(57)【要約】  本発明は、血小板凝集阻害効果を有する新規の化合物及びその塩類に関するものであり、さらに詳しくは、せん断応力による血小板凝集（shear stress-induced platelet aggregation）を選択的に阻害する新しい血小板凝集阻害剤及びそれを有効成分とする医薬組成物及びその製造方法に関するものである。【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）
【化１】
2018534344.tif 000025
［式中、
Ｒ１は、ヒドロキシ又はＣ１−Ｃ１０アルコキシであり；
Ｘは、Ｎ又はＯであり；
Ｒ２は、−（ＣＨ２）ｐ−５〜１２員複素環−（ＣＨ２）ｐ−Ｃ６−Ｃ１２アリール、５〜１２員複素環、−（ＣＨ２）ｐ−ＮＨＣ（＝Ｏ）−Ｃ６−Ｃ１２アリール、−ＣＨＲ４Ｒ５、５〜１２員ヘテロアリール、Ｃ６−Ｃ１２アリール、−Ｃ６−Ｃ１２アリール−Ｏ−５〜１２員ヘテロアリール、−（ＣＨ２）ｐ−５〜１２員ヘテロアリール又は−（ＣＨ２）ｐ−Ｃ６−Ｃ１２アリール｛ここで、ｐは、１〜１０の整数であり、Ｒ４及びＲ５は、それぞれ独立して、Ｃ１−Ｃ６アルコキシカルボニル基又は−ＣＨ２−５〜１２員ヘテロアリールであり、複素環及びヘテロアリールは、Ｎ、Ｏ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有してもよく、複素環、ヘテロアリール及びアリールは、ハロゲン、オキソ、アミノカルボニル、Ｃ１−Ｃ６アルキル、ニトロ、Ｃ１−Ｃ６アルコキシ、ニトリル、Ｃ１−Ｃ６アルキルアミノカルボニル、ヒドロキシ及びヒドロキシ−Ｃ１−Ｃ６アルキルから選ばれる１〜４個の置換基で置換され得る｝であり；
Ｒ３は、水素であり；
ＸがＯのとき、Ｒ３は存在しなく；
ＸがＮのとき、ＸはＲ２及びＲ３と共にＯ、Ｎ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する５〜１２員複素環を形成していてもよく、前記複素環は、Ｃ６−Ｃ１２アリール、非置換またはハロゲンで置換されたＯ、Ｎ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する６〜１２員ヘテロアリール、−Ｏ−ＣＨＲ６Ｒ７｛ここで、Ｒ６及びＲ７は、それぞれ独立して、非置換又はハロゲンで置換されたＣ６−Ｃ１２アリール又はＮ、Ｏ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する６〜１０員ヘテロアリールである｝で置換され得る］
で示される化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体。
【請求項２】
前記化合物が、以下の群から選ばれる請求項１に記載の化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体：
（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン；
（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン；
Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−３，４−ジヒドロキシベンズアミド；
３，４−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド；
Ｎ，Ｎ’−（ノナン−１，９−ジイル）ビス（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）；
（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン；
（Ｓ）−（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン；
（Ｓ）−メチル−２−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−３−（１Ｈ−インドール−３−イル）プロパノエート；
４−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−１−メチル−３−プロピル−１Ｈ−ピラゾール−５−カルボキサミド；
２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル３，４−ジヒドロキシベンゾエート；
（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−フェニルピペラジン−１−イル）メタノン；
（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン；
２−エチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート；
２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート；
４−ヒドロキシ−３−メトキシ−Ｎ−（４−メトキシ−２−ニトロフェニル）ベンズアミド；
Ｎ−（３−エチニルフェニル）−４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド；
４−（４−（４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド）フェノキシ）−Ｎ−メチルピコリンアミド；
４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン；
４−ヒドロキシ−Ｎ−（（３−ヒドロキシ−５−（ヒドロキシメチル）−２−メチルピリジン−４−イル）メチル）−３−メトキシベンズアミド；
（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（２，５−ジヒドロキシフェニル）メタノン；
（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（２，５−ジヒドロキシフェニル）メタノン；
Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド；
（２，５−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン；
Ｎ−（３，４−ジメトキシフェネチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド；
２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−（チオフェン−２−イル）エチル）ベンズアミド；及び
２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド。
【請求項３】
有効成分として請求項１または２に記載の化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体を含む、血栓性疾患の予防又は治療用組成物。
【請求項４】
血栓性疾患が、肺塞栓症、血栓性静脈炎、心不整脈血栓症、門脈血栓症、狭心症、動脈硬化症及び脳梗塞からなる群から選ばれる請求項３に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血小板凝集阻害効果を有する新規の化合物及びその塩類に関するものであり、さらに詳しくは、せん断応力による血小板凝集（shear stress-induced platelet aggregation）を選択的に阻害する新しい血小板凝集阻害剤及びそれを有効成分とする医薬組成物及びその製造方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
人体は、創傷部位の治療と血液の損失を防ぐための自己治療又は防御体系を有しており、これは、血小板と血漿の凝固、繊維素分解、及び凝固阻害の調節と均衡からなっている。これらの適切な調節と均衡が、様々な要因よって妨げられると、異常な血小板凝集が生じ、それが血栓性疾患を引き起こす。
【０００３】
血栓症（thrombosis）は、血管内の血栓（blood clot）によって妨げられている状態を意味し、最悪の場合、血液の流れが遮断される。血栓症は、動脈血栓症（atherothrombosis）、静脈血栓症（phlebothrombosis）、肝門脈血栓症（hepatic portal vein thrombosis）、肺動脈塞栓症（pulmonary thromboembolism）、慢性静脈虚血（chronic limb ischemia）、下肢静脈瘤（Varicose vein）、心不整脈血栓症（deep vein thrombosis diseases）、狭心症（angina pectoris）、脳梗塞（cerebral infarction）、脳出血（cerebral hemorrhage）などを引き起こし、また、感染、血管の損傷、術後の合併症、凝固性疾患などを引き起こす。このような血栓症は、非正常的血管壁と血流力、血漿中の凝固タンパク質、血小板間の相互作用によって生成される。血小板は、多様なアゴニスト（アデノシン二リン酸、トロンボキサンＡ２、トロンビンなど）により活性化され、活性化された血小板の糖蛋白質ＩＩｂ／ＩＩＩａなどが血液中の複合タンパク質（フィブリノーゲン、ヴォン・ヴィレブランド因子など）と結合して凝集反応を引き起こす。
【０００４】
最近、化学的アゴニストだけでなく、物理的刺激によって、血小板が異常に活性化され、血栓症を引き起こすことが知られている。物理的刺激の中で、血小板の活性化における最も重要な因子はせん断応力（shear stress）である。これは、血流により血小板、赤血球、内皮細胞など血管内細胞に加えられる力を意味する。せん断応力の異常な変化は、生体内で引き起こされる病理学的動脈血栓発生の最も主要な原因であり、ステント（stent）、アテローム切除術、バルーン血管整形術（balloon angioplasty）のような経皮的冠動脈形成術（percutaneous coronary intervention）による動脈薄利、血管痙攣（vascular spasm）又は高血圧（hypertension）、動脈硬化（atherosclerosis）等のような疾患に起因する。
【０００５】
せん断応力が、異常に上昇する場合、血小板が活性化され、直接的にヴォン・ヴィレブランド因子と活性化された血小板の糖蛋白質ＩＩｂ／ＩＩＩａが結合して、凝集が起こる。このような現像は、血小板内の信号体系を加速化し、細胞内カルシウム濃度を増加させ、微小体（granules）から多様な活性因子の放出を誘導し、それによって血小板の凝集を促進し、血栓症を引き起こす（非特許文献１）。
【０００６】
現在、血栓疾患の予防と治療には、化学的アゴニストに拮抗する抗血小板剤（例えば、アスピリン、クロピドグレルなど）、抗凝固剤（例えば、ヘパリン、ワルファリンなど）、形成された血栓を治療するための血栓溶解剤（例えば、組織プラスミノーゲン活性化因子など）等が使用されている。アスピリンは、かなり効果的であるが、胃腸管出血と消化性潰瘍などの副作用を起こすと知られている。また、その他の抗凝固剤として使用される薬物は、ほとんどの経口投与ができず、血栓に対する選択性が少なく、長期間服用時の出血、溶血現象、免疫反応、発熱、アレルギーなどの様々な副作用を示している。このような副作用と無効性に加えて、商業的に入手可能ないくつかの治療剤の価格が非常に高価であるという別の問題がある。
【０００７】
