(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
標識アシル−Ｌ−カルニチンを有効成分とする薬剤であり、この薬剤を投与した脳の全体または各部位における標識アシル−Ｌ−カルニチンの取り込み量を測定することによって、アシルカルニチン代謝異常症候群に属するヒト疾患の有無または程度を診断する疾患診断剤であって、標識アシル−Ｌ−カルニチンは、アシル基の第２位からω末端までの任意の位置の炭素原子を１１Ｃ標識したアシル−Ｌ−カルニチンまたはその塩もしくは誘導体であることを特徴とする疾患診断剤。
【請求項２】
標識アシル−Ｌ−カルニチンを有効成分とする薬剤であり、この薬剤を全身投与した後の脳の全体または各部位における標識アシル−Ｌ−カルニチンの取り込み量を測定することによって、脳の構造的および／または機能的障害を原因とするヒト疾患の有無または程度を診断する疾患診断剤であって、標識アシル−Ｌ−カルニチンは、アシル基の第２位からω末端までの任意の位置の炭素原子を１１Ｃ標識したアシル−Ｌ−カルニチンまたはその塩もしくは誘導体であることを特徴とする疾患診断剤。
【請求項３】
標識アシル−Ｌ−カルニチンは、アセチル基の第２位炭素原子を１１Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチンであることを特徴とする請求項１または２に記載の疾患診断剤。
【請求項４】
標識アシル−Ｌ−カルニチンの取り込み量は、ポジトロンエミッショントモグラフィー、核磁気共鳴スペクトル装置または核磁気共鳴画像装置を用いて測定されることを特徴とする請求項１または２に記載の疾患診断剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
この発明は、標識アシル−Ｌ−カルニチンを用いた疾患診断剤に関するものである。さらに詳しくは、この発明は、生体内のアシルカルニチン挙動を高感度で測定することのできる標識アシル−Ｌ−カルニチンを用い、慢性疲労症候群をはじめとする消耗性疾患、血管障害、ストレス病などのアシルカルニチン代謝異常症候群（Acyl-Carnitine Metabolic Syndrome: ACMDS）に属する疾患や、あるいは脳梗塞、脳血栓症、老人性脳機能障害等の脳障害疾患の発病またはその危険性を簡便かつ正確に診断するための薬剤に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
カルニチンは、１９０５年に筋肉組織中で最初に発見された生理活性物質であり、これまでに、生体における主なエネルギー源として利用されている長鎖脂肪酸のミトコンドリア内への取り込みや、ミトコンドリア内における短鎖脂肪酸ＣｏＡ（Coenzyme A）／ＣｏＡ比の調節に重要な働きをしていることが明らかにされている。
【０００３】
カルニチンが脂肪酸と結合したアシルカルニチン（特にアセチルカルニチン）については、約１０年前よりその薬理的効果について動物を用いた様々な検討がなされており、その結果、生体組織または細胞へのアシルカルニチンの投与が、ア）脳エネルギー代謝や脂肪代謝に影響を及ぼすこと、イ）神経細胞の生存期間を延長させること、ウ）加齢に伴う神経細胞の構造変化を予防し、学習効率の低下を改善させること、エ）細胞のアポトーシスを抑制すること等の数多くの薬理効果をもたらすことが明らかにされつつある。
【０００４】
このアシルカルニチンは、内在性に存在する生理的な物質であるが、現在までに生体内でのアシルカルニチンの変化については絶食時や運動時において血液中に上昇がみられることが報告されているだけであり、このアシルカルニチンが生体のどの器官、組織、細胞で産生され、どのように働いているいるのかなどについては殆ど解明されていない。
【０００５】
