(57)【要約】      （修正有）【課題】分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することのできる、分子振動計測法及び分子振動計測装置を提供する。【解決手段】標的分子に結合した光吸収物質に光を照射し、光吸収物質の周辺の標的分子の内部構造から発生するラマン散乱を計測する。または、光吸収物質に表面プラズモンを発生する物体を近づけて光を照射する。好ましくは、光吸収物質は２５０〜８００ｎｍに光吸収帯を有し、表面プラズモンを発生する物体は金属コロイド粒子である。【選択図】図１
2007033338.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射し、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測することを特徴とする分子振動計測法。
【請求項２】
前記光吸収物質に表面プラズモンを発生する物体を近づけて光を照射することを特徴とする請求項１記載の分子振動計測法。
【請求項３】
前記標的分子は生体分子であることを特徴とする請求項１又は２記載の分子振動計測法。
【請求項４】
前記光吸収物質は２５０〜８００ｎｍに光吸収帯を有することを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項記載の分子振動計測法。
【請求項５】
前記表面プラズモンを発生する物体は金属粒子、金属殻又は金属薄膜であることを特徴とする請求項２〜４のいずれか１項記載の分子振動計測法。
【請求項６】
前記表面プラズモンを発生する物体は金属コロイド粒子であることを特徴とする請求項５記載の分子振動計測法。
【請求項７】
前記標的分子が１分子レベルであることを特徴とする請求項１〜６のいずれか１項記載の分子振動計測法。
【請求項８】
標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射する照射手段と、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測する計測手段とを備えたことを特徴とする分子振動計測装置。
【請求項９】
前記標的分子の計測箇所を検出する検出手段と、前記計測箇所を前記計測手段で計測可能な位置へ移動させる移動手段とを備えたことを特徴とする請求項８記載の分子振動計測装置。
【請求項１０】
前記標的分子が１分子レベルであることを特徴とする請求項８又は９記載の分子振動計測装置。
【請求項１１】
前記請求項１〜７のいずれか１項に記載の分子振動計測法に用いられる試料調製用キットであって、前記光吸収性物質と、この光吸収性物質を標的分子に結合するための結合試薬と、前記表面プラズモンを発生する物体とを備えたことを特徴とする試料調製用キット。
【請求項１２】
前記請求項８〜１０のいずれか１項記載の分子振動計測装置と、前記請求項１１記載の試料調製用キットを備えたことを特徴とする分子振動計測システム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、分子振動計測法及び分子振動計測装置に関し、特に、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルで計測するための方法と装置に関する。さらに、計測対象となる試料を調製するための試料調製用キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
生命科学研究の分野では、生体分子の機能と、生体分子間相互作用を解析する技術の開発が求められている。
【０００３】
例えば、タンパク質や核酸に代表される生体分子の機能を解明するためには、生体分子の動的な構造変化を１分子レベルで解析することが必須である。その理由は、従来の多分子を対象とする計測では平均値しか求めることができず、個々の分子のダイナミクスを計測することが困難だからである。
【０００４】
ここで、１分子レベルとは、複数分子であってもゆらぎ解析で１分子の情報を得ることができる範囲、例えば１〜１０分子の範囲をいう。
【０００５】
原子間力顕微鏡は生体分子をナノメートルの分解能で検出する強力なツールであり、１分子の構造変化を捉えることが可能である。最近では、高速原子間力顕微鏡が開発され、数十ミリ秒の時間分解能で生体分子の動的な構造変化がイメージングされている（非特許文献１）。しかし、この手法では、生体分子の外見の構造変化しか捉えることができず、生体分子内の特定の領域の構造変化をとらえることは困難である。
【０００６】
生体分子の構造変化を捉える別の方法として、蛍光共鳴エネルギー移動法（ＦＲＥＴ）がある。この方法では、生体分子の特定の部位に２種類の異なる蛍光色素を結合させ、蛍光色素間の距離や角度の変化を検出する。実際、一対の蛍光色素を、蛍光顕微鏡を用いて観察することにより、１分子の生体分子内の構造変化が測定されている（非特許文献２）。しかし、代表的な生体分子であるタンパク質の場合、分子内の決まった位置に２種類の蛍光色素を導入することは困難である。また、特定の２残基の距離が求まったとしても、距離の変化だけから具体的な構造変化を明らかにすることは困難である。
【０００７】
したがって、生体分子内部の特定の化学結合に関する情報を１分子レベルで検出する技術の開発が待ち望まれている。
【０００８】
一方、生体分子間相互作用を解析するための技術として、表面プラズモン共鳴法（ＳＰＲ）が開発され、装置が市販されている。この方法では、ガラス基板に金属薄膜を蒸着し、ガラス側から特定の角度で光を入射することにより金属薄膜に表面プラズモン共鳴を発生させる。まず、金属薄膜に生体分子（標的生体分子）を吸着させておき、次に溶液中に別の生体分子（試験分子）を加える。両者が結合すると屈折率が変化し、共鳴を起こす入射角が変化する。この変化を測定することにより生体分子間相互作用が測定されている。
【０００９】
また、同様の効果を示す生体分子間相互作用の検出技術として、水晶発振子マイクロバランス法（ＱＣＭ）がある。これは、生体分子の吸着を水晶発振子の周波数変化として検出する方法である。これらの方法は検出のために生体試料を蛍光色素などで修飾する必要がなく簡便に測定できる利点がある。しかし、非特異的吸着が大きな問題であり、弱い相互作用の検出は困難である。また、定量のためには数ｎｇ以上の試料を必要とするなど、１分子レベルの検出感度を有していない。そのため、結合速度定数、解離速度定数、解離定数などを測定できるが、生体分子間相互作用のダイナミクスを１分子レベルで解析することは不可能ある。
【００１０】
生体分子間相互作用を計測する別の手段として蛍光顕微鏡法がある。蛍光色素を生体分子に結合させることにより単一分子のイメージングが可能になっている（１分子蛍光イメージング法）。この手法を使った研究により、生体分子間相互作用を１分子レベルで解析することの重要性が明らかになった。
【００１１】
ここでは酵素反応を例にして１分子レベルでの解析の重要性を紹介する。従来、蛍光性の補酵素を結合している酵素は、その蛍光を利用して反応の１分子レベルでの解析が行われてきた。例えば、コレステロール酸化酵素は、補酵素としてＦＡＤ（flavin adenine dinucleotide）を持っており、ＦＡＤの酸化と還元に伴って蛍光を発したり発しなくなったりする。この性質を利用して、酵素反応の１分子レベルでの解析が行われている（非特許文献３）。解析の結果、酵素反応が終了した直後は次の反応が速やかに進行することが示された。このようなタンパク質の履歴効果は、１分子レベルでの計測によって初めて明らかにされた現象である。
【００１２】
蛍光性の補酵素を持たない一般の酵素の場合、酵素と基質に、それぞれ異なる蛍光色素を結合させることにより酵素反応が１分子レベルで計測されている。例えば、蛍光色素Ｃｙ３を結合したＡＴＰを用いて、ＡＴＰ加水分解酵素であるミオシンのＡＴＰ加水分解反応が１分子レベルで計測されている（非特許文献４）。この方法では、まず、酵素をガラス基板に固定し、その位置を蛍光顕微鏡により確認しておく。次に、溶液中に蛍光標識した基質分子を漂わせ、基質が酵素に結合、解離する過程を全反射型エバネッセント場蛍光顕微鏡により１分子イメージングする。しかし、この方法で１分子レベルの計測するためには、溶液中に漂う蛍光性基質からの背景光を抑えるため、基質濃度を２０ｎＭ以下にする必要があった。このため弱い生体分子間相互作用を１分子レベルで計測することは困難であった。また、基質の非特異的な吸着が計測を困難にしていた。
【００１３】
