(57)【要約】      （修正有）【課題】公知のＦＡＤＧＤＨの欠点を克服し、基質に対する特異性が優れた改変型ＦＡＤＧＤＨを提供すること。【解決手段】ＦＡＤＧＤＨを遺伝子レベルで改変することで、キシロース作用性が低下した改変型ＦＡＤＧＤＨ、例えば、特定のアミノ酸配列において、３３６位のアミノ酸が他のアミノ酸に置換されているタンパク質、または、特定のアミノ酸配列において、少なくともいずれかと６０％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質をコードするアミノ酸配列において、同等の位置のアミノ酸が他のアミノ酸に置換されているタンパク質。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（Ａ１）または（Ａ２）のタンパク質。
（Ａ１）配列番号１または配列番号２に記載のＦＡＤ依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤＧＤＨ）のアミノ酸配列において、下記（ａ）に示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質：
（ａ）Ｖ３３６Ａ；
（Ａ２）以下の（ｉ）〜（ｉｉｉ）を満たすタンパク質；
（ｉ）  配列番号１または配列番号２に示されるアミノ酸配列と少なくとも６０％の相同性を有するアミノ酸配列において下記（ｂ）のアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、
（ｂ）３３６Ａ  
（ｉｉ）  グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、
（ｉｉｉ）  配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。
【請求項２】
請求項１に記載のタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加（挿入）されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
【請求項３】
請求項１〜２のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子。
【請求項４】
請求項３に記載の遺伝子を含むベクター。
【請求項５】
請求項４に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
【請求項６】
請求項５に記載の形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法。
【請求項７】
請求項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースアッセイキット。
【請求項８】
請求項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースセンサ。
【請求項９】
請求項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコース測定法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来フラビンアデニンジヌクレオチド依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（以下、フラビンアデニンジヌクレオチド依存性グルコースデヒドロゲナーゼを、ＦＡＤＧＤＨとも表す。）のアミノ酸配列を他のアミノ酸に置換して得られる基質特異性の改善した改変型ＦＡＤＧＤＨに関するものである。
本発明はまた、該改変型ＦＡＤＧＤＨをコードする遺伝子、該遺伝子を含むベクター、該ベクターで形質転換された形質転換体、および、該形質転換体を培養して改変型ＦＡＤＧＤＨを製造する方法に関する。
さらに本発明は、該改変型ＦＡＤＧＤＨの、グルコース測定試薬等への種々の適用に関する。
【背景技術】
【０００２】
血糖自己測定（ＳＭＢＧ：Ｓｅｌｆ−Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ  ｏｆ  Ｂｌｏｏｄ  Ｇｌｕｃｏｓｅ）は糖尿病患者が自己の血糖値を管理し、治療に活用するために重要である。ＳＭＢＧに関しては、多くの方法で実用化が進んでおり、検体の微量化、測定時間の短縮、装置の小型化の点で電気化学的なセンシングが有利である。
【０００３】
血糖測定技術におけるセンシングの手法としては血液中のグルコースを基質とする酵素が利用される。そのような酵素の例としては、例えばグルコースオキシダーゼ（ＥＣ  １．１．３．４）が挙げられる。グルコースオキシダーゼはグルコースに対する選択性の高さや熱に対する安定性が高いという利点があった。しかしながら、グルコースオキシダーゼを利用したグルコースセンサはグルコースを酸化してＤ−グルコノ−δ−ラクトンに変換する過程で生じる電子がメディエーターを介して電極に流れることで測定されるが、反応で生じたプロトンを血液中の溶存酸素に渡しやすいため測定値に影響してしまうという問題があった。
【０００４】
このような問題を回避するために、ピロロキノリンキノン依存型グルコースデヒドロゲナーゼ（以下、ＰＱＱＧＤＨとも表す。）（ＥＣ１．１．５．２（旧ＥＣ１．１．９９．１７））がグルコースセンサ用酵素として用いられている。ＰＱＱＧＤＨは溶存酸素の影響を受けない点で優位であるが、マルトースやラクトースといったグルコース以外の糖類にも作用するため測定値の正確性を損ねてしまうという欠点がある。
【０００５】
そこで、溶存酸素の影響を受けず、なおかつ基質特異性に優れたグルコースデヒドロゲナーゼ（以下、ＧＤＨとも表す。）としてフラビンアデニンジヌクレオチド依存性グルコースデヒドロゲナーゼがグルコースセンサ用酵素としての応用が期待されている。ＦＡＤＧＤＨは非特許文献１〜６に記載されており、古くから知られている。
