(57)【要約】本発明は、医学において有用な予後方法、特にガンの化学療法に関する。本発明の目的は、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された組織中のＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲの発現レベルを評価するための方法を提供し、そして、患者の腫瘍細胞中のＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ ｍＲＮＡの量を試験し、そしてそれをそれらの遺伝子の規定の閾値の発現レベルと比較する事によって、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による処置に対する、患者の腫瘍の推定される感度を予後判定することである。更に具体的には、本発明は、オリゴヌクレオチドプライマー対ＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕ並びにＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡのそれぞれのレベルを検出するためのそれらの使用を含んで成る方法を提供する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
患者の腫瘍を処置するために、受容体チロシンキナーゼを標的とした薬剤を含んで成る化学療法による養生法を決定するための方法であって、
（ａ）腫瘍の組織試料を入手し；
（ｂ）前記腫瘍に対応する非悪性の組織試料を入手し；
（ｃ）腫瘍の試料及び非悪性の試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｄ）ＥＧＦＲ腫瘍の増幅試料及びＥＧＦＲの非悪性の増幅試料、又はＨＥＲ２−ｎｅｕ腫瘍の増幅試料及びＨＥＲ２−ｎｅｕの非悪性の増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＥＧＦＲ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対、又はストリンジェントな条件下でＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いて、前記ｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｅ）ＨＥＲ２−ｎｅｕ腫瘍の増幅試料及びＨＥＲ２−ｎｅｕの非悪性の増幅試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡの量を決定し、又はＥＧＦＲ腫瘍の増幅試料及びＥＧＦＲの非悪性の増幅試料中のＥＧＦＲ ｍＲＮＡの量を決定し；
（ｆ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを入手し、又はディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルを入手し；そして
（ｇ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルとＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の発現についての閾値とを比較し、又はディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルとＥＧＦＲ遺伝子の発現についての閾値とを比較することによって、化学療法による養生法を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項２】
患者の腫瘍を処置するために、受容体チロシンキナーゼを標的とした薬剤を含んで成る化学療法による養生法を決定するための方法であって、
（ａ）腫瘍の組織試料を入手し；
（ｂ）前記腫瘍に対応する非悪性の組織試料を入手し；
（ｃ）腫瘍の試料及び非悪性の試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｄ）腫瘍の増幅試料及び非悪性の増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＥＧＦＲ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いて、前記ｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｅ）ＥＧＦＲ腫瘍の増幅試料及びＥＧＦＲの非悪性の増幅試料中のＥＧＦＲ ｍＲＮＡの量を決定し；
（ｆ）ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルを入手し；そして
（ｇ）ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルとＥＧＦＲ遺伝子の発現についての閾値とを比較することによって、化学療法による養生法を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項３】
患者の腫瘍を処置するために、受容体チロシンキナーゼを標的とした薬剤を含んで成る化学療法による養生法を決定するための方法であって、
（ａ）腫瘍の組織試料を入手し；
（ｂ）前記腫瘍に対応する非悪性の組織試料を入手し；
（ｃ）腫瘍の試料及び非悪性の試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｄ）腫瘍の増幅試料及び非悪性の増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＥＧＦＲ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対、又はストリンジェントな条件下でＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いて、前記ｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｅ）ＨＥＲ２−ｎｅｕ腫瘍の増幅試料及びＨＥＲ２−ｎｅｕの非悪性の増幅試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡの量を決定し；
（ｆ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを入手し；そして
（ｇ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルとＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の発現についての閾値とを比較することによって、化学療法による養生法を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項４】
患者の腫瘍を処置するために、受容体チロシンキナーゼを標的とした薬剤を含んで成る化学療法による養生法を決定するための方法であって、
（ａ）腫瘍の組織試料を入手し；
（ｂ）前記腫瘍に対応する非悪性の組織試料を入手し；
（ｃ）腫瘍の試料及び非悪性の試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｄ）ＥＧＦＲ腫瘍の増幅試料及びＥＧＦＲの非悪性の増幅試料、又はＨＥＲ２−ｎｅｕ腫瘍の増幅試料及びＨＥＲ２−ｎｅｕの非悪性の増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＥＧＦＲ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対及びストリンジェントな条件下でＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の領域とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いて、前記ｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｅ）ＨＥＲ２−ｎｅｕ腫瘍の増幅試料及びＨＥＲ２−ｎｅｕの非悪性の増幅試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡの量を決定し、そしてＥＧＦＲ腫瘍の増幅試料及びＥＧＦＲの非悪性の増幅試料中のＥＧＦＲ ｍＲＮＡの量を決定し；
（ｆ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを入手し、そしてディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルを入手し；そして
（ｇ）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルとＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の発現についての閾値とを比較し、そしてディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルとＥＧＦＲ遺伝子の発現についての閾値とを比較することによって、化学療法による養生法を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項５】
オリゴヌクレオチドプライマーがＥＧＦＲのオリゴヌクレオチドプライマー対、又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマー対から成る、請求項２に記載の方法。
【請求項６】
オリゴヌクレオチドプライマーがＨＥＲ２−ｎｅｕのオリゴヌクレオチドプライマー対、又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマー対から成る、請求項３に記載の方法。
【請求項７】
腫瘍が非小細胞肺癌の腫瘍である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
プライマーがＨＥＲ２−ｎｅｕのオリゴヌクレオチドプライマー対及びＥＧＦＲのオリゴヌクレオチドプライマー対の両方から成る、請求項４に記載の方法。
【請求項９】
ＥＧＦＲ遺伝子発現の閾値が、対応する非悪性組織におけるＥＧＦＲ遺伝子発現の約１．８倍である、請求項１，２，又は４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
ＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子発現の閾値が、対応する非悪性組織におけるＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子発現の約１．８倍である、請求項１，３，又は４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
組織試料が固定され、又は固定されてパラフィン包埋される、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１２】
固定されてパラフィン包埋された組織試料中のＥＧＦＲの発現レベルを決定するための方法であって；
（ａ）脱パラフィン化した試料を得るために、組織試料を脱パラフィン化し；
（ｂ）有効量のカオトロピック剤の存在下で、脱パラフィン化した試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｃ）増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＥＧＦＲ遺伝子の領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いてｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｄ）内部標準遺伝子のｍＲＮＡの量と比較してＥＧＦＲのｍＲＮＡの量を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項１３】
オリゴヌクレオチドプライマー対がＥＧＦＲのオリゴヌクレオチドプライマー対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマー対から成る、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
固定されてパラフィン包埋された組織試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを決定するための方法であって；
（ａ）脱パラフィン化した試料を得るために、組織試料を脱パラフィン化し；
（ｂ）有効量のカオトロピック剤の存在下で、脱パラフィン化した試料からｍＲＮＡを単離し；
（ｃ）増幅試料を得るために、ストリンジェントな条件下でＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の領域にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー対を用いてｍＲＮＡを増幅にかけ；
（ｄ）内部標準遺伝子のｍＲＮＡの量と比較してＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの量を決定すること、
を含んで成る方法。
【請求項１５】
オリゴヌクレオチドプライマー対がＨＥＲ２−ｎｅｕのオリゴヌクレオチドプライマー対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマー対から成る、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
内部標準遺伝子がβ−アクチンである、請求項１２又は１４に記載の方法。
【請求項１７】
ｍＲＮＡの単離が、
（ａ）有効濃度のカオトロピック化合物を含んで成る溶液中の組織試料を、約７５〜約１００℃の温度に約５〜約１２０分加熱し；そして
（ｂ）前記ｍＲＮＡをカオトロピック溶液から回収すること、
によって実施される、請求項１２又は１４に記載の方法。
【請求項１８】
配列番号１の配列及びそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドプライマー。
【請求項１９】
配列番号２の配列及びそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドプライマー。
【請求項２０】
配列番号４の配列及びそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドプライマー。
【請求項２１】
配列番号５の配列及びそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドプライマー。
【請求項２２】
ＥＧＦＲのオリゴヌクレオチド対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチド対を含んで成るＥＧＦＲ遺伝子の発現を検出するためのキット。
【請求項２３】
ＨＥＲ２−ｎｅｕのオリゴヌクレオチド対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチド対を含んで成るＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の発現を検出するためのキット。
【請求項２４】
ＥＧＦＲのオリゴヌクレオチド対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチド対及びＨＥＲ２−ｎｅｕのオリゴヌクレオチド対又はそれと実質的に同一のオリゴヌクレオチド対を含んで成るＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子の発現を検出するためのキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
本発明の分野
本発明は、医術、特にガンの化学療法に有用な予後方法関する。更に具体的には、本発明は、腫瘍細胞の遺伝子発現が解析される患者の生存度の評価に関する。更に、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法に対する腫瘍細胞の感受性は、ヒトのＥＧＦＲ及びＨｅｒ２−ｎｅｕ遺伝子のｍＲＮＡ発現を試験することによって評価される。
【０００２】
本発明の背景
肺ガンは、西洋諸国における男性及び女性のガン関連死の主要原因である。米国において、約１７１，０００の肺ガンの新症例が診断され、そして毎年１６０，０００人の個体がこの疾患により死亡する。この２０年の間の肺ガンの検出及び処置の向上にも関わらず、合計５年の生存は１５％未満である。Ｇｉｎｓｂｅｒｇ， ｅｔ ａｌ．， Ｉｎ：ＤｅＶｉｔａ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｉｎ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ， Ｅｄ． ５， ｐｐ． ８５８−９１０． Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ：Ｌｉｐｉｎｃｏｔｔ−Ｒａｖｅｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ， １９９７．非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）を有する患者の生存率を向上させるために、分子変化に基づく彼らの予後的な分類が必要である。そのような分類は、更に正確で、且つ有用な診断用ツールを、そして最終的には更に有効な治療のオプションを提供する。
【０００３】
ガンは、正常な細胞が悪性形質転換を受け、そして悪性細胞になる場合に生ずる。形質転換した（悪性の）細胞は、細胞の表現型を指定し、そして細胞増殖を抑制する正常な生理学的制御を免れる。個体の体内の形質転換細胞は、その結果増殖し、ガンを形成する。腫瘍が発見された場合、臨床的な目的は、悪性細胞を選択的に破壊し、同時に、処置を受ける個体の正常細胞にもたらされた何らかの害を緩和することである。
【０００４】
