(57)【要約】  本発明は、発酵ブロスからバニリンを形成されたままの状態で連続的に製造及び除去することを可能にする、生物変換による基質からのバニリン製造の新規な方法に関する。特に、本発明の方法は、有利には、発酵槽中でのバニリンの滞留時間を短縮することと、発酵ブロス中のバニリン濃度を、微生物に関するその毒性レベル未満に維持することとを可能にする。【選択図】図２
2018521683.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
基質からの生物変換によってバニリンを製造する方法であって、少なくとも、
−  基質の生物変換によってバニリンを形成することが可能な少なくとも１種の微生物を発酵槽中で培養すること、
−  前記微生物によって変換される少なくとも１種の基質を前記発酵槽に供給すること、及び
−  前記発酵槽の発酵ブロスからそのように製造されたバニリンを回収すること
からなる工程を含み、
−  前記基質が少なくとも部分的に発酵槽の発酵ブロスに連続的に添加され、及び
−  前記基質の連続添加中、発酵ブロスの流れが分離装置によって発酵槽から連続的に抽出され、それにより、（ｉ）前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）と、（ｉｉ）前記微生物を含む発酵ブロス組成物（ｂ）とが与えられ、
前記バニリンが組成物（ａ）の全て又は一部から回収され、及び組成物（ｂ）が全て又は少なくとも部分的に発酵槽でリサイクルされる、方法。
【請求項２】
基質の最初の投入量が発酵槽に添加され、及び引き続き又は同時に、一部の基質が発酵槽中の発酵ブロスに連続的に添加される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
発酵槽の滞留時間が１〜２４時間、好ましくは３〜１０時間の範囲である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
基質の供給の流量Ｑｆｅｅｄ及び組成物（ａ）の流れの流量Ｑ（ａ）が、前記発酵槽中の発酵ブロスの一定の体積を維持するように調整される、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記基質がフェルラ酸である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
基質が、７〜９の範囲のｐＨを有する溶液の形態で連続的に供給される、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
前記溶液が前記発酵槽の発酵ブロスのための栄養成分も含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
発酵ブロス中において基質の濃度が５〜６０ｇ／Ｌの範囲である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
微生物が、バシラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、及びセラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）からなる群において選択され、好ましくはストレプトマイセス・セトニィ（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｅｔｏｎｉｉ）である、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
分離装置がバニリンの選択的な同時抽出も可能にする、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
前記分離装置が、膜溶媒抽出（ＭＢＳＥ）に基づく濾過膜装置である、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
分離装置が、未変換の基質と生物変換生成物とを含む組成物（ａ）を形成する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１３】
組成物（ａ）からのバニリンの選択的な回収を可能にする後続の且つ補完的な分離技術を含む、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
