(57)【要約】【課題】悪性胸膜中皮腫を治療するための新規な治療剤を提供する。【解決手段】接着斑キナーゼを標的として、細胞内で該接着斑キナーゼの発現量を低減させるＲＮＡｉ分子を含む、中皮腫治療剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
接着斑キナーゼを標的として、細胞内で該接着斑キナーゼの発現量を低減させるＲＮＡｉ分子を含む、中皮腫治療剤。
【請求項２】
ＲＮＡｉ分子が、ＡＵＡＣＵＧＵＡＧＡＧＵＣＣＵＣＣＡＣＡＵＵＧＧＧ（配列番号１）で表される塩基配列からなるセンス鎖と該センス鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするアンチセンス鎖がハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む、請求項１に記載の中皮腫治療剤。
【請求項３】
ＲＮＡｉ分子が、ＡＵＡＣＵＧＵＡＧＡＧＵＣＣＵＣＣＡＣＡＵＵＧＧＧ（配列番号１）で表される塩基配列からなるセンス鎖とＣＣＣＡＡＵＧＵＧＧＡＧＧＡＣＵＣＵＡＣＡＧＵＡＵ（配列番号２）で表される塩基配列からなるアンチセンス鎖がハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む、請求項２に記載の中皮腫治療剤。
【請求項４】
ＲＮＡｉ分子のセンス鎖とアンチセンス鎖がリンカー部分を介して連結されている、請求項１〜３のいずれか１項に記載の中皮腫治療剤。
【請求項５】
ＲＮＡｉ分子が配列番号３で表される塩基配列からなる、請求項４に記載の中皮腫治療剤。
【請求項６】
請求項４または請求項５に特定されるＲＮＡｉ分子を発現するベクターを含む、中皮腫治療剤であって、該ベクターは該ＲＮＡｉ分子をコードするＤＮＡを含む、上記中皮腫治療剤。
【請求項７】
中皮腫が悪性胸膜中皮腫である、請求項１〜６のいずれか１項に記載の中皮腫治療剤。
【請求項８】
胸腔内投与用である、請求項１〜７のいずれか１項に記載の中皮腫治療剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、接着斑キナーゼ（ｆｏｃａｌ  ａｄｈｅｓｉｏｎ  ｋｉｎａｓｅ；ＦＡＫ）遺伝子の発現を抑制するＲＮＡｉ分子および当該ＲＮＡｉ分子を含む悪性胸膜中皮腫の治療のための組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
中皮腫は、胸膜、腹膜および心膜を主な発生部位とする、中皮細胞由来の腫瘍の総称である。悪性胸膜中皮腫は、中胚葉由来の胸膜中皮から発生する悪性腫瘍で、通常壁側胸膜から発生し、胸膜沿いに進展する（非特許文献１）。胸膜中皮腫の発生要因の大半はアスベスト暴露であることが知られており、肺がんとは異なり喫煙との相互作用は認められていない（非特許文献１）。一般にアスベスト暴露後の潜伏期間は長く、中皮腫発生までに２０〜５０年（平均４０年）を要する。２００８年には本邦で１，１７０人の患者が報告されているが（非特許文献２）、本邦でのアスベストの全面使用禁止は２００６年であり、今後の４０年間で２０３０〜２０５１年をピークに約１０万人の患者発生が予想されている（非特許文献３）。悪性胸膜中皮腫は肺癌とは異なり中胚葉由来であることから、上皮としての性格を持つ癌腫と非上皮の性格を持つ肉腫の両方向への分化能を有しており、病理組織学的には上皮型（５０〜６０％）、二相型（２０〜２５％）、肉腫型（２０％）に分かれる。患者では、通常片側性の胸膜肥厚を認め、約８０％の症例で胸水を合併する。細胞診での診断率は約３０％と低く、胸腔鏡下の組織検査が行われることが多い。肺がんとの鑑別にも複数の分子マーカーに対する免疫染色を用いた総合的な組織診断が必要である（非特許文献４）。一方、臨床経過は遠隔臓器への転移が問題となる肺がんとは大きく異なり、臨床的に転移が問題になることは少なく、局所再発が問題となる症例がほとんどである。治療には抵抗性を示し、手術療法、放射線療法、化学療法が行われるが、いずれの治療に対しても低感受性である。化学療法としては、シスプラチンとペメトレキセドの併用療法が用いられるが（非特許文献５）、平均生存期間は約１２ヶ月と予後は不良である。
【０００３】
インテグリンは、細胞外マトリックス分子に対する主要な細胞表面レセプターであって、さまざまな生物学的プロセスにおいて重要な役割を果たしている。接着斑キナーゼ（以下、「ＦＡＫ」と記載する）は、インテグリンによって開始されるシグナル伝達経路の主要な構成要素であることが、最近になって確認されている。ＦＡＫは、接着斑において、インテグリンおよび細胞骨格タンパク質とともに集合することが、ＦＡＫの活性化に関与すると提唱されてきた。多くの異なったアプローチによる最近の結果から、ＦＡＫを介するインテグリンシグナル伝達は、フィブロネクチン上での細胞の遊走を増加させるとともに、細胞の増殖および生存を調節している可能性があることが示されている（非特許文献６）。インテグリンとＦＡＫの相互作用によって、癌細胞の接着および細胞外マトリックス（ＥＣＭ）への浸潤を調節している。ＦＡＫのシグナル伝達カスケードのトリガーは、Ｙ３９７の自己リン酸化である。リン酸化されたＹ３９７は、ＳｒｃファミリーのチロシンキナーゼのためのＳＨ２ドッキング部位であり、これに結合したｃ−Ｓｒｃキナーゼは、ＦＡＫ中の他のチロシン残基をリン酸化する。ＦＡＫのリン酸化は、細胞の運動性および浸潤の増加と相関する。ＩＶ型コラーゲン等、さまざまなＥＣＭタンパク質への癌細胞の接着および伝播によって、チロシンのリン酸化およびＦＡＫの活性化の増加がもたらされる（非特許文献７）。
【０００４】
ＲＮＡ干渉（以下、「ＲＮＡｉ」と記載する）は、多くの真核生物で保存されている転写後遺伝子制御の方法である。ＲＮＡｉ分子は、細胞中に存在する二本鎖ＲＮＡ（以下、「ｄｓＲＮＡ」と記載する）によって誘導される（非特許文献８）。ｄｓＲＮＡであって短いもの、即ち、３０ヌクレオチド未満のものは、短い干渉性ＲＮＡ（以下、「ｓｉＲＮＡ」と記載する）と呼ばれ、ｓｉＲＮＡとの配列相同性を共有するメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）の破壊を引き起こす（非特許文献９）。ｓｉＲＮＡ及び標的のｍＲＮＡは、ＲＮＡ誘導されたサイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）に結合し、これが標的ｍＲＮＡを開裂させると考えられている。このｓｉＲＮＡは、見かけ上、マルチプルターンオーバー酵素とよく似て、再利用され、一つのｓｉＲＮＡ分子が、約１０００のｍＲＮＡ分子の開裂を誘導することができる。それ故、ＲＮＡｉ分子によるｍＲＮＡの分解は、標的遺伝子の発現を阻止するための現在利用可能な技術より一層有効である。
