(57)【要約】  細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、を含み、前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することである、細胞のテロメアを伸長させる方法と、物理的刺激によりテロメアが伸長された細胞と、を開示する。本発明による細胞のテロメアを伸長させる方法は、従来の方法に比べて、簡単であり、時間、コスト、効果の効率性、及び安全性の面で優れている。また、本発明の方法は、単にテロメアを伸長させるにとどまらず、細胞分裂を誘導し、抗老化効果を有するため、これによりテロメア長の短縮による問題だけでなく、老化に関連する様々な疾患や症状を改善および予防することができるものと期待できる。【選択図】図１
2022501050.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、
前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、
を含み、
前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することである
ことを特徴とする細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項２】
前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つである
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項３】
前記細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階は、
細胞と培地を混合した後、前記混合物に物理的刺激を提供するか、
培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合するか、
細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合するか、
細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、
培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、
細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合するか、
細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか
の方式の中から選択されるいずれか一つの方式により行われる
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項４】
前記物理的刺激は超音波刺激であり、
前記直接的な超音波刺激は、強度が０．１〜３Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴とし、
前記間接的な超音波刺激は、強度が１〜２０Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分である
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項５】
前記物理的刺激は熱刺激であり、
前記温度変化刺激は、細胞を４０〜５０℃の温度条件下で１〜１０分露出させた後、０〜４℃の温度条件下で５〜１０秒間露出させることにより加えられる
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項６】
前記物理的刺激は光刺激であり、
前記光刺激は、レーザー光または発光ダイオード（ｌｉｇｈｔ−ｅｍｉｔｔｉｎｇ  ｄｉｏｄｅ）光のいずれか一方の、波長帯域３００〜９００ｎｍのパルス型ビームを１〜１０秒間照射することにより加えられる
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項７】
前記細胞は、それぞれ哺乳類由来の幹細胞、前駆細胞、繊維芽細胞、角質細胞、または器官内の組織細胞からなる群から選択される
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項８】
前記培地は、培養培地または分化誘導培地から選択される
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項９】
前記混合物の培養は、１時間〜１０日間行われる
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項１０】
前記培養後、前記細胞における、ＴＥＲＴ、ＴＥＲＦ２、ＤＫＣ１、ＴＥＲＦ２ＩＰ、ＲＦＣ１、ＲＡＤ５０、ＴＥＲＦ１、ＰＩＮＸ１、ＴＮＫＳ１ＢＰ１、ＡＣＤ、ＮＢＮ、ＨＳＰＡ１Ｌ、ＰＡＲＰ１、ＰＴＧＥＳ３、ＳＭＧ６、ＢＬＭ、ＸＲＣＣ５、ＸＲＣＣ６、ＥＲＣＣ４、ＰＲＫＤＣ、ＴＥＰ１、及びβ−カテニンの中から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が増加する
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項１１】
前記培養後、前記細胞におけるテロメラーゼ活性が上昇することを特徴とする、請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項１２】
前記培養後、前記細胞におけるβ−ガラクトシダーゼ活性が低下する
請求項１に記載の細胞のテロメアを伸長させる方法。
【請求項１３】
物理的刺激によりテロメアが伸長された
ことを特徴とする細胞。
【請求項１４】
前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つである
請求項１３に記載の細胞。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞のテロメアを伸長させる方法に係り、さらに詳しくは、細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供して、前記細胞のテロメアを伸長させる方法、および、上記のような方法によりテロメアが伸長された細胞に関する。
【背景技術】
【０００２】
テロメア（ｔｅｌｏｍｅｒｅ）は、染色体の両端にあるＤＮＡ繰り返し構造（ヒトではＴＴＡＧＧＧ）である。テロメアは、シェルテリン（ｓｈｅｌｔｅｒｉｎ）複合体と結合して保護キャップを形成し、これは、細胞の増幅機能を調節し、細胞分裂時に染色体同士の結合と遺伝情報の消失を防止する役割を果たす。ＤＮＡポリメラーゼは３’末端すべてを増幅できないため、テロメアは、毎細胞分裂ごとに３０〜２００ｂｐほど短くなる。テロメアが閾値よりも短くなり、コーディングＤＮＡに近づいて、テロメアのループ（ｌｏｏｐ）構造を維持できなくなると、露出されたテロメアは、ｐ５３またはｐ１６ＩＮＫ４ａシグナル伝達システムにより認識され、細胞分裂が停止し、老化して死滅していく。
