(57)【要約】【課題】ＮＦ−κＢの活性化阻害効果が強いにもかかわらず副作用の軽減が期待できるＮＦ−κＢ阻害剤を提供すること。【解決手段】本発明は、ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤に関する。このＮＦ−κＢ阻害剤は、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患を治療するための医薬組成物に含有させてもよい。このＮＦ−κＢ阻害剤は、ＩＫＫα活性に対し１μＭ以下のＩＣ５０を有し、ＩＫＫβ活性に対し１０μＭ以上のＩＣ５０を有することがよい。【選択図】図６
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【請求項２】
９−［（１Ｓ，３Ｒ）−シス−シクロペンタン−３−オール］アデニン（ｃＰＡ）の細胞毒性と同程度の細胞毒性を有する一方、ｃＰＡよりもＮＦ−κＢ依存性の転写に対する抑制効果が大きいことを特徴とする請求項１に記載のＮＦ−κＢ阻害剤。
【請求項３】
ＩＫＫα活性に対し１μＭ以下のＩＣ５０を有し、ＩＫＫβ活性に対し１０μＭ以上のＩＣ５０を有することを特徴とする請求項１または２に記載のＮＦ−κＢ阻害剤。
【請求項４】
ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患を治療するためのものであって、請求項１乃至３のいずれか１項に記載のＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする医薬組成物。
【請求項５】
前記疾患はＡＩＤＳであることを特徴とする請求項４に記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＮＦ−κＢ阻害剤及びそれを含有する医薬組成物に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
転写因子nuclear factor κB（ＮＦ−κＢ）は、炎症、免疫反応、細胞増殖、アポトーシスなどを制御する様々な遺伝子や、ＡＩＤＳ（acquired immunodeficiency syndrome：後天性免疫不全症候群）の原因ウィルスであるＨＩＶ−１(human immunodeficiency virus type1)遺伝子の発現に関わる誘導型の転写因子である。ＮＦ−κＢ は、様々な炎症性疾患や骨髄腫などの悪性腫瘍において恒常的に活性化されており、ＨＩＶ−１潜伏感染細胞からのウィルス複製においてもその引き金となる分子である。そのため、ＮＦ−κＢに対する阻害剤はこれらの疾患に対する治療に有効であると考えられている。
【０００３】
ＮＦ−κＢは、Rel familyタンパク質であるp65(RelA), RelB, c-Rel, p50/p105, p52/p100により構成されるヘテロ、またはホモ二量体であり、その内 p65-p50二量体が最も主要なものである。通常は阻害タンパク質であるＩκＢと会合した不活性型として細胞質にとどまっており、一部が細胞質と核との間をシャトリングしている。細胞がＴＮＦαやinterleukin-1 （ＩＬ−１）などの炎症性サイトカインの刺激を受けると、mitogen-activated protein kinase/extracellular signal-regulated kinase kinase 1,3 (MEKK1,3)、ＮＦ−κＢ inducing kinase （ＮＩＫ）などのリン酸化酵素により、ＩκＢ kinase （ＩＫＫ）複合体が活性化される。ＩＫＫ複合体は、リン酸化活性を持つ２つのサブユニット (ＩＫＫα，ＩＫＫβ)とこれらと会合した制御性サブユニット（ＩＫＫγ／ＮＥＭＯ）から主に構成され、活性化型ＩＫＫ複合体はＩκＢ分子上の２つの特異的なセリン残基 (IκＢαではSer32/36)をリン酸化する。リン酸化されたＩκＢがポリユビキチン化され26Sプロテアソームにより分解される結果、ＮＦ−κＢ p65上の核移行シグナル (nuclear localization signal : NLS) が露出し、フリーとなったＮＦ−κＢが核内に移行し標的遺伝子の転写を活性化する。ＩＫＫα，ＩＫＫβにはＩκＢ以外にもp65、ヒストンH3という２つの基質が知られている。p65の転写活性化ドメイン上に存在する特異的セリン残基 (Ser536)はＩＫＫα，ＩＫＫβによりリン酸化され、ヒストンH3はＩＫＫαのみによってリン酸化されることがわかっており、それぞれＮＦ−κＢ依存性の転写活性を正に制御することが知られている。
【０００４】
ところで、ＮＦ−κＢは各種炎症性疾患や多くの悪性腫瘍で恒常的に活性化していることが分かっている。このため近年、ＮＦ−κＢ阻害剤を新たな抗炎症剤、抗悪性腫瘍剤などの候補として位置づけた研究や開発が精力的に行われており、様々な作用機序を持つ低分子化合物からなるＮＦ−κＢ阻害剤がいくつか報告されている。例えば、骨髄腫の治療薬として臨床試験が行われているBortezomib (PS-341)は、26Sプロテアソーム阻害剤であり、ＩκＢの分解を抑制することでＮＦ−κＢ阻害効果を示す。dehydroxymethylepoxyquinomycin （ＤＨＭＥＱ） は、ＮＦ−κＢ二量体の核移行を阻害することでＮＦ−κＢの活性化を抑制する化合物であり、種々の骨髄腫細胞のアポトーシスを誘導する。また、リウマチ治療薬である金化合物のうちのいくつか、特にaurothioglucoce （ＡｕＴＧ）は、そのレドックス制御を通じてＮＦ−κＢのＤＮＡ結合を阻害する。また、炭素環アデニンヌクレオシドの一種である9-[(1S,3R)-cis-cyclopentan-3-ol]adenine （ｃＰＡ）も、ＮＦ−κＢの活性化を阻害する化合物として知られている。ｃＰＡはＮＦ−κＢ二量体のＤＮＡ結合を阻害することでＮＦ−κＢ依存性の転写を抑制すると報告されているが、その詳細は不明である。