最近、この発明の発明者等は、慢性疲労症候群（Chronic Fatigue Syndrome: ＣＦＳ）の多くの患者では筋肉生理学・生化学検査上明らかな異常が認められないにもかかわらず、脱力、筋肉痛、軽度の労作後の強い倦怠感等の筋症状を示すことに疑念をいだき、血清中のカルニチンの値を測定したところ、ＣＦＳ患者では遊離カルニチン値は正常であるが、脂肪酸を結合したアシルカルニチンが明らかに減少しているという特異な現象を報告している（Clinical Infectious Diseases 1994; 18(Suppl 1) S62-7）。さらにその後、この発明の発明者等は、絶食・再摂食マウス、糖負荷前後のサルやヒトを用いた検討によって、絶食などのエネルギー危機の状態では、肝でアシルカルニチンを産生し、再摂食や糖負荷によりその必要がうすれた場合には、速やかに血液中より肝へ取り込み貯蔵するという、肝臓を中心とした制御機構が存在していることを見出している。
【０００６】
一方、生体内の極微量物質の生理的、薬理的、あるいは生化学的挙動を測定する方法として、標識した物質を生体内に投与し、生体各組織やその生物標本における物質の挙動をトレースすることが各種の方法によって行われている。たとえば、サイクロトロンで作成したポジトロン崩壊核種を用いてポジトロン標識化合物を合成し、これを生体内に投与したのち、ポジトロンエミッショントモグラフィー（Positron Emission Tomography：ＰＥＴ）によって各組織の放射活性を測定する方法や、あるいは安定同位体で標識した物質を生体に投与し、高磁場環境下での電磁波照射に対する核磁気共鳴を画像化する方法（ Magnetic Resonance Imaging:ＭＲＩ）や、その共鳴周波数を測定する核磁気共鳴スペクトル装置（Magnetic Resonance Spectroscopy ：ＭＲＳ）を用いた方法等が広く用いられている。また、これらの方法は１個体としての生体を対象としてその各組織における標識物質の挙動を追跡することが可能であるが、それ以外にも、たとえば生体から採取した尿や血液等の生物標本を試料として標識物質を測定する方法として、液体クロマトグラフィー等を利用した方法も用いられている。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
この発明は、この発明者等が見出したアシルカルニチン代謝異常と各種疾患との関係に基づいてなされたものであって、生体各組織またはその生物標本におけるアシルカルニチン挙動を高感度で測定することのできる新しい標識物質を有効成分とする疾患診断剤を提供することを目的としている。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
この発明は、上記の課題を解決するものとして、炭素が放射化学標識されたアシル−Ｌ−カルニチンまたはその塩もしくは誘導体である標識アシル−Ｌ−カルニチンを提供する。
この標識アシル−Ｌ−カルニチンにおけるアシル−Ｌ−カルニチンとは、カルニチンが脂肪酸と結合した物質であり、アシル−Ｌ−カルニチンまたはその塩もしくは誘導体を含んでいる。アシル−Ｌ−カルニチンとしては、炭素２〜２６程度の直鎖状または分枝鎖状アシル基を有するカルニチン、例えば、アセチルカルニチン、プロピオニルカルニチン、ブチルカルニチン、イソブチルカルニチン、バレリルカルニチン、イソバレリルカルニチン、ピバロイルカルニチン、ヘキサノイルカルニチン、ラウロイルカルニチンなどが含まれる。後記する検査方法等に用いる場合には、炭素２〜６程度のアシル−Ｌ−カルニチンが好ましく、特に、アセチルカルニチン、プロピオニルカルニチンが好ましい。
【００１０】
このような標識アシル−Ｌ−カルニチンは、具体的には放射化学標識が、11Ｃ標識であって、標識された炭素が、カルニチン基を構成する炭素原子、アシル基の第１位炭素原子、またはアシル基の第２位からω末端までの任意の位置の炭素原子であることを好ましい態様としている。これらの標識アシル−Ｌ−カルニチンは、例えば以下の化１、化２、化３、化４として各々例示することができる。