【０００３】
テロメアは、逆転写酵素であるテロメラーゼ（ｔｅｌｏｍｅｒａｓｅ）によって伸長することができるが、ヒトテロメラーゼ複合体は、テロメアの合成のテンプレート（鋳型）として作用するＲＮＡ分子であるＴＥＲＣ、触媒サブユニットであるＴＥＲＴ、ＤＫＣ１及びＴＥＰ１などの補助タンパク質から構成されている。通常の場合、体細胞のテロメラーゼ活性はほとんど存在せず、活発な分裂能を必要とする幹細胞および前駆細胞でのみ高い活性が検出される。
【０００４】
テロメアが短くなり、多数の細胞の分裂が停止すると、さまざまな問題が発生したり、特に、老化（ａｇｉｎｇ）と変性（ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ：退化）をはじめとする様々な症状が現れたりすることがある。皮膚組織変性の先天性角化異常症（ｄｙｓｋｅｒａｔｏｓｉｓ  ｃｏｎｇｅｎｉｔａ）および血液細胞が不足する再生不良性貧血（ａｐｌａｓｔｉｃ  ａｎｅｍｉａ）などの骨髄細胞の再生に問題が生じる疾病は、テロメラーゼまたはこれを含むシェルテリン複合体関連遺伝子の変異などのテロメア維持機能の異常が原因で現れることが既に明らかになっている。最近の研究結果では、高血圧、代謝症候群、糖尿病、認知症などの老化関連疾患を患っている患者は、通常の人よりもテロメアが短いことが示されているため、テロメア長を長くすることによって老化を遅らせる可能性に関する研究が説得力を得ている。また、テロメラーゼ活性がほとんどないことが一般的に知られている体細胞では、テロメラーゼ活性を高めることで再生活動を活発に行えることが研究により示されており、特に、火傷、怪我（負傷）、老化、疾病による心筋、肝臓、角膜、皮膚、血管、軟骨、骨などの様々な組織、免疫細胞、血液細胞などを補う必要がある場合に効果があると報告されている。しかしながら、テロメア長を伸長させることができる遺伝子を継続的に過剰発現させたマウスでは癌細胞が多数発生するなど、長いテロメアが癌発症の危険因子である可能性があるという研究結果も出てきている。したがって、テロメアを一時的に伸張させることができれば、癌を引き起こすリスクなしに様々な老化及び変性に関連する症状を緩和し、特に再生医療分野でも有用であると予想されている。
【０００５】
上記のように様々な効果が予想されるので、テロメアを伸長させるための様々な方法が考案されてきた。特許文献１には、テロメラーゼ活性を高めるための化合物を含む医薬組成物が開示されており、そのためには、化合物を合成する過程が必要であり、前記組成物が効果を出すためには時間がかかる。このような化合物は、その効果が相当時間持続することが示されたが、テロメラーゼ活性が持続的に高いと癌の発生リスクが存在することが知られている。特許文献２には、テロメラーゼをコーディングする核酸が開示しており、これも合成過程を必要とし、また、核酸は、親水性であるため、細胞内への送達には伝達体がさらに必要とされる。特許文献３には、テロメラーゼ由来ペプチドが開示されており、これもまた合成過程を必要とし、さらに週に３回、２ヶ月間注射し、１カ月後に測定した場合にのみ効果が奏するレベルなので、面倒であり、コスト面で問題になる可能性がある。したがって、合成等のコストと時間の観点から、より合理的で、安全で、効率の良いテロメア伸長方法が求められている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】米国公開特許第２０１８−０２８０４１３号公報
【特許文献２】欧州公開特許第２９５９００５号公報
【特許文献３】韓国公開特許第１０−２０１８−０１２３５１２号公報
【特許文献４】韓国登録特許第１０−１８５５９６７号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、前述した問題を解決するために案出されたものであり、本発明の一実施形態によるテロメアを伸長させる方法は、細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、を含み、前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することであることを特徴とする。
【０００８】
また、本発明の一実施形態は、物理的刺激によりテロメアが伸長された細胞を提供する。
【０００９】
本発明が成し遂げようとする技術的課題は、以上で言及した技術的課題に限定されるものではなく、言及していない他の技術的課題は、以下の記載から、本発明の属する技術の分野における通常の知識を有する者に明確に理解されるであろう。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
前述した技術的課題を達成するための技術的手段として、本発明の一態様による、テロメアを伸長させる方法は、細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、を含み、前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することであることを特徴とする。
【００１１】
ここで、前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【００１２】
前記細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階は、細胞と培地を混合した後、前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するかの方式の中から選択されるいずれか一つの方式により行われることを特徴としてもよい。
【００１３】
前記物理的刺激は超音波刺激であり、前記直接的な超音波刺激は、強度が０．１〜３Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴とし、前記間接的な超音波刺激は、強度が１〜２０Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴としてもよい。
【００１４】
前記物理的刺激は熱刺激であり、前記温度変化刺激は、細胞を４０〜５０℃の温度条件下で１〜１０分露出させた後、０〜４℃の温度条件下で５〜１０秒間露出させることにより加えられることを特徴としてもよい。
【００１５】
前記物理的刺激は光刺激であり、前記光刺激は、レーザー光または発光ダイオード（ｌｉｇｈｔ−ｅｍｉｔｔｉｎｇ  ｄｉｏｄｅ）光のいずれか一方の、波長帯域３００〜９００ｎｍのパルス型ビームを１〜１０秒間照射することにより加えられることを特徴としてもよい。
【００１６】
前記細胞は、それぞれ哺乳類由来の幹細胞、前駆細胞、繊維芽細胞、角質細胞、または器官内の組織細胞からなる群から選択されることを特徴としてもよい。
【００１７】
前記培地は、培養培地または分化誘導培地から選択されることを特徴としてもよい。
【００１８】
前記混合物の培養は、１時間〜１０日間行われることを特徴としてもよい。
【００１９】