また、特許文献１にはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ（アスペルギルス・テレウス）由来ＦＡＤＧＤＨの遺伝子配列、アミノ酸配列並びに本ＦＡＤＧＤＨを用いたグルコースセンサについて記載されている。特許文献２にはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来ＦＡＤＧＤＨの遺伝子配列、アミノ酸配列並びに製造方法が記載されている。特許文献３にはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列の一部を他のアミノ酸に置換することで得られる熱安定性が向上した改変型ＦＡＤＧＤＨが記載されている。特許文献４にはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来ＦＡＤＧＤＨおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ由来ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列を置換することで得られる熱安定性および、又はキシロース作用性を改善した改変型ＦＡＤＧＤＨが記載されている。特許文献５にはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ由来ＦＡＤＧＤＨを使用したグルコースセンサが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】ＷＯ２００４／０５８９５８
【特許文献２】特開２００７−２８９１４８
【特許文献３】特開２００８−２３７２１０
【特許文献４】ＷＯ２００８／０５９７７７
【特許文献５】ＷＯ２００６／１０１２３９
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ．１９６７  Ｊｕｌ  １１；１３９（２）：２６５−７６
【非特許文献２】Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ．１９６７  Ｊｕｌ  １１；１３９（２）：２７７−９３
【非特許文献３】Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ．１４６（２）：３１７−２７
【非特許文献４】Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ．１４６（２）：３２８−３５
【非特許文献５】Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  （１９６７）２４２：３６６５−３６７２
【非特許文献６】Ａｐｐｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  （１９９６）５６：３０１−３１０
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明の目的は、上述のような公知のグルコースセンサ用酵素と比較して、さらに実用面において有利な血糖測定用試薬に使用可能な酵素を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
特許文献２あるいは特許文献３に開示された公知のＦＡＤＧＤＨは溶存酸素の影響をうけず、グルコースに対して高い選択性を有することから、グルコースオキシダーゼやＰＱＱＧＤＨに変わる次世代のグルコースセンサ用酵素としての応用が期待されている。
しかしながら、本ＦＡＤＧＤＨはグルコースだけではなくキシロースにも反応するため、キシロース負荷試験を受けている患者の血糖値を測定する場合、測定値の正確性を損ねてしまうという欠点があった。キシロースは、糖質の消化吸収試験に使用される単糖である。そのためキシロース吸収試験を実施している患者が、ＦＡＤＧＤＨを使用したグルコースセンサを使用した場合、血中のグルコースだけではなくキシロースにも反応するため、測定値が実際のグルコース濃度よりも高値を示すことが問題となる。
【００１０】
この問題を解決するために特許文献４に開示された基質特異性が改善した改変型ＦＡＤＧＤＨがある。本改変型ＦＡＤＧＤＨは野生株由来のＦＡＤＧＤＨの５３位のグリシンを他のアミノ酸に置換することで得られる。本改変型ＦＡＤＧＤＨはキシロースに対する反応性が低減しているという点で有利であるが、これと同調してグルコースに対する反応性も低下するため、測定値の低下や酵素の使用量の増大につながるという欠点があった。
【００１１】
詳細には、本発明者らは、特許文献１に記載のＦＡＤＧＤＨのキシロース作用性を検討し（特許文献４参照）、該ＦＡＤＧＤＨのキシロース作用性は、グルコースに対する反応性を１００％とした場合、１０％程度反応することを見出した。即ち、このＦＡＤＧＤＨを使用したグルコース濃度を測定した場合、測定値の正確性を損ねてしまうという欠点があることが判明した。
【００１２】
本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、公知のＦＡＤＧＤＨの特定のアミノ酸を他のアミノ酸に置換することで、改変前のＦＡＤＧＤＨと同等のグルコースに対する反応性を保持したまま、キシロース作用性を低減した改変型ＦＡＤＧＤＨを見出し、本発明を完成させた。
【００１３】
以下に、代表的な本発明を例示する。
［項１］
以下の（Ａ１）または（Ａ２）のタンパク質。
（Ａ１）配列番号１または配列番号２に記載のＦＡＤ依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤＧＤＨ）のアミノ酸配列において、下記（ａ）に示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質：
（ａ）Ｖ３３６Ａ；
（Ａ２）以下の（ｉ）〜（ｉｉｉ）を満たすタンパク質；
（ｉ）  配列番号１または配列番号２に示されるアミノ酸配列と少なくとも６０％の相同性を有するアミノ酸配列において下記（ｂ）のアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、
（ｂ）３３６Ａ  
（ｉｉ）  グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、
（ｉｉｉ）  配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。
［項２］
