(57)【要約】本発明は，ＨＣＶまたはＨＢＶ  ＲＮＡの合成，発現および／または安定性を調節する核酸分子，例えば，アンチセンスおよび酵素的核酸分子，例えば，ハンマーヘッドリボザイム，ＤＮＡザイム，イノザイム，チンザイム，アンバーザイム，およびＧ切断剤リボザイム，およびこれらを単独でまたは他の療法との組み合わせで用いる方法に関する。さらに，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼおよび／またはＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマー配列に結合する核酸デコイ分子およびアプタマー，およびこれらを単独でまたは他の療法と組み合わせて用いる方法が開示される。さらに，ＨＢＶ  ＤＮＡのエンハンサーＩ領域に特異的に結合するオリゴヌクレオチドが開示される。本発明はさらに，本発明の核酸，例えばデコイおよびアプタマー分子を用いて，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）遺伝子の発現およびＨＢＶウイルス複製を調節することに関する。さらに，ＨＢＶ動物モデルおよびその使用方法が開示され，例えば，ＨＢＶに対する化合物および／または潜在的療法をスクリーニングする方法が開示される。本発明はまた，Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）の発現および／または複製を調節する化合物，例えば，酵素的核酸分子，リボザイム，ＤＮＡザイム，ヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラ，例えば２’，５’−アデニレートに関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
式Ｉ：
【化１】
2004532022.tif 000200
［式中
Ｘ1は，１，２，および３からなる群より選択される整数であり；Ｘ2は，１以上の整数であり；Ｒ6は，独立して，Ｈ，ＯＨ，ＮＨ2，ＯＮＨ2，アルキル，Ｓ−アルキル，Ｏ−アルキル，Ｏ−アルキル−Ｓ−アルキル，Ｏ−アルコキシアルキル，アリル，Ｏ−アリル，およびフルオロからなる群より選択され；各Ｒ1およびＲ2は，独立して，ＯおよびＳからなる群より選択され；各Ｒ3およびＲ4は，独立して，Ｏ，Ｎ，およびＳからなる群より選択され；およびＲ5は，アルキル，アルキルアミン，配列番号１１３４３−１６１８２のいずれかを有するオリゴヌクレオチド，配列番号２５９４−７４３３のいずれかに相補的な配列を有するオリゴヌクレオチド，および無塩基成分からなる群より選択される］
を有する化合物。
【請求項２】
配列番号２５９４−７４３３のいずれかに相補的な配列を有する前記オリゴヌクレオチドが酵素的核酸分子である，請求項１記載の化合物。
【請求項３】
配列番号２５９４−７４３３のいずれかに相補的な配列を有する前記オリゴヌクレオチドがアンチセンス核酸分子である，請求項１記載の化合物。
【請求項４】
前記酵素的核酸分子が，ハンマーヘッド，イノザイム，Ｇ−切断剤，ＤＮＡザイム，アンバーザイム，およびチンザイムモチーフからなる群より選択される，請求項２記載の化合物。
【請求項５】
前記イノザイム酵素的核酸分子が，２塩基対以上の長さのステムＩＩ領域を含む，請求項２記載の化合物。
【請求項６】
前記酵素的核酸が，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１２−１００塩基を含む，請求項２記載の化合物。
【請求項７】
前記酵素的核酸が，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１４−２４塩基を含む，請求項２記載の化合物。
【請求項８】
前記アンチセンス核酸が，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１２−１００塩基を含む，請求項３記載の化合物。
【請求項９】
前記アンチセンス核酸が，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１４−２４塩基を含む，請求項３記載の化合物。
【請求項１０】
請求項１記載の化合物および薬学的に許容しうる担体を含む組成物。
【請求項１１】
請求項１記載の化合物を含む哺乳動物細胞。
【請求項１２】
前記哺乳動物細胞がヒト細胞である，請求項１１記載の哺乳動物細胞。
【請求項１３】
肝硬変，肝不全，肝細胞癌，またはＨＣＶ感染に伴う状態を治療する方法であって，患者に請求項１記載の化合物を前記治療に適した条件下で投与する工程を含む方法。
【請求項１４】
前記治療に適した条件下で１またはそれ以上の薬剤療法を使用することをさらに含む，請求項１３記載の方法。
【請求項１５】
哺乳動物細胞においてＨＣＶ複製を阻害する方法であって，前記阻害に適した条件下で前記細胞に請求項１記載の化合物を投与する工程を含む方法。
【請求項１６】
別個のＲＮＡ分子を切断する方法であって，前記別個のＲＮＡ分子の切断に適した条件下で請求項１記載の化合物を前記別個のＲＮＡ分子と接触させることを含む方法。
【請求項１７】
前記切断が２価カチオンの存在下で行われる，請求項１６記載の方法。
【請求項１８】
前記２価カチオンがＭｇ2+である，請求項１７記載の方法。
【請求項１９】
前記切断が蛋白質ヌクレアーゼの存在下で行われる，請求項１６記載の方法。
【請求項２０】
前記蛋白質ヌクレアーゼがＲＮＡｓｅＬである，請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
前記化合物が化学的に合成されたものである，請求項１記載の化合物。
【請求項２２】
前記オリゴヌクレオチドが少なくとも１つの２’−糖修飾を含む，請求項１記載の化合物。
【請求項２３】
前記オリゴヌクレオチドが少なくとも１つの核酸塩基修飾を含む，請求項１記載の化合物。
【請求項２４】
前記オリゴヌクレオチドが少なくとも１つのリン酸修飾を含む，請求項１記載の化合物。
【請求項２５】
前記薬剤療法が１型インターフェロンの投与である，請求項１４記載の方法。
【請求項２６】
前記１型インターフェロンおよび請求項１記載の化合物が同時に投与される，請求項２５記載の方法。
【請求項２７】
前記１型インターフェロンおよび請求項１記載の化合物が別々に投与される，請求項２５記載の方法。
【請求項２８】
前記１型インターフェロンが，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，およびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンからなる群より選択される，請求項２５記載の方法。
【請求項２９】
前記化合物中のＲ5が，アルキル，アルキルアミンおよび無塩基成分からなる群より選択され，および前記薬剤療法が，ＨＣＶ複製を標的とする酵素的核酸分子を用いる治療を含む，請求項１４記載の方法。
【請求項３０】
前記化合物中のＲ5が，アルキル，アルキルアミンおよび無塩基成分からなる群より選択され，および前記薬剤療法が，ＨＣＶ複製を標的とするアンチセンス核酸分子を用いる治療を含む，請求項１４記載の方法。
【請求項３１】
１型インターフェロンおよび請求項１記載の化合物および薬学的に許容しうる担体を含む組成物。
【請求項３２】
前記無塩基成分が，
【化２】
2004532022.tif 000201
［式中，Ｒ3は，Ｓ，Ｎ，またはＯからなる群より選択され，およびＲ7は，独立して，Ｈ，ＯＨ，ＮＨ2，Ｏ−ＮＨ2，アルキル，Ｓ−アルキル，Ｏ−アルキル，Ｏ−アルキル−Ｓ−アルキル，Ｏ−アルコキシアルキル，アリル，Ｏ−アリル，フルオロ，オリゴヌクレオチド，アルキル，アルキルアミンおよび無塩基成分からなる群より選択される］
からなる群より選択される，請求項１記載の化合物。
【請求項３３】
Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）に由来するＲＮＡを特異的に切断する酵素的核酸分子であって，配列番号６３４６により規定される配列を含む酵素的核酸分子。
【請求項３４】
細胞に請求項３３記載の酵素的核酸分子を投与する方法であって，前記投与に適した条件下で前記細胞を酵素的核酸分子と接触させることを含む方法。
【請求項３５】
１またはそれ以上の他の治療用化合物を投与することをさらに含む，請求項３４記載の方法。
【請求項３６】
前記他の治療用化合物が１型インターフェロンである，請求項３５記載の方法。
【請求項３７】
前記他の治療用化合物が３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）である，請求項３５記載の方法。
【請求項３８】
前記他の治療用化合物および酵素的核酸分子が同時に投与される，請求項３５記載の方法。
【請求項３９】
前記他の治療用化合物および酵素的核酸分子が別々に投与される，請求項３５記載の方法。
【請求項４０】
前記１型インターフェロンが，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，およびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンからなる群より選択される，請求項３６記載の方法。
【請求項４１】
前記細胞が哺乳動物細胞である，請求項３４または３５に記載の方法。
【請求項４２】
前記細胞がヒト細胞である，請求項４１記載の方法。
【請求項４３】
前記投与が輸送試薬の存在下で行われる，請求項４１記載の方法。
【請求項４４】
前記輸送試薬が脂質である，請求項４３記載の方法。
【請求項４５】
前記脂質がカチオン性脂質またはリン脂質である，請求項４４記載の方法。
【請求項４６】
前記輸送試薬がリポソームである，請求項４３記載の方法。
【請求項４７】
Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマーに特異的に結合する核酸分子であって，配列（ＵＵＣＡ）n（ここで，ｎは１−１０の整数である）を含む核酸分子。
【請求項４８】
Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマーに特異的に結合する核酸分子であって，配列番号１１２１６−１１２６２，１１２６４，１１２６６，１１２６８，１１２７０，１１２７２，１１２７４，１１２７６，１１２７８，１１２８０，１１２８２，１１２８４，１１２８６，１１２８８，１１２９０および１１２９２のいずれかを含む配列であることを特徴とする核酸分子。
【請求項４９】
ＨＢＶ  ＤＮＡのエンハンサーＩ配列に特異的に結合する核酸分子。
【請求項５０】
前記核酸分子が，配列番号１１３２７，１１３３０，１１３３２，１１３３４，１１３３５，１１３３８，１１３４０および１１３４２のいずれかを含む，請求項４９記載の核酸分子。
【請求項５１】
細胞に請求項４７−５０のいずれかに記載の核酸分子を投与する方法であって，前記投与に適した条件下で前記細胞を核酸デコイ分子と接触させることを含む方法。
【請求項５２】
１またはそれ以上の他の治療用化合物を投与することをさらに含む，請求項５１記載の方法。
【請求項５３】
前記他の治療用化合物が１型インターフェロンである，請求項５２記載の方法。
【請求項５４】
前記他の治療用化合物が３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）である，請求項５２記載の方法。
【請求項５５】
前記他の治療用化合物および核酸分子が同時に投与される，請求項５２記載の方法。
【請求項５６】
前記他の治療用化合物および核酸分子が別々に投与される，請求項５２記載の方法。
【請求項５７】
前記１型インターフェロンが，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，およびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンからなる群より選択される，請求項５３記載の方法。
【請求項５８】
前記核酸分子が核酸骨格修飾を含む，請求項４７−５０のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項５９】
前記核酸分子が核酸糖修飾を含む，請求項４７−５０のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項６０】
前記核酸デコイ分子が核酸塩基修飾を含む，請求項４７−５０のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項６１】
前記細胞が哺乳動物細胞である，請求項５１または５２に記載の方法。
【請求項６２】
前記細胞がヒト細胞である，請求項６１記載の方法。
【請求項６３】
前記投与が輸送試薬の存在下で行われる，請求項６１記載の方法。
【請求項６４】
前記輸送試薬が脂質である，請求項６３記載の方法。
【請求項６５】
前記脂質がカチオン性脂質またはリン脂質である，請求項６４記載の方法。
【請求項６６】
前記輸送試薬がリポソームである，請求項６３記載の方法。
【請求項６７】
前記核酸分子がデコイ核酸分子である，請求項４７記載の核酸分子。
【請求項６８】
前記核酸分子がアプタマー核酸分子である，請求項４７記載の核酸分子。
【請求項６９】
前記エンハンサーＩ配列が，肝細胞核因子３および／または肝細胞核因子４結合配列を含む，請求項４９記載の核酸分子。
【請求項７０】
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が移植されているマウスであって，ＨＥＰＧ２．２．１５細胞の繁殖およびＨＢＶ生成を支持するマウス。
【請求項７１】
前記マウスがＨＢＶに少なくとも１週間感染している，請求項７０記載のマウス。
【請求項７２】
前記マウスがＨＣＶに少なくとも４週間感染している，請求項７０記載のマウス。
【請求項７３】
前記マウスがＨＢＶに少なくとも８週間感染している，請求項７０記載のマウス。
【請求項７４】
前記マウスが免疫欠陥マウスである，請求項７０記載のマウス。
【請求項７５】
前記マウスがｎｕ／ｎｕマウスである，請求項７４記載のマウス。
【請求項７６】
前記マウスがｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウスである，請求項７４記載のマウス。
【請求項７７】
請求項７０記載のマウスを製造する方法であって，前記マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５細胞の繁殖に適した条件下でＨｅｐＧ２．２．１５細胞を前記マウスに注入することを含む方法。
【請求項７８】
前記マウスがｎｕ／ｎｕマウスである，請求項７７記載の方法。
【請求項７９】
前記マウスがｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウスである，請求項７７記載の方法。
【請求項８０】
前記注入が皮下注入である，請求項７７記載の方法。
【請求項８１】
前記ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が，カルシウムおよびマグネシウムを含むダルベッコＰＢＳ溶液に懸濁されている，請求項７７記載の方法。
【請求項８２】
治療用化合物をＨＢＶに対する活性についてスクリーニングする方法であって，前記治療用化合物を請求項７０記載のマウスに投与し，そして，ＨＢＶ  ＤＮＡのレベルに及ぼす前記治療用化合物の効果について前記マウスをモニターすることを含む方法。
【請求項８３】
前記治療用化合物が，単独でまたは他の治療用化合物または治療と組み合わせて投与される核酸分子である，請求項７０記載の方法。
【請求項８４】
前記核酸分子が酵素的核酸分子である，請求項８３記載の方法。
【請求項８５】
前記核酸分子がアンチセンス核酸分子である，請求項８３記載の方法。
【請求項８６】
前記他の治療が抗ウイルス療法である，請求項８３記載の方法。
【請求項８７】
前記抗ウイルス療法が３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）による治療である，請求項８６記載の方法。
【請求項８８】
前記抗ウイルス療法がインターフェロンによる治療である，請求項８６記載の方法。
【請求項８９】
前記インターフェロンがコンセンサスインターフェロン，１型インターフェロン，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂおよびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンからなる群より選択される，請求項８８記載の方法。
【請求項９０】
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が移植されている免疫欠陥非ヒト哺乳動物であって，ＨＢＶ感染に感受性であり，かつＨＢＶ  ＤＮＡ発現を支持しうることを特徴とする非ヒト哺乳動物。
【請求項９１】
前記非ヒト哺乳動物がＨＢＶに少なくとも１週間感染している，請求項９０記載の哺乳動物。
【請求項９２】
前記非ヒト哺乳動物がＨＢＶに少なくとも４週間感染している，請求項９０記載の哺乳動物。
【請求項９３】
前記非ヒト哺乳動物がＨＢＶに少なくとも８週間感染している，請求項９０記載の哺乳動物。
【請求項９４】
前記非ヒト哺乳動物がｎｕ／ｎｕ哺乳動物である，請求項９０記載の哺乳動物。
【請求項９５】
前記非ヒト哺乳動物がｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ哺乳動物である，請求項９０記載の哺乳動物。
【請求項９６】
請求項９０記載の非ヒト哺乳動物を製造する方法であって，前記非ヒトにおけるＨｅｐＧ２．２．１５細胞の繁殖に適した条件下でＨｅｐＧ２．２．１５細胞を前記非ヒト哺乳動物に注入することを含む方法。
【請求項９７】
前記非ヒト哺乳動物がｎｕ／ｎｕ哺乳動物である，請求項９６記載の方法。
【請求項９８】
前記非ヒト哺乳動物がｓｃｉｄ哺乳動物である，請求項９６記載の方法。
【請求項９９】
前記注入が皮下注入である，請求項９６記載の方法。
【請求項１００】
前記ＨｅｐＧ２．２．１５細胞がカルシウムおよびマグネシウムを含むダルベッコＰＢＳ溶液に懸濁される，請求項９６記載の方法。
【請求項１０１】
ＨＢＶに対する活性について治療用化合物をスクリーニングする方法であって，前記治療用化合物を請求項９０記載の非ヒト哺乳動物に投与し，そして，ＨＢＶ  ＤＮＡのレベルに及ぼす前記治療用化合物の効果について前記哺乳動物をモニターすることを含む方法。
【請求項１０２】
前記治療用化合物が，単独でまたは他の治療用化合物または治療との組み合わせで投与される核酸分子である，請求項１０１記載の方法。
【請求項１０３】
前記核酸分子が酵素的核酸分子である，請求項１０２記載の方法。
【請求項１０４】
前記核酸分子がアンチセンス核酸分子である，請求項１０２記載の方法。
【請求項１０５】
前記他の治療が抗ウイルス療法である，請求項１０２記載の方法。
【請求項１０６】
前記抗ウイルス療法が３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）による治療である，請求項１０５記載の方法。
【請求項１０７】
前記抗ウイルス療法がインターフェロンによる治療である，請求項１０５記載の方法。
【請求項１０８】
前記インターフェロンが，コンセンサスインターフェロン，１型インターフェロン，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，およびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンからなる群より選択される，請求項１０７記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本特許出願は，Ｂｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／８１７，８７９）（２００１年３月２６日出願）に基づく優先権を主張しており，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／７４０，３３２）（２０００年１２月１８日出願）の一部継続出願であり，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／６１１，９３１）（２０００年７月７日出願）の一部継続出願であり，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，０９／５０４，３２１（２０００年２月１５日出願）の一部継続出願であり，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願０９／２７４，５５３（１９９９年３月２３日出願）の一部継続出願であり，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願０９／２５７，６０８（１９９９年２月２４日出願）（取下）の一部継続出願であり，これはＢｌａｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願６０／１００，８４２（１９９８年９月１８日出願）およびＭｃＳｗｉｇｇｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願６０／０８３，２１７（１９９８年４月２７日出願）に基づく優先権を主張しており；これらのすべての先の出願の表題は"ＥＮＺＹＭＡＴＩＣ  ＮＵＣＬＥＩＣ  ＡＣＩＤ  ＴＲＥＡＴＭＥＮＴ  ＯＦ  ＤＩＳＥＡＳＥＳ  ＯＲ  ＣＯＮＤＩＴＩＯＮＳ  ＲＥＬＡＴＥＤ  ＴＯ  ＨＥＰＡＴＩＴＩＳ  Ｃ  ＶＩＲＵＳ  ＩＮＦＥＣＴＩＯＮ"である。本特許出願はまた，Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願０９／８７７，４７８（２００１年６月８日出願）に基づく優先権を主張しており，これはＤｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／６９６，３４７）（２０００年１０月２４日出願）の一部継続出願であり，これはＤｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／６３６，３８５）（２０００年８月９日出願）の一部継続出願であり，これはＤｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（０９／５３１，０２５）（２０００年３月２０日出願）の一部継続出願であり，これはＤｒａｐｅｒ，米国特許出願（０９／４３６，４３０）（１９９９年１月８日出願）の一部継続出願であり，これは米国特許出願（０８／１９３，６２７），（１９９４年２月７日出願，米国特許６，０１７，７５６）の継続出願であり，これは米国特許出願（０７／８８２，７１２）（１９９２年５月１４日出願）（取下）の継続出願であり；これらのすべての先の出願の表題は"ＭＥＴＨＯＤ  ＡＮＤ  ＲＥＡＧＥＮＴ  ＦＯＲ  ＩＮＨＩＢＩＴＩＮＧ  ＨＥＰＡＴＩＴＩＳ  Ｂ  ＶＩＲＵＳ  ＲＥＰＬＩＣＡＴＩＯＮ"である。本特許出願はまた，Ｍａｃｅｊａｋ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（６０／３３５，０５９）（２００１年１０月２４日出願），Ｍａｃｅｊａｋ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（６０／２９６，８７６）（２００１年６月８日出願）およびＭｏｒｒｉｓｓｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願（６０／３３７，０５５）（２００１年１２月５日出願）に基づく優先権を主張する。これらの出願は，図面を含めその全体を本明細書の一部としてここに引用する。
【０００２】
本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）およびＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）の感染，複製および遺伝子発現に関連する変性性状態および疾病状態を研究，診断，および治療するための化合物，組成物，および方法に関する。詳細には，本発明は，ＨＢＶおよびＨＣＶの発現を調節するために用いられる核酸分子に関する。さらに，本発明は，ＨＢＶおよびＨＣＶの複製および繁殖の阻害剤をスクリーニングするための方法，モデルおよびシステムに関する。
【背景技術】
【０００３】
以下は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）およびＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）に関係する関連技術の議論である。この議論は完全であることを意味するものではなく，以下の本発明を理解するためにのみ提供される。この概要は，以下に記載されるいずれかの研究が本発明に対する先行技術であると認めるものではない。
【０００４】
１９８９年，Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）は，ＲＮＡウイルスであると決定され，ほとんどの非Ａ非Ｂ肝炎の原因となるウイルスであることが同定された（Ｃｈｏｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ．１９８９；２４４：３５９−３６２）。ＨＩＶ等のレトロウイルスとは異なり，ＨＣＶはＤＮＡ複製期を通らず，ウイルスゲノムが宿主染色体内にインテグレーションした形は検出されていない（Ｈｏｕｇｈｔｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９１；１４：３８１−３８８）。その代わり，コーディング（プラス）鎖の複製は，複製（マイナス）鎖の生成により媒介され，数コピーのプラス鎖ＨＣＶ  ＲＮＡが生成される。ゲノムは，ポリ蛋白質に翻訳される単一の大きなオープンリーディングフレームから構成される（Ｋａｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔｅｒｓ．１９９１；２８０：３２５−３２８）。このポリ蛋白質は，続いて翻訳後切断を受け，いくつかのウイルス蛋白質が生ずる（Ｌｅｉｎｂａｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ．１９９４：２０４：１６３−１６９）。
【０００５】
ＨＣＶの９．５キロベースのゲノムの研究は，ウイルス核酸が高い率で変異しうることを示した（Ｓｍｉｔｈ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｅｖｏｌ．１９９７  ４５：２３８−２４６）。この変異率により，約７０％の配列同一性を共有する，いくつかの区別しうる遺伝子型のＨＣＶが進化した（Ｓｉｍｍｏｎｄｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．１９９４；７５：１０５３−１０６１）。これらの配列は，進化的には非常に区別されるものであることに注目することが重要である。例えば，ヒトと霊長類，例えばチンパンジーとの間の遺伝的同一性は約９８％である。さらに，一人の患者におけるＨＣＶ感染は，ＲＮＡレベルで９８％の同一性を有するいくつかの異なりかつ進化した亜種（ｑｕａｓｉｓｐｅｃｉｅｓ）から構成されることが示されている。すなわち，ＨＣＶゲノムは超可変性であり，絶えず変化している。ＨＣＶゲノムは超可変性であるが，高度に保存されているゲノムの３つの領域が存在する。これらの保存配列は，５'および３'非コーディング領域，ならびにコア蛋白質コーディング領域の５'−末端に存在し，ＨＣＶ  ＲＮＡの複製ならびにＨＣＶポリ蛋白質の翻訳に必須であると考えられる。すなわち，これらの保存ＨＣＶゲノム領域を標的とする治療用薬剤は，広範な種類のＨＣＶ遺伝子型に対して有意な影響を有するであろう。さらに，ＨＣＶゲノムの保存領域に特異的な酵素的核酸によっては，薬剤耐性は生じないであろう。これに対し，ウイルスプロテアーゼまたはヘリカーゼ等の酵素の阻害を標的とする療法は，ウイルスにコードされるこれらの酵素のＲＮＡがＨＣＶゲノムの超可変性部分に位置するため，薬剤耐性株の選択が生ずるであろう。
【０００６】
ＨＣＶへの最初の暴露の後，患者において肝酵素の過渡的上昇が生ずるであろう。これは，炎症性の過程が生じていることを示す（Ａｌｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＩＮ：Ｓｅｅｆｆ  ＬＢ，Ｌｅｗｉｓ  ＪＨ  ｅｄｓ．Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ  ｉｎ  Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ．Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｐｌｅｎｕｍ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｂｏｏｋ  Ｃｏ；１９８９：８３−８９）。この肝酵素の上昇は，最初の暴露の少なくとも４週間後に起こり，２ヶ月まで持続するであろう（Ｆａｒｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．１９９１：３２５：９８−１０４）。肝酵素の上昇の前に，ＲＴ−ＰＣＲ分析を用いて患者血清中のＨＣＶ  ＲＮＡを検出することが可能である（Ｔａｋａｈａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ．１９９３：８８：２：２４０−２４３）。疾患のこの段階は急性段階と称され，ＨＣＶ感染からの急性肝炎ウイルスを有する患者の７５％が無症候性であるため，通常は検出されないままである。これらの患者の残りの２５％は黄疸または肝炎の他の症状を発症する。
【０００７】
急性ＨＣＶ感染は良性疾患であるが，急性ＨＣＶ患者の８０％程度が，血清アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）レベルの持続的上昇および循環ＨＣＶ  ＲＮＡの継続的な存在により示される慢性肝疾患に進行する（Ｓｈｅｒｌｏｃｋ，Ｌａｎｃｅｔ  １９９２；３３９：８０２）。慢性ＨＣＶ感染は１０−２０年間に自然に進行して，２０−５０％の患者で肝硬変となり（Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  Ａｇｅｎｔｓ  ａｎｄ  Ｄｉｓｅａｓｅ  １９９３；２：１５０：１５４），ＨＣＶ感染の肝細胞癌への進行は，詳細に報告されている（Ｌｉａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ．１９９３；１８：１３２６−１３３３；Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｗｅｓｔｅｒｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，１９９４；Ｖｏｌ．１６０，Ｎｏ．２：１３３−１３８）。肝硬変および／または肝細胞癌に進行する可能性の高い亜集団を判定した研究はない。したがって，すべての患者は進行の等しいリスクを有する。
【０００８】
肝細胞癌を有すると診断された患者の生存は，最初の診断からわずか０．９−１２．８月であることに注目することが重要である（Ｔａｋａｈａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ．１９９３：８８：２：２４０−２４３）。肝細胞癌の化学療法剤による治療は，有効ではないことが証明されており，肝臓の広い範囲に腫瘍が侵入するため，患者のわずか１０％しか外科手術の恩恵を受けないであろう（Ｔｒｉｎｃｈｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｅｓｓｅ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．１９９４：２３：８３１−８３３）。原発性肝細胞癌の侵略的な性質のため，外科手術に代わる唯一の実行可能な治療は肝移植である（Ｐｉｃｈｌｍａｙｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ．１９９４：２０：３３Ｓ−４０Ｓ）。
【０００９】
慢性ＨＣＶ感染を有する患者は，肝硬変に進行すると，臨床的肝硬変に共通する臨床的特徴が現れる（Ｄ'Ａｍｉｃｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ  ａｎｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．１９８６；３１：５：４６８-４７５）。これらの臨床的特徴には，出血性食道静脈瘤，腹水症，黄疸，および脳障害が含まれる（Ｚａｋｉｍ  Ｄ，Ｂｏｙｅｒ  ＴＤ．Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ａ  ｔｅｘｔｂｏｏｋ  ｏｆ  ｌｉｖｅｒ  ｄｉｓｅａｓｅ．Ｓｅｃｏｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ  Ｖｏｌｕｍｅ  １．１９９０  Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ  Ｃｏｍｐａｎｙ．Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ）。肝硬変の初期段階においては，患者は，代償性（ｃｏｍｐｅｎｓａｔｅｄ）として分類される。これは，肝臓組織傷害が生じているにもかかわらず，患者の肝臓は依然として血流中の代謝物を解毒することができることを意味する。さらに，代償性肝疾患を有するほとんどの患者は，無症候性であり，症状を有する少数の者は，味覚不全および虚弱などの小さな症状しか報告していない。肝硬変のより後期においては，患者は，脱代償性（ｄｅｃｏｍｐｅｎｓａｔｅｄ）と分類される。これは，その患者が血中代謝物を解毒する能力が低下していることを意味し，上述した臨床的特徴が現れるのはこの段階である。
【００１０】
１９８６年，Ｄ'Ａｍｉｃｏらは，アルコール関連およびウイルス関連の肝硬変を有する１１５５人の患者の臨床的発現および生存率を記載した（Ｄ'Ａｍｉｃｏ（上掲））。１１５５人の患者のうち，４３５人（３７％）が代償性疾患を有しているが，研究の開始時には７０％は無症候性であった。残りの７２０人の患者（６３％）は脱代償性肝疾患を有しており，このうち，７８％は腹水の病歴を，３１％は黄疸を，１７％は出血を有し，１６％は脳障害を有していた。肝細胞癌は，代償性疾患を有する患者の６人（０．５％）および脱代償性疾患を有する患者の３０人（２．６％）において認められた。
【００１１】
６年間の経過の間に，代償性肝硬変を有する患者は，１年に１０％の割合で，脱代償性疾患の臨床的特徴を発症した。ほとんどのケースにおいては，腹水症が脱代償性の最初の現れであった。さらに，６年間の研究の終わりには，最初は代償性疾患が現れていた５９人の患者で肝細胞癌が発症した。
【００１２】
生存に関しては，Ｄ'Ａｍｉｃｏの研究は，研究したすべての患者についての５年生存率はわずか４０％であることを示した。最初に代償性肝硬変を有していた患者についての６年生存率は５４％であり，最初に脱代償性疾患を有していた患者についての６年生存率はわずか２１％であった。アルコール性肝硬変を有する患者とウイルス関連肝硬変を有する患者との間には，生存率の有意な差はなかった。Ｄ'Ａｍｉｃｏの研究における患者の主要な死亡原因は，肝不全が４９％；肝細胞癌が２２％；出血が１３％であった（Ｄ'Ａｍｉｃｏ（上掲））。
【００１３】
慢性Ｃ型肝炎は，ゆっくり進行する肝臓の炎症性疾患であり，ウイルス（ＨＣＶ）により媒介され，１０−２０年間の間に，肝硬変，肝不全および／または肝細胞癌を引き起こしうる。米国においては，ＨＣＶによる感染は，毎年新たに５０，０００人の急性肝炎が発生していると見積もられている（ＮＩＨ  Ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｔａｔｅｍｅｎｔ  ｏｎ  Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｈｅｐａｔｉｔｉｓ  Ｃ，Ｍａｒｃｈ  １９９７）。米国におけるＨＣＶの罹患率は，１．８％であると見積もられており，ＣＤＣは，慢性的に感染した米国人の人数が約４５０万人であると認めている。ＣＤＣはまた，慢性ＨＣＶ感染により引き起こされる死亡は１年間に１０，０００人に達すると推定している。
【００１４】
慢性ＨＣＶ感染の治療にインターフェロン（ＩＦＮ−アルファ）を用いる多数のよく制御された臨床試験は，週３回の治療により，６ヶ月の治療の終了時までに，約５０％（４０％−７０％の範囲）の患者において血清ＡＬＴ値が低下することを示した（Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  １９８９；３２１：１５０１−１５０６；Ｍａｒｃｅｌｌｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９１；１３：３９３−３９７；Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９７：２６：７４７−７５４；Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９７  ２６（６）：１６４０−１６４５）。しかし，インターフェロン治療の終了後，応答した患者の約５０％が再発し，"持続可能な"応答の比率は，血清ＡＬＴ濃度により標準化して約２０−２５％であった。
【００１５】
近年，分岐ＤＮＡまたはリバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）分析のいずれかを用いて，ＨＣＶ  ＲＮＡを直接測定することが可能となった。一般に，ＲＴ−ＰＣＲ法は，より感度が高く，臨床経過のより正確な評価をもたらす（Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。臨床的エンドポイントとしてＨＣＶ  ＲＮＡ値の変化を用いる６ヶ月の１型インターフェロン療法を試験した研究は，治療の終わりまでには，３５％の患者がＨＣＶ  ＲＮＡを失うことを示した（Ｍａｒｃｅｆｆｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。しかし，ＡＬＴエンドポイントと同様に，約５０％の患者は，治療の終了から６ヶ月後に再発し，持続可能なウイルス応答はわずか１２％であった（Ｍａｒｃｅｌｌｉｎ  ｅｔ  ａｌ（上掲））。４８週間の治療を試験した研究は，持続するウイルス応答が２５％以下であることを示した（ＮＩＨ  Ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  Ｓｔａｔｅｍｅｎｔ：１９９７）。すなわち，現在，１型インターフェロンによる慢性ＨＣＶ感染の治療の標準は，有効性の主な評価としてＨＣＶ  ＲＮＡ濃度の変化を用いる４８週間の治療である（Ｈｏｏｆｎａｇｌｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  １９９７；３３６（５）３４７−３５６）。
【００１６】
１型インターフェロンによる治療に起因する副作用は，４つの一般的カテゴリーに分類することができる。すなわち，１．インフルエンザ様症状；２．神経精神医学；３．実験室的異常；および４．その他（Ｄｕｓｈｅｉｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒａｌ  Ｈｅｐａｔｉｔｉｓ．１９９４：１：３−５）。インフルエンザ様症状の例としては，疲労，発熱；筋肉痛；倦怠；食欲喪失；頻脈；悪寒；頭痛および関節痛がある。インフルエンザ様症状は，通常は短期間であり，投与の最初の４週間の後には軽減する傾向にある（Ｄｕｓｈｉｅｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。神経精神医学的副作用としては，被刺激性，無関心；気分変化；不眠；認識変化および鬱病がある。これらの神経精神病学的副作用の最も重要なものは鬱病であり，鬱病の病歴を有する患者には１型インターフェロンを投与してはならない。実験室的異常としては，顆粒球等の骨髄細胞，血小板，および頻度は低いが赤血球の減少がある。これらの血液細胞の変化が有意な臨床的結末につながることはほとんどない（Ｄｕｓｈｉｅｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。さらに，トリグリセリドの濃度の増加および血清アラニンおよびアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼの濃度の上昇が認められている。最後に，甲状腺異常が報告されている。これらの甲状腺異常は，通常はインターフェロン治療の終了後は可逆的であり，治療の間には適当な薬物で調節することができる。その他の副作用には，吐き気；下痢；腹部および背中の痛み；そう痒；脱毛；および鼻漏がある。一般に，ほとんどの副作用は，治療の４−８週間後には軽減するであろう（Ｄｕｓｈｉｅｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。
【００１７】
１型インターフェロンは，慢性ＨＣＶ感染の多くの治療プログラムの鍵となる成分である。１型インターフェロンによる治療は，多くの遺伝子を誘導し，細胞内に抗ウイルス状態が生ずる。誘導される遺伝子の１つは２’，５’オリゴアデニレートシンセターゼ，すなわち，短い２’，５’オリゴアデニレート（２−５Ａ）分子を合成する酵素である。発生期の２−５Ａは，次に潜伏性ＲＮａｓｅであるＲＮａｓｅＬを活性化し，次にこれはウイルスＲＮＡを非特異的に分解する。
【００１８】
慢性Ｂ型肝炎は，Ｂ型肝炎ウイルスないしはＨＢＶとして一般に知られるエンベロープ付きウイルスにより引き起こされる。ＨＢＶは，分娩，性的行動性，または感染した血液により汚染された針の共有の間に，感染した血液または他の体液，特に唾液および精液を介して伝達される。個人は，"キャリア"であるかもしれず，疾病の症状を体験することなく他人に感染を伝染させるかもしれない。最も高いリスクを有する者は，多数の性的パートナーを有する者，性伝染性疾病の病歴を有する者，非経口薬剤の使用者，感染した母親から生まれた新生児，感染者と"密接な"接触を有するかその性的パートナーである者，および医療施設の従業者または血液と接触する他の職場の従業員である。刺青，耳または身体の穿刺，鍼による伝染もありうる。ウイルスはまた，かみそり，歯ブラシ，ほ乳瓶，食事道具，および人工呼吸装置，測定器および装置などのある種の病院の機器上で安定である。ＨＢｓＡｇ陽性の食事取扱者が職業上の設定において健康上のリスクを与えるという証拠も，これらの者が仕事から除外されるべきであるという証拠もない。Ｂ型肝炎は，食物伝達性疾病であるという証拠が示されたことはない。平均潜伏期間は６０−９０日間であり，４５−１８０日間の範囲である。日数は，その者が暴露されたウイルスの量に関係するようである。しかし，症状の開始が潜行性であるため，潜伏期の長さを判定することは困難である。約５０％の患者が急性肝炎の症状を発症し，これは１−４週間続く。これらの患者の２％またはそれ以下が激症肝炎を発症し，肝不全となり死亡する。
【００１９】
重篤度の決定因子には以下のものが含まれる：（１）患者が暴露された量の多さ；（２）患者の年齢，より若い患者はより軽い形の疾病を有する；（３）免疫系の状態，免疫抑制されている患者はより軽い症例である；および（４）デルタウイルス（Ｄ型肝炎）との共感染が存在するかしないか，共感染によってより重篤な症例となる。徴候的な症例においては，臨床上の兆候には，食欲喪失，悪心，嘔吐，右上腹部の痛み，関節痛，および疲れ／エネルギー喪失が含まれる。黄疸はすべての症例では見られないが，黄疸は感染が輸血または経皮的血清輸送によるものである場合にはより起こりやすく，患者によっては軽いかゆみを伴う。暗色の尿および黄褐色の便においてビリルビンの上昇が示され，右上部の痛みを伴う肝臓の肥大が生ずる。疾病の急性期には，重症のうつ病，髄膜炎，ギヤン−バレー症候群，脊髄炎，脳炎，顆粒球減少症，および／または血小板減少症を伴う。
【００２０】
Ｂ型肝炎は一般に自己制限疾患であり，約６か月で消散する。ウイルスの存在により血中に大量のＨＢｓＡｇが産生されるため，徴候的な症例は，血清試験により検出することができる。この抗原は活動性の感染の最初のかつ最も有用な診断マーカーである。しかし，ＨＢｓＡｇが２０週間またはそれ以上陽性のままである場合，その者はおそらく永久に陽性のままであり，すなわちキャリアである。ＨＢＶにかかる６歳以上の者の１０％のみがキャリアになるが，１歳までに感染した新生児の９０％はキャリアになる。
【００２１】
Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）は，世界で３億人以上が感染している（Ｉｍｐｅｒｉａｌ，１９９９，Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．Ｈｅｐａｔｏｌ．，１４（ｓｕｐｐｌ），Ｓ１−５）。米国においては，約１２５万人が血中に測定可能なＢ型肝炎ウイルス表面抗原ＨＢｓＡｇを有することからＨＢＶの慢性キャリアである。慢性ＨＢｓＡｇキャリアになるリスクは，感染を獲得した様式，ならびに感染時の年齢に依存する。高いレベルのウイルス複製を有する者については，慢性の活動性の肝炎が肝硬変，肝不全および肝細胞癌（ＨＣＣ）に移行することが一般的であり，ＨＢＶによる末期肝疾患を有する患者には肝臓移植が唯一の治療法である。
【００２２】
慢性ＨＢＶ感染は１０−２０年の期間にわたり自然に進行して，２０−５０％の患者が肝硬変になり，ＨＢＶ感染の肝細胞癌への進行は詳細に解明されている。おそらく肝硬変および／または肝細胞癌に進行するであろう亜集団を判定した研究はないため，すべての患者が進行の等しいリスクを有する。
【００２３】
肝細胞癌であると診断された患者の生存率は最初の診断からわずか０．９−１２．８か月であることに注目することが重要である（Ｔａｋａｈａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，８８，２４０−２４３）。肝細胞癌の化学療法剤による治療は有効であることが証明されておらず，肝臓の広範囲の腫瘍侵襲のため，患者の１０％しか外科手術の恩恵を受けられない（Ｔｒｉｎｃｈｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｐｒｅｓｓｅ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，２３，８３１−８３３）。原発性肝細胞癌の攻撃的な性質のため，外科手術に代わる唯一の実行可能な治療は肝臓移植である（Ｐｉｃｈｌｍａｙｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ．，２０，３３Ｓ−４０Ｓ）。
【００２４】
肝硬変への進行に際して，慢性ＨＣＶおよびＨＢＶ感染を有する患者は，最初の原因にかかわらず，臨床的肝硬変に共通する臨床上の特徴を示す（Ｄ’Ａｍｉｃｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６，Ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ  ａｎｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，３１，４６８−４７５）。これらの臨床上の特徴には，出血性食道静脈瘤，腹水，黄疸，および脳障害（Ｚａｋｉｍ  Ｄ，ＢｏｙｅｒＴ  Ｄ．Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ａ  ｔｅｘｔｂｏｏｋ  ｏｆ  ｌｉｖｅｒ  Ｄｅｓｅａｓｅｓ，Ｓｅｃｏｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ  Ｖｏｌｕｍｅ  １．１９９０Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ  Ｃｏｍｐａｎｙ．Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ）が含まれる。肝硬変の初期においては，患者は代償性であると分類され，これは肝臓組織の障害は生じているが，患者の肝臓はまだ血流中の代謝産物を解毒することができることを意味する。さらに，代償性肝疾患を有するほとんどの患者は無症候性であり，症状を有するわずかの者は，軽い症状，例えば消化不良および虚弱のみをうったえる。肝硬変の後期においては，患者は代償不全であると分類され，これは血流中の代謝産物を解毒する能力が減少することを意味し，上述した臨床上の特徴が存在するのはこの段階である。
【００２５】
１９８６年，Ｄ’Ａｍｉｃｏらは，アルコール性およびウイルス関連性肝硬変の両方を有する１１５５人の患者における臨床的発現および生存率を記載した（Ｄ’Ａｍｉｃｏ（上掲））。１１５５人の患者のうち，４３５（３７％）が代償性疾病を有したが，７０％は研究の開始時には無症候性であった。残りの７２０人の患者（６３％）は，代償不全肝疾患を有しており，７８％が腹水，３１％が黄疸，１７％が出血，および１６％が脳障害の病歴を示した。肝細胞癌は，代償性疾病を有する６人（０．５％）の患者および代償不全疾病を有する３０人（２．６％）の患者に観察された。
【００２６】
６年間の経過のあいだに，代償性肝硬変を有する患者は１年に１０％の割合で，代償不全疾病の臨床的特徴を発達させた。ほとんどの場合，腹水が代償不全の最初の表示であった。さらに，６年間の実験の終了までに，最初に代償性疾病を示した５９人の患者で肝細胞癌が発達した。
【００２７】
生存に関しては，Ｄ’Ａｍｉｃｏ研究は，研究したすべての患者の５年生存率がわずか４０％であることを示した。最初に代償性肝硬変を有していた患者の６年生存率は５４％であったが，最初に代償不全疾病を示した患者の６年生存率はわずか２１％であった。アルコール性肝硬変を有した患者とウイルス関連性肝硬変を有した患者との間には，生存率の有意な相違はなかった。Ｄ’Ａｍｉｃｏ研究における患者の死亡の主要な原因は，肝不全が４９％；肝細胞癌が２２％；および出血が１３％であった（Ｄ’Ａｍｉｃｏ（上掲））。
【００２８】
Ｂ型肝炎ウイルスは，二本鎖の環状ＤＮＡウイルスである。これは，Ｈｅｐａｄｎａｖｉｒｉｄａｅファミリーのメンバーである。ウイルスは，コア抗原（ＨＢｃＡｇ）を含む中心コアおよびこれを囲む表面蛋白質／表面抗原（ＨＢｓＡｇ）を含むエンベロープから構成され，直径４２ｎｍである。これはまたｅ抗原（ＨＢｅＡｇ）を含み，これはＨＢｃＡｇおよびＨＢｓＡｇとともにこの疾病の同定において有用である。
【００２９】
ＨＢＶビリオンにおいては，ゲノムは不完全な二本鎖形として見いだされる。ＨＢＶは，リバーストランスクリプターゼを用いてそのゲノムの正センスの全長ＲＮＡ版をＤＮＡに逆転写する。このリバーストランスクリプターゼはまたＤＮＡポリメラーゼ活性を含み，したがって，新たに合成されたマイナスセンスＤＮＡ鎖を複製し始める。しかし，コア蛋白質はこれが複製を完了する前にリバーストランスクリプターゼ／ポリメラーゼをカプシド化するようである。
【００３０】
ウイルスは，自由浮遊形態から，最初にそれ自身を宿主細胞の膜に特異的に付着させなければならない。ウイルスの付着は宿主および組織の特異性を決定する非常に重要な工程の１つである。しかし，現在のところ，ＨＢＶで感染させることができるインビトロ細胞株はない。ＨＢＶ  ＤＮＡを用いる過渡的または安定なトランスフェクションの際にのみウイルス複製を支持することができるいくつかの細胞株，例えばＨｅｐＧ２が存在する。
【００３１】
付着した後，ウイルスエンベロープと宿主の膜との融合が生じて，ゲノムおよびポリメラーゼを含むウイルスコア蛋白質が細胞に入ることが可能とならなければならない。いったん内部に入ると，ゲノムは核に移動し，ここで修復されて環化される。
【００３２】
ＨＢＶの完全な閉環状ＤＮＡゲノムは核内に残り，４つの転写産物を生ずる。これらの転写産物は独特の部位で始まるが，同じ３’末端を共有する。３．５−ｋｂのプレゲノムＲＮＡは逆転写のテンプレートとして働き，これもヌクレオカプシド蛋白質およびポリメラーゼをコードする。この転写産物の５’末端の延長を有するサブクラスは，プロセシング後にＨＢＶｅ抗原として分泌されるプレコア蛋白質をコードする。２．４−ｋｂのＲＮＡは，大きな表面蛋白質をコードするｐｒｅ−Ｓ１オープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を包含する。２．１−ｋｂのＲＮＡは，それぞれ中程度のおよび小さい表面蛋白質をコードするｐｒｅ−Ｓ２およびＳＯＲＦを包含する。最も小さい転写産物（約０．８ｋｂ）は，転写アクチベータであるＸ蛋白質をコードする。
【００３３】
ＨＢＶゲノムの増殖は感染細胞の核中で始まる。ＲＮＡポリメラーゼＩＩは，環状のＨＢＶ  ＤＮＡを転写して，全長より長いｍＲＮＡを生成する。ｍＲＮＡは実際の完全な環状ＤＮＡより長いため，余分の末端が形成される。プレゲノムＲＮＡは，いったん生成されると，核に存在し，細胞質に入る。
【００３４】
プレゲノムＲＮＡのコア粒子中へのパッケージングは，ＨＢＶポリメラーゼが５’イプシロンステム−ループに結合することにより開始される。ＲＮＡのカプシド化は，結合が生じてすぐに生ずると考えられている。ＨＢＶポリメラーゼはまた，機能するためには付随するコア蛋白質を必要とするようである。ＨＢＶポリメラーゼは５’イプシロンステム−ループの３−４塩基対から逆転写を開始させ，この点においてポリメラーゼおよび結合している発生期ＤＮＡはＤＲ１領域の３’コピーに移る。いったんここに移ると，（−）ＤＮＡはＨＢＶポリメラーゼにより伸長され，一方ＲＮＡテンプレートはＨＢＶポリメラーゼＲＮＡｓｅＨ活性により分解される。ＨＢＶポリメラーゼが５’末端に到達したとき，ＲＮＡの小さいストレッチはＲＮＡｓｅＨ活性により消化されずに残る。このＲＮＡのセグメントは，すぐ上流の小さい配列から構成され，ＤＲ１領域を含む。次に，ＲＮＡオリゴマーが移動し，（−）ＤＮＡの５’末端でＤＲ２領域にアニーリングする。これは，やはりＨＢＶポリメラーゼにより生成される（＋）ＤＮＡ合成のプライマーとして用いられる。逆転写ならびにプラス鎖合成は完成したコア粒子中で生ずるようである。
【００３５】
プレゲノムＲＮＡはＤＮＡ合成のテンプレートとして必要であるため，このＲＮＡは，リボザイム切断の優れた標的である。ＨＢＶ複製を阻害することが示されているヌクレオシド類似体は，プレゲノムＲＮＡをＤＮＡに変換するのに必要なリバーストランスクリプターゼ活性を標的とする。ＨＢＶリバーストランスクリプターゼの核酸デコイおよびアプタマーによる調節により，ＨＢＶ複製が同様に調節されると予測される。
【００３６】
治療の現在の目標は３つの部分からなる：ＨＢＶの感染性および他人への伝達を排除する，肝疾患の進行を停止させ，臨床的予後を改善する，および，肝細胞癌（ＨＣＣ）の発症を防止する。
【００３７】
インターフェロンアルファの使用は，ＨＢＶの最も一般的な療法である。しかし，最近，ラミブジン（３ＴＣ（登録商標））がＦＤＡにより認可された。インターフェロンアルファ（ＩＦＮ−アルファ）は，慢性Ｂ型肝炎の１つの治療法である。ＩＦＮ−アルファ療法の標準的な期間は１６週間であるが，最適な治療期間の長さはまだよくわかっていない。完全な応答（ＨＢＶ  ＤＮＡネガティブＨＢｅＡｇネガティブ）は，患者の約２５％に生ずる。治療に対する望ましい応答を予測するいくつかの因子が同定されており，これには，高ＡＬＴ，低ＨＢＶ  ＤＮＡ，女性であること，および異性愛指向であることが含まれる。
【００３８】
応答に成功した後であっても，Ｂ型肝炎ウイルスの再活性化の危険がある。これは応答した者の約５％に，通常は１年以内に生ずる。
【００３９】
１型インターフェロンを用いる治療から生ずる副作用は，４つの一般的なカテゴリーに分類することができる：インフルエンザ様症状，神経精神医学的副作用，実験室的異常，および他の種々の副作用。インフルエンザ様症状の例には，疲労，発熱；筋肉痛，倦怠感，食欲喪失，頻拍，硬直，頭痛および関節痛が含まれる。インフルエンザ様症状は，通常は短期間であり，投与の最初の４週間までには弱まる傾向にある（Ｄｕｓｈｅｉｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒａｌ  Ｈｅｐａｔｉｔｉｓ，１，３−５）。神経精神医学的副作用には，被刺激性，無関心，気分変化，不眠，認識変化，および抑うつが含まれる。実験室的異常には，骨髄性細胞，例えば顆粒球，血小板およびより程度は低いが赤血球の減少が含まれる。これらの血液細胞数の変化は，有意な臨床的後遺症につながることはほとんどない。さらに，トリグリセリド濃度の増加および血清アラニンおよびアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ濃度の上昇が観察されている。最後に，甲状腺異常が報告されている。これらの甲状腺異常は，通常はインターフェロン療法の休止後には可逆的であり，療法の間の適切な投薬により管理することができる。その他の副作用には，悪心，下痢，腹痛および背痛，かゆみ，脱毛，および鼻漏が含まれる。一般に，ほとんどの副作用は，４−８週間の療法の後には弱まるであろう（Ｄｕｓｈｉｅｋｏ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲））。
【００４０】
ラミブジン（３ＴＣ（登録商標））は，ＨＢＶ  ＤＮＡ合成の非常に強力かつ特異的な阻害剤であるヌクレオシド類似体である。ラミブジンは，最近慢性Ｂ型肝炎の治療用に認可された。インターフェロンを用いる治療とは異なり，３ＴＣ（登録商標）を用いる治療は患者からＨＢＶを排除しない。その代わりに，ウイルス複製を制御して，慢性的な投与により患者の５０％において肝臓組織学が改良される。３ＴＣ（登録商標）による第ＩＩＩ相試験は，１年間の治療が肝臓の炎症の減少および肝臓の瘢痕の遅延を伴うことを示した。さらに，ラミブジン（１００ｍｇ／ｄａｙ）で処置した患者は，Ｂ型肝炎ＤＮＡの９８％の減少および有意に高い比率のセロコンバージョンを有しており，このことは，治療の完了後に疾病が改良されたことを示唆する。しかし，治療を中止すると，ほとんどの患者においてＨＢＶ複製が再活性化される。さらに，最近の報告は，患者の約３０％に３ＴＣ（登録商標）耐性が生ずることを示した。
【００４１】
ＨＢＶ感染を治療する現在の治療法，例えば，インターフェロンおよびヌクレオシド類似体は，部分的にしか有効ではない。さらに，現在ヌクレオシド類似体に対する薬剤耐性が明らかになり，慢性Ｂ型肝炎の治療がより困難なものになっている。すなわち，急性および慢性Ｂ型肝炎感染の療法において現在用いられている治療とは異なるメカニズムにより作用する抗ウイルス調節剤を利用する，この疾病の有効な治療が必要とされている。
【００４２】
Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ  １９９６  ３（１１）：９９４−１００１は，Ｃ型肝炎ウイルスを標的とするヘアピンリボザイムを発現する２つのベクターを用いるインビトロおよびインビボ研究を記載する。
【００４３】
Ｓａｋａｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ  １９９６  ９８（１２）：２７２０−２７２８は，ハンマーヘッドリボザイムを発現するある種のベクターによる，Ｃ型肝炎ウイルスＲＮＡの細胞内切断およびウイルス蛋白質翻訳の阻害を記載する。
【００４４】
Ｌｉｅｂｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９６  ７０（１２）：８７８２−８７９１は，ある種のハンマーヘッドリボザイムのアデノウイルス媒介性発現による，感染ヒト肝細胞におけるＣ型肝炎ウイルスＲＮＡの排除を記載する。
【００４５】
Ｏｈｋａｗａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｊ．Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，２７；７８−８４は，ある種のインビトロ転写ハンマーヘッドリボザイムを用いる，ＨＣＶ  ＲＮＡのインビトロ切断およびウイルス蛋白質翻訳の阻害を記載する。
【００４６】
Ｂａｒｂｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９７／３２０１８は，ある種の抗Ｃ型肝炎ウイルスヘアピンリボザイムを発現するアデノウイルスベクターの使用を記載する。
【００４７】
Ｋａｙ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／１８４１９は，抗ＨＣＶハンマーヘッドリボザイムの発現のための，ある種の組換えアデノウイルスベクターを記載する。
【００４８】