化学療法は、ガン細胞に対して選択的に毒性がある（細胞障害性の）薬物の使用に基づく。化学療法の薬物の、複数の一般的なクラスが開発されており、これには核酸合成、タンパク質合成及び他の生命維持に必要な代謝過程を妨害する薬物が含まれる。これらは通常抗代謝薬と称される。他の化学療法薬のクラスは、細胞のＤＮＡに対して損傷を与える。これらのクラスの薬物は通常遺伝毒と称される。更に、化学療法剤のクラスは、受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）を介する分裂促進のシグナル伝達を、ＲＴＫが過敏性の細胞において特異的に阻害する。（Ｄｒｕｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｕｔｕｒｅ， １９９２， １７， １１９）。
【０００５】
しかしながら、所望の化学療法薬又は当該薬物の組み合わせに対する個体の新生物の感受性はしばしば、処置の試用期間の後でのみ正確に評価されうる。失敗に終わった試用期間に注いだ時間は、積極的な悪性度の臨床的な管理において重大な危険性をもたらす。従って、特異的な化学療法剤の標的となる遺伝的な決定因子の発現状態を評価することは重要である。例えば、腫瘍が高レベルのＤＮＡ修復遺伝子を発現する場合、恐らく、当該腫瘍は、少量のＤＮＡに損傷を与える遺伝毒性剤に対してほとんど応答しない。このように、腫瘍の遺伝的決定因子の発現状態は、臨床医が、腫瘍の遺伝的レパートリーに特異的な、適切な化学療法の養生法を開発するのを助ける。
【０００６】
受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）は、分裂シグナルの伝達において重要である。ＲＴＫは、増殖因子、例えば上皮増殖因子（ＥＧＦ）についての細胞外リガンド結合ドメイン及び、細胞質タンパク質上のチロシンアミノ酸残基をリン酸化し、それによって細胞増殖を媒介するキナーゼとして機能する細胞内部分を有する巨大な膜貫通タンパク質である。受容体チロシンキナーゼの種々のクラスは、異なる受容体チロシンキナーゼに結合する増殖因子のファミリーに基づいたものが知られている（Ｗｉｌｋｓ， Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， １９９３， ６０， ４３−７３）。
【０００７】
クラスＩのキナーゼ、例えば受容体チロシンキナーゼのＥＧＦ−Ｒファミリーには、ＥＧＦ， ＨＥＲ２−ｎｅｕ， ｅｒｂＢ， Ｘｍｒｋ， ＤＥＲ及びｌｅｔ２３受容体が含まれる。これらの受容体は、一般的なヒトのガン、例えば乳ガン（Ｓａｉｎｓｂｕｒｙ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒｉｔ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ， １９９８， ５８， ４５８；Ｇｕｅｒｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｇｅｎｅ Ｒｅｓ．， １９８８， ３， ２１）、肺の扁平上皮細胞ガン（Ｈｅｎｄｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌｓ， １９８９， ７， ３４７）、膀胱ガン（Ｎｅａｌ ｅｔ ａｌ．， Ｌａｎｃｅｔ， １９８５， ３６６）、食道ガン（Ｍｕｋａｉｄａ ｅｔ ａｌ， Ｃａｎｃｅｒ， １９９１， ６８， １４２）、胃腸ガン、例えば結腸、直腸又は胃ガン（Ｂｏｌｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｇｅｎｅ Ｒｅｓ．， １９８７， １， １４９）、白血病（Ｋｏｎａｋａ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ， １９８４， ３７， １０３５）及び卵巣、気管支又は膵臓のガン（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｐａｔｅｎｔ Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ． ０４００５８６）においてしばしば存在する。更にヒト腫瘍組織が受容体チロシンキナーゼのＥＧＦファミリーについて試験される場合、その広範な有病率は、他のガン、例えば甲状腺及び子宮ガンにおいて予想される。
【０００８】
具体的には、ＥＧＦＲチロシンキナーゼ活性は正常な細胞においてまれに検出されるが、悪性細胞においてはよりしばしば検出されうる（Ｈｕｎｔｅｒ， Ｃｅｌｌ， １９８７， ５０， ８２３）。ごく最近、ＥＧＦＲは多くの人のガン、例えば脳、肺の扁平上皮細胞、膀胱、胃、乳房、頭及び首、食道、婦人科及び甲状腺の腫瘍において過剰発現することが証明されている（Ｗ Ｊ Ｇｕｌｌｉｃｋ， Ｂｒｉｔ． Ｍｅｄ． Ｂｕｌｌ， １９９１， ４７， ８７）。受容体チロシンキナーゼは更に、他の細胞増殖疾患、例えば乾癬においても重要である。ＥＧＦＲ疾患は、ＥＧＦＲを正常に発現しない細胞によるＥＧＦＲ発現、又は不所望な細胞増殖を招くＥＧＦＲ活性化の増大、及び／又は不適切なＥＧＦＲレベルの存在を特徴とするものである。ＥＧＦＲは、そのリガンドＥＧＦ及びトランスフォーミング増殖因子−アルファ（ＴＧＦ−α）によって活性化されることが知られている。
【０００９】
Ｈｅｒ２−ｎｅｕタンパク質はまた、クラスＩの受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）ファミリーのメンバーである。Ｙａｒｄｅｎ ａｎｄ Ｕｌｌｒｉｃｈ， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ５７：４４３， １９８８；Ｕｌｌｒｉｃｈ ａｎｄ Ｓｃｈｌｅｓｓｉｎｇｅｒ， Ｃｅｌｌ６１：２０３， １９９０．Ｈｅｒ２−ｎｅｕタンパク質は、構造的にＥＧＦＲに関連している。Ｃａｒｒａｗａｙ， ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ７８：５， １９９４； Ｃａｒｒａｗａｙ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６９：１４３０３， １９９４．これらの受容体は、共通の分子構造を有し、そしてそれらの細胞質ドメイン内に２つのシステインに富む領域及びそれらの細胞質ドメイン内に構造的に関連した酵素領域を含む。
【００１０】
Ｈｅｒ２−ｎｅｕタンパク質のリガンド依存の活性化は、ｐ１６５（Ｈｅｒ２−ｎｅｕ）に直接的に結合し、そして酵素活性を刺激しうる好中球活性化因子（ＮＡＦ）によって媒介されると考えられている。Ｄｏｕｇａｌｌ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ９：２１０９， １９９４； Ｓａｍａｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９１：１７１１， １９９４．Ｈｅｒ２−ｎｅｕタンパク質のリガンド依存のホモ二量体化及びその結果としての受容体の活性化は、Ｈｅｒ２−ｎｅｕタンパク質の過剰発現によって容易になる。活性化したＨｅｒ２−ｎｅｕ複合体はホスホキナーゼとして働き、そして異なる細胞質タンパク質をリン酸化する。ＨＥＲ２−ｎｅｕ疾患は、ＨＥＲ２−ｎｅｕの不適当な活性又は過剰な活性がＨＥＲ２−ｎｅｕの発現を増大させ、不所望な細胞増殖、例えばガンに至ったことを特徴とする。
【００１１】
受容体チロシンキナーゼＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕの阻害剤は、哺乳類のガン細胞の増殖の選択的阻害剤として利用される（Ｙａｉｓｈ ｅｔ ａｌ． Ｓｃｉｅｎｃｅ， １９８８， ２４２， ９３３）。例えば、エルブスタチンは、ＥＧＦ受容体チロシンキナーゼであり、これは胸腺欠損ヌードマウスに注射されたＥＧＦＲを発現するヒト哺乳類ガン細胞の増殖を低下させ、更にＥＧＦＲを発現していない腫瘍の増殖には効果がなかった（Ｔｏｉ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ．， １９９０， ２６， ７２２）。スチレンの種々の誘導体も、チロシンキナーゼ阻害特性を有し（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｐａｔｅｎｔ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏｓ． ０２１１３６３， ０３０４４９３及び０３２２７３８）、そして抗腫瘍剤として使用されるものであることが述べられている。２つのそのようなスチレン誘導体は、有効性がヌードマウスに注射されたヒト扁平上皮細胞ガンの増殖を弱めることによって証明されたクラスＩのＲＴＫ阻害剤である（Ｙｏｎｅｄａ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， １９９１， ５１， ４４３０）。また、欧州特許出願番号第０５２０７２２号及び第０５６６２２６号から、ある４−アニリノキナゾリン誘導体が、受容体チロシンキナーゼ阻害剤として有用であることが知られている。これらの化合物によって示された非常に密接な構造と活性の関係は、明確に規定された結合モードを示唆しており、この中で、キナゾリン環はアデニンポケット内で結合し、そしてアニリノ環は隣接した独特の親油性ポケット内で結合する。３つの４−アニリノキナゾリン類似体（２つは可逆的、そして１つは不可逆的な阻害剤である）は、抗ガン薬として臨床的に評価されてきた。Ｄｅｎｎｙ， Ｆａｒｍａｃｏ ２００１ Ｊａｎ−Ｆｅｂ；５６（１−２）：５１−６．近年、米国のＦＤＡが、ＨＥＲ２−ｎｅｕを過剰発現している転移性の乳ガンの処置のためのモノクローナル抗体トラスタツマブ（ｔｒａｓｔａｚｕｍａｂ）（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（商標））の使用を認可した。Ｓｃｈｅｕｒｌｅ， ｅｔ ａｌ．， Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ２０：２０９１−２０９６， ２０００．
【００１２】
腫瘍に対する有効な化学療法はがしばしば薬剤の組み合わせを必要とするので、それぞれの単一薬物に対する耐性又は感受性の決定因子の同定及び定量が、個々の組み合わせの化学療法を設計するのに重要なツールと成ってきている。生存性を有するガン患者由来の悪性細胞におけるＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕの発現の相対レベルを確実に補正するための研究は不成功に終わっている。
【００１３】
ＥＧＦＲの及びＮＳＣＬＣにおける予後の重要性は、これまでは議論の余地が残されていた。結合アッセイを用いる研究は、ＥＧＦＲ発現の増大を、進行した段階にあるＮＳＣＬＣ及び短縮した全体的な生存度と相関させ、一方、ＥＧＦＲのｍＲＮＡ又はタンパク質の発現を測定するための半定量的な技術は、臨床的な結果と一致した相関を示すことに失敗した。Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ６８：１６２−１６５， １９９３，；Ｆｕｊｉｎｏ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｃａｎｃｅｒ ３２：２０７０−２０７４， １９９６； Ｒｕｓｃｈ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：２３７９−２３８５， １９９３；Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ ７４：８６−９１， １９９６；Ｐａｓｔｏｒｉｎｏ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｌｉｎ Ｏｎｃｏｌ １５：２８５８−２８６５， １９９７．免疫組織化学的方法を用いるＮＳＣＬＣ腫瘍におけるＥＧＦＲの発現研究は、ＮＳＣＬＣ腫瘍における３２％〜４７％のＥＧＦＲ過剰発現についての頻度を示した。Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ５５：５１３−５１６， １９８７； Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ６８：１６２−１６５， １９９３，；Ｆｕｊｉｎｏ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｃａｎｃｅｒ ３２：２０７０−２０７４， １９９６； Ｒｕｓｃｈ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５３：２３７９−２３８５， １９９３；Ｐａｓｔｏｒｉｎｏ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｌｉｎ Ｏｎｃｏｌ １５：２８５８−２８６５， １９９７；Ｔａｔｅｉｓｈｉ， ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ ２７：１３７２−７５， １９９１；Ｒａｃｈｗａｌ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ ７２：５６−６４， １９９５； Ｒｕｓｃｈ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ １５：２３７９−８５， １９９３； Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ ７８：９６−９， １９９８； Ｏｈｓａｋｉ， ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｌ Ｒｅｐ ７：６０３−７， ２０００．更に、ＥＧＦＲ発現の有意な低下が、組織学的な亜型間で報告されており、これは通常ＡＣ及びＬＣと比較してＳＣＣのＥＧＦＲ発現が高いほどみられる。Ｆｕｊｉｎｏ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｃａｎｃｅｒ ３２：２０７０−２０７４， １９９６； Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ５５：５１３−５１６， １９８７； Ｐａｓｔｏｒｉｎｏ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｌｉｎ Ｏｎｃｏｌ １５：２８５８−２８６５， １９９７； Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ ７８：９６−９， １９９８； Ｏｈｓａｋｉ， ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｌ Ｒｅｐ ＆：６０３−７， ２０００．しかしながら、これらの研究では、ＥＧＦＲの過剰発現と肺ガン患者の生存度との一致した相関が報告されなかった。
【００１４】
ＥＧＦＲの過剰発現と患者の生存度の低下との相関していると言われるものの観察は、いくつかの決定的な研究においてなされた。Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， １９８７；Ｏｈｓａｋｉ ｅｔ ａｌ．， ２０００．しかしながら、Ｖｅａｌｅ等は、わずかに１９人のＮＳＣＬＣの患者群を解析した。Ｏｈｓａｋｉ等は、ＥＧＦＲタンパク質発現と、ｐ５３を過剰発現しているＮＳＣＬＣの患者の乏しい予後とを相関させた（Ｐ＝０．０２４）。
【００１５】
ＥＧＦＲと同様に、ＨＥＲ２−ｎｅｕの、及びＮＳＣＬＣにおける予後の重要性は、以前は議論の余地が残されていた。ＨＥＲ２−ｎｅｕタンパク質の過剰発現は、扁平上皮細胞ガン、腺ガン、及び大細胞ガンを含む、ＮＳＣＬＣにおいて示された。Ｖｅａｌｅ ｅｔ ａｌ．， １９８７； Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ４９：４９６８−４９７１， １９８９； Ｋｅｒｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５０：５１８４−５１９１， １９９０； Ｗｅｉｎｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５０：４２１−４２５， １９９０； Ｓｃｈｅｕｒｌｅ， ｅｔ ａｌ．， Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ２０：２０９１−２０９６， ２０００．タンパク質アッセイを用いた初期の研究は、ＨＥＲ２−ｎｅｕタンパク質の過剰発現と肺腺ガン（ＡＣ）における低下した全体的な生存度との関連性を報告した。Ｋｅｒｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５０：５１８４−５１９１， １９９０； Ｋｅｒｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｌｉｎ Ｉｎｖｅｓｔ ９３：５１６−２０， １９９４．しかしながら、正反対の研究が、ＨＥＲ２−ｎｅｕタンパク質の過剰発現と肺腺ガン（ＡＣ）における低下した全体的な生存度との相関がないことを報告した。Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， ｅｔ ａｌ．， Ｂｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ７４：８６−９１， １９９６．
【００１６】
別の重要な問題は、ガンを予後判定するものとして、ＨＥＲ２−ｎｅｕとＥＧＦＲの過剰発現との相互関係を評価することである。Ｔａｔｅｉｓｈｉ等は（Ｅｕｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ２７：１３７２−７５， １９９１）、解析したＡＣの１３％において、ＥＧＦＲとＨＥＲ２−ｎｅｕの同時発現を測定し、そして、これらの２つの遺伝子の同時過剰発現が低下した５年の生存度と相関していたことを見いだした。しかしながら、ＨＥＲ２−ｎｅｕの過剰発現のみの場合と同様に、肺の扁平上皮細胞ガン（ＳＣＣ）及び大細胞ガン（ＬＣＣ）におけるＨＥＲ２−ｎｅｕとＥＧＦＲの同時発現と生存度との関係は報告されていなかった。
【００１７】
ＥＧＦＲとＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルの決定のための矛盾した方法論が、これらの遺伝子の発現がガン患者の生存度を予後判定するためにどの程度使用されうるを決定するという問題の根底に存在していた。ＮＳＣＬＣにおけるＨＥＲ２−ｎｅｕとＥＧＦＲの発現のこれまでの研究は、ＥＧＦＲとＨＥＲ２−ｎｅｕの発現の両方についてポジティブの結果を示したＮＳＣＬＣ腫瘍の頻度における莫大な変動性をもたらした。腺ガン（ＡＣ）におけるポジティブなタンパク質染色として定義されるＨＥＲ２−ｎｅｕの過剰発現は１３〜８０％であると報告され、扁平上皮細胞ガン（ＳＣＣ）においては２〜４５％、そして大細胞ガン（ＬＣ）においては０〜２０％と報告され、これには光学顕微鏡のスライド上でパラフィンによって包埋された組織及びＨＥＲ２−ｎｅｕの抗血清を用いた。Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， ｅｔ ａｌ．， １９９６；Ｋｅｒｎ ｅｔ ａｌ．， １９９０； Ｋｅｒｎ ｅｔ ａｌ．， １９９４； Ｔａｔｅｉｓｈｉ ｅｔ ａｌ．， １９９１； Ｓｈｉ， ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ Ｃａｒｃｉｎｇ ５：２１３−８， １９９２； Ｂｏｎｇｉｏｒｎｏ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｔｈｏｒａｃ Ｃａｒｄｉｏｖａｓｃ Ｓｕｒｇ １０７：５９０−５， １９９４；Ｈａｒｐｏｌｅ， ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ １：６５９−６４， １９９５；Ｖｏｌｍ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ １２：１１−２０， １９９２．更に、最近の報告は、ＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを評価するために設計された現在のプロトコールの非特異性を証明している。浸潤性の乳ガンにおけるＨＥＲ２−ｎｅｕの発現の測定のためのＨｅｒｃｅｐＴｅｓｔ（商標）が、非常に高い偽陽性を有することを示した。Ｊａｃｏｂｓ ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｌｉｎ Ｏｎｃｏｌ １７：１９８３−１９８７， １９９９．
【００１８】
ＥＧＦＲとＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを決定するための、正確で、誤りのない、且つ一貫した方法が存在していた場合、どのような発現レベルが患者の生存度と相関しているか、そして受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法が適切であるか否かを確かめることができる。標準的な方法を用いた、ＮＳＣＬＣにおけるＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕの過剰発現の一貫した実証が、受容体チロシンキナーゼを標的とした現在及び将来の化学療法、例えば、これらの受容体を過剰発現しているガンを処置するための化学療法剤、抗体を基にした薬物、についての臨床試験を確立するのに望ましい。
【００１９】
ＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子の発現を測定するための現在のプロトコールは、腫瘍の予後にとって十分に正確でないことだけでなく、それらが分解していないｍＲＮＡを含む大量の新鮮な組織を必要とするという第二の制限に苦しむ。多くの患者に由来する病理学的試料は、組織学的解析及びその後の記録保存を可能にするべく、規定通りに固定され、そしてパラフィン包埋（ＦＰＥ）される。このように、多くの生検組織試料が遺伝子発現の解析にとって有用でないのは、そのような研究が、遺伝子発現の正確な測定を行いうるようなＲＮＡの高度な完全性を要求するためである。現在、遺伝子の発現レベルは、タンパク質の発現レベルをモニタリングするための免疫組織化学的染色を用いることによって、そのように固定され、そして包埋された試料中で定性的にのみモニタリングされうる。
【００２０】
医療専門家による凍結組織の使用は、実質的な不都合をもたらす。組織及びそれに続くｍＲＮＡの分解を避けるための迅速な生検の輸送は、任意のＲＮＡを基にした定量的遺伝子マーカーアッセイを計画する際の主要な関心事である。生検を実施する医療専門家は、組織試料を受け取ってすぐにＲＮＡの抽出プロトコールを実施するためのものを備えた施設に、当該組織試料を急いで輸送しなければならない。そのような施設が利用可能でない場合、臨床医は、ｍＲＮＡの分解を防ぐために、当該試料をすぐに凍結しなければならない。診断用の施設で、組織及びＲＮＡの分解の前に有用なＲＮＡ抽出プロトコールを実施するためには、当該組織試料は、診断用の施設に到着するまでは、たとえ遠かろうが凍結したままの状態にしなければならない。液体窒素及びドライアイスを備えた専門の宅配業者を用いて、輸送の間に凍結組織の完全性を維持することは、非常に高くつくだけである。
【００２１】
規定通りの生検は、通常、間質組織及び腫瘍組織の不均質な混合物を含んで成る。新鮮な又は凍結した組織とは異なり、ＦＰＥ生検組織試料は直ちに顕微解剖され、そして間質組織及び腫瘍組織に分けられ、そして、その結果、新鮮な組織又は凍結組織の使用以上の利点を提供する。しかしながら、固定した組織、特に固定してパラフィン包埋した組織からのＲＮＡの単離は、高度に分解したＲＮＡをもたらし、これは一般的には遺伝子発現研究に利用可能であると考えられない。
【００２２】
多くの技術が、生物学的試料からのＲＮＡの単離のための存在するが、いずれもＦＰＥ試料からのＲＮＡの単離にとって信頼できるものではない。例えば、Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ（米国特許第５，３４６，９９４号）は、フェノールとイソチオシアン酸グアニジンを用いる液相分離に基づいて、組織からＲＮＡを精製するための方法を記載している。生物学的な試料は、フェノールとイソチオシアン酸グアニジンの水溶液中でホモジェナイズされ、そしてホモジェネートはその後クロロホルムと混合される。遠心後、ホモジェネートは有機相、中間相及び水相に分離する。タンパク質は有機相中に隔離され、ＤＮＡは中間相に、そしてＲＮＡは水相に隔離される。ＲＮＡは水相から沈澱しうる。不運なことに、この方法は固定され、そしてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料に適用され得ない。
【００２３】
ＲＮＡを単離するための他の既知の技術は、典型的にはグアニジン塩又はフェノール抽出のいずれかを利用するものであり、これは、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ． ｅｔ ａｌ．， （１９８９） ａｔ ｐｐ． ７．３−７．２４、及びＡｕｓｕｂｅｌ， Ｆ． Ｍ． ｅｔ ａｌ．， （１９９４） ａｔ ｐｐ． ４．０．３−４．４．７に記載されている。また、既知の方法のいずれも、パラフィン包埋した組織試料からのＲＮＡの単離において、再現性のある定量的な結果を供しない。
【００２４】
パラフィン包埋した組織からのＲＮＡの単離のための技術が、このように、腫瘍組織における遺伝子発現の研究に特に必要とされるのは、ある受容体又は酵素の発現レベルが、特定の処置の成功の可能性又は妥当性を決定するために使用されうるからである。
【００２５】
我々は、高レベルの腫瘍内ＥＧＦＲ ｍＲＮＡ及び高レベルのＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡと、低下した生存度との有意な関係をここに報告する。従って、本発明の目的は、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法についての初期の予後を提供するために、腫瘍組織由来のＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡを定量する方法を提供することである。また、本発明の目的は、患者の腫瘍細胞中のＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの量を試験し、そしてそれを所定の閾値の発現レベルと比較することによって、固定され、そしてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織中のＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕレベルを評価し、そして受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法を用いる腫瘍に対する患者の腫瘍の予想される感度を予測するための方法を提供することである。
【００２６】
本発明の要約
本発明の１つの観点において、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）腫瘍細胞から得られたＥＧＦＲのｍＲＮＡの発現レベルを評価する方法が提供される。
【００２７】
本発明の別の観点において、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）腫瘍細胞から得られたＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの発現レベルを評価する方法が提供される。
【００２８】
本発明の別の観点において、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料由来の内部標準と比較した、ＥＧＦＲのｍＲＮＡの発現量を定量する方法が提供される。この方法は、前記試料からの全ｍＲＮＡの単離及び内部標準の遺伝子のｍＲＮＡの量と比較したＥＧＦＲのｍＲＮＡの量の決定を含む。
【００２９】
本発明の別の観点において、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料由来の内部標準と比較した、ＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの発現量を定量する方法が提供される。この方法は、前記試料からの全ｍＲＮＡの単離及び内部標準の遺伝子のｍＲＮＡの量と比較したＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの量の決定を含む。
【００３０】
本発明のこの観点の態様において、ＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１）又はＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）の配列及び実質的にそれらと同一の配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーが提供される。本発明はまた、配列番号１又は配列番号２あるいはそれらの相補体とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーを提供する。
【００３１】
本発明のこの観点の態様において、ＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）又はＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）の配列及び実質的にそれらと同一の配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーが提供される。本発明はまた、配列番号４又は配列番号５あるいはそれらの相補体とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーを提供する。
【００３２】
本発明の更に別の観点において、患者のために受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法の養生法を決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；両組織中のＥＧＦＲの遺伝子発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと、ＥＧＦＲ遺伝子についての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして化学療法による養生法を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３３】
本発明の更に別の観点において、患者のために受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法の養生法を決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；両組織中のＨＥＲ２−ｎｅｕの遺伝子発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子発現レベルと、ＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子についての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして化学療法による養生法を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３４】
本発明の更に別の観点において、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法の養生法を患者のための決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；前記試料の両方のＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの遺伝子発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＥＧＦＲの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ発現レベルで割ってＥＧＦＲのディファレンシャルな発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルで割ってＨＥＲ２−ｎｅｕのディファレンシャルな発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと、ＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子のそれぞれについての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして化学療法による養生法を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３５】
本発明の更に別の観点において、患者の生存度を決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；両試料中のＥＧＦＲの遺伝子発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＥＧＦＲの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ発現レベルで割ってディファレンシャルな発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと、ＥＧＦＲ遺伝子についての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして患者の生存度を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３６】
本発明の更に別の観点において、患者の生存度を決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；両試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの遺伝子発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルで割ってディファレンシャルな発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと、ＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子についての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして患者の生存度を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３７】
本発明の更に別の観点において、患者の生存度を決定する方法であって、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織試料からＲＮＡを単離し；新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）、対応する非悪性組織試料を単離し；前記試料の両方のＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの遺伝子発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＥＧＦＲの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ発現レベルで割ってＥＧＦＲのディファレンシャルな発現レベルを決定し；腫瘍試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルを、対応する非悪性組織試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルで割ってＨＥＲ２−ｎｅｕのディファレンシャルな発現レベルを決定し；ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと、ＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子のそれぞれについての所定の閾値とを比較し；そしてディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲ遺伝子発現レベルと所定の閾値との比較の結果を基にして化学療法による養生法を決定すること、を含んで成る方法が提供される。
