(57)【要約】      （修正有）【課題】ＤＮＡの定量値が正確で、各種ＤＮＡ定量装置により得られた定量値を客観的な値に校正することが可能であって、このため、ＤＮＡ定量装置の性能を客観的に比較、評価を可能にするための、新規な標準ＤＮＡ試料を提供する。【解決手段】長さおよびＧＣ含量が一定のオリゴヌクレオチド配列を組み合わせたＤＮＡであって、かつ非天然で高次構造をとらない塩基配列からなるＤＮＡを用いて、ＤＮＡ定量用の標準ＤＮＡ試料とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
長さおよびＧＣ含量が一定のオリゴヌクレオチド配列を組み合わせたＤＮＡであって、非天然の塩基配列からなることを特徴とするＤＮＡ。
【請求項２】
配列表の配列番号１に示される塩基配列を有することを特徴とするＤＮＡ。 
【請求項３】
請求項２に記載されたＤＮＡの塩基配列中の任意の領域の塩基配列からなり、少なくとも３０ｍｅｒの長さを有することを特徴とする、ＤＮＡ。
【請求項４】
配列表の配列番号２〜６のいずれかに示される塩基配列を有することを特徴とする、請求項３に記載のＤＮＡ。
【請求項５】
請求項２〜４のいずれかに記載のＤＮＡの５’末端および３’末端に、さらにＧＣ含量５０％のプライマー接合用の塩基配列が設けられていることを特徴とする、ＤＮＡ。
【請求項６】
配列表の７〜１８のいずれかに示される塩基配列を有することを特徴とする、請求項５に記載のＤＮＡ。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれかに記載のＤＮＡと、該ＤＮＡと相補の塩基配列を有するＤＮＡとからなることを特徴とする、２本鎖ＤＮＡ。
【請求項８】
請求項７の２本鎖ＤＮＡがベクターに導入されていることを特徴とする、組み換えベクター。
【請求項９】
請求項７または８に記載の２本鎖ＤＮＡからなることを特徴とする、ＤＮＡ定量に使用する標準ＤＮＡ試料。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＤＮＡ定量において標準物質として使用するのに最適なＤＮＡ、および該ＤＮＡからなる標準ＤＮＡ試料に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、ウイルス疾患、腫瘍等の様々な疾病の診断、発症予測あるいはその原因究明等のため、あるいは遺伝子組み換え食品等に対する安全性確保等のため、ＤＮＡ定量技術が盛に用いられている。現在用いられている代表的なＤＮＡ定量技術としてＰＣＲを用いる手段がある、
これは、ＤＮＡポリメラーゼ、蛍光標識した基質ヌクレオチド、予めＤＮＡ標準物質及びプライマーを含有する反応溶液を用いて、ＤＮＡ標準物質の濃度を変えてＰＣＲ増幅を行い、該ＤＮＡ標準物質の各濃度毎に、サイクル数とこれに伴い増大（ＴａｑＭａｎ法等に代表される蛍光強度増大型検出法を用いる場合）、または減少（ＱＰ法に代表される蛍光強度減少型検出法を用いる場合）する蛍光強度との関係を求め（ＰＣＲ増幅曲線）、さらに一定の蛍光強度、または蛍光減少率に達するサイクル数とＤＮＡ標準物質濃度との関係を求めておく。次いで、被験ＤＮＡ試料を同様にＰＣＲ増幅し、該試料が上記の蛍光強度、または蛍光減少率に達するサイクル数を求め、このサイクル数とＤＮＡ標準物質濃度の関係から、試料中のＤＮＡ濃度を決定するものである。
このＤＮＡ定量技術においては、ＤＮＡ標準物質として既知の遺伝子配列の一部が使用されてきたが、この既知の遺伝子配列を利用することに起因して、様々な問題が考えられる。
【０００３】
一方、ＤＮＡ設計手法として、  互いにミスハイブリダイゼーションを起こしにくいＤＮＡ配列を効率よくかつシステマティックに設計する方法が開発されており、この方法は所定の長さのＤＮＡ配列を、Ｇ又はＣとＡ又はＴを０と１からなるビット列（テンプレート）で表わした場合、各テンプレート間、各テンプレートの逆配列間、これらをシフトした配列間、これらの連結配列間とのハミング距離が、いずれも所定値以上になるテンプレートを選択し、該テンプレートが表現するＤＮＡ配列の集合の中から、ハミング符号等の任意の誤り訂正符号の符号語と組み合わせることにより、テンプレートが表現するＤＮＡ配列同士が少なくとも前記ハミング距離ｋを保つＤＮＡ配列の集合を選定するというものである（特許文献１、２参照。）
【０００４】
【特許文献１】特開２００４−３５５２９４
【特許文献２】ＷＯ２００３／０３８０９１
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ＤＮＡ標準物質として、既知の遺伝子配列を利用することに起因して生じる主な問題点としては、例えば以下のものが考えられる。
