(57)【要約】      （修正有）【課題】前立腺癌を処置するための方法の提供。【解決手段】治療的有効量の癌抗原ペプチド関連物質および低用量のエストラムスチンまたはその塩をそれを必要とする患者に投与することを含む方法およびそのための医薬組成物を提供する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
前立腺癌を処置するための方法であって、治療上有効量の癌抗原ペプチド関連物質および低用量のエストラムスチンまたはその塩をそれを必要とする患者に投与することを含む方法。
【請求項２】
低用量のエストラムスチンまたはその塩の用量が１４０〜５６０ｍｇ／日である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
癌抗原ペプチド関連物質が患者指向性である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
癌抗原ペプチド関連物質が、癌抗原タンパク質、その癌抗原ペプチド、その遺伝子およびそれらの誘導体より成る群から選択される、請求項３記載の方法。
【請求項５】
癌がホルモン不応性前立腺癌である、請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前立腺癌を処置するための医薬組成物であって、低用量のエストラムスチンまたはその塩を含む、癌抗原ペプチド関連物質と一緒に投与される医薬組成物。
【請求項７】
低用量のエストラムスチンまたはその塩の用量が１４０〜５６０ｍｇ／日である、請求項６に記載の医薬組成物。
【請求項８】
癌抗原ペプチド関連物質が患者指向性である、請求項６または７に記載の医薬組成物。
【請求項９】
癌抗原ペプチド関連物質が、癌抗原タンパク質、その癌抗原ペプチド、その遺伝子およびそれらの誘導体より成る群から選択される、請求項８に記載の医薬組成物。
【請求項１０】
癌がホルモン不応性前立腺癌である、請求項６から９のいずれかに記載の医薬組成物。
【請求項１１】
前立腺癌を処置するための医薬を製造するためのエストラムスチンまたはその塩の使用であって、該エストラムスチンまたはその塩が低用量であり、かつ該医薬が癌抗原ペプチド関連物質と一緒に投与される使用。
【発明の詳細な説明】
【発明の詳細な説明】
【０００１】
［技術分野］
本発明は、癌の免疫療法、具体的にはホルモン不応性前立腺癌の処置に関する。
【０００２】
［背景技術］
転移性ホルモン不応性前立腺癌（ＨＲＰＣ）患者の最適な処置は依然として癌研究の代表的目標であり続けている。転移性ＨＲＰＣ患者の生存期間中央値は約１２ヶ月である［１３］。ミトキサントロン（mitoxantrone）による化学療法には一過性の改善が見られるが［１、２］、生存期間延長が証明された処置はまだない。最近、エストラムスチンまたはタキサンに基づく治療法の第ＩＩ相臨床試験において、患者の４５％〜６７％で血清前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）レベルが≧５０％低下したことが報告された［４８］。しかしながら、これらの併用は、顕著な悪心、下痢、白血球減少、および累積性体液貯留を伴い、血栓性イベントの危険が増大するので、パフォーマンス・ステータスの悪い患者には使用できない。それに加えて、これら治療法ではいずれも生存期間延長が見られず、この研究での患者数は限られている。
【０００３】
ヒト白血球関連抗原（ＨＬＡ）クラスＩ拘束性細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）が認識する多数の腫瘍抗原が過去十年間に確認され［９、１０］、腫瘍ワクチンを用いるＨＲＰＣの新処置法が研究されてきた。樹状細胞に基づく免疫療法の第Ｉ相／第ＩＩ相臨床試験が行われ、組換え前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ）およびアジュバントを含むワクチンも前立腺癌患者で試験された ［１１、１２］。ＨＲＰＣ患者に施すわれわれの免疫療法の手法は、既報のように［１３、１４］、ＣＴＬを誘導する能力を持つワクチン候補３０種に反応する癌患者の循環血中のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体のワクチン投与前測定に続いて、反応性ペプチドのみを投与するもの（患者指向性ペプチドワクチン投与）である。われわれは最近、ＨＲＰＣについて第Ｉ相臨床試験を完了し、これらのペプチドの安全な投与を評価した［１５］。この免疫療法の有害事象は通常の治療法のものより軽症であったが、この試験の臨床的応答は限定的であった。細胞毒性物質による免疫系の抑制が最低の場合にペプチドワクチン投与と細胞毒性物質との併用によって相加的抗腫瘍効果が達成できるであろうことが示唆される。
【０００４】
エストラムスチンリン酸塩は、エストラジオールとナイトロジェンマスタードとの安定な結合体であって、抗有糸分裂性を示し、微小管形成の崩壊を起す［１６］。エストラムスチンリン酸塩は、過去２５年間にＨＲＰＣの一次的処置のみならず二次的処置として、第ＩＩ相および第ＩＩＩ相臨床試験が何回も行われている。他の細胞毒性薬と比較してエストラムスチンリン酸塩の利点は、投与が容易な点（経口投与）および有効用量で比較的に耐容性がよい点にある。
【０００５】
免疫療法と細胞毒性薬との併用は新しい概念ではないが［２７］、多くの細胞毒性薬の骨髄抑制的な性質により起こり得るマイナスの相互作用が主な注目を集めてきた。細胞毒性薬は、活性化免疫系の特徴として分裂中の細胞を優先的に殺し、それ故に免疫応答を阻害する場合がある。しかしながら、エストラムスチンリン酸塩の毒性としての骨髄抑制は、ＨＲＰＣを処置した患者では稀にしか報告されていない［１６］。エストラムスチンリン酸塩とビンブラスチンとの併用をビンブラスチン単独と比較する第ＩＩＩ相臨床試験では、併用法は単独法に比べて好中球減少率が低かった（グレード２、３、４：７％、１％および１％に対して２７％、１８％および９％）［３］。
【０００６】
［発明の開示］
本発明の目的は、患者指向性ペプチドワクチン投与および経口投与エストラムスチンリン酸塩の併用に対するＨＲＰＣ患者の臨床的および免疫学的応答を、順次測定した血清ＰＳＡ、骨代謝マーカー並びに臨床的骨スキャン記録、ＩＮＦ−γ放出検定によるペプチド特異的ＣＴＬ前駆体、および酵素結合免疫吸着検査法によるペプチド反応性ＩｇＧを解析して評価することにある。
【０００７】
即ち、本発明は以下の各項に関する：
（１）前立腺癌を処置するための方法であって、治療上有効量の癌抗原ペプチド関連物質および低用量のエストラムスチンまたはその塩をそれを必要とする患者に投与することを含む方法；
（２）低用量のエストラムスチンまたはその塩の用量が１４０〜５６０ｍｇ／日である、（１）に記載の方法；
（３）癌抗原ペプチド関連物質が患者指向性である、（１）または（２）に記載の方法；
（４）癌抗原ペプチド関連物質が、癌抗原タンパク質、その癌抗原ペプチド、その遺伝子およびそれらの誘導体より成る群から選択される、（３）に記載の方法；
（５）癌がホルモン不応性前立腺癌である、（１）から（４）のいずれかに記載の方法；
（６）前立腺癌を処置するための医薬組成物であって、低用量のエストラムスチンまたはその塩を含む、癌抗原ペプチド関連物質と一緒に投与される医薬組成物；
（７）低用量のエストラムスチンまたはその塩の用量が１４０〜５６０ｍｇ／日である、
（６）の医薬組成物；
（８）癌抗原ペプチド関連物質が患者指向性である、（６）または（７）の医薬組成物；
（９）癌抗原ペプチド関連物質が、癌抗原タンパク質、その癌抗原ペプチド、その遺伝子およびそれらの誘導体より成る群から選択される、（８）の医薬組成物；
（１０）癌がホルモン不応性前立腺癌である、（６）から（９）のいずれかに記載の医薬組成物；および
（１１）前立腺癌を処置するための医薬を製造するためのエストラムスチンまたはその塩の使用であって、該エストラムスチンまたはその塩が低用量であり、かつ該医薬が癌抗原ペプチド関連物質と一緒に投与される使用。
【０００８】
［発明を実施するための最良の形態］
本発明によって、我々は、事前のペプチドワクチン投与に応答しなかったヒト白血球抗原（ＨＬＡ）−Ａ２４またはＡ２陽性転移性ホルモン不応性前立腺癌（ＨＲＰＣ）患者に、ペプチドワクチン投与およびエストラムスチンリン酸塩処置の併用療法を施し、その結果、この併用療法がペプチド特異的ＣＴＬ前駆体またはペプチド特異的ＩｇＧを成功裏に増強すること、および患者の血清ＰＳＡレベルを減少させることを見出した。
【０００９】
第１の態様において本発明は、前立腺癌を処置するための方法であって、治療上有効量の癌抗原ペプチド関連物質および低用量のエストラムスチンまたはその塩をそれを必要とする患者に投与することを含む方法を提供する。
【００１０】
本発明によって処置される前立腺癌には、ホルモン応答性前立腺癌(hormone-responsive prostate cancer）、ホルモン不応性前立腺癌（hormone-refractory prostate cancer）およびホルモン無感応性前立腺癌（hormone-insensitive prostate cancer）を含む。本発明は、好ましくはホルモン不応性前立腺癌、特に転移性ホルモン不応性前立腺癌を処置または予防する。
【００１１】
エストラムスチンは抗新生物薬と呼ばれる医薬群に属し、前立腺癌の症例のいくつかの処置に世界的に使用されている。エストラムスチンはエストラジオールとナイトロジェンマスタードとの組み合わせである。本発明では、エストラムスチンを塩、好ましくはリン酸塩、の形で患者に経口投与できる。
【００１２】
エストラムスチンに関して用いる「低用量」なる用語は、通常の用量よりも低いエストラムスチン用量を意味し、具体的には、１４０〜５６０ｍｇ／日、好ましくは２１０〜４９０ｍｇ／日、更に好ましくは２１０〜４２０ｍｇ／日、なお好ましくは２８０ｍｇ／日を示す。低用量には、特に、１００〜１５０ｍｇ／日、１００〜２００ｍｇ／日、１００〜２５０ｍｇ／日、１２０〜１７０ｍｇ／日、１２０〜２２０ｍｇ／日、１２０〜２７０ｍｇ／日、１４０〜１９０ｍｇ／日、１４０〜２４０ｍｇ／日、１４０〜２９０ｍｇ／日、１６０〜２１０ｍｇ／日、１６０〜２６０ｍｇ／日、１８０〜２３０ｍｇ／日および１８０〜２８０ｍｇ／日が含まれる。
【００１３】
本明細書で用いる「癌抗原ペプチド関連物質」なる用語は、腫瘍抗原タンパク質並びにその遺伝子、腫瘍抗原タンパク質由来の腫瘍抗原ペプチド並びにその遺伝子、およびそれらの誘導体を意味する。腫瘍抗原ペプチドは、腫瘍に特異的なタンパク質である腫瘍抗原タンパク質の細胞内のプロテアソームによる分解によって作製され、細胞内で合成される。このようにして作製された腫瘍抗原ペプチドは、小胞体にあるＭＨＣクラスＩ抗原（ＨＬＡ抗原）に結合して複合体を形成し、この複合体が細胞表面に輸送されることで抗原として提示される。
【００１４】
本発明で使用する腫瘍抗原タンパク質は、次のものを含む：すなわちヒトメラノーマ細胞由来のＭＡＧＥと命名されたタンパク質（Science, 254: 1643, 1991）；メラノソームのタンパク質、たとえばメラニン形成細胞組織特異的タンパク質、ｇｐ１００（J. Exp. Med., 179: 1005, 1994）、ＭＡＲＴ−１（Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91: 3515, 1994）、およびチロシナーゼ（J. Exp. Med., 178: 489, 1993）；ＭＥＧＥ関連タンパク質（J. Exp. Med., 179: 921, 1994）；腫瘍特異的アミノ酸突然変異を有するβ−カテニン（catenin）（J. Exp. Med., 183: 1185, 1996）；およびＣＤＫ４（Science, 269: 1281, 1995）；ＨＥＲ２-ｎｅｕ（J. Exp. Med., 181: 2109, 1995）、ｐ５３（変異種）（Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93: 14704, 1996）；腫瘍マーカー、たとえばＣＥＡ（J. Natl. Cancer Inst., 87: 982, 1995）、ＰＳＡ（J. Natl. Cancer Inst., 89: 293, 1997）；およびウイルスタンパク質、たとえばＨＰＶ（J. Immunol., 154: 5934, 1995）およびＥＢＶ（Int. Immunol., 7: 653, 1995）。これらの物質の詳細な説明は刊行された総説に記載がある（例えば、Immunol. Today, 18: 267, 1997；J. Exp. Med., 183: 725, 1996；および Curr. Opin. Immunol., 8: 628, 1996）。
【００１５】
本発明で使用する腫瘍抗原ペプチドの典型的な例は、以下のものを含むが、これらに限定されない： WO97/46676, WO99/29715 および WO99/33977に記載の腫瘍抗原ペプチド；サイクロフィリンＢ（cyclophilin B）由来の腫瘍抗原ペプチド（WO99/67288）；ＳＡＲＴ−１由来の腫瘍抗原ペプチド（WO00/06595）；ＳＡＲＴ−３由来の腫瘍抗原ペプチド（WO00/12701）；ＡＲＴ−１由来の腫瘍抗原ペプチド（WO00/32770）；ＳＡＲＴ−２由来の腫瘍抗原ペプチド（J. Immunol, 164: 2565, 2000）；ｌｃｋ由来の腫瘍抗原ペプチド（Eur. J. Immunol., 31: 323, 2001）；ＡＲＴ−４由来の腫瘍抗原ペプチド（Cancer Res., 60: 3550, 2000）；およびｐｐＭＡＰｋｋ、ＷＨＳＣ２、ＵＢＥ２Ｖ、ＨＮＲＰＬ、ＥＩＦ由来の腫瘍抗原ペプチド（Cancer Res., 61: 2038, 2001）。
【００１６】
本発明で使用する癌抗原タンパク質および癌抗原ペプチドの遺伝子は、たとえばMolecular Cloning 2nd Edt. Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989）に記載の方法のような周知の方法に従い、前記文献を参照して調製することができる。
【００１７】
本発明で使用する癌抗原タンパク質、癌抗原ペプチドおよびその遺伝子の誘導体は、その癌抗原タンパク質およびペプチドのアミノ酸配列に基づいて調製される人工のタンパク質およびペプチドおよびその遺伝子を意味する。誘導体の典型的な例には、天然の癌抗原タンパク質およびペプチドのアミノ酸配列に対して少数のアミノ酸残基が置換、欠失および／または付加しているアミノ酸配列を有し、かつその天然の癌抗原タンパク質およびペプチドと同等の免疫応答誘導活性を有する、タンパク質およびペプチドが含まれる。
【００１８】
本発明によれば、患者指向性の癌抗原ペプチド関連物質を投与する。例えば、患者指向性癌抗原ペプチドを選択するために、抗原ペプチドを含むワクチン候補を癌患者に投与し、そのワクチン候補がＣＴＬを誘導する能力を常法［１３、１４］によって測定する。この癌抗原ペプチド関連物質は、通常皮下に投与する。