【００３８】
本発明は更に、ＴａｑＭａｎ（商標）技術によって解析された試料由来の内部標準と比較した既知のＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルに対して、ＴａｑＭａｎ（商標）技術を用いて解析された組織試料中の内部標準と比較したＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕの未修整の遺伝子発現（ＵＧＥ）を標準化する方法に関する。
【００３９】
本発明の詳細な説明
高レベルのＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのｍＲＮＡを発現している腫瘍は、恐らく受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に感受性があると考えられる。反対に、低量のＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲのｍＲＮＡを発現している腫瘍は、恐らくは受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に感受性がないであろう。患者のディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲのｍＲＮＡの発現状態は、それを所定の閾値と比較することによって判断される。
【００４０】
本発明は、内部標準の遺伝子発現と比較した、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織中のＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのｍＲＮＡの発現量を定量する方法を提供する。本発明者は、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されて包埋された組織中のＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの遺伝子発現の正確な評価を可能にするオリゴヌクレオチドプライマーを開発した。当該オリゴヌクレオチドプライマー、ＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１）、ＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）、又はそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーは、好ましくは、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）腫瘍組織から抽出されたＲＮＡと一緒に使用される。本発明はまた、オリゴヌクレオチドプライマー、ＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）、ＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）、又はそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーを提供し、これらは、好ましくは、新鮮で、凍結され、固定され、又は固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）腫瘍組織から抽出されたＲＮＡと一緒に使用される。ＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲの遺伝子発現のこの測定は、その結果受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法の予後に使用されうる。
【００４１】
本発明のこの態様は、新鮮で、凍結され、固定された又はＦＰＥの試料由来のＲＮＡの信頼性のある抽出、逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応を実施するための、オリゴヌクレオチドプライマー対、好ましくはＥＧＦＲ−１７５３Ｆ（配列番号１）とＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）、又はそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドのオリゴヌクレオチドプライマー対を用いることによる当該試料中のＥＧＦＲのｍＲＮＡ含量の決定、を包含する。
【００４２】
本発明の別の態様は、新鮮で、凍結され、固定された又はＦＰＥの試料由来のＲＮＡの信頼性のある抽出、及びオリゴヌクレオチドプライマー対、好ましくはＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）とＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）、又はそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドのオリゴヌクレオチドプライマー対を用いることによる当該試料中のＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡ含量の決定、を包含する。
【００４３】
本明細書で使用する場合の核酸の文脈における「実質的に同一」は、ストリンジェントな条件下で標的にハイブリダイズすることを意味し、そして更に、核酸のセグメント、又はそれらの相補鎖が、比較した場合に、適切なヌクレオチドの挿入物及び欠失物と、適切に整列した場合当該ヌクレオチドの少なくとも約６０％、典型的には少なくとも約７０％、更に典型的には少なくとも約８０％、一般的には少なくとも約９０％、そして更に一般的には、少なくとも約９５〜９８％同一である。選択的ハイブリダイゼーションは、ハイブリダイゼーションが、特異性の完全なる欠如よりも選択的である場合に存在する。Ｋａｎｅｈｉｓａ， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １２：２０３−２１３（１９８４）を参照のこと。
【００４４】
本発明の方法は、広範な腫瘍型に適用されうる。このことは、個々の「腫瘍発現プロファイル」の作成を可能にし、それによりＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲの発現レベルが個々の患者の試料において決定され、そして種々の化学療法に対する応答が予想される。好ましくは、本発明の方法は、固形腫瘍、最も好ましくはＮＳＣＬＣ腫瘍に対して適用される。
【００４５】
本明細書で定義する「ディファレンシャルな発現レベル」とは、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ又はＨＥＲ２−ｎｅｕのそれぞれの発現レベルに対する、腫瘍中のＥＧＦＲ又はＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルの差違を言及する。ディファレンシャルな発現レベルは、腫瘍試料由来の特定遺伝子のＵＧＥを、対応する非悪性組織試料由来の同一遺伝子のＵＧＥで割ることによって決定される。
【００４６】
ＥＧＦＲの発現に関して本明細書で定義する、「所定の閾値」とは、腫瘍が受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法に対して感受性を示す可能性があるレベル以上の（すなわち、高い）ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルのことである。高いディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルは、より低い患者の生存度の予後因子である。この閾値よりも低い発現レベルを有する腫瘍は、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法によって影響を受ける可能性がない。低いディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルは、より高い患者の生存度の予後因子である。ディファレンシャルな発現が高かろうとも低かろうとも、「所定の閾値」は、食道の扁平上皮細胞ガンを有する患者から得られた対応する非悪性組織中の個々のディファレンシャルな腫瘍／正常（Ｔ／Ｎ）発現比を計算した、Ｍａｆｕｎｅ等によって使用された方法によって決定される。Ｍａｆｕｎｅ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ ５：４０７３−４０７８， １９９９．この解析方法は、対応する非悪性組織から得られた個々のバックグラウンドの発現に基づいて、各患者についての正確な発現の値を導く。ＥＧＦＲのディファレンシャルな発現は、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ：β−アクチンのＵＧＥによって割られた腫瘍試料中のＥＧＦＲ：β−アクチンのＵＧＥが約１．８の所定の閾値以上である場合、「高い」と考えられ、そしてそれは低い生存度を示すものであると考えられる。ＥＧＦＲのディファレンシャルな発現は、対応する非悪性組織試料中のＥＧＦＲ：β−アクチンのＵＧＥによって割られた腫瘍試料中のＥＧＦＲ：β−アクチンのＵＧＥが約１．８の所定の閾値以下である場合、「低い」と考えられ、そしてそれは高い生存度を示すものであると考えられる。
【００４７】
ＨＥＲ２−ｎｅｕの発現に関して本明細書で定義する、「所定の閾値」とは、腫瘍が受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法に対して感受性を示す可能性があるレベル以上の（すなわち、高い）ディファレンシャルなＨＥＲ２−ＮＥＵの発現レベルのことである。高いディファレンシャルなＨＥＲ２−ＮＥＵの発現レベルは、より低い患者の生存度の予後因子である。この閾値よりも低い発現レベルを有する腫瘍は、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法によって影響を受ける可能性がない。低いディファレンシャルなＨＥＲ２−ＮＥＵの発現レベルは、より高い患者の生存度の予後因子である。ＨＥＲ２−ＮＥＵのディファレンシャルな発現は、対応する非悪性組織試料中のＨＥＲ２−ＮＥＵ：β−アクチンのＵＧＥによって割られた腫瘍試料中のＨＥＲ２−ＮＥＵ：β−アクチンのＵＧＥが約１．８の所定の閾値以上である場合、「高い」と考えられ、そしてそれは低い生存度を示すものであると考えられる。ＨＥＲ２−ＮＥＵのディファレンシャルな発現は、対応する非悪性組織試料中のＨＥＲ２−ＮＥＵ：β−アクチンのＵＧＥによって割られた腫瘍試料中のＨＥＲ２−ＮＥＵ：β−アクチンのＵＧＥが約１．８の所定の閾値以下である場合、「低い」と考えられ、そしてそれは高い生存度を示すものであると考えられる。
【００４８】
ＨＥＲ２−ｎｅｕの「閾値」は以下の結果及び方法を用いて決定される。ＨＥＲ２−ｎｅｕとβ−アクチンのＰＣＲ産物間の比として表した、修正したＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡの発現は、正常な肺において４．１７ｘ１０−３（範囲０．２８〜２３．８６ｘ１０−３）であり、そして腫瘍組織において４．３５ｘ１０−３（範囲：０．２１〜６８．１１ｘ１０−３）であった（Ｐ＝０．０１９ ウィルコクソン検定）。Ｍｉｌｌｅｒ及びＳｉｅｇｍｕｎｄ（Ｍｉｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１１−１０１６， １９８２）並びにＨａｌｐｅｎ（Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１７−１０２３， １９８２）による最大カイ二乗法は、患者を低いディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕを発現する者と高いディファレンシャルなＨＥＲを発現する者とに分けるために、１．８の閾値を決定した。この基準によって、２９人（３４．９％）の患者が高いディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現を有しており、そして５４人（６５．１％）が低いディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現を有していた。
【００４９】
ＥＧＦＲの「閾値」は以下の結果及び方法を用いて決定される。ＥＧＦＲとβ−アクチンのＰＣＲ産物間の比として表した、修正したＥＧＦＲのｍＲＮＡの発現は、正常な肺において８．１７ｘ１０−３（範囲０．３１〜４６．２６ｘ１０−３）であり、そして腫瘍組織において７．２２ｘ１０−３（範囲：０．２７〜９７．４９ｘ１０−３）であった（Ｐ＝ｎ．ｓ．）。最大カイ二乗法（Ｍｉｌｌｅｒ（１９８２）；Ｈａｌｐｅｎ（１９８２））は、患者を低いディファレンシャルなＥＧＦＲを発現する者と高いディファレンシャルなＨＥＲを発現する者とに分けるために、１．８の閾値を決定した。この基準によって、２８人（３３．７％）の患者が高いディファレンシャルなＥＧＦＲの発現を有しており、そして５５人（６６．３％）が低いディファレンシャルなＥＧＦＲの発現を有していた。
【００５０】
本発明の方法の実施において、ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベル又はディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルは、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法の有効性について予後を行うために、患者においてアッセイされる。更に、本発明の方法において、ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルは、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法の有効性について予後を行うために、患者においてアッセイされる。更に、本発明の方法において、ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベルは、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法の有効性について予後を行うために、患者においてアッセイされる。あるいは、ディファレンシャルなＥＧＦＲの発現レベル及びディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルは共に、受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法による養生法の有効性について予後判定するために、患者においてアッセイされる。
【００５１】
本明細書で定義する「対応する非悪性試料」とは、ディファレンシャルなＥＧＦＲ及び／又はディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現について解析される腫瘍試料と同一の個体に由来する非ガン性の組織の試料を言及する。好ましくは、対応する非悪性試料は、腫瘍試料が由来する器官と同一の器官に由来する。最も好ましくは、対応する非悪性腫瘍試料は、腫瘍試料が由来するものと同一の器官の組織層に由来する。また、対応する非悪性組織試料を、腫瘍組織の生検と同時に採取するのが好ましい。好ましい態様において、以下の２つの部位に由来する組織が解析される：肺腫瘍と、当該腫瘍から最大距離をとる非悪性の肺組織、又は結腸腫瘍と、当該腫瘍から現状で可能な限りの最大距離をとる非悪性の結腸組織。
【００５２】
本発明のこの態様の方法を実施する場合において、腫瘍細胞は、好ましくは、当該患者から単離される。固形又はリンパの腫瘍あるいはそれらの一部が患者から外科的に切除され、又は通常の生検によって得られる。凍結した、又は新鮮な組織から単離されたＲＮＡは、当業界で典型的な方法のいずれかによって当該細胞から抽出され、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｆｉｓｃｈｅｒ ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ， ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ， （２ｎｄ ｅｄ．）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， （１９８９）による。好ましくは、抽出過程の間のＲＮＡの減成を避けるための処置がとられる。
【００５３】
しかしながら、生検後に患者から得られた組織は、通常ホルマリン（ホルムアルデヒド）又はグルタルアルデヒドによって、例えば、あるいはアルコール浸漬によって、しばしば固定される。固定された生物学的試料はしばしば脱水され、そしてパラフィン又は当業者に知られている他の固形の支持体中に包埋される。Ｐｌｅｎａｔ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎ Ｐａｔｈｏｌ ２００１ Ｊａｎ；２１（１）：２９−４７を参照のこと。包埋されていない固定された組織及び固定されて包埋された組織も本発明の方法において使用されうる。固定した組織を包埋するための固形の支持体は、例えば保存された組織のその後の再水和を可能にするために、有機溶媒で除去可能であることが推定される。
【００５４】