前記理由から、せん断応力による血小板凝集に選択的に関与し、副作用の少ない抗血小板剤開発が必要である（非特許文献２、３）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Nesbitt et al., Nature Medicine 15, 665 - 673 (2009)
【非特許文献２】Kiefer and Becker, Circulation, 2009, 120:2488-2495
【非特許文献３】Gilbert et al., Circulation, 2007, 116:2678-2686
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は、アミド及びエステル構造を含む抗血小板凝集阻害の構造活性研究（structure activity relationship）により得られた化合物が、出血などの副作用の少ない血栓性疾患予防又は治療に有用であることを見出したものである。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明の一態様は、下記の一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）
【化１】
2018534344.tif 000002
［式中、
Ｒ１は、ヒドロキシ又はＣ１−Ｃ１０アルコキシであり；
Ｘは、Ｎ又はＯであり；
Ｒ２は、−（ＣＨ２）ｐ−５〜１２員複素環−（ＣＨ２）ｐ−Ｃ６−Ｃ１２アリール、５〜１２員複素環、−（ＣＨ２）ｐ−ＮＨＣ（＝Ｏ）−Ｃ６−Ｃ１２アリール、−ＣＨＲ４Ｒ５、５〜１２員ヘテロアリール、Ｃ６−Ｃ１２アリール、−Ｃ６−Ｃ１２アリール−Ｏ−５〜１２員ヘテロアリール、−（ＣＨ２）ｐ−５〜１２員ヘテロアリール又は−（ＣＨ２）ｐ−Ｃ６−Ｃ１２アリール｛ここで、ｐは、１〜１０の整数であり、Ｒ４及びＲ５は、それぞれ独立して、Ｃ１−Ｃ６アルコキシカルボニル基又は−ＣＨ２−５〜１２員ヘテロアリールであり、複素環及びヘテロアリールは、Ｎ、Ｏ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有してもよく、複素環、ヘテロアリール及びアリールは、ハロゲン、オキソ、アミノカルボニル、Ｃ１−Ｃ６アルキル、ニトロ、Ｃ１−Ｃ６アルコキシ、ニトリル、Ｃ１−Ｃ６アルキルアミノカルボニル、ヒドロキシ及びヒドロキシ−Ｃ１−Ｃ６アルキルから選ばれる１〜４個の置換基で置換され得る｝であり；
Ｒ３は、水素であり；
ＸがＯのとき、Ｒ３は存在しなく；
ＸがＮのとき、ＸはＲ２及びＲ３と共にＯ、Ｎ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する５〜１２員複素環を形成していてもよく、前記複素環は、Ｃ６−Ｃ１２アリール、非置換またはハロゲンで置換されたＯ、Ｎ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する６〜１２員ヘテロアリール、−Ｏ−ＣＨＲ６Ｒ７｛ここで、Ｒ６及びＲ７は、それぞれ独立して、非置換又はハロゲンで置換されたＣ６−Ｃ１２アリール又はＮ、Ｏ及びＳから選ばれる１〜３個のヘテロ原子を有する６〜１０員ヘテロアリールである｝で置換され得る］
で示される化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体に関するものである。
【００１１】
前記化合物の具体的な例は、以下の通りである：
１．（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
２．（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン
３．Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−３，４−ジヒドロキシベンズアミド
４．３，４−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド
５．Ｎ，Ｎ’−（ノナン−１，９−ジイル）ビス（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）
６．（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
７．（Ｓ）−（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
８．（Ｓ）−メチル−２−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−３−（１Ｈ−インドール−３−イル）プロパノエート
９．４−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−１−メチル−３−プロピル−１Ｈ−ピラゾール−５−カルボキサミド
１０．２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル  ３，４−ジヒドロキシベンゾエート
１１．（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−フェニルピペラジン−１−イル）メタノン
１２．（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン
１３．２−エチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル  ４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート
１４．２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル  ４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート
１５．４−ヒドロキシ−３−メトキシ−Ｎ−（４−メトキシ−２−ニトロフェニル）ベンズアミド
１６．Ｎ−（３−エチニルフェニル）−４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド
１７．４−（４−（４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド）フェノキシ）−Ｎ−メチルピコリンアミド
１８．４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン
１９．４−ヒドロキシ−Ｎ−（（３−ヒドロキシ−５−（ヒドロキシメチル）−２−メチルピリジン−４−イル）メチル）−３−メトキシベンズアミド
２０．（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（２，５−ジヒドロキシフェニル）メタノン
２１．（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（２，５−ジヒドロキシフェニル）メタノン
２２．Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド
２３．（２，５−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン
２４．Ｎ−（３，４−ジメトキシフェネチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド
２５．２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−（チオフェン−２−イル）エチル）ベンズアミド
２６．２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド
【００１２】
したがって、本発明の別の態様は、前記群から択一的に選ばれる化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体に関する。
【００１３】
本発明のさらに別の態様は、有効成分として一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）の化合物、又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体を含む、血小板凝集による血栓性疾患の予防又は治療用組成物に関する。本明細書で言及される血栓性疾患には、例えば、肺塞栓症、血栓性静脈炎、心不整脈血栓症、門脈血栓症、狭心症、動脈硬化症、又は脳梗塞が含まれてもよいが、これらに限定されない。
【００１４】
本発明の医薬組成物は、通常使用される薬学的に許容しうる担体と共に適切な形態に製剤化することができる。‘薬学的に許容しうる’という用語は、生理学的に許容され、ヒトに投与された場合、通常的に、胃腸障害及び目眩などのアレルギー反応、又は同様の反応を引き起こさない成分を指す。このような薬学的に許容しうる担体の例には、水、適した油、食塩水、水性グルコース及びグリコールのような非経口投与用担体などが挙げられる。
【００１５】
さらに、本発明に係る組成物は、安定化剤及び保存剤をさらに含んでもよい。適切な安定化剤は、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム及びアスコルビン酸などの抗酸化剤が挙げられる。適切な保存剤は、塩化ベンザルコニウム、メチル−又はプロピル−パラベン及びクロロブタノールが挙げられる。さらに、本発明の組成物は、その投与方法や製剤によって、必要に応じて、懸濁剤、溶解補助剤、安定化剤、等張化剤、保存剤、吸着防止剤、界面活性化剤、希釈剤、賦形剤、ｐＨ調整制、注射痛みの緩和剤、緩衝剤、酸化防止剤などを含んでいてもよい。前記に例示されたものを含む、本発明に適した薬学的に許容しうる担体及び製剤は、文献［Remington’s Pharmaceutical Sciences, Current Edition］に詳細に記載されている。本発明の組成物は、単位製剤に製造してもよく、又は多用量容器内に組み込むことによって製造してもよい。医薬組成物において、本発明の化合物は、全組成物の総重量に対して、０．０００１〜１０重量％、好ましくは０．００１〜１重量％の量で存在する。
【００１６】
本発明の医薬組成物の投与方法は、製剤の種類に応じて容易に選択することができ、家畜、ヒトなどの哺乳動物に種々の経路、以下の経口又は非経口投与形態で投与することができる。
【００１７】
経口投与用の製剤には、錠剤、丸剤、硬／軟質カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳化剤、シロップ剤、顆粒剤、エリキシル剤、トローチ剤などが挙げられる。これらの製剤は、活性成分に加えて、希釈剤（例：ラクトース、デキストロース、スクロース、マンニトール、ソルビトール、セルロース及び／又はグリシン）、滑沢剤（例：シリカ、タルク、ステアリン酸及びそのマグネシウム又はカルシウム塩及び／又はポリエチレングリコール）を含有している。錠剤はまた、ケイ酸アルミニウムマグネシウム、デンプンペースト、ゼラチン、メチルセルロース、ナトリウムカルボキシメチルセルロース及び／又はポリビニルピロリジンなどの結合剤を含有してもよく、場合によりデンプン、寒天、アルギン酸又はそのナトリウム塩などの崩壊剤、又は沸騰性混合物及び／又は吸収剤、着色剤、香味剤、及び甘味剤を含む。
【００１８】
