(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ1004(FERM P-15360)またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ1005(FERM P-15361)を有効成分とする、胃または十二指腸からヘリコバクター・ピロリを除菌しうる、抗胃炎剤または抗潰瘍剤。
【請求項２】
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ1004(FERM P-15360)またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ1005(FERM P-15361)を有効成分とする、胃または十二指腸からヘリコバクター・ピロリを除菌しうる醗酵食品。
【請求項３】
ヘリコバクター・ピロリを胃または十二指腸から除菌しうる能力を有する、ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ1004(FERM P-15360)またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ1005(FERM P-15361)。
【請求項４】
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ1004(FERM P-15360)またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ1005(FERM P-15361)を純粋培養して得られる菌体。
【請求項５】
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ1004(FERM P-15360)またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ1005(FERM P-15361)の菌体を乾燥して得られる乾燥菌末。
【請求項６】
請求項1記載の薬剤および本剤とは作用機序の異なる医薬的に許容しうる、胃炎治療剤または潰瘍治療剤との合剤からなる組成物。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は乳酸菌を有効成分とする抗胃炎剤、抗潰瘍剤の医薬品または醗酵食品を提供する。
【０００２】
【従来の技術】
欧米や日本における消化性潰瘍に対する研究の中から、その治療薬としてシメチジン、ラニチジン、ファモチジンに代表されるＨ2-受容体拮抗剤、オメプラゾールに代表されるプロトンポンプ阻害剤、さらには胃粘膜保護剤が開発されて以来、消化性潰瘍の手術が激減したように、これらの薬剤は優れた治療成績をおさめてきた。しかしながら、本疾患の維持療法を経て完治したはずの潰瘍が再発・再燃を繰り返す症例が２０％前後見受けられ、その原因の究明が急務であったところ、１９８３年にオーストラリアの病理学者Ｊ．Ｒ．Ｗａｒｒｅｎと消化器病医Ｂ．Ｊ．Ｍａｒｓｈａｌｌが胃炎または消化性潰瘍患者の胃粘膜の生検組織にヘリコバクター・ピロリ（Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ）を高率に見出し、本菌の分離培養に成功したことをランセット（Ｊ．Ｒ．Ｗａｒｒｅｎａｎｄ  Ｂ．Ｊ．Ｍａｒｓｈａｌｌ：Ｌａｎｃｅｔ，１２７３−５，１９８３）に報告した。それ以来、胃炎あるいは胃・十二指腸潰瘍の発症に本菌が関与していることが次第に明らかになり数多くの報告がなされている。特に消化性潰瘍の再発・再燃を繰り返す症例において本菌の除菌を積極的に試みると、９０％以上が再発しないことからも本菌の感染と消化性潰瘍の関連性が臨床的にも明らかになってきた。ヘリコバクター・ピロリは胃粘膜に感染するグラム陰性の微好気性、らせん状の桿菌である。本菌はその強いウレアーゼ活性によって、宿主由来の尿素をアンモニアに分解して胃酸を中和し、胃の中での生育を可能にしているものと考えられている。また、本菌の病原性については細胞空胞化毒素をはじめとする数々の因子が見出されているが、その中でも本菌のウレアーゼによって生じたアンモニアが胃粘膜に対して障害を与えることも近年報告され、病原因子の一つとして注目されている。
【０００３】