１）従来のＤＮＡ標準物質は天然の環境中に存在する塩基配列を有するから、特異的プローブ、プライマーがＤＮＡ定量系に予期せず混入するＤＮＡとハイブリダイズする等の恐れがあり、これがＰＣＲの増幅効率や検出系に影響を与え、定量値が正確でない可能性がある。
２）天然由来のＤＮＡ標準物質における塩基配列中の塩基の種類に偏り（例えば、ＧＣ含量）、または高次構造があり、これらがＰＣＲの増幅効率に影響を与え、定量値に誤差を生ずる恐れがある。  
３）上記１）、２）に起因して、従来のＤＮＡ標準物質は天然に存在するＤＮＡを標準物質として使用しており、定量装置・定量手法ごとに校正に用いる標準物質が異なっているため、プライマー、プローブのサイトとして選択したＤＮＡ配列ごとにＧＣ含量、塩基長、特異的配列に起因して増幅効率に差が生じ、各種ＤＮＡ定量装置・定量手法により得られた定量値を客観的な値に校正するためには十分ではなく、このため、各種ＤＮＡ定量装置間、手法間のＤＮＡ定量能力の比較、あるいは各種ＤＮＡ定量装置で得られた定量値を客観的に評価、比較することが非常に困難である。
【０００６】
本発明の課題は、上記１）〜３）にみられる、従来のＤＮＡ標準物質の使用に起因して生ずる問題点を解消する点にあり、ＤＮＡの定量値が正確で、各種ＤＮＡ定量装置により得られた定量値を客観的な値に校正することが可能であって、このため、各ＤＮＡ定量装置間の定量能力を比較、評価でき、あるいは異なるＤＮＡ定量装置で得られた定量値を、客観的に評価、比較可能にし得る新規な標準ＤＮＡ試料を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究の結果、塩基配列中の塩基に偏りがなく、しかも非天然で高次構造をとらない塩基配列からなるＤＮＡを設計し、該ＤＮＡがＤＮＡ標準物質として極めて良好な性能を有することを見いだし、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は以下の（１）〜（９）に係るものである
【０００８】
（１）長さおよびＧＣ含量が一定のオリゴヌクレオチド配列を組み合わせたＤＮＡであって、非天然の塩基配列からなることを特徴とするＤＮＡ。
（２）配列表の配列番号１に示される塩基配列を有することを特徴とするＤＮＡ
（３）上記（２）に記載されたＤＮＡの塩基配列中の任意の領域の塩基配列からなり、少なくとも３０ｍｅｒの長さを有することを特徴とする、ＤＮＡ。
（４）配列表の配列番号２〜６のいずれかに示される塩基配列を有することを特徴とする、上記（３）に記載のＤＮＡ。
（５）上記（２）〜（４）のいずれかに記載のＤＮＡの５’末端および３’末端に、さらにＧＣ含量５０％のプライマー接合用の塩基配列が設けられていることを特徴とする、ＤＮＡ
（６）配列表の７〜１８のいずれかに示される塩基配列を有することを特徴とする、上記（５）に記載のＤＮＡ。
（７）上記（１）〜（６）のいずれかに記載のＤＮＡと、該ＤＮＡと相補の塩基配列を有するＤＮＡとからなることを特徴とする、２本鎖ＤＮＡ 
（８）上記（７）の２本鎖ＤＮＡがベクターに導入されていることを特徴とする、組み換えベクター。
（９）上記（７）または（８）に記載の２本鎖ＤＮＡからなることを特徴とする、ＤＮＡ定量に使用する標準ＤＮＡ試料。
【発明の効果】
【０００９】
本発明のＤＮＡ標準物質は、ＧＣ含量が一定のオリゴヌクレオチドを組み合わせ、全体のＤＮＡの塩基配列はもちろん、その一部の領域においてもＧＣ含量は一定であるように設計しているので、配列中のＧＣ含量のバラツキや高次構造の有無によりＰＣＲ増幅が影響されることがなく、また、天然のＤＮＡの塩基配列とは異なる塩基配列を有するために、天然に存在する目的以外のＤＮＡが校正実験の定量系に予期せず混入しても、それによりＰＣＲ増幅に与える影響は少なく、これらの点で、正確なＤＮＡ定量が可能となるほか、各種ＤＮＡ定量装置により得られた定量値を客観的な値に校正することが可能であって、このため、各ＤＮＡ定量装置間の定量能力の比較、評価、あるいは異なるＤＮＡ定量装置で得られた定量値を、客観的に評価、比較することが可能になる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
本発明のＤＮＡは、ＧＣ含量に偏りのない塩基配列を有し、かつ、非天然で高次構造をとらない塩基配列を有することを特徴とするものであり、これと相補の塩基配列を有するＤＮＡとからなる２本鎖ＤＮＡは、ＤＮＡ定量装置に使用する標準ＤＮＡ試料として好適に使用できる。  本発明におけるＤＮＡはその長さに特に制限はなく、ＱＰｒｉｍｅｒ法等、プローブを用いない定量ＰＣＲ実験の標準ＤＮＡ試料として使用する場合、最短で３０ｂｐ程度の長さがあればよい。また、６００ｂｐの長さがあれば、現在使用されている全てのＤＮＡ定量装置において使用できる。
【００１１】
本発明のより具体的なＤＮＡの塩基配列は、配列表の配列番号１に示されるもの、およびその部分配列である。
