(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式［III］で表される化合物を含有する抗癌剤。
【化１】
0004003369.tif 000011
〔Ｒ1、Ｒ2、Ｒ3、Ｒ4は水酸基、もしくは水酸基に変換し得る基を表し、Ｒ5、Ｒ6は炭素数１１〜２３のアルキル基、アルケニル基から選ばれた基を表す。〕
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は微小管重合促進作用または微小管解重合阻害作用を有する化合物に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
微小管は真核生物に存在する管状蛋白繊維である。この微小管を構成する主蛋白質がチューブリンであり、α−チューブリンとβ−チューブリン各１分子が結合したヘテロ２量体を基本単位として重合し、通常１３本のプロトフィラメントからなる管状構造の微小管を形成する。
【０００３】
微小管は紡錘体の主成分として知られ、細胞周期Ｍ期における有糸分裂の制御に強く関与している〔サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）、２４６、６２２（１９８９）；セル（Ｃｅｌｌ）、７１、５４７（１９９２）〕。
【０００４】
微小管の形成を制御し、その結果、細胞分裂阻害などの様々な生物活性を有する化合物が発見されており、抗癌剤、抗カビ剤、駆虫薬、除草剤など幅広く用いられている。
【０００５】
これらの薬剤は微小管に対する作用機序から、重合阻害剤と重合促進剤（解重合阻害剤を含む）に分類することができる。微小管重合阻害作用を示す化合物は今までに多数が見つかり臨床応用されている。一方、重合促進作用または解重合阻害作用を示す化合物として臨床応用されている化合物としては、タキサン骨格を有するタキソール（Ｔａｘｏｌ、一般名Ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）とタキソテール（Ｔａｘｏｔｅｒｅ、一般名  Ｄｏｃｅｔａｘｅｌ）があり、乳癌、卵巣癌、子宮癌などの治療薬として高い評価を得ている（Ｅ．Ｋ．Ｒｏｗｉｎｓｋｙら，Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ．Ｉｎｓｔ．，８２：１２４７−１２５９（１９９０））。
【０００６】
しかしながら、これらの化合物には原料を安定供給するという観点から問題がある。タキソールは西洋イチイの樹皮から抽出されるが、その含有量は極めて少ない。タキソテールは、イチイ類の葉から得られる１０−デアセチルバッカチンIIIなどを原料として半合成により供給している。したがって、いずれもイチイを原料としているため、大量に安定供給することが難しい。また、イチイをその原料とし大量に伐採することは、最終的には深刻な環境破壊を引き起こすといった欠点も有している。
【０００７】
これらの問題を解決するために、細胞培養を利用して生産する方法や全化学合成する方法が検討されている。全化学合成法は、タキサン骨格の複雑な化学構造から予想できるように、高価な試薬と複雑な反応経路を要し、収率も低いことから、本分野では使用されていない。一方、細胞培養を利用する方法についても検討されているが、数ｍｇ〜数百ｍｇ／Ｌのタキソールを生産するのに４０〜５０日を必要とし（Ｅ．Ｒ．Ｍ．Ｗｉｃｋｒｅｍｅｓｉｎｅ等，Ｗｏｒｌｄ  Ｃｏｎｇｒｅｓｓ  ｏｎ  Ｃｅｌｌ  ａｎｄ  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ（１９９２）、特開平１０−５０４７２６）、産業上利用できる生産性を有していると言い難い。また、細胞培養による生産方法は不安定であり、高生産性の一次細胞が得られたとしても、その生産性を確保するのは難しいといった欠点も有している。
