(57)【要約】光合成生物由来のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼをコードする遺伝子配列を開示する。この酵素、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼは、γ−トコフェロールのメチル化による、トコフェロールの中で最も生物活性の高い、α−トコフェロールの製造を触媒する。γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼは、光合成生物中に存在する種々のトコフェロールの、相対的な量の調節に関与していると考えられている。植物プロモータの制御下に置かれた、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を持つ遺伝子構築体を植物に導入することにより、改変されたγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ発現性を持つトランスジェニック植物に、該植物のトコフェロールプロフィールを大幅に変更させることができる。その種子およびオイル中の支配的なトコフェロールとして、α−トコフェロールを含む、トランスジェニック植物を製造できる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含むことを特徴とする、単離されたＤＮＡフラグメント。
【請求項２】
該フラグメントが、配列番号１および配列番号３からなる群から選択される、請求項１記載のＤＮＡフラグメント。
【請求項３】
アラビドプシスγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼを含むことを特徴とする、単離されたＤＮＡフラグメント。
【請求項４】
シネコシスティスγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼを含むことを特徴とする、単離されたＤＮＡフラグメント。
【請求項５】
γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含み、該配列が自然においてはこれと結合していない植物プロモータと機能可能に結合していることを特徴とする、遺伝子構築物。
【請求項６】
該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列が、配列番号１および配列番号３からなる群から選択される、請求項５記載の遺伝子構築物。
【請求項７】
ゲノム内に、請求項５記載の遺伝子構築物を含むことを特徴とする、トランスジェニック植物。
【請求項８】
該植物が、形質転換されていない野生型植物に対して、改変されたα−トコフェロール：γ−トコフェロール比を有する、請求項５記載の植物。
【請求項９】
請求項８記載の植物の種子。
【請求項１０】
該植物が、形質転換されていない野生型植物に対して、改変されたδ−トコフェロール：β−トコフェロール比を有する、請求項５記載の植物。
【請求項１１】
請求項１０記載の植物の種子。
【請求項１２】
請求項１１記載の種子由来のオイル。
【請求項１３】
本来的に、α−トコフェロールが種子内の主なトコフェロールではない種のトランスジェニック植物であって、該トランスジェニック植物が、該植物の種子中の最も豊富なトコフェロールとして、α−トコフェロールを生産するように改変されていることを特徴とする、上記トランスジェニック植物。
【請求項１４】
請求項１３記載の植物の種子。
【請求項１５】
請求項１４記載の種子由来のオイル。
【請求項１６】
該トランスジェニック植物が、そのゲノムに、配列番号１および配列番号３からなる群から選択される本来的に、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子を含む、外来遺伝子構築物を担持する、請求項１３記載のトランスジェニック植物。
【請求項１７】
同一の種の非‐トランスジェニック植物に比して、種子またはオイル中のトコフェロールの改変されたプロフィールをもつことを特徴とする、トランスジェニック植物。
【請求項１８】
請求項１７記載の植物の種子。
【請求項１９】
請求項１８記載の種子由来のオイル。
【請求項２０】
本来的に、α−トコフェロールが種子内の主なトコフェロールではない植物種のトランスジェニック植物種子であって、該トランスジェニック植物種子が、該植物の種子中に存在する最も豊富なトコフェロールとして、α−トコフェロールを含むことを特徴とする、上記トランスジェニック植物種子。
【請求項２１】
請求項２０記載の種子由来のオイル。
【請求項２２】
同一の種の、非‐トランスジェニック植物に比して、組織内におけるトコフェロールの、改変された相対的割合を有するトランスジェニック植物であって、該トランスジェニック植物が、そのゲノム内に、挿入されたγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含むことを特徴とする、上記トランスジェニック植物。
【請求項２３】
該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼが、センス配向にある、請求項２２記載の植物。
【請求項２４】
該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼが、アンチセンス配向にある、請求項２２記載の植物。
【請求項２５】
（ａ）ゲノム内に、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含む、発現宿主細胞を作成し、該コード配列は、該配列と本来的には結合していないプロモータと、機能可能に結合しており、該プロモータは、該宿主内で機能性であり、
（ｂ）該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの発現を可能とするのに適した条件下で、該宿主細胞を培養し、および
（ｃ）適当な条件下で、かつγ−トコフェロールの、α−トコフェロールへの転化を可能とするのに十分な時間、上記工程ｂの該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼタンパクと、γ−トコフェロールおよびＳ−アデノシルメチオニンとを反応させる、
諸工程を含むことを特徴とする、α−トコフェロールの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
関連出願の相互引証
本件特許出願は、１９９７年７月２５日付けの米国特許出願第６０／０５３，８１９号および１９９８年１月２６日付けの米国特許出願第６０／０７２，４９７号に基づく優先権を主張する。
【０００２】
連邦政府により支援された研究または開発に関する供述
適用されず。
【０００３】
背景技術
ビタミンＥは、哺乳動物食事の必須成分の一つである。疫学的な証拠は、ビタミンＥの補給が、心血管性疾患または癌の低い危険性をもたらし、免疫機能を助け、かつ一般的にヒトにおける多数の変質性疾患過程を防止もしくは軽減することを示している（Ｔｒａｂｅｒ ＆ Ｓｉｅｓ， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｎｕｔｒ．， １９９６， １６：３２１−３４７）。ビタミンＥは、生体膜の脂質二重層を安定化し （Ｓｋｒｙｐｉｎ ＆ Ｋａｇａｎ， Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． Ａｃｔａ， １９９５， ８１５：２０９； Ｋａｇａｎ， Ｎ．Ｙ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， １９８９， ｐ． １２１； Ｇｏｍｅｚ−Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ等， Ａｎｎ． Ｎ．Ｙ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．， １９８９， ｐ １０９）、脂質酸化により発生する、ポリ不飽和脂肪酸（ＰＵＦＡ）遊離基の還元（Ｆｕｋｕｚａｗａ等，Ｌｉｐｉｄｓ， １９８２， １７：５１１−５１３）、およびシングレット（ｓｉｎｇｌｅｔ）酸素種を抑制（Ｆｒｙｅｒ， Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｅｎｖｉｒｏｎ．， １９９２， １５（４）：３８１−３９２）するように機能する。
【０００４】
ビタミンＥまたはα−トコフェロールは、α、β、γおよびδ−トコフェロールおよびα、β、γおよびδ−トコトリエノールを含む、一群の脂質‐可溶性酸化防止剤に属する。α、β、γおよびδ−トコフェロールおよびα、β、γおよびδ−トコトリエノールは、大衆的な刊行物ではしばしば総合的に「ビタミンＥ」と呼ばれているが、ビタミンＥは、化学的には単にα−トコフェロールとして、適当に定義されている。食料品中に存在するこれら種々のトコフェロールの中で、α−トコフェロールは、これが該トコフェロール類の中で最も生活性が高く、しかも身体に最も迅速に吸収されかつ維持される（Ｔｒａｂｅｒ ＆ Ｓｉｅｓ， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｎｕｔｒ．， １９９６， １６：３２１−３４７）という２つの理由から、ヒトの健康にとって最も重要である。α−トコフェロールのインビボでの酸化防止活性は、β、γおよびδ−トコフェロール酸化防止活性よりも高い（Ｋａｍａｌ−Ｅｌｄｉｎ ＆ Ａｐｐｅｌｑｚｖｉｓｔ， Ｌｉｐｉｄｓ， １９９６， ３１：６７１−７０１）。