本発明のＤＮＡは、一定の長さと一定のＣＧ含量を有するＤＮＡを複数組み合わせてデザインした多数のＤＮＡから、データーベースに登録されている既存の塩基配列と相同性を有するものを除いたものである。また、選択した配列が高次構造をとらないことを確認した。例えば、配列番号１のＤＮＡの塩基配列は、ＧＣ含量５０％で長さが１２ｍｅｒの塩基配列を複数、有田等の方法（特開２００４−３５５２９４号公報）を用いて設計し、さらにこれらの配列をつなぎ合わせて、約６００ｍｅｒの塩基配列をデザインし、このようにデザインした複数の候補配列の中で、核酸塩基配列および翻訳産物の配列が既存の核酸・蛋白質データーベースのレコードと６０％以上の相同性を示さないものを選択したものである。
【００１２】
この配列番号１の塩基配列は天然には存在せず、また、該塩基配列中のＧＣ含量は、１２ｍｅｒの長さであれば、どの領域の部分をとってもほぼ均等に５０％である。したがって、
この配列番号１の塩基配列中の任意の領域の部分塩基配列からなるものであっても、少なくとも３０ｍｅｒの長さを有するＤＮＡであれば、標準ＤＮＡ試料の構成ＤＮＡとなりうる。このようなＤＮＡの塩基配列の具体例は配列番号２〜６に示される。
また、配列番号７〜１２、１３〜１８のＤＮＡは、いずれも配列番号１のＤＮＡあるいはその部分配列（配列番号２〜６）を有するもので、５’末端と３’末端にそれぞれ１２ｍｅｒまたは２４ｍｅｒの塩基配列を付加したものであり、これにより１００ｂｐから６００ｂｐのいずれの増幅長に対しても同じ両末端の１２ｍｅｒまたは２４ｍｅｒの配列、および相補配列を共通のプライマーとしたＰＣＲ増幅が可能となる。また、付加された塩基配列もそれぞれ５０％のＧＣ含量を有し、また、天然の塩基配列を含まないように設計した点では、配列番号１〜６に示されるＤＮＡと同様である。
【００１３】
このように設計された本発明のＤＮＡは、それ自体周知の方法により合成可能である。また、現在ではこのようなＤＮＡの委託製造元が多数あり。これらに委託して入手することも可能である。
得られたＤＮＡは、該ＤＮＡと相補ＤＮＡとで２本鎖ＤＮＡとし、これをＤＮＡ定量装置において標準ＤＮＡ試料として使用するが、この２本鎖ＤＮＡも、上記ＤＮＡを鋳型鎖としてＤＮＡポリメラーゼにより相補鎖を合成することにより得られ、従来周知の方法により得ることができる。本発明の標準ＤＮＡ試料は適当なプラスミド等のベクターに連結しておくことが便利である。このような組み換えベクターは、大腸菌等の宿主に導入して、凍結乾燥等により保存でき、必要なとき、宿主微生物を増殖させることにより組み換えベクターを得、これから、本発明の標準ＤＮＡ試料をＰＣＲ的に増幅することにより、大量に供給できる。また実施例１に示すように、任意のプライマーサイトを付与できる。
【００１４】
本発明における標準ＤＮＡ試料は、ＤＮＡ定量装置において従来と同様に使用すればよい。その代表的な使用法について、図1に基づき以下説明する。
すなわち、ＤＮＡ定量装置において、本発明の各種濃度の標準ＤＮＡ試料を鋳型としてＰＣＲを行う。このＰＣＲ反応溶液中には蛍光標識したヌクレオチドを含有させる。
ＰＣＲのサイクル数が増大するにしたがい、蛍光強度が増大（ＴａｑＭａｎ法）、または蛍光強度が減少(ＱＰ法)するが、使用した標準ＤＮＡの濃度毎にＰＣＲの増幅曲線（サイクル数と蛍光強度の関係）を求め（図１Ａ）。さらに、一定の蛍光強度、または蛍光消光率になるまでのＰＣＲのサイクル数と標準ＤＮＡ試料濃度との関係を求める（図１Ｂ）。
本発明の標準ＤＮＡ試料を、異なるＤＮＡ定量装置間において使用して、上記増幅曲線を求め、これを比較することにより、その感度、正確性等の性能比較を行うことができ、また、各定量装置の校正も可能となる。
以下本発明の実施例を示すが、本発明はこれら実施例により限定されるものではない。
【実施例１】
【００１５】
以下に、標準用ＤＮＡの加工例を示す。タカラバイオ、ドラゴンジェノミックス社に製造を依頼して、配列番号1に示す塩基配列を有するＤＮＡを合成し、ｐＵＣ１８ベクターに組み込まれた形（NMIJ-Arita2::pUC18）で供給を受けた。この合成ＤＮＡ（２００ｎｇ/μｌ）をテンプレートとして、ＡｍｐｌｉＴａｑ Ｇｏｌｄ  （Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）の標準プロトコールに従って、次に示すプライマー・セットにより（９５℃４０秒・５９℃４０秒・７２℃４０秒）×２５サイクルのＰＣＲ増幅を行い、配列番号７〜１２に示す、両末端に１２ｍｅｒずつの塩基配列を付加したＤＮＡシリーズを作成した。
【００１６】
配列番号７のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttctggcatccttagtccc（配列番号２０）