【０００５】
培養哺乳動物細胞においては、ＲＮＡｉ作用が、生きたマウスにおいても有効であることが示された（非特許文献１０、非特許文献１１）。また、ＦＡＫを標的とするＲＮＡｉ分子は、乳癌、肺癌、卵巣腫瘍の治療に適応する可能性があることが開示されている（非特許文献１２、非特許文献１３、特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特表２００８−５３６８７４号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｒｏｂｉｎｓｏｎ  ＢＷＳ，Ｌａｋｅ  ＲＡ．Ａｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ．Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ  ２００５；３５３：１５９１−１６０３．
【非特許文献２】厚生労働省ホームページ。都道府県別にみた中皮腫による死亡数の年次推移（平成７年〜２０年）（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｈｌｗ．ｇｏ．ｊｐ／ｔｏｕｋｅｉ／ｓａｉｋｉｎ／ｈｗ／ｊｉｎｋｏｕ／ｔｏｋｕｓｙｕ／ｃｈｕｕｈｉｓｙｕ０８／）
【非特許文献３】Ｍｕｒａｙａｍａ  Ｔ  ｅｔ  ａｌ．Ｅｓｔｉｍａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｆｕｔｕｒｅ  ｍｏｒｔａｌｉｔｙ  ｆｒｏｍ  ｐｌｅｕｒａｌ  ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ  ｉｎ  Ｊａｐａｎ  ｂａｓｅｄ  ｏｎ  ａｎ  ａｇｅ−ｃｏｈｏｒｔ  ｍｏｄｅｌ．  Ａｍ  Ｊ  Ｉｎｄ  Ｍｅｄ  ２００６；４９：１−７．
【非特許文献４】Ｒｏｂｉｎｓｏｎ  ＢＷＳ  ｅｔ  ａｌ．Ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ．２００５；３６６：３９７−４０８．
【非特許文献５】Ｖｏｇｅｌｚａｎｇ  ＮＪ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｈａｓｅ  ＩＩＩ  ｓｔｕｄｙ  ｏｆ  ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ  ｉｎ  ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ｃｉｓｐｌａｔｉｎ  ｖｅｒｓｕｓ  ｃｉｓｐｌａｔｉｎ  ａｌｏｎｅ  ｉｎ  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ｗｉｔｈ  ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｐｌｅｕｒａｌ  ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ．Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｏｎｃｏｌ．２００３；２１：２６３６−２６４４
【非特許文献６】ＪＬ  Ｇｕａｎ，Ｉｎｔ  Ｊ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，２９（８−９）：１０８５−９６（１９９７  Ａｕｇ−Ｓｅｐ）
【非特許文献７】Ｈ  Ｓａｗａｉ，  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃａｎｃｅｒ，４：３７（２００５）
【非特許文献８】Ｆｉｒｅ  Ａ，  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ  ３９１：８０６−８１１（１９９８）
【非特許文献９】Ｅｌｂａｓｈｉｒ  ＳＭ，ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，４１１：４９４−４９８（２００１）
【非特許文献１０】Ｎａｔｕｒｅ，４１８：３８−３９（２００２）
【非特許文献１１】Ｘｉａ  Ｈ，ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．２０：１００６−１０１０（２００２）
【非特許文献１２】ＢＭＣ  Ｃａｎｃｅｒ  ２００９；９：２８０
【非特許文献１３】Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ２００４；２４（６）：３８９９
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
中皮腫、特に悪性胸膜中皮腫は、従来治療法に対して明らかな高い悪性腫瘍抵抗性があるので、当該中皮腫における新規な標的および新規な治療戦略が早急に開発されることを必要とされている。
本発明は、悪性胸膜中皮腫を治療するための新規な治療剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らはこのような現状に鑑み、悪性胸膜中皮腫に対する新規標的遺伝子を探索し、また当該中皮腫の治療法の研究を重ねた結果、ＦＡＫは当該中皮腫の効果的な標的であることを見出した。また、ＦＡＫの発現を特に顕著に抑制することが可能な新規なＲＮＡｉ分子を見出した。さらに、本発明者らは、当該ＲＮＡｉ分子がＦＡＫの発現を顕著に抑制することにより、当該中皮腫の抗腫瘍効果を有することを確認し、本発明を完成するに至った。
【００１０】
