(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
表層蛋白質を有するウイルスを直接、検出するウイルス検出方法であって、
微小固体担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質に親和性のある分子を固定させたウイルス凝集検査薬を、前記ウイルスを含むサンプルと接触させる工程と、
陽性対照試薬および陰性対照試薬を用いて凝集の有無を確認する工程と、を包含し、
前記ウイルスは、ヘルペスウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、パラミクソウイルス、またはヒトＴ細胞白血病ウイルスであり、
前記陽性対照試薬は、微小固体担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質の一部または全部を固定させた偽ウイルスモデルであり、
前記陰性対照試薬は、ウイルス表層の蛋白質の一部または全部を含有する溶液であり、
前記親和性のある分子は、モノクローナル抗体、ＣＤ４またはポリペプチドであることを特徴とするウイルス検出方法。
【請求項２】
前記微小固体担体は、ラテックスビーズ、ポリスチレンビーズ、または金コロイドである請求項１に記載のウイルス検出方法。
【請求項３】
請求項１または２に記載のウイルス凝集検査薬、請求項１に記載の陽性対照試薬、および請求項１に記載の陰性対照試薬を含んでなることを特徴とするウイルス検査用キット。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、ウイルス感染者血液中に形成された抗ウイルス抗体を介さずに血液中のウイルスを直接、感度良く検出することのできるウイルス検出方法およびウイルス検査用キットに関するものである。本発明のウイルス検出方法およびウイルス検査用キットは、ＤＮＡウイルス，ＲＮＡウイルスのいずれのタイプのウイルスにも有効であるが、特に持続性感染を引き起こすウイルスを検出するのに有効であり、なかでも、非Ａ非Ｂ型肝炎の主な原因となるＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）や、後天性免疫不全症候群（エイズ）ウイルス（ＨＩＶ）の検出に有用である。
背景技術
ウイルス疾患のうちでも、近年、特にその治療法が問題となっている上記Ｃ型肝炎やエイズは、ウイルスそのものの変異が激しく、長年の間その実体が不明であったこともあり、二次感染が多発し感染者の増加を有効に防止することができていなかった。しかしながら近年における遺伝子解析技術の著しい発展により、これらウイルスの一次構造が次々と解明されるに至って、その検出法がようやく確立され、二次感染の増大にも歯止めがかかる様になった。即ち、上述したいずれのウイルスにおいても、変異の激しい表層の蛋白質に比べて核蛋白質は一次構造をよく保っていることが分かり、更に遺伝子工学技術の発展によってこれら蛋白質の大量生産が可能になったことから、表層の蛋白質に加えて核蛋白質を抗原として用い、患者の血清中に形成された抗ウイルス抗体を検出する方法が開発され、現在、日常検査法として普及している。
しかしながら、これらの検査法は、ウイルス感染者の体内に、ウイルスが感染してから抗体ができるまでの期間、少なくとも２〜３カ月間は、感染の有無を判定することができず、二次感染を有効に防ぐことができないという問題を持つだけでなく、膠原病などの自己免疫疾患の場合、偽陽性が現れやすく診断がつきにくいのが現状である。また、母子感染の場合、子供は親から受け継いだ抗体を持っているために、このような抗体検査だけでは、感染しているかどうかの正確な判断が得られないという問題も残る。
一方、これらのウイルスの構成蛋白質のなかで、一次構造が比較的良く保存されている逆転写酵素（リバーストランスクリプターゼ：ＲＴ）を、ポリメラーゼチェーンリアクション（ＰＣＲ）法により、それらの遺伝子を増幅して検出するＲＴ−ＰＣＲ法が用いられているが、前述した抗体検出法に比べて簡便なものとは言い難い。そこで、従来の患者血清中の抗ウイルス抗体を検出する診断法やＲＴ−ＰＣＲ法に代わって、ウイルスそのものを直接検出できる新規な方法を提供することが切望されている。
発明の開示
本発明は上記事情に着目してなされたものであって、その目的は、患者血清中に生成される抗ウイルス抗体を検出する従来の抗体検査法に代わって、抗体を介さずに直接、短時間で感度良く血清中のウイルスを検出することのできる新規なウイルス検出方法を提供することにある。
上記課題を解決することのできた本発明のウイルス検出方法とは、表層蛋白質を有するウイルスを直接、検出するウイルス検出方法であって、微小固体担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質に親和性のある分子を固定させたウイルス凝集検査薬を、前記ウイルスを含むサンプルと接触させる工程と、陽性対照試薬および陰性対照試薬を用いて凝集の有無を確認する工程と、を包含し、前記陽性対照試薬は、微小固体担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質の一部または全部を固定させた偽ウイルスモデルであり、前記陰性対照試薬は、ウイルス表層の蛋白質の一部または全部を含有する溶液であり、前記親和性のある分子は、モノクローナル抗体、ＣＤ４またはポリペプチドであるところに要旨を有するものである。
