(57)【要約】【課題】口腔内衛生状態を良好に保つ健康食品を提供する。【解決手段】健康食品がノヌの果実から抽出されるとともに口腔内細菌の増殖を抑制するノヌのエキスを含有することにより、口腔内衛生状態を良好に保つ健康食品を提供することができる。【選択図】なし。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ノヌの果実から抽出されるとともに口腔内細菌の増殖を抑制するノヌのエキスを含有することを特徴とする健康食品。
【請求項２】
ノヌのエキスは、ノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液を濾過してなる搾汁液である請求項１に記載の健康食品。
【請求項３】
ノヌのエキスは、完熟したノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液からなる請求項１または２に記載の健康食品。
【請求項４】
ノヌのエキスは、ノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液を濃縮してなる請求項１から３のいずれかに記載の健康食品。
【請求項５】
ノヌのエキスには、ノヌの果実、葉、茎、根のいずれかを潰してなるピューレが含有されている請求項１から４のいずれかに記載の健康食品。
【請求項６】
ゼリー、寒天、キャンデー、ガム、タブレット状の菓子、グミからなる群から選ばれる請求項１から５のいずれかに記載の健康食品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ノヌのエキスを含有する健康食品に関する。
【背景技術】
【０００２】
ノヌ（モリンダ・シトリフォリア（Ｍｏｒｉｎｄａ  ｃｉｔｒｉｆｏｌｉａ  Ｌ．）、ヤエヤマアオキ、あるいはノニともいう）は、沖縄などアジアの熱帯・亜熱帯地域、オーストラリアなどのオセアニア地域、ハワイやサモアなどの太平洋諸島といった太平洋を取り囲む広い地域に生育している。ノヌは、モリンダ属アカネ科の潅木で、長さが約５〜８ｃｍ程の緑色の果実をつける。ノヌの果実には、ごつごつした表面に多数の円い孔が形成されており、黄緑色の薄透明な肉質の集合核果が形成されている。
【０００３】
ノヌの果実は、食用可能であるものの酸味や渋みが強く、熟するにつれてその表面を緑色から白色に変える。このノヌの果実には、生体の健康状態を良好に保ったり様々な疾病を改善する効果が経験的に認められている。また、生体の健康状態を保つのに有効なビタミン類など数多の具体的な栄養成分の存在を指摘した知見が得られてきている。そして、さらにはノヌの葉、茎や根についても栄養成分の存在が指摘されている。こうしたことから、生体を健康に保つ食材としてノヌを積極的に利用することが検討されるようになってきた。
【０００４】
例えば、特許文献１には、ノニの葉を乾燥したもの又は乾燥後焙煎したものを粉砕して製造したノニ葉茶が提案されている。
【０００５】
【特許文献１】特開２００３−２８９８３４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、特許文献１のノニ葉茶は専らノニの葉そのものを用いたものであり、ノニの果実を利用しようとするものではない。また、特許文献１のノニ葉茶は、そのままでは美味しくないノニをおいしく飲みやすい形態にしようとするものであり、生体の健康状態を特に保とうとするものではない。
【０００７】
ところで、ノヌの果実等が生体の健康状態に与える影響に関しては、上記したように徐々に知見が得られはじめている。ただ、そうした知見は、切傷などの外傷、皮膚炎、喘息などのアレルギー諸症状、高血圧、糖尿病などの生活習慣病、結核、マラリアなどの感染症といった疾病についてのものであり、ノヌが口腔内の衛生状態に与える影響については知られていない。
【０００８】
本発明者らは、ノヌが口腔内衛生状態に与える影響について鋭意研究し、ノヌが口腔内細菌の増殖を抑制する作用を奏して口腔内衛生状態を良好な保持するために有用であることを見出し、本発明を完成するに到った。
【０００９】
