(57)【要約】【課題】簡便で動力削減にも寄与可能な、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まりを軽減する方法を提供する。【解決手段】汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まり軽減方法であって、糖分解酵素を分泌する微生物を前記汚泥中で維持する工程を含む、方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まり軽減方法であって、糖分解酵素を分泌する微生物を前記汚泥中で維持する工程を含む、方法。
【請求項２】
前記微生物は、担体又はグラニュールに固定されている、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記汚泥中の前記糖分解酵素の存在量は、１×１０−６［ＩＵ／ｍｌ］以上である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記微生物が分泌する糖分解酵素の量は、０．１［ＩＵ／ｍｌ］以上である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、膜の目詰まり軽減方法に関する。より詳細には、生物処理による排水処理において、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まり軽減方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、排水処理において、ＭＢＲ（Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｂｉｏ  Ｒｅａｃｔｏｒ）が非常に着目されている。ＭＢＲとは、従来の排水処理で一般的に使われている標準活性汚泥法と、膜処理技術を組み合わせたものである。この２つを組み合わせることによって、処理水が清澄になり、最終沈殿池が不要になるため装置全体がコンパクトになる等のメリットが得られる。
【０００３】
日本では、コンパクト化・処理水の安定・省人化などを理由に民間企業でＭＢＲが採用されるケースが増えている。また、下水処理場等においても、下水道事業団がＭＢＲの普及に向けて精力的に取り組んでいる。
【０００４】
しかしながら、ＭＢＲは従来技術と比べて膜の目詰まりを軽減するための洗浄に必要な動力が高く、ランニングコストが大きいため、導入が見送られる場合も多い。ＭＢＲが普及するためには動力削減が求められており、独立行政法人  新エネルギー・産業技術総合開発機構（ＮＥＤＯ）においても２０１３年までにＭＢＲ全体動力の３０％削減を目標としたプロジェクトが進んでいる。
【０００５】
ＭＢＲの形式には数種類あるが、膜を汚泥の中に入れて使用する浸漬型が代表的である。浸漬型は膜に汚泥が付着しやすいため、通常、膜の下部から曝気することにより膜を洗浄する。しかし、曝気洗浄にも限界があり、膜への汚泥の付着を抑制する効果はあるものの防止することはできない。そこで、膜のろ過方向と逆向きに水を通し、膜に付着した汚泥を洗浄する逆洗が行われるが、それでも、汚泥は徐々に膜に付着・堆積して膜が目詰まりし、ろ過性能が低下する。
【０００６】
膜の目詰まりを軽減する方法として、例えば、熱水を透過液流出側から分離膜に注入した後、加水分解酵素溶液を透過液流出側から分離膜に注入することを特徴とする分離膜の洗浄方法が検討されている（特許文献１を参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００６−３１４８８３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
しかしながら、特許文献１の方法では、加水分解酵素が高価であることや、熱水を分離膜に注入した後、熱水の温度が加水分解酵素の至適温度付近まで低下するまで待ってから加水分解酵素を注入する必要があり、煩雑であること等が問題となる場合がある。そこで本発明は、簡便で動力削減にも寄与可能な、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まりを軽減する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