項１に記載のタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加（挿入）されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
［項３］
項１〜２のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子。
［項４］
項３に記載の遺伝子を含むベクター。
［項５］
項４に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
［項６］
項５に記載の形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法。
［項７］
項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースアッセイキット。
［項８］
項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコースセンサ。
［項９］
項１〜２のいずれかに記載のタンパク質を含むグルコース測定法。
【発明の効果】
【００１４】
本発明により臨床検査薬用酵素として有用な改変型ＦＡＤＧＤＨを創出し、該ＦＡＤＧＤＨをグルコースセンサに応用することで、グルコースセンサの測定精度の向上につながるものである。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】図１は、アスペルギルス・オリゼ由来の野生型ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列（配列番号１）と、アスペルギルス・テレウス由来の野生型ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列（配列番号３）を比較した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
以下に、本発明を詳細に説明する。
本明細書において、アミノ酸配列を構成するアミノ酸はアルファベット１文字又は３文字で表記される。例えば、グリシンは、Ｇｌｙ又はＧと表記される。アミノ酸配列上のアミノ酸の位置は、番号を用いて特定される。例えば、３３６番目のバリンがアラニンに置換されている場合は、「Ｖ３３６Ａ」と表記する。また、「３３６Ａ」は、変異の有無を問わず、３３６位（又は３３６番目）のアミノ酸がＡｌａ（Ａ）であることを示す。配列番号１、配列番号２、配列番号３において、アミノ酸の表記は、メチオニンを１として番号付けされている。
【００１７】
本明細書において、配列番号１は、野生型のアスペルギルス・オリゼ由来のＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列を示す。配列番号２は、配列番号１のアミノ酸配列における１６３位のグリシンがアルギニン置換され、５５１位バリンがシステインに置換されたアミノ酸配列を示す。配列番号２で示されるアミノ酸配列から成るタンパク質は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を保持している。以下、配列番号２で示されるアミノ酸配列から成るタンパク質を適宜配列番号２のＦＡＤＧＤＨと表記する。配列番号１及び２のアミノ酸配列は、例えば、特許文献２又は特許文献３に開示されている。
【００１８】
キシロース作用性が低下した改変型ＦＡＤＧＤＨ
本願発明の一実施形態は、配列番号１または配列番号２に記載のＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列において、３３６位、もしくは、それと同等の位置においてアミノ酸置換を有する、改変前よりもキシロース作用性が低下した改変型ＦＡＤＧＤＨである。
【００１９】
具体的には、以下の（Ａ１）または（Ａ２）のタンパク質が例示される。
（Ａ１）配列番号１または配列番号２に記載のＦＡＤ依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＦＡＤＧＤＨ）のアミノ酸配列において、下記（ａ）に示されるアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質：
（ａ）Ｖ３３６Ａ；
（Ａ２）以下の（ｉ）〜（ｉｉｉ）を満たすタンパク質；
（ｉ）  配列番号１または配列番号２に示されるアミノ酸配列と少なくとも６０％の相同性を有するアミノ酸配列において下記（ｂ）のアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、
（ｂ）３３６Ａ  
（ｉｉ）  グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、
（ｉｉｉ）  配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも改善されたキシロース作用性を有する。
【００２０】
グルコースに対する反応性
本願におけるグルコースに対する反応性とは培養力価の増減を指標として判断した。培養力価とは、Ｄ−グルコースを基質とした場合の培養液１ｍｌあたりのＧＤＨ活性である。培養力価比とは、配列番号２で示される熱安定性が向上した改変型ＦＡＤＧＤＨ（以下、Ｍｕｔ１  とも示す。）の培養力価の値を１とし、当該改変型ＦＡＤＧＤＨの比から計算する。これが表１における培養力価比である。この値が１に近いほど野生株と同等の培養力価を保持していると判断される。
【００２１】
キシロース作用性
本願におけるキシロース作用性とは、グルコースを基質とした場合の反応速度とキシロースを基質とした場合の反応速度の相対比％（グルコースを１００％とする。）である。
次いで、配列番号２で示される熱安定性の向上した改変型ＦＡＤＧＤＨ（Ｍｕｔ１）のキシロ−ス作用性の値を１とし、当該改変型ＦＡＤＧＤＨの相対比％を計算しなおす。これが表１における「キシロース作用性比」である。この値が小さいほど、キシロース作用性が低下していると判断される。
【００２２】
本願発明の改変型ＦＡＤＧＤＨは、好ましくは、キシロース作用性比が改変前と比べて０．９以下に低減している改変型ＦＡＤＧＤＨである。さらに好ましくは、改変前と比べて０．８以下に低減している改変型ＦＡＤＧＤＨである。