本発明は、ノヌを用いて口腔内衛生状態を良好に保つ健康食品を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は、（１）ノヌの果実から抽出されるとともに口腔内細菌の増殖を抑制するノヌのエキスを含有することを特徴とする健康食品、（２）ノヌのエキスは、ノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液を濾過してなる搾汁液である上記（１）に記載の健康食品、（３）ノヌのエキスは、完熟したノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液からなる上記（１）または（２）に記載の健康食品、（４）ノヌのエキスは、ノヌの果実を圧搾して得られる圧搾液を濃縮してなる上記（１）から（３）のいずれかに記載の健康食品、（５）ノヌのエキスには、ノヌの果実、葉、茎、根のいずれかを潰してなるピューレが含有されている上記（１）から（４）のいずれかに記載の健康食品、（６）ゼリー、寒天、キャンデー、ガム、タブレット状の菓子、グミからなる群から選ばれる上記（１）から（５）のいずれかに記載の健康食品、を要旨とする。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の健康食品によれば、ノヌの果実から抽出されるとともに口腔内細菌の増殖を抑制するノヌのエキスが添加されているので、口腔内細菌の増殖抑制効果が得られる。
この健康食品によれば、口腔内細菌を原因とする口腔内のプラーク（歯垢）の形成や成長を抑制できるため、う蝕を抑制でき、また、口腔内細菌を原因とする歯周病に罹る虞を低減できる。
【００１２】
本発明の健康食品によれば、ノヌの果実から得られる圧搾液を濾過した搾汁液をノヌのエキスとすることで、圧搾液中の夾雑物によって舌触りがざらつく虞を抑えるとともに、雑味を抑えることができる。
【００１３】
本発明の健康食品によれば、完熟したノヌの果実から得られる圧搾液をノヌのエキスとすることで、ノヌのエキスの色あいの悪化を抑えることができ、ノヌの果実独特のクセを抑えることができる。
【００１４】
本発明の健康食品によれば、ノヌの果実から得られる圧搾液を濃縮させてノヌのエキスとすることで、口腔内細菌の増殖抑制効果を一層高めることができる。
【００１５】
本発明の健康食品によれば、ノヌの果実、葉、茎、根のいずれかを潰してなるピューレをノヌのエキスに含ませることで、ノヌのエキスに、ノヌの果実の固形成分や、ノヌの葉、茎などに含まれる栄養成分を更に追加することができる。
【００１６】
さらに、本発明においては、ノヌのエキスをガムやキャンデーなどに添加して健康食品とすることができる。この場合、これらの健康食品は口腔内に滞留する時間が比較的長いことから、健康食品の摂取者がノヌのエキスを口腔内に含ませた後、長い時間にわたってノヌのエキスが口腔内に留まり、健康食品による口腔内細菌増殖抑制効果が持続的に得られる。したがって、このような本発明の健康食品によれば、口腔内細菌の増殖を効果的に抑制することが可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
本発明における健康食品は、ノヌのエキスを含有している。
この健康食品において、ノヌのエキスは、採取されたノヌの果実から次に示すように抽出されたものである。すなわち、ノヌの果実を圧搾することで得られた圧搾液を濾過して圧搾液中の夾雑物（滓（オリ））を取り除くことで、圧搾液の液体成分を主成分とする搾汁液がノヌの果実から抽出されて得られる。具体的には、例えば、搾汁液は、ノヌの果実を濾布に収容して圧搾することで得られた圧搾液をフィルターに通じて濾過することにより製造される濾液として得ることができる。このようにしてノヌの果実から得られた搾汁液がノヌのエキスとして用いられる。なお、搾汁液は、圧搾液から完全にオリを取り除いた液体成分であってもよい。
【００１８】
ノヌの果実の採取からノヌの果実を搾って圧搾液を得てノヌのエキスとなすまでの期間はできるだけが短期間であることが好ましい。ノヌの果実の採取から圧搾までの期間は３日以内であることが好ましく、２４時間以内であることがより好ましい。ノヌの果実を搾ってノヌのエキスとなすまでにあまり長い時間がかかると、圧搾液の発酵が過度に進んでしまう。圧搾液が過度に発酵されるとノヌのエキスの色あいが暗色化して悪化し、さらに、独特の臭いやクセが付与されてしまう虞がある。
【００１９】
ノヌの果実としては、未熟状態の果実を用いることができるが、ノヌのエキスの口腔内細菌増殖抑制効果をより高めるためには、半熟状態や完熟状態の果実を用いることが好ましく、半熟状態から完熟状態に移行する時期の果実を用いることがより好ましい。また、ノヌの果実は、採取された果実の熟成が進んで果実の圧搾の時点で丁度完熟状態が形成されるように、半熟状態から完熟状態へ移行する時期に採取されることがさらに好ましい。
ノヌの果実を圧搾する時点で丁度完熟状態が形成されると、ノヌの果肉が程よい柔らかさを備える時期が圧搾の時期に重なるため、短時間でノヌの果実を圧搾することができ、容易に圧搾液を得ることができるようになる。このように、ノヌの果実の圧搾に費やす時間をより短くすることができると、より新鮮な圧搾液を得ることができ、また圧搾液が過度に発酵してしまう虞を抑制できる。