【００１１】
【化１】
0003897841.tif 000002
【００１２】
【化２】
0003897841.tif 000003
【００１３】
【化３】
0003897841.tif 000004
【００１４】
【化４】
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【００１５】
また、この発明は、炭素が安定同位体標識されたアシル−Ｌ−カルニチンまたはその塩もしくは誘導体である標識アセチル−Ｌ−カルニチンを提供する。この標識アシル−Ｌ−カルニチンは、具体的には、安定同位体標識が、13Ｃ標識であることを好ましい態様としている。
さらにこの発明は、上記の標識アシル−Ｌ−カルニチンの一種または２種以上を有効成分とする薬剤であって、この薬剤を投与した生体の各組織、または生体より採取した生物標本における標識アシル−Ｌ−カルニチンの取り込み量を測定することによって、アシルカルニチン代謝異常症候群に属するヒト疾患の有無または程度を診断することを特徴とする疾患診断剤を提供する。この薬剤を用いることによって、アシルカルニチンの代謝やその取り込み異常を原因とする様々な疾患の有無や程度、あるいはそれらの疾患に対する各種の治療処置の効果を、生体から採取した尿や血液における標識アシル−Ｌ−カルニチン挙動を測定することによって診断することができ、また、ＰＥＴ法やＭＲＩ、ＭＲＳを用いた画像化によって生体各組織における標識アシル−Ｌ−カルニチン挙動の局在を判断することが可能となる。
【００１６】
なお、この疾患診断剤によってその症状や発病のリスクを診断することのできるヒト疾患は、ＡＣＭＤＳに基づく症状、病態等である。すなわち、全身の細胞機能異常に関連する症状、例えば、全身倦怠感、頭痛、関節痛、微熱、睡眠過剰や不眠などの睡眠異常、めまい、羞明、視野暗転、健忘、過敏、錯乱、思考障害、注意集中不能、知覚障害、運動障害（運動麻痺、運動失調など）、抑うつなどの精神神経症状、食欲不信、眼のかすみなどの乾燥症状、消化器症状（腹痛、悪心、下痢、便秘など）、口腔乾燥、寝汗、呼吸器症状（咳、呼吸困難、息切れ、咽頭痛、胸痛など）、循環器症状（不整脈、頻脈、徐脈、動悸、胸痛、ショック状態、高血圧、低血圧などの血圧異常）、頻尿、乏尿、湿尿、白血球機能異常（ＮＫ活性の低下、リンパ球機能異常、単球機能異常など）、赤血球の形態異常などが挙げられる。
【００１７】
さらに、この発明の疾患診断剤は、脳の構造的および／または機能的障害を原因とするヒト疾患を診断することもできる。すなわち、この発明の発明者等は、サルの一側の脳動脈を結紮したところ、血流が低下した側の脳部位では予想に反してアシルカルニチンの取り込みが亢進しているという極めて興味深い事実を見出している。このことは、血流低下等により糖代謝などが障害された場合にはアシルカルニチンがより取り込まれるメカニズムが存在し、このメカニズムが脳代謝代償に寄与していることを示唆するが、同時にこのようなアシルカルニチンの脳内挙動を追跡することによって、例えば脳梗塞や脳血栓症等の構造的障害、あるいはアルツハイマー病等の老人性脳機能障害の症状や病態を診断することが可能となる。
【００１８】
さらにまた、標識アシル−Ｌ−カルニチンの脳内挙動の測定は、上記のＡＣＭＤＳに基づく各種疾患の有無や程度を診断するのにも有効である。なお、このような脳部位におけるアシルカルニチン挙動の測定には、アシル基の第２位からω末端までの任意の位置の炭素原子が11Ｃ標識されたアシル−Ｌ−カルニチンを用いるのが好ましい。他の標識アシル−Ｌ−カルニチンに比べ脳内に取り込まれる効率が最も高いためである。
【００１９】
【実施例】