補完的な分離技術が、吸着カラムの樹脂へのバニリンの選択的な吸着に基づく、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
補完的な分離技術が液−液抽出に基づく、請求項１３に記載の方法。
【請求項１６】
補完的な分離技術が、バニリンを含まず且つ未変換の基質を含む組成物の回収を可能にし、前記バニリンを含まず且つ未変換の基質を含む組成物が少なくとも部分的に発酵槽中でリサイクルされる、請求項１３〜１５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１７】
前記回収されたバニリンの精製工程又は精製工程の組み合わせを更に含む、請求項１〜１６のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生物変換反応による基質からのバニリン製造の方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
化学名が４−ヒドロキシ−３−メトキシベンズアルデヒドであるバニリンは、食品、飲料、香料、医薬品、及びポリマー中で使用されている最も重要な芳香族フレーバー化合物のうちの１つである。バニリンは、歴史的には、バニラ・パニフォリア（Ｖａｎｉｌｌａ  ｐｌａｎｉｆｏｌｉａ）、バニラ・タヒテンシス（Ｖａｎｉｌｌａ  ｔａｈｉｔｉｅｎｓｉｓ）、及びバニラ・ポンポナ（Ｖａｎｉｌｌａ  ｐｏｍｐｏｎａ）の鞘から抽出されていた。需要が益々増加している今日では、世界中のバニリン産出量の５％未満が天然のバニラの鞘由来である。現在、バニリンの製造のために化学合成が最も重要な方法である。
【０００３】
しかし、化学合成は香料及び化粧品の製造に適しているものの、農産品産業では法律上の問題が生じ得る。また、合成風味料は、更に天然由来の風味料よりも消費者にあまり好まれない傾向がある。
【０００４】
そのため、微生物を利用するバイオテクノロジープロセスによって製造されるバニリンを得る試みがなされている。
【０００５】
これらのプロセスは、次の基質：リグニン、フェノール性スチルベン、イソオイゲノール、オイゲノール、フェルラ酸、糖類、バニリン酸、フェノール性スチルベン、廃棄物残渣、及び芳香族アミノ酸を、好都合な微生物（例えば、バシラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、及びセラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）等）の触媒作用下で変換することに基づく。Ｋａｕｒ及びＣｈａｋｒａｂｏｒｔｙの最近の総説（Ｋａｕｒ  Ｂ，Ｃｈａｋｒａｂｏｒｔｙ  Ｄ．“Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｃａｌ  ａｎｄ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ  ｆｏｒ  ｖａｎｉｌｌｉｎ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ：ａ  ｒｅｖｉｅｗ．”Ａｐｐｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０１３  Ｆｅｂ；１６９（４）：１３５３−７２）には、バニロイドの生物変換のために使用される複数の生合成経路及び適切な細胞が列挙されている。特許出願である欧州特許第１７３４１２８号明細書にも発酵及び生体内変換によるバニリンの製造方法が開示されている。
【０００６】
しかし、ほとんどの生物変換及び発酵の生産性は、多くの場合、微生物に対する生成物の毒性によって制限される。特に、バニリンを製造するためにバイオテクノロジーの経路を使用するほとんどの既知のプロセスは、微生物に対するバニリンの毒性及び分解の問題を有している。更に、バニリンの収率はバニリンアルコール及びバニリン酸などの分解生成物へのバニリンの更なる変換による影響を受ける。
【０００７】
そのため、産業界における現在の課題は、収率及び選択率を改善するためにこれらの阻害要因を克服することである。
【０００８】
この目的のため、抽出プロセスを生物変換工程と連結させることが既に提案されている。
【０００９】
そのため、バイオバニリンのための従来の連結プロセスのスキームは、一般的に、次の部分を含む：
−  通常、発酵槽である生体内変換部分であって、微生物は、バニリン及びほとんどの場合に基質からの副生成物を合成する、生体内変換部分、