【００２０】
なお、ノヌの果実における未熟状態、半熟状態、完熟状態は、果実の色合いで判定できる。具体的には、例えば、果実の外皮が全体に緑色である場合には未熟状態であり、果実の外皮が全体に緑色から白みがかった色あいである場合には半熟状態であり、果実の外皮が全体に白色である場合には完熟状態であるとの判定をすることができる。
【００２１】
また、ノヌのエキスとしては、ノヌの果実を搾って得られた圧搾液を、さらに濃縮してなるものが使用されてもよい。圧搾液を濃縮したものをノヌのエキスとすると、ノヌのエキスは、口腔内細菌の増殖を抑制する効果のより優れたものとなる。なお、圧搾液の濃縮は、例えば、圧搾液をタンク（貯留槽）に集め、タンク内を減圧状態にして水分を蒸発させることにより具体的に実現できる。
【００２２】
また、ノヌのエキスには、ノヌの果実、葉、茎、根のいずれかを潰してなるピューレが含有されてもよい。このようなノヌのエキスを健康食品に添加することで、健康食品に、搾汁液内に含まれる栄養物質に加え、ノヌの果実の圧搾液中の夾雑物などの固形成分に含まれる栄養物質や、ノヌの葉、茎、根といった部分に特異的に存在するような栄養物質を含有させることができる。
【００２３】
ノヌのエキスを含む健康食品としては、ゼリー、寒天、キャンデー、ガム、タブレット状の菓子、グミなどを挙げることができる。これらの各健康食品を口腔内に含ませることで、口腔内にノヌのエキスが存在する状態となり、口腔内細菌増殖抑制効果が得られる。
【００２４】
これら各種健康食品は常法にて製造可能である。
例えば、ノヌのエキスをキャンデーに含有させる場合、このキャンデーは、原料となる糖質物にノヌのエキスを添加して原料混合物となし、この原料混合物を加熱溶解させて溶解液を得て、さらにこの溶解液を型内に注入して固形化することで製造可能である。なお、糖質物としては、マルチトール、ソルビトール、パラチニット、エリスリトール、キシリトールなどといった口腔内細菌による資化が生じにくい糖が１種あるいは複数種採用されることが好ましい。
また、ノヌのエキスをタブレット状の菓子に含有させる場合、この菓子は、糖質物にノヌのエキスを加え、これにアラビアゴムの粉末を加えて、タブレット機にて圧縮成形することにより製造可能である。なお、糖質物には、口腔内細菌による資化が生じにくい糖を予め粉体化したものが用いられることが好ましい。
【００２５】
本発明は、ノヌの果実から得られるノヌのエキスが口腔内細菌の増殖を抑制する作用を有することが見出されたことに基づきなされたものであるが、次に、こうしたノヌのエキスの調整方法、口腔内細菌増殖抑制効果について、実施例にて詳細に示す。
【実施例】
【００２６】
実施例
［ノヌのエキスの調整］
未熟状態から完熟状態に移行する時期にあるノヌの果実（産出地サモア諸島）を採取し、これを濾布に詰めて果実の種子を破壊しない程度に圧搾してノヌの果実のうちノヌの果肉より圧搾液を得た。果実の種子を破壊しないようにノヌの果実を圧搾することで、より純正なノヌの果肉由来の圧搾液を得ることができる。なお、濾布としては２０μm以下の大きさの粒子を通す程度の目の細かさを有するものを使用した。次に、圧搾液をフィルター（孔径０．４５μｍ）に通ずることにより濾過し、圧搾液中に含まれる夾雑物を分離し搾汁液を得た。この搾汁液がノヌのエキス（原液）である。
また、こうして得られたノヌのエキスの原液について、凍結乾燥により固体化物を得て、この固体化物を滅菌精製水に溶解させることで濃縮する処理を行い、原液を１０倍、２０倍、３０倍に濃縮して各々１０倍濃縮液、２０倍濃縮液、３０倍濃縮液を得た。
【００２７】
［口腔内細菌増殖抑制力試験］
得られたノヌのエキスについての口腔内細菌増殖抑制力は、ペーパーディスク法により次に示すように測定された。
＜試験用ペーパーディスクの調整＞
上記にて得られたノヌのエキスの原液、１０倍濃縮液、２０倍濃縮液、３０倍濃縮液、滅菌水を、ディスク状のろ紙（ペーパーディスク）に染み込ませる浸透液とし、それぞれ直径８mmの滅菌されたペーパーディスクに１００μＬ染み込ませ、５種類の試験用ペーパーディスク（それぞれ試験ディスク１、試験ディスク２、試験ディスク３、試験ディスク４、試験ディスク５という）を作製した。
【００２８】
＜試験用シャーレの調整＞