Ｙａｍａｄａ  ｅｔ  ａｌ．，日本特許出願ＪＰ  ０７２３１７８４は，特定のポリ−（Ｌ）−リシンとコンジュゲートさせた，ＨＣＶを標的とするハンマーヘッドリボザイムを記載する。
【００４９】
Ｄｒａｐｅｒ，米国特許５，６１０，０５４は，ＨＣＶの複製を阻害しうる酵素的核酸分子を記載する。
【００５０】
Ｍａｃｅｊａｋ．ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，３１，７６９−７７６は，ＨＣＶの複製を阻害しうる酵素的核酸分子を記載する。
【００５１】
Ｗｅｉｆｅｎｇ  ａｎｄ  Ｔｏｒｒｅｎｃｅ，１９９７，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，１６，７−９は，種々の非ヌクレオシド成分を有する２−５Ａアンチセンスキメラの合成を記載する。
【００５２】
Ｔｏｒｒｅｎｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５８３，０３２は，ＲＮａｓｅＬの２’，５’−オリゴアデニレートアクチベータに結合したアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いるＲＮＡの標的化切断を記載する。
【００５３】
Ｓｕｈａｄｏｌｎｉｋ  ａｎｄ  Ｐｆｌｅｉｄｅｒｅｒ，米国特許５，８６３，９０５；５，７００，７８５；５，６４３，８８９；５，５５６，８４０；５，５５０，１１１；５，４０５，９３９；５，１８８，８９７；４，９２４，６２４；および４，８５９，７６８は，特定のヌクレオチド間ホスホロチオエート２’，５’−オリゴアデニレートおよび２’，５’−オリゴアデニレートコンジュゲートを記載する。
【００５４】
Ｂｕｄｏｗｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，９６２，４３１は，特異的２’，５’−オリゴアデニレートを用いてパピローマウイルスを処理する方法を記載する。
【００５５】
Ｔｏｒｒｅｎｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／１４２１９は，特異的ペプチド核酸２’，５’−オリゴアデニレートキメラ分子を記載する。
【００５６】
Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８１７，７９６は，２’−５’結合アデニレート残基を有するＣ−ｍｙｂリボザイムを記載する。
【００５７】
Ｄｒａｐｅｒ，米国特許６，０１７，７５６は，Ｂ型肝炎ウイルスの阻害のためのリボザイムの使用を記載する。
【００５８】
Ｐａｓｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２６８（３），７２８−７３３．；Ｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｏｌｌ．ＰＬＡ，１３（３），１５７−１５９．；Ｌｉ  ｅ  ｔａｌ．，１９９９，Ｊｉｅｆａｎｇｉｕｎ  Ｙｉｘｕｅ  Ｚａｚｈｉ，２４（２），９９−１０１．；Ｐｕｔｌｉｔｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７３（７），５３８１−５３８７．；Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２５７（３），７５９−７６５．；Ｘｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｂｉｎｇｄｕ  Ｘｕｅｂａｏ，１４（４），３６５−３６９．；Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．，４（７），７３６−７４３．；Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，国際公開９７／０８３０９，Ｗａｎｄｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｊ．ｏｆ  Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，１２（ｓｕｐｐｌ．），Ｓ３５４−Ｓ３６９．；Ｒｕｉｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，２２（２），３３８−３４５．；Ｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｏｌｌ．ＰＬＡ，１１（３），１７１−１７５．；Ｂｅｃｋ  ａｎｄ  Ｎａｓｓａｌ，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２３（２４），４９５４−６２．；Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇ，１９９５，国際公開９５／２２６００．；Ｘｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｂｉｎｇｄｕ  Ｘｕｅｂａｏ，９（４），３３１−６．；Ｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｂｉｎｇｄｕ  Ｘｕｅｂａｏ，９（３），２７８−８０はすべて，特定のＨＢＶ標的部位を切断することを標的とするリボザイムを記載する。
【００５９】
Ｈｕｎｔ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８５９，２２６は，ある種のＨＢＶおよびＣＭＶウイルス蛋白質の発現を阻害することができるＲＦ−Ｘ転写因子の結合によりＭＨＣ−ＩＩ遺伝子の発現を阻害することを意図した天然に生じない特定のオリゴヌクレオチドデコイを記載する。
【００６０】
Ｋａｏ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／０４１４１は，ウイルスポリメラーゼに特異的に結合し，ウイルスポリメラーゼの活性を阻害することができる直鎖状一本鎖核酸分子を記載する。
【００６１】
Ｌｕ，国際公開ＷＯ９９／２０６４１は，ＨＢＶ感染の治療において用いられる特定のトリプレックス形成オリゴヌクレオチドを記載する。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００６２】
本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ），Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）のＲＮＡ種および／またはＨＢＶまたはＨＣＶによりコードされるＲＮＡ種の機能を破壊することができる酵素的核酸分子に関する。詳細には，本発明は，ＨＢＶ  ＲＮＡまたはＨＣＶ  ＲＮＡを特異的に切断しうる酵素的核酸分子を提供し，その選択および機能を記述する。そのような酵素的核酸分子は，ＨＢＶおよびＨＣＶ感染に伴う疾病および疾患を治療するために用いることができる。
【００６３】
１つの態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）に由来するＲＮＡを特異的に切断する酵素的核酸分子を特徴とし，ここで，酵素的核酸分子は，配列番号１０８８７として規定される配列を含む。
【００６４】
別の態様においては，本発明は，本発明の酵素的核酸分子および薬学的に許容しうる担体を含む組成物を特徴とする。
【００６５】
別の態様においては，本発明は，本発明により企図される酵素的核酸分子を含む哺乳動物細胞，例えばヒト細胞を特徴とする。
【００６６】
１つの態様においては，本発明は，治療に適した条件下で患者に本発明の酵素的核酸分子を投与することを含む，肝硬変，肝不全または肝細胞癌を治療する方法を特徴とする。
【００６７】
別の態様においては，本発明は，患者の細胞を本発明の酵素的核酸分子と接触させることを含む，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶ感染に伴う状態を有する患者を治療する方法を特徴とする。
【００６８】
別の態様においては，本発明は，患者の細胞を本発明の酵素的核酸分子と接触させることを含み，さらに１またはそれ以上の薬剤療法，例えば，１型インターフェロンまたは３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）を治療に適した条件下で用いることを含む，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶ感染に伴う状態を有する患者を治療する方法を特徴とする。別の態様においては，他の療法は，酵素的核酸分子と同時にまたは別々に投与される。
【００６９】
別の態様においては，本発明は，阻害に適した条件下で細胞に本発明の酵素的核酸分子を投与することを含む，哺乳動物細胞においてＨＢＶおよび／またはＨＣＶの複製を阻害する方法を特徴とする。
【００７０】
さらに別の態様においては，本発明は，別個のＲＮＡの切断に適した条件下で本発明の酵素的核酸分子を別個のＲＮＡと接触させることを含む，別個のＨＢＶおよび／またはＨＣＶ  ＲＮＡを切断する方法を特徴とする。
【００７１】
１つの態様においては，本発明の酵素的核酸分子による切断は，２価カチオン，例えば，Ｍｇ2+の存在下で行う。
【００７２】
別の態様においては，本発明の酵素的核酸分子は化学的に合成されたものである。
【００７３】
別の態様においては，本発明により企図される１型インターフェロンは，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，ポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンである。
【００７４】
１つの態様においては，本発明は，１型インターフェロンおよび本発明の酵素的核酸分子および薬学的に許容しうる担体を含む組成物を特徴とする。
【００７５】
別の態様においては，本発明は，細胞（例えば哺乳動物細胞またはヒト細胞）に，本発明の酵素的核酸分子を，独立して，または他の治療用化合物，例えば１型インターフェロンまたは３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）との組み合わせで投与する方法を特徴とし，該方法は，投与に適した条件下で細胞を酵素的核酸分子と接触させることを含む。
【００７６】
別の態様においては，本発明の酵素的核酸分子の投与は，輸送試薬，例えば，脂質，カチオン性脂質，リン脂質，またはリポソームの存在下で行う。
【００７７】
別の態様においては，本発明は，新規な核酸に基づく手法，例えば酵素的核酸分子およびアンチセンス分子，およびこれらを用いてＨＢＶ  ＲＮＡの発現および／またはＨＢＶの複製をダウンレギュレートまたは阻害する方法を特徴とする。
【００７８】
別の態様においては，本発明は，新規な核酸に基づく手法，例えば，酵素的核酸分子およびアンチセンス分子，およびこれらを用いてＨＣＶ  ＲＮＡの発現および／またはＨＣＶの複製をダウンレギュレートまたは阻害する方法を特徴とする。
【００７９】
１つの態様においては，本発明は，酵素的核酸に基づく手法の１またはそれ以上を用いて，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶウイルス蛋白質おコードする遺伝子の発現をダウンレギュレートまたは阻害することを特徴とする。詳細には，本発明は，酵素的核酸に基づく手法を用いて，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶウイルスゲノムの発現を特異的にダウンレギュレートまたは阻害することを特徴とする。
【００８０】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく阻害剤（例えば，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸，トリプレックスＤＮＡ，デコイ，ｓｉＲＮＡ，アプタマー，ＲＮＡ切断化学基を含むアンチセンス核酸），およびこれらを用いて肝炎，肝細胞癌，肝硬変，および／または肝不全を進行および／または維持しうるＲＮＡ（例えばＨＢＶおよび／またはＨＣＶ）の発現をダウンレギュレートまたは阻害する方法を特徴とする。
【００８１】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は，治療に適した条件下で単独でまたは他の療法との組み合わせで，ＨＢＶが耐性であるかまたは患者が３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）による治療に応答しないＨＢＶ感染細胞またはＨＢＶ感染患者を治療するために用いられる。
【００８２】
さらに別の態様においては，本発明は，好ましくはハンマーヘッド，ＮＣＨ（イノザイム），Ｇ−切断剤，アンバーザイム，チンザイム，および／またはＤＮＡザイムのモチーフの酵素的核酸分子を用いて，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶ  ＲＮＡの発現を阻害することを特徴とする。
【００８３】
本明細書に記載される酵素的核酸分子は，感染細胞においてウイルスｍＲＮＡに対してのみ高度の特異性を示す。高度に保存された配列領域を標的とする本発明の核酸分子により，単一の化合物でヒトＨＢＶおよび／またはＨＣＶの多くの株を治療することが可能となる。現在，ＨＢＶおよび／またはＨＣＶによる肝細胞のトランスフォーメーションの原因であるウイルス遺伝子の発現を特異的に攻撃する治療は存在しない。
【００８４】
酵素的核酸に基づくＨＢＶおよびＨＣＶ発現の調節剤は，疾病および状態，例えばＨＢＶおよびＨＣＶ感染，肝炎，癌，肝硬変，肝不全，および細胞または組織におけるＨＢＶおよび／またはＨＣＶのレベルに関連する他の任意の疾病または状態の予防に有用である。
【００８５】
好ましい標的部位は，ウイルス複製に必要な遺伝子であり，その非限定的例には，蛋白質合成のための遺伝子，例えばＨＢＶプレゲノムｍＲＮＡの最も５’側の１５００ヌクレオチドが含まれる。配列の参照のためには，Ｒｅｎｂａｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，Ｓｃｉ．Ｓｉｎ．，３０，５０７を参照。この領域は，リバーストランスクリプターゼのテンプレートとして働くことにより，コア蛋白質（Ｃ），Ｘ蛋白質（Ｘ）およびＤＮＡポリメラーゼ（Ｐ）遺伝子の翻訳発現を制御し，ウイルスＤＮＡの複製において役割を果たす。ＲＮＡ中のこの領域を破壊すると，不十分な蛋白質合成，ならびに不完全なＤＮＡ合成（および不完全なゲノムからの転写の阻害）が生ずる。カプシド化部位の５’側の配列を標的とすると，コアビリオン構造中に破壊された３’ＲＮＡを含めることができ，カプシド化部位の３’側の配列を標的とすると，３’および５’フラグメントの両方からの蛋白質発現を減少させることができる。
【００８６】
プレゲノムｍＲＮＡの最も５’側の１５００ヌクレオチドの外側の別の領域もまた，ＨＢＶ複製の酵素的核酸媒介性阻害の適当な標的である。そのような標的には，ウイルスＳ遺伝子をコードするｍＲＮＡ領域が含まれる。特定の標的領域の選択は，プレゲノムｍＲＮＡの二次構造に依存するであろう。また，特にこれらの他のＲＮＡにおけるフォールディングおよびアクセス可能性のアッセイから，プレゲノムｍＲＮＡ種中では利用可能ではない追加の標的配列が明らかになった場合には，小さいｍＲＮＡ中の標的も用いることができる。
【００８７】
プレゲノムＲＮＡ中の望ましい標的は，ウイルス複製に重要であると考えられている，プレゲノムＲＮＡの３’末端における提唱される二裂ステム−ループ構造である（Ｋｉｄｄ  ａｎｄ  Ｋｉｄｄ−Ｌｊｕｎｇｇｒｅｎ，１９９６．Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．２４：３２９５−３３０２）。ＨＢＶプレゲノムＲＮＡの５’末端には，シス作用カプシド化シグナルがあり，これは二裂ステム−ループ構造を形成すると考えられている反転反復配列を有する。プレゲノムＲＮＡの余分の末端のため，３’末端においても推定ステム−ループが生ずる。ポリメラーゼ結合およびカプシド化において機能するものは５’コピーであるが，逆転写は実際には３’ステム−ループから開始される。逆転写を開始するには，５’カプシド化シグナル中のバルジをテンプレートとして用いて，ポリメラーゼに共有結合した４ｎｔプライマーが作成される。次に，このプライマーは未知のメカニズムにより３’ステム−ループ構造中のＤＲ１プライマー結合部位にシフトし，この点から逆転写が進行する。３’ステム−ループ，および特にＤＲ１プライマー結合部位は，リボザイムによる介在の非常に有効な標的であるようである。
【００８８】
プレゲノムＲＮＡの配列は，表面，コア，ポリメラーゼ，およびＸ蛋白質のｍＲＮＡで共通である。ＨＢＶ転写産物の重複する性質のため，すべてが共通の３’末端を有する。したがって，この共通の３’末端を標的とする酵素的核酸は，プレゲノムＲＮＡならびに表面，コア，ポリメラーゼおよびＸ蛋白質のｍＲＮＡのすべてを切断するであろう。
【００８９】
現在，天然に生ずる酵素的ＲＮＡの少なくとも７つの基本的変種が知られている。それぞれは，生理学的条件下で，ＲＮＡのホスホジエステル結合をトランスで加水分解することを触媒することができる（したがって，他のＲＮＡ分子を切断しうる）。表Ｉは，これらの酵素的ＲＮＡ分子のいくつかの特性をまとめたものである。一般に，酵素的核酸は，最初に標的ＲＮＡに結合することにより作用する。そのような結合は，標的ＲＮＡを切断する作用をする分子の酵素的部分に近接して保持された，酵素的核酸の標的結合部分により生ずる。すなわち，酵素的核酸は，まず標的ＲＮＡを認識し，次に相補的塩基対形成によりこれに結合し，いったん正しい部位に結合したら，酵素的に作用して標的ＲＮＡを切断する。そのような標的ＲＮＡの戦略的切断は，コードされる蛋白質の合成を指示するその能力を破壊するであろう。酵素的核酸は，そのＲＮＡ標的を結合し切断した後，そのＲＮＡから離れて別の標的を探し，新たな標的に繰り返し結合して切断することができる。すなわち，１つの酵素的核酸分子が多くの標的ＲＮＡ分子を切断することができる。さらに，酵素的核酸は，高度に特異的な遺伝子発現の阻害剤であり，その阻害の特異性は，標的ＲＮＡへの結合の塩基対形成メカニズムのみならず，標的ＲＮＡ切断のメカニズムにも依存する。切断の部位の近くにおける１つのミスマッチまたは塩基置換は，リボザイムの触媒活性を完全に排除することができる。
【００９０】
ＨＢＶ特異的ＲＮＡの特定の部位を切断する酵素的核酸分子は，種々の病原性適応症，例えば，ＨＢＶ感染，肝炎，肝細胞癌，腫瘍原性，肝硬変，肝不全およびＨＢＶのレベルに関連する他の状態を治療するための新規な治療方法である。
【００９１】
本明細書に記載される本発明の好ましい態様の１つにおいては，酵素的核酸分子はハンマーヘッドまたはヘアピンのモチーフで形成されるが，デルタ肝炎ウイルス，グループＩイントロン，グループＩＩイントロンまたはＲＮａｓｅＰ  ＲＮＡ（ＲＮＡガイド配列を伴う），Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ  ＶＳ  ＲＮＡ，ＤＮＡザイム，ＮＣＨ切断モチーフ，またはＧ−切断剤のモチーフで形成してもよい。そのようなハンマーヘッドモチーフの例は，Ｄｒｅｙｆｕｓ，（上掲），Ｒｏｓｓｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，ＡＩＤＳ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  Ｈｕｍａｎ  Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ  ８，１８３に記載されている。ヘアピンモチーフの例は，Ｈａｍｐｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，ＥＰ０３６０２５７，Ｈａｍｐｅｌ  ａｎｄ  Ｔｒｉｔｚ，１９８９  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２８，４９２９，Ｆｅｌｄｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９，Ｇｅｎｅ  ８２，５３，Ｈａｓｅｌｏｆｆ  ａｎｄ  Ｇｅｒｌａｃｈ，１９８９，Ｇｅｎｅ，８２，４３，Ｈａｍｐｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１８，２９９，Ｃｈｏｗｒｉｒａ  ＆  ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ，米国特許５，６３１，３５９に記載されている。デルタ肝炎ウイルスモチーフは，Ｐｅｒｒｏｔｔａ  ａｎｄ  Ｂｅｅｎ，１９９２  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｙ  ３１，１６により；ＲＮａｓｅＰモチーフの例は，Ｇｕｅｒｒｉｅｒ−Ｔａｋａｄａ  ｅｔ  ａｌ．，１９８３  Ｃｅｌｌ  ３５，８４９；Ｆｏｒｓｔｅｒ  ａｎｄ  Ａｌｔｍａｎ，１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４９，７８３；Ｌｉ  ａｎｄ  Ａｌｔｍａｎ，１９９６，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２４，８３５に記載されている。Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ  ＶＳ  ＲＮＡリボザイムモチーフは，Ｃｏｌｌｉｎｓ（Ｓａｖｉｌｌｅ  ａｎｄ  Ｃｏｌｌｉｎｓ，１９９０  Ｃｅｌｌ  ６１，６８５−６９６；Ｓａｖｉｌｌｅ  ａｎｄ  Ｃｏｌｌｉｎｓ，１９９１  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８８，８８２６−８８３０；Ｃｏｌｌｉｎｓ  ａｎｄ  Ｏｌｉｖｅ，１９９３  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｙ  ３２，２７９５−２７９９；Ｇｕｏ  ａｎｄ  Ｃｏｌｌｉｎｓ，１９９５，ＥＭＢＯ．Ｊ．１４，３６３）に記載されている。グループＩＩイントロンは，Ｇｒｉｆｆｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．２，７６１；Ｍｉｃｈｅｌｓ  ａｎｄ  Ｐｙｌｅ，１９９５，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ３４，２９６５；Ｐｙｌｅ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／２２６８９に記載されている。グループＩイントロンは，Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許４，９８７，０７１に記載されている。ＤＮＡザイムは，Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９５／１１３０４；Ｃｈａｒｔｒａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，ＮＡＲ  ２３，４０９２；Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏ．２，６５５；Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，ＰＮＡＳ  ９４，４２６２に記載されている。ＮＣＨ切断モチーフの例は，Ｌｕｄｗｉｇ＆Ｓｐｒｏａｔ，国際公開ＷＯ９８／５８０５８に記載され，およびＧ−切断剤の例は，Ｋｏｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２６，４１１６−４１２０，およびＥｃｋｓ���ｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９９／１６８７１に記載されている。さらに別のモチーフには，アプタザイム（Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９８／４３９９３），アンバーザイム（クラスＩモチーフ；図３；Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９９／５５８５７）およびチンザイム（Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９９／５５８５７）が含まれる。これらの文献はすべて，図面を含めその全体を本明細書の一部としてここに引用し，本発明において用いることができる。これらの特定のモチーフは本発明において限定的なものではなく，当業者は，本発明の酵素的核酸分子において重要なことは，それが標的遺伝子のＲＮＡ領域の１またはそれ以上に相補的な特異的基質結合部位を有し，かつその基質結合部位の中または周辺に，分子にＲＮＡ切断活性を付与するヌクレオチド配列を有することのみであることを認識するであろう（Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ，米国特許４，９８７，０７１）。
【００９２】
本発明の好ましい態様においては，核酸分子，例えば，アンチセンス分子，トリプレックスＤＮＡ，またはリボザイムは，１３−１００ヌクレオチドの長さであり，例えば，特定の態様においては，３５，３６，３７，または３８ヌクレオチドの長さ（例えば特定のリボザイムまたはアンチセンスについて）である。特に好ましい態様においては，核酸分子は，１５−１００，１７−１００，２０−１００，２１−１００，２３−１００，２５−１００，２７−１００，３０−１００，３２−１００，３５−１００，４０−１００，５０−１００，６０−１００，７０−１００，または８０−１００ヌクレオチドの長さである。上で特定された長さの範囲においてはその上限は１００ヌクレオチドであるが，長さの範囲の上限は，例えば，３０，４０，５０，６０，７０，または８０ヌクレオチドでありうる。すなわち，長さの範囲の任意のものについて，特定の態様についての長さの範囲は，特定された下限，および，下限より大きい上限を有する。例えば，特定の態様においては，長さの範囲は３５−５０ヌクレオチドの長さでありうる。そのような範囲の全てが明示的に含まれる。また，特定の態様においては，核酸分子は，上で特定された長さの任意の長さ，例えば２１ヌクレオチドの長さを有することができる。
【００９３】
ＨＢＶを標的とする本発明の例示的な酵素的核酸分子は表Ｖ−ＸＩに示される。例えば，本発明の酵素的核酸分子は，好ましくは１５−５０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２５−４０ヌクレオチドの長さであり，例えば，３４，３６，または３８ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｊａｒｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．；１９９６，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７１，２９１０７−２９１１２を参照）。本発明の例示的ＤＮＡザイムは，好ましくは１５−４０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２５−３５ヌクレオチドの長さであり，例えば，２９，３０，３１，または３２ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３７，１３３３０−１３３４２；Ｃｈａｒｔｒａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２３，４０９２−４０９６を参照）。本発明の例示的アンチセンス分子は，好ましくは１５−７５ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２０−３５ヌクレオチドの長さであり，例えば，２５，２６，２７，または２８ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｗｏｏｌｆ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，ＰＮＡＳ．，８９，７３０５−７３０９；Ｍｉｌｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１５，５３７−５４１を参照）。本発明の例示的トリプレックス形成オリゴヌクレオチド分子は，好ましくは１０−４０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは１２−２５ヌクレオチドの長さ，例えば，１８，１９，２０，または２１ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｍａｈｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２９，８８２０−８８２６；Ｓｔｒｏｂｅｌ  ａｎｄ  Ｄｅｒｖａｎ，１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，７３−７５を参照）。当業者は，核酸分子について必要なことは，核酸分子が本発明により企図される反応を触媒するのに充分かつ適した長さおよびコンフォメーションを有することのみであることを理解するであろう。本発明の核酸分子の長さは，記載される一般的限界により限定されない。
【００９４】
好ましい態様においては，本発明は，所望の標的のＲＮＡに対して高い程度の特異性を示す一群の核酸に基づく遺伝子阻害剤を製造する方法を提供する。例えば，酵素的核酸分子は，好ましくは，本発明の１またはいくつかの核酸分子により疾病または状態の特異的治療が与えられるように，ＨＢＶ蛋白質をコードする標的ＲＮＡ（特異的にＨＢＶ  ＲＮＡ）の高度に保存された配列領域を標的とする。そのような核酸分子は，必要に応じて特定の組織または細胞標的に外的に輸送することができる。あるいは，核酸分子（例えば，リボザイムおよびアンチセンス）は，特定の細胞に輸送されるＤＮＡおよび／またはＲＮＡベクターから発現させることができる。
【００９５】
酵素的核酸に基づくＨＢＶ発現の阻害剤は，ＨＢＶ感染，肝炎，癌，肝硬変，肝不全，および細胞または組織中のＨＢＶのレベルに関連する他のいずれかの疾病または状態等の疾病および状態の予防に有用である。
【００９６】
本発明の核酸に基づく阻害剤は，直接加えてもよく，またはカチオン性脂質と複合体化して，リポソーム中に封入して，または他の方法により，標的細胞または組織に輸送することができる。核酸または核酸複合体は，関連する組織にエクスビボで，または注射，注入ポンプまたはステントを用いてインビボで，バイオポリマー中に取り込ませてまたは取り込ませずに，局所的に投与することができる。好ましい態様においては，酵素的核酸ＨＢＶ阻害剤は，表の基質配列に相補的な配列を含む。そのような酵素的核酸分子の例も表に示される。そのような酵素的核酸分子の例は，本質的にこれらの表に記載される配列からなる。
【００９７】
さらに別の態様においては，本発明はＨＢＶ基質配列に相補的な配列を含むアンチセンス核酸分子を特徴とする。そのような核酸分子は，酵素的核酸分子の結合アームについて示される配列を含むことができる。同様に，トリプレックス分子は，対応するＤＮＡ標的領域，および標的配列と同等のＤＮＡまたは特定の標的（基質）配列に相補的な配列を含む領域を標的とするように提供することができる。典型的には，アンチセンス分子は，アンチセンス分子の１つの連続する配列に沿って標的配列に相補的である。しかし，ある態様においては，アンチセンス分子は基質分子がループを形成するように基質に結合することができ，および／またはアンチセンス分子はアンチセンス分子がループを形成するこように結合することができる。すなわち，アンチセンス分子は，２つ（またはさらにそれ以上）の非連続的基質配列に相補的であってもよく，またはアンチセンス分子の２つ（またはさらにそれ以上）の非連続的配列部分が標的配列に相補的であってもよく，その両方であってもよい。
【００９８】
"本質的に・・・からなる"とは，本発明の活性な核酸分子，例えば酵素的核酸分子が，標的部位における切断が生ずるように，実施例に記載されるものと同等の酵素中心もしくはコア，およびｍＲＮＡに結合することができる結合アームを含むことを意味する。そのような切断を有意に妨害しない他の配列が存在していてもよい。すなわち，コア領域は，例えば，酵素的活性を妨害しない１またはそれ以上のループ，ステム−ループ構造，またはリンカーを含んでいてもよい。すなわち，配列中の下線を施した領域は，そのようなループ，ステム−ループ，ヌクレオチドリンカー，および／または非ヌクレオチドリンカーであってもよく，一般に配列"Ｘ"として表される。例えば，ハンマーヘッド酵素的核酸のコア配列は，保存配列，例えば"Ｘ"により接続されている５’−ＣＵＧＡＵＧＡＧ−３’および５’−ＣＧＡＡ−３’（Ｘは５’−ＧＣＣＧＵＵＡＧＧＣ−３’（配列番号１６２０１），または当該技術分野において知られる他のステムＩＩ領域，またはヌクレオチドおよび／または非ヌクレオチドリンカーでありうる）を含むことができる。同様に，本発明の他の核酸分子，例えば，イノザイム，Ｇ切断剤，アンバーザイム，チンザイム，ＤＮＡザイム，アンチセンス，２−５Ａアンチセンス，トリプレックス形成核酸，およびデコイ核酸について，核酸分子の機能を妨害しない他の配列または非ヌクレオチドリンカーが存在していてもよい。
【００９９】
本発明の別の観点においては，標的ＲＮＡ分子と相互作用し，ＨＢＶ（特にＨＢＶ  ＲＮＡ）活性を阻害する酵素的核酸またはアンチセンス分子は，ＤＮＡまたはＲＮＡベクター中に挿入された転写ユニットから発現される。組換えベクターは，好ましくはＤＮＡプラスミドまたはウイルスベクターである。ウイルスベクターを発現する酵素的核酸またはアンチセンスは，アデノ随伴ウイルス，レトロウイルス，アデノウイルスまたはアルファウイルスに基づいて構築することができるが，これらに限定されない。好ましくは，酵素的核酸またはアンチセンスを発現しうる組換えベクターを上述のように輸送し，標的細胞中に残留させる。あるいは，酵素的核酸またはアンチセンスの過渡的発現を与えるウイルスベクターを用いることができる。そのようなベクターは，必要に応じて繰り返し投与することができる。いったん発現されれば，酵素的核酸またはアンチセンスは標的ＲＮＡに結合し，その機能または発現を阻害する。酵素的核酸またはアンチセンスを発現するベクターの輸送は，全身的（例えば，静脈内または筋肉内投与により），患者から外植された標的細胞に投与した後，患者に再導入することにより，または所望の標的細胞中への導入を可能とする他のいずれかの手段により行うことができる。アンチセンスＤＮＡは，一本鎖ＤＮＡ細胞内発現ベクターを用いて発現させることができる。
【０１００】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく阻害剤（例えば，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸，トリプレックスＤＮＡ，デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，ＲＮＡ切断化学基を含むアンチセンス核酸），およびこれらを用いて肝疾患および肝不全の進行および／または維持をしうるＲＮＡ（例えばＨＢＶ）の発現をダウンレギュレートまたは阻害する方法を特徴とする。
【０１０１】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく手法（例えば，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸，トリプレックスＤＮＡ，デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，ＲＮＡ切断化学基を含むアンチセンス核酸），およびこれらを用いてＨＢＶ  ＲＮＡ発現の発現をダウンレギュレートまたは阻害する方法を特徴とする。
【０１０２】
別の態様においては，本発明は，ＨＢＶ蛋白質を分析する方法を特徴とする。この方法は，ＨＢＶ阻害剤の効力を測定するのに有用である。詳細には，本発明は，ＨＢｓＡｇ蛋白質および分泌性アルカリホスファターゼ（ＳＥＡＰ）対照蛋白質を分析して，ＨＢＶ発現を調節するのに用いられる薬剤の効力を決定するためのアッセイを特徴とする。
【０１０３】
この方法は，マイクロタイタープレートを，緩衝液（例えば，炭酸緩衝液，例えばＮａ2ＣＯ3  １５ｍＭ，ＮａＨＣＯ3  ３５ｍＭ，ｐＨ９．５）中０．１−１０ｐｇ／ｍｌの抗体，例えば抗ＨＢｓＡｇＭａｂ（例えば，Ｂｉｏｓｔｒｉｄｅ  Ｂ８８−９５−３ｌａｄ，ａｙ）を４℃で一夜コーティングすることからなる。次にマイクロタイターのウエルをＰＢＳＴまたはその同等物（例えば，ＰＢＳ，０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄し，ＰＢＳＴ，１％ＢＳＡまたはその同等物で３７℃で０．１−２４時間ブロッキングする。上述のように洗浄した後，ウエルを乾燥（例えば，３７℃で３０分間）させる。ビオチニル化ヤギ抗ＨＢｓＡｇまたは同等の抗体（例えば，Ａｃｃｕｒａｔｅ  ＹＶＳ１８０７）をＰＢＳＴ中に希釈（例えば１：１０００で）し，ウエル中でインキュベートする（例えば，３７℃で１時間）。ウエルをＰＢＳＴで洗浄する（例えば，４回）。コンジュゲート（例えば，ストレプトアビジン／アルカリホスファターゼコンジュゲート，Ｐｉｅｒｃｅ２１３２４）をＰＢＳＴ中に１０−１０，０００ｎｇ／ｍｌで希釈し，ウエル中でインキュベートする（例えば，３７℃で１時間）。上述のように洗浄した後，基質（例えば，ｐ−ニトロフェニルリン酸基質，Ｐｉｅｒｃｅ３７６２０）をウエルに加え，次にこれをインキュベートする（例えば，３７℃で１時間）。次に，光学密度を測定する（例えば，４０５ｎｍで）。次に例えばＧｒｅａｔ  ＥｓｃＡＰｅ（登録商標）検出キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ  Ｋ２０４１−１）を用いて，製造元の指針にしたがって，ＳＥＡＰレベルをアッセイする。上述の例においては，インキュベーション時間および試薬濃度を変化させて最適な結果を得ることができる。実施例６に非限定的例が記載される。
【０１０４】
このＨＢｓＡｇ  ＥＬＩＳＡ法をＷｏｒｌｄ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，Ｉｎｃ．１５２７１  ＮＷ  ６０ｔｈ  Ａｖｅ，＃；２０１，Ｍｉａｍｉ  Ｌａｋｅｓ，ＦＬ  ３３０１４（３０５）８２７３３０４（Ｃａｔ．Ｎｏ．ＥＬ１００１８）の市販のアッセイと比較すると，感度（シグナル：ノイズ）が３−２０倍増加する。
【０１０５】
本発明はまた，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼの機能を破壊することに向けられた核酸分子に関する。さらに，本発明は，ＨＢＶゲノムＤＮＡのエンハンサーＩコア領域の機能を破壊することに向けられた核酸分子に関する。特に，本発明は，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ（ｐｏｌ）プライマーに特異的に結合し，ＨＢＶプレゲノムＲＮＡの逆転写を調節しうる核酸分子，例えばデコイおよびアプタマーの選択および機能を記述する。別の態様においては，本発明は，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ（ｐｏｌ）に特異的に結合し，ＨＢＶプレゲノムＲＮＡの逆転写を調節しうる核酸分子，例えばデコイ，アンチセンスおよびアプタマーに関する。さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域に特異的に結合し，ＨＢＶゲノムＤＮＡの転写を調節しうる核酸分子に関する。本発明はさらに，ＨＢＶ遺伝子の発現を調節するために用いられるアロステリック酵素的核酸分子または"アロザイム"に関する。そのようなアロザイムは，ＨＢＶ由来の核酸，ペプチド，および／または蛋白質，例えばＨＢＶリバーストランスクリプターゼおよび／またはＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマー配列の存在下で活性であり，このことにより，アロザイムはＨＢＶ  ＤＮＡまたはＲＮＡの配列を選択的に切断することが可能である。本発明のアロザイムはまた，ＨＢＶエンハンサーＩ配列および／または変異体ＨＢＶエンハンサーＩ配列の存在下で活性であるよう設計され，このことにより，アロザイムはＨＢＶ  ＤＮＡまたはＲＮＡの配列を選択的に切断することができる。これらの核酸分子は，ＨＢＶ感染に伴う疾病および疾患を治療するために用いることができる。
【０１０６】
１つの態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマー配列に特異的に結合する核酸デコイ分子を特徴とする。別の態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼに特異的に結合する核酸デコイ分子を特徴とする。さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶエンハンサーＩコア配列に特異的に結合する核酸デコイ分子を特徴とする。
【０１０７】
１つの態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマーに特異的に結合する核酸アプタマーを特徴とする。別の態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼに特異的に結合する核酸アプタマーを特徴とする。さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶエンハンサーＩコア配列に結合する特異的に核酸アプタマー分子を特徴とする。
【０１０８】
１つの態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマーに特異的に結合するアロザイムを特徴とする。別の態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼに特異的に結合するアロザイムを特徴とする。さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶエンハンサーＩコア配列に特異的に結合するアロザイムを特徴とする。
【０１０９】
さらに別の態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼプライマーに結合する核酸分子，例えばトリプレックス形成核酸分子またはアンチセンス核酸分子を特徴とする。別の態様においては，本発明は，Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）リバーストランスクリプターゼに特異的に結合するトリプレックス形成核酸分子またはアンチセンス核酸分子を特徴とする。さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶエンハンサーＩコア配列に特異的に結合するトリプレックス形成核酸分子またはアンチセンス核酸分子を特徴とする。
【０１１０】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，ＨＢＶゲノムＤＮＡのＨＢＶエンハンサーＩ領域中の，例えばエンハンサーＩ領域のプラス鎖および／またはマイナス鎖ＤＮＡの，肝細胞核因子３（ＨＮＦ３）および／または肝細胞核因子４（ＨＮＦ４）結合配列に結合し，ＨＮＦ３および／またはＨＮＦ４のエンハンサー１領域への結合をブロックする。
【０１１１】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，（ＵＵＣＡ）nドメイン（ｎは１−１０の整数である）を有する配列を含む。別の態様においては，本発明の核酸分子は，配列番号１１２１６−１１３４２の配列を含む。
【０１１２】
別の態様においては，本発明は，本発明の核酸分子および薬学的に許容しうる担体を含む組成物を特徴とする。別の態様においては，本発明は，本発明により企図される核酸分子を含む哺乳動物細胞，例えばヒト細胞を特徴とする。
【０１１３】
１つの態様においては，本発明は，治療に適した条件下で患者に本発明の核酸分子を投与することを含む，ＨＢＶ感染，肝硬変，肝不全，または肝細胞癌を治療する方法を特徴とする。
【０１１４】
別の態様においては，本発明は，ＨＢＶ感染に伴う状態を有する患者を治療する方法を特徴とし，該方法は，そのような治療に適した条件下で前記患者の細胞を本発明の核酸分子と接触させることを含む。別の態様においては，本発明は，治療に適した条件下で患者の細胞を本発明の核酸分子と接触させることを含み，１またはそれ以上の薬剤療法，例えば，１型インターフェロンまたは３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）を使用することをさらに含む，ＨＢＶ感染に伴う状態を有する患者を治療する方法を特徴とする。別の態様においては，他の療法は，核酸分子と同時にまたは別々に投与される。
【０１１５】
別の態様においては，本発明は，調節に適した条件下で本発明の核酸分子を細胞に投与することを含む，哺乳動物細胞においてＨＢＶ複製を調節する方法を特徴とする。
【０１１６】
さらに別の態様においては，本発明は，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ活性の調節に適した条件下で本発明の核酸分子，例えばデコイまたはアプタマーをＨＢＶリバーストランスクリプターゼと接触させることを含む，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ活性を調節する方法を特徴とする。
【０１１７】
別の態様においては，本発明は，ＨＢＶ転写の調節に適した条件下で本発明の核酸分子をＨＢＶエンハンサーＩ配列と接触させることを含む，ＨＢＶ転写を調節する方法を特徴とする。
【０１１８】
１つの態様においては，本発明の核酸分子，例えばデコイまたはアプタマーは，化学的に合成される。別の態様においては，本発明の核酸分子は少なくとも１つの核酸糖修飾を含む。さらに別の態様においては，本発明の核酸分子は少なくとも１つの核酸塩基修飾を含む。別の態様においては，本発明の核酸分子は少なくとも１つの核酸骨格修飾を含む。
【０１１９】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，少なくとも１つの２’−Ｏ−アルキル，２’−アルキル，２’−アルコキシルアルキル，２’−アルキルチオアルキル，２’−アミノ，２’−Ｏ−アミノ，または２’−ハロ修飾および／またはこれらの任意の組み合わせを含み，２’−デオキシおよび／または２’−リボヌクレオチドを有するかまたは有しない。さらに別の態様においては，本発明の核酸分子は全２’−Ｏ−アルキルヌクレオチド，例えば全２’−Ｏ−アリルヌクレオチドを含む。
【０１２０】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は，５’−キャップ，３’−キャップ，または５’−３’キャップ構造，例えば，無塩基または反転無塩基成分を含む。
【０１２１】
別の態様においては，本発明の核酸分子は直鎖状の核酸分子である。別の態様においては，本発明の核酸分子は，ヘアピン，ループ，ステム−ループ，または他の二次構造を任意に形成することができる直鎖状の核酸分子である。さらに別の態様においては，本発明の核酸分子は環状核酸分子である。
【０１２２】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は一本鎖オリゴヌクレオチドである。別の態様においては，本発明の核酸分子は二本鎖オリゴヌクレオチドである。
【０１２３】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は約３−約１００ヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドを含む。別の態様においては，本発明の核酸分子は約３−約２４ヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドを含む。別の態様においては，本発明の核酸分子は約４−約１６ヌクレオチドを有するオリゴヌクレオチドを含む。
【０１２４】
リバーストランスクリプターゼおよび／またはリバーストランスクリプターゼプライマーに結合し，したがってリバーストランスクリプターゼを不活性化する核酸デコイ分子および／またはアプタマーは，種々の病的適応症，例えば，ＨＢＶ感染等のウイルス感染，肝炎，肝細胞癌，腫瘍原性，肝硬変，肝不全およびその他を治療する新規な治療方法である。
【０１２５】
ＨＢＶエンハンサーＩ配列に結合し，したがってＨＢＶ転写を不活性化する核酸分子は，種々の病的適応症，例えばＨＢＶ感染等のウイルス感染，肝炎，肝細胞癌，腫瘍原性，肝硬変，肝不全およびＨＢＶのレベルに関連する他の状態を治療する新規な治療方法である。
【０１２６】
本発明の１つの態様においては，本発明のデコイ核酸分子は４−５０ヌクレオチドの長さであり，特定の態様においては約４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３，１４，１５，または１６ヌクレオチドの長さである。別の態様においては，非デコイ核酸分子（例えば，アンチセンス分子，トリプレックスＤＮＡ，またはリボザイム）は，１３−１００ヌクレオチドの長さであり，例えば，特定の態様においては３５，３６，３７，または３８ヌクレオチドの長さ（例えば，特定のリボザイムまたはアンチセンスについて）であることができる。特定の態様においては，核酸分子は，１５−１００，１７−１００，２０−１００，２１−１００，２３−１００，２５−１００，２７−１００，３０−１００，３２−１００，３５１００，４０−１００，５０−１００，６０−１００，７０−１００，または８０−１００ヌクレオチドの長さである。１００ヌクレオチドが上で特定した長さの範囲の上限ではなく，長さの範囲の上限は，例えば，３０，４０，５０，６０，７０，または８０ヌクレオチドでありうる。すなわち，長さの範囲のいずれについても，特定の態様についての長さの範囲は，特定される下限を有し，その下限より大きい特定される上限を有する。例えば，特定の態様においては，長さの範囲は，３５−５０ヌクレオチドの長さでありうる。すべてのそのような範囲は明示的に含まれる。また，特定の態様においては，核酸分子は，上述した長さの任意の長さ，例えば，２１ヌクレオチドの長さを有することができる。
【０１２７】
本発明の例示的核酸デコイ分子は表ＸＩＶに示される。本発明の例示的合成核酸分子は表ＸＶに示される。例えば，本発明のデコイ分子は４−４０ヌクレオチドの長さである。本発明の例示的デコイは，４，８，１２，または１６ヌクレオチドの長さである。さらに別の例においては，本発明の酵素的核酸分子は，好ましくは１５−５０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２５−４０ヌクレオチドの長さであり，例えば，３４，３６，または３８ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｊａｒｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｌｌｅｍ．，２７１，２９１０７２９１１２を参照）。本発明の例示的ＤＮＡザイムは，好ましくは１５−４０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２５−３５ヌクレオチドの長さであり，例えば，２９，３０，３１，または３２ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３７，１３３３０−１３３４２；Ｃｈａｒｔｒａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２３，４０９２−４０９６を参照）。本発明の例示的アンチセンス分子は，好ましくは，１５−７５ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは２０−３５ヌクレオチドの長さであり，例えば，２５，２６，２７，または２８ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｗｏｏｌｆ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，ＰＮＡＳ．，８９，７３０５−７３０９；Ｍｉｌｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｉａｏｌｏｇｙ，１５，５３７−５４１を参照）。本発明の例示的トリプレックス形成オリゴヌクレオチド分子は，好ましくは１０−４０ヌクレオチドの長さであり，より好ましくは１２−２５ヌクレオチドの長さであり，例えば，１８，１９，２０，または２１ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｍａｈｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２９，８８２０−８８２６；Ｓｔｒｏｂｅｌ  ａｎｄ  Ｄｅｒｖａｎ，１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，７３−７５を参照）。当業者は，必要なことは，核酸分子が本発明において企図される反応を触媒するのに充分かつ適当な長さおよびコンフォメーションであることのみであることを理解するであろう。本発明の核酸分子の長さは，記載される一般的制限内に限定されない。
【０１２８】
１つの態様においては，本発明は，ウイルスリバーストランスクリプターゼ（例えばＨＢＶリバーストランスクリプターゼ）またはリバーストランスクリプターゼプライマー（例えばＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマー）に対して高度の特異性を示す，核酸に基づく一群の遺伝子調節剤を製造する方法を提供する。例えば，核酸分子は，本発明の１またはいくつかの核酸分子により疾病または状態の特異的治療が与えられるように，好ましくはウイルスリバーストランスクリプターゼの高度に保存された核酸結合領域を標的とすることができる。そのような核酸分子は，必要に応じて特定の組織または細胞標的に輸送することができる。あるいは，核酸分子は，特定の細胞に輸送されるＤＮＡおよび／またはＲＮＡベクターから発現させることができる。
【０１２９】
別の態様においては，本発明は，ウイルスエンハンサー領域，例えばＨＢＶエンハンサーＩコア配列に高い特異性を示す，核酸に基づく一群の遺伝子調節剤を製造する方法を提供する。例えば，核酸分子は，本発明の１またはいくつかの核酸分子により疾病または状態の特異的治療が与えられるように，好ましくはウイルスエンハンサーＩ配列の高度に保存された転写因子結合領域を標的とする。そのような核酸分子は，必要に応じて特定の組織または細胞標的に外的に輸送することができる。あるいは，核酸分子は，特定の細胞に輸送されたＤＮＡおよび／またはＲＮＡベクターから発現させることができる。
【０１３０】
別の態様においては，本発明は，所望の標的のＲＮＡに対して高度の特異性を示す一群の酵素的切断剤を製造する方法を提供する。酵素的核酸分子，ヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラは，好ましくは，１またはいくつかの酵素的核酸を用いて疾病または状態の特異的治療を与えることができるように，ＨＣＶまたはＨＢＶ蛋白質をコードする標的ｍＲＮＡの高度に保存された配列領域を標的とする。そのような核酸分子は，必要に応じて，特定の細胞に外的に輸送することができる。あるいは，酵素的核酸分子は，特定の細胞に輸送されたＤＮＡ／ＲＮＡベクターから発現させることができる。ＤＮＡザイムは，化学的に合成してもよく，または一本鎖ＤＮＡベクターまたはその同等物を用いてインビボで内的に発現させてもよい。
【０１３１】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，例えば，核酸分子のリバーストランスクリプターゼプライマー配列への共有結合的付着により，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ標的に不可逆的に結合する。共有結合的付着は，核酸分子（例えば，デコイまたはアプタマー）の配列中にリバーストランスクリプターゼプライマー配列と共有結合を形成しうる化学的修飾を導入することにより行うことができる。
【０１３２】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，例えば，核酸分子のＨＢＶエンハンサーＩ配列への共有結合的付着により，ＨＢＶエンハンサーＩ配列標的に不可逆的に結合する。共有結合的付着は，核酸分子の配列中にリバーストランスクリプターゼプライマー配列と共有結合を形成しうる化学的修飾を導入することにより行うことができる。
【０１３３】
別の態様においては，本発明により企図される１型インターフェロンは，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，ポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンである。
【０１３４】
１つの態様においては，本発明は，１型インターフェロンおよび本発明の核酸分子および薬学的に許容しうる担体を含む組成物を特徴とする。
【０１３５】
別の態様においては，本発明は，細胞（例えば哺乳動物細胞またはヒト細胞）に，本発明の核酸分子を，独立して，または他の治療用化合物，例えば１型インターフェロンまたは３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）との組み合わせで投与する方法を特徴とし，該方法は，投与に適した条件下で細胞を核酸分子と接触させることを含む。
【０１３６】
さらに別の態様においては，本発明は，細胞（例えば哺乳動物細胞またはヒト細胞）に，本発明の核酸分子を，独立して，または他の治療用化合物，例えば酵素的核酸分子，アンチセンス分子，トリプレックス形成オリゴヌクレオチド，２，５−Ａキメラ，および／またはＲＮＡｉとの組み合わせで投与する方法を特徴とし，該方法は，投与に適した条件下で細胞を本発明の核酸分子と接触させることを含む。
【０１３７】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，輸送試薬，例えば，脂質，カチオン性脂質，リン脂質，またはリポソームの存在下で細胞または患者に投与する。
【０１３８】
１つの態様においては，本発明は，単独で，または酵素的核酸分子，アンチセンス分子，および／またはＲＮＡｉとの組み合わせで用いられる，新規な核酸に基づく手法，例えば核酸デコイ分子および／またはアプタマー，およびこれらを用いてＨＢＶ  ＲＮＡの発現および／またはＨＢＶの複製をダウンレギュレートするかまたは調節する方法を特徴とする。
【０１３９】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく手法の１またはそれ以上を用いて，ＨＢＶウイルス蛋白質をコードする遺伝子の発現を調節することを特徴とする。特に，本発明は，核酸に基づく手法を用いてＨＢＶウイルスゲノムの発現を特異的に調節することを特徴とする。
【０１４０】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく手法の１またはそれ以上を用いて，ＨＢＶ複製に必要な細胞蛋白質の活性，発現，またはレベルを調節することを特徴とする。例えば，本発明は，核酸に基づく手法を用いて，ＨＢＶ複製に必要な細胞性蛋白質の活性を特異的に調節することを特徴とする。
【０１４１】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく調節剤（例えば，核酸デコイ分子，アプタマー，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸，トリプレックスＤＮＡ，ＲＮＡ切断基を含有するアンチセンス核酸）およびこれを用いて，リバーストランスクリプターゼ活性および／またはＨＢＶ感染，肝細胞癌，肝疾患および肝不全の進行および／または維持をすることができるＲＮＡ（例えばＨＢＶ）の発現をダウンレギュレートまたは調節する方法を特徴とする。
【０１４２】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく手法（例えば，核酸デコイ分子，アプタマー，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸分子，トリプレックスＤＮＡ，ＲＮＡ切断化学基を含有するアンチセンス核酸），およびこれらを用いて，リバーストランスクリプターゼ活性および／またはＨＢＶ  ＲＮＡの発現をダウンレギュレートまたは調節する方法を特徴とする。