配列番号８のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttgtaagagcgtacgtaac（配列番号２１）
配列番号９のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttgatgcaatgtcggaagg（配列番号２２）
配列番号１０のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttgagacataagcggtgac（配列番号２３）
配列番号１１のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttatgtgcgaacctatcagc（配列番号２４）
配列番号１２のＤＮＡ製造用プライマーセット
aacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号１９）、aacgcgagtcttcatccattctgcgtacc（配列番号２５）
【００１７】
これら配列番号７〜１２に示すＤＮＡの断片（NMIJ-ARITA2-100〜600）はそれぞれＴベクター（pSTBlue-1 AccepTor Vectpr, Novagen, Germany）にクローン化し、シークエンシングにより全塩基配列を確認した。
次に、配列番号７〜１２のＤＮＡがそれぞれ挿入されたＴベクターをテンプレートとして、Pyrobest polymerase（宝酒造）の標準プロトコールに従って、次に示すプライマーとの組み合わせにより（95℃40秒・72℃80秒）×２５サイクルのＰＣＲ増幅を行い、さらに両末端に12merずつの塩基配列を付加、合計各24merずつのプライマー・サイトを追加したＤＮＡシリーズ（配列番号１３〜１８）を作成した。
【００１８】
配列番号１３のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号７のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttctggcatccttagtccc（配列番号２７）
配列番号１４のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号８のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttgtaagagcgtacgtaac（配列番号２８）
配列番号１５のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号９のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttgatgcaatgtcggaagg（配列番号２９）
配列番号１６のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号１０のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttgagacataagcggtgac（配列番号３０）
配列番号１７のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号１１のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttatgtgcgaacctatcagc（配列番号３１）
配列番号１８のＤＮＡ製造用テンプレート及びプライマーセット
テンプレート：配列番号１２のＤＮＡ
プライマーセット：tttgcaagcctcaacagacggcatattcgaagggtgattgg（配列番号２６）
aaagcatcggacaacgcgagtcttcatccattctgcgtacc（配列番号３２）
【実施例２】
【００１９】
図２〜６は、NMIJ-Arita2-100A（配列番号１８）, NMIJ-Arita2-200A（配列番号１７）, NMIJ-Arita2-300A（配列番号１６）, NMIJ-Arita2-400A（配列番号１５）, NMIJ-Arita2-500A（配列番号１４）およびNMIJ-Arita2-600A（配列番号１３）の各標準DNAを鋳型として各種プラットフォーム（Applied Biosystems社製のＤＮＡ定量装置；ABI7900とRoche社製のＤＮＡ定量装置；LightCycler）で各種測定法（TaqManProbe法、QProbe法、QPrimer法）にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す。図２〜６は、それぞれ
