(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｏｒ遺伝子をホモで有し、花球部以外の少なくとも一つ以上の部位が橙色を呈することを特徴とする、カリフラワーを除くブラシカ・オレラセア(Brassica oleracea L.)に属する植物。
【請求項２】
Ｏｒ遺伝子をホモで有し、花球部以外の少なくとも一つ以上の部位が橙色を呈することを特徴とする、ブラシカ・ナプス(Brassica napus L.)、ブラシカ・カンペストリス(Brassica campestris L.)、又は、ラファヌス・サチヴス(Raphanus sativus L.)に属する植物。
【請求項３】
Ｏｒ遺伝子をホモで有し、花球部以外の少なくとも一つ以上の部位が橙色を呈することを特徴とする、キャベツ(B.oleracea L. var. capitata L.)、葉ボタン(B.oleracea L. var. acephala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongyloides L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullta DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmifera Zenk.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italica)、又はカイラン（B.oleracea L. var. alboglabra Bayl.)。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、カロチン含量の高い新規なアブラナ科植物に関する。更に詳しくは、通常のアブラナ科植物では、カロチンを微量しか含まない部位にも多量のカロチンを含むアブラナ科植物に関する。
【０００２】
【従来の技術】
アブラナ科植物には、数多くの有用作物があるが、これらの中でもキャベツ、カリフラワー等を含むブラシカ・オレラセア(Brassica oleracea L.)、ナタネ、ハクラン等を含むブラシカ・ナプス(Brassica napus L.)、ハクサイ、カブ等を含むブラシカ・カンペストリス(Brassica campestris L.)、ダイコン等を含むラファヌス・サチブス(Raphanus sativus L.)の４種は特に有用性が高い。
【０００３】
これらいずれの種も植物体内にカロチンを含むことが知られているが、一般にその含有部位は、クロロフィルを多く含む緑色の濃い部位に限られているため、カロチンの色が外部から観察されることはほとんどない。また、一般にカロチンを多量に含む部位は可食に適さない部位であることが多い。
例えば、ブラシカ・オレラセアに属するキャベツ、コールラビ、メキャベツでは緑色部のカロチン含量は高いが、緑色でない部位（キャベツやメキャベツの結球内部の結球葉、コールラビの球茎内部）のカロチン含量はほとんどないか、非常に低い（四訂食品成分表：キャベツ（結球葉・生）１８μｇ／１００ｇ、コールラビ（球茎・生）５０μｇ／１００ｇ）。ブラシカ・ナプスに属するハクランでは緑色の葉部のカロチン含量は高いが、結球内部の結球葉のカロチン含量は余り高くない（四訂食品成分表：はくらん（結球葉・生）８０μｇ／１００ｇ）。また、種子もほとんどカロチンを含有していない。ブラシカ・カンペストリスに属する白菜では外側の緑色の結球部の結球葉のカロチン含量は高いが、大部分の結球内部の結球葉は淡黄色から白色でほとんどカロチンを含有していない（四訂食品成分表：はくさい（結球葉・生）１３μｇ／１００ｇ）。同じくブラシカ・カンペストリスに属するカブでは葉部のカロチン含量は高いが、根部では全くカロチンを含有していない（四訂食品成分表：かぶ（葉・生）１８００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００ｇ）。ラファヌス・サチヴスに属するダイコンでは葉部のカロチン含量は高いが、根部は白色で全くカロチンを含有していない（四訂食品成分表：だいこん（葉・生）２６００μｇ／１００ｇ、（根・生）０μｇ／１００ｇ）。
【０００４】
緑色部以外の部位において多量のカロチンを含むアブラナ科植物としては、ブラシカ・オレラセアに属するオレンジ・カリフラワーが知られている。オレンジ・カリフラワーは、髄組織以外の花球部が橙色を示すカリフラワーで、以下のようなことが知られている (M.H.Dikson et al., HortScience 23(4):778-779,1988)。
【０００５】
1) オレンジ・カリフラワーの橙色は、不完全一遺伝子支配である（遺伝子記号：Ｏｒ）。
2) ＯｒＯｒホモ個体の花球部の色はＯｒｏｒヘテロ個体の花球部よりも橙色が濃いが、草型はわい性で、直径３〜４ｃｍ以下の花球部を作る。
3) Ｏｒｏｒヘテロ個体の花球部は直径１５〜２０ｃｍで、通常の白色のカリフラワワーと同じ程度の大きさである。
【０００６】
4) 橙色はカロチン色素である。
従って、このオレンジ・カリフラワーの遺伝子を他のアブラナ科植物に導入し、発現することができれば商品価値の高い植物を作出することが可能となる。
しかし、オレンジ・カリフラワーの属するブラシカ・オレラセア同士の交雑はともかくとして、ブラシカ・オレラセアと、ブラシカ・ナプス、ブラシカ・カンペストリス、又はラファヌス・サチヴスのような異種間の交雑は極めて困難であり、ほとんど交雑種子が得られず、仮に種子が得られたとしてもほとんどが傾母個体（母親と同じ形態の個体）である。まれに雑種種子が得られたとしても、多くの場合不稔性であり、自殖や戻し交雑による後代の維持は極めて困難である。
【０００７】
また、オレンジ・カリフラワーにおいて橙色が発現する花球部は、花穂分化期の花芽の密集した組織塊で、カリフラワー特有の組織である。一般に、色素に関与する遺伝子の発現は組織特異的である場合が多く、ある組織で色素を産生する遺伝子が発現しても別の組織ではその遺伝子が発現していないのが通常である。従って、現在に至るまで、Ｏｒ遺伝子を異種や異属の植物に導入することはもちろん、同種の植物に導入するようなことも全く試みられたことはなかった。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、このＯｒ遺伝子をカリフラワー以外のアブラナ科植物に導入し、カロチンを微量しか含まない部位にも多量のカロチンを含むアブラナ科植物を提供することにある。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
本発明者等は、上記Ｏｒ遺伝子について詳細に検討した結果、この遺伝子は極めて広範囲の植物に導入でき、また、植物体の広範囲の組織で発現する特殊な遺伝子であることを見出し、更に、ブラシカ・オレラセアに属する植物中にこのＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があることを見出し、これらの知見に基づき本発明を完成した。
【００１０】
即ち、本発明の第１は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有することを特徴とする、ブラシカ・オレラセアに属する植物である。