これらの問題点は、光の波長よりも小さい微小開口から発生するエバネッセント場を利用することにより大幅に改善され、溶液中の蛍光性基質の濃度が１μＭでも１分子レベルで計測できるようになった（特許文献１、非特許文献５）。しかし、より高濃度では１分子レベルでの計測は不可能である。さらに、基質分子に蛍光色素を結合させるため、一般に、酵素活性が低下するという問題点が残された。そのため、基質分子を標識せずに１分子レベルで解析する手法の開発が求められている。
【００１４】
以上、酵素と基質の分子間相互作用について説明したが、同様のことが、タンパク質−タンパク質間相互作用、タンパク質−核酸間相互作用、核酸−核酸間相互作用などの、一般の生体分子間相互作用についても言える。
【００１５】
また、蛍光標識することなく分子の構造や状態を知る方法としてラマン散乱が有効である。ラマン散乱とは光が物質中で散乱され、入射光と波長の異なる光が放出される現象である。ラマン散乱は分子の振動準位に関する情報を与えるため、生体分子内の様々な結合をより詳細に測定するのに適している。しかし、ラマン散乱は非常に微弱な信号（散乱断面積が蛍光の１０−１４）であるため、１分子レベルでラマン散乱を検出することは困難だった。
【００１６】
しかし近年、銀や金などのコロイド粒子に結合した１分子の蛍光色素（非特許文献６）や、ヘムタンパク質（非特許文献７）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）（非特許文献８）からの信号が表面増強共鳴ラマン散乱によって検出できることが示され１分子レベルの計測の可能性が拓かれた。これらのタンパク質の表面増強共鳴ラマン散乱では、タンパク質が本来有している可視光の吸収が利用された。しかし、光吸収分子を人工的に生体分子に結合させて表面増強共鳴ラマン散乱による１分子レベルの計測を行った例は報告されていない。
【特許文献１】特開２００４−１６３１２２号公報
【特許文献２】特表２００３−５１００６５号公報
【非特許文献１】Ando, T., Kodera, N., Takai, E., Maruyama, D., Saito, K. & Toda, A. (2001) A high-speed atomic force microscope for studying biological macromolecules, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 98, 12468-12472.
【非特許文献２】Ha, T., Enderle, T., Ogletree, D. F., Chemla, D. S., Selvin, P. R. & Weiss, S. (1996) Probing the interaction between two single molecules: fluorescence resonance energy transfer between a single donor and a single acceptor, Proc Natl Acad Sci U S A. 93, 6264-8.
【非特許文献３】Lu, H. P., Xun, L. & Xie, X. S. (1998) Single-molecule enzymatic dynamics, Science. 282, 1877-1882.
【非特許文献４】Funatsu, T., Harada, Y., Tokunaga, M., Saito, K. & Yanagida, T. (1995) Imaging of single fluorescent molecules and individual ATP turnovers by single myosin molecules in aqueous solution, Nature. 374, 555-559.
【非特許文献５】Levene, M. J., Korlach, J., Turner, S. W., Foquet, M., Craighead, H. G. & Webb, W. W. (2003) Zero-mode waveguides for single-molecule analysis at high concentrations, Science. 299, 682-686.
【非特許文献６】Nie, S. & Emory, S. R. (1997) Probing Single Molecules and Single Nanoparticles by Surface-Enhanced Raman Scattering, Science. 275, 1102-1106.
【非特許文献７】Xu, H. X., Bjerneld, E. J., Kall, M. & Borjesson, L. (1999) Spectroscopy of single hemoglobin molecules by surface enhanced Raman scattering, Physical Review Letters. 83, 4357-4360.
【非特許文献８】Habuchi, S., Cotlet, M., Gronheid, R., Dirix, G., Michiels, J., Vanderleyden, J., De Schryver, F. C. & Hofkens, J. (2003) Single-molecule surface enhanced resonance Raman spectroscopy of the enhanced green fluorescent protein, J Am Chem Soc. 125, 8446-7.
【非特許文献９】Watanabe, Y. & Imai, K. (1981) High-performance liquid chromatography and sensitive detection of amino acids derivatized with 7-fluoro-4-nitrobenzo-2-oxa-1,3-diazole, Anal Biochem. 116, 471-2.
【非特許文献１０】Griffin, B. A., Adams, S. R. & Tsien, R. Y. (1998) Specific covalent labeling of recombinant protein molecules inside live cells, Science. 281, 269-272.
【非特許文献１１】Noren, C. J., Anthony-Cahill, S. J., Griffith, M. C. & Schultz, P. G. (1989) A general method for site-specific incorporation of unnatural amino acids into proteins, Science. 244, 182-8.
【非特許文献１２】Bain, J. D., Diala, E. S., Glabe, C. G., Wacker, D. A., Lyttle, M. H., Dix, T. A. & Chamberlin, A. R. (1991) Site-specific incorporation of nonnatural residues during in vitro protein biosynthesis with semisynthetic aminoacyl-tRNAs, Biochemistry. 30, 5411-21.
【非特許文献１３】Hohsaka, T., Kajihara, D., Ashizuka, Y., Murakami, H. & Sisido, M. (1999) Efficient incorporation of nonnatural amino acids with large aromatic groups into streptavidin in in vitro protein synthesizing systems, J Am Chem Soc. 121, 34-40.
【非特許文献１４】Yamaguchi, J., Nemoto, N., Sasaki, T., Tokumasu, A., Mimori Kiyosue, Y., Yagi, T. & Funatsu, T. (2001) Rapid functional analysis of protein-protein interactions by fluorescent C-terminal labeling and single-molecule imaging, FEBS. Lett. 502, 79-83.
