(57)【要約】【課題】本発明の目的は、明確にかつ再現性よく核酸配列中の複数の多型を検出することができる方法及びそのための試薬を提供することである。【解決手段】標的核酸配列上の塩基部位（Ｘ）及び塩基部位（Ｙ）の判定を、塩基部位（Ｘ）を含む少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）とオリゴヌクレオチドプライマー(Ｂ)とを用いて増幅反応を行う第一工程と、判定したい塩基部位（Ｙ）を含む塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物とプライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめる第二工程と、複合体（Ｐ）を検出する第三工程とを提供する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくとも以下の（１）〜（３）の工程を含む方法で、試料溶液中に含まれる標的核酸配列上の少なくとも１種類以上の塩基部位（Ｘ）及び少なくとも１種類以上の塩基部位（Ｙ）の判定を行うことを特徴とする塩基判定方法。
（１）第一のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｘ）を含む少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）と、該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類のオリゴヌクレオチドプライマー(Ｂ)と、を用いて標的核酸配列から増幅反応を行う第一工程、
（２）第一工程で得られうるプライマー（Ａ）の伸長産物と、第二のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｙ）を含むオリゴヌクレオチドであって該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）とをハイブリダイズさせ、該プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型として伸長反応を行い、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物と該プライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめる第二工程、
（３）第二工程で得られうる該複合体（Ｐ）中に、第一のリガンドと第二のリガンドが共存しているかどうかを検出する第三工程。
【請求項２】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端から２番目以降の少なくとも一つのヌクレオチドがリガンドにより標識されていることを特徴とする請求項１に記載の塩基判定方法。
【請求項３】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の５’末端が第二のリガンドにより標識されていることを特徴とする請求項１または２に記載の塩基判定方法。
【請求項４】
判定したい塩基部位（Ｙ）の塩基の種類により、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の配列がそれぞれ異なることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項５】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端の塩基が判定したい塩基部位（Ｙ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項６】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端より２番目の塩基が判定したい塩基部位（Ｙ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項７】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端より３から５番目の少なくとも１つの塩基が鋳型となる核酸配列と相補的または相同的でない塩基に置換されていることを特徴とする請求項５または６に記載の塩基判定方法。
【請求項８】
判定したい塩基部位（Ｘ）の塩基の種類により、プライマー（Ａ）の配列がそれぞれ異なることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項９】
プライマー（Ａ）の３’末端より２番目の塩基が判定したい塩基部位（Ｘ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする請求項１〜８のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項１０】
プライマー（Ａ）の３’末端より３から５番目の少なくとも１つの塩基が鋳型となる核酸配列と相補的または相同的でない塩基に置換されていることを特徴とする請求項９に記載の塩基判定方法。
【請求項１１】
第一工程において、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）が存在していることを特徴とする請求項１〜１０のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項１２】
オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）およびオリゴヌクレオチドプライマー（Ｂ）のＴｍ値より、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）のＴｍ値が低いことを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項１３】
第一のリガンドが抗原、抗体、蛍光物質、発光団および酵素からなる群より選ばれた少なくとも１種以上であることを特徴とする請求項１〜１２のいずれかに記載の塩基判定方法。
【請求項１４】
第二のリガンドが抗原、抗体、蛍光物質、発光団および酵素からなる群より選ばれた少なくとも１種以上であることを特徴とする請求項１〜１２のいずれかに記載の塩基判定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー、および核酸の伸長反応が起こりうる形態のオリゴヌクレオチドプローブを用いた塩基多型の同定方法に関するものである。本発明は、遺伝病の診断、塩基多型解析等に際して特に有用である。
【背景技術】
【０００２】
