(57)【要約】本開示は、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ）／ＴＳＣＭ／／ＴＣＭ）Ｔ細胞の新規供給源を提供する。Ｔ細胞のこの特定のサブセットは、少なくとも１つの動員因子を少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤と組み合わせて投与することによって動員され得ることを開示する。一局面において、被験体の末梢血に対して、増強された再構成能および／または長寿命を有する、ＴナイーブＴＣＭＴＳＣＭ、ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高、ＣＤ４４−ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高またはＣＤ４４＋ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高およびこれらの組合せのいずれかであるＴ細胞を動員する方法が提供され、この方法は、上記被験体に、少なくとも１つの動員因子を少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤と組み合わせて投与することを含む。【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験体の末梢血に対して、増強された再構成能および／または長寿命を有する、ＴナイーブＴＣＭＴＳＣＭ、ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高、ＣＤ４４−ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高またはＣＤ４４＋ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高およびこれらの組合せのいずれかであるＴ細胞を動員する方法であって、前記被験体に、少なくとも１つの動員因子を少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤と組み合わせて投与することを含む、方法。
【請求項２】
前記少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、請求項１および２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４】
前記Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、請求項１、２および３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記Ｔ細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、請求項１から４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
免疫応答の調節を必要とする被験体において免疫応答を調節する方法であって、前記被験体ががん、感染性疾患、自己免疫疾患、ＧＶＨＤおよび移植から選択される少なくとも１つの状態に罹患しており、前記方法が、前記被験体に、増強された再構成能および／または長寿命を有する、ＴナイーブＴＣＭＴＳＣＭ、ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ４４−ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高またはＣＤ４４＋ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高、およびこれらの組合せのいずれかであるＴ細胞を投与することを含む、方法。
【請求項７】
少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、請求項６および７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
前記Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、請求項６、７、および８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
前記Ｔ細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、請求項６から９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
増強された再構成能および／または長寿命を有するＣＡＲ−Ｔ細胞を産生する方法であって、前記ＣＡＲ−Ｔ細胞が請求項１から５のいずれか一項に従って産生される、方法。
【請求項１２】
少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、請求項１１および１２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１４】
前記Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、請求項１１、１２および１３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１５】
前記Ｔ細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、請求項１１から１４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】
増強された再構成能および／または長寿命を有するＴＣＲ改変細胞を産生する方法であって、前記ＴＣＲ改変細胞が請求項１から５のいずれか一項に従って産生される、方法。
【請求項１７】
少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、請求項１６および１７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１９】
前記Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、請求項１６、１７および１８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２０】
前記Ｔ細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、請求項１６から１９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２１】
がん、感染、自己免疫疾患の処置を必要とする被験体においてがん、感染、自己免疫疾患を処置する方法であって、前記被験体に、請求項１から５および１１から２０のいずれか一項に従って産生される細胞を投与することを含む、方法。
【請求項２２】
少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、請求項２１および２２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
前記Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、請求項２１、２２および２３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２５】
前記Ｔ細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、請求項２１から２４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２６】
請求項１から５および１１から２０のいずれか一項に従って産生される細胞を培養することを含む、分化したＴ細胞を産生する方法。
【請求項２７】
Ｔ細胞の集団を含む組成物であって、前記Ｔ細胞が請求項１から５および１１から２０のいずれか一項に従って産生される、組成物。
【請求項２８】
ＣＤ４４、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ４５ＲＯ、ＣＣＲ７、ＣＤ４５ＲＡ、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ２７、ＣＤ２８、ＩＬ−７Ｒα、ＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１に対する抗体から選択される少なくとも１つの抗体をさらに含む、請求項２７に記載の組成物。
【請求項２９】
人工細胞増殖培地をさらに含む、請求項２７および２８のいずれか一項に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
増強された再構成能および／または増強された寿命を有するＴ細胞集団の動員および採取のための新規方法、このＴ細胞集団を含む組成物、ならびに感染、自己免疫疾患、および／またはがんを含むがこれらに限定されない多数の疾患の処置におけるこのＴ細胞集団の使用方法が開示される。
【背景技術】
【０００２】
Ｔリンパ球またはＴ細胞は、感染およびがんを含む種々のトリガーに対する身体の免疫応答の重要な構成成分である。Ｓａｎｔｏｎｉ，  Ｆ．Ｒ．（２０１５年）、Ｔｈｅ  ｉｍｍｕｎｅ  ｓｙｓｔｅｍ  ａｓ  ａ  ｓｅｌｆ−ｃｅｎｔｅｒｅｄ  ｎｅｔｗｏｒｋ  ｏｆ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ、Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｌｅｔｔ．２０１５年８月；１６６巻（２号）：１０９〜１６頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｉｍｌｅｔ．２０１５．０６．００２．、Ｅｐｕｂ  ２０１５年６月１６日。Ｔ細胞養子移入（自己または同種のいずれか）およびおそらく内在性Ｔ細胞の動員は、感染、がんおよび他の免疫関連障害の処置のための複数の戦略の内の２つである。最近の総説については、ｈｅｍｅｌｉ，  Ｍ．ら（２０１５年）、Ｎｅｗ  ｃｅｌｌ  ｓｏｕｒｃｅｓ  ｆｏｒ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ  ａｎｄ  ａｄｏｐｔｉｖｅ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ、Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２０１５年４月２日；１６巻（４号）：３５７〜６６頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｓｔｅｍ．２０１５．０３．０１１；Ｍａｕｓ  ＭＶら、Ａｄｏｐｔｉｖｅ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ  ｏｒ  ｖｉｒｕｓｅｓ．  Ａｎｎｕ  Ｒｅｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ（２０１４年）３２巻：１８９〜２２５頁、１０．１１４６／ａｎｎｕｒｅｖ−ｉｍｍｕｎｏｌ−０３２７１３−１２０１３６；Ｂｕｔｌｅｒ  ＭＯら（２０１１年）、Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ  ｏｆ  ａｎｔｉｔｕｍｏｒ  ｍｅｍｏｒｙ  ｉｎ  ｈｕｍａｎｓ  ｕｓｉｎｇ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ−ｅｄｕｃａｔｅｄ  ＣＤ８＋  Ｔ  ｃｅｌｌｓ．  Ｓｃｉ  Ｔｒａｎｓｌ  Ｍｅｄ３巻（８０号）：８０ｒａ３４．１０．１１２６／ｓｃｉｔｒａｎｓｌｍｅｄ．３００２２０７；ｄｅ  Ａｑｕｉｎｏら（２０１５年）、Ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ  ａｎｄ  ｆｕｔｕｒｅ  ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ  ｏｆ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  ｉｎ  ｃａｎｃｅｒ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｌｅｔｔ．２０１５年８月；１６６巻（２号）：１１７〜１３３頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｉｍｌｅｔ．２０１５．０５．０１８．、Ｅｐｕｂ  ２０１５年６月１９日を参照されたい。
【０００３】
養子移入免疫治療では、Ｔ細胞は、その天然の形態または遺伝子改変された形態で患者に注入することができ、それによりＴ細胞はその治療活性にとって重要な１つまたは複数の外来性分子を発現する。この分子は、例えば、天然のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）またはキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）であり得る。ＣＡＲ−Ｔ細胞療法はがん臨床において成功していると報告されている。総説については、例えば、Ｊｅｎａ，  Ｂ．ら（２０１４年）、Ｄｒｉｖｉｎｇ  ＣＡＲ−Ｂａｓｅｄ  Ｔ−Ｃｅｌｌ  Ｔｈｅｒａｐｙ  ｔｏ  Ｓｕｃｃｅｓｓ、Ｃｕｒｒ  Ｈｅｍａｔｏｌ  Ｍａｌｉｇ  Ｒｅｐ．２０１４年３月；９巻（１号）：５０〜５６頁；Ｊｕｎｅ，  Ｃ．Ｈ．、Ａｄｏｐｔｉｖｅ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｔｈｅｒａｐｙ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｃｌｉｎｉｃ．  Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｉｎｖｅｓｔ．１１７巻、１４６６〜１４７６頁（２００７年）；Ｍｏｒｇａｎ，  Ｒ．Ａ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ａｆｔｅｒ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ  ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ．  Ｓｃｉｅｎｃｅ３１４巻、１２６〜１２９頁（２００６年）；Ｐｕｌｅ，  Ｍ．Ａ．ら、Ｖｉｒｕｓ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  ｔｏ  ｃｏｅｘｐｒｅｓｓ  ｔｕｍｏｒ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ：  ｐｅｒｓｉｓｔｅｎｃｅ  ａｎｄ  ａｎｔｉｔｕｍｏｒ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｉｎ  ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ  ｗｉｔｈ  ｎｅｕｒｏｂｌａｓｔｏｍａ．  Ｎａｔ．  Ｍｅｄ．１４巻、１２６４〜１２７０頁（２００８年）；および下記のＣＡＲ−Ｔセクションに引用する参考文献を参照されたい。
【０００４】