【００１９】
第２の態様において本発明は、前立腺癌を処置するための医薬組成物であって、低用量のエストラムスチンまたはその塩を含み、かつ癌抗原ペプチド関連物質と一緒に投与される医薬組成物を提供する。別の側面において本発明は、前立腺癌を処置するための医薬組成物であって、低用量のエストラムスチンまたはその塩を含み、かつ癌抗原ペプチド関連物質に特異的なＣＴＬ前駆体を増加させ、および／または癌抗原ペプチド関連物質に特異的な免疫グロブリンＧを増加させる医薬組成物を提供する。「前立腺癌」、「エストラムスチン」、「低用量」、「癌抗原ペプチド関連物質」なる用語の意味は前記した。
【００２０】
［実施例］
本発明を下記実施例によってさらに説明するが、本発明はいかなる点においてもこれら実施例によって限定されるものではない。
【００２１】
実施例で使用する略号は以下の用語を意味する：細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）；末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）；ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）；ホルモン不応性前立腺癌（ＨＲＰＣ）；前立腺特異抗原（ＰＳＡ）；骨代謝マーカー（ピリジノリン架橋Ｉ型コラーゲンカルボキシ末端テロペプチド：ＩＣＴＰ）；酵素結合免疫吸着検査法（ＥＬＩＳＡ）；遅延型過敏症（ＤＨＴ）；コンピュータ断層撮影（ＣＴ）；完全応答（ＣＲ）；部分応答（ＰＲ）；病状増悪（ＰＤ）；および高度の応答（Ａｒ）。
【００２２】
（実施例１）
患者および方法
患者
２００１年２月から２００２年９月の間に、ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）Ａ２４またはＡ２陽性転移性ＨＲＰＣ患者２０名が第Ｉ相試験に参加し、患者にペプチド特異的細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）前駆体指向性ワクチンを投与した［１５］。患者１３名は、第Ｉ相試験で少なくとも３回のペプチドワクチン投与後に病状が増悪した場合に、ペプチドワクチン投与およびエストラムスチンリン酸塩処置の併用療法に参加した。病状の増悪は、判断基準３種の少なくとも１種によって定義した：すなわち少なくとも２週あけて２回連続してＰＳＡレベルがベースラインから２５％以上増大したこと；二次元的に測定可能な軟部組織転移が２５％以上増大したこと；および放射性核種骨スキャン上に新病巣が出現したことである。血清ＰＳＡレベルは正常範囲を０〜４．０ｎｇ／ｍＬとしてタンデム−Ｒ（Hybritech Inc., San Diego, CA）検定を用いて測定した。その他の適格性には、イースタン・コオペラティブ・オンコロジー・グループの基準（Eastern Cooperative Oncology Group）のパフォーマンス・ステータス０または１、年齢７９才またはそれ以下、顆粒球数３０００／ｍｍ３以上、ヘモグロビン１０ｇ／ｄｌ以上、血小板１０万／ｍｍ３以上、ビリルビンが施設所定の正常限界に等しいかまたはそれ以下、およびクレアニチン１．４ｍｇ／ｄＬ以下が含まれた。Ｂ型肝炎およびＣ型肝炎の血清検査の陰性を必須とした。５年以内に重症疾患または活性な二次的悪性腫瘍に罹患した患者は研究参加から除外した。除外基準には、免疫抑制または自己免疫疾患の徴候がある者も含まれた。全患者に施設の指針に従って内容を説明して承認を得た。この研究は、久留米大学医学部倫理委員会の承認を得た。
【００２３】
患者１３名中２名の患者は、意図した治療コースが完了せず（ワクチン投与６回）、免疫学的解析用サンプルがなかったことから免疫学的および臨床的評価からはずした。それ故、患者１１名を免疫学的および臨床的評価の対象にできた。併用療法で処置した患者１１名のベースライン特性を下記表１にまとめた。
【００２４】
研究に登録した時点で、骨転移を有する患者のＰＡＢＳ中央値％は６．０（範囲：１．５〜８．４）であった。事前の処置には、ホルモン療法（患者１１名）、骨転移に対する放射線療法（患者２名）およびエストラムスチンリン酸塩による化学療法（患者８名：患者５名はエストラムスチン単独で；患者３名はエストラムスチン＋エトポシド配合剤ので処置）が含まれていた。患者全１１名は、併用療法開始前に３回以上（中央値６回、範囲３回〜２３回）ペプチドワクチン投与を受けた。併用療法継続の中央値は１３ヶ月であった（範囲６ヶ月〜２１ヶ月）。
【００２５】
患者指向性ペプチドワクチン投与
ＨＲＰＣ患者に対する我々の免疫療法の手法は、既報のように［１３〜１５］、ＣＴＬを誘導する能力を有するワクチン候補３０種（ＨＬＡ−Ａ２４陽性患者に対するペプチド１４種およびＨＬＡ−Ａ２陽性患者に対するペプチド１６種）に反応する癌患者の循環血中のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体をワクチン投与前に測定し、続いて、反応性ペプチドのみを投与するものである（ＣＴＬ前駆体指向性ペプチドワクチン）。本研究に使用したペプチドを下記表２に記載する。これらのペプチドは、医薬品の製造管理及び品質管理に関する基準条件下、マルチプルペプチドシステム（Multiple Peptide System, San Diego, CA）によって調製した。これらのペプチドはすべて、癌患者の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）においてＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２拘束性および腫瘍特異的ＣＴＬ活性を誘導する能力を有する［１７〜２３］。第１回目のワクチン投与前と６回のワクチン投与毎の投与後７日目とに末梢血３０ｍＬを採取し、フィコール−コンレイ密度勾配遠心法によりＰＢＭＣを分離した。ＰＢＭＣ中のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体は、既報の培養法［２４］を用いて検出した。略述すれば、ＰＢＭＣ（１ｘ１０５細胞／ウェル）を培養培地２００μＬ中で、各ペプチド１０μＭとともにＵ底型９６−ウェルマイクロ培養プレート（Nunc, Roskilde, Denmark）上でインキュベーションした。この培養培地は、４５％ＲＰＭＩ１６４０培地、４５％ＡＩＭ−ＶTM培地（Invitrogen Corp., Carlsbad, CA）、１０％ＦＣＳ、１００Ｕ／ｍＬ−インターロイキン２（ＩＬ−２）および０．１ｍＭ−ＭＥＭ非必須アミノ酸溶液（Invitrogen Corp.）を含む。１２日まで３日毎に培地の半分を除去し、対応ペプチド（２０μＭ）を含む新しい培地に交換した。培養１２日目で最後の刺激から２４時間後に、細胞を回収し、３回洗浄し、次に、対応ペプチドまたはネガティブコントロールとしてのＨＩＶペプチド（ＲＹＬＲＱＱＬＬＧＩ）の何れかを事前にロードしたＣ１Ｒ−Ａ２４０２またはＴ２細胞に応答してＩＮＦ−γを産生する能力を、ＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２ＰＢＭＣにおいてそれぞれ試験した。標的細胞（Ｃ１Ｒ−Ａ２４０２またはＴ２、１ｘ１０４／ウェル）を各ペプチド（１０μＭ）で２時間パルスし、次にエフェクター細胞（１ｘ１０５／ウェル）を各ウェルに加えて最終容量２００μＬとした。１８時間インキュベーション後、上清（１００μＬ）を回収し、酵素結合免疫吸着検査法（ＥＬＩＳＡ）を用いてＩＮＦ−γの量を測定した（検出限界：１０ｐｇ／ｍＬ）。全実験を、異なる４ウェル中で２回反復して行った。ペプチド３０種（ＨＬＡ−Ａ２４陽性患者に対するペプチド１４種、およびＨＬＡ−Ａ２陽性患者に対するペプチド１６種）に反応するＣＴＬ前駆体について、ワクチン投与前ＰＢＭＣを異なるウェルで各ウェルにつき２回反復してスクリーニングした。各ウェルの結果をｐ値（両測スチューデントｔ検定）に従って４群に分類し、ＩＮＦ−γの量（対応ペプチドに対する応答平均値−ＨＩＶペプチドに対する応答平均値）は以下の通りであった：
高度の応答（Ａｒ）：ｐ≦０．１および５００≦純産生量；
Ａ：中程度の応答（Ａ）：ｐ≦０．０５および５０≦純産生量；
Ｂ：ｐ≦０．０５および２５≦純産生量＜５０；
Ｃ：０．０５＜ｐ≦０．１および５０≦純産生量。
ペプチドは４ウェル全ての評価に基づいて前記の順序で選択した。
【００２６】
併用療法
ペプチドワクチン投与計画は以下の通りであった：皮膚試験では、選択したペプチドを各１０μｇずつ４種まで、２７ゲージ注射針を装着したツベルクリン注射器で別個に皮内注射した。皮膚試験２０分後および２４時間後に、即時型および遅延型過敏症（ＤＨＴ）反応を測定した。直径＞３０ｍｍの紅斑および硬結を陽性の皮膚試験反応と定義し、食塩水を過敏症評価のネガティブコントロールに用いた。即時型過敏症が陰性の場合に、ペプチドを注射した。併用療法の前に、各ペプチド３ｍｇ／ｍＬを各患者の大腿側方皮下に２週間隔で合計６回注射した。併用療法の間、各ペプチド１ｍｇ／ｍＬを４週間隔〜６週間隔で注射した。
【００２７】
最初の２症例でははじめ、エストラムスチンリン酸塩を１４０ｍｇカプセル２カプセルを１日２回、合計日用量５６０ｍｇで経口投与したが、これらの患者で重度の免疫抑制が観察された。重度の免疫抑制を回避するために、残りの１１症例ではエストラムスチンリン酸塩を２８０ｍｇ／日に減量した。
【００２８】
免疫学的モニタリング
併用療法中の免疫応答を評価するために、ＰＢＭＣ内のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体およびペプチド特異的抗体の血清濃度をワクチン投与６回毎に測定した。ＰＢＭＣ内のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体は、既報の培養法を使用して検出し［２４］、投与ペプチドに特異的な血清ＩｇＧレベルは、既報のようにＥＬＩＳＡを使用して検出した［１３〜１５］。これに加えて、エストラムスチン誘導免疫抑制を慎重に測定するため、新しいモニタリングを行った。すなわち、ＰＢＭＣを２週間毎に回収し、三回反復検定にて、１０μＭフィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）、ＨＬＡ−Ａ２４または−Ａ２結合モチーフを有する Epstein-Bar ウイルス（ＥＢＶ）由来ペプチド１０ｎｇ／ｍＬおよびワクチン投与した２種の異なるペプチド１０ｎｇ／ｍＬとともに２日間培養した（１０４細胞／ウェル）。２日間培養後、無細胞上清液中のＩＮＦ−γ量を三回反復検定で測定し、生存細胞数も計数した。各検定での偏りを回避するために、ＰＢＭＣ全てを一度凍結保存し、４種の相異なるＰＢＭＣ（健常人より２種、直近のワクチン投与の２週前に回収した患者ＰＢＭＣより１種および直近のワクチン投与より１種）を実験日の朝に同時に解凍した。ＰＨＡ、ＥＢＶ−ペプチドおよびワクチン投与ペプチドに対する応答（ＩＮＦ−γ産生）は、各々休止Ｔ細胞、記憶Ｔ細胞および活性化Ｔ細胞により仲介されると考えられる。
【００２９】
臨床的モニタリング
患者を臨床的にモニターして併用療法の効果を評価した。具体的には、本研究に参加した患者を疾患死または不耐容まで、または同意が撤回されるまでモニターした。臨床と実験室での評価は各訪問時に行い、患者から有害事象、その重症度および頻度を聴取した。有害事象の重症度は、米国癌研究所（the National Cancer Institute： NCI）の毒性評価基準に従って評点をつけた。血清ＰＳＡおよび骨代謝マーカー（ピリジノリン架橋Ｉ型コラーゲンカルボキシ末端テロペプチド：ＩＣＴＰ）レベルを処置の間４週毎に測定した。ＩＣＴＰの血中濃度は、二抗体ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）により、テロペプチドＩＣＴＰのＲＩＡキット（フィンランド国、Espoo、Orion Diagnostica社製品；日本国、東京、中外提供）を使用して測定した。血清ＩＣＴＰの正常範囲は１．８〜５．０ｎｇ／ｍＬである［２５］。骨スキャンおよび腹部のコンピュータ断層撮影（ＣＴ）スキャンは、この研究進行中３ヶ月ごとに行った。骨スキャンによる転移の所見は、骨スキャンにおける陽性部分の百分率（％ＰＡＢＳ）［２６］を用いる疾患の範囲によって評価した。臨床的応答は、ＰＳＡレベルの変化と、測定可能な疾患を有する患者における画像研究の変化との両方によって決定した。ＰＳＡ応答は、少なくとも４週あけた２回の連続測定でのＰＳＡレベルのベースラインからの５０％またはそれ以上の低下（ＰＲ）またはＰＳＡレベルの正常化（ＣＲ）と定義した。ＰＳＡ増悪の時点は、はじめて２回連続でＰＳＡレベルがベースラインから２５％以上増大した時点として登録した。測定可能かつ評価可能な疾患の応答および増悪については標準的定義を用いた。二次元的に測定可能な疾患を有する患者については、完全応答（ＣＲ）は、少なくとも４週にわたる全標的病巣の消失と定義した；部分応答（ＰＲ）は、二次元的に測定可能な疾患の≧５０％の低下と定義し、軽度応答は２５％から５０％の間の低下と定義した。骨転移の応答については、ＣＲを骨スキャンにおける全陽性範囲の消失と定義した。％ＰＡＢＳでは、ＰＲは５０％またはそれ以上の低下であると定義し、増悪（ＰＤ）は陽性部位数の増大、既存の病巣の悪化、またはこの２つの同時観察と定義した。
【００３０】
統計学的方法
非増悪生存期間は、併用療法の開始時点から、病状が増悪した患者では増悪時点まで、増悪なしに死亡した患者では死亡時点まで、または生存し、増悪しなかった患者では最後の接触時点までの時間と定義した。原因特異的生存期間は、併用療法開始から疾患による死亡までの時間と定義した。カプラン−マイヤー（Kaplan−Meier）法を用いて非増悪生存期間および原因特異的生存期間を評価した。
【００３１】
結果
併用療法中の免疫学的応答
併用療法中、ペプチド特異的ＣＴＬ前駆体およびペプチド特異的抗体を全患者１１名について６週間隔で測定した。ワクチン投与ペプチドおよび免疫応答を下記表２にまとめた。併用療法中、免疫応答をモニターした全患者１１名は、細胞性応答または液性応答のいずれかが増強された。ペプチド特異的ＣＴＬ前駆体の増加が患者１１名中６名（症例２、５、７、８、１０および１２）に観察され、一方ペプチド特異的ＩｇＧの誘導が患者１１名中１０名（症例３、４、５、７、８、１０、１１、１２および１３）に観察された。図１は、ＩＮＦ−γ産生と、各患者に投与したペプチドに特異的なＩｇＧのレベルとの双方の経時変化を示す。
【００３２】
エストラムスチンが誘導した免疫抑制もまた、患者１１名中１０名で、ＰＨＡ、ＥＢＶペプチドおよびワクチン投与ペプチドに対するＩＮＦ−γ産生を測定することにより解析した。症例１３では、検定するには入手したＰＢＭＣが少なすぎたので、免疫モニタリングをしなかった。ＰＨＡ、ＥＢＶペプチドおよびワクチン投与したペプチドに対する応答（ＩＮＦ−γ産生）は、おのおの休止Ｔ細胞、記憶Ｔ細胞および活性化Ｔ細胞によって仲介されることが示唆されている。各症例のモニタリング結果を図２に示す。症例２および症例３は、はじめ全用量（５６０ｍｇ／日）のエストラムスチンリン酸塩と併用して処置したが、免疫学的モニタリングで重度の免疫抑制が示された。この免疫抑制は、エストラムスチンリン酸塩の投与中断によって回復した。ペプチドとエストラムスチンリン酸塩の半用量とを投与した場合には、８症例のいずれにおいても顕著な免疫抑制がなかった（図２）。