【００２３】
あるいは、本願発明の改変型ＦＡＤＧＤＨは、好ましくは、キシロース作用性が１０％以下である。さらに好ましくは、キシロース作用性が８％以下である。
【００２４】
キシロース作用性の測定方法は、後述のＦＡＤＧＤＨの活性測定法を用いて求める。
【００２５】
（Ａ２）タンパク質は、以下の（ｉ）〜（ｉｉｉ）の要件を満たす。
（ｉ）  配列番号２に示されるアミノ酸配列と少なくとも６０％の相同性を有するアミノ酸配列において下記（ｂ）のアミノ酸を有するアミノ酸配列を含む、
（ｂ）  ３３６Ａ
（ｉｉ）  グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する、
（ｉｉｉ）  配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質よりも低下したキシロース作用性を有する。
即ち、（Ａ２）タンパク質は、配列番号２に示されるアミノ酸配列と少なくとも６０％のアミノ酸の相同性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、上記（ｂ）で示される少なくとも一つのアミノ酸を含む。更に、（Ｂ２）タンパク質は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を保持し、配列番号２のＦＡＤＧＤＨと比較して低下したキシロース作用性を有する。
【００２６】
配列番号１または配列番号２の少なくともいずれかと６０％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質をコードするアミノ酸配列としては、例えば配列番号３に示される、アスペルギルス・テレウス由来の野生型ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列が挙げられる。そのアミノ酸配列は、特許文献５に開示されている。
【００２７】
本願明細書において、アミノ酸配列の相同性とは、ＧＥＮＥＴＹＸソフトで比較した値を意味する。例えば、アスペルギルス・オリゼ由来の野生型ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列（配列番号１）と、アスペルギルス・テレウス由来の野生型ＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列（配列番号３）を、ＧＥＮＥＴＹＸソフトにて比較分析したところ、６３．５％の相同性がある（図２参照）。また、配列番号２に示されるアミノ酸配列と配列番号３に示されるアミノ酸配列との相同性は、６３．４％である。
【００２８】
グルコースデヒドロゲナーゼ活性及び改善された温度依存性を保持した、配列番号２のアミノ酸配列と６０％の相同性を有するアミノ酸を含むタンパク質は、例えば、配列番号２と配列番号３とについてアライメント作成し、保存性のある領域以外の領域について変異を加えることによって作製することが可能である。
【００２９】
アミノ酸配列に変異を加えても酵素活性及び温度依存性に影響を与えないと推測される領域としては、Ｘ線結晶構造からタンパク質表面に位置する領域があげられる。例えば、１位〜４０位、１１１位〜１９０位、２１３位〜３１０位、３４０位〜３９７位、４２０位〜４３５位、４５５位〜４９２位、５１４位〜５３８位、５５２位〜５７２位である。
【００３０】
（Ａ２）タンパク質、（Ｂ２）タンパク質、（Ｃ２）タンパク質がそれぞれ含むアミノ酸配列は、上記（ｉ）〜（ｉｉｉ）の要件を満たす限り特に制限されないが、好ましくは配列番号２で示されるアミノ酸配列と７０％以上の相同性を有し、より好ましくは８０％以上の相同性を有し、更に好ましくは９０％以上の相同性を有し、特に好ましくは９５％以上の相同性を有する。尚、本明細書におけるアミノ酸の相同性とは、アミノ酸の同一性を意味する。
【００３１】
上記（ｂ）に例示される特定のアミノ酸を有することにより、（Ａ２）タンパク質は、配列番号１または２のＦＡＤＧＤＨよりもキシロースに対する作用性が低減されている。
【００３２】
なお、上記の変換位置は、アスペルギルス・オリゼ由来のもの（配列番号１）、または、それを改変したもの（配列番号２）以外の起源（たとえば、アスペルギルス・テレウス）に由来するＦＡＤＧＤＨ活性を有する蛋白質のアミノ酸配列における同等の位置であっても良い。この同等の位置は、そのアミノ酸配列の一次構造（例えばアラインメント）、立体構造の知見を基に判断することができる。アラインメントは、ＧＥＮＥＴＹＸ  ＷＩＮ（株式会社ゼネティックス製）を用いて比較することができる。
【００３３】
本願明細書において、アミノ酸配列の相同性は、ＧＥＮＥＴＹＸソフトで比較した値を意味する。
また、本願明細書において、あるアミノ酸配列における配列番号１の３３６位と同等の位置は、ＧＥＮＥＴＹＸソフトで配列を比較したとき、配列番号１の３３６位と対応する位置をもって同等と判断する。同様に、アミノ酸配列における配列番号１の３３６位と同等の位置は、ＧＥＮＥＴＹＸソフトで配列の一次構造（例えばアラインメント）を比較したとき、配列番号１の３３６位と対応する位置をもって同等と判断する。必要に応じてさらに立体構造の知見などを参照しても良い。
具体的には、アスペルギルス・オリゼ野生株由来のＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列とアスペルギルス・テレウス野生株由来のＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列とのアライメントの比較データより、本発明の３３６位と同等の位置とは、アスペルギルス・テレウス野生株由来のＦＡＤＧＤＨの３３２位のＶに相当する。
【００３４】
なお、本願発明のタンパク質は、上記のタンパク質において、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するものであって、さらに、キシロース作用性が低下しているものであれば、３３６位にアミノ酸置換を有し、さらに、それら以外の部位に１箇所以上（たとえば数箇所）のアミノ酸変異を有するものであっても良い。
変異は、１若しくは数個の置換、欠失、挿入、さらにはその組合せであっても良い。