Ｔ細胞は、他にＢ細胞、好中球および他の血液系構成成分を含む、造血幹細胞（ＨＳＣ）分化の産物の１つである。造血幹細胞およびその細胞分化産物の動員は、ある特定の増殖因子またはサイトカインの投与を介して促進され得る。Ｓａｒａｃｅｎｉら（２０１５年）、Ｍｏｂｉｌｉｚｅｄ  ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ  ｂｌｏｏｄ  ｇｒａｆｔｓ  ｉｎｃｌｕｄｅ  ｍｏｒｅ  ｔｈａｎ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ：  ｔｈｅ  ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅ、Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．２０１５年７月；５０巻（７号）：８８６〜９１頁、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｂｍｔ．２０１４．３３０．、Ｅｐｕｂ  ２０１５年２月９日。例えば、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）は、化学療法によって誘導される好中球減少症を有する患者において好中球の産生を促進し、移植のためにＨＳＣを動員するために長く使用されてきた。Ｄｅｏｔａｒｅら、２０１５年、Ｇ−ＣＳＦ−ｐｒｉｍｅｄ  ｂｏｎｅ  ｍａｒｒｏｗ  ａｓ  ａ  ｓｏｕｒｃｅ  ｏｆ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｆｏｒ  ａｌｌｏｇｒａｆｔｉｎｇ：  ｒｅｖｉｓｉｔｉｎｇ  ｔｈｅ  ｃｏｎｃｅｐｔ．  Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．２０１５年４月２７日、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｂｍｔ．２０１５．８０．［Ｅｐｕｂ印刷前］およびＢｅｎｄａｌｌ  ＬＪら（２０１４年）、Ｇ−ＣＳＦ  Ｆｒｏｍ  ｇｒａｎｕｌｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｓｔｉｍｕｌａｎｔ  ｔｏ  ｂｏｎｅ  ｍａｒｒｏｗ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｍｏｂｉｌｉｚｉｎｇ  ａｇｅｎｔ．：  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ  Ｒｅｖ．  ２０１４年８月；２５巻（４号）：３５５〜６７頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｃｙｔｏｇｆｒ．２０１４．０７．０１１．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年７月２３日。
【０００５】
ヒト好中球およびマウス好中球は、ＣＤ６２Ｌとしても公知のＬ−セレクチンの様々なグリコフォームを発現することが報告されている。Ｚｏｅｌｌｎｅｒ  Ｏ．ら、Ｌ−ｓｅｌｅｃｔｉｎ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ，  ｂｕｔ  ｎｏｔ  ｆｒｏｍ  ｍｏｕｓｅ  ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌｓ  ｂｉｎｄｓ  ｄｉｒｅｃｔｌｙ  ｔｏ  Ｅ−ｓｅｌｅｃｔｉｎ、Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１９９７年２月１０日；１３６巻（３号）：７０７〜１６頁。さらに、ヒトおよびマウスＴ細胞の両方のある特定の集団はＣＤ６２Ｌ陽性（ＣＤ６２Ｌ＋）である。Ｌ−セレクチンは、Ｅ−セレクチンに結合する炭水化物を含有する。Ｇｒａｂｅｒ  Ｎ．ら、１９９０年、Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｂｉｎｄ  ｔｏ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ｖｉａ  ａ  ｎｏｖｅｌ，  ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ  ｓｉａｌｏｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ  ａｎｄ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ  ａｄｈｅｓｉｏｎ  ｍｏｌｅｃｕｌｅ−１、Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９０年８月１日；１４５巻（３号）：８１９〜３０頁。Ｅ−セレクチンは、骨髄血管内皮細胞によって発現され、そこでＨＳＣ増殖を駆動させる。Ｗｉｎｋｌｅｒ  ＩＪら、２０１２年、Ｖａｓｃｕｌａｒ  ｎｉｃｈｅ  Ｅ−ｓｅｌｅｃｔｉｎ  ｒｅｇｕｌａｔｅｓ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｄｏｒｍａｎｃｙ，  ｓｅｌｆ  ｒｅｎｅｗａｌ  ａｎｄ  ｃｈｅｍｏｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ、Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２０１２年１１月；１８巻（１１号）：１６５１〜７頁、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｎｍ．２９６９．、Ｅｐｕｂ  ２０１２年１０月２１日。小さな合成Ｅ−セレクチンアンタゴニスト（ＧＭＩ−１０７０）の一過性投与は、ＨＳＣ自己再生を促進する。同書。その後、Ｇ−ＣＳＦによるＨＳＣの動員の際に別のＥ−セレクチンアンタゴニスト（ＧＭＩ−１２７１）によってＥ−セレクチンを阻害することにより、およそ２５倍の再構成能を有するＨＳＣが動員されることが報告されている。Ｍｏｂｉｌｉｓａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｎｇ  ＨＳＣ  Ｉｓ  Ｂｏｏｓｔｅｄ  Ｂｙ  Ｓｙｎｅｒｇｙ  Ｂｅｔｗｅｅｎ  Ｇ−ＣＳＦ  ａｎｄ  Ｅ−Ｓｅｌｅｃｔｉｎ  Ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ  ＧＭＩ−１２７１．    Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ：  ５６ｔｈ  Ａｎｎｕａｌ  Ｍｅｅｔｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ａｍｅｒｉｃａｎ−Ｓｏｃｉｅｔｙ−ｏｆ−Ｈｅｍａｔｏｌｏｇｙ  Ｌｏｃａｔｉｏｎ：  Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，  ＣＡ  Ｄａｔｅ：２０１４年１２月６日〜９日、ＢＬＯＯＤ、１２４巻、２１号、２０１４年１２月６日発行。
【０００６】
Ｔ細胞媒介療法の有用性についての可能性のある制限は、Ｔ細胞それ自体の欠乏であり、特に、患者の免疫系が異物として拒絶せず、移植片対宿主病を生じず、有効な処置をもたらすのに十分な時間持続することである。例えば、Ｎａｙａｒ  Ｓ．ら（２０１５年）、Ｅｘｔｅｎｄｉｎｇ  ｔｈｅ  ｌｉｆｅｓｐａｎ  ａｎｄ  ｅｆｆｉｃａｃｉｅｓ  ｏｆ  ｉｍｍｕｎｅ  ｃｅｌｌｓ  ｕｓｅｄ  ｉｎ  ａｄｏｐｔｉｖｅ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｉｅｓ−Ａ  ｒｅｖｉｅｗ，  Ｏｎｃｏｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ．２０１５年３月１９日；４巻（４号）：ｅ１００２７２０、ｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ２０１５年に考察されている。さらに、がん患者および他の多くの障害を有する者では、ＴＳＣＭ／ＣＭ／ナイーブ細胞集団が疲弊している（ｅｘｈａｕｓｅｄ）場合がある。このことは、自己移植後に未改変、ＴＣＲ改変、またはＣＡＲ−Ｔ細胞として長期間存続し、機能する十分な数の細胞を回収することを困難にする可能性がある。したがって、これらの要求のうちの１つまたは複数を満たす新たなＴ細胞供給源に対する満たされていないニーズがあり得る。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｚｏｅｌｌｎｅｒ  Ｏ．ら、Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１９９７年２月１０日；１３６巻（３号）：７０７〜１６頁
【非特許文献２】Ｇｒａｂｅｒ  Ｎ．ら、Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９０年８月１日；１４５巻（３号）：８１９〜３０頁
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本開示は、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ／ＴＳＣＭ／／ＴＣＭ）Ｔ細胞の新規供給源を提供する。Ｔ細胞のこの特定のサブセットは、Ｇ−ＣＳＦをＥ−セレクチン阻害剤と組み合わせて投与することによって動員され得ることを開示する。他の動員因子を使用することもできる（例えば、ＶＬＡ−４遮断と併せたＣＸＣＲ４遮断）。
実施形態１において、本開示は、被験体の末梢血に、増強された再構成能および／または長寿命を有する、ＴナイーブＴＣＭＴＳＣＭ、ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高、ＣＤ４４−ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高またはＣＤ４４＋ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高およびこれらの組合せのいずれかであるＴ細胞を動員する方法であって、前記被験体に、少なくとも１つの動員因子を少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤と組み合わせて投与することを含む方法を提供する。
【０００９】
実施形態２において、本開示は、前記少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、実施形態１に従う方法を提供する。
【００１０】
実施形態３において、本開示は、前記少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、実施形態１および２のいずれかに従う方法を提供する。
【００１１】
実施形態４において、本開示は、Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、実施形態１、２および３のいずれかに従う方法を提供する。
【００１２】
実施形態５において、本開示は、前記細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、実施形態１から４のいずれかに従う方法を提供する。
【００１３】
実施形態６において、本開示は、それを必要とする被験体において免疫応答を調節する方法であって、前記被験体ががん、感染性疾患、自己免疫疾患、ＧＶＨＤおよび移植から選択される少なくとも１つの状態に罹患しており、前記方法が、実施形態１から６のいずれかに従う細胞を投与することを含む方法を提供する。
【００１４】
実施形態７において、本開示は、少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、請求項６に記載の方法。
【００１５】
実施形態８において、本開示は、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、実施形態６および７のいずれかに従う方法を提供する。
【００１６】
実施形態９において、本開示は、Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、実施形態６から８のいずれかに従う方法を提供する。
【００１７】
実施形態１０において、本開示は、前記細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、実施形態６から９のいずれかに従う方法を提供する。
【００１８】
実施形態１１において、本開示は、増強された再構成能および／または長寿命を有するＣＡＲ−Ｔ細胞を産生する方法であって、前記ＣＡＲ−Ｔ細胞が実施形態１から５のいずれかに従って産生される、方法を提供する。
【００１９】
実施形態１２において、本開示は、前記少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、実施形態１１に従う方法を提供する。
【００２０】
実施形態１３において、本開示は、前記少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、実施形態１１および１２のいずれかに従う方法を提供する。
【００２１】
実施形態１４において、本開示は、Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、実施形態の１１〜１３いずれかに従う方法を提供する。
【００２２】
実施形態１５において、本開示は、前記細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、実施形態１１〜１４のいずれかに従う方法を提供する。
【００２３】
実施形態１６において、本開示は、増強された再構成能および／または長寿命を有するＴＣＲ改変細胞を産生する方法であって、前記ＴＣＲ改変細胞が実施形態１から５のいずれかに従って産生される、方法を提供する。
【００２４】
実施形態１７において、本開示は、前記少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、実施形態１６に従う方法を提供する。
【００２５】
実施形態１８において、本開示は、前記少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、実施形態１に従う方法を提供する。
【００２６】
実施形態１９において、本開示は、Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、実施形態１１〜１３のいずれかに従う方法を提供する。
【００２７】
実施形態２０において、本開示は、前記細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、実施形態１６〜１９のいずれかに従う方法を提供する。
【００２８】
実施形態２１において、本開示は、それを必要とする被験体においてがん、感染、または自己免疫疾患を処置する方法であって、前記被験体に、実施形態１から５および１１から２０のいずれかに従って産生される細胞を投与することを含む、方法を提供する。
【００２９】
実施形態２２において、本開示は、前記少なくとも１つの動員因子がＧ−ＣＳＦである、実施形態２１に従う方法を提供する。
【００３０】
実施形態２３において、本開示は、前記少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤がＧＭＩ−１２７１である、実施形態２１および２２のいずれかに従う方法を提供する。
【００３１】
実施形態２４において、本開示は、Ｇ−ＣＳＦが０．５μｇ／ｋｇ／日から５０μｇ／ｋｇ／日の用量で投与される、実施形態２１〜２３のいずれかに従う方法を提供する。
【００３２】
実施形態２５において、本開示は、前記細胞がＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である、実施形態２１〜２４のいずれかに従う方法を提供する。
【００３３】
【００３４】
実施形態２６において、本開示は、実施形態１から５および１１から２０のいずれかに従って産生される細胞を培養することを含む、分化したＴ細胞を産生する方法を提供する。
【００３５】
【００３６】
実施形態２７において、本開示は、Ｔ細胞の集団を含む組成物であって、前記Ｔ細胞が実施形態１から５および１１から２０のいずれかに従って産生される、組成物を提供する。
【００３７】
実施形態２８において、本開示は、ＣＤ４４、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ４５ＲＯ、ＣＣＲ７、ＣＤ４５ＲＡ、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ２７、ＣＤ２８、ＩＬ−７Ｒα、ＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１に対する抗体から選択される少なくとも１つの抗体をさらに含む、実施形態２７に従う組成物を提供する。
【００３８】
実施形態２９において、本開示は、人工細胞増殖培地をさらに含む、実施形態２７および２８のいずれかに従う組成物を提供する。
【００３９】
当業者は、下に記載の図面が例示的目的のためだけであることを理解する。図面は、本教示の範囲をいかなる方法によっても限定する意図はない。
【００４０】
本特許または出願書類は、カラーで出力された少なくとも１つの図面を含有する。カラー図面を含む本特許または特許出願公開の複製物は、申請および必要経費の支払いに応じて米国特許商標局により提供される。
【図面の簡単な説明】
【００４１】
【図１】図１は、Ｅ−セレクチン阻害剤ＧＭＩ−１２７１の存在下でのＴ細胞のサブセットのＧ−ＣＳＦ媒介動員についての実験概要を示す図である。
【００４２】
