(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式（Ｉ）で表されるスフィンゴシン類縁化合物。
0004001929.tif 000011
式中、Ｑ1、Ｑ2、Ｑ3は、Ｑ1、Ｑ2が同一若しくは異なって、水素、炭素数１〜４のアルキル基、炭素数２〜５のアシル基若しくはアミノ基の保護基を表し、Ｑ3が水素若しくはヒドロキシル基の保護基を表すか、又は、Ｑ2とＱ3とが一緒になってイソプロピリデン基を表し、Ｑ1が水素若しくはアミノ基の保護基を表す。Ｑ4、Ｑ5は、同一若しくは異なって、ヒドロキシル基、炭素数２〜５のアシル基、−Ｏ−Ｑ6若しくは水素を表すか、又は、Ｑ4とＱ5とが一緒になって共有結合を表す。Ｑ6は、ヒドロキシル基の保護基を表す。Ｘ1は、−ＣＯＯＨ、−ＣＯＮＨ2、−ＣＯ−Ｑ7、−ＣＨ2ＯＨ又は−ＣＨ2Ｏ−Ｑ8を表す。Ｑ7は、カルボキシル基の保護基を表し、Ｑ8は、ヒドロキシル基の保護基を表す。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、真菌感染症、アレルギー疾患等の治療剤として有用なＴＫＲ１７８５類又はその誘導体の合成中間体として有用であり、また、新規スフィンゴ脂質類縁体の合成中間体として有用である新規スフィンゴシン類縁化合物に関する。また、本発明は、新規スフィンゴ脂質の製造方法にも関する。
背景技術
スフィンゴシンは、下記一般式で表される化学構造（式中、Ｙ1は、水素である。）を有する化合物であり、これを構成成分として含有する多くのスフィンゴ脂質が、神経系の細胞膜表面を始めとして生体内に広く存在していることが知られている。また、スフィンゴシンのアミノ基に脂肪酸がペプチド結合したセラミドに、更にＹ1として糖が１種類乃至数種類グリコシド結合したスフィンゴ糖脂質や、Ｙ1としてりん酸とコリン、エタノールアミン等の塩基とが結合したスフィンゴミエリン等のスフィンゴりん脂質も知られている。
0004001929.tif 000002
スフィンゴ脂質は、生体内で重要な役割を果たしている脂質の一一つであるが、酵素欠損等により代謝系に異常が生じた場合、特定のスフィンゴ脂質が生体内に蓄積し、いわゆるリピドーシスと呼ばれる疾患が起こることも知られている。また、細胞膜に存在するスフィンゴ脂質が有する機作として、細胞増殖調節、相互識別等における機能；発生、分化における機能；神経機能；感染や細胞の悪性化等への関与等が注目されているが、これらの機作についての生理的意義は不明な点が多い。近年、スフィンゴシン誘導体の一つであるセラミドが細胞のシグナル伝達機構に重要な役割を演じている可能性が指摘され、アポトーシスや細胞周期に対する作用等が活発に研究されている。
スフィンゴ脂質は、真菌や植物にも存在しており、これらに存在するスフィンゴシンは、下記式で表される化学構造を有するものが主である。これらの脂質は、真菌や植物の細胞増殖において重要な機能を果たしていることが知られているが、詳細な役割はいまだ明らかにされていない。
0004001929.tif 000003
最近では、スフィンゴ脂質の誘導体やその関連化合物が代謝系を阻害又は促進することによって各種の生理活性を発揮することが知られるようになった。これらのなかには、プロテインキナーゼＣ阻害物質、アポトーシス誘発物質、免疫抑制物質、抗真菌性物質等がある。このような生理活性を発揮するような物質は、各種の疾患に対して有効な化合物として期待されている。
発明の要約
本発明は、上記の現状に鑑み、スフィンゴ脂質の機能を調節することができるスフィンゴ脂質誘導体等の新規な脂質誘導体の合成中間体として有用な新規スフィンゴシン類縁化合物を提供することを目的とするものである。
本発明者らは、新規な生理活性物質の探索を目的として、多数の微生物を自然界より分離し、該微生物が産生する生理活性物質を単離し、生物学的性質を調べたところ、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属に属する微生物の培養物、中に、カンジダ（Ｃａｎｄｉｄａ）、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）、マラセチア（Ｍａｌａｓｓｅｚｉａ）等の病原性真菌に対して抗菌活性を示す新規な生理活性物質ＴＫＲ１７８５類が存在していることを見いだした。また、本発明者らは、ＴＫＲ１７８５類がアレルギー反応に関与する酵素の阻害活性を有することを見いだした。
本明細書中、ＴＫＲ１７８５類とは、下記一般式（ＩＩ）で表される化合物である。上記ＴＫＲ１７８５類としては、例えば、下記式（ＩＩａ）で表されるＴＫＲ１７８５−Ｉ、又は、下記式（ＩＩｂ）で表されるＴＫＲ１７８５−ＩＩが挙げられる。