本件発明のウイルス検出方法は、パルヴォウイルス、パポヴァウイルス、ヘルペスウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス等のＤＮＡウイルス：パラミクソウイルス、トガウイルス、レトロウイルス（エイズウイルスやヒトＴ細胞白血病ウイルス等）、Ｃ型肝炎ウイルスなどのＲＮＡウイルスを検出するのに有効である。
上記微小固体担体は、ラテックスビーズ、ポリスチレンビーズ、または金コロイドであることが好ましい。
また、本発明のウイルス検査用キットは、上述したウイルス凝集検査薬、陽性対照試薬および陰性対照試薬を含んでなるところに要旨を有するものである。
発明を実施する為の最良の形態
本発明者らは、従来の抗体検査法に代わって、血清中のウイルスを直接検出することのできる新規なウイルス検出方法について鋭意検討したところ、感染者の血液中に存在するウイルス表層の蛋白質を介して、この領域に親和性のある分子で標識された担体が凝集することによって、該ウイルスを直接、短時間で感度良く検出することができることを見出し、本発明を完成したのである。従って、本発明においては、表層の蛋白質を有するウイルスであって、その表層の蛋白質に親和性を有する分子が存在し、且つ該分子が固定される担体が存在するものであれば全て本発明の範囲内に包含される。
上述した様に本発明のウイルス検出方法は、微小固体担体の表面に、ウイルスの外套蛋白質に親和性のある分子を固定させたウイルス凝集検査薬を用いた点に特徴を有するものである。
尚、以下の記載では便宜上、上述した親和性のある分子を固定していない微小固体担体を未標識担体と呼び、これに対してウイルス表層の蛋白質に親和性分子を固定した担体（本発明担体）を分子標識担体と呼ぶ場合がある。
ここで、ウイルス表層の蛋白質に親和性のある分子とは、表層の蛋白質を認識して電気化学的または化学的に結合することのできる分子を意味し、その様な分子としては、例えばモノクローナル抗体（例えば、抗ｇｐ１２０モノクローナル抗体、抗ＨＣＶモノクローナル抗体、抗ＨＢＶモノクローナル抗体、抗単純ヘルペスウイルスＩ型モノクローナル抗体、抗単純ヘルペスウイルスＩＩ型モノクローナル抗体、抗水痘帯状疱疹ウイルスＩＩ型モノクローナル抗体、抗サイトメガロウイルスモノクローナル抗体、抗Epstein-Barrウイルスモノクローナル抗体、抗麻疹ウイルスモノクローナル抗体、抗ヒトＴ細胞白血病ウイルスモノクローナル抗体等）、ＣＤ４（ＨＩＶにおいては、リンパ球のバインディングサイトとして知られている）等の可溶性蛋白質、ポリペプチド（例えば抗ｇｐ１２０ポリペプチド等）等が挙げられる。尚、本発明で対象となるウイルスの様に変異が激しく抗体の作製が困難であったものについては、特定領域のペプチドのみを抗原に用いて抗体を効率よく作製する方法がＴａｍらによって提案されており、本発明においてもその適用が可能である（James P.Tam.In Synthetic Peptide: Approaches to Biological Problems, ed. J.P.Tam and E.T.Kaiser, Multiple antigen pep-tide systems: A model design for synthetic peptide vaccine and immunoassay, pages 3-18, 1989, Alan R. Liss, Inc.）。
また、本発明に用いられる未標識担体としては、ラテックス、ゼラチン、ポリスチレン、金コロイド等、通常の凝集法に用いられる球状担体であれば特に限定されない。これら担体のサイズは０．３ｎｍ〜２０μｍの範囲内であれば任意のサイズを使用することが可能であり、凝集判定方法によって好適なサイズを適宜選択し得る。例えば凝集の有無を肉眼で判定する場合には、肉眼で容易に観察することのできる０．２〜３μｍのサイズを用いることが好ましく、一方、分光学的手法を用いて凝集の有無を判定する場合には０．２μｍ以下でも構わない。また、これらの担体は何色に着色されていても良く、どの判定方法を選択するかによって適宜決定されることが好ましい。
これらの未標識担体は、精製水や緩衝液、血清等の溶液中に予め分散させておいても良いし、あるいは凍結乾燥品を、用時、適当な溶媒（例えば精製水や緩衝液等）を加えて溶解しても良い。
次に、上述した本発明のウイルス凝集検査薬を含有するキットを用いて、ウイルスを検出する方法について説明する。
本発明のウイルス検査用キットには、上記ウイルス凝集検査薬の他に、陽性対照試薬、および必要に応じて陰性対照試薬が含まれる。
このうち陽性対照試薬としては、通常の抗体検査法の場合と同様、標的ウイルスを有する患者血清に加熱処理や化学処理等を施して非感染性状態とし、しかも判定可能な状態にしたものを用いることもできるが、本発明者らの研究によれば、未標識担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質の一部または全部を固定した、いわゆる偽ウイルスモデルの使用が、より効果的であることが分かった。即ち、検査時における取扱い上の安全性や陽性対照としての品質確保等を考慮すれば、後者の偽ウイルスモデルを使用することが推奨される。