本発明において、塩基多型とは野生型とは異なる塩基配列を有することをいう。遺伝子の塩基多型は薬物代謝において副作用および治療失敗の発生において個体間変動の原因として重要な役割を果たし、体質として知られる基礎代謝等の個人差の原因としても知られている。その上、これらは多数の疾患の遺伝マーカーとしての働きもする。それゆえ、これら突然変異の解明は臨床的に重要であり、ルーチンの表現型分類が臨床研究における精神医学患者および自発志願者にとって特に推奨される（非特許文献１、非特許文献２）。また、原因となる変異型遺伝子の同定に続くそれぞれの遺伝子型の検出用の核酸配列分析法が所望される。
【０００３】
従来の核酸配列分析技術としては、例えば核酸配列決定法（シークエンシング法）がある。核酸配列決定法は核酸配列中に含まれる塩基多型を検出、同定することができるが、鋳型核酸の調製、ＤＮＡポリメラーゼ反応、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、核酸配列の解析等を行うため多大な労力と時間が必要である。また近年の自動シークエンサーを用いることで省力化は行うことができるが、高価な装置が必要であるという問題がある。
【０００４】
一方、遺伝子の点突然変異により引き起こされる遺伝病が種々知られており、それらの中には、遺伝子のどの部位がどのように点突然変異することにより遺伝病が引き起こされるかわかっているものも少なくない。
【０００５】
このような予想される点突然変異を検出する方法として、従来より、ＰＣＲ（polymerase chain reaction）法（例えば、特許文献１及び２参照）などの遺伝子増幅法を利用した遺伝子の点突然変異の検出方法が知られている。増幅された遺伝子断片に対し、特定の核酸配列を切断する制限酵素により処理し、生じるフラグメントの大きさで判断する方法（ＰＣＲ−ＲＦＬＰ）法が用いられている。同じくＰＣＲ法を用いた検出方法としては、使用するプライマーの特異性を利用したAlelle specific amplification法が用いられる。この方法では、遺伝子増幅法に用いる一対のオリゴヌクレオチドのうちの一方のオリゴヌクレオチドとして、野生型遺伝子の増幅領域の端部領域に完全に相補的な野生型用オリゴヌクレオチドと、変異型遺伝子の増幅領域の端部領域に完全に相補的な変異型用オリゴヌクレオ チドとを用いる。変異型のオリゴヌクレオチドは、その３’末端が予想される点突然変異を起こしたヌクレオチドに相補的なヌクレオチドになっている。このような野生型及び変異型用オリゴヌクレオチドをそれぞれ別個に用いて試料遺伝子を遺伝子増幅法に供する。
【０００６】
試料遺伝子が野生型であれば、野生型用オリゴヌクレオチドを用いた場合には核酸の増幅が起きるが、変異型用オリゴヌクレオチドを用いた場合には、オリゴヌクレオチドの３’末端が試料遺伝子の対応ヌクレオチドと相補的ではない（ミスマッチ）ので伸長反応が起きず、核酸の増幅は起きない。一方、試料遺伝子が変異型であれば、逆に、野生型用オリゴヌクレオチドを用いた場合には増幅が起きず、変異型用オリゴヌクレオチドを用いた場合に増幅が起きる。従って、各オリゴヌクレオチドを用いた場合に増幅が起きるか否かを調べることにより、試料遺伝子が野生型か変異型かを判別することができ、それによって試料遺伝子中の点突然変異を同定することができる。この時増幅が起きたか否かを調べる方法として、増幅産物をアガロースゲル電気泳動した後、エチジウムブロマイド等の核酸特異的結合蛍光試薬を用いて染色の後、ＵＶ照射して増幅核酸の有無を検出できる。
【０００７】
上記のような方法により増幅核酸を検出し、容易に多型の同定が行えるように思われるが、実際には、非特異的な核酸増幅が起こり試料遺伝子が野生型か変異型かを明確に判別できない場合もある。また上記の塩基多型同定方法では１箇所の塩基多型を同定するために通常１回または２回の核酸増幅を行う必要があり、特に遺伝病の原因となる点突然変異が遺伝子の複数の部位で起こっている場合には上記一連の操作を複数回行わなければならいため、遺伝子の塩基多型を同定するためにより大きな労力が必要となる。
【０００８】
試料中に存在する特定の核酸分子を検出するための他の代表的な技術としては、ハイブリダイゼーション法がある（例えば、非特許文献３参照）。核酸のハイブリダイゼーション分析は、多種類の核酸の中から非常に少数の標的核酸（ＤＮＡやＲＮＡ）をプローブで検出する技術であるが、ハイブリダイゼーション法では、高感度なレポーター（酵素、蛍光色素、ラジオアイソトープ等）を用いても、低コピー数（１〜１０００個）の標的核酸分子を検出するのは困難である。さらに、ハイブリダイゼーション法には、非特異反応という大きな問題点が存在するため、特定の核酸分子を正確に検出する為には担体のブロッキング、非特異シグナルの除去等の操作が不可欠であり、多大な労力が必要となる。
【０００９】
また、過去において非特異反応の問題を解決するための方法として、標的核酸より調製した標識ＤＮＡに、同様に調製した非標識ＤＮＡを添加して非特異反応を抑制するコンペティティブハイブリダイゼーション法（例えば、特許文献３、非特許文献４参照）が開発された。しかしコンペティティブハイブリダイゼーション法は操作が煩雑であり、また検出感度の面でも十分とはいえないため、特に遺伝病の診断、塩基多型解析等には適用できない。
【特許文献１】特公平４−６７９６０号公報
【特許文献２】特公平４−６７９５７号公報
【特許文献３】特許第２９８２３０４号公報
【非特許文献１】GramおよびBrsen, European Consensus Conference on Pharmacogenetics. Commission of the European Communities, Luxembourg, 第８７〜９６頁（１９９０年）
【非特許文献２】Balantら、Eur. J. Clin. Pharmacol. 第３６巻、第５５１〜５５４頁、（１９８９年）
【非特許文献３】Sambrookら、Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Third Edition、第１０章、第１０．１〜１０．５２頁（２００１年）
【非特許文献４】Nicolasら、Anal. Biochem. 第２０５巻、第１９３頁、（１９９２年）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明の目的は、上記のような問題点を解決して、明確にかつ再現性よく核酸配列中の多型を検出することができる方法及びそのための試薬を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは、上記事情に鑑み、鋭意研究の結果、本発明を完成させるに至った。
【００１２】