１９９４年２月にはＮＩＨのコンセンサス・ステートメント（ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  ｓｔａｔｅｍｅｎｔ）が発表され、『ヘリコバクター・ピロリ感染潰瘍患者は初回あるいは再発に拘わらず胃酸分泌抑制剤に加えて抗菌剤の治療が要求される。』と勧告した。一方、ＷＨＯでは１９９４年１２月にはヒトの癌とヘリコバクター・ピロリの関連について疫学的立場からステートメントを公表した。これらの勧告および公表を受けてヘリコバクター・ピロリの除菌治療が消化性潰瘍における新しい治療法として世界中に認知されることになった。これまでペニシリンやアモキシシリン、アンピシリンなどのβ−ラクタム剤、エリスロマイシンやクラリスロマイシン、アジスロマイシン、ロキシスロマイシンなどのマクロライド剤、アルベカシンやゲンタミシンなどのアミノ配糖体抗生物質、テトラサイクリン系抗生物質および抗原虫薬として使用されているメトロニダゾール、さらにはビスマス製剤を用いたヘリコバクター・ピロリの除菌について報告され、実際に欧米ではすでにこれらの薬剤の合剤がヘリコバクター・ピロリの除菌を目的に認可され使用されている。また、近年Ｈ2-受容体拮抗剤、プロトンポンプ阻害剤などの抗潰瘍剤において、ヘリコバクター・ピロリに対する抗菌活性を併せ持つ化合物の開発が行われ、製品化されつつある。
以上のように、胃炎あるいは胃・十二指腸潰瘍の治療および再発防止を目的としてヘリコバクター・ピロリに抗菌活性を有する抗生物質等で除菌する試みがなされてきた。しかしながら、これら従来の抗生物質等の投与では通常の感染症治療に使用する量より多く処方する必要があり、また投与期間も長期にわたる。このことは新たなる耐性菌を生み出すことにつながり、さらに副作用の併発も危惧されることから未だ臨床評価が一定せず、これまで有効かつ安全で長期投与が可能な薬剤はなかった。
【０００４】
一方、抗生物質に代わるものとして、乳酸菌など安全性の高いプロバイオティックスによりヘリコバクター・ピロリの感染を防ぐ試みもなされており、腸および胃細胞から病原菌特にヘリコバクター・ピロリを排除しうる抗胃炎剤および抗潰瘍剤としてネッスル社は特開平６−９８７８２にラクトバシラス・アシドフィルスの菌株について特定している。しかしながら、イタリアのボローニャ大学消化器病学のＥ．Ｂａｚｚｏｌｉらは臨床の場で２０名の患者に本菌ラクトバシラス・アシドフィルスを８週間にわたって長期連続投与を行い、最終のバイオプシーの結果からその有効性を判断した結果、全く有効ではなかったことを発表しており（Ｅ．Ｂａｚｚｏｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，１０２，Ｎｏ．４，Ａ３８，１９９２）、今後、真に臨床上有効な乳酸菌を設定していく必要がある。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
従来の先行技術に鑑み、本発明の目的はヘリコバクター・ピロリの宿主への定着、増殖を抑える能力を持つ乳酸菌製剤を供し、胃炎あるいは胃・十二指腸潰瘍の発症を防ぎ、治療するのに有効かつ安全なヘリコバクター・ピロリ除菌製剤もしくはそれらの効力が発揮できる醗酵食品を提供することにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明者らはヒトの腸内に棲息する有用細菌のうち酸性条件下においても生育可能なラクトバシラス属に注目し、後で詳細に述べるが、ヒト由来のラクトバシラス属の保存菌株の中から、ヒト胃癌細胞（ＭＫＮ４５株）に臨床分離株のヘリコバクター・ピロリを感染せしめたのちに、多数のラクトバシラス属の各々の菌株をチャレンジして胃癌細胞への付着抑制効果に優れた２菌株を選抜した。
【０００７】
感染菌であるヘリコバクター・ピロリが宿主の胃壁に定着し増殖し始めると宿主側の生態防御機構の一つとしてサイトカイン（インターロイキン−８）が産生され、この物質によって好中球の動員と活性化が進み、ひいては宿主の胃または十二指腸の組織への好中球の浸潤を招き炎症を惹起する要因の一つになりうる。ヘリコバクター・ピロリの感染は、このようなメカニズムの進行によって、胃炎の発症あるいは胃・十二指腸潰瘍の進展・憎悪もしくは再発・再燃を招く原因の一つであることは間違いないところである。したがって、ヘリコバクター・ピロリの胃癌細胞への付着抑制効果をメルクマールに有用な細菌をスクリーニングすることは極めて重要な意義があることを附記しておく。
【０００８】
