(57)【要約】【課題】免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質を含有する試料液中から高精度でかつ容易に精製タンパク質を精製することができる精製方法を提供する。【解決手段】免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質と、該精製タンパク質以外の物質からなる混入物とを含有する試料液中から、前記精製タンパク質を精製する精製方法であり、前記試料液に粗精製を施すことにより、前記混入物の少なくとも一部を前記試料液中から除去する第１の工程と、前記第１の工程が施された前記試料液に、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理を施し、該フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理により得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで、前記精製タンパク質を精製する第２の工程とを有する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質と、該精製タンパク質以外の物質からなる混入物とを含有する試料液中から、前記精製タンパク質を精製する精製方法であって、
前記試料液に粗精製を施すことにより、前記混入物の少なくとも一部を前記試料液中から除去する第１の工程と、
前記第１の工程が施された前記試料液に、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理を施し、該フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理により得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで、前記精製タンパク質を精製する第２の工程とを有することを特徴とする精製方法。
【請求項２】
前記第１の工程において、前記粗精製は、アフィニティークロマトグラフィー処理である請求項１に記載の精製方法。
【請求項３】
前記アフィニティークロマトグラフィー処理は、
固体支持体に結合性タンパク質が固定化された固定化部材で構成される吸着剤に前記試料液を接触させ、前記固定化部材で構成される吸着剤に前記精製タンパク質を吸着させる工程と、
前記固定化部材で構成される吸着剤に溶出液を供給することにより、前記固定化部材で構成される吸着剤から前記精製タンパク質を溶出させる工程とを有する請求項２に記載の精製方法。
【請求項４】
結合性タンパク質は、プロテインＧ、プロテインＬＧおよびプロテインＡのうちの少なくとも１種である請求項２または３に記載の精製方法。
【請求項５】
前記アフィニティークロマトグラフィー処理を施した後の前記試料液中には、前記混入物として、前記固体支持体から離脱した前記結合性タンパク質および／または前記結合性タンパク質と前記精製タンパク質との複合体が含まれる請求項２ないし４のいずれかに記載の精製方法。
【請求項６】
前記第２の工程における、前記フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理は、
フッ素アパタイトで構成される吸着剤に前記第１の工程が施された前記試料液を接触させ、前記フッ素アパタイトで構成される吸着剤に前記精製タンパク質を吸着させることなく、前記混入物を吸着させる工程と、
前記フッ素アパタイトで構成される吸着剤に供給液を供給し、得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで、該フロースルー液および洗浄液中に前記精製タンパク質が精製される請求項１ないし５のいずれかに記載の精製方法。
【請求項７】
前記供給液は、濃度が０．５ｍＭ〜５０ｍＭのリン酸緩衝液である請求項６に記載の精製方法。
【請求項８】
前記供給液は、ｐＨが６．０程度〜９．０のリン酸緩衝液である請求項６または７に記載の精製方法。
【請求項９】
前記精製タンパク質は、天然の抗体、または組換え融合タンパク質である請求項１ないし８のいずれかに記載の精製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、試料液中から精製タンパク質を精製する精製方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
近年、血漿中に含まれる抗体（天然の抗体）や、遺伝子工学的に処理した宿主生細胞により産生される組換え融合タンパク質（人工の抗体）を精製する方法として、アフィニティークロマトグラフィー法や、イオン交換クロマトグラフィー法が用いられている。
【０００３】
特に、アフィニティークロマトグラフィー法は、プロテインＡ、プロテインＧのような結合性タンパク質を個体支持体に固定化したものを吸着剤として用い、この結合性タンパク質に対して、抗体および組換え融合タンパク質が有する定常（Ｆｃ）部が優れた可逆的相互作用を有することから、かかる相互作用を利用して、抗体および組換え融合タンパク質を容易に精製することができるため広く利用されている（例えば、非特許文献１、２参照。）。
【０００４】
また、このような抗体および組換え融合タンパク質を薬理学的用途で使用する場合、抗体および組換え融合タンパク質とともに含まれる混入物を高い精度で除去する必要がある。
【０００５】
なお、この混入物としては、組換え融合タンパク質である場合には、宿主細胞に由来する、ＤＮＡ、ＲＮＡおよびタンパク質等が挙げられ、また、抗体である場合には、血漿中に含まれるアルブミン、βグロブリン、αグロブリン、γグロブリンのようなタンパク質等が挙げられる。さらに、精製にアフィニティークロマトグラフィー法を用いた場合には、個体支持体から離脱したプロテインＡ、プロテインＧのような結合性タンパク質も含まれる。
【０００６】
特に、プロテインＡおよびプロテインＧは免疫原性であり、大量に含まれていると有毒となる可能性があるため、より高精度に除去しておく必要がある。
【０００７】
しかしながら、このような混入物を、高精度でかつ容易に精製することができる精製方法については知られていないのが実状である。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Ｒ．Ｖｏｌａ ｅｔ ａｌ．（１９９４），Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｐｈｙｓ．２４−２５：２７−３６
【非特許文献２】Ａｙｂａｙ ａｎｄ Ｉｍｉｒ（２０００），Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２３３（１−２）：７７−８１
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明の目的は、免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質を含有する試料液中から高精度でかつ容易に精製タンパク質を精製することができる精製方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
このような目的は、下記（１）〜（９）の本発明により達成される。
（１）  免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質と、該精製タンパク質以外の物質からなる混入物とを含有する試料液中から、前記精製タンパク質を精製する精製方法であって、
