(57)【要約】  ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを使用して、２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を酵素的に産生する方法を記述する。
2018527937.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩からのアシルリン酸の酵素的産生のための方法であって、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩からのアシルリン酸の産生が、以下の反応スキーム：
【化１】
2018527937.tif 000030
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）
に従う、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）の使用によって行われる、方法。
【請求項２】
前記ホスホケトラーゼが、
（ａ）ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）または
（ｂ）フルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．２２）
である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
産生された前記アシルリン酸を以下の反応スキーム：
【化２】
2018527937.tif 000031
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）
に従ってカルボン酸に変換するステップをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
アシルリン酸のカルボン酸への変換が、アシルホスファターゼ（ＥＣ３．６．１．７）を利用することによって行われる、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
産生された前記アシルリン酸を、以下の反応スキーム：
【化３】
2018527937.tif 000032
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）
に従ってカルボン酸に変換するステップをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項６】
アシルリン酸のカルボン酸への変換が、カルボキシル基をアクセプターとするホスホトランスフェラーゼ（ＥＣ２．７．２）として分類される酵素を利用することによって行われる、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
前記ホスホトランスフェラーゼが、酢酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１）、酪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．７）、酢酸キナーゼ（二リン酸）（ＥＣ２．７．２．１２）、分岐鎖脂肪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１４）、またはプロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１５）である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
産生された前記アシルリン酸を、以下の反応スキーム：
【化４】
2018527937.tif 000033
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）
に従ってアシル−補酵素Ａに酵素的に変換するステップをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項９】
アシルリン酸のアシル−補酵素Ａへの変換が、リン酸アセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．８）またはリン酸ブチリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．１９）を利用することによって行われる、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記２−ヒドロキシアルデヒドが２−ヒドロキシプロパナールである、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
前記２−ヒドロキシアルデヒドが、２，３−ジヒドロキシプロパナールである、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１２】
（ａ）請求項１に規定した２−ヒドロキシアルデヒドと、ホスホケトラーゼおよび／もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ；または
（ｂ）請求項１に規定した２−ヒドロキシアルデヒドと、ホスホケトラーゼおよび／もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物
を含有する組成物。
【請求項１３】
請求項１に規定した２−ヒドロキシアルデヒドからのアシルリン酸の産生のための、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの使用。
【請求項１４】
請求項１に規定した２−ヒドロキシアルデヒドからのアシルリン酸の産生のための、ホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを利用する、２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を酵素的に産生する方法、および２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を産生するための、ホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの使用、またはホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
過去数十年にわたって、代謝工学の実務者は、化学物質を産生するための生物学的解決策を探索する努力を行い、これにより、従来の化学プロセスに代わる代替策を提供してきた。一般的に、生物学的解決策は、再生可能な原料（例えば、糖）の利用を可能にし、既存の石油化学に基づくプロセスと競合する。化学物質を産生するためのマルチステップの生物学的解決策は、典型的に、原料を標的分子に変換するための触媒として微生物を含む。特定の標的分子を産生するための酵素反応一式は、中心炭素経路に属するものと、産物特異的経路に属するものとに分類することができる。中心炭素経路に属する反応と産物特異的経路に属する反応は、プロセスの競合性に寄与するあらゆる酵素反応の酸化還元（典型的にＮＡＤ（Ｐ）Ｈ）およびエネルギー（典型的にＡＴＰ）の拘束を全体的なバランスで説明しなければならないという点において関連している。歴史的に、糖に基づいて生育する従属栄養生物の中心炭素経路は、Ｅｍｂｄｅｎ−Ｍｅｙｅｒｈｏｆｆ−Ｐａｒｎａｓ経路（ＥＭＰＰ、すなわち「解糖」）、ペントースリン酸経路（ＰＰＰ）、Ｅｎｔｎｅｒ−Ｄｏｕｄｏｒｏｆｆ経路（ＥＤＰ）、およびホスホケトラーゼ経路（ＰＫＰ）（Gottschalk (1986), Bacterial Metabolism, 2nd Edition, Springer-Verlag, New Yorkを参照されたい）として記述されている。それぞれの中心経路または中心経路の組み合わせは、特異的標的分子に関して長所と短所をもたらす。競合的バイオプロセスを提供するために、ＥＭＰＰ、ＰＰＰおよびＥＤＰを伴う改変を有する組み換え型微生物が記述されている（M. Emmerling et al., Metab. Eng. 1:117 (1999); L. O. Ingram et al., Appl. Environ. Microbiol. 53: 2420 (1987); C. T. Trinh et al., Appl. Environ. Microbiol. 74:3634 (2008)）。つい最近では、ＰＫＰを伴う改変を有する組み換え型微生物が記述されている（Sonderegger et al. Appl. Environ. Microbiol. 70 (2004), 2892-2897、米国特許第７，２５３，００１号明細書、Chinen et al. J. Biosci. Bioeng. 103 (2007), 262-269、米国特許第７，７８５，８５８号明細書；Fleige et al., Appl. Microbiol. Cell Physiol. 91 (2011), 769-776を参照されたい）。
【０００３】
ＥＭＰＰ（解糖）は、グルコース１モルをピルビン酸塩（ＰＹＲ）２モルに変換する。アセチル−ＣｏＡが望ましい場合、ＰＹＲ１モルを、アセチル−ＣｏＡ（ＡｃＣｏＡ）１モルに変換することができ、それと同時にＣＯ２１モルおよびＮＡＤＨ１モルが生成される。反応全体は等式１で示される。
グルコース＋２ＡＤＰ＋２Ｈ３ＰＯ４＋２ＣｏＡ＋４ＮＡＤ＋  →  
２アセチル−ＣｏＡ＋２ＣＯ２＋２ＡＴＰ＋２Ｈ２Ｏ＋４ＮＡＤＨ＋４Ｈ＋
（等式１）
【０００４】
ＰＰＰは、グルコース１モルをＣＯ２１モルおよびＮＡＤＰＨ２モルに変換して、同時にフルクトース−６−リン酸（Ｆ６Ｐ）０．６７モルおよびグリセルアルデヒド−３−リン酸（ＧＡＰ）０．３３モルを生成する手段を提供する。このように形成されたＦ６ＰおよびＧＡＰは、他の反応経路によって、例えばＥＭＰＰによって代謝されなければならない。ＥＤＰはグルコース１モルをＧＡＰ１モルおよびＰＹＲ１モルに変換して、同時にＮＡＤＰＨ１モルを生成する。ＰＰＰに関して、このように形成されたＧＡＰは、他の反応経路によって代謝されなければならない。ＰＫＰは、グルコース１モルをＧＡＰ１モルおよびアセチルリン酸（ＡｃＰ）１．５モルに変換する手段を提供する。アセチル−ＣｏＡが望ましい場合、ＡｃＰ１当量プラス補酵素Ａ（ＣｏＡ）１当量を、ホスホトランスアセチラーゼの作用によってアセチル−ＣｏＡ１当量および無機リン酸塩（Ｐｉ）１当量に変換することができる。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
あらゆる種類の化合物を産生するための再生可能な資源を利用するプロセスの需要が高まっていることを考慮すると、アシル−ＣｏＡもしくはカルボン酸またはその前駆体などの中心代謝物の効率的な産生を可能にする手段および方法を提供して、それによってこれらの代謝物を有用な化合物へと変換するさらなるプロセスを開発するためのプラットフォームを構築することが望ましい。
【０００６】
このため、酵素反応の酸化還元およびエネルギー拘束を最善に適合させて、それによって多くの生物、特に、有機酸、アルケン、ジエンまたは短鎖カルボン酸などの再生可能な資源から多数の工業的に重要な化合物を産生するために使用することができる微生物においてアシル−ＣｏＡまたはカルボン酸の前駆体のエネルギー的に効率的な産生を可能にすることによって、原料の産物への変換を最大限にする、中心炭素経路および産物特異的経路を含む方法を提供する必要がある。本出願人は、特許請求の範囲に定義される実施形態を提供することによって、この必要性に取り組んだ。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
このように、本発明は、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩からのアシルリン酸の産生が、以下の反応スキームに従ってホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）を使用することによって行われる、２−ヒドロキシアセトアルデヒドおよびリン酸塩からアシルリン酸を酵素的に産生する方法に関する：
【０００８】
【化１】
2018527937.tif 000003
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）。
【０００９】
本発明の文脈において使用される「Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない」という用語は、Ｒ１とＲ２が同時にＨであることはできないことを意味し、すなわち、これは、Ｒ２がＨである場合、Ｒ１はＨであることはできないことも意味する。
【００１０】
本出願は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）として分類される酵素が、上記に規定した２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩からのアシルリン酸の形成を触媒することができることを記述する。
【００１１】
種々のタイプのホスホケトラーゼが公知であり、それらのすべてを本発明に従う方法において使用することができる。一般的に、ホスホケトラーゼは、それが本来触媒する反応に関する基質選択性に基づいて２つのタイプに分類される：キシルロース−５−リン酸（Ｘ５Ｐ）ホスホケトラーゼは、ＥＣ４．１．２．９に分類され、基質として本来Ｘ５Ｐおよびフルクトース−６−リン酸（Ｆ６Ｐ）を使用するが、Ｘ５Ｐを好み、Ｘ５Ｐ／フルクトース−６−リン酸（Ｆ６Ｐ）ホスホケトラーゼは、４．１．２．２２に分類され、Ｘ５ＰとＦ６Ｐの両方を基質として同等の活性で使用することができる（Suzuki et al., J. Biol. Chem. 44 (2010), 34279-34287）。以下において、用語「ホスホケトラーゼ」は、常に両方のタイプを指す。
【００１２】
このため、Ｘ５Ｐホスホケトラーゼは、ＥＣ４．１．２．９に分類され、以下の反応を触媒することができる酵素である：
Ｄ−キシルロース−５−リン酸＋リン酸塩  →  Ｄ−グリセルアルデヒド−３−リン酸＋アセチルリン酸＋Ｈ２Ｏ
【００１３】
ＥＣ４．１．２．２２に分類される他のタイプのホスホケトラーゼは、一般的にフルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼと呼ばれ、以下の反応を本来触媒することができる：
Ｄ−フルクトース−６−リン酸＋リン酸塩  →  アセチルリン酸＋Ｄ−エリスロース４−リン酸＋Ｈ２Ｏ
【００１４】
同様に、ホスホケトラーゼが、例えばニトロランセツスホランディクスＬｂ（Nitrolancetus hollandicus Lb）のホスホケトラーゼの場合のように両方のタイプのホスホケトラーゼに割付されている場合、または同定されたホスホケトラーゼが２つのタイプのいずれにもまだ割付されていないが、単に一般的にホスホケトラーゼとして分類されている場合もある。本明細書において使用される用語「ホスホケトラーゼ」は、これらのすべてのホスホケトラーゼも指す。
【００１５】
このように、本発明に従う方法の１つの実施形態において、上記に示す反応スキームに従う、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩のアシルリン酸への酵素的変換は、ＥＣ４．１．２．９のホスホケトラーゼとして分類されるホスホケトラーゼを利用することによって行われる。この酵素は、多様な生物、特に細菌および真菌などの微生物において同定されている。１つの好ましい実施形態において、ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）は、原核生物、好ましくは細菌に由来する。酵素は例えば、ラクトコッカスラクチス（Lactococcus lactis）、ラクトバチルスプランタルム（Lactobacillus plantarum （Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ８８Ｓ８７；Ｑ８８Ｕ６７）、ラクトバチルスペントサス（Lactobacillus pentosus）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９３７Ｆ６）、ラクトバチルスロイテリ（Lactobacillus reuteri）、ビフィドバクテリウムアニマリス（Bifidobacterium animalis）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ａ０ＰＡＤ９）、ビフィドバクテリウムアニマリス亜種ラクチス（Bifidobacterium animalis subsp. Lactis）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９ＡＥＭ９）、ブチロビブリオフィブリソルベンス（Butyrovibrio fibrisolvens）、フィブロバクターインテスチナリス（Fibrobacter intestinalis）、フィブロバクタースクシノゲネス（Fibrobacter succinogenes）、ロイコノストックメセンテロイデス（Leuconostoc mesenteroides）、オエノコッカスオエニ（Oenococcus oeni）、スターケヤノベラ（Starkeya novella）、チオバチルス種（Thiobacillus sp.）、サーモビスポラビスポラ（Thermobispora bispora）（株ＡＴＣＣ１９９９３／ＤＳＭ４３８３３／ＣＢＳ１３９．６７／ＪＣＭ１０１２５／ＮＢＲＣ１４８８０／Ｒ５１；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｄ６ＹＡＤ９）、サーモバキュルムテレヌム（Thermobaculum terrenum）（株ＡＴＣＣＢＡＡ−７９８／ＹＮＰ１；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｄ１ＣＩ６３）、およびニトロランセツスホランディクスＬｂ（Nitrolancetus hollandicus Lb）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｉ４ＥＪ５２）に存在すると記述されている。