TaqManProbe法（ABI7900）、QPrimer法（ABI7900）、QProbe法（ABI7900）、QPrimer法（LightCycler）およびQProbe法（LightCycler）を行った場合の結果を示し。各図の（１）、（２）及び（３）はそれぞれ順に、templateとして0.5x107、0.5x108、0.5x109コピーの鋳型DNA（NMIJ-Arita2 100A-600A、配列番号１３-１８に対応）を1ウェル（50μL, ABI7900）または１キャピラリー（20μL, LightCycler）に添加して実験した結果を表す。なお、各鋳型の増幅塩基配列長はおよそ100、200、300、400、500、600 bpである。
【００２０】
ABI7900を使用する場合、ABI指定の９６穴プレートを容器として用い、TaqManProbe法で測定する場合は、各ウエルには50 μl中に蒸留水22.1 μl、2x Universal master mix（ABI）25 μl、サケ精子DNA溶液（50 ng/μl、和光）0.5 μl、Foward primer 
(CAAGCCTCAACAGACGGCATA(配列番号33)  100 μM) 0.45 μl、Reverse primer 
(CATCGGACAACGCGAGTCTT(配列番号34)  100 μM) 0.45 μl、TaqMan probe 
(FAM-CCGTTATCTCAGCCCTAATCTCTGCGGTT-TAMRA (配列番号36）25 μM) 0.5 μl、template (0.5x107、0.5x108、0.5x109 copy/μl) 1 μlを含む 反応液を入れた。PCRランの条件は50度2分、95度10分の加熱の後、40サイクルのPCR反応（95度30秒、55度30秒、72度30秒を1サイクルとする）で行った。  
【００２１】
ABI7900を用いQPrimer法で測定する場合は50 μl中に蒸留水39.6 μl、10x Titanium Buffer (BD Biosciences Clontech) 5.0 μl 、50x AGUC mix (Roche) 1 μl、サケ精子DNA溶液  (50 ng/μl、和光) 0.5 μl、牛血清アルブミン溶液（10 mg/ml、和光） 1.2 μl、QPrimer (QProbeTM  G5’; CAAGCCTCAACAGACGGCATA(配列番号33)、J Bio21、100 μM) 0.15 μl、Reverse primer (CATCGGACAACGCGAGTCTT(配列番号34)  100 μM) 0.50 μl、Titanium Taq (BD Biosciences Clontech) 1 μl、Urasil-DNA Glycosylase (Roche) 0.5 μl、template (0.5x107、0.5x108、0.5x109 copy/μl)1 μlを含む 反応液を入れた。PCRランの条件は95度10分の加熱の後、40サイクルのPCR反応（95度30秒、55度30秒、72度30秒を1サイクルとする）で行った。
【００２２】
ABI7900を用いQProbe法で測定する場合は50 μl中に蒸留水38.05 μl、10x Titanium Buffer (BD Biosciences Clontech) 5.0 μl、50x AGUC mix (Roche) 1 μl、サケ精子DNA溶液  (50 ng/μl、和光) 0.5 μl、牛血清アルブミン溶液（10 mg/ml、和光） 1.2 μl、Foward primer (CAAGCCTCAACAGACGGCATA(配列番号33)  100 μM) 0.15 μl、Reverse primer (CATCGGACAACGCGAGTCTT(配列番号34)  100 μM) 0.50 μl、QProbe(QProbeTM G3’; CAATCGAAGCCAGAATGCAAGGGTCA(配列番号35), JBio21、10 μM) 1 μl、Titanium Taq (BD Biosciences Clontech) 1 μl、Urasil-DNA Glycosylase (Roche) 0.5 μl、template (0.5x107、0.5x108、0.5x109 copy/μl)1 μlを含む 反応液を入れた。PCRランの条件は95度10分の加熱の後、40サイクルのPCR反応（95度30秒、55度30秒、72度30秒を1サイクルとする）で行った。
【００２３】