前記試料液に粗精製を施すことにより、前記混入物の少なくとも一部を前記試料液中から除去する第１の工程と、
前記第１の工程が施された前記試料液に、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理を施し、該フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理により得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで、前記精製タンパク質を精製する第２の工程とを有することを特徴とする精製方法。
【００１１】
これにより、免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質を含有する試料液中から高精度でかつ容易に精製タンパク質を精製することができる。
【００１２】
（２）  前記第１の工程において、前記粗精製は、アフィニティークロマトグラフィー処理である上記（１）に記載の精製方法。
これにより、試料液中から混入物の少なくとも一部を除去することができる。
【００１３】
（３）  前記アフィニティークロマトグラフィー処理は、
固体支持体に結合性タンパク質が固定化された固定化部材で構成される吸着剤に前記試料液を接触させ、前記固定化部材で構成される吸着剤に前記精製タンパク質を吸着させる工程と、
前記固定化部材で構成される吸着剤に溶出液を供給することにより、前記固定化部材で構成される吸着剤から前記精製タンパク質を溶出させる工程とを有する上記（２）に記載の精製方法。
これにより、試料液中から混入物の少なくとも一部を除去することができる。
【００１４】
（４）  結合性タンパク質は、プロテインＧ、プロテインＬＧおよびプロテインＡのうちの少なくとも１種である上記（２）または（３）に記載の精製方法。
【００１５】
これにより、精製タンパク質が備える免疫グロブリン定常ドメインを、結合性タンパク質で認識させることができる。
【００１６】
（５）  前記アフィニティークロマトグラフィー処理を施した後の前記試料液中には、前記混入物として、前記固体支持体から離脱した前記結合性タンパク質および／または前記結合性タンパク質と前記精製タンパク質との複合体が含まれる上記（２）ないし（４）のいずれかに記載の精製方法。
【００１７】
このような結合性タンパク質および／または結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体が混入物に含まれていたとしても、本発明によれば試料液中から精製タンパク質を精製することができる。
【００１８】
（６）  前記第２の工程における、前記フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理は、
フッ素アパタイトで構成される吸着剤に前記第１の工程が施された前記試料液を接触させ、前記フッ素アパタイトで構成される吸着剤に前記精製タンパク質を吸着させることなく、前記混入物を吸着させる工程と、
前記フッ素アパタイトで構成される吸着剤に供給液を供給し、得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで、該フロースルー液および洗浄液中に前記精製タンパク質が精製される上記（１）ないし（５）のいずれかに記載の精製方法。
【００１９】
これにより、フロースルー液および洗浄液を回収することで、精製タンパク質を確実に精製することができる。
【００２０】
（７）  前記供給液は、濃度が０．５ｍＭ〜５０ｍＭのリン酸緩衝液である上記（６）に記載の精製方法。
【００２１】
これにより、フッ素アパタイトで構成される吸着剤に、試料液中に含まれる精製タンパク質を吸着させることなく、混入物を選択的に吸着させることができる。
【００２２】
（８）  前記供給液は、ｐＨが６．０程度〜９．０のリン酸緩衝液である上記（６）または（７）に記載の精製方法。
【００２３】
これにより、フッ素アパタイトで構成される吸着剤に、試料液中に含まれる精製タンパク質を吸着させることなく、混入物を選択的に吸着させることができる。
【００２４】
（９）  前記精製タンパク質は、天然の抗体、または組換え融合タンパク質である上記（１）ないし（８）のいずれかに記載の精製方法。
【００２５】
本発明の精製方法は、天然の抗体、または組換え融合タンパク質の精製に好適に適用される。
【発明の効果】
【００２６】
本発明の精製方法によれば、免疫グロブリン定常ドメインを有する精製タンパク質と、該精製タンパク質以外の物質からなる混入物とを含有する試料液中から高精度でかつ容易に精製タンパク質を精製することができる。
【００２７】
また、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理において、吸着剤としてフッ素アパタイトで構成されるものを用いるので、フロースルー液および洗浄液を得る際に用いる供給液の選択の幅が広がり、供給液のｐＨ値を広範囲に設定することができるため、フロースルー液および洗浄液中に高精度で精製タンパク質が精製される条件により確実に設定することができるようになる。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】本発明の精製方法に用いられる吸着装置の一例を示す縦断面図である。
【図２】実施例におけるロースルーおよび洗浄液の吸光度変化を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２９】
以下、本発明の精製方法の好適な実施形態について詳細に説明する。
なお、本発明の精製方法は、精製タンパク質を含む試料液を粗精製した後に、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理により精製することで、精製タンパク質を精製する方法であるが、以下では、粗精製する方法として、アフィニティークロマトグラフィー法を用いる場合を代表に説明する。
【００３０】
また、本発明の精製方法を説明するのに先立って、好適な実施形態を説明するにあたり、説明に使用する用語を以下に定義する。
【００３１】
「吸着剤」とは、固体支持体に固定した少なくとも１種類の分子、またはそれ自体が固体である少なくとも１種類の分子で構成され、各種クロマトグラフィーを実施するために用いられるものである。
【００３２】
「アフィニティークロマトグラフィー」とは、クロマトグラフィー分離を行うために、分子の一般的な特性（例えば、等電点、疎水性またはサイズ）ではなく、生体分子間の特異的な可逆的相互作用（例えば、プロテインＡがＩｇＧ抗体のＦｃ部に結合する能力）を利用するクロマトグラフィーである。具体的には、アフィニティークロマトグラフィーは、例えば、固体支持体にプロテインＡ等の結合性タンパク質が固定化されたものを吸着剤として用いて、吸着剤に対する分子の吸着力（結合力）の差に基づいて分子をクロマトグラフィー分離することをいう（Ｏｓｔｒｏｖｅ（１９９０）Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ １８２：３５７−３７９参照。）。
【００３３】
「抗体」とは、タンパク質またはタンパク質複合体であり、それぞれが、少なくとも１つの免疫グロブリン可変ドメイン、および少なくとも１つの免疫グロブリン定常ドメインを含むものをいう。また、「抗体」は、一本鎖抗体、二量体抗体、またはいずれかの高次タンパク質複合体であってよく、これにはヘテロ二量体抗体が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【００３４】