このように選定した本２菌株について細菌学的性質を調べ表１にまとめた。表１の結果より、本発明のＷＢ１００４株はバージーズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー、２巻、（１９８６）および腸内菌の世界、光岡知足、叢文社、（１９８０）の分類基準に従い、ラクトバシラス・サリバリウス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｓａｌｉｖａｒｉｕｓ）と同定した。同様にＷＢ１００５株はラクトバシラス・ブレビス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｖｉｓ）であると同定した。これらの菌株はラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４、ラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５と命名し、それぞれ受託番号ＦＥＲＭＰ−１５３６０号、ＦＥＲＭＰ−１５３６１号として工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託されている。
【０００９】
【表１】
0004021951.tif 000002
【００１０】
次に、上記選定されたラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株の両株について、胃癌細胞あるいは無菌マウスを用いてヘリコバクター・ピロリの除菌効果を証明するために下記に示す項目の試験を行なった。
【００１１】
１）選定した乳酸菌による胃癌細胞へのヘリコバクター・ピロリの付着抑制試験（フローサイトメトリー法）（試験例１参照）
２）同菌株を用いたヘリコバクター・ピロリ感染胃癌細胞からのインターロイキン−８の産生抑制試験（試験例２参照）
３）同菌株を無菌マウスにモノアソシエイトしたマウスに対するヘリコバクター・ピロリの感染試験（試験例３）
【００１２】
以上、３試験の成績から、本発明者らが選定した両菌株は、１）胃癌細胞へのヘリコバクター・ピロリの付着を抑える、２）胃癌細胞からのインターロイキン−８の産生を菌量依存的に抑制する、３）無菌マウスの実験系においてもヘリコバクター・ピロリの感染抑制効果を示すことが判明した。これらのことから、両菌株がヘリコバクター・ピロリのヒトへの感染を食い止めることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１３】
すなわち、本発明は、本発明の有用乳酸菌を用いてヘリコバクター・ピロリの胃や十二指腸への付着および増殖を阻止して本菌を排除するとともに、本菌が誘導するインターロイキン−８の産生を抑えて胃粘膜の炎症を食い止めることによって、胃炎あるいは胃・十二指腸潰瘍の治療あるいは予防に極めて有用な手段を提供するものである。
【００１４】
このような宿主と消化管微生物間の相互作用は広く自然界でも観察されており、宿主と微生物との係わりの中で共生、寄生あるいは拮抗現象として理解されている。
次に、本有用乳酸菌の用途について述べる。
【００１５】
本発明の有用乳酸菌を医薬品として投与する場合、本有用乳酸菌を有効成分として単剤で投与することも可能であり、また、シメチジン、ラニチジン、ファモチジンなどのＨ2-受容体拮抗物質あるいはオメプラゾールなどのプロトンポンプ阻害剤さらには胃粘膜保護剤などの合剤を製造して、両有効成分を同時に投与しても良い。これらの製剤は常法に従って種々の形態で投与される。その投与形態としては例えば散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、シロップ剤などの形態が好ましく経口的に安全に投与することができる。これらの各種製剤は常法に従って、主薬に賦形剤、結合剤、崩壊剤、コーティング剤、潤滑剤、安定剤、矯味矯臭剤、溶解補助剤、懸濁剤、希釈剤などの医薬の製剤技術分野において通常使用しうる既知の補助剤を用いて製剤化することができる。投与量においては対象疾患、疾病の程度によって異なるが、例えば成人に対して１日１ｍｇ〜２，０００ｍｇを症状に応じて１日１回または数回に分けて投与することができる。また、本有用乳酸菌はヨーグルトなどの醗酵食品としての形態あるいはヨーグルト味などの錠菓としても投与が可能である。例えば牛乳や羊乳などにヨーグルト製造上のスターター菌であるラクトバシラス・ブルガリカス、ラクトバシラス・アシドフィルス、ラクトバシラス・ヘルベチカス、ストレプトコッカス・サーモフィルス、ストレプトコッカス・ラクチスなどの酪農乳酸菌と本発明の有用乳酸菌を接種し混合培養あるいは各々単独培養後に混ぜ合わせることによって醗酵乳を製造することができる。また、ヨーグルト味などの錠菓については本発明の有用乳酸菌を純粋培養し遠心分離などの方法により集菌後、適切な安定剤を加え凍結乾燥して得られる凍乾菌体を加えて通常の製菓方法に従って例えばヨーグルト味の錠菓を製造することができる。