すなわち本発明は、以下のとおりである。
［１］  接着斑キナーゼを標的として、細胞内で該接着斑キナーゼの発現量を低減させるＲＮＡｉ分子を含む、中皮腫治療剤。
［２］  ＲＮＡｉ分子が、ＡＵＡＣＵＧＵＡＧＡＧＵＣＣＵＣＣＡＣＡＵＵＧＧＧ（配列番号１）で表される塩基配列からなるセンス鎖と該センス鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするアンチセンス鎖がハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む、［１］の中皮腫治療剤。
［３］  ＲＮＡｉ分子が、ＡＵＡＣＵＧＵＡＧＡＧＵＣＣＵＣＣＡＣＡＵＵＧＧＧ（配列番号１）で表される塩基配列からなるセンス鎖とＣＣＣＡＡＵＧＵＧＧＡＧＧＡＣＵＣＵＡＣＡＧＵＡＵ（配列番号２）で表される塩基配列からなるアンチセンス鎖がハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む、［２］の中皮腫治療剤。
［４］  ＲＮＡｉ分子のセンス鎖とアンチセンス鎖がリンカー部分を介して連結されている、［１］〜［３］のいずれかの中皮腫治療剤。
［５］  ＲＮＡｉ分子が配列番号３で表される塩基配列からなる、［４］の中皮腫治療剤。
［６］  ［４］または［５］に特定されるＲＮＡｉ分子を発現するベクターを含む、中皮腫治療剤であって、該ベクターは該ＲＮＡｉ分子をコードするＤＮＡを含む、上記中皮腫治療剤。
［７］  中皮腫が悪性胸膜中皮腫である、［１］〜［６］のいずれかの中皮腫治療剤。
［８］  胸腔内投与用である、［１］〜［７］のいずれかの中皮腫治療剤。
【発明の効果】
【００１１】
本発明におけるＲＮＡｉ分子は、ＦＡＫの発現を特に顕著に抑制することが可能であり、ＦＡＫを発現する悪性胸膜中皮腫の増殖を抑制することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞（Ａ）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞（Ｂ）におけるＦＡＫ発現量を示す。ＣＴＲＬ：無処置のもの、対照ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、縦軸：βアクチン発現量との相対比で示すＦＡＫ発現量。
【図２】図２はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞（Ａ）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞（Ｂ）の創傷治癒率（遊走率）（％）を示す。ＣＴＲＬ：無処置のもの、対照ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【図３】図３はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞（Ａ）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞（Ｂ）の浸潤率（％）を示す。ＣＴＲＬ：無処置のもの、対照ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【図４】図４はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞（Ａ）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞（Ｂ）の細胞増殖能（細胞生存率）（％）を示す。細胞のみ：無処置のもの、対照ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ  ３，１０，３０，６０ｎＭ：ＦＡＫを標的とする各濃度のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【図５】図５はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子のｉｎ  ｖｉｖｏ投与による、Ｙ−ＭＥＳＯ−１４細胞およびＮＣＩ−Ｈ２９０細胞におけるＦＡＫ発現量を示す。ＭＯＣＫ：ｓｉＲＮＡ分子による処置なし、ＣＴＲＬ  ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ  ｉｎ  ｖｉｖｏトランスフェクション：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【図６】図６はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子のｉｎ  ｖｉｖｏ投与による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞の胸腔内腫瘍ならびに血性胸水を示す。ＣＴＲＬ：ｓｉＲＮＡ分子による処置なし、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【図７】図7はＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子のｉｎ  ｖｉｖｏ投与による、ＮＣＩ−Ｈ２９０細胞およびＹ−ＭＥＳＯ−１４細胞の腫瘍重量ならびに血性胸水産生量を示す。ＭＯＣＫ：ｓｉＲＮＡ分子による処置なし、ＣＴＲＬ  ｓｉＲＮＡ：対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したもの、ＦＡＫ  ｓｉＲＮＡ：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子で処置したもの。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明におけるＲＮＡｉ分子は、配列番号１で表される塩基配列からなるセンス鎖と、当該センス鎖の塩基配列に相補的な塩基配列を有するアンチセンス鎖とがハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む。本発明におけるＲＮＡｉ分子は、当該アンチセンス鎖がハイブリダイズ可能なＦＡＫのｍＲＮＡ部分（以下、標的ｍＲＮＡ部分）を標的とすることにより、ＦＡＫ特異的にＲＮＡｉ作用を奏し、ＦＡＫの発現を顕著に抑制することができる。