前記培養後、前記細胞における、ＴＥＲＴ、ＴＥＲＦ２、ＤＫＣ１、ＴＥＲＦ２ＩＰ、ＲＦＣ１、ＲＡＤ５０、ＴＥＲＦ１、ＰＩＮＸ１、ＴＮＫＳ１ＢＰ１、ＡＣＤ、ＮＢＮ、ＨＳＰＡ１Ｌ、ＰＡＲＰ１、ＰＴＧＥＳ３、ＳＭＧ６、ＢＬＭ、ＸＲＣＣ５、ＸＲＣＣ６、ＥＲＣＣ４、ＰＲＫＤＣ、ＴＥＰ１、及びβ−カテニンの中から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が増加することを特徴としてもよい。
【００２０】
前記培養後、前記細胞におけるテロメラーゼ活性が上昇することを特徴としてもよい。
【００２１】
前記培養後、前記細胞におけるβ−ガラクトシダーゼ活性が低下することを特徴としてもよい。
【００２２】
本発明の他の態様は、物理的刺激によりテロメアが伸長された細胞を提供する。
【００２３】
ここで、前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【００２４】
上述した課題を解決する手段は、単に例示的なものであり、本発明を限定しようとするものと解釈されてはならない。上述した例示的な実施形態に加えて、図面及び発明の詳細な説明においてさらなる実施形態が存在することが可能である。
【発明の効果】
【００２５】
本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、前述の従来のテロメアを伸長させる方法に比べて、簡単であり、コスト面で優れている。すなわち、従来の方法は、化合物を投与する方式であり、この化合物を化学的または生物学的方法を用いて合成および精製する過程、ならびにこのための設備および継続的に投入される材料が必要である。化学合成の場合、特異性がなく、環境に有害であり、このような欠点を生合成により克服することができるが、生合成の場合、収率が低く、大量生産および品質保持が困難であり、汚染の可能性が高いため、それに対処するための設備と材料がさらに必要である。また、細胞は二重脂質膜に囲まれているため、精製された化合物の化学的性質によっては、このような化合物を細胞内に送達できる伝達体がさらに必要であり、この場合、伝達体に化合物をロードする段階が必要とされる。これに対し、本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、細胞への物理的刺激を直接処理することで効果を奏するので、合成、精製、伝達体考案・合成・調達などの過程をすべて省略することができ、刺激を与えることができる設備があれば実施が可能なので、低コストでテロメアを伸長させることができる。
【００２６】
さらに、本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、従来のテロメアを伸長させる方法に比べて、時間および効率の面で優れている。従来技術のテロメアを合成する化合物を合成する過程では、原材料が投入され、これらのすべてが産出物を構成するわけではなく、副産物やバッファーなどの廃棄される部分が存在するのに対し、本発明の方法では、材料を合成する過程がなく、物理的刺激を加える方式であるため、そのような無駄はない。さらにまた、前述の化合物を用いたテロメア伸長方法は、十分な効果を生み出すために高濃度の化合物を複数回または長時間（ないし長期間）にわたって処理する必要があるのに対し、本発明の一実施形態による細胞のテロメアを身長させる方法は、２０分以内の短い物理的刺激を１回処理するだけでも効果が現れる。
【００２７】
さらに、本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、高い安全性を有する。すなわち、化合物は、代謝過程での毒性などの追加のリスクを伴う可能性があり、前述した従来の技術では、化合物の処理量がｍｇ／ｋｇのレベルで非常に高く、合成過程においても、環境に負担を掛ける廃棄物等が発生するが、本発明による方法はこのような問題を伴わない。さらにまた、本発明による方法は、短時間の超音波処理によりテロメア伸長に関連するＴＥＲＴ遺伝子の発現の増加を一時的に誘導するが、前記遺伝子の持続的な発現は癌の発生と相関することが知られているので、このような遺伝子発現の増加効果が持続的ではない本発明の方法により、テロメアが伸長された細胞を治療目的で投入する場合、または、本発明を生体に適用する場合、癌発生のリスクの観点から、より安全であることが期待できる。
【００２８】
さらにまた、本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、単にテロメアを伸長させるにとどまらず、細胞分裂を誘導し、抗老化効果を有することが確認されており、したがって、これによりテロメア長の短縮による問題だけでなく、老化に関連する様々な疾病や症状を改善および予防することができるものと期待できる。
【００２９】
本発明の効果は、上記の効果に限定されるものではなく、本発明の詳細な説明または特許請求の範囲に記載された発明の構成から推論できるすべての効果を含む。
【図面の簡単な説明】
【００３０】
【図１】本発明の実施例１による超音波処理及び培養後の細胞の種類に応じたテロメア長の変化の分析データである。
【図２】本発明の実施例１による超音波刺激処理、実施例２による熱刺激処理、実施例３による発光ダイオード光刺激処理、及び各培養後の各物理的刺激処理によるテロメア長の変化の分析データである。
【図３】本発明の実施例５による間接超音波刺激処理及び培養後のテロメア長の変化の分析データである。
【図４】本発明の実施例１による超音波処理及び培養後の培地の種類に応じたテロメア長の変化の分析データである。
【図５】本発明の実施例１による超音波処理及び培養後の超音波刺激処理回数によるテロメア長の変化の分析データである。
【図６】本発明の実施例１による超音波処理及び培養後の細胞の種類に応じたＴＥＲＴ遺伝子発現変化の分析データである。
【図７】ＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後のＴＥＲＴ遺伝子発現変化の分析データである。
【図８】ＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後のβ−カテニン遺伝子発現変化の分析データである。
【図９】ＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後のテロメラーゼ活性の変化の分析データである。
【図１０】ＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後のテロメアＦＩＳＨ（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：蛍光  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ハイブリダイゼーション）データである。
【図１１】ＣＢ−ＨＤＦに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後のＴＥＲＴとＫｉ６７の細胞の蛍光染色データである。
【図１２】ＣＢ−ＨＤＦに対する、本発明の実施例１による超音波処理及び培養後の老化関連β−ガラクトシダーゼ活性の分析データである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３１】