また、本発明に用いられる陰性対照試薬としては、標的ウイルスを含まない健常者の血清、緩衝液、塩類含有水溶液、ウイルスの外套蛋白質を含有するもの等が挙げられる。これらのうち、本発明キットにおける陰性対照としての品質確保といった観点からすれば、表層の蛋白質の一部または全部を含有するものを使用することが同様の趣旨で推奨され、具体的には、精製水や緩衝液、血清等の溶液中に予め分散させておいても良いし、あるいは凍結乾燥品を、用時、適当な溶媒（例えば精製水や緩衝液等）を加えて溶解しても良い。
本発明のウイルス検査用キットの具体例として、ＨＩＶ検査用キットの一例を挙げ、その使用方法を説明する。
［ＨＩＶ検査用キット］
構成品目：
▲１▼抗ｇｐ１２０−分子標識Ｌａｔｅｘ試薬、２ｍｌ
▲２▼陽性対照［偽ＨＩＶ;ｇｐ１２０標識−金コロイド］、５００μｌ
▲３▼陰性対照［ｇｐ１２０］、５００μｌ
▲４▼凝集板、２０枚
▲５▼検体希釈液、５０ｍｌ
使用方法：
１．分子標識Ｌａｔｅｘ試薬は、室温に放置し常温に戻してから使用する。
また添加前には、泡立てない様に混和し、均一な懸濁状態にしておく。
２．凝集板のサークル内に、上記分子標識Ｌａｔｅｘ試薬を２０μｌ加える。
３．その上に、検体あるいは陽性対照／陰性対照をそれぞれ、２０μｌずつ加え、マイクロピペットの先端で均一に混和する。
４．凝集板を手に持って、１〜２分間ローリング混和する。
５．陽性対照試薬については、凝集像がはっきりと認められると共に、陰性対照については凝集像が認められないことを確認する。
本発明のウイルス凝集検査薬は、ＤＮＡウイルス、ＲＮＡウイルスのタイプを問わず、これらウイルスを検出するのに適用できるが、なかでも持続性感染症を引き起こすウイルスを検出するのに好適に用いられる。具体的には、パルヴォウイルス（パルヴォウイルス属に属するキルハムウイルス等）、パポヴァウイルス（パピローマウイルス属に属するショープ乳頭腫ウイルス、ポリオーマウイルス属に属するポリオーマウイルス等）、ヘルペスウイルス（単純ヘルペスウイルスＩ型、単純ヘルペスウイルスII型、水痘帯状疱疹ウイルス、サイトメガロウイルス、Epstein-Barrウイルス等）、ヘパドナウイルス（Ｂ型肝炎ウイルス等）等のＤＮＡウイルス；パラミクソウイルス（ニューモウイルス属に属するＲＳウイルス、パラミクソウイルス属に属するセンダイウイルス、モルビリウイルス属に属する麻疹ウイルス等）、トガウイルス（ルビウイルス属に属する風疹ウイルス、フラヴィウイルス属に属する日本脳炎ウイルス等）、レトロウイルス（エイズウイルス、ヒトＴ細胞白血病ウイルス等）、アレナウイルス（アレナウイルス属に属するリンパ球脈絡髄膜炎ウイルス等）、Ｃ型肝炎ウイルス等のＲＮＡウイルスが挙げられ、特に、エイズウイルスやＣ型肝炎ウイルスを検出するのに有効である。
以下、製剤例および実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、下記実施例及び試験例は本発明を制限するものではなく、前・後記の趣旨を逸脱しない範囲で変更実施することは全て本発明の技術的範囲に包含される。
製剤例１
活性化ラテックスビーズ（ポリサイエンス社製、粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗ｇｐ１２０モノクローナル抗体（１ｍｇ／ｍｌのほう酸緩衝液、ｐＨ８．３）を等量混和し、３７℃で１時間反応させた。反応終了後、更にウシ血清アルブミン（１０ｍｇ／ｍｌ）を加えてその濃度が０．１％になる様に調整し、未反応活性基のブロッキング化を室温で３０分間行った。その後、遠心操作を繰り返して未反応物を除去すると共に、リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に置換して、ＨＩＶ検査薬を得た。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、バキュロバイラスで発現させたリコンビナントｇｐ１２０を反応させて標識したものを調製し、陰性対照としては、該リコンビナントｇｐ１２０をリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に溶解したものを調製した。
製剤例２
アビジン標識ラテックスビーズ（Molecular Probe社製）懸濁液に、ビオチニル化した抗ＮＳ（ＨＣＶ）モノクローナル抗体を等量混和し、３７℃で１時間反応させることによりＨＣＶ検査薬を調製した。陽性対照としてはリコンビナントＮＳを、陰性対照としてはヒトアルブミンを夫々金コロイドに標識して用いた。尚、ＮＳとはnon structure proteinの略称である。
製剤例３
アルデヒド基修飾ポリスチレンビーズ（Interfacial Dynamics社製，粒径０．２μｍ）懸濁液と抗ｇｐ１２０モノクローナル抗体（１ｍｇ／ｍｌ精製水）を等量混和し、更に、トリエチルアミン（１０ｍｇ／ｍｌ精製水）を、その濃度が０．１％になる様に加え、室温で１時間反応させることによりＨＩＶ検査薬を調製した。陽性対照／陰性対照の調製は、製剤例１に準じて行った。
製剤例４