【００１４】
ここで本発明におけるＲＮＡｉ分子が、標的ｍＲＮＡ部分を「標的」とするとは、本発明のＲＮＡｉ分子の二本鎖ＲＮＡ部分のアンチセンス鎖が、標的ｍＲＮＡ部分とストリンジェントな条件下でハイブリダイズできることをいう。
【００１５】
ストリンジェントな条件下とは、常法に従ってハイブリッドを形成する核酸の融解温度（Ｔｍ）に基づいて求めることができる。例えば、ハイブリダイズ状態を維持できる洗浄条件として通常「１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、３７℃」程度の条件、より厳格には「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」程度の条件、さらに厳格には「０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」程度の条件が挙げられる。
【００１６】
本発明におけるＲＮＡｉ分子の二本鎖ＲＮＡ部分のアンチセンス鎖は、標的ｍＲＮＡ部分と完全に相補的な塩基配列からなるＲＮＡであることが望ましいが、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズできる限り、１〜３の塩基、好ましくは１〜２塩基、より好ましくは１塩基の欠失、置換、付加を含むミスマッチを有するものであってもよい。
【００１７】
好ましくは、本発明におけるＲＮＡｉ分子は、配列番号１で表される塩基配列からなるセンス鎖と配列番号２で表される塩基配列からなるアンチセンス鎖がハイブリダイズしてなる二本鎖ＲＮＡ部分を含む。
【００１８】
本発明におけるＲＮＡｉ分子を構成するセンス鎖またはアンチセンス鎖は必要に応じて、３’末端にオーバーハングを有していても良い。当該オーバーハングの塩基の種類、数は限定されず、例えば、１〜５、好ましくは１〜３、さらに好ましくは１もしくは２塩基からなる配列が挙げられ、例えば、ＴＴＴ、ＵＵやＴＴが挙げられる。本発明において、オーバーハングとは、ＲＮＡｉ分子の一方の鎖の末端に付加された塩基であって、もう一方の鎖の対応する位置に相補的に結合し得る塩基が存在しない塩基をいう。オーバーハングはＤＮＡを構成する塩基であってもよい。さらに、ｓｉＲＮＡを構成するセンス鎖またはアンチセンス鎖は、遺伝子の配列決定等種々の実験操作を円滑に行うために、ＲＮＡｉ活性に対して影響を与えない範囲で必要に応じて１〜３塩基、さらに好ましくは１もしくは２塩基の置換、付加、欠失をさらに含んでも良い。
【００１９】
また、センス鎖またはアンチセンス鎖は必要に応じて、５’末端がリン酸化されていてもよく、５’末端に三リン酸（ｐｐｐ）が結合していても良い。
【００２０】
本発明におけるＲＮＡｉ分子には、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ（ｓｈｏｒｔ  ｈａｉｒｐｉｎ  ＲＮＡ）分子等の二本鎖ＲＮＡ分子が含まれるが、好ましくはｓｉＲＮＡ分子およびｓｈＲＮＡ分子である。
【００２１】
本発明におけるｓｉＲＮＡ分子とは、上記センス鎖とアンチセンス鎖がハイブリダイズし、二本鎖部分を形成した二本鎖ＲＮＡ分子である。
【００２２】
ｓｉＲＮＡ分子を構成するセンス鎖およびアンチセンス鎖は、公知の方法に基づいて、化学合成や、プロモーターおよびＲＮＡポリメラーゼを用いた転写系によってｉｎ  ｖｉｔｒｏで合成することができる。また、適当な発現ベクターに当該アンチセンス鎖およびセンス鎖の鋳型ＤＮＡを導入し、当該ベクターを適当な宿主細胞内に投与することによってｉｎ  ｖｉｖｏで合成することも可能である。合成されたセンス鎖およびアンチセンス鎖のアニーリングは、当業者に公知である一般的な方法によって行うことができる。合成したセンス鎖およびアンチセンス鎖をそれぞれ二本鎖ＲＮＡ用アニーリングバッファーに溶解し、等量（等モル数）を混合し、二本鎖が解離するまで温度を加熱し、その後徐々に冷却してインキュベートすることによって行うことができる。アニーリング条件は、例えば、９０℃にて１分間、続いて３７℃にて１時間静置することによって行うことができる。その後、フェノール／クロロホルム抽出・エタノール沈殿を行うことによって、二本鎖ＲＮＡ分子であるｓｉＲＮＡ分子を得ることができる。
【００２３】
本発明における、ｓｈＲＮＡ分子とは、上記センス鎖とアンチセンス鎖とが、リンカー部分を介して連結された４０〜６０塩基からなる一本鎖ＲＮＡであり、当該リンカー部分がループを形成することにより折りたたまれ、当該アンチセンス鎖と当該センス鎖がハイブリダイズして、二本鎖部分を形成する。
【００２４】
ｓｈＲＮＡ分子に含まれるリンカー部分は、センス鎖とアンチセンス鎖を連結しステムループ構造を形成し得る限り、ポリヌクレオチドリンカーであっても、非ポリヌクレオチドリンカーであってもよく、特に限定しないが、当業者に公知である２〜２２塩基のポリヌクレオチドリンカーが好ましい。具体的には、ＵＡＧＵＧＣＵＣＣＵＧＧＵＵＧ（配列番号４）、ＵＵＣＡＡＧＡＧＡ、ＣＣＡＣＣ、ＣＵＣＧＡＧ、ＣＣＡＣＡＣＣ、ＵＵＣＡＡＧＡＧＡ、ＡＵＧ、ＣＣＣおよびＵＵＣＧが例示でき、ＵＡＧＵＧＣＵＣＣＵＧＧＵＵＧ（配列番号４）が好ましい。
このようなｓｈＲＮＡとしては、配列番号３で表される塩基配列を含むものが好ましい。
【００２５】
ｓｈＲＮＡ分子も、上記したように公知の方法に基づいて、ｉｎ  ｖｉｔｒｏまたはｉｎ  ｖｉｖｏにて合成することが可能である。合成に際しては、センス鎖とアンチセンス鎖をリンカー部分を介して逆方向配列として含む１本のＲＮＡ鎖を合成し、その後この１本のＲＮＡ鎖を自己相補的結合によって二本鎖構造を形成させｓｈＲＮＡ分子を得ることができる。
【００２６】
ｓｈＲＮＡ分子はまた、当該ｓｈＲＮＡ分子をコードする鋳型ＤＮＡを含む発現ベクターを使用して得ることもできる。
【００２７】