本発明の一態様によるテロメアを伸長させる方法は、細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、を含み、前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することであることを特徴とする。
【００３２】
ここで、前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【００３３】
前記細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階は、細胞と培地を混合した後、前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するかの方式の中から選択されるいずれか一つの方式により行われることを特徴としてもよい。
【００３４】
前記物理的刺激は超音波刺激であり、前記直接的な超音波刺激は、強度が０．１〜３Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴とし、前記間接的な超音波刺激は、強度が１〜２０Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴としてもよい。
【００３５】
前記物理的刺激は熱刺激であり、前記温度変化刺激は、細胞を４０〜５０℃の温度条件下で１〜１０分露出させた後、０〜４℃の温度条件下で５〜１０秒間露出させることにより加えられることを特徴としてもよい。
【００３６】
前記物理的刺激は光刺激であり、前記光刺激は、レーザー光または発光ダイオード（ｌｉｇｈｔ−ｅｍｉｔｔｉｎｇ  ｄｉｏｄｅ）光のいずれか一方の、波長帯域３００〜９００ｎｍのパルス型ビームを１〜１０秒間照射することにより加えられることを特徴としてもよい。
【００３７】
前記細胞は、それぞれ哺乳類由来の幹細胞、前駆細胞、繊維芽細胞、角質細胞、または器官内の組織細胞からなる群から選択されることを特徴としてもよい。
【００３８】
前記培地は、培養培地または分化誘導培地から選択されることを特徴としてもよい。
【００３９】
前記混合物の培養は、１時間〜１０日間行われることを特徴としてもよい。
【００４０】
前記培養後、前記細胞における、ＴＥＲＴ、ＴＥＲＦ２、ＤＫＣ１、ＴＥＲＦ２ＩＰ、ＲＦＣ１、ＲＡＤ５０、ＴＥＲＦ１、ＰＩＮＸ１、ＴＮＫＳ１ＢＰ１、ＡＣＤ、ＮＢＮ、ＨＳＰＡ１Ｌ、ＰＡＲＰ１、ＰＴＧＥＳ３、ＳＭＧ６、ＢＬＭ、ＸＲＣＣ５、ＸＲＣＣ６、ＥＲＣＣ４、ＰＲＫＤＣ、ＴＥＰ１、及びβ−カテニンの中から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が増加することを特徴としてもよい。
【００４１】
前記培養後、前記細胞におけるテロメラーゼ活性が上昇することを特徴としてもよい。
【００４２】
前記培養後、前記細胞におけるβ−ガラクトシダーゼ活性が低下することを特徴としてもよい。
【００４３】
本発明の他の態様は、物理的刺激によりテロメアが伸長された細胞を提供する。
【００４４】
ここで、前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【発明を実施するための形態】
【００４５】
以下、本発明をさらに詳細に説明する。しかし、本発明は、種々の態様で実現することが可能であり、ここで説明する実施形態により限定されるものではなく、後述する特許請求の範囲により定義されるだけである。
【００４６】
なお、本発明で使用される用語は、単に特定の実施形態を説明するために使われるものであって、本発明を限定するものではない。単数の表現は、文脈上明らかに異なるものを意味しない限り、複数の表現を含む。本発明の明細書の全般に亘って、ある構成要素を「含む」とは、特に断りのない限り、他の構成要素を除外するものではなく、他の構成要素をさらに含んでいてもよいということを意味する。
【００４７】
また、本発明での遺伝子という名称で使用される各遺伝子の固有の名称は、公式に知られている遺伝子名、慣用的に使用される名称、またはその遺伝子の産物の名称、例えば、タンパク質をコードする遺伝子の場合、そのタンパク質である。
【００４８】
本発明の発明者らによる特許文献４には、細胞及び培養培地の混合物に環境流入を促進できる物理的刺激を提供し、前記物理的刺激を提供された混合物を一定時間培養する場合、リプログラミングされた細胞を得ることができるということが開示されている。ここで、リプログラミングの方向は、細胞の種類とは関係なく、培地の組成に応じて異なることが示されている。前記細胞リプログラミング方法の効果を分析する過程において、物理的刺激を加えることにより、テロメア伸長に関連する遺伝子群の発現が増加することが確認された。これに関するさらなる研究により、開示の発明とは異なり、実験した細胞の種類ならびに培地の組成に関係なく、物理的刺激によってテロメアが伸長されることが確認され、その結果、環境流入よりも物理的刺激自体によってテロメア伸長が誘発されるという結論を出すことができ、これが新規発明として開示された。
【００４９】
本発明の一態様による細部のテロメアを伸長させる方法は、細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階と、前記細胞および培地の混合物を一定時間培養する段階と、を含み、前記直接的に刺激を提供することは、細胞を含む培地に物理的刺激を加えることであり、前記間接的に刺激を提供することは、細胞を含まない培地に物理的刺激を加えた後、前記培地と細胞を混合することであることを特徴とする。
【００５０】
前記物理的刺激の形態は、低周波、超音波、高周波、熱、光、 電氣波、電波、ストレッチ（ｓｔｒｅｔｃｈ）、及び圧縮（ｃｏｍｐｒｅｓｓｉｏｎ）の中から選択されてもよく、好ましくは、超音波、熱、及び光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【００５１】
前記細胞に直接的または間接的に物理的刺激を提供する段階は、細胞と培地を混合した後、前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合するか、細胞に物理的刺激を提供した後、前記細胞と培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、培地に物理的刺激を提供した後、前記培地と細胞を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合するか、細胞と培地にそれぞれ物理的刺激を提供した後、前記細胞および前記培地を混合し、次いで前記混合物に物理的刺激を提供するかの方式の中から選択されるいずれか一つの方式により行われることを特徴としてもよい。このような物理的刺激は、細胞に直接的または間接的に１回以上提供されてもよく、回数が増加するほど、テロメア伸長効果が比例的に高くなる。このように物理的刺激を１回以上提供する場合は、各回の間に細胞が回復できるような時間間隔を設定することが好ましく、前記時間間隔を、好ましくは１日以上、より好ましくは２日以上と設定してもよい。