【００３３】
本研究の結果は、転移性ＨＲＰＣ患者における、ペプチドワクチン投与および低用量エストラムスチンリン酸塩（２８０ｍｇ／日）の併用の利点を示唆する。本研究は、転移性ＨＲＰＣ患者全員において、ペプチドワクチン投与および低用量のエストラムスチンリン酸塩の併用療法の間、細胞性および液性応答が十分維持されることを証明した。本研究の結果、ペプチド特異的ＣＴＬ前駆体の増加が患者１１名中６名で観察され、ペプチド特異的ＩｇＧの誘導が患者１１名中１０名で観察されることが示された。ペプチドと低用量エストラムスチンリン酸塩を投与した場合には、患者１１名のいずれにおいても顕著な免疫抑制は見られなかった。この小規模な研究から得た結果を確認するため、比較的多数の患者についての追加的研究が推奨される。
【００３４】
臨床的応答
ペプチドワクチン投与および経口エストラムスチンリン酸塩の併用に対する臨床的応答を表３にまとめた。患者１１名中１０名（９１％）で、処置後に血清ＰＳＡレベルがベースラインから低下し、その中で患者８名（７３％）では血清ＰＳＡレベルの低下は≧５０％に達した。各症例の併用療法期間中におけるＰＳＡレベルの経時変化を図３に示す。事前のエストラムスチンリン酸塩による化学療法には反応しなかった患者８名全員で、ＰＳＡの応答が認められた。測定可能な疾患を有する患者２名中１名では、ＣＴでリンパ節転移の４４％の減少が見られた（図４）。この患者は現在も≧５０％のＰＳＡ減少を保ち、生存している（症例１２）。患者１０名では骨転移があった。骨転移の改善はなかったが、骨転移のある患者１０名中１名が、≧５０％の血清ＩＣＴＰレベルの低下を示した。
【００３５】
現在患者３名が死亡したが、死因は全て前立腺癌または転移であった。全患者の追跡調査中央値は１４ヶ月、範囲は８ヶ月〜２４ヶ月であった。生存率中央値は計算していない。１２ヶ月の時点で、患者の６４％が生存していた。
【００３６】
全般的応答率（７３％）は血清ＰＳＡレベルの≧５０％の低下と定義したが、これは、既報の免疫療法（たとえばインターフェロン−αおよびインターロイキン−２の併用（３１％）［３２］または前立腺特異的膜抗原のペプチドで処理した樹状細胞の点滴（２７％）［１１、１２］）の第Ｉ／ＩＩ相試験の報告に見られるものよりも明らかに高い。さらに、この値は併用療法に関する化学療法臨床試験（たとえば、エストラムスチンおよびパクリタキセル（５３％）［６］、エストラムスチンおよびドセタキセル（６２％）［７］、およびエストラムスチン、パクリタキセルおよびカルボプラチンの三剤併用（６７％）［８］）について最近報告された応答率にも匹敵する。測定可能な疾患については、全般的応答率はこれら化学療法治療計画で報告された値よりもいくらか低いと思われるが、それは本研究の患者はほとんど測定可能な軟部組織疾患を持たなかったことによる。大部分の患者は、骨代謝マーカー（ＩＣＴＰ）（骨転移のある前立腺癌患者で骨転移をモニターするための方法として提案されている［３３］）が減少したが、骨スキャンでは骨転移の改善は見られなかった。この矛盾点の説明は、骨スキャンが低感度な手段である点、または治療に対してより抵抗性である可能性のある骨中の疾患に影響を与えるには処置期間が短すぎた点にあるかもしれない。
【００３７】
毒性
全患者１３名を毒性評価の対象とした。処置した患者１３名で報告された毒性を表４にまとめた。この併用療法は安全かつ良好に耐容され、殆どの症例で重大な副作用はなかったが、グレード３の不整脈と脳梗塞が各症例で観察された。患者１名（症例４）はグレード３の不整脈を起したが、その不整脈はエストラムスチンの中断によって消失した。１４ヶ月の併用療法後にグレード３の脳梗塞で入院した患者（症例７）では抗凝固剤での処置に成功し、他に重大な毒性なしに併用療法を継続中である。最も一般的な毒性は、全症例においてワクチン投与の注射局部における皮膚反応であった。全１３の皮膚反応は米国癌研究所の通常毒性評価基準によりグレード１または２であると評点された。患者７名は骨痛を訴え、患者４名はグレード２の血尿を発症し、患者３名は疲労を訴えた。血液、肝臓または腎臓の毒性はなかった。
【００３８】
ここに報告する本併用療法の毒性は弱く、この処置法は転移性ＨＲＰＣに罹患した老年男性（年令中央値７１才）の処置によいと考えられる。最も一般的な毒性はワクチン注射局部における皮膚反応であった。重要なことは、エストラムスチンに基づく、またはタキサンに基づく化学療法において用量を制限する毒性であると報告されている血液学的毒性も神経障害も［４〜８］なかったことである。エストラムスチン処置の一般的毒性には、悪心、嘔吐、末梢浮腫および脈管系イベントが含まれる［１６］。本併用療法は安全であり、良好に耐容されることが見出された。
【００３９】
患者指向性のワクチン投与と低用量エストラムスチンリン酸塩との併用では、検討した患者の７３％で血清ＰＳＡレベルに≧５０％の低下が見られ、また主に事前に集中治療を受けた転移性ＨＲＰＣのある高齢の患者においても低毒性であった。これらの予備的知見に基づき、この併用についてより大規模な第ＩＩ相臨床試験が認可された。
【００４０】
（実施例２）
患者および方法
下記の諸点を除き、実施例１と実質的に同様な手法を採用した。
【００４１】
患者
２００２年３月〜２００３年１月の間に、ＨＬＡ−Ａ２４陽性転移性ＨＲＰＣ患者１６名で第Ｉ／ＩＩ相試験を行った。患者１３名において、少なくとも第３回目のペプチドワクチン投与後に病状が増悪した場合に、それに続いてペプチドワクチン投与および低用量エストラムスチンリン酸塩の併用療法を行った。残る患者３名は、病状が急速に増悪して死に至ったのでワクチン療法のみであった。表５に本研究のＨＲＰＣ患者１６名の臨床的特性をまとめた。
【００４２】
患者指向性ペプチドワクチン投与法
この研究には、上皮癌関連抗原および前立腺関連抗原に由来する下記のペプチド１６種を使用した：すなわち、ＳＡＲＴ１６９０−６９８（ＥＹＲＧＦＴＱＤＦ）、ＳＡＲＴ２９３−１０１（ＤＹＳＡＲＷＮＥＩ）、ＳＡＲＴ２１６１−１６９（ＡＹＤＦＬＹＮＹＬ）、ＳＡＲＴ２８９９−９０７（ＳＹＴＲＬＦＬＩＬ）、ＳＡＲＴ３１０９−１１８（ＶＹＤＹＮＣＨＶＤＬ）、ＳＡＲＴ３３１５−３２３（ＡＹＩＤＦＥＭＫＩ）、Ｌｃｋ２０８−２１６（ＨＹＴＮＡＳＤＧＬ）、Ｌｃｋ４８６−４８７（ＴＦＤＹＬＲＳＶＬ）、Ｌｃｋ４８８−４９７（ＤＹＬＲＳＶＬＥＤＦ）、ＡＲＴ１１７０−１７９（ＥＹＣＬＫＦＴＫＬ）、前立腺酸性ホスフェート（ＰＡＰ）２１３−２２１（ＬＹＣＥＳＶＨＮＦ）、ＰＳＡ１５２−１６０（ＣＹＡＳＧＷＧＳＩ）、ＰＳＡ２４８−２５７（ＨＹＲＫＷＩＫＤＴＩ）、前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ）６２４−６３２（ＴＹＳＶＳＦＤＳＬ）、多剤耐性関連タンパク質３（ＭＲＰ３）５０３−５１１（ＬＹＡＷＥＰＳＦＬ）、およびＭＲＰ３１２９３−１３０２（ＲＹＬＴＱＥＴＮＫＶ）。これらのペプチドは全て癌患者でＰＢＭＣにＨＬＡ−Ａ２４拘束性および腫瘍特異的ＣＴＬ活性を誘導する能力を有する（１５、１９、２０、３４〜４１）。全患者に、ワクチン投与前測定によってペプチド候補１６種の中から選択したペプチドを４種までワクチン投与した。
【００４３】
併用療法
エストラムスチンリン酸塩は１４０ｍｇカプセルを１カプセルずつ１日２回、合計２８０ｍｇを経口投与して、併用療法における重度の免疫抑制を回避した。
【００４４】
臨床的モニタリング
この処置の間、日本語版「癌療法の機能的評価」（ＦＡＣＴ−Ｐ）サブスケール、ＦＡＣＴ−Ｐ（前立腺癌用）（４２）を用いて、患者のＱＯＬをワクチン投与前および第３回目、第６回目および第１２回目のワクチン投与の時点で評価した。このＦＡＣＴ−Ｐ質問表は身体的健康（７項目）、社会的／家族的健康（８項目）、情動的健康（６項目）、機能的健康（７項目）および前立腺癌スケール（１２項目）を含む５因子から構成される。ＱＯＬの結果は各スケールの百分率によって別個に評価した。
【００４５】
結果
併用療法中の免疫学的応答
ペプチドワクチン投与の前にペプチド特異的ＣＴＬ前駆体を調べたところ、患者１６例中１４例で検出可能であり、患者当りの陽性数中央値は１．５ペプチド（範囲０〜４ペプチド）であった（表６）。更に、抗ペプチドＩｇＧも患者１６例中１４例で検出可能であり、患者当りの陽性数中央値は３ペプチド（０〜４ペプチド）であった。最大４ペプチドを選択して各患者に注射し、その選択の結果を表６に示す。最大の頻度で選択したペプチドはＰＳＡ２４８−２５７（１３／１６）であり、続いてＰＡＰ２１３−２２１（１１／１６）、ＳＡＲＴ３１０９−１１８（１１／１６）、ＳＡＲＴ３３１５−３２３（６／１６）、ＰＳＡ１５２−１６０（５／１６）、Ｌｃｋ４８８−４９７（５／１６）、ＳＡＲＴ１６９０−６９８（３／１６）、ＳＡＲＴ２９３−１０１（３／１６）、およびＬｃｋ２０８−２１６（３／１６）を選択した。ＰＳＭＡ６２４−６２８およびＳＡＲＴ２１６１−１６９は各患者で選択したが、ＳＡＲＴ２、Ｌｃｋ、ＡＲＴ１およびＭＲＰ３に由来する残りのペプチド５種は、これらの患者では選択しなかった。ペプチド特異的ＣＴＬ前駆体またはペプチド特異的ＩｇＧの増加は、１２週目（ペプチドワクチン投与単独）に患者１４名中１０名または患者１４名中患者７名で観察され、２４週目（併用療法中）には患者８名中６名または患者１２名中１０名で観察された。ＰＢＭＣ中のペプチド特異的ＣＴＬ前駆体に関する代表的結果を図５に示す。図６は各患者に投与したペプチドに特異的なＩｇＧレベルの段階的変化を示す。ＤＴＨ応答は患者１６名中４名で観察され、その概要を表６に示す。
【００４６】
ペプチドと半量（２８０ｍｇ／日）のエストラムスチンとを投与した場合には、ほとんどの症例で顕著な免疫抑制は認められなかった。
【００４７】
臨床的応答
患者１６名中患者２名は併用療法の前に腫瘍が急速に増悪し、残りの患者１名はワクチン投与単独で血清ＰＳＡレベルが≧５０％低下した後に併用療法についての同意を撤回した。残りの患者１３名がワクチン投与および低用量エストラムスチンリン酸塩の併用療法を受け、臨床的応答を評価した。全患者１３名において、併用療法終了後に血清ＰＳＡレベルがベースラインから低下し、患者１３名中６名（４６％）は、≧５０％の血清ＰＳＡレベルの低下を中央値７．５ヶ月（範囲３〜１３ヶ月）の期間示した。しかし、これらの患者１３名は治療に対して他覚的応答を示さなかった。
【００４８】
疾患の増悪した患者は余命が短く、すぐに治癒する望みがないので、身体的病状の軽減および機能の維持が医学的処置の第一目的となる［４３］。この研究では、処置期間内の患者１６名のＱＯＬの結果を、ワクチン投与前（患者１６名）および第３回目ワクチン投与（患者１６名）、第６回目ワクチン投与（患者１３名）および第１２回目ワクチン投与（患者７名）の時点で、ＦＡＣＴ−ｐの日本語版質問表を用いて評価した。図７は観測点における各因子についてのスケール百分率の平均値を示す。処置期間中、全因子についてＱＯＬの結果は低下しなかった。
【００４９】
毒性
患者１６名全員を一般的毒性について評価し、全体の毒性を表７に示す。ここに報告する併用療法の毒性は耐容可能であり、この処置は大部分の転移性ＨＲＰＣを処置するために使用可能と考えられる。
【００５０】
（実施例３）
実施例１に示したように、全用量（５６０ｍｇ／日）のエストラムスチンリン酸塩では重度の免疫抑制が観察された。エストラムスチンリン酸塩の用量からみた本発明による併用療法の結果を、表８にまとめた。エストラムスチンリン酸塩２８０ｍｇ／日（最大非免疫抑制用量）を使用する併用療法においては、ペプチドワクチン投与単独療法では病状の増悪を示したＨＲＰＣの患者に、免疫学的応答の増加および臨床的応答の改善が観察された。これらの結果は、低用量エストラムスチンとペプチドワクチン投与との併用が示す有利な効果を裏付ける。
【００５１】
（実施例４）
表９もまた、本併用療法がこれまでの治療法と比較して優れた効果を有することを証明する。全症例が事前のエストラムスチンリン酸塩療法には応答せず、その病状はワクチン投与単独後に増悪した（ＰＤ）。併用療法により、殆どの症例で臨床的応答がＰＲ（部分応答）またはＳＤ（病状安定）まで改善され、ＨＲＰＣ患者の生存は著しく延長された（生存期間中央値：２５ヶ月）。
【００５２】
［考察］
様々なステージの前立腺癌における腫瘍抗原の発現を明確にすることは、特異的免疫療法の標的を選択するためにきわめて重大な第一段階である［２８〜３０］。ＨＲＰＣ患者に対する免疫療法における本方法は、癌患者の循環血中にあるペプチド特異的ＣＴＬ前駆体のワクチン投与前測定に続いて、ワクチン候補のうちワクチン投与前測定で反応したペプチドを４種まで投与するという新戦略を採用した（患者指向性ワクチン投与）。以前に行った第Ｉ相試験の結果は、患者指向性ワクチン投与が、実現可能、安全、かつ免疫学的に有効であるが、臨床的応答は一般に限定的であることを示した［１５］。近年、細胞の悪性転化がＨＬＡクラスＩの発現の変化および／または機能の変化に関連していること、およびこの異常性が免疫認識から逃れる手段を腫瘍細胞に提供することがあることが知られている。良性組織の正常ＨＬＡクラスＩの発現とは対照的に、原発性前立腺癌細胞の３４％およびリンパ節転移した前立腺癌細胞の８０％ではＨＬＡクラスＩ発現の完全な喪失が報告された［３１］。それ故、前立腺癌におけるＨＬＡクラスＩ抗原の発現低下は、悪性腫瘍細胞にＴ細胞による認識から逃れる機序を提供することにより、Ｔ細胞に基づく免疫療法の結果にマイナスの影響を与える可能性がある。Ｔ細胞に基づく免疫療法と免疫抑制が最低の細胞毒性物質との併用によって、相加的抗腫瘍効果が達成され得ることが示唆される。本研究では、エストラムスチンリン酸塩またはペプチドワクチン投与の前に病状の増悪を経験した患者にもＰＳＡ応答が観察され、この事実は本併用療法が相加的抗腫瘍効果によって機能するという仮説を支持している。しかし、この相互作用の正確な機序はまだ不明である。この機序についてはさらなる研究が必要である。
【００５３】
［文献］
1.  Tannock IF, Osoba D, Stockler MR, Ernst DS, Neville AJ, Moore MJ, Armitage GR, Wilson JJ, Venner PM, Coppin CM, Murphy KC.  Chemotherapy with mitxantrone plus prednisone or prednisone alone for symptomatic hormone-resistant prostate cancer: A Canadian randomized trial with palliative end points.  J Clin Oncol 1996; 14: 1756-1764.