【図２】図２は、６群（未処置群も同様に含む）それぞれでの血液１ｕＬあたりの合計白血球ｘ１０３を示す図である。ＧＭＩ１２７１の投与２４時間での顕著な増加に注目されたい（Ｇ−ＣＳＦ単独３日に対して約１．５倍）。
【００４３】
【図３】図３は、血液１ｕＬあたりの合計Ｔ細胞を示す図である（ＣＤ４＋およびＣＤ８＋組合せ）。ＧＭＩ１２７１同時投与で変化なし。
【００４４】
【図４】図４Ａは、血液１ｕＬあたりのＣＤ４＋Ｔ細胞を示す図であり（変化なし）；図４Ｂは、血液１ｕＬあたりのＣＤ４４＋ＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ４＋Ｔ細胞を示す図である（ＧＣＳＦ投与により減少したと考えられる；ＧＭＩ−１２７１同時投与は血液中のそれらの数を強化しないと考えられる）。
【００４５】
【図５】図５Ａは、血液１ｕＬあたりのＣＤ８＋Ｔ細胞を示す図であり（変化なし）；図５Ｂは、血液１ｕＬあたりのＣＤ４４＋ＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ８＋Ｔ細胞を示す図である（ＧＭＩ−１２７１同時投与２４時間により顕著に増加した）。
【００４６】
【図６】図６Ａは、血液中のＣＤ４＋ＣＤ６２ＬＨｉ細胞を示す図であり；図６Ｂは、血液中のＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高を示す図である。
【００４７】
【図７−１】図７は、例示的細胞表面マーカーおよび細胞集団を示す図である。
【図７−２】図７は、例示的細胞表面マーカーおよび細胞集団を示す図である。
【図７−３】図７は、例示的細胞表面マーカーおよび細胞集団を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００４８】
他に具体的に定義する場合を除いて、本明細書で使用するすべての技術的および科学的用語は、本開示が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるものと同じ意味を有する。他に述べる場合を除いて本明細書において用いられるまたは検討される技術は、当業者に周知の標準的方法である。本開示の実行は、他に示す場合を除いて、当技術分野内の技能の範囲内である、免疫学、組織培養、分子生物学、化学、生化学および組換えＤＮＡ技術の従来の技術を用いる。材料、方法および例は、単なる例示であり、限定ではない。以下は、例示の方法によって示され、本開示の範囲を限定することは意図されない。
【００４９】
本明細書に記載する開示の多数の改変および他の実施形態は、前述の記載および関連する図面において示される教示の利益を有する、これらの開示が関連する技術分野の当業者に想定される。したがって開示が、開示される具体的な実施形態に限定されず、改変および他の実施形態が添付の特許請求の範囲内に含まれることが意図されることは理解される。具体的な用語が本明細書において用いられているが、それらは包括的および記述的な意味だけで使用され、限定の目的で使用されない。
【００５０】
単位、接頭語および記号は、それらのＳＩ承認形式で記され得る。
【００５１】
下に定義の用語は、全体として明細書を参照することによってさらに完全に定義される。
【００５２】
本明細書において使用される用語は、当業者により十分に理解されると考えられるが、本文書に含まれる定義は、ここで開示する主題の説明を促進するために記載される。
【００５３】
長年にわたる特許法の慣例に従って、特許請求の範囲を含む本出願において使用される場合に用語「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、「１つまたは複数の」を指す。したがって、例えば、「細胞（ａ  ｃｅｌｌ）」を参照することは、１つの細胞または複数の細胞を含む。
【００５４】
本明細書において使用される用語「約」は、値または大きさの量、重量、時間、体積、濃度または百分率を参照する場合、指定の量から一部の実施形態では±２０％、一部の実施形態では±１０％、一部の実施形態では±５％、一部の実施形態では±１％、一部の実施形態では±０．５％、一部の実施形態では±０．１％の変動を包含することを意味し、そのような変動は開示の方法を実施するために好適である。
【００５５】
本開示を通じて種々の実施形態は、範囲の形式で表される場合がある。数値の範囲は範囲を定義する数を含む。範囲の形式での記載は、利便性および簡潔さのためだけであり、本開示の範囲の柔軟性のない限定として見なされるべきではないことは理解されるべきである。したがって範囲の記載は、すべての可能な部分的範囲および範囲内の個々の数値を具体的に開示していると見なされるべきである。例えば１から６などの範囲の記載は、１から３、１から４、１から５、２から４、２から６、３から６などの部分的範囲ならびに範囲内の個々の数値、例えば１、２、２．７、３．８、４、５．１、５．３および６を具体的に開示していると見なされるべきである。これは、範囲の幅に関係なく適用される。
【００５６】
本明細書において使用される用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」または「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」は、組成物、方法およびそのそれぞれの構成成分（複数可）を参照して使用され、必須であるか否かにかかわらず指定していない要素を含むことができる。
【００５７】
本明細書において使用される用語「から本質的になる」は、所与の実施形態に必要である要素を指す。用語は、本開示のその実施形態の基本的および新規または機能的特徴（複数可）に実質的に影響を与えない要素の存在を追加的に容認する。
【００５８】
用語「からなる」は、実施形態の記載に列挙されていないいかなる要素も含まない、本明細書に記載の組成物、方法およびそのそれぞれの構成成分を指す。
【００５９】
「造血幹細胞（ＨＳＣ）」は、すべての血液細胞を再生できる始原細胞である。発生の際に造血部位は、胎児肝臓から、成人期を通じて造血部位であり続ける骨髄に移動する。ＨＳＣは、多系列造血性分化能を有し、自己再生活性を維持している細胞である。「自己再生」は、分裂し、親細胞と同一の（例えば、自己再生）特徴を有する少なくとも１つの娘細胞を生成する細胞の能力を指す。第２の娘細胞は、特定の分化経路に拘束し得る。例えば自己再生造血幹細胞は、分裂し、１個の娘幹細胞および骨髄性またはリンパ系経路での分化に拘束された別の娘細胞を形成する。拘束された前駆細胞は、典型的には自己再生能力を失っており、細胞分裂でさらに分化した（すなわち、限定された）表現型を提示する２個の娘細胞を産生する。造血幹細胞は、骨髄または臍帯血移植を受けた個体において長期多系列造血（例えば「長期生着（ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ  ｅｎｇｒａｆｔｍｅｎｔ）」）を再生する能力を有する。造血幹細胞が、多能性幹細胞、多分化能幹細胞（例えばリンパ系幹細胞）、および／または特定の造血性系列に拘束された幹細胞を含むことは当技術分野において周知である。特定の造血性系列に拘束された幹細胞は、Ｔ細胞系列、Ｂ細胞系列、樹状細胞系列、ランゲルハンス細胞系列および／またはリンパ組織特異的マクロファージ細胞系列であってよい。追加的にＨＳＣは、長期ＨＳＣ（ＬＴ−ＨＳＣ）および短期ＨＳＣ（ＳＴ−ＨＳＣ）も指す。長期幹細胞は、典型的には移植後の多系列生着への長期（３カ月を超える）寄与を含む。短期幹細胞は、典型的には３カ月より短く持続する、および／または多系列ではないものである。ＬＴ−ＨＳＣおよびＳＴ−ＨＳＣは、例えばそれらの細胞表面マーカー発現に基づいて識別される。ＬＴ−ＨＳＣはＣＤ３４−、ＳＣＡ−１＋、Ｔｈｙ１．１＋／ｌｏ、Ｃ−ｋｉｔ＋、Ｕｎ−、ＣＤ１３５−、Ｓｌａｍｆｌ／ＣＤ１５０＋であり、一方ＳＴ−ＨＳＣはＣＤ３４＋、ＳＣＡ−１＋、Ｔｈｙ１．１＋／ｌｏ、Ｃ−ｋｉｔ＋、ｌｉｎ−、ＣＤ１３５−、Ｓｌａｍｆｌ／ＣＤ１５０＋、Ｍａｃ−１（ＣＤ１Ｉｂ）ｌｏ（「ｌｏ」は低発現を指す）である。追加的にＳＴ−ＨＳＣは、あまり静止状態ではなく（すなわち、より活動性）、ＬＴ−ＨＳＣよりも増殖性である。ＬＴ−ＨＳＣが無制限の自己再生を有する（すなわち、それらは成人期を通じて生存する）一方でＳＴ−ＨＳＣは限定された自己再生を有する（すなわち、それらは限定された期間だけ生存する）。
【００６０】
本明細書において使用される「薬学的に許容される担体」は、Ｇ−ＣＳＦもしくはＥ−セレクチン阻害剤または他の治療剤と組み合わせた場合に、その活性を維持し、被験体の免疫系と非反応性である任意の材料を含む。例は、これだけに限らないが、リン酸緩衝生理食塩溶液、水、油／水エマルジョンなどのエマルジョンおよび種々の種類の湿潤剤を含む。他の担体は、滅菌溶液、コーティングされた錠剤およびカプセルを含む錠剤も含む。典型的にはそのような担体は、デンプン、乳、糖、ある特定の種類のクレイ、ゼラチン、ステアリン酸もしくはその塩、ステアリン酸マグネシウムもしくはカルシウム、タルク、植物性脂肪もしくは油、ガム、グリコールまたは他の公知の賦形剤などの賦形剤を含有する。そのような担体は、香料および着色添加物または他の成分も含む場合がある。そのような担体を含む組成物は、周知の従来方法によって製剤化される。
【００６１】
用語「患者」、「被験体」、「個体」などは、本明細書において互換的に使用され、ｉｎ  ｖｉｔｒｏまたはｉｎ  ｓｉｔｕであるかにかかわらず本明細書に記載の方法に適した任意の動物またはその細胞を指す。ある特定の非限定的実施形態では、患者、被験体または個体はヒトである。
【００６２】
用語「治療」は、疾患を抑制すること（その発症を遅らせるまたは停止すること）、疾患の症状または副作用からの軽減を提供すること（待期療法を含む）および疾患を軽減すること（疾患の退縮を生じること）を含む疾患または状態の「処置すること（ｔｒｅａｔｉｎｇ）」または「処置（ｔｒｅａｔｍｅｎｔ）」を指す。対照的に予防的処置は、疾患の素因を有し得るが、まだ疾患の症状を経験していないまたは呈していない被験体において疾患または状態が生じることを予防することを指す。
【００６３】
本開示の主題の方法がここに記載される。
【００６４】
Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤の存在下での増強された再構成能および／または長寿命を有するＴ細胞の動員および採取
一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有するヒト末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、Ｇ−ＣＳＦ（または別の動員因子）を被験体に少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員され得る。これらの細胞は、採取されると、例えば免疫治療における使用のためにそのまま使用されてもよく、またはＴＣＲ改変もしくはＣＡＲ−Ｔ細胞に遺伝子改変されてもよい。一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわちＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高のＴ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。本セクションまたは他所の本開示のすべての実施形態では、目的の細胞は、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員される。ＶＬＡ−４遮断とＣＸＣＲ４アンタゴニスト（例えば、プレリキサホル、モゾビル）を含むがこれらに限定されない他の動員因子も使用され得る。それらの使用は下にさらに記載される。
【００６５】
Ｇ−ＣＳＦは、好中球顆粒球前駆細胞および成熟好中球の生存、増殖、分化および機能を刺激する糖タンパク質である。生存している生物では、Ｇ−ＣＳＦに関する３つの主な生物学的機能がある。すなわち：１．好中球の分化、増殖および成熟を駆動するための好中球前駆体細胞および骨髄性幹細胞への作用；２．免疫応答への参加のための成熟好中球への作用；ならびに３．造血機能を実施するための幹細胞因子、Ｆｌｔ−３リガンドおよびＧＭ−ＣＳＦなどの他の造血性増殖因子との協同作用である。臨床使用での組換えヒトＧ−ＣＳＦの少なくとも２つの形態は、好中球顆粒球形成の強力な刺激因子であり、一部の好中球減少症状態での感染合併症の予防における有効性が実証された。それらは、骨髄抑制処置からの好中球回復を加速するために使用され得る。ヒト形態のＧ−ＣＳＦは、１９８６年に日本および米国のグループによってクローニングされた（例えば、Ｎａｇａｔａら、Ｎａｔｕｒｅ３１９巻：４１５〜４１８頁、１９８６年を参照されたい）。天然ヒト糖タンパク質は、一方は１７５および他方は１７８アミノ酸の２つの形態で存在する。より豊富でより活性な１７５アミノ酸形態が組換えＤＮＡ技術による医薬品の開発において使用されている。
【００６６】
任意のＧ−ＣＳＦが本明細書に開示の方法において使用でき、それによりいくつかの実施形態が想定される。現在、市販で入手できる治療用に使用されるｒｈＧ−ＣＳＦに２つの主な分類がある。第１の分類は、分子量１９ｋＤで１７５アミノ酸を含み、そのアミノ末端はメチオニンである、Ｅ．ｃｏｌｉによって発現される組換えタンパク質（フィルグラスチム）；１７４アミノ酸およびグリコシル化による修飾を含む哺乳動物細胞ＣＨＯによって産生される組換えタンパク質を含む。ｒｈＧ−ＣＳＦのこの分類は、短時間作用性であり、現在公知の臨床使用のために毎日または毎週の複数回の注射が典型的には必要である。第２の分類は、そのタンパク質分子のＮ末端にペグ化（２０ｋＤ−ＰＥＧ）修飾を有するフィルグラスチムを含む。修飾ペグフィルグラスチムの分子量は、２倍であり、腎臓排出速度を低減し、フィルグラスチムの半減期を３．５時間から１５〜８０時間に増加させ、臨床使用を促進する。両方の分類で使用されるｒｈＧ−ＣＳＦは、Ｇ−ＣＳＦ単量体であるが、Ｇ−ＣＳＦ二量体も当技術分野において記載されている。他の商業的に入手できる組換えヒトＧ−ＣＳＦも存在し（例えばニューポジェンおよびニューラスタ（Ｎｅｕｌａｓｔａ））、そして他は開発中である。Ｂｏｎｉｇら、２０１５年。例えば：Ｂｉｏｓｉｍｉｌａｒ  ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ  ｆｏｒ  ｈｅａｌｔｈｙ  ｄｏｎｏｒ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ：  ｎｅｅｄ  ｗｅ  ｂｅ  ａｆｒａｉｄ？  Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ．２０１５年２月；５５巻（２号）：４３０〜９頁、ｄｏｉ：  １０．１１１１／ｔｒｆ．１２７７０．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年６月２６日；Ｍａｒｔｉｎｏ  Ｍ．ら、２０１４年、Ｌｏｎｇ−ａｃｔｉｖｅ  ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ  ｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ  ｆｏｒ  ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ  ｂｌｏｏｄ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ、Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ  Ｂｉｏｌ  Ｔｈｅｒ．２０１４年６月；１４巻（６号）：７５７〜７２頁、ｄｏｉ：  １０．１５１７／１４７１２５９８．２０１４．８９５８０９．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年３月５日；およびＨｏｇｇａｔｔら（２０１４年）、Ｎｅｗ  Ｇ−ＣＳＦ  ａｇｏｎｉｓｔｓ  ｆｏｒ  ｎｅｕｔｒｏｐｅｎｉａ  ｔｈｅｒａｐｙ、Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇ  Ｄｒｕｇｓ．２０１４年１月；２３巻（１号）：２１〜３５頁、ｄｏｉ：  １０．１５１７／１３５４３７８４．２０１３．８３８５５８．、Ｅｐｕｂ  ２０１３年９月２７日を参照されたい。
【００６７】
Ｇ−ＣＳＦは、静脈内にまたは任意の他の好適な方法によって投与されてよい。当業者は、投与の最良の経路を決定できる。Ｇ−ＣＳＦは、患者に、例えば経口、皮下注射により、血液への注入により投与されてよく、または標的組織部位へ直接送達されてよい。Ｇ−ＣＳＦは、単一用量、ボーラス、複数回注射または持続注入によって送達されてよい。例えばＧ−ＣＳＦは、血流、骨髄または身体の任意の位置に注射、注入または他の方法で投与されてよい。