【００５２】
前記物理的刺激は超音波刺激であり、前記直接的な超音波刺激は、強度が０．１〜３Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴とし、前記間接的な超音波刺激は、強度が１〜２０Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２０ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜２０分であることを特徴としてもよい。好ましくは、前記直接的な超音波刺激は、強度が０．５〜２Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２ＭＨｚであり、持続時間が０．１秒〜１０分であることを特徴とし、前記間接的な超音波刺激は、強度が２〜１０Ｗ／ｃｍ２であり、周波数が２０ｋＨｚ〜２ＭＨｚであり、持続時間が１秒〜１５分であることを特徴としてもよい。
【００５３】
前記物理的刺激は熱刺激であり、前記温度変化刺激は、細胞を４０〜５０℃の温度条件下で１〜１０分露出させた後、０〜４℃の温度条件下で５〜１０秒間露出させることにより加えられることを特徴としてもよい。
【００５４】
前記物理的刺激は光刺激であり、前記光刺激は、レーザー光または発光ダイオード（ｌｉｇｈｔ−ｅｍｉｔｔｉｎｇ  ｄｉｏｄｅ）光のいずらか一方の、波長帯域３００〜９００ｎｍのパルス型ビームを１〜１０秒間、好ましくは３〜７秒間照射することにより加えられること特徴としてもよい。
【００５５】
本発明の一実施形態による細胞のテロメアを伸長させる方法は、様々な細胞に適用したとき、すべての各細胞のテロメアを伸長させることができることがわかった。前記細胞は、哺乳類由来の幹細胞、前駆細胞、繊維芽細胞、角質細胞、または器官内の組織細胞からなる群から選択されることを特徴としてもよい。前記テロメアが伸長された細胞を生体適用の目的で使用する場合、前記細胞は、自己（ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ）由来、同種（ａｌｌｏｇｅｎｅｉｃ）由来、または異種（ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ）由来のいずれかであってもよく、異種由来である場合、哺乳類から得られるものであってもよい。免疫拒絶反応の可能性を低減するために、好ましくは同種由来、より好ましくは自己由来のものを使用してもよい。
【００５６】
前記培地は、培養培地または分化誘導培地から選択されることを特徴としてもよい。ここで、「培養培地」とは、特定の細胞の均一性を維持しながらその細胞の生存に最適化された培地であり、均一な細胞の増殖に使用される培地を指す。一方、「分化誘導培地」とは、特定の細胞を他の分化能または機能を有する細胞に誘導するための培地を指す。
【００５７】
前記混合物の培養は、１時間〜１０日間、好ましくは１日〜５日間行われてもよい。これは、前述の物理的刺激を細胞に加えると、後述する様々な遺伝子の発現が増加し、この「遺伝子発現」は、転写やタンパク質合成などの生活性物質の合成と折り畳み（ｆｏｌｄｉｎｇ）、前記物質の細胞内の必要な位置への移動を含み、したがって、実際にテロメアの伸長が達成されるまでには時間がかかるからである。
【００５８】
前記培養後、前記細胞における、ＴＥＲＴ、ＴＥＲＦ２、ＤＫＣ１、ＴＥＲＦ２ＩＰ、ＲＦＣ１、ＲＡＤ５０、ＴＥＲＦ１、ＰＩＮＸ１、ＴＮＫＳ１ＢＰ１、ＡＣＤ、ＮＢＮ、ＨＳＰＡ１Ｌ、ＰＡＲＰ１、ＰＴＧＥＳ３、ＳＭＧ６、ＢＬＭ、ＸＲＣＣ５、ＸＲＣＣ６、ＥＲＣＣ４、ＰＲＫＤＣ、ＴＥＰ１、及びβ−カテニンの中から選択される少なくとも一つの遺伝子の発現が増加することを特徴としてもよい。ＴＥＲＴ（Ｔｅｌｏｍｅｒａｓｅ  ｒｅｖｅｒｓｅ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ：テロメラーゼ逆転写酵素）は、テロメラーゼの触媒活性を有するサブユニットであり、ＴＥＲＦ１（Ｔｅｌｏｍｅｒｉｃ  ｒｅｐｅａｔ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ  １：テロメア反復結合因子１）及びＴＥＲＦ２（Ｔｅｌｏｍｅｒｉｃ  ｒｅｐｅａｔ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ  ２：テロメア反復結合因子２）は、テロメア配列を認識する。ＤＫＣ１（Ｄｙｓｋｅｒｉｎ  ｐｓｅｕｄｏｕｒｉｄｉｎｅ  ｓｙｎｔｈａｓｅ  １：ジスケリンシュードウリジンシンターゼ１）、ＲＦＣ１（Ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ  Ｃ  ｓｕｂｕｎｉｔ  １：複製因子Cサブユニット１）、ＴＮＫＳ１ＢＰ１（Ｔａｎｋｙｒａｓｅ  １  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ  １：タンキラーゼ１結合タンパク質）、ＮＢＮ（Ｎｉｂｒｉｎ：ニブリン）、ＨＳＰＡ１Ｌ（Ｈｅａｔ  ｓｈｏｃｋ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｆａｍｉｌｙ  Ａ  ｍｅｍｂｅｒ  １  ｌｉｋｅ：熱ショックタンパク質ファミリーAメンバー1様）、ＰＡＲＰ１（Ｐｏｌｙ  ＡＤＰ−ｒｉｂｏｓｅ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  １：ポリ（ＡＤＰリボース）ポリメラーゼ）、ＰＴＧＥＳ３（Ｐｒｏｓｔａｇｌａｎｄｉｎ  Ｅ  ｓｙｎｔｈａｓｅ  ３：プロスタグランジンＥシンターゼ）、ＳＭＧ６（Ｓｍｇ６  ｈｏｍｏｌｏｇ、Ｎｏｎｓｅｎｓｅ  ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｍＲＮＡ  ｄｅｃａｙ  ｆａｃｔｏｒ：Ｓｍｇ−６ホモログ、ナンセンス変異依存ｍＲＮＡ崩壊因子）、ＸＲＣＣ５（Ｘ−ｒａｙ  ｒｅｐａｉｒ  ｃｒｏｓｓ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔｉｎｇ  ５：Ｘ線修復交差補完５）、ＸＲＣＣ６（Ｘ−ｒａｙ  ｒｅｐａｉｒ  ｃｒｏｓｓ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔｉｎｇ  ６：Ｘ線修復交差補完６）は、テロメアの安定化と維持に必要であると知られている。ＴＥＲＦ２ＩＰ（ＴＥＲＦ２  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ：ＴＥＲＦ２相互作用タンパク質）、ＲＡＤ５０（ＲＡＤ５０  Ｈｏｍｏｌｏｇ、Ｄｏｕｂｌｅ  ｓｔｒａｎｄ  ｂｒｅａｋ  ｒｅｐａｉｒ  ｐｒｏｔｅｉｎ；ＲＡＤ５０ホモログ、二本鎖切断修復タンパク質）は、テロメア組換えを阻害し、ＰＩＮＸ１（ＰＩＮ２／ＴＥＲＦ１−ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ  ｔｅｌｏｍｅｒａｓｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  １：ＰＩＮ２／ＴＥＲＦ１相互作用テロメラーゼ阻害剤１）は、ＴＥＲＦ１及びＴＥＲＴの核小体（ｎｕｃｌｅｏｌｕｓ）内の蓄積を媒介し、ＴＲＦ１がテロメラーゼに結合することを助け、Ｓ期にテロメラーゼ活性を阻害するということが報告された。