以下、参考例および実施例を示し、この発明の実施の形態についてさらに詳しく説明するが、この発明は以下の例によって限定されるものではない。
参考例１
第１位炭素原子を11Ｃ標識したアセテート (〔１−11Ｃ〕Acetate)を以下のとおり合成した。
【００２０】
〔11Ｃ〕二酸化炭素を、９００μｌ乾燥ジエチルエーテル、２００μｌ乾燥ＴＨＦおよび７０μｌ３Ｍメチルマグネシウムブロミドの溶液に補集した。３０秒の反応時間の後、１．２Ｍ−ＨＣｌの１ｍｌを添加し、Ｎ2 気流中でジエチルエーテルを蒸発させた。
粗生成物を、ＨＰＬＣ (Beckman Ultrasphere ＯＤＳ  Ｃ−１８  １０×２５０ｍｍ、mobile phase：saline（０．９％ＮａＣｌ）により精製した。
【００２１】
また、分析は、Beckman ＡＸＨＰＬＣカラム（４．６×２５０ｍｍ、５μｍ）で、mobile phase  Ａ：０．０１Ｍ  ＣａＨＰＯ4 （ｐＨ４．６）およびＢ：ＭｅＯＨ、Ａ／Ｂ＝９５／５で行った。
参考例２
第２位炭素原子を11Ｃ標識したアセテート (〔２−11Ｃ〕Acetate)を以下のとおり合成した。
【００２２】
０．２５Ｍ−水素化アルミニウムリチウムのＴＨＦ０．５ｍｌ溶液に〔11Ｃ〕二酸化炭素をトラップすることにより〔11Ｃ〕ヨウ化メチルを合成した。
ＴＨＦを蒸発させたのち、１ｍｌの５７％ヨウ化水素を加え、Ｎ2 気流中、−７２℃で〔11Ｃ〕ヨウ化メチルを、５００μｌ乾燥ジエチルエーテルおよび１００μｌ（１６０μｍｏｌ）の１．６Ｍｎ−ブチルリチウムの溶液に移行した。１分間の反応時間ののち、二酸化炭素ガスを加えた（毎分５０ｍｌ、３０秒間）。反応ビンを２分間、５５℃まで加温し、Ｎ2 気流中でジエチルエーテルを蒸発させた。３ｍｌの０．１Ｍ  ＨＣｌと１ｍｌ生理食塩水を添加したのち、粗生成物をＨＰＬＣカラムに注入した。なお、ＨＰＬＣシステムは参考例１と同一のものを使用した。
参考例３
第１位炭素原子を13Ｃ標識したアセテート (〔１−13Ｃ〕Acetate)を参考例１と同様にして合成した。
【００２３】
ただし、３０ｍｇ（２８０μｍｏｌ）の〔13Ｃ〕Ｎａ2 ＣＯ3 を空間反応容器中において２ｍｌ  Ｈ2 Ｏに溶解し、１Ｍ−ＨＣｌの１ｍｌを添加し、生成した〔13Ｃ〕二酸化炭素をヘリウムガス流により参考例１と同様に補集して反応を行った。
参考例４
第２位炭素原子を13Ｃ標識したアセテート (〔２−13Ｃ〕Acetate)を参考例２と同様にして合成した。
【００２４】
ただし、〔11Ｃ〕ヨウ化メチルを、ｎ−ブチルリチウム中で補集したのち、２０μｌ（６４μｍｏｌ）の〔13Ｃ〕ヨウ化メチルを添加した。ＨＰＬＣのmobile phaseとしては、Ｈ2 Ｏを使用した。
実施例１
アセチル基の第１位炭素原子を11Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチン（ＡＣＮ）を以下のとおり合成した。
【００２５】
参考例１で合成した〔１−11Ｃ〕アセテートの生理食塩水溶液（１．３２ｍｌ）を０．５Ｍ−Ｔｒｉｓ／ＨＣｌバッファー（ｐＨ８．０）４００μｌ、０．３Ｍ−ＭｇＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏの２０μｌ（６μｍｏｌ）、０．１Ｍ−ＡＴＰの１００μｌ（１０μｍｏｌ）、５０ｍＭ−コエンザイムＡ(Sigma) の４０μｌ（２μｍｏｌ）、アセチル−ＣｏＡ合成酵素(Boehringer Mannheim GmbH)４０μｌ（４００μｇ、３units ／ｍｇ蛋白質）、１．０Ｍ−Ｌ−カルニチン４０μｌ（４μｍｏｌ）およびカルニチンアセチルトランスフェラーゼ(Sigma) ４０μｌ（３０４μｇ，７７units ／ｍｇ）の溶液に添加した。
【００２６】
この溶液を、３７℃の温度において５分間インキュベートし、１．０Ｍ−ＨＣｌの２００μｌを添加して反応を終了させた。