−  バイオマス濾過部分であって、細胞は、合成された生成物と残留基質とを含む濾液から物理的に分離され、その後、発酵槽中でリサイクルされる、バイオマス濾過部分、及び
−  選択的な分離部分であって、バニリンなどの目的生成物は、発酵槽へリサイクルされる他のものから抽出される、選択的な分離部分。
【００１０】
従来の発酵プロセスで既に考えられているいくつかの分離技術の代表例としては、特に前述の液−液抽出、膜溶媒抽出（ＭＢＳＥ）、及び樹脂（又は溶媒含浸樹脂）への吸着であってもよい。
【００１１】
しかし、発酵槽中にバニリンがなお多量に存在することになることから、生物変換工程とその後の抽出プロセスとを連結することは、微生物に対するバニリンの毒性の問題を完全には解決しない。
【００１２】
したがって、本発明の目的は、微生物に対するその阻害を抑制し、バニリン製造についての生産性及び選択性を増加させるために基質の更なる生物変換を進めることを目的として、発酵ブロス中のバニリン濃度を低減させることが可能な方法を提案することである。
【発明の概要】
【００１３】
より詳しくは、本発明は、基質からの、及び特にフェルラ酸からの生物変換によりバニリンを製造する方法であって、少なくとも、
−  基質の生物変換によってバニリンを形成することが可能な少なくとも１種の微生物を発酵槽中で培養すること、
−  前記微生物によって変換される少なくとも１種の基質を前記発酵槽に供給すること、及び
−  前記発酵槽の発酵ブロスからそのように製造されたバニリンを回収すること
からなる工程を含み、
−  前記基質が少なくとも部分的に発酵槽の発酵ブロスに連続的に添加され、及び
−  前記基質の連続添加中、発酵ブロスの流れが分離装置によって発酵槽から連続的に抽出され、それにより、（ｉ）前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）と、（ｉｉ）前記微生物を含む発酵ブロス組成物（ｂ）とが与えられ、
前記バニリンが組成物（ａ）の全て又は一部から回収され、及び組成物（ｂ）が全て又は少なくとも部分的に発酵槽でリサイクルされる、方法に関する。
【００１４】
このように、本発明者らは、発酵ブロスからバニリンを形成されたままの状態での連続的に製造及び除去するのに好都合な新規な手法を発見した。特に、本発明の方法は、有利には、発酵槽中でのバニリンの滞留時間を短縮することと、発酵ブロス中のバニリン濃度を、微生物に関するその毒性レベル未満に維持することとを可能にする。
【００１５】
更に、新鮮な基質を発酵槽に連続的に供給することにより、より多くの基質を変換させることによる生物変換を促すことができる。
【００１６】
連続的な基質の添加、ブロスの連続的な抽出、及び前記微生物を含む発酵ブロス組成物（ｂ）の全て又は一部のリサイクルを伴う本発明の方法は、発酵ブロスの内容物の連続的な修正を意味する。前記修正は、微生物の代謝に対して予測不可能な結果を有し得る。バニリンを生成する微生物の代謝スキームは複雑である。そのため、本発明の方法で観察されるバニリンへの生物変換の改善は予測できなかった。
【００１７】
好ましい実施形態によれば、基質の最初の投入量が発酵槽に添加され、及び引き続き又は同時に、一部の基質が発酵槽中の発酵ブロス中に連続的に供給される。
【００１８】
別の好ましい実施形態によれば、組成物（ｂ）は、発酵槽中に全体として戻される。
【００１９】
別の好ましい実施形態によれば、発酵ブロスは、分離装置としての膜濾過装置を通して抽出され、それにより、（ｉ）前記微生物を含まない濾液（ａ）と、（ｉｉ）前記微生物を含む保持液（ｂ）とが与えられる。
【００２０】
ある具体的な実施形態によれば、分離装置は、前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）の形成のみに特化される。このように形成された組成物（ａ）は、バニリンと、未変換の基質と、不純物（バニリン酸、バニリルアルコール、及びグアイアコールなど）とを主成分とする。
【００２１】
この変形形態では、本発明の方法は、組成物（ａ）からのバニリンの選択的な回収を可能にする補完的な分離技術を含む。特に、有利には、濾過装置である分離装置は、この組成物（ａ）からのバニリンの選択的な回収を可能にする補完的な分離装置と連結されてもよい。
【００２２】
例えば、組成物（ａ）は、バニリンが液−液抽出によって抽出され得るタンク中に集められてもよい。図１はこの実施形態を示している。
【００２３】