ＲＮＡは、パラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織の細胞から、１９９９年１２月２０日に出願された米国特許出願番号第０９／４６９，３８号に記載の方法のいずれかによって抽出され、ここで、これは引用によってその全体が本明細書に組み入れられる。本明細書で使用する場合、ＦＰＥ組織とは、固定され、そして固形でない除去可能な支持体中に包埋された組織、例えば保存可能な又は保管可能な組織試料を意味する。ＲＮＡは、最初に脱パラフィン化される、保管可能な病理学的試料又は生検試料から単離されうる。例示的な脱パラフィン化法は、パラフィン化した試料を有機溶媒、例えばキシレンで洗浄することを包含する。脱パラフィン化した試料は、低級アルコールの水溶液で再水和されうる。適当な低級アルコールには、例えばメタノール、エタノール、プロパノール、及びブタノールが含まれる。脱パラフィン化した試料は、徐々に濃度を低下させた低級アルコールによる連続洗浄で再水和されうる。あるいは、当該試料は同時に脱パラフィン化されて再水和される。それにより、ＲＮＡは当該試料から抽出される。
【００５５】
ＲＮＡ抽出のために、固定され、又は固定されて脱パラフィン化された試料は、機械による、超音波による、又は他の手段によるホモジェナイゼーションを用いてホモジェナイズされうる。再水和された試料は、カオトロピック剤、例えばチオシアン酸グアニジン（イソチオシアン酸グアニジンとしても販売されている）を含んで成る溶液中でホモジェナイズされうる。ホモジェナイズされた試料は、有効量のカオトロピック剤、例えばチオシアン酸グアニジンを含むカオトロピックな溶液中で、約５０℃〜約１００℃の範囲の温度に加熱される。好ましいカオトロピック剤はチオシアン酸グアニジンである。
【００５６】
「有効濃度のカオトロピック剤」は、ＲＮＡが、カオトロピック剤の不在下で単離されたものより約１０倍以上の量で、パラフィン包埋された試料から単離されるように選択される。カオトロピック剤には、例えば、グアニジン化合物、ウレア、ホルムアルデヒド、ヨウ化カリウム、チオシアン酸カリウム及び類似化合物が含まれる。本発明の方法にとって好ましいカオトロピック剤は、グアニジン化合物、例えばイソチオシアン酸グアニジン（チオシアン酸グアニジンとしても販売されている）及び塩酸グアニジンである。多くの陰イオン性の対イオンが有用であり、そして当業者はそのような適切な陰イオンを用いて多くのグアニジン塩を調製することができる。本発明で使用される有効濃度のグアニジン溶液は、概して、約１〜約５Ｍの範囲の濃度を有しており、好ましくは４Ｍの値である。ＲＮＡが既に溶液中にある場合、グアニジン溶液は、当該試料中で到達した終濃度が約１〜約５Ｍの範囲内であるような、より高い濃度であってもよい。グアニジン溶液はまた、適当な生化学的緩衝液、例えばＴｒｉｓ−Ｃｌを用いて、好ましくは約３〜約６、更に好ましくは約４に緩衝化される。カオトロピックな溶液はまた、還元剤、例えばジチオトレイトール（ＤＴＴ）及びβ−メルカプトエタノール（ＢＭＥ）を含んでもよい。カオトロピックな溶液は、更にリボヌクレアーゼ阻害剤を含んでもよい。
【００５７】
続いて、ＲＮＡは、例えばフェノールクロロホルム抽出、イオン交換クロマトグラフィー又はサイズ排除クロマトグラフィーによって、カオトロピックな溶液から回収される。続いて、ＲＮＡは、抽出、電気泳動、クロマトグラフィー、沈澱の技術又は他の適当な技術を用いて更に精製されることがある。
【００５８】
新鮮な、凍結された又は固定されたものから精製した全ｍＲＮＡからのＨＥＲ２−ｎｅｕ又はＥＧＦＲのｍＲＮＡの定量は、好ましくは、例えば当業界で一般的な逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）を用いて実施される。ＨＥＲ２−ｎｅｕ又はＥＧＦＲのｍＲＮＡを定量する他の方法は、例えば、マルチプレックスＲＮＡにおいて有用な分子ビーコン及び他の標識プローブの使用を含む。更に、本発明は、例えば、Ｉｎｖａｄｅｒ（商標）アッセイ（Ｔｈｉｒｄ Ｗａｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ， Ｉｎｃ．）のものに類似の蛍光標識プローブを利用する、ＰＣＲ無しの系の使用を介して、ＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのｍＲＮＡの定量を構想する。最も好ましくは、ＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのｃＤＮＡ並びに内部標準又はハウスキーピング遺伝子（例えば、β−アクチン）の定量は、蛍光を基にしたリアルタイムの検出法（ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ７７００又は７９００ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ［ＴａｑＭａｎ（商標）］， Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ ＣＡ．）又はＨｅｉｄ等（Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １９９６；６；９８６−９９４）、そしてＧｉｂｓｏｎ等（Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １９９６；６；９９５−１００１）によって説明された類似の系を用いて行われる。ＡＢＩ ７７００（ＴａｑＭａｎ（商標）Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ）のアウトプットは、Ｃｔ又は「サイクルの閾値」で表される。ＴａｑＭａｎ（商標）の系により、試料中により多数の標的分子を有する高度に発現した遺伝子は、より少ない標的分子でより低い相対的な発現遺伝子よりも（より高いＣｔ）、より少ないＰＣＲサイクル（より低いＣｔ）でシグナルを産生する。
【００５９】
本明細書で使用する場合、「ハウスキーピング」遺伝子又は「内部標準」は、その存在がＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのｍＲＮＡレベルの評価を可能にする、任意の構成的に又は全体的に発現している遺伝子である。そのような評価は、遺伝子転写の全体的な構成的レベルの決定及びＲＮＡ回収の変動についての制御を含んで成る。「ハウスキーピング」遺伝子又は「内部標準」には、限定しないが、サイクロフィリン遺伝子、β−アクチン遺伝子、トランスフェリン受容体遺伝子、ＧＡＰＤＨ遺伝子等が含まれることがある。最も好ましくは、内部標準遺伝子は、Ｅａｄｓ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １９９９；５９：２３０２−２３０６に記載のとおりβ−アクチンである。
【００６０】
ＲＮＡの回収における変動についての制御は、「キャリブレーターＲＮＡ」を必要とする。「キャリブレーターＲＮＡ」は、正確にあらかじめ定量したコントロールのＲＮＡの、任意な利用することができる供給源であることが意図される。好ましくは、ヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）が使用される。
【００６１】
「未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）」は、本明細書で使用する場合、ＴａｑＭａｎ（商標）の装置によって生成した内部標準遺伝子と比較した、ＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲの発現の、数値によるアウトプットを言及する。ＵＧＥを決定するために使用される方程式を例３及び４に示し、そして図７及び８において試料の計算を用いて例示する。
【００６２】
これらの数値は、ディファレンシャルな遺伝子発現（すなわち、対応する非腫瘍試料の「ＵＧＥ」によって割られた特定の腫瘍試料の「ＵＧＥ」）が、「所定の閾値」以上又は以下であるか否かの決定を可能にする。ＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕの所定の閾値は約１．８である。
【００６３】
本発明の更なる観点は、ＴａｑＭａｎ（商標）以外の技術によって導かれた「既知の相対的な遺伝子発現」を用いて、ＴａｑＭａｎ（商標）の装置から得られた未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）を標準化する方法を提供する。好ましくは、組織試料由来の、ＴａｑＭａｎ（商標）によって導かれたＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲのＵＧＥの値は、既知の、ＴａｑＭａｎ（商標）以外の技術によって導かれた相対的なＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ：β−アクチンの発現の値を有する試料に対して標準化される。
【００６４】
「修正済みの相対的なＥＧＦＲの発現」とは、本明細書で使用する場合、ＵＧＥをＥＧＦＲ特異的な補正係数（ＫＥＧＦＲ）とかけて、内部標準遺伝子と相対的なＥＧＦＲの発現レベルの既知の範囲と比較可能な値を生じさせることで標準化したＥＧＦＲの発現を言及する。例３及び図７は、これらの計算を詳細に例示する。ＥＧＦＲ、内部標準のβ−アクチン及びキャリブレーターヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）にとって特異的なＫＥＧＦＲは、２６．９５ｘ１０−３である。これらの数値はまた、対応する非腫瘍試料の「修正済みの相対的な発現」によって割られた特定の腫瘍試料の「修正済みの相対的な発現」（すなわち、ディファレンシャルな発現）が「所定の閾値」以上又は以下であるか否かの決定も可能にする。ＨＥＲ２−ｎｅｕ又はＥＧＦＲの所定の閾値は約１．８である。腫瘍試料におけるＨＥＲ２−ｎｅｕ又はＥＧＦＲのディファレンシャルな発現が、非腫瘍試料のものと比べて１．８倍以上であるか否かの決定において、ＵＧＥの値又は修正済みの相対的な発現の値のいずれかが使用されうるかは容易に認識される。例えば、腫瘍の未修正の相対的な発現レベルを対応する非腫瘍試料で割る場合、Ｋの因子が相殺し、そしてＵＧＥの値を使用した場合と同じ比率が残る。
【００６５】
「既知の相対的な遺伝子発現」の値は、既に解析した組織試料から導かれ、そして構成的に発現した内部標準遺伝子（例えば、β−アクチン、ＧＡＰＤＨ等）に対する標的遺伝子の比率を基にしている。好ましくは、そのような組織試料は、ホルマリン固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）試料であり、そしてＲＮＡは、例１に記載のプロトコールに従い、それらから抽出される。内部標準と比較した遺伝子発現を定量するために、当業界で既知の標準的な定量ＲＴ−ＰＣＲ技術が使用される。Ｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）技術のＰＣＲ反応は、一定数のサイクル（すなわち、３０）で実施され、そして最終点の値が各試料につき報告される。続いて、これら値はβ−アクチンの発現に対するＥＧＦＲの発現の比率として報告される。
【００６６】
ＫＥＧＦＲは、β−アクチン以外の内部標準遺伝子及び／又はヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）とは異なるキャリブレーターＲＮＡについて決定されうる。それを行うためには、その特定の内部標準遺伝子と相対的なＥＧＦＲの発現レベルが既に決定された（すなわち、「既知の相対的な遺伝子発現」）組織試料に対して、内部標準遺伝子及びキャリブレーターＲＮＡの両方を検量しなければならない。好ましくは、そのような組織試料は、ホルマリン固定され、そしてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）試料であり、そしてＲＮＡは例１に記載のプロトコールに従い、それから抽出される。そのような決定は、当業界で周知の標準的なｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）の定量的ＲＴ−ＰＣＲ技術を用いて行われうる。そのような決定により、当該試料は、例３に記載のように、新規の内部標準及び／又はキャリブレーターＲＮＡに特異的な新規のＫＥＧＦＲを決定するのに有用なＥＧＦＲの「既知の相対的な遺伝子発現」レベルを有する。
【００６７】
「修正済みの相対的なＨＥＲ２−ｎｅｕの発現」とは、本明細書で使用する場合、ＵＧＥをＨＥＲ２−ｎｅｕ特異的な補正係数（ＫＥＧＦＲ）とかけて、内部標準遺伝子と相対的なＨＥＲ２−ｎｅｕの発現レベルの既知の範囲と比較可能な値を生じさせることで標準化したＨＥＲ２−ｎｅｕの発現を言及する。例４及び図８は、これらの計算を詳細に例示する。ＨＥＲ２−ｎｅｕ、内部標準のβ−アクチン及びキャリブレーターヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）にとって特異的なＫＥＧＦＲは、１３．３ｘ１０−３である。
【００６８】
ＫＥＧＦＲは、β−アクチン以外の内部標準遺伝子及び／又はヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）とは異なるキャリブレーターＲＮＡについて決定されうる。それを行うためには、その特定の内部標準遺伝子と相対的なＥＧＦＲの発現レベルが既に決定された（すなわち、「既知の相対的な遺伝子発現」）組織試料に対して、内部標準遺伝子及びキャリブレーターＲＮＡの両方を検量しなければならない。好ましくは、そのような組織試料は、ホルマリン固定され、そしてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）試料であり、そしてＲＮＡは本明細書に記載のプロトコールに従い、それから抽出される。そのような決定は、例えば、当業界で周知の標準的なｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）の定量的ＲＴ−ＰＣＲ技術を用いて行われうる。そのような決定により、当該試料は、例４に記載のように、新規の内部標準及び／又はキャリブレーターＲＮＡに特異的な新規のＫＥＧＦＲを決定するのに有用なＥＧＦＲの「既知の相対的な遺伝子発現」レベルを有する。
【００６９】
本発明の方法は、広範の組織及び腫瘍の型に適用可能であり、そしてその結果、患者の臨床的処置の評価のために、そして乳ガン、頭部ガン、頚部ガン、肺ガン、食道ガン、結腸直腸ガン等の各種ガンについての診断又は予後のためのツールとして使用されうる。好ましい態様において、本発明の方法はＮＳＣＬＣ腫瘍の予後に適用される。
【００７０】
予備的な化学療法の処置の腫瘍生検は一般的に、通常わずかに最小量の異種組織を含む、固定されてパラフィン包埋された（ＦＰＥ）組織としてのみ入手可能である。そのようなＦＰＥ試料は容易に顕微解剖をすることができ、その結果ＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲの遺伝子発現は、非悪性の間質組織を含まない腫瘍組織において決定することができる。更に、生検組織試料内で非悪性の間質組織と腫瘍組織との間で比較が行われうるのは、そのような試料がしばしば両方の型の組織を含むためである。
【００７１】
一般的に、配列番号１０に示すような、ＥＧＦＲ遺伝子領域に隣接する任意のオリゴヌクレオチド対は、本発明の方法を実施するために使用されうる。本発明のおける使用のための、ＥＧＦＲ遺伝子領域に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズするプライマーは、２０〜１０００塩基対、好ましくは５０〜１００塩基対、最も好ましくは１００塩基対未満の産物を増幅する。
【００７２】
本発明は、新鮮で、凍結され、固定され、又はＦＰＥの組織を用いての、ＥＧＦＲ発現の正確な評価を可能にする、特異的なオリゴヌクレオチドプライマー対及びそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーを提供する。好ましいものは、オリゴヌクレオチドプライマーＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１）とＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）（本明細書でオリゴヌクレオチドプライマー対ＥＧＦＲとしても言及される）、及びそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーである。オリゴヌクレオチドプライマーＥＧＦＲ−１７５３Ｆ（配列番号１）とＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）は、例えば例１に記載のような、任意のｍＲＮＡ単離法によって、新鮮な、凍結され、固定され、又はＦＰＥの細胞から抽出されたＲＮＡを用いて、ＥＧＦＲのｍＲＮＡレベルを測定するの特に有効であることが示された。
【００７３】
更に、配列番号１１に示すような、ＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子領域に隣接する任意のオリゴヌクレオチド対は、本発明の方法を実施するために使用されうる。本発明のおける使用のための、ＨＥＲ２−ｎｅｕ遺伝子領域に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズするプライマーは、２０〜１０００塩基対、好ましくは５０〜１００塩基対、最も好ましくは１００塩基対未満の産物を増幅する。
【００７４】
本発明は、新鮮で、凍結され、固定され、又はＦＰＥの組織を用いての、ＨＥＲ２−ｎｅｕ発現の正確な評価を可能にする、特異的なオリゴヌクレオチドプライマー対及びそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーを提供する。好ましいものは、オリゴヌクレオチドプライマーＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）とＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）（本明細書でオリゴヌクレオチドプライマー対ＥＧＦＲとしても言及される）、及びそれらと実質的に同一のオリゴヌクレオチドプライマーである。オリゴヌクレオチドプライマーＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）とＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）は、例えば本明細書に記載のような、任意のｍＲＮＡ単離法によって、新鮮な、凍結され、固定され、又はＦＰＥの細胞から抽出されたＲＮＡを用いて、ＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡレベルを測定するの特に有効であることが示された。