【非特許文献１５】Lee, P. C. & Meisel, D. (1982) Adsorption and Surface-Enhanced Raman of Dyes on Silver and Gold Sols, Journal of Physical Chemistry. 86, 3391-3395.
【非特許文献１６】Zhang, X., Young, M. A., Lyandres, O. & Van Duyne, R. P. (2005) Rapid detection of an anthrax biomarker by surface-enhanced Raman spectroscopy, J Am Chem Soc. 127, 4484-9.
【非特許文献１７】Jackson, J. B. & Halas, N. J. (2004) Surface-enhanced Raman scattering on tunable plasmonic nanoparticle substrates, Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 17930-5.
【非特許文献１８】Peyser-Capadona, L., Zheng, J., Gonzalez, J. I., Lee, T. H., Patel, S. A. & Dickson, R. M. (2005) Nanoparticle-free single molecule anti-stokes Raman spectroscopy, Phys Rev Lett. 94, 058301.
【非特許文献１９】Tokunaga, M., Kitamura, K., Saito, K., Iwane, A. H. & Yanagida, T. (1997) Single molecule imaging of fluorophores and enzymatic reactions achieved by objective-type total internal reflection fluorescence microscopy, Biochem. Biophys. Res. Commun. 235, 47-53.
【非特許文献２０】Leopold, N. & Lendl, B. (2003) A new method for fast preparation of highly surface-enhanced Raman scattering (SERS) active silver colloids at room temperature by reduction of silver nitrate with hydroxylamine hydrochloride, Journal of Physical Chemistry B. 107, 5723-5727.
【非特許文献２１】Bayley, P. M. & Martin, S. R. (1992) The alpha-helical content of calmodulin is increased by solution conditions favouring protein crystallisation, Biochim Biophys Acta. 1160, 16-21.
【非特許文献２２】Kasurinen, J. (1992) A novel fluorescent fatty acid, 5-methyl-BDY-3-dodecanoic acid, is a potential probe in lipid transport studies by incorporating selectively to lipid classes of BHK cells, Biochem Biophys Res Commun. 187, 1594-601.
【非特許文献２３】Triantafilou, K., Triantafilou, M. & Fernandez, N. (2000) Lipopolysaccharide (LPS) labeled with Alexa 488 hydrazide as a novel probe for LPS binding studies, Cytometry. 41, 316-20.
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１７】
上述のように、従来の技術では、生体分子内部の特定領域の構造変化や化学結合に関する情報を１分子レベルの高感度で検出することは困難であった。また、生体分子間相互作用を１分子レベルで解析することも、内在性の蛍光物質を有する生体分子以外は困難であった。生体分子に蛍光色素を導入することにより１分子イメージングできる場合があるが、溶液中の分子の濃度がｎＭやμＭ以下の制限を受けるなど限界があった。さらに蛍光標識が生体分子の機能に影響を与える場合があるなど問題があった。
【００１８】
そこで、本発明は上記問題点に鑑み、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することのできる、分子振動計測法及び分子振動計測装置を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１９】
本発明の請求項１記載の分子振動計測法は、標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射し、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測することを特徴とする。
【００２０】
本発明の請求項２記載の分子振動計測法は、請求項１において、前記光吸収物質に表面プラズモンを発生する物体を近づけて光を照射することを特徴とする。
【００２１】
本発明の請求項３記載の分子振動計測法は、請求項１又は２において、前記標的分子は生体分子であることを特徴とする。
【００２２】
本発明の請求項４記載の分子振動計測法は、請求項１〜３のいずれか１項において、前記光吸収物質は２５０〜８００ｎｍに光吸収帯を有することを特徴とする。
【００２３】
本発明の請求項５記載の分子振動計測法は、請求項２〜４のいずれか１項において、前記表面プラズモンを発生する物体は金属粒子、金属殻又は金属薄膜であることを特徴とする。
【００２４】
本発明の請求項６記載の分子振動計測法は、請求項５において、前記表面プラズモンを発生する物体は金属コロイド粒子であることを特徴とする。
【００２５】
本発明の請求項７記載の分子振動計測法は、請求項１〜６のいずれか１項において、前記標的分子が１分子レベルであることを特徴とする。
【００２６】
本発明の請求項８記載の分子振動計測装置は、標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射する照射手段と、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測する計測手段とを備えたことを特徴とする。
【００２７】
本発明の請求項９記載の分子振動計測装置は、請求項８において、前記標的分子の計測箇所を検出する検出手段と、前記計測箇所を前記計測手段で計測可能な位置へ移動させる移動手段とを備えたことを特徴とする。