組成物（ａ）中に含まれるバニリンは、樹脂などの吸着材に選択的に吸着されてもよい。この吸着材は、通常、バニリンのための抽出溶媒を使用することにより、バニリンを回収及び精製するために引き続き処理される。図２はそのような実施形態を示している。
【００２４】
両方の場合において、未変換の基質を含む組成物は、有利には、全て又は部分的に発酵槽中でリサイクルされてもよい。
【００２５】
別の具体的な実施形態によれば、分離装置は、バニリンの同時の選択的抽出を可能にする。図３はこの実施形態を示している。
【００２６】
本発明の方法では、通常、１つのみの発酵槽が使用される。しかし、当業者が容易に理解できるように、方法は、複数の発酵槽を用いて容易に実施することも可能であり、その際、多くの場合にこれらは並列配置にされる。複数の発酵槽が使用される場合、これらは互いに実質的に同一又は同一であってもよく、またそれに加えて、発酵槽は実質的に又は厳密に同じ方法で機能してもよい。
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】分離装置である液−液抽出装置と連結している本発明の方法の例を示す。
【図２】分離装置である吸着カラムと連結している本発明の方法の別の例を示す。
【図３】分離装置としてバニリン用の選択膜を主体とする濾過装置を使用する本発明の方法の別の例を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
発酵ブロス
前述したように、本発明の方法は、基質をバニリンに変換できる少なくとも１種の微生物を発酵槽中で培養する予備工程を含む。
【００２９】
本発明において、用語「培養」は、適切な培地中での微生物の増殖を指すために使用される。
【００３０】
用語「適切な培地」は、炭素源若しくは炭素基質、窒素源、尿素、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、及びリン酸アンモニウム；リン源；例えばマグネシウム塩、コバルト塩、及び／又はマグネシウム塩などの金属塩など、細胞の維持及び／又は増殖に必須又は有益である養分、並びにアミノ酸及びビタミンなどの増殖因子を含む培地（例えば、無菌の液体培地）を指す。典型的な培地は、１０ｇ／ｌの酵母エキスと、２０ｇ／ｌのペプトンと、２０ｇ／ｌの炭素源とからなる。
【００３１】
本発明の用語「炭素源」とは、酵母の通常の増殖を促進するために当業者が使用し得る任意の炭素源を指す。酵母は、これらの主要炭素及びエネルギー源として糖類を使用するが、従来と異なる炭素源も可能である。
【００３２】
炭素源は、グルコース、フルクトース、マンノース、キシロース、アラビノース、ガラクトース、ラクトース、エタノール、セロビオース、グリセロール、及び多糖（セルロースなど）、並びにこれらの混合物からなる群から選択されてもよい。特に好ましい炭素源は、エタノール及び／又はグルコースである。
【００３３】
好適な窒素源の例は、硝酸塩及びアンモニウム塩などの無機窒素源；並びに酵母エキス、大豆かす、綿実油かす、カゼイン、カゼイン加水分解物、小麦グルテン、及びコーンスティープリカーなどの有機窒素源である。
【００３４】
使用できる無機塩は、例えば、特にナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム、亜鉛、及び鉄の硫酸塩、硝酸塩、塩化物、炭酸塩、及びリン酸塩である。
【００３５】
培養工程は、ｐＨ、温度、ｐＯ２、及び曝気の制御された条件下で行われ、条件は当業者に周知である。
【００３６】
培養温度は、好ましくは１０〜５５℃の範囲、特に好ましくは３０〜４５℃の範囲である。培地のｐＨは、好ましくは３〜９、特に４〜８である。
【００３７】
微生物は、従来の基質の生物変換によりバニリンを形成できる任意の微生物であってもよい。
【００３８】
好都合な微生物としては、バシラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、及びセラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）からなる群において選択される微生物が特に挙げられるが、好ましくはストレプトマイセス・セトニィ（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｅｔｏｎｉｉ）であり、より好ましくはＡＴＣＣ３９１１６株である。
【００３９】
基質
既に前述したように、複数の種類の炭素基質を検討することができる。
【００４０】