【００６８】
Ｇ−ＣＳＦは、１つまたは複数の用量および／または処置レジメンで投与されてよい。一実施形態では、Ｇ−ＣＳＦは、１日あたり５μｇ／ｋｇから５μｇ／ｋｇの範囲の量で投与される。一実施形態では、Ｇ−ＣＳＦは、１日あたり０．５μｇ／ｋｇから５μｇ／ｋｇの間の用量で投与される。１つまたは複数の処置周期は、例えば合計３周期反復される場合があるが、任意の数の周期が検討されてよい。１日あたりの処置周期の数および用量あたりの量は、各周期の際に変更されてよい。例えば投与される製剤に応じて、投与されるＧ−ＣＳＦの用量は、１日１回フィルグラスチム（Ｆｉｌｇａｓｔｒｉｍ）（ｆｌｇ）約３００μｇから約９６０μｇ、または１日１回約５μｇ／ｋｇから約３２μｇ／ｋｇの範囲であってよい。一実施形態では、合計用量の２０から５０％部分は処置の開始時にボーラスとして与えられ、残りの部分は処置期間にわたって持続的に投与される。前述の範囲は、例示であり、他の要因のなかでも、患者のサイズ、年齢および健康、投与の経路、患者が摂取している他の薬物療法の数および濃度、患者の状態の重症度、組成物への患者の耐容性に応じて変更されてよい。例えば、７０ｋｇのヒトのための用量は、２ｍｌ注射での４８０μｇであってよく、適切な用量であり得る。最適なＧ−ＣＳＦスケジュールは、本開示の目的により当業者によって選択され得る。
【００６９】
ＨＳＣの動員のために利用されているおよび／または利用され得、かつ本明細書に開示のＴ細胞を動員するために使用され得る、他の非Ｇ−ＣＳＦ「動員因子」としては、ＣＸＣＲ４アンタゴニスト、ＶＬＡ−４阻害剤とＡＤＭ３１００（ＣＸＣＲ４阻害剤）との組合せが挙げられる。一実施形態では、動員因子は、ＳＣＦ、Ｆｌｔ３リガンド、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびＩＬ−１１から選択されてよく、造血を維持できる始原の、多能性前駆細胞を再生する。別の実施形態では、シクロホスファミドはＧ−ＣＳＦと組み合わされてよい。
【００７０】
本開示によれば、１つまたは複数のＥ−セレクチン阻害剤は、Ｇ−ＣＳＦと組み合わせて投与される。両方の薬剤の組合せ使用は好適に重複し、それにより一方の薬剤の治療効果（すなわち、使用後に患者への測定可能な利益が観察される期間）は、第２の薬剤の治療効果の期間と少なくとも一部の点で同時である。２種類の薬剤は、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞の所望の効果を達成するように一緒に作用する。これら２種類の薬剤は、一緒にまたは逐次的に投与されてよい。本明細書において使用される「一緒に」は、２種類の薬剤が同時に投与されることを意味するように使用される。それらは、同じ組成物中でまたは別々の組成物中で投与され得る。「一緒に」とは対照的に本明細書で「逐次的に」は、一方の薬剤と他方とが投与される間の間隙が重要であること、すなわち最初に投与される薬剤は、第２の薬剤が投与されるときにもはや血流中に治療量で存在しない可能性があることを意味するように使用される。どちらが最初または後で投与されてもよい。
【００７１】
Ｅ−セレクチン（ＣＤ６２Ｅ）は、活性化された内皮細胞で発現され、血管傷害部位への白血球リクルートメントにおいて重要な役割を演じる細胞接着分子である。ＧＭＩ−１２７１はＥ−セレクチンのシアリル−Ｌｅｘ炭水化物結合ドメインの生理活性コンホメーションを模倣するように設計されており、特異的Ｅ−セレクチン阻害剤である。Ｍｙｅｒｓら、２０１４年、Ｅ−Ｓｅｌｅｃｔｉｎ  Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ＧＭＩ−１２７１  Ｗｏｒｋｓ  ｉｎ  Ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  Ｌｏｗ−Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｗｅｉｇｈｔ  Ｈｅｐａｒｉｎ  ｔｏ  Ｄｅｃｒｅａｓｅ  Ｖｅｎｏｕｓ  Ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ａｎｄ  Ｂｌｅｅｄｉｎｇ  Ｒｉｓｋ  ｉｎ  ａ  Ｍｏｕｓｅ  Ｍｏｄｅｌ、Ｂｌｏｏｄ：１２４巻（２１号）、５９３〜５９３頁。一実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、次の構造：
【化１】
2018522040.tif 000002
によって表される化合物ＧＭＩ−１２７１すなわちナトリウム（１Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｓ）−３−（｛２−Ｎ−アセチルアミノ−２−デオキシ−３−Ｏ−［（１Ｓ）−１−カルボキシラート−２−シクロヘキルエチル］−β−Ｄ−ガラクトピラノシル｝オキシ）−４−（｛６−デオキシ−α−Ｌ−ガラクトピラシル｝オキシ）−５−エチル−シクロヘキサン−１−イル−（３８−オキソ−２，５，８，１１，１４，１７，２０，２３，２６，２９，３２，３５−ドデカオキサ−３９−アザヘンテトラコンタン−４１−イル）カルボキシアミドである
【００７２】
【００７３】
他の実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、ＧＭＩ−１２７１、ＧＭＩ−１０７０、ＧＭＩ−１３５９および他の糖模倣物（ｇｌｙｃｏｍｉｍｅｔｉｃ）から選択される。
【００７４】
任意の他のＥ−セレクチン阻害剤（複数可）は、本明細書に開示の方法において使用されてよい。一部の実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、シアリルルイスｘ（ｓＬｅｘ）またはｓＬｅｘ模倣物から選択される。Ｅ−セレクチン阻害剤は、Ｅ−セレクチンの他の小分子糖模倣物アンタゴニスト、Ｅ−セレクチンに方向付けられた抗体、Ｅ−セレクチンへのアプタマー、Ｅ−セレクチンに方向付けられたペプチドおよびペプチド模倣物からも選択されてよい。
【００７５】
Ｇ−ＣＳＦと同様に、１つまたは複数のＥ−セレクチン阻害剤は、静脈内にまたは任意の他の好適な方法によって投与されてよい。当業者は、投与の最良の経路を決定できる。少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、患者に、例えば経口、皮下注射により、血液への注入により投与されてよく、または標的組織部位へ直接送達されてよい。少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤（複数可）は、単一用量、ボーラス、複数回注射または持続注入によって送達されてよい。例えば少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、血流、骨髄または身体の任意の位置に注射、注入または他の方法で投与されてよい。
【００７６】
少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、同じまたは異なっていてよい１つまたは複数の用量および処置レジメンで投与されてよい。一実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、１日１回約１ｍｇ／ｋｇから約５０ｍｇ／ｋｇの範囲の量で投与される。別の実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤は、１日１回約１ｍｇ／ｋｇから約５ｍｇ／ｋｇの範囲の量で投与される。別の実施形態では、投薬量は、約１μｇ／ｋｇ、２５μｇ／ｋｇ、５０μｇ／ｋｇ、７５μｇ／ｋｇ、１００μｇ／ｋｇ、１２５μｇ／ｋｇ、１５０μｇ／ｋｇ、１７５μｇ／ｋｇ、２００μｇ／ｋｇ、２２５μｇ／ｋｇ、２５０μｇ／ｋｇ、２７５μｇ／ｋｇ、３００μｇ／ｋｇ、３２５μｇ／ｋｇ、３５０μｇ／ｋｇ、３７５μｇ／ｋｇ、４００μｇ／ｋｇ、４２５μｇ／ｋｇ、４５０μｇ／ｋｇ、４７５μｇ／ｋｇ、５００μｇ／ｋｇ、５２５μｇ／ｋｇ、５５０μｇ／ｋｇ、５７５μｇ／ｋｇ、６００μｇ／ｋｇ、６２５μｇ／ｋｇ、６５０μｇ／ｋｇ、６７５μｇ／ｋｇ、７００μｇ／ｋｇ、７２５μｇ／ｋｇ、７５０μｇ／ｋｇ、７７５μｇ／ｋｇ、８００μｇ／ｋｇ、８２５μｇ／ｋｇ、８５０μｇ／ｋｇ、８７５μｇ／ｋｇ、９００μｇ／ｋｇ、９２５μｇ／ｋｇ、９５０μｇ／ｋｇ、９７５μｇ／ｋｇ、１ｍｇ／ｋｇ、２ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、４ｍｇ／ｋｇ、５ｍｇ／ｋｇ、６ｍｇ／ｋｇ、７ｍｇ／ｋｇ、８ｍｇ／ｋｇ、９ｍｇ／ｋｇまたは１０ｍｇ／ｋｇを含むが、これらに限定されない任意の投薬量であり得る。他の実施形態では、これらの量および範囲のいずれかで１日１回を超えて、１日おきに、２日毎になどで投与される。さらなる処置周期の１回は、合計３周期反復されてよいが、任意の数の周期が検討される。１日あたりの処置の数および用量あたりの量は、各周期の際に変更されてよい。
【００７７】
一実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤はＧＭＩ−１２７１である。一実施形態では、０から３日目のＧ−ＣＳＦ、１日あたり１０μｇ／Ｋｇの投与と共に、ＧＭＩ−１２７１は２日目および３日目に０．５ｍｇ／ｋｇから５０ｍｇ／ｋｇの量で投与される。一実施形態では、本開示のＴ細胞は、４〜６日のＧＣＳＦ投与後に動員される。この動員は、血液採取前４日から１２時間にわたりＧＭＩ−１２７１が同時投与される場合に強化され得る。
【００７８】
Ｅ−セレクチン阻害剤の存在または非存在でのＧ−ＣＳＦへの応答におけるＴ細胞動員は、任意の公知方法によってアッセイされ得る。血液および血漿試料は、ベースラインでおよびこれらの薬剤での処置のさまざまな段階でサンプリングされてよい。
【００７９】
ＣＡＲ−Ｔ細胞の産生について下に記載の本明細書に開示の増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわちＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞の拡大増殖（ｅｘｐａｎｓｉｏｎ）および遺伝子改変の前に、本明細書に開示のＴ細胞の供給源は被験体から得られる。例えば少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦによる動員の後に得られた本明細書に開示のＴ細胞は、末梢血液単核細胞、骨髄、リンパ節組織、臍帯血、胸腺組織、感染の部位由来の組織、腹水、胸水、脾臓組織および腫瘍を含む多数の供給源から得られ得る。本開示のある特定の実施形態では、Ｔ細胞は、フィコール分離などの当業者に公知の多数の技術を使用して被験体から回収された血液単位から得られ得る。当業者は、選択の複数のラウンドが、本開示の内容でも使用され得ることを認識する。
【００８０】
一実施形態では、個体の循環血液由来の細胞は、アフェレーシスによって得られる。アフェレーシス産生物は、典型的にはＴ細胞を含むリンパ球、単球、顆粒球、Ｂ細胞、他の有核白血球、赤血球および血小板を含有する。一実施形態では、アフェレーシスによって回収された細胞は、血漿画分を除去するため、および続く処理ステップに適切な緩衝液または培地に細胞を置くために洗浄されてよい。本開示の一実施形態では細胞は、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄される。代替的実施形態では、洗浄溶液は、カルシウムを欠いており、マグネシウムを欠いていてよくまたは二価カチオンのすべてではなくとも多くを欠いていてよい。別の実施形態では、血液単核細胞（ＢＭＮＣ）は、密度勾配遠心分離などの任意の方法によって単離されてよい。Ｔ細胞は、ＢＭＮＣから分離されてよく、次いでさらに例えば磁気ビーズなどの周知方法を使用するポジティブおよびネガティブ選択によってさまざまなＴ細胞集団に分離されてよく、または特異的抗体を有する固相への親和性によってもしくは標識化細胞のＦＡＣＳによって単離されてよい。採取後細胞は、例えば、Ｃａ２＋不含有、Ｍｇ２＋不含有ＰＢＳ、ＰｌａｓｍａＬｙｔｅ  Ａまたは緩衝液を含むもしくは含まない他の生理食塩溶液などの種々の生体適合性緩衝液中に再懸濁されてよい。代替的にアフェレーシス試料の望ましくない構成成分は、除去されてよく、細胞は培養培地に直接再懸濁される。
【００８１】
別の実施形態では、Ｔ細胞は、赤血球を溶解し、例えばＰＥＲＣＯＬＬグラジエントを通じた遠心分離によってまたは向流遠心分離エルトリエーションによって単球を枯渇させることによって末梢血リンパ球から単離される。ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ３＋、ＣＤ２８＋、ＣＤ４＋、ＣＤ８＋、ＣＤ４５ＲＡ＋およびＣＤ４５ＲＯ＋Ｔ細胞などのＴ細胞の特定の亜集団は、ポジティブまたはネガティブ選択技術によってさらに単離され得る。例えば一実施形態では、Ｔ細胞は、ＤＹＮＡＢＥＡＤＳ  Ｍ−４５０  ＣＤ３／ＣＤ２８  Ｔなどの抗ＣＤ３／抗ＣＤ２８（すなわち、３ｘ２８）コンジュゲートビーズとの、所望のＴ細胞のポジティブ選択のために十分な時間にわたるインキュベーションによって単離される。別の実施形態では、Ｔ細胞は、抗ＣＤ６２Ｌビーズおよび抗ＣＤ８ビーズとのインキュベーションによって単離される。一実施形態では、時間は、約３０分間である。さらなる実施形態では、時間は、３０分間から３６時間またはそれより長くおよびその間のすべての整数値の範囲である。さらなる実施形態では、時間は、少なくとも１、２、３、４、５または６時間である。さらに別の実施形態では、時間は、１０から２４時間である。
【００８２】
ネガティブ選択によるＴ細胞集団の濃縮は、ネガティブに選択された細胞に特有の表面マーカーに方向付けられた抗体の組合せで達成され得る。１つの方法は、ネガティブ磁気免疫付着または、ネガティブに選択された細胞に存在する細胞表面マーカーに方向付けられたモノクローナル抗体のカクテルを使用するフローサイトメトリーを介した細胞選別および／または選択である。例えばネガティブ選択によってＣＤ８＋細胞について濃縮するために、典型的にはモノクローナル抗体カクテルは、ＣＤ１４、ＣＤ２０、ＣＤ１１ｂ、ＣＤ１６、ＨＬＡ−ＤＲおよびＣＤ４に対する抗体を含む。ある特定の実施形態では、典型的にはＣＤ８＋、ＣＤ２５＋、ＣＤ６２Ｌｈｉ、ＧＩＴＲ＋およびＦｏｘＰ３＋を発現する制御性Ｔ細胞について濃縮またはポジティブに選択することが望ましい場合がある。代替的にある特定の実施形態では、Ｔ制御性細胞は、抗Ｃ２５コンジュゲートビーズまたは他の類似の選択方法によって枯渇される。
【００８３】
これらの方法を実施することによって、本開示の１つまたは複数のＴ細胞集団は、単離され得る。本明細書において使用される用語として「細胞集団」は、大部分の細胞が同じ細胞型であるまたは同じ特徴を有する細胞の集団を包含する。細胞集団の一部として単一の細胞を分類するための好都合な１つの方法は、単一の細胞上で所与の細胞集団の細胞表面マーカーのレベルを決定することである。用語「細胞表面マーカー」および「細胞外細胞マーカー」は、本明細書において互換的に使用される。例えばＴ細胞は、ＣＤ６２Ｌ、ＣＣＲ７、ＣＤ４＋またはＣＤ８＋マーカーの存在もしくは非存在または相対的存在量に基づいて同定および分類され得る；それにより、１つの細胞集団はＣＤ４＋Ｔ細胞、またはＴヘルパー細胞である可能性がある。そのようなマーカーおよび分類は、当技術分野において周知であり、分類の任意の好適な方法は使用され得る（例えば、Ａｐｐａｙ，  Ｖ．ら、Ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ｓｕｂｓｅｔｓ：  ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  ａｎｄ  ｉｓｓｕｅｓ、Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ  Ａ．２００８年１１月；７３巻（１１号）：９７５〜８３頁、ｄｏｉ：  １０．１００２／ｃｙｔｏ．ａ．２０６４３．総説および／またはＤｅ  Ｒｏｓａら、１１−ｃｏｌｏｒ，  １３−ｐａｒａｍｅｔｅｒ  ｆｌｏｗ  ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ：  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｎａｉｖｅ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ，  ｆｕｎｃｔｉｏｎ，  ａｎｄ  Ｔ−ｃｅｌｌ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ、Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００１年２月；７巻（２号）：２４５〜８頁；米国特許公開第２０１５／０１１８２４７号、Ｇａｔｔｉｎｏｎｉ，  Ｌ．ら、２０１３年、Ｍｏｖｉｎｇ  Ｔ  ｍｅｍｏｒｙ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｃｌｉｎｉｃ、Ｂｌｏｏｄ１２１巻（４号）：５６７〜５６８頁；Ｇａｔｔｉｎｏｎｉ  Ｌら、Ｗｎｔ  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ａｒｒｅｓｔｓ  ｅｆｆｅｃｔｏｒ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｇｅｎｅｒａｔｅｓ  ＣＤ８＋  ｍｅｍｏｒｙ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．  Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００９年７月；１５巻（７号）：８０８〜１３頁、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｎｍ．１９８２．、Ｅｐｕｂ  ２００９年６月１４日およびＲｅｓｔｉｆｏ  Ｂｉｇ  ｂａｎｇ  ｔｈｅｏｒｙ  ｏｆ  ｓｔｅｍ−ｌｉｋｅ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ  Ｂｌｏｏｄ．２０１４年７月２４日；１２４巻（４号）：４７６〜７頁、ｄｏｉ：  １０．１１８２／ｂｌｏｏｄ−２０１４−０６−５７８９８９中の唯一の図に記載の詳細な方法を参照されたい）。