【０００５】
またこれらの他に近年では、特にＩＫＫをターゲットとしてこれを阻害するＮＦ−κＢ阻害剤がいくつか報告されている。現在までに報告されているＮＦ−κＢ阻害剤は、その作用機序により、ＡＴＰアナログとして作用するものと、アロステリックな効果を示すものとに分類することができる。ＡＴＰアナログとして機能するＮＦ−κＢ阻害剤の例としては、2-amino-3-cyano-4-alkyl-6-(2-hydroxyphenyl)pyridine （ＡＣＨＰ）誘導体が挙げられる。この化合物は、ＩＫＫβの活性を選択的に阻害することにより、インビボで強い抗炎症作用を示し、種々の骨髄腫細胞に対してアポトーシスを誘導する。また、アロステリックな効果を示すＮＦ−κＢ阻害剤の例としては、BMS-345541が挙げられる。この化合物は、ＩＫＫβの活性を選択的に阻害することにより、マウスにおいてコラーゲン誘導型の関節炎を抑制する。
【０００６】
また、これらの化合物以外にも、ＩＫＫβの活性を選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤として、従来様々な化合物が報告されている（例えば、特許文献１〜３参照）。具体的にいうと、特許文献１には４（２’−アミノエチル）アミノ−１，８−ジメチルイミダゾ（１，２−ａ）キノキサリンが、特許文献２にはアニリノピリミジン誘導体が、特許文献３にはアミノチオフェン化合物が、それぞれＮＦ−κＢ阻害剤として開示されている。ただし、現時点において本願発明者の知る限りでは、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤の報告例はまだない。
【特許文献１】特表２００４−５２９０８８号公報
【特許文献２】特表２００４−５２３４９７号公報
【特許文献３】特表２００５−５０６３３４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
ところで、ＩＫＫ阻害効果を有する上述のＮＦ−κＢ阻害剤は、骨髄腫などのＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患の治療薬として有望視されており、より効果的なＮＦ−κＢ阻害剤の開発が期待されている。しかしながら、ＮＦ−κＢ阻害剤として十分な効果を有す化合物は、現在のところ得られていない。それゆえ、ＮＦ−κＢ阻害剤として十分な効果を有する化合物の探索が望まれていた。
【０００８】
また、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患の治療薬は、できるだけ副作用が少ない化合物であることが実用上望ましい。しかし、ＩＫＫβを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤の場合、薬効が高くなると副作用が多くなる傾向があった。
【０００９】
本発明は上記の課題に鑑みてなされたものであり、その目的は、ＮＦ−κＢの活性化阻害効果が強いにもかかわらず副作用の軽減が期待できるＮＦ−κＢ阻害剤及びそれを含有する医薬組成物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記の課題を解決しうる手段を模索する過程で、本願発明者は「ＩＫＫβ（ＩＫＫ−２とも呼ばれる。）はＩＫＫα（ＩＫＫ−１とも呼ばれる。）に比べて多くのＮＦ−κＢ活性化過程に関与し、ＩＫＫβの阻害剤は同時に正常の炎症・免疫応答をも抑制する」という事実に着目した。そこで、ＮＦ−κＢ阻害剤の副作用を軽減するためには、ＩＫＫβの活性化を選択的に阻害するのではなく、むしろＩＫＫβにあまり影響を与えずにＩＫＫαの活性化を選択的に阻害する化合物のほうが望ましいと考え、このような化合物の探索を試みた。そして本願発明者が鋭意研究を行ったところ、合成炭素環アデニンヌクレオシドであってｃＰＡ類似の化合物のなかに、ＩＫＫαの活性化を選択的に阻害でき細胞毒性も少なくて、しかも強いＮＦ−κＢ活性化阻害効果を示すものがあることを突き止め、以下の本願発明を完成させるに至った。
【００１１】
即ち、請求項１に記載の発明（第１発明）は、ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤をその要旨とする。
【００１２】
請求項２に記載の発明（第２発明）は、請求項１において、９−［（１Ｓ，３Ｒ）−シス−シクロペンタン−３−オール］アデニン（ｃＰＡ）の細胞毒性と同程度の細胞毒性を有する一方、ｃＰＡよりもＮＦ−κＢ依存性の転写に対する抑制効果が大きいことをその要旨とする。
【００１３】
請求項３に記載の発明（第３発明）は、請求項１または２において、ＩＫＫα活性に対し１μＭ以下のＩＣ５０を有し、ＩＫＫβ活性に対し１０μＭ以上のＩＣ５０を有することをその要旨とする。
【００１４】
請求項４に記載の発明（第４発明）は、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患を治療するためのものであって、請求項１乃至３のいずれか１項に記載のＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする医薬組成物をその要旨とする。