すなわち、本発明は以下のような構成からなる。
１．少なくとも以下の（１）〜（３）の工程を含む方法で、試料溶液中に含まれる標的核酸配列上の少なくとも１種類以上の塩基部位（Ｘ）及び少なくとも１種類以上の塩基部位（Ｙ）の判定を行うことを特徴とする塩基判定方法。
（１）第一のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｘ）を含む少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）と、該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類のオリゴヌクレオチドプライマー(Ｂ)と、を用いて標的核酸配列から増幅反応を行う第一工程、
（２）第一工程で得られうるプライマー（Ａ）の伸長産物と、第二のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｙ）を含むオリゴヌクレオチドであって該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）とをハイブリダイズさせ、該プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型として伸長反応を行い、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物と該プライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめる第二工程、
（３）第二工程で得られうる該複合体（Ｐ）中に、第一のリガンドと第二のリガンドが共存しているかどうかを検出する第三工程。
２．オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端から２番目以降の少なくとも一つのヌクレオチドがリガンドにより標識されていることを特徴とする１に記載の塩基判定方法。
３．オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の５’末端が第二のリガンドにより標識されていることを特徴とする１または２の塩基判定方法。
４．判定したい塩基部位（Ｙ）の塩基の種類により、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の配列がそれぞれ異なることを特徴とする１〜３のいずれかの塩基判定方法。
５．オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端の塩基が判定したい塩基部位（Ｙ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする１〜４のいずれかの塩基判定方法。
６．オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端より２番目の塩基が判定したい塩基部位（Ｙ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする１〜４のいずれかの塩基判定方法。
７．オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端より３から５番目の少なくとも１つの塩基が鋳型となる核酸配列と相補的または相同的でない塩基に置換されていることを特徴とする５または６の塩基判定方法。
８．判定したい塩基部位（Ｘ）の塩基の種類により、プライマー（Ａ）の配列がそれぞれ異なることを特徴とする１〜７のいずれかの塩基判定方法。
９．プライマー（Ａ）の３’末端より２番目の塩基が判定したい塩基部位（Ｘ）の予想される塩基と同じ、または相補的な塩基であることを特徴とする１〜８のいずれかの塩基判定方法。
１０．プライマー（Ａ）の３’末端より３から５番目の少なくとも１つの塩基が鋳型となる核酸配列と相補的または相同的でない塩基に置換されていることを特徴とする９の塩基判定方法。
１１．第一工程において、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）が存在していることを特徴とする１〜１０のいずれかの塩基判定方法。
１２．オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）およびオリゴヌクレオチドプライマー（Ｂ）のＴｍ値より、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）のＴｍ値が低いことを特徴とする１〜１１のいずれかの塩基判定方法。
１３．第一のリガンドが抗原、抗体、蛍光物質、発光団および酵素からなる群より選ばれた少なくとも１種以上であることを特徴とする１〜１２のいずれかの塩基判定方法。
１４．第二のリガンドが抗原、抗体、蛍光物質、発光団および酵素からなる群より選ばれた少なくとも１種以上であることを特徴とする１〜１２のいずれかの塩基判定方法。
【発明の効果】
【００１３】
本発明により、試料核酸中の複数の塩基多型を明確にまた簡便に、再現性よく検出できる方法が提供される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明において「試料溶液」とは、標的核酸配列すなわち解析の対象となる塩基多型部位を含む染色体又はその断片に相補的な配列を有する核酸を含む溶液を指し、例えば、バクテリア、動物または植物組織、個体細胞由来の溶解物などのあらゆる材料から調製することができる。該試料溶液の調製法は特に限定されないが、例えば、患者の血液、組織から、既知の方法により調製してもよい。代表的なものとして、フェノール／クロロホルム抽出法（Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ  ｅｔ  Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ  ａｃｔａ 第７２巻、第６１９〜６２９頁、１９６３年）、アルカリＳＤＳ法（Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ 第７巻、第１５１３〜１５２３頁、１９７９年）等の液相で行う方法がある。また、核酸の単離に核酸結合用担体を用いる系としては、ガラス粒子とヨウ化ナトリウム溶液を使用する方法（Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ．  ＵＳＡ 第７６−２巻、第６１５〜６１９頁、１９７９年）、ハイドロキシアパタイトを用いる方法（特開昭６３−２６３０９３号公報）等がある。その他の方法としてはシリカ粒子とカオトロピックイオンを用いた方法（Ｊ．  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ 第２８−３巻、第４９５〜５０３頁、１９９０年、特開平２−２８９５９６号公報）が挙げられる。