【００８４】
一部の追加的な例示的細胞表面マーカーおよび細胞集団は、図７に示されている。細胞集団は、別の細胞集団の亜種団であってもよい。例えばＴヘルパー細胞集団は、Ｔ細胞系列集団の亜集団であり、Ｔヘルパーエフェクター集団はＴヘルパー集団の亜集団である。別の細胞集団の亜集団である細胞集団の他の例は、図７に示されている。
【００８５】
Ｔ細胞が単離され、さまざまな亜集団に選別された後、本開示の方法のための目的の集団は、定量でき、所望により採取され得る。これらの採取された細胞の一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわちＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。実施形態の一部では目的のＴ細胞は、Ａｐｐａｙ，  Ｖ．ら、Ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ｓｕｂｓｅｔｓ：  ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  ａｎｄ  ｉｓｓｕｅｓ、Ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ  Ａ．２００８年１１月；７３巻（１１号）：９７５〜８３頁、ｄｏｉ：  １０．１００２／ｃｙｔｏ．ａ．２０６４３．総説および／またはＤｅ  Ｒｏｓａら、１１−ｃｏｌｏｒ，  １３−ｐａｒａｍｅｔｅｒ  ｆｌｏｗ  ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ：  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｎａｉｖｅ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ，  ｆｕｎｃｔｉｏｎ，  ａｎｄ  Ｔ−ｃｅｌｌ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ、Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００１年２月；７巻（２号）：２４５〜８頁に記載のマーカーおよび方法に基づいて選択される。
【００８６】
目的のＴ細胞の動員は、本明細書に開示の組合せ処置を投与することが、末梢血において所望の細胞の集団の増加をもたらす場合に、生じたと見なされる。動員は、組み合わせ処置の後の約１時間、２時間、３時間、４時間、６時間、８時間、１０時間、１２時間、１４時間、１６時間、１８時間、２０時間、２２時間、２４時間、２６時間、２８時間または３０時間で生じることができ、血液におけるＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞を含む目的のＴ細胞の蓄積は、投与の後の約１時間、２時間、３時間、４時間、６時間、８時間、１０時間、１２時間、１４時間、１６時間、１８時間、２０時間、２２時間、２４時間、２６時間、２８時間、３０時間、４０時間、５０時間、６０時間、６５時間、６６時間、６７時間、６８時間、６９時間、７０時間、７１時間、７２時間、７３時間、７４時間、７５時間、７６時間、７７時間、７８時間、７９時間、８０時間、８１時間、８２時間、８３時間、８４時間、８５時間、８６時間、８７時間、８８時間、８９時間、９０時間、９１時間、９２時間、９３時間、９４時間、９５時間、９６時間、９７時間、９８時間、９９時間、１００時間、１０１時間、１０２時間、１０３時間、１０４時間、１０５時間、１０６時間、１０７時間、１０８時間、１０９時間および／または１１０時間でピークとなり得る。
【００８７】
目的の細胞は、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦまたは別の動員因子によって動員される。一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわちＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。一実施形態では、少なくとも後者は、文献において増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するとして報告されている。Ｇａｔｔｉｎｏｎｉ，  Ｌ．ら、Ａ  ｈｕｍａｎ  ｍｅｍｏｒｙ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｓｕｂｓｅｔ  ｗｉｔｈ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ−ｌｉｋｅ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ、Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２０１１年９月１８日；１７巻（１０号）：１２９０〜７頁；Ｓｔｅｍｂｅｒｇｅｒら（２０１４年）、Ｌｏｗｅｓｔ  ｎｕｍｂｅｒｓ  ｏｆ  ｐｒｉｍａｒｙ  ＣＤ８（＋）  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｃａｎ  ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ  ｉｍｍｕｎｉｔｙ  ｕｐｏｎ  ａｄｏｐｔｉｖｅ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ、Ｂｌｏｏｄ．２０１４年７月２４日；１２４巻（４号）：６２８〜３７頁、ｄｏｉ：  １０．１１８２／ｂｌｏｏｄ−２０１３−１２−５４７３４９．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年５月２２日およびＧｒａｅｆら（２０１４年）、Ｓｅｒｉａｌ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ｓｉｎｇｌｅ−ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｉｍｍｕｎｏｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ  ｒｅｖｅａｌｓ  ｓｔｅｍｎｅｓｓ  ｏｆ  ＣＤ８（＋）  ｃｅｎｔｒａｌ  ｍｅｍｏｒｙ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ、Ｉｍｍｕｎｉｔｙ．２０１４年７月１７日；４１巻（１号）：１１６〜２６頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｉｍｍｕｎｉ．２０１４．０５．０１８。少なくとも１つの方法によりＴ細胞が増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有する場合、細胞は本開示の範囲内である。Ｔ細胞の増強された再構成能は、当業者に公知の種々の方法のいずれかによってアッセイされ得る。一実施形態では、Ｔ細胞の増強された再構成能は、恒常性シグナルでのそれらの自己再生能力およびＴ細胞受容体活性化後のそれらの多分化能を評価することによってアッセイされる。一実施形態では、このアッセイは、Ｇａｔｔｉｔｏｎｉ、２０１１年、上記に記載のとおり行われる。一実施形態では、再構成能は、マウスへの移植後に、当技術分野において公知の方法によって測定される。
【００８８】
Ｔ細胞の有効な寿命は、当業者に公知の種々の方法のいずれかによってアッセイされ得る。一実施形態では、Ｔ細胞の増強された寿命は、ＴＣＭおよびＴＥＭ細胞と比較してそれらの長期複製および生存能力を評価することによってアッセイされる。一実施形態では、このアッセイはＧａｔｔｉｔｏｎｉ、２０１１年、上記に記載のとおり行われる。別の実施形態では、それらがＣＡＲ−Ｔ細胞に転換された後のＴ細胞の増強された寿命が、養子移入されたＣＡＲ−Ｔ細胞としてのそれらの抗腫瘍有効性をアッセイすることによってアッセイされる。一実施形態では、このアッセイはＧａｔｔｉｔｏｎｉ、２０１１年、上記に記載のとおり行われる。一実施形態では、細胞は、それらがｉｎ  ｖｉｖｏで少なくとも１０年間０．１％ＰＭＢＣを超えて長期持続できる場合に増強された寿命を有する。一実施形態では（例えばマウスでは）、これは移植後１２週間である（＝寿命の２０％）。
【００８９】
Ｔ細胞を維持するまたは培養する方法は、当技術分野において周知である。一実施形態では、目的の細胞は、Ｇａｔｔｉｔｏｎｉ、２０１１年、上記に記載のとおり培養される。
【００９０】
Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤の存在下での血液への動員によって得られた、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞による免疫応答の調節
種々の刺激または障害に対する被験体の免疫応答は、被験体にＧ−ＣＳＦを少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員される、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞によって調節され得る。別の実施形態では、種々の刺激または障害に対する被験体の免疫応答は、被験体に別のＴ細胞動員因子を（Ｇ−ＣＳＦの代わりにまたは一緒に）少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員される、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞によって調節され得る。一部の実施形態では、Ｔ細胞動員因子は、ＶＬＡ−４遮断との選択されたＣＸＣＲ４遮断であってもよい。一実施形態では、細胞動員は、末梢血における所望のＴ細胞の数の増加を指す。
【００９１】
本明細書に開示の方法によって動員され得るＴ細胞（目的のＴ細胞）の一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ）／ＴＳＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。一実施形態では、本明細書に開示のＴ細胞および／または動員方法は、それを必要とする被験体において、がん、炎症、感染、自己免疫性障害、移植片拒絶の予防および／または移植から選択される少なくとも１つの状態の処置において使用され得る。
【００９２】
処置される少なくとも１つのがんは、脳、乳房、膵臓、肝臓、腎臓、肺、脾臓、胆嚢、肛門、精巣、卵巣、子宮頸部（ｃｅｒｖｉｃａｌ）、皮膚、骨、血液、および／または結腸がんを含むがんから選択され得、その処置が、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞の増加から利益を受ける。これらの状況では利益は、破壊のために標的がん細胞に特異的に適合されるようにさらに改変された本開示のＴ細胞の能力に由来してよい。
【００９３】
感染は、ウイルス感染、細菌感染および他の公知の感染から選択されてよい。これらの状況では利益は、例えばウイルス性抗原に結合する受容体の使用による、破壊のために標的感染細胞に特異的に適合されるようにさらに改変された本開示のＴ細胞の能力に由来してよい。
【００９４】
本明細書において使用される用語「自己免疫疾患」は、自己免疫性応答から生じる障害として定義される。自己免疫疾患は、自己抗原への不適切で過剰な応答の結果である。一実施形態では、自己免疫疾患の例は、これだけに限らないが特に、アジソン病、円形脱毛症（ａｌｏｐｅｃｉａ  ｇｒｅａｔａ）、強直性脊椎炎、自己免疫性肝炎、自己免疫性耳下腺炎、クローン病、糖尿病（Ｉ型）、ジストロフィー型表皮水疱症、精巣上体炎、糸球体腎炎、グレーブス病、ギランバレー症候群、橋本病、溶血性貧血、全身性エリテマトーデス、多発性硬化症、重症筋無力症、尋常性天疱瘡、乾癬、リウマチ熱、関節リウマチ、サルコイドーシス、強皮症、シェーグレン症候群、脊椎関節症、甲状腺炎、血管炎、白斑、粘液水腫、悪性貧血および潰瘍性大腸炎を含む。一実施形態では、本開示は、患者での化学療法および／または免疫治療が患者において顕著な免疫抑制を生じる任意の自己免疫疾患を処置することを提供する。これらの状況では利益は、免疫を再構成するＴ細胞の能力に由来する。
【００９５】
一実施形態では、方法は、被験体に、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞の有効量を投与することを含み、Ｔ細胞はＧ−ＣＳＦおよび少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤による動員によって得られたものである。
【００９６】
本明細書において使用される「有効量」は、治療的および予防的利益から選択される少なくとも１つの利益を提供する量を意味する。
【００９７】
用語「治療有効量」は、研究者、獣医、医師および他の臨床医によって求められる組織、系または被験体での生物学的または医学的応答を誘発する対象化合物の量を指す。用語「治療有効量」は、投与された場合に処置される障害または疾患の１つまたは複数の徴候または症状の発症を予防する、またはある程度緩和するために十分である化合物の量を含む。治療有効量は、化合物、疾患およびその重症度ならびに処置される被験体の年齢、体重などに応じて変化する。例えばがんの場合、治療効果は、がん細胞を死滅させること、がん細胞のアポトーシスを誘導すること、がん細胞の増殖速度を低減すること、転移の発生率もしくは数を低減すること、腫瘍サイズを低減すること、腫瘍増殖を抑制すること、腫瘍もしくはがん細胞への血液供給を低減すること、がん細胞もしくは腫瘍に対する免疫応答を促進すること、がんの進行を予防することもしくは抑制すること、またはがんを有する被験体の寿命を増大させることであってよい。
【００９８】
別の実施形態では、処置は、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞のｉｎ  ｖｉｖｏ動員（投与に続く単離は含まない）からなり、Ｔ細胞は、Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤による動員によって得られたものである。方法は、がん、感染、自己免疫性障害、移植片対宿主病もしくは移植の処置を受ける前の患者または、細胞が後にレシピエントに移植される可能性があるドナーに投与されてよい。
【００９９】
一部の実施形態では、用語「処置」は、疾患の進行の減速、中断、停止、逆転または停めることを意味し、疾患のすべての徴候および症状の完全な消失が必ずしも必要ではない。さらに処置された患者の１００％において処置が有効性を示す必要はなく、むしろ用語「処置」は、統計的に有意な割合の患者が、症状および臨床徴候が少なくとも改善を示すように有効に処置され得ることを意味することが意図される。当業者は、種々の統計的方法（例えば信頼区間、それらのｐ値の決定、スチューデントｔ検定、マン・ホイットニー検定など）を使用して割合が統計的に有意であるかどうかを容易に確立できる。信頼区間は、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％または少なくとも９９％の信頼度を有する。ｐ値は、０．１、０．０５、０．０１、０．００５または０．０００１である。