非経口投与のための製剤には、滅菌水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、乳剤、凍結乾燥製剤、坐剤が含まれる。非水性溶剤、懸濁化剤には、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブ油などの植物油、オレイン酸エチルなどの注射用エステルなどが挙げられる。坐剤の基剤には、ウィテップゾール（witepsol）、マクロゴール、ツイーン（tween）６１、カカオ脂、ラウリン脂、グリセロール、ゼラチンなどが挙げられる。非経口投与用製剤を製剤化するために、前記一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）の化合物又はこれの薬学的に許容しうる塩を滅菌、及び／又は防腐剤、安定化剤、水和剤又は乳化促進剤、浸透圧調節のための塩及び／又は緩衝剤などの補助剤、及びその他の治療上有用な物質と共に水に混合し、溶液又は懸濁液を製造し、これをアンプル又はバイアル単位剤形で製造することができる。
【００１９】
本発明の前記一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）の化合物を有効成分として含有する医薬組成物の人体に対する好ましい投与量は、患者の状態及び体重、疾患の程度、薬物形態、投与経路及び治療期間によって異なるが、当業者が適宜選択することができる。しかし、好ましくは、本発明の化合物を、０．００１〜１００ｍｇ／体重ｋｇ、より好ましくは０．０１〜３０ｍｇ／体重ｋｇの１日用量で投与することができる。投与は、１日１回または１日に数回に分けて行うことができる。投与量は、患者の体重、年齢、性別、健康状態、食事、投与時間、投与方法、排せつ率及び疾患の重症度などの様々な状態に応じて変化し得るので、前記投与量に加減があり得るということは当業者に自明である。従って、前記用量は、決して本発明の範囲を限定するものでない。投与回数は、所望の範囲内で１日に１回、又は１日数回であってもよく、投与期間も特に限定されない。
【００２０】
前述の本発明の一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）で示される化合物は、抗血小板凝集阻害を活性化する。
【００２１】
せん断応力（shear stress）は、血流によって血小板、赤血球などの血球細胞と血管内皮に加えられる物理的な刺激である。正常な状態では、３００−１５００ｓ−１の低レベルに維持されるが、狭窄症、動脈硬化、癌、血管痙攣など血管が狭窄した場合、異常に増加し、さらに１０，０００ｓ−１以上に増加する。この過度に上昇したせん断応力は、直接的に血小板を活性化及び凝集し、その状態はせん断応力による血小板凝集（ＳＩＰＡ）と定義される。せん断応力による血小板凝集は、ヴォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）と糖タンパク質（ＧＰ）Ｉｂの結合によって開始され、細胞内カルシウム濃度の増加、微小体（granule）から活性因子の分泌、及び付着タンパク質の発現を通じて安定した血小板凝集及び血栓形成を誘発する。
【００２２】
実際、せん断応力は、生体内での病理学的動脈血栓の発生の最も重要な原因の一つであるが、今日まで、せん断応力による血小板凝集を標的とする薬物は開発されていなく、開発中でもない。従って、このような薬物の開発は、ファースト・イン・クラスであり、既存の製品を置き換えるだけでなく、新規市場の開拓が期待されている。特に、この薬物の場合、他の化学アゴニストとは異なり、新規機序により血小板活性化を誘導し、血流変化によって誘発される生体内環境を反映するのに有利であり、その作用機序は、ｖＷＦ−ＧＰＩｂ結合、細胞内Ｃａ２＋変化、ＧＰＩＩｂ/ＩＩＩａ活性化、ｖＷＦ分泌、ＡＤＡＭＴＳ１３活性化の５段階に細分されることが期待される。
【００２３】
また、本発明の一般式（Ｉ）又は（ＩＩ）で示される化合物は、従来の抗血小板剤とは異なり、長期間服用しても出血などの副作用をほとんど見られない。
【００２４】
本明細書で使用される用語「予防」は、本発明の組成物の投与時に関連疾患の発病を阻害又は遅延させる任意の作用を指す。本発明の組成物は、症状発生以前または初期に投与された場合に、このような疾患を予防することができることは当業者に自明であろう。
【００２５】
本明細書で使用される用語「治療」は、本発明の組成物の投与時に関連疾患の症状を好転させるか、または有利な状態に変化させる人の行為を指し、緩和又は改善を含む。本発明が属する技術分野における通常の知識を有する者は、韓国医学協会などから提示されたデータを参考にして疾患の正確な基準を知ることができ、疾患の緩和、改善及び治療の程度を判断することができる。
【００２６】
本発明のさらに別の態様は、本発明に係る組成物の治療有効量を血栓症の治療が必要とされる対象に投与することを含む血栓症の治療又は予防方法に関するものである。
【００２７】
本明細書で使用される用語「対象」は、疾患の治療を必要とする対象を意味し、より具体的には、ヒト又は非ヒトである霊長類、マウス、ラット（rat）、イヌ、ネコ、ウマ及びウシなどを含む哺乳類を意味する。
【００２８】
本発明の組成物を対照に投与する方法は、前述のように実施することができる。
【００２９】
本明細書で使用される用語「治療有効量」は、前述のような血栓症を治療、阻害、軽減または防止するのに十分な、本発明に係る化合物又は前記化合物を含む医薬組成物の量を指し、任意の薬物に適用される効果対リスク比（benefit/risk ratio）の決定を行う。しかし、１日総投与量は、医師の合理的な意見によって決定される。さらに、特定患者の１日投与量は、多様な要因、例えば、特定疾患の種類、疾患の重症度、投与された特定薬物の種類、使用された組成物の種類、患者の年齢、体重、一般的健康状態、性別、食事、投与時間、投与経路、薬物の吸収、分布及び排泄率、投与期間、使用される他の薬物の種類などの当業界に知らされた要因を考慮して決定することができる。さらに、薬物投与の初期段階では、所望の効果に必要な量より少ない量で投与し、所望の効果が得られるまで徐々に用量を増加させる。
【発明の効果】
【００３０】
本発明に係る化合物又はその薬学的に許容しうる塩又は異性体は、血小板凝集阻害効果を有し、出血などの副作用が少ない血栓性疾患を効率的に予防又は治療することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３１】
以下では、本発明の理解を容易にするために実施例を提示する。ただし、以下の実施例は、本発明の理解を容易にするためのものであり、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【００３２】
実施例
実験準備及び機器
１．分析器期
本実験で得られた生成物の構造を同定するために、以下の機器を使用した。核磁気共鳴スペクトル（１Ｈ−ＮＭＲ）は、３００ＭＨｚ又は４００ＭＨｚを、溶媒は、ＣＤＣｌ３、ＤＭＳＯ−ｄ６を使用した。結合定数（Ｊ）はＨｚで表した。質量（mass）スペクトル（メーカー：ＪＥＯＬ／モデル名：ＪＭＳ−ＡＸ５０５ｗＡ、又はメーカー：ＪＥＯＬ／モデル名：ＪＭＳ−ＨＸ／ＨＸ１１０Ａスペクトロメーター）を製造者のマニュアルに従って、ｍ／ｚ形式で表した。
【００３３】
２．ＴＬＣ及びカラムクロマトグラフィー
Ｍｅｒｃｋ社製のシリカゲル（Ｍｅｒｃｋ  Ｆ２５４）を薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）に使用し、シリカ（Ｍｅｒｃｋ  ＥＭ９３８５、２３０−４００メッシュ）をカラムクロマトグラフィーに使用した。さらに、ＴＬＣ上で分離された物質を確認するために、ＵＶランプ（＝２５４ｎｍ）下でモニターし、又はプレートをアニスアルデヒド（anisaldehyde）及び過マンガン酸カリウム（ＫＭｎＯ４）発色試薬に浸漬し、続いて加熱した。
【００３４】
３．使用試薬
本実験で使用された試薬は、シグマアルドリッチ（Sigma-Aldrich）社からランカスター（Lancaster）、プルルカ（Fluka）製品を購入し、反応に使用された溶媒は、シグマアルドリッチ（Sigma-Aldrich）社、マック（Merck）社、純正化学株式会社から購入した。一級試薬は精製することなく使用した。溶媒として使用されたＴＨＦは、アルゴン気流中でベンゾフェノン存在下、Ｎａ金属上で加熱還流し、青色になるまで加熱して製造した。また、ジクロロメタン（ＣＨ２Ｃｌ２）は、アルゴン気流中にＣａＨ２を添加し、加熱還流して製造した。酢酸エチルとヘキサンをアルゴン気流中で加熱還流し、精製した。
【００３５】
製造例１：１，３−ジアセトキシ安息香酸の製造
精製水（１５０ｍＬ）及びＴＥＡ（３６．１ｍＬ）の混合液にＰＣＡ（１０．０ｇ）を加え、２０℃以下で無水醋酸（１８．４ｍＬ）を滴下した。混合物を室温で一晩撹拌した。そこに塩酸を加えてｐＨ＝３．０に調整し、室温で１時間撹拌した。生成された固体をろ過し、精製水で洗浄し、４０℃で乾燥して、白色固体として表題化合物（９．２ｇ）を得た。
【００３６】
収率：５９．５％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 8.05 (dd, J = 2.0 and 8.4 Hz, 1H), 7.97 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.35(d, J = 8.8 Hz, 1H), 2.35(s, 3H), 2.34 (s, 3H)
【００３７】
製造例２：４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸の製造
精製水（１５０ｍＬ）及びＴＥＡ（１６．５ｍＬ）の混合液にバニリン酸（１０．０ｇ）を加え、２０℃以下で無水醋酸（８．４ｍＬ）を滴下した。混合物を室温で一晩撹拌した。そこに塩酸を加えてｐＨ＝３．０で調整し、室温で１時間撹拌した。生成された固体をろ過し、精製水で洗浄した。４０℃で乾燥して、黄土色固体として表題化合物（１０．７ｇ）を得た。
【００３８】
収率：８５．５％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 7.78 (dd, J = 6.4 and 8.0 Hz, 1H), 7.73 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.16(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.93(s, 3H), 2.37 (s, 3H)
【００３９】
実施例１：（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、混合物を１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌し、精製水（１０ｍＬ）を加えて抽出した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、４，５，６,７−テトラヒドロチエノ［３，２，ｃ］ピリジン塩酸塩（０．３３ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温まで昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨てた。有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加えて４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮してＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を濃縮し、少量のＤＣＭを加え、５分間超音波処理した。生成された固体をろ過し、少量のＤＣＭで洗浄して、白色固体として表題化合物（０．３８ｇ）を得た。