発明者らは、膜の目詰まりに影響する因子を検討した結果、糖が主要因物質の１つであることを明らかにした。本発明は、膜の目詰まりの主要因物質である糖を分解（低分子化）することにより、膜の目詰まりを軽減させるものである。
【００１０】
本発明は、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まり軽減方法であって、糖分解酵素を分泌する微生物を汚泥中で維持する工程を含む方法を提供する。
【００１１】
上記本発明の方法によれば、ＭＢＲにおける膜の目詰まりを簡便に軽減することができる。また、膜の目詰まりを防止するための洗浄に必要な動力を削減することができる。
【００１２】
糖分解酵素を分泌する微生物は、担体又はグラニュールに固定されていることが好ましい。
【００１３】
微生物が担体又はグラニュールに固定されていることにより、汚泥内の微生物同士の自然淘汰により存在量が減少することを抑制し、安定した存在量を維持することができる。
【００１４】
汚泥中の糖分解酵素の存在量は、１×１０−６［ＩＵ／ｍｌ］以上であることが好ましい。
【００１５】
糖分解酵素の存在量が１×１０−６［ＩＵ／ｍｌ］以上であることにより、より効果的にＭＢＲにおける膜の目詰まりを軽減することができる。
【００１６】
また、上記の糖分解酵素を分泌する微生物が分泌する糖分解酵素の量は、０．１［ＩＵ／ｍｌ］以上であることが好ましい。
【００１７】
微生物が分泌する糖分解酵素の量が、０．１［ＩＵ／ｍｌ］以上であることにより、より効果的にＭＢＲにおける膜の目詰まりを軽減することができる。
【発明の効果】
【００１８】
本発明により、簡便で動力削減にも寄与可能な、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まりを軽減する方法が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】ＭＢＲの構造を説明する概略図である。
【図２】平膜試験装置の概略図である。
【図３】汚泥中の糖濃度と限界フラックスとの関係を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
本実施形態の方法は、汚泥と処理水の固液分離を行う膜の目詰まり軽減方法であって、糖分解酵素を分泌する微生物を汚泥中で維持する工程を含むものである。汚泥は好気性のものであっても嫌気性のものであってもよい。糖分解酵素を分泌する微生物を汚泥中で維持することにより、微生物から分泌された糖分解酵素が、汚泥中の糖を常時分解し、膜の目詰まりが軽減される。さらに、膜に付着した糖が分解されることにより、付着物が除去されやすくなる。また、膜の洗浄時に膜を汚泥から取り出す必要もなく簡便である。
【００２１】
従来、膜の目詰まり低減のために過剰に曝気することが必要であったが、本実施形態の方法により、膜面洗浄用の曝気量を低減することができ、ＭＢＲ普及のネックだったランニングコストの削減が期待できる。
【００２２】
（ＭＢＲ）
ＭＢＲには、槽外型及び浸漬型が存在する。図１ａは槽外型ＭＢＲの概略図である。槽外型ＭＢＲ１００では、汚泥を含む生物反応槽１１０の外に膜１２０が設置される。ラインＬ１１０を通して汚泥が膜１２０に供給される。膜１２０において、汚泥と処理水が分離される。処理水はラインＬ１２０を通して取り出され、汚泥はラインＬ１３０を通して生物反応槽１１０に返送される。
【００２３】
浸漬型ＭＢＲとは、汚泥を含む生物反応槽に膜を浸漬して、汚泥と処理水を分離する方式である。浸漬型には、さらに一体型と槽別置型が存在する。図１ｂは浸漬型ＭＢＲ（一体型）２００の概略図である。浸漬型ＭＢＲ（一体型）２００では、汚泥を含む生物反応槽２１０内に膜２２０が設置される。膜２２０において、汚泥と処理水が分離され、処理水はラインＬ２２０を通して取り出される。
【００２４】
浸漬型ＭＢＲ（槽別置型）とは、汚泥を含む生物反応槽と膜を設置する膜分離槽とが分離した方式である。図１ｃは浸漬型ＭＢＲ（槽別置型）３００の概略図である。浸漬型ＭＢＲ（槽別置型）３００では、汚泥を含む生物反応槽３１０と、膜３２０が設置された膜分離槽３３０とが分離している。生物反応槽３１０からラインＬ３１０を通して汚泥が膜分離槽３３０に供給される。膜３２０において、汚泥と処理水が分離される。処理水はラインＬ３２０を通して取り出され、汚泥はラインＬ３３０を通して生物反応槽３１０に返送される。
【００２５】