例えば、（Ａ１）、（Ａ２）、（Ｂ１）、（Ｂ２）、（Ｃ１）および（Ｃ２）からなる群のうちいずれかよりなるタンパク質において、アミノ酸が置換された位置以外の位置において、さらに、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加（挿入）されたアミノ酸配列からなり、かつグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質もまた、本願発明の一実施形態である。
なお、ＧＥＮＥＴＹＸソフトは、ＧＥＮＥＴＹＸ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮから販売さ
れているＧＥＮＥＴＹＸ  ＷＩＮ  Ｖｅｒｓｉｏｎ ６．１のものを使用した。
【００３５】
本願発明の改変型ＦＡＤＧＤＨは、種々の公知の手段で作製することが出来る。
以下に、配列番号１で示されるアスペルギルス・オリゼ野生株由来のＦＡＤＧＤＨのアミノ酸配列を他のアミノ酸に置換したことで得られる改変型改変型ＦＡＤＧＤＨの製造法を例示する。製造法は、特に限定されないが、以下に示すような手順で製造することが可能である。
アスペルギルス・オリゼ野生株由来のＦＡＤＧＤＨを構成するアミノ酸配列を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿
入または欠失させることにより、改変タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡが作成される。ＤＮＡ中の塩基配列を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキット（Ｔｒａｎｓｆｏｒｍｅｒ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ；Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ社，  ＥＸＯＩＩＩ／Ｍｕｎｇ  Ｂｅａｎ  Ｄｅｌｅｔｉｏｎ  Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製，  Ｑｕｉｃｋ  Ｃｈａｎｇｅ  Ｓｉｔｅ  Ｄｉｒｅｃｔｅｄ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製など）の使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）の利用が挙げられる。
【００３６】
本発明の改変型ＦＡＤＧＤＨの改変の基になる遺伝子は、特に限定されるものではないが、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のＦＡＤＧＤＨを用いることが望ましい。さらに好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来あるいはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ由来のＦＡＤＧＤＨであることが望ましい。
Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｏｒｙｚａｅ由来のＦＡＤＧＤＨとしては、配列番号１または配列番号２で表されるタンパク質が例示できる。
Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ由来のＦＡＤＧＤＨとしては、配列番号３で表されるタンパク質が例示できる。
【００３７】
本願発明の一実施形態は、上記のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子である。
【００３８】
改変前のタンパク質をコードする遺伝子として、たとえば、上記の配列番号１で表されるタンパク質をコードする遺伝子としては、配列番号４で表される塩基配列が例示できる。また、上記の配列番号２で表されるタンパク質をコードする遺伝子としては、配列番号５で表される塩基配列が例示できる。また、上記の配列番号３で表されるタンパク質（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ  ｔｅｒｒｅｕｓ由来のＦＡＤＧＤＨ）をコードする遺伝子としては、配列番号６で表される塩基配列が例示できる。
本願発明の遺伝子は、上記改変前のタンパク質をコードする遺伝子の配列において、３３６位のアミノ酸、あるいはそれと同等の位置のアミノ酸をコードする部分が、他のアミノ酸をコードするように置換されている。
【００３９】
本発明の改変型ＦＡＤＧＤＨをコードする遺伝子は、配列番号４、５または６に記載の塩基配列と相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつＦＡＤＧＤＨ活性を有する蛋白質をコードするＤＮＡである。ここでストリンジェントな条件とは、相同性が高い核酸同士、例えば完全にマッチしたハイブリッドのＴｍから該Ｔｍより１５℃、好ましくは１０℃低い温度までの範囲の温度でハイブリダイズする条件をいう。具体的には、例えば一般的なハイブリダイゼーション用緩衝液中で、６８℃、２０時間の条件でハイブリダイズする条件をいう。本発明において、配列番号４、５または６に記載の塩基配列がコードするアミノ酸配列と５０％以上の相同性、好ましくは８０％以上の相同性、さらに好ましくは９０％以上の相同性、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有するアミノ配列をコードする塩基配列がストリンジェントな条件に相当すると考えられる。
【００４０】
本願発明の遺伝子は、たとえばＧＤＨの発現を向上させる目的などで、コドンユーセージ（Ｃｏｄｏｎ  ｕｓａｇｅ）を変更したものを含みうる。具体的には配列番号１及び２の３３６位のバリンをアラニンに置換する場合は、配列番号４及び配列番号５記載の塩基配列における１００６番目から１００８番目のＧＴＧを、ＧＣＧ、ＧＣＣ、ＧＣＡ、ＧＣＴのいずれに改変しても良い。配列番号３の３３２位のバリンをアラニンに置換する場合は、配列番号６記載の塩基配列における９９４番目から９９６番目のＧＴＣを、ＧＣＧ、ＧＣＣ、ＧＣＡ、ＧＣＴのいずれに改変しても良い。
【００４１】