【００４０】
収率：６５．７％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.30 (brs, 2H), 7.35(d, J = 4.0 Hz, 1H), 6.88(brs, 1H), 6.84 (s, 1H), 6.77(d, J = 4.0 Hz, 1H), 4.64(s, 1H), 3.96(s, 1H), 3.87 (s, 1H), 2.89 (s, 1H), 2.81 (s, 1H)
【００４１】
実施例２：（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、混合物を０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌し、精製水（１０ｍＬ）を加えて抽出した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、６−フルオロ−３−（４−ピペリジニル）−１，２−ベンゾイソオキサゾール塩酸塩（０．４８ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）でさらに抽出し、残った水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物に、ＭｅＯＨ（５ｍＬ）精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨ相を濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）及び精製水（１０ｍＬ）を加えて抽出した。有機層を濃縮し、少量のＤＣＭを加えた後、５分間超音波処理した。生成された固体をろ過し、少量のＤＣＭで洗浄して、白色固体として表題化合物（０．４２ｇ）を得た。
【００４２】
収率：５６．１％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.23 (brs, 2H), 8.07(dd, J = 5.6 and 8.8 Hz, 1H), 7.71(dd, J = 2.0 and 9.2 Hz, 1H), 7.30(td, J = 2.0 and 9.2 Hz, 1H), 6.84(d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.76〜6.75(m, 2H), 4.19(brs, 2H), 3.53〜3.46(m, 2H), 3.12(brs, 1H), 2.10〜2.07(m, 2H), 1.83〜1.73(m, 1H)
【００４３】
実施例３：Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−３，４−ジヒドロキシベンズアミド
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（３．０ｇ）をＤＣＭ（６０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（３．９ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌し、精製水（６０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（６０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、３−アミノメチル−４−（４−フルオロベンジル）モルホリン（２．７ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（５．２ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（６０ｍＬ）及び精製水（６０ｍＬ）を加えて、抽出した。水層をＥｔＯＡＣ（６０ｍＬ）でさらに抽出し、残った水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物に、ＭｅＯＨ（３ｍＬ）、精製水（３ｍＬ）及びＴＥＡ（１７．５ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（６０ｍＬ）及び精製水（６０ｍＬ）を加えて、抽出した。有機層を濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製し、真空乾燥して、泡状物として表題化合物（２．９ｇ）を得た。
【００４４】
収率：６３．８％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.45 (brs, 1H), 9.11(brs, 1H), 8.18(t, J = 5.6 Hz, 1H), 7.33(dd, J = 5.6 and 8.4 Hz, 2H), 7.27(d, J = 1.6 Hz, 1H), 7.19〜7.11(m, 3H), 6.75(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.77(d, J = 10.8 Hz, 1H), 3.59〜3.40(m, 4H), 3.29〜3.17(m, 2H), 2.73(d, J = 11.2 Hz, 1H),  2.55(d, J = 11.2 Hz, 1H), 2.04(t, J = 10.4 Hz, 1H), 1.82(d, J = 10.4 Hz, 1H)
【００４５】
実施例４：３，４−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にプロトカテク酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、ホモシステインチオラクトン塩酸塩（０．５５ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨てた。有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．２８ｇ）を得た。
【００４６】
収率：３４．１％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 9.52(brs, 1H), 9.17(brs, 1H), 8.42(d, J=8.0, 1H), 7.29(d, J=2.0, 1H), 7.20(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 6.77(d, J=8.8, 1H), 4.79(sex, J=7.6, 1H), 3.47〜3.29(m, 2H), 2.46〜2.22(m, 2H)
【００４７】
実施例５：Ｎ，Ｎ’−（ノナン−１，９−ジイル）ビス（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、１，９−ジアミノノナン（０．１３ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．６５ｇ）を白色固体として得た。
【００４８】
収率：７１．９％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.40 (brs, 2H), 9.08(brs, 2H), 8.10(t, J = 5.6 Hz, 2H), 7.26(d, J = 2.4 Hz, 2H), 7.17(dd, J = 2.0 and 8.0 Hz, 2H), 6.74(d, J = 8.0 Hz, 2H), 3.09(q, J = 6.8 Hz, 4H), 1.47(t, J = 6.0 Hz, 4H), 1.27(s, 10H)
【００４９】
実施例６：（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌し、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、２−［（４−クロロフェニル）（４−ピペリジニルオキシ）メチル］ピリジン（０．５７ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水５ｍＬ、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、泡状物として表題化合物（０．７２ｇ）を得た。
【００５０】
収率：７８．１％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.25 (brs, 2H), 8.47 (d, J = 4.8 Hz, 1H), 7.81 (td, J = 1.6 and 7.6 Hz, 1H), 7.57(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.44〜7.24(m, 5H), 6.80〜6.67(m, 3H), 5.70(s, 1H),  3.76(brs, 1H), 3.66(brs, 2H), 3.19(brs, 2H), 1.85(brs, 2H), 1.53(brs, 2H)
【００５１】
実施例７：（Ｓ）−（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（３，４−ジヒドロキシフェニル）メタノン
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬに加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬを加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、（ｓ）−２−［（４−クロロフェニル）（４−ピペリジニルオキシ）メチル］ピリジン（０．５７ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、泡状物として表題化合物（０．４７ｇ）を得た。
【００５２】
収率：５１．０％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 8.50 (brs, 2H), 7.72 (t, J = 6.8 Hz, 1H), 7.52 (d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.38〜7.21(m, 5H), 6.84(s, 1H), 6.72(s, 2H), 5.65(s, 1H), 3.91(brs, 1H), 3.69(brs, 2H), 3.40(brs, 1H), 3.31(brs, 1H), 1.73(brs, 4H)
【００５３】
実施例８：（Ｓ）−メチル−２−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−３−（１Ｈ−インドール−３−イル）プロパノエート
ＤＭＦ１０ｍＬにプロトカテク酸（０．５ｇ、３．２４ｍｍｏｌ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ、３．５７ｍｍｏｌ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ、３．５７ｍｍｏｌ）、ＴＥＡ（１．５８ｍＬ、１１．３５ｍｍｏｌ）、Ｄ−トリプトファンメチルエステル塩酸塩（１．０ｇ、３．８９ｍｍｏｌ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、泡状物として表題化合物（０．３７ｇ）を得た。