本実施形態の方法は、上記のＭＢＲのうち、浸漬型ＭＢＲに適用することが好ましい。
【００２６】
（膜）
本実施形態の方法が対象とする膜は、通常ＭＢＲに使用されるものでよく、塩素化ポリエチレン等のポリオレフィン系樹脂、ポリフッ化ビニリデン系樹脂、ポリ四弗化エチレン樹脂、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリスチレン、ポリアクリロニトリル、酢酸セルロース、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、セラミック等から形成された多孔質膜等が挙げられる。
【００２７】
膜の形態には、平膜、中空糸膜、チューブラー等が存在するがいずれの形態であってもよい。平膜とは、平面状又はシート状に成形した膜である。中空糸膜とは、内部が内径３ｍｍ程度以下の空洞である糸状の膜である。チューブラーとは、内部が内径３〜５ｍｍ以上の空洞である管状の膜である。平膜や中空糸膜は浸漬型ＭＢＲで使用される場合が多く、チューブラーは槽外型ＭＢＲで使用されることが多い。槽外型ＭＢＲにおいても、本実施形態の方法により汚泥中に糖分解酵素が分泌される結果、汚泥中の糖及び膜表面の糖が分解されることにより、膜の目詰まりを軽減する効果が得られる。
【００２８】
（微生物）
糖分解酵素としては、糖を低分子化するものであれば特に制限されず、ガラクトシダーゼ、アミラーゼ、セルラーゼ、グルカナーゼ、グリコペプチダーゼ、エンドグリコシダーゼ、マンノシダーゼ、フコシダーゼ、アセチルヘキソサミニダーゼ、アラビノシダーゼ、ラムノシダーゼ、キシラナーゼ等が例示できる。糖分解酵素を分泌する微生物としては、これらのいずれかの酵素を分泌するものが使用できる。より具体的には、アルカリゲネス属、アルテロモナス属、バチルス属、マイクロコッカス属、アルスロバクター属、プラノコッカス属、アゾリカ属、アキシネラ属、サルガッスム属、アラクニオタス属、アスペルギルス属、オルピノマイセス属、サーモマイセス属、フラボバクテリウム属、シュードモナス属等に属する微生物が使用可能である。汚泥中でこれらの微生物を維持することにより、汚泥中に糖分解酵素が分泌される。その結果、膜の目詰まりの主要因物質である糖が分解（低分子化）され、膜の目詰まりが軽減される。槽別置型の浸漬ＭＢＲの場合は膜分離糟に菌を投入して維持することが好ましい。
【００２９】
糖分解酵素を分泌する微生物を汚泥に添加しても、汚泥内の微生物同士の自然淘汰により存在量が減少してしまう場合がある。そこで、汚泥を含む生物反応槽とは別の槽で糖分解酵素を分泌する微生物を培養し、その培養液を経時的に汚泥に投入してもよい。この場合、滅菌系を使用して、特定の糖分解酵素を分泌する微生物のみを培養することが更に好ましい。培養した糖分解酵素を分泌する微生物の培養液を、経時的に汚泥に添加することにより、汚泥中の糖分解酵素を分泌する微生物を維持することが可能となる。特定の糖分解酵素を分泌する微生物は、凍結乾燥して製剤の形態にしたうえで添加してもよい。
【００３０】
（担体・グラニュール）
別の方法として、糖分解酵素を分泌する微生物を、担体又はグラニュールに固定して汚泥中で維持してもよい。これにより、糖分解酵素を分泌する微生物を長期間維持することが可能となる。
【００３１】
担体としては、立方体状、直方体状、円筒状、球状、波板状、チューブ状等の形状に成形された、ゲル、スポンジ、セラミック、合成樹脂等の多孔質材料を好適に用いることかできる。担体に糖分解酵素を分泌する微生物を付着させたものを汚泥に添加することにより、糖分解酵素を分泌する微生物を高濃度に維持することが可能となる。担体中に存在する微生物のうち、５０％以上、より好ましくは７０％以上、更に好ましくは９０％以上の微生物が、糖分解酵素を分泌する微生物であることが好ましい。
【００３２】
グラニュールとは、微生物が自己造粒して形成された直径数ｍｍの塊である。グラニュールに固定した微生物（グラニュールを形成した微生物）は、汚泥内の微生物同士の自然淘汰により減少してしまうことなく長期間維持することが可能である。グラニュール中に存在する微生物のうち、３０％以上、より好ましくは５０％以上、更に好ましくは７０％以上の微生物が、糖分解酵素を分泌する微生物であることが好ましい。
【００３３】
担体又はグラニュール中に存在する微生物の種類及び存在割合を調べる方法の非限定的な例としては、例えば、次のような方法がある。