【００２８】
本発明の請求項１０記載の分子振動計測装置は、請求項８又は９において、前記標的分子が１分子レベルであることを特徴とする。
【００２９】
本発明の請求項１１記載の試料調製用キットは、前記請求項１〜７のいずれか１項に記載の分子振動計測法に用いられる試料調製用キットであって、前記光吸収性物質と、この光吸収性物質を標的分子に結合するための結合試薬と、前記表面プラズモンを発生する物体とを備えたことを特徴とする。
【００３０】
本発明の請求項１２記載の分子振動計測システムは、前記請求項８〜１０のいずれか１項記載の分子振動計測装置と、前記請求項１１記載の試料調製用キットを備えたことを特徴とする。
【発明の効果】
【００３１】
本発明の分子振動計測法及び分子振動計測装置によれば、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することができる。
【００３２】
本発明の試料調製用キットによれば、本発明の分子振動計測法に用いられる標的分子を含む試料を簡便に調製することができる。
【００３３】
本発明の分子振動計測システムによれば、標的分子を含む試料を簡便に調製し、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３４】
本発明の分子振動計測法は、標的分子に結合した光吸収物質に光を照射し、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測するものである。
【００３５】
本発明の方法では、標的分子の局所的な情報を得るために、標的分子の特定の部位に光吸収物質を結合させるが、標的分子がその構造中に光吸収物質を元来有している場合には、その光吸収物質を利用してもよい。標的分子が構造中に光吸収物質を持っている例としては、ＧＦＰ（非特許文献８），コレステロール酸化酵素（非特許文献３），ヘモグロビン（非特許文献７）などがある。
【００３６】
また、本発明の方法は、特に、タンパク質，核酸，脂質，糖鎖などの複雑な構造を有する生体分子の局所的な構造変化や機能、及び分子間相互作用を１分子レベルで計測するのに適しているが、標的分子としては生体分子に限らず、液晶などの機能性高分子材料、その他のあらゆる分子、さらには結晶、ナノデバイス用薄膜やナノガラス薄膜などの種々の材料にも適用することができる。
【００３７】
光吸収物質としては、２５０〜８００ｎｍ、好ましくは４００〜７００ｎｍに光吸収帯を有する化合物を使用する。また、光吸収物質としては、標的分子の機能を阻害しない小さい分子が好ましく用いられる。
【００３８】
代表的な光吸収物質として、例えばローダミン（rhodamine），スルホンローダミン（sulfonerhodamine），オレゴングリーン（oregon green，登録商標），フルオレセイン（fluorescein），エオシン（eosin），ルシフェールイエロー（lucifer yellow），ＮＢＤ，テキサスレッド（texas red），ボディピー（BODIPY，登録商標）やアレクサフルオール（Alexa Fluor，登録商標）などの蛍光色素がある（多くの例が、Molecular Probe社のThe Handbook. A guide to Fluorescent Probes and Labeling Technologies. Tenth Editionに集録されている）。
【００３９】
ただし、蛍光がラマン散乱光の検出を妨げる場合は、ＮＢＤ−Ｆ（4-fluoro-7-nitro-2,1,3-benzoxadiazole）（非特許文献９）やＦｌＡｓＨ，ＲｅＡｓＨ（非特許文献１０）のように、生体物質と反応して始めて蛍光を発する蛍光色素が好ましい。このように、他の物質と結合するまでは蛍光性を持たないが、結合した後は蛍光性を有する物質を発蛍光物質という。
【００４０】
さらに、マラカイトグリーン（malachite green）やベンゾオキサゾール（benzoxadiazole），ＱＳＹ７（登録商標），ＱＳＹ９（登録商標），ＱＳＹ２１（登録商標）のように光を吸収するが蛍光を発しない色素を使用すれば、蛍光の妨害を除くことができる。
【００４１】
光吸収物質を生体分子に結合させる場合、計測すべき領域に応じて１個、または複数個の光吸収物質を結合させる。タンパク質ならば特定のアミノ酸に蛍光色素を導入する方法が最も一般的である。このためには、タンパク質の局所的な情報を取りたい領域を決め、その近傍、好ましくは３ｎｍ以内の反応性の高いＣｙｓのＳＨ基（チオール基）にマレイミド（maleimide）基，ヨードアセトアミド（iodoacetamide）基，ハロゲン化アルキル（alkyl halide）基やアリル化剤（arylating agents）を有する蛍光色素を共有結合させる。周囲に反応性の高いＣｙｓがない場合は、Ｃｙｓと置換した変異タンパク質を合成して蛍光標識する。このように、光吸収物質を結合させる位置によって、測定したい部分を特定でき、光吸収物質を結合させた位置の周辺３ｎｍ以内のラマン散乱光を測定することが可能となる。
【００４２】
その他、Ｎ末端やＬｙｓのアミノ基をイソチオシアネート（isothiocyanate）基，スクシニミジルエステル（succinimidyl ester）基，スルホスクシニミジルエステル（sulfosuccinimidyl ester）基，テトラフルオロフェニルエステル（tetrafluorophenyl ester）基，またはＳＴＰエステル基で標識する方法も有効である。
【００４３】
特に、上皮成長因子のようにＬｙｓを持たないか、Ｌｙｓの個数が少ないポリペプチドの場合は、特定のアミノ基を選択的に修飾できるため、Ｎ末端やＬｙｓのアミノ基を修飾する上記の方法が有効である。
【００４４】
すなわち、一般に、タンパク質を修飾する場合、反応性と選択性の高い順にＣｙｓ、Ｌｙｓが使われるが、通常、タンパク質にはＬｙｓの含量が多いので、どのＬｙｓが修飾されたのかを特定することは難しく、これが問題となる。しかし、上皮成長因子は例外のポリペプチドで、Ｌｙｓの数がマウスでは０、ヒトやその他の動物で１〜２個と極端に少ない。そのため、上記の方法でアミノ基を修飾すると、Ｎ末端か、数少ないＬｙｓのεアミノ基が修飾される。このように、タンパク質の中にごくわずかに存在する反応性の高いアミノ酸を修飾することによって、きわめて選択性の高い修飾ができる。
【００４５】
また、光吸収物質を結合させたアミノアシルｔＲＮＡ（aminoacyl-tRNA）を含む試験管内合成系でタンパク質を合成する方法も有効である。この場合、特定の部位のコドンを終始コドンに変えてサプレッサーｔＲＮＡによって光吸収物質を導入するか（非特許文献１１，１２）、４塩基コドンに変えることにより（非特許文献１３）、特定の部位に光吸収物質を導入することが可能である。この他、光吸収物質を結合させたピューロマイシンを用いてＣ末端を標識する方法（非特許文献１４）も有効である。
【００４６】