【００７５】
本発明は、ＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１）のオリゴヌクレオチドプライマー配列、その相補鎖又はＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）、若しくはその相補鎖又はＨＥＲ２−ｎｅｕ２６７１Ｆ（配列番号４）のオリゴヌクレオチドプライマー配列、その相補鎖又はＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）、若しくはその相補鎖の全部又は一部に対し、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする、実質的に同一のオリゴヌクレオチドを含む。
【００７６】
ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、本明細書で定義される、高度に相補的な、すなわち実質的に類似の核酸配列のみがハイブリダイズする。好ましくは、そのような条件は、２０個の隣接配列のうちの４ないしそれ以上のミスマッチ、更に好ましくは２０個の隣接配列のうちの２ないしそれ以上のミスマッチ、最も好ましくは２０個の隣接配列のうちの１又は複数のミスマッチを有する核酸のハイブリダイゼーションを防ぐ。
【００７７】
核酸のハイブリダイズする部分は、典型的に少なくとも約１０個（例えば１５個）のヌクレオチドの長さである。ハイブリダイズする核酸のハイブリダイズする部分は、オリゴヌクレオチドプライマーＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１）、その相補鎖又はＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２）、若しくはその相補鎖又はオリゴヌクレオチドプライマーＨＥＲ２−ｎｅｕ２６７１Ｆ（配列番号４）、その相補鎖又はＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）、若しくはその相補鎖の一部又は全部に対して、少なくとも約８０％、好ましくは少なくとも約９５％、又は最も好ましくは少なくとも約９８％同一である。
【００７８】
ストリンジェントな条件下での核酸試料に対するオリゴヌクレオチドプライマーのハイブリダイゼーションは下文で定義される。核酸の二本鎖又はハイブリッドの安定性は、プローブが標的ＤＮＡから解離する温度である、融解温度（Ｔｍ）として表現される。この融解温度は、必要なストリンジェンシー条件を定義するために使用される。配列が、同一というよりもむしろ、プローブと実質的に同一であると同定されうる場合、相同のハイブリダイゼーションのみが特定の塩（例えば、ＳＳＣ又はＳＳＰＥ）で起こる最低温度を最初に確立するのに有用である。続いて、１％のミスマッチングがＴｍの１℃の低下を招くと仮定すると、ハイブリダイゼーション反応における最終洗浄の温度はそれに応じて低下する（例えば、プローブとの９５％超の同一性を有する配列が求められる場合、最終洗浄温度は５℃低下する）。実際には、Ｔｍの変化は、１％のミスマッチ当たり０．５℃〜１．５℃であってもよい。
【００７９】
ストリンジェントな条件は、５ｘＳＳＣ／５ｘデンハルト溶液／１．０％ ＳＤＳ中での、約６８℃でのハイブリダイズ、及び０．２ｘＳＳＣ／０．１％ ＳＤＳ中での、室温での洗浄を包含する。中程度にストリンジェントな条件は、３ｘＳＳＣ中での、約４２℃での洗浄を含む。塩濃度及び温度のパラメーターは、プライマーと標的核酸との間の同一性の至適レベルを達成するために変化することがある。そのような条件に関する更なる手引きは、当業界で容易に入手でき、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ， Ｆｉｓｃｈｅｒ ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ， ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ， （２ｎｄ ｅｄ．）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， （１９８９） ａｎｄ Ｆ． Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ ｅｄｓ．， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ （１９９４）である。
【００８０】
本明細書に開示されているオリゴヌクレオチドプライマーは、固定された、又は固定されてパラフィン包埋された組織、並びに凍結された、又は新鮮な組織におけるＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ遺伝子発現の正確な評価を可能にしうる。このことは、ＦＰＥ試料由来のＲＮＡが、新鮮な、又は凍結された組織のものと比較して更にフラグメント化されているという事実にも関わらず、である。このように、本発明の方法は、新鮮で、且つ凍結された組織中のＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ遺伝子を評価するための、正確で且つ一貫した方法がこれまで存在しておらず、そして固定された組織を用いてＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ遺伝子発現を評価する方法が全くない全ての組織においてＨＥＲ２−ｎｅｕ及び／又はＥＧＦＲ遺伝子発現レベルをアッセイする際の使用に適している。
【００８１】
ＨＥＲ２−ｎｅｕの過剰活性は、ＨＥＲ２−ｎｅｕをコードする遺伝子の増幅又は細胞増殖疾患と関連しうるＨＥＲ２−ｎｅｕの活性レベルの産生のいずれかを言及する（すなわち、ＨＥＲ２−ｎｅｕのレベルが増大するにつれ、細胞増殖疾患の１又は複数の症候の重症度が増大する）。
【００８２】
本発明との関連における、「受容体チロシンキナーゼを標的とした」化学療法又は化学療法による養生法は、クラスＩの受容体チロシンキナーゼ機能を特異的に妨害する薬剤を含んで成る化学療法を意味する。好ましくは、そのような薬剤はＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕの受容体チロシンキナーゼシグナル伝達活性を阻害する。そのような薬剤は、４−アニリノキナゾリン、例えば６−アクリルアミド−４−アニリノキナゾリン（Ｂｏｎｖｉｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ２００１ Ｆｅｂ １５；６１（４）：１６７１−７）及び誘導体、エルブスタチン（Ｔｏｉ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ Ｃｌｉｎ． Ｏｎｃｏｌ．， １９９０， ２６， ７２２．）、ゲルダナマイシン、ビスモノサイクリック、ビサイクリック又はヘテロサイクリックアリール化合物（ＰＣＴ ＷＯ ９２／２０６４２）、ビニレン−アザインドール誘導体（ＰＣＴ ＷＯ ９４／１４８０８）及び１−シクロプロピル−４−ピリジル−キノロン（米国特許第５，３３０，９９２号）を含み、これらは広くチロシンキナーゼ阻害剤として記載されている。また、スチリル化合物（米国特許第５，３０２，６０６号）、スチリル置換ピリジル化合物（米国特許第５，３０２，６０６号）、あるキナゾリン誘導体（欧州特許出願番号０ ５６６ ２６６ Ａ１）、セレノインドール（ｓｅｌｅｏｉｎｄｏｌ）及びセレニド（ＰＣＴ ＷＯ ９４／０３４２７）、三環系のポリヒドロキシル化合物（ＰＣＴ ＷＯ ９２／２１６６０）及びベンジルホスホン酸化合物（ＰＣＴ ＷＯ ９１／１５４９５）が、ガンの処置における使用のためのチロシンキナーゼ阻害剤としての使用のための化合物として記載されている。
【００８３】
ＥＧＦＲ及び／又はＨＥＲ２−ｎｅｕの受容体チロシンキナーゼ伝達活性を標的とする他の薬剤には、ターゲッティング機能を介する細胞毒性を媒介することにより間接的に増殖因子受容体の生物学的機能を阻害する抗体が含まれる。
【００８４】
受容体と複合化する抗体は、血清の補体を活性化し、そして／あるいは抗体依存性の細胞障害活性を媒介する。受容体に結合する抗体は更に、毒素と複合することがある（免疫毒）。有利には、受容体のリガンド結合部位の立体的な近傍に結合すること（受容体をブロッキングすること）によって受容体機能を大きく阻害し、そして／あるいはリガンドが受容体に結合するのを防ぐ（ブロッキングする）ように増殖因子に結合する抗体が選択される。これらの抗体は、受容体機能を中和する抗体を選択するための常用のｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイを用いて選択される。リガンドを真似ることによってリガンドのアゴニストとして働く抗体は、当業者に自明の適当なアッセイを実施することによって切り捨てられる。ある腫瘍細胞の場合、当該抗体は自己分泌増殖周期（すなわち、細胞が増殖因子を分泌すると、これが同じ細胞の受容体に結合する）を阻害する。いくつかのリガンド、例えばＴＧＦ−αは、細胞膜に位置することが見いだされているので、ターゲッティング機能を果たす抗体はリガンド及び／又は受容体を標的とする。
【００８５】
免疫毒の細胞障害性部分は、細菌又は植物起源の細胞障害性薬物又は酵素的に活性な毒素、あるいはそのような毒素の酵素的に活性なフラグメントであってもよい。使用される酵素的に活性な毒素及びそれらのフラグメントは、ジフテリア、ジフテリア毒素の非結合性の活性フラグメント、外毒素（シュードモナス・アエルギノサ（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（緑膿菌）由来のもの）、リシン、アブリン、モデシン、α−サルシン、アレウリテス・フォルディ（ａｌｅｕｒｉｔｅｓ ｆｏｒｄｉｉ）（シナアブラギリ）のタンパク質、ｄｉａｎｔｈｉｎタンパク質、ヨウシュヤマゴボウ（ｐｈｙｔｏｌａｃｃａ ａｍｅｒｉｃａｎａ）のタンパク質（ＰＡＰＩ， ＰＡＰＩＩ， 及びＰＡＰ−Ｓ）、ニガウリ（ｍｏｍｏｒｄｉｃａ ｃｈａｒａｎｔｉａ）の阻害剤、カーシン（ｃｕｒｃｉｎ）、クロチン（ｃｒｏｔｉｎ）、サボンソウの阻害剤、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、ミトゲリン（ｍｉｔｏｇｅｌｌｉｎ）、レストリクトシン、フェノマイシン、及びエノマイシンである。別の態様において、前記抗体は小分子の抗ガン剤と複合される。モノクローナル抗体とそのような細胞障害性部分との複合は、様々な二機能性タンパク質のカップリング剤を用いて行われる。そのような試薬の例は、ＳＰＤＰ、ＩＴ、イミドエステルの二官能性誘導体、例えばジメチルアジピミデートＨＣｌ、活性エステル、例えばジスクシニミジルスベレート、アルデヒド、例えばグルタルアルデヒド、ビスアジド化合物、例えば、ビス（ｐ−アジドベンゾイル）ヘキサンジアミン、ビス−ジアゾニウム誘導体、例えばビス−（ｐ−ジアゾニウムベンゾイル）−エチレンジアミン、ジイソシアネート、例えばトリレン２，６−ジイソシアネート、及びビス活性フッ素化合物、例えば、１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼンである。毒素の溶解部分は、抗体のＦａｂフラグメントに結合しうる。
【００８６】
ガンを処置するための細胞障害性の放射線医薬は、放射性同位体を前記抗体に複合させることみよって作製されうる。用語「細胞障害性部分」は、本明細書で使用する場合、そのような同位体を含むことを意図する。
【００８７】
別の態様において、リポソームが細胞障害性薬物で充填され、そして当該リポソームは増殖因子受容体と特異的に結合する抗体でコーティングされる。多数の受容体部位が存在するので、この方法は、適当な細胞型への大量の薬物の送達を可能にする。正確な調剤、投与経路及び投与量は、患者の症状の観点から、それぞれの医師によって選択されうる（例えば、Ｆｉｎｇｌ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｅ ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｂａｓｉｓ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ， １９７５， Ｃｈ． １ ｐ．１）。担当医が、毒性、又は臓器不全に起因して投与をどのように、そしていつ終了し、中断し、又は調整するかを知っていることに注目するべきである。反対に、担当医は、臨床的な応答が適切でなかった場合に（毒性を除く）、処置を高レベルのものに調整することも知っている。注目の発ガン性の障害の管理における投与量の程度は、処置される症状の重症度及び投与経路によって変化する。症状の重症度は、例えば標準的な予後の評価法によって、部分的に評価されうる。更に、投与量及び恐らくは投与頻度も、個々の患者の年齢、体重、及び応答に従い変化する。
【００８８】
処置される特定の症状に依存して、前記薬剤は調製され、そして全身的又は局所的に投与されうる。調剤及び投与の技術は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， １８ｔｈ ｅｄ．， Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．， Ｅａｓｔｏｎ， Ｐａ． （１９９０）において見られる。適当な経路は、経口、経直腸、経皮、経膣、経粘膜、又は経腸投与；非経口送達、例えば筋肉内、皮下、髄内注射、並びにくも膜下内、静脈内、腹腔内、鼻腔内、又は眼内注射が、いくつかの例として含まれうる。注射の場合、本発明の薬剤は水溶液中、好ましくは生理学的に許容される緩衝液、例えばハンクス液、リンガー液、又は生理食塩水中で調製されうる。前記経粘膜投与の場合、障壁を透過するのに適した浸透剤が調剤において使用される。そのような浸透剤は、一般的に当業界で知られている。
【００８９】
これまで記載してきた本発明の実施は、以下に示す実施例によって例示される。当業者は、本実施例において使用される材料及び方法が種々の方法において修飾されうることを認識するだろう。そのような修飾は、本発明の範囲内にあると考えられる。
【００９０】
実施例
実施例１
ＦＰＥ組織からのＲＮＡの単離
ＲＮＡは、以下の一般的手法によってパラフィン包埋された組織から抽出される。
【００９１】
Ａ．切片の脱パラフィン化及び水和
（１）約１０μＭの切片の一部を１．５ｍｌの遠心管内に据える。
（２）６００μｌのキシレンを添加し、そして混合物を激しく約１０分間、室温（およそ２０〜２５℃）で振とうする。
（３）試料を、室温で、ベンチトップ遠心機の最速値（約１０〜２０，０００ｘｇ）で約７分間遠心する。
（４）段階２及び３を、大部分のパラフィンが溶解するまで繰り返した。もとの試料部分に含まれるパラフィンの量に依存して、２ないしそれ以上の回数が必要とされる。
（５）キシレン溶液は、低級アルコール、好ましくは１００％エタノール（約６００μｌ）を用いて約３分間激しく振とうすることによって除去される。
（６）遠心管は、段階（３）のように約７分間遠心される。上清をデカントし、そして廃棄する。ペレットは白くなる。
（７）段階５と６を漸次的に徐々に希釈していったエタノールを用いて繰り返す：最初は約９５％エタノール、続いては約８０％、そして最終的には約７０％のエタノール。
（８）試料を段階（３）のように室温で７分間遠心する。
（９）上清を棄て、そしてペレットを室温で約５分間乾燥させる。
【００９２】
Ｂ．フェノール−クロロホルムによるＲＮＡ単離
（１）０．５％サルコシン及び８μｌのジチオトレイトールを含む４００μｌのイソチオシアン酸グアニジン溶液を添加する。
（２）続いて試料を組織用ホモジェナイザー（Ｕｌｔｒａ−Ｔｕｒｒａｘ， ＩＫＡ−Ｗｏｒｋｓ， Ｉｎｃ．， Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎｍ ＮＣ）を用いて、約２〜３分間、低速（ｓｐｅｅｄ １）から高速（ｓｐｅｅｄ ５）へと速度を徐々に増大させながらホモジェナイズする。
（３）続いて、試料を約９５℃で約５〜２０分間加熱する。９５℃に加熱する前に、試料を含むチューブのキャップを、細いゲージニードルを用いて穴を開けることが好ましい。あるいは、当該キャップにプラスチッククランプ又はラボラトリーフィルムを貼ってもよい。
（４）続いて、試料をｐＨ４．０の、５０μＬの２Ｍ 酢酸ナトリウム及び、１８ｍＬのフェノールと３．６ｍＬの１：４９のイソアミルアルコール：クロロホルム溶液とを混合することによって新しく調製した６００μＬのフェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール（１０：１．９３：０．０３６）を用いて抽出する。溶液を１０秒間激しく振とうし、続いて氷上で約１５分間冷却する。
（５）溶液を最速で約７分間遠心する。上側の（水）相を新しいチューブに移す。
（６）ＲＮＡを約１０μＬのグリコーゲンと４００μＬのイソプロパノールを用いて約３０分間−２０℃で沈澱させる。
（７）ＲＮＡを、ベンチトップの遠心機において、最速で、約７分間の遠心によってペレット化させ；上清をデカントし、そして廃棄し；そしてペレットを約５００μＬの約７０〜７５％エタノールで洗浄する。
（８）試料を再び７分間最速で遠心する。上清をデカントし、そしてペレットを風乾させる。続いて、ペレットをその後の実験に適した緩衝液（例えば、５０ｐＩ． ５ｍＭ Ｔｒｉｓ塩化物、ｐＨ８．０）中で溶解する。
【００９３】
実施例２
ｍＲＮＡの逆転写及びＰＣＲ