本願発明の一実施形態は、上記の遺伝子を含むベクター、該ベクターで形質転換された形質転換体、該形質転換体を培養し、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を採取するグルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質を生産する方法である。
【００４２】
例えば、上記のＧＤＨ遺伝子を発現用ベクター（プラスミド等多くのものが当該技術分野において知られている）に挿入し、適当な宿主（大腸菌等多くのものが当該技術分野において知られている）を形質転換する。得られた形質転換体を培養し、培養液から遠心分離などで菌体を回収した後、菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じてＥＤＴＡなどのキレート剤や界面活性剤等を添加して可溶化し、ＧＤＨを含む水溶性画分を得ることができる。または適当な宿主ベクター系を用いることにより、発現したＧＤＨを直接培養液中に分泌させることが出来る。
【００４３】
上記のようにして得られたＧＤＨ含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。また、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたＧＤＨを得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。
【００４４】
これらは、例えば、以下の文献に従って進めることができる。
（ａ）タンパク質実験プロトコール第１巻  機能解析編，第２巻  構造解析編  （秀潤社）  西村善文，大野茂男  監修
（ｂ）改訂  タンパク質実験ノート  上  抽出と分離精製  （洋土社）  岡田雅人，宮崎香  編集
また、以下に例示する方法によって進めることもできる。
【００４５】
作製されたタンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡは、ベクターと連結された状態にて宿主微生物中に移入される。
【００４６】
ベクターとしては、宿主微生物内で自立的に増殖し得るファージまたはプラスミドから遺伝子組換え用として構築されたものが適している。ファージとしては、例えばエシェリヒア・コリーを宿主微生物とする場合にはＬａｍｂｄａ  ｇｔ１０、Ｌａｍｂｄａ  ｇｔ１１などが例示される。また、プラスミドとしては、例えば、エシェリヒア・コリーを宿主微生物とする場合には、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１９、ｐＫＫ２２３−３、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔなどが例示される。なかでも、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔなど、クローニングサイト上流にエシェリヒア・コリー内で認識されうるプロモーターを保持するものが好ましい。
また、適当な宿主微生物としては、組換えベクターが安定であり、かつ自立増殖可能で外来遺伝子の形質発現できるものであれば特に制限されない。エシェリヒア・コリーではエシェリヒア・コリーＷ３１１０、エシェリヒア・コリーＣ６００、エシェリヒア・コリーＨＢ１０１、エシェリヒア・コリーＪＭ１０９、エシェリヒア・コリーＤＨ５αなどを用いることができる。
【００４７】
宿主微生物に組換えベクターを移入する方法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア属に属する微生物の場合には、カルシウムイオンの存在下で組換えＤＮＡの移入を行なう方法などを採用することができ、更にエレクトロポレーション法を用いても良い。更には、市販のコンピテントセル（例えば、コンピテントハイＤＨ５α；東洋紡績製）を用い
ても良い。宿主として、酵母が用いられる場合にリチウム法、エレクトロポレーション法が、また、糸状菌が用いられ場合にはプロトプラスト法などが用いられる。
【００４８】
本発明において、ＧＤＨをコードする遺伝子を得る方法としては、次のような方法が挙げられる。アスペルギルス・オリゼのゲノム配列情報を用い、予測ＧＤＨ遺伝子を見出すことができる。ついで、アスペルギルス・オリゼの菌体よりｍＲＮＡを調製し、ｃＤＮＡを合成する。こうして得られたｃＤＮＡをテンペレートとして、ＰＣＲ法によりＧＤＨ遺伝子を増幅させ、本遺伝子をベクターと両ＤＮＡの平滑末端または付着末端においてＤＮＡリガーゼなどにより結合閉鎖させて組換えベクターを構築する。該組換えベクターを複製可能な宿主微生物に移入した後、ベクターのマーカーを利用してＧＤＨをコードする遺伝子を含有する組換え微生物を得る。
【００４９】
上記のように得られた形質転換体である微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量のＧＤＨを安定に生産し得る。組換え体の選択は、ベクターのマーカーとＧＤＨ活性を同時に発現する微生物を検索すればよい。例えば、薬剤耐性マーカーに基づく選択培地で生育し、かつＧＤＨを生成する微生物を選択すればよい。
【００５０】
ＧＤＨ遺伝子の塩基配列は、Ｓｃｉｅｎｃｅ，第２１４巻，１２０５（１９８１）に記載されたジデオキシ法により解読した。また、ＧＤＨのアミノ酸配列は上記のように決定された塩基配列より推定した。
【００５１】
上記のようにして、一度選択されたＧＤＨ遺伝子を保有する組換えベクターより、他の微生物にて複製できる組換えベクターへの移入は、ＧＤＨ遺伝子を保持する組換えベクターから制限酵素やＰＣＲ法によりＧＤＨ遺伝子であるＤＮＡを回収し、他のベクター断片と結合させることにより容易に実施できる。また、これらのベクターによる他の微生物の形質転換は、カルシウム処理によるコンピテントセル法やエレクトロポレーション法、プロトプラスト法などを用いることができる。
【００５２】
なお、本発明のＧＤＨ遺伝子は、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する限り、該遺伝子の翻訳後のアミノ酸配列の各アミノ酸残基の一部が欠失または置換されるようなＤＮＡ配列をもつものでもよく、また他のアミノ酸残基が付加または置換されるようなＤＮＡ配列をもつものでもよい。