【００５４】
収率：３３．６％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 10.84 (s, 1H), 9.51(s, 1H), 9.14(s, 1H), 8.42(d, J = 7.2 Hz, 1H), 7.54(d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.33(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.26(d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.21〜7.19(m, 2H), 7.08〜6.97(m, 2H), 6.75(d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.63(td, J = 5.6 and 7.6 Hz, 1H), 3.61(s, 3H), 3.27〜3.21(m, 2H)
【００５５】
実施例９：４−（３，４−ジヒドロキシベンズアミド）−１−メチル−３−プロピル−１Ｈ−ピラゾール−５−カルボキサミド
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌し、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、４−アミノ−１−メチル−３−プロピル−１Ｈ−ピラゾール−５−カルボキサミド塩酸塩（０．４１ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して得た泡状物の残渣をＥｔＯＡＣ／ＤＣＭの混合溶媒中で結晶化して、微白色固体として表題化合物（０．２１ｇ）を得た。
【００５６】
収率：３１．４％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.83(s, 1H), 9.69(brs, 1H), 9.29(brs, 1H), 7.38 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.34(dd, J = 2.0 and 8.0 Hz, 1H), 6.84(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.94(s, 3H), 1.56(sextet, J = 7.2 Hz, 2H), 1.17(t, J = 7.2 Hz, 2H), 0.85(t, J = 7.2 Hz, 3H)
【００５７】
実施例１０：２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル３，４−ジヒドロキシベンゾエート
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸０．５ｇをＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、マルトール（０．２４ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を濃縮し、少量のＤＣＭを加え、５分間超音波処理した。生成された固体をろ過し、少量のＤＣＭで洗浄して、白色固体として表題化合物（０．４０ｇ）を得た。
【００５８】
収率：７２．６％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.79(brs, 2H), 8.19 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 7.47〜7.44(m, 2H), 6.89(d, J = 8.8 Hz, 1H), 6.46(d, J = 6.0 Hz, 1H), 2.26(s, 3H)
【００５９】
実施例１１：（３，４−ジヒドロキシフェニル）（４−フェニルピペラジン−１−イル）メタノン
製造例１で得られた３，４−ジアセトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．６６ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌後精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、１−フェニルピペラジン（０．３１ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．４４ｍＬを滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（２．９ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．２８ｇ）を得た。
【００６０】
収率：４５．２％
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.35(s, 1H), 9.21(s, 1H), 7.24〜7.21(m, 2H), 6.96〜6.75(m, 6H), 3.62(brs, 4H), 3.14(brs, 4H)
【００６１】
実施例１２：（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、４，５，６,７−テトラヒドロチエノ［３，２，ｃ］ピリジン塩酸塩（０．４ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、生成された固体をろ過し、精製水で洗浄して、白色固体として表題化合物（０．５５ｇ）を得た。
【００６２】
収率：７９．９％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.48 (s, 1H), 7.35 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.01 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.93〜6.90(m, 2H),  6.83 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.60(s, 1H), 3.79(s, 3H),  3.74(brs, 2H), 2.88 (t, J = 4.8 Hz, 2H)
【００６３】
実施例１３：２−エチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、エチルマルトール（０．３１ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下して、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．３４ｇ）を得た。
【００６４】
収率：４９．２％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 10.24 (s, 1H), 8.23 (d, J = 5.2 Hz, 1H), 7.63 (d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.53(s, 1H), 6.95 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 6.48 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 3.85(s, 3H), 2.62 (q, J = 6.8 Hz, 2H), 1.15 (t, J = 7.2 Hz, 3H)
【００６５】
実施例１４：２−メチル−４−オキソ−４Ｈ−ピラン−３−イル４−ヒドロキシ−３−メトキシベンゾエート
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、マルトール（０．２７ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、生成された固体をろ過し、精製水で洗浄して、白色固体として表題化合物（０．３５ｇ）を得た。
【００６６】
収率：５３．２％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 10.24 (s, 1H), 8.21 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 7.63 (d, J = 8.4 Hz, 1H), 7.53(s, 1H), 6.95 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 6.48 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 3.85(s, 3H), 2.83(s, 3H)
【００６７】
実施例１５：４−ヒドロキシ−３−メトキシ−Ｎ−（４−メトキシ−２−ニトロフェニル）ベンズアミド
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ３（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌後精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、４−メトキシ−２−ニトロアニリン（０．４０ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、赤色固体として表題化合物（０．５４ｇ）を得た。
【００６８】
収率：７１．３％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 10.32(s, 1H), 9.81(brs, 1H)7.63(d, J=8.8, 1H), 7.52〜7.46(m, 3H), 7.35(dd, J=2.8 and 8.8, 1H), 3.86(s, 1H), 3.85(s, 3H)
【００６９】
実施例１６：Ｎ−（３−エチニルフェニル）−４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ５（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、３−アミノフェニルアセチレン（０．２５ｇ）を加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡＣ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮した。生成された固体に少量のＩＰＡに加え、撹拌して、白色固体として表題化合物（０．３０ｇ）を得た。
【００７０】
収率：４７．２％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 10.07 (s, 1H), 9.75(brs, 1H), 7.92 (d, J = 1.2 Hz, 1H), 7.80 (dd, J = 1.2 and 8.4 Hz, 1H), 7.54〜7.50(m, 2H), 7.36 (t, J = 8.0 Hz, 1H), 7.10 (dd, J = 1.2 and 8.0 Hz, 1H), 6.90 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.18(s, 1H), 3.87(s, 3H)
【００７１】