核酸に光吸収物質を導入する方法としては、核酸の相補鎖部位の隙間に特異的に結合する縫込み型インターカレータ−を用いて光吸収物質を導入する方法がある。その他、グアニンに共有結合させる方法（例えば、Molecular Probe社 ULYSIS Alexa Fluor 546 Nucleic Acid Labeling Kit, Cat# U21652  または、Mirus Bio社 Label It Cy5 Labeling Kit Full Size Cat# MIR3700）や、核酸の合成時に光吸収物質を結合したＮＴＰを導入する方法（Amersham社 Cy3-UTP Cat# PA53026）がある。
【００４７】
脂質および糖鎖を光吸収物質で標識する場合には、ヒドラジン（hydrazine）やヒドロキシルアミン（hydroxylamine）を反応基としてもつ光吸収物質を用いて、脂質や糖鎖のキトン基またはアルデヒド基と共有結合させる方法が有効である。またカルボン酸基もタンパク質や脂質等に存在し、これはヒドラジンやヒドロキシルアミンに加えてジアゾアルカン（diazoalkane），ハロゲン化アルキル（alkyl halide），トリフルオロメタンスルホネート（trifluoromethanesulfonate），ＳＴＰ（4-sulfo-2,3,5,6-tetrafluorophenol），Ｎ−ヒドロキシスルホスクシニミド（N-hydroxysulfosuccinimide）を有する光吸収分子と共有結合させる。
【００４８】
また、本発明の分子振動計測法は、光吸収物質に表面プラズモンを発生する物体を近づけて光を照射するものである。
【００４９】
この表面プラズモンを発生する物体としては金属が用いられ、この金属としては、薄膜や微粒子の形態のものを用いることができる。微粒子の形態のものとしては、金属コロイド粒子が好適に用いられる。
【００５０】
なお、１分子レベル、すなわち、複数分子であってもゆらぎ解析で１分子の情報を得ることができる範囲、例えば１〜１０分子の範囲での測定には表面プラズモンを発生する物体の使用が不可欠であるが、これよりも分子数の多い多分子の結合等の測定においては、測定時間を長くすればラマン散乱光の測定が可能であるので、必ずしも表面プラズモンを発生する物体を使用する必要はない。
【００５１】
具体的には、例えば、光吸収物質を結合した標的分子と、表面プラズモンを発生する金属粒子とを吸着または結合させる。これを顕微鏡のスライドガラスに付着させ、光吸収物質の吸収波長に相当する光を照射する。この光の照射に伴い金属粒子から表面プラズモンが発生し、これにより標的分子の光吸収物質が結合している近傍の表面増強共鳴ラマン散乱を発生させることができる。この信号を解析すると標的分子の構造変化のダイナミクスを１分子レベルで解析することが可能である。その測定原理を図１に示す。
【００５２】
なお、表面増強ラマン散乱とは、金属表面上に吸着した分子のラマン散乱断面積がその分子が溶液中にあるときよりも、１０４〜１０６倍も大きくなる現象である。その原因として、金属表面の凹凸による電磁場の局所的増強や吸着された分子とその周辺の電子状態の変化などが考えられている。
【００５３】
さらに、標的分子が酵素の場合、光吸収物質を基質結合部位の近くに結合させておけば、基質の酵素への結合や酵素反応中間体の信号を得ることも可能になる。また、標的分子が一般の生体分子の場合、溶液に別の生体分子を加えて両者の結合と解離を１分子レベルで解析することも可能である。この場合、溶液中の生体分子の濃度に制約はなくｍＭ以上の濃度でも測定が可能である。
【００５４】
表面増強共鳴ラマン散乱を発生させるためには、表面プラズモンを発生させる必要がある。表面プラズモンを発生する物体としては、金属粒子、金属薄膜などが挙げられるが、直径数十ナノメートルの銀，金，白金，ニッケルなどのコロイド粒子を作製し（非特許文献１５）、これに光を照射して表面プラズモンを発生させる方法が最も一般的である。金属コロイド粒子の他に、金属粒子の付着したシート（非特許文献１６）や、金属ナノシェル（nanoshell，非特許文献１７）やナノクラスター（nanocluster，非特許文献１８）を用いて表面プラズモンを発生させる方法も有効である。その他、特許文献２において開示されているラマンシグナルを増強する微粒子構造体も有効である。
【００５５】
以上のように、本発明は、分析対象となる標的分子に光を吸収する分子である光吸収分子を結合させ、表面増強共鳴ラマン散乱を用いて、光吸収分子の近傍における標的分子の局所的構造変化や機能を検出する。さらに、別の試験分子を加えることにより、標的分子と試験分子の相互作用を、表面増強共鳴ラマン散乱により検出する。
【００５６】
従来の技術では、生体分子内部の特定領域の構造変化や化学結合に関する情報を１分子レベルの高感度で検出することは困難であったが、本発明では、生体分子の特定の部位に蛍光色素などの光吸収物質を結合させ、これを表面プラズモンを発生する金属微粒子などの物体に結合させ、光吸収物質の吸収波長の光で励起し、発生した表面増強共鳴ラマン散乱を利用して光吸収物質の近傍の化学結合に由来するラマン散乱の信号を１分子レベルで検出し、生体分子の局所的な特定領域の構造変化、化学結合に関する情報を得ることができる。そして、光吸収物質を生体分子内の様々な部位に結合させることにより生体分子内部の構造変化のダイナミクスの全体をも明らかにすることができる。特に、光吸収物質の結合部位をタンパク質分子の基質結合部位の近傍にすることにより、酵素反応の１分子レベルでの検出が可能になる。
【００５７】
また、従来の技術では、生体分子間相互作用を１分子レベルで解析することは困難だった。生体分子に蛍光色素を導入し、１分子イメージングした例が報告されているが、溶液中の分子の濃度をｎＭやμＭ以下に抑える必要があった。さらに両方の生体分子を蛍光標識するために機能が阻害される可能性があった。本発明では、生体分子同士が結合する部位の近傍に光吸収物質を結合させて、生体分子同士の結合に伴う表面増強共鳴ラマン散乱の変化を検出することにより生体分子間相互作用の１分子レベルでの解析を可能にする。一方の生体分子を標識する必要が無いので機能阻害を避けられる他、溶液中の分子の濃度をｍＭ以上にすることも可能であり、溶液中の濃度について制限を受けないという利点を有する。
【００５８】
本発明は、生体分子、機能性高分子材料など種々の物質の機能解析と相互作用解析に大きな貢献をするものと期待される。
【００５９】
また、本発明の分子振動計測法の計測対象となる、標的分子を含む試料を簡便に調製することができるように、本発明の試料調製用キットは、光吸収性物質と、この光吸収性物質を標的分子に結合するための結合試薬と、表面プラズモンを発生する物体とを備えている。
【００６０】