【０１００】
一実施形態では、Ｔ細胞は、先に開示されたとおりに動員される。動員されるとＴ細胞は、回収または採取されてよく、次いでそれを必要とする同じ被験体（自己移植）に戻してまたは別の被験体（同種間移植）に移植される。本明細書において使用される用語「自己」は、後に再導入される個体と同じ個体由来の任意の材料を指す。「同種」は、同じ種の異なる動物（例えばヒト）由来の移植片を指す。
【０１０１】
別の実施形態では、処置は、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞のｉｎ  ｖｉｖｏ動員（投与に続く単離は含まない）からなり、Ｔ細胞は、Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤による動員によって得られたものである。
【０１０２】
Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤の存在下での動員によって得られた、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞を用いた、ＣＡＲ−Ｔ細胞の産生
一実施形態では、例えば、Ｇ−ＣＳＦを被験体に少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員された、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞は、免疫治療または養子Ｔ細胞移入／移植においてそのまま使用されてもよい。一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわちＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。
【０１０３】
追加的に別の実施形態では、例えば、Ｇ−ＣＳＦを被験体にＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員された、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するこれらの同じＴ細胞は、ＣＡＲ−Ｔ細胞の産生のために使用されてよい。ＣＡＲは、内在性Ｔ細胞受容体と類似する様式でＴ細胞活性化を引き起こすことができる一方で、今日までのこの技術の臨床適用への主な障害はＣＡＲ−Ｔ細胞の限定的なｉｎ  ｖｉｖｏ拡大増殖および注入後の細胞の急速な消失である。したがって本明細書に開示のＴ細胞は、有益で、持続的であること、ならびに／またはがん、感染、炎症、および／もしくは自己免疫疾患の長期の有効な処置を提供することが期待される。
【０１０４】
回収後に、前段落で開示のＴ細胞、例えばＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋は、キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）と称されるそれらの表面上の特殊な受容体を産生するように遺伝子操作される。ＣＡＲは、Ｔ細胞が、例えば腫瘍細胞上の、特定のタンパク質（抗原）を認識できるようにするタンパク質である。次いでこれらの操作されたＣＡＲ−Ｔ細胞は、それらの数が数十億になるまで実験室で増殖される。次いでＣＡＲ−Ｔ細胞の拡大増殖された集団は、患者に注入される。がんの処置では、注入後、Ｔ細胞は患者の身体で増加し、それらの操作された受容体からの誘導で、その表面に抗原を保持しているがん細胞を認識し、死滅させる。別の実施形態では、炎症を生じる望まれないＴ細胞応答の「機能の喪失」をもたらすように天然に存在する制御性Ｔ細胞（ｎＴｒｅｇ）中にＣＡＲを移植でき、それにより進行中の自己免疫性障害を好転させる。例えば、Ｄｏｔｔｉ，  Ｇ．（２０１４年）、Ｔｈｅ  Ｏｔｈｅｒ  Ｆａｃｅ  ｏｆ  Ｃｈｉｍｅｒｉｃ  Ａｎｔｉｇｅｎ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｔｈｅｒａｐｙ（２０１４年）；２２巻、５号、８９９〜９００頁、ｄｏｉ：１０．１０３８／ｍｔ．２０１４．５８を参照されたい。
【０１０５】
ＣＡＲ−Ｔ細胞の遺伝子操作は、当技術分野において十分記載されており、当業者に日常的に利用可能な任意の分子生物学的技術によって実施され得る。例えば米国特許公開第２０１５０１１８２０２号を参照されたい。一実施形態では、本明細書に開示のＣＡＲは、他に抗原結合成分と称される標的特異的結合要素を含む。例えば米国特許第８，９７５，０７１号を参照されたい。成分の選択は、標的細胞の表面を定義するリガンドの種類および数に依存する。例えば抗原結合ドメインは特定の疾患状態に関連する標的細胞上の細胞表面マーカーとして作用するリガンドを認識するように選択されてよい。それにより、本明細書に開示のＣＡＲ中の抗原成分ドメインに対するリガンドとして作用できる細胞表面マーカーの例は、ウイルス性、細菌性および寄生生物感染、自己免疫疾患ならびに／またはがん細胞に関連するものを含む。
【０１０６】
一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞は、がん患者への移植後に種々のがんを処置するために使用され得る。それらは、進行急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）およびリンパ腫を含む種々のがんの処置に有望であることが示されている。
【０１０７】
ＣＡＲ−Ｔ細胞製造および送達は、次のステップ：（１）白血球アフェレーシス：患者のＴ細胞が末梢血から採取されるアフェレーシス；（２）Ｔ細胞活性化：Ｔ細胞は、人工樹状細胞（ＤＣ）として働くＡｂコーティングビーズを使用して活性化される；（３）形質導入またはトランスフェクション：Ｔ細胞は、抗遺伝子標的キメラ抗原受容体をコードする構築物でｅｘ  ｖｉｖｏで遺伝子的に形質導入されるかまたはトランスフェクトされる；（４）拡大増殖：遺伝子改変細胞は、さらにｅｘ  ｖｉｖｏ拡大増殖を受ける；（５）化学療法：患者は、Ｔ細胞注入の前に調製的リンパ枯渇レジメンを受ける；（６）注入：遺伝子操作されたＴ細胞は患者に注入される、を含み得る。Ｌｅｖｉｎｅ，  Ｂ．Ｌ．、Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ−ｅｎｈａｎｃｉｎｇ  ｄｒｕｇｓ：  ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｅｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  （ＣＡＲ）  Ｔ  ｃｅｌｌｓ、Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（２０１５年）２２巻、７９〜８４頁；ｄｏｉ：１０．１０３８／ｃｇｔ．２０１５．５；２０１５年２月１３日にオンラインで発表。本開示は、ステップ（１）において採取される細胞の品質を改善する。
【０１０８】
ＣＡＲ−Ｔ細胞産生のためにＴ細胞を採取し、ＣＡＲ−Ｔ細胞を使用する方法は、当業者に十分理解されており、種々の学術論文に記載および要約され使用されている。それらは、本開示の特異的なＴ細胞サブセットの選択および採取を導くために変更されてよい。例えば、Ｔｈｅｍｅｌｉら（２０１５年）；Ｓｈａｒｐｅら（２０１５年）、Ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｃａｎｃｅｒ  ｔｈｅｒａｐｙ：  ｏｐｐｏｒｔｕｎｉｔｉｅｓ  ａｎｄ  ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ、Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｍｏｄｅｌｓ  ａｎｄ  Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ、８巻（４号）３３７〜３５０頁；Ｒｉｄｄｅｌｌら、２０１３年、Ｃｈｉｍｅｒｉｃ  Ａｎｔｉｇｅｎ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ  Ｃｅｌｌｓ  −  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ  ｉｎ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｂｅｙｏｎｄ、Ｂｉｏｌ  Ｂｌｏｏｄ  Ｍａｒｒｏｗ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．２０１３年１月；１９巻（１０号）：Ｓ２〜Ｓ５；Ｋｅｒｓｈａｗら（２０１４年）、Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｃａｎｃｅｒ  ｔｈｅｒａｐｙ、Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ＆  Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（２０１４年）３巻、ｅ１６；ｄｏｉ：１０．１０３８／ｃｔｉ．２０１４．７；Ｂｒｅｎｔｊｅｎｓ  ＲＪ、Ｄａｖｉｌａ  ＭＬ、Ｒｉｖｉｅｒｅ  Ｉら、ＣＤ１９−ｔａｒｇｅｔｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｒａｐｉｄｌｙ  ｉｎｄｕｃｅ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｒｅｍｉｓｓｉｏｎｓ  ｉｎ  ａｄｕｌｔｓ  ｗｉｔｈ  ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ−ｒｅｆｒａｃｔｏｒｙ  ａｃｕｔｅ  ｌｙｍｐｈｏｂｌａｓｔｉｃ  ｌｅｕｋｅｍｉａ．  Ｓｃｉ  Ｔｒａｎｓｌ  Ｍｅｄ．２０１３年；５巻：１７７ｒａ３８；Ｇｒｕｐｐ  ＳＡ、Ｋａｌｏｓ  Ｍ、Ｂａｒｒｅｔｔ  Ｄら、Ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｆｏｒ  ａｃｕｔｅ  ｌｙｍｐｈｏｉｄ  ｌｅｕｋｅｍｉａ．  Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ．２０１３年；３６８巻：１５０９〜１５１８頁；Ｌｅｅ  ＤＷ、Ｓｈａｈ  ＮＮ、Ｓｔｅｔｌｅｒ−Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ  Ｍら、Ａｎｔｉ−ＣＤ１９  ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  （ＣＡＲ）  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｐｒｏｄｕｃｅ  ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ  ｗｉｔｈ  ａｃｃｅｐｔａｂｌｅ  ｔｏｘｉｃｉｔｙ  ｂｕｔ  ｗｉｔｈｏｕｔ  ｃｈｒｏｎｉｃ  Ｂ−ｃｅｌｌ  ａｐｌａｓｉａ  ｉｎ  ｃｈｉｌｄｒｅｎ  ｗｉｔｈ  ｒｅｌａｐｓｅｄ  ｏｒ  ｒｅｆｒａｃｔｏｒｙ  ａｃｕｔｅ  ｌｙｍｐｈｏｂｌａｓｔｉｃ  ｌｅｕｋｅｍｉａ  （ＡＬＬ）  ｅｖｅｎ  ａｆｔｅｒ  ａｌｌｏｇｅｎｅｉｃ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  （ＨＳＣＴ）［抄録］、Ｂｌｏｏｄ．２０１３年；１２２巻：抄録６８；Ｄａｖｉｌａ  ＭＬ、Ｒｉｖｉｅｒｅ  Ｉ、Ｗａｎｇ  Ｘら、Ｅｆｆｉｃａｃｙ  ａｎｄ  ｔｏｘｉｃｉｔｙ  ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ  ｏｆ  １９−２８ｚ  ＣＡＲ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｔｈｅｒａｐｙ  ｉｎ  Ｂ  ｃｅｌｌ  ａｃｕｔｅ  ｌｙｍｐｈｏｂｌａｓｔｉｃ  ｌｅｕｋｅｍｉａ．  Ｓｃｉ  Ｔｒａｎｓｌ  Ｍｅｄ．２０１４年；６巻：２２４ｒａ２５；Ｐａｒｋ  ＪＨ、Ｒｉｖｉｅｒｅ  Ｉ、Ｗａｎｇ  Ｘら、ＣＤ１９−ｔａｒｇｅｔｅｄ  １９−２８ｚ  ＣＡＲ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎｄｕｃｅ  ｈｉｇｈ  ｒａｔｅｓ  ｏｆ  ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｒｅｍｉｓｓｉｏｎ  ａｎｄ  ｄｕｒａｂｌｅ  ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ  ｉｎ  ａｄｕｌｔ  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ｗｉｔｈ  ｒｅｌａｐｓｅｄ，  ｒｅｆｒａｃｔｏｒｙ  Ｂ−ｃｅｌｌ  ＡＬＬ［抄録］、Ｂｌｏｏｄ．２０１４年；１２４巻：抄録３８２およびＬｅｖｉｎｅ，  Ｂ．Ｌ．、Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ−ｅｎｈａｎｃｉｎｇ  ｄｒｕｇｓ：  ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｅｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  （ＣＡＲ）  Ｔ  ｃｅｌｌｓ、Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（２０１５年）２２巻、７９〜８４頁；ｄｏｉ：１０．１０３８／ｃｇｔ．２０１５．５；２０１５年２月１３日にオンラインで発表、を参照されたい。
【０１０９】
一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞は、リン酸緩衝生理食塩水で拡大増殖、洗浄および濃縮され、５％Ａｌｂｕｍｅｘ２０を補充した滅菌生理食塩水１００ｍｌに製剤化した。ＣＡＲ−Ｔ細胞は、当業者によって決定される適切な細胞用量で投与され得る。一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞は、生細胞１×１０８個の最小値で投与される。再注入または移植されるＴ細胞の最大数は、当業者によって行われる臨床試験の際に典型的には決定される。
【０１１０】
任意のキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）は、本明細書に開示の細胞と共に使用され得る。一実施形態では、ＣＡＲは、さまざまなタンパク質由来のいくつかのドメインから構成されるキメラ構築物である、すなわち：（１）Ａｂから通常取られる抗原認識ドメイン、（２）ＣＤ３ζＴ細胞共受容体シグナル伝達ドメイン、および（３）抗原提示の際にＴ細胞活性化のために必要な共刺激ドメイン。Ｌｅｖｉｎｅ、２０１５年。任意の腫瘍抗原、Ｔ特異的抗原／腫瘍関連抗原は、標的化され得る。腫瘍抗原は、免疫応答、特にＴ細胞媒介免疫応答を誘発する、腫瘍細胞によって産生されるタンパク質である。例えば、Ｖｉｇｎｅｒｏｎ  Ｎ．（２０１５年）、Ｈｕｍａｎ  Ｔｕｍｏｒ  Ａｎｔｉｇｅｎｓ  ａｎｄ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ、Ｂｉｏｍｅｄ  Ｒｅｓ  Ｉｎｔ．  ２０１５；２０１５年；９４８５０１頁、ｄｏｉ：  １０．１１５５／２０１５／９４８５０１．、Ｅｐｕｂ  ２０１５年６月１６日を参照されたい。本明細書で開示の抗原結合成分の選択は、処置されるがんの具体的な種類に依存する。腫瘍抗原は、当技術分野において周知であり、例えば神経膠腫関連抗原、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、ベータ−ヒト絨毛性ゴナドトロピン、アルファフェトプロテイン（ＡＦＰ）、レクチン反応性ＡＦＰ、サイログロブリン、ＲＡＧＥ−１、ＭＮ−ＣＡ  ＩＸ、ヒトテロメラーゼ逆転写物酵素、ＲＵ１、ＲＵ２（ＡＳ）、腸カルボキシルエステラーゼ、ｍｕｔ  ｈｓｐ７０−２、Ｍ−ＣＳＦ、プロスターゼ、前立腺特異抗原（ＰＳＡ）、ＰＡＰ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＬＡＧＥ−１ａ、ｐ５３、プロステイン（ｐｒｏｓｔｅｉｎ）、ＰＳＭＡ、Ｈｅｒ２／ｎｅｕ、サバイビンおよびテロメラーゼ、前立腺癌腫瘍抗原−１（ＰＣＴＡ−１）、ＭＡＧＥ、ＥＬＦ２Ｍ、好中球エラスターゼ、エフリンＢ２、ＣＤ２２、インスリン増殖因子（ＩＧＦ）−Ｉ、ＩＧＦ−ＩＩ、ＩＧＦ−Ｉ受容体およびメソテリンを含む。本開示で参照する腫瘍抗原の種類は、腫瘍特異抗原（ＴＳＡ）または腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）であってもよい。ＴＳＡは、腫瘍細胞に特有であり、身体の他の細胞には生じない。ＴＡＡ関連抗原は、腫瘍細胞に特有ではなく、代わりに抗原への免疫学的寛容の状態を誘導できない条件下で正常細胞でも発現される。腫瘍上での抗原の発現は、免疫系が抗原に応答できるような条件下で生じ得る。ＴＡＡは、免疫系が未成熟であり、応答できない胎児発生の際に正常細胞で発現される抗原であってよく、または正常細胞で非常に低いレベルで通常存在するが、腫瘍細胞上でさらに高いレベルで発現される抗原であってよい。