【００１５】
本発明において「標的核酸配列」とは、標的核酸すなわち解析の対象となる塩基多型部位を含む核酸の配列を指す。該標的核酸の例としては、Ａｌｕ配列、リボゾーム遺伝子、蛋白質をコードする遺伝子のエキソンやイントロン、プロモーターなどが例示できる。より具体的には、遺伝病を含む各種疾患、薬物代謝、生活習慣病（高血圧、糖尿病等）に関連する遺伝子が挙げられる。例えば、薬物代謝に関連する遺伝子としてＣＹＰ２Ｃ１９ （Cytochrome P450 2C19）遺伝子が挙げられる。
【００１６】
本発明において「塩基多型」とは、核酸が野生型とは異なる塩基配列を有することをいう。野生型の塩基配列を有する野生型核酸のうち少なくとも１つ、好ましくは１つのヌクレオチドが点突然変異して他のヌクレオチドに置換されているものや、該野生型核酸の一部に挿入、欠失配列等を含む核酸、すなわち変異型核酸について、どの部位のヌクレオチドが変異しているかが解明されてきている。また、このような塩基多型により体質等が異なっていることも解明されてきており、本発明の方法は試料中の核酸がこのような予想される変異を有しているか否かを検査する方法である。
【００１７】
「塩基部位（Ｘ）」および「塩基部位（Ｙ）」とは、それぞれ該塩基多型のうち検査の対象として判定しようとする塩基部位を示す。該塩基部位（Ｘ）および（Ｙ）は同一の核酸上の異なる塩基部位であることが好ましく、同一の遺伝子上の異なる塩基部位であることがより好ましい。判定しようとする塩基部位の一例として、ＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子では６３６番目の塩基（ＧからＡへの変異）および６８１番目の塩基（ＧからＡへの変異）の多型が薬物代謝に影響することが知られている。
【００１８】
本発明において、第一のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｘ）を含む少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）、および、該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類のオリゴヌクレオチドプライマー(Ｂ)とは、対象となる核酸配列を含む染色体又はその断片に相補的な配列を有するオリゴヌクレオチドであって、既知の増幅方法であるＰＣＲ、ＮＡＳＢＡ、ＬＣＲ、ＳＤＡ、ＲＣＡ、ＴＭＡ、ＬＡＭＰ、ＩＣＡＮおよびＵＣＡＮ法に使用でき、増幅された核酸断片が判定したい塩基部位（Ｙ）を含みうるものであれば特に限定されるものではなく、必要に応じて修飾されていても良い。一例として、該プライマー（Ａ）が塩基部位（Ｘ）を含むセンスプライマーである場合は該プライマー（Ｂ）が該塩基部位（Ｘ）および（Ｙ）の下流領域に相補的なアンチセンスプライマーであり、他の一例として、該プライマー（Ａ）が該塩基部位（Ｘ）を含むアンチセンスプライマーである場合は該プライマー（Ｂ）が該塩基部位（Ｘ）および（Ｙ）の上流領域に相同的なセンスプライマーであることが好ましい。プライマー鎖長は、９〜３５塩基であればよく、好ましくは、１１〜３０塩基である。該プライマーは検出したい核酸配列に応じて、複数混在していても良い。例えば、判定したい塩基部位（Ｘ）が複数箇所存在する場合、所望により、プライマー（Ａ）および／またはプライマー（Ｂ）を複数、混在させてもよい。複数のプライマーを使用し、一つの反応系で増幅反応を行うことができる。複数のプライマー（Ａ）を混合して用いる場合、第一のリガンドの種類を変えても良い。
【００１９】
本発明において、第一のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｘ）を含む少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）および第二のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｙ）を含むオリゴヌクレオチドであって該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長方法は、基本的には、従来の方法を用いて行うことができる。通常、一本鎖に変性させた特定の塩基多型部位を含む染色体又はその断片に、４種類のデオキシヌクレオシド三リン酸（ｄＮＴＰ）及びＤＮＡポリメラーゼを共に、作用させることで、標的核酸を鋳型としてオリゴヌクレオチドが伸長する。
【００２０】
該伸長反応は、Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Third Edition （Sambrookら、第８章、第８．１〜８．１２６頁、２００１年）に記載の方法に従って行うことができる。また、標的核酸が検出するのに十分な量が含まれていない場合、予め前記判定したい塩基部位（Ｘ）および（Ｙ）を含む核酸断片を以下に示す増幅反応によって、増幅しておくことも可能である。
【００２１】
本発明において、特定の塩基多型部位を含む染色体又は断片の増幅方法も、基本的には、従来の方法を用いて行うことができ、通常、一本鎖に変性させた特定の塩基多型部位を含む染色体又はその断片に、４種類のデオキシヌクレオシド三リン酸（ｄＮＴＰ）及びＤＮＡポリメラーゼ及びオリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）および（Ｂ）を作用させることで、標的核酸を鋳型として用いたオリゴヌクレオチドプライマー間の配列が増幅される。
【００２２】
核酸増幅方法としては、ＰＣＲ、ＮＡＳＢＡ（Nucleic acid sequence-basedamplification method；Nature 第３５０巻、第９１頁（１９９１年））、ＬＣＲ（国際公開８９／１２６９６号公報、特開平２−２９３４号公報）、ＳＤＡ（Strand Displacement Amplification：Nucleic acid research 第２０巻、第１６９１頁（１９９２年））、ＲＣＡ（国際公開９０／１０６９号公報）、ＴＭＡ（Transcription mediated amplification method；J.Clin.Microbiol. 第３１巻、第３２７０頁（１９９３年））、ＬＡＭＰ（loop-mediated isothermal amplification method：J Clin Microbiol. 第４２巻：第１，９５６頁（２００４年））、ＩＣＡＮ（isothermal and chimeric primer-initiated amplification of nucleic acids：Kekkaku. 第７８巻、第５３３頁（２００３年））などが挙げられる。