また、本発明の第２は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有することを特徴とする、ブラシカ・ナプス、ブラシカ・カンペストリス、又は、ラファヌス・サチヴスに属する植物である。
【００１１】
更に、本発明の第３は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有することを特徴とする、キャベツ(B.oleracea L. var. capitata L.)、葉ボタン(B.oleracea L. var. acephala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongyloides L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullta DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmifera Zenk.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italica)、又はカイラン（B.oleracea L. var. alboglabra Bayl.)である。
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１２】
本発明のブラシカ・オレラセアに属する植物を具体的に例示すると、キャベツ(B.oleracea L. var. capitata L.)、葉ボタン(B.oleracea L. var. acephala DC.) 、コールラビ(B.oleracea L. var. gongyloides L.) 、サボイカンラン(B.oleracea L. var. bullta DC.) 、コモチカンラン(B.oleracea L. var. gemmifera Zenk.)、カリフラワー(B.oleracea L. var. botrytis L.)、ブロッコリ(B.oleracea L. var. italica)、カイラン（B.oleracea L. var. alboglabra Bayl.)等を挙げることができる。但し、カリフラワーについては、後述するＯｒ遺伝子のみを有し、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子を有しない場合は、本発明の範囲には含まれない。
【００１３】
本発明のブラシカ・オレラセアに属する植物は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を促進する条件遺伝子を有している。カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子は、通常Ｏｒ遺伝子と呼ばれており、例えば、ＮＹ１６３系統、ＮＹ１５６系統、ＮＹ１６５系統等のオレンジ・カリフラワーに含まれる。Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子は、商品として人工的に栽培される通常のキャベツ、カイラン等に含まれている遺伝子であり、このような遺伝子を有する植物を例示するとキャベツ品種「明徳」、カイラン品種「芥藍」等を挙げることができる。
【００１４】
なお、ＮＹ１６３近交系統は、Department of Horticultural Sciences and food Science, New York State Experimental Station, Cornell University, (Geneva, NY 14456, U.S.A) より入手したものであり、現在本出願人が所持しており、必要に応じて分譲することができる。また、キャベツ明徳固定系統、カイラン芥藍固定系統も同様に現在本出願人が所持しており、必要に応じて分譲することができる。
【００１５】
本発明のブラシカ・オレラセアに属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈することである。このような部位を具体的に例示するとキャベツであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等、カイランであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コールラビであれば、球茎内部、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コモチカンランであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、葉ボタンであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、サボイカンランであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、ブロッコリであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙げることができる。
【００１６】
これらの部位におけるカロチン含量は、キャベツの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のキャベツでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、カイランの茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカイランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、コールラビの球茎内部であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコールラビでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、コモチカンランの結球内部の結球葉であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコモチカンランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、葉ボタンの茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来の葉ボタンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、サボイカンランの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のサボイカンランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、ブロッコリの茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のブロッコリでは０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００１７】