「免疫グロブリン定常ドメイン」とは、ヒトまたは動物由来のＣL、ＣH１、ＣH２、ＣH３またはＣH４ドメインと同一または実質的に類似する免疫グロブリンドメインのことを言い、抗体のＦｃ部もこれに含まれる。（例えば、Ｃｈａｒｌｅｓ Ａ Ｈａｓｅｍａｎｎ ａｎｄ Ｊ．Ｄｏｎａｌｄ Ｃａｐｒａ，免疫グロブリン：構造と機能，Ｗｉｌｌｉａｍ Ｅ．Ｐａｕｌ編，Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，第２版，２０９，２１０−２１８（１９８９）参照。）。
【００３５】
「免疫グロブリン可変ドメイン」とは、ヒトまたは動物由来のＶLまたはＶHドメインと同一または実質的に類似する免疫グロブリンドメインのことを言う。なお、本発明では、実質的類似性を判定するための免疫グロブリン可変ドメインの生物学的活性は、抗原結合性である。
【００３６】
「プロテインＡ」とは、最初にブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ）の細胞壁に発見されたタンパク質であり、ＩｇＧ抗体のＦｃ部に特異的に結合する特性を有するものである。本発明では、「プロテインＡ」は、ブドウ球菌由来のプロテインＡと同一または実質的に類似するいずれかのタンパク質のことを言い、市販および／または組換え型のプロテインＡも含まれる。なお、本発明では、実質的類似性を判定するためのプロテインＡの生物学的活性は、ＩｇＧ抗体のＦｃ部への結合能である。
【００３７】
「プロテインＧ」とは、最初に連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）の細胞壁に発見されたタンパク質であり、ＩｇＧ抗体のＦｃ部に特異的に結合する特性を有するものである。本発明では、「プロテインＧ」は、連鎖球菌由来のプロテインＧと同一または実質的に類似するいずれかのタンパク質のことを言い、市販および／または組換え型のプロテインＧも含まれる。なお、本発明では、実質的類似性を判定するためのプロテインＧの生物学的活性は、ＩｇＧ抗体のＦｃ部への結合能である。
【００３８】
「プロテインＬＧ」とは、ＩｇＧ抗体に結合する組換え融合タンパク質のことを言い、前記プロテインＧとプロテインＬの両方の一部を含む。また、「プロテインＬ」とは、最初にペプトストレプトコッカス（Ｐｅｐｔｏｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）の細胞壁から単離されたタンパク質である。プロテインＬＧは、プロテインＬとＧの両方に由来するＩｇＧ結合ドメインを含む（例えば、Ｖｏｌａ ｅｔ ａｌ．（１９９４），Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｐｈｙｓ．２４−２５：２７−３６参照。）。本発明では、「プロテインＬＧ」は、プロテインＬＧと同一または実質的に類似するいずれかのタンパク質のことを言い、市販および／または組換え型のプロテインＬＧも含まれる。本発明の目的に関して、実質的類似性を判定するためのプロテインＬＧの生物学的活性は、ＩｇＧ抗体のＦｃ部への結合能である。
【００３９】
「組換え融合タンパク質」とは、それらの天然状態では融合していない２以上のタンパク質の一部または全体を含むいずれかのタンパク質のことを言い、そのようなタンパク質としては、例えば、抗体のＦｃ部に融合したＮＦ−κＢのヒト受容体アクチベーター（ｈｕＲＡＮＫ：Ｆｃ）、抗体のＦｃ部に融合した内膜内皮細胞キナーゼ−δ（ＴＥＫδ：Ｆｃ）、および抗体のＦｃ部に融合した腫瘍壊死因子受容体（ＴＮＦＲ：Ｆｃ）が挙げられるが、これらに限定されない。
【００４０】
「タンパク質を精製する」とは、タンパク質試料液中に存在する可能性のある異質または不都合な要素、特にタンパク質およびＤＮＡのような生体高分子の量を減らすことを意味する。また、精製すべき精製タンパク質とは異なるタンパク質の存在は、ゲル電気泳動と染色および／またはＥＬＩＳＡアッセイを含めた、いずれかの適切な方法で特定できる。さらに、ＤＮＡの存在は、ゲル電気泳動と染色および／またはポリメラーゼ連鎖反応を用いるアッセイを含めた、いずれか適切な方法で特定できる。
【００４１】
「実質的に類似」とは、タンパク質のアミノ酸配列が互いに少なくとも８０％、好ましくは少なくとも９０％同一であり、かつ変化していないタンパク質の生物学的活性を保持するか、または望ましい様式で活性が変化している場合、それらのタンパク質は実質的に類似すると言う。タンパク質が実質的に類似するかを判定する目的について同一とみなされるアミノ酸に含まれるのは、生物学的活性に影響を与える可能性がない保存的置換であり、下記のものが含まれる。すなわち、ＡｌａがＳｅｒを、ＶａｌがＩｌｅを、ＡｓｐがＧｌｕを、ＴｈｒがＳｅｒを、ＡｌａがＧｌｙを、ＡｌａがＴｈｒを、ＳｅｒがＡｓｎを、ＡｌａがＶａｌを、ＳｅｒがＧｌｙを、ＴｙｒがＰｈｅを、ＡｌａがＰｒｏを、ＬｙｓがＡｒｇを、ＡｓｐがＡｓｎを、ＬｅｕがＩｌｅを、ＬｅｕがＶａｌを、ＡｌａがＧｌｕを、ＡｓｐがＧｌｙを置換、およびこれらの逆の交換の場合が含まれる（例えば、Ｎｅｕｒａｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，ニューヨーク（１９７９）参照。）。
【００４２】
「ＴＮＦＲ」とは、天然の哺乳動物の腫瘍壊死因子受容体（ＴＮＦＲ）の配列と同一または実質的に類似するアミノ酸配列を含むタンパク質のこと言う。実質的類似性を判定するための生物学的活性とは、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）を結合する、ＴＮＦの結合によって開始する生物学的信号を細胞へ伝達する、または天然（すなわち非組換え）源由来ＴＮＦＲに対して産生された抗−ＴＮＦＲ抗体と交差反応する能力を意味する。ＴＮＦＲはいずれの哺乳動物ＴＮＦＲであってもよく、ネズミまたはヒトＴＮＦＲがこれに含まれる。そのようなＴＮＦＲは、米国特許第５，３９５，７６０号および米国特許第５，６１０，２７９号に記載されている。なお、特に好ましいＴＮＦＲは、米国特許第５，３９５，７６０号に記載のものであり、グリコシル化型でＳＤＳ−ＰＡＧＥによる見掛け分子量は約８０キロダルトンである。
【００４３】
「ＴＮＦＲ：Ｆｃ」とは、抗体のＦｃ領域に融合したＴＮＦＲの細胞外ドメインの全体または部分を含む組換え融合タンパク質のことを言う。そのような細胞外ドメインには、米国特許第５，３９５，７６０号の図２Ａのアミノ酸配列１〜１６３、１〜１８５または１〜２３５に実質的に類似するアミノ酸配列が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【００４４】
次に、本発明の精製方法に用いられる吸着装置（分離装置）の一例について説明する。
＜吸着装置＞
図１は、本発明の精製方法に用いられる吸着装置の一例を示す縦断面図である。なお、以下の説明では、図１中の上側を「流入側」、下側を「流出側」と言う。
【００４５】
ここで、流入側とは、精製すべき精製タンパク質を精製（分離）する際に、例えば、試料液（精製タンパク質を含む液体）、溶出液等の液体を、吸着装置内に供給する側のことを言い、一方、流出側とは、前記流入側と反対側、すなわち、前記試料液が流出液として吸着装置内から流出する側のことを言う。
【００４６】