【００２３】
なかでもＰＣＲ法は、試料核酸、４種類のデオキシヌクレオシド三リン酸、一対のオリゴヌクレオチド及び耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの存在下で、変性、アニーリング、伸長の３工程からなるサイクルを繰り返すことにより、上記一対のオリゴヌクレオチドプライマーで挟まれる試料核酸の領域を指数関数的に増幅させる方法である。すなわち、変性工程で試料の核酸を変性し、続くアニーリング工程において各オリゴヌクレオチドプライマーと、それぞれに相補的な一本鎖試料核酸上の領域とをハイブリダイズさせ、続く伸長工程で、各オリゴヌクレオチドプライマーを起点としてＤＮＡポリメラーゼの働きにより鋳型となる各一本鎖試料核酸に相補的なＤＮＡ鎖を伸長させ、二本鎖ＤＮＡとする。この１サイクルにより、１本の二本鎖ＤＮＡが２本の二本鎖ＤＮＡに増幅される。従って、このサイクルをｎ回繰り返せば、理論上、上記一対のオリゴヌクレオチドプライマーで挟まれた試料ＤＮＡの領域は２のｎ乗倍に増幅される。増幅されたＤＮＡ領域は大量に存在するので、電気泳動等の方法により容易に検出できる。よって、遺伝子増幅法を用いれば、従来では検出不可能であった、極めて微量（１分子でも可）の試料核酸をも検出することが可能であり、最近非常に広く用いられている技術である。
【００２４】
本発明の重要な開示の別の一つは、オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）の伸長産物に、判定したい塩基部位（Ｙ）を含むオリゴヌクレオチドであって該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）をハイブリダイズさせる場合に、該プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型とする伸長反応を行って該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物と該プライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめることによって、核酸配列中の複数の多型を明確にかつ再現性よく検出することができるような顕著な効果を見出したことにある。
【００２５】
本発明に用いられる「第二のリガンドが結合しておりかつ判定したい塩基部位（Ｙ）を含むオリゴヌクレオチドであって該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の塩基判定用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）」は、好適には該プライマー（Ａ）の伸長産物のうち該塩基部位（Ｙ）を含む部分に相補的なオリゴヌクレオチドにリガンドが結合されたもの、より好適には、オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）および（Ｂ）を用いて増幅した核酸断片のうちの該プライマー（Ａ）の伸長産物のうち該塩基部位（Ｙ）を含む部分に相補的なオリゴヌクレオチドにリガンドが結合されたものを用いることができ、上記プローブ（Ｄ）の伸長反応を阻害しない位置にリガンドを結合させることが好ましい。該リガンドを結合させる位置としては、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の３’末端から２番目以降の少なくとも一つのヌクレオチドにリガンドを結合させることが好ましく、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の５’末端にリガンドを結合させることがより好ましい。
【００２６】
また、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）は、３’末端より1番目または２番目の塩基が、判定したい塩基部位（Ｙ）の位置に相当するように設計するのがよい。好ましくは、２番目の塩基が、該塩基部位（Ｙ）の位置に相当するように設計するのがよい。また、本発明の効果を損なわないように、３’末端より３番目や３番目以降の塩基を該塩基部位（Ｙ）の位置に相当するように設計してもよい。さらに、３’末端より３から５番目の少なくとも1つの塩基が、鋳型となる核酸配列と相補的でない塩基に置換させることによって、該塩基部位（Ｙ）が存在した場合、より選択的に該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長反応が起こりうるようにしてもよい。該オリゴヌクレオチドプローブの鎖長は、５〜２５塩基であればよく、好ましくは、１０〜２０塩基である。
【００２７】
オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）は判定したい塩基部位（Ｙ）に応じて、複数混在していても良い。例えば、野生型を検出するためのオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）と、変異型を検出するためのオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）を混合して用いてもよい。オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）を混合して用いる場合、第二のリガンドの種類を変えても良い。
【００２８】
また、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）は、オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）および（Ｂ）を用いた増幅反応を阻害しないように設計するのがよい。その一例として、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）のＴｍ値を該プライマー（Ａ，Ｂ）のＴｍ値より低くなるように設計すればよい。
【００２９】
オリゴヌクレオチドプライマーのＴｍ値は、ハイブリッドを形成した２本鎖ＤＮＡ分子の５０％が乖離する温度のことであり、その計算方法としては、既知の方法であれば特に限定されないが、Ｎｅａｒｅｓｔ  ｎｅｉｇｈｂｏｒ  ｍｅｔｈｏｄ、Ｗａｌｌａｃｅ法、ＧＣ％法のいずれかにより求められたもので、本発明の特性を満たしていることが必要である。なお、特に好ましいＴｍ値はＮｅａｒｅｓｔ  ｎｅｉｇｈｂｏｒ  ｍｅｔｈｏｄで計算されたものである。該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）および該プライマー（Ａ，Ｂ）におけるＴｍ値の差は１℃以上であれば特に限定されるものではないが、好ましくは５℃以上である。なお、Ｔｍ値の差は５０℃以下であればよく、好ましくは４０℃以下がよい。プローブ鎖長は、５〜３０塩基であればよく、好ましくは、８〜２５塩基である。