【０１４３】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく調節剤（例えば，核酸デコイ分子，アプタマー，酵素的核酸分子（リボザイム），アンチセンス核酸，トリプレックスＤＮＡ，ｓｉＲＮＡ，ｄｓＲＮＡ，ＲＮＡ切断化学基を含有するアンチセンス核酸），およびこれらを用いて，ＨＢＶ感染，肝細胞癌，肝疾患および不全を進行および／または維持することができるエンハンサー媒介性転写活性および／またはＤＮＡ（例えばＨＢＶ）の発現をダウンレギュレートまたは調節する方法を特徴とする。
【０１４４】
別の態様においては，本発明は，核酸に基づく手法（例えば，核酸デコイ分子，アプタマー，酵素的核酸分子，アンチセンス核酸分子，トリプレックスＤＮＡ，ｓｉＲＮＡ，ＤＮＡ切断化学基を含むアンチセンス核酸），およびこれらを用いて，エンハンサーＩ媒介性転写活性および／またはＨＢＶ  ＤＮＡの発現をダウンレギュレートまたは調節する方法を特徴とする。
【０１４５】
別の態様においては，本発明は，ＨＢＶペプチド，蛋白質，またはポリヌクレオチド配列，例えば，ＨＢＶプレゲノムＲＮＡのＨＢＶリバーストランスクリプターゼ，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマー，またはエンハンサーＩ要素と相互作用する，酵素的核酸ドメインおよびセンサードメインを有する核酸センサー分子を特徴とし，ここで，そのような相互作用により，核酸センサー分子の酵素的核酸ドメインの活性が調節される。別の態様においては，本発明は，ＨＢＶ特異的核酸センサー分子またはアロザイム，およびこれを用いて，肝炎，肝細胞癌，肝硬変，および／または肝不全の進行および／または維持をすることができるＨＢＶ  ＲＮＡの発現をダウンレギュレートまたは調節する方法を特徴とする。さらに別の態様においては，本発明の核酸センサー分子の酵素的核酸ドメインは，ハンマーヘッド，イノザイム，Ｇ切断剤，ＤＮＡザイム，チンザイム，アンバーザイム，またはヘアピン酵素的核酸分子である。
【０１４６】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は，ＨＢＶ感染細胞またはＨＢＶ感染患者を治療するために用いられ，ここで，３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）単独または治療に適した条件下での他の療法との組み合わせによる治療にＨＢＶが耐性であるかまたは患者が応答しない。
【０１４７】
別の態様においては，本発明の核酸分子は，ＨＢＶ感染細胞またはＨＢＶ感染患者を治療するために用いられ，ここで，インターフェロン（例えばＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標））単独または，治療に適した条件下での他の療法との組み合わせによる治療にＨＢＶが耐性であるかまたは患者が応答しない。
【０１４８】
本発明はまた，ＨＢＶの阻害剤をスクリーニングするためのインビトロおよびインビボ系，例えば，哺乳動物系に関する。１つの態様においては，本発明は，マウス，例えば，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が移植された雄または雌マウスを特徴とし，ここで，マウスはＨＢＶ感染に感受性であり，ＨＢＶ  ＤＮＡ発現を支持することができる。本発明の１つの態様は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が移植されたマウスを提供し，ここで，前記マウスは，ＨＥＰＧ２．２．１５細胞の繁殖およびＨＢＶ産生を支持する。
【０１４９】
別の態様においては，本発明のマウスは，少なくとも１週間から少なくとも８週間，例えば，少なくとも４週間ＨＢＶに感染している。
【０１５０】
さらに別の態様においては，本発明のマウス，例えば雄または雌マウスは，免疫欠陥マウス，例えばｎｕ／ｎｕマウスまたはｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウスである。
【０１５１】
１つの態様においては，本発明は，前記マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５細胞の繁殖に適した条件下で，例えば皮下注入により，ＨｅｐＧ２．２．１５（Ｓｅｌｌｓ，  ｅｔ  ａｌ，．１９８７，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ．，８４，１００５−１００９）細胞をマウスに注入することを含む，本発明のマウスを製造する方法を特徴とする。ＨｅｐＧ２．２．１５細胞は，例えば，カルシウムおよびマグネシウムを含むダルベッコＰＢＳ溶液に懸濁することができる。別の態様においては，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を抗生物質耐性について選択し，次に前記マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５細胞の繁殖に適した条件下でマウスに導入する。抗生物質耐性ＨｅｐＧ２．２．１５細胞の非限定的例としては，Ｇ４１８抗生物質耐性ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が挙げられる。
【０１５２】
別の態様においては，本発明は，化合物を本発明のマウスに投与し，マウスにおいて産生されるＨＢＶのレベルをモニターする（例えば，ＨＢＶ  ＤＮＡレベルをアッセイすることにより）ことを含む，ＨＢＶに対する治療活性について化合物をスクリーニングする方法を特徴とする。
【０１５３】
１つの態様においては，本発明により企図される治療用化合物または療法は，脂質，ステロイド，ペプチド，蛋白質，抗体，モノクローナル抗体，ヒト化モノクローナル抗体，小分子，および／またはこれらの異性体および類似体，および／または細胞である。
【０１５４】
１つの態様においては，本発明により企図される治療用化合物または療法は，核酸分子，例えば核酸分子，例えば，酵素的核酸分子，アンチセンス核酸分子，アロザイム，ペプチド核酸，デコイ，トリプレックスオリゴヌクレオチド，ｄｓＲＮＡ，ｓｓＲＮＡ，ＲＮＡｉ，ｓｉＲＮＡ，アプタマー，または２，５−Ａキメラであり，これらは単独でまたは別の療法，例えば，抗ウイルス療法とともに用いられる。抗ウイルス療法は，例えば，３ＴＣ（登録商標）（ラミブジン）またはインターフェロンによる治療でありうる。インターフェロンには，例えば，コンセンサスインターフェロンまたは１型インターフェロンが含まれる。１型インターフェロンとしては，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，またはポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロンが挙げられる。
【０１５５】
１つの態様においては，本発明は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞が移植されている非ヒト哺乳動物を特徴とし，ここで，非ヒト哺乳動物はＨＢＶ感染に感受性であり，移植されたＨｅｐＧ２．２．１５細胞中でＨＢＶ  ＤＮＡ発現を支持することができる。
【０１５６】
別の態様においては，本発明の非ヒト哺乳動物，例えば，雄または雌非ヒト哺乳動物は，ＨＢＶに少なくとも１週間から少なくとも８週間，例えば少なくとも４週間感染している。
【０１５７】
さらに別の態様においては，本発明の非ヒト哺乳動物は，免疫欠陥哺乳動物，例えば，ｎｕ／ｎｕ哺乳動物またはｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ哺乳動物である。
【０１５８】
１つの態様においては，本発明は，前記非ヒト哺乳動物におけるＨｅｐＧ２．２．１５細胞の繁殖に適した条件下でＨｅｐＧ２．２．１５細胞を，例えば皮下注入により，非ヒト哺乳動物中に注入することを含む，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を含む非ヒト哺乳動物を製造する方法を特徴とする。
【０１５９】
別の態様においては，本発明は，化合物を本発明の非ヒト哺乳動物に投与し，非ヒト哺乳動物において産生されるＨＢＶのレベルをモニター（例えば，ＨＢＶ  ＤＮＡレベルをアッセイすることにより）することを含む，ＨＢＶに対する治療活性について化合物をスクリーニングする方法を特徴とする。
【０１６０】
１つの態様においては，本発明により企図される治療用化合物または療法は，核酸分子，例えば，酵素的核酸分子，アロザイム，アンチセンス核酸分子，デコイ，トリプレックスオリゴヌクレオチド，ｄｓＲＮＡ，ｓｓＲＮＡ，ＲＮＡｉ，ｓｉＲＮＡ，または２，５−Ａキメラであり，これらは単独でまたは他の療法，例えば抗ウイルス療法との組み合わせで用いられる。
【０１６１】
Ｂ型肝炎ウイルス（"ＨＢＶ"）の発現のために，方法およびキメラ免疫欠陥異種非ヒト哺乳動物宿主，特にマウス宿主が提供される。１つの態様においては，キメラ宿主は，免疫欠陥宿主中に移植された生きたＨｅｐＧ２．２．１５細胞を有する。
【０１６２】
本発明により企図される非ヒト哺乳動物は，通常は遺伝により受け継がれる所望の免疫的無能の免疫欠陥を有するか，または所望の免疫的無能を作成することができる。例えば，ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ宿主として知られる，重篤な合併免疫不全を有する宿主が利用可能である。齧歯動物，特にマウス，およびウマ科の動物，特にウマは，現在，ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ宿主，例えばｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウスおよびｓｃｉｄ／ｓｃｉｄラットとして利用可能である。ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ宿主は機能的リンパ球のタイプ，特にＢ細胞およびある種のＴ細胞タイプを欠失している。ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウス宿主においては，生殖細胞系ＤＮＡが機能的表面イムノグロブリンおよびＴ細胞レセプターを産生するよう再配列しないため，遺伝的欠陥は，非機能性リコンビナーゼとして現れる。
【０１６３】
すべての免疫不全非ヒト哺乳動物，例えばマウスは，本明細書に記載される動物モデルを生成するために用いることができる。本明細書において用いる場合，"免疫不全"との用語は，有効な免疫応答を与える動物の能力に障害を与える遺伝的変化を表す。この点に関して，"有効な免疫応答"とは，侵入しつつある病原体，例えば（限定されないが）ウイルス，細菌，寄生生物，悪性腫瘍細胞，および／または異種または同種移植を破壊することができるものである。１つの態様においては，免疫不全マウスは，イムノグロブリンおよび機能的Ｔ細胞抗原レセプターの生成に必要なリコンビナーゼ活性を欠失しており，このため機能的ＢおよびＴリンパ球を産生しない，重症の免疫不全（ＳＣＩＤ）マウスである。別の態様においては，免疫不全マウスは，機能的胸腺が存在せず，Ｔ細胞およびＢ細胞欠失につながる遺伝的欠陥を含むヌードマウスである。しかし，他の免疫不全（例えば，Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，６，３１３−３１９およびＧｕｉｄａｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８１，１１８７−１１９５に記載されるｒａｇ−１またはｒａｇ−２ノックアウト，または，Ｋｏｌｌｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１７７，８２１−８３２に記載される，やはりナチュラルキラー細胞を欠失したベージュヌードマウス）等のマウスもまた用いることができる。
【０１６４】
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞は，マウスについてその正常な寿命の約２５％より若い年齢で，通常はその正常な寿命の２０％の年齢で宿主に導入し，その年齢は一般に約３−１０週間，しばしば約４−８週間であろう。マウスはいずれの性別でもよく，生殖能力がなくてもよく，免疫欠陥状態を有する以外は正常であってもよく，または，１またはそれ以上の変異を有していてもよく，変異は天然に生ずるものでもよく，突然変異誘発の結果であってもよい。
【０１６５】
別の態様においては，本明細書に記載されるマウスモデルは，治療用化合物および方法の有効性を評価するために用いられる。本明細書において用いる場合，"治療用化合物"，"治療方法"および"療法"との用語は，外的因子，例えば食事または環境条件，ならびに医薬組成物"薬剤"およびワクチンを包含する。１つの態様においては，治療方法は免疫療法であり，これには，ＨＢＶ反応性免疫細胞の集団を有するＨＢＶ保有動物の治療が含まれる。治療方法はさらに，あるいはその代わりに，遺伝子療法（すなわち，１またはそれ以上の遺伝子を発現するよう操作されている細胞集団を有するＨＢＶ保有マウスの治療を含む療法，その産物は抗ウイルス活性を有することができる）であってもよい（例えば，Ｔｈｅ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，Ｔｈｅｏｄｏｒｅ  Ｆｒｉｅｄｍａｎｎ，Ｅｄ．Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，１９９９を参照）。本発明の治療用化合物は，病気または疾病を治療するために用いることができる薬学的活性を有する薬剤または組成物を含むことができる。治療方法は，複数の化合物を混合物としてまたは別々の成分として用いることを含むことができる。そのような化合物の例には，ヌクレオシド，核酸，核酸キメラ，ＲＮＡおよびＤＮＡオリゴヌクレオチド，ペプチド核酸，酵素的核酸分子，アンチセンス核酸分子，デコイ，トリプレックスオリゴヌクレオチド，ｓｓＤＮＡ，ｄｓＲＮＡ，ｓｓＲＮＡ，ｓｉＲＮＡ，２，５−Ａキメラ，脂質，ステロイド，ペプチド，蛋白質，抗体，モノクローナル抗体（例えば，Ｈａｌｌ，１９９５，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２７０，９１５−９１６を参照），小分子，および／またはこれらの異性体および類似体が含まれる。
【０１６６】
本発明の方法は，ヒトＢ型肝炎ウイルス感染，例えば，生産性ウイルス感染，潜伏性または持続性ウイルス感染，およびＨＢＶ誘導性肝細胞トランスフォーメーションを治療するために用いることができる。この用途は，非ヒト動物に感染し，そのような感染が獣医学的に重要である他の株のＨＢＶに拡張することができる。
【０１６７】
本発明の核酸分子の好ましい結合部位としては，限定されないが，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼのプライマー結合部位，ＨＢＶ  ＲＮＡのプライマー結合配列，および／またはＨＢＶ  ＤＮＡのＨＢＶエンハンサーＩ領域が挙げられる。
【０１６８】
本発明はさらに，Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）および／またはＨＣＶによりコードされるＲＮＡ種を標的とする核酸分子に関する。１つの態様においては，本出願人は，ＨＣＶ  ＲＮＡを特異的に切断する酵素的核酸分子およびその選択および機能を記述する。本発明はさらに，ヌクレアーゼ活性化活性を含む化合物およびキメラ分子に関する。本発明はまた，これらのヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラを用いてＲＮＡを切断するための組成物および方法に関する。核酸分子，ヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラ，および本発明の組成物および方法は，ＨＣＶ感染に伴う疾病の治療に用いることができる。
【０１６９】
ＨＣＶゲノムの高い配列変動性のため，広い治療応用のための核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラの選択には，好ましくはＨＣＶゲノムの保存領域が関連する。すなわち，本発明の１つの態様は，ＨＣＶゲノムの保存領域を切断する核酸分子を記載する。本発明はさらに，ＨＣＶゲノムの保存領域を含むＨＣＶ  ＲＮＡを切断する細胞ヌクレアーゼを活性化する化合物およびキメラ分子を記載する。ＨＣＶゲノムの保存領域の例としては，限定されないが，５’−非コーディング領域（ＮＣＲ），コア蛋白質コーディング領域の５’末端，および３’−ＮＣＲが挙げられる。ＨＣＶゲノムＲＮＡは，５’−ＮＣＲ中に内部リボソーム侵入部位（ＩＲＥＳ）を含み，これは独立して５’−キャップ構造の翻訳を媒介する（Ｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６７，３３３８−４４）。ＨＣＶ  ＲＮＡゲノムの全長配列は臨床的に単離されたサブタイプの間で異質であり，これには少なくとも１５種類が存在する（Ｓｉｍｍｏｎｄｓ，１９９５，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，２１，５７０−５８３）。しかし，ＨＣＶの５’−ＮＣＲ配列はすべての既知のサブタイプの間で高度に保存されており，これはおそらく共有するＩＲＥＳメカニズムを保存するためである（Ｏｋａｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，Ｊ．Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒａｌ，７２，２６９７−２７０４）。一般に，ＨＣＶゲノムの５’末端に位置する部位を切断する酵素的核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物，およびキメラは翻訳を妨害すると予測されるが，ゲノムの３’末端に位置する部位を切断する核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物，およびキメラはＲＮＡ複製を妨害すると予測される。したがって，１つの核酸分子，化合物，またはキメラを，ＨＣＶのすべての異なる単離物を切断するよう設計することができる。種々のＨＣＶの単離物の保存領域に対して設計された酵素的核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物，およびキメラは，多様な患者集団におけるＨＣＶ複製の有効な阻害を可能とし，ＨＣＶゲノムの非保存領域中の変異により進化した擬ＨＣＶに対する核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物，およびキメラの有効性を確実にする。
【０１７０】
１つの態様においては，本発明は，酵素的核酸分子，好ましくは，ハンマーヘッド，ＮＣＨ（イノザイム），Ｇ切断剤，アンバーザイム，チンザイムおよび／またはＤＮＡザイムモチーフの酵素的核酸分子，およびこれらを用いてＨＣＶ  ＲＮＡの発現をダウンレギュレートまたは阻害することを特徴とする。
【０１７１】
別の態様においては，本発明は，酵素的核酸分子，好ましくは，ハンマーヘッド，イノザイム，Ｇ切断剤，アンバーザイム，チンザイムおよび／またはＤＮＡザイムモチーフの酵素的核酸分子，およびこれらを用いてＨＣＶマイナス鎖ＲＮＡの発現をダウンレギュレートまたは阻害することを特徴とする。
【０１７２】
さらに別の態様においては，本発明は，ヌクレアーゼ活性化化合物および／またはキメラおよびこれらを用いてＨＣＶ  ＲＮＡの発現をダウンレギュレートまたは阻害することを特徴とする。
【０１７３】
別の態様においては，本発明は，ヌクレアーゼ活性化化合物および／またはキメラを用いてＨＣＶマイナス鎖ＲＮＡの発現を阻害することを特徴とする。
【０１７４】
１つの態様においては，本発明は，式Ｉ：
【化３】
2004532022.tif 000002
［式中，Ｘ1は，１，２および３からなる群より選択される整数であり；Ｘ2は１以上の整数であり；Ｒ6は，独立して，Ｈ，ＯＨ，ＮＨ2，Ｏ−ＮＨ2，アルキル，Ｓ−アルキル，Ｏ−アルキル，Ｏ−アルキル−Ｓ−アルキル，Ｏ−アルコキシアルキル，アリル，Ｏ−アリル，およびフルオロを含む群より選択され；各Ｒ1およびＲ2は，独立して，ＯおよびＳからなる群より選択され；各Ｒ3およびＲ4は，独立して，Ｏ，Ｎ，およびＳからなる群より選択され；そして，Ｒ5は，アルキル，アルキルアミン，配列番号１１３４３−１６１８２のいずれかを有するオリゴヌクレオチド，配列番号２５９４−７４３３を含む群より選択される配列に相補的な配列を有するオリゴヌクレオチド，および無塩基成分からなる群より選択される］
を有する化合物を特徴とする。
【０１７５】
別の態様においては，本発明の無塩基成分は以下の基：
【化４】
2004532022.tif 000003
［式中，Ｒ３は，Ｏ，Ｎ，およびＳからなる群より選択され，Ｒ7は，独立して，Ｈ，ＯＨ，ＮＨ2，Ｏ−ＮＨ2，アルキル，Ｓ−アルキル，Ｏ−アルキル，Ｏ−アルキル−Ｓ−アルキル，Ｏ−アルコキシアルキル，アリル，Ｏ−アリル，フルオロ，オリゴヌクレオチド，アルキル，アルキルアミンおよび無塩基成分からなる群より選択される］
からなる群より選択される。
【０１７６】
別の態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は酵素的核酸分子である。
【０１７７】
さらに別の態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5はアンチセンス核酸分子である。
【０１７８】
別の態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は，ハンマーヘッド，イノザイム，Ｇ切断剤，ＤＮＡザイム，アンバーザイムおよびチンザイムモチーフからなる群より選択される酵素的核酸分子である。
【０１７９】
別の態様においては，本発明のイノザイム酵素的核酸分子は，２塩基対以上の長さのステムＩＩ領域を含む。
【０１８０】
１つの態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１２−１００塩基を含む酵素的核酸である。
【０１８１】
別の態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１４−２４塩基を含む酵素的核酸である。
【０１８２】
１つの態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１２−１００塩基を含むアンチセンス核酸である。
【０１８３】
別の態様においては，配列番号２５９４−７４３３からなる群より選択される配列に相補的な配列を有する式ＩのオリゴヌクレオチドＲ5は，ＨＣＶに由来するＲＮＡに相補的な１４−２４塩基を含むアンチセンス核酸である。
【０１８４】
別の態様においては，本発明は，薬学的に許容しうる担体中に式Ｉの化合物を含む組成物を特徴とする。
【０１８５】
さらに別の態様においては，本発明は，式Ｉの化合物を含む哺乳動物細胞を特徴とする。例えば，式Ｉの化合物を含む哺乳動物細胞はヒト細胞でありうる。
【０１８６】
１つの態様においては，本発明は，患者に式Ｉの化合物を治療に適した条件下で投与する工程を含む，肝硬変，肝不全，肝細胞癌，またはＨＣＶ感染に伴う状態を治療する方法を特徴とする。
【０１８７】
別の態様においては，本発明は，患者の細胞を式Ｉを有する化合物と接触させることを含み，治療に適した条件下で１またはそれ以上の薬剤療法を前用することをさらに含む，ＨＣＶ感染に伴う状態を有する患者を治療する方法を特徴とする。例えば，本発明の他の療法は，１型インターフェロン，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，ポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロン，酵素的核酸分子を用いる治療，およびアンチセンス分子を用いる治療からなる群より選択することができる。
【０１８８】
別の態様においては，本発明の他の療法，例えば，１型インターフェロン，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，ポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロン，酵素的核酸分子による治療，およびアンチセンス核酸分子による治療と，式Ｉを有する化合物とを，別々の薬学的に許容しうる担体中で別々に投与する。
【０１８９】
さらに別の態様においては，本発明の他の療法，例えば，１型インターフェロン，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ｂ，ポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロン，酵素的核酸分子による治療，およびアンチセンス核酸分子による治療と，式Ｉを有する化合物とを薬学的に許容しうる担体中で同時に投与する。本発明は，式Ｉの化合物および上述の化合物の１またはそれ以上を薬学的に許容しうる担体中に含む組成物を特徴とする。
【０１９０】
さらに別の態様においては，本発明は，阻害に適した条件下で細胞に式Ｉを有する化合物を投与する工程を含む，哺乳動物細胞においてＨＣＶ複製を阻害する方法を特徴とする。
【０１９１】
別の態様においては，本発明は，別個のＲＮＡ分子の切断に適した条件下で式Ｉを有する化合物を別個のＲＮＡ分子と接触させることを含む，別個のＲＮＡ分子（例えば，ＨＣＶ  ＲＮＡまたはＨＣＶ複製に必要なＲＮＡ）を切断する方法を特徴とする。１つの例においては，別個のＲＮＡ分子を切断する方法は，２価カチオン，例えばＭｇ2+の存在下で行う。
【０１９２】
さらに別の態様においては，別個のＲＮＡ分子を切断する本発明の方法は，蛋白質ヌクレアーゼ，例えばＲＮＡｓｅＬの存在下で行う。
【０１９３】
１つの態様においては，式Ｉを有する化合物は化学的に合成する。１つの態様においては，式Ｉを有する化合物は，少なくとも１つの２’−糖修飾，少なくとも１つの核酸塩基修飾，および／または少なくとも１つのリン酸修飾を含む。
【０１９４】
本発明の核酸に基づく調節剤は，直接加えるか，またはカチオン性脂質とともに複合体化するか，リポソーム中に封入するか，または他の方法により，標的細胞または組織に輸送される。核酸または核酸複合体は，注射，注入ポンプまたはステントにより，バイオポリマー中に取り込むか取り込まずに，関連する組織にエクスビボでまたはインビボで局所的に投与することができる。好ましい態様においては，本発明の核酸分子は表ＩＶ−ＸＩ，ＸＩＶ−ＸＶおよびＸＶＩＩＩ−ＸＸＩＩＩに示される配列を含む。そのような核酸分子の例は，表において規定される配列から本質的になる。
【０１９５】
本発明の核酸に基づく阻害剤，ヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラは，直接加えるか，またはカチオン性脂質とともに複合体化するか，リポソーム中に封入するか，または他の方法により，標的細胞または組織に輸送される。核酸または核酸複合体，およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラは，注射，注入ポンプまたはステントにより，バイオポリマー中に取り込むか取り込まずに，関連する組織に局所的に投与することができる。好ましい態様においては，酵素的核酸阻害剤，およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラは，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩの基質配列に相補的な配列を含む。そのような酵素的核酸分子の例はまた，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸ，ＸＸＩおよびＸＸＩＩＩに示される。そのような酵素的核酸分子の例は，これらの表に規定される配列から本質的になる。さらに別の態様においては，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩの基質配列に相補的な配列を含む本発明の酵素的核酸阻害剤は，本発明のヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラ，例えば式Ｉを有する化合物に共有結合により結合される。
【０１９６】
さらに別の態様においては，本発明は，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩに示される基質配列に相補的な配列を含むアンチセンス核酸分子および２−５Ａキメラを特徴とする。そのような核酸分子は，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸ，ＸＸＩおよびＸＸＩＩＩの酵素的核酸分子の結合アームについて示される配列を含むことができる。同様に，対応するＤＮＡ標的領域を標的とし，標的配列または特定の標的（基質）配列に相補的な配列のＤＮＡ同等物を含むトリプレックス分子を提供することができる。典型的には，アンチセンス分子は，アンチセンス分子の単一の連続する配列に沿って標的配列に相補的である。しかし，ある態様においては，アンチセンス分子は基質分子がループを形成するように基質に結合してもよく，および／またはアンチセンス分子はアンチセンス分子がループを形成するように結合してもよい。すなわち，アンチセンス分子は２つ（またはさらに多く）の非連続的基質配列に相補的であってもよく，またはアンチセンス分子の２つ（またはさらに多く）の非連続的配列部分が標的配列に相補的であってもよく，その両方でもよい。
【０１９７】
１つの態様においては，本発明は，遺伝子発現および／またはウイルス複製を阻害する核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラを特徴とする。これらの化学的または酵素的に合成された核酸分子は，それらの標的ｍＲＮＡのアクセス可能な領域に結合する基質結合ドメインを含有することができる。核酸分子はまた，ＲＮＡの切断を触媒するドメインを含む。酵素的核酸分子は，好ましくは，ハンマーヘッド，イノザイム，ＤＮＡザイム，チンザイム，アンバーザイム，および／またはＧ切断剤モチーフの分子である。酵素的核酸分子は，結合すると，標的ｍＲＮＡを切断し，翻訳および蛋白質蓄積を防止する。標的遺伝子が発現されないため，ＨＣＶ遺伝子発現および／または複製が阻害される。
【０１９８】
別の観点においては，本発明は，１またはそれ以上の本発明の核酸分子および／または発現ベクターを含む哺乳動物細胞を提供する。１またはそれ以上の核酸分子は，独立して，同じまたは異なる部位を標的とすることができる。
【０１９９】
１つの態様においては，標的蛋白質および／またはＲＮＡ分子と相互作用し，ＨＢＶ（特にＨＢＶリバーストランスクリプターゼ，またはＨＢＶゲノムＤＮＡの転写）活性を調節する核酸デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，酵素的核酸またはアンチセンス分子は，ＤＮＡまたはＲＮＡベクター中に挿入された転写ユニットから発現される。組換えベクターは，好ましくはＤＮＡプラスミドまたはウイルスベクターである。デコイ，アプタマー，酵素的核酸またはアンチセンスを発現するウイルスベクターは，限定されないが，アデノ随伴ウイルス，レトロウイルス，アデノウイルス，またはアルファウイルスに基づいて構築することができる。好ましくは，デコイ，アプタマー，酵素的核酸またはアンチセンスを発現しうる組換えベクターは，上述のように輸送し，標的細胞中に残留させる。あるいは，デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，酵素的核酸またはアンチセンスの過渡的発現を与えるウイルスベクターを用いることができる。そのようなベクターは，必要に応じて繰り返し投与することができる。いったん発現されると，デコイ，アプタマー，酵素的核酸またはアンチセンスは標的蛋白質および／またはＲＮＡに結合し，その機能または発現を調節する。デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，酵素的核酸またはアンチセンスを発現するベクターの輸送は，例えば静脈内または筋肉内投与により全身的に，または患者から外植された標的細胞に投与した後，患者に再導入することにより，または所望の標的細胞中への導入を可能とする他の任意の手段により，行うことができる。ＤＮＡに基づく本発明の核酸分子は，一本鎖ＤＮＡ細胞内発現ベクターを用いて発現させることができる。
【０２００】
１つの態様においては，核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラは，直接加えるか，またはカチオン性脂質とともに複合体化するか，リポソーム中に封入するか，または他の方法により標的細胞に輸送される。核酸または核酸複合体は，エクスビボで，またはインビボで，注射，注入ポンプまたはステントにより，バイオポリマー中に取り込むか取り込まずに，関連する組織に局所的に投与することができる。別の好ましい態様においては，核酸分子，ヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラは，適当なリポソームベヒクル中で，ＨＢＶまたはＨＣＶ活性の部位（例えば肝細胞）に投与される。
【０２０１】
別の態様においては，標的分子を切断し，ＨＣＶ活性を阻害する核酸分子は，ＤＮＡまたはＲＮＡベクター中に挿入された転写ユニットから発現される。組換えベクターは，好ましくはＤＮＡプラスミドまたはウイルスベクターである。核酸分子を発現するウイルスベクターは，限定されないが，アデノ随伴ウイルス，レトロウイルス，アデノウイルス，またはアルファウイルスに基づいて構築することができる。好ましくは，核酸分子を発現することができる組換えベクターを上述のように輸送し，標的細胞中に残留させることができる。あるいは，核酸分子の過渡的発現を与えるウイルスベクターを用いてもよい。そのようなベクターは，必要に応じて繰り返し投与することができる。いったん発現されたら，核酸分子は標的ｍＲＮＡを切断する。酵素的核酸分子を発現するベクターの輸送は，例えば静脈内または筋肉内投与により全身的に，または患者から外植された標的細胞に投与した後，患者に再導入することにより，または所望の標的細胞中への導入を可能とする他の任意の手段により，行うことができる（総説については，Ｃｏｕｔｕｒｅ  ａｎｄ  Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂ，１９９６，ＴＩＧ．，１２，５１０を参照）。本発明の別の観点においては，標的分子を切断しウイルス複製を阻害する核酸分子は，ＤＮＡ，ＲＮＡ，またはウイルスベクター中に挿入された転写ユニットから発現される。好ましくは，核酸分子を発現しうる組換えベクターを上述のように局所的に輸送し，平滑筋細胞中に過渡的に残留させる。しかし，この目的のために，ＲＮＡの発現を指示する他の哺乳動物細胞ベクターを用いてもよい。
【０２０２】
本発明の核酸分子は，独立して，または他の薬剤および／または療法と組み合わせてまたは結合させて，本明細書に記載される疾病または状態の治療に用いることができる。例えば，ＨＢＶまたはＨＣＶのレベルに関連する疾病または状態を治療するためには，核酸分子を独立して，または１またはそれ以上の薬剤との組み合わせて，治療に適した条件下で患者に投与してもよく，または当業者には明らかな他の適当な細胞に投与してもよい。
【０２０３】
さらに別の態様においては，本明細書に記載される分子，例えばデコイ，アプタマー，アンチセンス，酵素的核酸，またはヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラは，上述の状態または疾病を治療するために他の既知の治療との組み合わせで用いることができる。例えば，本明細書に記載される分子は，１またはそれ以上の既知の治療用薬剤との組み合わせで，ＨＢＶ感染，ＨＣＶ感染，肝炎，肝細胞癌，癌，肝硬変，および肝不全を治療するために用いることができる。そのようは治療用薬剤には，限定されないが，ラミブジン（３ＴＣ（登録商標），Ｌ−ＦＭＡＵ，および／またはアデフォビル，ジピボキシルを含む群より選択されるヌクレオシド類似体が含まれる（適用可能なヌクレオシド類似体の概説については，Ｃｏｌａｃｉｎｏ  ａｎｄ  Ｓｔａｓｃｈｋｅ，１９９８，Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ｉｎ  Ｄｒｕｇ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，５０，２５９−３２２を参照）。１型インターフェロン，治療用ワクチン，ステロイド，および２’−５’オリゴアデニレートを含む群より選択される免疫調節剤も含まれる（２’−５’オリゴアデニレートの概説については，Ｃｈａｒｕｂａｌａ  ａｎｄ  Ｐｆｌｅｉｄｅｒｅｒ，１９９４，Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ａｎｄ  Ｓｕｂｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，１４，１１３−１３８を参照）。
【０２０４】
本発明の核酸分子，ヌクレアーゼ活性化化合物およびキメラは，独立して，または他の薬剤と組み合わせてまたは結合させて，上述の疾病または状態の治療に用いることができる。例えば，ＨＢＶまたはＨＣＶレベルに関連する疾病または状態を治療するためには，当業者に明らかなように，患者を治療してもよく，他の適当な細胞を治療してもよい。
【０２０５】
さらに別の態様においては，本明細書に記載される分子は，上述の状態または疾病を治療するために他の既知の治療との組み合わせで用いることができる。例えば，本明細書に記載される分子は，肝不全，肝細胞癌，肝硬変，および／またはＨＢＶまたはＨＣＶ感染に伴う他の疾病状態を治療するために，１またはそれ以上の既知の治療用薬剤との組み合わせで用いることができる。別の既知の治療用薬剤は，抗ウイルス剤，インターフェロン，および／またはアンチセンス化合物を含むものである。
【０２０６】
本明細書において用いる場合，"阻害する"または"ダウンレギュレートする"との用語は，遺伝子の発現，または１またはそれ以上の蛋白質サブユニットまたは成分をコードするＲＮＡまたは同等のＲＮＡのレベル，または１またはそれ以上の蛋白質サブユニットまたは成分（例えばＨＢＶ蛋白質）の活性が，本発明の療法の非存在下において観察されるものより減少していることを表す。１つの態様においては，酵素的核酸分子による阻害またはダウンレギュレーションは，好ましくは，標的ＲＮＡの同じ部位に結合しうるがそのＲＮＡを切断することができない酵素的に不活性なまたは減弱化分子の存在下で観察されるレベルより低い。別の態様においては，オリゴヌクレオチドによる阻害またはダウンレギュレーションは，好ましくは，例えば，スクランブル化配列またはミスマッチを有するオリゴヌクレオチドの存在下で観察されるレベルより低い。別の態様においては，本発明の核酸分子によるＨＢＶの阻害またはダウンレギュレーションは，核酸分子の存在下でその非存在下におけるより大きい。
【０２０７】
本明細書において用いる場合，"アップレギュレート"との用語は，遺伝子の発現，または１またはそれ以上の蛋白質サブユニットまたは成分をコードするＲＮＡまたは同等のＲＮＡのレベル，またはＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質等の１またはそれ以上の蛋白質サブユニットまたは成分の活性が，本発明の療法の非存在下で観察されるより高いことを表す。例えば，遺伝子発現の非存在または低いレベルにより引き起こされるかまたは悪化する病原性状態を治療，予防，軽減または改変するために，ＨＢＶまたはＨＣＶ遺伝子等の遺伝子の発現を増加させることができる。
【０２０８】
本明細書において用いる場合，"調節する"との用語は，遺伝子の発現，または１またはそれ以上の蛋白質サブユニットまたは成分をコードするＲＮＡまたは同等のＲＮＡのレベル，または１またはそれ以上の蛋白質の活性が，本発明の療法の非存在下で観察されるより発現，レベル，または活性が高いかまたは低いように，アップレギュレートまたはダウンレギュレートされることを表す。
【０２０９】
本明細書において用いる場合，"デコイ"との用語は，予め決定されたリガンドに優先的に結合するよう設計された核酸分子，例えばＲＮＡまたはＤＮＡ，またはアプタマーを表す。そのような結合により，標的分子は阻害または活性化されることができる。デコイまたはアプタマーは，特定のリガンドへの結合について天然に生ずる結合標的と競合することができる。例えば，ＨＩＶトランス活性化応答（ＴＡＲ）ＲＮＡの過剰発現が"デコイ"として作用して，ＨＩＶｔａｔ蛋白質に有効に結合し，このことによりこれがＨＩＶ  ＲＮＡ中にコードされるＴＡＲ配列に結合することを妨害することが示されている（Ｓｕｌｌｅｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｃｅｌｌ，６３，６０１−６０８）。これは特定の例にすぎず，当業者は，当該技術分野において一般に知られる手法を用いて他の態様を容易に生成しうることを理解するであろう。例えば，Ｇｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ａｙａｎｔ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅ７ｎ．，６４，７６３；Ｂｒｏｄｙ  ａｎｄ  Ｇｏｌｄ，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，５；Ｓｕｎ，２０００，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｆａ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２，１００；Ｋｕｓｓｅｒ，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，２７；Ｈｅｒｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｐａｔｅｌ，２０００，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８７，８２０；およびＪａｙａｓｅｎａ，１９９９，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５，１６２８を参照。同様に，デコイは，ＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質に結合してＨＢＶまたはＨＣＶ  ＤＮＡまたはＲＮＡの結合をブロックするよう設計することができ，またはデコイは，ＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質に結合してＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質との分子相互作用を防止するよう設計することができる。
【０２１０】
本明細書において用いる場合，"アプタマー"または"核酸アプタマー"とは，標的分子に特異的に結合する核酸分子を意味し，ここで，核酸分子は，その自然の設定において標的分子により認識される配列とは異なる配列を有する。あるいは，アプタマーは標的分子と結合する核酸分子であってもよく，ここで，標的分子は自然には核酸に結合しない。標的分子は興味のある任意の分子でありうる。例えば，アプタマーを用いて蛋白質のリガンド結合ドメインと結合させ，このことにより，天然に生ずるリガンドと蛋白質との相互作用を防止することができる。これは非限定的例であり，当業者は，当該技術分野において一般に知られる手法を用いて他の態様を容易に生成しうることを理解するであろう。例えば，Ｇｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ａｎｎｅ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，６４，７６３；Ｂｒｏｄｙ  ａｎｄ  Ｇｏｌｄ，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，５；Ｓｕｎ，２０００，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２，１００；Ｋｕｓｓｅｒ，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，２７；Ｈｅｒｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｐａｔｅｌ，２０００，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８７，８２０；およびＪａｙａｓｅｎａ，１９９９，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５，１６２８を参照されたい。
【０２１１】
"酵素的核酸分子"とは，特定の遺伝子標的の基質結合領域において相補性を有し，かつ標的ＲＮＡを特異的に切断する作用をする酵素的活性を有する核酸分子を意味する。すなわち，酵素的核酸分子は，分子間でＲＮＡを切断し，このことにより標的ＲＮＡ分子を不活性化することができる。このような相補的領域は，酵素的核酸分子が標的ＲＮＡに十分にハイブリダイズし，したがって切断が起こることを可能にする。１００％の相補性が好ましいが，５０−７５％程度の低い相補性もまた本発明において有用である（例えば，Ｗｅｒｎｅｒ  ａｎｄ  Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２３，２０９２−２０９６；Ｈａｍｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ａｉａｔｉｓｅｎｓｅ  ａｎｄ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖ．，９，２５−３１を参照）。核酸は塩基，糖および／またはリン酸基で修飾されていてもよい。酵素的核酸との用語は，リボザイム，触媒的ＲＮＡ，酵素的ＲＮＡ，触媒的ＤＮＡ，アプタザイムまたはアプタマー結合リボザイム，制御可能リボザイム，触媒的オリゴヌクレオチド，ヌクレオザイム，ＤＮＡザイム，ＲＮＡ酵素，エンドリボヌクレアーゼ，エンドヌクレアーゼ，ミニザイム，リードザイム，オリゴザイムまたはＤＮＡ酵素のような句と相互交換的に使用される。これらすべての用語は酵素的活性を有する核酸分子を記述する。本出願に記載されている特定の酵素的核酸分子は本発明において限定的なものではない。当業者は，本発明の酵素的核酸分子において重要なことは，１またはそれ以上の標的核酸領域に相補的な特異的基質結合部位を有し，かつ分子に核酸切断活性を与えるヌクレオチド配列を基質結合部位内または周辺に有することであることを認識するであろう（Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許４，９８７，０７１，Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９８８，ＪＡＭＡ  ２６０：２０  ３０３０−４）。
【０２１２】
本明細書において用いる場合，"核酸分子"とは，ヌクレオチドを有する分子を意味する。核酸は，一本鎖，二本鎖または多数の鎖であることができ，修飾または非修飾ヌクレオチドまたは非ヌクレオチドまたはこれらの種々の混合物および組み合わせを含むことができる。
【０２１３】
"酵素的部分"または"触媒ドメイン"とは，その酵素的核酸分子の核酸基質の切断に必須の部分／領域を意味する（例えば図１−５を参照）。
【０２１４】
”基質結合アーム”または”基質結合ドメイン”とは，その基質の一部分に相補的な（即ち，塩基対を形成できる）リボザイムの部分／領域を意味する。一般に，そのような相補性は１００％であるが，所望の場合にはそれ未満でもよい。例えば，１４の内の１０程度でも塩基対を形成しうる（例えば，Ｗｅｍｅｒ  ａｎｄ  Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２３，２０９２−２０９６；Ｈａｍｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  ａｎｄ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖ．，９，２５−３１を参照）。そのようなアームは一般に図１−５に示される。すなわち，これらのアームは，相補的塩基対形成相互作用によりリボザイムと標的ＲＮＡとを一緒にすることが意図される配列をリボザイム中に含む。本発明のリボザイムは連続または非連続的な，種々の長さの結合アームを有していてもよい。結合アームの長さは，好ましくは４ヌクレオチド以上であり標的ＲＮＡと安定に相互作用するのに十分な長さであり，特に，１２−１００ヌクレオチド；より特別には１４−２４ヌクレオチドの長さである（例えば，Ｗｅｒｎｅｒ  ａｎｄ  Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，上掲，Ｈａｍｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，上掲；Ｈａｍｐｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，ＥＰ０３６０２５７；Ｂｅｒｚａｌ−Ｈｅｒｒａｎｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，ＥＭＢＯ  Ｊ．，１２，２５６７−７３を参照）。２つの結合アームが選択される場合，結合アームの長さは対称的（即ち，各々の結合アームは同じ長さである；例えば，５および５ヌクレオチド，６および６ヌクレオチドまたは７および７ヌクレオチド長）または非対称的（即ち，結合アームは異なった長さである；例えば，６および３ヌクレオチド；３および６ヌクレオチド長；４および５ヌクレオチド長；４および６ヌクレオチド長；４および７ヌクレオチド長など）であるように設計される。
【０２１５】
"ヌクレアーゼ活性化化合物"とは，ヌクレアーゼによるＲＮＡの切断を活性化する化合物，例えば，式Ｉを有する化合物を意味する。ヌクレアーゼはＲＮＡｓｅＬを含むことができる。"ヌクレアーゼ活性化キメラ"または"キメラ"とは，核酸分子，例えば標的ＲＮＡに優先的に結合する核酸分子に結合されたヌクレアーゼ活性化化合物，例えば，式Ｉを有する化合物を意味する。これらのキメラ核酸分子は，ヌクレアーゼ活性化化合物およびアンチセンス核酸分子，例えば，２’，５’−オリゴアデニレートアンチセンスキメラ，または酵素的核酸分子，例えば，２’，５’−オリゴアデニレート酵素的核酸キメラを含むことができる。
【０２１６】
"イノザイム"または"ＮＣＨ"モチーフまたはコンフィギュレーションとは，Ｌｕｄｗｉｇ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９８／５８０５８および米国特許出願０８／８７８，６４０にＮＣＨ  Ｒｚとして一般的に記載されるモチーフを含む酵素的核酸分子を意味する。イノザイムは，切断トリプレットＮＣＨ／（式中，Ｎはヌクレオチドであり，Ｃはシチジンであり，Ｈはアデノシン，ウリジンまたはシチジンであり，／は切断部位を表す）を有するＲＮＡ基質を切断するエンドヌクレアーゼ活性を有する。イノザイムはまた，切断トリプレットＮＣＮ／（式中，Ｎはヌクレオチドであり，Ｃはシチジンであり，／は切断部位を表す）を有するＲＮＡ基質を切断するエンドヌクレアーゼ活性を有する。
【０２１７】
"Ｇ切断剤"モチーフまたはコンフィギュレーションとは，Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許６，１２７，１７３およびＫｏｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２６，４１１６−４１２０に一般的に記載されるモチーフを含む酵素的核酸分子を意味する。Ｇ切断剤は，切断トリプレットＮＹＮ／（式中，Ｎはヌクレオチドであり，Ｙはウリジンまたはシチジンであり，／は切断部位を表す）を有するＲＮＡ基質を切断するエンドヌクレアーゼ活性を有する。Ｇ切断剤は化学的に修飾することができる。
【０２１８】
"チンザイム"モチーフまたはコンフィギュレーションとは，Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９９／５５８５７および米国特許出願０９／９１８，７２８に一般的に記載されるモチーフを含む酵素的核酸分子を意味する。チンザイムは，切断トリプレット，例えば，限定されないが，ＹＧ／Ｙ（式中，Ｙはウリジンまたはシチジンであり，Ｇはグアノシンであり，／は切断部位を表す）を有するＲＮＡ基質を切断するエンドヌクレアーゼ活性を有する。チンザイムは，化学的に修飾して，種々の置換，例えば，２’−Ｏ−メチルグアノシンヌクレオチドでグアノシンヌクレオチドを置き換えることにより，ヌクレアーゼ安定性を高めることができる。さらに，異なるヌクレオチドおよび／または非ヌクレオチドリンカーを用いて，モチーフの５’−ｇａａａ−２’ループを置き換えることができる。チンザイムは，活性のためにそれ自身の核酸配列中にリボヌクレオチド（２’−ＯＨ）基を必要としない酵素的核酸分子の非限定的例である。
【０２１９】
"アンバーザイム"モチーフまたはコンフィギュレーションとは，Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９９／５５８５７および米国特許出願０９／４７６，３８７に一般的に記載されるモチーフを含む酵素的核酸分子を意味する。アンバーザイムは，切断トリプレットＮＧ／Ｎ（式中，Ｎはヌクレオチドであり，Ｇはグアノシンであり，／は切断部位を表す）を有するＲＮＡ基質を切断するエンドヌクレアーゼ活性を有する。アンバーザイムは，化学的に修飾してヌクレアーゼ安定性を高めることができる。さらに，異なるヌクレオシドおよび／または非ヌクレオシドリンカーを用いて，モチーフの５’−ｇａａａ−３’ループを置き換えることができる。アンバーザイムは，活性のためにそれ自身の核酸配列の中にリボヌクレオチド（２’−ＯＨ）基を必要としない酵素的核酸分子の非限定的例である。
【０２２０】
’ＤＮＡザイム’とは，活性のためにそれ自身の核酸配列中に２’−ＯＨ基の存在を必要としない酵素的核酸分子を意味する。特定の態様においては，酵素的核酸分子は，２’−ＯＨ基を有する１またはそれ以上のヌクレオチドを含む，結合したリンカーまたは他の結合または会合した基，成分，または鎖を有することができる。ＤＮＡザイムは，化学的に合成してもよく，一本鎖ＤＮＡベクターまたはその同等物によりインビボで外的に発現させてもよい。ＤＮＡザイムの非限定的例は，Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許，６，１５９，７１４；Ｃｈａｒｔｒａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，ＮＡＲ  ２３，４０９２；Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏ．２，６５５；Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，ＰＮＡＳ  ９４，４２６２；Ｂｒｅａｋｅｒ，１９９９，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１７，４２２−４２３；およびＳａｎｔｏｒｏｅｔ．ａｌ．，２０００，Ｊ；Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１２２，２４３３−３９に一般的に概説されている。"１０−２３"ＤＮＡザイムモチーフは，インビトロ選択を用いて進化させたＤＮＡザイムの１つの特定のタイプであり，Ｊｏｙｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８０７，７１８およびＳａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．（上掲）に一般的に記載されている。別のＤＮＡザイムモチーフは，これらの参考文献に記載される手法と類似する手法を用いて選択することができ，したがって，本発明の範囲内である。
【０２２１】
本明細書において用いる場合，"核酸センサー分子"または"アロザイム"とは，酵素的ドメインおよびセンサードメインを含む核酸分子を意味し，ここで，酵素的核酸ドメインが化学反応を触媒する能力は，標的シグナリング分子，例えば，核酸，ポリヌクレオチド，オリゴヌクレオチド，ペプチド，ポリペプチド，または蛋白質，例えば，ＨＢＶ  ＲＴ，ＨＢＶ  ＲＴプライマー，またはＨＢＶエンハンサーＩ配列との相互作用に依存する。核酸センサー分子に化学的修飾，追加の官能基および／またはリンカーを導入することにより，核酸センサー分子の触媒活性の増強，センサードメインの標的核酸に対する結合親和性の増加，および／または核酸センサー分子のヌクレアーゼ／化学的安定性の改良が可能となり，したがって，これらも本発明の範囲内である（例えば，Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願０９／８７７，５２６，Ｇｅｏｒｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８３４，１８６および５，７４１，６７９，Ｓｈｉｈ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５８９，３３２，Ｎａｔｈａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８７１，９１４，Ｎａｔｈａｎ  ａｎｄ  Ｅｌｌｉｎｇｔｏｎ，国際公開ＷＯ００／２４９３１，Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／２６２２６および９８／２７１０４，およびＳｕｌｌｅｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願０９／２０５，５２０を参照）。
【０２２２】
本明細書において用いる場合，核酸センサー分子の"センサー成分"または"センサードメイン"とは，標的シグナリング分子，例えば，標的核酸分子の１またはそれ以上の領域中の核酸配列または２以上の標的核酸分子と相互作用し，この相互作用により核酸センサー分子の酵素的核酸成分が反応を触媒するかまたは反応の触媒作用を停止することを引き起こす核酸配列（例えば，ＲＮＡまたはＤＮＡまたはこれらの類似体）を意味する。本発明の標的シグナリング分子，例えばＨＢＶ  ＲＴ，ＨＢＶ  ＲＴプライマー，またはＨＢＶエンハンサーＩ配列の存在下で，センサー成分の能力，例えば，核酸センサー分子の触媒活性を調節する能力は，検出または測定することができる様式で変更されるか減少する。センサー成分は，核酸センサー分子の構造に対する化学的または物理学的変化により核酸センサー分子を調節することができる化学的または物理学的シグナルに関連する認識特性を含むことができる。センサー成分は，天然に生ずる核酸結合配列，例えば，インビボで他の核酸配列に結合するＲＮＡに由来することができる。あるいは，センサー成分は，標的核酸分子中の核酸配列に結合するよう進化させた核酸分子（アプタマー）に由来するものであってもよい。センサー成分は，核酸センサー分子に共有結合により結合させてもよく，非共有結合的に会合させてもよい。当業者は，必要なことは，センサー成分が核酸センサー分子の活性を選択的に調節して反応を触媒することができることのみであることを理解するであろう。
【０２２３】
"標的分子"または"標的シグナリング分子"とは，核酸センサー分子が活性または不活性となるように，核酸センサー分子，特に核酸センサー分子のセンサードメインと相互作用することができる分子を意味する。シグナリング剤と核酸センサー分子との相互作用の結果，核酸センサー分子の酵素的核酸成分の活性が調節されるように，例えばこれが活性化または不活性化されるように，分子の構造の化学的，物理学的，トポロジー的，またはコンフォメーション的変化により核酸センサー分子の酵素的核酸成分が修飾されることができる。シグナリング剤は，標的シグナリング分子，例えば高分子，リガンド，小分子，金属およびイオン，核酸分子（限定されないが，ＲＮＡおよびＤＮＡまたはそれらの類似体），蛋白質，ペプチド，抗体，多糖類，脂質，糖，微生物または細胞代謝産物，医薬品，および精製されたまたは精製された形の有機および無機分子，例えば，ＨＢＶ  ＲＴまたはＨＢＶ  ＲＴプライマーを含むことができる。
【０２２４】