（１）担体又はグラニュール中に存在する微生物を、平板培地上でコロニーとして単離する。得られたコロニーから、ランダムに、例えば１００個選択し、定法により微生物の種類を特定する。この結果に基づいて、担体又はグラニュール中に存在する微生物のうち、糖分解酵素を分泌する微生物の存在割合を算出する。
（２）担体又はグラニュール中に存在する微生物の混合物からＤＮＡを抽出し、適切なプライマーでＰＣＲ増幅する。増幅断片を適切なベクターにクローニングする。得られたクローンから、ランダムに、例えば１００個選択してシークエンスする。シークエンス結果に基づいて、１００個の各ＰＣＲ断片がどの微生物に由来するものであったかを、遺伝子配列データベースと照合することにより推定する。この結果に基づいて、担体又はグラニュール中に存在する微生物のうち、糖分解酵素を分泌する微生物の存在割合を算出する。
【００３４】
（糖分解酵素の存在量）
汚泥中の糖分解酵素の存在量は、１×１０−６［ＩＵ／ｍｌ］以上であることが好ましく、１×１０−６〜１×１０−２［ＩＵ／ｍｌ］であることがより好ましく、１×１０−４〜１×１０−３［ＩＵ／ｍｌ］であることが更に好ましい。ここで、ＩＵ（ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ｕｎｉｔ）とは、標準状態（３０℃）で１分間に１μｍｏｌの基質を生成物に転換する酵素活性の量（酵素力価）を意味する。１×１０−６［ＩＵ／ｍｌ］未満では、膜の目詰まり軽減効果が不十分となる場合がある。また、汚泥中の糖分解酵素の存在量とは、汚泥中の主要な糖分解酵素の存在量を意味する。主要な糖分解酵素が複数種類存在する場合には、それらの糖分解酵素の合計の存在量を意味する。
【００３５】
汚泥中の糖分解酵素の存在量［ＩＵ／ｍｌ］は、例えば次のようにして測定することができる。代表としてアミラーゼ活性の測定法を示す。０．２ｍｌの１質量％可溶性デンプン、０．５ｍｌの緩衝液（ｐＨ６．０）及び０．２ｍｌのイオン交換水を混合し、３７℃で１〜２分保つ。酵素液サンプル（汚泥をホモジナイズした後、５５００ｇ、３０分遠心分離した上清）０．１ｍｌを加えて１０分間反応させる。続いて発色液（０．７５ｍｌの１％Ｉ２／１０％ＫＩを１００ｍｌの２５ｍＭ酢酸に加えたもの）を４ｍｌ添加して発色させ、６６０ｎｍの吸光度を測定する。酵素液サンプルの代わりに、段階希釈した既知濃度のアミラーゼを用いて、上記と同様の操作を行って作成した検量線に基づいて、汚泥中のアミラーゼの存在量［ＩＵ／ｍｌ］を求めることができる。
【００３６】
その他の糖分解酵素についても、測定対象の酵素の基質に酵素液サンプルを反応させた後、反応生成物又は未反応基質を定量することにより、汚泥中の糖分解酵素の存在量［ＩＵ／ｍｌ］を求めることができる。
【００３７】
本実施形態の糖分解酵素を分泌する微生物が分泌する糖分解酵素の量は０．１［ＩＵ／ｍｌ］以上であることが好ましい。微生物が分泌する糖分解酵素の量とは、滅菌系で培養した当該微生物が、最適環境下で培地中に分泌する糖分解酵素の量を意味する。微生物が複数の糖分解酵素を分泌する場合には、それらの糖分解酵素の合計の存在量を意味する。微生物が分泌する糖分解酵素の量は、酵素液サンプルとして、当該微生物を培養した培地を５５００×ｇ、３０分遠心分離した上清を使用して、上記と同様の方法により測定することができる。
【実施例】
【００３８】
以下、本発明の実施例を示して、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではなく、本発明の技術的思想を逸脱しない範囲での種々の変更が可能である。
【００３９】
平膜試験装置を用いて、汚泥中の糖濃度と限界フラックス（限界透過水量）との関係を検討した。測定には、糖濃度がそれぞれ異なる、好気性及び嫌気性の数種類の汚泥を使用した。
【００４０】
（平膜試験装置）
図２は平膜試験装置４００の概略図である。平膜４２０の下部に散気管４３０を設置し、連続曝気による膜面洗浄を行った。曝気量は１０Ｌ／分とし、ラインＬ４４０を通して圧縮空気をマスフローコントローラ４４０に供給することで一定の風量を確保した。マスフローコントローラ４４０からラインＬ４５０を通して散気管４３０に空気を供給した。平膜４２０とバッフル板との隙間は、８ｍｍとした。散気管４３０は、孔径１ｍｍの穴を１０ｍｍピッチで連続して空け、穴と穴の開きが６０度になるように２列に配置した形状のものを用いた。散気管４３０は、水槽４１０中に、穴が下向きになるように設置した。ろ過水は、ラインＬ４１０を通して取り出した。吸引ポンプ４５０には容量ポンプを用いた。また、平膜と容量ポンプの間に連成圧用の圧力計４６０を設置して静圧を測定した。水槽４１０中の汚泥濃度及び水量を一定にするために、ろ過水は、ラインＬ４２０を通して全て水槽４１０に返送した。また、流量測定の際には、ラインをＬ４３０に切り替えてメスシリンダーを用いて流量を測定した。