なお、本発明の精製方法では、吸着装置１として、このものが備える吸着剤３の種類が異なるもの、すなわち、固体支持体にプロテインＡ等の結合性タンパク質が固定化された固定化部材と、フッ素アパタイトとで吸着剤３がそれぞれ構成されるものを、２つ用意する。
【００４７】
以下では、吸着装置１の吸着剤３以外の構成について説明した後、吸着剤３について説明する。
【００４８】
図１に示す吸着装置１は、カラム２と、吸着剤（充填剤）３と、２枚のフィルタ部材４、５とを有している。
【００４９】
カラム２は、カラム本体２１と、このカラム本体２１の流入側端部および流出側端部に、それぞれ装着されるキャップ（蓋体）２２、２３とで構成されている。
【００５０】
カラム本体２１は、例えば円筒状の部材で構成されている。カラム本体２１を含めカラム２を構成する各部（各部材）の構成材料としては、例えば、各種ガラス材料、各種樹脂材料、各種金属材料、各種セラミックス材料等が挙げられる。
【００５１】
カラム本体２１には、その流入側開口および流出側開口を、それぞれ塞ぐようにフィルタ部材４、５を配置した状態で、その流入側端部および流出側端部に、それぞれキャップ２２、２３が螺合により装着される。
【００５２】
このような構成のカラム２では、カラム本体２１と各フィルタ部材４、５とにより、吸着剤充填空間２０が画成されている。そして、この吸着剤充填空間２０の少なくとも一部に（本実施形態では、ほぼ満量で）、吸着剤３が充填されている。
【００５３】
吸着剤充填空間２０の容積は、試料液の容量に応じて適宜設定され、特に限定されないが、試料液１ｍＬに対して、０．０５〜１００ｍＬ程度が好ましく、０．１〜１００ｍＬ程度がより好ましく、０．５〜５０ｍＬ程度がさらに好ましい。
【００５４】
また、カラム２では、カラム本体２１に各キャップ２２、２３を装着した状態で、これらの間の液密性が確保されるように構成されている。
【００５５】
これらキャップ２２、２３のほぼ中央には、それぞれ、流入管２４および流出管２５が液密に固着（固定）されている。この流入管２４およびフィルタ部材４を介して吸着剤３に、試料液（液体）が供給される。また、吸着剤３に供給された試料液は、吸着剤３同士の間（間隙）を通過して、フィルタ部材５および流出管２５を介して、カラム２外へ流出する。
【００５６】
各フィルタ部材４、５は、それぞれ、吸着剤充填空間２０から吸着剤３が流出するのを防止する機能を有するものである。これらのフィルタ部材４、５は、それぞれ、例えば、ガラス焼結体、金属あるいはポリウレタン、ポリビニルアルコール、ポリプロピレン、ポリエーテルポリアミド、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート等の合成樹脂からなる不織布、発泡体（連通孔を有するスポンジ状多孔質体）、織布、メッシュ等で構成されている。
【００５７】
また、本発明の精製方法では、２つの吸着装置のうち一方の吸着装置１（第１の吸着装置１Ａ）は、後述するアフィニティークロマトグラフィー処理（第１の工程）において用いられ、吸着剤３として、固体支持体にプロテインＡ等の結合性タンパク質が固定化された固定化部材を備えるものであり、他方の吸着装置１（第２の吸着装置１Ｂ）は、後述するフッ素アパタイトクロマトグラフィー処理（第２の工程）において用いられ、吸着剤３としてフッ素アパタイトで構成されるものを備えている。
【００５８】
固定化部材は、結合性タンパク質が固体支持体に固定化されたものである。
この固定化部材は、結合性タンパク質と可逆的相互作用（親和性）を有する各種物質（本発明では、精製タンパク質）に対して優れた吸着特性を発揮するため、結合性タンパク質と可逆的相互作用を有する各種物質を吸着させる吸着剤として好適に使用される。
【００５９】
結合性タンパク質としては、特に限定されないが、例えば、免疫グロブリン定常ドメインに結合する特性を備えるタンパク質であり、具体的には、例えば、プロテインＧ、プロテインＬＧおよびプロテインＡ等が挙げられ、これらのうちの１種または２種以上を組み合わせて用いることができる。
【００６０】
また、固体支持体の構成材料としては、例えば、アガロース、セファロース、シリカ、コロジオン木炭および砂等が挙げられ、これらのうちの１種または２種以上を組み合わせて用いることができる。
【００６１】
また、フッ素アパタイトは、Ｃａ１０（ＰＯ４）６（ＯＨ）２−２ｘＦ２Ｘ［式中、ｘは０＜ｘ≦１である。］で表され、ハイドロキシアパタイトが有する水酸基の少なくとも一部がフッ素原子で置換されたものである。
【００６２】
かかる構成のフッ素アパタイトは、そのＣａ／Ｐ比が１．０〜２．０のものが用いられ、カルシウムイオンとリン酸基とが高密度に規則的に配列した構造を有し、両性イオン交換体として静電相互作用に基づく吸着能を有する。このため、フッ素アパタイトで構成された粒子は、正または負電荷を有する各種物質に対して優れた吸着能を発揮する。
【００６３】
このようなフッ素アパタイトが有する吸着特性を利用して、試料液中に含まれる精製タンパク質はフッ素アパタイトに結合しないが、試料液中含まれる精製タンパク質以外の物質（結合性タンパク質および／または結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体）は結合する条件で、試料液をフッ素アパタイトと接触させる。これにより、後述するフッ素アパタイトクロマトグラフィー処理において、フロースルー液および洗浄液を採集することで、このフロースルー液および洗浄液中には、精製タンパク質が含まれ、精製タンパク質以外の物質からなる混入物がフッ素アパタイトに吸着して除去されていることから、精製タンパク質が精製される。
【００６４】
また、フッ素アパタイトは、ハイドロキシアパタイトと比較して、混入物の吸着能が特に優れることから、フロースルー液および洗浄液への混入物の溶出を的確に抑制または防止することができる。すなわち、精製タンパク質の精製をより高精度に行うことができる。
【００６５】
さらに、フッ素アパタイトは、ハイドロキシアパタイトと比較して、耐酸性および耐アルカリ性に優れることから、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理において、フロースルー液および洗浄液を得る際に用いる供給液の選択の幅が広がる。すなわち、供給液（洗浄液）のｐＨ値を広範囲に設定することができる。そのため、フロースルー液および洗浄液中に高精度で精製タンパク質が精製される条件により確実に設定することができるようになる。
【００６６】
なお、これらのフッ素アパタイトは、公知の湿式合成法、乾式合成法等によって合成することができる。この場合、フッ素アパタイト中には、その合成の際に残存する物質（原料等）または合成の過程で生じる二次反応生成物等が含まれていてもよい。
【００６７】
以上のような２つの吸着装置１（第１の吸着装置１Ａおよび第２の吸着装置１Ｂ）に、それぞれ充填される吸着剤３の形態（形状）は、図１に示すように、粒子状（顆粒状）のものであるのが好ましいが、その他、例えばペレット状（小塊状）、ブロック状（例えば、隣接する空孔同士が互いに連通する多孔質体、ハニカム形状、モノリス）等とすることもできる。なお、吸着剤３を粒子状とすることにより、その表面積を増大させることができ、エンベロープウイルス等のような生体関連物質に対する分離特性の向上を図ることができる。
【００６８】
粒状の吸着剤３の平均粒径は、特に限定されないが、０．５〜１５０μｍ程度であるのが好ましく、１０〜８０μｍ程度であるのがより好ましい。このような平均粒径の吸着剤３を用いることにより、前記フィルタ部材５の目詰まりを確実に防止しつつ、吸着剤３の表面積を十分に確保することができる。