"十分な長さ"とは，核酸分子が，予測される条件下で意図する機能を与えるのに十分な長さであること意味する。例えば，本発明の核酸分子は，予測される結合条件および環境下で標的部位への安定な結合を与えるのに"十分に長い"ことが必要である。別の非限定的例においては，酵素的核酸の結合アームについて"十分な長さ"とは，結合アーム配列が予測される反応条件および環境下で標的部位に対する安定な結合を与えるのに十分に長いことを意味する。結合アームは核酸分子の有用なターンオーバーを妨害するほど長くない。"安定に相互作用する"とは，意図する目的（例えば，酵素による標的ＲＮＡの切断）のために十分なオリゴヌクレオチドと標的核酸との相互作用（例えば，生理学的条件下で標的中の相補的ヌクレオチドと水素結合を形成することにより）を意味する。
【０２２５】
ＨＢＶまたはＨＣＶと"同等の"ＲＮＡとは，ＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質とホモロジー（部分的または完全な）を有する天然に生ずるＲＮＡ分子，または種々の生物，例えば，ヒト，齧歯類，霊長類，ウサギ，ブタ，原生動物，真菌，植物，および他の微生物および寄生体においてＨＢＶまたはＨＣＶと類似の機能を有する蛋白質をコードするＲＮＡを含むことを意味する。同等のＲＮＡ配列には，コーディング領域に加えて，例えば５’−非翻訳領域，３’−非翻訳領域，イントロン，イントロン−エクソンジャンクション等の領域が含まれる。
【０２２６】
本明細書において用いる場合，ＨＢＶまたはＨＣＶの"成分"との用語は，ＨＢＶまたはＨＣＶ遺伝子から発現されるペプチドまたは蛋白質サブユニットを表す。
【０２２７】
"ホモロジー"とは，２またはそれ以上の核酸分子のヌクレオチド配列が部分的にまたは完全に同一であることを意味する。
【０２２８】
"アンチセンス核酸"とは，ＲＮＡ−ＲＮＡまたはＲＮＡ−ＤＮＡまたはＲＮＡ−ＰＮＡ（蛋白質核酸；Ｅｇｈｏｌｍ  ｅｌ  ａｌ．，１９９３  Ｎａｔｕｒｅ  ３６５，５６６）相互作用により標的ＲＮＡに結合して，標的ＲＮＡの活性を変化させる非酵素的核酸分子を意味する（概説については，Ｓｔｅｉｎ  ａｎｄ  Ｃｈｅｎｇ，１９９３  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２６１，１００４および米国特許５，８４９，９０２を参照）。典型的には，アンチセンス分子は，アンチセンス分子の１つの連続する配列に沿って標的配列に相補的である。しかし，ある態様においては，アンチセンス分子は，基質分子がループを形成するように基質に結合することができ，および／またはアンチセンス分子はアンチセンス分子がループを形成するように結合することができる。すなわち，アンチセンス分子が２つまたはそれ以上の非連続的基質配列に相補的であってもよく，またはアンチセンス分子の２つまたはそれ以上の非連続的配列部分が標的配列に相補的であってもよく，その両方でもよい。現在のアンチセンス戦略の概要については，Ｓｃｈｍａｊｕｋ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７４，２１７８３−２１７８９，Ｄｅｌｉｈａｓ  ｅ  ｔａｌ．，１９９７，Ｎａｔｕｒｅ，１５，７５１−７５３，Ｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｎ．Ａ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖ．，７，１５１，Ｃｒｏｏｋｅ，２０００，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，３１３，３−４５，Ｃｒｏｏｋｅ，１９９８，Ｂｉｏｔｅｃｈ．Ｇｅｎｅｔ．Ｅｎｇ  Ｒｅｖ．，１５，１２１−１５７，Ｃｒｏｏｋｅ，１９９７，Ａｄ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，４０，１−４９を参照。本発明のアンチセンス分子には，２−５Ａアンチセンスキメラ分子が含まれる。さらに，アンチセンスＤＮＡを用いてＤＮＡ−ＲＮＡ相互作用によりＲＮＡをターゲティングし，このことによりＲＮａｓｅＨを活性化させ，これはデュープレックス中の標的ＲＮＡを消化することができる。アンチセンスオリゴヌクレオチドは，標的ＲＮＡのＲＮＡｓｅＨ切断を活性化しうる１またはそれ以上のＲＮＡｓｅＨ活性化領域を含むことができる。アンチセンスＤＮＡは，化学的に合成してもよく，一本鎖ＤＮＡ発現ベクターまたはその同等物を用いて発現させてもよい。
【０２２９】
"ＲＮａｓｅＨ活性化領域"とは，標的ＲＮＡに結合して細胞性ＲＮａｓｅＨ酵素により認識される非共有結合性複合体を形成することができる核酸分子の領域（一般に４−２５ヌクレオチド以上の長さ，好ましくは５−１１ヌクレオチドの長さ）を意味する（例えば，Ａｒｒｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８４９，９０２；Ａｒｒｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，９８９，９１２を参照）。ＲＮａｓｅＨ酵素は核酸分子−標的ＲＮＡ複合体に結合し，標的ＲＮＡ配列を切断する。ＲＮａｓｅＨ活性化領域は，例えば，ホスホジエステル，ホスホロチオエート（例えば，ヌクレオチドの少なくとも４個はホスホロチオエート置換であり；さらに詳細には，ヌクレオチドの４−１１個はホスホロチオエート置換である），ホスホロジチオエート，５’−チオリン酸，またはメチルホスホネート骨格化学またはこれらの組み合わせを含む。１またはそれ以上の上述の骨格化学に加えて，ＲＮａｓｅＨ活性化領域はまた，種々の糖化学を含むことができる。例えば，ＲＮａｓｅＨ活性化領域は，デオキシリボース，アラビノ，フルオロアラビノまたはこれらの組み合わせのヌクレオチド糖化学を含むことができる。当業者は，上述の記載は非限定的例であり，ＲＮａｓｅＨ酵素の活性を支持する核酸のリン酸，糖および塩基化学の任意の組み合わせはＲＮａｓｅＨ活性化領域の定義および本発明の範囲内であることを理解するであろう。
【０２３０】
"２−５Ａアンチセンス"または"２−５Ａアンチセンスキメラ"とは，５’リン酸化２’−５’結合アデニレート部分を含むアンチセンスオリゴヌクレオチドを意味する。これらのキメラは配列特異的様式で標的ＲＮＡに結合し，細胞性２−５Ａ依存性リボヌクレアーゼを活性化し，それは次に標的ＲＮＡを切断する（Ｔｏｒｒｅｎｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９０，１３００；Ｓｉｌｖｅｒｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，３１３，５２２−５３３；Ｐｌａｙｅｒ  ａｎｄ  Ｔｏｒｒｅｎｃｅ，１９９８，Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｈｅｒ．，７８，５５−１１３）。
【０２３１】
"トリプレックス核酸"または"トリプレックスオリゴヌクレオチド"とは，二本鎖ＤＮＡに配列特異的様式で結合して，三重らせんを形成することができるポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドを意味する。そのような三重らせん構造の形成は，標的とする遺伝子の転写を阻害することが示されている（Ｄｕｖａｌ−Ｖａｌｃｎｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８９，５０４）。本発明のトリプレックス核酸分子には，ＨＢＶ  ＤＮＡ（プラス鎖および／またはマイナス鎖）のエンハンサーＩ領域に結合しＨＢＶゲノムＤＮＡの翻訳を妨害する立体ブロッカー核酸分子も含まれる。
【０２３２】
本明細書において用いる場合，"一本鎖ＲＮＡ"（ｓｓＲＮＡ）との用語は，直鎖状の一本鎖を含む天然に生ずるかまたは合成のリボ核酸分子を表し，例えば，ｓｓＲＮＡは遺伝子のメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ），転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ），リボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）等でありうる。
【０２３３】
本明細書において用いる場合，"一本鎖ＤＮＡ"（ｓｓＤＮＡ）との用語は，直鎖状の一本鎖を含む天然に生ずるかまたは合成のデオキシリボ核酸分子を表し，例えば，ｓｓＤＮＡはセンスまたはアンチセンス遺伝子配列またはＥＳＴ（発現配列タグ）であることができる。
【０２３４】
本明細書において用いる場合，"アロザイム"との用語は，アロステリック酵素的核酸分子を表す。例えば，Ｇｅｏｒｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８３４，１８６および５，７４１，６７９，Ｓｈｉｈ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５８９，３３２，Ｎａｔｈａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８７１９１４，Ｎａｔｈａｎ  ａｎｄ  Ｅｌｌｉｎｇｔｏｎ，国際公開ＷＯ００／２４９３１，Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／２６２２６および９８／２７１０４，およびＳｕｌｌｅｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９９／２９８４２を参照。
【０２３５】
本明細書において用いる場合，"２−５Ａキメラ"との用語は，５’−リン酸化２’−５’−連結アデニレート残基を含有するオリゴヌクレオチドを表す。これらのキメラは，配列特異的様式で標的ＲＮＡに結合し，細胞性２−５Ａ−依存性リボヌクレアーゼを活性化し，これは次に標的ＲＮＡを切断する（Ｔｏｒｒｅｎｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９０，１３００；Ｓｉｌｖｅｒｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，３１３，５２２−５３３；Ｐｌａｙｅｒ  ａｎｄ  Ｔｏｒｒｅｎｃｅ，１９９８，Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｌｚｅｒ．，７８，５５−１１３）。
【０２３６】
本明細書において用いる場合，"二本鎖ＲＮＡ"または"ｄｓＲＮＡ"との用語は，ＲＮＡ干渉"ＲＮＡｉ"，例えば短干渉ＲＮＡ"ｓｉＲＮＡ"を行うことができる二本鎖ＲＮＡ分子を表す。例えば，Ｂａｓｓ，２００１，Ｎａｔｕｒｅ，４１１，４２８−４２９；Ｅｌｂａｓｈｉｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｎａｔｕｒｅ，４１１，４９４−４９８；ａｎｄＫｒｅｕｔｚｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／４４８９５；Ｚｅｒｎｉｃｋａ−Ｇｏｅｔｚ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ０１／３６６４６；Ｆｉｒｅ，国際公開ＷＯ９９／３２６１９；Ｐｌａｅｔｉｎｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／０１８４６；Ｍｅｌｌｏ  ａｎｄ  Ｆｉｒｅ，国際公開ＷＯ０１／２９０５８；Ｄｅｓｃｈａｍｐｓ  Ｄｅｐａｉｌｌｅｔｔｅ，国際公開ＷＯ９９／０７４０９；およびＬｉ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／４４９１４を参照。
【０２３７】
"遺伝子"とは，ＲＮＡをコードする核酸，例えば，限定されないが，ポリペプチドをコードする構造遺伝子等の核酸配列を意味する。
【０２３８】
"相補性"とは，核酸が，伝統的なワトソン−クリックまたは他の非伝統的なタイプのいずれかにより，別のＲＮＡ配列と水素結合を形成することができることを意味する。本発明の核酸分子に関して，核酸分子とその標的または相補的配列との結合自由エネルギーは，核酸の関連する機能，例えば，リボザイム切断，アンチセンスまたは三重らせん阻害が進行するのに十分である。核酸分子についての結合自由エネルギーの決定は当該技術分野においてよく知られている（例えば，Ｔｕｒｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，ＣＳＨ  Ｓｙｍｐ．Ｑｕａｎｔ．Ｂｉｏｌ．ＬＩＩ  ｐｐ．１２３−１３３；Ｆｒｉｅｒ  ｅｔ  ａｌ，１９８６，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８３：９３７３−９３７７；Ｔｕｒｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１０９：３７８３−３７８５を参照）。相補性のパーセンテージは，核酸分子中の，第２の核酸配列と水素結合（例えば，ワトソン−クリック塩基対形成）を形成しうる連続する残基のパーセンテージを示す（例えば，１０塩基中の５，６，７．８，９，１０塩基は，５０％，６０％，７０％，８０％，９０％，および１００％の相補性である）。"完全な相補性"とは，核酸配列の連続する残基がすべて第２の核酸配列中の同じ数の連続する残基と水素結合するであろうことを意味する。
【０２３９】
本明細書において用いる場合，"細胞"は，その通常の生物学的意味で用いられ，多細胞生物全体，特にヒトを意味しない。細胞は生物中で，例えば，鳥類，植物および哺乳動物，例えばヒト，ウシ，ヤギ，無尾サル，有尾サル，ブタ，イヌおよびネコ中で存在することができる。細胞は，原核生物（例えば細菌細胞）または真核生物（例えば哺乳動物または植物細胞）でありうる。
【０２４０】
"ＨＢＶ蛋白質"または"ＨＣＶ蛋白質"とは，ＨＢＶゲノムにより発現されるかおよび／またはコードされる配列を含む，蛋白質またはそれらの変異蛋白質誘導体を意味する。
【０２４１】
"高度に保存された配列領域"とは，標的遺伝子中の１またはそれ以上の領域のヌクレオチド配列が，１つの世代と他の世代とで，または１つの生物学的システムと他の生物学的システムとで有意に相違しないことを意味する。
【０２４２】
"高度に保存された核酸結合領域"とは，標的蛋白質中の１またはそれ以上の領域のアミノ酸配列が，１つの世代と他の世代とで，または１つの生物学的システムと他の生物学的システムとで有意に相違しないことを意味する。
【０２４３】
"ＨＢＶのレベルに関連する"とは，ＨＢＶ発現（特にＨＢＶ遺伝子）ＲＮＡレベルの減少，したがってそれぞれの蛋白質のレベルの減少が疾病または状態の症状をある程度軽減するであろうことを意味する。
【０２４４】
"ＨＣＶのレベルに関連する"とは，ＨＣＶ発現（特にＨＣＶ遺伝子）ＲＮＡレベルの減少，したがってそれぞれの蛋白質のレベルの減少が疾病または状態の症状をある程度軽減するであろうことを意味する。
【０２４５】
"ＲＮＡ"とは，少なくとも１つのリボヌクレオチド残基を含む分子を意味する。"リボヌクレオチド"とは，β−Ｄ−リボフラノース成分の２’位にヒドロキシル基を有するヌクレオチドを意味する。
【０２４６】
"ベクター"とは，所望の核酸を発現および／または輸送するために用いられる，任意の核酸−および／またはウイルス−に基づく手法を意味する。
【０２４７】
"患者"とは，外植された細胞のドナーまたはレシピエントまたは細胞それ自身である生物を意味する。"患者"とはまた，本発明の核酸分子を投与することができる生物を表す。１つの態様においては，患者は哺乳動物または哺乳動物細胞である。別の態様においては，患者はヒトまたはヒト細胞である。
【０２４８】
本発明の他の特徴および利点は，以下の本発明の好ましい態様の説明および特許請求の範囲から明らかであろう。
【発明を実施するための最良の形態】
【０２４９】
まず図面を簡単に説明する。
図面
図１は，７つの異なる種類の酵素的核酸分子の二次構造モデルを示す。矢印は切断の部位を示す。−−−−−−−−−は標的配列を示す。点が散在する線は，三次相互作用を示す。−は塩基対形成相互作用を示す。グループＩイントロン：Ｐ１−Ｐ９．０は種々のステム−ループ構造を表す（Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎａｔｕｒｅ  Ｓｔｒｕｃ．Ｂｉｏ．，１，２７３）。ＲＮａｓｅ  Ｐ（Ｍ１ＲＮＡ）ＥＧＳは外部ガイド配列を表す（Ｆｏｒｓｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．１９９０，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，７８３；Ｐａｃｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６５，３５８７）。グループＩＩイントロン：５'ＳＳは５'スプライシング部位を意味する；３’ＳＳは３’−スプライシング部位を意味する；ＩＢＳはイントロン結合部位を意味する；ＥＢＳはエクソン結合部位を意味する（Ｐｙｌｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｙ，３３，２７１６）。ＶＳ  ＲＮＡ：Ｉ−ＶＩは，６つのステム−ループ構造を示す；陰領域は三次相互作用を示す（Ｃｏｌｌｉｎｓ，国際公開ＷＯ９６／１９５７７）。ＨＤＶリボザイム：Ｉ−ＩＶは４つのステム−ループ構造を示す（Ｂｅｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，６２５，０４７）。ハンマーヘッドリボザイム：Ｉ−ＩＩＩは，３つのステム−ループ構造を示す；ステムＩ−ＩＩＩは，任意の長さであってもよく，対称でも非対称でもよい（Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏ．，１，５２７）。ヘアピンリボザイム：ヘリックス１，４および５は任意の長さでありうる；ヘリックス２は３−８塩基対の長さである；Ｙはピリミジンである；ヘリックス２（Ｈ２）は少なくとも４塩基対で与えられ（すなわち，ｎは１，２，３または４），ヘリックス５は任意に２塩基またはそれ以上の長さでありうる（好ましくは３−２０塩基，すなわち，ｍは１−２０またはそれ以上）。ヘリックス２およびヘリックス５は，１またはそれ以上の塩基により共有結合していてもよい（すなわち，ｒは１塩基以上）。ヘリックス１，４または５はまた，リボザイム構造を安定化するために，２塩基対またはそれ以上長くてもよく（すなわち４−２０塩基対），好ましくは蛋白質結合部位である。それぞれの例において，各ＮおよびＮ'は，独立して，任意の正常または修飾塩基であり，各ダッシュは潜在的塩基対相互作用を表す。これらのヌクレオチドは，糖，塩基またはリン酸で修飾されていてもよい。ヘリックス中では完全な塩基対形成は必要ではないが，好ましい。ヘリックス１および４は，ある程度の塩基対形成が保持される限り，任意のサイズでありうる（すなわち，ｏおよびｐは，それぞれ独立して，０から任意の数，例えば２０である）。必須塩基は，構造中に特定の塩基として示されるが，当業者は，１またはそれ以上が化学的に修飾（脱塩基，塩基，糖および／またはリン酸修飾）されていてもよく，または著しい影響なしで他の塩基で置き換えられていてもよいことを認識するであろう。ヘリックス４は，２つの別々の分子から，すなわち接続ループなしで形成してもよい。接続ループは，存在する場合，その塩基，糖またはリン酸に修飾を有するかまたは有しないリボヌクレオチドでありうる。ｑは２塩基以上である。接続ループはまた，非ヌクレオチドリンカー分子で置き換えられていてもよい。Ｈは塩基Ａ，Ｕ，またはＣを表す。Ｙはピリミジン塩基を表す。"＿＿"は，共有結合を表す（Ｂｕｒｋｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ＆Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１０，１２９；Ｃｈｏｗｒｉｒａ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，６３１，３５９）。
【０２５０】
図２は，化学的に安定化されたリボザイムモチーフの例を示す。ＨＨ  Ｒｚはハンマーヘッドリボザイムモチーフを表す（Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏ．，１，５２７）；ＮＣＨ  ＲｚはＮＣＨリボザイムモチーフを表す（Ｌｕｄｗｉｇ＆Ｓｐｒｏａｔ，国際公開９８／５８０５８に記載される）；Ｇ−切断剤はＧ切断剤リボザイムモチーフを表す（Ｋｏｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２６，４１１６−４１２０）。Ｎまたはｎは，独立して，ヌクレオチドを表し，これらは同じでも異なっていてもよく，互い相補性を有していてもよい；ｒＩはリボ−イノシンヌクレオチドを表す；矢印は標的中の切断の部位を表す。ＨＨ  ＲｚおよびＮＣＨ  Ｒｚの位置４は，２’−Ｃ−アリル修飾を有するものとして示されているが，当業者は，修飾がリボザイムの活性を有意に阻害しない限り，この位置を当該技術分野においてよく知られる他の修飾で修飾することができることを認識するであろう。
【０２５１】
図３は，化学的に安定化されたアンバーザイムリボザイムモチーフ（例えば，Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９９／５５８５７を参照；クラスＩモチーフとも称される）の例を示す。アンバーザイムモチーフは，活性にリボヌクレオチド（２’−ＯＨ）基の存在を必要としない一群の酵素的核酸分子である。
【０２５２】
図４は，化学的に安定化されたチンザイムＡリボザイムモチーフ（例えば，国際公開９９／５５８５７を参照；クラスＡモチーフとも称される）の例を示す。チンザイムモチーフは，活性にリボヌクレオチド（２’−ＯＨ）基の存在を必要としない一群の酵素的核酸分子である。
【０２５３】
図５は，Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，ＰＮＡＳ，９４，４２６２により記載されるＤＮＡザイムモチーフの例を示す。
【０２５４】
図６は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルの変化のパーセントを示す棒グラフである。１０，３０，および１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙで連続的皮下注入により投与したＨＢＶ  ＲＮＡの部位２７３（ＲＰＩ．１８３４１）および１８３３（ＲＰＩ．１８３７１）を標的とするリボザイムを，連続皮下注入により投与したスクランブル化減弱化コアリボザイムおよび食塩水対照，および経口で投与した３ＴＣ（登録商標）（３００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ）および食塩水対照と比較した。
【０２５５】
図７は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の平均血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルを示す棒グラフである。１０，３０，および１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙで連続的皮下注入により投与したＨＢＶ  ＲＮＡの部位２７３（ＲＰＩ．１８３４１）および１８３３（ＲＰＩ．１８３７１）を標的とするリボザイムを，連続皮下注入により投与したスクランブル化減弱化コアリボザイムおよび食塩水対照，および経口で投与した３ＴＣ（登録商標）（３００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ）および食塩水対照と比較した。
【０２５６】
図８は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の血清ＨＢＶ  ＤＮＡ（ｌｏｇ）レベルの低下を示すを示す棒グラフである。１０，３０，および１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙで連続的皮下注入で投与したＨＢＶ  ＲＮＡの部位２７３（ＲＰＩ．１８３４１）および１８３３（ＲＰＩ．１８３７１）を標的とするリボザイムを，連続的皮下注入で投与したスクランブル化減弱化コアリボザイムおよび食塩水対照，経口的に投与した３ＴＣ（登録商標）（３００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ）および食塩水対照と比較した。
【０２５７】
図９は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞において，ＨＢＶ  ＲＮＡの部位２７３（ＲＰＩ．１８３４１），１８３３（ＲＰＩ．１８３７１），１８７４（ＲＰＩ．１８３７２），および１８７３（ＲＰＩ．１８４１８）を標的とするリボザイムで処理した後のＨＢＶ  ＤＮＡの減少を，スクランブル化減弱化コアリボザイム（ＲＰＩ．２０９９５）と比較して示す棒グラフである。
【０２５８】
図１０は，ＨｅｐＧ２細胞を，ＨＢＶプレゲノムＲＮＡの部位２７３を標的とする抗ＨＢＶアーム，ステム，およびループ−変種リボザイム（ＲＰＩ．１８３４１，ＲＰＩ．２２６４４，ＲＰＩ．２２６４５，ＲＰＩ．２２６４６，ＲＰＩ．２２６４７，ＲＰＩ．２２６４８，ＲＰＩ．２２６４９，およびＲＰＩ．２２６５０）で処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を，スクランブル化減弱化コアリボザイム（ＲＰＩ．２０５９９）と比較して示す棒グラフである。
【０２５９】
図１１は，ＨｅｐＧ２細胞をＲＰＩ１８３４１単独またはＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）との組み合わせで処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を示す棒グラフである。５００または１０００ユニットのＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）において，２００ｎＭのＲＰＩ．１８３４１を加えると，処理ＨｅｐＧ２細胞から分泌されたＨＢｓＡｇのレベルにより判定して，抗ＨＢＶ活性が７５−７７％増加した。これに対し，５００または１０００ユニットのＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）との組み合わせで用いたとき，ＲＰＩ．１８３４１（２００ｎＭ）の抗ＨＢＶ活性は３１−３９％増加する。
【０２６０】
図１２は，ＨｅｐＧ２細胞をＲＰＩ１８３４１単独でまたはラミブジンとの組み合わせで処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を示す棒グラフである。２５ｎＭのラミブジン（３ＴＣ（登録商標））で，１００ｎＭのＲＰＩ．１８３４１を加えると，処理したＨｅｐＧ２細胞から分泌されたＨＢｓＡｇのレベルにより判定して，抗ＨＢＶ活性が４８％増加した。これに対し，２５ｎＭラミブジンとの組み合わせで用いたとき，ＲＰＩ．１８３４１（１００ｎＭ）の抗ＨＢＶ活性は３１％増加した。
【０２６１】
図１３は，ＨＢＶ逆転写に関与する工程の概要を表すスキームを示す。ＨＢＶポリメラーゼ／リバーストランスクリプターゼはＨＢＶプレゲノムＲＮＡの５’−ステム−ループに結合し，ＵＵＣＡテンプレートからプライマーを合成する。リバーストランスクリプターゼおよびテトラマープライマーは，３’−ＤＲ１部位に移動する。ＲＴプライマーはＤＲ１要素中のＵＵＣＡ配列に結合し，マイナス鎖合成が開始する。
【０２６２】
図１４は，ＨＢＶ逆転写の阻害の非限定的例を示す。デコイ分子はＨＢＶ  ＲＴプライマーに結合し，このことによりＲＴの３’−ＤＲ１部位への移動を妨害し，マイナス鎖合成を妨害する。
【０２６３】
図１５は，２’−Ｏ−アリル修飾核酸分子のＨＢＶ核酸スクリーニングを示すデータを示す。ＨｂｓＡｇのレベルはＥＬＩＳＡにより決定した。ＨＢＶの阻害はＨＢｓＡｇ抗原レベルと相関する。
【０２６４】
図１６は，２’−Ｏ−メチル修飾核酸分子のＨＢＶ核酸スクリーニングのデータを示す。ＨｂｓＡｇのレベルはＥＬＩＳＡにより決定した。ＨＢＶの阻害はＨＢｓＡｇ抗原レベルと相関する。
【０２６５】
図１７は，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマーを標的とする２’−Ｏ−メチル修飾核酸分子の用量応答データをＨＢｓＡｇのレベルと比較して示す。
【０２６６】
図１８は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子（２００ｎＭ）の核酸スクリーニングのデータをＨＢｓＡｇのレベルと比較して示す。
【０２６７】
図１９は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子（４００ｎＭ）の核酸スクリーニングのデータをＨＢｓＡｇのレベルと比較して示す。
【０２６８】
図２０は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子の用量応答データをＨＢｓＡｇのレベルと比較して示す。
【０２６９】
図２１は，無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍成長を，腫瘍体積（ｍｍ3）対時間（日）として示すグラフである。
【０２７０】
図２２は，無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍成長を，腫瘍体積（ｍｍ3）対時間（日）として示すグラフである。接種されたＨｅｐＧ２．２．１５細胞は，マウスに導入する前にＧ４１８に対する抗生物質耐性について選択した。
【０２７１】
図２３は，細胞培養におけるルシフェラーゼ活性の酵素的核酸媒介性減少を示すために用いられたデュアルレポーターシステムの図解である。
【０２７２】
図２４は，ＨＣＶ５’ＵＴＲの二次構造の図解を示す（Ｂｒｏｗｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２０，５０４１−４５；Ｈｏｎｄａ  ｅｔ  ａｌ，１９９９，Ｊ  Ｖｉｒｏｌ．，７３，１１６５−７４）。主要構造ドメインは太字で示される。酵素的核酸切断部位は矢印で示される。黒矢印はアミノ修飾酵素的核酸阻害に利用可能な部位を示す。リード切断部位（１９５および３３０）は大きな黒矢印で示される。
【０２７３】
図２５は，ヌクレアーゼ耐性酵素的核酸分子の非限定的例を示す。結合アームはステムＩおよびステムＩＩＩとして示される。ヌクレオチド修飾は以下のように示される：２’−Ｏ−メチルヌクレオチド，小文字；リボヌクレオチド，大文字Ｇ，Ａ；２’−アミノ−ウリジン，ｕ；反転３’−３’デオキシ無塩基，Ｂ。各酵素的核酸の５’末端のホスホロチオエート結合の位置は下付の"ｓ"により示される。ＨはＡ，ＣまたはＵリボヌクレオチドを表す。Ｎは基質中のＡ，Ｃ，ＧまたはＵリボヌクレオチドを表す。ｎはＮ’に相補的な塩基を表す。触媒コア中のＵ４およびＵ７位が示されている。
【０２７４】
図２６は，ＯＳＴ７細胞におけるＨＣＶ−ルシフェラーゼ発現の酵素的核酸媒介性阻害を示す１組の棒グラフである。ＯＳＴ７細胞をレポータープラスミド（２μｇ／ｍＬ），酵素的核酸（１００ｎＭ）および脂質を含む複合体でトランスフェクトした。試験した各酵素的核酸についてＨＣＶ−蛍ルシフェラーゼ発光／ウミシイタケルシフェラーゼ発光の比率を決定し，ＩＣＲ，すなわちＨＣＶ５’ＵＴＲに対する特異性を有しない無関係対照酵素的核酸（１に調節）による処理と比較した。結果は３つのサンプルの平均±ＳＤとして表される。図２６Ａにおいては，ＯＳＴ７細胞をＨＣＶ５’ＵＴＲ中の保存部位（切断部位により示される）を標的とする酵素的核酸（１００ｎＭ）で処理した。図２６Ｂにおいては，ＯＳＴ７細胞を酵素的核酸のサブセットで処理して，ＨＣＶ部位を導き（切断部位により示される），および対応する減弱化コア（ＡＣ）対照で処理した。減少が５０％以上であり統計学的に有意な場合に，活性な酵素的核酸で処理した後の蛍／ウミシイタケルシフェラーゼ比の減少のパーセンテージが対応するＡＣによる処理と比較して示される。５０ｎＭの酵素的核酸についても同様の結果が得られた。
【０２７５】
図２７は，酵素的核酸処理後のＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の用量依存的阻害を示す一連の線グラフである。活性な酵素的核酸を対応するＡＣと混合して，１００ｎＭの総オリゴヌクレオチド濃度および同じ脂質荷電比を維持した。各点における活性な酵素的核酸の濃度が示される。図２７Ａ−Ｅは，それぞれ部位７９，８１，１４２，１９５，または３３０を標的とする酵素的核酸を示す。結果は，３つのサンプルの平均±ＳＤで表される。
【０２７６】
図２８はＯＳＴ７細胞におけるＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡの減少およびＨＣＶ−ルシフェラーゼ発現の阻害を示す１組の棒グラフである。ＯＳＴ７細胞をレポータープラスミド（２μｇ／ｍｌ），酵素的核酸，ＢＡＣまたはＳＡＣ（５０ｎＭ）および脂質を含む複合体でトランスフェクトした。結果は，３つのサンプルの平均±ＳＤで表される。図２８Ａにおいては，試験した各酵素的核酸または対照についてＨＣＶ−蛍ルシフェラーゼＲＮＡ／ウミシイタケルシフェラーゼＲＮＡの比が示される。対のＢＡＣ対照（１に調節）と比較して，部位１９５または３３０酵素的核酸について，ルシフェラーゼＲＮＡレベルはそれぞれ４０％および２５％減少した。図２８Ｂにおいては，部位１９５または３３０酵素的核酸または対の対照で処理した後のＨＣＶ−蛍ルシフェラーゼ発光／ウミシイタケルシフェラーゼ発光の比が示される。対のＢＡＣ対照（１に調節）と比較して，部位１９５または３３０酵素的核酸について，蛋白質発現の阻害はそれぞれ７０％および４０％であった（Ｐ＜０．０１）。
【０２７７】
図２９は，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸処理と組み合わせたインターフェロン（ＩＦＮ）アルファ２ａおよび２ｂの用量応答を示す１組の棒グラフである。図２９ＡはＩＦＮアルファ２ａ処理のデータを示す。図２９ＢはＩＦＮアルファ２ｂ処理のデータを示す。感染前に，示されるユニット／ｍｌ（Ｕ／ｍｌ）のＩＦＮで４時間前処理し，次に２００ｎＭの対照（ＳＡＣ）または部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸（１９５ＲＺ）のいずれかで感染後２４時間処理したＨｅＬａ細胞からのウイルス収量が示される。細胞はＭＯＩ＝０．１で３０分間感染させ，感染の２４時間後に回収した。誤差バーは３回の測定の平均のＳ．Ｄ．を表す。
【０２７８】
図３０は，インターフェロン（ＩＦＮ）アルファ２ａおよび２ｂ前処理と組み合わせた，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量応答を示す線グラフである。ＩＦＮありまたはなしで４時間前処理し，示される用量の部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸（１９５ＲＺ）で感染後２４時間処理したＨｅＬａ細胞のウイルス収量が示される。抗ＨＣＶ酵素的核酸を対照オリゴヌクレオチド（ＳＡＣ）と混合して，輸送用に一定の２００ｎＭの核酸総用量を維持した。細胞はＭＯＩ＝０．１で３０分間感染させ，感染の２４時間後に回収した。誤差バーは３回の測定の平均のＳ．Ｄ．を表す。
【０２７９】
図３１は，コンセンサスインターフェロン（ＣＩＦＮ）／酵素的核酸の組み合わせ処理からのデータを示す１組の棒グラフである。図３１Ａは部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸で処理したＣＩＦＮの用量応答を示す。示されるユニット／ｍｌ（Ｕ／ｍｌ）のＣＩＦＮで前処理し，２００ｎＭの対照（ＳＡＣ）または部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸（１９５ＲＺ）のいずれかで処理した細胞からのウイルス収量が示される。図３１ＢはＣＩＦＮ前処理した部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量応答を示す。ＣＩＦＮありまたはなしで前処理し，示される濃度の部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸（１９５ＲＺ）で処理した細胞からのウイルス収量が示される。抗ＨＣＶ酵素的核酸を対照オリゴヌクレオチド（ＳＡＣ）と混合して，輸送用に一定の２００ｎＭの核酸総用量を維持した。細胞をＭＯＩ＝０．１で３０分間感染させ，感染の２４時間後に回収した。誤差バーは３回の測定の平均のＳ．Ｄ．を表す。
【０２８０】
図３２は，コンセンサスインターフェロン（ＣＩＦＮ）と組み合わせて用いた部位１９５を標的とする抗ＨＣＶ酵素的核酸の酵素的核酸活性および増強された抗ウイルス効果を示す棒グラフである。示されるように処理した細胞からのウイルス収量が表される。ＢＡＣ，細胞を２００ｎＭのＢＡＣ（結合減弱化対照）で感染後２４時間処理した；ＣＩＦＮ＋ＢＡＣ，細胞を１２．５Ｕ／ｍｌＣＩＦＮで感染前に４時間，２００ｎＭのＢＡＣで感染後２４時間処理した；１９５ＲＺ，細胞を２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸で感染後２４時間処理した；ＣＩＦＮ＋１９５ＲＺ，細胞を１２．５Ｕ／ｍｌＣＩＦＮで感染前に４時間，２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸で感染後２４時間処理した。細胞はＭＯＩ＝０．１で３０分間感染させた。誤差バーは３回の測定の平均のＳ．Ｄ．を示す。
【０２８１】
図３３は，ＨＣＶ５’−ＵＴＲ中の種々の部位を標的とするチンザイム酵素的核酸分子での処理によるＨＣＶ−ＰＶキメラ複製の阻害を，スクランブル化減弱化コア対照（ＳＡＣ）チンザイムと比較して示す棒グラフである。
【０２８２】
図３４は，ＨＣＶ５’−ＵＴＲの保存領域を標的とするアンチセンス核酸分子によるＨＣＶ−ＰＶキメラ複製の阻害を，スクランブル化アンチセンス対照と比較して示す棒グラフである。
【０２８３】
図３５は，この実験において用いた化合物（２−５Ａ）の構造を示す。"Ｘ"は，類似体Ｉ中の酸素（Ｏ）またはチオリン酸（Ｐ＝Ｓ）類似体ＩＩ中のイオウ（Ｓ）の位置を示す。２−５Ａ化合物は，ＣＰＧ支持体を用い，３’−反転無塩基ヌクレオチドを用いて本明細書に記載されるように合成し，脱保護し，精製した。鎖伸長のためには，５’−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）−３’−Ｏ−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）−Ｎ６−ベンゾイルアデノシン−２−シアノエチル−Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルホスホルアミダイト（Ｃｈｅｍ．Ｇｅｎｅｓ  Ｃｏｒｐ．，Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）を用いた。５’−末端リン酸（類似体Ｉ）またはチオリン酸（類似体ＩＩ）基の導入は，"Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｔｉｏｎ  Ｒｅａｇｅｎｔ"（Ｇｌｅｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｓｔｅｒｌｉｎｇ，ＶＡ）を用いて行った。最終化合物の構造はＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ分析により確認した。
【０２８４】
図３６は，リボザイム活性および増強された抗ウイルス効果を示す棒グラフである。（Ａ）インターフェロン／リボザイム組み合わせ処理。（Ｂ）２−５Ａ／リボザイム組み合わせ処理。９６ウエルプレート（１０，０００細胞／ウエル）に播種したＨｅＬａ細胞を示されるように４時間前処理した。前処理のためには，ＳＡＣ（ＲＰＩ１７８９４），ＲＺ（ＲＰＩ１３９１９），および２−５Ａ類似体Ｉ（ＲＰＩ２１０９６）（２００ｎＭ）を脂質サイトフェクチンと複合体化させた。次に細胞をＨＣＶ−ＰＶで感染多重度０．１で感染させた。３０分後に，５％血清およびサイトフェクチンＲＰＩ．９７７８と複合体化した１００ｎＭのＲＺまたは示されるＳＡＣを含む培地でウイルス接種物を置き換えた。２０時間後，３回の凍結／融解サイクルにより細胞を溶解し，プラークアッセイによりウイルスを定量した。プラーク形成ユニット（ＰＦＵ）／ｍｌは，３つのサンプルの平均±ＳＥＭで示される。処理細胞におけるウイルス収量の絶対量は日によって異なった。これはおそらく，細胞播種およびトランスフェクション複合体化が日によって異なるためであろう。Ｎｏｎｅ，正常培地；ＩＦＮ，１０Ｕ／ｍｌコンセンサスインターフェロン；ＳＡＣ，スクランブル化アーム減弱化コア対照（ＲＰＩ１７８９４）；ＲＺ，抗ＨＣＶリボザイム（ＲＰＩ１３９１９）；２−５Ａ，（ＲＰＩ２１０９６）。
【０２８５】
図３７は，抗ＨＣＶリボザイム（ＲＰＩ１３９１９）または２−５Ａ（ＲＰＩ２１０９６）処理によるウイルス複製の阻害を示すグラフである。ＨｅＬａ細胞を図３６に記載されるように処理したが，ただし，前処理をせず，２００ｎＭのオリゴヌクレオチドを処理に用いた。２−５ＡＰ＝Ｓは５’−末端チオリン酸を含む（ＲＰＩ２１０９５）（図３５を参照）。
【０２８６】
図３８は，２−５Ａ処理と組み合わせた抗ＨＣＶリボザイムを示す棒グラフである。ＨｅＬａ細胞を図３７に記載されるように処理したが，ただしトランスフェクション用に一定の２００ｎＭの総オリゴヌクレオチド用量を維持するために，濃度も示されるように変化させた。５０ｎＭの抗ＨＣＶリボザイム（ＲＰＩ１３９１９）（真中のバー）で処理した細胞も，１５０ｎＭのＳＡＣ（ＲＰＩ１７８９４）または２−５Ａ（ＲＰＩ２１０９６）で処理した。同様に，１００ｎＭの抗ＨＣＶリボザイム（右のバー）で処理した細胞も１００ｎＭのＳＡＣまたは２−５Ａで処理した。
【０２８７】
本発明の核酸分子の作用のメカニズム
デコイ：核酸デコイ分子は，天然に生ずる核酸分子または天然に生ずる核酸分子の一部の模倣体であり，その活性が天然に生ずる核酸分子との相互作用に依存する特定の蛋白質または核酸の機能を調節するために用いることができる。デコイは，目的とするリガンドに結合する真正核酸と競合することにより，標的蛋白質または核酸の機能を調節する。しばしば，核酸デコイは，例えば転写因子またはポリメラーゼ等の特定の蛋白質により認識される核酸配列の切断型である。デコイは，化学的に修飾して，標的リガンドに対する結合親和性を増加させ，ならびにデコイの酵素的および化学的安定性を増加させることができる。さらに，架橋および非架橋リンカーをデコイ配列中に導入して，標的リガンドに対する追加の結合親和性を与えることができる。ＨＣＶまたはＨＢＶ標的，例えばＨＢＶリバーストランスクリプターゼまたはＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマー，またはＨＢＶプレゲノムＲＮＡのエンハンサー領域（例えばエンハンサーＩ要素）に結合する本発明のデコイ分子は，ＲＮＡからＤＮＡへの転写を調節し，したがってウイルスのプレゲノムＲＮＡの発現を調節する（図１３および１４を参照）。
【０２８８】
アプタマー：核酸アプタマーは，目的とする特定のリガンドに特異的に結合するよう選択することができる（例えば，Ｇｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５６７，５８８および米国特許５，４７５，０９６，Ｇｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，６４，７６３；Ｂｒｏｄｙ  ａｎｄ  Ｇｏｌｄ，２０００，Ｊ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，５；Ｓｕｎ，２０００，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２，１００；Ｋｕｓｓｅｒ，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，７４，２７；Ｈｅｒｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｐａｔｅｌ，２０００，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８７，８２０；およびＪａｙａｓｅｎａ，１９９９，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５，１６２８を参照）。例えば，インビトロ選択を適用してＨＢＶ  ＲＴおよび／またはＨＢＶ  ＲＴプライマーに対する結合特異性を有する核酸アプタマーを進化させることができる。核酸アプタマーは，本明細書に記載される化学的修飾およびリンカーを含むことができる。リバーストランスクリプターゼまたはリバーストランスクリプターゼプライマー，例えば，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼまたはＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマーに結合する本発明のアプタマー分子は，ＲＮＡからＤＮＡへの転写を調節することができ，したがってウイルスのプレゲノムＲＮＡの発現を調節することができる。
【０２８９】
アンチセンス：アンチセンス分子は，修飾されたまたは修飾されていないＲＮＡ，ＤＮＡ，または混合ポリマーのオリゴヌクレオチドであることができ，主として，マッチする配列に特異的に結合することにより機能し，ペプチド合成を阻害する（Ｗｕ−Ｐｏｎｇ，Ｎｏｖ  １９９４，Ｂｉｏ  Ｐｈａｒｍ，２０−３３）。アンチセンスオリゴヌクレオチドは，標的ＲＮＡにワトソンクリック塩基対形成により結合し，立体的障害により結合した配列のリボソーム翻訳を防止することによりまたはＲＮａｓｅＨ酵素を活性化することにより遺伝子発現を妨害する。アンチセンス分子はまた，ＲＮＡのプロセシングまたは核から細胞質への輸送を妨害することにより蛋白質合成を変化させることができる（Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ＆Ｒｏｔｈ，１９９６，Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．ｉｎ  Ｏｎｃｏｇｅｎｅｓｉｓ  ７，１５１−１９０）。
【０２９０】
さらに，一本鎖ＤＮＡのＲＮＡへの結合により，ヘテロデュープレックスがヌクレアーゼ分解される（Ｗｕ−Ｐｏｎｇ，（上掲），Ｃｒｏｏｋｅ，（上掲））。これまでのところ，ＲＮａｓｅＨの基質として作用する，主鎖を化学的に修飾したＤＮＡは，ホスホロチオエート，ホスホロジチオエートおよびボロントリフルオリデートのみである。最近，２’−アラビノおよび２’−フルオロアラビノ含有オリゴもまたＲＮａｓｅＨ活性を活性化することが報告された。
【０２９１】
化学的に修飾されたヌクレオチドの新規なコンフィギュレーション，二次構造，および／またはＲＮａｓｅＨ基質ドメインを利用する多数のアンチセンス分子が記載されている（Ｗｏｏｌｆ  ｅｔ  ａｌ；国際公開ＷＯ９８／１３５２６；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願６０／０８２，４０４，１９９８年４月２０日出願；Ｈａｒｔｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願６０／１０１，１７４，１９９８年９月２１日出願）（これらはその全体を本明細書の一部としてここに引用する）。
【０２９２】
アンチセンスＤＮＡを用いて，ＤＮＡ−ＲＮＡ相互作用によりＲＮＡを標的化して，このことによりデュープレックス中の標的ＲＮＡを消化するＲＮａｓｅＨを活性化することができる。アンチセンスＤＮＡは，化学的に合成することができ，または一本鎖ＤＮＡの細胞内発現ベクターまたはその同等物を用いて発現させることができる。
【０２９３】
トリプレックス形成オリゴヌクレオチド（ＴＦＯ）：配列特異的様式でゲノムＤＮＡに結合するように一本鎖オリゴヌクレオチドを設計することができる。ＴＦＯは，フーグスティーン塩基対形成を介してＤＮＡらせんに結合するピリミジンリッチオリゴヌクレオチドから構成される（Ｗｕ−Ｐｏｎｇ，（上掲））。さらに，ＴＦＯは，化学的に修飾して，標的ＤＮＡ配列に対する結合親和性を高めることができる。得られるＤＮＡセンス，ＤＮＡアンチセンス，およびＴＦＯからなる三重らせんは，ＲＮＡポリメラーゼによるＲＮＡ合成を破壊する。結合が不可逆的であるため，ＴＦＯメカニズムにより遺伝子発現または細胞死が生じうる（Ｍｕｋｈｏｐａｄｈｙａｙ＆Ｒｏｔｈ，（上掲））。
【０２９４】
２’−５’オリゴアデニレート：２−５Ａシステムは，高等脊椎動物に見いだされるＲＮＡ分解のインターフェロン媒介性メカニズムである（Ｍｉｔｒａ  ｅｔ  ａｌ；１９９６，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ  ９３，６７８０−６７８５）。ＲＮＡ切断には，２種類の酵素，すなわち，２−５ＡシンセターゼおよびＲＮａｓｅＬが必要である。２−５Ａシンセターゼは，二本鎖ＲＮＡが２’−５’オリゴアデニレート（２−５Ａ）を形成することを必要とする。次に，２−５Ａは，一本鎖ＲＮＡを切断する能力を有するＲＮａｓｅＬを利用するためのアロステリックエフェクターとして作用する。二本鎖ＲＮＡとともに２−５Ａ構造を形成する能力のため，このシステムはウイルス複製の阻害に特に有用である。
【０２９５】
（２’−５’）オリゴアデニレート構造は，アンチセンス分子に共有結合で結合して，ＲＮＡ切断が可能なキメラオリゴヌクレオチドを形成することができる（Ｔｏｒｒｅｎｃｅ，（上掲））。これらの分子は，おそらくは，２−５Ａ依存性ＲＮａｓｅに結合してこれを活性化し，次にオリゴヌクレオチド／酵素複合体が標的ＲＮＡ分子に結合し，これは次にＲＮａｓｅ酵素により切断されることができる。２’−５’オリゴアデニレート構造の共有結合は，アンチセンス用途に限定されず，本発明の核酸分子への結合を含むようにさらに作り上げることができる。
【０２９６】
ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）：ＲＮＡ干渉とは，動物において短干渉ＲＮＡｓ（ｓｉＲＮＡ）により媒介される配列特異的転写後遺伝子サイレンシングのプロセスを表す（Ｆｉｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｎａｔｕｒｅ，３９１，８０６）。植物における対応するプロセスは一般に転写後遺伝子サイレンシングまたはＲＮＡサイレンシングと称され，真菌においてはクエリングとも称される。転写後遺伝子サイレンシングのプロセスは，異なる叢および門が共有する，外来遺伝子の発現を妨害するために用いられる進化的に保存された細胞防御メカニズムであると考えられている（Ｆｉｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｔｒｅｎｄｓ  Ｇｅｎｅｔ．，１５，３５８）。そのような外来遺伝子発現からの防御は，相同的一本鎖ＲＮＡまたはウイルスゲノムＲＮＡを特異的に破壊する細胞応答により，宿主ゲノム中へのウイルス感染またはトランスポゾン要素のランダムインテグレーションに由来する二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）の産生に応答して進化してきた。細胞におけるｄｓＲＮＡの存在は，まだ完全には特性決定されていないメカニズムにより，ＲＮＡｉ応答を引き起こす。このメカニズムは，蛋白質キナーゼＰＫＲおよび２’，５’−オリゴアデニレートシンセターゼのｄｓＲＮＡ媒介性活性化によりリボヌクレアーゼＬによるｍＲＮＡの非特異的切断が生ずるインターフェロン応答とは異なるようである。
【０２９７】
細胞中に長いｄｓＲＮＡｓが存在すると，ダイサーと称されるリボヌクレアーゼＩＩＩ酵素の活性が刺激される。ダイサーは，ｄｓＲＮＡを短干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）として知られる短い断片のｄｓＲＮＡにプロセシングすることに関与している（Ｂｅｒｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｎａｔｕｒｅ，４０９，３６３）。ダイサー活性から得られる短干渉ＲＮＡｓは，典型的には約２１−２３ヌクレオチドの長さであり，約１９塩基対のデュープレックスを含む。ダイサーはまた，翻訳制御における関与が示唆される保存された構造の前駆体ＲＮＡから２１および２２ヌクレオチドの小さな一時的ＲＮＡ（ｓｔＲＮＡ）を切り出すことに関与することが示唆されている（Ｈｕｔｖａｇｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２９３，８３４）。ＲＮＡｉ応答はまた，一般にＲＮＡ誘導性サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）と称されるｓｉＲＮＡを含むエンドヌクレアーゼ複合体を特徴とし，これはｓｉＲＮＡと相同な配列を有する一本鎖ＲＮＡの切断を媒介する。標的ＲＮＡの切断は，ｓｉＲＮＡデュープレックスのガイド配列に相補的な領域の真中で生ずる（Ｅｌｂａｓｈｉｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．，１５，１８８）。
【０２９８】
短干渉ＲＮＡに媒介されるＲＮＡｉは種々の系で研究されてきた。Ｆｉｒｅ  ｅｔ  ａｌ．（１９９８，Ｎａｔｕｒｅ，３９１，８０６）は，Ｃ．Ｅｌｅｇａｎｓにおいて最初にＲＮＡｉを観察した。Ｗｉａｎｎｙ  ａｎｄ  Ｇｏｅｔｚ（１９９９，Ｎａｔｕｒｅ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，２，７０）は，マウス胚においてｄｓＲＮＡにより媒介されるＲＮＡｉを記載する。Ｈａｍｍｏｎｄ  ｅｔ  ａｌ．（２０００，Ｎａｔｕｒｅ，４０４，２９３）は，ｄｓＲＮＡでトランスフェクトしたショウジョウバエ細胞におけるＲＮＡｉを記載する。Ｅｌｂａｓｈｉｒ  ｅｔ  ａｌ．（２００１，Ｎａｔｕｒｅ，４１１，４９４）は，培養哺乳動物細胞，例えばヒト胚性腎臓細胞およびＨｅＬａ細胞において，合成２１ヌクレオチドＲＮＡのデュープレックスを導入することにより誘導されるＲＮＡｉを記載する。ショウジョウバエ胚溶解物における最近の研究は，効率的なＲＮＡｉ活性を媒介するために必須であるｓｉＲＮＡの長さ，構造，化学組成，および配列のある種の要件を明らかにした。これらの研究は，２ヌクレオチドの３’オーバラップを含む場合，２１ヌクレオチドｓｉＲＮＡデュープレックスが最も活性であることを示した。さらに，一方または両方のｓｉＲＮＡ鎖を２’−デオキシまたは２’−Ｏメチルヌクレオチドで置換するとＲＮＡｉ活性が破壊されるが，３’−末端ｓｉＲＮＡヌクレオチドをデオキシヌクレオチドで置換することは許容されることが示された。ｓｉＲＮＡデュープレックスの中心におけるミスマッチ配列もまたＲＮＡｉ活性を破壊することが示された。さらに，これらの研究はまた，標的ＲＮＡにおける切断部位の位置はｓｉＲＮＡガイド配列の３’末端ではなく５’末端により規定されることを示した（Ｅｌｂａｓｈｉｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，ＥＭＢＯ  Ｊ．，２０，６８７７）。他の研究は，ｓｉＲＮＡデュープレックスの標的相補鎖の５’−リン酸がｓｉＲＮＡ活性に必要であり，ｓｉＲＮＡの５’−リン酸成分を維持するためにＡＴＰが用いられることを示した（Ｎｙｋａｎｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｃｅｌｌ，１０７，３０９）。しかし，５’−リン酸を欠失するｓｉＲＮＡ分子は，外的に導入したとき活性であり，このことは，ｓｉＲＮＡ構築物の５’−リン酸化はインビボで生ずるかもしれないことを示唆する。
【０２９９】
酵素的核酸：現在，天然に生ずる酵素的ＲＮＡのいくつかの変種が知られている。さらに，いくつかのインビトロ選択（進化）戦略（Ｏｒｇｅｌ，１９７９，Ｐｒｏｃ．Ｒ．Ｓｏｃ．Ｌｏｎｄｏｎ，Ｂ２０５，４３５）を用いて，ホスホジエステル結合の切断およびライゲーションを触媒しうる新たな核酸触媒が発展してきた（Ｊｏｙｃｅ，１９８９，Ｇｅｎｅ，８２，８３−８７；Ｂｅａｕｄｒｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５７，６３５−６４１；Ｊｏｙｃｅ，１９９２，Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  ２６７，９０−９７；Ｂｒｅａｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，ＴＩＢＴＥＣＨ  １２，２６８；Ｂａｒｔｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２６１：１４１１−１４１８；Ｓｚｏｓｔａｋ，１９９３，ＴＩＢＳ  １７，８９−９３；Ｋｕｍａｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，ＦＡＳＥＢ  Ｊ．，９，１１８３；Ｂｒｅａｋｅｒ，１９９６，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，７，４４２；Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，９４，４２６２；Ｔａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，ＲＮＡ  ３，９１４；Ｎａｋａｍａｙｅ＆Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，１９９４，（上掲）；Ｌｏｎｇ＆Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９９４，（上掲）；Ｉｓｈｉｚａｋａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，（上掲）；Ｖａｉｓｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｙ３６，６４９５。それぞれは，生理学的条件下で，ホスホジエステル結合をトランスで加水分解することを含む一連の反応を触媒することができる（したがって，他のＲＮＡ分子を切断しうる）。
【０３００】
本発明の核酸分子は，ＨＢＶまたはＨＣＶ蛋白質の発現を妨害することができ，ＨＢＶまたはＨＣＶのレベルに関連する疾病の治療または疾病の診断に用いることができる。
【０３０１】
酵素的核酸の酵素的性質は，治療を行うのに必要な核酸の濃度が低いなどの重要な利点を有する。この利点は，酵素的核酸分子が酵素的に作用する能力を反映している。すなわち，１つの酵素的核酸分子が多くの標的ＲＮＡ分子を切断することができる。さらに，酵素的核酸分子は，高度に特異的な阻害剤であり，その阻害の特異性は，標的ＲＮＡへの結合の塩基対形成メカニズムのみならず，標的ＲＮＡ切断のメカニズムにも依存する。切断の部位の近くにおける１つのミスマッチまたは塩基置換を選択して，酵素的核酸分子の触媒活性を完全に排除することができる。
【０３０２】
エンドヌクレアーゼ酵素活性を有する核酸分子は，ヌクレオチド塩基配列に特異的な様式で他の別のＲＮＡ分子を繰り返し切断することができる。適切な設計および構造を有するそのような酵素的核酸分子は，事実上すべてのＲＮＡ転写産物を標的とすることができ，インビトロで有効な切断を達成することができる（Ｚａｕｇ  ｅｔ  ａｌ．，３２４，Ｎａｔｕｒｅ  ４２９  １９８６；Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９８７  Ｎａｔｕｒｅ  ３２８，５９６；Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，８４  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８７８８，１９８７；Ｄｒｅｙｆｕｓ，１９８８，Ｅｉｎｓｔｅｉｎ  Ｑｕａｒｔ．Ｊ．Ｂｉｏ．Ｍｅｄ．，６，９２；Ｈａｓｅｌｏｆｆ  ａｎｄ  Ｇｅｒｌａｃｈ，３３４  Ｎａｔｕｒｅ  ５８５，１９８８；Ｃｅｃｈ，２６０  ＪＡＭＡ  ３０３０，１９８８；Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，１７  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  １３７１，１９８９；Ｃｈａｒｔｒａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２３，４０９２；Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７（上掲））ＰＮＡＳ  ９４，４２６２）。