2.  Kantoff PW, Halabi S, Conaway M, Picus J, Kirshner J, Hars V, Trump D, Winer EP, Vogelzang NJ.  Hydrocortisone with or without mitoxantrone in men with hormone-refractory prostate cancer: Results of the cancer and leukemia group B 9182 study.  J Clin Oncol 1999; 17: 2506-2513.
3.  Hudes G, Einhorn L, Ross E, Balsham A, Loehrer P, Ramsey H, Sprandio J, Entmacher M, Dugan W, Ansari R, Monaco F, Hanna M, Roth B. Vinblastine versus vinblastine plus oral estramustine phosphate for patients with hormone-refractory prostate cancer: a Hoosier Oncology Group and Fox Chase Network phase III trial.  J Clin Oncol 1999; 17: 3160-3166.
4.  Smith DC, Esper P, Strawderman M, Redman B, Pienta KJ.  Phase II trial of oral estramustine, oral etoposide, and intravenous paclitaxel in hormone-refractory prostate cancer.  J Clin Oncol 1999; 17: 1664-1671.
5.  Beer TM, Pierce WC, Lowe BA, Henner WD.  Phase II study of weekly docetaxel in symptomatic androgen-independent prostate cancer.  Ann Oncol 2001; 12: 1273-1279.
6.  Hudes GR, Nathan F, Khater C, Haas N, Cornfield M, Giantonio B, Greenberg R, Gomella L, Litwin S, Ross E, Roethke S, McAleer C.  Phase II trial of 96-hour paclitaxel plus oral estramustine phosphate in metastatic hormone-refractory prostate cancer.  J Clin Oncol 1997; 15: 3156-3163.
7.  Ellerhorst JA, Tu SM, Amato RJ, Finn L, Millikan RE, Pagliaro LC, Jackson A, Logothetis CJ. et al: Phase II trial of alternating weekly chemohormonal therapy for patients with androgen-independent prostate cancer.  Clin Cancer Res 1997; 3: 2371-2376.
8.  Kelly WK, Curley T, Slovin S, Heller G, McCaffrey J, Bajorin D, Ciolino A, Regan K, Schwartz M, Kantoff P, George D, Oh W, Smith M, Kaufman D, Small EJ, Schwartz L, Larson S, Tong W, Scher H.  Paclitaxel, estramustine phosphate, and carboplatin in patients with advanced prostate cancer.  J Clin Oncol 2001; 19: 44-53.
9.  van der Bruggen P, Traversari C, Chomez P, Lurquin C, De Plaen E, Van den Eynde B, Knuth A, Boon T.  A gene encoding an antigen recognized by cytolytic T lymphocytes on a human melanoma.  Science 1991; 254: 16431647.
10.  Kawakami Y, Eliyahu S, Sakaguchi K, Robbins PF, Rivoltini L, Yannelli JR, Appella E, Rosenberg SA.  Identification of the immunodominant peptides of the MART-1 human melanoma antigen recognized by the majority of HLA-A2-restricted tumor infiltrating lymphocytes.  J Exp Med 1994; 180: 347-352. 
11.  Tjoa BA, Simmons SJ, Bowes VA, Ragde H, Rogers M, Elgamal A, Kenny GM, Cobb OE, Ireton RC, Troychak MJ, Salgaller ML, Boynton AL, Murphy GP.  Evaluation of phase I/II clinical trials in prostate cancer with dendritic cells and PSMA peptides.  Prostate 1998; 36: 39-44.
12.  Salgaller ML, Lodge PA, McLean JG, Tjoa BA, Loftus DJ, Ragde H, Kenny GM, Rogers M, Boynton AL, Murphy GP.  Report of immune monitoring of prostate cancer patients undergoing T-cell therapy using dendritic cells pulsed with HLA-A2-specific peptides from prostate-specific membrane antigen (PSMA). Prostate 1998; 35: 144-151.
13.  Mine T, Gouhara R, Hida N, Imai N, Azuma K, Rikimaru T, Katagiri K, Nishikori Misa, Sukehiro A, Nakagawa M, Yamada A, Aizawa H, Shirozu K, Itoh K, and Yamana H.  Immunological evaluation of CTL precursor-oriented vaccine for advanced lung cancer patients.  Cancer Sci 2003; 94: 548-556.
14.  Tanaka S, Harada M, Mine T, Noguchi M, Gohara R, Azuma K, Yamada A, Morinaga A, Nishikori M, Katagiri K, , Itoh K, Yamana H and Hashimoto T.: Peptide vaccination for patients with melanoma and other types of cancers based on pre-existing peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors in periphery.  J Immunother (in press)
15.  Noguchi M, Kobayashi K, Suetugu N, Tomiyasu K, Suekane S, Yamada A, Itoh K, Noda S.  Induction of cellular and humoral immune responses to tumor cells and peptides in HLA-A24 positive hormone-refractory prostate cancer patients by peptide vaccination.  Prostate (in press)
16.  Perry CA and McTavish D.  Estramustine phosphate sodium. A review of its pharmacodynamic and pharmacokinetic properties, and therapeutic efficacy in prostate cancer.  Drugs and Aging 1995; 7: 49-74.
17.  Shichijo S, Nakao M, Imai Y, Takasu H, Kawamoto M, Niiya F, Yang D, Toh Y, Yamana H, Itoh K.  A gene encoding antigenic peptides of human squamous cell carcinoma recognized by cytotoxic T lymphocytes.  J Exp Med 1998; 187: 277-288.
18.  Nakao M, Shichijo S, Imaizumi T, Inoue Y, Matsunaga K, Yamada A, Kikuchi M, Tsuda N, Ohta K, Takamori S, Yamana H, Fujita H, Itoh K.  Identification of gene coding for a new squamous cell carcinoma antigen recognized by the CTLs.  J Immunol 2000; 164: 2565-2574.
19.  Yang D, Nakao M, Shichijo S, Sasatomi T, Takasu H, Matsumoto H, Mori K, Hayashi A, Yamana H, Shirouzu K, Itoh K.  Identification of a gene coding for a protein possessing shared tumor epitopes capable of inducing HLA-A24-restructed cytotoxic T lymphocytes in cancer patients.  Cancer Res 1999; 59: 4056-4063.
20.  Gomi S, Nakao M, Niiya F, Imamura Y, Kawano K, Nishizaka S, Hayashi A, Sobao Y, Oizumi K, Itoh K.  A cyclophilin B gene encodes antigenic epitopes recognized by HLA-A24-restricted and tumor-specific cytotoxic T lymphocytes.  J Immunol 1999; 163: 4994-5004.
21.  Maeda Y, Ito M, Harashima N, Nakatsura T, Hida N, Imai N, Sato Y, Shichijo S, Todo S, Itoh K.  Cleavage and polyadenylation specificity factor (CPSF)-derived peptides can induce HLA-A2-restricted and tumor-specific CTLs in the majority of gastrointestinal cancer patients.  Int J Cancer 2002; 99: 409-417.
22.  Suzuki N, Maeda Y, Tanaka S, Hida N, Mine T, Yamamoto K, Oka M, Itoh K.  Detection of peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors used for specific immunotherapy of pancreatic cancer.  Int J Cancer 2002; 98: 45-50.
23.  Miyagi Y, Imai N, Sasatomi T, Yamada A, Mine T, Katagiri K, Nakagawa M, Muto A, Okouchi S, Isomoto H, Shirouzu K, Yamana H, Itoh K.  Induction of cellular immune response to tumor cells and peptides in colorectal cancer patients by vaccination with SART3 peptides.  Clin Cancer Res 2001; 7: 3950-3962. 
24.  Hida N, Maeda Y, Katagiri K, Takasu H, Harada M, Itoh K.  A simple culture protocol to detect peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors in circulation.  Cancer Immunol Immunotherapy 2002; 51: 219-228.
25.  Noguchi M and Noda S: Pyridinoline cross-linked carboxyterminal telopeptide of type I collagen as a useful marker for monitoring metastatic bone activity in men with prostate cancer.  J Urol 2001; 166: 1106-1110.
26.  Noguchi M, Kikuchi H, Ishibashi M, Noda S.  Percentage of the positive area of bone metastasis is an independent predictor of thedisease death in advanced prostate cancer.  Br J Cancer 2003; 88: 195-201.
27.  Mitcell MS.  Chemotherapy in combination with biomodulation: a 5 year experience with cyclophosphamide and IL-2.  Semin Oncol 1992; 19 (suppl 2): 80-87.
28.  Zhang S, Cordon-Cardo C, Zhang HS, Reuter VE, Adluri S, Hamilton WB, Lloyd KO, and Livingston PO.  Selection of tumor antigens as targets for immune attack using immunohistochemistry.  I. Focus on gangliosides.  Int J Cancer 1997; 73: 42-49.
29.  Zhang S, Zhang HS, Cordon-Cardo C, Reuter VE, Singhal AK, Lloyd KO, and Livingston PO.  Selection of tumor antigens as targets for immune attack using immunohistochemistry.  II. Blood group-related antigens.  Int J Cancer 1997; 73: 50-56.
30.  Zhang S, Zhang HS, Reuter VE, Slovin SF, Scher HI, Livingston PO.  Expression of potential target antigens for immunotherapy on primary and metastatic prostate cancers.  Clin Cancer Res 1998; 4: 295-302.
31.  Blades RA, Keating PJ, McWilliam LJ, George NJ, Stern PL.  Loss of HLA class I expression in prostate cancer: implications for immunotherapy.  Urology 1995; 46: 681-687.
32.  Maffezzini M, Simonato A, Fortis C.  Salvage immunotherapy with subcutaneous recombination interleukin 2 (rIL-2) and alpha-interferon (A-INF) for stage D3 prostate carcinoma failing second-line hormonal treatment.  Prostate 1996; 28: 282-286.
33.  Noguchi M, Yahara J, and Noda S: Serum levels of bone turnover markers parallel the results of bone scintigraphy in monitoring bone activity of prostate cancer.  Urology 2003; 61: 993-998.
34.  Noguchi M, Itoh K, Suekane S, Yao A, Suetsugu N, Katagiri K, Yamada A, Yamana H, and Noda S.  Phase I trial of patient-oriented vaccination in HLA-A2 positive patients with metastatic hormone refractory prostate cancer.  Cancer Sci 2004;95:77-84. 
35.  Noguchi M, Itoh K, Suekane S, Morinaga A, Sukehiro A, Suetsugu N, Katagiri K, Yamada A, and Noda S.  Immunological Monitoring during Combination of Patient-Oriented Peptide Vaccination and Estramustine Phosphate in Patients with Metastatic Hormone Refractory Prostate Cancer.  Prostate 2004;60:32-45.
36.  Inoue Y, Takaue Y, Takei M, Kato K, Kanai S, Harada Y, Tobisu K, Noguchi M, Kakizoe T, Itoh K, and Wakasugi H.  Induction of tumor specific cytotoxic T lymphocytes in prostate cancer using prostatic acid phosphatase derived HLA-A2402 binding peptide.  J Urol 2001;166:1508 -1513.
37.  Harada M, Kobayashi K, Matsueda S, Nakagawa M, Noguchi M, and Itoh K. Prostate-specific antigen-derived epitopes capable of inducing cellular and humoral responses in HLA-A24+ prostate cancer patients.  Prostate 2003;57:152-159.
38.  Kobayashi K, Noguchi M, Itoh K, and Harada M.  Identification of a prostate-specific membrane antigen-derived peptide capable of eliciting both cellular and humoral immune responses in HLA-A24+ prostate cancer patients.  Cancer Sci 2003;94:622-627.
39.  Harada M, Noguchi M, Itoh K.  Target molecules in specific immunotherapy against prostate cancer.  Int J Clin Oncol 2003;8:193-199.