0004001929.tif 000004
本発明者らは、上記ＴＫＲ１７８５類を加水分解することにより、下記式（ＩＩＩ）で表される新規なスフィンゴシン類縁化合物を調製することに成功し、更に、この化合物がＴＫＲ１７８５類の合成に有用な中間体であることを明らかにした。
0004001929.tif 000005
また、本発明者らは、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物を代表とする下記一般式（Ｉ）で表される化合物群が、新規なスフィンゴ脂質類縁体等の生理活性物質を合成するのに有用な中間体であることを明らかにし、本発明を完成するに至った。
0004001929.tif 000006
式中、Ｑ1、Ｑ2、Ｑ3は、Ｑ1、Ｑ2が同一若しくは異なって、水素、炭素数１〜４のアルキル基、炭素数２〜５のアシル基若しくはアミノ基の保護基を表し、Ｑ3が水素若しくはヒドロキシル基の保護基を表すか、又は、Ｑ2とＱ3とが一緒になってイソプロピリデン基を表し、Ｑ1が水素若しくはアミノ基の保護基を表す。Ｑ4、Ｑ5は、同一若しくは異なって、ヒドロキシル基、炭素数２〜５のアシル基、−Ｏ−Ｑ5若しくは水素を表すか、又は、Ｑ4とＱ5とが一緒になって共有結合を表す。Ｑ6は、ヒドロキシル基の保護基を表す。Ｘ1は、−ＣＯＯＨ、−ＣＯＮＨ2、−ＣＯ−Ｑ7、−ＣＨ2ＯＨ又は−ＣＨ2Ｏ−Ｑ8を表す。Ｑ7は、カルボキシル基の保護基を表し、Ｑ8は、ヒドロキシル基の保護基を表す。
【図面の簡単な説明】
図１は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−Ｉの紫外線吸収スペクトルを示す図である。縦軸は波長（ｎｍ）、横軸は吸光度を示す。
図２は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−Ｉの赤外線吸収スペクトルを示す図である。縦軸は透過率（％）、横軸は波数（ｃｍ-1）を示す。
図３は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−Ｉの1Ｈ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。縦軸はシグナルの強度、横軸は化学シフト値（ｐｐｍ）を示す。
図４は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−Ｉの13Ｃ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。縦軸はシグナルの強度、横軸は化学シフト値（ｐｐｍ）を示す。
図５は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−ＩのＨＰＬＣでの溶出位置を示す図である。縦軸は保持時間（分）、横軸は相対紫外吸収強度を示す。
図６は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−ＩＩの1Ｈ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。縦軸はシグナルの強度、横軸は化学シフト値（ｐｐｍ）を示す。
図７は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−ＩＩの13Ｃ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。縦軸はシグナルの強度、横軸は化学シフト値（ｐｐｍ）を示す。
図８は、生理活性物質ＴＫＲ１７８５−ＩＩのＨＰＬＣでの溶出位置を示す図である。縦軸は保持時間（分）、横軸は相対紫外吸収強度を示す。
発明の詳細な開示
以下に本発明を詳述する。
本発明のスフィンゴシン類縁化合物は、上記一般式（Ｉ）で表される。
上記炭素数１〜４のアルキル基としては特に限定されず、例えば、メチル基、エチル基、プロピル基、ｉ−プロピル基、ｎ−ブチル基、ｔ−ブチル基等を挙げることができる。
上記炭素数２〜５のアシル基としては特に限定されず、例えば、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、バレリル基等を挙げることができる。
上記アミノ基の保護基としては特に限定されず、例えば、ｔ−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基、トリクロロエトキシカルボニル（Ｔｒｏｃ）基等を挙げることができる。