【００１６】
別の好ましい実施形態において、ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）は、真核生物、好ましくは真菌、例えば出芽酵母（S. cerevisiae）などの酵母に由来する。酵素は例えば、エメリセラニデュランス（Emericella nidulans）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ５Ｂ３Ｇ７）、メタリジウムアニソプリアエ（Metarhizium anisopliae）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｃ１Ｋ２Ｎ２）、カンジダボイディニイ（Candida boidinii）、色素分解酵母（Candida curvata）、カンジダファマタ（Candida famata）、カンジダフミコーラ（Candida humicola）、カンジダパラプシロシス（Candida parapsilosis）、カンジダパラプシロシス（Candida parapsilosis）ＮＣＹＣ  ９２６、カンジダトロピカリス（Candida tropicalis）、シバーリンドネラジャディニイ（Cyberlindnera jadinii）、シバーリンドネラサターヌス（Cyberlindnera saturnus）、デバロマイセスロベルトシアエ（Debaromyces robertsiae）、フザリウムオキシスポルム（Fusarium oxysporum）、クルイベロマイセスマルキシアヌス（Kluyveromyces marxianus）、クルイベロマイセスファセオロスポルス（Kluyveromyces phaseolosporus）、リポマイセススターケイ（Lipomyces starkeyi）、オガタエアアングスタ（Ogataea angusta）、パチソレンタノフィルス（Pachysolen tannophilus）、プリセオマイセスメディウス（Priceomyces medius）、出芽酵母（Saccharomyces cerevisiae）、ロドスポリジウムトルロイデス（Rhodosporidium toruloides）、ロドトルラグルチニス（Rhodotorula glutinis）、ロドトルラグラミニス（Rhodotorula graminis）、ペニシリウムクリソゲヌム（Penicillium chrysogenum）、トリコスポロンクタネウム（Trichosporon cutaneum）、およびヤロウィアリポリチカ（Yarrowia lipolytica）に存在することが記述されている。
【００１７】
ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）の酵素活性は、当業者に公知の方法によって評価することができる。そのような方法は、例えばMeileら（J. Bacteriol. 183 (2001), 2929-2936）およびSuzukiら（Acta Cryst. F66 (2010), 941-943）に記述されている。
【００１８】
ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）は、構造および機能に関して十分に定義されている。例えば、Petrareanuら（Acta Crystallographica F66 (2010), 805-807）は、ラクトコッカスラクチス（Lactococcus lactis）からのキシルロース−５−リン酸ホスホケトラーゼのＸ線結晶学分析を記述している。
【００１９】
本発明に従う方法の別の実施形態において、上記で示される反応スキームに従う、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩のアシルリン酸への酵素的変換は、ＥＣ４．１．２．２２におけるフルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼとして分類されるホスホケトラーゼを利用することによって行われる。この酵素は、多様な生物、特に細菌および真菌などの微生物において同定されている。１つの好ましい実施形態において、フルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．２２）は、原核生物、好ましくは細菌に由来する。酵素は、例えばビフィドバクテリウムアドレッセンティス（Bifidobacterium adolescentis）、ビフィドバクテリウムアニマリス亜種ラクチス（Bifidobacterium animalis subsp. lactis）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９ＡＥＭ９）、ビフィドバクテリウムロングム（Bifidobacterium longum）、ビフィドバクテリウムシュードロングム（Bifidobacterium pseudolongum）、特にビフィドバクテリウムシュードロングム亜種グロボスム（Bifidobacterium pseudolongum subsp. globosum）、ビフィドバクテリウムビフィドゥム（Bifidobacterium bifidum）、ビフィドバクテリウムブレーベ（Bifidobacterium breve）、ビフィドバクテリウムデンチウム（Bifidobacterium dentium）、ビフィドバクテリウムモンゴリエンス（Bifidobacterium mongoliense）、ビフィドバクテリウムボンビ（Bifidobacterium bombi）、カプリアビダスネカトール（Cupriavidus necator）、ガルドネレラバジナリス（Gardnerella vaginalis）、グルコナセトバクターキシリヌス（Gluconacetobacter xylinus）、ラクトコッカスクリスパタス（Lactococcus crispatus）、ラクトバチルスパラプランタルム（Lactobacillus paraplantarum）、ロイコノストックメセンテロイデス（Leuconostoc mesenteroides）およびニトロランセツスホランディクスＬｂ（Nitrolancetus hollandicus Lb）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｉ４ＥＪ５２）に存在すると記述されている。
【００２０】
別の好ましい実施形態において、フルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．２２）は、真核生物、好ましくは真菌、例えばＳ．パストリアヌス（S. pastorianus）などの酵母に由来する。酵素は例えば、カンジダ種（Candida sp.）、カンジダ種（Candida sp.）１０７、カンジダトロピカリス（Candida tropicalis）、ロドトルラグルチニス（Rhodotorula glutinis）、ロドトルラグラミニス（Rhodotorula graminis）およびサッカロミセスパストリアヌス（Saccharomyces pastorianus）に存在することが記述されている。
【００２１】
酵素は構造および機能に関して十分に定義されている。例えば、Suzukiら（Acta Crystallographica F66 (2010), 941-943; J. Biol. Chem. 285 (2010), 34279-34287）は、ビフィドバクテリウムブレーベ（Bifidobacterium breve）由来のホスホケトラーゼの過剰発現、結晶化、およびＸ線分析を記述している。ビフィドバクテリウムラクチス（Bifidobacterium lactis）由来のキシルロース−５−リン酸／フルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼをコードする遺伝子は、例えばMeileら（J. Bacteriol. 183 (2001), 2929-2936）に記述されている。
【００２２】
フルクトース−６−リン酸ホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．２２）の酵素活性は、当業者に公知の方法によって評価することができる。そのような方法は、例えば、Meileら（J. Bacteriol. 183 (2001), 2929-2936）およびSuzukiら（Acta Cryst. F66 (2010), 941-943）に記述されている。
【００２３】
ＥＣ４．２．１．９またはＥＣ４．２．１．２２に未だ分類されていないが本発明に従う方法において使用することができる他のホスホケトラーゼは、例えばサーモシネココッカスエロンガタス（Thermosynechococcus elongatus）（株ＢＰ−１；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ８ＤＪＮ６）のホスホケトラーゼ、バチルスコアグランス（Bacillus coagulans）３６Ｄ１（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｇ２ＴＩＬ０）のホスホケトラーゼ、ラクトコッカスラクチス亜種ラクチス（Lactococcus lactis亜種lactis（株ＫＦ１４７：Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ａ９ＱＳＴ６）のホスホケトラーゼ、ビフィドバクテリウムシュードロングム亜種グロボスム（Bifidobacterium pseudolongum subsp. globosum）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ６Ｒ２Ｑ６）のホスホケトラーゼ、およびクロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）（株ＡＴＣＣ  ８２４；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９７ＪＥ３；Serviskyら（J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 39 (2012), 1859-1867）；配列番号２）のホスホケトラーゼである。
【００２４】
添付の実施例において、２，３−ヒドロキシプロパナール（Ｄ，Ｌ−グリセルアルデヒド）および２−ヒドロキシプロパナール（Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒド）を、ホスホケトラーゼによってそれぞれ、３−ヒドロキシプロピオニルリン酸およびプロピオニルリン酸に変換することができ、次いでこれらをさらに、自然加水分解によってそれぞれ、３−ヒドロキシプロピオン酸およびプロピオン酸に変換することができることが示される。
【００２５】
一つの実施形態において、本発明に従う方法に使用されるホスホケトラーゼは、ビフィドバクテリウムシュードロングム亜種グロボスム（Bifidobacterium pseudolongum subsp. globosum）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ６Ｒ２Ｑ６；配列番号１）のホスホケトラーゼ、またはクロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）（株ＡＴＣＣ  ８２４；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９７ＪＥ３；配列番号２）のホスホケトラーゼ、またはラクトコッカスラクチス亜種ラクチス（Lactococcus lactis subsp. lactis）（株ＫＦ１４７；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ａ９ＱＳＴ６；配列番号３）のホスホケトラーゼ、またはラクトコッカスクリスパツス（Lactococcus crispatus）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｄ５Ｈ２１５；配列番号２０）のホスホケトラーゼ、またはビフィドバクテリウムガリクム（Bifidobacterium gallicum）（ＤＳＭ  ２００９３；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｄ１ＮＳ９０；配列番号１６）のホスホケトラーゼ、またはロイコノストックシトレウム（Leuconostoc citreum）（株ＫＭ２０；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｂ１ＭＷＶ８；配列番号１７）のホスホケトラーゼ、またはストレプトコッカスゴルドニー（Streptococcus gordonii）（チャリス株／ＡＴＣＣ  ３５１０５／ＣＨ１／ＤＬ１／Ｖ２８８；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ａ８ＡＶ２１；配列番号１８）のホスホケトラーゼ、またはチオバチルスデニトリフィカンス（Thiobacillus denitrificans）（株ＡＴＣＣ  ２５２５９；Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ３ＳＫＪ７；配列番号１９）のホスホケトラーゼである。
【００２６】
好ましい実施形態において、本発明の方法において使用されるホスホケトラーゼは、配列番号１から３もしくは１６から２０のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を有するか、または配列番号１から３もしくは１６から２０のいずれか１つと少なくともＸ％相同であるアミノ酸配列を示し、かつホスホケトラーゼであり、ここでＸは３０から１００のあいだの整数、好ましくは、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、または９９であり、そのような酵素は、本明細書において上記で説明されるように２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩をアシルリン酸に変換することができる。好ましくは、同一性の程度は、それぞれの配列を、上記の配列番号のいずれか１つのアミノ酸配列と比較することによって決定される。比較される配列が同じ長さを有しない場合、同一性の程度は、好ましくは、より長い配列におけるアミノ酸残基と同一であるより短い配列におけるアミノ酸残基の百分率を指すか、またはより短い配列におけるアミノ酸残基と同一であるより長い配列におけるアミノ酸残基の百分率を指す。配列同一性の程度は、好ましくはＣＬＵＳＴＡＬなどの適したコンピューターアルゴリズムを使用して当技術分野において周知の方法に従って決定することができる。
【００２７】
特定の配列が、例として参照配列と８０％同一であるか否かを決定するためにＣｌｕｓｔａｌ分析法を使用する場合、配列のデフォルト設定を使用してもよく、または設定は好ましくは以下のとおりである：アミノ酸配列の比較に関して、行列：ｂｌｏｓｕｍ  ３０；オープンギャップペナルティ：１０．０；伸長ギャップペナルティ：０．０５；ディレイダイバージェント（Ｄｅｌａｙ  ｄｉｖｅｒｇｅｎｔ）：４０；ギャップ分離距離：８。ヌクレオチド配列の比較に関して、伸長ギャップペナルティは好ましくは５．０に設定される。
【００２８】
好ましくは、同一性の程度は、配列の全長にわたって計算される。
【００２９】
ホスホケトラーゼ配列の多重アライメントから、いくつかの高度保存領域が示され、これらの領域の２つはホスホケトラーゼのシグネチャーパターンとして使用されることが記述されている（http://prosite.expasy.org/PDOC60002）。第１のシグナチャーパターンは、Ｅ−Ｇ−Ｇ−Ｅ−Ｌ−Ｇ−Ｙであり、第２のシグナチャーパターンは、Ｇ−ｘ（３）−［ＤＮ］−ｘ−Ｐ−ｘ（２）−［ＬＩＶＦＴ］−ｘ（３）−［ＬＩＶＭ］−ｘ−Ｇ−Ｄ−Ｇ−Ｅである。第１のシグナチャーパターンの機能は、まだわかっていないが、第２のシグナチャーパターンは、チアミンピロリン酸の結合部位に対応する。このため、好ましい実施形態において、本明細書において上記に定義されるホスホケトラーゼは、上記で言及された２つのシグナチャーパターンの少なくとも１つ、好ましくは、少なくとも第２のシグナチャーパターン、より一層好ましくは両方のシグナチャーパターンを含有するアミノ酸配列を有する。
【００３０】
配列比較から、異なる起源に由来するホスホケトラーゼのあいだの全配列同一性が、約２６％もの低さでありうることが示されている。例えば、Meileら（J. Biol. Chem. 183 (2001), 2929-2936）は、ビフィドバクテリウムラクチス（Bifidobacterium lactis）のＤ−キシルロース５−リン酸／Ｄ−フルクトース６−リン酸ホスホケトラーゼ遺伝子（ｘｆｐ）が、他の生物のゲノムにおける配列と２６％から５５％の同一性を有することが判明したことを報告している。
【００３１】
選択したホスホケトラーゼが、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩のアシルリン酸およびＨ２Ｏへの変換を触媒することができるか否かは、例えば添付の実施例に説明されるアッセイによって評価することができる。
【００３２】
本発明の方法に関連して使用される用語「リン酸塩」は、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩をアシルリン酸およびＨ２Ｏに変換する方法において使用される酵素に関するリン酸塩の供給源として許容可能な化合物を指す。１つの可能性は、リン酸の形態、すなわちＨ３ＰＯ４でのリン酸塩の提供である。しかし、同様に他の形態、特に水素原子の１個、２個、または３個が他のイオン、例えばナトリウムイオンに置き換えられているリン酸（Ｈ３ＰＯ４）の塩も考えられる。ホスホケトラーゼは、チアミン二リン酸依存的酵素であり、すなわちそれらは補因子としてチアミン二リン酸（ＴｈＤＰまたはＴＰＰとも呼ばれる）を必要とする。それゆえ、本発明に従う方法において、ホスホケトラーゼを使用すると、ＴＰＰが反応の間に提供されるという点が有利である。その上、いくつかのホスホケトラーゼは、補因子としてＭｇ２＋またはＣａ２＋などのイオンを必要とする。そのような場合、本発明に従う方法はまた、上記の変換の際にそのようなイオンが存在することも含む。