40.  Harashima N, Tanaka K, Sasatomi T, Shimizu K, Miyagi Y, Yamada A, Tamura M, Yamana H, Itoh K, and Shichijo S.  Recognition of the Lck tyrosine kinase as a tumor antigen by cytotoxic T lymphocytes of cancer patients with distant metastases.  Eur J Immunol 2000;31:323-332.
41.  Kawano K, Gomi S, Tanaka K, Tsuda N, Kamura T, Itoh K, and Yamada A.  Identification of a new endoplasmic reticulum-resident proteine recognized by HLA-A-24 restricted tumor infiltrating lymphocytes of lung cancer.  Cancer Res 2000;60:3550-3558.
42.  Esper PMoF, Chodak G., Sinner M, Cella D, and Pienta KJ.  Measuring quality of life in men with prostate cancer using the functional assessment of cancer therapy-prostate instrument.  Urology 1997;50:920-928.
43.  Coons SJ, Kaplan RM.  Assessing health-related quality-of-life: application to drug therapy.  Clin Ther 1992;14:850-858.
【００５４】
【表１】
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【表２−１】
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【表２−２】
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【表２−３】
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【表２−４】
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【表３】
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【表４】
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【表５】
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【表６−１】
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【表６−２】
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【表６−３】
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【表６−４】
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【表７】
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【表８】
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【表９】
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【図面の簡単な説明】
【００５５】
【図１】図１Ａから図１Ｊは、各症例で投与したペプチドに特異的なＩＮＦ−γ産生およびＩｇＧレベルの経時変化を示すグラフである。症例２、５、７、８、１０および１２ではペプチド特異的ＣＴＬ前駆体の増加が観察され、症例３、４、５、７、８、１０、１１、１２および１３ではペプチド特異的ＩｇＧの誘導が観察された。
【図２】図２Ａから図２Ｊは、処置が誘導した免疫抑制のモニタリング結果を示すグラフである。症例２および症例３は重度の免疫抑制を示し、その免疫抑制はエストラムスチンリン酸塩全用量投与（５６０ｍｇ／日）を中止することによって回復した。ペプチドおよび低用量のエストラムスチンリン酸塩（２８０ｍｇ／日）を投与した８症例では免疫抑制はなかった。
【図３】図３Ａから図３Ｋは、患者１１名における本研究中のＰＳＡレベルの経時変化を示すグラフである。患者１１名中１０名（９４％）の患者は、併用療法の間に血清ＰＳＡレベルがベースラインから低下した。
【図４】図４は、症例１２のＣＴ画像を示す。Ａ：併用療法の開始時点でＣＴスキャンに大動脈周囲リンパ節転移（矢印）が認められた。Ｂ：併用療法８ヵ月後の再度のＣＴスキャンでは、リンパ節転移のサイズが４４％減少した（矢印）。
【図５】図５Ａから図５Ｇは、ワクチン投与前およびワクチン投与後のＰＢＭＣにおけるペプチド特異的ＣＴＬ前駆体の代表的結果を示すグラフである。ペプチド特異的ＣＴＬ前駆体の増加が、ペプチドワクチン投与単独および併用療法で観察された。  高度の応答（Ａｒ）：ｐ≦０．０１および５００≦純産生量（対応ペプチドに応答したＩＮＦ−γレベル−ＨＩＶペプチドに応答したＩＮＦ−γレベル）；  Ａ：中程度の応答（Ａ）：ｐ≦０．０５および５０≦純産生量；  Ｂ：ｐ≦０．０５および２５≦純産生量＜５０；  Ｃ：０．０５＜ｐ≦０．１および５０≦純産生量。
【図６】図６Ａから図６Ｊは、投与ペプチド特異的ＩｇＧレベルの段階的変化を示すグラフである。垂直の線はＯＤを示し、水平の線は血清の希釈を示す。ペプチド特異的ＩｇＧの増加が、ペプチドワクチン投与単独および併用療法で観察された。Ｓｃ：皮下注射。
【図７】図７Ａから図７Ｅは、ワクチン投与の間の％ＱＯＬスケール評価を示すグラフである。ｎ．ｓ．：非有意。全因子についてＱＯＬは処置の間に悪化しなかった。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図１Ｄ】
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【図１Ｅ】
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【図１Ｆ】
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【図１Ｇ】
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【図１Ｈ】
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【図１Ｉ】
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【図１Ｊ】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図２Ｄ】
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【図２Ｅ】
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【図２Ｆ】
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【図２Ｇ】
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【図２Ｈ】
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【図２Ｉ】
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【図２Ｊ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図３Ｃ】
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【図３Ｄ】
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【図３Ｅ】
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【図３Ｆ】
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【図３Ｇ】
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【図３Ｈ】
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【図３Ｉ】
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【図３Ｊ】
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【図３Ｋ】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図５Ｃ】
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【図５Ｄ】
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【図５Ｅ】
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【図５Ｆ】
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【図５Ｇ】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図６Ｄ】
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【図６Ｅ】
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【図６Ｆ】
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【図６Ｇ】
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【図６Ｈ】
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【図６Ｉ】
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【図６Ｊ】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図７Ｃ】
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【図７Ｄ】
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【図７Ｅ】
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【外国語明細書】
TITLE OF THE INVENTION
COMBINATION THERAPY OF PEPTIDE VACCINATION AND ESTRAMUSTINE TREATMENT
TECHNICAL FIELD
The present invention relates to immunotherapy for cancers, and specifically it relates to treatment for hormone-refractory prostate cancers.  
BACKGROUND ART
The optimal treatment strategy for patients with metastatic hormone-refractory prostate cancer (HRPC) continues to represent a challenge for oncologists.  The median survival duration of patients with metastatic HRPC is about 12 months [13].  Although chemotherapy with mitoxantrone offers a palliative benefit [1, 2], no treatment has been shown to prolong survival.  Recently, phase II trials of estramustine-based or taxane-based regimes reported a ≧ 50% decrease in levels of serum prostate-specific antigen (PSA) in 45% to 67% of patients [48].  However, these combinations were associated with a significant degree of nausea, diarrhea, leukopenia, and cumulative fluid retention and an increased risk for thrombotic events, precluding its use in patients with a poor performance status.  In addition, none of these regimes is associated with prolonged survival and the number of patients in these studies was limited.  
Many tumor antigens recognized by human leukocyte-associated antigens (HLA) class I-restricted cytotoxic T lymphocytes (CTLs) have been identified in the past decade [9, 10], and new approaches for HRPC with tumor vaccines have been investigated.  Phase I/II clinical trials with dendritic cell-based immunotherapy have been conducted, and also a vaccine comprising a recombinant prostate-specific membrane antigen (PSMA) and an adjuvant has been tested in prostate cancer patients [11, 12].  Our approach in the immunotherapy for HRPC patients is a pre-vaccination measurement of peptide-specific CTL precursors in the circulation of cancer patients reactive to 30 kinds of vaccine candidates with the ability to induce CTLs, followed by administration of only reactive peptides (patient-oriented peptide vaccination) as reported previously [13, 14].  We recently completed our phase I clinical trial for HRPC to assess the safe administration of these peptides [15].  The adverse events of this immunotherapy were less severe than those of conventional therapies although the clinical responses of this trial have been limited.  It is suggested that additive anti-tumor effects could be achieved by combination of peptide vaccination and cytotxic agents when the cytotoxic agents had minimum suppression of immune system.  
Estramustine phosphate is a stable conjugate of estradiol and nitrogen mustard that possesses anti-mitotic properties and causes distruption of microtubule organization [16].  Estramustine phosphate has been subjected to many Phase II and III clinical trials in the last 25 years as a second-line treatment of HRPC in addition to primary treatment.  The advantage of estramustine phosphate over other cytotoxic drugs is its ease of administration (oral) and relatively good tolerability at the effective dose.  
Combination of immunotherapy and cytotoxic drugs is not a new concept [27], but there have been major concerns about a negative interaction which might take place due to the myelosuppressive properties of many cytotoxic drugs.  Cytotoxic drugs also preferentially kill cells in division, a hallmark of an activated immune system, and therefore could inhibit immune responses.  However, myelosuppression has rarely been reported as a toxicity of estramustine phosphate in patients treated for HRPC [16].  In a phase III study of estramustine phosphate combined with vinblastine versus vinblastine alone, the rate of neutropenia was lower in the combination arm versus the monotherapy arm (grades 2, 3, 4: 7%, 1% and 1% versus 27%, 18% and 9%, respectively)[3].  
DISCLOSURE OF THE INVENTION
The aim of the present invention is to evaluate the clinical and immunological responses of a combination of patient-oriented peptide vaccination and oral estramustine phosphate in patients with HRPC by analyzing serially measured serum PSA, bone turnover marker together with clinical bone scan recordings, peptide-specific CTL precursors by IFN-γ -release assay, and peptide-reactive IgG by an enzyme-linked immunosorbent assay.  
Thus, the present invention relates to:
(1) A method for treating a prostate cancer, which comprises administering a therapeutically effective amount of a cancer antigen peptide-associated agent and a lower dose of an estramustine or a salt thereof to a patient in need thereof; 
(2) The method of (1), wherein the lower dose of an estramustine or a salt thereof is 140 to 560 mg/day; 
(3) The method of (1) or (2), wherein the cancer antigen peptide-associated agent is patient-oriented;  
(4) The method of (3), wherein the cancer antigen peptide-associated agent is selected from a group consisting of a cancer antigen protein, a cancer antigen peptide thereof, a gene thereof, and a derivative of their substances;  
(5) The method of any one of (1) to (4), wherein the cancer is a hormone-refractory prostate cancer;  
(6) A pharmaceutical composition for treating a prostate cancer which comprises a lower dose of an estramustine or a salt thereof, said composition being administered together with a cancer antigen peptide-associated agent;  
(7) The pharmaceutical composition of (6), wherein the lower dose of an estramustine or a salt thereof is 140 to 560 mg/day;  
(8) The pharmaceutical composition of (6) or (7), wherein the cancer antigen peptide-associated agent is patient-oriented;  
(9) The pharmaceutical composition of (8), wherein the cancer antigen peptide-associated agent is selected from a group consisting of a cancer antigen protein, a cancer antigen peptide thereof, a gene thereof, and a derivative of their substances; 
(10) The pharmaceutical composition of any one of (6) to (9), wherein the cancer is a hormone-refractory prostate cancer; and
(11) Use of an estramustine or a salt thereof for preparation of a medicament for treating a prostate cancer, wherein the estramustine or a salt thereof is in a lower dose, and wherein the medicament is administered together with a cancer antigen peptide-associated agent.  
BRIEF DESCRIPTION OF DRAWINGS
Figure 1A to 1J depict the graphs showing the serial changes of IFN-γ productions and IgG levels specific for the peptides administered in each case.  Augmentation of peptide-specific CTL precursors was observed in cases 2, 5, 7, 8, 10 and 12, while induction of peptide-specific IgG was observed in cases 3, 4, 5, 7, 8, 10, 11, 12 and 13.  
Figure 2A to 2J depict the graphs showing the monitoring of the treatment-induced immune suppression.  Cases 2 and 3 revealed severe immune suppression and their immune suppressions were recovered by discontinuing administration of full dose (560 mg/day) estramustine phosphate.  There was no immune suppression in any of 8 cases when the peptide and low dose (280 mg/day) estramustine phosphate was administered.  
Figure 3A to 3K depict the graphs showing the serial changes of PSA levels in 11 patients during the study.  Ten of 11 (94%) patients showed serum PSA level decrease from baseline during the combination therapy.  
Figure 4 shows the CT images of case 12.  A: Para-aortic lymph node metastasis (arrow) was detected by a CT scan at the beginning of combination therapy.  B: A repeat CT scan after 8 months with the combination therapy showed a 44% decrease in the size of lymph node metastasis (arrow).  
Figure 5A to 5G depict the graphs showing the representative results of peptide-specific CTL precursors in PBMCs of pre- and post-vaccinations.  Augmentation of peptide-specific CTL precursors was observed with the peptide vaccination alone, and with the combination therapy.  Armed response (Ar): p ≦ 0.01 and 500 ≦ net value (the amount of IFN-γ in response to the corresponding peptide minus that in response to HIV peptide); A level of response (A): p ≦ 0.05 and 50 ≦ net; B: p ≦ 0.05 and 25 ≦ net ＜ 50; C: 0.05 ＜ p ≦ 0.1 and 50 ≦ net.  
Figure 6A to 6J depict the graphs showing the serial changes of IgG levels specific to the peptides administrated.  Vertical lines indicate OD and horizontal lines indicate dilution of sera.  Augmentation of peptide-specific IgG was observed with the peptide vaccination alone, and with the combination therapy.  Sc: Subcutaneous injection.  
Figure 7A to 7E depict the graphs showing the evaluation of % QOL scales during vaccination.  n.s.; not significant.  QOL outcome for all factors were not deteriorated during the treatment. 
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
In accordance with the invention, we conducted combined peptide vaccination and estramustine phosphate treatment on patients positive for human leukocyte antigen (HLA)-A24 or A2 with metastatic hormone refractory prostate cancer (HRPC) who had failed to respond to the prior-peptide vaccination, and found that the combination therapy successfully augmented peptide-specific CTL precursors or peptide-specific IgG, and decreased serum PSA level in the patients.  
In the first embodiment, the invention provides a method for treating a prostate cancer, which comprises administering a therapeutically effective amount of a cancer antigen peptide-associated agent and a lower dose of an estramustine or a salt thereof to a patient in need thereof.  
Prostate cancers to be treated by the invention include a hormone-responsive prostate cancer, a hormone-refractory prostate cancer, and a hormone-insensitive prostate cancer.  The present invention preferably treat or prevent a hormone-refractory prostate cancer, particularly a metastatic hormone refractory prostate cancer.  
Estramustine belongs to the general group of medicines called antineoplastics, and is worldwide used to treat some cases of prostate cancer.  Estramustine is a combination of estradiol with nitrogen mustard.  In the invention, estramustine may be orally administered to a patient in a form of salt, which is preferably a phosphate.  
The term ”lower dose” as used in connection with estramustine means a dose that is lower than the usual dosage of estramustine, and specifically 140 to 560 mg/day, preferably 210 to 490 mg/day, more preferably 210 to 420 mg/day, and still more preferably 280 mg/day.  The lower dose particulary includes 100 to 150 mg/day, 100 to 200 mg/day, 100 to 250 mg/day, 120 to 170 mg/day, 120 to 220 mg/day, 120 to 270 mg/day, 140 to 190 mg/day, 140 to 240 mg/day, 140 to 290 mg/day, 160 to 210 mg/day, 160 to 260 mg/day, 180 to 230 mg/day, and 180 to 280 mg/day.  