上記ヒドロキシル基の保護基としては特に限定されず、例えば、ベンジル（Ｂｚｌ）基、アセチル基、メチル基、トリメチルシリル基等を挙げることができる。
上記Ｑ7は、カルボキシル基の保護基を表す。上記カルボキシル基の保護基としては特に限定されず、例えば、フェナシル（Ｐａｃ）基、Ｂｚｌ基等を挙げることができる。
上記Ｑ6及び上記Ｑ8は、ヒドロキシル基の保護基を表す。上記ヒドロキシル基の保護基としては特に限定されず、例えば、上述したもの等を挙げることができる。
上記スフィンゴシン類縁化合物としては、上記一般式（Ｉ）で表すことができる化合物であればよく、例えば、後に示す表１に記載した化合物等を挙げることができる。
表１に化合物（１）で示される上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、ヒドロキシル基及びアミノ基を、酸無水物、酸クロリド等を用いて、常法によりアシル化合物へ変換することができる。また、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、アミノ基を水素化ナトリウムとヨウ化アルキル等を用いてＮ−アルキル化物へ変換することができる。更に、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、カルボキシル基をメチル化後、アンモノリシスによりアミドへ変換したり、水素化リチウムアルミニウム（ＬｉＡｌＨ4）、水素化ホウ素ナトリウム（ＮａＢＨ4）等によって還元することによりアルコールに変換することができる。
上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、選択的に反応させたり、適当な保護基を利用することにより、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物が有するヒドロキシル基、アミノ基、カルボキシル基のなかから選択的に特定の官能基を修飾し、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物以外の上記一般式（Ｉ）で表される化合物に変換することができる。この場合においては、ペプチド合成において広く利用されている各種の保護基を適宜利用することができる。このような保護基として上述したアミノ基保護基、カルボキシル基保護基、ヒドロキシル基保護基等を利用することができる。
上記保護基は、必要に応じて、各々対応する公知の脱離反応又はこの反応を応用した脱離反応により脱離され、目的物に変換される。上記保護基として、異なる条件下で脱離可能なものを使用した場合には、上記脱離反応を行うことによって、選択的修飾を容易に行うことができる。例えば、アミノ基の選択的修飾を行うためには、アミノ基をＢｏｃ基により保護した後、ヒドロキシル基をアセチル基で保護し、カルボキシル基をメチル基で保護して酸性下に置くことにより、Ｂｏｃ基を選択的に除去脱離させてから有機酸とペプチド結合させ、その後、アルカリ加水分解することによって、アミノ基のみを修飾した化合物を得ることができる。このとき、カルボキシル基をヒドロキシル基に変換したものを原料として使用し、ヒドロキシル基をアセチル基で保護しておくと、セラミド類似化合物を得ることができる。
本発明の上記一般式（Ｉ）で表される化合物のうち、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、上記一般式（ＩＩ）で表されるＴＫＲ１７８５類、例えば、ＴＫＲ１７８５−Ｉ又はＴＫＲ１７８５−ＩＩを加水分解することにより製造することができる。例えば、上記式（ＩＩａ）で表されるＴＫＲ１７８５−Ｉを酸加水分解、例えば、ペプチド結合の加水分解に使用される６Ｎ−塩酸中、１１０℃、一晩処理等の条件で分解後、いったん反応液を中和し、更にアルカリにすることにより得ることができる。ここで得られた化合物を単離する場合には、再度反応液を中和した後、クロロホルムやクロロホルム／メタノールの混合溶媒等の有機溶媒で抽出し、更に必要に応じて、シリカゲルによる吸着クロマトグラフィーや化学結合型シリカゲルによる逆相分配クロマトグラフィーにより精製すればよい。また、ＴＫＲ１７８５−Ｉを上記と同様の条件で酸加水分解した後、そのまま濃縮、精製すると、下記式（ＩＶ）で表されるラクトン体を得ることができる。この化合物を用いて、例えば、Ｂｏｃ化すれば、アミノ基単独又はアミノ基及びヒドロキシル基の双方にＢｏｃ基を導入することができる。その後、アルカリ加水分解することによって、上記一般式（Ｉ）で表される化合物の１種を合成することができる。