【００３３】
上記に示される反応スキームに従う２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩のアシルリン酸への酵素的変換はまた、スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）を利用することによっても行うことができる。スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）は、以下の反応を触媒することができる酵素である：
２−スルホアセトアルデヒド＋リン酸塩  →  アセチルリン酸＋亜硫酸塩
【００３４】
この酵素は、多様な生物、特に細菌において同定されている。１つの好ましい実施形態において、スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）は、原核生物、好ましくは細菌に由来する。酵素は、例えばカステラニエラデフラグランス（Castellaniella defragrans）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ８４Ｈ４４；以前の名称アルカリゲネスデフラグランス（Alcaligenes defragrans）（Ruff et al., Biochem. J. 369 (2003), 275-285））、アルカリゲネスキシロソキシダンスキシロソキシダンス（Alcaligenes xylosoxidans xylosoxidans）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ８４Ｈ４１）、デスルフォニスポラチオスルファチゲネス（Desulfonispora thiosulfatigenes）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９３ＰＳ３）、リゾビウムメリロチ（Rhizobium meliloti）（株１０２１）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９２ＵＷ６）、ルエゲリアポメロイ（Ruegeria pomeroyi）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ５ＬＭＫ２）、カプリアビダスネカトール（Cupriavidus necator）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ０Ｋ０２２）、ロゼオバリウスヌビンヒベンス（Roseovarius nubinhibens）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ａ３ＳＲ２５）、アシネトバクター種（Acinetobacter sp.）および緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa）に存在することが記述されている。
【００３５】
原則的に、いかなるスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）も、本発明の方法に従う、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩のアシルリン酸への変換に使用することができる。
【００３６】
スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、ホスホケトラーゼと同様に、チアミンピロリン酸（ＴＰＰ）依存的酵素であり、それゆえＴＰＰ結合ドメインを含有することを特徴とする。公知のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの中で、ＴＰＰ結合ドメインは高度に保存されている（例えば、Ruff et al., Biochem. J. 369 (2003), 275-285を参照されたい）。全体として、公知のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、ＴＰＰ結合ドメインを含むＮ−末端近傍で高度の配列保存を示す（Ruff et al.、前出を参照されたい）。配列分岐は、酵素そのもののＮ−末端およびＣ．デフラグランス（C. defragrans）酵素の４００番目のアミノ酸近傍の領域で観察することができる。Ruffら（前出）は、スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼが３つの亜群を形成することを記述している（当該文献の図４を参照されたい）。亜群２および３は、ＰＲＯＳＩＴＥコンセンサス配列(L/I/V/M/F)(G/S/A)X5PX4(L/I/V/M/F/Y/W)X(L/I/V/M/F)XGD(G/S/A)(G/S/A/C)と一致するＴＰＰ結合ドメインを示すと言われているが、亜群は、コンセンサス配列(L/I/V/M/F)(G/S/A)X5PX4(L/I/V/M/F/Y/W)X(L/I/V/M/F/Y)XGD(G/S/A)(G/S/A/C)からわずかに逸脱している。これらの領域を除けば、異なるスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼのあいだの配列同一性は、かなり低くなりうる（約４４％まで低下）。
【００３７】
好ましい実施形態において、本発明に従う方法において使用されるスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、配列番号４に示されるアミノ酸配列を示すＣ．デフラグランス（C. defragrans）のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼであるか、または配列番号５に示すアミノ酸配列を示すアルカリゲネスキシロソキシダンスキシロソキシダンス（Alcaligenes xylosoxydans xylosoxydans）のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼであるか、または配列番号６に示すアミノ酸配列を示すデスルフォニスポラチオスルファチゲネス（Desulfonispora thiosulfatigenes）のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼであるか、または配列番号７に示すアミノ酸配列を示すリゾビウムメリロティ（Rhizobium meliloti）（株１０２１）のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼであるか、または配列番号８に示すアミノ酸配列を示すもしくは関連するアミノ酸配列を示すロゼオバリウスヌビンヒベンス（Roseovarius nubinhibens）のスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼである。
【００３８】
このように、好ましい実施形態において、本発明の方法において使用されるスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、配列番号４〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を有するか、または配列番号４〜８のいずれか１つと少なくともＸ％相同であるアミノ酸配列を示し、かつスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼであり、Ｘは３０〜１００のあいだの整数であり、好ましくは３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、または９９であり、そのような酵素は、本明細書において上記で説明されるように、２−ヒドロキシアルデヒドおよびリン酸塩をアシルリン酸に変換することができる。好ましくは、同一性の程度は上記のように決定される。
【００３９】
スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）の酵素活性は、当業者に公知の方法によって評価することができる。そのような方法は、例えばRuffら（Biochem. J. 369 (2003), 275-285）に記述されている。
【００４０】
添付の実施例において、Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒド（ラセミ体２−ヒドロキシプロパナール）およびＤ，Ｌ−グリセルアルデヒド（ラセミ体２，３−ヒドロキシプロパナール）を、スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼによってそれぞれ、プロピオニルリン酸および３−ヒドロキシプロピオニルリン酸に変換することができ、次いでこれらをさらに自然加水分解によってそれぞれ、プロピオン酸および３−ヒドロキシプロピオン酸に変換することができることが示される。
【００４１】
好ましい実施形態において、本発明の方法に従ってアシルリン酸に変換される、以下の式の２−ヒドロキシアルデヒド：
【００４２】
【化２】
2018527937.tif 000004
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）
は、２−ヒドロキシプロパナール（ラクトアルデヒド）であり、これはプロピオニルリン酸に変換される。このため、好ましい実施形態において、本発明は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）を利用することによって、２−ヒドロキシプロパナール（ラクトアルデヒド）からプロピオニルリン酸を酵素的に産生する方法であって、２−ヒドロキシプロパナール（ラクトアルデヒド）のプロピオニルリン酸への変換が、以下の反応スキームに従って起こる方法に関する：
【００４３】
【化３】
2018527937.tif 000005
【００４４】
別の好ましい実施形態において、本発明の方法に従ってアシルリン酸に変換される、以下の式の２−ヒドロキシアルデヒド：
【００４５】
【化４】
2018527937.tif 000006
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）は、２，３−ジヒドロキシプロパナール（グリセルアルデヒド）であり、これは３−ヒドロキシプロピオニルリン酸に変換される。このため、好ましい実施形態において、本発明は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．３．１５）を利用することによって、２，３−ジヒドロキシプロパナール（グリセロアルデヒド）から３−ヒドロキシプロピオニルリン酸を酵素的に産生する方法であって、２，３−ジヒドロキシプロパナール（グリセルアルデヒド）の３−ヒドロキシプロピオニルリン酸への変換が、以下の反応スキームに従って起こる方法に関する：
【００４６】
【化５】
2018527937.tif 000007
【００４７】
本発明の方法に従って産生されたアシルリン酸は、カルボン酸または対応するアシル−補酵素Ａ（アシル−ＣｏＡとも呼ばれる）などの所望の分子にさらに変換することができる。
【００４８】
アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換は、以下の反応スキームに従って機能する加水分解を介して起こりうる：
【００４９】
【化６】
2018527937.tif 000008
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）。
【００５０】
本明細書において上記で定義されるアシルリン酸の対応するカルボン酸へのインビトロでの加水分解は、アシルリン酸がかなり不安定であることから自然に起こりうる。
【００５１】
酵素触媒反応によって変換を行うことも同様に可能である。アシルリン酸の対応するカルボン酸およびＨ３ＰＯ４への酵素的加水分解は、例えばアシルホスファターゼ（ＥＣ３．６．１．７）を利用することによって行うことができる。アシルホスファターゼ（ＡｃＰ；ＥＣ３．６．１．７）は、真核生物および原核生物（中温性生物および極限環境生物の両方）において広く発現されるサイトゾル酵素である（分子量は約１０ｋＤａ）。ＡｃＰは、脊椎動物種の多くの組織、骨格筋および心臓において筋型ＡｃＰ（ＭＴ−ＡｃＰ）として、ならびに赤血球、脳、および精巣において（臓器）共通型ＡｃＰ（ＣＴ−ＡｃＰ）として見出されうる（Zuccotti et al., Acta Cryst. 61 (2005), 144-146）。アシルホスファターゼは以下の反応を触媒する：
アシルリン酸＋Ｈ２Ｏ  →  カルボン酸＋Ｈ３ＰＯ４
【００５２】
この酵素は、多様な生物において記述されている。好ましくは、本発明に従う方法において使用されるアシルホスファターゼは、セキショクヤケイ（Gallus gallus）、モルモット（Cavia porcellus）（Liguri et al., Biochem. J. 217 (1984), 499-505）、ヒト（Homo sapiens）、イノシシ（Sus scrofa）、ウシ（Bos taurus）、アナウサギ（Oryctolagus cuniculus）、ウマ（Equus acallus）、またはピュロコックスヒロコシイ（Pyrococcus hirokoshii）（Miyazoo et al., Acta Crystallographica D60 (2004), 1135-1136）に由来する。
【００５３】
これらの酵素の構造的および機能的特徴は、すでに詳細に研究され、例えばLiguriら（Biochem. J. 217 (1984), 499-505）、Miyazooら（Acta Crystallographica D60 (2004), 1135-1136）、およびTaddeiら（FEBS Letters 362 (1995), 175-179）に記述されている。
【００５４】
あるいは、これは以下の反応スキームに従ってＡＤＰからのＡＴＰの生成を伴う酵素反応によって起こりうる：
【００５５】
【化７】
2018527937.tif 000009
【００５６】
特に、アシルリン酸はまた、インビトロまたはインビボで、例えばＥＣ２．７．２．−として分類される酵素、すなわちホスホトランスフェラーゼを利用することによって、対応するカルボン酸へと酵素的に変換することもできる。そのような酵素は、アクセプターとしてカルボキシル基を使用する。このため、アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換は、例えばカルボキシ基をアクセプターとする酵素（ＥＣ２．７．２．−）を利用することによって行うことができる。そのような酵素の例は、酢酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１）として、酪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．７）として、酢酸キナーゼ（二リン酸）（ＥＣ２．７．２．１２）として、分岐鎖脂肪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１４）として、またはプロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１５）として分類される酵素である。
【００５７】
酢酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１）は、以下の反応を触媒する酵素である：
【００５８】
【化８】
2018527937.tif 000010
【００５９】