【０００８】
さらに、タキサン骨格を持つ化合物を利用する場合の別の欠点として、水溶性の低さがある。そのため、可溶化剤であるポリオキシエチレンヒマシ油（商品名クレモフォアＥＬ）とエタノールの５０／５０（Ｖ／Ｖ）の混合液にタキソールを溶解し、これを生理食塩水にて１０倍に希釈して調製した注射剤を点滴静脈内投与するなどの対応が行われている（特開平０８−１１３５８９）。しかしながら、ポリオキシエチレンヒマシ油に由来する副作用が知られており、該副作用を回避するために、タキソールの水溶性誘導体および水溶性製剤についての検討が数多く報告されている。例えば、ＷＯ９０／１０４４３号（Ｖ．Ｊ．Ｓｔｅｌｌａ等）、アメリカ合衆国特許第５，１５７，０４９号（Ｒ．Ｄ．Ｈａｕｇｗｉｔｚ等）、欧州特許第０５３７９０５号（Ｄ．Ｇ．Ｉ．Ｋｉｎｇｓｔｏｎ等）、アメリカ合衆国特許第５，４１１，９８４号（Ｄ．Ｇ．Ｉ．Ｋｉｎｇｓｔｏｎ等）、アメリカ合衆国特許第５，４２２，３６４号（Ｋ．Ｃ．Ｎｉｃｏｌａｏｕ等）、ＷＯ９５／１８８０４号（Ｋ．Ｃ．Ｎｉｃｏｌａｏｕ等）、欧州特許第０５５８９５９号（ブリストル  マイヤーズ  スクイブ社）および欧州特許第０６３９５７７号（ブリストル  マイヤーズ  スクイブ社）などに開示されている。しかしながら、これらの方法は安定供給の問題を何ら解決していない。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
微小管重合促進作用または解重合阻害作用を有し、かつタキサン骨格を有する化合物に比べ、安定供給を可能とする簡単な化学構造を持ち、さらに水溶性が高い、タキソール、タキソレートに換わる化合物を見いだすことが求められている。
【００１０】
【課題を解決するための手段】
このような状況において、本発明者らは、微小管重合促進作用または微小管解重合阻害作用を示す化合物を海洋生物の中に求め、探索した結果、カイメンより単離した化合物群に微小管重合促進作用または解重合阻害作用を有することを見出した。
【００１１】
以下、本発明について詳細に説明する。
前記一般式［III］において、Ｒ1、Ｒ2、Ｒ3、Ｒ4で表される水酸基に変換し得る基としては、炭素数１ないし６のアルコキシ基（例えば、メトキシ基、エトキシ基、プロポキシ基、イソプロポキシ基、ブトキシ基、イソブトキシ基、ｓｅｃ−ブトキシ基、ｔｅｒｔ−ブトキシ基、ペンチルオキシ基、イソペンチルオキシ基、ネオペンチルオキシ基、ヘキシルオキシ基など）、炭素数６ないし１０のアリールオキシ基（例えば、フェノキシ基、ナフトキシ基など）、炭素数７ないし１２のアラルキルオキシ基（例えば、ベンジルオキシ基、フェネチルオキシ基、ナフチルエチルオキシ基など）、炭素数１ないし６のアルキルカルボニルオキシ基（例えば、アセチルオキシ基、プロピオニルオキシ基など）、炭素数６ないし１０のアリールカルボニルオキシ基（例えば、ベンゾイルオキシ基、ナフチルカルボニルオキシ基など）、炭素数７ないし１２のアラルキルカルボニルオキシ基（例えば、ベンジルカルボニルオキシ基、フェネチルカルボニルオキシ基など）、糖類などが挙げられる。Ｒ1、Ｒ2、Ｒ3、Ｒ4で表される水酸基に変換し得る基は、置換基を有していてもよく、これら置換基としては、例えば、ハロゲン、糖類、アルコキシ基、カルボキシル基、スルホ基が挙げられる。Ｒ1、Ｒ2、Ｒ3、Ｒ4としては水酸基が好ましい。
【００１５】
一般式［III］において、Ｒ5、Ｒ6で表されるアルキル基、アルケニル基は炭素数１１から２３である。不飽和炭化水素における２重結合の数としては、好ましくは１から６である。
【００１７】
一般式［III］で表される化合物の塩としては、薬学的に許容される塩が好ましく、例えば、無機塩基、有機塩基、塩基性アミノ酸などの塩基との塩、無機塩、有機酸、酸性アミノ酸などの酸との塩が挙げられる。