滅菌シャーレに、ＧＡＭ寒天培地および変法ＧＡＭ寒天培地を常法にて調整した。つぎに、ヒト唾液（２７歳女性より採取されたもの）をＧＡＭ寒天培地に略均一に塗布し試験用シャーレを調整し、またＥ.ｃｏｌｉ  Ｏ−１２７（大腸菌）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ  ＦＤＡ２０９Ｐ（黄色ブドウ球菌）（Ｓ.ａｕｒｅｕｓ ＦＤＡ２０９ｐ）、Ｓｔｒｅｐｔｃｏｃｃｕｓ  ｓｏｂｒｉｎｕｓ  ６７１５（Ｓ.ｓｏｂｒｉｎｕｓ  ６７１５）を試験用の細菌として、それぞれＧＡＭ寒天培地上に略均一に塗布し、さらに、Ｐｒｏｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ  ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ＡＴＣＣ３３２７７（Ｐ.ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ＡＴＣＣ３３２７７）、Ｐｒｏｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ  ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ３８１（Ｐ.ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ３８１）を試験用の細菌として、それぞれ変法ＧＡＭ寒天培地上に略均一に塗布して、各試験用の細菌ごとに試験用シャーレを調整した。また、空気中落下細菌の付着した試験用シャーレを調整した。空気中落下細菌は、試験用シャーレの培地（ＧＡＭ寒天培地）上に落下し付着した空気中の細菌であり、これを培地に付着させた試験用シャーレは、衛生試験法・注解２０００（日本薬学会編集、発行所；金原出版（株））の１１２１頁左欄に記載された寒天平板を用いる方法に準じ、試験用シャーレを培地と外気とが接触する状態で５分間放置して試験用シャーレの培地上に空気中の細菌を付着させることにより調整された。
【００２９】
＜口腔内細菌増殖抑制力の計測＞
ヒト唾液を塗布して２７歳ヒト唾液内細菌の付着した試験用シャーレや上記各細菌を塗布した試験用シャーレそれぞれの培地上に、上記のように調整された５種類の試験用ペーパーディスクを互いにやや距離をおいて静置し、表１に示すような培養方法、培養時間にて、細菌の培養を行った。
【００３０】
（表１）
2007089413.tif 000002
【００３１】
細菌の培養の結果、培地上において、細菌の生育が阻止されない領域では細菌が増殖してコロニーを形成し、細菌の生育が阻止された領域ではコロニーが形成されない。したがって、試験用ペーパーディスクに染み込ませたノヌのエキスに細菌増殖抑制力がより強いほど、略円形状の試験用ペーパーディスクの周囲に口腔内細菌の増殖の阻止された領域（阻止像）がより大きく略円形状に形成される。そこで、培養の後、各試験用シャーレの培地上に静置した試験用ペーパーディスクごとに阻止像の直径（コロニーの形成されない領域の直径）を計測した。結果は表２に示されるとおりである。
【００３２】
（表２）
2007089413.tif 000003
表２中、数値の単位は、ｍｍである。
ＮＤは、阻止像を明確には計測できなかったことを示す。
また、原液、１０倍、２０倍、３０倍は、それぞれ、ノヌのエキスの原液、原液の１０倍濃縮液、原液の２０倍濃縮液、原液の３０倍濃縮液を示す。
【００３３】
表２に示すように、口腔内細菌の例として試験に用いられた各細菌、すなわちＥ−ｃｏｌｉ  Ｏ−１２７（大腸菌）、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ  ＦＤＡ２０９Ｐ（黄色ブドウ球菌）、Ｓｔｒｅｐｔｃｏｃｃｕｓ  ｓｏｂｒｉｎｕｓ  ６７１５、Ｐｒｏｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ  ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ＡＴＣＣ３３２７７、Ｐｒｏｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ  ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ  ３８１、２７歳ヒト唾液内細菌について、ノヌのエキスの濃度が上昇するとともに阻止像がより大きく形成されることが確認され、ノヌのエキスに口腔内細菌の増殖を抑制する効果があることが示された。また、口腔内に入る可能性のある空気中落下細菌についても、阻止像の形成が見られ、ノヌのエキスによる増殖抑制が認められた。
【００３４】
[プラーク形成抑制力の計測]