0004001929.tif 000007
更に、上記一般式（Ｉ）において、Ｑ4、Ｑ5が結合した化合物、例えば、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物において、炭素番号５と炭素番号６との間が二重結合になった化合物、例えば、後に示す表１に化合物（１０）で示された化合物は、上記式（ＩＶ）のラクトン体を濃硫酸による処理やピリジン中塩化チオニルとの反応により脱水後、アルカリ加水分解すれば容易に得ることができる。また、得られた上記式（ＩＶ）の脱水物に濃硫酸を作用させて直接水酸基を導入したり、還元によりエポキサイドとした後、アルカリ加水分解すれば、上記一般式（Ｉ）のＱ4に水酸基を有する化合物を得ることができる。
上記ＴＫＲ１７８５類、すなわち、ＴＫＲ１７８５−Ｉ及びＴＫＲ１７８５−ＩＩは、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属に属し、ＴＫＲ１７８５類を産生する菌株を培養し、その後、その培養物から単離することにより製造することができる。上記ＴＫＲ１７８５類の生産に用いられる菌株としては、例えば、ペニシリウム・エスピー（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ  ｓｐ．）ＴＫＲ１７８５株（以下、単に「ＴＫＲ１７８５株」という）等を挙げることができる。すなわち、上記ＴＫＲ１７８５株を栄養源含有培地に接種し、液体培養することにより、上記ＴＫＲ１７８５類を得ることができる。
上記培養は、１５〜２５℃で行うことが好ましく、通常３〜１１日間培養すれば充分な産生量を得ることができる。培養物中に蓄積されたＴＫＲ１７８５類は、その理化学的性質及び生物学的性質を利用して精製し、取得することができる。上記精製において高速液体クロマトグラフィー法を採用する場合には、担体として、例えば、オクタデシル基、オクチル基、フェニル基等が結合した化学結合型シリカゲル；ポリスチレン系ポーラスポリマーゲル等を使用することができ、移動相としては、例えば、含水メタノール、含水アセトニトリル等の水溶性有機溶媒の含水溶液等を使用することができる。
上記一般式（Ｉ）で表される本発明のスフィンゴシン類縁化合物は、ＴＫＲ１７８５類又はその誘導体の合成中間体として有用である。例えば、上記式（ＩＩＩ）で表される化合物は、ＴＫＲ１７８５−Ｉ又はその類縁体を合成するための重要中間体として利用可能である。上記式（ＩＩＩ）で表される化合物からＴＫＲ１７８５−Ｉ又はその類縁体を得る場合には、例えば、後に示すスキーム１に従って合成することによって得ることができる。
また、上記一般式（Ｉ）で表される化合物は、スフィンゴシン類似の脂質として、各種スフィンゴ脂質類縁体の合成に利用することができる。例えば、上記一般式（Ｉ）において、Ｘ1が−ＣＨ2ＯＨであり、アミノ基にパルミチン酸等の脂肪酸がペプチド結合したセラミド様の下記一般式（Ｖ）で表される化合物にするためには、アミノ基と３個のヒドロキシル基とがそれぞれ別の脱離可能な保護基で保護されたものを原料に用い、アミノ基の保護基のみを脱離させた後、脂肪酸をペプチド結合させ、ついでヒドロキシル基の保護基を脱離させればよい。更に、得られた下記一般式（Ｖ）で表される化合物は、上記一般式（Ｉ）で表される化合物のＱ8の位置にガラクトース、グルコース等の単糖又はオリゴ等を結合させたスフィンゴ糖脂質類縁体の合成に利用可能である。この場合、Ｑ3、Ｑ5、Ｑ8を異なる条件で脱離可能なヒドロキシル基保護基で保護しておけば、Ｑ8の保護基のみを選択的に脱離させることができ、スフィンゴ糖脂質類縁体の合成に利用することができる。
0004001929.tif 000008
式中、Ｙ2は、ミリストイル基（Ｃ１４：０）、パルミトイル基（Ｃ１６：０）、ステアロイル基（Ｃ１８：０）、オレオイル基（Ｃ１８：１）又はリグノセロイル基（Ｃ２４：０）等の脂肪酸アシル基を表す。
本発明のスフィンゴシン類縁化合物は、更にまた、免疫活性抑制、癌細胞に対する細胞毒性を有しており、医薬品としての有用性も有している。
発明を実施するための最良の形態
以下に実施例を掲げて本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。
参考例１  ＴＫＲ１７８５−Ｉ及びＴＫＲ１７８５−ＩＩの調製