【０００５】
植物およびシアノバクテリア（ｃｙａｎｏｂａｃｔｅｒｉａ）を包含する幾つかの他の光合成生物のみが、トコフェロール類を合成する。従って、食用のトコフェロール類は、殆ど完全に植物から得られる。植物組織は、全トコフェロール含有率およびトコフェロール組成においてかなり異なっている。緑色光合成植物組織における主なトコフェロールは、しばしばα−トコフェロールである。葉の組織は、新鮮な葉の１ｇ当たり１０−５０μｇなる全トコフェロールを含むことができる。
緑色以外の植物組織および器官は、より広い範囲の全トコフェロールレベルおよびトコフェロール組成両者を示す。一般的に、殆どの主要な食品群（例えば、米、コーン、小麦、ポテト）が、低レベル乃至極めて低レベルの全トコフェロールを生産し、その僅かに小割合のみが、α−トコフェロールである（Ｈｅｓｓ， ビタミンＥ、α−トコフェロール、高等植物における酸化防止剤（Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓ ｉｎ Ｈｉｇｈｅｒ Ｐｌａｎｔｓ），Ｒ． Ａｌｓｃｈｅｒ ＆ Ｊ． Ｈｅｓｓ編， １９９３， ＣＲＣプレス， ボカラトン， ｐｐ． １１１−１３４）。脂肪種子作物は、一般的により高レベルの全トコフェロールを含むが、α−トコフェロールは、主な成分の一つとして存在するに過ぎず、β、γおよびδ−トコフェロールが支配的である（Ｔａｙｌｏｒ ＆ Ｂａｒｎｅｓ， Ｃｈｅｍｙ． Ｉｎｄ．， Ｏｃｔ．：７２２−７２６， １９８１）。
【０００６】
毎日の食事で、１５−３０ｍｇのビタミンＥを摂取することが、最適な血漿α−トコフェロール濃度を達成する上で推奨される。平均的な米国での食事から、このレベルのビタミンＥ摂取量を達成することは全く困難である。例えば、この推奨される毎日のビタミンＥ摂取量を、７５０ｇを越えるホウレンソウの葉（ここでは、α−トコフェロールが、全トコフェロールの６０％を構成する）または２００−４００ｇの大豆油を毎日消費することによって達成できる。
この推奨されるビタミンＥの摂取量を達成するための、食事のみによるもう一つの方法は、ビタミンＥ補給剤の摂取である。しかしながら、多くのビタミンＥ補給剤は、６種の立体異性体を含む合成ビタミンＥであり、一方で天然のビタミンＥビタミンは、単一の異性体である。その上、補給剤は比較的高価となる傾向があり、しかも一般的な人々は、定期的なビタミン補給剤の摂取を毛嫌いする傾向がある。
【０００７】
植物中のトコフェロール機能は、哺乳動物系におけるトコフェロールの機能ほどには、深く研究されていないが、動物中でトコフェロールによって達成されている類似の機能が、植物においても起こっているものと考えられる。一般的に、植物中のトコフェロール濃度は、種々のストレス、特に酸化性のストレスの増大に伴って、増大することが分かっている。作物中の高いα−トコフェロールレベルは、新鮮なおよび加工植物製品の高い安定性および長い保存寿命と関連している（Ｐｅｔｅｒｓｏｎ， Ｃｅｒｅａｌ−Ｃｈｅｍ．， １９９５， ７２（１）：２１−２４； Ｂａｌｌ， 食品分析における脂肪‐溶解性ビタミンアッセイ、包括的吟味（Ｆａｔ−ｓｏｌｕｂｌｅ ｖｉｔａｍｉｎ ａｓｓａｙｓ ｉｎ ｆｏｏｄ ａｎａｌｙｓｉｓ， Ａ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｒｅｖｉｅｗ）， ロンドン， エルセビアサイエンスパブリッシャーＬＴＤ， １９８８）。
ブタ、ウシおよび家禽飼料のビタミンＥ補給は、その肉質を大幅に改善し、かつ加工後の肉製品の保存寿命を、加工後の脂質の酸化を遅らせることによって大幅に延長できることが示されている。この脂質酸化は、望ましくない香味成分の形成に寄与している（Ｂａｌｌ， 上記文献， １９８８； Ｓａｎｔｅ ＆ Ｌａｃｏｕｒｔ， Ｊ． Ｓｃｉ． Ｆｏｏｄ Ａｇｒｉｃ．， １９９４， ６５（４）：５０３−５０７； Ｂｕｃｋｌｅｙ等， Ｊ． ｏｆ Ａｎｉｍａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ， １９９５， ７３：３１２２−３１３０）。
【０００８】
当分野において重要なことは、作物および飼料植物由来の種子、オイルおよび葉中の、α−トコフェロール対γ−トコフェロールの比を高める方法、または大規模の醗酵法を利用して、非光合成性バクテリアまたは菌類内で天然ビタミンＥを生産する方法である。穀類植物内の高いα−トコフェロール濃度は、ヒトの食事において得られるα−トコフェロールを増大し、また植物および植物製品の安定性を高め、かつ保存寿命を延長するであろう。精肉工業は、高レベルでビタミンＥを含む飼料植物の開発の恩恵にあずかるであろう。
【０００９】
発明の概要
本発明は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼのコード配列を含む、単離されたＤＮＡフラグメントに基づくものである。
本発明は、また本来γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列と結合していない、植物、バクテリア、または菌類プロモータと、機能可能に結合した、該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含む、異種の遺伝子構築物をも提供する。
本発明のもう一つの局面は、植物のトコフェロールプロフィールを改変する方法を提供し、該方法は、（ａ）本来γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列と結合していない、植物プロモータと機能可能に結合した、該コード配列を含む、異種遺伝子構築物を作成し、および（ｂ）この構築物を植物のゲノムに導入する、諸工程を含む。
本発明は、また改変されたα−トコフェロール対γ−トコフェロールの比を有し、かくして該植物および植物製品の、ヒトおよび動物に対する栄養的価値を高める、トランスジェニック植物をも目的とする。
【００１０】
もう一つの態様において、本発明はある植物を提供することを目的とし、該植物のゲノム内に、該植物内で機能性のプロモータと機能可能に結合した、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含む、異種遺伝子構築物を含む。
本発明の目的の一つは、本来γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列とは結合していない、植物プロモータと機能可能に結合した、該コード配列を含む遺伝子構築物を提供することにある。該コード配列は、ゲノム内に該構築物を含む植物中で発現された場合に、該植物中の、α−トコフェロール：γ−トコフェロールの比を、形質転換されていない野生型の植物に比して、相対的に改変する。
本発明の目的の一つは、改変されたα−トコフェロール：γ−トコフェロールの比を有する植物を提供することにある。
本発明のその他の目的、特超、並びに利点は、本明細書および特許請求の範囲を吟味することにより明らかとなろう。
【００１１】
発明を実施するための最良の形態
本発明は、一部にはある植物に係わり、該植物はそのゲノムに、本来γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列とは結合していない、植物プロモータと機能可能に結合した、該コード配列を含む遺伝子構築物を含んでいる。このようなトランスジェニック植物は、同一の種の野生型植物に対して、改変されたある比を示す。事実、通常はα−トコフェロールを含まない植物の種子および種子オイルは、最も豊富なトコフェロールが、α−トコフェロールとなるように、改変できる。あるいはまた、植物組織内に存在するγ−トコフェロールの相対的な割合を、該植物中のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの活性を減じることによって、高めることができ、これは、アンチセンス配向にあるγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列の発現により達成できる。高い比率でγ−トコフェロールを含む植物を開発することは、幾つかの工業において有用であり得る。
【００１２】
トコフェロールおよび植物プラスチドにおいて最も豊富なキノンであるプラストキノンは、共通の経路により合成される（Ｈｅｓｓ， 高等植物における酸化防止剤（Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓ ｉｎ Ｈｉｇｈｅｒ Ｐｌａｎｔｓ）， ＣＲＣプレス：ボカラトン， ｐ．１４０−１５２， １９９３； Ｓｏｌｌ， 植物細胞膜（Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ），アカデミックプレス：サンジエゴ， ｐ．３８３−３９２， １９８７）。トコフェロールの合成は、少なくとも６種の酵素活性によって触媒される４段階を含む。この共通の経路の分岐点は、プリカーサーホモゲンチジン酸をフィチル化またはプレニル化して、夫々トコフェロールおよびプラストキノンの中間体である２−メチル−６−フィチルプラストキノンまたは２−メチル−６−ソラニルプラストキノンの何れかを形成する際に生ずる。
【００１３】