マレイミド化金コロイド（Molecular Probe社製，粒径３ｎｍ）に、抗ＮＳ（ＨＣＶ）モノクローナル抗体を用いて調製したＳＨ基導入Ｆａｂ’抗体を反応させることによりＨＣＶ検査薬を調製した。陽性／陰性対照の調製は、製剤例２に準じて行った。
製剤例５
アミノ基修飾ラテックスビーズ（Interfacial Dynamics社製，粒径０．２μｍ）をグルタールアルデヒドで処理した後抗ｇｐ１２０モノクローナル抗体（１ｍｇ／ｍｌのほう酸緩衝液、ｐＨ８．３）を等量混和し、反応させた。反応終了後、トリエチルアミンで未反応活性基をブロックしてＨＩＶ検査薬を得た。陽性対照／陰性対照の調製は、製剤例１に準じて行った。
製剤例６
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、バキュロバイラスで発現したリコンビナントＣＤ４（１００μｇ／ｍｌのほう酸緩衝液，ｐＨ８．３）を等量混和し、３７℃で１時間反応させることによりＨＩＶ検査薬を調製した。陽性／陰性対照の調製は、製剤例１に準じて行った。
製剤例７
金コロイド（Polysciences社製，粒径０．０３μｍ）懸濁液に、抗ｇｐ１２０ポリペプチド溶液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりＨＩＶ検査薬を調製した。陽性／陰性対照の調製は、製剤例１に準じて行った。
製剤例８
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗ＮＳ（ＨＣＶ）モノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりＨＣＶ検査薬を調製した。陽性／陰性対照の調製は、製剤例２に準じて行った。
製剤例９
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗ＨＢＶモノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりＨＢＶ検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）にＨＢＳ抗原を反応させて標識したものを調製し、陰性対照としては、ヒト血清アルブミンを金コロイドに反応させて標識したものを調製した。
製剤例１０
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗単純ヘルペスウイルスＩ型モノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることにより単純ヘルペスウイルスＩ型検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、ベロ細胞で培養した単純ヘルペスウイルスＩ型を部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１１
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗単純ヘルペスウイルスII型モノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることにより単純ヘルペスウイルスII型検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、ベロ細胞で培養した単純ヘルペスウイルスII型を部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１２
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗水痘帯状疱疹ウイルスII型モノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることにより水痘帯状疱疹検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、ヒト繊維芽細胞で培養した水痘帯状疱疹ウイルスを部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１３
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗サイトメガロウイルスモノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりサイトメガロウイルス検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、ヒト繊維芽細胞で培養したサイトメガロウイルスを部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１４
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗Epstein-Barrウイルスモノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりEpstein-Barrウイルス検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、感染細胞からEpstein-Barrウイルスを部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１５