The term ”cancer antigen peptide-associated agent” as used herein means a tumor antigen protein and the gene thereof, a tumor antigen peptides derived from the tumor antigen protein and the gene thereof, and a derivative of their substances.  Tumor antigen peptides are generated by degradation of tumor antigen proteins, which are proteins specific for tumors, in cells with proteasomes, which peptides are intracellularly synthesized.  The tumor antigen peptides thus generated bind to MHC class I antigens (HLA antigens) in endoplasmic reticulum to form complexes, and the complexes are transported to the cell surface to be presented as an antigen.  
Tumor antigen proteins as used herein include a protein named MAGE from human melanoma cells (Science, 254:1643, 1991); melanosomal proteins such as a melanocytic tissue-specific protein, gp100 (J. Exp. Med., 179:1005, 1994), MART-1 (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91:3515, 1994), and tyrosinase (J. Exp. Med., 178:489, 1993); MEGE-related proteins (J. Exp. Med., 179:921, 1994); β-catenin having a tumor-specific amino acid mutation (J. Exp. Med., 183:1185, 1996); and CDK4 (Science, 269:1281, 1995); HER2-neu (J. Exp. Med., 181:2109, 1995), p53 (variant) (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93:14704, 1996); tumor markers such as CEA (J. Natl. Cancer Inst., 87:982, 1995), PSA (J. Natl. Cancer Inst., 89:293, 1997); and viral proteins such as HPV (J. Immunol., 154:5934, 1995) and EBV (Int. Immunol., 7:653, 1995).  Detailed descriptions of these substances can be found in published reviews (e.g. Immunol. Today, 18:267, 1997; J. Exp. Med., 183:725, 1996; and Curr. Opin. Immunol., 8:628, 1996).  
Typical examples of tumor antigen peptides as used herein include, but not limited to, tumor antigen peptides described in WO97/46676, WO99/29715 and WO99/33977; tumor antigen peptides derived from cyclophilin B (WO99/67288); tumor antigen peptides derived from SART-1 (WO00/06595); tumor antigen peptides derived from SART-3 (WO00/12701); tumor antigen peptides derived from ART-1 (WO00/32770); tumor antigen peptides derived from SART2 (J. Immunol., 164:2565, 2000); tumor antigen peptides derived from lck (Eur. J. Immunol., 31:323, 2001); tumor antigen peptides derived from ART4 (Cancer Res., 60:3550, 2000); and tumor antigen peptides derived from ppMAPkk, WHSC2, UBE2V, HNRPL, EIF (Cancer Res., 61:2038, 2001).  
Genes as used herein of a cancer antigen protein and a cancer antigen peptide can be prepared according to the well-known method such as those described in for example Molecular Cloning 2nd Edt. Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989) with consulting the references as described above.  
Derivatives as used herein of a cancer antigen protein, a cancer antigen peptide and a gene thereof mean artificial proteins and peptides that are prepared on the basis of the amino acid sequence of the cancer antigen protein and peptide, as well as genes thereof.  Typical examples of derivatives include a protein and a peptide which have an amino acid sequence having a substitution, a deletion and/or an addition of a few amino acid residue in the amino acid sequence of naturally-occurring cancer antigen proteins and peptides, and which have a similar activity for inducing immunoresponses as the naturally-occurring cancer antigen proteins and peptides.  
In accordance with the invention, the cancer antigen peptide-associated agent that is patient-oriented is administered.  For example, in order to select patient-oriented cancer antigen peptides, cancer patients are administered with vaccine candidates comprising antigen peptides, and the ability of the vaccine candidates to induce CTLs is determined by the conventional methods [13, 14].  The cancer antigen peptide-associated agents are usually administered subcutaneously.  
In the second embodiment, the invention provides a pharmaceutical composition for treating a prostate cancer which comprises a lower dose of an estramustine or a salt thereof, said composition being administered together with a cancer antigen peptide-associated agent.  In another aspect, the invention provides a pharmaceutical composition for treating a prostate cancer which comprises a lower dose of an estramustine or a salt thereof, said composition augmenting CTL precursors specific for a cancer antigen peptide-associated agent, and/or augmenting immunoglobulin G specific for a cancer antigen peptide-associated agent.  Meanings of the terms ”prostate cancers”, ”estramustine”, ”lower dose”, and ”cancer antigen peptide-associated agent” are as shown above.  
EXAMPLES
The present invention is further illustrated by the following examples, but is not limited by these examples in any respect.  
Abbreviations as used in Examples stand for the following terms: cytotoxic T lymphocyte (CTL); peripheral blood mononuclear cells (PBMCs); human leukocyte antigen (HLA); hormone refractory-prostate cancer (HRPC); prostate-specific antigen (PSA); bone turnover marker (pyridinoline cross-linked carboxyterminal telopeptide of type I collagen: ICTP); enzyme-linked immuno-sorbent assay (ELISA); delayed-type hypersensitivity (DHT); computed tomography (CT); complete response (CR); partial response (PR); progression (PD); Armed response (Ar).  
Example 1
PATIENTS AND METHOD
Patients  
Between February, 2001 and September, 2002, 20 patients positive for human leukocyte antigen (HLA)-A24 or A2 with metastatic HRPC were entered into a phase I study in which patients were treated by peptide-specific cytotoxic T lymphocyte (CTL) precursor oriented vaccination [15].  Thirteen patients were entered in the combined peptide vaccination and estramustine phosphate treatment when the disease progressed after at least 3 peptide vaccinations in the phase I study.  The disease progression was defined by at least one of three criteria: two consecutive 25% increase from baseline PSA levels at least 2 weeks apart, a greater than 25% increase in bidimensionally measurable soft tissue metastases, and the appearance of new foci on radionuclide bone scans.  Serum PSA levels were determined using Tandem-R (Hybritech Inc., San Diego, CA) assays with a normal range between 04.0 ng/ml.  Other eligibility included an Eastern Cooperative Oncology Group performance status of 0 or 1, age 79 years or less, granulocyte count greater than 3,000/mm3, hemoglobin greater than 10 g/dl, platelets greater than 100,000/mm3, bilirubin equal to or less than the institutional limit of normal, and creatinine less than 1.4 mg/dl.  Negative serologic tests for hepatitis B and hepatitis C were required.  Patients with a serious illness or an active secondary malignancy within the prior 5 years were excluded from the study entry.  Exclusion criteria also included evidence of immunosuppression or autoimmune disease.  All patients gave informed consent in accordance with institutional guidelines.  This study was approved by the Kurume University School of Medicine ethics committee.  
Among the 13 patients, two patients were withdrawn from the immunological and clinical evaluation because of incompletion of the intended course of therapy (6th vaccination) and there was no sample for the immunological analysis.  Therefore, 11 patients were assessable for immunological and clinical evaluation.  Baseline characteristics of 11 patients treated by the combination therapy are summarized in Table 1 hereinafter.  
At the time of enrollment in the study, median % PABS in patients with bone metastases was 6.0 (range, 1.5 to 8.4).  Prior treatments included hormonal therapy (11 patients), radiation therapy to bone metastases (2 patients), and chemotherapy with estramustine phosphate (8 patients: 5 patients were treated with estramustine alone; 3 patients were treated with estramustine plus a combination of etoposide).  All 11 patients also received more than 3 (median 6, range 3 to 23 times) peptide vaccinations before the start of the combination therapy.  The median duration of the combination therapy was 13 months (range, 6 to 21 months).   
Patient-oriented Peptide Vaccination
Our approach in the immunotherapy for HRPC patients is a pre-vaccination measurement of peptide-specific CTL precursors in the circulation of cancer patients reactive to 30 kinds of vaccine candidates (14 peptides for HLA-A24 positive patients, and 16 peptides for HLA-A2 positive patients) with the ability to induce CTLs, followed by administration of only reactive peptides (CTL precursor-oriented peptide vaccine) as reported previously [1315].  The peptides used in the present study are listed in Table 2 hereinafter.  These peptides were prepared under conditions of Good Manufacturing Practice by a Multiple Peptide System (San Diego, CA).  All of these peptides have the ability to induce HLA-A24 or HLA-A2-restricted and tumor-specific CTL activity in peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) of the cancer patients [1723].  Before the first vaccination and 7 days after every 6th vaccination, 30 ml of peripheral blood was obtained, and PBMCs were isolated by means of Ficoll-Conray density gradient centrifugation.  Peptide-specific CTL precursors in PBMCs were detected using a previously reported culture method [24].  Briefly, PBMCs (1 x 105 cells/well) were incubated with 10 μM of each peptide in U-bottom-type 96-well microculture plates (Nunc, Roskilde, Denmark) in 200 μl of culture medium.  The culture medium contained 45% RPMI-1640 medium, 45% AIM-VTM medium (Invitrogen Corp., Carlsbad, CA), 10% FCS, 100 U/ml of interleukin-2 (IL-2) and 0.1 mM MEM nonessential amino acid solution (Invitrogen Corp.).  Half of the medium was removed and replaced with the new medium containing a corresponding peptide (20 μM) every 3 days for up to 12 days.  On the 12th day of the culture, 24 hr after the last stimulation, these cells were harvested, washed 3 times and then tested for their ability to produce IFN-γ in response to C1R-A2402 or T2 cells preloaded with either a corresponding peptide or HIV peptide (RYLRQQLLGI) as a negative control in HLA-A24 or HLA-A2 PBMCs, respectively.  The target cells (C1R-A2402 or T2, 1 x 104/well) were pulsed with each peptide (10 μM) for 2 hr, and then effector cells (1 x 105/well) were added to each well with the final volume of 200 μl.  After incubation for 18 hr, the supernatants (100 μl) were collected, and the amounts of IFN-γ were measured using an enzyme-linked immuno-sorbent assay (ELISA) (limit of sensitivity: 10 pg/ml).  All experiments were performed in the four different wells with duplicate assays.  Pre-vaccination PBMCs were provided for screening of the CTL precursors reactive to 30 peptides (14 peptides for HLA-A24 positive patients, and 16 peptides for HLA-A2 positive patients) for different wells with duplicate assays in each well, and the results of each well were classified into 4 groups in accordance with the p values (by two-tailed Students' t test) and the amounts of IFN-γ (a mean value response to a corresponding peptide minus that to an HIV peptide) as follows: Armed response (Ar): p ≦ 0.1 and 500 ≦ net; A level of response (A): p ≦ 0.05 and 50 ≦ net; B: p ≦ 0.05 and 25 ≦ net ＜ 50; C: 0.05 ＜ p ≦ 0.1 and 50 ≦ net.  Peptides were chosen based upon evaluation of all 4 wells by the order shown above. 
Combination Therapy  
The peptide vaccination schedule was as follows.  For the skin test, 10 μg of each selected peptide for up to 4 peptides were independently injected intradermally with a tuberculin syringe with a 27-gauge needle.  Immediate- and delayed-type hypersensitivity (DHT) reactions were determined at 20 min and 24 hr after the skin test, respectively.  A positive skin-test reaction was defined as > 30-mm diameter erythema and induration, when saline was a negative control for assessment of the hypersensitivity.  If immediate-type hypersensitivity was negative, the peptide was injected.  Before the combination therapy, 3 mg/ml of each of the peptides was injected subcutaneously in the lateral thigh of each patient a total of 6 times at 2-week intervals.  During the combination therapy, 1 mg/ml of each of the peptides was injected at 4- to 6-week intervals.  
Estramustine phosphate was initially administered orally as 140 mg capsules, 2 capsules twice daily for a total daily dose of 560 mg for the first 2 cases, but severe immunosuppression was observed in these patients.  To avoid severe immnosuppression, estramustine phosphate was reduced to 280 mg/day for the remaining 11 cases.  
Immunological Monitoring  
For evaluation of immune responses during the combination therapy, peptide specific CTL precursors in PBMCs and serum levels of peptide-specific antibodies were measured every 6th vaccination.  Peptide-specific CTL precursors in PBMCs were detected using a previously reported culture method [24], while an ELISA was used to detect the serum IgG levels specific for the peptides administrated, as reported previously [1315].  In addition, a new monitoring method was conducted to carefully measure the estramustine-induced immunosuppression.  Namely, PBMCs were harvested every 2 weeks and were cultured (104 cells/well) for 2 days in triplicate assays with 10 μ M of phytohemagglutinin (PHA), 10 ng/ml of Epstein-Bar virus (EBV)-derived peptide with HLA-A24 or -A2 binding motif, and 10 ng/ml of two different peptides under vaccination.  After 2 days in culture, the amounts of IFN-γ in cell free supernatants were measured in triplicate assays, and viable cell numbers were also counted.  To avoid biases in each assay, all the PBMCs were once cryopreserved and the four different PBMCs (two from healthy donors, one from patients PBMCs harvested 2 weeks before the latest vaccination, and one from the latest vaccination) were thawed at the same time in the morning of the experiment.  The PBMCs from healthy donors were from the same donors throughout the series of immunological monitoring.  Responses (IFN-γ production) to PHA, EBV-peptide, and the vaccinated peptides were considered to be mediated by resting T cells, memory T cells, and activated T cells, respectively.  
Clinical Monitoring
The patients were clinically monitored to evaluate the efficacy of the combination therapy.  Specifically, the patients entered in the present trial were observed until disease death or intolerance, or consent was withdrawn.  Clinical and laboratory assessments were performed at each visit, and patients were questioned about adverse events, their severity, and frequency.  The severity of the adverse events was scored according to the National Cancer Institute (NCI) Toxicity Criteria.  Serum PSA and bone turnover marker (pyridinoline cross-linked carboxyterminal telopeptide of type I collagen: ICTP) levels were measured every 4 weeks during the treatment.  The serum levels of ICTP were measured using a two-antibody radioimmunoassay (RIA) using the Telopeptide ICTP RIA kit (Orion Diagnostica, Espoo, Finland, provided by Chugai, Tokyo, Japan).  The normal range of serum ICTP was 1.85.0 ng/ml [25].  Bone scans and Computed tomography (CT) scans of the abdomen were performed every 3 months during this study.  The metastatic findings on bone scans were assessed by the extent of the disease using the percentage of positive area on the bone scan (%PABS)[26].  Clinical response was determined by both changes in PSA levels and by imaging studies in patients with measurable disease.  PSA response was defined as two consecutive measurements at least 4 weeks apart that showed a 50% or greater decrease from baseline PSA levels (PR) or normalization of the PSA level (CR).  Time of PSA progression was registered at the time of the first of 2 consecutive PSA levels 25% above the baseline.  Standard definitions were used for response and progression of measurable and evaluable disease.  For patients with bidimensionally measurable disease, a complete response (CR) was defined as disappearance of all target lesions for at least 4 weeks; a partial response (PR) was defined as a ≧ 50% decline in bidimensionally measurable disease, and a minor response was defined as a reduction between 25% and 50%.  For a response of bone metastasis, a CR was the defined as disappearance of all positive areas on bone scans.  A PR was defined as a 50% or greater decrease in the %PABS, and progression (PD) was defined as an increased number of positive sites, increased intensity of the existing lesions or the 2 findings observed concurrently.  