【０１１１】
ＴＳＡまたはＴＡＡ抗原の非限定的例は、次の：ＭＡＲＴ−１／ＭｅｌａｎＡ（ＭＡＲＴ−Ｉ）、ｇｐ１００（Ｐｍｅｌ１７）、チロシナーゼ、ＴＲＰ−１、ＴＲＰ−２などの分化抗原、およびＭＡＧＥ−１、ＭＡＧＥ−３、ＢＡＧＥ、ＧＡＧＥ−１、ＧＡＧＥ−２、ｐ１５などの腫瘍特異的多系列抗原；ＣＥＡなどの過発現胚性抗原；ｐ５３、Ｒａｓ、ＨＥＲ−２／ｎｅｕなどの過発現癌遺伝子および変異腫瘍抑制遺伝子；染色体転座から生じる特有の腫瘍抗原；ＢＣＲ−ＡＢＬ、Ｅ２Ａ−ＰＲＬ、Ｈ４−ＲＥＴ、ＩＧＨ−ＩＧＫ、ＭＹＬ−ＲＡＲなど；ならびにエプスタイン・バーウイルス抗原ＥＢＶＡならびにヒトパピローマウイルス（ＨＰＶ）抗原Ｅ６およびＥ７などのウイルス性抗原を含む。他の大きな、タンパク質に基づく抗原は、ＴＳＰ−１８０、ＭＡＧＥ−４、ＭＡＧＥ−５、ＭＡＧＥ−６、ＲＡＧＥ、ＮＹ−ＥＳＯ、ｐ１８５ｅｒｂＢ２、ｐ１８０ｅｒｂＢ−３、ｃ−ｍｅｔ、ｎｍ−２３Ｈ１、ＰＳＡ、ＴＡＧ−７２、ＣＡ１９−９、ＣＡ７２−４、ＣＡＭ１７．１、ＮｕＭａ、Ｋ−ｒａｓ、ベータカテニン、ＣＤＫ４、Ｍｕｍ−１、ｐ１５、ｐ１６、４３−９Ｆ、５Ｔ４、７９１Ｔｇｐ７２、アルファフェトプロテイン、ベータＨＣＧ、ＢＣＡ２２５、ＢＴＡＡ、ＣＡ１２５、ＣＡ１５−３＼ＣＡ２７．２９＼ＢＣＡＡ、ＣＡ１９５、ＣＡ２４２、ＣＡ−５０、ＣＡＭ４３、ＣＤ６８＼Ｐ１、ＣＯ−０２９、ＦＧＦ−５、Ｇ２５０、Ｇａ７３３＼ＥｐＣＡＭ、ＨＴｇｐ−１７５、Ｍ３４４、ＭＡ−５０、ＭＧ７−Ａｇ、ＭＯＶ１８、ＮＢ／７０Ｋ、ＮＹ−ＣＯ−１、ＲＣＡＳ１、ＳＤＣＣＡＧ１６、ＴＡ−９０＼Ｍａｃ−２結合タンパク質＼シクロフィリンＣ関連タンパク質、ＴＡＡＬ６、ＴＡＧ７２、ＴＬＰおよびＴＰＳを含む。
【０１１２】
一実施形態では、ＣＡＲ中の抗原結合ドメインは、ＣＤ１９に結合する。一実施形態では、腫瘍抗原は、血液学的悪性疾患に関連している。別の実施形態では、腫瘍抗原は、固形腫瘍に関連している。さらに別の実施形態では、腫瘍抗原は、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＲＯＲ１、メソテリン、ＣＤ３３／ＩＬ３Ｒａ、ｃ−Ｍｅｔ、ＰＳＭＡ、糖脂質Ｆ７７、ＥＧＦＲｖＩＩＩ、ＧＤ−２、ＮＹ−ＥＳＯ−１  ＴＣＲ、ＭＡＧＥ  Ａ３  ＴＣＲおよびこれらの任意の組合せからなる群より選択される。一実施形態では、腫瘍抗原は、悪性腫瘍に関連する１つまたは複数の抗原性がんエピトープを含む。悪性腫瘍は、免疫攻撃のための標的抗原として働く場合がある多数のタンパク質を発現する。一実施形態では、これらの分子は、これだけに限らないがメラノーマ中のＭＡＲＴ−１、チロシナーゼおよびＧＰ１００ならびに前立腺がん中の前立腺酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）および前立腺特異抗原（ＰＳＡ）などの組織特異抗原を含む。他の実施形態では、他の標的分子は、癌遺伝子ＨＥＲ−２／Ｎｅｕ／ＥｒｂＢ−２などの形質転換関連分子の群に属する。標的抗原のさらに別の群は、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）などの腫瘍胎児性抗原である。Ｂ細胞リンパ腫では腫瘍特異的イディオタイプ免疫グロブリンは、個々の腫瘍に特有の真の腫瘍特異的免疫グロブリン抗原を構成する。ＣＤ１９、ＣＤ２０およびＣＤ３７などのＢ細胞分化抗原は、Ｂ細胞リンパ腫中の標的抗原に関する他の実施形態である。一部のこれらの抗原（ＣＥＡ、ＨＥＲ−２、ＣＤ１９、ＣＤ２０、イディオタイプ）は、モノクローナル抗体での受動的免疫治療のための標的として成功裏に使用されている。
【０１１３】
一実施形態では、ＣＡＲ中の共刺激シグナル伝達領域は、ＣＤ２７、ＣＤ２８、４−１ＢＢ、ＯＸ４０、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＰＤ−１、ＩＣＯＳ、リンパ球機能関連抗原−１（ＬＦＡ−１）、ＣＤ２、ＣＤ７、ＬＩＧＨＴ、ＮＫＧ２Ｃ、Ｂ７−Ｈ３、ＣＤ８３に特異的に結合するリガンドおよびこれらの任意の組合せからなる群より選択される共刺激分子の細胞内ドメインを含む。一実施形態では、ＣＡＲ中の抗原結合ドメインは、抗体またはその抗原結合断片である。一実施形態では、抗原結合断片は、ＦａｂまたはｓｃＦｖである。
【０１１４】
一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞は、ヒトにおいて投与後少なくとも３カ月持続する。別の実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞の持続集団は、ヒトにおいて投与後少なくとも４カ月、５カ月、６カ月、７カ月、８カ月、９カ月、１０カ月、１１カ月、１２カ月、２年または３年持続する。一実施形態では、本明細書に開示のＣＡＲ−Ｔ細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏで複製可能であり、持続性抗腫瘍効果をもたらすことができる血液または骨髄における長期持続を生じる。本明細書において使用される用語「抗腫瘍効果」は、腫瘍体積の減少、腫瘍細胞の数の減少、転移の数の減少、平均余命の増大またはがん性状態に関連する種々の生理学的症状の好転によって明らかになり得る生物学的効果を指す。一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞後代は、メモリーＴ細胞を含み得る。
【０１１５】
Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤の存在下での動員によって得られた、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞を用いた、遺伝子改変Ｔ細胞受容体を保有するＴ細胞（ＴＣＲ細胞）の産生
一実施形態では、例えば、Ｇ−ＣＳＦを被験体に少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員された、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞は、ある特定のＴ細胞受容体を発現するように改変された後に、そのまま免疫治療または養子Ｔ細胞移入／移植に使用され得る。一実施形態では、増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ／ＴＳＣＭ／ＴＣＭ）Ｔ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現している。
【０１１６】
追加的に別の実施形態では、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するこれらの同じＴ細胞は、例えば、Ｇ−ＣＳＦを被験体にＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員される。
【０１１７】
ＴＣＲ改変細胞の産生のために開示の細胞は、当業者に公知の任意の方法を使用して遺伝子改変され得る。例えばＴＣＲ保有構築物は、ウイルス形質導入（レトロウイルス、レンチウイルス）または電気穿孔法を介して細胞に導入され得る。これらの手順の例は、文献に見出すことができ、Ｂｅｒｔｏｌｅｔｔｉら（２０１５年）、Ｔ  ｃｅｌｌ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｔｈｅｒａｐｙ  ｉｎ  ＨＢＶ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｈｅｐａｔｏｃｅｌｌｕｌａｒｃａｒｃｉｎｏｍａ、Ｏｎｃｏｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ．２０１５年３月１９日；４巻（６号）：ｅ１００８３５４、ｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ２０１５年、Ｑａｓｉｍ  Ｗら（２０１５年）、Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  ｏｆ  ＨＣＣ  ｍｅｔａｓｔａｓｅｓ  ｗｉｔｈ  ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｒｅｄｉｒｅｃｔｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ，  ｔａｒｇｅｔｉｎｇ  ＨＢｓＡｇ  ｉｎ  ａ  ｌｉｖｅｒ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ  ｐａｔｉｅｎｔ．  Ｊ  Ｈｅｐａｔｏｌ．２０１５年２月；６２巻（２号）：４８６〜９１頁、ｄｏｉ：  １０．１０１６／ｊ．ｊｈｅｐ．２０１４．１０．００１．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年１０月１３日およびＬｅｖｉｎｅら（２０１３年）、Ａｄｏｐｔｉｖｅ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ｇｅｎｅ−ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ−ｃｅｌｌｓ  ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  ｔｏ  ｅｘｐｒｅｓｓ  ｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙ  ｔｃｒ’ｓ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ−ｔｅｓｔｉｓ  ａｎｔｉｇｅｎｓ  ＮＹ−ＥＳＯ−１  ｏｒ  ｌａｇｅ−１，  ｉｎ  ｍｕｌｔｉｐｌｅ  ｍｙｅｌｏｍａ  （ＭＭ）  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ｐｏｓｔ  ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ  （ＡＳＣＴ）、Ｃｙｔｏｔｈｅｒａｐｙ、１５巻、４号、増補、Ｓ１３頁を含む。ＴＣＲ媒介改変とＣＡＲ−Ｔ細胞産生との間の差異は当技術分野において記載されている、例えばＱａｓｉｍら（２０１４年）、Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ａｎｄ  ｐｒｏｓｐｅｃｔｓ  ｆｏｒ  ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｔｈｅｒａｐｉｅｓ．  Ｂｒ  Ｊ  Ｈａｅｍａｔｏｌ．２０１４年９月；１６６巻（６号）：８１８〜２９頁、ｄｏｉ：  １０．１１１１／ｂｊｈ．１２９８１．、Ｅｐｕｂ  ２０１４年６月１７日およびＫｅｒｓｈａｗら（２０１４年）、Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｃａｎｃｅｒ  ｔｈｅｒａｐｙ．  Ｃｌｉｎ  Ｔｒａｎｓｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ．２０１４年５月１６日；３巻（５号）：ｅ１６、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｃｔｉ．２０１４．７．  ｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ２０１４年。
【０１１８】
この手法において標的として使用され得る抗原の例は、上のＣＡＲ−Ｔ関連セクションにおいて見出すことができる。この分類での例は、幅広いがんでの発現を伴ってメラニン細胞分化抗原ＭＡＲＴ−１およびｇｐ１００ならびにＭＡＧＥ抗原およびＮＹ−ＥＳＯ−１を含む。
【０１１９】
Ｇ−ＣＳＦおよびＥ−セレクチン阻害剤の存在下での動員によって得られた、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するＴ細胞を用いた、分化したＴ細胞の産生
一実施形態では、増強された再構成能および／または長期の有効な寿命を有するとして本明細書に記載され、Ｇ−ＣＳＦを被験体にＥ−セレクチン阻害剤の存在下で投与することによって動員されたＴ細胞は、他のＴ細胞集団の産生のために使用され得る。Ｃｉｅｒｉら（２０１３年）、  ＩＬ−７  ａｎｄ  ＩＬ−１５  ｉｎｓｔｒｕｃｔ  ｔｈｅ  ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｍｅｍｏｒｙ  ｓｔｅｍ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｆｒｏｍ  ｎａｉｖｅ  ｐｒｅｃｕｒｓｏｒｓ、ＰｕｂＭｅｄ  Ｃｏｍｍｏｎｓ、Ｂｌｏｏｄ．２０１３年１月２４日；１２１巻（４号）：５７３〜８４頁、ｄｏｉ：  １０．１１８２／ｂｌｏｏｄ−２０１２−０５−４３１７１８．、Ｅｐｕｂ  ２０１２年１１月１５日の論評および  Ｇａｔｔｉｎｏｎｉら（２０１３年）、Ｍｏｖｉｎｇ  Ｔ  ｍｅｍｏｒｙ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｃｌｉｎｉｃ、Ｂｌｏｏｄ．２０１３年１月２４日；１２１巻（４号）：５６７〜８頁、ｄｏｉ：  １０．１１８２／ｂｌｏｏｄ−２０１２−１１−４６８６６０；Ｇａｔｔｉｔｏｎｉ，  Ｌ．ら（２０１１年）、Ａ  ｈｕｍａｎ  ｍｅｍｏｒｙ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｓｕｂｓｅｔ  ｗｉｔｈ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ−ｌｉｋｅ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ、Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２０１１年９月１８日；１７巻（１０号）：１２９０〜７頁、ｄｏｉ：  １０．１０３８／ｎｍ．２４４６による論評を参照されたい。
【０１２０】