【０３０３】
その配列特異性のため，トランス切断酵素的核酸分子は，ヒトの疾患の治療剤として有望である（Ｕｓｍａｎ＆ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ，１９９５  Ａｎｎ．Ｒｅｐ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３０，２８５−２９４；Ｃｈｒｉｓｔｏｆｆｅｒｓｅｎ  ａｎｄ  Ｍａｒｒ，１９９５  Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３８，２０２３−２０３７）。酵素的核酸分子は，細胞性ＲＮＡのバックグラウンド中で特定のＲＮＡ標的を切断するよう設計することができる。そのような切断事象は，ＲＮＡを非機能性にし，そのＲＮＡからの蛋白質発現を排除する。このようにして，疾患状態に関連する蛋白質の合成を選択的に阻害することができる（Ｗａｒａｓｈｉｎａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｃｈｅｎａｉｓｔｔｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，６，２３７−２５０）。
【０３０４】
本発明はまた，本発明の核酸デコイおよび／またはアプタマーを含むセンサードメインを有する核酸センサー分子またはアロザイムを特徴とする。核酸センサー分子のセンサードメインと分子標的，例えば，ＨＣＶまたはＨＢＶ標的（例えば，ＨＢＶ  ＲＴおよび／またはＨＢＶ  ＲＴプライマー）との相互作用は，標的シグナリング分子の存在下で核酸センサー分子の活性が調節されるように，核酸センサー分子の酵素的核酸ドメインを活性化または不活性化することができる。核酸センサー分子は，標的分子の存在下で活性であるように設計してもよく，あるいは，分子標的の存在下で不活性であるように設計してもよい。例えば，核酸センサー分子は，配列（ＵＵＣＡ）n（式中，ｎは１−１０の整数である）を有するセンサードメインを有するように設計する。非限定的例においては，ＨＢＶ  ＲＴプライマーと核酸センサー分子のセンサードメインとの相互作用は，センサー分子が反応（例えばＨＢＶ  ＲＮＡの切断を触媒）するように，核酸センサー分子の酵素的核酸ドメインを活性化することができる。この例においては，核酸センサー分子はＨＢＶ  ＲＴまたはＨＢＶ  ＲＴプライマーの存在下で活性化され，ＨＢＶ感染を治療するための治療剤として用いることができる。あるいは，反応は標識核酸レポーター分子の切断またはライゲーションを含むことができ，ある系におけるＨＢＶの存在を検出するのに有用な診断試薬を提供する。
【０３０５】
ＨＣＶ標的部位
有用な核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラの標的は，以下の開示にしたがって決定することができる（Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９３／２３５６９；Ｓｕｌｌｉｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９３／２３０５７；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９４／０２５９５；Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９５／０４８１８；ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５２５，４６８）。ここでは，これらの文献に与えられるガイダンスを繰り返さず，以下にそのような方法の特定の例を提供するが，これらは当業者を限定するものではない。そのような標的に対する核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラを，これらの出願に記載されるように設計し，これもまた記載されるようにインビトロおよびインビボで試験すべく合成する。そのような核酸分子およびヌクレアーゼ活性化化合物またはキメラはまた，本明細書に記載されるように最適化し，輸送することができる。
【０３０６】
コンピュータフォールディングアルゴリズムを用いて，ＨＣＶ  ＲＮＡの配列を，最適な酵素的核酸標的部位についてスクリーニングした。酵素的核酸の切断部位を同定した。これらの部位は表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩに示される（表中，すべての配列は５’から３'方向である）。表中，ヌクレオチド塩基の位置は，指示されたタイプの酵素的核酸分子により切断されるべき位置として示される。
【０３０７】
ＨＣＶ  ＲＮＡは，ある領域中では高度に相同性であるため，いくつかの酵素的核酸分子標的部位もまた相同性である。この場合，１つの酵素的核酸分子が異なる種類のＨＣＶ  ＲＮＡを標的とするであろう。いくつかの種類のＨＣＶ  ＲＮＡを標的とする１つの酵素的核酸分子の利点は，特に，これらのＲＮＡの１またはそれ以上が疾患状態に寄与しているかもしれない場合に明らかである。
【０３０８】
酵素的核酸分子は，結合することができるように設計し，コンピュータフォールディングにより個別に分析して（Ｊａｅｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６，７７０６），酵素的核酸分子配列が適切な二次構造にフォールディングされるか否かを評価した。結合アームと触媒コアとの間に望ましくない分子内相互作用を有する酵素的核酸分子は考慮から除外する。種々の結合アームの長さを選択して，活性を最適化することができる。一般に，各アームに少なくとも５塩基あれば，標的ＲＮＡに結合するか，さもなくば相互作用することができる。酵素的核酸分子は，ｍＲＮＡメッセージ中の種々の部位にアニーリングするよう設計した。結合アームは，上述の標的部位配列に相補的である。
【０３０９】
ＨＢＶ標的部位
ＨＢＶを標的とする有用なリボザイムおよびアンチセンス核酸の標的は，Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９３／２３５６９；Ｓｕｌｌｉｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９３／２３０５７；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９４／０２５９５；Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９５／０４８１８；ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，５２５，４６８に開示されるようにして決定することができる。他の例としては，疾病関連遺伝子の発現の不活性化に関する以下のＰＣＴ出願が挙げられる：ＷＯ９５／２３２２５，ＷＯ９５／１３３８０，ＷＯ９４／０２５９５。本明細書においては，これらの文書に提供されるガイダンスを繰り返さずに，以下にそのような方法の特定の例を記載するが，これらに限定されない。そのような標的に対するリボザイムおよびアンチセンスをこれらの出願に記載されるように設計し，合成して，やはりこれらに記載されるようにインビトロおよびインビボで試験する。ヒトＨＢＶ  ＲＮＡの配列（例えば，受託番号ＡＦ１００３０８．１；ＨＢＶ株２−１８；当業者はさらに別のＨＢＶ株をスクリーニングすることができる，他の可能性のある株については表ＩＩＩを参照）を，コンピュータフォールディングアルゴリズムを用いて最適な酵素的核酸およびアンチセンス標的部位についてスクリーニングした。アンチセンス，ハンマーヘッド，ＤＮＡザイム，ＮＣＨ（イノザイム），アンバーザイム，チンザイムまたはＧ切断剤リボザイムの結合／切断部位を同定した。これらの部位は表Ｖ−ＸＩに示される（表中，すべての配列は５’から３’方向である；Ｘは任意の塩基対形成配列であることができ，ここでは実際の配列は重要ではない）。表中，ヌクレオチド塩基の位置は，所定のタイプの酵素的核酸分子により切断されるべき部位として示される。表ＩＶは，Ｄｒａｐｅｒ，米国特許出願（０７／８８２，７１２），１９９２年５月１４日出願，表題"ＭＥＴＨＯＤ  ＡＮＤ  ＲＥＡＧＥＮＴ  ＦＯＲ  ＩＮＨＩＢＩＴＩＮＧ  ＨＥＰＡＴＩＴＩＳ  Ｂ  ＶＩＲＵＳ  ＲＥＰＬＩＣＡＴＩＯＮ"およびＤｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９３／２３５６９，１９９３年４月２９日出願，表題"ＭＥＴＨＯＤ  ＡＮＤ  ＲＥＡＧＥＮＴ  ＦＯＲ  ＩＮＨＩＢＩＴＩＮＧ  ＶＩＲＡＬ  ＲＥＰＬＩＣＡＴＩＯＮ"において用いられた，Ｒｅｎｂｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，Ｓｃｉ．Ｓｉｎ．，３０，５０７から選択された基質位置を示す。Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９５／２３２２５において議論されているように，ヒト配列をスクリーニングしてその後に酵素的核酸分子および／またはアンチセンスを設計することができるが，マウスを標的とするリボザイムは，ヒトで試験する前に酵素的核酸分子および／またはアンチセンスの作用の有効性を試験するのに有用でありうる。
【０３１０】
アンチセンス，ハンマーヘッド，ＤＮＡザイム，ＮＣＨ（イノザイム），アンバーザイム，チンザイムまたはＧ切断剤リボザイムの結合／切断部位は，上述したように同定した。核酸分子はコンピュータフォールディングにより個々に分析して（Ｊａｅｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６，７７０６），配列が適切な二次構造にフォールディングされるか否かを評価した。例えば結合アームと触媒コアとの間に望ましくない分子内相互作用を有する核酸分子は考慮から除外した。結合アームの長さを変化させて最適活性を選択することができる。
【０３１１】
アンチセンス，ハンマーヘッド，ＤＮＡザイム，ＮＣＨ，アンバーザイム，チンザイムまたはＧ−切断剤リボザイムの結合／切断部位を同定し，ＲＮＡ標的中の種々の部位にアニーリングするよう設計した。結合アームは，上述の標的部位配列に相補的である。核酸分子は化学的に合成した。用いた合成方法は，以下に，およびＵｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０９，７８４５；Ｓｃａｒｉｎｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１８，５４３３；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４；およびＣａｒｕｔｈｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ２１１，３−１９に記載される通常のＤＮＡ／ＲＮＡ合成の方法にしたがう。
【０３１２】
核酸分子の合成
１００ヌクレオチドを越える長さの核酸の合成は，自動化方法を用いては困難であり，そのような分子の治療的コストは非常に高くなる。本発明においては，好ましくは，小さい核酸モチーフ（"小さい"とは，１００ヌクレオチド以下の長さ，好ましくは８０ヌクレオチド以下の長さ，最も好ましくは５０ヌクレオチド以下の長さの核酸モチーフ，例えばデコイ核酸分子，アプタマー核酸分子アンチセンス核酸分子，酵素的核酸分子を表す）が外的輸送に用いられる。これらの分子は構造が簡単であるため，核酸が蛋白質および／またはＲＮＡ構造の標的領域に進入する能力が高い。本発明の例示的分子は化学的に合成するが，他の分子も同様に合成することができる。
【０３１３】
オリゴヌクレオチド（例えば，ＤＮＡオリゴヌクレオチド）は，Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ２１１，３−１９，Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９９／５４４５９，Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４，Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．，７４，５９，Ｂｒｅｎｎａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｂｉｏｅｎｇ．，６１，３３−４５，およびＢｒｅｎｎａｎ，米国特許６，００１，３１１に記載されるような，当該技術分野において知られるプロトコルを用いて合成する。オリゴヌクレオチドの合成には，一般の核酸保護基およびカップリング基，例えば５’末端にジメトキシトリチル，および３’末端にホスホルアミダイトを用いる。非限定的例においては，３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成器で，０．２μｍｏｌスケールのプロトコルで，２’−Ｏメチル化ヌクレオチドについては２．５分間のカップリング工程，および２’−デオキシヌクレオチドについては４５秒間のカップリング工程で，小スケールの合成を行う。表ＩＩは，合成サイクルで用いる試薬の量および接触時間の概要を示す。あるいは，０．２μｍｏｌスケールでの合成は，９６ウエルプレート合成機，例えば，Ｐｒｏｔｏｇｅｎｅ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）により製造される装置で，サイクルに最少の改変を加えて行うことができる。２’−Ｏ−メチル残基の各カップリングサイクルにおいて，ポリマー結合５’−ヒドロキシルに対して３３倍過剰（６０μＬの０．１１Ｍ＝６．６μｍｏｌ）の２’−Ｏ−メチルホスホルアミダイトおよび１０５倍過剰のＳ−エチルテトラゾール（６０μＬの０．２５Ｍ＝１５μｍｏｌ）を用いることができる。デオキシ残基の各カップリングサイクルにおいて，ポリマー結合５’−ヒドロキシルに対して２２倍過剰（４０μＬの０．１１Ｍ＝４．４μｍｏｌ）のデオキシホスホルアミダイトおよび７０倍過剰のＳ−エチルテトラゾール（４０μＬの０．２５Ｍ＝１０μｍｏｌ）を用いることができる。３９４Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成機における平均カップリング収率は，トリチル画分の比色定量により決定して，典型的には９７．５−９９％である。３９４Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔeｍｓ，Ｉｎｃ．合成器で用いる他のオリゴヌクレオチド合成試薬は以下のとおりである：脱トリチル化溶液は塩化メチレン中３％ＴＣＡ(ＡＢＩ）であり；キャッピングは，ＴＨＦ中１６％Ｎ−メチルイミダゾール（ＡＢＩ）およびＴＨＦ中１０％無水酢酸／１０％２，６−ルチジン（ＡＢＩ）中で行い；酸化溶液は，１６．９ｍＭ  Ｉ2，４９ｍＭピリジン，ＴＨＦ中９％水（ＰＥＲＳＥＰＴＩＶＥ（登録商標））である。Ｂｕｒｄｉｃｋ＆Ｊａｃｋｓｏｎ合成等級アセトニトリルは，試薬瓶から直接用いる。Ｓ−エチルテトラゾール溶液（アセトニトリル中０．２５Ｍ）は，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｉｎｃ．から入手した固体から作成する。あるいは，ホスホロチオエート結合の導入のために，ボーケージ試薬（３��１，２−ベンゾジチオール−３−オン１，１−ジオキシド，アセトニトリル中０．０５Ｍ）を用いる。
【０３１４】
ＤＮＡに基づくオリゴヌクレオチドの脱保護は以下のように行う：ポリマー結合トリチルオンオリゴリボヌクレオチドを４ｍＬのガラスねじ蓋バイアルに移し，４０％水性メチルアミン（１ｍＬ）の溶液中で６５℃で１０分間懸濁した。−２０℃に冷却した後，上清をポリマー支持体から除去した。支持体を１．０ｍＬのＥｔＯＨ：ＭｅＣＮ：Ｈ2Ｏ／３：１：１で３回洗浄し，ボルテックスし，次に上清を最初の上清に加えた。オリゴリボヌクレオチドを含む合わせた上清を乾燥して，白色粉末を得る。
【０３１５】
ある種のデコイ核酸分子および酵素的核酸分子を含む通常のＲＮＡについて用いられる合成方法は，Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７  Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０９，７８４５；Ｓｃａｒｉｎｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１８，５４３３；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．，７４，５９；に記載の方法にしたがい，慣用の核酸保護基およびカップリング基，例えば，５’末端にジメトキシトリチル，および３’末端にホスホルアミダイトを用いる。非限定的例においては，小スケールの合成は，３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成機で，改変した０．２μｍｏｌスケールのプロトコルを用いて，アルキルシリル保護ヌクレオチドについては７．５分間のカップリング工程を，２’−Ｏ−メチル化ヌクレオチドについては２．５分間のカップリング工程を行う。表ＩＩは，合成サイクルにおいて用いる試薬の量および接触時間の概要を示す。あるいは，０．２μｍｏｌスケールでの合成は，９６ウエルプレート合成機，例えば，Ｐｒｏｔｏｇｅｎｅ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）により製造される装置で，サイクルに最少の改変を加えて行うことができる。２’−Ｏ−メチル残基の各カップリングサイクルにおいて，ポリマー結合５’−ヒドロキシルに対して３３倍過剰（６０μＬの０．１１Ｍ＝６．６μｍｏｌ）のホスホルアミダイトおよび７５倍過剰のＳ−エチルテトラゾール（６０μＬの０．２５Ｍ＝１５μｍｏｌ）を用いた。リボ残基の各カップリングサイクルにおいて，ポリマー結合５’−ヒドロキシルに対して６６倍過剰（１２０μＬの０．１１Ｍ＝１３．２μｕｍｏｌ）のアルキルシリル（リボ）保護ホスホルアミダイトおよび１５０倍過剰のＳ−エチルテトラゾール（１２０μＬの０．２５Ｍ＝３０μｍｏｌ）を用いることができる。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成機における平均カップリング収率は，トリチル画分の比色定量により決定して，典型的には９７．５−９９％である。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成器で用いる他のオリゴヌクレオチド合成試薬は以下のとおりである：脱トリチル化溶液は塩化メチレン中３％ＴＣＡ(ＡＢＩ）であり；キャッピングは，ＴＨＦ中１６％Ｎ−メチルイミダゾール（ＡＢＩ）およびＴＨＦ中１０％無水酢酸／１０％２，６−ルチジン（ＡＢＩ）中で行い；酸化溶液は，１６．９ｍＭ  Ｉ2，４９ｍＭピリジン，ＴＨＦ中９％水（ＰＥＲＳＥＰＴＩＶＥ（登録商標））であった。Ｂｕｒｄｉｃｋ＆Ｊａｃｋｓｏｎ合成等級アセトニトリルは，試薬瓶から直接用いた。Ｓ−エチルテトラゾール溶液（アセトニトリル中０．２５Ｍ）は，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｉｎｃ．から入手した固体から作成した。あるいは，ホスホロチオエート結合の導入のために，ボーケージ試薬（３Ｈ−１，２−ベンゾジチオール−３−オン１，１−ジオキシド，アセトニトリル中０．０５Ｍ）を用いる。
【０３１６】
ＲＮＡの脱保護は，２ポットプロトコルまたは１ポットプロトコルのいずれかを用いて行う。２ポットプロトコルについては，ポリマー結合トリチルオンオリゴリボヌクレオチドを４ｍＬのガラスねじ蓋バイアルに移し，４０％水性メチルアミン（１ｍＬ）の溶液中で６５℃で１０分間懸濁する。−２０℃に冷却した後，上清をポリマー支持体から除去する。支持体を１．０ｍＬのＥｔＯＨ：ＭｅＣＮ：Ｈ2Ｏ／３：１：１で３回洗浄し，ボルテックスし，次に上清を最初の上清に加える。オリゴリボヌクレオチドを含む合わせた上清を乾燥して，白色粉末を得る。塩基脱保護オリゴリボヌクレオチドを無水ＴＥＡ／ＨＦ／ＮＭＰ溶液（１．５ｍＬ  Ｎ−メチルピロリジノン，７５０μＬ  ＴＥＡおよび１．０ｍＬ  ＴＥＡ・３ＨＦの溶液３００μＬ，ＨＦ濃度１．４Ｍ）に再懸濁し，６５℃に加熱する。１．５時間後，オリゴマーを１．５Ｍ  ＮＨ4ＨＣＯ3で急冷する。
【０３１７】
あるいは，１ポットプロトコルのためには，ポリマー結合トリチルオンオリゴリボヌクレオチドを４ｍＬのガラスねじ蓋バイアルに移し，３３％エタノール性メチルアミン／ＤＭＳＯ：１／１（０．８ｍＬ）の溶液中で，６５℃で１５分間懸濁する。バイアルを室温にする。ＴＥＡ・３ＨＦ（０．１ｍＬ）を加え，バイアルを６５℃で１５分間加熱する。試料を−２０℃に冷却し，次に１．５Ｍ  ＮＨ4ＨＣＯ3で急冷する。
【０３１８】
トリチルオンオリゴマーの精製のためには，急冷したＮＨ4ＨＣＯ3溶液を，アセトニトリル，続いて５０ｍＭ  ＴＥＡＡで予備洗浄したＣ−１８含有カートリッジに負荷する。負荷したカートリッジを水で洗浄した後，ＲＮＡを０．５％ＴＦＡで１３分間脱トリチル化する。次にカートリッジを水で再び洗浄し，１Ｍ  ＮａＣｌで塩交換し，再び水で洗浄する。次に，３０％アセトニトリルでオリゴヌクレオチドを溶出する。
【０３１９】
不活性ハンマーヘッドリボザイムまたは減弱化対照（ＢＡＣ）オリゴヌクレオチド）は，Ｇ５をＵで，Ａ１４をＵで置換することにより合成する（番号付けは，Ｈｅｒｔｅｌ，Ｋ．Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２０，３２５２による）。同様に，他の核酸デコイ分子に１またはそれ以上のヌクレオチド置換を導入して分子を不活性化し，そのような分子は負の対照として働くことができる。
【０３２０】
平均段階カップリング収率は，典型的には＞９８％である（Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４）。当業者は，合成のスケールは，上述の例より大きくまたは小さく，例えば，限定されないが，９６ウエルのフォーマットに適合させることができること，および，重要なすべては，反応において用いられる化学物質の比率であることを認識するであろう。
【０３２１】
あるいは，本発明の核酸分子は，別々に合成して，合成後に例えばライゲーションにより一緒につなげてもよい（Ｍｏｏｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５６，９９２３；Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．国際公開ＷＯ９３／２３５６９；Ｓｈａｂａｒｏｖａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  １９，４２４７；Ｂｅｌｌｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ＆Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，１６，９５１；Ｂｅｌｌｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ＆Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，Ｂｅｌｌｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍ．８，２０４）。
【０３２２】
本発明の核酸分子は，広範囲に修飾して，ヌクレアーゼ耐性基，例えば，２’−アミノ，２’−Ｃ−アリル，２’−フルオロ，２’−Ｏ−メチル，２’−Ｈによる修飾により安定性を高める（概説としてはＵｓｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｅｄｅｒｇｒｅｎ，１９９２，ＴＩＢＳ１７，３４；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｓｙｍｐ．Ｓｅｒ．３１，１６３を参照）。リボザイムは，一般的な方法を用いてゲル電気泳動により精製するか，または高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）を参照，その全体を本明細書の一部としてここに引用する）により精製し，水に再懸濁する。
【０３２３】
化学的に合成した，この研究において有用な核酸分子の配列は，表ＸＩ，ＸＶ，ＸＸ，ＸＸＩ，ＸＸＩＩおよびＸＸＩＩＩに示される。表ＩＶ−ＸＩ，ＸＩＶ−ＸＶおよびＸＶＩＩＩ−ＸＸＩＩＩに記載される核酸配列は，リボヌクレオチドで，または他のヌクレオチドまたは非ヌクレオチドで形成することができる。そのような核酸配列は，表において特定的に記載される配列と同等である。
【０３２４】
本発明の核酸分子の活性の最適化
血清リボヌクレアーゼによる分解を防止する修飾（塩基，糖および／またはリン酸）を有する，化学的に合成された核酸分子は，その抗力が高まるであろう（例えば，Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９２／０７０６５；Ｐｅｒｒａｕｌｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｎａｔｕｒｅ  ３４４，５６５；Ｐｉｅｋｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５３，３１４；Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｅｄｅｒｇｒｅｎ，１９９２  Ｔｒｅｎｄｓ  ｉｎ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．１７，３３４；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９３／１５１８７；Ｒｏｓｓｉ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９１／０３１６２；Ｓｐｒｏａｔ，米国特許５，３３４，７１１；Ｇｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，ＵＳ６，３００，０７４およびＢｕｒｇｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）を参照（これらはすべて本明細書の一部としてここに引用する）。上述の参考文献はすべて，本明細書に記載される核酸分子の塩基，リン酸および／または糖成分になしうる種々の化学修飾を記載する。細胞中におけるその抗力を増強する修飾，およびオリゴヌクレオチドの合成時間を短縮し化学物質の必要性を減少するために核酸分子から塩基を除去することが望ましい。
【０３２５】
当該技術分野には，そのヌクレアーゼ安定性および効力を有意に増強することができる，核酸分子（例えば酵素的核酸分子）中に導入することができる糖，塩基およびリン酸修飾を記述するいくつかの例がある。例えば，オリゴヌクレオチドは，ヌクレアーゼ耐性基，例えば，２’−アミノ，２’−Ｃ−アリル，２'−フルオロ，２’−Ｏ−メチル，２’−Ｏ−アリル，２'−Ｈ，ヌクレオチド塩基修飾で修飾することにより，安定性を高め，および／または生物学的活性を増強するために修飾される（総説については，Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｅｄｅｒｇｒｅｎ，１９９２  ＴＩＴＢＳ  １７，３４；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｓｙｍｐ．Ｓｅｒ．３１，１６３；Ｂｕｒｇｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｙ  ３５，１４０９０を参照）。核酸分子の糖修飾は，当該技術分野において広く記載されている（Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９２／０７０６５；Ｐｅｒｒａｕｌｔ  ｅｔ  ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ  １９９０，３４４，５６５−５６８；Ｐｉｅｋｅｎ  ｅｔ  ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９１，２５３，３１４−３１７；Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｅｄｅｒｇｒｅｎ，Ｔｒｅｎｄｓ  ｉｎ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．１９９２，１７，３３４−３３９；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．国際公開ＷＯ９３／１５１８７；Ｓｐｒｏａｔ，米国特許５，３３４，７１１，Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０，２５７０２；Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９７／２６２７０；Ｂｅｉｇｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，７１６，８２４；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，６２７，０５３；Ｗｏｏｌｆ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９８／１３５２６；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許出願６０／０８２，４０４，１９９８年４月２０日出願；Ｋａｒｐｅｉｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．，３９，１１３１；Ｅａｒｎｓｈａｗ  ａｎｄ  Ｇａｉｔ，１９９８，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ（Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ），４８，３９−５５；Ｖｅｒｍａ  ａｎｄ  Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，１９９８，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，６７，９９−１３４；およびＢｕｒｌｉｎａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，５，１９９９−２０１０を参照，これらの参考文献はすべて，その全体を本明細書の一部としてここに引用する）。これらの刊行物は，触媒活性を阻害することなく，糖，塩基および／またはリン酸修飾等をリボザイム中に組み込む位置を決定する一般的方法および戦略を記載しており，本明細書の一部としてここに引用する。このような教示の観点から，本明細書に記載されるものと同様の修飾を用いて，本発明の核酸分子を修飾することができる。
【０３２６】
ホスホロチオエート，ホスホロチオエート，および／または５’−メチルホスホネート結合によるオリゴヌクレオチドのヌクレオチド間結合の化学修飾は安定性を改良するが，過剰な修飾はある種の毒性を引き起こしうる。したがって，核酸分子を設計する場合，これらのヌクレオチド間結合の量は最小にすべきである。これらの結合の濃度を減少させると，毒性が低下し，これらの分子の効力が増加し特異性が高くなるはずである。
【０３２７】
活性を維持するかまたは増強させる化学的修飾を有する核酸分子が提供される。そのような核酸はまた，一般に非修飾核酸よりヌクレアーゼに対してより耐性が高い。したがって，インビトロおよび／またはインビボで，活性は顕著に低下しないはずである。調節が目的である場合，外的に輸送された治療用核酸分子は，最適には，望ましくない蛋白質のレベルが低下するのに充分長い時間標的ＲＮＡの翻訳が調節されるまで細胞内で安定であるべきである。この時間は，疾病状態に依存して数時間から数日まで様々であろう。ＲＮＡおよびＤＮＡの化学合成の改良（Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７；Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ２１１，３−１９（本明細書の一部としてここに引用する））により，上述したように，ヌクレオチド修飾を導入してそのヌクレアーゼ安定性を増強させることにより，核酸分子を修飾する可能性が拡大した。
【０３２８】
１つの態様においては，本発明の核酸分子は１またはそれ以上のＧクランプヌクレオチドを含む。Ｇクランプヌクレオチドは，修飾シトシン類似体であり，ここで，修飾は，デュープレックス中の相補的グアニンのワトソン・クリックおよびフーグスティーン面の両方の水素結合の能力を与える。例えば，Ｌｉｎ  ａｎｄ  Ｍａｔｔｅｕｃｃｉ，１９９８，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１２０，８５３１−８５３２を参照。オリゴヌクレオチド中の単一のＧクランプ類似体置換は，相補的オリゴヌクレオチドにハイブリダイズしたときのらせん熱安定性およびミスマッチ識別性を実質的に増強することができる。そのようなヌクレオチドを本発明の核酸分子中に取り込ませることにより，核酸標的に対する親和性および特異性の両方が増強される。別の態様においては，本発明の核酸分子は１またはそれ以上のＬＮＡ"ロックされた核酸"ヌクレオチド，例えば，２’，４’−Ｃメチレンビシクロヌクレオチドを含む（例えば，Ｗｅｎｇｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ００／６６６０４およびＷＯ９９／１４２２６を参照）。
【０３２９】
別の態様においては，本発明は，ＨＢＶまたはＨＣＶを標的とする核酸分子のコンジュゲートおよび／または複合体を特徴とする。そのようなコンジュゲートおよび／または複合体は，生物系，例えば細胞への分子の輸送を容易にするために用いることができる。本発明により提供されるコンジュゲートおよび複合体は，治療用化合物を細胞膜を超えて輸送し，薬物動態学を変更し，および／または本発明の核酸分子の局在化を調節することにより，治療的活性を与えることができる。本発明は，分子，例えば，限定されないが，小分子，脂質，リン脂質，ヌクレオシド，ヌクレオチド，核酸，抗体，トキシン，負に荷電したポリマーおよび他のポリマー，例えば，蛋白質，ペプチド，ホルモン，炭水化物，ポリエチレングリコール，またはポリアミンを，細胞膜を横切って輸送するための，新規コンジュゲートおよび複合体の設計および合成を包含する。一般に，記載されるトランスポーターは，個々にまたは多成分系の一部として，分解性リンカー付きでまたはなしで用いるよう設計される。これらの化合物は，血清の存在下または非存在下で本発明の核酸分子を異なる組織に由来する多数の細胞タイプに輸送および／または局在化することを改良すると予測される（Ｓｕｌｌｅｎｇｅｒ  ａｎｄ  Ｃｅｃｈ，ＵＳ５，８５４，０３８を参照）。本明細書に記載される分子のコンジュゲートは，生物分解性のリンカー，例えば生物分解性核酸リンカー分子を介して，生物学的に活性な分子に結合させることができる。
【０３３０】
本明細書において用いる場合，"生物分解性核酸リンカー分子"との用語は，１つの分子を別の分子，例えば，生物学的に活性な分子に接続するための生物分解性リンカーとして設計される核酸分子を表す。生物分解性核酸リンカー分子の安定性は，リボヌクレオチド，デオキシリボヌクレオチド，および化学的に修飾されたヌクレオチド，例えば，２’−Ｏ−メチル，２’−フルオロ，２’−アミノ，２’−Ｏ−アミノ，２’−Ｃ−アリル，２’−Ｏ−アリル，および他の２’−修飾または塩基修飾ヌクレオチドの種々の組み合わせを用いることにより改変することができる。生物分解性核酸リンカー分子は，ダイマー，トリマー，テトラマー，またはより長い核酸分子，例えば，約，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３，１４，１５，１６，１７，１８，１９，または２０ヌクレオチドの長さのオリゴヌクレオチドであることができ，またはリンに基づく結合，例えば，ホスホルアミデートまたはホスホジエステル結合を有する単一のヌクレオチドを含むことができる。生物分解性核酸リンカー分子はまた，核酸骨格，核酸糖，または核酸塩基修飾を含むことができる。
【０３３１】
本明細書において用いる場合，"生物分解性"との用語は，生物学的系における分解，例えば酵素的分解または化学的分解を表す。
【０３３２】
本明細書において用いる場合，"生物学的に活性な分子"との用語は，系において生物学的応答を導き出すかまたは調節することができる化合物または分子を表す。本発明により企図される生物学的に活性な分子の非限定的例としては，治療上活性な分子，例えば，抗体，ホルモン，抗ウイルス，ペプチド，蛋白質，化学療法剤，小分子，ビタミン，補因子，ヌクレオシド，ヌクレオチド，オリゴヌクレオチド，酵素的核酸，アンチセンス核酸，トリプレックス形成オリゴヌクレオチド，２，５−Ａキメラ，ｓｉＲＮＡ，ｄｓＲＮＡ，アロザイム，アプタマー，デコイおよびこれらの類似体が含まれる。本発明の生物学的に活性な分子には，他の生物学的に活性な分子の薬物動態学および／または薬力学を調節することができる分子，例えば，脂質およびポリマー，例えば，ポリアミン，ポリアミド，ポリエチレングリコールおよび他のポリエーテルも含まれる。
【０３３３】
本明細書において用いる場合，"リン脂質"との用語は，少なくとも１つのリン基を含む疎水性分子を表す。例えば，リン脂質は，リン含有基および，ＯＨ，ＣＯＯＨ，オキソ，アミン，または置換もしくは未置換アリール基で任意に置換されていてもよい飽和または不飽和アルキル基を含むことができる。
【０３３４】
外的に輸送された治療用核酸分子（例えば，デコイ核酸分子）は，最適には，ＨＢＶまたはＨＣＶ  ＤＮＡのレベルを低下させるのに充分長い時間プレゲノムＲＮＡが逆転写されるまで細胞内で安定である。核酸分子は，有効な細胞内治療用薬剤として機能するために，ヌクレアーゼに対して耐性である。上述するように，本発明および当該技術分野において記載される核酸分子の化学合成の改良は，ヌクレオチド修飾を導入してそのヌクレアーゼ安定性を高めることにより，核酸分子を修飾する可能性を拡大した。
【０３３５】
さらに別の態様においては，酵素的活性を維持するかまたは増強させる化学的修飾を有する核酸分子が提供される。そのような核酸はまた，一般に非修飾核酸よりヌクレアーゼに対してより耐性が高い。すなわち，インビトロおよび／またはインビボで，活性は顕著に低下しないはずである。本明細書に例示されるように，そのような核酸分子は，全体の活性が１０倍低下したとしても，インビトロおよび／またはインビボにおいて有用である（Ｂｕｒｇｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３５，１４０９０）。
【０３３６】
本発明の核酸に基づく分子を用いることは，組み合わせ療法（例えば，異なる遺伝子を標的とする複数のアンチセンス，核酸デコイ，または核酸アプタマー分子；既知の小分子調節剤と結合させた核酸分子；または分子の組み合わせ（異なるモチーフのものおよび／または他の化学的または生物学的分子を含む）を用いる断続的治療）の可能性を提供することにより，疾病進行のよりよい治療につながるであろう。核酸分子による患者の治療はまた，異なるタイプの核酸分子の組み合わせを含む。
【０３３７】
別の観点においては，核酸分子は５’および／または３’−キャップ構造を含む。
【０３３８】
"キャップ構造"とは，オリゴヌクレオチドのいずれかの末端に組み込まれている化学的修飾を意味する（例えば，Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９７／２６２７０（本明細書の一部としてここに引用する）を参照）。これらの末端修飾は，核酸分子をエキソヌクレアーゼ分解から保護し，輸送および／または細胞中の局在化を助けるであろう。キャップは５’−末端（５’−キャップ）に存在してもよく，または３’−末端（３’−キャップ）に存在してもよく，両方の末端に存在してもよい。非限定的例においては，５’−キャップは，反転無塩基残基（成分）；４’，５’−メチレンヌクレオチド；１−（ベータ−Ｄ−エリスロフラノシル）ヌクレオチド，４’−チオヌクレオチド；炭素環式ヌクレオチド；１，５−アンヒドロヘキシトールヌクレオチド；Ｌ−ヌクレオチド；アルファ−ヌクレオチド；修飾塩基ヌクレオチド；ホスホロジチオエート結合；スレオ−ペントフラノシルヌクレオチド；非環状３’，４’−セコヌクレオチド；非環状３，４−ジヒドロキシブチルヌクレオチド；非環状３，５−ジヒドロキシペンチルヌクレオチド，３’−３’−反転ヌクレオチド成分；３’−３’−反転無塩基成分；３’−２’−反転ヌクレオチド成分；３’−２’−反転無塩基成分；１，４−ブタンジオールリン酸；３’−ホスホルアミデート；ヘキシルリン酸；アミノヘキシルリン酸；３’−リン酸；３’−ホスホロチオエート；ホスホロジチオエート；または架橋または非架橋メチルホスホネート成分からなる群より選択される（詳細には，Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９７／２６２７０（本明細書の一部としてここに引用する）を参照）。
【０３３９】
さらに別の好ましい態様においては，３’−キャップは，４’，５’−メチレンヌクレオチド；１−（ベータ−Ｄ−エリスロフラノシル）ヌクレオチド；４’−チオヌクレオチド，炭素環式ヌクレオチド；５’−アミノ−アルキルリン酸；１，３−ジアミノ−２−プロピルリン酸；３−アミノプロピルリン酸；６−アミノヘキシルリン酸；１，２−アミノドデシルリン酸；ヒドロキシプロピルリン酸；１，５−アンヒドロヘキシトールヌクレオチド；Ｌ−ヌクレオチド；アルファ−ヌクレオチド；修飾塩基ヌクレオチド；ホスホロジチオエート；スレオペントフラノシルヌクレオチド；非環状３’，４’セコヌクレオチド；３，４−ジヒドロキシブチルヌクレオチド；３，５−ジヒドロキシペンチルヌクレオチド，５’−５’−反転ヌクレオチド成分；５’−５’−反転無塩基成分；５’−ホスホルアミデート；５’−ホスホロチオエート；１，４−ブタンジオールリン酸；５’−アミノ；架橋および／または非架橋５’−ホスホルアミデート，ホスホロチオエートおよび／またはホスホロジチオエート，架橋または非架橋メチルホスホネートおよび５’−メルカプト成分からなる群より選択される（より詳細には，Ｂｅａｕｃａｇｅ  ａｎｄ  Ｉｙｅｒ，１９９３，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  ４９，１９２５（本明細書の一部としてここに引用する）を参照）。
【０３４０】
"非ヌクレオチド"との用語は，１またはそれ以上のヌクレオチドユニットの代わりに核酸鎖中に導入することができ，糖および／またはリン酸置換のいずれかを含み，残りの塩基がその酵素的活性を発揮することを可能とする任意の基または化合物を意味する。基または化合物は，一般に認識されているヌクレオチド塩基，例えば，アデノシン，グアニン，シトシン，ウラシルまたはチミンを含まない場合，無塩基である。
【０３４１】
本明細書において用いる場合，"アルキル"との用語は，飽和脂肪族炭化水素を表し，直鎖，分枝鎖の"イソアルキル"，および環状アルキル基が含まれる。"アルキル"との用語はまた，アルコキシ，アルキル−チオ，アルキル−チオ−アルキル，アルコキシアルキル，アルキルアミノ，アルケニル，アルキニル，アルコキシ，シクロアルケニル，シクロアルキル，シクロアルキルアルキル，ヘテロシクロアルキル，ヘテロアリール，Ｃ１−Ｃ６ヒドロカルビル，アリールまたは置換アリール基を含む。好ましくは，アルキル基は１−１２個の炭素を有する。より好ましくは，これは約１−７個の炭素，より好ましくは約１−４個の炭素を有する低級アルキルである。アルキル基は置換されていてもされていなくてもよい。置換されている場合，置換基は，好ましくは，ヒドロキシ，オキシ，チオ，アミノ，ニトロ，シアノ，アルコキシ，アルキル−チオ，アルキル−チオ−アルキル，アルコキシアルキル，アルキルアミノ，シリル，アルケニル，アルキニル，アルコキシ，シクロアルケニル，シクロアルキル，シクロアルキルアルキル，ヘテロシクロアルキル，ヘテロアリール，Ｃ１−Ｃ６ヒドロカルビル，アリールまたは置換アリール基を含む。"アルキル"との用語はまた，少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を含むアルケニル基を含み，これには直鎖，分枝鎖，および環状基が含まれる。好ましくは，アルケニル基は，約２−１２個の炭素を有する。より好ましくは，これは約２−７個の炭素，より好ましくは約２−４個の炭素を有する低級アルケニルである。アルケニル基は置換されていてもされていなくてもよい。置換されている場合，置換基は，好ましくは，ヒドロキシ，オキシ，チオ，アミノ，ニトロ，シアノ，アルコキシ，アルキル−チオ，アルキル−チオアルキル，アルコキシアルキル，アルキルアミノ，シリル，アルケニル，アルキニル，アルコキシ，シクロアルケニル，シクロアルキル，シクロアルキルアルキル，ヘテロシクロアルキル，ヘテロアリール，Ｃ１−Ｃ６ヒドロカルビル，アリールまたは置換アリール基を含む。"アルキル"との用語はまた，少なくとも１つの炭素−炭素三重結合を含むアルキニル基を含み，これには直鎖，分枝鎖，および環状基が含まれる。好ましくは，アルキニル基は約２−１２個の炭素を有する。より好ましくは，これは約２−７個の炭素，より好ましくは約２−４個の炭素を有する低級アルキニルである。アルキニル基は置換されていてもされていなくてもよい。置換されている場合，置換基は，好ましくは，ヒドロキシ，オキシ，チオ，アミノ，ニトロ，シアノ，アルコキシ，アルキル−チオ，アルキル−チオ−アルキル，アルコキシアルキル，アルキルアミノ，シリル，アルケニル，アルキニル，アルコキシ，シクロアルケニル，シクロアルキル，シクロアルキルアルキル，ヘテロシクロアルキル，ヘテロアリール，Ｃ１−Ｃ６ヒドロカルビル，アリールまたは置換アリール基を含む。本発明のアルキル基または成分はまた，アリール，アルキルアリール，炭素環式アリール，複素環アリール，アミドおよびエステル基を含んでいてもよい。アリール基の好ましい置換基は，ハロゲン，トリハロメチル，ヒドロキシル，ＳＨ，ＯＨ，シアノ，アルコキシ，アルキル，アルケ��ル，アルキニル，およびアミノ基である。"アルキルアリール"基とは，アリール基（上で定義したとおりである）に共有結合しているアルキル基（上で定義したとおりである）を表す。炭素環式アリールは，芳香族環上の環原子がすべて炭素原子である基である。炭素原子は任意に置換されていてもよい。複素環式アリール基は，約１−３個の複素原子を芳香族環の環原子として有し，残りの環原子が炭素原子である基である。適当な複素原子には，酸素，イオウ，および窒素が含まれ，フラニル，チエニル，ピリジル，ピロリル，Ｎ−低級アルキルピロロ，ピリミジル，ピラジニル，イミダゾリル等が含まれ，すべて任意に置換されていてもよい。"アミド"とは，−Ｃ（Ｏ）−ＮＨ−Ｒ（Ｒは，アルキル，アリール，アルキルアリールまたは水素である）を表す。"エステル"とは，Ｃ（Ｏ）−ＯＲ’（Ｒは，アルキル，アリール，アルキルアリールまたは水素である）を表す。
【０３４２】
本明細書において用いる場合，"アルコキシアルキル"との用語は，アルキル−Ｏ−アルキルエーテル，例えば，メトキシエチルまたはエトキシメチルを表す。
【０３４３】
本明細書において用いる場合，"アルキル−チオ−アルキル"との用語は，アルキル−Ｓ−アルキルチオエーテル，例えば，メチルチオメチルまたはメチルチオエチルを表す。
【０３４４】
本明細書において用いる場合，"アミノ化"との用語は，有機分子中にアミノ基または置換アミンを導入するプロセスを表す。
【０３４５】
本明細書において用いる場合，"環外アミン保護成分"との用語は，オリゴヌクレオチド合成に適合した核酸塩基アミノ保護基，例えば，アシルまたはアミド基を表す。
【０３４６】
本明細書において用いる場合，"アルケニル"との用語は，少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を含む所定の数の炭素原子の直鎖または分枝鎖の炭化水素を表す。
【０３４７】
"アルケニル"の例には，ビニル，アリル，および２−メチル−３−ヘプテンが含まれる。
【０３４８】
本明細書において用いる場合，"アルコキシ"との用語は，酸素架橋を介して親分子成分に結合している所定の数の炭素原子のアルキル基を表す。アルコキシ基の例としては，例えば，メトキシ，エトキシ，プロポキシおよびイソプロポキシが挙げられる。
【０３４９】
本明細書において用いる場合，"アルキニル"との用語は，少なくとも１つの炭素−炭素三重結合を含む，所定の数の炭素原子の直鎖または分枝鎖の炭化水素を表す。
【０３５０】
"アルキニル"の例としては，プロパルギル，プロピンおよび３−ヘキシンが挙げられる。
【０３５１】
本明細書において用いる場合，"アリール"との用語は，少なくとも１つの芳香族環を含む芳香族炭化水素環系を表す。芳香族環は，任意に他の芳香族炭化水素環または非芳香族環と縮合していてもよく，結合していてもよい。アリール基の例としては，例えば，フェニル，ナフチル，１，２，３，４−テトラヒドロナフタレンおよびビフェニルが挙げられる。アリール基の好ましい例には，フェニルおよびナフチルが含まれる。
【０３５２】
本明細書において用いる場合，"シクロアルケニル"との用語は，少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を含むＣ３−Ｃ８の環状炭化水素を表す。シクロアルケニルの例としては，シクロプロペニル，シクロブテニル，シクロペンテニル，シクロペンタジエン，シクロヘキセニル，１，３−シクロヘキサジエン，シクロヘプテニル，シクロペプタトリエニル，およびシクロオクテニルが挙げられる。
【０３５３】
本明細書において用いる場合，"シクロアルキル"との用語は，Ｃ３−Ｃ８の環状炭化水素を表す。シクロアルキルの例としては，シクロプロピル，シクロブチル，シクロペンチル，シクロヘキシル，シクロヘプチルおよびシクロオクチルが挙げられる。
【０３５４】
本明細書において用いる場合，"シクロアルキルアルキル"との用語は，上で定義したアルキル基により親分子成分に結合したＣ３−Ｃ７のシクロアルキル基を表す。シクロアルキルアルキル基の例としては，シクロプロピルメチルおよびシクロペンチルエチルが挙げられる。
【０３５５】
本明細書において用いる場合，"ハロゲン"または"ハロ"との用語は，フッ素，塩素，臭素およびヨウ素を示すことを表す。
【０３５６】
本明細書において用いる場合，"ヘテロシクロアルキル"との用語は，窒素，酸素，およびイオウから選択される少なくとも１つの複素原子を含有する非芳香族環系を表す。ヘテロシクロアルキル環は，任意に，他のヘテロシクロアルキル環および／または非芳香族性炭化水素環と縮合していてもよく，結合していてもよい。好ましいヘテロシクロアルキル基は，３−７員である。ヘテロシクロアルキル基の例としては，例えば，ピペラジン，モルホリン，ピペリジン，テトラヒドロフラン，ピロリジン，およびピラゾールが挙げられる。好ましいヘテロシクロアルキル基としては，ピペリジニル，ピペラジニル，モルホリニル，およびピロリジニルが挙げられる。
【０３５７】
本明細書において用いる場合，"ヘテロアリール"との用語は，窒素，酸素およびイオウから選択される少なくとも１つの複素原子を含有する芳香族環系を表す。ヘテロアリール環は，１またはそれ以上のヘテロアリール環，芳香族性または非芳香族性炭化水素環またはヘテロシクロアルキル環と縮合してもよく，あるいは結合していてもよい。ヘテロアリール基の例としては，例えば，ピリジン，フラン，チオフェン，５，６，７，８−テトラヒドロイソキノリンおよびピリミジンが挙げられる。ヘテロアリール基の好ましい例としては，チエニル，ベンゾチエニル，ピリジル，キノリル，ピラジニル，ピリミジル，イミダゾリル，ベンゾイミダゾリル，フラニル，ベンゾフラニル，チアゾリル，ベンゾチアゾリル，イソキサゾリル，オキサジアゾリル，イソチアゾリル，ベンズイソチアゾリル，トリアゾリル，テトラゾリル，ピロリル，インドリル，ピラゾリル，およびベンゾピラゾリルが挙げられる。
【０３５８】
本明細書において用いる場合，"Ｃ１−Ｃ６ヒドロカルビル"との用語は，１−６個の炭素原子を有し，１またはそれ以上の炭素−炭素二重結合または三重結合を任意に有していてもよい直鎖，分枝鎖，または環状アルキル基を表す。ヒドロカルビル基の例としては，例えば，メチル，エチル，プロピル，イソプロピル，ｎ−ブチル，ｓｅｃ−ブチル，ｔｅｒｔ−ブチル，ペンチル，２−ペンチル，イソペンチル，ネオペンチル，ヘキシル，２−ヘキシル，３−ヘキシル，３−メチルペンチル，ビニル，２−ペンテン，シクロプロピルメチル，シクロプロピル，シクロヘキシルメチル，シクロヘキシルおよびプロパルギルが挙げられる。本明細書において，１または２個の二重結合または三重結合を含有するＣ１−Ｃ６ヒドロカルビルと称する場合，これは，アルキル中に１つの二重結合または三重結合用に少なくとも２つの炭素が存在し，２つの二重結合または三重結合用に少なくとも４個の炭素が存在することであることが理解される。
【０３５９】
本明細書において用いる場合，"ヌクレオチド"との用語は，リン酸化糖とＮ−グリコシル結合した複素環窒素塩基を表す。ヌクレオチドは，当該技術分野においては，天然塩基（標準的），および当該技術分野においてよく知られる修飾塩基を含むと認識されている。そのような塩基は，一般にヌクレオチド糖成分の１’位に位置する。ヌクレオチドは一般に，塩基，糖およびリン酸基を含む。ヌクレオチドは，糖，リン酸および／または塩基成分において修飾されていてもされていなくてもよい（互換的に，ヌクレオチド類似体，修飾ヌクレオチド，非天然ヌクレオチド，非標準的ヌクレオチド等とも称される。例えば，Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ（上掲）；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９２／０７０６５；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９３／１５１８７；Ｕｈｌｍａｎ＆Ｐｅｙｍａｎ，（上掲）（すべて本明細書の一部としてここに引用する）を参照）。当該技術分野において知られる修飾核酸塩基のいくつかの例があり，Ｌｉｍｂａｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２２，２１８３にまとめられている。核酸中に導入することができる化学的に修飾したおよび他の天然の核酸塩基のいくつかの非限定的例としては，例えば，イノシン，プリン，ピリジン−４−オン，ピリジン−２−オン，フェニル，シュードウラシル，２，４，６−トリメトキシベンゼン，３−メチルウラシル，ジヒドロウリジン，ナフチル，アミノフェニル，５−アルキルシチジン（例えば５−メチルシチジン），５−アルキルウリジン（例えばリボチミジン），５−ハロウリジン（例えば５−ブロモウリジン）または６−アザピリミジンまたは６−アルキルピリミジン（例えば６−メチルウリジン），プロピン，ケソシン，２−チオウリジン，４−チオウリジン，ワイブトシン，ワイブトキソシン，４−アセチルシチジン，５−（カルボキシヒドロキシメチル）ウリジン，５’−カルボキシメチルアミノメチル−２−チオウリジン，５−カルボキシメチルアミノメチルウリジン，ベータ−Ｄ−ガラクトシルケオシン，１−メチルアデノシン，１−メチルイノシン，２，２−ジメチルグアノシン，３−メチルシチジン，２メチルアデノシン，２−メチルグアノシン，Ｎ６−メチルアデノシン，７−メチルグアノシン，５−メトキシアミノメチル−２−チオウリジン，５−メチルアミノメチルウリジン，５−メチルカルボニルメチルウリジン，５−メチルオキシウリジン，５−メチル−２−チオウリジン，２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデノシン，ベータ−Ｄ−マンノシルケオシン，ウリジン−５−オキシ酢酸，２−チオシチジン，トレオニン誘導体およびその他のものが挙げられる（Ｂｕｒｇｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３５，１４０９０；Ｕｈｌｍａｎ＆Ｐｅｙｍａｎ，上掲）。この観点において，"修飾塩基"とは，１’位におけるアデニン，グアニン，シトシンおよびウラシル以外のヌクレオチド塩基またはそれらの同等物を意味する。そのような塩基は，任意の位置で，例えば，酵素的核酸分子の触媒コア中でおよび／または核酸分子の基質結合領域中で用いることができる。
【０３６０】
本明細書において用いる場合，"ヌクレオシド"との用語は，糖とのＮグリコシル結合における複素環窒素性塩基を表す。当該技術分野においては，ヌクレオシドは，天然塩基（標準），および当該技術分野においてよく知られる修飾塩基を含むと認識されている。そのような塩基は，一般に，ヌクレオシド糖成分の１’位に位置する。ヌクレオシドは，一般に，塩基，糖およびリン酸基を含む。ヌクレオシドは，糖，リン酸および／または塩基成分において，修飾されていても修飾されていなくてもよい（ヌクレオシド類似体，修飾ヌクレオシド，非天然ヌクレオシド，非標準的ヌクレオシドおよび他のものとして互換的に称される。例えば，Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  ＭｃＳｗｉｇｇｅｎ，（上掲）；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９２／０７０６５；Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９３／１５１８７；Ｕｈｌｍａｎ＆Ｐｅｙｍａｎ，（上掲）を参照，すべて本明細書の一部としてここに引用する）。修飾核酸塩基のいくつかの例が当該技術分野において知られるており，Ｌｉｍｂａｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２２，２１８３にまとめられている。核酸中に導入することができる化学的に修飾された塩基および他の天然の核酸塩基の非限定的例には，イノシン，プリン，ピリジン−４−オン，ピリジン−２−オン，フェニル，シュードウラシル，２，４，６−トリメトキシベンゼン，３メチルウラシル，ジヒドロウリジン，ナフチル，アミノフェニル，５−アルキルシチジン（例えば，５−メチルシチジン），５−アルキルウリジン（例えば，リボチミジン），５−ハロウリジン（例えば，５−ブロモウリジン）または６−アザピリミジンまたは６−アルキルピリミジン（例えば，６−メチルウリジン），プロピン，ケソシン，２−チオウリジン，４−チオウリジン，ワイブトシン，ワイブトキソシン，４−アセチルシチジン，５−（カルボキシヒドロキシメチル）ウリジン，５’−カルボキシメチルアミノメチル−２−チオウリジン，５−カルボキシメチルアミノメチルウリジン，ベータ−Ｄ−ガラクトシルケソシン，１−メチルアデノシン，１−メチルイノシン，２，２−ジメチルグアノシン，３−メチルシチジン，２−メチルアデノシン，２−メチルグアノシン，Ｎ６−メチルアデノシン，７−メチルグアノシン，５−メトキシアミノメチル−２−チオウリジン，５−メチルアミノメチルウリジン，５メチルカルボニルメチルウリジン，５−メチルオキシウリジン，５−メチル−２−チオウリジン，２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデノシン，ベータ−Ｄ−マンノシルケソシン，ウリジン−５−オキシ酢酸，２−チオシチジン，トレオニン誘導体および他のものが含まれる（Ｂｕｒｇｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３５，１４０９０；Ｕｈｌｍａｎ＆Ｐｅｙｍａｎ，（上掲））。この観点において"修飾塩基"とは，１’位におけるアデニン，グアニン，シトシンおよびウラシル以外のヌクレオシド塩基またはその同等物を意味する。このような塩基は，任意の位置で，例えば酵素的核酸分子の触媒コア中でおよび／または核酸分子の基質結合領域中で用いることができる。
【０３６１】