【００６９】
次に、このような吸着装置（分離装置）１（第１の吸着装置１Ａおよび第２の吸着装置１Ｂ）を用いて、精製タンパク質と、この精製タンパク質以外の物質からなる混入物とを含有する試料液中から、精製タンパク質を精製する精製方法について説明する。
【００７０】
＜精製方法＞
本実施形態の精製方法は、試料液にアフィニティークロマトグラフィー処理を施すことにより、前記混入物の少なくとも一部を前記試料液中から除去する第１の工程と、この第１の工程が施された試料液に、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理を施し、このフッ素アパタイトクロマトグラフィー処理により得られるフロースルー液および洗浄液を回収することで精製タンパク質を精製する第２の工程とを有する。
【００７１】
以下、この精製方法について詳述する。
［１］  調製工程
まず、精製すべき精製タンパク質と、精製タンパク質以外の物質である混入物とを含有する試料液を用意する。
【００７２】
精製タンパク質は、免疫グロブリン定常ドメイン（例えば、抗体のＦｃ部）を有するタンパク質またはタンパク質複合体であり、アフィニティークロマトグラフィー処理［２］において、この免疫グロブリン定常ドメインの結合性タンパク質に対する可逆的相互作用（親和性）に基づいて、固定化部材に吸着する特性を有するものである。
【００７３】
この精製タンパク質は、例えば、かかる精製タンパク質が産生されるように遺伝子工学的に処理した宿主生細胞により産生される。
【００７４】
この場合、精製タンパク質が産生されるように細胞を遺伝子工学的に処理する方法は、当技術分野で周知である（例えば、Ａｕｓａｂｅｌ ｅｔ ａｌ．編（１９９０），Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ｗｉｌｌｅｙ，ニューヨーク）参照。）。
【００７５】
なお、精製タンパク質は、１以上の免疫グロブリン定常ドメインを有するものであればよく、１個または２個以上の免疫グロブリン可変ドメインを有するものであってもよく、免疫グロブリン可変ドメインを有しないものであってもよい。
【００７６】
さらに、精製タンパク質は、天然タンパク質（天然の抗体）または組換え融合タンパク質であってもよく、組換え融合タンパク質としては、例えば、抗体のＦｃ部を有するものが挙げられ、非抗体タンパク質であってもよい。
【００７７】
組換え融合タンパク質の具体例としては、１以上の免疫グロブリン定常ドメイン（例えば、抗体のＦｃ部）と、下記のタンパク質のいずれかと同一または実質的に類似するタンパク質とを含むものが挙げられる。
【００７８】
前記タンパク質としては、例えば、ｆｌｔ３リガンド（国際特許出願ＷＯ９４／２８３９１参照。）、ＣＤ４０リガンド（米国特許第６，０８７，３２９号参照。）、エリスロポエチン、トロンボポエチン、カルシトニン、Ｆａｓリガンド、ＮＦ−κＢの受容体アクチベーターに対するリガンド（ＲＡＮＫＬ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）関連アポトーシス誘導リガンド（ＴＲＡＩＬ、国際特許出願ＷＯ９７／０１６３３参照。）、胸腺ストローマ由来リンホポエチン、顆粒球コロニー刺激因子、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ、オーストラリア特許Ｎｏ．５８８８１９参照。）、マスト細胞増殖因子、幹細胞増殖因子、上皮増殖因子、ＲＡＮＴＥＳ、成長ホルモン、インスリン、インスリノトロピン、インスリン様増殖因子、副甲状腺ホルモン、インターフェロン、神経成長因子、グルカゴン、インターロイキン１〜１８、コロニー刺激因子、リンホトキシン−β、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、白血病阻害因子、オンコスタチン−Ｍ、ならびに細胞表面分子ＥＬＫおよびＨｅｋに対する種々のリガンド（例えば、ｅｐｈ関連キナーゼまたはＬＥＲＫＳに対するリガンド）等が挙げられる。
【００７９】
また、組換え融合タンパク質の具体例としては、１以上の免疫グロブリン定常ドメイン（例えば、抗体のＦｃ部）と、前記タンパク質のいずれかに対する受容体またはそのような受容体と実質的に類似するタンパク質とを含むものが挙げられる。
【００８０】
前記受容体としては、両形態のＴＮＦＲ（ｐ５５およびｐ７５と呼ばれる）、Ｉ型およびＩＩ型インターロイキン−１受容体（ＥＰ特許Ｎｏ．０ ４６０ ８４６、米国特許第４，９６８，６０７号および米国特許第５，７６７，０６４号参照。）、インターロイキン−２受容体、インターロイキン−４受容体（ＥＰ特許Ｎｏ．０ ３６７ ５６６および米国特許第５，８５６，２９６号参照。）、インターロイキン−１５受容体、インターロイキン−１７受容体、インターロイキン−１８受容体、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子受容体、顆粒球コロニー刺激因子受容体、オンコスタチン−Ｍおよび白血病阻害因子に対する受容体、ＮＦ−κＢの受容体アクチベーター（ＲＡＮＫ、米国特許第６，２７１，３４９号参照。）、ＴＲＡＩＬに対する受容体（ＴＲＡＩＬ受容体１、２、３および４を含む）、ならびにデスドメインを含む受容体、例えば、Ｆａｓまたはアポトーシス誘導受容体（ＡＩＲ）等が挙げられる。
【００８１】
さらに、組換え融合タンパク質の具体例としては、１以上の免疫グロブリン定常ドメイン（例えば、抗体のＦｃ部）と、分化抗原（ＣＤタンパク質と呼ばれる）もしくは分化抗原または分化抗原と実質的に類似するタンパク質とを含むものが挙げられる。
【００８２】
前記分化抗原としては、Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ Ｔｙｐｉｎｇ ＶＩ（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ ＶＩｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｗｏｒｋｓｈｏｐ ａｎｄ Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ，Ｋｉｓｈｉｍｏｔｏ，Ｋｉｋｕｔａｎｉ ｅｔ ａｌ．編，日本，神戸，１９９６）に示されており、具体的には、ＣＤ２７、ＣＤ３０、ＣＤ３９、ＣＤ４０、およびそれらに対するリガンド（ＣＤ２７リガンド、ＣＤ３０リガンド、など）が挙げられる。
【００８３】
なお、幾つかのＣＤ抗原は、ＴＮＦ受容体ファミリーの１種であり、これには４１ＢＢリガンドおよびＯＸ４０も含まれる。上記リガンドは、４１ＢＢリガンドおよびＯＸ４０リガンドと同様にＴＮＦファミリーの１種である。したがって、ＴＮＦファミリーおよびＴＮＦＲファミリーも本発明の精製方法で精製し得る。また、それらのリガンドも本発明の精製方法で精製し得る。
【００８４】
その例には、少なくとも１つの免疫グロブリン定常ドメインと、下記のタンパク質のいずれかもしくはそれらのリガンドまたはこれらのいずれかと実質的に類似するタンパク質の全体または一部とを含む組換え融合タンパク質が挙げられ、例えば、メタロプロテイナーゼ−ディスインテグリンファミリーのメンバー、種々のキナーゼ、グルコセレブロシダーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ、組織プラスミノーゲンアクチベーター、ＶＩＩＩ因子、ＩＸ因子、アポリポタンパク質Ｅ、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ、グロビン、ＩＬ−２アンタゴニスト、α−１アンチトリプシン、ＴＮＦ−α変換酵素、前記酵素のいずれかに対するリガンド、ならびに他の多数の酵素およびそれらのリガンドが挙げられる。