【００４１】
（限界フラックス測定）
上記の平膜試験装置を使用して、汚泥中の糖濃度と限界フラックスとの関係を検討した。汚泥中の糖濃度は後述する方法により測定した。
【００４２】
限界フラックスの測定は次のようにして行った。上記の平膜試験装置において、１５分間隔で容量ポンプの回転数を上げることにより、段階的にフラックスを上げていく運転を行った。これと同時に、膜間差圧を測定し、膜間差圧が上昇し始めた時のフラックスの値を限界フラックスとした。ここで、限界フラックスが低いことは、膜が目詰まりしやすいことを意味する。
【００４３】
（汚泥からの糖の抽出）
Ｆｒｏｌｕｎｄ（１９９６）らの方法にしたがって、次のようにして、汚泥から糖を抽出した。
（１）イオン交換樹脂（ＤＯＷＥＸ  ＭＡＲＡＴＨＯＮ  Ｃ  Ｎａ＋−ｆｏｒｍ）をビーカーに取り、緩衝液（２ｍＭ  Ｎａ３ＰＯ４−４ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４−９ｍＭ  ＮａＣｌ−１ｍＭ  ＫＣｌ、ｐＨ７）を加えてスターラ上で３００ｒｐｍで撹拌しながら１時間洗浄した。
（２）汚泥１００ｍｌを遠心分離し（２０００ｇ、１５分、４℃）、沈降物と上清とに分けた。
（３）（２）の上清に、上記緩衝液の５倍濃度のものを、上清の１／４容量添加して混合した。
（４）（３）の溶液を２００ｍｌビーカーに移し、イオン交換樹脂（以下「ＣＥＲ」という場合がある。）を１ｇ添加した。
（５）（４）の溶液をスターラ上で４℃、３００ｒｐｍで１時間撹拌して糖の抽出を行った。なお、上記のイオン交換樹脂はＮａ＋型であるため、陽イオン、特に価数の多いＣａ２＋やＦｅ２＋等を吸着する。汚泥のフロック（バイオフィルム）中の糖はＦｅ２＋等の金属によりキレートされているため、イオン交換樹脂によりＦｅ２＋等を吸着除去することでフロックがもろくなり、糖が溶出されるものと考えられる。
（６）（５）の溶液を遠心分離（１２０００ｇ、１分、４℃）し、上清及び汚泥・ＣＥＲに分離した。上清に糖が抽出されている。
（７）（６）の上清を更に２回遠心分離（１２０００ｇ、１５分、４℃）し、微細なフロックを除去した。この上清を糖濃度測定用の試料とした。
【００４４】
（糖濃度の測定）
続いてフェノール硫酸法により、試料中の糖濃度を測定し、汚泥の糖濃度とした。まず、上記前処理で調製した試料１ｍｌを試験管に取り、超純水を２ｍｌ加えた。その後、５％フェノールを１ｍｌ加えた。続いて、９５％濃硫酸をオートビューレットで５ｍｌ加え、すぐに強攪拌した。続いて１００℃の湯浴中で５分間加熱した。加熱から約３０分後以降に吸光度（４９０ｎｍ）を測定した。検量線として、０、１０、２０、５０、１００、２５０ｍｇ／Ｌとなるように調製したグルコース水溶液を用いて、上記と同様の方法で吸光度を測定した値を用いた。
【００４５】
図３は、好気性及び嫌気性の数種類の汚泥について測定した、糖濃度と限界フラックスとの関係を示すグラフである。好気性及び嫌気性のいずれの汚泥においても、汚泥中の糖濃度と限界フラックスとの間には負の相関が見られた。この結果は、汚泥中の糖濃度が高いほど膜の目詰まりが起こりやすいことを意味する。したがって、汚泥中の糖濃度が膜の目詰まりに大きく影響することが明らかとなった。
【符号の説明】
【００４６】
１００…槽外型ＭＢＲ、１１０，２１０，３１０…生物反応槽、１２０，２２０，３２０…膜、Ｌ１１０，Ｌ１２０，Ｌ１３０，Ｌ２２０，Ｌ３１０，Ｌ３２０，Ｌ３３０，Ｌ４１０，Ｌ４２０，Ｌ４３０，Ｌ４４０，Ｌ４５０…ライン、２００…浸漬型ＭＢＲ（一体型）、３００…浸漬型ＭＢＲ（槽別置型）、３３０…膜分離槽、４００…平膜試験装置、４１０…水槽、４２０…平膜、４３０…散気管、４４０…マスフローコントローラ、４５０…吸引ポンプ、４６０…圧力計。
【図１】
2013052363.tif 000002
【図２】
2013052363.tif 000003
【図３】
2013052363.tif 000004