Roch LightCyclerを用いる場合は、指定のガラスキャピラリを容器として用い、QPrimer法で測定する場合は20 μl中に蒸留水15.22 μl、10x Titanium Buffer (BD Biosciences Clontech) 2.0 μl 、50x AGUC mix (Roche)0.4 μl、サケ精子DNA溶液(50 ng/μl、和光) 0.2 μl、牛血清アルブミン溶液（10 mg/ml、和光） 0.5 μl、QPrimer (QProbeTM  G5’; CAAGCCTCAACAGACGGCATA(配列番号33)、J Bio21、100 μM) 0.04 μl、Reverse primer (CATCGGACAACGCGAGTCTT(配列番号34)  100 μM) 0.04 μl、Titanium Taq (BD Biosciences Clontech) 0.4 μl、Urasil-DNA Glycosylase (Roche) 0.2 μl、template (0.5x107、0.5x108、0.5x109 copy/μl)1 μlを含む 反応液を入れた。PCRランの条件は50度2分、95度10分の加熱の後、40サイクルのPCR反応（95度30秒、55度30秒、72度30秒を1サイクルとする）で行った。
【００２４】
LightCyclerを用いてQProbe法で測定する場合、20 μl中に蒸留水14.94 μl、10x Titanium Buffer (BD Biosciences Clontech) 2.0 μl 、50x AGUC mix (Roche)0.4 μl、サケ精子DNA溶液 (50 ng/μl、和光) 0.2 μl、牛血清アルブミン溶液（10 mg/ml、和光） 0.5 μl、Fowardprimer(CAAGCCTCAACAGACGGCATA(配列番号33)、100 μM) 0.06 μl、Reverse primer (CATCGGACAACGCGAGTCTT(配列番号34)  100 μM) 0.20 μl、QProbe(QprobeTM G3’; CAATCGAAGCCAGAATGCAAGGGTCA(配列番号35)、JBio21、10 μM)0.1 μl、Titanium Taq (BD Biosciences Clontech) 0.4 μl、Urasil-DNA Glycosylase (Roche) 0.2 μl、template (0.5x107、0.5x108、0.5x109 copy/μl)1 μlを含む 反応液を入れた。PCRランの条件は50度2分、95度10分の加熱の後、40サイクルのPCR反応（95度30秒、55度30秒、72度30秒を1サイクルとする）で行った。各キャピラリには図２〜６に示したように、すべての装置、手法、標準DNA濃度、増幅配列長に渡って良好な増幅曲線が得られ、本標準DNAが対象とするすべての組み合わせで標準DNA試料として使用可能なことが明確に示されている。
【図面の簡単な説明】
【００２５】
【図１】代表的なＤＮＡ定量法の原理の概略を示す図である。
【図２】配列番号１３〜１８に示されるＤＮＡを鋳型として用い、Applied Biosystems社製のABI7900でTaqMan法にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す図である。
【図３】配列番号１３〜１８に示されるＤＮＡを鋳型として用い、Applied Biosystems社製のABI7900でQPrimer法にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す図である。
【図４】配列番号１３〜１８に示されるＤＮＡを鋳型として用い、Applied Biosystems社製のABI7900でQProbe法にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す図である。
【図５】配列番号１３〜１８に示されるＤＮＡを鋳型として用い、Roche社製のLightCyclerでQPrimer法にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す図である。
【図６】配列番号１３〜１８に示されるＤＮＡを鋳型として用い、Roche社製のLightCyclerでQProbe法にしたがいリアルタイムＰＣＲを行った場合に得られた増幅曲線を示す図である。
【符号の説明】
【００２６】
TMProbe法；タックマンプローブ法
QPrimer;キュープライマー法
QProbe;キュープローブ法
ABI;アプライドバイオシステムズ社製定量DNA測定装置ABI7900
LC;ロッシュ社製定量DNA測定装置 LightCycler
【図１】
2007060966.tif 000002
【図２】
2007060966.tif 000003
【図３】
2007060966.tif 000004
【図４】
2007060966.tif 000005
【図５】
2007060966.tif 000006
【図６】
2007060966.tif 000007
【配列表】
2007060966000001.app