この反応は可逆的であることから、アシルリン酸を対応するカルボン酸に変換するために酵素を使用することができる。反応を、例えばさらなる酵素的変換によって反応からＡＴＰを連続的に除去することによって、または当業者に公知の手段および方法によって反応から除去することによって、カルボン酸の方向に進めてもよい。この酵素は、多様な生物、特に原核生物、真核生物、および古細菌に存在する。これは解糖において重要な酵素であり、酵素レベルは通常、過剰量のグルコースの存在下で増加する。この酵素は、例えば、多数の生物、特に細菌および真核生物に存在すると記述されている。一つの好ましい実施形態において、酵素は、細菌、好ましくはメタノサルシナ（Methanosarcina）、クリプトコッカス（Cryptococcus）、エタノリゲネス（Ethanoligenes）、プロピオニバクテリウム（Propionibacterium）、ロセオバリウス（Roseovarius）、ストレプトコッカス（Streptococcus）、サルモネラ（Salmonella）、アコレプラズマ（Acholeplasma）、アシネトバクター（Acinetobacter）、アジェロミセス（Ajellomyces）、バチルス（Bacillus）、ボレリア（Borrelia）、ケトミウム（Chaetomium）、クロストリジウム（Clostridium）、コクシジオイデス（Coccidioides）、コプリノプシス（Coprinopsis）、クリプトコッカス（Cryptococcus）、カプリアビダス（Cupriavidus）、デスルホビブリオ（Desulfovibrio）、エンテロコッカス（Enterococcus）、エシェリキア（Escherichia）、エタノリゲネス（Ethanoligenes）、ゲオバチルス（Geobacillus）、ヘリコバクター（Helicobacter）、ラクトバチルス（Lactobacillus）、ラクトコッカス（Lactococcus）、リステリア（Listeria）、メソプラズマ（Mesoplasma）、ムーレラ（Moorella）、マイコプラズマ（Mycoplasma）、オセアノバチルス（Oceanobacillus）、プロピオニバクテリウム（Propionibacterium）、ロドシュードモナス（Rhodospeudomonas）、ロセオバリウス（Roseovarius）、サルモネラ（Salmonella）、スタフィロコッカス（Staphylococcus）、テルモトガ（Thermotoga）、またはベイロネラ（Veillonella）属の細菌、より好ましくはメタノサルシナサーモフィラ（Methanosarcina thermophila）、クリプトコッカスネオフォルマンス（Cryptococcus neoformans）、エタノリゲネンスハルビネンス（Ethanoligenens harbinense）、プロピオニバクテリウムアシジプロピオニシ（Propionibacterium acidipropionici）、肺炎連鎖球菌（Streptococcus pneumoniae）、ストレプトコッカスエンテリカ（Streptococcus enterica）、化膿連鎖球菌（Streptococcus pyogenes）、アコレプラズマライドラウイ（Acholeplasma laidlawii）、アシネトバクターカルコアセチクス（Acinetobacter calcoaceticus）、アジェロミセスカプスラツス（Ajellomyces capsulatus）、枯草菌（Bacillus subtilis）、ボレリアブルグドルフェリ（Borrelia burgdorferi）、ケトミウムグロボスム（Chaetomium globosum）、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、クロストリジウムサーモセルム（Clostridium thermocellum）、コクシジオイデスイミチス（Coccidioides immitis）、コプリノプシスシネレア（Coprinopsis cinerea）、クリプトコッカスネオフォルマンス（Cryptococcus neoformans）、カプリアビダスネカトール（Cupriavidus necator）、デスルホビブリオブルガリス（Desulfovibrio vulgaris）、エンテロコッカスフェカーリス（Enterococcus faecalis）、大腸菌（Escherichia coli）、エタノリゲネスハルビネンス（Ethanoligenes harbinense）、ゲオバチルスステアロサーモフィルス（Geobacillus stearothermophilus）、ヘリコバクターピロリ（Helicobacter pylori）、ラクトバチルスデルブルエキイ（Lactobacillus delbrueckii）、ラクトバチルスアシドフィルス（Lactobacillus acidophilus）、ラクトバチルスサンフランシセンシス（Lactobacillus sanfranciscensis）、ラクトバチルスラクチス（Lactococcus lactis）、リステリアモノサイトゲネス（Listeria monocytogenes）、メソプラズマフロルム（Mesoplasma florum）、メタノサルシナアセチボランス（Methanosarcina acetivorans）、メタノサルシナマゼイ（Methanosarcina mazei）、ムーレラサーモアセチカ（Moorella thermoacetica）、マイコプラズマニューモニアエ（Mycoplasma pneumoniae）、オセアノバチルスイヘイエンシス（Oceanobacillus iheyensis）、プロピオニバクテリウムフロイデンライヒ（Propionibacterium freudenreichii）、プロピオニバクテリウムアシジプロピオニシ（Propionibacterium acidipropionici）、ロドシュードモナスパルストリス（Rhodospeudomonas palustris）、サルモネラエンテリカ（Salmonella enterica）、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）、テルモトガマリチマ（Thermotoga maritima）、またはベイロネラパルブラ（Veillonella parvula）種の細菌に由来する。
【００６０】
別の好ましい実施形態において、酵素は、真菌、好ましくはアスペルギルス（Aspergillus）、ジベレラ（Gibberella）、ヒポクレア（Hypocrea）、マグナポルテ（Magnaporthe）、フェオスフェリア（Phaeosphaeria）、ファネロカエテ（Phanerochaete）、フィトフトラ（Phytophthora）、スクレロチニア（Sclerotinia）、ウンシノカルプス（Uncinocarpus）、ウスチラゴ（Ustilago）、またはニューロスポラ（Neurospora）属の真菌、さらにより好ましくはアスペルギルスフミガーツス（Aspergillus fumigates）、アスペルギルスニデュランス（Aspergillus nidulans）、ジベレラゼアエ（Gibberella zeae）、ヒポクレアジェコリナ（Hypocrea jecorina）、マグナポルテグリセア（Magnaporthe grisea）、フェオスフェリアノドルム（Phaeosphaeria nodorum）、ファネロカエテクリソスポリウム（Phanerochaete chrysosporium）、フィトフトララモルム（Phytophthora ramorum）、フィトフトラソジャエ（Phytophthora sojae）、スクレロチニアスクレロチオルム（Sclerotinia sclerotiorum）、ウンシノカルプスレエシ（Uncinocarpus reesii）、ウスチラゴマイジス（Ustilago maydis）、またはニューロスポラクラッサ（Neurospora crassa）種の真菌に由来する酵素である。
【００６１】
さらに好ましい実施形態において、酵素は植物または藻類に由来する酵素、好ましくはクラミドモナス（Chlamydomonas）属に由来し、さらにより好ましくはクラミドモナスラインハーディ（Chlamydomonas reinhardtii）種に由来する酵素である。
【００６２】
別の実施形態において、酵素は、エントアメーバ（Entamoeba）属、より好ましくはエントアメーバヒストリチカ（Entamoeba histolytica）種の生物に由来する。
【００６３】
原則的に、本発明に従う方法において、アシルリン酸を対応するカルボン酸に変換することができる任意の酢酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１）を使用することができる。
【００６４】
アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換はまた、酪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．７）を利用することによっても行うことができる。酪酸キナーゼは、以下の反応を触媒する酵素である：
【００６５】
【化９】
2018527937.tif 000011
【００６６】
酪酸キナーゼが、酪酸塩に加えて多数の基質、例えば吉草酸塩、イソ酪酸塩、イソ吉草酸塩、およびビニル酢酸を使用することができることは、例えばHartmanis（J. Biol. Chem. 262 (1987), 617-621）によって記述されている。酵素は多様な生物、特に細菌において記述されている。一つの好ましい実施形態において、酵素は、細菌、好ましくはラクトバチルス(Lactobacillus）、ゲオバチルス（Geobacillus）、クロストリジウム（Clostridium）、ブチリビブリオ（Butyrivibrio）、テルモトガ（Thermotoga）、またはエンテロコッカス（Enterococcus）属の細菌に由来する。クロストリジウム（Clostridium）、ラクトバチルス（Lactobacillus）またはゲオバチルス（Geobacillus）が好ましい。より好ましくは、酵素は、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、クロストリジウムプロテオクラスチクム（Clostridium proteoclasticum）、クロストリジウムチロブチリクム（Clostridium tyrobutyricum）、クロストリジウムブチリクム（Clostridium butyricum）、クロストリジウムパスツリアヌム（Clostridium pasteurianum）、クロストリジウムテタノモルフム（Clostridium tetanomorphum）、ブチリビブリオフィブリソルベンス（Butyrivibrio fibrisolvens）、ブチリビブリオヒュンガティ（Butyrivibrio hungatei）、テルモトガマリチマ（Thermotoga maritima）、またはエンテロコッカスデュランス（Enterococcus durans）種の細菌に由来する。クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）が好ましい。この生物に関して、２つの酪酸キナーゼ：酪酸キナーゼＩ（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ４５８２９）および酪酸キナーゼＩＩ（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｑ９７ＩＩ１９）が記述されている。別の好ましい実施形態において、酪酸キナーゼは、ラクトバチルスカゼイ（Lactobacillus casei）、例えばラクトバチルスカゼイ（Lactobacillus casei）Ｗ５６（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｋ０Ｎ５２９）またはゲオバチルス種（Geobacillus sp.）、例えばゲオバチルス種（Geobacillus sp.）ＧＨＨ０１（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｌ８Ａ０Ｅ１）に由来する酪酸キナーゼである。前記タンパク質のアミノ酸配列をそれぞれ、配列番号１３および１４に示す。
【００６７】
当然、配列番号１３または１４のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能なだけではない。同様に、配列番号１３または１４に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することも可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１３または１４に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、本明細書において上記で定義されるアシルリン酸を対応するカルボン酸に変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【００６８】
その上、アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換はまた、酢酸キナーゼ（二リン酸）（ＥＣ２．７．２．１２）を利用することによっても行うことができる。酢酸キナーゼ（二リン酸）（ＥＣ２．７．２．１２）は、以下の反応を本来触媒する酵素である：
【００６９】
【化１０】
2018527937.tif 000012
【００７０】
この酵素は、エントアメーバヒストリチカ（Entamoeba histolytica）に存在すると記述されている。
【００７１】
その上、アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換はまた、分岐鎖脂肪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１４）を利用することによっても行うことができる。分岐鎖脂肪酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１４）は、以下の反応を本来触媒する：
【００７２】
【化１１】
2018527937.tif 000013
（式中、「アルキル」は、２−メチルブタン酸塩、ブタン酸塩、イソブタン酸塩、ペンタン酸塩、またはプロピオン酸塩でありうる）。プロピオン酸塩との後半の反応は、スピロヘータ（spirochaete）（J. Bacteriol. 152 (1982), 246-54）由来の分岐鎖脂肪酸キナーゼに関して記述されている。
【００７３】
この酵素は、多数の細菌に存在すると記述されている。このため、一つの好ましい実施形態において、酵素は、細菌、好ましくはスピロヘータ（Spirochaeta）またはテルモトガ（Thermotoga）属の細菌、より好ましくはテルモトガマリチマ（Thermotoga maritima）に由来する酵素である。
【００７４】
同様に、プロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１５）も、本明細書において上記で定義されるアシルリン酸の対応するカルボン酸への変換に使用することができる。プロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１５）は、以下の反応を本来触媒する：
【００７５】
【化１２】
2018527937.tif 000014
【００７６】
【化１３】
2018527937.tif 000015
【００７７】
この酵素は、多数の細菌、特に腸内細菌科（Enterobacteriacea）に存在すると記述されている。このため、一つの好ましい実施形態において、酵素は細菌、好ましくはサルモネラ（Salmonella）またはエシェリキア（Escherichia）属の細菌、より好ましくはサルモネラエンテリカ（Salmonella enterica）、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）または大腸菌（Escherichia coli）種の細菌に由来する酵素である。
【００７８】
好ましい実施形態において、本明細書において上記で定義されるアシルリン酸の対応するカルボン酸への変換は、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）、好ましくはネズミチフス菌株（Salmonella typhimurium strain）ＡＴＣＣ  ７００７２０に由来するプロピオン酸キナーゼを利用することによって行われる。前記タンパク質のアミノ酸配列を配列番号９に示す。
【００７９】
当然、配列番号９のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号９に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号９に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、本明細書において上記で定義されるアシルリン酸を対応するカルボン酸に変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【００８０】
別の好ましい実施形態において、本明細書において上記で定義されたアシルリン酸の対応するカルボン酸への変換は、大腸菌（Escherichia coli）、好ましくは大腸菌（Escherichia coli）株Ｋ１２に由来するプロピオン酸キナーゼを利用することによって行われる。前記タンパク質のアミノ酸配列を配列番号１０に示す。
【００８１】
当然、配列番号１０のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号１０に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１０に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、本明細書において上記で定義されるアシルリン酸を対応するカルボン酸に変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【００８２】
ＰＲＯＳＩＴＥデータベース（http://prosite.expasy.org/cgi-bin/prosite/prosite-search-ac?PDOC00826#ref1）から明らかであるように、酢酸キナーゼ、酪酸キナーゼ、およびプロピオン酸キナーゼは、進化的に近縁である。
【００８３】
これらの酵素には２つのシグネチャーパターンが存在する：最初のパターンは、Ｎ−末端部分に位置し、第二のパターンは中心部分に位置する。それらのいずれも、グリシンに富み、基質またはＡＴＰ結合に関与することが疑われている。
【００８４】
第一のコンセンサスパターン（シグネチャー１）は：
［ＬＩＶＭＦＡＮＴ］−［ＬＩＶＭ］−ｘ−［ＬＩＶＭＡ］−Ｎ−ｘ−Ｇ−Ｓ−［ＳＴ］（２）−ｘ−［ＫＥ］
である。ＰＲＯＳＩＴＥデータベースにおけるこのシグネチャーの参照はＰＳ０１０７５である。
【００８５】
第二のコンセンサスパターン（シグネチャー２）は：
［ＬＩＶＭＦＡＴＱ］−［ＬＩＶＭＡ］−ｘ（２）−Ｈ−ｘ−Ｇ−ｘ−［ＧＴ］−ｘ−［ＳＴ］−［ＬＩＶＭＡ］−ｘ−［ＴＡＶＣ］−ｘ（３）−Ｇ
である。ＰＲＯＳＩＴＥデータベースにおけるこのシグネチャーの参照はＰＳ０１０７６である。
【００８６】
上記のように、好ましい実施形態において、本発明に従う方法において変換される２−ヒドロキシアルデヒドは、２−ヒドロキシプロパナールであり、これはプロピオニルリン酸に変換される。好ましい実施形態において、プロピオニルリン酸は、本明細書において上記のように対応するカルボン酸、すなわちプロパン酸へとさらに変換される。対応する反応は、例えば以下の反応スキームの１つに従って起こりうる：
【００８７】
【化１４】
2018527937.tif 000016
【００８８】
プロピオニルリン酸のプロパン酸への変換は、好ましくは上記のプロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．１５）を利用することによって行われる。
【００８９】