【００１８】
無機塩基の塩としては、例えば、アルカリ金属塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩など）、アルカリ土類金属塩（例えば、カルシウム塩、マグネシウム塩など）、アルミニウム塩、アンモニウム塩などが挙げられ、有機塩基との塩としては、例えば、トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコリン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、ジシクロヘキシルアミン、Ｎ，Ｎ′−ジベンジルエチレンジアミンなどとの塩が挙げられ、無機酸との塩としては、例えば、塩酸、臭化水素酸、硝酸、硫酸、リン酸などとの塩が挙げられ、有機酸との塩としては、例えば、ギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、フマール酸、シュウ酸、酒石酸、マレイン酸、クエン酸、コハク酸、リンゴ酸、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸などとの塩が挙げられ、塩基性アミノ酸との塩としては、例えば、アルギニン、リジン、オルニチン塩との塩が挙げられ、塩基性または酸性アミノ酸との塩としては、例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸との塩などが挙げられる。このような塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、塩酸塩、酢酸塩、シュウ酸塩、クエン酸塩などが好ましく、ナトリウム塩、カリウム塩、塩酸塩などがより好ましい。
【００１９】
本発明の化合物を得るには、天然物から目的の化合物を抽出精製する方法、天然物から抽出精製された化合物を修飾することにより化学合成する方法、目的とする化合物を全化学合成する方法などが考えられるが、本発明はこれら製造方法により限定されるものではない。
【００２０】
本発明の化合物を得る方法の一つとして、天然物から抽出精製する方法が挙げられるが、天然物としては、本発明の化合物もしくはその前駆体を含有していればよく、特に限定されるものではない。本発明の化合物を含有している一つの例として海洋から採取されたカイメンが挙げられる。目的化合物のカイメンからの抽出精製は、公知の方法の組み合わせにより達成可能である。即ち、カイメンをホモジナイズした後、抽出目的とする化合物を有機溶剤で抽出し、さらに抽出物を有機溶剤／水系により数回抽出操作を繰り返す。抽出された化合物をさらに精製するためには、イオン交換カラム、ゲル濾過カラム、逆相系カラム、順相系カラムなどの各種カラムを利用して分離精製することが可能である。単離された化合物の精製度の確認は、例えば、薄相クロマトグラフィーや元素分析などを行うことにより可能である。あるいは、単離された化合物の質量分析、1Ｈ−ＮＭＲ、13Ｃ−ＮＭＲの結果を基準品と比較することにより可能である。
【００２１】
本発明の化合物を抗癌剤として使用する場合、本発明の化合物は単独で投与しても良いし、あるいは医薬的に許容される担体に含有させても良い。担体としては固形、半固形、又は液状の希釈剤、充填剤、及びその他の処用の助剤などが用いられる。本発明の化合物を含有する医薬組成物は、経口投与、組織内投与、局所投与（経皮投与等）又は経直腸的に投与することができ、これらの投与方法に適した剤型で投与される。
【００２２】