該中間体２−メチル−６−フィチルプラストキノンは、全てのトコフェロールの生合成に対する共通のプリカーサーである。ホウレンソウの葉において、該中間体は、リングメチル化を行って、２，３−ジメチル−６−フィチルプラストキノールを生成し、これは環化されてγ−トコフェロールを形成する。位置５における第二のリングメチル化はα−トコフェロールを生成する（Ｓｏｌｌ ＆ Ｓｃｈｕｌｔｚ， Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， １９８０， １９（２）：２１５−２１８）。この第二のリングメチル化は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼにより触媒され、これは位置７のメチル化を触媒する該メチルトランスフェラーゼとは異なる酵素活性であり、また植物から精製される該経路の唯一の酵素である（ｄ’Ｈａｒｌｉｎｇｕｅ ａｎｄ Ｃａｍｅｒａ， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， １９８５， ２６０（６８）： １５２９９−１５２０３； Ｉｓｈｉｋｏ等， Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， １９９２， ３１（５）：１４９９−１５００）。
【００１４】
該メチル化酵素は、該トコフェロールプールの最終的な組成の調節に関与する。ヒマワリの変異体に関する研究において得られたデータは、メチル化に関与する該酵素が、相対的なトコフェロールの量にかなりの影響を与えるが、全トコフェロール含有率には影響を与えないことが示唆される（Ｄｅｍｕｒｉｎ， Ｈｅｌｉａ， １９９３， １６：５９−６２）。通常、栽培されたヒマワリ種子 （ヘリアンタスアンヌス（Ｈｅｌｉａｎｔｈｕｓ ａｎｎｕｕｓ） Ｌ．） のトコフェロール組成は、主としてα−トコフェロールである（即ち、全トコフェロールプールの９５−１００％） （Ｓｋｏｒｉｃ等，プロシーディングズオブザ１４ｔｈインターナショナルサンフラワーカンファレンス（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ １４ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｕｎｆｌｏｗｅｒ Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ）， １９９６， Ｂｅｉｊｉｎｇ／Ｓｈｅｎｙａｎｇ， 中国）。しかしながら、２つの変異ヒマワリ系が、９５％γ−トコフェロール／５％α−トコフェロールおよび５０％β−トコフェロール／５０％α−トコフェロールなるトコフェロール組成をもつものとして同定された。これらの推定されたトコフェロールメチル化変異体は、種子中の著しく異なるトコフェロールメチル化を示すことが分かっているが、全トコフェロール濃度は、野生型のヒマワリのものとさほど異なってはいない（Ｄｅｍｕｒｉｎの上記文献， １９９３）。これらの結果に基づいて、我々は、多くの植物種のトコフェロールプロフィールを、その全トコフェロールプールのサイズに影響を与えることなしに、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ発現を操作することによって改変できるはずであるものと仮定した。
【００１５】
該酵素γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼは、γ−トコフェロールのメチル化によるα−トコフェロールの形成、即ちα−トコフェロール生合成の最終段階を触媒する。植物におけるγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子の過度の発現は、γ−トコフェロールを含む任意の組織における、γ−トコフェロールのα−トコフェロールへの転化を増強し、結果として該α−トコフェロール対γ−トコフェロール比を高めた。事実、殆どまたは全くα−トコフェロールが見られない種子およびオイルは、支配的にα−トコフェロールを含むように改変できる。逆に、該アンチセンスＲＮＡの発現は、該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの発現を減じるものと予想され、結果として該α−トコフェロール対γ−トコフェロール比の減少をもたらすであろう。高いγ−トコフェロール含有率をもつ植物は、幾つかの工業にとって有用である可能性がある。
我々は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼが、同様にδ−トコフェロールのβ−トコフェロールへの転化をも触媒することをも見出した。植物組織内でのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの過剰な発現は、δ−トコフェロールのβ−トコフェロールへの高い転化率をもたらす。γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼアンチセンスＲＮＡの発現は、δ−トコフェロールのβ−トコフェロールへの低い転化率をもたらすものと予想される。
【００１６】
以下の実施例において明らかにされるように、アラビドプシス植物の種子を、該種子特異的プロモータまたは構成的カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモータ何れかの制御下で、アラビドプシスγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子を含む遺伝子構築物で形質転換して得た、アラビドプシス植物の種子は、α−トコフェロール：γ−トコフェロール比の顕著な増大を示す。形質転換されていないアラビドプシスの種子中には、α−トコフェロールは検出されず、一方該種子特異的プロモータの制御下で、該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子で形質転換したアラビドプシス由来の種子は、約９０％のα−トコフェロールを含んでいた。構成的プロモータの制御下で、該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子で形質転換したアラビドプシス由来の種子は、これより僅かに少ないα−トコフェロール（８４％）を含んでいた。この観測は、本来、α−トコフェロールが支配的でない（即ち、全トコフェロールの５０％未満）トコフェロールプロフィールを有する植物については、トランスジェニック植物の種子または種子オイル中の、支配的なトコフェロール形状とすることが可能であることを立証している。
【００１７】
γ−トコフェロールのメチル化によるα−トコフェロールの形成は、該ジ‐メチル化トコフェロール（γ−トコフェロール）と、トリ‐メチル化トコフェロール（α−トコフェロール）との比を、調節するための手段である。通常植物中では発現されない、組織中でのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの発現を調節することによって、γ−トコフェロールが主要なトコフェロールである多くの栽培穀類（例えば、トウモロコシ、大豆、アブラナ、コットン、ピーナッツ、ベニバナ、トウゴマ）の組織におけるα−トコフェロールのレベルを高めることが可能となる。多くの一般的な食用種子オイルは、大量のγ−トコフェロールを含む。種子オイル植物における、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの発現レベルを高めることにより、α−トコフェロール：γ−トコフェロールの比が、高められるはずである。
シネコシスティスＰＣＣ６８０３およびアラビドプシスタリアナ（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ）由来の該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子の単離および機能分析は、実施例において詳しく説明する、相補的分子遺伝学的方法を、同時に実施することによって達成した。これら２つのモデル生物は、両者ともに類似または同一の経路によりトコフェロールを合成し、かつ両者ともに著しく御し易い遺伝学的、分子論的、かつ生化学的な系であることから選択された。
【００１８】
シネコシスティスＰＣＣ６８０３およびアラビドプシスタリアナ由来のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子のＤＮＡ配列は、夫々、配列番号１および配列番号３に示されている。これらタンパクの対応する推定アミノ酸配列は、配列番号２および配列番号４に示されている。
本発明は、任意の光合成生物由来のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子を使用して実施できるものと予想される。本明細書に記載した配列を利用して、植物γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子を単離することは、完全に当業者の能力の範囲内にある。他のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を同定するための、これら配列の有用性は、該アラビドプシス配列を同定するのに使用されたものが、該シネコシスティス配列であったという事実によって立証される。これら２つの配列は、植物ｃＤＮＡ（ｄｂｅｓｔ データベース）およびゲノム配列の公的なコンピュータデータベースの検索のために利用できる。あるいはまた、これら配列は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ配列を含む、ゲノムまたはｃＤＮＡクローンを同定するために使用するプローブを設計するのに利用できる。もう一つの方法は、これら配列を、植物ＤＮＡからのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子のＰＣＲ増幅で使用するための、オリゴヌクレオチドプライマーの設計のために使用することであろう。