また、これらの部位の色調について詳述すると、キャベツの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来のキャベツでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のキャベツでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャベツでは白色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のキャベツでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のキャベツでは白色）、種子であれば橙色〜濃黄色（従来のキャベツでは黄色）、カイランの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカイランでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカイランでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のカイランでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のカイランでは黄色）、コールラビの球茎内部であれば濃橙色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコールラビでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のコールラビでは黄色）、コモチカンランの結球内部の結球葉であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のコモチカンランでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコモチカンランでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のコモチカンランでは黄色）、葉ボタンの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来の葉ボタンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来の葉ボタンでは黄色）、サボイカンランの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来のサボイカンランでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のサボイカンランでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のサボイカンランでは白色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のサボイカンランでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のサボイカンランでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のサボイカンランでは黄色）、ブロッコリの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のブロッコリでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のブロッコリでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のブロッコリでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のブロッコリでは黄色）である。
【００１８】
本発明のブラシカ・オレラセアに属する植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより得られる。交雑方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法に従って行えばよい。また、作出される植物の栽培方法についても特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法に従って行えばよい。以上のような方法により得られたＦ1 植物は、カロチン含量に関する特性のほかにも、植物体の大型化、葉色が濃くなる、花芽分化期が早くなり、抽苔・開花が早まるなどの特性を有する。なお、本発明におけるブラシカ・オレラセアに属する植物には、このＦ1 植物のみならず、Ｆ1 植物の自殖や戻し交雑により得られる後代植物も含まれる。
【００１９】
本発明のブラシカ・ナプスに属する植物を具体的に例示するとアブラナ、ナタネ、ルータバガ、ハクラン等を挙げることができる。本発明のブラシカ・ナプスに属する植物は、カリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、該遺伝子の発現を促進する遺伝子を有する。
本発明のブラシカ・ナプスに属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈することである。このような部位を具体的に例示するとナタネであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、ハクランであれば、結球内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙げることができる。
【００２０】
これらの部位におけるカロチン含量は、ナタネの茎の維管束であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば２００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のナタネでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、ハクランの結球内部の結球葉であれば１５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜１００μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクランでは０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００２１】
また、これらの部位の色調について詳述すると、ナタネの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のナタネでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のナタネでは黄色）、ハクランの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来のハクランでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のハクランでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のハクランでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のハクランでは黄色）である。
【００２２】