１つの態様においては，本発明はリン酸骨格修飾を有する修飾核酸分子を特徴とし，これは１またはそれ以上のホスホロチオエート，ホスホロジチオエート，メチルホスホネート，モルホリノ，アミデート，カルバメート，カルボキシメチル，アセトアミデート，ポリアミド，スルホネート，スルホンアミド，スルファメート，ホルムアセタール，チオホルムアセタール，および／またはアルキルシリル置換を含む。オリゴヌクレオチド骨格修飾の概説については，Ｈｕｎｚｉｋｅｒ  ａｎｄ  Ｌｅｕｍａｎｎ，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ａｎａｌｏｇｕｅｓ：Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ，Ｍｏｄｅｒｎ  Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  Ｍｅｔｈｏｄｓ，ＶＣＨ，３３１−４１７，およびＭｅｓｍａｅｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｏｖｅｌ  Ｂａｃｋｂｏｎｅ  Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔｓ  ｆｏｒ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，ＡＣＳ，２４−３９を参照。これらの参考文献は本明細書の一部としてここに引用する。
【０３６２】
本明細書において用いる場合，"無塩基"との用語は，１’位置において塩基を欠失しているか，または塩基の代わりに他の化学基を有する糖成分，例えば，３’，３’−結合または５’，５’−結合デオキシ無塩基リボース誘導体を意味する（詳細については，Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開９７／２６２７０を参照）。
【０３６３】
本明細書において用いる場合，"非修飾ヌクレオシド"との用語は，β−Ｄ−リボ−フラノースの１’炭素に結合した塩基，アデニン，シトシン，グアニン，チミン，ウラシルの１つを意味する。
【０３６４】
本明細書において用いる場合，"修飾ヌクレオシド"との用語は，非修飾ヌクレオチドの塩基，糖および／またはリン酸の化学構造中に修飾を含む任意のヌクレオチド塩基を意味する。
【０３６５】
本発明において記載される２’−修飾ヌクレオチドに関して，"アミノ"とは，２’−ＮＨ2または２’−Ｏ−ＮＨ2を意味し，これは修飾されていてもされていなくてもよい。そのような修飾基は，例えば，Ｅｃｋｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，６７２，６９５およびＭａｔｕｌｉｃ−Ａｄａｍｉｃ  ｅｔ  ａｌ．，ＷＯ９８／２８３１７（いずれも本明細書の一部としてここに引用する）に記載されている。
【０３６６】
核酸（例えば，酵素的核酸，アンチセンス，デコイ，アプタマー，ｓｉＲＮＡ，トリプレックスオリゴヌクレオチド，２，５−Ａオリゴヌクレオチドおよび他の核酸分子）構造に対する種々の修飾を作成して，これらの分子の有用性を高めることができる。例えば，このような修飾は，製品寿命，インビトロの半減期，安定性，およびそのようなオリゴヌクレオチドを標的部位に導入する容易さを高め，例えば，細胞膜の透過性を高め，標的とする細胞を認識し結合する能力を付与するであろう。
【０３６７】
これらの分子の使用は，組み合わせ療法の可能性を提供することにより，疾病の進行のよりよい治療につながるであろう（例えば，異なる遺伝子を標的とする多数の核酸分子，既知の小分子阻害剤とカップリングさせた核酸分子，または核酸分子（異なる核酸分子モチーフを含む）および／または他の化学的または生物学的分子の組み合わせによる間欠的治療）。核酸分子を用いる患者の治療にはまた，異なる種類の核酸分子の組み合わせが含まれる。１またはそれ以上の標的に対する酵素的核酸分子（異なる酵素的核酸分子モチーフを含む），アンチセンス，デコイ，アプタマーおよび／または２−５Ａキメラ分子の混合物を含む療法を案出して，疾病の症状を軽減することができる。
【０３６８】
核酸分子の投与
核酸分子の輸送の方法は，Ａｋｈｔａｒ  ｅｔ  ａｌ．，（１９９２，Ｔｒｅｎｄｓ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏ．，２，１３９）およびＤｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ  ｆｏｒ  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，ｅｄ．Ａｋｈｔａｒ，１９９５，Ｍａｕｒｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｍｏｌ．Ｍｅｍｂｒ．Ｂｉｏｌ．，１６，１２９−１４０；Ｈｏｆｌａｎｄ  ａｎｄ  Ｈｕａｎｇ，１９９９，Ｈａｎｄｂ．Ｅｘｐ．Ｐｌａａｒｆｎａｃｏｌ．，１３７，１６５−１９２；およびＬｅｅ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，ＡＣＳ  Ｓｙｍｐ．Ｓｅｒ．，７５２，１８４−１９２に記載されている。Ｓｕｌｌｉｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＰＣＴ  ＷＯ９４／０２５９５は，さらに，酵素的核酸分子を輸送するための一般的な方法を記載する。これらのプロトコルを用いて，事実上いかなる核酸分子も輸送することができる。核酸分子は当業者に知られる種々の方法によって細胞に投与することができ，これにはリポソームへの封入，イオントホレシス，または他のベヒクル，例えば，ヒドロゲル，シクロデキストリン，生分解性ナノカプセル，および生体接着性小球体への組み込み，または蛋白質性ベクターによるものが含まれるが，これらに限定されない（Ｏ’Ｈａｒｅ  ａｎｄ  Ｎｏｒｍａｎｄ，国際公開ＷＯ００／５３７２２）。あるいは，核酸／ベヒクルの組み合わせは，直接注入によりまたは注入ポンプを用いて局所的に輸送することができる。本発明の核酸分子の直接注入は，標準的な針とシリンジの方法論を用いて，または例えばＣｏｎｒｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｃｌｉｖａ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５，２３３０−２３３７およびＢａｒｒｙ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９９／３１２６２に記載される無針手法により，皮下，筋肉内，または皮膚内に行うことができる。本発明の分子は医薬品として用いることができる。医薬品は，患者における疾病状態を予防し，発症を調節しまたは治療する（症状をある程度，好ましくは症状をすべて軽減する）。
【０３６９】
すなわち，本発明は，１またはそれ以上の本発明の核酸を許容しうる担体，例えば，安定剤，緩衝液等の中に含む医薬組成物を特徴とする。本発明の負に荷電したポリヌクレオチド（例えば，ＲＮＡ，ＤＮＡまたは蛋白質）は，医薬組成物を形成するために安定化剤，緩衝剤等を用いて，または用いることなく，任意の標準的手段により患者に投与および導入することができる。リポソーム輸送メカニズムを用いることが望ましい場合，リポソームの処方のための標準的プロトコルに従うことができる。本発明の組成物はまた，経口投与用の錠剤，カプセルまたはエリキシル；直腸投与用の座剤；無菌溶液；注射投与用の懸濁液および当該技術分野において知られた組成物等として，処方して用いることもできる。
【０３７０】
本発明はまた，記載される化合物の薬学的に許容しうる処方を含む。これらの処方には，上述の化合物の塩，例えば，酸付加塩（例えば，塩酸，シュウ酸，酢酸およびベンゼンスルホン酸の塩）が含まれる。
【０３７１】
医薬組成物または処方は，細胞または患者への投与（例えば全身投与），好ましくはヒトへの投与に適当な形態の組成物または処方を表す。適当な形態は，部分的には，使用する投与経路（例えば経口，経皮，または注射）に依存する。そのような形態は，組成物または処方が標的細胞（すなわち，負に荷電した核酸が輸送されることが望まれる細胞）に到達することを妨害してはならない。例えば，血流中に注入される医薬組成物は可溶性でなければならない。他の因子は当該技術分野において知られており，例えば，毒性，および組成物または処方がその効果を発揮することを妨害する形態等を考慮することが含まれる。
【０３７２】
"全身投与"とは，インビボでの全身吸収，または血流中における薬剤の蓄積の後に全身に分配されることを意味する。全身的吸収をもたらす投与経路には，静脈内，皮下，腹腔内，吸入，経口，肺内および筋肉内が含まれるが，これらに限定されない。これらの投与経路のそれぞれは，所望の負に荷電したポリマー（例えば核酸）をアクセス可能な疾患組織に暴露する。薬剤が循環中に入る速度は，分子量またはサイズの関数であることが示されている。本発明の化合物を含むリポソームまたは他の薬剤担体を使用することにより，薬剤を，例えば，あるタイプの組織（例えば網状内皮系（ＲＥＳ）の組織）に局在化させることが可能である。薬剤と細胞（例えば白血球およびマクロファージ）の表面との会合を容易にすることができるリポソーム処方もまた有用である。この方法は，マクロファージおよび白血球による異常な細胞（例えば癌細胞）の免疫認識の特異性を利用することにより，薬剤の標的細胞への輸送を増強するであろう。
【０３７３】
"薬学的に許容しうる処方"とは，本発明の核酸分子をその所望の活性に最も適した物理学的位置に有効に分布させることができる組成物または処方を意味する。本発明の核酸分子とともに処方するのに適した薬剤の非限定的例には以下のものが含まれる：ＣＮＳ中への薬剤の侵入を促進することができるＰ−糖蛋白質阻害剤（Ｐｌｕｒｏｎｉｃ  Ｐ８５等）（Ｊｏｌｌｉｅｔ−Ｒｉａｎｔ  ａｎｄ  Ｔｉｌｌｅｍｅｎｔ，１９９９，Ｆｕｎｄａｍ．Ｃｌｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，１３，１６−２６）；大脳内移植後の徐放輸送用の生分解性ポリマー，例えばポリ（ＤＬ−ラクチド−ｃｏグリコリド）微小球（Ｅｍｅｒｉｃｈ，ＤＦ  ｅｔ  ａｌ，１９９９，Ｃｅｌｌ移植，８，４７−５８）Ａｌｋｅｒｍｅｓ，Ｉｎｃ．Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ；および薬剤を脳血管関門を越えて輸送することができ，神経の取り込みメカニズムを変更しうる，例えばポリブチルシアノアクリレートから作成される充填されたナノ粒子（ＰｒｏｇＮｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌ  Ｂｉｏｌ  Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ，２３，９４１−９４９，１９９９）。本発明の核酸分子の輸送戦略の他の非限定的例には，Ｂｏａｄｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｃｉ．，８７，１３０８−１３１５；Ｔｙｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．，４２１，２８０−２８４；Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，ＰＮＡＳ  ＵＳＡ．，９２，５５９２−５５９６；Ｂｏａｄｏ，１９９５，Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖ．，１５，７３−１０７；Ａｌｄｒｉａｎ−Ｈｅｒｒａｄａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２６，４９１０−４９１６；およびＴｙｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，ＰＮＡＳ  ＵＳＡ．，９６，７０５３−７０５８に記載されるものが含まれる。
【０３７４】
本発明はまた，ポリ（エチレングリコール）脂質（ＰＥＧ−修飾，または長期間循環リポソームまたはステルスリポソーム）を含む，表面修飾リポソームを含む組成物の使用を特徴とする。これらの処方は，標的組織における薬剤の蓄積を増加させる方法を提供する。この種類の薬剤担体は，単核食細胞システム（ＭＰＳまたはＲＥＳ）によるオプソニン作用および排除に抵抗性であり，したがって，封入された薬剤の血流循環時間を長くし，組織への暴露を増強する（Ｌａｓｉｃ  ｅｔ  ａｌ．Ｃｈｅｍ．Ｒｅｖ．１９９５，９５，２６０１−２６２７；Ｉｓｈｉｗａｔａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｕｌｌ．１９９５，４３，１００５−１０１１）。そのようなリポソームは，おそらくは脈管新生標的組織における溢出および捕獲のため，腫瘍中に選択的に蓄積することが示されている（Ｌａｓｉｃ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９５，２６７，１２７５−１２７６；Ｏｋｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１２３８，８６−９０）。長期間循環リポソームは，特に，ＭＰＳの組織で蓄積することが知られている慣用のカチオン性リポソームと比べて，ＤＮＡおよびＲＮＡの薬物動態学および薬力学を増強する（Ｌｉｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９５，４２，２４８６４−２４８７０；Ｃｈｏｉ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／１０３９１；Ａｎｓｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／１０３９０；Ｈｏｌｌａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／１０３９２）。長期間循環リポソームはまた，代謝的に攻撃的なＭＰＳ組織，例えば肝臓および脾臓における蓄積を回避するその能力に基づいて，カチオン性リポソームと比較して薬剤をヌクレアーゼ分解からより強く保護するようである。
【０３７５】
本発明はまた，薬学的に有効量の所望の化合物を薬学的に許容しうる担体または希釈剤中に含む，保存または投与用に調製される組成物を含む。治療用途に用いるための許容しうる担体または希釈剤は，医薬の技術分野においてよく知られており，例えばＲｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．（Ａ．Ｒ．Ｇｅｎｎａｒｏ  ｅｄｉｔ．１９８５）（本明細書の一部としてここに引用する）に記載されている。例えば，保存剤，安定剤，染料，および風味剤を用いることができる。これらには，安息香酸ナトリウム，ソルビン酸，およびｐ−ヒドロキシ安息香酸のエステルが含まれる。さらに，抗酸化剤および懸濁剤を用いてもよい。
【０３７６】
薬学的に有効な用量とは，疾患状態の予防，発症の阻害または治療（症状をある程度緩和し，好ましくはすべての症状を緩和する）に必要な用量である。薬学的に有効な用量は，疾患の種類，用いる組成物，投与の経路，治療する哺乳動物の種類，考慮中の特定の哺乳動物の物理学的特性，同時投与される薬剤，および医薬の分野の当業者が認識するであろう他の因子によって異なる。一般に，負に荷電したポリマーの効力に依存して，０．１ｍｇ／ｋｇ−１００ｍｇ／ｋｇ体重／日の活性成分を投与する。
【０３７７】
本発明はまた，薬学的に有効量の所望の化合物を薬学的に許容しうる担体または希釈剤中に含む，保存または投与用に調製される組成物を含む。治療用途に用いるための許容しうる担体または希釈剤は，医薬の技術分野においてよく知られており，例えばＲｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．（Ａ．Ｒ．Ｇｅｎｎａｒｏｅｄｉｔ．１９８５）（本明細書の一部としてここに引用する）に記載されている。例えば，保存剤，安定剤，染料，および風味剤を用いることができる。これらには，安息香酸ナトリウム，ソルビン酸，およびｐ−ヒドロキシ安息香酸のエステルが含まれる。さらに，抗酸化剤および懸濁剤を用いてもよい。
【０３７８】
薬学的に有効な用量とは，疾患状態の予防，発症の阻害または治療（症状をある程度緩和し，好ましくはすべての症状を緩和する）に必要な用量である。薬学的に有効な用量は，疾患の種類，用いる組成物，投与の経路，治療する哺乳動物の種類，考慮中の特定の哺乳動物の物理学的特性，同時投与される薬剤，および医薬の分野の当業者が認識するであろう他の因子によって異なる。一般に，負に荷電したポリマーの効力に依存して，０．１ｍｇ／ｋｇ−１００ｍｇ／ｋｇ体重／日の活性成分を投与する。
【０３７９】
本発明の核酸分子は，慣用的な無毒性の薬学的に許容しうる担体，アジュバントおよびベヒクルを含む用量単位処方中で，経口的に，局所的に，非経口的に，吸入またはスプレーにより，または直腸に投与することができる。本明細書において用いる場合，非経口的との用語には，経皮，皮下，血管内（例えば，静脈内），筋肉内，または包膜内注射または注入の手法等が含まれる。さらに，本発明の核酸分子および薬学的に許容しうる担体を含む医薬処方が提供される。１またはそれ以上の本発明の核酸分子は，１またはそれ以上の無毒性の薬学的に許容しうる担体および／または希釈剤，および／またはアジュバント，および所望の場合には他の活性成分とともに存在することができる。本発明の核酸分子を含有する医薬組成物は，経口使用に適した形，例えば，錠剤，トローチ剤，菱形剤，水性または油性懸濁液，分散可能な粉体または顆粒，乳剤，硬カプセルまたは軟カプセル，またはシロップまたはエリキシル剤の形であることができる。
【０３８０】
経口で使用することが意図される組成物は，医薬組成物の製造について当該技術分野において知られる任意の方法にしたがって製造することができ，そのような組成物は，薬学的に洗練された口に合う製品を提供するために，１またはそれ以上のそのような甘味剤，芳香剤，着色剤または保存剤を含んでいてもよい。錠剤は，錠剤の製造に適した無毒性の薬学的に許容しうる賦形剤との混合物として活性成分を含む。これらの賦形剤は，例えば，不活性希釈剤，例えば，炭酸カルシウム，炭酸ナトリウム，ラクトース，リン酸カルシウムまたはリン酸ナトリウム；顆粒化剤および崩壊剤，例えば，コーンスターチ，またはアルギン酸；結合剤，例えば，デンプン，ゼラチンまたはアラビアゴム，および潤滑剤，例えば，ステアリン酸マグネシウム，ステアリン酸またはタルクでありうる。錠剤は被覆しなくてもよく，既知の手法により被覆してもよい。場合によっては，既知の手法によりそのような被覆を調製して，崩壊および胃腸管における吸収を遅延させ，このことによりより長い期間の持続作用を与えることができる。例えば，遅延用材料，例えばグリセリルモノステアレートまたはグリセリルジステアレートを用いることができる。
【０３８１】
経口使用のための処方は，活性成分が不活性固体希釈剤，例えば，炭酸カルシウム，リン酸カルシウムまたはカオリンと混合されている硬ゼラチンカプセル，または活性成分が水または油状媒体，例えば，ピーナッツ油，液体パラフィンまたはオリーブ油と混合されている軟ゼラチンカプセルであってもよい。
【０３８２】
水性懸濁液は，水性懸濁液の製造に適した賦形剤との混合物中に活性物質を含む。そのような賦形剤は，懸濁剤，例えば，カルボキシメチルセルロースナトリウム，メチルセルロース，ヒドロプロピル−メチルセルロース，アルギン酸ナトリウム，ポリビニルピロリドン，トララガントガムおよびアラビアゴムである。分散剤または湿潤剤は，天然に生ずるホフファチド，例えば，レシチン，またはアルキレンオキサイドと脂肪酸との縮合生成物，例えば，ステアリン酸ポリオキシエチレン，またはエチレンオキサイドと長鎖脂肪族アルコールとの縮合生成物，例えば，ヘプタデカエチレンオキシセタノール，またはエチレンオキサイドと脂肪酸およびヘキシトールから誘導された部分エステルとの縮合生成物，例えば，ポリオキシエチレンソルビトールモノオレエート，またはエチレンオキサイドと脂肪酸および無水ヘキシトールから誘導された部分エステルとの縮合生成物，例えば，ポリエチレンソルビタンモノオレエートであってもよい。水性懸濁液はまた，１またはそれ以上の保存剤，例えば，エチル−，またはｎ−プロピル−ｐ−ヒドロキシベンゾエート，１またはそれ以上の着色剤，１またはそれ以上の芳香剤，および１またはそれ以上の甘味剤，例えばショ糖またはサッカリンを含んでいてもよい。
【０３８３】
油性懸濁液は，活性成分を植物油，例えば，アラキス油，オリーブ油，ゴマ油またはココナッツ油，または無機油，例えば液体パラフィン中に懸濁させることにより処方することができる。油性懸濁液は，増粘剤，例えば，密ロウ，硬パラフィンまたはセチルアルコールを含むことができる。甘味剤および芳香剤を加えて，口に合う経口製品を得ることができる。これらの組成物は，抗酸化剤，例えばアスコルビン酸を加えることにより保存することができる。
【０３８４】
水を加えることにより水性懸濁液を製造するのに適した分散可能な粉体および顆粒は，活性成分を，分散剤または湿潤剤，懸濁剤および１またはそれ以上の保存剤との混合物中で与える。適当な分散剤または湿潤剤または懸濁剤は，上で例示したとおりである。さらに別の賦形剤，例えば，甘味剤，芳香剤および着色剤が存在していてもよい。
【０３８５】
本発明の医薬組成物はまた，水中油エマルジョンの形であってもよい。油相は，植物油またはミネラルオイルまたはこれらの混合物であってもよい。適当な乳化剤としては，天然に生ずるガム，例えば，アラビアゴムまたはトラガガントゴム，天然に生ずるホスファチド類，例えば，大豆，レクチン，および脂肪酸から誘導されるエステルまたは部分エステルおよびヘキシトール，無水物，例えば，ソルビタンモノオレエート，および前記部分エステルとエチレンオキサイドとの縮合生成物，例えば，ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエートが挙げられる。エマルジョンは，甘味料および芳香剤を含んでいてもよい。
【０３８６】
シロップおよびエリキシルは，甘味剤，例えば，グリセロール，プロピレングリコール，ソルビトール，グルコースまたはショ糖を用いて処方することができる。このような処方はまた，粘滑剤，保存剤および甘味料および着色料を含んでいてもよい。医薬組成物は，滅菌した注射可能な水性または油性の懸濁液の形であってもよい。この懸濁液は，上述した適当な分散剤または湿潤剤および懸濁剤を用いて，当該技術分野において知られるように処方することができる。滅菌した注射可能な製品はまた，無毒性の非経口的に許容可能な希釈剤または溶媒中の滅菌した注射可能な溶液または懸濁液，例えば，１，３−ブタンジオール中の溶液であってもよい。用いることのできる許容可能なベヒクルおよび溶媒の例は，水，リンゲル溶液および等張塩化ナトリウム溶液である。さらに，滅菌し，凝固させた油を溶媒または懸濁媒体として便利に用いることができる。この目的のためには，任意の非刺激性の凝固させた油，例えば，合成のモノグリセリドまたはジグリセリドを用いることができる。さらに，脂肪酸，例えば，オレイン酸を注射可能な薬剤の製造において用いることができる。
【０３８７】
本発明の核酸分子はまた，例えば，薬剤の直腸投与用に，座剤の形で投与することができる。これらの組成物は，薬剤を，通常の温度では固体であるが直腸温度では液体であり，したがって直腸中で溶融して薬剤を放出する適当な非刺激性賦形剤と混合することにより製造することができる。そのような材料としては，カカオバターおよびポリエチレングリコールが挙げられる。
【０３８８】
本発明の核酸分子は，滅菌媒体中で非経口的に投与することができる。薬剤は，使用するベヒクルおよび濃度に応じて，ベヒクル中に懸濁されていてもよく，溶解されていてもよい。アジュバント，例えば局所麻酔剤，保存剤および緩衝剤をベヒクル中に溶解することも有利である。
【０３８９】
上述した状態の治療には，体重１キログラムあたり１日あたり約０．１ｍｇ−約１４０ｍｇのオーダーの投与量レベルが有用である（患者あたり１日あたり約０．５ｍｇ−約７ｇ）。担体物質と組み合わせて１回投与量形を生成することができる活性成分の量は，治療される宿主および投与の特定のモードに依存して様々であろう。投与量単位形は，一般に，約１ｍｇ−約５００ｍｇの活性成分を含むであろう。
【０３９０】
しかし，特定の患者についての特定の投与量レベルは，種々の因子，例えば，用いる特定の化合物の活性，年齢，体重，一般的健康状態，性別，食事，投与時間，投与経路，および排出速度，薬剤の組み合わせ，および治療をしている特定の疾病の重篤性に依存することが理解されるであろう。
【０３９１】
ヒト以外の動物に投与するためには，組成物を動物飼料または飲料水に加えてもよい。動物が治療上適当な量の組成物を飼料とともに接種できるよう，動物飼料および飲用水組成物を処方することが便利であろう。飼料または飲料水に加えるように組成物をプレミックスとして製造することも便利であろう。
【０３９２】
本発明の核酸分子はまた，他の治療用化合物と組み合わせて患者に投与して，全体的治療効果を高めることができる。ある適応症の治療に複数の化合物を用いることにより，副作用の存在を低下させながら有益な効果を高めることができる。
【０３９３】
１つの態様においては，本発明は，特定の細胞タイプ，例えば肝細胞に本発明の核酸分子を投与するのに適した組成物を提供する。例えば，アシアロ糖蛋白質レセプター（ＡＳＧＰｒ）（Ｗｕ  ａｎｄ  Ｗｕ，１９８７，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２，４４２９−４４３２）は，肝細胞に独特であり，分枝鎖ガラクトース末端糖蛋白質，例えばアシアロオロソムコイド（ＡＳＯＲ）に結合する。そのような糖蛋白質または合成グリココンジュゲートのレセプターへの結合は，オリゴサッカライド鎖の分枝の程度に強く依存する親和性で生ずる。例えば，三触角構造は，二触角または一触角鎖より高い親和性で結合する（Ｂａｅｎｚｉｇｅｒ  ａｎｄ  Ｆｉｅｔｅ，１９８０，Ｃｅｌｌ，２２，６１１−６２０；Ｃｏｎｎｏｌｌｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９８２，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２５７，９３９−９４５）。Ｌｅｅ  ａｎｄ  Ｌｅｅ（１９８７，Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｊ．，４，３１７−３２８）は，ガラクトースと比較してレセプターに対してより高い親和性を有するＮ−アセチル−Ｄ−ガラクトースアミンを炭水化物成分として用いることによりこの高い特異性を得た。この"クラスタリング効果"はまた，マンノシル末端糖蛋白質またはグリココンジュゲートの結合および取込についても記載されている（Ｐｏｎｐｉｐｏｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９８１，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｌｉｅｎｔ．，２４，１３８８−１３９５）。ガラクトースおよびガラクトースアミンに基づくコンジュゲートを使用して外来性化合物を細胞膜を超えて輸送することは，肝疾患，例えばＨＢＶ感染または肝細胞癌の治療に標的化輸送方法を提供することができる。また，バイオコンジュゲートの使用により，治療に必要な治療用化合物の必要用量を低下させることができる。さらに，本発明の核酸バイオコンジュゲートを使用することにより，治療的生物利用性，薬力学，および薬物動態学的パラメータを調節することができる。
【０３９４】
あるいは，本発明の核酸分子のある種のものは，細胞中で真核生物プロモーターから発現させることができる（例えば，Ｉｚａｎｔ  ａｎｄ  Ｗｅｉｎｔｒａｕｂ，１９８５  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２２９，３４５；ＭｃＧａｒｒｙ  ａｎｄＬｉｎｄｑｕｉｓｔ，１９８６  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８３，３９９；Ｓｃａｎｌｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ，８８，１０５９１−５；Ｋａｓｈａｎｉ−Ｓａｂｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓ．Ｄｅｖ．，２，３−１５；Ｄｒｏｐｕｌｉｃ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｊ．Ｖｉｒｏｌ  ６６，１４３２−４１；Ｗｅｅｒａｓｉｎｇｈｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１  Ｊ．Ｖｉｒｏｌ，６５，５５３１−４；Ｏｊｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８９，１０８０２−６；Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２０，４５８１−９；Ｓａｒｖｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４７，１２２２−１２２５；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２２５９；Ｇｏｏｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，４，４５；すべての参考文献は，その全体を本明細書の一部としてここに引用する））。当業者は，真核生物細胞中で任意の核酸を適当なＤＮＡ／ＲＮＡベクターから発現させることができることを認識するであろう。そのような核酸の活性は，それらをリボザイムにより一次転写産物から放出させることにより増大させることができる（Ｄｒａｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，ＰＣＴ  ＷＯ９３／２３５６９，Ｓｕｌｌｉｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，ＰＣＴ  ＷＯ９４／０２５９５；Ｏｈｋａｗａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｓｙｍｐ．Ｓｅｒ．，２７，１５−６；Ｔａｉｒａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９，５１２５−３０；Ｖｅｎｔｕｒａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２１，３２４９−５５；Ｃｈｏｗｒｉｒａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４  Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９，２５８５６；すべての参考文献はその全体を本明細書の一部としてここに引用する）。
【０３９５】
本発明の別の観点においては，本発明のＲＮＡ分子は，好ましくはＤＮＡまたはＲＮＡベクター中に挿入された転写ユニットから発現される（例えばＣｏｕｔｕｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，ＴＩＧ．，１２，５１０を参照）。組換えベクターは，好ましくはＤＮＡプラスミドまたはウイルスベクターである。リボザイムを発現するウイルスベクターは，アデノ随伴ウイルス，レトロウイルス，アデノウイルス，またはアルファウイルスに基づいて構築することができるが，これらに限定されない。好ましくは，核酸分子を発現しうる組換えベクターは，上述のように輸送され，標的細胞中に残留する。あるいは，核酸分子の過渡的発現を与えるウイルスベクターを用いることもできる。そのようなベクターは，必要に応じて繰り返し投与することができる。いったん発現されれば，核酸分子は標的ｍＲＮＡに結合する。核酸分子を発現するベクターの輸送は，全身的（例えば，静脈内または筋肉内投与により），患者から外植された標的細胞に投与した後，患者に再導入することにより，または所望の標的細胞中への導入を可能とする他のいずれかの手段により行うことができる（総説については，Ｃｏｕｔｕｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，ＴＩＧ．，１２，５１０を参照）。
【０３９６】
本発明の１つの観点においては，本発明の核酸分子の少なくとも１つをコードする核酸配列を含む発現ベクターが開示される。本発明の核酸分子をコードする核酸配列は，その核酸分子の発現を可能とする様式で動作可能なように連結されている。
【０３９７】
本発明の別の観点においては，本発明は，以下を含む発現ベクターを特徴とする：ａ）転写開始領域（例えば真核生物ｐｏｌ  Ｉ，ＩＩまたはＩＩＩの開始領域）；ｂ）転写終止領域（例えば真核生物ｐｏｌ  Ｉ，ＩＩまたはＩＩＩの終止領域）；ｃ）本発明の核酸触媒の少なくとも１つをコードする遺伝子を含み，前記配列は，前記核酸分子の発現および／または輸送を可能とする様式で，前記開始領域および前記終止領域に動作可能なように連結されている。ベクターは，任意に，本発明の核酸触媒をコードする遺伝子の５'側または３’側に動作可能なように連結された蛋白質のオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）；および／またはイントロン（介在配列）を含んでいてもよい。
【０３９８】
核酸分子配列の転写は，真核生物ＲＮＡポリメラーゼＩ（ｐｏｌ  Ｉ），ＲＮＡポリメラーゼＩＩ（ｐｏｌ  ＩＩ），またはＲＮＡポリメラーゼＩＩＩ（ｐｏｌ  ＩＩＩ）のプロモーターにより推進される。ｐｏｌ  ＩＩまたはｐｏｌ  ＩＩＩプロモーターからの転写産物は，すべての細胞において高いレベルで発現されるであろう。所定の細胞タイプ中における所定のｐｏｌ  ＩＩプロモーターのレベルは，近くに存在する遺伝子制御配列（エンハンサー，サイレンサー等）の性質に依存するであろう。原核生物ＲＮＡポリメラーゼ酵素が適当な細胞中で発現される限り，原核生物ＲＮＡポリメラーゼプロモーターもまた用いられる（Ｅｌｒｏｙ−Ｓｔｅｉｎ  ａｎｄ  Ｍｏｓｓ，１９９０  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ，８７，６７４３−７；Ｇａｏ  ａｎｄ  Ｈｕａｎｇ  １９９３  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２１，２８６７−７２；Ｌｉｅｂｅｒｅｔ．ａｌ．，１９９３  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，２１７，４７−６６；Ｚｈｏｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０  Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１０，４５２９−３７，これらの文献はすべて本明細書の一部としてここに引用する）。何人かの研究者が，そのようなプロモーターから発現した核酸分子，例えばリボザイムが哺乳動物細胞中で機能しうることを示している（例えば，Ｋａｓｈａｎｉ−Ｓａｂｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓ．Ｄｅｖ．，２，３−１５；Ｏｊｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ，８９，１０８０２−６；Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２０，４５８１−９；Ｙｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ，９０，６３４０−４；Ｌ'Ｈｕｉｌｌｉｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  ＥＭＢＯ  Ｊ．１１，４４１１−８；Ｌｉｓｚｉｅｗｉｃｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，９０，８０００−４；Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２２５９；Ｓｕｌｌｅｎｇｅｒ＆Ｃｅｃｈ，１９９３，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６２，１５６６）。より詳細には，転写ユニット，例えばＵ６小核（ｓｎＲＮＡ），転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）およびアデノウイルスＶＡ  ＲＮＡをコードする遺伝子に由来するものは，細胞中において高濃度の所望のＲＮＡ分子（例えばリボザイム）を生成するのに有用である（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）；Ｃｏｕｔｕｒｅ  ａｎｄ  Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂ，１９９６，（上掲）；Ｎｏｏｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．，２２，２８３０；Ｎｏｏｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，１６２４，８０３；Ｇｏｏｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．４，４５；Ｂｅｉｃｒｅｌｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，国際公開ＷＯ９６／１８７３６；（これらのすべての刊行物を本明細書の一部としてここに引用する）。上述のリボザイム転写ユニットは，哺乳動物細胞中に導入するために種々のベクター中に組み込むことができる。ベクターとしては，プラスミドＤＮＡベクター，ウイルス��ＮＡベクター（例えばアデノウイルスまたはアデノ随伴ウイルスベクター），またはウイルスＲＮＡベクター（例えばレトロウイルスまたはアルファウイルスベクター）が挙げられるが，これらに限定されない（総説については，Ｃｏｕｔｕｒｅ  ａｎｄ  Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂ，１９９６，（上掲）を参照）。
【０３９９】
本発明のさらに別の観点は，本発明の核酸分子の少なくとも１つをコードする核酸配列を，その核酸分子の発現を可能とする様式で含む発現ベクターを特徴とする。１つの態様においては，発現ベクターは，ａ）転写開始領域；ｂ）転写終止領域；ｃ）前記核酸分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を含み；前記遺伝子は，前記核酸分子の発現および／または輸送を可能とする様式で，前記開始領域および前記終止領域に動作可能なように連結されている。別の態様においては，発現ベクターは，ａ）転写開始領域；ｂ）転写終止領域；ｃ）オープンリーディングフレーム；ｄ）前記核酸分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を含み，前記遺伝子は，前記オープンリーディングフレームの３'−末端に動作可能なように連結されており，前記遺伝子は，前記核酸分子の発現および／または輸送を可能とする様式で，前記開始領域，前記オープンリーディングフレームおよび前記終止領域に動作可能なように連結されている。さらに別の態様においては，発現ベクターは，ａ）転写開始領域；ｂ）転写終止領域；ｃ）イントロン；ｄ）前記核酸分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を含み；前記遺伝子は，前記核酸分子の発現および／または輸送を可能とする様式で，前記開始領域，前記イントロンおよび前記終止領域に動作可能なように連結されている。別の態様においては，発現ベクターは，ａ）転写開始領域；ｂ）転写終止領域；ｃ）イントロン；ｄ）オープンリーディングフレーム；ｅ）前記核酸分子の少なくとも１つをコードする遺伝子を含み，前記遺伝子は，前記オープンリーディングフレームの３'−末端に動作可能なように連結されており，前記遺伝子は，前記核酸分子の発現および／または輸送を可能とする様式で，前記開始領域，前記イントロン，前記オープンリーディングフレームおよび前記終止領域に動作可能なように連結されている。
【０４００】
インターフェロン
タイプＩインターフェロン（ＩＦＮ）は，２５種類以上のＩＦＮ−αのファミリー（Ｐｅｓｔａ，１９８６，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．１１９，３−１４），ならびにＩＦＮ−β，およびＩＦＮ−ωを含む，一群の天然のサイトカインである。進化的には同じ遺伝子に由来するものであるが（Ｄｉａｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ  ２２，５４０−５５２），これらの分子の一次配列には多くの差異があり，生物学的活性が進化的に分岐してきたことが暗示される。すべてのタイプＩのＩＦＮは，ＩＦＮが細胞表面レセプターに結合することから始まる生物学的効果の共通のパターンを共有する（Ｐｆｅｆｆｅｒ＆Ｓｔｒｕｌｏｖｉｃｉ，１９９２，Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ  ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ｍｅｓｓｅｎｇｅｒｓ  ｆｏｒ  ＩＦＮ−α／β．Ｉｎ：Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ．Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．，Ｓ．Ｂａｒｏｎ，Ｄ．Ｈ．Ｃｏｏｐｅｎｈａｖｅｒ，Ｆ．Ｄｉａｎｚａｎｉ，Ｗ．Ｒ．Ｆｌｅｉｓｃｈｍａｎｎ  Ｊｒ．，Ｔ．Ｋ．Ｈｕｇｈｅｓ  Ｊｒ．，Ｇ．Ｒ．Ｋｉｍｐｅｌ，Ｄ．Ｗ．Ｎｉｅｓｅｌ，Ｇ．Ｊ．Ｓｔａｎｔｏｎ，ａｎｄ  Ｓ．Ｋ．Ｔｙｒｉｎｇ，ｅｄｓ．１５１−１６０）。結合した後，ヤヌス（Ｊａｎｕｓ）チロシンキナーゼおよびＳＴＡＴ蛋白質等のチロシンキナーゼが活性化され，いくつかのＩＦＮ−刺激性遺伝子産物が産生される（Ｊｏｈｎｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｓｃｉ．Ａｍ．２７０，６８−７５）。ＩＦＮ−刺激性遺伝子産物は，抗ウイルス，抗増殖および免疫調節効果，サイトカイン誘導，およびＨＬＡクラスＩおよびクラスＩＩ制御を含む，タイプＩ  ＩＦＮの多面的な生物学的効果の原因である（Ｐｅｓｔｋａ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ  ５６，７２７）。ＩＦＮ−刺激性遺伝子産物の例としては，２−５−オリゴアデニレートシンターゼ（２−５  ＯＡＳ），β２−ミクログロブリン，ネオプテリン，ｐ６８キナーゼ，およびＭｘ蛋白質（Ｃｈｅｂａｔｈ＆Ｒｅｖｅｌ，１９９２，Ｔｈｅ  ２−５  Ａ  ｓｙｓｔｅｍ：２−５  Ａ  ｓｙｎｔｈｅｔａｓｅ，ｉｓｏｓｐｅｃｉｅｓ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ．Ｉｎ：Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ．Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．Ｓ．Ｂａｒｏｎ，Ｄ．Ｈ．Ｃｏｏｐｅｎｈａｖｅｒ，Ｆ．Ｄｉａｎｚａｎｉ，Ｗ．Ｒ．Ｊｒ．Ｆｌｅｉｓｃｈｍａｎｎ，Ｔ．Ｋ．Ｊｒ  Ｈｕｇｈｅｓ，Ｇ．Ｒ．Ｋｉｍｐｅｌ，Ｄ．Ｗ．Ｎｉｅｓｅｌ，Ｇ．Ｊ．Ｓｔａｎｔｏｎ，ａｎｄ  Ｓ．Ｋ．Ｔｙｒｉｎｇ，ｅｄｓ．，ｐｐ．２２５−２３６；Ｓａｍｕｅｌ，１９９２，Ｔｈｅ  ＲＮＡ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  Ｐ１／ｅＩＦ−２α  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｋｉｎａｓｅ．Ｉｎ：Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ．Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．Ｓ．Ｂａｒｏｎ，Ｄ．Ｈ．Ｃｏｏｐｅｎｈａｖｅｒ，Ｆ．Ｄｉａｎｚａｎｉ，Ｗ．Ｒ．Ｆｌｅｉｓｃｈｍａｎｎ  Ｊｒ．，Ｔ．Ｋ．Ｈｕｇｈｅｓ  Ｊｒ．，Ｇ．Ｒ．Ｋｉｍｐｅｌ，Ｄ．Ｗ．Ｎｉｅｓｅｌ，Ｇ．Ｈ．Ｓｔａｎｔｏｎ，ａｎｄ  Ｓ．Ｋ．Ｔｙｒｉｎｇ，ｅｄｓ．２３７−２５０；Ｈｏｒｉｓｂｅｒｇｅｒ，１９９２，Ｍ��  ｐｒｏｔｅｉｎ：ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ  ｏｆ  Ａｃｔｉｏｎ．Ｉｎ：Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ．Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．Ｓ．Ｂａｒｏｎ，Ｄ．Ｈ．Ｃｏｏｐｅｎｈａｖｅｒ，Ｆ．Ｄｉａｎｚａｎｉ，Ｗ．Ｒ．Ｆｌｅｉｓｃｈｍａｎｎ  Ｊｒ．，Ｔ．Ｋ．Ｈｕｇｈｅｓ  Ｊｒ．，Ｇ．Ｒ．Ｋｉｍｐｅｌ，Ｄ．Ｗ．Ｎｉｅｓｅｌ，Ｇ．Ｈ．Ｓｔａｎｔｏｎ，ａｎｄ  Ｓ．Ｋ．Ｔｙｒｉｎｇ，ｅｄｓ．２１５−２２４）。すべてのタイプＩ  ＩＦＮは類似する生物学的効果を有するが，すべての活性が各タイプＩのＩＦＮに共通なわけではなく，多くの場合，活性の程度は，各ＩＦＮサブタイプにより非常に異なる（Ｆｉｓｈ  ｅｔ  ａｌ，１９８９，Ｊ．Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ  Ｒｅｓ．９，９７−１１４；Ｏｚｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｊ．Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ  Ｒｅｓ．１２，５５−５９）。より詳細には，異なるサブタイプのＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−αの分子ハイブリッドの特性の研究は，薬理学的特性の相違を示した（Ｒｕｂｉｎｓｔｅｉｎ，１９８７，Ｊ．Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ  Ｒｅｓ．７，５４５−５５１）。これらの薬理学的相違は，３アミノ酸残基程度の変化によっても生じうる（Ｌｅｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９８２，Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．４２，１３１２−１３１６）。
【０４０１】
既知のＩＦＮ−αサブタイプにおいて８５−１６６アミノ酸が保存されている。ＩＦＮ−α偽遺伝子をのぞき，約２５種類の異なるＩＦＮ−αのサブタイプが知られている。これらの非対立遺伝子サブタイプの対の比較により，一次配列の差異が２％−２３％であることが示された。天然に生ずるＩＦＮに加え，コンセンサスインターフェロン（ＣＩＦＮ）として知られる非天然型組換えタイプＩインターフェロンが治療用化合物として合成された（Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ２６，７４７−７５４）。
【０４０２】
インターフェロンは，現在，感染性疾患および自己免疫疾患および癌を含む，少なくとも１２の異なる適応症において用いられている（Ｂｏｒｄｅｎ，１９９２，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２６，１４９１−１４９２）。自己免疫疾患については，ＩＦＮは，慢性関節リウマチ，多発性硬化症およびクローン病の治療に用いられてきた。癌の治療については，ＩＦＮは，単独でまたは多くの異なる化合物との組み合わせで用いられてきた。ＩＦＮが用いられている特定のタイプの癌には，扁平上皮癌，黒色腫，副腎腫，血管腫，毛様細胞性白血病およびカポジ肉腫が含まれる。感染性疾患の治療においては，ＩＦＮは，マクロファージの食作用活性および白血球の細胞毒性を増加させ，細胞性病原体の増殖を阻害する。ＩＦＮが治療に用いられている特定の適応症には，Ｂ型肝炎，ヒトパピローマウイルスタイプ６および１１（すなわち，性器ゆうぜい）（Ｌｅｖｅｎｔｈａｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２５，６１３−６１７），慢性肉芽腫疾患およびＣ型肝炎ウイルスが含まれる。
【０４０３】
慢性ＨＣＶ感染の治療におけるＩＦＮ−アルファの，多くのよく統制された臨床試験は，週３回の治療により，６ヶ月の治療の終わりには患者の約５０％（４０％−７０％の範囲）で血清ＡＬＴ値が低下することを示している（Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９，Ｔｈｅ  Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  ３２１，１５０１−１５０６；Ｍａｒｃｅｌｌｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １３，３９３−３９７；Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ２６，７４７−７５４；Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ２６，１６４０−１６４５）。しかし，インターフェロン治療を中止した後，応答した患者の約５０％が再発し，"永続的"応答率は，血清ＡＬＴ濃度の正常化により評価して約２０−２５％であった。さらに，ＨＣＶ  ＲＮＡの値の変化を臨床的最終結果として用いた６ヶ月間のタイプＩインターフェロン治療を試験した研究は，３５％までの患者が治療の終わりまでにＨＣＶ  ＲＮＡを失うことを示した（Ｔｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，（上掲））。しかし，ＡＬＴの最終結果に関しては，約５０％の患者が治療の中止から６ヶ月後に再発し，永続的なウイルス性応答はわずか１２％（２３）であった。４８週間の治療を試験した研究は，持続するウイルス性応答は２５％までであることを示した。
【０４０４】
Ｐｅｇ化インターフェロン，すなわち，ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）とコンジュゲート化したインターフェロンは，インターフェロンより改良された特性を示す。ＰＥＧコンジュゲーションにより与えられる利点には，ＰＥＧを有しないインターフェロンと比較して改良された薬物動態学プロファイルが含まれ，したがって，より便利な投与計画，改良された許容度，および改良された抗ウイルス効力が与えられる。そのような改良は，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ−２ａ（ＰＥＧＡＳＹＳ，Ｒｏｃｈｅ）およびポリエチレングリコールインターフェロンアルファ−２ｂ（ＶＩＲＡＦＥＲＯＮ  ＰＥＧ，ＰＥＧ−ＩＮＴＲＯＮ，Ｅｎｚｏｎ／Ｓｃｈｅｒｉｎｇ  Ｐｌｏｕｇｈ）の両方の臨床研究で示されている。
【０４０５】
インターフェロンおよびポリエチレングリコール  インターフェロンと組み合わせたリボザイムは，ＨＣＶまたは上述した他のいずれかの適応症の治療の有効性を改良する可能性を有する。疾患，例えば感染性疾患，自己免疫疾患，および癌に関連するＲＮＡを標的とする酵素的核酸分子を，個々にまたはインターフェロンおよびポリエチレングリコールインターフェロン等の他の療法と組み合わせて用いて，増強された有効性を達成することができる。
【実施例１】
【０４０６】
以下は，本発明の核酸の選択，単離，合成および活性を示す非限定的例である。これらの実施例は，アンチセンス，ハンマーヘッド，ＤＮＡザイム，ＮＣＨ，アンバーザイム，チンザイムまたはＧ切断剤リボザイム分子の選択および設計，およびＨＢＶおよびＨＣＶ  ＲＮＡ中の結合／切断部位を示す。以下の実施例はまた，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼを標的とする核酸デコイ分子の選択および設計を示す。以下の実施例はまた，ＨＣＶ  ＲＮＡを切断する酵素的核酸分子の使用を示す。本明細書に記載される方法は，ＨＣＶ複製に必要な他のＲＮＡ標的を切断する核酸分子を誘導することができるスキームである。
【０４０７】
実施例１：ヒトＨＢＶ  ＲＮＡにおける潜在的標的部位の同定
コンピュータフォールディングアルゴリズムを用いて，ヒトＨＢＶの配列を，アクセス可能な部位についてスクリーニングした。二次フォールディング構造を形成せず，潜在的リボザイムおよび／またはアンチセンス結合／切断部位を含むＲＮＡの領域を同定した。これらの切断部位の配列は表ＩＶ−ＸＩに示される。
【０４０８】
実施例２：ヒトＨＢＶ  ＲＮＡにおける酵素的核酸の切断部位の選択
リボザイム標的部位は，ヒトＨＢＶの配列（受託番号：ＡＦ１００３０８．１）を分析し，フォールディングに基づいて部位を順位づけることにより選択した。各標的に結合することができるリボザイムを設計し，コンピュータフォールディングにより個々に分析して（Ｃｈｒｉｓｔｏｆｆｅｒｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４  Ｊ．Ｍｏｌ．Ｓｔｒｕｃ．Ｔｈｅｏｃｈｅｍ，３１１，２７３；Ｊａｅｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６，７７０６），リボザイム配列が適切な二次構造にフォールディングされるか否かを評価した。結合アームと触媒コアとの間に望ましくない分子内相互作用を有するリボザイムは考慮から除外した。以下に示されるように，種々の結合アームの長さを選択して，活性を最適化することができる。一般に，各アームに少なくとも５塩基あれば，標的ＲＮＡに結合するか，さもなくば相互作用することができる。
【０４０９】
実施例３：ＨＢＶ  ＲＮＡの効率的な切断および／または妨害用のリボザイムおよびアンチセンスの化学合成および精製
リボザイムおよびアンチセンス構築物は，ＲＮＡメッセンジャーの種々の領域にアニーリングするよう設計した。リボザイムの結合アームは，上述した標的部位配列に相補的であり，アンチセンス構築物は上述した標的部位配列に完全に相補的である。リボザイムおよびアンチセンス構築物は化学的に合成した。用いた合成の方法は，上述し，Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，（１９８７  Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０９，７８４５），Ｓｃａｒｉｎｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，（１９９０  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１８，５４３３）およびＷｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）に記載される通常のＲＮＡ合成の方法にしたがい，一般的な核酸保護基およびカップリング基，例えば５’末端にジメトキシトリチル，および３’末端にホスホルアミダイトを用いた。平均段階カップリング収率は，典型的には＞９８％であった。
【０４１０】
リボザイムおよびアンチセンス構築物はまた，バクテリオファージＴ７ＲＮＡポリメラーゼを用いてＤＮＡテンプレートから合成した（Ｍｉｌｌｉｇａｎ  ａｎｄ  Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９８９，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．１８０，５１）。リボザイムおよびアンチセンス構築物は，一般的な方法を用いてゲル電気泳動により精製するか，または高速液体クロマトグラフィーにより精製し（ＨＰＬＣ；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）を参照；その全体を本明細書の一部としてここに引用する），水に再懸濁した。この実験に用いられた化学的に合成されたリボザイムの配列は以下の表ＸＩに示される。
【０４１１】
実施例４：ＨＢＶ  ＲＮＡ標的のインビトロでのリボザイム切断
ヒトＨＢＶ  ＲＮＡを標的とするリボザイムを上述のように設計し合成する。これらのリボザイムは，インビトロで，例えば以下の方法を用いて切断活性を試験することができる。ＨＢＶ  ＲＮＡ中の標的配列およびヌクレオチドの位置は表ＩＶ−ＸＩに示されている。
【０４１２】
切断反応：リボザイム切断アッセイ用の全長または部分全長の，内部標識した標的ＲＮＡは，［α−32Ｐ］ＣＴＰの存在下でインビトロ転写により調製し，スピンクロマトグラフィーによりＧ５０セファデックスカラムを通し，さらに精製することなく，基質ＲＮＡとして用いる。あるいは，Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼ酵素を用いて基質を５’−32Ｐ−末端標識する。アッセイは，以下のように行う。２Ｘ濃度の精製リボザイムをリボザイム切断緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．５，３７℃，１０ｍＭ  ＭｇＣｌ2）中であらかじめ暖め，２Ｘリボザイム混合物を，これもあらかじめ暖めた緩衝液中の等量の基質ＲＮＡ（最大１−５ｎＭ）に加えることにより切断反応を開始する。最初のスクリーニングとして，アッセイは，４０ｎＭまたは１ｍＭリボザイムの最終濃度を用いて，すなわちリボザイム過剰で，３７℃で１時間行う。等量の９５％ホルムアミド，２０ｍＭ  ＥＤＴＡ，０．０５％ブロモフェノールブルーおよび０．０５％キシレンシアノールを加えることにより反応を急冷し，その後，試料を９５℃で２分間加熱し，急冷し，変性ポリアクリルアミドゲルに負荷する。基質ＲＮＡおよびリボザイム切断により生成した特異的ＲＮＡ切断生成物は，ゲルのオートラジオグラフィーにより可視化する。切断のパーセントは，無傷の基質および切断産物を示すバンドをホスファーイメージャーで定量することにより決定する。
【０４１３】
実施例５：ｐｓＨＢＶ−１およびリボザイムを用いるＨｅｐＧ２細胞のトランスフェクション
ヒト肝細胞癌細胞株ＨｅｐＧ２は，１０％ウシ胎児血清，２ｍＭグルタミン，０．１ｍＭ非必須アミノ酸，１ｍＭピルビン酸ナトリウム，２５ｍＭ  Ｈｅｐｅｓ，１００単位のペニシリン，および１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンを補充したダルベッコ改変イーグル培地で成長させた。複製能力のあるｃＤＮＡを生成するために，トランスフェクション前にｐｓＨＢＶ−１ベクター中に含まれるＨＢＶゲノム配列を細菌プラスミド配列から切り出した（当業者は他の方法を用いて複製能力のあるｃＤＮＡを生成しうることを理解するであろう）。これは，ＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素消化により行った。消化の完了後，薄い条件（２０μｇ／ｍｌ）下でライゲーションを行って分子内ライゲーションに好都合なようにした。次に，全ライゲーション混合物をＱｉａｇｅｎスピンカラムを用いて濃縮した。
【０４１４】
分泌性アルカリホスファターゼ（ＳＥＡＰ）を用いて，ＨＢｓＡｇレベルを標準化して，トランスフェクションの変動を調節した。ｐＳＥＡＰ２−ＴＫ対照ベクターは，ｐＲＬ−ＴＫベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）の，ヘルペス単純ウイルスチミジンキナーゼプロモーター領域を含有するＢｇｌＩＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントをＢｇｌＩＩＩ−ＨｉｎｄＩＩＩ切断ｐＳＥＡＰ２Ｂａｓｉｃ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）中にライゲーションすることにより構築した。ＨｅｐＧ２細胞を９６−ウエルマイクロタイタープレートに播種し（３ｘ１０4細胞／ウエル），一夜インキュベートした。カチオン性脂質（１５μｇ／ｍｌ），調製したｐｓＨＢＶ−１（４．５μｇ／ｍｌ），ｐＳＥＡＰ２−ＴＫ（０．５ｇ／ｍｌ），およびリボザイム（１００ｐＭ）を含む（最終濃度）脂質／ＤＮＡ／リボザイム複合体を形成した。３７℃で１５分間インキュベーションした後，複合体をプレート上のＨｅｐＧ２細胞に加えた。トランスフェクションの９６時間後に細胞から培地を除去し，ＨＢｓＡｇおよびＳＥＡＰを分析した。
【０４１５】