経口投与は固形または液状の用量単位、例えば、末剤、散剤、錠剤、糖衣剤、カプセル剤、顆粒剤、懸濁剤、液剤、シロップ剤、ドロップ剤、舌下錠、坐剤、その他の剤型によって行うことができる。固形の医薬組成物は、適切な結合剤、滑剤、分散剤、希釈剤、崩壊剤、風味剤、着色料、香料、流動化剤、および溶解剤などを含んでもよい。液状の医薬組成物は、水溶液または水懸濁液、医薬に許容可能な脂肪または油、アルコール類またはその他の有機溶剤、例えば乳濁液、エステル、エリキシル、シロップ、非発泡性顆粒から作った溶液、または懸濁液、発泡性顆粒から作った発泡性製剤などを含んでもよい。また、適した溶剤、保存料、乳化剤、沈殿防止剤、希釈剤、甘味料、増粘剤および溶解剤を含有してもよい。さらに、風味剤、香料、着色料を含有してもよい。
【００２３】
組織内投与は液状の用量単位、例えば溶液や懸濁剤の形態として、皮下・筋肉又は静脈内注射などにより行うことができる。これらのものは、本発明の化合物を、注射の目的に適合する非毒性の液状担体に溶解し利用することができる。さらに、非毒性の塩や塩溶液を添加してもよい。また安定剤、保存剤、乳化剤のようなものを併用することもできる。
【００２４】
直腸投与は、化合物を低融点の水に可溶又は不溶の固体、例えばポリエチレングリコール、カカオ脂、高級エステル類、及びそれらの混合物を混じた坐剤を用いることによって行うことができる。
【００２５】
抗癌剤としての用量は、年齢、体重、病気の性質、程度等の患者の状態、投与経路を考慮した上で調製することが望ましい。
【００２６】
【実施例】
以下により、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。
【００２７】
実施例１
［精製ブタ脳微小管を用いる生物検定法］
（１）微小管の調製
東京食肉センターより購入したブタ脳をＭＥＳ  ｂｕｆｆｅｒ（１００ｍＭ  ＭＥＳ，１ｍＭ  ＥＧＴＡ，０．５ｍＭ  ＭｇＣｌ2・６Ｈ2Ｏ，１ｍＭ  ＧＴＰ，１ｍＭ  ２−ＭＥ）存在下で、１分間ホモジナイズした後、超遠心分離を行った（４℃、５００００Ｇ、３０分、日立ｈｉｍａｃ  ６０Ｅ）。上清の微小管懸濁液にグリセロールｂｕｆｆｅｒを加え（８Ｍ  Ｇｌｙｃｅｒｏｌ，１００ｍＭＭＥＳ，１ｍＭ  ＥＧＴＡ，０．５ｍＭ  ＭｇＣｌ2・６Ｈ2Ｏ，１ｍＭ  ２−ＭＥ）、３７℃で３０分インキュベートすることで微小管を重合させた。得られた微小管懸濁液を３０℃、１００，０００Ｇで４５分間超遠心することで微小管のペレットを得た。得た微小管のペレットを氷冷下で解重合させた。重合・解重合の操作を２度繰り返すことで、高純度の微小管蛋白質を得た。蛋白質の定量をピアス社のクーマシーブルータンパク測定キットにて行い、１．３ｍｇ／ｍｌに調製した。
【００２８】
（２）微小管重合促進活性の測定
この方法［ジャーナル・オブ・アンチバイオティクス（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆＡｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ）、４０，６６，（１９８７）］は、以前より精製された微小管機能阻害物質の活性測定に利用されていたが、本研究ではこれをスクリーニング法として応用するための改良を行った。スクリーニング法として応用するために一番障害となるのは、抽出物や培養液の色である。また、海洋生物を対象物とした場合、塩の混入の問題を克服する必要があった。
【００２９】
まず、重合促進および解重合阻害物質としてタキソールを標品として、微小管の重合促進及び解重合阻害を検出する条件設定を行った。塩の混入はエタノール抽出により脱塩する方法を採用した。その結果、重合及び解重合の阻害活性を連続的に検出するスクリーニングは、以下の手順により達成できる事が明かとなった。
【００３０】