【００８５】
さらに、精製タンパク質としては、抗体（天然の抗体）またはその一部、およびキメラ抗体、例えば、ヒト免疫グロブリン定常ドメインが１以上のネズミ免疫グロブリン可変ドメインに結合した抗体、またはそのフラグメントであってもよいし、抗体と細胞傷害性物質または発光物質とを含む結合体であってもよい。細胞傷害性物質または発光物質としては、メイタンシン（ｍａｙｔａｎｓｉｎｅ）誘導体（例えば、ＤＭ１）；エンテロトキシン（例えば、ブドウ球菌エンテロトキシン）；ヨウ素同位体（例えば、Ｉ−１２５）；テクニウム同位体（例えば、Ｔｃ−９９ｍ）；シアニン蛍光色素（例えば、Ｃｙ５．５．１８）；およびリボソーム不活性化タンパク質（例えば、ボーガニン（ｂｏｕｇａｎｉｎ）、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、またはサポリン−Ｓ６（ｓａｐｏｒｉｎ−Ｓ６））等が挙げられる。
【００８６】
なお、抗体、抗体／細胞毒素結合体、または抗体／発光団結合体としては、例えば、前記タンパク質および／または下記抗原のうちいずれか１種類またはその組合わせを認識するものが挙げられ、抗原としては、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１４、ＣＤ１８、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ３３、ＣＤ４０、ＣＤ４４、ＣＤ５２、ＣＤ８０（Ｂ７．１）、ＣＤ８６（Ｂ７．２）、ＣＤ１４７、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＩＬ−２受容体、ＩＬ−４受容体、ＩＬ−６受容体、ＩＬ−１３受容体、ＩＬ−１８受容体サブユニット、ＰＤＧＦ−β、ＶＥＧＦ、ＴＧＦ、ＴＧＦ−β２、ＴＧＦ−β１、ＥＧＦ受容体、ＶＥＧＦ受容体、Ｃ５補体、ＩｇＥ、腫瘍抗原ＣＡ１２５、腫瘍抗原ＭＵＣＩ、ＰＥＭ抗原、ＬＣＧ（肺癌に関連して発現する遺伝子産物）、ＨＥＲ−２、腫瘍関連糖タンパク質ＴＡＧ−７２、ＳＫ−１抗原、結腸癌および／または膵臓癌の患者血清中に高濃度で存在する腫瘍関連エピトープ、胸部、結腸、扁平上皮細胞、前立腺、膵臓、肺および／または腎臓癌細胞、および／または黒色腫、グリオーマもしくは神経芽細胞に発現する癌関連エピトープまたはタンパク質、腫瘍壊死コア、インテグリンα４β７、インテグリンＶＬＡ−４、Ｂ２インテグリン、ＴＲＡＩＬ受容体１、２、３および４、ＲＡＮＫ、ＲＡＮＫリガンド、ＴＮＦ−α、接着分子ＶＡＰ−１、上皮細胞接着分子（ＥｐＣＡＭ）、細胞間接着分子−３（ＩＣＡＭ−３）、ロイコインテグリンアドヘシン、血小板糖タンパク質ｇｐＩＩｂ／ＩＩＩａ、心臓ミオシンＨ鎖、副甲状腺ホルモン、ｒＮＡＰｃ２（ＶＩＩａ因子−組織因子の阻害薬）、ＭＨＣ Ｉ、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、α−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、ＣＴＬＡ−４（細胞傷害性Ｔリンパ球関連抗原である）、Ｆｃ−γ−１受容体、ＨＬＡ−ＤＲ １０β、ＨＬＡ−ＤＲ抗原、Ｌ−セレクチン、ＩＦＮ−γ、呼吸系発疹ウイルス、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、ストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｍｕｔａｎｓ）および黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｓ）等が挙げられる。
【００８７】
また、混入物は、試料液中に含まれる精製タンパク質以外の異質または不都合な分子のことを総称して言い、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質のような生体高分子が挙げられる。
【００８８】
具体的には、混入物としては、精製タンパク質が遺伝子工学的に処理した宿主生細胞により産生される場合、宿主細胞に由来する、ＤＮＡ、ＲＮＡおよびタンパク質等が挙げられ、また、精製タンパク質が天然の抗体である場合、血漿中に含まれるアルブミン、βグロブリン、αグロブリンのようなタンパク質等が挙げられる。さらに、アフィニティークロマトグラフィー処理［２］において用いる第１の吸着装置１Ａが備える吸着剤（固定化部材）３から離脱して試料液中に浸出したプロテインＡ等の結合性タンパク質も含まれる。
【００８９】
［２］  アフィニティークロマトグラフィー処理（第１の工程）
［２−１］  第１の吸着装置への供給工程
次に、得られた試料液を、まず、２つの吸着装置１のうち第１の吸着装置１Ａに供給する。すなわち、第１の吸着装置１Ａの流入管２４およびフィルタ部材４を介して吸着剤３に供給する。
【００９０】
これにより、カラム２（第１の吸着装置１Ａ）内を、試料液が通過して、固体支持体に結合性タンパク質が固定化された固定化部材で構成される吸着剤３に試料液が接触する。
【００９１】
この際、試料液中に含まれる物質のうち、固体支持体（特に、結合性タンパク質）に対する可逆的相互作用（親和性）が高いものが、カラム２内に吸着（保持）され、固体支持体（特に、結合性タンパク質）に対する可逆的相互作用（親和性）が低いものが、フィルタ部材５および流出管２５を介してカラム２内から流出液として流出する。
【００９２】
すなわち、精製タンパク質と、混入物のうち固体支持体に対して親和性が高いものがカラム２内に吸着され、混入物のうち固体支持体に対して親和性が低いものがカラム２内から流出する。
【００９３】
なお、第１の吸着装置１Ａへの試料液の供給の前後において、精製タンパク質の免疫グロブリン定常ドメインが、結合性タンパク質に結合するのを妨害しない溶液を、第１の吸着装置１Ａに供給することで、吸着剤３を洗浄するようにしてもよい。
【００９４】
また、吸着剤３を洗浄する洗浄液としては、緩衝液および／または塩類を含むものを用いることができる。
【００９５】
緩衝液としては、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、酢酸緩衝液およびクエン酸緩衝液が挙げられ、これらのうちの１種または２種以上を組み合わせて用いることができる。
【００９６】
また、塩類としては、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化アンモニウム、酢酸ナトリウム、酢酸カリウム、酢酸アンモニウム、カルシウム塩およびマグネシウム塩等が挙げられ、これらのうちの１種または２種以上を組み合わせて用いることできる。
【００９７】
なお、この溶液としては、具体的には、例えば、トリスを約５〜１００ｍＭの濃度とし、塩化ナトリウムを約５０〜２５０ｍＭの濃度で添加したものが挙げられる。
【００９８】
［２−２］  第１の吸着装置による分画工程
次に、第１の吸着装置１Ａの流入管２４からカラム２内に、吸着剤３に対して精製タンパク質を溶出させるための溶出液を供給する。そして、カラム２内から流出管２５を介して流出する試料液（流出液）を回収する。
【００９９】