ここで、光吸収性物質と表面プラズモンを発生する物体については、既に詳細に説明したのでその説明は省略する。また、光吸収性物質を標的分子に結合するための結合試薬については、特定の試薬に限定されず公知の種々の試薬とすることができる。標的分子がタンパク質であって、光吸収性物質の目的とする結合部位がＳＨ基である場合には、光吸収性物質に、例えば、マレイミド（maleimide）基，ヨードアセトアミド（iodoacetamide）基を有する結合試薬を結合させてから、結合試薬のマレイミド基，ヨードアセトアミド基を標的分子に結合させることによって、光吸収性物質を標的分子に結合させる。標的分子がタンパク質であって、光吸収性物質の目的とする結合部位がアミノ基である場合には、光吸収性物質に、例えば、イソチオシアネート（isothiocyanate）基，スクシニミジルエステル（succinimidyl ester）基を有する結合試薬を結合させてから、結合試薬のイソチオシアネート基，スクシニミジルエステル基を標的分子に結合させることによって、光吸収性物質を標的分子に結合させる。標的分子が核酸であって、光吸収性物質の目的とする結合部位がグアニンの場合には、結合試薬として、例えば、Molecular Probe社 ULYSIS Alexa Fluor 546 Nucleic Acid Labeling Kit, Cat# U21652  または、Mirus Bio社 Label It Cy5 Labeling Kit Full Size Cat# MIR3700を使用することができる。標的分子が核酸であって、光吸収性物質の目的とする結合部位がウラシルの場合は、結合試薬として、例えば、Amersham社 Cy3-UTP Cat# PA53026を使用することができる。標的分子が脂質または糖質であって、光吸収性物質の目的とする結合部位がキトン基またはアルデヒド基の場合は、結合試薬として、ヒドラジン（hydrazine）やヒドロキシルアミン（hydroxylamine）を用いることにより、光吸収性物質を標的分子に結合させることができる。
【００６１】
これら光吸収性物質、結合試薬と、表面プラズモンを発生する物体は、好ましくは、それぞれ容器に収容されている。また、本発明の試料調製用キットは、試料を調製するときに必要となる溶媒や、スライドガラス、ピペットなどの器具を備えていてもよい。
【００６２】
つぎに、上述の分子振動計測法を実施するために構成された、本発明の分子振動計測装置について説明する。
【００６３】
図２に、本発明の分子振動計測装置の一実施形態として、表面増強共鳴ラマン散乱を発生させるための光照射装置および散乱光を分光して定量するための顕微ラマン分光装置を示す。この装置では、個々の分子の位置をイメージングし、分光したい分子を所定の位置に移動させる機能も有している。
【００６４】
図２において、１は標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射する照射手段としての光源であり、この光源１からの励起光は、ダイクロイックミラー２で反射され、対物レンズ３を通して光吸収物質が結合した標的分子を含む試料Ａに照射されるようになっている。光源１はレーザーなどから構成することができる。
【００６５】
そして、試料Ａから出たラマン散乱光は対物レンズ３で集められ、ダイクロイックミラー２でレイリー散乱光が除かれ、ハーフミラー４または可動式のミラーによって分光用ポートと画像用ポートに分岐されるようになっている。
【００６６】
画像用ポートの経路には、吸収フィルター５が取り付けられており、吸収フィルター５を通過したラマン散乱の顕微鏡像は、標的分子の計測箇所を検出する検出手段としての高感度ビデオカメラ６で撮影されるようになっている。
【００６７】
分光用ポートの経路には、励起光を除くためのノッチフィルター７と、ピンホール８又はスリットが取り付けられており、ノッチフィルター７，ピンホール８又はスリットを通過したラマン散乱光は、光吸収物質の周辺の標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測する計測手段としての分光ユニット９で計測されるようになっている。なお、分光ユニット９は、ポリクロメーター，ＣＣＤカメラ等から構成されている。
【００６８】
また、標的分子の計測箇所を計測手段で計測可能な位置へ移動させる移動手段（図示せず）が設けられており、高感度ビデオカメラ６で撮影された顕微鏡像に基づいて、標的分子からのラマン散乱光がピンホール８又はスリットを通過するように、試料Ａを載置するステージ（図示せず）を移動することができるように構成されている。
【００６９】
以上のように、本実施形態の分子振動計測装置は、標的分子に結合した光吸収物質に励起光を照射する照射手段としての光源１と、この光吸収物質の周辺の前記標的分子の内部構造から発生するラマン散乱光を計測する計測手段としての分光ユニット９とを備えたものである。
【００７０】
また、前記標的分子の計測箇所を検出する検出手段としての高感度ビデオカメラ６と、前記計測箇所を分光ユニット９で計測可能な位置へ移動させる移動手段とを備えたものである。
【００７１】
この分子振動計測装置によれば、本発明の分子振動計測法が可能となり、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することができる。
【００７２】
図３に、本発明の分子振動計測装置の別の実施形態を示す。なお、前記実施形態と同様の部分には同じ符号を付して、その詳細な説明は省略する。
【００７３】
この実施形態は、励起光の照射経路が前記実施形態と異なっており、プリズム型全反射照明を採用している。光源１からの励起光は、試料Ａから見て対物レンズ３と反対側に設置されたプリズム10を経由して光吸収物質が結合した標的分子を含む試料Ａに照射されるようになっている。この実施形態では、ダイクロイックミラーを除くことができるので、ストークス光だけでなく、アンチストークス光を測定しやすいという利点を有する。
【００７４】
また、本発明の分子振動計測システムは、上記の分子振動計測装置と試料調製用キットを備えたものである。標的分子を含む試料を簡便に調製し、分子の局所的な構造変化及び機能、並びに分子間相互作用を１分子レベルの高感度で計測することができる。
【００７５】
なお、本発明は上記実施形態に限定されるものではなく、本発明の思想を逸脱しない範囲で種々の変形実施が可能である。
【００７６】
以下、さらに具体的に本発明の実施例について説明する。
【実施例１】
【００７７】
［顕微ラマン分光装置］
図２に示した落射照明または対物レンズ型エバネッセント場照明による顕微ラマン分光装置の構成例を以下に示す。倒立蛍光顕微鏡（IX70，オリンパス株式会社）に各種の光学部品と検出装置を取り付けることにより顕微ラマン分光装置を組み立てた。試料を励起するためのレーザーと各種のフィルターセットの例を表１に示す。ただし、本発明に使用するレーザー、ダイクロイックミラーやフィルターの種類については表１に限定されるものではない。
【００７８】
【表１】
2007033338.tif 000003
【００７９】
レーザー光をダイクロイックミラーで反射し、対物レンズ（PlanApo 60X，NA1.4，オリンパス株式会社製）を通して試料に照射する。照射方法として、落射照明または対物レンズ型エバネッセント場照明を採用した。両者の違いは入射角の違いによる。臨界角を越えた入射角でレーザーを照射すると、カバーガラスと溶液の界面で全反射が起こり、境界面でエバネッセント場が発生する。これを利用して境界面の近傍だけを局所的に観察することができる（非特許文献１９）。
【００８０】
試料から出たラマン散乱光を対物レンズで集め、ダイクロイックミラーでレイリー散乱光を除き、ラマン散乱光のみを通過させる。その後、ハーフミラーまたは可動式のミラーによって分光用のポートと画像用のポートに分岐する。画像ポートの経路には、吸収フィルターが取り付けられており、ラマン散乱の顕微鏡像を高感度ビデオカメラ（EB CCDカメラ，浜松ホトニクス株式会社製）で撮影する。これにより、表面増強共鳴ラマン散乱光を発している金属粒子と生体分子の複合体の位置を確認する。