ブラシカ・ナプスは、ブラシカ・オレラセアとブラシカ・カンペストリスの種間雑種の複二倍体である。従って、本発明のブラシカ・ナプスに属する植物は、上記のＯｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得られる種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個体を選抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ・カンペストリスに属する植物は、特に限定されず、商品として人工的に栽培されているハクサイ、カブなどを用いることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとブラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種が異なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難であるため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出し、胚培養を行うことが好ましい。染色体の倍化は何ら人工的な処理を行わない場合であっても一定の確率でおこり得るが、葉切片由来の組織培養法により得られた再分化個体の中から倍化個体を選抜する方法、０．０１％〜１％コルヒチン水溶液を植物体の成長点に滴下またはその溶液中に植物体を浸漬する方法等の処理を行うことにより倍化個体数を増大させることが可能である。また、倍化個体の選抜方法は、２倍体に比べて植物体が大型化する、花粉稔性がある、根端細胞の染色体数の観察等である。以上の方法により得られる倍化個体は通常種子稔性を有するので、自殖、戻し交雑、放任受粉等により後代を維持することができる。
【００２３】
また、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子の導入は、上記方法により得られた倍化個体と、上記のＯｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得られる種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個体を選抜することによっても導入することができる。ここで用いるブラシカ・カンペストリスに属する植物は、特に限定されず、商品として人工的に栽培されているハクサイ、カブ等を用いることができる。さらには、Ｏｒ遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、Ｏｒ遺伝子及び該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑して得られる種間雑種の中から染色体の倍化が起こっている個体を選抜することによっても導入することができる。
【００２４】
本発明のブラシカ・ナプスに属する植物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法に従って行えばよい。なお、本発明におけるブラシカ・ナプスに属する植物には、この種間雑種の倍化個体のみならず、倍化個体の自殖や戻し交雑により得られる後代植物も含まれる。
本発明のブラシカ・カンペストリスに属する植物を具体的に例示するとハクサイ、カブ、ツケナ等を挙げることができる。本発明のブラシカ・カンペストリスに属する植物は、上記のカリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の該遺伝子の発現を促進する遺伝子を有する。
【００２５】
本発明のブラシカ・カンペストリスに属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈することである。このような部位を具体的に例示するとハクサイであれば、結球葉内部の結球葉、結球葉の葉柄、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、カブであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を、コマツナであれば、茎の維管束、茎の髄組織、根、種子等を挙げることができる。
【００２６】
これらの部位におけるカロチン含量は、ハクサイの結球内部の結球葉であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、結球葉の葉柄であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の維管束であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、茎の髄組織であれば５０〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜２０μｇ／１００ｇ）、根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のハクサイでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、カブの根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のカブでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のカブでは０〜５０μｇ／１００ｇ）、コマツナの根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のコマツナでは０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００２７】
また、これらの部位の色調について詳述すると、ハクサイの結球内部の結球葉であれば濃橙色〜黄色（従来のハクサイでは黄色〜白色）、結球葉の葉柄であれば濃橙色〜黄色（従来のハクサイでは白色）、茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のハクサイでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色従来のハクサイでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のハクサイでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のハクサイでは黄色）、カブの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のカブでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のカブでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のカブでは黄色）、コマツナの茎の維管束であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコマツナでは白色〜淡緑色）、茎の髄組織であれば赤橙色〜淡橙色（従来のコマツナでは白色〜淡緑色）、根であれば橙色〜淡橙色（従来のコマツナでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃橙色（従来のコマツナでは黄色）である。