１．脱塩した試料を微小管懸濁液に０℃で加え、直ぐに４００ｎｍで濁度を測定する（日立Ｕ−３０００スペクトロフォトメーター）。（ＤＭＳＯ  ２０μｌに溶解した試料を微小管懸濁液１ｍｌに入れて測定する。海洋生物を試料として用いる場合、最終濃度を０．１μｇ／ｍｌとする。）
２．１０℃で１５〜２０分インキュベートし、４００ｎｍで濁度を測定する。
【００３１】
３．これを３７℃に温め、１５〜２０分その温度でインキュベートし、４００ｎｍで濁度を測定する。
【００３２】
４．次に、３７℃のままＣａＣｌ2を４ｍＭになる様に加え、４００ｎｍで濁度を測定する。
【００３３】
着色した試料は、手順１の値を０点とすれば濁度の変化を検出でき、コントロール（試料の代わりに水を加えたものをコントロールとする）と直接比較する事ができた。
【００３４】
重合促進活性（％）は、以下の式により算出する。
重合促進活性（％）＝Ｓ［手順２（１０℃）の濁度−手順１（０℃）の濁度］／Ｃ［手順３（３７℃）の濁度−手順１（０℃）の濁度］×１００
ここで、Ｓは試料、Ｃはコントロールを表す。
【００３５】
数値が大きい程、強い重合促進活性を示す（コントロールは０％）。
解重合阻害活性（％）は、
Ｃ［手順３（３７℃）の濁度−手順１（０℃）の濁度］をＣ（重合）、
Ｃ［手順３（３７℃）の濁度−手順４（Ｃａ添加）の濁度］をＣ（解重合）、
Ｓ［手順３（３７℃）の濁度−手順１（０℃）の濁度］をＳ（重合）、
Ｓ［手順３（３７℃）の濁度−手順４（Ｃａ添加）の濁度］をＳ（解重合）として、以下の式で算出した値を使い、
解重合阻害活性（％）＝〔Ｓ（解重合）×Ｃ（重合）〕／〔Ｓ（重合）×Ｃ（解重合）〕×１００
で判定する。
【００３６】
数値が小さい程、強い解重合阻害活性を示す（コントロールは１００％）。
（３）海洋生物抽出物のスクリーニング結果
採取した数百種類の海洋生物についてジクロロメタン／メタノール（１：１）により抽出を行い、濃縮、乾固して抽出物を得た。抽出物の最終濃度を１００μｇとなるように調製した後、上記の活性測定を行った。その結果、西表島で採取したＰｓｅｕｄｏｃｅｒａｔｉｎａ属のカイメン（ＭＮ００３）に微小管重合促進作用および解重合阻害作用が確認された。その結果を表１に示す。
【００３７】
【表１】
0004003369.tif 000002
【００３８】
実施例２
［カイメンＭＮ００３からの活性物資の単離］
西表島で採集したＰｓｅｕｄｏｃｅｒａｔｉｎａ属のカイメンＭＮ００３（３５５．０ｇ湿質量）をジクロロメタン／メタノール（１：１）５００ｍｌで３回抽出した。抽出液を濃縮・乾固した後、蒸留水／酢酸エチル（１：３）４００ｍｌで３回抽出した。酢酸エチル抽出層に活性が確認され、１．５７ｇの抽出物を得た。該抽出物をシリカゲルカラム（メルク社製、シリカゲル６０、２３０−４００ｍｅｓｈ、直径２ｃｍ×５２ｃｍ、８０ｇ）を用いて、クロロホルム／メタノールの混合溶剤にて分離した（５％メタノール２００ｍｌ、１０％メタノール１５０ｍｌ、１５％メタノール３８５ｍｌ、１００％メタノール２００ｍｌ）。
【００３９】
１０％メタノールで溶出されたフラクションに活性が認められ、６６．８ｍｇの分離物を得た。さらにこの分離物をＬＨ−２０カラム（セファデックス、１ｃｍ×３５ｃｍ、２７．５ｍｌ）を用いクロロホルム／メタノール（１：１）３００ｍｌを溶離液として５つのフラクションに分離した。２番目のフラクションに活性が認められ、９ｍｇの分離物を得た。さらに分離物をシリカゲルカラム（丸石化学薬品商店、特製シリカゲル、ＮＡＭ−３００ＨＦ２５４、１ｃｍ×３０ｃｍ、１８ｇ）を用いてベンゼン／アセトン混合溶剤にて１０個のフラクションに分離した（１００％ベンゼン３０ｍｌ、１０％アセトン２４ｍｌ、２０％アセトン１３０ｍｌ、１００％アセトン３０ｍｌ）。２０％アセトンにて溶出されたフラクション７、フラクション８、フラクション９に活性が認められた。それぞれ、３ｍｇ、０．６ｍｇ、０．６ｍｇの分離物を得た。それぞれのフラクションの純度を薄層クロマトグラフィー（展開溶剤にクロロホルム／メタノールの９：１を使用）を用いて精製度を確認した後、後述する方法にて各フラクションの化合物の構造決定をした。