【００１６】
【実施例】
次に実施例をもって詳細に本発明を説明するが、これによって本発明が限定されるものではない。
［試験例１］ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株によるヘリコバクター・ピロリの胃癌細胞への付着抑制試験（フローサイトメトリー法）
１）ヒト胃癌細胞ＭＫＮ４５の培養方法と細胞浮遊液の調製
胃癌細胞ＭＫＮ４５を１０％牛胎児血清（ＦＣＳ）を含む５０ｍｌのＲＰＭＩ１６４０倍地（ＧＩＢＣＯ）を用いて、３７℃、７日間、７５ｃｍ2 のフラスコ内に飽和になるまで培養した。培養後、細胞をセルスクレーパーで剥がし、０．１％のゼラチンを含むハンクス平衡塩溶液（ＧＩＢＣＯ、以下ＨＧＳと云う）に浮遊させ、細胞濃度約１×１０6 ／ｍｌに調整した。
【００１７】
２）ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株の培養と蛍光標識菌液の調製方法
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株をＭＲＳ寒天培地（Ｄｉｆｃｏ）のシャーレに画線し、３７℃、１８時間嫌気培養を行った。培養を終えたシャーレより白金耳で適量菌体を採集しＤｕｌｂｅｃｃｏのｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ（−）（以下ＰＢＳと云う）にて洗浄後、細胞蛍光標識キットＰＫＨ−２６（大日本製薬）中の希釈液Ｃを５００μｌ加え、２μｌの蛍光標識色素ＰＫＨ−２６と混合して１５分間反応した。その後、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳを１ｍｌ加えて未反応の色素を吸着せしめて反応を停止し、標識された菌体を遠心分離（３，０００ｒｐｍ、１５分）で集め、ＨＧＳにて洗浄後、ＨＧＳにて菌数を１×１０8 、１×１０9 、１×１０10／ｍｌにそれぞれ調整し蛍光標識菌液とした。ラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株についても同様の方法で蛍光標識菌液を調製した。
【００１８】
３）ヘリコバクター・ピロリの培養と蛍光標識菌液の調製方法
ヘリコバクター・ピロリＮｏ．２０９７株を１０％ＦＣＳを含むブレインハートインフュージョン寒天培地（Ｄｉｆｃｏ）のシャーレで３７℃、４日間微好気培養した。培養を終えたシャーレより白金耳で適量菌体を採集しＰＢＳで洗浄後、細胞蛍光標識キットＰＫＨ−２（大日本製薬）中の希釈液Ａを５００μｌ加え、２μｌの蛍光標識色素ＰＫＨ−２と混合して１５分間反応した。その後、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳ１ｍｌを加えて反応を停止し、標識された菌体を遠心分離で集めＨＧＳにて洗浄後、ＨＧＳにて菌数を１×１０9 ／ｍｌに調整し、蛍光標識菌液とした。
【００１９】
４）細胞付着抑制試験
胃癌細胞ＭＫＮ４５の浮遊液０．９ｍｌにラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株の蛍光標識菌液０．１ｍｌを加えて（終濃度１０9 ，１０8 ，１０7 ／ｍｌ）３０分間振盪培養した後、ヘリコバクター・ピロリＮｏ．２０９７株の蛍光標識菌液０．１ｍｌを加えて（終濃度１０8 ／ｍｌ）１時間振盪培養し細胞へ付着させた。培養終了後、１５％ショ糖を含むＰＢＳ９ｍｌを加えて混和し、遠心分離（１，０００ｒｐｍ、１５分）により細胞を集めてＨＧＳで洗浄後、１ｍｌのＨＧＳに再懸濁し、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳｖａｎｔａｇｅ、ベクトン・ディッキンソン）により分析した。その結果、ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株は菌量依存的にヘリコバクター・ピロリの胃癌細胞への付着を抑制することが判明した（図１）。ラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株についても同様の付着抑制効果が認められた。
【００２０】