プロパン酸（プロピオン酸とも呼ばれる）は、それを多数の技術分野で使用することができることから、商業的に重要である。これは主に、動物試料および穀物における保存剤および抗カビ剤として使用するために製造される。これはまた、焼成製品およびチーズなどの包装された食品中の保存剤および香味料としても使用される。例えば、プロパン酸の塩型であるプロピオン酸カルシウムおよびプロピオン酸ナトリウムは、カビを防止するためにパンおよびトルティーヤに使用される。さらに、プロパン酸は、除草剤、薬剤、色素、織物、およびゴム製品、プラスチック、可塑剤、化粧品および香料の生産のための化学構築ブロックとして使用される。
【００９０】
その上、上記のように、好ましい実施形態において、本発明に従う方法において変換される２−ヒドロキシアルデヒドは、２，３−ジヒドロキシプロパナールであり、これは３−ヒドロキシプロピオニルリン酸に変換される。好ましい実施形態において、３−ヒドロキシプロピオニルリン酸はさらに、対応するカルボン酸、すなわち本明細書において上記の３−ヒドロキシプロパン酸に変換される。対応する反応は、例えば以下の反応スキームの一つに従って起こりうる：
【００９１】
【化１５】
2018527937.tif 000017
【００９２】
プロピオニルリン鎖のプロパン酸への変換は、好ましくは上記のプロピオン酸キナーゼ（ＥＣ２．７．２．７）を利用することによって行われる。ラクトバチルスカゼイ（Lactobacillus casei）Ｗ５６（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｋ０Ｎ５２９）またはゲオバチルス種（Geobacillus sp.）、例えば、ゲオバチルス種（Geobacillus sp.）ＧＨＨ０１（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｌ８Ａ０Ｅ１）に由来する酵素が好ましい。前記タンパク質のアミノ酸配列をそれぞれ、配列番号１３および１４に示す。
【００９３】
当然、配列番号１３または１４のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号１３または１４に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１３または１４に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、上記のプロピオニルリン酸または３−ヒドロキシプロピオニルリン酸をプロパン酸または３−ヒドロキシプロピオン酸に変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【００９４】
プロパン酸としての３−ヒドロキシプロパン酸（３−ヒドロキシプロピオン酸、３−ＨＰとも呼ばれる）も同様に商業的に重要である。これはアクリル酸、１，３−プロパンジオール、マロン酸、生体分解性のポリエステルおよび他の貴重な化学物質に変換することができる基盤化学物質である。アクリル酸由来産物には、赤ちゃん用おむつおよび尿もれ用製品に使用される高吸収性ポリマー、プラスチック、コーティング、接着剤、エラストマー、ならびに塗料が挙げられる。現在、アクリル酸は主に、プロペンの触媒的酸化によって作製される。グルコースまたは他の再生可能な資源から前駆体３−ＨＰを提供できることは、化石資源からのアクリル酸産生に対するバイオサステナブルな代替を提供するであろう。
【００９５】
上記のように、本発明の方法によって産生されるアシルリン酸はまた、対応するアシル−補酵素Ａ（アシル−ＣｏＡ）にさらに変換することができる。そのような変換は、以下の反応スキームによって起こる：
【００９６】
【化１６】
2018527937.tif 000018
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）。
【００９７】
アシルリン酸の対応するアシル−ＣｏＡへの変換（インビトロまたはインビボ）は、酵素的に、例えばリン酸アセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．８）の使用によって、またはリン酸ブチリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．１９）の使用によって行うことができる。
【００９８】
リン酸アセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．８）は、以下の反応を本来触媒する：
【００９９】
【化１７】
2018527937.tif 000019
【０１００】
リン酸アセチルトランスフェラーゼがまた、基質として、ブチリル−ＣｏＡまたはプロピオニル−ＣｏＡも使用することができることは、Veitら（J. Biotechnol.140 (2009), 75-83）に記述されている。
【０１０１】
ＩｎｔｅｒＰｒｏデータベースにおけるこの酵素ファミリーの受託番号は、ＩＰＲ０１２１４７およびＩＰＲ００２５０５、「http://www.ebi.ac.uk/interpro/entry/IPR002505」
（http://www.ebi.ac.uk/interpro/entry/IPR012147
http://www.ebi.ac.uk/interpro/entry/IPR002505）である。
同様に、http://pfam.sanger.ac.uk/family/PF01515も参照されたい。
【０１０２】
酵素は、多様な生物、特に細菌および真菌において記述されている。このため、一つの好ましい実施形態において、酵素は、細菌、好ましくはエシェリキア（Escherichia）、クロロゴニウム（Chlorogonium）、クロストリジウム（Clostridium）、ベイロネラ（Veillonella）、メタノサルシナ（Methanosarcina）、コリネバクテリウム（Corynebacterium）、ルエゲリア（Ruegeria）、サルモネラ（Salmonella）、アゾトバクター（Azotobacter）、ブラジリゾビウム（Bradyrhizobium）、ラクトバチルス（Lactobacillus）、ムーレラ（Moorella）、ロドシュードモナス（Rhodopseudomonas）、シノリゾビウム（Sinorhizobium）、ストレプトコッカス（Streptococcus）、テルモトガ（Thermotoga）、またはバチルス（Bacillus）属の細菌、より好ましくは大腸菌（Escherichia coli）、クロロゴニウムエロンガツム（Chlorogonium elongatum）、クロストリジウムクルイベリ（Clostridium kluyveri）、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、耐酸性クロストリジウム（Clostridium acidurici）、ベイロネラパルブラ（Veillonella parvula）、メタノサルシナサーモフィラ（Methanosarcina thermophila）、コリネバクテリウムグルタミクム（Corynebacterium glutamicum）、ルエゲリアポメロイ（Ruegeria pomeroyi）、サルモネラエンテリカ（Salmonella enterica）、アゾトバクタービネランディ（Azotobacter vinelandii）、ブラジリゾビウムジャポニクム（Bradyrhizobium japonicum）、ラクトバチルスファーメンツム（Lactobacillus fermentum）、ラクトバチルスサンフランシセンシス（Lactobacillus sanfranciscensis）、ムーレラサーモアセチカ（Moorella thermoacetica）、ロドシュードモナスパルストリス（Rhodopseudomonas palustris）、シノリゾビウムメリロチ（Sinorhizobium meliloti）、化膿連鎖球菌（Streptococcus pyogenes）、テルモトガマリチマ（Thermotoga maritima）、または枯草菌（Bacillus subtilis）種の細菌に由来する酵素である。別の好ましい実施形態において、酵素は、真菌、好ましくはサッカロミセス（Saccharomyces）属、より好ましくはサッカロミセスセレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）種の真菌に由来する酵素である。
【０１０３】
好ましい実施形態において、アシルリン酸のアシル−ＣｏＡへの変換は、コリネバクテリウムグルタミクム（Corynebacterium glutamicum）に由来する、好ましくはコリネバクテリウムグルタミクム（Corynebacterium glutamicum）株ＡＴＣＣ  １３０３２に由来するリン酸アセチルトランスフェラーゼを利用することによって行われる。前記タンパク質のアミノ酸配列を配列番号１１に示す。
【０１０４】
当然、配列番号１１のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号１１に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１１に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、アシルリン酸をアシル−ＣｏＡに変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【０１０５】
上記のように、アシルリン酸の対応するアシル−ＣｏＡへの変換（インビトロまたはインビボ）はまた、リン酸ブチリルトランスフェラーゼ（ＥＣ．２．３．１．１９）を利用することによっても行うことができる。
【０１０６】
リン酸ブチリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．１９）は、以下の反応を本来触媒する：
【０１０７】
【化１８】
2018527937.tif 000020
【０１０８】
リン酸ブチリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．３．１．１９）は、ブチリル補酵素Ａ（ブチリル−ＣｏＡ）に加えて多数の基質、特にアセチル−ＣｏＡ、プロピオニル−ＣｏＡ、イソブチリル−ＣｏＡ、バレリル−ＣｏＡ、およびイソバレリル−ＣｏＡを使用することができることは、Wiesenbornら（Appl. Environ. Microbiol. 55 (1989), 317-322）およびWardら（J. Bacteriol. 181 (1999), 5433-5442）によって記述されている。
【０１０９】
酵素は、多数の生物、特に細菌および原虫に存在すると記述されている。一つの実施形態において、酵素は、原虫のダシトリカルミナンツム（Dasytricha ruminantium）に由来する。好ましい実施形態において、リン酸ブチリルトランスフェラーゼは、細菌、好ましくはバチルス（Bacillus）、ブチリビブリオ（Butyrivibrio）、エンテロコッカス（Enterococcus）、またはクロストリジウム（Clostridium）属の細菌、より好ましくはエンテロコッカス（Enterococcus）、またはクロストリジウム（Clostridium）属、およびさらにより好ましくは枯草菌（Bacillus subtilis）、バチルスメガテリウム（Bacillus megaterium）、ブチリビブリオフィブリソルベンス（Butyrivibrio fibrisolvens）、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、クロストリジウムベイジェリンキイ（Clostridium beijerinckii）、クロストリジウムブチリクム（Clostridium butyricum）、クロストリジウムクルイベリ（Clostridium kluyveri）、クロストリジウムサッカロアセトブチリクム（Clostridium saccharoacetobutylicum）、クロストリジウムスポロゲネス（Clostridium sporogenes）、またはエンテロコッカスフェカーリス（Enterococcus faecalis）に由来するリン酸ブチリルトランスフェラーゼである。最も好ましくは、酵素は、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、特にｐｔｂ遺伝子によってコードされる酵素（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｆ０Ｋ６Ｗ０；Wiesenborn et al. (Appl. Environ. Microbiol. 55 (1989), 317-322)）、エンテロコッカスフェカーリス（Enterococcus faecalis）（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｋ４ＹＲＥ８；Wardら（J. Bacteriol. 181 (1999), 5433-5442)）、または枯草菌（Bacillus subtilis）、特に株１６８（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｐ５４５３０）に由来する。
【０１１０】
一つの好ましい実施形態において、アシルリン酸の対応するアシル−ＣｏＡへの変換は、クロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、好ましくはクロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）株ＡＴＣＣ  ８２４に由来するリン酸ブチリルトランスフェラーゼを利用することによって行われる。前記タンパク質のアミノ酸配列を配列番号１２に示す。
【０１１１】
当然、配列番号１２のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号１２に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１２に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、アシルリン酸を対応するアシル−ＣｏＡに変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【０１１２】
別の好ましい実施形態において、アシルリン酸の対応するアシル−ＣｏＡへの変換は、枯草菌（Bacillus subtilis）、特に株１６８（Ｕｎｉｐｒｏｔ受託番号：Ｐ５４５３０）に由来するリン酸ブチリルトランスフェラーゼを利用することによって行われる。前記タンパク質のアミノ酸配列を配列番号１５に示す。
【０１１３】
当然、配列番号１５のアミノ酸を正確に示す酵素を使用することが可能であるのみならず、同様に、配列番号１５に示すアミノ酸配列と少なくとも６０％同一である配列を含む酵素も使用することが可能である。好ましくは、配列同一性は、配列番号１５に対して少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、８５％、または９０％、さらにより好ましくは９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、および特に好ましくは少なくとも９９％であり、酵素は、アシルリン酸を対応するアシル−ＣｏＡに変換する酵素活性を有する。配列同一性の決定に関しては、上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【０１１４】
上記のように、好ましい実施形態において、本発明の方法に従う方法で変換される２−ヒドロキシアセトアルデヒドは、２−ヒドロキシプロパナールであり、これはプロピオニルリン酸に変換される。好ましい実施形態において、プロピオニルリン酸は、本明細書において上記のように対応するアシル−ＣｏＡ、すなわちプロピオニル−ＣｏＡにさらに変換される。対応する反応は、例えば以下の反応スキームの１つに従って起こりうる：
【０１１５】
【化１９】
2018527937.tif 000021
【０１１６】
このスキームに従うプロピオニルリン酸のプロピオニル−ＣｏＡへの変換は、好ましくはリン酸ブチリルトランスフェラーゼ、より好ましくはクロストリジウムアセトブチリクム（Clostridium acetobutylicum）、枯草菌（Bacillus subtilis）、またはエンテロコッカスフェカーリス（Enterococcus faecalis）に由来するリン酸ブチリルトランスフェラーゼ、さらにより好ましくは上記の対応する酵素を利用することによって行われる。
【０１１７】
その上、上記のように、好ましい実施形態において、本発明の方法に従う方法で変換される２−ヒドロキシアルデヒドは、２，３−ジヒドロキシプロパナールであり、これは３−ヒドロキシプロピオニルリン酸に変換される。好ましい実施形態において、３−ヒドロキシプロピオニルリン酸は、本明細書において上記のように、対応するアシル−ＣｏＡ、すなわち３−ヒドロキシプロピオニル−ＣｏＡにさらに変換される。対応する反応は、例えば以下の反応スキームの１つに従って起こりうる：
【０１１８】
【化２０】
2018527937.tif 000022
【０１１９】
このスキームに従う３−ヒドロキシプロピオニルリン酸の３−ヒドロキシプロピオニル−ＣｏＡへの変換は、リン酸ブチリルトランスフェラーゼ、より好ましくは、枯草菌（Bacillus subtilis）、またはエンテロコッカスフェカーリス（Enterococcus faecalis）に由来するリン酸ブチリルトランスフェラーゼ、さらにより好ましくは上記の対応する酵素を利用することによって行われる。
【０１２０】
本発明に従う方法は、インビトロまたはインビボで行われうる。インビトロ反応は、細胞を使用しない反応、すなわち無細胞反応であると理解される。このため、インビトロは好ましくは無細胞系を意味する。１つの実施形態における用語「インビトロ」は、単離された酵素（または任意でおそらく必要な補因子を含む酵素系）が存在することを意味する。１つの実施形態において、方法において使用される酵素は精製された形態で使用される。
【０１２１】
方法をインビトロで行うために、反応の基質と酵素とを、酵素が活性となり酵素的変換が起こる条件（緩衝液、温度、補基質、補因子等）でインキュベートする。反応をそれぞれの産物を産生するために十分な時間、進行させる。それぞれの産物の産生は、質量分析による検出と連結されている場合もある液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）などの当技術分野で公知の方法によって測定することができる。