【００３０】
本発明においては、第一のリガンドが結合した少なくとも１種類のオリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）と第二のリガンドが結合しておりかつ該プライマー（Ａ）の伸長産物の一部と相補的な少なくとも１種類の検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）は、別々、又は同時に作用させることが可能である。
【００３１】
別々に作用させる場合には、一例として、上記オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）および（Ｂ）を用いて増幅反応を行った後に該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）を加え、９８℃、３分の熱変性を行ってから徐々に室温付近まで温度を下げることができる。
【００３２】
同時に作用させる場合には、一例として、上記オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）、（Ｂ）および該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）を混合した状態で増幅反応を行い、増幅反応に引き続いて９８℃、３分の熱変性を行ってから徐々に室温付近まで温度を下げることができる。
【００３３】
核酸増幅法から複合体（Ｐ）を形成せしめるまでは、ホモジニアスな系で実施しても良い。例えば、試料核酸、４種類のデオキシヌクレオシド三リン酸、プライマー（Ａ）、プライマー（Ｂ）、検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）及び耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの存在下で、変性、アニーリング、伸長の３工程からなるサイクルを繰り返し、核酸増幅反応を行う。その後、９８℃、３分の熱変性を行ってから徐々に室温付近まで温度を下げ、検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）とプライマー（Ａ）の伸長産物をハイブリダイズせしめる。その後、反応系に存在する耐熱性ＤＮＡポリメラーゼにより、プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型として検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長反応を行い、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物とプライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめる。その後、複合体（Ｐ）の検出を行えばよい。
【００３４】
使用される第一リガンドと第二のリガンドは核酸配列の検出を妨げるものでないのであれば、特に限定されるものではないが、好適には抗原、抗体、蛍光物質、発光団、および酵素、アビジン、ビオチン、ジゴケシゲニン、ジニトロフェニルからなる群から選ぶことができる。好ましくは、抗原、蛍光物質、ビオチン、ジゴキシゲニン、ジニトロフェニルなどが良く、特に好ましくは抗原、蛍光物質、ビオチン、ジゴキシゲニン、ジニトロフェニルが良い。本発明を実施するにあたって、第一リガンドと第二のリガンドが異なっていることが好ましい。一例として、第一リガンドにＦＩＴＣ、第二のリガンドにビオチンを用いてもよい。
【００３５】
また、他の一例として、判定したい塩基部位（Ｘ）について、野生型を検出するためのオリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）の第一リガンドとしてＦＩＴＣ、変異型を検出するためのオリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）の第一リガンドとしてジゴキシゲニンを使用し、判定したい塩基部位（Ｙ）について、野生型を検出するためのオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の第二リガンドとしてビオチン、変異型を検出するためのオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の第二リガンドとしてジニトロフェニルを使用することにより、検出された第一および／または第二リガンドの組み合わせから塩基部位（Ｘ）および（Ｙ）の多型を同時に同定することができる。
【００３６】
本発明の重要な開示の一つは、第一工程で得られうるプライマー（Ａ）の伸長産物に、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）をハイブリダイズさせる場合に、プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型とする伸長反応を行ってオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物とプライマー（Ａ）の伸長産物の複合体（Ｐ）を形成せしめることによって、従来公知の伸長反応を行わないハイブリダイゼーション法と比較して複合体（Ｐ）の生成量が大幅に向上し、塩基多型を明確にまた簡便に同定できるような顕著な効果を見出したことにある。
【００３７】