実施例１７：４−（４−（４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアミド）フェノキシ）−Ｎ−メチルピコリンアミド
製造例２で得られた４−アセトキシ−３−メトキシ安息香酸（０．５ｇ）をＤＣＭ（１０ｍＬ）に加え、１０℃で撹拌した。１０℃以下でＰＣｌ３（０．７４ｇ）を加え、０〜１０℃に保持しながら２時間撹拌、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層を捨て、有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。ろ液を濃縮し、ＤＣＭ（１０ｍＬ）を加え、０℃に冷却し、４−（４−アミノフェノキシ）−Ｎ−メチルピコリンアミド（０．５５ｇを加えた。０℃に保持しながらＴＥＡ（０．５ｍＬ）を滴下し、徐々に室温に昇温し、２時間撹拌した。ＤＣＭを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）と精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で抽出し、水層を捨て、有機層を濃縮した。この濃縮物にＭｅＯＨ（５ｍＬ）、精製水（５ｍＬ）、ＴＥＡ（３．３ｍＬ）を加え、４時間還流した。ＭｅＯＨを濃縮し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。有機層を減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、淡黄色固体として表題化合物（０．４８ｇ）を得た。
【００７２】
収率：５１．３％
1H NMR(400MHz, CDCl3) 8.60(s, 1H), 8.39(d, J=5.6, 1H), 8.10(q, J=5.2, 1H), 7.71〜7.65(m, 3H), 7.52(d, J=2.0, 1H), 7.43(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 7.04〜6.90(m, 4H), 6.73(brs, 1H), 3.78(s, 3H), 3.01(d, J=5.2, 3H)
【００７３】
実施例１８：４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（４−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）メタノン
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にバニリン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．５１ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４４ｇ）、ＴＥＡ（１．４４ｍＬ）、２−［（４−クロロフェニル）（４−ピペリジニルオキシ）メチル］ピリジン（０．９９ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、淡黄色固体として表題化合物（０．４０ｇ）を得られた。
【００７４】
収率：３１．６％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.41 (brs, 1H), 8.47 (d, J = 4.0 Hz, 1H), 7.81 (t, J = 7.0, 1H), 7.57(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.44〜6.94(m, 6H), 6.84〜6.67(m, 3H), 5.71(s, 1H),  3.87(s, 3H), 3.74〜3.69(m, 2H), 3.37(brs, 2H), 1.85(brs, 2H), 1.72(brs, 2H)
【００７５】
実施例１９：４−ヒドロキシ−Ｎ−（（３−ヒドロキシ−５−（ヒドロキシメチル）−２−メチルピリジン−４−イル）メチル）−３−メトキシベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にバニリン酸（０．５ｇ、ＥＤＣ（０．５１ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４４ｇ）、ＴＥＡ（１．４４ｍＬ）、ピリドキサミン２ＨＣｌ（０．７２ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、淡黄色固体として表題化合物（０．６２ｇ）を得た。
【００７６】
収率：６５．６％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 10.50(s, 1H), 9.76(s, 1H), 9.18(t, J=5.6, 1H), 7.29(s, 1H), 7.47(d, J=2.0, 1H), 7.42(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 6.83(d, J=8.4, 1H), 5.25(t, J=5.2, 1H), 4.67(d, J=4.8, 2H), 4.48(d, J=6.0, 2H), 3.82(s, 3H), 2.35(s, 3H)
【００７７】
実施例２０：（６，７−ジヒドロチエノ［３，２−ｃ］ピリジン−５（４Ｈ）−イル）（２，５−ジヒドロキシ−フェニル）メタノン
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．９３ｇ）、ＨＯＢｔ（０．６６ｇ）、ＴＥＡ（１．３５ｍＬ）、４，５，６，７−テトラヒドロチエノ［３，２，ｃ］ピリジン塩酸塩（０．６２ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。反応物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、撹拌した。生成された固体をろ過し、ＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）中で１時間還流し、次いでろ過した。少量のＥｔＯＡｃで洗浄して、アンズ色固体として表題化合物（０．３８ｇ）を得た。
【００７８】
収率：４２．６％
1H NMR (400MHz, DMSO-d6) δ 9.08 (s, 1H), 8.93 (s, 1H), 7.34 (brs, 1H), 7.35 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.01 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.93〜6.90(m, 2H),  6.83 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.60(s, 1H), 3.79(s, 3H),  3.74(brs, 2H), 2.86 (t, J = 4.8 Hz, 1H)
【００７９】
実施例２１：（４−（（４−クロロフェニル）（ピリジン−２−イル）メトキシ）ピペリジン−１−イル）（２，５−ジヒドロキシフェニル）メタノン
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、２−［（４−クロロフェニル）（４−ピペリジニルオキシ）メチル］ピリジン（１．０８ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、泡状物として表題化合物（０．７８ｇ）を得た。
【００８０】
収率：５４．９％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 9.05(s, 1H), 8.89(s, 1H), 8.47(dd, J=0.8 and 4.0, 1H), 7.81(td, J=1.6 and 8.0, 1H), 7.57(d, J=7.6, 1H), 7.43〜7.25(m, 5H), 6.67〜6.60(m, 2H), 6.46(d, J=2.8, 1H), 5.69(s, 1H), 3.93(brs, 1H), 3.64(p, J=4.4, 1H), 3.14(brs, 2H), 1.85(brs, 1H), 1.55〜1.52(m, 2H)
【００８１】
実施例２２：Ｎ−（（４−（４−フルオロベンジル）モルホリン−２−イル）メチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、３−アミノメチルl−４−（４−フルオロベンジル）モルホリン（０．７３ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、泡状物として表題化合物（０．８０ｇ）を得た。
【００８２】
収率：６８．５％
1H NMR(400MHz, CDCl3) 7.31〜7.27(m, 2H), 7.05〜7.00(m, 4H), 6.89〜6.88(m, 2H), 3.96〜3.67(m, 4H), 3.49〜3.33(m, 3H), 2.79(d, J=11.6, 1H), 2.69(d, J=11.6, 1H), 2.24〜1.91(m, 2H)
【００８３】
実施例２３：（２，５−ジヒドロキシフェニル）（４−（５−フルオロベンゾ［ｄ］イソオキサゾール−３−イル）ピペリジン−１−イル）メタノン
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、６−フルオロ−３−（４−ピペリジニル）−１，２−ベンゾイソオキサゾール塩酸塩（０．８３ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．６４ｇ）を得た。
【００８４】
収率：５５．４％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 9.07(s, 1H), 8.92(s, 1H), 8.02(dd, J=5.6 and 8.8, 1H), 7.70(dd, J=1.6 and 8.8, 1H), 6.70〜6.54(m, 3H), 4.57(brs, 1H), 3.61〜3.45(m, 3H), 3.09(brs, 2H), 2.06(brs, 2H), 1.80(brs, 2H)
【００８５】
実施例２４：Ｎ−（３，４−ジメトキシフェネチル）−２，５−ジヒドロキシベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、３，４−ジメトキシフェネチルアミン（０．６ｍＬ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．７３ｇ）を得た。
【００８６】
収率：７１．０％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 11.63(brs, 1H), 9.00(brs, 1H), 8.72(t, J=5.2, 1H), 7.22(d, J=2.8, 1H), 6.88〜6.71(m, 5H), 3.72(s, 3H), 3.71(s, 3H), 3.50(q, J=6.8, 2H), 2.78(t, J=7.6, 2H)
【００８７】
実施例２５：２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−（チオフェン−２−イル）エチル）ベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、チオフェン−２−エチルアミン（０．４ｍＬ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．５６ｇ）を得た。