ＴＫＲ１７８５株（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５７８８）の斜面培養から−白金耳を１００ｍｌの液体培地〔ディフコイーストナイトロジェンベース０．６７％（ｗ／ｖ）、グルコース２．０％（ｗ／ｖ）〕を入れた５００ｍｌ容の三角フラスコに接種し、２５℃で５日間振とうし、種培養液を得た。この種培養液１．０ｍｌを上記液体培地１２５ｍｌを入れた５００ｍｌ容の三角フラスコ１８本に接種し、２５℃、９日間振とう培養（振とう２２０ｒｐｍ）を行った。このようにして得た培養液を遠心分離し、上澄み液と菌体とに分離した。得られた菌体にメタノール１Ｌを加えて充分混合して抽出操作を行った後、減圧濃縮を行った。得られた残渣に水を３００ｍｌ加えて充分混合した後、ｐＨを２に調整した。これに酢酸エチルを３００ｍｌ加えて充分混合し、酢酸エチル洗浄操作を行った。この水層のｐＨを９に調整し、酢酸エチルを３００ｍｌ加えて抽出操作を行った。この抽出液を減圧濃縮し、残渣５２ｍｇを得た。これをメタノール０．４ｍｌに溶解し、高速液体クロマトグラフィーに付し、２つの活性画分Ｉ及びＩＩを得た。それぞれの画分を減圧濃縮することにより、ＴＫＲ１７８５−Ｉの精製物１６ｍｇ及びＴＫＲ１７８５−ＩＩの精製物３ｍｇを白色粉末として得た。なお、高速液体クロマトグラフィーの条件は、下記によった。
装置：ＬＣ８Ａ（島津製作所社製）
カラム：ＹＭＣｐａｃｋ  Ｃ１８（２．０ｃｍ×２５ｃｍ）（ワイエムシー社製）
移動相：０．０５％トリフルオロ酢酸を含む５５％（ｖ／ｖ）アセトニトリル／水
理化学的性質
質量分析には、ＪＭＳ−ＤＸ３０２型質量分析装置（日本電子社製）を用いた。1Ｈ−ＮＭＲスペクトル（重ジメチルスルホキシド中、標準物質：重ジメチルスルホキシド）及び13Ｃ−ＮＭＲスペクトル（重ジメチルスルホキシド中、標準物質：重ジメチルスルホキシド）の測定には、ＪＮＭ−Ａ５００核磁気共鳴装置（日本電子社製）を用いた。紫外線吸収スペクトル分析（メタノール中）には、ＵＶ−２５０型自記分光光度計（島津製作所社製）を用いた。赤外線吸収スペクトル分析（ＫＢｒ法）には、２７０−３０型赤外分光光度計（日立製作所社製）を用いた。アミノ酸分析には、Ｌ−８５００型（日立製作所社製）を用いた。
以下にＴＫＲ１７８５−Ｉの理化学的性質を述べる。
高速液体クロマトグラフィーに付し、得られた活性画分Ｉを減圧濃縮することにより得られた白色粉末精製物は、質量分析によるＦＡＢ−ＭＳ測定で、ｍ／ｚ５１８［Ｍ＋Ｈ］+であることが判明した。本物質についての1Ｈ−ＮＭＲスペクトル測定及び13Ｃ−ＮＭＲスペクトル測定並びにその解析により、炭素数２７であり、窒素数３であることが判った。1Ｈ−ＮＭＲスペクトルを図３に、13Ｃ−ＮＭＲスペクトルを図４に示した。更に、本物質のメタノール中における紫外線吸収スペクトルは、図１に示すように、末端吸収を示すことが判った。本物質のＫＢｒ法による赤外線スペクトル測定結果は、下記のとおりであった。赤外線吸収スペクトルを図２に示した。
ＩＲ（ＫＢｒ）（ｃｍ-1）：３４１０、２９２０、２８５０、１６７０、１５４０、１４７０、１２１０、１１４０、１０５０、８４０、８００、７２０。
また、本物質の各種溶媒に対する溶解性は、メタノール、水に可溶、クロロホルム、ヘキサンには難溶であった。
上記分析結果により、高速液体クロマトグラフィーに付し、得られた活性画分Ｉを減圧濃縮することにより得られた白色粉末精製物は、ＴＫＲ１７８５−Ｉであることが判明した。また、図３の1Ｈ−ＮＭＲスペクトル及び図４の13Ｃ−ＮＭＲスペクトルについて詳細に解析したところ、ＴＫＲ１７８５−Ｉは、式（ＩＩａ）の化学構造を有することが明らかとなった。
ＴＫＲ１７８５−ＩをＬＣ−１０Ａ型高速液体クロマトグラフィー装置（島津製作所社製）を用いた逆相分配高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）による分析に供した。なお、高速液体クロマトグラフィーの条件は下記によった。
カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ  ＰＡＣＫ  Ｃ18（６ｍｍ×１５０ｍｍ）（資生堂社製）
移動相：０．０５％トリフルオロ酢酸を含む５０％（ｖ／ｖ）アセトニトリル／水
カラム温度：４０℃
検出ＵＶ波長：２２０ｎｍ
分析の結果、ＴＫＲ１７８５−Ｉは、図５に示す位置に溶出されることが明らかとなった。
次に、ＴＫＲ１７８５−ＩＩの理化学的性質を述べる。