ＡＣＤ（Ａｄｒｅｎｏｃｏｒｔｉｃａｌ  Ｄｙｓｐｌａｓｉａ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｈｏｍｏｌｏｇ：副腎皮質異形成タンパク質ホモログ）、ＥＲＣＣ４（Ｅｘｃｉｓｉｏｎ  ｒｅｐａｉｒ  ｃｒｏｓｓ−ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ  ｇｒｏｕｐ  ４：切除修復交差補完グループ��）、ＰＲＫＤＣ（Ｐｒｏｔｅｉｎ  ｋｉｎａｓｅ、ＤＮＡ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ、ｃａｔａｌｙｔｉｃ  ｓｕｂｕｎｉｔ：タンパク質キナーゼ、ＤＮＡ活性化、触媒サブユニット）は、テロメアの長さ調節及び保護に必要であり、ＢＬＭ（Ｂｌｏｏｍ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ：ブルーム症候群タンパク質）ＤＮＡ合成時にテロメア増幅を助け、ＴＥＰ１（Ｔｅｌｏｍｅｒａｓｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ  １：テロメラーゼ関連タンパク質）は、テロメラーゼ複合体の一部を形成する。β−カテニンは、ＴＥＲＴ発現を促進する転写調節因子である。前記のような遺伝子の発現を高めることができる本発明の一態様によるテロメア伸長方法は、後述する様々な用途に使用可能である。
【００５９】
前記培養後、前記細胞におけるテロメラーゼ活性が上昇することを特徴としてもよい。このようなテロメラーゼ活性の増加は、培養２日後、培養前に比べて１．５倍以上であってもよく、このようにテロメラーゼの活性が高まるにつれてテロメア長が１．２倍以上増加してもよい。
【００６０】
前記培養後、前記細胞におけるβ−ガラクトシダーゼ活性が低下することを特徴としてもよい。β−ガラクトシダーゼは、β−ガラクトシドの単糖類への加水分解を触媒する酵素であり、リソソームβ−ガラクトシダーゼは、老化した細胞（ｓｅｎｅｓｃｅｎｔ  ｃｅｌｌ）で過剰発現して蓄積する。その結果、老化した細胞では、β−ガラクトシダーゼの活性が高いことが報告されており、本発明の一実施形態による、細胞のテロメアを伸長させる方法によれば、前記酵素の活性が低下することが示され、抗老化効果を有することがわかった。
【００６１】
本発明の他の態様は、物理的刺激によりテロメアが伸長された細胞を提供する。
【００６２】
ここで、前記物理的刺激の形態は、超音波、熱、および光の中から選択されるいずれか一つであってもよい。
【００６３】
このような細胞は、前述した本発明の一態様による細胞のテロメアを伸長させる方法により製造されてもよい。
【００６４】
本発明の発明者らは、物理的刺激の細胞への処理時、ＴＥＲＴ、ＴＥＲＦ２、ＤＫＣ１、ＴＥＲＦ２ＩＰ、ＲＦＣ１、ＲＡＤ５０、ＴＥＲＦ１、ＰＩＮＸ１、ＴＮＫＳ１ＢＰ１、ＡＣＤ、ＮＢＮ、ＨＳＰＡ１Ｌ、ＰＡＲＰ１、ＰＴＧＥＳ３、ＳＭＧ６、ＢＬＭ、ＸＲＣＣ５、ＸＲＣＣ６、ＥＲＣＣ４、ＰＲＫＤＣ、ＴＥＰ１、及びβ−カテニンなどの、細胞のテロメラーゼ活性と関連する遺伝子の発現が増加するとともに、前記細胞のテロメアが伸長されるだけではなく、このような遺伝子のｍＲＮＡおよびタンパク質を含むエキソソームが多量に分泌されることを見つけた。ｍＲＮＡおよびタンパク質などの各種因子を含むエキソソームは、血流に沿って移動し、前記因子を細胞に直接送達して治療効果を奏することができるので、前述した本発明の一態様による細胞のテロメアを伸長させる方法、本発明の他の態様による細胞、およびこのような細胞から由来したエキソソームは、このような遺伝子活性を必要とする個体の治療目的に使用されてもよい。例えば、まず、先天性角化異常症、再生不良性貧血、ウェルナー症候群（Ｗｅｒｎｅｒ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ）、ブルーム症候群（Ｂｌｏｏｍ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ）、毛細血管拡張性運動失調（Ａｔａｘｉａ−ｔｅｌａｎｇｉｅｃｔａｓｉａ）、ナイミーヘン症候群（Ｎｉｊｍｅｇｅｎ  ｂｒｅａｋａｇｅ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ）、毛細血管拡張性運動失調様症候群（Ａｔａｘｉａ−ｔｅｌａｎｇｉｅｃｔａｓｉａ−ｌｉｋｅ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ）、肺線維症（Ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｆｉｂｒｏｓｉｓ）などの、テロメア維持異常により発生することが知られている疾病の治療または改善に使用されてもよい。さらに、細胞の老化と消失による各種疾病と症状、例えば、認知症、運動失調、軟骨および骨の変性などの各種変性疾患（退行性疾患）、クローン病、慢性閉塞性肺疾患などを含む自己免疫疾患、高血圧、代謝症候群、糖尿病、皮膚老化、色素異常症、脱毛などの治療または改善に使用されてもよい。さらにまた、火傷、創傷、怪我（負傷）、臓器不全（ｏｒｇａｎ  ｆａｉｌｕｒｅ）、臓器喪失、潰瘍などの様々な損傷の迅速な再生のために使用されてもよい。
【００６５】
以下、本発明が属する技術分野で通常の知識を有する者が容易に実施できるように、本発明の実施例について詳細に説明する。しかしながら、本発明は、種々の異なる形態で実現可能であり、後述する実施例により限定されるものではない。
【００６６】
本発明のすべての実施例及び実験例上のすべての細胞培養は、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で行われた。
【００６７】
実施例１．直接超音波刺激による細胞のテロメア伸長誘導
１ｍｌの培地中の１×１０６個の細胞に超音波刺激を直接１Ｗ／ｃｍ２にて５秒間（２０ＫＨｚ）加えた細胞を、培養皿（ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈ）で同種の培地と共に１日以上培養した。
【００６８】
実施例２．直接熱刺激による細胞のテロメア伸長誘導
１ｍｌのｈＥＳ培地中の１×１０６個の細胞を１．５ｍｌチューブに入れ、５０℃で５秒間露出後、０℃で１０秒間露出させ、培養皿で同種の培地と共に１日以上培養した。
【００６９】
実施例３．直接発光ダイオード光刺激による細胞のテロメア伸長誘導
１ｍｌのｈＥＳ培地中の１×１０６個の細胞に８０８ｎｍの発光ダイオードレーザー光刺激（１Ｗ、５００Ｈｚ／ｓｅｃ）を直接５秒間加えた細胞を、培養皿で同種の培地と共に１日以上培養した。