Statistical Methods
Progression-free survival was defined as the time from the beginning of the combination therapy to the time of progression for patients whose disease progressed, to the time of death for patients who died progression free, or to the time of the last contact who remain alive and progression free.  Cause-specific survival was defined as the time from the beginning of the combination therapy to disease caused death.  The Kaplan-Meier method was used to estimate progression-free and cause-specific survival. 
RESULTS
Immunological Response During The Combination Therapy  
During the combination therapy, peptide-specific CTL precursors and peptide-specific antibodies were measured at 6-week intervals in all 11 patients.  Vaccinated peptides and immune responses are summarized in Table 2 hereinafter.  All 11 patients monitored for immune response during the combination therapy had either enhanced cellular or humoral responses.  Augmentation of peptide-specific CTL precursors was observed in 6 of 11 patients (cases 2, 5, 7, 8, 10 and 12), while induction of peptide-specific IgG was observed in 10 of 11 patients (cases 3, 4, 5, 7, 8, 10, 11, 12 and 13).  Figure 1 demonstrates serial changes of both IFN-γ productions and IgG levels specific for the peptides administrated in each patient.  
The estramustine-induced immunosuppression was also analyzed in ten of 11 patients by measurement of IFN-γ productions to PHA, EBV-peptide and the vaccinated peptides.  Immunomonitoring was not carried out for case 13 because the available PBMCs were too few for use in the assay.  Responses (IFN-γ productions) to PHA, EBV-peptide, and the vaccinated peptides were suggested to be mediated by resting T cells, memory T cells, and activated T cells, respectively.  Results of monitoring in each case are shown in Figure 2.  Cases 2 and 3 were initially treated by the combination with a full dose (560 mg/day) of estramustine phosphate, but the immunological monitoring revealed severe immune suppression.  These immune suppressions were recovered by discontinuing administration of estramustine phosphate.  There was no significant immune suppression in any of 8 cases tested when the peptide and a half dose of estramustine phosphate were administrated (Fig. 2).  
The results of this study suggest a benefit of combination of peptide vaccination and a low dose (280 mg/day) of estramustine phosphate in patients with metastatic HRPC.  The present study demonstrated that cellular and humoral responses were well maintained in all patients with metastatic HRPC during the combination of peptide vaccination and a low-dose estramustine phosphate.  The present results showed that augmentation of peptide-specific CTL precursors was observed in 6 of 11 patients and induction of peptide-specific IgG was observed in 10 of 11 patients.  There was no significant immune suppression in any of 11 patients when the peptide and low dose of estramustine phosphate were administered.  Further studies with a relatively large number of patients are recommended to confirm the results from this small scale study.
Clinical Response
Clinical responses to the combination of peptide vaccination and oral estramustine phosphate are presented in Table 3.  Ten of 11 (91%) patients showed a serum PSA level decrease from the baseline after the treatment including 8 patients (73%) who showed a serum PSA level decrease of ≧ 50%.  Serial changes of PSA levels in each case during the combination therapy are shown in Figure 3.  PSA responses were noted in all 8 patients who had failed prior chemotherapy with estramustine phosphate.  One of 2 patients with measurable disease showed a 44% decrease of lymph node metastasis on the CT (Figure 4).  This patient is still alive with a PSA decline of ≧ 50% (case 12).  Ten patients had bone metastases.  There was no improvement of bone metastases although one of 10 patients with bone metastases showed a serum ICTP level decrease of ≧ 50%.  
At present, 3 patients have died and all deaths were attributed to prostate cancer or metastases.  The median follow up for all patients was 14 months, ranging from 8 to 24 months.  The median survival rate has not been calculated.  At 12 months, 64% of patients were still alive.  
The overall response rate (73%) defined as a serum PSA level decrease of ≧ 50% is significantly higher than those seen in previously reported phase I/II studies of immunotherapy such as the combination of interferon-α and interleukin-2 therapy (31%) [32] or the infusion of dendric cells primed with peptides of prostate specific membrane antigen (27%) [11, 12].  Moreover, it is also comparable with the response rate in recently reported chemotherapy trials with combinations such as estramustine and paclitaxel (53%) [6], estramustine and docetaxel (62%) [7], and the three-drug combination of estramustine, peclitaxel and carboplatin (67%) [8].  In terms of measurable disease, the overall response rate appears somewhat lower than that reported with those chemotherapy regimens because few patients in the present study had measurable soft tissue disease.  Although the majority of patients showed decreased bone turnover marker (ICTP) which were proposed as a modality for monitoring bone metastasis in patients with prostate cancer with bone metastasis [33], there was no improvement of bone metastasis on bone scans.  Possible explanations for this discrepancy are that bone scans are an insensitive tool or that the duration of the treatment was too short to affect the disease in bone where it can be more resistant to therapy.  
Toxicity
All 13 patients were included in toxicity assessments.  The toxicities reported among the 13 treated patients are summarized in Table 4.  The combination therapy was safe and well tolerated with no major adverse effects in most cases, although grade 3 arrhythmia and cerebral infarction was observed in each case.  One patient (case 4) developed grade 3 arrhythmia, but his arrhythmia disappeared by discontinuation of the estramustine.  The other patient (case 7), who was hospitalized with grade 3 cerebral infarction after the 14-month-combination therapy, was successfully treated with anticoagulants, and was continuing the combination therapy without the other major toxicities.  The most common toxicities were dermatologic reactions at the injection site of the vaccination in all cases.  All 13 dermatologic reactions were scored as grade 1 or 2 using National Cancer Institute common toxicity criteria.  Seven patients complained of bone pain, 4 patients developed grade 2 hematuria and 3 patients complained of fatigue.  There was no treatment related hematologic, hepatic, or renal toxicity.  
The toxicity of the combination regimen reported here was less and this treatment was considered acceptable in the treatment of elderly (median age 71 years) males with metastatic HRPC.  The most common toxicities were dermatologic reactions at the injection site of the vaccination.  Importantly, there was no hematologic toxicity nor neuropathy reported in estramustine-based or taxane-based chemotherapy regimens, and they were dose-limiting toxicities [48].  The common toxicities of estramustine treatment include nausea, vomiting, peripheral edema, and vascular events [16].  The combination therapy was found safe and well tolerated.  
The combination of patient-oriented vaccination and low-dose estramustine phosphate was associated with a serum PSA level decrease of ≧ 50% in 73% of the study patients and also less toxicity in mainly elderly patients with metastatic HRPC who had received extensive prior therapy.  Based on these preliminary findings, larger phase II studies of this combination are warranted.
Example 2
PATIENTS AND METHOD
Except for the following points, substantially the same approach was employed as Example 1.  
Patients
Between March, 2002 and January, 2003, 16 patients positive for HLA-A24 with metastatic HRPC entered into the phase I/II study.  Thirteen patients were followed by the combined peptide vaccination and a low dose of estramutine phosphate when the disease progressed after at least the 3rd peptide vaccination.  The remaining 3 patients had only vaccine therapy because of quick disease progression to death.  Table 5 summarizes the clinical characteristics for the 16 patients with HRPC in this study.  
Patient-oriented Peptide Vaccination
The following 16 peptides derived from epithelial cancer-related antigens and prostate-related antigens were used in this study : SART1690-698 (EYRGFTQDF), SART293-101 (DYSARWNEI), SART2161-169 (AYDFLYNYL), SART2899-907 (SYTRLFLIL), SART3109-118 (VYDYNCHVDL), SART3315-323 (AYIDFEMKI), Lck208-216 (HYTNASDGL), Lck486-487 (TFDYLRSVL), Lck488-497 (DYLRSVLEDF), ART1170-179 (EYCLKFTKL), prostate acid phosphate (PAP)213-221 (LYCESVHNF), PSA152-160 (CYASGWGSI), PSA248-257 (HYRKWIKDTI), prostate-specific membrane antigen (PSMA)624-632 (TYSVSFDSL), multidrug resistance-associated protein (MRP)3503-511 (LYAWEPSFL) and MRP31293-1302 (RYLTQETNKV).  All of these peptides have the ability to induce HLA-A24-restriced and tumor-specific CTL activity in PBMC on the cancer patients (15, 19, 20, 34-41).  All patients were vaccinated with up to 4 peptides selected from the 16 candidates by pre-vaccination measurements.  
Combination Thrapy
Estramustine phosphate was administered orally as a 140 mg. capsule, 1 capsule twice daily, for a total daily dose of 280 mg to avoid severe immunosuppression in the combination therapy.  
Clinical Monitering
QOL outcome of patients during this treatment were also evaluated at pre-vaccination,  and 3rd, 6th, and 12th vaccination using a Japanese version of the Functional Assessment of Cancer Therapy (FACT-P) subscale, FACT-P (for prostate cancer) (42).  The FACT-P questionnaire consists of 5 factors including physical well being (7 items), social/family well being (8 items), emotional well being (6 items), functional well being (7 items) and prostate cancer scale (12 items).  QOL outcomes were separately assessed by the percentage of each scale.  
RESULTS
Immunological Response During The Combination Therapy
Before the peptide vaccination, peptide-specific CTL precursors were examined, and were detectable in 14 of 16 patients with a median positive number of 1.5 peptides (range, 0-4 peptides) per patient (Table 6).  In addition, anti-peptide IgGs were also detectable in 14 of 16 patients with a median positive number of 3 peptides (0-4 peptides) per patient.  Four peptides at maximum were selected for the injection to each patient and the results of the selection were listed in Table 6.  The most frequently selected peptide was PSA248-257 (13/16), followed by PAP213-221 (11/16), SART3109-118 (11/16), SART3315-323 (6/16), PSA152-160 (5/16), Lck488-497 (5/16), SART1690-698 (3/16), SART293-101 (3/16), and Lck208-216 (3/16).  PSMA624-628 and SART2161-169 were selected in each patient, while the remaining 5 peptides derived from SART2, Lck, ART1 and MRP3 were not selected in these patients.  Augmentation of peptide-specific CTL precursors or peptide-specific IgG was observed in 10 of 14 or 7 of 14 patients at 12 weeks (peptide vaccination alone), and in 6 of 8 or 10 of 12 patients at 24 weeks (during the combination therapy), respectively.  Representative results of peptide-specific CTL precursors in PBMCs are shown in Figure 5.  Figure 6 demonstrates serial changes of IgG levels specific for the peptides administrated in each patient.  DTH response was observed in 4 of 16 patients, and a summary is presented in Table 6. 
There was no significant immunosuppression in most cases when the peptide and a half dose (280 mg/day) of estramustine were administrated.
Clinical Response
Among the 16 patients, two patients had rapid tumor progression before the combination therapy, and the remaining one patient withdrew his consent from combination therapy after a serum PSA level decrease of ≧ 50% with vaccination alone.  The remaining 13 patients received the combination of vaccinations and a low dose of estramustine phosphate, and were evaluated for clinical responses.  All 13 patients showed a serum PSA level decrease from the baseline after the combination therapy, and 6 of 13 (46%) patients showed a serum PSA level decrease of ≧ 50% with a median duration of 7.5 months (range, 3-13 months).  However, none of these 13 patients had objective response to treatment.  
For patients with advanced disease who have reduced life expectancy and no immediate hope for a cure, relief of physical symptoms and maintenance of function become primary objectives of medical intervention [43].  In this study, QOL outcomes of 16 patients during this treatment were evaluated at pre-vaccination (16 patients), and 3rd (16 patients), 6th (13 patients), and 12th vaccination (7 patients) using a Japanese version of questionnaire of the FACT-P.  Figure 7 shows an average percentage of scales for each factor at the measuring point.  QOL outcomes for all factors were not deteriorated during the treatment.
Toxicity
All 16 patients were evaluated for all common toxicities, and the over all toxicities are shown in table 7.  The toxicity of the combination regimen reported here was tolerable and this treatment was considered acceptable in the treatment on the vast majority of metastatic HRPC.  
Example 3
As shown in example 1, sever immunosuppression was observed with a full dose (560 mg/day) of estramustine phosphate.  Table 8 summarizes the results of the combination therapy according to the present invention in view of the dose of estramustine phosphate.  In the combination therapy using 280 mg/day (maximum non-immunosuppressive dose) of estramustine phosphate, an augmentation of the immunological response and an improvement of the clinical response were observed in HRPC patients who had showed disease progression with peptide vaccination alone.  These results support an advantageous effect of combination of a low dose of estramustine and peptide vaccination.  
Example 4
Table 9 also demonstrates the superior effects of the present combination therapy compared to previous therapies.  All cases had not responded to prior estramustine phosphate therapy, and their diseases progressed after vaccination alone (PD).  With the combination therapy, the clinical responses were improved to PR (partial response) or SD (stable disease) in most cases, and survival of patients with HRPC was remarkably prolonged (Median survival time: 25 months).  
DISCUSSION
Defining the expression of tumor antigens on prostate cancers of different stages is the crucial first step in selecting targets for specific immunotherapy [2830].  The present approach in immunotherapy for HRPC patients used a new strategy of a pre-vaccination measurement of peptide-specific CTL precursors in the circulation of cancer patients, followed by administration of up to 4 peptides that had been reactive for pre-vaccination measurement among vaccine candidates (patient-oriented vaccination).  Previous results from a phase I study demonstrated that patient-oriented vaccination is feasible, safe and immunologically active but the clinical response has been largely limited [15].  It has been known for some time that the malignant transformation of cells is associated with altered HLA class I expression and/or function, and that these abnormalities can provide tumor cells with avenues of escape from immune recognition.  In contrast to the normal HLA class I expression of the benign tissue, complete loss of HLA class I expression was reported in 34% of primary prostate cancer cells and 80% of prostate cancer cells of lymph node metastases [31].  Therefore, HLA class I antigen down-regulation in prostate cancer may have a negative impact on the outcome of T-cell-based immunotherapy because they provide malignant cells with a mechanism by which to escape T-cell recognition.  It is suggested that additive anti-tumor effects could be achieved by the combination of T-cell-based immunotherapy and cytotxic agents with minimum immunosuppression.  In the present study, PSA responses were observed in patients who experienced disease progression prior to estramustine phosphate or peptide vaccination, supporting the hypothesis that this combination works by additive anti-tumor effects.  However, the exact mechanism of this interaction is unclear.  Further studies on this mechanism are needed.  
REFERENCES
1.  Tannock IF, Osoba D, Stockler MR, Ernst DS, Neville AJ, Moore MJ, Armitage GR, Wilson JJ, Venner PM, Coppin CM, Murphy KC.  Chemotherapy with mitxantrone plus prednisone or prednisone alone for symptomatic hormone-resistant prostate cancer: A Canadian randomized trial with palliative end points.  J Clin Oncol 1996; 14: 1756-1764.