【０１２２】
酵素は、酵素反応を起こす任意の適した形態でありうる。酵素は精製もしくは部分精製されてもよく、または粗細胞抽出物もしくは部分精製抽出物の形態であってもよい。酵素を適した担体に固定することも可能である。
【０１２３】
実施例は、異なる起源に由来するホスホケトラーゼを使用する本発明に従うインビトロ反応を説明する。
【０１２４】
別の実施形態において、本発明に従う方法は、少なくともホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを産生し、任意で２−ヒドロキシアルデヒドを提供するために必要な、または産生されたアシルリン酸を本明細書において上記のようにカルボン酸もしくはアシル−ＣｏＡなどの他の化合物にさらに変換するために必要な酵素を産生する生物、好ましくは微生物の存在下で培養して行われる。本発明に従う方法を行うために微生物を使用する方法は、「インビボ」法と呼ばれる。２−ヒドロキシアルデヒドは、外から提供されてもよく、またはホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼそのものを発現する使用微生物によって産生されてもよい。そのような微生物は、２−ヒドロキシアルデヒドの酵素的産生に必要な少なくとも１つの酵素を発現する。同様に、２−ヒドロキシアルデヒドを産生することができる微生物と、第一の微生物によって産生された２−ヒドロキシアルデヒドを変換するためにホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物を同時培養することも可能である。
【０１２５】
このため、本発明のそのような実施形態において、上記のように少なくともホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを産生する微生物を使用する。ホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを本来産生する微生物、またはホスホケトラーゼおよび／もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する（または過剰発現する）ように遺伝子改変されている微生物を使用することが可能である。このように、微生物は、ホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを本来発現する、すなわちホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列を本来そのゲノムに有する、およびそれ／それらを発現する微生物でありうる。発現は、構成的であってもよく、または誘導型もしくは調節型であってもよい。ホスホケトラーゼ活性またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を固有に、すなわち本来有する微生物は、当技術分野において公知であり、それらのいずれも、本発明の文脈において使用することができる。
【０１２６】
別の実施形態において、微生物は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列を含有する核酸分子の導入によって遺伝子改変されている微生物でありうる。核酸分子は、微生物のゲノムに安定に組み入れることができ、または染色体外に、例えばプラスミドに存在してもよい。
【０１２７】
そのような遺伝子改変微生物は、例えばホスホケトラーゼ活性もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を本来有しないが、ホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現するように遺伝子改変されている微生物、またはホスホケトラーゼ活性もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を本来有し、前記微生物におけるホスホケトラーゼ活性もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を増加させるために、例えばホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする核酸、例えばベクターによる形質転換によって、および／もしくは前記微生物におけるそれぞれの活性を増加させるために酵素をコードする内因性のヌクレオチド配列の前にプロモーターを挿入することによって、遺伝子改変されている微生物でありうる。
【０１２８】
しかし、本発明は、好ましくは、上記の酵素をそれらが天然に存在するレベルで発現する、天然において見出される天然起源の微生物を除外する。その代わりに、本発明の微生物および本発明の方法において使用される微生物は、好ましくは、そのゲノムに通常は存在しない本発明の外因性の酵素を発現する（過剰発現を含む）ように遺伝子改変されているか、または外因性の酵素を過剰発現するように設計されているかによらず、非天然起源の微生物である。
【０１２９】
このため、本発明に関連して使用される酵素および（微）生物は、好ましくは非天然起源の酵素または（微生物）であり、すなわち、それらは天然起源の酵素または微生物とは顕著に異なり、天然に存在しない酵素または（微）生物である。酵素に関して、酵素は、好ましくは天然起源の酵素の変種であり、そのため決して天然に存在しない。そのような変種は、例えば変異体、特により高い酵素活性、より高い基質特異性、より高い温度抵抗性等などの改善された特性を示す、分子生物学的方法によって調製された変異体を含む。（微）生物に関して、微生物は、好ましくは、遺伝子改変により天然起源の生物とは異なる、本明細書において上記の遺伝子改変生物である。遺伝子改変生物は、天然に存在しない、すなわち天然において見出すことができず、かつ異物核酸分子の導入により天然起源の生物とは実質的に異なる生物である。
【０１３０】
本明細書において上記の外因性または内因性の酵素を過剰発現させることにより、酵素の濃度は天然において見出されるよりも実質的に高くなり、それによってそれぞれの酵素に関して非天然物を使用する本発明の反応を予想外に推進することができる。好ましくは、過剰発現された酵素の濃度は、宿主細胞の総タンパク質の少なくとも５％、１０％、２０％、３０％、または４０％である。
【０１３１】
「非天然の」基質は、たとえ実際に内因性の酵素と共に微生物において同時に存在していても、天然においてそれぞれの酵素による作用を受けない分子であると理解される。この「非天然の」基質は、他の基質（例えば「天然の基質」）のほうが好ましいことから、天然において微生物によって変換されない。このため、本発明は、天然において見出されない環境で上記の酵素と共に非天然の基質を利用することを企図する。
【０１３２】
このため、本発明の文脈において、微生物は、ホスホケトラーゼ活性またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を本来有しないが、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの発現を可能にするヌクレオチド配列を含むように遺伝子改変されている微生物であることも可能である。同様に、微生物はまた、ホスホケトラーゼ活性またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を本来有するが、例えばホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする外因性のヌクレオチド配列を導入することによって、または内因性の産生を過剰発現（非天然）レベルまで増加させるために酵素をコードする内因性の遺伝子に関するプロモーターを導入することによって、ホスホケトラーゼ活性またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を増強するように遺伝子改変されている微生物でありうる。
【０１３３】
ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを本来発現する微生物を使用する場合、それぞれの活性が微生物において過剰発現されるようにそのような微生物を改変することが可能である。これは、例えば、遺伝子のより高い発現を確実にするプロモーターが得られるように、対応する遺伝子のプロモーター領域に変異をもたらすことによって、または高発現性のプロモーターを導入することによって行うことができる。あるいは、より高い活性を示す酵素が得られるように、遺伝子を変異させることも可能である。
【０１３４】
ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物を使用することによって、酵素を分離または精製する必要なく、培養培地において本発明に従う方法を直接行うことが可能である。
【０１３５】
１つの実施形態において、本発明に従う方法において使用される生物は、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする異物核酸分子を含有するように遺伝子改変されている微生物である。この文脈における用語「異物」または「外因性」は、核酸分子が前記微生物に本来存在しないことを意味する。このことは、核酸分子が微生物において同じ構造でまたは同じ位置に存在しないことを意味する。１つの好ましい実施形態において、異物核酸分子は、コード配列の発現を促進するプロモーターがコード配列に関して異種である、プロモーターとそれぞれの酵素をコードするコード配列とを含む組み換え型分子である。この文脈における「異種」とは、プロモーターが、前記コード配列の発現を本来促進するプロモーターではないが、異なるコード配列の発現を本来促進するプロモーターである、すなわちプロモーターが別の遺伝子に由来する、または合成プロモーターもしくはキメラプロモーターであることを意味する。好ましくは、プロモーターは、微生物に対して異種のプロモーター、すなわちそれぞれの微生物に本来存在しないプロモーターである。より一層好ましくは、プロモーターは、誘導型プロモーターである。異なるタイプの生物、特に微生物において発現を促進するプロモーターは、当業者に周知である。
【０１３６】
さらなる実施形態において、核酸分子は、コードされる酵素が微生物に対して内因性でない、すなわち遺伝子改変されていない微生物によって本来発現されないという点において微生物に対して異物である。言い換えれば、コードされる酵素は、微生物に対して異種である。異物核酸分子は、微生物において染色体外に、例えばプラスミドとして存在しうるか、または染色体に安定に組み込まれうる。安定な組み込みが好ましい。このため、遺伝子改変は、例えば酵素をコードする対応する遺伝子を染色体に組み入れること、またはプロモーターとコード配列が好ましくは異なる生物に由来する、酵素コード配列の上流にプロモーターを含むプラスミドから酵素を発現させること、または当業者に公知の他の任意の方法からなることができる。
【０１３７】
本発明の文脈における用語「微生物」は、細菌ならびに酵母などの真菌、同様に藻類および古細菌を指す。１つの好ましい実施形態において、微生物は細菌である。原則的に、任意の細菌を使用することができる。本発明に従うプロセスにおいて使用することが好ましい細菌は、バチルス（Bacillus）、クロストリジウム（Clostridium）、コリネバクテリウム（Corynebacterium）、シュードモナス（Pseudomonas）、ザイモモナス（Zymomonas）、またはエスケリキア（Escherichia）属の細菌である。特に好ましい実施形態において、細菌はエスケリキア（Escherichia）属に属し、より一層好ましくは大腸菌（Escherichia coli）種に属する。別の好ましい実施形態において、細菌はシュードモナスプチダ（Pseudomonas putida）種または ザイモモナスモビリス（Zymomonas mobilis）種またはコリネバクテリウムグルタミクム（Corynebacterium glutamicum）種または枯草菌（Bacillus subtilis）種に属する。
【０１３８】
同様に、サームスサーモフィルス（Thermus thermophilus）などの極限環境細菌またはクロストリジウム（Clostridiae）科の嫌気性細菌を使用することも可能である。
【０１３９】
別の好ましい実施形態において、微生物は真菌、より好ましくはサッカロミセス（Saccharomyces）、シゾサッカロミセス（Schizosaccharomyces）、アスペルギルス（Aspergillus）、トリコデルマ（Trichoderma）、クルイベロミセス（Kluyveromyces）、またはピチア（Pichia）属の真菌であり、より一層好ましくは出芽酵母（Saccharomyces cerevisiae）、シゾサッカロミセスポンべ（Schizosaccharomyces pombe）、アスペルギルスニゲル（Aspergillus niger）、トリコデルマリーセイ（Trichoderma reesei）、クルイベロミセスマルキシアヌス（Kluyveromyces marxianus）、クルイベロミセスラクチス（Kluyveromyces  lactis）、ピチアパストリス（Pichia pastoris）、ピチアトルラ（Pichia torula）、またはピチアウチリス（Pichia utilis）種の真菌である。
【０１４０】
別の実施形態において、本発明に従う方法は、少なくともホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する光合成微生物を利用する。好ましくは、微生物は、光合成細菌または微細藻類である。さらなる実施形態において、微生物は、藻類、より好ましくはディアトマ（diatomeae）に属する藻類である。
【０１４１】
本発明に従う方法において、異なる微生物が上記のように異なる酵素を発現する微生物の組み合わせを使用することも考えられる。
【０１４２】
特に好ましい実施形態において、本発明に従う方法は、上記で定義される２−ヒドロキシアルデヒドを産生することができる微生物を利用する。そのような微生物は、そのような２−ヒドロキシアルデヒドを自然に産生することができるか、または微生物が代謝物または外部から提供された基質をそのような２−ヒドロキシアルデヒドに変換することができる、遺伝子改変による微生物のいずれかでありうる。一部の生物は、２−ヒドロキシアルデヒドを産生することができると記述されている。例えば、メタノカルドコッカスジャンナシイ（Methanocaldococcus jannaschii）などの一部の古細菌は、２−ヒドロキシプロパナール（ラクトアルデヒド；Grochowski et al, J. Bacteriol. 188 (2006), 2836-2844; White, RH, Biochemistry 47, (2008), 5037-5046を参照されたい）を産生すると記述されている。その上、ラクトアルデヒドは、１，２−プロパンジオール経路の代謝中間体であることが知られており、例えば大腸菌（E. coli）のＬ−フルクトースおよびＲ−ラムノース代謝において産生される（例えば、Boronat et Aguilar, J. Bacteriol. 147 (1981), 181-185; Bennet and San, Appl. Microbiol. Biotechnol. 55 (2001), 1-9を参照されたい）。
【０１４３】
対象の酵素を発現するための微生物の遺伝子改変をまた、以下にさらに詳細に説明する。
【０１４４】
本発明に従う方法において使用されるホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、天然起源のホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼでありうるか、または例えば酵素活性、安定性等を変化させるもしくは改善する変異もしくは他の変化を例えば導入することにより、天然起源のホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼから誘導されるホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼでありうる。
【０１４５】
本出願の文脈における用語「ホスホケトラーゼ」または「ホスホケトラーゼの活性を有するタンパク質／酵素」はまた、上記で定義された２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を産生することができるが、それらの天然の基質に対して低い親和性を有するに過ぎないか、またはそれらの天然の基質をもはや受容しないホスホケトラーゼに由来する酵素もその範囲に含む。好ましい基質に関するホスホケトラーゼのそのような改変により、２−ヒドロキシアルデヒドのアシルリン酸への変換を改善して、望ましくない副産物の産生を低減させることができる。
【０１４６】
本出願の文脈における用語「スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ」または「スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの活性を有するタンパク質／酵素」はまた、上記で定義された２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を産生することができるが、それらの天然の基質に対して低い親和性を有するに過ぎないか、またはそれらの天然の基質をもはや受容しないスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼに由来する酵素もその範囲に含む。好ましい基質に関するスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼのそのような改変により、２−ヒドロキシアルデヒドのアシルリン酸への変換を改善して、望ましくない副産物の産生を低減させることができる。
【０１４７】