【００５３】
野生株ＧＤＨをコードする遺伝子を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡが作成される。ＤＮＡ中の塩基を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキット（ＴｒａｎｓｆｏｒｍｅｒＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ；Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ製，ＥＸＯＩＩＩ／Ｍｕｎｇ  Ｂｅａｎ  Ｄｅｌｅｔｉｏｎ  Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製，ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅ  Ｓｉｔｅ  Ｄｉｒｅｃｔｅｄ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製など）の使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）の利用が挙げられる。
【００５４】
形質転換体である宿主微生物の培養形態は、宿主の栄養生理的性質を考慮して培養条件を選択すればよい。多くの場合は液体培養で行い、工業的には通気攪拌培養を行うのが有利である。ただし、生産性を考えた場合に、宿主として糸状菌を使用し、固体培養で行った方が有利な場合もある。
【００５５】
培地の栄養源としては，微生物の培養に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコース、シュークロース、
ラクトース、マルトース、ラクトース、糖蜜、ピルビン酸などが使用される。また、窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物などが使用される。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミンなどが必要に応じて使用される。
【００５６】
培養温度は菌が成育し、ＧＤＨを生産する範囲で適宜変更し得るが、好ましくは２０〜３７℃程度である。培養時間は条件によって多少異なるが、ＧＤＨが最高収量に達する時期を見計らって適当時期に培養を完了すればよく、通常は６〜４８時間程度である。培地のｐＨは菌が発育し、ＧＤＨを生産する範囲で適宜変更し得るが、好ましくはｐＨ６．０〜９．０程度の範囲である。
【００５７】
培養物中のＧＤＨを生産する菌体を含む培養液をそのまま採取し、利用することもできるが、一般には、常法に従って、ＧＤＨが培養液中に存在する場合はろ過、遠心分離などにより、ＧＤＨ含有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。ＧＤＨが菌体内に存在する場合には、得られた培養物からろ過または遠心分離などの手段により菌体を採取し、次いで、この菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じて、ＥＤＴＡ等のキレート剤及び界面活性剤を添加してＧＤＨを可溶化し、水溶液として分離採取する。
【００５８】
上記のようにして得られたＧＤＨ含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。その後、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたＧＤＨを得ることができる。
【００５９】
例えば、セファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅｘ）ゲル（ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）などによるゲルろ過、ＤＥＡＥセファロースＣＬ−６Ｂ  （ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）、オクチルセファロースＣＬ−６Ｂ  （ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）等のカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。
【００６０】
本発明において、ＦＡＤＧＤＨの活性測定は以下の条件で行う。
［試験例］
＜試薬＞
５０ｍＭ  ＰＩＰＥＳ緩衝液ｐＨ６．５（０．１％  ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を含む）
２４ｍＭ  ＰＭＳ溶液
２．０ｍＭ  ２，６−ジクロロフェノールインドフェノール（ＤＣＰＩＰ）溶液
１Ｍ  Ｄ−グルコース溶液
上記ＰＩＰＥＳ緩衝液２０．５ｍｌ、ＤＣＰＩＰ溶液１．０ｍｌ、ＰＭＳ溶液２．０ｍｌ、Ｄ―グルコース溶液５．９ｍｌを混合して反応試薬とする。
【００６１】
＜測定条件＞
反応試薬３ｍｌを３７℃で５分間予備加温する。ＧＤＨ溶液０．１ｍｌを添加しゆるやかに混和後、水を対照に３７℃に制御された分光光度計で、６００ｎｍの吸光度変化を５分記録し、直線部分から１分間あたりの吸光度変化（ΔＯＤＴＥＳＴ）を測定する。盲検はＧＤＨ溶液の代わりにＧＤＨを溶解する溶媒を試薬混液に加えて同様に１分間あたりの吸光度変化（ΔＯＤＢＬＡＮＫ）を測定する。これらの値から次の式に従ってＧＤＨ活性
を求める。ここでＧＤＨ活性における１単位（Ｕ）とは、濃度２００ｍＭのＤ−グルコース存在下で１分間に１マイクロモルのＤＣＰＩＰを還元する酵素量として定義している。キシロースに対する反応性を測定する際は、上記の１Ｍ  Ｄ−グルコース溶液の代わりに１Ｍ  Ｄ−キシロースを使用すればよい。
活性（Ｕ／ｍｌ）＝
｛−（ΔＯＤＴＥＳＴ−ΔＯＤＢＬＡＮＫ）×３．０×希釈倍率｝／｛１６．３×０．１×１．０｝
なお、式中の３．０は反応試薬＋酵素溶液の液量（ｍｌ）、１６．３は本活性測定条件におけるミリモル分子吸光係数（ｃｍ２／マイクロモル）、０．１は酵素溶液の液量（ｍｌ）、１．０はセルの光路長（ｃｍ）を示す。
【００６２】
グルコースアッセイキット