本発明に用いることができるベクターとしては、プラスミドベクター、ウイルスベクター、非ウイルスベクター等を用いることができる。プラスミドベクターとしては、ｐＢＡｓｉベクター、ｐＳＵＰＥＲベクター、ｐＢＡｓｉ−ｈＵ６等を用いることができる。ウイルスベクターとしては、アデノウイルスベクター（ｐＡｘｃｗｉｔ等）、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター等を用いることができる。非ウイルスベクターとしては、リポソームベクター等を用いることができる。
【００２８】
ベクターには、プロモーターおよび／またはその他の制御配列をｓｈＲＮＡ分子の鋳型ＤＮＡに機能し得るかたちで連結して挿入する。「機能し得るかたちで連結して挿入する」とは、当該ベクターが導入された細胞において、プロモーターおよび／またはその他の制御配列の制御の下、上記ｓｈＲＮＡ分子が発現され標的となるＦＡＫのｍＲＮＡが分解されるように、プロモーターおよび／またはその他の制御配列を連結してベクターに組み込むことを意味する。ベクターに組み込むことができるプロモーターおよび／またはその他の制御配列は特に限定されないが、構成的プロモーター、組織特異的プロモーター、時期特異的プロモーター、ｔＲＮＡプロモーター、Ｈ１プロモーター、Ｕ６プロモーター、ポリメラーゼＩＩ系プロモーター、ＣＭＶプロモーター等、その他の調節エレメント等（例えば、チミジン残基が少なくとも４つ以上連続する配列からなるターミネーター配列）、当該分野で公知のプロモーターおよび／またはその他の制御配列を適宜選択することが可能である。
【００２９】
このように作製された上記ｓｈＲＮＡ分子を発現するベクターは、導入された細胞内でｓｈＲＮＡ分子を発現し、ＦＡＫのｍＲＮＡを特異的に分解することができる。
【００３０】
本発明におけるＲＮＡｉ分子の投与方法は、腫瘍内で効果を奏する限り特に制限はなく、ＲＮＡｉ分子は、腫瘍内や血中に投与することが可能である。本発明におけるＲＮＡｉ分子が血中に投与される場合、ＲＮＡｉ分子の分解を防ぐため、公知の核酸修飾法により修飾してもよい。また、腫瘍に到達しやすいように、リポソームや高分子ミセル等の公知のドラッグデリバリーシステム（ＤＤＳ）技術を用いてもよい。
【００３１】
また、本発明におけるｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを細胞に導入する方法としては、脂質を媒介とする担体輸送法（例えば、リポフェクトアミン法）、化学物質（リン酸カルシウム等）を媒介とする輸送、マイクロインジェクション、遺伝子銃による打ち込み法、電気穿孔法等が挙げられる。
【００３２】
本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターの効果は、当該分子またはベクターを導入された細胞や組織、および個体におけるＦＡＫのｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量が、当該分子またはベクターを導入していない（または導入前の）細胞や組織、および個体におけるＦＡＫのｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量と比較して低下していることを指標にして評価することが可能である。測定対象がｍＲＮＡである場合には、ノザンハイブリダイゼーション、ＲＴ−ＰＣＲ、ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ等によって測定することができる。また、測定対象がタンパク質である場合には、ウエスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ、抗体を結合させたプロテインチップを用いた測定、タンパク質の活性測定等によって測定することができる。
【００３３】
本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターは、導入された細胞や組織、および個体におけるＦＡＫのｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量を、対照と比較して５割以上、６割以上、７割以上、好ましくは８割以上またはさらに好ましくは９割以上、低下させることが可能である。
【００３４】
本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターの効果は、ＦＡＫのｍＲＮＡを標的とする当業者に公知であるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターと比べて、２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、２０倍、３０倍、４０倍、５０倍、１００倍、またはそれ以上のＦＡＫの発現抑制効果を有し得る。
【００３５】
なお、ＲＮＡｉ分子の設計において、標的ｍＲＮＡ部分の塩基配列を選択する方法として種々の方法が知られており、例えば、ｓｉＲＮＡ  Ｄｅｓｉｇｎ  Ｓｕｐｐｏｒｔ  Ｓｙｓｔｅｍ（タカラバイオ株式会社）等を用いることが可能である。しかし、当該手法により選択された塩基配列を有するＲＮＡｉ分子の全てがＲＮＡｉ作用を有するわけではない。したがって、当該手法により選択された塩基配列を有する候補ＲＮＡｉ分子の中から、所望するＦＡＫの発現を顕著に抑制する作用を有するＲＮＡｉ分子を選択することは多大な困難性を有するものである。
【００３６】
下記実施例にて詳述されるように、本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターは中皮腫の増殖を抑制することが可能であることから、本発明のＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターは、中皮腫を治療および／または予防するための医薬組成物の有効成分として使用できる。
【００３７】
本発明において「中皮腫」は、ＦＡＫを発現する限り、胸膜中皮腫、腹膜中皮腫、心膜中皮腫など（これらに限定されない）が含まれ、また悪性であっても良性であってもよい。好ましくは、「中皮腫」は、悪性胸膜中皮腫である。
【００３８】