【００１９】
γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ配列を同定したかいなかを確認するために、野生型のシネコシスティスを使用した遺伝子置換、シネコシスティスγ−ＴＭＴノックアウト変異体を使用した相補性研究、または適当な基質およびＥ．コリまたは他の適当な発現系内で発現された、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼタンパクを使用した、インビトロ酵素アッセイを実施することができる。植物プロモータと機能可能に結合された、該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列を含む、遺伝子構築体を樹立して、アラビドプシスまたは興味ある植物もしくは栽培植物を形質転換するのに使用できる。ゲノム内にこの構築体を含むトランスジェニック植物は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの改変された発現性および形質転換されていない野生型植物に対して、改変されたトコフェロールプロフィールをもつことが予想されるであろう。
【００２０】
該γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子の１を越えるコピーを有する倍数体植物は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子配列において、対立遺伝子変化を持つ可能性があるものと予想される。配列番号１または配列番号３に対して１００％未満の相同性をもつ推定上のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子配列が、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性を持つタンパクをコードすることが予想される。
自然に発生したものであれ、インビトロで導入されたものであれ、ヌクレオチド付加、削除および変異と関連する、配列番号１または配列番号３からの僅かな配列変化が、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性に影響を与えないであろうことが、想像される。本発明の範囲は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ配列における僅かな変化をも包含するものである。また、共通のアミノ酸を指定するコドンを変え、あるいは酵素の重要でない部分をコードするＤＮＡ配列における、保存性のアミノ酸置換を行うことにより、ある遺伝子のコード配列を改変することは、完全に、植物遺伝子操作に係わる当業者の知識の範囲内にある。
【００２１】
γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼコード配列とは本来結合していない、植物プロモータと機能可能に結合した、該コード配列を含む、発現ベクターの溝築は、当分野で公知の標準的な分子生物学的技術を利用して達成されるであろう。該植物プロモータは、組織特異的プロモータ、例えば種子特異的プロモータ（例えば、ナピン（ｎａｐｉｎ）またはＤＣ３）、構成的プロモータ、例えばＣａＭＶ ３５Ｓ、発生段階特異的プロモータ、または誘発性プロモータであり得る。プロモータは、また転写の効率を改善する、幾つかのエンハンサー配列を含むこともできる。場合により、この構築体は、ナパリン（ｎａｐａｌｉｎｅ）シンターゼターミネータ（ＮＯＳ）等の停止シグナルを含むこともできる。好ましくは、これら構築体は、形質転換体の同定を簡略化するための、選別可能なまたはスクリーニング可能なマーカーを含むであろう。これら構築体は、センスまたはアンチセンス配向にある該コード配列を持つことができる。
【００２２】
γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子を含む、遺伝子構築体が得られれば、当分野で公知の標準的方法を利用して、植物または植物組織に、該構築体を容易に導入することができる。例えば、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）形質転換系は、全ての双子葉植物および幾つかの単子葉植物について良好に機能することが知られている。同様に双子葉植物および単子葉植物において有用な、その他の形質転換法も、使用可能である。トランスジェニック植物は、粒子衝撃、エレクトロポレーション、または植物分子生物学の当業者には公知の、任意の他の形質転換法によって得ることができる。植物遺伝子操作の技術における、これまでの実験は、該遺伝子導入法が、該トランスジェニック植物において達成された該表現型に影響を与えないことを教示している。
【００２３】
トランスジェニック植物は、培養物中で、植物細胞を直接形質転換し、次いで植物を再生することによって得ることができる。より具体的には、トランスジェニック植物は、親トランスジェニック植物により生成されたトランスジェニック種子から得ることができる。トランスジェニック植物は、しばしば導入遺伝子と呼ばれる、挿入された遺伝子を、本来の遺伝子が行っているものと同一の、正常なメンデルの遺伝によって、その子孫に伝える。耕種学的に興味ある植物を繁殖させかつ再生する方法は、当分野で公知である。トランスジェニック植物に係わる経験は、また該挿入遺伝子または導入遺伝子が、公知の植物繁殖技術によって、容易に任意の所定の遺伝的背景に伝達できることを立証している。
【００２４】
トランスジェニック植物における、異種γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの発現が、該植物における該トコフェロールプロフィールを改変するであろうと予想することは、妥当である。該α−トコフェロール：γ−トコフェロールの比を高めるという、固有の利点に加えて、該トコフェロールプロフィールにおける変化が、固有の有利な表現型において起こる可能性がある。本発明は、本発明の実施により得られた植物において、トコフェロールの生合成により得ることができる、他の有利な表現型をも包含するものである。
本明細書に開示した情報および当分野で公知の標準的な方法を利用すれば、当業者は、興味のある任意の穀類植物または飼料植物を使用して、本発明を実施することができる。
【００２５】
実施例
実施例１．シネコシスティスＰＣＣ６８０３の推定されるγ−ＴＭＴ遺伝子の同定及び特徴づけ
本発明者らは、最近下記のようにシネコシスティスからγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子をクローニングし、かつ特徴付けた。シロイヌナズナのｐ−ヒドロキシフェニル−ピルビン酸デヒドロゲナーゼ（ＨＰＰＰａｓｅ）のｃＤＮＡ配列（Ｎｏｒｒｉｓ ａｎｄ Ｄｅｌｌａ Ｐｅｎｎａ、Ｇｅｎｅｂａｎｋ寄託番号ＡＦ０００２２８、Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ、既刊）を用いて、シネコシスティスＰＣＣ６８０３ゲノムのＤＮＡ配列を含むデータベースを検索した（Ｋａｎｅｋｏら、ＤＮＡ Ｒｅｓ．、３：１０９−１３６（１９９６））。我々は、シロイヌナズナの酵素ＨＰＰＤａｓｅとアミノ酸配列の高度の類似性（すなわち３５％の同一性及び６１％の類似性）を共有するオープンリーディングフレーム（ＳＬＲ００９０と称す）を同定した。推定されるシネコシスティスＨＰＰＤａｓｅ遺伝子は、公表されたシネコシスティスＰＣＣ６８０３ゲノムの塩基２，８９３，１８４から２，９０５，２３５を包含している１０種のオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）でなるシネコシスティスゲノム中のオペロン内に局在している（Ｋａｎｅｋｏら、前記（１９９６））。我々は、このオペロンは、更にトコフェロール合成に関与する他の酵素をコードしている別の遺伝子も含むであろうと仮定した。
【００２６】
２種のＯＲＦ（ＳＬＲ００８９及びＳＬＲ００９５）を、シネコシスティスのトコフェロールメチルトトランスフェラーゼ遺伝子の可能性のある候補として同定した。ＯＲＦ ＳＬＲ００８９及びＳＬＲ００９５によるＢＬＡＳＴの検索は、これらのタンパク質がそれぞれ、公知のタンパク質配列であるΔ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼ及び様々な植物のカフェオール（ｃａｆｆｅｏｌ）ＣｏＡ−Ｏ−メチルトランスフェラーゼと高度の類似性を共有していることを示した。ＳＬＲ００８９及びＳＬＲ００９５の両方のタンパク質は、保存されたＳ−アデノシル−メチオニン（ＳＡＭ）結合ドメインに相当する共通配列を含む（Ｋａｇａｎ及びＣｌａｒｋｅ、Ａｒｃｈｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｉｏｃｈｅｍ． ａｎｄ Ｂｉｏｌｇｙ、３１０（２）：４１７−４２７（１９９６））。ＳＬＲ００８９タンパク質は、トコフェロールメチルトランスフェラーゼにおいて認められた特徴と一致している別の構造的特徴を有する。これらの特徴は、ＳＬＲ００９５では認められなかった。第一に、これら２種のタンパク質のＰＳＯＲＴ（タンパク質局在部位の予測）コンピュータ解析は、ＳＬＲ００８９が細胞膜に局在する一方で、ＳＬＲ００９５が細胞質ゾルに局在することを予測している。シアノバクテリアにおけるトコフェロールの生合成は、細胞膜において生じると考えられ；その結果、ＳＬＲ００８９タンパク質の細胞膜への局在が、これがトコフェロールメチルトランスフェラーゼであり得ることを示唆している。更に、ＰＳＯＲＴ解析は、ＳＬＲ００８９タンパク質の最初の２５個のアミノ酸中に推定される細菌性シグナル配列の存在を同定した。成熟したＳＬＲ００８９タンパク質の予想される分子量（シグナル配列の短縮化後）は３２，７６６ダルトンであり、これは報告されたコショウの実（ｐｅｐｐｅｒ ｆｒｕｉｔｓ）から精製されたものの分子量（３３，０００ダルトン）と非常に近似している。ＳＬＲ００９５の推定された分子量は２４，３２２ダルトンである。従って我々は、これら２種の同定されたＯＲＦにおいてＳＬＲ００８９遺伝子が恐らくトコフェロールメチルトランスフェラーゼであろうと結論した。