この原理は、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）と「プライマー（Ａ）の伸長産物」の複合体を（ｐ’）とすると、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物と「プライマー（Ａ）の伸長産物」の複合体（Ｐ）の方が、複合体（ｐ’）より、はるかに安定であることに由来する。一般に、「第一工程で得られうるプライマー（Ａ）の伸長産物」を含む二本鎖核酸の方がオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）よりはるかに長いため、該二本鎖核酸の変性により形成された一本鎖核酸同士がハイブリダイズして元の二本鎖核酸を形成する反応の方が、該一本鎖核酸の一方すなわち「プライマー（Ａ）の伸長産物」に該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）がハイブリダイズして複合体（ｐ’）を形成する反応よりはるかに優勢である。該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）を「プライマー（Ａ）の伸長産物」にハイブリダイズさせ、該伸長産物を鋳型として伸長させることによって形成された該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物の方が、該オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）よりはるかに長いため、複合体（Ｐ）の方が複合体（ｐ’）よりはるかに大量に存在しうる。また、伸長反応とは、換言すれば一本鎖核酸を鋳型とした相補鎖の合成によって合成二本鎖核酸を形成せしめる反応であり、該合成反応は、二本鎖核酸の変性により形成された一本鎖核酸同士がハイブリダイズして元の二本鎖核酸を形成する反応よりはるかに優勢であることからも、プライマー（Ａ）の伸長産物を鋳型とするオリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長反応によって複合体（Ｐ）の生成量が大幅に向上し、該複合体（Ｐ）は複合体（ｐ’）よりはるかに大量に存在しうる。
【００３８】
従って標的核酸配列上の塩基部位（Ｙ）の有無は、複合体の検出シグナルとなって反映される。塩基部位（Ｙ）が存在すれば、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物がえられ、複合体（Ｐ）の生成量が増えるため高いシグナルが得られる。逆に、塩基部位（Ｙ）が存在しなければ、オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）の伸長産物が得られないため、複合体（Ｐ）が生成されず、シグナルが得られないか、若しくはごく少数の複合体（ｐ’）に起因する極度に低いシグナルとなる。ごく少数の複合体（ｐ’）に起因する極度に低いシグナルが観察される場合には、カットオフ値を設定してもよい。カットオフ値は対象とする塩基部位（Ｙ）毎に設定してもよい。カットオフ値の設定は、当業者であれば、容易に設定できる。
【００３９】
本発明では、形成された複合体（Ｐ）中に、第一のリガンドと第二のリガンドが共存することを確認できればよい。例えば、第一および第二のいずれか一方のリガンドを該複合体（Ｐ）を固相上に捕捉するための捕捉用リガンドとして用い、他方のリガンドを該固相上に捕捉された複合体（Ｐ）を検出するための検出用リガンドとして用いることができる。一例として、検出用リガンドとして蛍光物質を使用し、捕捉用リガンドの捕捉剤が結合した固相上に捕捉された複合体（Ｐ）に含まれる蛍光物質が発する蛍光を検出しても良い。また、他の一例として、検出用リガンドに結合できかつ標識されてなる少なくとも１種類の生理活性物質を、複合体（Ｐ）を介して、捕捉用リガンドの捕捉剤が結合した固相上に捕捉し、その複合体（Ｐ）を介して固相上に捕捉された該生理活性物質の標識を検出しても良い。
【００４０】
すなわち、第一および第二のいずれか一方のリガンドを複合体（Ｐ）を固相上に捕捉するための捕捉用リガンドとして用い、他方のリガンドを該固相上に捕捉された複合体（Ｐ）を検出するための検出用リガンドとして用いてもよい。
そして、第三工程が、少なくとも以下の（ｉ）及び（ｉｉ）の工程を含んでいてもよい。
（ｉ）検出用リガンドに結合できかつ標識されてなる少なくとも１種類の生理活性物質を、複合体（Ｐ）を介して、捕捉用リガンドの捕捉剤が結合した固相上に捕捉する工程、
（ｉｉ）該複合体（Ｐ）を介して固相上に捕捉された該生理活性物質の標識を検出する工程。
さらに、捕捉用リガンドの捕捉剤が抗体、オリゴヌクレオチド、レセプター、核酸特異的結合物質及びアビジンからなる群より選ばれた少なくとも１種以上であってもよい。
さらに、生理活性物質が抗体、オリゴヌクレオチド、レセプター、核酸特異的結合物質およびアビジンからなる群より選ばれた少なくとも１種以上であってもよい。
さらに、生理活性物質に結合される標識が、蛍光化学物質、発光団、酵素、蛍光蛋白質、発光蛋白質、磁性体および導電性物質からなる群より選ばれた少なくとも１種以上であってもよい。
【００４１】
固相としては金属板、木片、プラスチック板、ガラス板、ゴム板、発泡スチロール、フィルム、膜、通液性フィルター、ゲルなど、あらゆるものが使用できるが、膜、通液性フィルターが好ましい。必要に応じて、固相の表面および／または内部がリガンドの捕捉剤を補足可能な形態に修飾されていても良い。
【００４２】
リガンドの捕捉剤としては、抗体、オリゴヌクレオチド、レセプター、核酸特異的結合物質、アビジン、ビオチン、ジゴケシゲニンより適宜選択することが可能である。好ましくは抗体、アビジンがよく、特に好ましくはアビジンがよい。例えば、リガンドがビオチンの場合、リガンドの捕捉剤はアビジンであれば良い。
【００４３】
用いられる生理活性物質は検出用リガンドに親和性を有するものであれば、特に限定されるものではないが、好適には抗体、オリゴヌクレオチド、レセプター、核酸特異的結合物質、アビジン、ビオチン、ジゴケシゲニンよりなる群より選ぶことができる。好ましくは抗体、アビジンがよく、特に好ましくは抗体がよい。例えば、検出用リガンドがＦＩＴＣの場合、生理活性物質は抗ＦＩＴＣ抗体であればよい。
【００４４】
検出用リガンド、捕捉用リガンド、捕捉用リガンドの捕捉剤及び検出用リガンドに結合する生理活性物質を選択する場合、検出用リガンドと検出用リガンドに結合する生理活性物質は結合でき、検出用リガンドと捕捉用リガンドの捕捉剤は結合できないように選択するのがよい。また、捕捉用リガンドと捕捉用リガンドの捕捉剤は結合でき、捕捉用リガンドと検出用リガンドに結合する生理活性物質は結合できないように選択するのがよい。
【００４５】
生理活性物質に結合される標識としては、蛍光化学物質、発光団、酵素、蛍光蛋白質、発光蛋白質、磁性体、導電性物質よりなる群より選ぶことができる。好ましくは蛍光化学物質、蛍光蛋白質、発光団、酵素、導電性物質がよく、さらに好ましくは蛍光化学物質、蛍光蛋白質、酵素がよく、特に好ましくは酵素がよい。この標識は、検出用リガンド、捕捉用リガンド、捕捉用リガンドの捕捉剤及び検出用リガンドに結合する生理活性物質のいずれとも結合しない物質が好ましい。
【００４６】