【００４０】
実施例３
［単離化合物の構造決定］
フラクション７の化合物の構造解析を行った。
【００４１】
図１はフラクション７のＥＳＩＭＳスペクトルを、図２はフラクション７の1Ｈ−ＮＭＲを、図３はフラクション７の13Ｃ−ＮＭＲを表す。
【００４２】
ＥＳＩＭＳスペクトル（図１）から、本化合物は少なくとも３種類（ｍ／ｚ  ６９５，７０９，７２３）の混合物であることが確認された。また、1Ｈ−ＮＭＲ（図２、表２）および13Ｃ−ＮＭＲ（図３、表２）から、これらの化合物は長鎖アルキル基を持ち、構造の非常に類似した同族体から構成されていることがわかった。
【００４３】
【表２】
0004003369.tif 000003
【００４４】
構造は、1Ｈおよび13Ｃ−ＮＭＲ、1Ｈ−1Ｈ  ＣＯＳＹ、ＨＭＱＣおよびＨＭＢＣスペクトル（表２）を詳細に解析して決定した。ｄH５．１８（Ｈ−２）とｄC１７４．１（Ｃ−１″′）のシグナルがＨＭＢＣコレレーションを示すことから、エステル（長鎖脂肪酸エステル）の存在が推定された。酸素の付け根（炭素１〜３および１′〜５′）の1Ｈ−1Ｈ  ＣＯＳＹおよびＨＭＢＣスペクトルから、１位と３位がエーテル結合し、２位がエステル結合したグリセロールとシクロペンタンペンタアルコールの部分構造を持つことがわかった。よって化合物Ａ群は、１位に環状糖アルコールがエーテル結合し、２位に長鎖脂肪酸エステル、３位に長鎖アルキル基がエーテル結合したグリセロール誘導体であると考えられた。フラクション７から分離された化合物の構造を下記に示す。
【００４５】
【化５】
0004003369.tif 000004
【００４６】
次に、フラクション９の化合物の構造解析を行った。
図４はフラクション９のＥＳＩＭＳスペクトルを、図５はフラクション９の1Ｈ−ＮＭＲを表す。
【００４７】
フラクション９のＥＳＩＭＳスペクトル（図４）および1Ｈ−ＮＭＲ（図５、表３）から、本化合物も同族体の混合物であると考えられる。また、1Ｈ−ＮＭＲから、こちらは糖を含む長鎖脂肪酸エステルと思われる。
【００４８】
【表３】
0004003369.tif 000005
【００４９】
ｄC１０４．１（ｄH４．２８）のシグナルはアセタールの存在を示し、1Ｈ−1Ｈ  ＣＯＳＹスペクトルを解析すると表３に示した炭素番号１′から６′の六炭糖の存在が明らかとなった。糖由来のシグナルのほかに、酸素が結合した炭素のシグナルが３つあるが（表３の１〜３）、ケミカルシフトと1Ｈ−1Ｈ  ＣＯＳＹスペクトルの解析から、２，３位にエステル結合をもつグリセロールの存在が推定された。ｄH５．３４にはシス二重結合に特徴的な２プロトン分のシグナルが検出された。またエステルカルボニルのα位（ｄC３４．３，ｄH２．３１）とβ位（ｄC２５．０，ｄH１．６２）および二重結合のα位（ｄC２７．３，ｄH２．０１）のメチレンシグナルがそれぞれ２つ分観察されることから、化合物Ｂ群の主成分［ＥＳＩＭＳ，ｍ／ｚ  ７５１（Ｍ＋Ｎａ）＋（図４）］は脂肪酸と１つのシス二重結合を持つ脂肪酸が１つずつエステル結合し、１位に六炭糖が結合したグリセロール誘導体（脂質）であると考えられた。フラクション９から分離された化合物の構造を下記に示す。
【００５０】
【化６】
0004003369.tif 000006
【００５１】
フラクション８は構造解析の結果、フラクション７とフラクション９の混合物であることが推定された。
【００５２】
実施例４
［活性測定］
実施例１の測定法に従い、フラクション７の化合物群とフラクション９の化合物群について微小管重合促進活性、微小管解重合阻害活性を測定した。その結果を表４および表５に示す。表４はＯＤ値（吸光度）、表５は活性％を表す。