より具体的には、基質は糖類（グルコース、フルクトース、マンノース、キシロース、アラビノース、ガラクトース、及びラクトースなど、グルコースが好ましい）、フェルラ酸、バニリン酸、フェニルアラニン、オイゲノール、及びこれらの混合物からなる群において選択される。
【００４１】
より好ましくは、基質はフェルラ酸である。
【００４２】
本発明の方法によれば、この基質の少なくとも一部が発酵槽中に連続的に添加される。
【００４３】
これは、基質の連続的な供給が添加の唯一のルートを構成しない場合があることを意味する。
【００４４】
そのため、具体的な実施形態によれば、基質の最初の投入量が発酵ブロスに添加されてもよく、及び一部の基質が引き続いて又は同時に、通常、溶液の形態で発酵槽中の発酵ブロス中に連続的に添加される。
【００４５】
より詳しくは、基質の最初の投入量が発酵槽に添加され、良好な酵素活性を確保するために生物変換はバッチ式で促進される。その後、基質の新たな溶液が連続的に発酵槽に投入される。
【００４６】
上述したように、本発明の方法は、基質の連続供給と同時に、発酵ブロスの流れが分離装置によって発酵槽から抽出され、それにより、（ｉ）前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）と、（ｉｉ）前記微生物を含む発酵ブロス組成物（ｂ）とが与えられることを含む。
【００４７】
基質の連続供給と同時のこの一部の発酵ブロスの連続的な抽出により、発酵槽中の発酵ブロスの一定の体積を維持すると共に、本明細書で上述した利点を有する発酵槽中でのバニリンの滞留時間の効率的な制限が可能になる。
【００４８】
有利には、発酵槽中での滞留時間は、１〜２４時間、好ましくは３〜１０時間の範囲である。したがって、基質の供給の流量Ｑｆｅｅｄ及び組成物（ａ）の流れの流量Ｑ（ａ）のそれぞれは、発酵槽の滞留時間を短縮するように調節されてもよい。
【００４９】
Ｑ（ａ）及びＱｆｅｅｄは、有利には近い値を有していてもよく、特に同じである。
【００５０】
定義によれば、滞留時間は流量が大きくなるにつれて短くなる。
2018521683.tif 000003
式中、ｔｒは、時間（ｈ）単位での滞留時間であり、
Ｖは、Ｌ単位での発酵槽の有効体積であり、
Ｑ＝Ｑ（ａ）＝Ｑｆｅｅｄは、Ｌ／ｈ単位での流量である。
【００５１】
基質の供給の流量Ｑｆｅｅｄ及び組成物（ａ）の流れの流量Ｑ（ａ）は、有利には発酵槽中の発酵ブロスの一定の体積を維持するためにも調節される。
【００５２】
組成物（ａ）の流量Ｑ（ａ）と等しいＱｆｅｅｄの流量を維持するために、３つのポンプ、すなわち発酵槽中への基質の流れを供給するためのものと、発酵槽から一部の発酵ブロスを連続的に抽出するための別のものと、組成物（ａ）のライン上の別のものとを使用することが有利な場合がある。
【００５３】
基質は、好ましくは８〜９の範囲のｐＨを有する水溶液の形態で好ましくは供給される。この水溶液は、前記発酵槽の発酵ブロスのための栄養成分を含んでいてもよい。特に、これは、基質が補われた塩及び養分を有する完全培地で構成されていてもよい。
【００５４】
好ましい実施形態によれば、基質の濃度、特にフェルラ酸の濃度は、発酵ブロス中において５〜６０ｇ／Ｌの範囲である。
【００５５】
分離装置
既に本明細書の上で提示したように、これは、一部の発酵ブロスの連続的な抽出のための、並びにその結果の（ｉ）前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）と、（ｉｉ）発酵ブロス組成物（ｂ）との連続的な形成のための分離装置を介して進行し、後者は、少なくとも部分的に発酵槽中でリサイクルされる。
【００５６】
前記組成物の分離が可能な任意の装置を本発明で使用することができる。好ましくは、分離装置は濾過膜装置である。そのような濾過装置は、抽出された発酵ブロスから、微生物を含む保持液と、微生物がない濾液との回収を可能にする。
【００５７】
第１の実施形態によれば、分離装置は、抽出された発酵ブロスからのバニリンの選択的な同時抽出を可能にする。
【００５８】
そのような分離装置は、有利には、膜溶媒抽出（ＭＢＳＥ）に基づく濾過膜装置であってもよい。本発明のために好都合な膜は疎水性膜であり、特にＰＴＦＥ膜である。
【００５９】
選択的な分離装置から回収された未変換の基質の溶液は、その全て又は部分的に発酵槽中でリサイクルされてもよい。
【００６０】
この具体的な実施形態は図３に図式化されている。
【００６１】