より詳細には、本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを投与することによって、悪性胸膜中皮腫細胞の遊走能を４割以上、好ましくは５割以上、さらに好ましくは６割以上抑制することができる。また、本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを投与することによって、悪性胸膜中皮腫細胞の浸潤能を６割以上、好ましくは７割以上、さらに好ましくは８割以上抑制することができる。さらに、本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを投与することによって、悪性胸膜中皮腫細胞の増殖を５割以上、６割以上、好ましくは７割以上、さらに好ましくは８割以上抑制することができる。またさらに、本発明におけるＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを投与することによって、悪性胸水の産生を５割以上、６割以上、好ましくは７割以上、さらに好ましくは８割以上抑制することができる。
【００３９】
本発明治療剤は、上記ＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを１種または複数種を組み合わせて含んでも良い。また、本発明治療剤の有効成分としては、ｓｈＲＮＡ分子発現ベクターを使用することが好ましい。当該ベクターは、ＲＮＡｉ分子を合成するより安価であり、かつ、細胞内に導入後増幅されてｓｈＲＮＡ分子を安定して大量に生成し得る点でＲＮＡｉ分子を導入するのに比べて量的な効率も良いためである。当該ｓｈＲＮＡ発現ベクターは配列番号３で表されるｓｈＲＮＡ分子を発現するものが好ましい。
【００４０】
本発明治療剤はまた、上記ＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターと共に、通常用いられている適当なキャリア、希釈剤、エマルジョン、賦形剤、増量剤、結合剤、浸潤剤、崩壊剤、表面活性剤、滑沢剤、分散剤、緩衝剤、保存剤、溶解補助剤、防腐剤、着色料、香味剤、および安定化剤等を含んでも良い。
【００４１】
本発明治療剤は、注射によって直接中皮腫に対して投与することが可能であり、また、経口投与または非経口投与（例えば、静脈内投与、動脈内投与、注射による局所投与、腹腔または胸腔内投与、経肺投与、皮下投与、筋肉内投与、舌下投与、経皮吸収または直腸内投与等）によっても、投与することができる。中皮種が悪性胸膜中皮腫である場合、その生体内での進展様式（上記「背景技術」の欄を参照）を考えると、胸腔内投与がより好ましい。胸腔内への投与方法については、公知慣用の方法が用いられるが、例えば、悪性胸膜中皮腫患者の胸腔内投与には、単回投与であれば経皮的に注射用シリンジと注射針を利用しての投与が一般的であるが、繰り返し投与の必要性が想定される場合はカテーテルを留置し、利用する方法が考えられる。
【００４２】
また、本発明治療剤は、投与経路に応じて適当な剤形とすることができる。具体的には注射剤、懸濁剤、乳化剤、軟膏剤、クリーム剤錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、丸剤、細粒剤、トローチ錠、直腸投与剤、油脂性坐剤、水溶性坐剤等の各種製剤形態に調製することができるが、好ましくは注射剤である。
【００４３】
本発明治療剤に含まれる上記ＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターは、患者の年齢、体重、疾患の重篤度等の要因によって変化し得るが、１回につき体重１ｋｇあたり０．０００１ｍｇ〜１００ｍｇの範囲から適宜選択される量を含めることができる。
【００４４】
また、本発明治療剤中に含有される上記ＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターの目的の組織または細胞への遺伝子送達は、遺伝子治療の分野で通常用いられている種々の投与方法を利用することが可能であり、例えば、上記したようにリポソームや高分子ミセル等の公知のＤＤＳ技術、脂質を媒介とする担体輸送法（例えば、リポフェクトアミン法）、化学物質（リン酸カルシウム等）を媒介とする輸送、マイクロインジェクション、遺伝子銃による打ち込み法、電気穿孔法等を利用することが可能である。
【００４５】
本発明治療剤の効果は、中皮腫に由来する細胞や組織、および中皮腫に罹患する個体に本発明治療剤を投与し、腫瘍の大きさが当該治療剤を投与していない（または投与前の）細胞や組織、および個体における腫瘍の大きさと比較して、腫瘍が縮小または消滅していることを指標にして評価することが可能である。本発明治療剤の効果を評価するのに利用できる中皮腫細胞としては、例えば、ヒト悪性胸膜中皮腫細胞ＮＣＩ−Ｈ２９０、Ｙ−ＭＥＳＯ−１４等が挙げられる。
【００４６】
本発明治療剤の効果は、ＦＡＫのｍＲＮＡを標的とする当業者に公知のＲＮＡｉ分子またはｓｈＲＮＡ分子発現ベクターと比べて、２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、２０倍、３０倍、４０倍、５０倍、１００倍、またはそれ以上の抗腫瘍効果を有し得る。
【００４７】
本発明治療剤における製剤としては、薬理学的に許容される担体を用いて、通常公知の方法により調製することができる。斯かる担体としては、通常の薬剤に汎用される各種のもの、例えば賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、ｐＨ調整剤、緩衝剤、安定化剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤等を例示できる。
【００４８】