【００８８】
収率：６５．６％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 11.62(brs, 1H), 9.03(brs, 1H), 8.83(t, J=5.2, 1H), 7.34(dd, J=1.2 and 4.8, 1H), 7.23(d, J=3.2, 1H), 6.97〜6.85(m, 3H), 6.73(d, J=8.8, 1H), 3.53(q, J=6.8, 2H), 3.08(t, J=6.8, 2H)
【００８９】
実施例２６：２，５−ジヒドロキシ−Ｎ−（２−オキソテトラヒドロチオフェン−３−イル）ベンズアミド
ＤＭＦ（１０ｍＬ）にゲンチジン酸（０．５ｇ）、ＥＤＣ（０．６８ｇ）、ＨＯＢｔ（０．４８ｇ）、ＴＥＡ（１．４ｍＬ）、ホモシステインチオラクトン塩酸塩（０．５５ｇ）を加え、６０〜８０℃で４時間撹拌した。この反応混合物にＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）、精製水（１０ｍＬ）を加え、層分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）で１回抽出し、水層を捨て、有機層を精製水（１０ｍＬ）で３回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ろ過した。減圧下蒸留して濃縮し、フラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、白色固体として表題化合物（０．２１ｇ）を得た。
【００９０】
収率：２５．６％
1H NMR(400MHz, DMSO-d6) 11.33(brs, 1H), 9.06(brs, 1H), 8.92(d, J=8.0, 1H), 7.24(d, J=3.2, 1H), 6.89(dd, J=2.8 and 8.8, 1H), 6.77(d, J=8.8, 1H), 4.84(sex, J=5.6, 1H), 3.50〜3.25(m, 2H), 2.56〜2.26(m, 2H)
【００９１】
【表１】
2018534344.tif 000003
【００９２】
【表２】
2018534344.tif 000004
【００９３】
【表３】
2018534344.tif 000005
【００９４】
【表４】
2018534344.tif 000006
【００９５】
【表５】
2018534344.tif 000007
【００９６】
実験例
実験例１：せん断応力による血小板凝集阻害効果の測定
１−１．ヒト多血小板血漿（ＰＲＰ）を用いた血小板凝集阻害効果の測定
血液は、２週間以上薬物を服用しなかった健常な男性志願者の静脈から採取し、これと関連した実験過程は、全部ソウル大学校生命倫理審議委員会の承認下で行われた（IRB No. 1305/001-016）。実験全過程において、ガラス器やガラスピペットの使用は避け、室温で行った。多血小板血漿（ＰＲＰ）を分離するために、抗凝固剤として３．２％クエン酸ナトリウムを用いた血液を採取した。全血を１５０ｇで１５分間遠心分離した後上清（ＰＲＰ）を得、残渣を２，０００ｇで２０分間遠心分離し、多血小板血漿（ＰＰＰ）を得た。このように得られたＰＲＰの血小板数は、血球計を用いた光学顕微鏡で計測した。ＰＲＰを１ｍＬ当たり３×１０８個の血小板が含まれるようにＰＰＰで希釈し、実験に使用した。ＰＲＰは、コーンプレート粘度計（Thermo Fischer Scientific, USA）に載置し、１０，８００ｓ−１のせん断速度で、３７℃で３分間せん断応力をかけた。候補物質評価のために、血小板凝集誘導以前に、２５μＭの候補物質（１．２μＬ）をＰＲＰ（５９８．８μＬ）で処理し、サーモミキサーを用いて３７℃で３分間培養した。せん断応力をかけた後、２０μＬのＰＲＰを、０．５％クルルタアルデヒドを含む浮遊緩衝液（１３４ｍＭ  ＮａＣｌ、２．９ｍＭ  ＫＣｌ、１．０ｍＭ  ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ、１０．０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ、５．０ｍＭ  デキストロース、１２．０ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、０．３４ｍＭ  Ｎａ２ＨＰＯ４、０．３％  ＢＳＡ、ｐＨ７．４）２８０μＬに入れて固定させた。次いで、懸濁液中の単独存在する血小板数を、血球計を用いて計数した。候補物質の阻害程度を下記数式（１）により算出した。阻害程度は、下記方法で測定した。せん断応力をかけないものを対照群とし、せん断応力のみをかけたものを陽性対照群とした。
【００９７】
【数１】
2018534344.tif 000008
Ａ：候補物質処理後、せん断応力をかけたサンプルの単独血小板数
Ｂ：せん断応力をかけなかった対照群の単独血小板数
Ｃ：せん断応力のみをかけた陽性対照群の単独血小板数
【００９８】
【表６】
2018534344.tif 000009
【００９９】
前記表２に示されるように、実施例１４及び実施例２０（各２５μＭ）では、断応力による血小板凝集阻害効果が３０％以上であることが確認された。また、実施例１、実施例１２、実施例１３、実施例１５、実施例２３（各２５μＭ）において、前記効果は２０〜３０％であることが確認された。
【０１００】
１−２．ヒト洗浄血小板（ＷＰ）を用いたた血小板凝集阻害効果の測定
ヒト洗浄血小板（ＷＰ）を分離するために、抗凝固剤として酸性クエン酸ブドウ糖（ＡＣＤ）を用いて健常な男性の静脈から血液を採取した。採血時、１μＭのプロスタグランジンＥ１（ＰＧＥ１）を処理して血小板の活性化を阻害した。採血した血液を１５０ｇで１５分間遠心分離し、上清よりＰＲＰを得、これを５００ｇで１０分間遠心分離して血小板を得た。これを洗浄溶液（washing buffer）（１３４ｍＭ  ＮａＣｌ、２．９ｍＭ  ＫＣｌ、１．０ｍＭ  ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ、１０．０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ、５．０ｍＭ  デキストロース、１２．０ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、０．３４ｍＭ  Ｎａ２ＨＰＯ４、１０％  ＡＣＤ、０．３％ウシ血清アルブミン、１μＭ  ＰＧＥ１、ｐＨ７．４）で懸濁して洗浄した後、４００ｇで１０分間再遠心分離した。こうして得られた血小板を浮遊緩衝液で懸濁した。ＷＰ中の血小板数は血球計（hemacytometer）を利用して計数したし、浮遊緩衝液で希釈して１ｍＬ当たり３×１０８個の血小板が含まれるようにした後、ＣａＣl２を最終濃度が２ｍＭになるように加えて実験に使用した。ｖＷＦをＷＰに加えて、１０μｇ／ｍＬの最終濃度を得た。ＷＰをコーンプレート粘度計に載置し、１０,８００ｓ−１のせん断速度で、３７℃で３分間せん断応力をかけた。候補物質の効力評価のために、血小板凝集誘導以前に候補物質１０、２５、５０μＭをＷＰに処理し、サーモミキサーを用いて、３７℃で３分間培養した。せん断応力をかけた後、２０μＬのＷＰを０．５％クルルタアルデヒドを含む浮遊緩衝液（２８０μＬ）に入れて固定させた。その後、この懸濁液中に単独存在する血小板数を血球計で計数した。前記数式（１）の方式で候補物質の阻害程度を計算した。阻害程度は、せん断応力をかけないものを対照群とし、せん断応力のみをかけたものを陽性対照群とした。
【０１０１】
【表７】
2018534344.tif 000010
【０１０２】
前記表３に示されるように、せん断応力による血小板凝集阻害効果は、ＷＰで実施例１、実施例１２、実施例１３、実施例１４、実施例１５及び実施例２０によって容量相関的に阻害されることが確認された。
【０１０３】
実験例２：動脈血栓生成モデルにおける薬効評価
一晩絶食させたＳＤラット（雄性、２５０〜３００ｇ）に、ビヒクル（ＤＭＳＯ：ツイーン８０：ＤＷ＝１：２：１７）又は候補物質（２５ｍｇ／ｋｇ）を経口投与した後、３０分後にウレタン（１．２５ｇ／ｋｇ）を腹腔投与して麻酔させた。麻酔した動物を手術台に載せ、全手術中に加熱パッドを用いて体温を保持した。実験動物の首を切開して右頸動脈を慎重に露出させ、血管に付着した脂肪組織を慎重に除去した。露出した頸動脈にドップラーフロープローブ（Doppler flow probe）（直径０．５ｍｍ、ＭＡ０．５ＰＳＢ、Transonic System Inc., USA）を露出した頸動脈に固定し、ドップラ流量計（ＴＳ４２０、Transonic System Inc., USA）に結びつけた。経口投与から６０分後に、プローブが固定された下にある血管に、５０％ＦｅＣｌ３溶液に浸したＷｈａｔｍａｎ  Ｎｏ.１ろ紙（２ｍｍ×１ｍｍ）を付着させた。ろ紙を１０分後に除去し、除去した時点から６０分間頸動脈内の血栓生成による血流の変化を測定した。閉塞時間は、初めて血流が０になり、１分以上持続する時点とした。
【０１０４】
【表８】
2018534344.tif 000011
【０１０５】
前記表４に示されるように、塩化鉄による血栓生成モデルにおける対照群対比２．５倍以上の効果を示した候補物質は、実施例１、実施例２０であることが確認された。
【０１０６】
実験例３：頸動脈せん断応力モデルにおける候補物質の血栓阻害効果の測定
ＳＤラット（雄性、２５０〜３００ｇ）に、ビヒクル（０．５％メチルセルロース）、クロピドグレル（８ｍｇ／ｋｇ）、アスピリン（５０ｍｇ／ｋｇ）又は候補物質を経口投与した。投与２時間後に、ラットをケタミン／ロムプンカクテル０．１ｍＬ／１００ｇで麻酔した。正常対照群を除いて、実験動物の右頚部皮膚を切開して総頚動脈を露出させた。露出した右頸動脈に長さ１ｍｍ、内径０．５８ｍｍの外科用チューブを挿入し、一本の糸で縛った。露出部位および手術部位を癒着防止剤で処理し、次いで、縫合して動物を回復させた。手術後、１日２回３日間、ビヒクル、クロピドグレル、アスピリン又は候補物質をラットに経口投与した。最終投与２時間後の４日目に、ラットにウレタン（１００ｍｇ／３００μＬ／１００ｇ）を腹腔投与して麻酔を誘導し、手術部位を開けて外科用チューブの上下５ｍｍずつ合計１ｃｍを分離した。分離された血管に、０．９％生理食塩水を０．３ｍＬ／ｍｉｎで０．２ｍＬ灌流して残りの血液を除去した後、１ｍＬのタンパク質溶解緩衝液（ＮａＯＨ  ２ｇ、Ｎａ２ＣＯ３  ０．１ｇ  ｉｎ  ５００ｍＬ  Ｄ．Ｗ）を維持した。血管内血栓を収集した後、タンパク質溶解緩衝液と共に沸騰水で湯煎した。加熱された血栓１０μＬに反応液（ビシンコニン酸溶液１０ｍＬ＋２００μＬ４％硫酸銅水溶液）２００μＬを混合した後、混合物を３０分間３７℃で反応させ、ＥＬＩＳＡリーダー（５６２ｎｍ）で定量した。
【０１０７】
【表９】
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【０１０８】
前記表５に示されるように、実施例１、実施例１２、実施例１３、実施例１４、実施例１５、実施例２０及び実施例２３の経口投動物では、対照群に比べて、せん断応力による血栓生成が有意的に顕著に阻害されることが確認された。これは、抗血小板剤として最も一般的に使用されるクロピドグレル投与群と比較したとき、候補物質の血栓生成阻害程度がクロピドグレルのそれに匹敵するほど優れることを示唆した。
【数２】
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Ａ：正常対照群の血栓量