高速液体クロマトグラフィーに付し、得られた活性画分ＩＩを減圧濃縮することにより得られた白色粉末精製物について、理化学的性質を調べた。本物質は、質量分析によるＦＡＢ−ＭＳ測定で、ｍ／ｚ５３２［Ｍ＋Ｈ］+であり、ＴＫＲ１７８５−Ｉより１４マス分子量が大きいことが判明した。また、塩酸加水分解後、アミノ酸分析にかけたところ、ＴＫＲ１７８５−Ｉは、Ｌ−バリンを含有しているのに対し、本物質は、Ｌ−イソロイシンを含有していることが明らかとなった。紫外線吸収スペクトルは、ＴＫＲ１７８５−Ｉとほとんど差がなかった。また、本物質の各種溶媒に対する溶解性も、ＴＫＲ１７８５−Ｉとほとんど差がなかった。本物質の1Ｈ−ＮＭＲスペクトル（図６）、13Ｃ−ＮＭＲスペクトル（図７）の結果を合わせて検討した結果、本物質は、式（ＩＩｂ）の化学構造を有することが明らかとなった。
上記分析結果により、高速液体クロマトグラフィーに付し、得られた活性画分ＩＩを減圧濃縮することにより得られた白色粉末精製物は、ＴＫＲ１７８５−ＩＩであることが判明した。
ＴＫＲ１７８５−ＩＩをＬＣ−１０Ａ型高速液体クロマトグラフィー装置（島津製作所社製）を用いたＨＰＬＣによる分析に供した。なお、高速液体クロマトグラフィーの条件は、上記ＴＫＲ１７８５−Ｉを分析した場合と同一であった。分析の結果、上記ＴＫＲ１７８５−ＩＩは、図８に示す位置に溶出されることが明らかとなった。
実施例１  ＴＫＲ１７８５−Ｉから化合物（１）の合成
ＴＫＲ１７８５−Ｉ（１０ｍｇ、１９．４μｍｏｌ）に６Ｎ−塩酸（６ｍｌ）を加え、１１０℃で１５時間放置した。氷冷下、反応液を２Ｎ−ＮａＯＨ（１８ｍｌ）で中和した後、６Ｎ−ＮａＯＨ（４ｍｌ）を加えて氷冷下１時間攪拌した。氷冷下、２Ｎ−塩酸を用いて反応液のｐＨを６．５とした後、減圧濃縮した。残渣に再びＨ2Ｏを加え、これをクロロホルム（合計８０ｍｌ）で抽出した。クロロホルム抽出液を減圧濃縮して、表１に示した化合物（１）の無色粉末を得た（６．３ｍｇ、９４％）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ３４６（Ｍ＋Ｈ）
薄層シリカゲルクロマトグラフィー（ＴＬＣ）〔クロロホルム−メタノール−酢酸−水（８：３：１：１）〕：Ｒｆ０．３４
紫外部吸収スペクトル（メタノール中）：末端吸収
実施例２  ＴＫＲ１７８５−Ｉから化合物（１）のラクトン体の合成
ＴＫＲ１７８５−Ｉ（２０ｍｇ、３８．７μｍｏｌ）に６Ｎ−塩酸（１２ｍｌ）を加え、１１０℃で１９時間放置した。減圧濃縮後、調製用薄層シリカゲルクロマトグラフィー（ＴＬＣ）〔クロロホルム−メタノール−酢酸（２５：５：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（１）のラクトン体を無色粉末として得た（５．５ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ３２８（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−酢酸−水（８：３：１：１）〕：Ｒｆ０．６５
1Ｈ−ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ6）δ（ｐｐｍ）：４．４８（ｍ，１Ｈ）、３．５５（ｍ，１Ｈ）、３．４７（ｍ，１Ｈ）、２．７９（ｄｄ，１Ｈ）、２．１０（ｄ，１Ｈ）、１．６７（ｍ，１Ｈ）、１．５２（ｍ，１Ｈ）、１．３３（ｍ，２Ｈ）、１．２１（ｓ，２２Ｈ）、０．８４（ｔ，３Ｈ）
13Ｃ−ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ6）δ（ｐｐｍ）：１７６．５、８１．８、６６．７、５０．１、３８．２、３６．２、３１．３、２９．１、２９．０、２８．９、２５．１、２２．１、１３．９
実施例３  化合物（１）から化合物（２）の合成
化合物（１）（２ｍｇ、５．８μｍｏｌ）をジオキサン（５０μｌ）に溶解し、室温でＢｏｃ−ＯＮ（２．２ｍｇ、８．７μｍｏｌ）及びトリエチルアミン（Ｅｔ3Ｎ）（１．６μｌ、１１．６μｍｏｌ）を加えて室温で１０時間攪拌した。反応液を減圧濃縮した後、１０％クエン酸水溶液を加え、これをクロロホルムで抽出した。クロロホルム抽出液を減圧濃縮後、残渣を調製用ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−酢酸（２５：５：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（２）を無色粉末として得た（１ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ４４６（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−酢酸（２５：５：１）〕：Ｒｆ０．５９
実施例４  化合物（３）の合成