賦形剤としては、例えば、乳糖、ショ糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、マルトース、マンニトール、エリスリトール、キシリトール、マルチトール、イノシトール、デキストラン、ソルビトール、アルブミン、尿素、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、結晶セルロース、ケイ酸、メチルセルロース、グリセリン、アルギン酸ナトリウム、アラビアゴムおよびこれらの混合物等が挙げられる。滑沢剤としては、例えば、精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコールおよびこれらの混合物等が挙げられる。結合剤としては、例えば、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン溶液、ポリビニルアルコール、ポリビニルエーテル、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロース、セラック、メチルセルロース、エチルセルロース、水、エタノール、リン酸カリウムおよびこれらの混合物等が挙げられる。崩壊剤としては、例えば、乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、ラミナラン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル類、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、デンプン、乳糖およびこれらの混合物等が挙げられる。希釈剤としては、例えば、水、エチルアルコール、マクロゴール、プロピレングリコール、エトキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル類およびこれらの混合物等が挙げられる。安定化剤としては、例えば、ピロ亜硫酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸、チオグリコール酸、チオ乳酸およびこれらの混合物等が挙げられる。等張化剤としては、例えば、塩化ナトリウム、ホウ酸、ブドウ糖、グリセリンおよびこれらの混合物等が挙げられる。ｐＨ調整剤および緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム、クエン酸、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウムおよびこれらの混合物等が挙げられる。無痛化剤としては、例えば、塩酸プロカイン、塩酸リドカインおよびこれらの混合物等が挙げられる。
【００４９】
上記各製剤の投与形態としては特に制限は無く、治療目的に応じて適宜選択でき、具体的には経口剤（錠剤、被覆錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤、液剤等）、注射剤、坐剤、貼付剤、軟膏剤等が例示できるが、注射剤とすることが好ましい。
【００５０】
本発明治療剤における投与順序や投与間隔は、各有効成分による効果が得られる範囲であれば特に制限されないが、１日に１回、２日に１回毎、１週間に２回毎、１週間に３回毎、又は１週間に１回毎に投与することが例示できる。
【００５１】
本発明はまた、上記本発明治療剤を用いた中皮腫の治療方法に関する。当該方法により治療し得る中皮腫としては、上記に定義したような中皮腫が含まれる。また、当該方法において上記本発明治療剤の用法および用量は上記したとおりである。
【実施例】
【００５２】
以下、実施例及び試験例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例及び試験例に限定されるものではない。
【００５３】
実施例１：ＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子の調製
ＲＮＡｉ作用によりＦＡＫの発現を抑制することができるｓｉＲＮＡ分子の作製を目的として、以下のＲＮＡを合成した：
センス鎖側ＲＮＡ
５’−ＡＵＡＣＵＧＵＡＧＡＧＵＣＣＵＣＣＡＣＡＵＵＧＧＧ−３’（配列番号１）；
アンチセンス鎖側ＲＮＡ
５’−ＣＣＣＡＡＵＧＵＧＧＡＧＧＡＣＵＣＵＡＣＡＧＵＡＵ−３’（配列番号２）。
【００５４】
センス鎖側ＲＮＡとアンチセンス鎖側ＲＮＡを各々等量に終濃度２０μＭとなるようにし、終濃度０．１％となるジエチルピロカーボネート（ＤＥＰＣ）、終濃度１０ｍＭとなるＴｒｉｓ―ＨＣｌ，ｐＨ８．０、終濃度２０ｍＭとなるＮａＣｌ、終濃度１ｍＭとなるＥＤＴＡを加えた水溶液を調製した。
【００５５】
実施例２：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫のＦＡＫの発現抑制効果
悪性胸膜中皮腫細胞ＮＣＩ−Ｈ２９０およびＹ−ＭＥＳＯ−１４をＲＰＭＩ１６４０培地で６ウェルプレートに培養した。ウェル中の細胞密度が約３０−５０％の状態となった段階で、１０ｎＭとした実施例１のＲＮＡｉ分子を７．５μＬと、７．５μＬのＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ  ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を混合し、これら培養細胞に添加する処置を行った。併せて、無処置のもの、対照のｓｉＲＮＡ分子で処置したものも用意した。
【００５６】
添加後４８時間経過した段階で、細胞を回収し、直ちにｍＲＮＡを抽出し、製造元のプロトコルに従って、ＴａｑｍａｎリアルタイムＰＣＲ法（Ａｓｓａｙｓ−ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ  Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｓｙｓｔｅｍ，ａｓｓａｙ  ＩＤ  Ｈｓ９９９９９９０５＿ｍ１，ＰＣＲ  ｐｒｏｄｕｃｔ  ｓｉｚｅ  １２２  ｂｐ；Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）によりＦＡＫの発現を確認した。内部標準としてはＧＡＰＤＨを用いた。各遺伝子の発現は、ＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ７７００  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）により確認した。
【００５７】
結果を図１に示す。実施例１にて調製したＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子が悪性胸膜中皮腫細胞におけるＦＡＫの発現を顕著に抑制することが確認できた。
【００５８】