本発明はまた、本発明に従う改変型ＦＡＤＧＤＨを含むグルコースアッセイキットを特徴とする。本発明のグルコースアッセイキットは、本発明に従う改変型ＦＡＤＧＤＨを少なくとも１回のアッセイに十分な量で含む。典型的には、キットは、本発明の改変型ＦＡＤＧＤＨに加えて、アッセイに必要な緩衝液、メディエーター、キャリブレーションカーブ作製のためのグルコース標準溶液、ならびに使用の指針を含む。本発明に従う改変型ＦＡＤＧＤＨは種々の形態で、例えば、凍結乾燥された試薬として、または適切な保存溶液中の溶液として提供することができる。
【００６３】
グルコースセンサ
本発明はまた、本発明に従う改変型ＦＡＤＧＤＨを用いるグルコースセンサを特徴とする。電極としては、カーボン電極、金電極、白金電極などを用い、この電極上に本発明の酵素を固定化する。固定化方法としては、架橋試薬を用いる方法、高分子マトリックス中に封入する方法、透析膜で被覆する方法、光架橋性ポリマー、導電性ポリマー、酸化還元ポリマーなどがあり、あるいはフェロセンあるいはその誘導体に代表される電子メディエーターとともにポリマー中に固定あるいは電極上に吸着固定してもよく、またこれらを組み合わせて用いてもよい。典型的には、グルタルアルデヒドを用いて本発明の改変型ＦＡＤＧＤＨをカーボン電極上に固定化した後、アミン基を有する試薬で処理してグルタルアルデヒドをブロッキングする。
【００６４】
グルコース濃度の測定は、以下のようにして行うことができる。恒温セルに緩衝液を入れ、一定温度に維持する。メディエーターとしては、フェリシアン化カリウム、フェナジンメトサルフェートなどを用いることができる。作用電極として本発明の改変型ＦＡＤＧＤＨを固定化した電極を用い、対極（例えば白金電極）および参照電極（例えばＡｇ／ＡｇＣｌ電極）を用いる。カーボン電極に一定の電圧を印加して、電流が定常になった後、グルコースを含む試料を加えて電流の増加を測定する。標準濃度のグルコース溶液により作製したキャリブレーションカーブに従い、試料中のグルコース濃度を計算することができる。
【００６５】
以下、本発明を実施例により具体的に説明する。
【実施例１】
【００６６】
実施例1  改変型ＦＡＤＧＤＨの遺伝子の作製
配列番号２のＦＡＤＧＤＨをコードする遺伝子（配列番号５）を含む組み換えプラスミドｐＡＯＧＤＨ−Ｍ７６で市販の大腸菌コンピテントセル（Ｅ．ｃｏｌｉ  ＤＨ５a；Ｔ
ＯＹＯＢＯ社製）を形質転換し、アンピシリンを含んだＬＢ寒天培地（１．０％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、１．０％ＮａＣｌ、１．５％寒天；ｐＨ７．３）に塗布した
後、３０℃で一晩培養した。得られた形質転換体をアンピシリン（５０ｍｇ／ｍｌ；ナカライテスク社製）を含んだＬＢ液体培地（１％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、１．０％ＮａＣｌ；ｐＨ６．５）を摂取し、３０℃で一晩振とう培養した。得られた菌体から常法によりプラスミドを調整した。
【実施例２】
【００６７】
実施例２  ３３６位のバリンをアラニンに置換
実施例１で使用したｐＡＯＧＤＨ−Ｍ７６を鋳型として、３３６位のバリンをアラニンに置換するよう設計した配列番号７の合成オリゴヌクレオチドとそれに相補的な合成オリゴヌクレオチドをＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＴＭＳｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）を用いてＰＣＲを行った。続いて、ＰＣＲ産物で市販の大腸菌コンピテントセル（Ｅ．ｃｏｌｉ  ＤＨ５ａ；ＴＯＹＯＢＯ社製）を形質転換し、アンピシリンを含んだＬＢ寒天培地で３７℃、１６時間培養した。その後、改変型ＦＡＤＧＤＨを有したシングルコロニーを、アンピシリンを含んだＬＢ液体培地に摂取し、３０℃で一晩振とう培養した。その後、１ｍｌの培養液を摂取し、常法によりプラスミドを抽出した。抽出したプラスミドの当該部位をＤＮＡシークエンサー（ＡＢＩ
ＰＲＩＳＭＴＭ  ３７００ＤＮＡ  Ａｎａｌｙｚｅｒ；Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ製）を用いて特定した。３３６位をアラニンに置換した改変型ＦＡＤＧＤＨを有するプラスミドをｐＡＯＧＤＨ−Ｍ７６−Ｖ３３６Ａと命名した。
【実施例３】
【００６８】
実施例３  ３３６位のバリンをアラニンに置換した改変型ＦＡＤＧＤＨの培養力価とキシロース作用性の評価
実施例２で取得したｐＡＯＧＤＨ−Ｍ７６−Ｖ３３６Ａで形質転換した大腸菌ＤＨ５αをアンピシリンを含んだＬＢ寒天培地で３０℃、１６時間培養した。その後、改変型ＦＡＤＧＤＨのシングルコロニーをアンピシリンを含んだＬＢ液体培地に摂取し、３０℃で一晩振とう培養した。その培養液の一部から遠心分離によって得られた菌体を回収し、５０ｍＭのリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）中でガラスビーズを用いて該菌体を破砕することにより粗酵素液を調製した。調製した粗酵素液を用いて、上述した活性測定法により培養力価とキシロース作用性を測定した。表１にその結果を示す。
表１は、５ｍｌ  ＬＢ培地／試験管，３０℃，１６時間培養した時の３３６位を改変した改変型ＦＡＤＧＤＨの培養力価およびキシロース作用性を比較した結果である。
改変前のＦＡＤＧＤＨ（Ｍｕｔ１）とＶ３３６Ａの培養力価は同等であった。また、Ｍｕｔ１のキシロース作用性は１０．９％であったのに対して、Ｖ３３６Ａのキシロース作用性は７．９%に低下した。
【００６９】
【表１】
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【産業上の利用可能性】
【００７０】
本発明による基質特異性が向上したＦＡＤＧＤＨを利用することにより、グルコース測定の精度向上を可能にし、医療関連分野などの産業に貢献するところ大である。
【図１】
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【配列表】
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