これにより、溶出液の作用により、吸着剤３に吸着している精製タンパク質が吸着剤３から離脱することから、試料液（流出液）に溶出した状態で回収される。
【０１００】
溶出液としては、結合性タンパク質による、精製タンパク質が備える免疫グロブリン定常ドメインに対する結合を阻害する機能を有するものが用いられ、例えば、ｐＨを上昇または低下させる物質であるカオトロピック剤、例えば、グアニジニウム、および塩類のうちの少なくとも１種を含有するものが挙げられる。
なお、この溶出液は、酢酸、グリシンまたはクエン酸を含有するものであってもよい。
【０１０１】
また、精製タンパク質の離脱（溶離）は、例えば、前記溶出液のｐＨを低下させることで、より確実に実施することができる。
【０１０２】
具体的には、例えば、クエン酸塩または酢酸塩を含む溶液を用いてｐＨを好ましくは４．５程度以下、より好ましくは３．３程度〜４．０程度に低下させることにより、精製タンパク質を吸着剤３から離脱させることができる。
【０１０３】
なお、ｐＨの上昇により精製タンパク質を吸着剤３から離脱させる場合には、前記溶液のｐＨを好ましくは８．５程度以上に設定すればよい。
【０１０４】
なお、溶出液の流速は、５０〜４００ｃｍ／時程度であるのが好ましく、１００〜３６０ｃｍ／時程度であるのがより好ましい。
【０１０５】
以上のような操作により、アフィニティークロマトグラフィー処理が施された試料液中が、精製タンパク質が粗精製（混入物の少なくとも一部が除去）された状態で回収される。
【０１０６】
なお、本工程を施すことにより、回収された試料液中には、精製タンパク質と、精製タンパク質以外の物質との他、固体支持体から乖離した結合性タンパク質や、この結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体が混入物として含まれる。
【０１０７】
［３］  フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理（第２の工程）
［３−１］  第２の吸着装置への供給工程
次に、第１の吸着装置１Ａから回収された試料液を、第２の吸着装置１Ｂに供給する。すなわち、第１の吸着装置１Ａから回収された試料液を、第２の吸着装置１Ｂの流入管２４およびフィルタ部材４を介して吸着剤３に供給する。
【０１０８】
これにより、カラム２（第２の吸着装置１Ｂ）内を試料液が通過して、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に試料液が接触する。
【０１０９】
この際、試料液中に含まれる緩衝液または塩類のｐＨおよび濃度が以下のようになるように設定されている。
【０１１０】
すなわち、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に対する吸着能が混入物で高くなり、精製タンパク質で低くなるように設定されている。
【０１１１】
換言すれば、フッ素アパタイトクロマトグラフィー処理［３］は、精製タンパク質は、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に吸着（結合）しないが、結合性タンパク質および／または結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体等の混入物は、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に吸着（結合）する条件下で実施される。
【０１１２】
緩衝液または塩類としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、塩化物、フッ化物、酢酸塩、リン酸塩および／またはクエン酸塩、ならびに／あるいはトリス緩衝液が挙げられ、中でも、トリス緩衝液またはリン酸ナトリウム緩衝液であるのが好ましい。
そのような緩衝液または塩類は、少なくとも５．５程度のｐＨに設定される。
【０１１３】
また、リン酸ナトリウム緩衝液を用いる場合、その濃度は、特に限定されないが、好ましくは０．５〜５０ｍＭ、より好ましくは１５〜３５ｍＭ程度に設定される。
【０１１４】
さらに、リン酸緩衝液（リン酸ナトリウ緩衝液）のｐＨは、６．０〜８．６程度であるのが好ましく、６．５〜７．５程度であるのがより好ましい。
【０１１５】
以上のことを考慮すると、かかる溶液としては、特に、濃度２５ｍＭ程度、ｐＨ６．８程度のリン酸ナトリウムが好ましく用いられる。
【０１１６】
［３−２］  第２の吸着装置による分画工程
次に、第２の吸着装置１Ｂの流入管２４からカラム２内に、精製タンパク質を流出させるための供給液（洗浄液）を供給する。そして、カラム２内から流出管２５を介して流出する流出液を回収する。
【０１１７】
この際、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に混入物が吸着し、精製タンパク質が吸着されていないことから、流出液中には精製タンパク質は含まれ、混入物は除去される。
【０１１８】
したがって、カラム２内から流出する流出液すなわちフロースルー液および洗浄液を採集することで、精製タンパク質を精製することができる。
【０１１９】
ここで、試料液中からの結合性タンパク質を含む混入物の除去は、精製すべき精製タンパク質の等電点と、結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体の等電点とが近接する際に、困難となる場合がある。すなわち、吸着剤としてイオン交換樹脂を用いたイオン交換クロマトグラフィーによる、結合性タンパク質を含む混入物の除去は、困難となる可能性が高い。
【０１２０】
これに対して、吸着剤３としてフッ素アパタイトを用いると、フッ素アパタイトは、前述のとおり、両性イオン交換体として静電相互作用に基づく吸着能を有し、正または負電荷を有する各種物質に対して優れた吸着能を発揮することから、上述したような結合性タンパク質を含む混入物の除去を高精度に行うことができるようになる。
【０１２１】
さらに、本発明によれば、精製タンパク質がフロースルー液および洗浄液中に回収されかつ結合性タンパク質（少なくとも１種類の除去すべきタンパク質）がフッ素アパタイトで構成される吸着剤３に保持される条件下で、精製すべき精製タンパク質（抗体のＦｃ領域を含むタンパク質）を精製することができる。そのため、吸着剤３に吸着した精製タンパク質を、溶出させるための溶出工程が省略されるため、精製タンパク質を精製するための精製方法の簡略化を図ることができ、容易に精製タンパク質を精製することができる。
【０１２２】
ここで、カラム２内に供給する供給液は、前記工程［３−１］で供給した試料液と同様に、精製タンパク質は、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に結合しないが、混入物として含まれる結合性タンパク質および／または結合性タンパク質と精製タンパク質との複合体は、フッ素アパタイトで構成される吸着剤３に結合するようなものが用いられる。
【０１２３】
このような供給液は、前記工程［３−１］で説明した、緩衝液または塩類と、同一の濃度およびｐＨであってもよいが、以下のようなものであるのが好ましい。
【０１２４】
すなわち、供給液は、緩衝液および／または塩類を含み、そのｐＨが５．５程度より高く設定されているものが好ましく用いられる。
【０１２５】
より詳しく説明すると、供給液としては、緩衝液および／または塩類を含有するものを用いることができ、緩衝液としては、トリス緩衝液が挙げられ、塩類としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、塩化物、フッ化物、酢酸塩、リン酸塩、クエン酸塩が挙げられる。