【００１５】
請求項５に記載の発明（第５発明）は、請求項４において、前記疾患はＡＩＤＳであることをその要旨とする。
【発明の効果】
【００１６】
以上詳述したように、請求項１〜３に記載の発明によると、ＮＦ−κＢの活性化阻害効果が強いにもかかわらず、ＩＫＫαの活性化を選択的に阻害する特異性を有しかつ細胞毒性が低いため副作用の軽減が期待できるＮＦ−κＢ阻害剤を提供することができる。請求項４，５に記載の発明によると、このような優れたＮＦ−κＢ阻害剤を含有する医薬組成物を提供することができ、これを使用することによりＮＦ−κＢの活性化が関与する様々な疾患を治療、予防することが可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
以下、本発明を具体化した一実施の形態を詳細に説明する。
【００１８】
本発明のＮＦ−κＢ阻害剤は、ノルアリステロマイシン（noraristeromycin；ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分としている。ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）とは、合成炭素環アデニンヌクレオシドであってｃＰＡ類似の化合物である。その分子量は２５１．２４８、分子式はＣ10Ｈ13Ｎ5Ｏ3である。ちなみに、ＮＡＭにおける糖部には３つの水酸基が結合しているのに対し（化１参照）、ｃＰＡではそのうち２つの水酸基が水素になっている（化２参照）。
【００１９】
【化１】
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【００２０】
【化２】
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ＮＡＭはＩＫＫαを選択的に阻害する特異性を有することが、後述する試験によって実証されている。
本発明のＮＦ−κＢ阻害剤は、ｃＰＡの細胞毒性と同程度の細胞毒性を有する一方、ｃＰＡよりもＮＦ−κＢ依存性の転写に対する抑制効果が大きいという特徴がある。なお、細胞毒性のレベルがｃＰＡと同程度であれば一応細胞毒性が低いと言うことができ、それゆえＩＫＫα選択的阻害性との相乗効果により副作用の軽減を期待することができる。
【００２１】
本発明のＮＦ−κＢ阻害剤は、ＩＫＫα活性に対する阻害力がＩＫＫβ活性に対する阻害力の２倍以上、好ましくは５倍以上、特に好ましくは１０倍以上となっている。また、本発明のＮＦ−κＢ阻害剤は、ＩＫＫα活性に対し１μＭ以下のＩＣ５０を有し、ＩＫＫβ活性に対し１０μＭ以上のＩＣ５０を有していることがよい。その理由は、ＩＫＫβにあまり影響を与えずにＩＫＫαの活性化を選択的にかつ確実に阻害でき、副作用の低減につながるからである。
【００２２】
ＮＡＭの医薬上許容できる塩とは、毒性がないため医薬上許容できる塩（例えば無機金属）などを指し、カチオンが当該塩の毒性あるいは生物学的活性に重大に関与しないものが好ましい。その具体例を挙げると、ナトリウム、リチウム、カリウムなどのアルカリ金属塩がある。無機金属以外の塩としては、例えば塩酸、硝酸、硫酸、リン酸、臭化水素酸などの無機酸との塩や、マレイン酸、フマル酸、酒石酸、乳酸、クエン酸、酢酸、メタンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸、アジピン酸、パルミチン酸、タンニン酸などの有機酸との塩や、リジンなどの塩基性アミノ酸との塩を挙げることができる。
上記のＮＦ−κＢ阻害剤を含有する本発明の医薬組成物は、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患の治療、予防を目的として使用される。当該医薬組成物が治療または予防の対象とする疾患としては例えば癌が挙げられる。具体的には、大腸癌、直腸癌、前立腺癌、子宮頚癌、血液癌、喉頭癌、肝臓癌、肺癌、咽頭癌、精巣癌、膀胱癌、卵巣癌、子宮癌、気管支癌、膵臓癌、頚部癌、胃癌、皮膚癌、腎臓癌、食道癌、口腔癌などが、治療または予防の対象となりうる。
【００２３】
また、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患としては、例えば炎症が挙げられる。具体的には、喘息、気管支炎、アレルギー性鼻炎、慢性閉塞性肺疾患、ルー・ゲーリック病、敗血症、結膜炎、紫斑病、鼻ポリープ、紅斑性狼瘡、急性呼吸窮迫症候群、クローン病、胃炎、食道炎、肝炎、膵炎、腎炎、過敏性腸症候群、粘液性大腸炎、潰瘍性大腸炎、骨関節炎、痛風、乾癬、湿疹、皮膚炎、慢性関節リウマチ、リウマチ性脊椎炎、嚢胞性繊維症、炎症性腸疾患、多発性硬化症などが、治療または予防の対象となりうる。
【００２４】
また、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患としては、例えば自己免疫症や感染症が挙げられる。具体的には、全身性強皮症、ベーチェット病、結節性動脈周囲炎、潰瘍性大腸炎、慢性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス、活動性慢性肝炎、糸球体腎炎、後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）、ヒトパピローマウィルスによる感染症、ヒトＴ細胞白血病ウィルスによる感染症、Ｂ型肝炎ウィルスによる感染症、Ｃ型肝炎ウィルスによる感染症などが、治療または予防の対象となりうる。