【００７０】
実施例４．間接超音波刺激による細胞のテロメア伸長誘導
ｈＥＳ培地に０、３、５、１０Ｗ／ｃｍ２の超音波を１０分間処理した後、これを超音波処理されていない細胞と混合して培養皿で１日以上培養した。
【００７１】
実施例５．超音波刺激による細胞のテロメア伸長を誘導できるエキソソームの製造
１ｍｌの培地中の１×１０６個の細胞に超音波刺激を直接１Ｗ、５秒間（２０ＫＨｚ）加えた細胞を、培養皿で同種の培地と共に１〜２日培養した。次に、培養液を回収し、３０００ｒｐｍで５分間遠心分離して細胞やアポトーシス小体などを除去し、上澄み液だけを回収して０．２μｍのフィルタでろ過し、０．２μｍ以下の成分のみを含むろ液を集め、１００ｋＤａフィルタにろ液を入れ、１００００ｘｇで３０分間遠心分離して分子量１００ｋＤａ以下の成分を除去し、濃縮エキソソームを得た。前記濃縮エキソソームを含む１００ｋＤａフィルタにＰＢＳを入れ、１００００ｘｇで５分間洗浄過程を２回繰り返し、前記エキソソーム濃縮液中の培地成分を除去してエキソソームを得た。
【００７２】
実験例１．細胞の種類に応じたテロメア伸長効果分析
細胞の種類に応じた実施例１の効果を比較するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地（繊維芽細胞培養培地）中の、１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦ（細胞バイオ）、Ａｄｉｐｏ−ＭＳＣ（韓国のファンドンヨン教授の研究室）、ＨＤＦａ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ＨＦＦ（韓国のＣＨＡ医科大学校）、Ｈｅｆ（韓国のＣＨＡ医科大学校）、ＧＦＰ−ＨＤＦ（ＧＦＰ−ＨＮＤＦ、Ａｎｇｉｏ−ｐｒｏｔｅｏｍｉｅ）、Ｓｋｉｎ  Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ（６０歳の脳卒中患者サンプル、ＩＲＢ経由）、ＨＤＰ（細胞バイオ）、Ｌ１３２（ＡＴＣＣ）、ｈ−ＰｒｅＡｄｉｐｏ（ＡＴＣＣ）、ＣＢ−ＨＤＦ  ｘ／Ｅｎｔｒ及びＭＳＣ  ｘ／Ｅｎｔｒのそれぞれに対して、実施例１により超音波刺激を加えた後、０、１及び２日間培養し、テロメア長を分析した（ここで、ＣＢ−ＨＤＦ  ｘ／Ｅｎｔｒ及びＭＳＣ  ｘ／Ｅｎｔｒは、本発明の発明者による研究（Ｌｅｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｎ  ｕｌｔｒａ−ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ  ｍｅｔｈｏｄ  ｏｆ  ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ  ｅｘｔｒａｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ  ｃｅｌｌｓ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ  ｂｙ  ｕｌｔｒａｓｏｕｎｄ，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ，２０１７．）の超音波処理による多能性細胞の誘導方法を適用して、ＣＢ−ＨＤＦ及びＭＳＣからヒト胚性幹細胞培養培地で別々に誘導される多能性細胞である）。このとき、テロメア長を、キットを使用してｑＰＣＲ法により分析した（Ａｂｓｏｌｕｔｅ  Ｈｕｍａｎ  Ｔｅｌｏｍｅｒｅ  Ｌｅｎｇｔｈ  Ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｑＰＣＲ  Ａｓｓａｙ  Ｋｉｔ，Ｃａｔ  Ｎｏ．８９１８，ＳｃｉｅｎＣｅｌｌＴＭ）。その結果、図１および表１に示すように、細胞の種類に関係なく、いずれもテロメアが伸長していることがわかった。
【００７３】
【表１】
2022501050.tif 000003
【００７４】
実験例２．物理的刺激の種類に応じたテロメア伸長効果分析
物理的刺激の種類に応じたテロメアの伸長効果を分析するために、ヒト胚性幹細胞培養培地及びＣＢ−ＨＤＦを用いて実施例１〜３により各物理的刺激を加えた後、０、１および２日間培養し、テロメア長をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図２に示すように、超音波、熱、および光刺激はいずれもテロメアを伸長させることがわかった。
【００７５】
実験例３．間接超音波刺激によるテロメア伸長効果分析
直接物理的刺激ではなく間接物理的刺激によりテロメアが伸長されることを確認するために、実施例２によりＣＢ−ＨＤＦに間接超音波刺激を加えた後、１日間培養し、テロメア長をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図３に示すように、テロメア伸長効果は、使用される超音波の強度に比例することがわかった。
【００７６】
実験例４．培地組成による超音波処理後のテロメア伸長効果分析
培地組成による実施例１の効果を比較するために、１ｍｌのヒト胚性幹細胞培養培地、神経幹細胞培養培地、１次生殖細胞培養培地、ＤＭＥＭ培地のそれぞれ中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦに実施例１により超音波刺激を加えた後、０、１および２日間培養し、テロメア長をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図４に示すように、培地組成に関係なく、いずれもテロメアが伸長していることがわかった。
【００７７】
実験例５．超音波処理の回数に応じたテロメア伸長効果分析
実施例１による超音波処理を繰り返すときに違いが生じるかどうかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦに実施例１により超音波刺激を加え、１、３及び６日培養し、このとき、超音波刺激を最初１回加えるか、または２日おきに加え、テロメア長をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図５に示すように、超音波処理の回数に関係なく、いずれもテロメア長が増加し、超音波処理の回数が多いほど、超音波処理のない対照群対比のテロメア長の増加幅が大きくなることがわかった。
【００７８】
実験例６．細胞の種類に応じた超音波処理後のＴＥＲＴ遺伝子発現分析