ヒト肝細胞癌細胞株，ＨｅｐＧ２を複製能力のあるＨＢＶ  ＤＮＡでトランスフェクションすると，ＨＢＶ蛋白質が発現され，ビリオンが産生される。慢性ＨＢＶ感染の治療におけるリボザイムの使用の可能性を調べるため，ＨＢＶゲノムの３’末端を標的とする一連のリボザイムを合成した。この領域を標的とするリボザイムは，４つすべての主要なＨＢＶ  ＲＮＡ転写産物を切断する可能性，ならびにプレゲノムＲＮＡの切断によりＨＢＶ  ＤＮＡの産生を妨害する可能性を有する。これらのＨＢＶリボザイムの効力を試験するため，リボザイムをＨＢＶゲノムＤＮＡとともにＨｅｐＧ２細胞にコトランスフェクトし，分泌されるＨＢＶ表面抗原（ＨＢｓＡｇ）のレベルをＥＬＩＳＡにより分析した。トランスフェクション効率の変動を調節するため，分泌性アルカリホスファターゼ（ＳＥＡＰ）を発現する対照ベクターもコトランスフェクトした。ＨＢＶリボザイムの効力は，ＨＢｓＡｇ：ＳＥＡＰおよび／またはＨＢｅＡｇ：ＳＥＡＰの比率をスクランブル化減弱化対照（ＳＡＣ）リボザイムのものと比較することにより決定した。対応するＳＡＣリボザイムと比較してＨＢｓＡｇおよび／またはＨＢｅＡｇのレベルの減少を引き起こす２５個のリボザイム（ＲＰＩ１８３４１，ＲＰＩ１８３５６，ＲＰＩ１８３６３，ＲＰＩ１８３６４，ＲＰＩ１８３６５，ＲＰＩ１８３６６，ＲＰＩ１８３６７，ＲＰＩ１８３６８，ＲＰＩ１８３６９，ＲＰＩ１８３７０，ＲＰＩ１８３７１，ＲＰＩ１８３７２，ＲＰＩ１８３７３，ＲＰＩ１８３７４，ＲＰＩ１８３０３，ＲＰＩ１８４０５，ＲＰＩ１８４０６，ＲＰＩ１８４０７，ＲＰＩ１８４０８，ＲＰＩ１８４０９，ＲＰＩ１８４１０，ＲＰＩ１８４１１，ＲＰＩ１８４１８，ＲＰＩ１８４１９，およびＲＰＩ１８４２２）が同定された。さらに，部位２７３を標的とするループ変種抗ＨＢＶリボザイムをこの系を用いて試験した。この実験の結果は図１０にまとめられている。図に示されるように，試験したリボザイムは，スクランブル化減弱化コアリボザイム対照と比較してＨｅｐＧ２  ＨＢｓＡｇレベルの有意な減少を示し，このうちＲＰＩ２２６５０およびＲＰＩ２２６４９がＨＢｓＡｇレベルの最も高い減少を示した。
【０４１６】
実施例６：リボザイム処理後のＨＢｓＡｇおよびＳＥＡＰレベルの分析
Ｉｍｍｕｌｏｎ４（Ｄｙｎａｘ）マイクロタイターウエルを，炭酸緩衝液（Ｎａ２ＣＯ3１５ｍＭ，ＮａＨＣＯ3３５ｍＭ，ｐＨ９．５）中１μｇ／ｍｌの抗ＨＢｓＡｇＭａｂ（Ｂｉｏｓｔｒｉｄｅ  Ｂ８８−９５−３１ａｄ，ａｙ）で，４℃で一夜コーティングした。次にウエルをＰＢＳＴ（ＰＢＳ，０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で４回洗浄し，ＰＢＳＴ，１％ＢＳＡで３７℃で１時間ブロッキングした。上述のように洗浄した後，ウエルを３７℃で３０分間乾燥した。ビオチニル化ヤギ抗ＨＢｓＡｇ（Ａｃｃｕｒａｔｅ  ＹＶＳ１８０７）をＰＢＳＴ中に１：１０００で希釈し，ウエル中で３７℃で１時間インキュベートした。ウエルをＰＢＳＴで４回洗浄した。ストレプトアビジン／アルカリホスファターゼコンジュゲート（Ｐｉｅｒｃｅ２１３２４）をＰＢＳＴ中で２５０ｎｇ／ｍｌに希釈し，ウエル中で３７℃で１時間インキュベートした。上述のように洗浄した後，ｐ−ニトロフェニルリン酸基質（Ｐｉｅｒｃｅ３７６２０）をウエルに加え，次にこれを３７℃で１時間インキュベートした。次に４０５ｎｍの光学密度を測定した。ＳＥＡＰレベルは，ＧｒｅａｔＥｓｃＡＰｅ（登録商標）検出キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ  Ｋ２０４１−１）を用いて，製造元の指針にしたがってアッセイした。
【０４１７】
実施例７：Ｘ−遺伝子レポーターアッセイ
リボザイム処理が，ＨＢＶＸ−蛋白質によるＳＶ４０プロモーター駆動性蛍ルシフェラーゼ遺伝子のトランス活性化のレベルに及ぼす影響を，トランスフェクトしたＨｅｐＧ２細胞において分析した。トランスフェクション効率の変動の対照として，ＴＫプロモーターにより駆動され，Ｘ蛋白質によりトランス活性化されないウミシイタケルシフェラーゼレポーターを用いた。ＨｅｐＧ２細胞を３ｘ１０4細胞／ウエルで９６−ウエルマイクロタイタープレートに播種し，一夜インキュベートした。カチオン性脂質（２．４μｇ／ｍｌ），Ｘ−遺伝子ベクターｐＳＢＤＲ（２．５μｇ／ｍｌ），蛍レポーターｐＳＶ４０  ＨＣＶ  ｌｕｃ（０．５μｇ／ｍｌ），ウミシイタケルシフェラーゼ対照ベクターｐＲＬ−ＴＫ（０．５μｇ／ｍｌ），およびリボザイム（１００μＭ）（最終濃度）を含むよう，脂質／ＤＮＡ／リボザイム複合体を形成した。３７℃で１５分間インキュベーションした後，播種したＨｅｐＧ２細胞に複合体を加えた。トランスフェクション後４８時間後，Ｐｒｏｍｅｇａのデュアルルシフェラーゼアッセイシステムを用いて，蛍およびウミシイタケルシフェラーゼのレベルを分析した。
【０４１８】
ＨＢＶＸ蛋白質は，多くのウイルスおよび細胞性遺伝子のトランスアクチベータである。Ｘ領域を標的とするリボザイムを，ＨｅｐＧ２細胞において，ＳＶ４０プロモーターにより駆動される蛍ルシフェラーゼ遺伝子のＸ蛋白質トランス活性化の減少を引き起こす能力について試験した。トランスフェクションの変動の対照として，ＴＫプロモーターにより駆動され，Ｘ蛋白質により活性化されないウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子を含むベクターをコトランスフェクションに含めた。ＨＢＶリボザイムの有効性は，蛍ルシフェラーゼ：ウミシイタケルシフェラーゼの比率をスクランブル化減弱化対照（ＳＡＣ）リボザイムのものと比較することにより決定した。対応するＳＡＣリボザイムと比較してＸ蛋白質によるレポーター遺伝子のトランス活性化のレベルの減少を引き起こす１１個のリボザイム（ＲＰＩ１８３６５，ＲＰＩ１８３６７，ＲＰＩ１８３６８，ＲＰＩ１８３７１，ＲＰＩ１８３７２，ＲＰＩ１８３７３，ＲＰＩ１８４０５，ＲＰＩ１８４０６，ＲＰＩ１８４１１，ＲＰＩ１８４１８，ＲＰＩ１８４２３）が同定された。
【０４１９】
実施例８：ＨＢＶトランスジェニックマウス実験Ａ
ＨＢＶ  ＲＮＡを発現し，ＨＢＶウイルス血症を形成するトランスジェニックマウス株（Ｃ５７Ｂ１／６バックグラウンドを有する創設株１．３．３２）（Ｍｏｒｒｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ａｎｔｉｖｉｒｕｓ  Ｒｅｓ．，４２，９７１０８；Ｇｕｉｄｏｔｔｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｊ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，６９，１０，６１５８−６１６９）を用いて，本発明のリボザイム（ＲＰＩ．１８３４１，ＲＰＩ．１８３７１，ＲＰＩ．１８３７２，およびＲＰＩ．１８４１８）のインビボ活性を研究した。このモデルは，抗ＨＢＶ薬剤のスクリーニングにおいて予言的である。リボザイムまたは等量の食塩水をＡｌｚｅｔ（登録商標）ミニ浸透圧ポンプを用いる連続皮下注入により１４日間投与した。試験物質は，製造元の指針にしたがって，Ａｌｚｅｔ（登録商標）ポンプに無菌的に充填した。インビボ移植の前に，ポンプを３７℃で一夜（１８時間以上）インキュベートして，フローモジュレータを用意した。外科手術の日に，ケタミン／キシラジンカクテル（それぞれ９４ｍｇ／ｋｇおよび６ｍｇ／ｋｇ；０．３ｍｌ，ＩＰ）で動物を軽く麻酔した。各動物から後部眼窩採血により基底状態血液試料（２００μｌ）を採取した。尾部の基底部に近い２ｃｍの領域を剃り，ベタジン外科ブラシで，次に７０％アルコールで清浄にした。＃１５のメスまたは短いハサミで尾の基底部に近い皮膚に１ｃｍの切開を作成した。ピンセットを用いて皮下結合組織を広げることによりポケットを嘴のように開いた（すなわち頭に向かって）。輸送ポートが切開と反対側を向くようにポンプを挿入した。滅菌９ｍｍステンレスクリップまたは滅菌４−０縫合糸で創傷を閉じた。次に動物を暖かい加熱パッド上で麻酔から回復させ，その後にケージに戻した。創傷は毎日調べた。クリップまたは糸は必要に応じて取り替えた。切開部は典型的には手術の７日後までに完全に癒合した。次に，ポンプ移植の１４日後に動物をケタミン／キシラジンカクテル（それぞれ１５０ｍｇ／ｋｇおよび１０ｍｇ／ｋｇ，０．５ｍｌ，ＩＰ）で深く麻酔した。正中開胸／側腹切開を行って腹腔および胸腔を暴露した。左心室の底部にカニューレを挿入し，２３Ｇの針および１ｍｌのシリンジを用いて動物を放血させた。血清を分離し，凍結し，ＨＢＶ  ＤＮＡおよび抗原レベルについて分析した。第０日から第１４日の変化のパーセントについて，実験群を食塩水対照群と比較した。ＨＢＶ  ＤＮＡは，定量的ＰＣＲによりアッセイした。
【０４２０】
結果
表ＸＩＩは，ＨＢＶトランスジェニックマウス研究において用いた群の名称および投与量のレベルの概要である。後部眼窩から基底状態血液試料を得，動物（Ｎ＝１０／群）に抗ＨＢＶリボザイム（１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ）を連続皮下注入として投与した。１４日後，ＨＢＶ  ＲＮＡの部位２７３を標的とするリボザイム（ＲＰＩ．１８３４１）で処理した動物は，定量的ＰＣＲアッセイにより測定して，食塩水処理動物と比較して血清ＨＢＶ  ＤＮＡ濃度の有意な低下を示した。より詳細には，食塩水処置動物においては，この２週間の期間に血清ＨＢＶ  ＤＮＡ濃度が６９％増加したが，２７３リボザイム（ＲＰＩ．１８３４１）による治療は血清ＨＢＶ  ＤＮＡ濃度を６０％低下させた。部位１８３３（ＲＰＩ．１８３７１），１８７３（ＲＰＩ．１８４１８），および１８７４（ＲＰＩ．１８３７２）に向けられたリボザイムは，血清ＨＢＶ  ＤＮＡ濃度をそれぞれ４９％，１５％および１６％低下させた。
【０４２１】
実施例９：ＨＢＶトランスジェニックマウス実験Ｂ
ＨＢＶ  ＲＮＡを発現しＨＢＶウイルス血症を形成するトランスジェニックマウス株（Ｃ５７Ｂ１／６バックグラウンドを有する創設株１．３．３２）（Ｍｏｒｒｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ａｎｔｉｖｉｒａｌ  Ｒｅｓ．，４２，９７１０８；Ｇｕｉｄｏｔｔｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｊ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，６９，１０，６１５８−６１６９）を用いて，本発明のリボザイム（ＲＰＩ．１８３４１およびＲＰＩ．１８３７１）のインビボ活性を調べた。このモデルは，抗ＨＢＶ薬剤のスクリーニングにおいて予言的である。リボザイムまたは等量の食塩水をＡｌｚｅｔ（登録商標）ミニ浸透圧ポンプを用いる連続皮下注入により１４日間投与した。試験物質は，製造元の指針にしたがって，Ａｌｚｅｔ（登録商標）ポンプに無菌的に充填した。インビボ移植の前に，ポンプを３７℃で一夜（１８時間以上）インキュベートして，フローモジュレータを用意した。外科手術の日に，ケタミン／キシラジンカクテル（それぞれ９４ｍｇ／ｋｇおよび６ｍｇ／ｋｇ；０．３ｍｌ，ＩＰ）で動物を軽く麻酔した。１−１０（表ＸＩＩＩ）の動物については，各動物から後部眼窩採血により基底状態血液試料（２００μｌ）を採取した。尾部の基底部に近い２ｃｍの領域を剃り，ベタジン外科ブラシで，次に７０％アルコールで清浄にした。＃１５のメスまたは短いハサミで尾の基底部に近い皮膚に１ｃｍの切開を作成した。ピンセットを用いて皮下結合組織を広げることによりポケットを嘴のように開いた（すなわち頭に向かって）。輸送ポートが切開と反対側を向くようにポンプを挿入した。滅菌９ｍｍステンレスクリップまたは滅菌４−０縫合糸で創傷を閉じた。次に動物を暖かい加熱パッド上で麻酔から回復させ，その後にケージに戻した。創傷は毎日調べた。クリップまたは糸は必要に応じて取り替えた。切開部は典型的には手術の７日後までに完全に癒合した。次に，ポンプ移植の１４日後に動物をケタミン／キシラジンカクテル（それぞれ１５０ｍｇ／ｋｇおよび１０ｍｇ／ｋｇ，０．５ｍｌ，ＩＰ）で深く麻酔した。正中開胸／側腹切開を行って腹腔および胸腔を暴露した。左心室の底部にカニューレを挿入し，２３Ｇの針および１ｍｌのシリンジを用いて動物を放血させた。血清を分離し，凍結し，ＨＢＶ  ＤＮＡおよび抗原レベルについて分析した。第０日から第１４日の変化のパーセントについて，実験群を食塩水対照群と比較した。ＨＢＶ  ＤＮＡは，定量的ＰＣＲによりアッセイした。また，３００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙの用量の３ＴＣ（登録商標）で経口胃管栄養により１４日間処理したマウス（１１群，表ＸＩＩＩ）を正対照として用いた。
【０４２２】
結果
表ＸＩＩＩは，ＨＢＶトランスジェニックマウス研究において用いた群の名称および投与量のレベルの概要である。後部眼窩から基底状態血液試料を得，動物（Ｎ＝１５／群）に抗ＨＢＶリボザイム（１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ，３０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ，１０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ）を連続皮下注入として投与した。この実験の結果は図６，７，および８にまとめられている。図６，７および８に示されるように，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日間のリボザイム治療後，部位２７３（ＲＰＩ．１８３４１）および１８３３（ＲＰＩ．１８３７１）に対するリボザイムは，スクランブル化減弱化コア（ＳＡＣ）リボザイムおよび食塩水対照と比較して血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルの低下を示した。さらに，これらのリボザイムは，３ＴＣ（登録商標）陽性対照より低い用量で，３ＴＣ（登録商標）陽性対照と比較して同様に，場合によってはより大きく，血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルを低下させた。
【０４２３】
実施例１０：ＨｅｐＧ２．２．１５細胞におけるＨＢＶ  ＤＮＡの減少
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞のリボザイム処理は，９６ウエルプレートフォーマットで，試験したそれぞれの異なるリボザイム（ＲＰＩ．１８３４１，ＲＰＩ．１８３７１，ＲＰＩ．１８３７２，ＲＰＩ．１８４１８，ＲＰＩ．２０５９９ＳＡＣ）について１２ウエルで行った。トランスフェクション後１２０−１４４時間で回収した培地中のＨＢＶ  ＤＮＡレベルをＲｏｃｈｅ  Ａｍｐｌｉｃｏｒ  ＨＢＶ  Ａｓｓａｙを用いて決定した。部位２７３を標的とするＲＰＩ１８３４１による処理により，ＨＢＶ  ＤＮＡレベルはＳＡＣ（ＲＰＩ．２０５９９）と比較して６２％と有意に減少した（Ｐ＜０．０５）。ＲＰＩ．１８３７１（部位１８３３）またはＲＰＩ．１８３７２（部位１８７４）による処理により，ＨＢＶ  ＤＮＡレベルはＳＡＣＲＰＩ．２０５９９（図９を参照）による処理と比較してそれぞれ５５％および５８％減少した。
【０４２４】
実施例１１：ＲＰＩ１８３４１とラミブジン／Ｉｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）との組み合わせ治療
本発明の核酸分子を，単独でまたは現在の療法，例えば，ラミブジンまたはＩ型ＩＦＮとの組み合わせで治療に使用することは，改良されたＨＢＶ治療モダリティーにつながりうる。組み合わせ療法の可能性を評価するために，複製可能なＨＢＶ  ｃＤＮＡでトランスフェクトしたＨｅｐＧ２細胞をＲＰＩ１８３４１（ＨｅｐＢｚｙｍｅ（登録商標）），Ｉｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）（Ａｍｇｅｎ，Ｔｈｏｕｓａｎｄ  Ｏａｋｓ  Ｃａ），および／またはラミブジン（Ｅｐｉｖｉｒ（登録商標）：ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ，Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｔｒｉａｎｇｌｅ  Ｐａｒｋ  ＮＣ）で，単独または組み合わせで処理した。結果は，ＲＰＩ．１８３４１プラスＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）またはＲＰＩ．１８３４１プラスラミブジンの組み合わせのいずれかによる組み合わせ治療により，ＨＢｓＡｇ発現の相加的なダウンレギュレーションが得られたことを示した（Ｐ＜０．００１）。これらの実験は，ラミブジン耐性細胞の処理に適用して，慢性Ｂ型肝炎の治療のためにＲＰＩ１８３４１と現在利用可能な療法との組み合わせ療法の可能性をさらに評価することができる。
【０４２５】
ＨｅｐＧ２細胞は，９６ウエルマイクロタイタープレートに播種し（２ｘ１０4細胞／ウエル），一晩インキュベートした。カチオン性脂質／ＤＮＡ／リボザイム複合体は，成長培地中に（最終濃度で）脂質（１１−１５μｇ／ｍＬ），再ライゲーションｐｓＨＢＶ−１（４．５μｇ／ｍＬ）およびリボザイム（１００−２００ｎＭ）を含むよう作成した。３７℃で１５分間インキュベートした後，２０μｌの複合体を，抗生物質を含まない８０μｌの成長培地中のＨｅｐＧ２細胞のプレートに加えた。インターフェロンとの組み合わせ処理のためには，インターフェロン（Ｉｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標），Ａｍｇｅｎ，Ｔｈｏｕｓａｎｄ  Ｏａｋｓ  ＣＡ）をトランスフェクションの２４時間後に加え，次にさらに９６時間インキュベートした。ラミブジン（３ＴＣ（登録商標））との共処理の場合には，トランスフェクションの１２０時間後にリボザイム含有細胞培養培地を除去し，ラミブジン（Ｅｐｉｖｉｒ（登録商標）：ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ，Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｔｒｉａｎｇｌｅ  Ｐａｒｋ  ＮＣ）を含む新鮮な培地を加え，次にさらに４８時間インキュベートした。ｐＳＨＢＶ−１ベクターのみでトランスフェクトしたＨｅｐＧ２細胞をラミブジンまたはインターフェロンで別々に処理し，次に共に処理した細胞と同じく処理した。すべてのトランスフェクションは三重に実施した。ＨＢｓＡｇレベルの分析は，Ｄｉａｓｏｒｉｎ  ＨＢｓＡｇ  ＥＬＩＳＡキットを用いて行った。
【０４２６】
結果
５００または１０００ユニットのＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）で，２００ｎＭのＲＰＩ．１８３４１を添加すると，処理したＨｅｐＧ２細胞から分泌されたＨＢｓＡｇのレベルで判定して，抗ＨＢＶ活性が７５−７７％増加した。これに対し，ＲＰＩ．１８３４１（２００ｎＭ）の抗ＨＢＶ活性は，５００または１０００ユニットのＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）との組み合わせで用いたとき３１−３９％増加する（図１１）。
【０４２７】
２５ｎＭのラミブジン（３ＴＣ（登録商標））では，１００ｎＭのＲＰＩ．１８３４１を添加すると，処理したＨｅｐＧ２細胞から分泌されたＨＢｓＡｇのレベルで判定して，抗ＨＢＶ活性が４８％増加した。これに対し，ＲＰＩ．１８３４１（１００ｎＭ）の抗ＨＢＶ活性は，２５ｎＭラミブジンとの組み合わせで用いたとき３１％増加する（図１２）。
【０４２８】
実施例１３：ＨＢＶリバーストランスクリプターゼの調節
ＨＢＶリバーストランスクリプターゼ（ｐｏｌ）はＨＢＶプレゲノムＲＮＡの５’ステム−ループ構造に結合し，テンプレートＵＵＣＡから４ヌクレオチドプライマーを合成する。次にリバーストランスクリプターゼはプレゲノムＲＮＡの３’末端に移動し，ここでプライマーはＤＲ１要素中のＵＵＣＡ配列に結合し，ＨＢＶ  ＤＮＡの第１鎖合成を開始する。ＨＢＶ  ＲＮＡのプライマー結合部位をブロッキングすることにより，またはデコイとして作用することにより，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマーの競合阻害剤として作用するよう４−１６ｍｅｒの範囲のサイズの多数の短いオリゴを設計した。
【０４２９】
オリゴヌクレオチドおよび対照は全２’−Ｏ−メチルおよび２’−Ｏ−アリル版として合成した（表ＸＶ）。すべてのオリゴの反転配列を対照として作製した。競合的阻害剤の一次スクリーニングは，オリゴをＨＢＶ  ｃＤＮＡベクターとともにＨｅｐＧ２細胞にコトランスフェクションする，ＨＢｓＡｇトランスフェクション／ＥＬＩＳＡ系において完了した。４日間のインキュベート後，細胞培養培地中に分泌されたＨＢｓＡｇのレベルをＥＬＩＳＡにより決定した。２’−Ｏ−アリル版をスクリーニングしたところ，マッチした反転対照に沿った３ｘまたは４ｘ反復のＲＴプライマー結合部位ＵＵＣＡからなる２つのデコイオリゴ（ＲＰＩ．２４９４４およびＲＰＩ．２４９４５）が，ＨＢｓＡｇレベルを減少させる顕著な活性を示すことがわかった（図１５）。ＭＴＳアッセイは処理した細胞のいずれにも増殖に相違がないことを示したため，ＨＢｓＡｇレベルのこの劇的な減少は細胞毒性に起因するものではない。５ｘＵＵＣＡ反復，反転配列対照，およびマッチしたスクランブル化対照を用いた追跡実験は，これらの３つのオリゴのすべてが細胞毒性なしでＨＢｓＡｇレベルを減少させたことを示した。オリゴの２’−Ｏ−メチル版のスクリーニングは，３ｘおよび４ｘＵＵＣＡ反復からは活性を示さず（図１６），このことはまた，抗ＨＢＶ効果はおそらく配列特異性ではなく２’−Ｏ−アリル化学に関係することを示唆する。
【０４３０】
２’−Ｏ−メチルオリゴのスクリーニングは，２’−Ｏ−メチル２ｘＷＣＡ反復（ＲＰＩ．２４９８６）が反転対照であるＲＰＩ．２４９５０と比較してＨＢｓＡｇレベルを減少させる活性を有することを示した。用量応答実験は，ＲＰＩ．２４９８６は１００および２００ｎＭの低い濃度において，反転対照であるＲＰＩ．２４９５０と比較してＨｂｓＡｇレベルを低下させる活性がより高いことを示した（図１７）。
【０４３１】
実施例１４：ＨＢＶ  ＤＮＡのエンハンサーＩコア領域を標的とするオリゴヌクレオチドによるＨＢＶ転写の調節
ＨＢＶ複製を妨害する目的で，ＨＢＶゲノムＤＮＡのエンハンサーコア領域の２つの肝臓特異的因子結合部位に結合するようオリゴヌクレオチドを設計した。肝細胞核因子３（ＨＮＦ３）および肝細胞核因子４（ＨＮＦ４）は，コア領域中の部位に結合し，ＨＮＦ３部位はＨＮＦ４部位の５’側にある。ＨＮＦ３およびＨＮＦ４部位は，多くのより普遍的な因子のための結合部位と重複するかまたは隣接しており，核レセプター応答要素（ＮＲＲＥ）と称される。これらの要素は，感染した肝細胞におけるＨＢＶ転写および複製の制御に必須であり，ＨＮＦ３およびＨＮＦ４結合部位中の変異はＨＢＶ複製のレベルを非常に低下させることが示されている（Ｂｏｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｊ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，７４，２１９３）。
【０４３２】
ＨＮＦ３またはＨＮＦ４結合部位の正鎖または負鎖のいずれかに結合するようオリゴヌクレオチドを設計した（表ＸＶ）。各オリゴにマッチするようスクランブル化対照を作製した。各オリゴは，全２’−Ｏ−メチル／全ホスホロチオエート，または全２’−Ｏ−アリル／全ホスホロチオエート化学で合成した。オリゴの初期スクリーニングは，ＨｅｐＧ２細胞中でＨＢｓＡｇトランスフェクション／ＥＬＩＳＡシステムで行った。ＨＮＦ４結合部位の負鎖を標的とするＲＰＩ．２５６５４は，正鎖のＨＮＦ４部位を標的とするＲＰＩ．２５６５５およびスクランブル化対照ＲＰＩ．２５６５６と比較して，ＨＢｓＡｇレベルの低下に対してより高い活性を示した。この結果は，２００および４００ｎＭのいずれにおいても認められた（図１８および１９）。追跡実験においては，ＲＰＩ．２５６５４は，５０−２００ｎＭで用量依存的様式でＨＢｓＡｇレベルを低下させた（図２０）。
【０４３３】
実施例１５：ｐｓＨＢＶ−１および核酸によるＨｅｐＧ２細胞のトランスフェクション
ヒト肝細胞癌細胞株であるＨｅｐＧ２は，１０％ウシ胎児血清，２ｍＭグルタミン，０．１ｍＭ非必須アミノ酸，１ｍＭピルビン酸ナトリウム，２５ｍＭ  Ｈｅｐｅｓ，１００ユニットのペニシリン，および１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンを補充したダルベッコ改変イーグル培地で成長させた。複製可能ｃＤＮＡを生成するために，トランスフェクション前に細菌プラスミド配列からｐｓＨＢＶ−１ベクター中に含まれるＨＢＶゲノム配列を切り出した。これはＥｃｏＲＩおよびＨｉｎｄＩＩＩ制限消化により行った。消化が完了した後，希釈条件下で（２０μｇ／ｍｌ）ライゲーションを行って，分子間ライゲーションを有利にした。次にライゲーション混合物全部をＱｉａｇｅｎスピンカラムを用いて濃縮した。当業者は，他の方法を用いて複製可能ｃＤＮＡを生成しうることを認識するであろう。
【０４３４】
分泌されたアルカリホスファターゼ（ＳＥＡＰ）を用いてＨＢｓＡｇレベルを標準化してトランスフェクション変量を調節した。ｐＳＥＡＰ２−ＴＫ対照ベクターは，単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼプロモーター領域を含むｐＲＬ−ＴＫベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）のＢｇｌＩＩ−ＨｉｎｄＩＩＩフラグメントをＢｇｌＩＩ／ＨｉｎｄＩＩＩ消化ｐＳＥＡＰ２−Ｂａｓｉｃ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）中にライゲーションすることにより構築した。ＨｅｐＧ２細胞を９６ウエルマイクロタイタープレートに播種し（３ｘ１０4細胞／ウエル），一晩インキュベートした。（最終濃度で）カチオン性脂質（１５ｇ／ｍｌ），調製したｐｓＨＢＶ−１（４．５μｇ／ｍｌ），ｐＳＥＡＰ２−ＴＫ（０．５μｇ／ｍｌ），および核酸（１００μＭ）を含む脂質／ＤＮＡ／核酸複合体が形成された。３７℃で１５分間インキュベートした後，複合体をプレートのＨｅｐＧ２細胞に加えた。トランスフェクションの９６時間後に細胞から培地を除去し，ＨＢｓＡｇおよびＳＥＡＰ分析を行った。
【０４３５】
複製可能ＨＢＶ  ＤＮＡでヒト肝細胞癌細胞株ＨｅｐＧ２をトランスフェクトすると，ＨＢＶ蛋白質が発現し，ビリオンが産生された。
【０４３６】
実施例１６：核酸処理後のＨＢｓＡｇおよびＳＥＡＰレベルの分析
Ｉｍｍｕｌｏｎ４（Ｄｙｎａｘ）マイクロタイターウエルを，炭酸バッファー（Ｎａ2ＣＯ3１５ｍＭ，ＮａＨＣＯ3３５ｍＭ，ｐＨ９．５）中の１μｇ／ｍｌの抗ＨＢｓＡｇＭａｂ（Ｂｉｏｓｔｒｉｄｅ  Ｂ８８−９５−３１ａｄ，ａｙ）で４℃で一夜コーティングした。次にウエルをＰＢＳＴ（ＰＢＳ，０．０５％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）で４回洗浄し，ＰＢＳＴ，１％ＢＳＡで３７℃で１時間ブロッキングした。上述のように洗浄した後，ウエルを３７℃で３０分間乾燥した。ビオチン化ヤギ抗ＨＢｓＡｇ（Ａｃｃｕｒａｔｅ  ＹＶＳ１８０７）をＰＢＳＴ中で１：１０００に希釈し，ウエル中で３７℃で１時間インキュベートした。ウエルをＰＢＳＴで４回洗浄した。ストレプトアビジン／アルカリホスファターゼコンジュゲート（Ｐｉｅｒｃｅ  ２１３２４）をＰＢＳＴ中で２５０ｎｇ／ｍｌに希釈し，ウエル中で３７℃で１時間インキュベートした。上述のように洗浄した後，ｐ−ニトロフェニルリン酸基質（Ｐｉｅｒｃｅ  ３７６２０）をウエルに加え，次にこれを３７℃で１時間インキュベートした。次に４０５ｎｍの光学密度を決定した。ＳＥＡＰレベルは，ＧｒｅａｔＥｓｃＡＰｅ（登録商標）Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ  Ｋ２０４１−１）を用いて製造元の指針にしたがってアッセイした。
【０４３７】
実施例１７：ＨｅｐＧ２．２．１５ネズミモデルにおけるＨＢＶ  ＤＮＡ発現の分析
慢性Ｂ型肝炎の治療のための新規抗ウイルス剤の開発は，関連するヘパドナウイルス，例えばＷｏｏｄｃｈｕｃｋ肝炎ウイルス（ＷＨＶ）およびＤｕｃｋ肝炎ウイルス（ＤＨＶ）の複製を許容する動物モデルの使用により助けられてきた。さらに，トランスジェニックマウスも用いられてきた。皮下（ＳＣ）腫瘍として移植されたヒト胚芽細胞腫細胞株ＨｅｐＧ２．２．１５を用いて，マウスにＢ型肝炎ウイルス血症を生じさせることができる。このモデルは新規なＨＢＶ療法を評価するのに有用である。ＨｅｐＧ２．２．１５ＳＣ腫瘍を有するマウスは，ＨＢＶウイルス血症を示す。ＨＢＶ  ＤＮＡは第３５日から血清中で検出することができる。第４９日までに最大血清ウイルスレベルは１．９ｘ１０5コピー／ｍＬに達する。ある実験により，ウイルス血症に伴う最小腫瘍体積は３００ｍｍ3であると決定された。したがって，ＳＣ腫瘍として成長したＨｅｐＧ２．２．１５細胞株は，マウスにおけるＨＢＶウイルス血症の有用なモデルを生成する。この新たなモデルは，慢性Ｂ型肝炎の新規治療計画を評価するために適している可能性がある。
【０４３８】
ＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍細胞はわずかに切断された形のウイルスＨＢＶ  ＤＮＡを含み，ＨＢＶ粒子を放出する。この実験の目的は，ウイルス粒子がどの時点で腫瘍から放出されるかを同定することであった。血清を分析して，無胸腺Ｎｃｒ  ｎｕ／ｎｕマウスにＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍を接種した後のＨＢＶ  ＤＮＡの存在の経時変化を調べた。ＨｅｐＧ２．２．１５細胞はＤＭＥＭ／１０％ＦＢＳ／２．４％ＨＥＰＥＳ／１％ＮＥＡＡ／１％グルタミン／１％ピルビン酸ナトリウム培地中で維持および拡大した。注入用に細胞をカルシウム／マグネシウムを含むダルベッコＰＢＳに懸濁した。１００μｌの腫瘍細胞懸濁液（１ｘ１０8細胞／ｍＬの濃度）を２３ｇｌの針および１ｃｃのシリンジでＮＣＲ  ｎｕ／ｎｕ雌マウスの横腹の皮下に注入し，このことにより各マウスに１ｘ１０7個の細胞を注入した。腫瘍は，腫瘍細胞接種後４９日までの期間成長させた。腫瘍接種後１，７，１４，３５，４２および４９日に分析用に血清をサンプリングした。１週間に３回ジャミソンマイクロカリパスを用いて各腫瘍の長さおよび幅を測定した。腫瘍体積は，腫瘍の長さ／幅の測定値から計算した（腫瘍体積＝０．５［ａ（ｂ）2］；ａ＝腫瘍の最長軸，ｂ＝腫瘍の最短軸）。血清は，Ｒｏｃｈｅ  Ａｍｐｌｉｃｏｒ  ＨＢＶ  ｍｏｎｉｔｅｒ（登録商標）ＤＮＡアッセイを用いてＨＢＶ  ＤＮＡの存在について分析した。
【０４３９】
実験１
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞は，ＤＭＥＭ／１０％ＦＢＳ／２．４％ＨＥＰＥＳ／１％ＮＥＡＡ／１％グルタミン／１％ピルビン酸ナトリウム培地中で維持および拡大した。注入用にカルシウム／マグネシウムを含むダルベッコＰＢＳに細胞を懸濁した。１００μｌの腫瘍細胞懸濁液（１ｘ１０8細胞／ｍＬの濃度）を２３ｇｌの針および１ｃｃのシリンジを用いてＮＣＲ  ｎｕ／ｎｕ雌マウスの横腹の皮下に注入し，このことにより各マウスに１ｘ１０7個の細胞を注入した。腫瘍は腫瘍細胞接種後４９日まで成長させた。腫瘍接種後１，７，１４，３５，４２および４９日に分析のために血清をサンプリングした。１週間に３回，ジャミソンマイクロカリパスを用いて各腫瘍の長さおよび幅を測定した。腫瘍体積は腫瘍長さ／幅の測定値から計算した（腫瘍体積＝０．５［ａ（ｂ）2］（ａ＝腫瘍の最長軸，ｂ＝腫瘍の最短軸）。血清はＲｏｃｈｅ  Ａｍｐｌｉｃｏｒ  ＨＢＶ  ｍｏｎｉｔｅｒ（登録商標）ＤＮＡアッセイを用いてＨＢＶ  ＤＮＡの存在について分析した。
【０４４０】
結果
無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスの皮下にＨｅｐＧ２．２．１５細胞を注入し腫瘍が形成されたとき，ＨＢＶ  ＤＮＡが血清中で検出された（ピーク血清レベルは１．９ｘ１０5コピー／ｍＬであった）。腫瘍重量（ミリグラム）とＨＢウイルスコピー／ｍＬ血清との間に正の相関があった（ｒｓ＝０．７，ｐ＜０．０１）。図２１は，ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍の，腫瘍体積対時間のプロットを示す。表ＸＶＩは，この実験において用いたＨｅｐＧ２．２．１５移植ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおける腫瘍サイズとＨＢＶ  ＤＮＡの濃度の関連性を示す。
【０４４１】
実験２
ＨｅｐＧ２．２．１５細胞は，４００μｇ／ｍｌのＧ４１８抗生物質を含むＤＭＥＭ／１０％ＦＢＳ／２．４％ＨＥＰＥＳ／１％ＮＥＡＡ／１％グルタミン／１％ピルビン酸ナトリウム培地中で維持および拡大した。注入用にカルシウム／マグネシウムを含むダルベッコＰＢＳにＧ４１８耐性細胞を懸濁した。１００μｌの腫瘍細胞懸濁液（１ｘ１０8細胞／ｍＬの濃度）を２３ｇｌの針および１ｃｃのシリンジを用いてＮＣＲｎｕ／ｎｕ雌マウスの横腹の皮下に注入し，このことにより各マウスに１ｘ１０7個の細胞を注入した。腫瘍は腫瘍細胞接種後４９日間成長させた。腫瘍接種後第３７日に血清を分析のためにサンプリングした。１週間に３回ジャミソンマイクロカリパスを用いて各腫瘍の長さおよび幅を測定した。腫瘍体積は腫瘍長さ／幅の測定値から計算した（腫瘍体積＝０．５［ａ（ｂ）2］（ａ＝腫瘍の最長軸，ｂ＝腫瘍の最短軸）。血清はＲｏｃｈｅ  Ａｍｐｌｉｃｏｒ  ＨＢＶ  ｍｏｎｉｔｅｒ（登録商標）ＤＮＡアッセイを用いてＨＢＶ  ＤＮＡの存在について分析した。
【０４４２】
結果
無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスの皮下にＧ４１８抗生物質耐性ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を注入し，腫瘍を形成させたとき，ＨＢＶ  ＤＮＡが血清において検出された（ピーク血清レベルは４．０ｘ１０5コピー／ｍＬであった）。腫瘍重量（ミリグラム）とＨＢウイルスコピー／ｍＬ血清との間には正の相関がある（ｒｓ＝０．７，ｐ＜０．０１）。図２２は，ｎｕ／ｎｕ雌マウス中のＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍を腫瘍体積対時間でプロットしたものを示す。表ＸＶＩＩは，この実験において用いられたｎｕ／ｎｕ雌マウスに移植したＧ４１８抗生物質耐性ＨｅｐＧ２．２．１５における，腫瘍サイズとＨＢＶ  ＤＮＡの濃度の関連性を示す。
【０４４３】
実施例１８：ＨＣＶ  ＲＮＡ中の潜在的酵素的核酸分子切断部位の同定
コンピュータフォールディングアルゴリズムを用いて，ＨＣＶ  ＲＮＡの配列をアクセス可能部位についてスクリーニングした。二次フォールディング構造を形成せず，潜在的酵素的核酸切断部位を含むｍＲＮＡの領域を同定した。これらの切断部位の配列は，表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩに示される。
【０４４４】
実施例１９：ＨＣＶ  ＲＮＡ中の酵素的核酸分子切断部位の選択
酵素的核酸の標的部位は，ヒトＨＣＶの配列（Ｇｅｎｂａｎｋ受託番号：Ｄ１１１６８，Ｄ５０４８３．１，Ｌ３８３１８およびＳ８２２２７）を分析することにより選択し，フォールディングに基づいて部位に優先順位をつけた。各標的に結合しうるように酵素的核酸分子を設計し，コンピュータフォールディングにより別々に分析して（Ｃｈｒｉｓｔｏｆｆｅｒｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４  Ｊ．Ｍｏｌ．Ｓｔｒｕｃ．Ｔｈｅｏｃｈｅｍ，３１１，２７３；Ｊａｅｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６，７７０６），酵素的核酸分子配列が適当な二次構造にフォールディングされるか否かを評価した。結合アームと触媒コアとの間に望ましくない分子内相互作用を有する酵素的核酸分子は考慮から除外した。以下に記載されるように，種々の結合アームの長さを選択して活性を最適化することができる。一般に，各アーム上に少なくとも４塩基あれば，標的ＲＮＡに結合するか，さもなくばそれと相互作用することができる。
【０４４５】
実施例２０．酵素的核酸の化学合成および精製
酵素的核酸分子を，ＲＮＡメッセージの種々の部位にアニーリングするよう設計することができる。酵素的核酸分子の結合アームは，上述した標的部位配列に相補的である。酵素的核酸分子は，ＲＮＡ合成，例えば，上述の方法およびＵｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，（１９８７  Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０９，７８４５），Ｓｃａｒｉｎｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，（１９９０  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１８，５４３３）；およびＷｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）に記載される方法を用いて化学的に合成することができる。そのような方法は，慣用的な核酸保護基およびカップリング基，例えば５’末端にジメトキシトリチル，および３’末端にホスホルアミダイトを用いる。平均段階カップリング収率は典型的には＞９８％である。酵素的核酸分子は，ヌクレアーゼ耐性基，例えば，２’−アミノ，２’−Ｃ−アリル，２’−フルオロ，２’−Ｏ−メチル，２’−Ｈ（）により修飾することにより，さらに安定性を高めるよう修飾することができる概説については，Ｕｓｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｅｄｅｒｇｒｅｎ，１９９２  ＴＩＢＳ  １７，３４を参照。
【０４４６】
酵素的核酸分子はまた，バクテリオファージＴ７ＲＮＡポリメラーゼを用いてＤＮＡテンプレートから合成することができる（Ｍｉｌｌｉｇａｎ  ａｎｄ  Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９８９，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．１８０，５１）。酵素的核酸分子は，既知の方法を用いてゲル電気泳動により精製してもよく，高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ；Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，（上掲）を参照；このすべてを本明細書の一部としてここに引用する）により精製してもよく，水に再懸濁する。化学的に合成された酵素的核酸構築物の配列は，以下の表ＸＸ，ＸＸＩおよびＸＸＩＩＩに示される。表ＸＸＩＩに示されるアンチセンス核酸分子は化学的に合成した。
【０４４７】
不活性酵素的核酸分子，例えば不活性ハンマーヘッド酵素的核酸は，Ｇ5Ａ6の順番を変更し，Ａ１４をＵで置換することにより合成することができる（番号付けはＨｅｒｔｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２０，３２５２に従う）。
【０４４８】
実施例２１：インビトロでのＨＣＶ  ＲＮＡ標的の酵素的核酸分子切断
ＨＣＶを標的とする酵素的核酸分子を設計し，上述のように合成する。これらの酵素的核酸分子は，例えば以下の方法を用いてインビトロで切断活性を試験することができる。ＨＣＶ中の標的配列およびヌクレオチドの位置は表ＸＶＩＩＩ，ＸＩＸ，ＸＸおよびＸＸＩＩＩに示される。
【０４４９】
切断反応：酵素的核酸分子切断アッセイのための，完全長または部分的完全長の，内部標識された標的ＲＮＡを，［α−32Ｐ］ＣＴＰの存在下でインビトロ転写により調製し，スピンクロマトグラフィーによりＧ５０  Ｓｅｐｈａｄｅｘカラムを通し，さらに精製することなく基質ＲＮＡとして用いる。あるいは，Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼ酵素を用いて基質を５’−32Ｐ−末端標識してもよい。アッセイは，酵素的核酸分子切断緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．５，３７℃，１０ｍＭ  ＭｇＣｌ2）中で２Ｘ濃度の精製酵素的核酸分子を予熱することにより実施し，切断反応は，２Ｘ酵素的核酸分子ミックスを，やはり切断緩衝液中で予熱した等量の基質ＲＮＡ（最大１−５ｎＭ）に加えることにより開始した。最初のスクリーニングとして，アッセイは，最終濃度４０ｎＭまたは１ｍＭの酵素的核酸分子，すなわち酵素的核酸分子過剰を用いて３７℃で１時間行う。等量の９５％ホルムアミド，２０ｍＭ  ＥＤＴＡ，０．０５％ブロモフェノールブルーおよび０．０５％キシレンシアノールを加えることにより反応を停止し，次に試料を９５℃に２分間加熱し，急冷し，変性ポリアクリルアミドゲルに負荷した。基質ＲＮＡおよび酵素的核酸分子切断により生成した特異的ＲＮＡ切断生成物は，ゲルのオートラジオグラフィーで可視化した。切断のパーセントは，ホスファーイメージャーを用いて，無傷の基質と切断生成物を表すバンドを定量することにより決定した。
【０４５０】
あるいは，０．２μｍｏｌスケールを用いて酵素的核酸分子および基質を９６ウエルフォーマットで合成した。基質を５’−32Ｐ標識し，７．５％ポリアクリルアミドゲルを用いてゲル精製し，水中に溶出させた。痕跡量の基質を５００ｎＭまたはそれ以上の酵素的核酸と混合し，最終濃度で４０ｍＭＭｇ2+，および５０ｍＭＴｒｉｓ−ＣｌｐＨ８．０を加えることによりアッセイを開始した。各酵素的核酸／基質の組み合わせについて，対照反応を行って，切断が非特異的基質分解の結果ではないことを確認した。３時間の時点で取り出し，１５％ポリアクリルアミドゲルに流して，切断活性を評価した。ゲルを乾燥し，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｙｎａｍｉｃｓ  Ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｍａｇｅｒを用いてスキャンし，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｙｎａｍｉｃｓ  Ｉｍａｇｅ  Ｑｕａｎｔソフトウエアを用いて定量した。切断されたパーセンテージは，切断された基質のバンドの値を全長（未切断）の値＋切断された値で割り，１００倍することにより決定した（％切断＝［Ｃ／（Ｕ＋Ｃ）］＊１００）。プラス鎖およびマイナス鎖ＨＣＶ  ＲＮＡを標的とする酵素的核酸分子のインビトロ切断データは表ＸＸＩＩＩに示される。
【０４５１】
実施例２２：ＯＳＴ７細胞におけるＨＣＶを標的とする酵素的核酸を用いるルシフェラーゼ活性の阻害
酵素的核酸が細胞内でＨＣＶ  ＲＮＡを阻害する能力は，蛍ルシフェラーゼおよびウミシイタケルシフェラーゼの両方を使用するデュアルレポーターシステムを用いて試験した（図２３）。５’ＨＣＶ  ＵＴＲ領域を標的とする酵素的核酸は，切断したとき，転写産物のルシフェラーゼへの翻訳を妨害するであろう。
【０４５２】
安定化酵素的核酸の合成
酵素的核酸は，ＨＣＶ  ＲＮＡの５’ＵＴＲ中の１５の部位を標的とするよう設計し（図２４），先に記載されるように合成した。ただし，すべての酵素的核酸は２つの２’−アミノウリジンを含んでいた。本明細書に記載される種々の実施例において用いた標的部位用の酵素的核酸および対の対照配列は表ＸＸＩに示される。
【０４５３】
レポータープラスミド
Ｔ７／ＨＣＶ／蛍ルシフェラーゼプラスミド（ＨＣＶＴ７Ｃ1-341，遺伝子型ｌａ）はＡｌｅｅｍ  Ｓｉｄｄｉｑｕｉ（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｃｏｌｏｒａｄｏ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｃｅｎｔｅｒ，Ｄｅｎｖｅｒ，ＣＯ）より譲り受けた。Ｔ７／ＨＣＶ／蛍ルシフェラーゼプラスミドは，ＨＣＶ  ５’ＵＴＲ（ヌクレオチド１−３４１）／蛍ルシフェラーゼ融合ＤＮＡの上流にＴ７バクテリオファージプロモーターを含む。ウミシイタケルシフェラーゼ対照プラスミド（ｐＲＬＳＶ４０）はＰＲＯＭＥＧＡから購入した。
【０４５４】
ルシフェラーゼアッセイ
デュアルルシフェラーゼアッセイは，製造元の指針にしたがって（ＰＲＯＭＥＧＡ），レポータープラスミドおよび酵素的核酸のコトランスフェクションの４時間後に行った。すべてのデータは，三重のサンプルにより決定されたウミシイタケルシフェラーゼ発光に対するＨＣＶ／蛍ルシフェラーゼ発光の平均比率＋ＳＤで表される。
【０４５５】
細胞培養およびトランスフェクション
ＯＳＴ７細胞は，１０％ウシ胎児血清，Ｌ−グルタミン（２ｍＭ）およびペニシリン／ストレプトマイシンを補充したダルベッコ改変イーグル培地（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ）中で維持した。トランスフェクションのために，ＯＳＴ７細胞を黒壁９６ウエルプレート（Ｐａｃｋａｒｄ）に１２，５００細胞／ウエルの密度で播種し，３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。標的レポーターＨＣＶＴ７Ｃ（０．８μｇ／ｍＬ），対照レポーターｐＲＬＳＶ４０（１．２μｇ／ｍＬ）および酵素的核酸（５０−２００ｎＭ）のコトランスフェクションは以下の方法により行った：ＨＣＶＴ７Ｃ（４μｇ／ｍＬ），ｐＲＬＳＶ４０（６μｇ／ｍＬ），酵素的核酸（２５０−１０００ｎＭ）およびカチオン性脂質（２８．５μｇ／ｍＬ）の５Ｘ混合物を１５０μＬのＯＰＴＩ−ＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ）マイナス血清中に作製した。３７℃で５％ＣＯ２で２０分間，レポーター／酵素的核酸／脂質複合体を形成させた。ＯＳＴ７細胞細胞から培地を吸引し，１２０μＬのＯＰＴＩ−ＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ）マイナス血清で置き換え，ただちに３０μＬの５Ｘレポーター／酵素的核酸／脂質複合体を加えた。細胞を複合体とともに３７℃で５％ＣＯ２で４時間インキュベートした。
【０４５６】
用量応答曲線のためのＩＣ５０の決定
見かけのＩＣ５０値は，直線内挿法により計算した。見かけのＩＣ５０は，用量曲線上でＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の約５０％阻害が認められる２つの連続的な点の間の最大応答の１／２である。
【０４５７】
ＲＮＡサンプルの定量
トランスフェクトした細胞からの総ＲＮＡは，ＤＮａｓｅＩ処理を含むＱｉａｇｅｎ  ＲＮｅａｓｙ  ９６法を用いて製造元の指針にしたがって精製した。蛍またはウミシイタケルシフェラーゼＲＮＡのいずれかに特異的な別々のプライマー／プローブの組を用いて，精製したＲＮＡサンプルについてリアルタイムＲＴ−ＰＣＲ（Ｔａｑｍａｎアッセイ）を行った。蛍ルシフェラーゼプライマーおよびプローブは，アッパー（５’−ＣＧＧＴＣＧＧＴＡＡＡＧＴＴＧＴＴＣＣＡＴＴ−３’）（配列番号１６２０２），ロアー（５’−ＣＣＴＣＴＧＡＣＡＣＡＴＡＡＴＴＣＧＣＣＴＣＴ−３’）（配列番号１６２０３），およびプローブ（５’−ＦＡＭ−ＴＧＡＡＧＣＧＡＡＧＧＴＴＧＴＧＧＡＴＣＴＧＧＡＴＡＣＣ−ＴＡＭＲＡ−３’）（配列番号１６２０４）であり，ウミシイタケルシフェラーゼプライマーおよびプローブは，アッパー（５’−ＧＴＴＴＡＴＴＧＡＡＴＣＧＧＡＣＣＣＡＧＧＡＴ３’）（配列番号１６２０５），ロアー（５’−ＡＧＧＴＧＣＡＴＣＴＴＣＴＴＧＣＧＡＡＡＡ−３’）（配列番号１６２０６），およびプローブ（５’−ＦＡＭ−ＣＴＴＴＴＣＣＡＡＴＧＣＴＡＴＴＧＴＴＧＡＡＧＧＴＧＣＣＡＡ−３’）（配列番号１６２０７）−ＴＡＭＲＡであり，いずれのプライマーおよびプローブの組も，Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ  ＤＮＡ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから購入した。ＲＮＡレベルは，大規模トランスフェクションから精製した増幅されたＲＮＡの標準曲線から求めた。ＲＴマイナス対照により，ＲＮＡシグナルが残留プラスミドＤＮＡではなくＲＮＡから生じたことを確認した。ＲＴ−ＰＣＲ条件は以下のとおりであった：４８℃で３０分間，９５℃で１０分間，次に９５℃で１５秒間および６０℃で１分間を４０サイクル。反応は，ＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ  ７７００配列検出器で行った。蛍ルシフェラーゼＲＮＡのレベルは，同じサンプル中に存在するウミシイタケルシフェラーゼＲＮＡのレベルで標準化した。結果は３回の処理の平均＋ＳＤで示される。
【０４５８】
実施例２３：合成の安定化酵素的核酸によるＨＣＶ  ５’ＵＴＲ−ルシフェラーゼ発現の阻害
ＨＣＶ５’ＵＴＲの一次配列および特徴的二次構造（図２４）は，すべてのＨＣＶ遺伝子型にわたって高度に保存されており，このため，これは酵素的核酸媒介性切断の非常に魅力的な標的である。図２５および表ＸＸＩ（ＲＰＩ１２２４９−１２２５４，１２２５７−１２２６５）に一般的に示される，ＨＣＶ  ＲＮＡの５’ＵＴＲ中の最も高度に保存された部位のうちの１５を標的とする酵素的ハンマーヘッド核酸を設計し，合成した。これらの合成酵素的核酸は，２’−Ｏ−メチルヌクレオチド，Ｕ４およびＵ７コア位置における２’−アミノウリジン，ホスホロチオエート結合，および３’−反転無塩基キャップ等の修飾を加えることによりヌクレアーゼ分解に対して安定化させた。
【０４５９】
ＨＣＶゲノムの細胞質転写を模倣するために，ＨＣＶ  ５’ＵＴＲ／蛍ルシフェラーゼ融合遺伝子の上流にＴ７バクテリオファージプロモーターを含む標的レポータープラスミドでＯＳＴ７細胞をトランスフェクトした。標的レポーターの細胞質発現は，ＯＳＴ７細胞の細胞質で発現される高レベルのＴ７ポリメラーゼにより促進される。標的レポーターＨＣＶＴ７Ｃ1-341（蛍ルシフェラーゼ），対照レポーターｐＲＬＳＶ４０（ウミシイタケルシフェラーゼ）および酵素的核酸のコトランスフェクションはカチオン性脂質の存在下で行った。ルシフェラーゼ活性のバックグラウンドレベルを決定するために，無関係な非ＨＣＶ配列を標的とする対照酵素的核酸を用いた。この無関係な対照酵素的核酸（ＩＣＲ）の存在下でレポータープラスミドをトランスフェクションすると，レポータープラスミド単独のトランスフェクションと比較してレポーター発現がわずかに減少した。したがって，ＩＣＲを，ＨＣＶ特異的酵素的核酸による処理の間のレポーター発現に及ぼす非特異的効果の対照として用いた。ｐＲＬＳＶ４０レポーターからのウミシイタケルシフェラーゼ発現を用いて，トランスフェクション効率およびサンプル回収を標準化した。
【０４６０】
試験した１５個のアミノ修飾ハンマーヘッド酵素的核酸のうち，１２個はＩＣＲと比較して有意にＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現を阻害した（＞４５％，Ｐ＜０．０５）（図２６Ａ）。これらのデータは，ここで標的としたＨＣＶ  ５’ＵＴＲ部位のほとんどが酵素的核酸の結合および続くＲＮＡ切断にアクセス可能であることを示唆する。いくつかの実験を通して，ＨＣＶ  ５’ＵＴＲの部位７９，８１，１４２，１９２，１９５，２８２または３３０の後を切断するよう設計されたハンマーヘッド酵素的核酸の抗ＨＣＶ活性が最も有効であったため，ＨＣＶ／ルシフェラーゼ活性の酵素的核酸依存的阻害をさらに調べるために，これらを選択して次の実験を行った。７個の活性な酵素的核酸のそれぞれについて対応する減弱化コア（ＡＣ）対照を合成した（表ＸＸ）。それぞれの対ＡＣ対照はその対応する活性な酵素的核酸と同様のヌクレオチド組成を含むが，スクランブル化結合アームおよび触媒コアにおける変更のため，これらはＨＣＶ  ＲＮＡに結合してその切断を触媒する能力を欠失している。部位７９，８１，１４２，１９５または３３０の後を切断するよう設計された酵素的核酸でＯＳＴ７細胞を処理すると，対応するＡＣで処理した細胞におけるＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現と比較して，ＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の有意な阻害が認められた（それぞれ６５％，５０％，５０％，８０％および８０％，Ｐ＜０．０５）（図２６Ｂ）。部位７９，８１，１４２または１９２についてのＩＣＲまたはＡＣｓのいずれかによる処理は，部位１９５，２８２または３３０についてのＡＣｓによる処理より高いＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の低下をもたらしたことに注意すべきである。ＡＣｓで処理した後のＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の観察された相違は，おそらくはオリゴヌクレオチド処理の非特異的効果および／または塩基組成の相違に起因する活性の範囲であろう。ＡＣｓによる処理の結果として観察されたＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現レベルの相違にかかわらず，部位７９，８１，１４２，１９５，または３３０の後を切断するよう設計された活性な酵素的核酸は，同様の強力な抗ＨＣＶ活性を示した（図２６Ｂ）。
【０４６１】
実施例２４：合成の安定化酵素的核酸はＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現を濃度依存的様式で阻害する
酵素的核酸の有効性をさらに詳細に特徴づけるために，これらの同じ５つのリードハンマーヘッド酵素的核酸が酵素的核酸の濃度（０ｎＭ−１００ｎＭ）の範囲でＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現を阻害する能力について試験した。トランスフェクション条件を一定とするために，活性な酵素的核酸をその対応するＡＣと混合することにより，すべてのサンプルについて核酸の総濃度を１００ｎＭとした。さらに，活性な酵素的核酸およびＡＣは脂質対核酸の荷電比を維持するよう混合した。それぞれ５つの酵素的核酸による処理の後にＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の濃度依存的阻害が認められた（図２７Ａ−Ｅ）。直線内挿法により，ＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の５０％阻害をもたらす酵素的核酸濃度（見かけのＩＣ５０）は，４０−２１５ｎＭの範囲であった。２つの最も有効な酵素的核酸は，部位１９５または３３０の後を切断するよう設計されたものであり，見かけのＩＣ５０値はそれぞれ４６ｎＭおよび４０ｎＭであった（図２７ＤおよびＥ）。
【０４６２】
実施例２５：ＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の観察された阻害には酵素的核酸メカニズムが必要である
作用の酵素的核酸メカニズムがＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の観察された阻害の原因であることを確認するため，対の結合アーム減弱化コア（ＢＡＣ）対照（ＲＰＩ１５２９１および１５２９４）を合成して，部位１９５（ＲＰＩ１２２５２）および３３０（ＲＰＩ１２２５４）を標的とする酵素的核酸と直接比較した。対のＢＡＣはＨＣＶ  ＲＮＡに特異的に結合することができるが，触媒コアにおける変化のためＲＮＡ切断を進行させることができない。したがって，これを用いて，結合のみによる阻害を評価することができる。この比較には，スクランブル化結合アームおよび減弱化触媒コアを含み，したがって，標的ＲＮＡに結合するかまたは標的ＲＮＡ切断を触媒する能力を欠失している対のＳＡＣ対照（ＲＰＩ１５２９２および１５２９５）も用いた。
【０４６３】
標的ＲＮＡの酵素的核酸切断により，ＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡのレベルが低下し，次にＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現が減少するはずである。標的ＲＮＡレベルを分析するために，リバーストランスクリプターゼ／ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）アッセイを用いてＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡレベルを定量した。プライマーは，ＨＣＶ  ５’ＵＴＲ／ルシフェラーゼＲＮＡのルシフェラーゼコーディング領域を増幅するよう設計した。この領域が選択されたのは，細胞ＲＮＡとともに精製されるかもしれない，ＨＣＶを標的とする酵素的核酸が，ルシフェラーゼＲＮＡ領域のＲＴ−ＰＣＲ増幅を妨害しないであろうからである。また，ウミシイタケＲＮＡレベルをトランスフェクション効率およびサンプル回収の対照として用いることができるように，ウミシイタケルシフェラーゼＲＮＡを増幅するプライマーも設計した。
【０４６４】
ＯＳＴ７細胞を，部位１９５または３３０の後を切断するよう設計された活性な酵素的核酸，対のＳＡＣ，または対のＢＡＣで処理した。部位１９５または３３０を標的とする酵素的核酸で処理すると，対のＳＡＣ対照と比較してＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡが有意に低下した（Ｐ＜０．０１）。この実験においては，部位１９５酵素的核酸は部位３３０酵素的核酸より有効であった（図２８Ａ）。部位１９５または３３０を標的とする対のＢＡＣによる処理は，対応するＳＡＣと比較してＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡを低下させなかった。すなわち，結合する能力のみではＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡが低下しないことが確認された。
【０４６５】
標的ＲＮＡの酵素的核酸媒介性切断がＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の阻害に必要であることを確認するため，同じ実験においてＨＣＶ／ルシフェラーゼ活性を決定した。予測されたように，酵素的酵素的核酸で処理した後に，対のＳＡＣと比較してＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の有意な阻害が認められた（図２８Ｂ）。重要なことには，対のＢＡＣによる処理はＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現を阻害しなかった。すなわち，結合する能力のみでは翻訳を阻害するには充分ではないことが確認された。ＲＮＡアッセイにおいて観察されたように，この実験において部位１９５酵素的核酸は部位３３０酵素的核酸より有効であった。しかし，酵素的核酸媒介性ＨＣＶ  ＲＮＡ低下とＨＣＶ／ルシフェラーゼ翻訳の阻害との間の相関は，いずれの部位に対する酵素的核酸についても認められた。標的ＲＮＡの減少および活性な酵素的核酸触媒コアが必要であることから，部位１９５または部位３３０酵素的核酸で処理した細胞におけるＨＣＶ／ルシフェラーゼ蛋白質活性の観察された阻害には，酵素的核酸メカニズムが必要であることが確認される。
【０４６６】
実施例２６：キメラＨＣＶ／ポリオウイルス複製のチンザイム阻害
ＨＣＶ感染の間，ウイルスＲＮＡはいくつかのプロセス，すなわちアンコーティング，翻訳，ＲＮＡ複製およびパッケージングにおいて，酵素的核酸切断の潜在的標的として存在する。標的ＲＮＡは，これらの工程のいずれにおいても，酵素的核酸切断に対してある程度アクセス可能でありうる。ＨＣＶ初期リボソーム侵入部位（ＩＲＥＳ）と翻訳装置との間の相関はＨＣＶ５’ＵＴＲ／ルシフェラーゼレポーターシステムにおいて模倣されるが，これらの他のウイルスプロセスはＯＳＴ７システムには存在しない。標的ウイルスＲＮＡに付随する得られるＲＮＡ／蛋白質複合体も存在しない。さらに，これらのプロセスはＨＣＶ感染細胞において連結している可能性があり，このことは標的ＲＮＡのアクセス可能性にさらに影響を与えるかもしれない。したがって，本出願人は，ＨＣＶ５’ＵＴＲを切断するよう設計された酵素的核酸がウイルス系を複製させることができるか否かを試験した。
【０４６７】
最近，ＬｕおよびＷｉｍｍｅｒは，ポリオウイルスＩＲＥＳをＨＣＶからのＩＲＥＳで置き換えた，ＨＣＶ−ポリオウイルスキメラを特性決定した（Ｌｕ＆Ｗｉｍｍｅｒ，１９９６，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．９３，１４１２−１４１７）。ポリオウイルス（ＰＶ）はＨＣＶと同様に正鎖ＲＮＡウイルスであるが，ＨＣＶとは異なり，エンベロープを有さず，培養細胞中で効率よく複製する。ＨＣＶ−ＰＶキメラは，野生型ＰＶと比較して安定な小さいプラークの表現型を示す。
【０４６８】