【００２５】
さらにこの他にも、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患としては、アルツハイマー病、パーキンソン病、II型糖尿病、骨粗鬆症、内毒素性ショック、血管形成術後の再狭窄、左心室肥大、心不全、心臓や肝臓などの虚血、臓器移植拒絶症、多臓器不全、卒中、アテローム性動脈硬化症、癲癇などが、治療または予防の対象となりうる。
【００２６】
本発明の医薬組成物においては、ＮＦ−κＢ阻害剤に加えて、他の治療剤または生物学的活性物質（例えばホルモン等）を適宜組み合わせて使用することができる。さらに、本発明の医薬組成物は、医薬上許容できる担体、希釈剤、賦形剤などを含有していてもよい。
【００２７】
また、本発明の医薬組成物は、ＮＦ−κＢの活性化が関与する治療、予防を目的として個体に使用されるが、この場合において個体は限定されるものではなく、広く動物一般を意味する。当該医薬組成物の使用対象となる動物としては、例えば、ネコ、イヌ、ウシ、サル、シチメンチョウ、ウズラ、ヒツジ、ウマ、ブタ、ニワトリ、マウス、ラット、ウサギ、モルモットなどが挙げられるが、より好ましくは哺乳類であり、最も好ましくはヒトである。
以下、本実施形態をより具体化した実施例について説明するが、言うまでもなく本発明は実施例に限定されるわけではない。
【実施例】
【００２８】
［試験例１］１４種類の合成炭素環アデニンヌクレオシドのＮＦ−κＢの転写活性に対する効果の検討
【００２９】
＜目的＞
【００３０】
ｃＰＡ及びその誘導体の合計１６種類の合成炭素環アデニンヌクレオシド（図１を参照）のＮＦ−κＢ依存性転写に対する抑制効果を、HEK293細胞（ヒト胎児腎細胞）を用いたレポーターアッセイを行って比較検討した。ＮＦ−κＢの活性化はＴＮＦα(1ng/mL)の刺激により行った。図１には、この実験に用いた合成炭素環アデニンヌクレオシドの構造式がグループ別に示されている。グループＡには６種の化合物（サンプル１〜6）が属し、グループＢには５種の化合物（サンプル7〜11）が属し、グループＣには１種の化合物（サンプル12）が属し、グループＤには１種の化合物（サンプル13）が属し、グループＥには１種の化合物（サンプル14）が属している。
【００３１】
＜具体的手順＞
【００３２】
１）HEK293細胞を12-well plateに1x105 cells/wellの密度でまいた。２）4κB-lucレポータープラスミドをトランスフェクションさせてHEK293細胞に遺伝子を導入した。３）トランスフェクションの24時間後、HEK293細胞に100μMの合成炭素環アデニンヌクレオシドを加え、その1時間後に1ng/mLのＴＮＦα(Roche社製)で刺激した。このときＴＮＦα(1ng/mL)で刺激しない区も設定した。４）遺伝子導入48時間後に、500L/wellのpassive lysis buffer (Promega社製)を加え、室温で15分間振動させて細胞を溶解し、その上清10Lをルシフェラーゼアッセイに用いた。５）ルシフェラーゼ活性は、Dual Luciferase Assay System Kit (Promega社製)を用いて、AutoLumat LB 9507 luminometer (EG&G Berthold社製)で測定した。６）遺伝子導入効率は、内部標準としてpRL-TK (Promega)を用い、Renillaのルシフェラーゼ活性を測定することによりモニタリングした。７）データは3つの独立したサンプルの活性の平均値により、レポータープラスミドのみを遺伝子導入したサンプルと比較、検討した。
【００３３】
＜試験結果＞
【００３４】
上記の実験を行った結果、図２の表に示すようにいくつかの化合物(Sample ＃2,3,6,14)がｃＰＡと比較してより強いＮＦ−κＢ阻害効果を示した。このうち3つの化合物
(Sample ＃3,6,14)では、ＴＮＦα非刺激時にもその阻害効果が見られた。この阻害効果は細胞毒性によるものか、または非特異的な転写活性阻害であると考えられた。ＴＮＦα刺激時にのみ阻害効果を示したSample
＃2の化合物は、抗ウィルス活性を持つことが報告されているＮＡＭであった。
［試験例２］ＮＡＭの阻害作用のＮＦ−κＢに対する特異性の検討
【００３５】
Ａ．レポーターアッセイ
【００３６】
＜目的＞
【００３７】
ＮＡＭの効果がＮＦ−κＢ活性化シグナル伝達経路特異的なものであるかどうかを検討するために、HEK293細胞を用い、cAMP response element binding protein (CREB)依存性のルシフェラーゼレポータープラスミドを用いたレポーターアッセイを行った。
【００３８】
＜具体的手順＞
【００３９】
１）HEK293細胞を12-well plateに1x105 cells/wellの密度でまいた。２）24時間後、Fugene6トランスフェクション試薬(Roche社製)を用いて遺伝子を導入した。３）トランスフェクションの24時間後に各濃度（0,0.1,1,10μM）のＮＡＭを加え、その1時間後にＴＮＦα(1ng/mL)で刺激した。４）遺伝子導入48時間後に500μL/wellのpassive lysis bufferを加え、室温で15分間振動させて細胞を溶解し、その上清10μLをルシフェラーゼアッセイに用いた。５）ルシフェラーゼ活性はDual Luciferase Assay System Kitを用いてAutoLumat LB 9507 luminometerで測定した。６）遺伝子導入効率は、内部標準としてpRL-TK (Promega社製)を用い、Renillaのルシフェラーゼ活性を測定することによりモニタリングした。７）データは３つの独立したサンプルの活性の平均値により、レポータープラスミドのみを遺伝子導入したサンプルと比較、検討した。