【００２７】
実施例２．シネコシスティスγ−ＴＭＴ遺伝子の増幅及びクローニング
シネコシスティスゲノムＤＮＡを、Ｗｉｌｌｉａｍｓの方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１６７：７７６−７７８（１９８７））に従って単離した。シネコシスティスゲノムＤＮＡからＳＬＲ００８９遺伝子を、センス鎖に特異的なプライマー（ＳＬＲ００８９Ｆ、配列番号：５）及びアンチセンス（ｎｏｎ−ｓｅｎｓｅ）鎖に特異的なプライマー（ＳＬＲ００８９Ｒ、配列番号：６）を使用するポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により、下記の条件下で増幅した：
ＳＬＲ００８９のオープンリーディングフレームの増幅は、０．４ｍＭ ｄＡＴＰ、０．４ｍＭ ｄＧＴＰ、０．４ｍＭ ｄＣＴＰ、０．４ｍＭ ｄＣＴＰ、０．４ｍＭ ｄＴＴＰ、０．２μＭ ＳＬＲ００８９Ｆプライマー、０．２μＭ ＳＬＲ００８９Ｒプライマー、１０ｎｇシネコシスティスＰＣＣ６８０３ゲノムＤＮＡ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．４）、５０ｍＭ ＫＣｌ、２ｍＭ ＭｇＣｌ２、及び２．５ユニットＴａｑポリメラーゼ（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）を含有する５０μｌの反応容量中で行った。ＰＣＲの温度サイクル条件は、下記のように行った：
５分間９５℃（１サイクル）
１分間９５℃≧１分間５５℃≧１．５分間７２℃（３５サイクル）
７分間７２℃（１サイクル）
【００２８】
このＳＬＲ００８９ ＯＲＦを含むＰＣＲ産物を、当業者に公知の標準的分子生物学的技術を用いてクローニングした。簡単に述べると、増幅したＳＬＲ００８９ ＯＲＦを精製し、かつＫｌｅｎｏｗ断片で処理することにより平滑末端を形成した。ＳＬＲ００８９遺伝子をＥｃｏＲＶで線状化したｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＫＳ ＩＩ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ Ｉｎｃ．， ＬａＪｏｌｌａ， ＣＡ）にライゲーションした。このライゲーション混合物を用いて、コンピテント細胞Ｅ．ｃｏｌｉ　ＤＨ５αに形質転換し、推定される形質転換体をアンピシリン耐性を基に選択した。形質転換体から単離したｐＨ−１と称されるプラスミドは、ＳＬＲ００８９挿入断片を含むことがわかった。ＳＬＲ００８９遺伝子（配列番号：１）の同一性は、Ｔ７及びＴ３シークエンシングプライマーを用いて配列決定することにより確認した。
【００２９】
実施例３．ＳＬＲ００８９ノックアウト変異体の開発
標準的分子生物学的技法を用いて、遺伝子置換ベクターを構築した。ＳＬＲ００８９ ＯＲＦに独特なＮｃｏＩ切断部位を含むプラスミドｐＨ１を、ＮｃｏＩ制限エンドヌクレアーゼで消化した。Ｔｎ９０３由来のアミノグリコシド３’−ホスホトランスフェラーゼ遺伝子をｐＨ１のＮｃｏＩ切断部位にライゲーションし、このライゲーション混合物を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ ＤＨ５α細胞を形質転換した。形質転換体は、カナマイシン及びアンピシリンを用いて選択した。破壊されたＳＬＲ００８９ ＯＲＦを含む組換えプラスミド（ｐＱ−１）を単離し、かつＷｉｌｌｉａｍｓの方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１６７：７７６−７７８（１９８７））に従ってシネコシスティスＰＣＣ６８０３の形質転換に使用した。
【００３０】
シネコシスティスの形質転換体は、１５ｍＭグルコース及び１５μｇ／ｍｌカナマイシンを含有するＢＧ−１１培地（Ｃａｓｔｅｎｈｏｌｚ、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、６８〜９３ページ、１９８８年）について選択した。全ての培養液を、連続して光を当てながら２６℃で増殖した。４つの個別の形質転換体を、新鮮な培地へ単一コロニーの５回の継代培養により維持した。ＰＣＲ及びゲノム解析を用いて、この遺伝子置換がうまく完了したことを確認した。
【００３１】
実施例４．野生型及び変異シネコシスティスのトコフェロールの特徴
ＢＧ−１１寒天培地上で２週間増殖したシネコシスティス培養物から、約２００ｍｇの細胞を剥ぎ取った。これらの細胞を、１ｍｇ／ｍｌブチル−ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）を含有するメタノール：ＣＨＣｌ３の２：１（容量：容量）溶液６ｍｌ中で、ポリトロンホモジナイザーを用いてホモジナイズした。ホモジナイズした後に、ＣＨＣｌ３ ２ｍｌ及び２回蒸留した水３．４ｍｌを、このホモジネートに加えた。下側の脂質相を除去し、窒素ガス下で乾燥した。乾燥した脂質を、１ｍｇ／ｍｌ ＢＨＴを含有するＨＰＣＬ用の酢酸エチル２００μｌ中に再懸濁した。
【００３２】
トコフェロールは、蛍光検出装置を装備したＨｅｗｌｅｔｔ−Ｐａｃｋａｒｄ社のシリーズ１１００ ＨＰＬＣシステムを用いる逆相ＨＰＬＣにより分析した。粗脂質抽出物を、Ｗａｔｅｒ Ｓｐｈｅｒｉｓｏｒｂ Ｓ５ ＯＤＳ２ ４．６ ｘ ２５０ ｍｍカラム上で、７５％メタノール及び２５％イソプロパノールからなる移動相を用い、流量１ｍｌ／分で分画した。蛍光の測定は、２９０ｎｍの波長で励起した後、３３０ｎｍで行った。
【００３３】
野生型シネコシスティスは、最も豊富なトコフェロールとしてα−トコフェロールを産生した（全トコフェロールの９５％以上）。ＳＬＲ００８９が破壊されたシネコシスティス変異体は、最早α−トコフェロールを合成することができず、代わりにその唯一のトコフェロールとしてγ−トコフェロールを蓄積していた。α−トコフェロール産生の排除とそれに随伴するγ−トコフェロールの蓄積は、結果的にＳＬＲ００８９が、α−トコフェロールの生合成の最終工程であるγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼをコードしていることを示している。
【００３４】
実施例５．ＥＳＴデータベースからの推定されるシロイヌナズナのγ−ＴＭＴ ｃＤＮＡの同定
シネコシスティスγ−ＴＭＴ ＤＮＡ及びタンパク質の配列をクエリーとして用いて、シロイヌナズナのＥＳＴデータベース（Ａｕｓｂｅｌら、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｇｒｅｅｎｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ ａｎｄ Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｓｅ、ニューヨーク、１９８７年）を検索した。シネコシスティス配列と明らかに相同な２種のｃＤＮＡクローンを同定した：シロイヌナズナΔ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼ及びシロイヌナズナが発現した配列標識（ＥＳＴ）クローン１６５Ｈ５Ｔ７であった。Δ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼは酵母のΔ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼ変異体（ｅｒｇ６）を相補するその能力によって機能的に同定されたので、我々は、このクローンはγ−ＴＭＴをコードしていないと確信した（Ｈｕｓｓｅｌｓｔｅｉｎら、ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ、３８１：８７−９２（１９９６））。従って、我々はシロイヌナズナ１６５Ｈ５Ｔ７ ＥＳＴクローン（Ｇｅｎｅｂａｎｋ寄託番号Ｒ３０５３９）に労力を集中することを決心した。１６５Ｈ５Ｔ７ ＥＳＴクローンのＤＮＡ配列を決定し（配列番号：３）、推定されるタンパク質のアミノ酸配列を予想した。この配列を、シネコシスティスγ−ＴＭＴの配列に並置した（図１）。完全な長さの１６５Ｈ５Ｔ７クローンは、シネコシスティスγ−ＴＭＴと３５％が同一で、６６％が類似しているようなタンパク質をコードしていて、同一性の巨大なブロックを示している。非反復タンパク質のデータベースに対するクエリーとして１６５Ｈ５Ｔ７を用いた場合、ＳＬＲ００８９との最大の相同性（Ｐ＜１０−５４）があるが、公知の４種の植物のΔ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼとは単に中等度の相同性（Ｐ≧１０−５）であることがわかった。更に１６５Ｈ５Ｔ７は、多くのメチルトランスフェラーゼに共通の保存されたＳＡＭ結合モチーフを含むが（図１）、今日までに同定された４種の植物のΔ−（２４）−ステロール−Ｃ−メチルトランスフェラーゼで共通であることが提唱されたステロール結合ドメインは欠損している（Ｈｕｓｓｅｌｓｔｅｉｎら、前記（１９９０））。これらのデータは、クローン１６５Ｈ５Ｔ７が、我々がＡ．ｔ．γ−ＴＭＴと称するシロイヌナズナのγ−ＴＭＴ相同体をコードしていることを示唆している。