細胞の種類に応じて、実施例１によるＴＥＲＴ遺伝子発現量に違いがあるかどうかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦ、Ａｄｉｐｏ−ＭＳＣ、ＨＤＦａ  ＨＦＦ  Ｈｅｆ、ＧＦＰ−ＨＤＦ、Ｓｋｉｎ  Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ（皮膚線維芽細胞）、ＨＤＰ、Ｌ１３２、ｈ−ＰｒｅＡｄｉｐｏ、ＣＢ−ＨＤＦ  ｘ／Ｅｎｔｒ、及びＭＳＣ  ｘ／Ｅｎｔｒのそれぞれに実施例１により超音波刺激を加え、０、１及び２日培養し、ＴＥＲＴ遺伝子発現量の変化をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図６および表２に示すように、細胞の種類に関係なく、いずれもＴＥＲＴ発現量が増加したことがわかった。また、図７に示すようにＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣを用いた場合、ＴＥＲＴの発現量が、超音波処理後、培養１日目に大幅に増加したが、２日目には再び減少したことがわかった。ＴＥＲＴの継続的な発現は癌などの発生リスクを有しているため、一時的なＴＥＲＴ発現により、このようなリスクを低減し、しかもテロメアの短縮によって引き起こされる老化関連症状の改善を期待することができる。
【００７９】
【表２】
2022501050.tif 000004
【００８０】
実験例７．超音波処理による細胞内のβ−カテニン遺伝子発現変化の分析
実施例１によるテロメア伸長方法がＴＥＲＴの転写活性因子としてのβ−カテニン遺伝子にどのように影響するかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに実施例１により超音波刺激を加え、０、１及び２日間培養し、β−カテニン遺伝子発現の変化をｑＰＣＲ法により分析した。その結果、図８に示すように、実験した２種類の細胞ではいずれもβ−カテニン発現量が増加したことがわかった。
【００８１】
実験例８．超音波処理による細胞内のテロメラーゼ活性の変化の分析
実施例１によるテロメア伸長方法がテロメラーゼ活性にどのように影響するかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに実施例１により超音波刺激を加え、０、１及び２日間培養した後、テロメラーゼ活性を米国ＳｃｉｅｎＣｅｌｌ社のＴｅｌｏｍｅｒａｓｅ  Ａｃｔｉｖｉｔｙ  Ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｑＰＣＲ  Ａｓｓａｙ  ｋｉｔ（ＴＡＱ：テロメラーゼ活性定量ｑＰＣＲアッセイキット）により分析した。その結果、図９に示すように、実験した２種類の細胞ではいずれもテロメラーゼ活性が増加したことがわかった。
【００８２】
実験例９．超音波処理された細胞のテロメアＦＩＳＨ
実施例１によるテロメア伸長方法によるテロメアの増加を別の方法で確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦ及びＡｄｉｐｏ−ＭＳＣに実施例１により超音波刺激を加え、１日培養した後、ＴｅｌＧテロメアプローブ（ＴＴＡＧＧＧＴＴＡＧＧＧＴＴＡＧＧＧ）を用いてＦＩＳＨ（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：蛍光  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ハイブリダイゼーション）を行い、蛍光シグナルを共焦点顕微鏡で分析した。このとき、ヘキスト（Ｈｏｅｃｈｓｔ）３３３４２で対比染色した。その結果、図１０に示すように、実験した２種類の細胞ではいずれもテロメア量が増加したことがわかった。
【００８３】
実験例１０．超音波処理された細胞のＫｉ６７及びＴＥＲＴ細胞免疫蛍光染色
実施例１によるテロメア伸長方法によるＴＥＲＴ遺伝子発現がタンパク質発現の増加につながるかどうかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦに実施例１により超音波刺激を加え、１日間培養した後、抗Ｋｉ６７および抗ＴＥＲＴ抗体を用いて蛍光染色し、これを共焦点顕微鏡で分析した。このとき、同細胞をＤＡＰＩ（４’，６−ｄｉａｍｉｄｉｎｏ−２−ｐｈｅｎｙｌｉｎｄｏｌｅ：４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール）で対比染色した。その結果、図１１に示すように、超音波処理時、ＴＥＲＴタンパク質ではいずれもテロメアが増加し、さらに細胞分裂マーカーであるＫｉ６７タンパク質の発現もまた増加したことがわかった。
【００８４】
実験例１１．老化関連β−ガラクトシダーゼ活性の分析
実施例１によるテロメア伸長方法による前述の変化が細胞老化にどのように影響するかを確認するために、１ｍｌのＤＭＥＭ培地中の１×１０６個のＣＢ−ＨＤＦに実施例１により超音波刺激を加え、１日及び３日間培養した後、細胞内の老化と相関関係があることが知られているβ−ガラクトシダーゼの活性に対する試験法を、Ｘ−ｇａｌを用いて行い、これを位相差顕微鏡で分析した。このとき、超音波処理は、最初１回または２日おきに行われた。その結果、図１２に示すように、β−ガラクトシダーゼ活性が低下していることが確認され、したがって、本発明によるテロメア伸長方法が抗老化効果を有することがわかった。
【００８５】
実験例１２．細胞分泌エキソソーム遺伝子ＲＮＡ−ｓｅｑによる細胞の遺伝子発現変化の分析
本発明の発明者らによる前述の先行発明の第１０−１８５５９６７号公報では、超音波処理により、細胞における遺伝子発現変化およびエキソソーム分泌を誘導することが可能であった。分泌されたエキソソームは細胞内で発現される遺伝子産物を含むため、実施例１により、テロメアが伸長された細胞の遺伝子発現変化を、前記細胞から分泌されたエキソソームの遺伝子発現を通じて確認した。ＲＮＡ−ｓｅｑの結果、表３に示すように、実験群の細胞から分泌されたエキソソームでは、テロメラーゼ活性関連遺伝子、およびテロメア維持と保護に関連する遺伝子の発現が増加したことがわかった。
【００８６】
【表３】
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【００８７】
前述した本発明の説明は例示のためのものであり、本発明が属する技術分野の通常の知識を有する者は、本発明の技術的思想や必須特徴を変更することなく他の具体的な形態に容易に変形可能である。よって、以上で記述した実施例は、全ての面で例示的なものであり、限定的ではないことを理解しなければならない。例えば、単一型に説明されている各構成要素は分散して実施されてもよく、同様に、分散して説明されている構成要素も結合された形態で実施されてもよい。
【００８８】
本発明の範囲は、後述する特許請求の範囲によって示され、特許請求の範囲の意味及び範囲、並びにその均等概念から導出される全ての変更または変形された形態が本発明の範囲に含まれる。
【図１】
2022501050.tif 000006
【図２】
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【図３】
2022501050.tif 000008
【図４】
2022501050.tif 000009
【図５】
2022501050.tif 000010
【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【国際調査報告】
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