化合物（１）（２ｍｇ、６．６７μｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（５．５ｍｌ）に溶解し、氷冷下攪拌しながらＬｉＡｌＨ4（５ｍｇ）を加えた。室温で２２時間熱還流した後、反応液を氷冷し、攪拌しながらゆっくりエーテル（２ｍｌ）、水（０．５ｍｌ）、１ＮＮａＯＨ水溶液（０．５ｍｌ）を順次加えた。３０分間攪拌後、水を加え、エーテル（合計４０ｍｌ）抽出した。エーテル抽出液を減圧濃縮して表１に示した化合物（３）の無色粉末を得た（２．２ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ３３２（Ｍ＋Ｈ）
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）δ：７．５５（ｂｒ）、５．２６（ｂｒ）、４．７７（ｂｒ）、４．３７（ｂｒ）、３．７４（ｂｒ）、３．６１（ｂｒ）、３．５２（ｍ）、３．０２（ｍ）、１．７４（ｍ）、１．６２（ｍ）、１．５０（ｄ）、１．４４（ｍ）、１．３５−１．２３（ｍ）、０．８４（ｔ）
実施例５  化合物（４）の合成
化合物（３）（１０．０ｍｇ、３０．０２μｍｏｌ）をジオキサン−水（１０：１３００μｌ）に溶解し、室温でＢｏｃ−ＯＮ（１１．５ｍｇ、４５．３μｍｏｌ）及びＮ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）（７．９μｌ、４５．３μｍｏｌ）を加えて６時間攪拌した。反応液に酢酸エチルを加えて、１０％クエン酸水溶液、飽和食塩水で順次洗浄した。酢酸エチル層を硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧濃縮した。これをＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（１９：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（４）の無色粉末を得た（８．５ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ４３２（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（１９：１）〕＝Ｒｆ０．２
実施例６  化合物（５）の合成
化合物（４）（６．５ｍｇ、１５．１μｍｏｌ）を塩化メチレン（ＣＨ2Ｃｌ2）（４００μｌ）に溶解し、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノピリジン（ＤＭＡＰ）（１ｍｇ）、ＮＥｔ3（２．５μｌ、１８．１μｍｏｌ）及び塩化ｔ−ブチルジメチルシリル（ＴＢＤＭＳ−Ｃｌ）（２．５ｍｇ、１６．６μｍｏｌ）を加えて室温で１６時間攪拌した。反応液をＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（１００：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（５）の無色油状物を得た（７．５ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ５４６（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（１００：１）〕：Ｒｆ０．５
実施例７  化合物（６）の合成
化合物（５）（５．０ｍｇ、９．１６μｍｏｌ）をＣＨ2Ｃｌ2（５００μｌ）に溶解し、ＤＭＡＰ（２ｍｇ）及びＢｏｃ2Ｏ（５．９ｍｇ、２７．５μｍｏｌ）を加えて室温で１８時間攪拌した。反応液をＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（２００：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（６）の無色油状物を得た（６．０ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ７４７（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（２００：１）〕：Ｒｆ０．８
実施例８  化合物（７）の合成
化合物（６）（２．５ｍｇ、３．３５μｍｏｌ）にＴＨＦ−酢酸−水（１：２：１．５ｍｌ）を加えて室温で１７時間攪拌した。減圧濃縮後、ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（５０：１）溶液で展開及び抽出〕で精製して表１に示した化合物（７）の無色油状物を得た（１．８ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ６３２（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール（５０：１）〕：Ｒｆ０．４