Ｂ：陰性対照群の血栓量
Ｃ：候補物質処理時の血栓量
【０１０９】
実験例４：候補物質の化学的アゴニストによる血小板凝集阻害効果の測定
候物理的刺激によるせん断応力による血小板凝集に対する阻害選択性を有するかどうかを確認するために、化学的アゴニストであるトロンビン、コラーゲン、ＡＤＰで血小板を活性化させることにより、候補物質の阻害効果を調べた。
ヒトＰＲＰ（５９８．８μＬ）に候補物質を濃度当たり（２５、１００、２５０μＭ）１．２μＬを処理し、ホーモミキサーを用いて３７℃で３分間反応した。次に、ＰＲＰ（４９５μＬ）を血小板凝集計キュベットに入れ、１分間予熱（preincubation）した後、血小板凝集誘発試料であるトロンビン（０．６〜０．８Ｕ／ｍＬ）、コラーゲン（２〜５μｇ／ｍＬ）、ＡＤＰ（adenosine diphosphate、１５〜２０μＭ）最大凝集を引き起こす最小濃度で加えた。血小板の凝集程度は、ルミ‐アグリゴメーター（Chrono-Log Co., USA）を用いて濁度変化によって測定した。ＰＲＰの濁度を０％とし、ＰＰＰの濁度を１００％とした。測定時、反応混合物は、シリコーンでコーティングされた磁気撹拌棒を用いて１，０００ｒｐｍで持続的に撹拌された。反応は、トロンビンまたはＡＤＰでは５分間、コラーゲンでは６分間を観察された。
【０１１０】
【表１０】
2018534344.tif 000014
【０１１１】
前記表６に示されるように、トロンビンのみを処理した群と比較したとき、候補物質は２５０μＭまでの血小板凝集阻害効果を示さないことが確認された。対照的に、陽性対照群のＤＴＩを処理する場合、血小板の凝集が阻害されることが確認された。
【０１１２】
【表１１】
2018534344.tif 000015
【０１１３】
前記表７に示されるように、コラーゲンだけを処理した群と比較したとき、候補物質は２５０μＭまでの血小板凝集阻害効果は示さないことが確認された。
【０１１４】
【表１２】
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【０１１５】
前記表８に示されるように、ａｄｐを処理した群と比較したとき、候補物質は２５０μＭまでの血小板凝集阻害効果は示さないことが確認された。対照的に、陽性対照群クロピドグレルを処理する場合、血小板の凝集が阻害されることが確認された。
【０１１６】
実験例５．候補物質の細胞毒性評価
５−１．ＥＡ．ｈｙ９２６細胞株を用いた候補物質の細胞毒性評価
ヒトの血管内皮細胞（ＥＡ．ｈｙ９２６）における候補物質の細胞毒性有無を確認するために実験を行った。ＥＡ．ｈｙ９２６は、ＤＭＥＭ（Dulbecco's Minimum Essential Medium）と１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）培養液で５％ＣＯ２／３７℃の条件で継代培養した。細胞を９６ウェルプレートで１×１０４細胞／ウェルで４８時間培養し、ＤＭＥＭで２回洗浄した後、２４時間培養させた。候補物質は最終濃度２５、１００μＭで製造し、ウェル当たり２００μＬずつ処理し、２４時間培養した。ＭＴＴアッセイを用いて、紫色での発色後の５７０ｎｍでの吸光度を測定した。
【０１１７】
【表１３】
2018534344.tif 000017
【０１１８】
前記表９に示されるように、候補物質はＥａ．ｈｙ９２６細胞株において、１００μＭまでの毒性を示さないことが確認された。
【０１１９】
５−２．ヒト血小板を用いた候補物質の細胞毒性評価
血小板から乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）の流出を分光光度計法により測定した。ＰＲＰ（５９８．８μＬ）に試験物質（１．２μＬ）を加え、サーモミキサーを用いて３７℃で３分間反応させた。反応、後試料（１００μＬ）を１２，０００ｇで２分間遠心分離し、上清（８０μＬ）を採取し、評価するまで冷蔵保管した。評価は、２４時間以内に行った。対照群（陽性対照）を５０μＭジギトニンで１時間処理した。予め加温したトリス−ＥＤＴＡ  ＮＡＤＨ溶液（５６ｍＭ  トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン、５．６ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．１７ｍＭ  β−ＮＡＤＨ  ｐＨ７．４）１ｍＬに試料（２５μＬ）を添加し、３７℃で５分の間反応させた。次に、予め３７℃に加温した１００μＬの１４ｍＭピルビン酸塩溶液を加え、ＵＶ−分光光度計（ＵＶ−２２０１、Shidmadzu,  Japan）を用いて、３３９ｎｍの波長で１分間吸光度を直ちに測定した。吸光度減少速度は、ＮＡＤＨの酸化速度を意味し、血小板から遊離したＬＤＨの活性度を示している。ＬＤＨの総活性度を、０．３％トリトンＸ−１００で血小板の溶解を誘導することによって測定した。ＬＤＨ（対照群）の基準水準は血漿中で測定した。各試料の活性度は、ＬＤＨの総活性度の百分率として測定した。
【０１２０】
【表１４】
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【０１２１】
前記表１０に示されるように、候補物質は血小板中で２５０μＭまでの毒性を示さないことが確認された。
【０１２２】
５−３．ヒト肝細胞を用いた候補物質の細胞毒性評価
ヒト肝細胞（ＨｅｐＧ２）における細胞毒性評価のための実験を行った。ヒト肝癌細胞株であるＨｅｐＧ２細胞を、１０％ＦＢＳ（ウシ胎仔血清）及び１％ペニシリン／ストレプトマイシンを添加したＤＭＥＭ（Dulbecco's minimum essential medium）中で、３７℃、ＣＯ２  ５％条件で培養した。４８ウェルフロイトに４×１０４細胞／ウェルで２４時間培養後、実験に使用した。ＨｅｐＧ２細胞に候補物質（２５０μＭ）で１８時間処理した後、培地を除去し、ＷＳＴ−１を加え、３時間遮光して反応させた。３時間後、上清を採取し、吸光度を４５０ｎｍで測定した。細胞生存率は、候補物質を処理していないＨｅｐＧ２細胞にＷＳＴ−１を加えた後に測定した吸光度を対比して計算した。対照物質としてはアセトアミノフェン（４０ｍＭ）を使用した。
【０１２３】
【表１５】
2018534344.tif 000019
【０１２４】
前記表１１に示されるように、候補物質は，ＨｅｐＧ２細胞株において２５０μＭまでの肝毒性を示さないことが確認された。
【０１２５】
実験例６：血漿凝固時間の測定
血漿を分離するために、３．２％クエン酸ナトリウを抗凝固剤として採血した。全血を２０００ｇで２０分間遠心分離して血漿を得た。血漿を試験物質で３分間処理した後、血漿凝固時間を測定した。血漿凝固時間のために、活性化部分トロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）、プロトロンビン時間（ＰＴ）をＢＢＬ（登録商標）蛍光計（Becton Dickinson,Cockeysville, MD）を用いて測定した。ａＰＴＴ測定のために、血漿をフィブロメーターカップ中のａＰＴＴ試薬で処理し、３分間３７℃で反応させた。反応後、ＣａＣｌ２を加え、直ちに血液凝固時間を測定した。ＰＴの測定のために、加温された血漿にＰＴ試薬を加え、直ちに血液凝固時間を測定した。対照群として血漿凝固時間を延長すると知られているＤＴＩを使用した。
【０１２６】
【表１６】
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【０１２７】
前記表１２に示されるように、候補物質は対照群と比較してａＰＴＴポイントを有意片はさせないことが確認された。候補物質がａＰＴＴに影響しなかったことを示す。
【０１２８】
【表１７】
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【０１２９】
前記表１３に示されるように、候補物質は対照群と比較してＰＴポイントを有意に変化させないことが確認され、候補物質がＰＴに影響しなかったことを示す。
【０１３０】
実験例７：実験動物における出血副作用（出血時間）の評価
雄性ＳＤラット（２５０〜３００ｇ）を一晩絶食させた後、各濃度の候補物質を経口投与した。１時間後、ラットをウレタン（１．２５ｇ／ｋｇ）の腹腔注射により麻酔した。ラットの尾の先端の３ｍｍ部分を切断し、毎３０秒ごとに慎重に拭き取った。出血時間は、採血がなくなるまで数時間で測定し、出血が３０分以上持続した場合、出血時間は３０分と記録された。
【０１３１】
【表１８】
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【０１３２】
前記表１４に示されるように、候補物質の副作用と予想される出血は、対照物質としてのクロピドグレルとアスピリンの出血よりも低いことが判明した。実施例の化合物の全てが出血の副作用を示さないことが確認された。
実験例８：反復投与による出血副作用の評価
ＩＣＲマウス（雄性、３５〜４０ｇ）に候補物質（５０ｍｇ／ｋｇ）、クロピドグレル（１５ｍｇ／ｋｇ）またはアスピリン（１００ｍｇ／ｋｇ）を１日１回７日間経口投与した。最後の投与の１時間後に、マウスを呼吸麻酔し、マウスの尾の先端から４ｍｍ部分を切断した。次いで、マウスの尾の先端を、予め準備した３７℃の食塩水を入れた透明な１５ｍＬチューブに浸した。血液がそれ以上拡散せずに出血が止まった時間を測定した。
【０１３３】
【表１９】
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【０１３４】
前記表１５に示されるように、クロピドグレルの場合、臨床用量で出血を止める時間は３５分を超えており、出血時間は対照群と比較して約２２倍出血時間が遅れた。アスピリンの場合、出血を止める時間は１２分を超えており、出血時間は約７．６倍遅れていた。しかし、実施例１３及び実施例１４の化合物を、１日１回、７日間反復投与した場合、出血を止まる時間は対照群とほぼ同じであり、出血時間は１分３０秒であった。したがって、候補物質については出血副作用が殆ど見られず、既存の抗血小板剤の出血副作用の問題を克服した新規抗血小板剤候補であることが確認された。
【０１３５】
実験例９：２週反復投与毒性試験
ＩＣＲマウス（雌性、雄性、１８〜２６ｇ）に対して、低用量、中用量、高用量（１００、３００、１０００ｍｇ／ｋｇ）のビヒクル（０．５％メチルセルロース）または候補物質を１日１回、２週間経口投与した後、死亡率、体重変化、臨床症状、飲食水摂取量、肉眼的検診所見、異常臓器の組織病理学的評価及び器官重量を観察し、記録することにより、候補物質のＮＯＡＥＬ値を算出した。
【０１３６】
【表２０】
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【０１３７】
前記表１６に示されるように、実施例１３または実施例１４の化合物を１００、３００及び１０００ｍｇ／ｋｇの用量で１日１回２週間経口投与したところ、死亡例は認められず、体重変化、臨床症状、飲食水摂取量、肉眼的検診所見、異常臓器の組織病理学的評価及び器官重量などを観察した結果、異常所見は認められなかった。したがって、候補物質のＮＯＡＥＬ値は１０００ｍｇ／ｋｇ以上であることが確認された。
【０１３８】
実験例１０：統計分析
スチューデントのｔ検定（Student’s t-test）及び一元配置分散分析検定（one-way ANOVA test）を用いて、ｐが０．０５以下で有意であると評価された。
【国際調査報告】
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