【００８１】
次に、顕微鏡のステージを移動して分光したい生体分子のラマン散乱光が分光用のポートのピンホールまたはスリットを通過する位置へ移動させる。分光用のポートではノッチフィルターで励起光が除かれ、試料と光学的に共役な位置にあるピンホールまたはスリットに到達する。これを通過したラマン散乱光はポリクロメーター（M10-TP，分光計器株式会社製）によって分散され、冷却ＣＣＤカメラ（ORCA ER，浜松ホトニクス株式会社製）によって撮影される。
【００８２】
試料の励起方法としては、図３に示すように、プリズム型全反射照明も可能である。この照明方法では、ダイクロイックミラーを除くことができるので、ストークス光だけでなく、アンチストークス光を測定しやすいという利点を有する。
【００８３】
ここまでの実施例は、生体分子に結合した光吸収物質を青や緑の可視光レーザーで励起する場合について説明したが、光吸収物質によっては、紫外光や赤外光のレーザーで励起したり、あるいは多光子励起を使用することが望ましい場合もあり得る。また、上述した対物レンズ、ビデオカメラ、顕微鏡、ポリクロメーターの社名および種類は例として挙げており、これらに限定されるものではない。
【実施例２】
【００８４】
［銀コロイドの作製と生体試料の結合］
従来のＬｅｅ−Ｍｅｉｓｅｌ法（非特許文献１５）による銀コロイド作製法では、１時間の煮沸プロセスが銀コロイドの形状を均一化するために必須であり、かつ保存可能期間も１ヶ月が限度であった。それに対して銀コロイド簡便作製法（非特許文献２０）は常温、１０分で作製でき、保存も３ヶ月可能である。また、これを使って得られたラマン散乱シグナルはＬｅｅ−Ｍｅｉｓｅｌ法によるそれと変わらなかったことから、銀コロイド簡便作製法に従って以下のように作製した。
【００８５】
１０ｍＭの硝酸銀溶液１０ｍｌを１．６７ｍＭの塩化ヒドロキシルアミンと３．３３ｍＭの水酸化ナトリウムを含んだ溶液９０ｍｌに滴下して加えることにより銀コロイドを作製し、常温で保存した。生体試料のラマン散乱光を観察する時には、１０−３０ｍＭの水酸化ナトリウムをコロイド凝集促進のため銀コロイド溶液に加えて常温で１０分間放置し、生体試料を凝集銀コロイドに加え、さらに２０−９０分間放置し、生体分子の銀コロイドへの吸着を促した。このラマン散乱光を顕微ラマン分光装置を使って観測した。また、金コロイドについてはＬｅｅ−Ｍｅｉｓｅｌ法によって作製可能である。
【実施例３】
【００８６】
［カテコールアミンの表面増強共鳴ラマン散乱］
カテコールアミンの一種であるＮＥ（ノルエピネフリン）と蛍光誘導体化試薬ＮＢＤ−Ｆ（4-fluoro-7-nitro-2,1,3-benzoxadiazole)（化１）とを結合させＮＢＤ−ＮＥ（化２）とし、この表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルを観測した。さらに、ＮＥの分解に伴う構造変化を観察した。
【００８７】
【化１】
2007033338.tif 000004
【００８８】
【化２】
2007033338.tif 000005
【００８９】
まず、５００μＭのＮＥ溶液１００μｌに、４０ｍＭのＮＢＤ−Ｆアセトニトリル溶液１００μｌ、１００ｍＭのホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）１００μｌを加え、６０℃、５分間反応させ、氷冷した。また、ＮＥを予め６０℃、５分間放置して構造変化を起こさせた試料も同様の方法で蛍光誘導体化した。各々のサンプルを、上述のように銀コロイド溶液、ＮａＣｌと混合させた後、スライドガラスに滴下し、ラマン散乱スペクトルを計測した。ＮＢＤ−Ｆの吸収波長である４８８ｎｍのレーザーにてサンプルを励起し、冷却ＣＣＤカメラを使用して積算時間５秒で表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルを得た。
【００９０】
１７μＭのＮＢＤ−ＮＥ溶液のラマン散乱スペクトルを図４に示す。縦軸は観測されたラマン散乱の強度を任意単位で示しており、横軸は波数を示した。ＮＥを熱処理により構造変化させ、ＮＢＤ−Ｆにより誘導体化した物質のラマン散乱スペクトルを図５に示す。
【００９１】
このように、ＮＥをＮＢＤ−Ｆにより誘導体化することにより、表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルを得ることができた。また、ＮＥの分解に伴う構造変化を表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルにより検出することができた。この結果は、低分子の生体分子に蛍光色素を結合させ、その表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルを得ることにより、生体分子の構造変化を検出できることを示している。
【００９２】
例示したＮＢＤ−Ｆは、図４に示すように、標的分子と反応して始めて共鳴ラマン散乱光を発する。そのため、標的分子のラマン散乱光を高感度に検出できる。
【実施例４】
【００９３】
［蛍光標識したタンパク質の表面増強共鳴ラマン散乱］
筋タンパク質の一つであるアクチンの３７４番目のＣｙｓに蛍光色素ＴＭＲＩＡを結合させ、表面増強共鳴ラマン法を用いてアクチンのラマン散乱光を観測した。手順を以下に示す。
【００９４】
１ｐＭの色素標識したアクチンを０．２５ｍＭの銀コロイドを含むＴｒｉｓ緩衝溶液（１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，３０ｍＭ  ＮａＣｌ，ｐＨ７．０）に加え、１時間室温で放置後、顕微ラマン分光装置を使ってラマン散乱光を観測した。励起波長はＴＭＲＩＡの吸収波長である５３２ｎｍ、積算時間は５秒を用いた。
【００９５】
ＴＭＲＩＡのみのラマンスペクトルを図６に、ＴＭＲＩＡで標識したアクチン１分子のラマンスペクトルを図７に示す。なお、１ｐＭの色素標識したアクチンの代わりに１０μＭの無標識アクチンを用いた場合、ラマン散乱光は観測されなかった。この結果は、タンパク質などの生体高分子の所定の位置に蛍光色素を結合させ、その表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルを得ることにより、蛍光色素の近傍の化学結合を検出できることを示している。
【００９６】
次に、カルシウム（Ｃａ）結合タンパク質であるカルモジュリン（ＣａＭ）に光吸収物質を結合させ、カルシウムの結合に伴うＣａＭの構造変化をラマン散乱スペクトルで検出した例を示す。ＣａＭはＣａと結合するとその構造が大きく変わることが知られている。ＣａＭ（シグマ社、Ｐ２２７７）のアミノ基をＴＲＩＴＣ（tetramethylrhodamine isothiocyanate）にて標識した。１ｐＭのＴＲＩＴＣ標識したＣａＭを０．２５ｍＭの銀コロイドを含むＭＯＰＳ緩衝溶液（−Ｃａの場合は２５ｍＭ  ＭＯＰＳ，ｐＨ７．０，１０ｍＭ  ＮａＣｌ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，＋Ｃａの場合は２５ｍＭ  ＭＯＰＳ，ｐＨ７．０，１０ｍＭ  ＮａＣｌ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，２ｍＭ  ＣａＣｌ２）に加え、室温で９０分放置後、顕微ラマン分光装置にてＣａ無結合時または結合時のＣａＭの表面増強共鳴ラマン散乱光を観測した。励起波長はＴＲＩＴＣの吸収波長である５３２ｎｍ、積算時間は５秒を用いた。図８に１分子のＣａＭのラマン散乱光を示す。