【００４０】
＜試験結果＞
【００４１】
上記の試験を行った結果を図３のグラフに示す。図３（ａ）のグラフに示すとおり、ＮＡＭは濃度依存的にＮＦ−κＢ依存性の転写活性を阻害した。具体的なデータは示さないが、Sample
#3,6,14の化合物は10μM以下では抑制効果を示さなかった。なお、図３（ｂ）はＴＮＦαに替えてForskolinを用いた場合のグラフであるが、ＮＡＭはForskolinの転写活性を殆ど阻害しないことがわかった。ちなみに、ＴＮＦα処理時においては、ＮＦ−κＢ依存性の転写活性に対し１０μＭ以下（具体的には約２．７μＭ）のＩＣ５０を有していた。
【００４２】
Ｂ．細胞毒性試験
【００４３】
＜目的＞
【００４４】
次に、ＮＡＭの細胞に対する毒性を、HEK293細胞にて細胞活性測定試薬であるWST-1により細胞の活性を比較することにより検討した。
【００４５】
＜具体的手順＞
【００４６】
１）HEK293細胞を1x105 cell/wellの密度で96 wellプレートにまき、37℃、5% CO2存在下で24時間培養した。２）ＮＡＭで1時間前処理した後、ＴＮＦαを最終濃度が1ng/mLとなるように加え、さらに24時間培養した。３）Cell Proliferation Reagent WST-1試薬(Roche社製)を10μL/well加え、さらに4時間培養した。４）1分間撹拌した後、microtiter plate readerを用いて450nmの吸光度を測定した。５）データは4つの独立したサンプルの平均値を用い、阻害剤非処理、ＴＮＦα非処理のサンプルと比較検討した。
【００４７】
＜試験結果＞
【００４８】
その結果、ＮＡＭはＴＮＦα刺激時、非刺激時ともにそのＮＦ−κＢ阻害濃度においてコントロール細胞と同等の細胞の生存率を示し、毒性を示さないことが分かった（図４のグラフ参照）。この結果は、レポーターアッセイにおいてＮＡＭがＴＮＦα非刺激時にはＮＦ−κＢ阻害効果を示さなかった結果とも一致する（図３（ａ）のグラフ参照）。
［試験例３］ウェスタンブロッティングによるＮＦ−κＢ阻害におけるＮＡＭの作用機序の検討
【００４９】
＜目的＞
【００５０】
次に、ＮＡＭのＮＦ−κＢ阻害効果の作用機序を検討するために、抗リン酸化ＩκＢα(Ser 32/36)抗体、抗ＩκＢα抗体を用いてウェスタンブロッティングを行った。
【００５１】
＜試験準備作業及び試験の手順＞
【００５２】
Ａ．ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動 （ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）及びウェスタンブロッティングについて
【００５３】
（１）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
【００５４】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥについて試料の調製を以下のように行った。
【００５５】
１）シャーレ内の培養液を除き、氷冷PBS(-) 10mLで洗った。２）氷冷PBS(-) 1mLを加えてスクレーパーを用いて細胞をサンプルチューブに回収し、2000rpm, 4℃, 3min遠心した。３）上清を除き、氷冷したlysis buffer 1mLを加え4℃で30分間振盪した。４）15,000 rpm, 4℃, 15minで遠心し、得られた上清を細胞抽出液とし、-80℃で保存した。
【００５６】
また、上記のようにして得られた細胞抽出液15μLに6×SDS sample bufferを3μL加え100℃,3分間熱処理後、遠心し全量を電気泳動用試料とした。
【００５７】
そして電気泳動を以下のように行った。
【００５８】
１）所定の組成を有する10%ポリアクリルアミドゲルを２種作製した。２）調製した試料と分子量マーカー Precision Plus Protein Dual Color Standards (Bio-Rad社製)をとスタッキングゲルにのせ、ランニングゲルに達するまでは10mA、以後は20mAの定電流で電気泳動を行った。
【００５９】
（２）ウェスタンブロッティング
【００６０】
PVDF (polyvinylidene difluoride)メンブレンとして、Immobilon-P (0.45μm pore size) (MILLIPORE社製)を準備した。ブロッティング用濾紙として、chromatography paper 3MM Chr (Whatman社製)を準備した。10×transfer bufferとして、Trisbase 24g, Glycine 113g, H2O to 800mLの混合物を作製し、これを4℃で保存した。使用時には、最終濃度で20%のメタノールを加え超純水で希釈した。また、10 x TBST (Tris buffered saline)として、Trisbase 24.2g, NaCl 80g, HCl(pH調整用), H2O to 1L, Tween-20 10mLの混合物を準備した。使用時には、超純水で希釈した。また、ブロッキング液として、5%skim milk (Difco社製) / TBSTを準備した。
【００６１】
そして以下の手順でブロッティングを行った。