別の実施形態によれば、分離装置は、発酵ブロスからバニリンを選択的に抽出できない。そのため、これは微生物に関してのみ選択性を示す膜を主体とする濾過装置の場合であってもよい。その結果、分離装置は、未変換の基質と生物変換生成物とを含む組成物（ａ）を形成する。
【００６２】
そのような場合、本発明の方法は、この組成物（ａ）からバニリンを抽出するための後続の且つ補完的な分離技術を含む。
【００６３】
この補完的な分離技術は、バニリンの期待される抽出を行うために有用な任意の従来の方法であってもよい。
【００６４】
第１の実施形態によれば、これは液−液抽出である。
【００６５】
バニリンの抽出溶媒は、当業者に公知の抽出溶媒の中から選択されてもよい。特に、これは、アルコール、酢酸アルキル、ヘキサン、及びこれらの混合物からなる群から選択されてもよく、好ましくはＮ−イソブチルアセテートである。
【００６６】
この具体的な実施形態に関して、国際公開第２０１５／０１１１１２号明細書及び欧州特許第０８８５９６８号明細書の内容を参照することができる。本発明の方法のこの具体的な実施形態は、図１に示されている。
【００６７】
第２の実施形態によれば、これは、吸着カラムの樹脂へのバニリンの選択的な吸着に基づく分離技術であってもよい。
【００６８】
例えば、ポリスチレン樹脂又はポリフェノール樹脂などのそのような吸収材樹脂は、当業者に公知である。
【００６９】
これは、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ  ＸＡＤ−２、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ  ＸＡＤ−７、ＸＡＤ−１６、Ｌｅｗａｔｉｔ  ＯＣ  １０６２、又はＯＣ  １０６４（米国特許第６１３３００３号明細書中で言及）などの吸収材樹脂であってもよい。バニリンは、引き続き従来の抽出溶媒を用いてそのような樹脂から抽出される。そのようなプロセスの具体的な実施形態が図２に示されている。
【００７０】
補完的な分離装置の種類がどのようなものであろうとも、この補完的な分離技術によっても回収される、バニリンを含まず且つ未変換の基質を含む組成物は、少なくとも部分的に発酵槽中でリサイクルされてもよい。
【００７１】
本発明の方法により得られるバニリンは、そのまま使用されても更に精製されてもよい。典型的な精製工程は、溶媒での抽出、蒸留、結晶化から構成されてもよく、又は例えば抽出若しくは蒸留などの前記精製工程と、それに続く結晶化との組み合わせであってもよい。
【００７２】
図１〜３は、本発明の方法の具体的な実施形態を示している。発酵培地、微生物、及び好ましくは一部の基質が入っている発酵槽（１）に、制御された流量Ｑｆｅｅｄで基質（１０）の溶液が連続的に供給される。一部の発酵ブロス（１１）は、発酵槽から分離装置（２）へ連続的に循環され、それにより、制御された流量Ｑ（ａ）を有する、前記微生物を含まない発酵ブロス組成物（ａ）の流れ（１２）又は（１６）、及び（ｉｉ）発酵槽（１）へリサイクルされ戻される、前記微生物を含む発酵ブロス組成物（ｂ）の流れ（１３）が得られる。
【００７３】
図１及び２では、組成物（ａ）は、分離装置（２）から補完的な分離装置（３）又は（４）へ循環される。
【００７４】
図１では、分離装置は、少なくとも１種の抽出溶媒（１４）及び組成物（ａ）（１２）が供給される抽出装置（３）である。液−液抽出が抽出装置内へ行われ、装置の内容物は、その後、デカンテーションによって相分離できるように保持槽（５）へ移される。バニリンを含む抽出溶液（１５）は集められ、残りの溶液（１６）は発酵槽中でリサイクルされ戻される。
【００７５】
図２では、分離装置はバニリン用の吸着カラム（４）である。組成物（ａ）（１２）は吸着カラムを通って循環し、バニリンを含まない組成物（１７）は、吸着カラムの端部で回収されて発酵槽へポンプで戻される。バニリンは吸着カラムから更に抽出される。
【００７６】
図３では、分離装置（２）は、膜溶媒抽出（ＭＢＳＥ）に基づく濾過装置である。抽出された発酵ブロス（１１）は、前記装置の膜を通って循環することで、発酵槽にポンプで戻されるバニリンを含まない組成物（１３）と、バニリンを含む組成物（１６）とを与える。
【００７７】
本発明による方法の実施例について言及する以降の追加的な記載から、本発明をよりよく理解できるであろう。
【００７８】
しかし、これらの実施例は本発明の主題の例示の目的で示されているに過ぎず、決してこれを限定するものではないことは明確に理解されるべきである。