さまざまなＣＤ８＋Ｔ細胞サブセットがある。ナイーブ、Ｔ幹細胞（ＴＳＣＭ）およびＴセントラルメモリー（ＴＣＭ）細胞は、循環し、リンパ系組織に移動する一方でエフェクターメモリーＴ細胞（ＴＥＭ）およびエフェクターＴ細胞（ＴＥＦＦ）は、末梢組織に輸送する能力を有する。ＣＤ８＋Ｔ細胞の分化について多数のモデルがある。ＪｏｓｈｉおよびＫａｅｃｈ（２００８年）、Ｅｆｆｅｃｔｏｒ  ＣＤ８  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ：  ａ  ｂａｌａｎｃｉｎｇ  ａｃｔ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｍｅｍｏｒｙ  ｃｅｌｌ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ａｎｄ  ｔｅｒｍｉｎａｌ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ．  Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８０巻、１３０９〜１３１５頁。１つのモデルは、ナイーブＴ細胞の活性化に続いて、Ｔ細胞の３つの主な循環サブセット（ＴＳＣＭ、ＴＣＭおよびＴＥＭ）を通じた進行性の分化があり、ＴＥＦＦが最終的に分化したＴ細胞を表していることを提案するＣＤ８＋Ｔ細胞の分化についての直線モデルである。さまざまなＴ細胞サブセットを標的化することは、遺伝子改変Ｔ細胞療法の有効性および持続性を増加できる。したがって、本明細書に開示の細胞から誘導され得る細胞の非限定的例は、ＴＣＭ、ＴＥＭ、ＴＥＦＦ、Ｔｒｅｇを含む。Ｔｒｅｇは、Ｔ細胞応答を弱めるように作用できる免疫抑制細胞である。ある特定のヒト自己免疫性、感染性およびアレルギー性疾患は、欠陥のある制御性Ｔ細胞機能と関連している。Ｔｒｅｇの養子移入は、これらの障害に対して可能性がある処置と考えられている。Ｔｒｅｇの使用に関する参考文献の例として、例えば、Ｂｌｕｅｓｔｏｎｅら（２０１５年）、Ｔｈｅ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｏｆ  ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔ  ｏｆ  ａｕｔｏｉｍｍｕｎｅ  ｄｉｓｅａｓｅ、Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ  Ｔｈｅｒ  Ｔａｒｇｅｔｓ．２０１５年４月１６日：１〜１３頁およびＴａａｍｓら（２００６年）、Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｄｉｓｅａｓｅ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｆｏｒ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ、Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ．２００６年５月；１１８巻（１号）：１〜９頁を参照されたい。例えば大腸炎は、結腸におけるＣＥＡ（癌胎児性抗原）などのタンパク質標的に対して反応する患者自身のＴ細胞によって生じることから、Ｔｒｅｇはこれらの免疫応答を抑制でき、健康な結腸を回復できる。免疫恒常性の間、Ｔｒｅｇは自己反応性ＴＥＦＦ細胞の作用を均衡させ、それにより末梢性寛容に加わっている。この工程は、Ｔｒｅｇ対ＴＥＦＦの数または機能に不均衡がある１型糖尿病を含む多数の疾患において調節不全である。
【０１２１】
組成物
同様に本開示の範囲内であるのは、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員されるＴ細胞を含む組成物である。一実施形態では、これらの組成物は、開示のＴ細胞および少なくとも１つの抗体を含む。一実施形態では、少なくとも１つの抗体は、ＣＤ４４、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ４５ＲＯ、ＣＣＲ７、ＣＤ４５ＲＡ、ＣＤ６２Ｌ、ＣＤ２７、ＣＤ２８、ＩＬ−７Ｒα、ＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１に対する抗体から選択される。一実施形態では、組成物は、開示のＴ細胞を人工細胞増殖培地中に含む。一実施形態では、この培地は細胞の増殖を許容する。一実施形態では、この培地は細胞分化を許容する。一実施形態では、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤はＧＭＩ−１２７１であり、少なくとも１つの動員因子はＧ−ＣＳＦである。一実施形態では、動員は、ＣＸＣＲ４をＶＬＡ−４と組み合わせて遮断することによって行われる。これらの組成物の一実施形態では増強された再構成能および／または長寿命を有する末梢血ナイーブ／メモリー幹細胞（すなわち（ＴＮ／ＴＣＭ／ＴＳＣＭ）Ｔ細胞は、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員されるＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋細胞である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員されるＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋Ｔ細胞である。一実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現しており、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員される。
【０１２２】
一実施形態では、本開示は、改変自己ヒトＴ細胞の集団の抗腫瘍有効量を含む医薬組成物であって、Ｔ細胞が、キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）をコードする核酸配列を含み、ＣＡＲ−Ｔ細胞に操作されるＴ細胞が、本明細書に開示の方法に従って産生される、医薬組成物を提供する。一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞が作製されたＴ細胞はＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高Ｔ細胞である。一実施形態では、ＣＡＲ−Ｔ細胞が作製されたＴ細胞は、ＣＤ６２Ｌ高／＋ＣＣＲ７＋である。一部の実施形態では、目的のＴ細胞は、ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌ高ＣＣＲ７＋Ｔ細胞である。別の実施形態では、目的のＴ細胞は、ナイーブＴ細胞に特徴的なＣＤ４５ＲＯ−、ＣＣＲ７＋、ＣＤ４５ＲＡ＋、ＣＤ６２Ｌ＋、ＣＤ２７＋、ＣＤ２８＋およびＩＬ−７Ｒα＋Ｔ細胞コンパートメント内で見出すことができ、多量のＣＤ９５、ＩＬ−２Ｒβ、ＣＸＣＲ３およびＬＦＡ−１を発現しており、少なくとも１つのＥ−セレクチン阻害剤の存在下でＧ−ＣＳＦ（または別の動員因子）によって動員される。
【０１２３】
一実施形態では、Ｔ細胞の抗腫瘍有効量は、そのような細胞を必要とするヒトの体重１ｋｇあたり細胞１０４から１０９個である。一実施形態では、Ｔ細胞の抗腫瘍有効量は、そのような細胞を必要とするヒトの体重１ｋｇあたり細胞１０７から１０８個である。一実施形態では、Ｔ細胞の抗腫瘍有効量は、そのような細胞を必要とするヒトの体重１ｋｇあたり細胞１０５から１０６個である。
【実施例】
【０１２４】
Ｉ．ＣＤ８＋ＣＤ６２Ｌｈｉ  ＣＤ４４＋細胞の動員の増大
次の分類を次の実験において使用した。すべてのＣＤ８＋細胞の中で、Ｔナイーブ集団はＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ４４−であり；ＴＣＭ／ＳＣＭ集団はＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ４４＋であり；ＴＥＭ集団はＣＤ４４＋ＣＤ６２−集団である。ＴＣＭ／ＳＣＭマウス細胞集団の増加が下に観察される（図１から６を参照されたい）。
【０１２５】
マウスのコホート（Ｃ５７ｂｌ／６成体１０週齢オス）にＧ−ＣＳＦ（フィルグラスチム（Ｆｉｌｇａｓｔｉｍ）、Ａｍｇｅｎ）を注射１回あたり１２５ｕｇ／ｋｇ、１日２回、皮下注射で屠殺前に合計７２時間にわたり投与した（非動員対照群＃１は、代わりに生理食塩水注射を受けた）。
【０１２６】
これらのマウスにＥ−セレクチン模倣物アンタゴニストＧＭＩ−１２７１（注射１回あたり４０ｍｇ／ｋｇ、１日２回腹腔内注射）を、屠殺前の特定の時点で同時投与し、最後のＧＭＩ−１２７１注射を、屠殺の正確に１時間前に常に行った。一般にすべてのマウスに毎日午前９時および午後６時に１群あたりｎ＝４で注射した。注射群は図１に概要を示し、下に詳述する。
【０１２７】
マウス群は：群１．非動員対照、群２．Ｇ−ＣＳＦのみの対照、群３．１４時間ＧＭＩ−１２７１、群４．２４時間ＧＭＩ−１２７１、群５．４８時間ＧＭＩ−１２７１、群６．７２時間ＧＭＩ−１２７１であった。
【０１２８】
３日（７２時間）後、Ｇ−ＣＳＦ投与マウスを安楽死投与し、心臓穿刺によって回収した血液をヘパリン処理した。全血白血球数を自動血球計数器（Ｂｅｃｋｍａｎ−Ｃｏｕｌｔｅｒ  ＫＸ−２１）を使用して計数した。フローサイトメトリーのために、Ｗｉｎｋｌｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ２０１２年の方法論に従って赤血球を最初にアンモニウム溶解を使用して溶解し、次いで血液白血球を２％ウシ胎仔血清を含有するリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄し、過剰なＦｃＢｌｏｃｋ（内在性Ｆｃ受容体を遮断するためのＣＤ１６／ＣＤ３２ハイブリドーマ２．４Ｇ２上清）の存在下で氷上でインキュベートした。細胞を抗体ＣＤ４−パシフィックブルー、ＣＤ８−ｐｅＣＹ７、ＣＤ６２Ｌ−ＢＶ６０５、ＣＤ４４−ＡＦ７００を、上のそれぞれのコンジュゲート化モノクローナル抗体０．５ｕｇを含有する体積１００ｕＬあたり白血球およそ５百万個の最終濃度で使用して染色した。すべてのコンジュゲート化抗体はＢｉｏｌｅｇｅｎｄ、ＣＡから購入した。氷上４０分間インキュベーション後、細胞を過剰な抗体を除去するために洗浄した（１ｍＬ  ＰＢＳの添加、３７０ｘｇ、５分間、４Ｃでの遠心分離、上清の除去および２％ウシ胎仔血清を含む１００ｕＬ  ＰＢＳ中へのペレットの再懸濁による）。細胞のフローサイトメトリーを電圧およびゲーティング方針を設定するために未染色血液および単色対照を使用して８色ＣＹＡＮ（Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ）で実施した。
【０１２９】
ＣＤ８＋Ｔ細胞サブセットをＣＤ６２およびＣＤ４４染色に基づいて分類した。日常的方法論に従い、ＣＤ８＋ナイーブＴ細胞はＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ４４−、ＣＤ８＋Ｔ  ＣＭ／ＳＣＭ細胞はＣＤ６２ｈｉ  ＣＤ４４＋二重陽性、およびＴＥＭはＣＤ４４＋およびＣＤ６２陰性。
【０１３０】
次にデータをＦｌｏｗ  Ｊｏソフトウェアを使用して解析し、エクセルソフトウェアで照合した。図および統計はプリズムソフトウェアを使用するＡＮＯＶＡによった。
【０１３１】
ＩＩ．ＣＣＲ７細胞の動員の増大
方法および材料：
【０１３２】
１）検査動物：
１．種：マウス
２．系統：Ｂａｌｂ／ＣおよびＣ５７Ｂｌ／６
３．齢および性別：７〜９週、メス
４．供給源：Ｈａｒｌａｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ
５．合計数：２５
【０１３３】
２）検査物質：
検査物質の調製：
【０１３４】
粉末形態のＧ−ＣＳＦおよびＧＭ−１２７１。検査薬剤は生理食塩水で再構成した。６００μｇのＧ−ＣＳＦを６．５ｍＬの滅菌生理食塩水に溶解し、濃度９２．３０７μｇ／ｍＬを生じた。動物に１時点あたり０．１ｍＬの用量溶液を投与し、Ｇ−ＣＳＦについての用量濃度はマウス１匹、１時点あたり９．２３μｇであった。
【０１３５】
７０ｍｇのＧＭ−１２７１を７ｍＬの滅菌生理食塩水で再構成し、濃度１０ｍｇ／ｍＬを生じた。動物に１時点あたり０．１ｍＬの用量溶液を投与し、ＧＭ−１２７１についての用量濃度はマウス１匹、１時点あたり１ｍｇであった。
３）動物処置：
１．動物の処置は、研究プロトコールに従い、ＵＳＤＡ  Ａｎｉｍａｌ  Ｗｅｌｆａｒｅ  Ａｃｔ（９  ＣＦＲ  Ｐａｒｔｓ  １，２  ａｎｄ  ３）に概略される規制およびＧｕｉｄｅ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ｃａｒｅ  ａｎｄ  Ｕｓｅ  ｏｆ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ａｎｉｍａｌｓ（ＩＬＡＲ  ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ、ＮＲＣ、２０１１、Ｔｈｅ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ａｃａｄｅｍｉｅｓ  Ｐｒｅｓｓ）に指定される条件に順守するＮｏｂｌｅ  ＳＯＰにも従った。Ｔｈｅ  Ｎｏｂｌｅ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃａｒｅ  ａｎｄ  Ｕｓｅ  Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ（ＩＡＣＵＣ）は、許容可能な標準的動物福祉および人道的ケアの遵守を保証するために完了の前に研究プロトコールを承認した。
【表１】
2018522040.tif 000003
【０１３６】
５）実験手順：
１．末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）の調製：
ＰＢＭＣを精製するために全血中の赤血球（ＲＢＣ）をＡＣＫ溶解緩衝液（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ａ１０４９２０１）を使用して溶解した。全血をＡＣＫ溶解緩衝液と比１：２５で混合し、室温、振とう機上で５分間インキュベートした。細胞を３５０ｇ、７分間遠心分離し、上清を廃棄した。精製ＰＢＭＣを２％ＦＢＳを含有するＰＢＳ中に懸濁した。細胞計数を実施し、２５０ｘｇで１０分間ペレットにし、Ｃａ２＋およびＭｇ２＋（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓカタログ＃１４０２５−０９２）に加えて、０．０５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含有する５ｍｌ  ＨＢＳＳ中に抗体染色のために細胞２〜３×１０６個／ｍＬで懸濁した。
２．抗体染色
チューブ（５ｍＬポリプロピレン丸底チューブ（ＢＤ  Ｆａｌｃｏｎチューブ＃３５２０６３、ＶＷＲカタログ＃６０８１９−７２８））１本あたり細胞１００ｕｌ（細胞２〜３×１０５個）を加える。表示の量のＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ４８８（登録商標）標識抗体を表３に示すとおり加え、直ちに氷上に置く。
チューブを４℃、１時間置き、次いで冷ＨＢＳＳ／ＢＳＡ  ２ｍＬを各チューブに加え、細胞２５０ｘｇ、１０分間ペレットにする。上清を捨て、細胞ペレットを１ｍＬ冷ＨＢＳＳ／ＢＳＡ中に懸濁する。細胞を２５０ｘｇ、１０分間ペレットにし、上清を捨て、細胞ペレットを２５０マイクロリットルＨＢＳＳ／ＢＳＡ中に懸濁する。２５０マイクロリットル２％ホルムアルデヒド（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｉｎｃ．カタログ＃０４０１８、１０％ｕｌｔｒａｐｕｒｅ、ＥＭグレード、メタノール不含有）を加える。フローサイトメトリーに進む。
３．フローサイトメトリー
蛍光は、Ａｔｔｕｎｅ（登録商標）ＮｘＴ  Ａｃｃｏｕｓｔｉｃ  Ｆｏｃｕｓｉｎｇ  Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）に備えられたプリセットレーザーを使用して５３０ｎｍでの発光を伴う４８８ｎｍでの青色レーザー励起を介して取得した。２ｘ１０４の事象を各試料について回収し、Ａｔｔｕｎｅ（登録商標）ＮｘＴ  Ｃｙｔｏｍｅｔｒｉｃ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ  ｖ２．１を使用して分析した。結果は、蛍光強度中央値、所与のマーカーについての％細胞陽性としておよび特異的マーカーを発現している１ｍＬあたりの細胞濃度として記録した。
【表２】
2018522040.tif 000004
【０１３７】
これらの実験は、Ｂａｌｂ／ｃ（上表）およびＢＬ６（下表）マウス系統の両方において行われた。結果は、両方の系統においてＧ−ＣＳＦへのＧＭＩ−１２７１の添加がＣＣＲ７＋細胞の動員を増大させることを示している。
【表３】
2018522040.tif 000005
【表４】
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【図１】
2018522040.tif 000007
【図２】
2018522040.tif 000008
【図３】
2018522040.tif 000009
【図４】
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【図５】
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【図６】
2018522040.tif 000012
【図７−１】
2018522040.tif 000013
【図７−２】
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【図７−３】
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【国際調査報告】
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