逆転写：ＲＮＡを、例１で例示したように、顕微解剖し、又は顕微解剖していない、ホルマリン固定してパラフィン包埋した（ＦＰＥ）組織から、あるいはＱｕｉｃｋＰｒｅｐ（商標）Ｍｉｃｒｏ ｍＲＮＡ精製キット（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｃ．， Ｐｉｓｃａｔｗａｙ， Ｎ．Ｊ．）を取扱説明書通りに用いた一段階のイソシアン酸グアニジン法によって、新鮮な、又は凍結した組織から単離した。エタノールによる沈澱及び遠心の後、ＲＮＡのペレットを、ｐＨ８．０の５０μＬの５ｍＭ Ｔｒｉｓ／Ｃｌ中で溶解した。Ｍ−ＭＬＶ逆転写酵素が、デオキシヌクレオチドの存在下で一本鎖のＲＮＡ又はＤＮＡの鋳型にハイブリダイズしたオリゴヌクレオチドプライマーを伸長して、相補鎖を作り出す。生じたＲＮＡは、ランダムなヘキサマー及びＬｉｆｅ ＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓのＭ−ＭＬＶ逆転写酵素を用いて逆転写した。逆転写は、２５μＬのＲＮＡ溶液と２５．５μＬの「逆転写用混合液（ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｍｉｘ」（後文を参照のこと）とを混合することによって達成した。反応溶液をサーモサイクラー内に２６℃で８分間（ランダムなヘキサマーをＲＮＡに結合させるため）、４２℃で４５分間（Ｍ−ＭＬＶ逆転写酵素反応のため）、そして９５℃で５分間（デオキシヌクレアーゼの熱による不活性化のため）据える。
【００９４】
「逆転写用混合液」は、１０μＬの５ｘ緩衝液（２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ， ｐＨ８．３， ３７５ｍＭ ＫＣｌ， １５ｍＭ ＭｇＣｌ２）、０．５μＬのランダムなヘキサマー（５０ Ｏ．Ｄ．， ５５０μＬの１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５で溶解）、５μＬの１０ｍＭ ｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ， ｄＧＴＰ， ｄＣＴＰ及びｄＴＴＰ）、５μＬ ０．１Ｍ ＤＴＴ， １．２５μＬのＢＳＡ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ， ｐＨ ７．５中３ｍｇ／ｍｌ）、１．２５μＬ ＲＮＡ Ｇｕａｒｄ ２４，８００Ｕ／ｍｌ（リボヌクレアーゼ阻害剤）（Ｐｏｒｃｉｎｅ＃２７−０８１６， Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ）及び２．５μＬのＭＭＬＶ ２００Ｕ／μＬ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈ Ｃａｔ＃２８０２５−０２）から成る。
【００９５】
反応成分の終濃度は、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ， ｐＨ８．３， ７５ｍＭ ＫＣｌ， ３ｍＭ ＭｇＣｌ２， １．０ｍＭ ｄＮＴＰ， １．０ｍＭ ＤＴＴ， ０．００３７５ｍｇ／ｍｌ ＢＳＡ， ０．６２ ＵμＬ ＲＮＡ Ｇｕａｒｄ及び１０Ｕ／μｌ ＭＭＬＶである。
【００９６】
ｍＲＮＡ発現のＰＣＲ定量。ＥＧＦＲのｃＤＮＡ及び内部標準又はハウスキーピング遺伝子（例えば、β−アクチン）のｃＤＮＡの定量は、蛍光を基にしたリアルタイムの検出法（ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ７７００又は７９００ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ［ＴａｑＭａｎ（商標）］， Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， ＣＡ．）を、Ｈｅｉｄ等（Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １９９６；６；９８６−９９４）；Ｇｉｂｓｏｎ等（Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １９９６；６：９９５−１００１）に記載のように用いることによって行った。要約すると、この方法は、フォワードプライマーとリバースプライマーの間に特異的にアニーリングする二重蛍光標識された蛍光発生的なＴａｑＭａｎ（商標）オリゴヌクレオチドプローブ（ＥＧＦＲ−１７７３（配列番号３）、Ｔｍ＝７０℃；ＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６５７（配列番号６）、β−アクチン−６１１（配列番号７））を使用する。反応混合物を含むキャップ付きのウェル内でのレーザー刺激は、プローブがＰＣＲ伸長の間にＤＮＡポリメラーゼの５’から３’へのヌクレアーゼ活性によって開裂されて５’のレポーター色素（６ＦＡＭ）を放出するまで３’クエンチャー色素（ＴＡＭＲＡ）の発光をもたらす。その結果、アンプリコンの産生は、ＴａｑＭａｎ（商標）のＣＣＤ（電荷結合素子）検出カメラによって検出される蛍光シグナルの発光をもたらし、そしてＰＣＲ反応の純粋な対数期における閾値のサイクルで産生したシグナルの量は、注目の配列の出発時のコピー数を反映する。注目の配列の出発時のコピー数と内部標準遺伝子の出発時のコピー数との比較は、相対的な遺伝子の発現レベルを提供する。ＴａｑＭａｎ（商標）解析は、２つの絶対測定値間での比率（注目の遺伝子／内部標準遺伝子）として表されるレベルを算出する。
【００９７】
ＰＣＲの反応混合物は、上述のように調製したｃＤＮＡを含む０．５μｌの逆転写反応溶液、６００ｎＭの各オリゴヌクレオチドプライマーＥＧＦＲ−１５７３Ｆ（配列番号１，Ｔｍ＝５９℃）及びＥＧＦＲ−１８２３Ｒ（配列番号２、Ｔｍ＝５８℃）又はオリゴヌクレオチドプライマーＨＥＲ２−ｎｅｕ ２６７１Ｆ（配列番号４）及びＨＥＲ−ｎｅｕ ２６９９Ｒ（配列番号５）、２００ｎＭ ＴａｑＭａｎ（商標）プローブ（配列番号３又は配列番号６）、５ＵのＡｍｐｌｉＴａｑ Ｇｏｌｄポリメラーゼ、２００μＭの各ｄＡＴＰ， ｄＣＴＰ， ｄＧＴＰ， ４００μＭのｄＴＴＰ、５．５ｍＭのＭｇＣｌ２，及び参照色素を含む１ｘＴａｑｍａｎ緩衝液Ａから成り、これらは終量が２５μｌ以下である（全ての試薬をＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， ＣＡ．から購入した）。サイクリングの条件は、９５℃を１０分間、続いて９５℃１５秒間、６０℃１分間を４５サイクル、であった。内部標準遺伝子β−アクチンを定量するために使用したオリゴヌクレオチドはβ−アクチン−５９２Ｆ（配列番号８）及びβ−アクチン−６５１Ｒ（配列番号９）であった。
【００９８】
実施例３
ＥＧＦＲについての未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）の決定
二組の類似の反応を実施する。「試験」反応及び「検量」反応。図７。ＥＧＦＲ増幅反応及びβ−アクチン内部標準の増幅反応は試験反応である。別々のＥＧＦＲ及びβ−アクチンの増幅反応がキャリブレーターＲＮＡの鋳型で実施され、そして検量反応として言及される。ＴａｑＭａｎ（商標）装置は、４つの異なるサイクルの閾値（Ｃｔ）：試験反応由来のＣｔＥＧＦＲ及びＣｔβ−アクチン並びに検量反応由来のＣｔＥＧＦＲ及びＣｔβ−アクチン、を算出する。２つの反応のＣｔ値の差違は、以下の方程式に従い決定される。
ΔＣｔ試験＝ＣｔＥＧＦＲ−Ｃｔβ−アクチン（「試験」反応由来）
ΔＣｔ検量＝ＣｔＥＧＦＲ−Ｃｔβ−アクチン（「検量」反応由来）
【００９９】
次の段階は、以下の方程式に従い、数字の２を−ΔＣｔの累乗することを包含する。
２−ΔＣｔｔｅｓｔ（「試験」反応由来）
２−ΔＣｔｃａｌｉｂｒａｔｏｒ（「検量」反応由来）
【０１００】
ＴａｑＭａｎ（商標）装置からＥＧＦＲについての未修正の遺伝子発現を得るために、以下の計算が実施される：
ＥＧＦＲについての未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）＝ ２−ΔＣｔｔｅｓｔ／２−ΔＣｔｃａｌｉｂｒａｔｏｒ
【０１０１】
既知の相対的なＥＧＦＲ発現レベルを用いるＵＧＥの標準化
標準化の計算は、ＵＧＥとＥＧＦＲ及び特定のキャリブレーターＲＮＡに特異的な補正係数（ＫＥＧＦＲ）を掛けることを必要とする。補正係数ＫＥＧＦＲは、任意の内部標準遺伝子及び任意の正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡについても決定されうる。好ましくは、内部標準遺伝子β−アクチン及び正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡ、ヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）を使用する。所定のこれらの試薬の補正係数ＫＥＧＦＲは１．５４に等しい。
【０１０２】
標準化は、ＴａｑＭａｎ（商標）の製造業者であるＡｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓがＵｓｅ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ＃２に記載し、そして上文に記載したΔＣｔの改良法を用いて達成される。この手順を実施するために、６個の異なるＦＰＥ試験組織のＵＧＥが、上述のＴａｑＭａｎ（商標）の方法論を持ちいてＥＧＦＲの発現について解析された。内部標準遺伝子β−アクチン及びキャリブレーターＲＮＡ、ヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）を使用した。
【０１０３】
ＡＧ２２１， ＡＧ２２２， ＡＧ２５２， 成人の肺、ＰＣ３， ＡｄＣｏｌの各試料の既知の相対的ＥＧＦＲ発現は、平均化していない補正係数Ｋを算出するために、その相当するＴａｑＭａｎ（商標）から導いたＵＧＥで割られた。
Ｋ平均化していない＝既知の値／ＵＧＥ
【０１０４】
続いて、Ｋの値は全て、キャリブレーターＲＮＡ及びβ−アクチンから、ＥＧＦＲ， Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅのヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）に特異的な単一のＫＥＧＦＲの補正係数を決定するために平均化される。
【０１０５】
従って、ｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）ＥＧＦＲの発現研究と一致するスケールでの未知の組織試料における修正済みの相対的なＥＧＦＲ発現を決定するために、希に、ＴａｑＭａｎ（商標）装置から導いた未修正の遺伝子発現データ（ＵＧＥ）を、同一の内部標準遺伝子とキャリブレーターＲＮＡを使用したＫＥＧＦＲ特異的な補正係数と掛ける。
修正済みの相対的なＥＧＦＲ発現＝ＵＧＥｘ ＫＥＧＦＲ
【０１０６】
ＫＥＧＦＲは、任意の正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡ又は内部標準遺伝子を用いて決定されうる。正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡの将来の供給源は、上文の方法に記載のように既知の相対的なＥＧＦＲ発現レベルを用いて試料に対して検量されることがあり、又は上述のように、既に検量したキャリブレーターＲＮＡ、例えばヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）に対しても今回検量されうる。
【０１０７】
例えば、次のＫＥＧＦＲが異なる内部標準遺伝子及び／又は異なるキャリブレーターＲＮＡについて決定される場合、その特定の内部標準遺伝子と相対的なＥＧＦＲ発現レベルが既に決定された組織試料に対し、内部標準遺伝子及びキャリブレーターＲＮＡの両方を検量しなければならない。そのような決定は、当業界で周知の標準的なｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）の、定量的ＲＴ−ＰＣＲ技術を用いて行われうる。これらの試料についての既知の発現レベルは、その試料についてのＫを決定するために、それらの相当するＵＧＥレベルによって割られる。続いて、Ｋの値は、異なる内部標準遺伝子及び／又はキャリブレーターＲＮＡに特異的なＫＥＧＦＲを決定するために、既知の試料の数に依存して平均化される。
【０１０８】
実施例４
ＨＥＲ２−ＮＥＵについての未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）の決定
二組の類似の反応を実施する。「試験」反応及び「検量」反応。図８。ＨＥＲ２−ＮＥＵ増幅反応及びβ−アクチン内部標準の増幅反応は試験反応である。別々のＨＥＲ２−ＮＥＵ及びβ−アクチンの増幅反応がキャリブレーターＲＮＡの鋳型で実施され、そして検量反応として言及される。ＴａｑＭａｎ（商標）装置は、４つの異なるサイクルの閾値（Ｃｔ）：試験反応由来のＣｔＨＥＲ２−ＮＥＵ及びＣｔβ−アクチン並びに検量反応由来のＣｔＨＥＲ２−ＮＥＵ及びＣｔβ−アクチン、を算出する。２つの反応のＣｔ値の差違は、以下の方程式に従い決定される。
ΔＣｔ試験＝ＣｔＨＥＲ２−ＮＥＵ−Ｃｔβ−アクチン（「試験」反応由来）
ΔＣｔ検量＝ＣｔＨＥＲ２−ＮＥＵ−Ｃｔβ−アクチン（「検量」反応由来）
【０１０９】
次の段階は、以下の方程式に従い、数字の２を−ΔＣｔの累乗することを包含する。
２−ΔＣｔｔｅｓｔ（「試験」反応由来）
２−ΔＣｔｃａｌｉｂｒａｔｏｒ（「検量」反応由来）
【０１１０】
ＴａｑＭａｎ（商標）装置からＨＥＲ２−ＮＥＵについての未修正の遺伝子発現を得るために、以下の計算が実施される：
ＨＥＲ２−ＮＥＵについての未修正の遺伝子発現（ＵＧＥ）＝ ２−ΔＣｔｔｅｓｔ／２−ΔＣｔｃａｌｉｂｒａｔｏｒ
【０１１１】
既知の相対的なＨＥＲ２−ＮＥＵ発現レベルを用いるＵＧＥの標準化
標準化の計算は、ＵＧＥとＨＥＲ２−ＮＥＵ及び特定のキャリブレーターＲＮＡに特異的な補正係数（ＫＨＥＲ２−ＮＥＵ）を掛けることを必要とする。補正係数ＫＨＥＲ２−ＮＥＵは、任意の内部標準遺伝子及び任意の正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡについても決定されうる。好ましくは、内部標準遺伝子β−アクチン及び正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡ、ヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）を使用する。所定のこれらの試薬の補正係数ＫＨＥＲ２−ＮＥＵは１２．６×１０−３に等しい。
【０１１２】
標準化は、ＴａｑＭａｎ（商標）の製造業者であるＡｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓがＵｓｅ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ＃２に記載し、そして上文に記載したΔＣｔの改良法を用いて達成される。この手順を実施するために、６個の異なるＦＰＥ試験組織のＵＧＥが、上述のＴａｑＭａｎ（商標）の方法論を持ちいてＨＥＲ２−ＮＥＵの発現について解析された。内部標準遺伝子β−アクチン及びキャリブレーターＲＮＡ、ヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）を使用した。
【０１１３】
ＡＧ２２１， ＡＧ２２２， ＡＧ２５２， 成人の肺、ＰＣ３， ＡｄＣｏｌの各試料の既知の相対的ＨＥＲ２−ＮＥＵ発現は、平均化していない補正係数Ｋを算出するために、その相当するＴａｑＭａｎ（商標）から導いたＵＧＥで割られた。
Ｋ平均化していない＝既知の値／ＵＧＥ
【０１１４】
続いて、Ｋの値は全て、キャリブレーターＲＮＡ及びβ−アクチンから、ＨＥＲ２−ＮＥＵ， Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅのヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）に特異的な単一のＫＨＥＲ２−ＮＥＵの補正係数を決定するために平均化される。
【０１１５】
従って、ｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）ＨＥＲ２−ＮＥＵの発現研究と一致するスケールでの未知の組織試料における修正済みの相対的なＨＥＲ２−ＮＥＵ発現を決定するために、希に、ＴａｑＭａｎ（商標）装置から導いた未修正の遺伝子発現データ（ＵＧＥ）を、同一の内部標準遺伝子とキャリブレーターＲＮＡを使用したＫＨＥＲ２−ｎｅｕ特異的な補正係数と掛ける。
修正済みの相対的なＨＥＲ２−ＮＥＵ発現＝ＵＧＥｘ ＫＨＥＲ２−ＮＥＵ
【０１１６】
ＫＨＥＲ２−ＮＥＵは、任意の正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡ又は内部標準遺伝子を用いて決定されうる。正確にあらかじめ定量したキャリブレーターＲＮＡの将来の供給源は、上文の方法に記載のように既知の相対的なＨＥＲ２−ＮＥＵ発現レベルを用いて試料に対して検量されることがあり、又は上述のように、既に検量したキャリブレーターＲＮＡ、例えばヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）に対しても今回検量されうる。
【０１１７】
例えば、次のＫＨＥＲ２−ＮＥＵが異なる内部標準遺伝子及び／又は異なるキャリブレーターＲＮＡについて決定される場合、その特定の内部標準遺伝子と相対的なＨＥＲ２−ＮＥＵ発現レベルが既に決定された組織試料に対し、内部標準遺伝子及びキャリブレーターＲＮＡの両方を検量しなければならない。そのような決定は、当業界で周知の標準的なｐｒｅ−ＴａｑＭａｎ（商標）の、定量的ＲＴ−ＰＣＲ技術を用いて行われうる。これらの試料についての既知の発現レベルは、その試料についてのＫを決定するために、それらの相当するＵＧＥレベルによって割られる。続いて、Ｋの値は、異なる内部標準遺伝子及び／又はキャリブレーターＲＮＡに特異的なＫＨＥＲ２−ＮＥＵを決定するために、既知の試料の数に依存して平均化される。
【０１１８】
実施例５
患者群及び組織の収集