【００２８】
本発明のブラシカ・カンペストリスに属する植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交配して得られる種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示す個体を選抜することにより得られる。ここで用いるブラシカ・カンペストリスに属する植物は、特に限定されず、一般的に商品として販売されているハクサイ、カブなどを用いることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとブラシカ・カンペストリスに属する植物の交雑は、種が異なるので通常の方法では種間雑種を得ることは困難であるため、交配に際しては、交配子房から胚を取り出し、胚培養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選抜方法は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎から折り取った葉柄基部の維管束等の部位の色が橙色であるものを選抜することにより行う。
【００２９】
また、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子の導入は、上記方法により得られた選抜個体と、上記のＯｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、ブラシカ・カンペストリスに属する植物とを交雑することにより行うことができる。
【００３０】
本発明のブラシカ・カンペストリスに属する植物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法に従って行えばよい。
本発明のラファヌス・サチヴスに属する植物を具体的に例示すると、ダイコン等を挙げることができる。本発明のラファヌス・サチヴスに属する植物は、上記のカリフラワーの花球部を橙色にする遺伝子を有し、好ましくは、更に、上記の該遺伝子の発現を促進する遺伝子を有する。
【００３１】
本発明のラファヌス・サチヴスに属する植物の特徴は、従来の植物ではカロチンが微量しか含まれていなかった部位のうち、少なくとも一つ以上の部位において多量のカロチンを含み、橙色、淡橙色等を呈することである。このような部位を具体的に例示するとダイコンであれば、根、種子等を挙げることができる。
これらの部位におけるカロチン含量は、ダイコンの根であれば２０〜１０００μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは０〜９μｇ／１００ｇ）、種子であれば１００〜５０００μｇ／１００ｇ（従来のダイコンでは０〜５０μｇ／１００ｇ）程度である。
【００３２】
また、これらの部位の色調について詳述すると、ダイコンの根であれば橙色〜淡橙色（従来のダイコンでは白色）、種子であれば淡橙色〜濃黄色（従来のダイコンでは黄色）である。
本発明のラファヌス・サチヴスに属する植物は、Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーと、ラファヌス・サチヴスに属する植物とを交配して得られる種間雑種について戻し交雑を繰り返し、橙色を示す個体を選抜することにより得られる。ここで用いるラファヌス・サチヴスに属する植物は、特に限定されず、一般的に商品として販売されているダイコンなどを用いることができる。Ｏｒ遺伝子を有するカリフラワーとラファヌス・サチヴスに属する植物の交雑及び雑種植物の戻し交雑においては、交配子房から胚を取り出し、胚培養を行うことが好ましい。橙色を示す個体の選抜方法は、幼植物期における主茎と葉柄の接合部、主茎から折り取った葉柄基部の維管束、根等の部位の色が橙色であるものを選抜することにより行う。また、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する遺伝子の導入は、上記方法により得られた選抜個体と、上記のＯｒ遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物とを交配することにより行うことができる。あるいは、Ｏｒ遺伝子と、該遺伝子の発現を促進する少なくとも一つの条件遺伝子を有するブラシカ・オレラセアに属する植物と、ラファヌス・サチヴスに属する植物とを交雑することにより行うことができる。
【００３３】
本発明のラファヌス・サチヴスに属する植物の栽培方法は特別な方法を用いる必要はなく、通常の方法に従って行えばよい。
【００３４】
【参考例】
１９８９年にオレンジ・カリフラワーＮＹ１６３近交系統（ＯｒＯｒ）を栽培した。このオレンジ・カリフラワーの特性を表１に示す。
【００３５】
【表１】
0003995729.tif 000002
【００３６】
花球部の色は、色調としては橙色と一色に分類され、淡橙色及び濃い橙色の花球部はなかった。花球部の大きさは平均３〜４ｃｍであるが、その大きさにかなりの変異がみられた。そこで、できるだけ大きい花球を持つ個体を２個選抜し、それぞれ系統番号ＯＣ１、ＯＣ２として自殖により維持した。
１９９３年２月に上記２系統の自殖３代目の種子を播種し、定植後、６月に各部位の色調等について調査した。結果を表２に示す。
【００３７】
【表２】
0003995729.tif 000003
【００３８】
調査した２系統とも、主茎の横断面は全体が淡橙色に染まり、維管束も淡橙色であり、色調の変異はなく、両系統の全個体ともよく揃っていた。また、花球部の大きさは平均約４ｃｍで、淡橙色も濃い橙色もなく、橙色であった。
【００３９】
【実施例】
（実施例１）
１９９０年春にキャベツ固定系統ａを母親とし、オレンジ・カリフラワーを父親として交配した。そのＦ1 世代は半結球を示し、１９９１年１月に半結球部を切ってみたところ、すでに花蕾が生じ、花蕾及び花蕾の周囲の結球葉が淡い橙色を示していた。このことから、オレンジ・カリフラワーが持っているＯｒ遺伝子はキャベツにおいても優性に発現すること、また、花蕾部だけでなく、結球葉でも淡い橙色を示すことが新たにわかった。
【００４０】
１９９１年春に、Ｆ1 世代の自殖を行った。また、Ｆ1 世代にキャベツ固定系統ａ及び固定系統ｂを父親として戻し交雑を行った。同年１２月に、Ｆ1 の自殖世代（Ｆ2 世代）及び戻し交雑世代（ＢＣ1 Ｆ1 世代）の各個体の主茎の横断面における橙色の有無及び色の濃さについて調査した。
Ｆ2 及びＢＣ1 Ｆ1 世代では、オレンジ・カリフラワーで見られたような主茎の横断面全体が淡橙色である個体は見出されず、維管束のみが淡橙色を示す個体が見出された。さらに、淡橙色よりも色が濃い、橙色の維管束を持つ個体、維管束を含む主茎の横断面全体が橙色の個体が見出された。従って、キャベツ固定系統ａとオレンジ・カリフラワーを交雑したＦ1 個体の自殖後代Ｆ2 世代及びＦ1 個体とキャベツ固定系統ａ、ｂの戻し交雑ＢＣ1 Ｆ1 世代において、オレンジ・カリフラワーそのものよりも濃い色調の主茎横断面を持つ個体が出現すること、ＢＣ1 Ｆ1 世代で橙色、淡橙色、白色に分離すること、キャベツにはこれまで橙色を発現する遺伝子が見出されていないことから、キャベツ固定系統ａ及びｂにはＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があると考えられた。
【００４１】