【００９７】
Ｃａ無結合時に観測された１２５０ｃｍ−１前後のピークが、Ｃａ結合時には減少し、かつ１３５０ｃｍ−１付近になだらかなピークが観測されている。これはα−ｈｅｌｉｘ構造の増加を表しており、多分子のＣａＭを用いたこれまでの解析結果と一致している（非特許文献２１）。
【００９８】
また、Ｃａ結合時にのみに現れた１４００ｃｍ−１付近のピークはＣＯＯ−を意味する。結晶解析の結果（Protein Data Bank ID = 3CLN）によるとＣａＭに結合したＣａはＡｓｐのＣＯＯ−に囲まれていることがわかる。従ってこのピークはＣａと結合したことによって増強されたＣＯＯ−のピークであると考えられる。
【００９９】
同様にＣａ無結合時のみに出現した８５０ｃｍ−１付近のピークはＴｙｒを意味する。ＣａＭには2つのＴｙｒが含まれており、結晶解析の結果によるとＴｙｒ１３８−Ｌｙｓ７５の距離はＣａ無結合時の２．８ｎｍからＣａ結合時の１．９ｎｍと短くなっている。Ｌｙｓ７５のεアミノ基が標識されたと仮定すると、Ｃａ結合によるＣａＭの構造変化によって、Ｔｙｒ１３８がラマン増強範囲内に入ったために、このＴｙｒが観測されたものと考えられる。
【０１００】
このように生体分子に吸収のある分子を結合させることによって生体分子の局所的なラマン散乱光を増強でき、生体分子の構造変化、および結合（生体分子間相互作用）を明らかにすることが可能であることが示された。
【実施例５】
【０１０１】
［蛍光標識した核酸の表面増強共鳴ラマン散乱］
１μＭのｐｏｌｙ  Ａとｐｏｌｙ  Ｔを純水中で室温において２０分間放置して２本鎖ＤＮＡを形成させた。これに蛍光色素であるエチジウムブロマイドを加えて３０分間放置した。さらに、０．５ｍＭ銀コロイドを含む溶液で１０００倍（最終濃度１ｐＭ）に希釈して１時間放置した。試料をスライドガラスに滴下し、４８８ｎｍ波長で励起した。銀コロイドに結合した２本鎖ＤＮＡが発するラマン散乱を観察した。代表的なラマン散乱スペクトルを図９に示す。
【０１０２】
一方、ｐｏｌｙ  Ａあるいはｐｏｌｙ  Ｔのみの１本鎖ＤＮＡの場合、エチジウムブロマイドが結合しにくいため、１本鎖ＤＮＡのラマンスペクトルの観測には２本鎖ＤＮＡの場合の５０，０００倍の濃度を必要とした。この結果は、エチジウムブロマイドの結合がＤＮＡの１本鎖と２本鎖で異なることを利用して、両者の違いを表面増強ラマン散乱で高感度に検出できることを示している。
【０１０３】
この手法を拡張すれば、ＤＮＡの局所的な障害を感度よく検出することができる。例えば、紫外線の照射によってチミン２量体（thymine dimer）が形成されたことを、チミン間に形成されたシクロブチル環（cyclobutyl ring）の表面増強共鳴ラマン散乱スペクトルによって検出可能である。
【実施例６】
【０１０４】
［蛍光標識した脂質の表面増強共鳴ラマン散乱］
脂質と光吸収物質とを共有結合させて、細胞膜の局所的な情報を得ることができる。例えば、ＢＤＹ標識したドデカン酸（5-methyl-BDY-3-dodecanoic acid）を含んだ培地で細胞を数時間培養するとそれらが細胞膜に取り込まれ細胞膜が蛍光標識される（非特許文献２２）。この表面増強共鳴ラマン散乱光を観察することにより、細胞間相互作用や細胞膜状で起こる生体分子のダイナミクス、例えば受容体（またはチャンネル）とリガンドとの相互作用や受容体の活性化（例えばリン酸化）を観察することが可能である。
【実施例７】
【０１０５】
［蛍光標識した糖鎖の表面増強共鳴ラマン散乱］
ここではガラクトース（galactose）をヒドラジド（Hydrazide）を用いて蛍光標識する具体例を述べる。ガラクトースを標識するためには通常ガラクトース酸化酵素（galactose oxidase）を用いてガラクトースを酸化し、それによってもたらされたアルデヒド基がヒドラジドと共有結合する仕組みを利用する。例えばＬＰＳ（Lipopolysaccharide）はガラクトースを含んでいるがこれを標識するためには、０．２ｍｇのＬＰＳを含んだリン酸緩衝液にガラクトース酸化酵素０．０２Ｕとノイラミニダーゼ（neuraminidase）０．００５Ｕとを加え、３７℃で５分放置する。その後、ヒドラジドを有する光吸収分子（例えばAlexa 488 hydraide）を０．１ｍｇその溶液に加えて３７℃で１時間半放置する。これによってＬＰＳのガラクトースが蛍光標識される（非特許文献２３）。糖タンパク（glycoprotein）や免疫グロブリン（immunoglobulin）のガラクトースを標識することにより、細胞間相互作用や免疫活性等を観察することが可能である。
【産業上の利用可能性】
【０１０６】
表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）を利用した分子間相互作用の検出技術は実用化され、Biacore社から商品が販売されている。この製品は、生命科学をはじめ、創薬、食品、環境関連分野で広く使われている。また、同様の効果をもたらす技術として、水晶発振子マイクロバランス法（ＱＣＭ）によるセンサーが開発され、株式会社イニシアムなどで販売されている。本発明は、これらの従来技術よりも、感度と選択性で勝っており、生命科学研究だけでなく、創薬、食品、環境関連の分野を含むあらゆる産業分野で広く使われる可能性がある。
【図面の簡単な説明】
【０１０７】
【図１】本発明の分子振動計測法の計測の原理図である。
【図２】本発明の分子振動計測装置の一実施例を示す落射照明又は対物レンズ型エバネッセント場照明による顕微ラマン分光装置の構成図である。
【図３】本発明の分子振動計測装置の別の実施例を示すプリズム型エバネッセント場照明によるラマン散乱検出装置の構成図である。
【図４】ＮＢＤ−ＮＥのラマン散乱スペクトルである。
【図５】構造変化後のＮＢＤ−ＮＥのラマン散乱スペクトルである。
【図６】ＴＭＲＩＡのみのラマンスペクトルである。
【図７】ＴＭＲＩＡ標識したアクチンのラマンスペクトルである。
【図８】ＣａＭのＣａ無結合時（上）と結合時（下）のラマンスペクトルである。
【図９】２本鎖ＤＮＡ（ｐｏｌｙ  Ａ−ｐｏｌｙ  Ｔ）のラマン散乱スペクトルである。
【符号の説明】
【０１０８】
１  光源（照射手段）
６  高感度ビデオカメラ（検出手段）
９  分光ユニット（計測手段）
【図１】
2007033338.tif 000006
【図２】
2007033338.tif 000007
【図３】
2007033338.tif 000008
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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