【実施例】
【００７９】
実施例１：
０．１ｇのＫＨ２ＰＯ４、０．４ｇのＮａ２ＨＰＯ４、１２Ｈ２Ｏ、１ｇの酵母エキス、０．０２ｇのＭｇＳＯ４，７Ｈ２Ｏ、３８ｇの水中に２ｇのグルコースを含む溶液１０ｇが入っている５００ｍＬの振とうフラスコに１ｍＬのストレプトマイセス・セトニィ（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｅｔｏｎｉｉ）ＡＴＣＣ３９１１６株を接種し、３７℃、１５０ｒｐｍで２４時間培養する。
【００８０】
１２ｇの酵母エキス、１．２ｇのＭｇＳＯ４、７Ｈ２Ｏ、４８ｇのグルコース、及び１３９１ｇの水が入っている２Ｌ（総容積）の発酵槽に、振とうフラスコ中で準備した５０ｍＬの予備培養物を接種する。株を大気圧において約２４時間にわたり０．６７ｖｖｍで曝気しながら、３７℃、１０００ｒｐｍ（Ｒｕｓｈｔｏｎタービン）の発酵条件で培養する。最初のｐＨは７であり、この増殖期中には調整しない。バイオマスは８〜１０ｇ／Ｌ（乾燥重量）に到達し得る。
【００８１】
実施例２：
ストレプトマイセス・セトニィ（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｅｔｏｎｉｉ）を実施例１に従って培養した。３００ｍＬの溶液を発酵槽から取り出す。ｐＨを８．３に上げて一定に保ち、曝気を０．４７ｖｖｍに下げ、撹拌速度を変化させて溶存酸素を３０％で一定に維持する。温度及び圧力は変更しない。
【００８２】
２４ｇのフェルラ酸、１６ｇのＮａＯＨ（３０％）、及び２４０ｇの水を含む溶液を発酵槽中に添加する。
【００８３】
６時間後、３５ｇ／Ｌのフェルラ酸を含む溶液を０．１５９Ｌ／ｈで連続的に供給する。並行して、発酵培地を、ＰＶＤＦ膜（カットオフ＝０．１５μｍ）を備えた精密濾過モジュールタイププランＲＡＹＦＬＯＷ１００（Ｏｒｅｌｉｓ）を使用して濾過する。膜の全表面は０．２ｍ２であり、入口圧力は約１．５ｂａｒであり、出口圧力は約１ｂａｒである。
【００８４】
フィルターには１３３．４Ｌ／ｈの流れで供給される。これらの条件では、濾液の流れは１．９Ｌ／ｈであり、保持液の流れは１３１．５Ｌ／ｈである。濾過は２４時間行った。低い方の測定された濾液の流れは１．１Ｌ／ｈである。いずれの時点でも濾液は微生物を含んでいなかった。
【００８５】
保持液を発酵槽中に再び入れ、０．１６０Ｌ／ｈの濾液を取り出す（濾液の他の部分は発酵槽中に再び入れる）。この連続プロセスを３９時間行う。試料を定期的に抜き出してＨＰＬＣで分析する。
【００８６】
最終的に０．５２ｍｏｌのフェルラ酸が消費され、０．２４ｍｏｌのバニリンが製造され、合計で０．４７ｍｏｌの生成物（バニリン、バニリン酸、バニリルアルコール、及びグアイアコール）が製造された。
【００８７】
発酵槽中の最大バニリン濃度は、生物変換の２５．５時間後に観察され、これは１０．６ｇ／Ｌである。
【００８８】
実施例３：
ストレプトマイセス・セトニィ（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｓｅｔｏｎｉｉ）を実施例１に従って培養した。３００ｍＬの溶液を発酵槽から取り出す。ｐＨを８．３に上げて一定に保ち、曝気を０．４７ｖｖｍに下げ、撹拌速度を変化させて溶存酸素を３０％で一定に維持する。温度及び圧力は変更しない。
【００８９】
２４ｇのフェルラ酸、１６ｇのＮａＯＨ（３０％）、及び２４０ｇの水を含む溶液を発酵槽中に添加する。
【００９０】
６時間後、２８ｇ／Ｌのフェルラ酸を含む溶液を０．２７Ｌ／ｈで連続的に供給する。並行して、発酵培地を実施例２に記載の精密濾過モジュールを使用して濾過する。
【００９１】
保持液を発酵槽中に再び入れ、０．２７Ｌ／ｈの濾液を取り出す（濾液の他の部分は発酵槽中に再び入れる）。この連続プロセスを４４時間行う。試料を定期的に抜き出してＨＰＬＣで分析する。
【００９２】
最終的に１．０３ｍｏｌのフェルラ酸が消費され、０．４２ｍｏｌのバニリンが製造され、合計で０．８９ｍｏｌの生成物（バニリン、バニリン酸、バニリルアルコール、及びグアイアコール）が製造された。
【００９３】
発酵槽中の最大バニリン濃度は、生物変換の２４．５時間後に観察され、これは８．９ｇ／Ｌである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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