タンパク質の所望の酵素活性を修飾および／または改善する方法は、当業者に周知であり、例えば、ランダム変異誘発または部位特異的変異誘発、および所望の特性を有する酵素のその後の選択またはいわゆる「指向性進化」のアプローチを含む。
【０１４８】
例えば、原核細胞における遺伝子改変に関して、ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする核酸分子を、変異誘発またはＤＮＡ配列の組み換えによる配列改変を許容にするプラスミドに導入することができる。標準的な方法（Sambrook and Russell (2001), Molecular Cloning: A Laboratory Manual, CSH Press, Cold Spring Harbor, NY, USAを参照されたい）により、塩基の交換を行うことができ、または天然もしくは合成の配列を付加することができる。ＤＮＡ断片を、断片と相補的なアダプターおよびリンカーを使用してライゲートすることができる。その上、適した制限部位を提供する、または余剰なＤＮＡもしくは制限部位を除去する工学手法を使用することができる。挿入、欠失、または置換が可能であるそれらの場合、インビトロ変異誘発、「プライマー修復」、制限、またはライゲーションを使用することができる。一般的に、配列分析、制限分析、ならびに他の生化学および分子生物学の方法が、分析方法として行われる。次に、得られたホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ変種を、上記のアッセイによって、所望の活性、例えば酵素活性、特に増加した酵素活性に関して試験する。
【０１４９】
上記のように、本発明の方法において使用されるまたは本発明の組成物に含まれる微生物は、ホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする核酸分子の導入によって遺伝子改変されている微生物でありうる。このため、好ましい実施形態において、微生物は、増加したホスホケトラーゼ活性および／または増加したスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を有するように遺伝子改変されている組み換え型微生物である。これは、例えば、ホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードする核酸によって微生物を形質転換することによって行うことができる。微生物の遺伝子改変の詳細な説明をさらに以下に示す。好ましくは、微生物に導入される核酸分子は、微生物に関して異種である、すなわち当該微生物に本来存在しない核酸分子である。
【０１５０】
本発明の文脈において、「増加した活性」は、遺伝子改変微生物における酵素、特にホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの発現および／または活性が、対応する非改変微生物における活性より少なくとも１０％、好ましくは少なくとも２０％、より好ましくは少なくとも３０％または５０％、より一層好ましくは少なくとも７０％または８０％、特に好ましくは少なくとも９０％または１００％高いことを意味する。さらにより好ましい実施形態において、発現および／または活性の増加は、少なくとも１５０％、少なくとも２００％、または少なくとも５００％でありうる。特に好ましい実施形態において、発現は、対応する非改変微生物より少なくとも１０倍、より好ましくは少なくとも１００倍、より一層好ましくは少なくとも１０００倍高い。
【０１５１】
用語「増加した」発現／活性はまた、対応する非改変微生物が、対応する酵素、例えばホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現せず、そのため非改変微生物における対応する発現／活性がゼロである状況も含む。好ましくは、過剰発現された酵素の濃度は宿主細胞の総タンパク質の少なくとも５％、１０％、２０％、３０％、または４０％である。
【０１５２】
細胞における所定のタンパク質の発現レベルを測定する方法は、当業者に周知である。１つの実施形態において、発現レベルの測定は、対応するタンパク質の量を測定することによって行われる。対応する方法は、当業者に周知であり、ウェスタンブロット、ＥＬＩＳＡ等を含む。別の実施形態において、発現レベルの測定は、対応するＲＮＡの量を測定することによって行われる。対応する方法は、当業者に周知であり、例えばノザンブロットを含む。
【０１５３】
ホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの酵素活性を測定する方法は当技術分野において公知であり、すでに上記で説明されている。
【０１５４】
本発明の文脈において、用語「組み換え型」は、野生型または非改変微生物と比較して上記で定義された酵素をコードする核酸分子を含むように微生物が遺伝子改変されていることを意味する。上記で定義される酵素をコードする核酸分子は単独でまたはベクターの一部として使用することができる。
【０１５５】
核酸分子はさらに、核酸分子に含まれるポリヌクレオチドに機能的に連結した発現制御配列を含むことができる。本明細書の記述を通して使用される用語「機能するように連結した」または「機能的に連結した」は、発現制御配列と適合性の条件で発現が得られるように、１つまたは複数の発現制御配列と、発現されるポリヌクレオチドのコード領域とが連結していることを指す。
【０１５６】
発現は、異種ＤＮＡ配列の、好ましくは翻訳可能なｍＲＮＡへの転写を含む。真菌ならびに細菌における発現を確実にする調節エレメントは当業者に周知である。それらは、プロモーター、エンハンサー、終止シグナル、標的化シグナル等を包含する。ベクターに関する説明に関連して、例を以下にさらに述べる。
【０１５７】
核酸分子に関連して使用するためのプロモーターは、その起源および／または発現される遺伝子に関して同種または異種であってもよい。適したプロモーターは、例として、それらを構成的に発現させるプロモーターである。しかし、外部の影響に左右される時点に限って活性化されるプロモーターもまた使用することができる。人工的および／または化学的に誘導されるプロモーターが、この文脈において使用されうる。
【０１５８】
ベクターは、さらに、ベクターに含まれる前記ポリヌクレオチドに機能的に連結した発現制御配列を含むことができる。これらの発現制御配列は、細菌または真菌において翻訳可能なＲＮＡの転写および合成を確実にするために適切でありうる。
【０１５９】
加えて、分子生物学において通常の方法によって、異なる変異をポリヌクレオチドに挿入することが可能であり（例として、Sambrook and Russell (2001), Molecular Cloning: A Laboratory Manual, CSH Press, Cold Spring Harbor, NY, USAを参照されたい）、それによって改変された生物学的特性をおそらく有するポリペプチドが合成される。点突然変異の導入は、例としてアミノ酸配列の改変がポリペプチドの生物活性または調節に影響を及ぼす位置で考えられる。
【０１６０】
その上、改変された基質または産物特異性を有する変異体を調製することができる。好ましくは、そのような変異体は、増加した活性を示す。あるいは、基質結合活性を失うことなくその触媒活性が失われた変異体を調製することができる。
【０１６１】
さらに、上記で定義される酵素をコードするポリヌクレオチドに変異を導入することにより、前記ポリヌクレオチドによってコードされる酵素の遺伝子発現速度および／または活性を低減または増加させることができる。
【０１６２】
細菌または真菌を遺伝子改変するために、上記で定義される酵素をコードするポリヌクレオチドまたはこれらの分子の一部を、変異誘発またはＤＮＡ配列の組み換えによる配列改変を許容するプラスミドに導入することができる。標準的な方法（Sambrook and Russell (2001), Molecular Cloning: A Laboratory Manual, CSH Press, Cold Spring Harbor, NY, USAを参照されたい）によって、塩基の交換を行うことができ、または天然もしくは合成の配列を付加することができる。アダプターおよびリンカーを断片に適用することによって、ＤＮＡ断片を互いに接続することができる。その上、適した制限部位を提供する、または余剰なＤＮＡもしくは制限部位を除去する工学手法を使用することができる。挿入、欠失、または置換が可能であるそれらの場合、インビトロ変異誘発、「プライマー修復」、制限またはライゲーションを使用することができる。一般的に、配列分析、制限分析、ならびに生化学および分子生物学の他の方法が分析法として行われる。
【０１６３】
このため、本発明に従って、上記のポリヌクレオチド、核酸分子、またはベクターを真菌または細菌に導入することを含む、真菌または細菌を遺伝子改変することによって、組み換え型微生物を産生することができる。
【０１６４】
それぞれの酵素、特にホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼをコードするポリヌクレオチドを、上記の活性、例えばホスホケトラーゼ活性またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ活性を有するポリペプチドが産生されるように、発現させる。異なる発現システムの総説は、例としてMethods in Enzymology 153 (1987), 385-516、Bitterら（Methods in Enzymology 153 (1987), 516-544）、およびSawersら（Applied Microbiology and Biotechnology 46 (1996), 1-9）、Billman-Jacobe（Current Opinion in Biotechnology 7 (1996), 500-4）、Hockney（Trends in Biotechnology 12 (1994), 456-463）、Griffithsら（Methods in Molecular Biology 75 (1997), 427-440）に含まれる。酵母発現系の総説は、例としてHensingら（Antonie van Leuwenhoek 67 (1995), 261-279）、Bussineauら（Developments in Biological  Standardization 83 (1994), 13-19）、Gellissenら（Antonie van Leuwenhoek 62 (1992), 79-93）、Fleer（Current Opinion in Biotechnology 3 (1992), 486-496）、Vedvick（Current Opinion in Biotechnology 2 (1991), 742-745）、およびBuckholz（Bio/Technology 9 (1991), 1067-1072）によって示される。
【０１６５】
発現ベクターは、文献において広く記述されている。原則として、発現ベクターは、選択マーカー遺伝子および選択された宿主における複製を確実にする複製開始点のみならず、細菌またはウイルスプロモーター、およびほとんどの場合転写終止シグナルを含有する。プロモーターと終止シグナルのあいだに、一般的に、コードするＤＮＡ配列を挿入することができる少なくとも１つの制限部位またはポリリンカーが存在する。対応する遺伝子の転写を本来制御するＤＮＡ配列が、選択された宿主生物において活性である場合、そのＤＮＡ配列をプロモーター配列として使用することができる。しかし、この配列を、他のプロモーター配列と交換することもできる。遺伝子の構成的発現を確実にするプロモーターおよび遺伝子の発現の意図的な制御を可能にする誘導型プロモーターを使用することが可能である。これらの特性を保有する細菌およびウイルスプロモーター配列は、文献において詳細に記述されている。微生物（例として大腸菌（E. coli）、出芽酵母（S. cerevisiae））における発現のための調節配列は、文献において十分に記述されている。下流の配列の特に高い発現を許容するプロモーターは、例としてＴ７プロモーター（Studier et al., Methods in Enzymology 185 (1990), 60-89）、ｌａｃＵＶ５、ｔｒｐ、ｔｒｐ−ｌａｃＵＶ５（DeBoer et al., in Rodriguez and Chamberlin (Eds), Promoters, Structure and Function; Praeger, New York, (1982), 462-481; DeBoer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1983), 21-25）、ｌｐ１、ｒａｃ（Boros et al., Gene 42 (1986), 97-100）である。ポリペプチドを合成するためには、誘導型プロモーターが好ましくは使用される。これらのプロモーターは、構成的プロモーターより高いポリペプチド収率が得られることが多い。最適な量のポリペプチドを得るために、２段階プロセスがしばしば使用される。第１に、宿主細胞を、最適な条件で比較的高い細胞密度まで培養する。第２のステップにおいて、使用されるプロモーターのタイプに応じて転写を誘導する。この点において、ラクトースまたはＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド）によって誘導することができるｔａｃプロモーターは、特に適している（deBoer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80 (1983), 21-25）。転写終止シグナルもまた、文献に記述されている。
【０１６６】
上記のポリヌクレオチドまたはベクターによる宿主細胞の形質転換は、例としてSambrook and Russell (2001), Molecular Cloning: A Laboratory Manual, CSH Press, Cold Spring Harbor, NY, USA; Methods in Yeast Genetics, A Laboratory Course Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1990に記述される標準的な方法によって行うことができる。宿主細胞を、使用される特定の宿主細胞の必要条件、特にｐＨ値、温度、塩濃度、通気、抗生物質、ビタミン、微量元素等に関する必要条件を満たす栄養培地で培養する。
【０１６７】
本発明に従う方法を、それぞれの酵素活性を提供する生物／微生物を使用することによってインビボで行う場合、生物、好ましくは微生物を、酵素反応を発生させる適した培養条件で培養する。特定の培養条件は、使用される特定の生物／微生物に依存するが、当業者に周知である。培養条件は一般的に、それぞれの反応の酵素をコードする遺伝子を発現させるように選択される。化学誘発物質または温度のシフトによる遺伝子発現の誘導などの、培養の特定の段階で特定の遺伝子の発現を改善および微調整するために、様々な方法が当業者に公知である。
【０１６８】
別の実施形態において、本発明の方法は、生物、好ましくはそれぞれの酵素活性を有する微生物を、（細胞）培養の形態、好ましくは液体細胞培養の形態で提供するステップと、その後に生物、好ましくは微生物を発酵装置（しばしばバイオリアクターとも呼ばれる）においてそれぞれの酵素を発現させる適した条件で培養するステップとを含み、さらに本明細書において上記の本発明の方法の酵素的変換を行うステップを含む。適した発酵装置またはバイオリアクター装置および発酵条件は、当業者に公知である。バイオリアクターまたは発酵装置は、生物学的に活性な環境を支持する当技術分野で公知の任意の製造または工学用の装置またはシステムを指す。このため、バイオリアクターまたは発酵装置は、本発明の方法のような、生物、好ましくは微生物、および／または活性物質、すなわち当該生物または上記の酵素を有する生物に由来する上記の酵素、を伴う化学反応が行われる容器でありうる。バイオリアクターまたは発酵装置において、このプロセスは好気性または嫌気性でありうる。これらのバイオリアクターは一般的に円柱形であり、リットルサイズから立方メートルサイズまでの範囲でありえて、しばしばステンレス鋼製である。この点に関して、理論に拘束されることなく、発酵装置またはバイオリアクターは、生物、好ましくは微生物を、例えばそのすべてが当技術分野で一般的に公知であるバッチ培養、流加培養、還流培養または連続培養で培養するために適した様式で設計されうる。
【０１６９】
培養培地は、それぞれの生物または微生物を培養するために適した任意の培養培地でありうる。
【０１７０】
本発明はまた：
（ａ）  ２−ヒドロキシアルデヒドとホスホケトラーゼ、または
（ｂ）  ２−ヒドロキシアルデヒドとスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ、または
（ｃ）  ２−ヒドロキシアルデヒドと、ホスホケトラーゼおよびスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼ、または
（ｄ）  ２−ヒドロキシアルデヒドと、ホスホケトラーゼを発現する微生物、または
（ｅ）  ２−ヒドロキシアルデヒドと、スルホアセトアルデヒドアセチルトランストランスフェラーゼを発現する微生物、または
（ｆ）  ２−ヒドロキシアルデヒドと、ホスホケトラーゼおよびスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物、
を含有する組成物であって、
２−ヒドロキシアルデヒドが、以下の式に対応する、組成物に関する：
【０１７１】
【化２１】
2018527937.tif 000023
（式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、ＣＨ３、ＣＨ２ＯＨおよびＣ２Ｈ５から独立して選択され、Ｒ１がＨである場合、Ｒ２はＨであることはできない）。
【０１７２】
ホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、本発明に従う方法に関連して上記で定義したホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼでありうる。組成物に含まれる微生物は、ホスホケトラーゼおよび／またはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する任意の適した微生物、特に本発明に従う方法に関連して本明細書において上記の微生物でありうる。
【０１７３】
本発明はさらに、本明細書において上記で規定した２−ヒドロキシアルデヒドからアシルリン酸を産生するための、ホスホケトラーゼもしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼの使用、またはホスホケトラーゼおよび／もしくはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼを発現する微生物の使用に関する。ホスホケトラーゼ／スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼおよび微生物に関して、本発明に従う方法に関連して上記で説明した内容と同じ内容が適用される。
【図面の簡単な説明】
【０１７４】
【図１】２−ヒドロキシアルデヒドの対応するアシルリン酸への変換を示す概略図である。
【図２】アシルリン酸の対応するカルボン酸への変換を示す概略図である。
【図３】アシルリン酸の対応するアシル−ＣｏＡへの変換を示す概略図である。
【図４】２−ヒドロキシプロパナールのプロパン酸またはプロピオニル−ＣｏＡへの変換を示す概略図である。
【図５】２，３−ジヒドロキシプロパナールの３−ヒドロキシプロパン酸または３−ヒドロキシプロピオニル−ＣｏＡへの変換を示す概略図である。
【発明を実施するための形態】
【０１７５】
本明細書において、特許出願を含む多数の文書が引用される。これらの文書の開示は、本発明の特許性に関連すると考えられないが、その全内容が参照により本明細書に組み入れられる。より具体的には、すべての参考文書は、それぞれの個々の文書が具体的かつ個別に参照により組み入れられることが示されているのと同じ程度に参照により組み入れられる。
【０１７６】
本発明を、以下の実施例を参照してさらに説明するが、これらの実施例は、単なる説明であり、本発明の範囲の制限として解釈してはならない。
【実施例】
【０１７７】
実施例１：ホスホケトラーゼのクローニング、発現、および精製
組み換え型酵素の遺伝子合成、クローニング、および発現
原核生物のゲノムから推定されるホスホケトラーゼの配列を、大腸菌（E. coli）のコドン使用に適合するようにオリゴヌクレオチドを連結することにより作製した（遺伝子は、ＧｅｎｅＡｒｔ（登録商標）が商業的に合成した）。精製のためのアフィニティタグを提供するために、一続きのヒスチジン６個のコドンをメチオニン開始コドンの後に挿入した。このようにして合成された遺伝子を、改変されたマルチクローニングサイト（ＭＣＳ）を含む改変ｐＵＣ１８発現ベクター（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ）においてクローニングした。対象の遺伝子をＰａｃＩおよびＮｏｔＩ制限部位でクローニングした。
【０１７８】
コンピテントＭＧ１６５５大腸菌（E. coli）細胞を、標準的な熱ショック技法を使用してこれらのベクターによって形質転換した。形質転換された細胞をＬＢ−アンピシリン培地において、１６０ｒｐｍで振とうさせながら３０℃で２４時間生育させた。
【０１７９】
細胞を、４℃、１０，０００ｒｐｍで２０分間の遠心分離により回収して、沈降物を−８０℃で保存した。
【０１８０】
タンパク質の精製および濃縮
培養細胞２００ｍｌからの沈降物を氷中で融解して、３００ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  ＤＴＴ、および１０ｍＭイミダゾールを含有する５０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５  ３ｍｌに再懸濁させた。リゾナーゼ（Ｍｅｒｃｋ）１０μｌを添加した。細胞を室温で１０分間インキュベートした後、氷中に２０分間戻した。２×３０秒間の超音波処理によって細胞の溶解が完了した。次に、細菌抽出物を４℃、１０，０００ｒｐｍで２０分間の遠心分離により透明にした。透明にした細菌溶解物をＰＲＯＴＩＮＯ−１０００  Ｎｉ−ＴＥＤカラム（Ｍａｃｈｅｒｅｙ−Ｎａｇｅｌ）にロードして、６−Ｈｉｓタグタンパク質を吸着させた。カラムを洗浄して、対象の酵素を、３００ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  ＤＴＴ、２５０ｍＭイミダゾールを含有する５０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５  ４ｍｌによって溶離させた。次に、溶離液を、Ａｍｉｃｏｎ  Ｕｌｔｒａ−４  １０ｋＤａフィルターユニット（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）で濃縮して脱塩し、酵素を５０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５に再懸濁させた。酵素調製物に１０％グリセロールを補充した後、長期間保存した。タンパク質濃度は、ＮａｎｏＤｒｏｐ  １０００分光光度計（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）でＵＶ２８０ｎｍの直接測定によって定量した。このように精製されたタンパク質の純度は、７０％〜９０％まで変化した。
【０１８１】
実施例２：ホスホケトラーゼによって触媒される、２，３−ジヒドロキシプロパナールからの３−ヒドロキシプロピオニルリン酸の形成に関する試験
酵素反応
酵素反応を以下の条件下で実施した：
５０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５
２５ｍＭリン酸カリウムｐＨ７．５
５ｍＭチアミンピロリン酸（ＴＰＰ）
５ｍＭ  ＭｇＣｌ２
２３ｍＭフッ化ナトリウム
８ｍＭヨード酢酸ナトリウム
１．９ｍＭ  Ｌ−システイン塩酸塩
５０ｍＭ  ２，３−ジヒドロキシプロパナール（Ｄ，Ｌ−グリセルアルデヒド）（Ｓｉｇｍａ）
ｐＨは、７．５に調節した。
【０１８２】
各酵素反応は、３ｍｇ／ｍｌ精製組換えホスホケトラーゼ（ＰＫＴ）を添加することによって開始した。
【０１８３】
酵素を添加しないまたは基質を添加しない対照アッセイを実施した。
【０１８４】
インキュベーションを、３７℃で振とうさせながら一晩実施した。３−ヒドロキシプロピオニルリン酸の形成を、以下の技法を使用して３−ヒドロキシプロピオニルヒドロキサム酸鉄（ＩＩＩ）の検出を通して調べた（Racker E., Methods Enzymol. 5, 1962, 276-280）：塩酸ヒドロキシルアミン（２Ｍ、ｐＨ６．５）０．１ｍｌを反応混合物０．１ｍｌに添加した。室温で１０分間インキュベートした後、試料を３０％トリクロロ酢酸３５μｌによって酸性にした。次に、８Ｍ  ＨＣｌ  ３５μｌおよびＦｅＣｌ３試薬（０．１Ｍ  ＨＣｌ中に１０％  ＦｅＣｌ３）３５μｌを添加した。試料をさらに遠心分離によって透明化して、３−ヒドロキシプロピオニル−ヒドロキサム酸鉄錯体の吸光度を５０５ｎｍで測定した。
【０１８５】
ホスホケトラーゼを添加しない、または２，３−ジヒドロキシプロパナールを添加しない対照アッセイでは、吸光度の低いシグナルが観察された。酵素なしの対照アッセイの減算によって補正した酵素試料の吸光度の値を表１に示す。
【０１８６】
【表１】
2018527937.tif 000024
【０１８７】
実施例３：ホスホケトラーゼによって触媒される２−ヒドロキシプロパナールからのプロピオニルリン酸の形成に関する試験
酵素アッセイは、実施例２に記述されるプロトコールに従って実施した。２−ヒドロキシプロパナール（ラクトアルデヒド）を、２，３−ジヒドロキシプロパナールの代わりに基質として使用した。
【０１８８】
ヒドロキサム酸塩に基づく比色測定アッセイ
プロピオニルリン酸の形成を、実施例２に記載の技法を使用して、プロピオニル−ヒドロキサム酸鉄（ＩＩＩ）の検出を通して調べた。ホスホケトラーゼを添加しないまたは２−ヒドロキシプロパナールを添加しない対照アッセイでは、吸光度の低いシグナルが観察された。酵素なしの対照アッセイの減算によって補正した酵素試料の吸光度の値を表２に示す。
【０１８９】
【表２】
2018527937.tif 000025
【０１９０】
このように、異なるホスホケトラーゼは、２−ヒドロキシアルデヒドの対応するアシルリン酸への変換を触媒することが示された。
【０１９１】
実施例４：スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼのクローニング、発現、および精製
組換えタンパク質の遺伝子合成、クローニング、および発現
原核生物のゲノムから推定される、試験した酵素の配列を、大腸菌（E. coli）のコドン使用に適合するようにオリゴヌクレオチドを連結することにより作製した（遺伝子はＧｅｎｅＡｒｔ（登録商標）が商業的に合成した）。精製のためのアフィニティタグを提供するために、一続きのヒスチジン６個のコドンをメチオニン開始コドンの後に挿入した。このように合成された遺伝子を、ｐＥＴ−２５ｂ（＋）発現ベクター（ベクターはＧｅｎｅＡｒｔ（登録商標）が構築した）にクローニングした。
【０１９２】
コンピテント大腸菌（E. coli）ＢＬ２１（ＤＥ３）細胞（Ｎｏｖａｇｅｎ）を、標準的な熱ショック技法に従って、これらのベクターによって形質転換した。形質転換された細胞を、ＺＹＭ−５０５２自家誘導培地（Studier FW, Prot. Exp. Pur. 41, (2005), 207-234）を使用して振とう（１６０ｒｐｍ）させながら３０℃で７時間生育させて、タンパク質発現を１８℃で一晩継続させた（約１６時間）。細胞を、４℃、１０，０００ｒｐｍで２０分間の遠心分離によって収集して、沈降物を−８０℃で保存した。
【０１９３】
タンパク質の精製および濃縮
培養細胞２００ｍｌからの沈降物を氷上で融解して、３００ｍＭ  ＮａＣｌ、１０ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１０ｍＭイミダゾール、および１ｍＭ  ＤＴＴを含有する５０ｍＭトリス−ＨＣｌ緩衝液ｐＨ７．５  ５ｍｌに再懸濁させた。リゾナーゼ（Ｎｏｖａｇｅｎ）２０μｌを添加した。細胞を室温で１０分間インキュベートした後、氷中に２０分間戻した。２×３０秒間の超音波処理によって細胞の溶解が完了した。次に、細菌抽出物を４℃、４０００ｒｐｍで４０分間の遠心分離により透明にした。透明にした細菌溶解物をＰＲＯＴＩＮＯ−１０００  Ｎｉ−ＴＥＤカラム（Ｍａｃｈｅｒｅｙ−Ｎａｇｅｌ）にロードして、６−Ｈｉｓタグタンパク質を吸着させた。カラムを洗浄して、目的の酵素を、３００ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  ＤＴＴ、および２５０ｍＭイミダゾールを含有する５０ｍＭトリス−ＨＣｌ緩衝液ｐＨ７．５  ６ｍｌによって溶離させた。次に、溶離液を濃縮して、Ａｍｉｃｏｎ  Ｕｌｔｒａ−４  １０ｋＤａフィルターユニット（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）で脱塩し、酵素を５０ｍＭトリス−ＨＣｌ緩衝液ｐＨ７．５に再懸濁させた。このように精製したタンパク質の純度は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析によって推定すると７０％〜９０％まで変化した。タンパク質濃度は、ＮａｎｏＤｒｏｐ１０００分光光度計（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）での直接ＵＶ２８０ｎｍ測定、またはＢｒａｄｆｏｒｄアッセイ（ＢｉｏＲａｄ）によって決定した。
【０１９４】
実施例５：Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒド（２−ヒドロキシプロパナール）のプロピオニルリン酸への変換およびさらにプロピオン酸への変換に関するＨＰＬＣに基づく分析
ホスホケトラーゼは、実施例１に記載のように発現させて精製した。スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、実施例４に記載のように発現させた。
【０１９５】
酵素反応
酵素反応を以下の条件下で実施した：
５０ｍＭ  トリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５
２５ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ７．５の存在または非存在
０．６ｍＭチアミンピロリン酸（ＴＰＰ）
１ｍＭ  ＭｇＣｌ２
１．９ｍＭ  Ｌ−システイン塩酸塩
５０ｍＭ  Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒド（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）
２．８ｍｇ／ｍｌ精製酵素
全量１５０μｌ。
【０１９６】
酵素を添加しない対照アッセイを行った。酵素アッセイを３７℃で一晩実施した。プロピオン酸の形成を、ＨＰＬＣに基づく分析を使用して調べた。
【０１９７】
ＨＰＬＣに基づく方法
酵素反応を、８０℃で５分間インキュベートすることにより停止させた。次に、ＭｅＣＮ  １５０μｌを培地に添加し、アッセイ試験管を遠心分離した。透明な上清１００μｌを濾過し、きれいなバイアルに移した。
【０１９８】
ＨＰＬＣ分析は、屈折計検出器およびカラム加熱モジュールを備えた１２６０インフィニティＬＣシステム（Ａｇｉｌｅｎｔ）を使用して行った。試料５μｌをＰＬ  Ｈｉ−Ｐｌｅｘ  Ｈガードカラム（５０×７．７ｍｍ）を備えたＨｉ−Ｐｌｅｘ  Ｈカラム（１００×７．７ｍｍ、粒子径８μｍ、カラム温度６５℃）で分離した。移動相は、硫酸水溶液（１ｍＭ）からなり、流速０．８ｍｌ／分で移動させた。これらの条件下でのＤ，Ｌ−ラクトアルデヒドおよびプロピオン酸の保持時間はそれぞれ、４．９４および６．６２分であった。
【０１９９】
いくつかのホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒドのプロピオン酸への変換を触媒することができた（表３）。プロピオン酸の形成は、無機リン酸塩の存在下で改善され、このことは、変換が中間体としてアシルリン酸を通して起こることを示している。かなり不安定であるアシルリン酸は、自然加水分解によってプロピオン酸に変換される。
【０２００】
【表３−１】
2018527937.tif 000026
【０２０１】
【表３−２】
2018527937.tif 000027
【０２０２】
実施例６：Ｄ，Ｌ−ラクトアルデヒド（２，３−ヒドロキシプロパナール）の３−ヒドロキシプロピオニルリン酸への変換およびさらに３−ヒドロキシプロピオン酸への変換に関するＨＰＬＣに基づく分析
ホスホケトラーゼは全て、実施例１に記載のように発現させて精製した。スルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、実施例４に記載のように発現させた。
【０２０３】
酵素反応
酵素反応を以下の条件下で実施した：
５０ｍＭ  トリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．５
２５ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ７．５の存在または非存在
０．６ｍＭチアミンピロリン酸（ＴＰＰ）
１ｍＭ  ＭｇＣｌ２
１．９ｍＭ  Ｌ−システイン塩酸塩
５０ｍＭ  Ｄ，Ｌ−グリセルアルデヒド（Ｓｉｇｍａ）
２．８ｍｇ／ｍｌ精製酵素
反応の全量は１５０μｌであった。
【０２０４】
酵素を添加しない対照アッセイを行った。酵素アッセイを３７℃で一晩実施した。３−ヒドロキシプロピオン酸の形成を、ＨＰＬＣに基づく分析を使用して調べた。
【０２０５】
ＨＰＬＣに基づく方法
酵素反応を、８０℃で５分間インキュベートすることにより停止させた。次に、ＭｅＣＮ  １５０μｌを培地に添加し、アッセイ試験管を遠心分離した。透明な上清１００μｌを濾過し、きれいなバイアルに移した。
【０２０６】
産生された３−ヒドロキシプロピオン酸の量を、ＨＰＬＣに基づく技法を使用して測定した。ＨＰＬＣ分析は、カラム加熱モジュールおよび屈折計検出器を備えた１２６０インフィニティＬＣシステム  Ａｇｉｌｅｎｔを使用して行った。試料５μｌを、以下のように連続して接続した３つのカラムを使用して分離した：
１．Ｈｉ−Ｐｌｅｘガードカラム（５０×７．７ｍｍ、粒子径８μｍ）（Ａｇｉｌｅｎｔ）
２．Ｈｉ−Ｐｌｅｘカラム（１００×７．７ｍｍ、粒子径８μｍ）（Ａｇｉｌｅｎｔ）
３．Ｚｏｒｂａｘ  ＳＢ−Ａｑカラム（２５０×４．６ｍｍ、粒子径５μｍ、カラム温度６５℃）（Ａｇｉｌｅｎｔ）。
【０２０７】
移動相は硫酸水溶液（１ｍＭ）からなり、移動相の流速は０．５ｍｌ／分であった。これらの条件下でのＤ，Ｌ−グリセルアルデヒドおよび３−ヒドロキシプロピオン酸の保持時間はそれぞれ、１２．１２および１４．６７分であった。
【０２０８】
いくつかのホスホケトラーゼまたはスルホアセトアルデヒドアセチルトランスフェラーゼは、Ｄ，Ｌ−グリセルアルデヒドの３−ヒドロキシプロピオン酸への変換を触媒することができた（表４）。変換は、かなり不安定で自然に３−ヒドロキシプロピオン酸へと加水分解される中間体３−ヒドロキシプロピオニルリン酸を通して起こると考えられる。
【０２０９】
【表４−１】
2018527937.tif 000028
【０２１０】
【表４−２】
2018527937.tif 000029
【図１】
2018527937.tif 000034
【図２】
2018527937.tif 000035
【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
2018527937000001.app
【国際調査報告】
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2018527937.tif 000040
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