実施例３：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫細胞の遊走能抑制効果
実施例２と同様に、実施例１のｓｉＲＮＡ分子で処置した細胞を用意した。併せて、無処置の細胞、対照のｓｉＲＮＡ分子で処置した細胞も用意した。
【００５９】
ｓｉＲＮＡ分子添加２４時間後に滅菌チップの先端でプレート底部に直線状の細胞剥離傷を作成した。更に２４時間後に、細胞遊走による創傷治癒の状態を観察した。細胞剥離傷境界の間の創傷幅と、細胞遊走先端部境界の間の創傷治癒幅を測定し、創傷治癒率（遊走率）（％）を計算することによって、遊走能を評価した。
【００６０】
結果を図２に示す。実施例１にて調製したＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子の処置により、悪性胸膜中皮腫細胞の創傷治癒率が顕著に低下し、悪性胸膜中皮腫細胞の遊走能を抑制できることが確認できた。
【００６１】
実施例４：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫細胞の浸潤能抑制効果
実施例２と同様に、実施例１のｓｉＲＮＡ分子で処置した細胞を用意した。併せて、無処置の細胞、対照のｓｉＲＮＡ分子で処置した細胞も用意した。
【００６２】
ｓｉＲＮＡ分子添加２４時間後に細胞を回収し、１０％ＦＢＳ添加ＲＭＩ１６４０培地で５×１０５／ｍｌの細胞濃度溶液を作成した。マトリゲルインベージョンチャンバー（ベクトン・ディッキンソン社製）を用いて細胞浸潤能を測定した。即ち、マトリゲルインベージョンチャンバーの２４ウェルプレートの８μｍポアインサート付き２４ウェルプレートに０．５ｍｌ（２．５×１０４個）の細胞浮遊液を添加し、２４時間培養後、メンブレン下面に浸潤した細胞数（％）を測定することによって、細胞浸潤能を評価した。
【００６３】
結果を図３に示す。実施例１にて調製したＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子の処置により、悪性胸膜中皮腫細胞の浸潤数が顕著に低下し、悪性胸膜中皮腫細胞の浸潤能を抑制できることが確認できた。
【００６４】
実施例５：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫細胞の増殖抑制効果
実施例２と同様に、実施例１のｓｉＲＮＡ分子で処置した細胞を用意した。ただし、実施例１のｓｉＲＮＡ分子の濃度を３ｎＭ、１０ｎＭ、３０ｎＭ及び６０ｎＭとした。併せて、無処置の細胞、対照のｓｉＲＮＡ分子（１０ｎＭ）で処置した細胞も用意した。
【００６５】
ｓｉＲＮＡ分子添加２４時間後に細胞を一旦回収後、９６ウェルプレートに５０００／ｗｅｌｌの細胞を播種した。その２４、４８および７２時間培養後、０．２％のＭＴＴ（３−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］−２，５−ジフェニルテトラゾリウム）溶液を添加した。その３時間培養後、１００μＬのジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を添加し、５５０ｎｍおよび６３０ｎｍの吸光度を測定し、無処置群の吸光度に対する、ｓｉＲＮＡ分子処置群の吸光度の割合（細胞数）（％）を計算することによって、細胞増殖能を評価した。
【００６６】
結果を図４に示す。実施例１にて調製したＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子の処置により、無処置と比較し、吸光度の割合が顕著に低下し、悪性胸膜中皮腫細胞の細胞増殖を抑制できることが確認できた。
【００６７】
実施例６：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫細胞のＦＡＫの発現抑制効果
ＳＣＩＤマウスに血性胸水を伴う胸腔内播種性腫瘍を形成させるため、悪性胸膜中皮腫細胞ＮＣＩ−Ｈ２９０（３×１０５）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４（１×１０６）を胸腔内に播種した。播種後１０日目に、実施例１のｓｉＲＮＡ分子を、マウス体重１ｋｇ当たり５ｍｇとなるよう、１００μＬのＩｎｖｉｖｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）と複合させ、マウス胸腔内に投与した。投与後１日、４日および７日後の腫瘍組織におけるＦＡＫ発現量をＷｅｓｔｅｒｎ  ｂｌｏｔｔｉｎｇ法で測定し確認した。
【００６８】
結果を図５に示す。実施例１にて調製したＦＡＫを標的とするｓｉＲＮＡ分子の処置により、マウス胸腔内の悪性胸膜中皮腫の腫瘍組織におけるＦＡＫ発現が投与後１日目より抑制されることが確認できた。
【００６９】
実施例７：ｓｉＲＮＡ分子による悪性胸膜中皮腫細胞の増殖抑制効果
ＳＣＩＤマウスに血性胸水を伴う胸腔内播種性腫瘍を形成させるため、悪性胸膜中皮腫細胞ＮＣＩ−Ｈ２９０（３×１０５）およびＹ−ＭＥＳＯ−１４（１×１０６）を胸腔内に播種した。播種後１０日目から３日ごと計４回、実施例１のｓｉＲＮＡ分子を、マウス体重１ｋｇ当たり５ｍｇとなるよう、１００μＬのＩｎｖｉｖｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）と複合させ、マウス胸腔内に投与した。
播種後２１日目における胸腔内播種性腫瘍および血性胸水を評価した。
【００７０】
結果を図６及び図7に示す。実施例のＲＮＡｉ分子の処置により、胸腔内腫瘍増殖および悪性胸水産生が抑制されることが確認できた。
【産業上の利用可能性】
【００７１】
本発明におけるＦＡＫのｍＲＮＡを標的とするＲＮＡｉ分子は、悪性胸膜中皮腫細胞におけるＦＡＫの発現量を抑制することが可能であり、また悪性胸膜中皮腫細胞の増殖を抑制することが可能である。よって、効率的に悪性胸膜中皮腫を治療および／または予防することを可能とする。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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