そこで、次のような仮説を立てて、各々の仮説の下で、χ2 検定を行った。
仮説１  橙色の遺伝は、完全優性一遺伝子支配である。
（Ｆ2 分離比３：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１）
仮説２  橙色の遺伝は、不完全優性一遺伝子支配である。
（Ｆ2 分離比１：２：１、ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１）
仮説３  橙色の遺伝は、優性二遺伝子支配である。
【００４２】
（Ｆ2 分離比９：３：４、１０：２：４
ＢＣ1 Ｆ1 分離比１：１、１：１：２、３：１：４）
なお、色の濃さの基準として、オレンジ・カリフラワーの維管束を含む主茎の横断面の色を淡橙色とし、これよりも濃い色は橙色とした。また、色の判定は、主茎の横断面全体が着色しているものと、維管束のみが着色しているものとを区別せずに行った。この結果を表３及び表４に示す。
【００４３】
【表３】
0003995729.tif 000004
【００４４】
【表４】
0003995729.tif 000005
【００４５】
表３に示したように、優性一遺伝子支配である３：１の分離比を示すとする仮説に適合しない場合と、適合する場合があった。前者の場合は、橙色の出現頻度が少ないので、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子を持つと考えられた。また、調査したすべてのＦ1 の花蕾及びその周辺の結球葉は淡橙色であったので、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子は劣性であると考えられた。後者の場合は、３：１の分離比を示すとする仮説に適合するものの、橙色：淡橙色：無色＝１：２：１の分離比を示すとする仮説には適合しなかった。従って、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配であるという仮説は棄却された。また、ＯｒＯｒホモであるオレンジ・カリフラワーと同じ淡橙色を示す個体が少なく、より濃い色の橙色を示す個体が多かった。
【００４６】
ＢＣ1 Ｆ1 世代についてみると、表４に示したように、１：１の分離比を示すとする仮説に適合する系統が４系統あった。残りの１系統は橙色の出現が極端に少なく、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子が関与していると考えられた。もし、Ｏｒ遺伝子のみ単独支配であるのなら、ＢＣ1 Ｆ1 世代では淡橙色と白色のみに分離して橙色は分離しないはずであるが、１：１の分離比を示すとする仮説に適合する４系統はさらに橙色と淡橙色に分類することができた。
【００４７】
以上のことから、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配であるという仮説は棄却されるので、Ｏｒ遺伝子がある時にその色を濃くする優性一遺伝子を仮定したところ、そのＦ2 分離比である９：３：４、及び１０：２：４の分離比を示すとする仮説によく適合した。また、ＢＣ1 Ｆ1 の分離比のうち、３色に分離するものは、１：１：２（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒａａ）及び３：１：４（ＯｒｏｒＡａ×ｏｒｏｒＡａ）の２通りであるが、これらの分離比を示すとする仮説にもよく適合した。
【００４８】
従って、キャベツ固定系統ａには、Ｏｒ遺伝子の発現を抑制する遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があり、キャベツ固定系統ｂには、Ｏｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子があることがわかった。
主茎の色が３：１に分離するＦ2 世代の２系統の中からキャベツ型で維管束が橙色の個体を一個体ずつ選抜し、Ｆ3 種子を得た。これらのＦ3 世代においても橙色：淡橙色：無色の分離について調査した。この結果を表５に示す。
【００４９】
【表５】
0003995729.tif 000006
【００５０】
表に示したように、２系統ともＦ3 世代で、主茎の維管束のみ淡橙色である個体が全くなり、橙色を示す個体群と無色の個体群だけとなった。橙色：無色の分離比が３：１を示すとする仮説に適合しているか否かについて検定を行ったところ、いずれの系統も３：１に適合した。従って、親個体の遺伝子型は、Ｏｒ遺伝子ヘテロ＋Ｏｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子ホモであると推察された。
【００５１】
１９９２年春にＢＣ1 Ｆ1 世代の中から、主茎の色が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、自殖させた。同年夏に、そのＢＣ1 Ｆ2 種子を播種し、ＢＣ1 Ｆ2 世代の橙色の分離についてこれまでと同様な調査を行った。結果を表６に示す。
【００５２】
【表６】
0003995729.tif 000007
【００５３】
戻し交雑の親にキャベツ系統ａを用いた場合、５系統のうち２系統は３：１の分離比を示すとする仮説に適合せず、白色の比率が３：１よりも高いのでＯｒ遺伝子を抑制する遺伝子の存在が考えられた。残りの３系統は３：１の分離比を示すとする仮説に適合したが、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却された。一方、９：３：４及び１０：２：４の分離比を示すとする仮説に適合するので、Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の色を濃くする条件遺伝子が存在すると考えられた。
【００５４】
戻し交雑の親にキャベツｂ系統を用いた場合、２系統とも３：１の分離比を示すとする仮説に適合したが、１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないことが支持された。また、両系統とも、９：３：４及び１０：２：４の分離比を示すとする仮説に適合するので、Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子の存在が考えられた。
【００５５】
以上の結果から、キャベツ系統ａはＯｒ遺伝子を抑制する遺伝子及びＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子が存在し、キャベツ系統ｂはＯｒ遺伝子の発現を促進をする条件遺伝子のみが存在することがわかった。
１９９２年春に、ＢＣ1 Ｆ1 世代の中から主茎の色が橙色でキャベツ型の個体を選抜し、キャベツ系統ａ、ｂ、ｃ、ｄを戻し交雑してＢＣ2 Ｆ1 種子を得た。同年夏にそのＢＣ2 Ｆ1 種子を播種し、ＢＣ2 Ｆ1 世代の橙色の分離についてこれまでと同様の調査を行った。この結果を表７に示す。
【００５６】
【表７】
0003995729.tif 000008
【００５７】