【００３５】
実施例６．シネコシスティスにおける遺伝子置換を用いる推定されるシロイヌナズナのγ−ＴＮＴ相同体の特徴付け
推定されるγ−ＴＭＴ相同体をコードしている植物のｃＤＮＡは、シネコシスティスにおける２種の遺伝子置換法のひとつを用いて、機能的に同定することができる。用いることができるひとつの方法は、野生型シネコシスティスの内因性シネコシスティスγ−ＴＭＴ遺伝子を、推定されるシロイヌナズナγ−ＴＭＴのｃＤＮＡ　１６５Ｈ５Ｔ７と置換することである。シネコシスティスγ−ＴＭＴ（コード配列＃ＳＬＲ００８９）遺伝子置換ベクターを、５’から３’へ順に下記の特徴を含むように構築する：１）天然のＳＬＲ００８９遺伝子のすぐ上流（５’側）に認められたシネコシスティスゲノム配列に相当するＤＮＡ配列の少なくとも３００の塩基対；２）独自のインフレームのＮｃｏＩ切断部位の末端を持つ同定された細菌性シグナル配列に相当するＳＬＲ００８９ ＯＲＦの最初の７７の塩基対；３）ポリリンカー及びマルチクローニングサイト；４）抗生物質耐性マーカー（例えばカナマイシン耐性遺伝子カセット）；及び５） 天然のＳＬＲ００８９遺伝子のすぐ下流（３’側）に認められたシネコシスティスゲノム配列に相当するＤＮＡ配列の少なくとも３００の塩基対。相補性について試験される推定される植物のγ−ＴＭＴのｃＤＮＡを、ＮｃｏＩ切断部位又はマルチクローニングサイトに挿入される。
【００３６】
１６５Ｈ５Ｔ７ ｃＤＮＡは、遺伝子操作により、ＰＣＲ突然変異誘発を用いてＰＳＯＲＴにより予想された転位性の（ｔｒａｎｓｉｔ）ペプチド切断部位にＮｃｏＩ切断部位を含むようにすることができ、これはアミノ酸Ｖａｌ−４８をＭｅｔに変更する。このｃＤＮＡをＳＬＲ００８９遺伝子置換プラスミドの独自のＮｃｏＩ切断部位にライゲーションし、シネコシスティスγ−ＴＭＴシグナルペプチドと植物のタンパク質配列の間でインフレーム、アミノ末端の融合体を形成する。この構築体を使用して、野生型シネコシスティスを形質転換し；この形質転換体はカナマイシン選択性について同定する。いくつかの単一のコロニーを選択しながら継代した後、遺伝子置換をＰＣＲによって確認する。形質転換体のトコフェロールの特性は、ＨＰＬＣにより決定する。シロイヌナズナのγ−ＴＭＴを機能的に発現しているシネコシスティス形質転換体は、それらの機能的シネコシスティスγ−ＴＭＴ遺伝子非存在下でα−トコフェロールを合成する能力について同定する。
【００３７】
別の方法においては、推定されるγ−ＴＭＴ遺伝子を、そのシネコシスティスγ−ＴＭＴノックアウト変異体を相補する能力に従って特徴付けることができる。前記置換ベクターを、完全な推定されるγ−ＴＭＴ遺伝子及びカナマイシン以外の抗生物質耐性マーカーを含むように構築することができる。形質転換及び選択の後、遺伝子置換体をＰＣＲによって確認することができ、かつこれらの形質転換体をトコフェロール分析によって更に特徴付けることができる。
【００３８】
実施例７．Ｅ．ｃｏｌｉにおける発現によるシロイヌナズナ及びシネコシスティスのγ−ＴＭＴ遺伝子の機能的特徴づけ
シネコシスティスＳＬＲ００８９遺伝子及びシロイヌナズナ１６５Ｈ５Ｔ７のｃＤＮＡクローンによってコードされたタンパク質を、Ｅ．ｃｏｌｉにおける機能発現を通じて、γ−ＴＭＴとして同定した。
【００３９】
ＳＬＲ００８９遺伝子は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いて、シネコシスティスＰＣＣ６８０３ゲノムから増幅した。前向きプライマー（ＳＬＲ００８９ｃｏｌｉＦ、配列番号：７）は、プライマーの５’末端へＢｓｐＨＩ切断部位を加えるようにデザインした。後向き（３’）ＰＣＲプライマー（ＳＬＲ００８９ｃｏｌｉＲ、配列番号：８）は、プライマーの５’末端に遺伝子操作したＢｇｌＩＩ切断部位を持つようにデザインした。
【００４０】
ＰＣＲ反応を、各々が、ｄＮＴＰ類（各０．４ｍＭ）、２μＭ ＳＬＲ００８９ｃｏｌｉＦ、２μＭ ＳＬＲ００８９ｃｏｌｉＲ、１０ｎｇシネコシスティスＰＣＣ６８０３ゲノムＤＮＡ、１０ｍＭ ＫＣｌ、６．０ｍＭ （ＮＨ４）２ＳＯ４、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．２）、２ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．１％トリトンＸ−１００、１０μｇ／ｍｌ ＢＳＡ、２．５ユニットＰｆｕポリメラーゼ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， ＬａＪｏｌｌａ， ＣＡ）を含む２種の反応混合液１００μｌ中おいて行った。下記の温度サイクル条件を用いた：
５分間９５℃（１サイクル）
０．７５分間９４℃≧０．７５分間５５℃≧２分間７２℃（３０サイクル）
１０分間７２℃（１サイクル）
【００４１】
このＰＣＲ断片をゲルで精製し、及びＥｃｏＲＶで線状化したｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＫＳ ＩＩ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， ＬａＪｏｌｌａ， ＣＡ）にライゲーションした。このライゲーション産物を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ株ＤＨα５を形質転換し、かつ推定される形質転換体を、アンピシリン耐性を基に選択した。この挿入断片を含む組換えプラスミド（ｐ０８２２９７と称す）を配列決定し、ＳＬＲ００８９配列が正確に増幅されかつサブクローニングされたことを確認した。
【００４２】
ＳＬＲ００８９の予想されたアミノ酸配列は、この予想されるアミノ酸配列の最初の２４個のアミノ酸を含む推定のアミノ末端の細菌性シグナル配列を含む。このアミノ末端シグナル配列は、Ｅ．ｃｏｌｉにおいて発現される場合にＳＬＲ００８９タンパク質のコンホメーションに影響を及ぼし、このタンパク質を失活するので、我々はＳＬＲ００８９ ＤＮＡ配列を、推定されるアミノ末端の細菌性シグナル配列を欠く短縮化されたタンパク質をコードするように修飾した。このＳＬＲ００８９遺伝子は、推定される細菌性シグナル配列について予想される切断部位にＮｃｏＩ認識配列を含む。ｐ０８２２９７−ｃｏｌｉ由来の短縮化したＳＬＲ００８９ ＤＮＡ配列を含むＮｃｏＩ−ＢｇｌＩＩ断片を、Ｔ７ Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＥＴ３Ｄ発現ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ， Ｍａｄｉｓｏｎ， ＷＩ）のＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩ制限部位へと、正確なリーディングフレームでサブクローニングした。このライゲーション混合物を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ ＢＬ２１（ＤＥ３）を形質転換し、かつ形質転換体をアンピシリン耐性を基に選択した。この挿入断片を含むプラスミド（ｐ０１１６９８−１と称す）を、酵素ＨｉｎｄＩＩＩによる制限消化分析により同定した。
【００４３】
更に１６５Ｈ５Ｔ７ ｃＤＮＡクローンも、ｐＥＴ３Ｄ発現ベクターにサブクローニングした。１６５Ｈ５Ｔ７の推定されるアミノ酸配列の最初の５０個のＮ−末端のアミノ酸は、Ｅ．ｃｏｌｉにおいて発現される場合に１６５Ｈ５Ｔ７タンパク質のコンホメーションに影響を及ぼし、このタンパク質を失活する推定されるアミノ末端の葉緑体ターゲティング配列を含む。従って我々は、１６５Ｈ５Ｔ７ ＤＮＡ配列を、推定される網の末端の葉緑体ターゲティング配列を欠いた短縮化されたタンパク質をコードするように修飾した。この短縮化した１６５Ｈ５Ｔ７ ＤＮＡ配列は、当初の１６５Ｈ５Ｔ７配列のヌクレオチド３５３とヌクレオチド１７９０の間の領域に対応する配列を増幅するようにデザインされたプライマーを用いる、１６５Ｈ５Ｔ７ ｃＤＮＡ のＰＣＲ増幅によって得た。前向きＰＣＲプライマー（１６５ｍａｔＦ、配列番号：９）は、短縮化された１６５Ｈ５Ｔ７配列の５’末端にＮｃｏＩ切断部位を加え、ｐＥＴ３Ｄベクターへのクローニングを促進する。後向き（３’）ＰＣＲプライマー（１６５ｍａｔＲ、配列番号：１０）は、このプライマーの５’末端に遺伝子操作されたＡｃｃＩ切断部位を伴い、ｐＳＰＯＲＴ１ベクターのポリリンカー領域からデザインされた。このＰＣＲ反応は、１６５ｍａｔＦプライマー及び１６５ｍａｔＲプライマー（各々２μＭ）で、前述の、短縮化されたシネコシスティス遺伝子の増幅について説明したのと同じＰＣＲ条件を用いて行った。
【００４４】