【００６２】
１）ランニングゲルと同じ大きさに切り1分間メタノールに浸したPVDFメンブレンと、同じ大きさのブロッティング用濾紙及びスポンジとをトランスファーバッファーに浸しておいた。２）SDS-PAGEが終了すると、ランニングゲルのみを切り出し、ブロッティング装置のカセットの陽極側からスポンジ、ブロッティング用濾紙2枚、PVDFメンブレン、ゲル、ブロッティング用濾紙2枚、スポンジの順に重ね、気泡が入らないように装置に装着した。３）ブロッティング装置に80℃に冷却したアイスボックスを入れ、トランスファーバッファーを加えて、撹拌しながら350mAの定電流で1時間のトランスファーを4℃で行った。４）トランスファー終了後、PVDFメンブレンをTBSTで洗い、ブロッキング液に浸して室温で30分間ブロッキングを行った。
【００６３】
Ｂ．抗体処理及びシグナルの検出について
【００６４】
次に、抗体処理及びシグナルの検出を行うために、２種類の抗体希釈液、即ち5% bovine serum albumin (BSA) (SIGMA) / TBST  (anti-phospho p65 (Ser536)に用いる)と、5% skim milk / TBST（その他の抗体に用いる）とを準備した。また、一次抗体を準備し、これを上記の抗体希釈液で1000倍に希釈して用いた。また、二次抗体 (HRP標識抗体)を準備し、これを抗体液で2000倍に希釈した。さらに、二次抗体検出用試薬としてSuperSignal West Pico Chemiluminescent Substrate  (PIERCE社製)を準備し、二次抗体検出用フィルムとしてHyperfilm ECL (Amersham Biosciences社製)を準備した。自動現像機として、KODAK X-Omat 1000 Processor (Kodak社製)を用いることとした。
【００６５】
そして以下の手順で抗体処理及びシグナルの検出を行った。
【００６６】
１）ブロッキングの終了したPVDFメンブレンをハイブリ・バック（コスモ・バイオ社製）に挟み三方を接着した。２）希釈した一次抗体を2mL加え、気泡が入らないように接着し密封して室温で1時間、または4℃で一晩抗体処理を行った。３）TBSTで5分間3回洗った。４）一次抗体と同様に二次抗体処理を室温で1時間行い、TBSTで5分間3回洗った。５）二次抗体検出用試薬を用いて発光させ、暗室にてフィルムに露光し、自動現像機で現像してシグナルを検出した。
【００６７】
＜試験結果＞
【００６８】
まず、TNFα刺激時のHEK293細胞におけるIκBαのリン酸化、分解の時間的経過を調べた(図５（ａ）参照)。TNFα刺激後5分でIκBαはリン酸化を受け始め、10分後に最も強くリン酸化された(図５（ａ）の中段のパネル参照)。また、そのリン酸化にともなってIκBαはTNFα刺激後10分頃から分解され始め、30分後にはほぼ完全に分解された(図５（ａ）の上段のパネル参照)。
【００６９】
この結果に基づき、まずTNFα刺激後10分後のIκBαのリン酸化状態に対するＮＡＭの影響を調べた(図５（ｂ）参照)。その結果、IκBαのリン酸化はＮＡＭによりその濃度依存的に抑制された(図５（ｂ）の２段目のパネル参照)。
【００７０】
また、同じくＩＫＫα及びＩＫＫβによってリン酸化されることが知られているＮＦ−κＢ p65サブユニットのSer 536のリン酸化に対する影響も抗リン酸化p65 (Ser 536)を用いて調べたところ、同様にＮＡＭによって濃度依存的に阻害された(図５（ｂ）の４段目のパネル参照)。ＩκＢα、p65自体の発現量に変化は見られなかった(図５（ｂ）の１、３段目のパネル参照)。
次に、リン酸化に引き続いて起こるIκBαの分解も同様に阻害されるかどうかを検討した。図５（ｃ）に示すように、ＮＡＭ未添加の細胞においてはＴＮＦα刺激30分後にほぼ完全に分解されたIκBαの発現量が、ＮＡＭの濃度依存的に回復した。以上より、ＮＡＭがIκBαのリン酸化とそれに引き続き起こる分解及びＮＦ−κＢ p65サブユニットのリン酸化を抑制することでＮＦ−κＢ活性化のシグナル伝達経路を阻害することが明らかとなった。また、ＮＡＭがIκBα、p65の共通のリン酸化酵素であるＩＫＫの活性を阻害する可能性が示唆された。
［試験例４］インビトロ・キナーゼ・アッセイ(in vitro kinase assay)によるＮＡＭのＩＫＫリン酸化活性に対する影響の検討
【００７１】
＜目的＞
【００７２】
これまでの結果から、ＮＡＭはＩＫＫの活性を阻害することでＮＦ−κＢ活性化を抑制する可能性が示唆された。そこで、ＮＡＭがＩＫＫの活性に対して直接阻害作用を示すかどうか、さらにはＩＫＫα，ＩＫＫβのどちらについて阻害を示すかをin vitro immunocomplex kinase assayを行い検討した（図６，図７，図８のグラフ参照）。
【００７３】
＜具体的手順＞
【００７４】
（１）ＧＳＴ融合タンパク質の合成と精製
【００７５】
あらかじめ所定のバッファーＡ、溶出液及び透析液をそれぞれ準備しておき、以下の手順を実行した。
【００７６】