プラークは、う蝕原性細菌に由来する酵素（ＧＴａｓｅ（Ｇｌｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ））によりスクロースが不溶性グルカンになり、不溶性グルカンにう蝕原性細菌が粘着することで形成される。そこで、上記実施例にて得られたノヌのエキス存在下で、う蝕原性細菌に由来するＧＴａｓｅの酵素活性を計測することで、ノヌのエキスのプラーク形成抑制力を評価した。
【００３５】
＜ＧＴａｓｅの調整＞
う蝕原性細菌としてＳ.ｓｏｂｒｉｎｕｓ  ６７１５株を使用し、この細菌を、３７℃９６時間グルコースを１５％添加したＢＨＩ液体培地中で培養した。培養後、培養液を遠心分離（１２０００ｒｐｍ、４℃、２０ｍｉｎ）して上清を得た後、５０％硫酸アンモニウムを加えて溶液中のＧＴａｓｅを塩析（４℃、２４時間）し、沈殿させた。この沈澱物を遠心分離（１２０００ｒｐｍ、４℃、２０ｍｉｎ）して回収後、５ｍＬの０．０２Ｍリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．８）に溶解して溶解液を作製し、この溶解液をセロファンチューブに封入して０．０２Ｍリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．８）を用いて４℃で４８時間透析し、ＧＴａｓｅの酵素溶液を得た。
【００３６】
＜ＧＴａｓｅ活性試験＞
ＧＴａｓｅの酵素活性は、次に示すような試験溶液１〜５に基づき測定された
試験溶液１
得られたＧＴａｓｅの酵素溶液０．１ｍＬと、０．０５Ｍスクロースを含む０．０２Ｍリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．８）、１％アジ化ナトリウム０．１ｍＬ、ノヌのエキスの原液１．５ｍＬを混合し、滅菌精製水を加えて全量３ｍＬの試験溶液（試験溶液１）を作製した。そして、この試験溶液１を用い、３７℃、７２時間、仰角３０°で静置培養にてＧＴａｓｅによる酵素反応を行って酵素反応液を得た。
得られた酵素反応液を試験管ミキサーにて攪拌して、酵素反応液中に不溶性グルカンの懸濁した状態を形成し、その状態における酵素反応液の波長５５０ｎｍの吸光度（Ａ１）を測定した。結果を表３に示す。
【００３７】
（表３）
2007089413.tif 000004
【００３８】
試験溶液２
試験溶液２は、ノヌのエキスに替えて同量の滅菌精製水を用いた他は試験溶液１と同様に調整された。この試験溶液２を用い、試験溶液１と同様にして酵素反応液を得て、吸光度（Ａ２）を測定した。
【００３９】
試験溶液３
試験溶液３は、スクロースに替えて同量の滅菌精製水を用いた他は試験溶液１と同様にし調整された。この試験溶液３を用い、試験溶液１と同様にして酵素反応液を得て、吸光度（Ａ３）を測定した。
【００４０】
試験溶液４
試験溶液４は、ノヌのエキスとスクロースに替えて同量の滅菌精製水を用いた他は試験溶液１と同様にし調整された。この試験溶液４を用い、試験溶液１と同様にして酵素反応液を得て、吸光度（Ａ４）を測定した。吸光度は、０．００８であった。
【００４１】
試験溶液５
試験溶液５は、ＧＴａｓｅに替えて同量の滅菌精製水を用いた他は試験溶液１と同様にし調整された。そして、試験溶液５を用い、試験溶液１と同様にして静置培養を行い、培養後の試験溶液５について吸光度（Ａ５）を測定した。吸光度は、０．５０２３８であった。
【００４２】
なお、ノヌのエキス存在下における、ＧＴａｓｅによる酵素反応は、試験溶液１、３を用いて行われているが、試験溶液１、３について測定された吸光度の値Ａ１、Ａ３には、ノヌのエキス自体の吸光度（Ａ５）による寄与分が含まれている。したがって、試験溶液１、３における、ＧＴａｓｅの酵素活性に伴なう吸光度は、Ａ１、Ａ３よりそれぞれＡ５を差し引いて校正（較正）した値（校正吸光度という）となる。
【００４３】
また、ノヌのエキス非存在下における、スクロースから不溶性グルカンへのＧＴａｓｅによる酵素反応は、試験溶液２を用いて行われ、その活性は吸光度（Ａ２）で計測されている。
したがって、ノヌのエキスによるＧＴａｓｅ酵素活性への影響は、試験溶液２の活性率を１００％として、下記式（１）に基づき算出したＧＴａｓｅ活性率で示される。その結果を表４に示す。
【００４４】
（数１）
ＧＴａｓｅ活性率（％）＝（校正吸光度）／Ａ２×１００    ・・・（１）
【００４５】
（表４）
2007089413.tif 000005
【００４６】
表４に示すように、ノヌのエキスを添加するとＧＴａｓｅ活性率が低下しており、ノヌのエキスによりＧＴａｓｅ活性が阻害されていることが認められ、したがって、ノヌのエキスによるプラーク形成抑制力が認められた。