ゲルによる精製の後、ＰＣＲ断片をＥｃｏＲＶで線状化したｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＫＳ ＩＩにライゲーションし、このライゲーション産物を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ株ＤＨα５を形質転換し、アンピシリン耐性の推定される形質転換体を選択した。挿入断片を含む組換えプラスミド（ｐ０１０４９８−２と称す）を同定した。ｐ０１０４９８−２のＤＮＡ配列を決定し、短縮化された１６５Ｈ５Ｔ７配列の正確な増幅とサブクローニングが行われたことを確認した。この短縮化された１６５Ｈ５Ｔ７ ＤＮＡ配列をＮｃｏＩ−ＢａｍＨＩ断片として、ＮｃｏＩ及びＢａｍＨＩで消化したｐＥＴ３Ｄベクターにサブクローニングした。このライゲーション産物を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ ＤＨα５を形質転換し、かつアンピシリン耐性を基に選択した。この挿入断片を含むプラスミド（ｐ０１１８９８−１と称す）を、酵素ＨｉｎｄＩＩＩを用いる制限消化分析によって同定した。
【００４５】
ｐ０１１６９８−１及びｐ０１１８９８−１構築体を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ Ｔ７発現宿主ＢＬ２１（ＤＥ３）を形質転換した。γ−ＴＭＴアッセイのためのタンパク質を生成するために、これらの構築体のひとつを含む形質転換した宿主細胞の１Ｌの培養液を、１００ｍｇ／Ｌアンピシリンを含有するＬｕｒｉａブロス中で増殖した。各培養は、６００ｎｍでの光学濃度（ＯＤ６００）が０．１の時点で開始し、かつ２８℃の振盪インキュベーター中で、ＯＤ６００が０．６になるまでインキュベーションし、この時点でイソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を、各培養液に、最終濃度が０．４ｍＭ ＩＰＴＧと成るように添加した。各培養液を、更に３時間２８℃でインキュベーションし、かつ８，０００ｇで遠心分離して細胞を収集した。その後細胞のペレットを、１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ （ｐＨ７．８）、５ｍＭ ＤＴＴ、０．２４Ｍソルビトール、１ｍＭ ＰＭＳＦの１０ｍｌ液の中で再浮遊した。細胞を、マイクロチップ超音波装置を用いて、４回の１０秒パルスで超音波処理することにより溶解した。各ホモジネートにトリトンＸ １００を、最終濃度が１％となるように添加した。これらのホモジネートを、氷上で３０分間インキュベンションし、かつ４℃で３０，０００ｇ ｘ ３０分間遠心分離した。これらの抽出物の上清を、下記のようにγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性についてアッセイした。
【００４６】
γ−ＴＭＴアッセイを、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（シネコシスティス酵素についてはｐＨ７．５及びシロイヌナズナ酵素についてはｐＨ８．５）、５ｍＭ ＤＴＴ、５ｍＭγ−又はδ−トコフェロール、及び０．０２５μＣｉ（５５μＣｉ／ｍｍｏｌ）（１４Ｃ−メチル）−Ｓ−アデノシルメチオニンを含有する容量２５０μｌ中で行った。反応混合物は室温で３０分間インキュベーションした。この反応を、１ｍｇ／ｍｌブチル−ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）を含有する ＣＨＣｌ３：メタノール２：１（ｖ：ｖ） １ｍｌ及び水を溶媒とする０．９％ＮａＣｌ ２５０μｌを添加し、激しく攪拌することによって停止した。試料を遠心分離し、相を分離した。ＣＨＣｌ３相（下側）を、α−トコフェロール１００ｍｇを含有する新しい試験管に移し、その後真空下で急速減圧（ｓｐｅｅｄ−ｖａｃ）により、ＣＨＣｌ３を除去した。乾燥した脂質分画を、１ｍｇ／ｍｌ ＢＨＴを含む酢酸エチル５０μｌに再懸濁した。脂質抽出物を、シリカ６０ ＴＬＣプレート上で、ジクロロメタンにより分画した。次にトコフェロールを、プレートをＥｍｍｅｒｉｅ−Ｅｎｇｅｌｓ溶液（エタノールを溶媒とする０．１％ ＦｅＣｌ３、０．２５％ ２，２’−ジピリジル）で染色した後、真のトコフェロール標準品と同時移動させることにより同定した。α−トコフェロールに相当するバンドを、ＴＬＣプレートから切り出し、存在する放射性物質の量をシンチレーションカウンターにより測定した。これらの実験は、シネコシスティスＳＬＲ００８９及びシロイヌナズナ１６５Ｈ５Ｔ７ ＤＮＡ配列によってコードされたタンパク質が、γ−トコフェロールをα−トコフェロールに転換することができたことを示した。
【００４７】
シネコシスティス及びシロイヌナズナのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの活性について、いくつかの異なるメチル置換したトコフェロール基質を用いて試験した。両酵素は、特異的にδ−トコフェロールをβ−トコフェロールに転換することができた。これら２種の酵素は、基質として、トコール、５，７−ジメチルトコール、β−トコフェロール、及びγ−トコフェロールを用いることはできなかった。これらの結果は、シネコシスティス及びシロイヌナズナのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼは両方とも、トコフェロールのクロマン環の５位の炭素のメチル化を触媒することを示している。シネコシスティス及びシロイヌナズナのγ−ＴＭＴは、活性のためにはクロマン環の８位に存在するメチル基、並びに完全に飽和したプレニル−テールを伴う基質が必要であるように見える。我々の結果は、シロイヌナズナのγ−ＴＭＴが、γ−トコフェロール基質の方が、δ−トコフェロール基質よりも、より大きい活性を発揮する一方で、シネコシスティスのγ−ＴＭＴは、γ−トコフェロールとδ−トコフェロールについて同程度の活性であるように見えることを示した。
【００４８】
実施例８．シロイヌナズナγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの過剰発現によるシロイヌナズナ及び他の植物におけるトコフェロールの定量的操作
シロイヌナズナの葉及び種子から得た脂質抽出物のＨＰＬＣ分析の結果は、これらの組織が比較的単純なトコフェロールの性質を有することを示している。シロイヌナズナの葉において、α−トコフェロールは、総トコフェロール含量の〜９０％で存在し、総トコフェロール含量の残りはγ−トコフェロールが占める。シロイヌナズナの種子においては、γ−トコフェロールが、シロイヌナズナの種子の総トコフェロール含量の〜９５％で存在し、残りはδ−トコフェロールである。これらの単純なトコフェロールの性質は、シロイヌナズナの種子及びは組織を、植物におけるγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子発現の変更の機能的結論を評価するための理想的な標的にしている。
【００４９】
我々は、シロイヌナズナにおいてγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子の発現を増すことは、総トコフェロールに対する割合としてのα−トコフェロールレベルを上昇するであろうと仮定した。この仮説を検証するために、完全な長さのシロイヌナズナのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼｃＤＮＡクローン１６５Ｈ５Ｔ７を、トランスジェニックなシロイヌナズナにおいて、強力な構成性カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓ転写物（ＣａＭＶ ３５Ｓ）プロモーター及び特異的なニンジン胚ＤＣ３プロモーター（Ｓｅｆｆｅｎｓ ＷＳら、Ｄｅｖ． Ｇｅｎｅｔ、１１：６５−７６（１９９０））の制御下で過剰発現した。
【００５０】
種子に特異的な植物性遺伝子発現プラスミドを、アグロバクテリウム植物形質転換ベクターであるｐＢＩＢ−Ｈｙｇ誘導体から構築した（Ｂｅｃｋｅｒ， Ｄ． 、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．、１８：２０３（１９９０））。ニンジン胚ＤＣ３プロモーターを、ＨｉｎｄＩＩＩ及びＢａｍＨＩによる消化後に、プラスミドｐＢＳ−ＤＣ３の５’ ＰＨから単離した。その後このＤＣ３のＨｉｎｄＩＩＩ及びＢａｍＨＩプロモーター断片を、ＤＮＡポリメラーゼで処理し、５’−突出末端を満たした。ｐＢＩＢ−Ｈｙｇプラスミドを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化し、その後ＤＮＡポリメラーゼで処理して、５’−突出末端を満たした。ＤＣ３プロモーター断片を、ｐＢＩＢ−Ｈｙｇにライゲーションし、ｐ１１１３９７と称するプラスミドを形成した。シロイナズナのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼｃＤＮＡ １６５Ｈ５Ｔ７は、として、ＳａｌＩ−ＸｂａＩ断片としてセンス方向で、ｐ１１１３９７のＳａｌＩ及びＸｂａＩ制限部位にサブクローニングし、ｐ１２２９９７を得た。このｐ１２２９９７プラスミドは、下記の構造を有した：１）植物のヒグロマイシン選択マーカー；２）アグロバクテリウムのＴ−ＤＮＡの左右の境界配列；３）ニンジン種子に特異的なＤＣ３プロモーター及びノポリン（ｎｏｐｏｌｉｎｅ）シンターゼ３’転写終結配列の間にクローニングされたシロイヌナズナ１６５Ｈ５Ｔ７のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼｃＤＮＡ；４）ＲＫ２の広範な宿主細菌プラスミドの複製起点；及び、５）細菌性カナマイシン耐性選択マーカーである。
【００５１】