反応液を、０．２２μｍ細孔径のフィルターに通し、次いでＨＰＬＣカラム(Beckman Ultraphere ＯＤＳ  Ｃ−１８  １０×２５０ｍｍ、mobile phase：１００％生理食塩水）に注入した。
【００２７】
分析は、Beckman ＣＸＨＰＬＣカラム、４．６×２５０ｍｍにより、mobile phase  Ａ：０．０１Ｍ  ＣａＨＰＯ4 （ｐＨ４．６）およびＢ：ＭｅＯＨ＝９５／５で行った。
実施例２
アセチル基の第１位炭素原子を13Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチンを実施例１と同様にして合成した。
【００２８】
ただし、以下の操作を行った。
参考例３で合成した１．４ｍｌの〔１−13Ｃ〕アセテート（Ｈ2 Ｏ）を、８００μｌの０．５Ｍ−Tris／ＨＣｌ、４０μｌ（１２μｍｏｌ）の０．３Ｍ−ＭｇＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏ、２００μｌ（２０μｍｏｌ）の０．１Ｍ−ＡＴＰ、８０μｌ（８μｍｏｌ）の５０ｍＭ−コエンザイムＡ、８０μｌ（８００μｇ、３units ／ｍｇ蛋白質、アセチル−ＣｏＡ合成酵素、８０μｌ（８μｍｏｌ）の１．０Ｍ−Ｌ−カルニチンおよび８０μｌ（６０８μｇ、７７units ／ｍｇ）カルニチンアセチルトランスフェラーゼの溶液に添加した。
【００２９】
この溶液を３７℃の温度において１２分間インキュベートし、Ｈ2 Ｏをmobile phaseとするＨＰＬＣにより精製した。
回収したフラクションを蒸発乾燥させ、Ｄ2 Ｏにより希釈した。13Ｃ−ＮＭＲスペクトルは、δ１７５．９（レファレンス  ＴＳＰ）シングルピークを示し、このピークは、同一条件でのＯ−アセチル−Ｌ−カルニチンのアセチル基におけるカルボニル炭素に対応するものであることを確認した。
実施例３
アセチル基の第２位炭素原子を11Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチン（ＡＣＭ）を、参考例２で合成した〔２−11Ｃ〕アセテートを用いて実施例１と同様にして合成した。
実施例４
アセチル基の第２位炭素原子を13Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチンを、参考例４で合成した〔２−13Ｃ〕アセテートを用いて実施例１と同様にして合成した。13Ｃ−ＮＭＲスペクトルは、δ２３．８（ＴＳＰ）シングルピークを示し、このピークは、同一条件でのＯ−アセチル−Ｌ−カルニチンのメチルカーボンに対応していることが確認された。
実施例５
カルニチンのＮ−メチル炭素原子を11Ｃ標識したＬ−カルニチン（ＣＲＮ）およびアセチル−Ｌ−カルニチン（ＡＣＣ）を以下のとおり合成した。
【００３０】
０．２５Ｍ−リチウムアルミニウム水素化物のＴＨＦ０．５ｍｌ溶液に〔11Ｃ〕二酸化炭素をトラップすることにより〔11Ｃ〕ヨウ化メチルを合成した。
ＴＨＦの蒸発後、５７％ヨウ化水素１ｍｌを添加し、〔11Ｃ〕ヨウ化メチルをＮ2 気流により、２ｍｇ（１３．５μｍｏｌ）デスメチル−Ｌ−カルニチン、２００μｌＤＭＳＯおよび５０μｌ（４３μｍｏｌ）Ｋ2 ＣＯ3 −溶液（４２ｍｇ／３５０μｌＨ2 Ｏ）の溶液に移した。
【００３１】
この溶液を９０℃の温度に５分間加熱し、２ｍｌのＨ2 Ｏにより希釈し、ｐＨを８〜９に調整した。
この溶液を、２ｍｌエタノールおよび２ｍｌのＨ2 Ｏ／ＫＯＨ（ｐＨ８．０）により調製された陽イオン交換樹脂（ＡＧ・５０Ｗ−Ｘ４、Bio-Rad Laboratories Richmond 、ＣＡ）１５０ｍｇが充填された抽出カラムを通した。
【００３２】
２ｍｌのＨ2 Ｏにより洗浄後、Ｌ−〔11Ｃ〕カルニチンを０．５ｍｌの２Ｍ−ＨＣｌにより、０．５ｍｌの２Ｍ−Ｎａ2 ＣＯ3 溶液に溶出した。