【０１２６】
緩衝液および塩類の具体例は、例えば、トリス、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム、リン酸アンモニウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化アンモニウム、塩化マグネシウム、塩化カルシウム、フッ化ナトリウム、フッ化カリウム、フッ化アンモニウム、フッ化カルシウム、フッ化マグネシウム、クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム、クエン酸アンモニウム、酢酸マグネシウム、酢酸カルシウム、酢酸ナトリウム、酢酸カリウムおよび酢酸アンモニウム等が挙げられる。
【０１２７】
ｐＨ範囲は、フッ素アパタイトクロマトグラフィー条件が最適となり、かつ精製タンパク質の特性が保持されるような範囲に設定される。
【０１２８】
具体的には、一般的な精製タンパク質について、ｐＨ範囲は、好ましくは６．０程度〜８．６程度、より好ましくは６．５程度〜７．５程度の範囲内に設定される。
【０１２９】
なお、特定の精製タンパク質については、高または低ｐＨにおいて、その特性が保持されることが知られており、かかる精製タンパク質を分離する場合には、前記ｐＨ範囲をより広範囲に設定することができる。
【０１３０】
以上のことを考慮して、溶液としては、具体的には、好ましくは０．５ｍＭ程度〜５０ｍＭ濃度、より好ましくは１５ｍＭ程度〜３５ｍＭ程度濃度のリン酸ナトリウム緩衝液が用いられ、より詳しくは、２５ｍＭ程度濃度およびｐＨ６．８程度のリン酸緩衝液（リン酸ナトリウム緩衝液）が用いられ、さらに、好ましくはｐＨ６．０程度〜９．０程度、より好ましくは６．５程度〜８．０程度のトリスを用いることができる。
【０１３１】
なお、本工程で用いられる吸着剤３は、前述のとおりフッ素アパタイトで構成され、フッ素アパタイトは、耐酸性および耐アルカリ性に優れる。そのため、供給液として、上記のようなｐＨの範囲を有するものを用いたとしても、吸着剤３の変質・劣化を的確に抑制または防止することができる。
【０１３２】
以上、本発明の精製方法について説明したが、本発明は、これに限定されるものではない。
【０１３３】
例えば、本発明では、任意の目的で、工程[１]の前工程、各工程[１]〜［３］同士の間に存在する中間工程、または工程[３]の後工程を追加するようにしてもよい。
【０１３４】
さらに、粗精製する方法として、アフィニティークロマトグラフィー法を用いるのに代えて、吸着剤として陰イオン交換樹脂または陽イオン交換樹脂を備えるイオン交換クロマトグラフィー法を用いるようにしてもよい。
【実施例】
【０１３５】
次に、本発明の具体的実施例について説明する。
・人免疫グロブリンＧの精製
（実施例）
−１−  まず、試料液として、人免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）を宿主細胞で増殖させた後、この培養上清を採取し、０．２２μｍのフィルタでろ過して試料液を調製した。
【０１３６】
−２−  次に、５ｍＬの試料液（サンプル）を、アガロースで構成される固体支持体に結合性タンパク質としてのプロテインＡが固定化された固定化部材を吸着剤として詰めたφ１０ｘ１００ｍｍのステンレス製カラム（第１の吸着装置）に供給（アプライ）した。
【０１３７】
−３−  次に、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ３）を第１の吸着装置に供給することによりＩｇＧの溶出を行うことで、アフィニティークロマトグラフィー処理が施された試料液を得た。
【０１３８】
なお、この試料液には、大部分を占めるＩｇＧと、宿主細胞タンパク質（５００ｐｐｍ）と、プロテインＡ（１０ｐｐｍ）とを含有していた。なお、宿主細胞タンパク質およびプロテインＡの測定は、ＥＬＩＳＡアッセイを用いて測定した。
【０１３９】
−４−  次に、アフィニティークロマトグラフィー処理が施された試料液に、リン酸ナトリウムを添加して、０．３Ｍリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）とした後、セラミックフルオロアパタイト Type II、４０μｍ（Bio-rad Laboratories, Inc.）を吸着剤として詰めたφ１０ｘ１００ｍｍのステンレス製カラム（第２の吸着装置）に供給（アプライ）した。
【０１４０】
なお、第２の吸着装置に試料液を供給するのに先立って、２カラム容量の０．３Ｍリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）で予備平衡化した後、導電率２ｍＳの２０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）３カラム容量で、第２の吸着装置を平衡化しておいた。
【０１４１】
−５−  次に、３カラム容量の２０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）を第２の吸着装置に供給することで、フロースルーおよび洗浄液を採集することによりＩｇＧの精製を行った。なお、この際におけるフロースルーおよび洗浄液の吸光度変化を図２に示す。
【０１４２】
この採集した液体（フロースルーおよび洗浄液）について、ＥＬＩＳＡアッセイを用いてＩｇＧ、宿主細胞タンパク質およびプロテインＡの含有量を測定したところ、かかる液体中に、装填したＩｇＧの大部分（９０％）が含まれ、宿主細胞タンパク質の含有量は約１／７０（５００ｐｐｍから７ｐｐｍ）にまで減少し、プロテインＡの含有量は約１／１０倍（１０ｐｐｍから１ｐｐｍ）にまで減少した。
【０１４３】
（比較例）
前記工程−４−において用いる第２の吸着装置が備える吸着剤として、セラミックフルオロアパタイトに代えて、セラミックハイドロキシアパタイトType II、４０μｍ（Bio-rad Laboratories, Inc.）を用いたこと以外は、前記実施例と同様にして、フロースルーおよび洗浄液を採集することでＩｇＧの精製を行った。
【０１４４】
そして、採集した液体（フロースルーおよび洗浄液）について、ＩｇＧ、宿主細胞タンパク質およびプロテインＡの含有量を測定したところ、かかる液体中に、装填したＩｇＧの大部分（９０％）が含まれ、宿主細胞タンパク質の含有量は１／２５倍（５００ｐｐｍから２０ｐｐｍ）にまで減少し、プロテインＡの含有量は約１／５倍（１０ｐｐｍから２ｐｐｍ）にまで減少していた。
【０１４５】
以上のように、第２の吸着装置が備える吸着剤として、セラミックフルオロアパタイトを用いた場合、セラミックハイドロキシアパタイトを用いた場合と比較して、採集した液体（フロースルーおよび洗浄液）に含まれる宿主細胞タンパク質の含有量およびプロテインＡの含有量を減少させることができた。
【符号の説明】
【０１４６】
１            吸着装置
１Ａ          第１の吸着装置
１Ｂ          第２の吸着装置
２            カラム
２０          吸着剤充填空間
２１          カラム本体
２２、２３    キャップ
２４          流入管
２５          流出管
３            吸着剤
４、５        フィルタ部材
【図１】
2013184919.tif 000002
【図２】
2013184919.tif 000003