2.  Kantoff PW, Halabi S, Conaway M, Picus J, Kirshner J, Hars V, Trump D, Winer EP, Vogelzang NJ.  Hydrocortisone with or without mitoxantrone in men with hormone-refractory prostate cancer: Results of the cancer and leukemia group B 9182 study.  J Clin Oncol 1999; 17: 2506-2513.
3.  Hudes G, Einhorn L, Ross E, Balsham A, Loehrer P, Ramsey H, Sprandio J, Entmacher M, Dugan W, Ansari R, Monaco F, Hanna M, Roth B. Vinblastine versus vinblastine plus oral estramustine phosphate for patients with hormone-refractory prostate cancer: a Hoosier Oncology Group and Fox Chase Network phase III trial.  J Clin Oncol 1999; 17: 3160-3166.
4.  Smith DC, Esper P, Strawderman M, Redman B, Pienta KJ.  Phase II trial of oral estramustine, oral etoposide, and intravenous paclitaxel in hormone-refractory prostate cancer.  J Clin Oncol 1999; 17: 1664-1671.
5.  Beer TM, Pierce WC, Lowe BA, Henner WD.  Phase II study of weekly docetaxel in symptomatic androgen-independent prostate cancer.  Ann Oncol 2001; 12: 1273-1279.
6.  Hudes GR, Nathan F, Khater C, Haas N, Cornfield M, Giantonio B, Greenberg R, Gomella L, Litwin S, Ross E, Roethke S, McAleer C.  Phase II trial of 96-hour paclitaxel plus oral estramustine phosphate in metastatic hormone-refractory prostate cancer.  J Clin Oncol 1997; 15: 3156-3163.
7.  Ellerhorst JA, Tu SM, Amato RJ, Finn L, Millikan RE, Pagliaro LC, Jackson A, Logothetis CJ. et al: Phase II trial of alternating weekly chemohormonal therapy for patients with androgen-independent prostate cancer.  Clin Cancer Res 1997; 3: 2371-2376.
8.  Kelly WK, Curley T, Slovin S, Heller G, McCaffrey J, Bajorin D, Ciolino A, Regan K, Schwartz M, Kantoff P, George D, Oh W, Smith M, Kaufman D, Small EJ, Schwartz L, Larson S, Tong W, Scher H.  Paclitaxel, estramustine phosphate, and carboplatin in patients with advanced prostate cancer.  J Clin Oncol 2001; 19: 44-53.
9.  van der Bruggen P, Traversari C, Chomez P, Lurquin C, De Plaen E, Van den Eynde B, Knuth A, Boon T.  A gene encoding an antigen recognized by cytolytic T lymphocytes on a human melanoma.  Science 1991; 254: 16431647.
10.  Kawakami Y, Eliyahu S, Sakaguchi K, Robbins PF, Rivoltini L, Yannelli JR, Appella E, Rosenberg SA.  Identification of the immunodominant peptides of the MART-1 human melanoma antigen recognized by the majority of HLA-A2-restricted tumor infiltrating lymphocytes.  J Exp Med 1994; 180: 347-352. 
11.  Tjoa BA, Simmons SJ, Bowes VA, Ragde H, Rogers M, Elgamal A, Kenny GM, Cobb OE, Ireton RC, Troychak MJ, Salgaller ML, Boynton AL, Murphy GP.  Evaluation of phase I/II clinical trials in prostate cancer with dendritic cells and PSMA peptides.  Prostate 1998; 36: 39-44.
12.  Salgaller ML, Lodge PA, McLean JG, Tjoa BA, Loftus DJ, Ragde H, Kenny GM, Rogers M, Boynton AL, Murphy GP.  Report of immune monitoring of prostate cancer patients undergoing T-cell therapy using dendritic cells pulsed with HLA-A2-specific peptides from prostate-specific membrane antigen (PSMA). Prostate 1998; 35: 144-151.
13.  Mine T, Gouhara R, Hida N, Imai N, Azuma K, Rikimaru T, Katagiri K, Nishikori Misa, Sukehiro A, Nakagawa M, Yamada A, Aizawa H, Shirozu K, Itoh K, and Yamana H.  Immunological evaluation of CTL precursor-oriented vaccine for advanced lung cancer patients.  Cancer Sci 2003; 94: 548-556.
14.  Tanaka S, Harada M, Mine T, Noguchi M, Gohara R, Azuma K, Yamada A, Morinaga A, Nishikori M, Katagiri K, , Itoh K, Yamana H and Hashimoto T.: Peptide vaccination for patients with melanoma and other types of cancers based on pre-existing peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors in periphery.  J Immunother (in press)
15.  Noguchi M, Kobayashi K, Suetugu N, Tomiyasu K, Suekane S, Yamada A, Itoh K, Noda S.  Induction of cellular and humoral immune responses to tumor cells and peptides in HLA-A24 positive hormone-refractory prostate cancer patients by peptide vaccination.  Prostate (in press)
16.  Perry CA and McTavish D.  Estramustine phosphate sodium. A review of its pharmacodynamic and pharmacokinetic properties, and therapeutic efficacy in prostate cancer.  Drugs and Aging 1995; 7: 49-74.
17.  Shichijo S, Nakao M, Imai Y, Takasu H, Kawamoto M, Niiya F, Yang D, Toh Y, Yamana H, Itoh K.  A gene encoding antigenic peptides of human squamous cell carcinoma recognized by cytotoxic T lymphocytes.  J Exp Med 1998; 187: 277-288.
18.  Nakao M, Shichijo S, Imaizumi T, Inoue Y, Matsunaga K, Yamada A, Kikuchi M, Tsuda N, Ohta K, Takamori S, Yamana H, Fujita H, Itoh K.  Identification of gene coding for a new squamous cell carcinoma antigen recognized by the CTLs.  J Immunol 2000; 164: 2565-2574.
19.  Yang D, Nakao M, Shichijo S, Sasatomi T, Takasu H, Matsumoto H, Mori K, Hayashi A, Yamana H, Shirouzu K, Itoh K.  Identification of a gene coding for a protein possessing shared tumor epitopes capable of inducing HLA-A24-restructed cytotoxic T lymphocytes in cancer patients.  Cancer Res 1999; 59: 4056-4063.
20.  Gomi S, Nakao M, Niiya F, Imamura Y, Kawano K, Nishizaka S, Hayashi A, Sobao Y, Oizumi K, Itoh K.  A cyclophilin B gene encodes antigenic epitopes recognized by HLA-A24-restricted and tumor-specific cytotoxic T lymphocytes.  J Immunol 1999; 163: 4994-5004.
21.  Maeda Y, Ito M, Harashima N, Nakatsura T, Hida N, Imai N, Sato Y, Shichijo S, Todo S, Itoh K.  Cleavage and polyadenylation specificity factor (CPSF)-derived peptides can induce HLA-A2-restricted and tumor-specific CTLs in the majority of gastrointestinal cancer patients.  Int J Cancer 2002; 99: 409-417.
22.  Suzuki N, Maeda Y, Tanaka S, Hida N, Mine T, Yamamoto K, Oka M, Itoh K.  Detection of peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors used for specific immunotherapy of pancreatic cancer.  Int J Cancer 2002; 98: 45-50.
23.  Miyagi Y, Imai N, Sasatomi T, Yamada A, Mine T, Katagiri K, Nakagawa M, Muto A, Okouchi S, Isomoto H, Shirouzu K, Yamana H, Itoh K.  Induction of cellular immune response to tumor cells and peptides in colorectal cancer patients by vaccination with SART3 peptides.  Clin Cancer Res 2001; 7: 3950-3962. 
24.  Hida N, Maeda Y, Katagiri K, Takasu H, Harada M, Itoh K.  A simple culture protocol to detect peptide-specific cytotoxic T lymphocyte precursors in circulation.  Cancer Immunol Immunotherapy 2002; 51: 219-228.
25.  Noguchi M and Noda S: Pyridinoline cross-linked carboxyterminal telopeptide of type I collagen as a useful marker for monitoring metastatic bone activity in men with prostate cancer.  J Urol 2001; 166: 1106-1110.
26.  Noguchi M, Kikuchi H, Ishibashi M, Noda S.  Percentage of the positive area of bone metastasis is an independent predictor of thedisease death in advanced prostate cancer.  Br J Cancer 2003; 88: 195-201.
27.  Mitcell MS.  Chemotherapy in combination with biomodulation: a 5 year experience with cyclophosphamide and IL-2.  Semin Oncol 1992; 19 (suppl 2): 80-87.
28.  Zhang S, Cordon-Cardo C, Zhang HS, Reuter VE, Adluri S, Hamilton WB, Lloyd KO, and Livingston PO.  Selection of tumor antigens as targets for immune attack using immunohistochemistry.  I. Focus on gangliosides.  Int J Cancer 1997; 73: 42-49.
29.  Zhang S, Zhang HS, Cordon-Cardo C, Reuter VE, Singhal AK, Lloyd KO, and Livingston PO.  Selection of tumor antigens as targets for immune attack using immunohistochemistry.  II. Blood group-related antigens.  Int J Cancer 1997; 73: 50-56.
30.  Zhang S, Zhang HS, Reuter VE, Slovin SF, Scher HI, Livingston PO.  Expression of potential target antigens for immunotherapy on primary and metastatic prostate cancers.  Clin Cancer Res 1998; 4: 295-302.
31.  Blades RA, Keating PJ, McWilliam LJ, George NJ, Stern PL.  Loss of HLA class I expression in prostate cancer: implications for immunotherapy.  Urology 1995; 46: 681-687.
32.  Maffezzini M, Simonato A, Fortis C.  Salvage immunotherapy with subcutaneous recombination interleukin 2 (rIL-2) and alpha-interferon (A-INF) for stage D3 prostate carcinoma failing second-line hormonal treatment.  Prostate 1996; 28: 282-286.
33.  Noguchi M, Yahara J, and Noda S: Serum levels of bone turnover markers parallel the results of bone scintigraphy in monitoring bone activity of prostate cancer.  Urology 2003; 61: 993-998.
34.  Noguchi M, Itoh K, Suekane S, Yao A, Suetsugu N, Katagiri K, Yamada A, Yamana H, and Noda S.  Phase I trial of patient-oriented vaccination in HLA-A2 positive patients with metastatic hormone refractory prostate cancer.  Cancer Sci 2004;95:77-84. 
35.  Noguchi M, Itoh K, Suekane S, Morinaga A, Sukehiro A, Suetsugu N, Katagiri K, Yamada A, and Noda S.  Immunological Monitoring during Combination of Patient-Oriented Peptide Vaccination and Estramustine Phosphate in Patients with Metastatic Hormone Refractory Prostate Cancer.  Prostate 2004;60:32-45.
36.  Inoue Y, Takaue Y, Takei M, Kato K, Kanai S, Harada Y, Tobisu K, Noguchi M, Kakizoe T, Itoh K, and Wakasugi H.  Induction of tumor specific cytotoxic T lymphocytes in prostate cancer using prostatic acid phosphatase derived HLA-A2402 binding peptide.  J Urol 2001;166:1508 -1513.
37.  Harada M, Kobayashi K, Matsueda S, Nakagawa M, Noguchi M, and Itoh K. Prostate-specific antigen-derived epitopes capable of inducing cellular and humoral responses in HLA-A24+ prostate cancer patients.  Prostate 2003;57:152-159.
38.  Kobayashi K, Noguchi M, Itoh K, and Harada M.  Identification of a prostate-specific membrane antigen-derived peptide capable of eliciting both cellular and humoral immune responses in HLA-A24+ prostate cancer patients.  Cancer Sci 2003;94:622-627.
39.  Harada M, Noguchi M, Itoh K.  Target molecules in specific immunotherapy against prostate cancer.  Int J Clin Oncol 2003;8:193-199.
40.  Harashima N, Tanaka K, Sasatomi T, Shimizu K, Miyagi Y, Yamada A, Tamura M, Yamana H, Itoh K, and Shichijo S.  Recognition of the Lck tyrosine kinase as a tumor antigen by cytotoxic T lymphocytes of cancer patients with distant metastases.  Eur J Immunol 2000;31:323-332.
41.  Kawano K, Gomi S, Tanaka K, Tsuda N, Kamura T, Itoh K, and Yamada A.  Identification of a new endoplasmic reticulum-resident proteine recognized by HLA-A-24 restricted tumor infiltrating lymphocytes of lung cancer.  Cancer Res 2000;60:3550-3558.
42.  Esper PMoF, Chodak G., Sinner M, Cella D, and Pienta KJ.  Measuring quality of life in men with prostate cancer using the functional assessment of cancer therapy-prostate instrument.  Urology 1997;50:920-928.
43.  Coons SJ, Kaplan RM.  Assessing health-related quality-of-life: application to drug therapy.  Clin Ther 1992;14:850-858.
[Table 1]
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1.  A method for treating a prostate cancer, which comprises administering a therapeutically effective amount of a cancer antigen peptide-associated agent and a lower dose of an estramustine or a salt thereof to a patient in need thereof.  
2.  The method of claim 1, wherein the lower dose of an estramustine or a salt thereof is 140 to 560 mg/day.  
3.  The method of claim 1 or 2, wherein the cancer antigen peptide-associated agent is patient-oriented.  
4.  The method of claim 3, wherein the cancer antigen peptide-associated agent is selected from a group consisting of a cancer antigen protein, a cancer antigen peptide thereof, a gene thereof, and a derivative of their substances.  
5.  The method of any one of claims 1 to 4, wherein the cancer is a hormone-refractory prostate cancer.  
6.  A pharmaceutical composition for treating a prostate cancer which comprises a lower dose of an estramustine or a salt thereof, said composition being administered together with a cancer antigen peptide-associated agent.  
7.  The pharmaceutical composition of claim 6, wherein the lower dose of an estramustine or a salt thereof is 140 to 560 mg/day.  
8.  The pharmaceutical composition of claim 6 or 7, wherein the cancer antigen peptide-associated agent is patient-oriented.  
9.  The pharmaceutical composition of claim 8, wherein the cancer antigen peptide-associated agent is selected from a group consisting of a cancer antigen protein, a cancer antigen peptide thereof, a gene thereof, and a derivative of their substances.  
10.  The pharmaceutical composition of any one of claims 6 to 9, wherein the cancer is a hormone-refractory prostate cancer.  
11. Use of an estramustine or a salt thereof for preparation of a medicament for treating a prostate cancer, wherein the estramustine or a salt thereof is in a lower dose, and wherein the medicament is administered together with a cancer antigen peptide-associated agent.  
ABSTRACT
A method for treating a prostate cancer, which comprises administering a therapeutically effective amount of a cancer antigen peptide-associated agent and a lower dose of an estramustine or a salt thereof to a patient in need thereof, and a pharmaceutical composition thereof are provided.  
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