生成物は、 BeckmanＣＸカラムで、Ａ：０．０１Ｍ  ＣａＨＰＯ4 （ｐＨ４．６）およびＢ：ＭｅＯＨ、Ａ／Ｂ＝９５／５によりＨＰＬＣにより分析した。
回収フラクションのＬＣ／ＭＳ分析の結果、Ｌ−カルニチンに相当するｍ／ｚ１６２の値を得た。
【００３３】
生成物を、４００μｌ  Tris／ＨＣｌの緩衝液（ｐＨ８．０）、２０μｌ（２μｍｏｌ）の０．１Ｍ−アセチル−ＣｏＡおよび２０μｌ（１５２μｇ、７７units ／ｍｇ）のカルニチンアセチルトランスフェラーゼの溶液に添加した。この溶液を、３７℃の温度において５分間インキュベートした。
反応は、２００μｌの１．０Ｍ−ＨＣｌの添加により終了させた。次いで溶液を、０．２２μｍ細孔径のフィルターを通した。実施例１と同様のＨＰＬＣシステムにより精製、分析した。
【００３４】
回収フラクションのＬＣ／ＭＳは、アセチル−Ｌ−カルニチンに相当するｍ／ｚ２０４の値を示した。
実施例６
カルニチンＮ−メチル炭素原子を13Ｃ標識したアセチル−Ｌ−カルニチンを実施例５と同様にして合成した。
【００３５】
ただし、以下の操作を行った。
Ｌ−〔Ｎ−メチル−13Ｃ〕カルニチンを、２ｍｌの０．５Ｍ−Tris／ＨＣｌバッファー、１００μｌ（１０μｌｍｏｌ）の０．１Ｍ−アセチル−ＣｏＡ、１００μｌ（７６０μｍｏｌ、７７units ／ｍｇ）カルニチンアセチルトランスフェラーゼの溶液に添加し、１５分間インキュベートした。また、ＨＰＬＣのmobile phaseとしてはＨ2 Ｏを用いた。
【００３６】
回収したフラクションは蒸発した後、Ｄ2 Ｏにより希釈した。13Ｃ−ＮＭＲスペクトルは、同一条件のＯ−アセチル−Ｌ−カルニチンのＮ−メチル炭素に相当するδ５７．２シングルピーク（ＴＳＰレファレンス）を示した。
実施例７
麻酔下のアカゲザルに、実施例１、３および５で各々作成したＡＣＮ、ＡＣＭ、ＣＲＮおよびＡＣＣをそれぞれ等量ずつ２時間間隔で静脈内に投与し、脳（whole brain:ＷＢ９）と側頭筋（temporal muscle:ＴＥＭ１１）への取り込み値をＰＥＴを用いて経時的に追跡した。ただし、取り込み値は次の式によって算出した。
【００３７】
0003897841.tif 000006
【００３８】
結果は、図１に示したとおりであり、カルニチンのＮ−メチル炭素原子が標識されたＣＲＮおよびＡＣＣは殆ど脳内に取り込まれなかった。また、第１位炭素原子が標識されたＡＣＮもわずかに脳に取り込まれるだけであった。これに対して、第２位炭素原子が標識されたＡＣＭの脳内取り込み効率は極めて良好であり、投与から６０分後までほぼ直線的に脳に取り込まれることが確認された。
【００３９】
一方、側頭筋への取り込み量は、いずれの標識物質にも基本的な差は観察されなかった。
以上の結果から、脳内のアシル−Ｌ−カルニチン挙動を測定するためには、少なくとも第２位炭素原子もしくは第２位からω末端までに位置する炭素原子を標識したアシル−Ｌ−カルニチンの使用が有効であることが確認された。
実施例８
実施例１で合成したＡＣＭを健常者に静脈内投与し、ＡＣＭの脳内取り込み値を、休止状態（ＷＢ９）と課題負荷状態（計算課題、記憶課題等：ＷＢ９−ＴＡＳＫ）の各々においてＰＥＴを用いて比較した。
【００４０】
結果は図２に示したとおりであり、ＡＣＭは休止状態でも経時的に脳に取り込まれることが再度確認されたが、さらに重要な点として、このＡＣＭは課題負荷状態では、休止状態の約２０％も脳に取り込まれることが実証された。
この結果は、脳の機能発現とアシルカルニチンの脳内活性には正の相関関係があり、従って、脳内の標識アシル−Ｌ−カルニチン挙動を測定することによって、脳の構造的および／または機能的障害の存在もしくはその程度を精度良く診断することが可能であることを示すものである。
実施例９
実施例３で合成したＡＣＭを、健常者（Ｎ＝５）およびＣＦＳ患者（Ｎ＝６）の各々に静脈内投与し、脳の全体および視覚皮質におけるＡＣＭの取り込み値をＰＥＴを用いて経時的に測定した。