患者：６５人（７８．３％）の男性及び１８人（２１．７％）の女性から成る、平均年齢６３．５才（３４〜８２才）のＮＳＣＬＣに苦しむ８３人の患者が研究された。３９人（４７％）の患者が扁平上皮細胞ガンを有し、３２人（３８．６％）が腺ガンを有し、そして１２人（１４．５％）が大細胞ガンを有していた。原発性腫瘍は、組織学的に、高分化（Ｇ１，１人の患者）、中分化（Ｇ２， １８人の患者）、及び低分化（Ｇ３， ６４人の患者）に分類された。腫瘍の病期分類は、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｕｎｉｏｎ Ａｇａｉｎｓｔ Ｃａｎｃｅｒ（ＵＩＣＣ）ＴＭＭの分類に従い実施され；４２人（４９．４％）が第Ｉ期の腫瘍を有し、１６人（１９．３％）が第ＩＩ期の腫瘍を有し、そして２６人（３１．３％）が第ＩＩＩａ期の腫瘍を有していた。全ての腫瘍が、品質管理として一度は肺葉切除術によって完全に切除された（Ｒ０の分類）。組織病理学的な第ＩＩＩａ期の腫瘍は、術後の放射線治療を受けた。平均的な追跡検査は８５．９ヶ月であり（最短６３．３ヶ月；最長１０５．２ヶ月）、そして患者は追跡検査されない患者はいなかった。
【０１１９】
組織の収集：遺伝子発現解析のための組織は、肺切除の直後で縦隔リンパ節切除の前に得られ、そして直ちに液体窒素中で凍結された。組織は、以下の２つの部位から解析された；腫瘍及び当該腫瘍に対し最大距離をとる関与していない肺組織。６μｍの凍結切片が腫瘍組織の固まりから採られ、そして最初の切片から開始して、５つ毎に慣習的にＨＥで染色され、そして組織病理学的に評価された。切片は推定７５％悪性細胞の領域からの解析のためにプールされた。ＲＮＡは、実施例２の方法に従い、組織試料から単離された。
【０１２０】
実施例６
統計解析
ＴａｑＭａｎ（商標）解析は、ＵＧＥで表される値を算出する。腫瘍組織のＵＧＥと、対応する非悪性肺組織のＵＧＥとの比率は、ディファレンシャルな遺伝子発現を決定するために使用された。２つのＵＧＥの変数間の関係は、ウィルコクソンの符号付き順位検定を用いることによって試験した。カイ二乗試験は、範疇臨床病理学的変数間の関係を解析するために使用された。ハザード率は、死亡の相対危険度を算出するために使用された。これらの計算はＰｉｋｅの概算（Ｐｉｋｅ ｅｓｔｉｍａｔｅ）に基づいており、これらは、対数順位検定の統計値において算出された通り、事象の観察された数及び予想された数を用いた。Ｐｉｋｅ， Ｊ Ｒ Ｓｔａｔ Ｓｏｃ Ｓｅｒｉｅｓ Ａ １３５：２０１−２０３；１９７２．Ｍｉｌｌｅｒ及びＳｉｇｍｕｎｄ（Ｍｉｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１１−１０１６， １９８２）並びにＨａｌｐｅｒｎ（Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１７−１０２３， １９８２）の最大カイ二乗法は、どの発現の値が、分類の強度を測定するために使用された統計値としての対数順位検定により、（生存可能性の観点から）悪い予後の部分集合と良い予後の部分集合とに患者を最もよく分離しているかを決定するために採用された。最大カイ二乗解析に基づいた関係の強度の測定値として解釈されるＰ値を決定するために、１０００個のブートストラップ様のシミュレーションが、関連性が無いとの仮定の下、最大カイ二乗統計分布を推定するために使用された。Ｈａｌｐｅｒｎ， Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１７−１０２３， １９８２．単変数解析において有意であったＣｏｘの比例ハザードモデリングが、どの因子が生存に対して有意な影響を有するかを同定するために実施された。有意のレベルはｐ＜０．０５に設定された。
【０１２１】
ＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡ発現は、定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲによって、８３のうち８３（１００％）の正常な肺及び８３のうち８３（１００％）の腫瘍試料で検出可能であった。ＨＥＲ２−ｎｅｕとβ−アクチンのＰＣＲ産物間の比率として表された修正済みのＨＥＲ２−ｎｅｕのｍＲＮＡ発現は、正常な肺で４．１７ｘ１０−３（範囲０．２８〜２３．８６ｘ１０−３）、そして腫瘍組織で４．３５ｘ１０−３（範囲：０．２１〜６８．１１ｘ１０−３）であった（Ｐ＝０．０１９ ウィルコクソン検定）。Ｍｉｌｌｅｒ及びＳｉｇｍｕｎｄ（Ｍｉｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１１−１０１６， １９８２）並びにＨａｌｐｅｒｎ（Ｂｉｏｍｅｔｒｉｃｓ ３８：１０１７−１０２３， １９８２）による最大カイ二乗法は、低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕを発現する者と高レベルにディファレンシャルな者へと患者を分離するために１．８の閾値を決定した。この基準により、２９人（３４．９％）の患者は高レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕを発現しており、そして５４人（６５．１％）は低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕを発現していた。図４は、臨床病理学的なデータとディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの遺伝子発現状態との関係を示す。検出可能な統計学的に有意な差違は存在しなかった。図１は、推定される生存可能性対ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡの発現状態のカプランマイヤープロットを示す。中央値の生存度には低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ発現群において達しなく、それと比較して高レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ発現群においては３１．１ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：２１．９６−４０．２４）で達した。Ｐ値を決定するために、ブートストラップ様のシミュレーションを使用して最大カイ二乗統計分布が推定されたのは、１．８の閾値が当該データを試験した後に選択されたためである。結果として生じた調整済みのＰ値は０．０４であった（対数順位検定）。
【０１２２】
予後因子としてのＨＥＲ２−ｎｅｕの正確性が、続いてＣｏｘの比例ハザードモデル解析によって決定された。潜在的な予後因子の単変数解析において、高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現及び進行したｐＴ（腫瘍病期）分類、ｐＮ（リンパ節病期）分類、及び腫瘍病期は、有意な望ましくない予後因子であった（図５）。予後因子の多変数解析において（図６）、高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現は有意で且つ独立した望ましくない予後因子であり、進行したｐＮ分類及び腫瘍病期も同様であった。
【０１２３】
ＥＧＦＲ ｍＲＮＡ発現は、定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲによって、８３のうち８３（１００％）の正常な肺及び８３のうち８３（１００％）の腫瘍試料で検出可能であった。中央値の修正済みのＥＧＦＲのｍＲＮＡ発現は、正常な肺で８．１７ｘ１０−３（範囲０．３１〜４６．２６ｘ１０−３）、そして腫瘍組織で７．２２ｘ１０−３（範囲：０．２７〜９７．４９ｘ１０−３）であった（Ｐ＝ｎ．ｓ．）。最大カイ二乗法（Ｍｉｌｌｅｒ（１９８２）；Ｈａｌｐｅｒｎ（１９８２））は、低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕを発現する者と高レベルにディファレンシャルな者へと患者を分離するために１．８の閾値を決定した。この基準により、２８人（３３．７％）の患者は高レベルにディファレンシャルなＥＧＦＲを発現しており、そして５５人（６６．３％）は低レベルにディファレンシャルなＥＧＦＲを発現していた。臨床病理学的なデータとディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの遺伝子発現状態との間に検出可能な統計学的に有意な差違は存在しなかった（図４）。全体的な生存度の低下が、高レベルにディファレンシャルなＥＧＦＲ発現群について観察されたが、統計的に有意ではなかった（図２）。中央値の生存度には低レベルにディファレンシャルなＥＧＦＲ発現群において達しなく（Ｐ＝０．１７６）、これと比較して高レベルにディファレンシャルなＥＧＦＲ発現群においては３２．３７ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：８．４３−５６．３１）で達した。
【０１２４】
ディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの高度な発現レベル（約１．８）は、８３人のうち１４人（１６．９％）の患者において見られた。８３人中４０人（４８．２％）の患者はＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲについて低レベルにディファレンシャルな発現状態（１．８未満）を示したが、８３人中１４人（１６．９％）の患者がＥＧＦＲのみの場合高レベルにディファレンシャルな発現を示し、そして８３人中１５人の患者（１８．１％）の患者がＨＥＲ２−ｎｅｕについて高度にディファレンシャルな発現を示した。中央値の生存度に、低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの発現を示した群において達しなく、それと比較して高度にディファレンシャルなＥＧＦＲの発現において４５．４７ヶ月、高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕの発現群において３１．１０ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：１４．７７〜４７．４３）、そして高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの発現群において２２．０３ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：２．３０；４１．７６；Ｐ＝０．００３；対数順位検定；図３及び５）で達した。単変数解析は、有意な望ましくない予後因子として高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの発現群を示した（図５）。予後因子の多変数解析において（図６）、高度にディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及び高度にディファレンシャルなＥＧＦＲの同時発現は有意で且つ独立した望ましくない予後因子であり、進行したｐＮ分類及び腫瘍病期も同様であった。
【０１２５】
実施例７
受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対する腫瘍応答
５人の結腸ガン患者の腫瘍が、免疫組織化学によってＥＧＦＲを発現しているとして最初に同定された。患者は、Ｉｍｃｌｏｎｅ ＩＭＣ−Ｃ２２５により、４００ｍｇ／ｍ２の負荷量、続いて２５０ ｍｇ／ｍ２で週に一回、更にＣＰＴ−１１により同量で、そして患者が既に進行してたスケジュールで処置された。従来のＣＰＴ−１１の投与量の減衰が維持された。
【０１２６】
例１〜４に記載の方法論を用いて、患者１は、２．０８ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有することが決定され、そしてＣＰＴ−１１（７−エチル−１０−［４−（１−ピペリジノ）−１−］カルボキシカンプトセシン）／Ｃ２２５（抗ガン治療に有効な抗ＥＧＦＲモノクローナル抗体；Ｍｅｎｄｅｌｓｏｈｎｍ Ｅｎｄｏｃｒ Ｒｅｌａｔ Ｃａｎｃｅｒ ２００１ Ｍａｒ；８（１）：３−９）を含んで成る受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対して完了した応答（ＣＲ）を有していた。患者２は、８．０４ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有しており、そして受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対する部分的な応答（ＰＲ）を有していた。患者３は、１．４７ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有しており、そして更に受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対する部分的な応答（ＰＲ）を示した。患者４は、０．１６ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有しており、そして受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対する応答を示さない安定な疾患（ＳＤ）を有していた。患者５は、ＥＧＦＲを発現しておらず（０．０ｘ１０−３）、そして受容体チロシンキナーゼを標的とした化学療法に対する応答を示さない進行性の疾患（ＰＲ）を有していた。図９を参照のこと。
【図面の簡単な説明】
【図１】
治療によって切除された非小細胞肺ガン患者の推定される生存の可能性対ＨＥＲ２−ｎｅｕ ｍＲＮＡの発現状態。中央値の生存度は、高いＨＥＲ２−ｎｅｕ発現群（ｐ＝０．００４）において３１．１ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ：２１．９６−４０．２４）で達したのと比較して、低いＨＥＲ２−ｎｅｕ発現群において達しなかった。
【図２】
治療によって切除された非小細胞肺ガン患者の推定される生存の可能性対ＥＧＦＲ ｍＲＮＡの発現状態。全体的な生存度の低下が、高いＥＧＦＲ発現群について観察されたが、統計的に有意ではなかった。中央値の生存度には低いＥＧＦＲ発現群において達しなく（Ｐ＝０．１７６）、これと比較して高いＥＧＦＲ発現群においては３２．３７ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：８．４３−５６．３１）で達した。
【図３】
治療によって切除された非小細胞肺ガン患者の推定される生存の可能性対ＮＳＣＬＣにおけるＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕの同時発現の組み合わせのパターン。中央値の生存度には、低レベルにディファレンシャルなＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの発現を示した群において達しなく、それと比較して高いＥＧＦＲの発現群において４５．４７ヶ月、高いＨＥＲ２−ｎｅｕの発現群において３１．１０ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：１４．７７〜４７．４３）、そして高いＨＥＲ２−ｎｅｕ及びＥＧＦＲの発現群において２２．０３ヶ月（９５％ Ｃ．Ｉ．：２．３０；４１．７６；Ｐ＝０．００３）で達した。
【図４】
患者及び腫瘍における高い及び低いＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕ発現を示す表。
【図５】
臨床的且つ分子のパラメーターを基にした患者の生存度を示す表。
【図６】
Ｃｏｘの比例ハザード回帰モデルを示す表。二重マーカーはＥＧＦＲ及びＨＥＲ２−ｎｅｕ両方の発現を言及する。
【図７】
図７は、ＥＧＦＲの発現を、内部標準遺伝子と比較してどのように算出するかを例示するチャートである。当該チャートは、２つの試験試料（未知１及び２）を用いて得られたデータを含み、そして未修正の遺伝子発現データ（ＵＧＥ）をどのように決定するかを例示する。当該チャートはまた、ｐｒｅ−Ｔａｑｍａｎ（商標）技術によって決定された既知の相対的なＥＧＦＲ値を用い、Ｔａｑｍａｎ（商標）装置によって生成したＵＧＥをどのように標準化するかを例示する。これは、ＵＧＥを修正因子ＫＥＧＦＲとかけることによって達成される。図中の内部標準遺伝子はβ−アクチンであり、そしてキャリブレーターＲＮＡはヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）である。
【図８】
図８は、ＨＥＲ２−ｎｅｕの発現を、内部標準遺伝子と比較してどのように算出するかを例示するチャートである。当該チャートは、２つの試験試料（未知１及び２）を用いて得られたデータを含み、そして未修正の遺伝子発現データ（ＵＧＥ）をどのように決定するかを例示する。当該チャートはまた、ｐｒｅ−Ｔａｑｍａｎ（商標）技術によって決定された既知の相対的なＨＥＲ２−ｎｅｕ値を用い、Ｔａｑｍａｎ（商標）装置によって生成したＵＧＥをどのように標準化するかを例示する。これは、ＵＧＥを修正因子ＫＨＥＲ２−ｎｅｕとかけることによって達成される。図中の内部標準遺伝子はβ−アクチンであり、そしてキャリブレーターＲＮＡはヒト肝臓全ＲＮＡ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｃａｔ＃７３５０１７）である。
【図９】
図９は、５人の異なる結腸ガン患者の腫瘍の修正済みのＥＧＦＲ発現値を示すグラフである。患者は、ＣＰＴ−１１／Ｃ２２５受容体チロシンキナーゼを標的とした処置の養生法にかけられた。患者１は、２．０８ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有することが決定され、そして完了した応答（ＣＲ）を有していた。患者２は、８．０４ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有してえおり、そして部分的な応答（ＰＲ）を有していた。患者３は１．４７ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現を有しており、そしてまた、部分的な応答（ＰＲ）を有していた。患者４は、１．０６ｘ１０−３の修正済みのＥＧＦＲ発現レベルを有し、そして応答を示さない安定な疾患（ＳＤ）を有していた。患者５はＥＧＦＲを発現しておらず（０．０ｘ１０−３）、そして進行性の疾患（ＰＲ）を有していた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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