系統ａを戻し交雑した４系統とも１：１の分離比を示すとする仮説に適合するが、その色は橙色、淡橙色、白色の３種類に分かれた。Ｏｒ遺伝子とＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子が存在する場合の分離比１：１：２または３：１：４の分離比を示すとする仮説にこれらの４系統は適合した。系統ｂを戻し親とした１系統も同様で、橙色、淡橙色、白色の３種類に分かれ、１：１及び３：１：４の分離比を示すとする仮説に適合した。系統ｃを戻し親とした２系統とも１：１に適合し、このうち１系統は淡橙色が出現しなかった。両系統とも、１：１：２の分離比を示すとする仮説は棄却された。３：１：４の分離比を示すとする仮説については、個体番号１では適合し、個体番号２では棄却された。系統ｄを戻し親とした３系統とも１：１の分離比を示すとする仮説に適合した。このうち１系統は淡橙色が出現しなかった。別の１系統は１：１：２の分離比を示すとする仮説が棄却され、３：１：４の分離比を示すとする仮説に適合した。残りの１系統は１：１：２の仮説にも３：１：４の仮説にも適合した。以上の結果から系統ａ、ｂ、ｃ、ｄの４系統ともＯｒ遺伝子の発現を促進する条件遺伝子をもっていることがわかった。
（実施例２）
従来のキャベツ（Ｏｒ遺伝子を持たない）とＯｒ遺伝子をヘテロに持っているキャベツについて、各々のカロチン含量を測定した。
【００５８】
カロチン含量の測定は以下のように行った。
２％アセトン−ｎ−ヘキサン混液を溶離液とするアルミナクロマトグラフ法を行い、β−カロチンを主体とするカロチンを他の色素成分と分別した。得られた溶液を減圧下で留去し、残留分にｎ−ヘキサンを加えて溶かした。分光光度計により、ｎ−ヘキサンを対照として、波長４５３ｎｍにおける吸光度を測定した。β−カロチン標準液による検量線より、定量値を算出した。基準物質としてβ−カロチンを用いたので、定量値はβ−カロチン相当量として算出された。算出された定量値は小数点第一位を四捨五入し、整数位μｇ数で示し、６μｇ未満は零でないという意味でφで示した。分析試料は、特に断りがない場合は、１ｃｍ巾で結球部上中央から縦断し、全結球葉が含まれるように採取し、細断混合したものを用いた。
【００５９】
従来のキャベツ４系統における１００ｇあたりのカロチン含量を表８に示した。
【００６０】
【表８】
0003995729.tif 000009
【００６１】
これらを戻し親として２回戻し交雑した後代でＯｒ遺伝子をヘテロにもっているキャベツ４系統における１００ｇ当たりのカロチン含量については表９に示した。
【００６２】
【表９】
0003995729.tif 000010
【００６３】
表からＯｒ遺伝子が導入されると、従来のキャベツのカロチン含量の３〜７倍高いカロチン含量を持つようになること、戻し交雑親に用いる系統によってカロチン含量の増加率が異なることがわかった。
Ｏｒ遺伝子をヘテロに持っているキャベツ戻し交雑系統の中で、最もカロチン含量が高かった系統（Ｆ1 ×ａ）×ｄを用いて、個体ごとに主茎切断面及び維管束における橙色の有無、結球部横断面の葉色、及び、カロチン含量について調査した。結果を表１０に示す。
【００６４】
【表１０】
0003995729.tif 000011
【００６５】
この系統の遺伝子型は戻し交雑であるから、Ｏｒｏｒ型（橙色が出現）とｏｒｏｒ型（従来キャベツ）に分かれる。主茎切断面が従来のキャベツと同じ場合でも、戻し交雑親の系統ａ及びｄのカロチン含量（ａ：２３μｇ、ｄ：４６μｇ）よりも高いカロチン含量を持つ個体が出現した（個体番号３、１７）。葉色が白→薄い淡黄色→淡黄色→黄色→橙黄色というように、黄色が濃くなり橙色がかると、カロチン含量も高くなった。さらに、主茎切断面の維管束のみが橙色である個体（葉色：黄色または淡橙黄色）よりも、維管束を含む主茎切断面全体が橙色である個体（葉色：橙黄色）の方がよりカロチン含量が高く、橙色無し（従来のキャベツ型）→維管束→維管束を含む主茎切断面全体というように橙色が出現する部分が増えると、カロチン含量も高くなった。
【００６６】
最もカロチン含量が高かった系統（Ｆ1 ×ａ）×ｄの中で、維管束を含む主茎切断面が橙色である個体を用いて、部位別にカロチン含量を測定した。同様に、従来のキャベツについても部位別に測定し、両者を比較した。この結果を表１１に示す。
【００６７】
【表１１】
0003995729.tif 000012
【００６８】
従来のキャベツでは、食用できる最外結球葉で２６０μｇ／１００ｇとなるが、食用となる大部分の結球葉はカロチン含量が低く（０〜３９μｇ／１００ｇ）、芯周辺ではほぼ０に等しくなってしまう。これに対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツはどの部位をとっても２４３μｇ／１００ｇ〜４０５μｇ／１００ｇと非常にカロチン含量が高かった。
【００６９】
また、葉軸についてみると、従来のキャベツでは最低０〜最高１１μｇ／１００ｇとほぼ０であるのに対し、Ｏｒ遺伝子を持っているキャベツの葉軸は、最低２２μｇ／１００ｇ〜最高９９０μｇ／１００ｇであり、カロチン含量が２〜９０倍以上高くなった。
（実施例３）
１９８９年７月にカイラン３系統とオレンジ・カリフラワーＮＹ１６３近交系統を播種した。１９９０年春にカイランを母親として、ＮＹ１６３と交雑した。同年７月に得られた交雑種子を播種し、Ｆ1 個体を生育させた。カイランの花芽の形態（食用にする部分）は、ブロコリーの小蕾がやや大きくなり、花枝全体も長く伸びたような形態をしている。カイランとオレンジ・カリフラワーのＦ1 個体は、淡橙色の花球に似た組織塊を形成するが、すぐに組織塊のほとんどの花芽が極めて小さい蕾となり（普通のカリフラワーの場合、花球の半数は休眠・未発達となり、花穂を形成しない）、色も淡橙色が消えて緑色となる。この緑色の小蕾の集まりは、ブロッコリーとカイランの中間的形態をしている。
【００７０】
１９９１年春にＦ1 個体の自殖（Ｆ2 種子）を行った。同年７月に得られたＦ2 種子を播種した。Ｆ2 個体の花球部を切り除いた主茎切断面の色について調査し、Ｆ2 分離比についてχ2 検定を行った。結果を表１２に示す。
【００７１】
【表１２】
0003995729.tif 000013
【００７２】
花球部を切り除いた主茎切断面の色の分離についてみると、橙色、淡橙色、橙色無し（カイランの主茎断面と同じ色）の３種類に分類できた。Ｆ2 世代３系統とも優性一遺伝子支配である３：１の分離比を示すとする仮説に適合したが、不完全優性一遺伝子支配である１：２：１の分離比を示すとする仮説は棄却され、橙色の遺伝は不完全優性一遺伝子支配ではないことが支持された。淡橙色よりも濃い橙色の個体の出現数が多かったので、Ｏｒ遺伝子がある時にその発現を促進する条件遺伝子Ａがあると考えられた。そこで、優性二遺伝子支配の時の分離比を仮説としてχ2 検定を行ったところ、９：３：４あるいは１０：２：４の分離比を示すとする仮説に適合した。
（実施例４）
１９９１年春に白菜２系統各４個体ずつにＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、種間雑種を作出することにした。各母本約１０００花に交配したが、交配子房が種子発育期間中にすべて落下してしまい、交配種子は一粒も得られなかった。従って、通常の交配方法では交雑種子は得られないと考えられた。そこで、翌年は通常の交配と同時に、交配後２〜５週間後の交配子房から無菌的に胚を取り出し、胚培養を行うことにした。
【００７３】
１９９２年春に白菜３系統及びカブ１系統の各個体ずつにＮＹ１６３自殖２代目の個体の花粉を交配した。通常の交配法による結果を表１３に胚培養による結果を表１４に示した。
【００７４】
【表１３】