【００４１】
結果は図３（脳全体）および図４（視覚皮質）に示したとおりである。すなわち、ＣＦＳ患者におけるＡＣＭ取り込み値の経時的増加は、健常者のそれに比べて有意に低く、しかもそのような違いは脳全体よりも視覚皮質において顕著に観察された。
以上の結果によって、この発明の標識アシル−Ｌ−カルニチン（特にＡＣＭ）をヒトに投与し、その脳の全体、好ましくは脳の視覚皮質におけるＡＣＭ挙動をＰＥＴ等により測定することにより、ＣＦＳに属する疾患の有無またはその程度を診断することが可能であることが確認された。
【００４２】
なお、ＣＦＳ患者におけるＡＣＭ取り込み値の減少は、脳血流量の低下に起因するものではない。すなわち、図５に示したように、脳全体（ＷＢ−Ｓ．Ｔ）および視覚皮質（ＶＣＸ）を含めた各部位（小脳：ＣＲＢ、橋：ＰＯＮＳ、下垂体：ＰＩＴ、線条体：ＳＴＲ、視床：ＴＨＡＬＡＭＵＳ、前偏頭皮質：Ａ−Ｃｇ、後偏頭皮質：Ｐ−Ｃｇ）における血流量を健常者およびＣＦＳ患者で比較したところ、両者に有意な差は観察されず、このことは、ＡＣＭ取り込み値で有意差が観られた脳全体および視覚皮質においても同様であった。
実施例１０
実施例９でＡＣＭを静脈投与した健常者およびＣＦＳ患者から血液を採取し、その血漿中のＡＣＭの取り込み量をウェルカウンター法により測定した。
【００４３】
結果は図６に示したとおりであり、血漿中におけるＡＣＭ取り込み量は、健常者もＣＦＳ患者もほぼ同様の時間経過で減少した。
しかしながら、赤血球と血漿の各々のＡＣＭ取り込み量の割合（赤血球／血漿比）を観た場合には、図７に示したように、健常者ではこの割合が経時的に増加するのに対し、ＣＦＳ患者では増加が抑制された。このことは、血漿中のＡＣＭ取り込み量の変化が健常者およびＣＦＳ患者で差がないことを考慮すれば、ＣＦＳ患者における赤血球でのＡＣＭ取り込み量が健常者に比べて有意に低いことを明示する結果である。
【００４４】
以上のことから、この発明の標識アシル−Ｌ−カルニチンは、その血液中の挙動を測定することによっても、ＣＦＳに属する疾患の有無またはその程度を診断することが可能であることが確認された。
【００４５】
【発明の効果】
以上詳しく説明したとおり、この発明によって、生体各組織またはその生物標本におけるアシルカルニチン挙動を高感度で測定することのできる新しい標識アシル−Ｌ−カルニチンが提供される。
また、この発明によって、アシルカルニチンの代謝やその取り込み異常を原因とする様々な疾患や、あるいは脳の構造的／機能的障害を原因とする疾患を、生体から採取した尿や血液等の生物標本の測定、またはＰＥＴ法やＭＲＩ、ＭＲＳを用いた生体各組織の画像化によって診断することが可能となる。さらには、それらの疾患に対する各種の治療処置の経過を把握することも可能になり、治療法の最適化が達成される。
【図面の簡単な説明】
【図１】アカゲザルの脳および側頭筋へのＡＣＮ、ＡＣＭ、ＣＲＮおよびＡＣＣの取り込み値を経時的に示したグラフ図である。
【図２】健常者の脳へのＡＣＭ取り込み値を、休止状態（ＷＢ９）と課題負荷状態（ＷＢ９−ＴＡＳＫ）の各々において経時的に示したグラフ図である。
【図３】健常者およびＣＦＳ患者の脳全体へのＡＣＭ取り込み値を経時的に示したグラフ図である。
【図４】健常者およびＣＦＳ患者の脳視覚皮質へのＡＣＭ取り込み値を経時的に示したグラフ図である。
【図５】健常者およびＣＦＳ患者の脳の各部位での血流量を示したグラフ図である。
【図６】健常者およびＣＦＳ患者の血漿へのＡＣＭ取り込み値を経時的に示したグラフ図である。
【図７】健常者およびＣＦＳ患者の赤血球および血漿への各々のＡＣＭ取り込み値の割合を経時的に示したグラフ図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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