［試験例２］ヘリコバクター・ピロリ感染によって誘導される胃癌細胞からのインターロイキン−８産生に対するラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株の抑制効果
１）細菌の培養と試験菌液の調製方法
ヘリコバクター・ピロリは５％ＦＣＳを含むＢｒｕｃｅｌｌａ  ｂｒｏｔｈ（Ｄｉｆｃｏ）１０ｍｌを用いて３７℃、３日間微好気培養した。培養終了後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、１５分）により菌体を集めＲＰＭＩ１６４０培地１ｍｌに再懸濁したもの（約２×１０9 ／ｍｌ）を試験菌液として用いた。ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株はＭＲＳ  ｂｒｏｔｈ（Ｄｉｆｃｏ）１０ｍｌを用いて３７℃、２４時間静置培養した培養液およびそれをＲＰＭＩ１６４０培地で１０倍、１００倍希釈した菌液を試験菌液として用いた。
【００２１】
２）胃癌細胞ＭＫＮ４５の培養とインターロイキン−８の誘導産生試験
２４穴マイクロプレートの１穴当たり１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地１．８ｍｌを用いて５×１０5 個のＭＫＮ４５細胞を３７℃で培養した。２４時間培養後、１穴当たり乳酸菌の試験菌液０．１ｍｌ（１０7 ，１０8 ，１０9 ／穴）を加えて３０分インキュベートした後、ヘリコバクター・ピロリの試験菌液０．１ｍｌ（１０8 ／穴）を加え、３７℃でさらにインキュベーションを続けた。１２，１８，２４時間後に培養液の一部（０．２ｍｌ）をサンプリングし、インターロイキン−８産生量をＥＬＩＳＡ法（ＱｕａｎｔｉｋｉｎｅTM  Ｈｕｍａｎ  ＩＬ−８  Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙキット、Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ  Ｅｕｒｏｐｅ  Ｌｔｄ．）により測定した。その結果、ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株は、ヘリコバクター・ピロリＮｏ．２０９７株によって誘導される胃癌細胞からのインターロイキン−８の産生を菌量依存的に抑制することが明らかとなった（図２）。また、ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株はヘリコバクター・ピロリＮｏ．１３０株、Ｎｏ．１３２株およびＮｏ．１３５株によって誘導されるインターロイキン−８産生に対しても抑制効果を示した（図３）。
【００２２】
［試験例３］ヘリコバクター・ピロリのマウス胃内感染に対する乳酸菌の防御効果
４週令ＢＡＬＢ／ｃＡ無菌マウス（♂）にＭＲＳ  ｂｒｏｔｈで３７℃、１８時間静置培養したラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株の培養液（２〜４×１０9 ／ｍｌ）０．５ｍｌを１日１回、３日間連続経口投与してラクトバシラス・サリバリウスのモノアソシエイトマウスを作成した。４週間飼育後、ヘリコバクター・ピロリＮｏ．１１２株の菌液［５％ＦＣＳを含むＢｒｕｃｅｌｌａｂｒｏｔｈ  １００ｍｌで３７℃、３日間微好気培養した後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、１５分）により集菌し２×１０9 ／ｍｌになるようにＰＢＳに再懸濁した菌液］０．５ｍｌを用いて１日１回、３日間連続経口感染させた。感染１，３，６週間後にマウスを屠殺して胃を摘出し、以下の方法で胃内の細菌数を測定した。
【００２３】
摘出胃内の固形分を除いた後、胃重量の１０倍量の嫌気性希釈液（ＫＨ2 ＰＯ4 ４．５ｇ、Ｎａ2 ＨＰＯ4 ６ｇ、システイン・ＨＣｌ 0. ５ｇ、Ｔｗｅｅｎ８０  ０．５ｇ、寒天０．５ｇ／ｌ）を加えてガラスホモジナイザーでホモジナイズし、ホモジネートを嫌気性希釈液で適宜希釈してからＢＬ寒天培地（日水製薬）のシャーレとスキロー寒天培地（栄研化学）のシャーレに塗布した。ラクトバシラス・サリバリウスの菌数はＢＬ寒天培地のシャーレを３７℃、２４時間嫌気培養して出現したコロニー数より求めた。ヘリコバクター・ピロリの菌数はスキロー寒天培地のシャーレを３７℃、５〜７日間微好気培養して出現したコロニー数より求めた。
【００２４】
ヘリコバクター・ピロリＮｏ．１１２株は３日間連続経口投与により無菌マウスに感染し胃内に１０4 〜１０5 ／ｇ定着した（図４）が、ラクトバシラス・サリバリウスのモノアソシエイトマウスに対しては感染できないことが明らかとなった（図５）。