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗麻疹ウイルスモノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることにより麻疹ウイルス検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、感染細胞から麻疹ウイルスを部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
製剤例１６
活性化ラテックスビーズ（Polysciences社製，粒径０．２μｍ）懸濁液に、抗ヒトＴ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ−１）モノクローナル抗体液を等量混和した後、３７℃で１時間反応させることによりヒトＴ細胞白血病ウイルス検査薬を調製した。
陽性対照としては、０．３μｍの金コロイド（NanoProbe社製）に、感染細胞からヒトＴ細胞白血病ウイルスを部分精製したものを反応させ、標識したものを調製した。陰性対照の調製は、製剤例９に準じて行った。
実施例１
培養されたＨＩＶ保存株（ＨＴＬＶ−IIIＢ）を用いて、製剤例７に準じて作製したＨＩＶ検査薬の感度試験を行った。尚、この保存株の培養上清は、既知のＨＩＶ抗体検査薬（セロディアＨＩＶ、富士レビオ社製）では陰性を示す。試験を実施するに当たっては、製剤例７に記載の陽性対照では陽性を示し、陰性対照では陰性を示すことを確認すると共に、ＨＩＶ−２型であるＬＡＶ−２には全く反応しないことを確認したうえで、この保存株の培養上清を種々の希釈倍率で希釈し、製剤例７の検査薬と反応させた。その結果を表１に示す。以下の表では、表中、＋は陽性を、−は陰性を、夫々示す。
0003903198.tif 000002
の希釈倍率下においても、感度良く検出することができた。尚、ＨＴＬＶ−IIIＢ保存ウイルス（１０4-5個ＴＣＩＤ50／ｍｌ）の希釈限界倍率は１０5倍であり、この希釈倍率は、ウイルスが存在すると考えられる限界値であった。
実施例２
製剤例７のＨＩＶ検査薬を用い、ＨＴＬＶ−IIIＢ保存株の培養上清（１０4-5個ＴＣＩＤ50／ｍｌ）を非働化したヒト血清で１０倍ずつ順次希釈した場合の感度を調べた。その結果を表２に示す。
0003903198.tif 000003
表２の結果から明らかな様に、本発明の検査薬を用いればＨＩＶをヒト血清のみで１０，０００倍希釈してもその感度に影響を及ぼすことがなく検出可能であることが分かった。
実施例３
製剤例８のＨＣＶ検査薬を用い、表３に示す種々の患者由来の血清に対する感度試験を行った。その結果を表３に併記する。
0003903198.tif 000004
表３に示す様に、本発明のＨＣＶ検査薬を用いれば、Ｃ型肝炎のみを特異的に検出できることが分かった。
実施例４
製剤例９のＨＢＶ検査薬を用い、表４に示す種々の患者由来の血清に対する感度試験を行った。その結果を表４に併記する。
0003903198.tif 000005
表４に示す様に、本発明のＨＢＶ検査薬を用いれば、Ｂ型肝炎のみを特異的に検出できることが分かった。
実施例５
表５に示す種々のウイルス検査薬を用い、表５に示す種々の陽性対照に対する特異性試験を行った。その結果を表５に併記する。
0003903198.tif 000006
表５に示す様に、本発明の検査薬を用いれば、対象となるウイルスのみを特異的に検出できることが分かった。
実施例６
表６に示す種々のウイルス検査薬を用い、表６に示す種々の陽性対照に対する特異性試験を行った。その結果を表６に併記する。
0003903198.tif 000007
表６に示す様に、本発明の検査薬を用いれば、対象となるウイルスのみを特異的に検出できることが分かった。
実施例７
表７に示す種々のウイルス検査薬を用い、表７に示す種々の患者由来の血清に対する感度試験を行った。その結果を表７に併記する。
0003903198.tif 000008
表７に示す様に、本発明の検査薬を用いれば、対象となるウイルスのみを特異的に検出できることが分かった。
産業上の利用可能性
本発明は以上のように構成されており、従来の抗体検査法に比べて、以下の様な優れた利点を有するものである。
▲１▼本発明では抗体を介さずに直接ウイルスを検出するものであるから、従来の抗体検査法の様に、患者の血清中に抗体が形成されるまで（約２〜３カ月）のタイムラグを埋めることができ、感染後、速やかに標的ウイルスを検出することが可能になる。
▲２▼母子感染経路によって感染した子供や膠原病などの自己免疫疾患患者等の様に、従来の抗体検査法ではウイルスの検出が困難であった場合においても、感度良く検出することができる。
▲３▼従来の抗体検査法では検出不可能であった感染力のあるウイルスを感度良く検出することができる。
▲４▼従来の抗体検査法では、陽性対照として標的ウイルスを有する患者血清を用いなければならなかったのに対し、本発明によれば、微小固体担体の表面に、ウイルス表層の蛋白質を固定させたものを使用することができるので、検査側の安全性を確保するといった観点からも非常に推奨される。