【００５３】
【表４】
0004003369.tif 000007
【００５４】
【表５】
0004003369.tif 000008
【００５５】
以上の結果より前記「化５」で示されるフラクション７の化合物群、「化６」で示されるフラクション９の化合物群には、微小管重合促進活性および微小管解重合阻害活性が認められることが確認された。
【００５６】
実施例５
［溶解性の比較］
タキソール、フラクション７の化合物群、フラクション９の化合物群の溶解性を比較検討した。既知量の化合物を１ｍｌのダルベコＰＢＳ（−）に添加後、超音波分散を行い、その溶解性を目視により判定した。その結果を表６に示す。
【００５７】
【表６】
0004003369.tif 000009
【００５８】
以上より、フラクション７の化合物群、フラクション９の化合物群はタキソールに比べて水溶性が高いことが確認された。
【００５９】
実施例６
［細胞増殖阻害効果の確認］
フラクション７の化合物群、及びフラクション９の化合物群をマウスリンパ腫由来細胞株（Ｌ１２１０）に感作させることで、フラクション７の化合物群、及びフラクション９の化合物群時の細胞増殖阻害効果を確認した。
マウスリンパ腫由来細胞株Ｌ１２１０を１×１０4ｃｅｌｌ／ｍｌの濃度で培地に懸濁し、９６穴マイクロタイタープレートの各ウエルに９０μｌずつ分注した。Ｌ１２１０細胞の培養は、常法に従いＭＥＭ（ギブコ社製、米国）に牛胎児血清（フロー  ラボラトリーズ社製、米国）を１０％添加した培地を使用した。３７℃、５％ＣＯ2に設定した炭酸ガスインキュベーターで半日間前培養を行った。次いで、リン酸生理食塩水に溶解したフラクション７の化合物群またはフラクション９の化合物群（それぞれ１００μｇ／ｍｌ  、３０μｇ／ｍｌ、１０μｇ／ｍｌ）を細胞懸濁液が分注してある各ウエルに１０μｌずつ添加した。ブランクにはリン酸生理食塩水のみを１０μｌ添加した。添加後さらに３日間培養を行った。
【００６０】
細胞増殖の観測には細胞毒性測定用試薬（Ｃｅｌｌ  ｃｏｕｎｔｉｎｇ  ｋｉｔ  ８、同仁化学社製）を用いた［タランタ（Ｔａｌａｎｔａ）、４４、１２９９（１９９７）］。各ウエルにＣｅｌｌ  ｃｏｕｎｔｉｎｇ  ｋｉｔ  ８溶液を１０μｌ添加し、上記炭酸ガスインキュベーターにて３時間保温した後に、４５０ｎｍでの吸光度をマイクロプレートリーダーＭＰＲ  Ａ４（東ソー社製）を用いて測定した。ブランクに対する吸光度から細胞増殖の阻害率を計算した。その結果を表７に示す。ＯＤ値が大きいほど細胞増殖が進行していることを示す。
【００６１】
【表７】
0004003369.tif 000010
【００６２】
表７の結果から解るように、フラクション７の化合物群およびフラクション９の化合物群は、濃度の上昇に伴い細胞の増殖を抑制していることが解る。
【００６３】
【発明の効果】
本発明の化合物は、微小管重合促進作用または微小管解重合阻害作用を示し、従来のタキサン骨格を有する化合物に比べ簡単な化学構造を持つため、安定供給が可能であり、さらに水溶性が高く、細胞の増殖を抑制する効果を有することから、抗癌剤、抗カビ剤、駆虫薬、除草剤などに有用である。
【図面の簡単な説明】
【図１】フラクション７のＥＳＩＭＳスペクトルを示す。
【図２】フラクション７の1Ｈ−ＮＭＲスペクトルを示す。
【図３】フラクション７の13Ｃ−ＮＭＲスペクトルを示す。
【図４】フラクション９のＥＳＩＭＳスペクトルを示す。
【図５】フラクション９の1Ｈ−ＮＭＲを示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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