実施例９  化合物（８）の合成
化合物（１）（５．０ｍｇ、１４．５μｍｏｌ）をアセトン（９００μｌ）に懸濁し、アセトンジメチルアセタール（１５０μｌ）及びｄｌ−ショウノウスルホン酸（１ｍｇ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応液をＮＥｔ3（１０μｌ）で中和した後、減圧濃縮した。残渣をＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−水（８：３：１）の下層〕で精製して表１に示した化合物（８）の無色油状物を得た（収量２．８ｍｇ、収率５１％）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ３８６（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−水（８：３：１）の下層〕：Ｒｆ０．４
実施例１０  化合物（９）の合成
化合物（８）（１．４ｍｇ、３．６μｍｏｌ）をピリジン（１００μｌ）に溶解し、氷冷下、塩化トリクロロエトキシカルボニル（１．５μｌ、１０．９μｍｏｌ）を加え、氷冷下、３０分間攪拌した後、室温で１時間攪拌した。反応液をＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−水（８：３：１）の下層〕で精製して表１に示した化合物（９）を無色粉末として得た（収量１．０ｍｇ、収率４２％）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ７３４（Ｍ＋Ｈ）
ＴＬＣ〔クロロホルム−メタノール−水（８：３：１）の下層〕：Ｒｆ０．６
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参考例２  ＴＫＲ１７８５−Ｉの合成
スキーム１に示した方法に従って合成した。すなわち、Ｂｏｃ−ＮＨ−ＣＨ（ＣＨ2ＯＨ）ＣＨ2ＯＢｚｌを出発原料として、ＨＣｌ・Ｈ2Ｎ−ＣＨ（ＣＨ（ＣＨ3）2）−ＣＯ−ＮＨ−ＣＨ（ＣＨ2ＯＡｃ）−ＣＨ2ＯＢｚｌを調製した。この化合物（３．０ｍｇ）と化合物（９）（３．０ｍｇ）との間で縮合反応を行い、保護ＴＫＲ１７８５−Ｉを得た（３．９ｍｇ）。これを常法に従って脱保護することによってＴＫＲ１７８５−Ｉを白色粉末として得た（１．２ｍｇ）。
ＦＡＢ−ＭＳ：ｍ／ｚ５１８（Ｍ＋Ｈ）
得られた最終産物を、培養液より単離精製したＴＫＲ１７８５−Ｉと比較するために、逆相分配高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）による分析に供した。なお、ＨＰＬＣの条件は下記によった。
カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ  ＰＡＣＫ  Ｃ18（６ｍｍ×１５０ｍｍ）（資生堂社製）
移動相：０．０５％トリフルオロ酢酸を含む５０％（ｖ／ｖ）アセトニトリル／水
カラム温度：４０℃
検出ＵＶ波長：２２０ｎｍ
その結果、合成品と天然物は、完全に同じ位置に溶出された。
更に、得られた最終産物をメタノールに１ｍｇ／ｍｌとなるように溶解後、カンジダ・アルビカンス（Ｃ．ａｌｂｉｃａｎｓ）ＴＩＭＭ０１３６株に対する抗菌活性〔使用培地：イーストナイトロジェンベース（ディフコ社製）０．６７％、グルコース１％、寒天１．５％を含有する培地〕をペーパーディスク法（２０μｌ／６ｍｍ径ろ紙）で測定したところ、明らかな生育阻止活性が観察された。
従って、化学合成により得られた物質は、ＴＫＲ１７８５−Ｉと同一であることが判った。すなわち、化合物（１）は、ＴＫＲ１７８５−Ｉを合成するための中間体として有用であることが明らかとなった。
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産業上の利用可能性
本発明により、真菌感染症、アレルギー疾患等の治療剤として有用なＴＫＲ１７８５類又はその誘導体の合成中間体として有用であり、また、新規スフィンゴ脂質類縁体の合成中間体として有用な新規脂質並びにその製造方法を提供することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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