0003995729.tif 000014
【００７５】
【表１４】
0003995729.tif 000015
【００７６】
表１３に示したように、通常の交配方法でも交配種子が得られたが、これらは発芽、定植後の生育状況からすべて傾母植物であった。表１４に示したように胚培養では交配子房１５３個から５９個の胚が得られ、このうち４６個が発芽した。培養中に、葉腋から腋芽がでるように組織培養を行い、複数のクローン個体を作った。発芽一個体から得られた複数のクローン個体を一つの系統とした。１９９２年の夏から秋にかけて鉢出しし、最終的に鉢出しできたのは８系統（Ｆ1 ）であった。鉢出し後の幼苗期の植物体の形態から、７系統は傾母植物で、残り１系統のみが種間雑種（Ｆ1 個体）であると考えられた。
【００７７】
１９９３年冬に、種間雑種と考えられる１系統のクローン個体１０個体について、花粉稔性の有無、形態的特性、橙色の有無の調査を行い、葉部のカロチン含量の定量を行った。１０個体とも両親の中間的特性を持ち、半結球であった。花粉稔性が全くない個体は９個体であった。残りの１個体は花粉稔性があり、蕾受粉による自殖及び放任受粉による採種が可能であった。また、不稔個体に比べ、可稔個体は葉や花の形態が大きかった。染色体数を調査したところ、２ｎ＝３８本であった。従って、この可稔個体は組織培養中に倍化された合成ナプスであり、残りの９個体はブラシカ・オレラセアとブラシカ・カンペストリスの種間雑種であると推定した。
【００７８】
合成ナプスと推定された可稔個体は、主茎と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示した。また、半結球葉に包まれた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色であった。
種子中のカロチン含量を測定したところ、従来のナタネでは、系統ａが５３μｇ／１００ｇ、系統ｂが２２μｇ／１００ｇであるのに対して、可稔個体の自殖種子は２０９μｇ／１００ｇと、非常に高いカロチン含量を示した。
【００７９】
１９９３年春に可稔個体に対して白菜による戻し交雑と蕾受粉による自殖を行った。結果を表１５に示す。
【００８０】
【表１５】
0003995729.tif 000016
【００８１】
表１５に示したように、可稔個体は、蕾受粉による自殖、白菜による戻し交雑、放任受粉による採種が可能であった。
（実施例５）
実施例４においてブラシカ・オレラセアとブラシカ・カンペストリスの種間雑種と推定した不稔性の９個体についてカロチン含量を定量した。従来の白菜では、結球内部の葉身部で３８μｇ／１００ｇ、葉柄部は０μｇ／１００ｇであった。これに対し、不稔個体では半結球内部の葉身部で４９６μｇ／１００ｇあり、従来の白菜に比べて非常にカロチン含量が高かった。また、これらの不稔個体も実施例４の可稔個体と同様に主茎と葉柄の接合部が薄い淡橙色を示し、半結球葉に包まれた中心の小葉及び根部の横断面全体も淡橙色であった。
【００８２】
１９９３年春に不稔個体６個体に白菜２系統及びカブ１系統の花粉を交配して戻し交雑を行い、ＢＣ1 Ｆ1 個体を作出することにした。交配後そのまま植物体上で発育させて種子を得る方法と、交配後１５日から３０日の交配子房から胚を無菌的に取り出して培養する方法の２通りを行った。この結果を表１６及び表１７に示す。
【００８３】
【表１６】
0003995729.tif 000017
【００８４】
【表１７】
0003995729.tif 000018
【００８５】
表に示したように、通常の交配法でも戻し交雑種子が少し得られた。胚培養した場合では、２０子房から１２の胚が得られ、４個体が発芽した。従って、通常の戻し交雑交配法及び胚培養法のどちらの方法を不稔個体に用いてもＢＣ1 Ｆ1 個体が得られる。
（実施例６）
１９９１年春に大根５系統各２個体ずつにＮＹ１６３自殖１代目の２個体の花粉を交配し、属間雑種を作出することにした。各母本約１０００花に交配したところ、ほとんど種子は得られなかったが、系統Ａの１個体から雑種種子と思われる交雑種子が７粒得られた。同年７月にこれらの７粒を播種したところ、３粒発芽し、生育した。生育途中で１個体が挫死したが、２個体は生育を続け、開花に至った。両個体とも、植物体上部の外観、花の形態・色は非常に大根に類似し、外観の色は淡緑色が強く、父親由来の橙色の有無は外観からはっきりしなかった。根部は大根のように太らず、細い主根であった。しかし、２個体とも花粉稔性は全く無かった。
【００８６】
１９９２年春にこれら属間雑種２個体（Ｆ1 ）に大根系統ｂ、ｃの花粉を交配し、ＢＣ1 Ｆ1 個体を作出することにした。交配後２０日から３０日ぐらいで交配子房のすべてが落下してしまい、戻し交雑種子を得ることは非常に困難であると考えられた。そこで、交配子房が落下しないうちに胚培養を行うことにした。交配後６日から３０日の子房から無菌的に胚を取り出し、培養した。
【００８７】
【表１８】
0003995729.tif 000019
【００８８】
表に示したように、交配子房７４個体から７０個の胚が得られ、このうち２２個が発芽した。培養中に、葉腋から腋芽が出るように組織培養を行い、複数のクローン個体を作った。発芽した一個体から得られた複数のクローン個体を一つの系統とした。１９９２年夏から秋にかけて鉢出しし、最終的に鉢出しできたのは１５系統（ＢＣ1 Ｆ1 ）であった。
【００８９】
１９９３年冬に、上記のＢＣ1 Ｆ1 世代１５系統について花粉稔性の有無、形態的特性、橙色の有無の調査を行い、更に根部のカロチン含量の定量を行った。この結果を表１９に示す。
【００９０】
【表１９】
0003995729.tif 000020
【００９１】
表に示したように、花粉稔性が全くないか非常に低い系統がほとんどであったが、１５系統のうち４系統は花粉稔性があった。植物体上部の外観、花の形態・色は、Ｆ1 の時と同様に非常に大根に類似し、外観の色は緑が強く、父親由来の橙色の有無は外観からでははっきりしなっかった。根部は大根のように太らず、細い主根であったが、Ｆ1 よりは太い傾向があった。ＢＣ1 Ｆ1 １５系統各々からクローン個体１個体を縦に切断してみたところ、淡橙色を示す個体があった。淡橙色を示す部位は茎部と根部の境から上部の一部分の維管束あるいは根の髄組織及び維管束を中心とする切断面全体であった。ＢＣ1 Ｆ1 世代１０系統についカロチン含量を測定したところ、供試１０系統中８系統でカロチンを含有していた。最高１５９μｇ／１００ｇで平均７５μｇ／１００ｇであった。
【００９２】
１９９３年春に、根部が淡橙色でカロチンを含有していると思われる４系統に大根の花粉を交配し、戻し交雑を行いＢＣ2 Ｆ1 個体を作出することにした。
【００９３】
【表２０】
0003995729.tif 000021
【００９４】
表に示したように４系統とも花粉稔性は非常に低いか全く無いにもかかわらず、交配種子を得ることができた。また、橙色に関しては不明または無い系統であるが、花粉稔性を持っている系統（Ｎｏ１、３）は、放任受粉による種子が得られた。同年９月に採取できた戻し交雑種子（ＢＣ2 Ｆ1 種子）を播種したところ、５０％前後の発芽率があった。
【００９５】
【発明の効果】
本発明は新規なアブラナ科植物を提供する。本発明により提供されるアブラナ科植物は、従来微量しかカロチンを含まなかった部位においても多量のカロチンを含み、食用、鑑賞用植物等として有用である。