１）GST-IκBα (1-54)発現プラスミドを大腸菌 (DH5α)にトランスフォームし、LB培地 (100μg/mL Ampicilin)で37℃で一晩培養した。２）100倍量のLB培地に希釈し、OD600が0.5〜0.7になるまで37℃で培養した。３）最終濃度が0.4mMとなるようにIPTG (SIGMA社製)を加え、30℃でさらに5時間培養した。４）1Lの大腸菌培養あたり20mlの氷冷したバッファーＡに懸濁し、氷上で1時間放置した。５）1mLの20% TritonX-100（最終濃度1%）及び480μLの5M NaCl（最終濃度150mM）を加えた。６）超音波処理装置（コスモ・バイオ社製）を用いて、15秒間のパルスを氷令しながら5回加え、細胞を破粋した。７）4℃、15000rpmで15分間遠心した。８）上清を別のチューブに移し、再度遠心した。９）上清を0.45μmのフィルター (MILLIPORE社製)を通しこれを粗抽出液とし、氷上に放置した。１０）1Lの大腸菌培養あたりベッドボリュームで3mLのレジン (Glutathione Sepharose 4B ; Amersham Biosciences社製)をカラム (Bio-Rad社製)に詰め、30mLの氷冷PBSで洗った。１１）コールドルームにおいて、上記の粗抽出液をカラムに通し、レジンに吸着させた。１２）30mLの氷冷PBSで3回カラムを洗った。１３）カラムのボトムキャップを閉じ、室温にて3mLの溶出液を加えて10分間放置した。１４）キャップをはずし溶出液を回収し氷冷した。溶出をさらに2回繰り返した。１５）透析チューブに入れ、4℃で一晩透析を行った。透析液は2回交換した。１６）翌日、タンパクを回収し、-80℃で保存した。タンパク濃度を測定し、SDS-PAGEで産物を確認した。
【００７７】
（２）免疫沈降とリン酸化反応
【００７８】
あらかじめ所定のキナーゼ・アッセイ・リシス・バッファー(kinase assay lysis buffer)及びキナーゼ・バッファー(kinase buffer)をそれぞれ準備しておき、以下の手順を実行した。
【００７９】
１）HEK293細胞を6×105 cells/dishの密度で60mm dishにまいた。２） 細胞を1mLの氷冷PBSで洗い、500μLのlysis bufferで回収した。３）抗ＩＫＫα抗体を用いて、4℃で90分間、ＩＫＫ複合体の免疫沈降を行った。４）1mLの氷冷lysis bufferで3回、kinase bufferで2回ビーズを洗った。５）20μM ATP, 2.5μCi [γ-32P] ATP, 2.5μg GST-IκBα (1-54)を含むkinase buffer 30μLを加え、30℃で20分間リン酸化反応を行った。６）6×SDS sample bufferを6mL加え、100℃で5分間加熱処理した後、10% SDS-PAGEを行った。７）ゲル乾燥機 (RAPIDRY, ATTO社製)でゲルを乾燥後、BAS-1800 II (FUJIFILM社製)を用いてシグナルを検出した。シグナルの検出用ソフトはImage Reader (FUJIFILM社製)を、データ解析はImage Gauge V4.0 (FUJIFILM社製)をそれぞれ用いた。
【００８０】
＜試験結果＞
【００８１】
上記アッセイを行って検討した結果、図６〜図８に示すように、ＮＡＭは抗ＩＫＫ抗体を用いて免疫沈降した内在性のＩＫＫ複合体のリン酸化能をその濃度依存的に阻害した。以上の結果より、ＮＡＭはＩＫＫのリン酸化能を阻害する、より詳細にいうとＩＫＫα活性の選択的阻害を通じてＩＫＫのリン酸化能を阻害することで、ＮＦ−κＢの活性化を抑制することが示された。ちなみに、ＮＡＭはＩＫＫα活性に対し１μＭ以下（具体的には約０．９３μＭ）のＩＣ５０を有し、ＩＫＫβ活性に対し１０μＭ以上のＩＣ５０を有していた。
［試験例５］ＨＩＶ−１潜伏感染細胞からのＨＩＶ−１の複製に対するＮＡＭの効果の検討
【００８２】
＜目的＞
【００８３】
次に、ＮＡＭの効果が実際にＮＦ−κＢにより制御されている生物学的現象に対して有効であるかどうかを検討するために、ＴＮＦ刺激におけるHIV-1潜伏感染細胞からのウィルス複製に対しての効果を検討した。ここでは、測定用キットとしてRETRO-TEK HIV-1 p24 Antigen ELISA kit (Zeoto Metrix Corp., 社製)を用いるとともに、試験に供する細胞としてOM10.1 細胞（HL-60（ヒト前骨髄性白血病細胞株）のHIV-1潜伏感染細胞株）を用いた。
【００８４】
＜具体的手順＞
【００８５】
１）12-well plateにOM10.1細胞を5 x 105 cells/wellの密度になるようにまき、ＮＡＭを加えた。２）1時間後、0.2ng/mLとなるようにＴＮＦαで刺激した。３）24時間後、細胞上清を回収し、HIV-1 p24抗原レベルをRETRO-TEK HIV-1 p24 Antigen ELISA kitを用いて、ELISA法によりウィルス複製量を測定した。
【００８６】
＜試験結果＞
【００８７】
その結果、ＮＡＭは、ＴＮＦα刺激によって強く誘導される培養上清中のHIV-1 p24抗原量を著しく、かつ濃度依存的に減少させた (図９のグラフを参照)。以上の結果より、ＮＡＭはそのＮＦ−κＢ活性化阻害作用を通じてHIV-1の複製に対して強い抑制効果を示すことが明らかとなった。また、ＮＡＭはHIV-1の複製抑制に対し０．０５μＭ〜０．１μＭ程度のＩＣ５０を有することがわかった。
［全体考察］
【００８８】
以上のように本実施例では、新規に合成したｃＰＡ類似化合物を含む合計１４種類の合成炭素環アデニンヌクレオシド化合物を用い、ＮＦ−κＢ阻害剤としてのスクリーニングを行った。その中で、最も強い抑制効果を示すものとしてＮＡＭを同定した。そして、この化合物について各種の試験を行うことで、下記のような極めて好適な結果を得ることができた。
【００８９】
・ＮＡＭは細胞毒性を示さない濃度において特異的にＮＦ−κＢの活性化を阻害した。
【００９０】