標識の検出は既知の方法であれば特に限定されるものではないが、標識が蛍光化学物質または蛍光蛋白質の場合、特定波長の光を照射し蛍光化学物質または蛍光蛋白質を励起させ、基底状態に変換される際に生じる特定波長の蛍光量を測定することが可能である。これらに用いられる蛍光化学物質としては、ＦＩＴＣ、ＦＡＭ、ＴＡＭＲＡ、ＴｅｘａｓＲｅｄ、ＶＩＣ、Ｃｙ３、Ｃｙ５、ＨＥＸ等が挙げられ、蛍光蛋白質としては、ＧＦＰ、ＹＦＰ、ＲＦＰ等を挙げることができる。標識が酵素である場合、酵素の基質を添加することによって生成される反応生成物を検出することによって測定が可能である。これらに用いられる酵素と基質の組み合わせとしては、アルカリフォスファターゼとパラニトロフェニルリン酸、ＣＤＰ−ｓｔａｒ、ＡＭＰＰＤ、ＤＤＡＯｐｈｏｓｐａｔｅ、ＢＣＩＰ−ＮＢＴ等の組み合わせ、パーオキシダーゼとＴＭＢ、Ｌｕｍｉ−Ｌｉｇｈｔ（ロッシュ・ダイアグノスティックス）、ＳＡＴ−１（同仁化学）等の組み合わせ、ジアホラーゼとＮＴＢ等の組み合わせ、各種オキシダーゼと基質、各種デヒドロゲナーゼと基質の組み合わせ等、反応性生物が検出されるものであれば、これらに限定されることはなく用いることが可能である。標識が磁性体の場合、磁気を検出することによって測定が可能である。標識が導電性物質、電流値を検出することによって測定が可能である。
【実施例】
【００４７】
以下、実施例に基づき本発明をより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
【００４８】
実施例１
Cytochrome P450 2C19（ＣＹＰ２Ｃ１９）遺伝子の塩基多型（６３６Ｇ→Ａおよび６８１Ｇ→Ａ）の検出
（１）ＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子の６３６番目および６８１番目の多型を検出するオリゴヌクレオチドの合成
パーキンエルマー社製ＤＮＡシンセサイザー３９２型を用いて、ホスホアミダイト法にて、配列番号１〜５に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチド（以下、オリゴ１〜５と示す）を合成した。合成はマニュアルに従い、各種オリゴヌクレオチドの脱保護はアンモニア水で５５℃、一夜実施した。オリゴヌクレオチドの精製はパーキンエルマー社ＯＰＣカラムにて実施した。もしくはＤＮＡ合成受託会社（（株）日本バイオサービス、シグマアルドリッチジャパン（株）、オペロンバイオテクノロジー（株）等）に依頼した。
オリゴ１がセンスプライマー(Ｂ)である。オリゴ２は野生型増幅用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）、オリゴ３は変異型増幅用オリゴヌクレオチドプライマー（Ａ）である。また、オリゴ４野生型検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）であり、オリゴ５は変異型検出用オリゴヌクレオチドプローブ（Ｄ）である。オリゴ２および３は５’末端をＦＩＴＣにより標識され、オリゴ４および５は５’末端をビオチンにより標識されている。オリゴ４および５の５’末端をビオチンにより標識することで、オリゴ４および５からの伸長反応を可能にしている。
【００４９】
（２）ＰＣＲ法によるＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子多型の解析
ＰＣＲ法による増幅反応ヒト白血球からフェノール・クロロフォルム法により抽出したＤＮＡ溶液をサンプルとして使用して、下記試薬を添加して、下記条件によりヒトＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子の塩基多型（６３６Ｇ→Ａおよび６８１Ｇ→Ａ）を解析した。
【００５０】
試薬
以下の試薬を含む２５μｌ溶液を調製した。
ＫＯＤ  ｐｌｕｓ ＤＮＡポリメラーゼ反応液
オリゴ１  ５ｐｍｏｌ、
オリゴ２またはオリゴ３（５’末端をＦＩＴＣにより標識） ５ｐｍｏｌ、
オリゴ４またはオリゴ５（５’末端をビオチンにより標識） ５ｐｍｏｌ、
×１０緩衝液 ２．５μｌ、
２ｍＭ ｄＮＴＰ ２．５μｌ、
２５ｍＭ ＭｇＣｌ２ １．０μｌ、
ＫＯＤ  ｐｌｕｓ  ＤＮＡポリメラーゼ ０．４Ｕ、
抽出ＤＮＡ溶液 ２０ｎｇ
【００５１】
増幅条件
９４℃・２分
９４℃・１５秒、
６０℃・３０秒、
６８℃・３０秒（３５サイクル）
９８℃・３分、
６５℃・１分、
５５℃・１分、
４５℃・１分、
３５℃・１分、
２５℃・１５分。
【００５２】
（３）通液性フィルターを用いた検出
増幅反応液１５μｌをＰＯＤ標識抗ＦＩＴＣ抗体（ＤＡＫＯ Ｃｙｔｏｍａｔｉｏｎ製）の溶液３０μｌに加えて、室温にて５分間反応させた。これによって、増幅されたＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子断片にＰＯＤ標識抗ＦＩＴＣ抗体が結合する。この反応液をアビジンの結合した通液性フィルターに添加するとフィルター上に増幅されたＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子断片に結合したビオチン標識オリゴヌクレオチドであるオリゴ４または５が捕捉される。次に、上部より洗浄液およびＰＯＤ基質液を順次添加後、フィルター表面の発色を目視によって確認した。表１に、試料Ｎｏ．１〜６で示すサンプルおよび試料なしの場合について、オリゴ２またはオリゴ３、および、オリゴ４またはオリゴ５をそれぞれ組み合わせて使用した場合に明らかに発色を確認できたものを「＋」、明らかに発色が見られなかったものを「−」として示す。
【００５３】
【表１】
2007330138.tif 000002
【００５４】
表１において、例えば試料１では６８１番目の塩基がＧであることを示すオリゴ２、および６３６番目の塩基がＧであることを示すオリゴ４を使用した場合にのみ明らかな発色を確認できる。したがって、試料１には６８１番目の塩基がＧかつ６３６番目の塩基がＧであるＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子のみが存在する。また試料２では、同様に、オリゴ２およびオリゴ４、オリゴ２およびオリゴ５を使用した場合にそれぞれ明らかな発色を確認できるため、試料２には６８１番目の塩基がＧかつ６３６番目の塩基がＧであるＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子と、６８１番目の塩基がＧかつ６３６番目の塩基がＡであるＣＹＰ２Ｃ１９遺伝子の両方が存在する。
【００５５】
上記のように、容易にかつ迅速に遺伝子型を明確に判定することができた。
【産業上の利用可能性】
【００５６】
本発明により、試料核酸中の複数の塩基多型を明確にまた簡便に検出が可能となり、これまでの方法のように煩雑な操作を必要とせず、迅速で容易に再現性の良い結果が得られることからも、産業界に大きく寄与することが期待される。
【配列表】
2007330138000001.app