構成的シロイヌナズナγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子発現プラスミドは、ｐＳＮ５０６ ＣａＭＶ ３５Ｓ植物性発現バイナリーベクターである、ｐ−ヒドロキシフェノールピルビン酸ジオキシゲナーゼ（ＨＰＰＤａｓｅ）ｃＤＮＡがＣａＭＶ ３５Ｓプロモーターの制御下にあるようなｐＡＲＴ２７誘導体に由来した（Ｎｏｒｒｉｓ及びＤｅｌｌａ Ｐｅｎｎａ、既報）。ＣａＭＶ ３５Ｓ／γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ構築体は、ＨＰＰＤａｓｅ ｃＤＮＡを、完全な長さの１６５Ｈ５Ｔ７ ｃＤＮＡ配列で置換することによって作成した。ＨＰＰＤａｓｅ ｃＤＮＡ断片を、ｐＳＮ５０６から、ＸｂａＩ及びＸｈｏＩによるこのプラスミドの消化によって除去した。ｐＳＮ５０６ のＸｂａＩ−ＸｈｏＩベクター断片の ５’ ＤＮＡの突出末端は、Ｅ．ｃｏｌｉ ＤＮＡポリメラーゼのＫｌｅｎｏｗ断片を用いて満たした。この線状化したベクターを、完全な長さのγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼをコードしている１６５Ｈ５Ｔ７由来のＸｂａＩ−ＳａｌＩ断片の平滑末端にライゲーションした。挿入断片を含む組換えプラスミドをエ、ｐ０１０３９８と称した。プラスミドｐ０１０３９８は、以下の特性を有する：１） 植物のカナマイシン選択マーカー；２）アグロバクテリウムのＴ−ＤＮＡの左右の境界配列；３）ＣａＭＶ ３５Ｓプロモーター及びノポリンシンターゼ３’転写終結配列の間にクローニングされたシロイヌナズナ１６５Ｈ５Ｔ７のγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼｃＤＮＡ；４）ＲＫ２の広範な宿主細菌プラスミドの複製起点；及び、５）細菌性カナマイシン耐性選択マーカーである。
【００５２】
構成的かつ種子特異的なγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ植物遺伝子発現構築体（ｐ１２２９９７及びｐ０１０３９８）並びに適当な空のベクターを制御するベクター（ｐＡＲＴ２７及びｐ１１１３９７）を用いて、アグロバクテリウム・ツメファシエンス株Ｃ５８ ＧＶ３１０１を形質転換した。野生型シロイヌナズナ（ｅｃｏｔｙｐｅ Ｃｏｌｕｍｂｉａ）植物は、これらのアグロバクテリウム株で、真空浸潤法（Ｂｅｃｈｔｏｌｄ Ｎ．、Ｅｌｌｉｓ Ｊ．、Ｐｅｌｌｅｔｉｅｒ Ｇ．、成熟したアラビドプシス・サリアナ植物の浸潤による植物アグロバクテリウムが媒介した遺伝子導入、ＣＲ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｐａｒｉｓ、１９９３年、１１４４（２）：２０４−２１２）を用いて形質転換した。初代の形質転換体の種子を、適当な抗生物質に対する耐性について、ＭＳ塩、１％ショ糖、０．７％寒天、及び適当な濃度の抗生物質を含有する培地上で選択した。抗生物質耐性の実生（Ｔ１世代を表す）を、土壌に移植し、成熟するまで育種した。これらのＴ１世代植物から得た葉及び種子材料を、ＨＰＬＣにより分析した。
【００５３】
実施例９．トランスジェニック植物の特徴づけ
Ａ．トランスジェニックシロイヌナズナのトコフェロールの特徴の分析
約５ｍｇであることがわかっている植物材料（すなわち種子又は葉）及びトコール１００ｎｇ（内部標準として使用）を、ブチル−ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）１ｍｇ／ｍｌを含有するメタノール：ＣＨＣｌ３の２：１（ｖ：ｖ）液３００μｌ中でホモジナイズした。このホモジネートに、ＣＨＣｌ３の１００μｌ及び水を溶媒とする０．９％（ｗ／ｖ）ＮａＣｌ １８０μｌを添加し、この混合物を短期間激しく攪拌した。次に混合物を遠心分離し、下側（ＣＨＣｌ３）分画を取り出し、新しい試験管に移した。このＣＨＣｌ３分画を真空下で乾燥し、得られた脂質残渣を、Ｃ１８逆相ＨＰＬＣによる分析のためには酢酸エチル１００μｌ中で、もしくは、順相ＨＰＬＣのためにはヘキサン１００μｌ中に最懸濁した。
【００５４】
粗脂質抽出物を、トコフェロールの性質の変化について、順相又は逆相ＨＰＬＣで分析した。個々のトコフェロール種を、それらの蛍光シグナルを、量がわかっている真のトコフェロール標準品の標準曲線と比較することによって定量した。逆相ＨＰＬＣは、実施例４に記したように行った。順相ＨＰＬＣ分析は、Ｌｉｃｏｓｏｒｂ Ｓｉ６０Ａ ４．６ ｘ ２５０ｍｍ ＨＰＬＣカラム上で、下記の条件を用いて行った：
2004514401.tif 000002
【００５５】
ｐ１２２９９７、ｐ０１０３９８、ｐ１１１３９８、ｐＡＲＴ２７で形質転換されたシロイヌナズナ植物由来のＴ１種子材料のＨＰＬＣ分析によって得られた様々なトコフェロール種を、表１に示した。ＣａＭＶ ３５Ｓプロモーター又はニンジンＤＣ３プロモーターのいずれかを用いてγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼを過剰発現している植物は、通常シロイヌナズナの種子に存在しているγ−トコフェロールの大部分を、α−トコフェロールに転換することができ、かつ更に通常シロイヌナズナの種子に存在しているδ−トコフェロールの大部分を、β−トコフェロールに転換することができる。これらの結果は、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼの活性は通常シロイヌナズナの種子に限定的なものであることを示している。
【００５６】
Ｂ．　トランスジェニックシロイヌナズナ種子におけるγ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性の分析
ｐ１２２９９７、ｐ０１０３９８、ｐ１１１３９８、及びｐＡＲＴ２７で形質転換されたＴ１世代の植物の種子を、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性についてアッセイした。タンパク質抽出物を、およそ１０ｍｇの種子を、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．５、５ｍＭ ＤＴＴ、１％トリトンＸ−１００、１ｍＭ ＰＭＳＦの２００μｌ中でホモジナイズすることによって調製した。この抽出物を５分間遠心分離し、不溶性の材料を除去した。各抽出物上清の２５−μｌのアリコートを、実施例７に記したように、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性についてアッセイした。野生型種子及び空のベクターを使った対照では、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ活性は検出されなかった。種子に特異的な株における活性は、およそ２ ｐｍｏｌ／ｈｒ／ｍｇタンパク質であり、３５５の構成的発現系の活性は、０．５ ｐｍｏｌ／ｈｒ／ｍｇタンパク質であった。
【００５７】
実施例１１．他のトランスジェニック植物
α−トコフェロールメチルトランスフェラーゼ遺伝子の植物への簡単な挿入が、植物種子中のトコフェロールの相対的な割合の劇的な変化を生じ得るということを示すこのデータを基に、他の植物種においても同様の結果が得られることを理論的に示唆することが可能になってきている。
【００５８】
本実施例において明らかにされた方法を用いていずれかの植物種におけるトコフェロールの性質を操作することができると予想される。形質転換していない植物の組織中の様々なトコフェロールの濃度を基に、我々は様々な植物種について得ることが可能なトコフェロールの性質を予想した（表２）。γ−トコフェロールが支配的であり、かつ低レベルのα−トコフェロールを含むようないくつかの一般的な植物油（例えば大豆）は、顕著なα−トコフェロールに変化することができることに注意すること。
【００５９】
本明細書において引用した出版物は全て、参照としてここに組入れられている。
【００６０】
本発明は、例示された実施態様に限定されるものではなく、添付された請求項の範囲に収まるようなあらゆる修飾及び変更を包含することが意図されている。
【００６１】
表１
2004514401.tif 000003
ＮＤ＝検出不能
全ての試料は三つ組で分析した。
【００６２】
表２
2004514401.tif 000004
2004514401.tif 000005
１ ＭｅＬａｕｇｈｌｉｎ， Ｐ．Ｊ．， Ｗｅｉｈｒａｕｃｈ， Ｊ．Ｃ．、「食品のビタミンＥ含量」、Ｊ．Ａｍ．Ｄｉｅｔ Ａｓｓ．、７５：６４７−６６８（１９７９）
２ Ｂａｕｅｒｎｆｅｉｎｄ， Ｊ．、「食品のトコフェロール」、Ｉｎ Ｖｉｔａｍｉｎ Ｅ； Ａ．Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｔｒｅａｔｉｃｓ、Ｌ．Ｊ． Ｍａｃｈｌｉｎ編集、Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ， Ｉｎｃ．、ニューヨーク、９９〜１６８ページ
【図面の簡単な説明】
【図１】
アラビドプシスタリアナおよびシネコシスティス由来の、γ−トコフェロールメチルトランスフェラーゼのアミノ酸配列の、配列状態を示す図である。逆三角形は、Ｎ−末端ターゲットドメインの推定上の開列サイトを示し、閉じた円は、ＳＬＲ００８９のリーダーペプチド内の、フレーム内ＮｃｏＩサイトの位置を示す。
【図１】
2004514401.tif 000006
【国際公開パンフレット】
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【国際調査報告】
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