・ＮＡＭは、IκBαのリン酸化を阻害し、それに引き続きおこるIκBαの分解を抑制することにより、ＮＦ−κＢ阻害効果を示した。
【００９１】
・ＮＡＭは、ＮＦ−κＢ p65サブユニット Ser536のリン酸化阻害し、この効果もＮＦ−κＢ阻害作用の一因となっていると考えられた。
【００９２】
・ＮＡＭはインビトロでＩＫＫの活性を、とりわけＩＫＫαの活性を直接阻害した。それに対してＩＫＫβの活性についてそれほど阻害していなかった。
【００９３】
・ＮＡＭは、そのＮＦ−κＢ阻害効果を通じて、ＴＮＦα刺激によるHIV-1潜伏感染細胞からのウィルスの複製を強力に抑制した。
【００９４】
次に、特許請求の範囲に記載された技術的思想のほかに、前述した実施の形態によって把握される技術的思想を以下に列挙する。
【００９５】
（１）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とすることを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【００９６】
（２）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【００９７】
（３）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫのリン酸化能を阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【００９８】
（４）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ｃＰＡよりもＮＦ−κＢ阻害効果が大きいことを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【００９９】
（５）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＮＦ−κＢ依存性の転写に対する抑制効果がｃＰＡよりも大きいことを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【０１００】
（６）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、細胞毒性のレベルがｃＰＡと同程度であって、かつ、ＮＦ−κＢ依存性の転写に対する抑制効果がｃＰＡよりも大きいことを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【０１０１】
（７）ｃＰＡを除く合成炭素環アデニンヌクレオシドまたはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＮＦ−κＢ p65サブユニット Ser536のリン酸化阻害することを特徴とするＮＦ−κＢ阻害剤。
【０１０２】
（８）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤を含有する医薬組成物を用いて、ＮＦ−κＢの活性化が関与する疾患を治療、予防する方法。
【０１０３】
（９）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαのリン酸化を選択的に阻害することを通じてＨＩＶ−１の転写を抑制するＡＩＤＳ治療薬。
【０１０４】
（１０）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする癌治療薬。
【０１０５】
（１１）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする炎症治療薬。
【０１０６】
（１２）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする自己免疫症治療薬。
【０１０７】
（１３）ノルアリステロマイシン（ＮＡＭ）またはその医薬上許容できる塩を有効成分とし、ＩＫＫαを選択的に阻害するＮＦ−κＢ阻害剤を含有することを特徴とする感染症治療薬。
【図面の簡単な説明】
【０１０８】
【図１】実施例の試験例１において供される５グループの合成炭素環アデニンヌクレオシドを示す構造式。
【図２】実施例の試験例１において、合計１４種類の合成炭素環アデニンヌクレオシドのＮＦ−κＢ依存性転写に対する抑制効果の結果を示すグラフ。
【図３】（ａ），（ｂ）は実施例の試験例２におけるレポーターアッセイの結果を示すグラフ。
【図４】実施例の試験例２における細胞毒性試験の結果を示すグラフ。
【図５】（ａ）〜（ｃ）は実施例の試験例３におけるウェスタンブロッティングの結果を示す写真。
【図６】（ａ）は実施例の試験例４におけるインビトロ・キナーゼ・アッセイの結果を示す写真、（ｂ）は結果を示すグラフ。
【図７】（ａ）は実施例の試験例４におけるインビトロ・キナーゼ・アッセイの結果を示す写真、（ｂ）は結果を示すグラフ。
【図８】（ａ）は実施例の試験例４におけるインビトロ・キナーゼ・アッセイの結果を示す写真、（ｂ）は結果を示すグラフ。
【図９】実施例の試験例５におけるELISA法によるウィルス複製量測定試験の結果を示すグラフ。
【図１】
2007099702.tif 000005
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図９】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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