【００２５】
［実施例１］ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５の乾燥菌末の調製
ラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４およびラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５を各々０．３％の炭酸カルシウムを含むブリックス・リバー液体倍地に接種後、３７℃、１８〜２４時間静置培養を行った。培養終了後、７，０００ｒｐｍ、１５分間遠心分離を行い培養液の１／１００量の濃縮菌体を得た。
【００２６】
次いで、各々の濃縮菌体にグルタミン酸ソーダ５％（重量）、可溶性澱粉５％（重量）、ショ糖５％（重量）および硫酸マグネシウム７水和物１％（重量）を含む分散媒と同量混合し、ｐＨ７．０に修正後、−４０℃以下で凍結してから凍結乾燥を行った。得られた各々の凍結乾燥菌末を６０メッシュのフルイで粉末化して両菌株の乾燥菌末を調製した。
【００２７】
［実施例２］スターター菌ラクトバシラス・アシドフィルスとラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５の混合培養による醗酵乳の製造
醗酵乳のスターター菌であるラクトバシラス・アシドフィルスを脱脂粉乳１１．５％、酵母エキス０．５％、アスコルビン酸０．０３％を含む還元脱脂乳培地に接種し、３７℃、１６時間培養したものをバルクスターターとした。
【００２８】
一方、生乳および脱脂粉乳からなる原料ミックスに実施例１で調製したラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５の培養液と先に調製したバルクスターター（ラクトバシラス・アシドフィルスの培養液）をそれぞれ５％づつ接種し、３８℃、１６時間培養を行い、各々２種類の醗酵乳を得た。本発明の菌株を用いて製造した醗酵乳は風味が良好、かつ美味であり嗜好性の高い製品であった。
【００２９】
［実施例３］シメチジンとラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５の配合錠剤の製造
第１２改正日本薬局方解説書製剤総則「錠剤」の規定に準拠し、実施例１で調製したラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４乾燥菌末２ｍｇ（菌数、５×１０8 相当）またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５乾燥菌末２ｍｇ（菌数、６．５×１０8 相当）とシメチジン２００ｍｇ、乳糖（日局）６１ｍｇ、澱粉（日局）１６．２ｍｇ、結合剤としてポリビニルピロリドンＫ２５（日局）２０ｍｇ、滑沢剤としてステアリン酸マグネシウム（日局）０．８ｍｇを加えて均一に混合し、打錠機で圧縮成型し１錠当たり３００ｍｇの素錠（２種類）を作り、さらに、ヒドロキシプロピルセルロース（ＨＰＣ）を用いてフィルムコーティングを施して白色のフィルムコーティングされた錠剤（２種類）を製造した。
【００３０】
【発明の効果】
本発明のラクトバシラス・サリバリウスＷＢ１００４株またはラクトバシラス・ブレビスＷＢ１００５株の乳酸菌製剤あるいは本乳酸菌を含んだ醗酵食品を用いて、胃炎あるいは胃・十二指腸潰瘍の発症または再発・再燃に深く関与しているヘリコバクター・ピロリの除菌が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【図１】フローサイトメトリーを用いて選定した乳酸菌による胃癌細胞（ＭＫＮ−４５）へのヘリコバクター・ピロリの付着抑制試験
【図２】ヘリコバクター・ピロリ感染によって誘導される胃癌細胞からのインターロイキン−８産生に対する乳酸菌の効果（その１）
【図３】ヘリコバクター・ピロリ感染によって誘導される胃癌細胞からのインターロイキン−８産生に対する乳酸菌の効果（その２）
【図４】ヒト由来ヘリコバクター・ピロリの無菌マウスへの感染と定着
【図５】乳酸菌モノアソシエイトマウスに対するヘリコバクター・ピロリの感染試験
【図１】
0004021951.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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