以下の酵素的核酸分子（チンザイム）を合成し，ＨＣＶ／ポリオウイルスキメラ：ＲＰＩ１８７６３，ＲＰＩ１８８１２，ＲＰＩ１８７４９，ＲＰＩ１８７６５，ＲＰＩ１８７９２，およびＲＰＩ１８８１４（表ＸＸ）の複製阻害について試験した。スクランブル化減弱化コア酵素的核酸であるＲＰＩ１８７４３を対照として用いた。
【０４６９】
ＨｅＬａ細胞をＨＣＶ−ＰＶキメラで３０分間感染させ，ただちに酵素的核酸で処理した。ＨｅＬａ細胞をＵ底９６ウエルプレートに９０００−１０，０００細胞／ウエルの密度で播種し，３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。核酸（２００ｎＭ）のトランスフェクションは，５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含むＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）で１０Ｘ核酸（２０００ｎＭ）および１０Ｘカチオン性脂質（８０μｇ／ｍｌ）を混合することにより行った。核酸／脂質複合体は３７℃で５％ＣＯ２で１５分間インキュベートした。培地を細胞から吸引し，５％ＦＢＳ血清を含む８０μｌのＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）で置き換え，次に２０μｌの１０Ｘ複合体を加えた。細胞を複合体とともに３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。
【０４７０】
処理した細胞からのＨＣＶ−ＰＶの収量をプラークアッセイにより定量した。プラークアッセイは，ウイルスサンプルを無血清ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）中で希釈し，１００μｌを６ウエルプレート中のＨｅＬａ細胞の単層（〜８０％コンフルエント）に３０分間適用することにより行った。感染した単層を３ｍｌの１．２％寒天（Ｓｉｇｍａ）で重層し，３７℃で５％ＣＯ２でインキュベートした。２−３日後に重層を取り除き，単層を１．２％クリスタルバイオレットで染色し，プラーク形成単位を計数した。ＨＣＶ−ＰＶ複製のチンザイム阻害の結果は図３３に示される。
【０４７１】
実施例２７：キメラＨＣＶ／ポリオウイルス複製のアンチセンス阻害
アンチセンス核酸分子（ＲＰＩ１７５０１およびＲＰＩ１７４９８，表ＸＸＩＩ）を，ＨＣＶ／ポリオウイルスキメラの複製阻害について試験し，スクランブル化対照と比較した。アンチセンス核酸分子は，ＲＮＡ−ＲＮＡまたはＲＮＡ−ＤＮＡまたはＲＮＡ−ＰＮＡ（蛋白質核酸；Ｅｇｈｏｌｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３  Ｎａｔｕｒｅ  ３６５，５６６）相互作用により標的ＲＮＡに結合し，標的ＲＮＡの活性を変化させる非酵素的核酸分子である（概説として，Ｓｔｅｉｎ  ａｎｄ  Ｃｈｅｎｇ，１９９３  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２６１，１００４およびＷｏｏｌｆ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８４９，９０２を参照）。典型的には，アンチセンス分子は，アンチセンス分子の単一の連続する配列に沿って標的配列に相補的である。しかし，ある態様においては，アンチセンス分子は基質分子がループを形成するように基質に結合することができ，および／またはアンチセンス分子はアンチセンス分子がループを形成するように結合することができる。すなわち，アンチセンス分子は２つの（またはさらに多くの）非連続的基質配列に相補的であることができ，またはアンチセンス分子の２つの（またはさらに多くの）非連続的配列部分は標的配列に相補的であることができ，これらの両方であってもよい。現在のアンチセンス戦略の概要については，Ｓｃｈｍａｊｕｋ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７４，２１７８３−２１７８９，Ｄｅｌｉｈａｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎａｔｕｒｅ，１５，７５１−７５３，Ｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｎ．Ａ．ＤｒｕｇＤｅｖ．，７，１５１，Ｃｒｏｏｋｅ，２０００，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，３１３，３−４５；Ｃｒｏｏｋｅ，１９９８，Ｂｉｏｔｅｃｈ．Ｇｅｎｅｔ．Ｅｎｇ．Ｒｅｖ．，１５，１２１−１５７，Ｃｒｏｏｋｅ，１９９７，Ａｄ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，４０，１−４９を参照。さらに，アンチセンスＤＮＡを用いてＤＮＡ−ＲＮＡ相互作用によりＲＮＡをターゲティングし，このことによりＲＮａｓｅＨを活性化させることができ，これはデュープレックス中の標的ＲＮＡを消化する。アンチセンスオリゴヌクレオチドは，１またはそれ以上のＲＮＡｓｅＨ活性化領域を含んでいてもよく，これは標的ＲＮＡのＲＮＡｓｅＨ切断を活性化することができる。アンチセンスＤＮＡは，化学的に合成してもよく，または一本鎖ＤＮＡ発現ベクターまたはその同等物を用いて発現させてもよい。さらに，アンチセンス分子は，本発明の酵素的核酸分子と組み合わせて用いることができる。
【０４７２】
ＲＮａｓｅＨ活性化領域は，標的ＲＮＡに結合して，細胞性ＲＮａｓｅＨ酵素により認識される非共有結合複合体を形成しうる核酸分子の領域である（一般に４−２５ヌクレオチドの長さ以上，好ましくは５−１１ヌクレオチドの長さである）（例えば，Ａｒｒｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，米国特許５，８４９，９０２；Ａｒｒｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，ＵＳ５，９８９，９１２を参照）。ＲＮａｓｅＨ酵素は核酸分子−標的ＲＮＡ複合体に結合し，標的ＲＮＡ配列を切断する。ＲＮａｓｅＨ活性化領域は，例えば，ホスホジエステル，ホスホロチオエート（好ましくはヌクレオチドの少なくとも４個がホスホロチオエート置換であり，特にヌクレオチドの４−１１個がホスホロチオエート置換である）；ホスホロジチオエート，５’−チオリン酸，またはメチルホスホネート骨格化学であるか，またはそれらの組み合わせである。上述した１またはそれ以上の骨格化学に加えて，ＲＮａｓｅＨ活性化領域はまた，種々の糖化学を含んでいてもよい。例えば，ＲＮａｓｅＨ活性化領域は，デオキシリボース，アラビノ，フルオロアラビノまたはこれらの組み合わせのヌクレオチド糖化学を含むことができる。当業者は，上述は非限定的な例であり，ＲＮａｓｅＨ酵素の活性を支持する核酸のリン酸，糖および塩基化学の任意の組み合わせが，ＲＮａｓｅＨ活性化領域の定義および本発明の範囲内に含まれることを理解するであろう。
【０４７３】
ＨｅＬａ細胞をＨＣＶ−ＰＶキメラで３０分間感染させ，ただちにアンチセンス核酸で処理した。ＨｅＬａ細胞は，Ｕ底９６ウエルプレートに９０００−１０，０００細胞／ウエルの密度で播種し，３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。核酸（２００ｎＭ）のトランスフェクションは，１０Ｘの核酸（２０００ｎＭ）と５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含むＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）中の１０Ｘのカチオン性脂質（８０μｇ／ｍｌ）とを混合することにより行った。核酸／脂質複合体を３７℃で５％ＣＯ２で１５分間インキュベートした。細胞から培地を吸引し，５％ＦＢＳ血清を含む８０μｌのＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）で置き換え，次に２０μｌの１０Ｘ複合体を加えた。細胞を複合体とともに３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。
【０４７４】
処理した細胞からのＨＣＶ−ＰＶの収量は，プラークアッセイにより定量した。プラークアッセイは，ウイルスサンプルを無血清ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）中で希釈し，１００μｌを６ウエルプレート中のＨｅＬａ細胞の単層（〜８０％コンフルエント）に３０分間適用することにより行った。感染した単層に３ｍｌの１．２％寒天（Ｓｉｇｍａ）を重層し，３７℃で５％ＣＯ２でインキュベートした。２−３日後，重層を取り除き，単層を１．２％クリスタルバイオレットで染色し，プラーク形成単位を計数した。ＨＣＶ−ＰＶのアンチセンス阻害の結果は図３４に示される。
【０４７５】
実施例２８：インターフェロンとの組み合わせにおけるキメラＨＣＶ／ＰＶの核酸阻害
慢性ＨＣＶに対するインターフェロン（ＩＦＮ）療法の制限因子の１つは，ＩＦＮに伴う毒性の副作用である。本出願人は，必要とするＩＦＮの用量を減少させれば，これらの副作用を減少させることができると推論した。本出願人は，先に，ＨＣＶ  ＲＮＡを標的とする酵素的核酸分子がＨＣＶ−ポリオウイルス（ＰＶ）キメラの複製に対する強力な抗ウイルス効果を有することを示した（Ｍａｃｅｊａｋ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，３１，７６９−７７６）。抗ＨＣＶ酵素的核酸治療を加えることによりＩ型ＩＦＮの抗ウイルス効果を改良することができるか否かを判定するために，ＨｅＬａ細胞においてＩＦＮアルファ２ａまたはＩＦＮアルファ２ｂを用いて，２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸（ＲＰＩ１３９１９）または酵素的核酸対照（ＳＡＣ）治療との組み合わせで用量応答実験（０Ｕ／ｍｌ−１００Ｕ／ｍｌ）を行った。ＳＡＣ対照（ＲＰＩ１７８９４）は部位１９５酵素的核酸（ＲＰＩ１３９１９）のスクランブル化結合アーム，減弱化コア版である。ＩＦＮの用量応答実験は，この系における阻害のダイナミックレンジを見いだすために，異なる前処理計画で行った。これらの実験においては，より有効な酵素的核酸輸送のため，ＨｅｐＧ２の代わりにＨｅＬａ細胞を用いた（Ｍａｃｅｊａｋ  ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，３１，７６９−７７６）。
【０４７６】
細胞およびウイルス
ＨｅＬａ細胞は５％ウシ胎児血清を補充したＤＭＥＭ（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ，Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）中で維持した。ＨＣＶ−ＰＶキメラウイルスのクローン化ＤＮＡコピーはＤｒ．Ｅｃｋａｒｄ  Ｗｉｍｍｅｒ（ＮＹＵ，Ｓｔｏｎｙ  Ｂｒｏｏｋ，ＮＹ）から贈与された。ＲＮＡ版はインビトロ転写により生成し，ＨｅＬａ細胞にトランスフェクトして感染性ウイルスを生成した（Ｌｕ  ａｎｄ  Ｗｉｍｍｅｒ，１９９６，ＰＮＡＳ  ＵＳＡ．，９３，１４１２−１４１７）。
【０４７７】
酵素的核酸の合成
２’−Ｏ−メチル−ヌクレオチド，２’−デオキシ−２’−Ｃ−アリルウリジン，３’−反転無塩基キャップ，およびホスホロチオエート結合を含むヌクレアーゼ耐性酵素的核酸および対照オリゴヌクレオチドは化学的に合成した。ＨＣＶの５’ＵＴＲのヌクレオチド１９５の後を標的として切断する抗ＨＣＶ酵素的核酸（ＲＰＩ１３９１９）は表ＸＸに示される。減弱化コア対照は，コア配列中に酵素的核酸の切断活性を大きく減少させるヌクレオチド変化を有する。減弱化対照は，スクランブル化結合アームを含む（ＳＡＣと称される，ＲＰＩ１８７４３）か，またはＨＣＶ  ＲＮＡ標的と結合しうる結合アームを維持する（ＢＡＣ，ＲＰＩ１７８９４）のいずれかである。
【０４７８】
酵素的核酸の輸送
サイトフェクチン剤としてカチオン性脂質を用いた。ＨｅＬａ細胞を９６ウエルプレートに９０００−１０，０００細胞／ウエルの密度で播種し，３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。酵素的核酸または対照オリゴヌクレオチド（２００ｎＭ）のトランスフェクションは，Ｕ底９６ウエルプレート中で１０Ｘ酵素的核酸または対照オリゴヌクレオチド（２０００ｎＭ）を５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含むＤＭＥＭの１０ＸＲＰＩ．９７７８（８０μｇ／ｍｌ）と混合して，５Ｘ複合体を作製することにより行った。酵素的核酸／脂質複合体は３７℃で５％ＣＯ２で１５分間インキュベートした。培地を細胞から吸引し，５％ＦＢＳ血清を含む８０μｌのＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）で置き換え，次に２０μｌの複合体を加えた。細胞を複合体とともに３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。
【０４７９】
インターフェロン／酵素的核酸の組み合わせ処理
インターフェロンアルファ２ａ（Ｒｏｆｅｒｏｎ（登録商標））はＲｏｃｈｅ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）から購入した。インターフェロンアルファ２ｂ（Ｉｎｔｒｏｎ  Ａ（登録商標））はＳｃｈｅｒｉｎｇ−Ｐｌｏｕｇｈ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＮＪ）から購入した。コンセンサスインターフェロン（インターフェロン−アルファ−ｃｏｎ１）はＡｍｇｅｎ，Ｉｎｃ．（Ｔｈｏｕｓａｎｄ  Ｏａｋｓ，ＣＡ）から譲り受けた。比較の基礎のため，本明細書に記載される実験においては製造元により特定されたユニットを用いた。しかし，これらの３つのＩＦＮ調製物についての製造元のユニット定義は同じである必要はない。いずれにしても，臨床的用量は製造元により特定されたユニットに基づいているため，これらのユニットに基づく直接の比較は臨床的治療指数に関連する。ＨｅＬａ細胞を播種し（１０，０００細胞／ウエル），３７℃で５％ＣＯ２で２４時間インキュベートした。次に細胞を完全培地（ＤＭＥＭ＋５％ＦＢＳ）中でインターフェロンで４時間前処理し，次にＨＣＶ−ＰＶを感染多重度（ＭＯＩ）＝０．１で３０分間感染させた。次にウイルス接種物を除去し，酵素的核酸または減弱化対照（ＳＡＣまたはＢＡＣ）をサイトフェクチン処方（８μｇ／ｍｌ）で完全培地中で上述したように２４時間輸送した。酵素的核酸の用量応答実験については，活性な酵素的核酸をＳＡＣと混合して２００ｎＭの総オリゴヌクレオチド濃度および同じ脂質荷電比を維持した。２４時間後，３サイクルの凍結／融解により細胞を溶解してウイルスを放出させた。ウイルスはプラークアッセイにより定量し，ウイルス収率は１ｍｌあたりの平均プラーク形成単位（ｐｆｕ／ｍｌ）＋ＳＤで表した。すべての実験は少なくとも２回繰り返し，報告された結果の傾向は再現性があった。有意レベル（Ｐ値）はスチューデントテストにより決定した。
【０４８０】
プラークアッセイ
ウイルスサンプルを無血清ＤＭＥＭ中で希釈し，１００μｌを６ウエルプレート中のＶｅｒｏ細胞単層（〜８０％コンフルエント）に３０分間適用した。感染した単層を３ｍｌの１．２％寒天（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）で重層し，３７℃で５％ＣＯ２でインキュベートした。プラークが見えるようになったとき（２−３日後），重層を取り除き，単層を１．２％クリスタルバイオレットで染色し，プラーク形成単位を計数した。
【０４８１】
結果
図２９Ａおよび２９Ｂに示されるように，部位１９５（ＲＰＩ１３９１９）抗ＨＣＶハンマーヘッド酵素的核酸単独（０Ｕ／ｍｌＩＦＮ）で処理すると，ＳＡＣ処理細胞と比較してウイルス複製が非常に減少した（８５％，Ｐ＜０．０１）。ＩＦＮアルファ２ａ（図２９Ａ）またはＩＦＮアルファ２ｂ（図２９Ｂ）のいずれも，ＳＡＣ処理細胞において２５Ｕ／ｍｌで処理すると，ＳＡＣのみで処理した細胞と比較してＨＣＶ−ＰＶ複製が９０％阻害された（いずれについてもｐ＜０．０１）。ＳＡＣ処理細胞における阻害の最大レベル（９４％）は，５０Ｕ／ｍｌ以上のＩＦＮアルファ２ａまたはＩＦＮアルファ２ｂのいずれかで処理することにより得られた（いずれもＳＡＣ単独に対してｐ＜０．０１）。しかし，最大阻害は，５倍低い用量のＩＦＮアルファ２ａ（１０Ｕ／ｍｌ）をＨＣＶ  ＲＮＡの５’ＵＴＲの部位１９５を標的とする酵素的核酸と組み合わせて与えたときに得られた（図２９Ａ，Ｐ＜０．０１）。１０Ｕ／ｍｌのＩＦＮアルファ２ｂで処理した細胞に及ぼす酵素的核酸処理の追加の効果は非常にわずかであったが，２５Ｕ／ｍｌのＩＦＮアルファ２ｂとの組み合わせの効果は大きかった（図２９Ｂ）。試験したいずれのインターフェロンについても，２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸と組み合わせて２５Ｕ／ｍｌで前処理すると，２００ｎＭのＳＡＣ単独で処理した細胞における複製と比較してさらに高いレベル（＞９８％）のウイルス複製の阻害が認められた（ｐ＜０．０１）。
【０４８２】
部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量応答実験はまた，ＨｅＬａ細胞において，１２．５Ｕ／ｍｌのＩＦＮアルファ２ａまたはＩＦＮアルファ２ｂによる前処理ありまたはなしで行った。図３０に示されるように，酵素的核酸媒介性阻害は用量依存的であり，１５０ｎＭ以上の抗ＨＣＶ酵素的核酸単独（ＩＦＮなし）で処理することにより，ＨＣＶ−ＰＶ複製の有意な阻害が得られた（０ｎＭの酵素的核酸に対して７５％以上，Ｐ＜０．０１）。しかし，ＩＦＮで前処理した細胞においては，このレベルの阻害を達成するのに必要な抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量は，３倍低下して５０ｎＭ（０ｎＭ酵素的核酸に対してＰ＜０．０１）であった。これに対し５０ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸単独で処理すると，ウイルス複製はわずかに〜４０％阻害された。ＩＦＮによる前処理は，すべての酵素的核酸の用量において，ＩＦＮ前処理なしと比較して，部位１９５酵素的核酸の抗ウイルス効果を増強した。
【０４８３】
インターフェロン−アルファｃｏｎ１，すなわちコンセンサスＩＦＮ（ＣＩＦＮ）は，慢性ＨＣＶを治療するために用いられている別の１型ＩＦＮである。ＣＩＦＮ処理細胞において同様の増強が生ずるか否かを判定するために，ＨｅＬａ細胞において０Ｕ／ｍｌ−１２．５Ｕ／ｍｌのＣＩＦＮを２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸，またはＳＡＣ処理と組み合わせて用いて，ＣＩＦＮを用いる用量応答を調べた（図３１Ａ）。この場合も，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸単独の存在下で，ウイルス複製はＳＡＣ処理細胞と比較して劇的に減少した。図３１Ａに示されるように，２００ｎＭの抗ＨＣＶ酵素的核酸単独での処理は，２００ｎＭＳＡＣ単独で処理した細胞における複製と比較して，ＨＣＶ−ＰＶ複製を有意に阻害した（ＳＡＣ治療に対して９０％，Ｐ＜０．０１）。しかし，１Ｕ／ｍｌ−１２．５Ｕ／ｍｌの濃度のＣＩＦＮを２００ｎＭの抗ＨＣＶ酵素的核酸と組み合わせて前処理すると，２００ｎＭのＳＡＣ単独で処理した細胞における複製と比較してウイルス複製がさらに大きく阻害された（＞９８％，Ｐ＜０．０１）。ＳＡＣ処理細胞においては１Ｕ／ｍｌのＣＩＦＮによる前処理はＨＣＶ−ポリオウイルス複製に有意な影響を有しないが，酵素的核酸の存在下では複製の阻害が認められた（＞９８％，Ｐ＜０．０１）ことに注目することが重要である。すなわち，２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸でも処理した細胞においては，９８％以上の阻害を達成するのに必要なＣＩＦＮの用量は１Ｕ／ｍｌまで減少させることができた。
【０４８４】
次に，ＨｅＬａ細胞において１２．５Ｕ／ｍｌＣＩＦＮ前処理ありまたはなしで部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量応答を調べた。図３１Ｂに示されるように，１５０ｎＭ以上の抗ＨＣＶ酵素的核酸単独での処理によりＨＣＶ−ＰＶ複製の有意な阻害が得られた（０ｎＭ酵素的核酸に対して＞９５％，Ｐ＜０．０１）。しかし，ＣＩＦＮ前処理細胞においては，このレベルの阻害を達成するのに必要な抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量はわずか５０ｎＭであった（Ｐ＜０．０１）。比較として，５０ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸単独での処理によりウイルス複製は約５０％阻害された。すなわち，ＩＦＮアルファ２ａおよびＩＦＮアルファ２ｂで見られたように，酵素的核酸の用量はＣＩＦＮ前処理の存在下で３倍減少させることができ，酵素的核酸処理単独と同様の抗ウイルス効果が得られた。
【０４８５】
より低い濃度の酵素的核酸とＣＩＦＮとの組み合わせをさらに調べるために，次に，ＨｅＬａ細胞において，５０ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸処理と組み合わせた０Ｕ／ｍｌ−１２．５Ｕ／ｍｌのＣＩＦＮを用いる用量応答実験を行った。多くの実験において，５０ｎＭの抗ＨＣＶ酵素的核酸単独による処理は，ＳＡＣ処理細胞におけるウイルス複製と比較してＨＣＶ−ＰＶ複製を５０％−８１％阻害した。図３１Ａに示される実験におけるように，５Ｕ／ｍｌのＣＩＦＮ単独での処理によりウイルス複製は約５０％阻害された。しかし，５Ｕ／ｍｌＣＩＦＮでの４時間の前処理，続いて５０ｎＭの抗ＨＣＶ酵素的核酸での処理により，ＳＡＣ処理細胞と比較して９５％−９７％の阻害が認められた（Ｐ＜０．０１）。
【０４８６】
ＣＩＦＮおよび酵素的核酸の組み合わせ処理の増強された抗ウイルス効果が酵素的核酸の切断活性に依存するものであることを示すために，次に，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸との組み合わせにおけるＣＩＦＮの効果と，結合能力を有する減弱化コアである対照（ＢＡＣ）との組み合わせにおけるＣＩＦＮの効果を比較した。ＢＡＣはなおその特異的ＲＮＡ標的に結合することができるが，切断活性は非常に減少している。１２．５Ｕ／ｍｌのＣＩＦＮによる前処理は，ＢＡＣで処理した細胞においてウイルス収率を約９０％（７倍）低下させた（図３２におけるＣＩＦＮ対ＢＡＣを比較）。２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸単独で処理した細胞は，ＢＡＣ処理細胞（図３２における１９５ＲＺＢＡＣ）と比較して約９５％（１７倍）少ないウイルスを産生した。ＣＩＦＮ前処理と２００ｎＭの部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸との組み合わせにより，ウイルス収率は９８％以上（３００倍）低下した（図３２におけるＣＩＦＮ＋ＲＺ対対照）。
【０４８７】
ＨＣＶの２’−５’−オリゴアデニレート阻害
１型インターフェロンは，慢性ＨＣＶ感染のための多くの有効な治療プログラムの鍵となる構成要素である。１型インターフェロンによる処理は，多くの遺伝子を誘導し，細胞中に抗ウイルス状態が生ずる。誘導される遺伝子の１つは２’，５’−オリゴアデニレートシンセターゼ，すなわち，短い２’，５’−オリゴアデニレート（２−５Ａ）分子を合成する酵素である。次に発生期２−５Ａは潜伏性ＲＮａｓｅであるＲＮａｓｅＬを活性化し，これは次にウイルスＲＮＡを非特異的に分解する。本明細書に記載されるように，ＨＣＶ  ＲＮＡを標的とするリボザイムは，細胞培養中でＨＣＶ−ポリオウイルス（ＨＣＶ−ＰＶ）キメラの複製を阻害し，この抗ウイルス効果は，リボザイムを１型インターフェロンとの組み合わせで与えたときに増強されることが示された。さらに，インターフェロン応答の２−５Ａ成分はまた，ＨＣＶ−ＰＶキメラの複製を阻害することができる。
【０４８８】
１型インターフェロンが組み合わせで与えられると，抗ＨＣＶリボザイム処理の抗ウイルス効果は増強される。インターフェロンは，多くの遺伝子産物，例えば，２’，５’オリゴアデニレート（２−５Ａ）シンセターゼ，二本鎖ＲＮＡ活性化蛋白質キナーゼ（ＰＫＲ），およびＭｘ蛋白質を誘導する。Ｍｘ蛋白質はウイルス複合体の核輸送を妨害するようであり，ＨＣＶ感染において阻害的役割を果たさないと考えられている。一方，インターフェロン処理細胞における追加の２−５Ａ媒介性ＲＮＡ分解（ＲＮａｓｅＬによる）および／またはＰＫＲによるウイルス翻訳の阻害は，ＨＣＶ−ＰＶ複製のリボザイム媒介性阻害を増強することができる。
【０４８９】
この増強現象における２−５Ａ／ＲＮａｓｅＬ経路の潜在的な役割を調べるために，２−５Ａの化学的に合成した類似体で，単独でまたは抗ＨＣＶリボザイム（ＲＰＩ１３９１９）との組み合わせで外来的に処理したＨｅＬａ細胞においてＨＣＶ−ＰＶ複製を分析した（図３５）。これらの結果を，インターフェロンおよび／または抗ＨＣＶリボザイムで処理した細胞における複製と比較した。抗ＨＣＶリボザイムをカチオン性脂質とともに細胞にトランスフェクションした。脂質媒介性トランスフェクションによる非特異的効果の対照として，スクランブル化アーム，減弱化コアのオリゴヌクレオチド（ＳＡＣ）（ＲＰＩ１７８９４）を比較のためにトランスフェクトした。ＳＡＣはリボザイムと同じ塩基組成であるが，コア配列における変化のために触媒活性が非常に減弱化されており，ＨＣＶ配列に特異的に結合することができない。
【０４９０】
図３６Ａに示されるように，ＨＣＶ−ＰＶ感染の前に１０Ｕ／ｍｌコンセンサスインターフェロンで４時間前処理したＨｅＬａ細胞は，ＳＡＣ処理細胞においてウイルス複製が７０％減少した。同様に，感染後に１００ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムで２０時間処理したＨｅＬａ細胞は，ウイルス収量が８０％減少した。この抗ウイルス効果は，感染の前にインターフェロンで４時間前処理し，次に感染後に抗ＨＣＶリボザイムで２０時間処理したＨｅＬａ細胞において９８％の阻害に増強された。これと平行して，３’末端で反転無塩基成分によりヌクレアーゼ消化から保護された２−５Ａ化合物（類似体Ｉ，図３５）を試験した。図３６Ｂに示されるように，ＨＣＶ−ＰＶ感染の前に２００ｎＭ２の−５Ａ類似体Ｉで４時間処理すると，ＳＡＣ処理細胞においてＨＣＶ−ＰＶ複製はわずかしか阻害されなかった（〜２０％）。さらに，２０時間の抗ＨＣＶリボザイム処理による阻害は，２−５Ａの４時間の前処理との組み合わせによっては増大しなかった（図３６Ｂの３番目のバーと４番目のバーを比較）。
【０４９１】
化学的に合成された２−５Ａ類似体がＲＮａｓｅＬを完全に活性化することができなかった理由についてはいくつかの説明が可能である。２−５Ａ類似体が充分に安定ではなかったか，またはこの実験においては４時間の前処理時間はＲＮａｓｅＬ活性化には短すぎた可能性がある。これらの可能性を調べるために，追加のヌクレアーゼ耐性のために３’−無塩基に加えて５’末端チオリン酸（Ｐ＝Ｓ）を含有する２−５Ａ化合物についても実験した（類似体ＩＩ，図３５）。さらに，より長い２−５Ａ処理を用いた。この実験においては（図３７），ＨｅＬａ細胞を２−５Ａまたは２−５Ａ（Ｐ＝Ｓ）でＨＣＶ−ＰＶ感染後２０時間処理した。この場合にも，抗ＨＣＶリボザイム治療により８０％以上の阻害が得られた。４時間の２−５Ａ前処理で見られたウイルス複製の２０％阻害とは対照的に，２−５Ａ類似体ＩでＨＣＶ−ＰＶ感染後２０時間処理した細胞においてはウイルス複製は約７０％阻害された。Ｐ＝Ｓ版（類似体ＩＩ）はＨＣＶ−ＰＶ複製を約３５％阻害した。すなわち，ここで用いた２−５Ａ類似体は両方とも抗ウイルス効果を生ずることができ，これはおそらくＲＮａｓｅＬ活性化によるものであろう。Ｐ＝Ｓ版は，５’脱リン酸化に対してより耐性であるが，同様に高い抗ウイルス効果を生じなかった。５’末端チオリン酸と３’反転無塩基成分の存在との組み合わせがＲＮａｓｅＬ活性化を妨害する可能性がある。いずれにしても，これらの結果は，ヌクレアーゼ安定化２−５Ａ類似体による強力な抗ＨＣＶ活性を示す。
【０４９２】
２−５Ａ類似体Ｉで２０時間処理した細胞におけるＨＣＶ−ＰＶ複製の減少のレベルは，コンセンサスインターフェロンで４時間前処理した細胞におけるものと同様であった。この拡張された２−５Ａ処理計画がインターフェロン前処理と同程度に抗ＨＣＶリボザイム効力を増強するか否かを判定するために，ＨＣＶ−ＰＶに感染させたＨｅＬａ細胞を２−５Ａと抗ＨＣＶリボザイムとの組み合わせで感染後２０時間処理した。この実験においては，２００ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムによる処理または２−５Ａ単独による処理は，ＳＡＣ処理と比較してウイルス複製をそれぞれ８８％または約６０％阻害した（図３８，左の３つのバー）。一定のトランスフェクション条件を維持しながら抗ＨＣＶリボザイムまたは２−５Ａの濃度を変化させるために，抗ＨＣＶリボザイムをＳＡＣと混合して総用量を２００ｎＭに維持した。５０ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムによる処理はＨＣＶ−ＰＶ複製を約７０％阻害した（真中の黒いバー）。しかし，５０ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムと１５０ｎＭの２−５Ａの組み合わせで処理した細胞においては，ＨＣＶ−ＰＶ複製の量はそれ以上低下しなかった（真中の縞のバー）。同様に，１００ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムで処理した細胞は，さらに１００ｎＭの２−５ＡまたはＳＡＣで処理してもしなくても，ＨＣＶ−ＰＶ複製を約８０％阻害した（右の２つのバー）。これに対し，１００ｎＭの抗ＨＣＶリボザイムをインターフェロンと組み合わせて与えたとき，抗ウイルス活性は８０％から９８％に増加した（図３６Ａ）。リボザイム／２−５Ａ組み合わせ処理について追加的または相乗的効果がない理由は現在不明であるが，両方の化合物が類似の作用メカニズムを有する（ＲＮＡの分解）ためでありうる。この可能性を調べるためにはさらなる研究が必要である。
【０４９３】
２−５Ａ治療は単独療法として，ＨＣＶポリオウイルス複製に対してインターフェロン治療と同様の阻害的効果を及ぼす。これらの結果がＨＣＶ患者においても維持されるのであれば，２−５Ａを用いる治療は有効ではあり得ないが，過剰のインターフェロン誘導性遺伝子が活性化されなければ，インターフェロンを用いたときに観察されるものより副作用が少ない可能性がある。
【０４９４】
ＨＢＶ細胞培養モデル
上述したように，ＨＢＶは培養細胞に感染しない。しかし，ＨＢＶ  ＤＮＡをＨｕＨ７またはＨｅｐＧ２肝細胞にトランスフェクション（頭−尾型ダイマーまたは１００％より大きい"オーバーレングス"ゲノムのいずれかとして）すると，ウイルス遺伝子が発現され，ＨＢＶビリオンが産生されて培地中に放出される。すなわち，ＨＢＶ複製能を有するＤＮＡを，リボザイムとともに培養細胞にコトランスフェクトすることができる。そのような方法を用いて，ＨＢＶに対する細胞内リボザイム活性が報告されている（ｚｕＰｕｔｌｉｔｚ，  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７３，５３８１−５３８７，およびＫｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２５７，７５９−７６５）。さらに，ＨＢＶを発現する安定な肝細胞の細胞株が作成されている。これらの細胞においては，リボザイムのみを輸送することが必要であるが，輸送スクリーニングを行うことが必要であろう。細胞内ＨＢＶ遺伝子発現は，ＨＢＶ  ＲＮＡのＴａｑｍａｎ（登録商標）アッセイによりまたはＨＢＶ蛋白質のＥＬＩＳＡによりアッセイすることができる。細胞外ウイルスは，ＤＮＡ用のＰＣＲまたは蛋白質用のＥＬＩＳＡによりアッセイすることができる。抗体は，ＨＢＶ表面抗原およびコア蛋白質について市販されている。分泌性アルカリホスファターゼ発現プラスミドを用いて，トランスフェクション効率および試料回収率の相違を標準化することができる。
【０４９５】
ＨＢＶ動物モデル
ＨＢＶ複製を研究するための小さい動物モデルがいくつか存在する。その１つはＨＢＶ感染肝臓組織を放射性照射マウスに移植することである。ウイルス血症（ＰＣＲによりＨＢＶ  ＤＮＡを測定することにより証明しうる）は移植の８日後に最初に検出され，ピークは１８−２５日である（Ｉｌａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，２９，５５３−５６２）。
【０４９６】
ＨＢＶを発現するトランスジェニックマウスもまた，潜在的抗ウイルスを評価するためのモデルとして用いられている。ＨＢＶ  ＤＮＡは肝臓および血清の両方で検出可能である（Ｇｕｉｄｏｔｔｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｊ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，６９，１０，６１５８−６１６９；Ｍｏｒｒｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９，Ａｎｔｉｖｉｒｕｓ  Ｒｅｓ．，４２，９７−１０８）。
【０４９７】
別のモデルは，ＨＢＶでトランスフェクトしたＨｅｐＧ２細胞を用いてヌードマウスに皮下腫瘍を樹立することである。腫瘍は，接種後約２週間で発達し，ＨＢＶ表面抗原およびコア抗原を発現する。ＨＢＶ  ＤＮＡおよび表面抗原はまた，腫瘍含有マウスの循環中でも検出することができる（Ｙａｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｊ．Ｖｉｒａｌ  Ｈｅｐａｔ．，３，１９−２２）。
【０４９８】
１つの態様においては，本発明は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を移植したマウス，例えば，雄または雌マウスを特徴とし，ここで，マウスは，ＨＢＶ感染に感受性であり，ＨＢＶ  ＤＮＡ発現を支持しうる．本発明の１つの態様は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞を移植したマウスを提供し，ここで，前記マウスは，ＨＥＰＧ２．２．１５細胞の繁殖およびＨＢＶ産生を支持する（Ｍａｃｅｊａｋ，米国特許仮出願６０／２９６，８７６を参照）。
【０４９９】
ウッドチャック肝炎ウイルス（ＷＨＶ）は，そのウイルス構造，遺伝的構成，および複製のメカニズムにおいてＨＢＶと密接に関連する。ヒトにおけるＨＢＶと同様に，持続性のＷＨＶ感染は天然のウッドチャック集団に一般的であり，慢性肝炎および肝細胞癌（ＨＣＣ）と関連している。実験的研究により，ウッドチャックにおいてＷＨＶがＨＣＣを引き起こすことが確立されており，慢性的にＷＨＶに感染したウッドチャックは，多数の抗ウイルス剤を試験するモデルとして用いられてきた。例えば，ヌクレオシド類似体３Ｔ３は，ウイルスの用量依存性減少を引き起こすことが観察されている（最高用量での２回の毎日治療の後に５０％減少）（Ｈｕｒｗｉｔｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８．Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ  Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，４２，２８０４−２８０９）。
【０５００】
ＨＣＶ細胞培養モデル
培養細胞におけるＨＣＶの複製についての報告はあるが（以下を参照），これらの系は，複製が困難であり，信頼性があるとは考えられていない。したがって，インターフェロンおよびリバビリン等の他の抗ＨＣＶ療法の開発の場合と同様に，動物実験で安全性が証明された後，臨床的実用性研究に直接進むことができる。
【０５０１】
最近のいくつかの報告は，ヒト細胞株におけるＨＣＶのインビトロ成長を示している（Ｍｉｚｕｔａｎｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ  １９９６  ２２７（３）：８２２−８２６；Ｔａｇａｗａ，  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇａｓｔｅｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９５  １０（５）：５２３−５２７；Ｃｒｉｂｉｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  ７６（１０）：２４８５−２４９１；Ｓｅｉｐｐ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９７  ７８（１０）２４６７−２４７８；Ｉａｃｏｖａｃｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９７  １４８（２）：１４７−１５１；Ｉｏｃａｖａｃｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９７  ２６（５）１３２８−１３３７；Ｉｔｏ  ｅｔ  ａｌ，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９６  ７７（５）：１０４３−１０５４；Ｎａｋａｊｉｍａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９６  ７０（５）：３３２５−３３２９；Ｍｉｚｕｔａｎｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９６  ７０（１０）：７２１９−７２２３；Ｖａｌｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｒｅｓ  Ｖｉｒｏｌ  １９９５  １４６（４）：２８５−２８８；Ｋａｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍ．１９９５  ２０６（３）：８６３−８６９）。ＨＣＶの複製は，Ｔ細胞株およびＢ細胞株の両方，ならびにヒト肝細胞に由来する細胞株において示されている。複製は，ＲＴ−ＰＣＲに基づくアッセイまたはｂ−ＤＮＡアッセイのいずれかを用いて証明された。ＨＣＶ細胞培養に関する最も最近の刊行物が６ヶ月までの複製を証明していることに注目することは重要である。
【０５０２】
さらに，別の最近の研究は，Ｃ型肝炎ウイルスのより強い株を同定した。この株は，これがヒト細胞培養中でより激しく複製することを可能とする適応的変異を有する。この増強された複製能力を与える変異は，ＮＳ５Ａとして識別される蛋白質の特定の領域中に位置する。Ｒｏｃｋｅｆｅｌｌｅｒ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙにおいて行われた研究は，ある種の細胞培養系においては，強い株による感染により感染細胞の数が１０，０００倍増加することを示した。ＨＣＶ感染細胞が培養により大量に入手可能となったことを用いて，多数の化合物，例えば酵素的核酸分子を試験してその有効性を判定するハイスループットスクリーニングアッセイを開発することができる。
【０５０３】
ＨＣＶに感染させることができる細胞株に加えて，いくつかのグループは，細胞株を全長または部分的ＨＣＶゲノムのｃＤＮＡクローンでトランスフォーメーションすることに成功したことを報告した（Ｈａｒａｄａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９５  ７６（５）１２１５−１２２１；Ｈａｒａｍａｔｓｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒａｌ  Ｈｅｐａｔｉｔｉｓ  １９９７  ４Ｓ（１）：６１−６７；Ｄａｓｈ  ｅｔ  ａｌ，Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ  １９９７  １５１（２）：３６３−３７３；Ｍｉｚｕｎｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｇａｓｔｅｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  １９９５  １０９（６）：１９３３−４０；Ｙｏｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  Ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９５  ６９（１）：３２−３８）。
【０５０４】
ＨＣＶ動物モデル
ＨＣＶ感染について最もよく特性決定されている動物系はチンパンジーである。さらに，チンパンジーおよびヒトにおいてＨＣＶ感染により引き起こされる慢性肝炎は非常に類似している。臨床的には適切であるが，チンパンジーモデルはいくつかの実用的な障害を有するため，このモデルの使用は困難である。例えば，コストが高く，長期間のインキュベーションが必要であり，十分な量の動物が得られないことである。これらの原因のため，多くのグループが，慢性Ｃ型肝炎感染の齧歯類モデルの開発を試みてきた。直接感染は可能ではないが，いくつかのグループは，ＨＣＶゲノムの一部または全部を齧歯類に安定的にトランスフェクションしたことを報告している（Ｙａｍａｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９５，２２（３）：８４７−８５５；Ｇａｌｕｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  Ｄｉｓｅａｓｅ  １９９５  １７２（１）：２５−３０；Ｋｏｉｋｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９５  ７６（１２）３０３１−３０３８；Ｐａｓｑｕｉｎｅｌｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９７  ２５（３）：７１９−７２７；Ｈａｙａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｉｎｃｅｓｓ  Ｔａｋａｍａｔｓｕ  Ｓｙｍｐ  １９９５  ２５：１４３−１４９；Ｍａｒｉｙａ  Ｋ，Ｙｏｔｓｕｙａｎａｇｉ  Ｈ，Ｓｈｉｎｔａｎｉ  Ｙ，Ｆｕｊｉｅ  Ｈ，Ｉｓｈｉｂａｓｈｉ  Ｋ，Ｍａｔｓｕｕｒａ  Ｙ，Ｍｉｙａｍｕｒａ  Ｔ，Ｋｏｉｋｅ  Ｋ．）。Ｃ型肝炎ウイルスコア蛋白質は，トランスジェニックマウス中で肝臓脂肪症を誘導する（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １９９７  ７８（７）１５２７−１５３１；Ｔａｋｅｈａｒａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９５  ２１（３）：７４６−７５１；Ｋａｗａｍｕｒａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  １９９７  ２５（４）：１０１４−１０２１）。さらに，ＨＣＶ感染ヒト肝臓を免疫無防備状態マウスに移植すると，動物の血液中でＨＣＶ  ＲＮＡがより長く検出される。
【０５０５】
Ｖｉｅｒｌｉｎｇ（国際公開ＷＯ９９／１６３０７）は，Ｃ型肝炎ウイルスをインビボ動物モデルで発現させる方法を記載する。生存可能なＨＣＶ感染ヒト肝細胞をｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウス宿主の肝臓実質内に移植する。次に，ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウス宿主を生存状態で維持し，このことにより，生存可能な，形態学的に無傷のヒト肝細胞がドナー組織中に残留し，Ｃ型肝炎ウイルスは残留するヒト肝細胞中で複製する。このモデルは，酵素的核酸によるＨＣＶ阻害をインビボで研究する有効な手段を提供する。
【０５０６】
適応症
ＨＢＶ発現の調節に関連しうる特定の変性性および疾病状態には，限定されないが，ＨＢＶ感染，肝炎，癌，腫瘍腹性，肝硬変，肝不全およびＨＢＶのレベルに関連する他の状態が含まれる。
【０５０７】
ＨＣＶ発現の調節に関連しうる特定の変性性および疾病状態には，限定されないが，ＨＣＶ感染，肝炎，癌，腫瘍原性，肝硬変，肝不全およびＨＣＶのレベルに関連する他の状態が含まれる。
【０５０８】
ＨＢＶおよびＨＣＶ研究における現在の知識は，ＨＢＶまたはＨＣＶ活性をアッセイする方法，および研究，診断，および治療用途のために，ＨＢＶおよびＨＣＶ発現を制御することができる化合物が必要であることを示す。
【０５０９】
ラミブジン（３ＴＣ（登録商標）），Ｌ−ＦＭＡＵ，アデフォビル，ジピボキシル，１型インターフェロン（例えば，インターフェロンアルファ，インターフェロンベータ，コンセンサスインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロン，ポリエチレングリコールインターフェロンアルファ２ａ，ポリエチレングリコールインターフェロン２ｂ，およびポリエチレングリコールコンセンサスインターフェロン），治療用ワクチン，ステロイド，および２’−５’オリゴアデニレートは，本発明の核酸分子（例えば，リボザイムおよびアンチセンス分子）と組み合わせるかまたは一緒に用いることができる薬剤の非限定的例である。当業者は他の薬剤または他の療法を同様にかつ容易に本発明の核酸分子（例えば，リボザイムおよびアンチセンス分子）と組み合わせることができ，したがってこれらも本発明の範囲内であることを理解するであろう。
【０５１０】
診断用途
本発明の核酸分子を診断手段として使用し，疾病に罹患した細胞内の遺伝的浮動および変異を検査するか，または細胞においてＨＢＶまたはＨＣＶ  ＲＮＡの存在を検出することができる。例えば，酵素的核酸活性と標的ＲＮＡの構造との間の密接な関係により，分子のいずれの領域においても，標的ＲＮＡの塩基対形成および３次元構造を変更する変異を検出することができる。本発明に記載される酵素的核酸を複数使用することにより，インビトロならびに細胞および組織におけるＲＮＡの構造および機能に重要なヌクレオチド変化をマッピングすることができる。酵素的核酸分子による標的ＲＮＡの切断を使用して，遺伝子の発現を阻害し，疾病の進行における特定の遺伝子産物の役割を（本質的に）明らかにすることができる。このようにして，他の遺伝子標的を疾病の重要な介在物として明らかにすることができる。これらの実験は，組み合わせ療法の可能性を提供することにより，疾病進行のよりよい治療につながるであろう（例えば，異なる遺伝子を標的とする多数の酵素的核酸分子，既知の小分子阻害剤とカップリングさせた酵素的核酸分子，酵素的核酸分子および／または他の化学的または生物学的分子と組み合わせた放射性または間欠的治療）。本発明の酵素的核酸分子の他のインビトロにおける使用は当該技術分野においてよく知られており，これには，ＨＢＶまたはＨＣＶに関連する状態に関係するｍＲＮＡの存在の検出が含まれる。そのようなＲＮＡは，標準的な方法論を使用して酵素的核酸で処理した後，切断産物の存在を判定することにより検出する。
【０５１１】
特定の例においては，標的ＲＮＡの野生型または変異型のみしか切断できない酵素的核酸分子をアッセイに使用する。第１の酵素的核酸を用いて試料中の野生型ＲＮＡの存在を同定し，第２の酵素的核酸を用いて試料中の変異型ＲＮＡを同定する。反応対照として野生型および変異型の両方のＲＮＡの合成基質を両方の酵素的核酸分子で切断し，反応におけるリボザイムの相対効率および“非標的”ＲＮＡ種を切断しないことを明らかにする。合成基質からの切断産物は，試料集団中の野生型および変異型ＲＮＡの分析のためのサイズマーカーの生成にも役立つ。従ってそれぞれの分析は２つの酵素的核酸分子，２つの基質，および１つの未知の試料を必要とし，これらを組み合わせて６つの反応を行う。切断産物の存在をＲＮａｓｅ保護アッセイを使用して確認し，各ＲＮＡの完全長および切断フラグメントをポリアクリルアミドゲルの１レーンで分析できるようにする。標的細胞における変異体ＲＮＡの発現および所望の表現型の変化の推定されるリスクへの洞察を得るために，必ずしも結果を定量する必要はない。その蛋白質産物が表現型（すなわちＨＢＶまたはＨＣＶ）の発生に関与することが示唆されるｍＲＮＡの発現はリスクを確立するのに十分である。同等の比活性のプローブを両方の転写産物に使用すれば，ＲＮＡレベルの定性的比較で十分であり，初期の診断のコストが低減する。ＲＮＡレベルを定性的に比較するにしても定量的に比較するにしても，より高い変異型と野生型の比率はより高いリスクと相関関係があるであろう。
【０５１２】
追加の用途
本発明の配列特異的酵素的核酸分子の潜在的な有用性は，ＤＮＡ制限エンドヌクレアーゼがＤＮＡの研究のために有するものと同様の多くの適用をＲＮＡの研究のために有する（Ｎａｔｈａｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９７５  Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．４４：２７３）。例えば，制限フラグメントのパターンを使用して２つの関連するＲＮＡ間の配列の関係を確立することができ，大型のＲＮＡを研究のためにより有用なサイズのフラグメントに特異的に切断することができる。酵素的核酸分子の配列特異性を操作できることは未知の配列のＲＮＡの切断に理想的である。出願人は，細菌，微生物，真菌，ウイルス，および真核生物系，例えば植物または哺乳動物細胞において，標的遺伝子の遺伝子発現をダウンレギュレートするために核酸分子を用いることを記載する。
【０５１３】
本明細書において言及されるすべての特許および刊行物は，本発明の属する技術分野の技術者のレベルを示す。本明細書において引用されるすべての参考文献は，それぞれの参考文献が個々にその全体が本明細書の一部としてここに引用されることと同じ程度に，本明細書の一部として引用される。
【０５１４】
当業者は，本発明が，その目的を実施し，記載される結果および利点，ならびに本明細書に固有のものを得るためによく適合していることを容易に理解するであろう。本明細書に記載される方法および組成物は，現在のところ好ましい態様の代表的なものであり，例示的なものであって，本発明の範囲を限定することを意図するものではない。当業者は，特許請求の範囲において定義される本発明の精神の中に包含される変更および他の用途をなすであろう。
【０５１５】
当業者は，本発明の範囲および精神から逸脱することなく，本明細書に開示される本発明に対して種々の置換および改変をなすことが可能であることを容易に理解するであろう。すなわち，そのような追加の態様は，本発明および特許請求の範囲の範囲内である。
【０５１６】
本明細書に例示的に記載されている発明は，本明細書に特定的に開示されていない任意の要素または限定なしでも適切に実施することができる。すなわち，例えば，本明細書における各例において，"・・・を含む"，"・・・から本質的になる"および"・・・からなる"との用語は，他の２つのいずれかと置き換えることができる。本明細書において用いられる用語および表現は，説明の用語として用いるものであり，限定ではない。そのような用語および表現の使用においては，示されかつ記載されている特徴またはその一部の等価物を排除することを意図するものではなく，特許請求の範囲に記載される本発明の範囲中で種々の変更が可能であることが理解される。すなわち，好ましい態様および任意の特徴により本発明を特定的に開示してきたが，当業者には本明細書に記載される概念の変更および変種が可能であり，そのような変更および変種も特許請求の範囲に定義される本発明の範囲内であると考えられることが理解されるべきである。
【０５１７】
さらに，発明の特徴および観点がマーカッシュグループまたは他の代替グループの用語で記載されている場合，当業者は，本発明が，マーカッシュグループまたは他のグループの個々のメンバーまたはサブグループに関してもまた記載されていることを認識するであろう。
【０５１８】
表１
天然に存在するリボザイムの特徴
グループＩイントロン
・サイズ：約１５０〜１０００以上のヌクレオチド。
・標的配列中の切断部位の５’側に隣接してＵを必要とする。
・切断部位の５’側で４〜６のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム：グアノシンの３’−ＯＨによって攻撃し，３’−ＯＨおよび５’グアノシンを有する切断産物を生成する。
・活性構造のフォールディングおよび維持を助けるために，場合により，蛋白質の補因子をさらに必要とする。
・このクラスには３００以上の種類が知られている。テトラヒメナ・サーモフィラのｒＲＮＡ，真菌ミトコンドリア，葉緑体，ファージＴ４，らん藻類，その他において，介在配列として見出されている。
・主要な構造上の特徴は，系統発生比較，突然変異原性および生化学的研究によってほぼ確立されている［１，２］。
・１つのリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが立証されている［３，４，５，６］。
・リボザイムのフォールディングおよび基質ドッキングに関する研究が進行中［７，８，９］。
・重要な残基の化学修飾検討は十分確立されている［１０，１１］。
・このリボザイムは，結合部位が小さい（４〜６ヌクレオチド）ため，標的ＲＮＡ切断に対して非常に非特異的になる場合があるが，テトラヒメナのグループＩイントロンは，「欠損」β−ガラクトシダーゼのメッセージに新たなβ−ガラクシダーゼ配列を結合することによってこのメッセージを修復するのに利用されている［１２］。
【０５１９】
ＲＮａｓｅＰ  ＲＮＡ（Ｍ１ＲＮＡ）
・サイズ：約２９０〜４００のヌクレオチド。
・偏在するリボ核蛋白質酵素のＲＮＡ部分。
・ｔＲＮＡ前駆体を切断し，成熟ｔＲＮＡを形成する［１３］。
・反応メカニズム：恐らくはＭ2+−ＯＨによって攻撃し，３’−ＯＨおよび５’リン酸を有する切断産物を生成する。
・ＲＮａｓｅＰは原核生物および真核生物全体に見出されている。このＲＮＡサブユニットは，細菌，酵母，げっ歯類および霊長類から配列決定されている。
・外部ガイド配列（ＥＧＳ）と標的ＲＮＡのハイブリダイゼーションによって，内因性ＲＮａｓｅＰを治療応用に活用することが可能である［１４，１５］。
・リン酸と２’ＯＨとの接触の重要性が最近判明した［１６，１７］。
【０５２０】
グループＩＩイントロン
・サイズ：１０００以上のヌクレオチド。
・標的ＲＮＡのトランス切断であることが最近実証された［１８，１９］。
・配列要求性は完全には決定されていない。
・反応メカニズム：内部アデノシンの２’−ＯＨが３’−ＯＨ，および３’−５’および２’−５’分岐点を含む「ラリアット（ｌａｒｉａｔ）」ＲＮＡを有する切断産物を生成する。
・ＲＮＡの切断および結合に加えて，ＤＮＡ切断への関与が実証された［２０，２１］唯一の天然リボザイムである。
・主要な構造上の特徴は，系統発生比較によってほぼ確立されている［２２］。
・２’ＯＨ接触の重要性が判明しはじめている［２３］。
・力学的フレームワークは検討中である［２４］。
【０５２１】
Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ  ＶＳ  ＲＮＡ
・サイズ：約１４４ヌクレオチド。
・ヘアピン標的ＲＮＡのトランス切断であることが最近実証された［２５］。
・配列要求性は完全には決定されていない。
・反応メカニズム：２’−ＯＨが切れやすい結合の５’側を攻撃し，２’，３’−サイクリックリン酸および５’−ＯＨ末端を有する切断産物を生成する。
・結合部位および構造上の要求性は完全には決定されていない。
・このクラスは１種しか知られていない。Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ  ＶＳ  ＲＮＡに見出されている。
【０５２２】
ハンマーヘッド・リボザイム（本文を参照のこと）
・サイズ：約１３〜４０ヌクレオチド。
・切断部位の５’に隣接した標的配列ＵＨを必要とする。
・切断部位の両側で可変数のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム：２’−ＯＨによって切れやすい結合の５’側を攻撃し，２’，３’−サイクリックリン酸および５’−ＯＨ末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスには１４種が知られている。ＲＮＡを感染体として利用する多くの植物病原体（ウィルソイド）において見出されている。
・２つの結晶構造を含め，本質的な構造上の特徴がほぼ明確にされている。［２６，２７］
・（インビトロ選択による工学的処理に対し）ごくわずかなライゲーション活性が実証された。［２８］
・２つまたはそれ以上のリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが確立されている。［２９］
・重要な残基の化学修飾検討は十分確立されている。［３０］
【０５２３】
ヘアピンリボザイム
・サイズ：約５０ヌクレオチド。
・切断部位の３’に隣接した標的配列ＧＵＣを必要とする。
・切断部位の５’側で４〜６のヌクレオチドと，切断部位の３’側で可変数のヌクレオチドと結合する。
・反応メカニズム：２’−ＯＨによって切れやすい結合の５’側を攻撃し，２’，３’−サイクリックリン酸および５’−ＯＨ末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスには３種が知られている。ＲＮＡを感染体として利用する３種の植物病原体（タバコ・リングスポット・ウィルス，アラビス・モザイク・ウィルスおよびチコリー黄色斑ウィルスのサテライトＲＮＡ）に見出されている。
・本質的な構造上の特徴がほぼ明確にされている［３１，３２，３３，３４］。
・（切断活性に加えて）ライゲーション活性があるためにこのリボザイムはインビトロ選択による工学処理が可能である［３５］。
・１つのリボザイムに対して完全な力学的フレームワークが確立されている［３６］。
・重要な残基の化学修飾検討が着手された［３７，３８］。
【０５２４】
デルタ肝炎ウィルス（ＨＤＶ）リボザイム
・サイズ：約６０ヌクレオチド。
・標的ＲＮＡのトランス切断であることが実証されている［３９］。
・結合部位および構造上の要求性は完全には決定されていないが，切断部位の５’側の配列は要求されない。フォールディングされたリボザイムはシュードノット構造を含む［４１］。
・反応メカニズム：２’−ＯＨによって切れやすい結合の５’側を攻撃し，２’，３’−サイクリックリン酸および５’−ＯＨ末端を有する切断産物を生成する。
・このクラスは２種しか知られていない。ヒトＨＤＶに見出されている。
・環状のＨＤＶは活性があり，ヌクレアーゼ安定性が増加している［４２］。
【０５２５】
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【０５２６】
【表１】
2004532022.tif 000004
【０５２７】
【表２】
2004532022.tif 000005
【０５２８】
【表３】
2004532022.tif 000006
【０５２９】
【表４】
2004532022.tif 000007
【０５３０】
【表５】
2004532022.tif 000008
【０５３１】
【表６】
2004532022.tif 000009
【０５３２】
【表７】
2004532022.tif 000010
【０５３３】
【表８】
2004532022.tif 000011
【０５３４】
【表９】
2004532022.tif 000012
【０５３５】
【表１０】
2004532022.tif 000013
【０５３６】
【表１１】
2004532022.tif 000014
【０５３７】
【表１２】
2004532022.tif 000015
【０５３８】
【表１３】
2004532022.tif 000016
【０５３９】
【表１４】
2004532022.tif 000017
【０５４０】
【表１５】
2004532022.tif 000018
【０５４１】
【表１６】
2004532022.tif 000019
【０５４２】
【表１７】
2004532022.tif 000020
【０５４３】
【表１８】
2004532022.tif 000021
【０５４４】
【表１９】
2004532022.tif 000022
【０５４５】
【表２０】
2004532022.tif 000023
【０５４６】
【表２１】
2004532022.tif 000024
【０５４７】
【表２２】
2004532022.tif 000025
【０５４８】
【表２３】
2004532022.tif 000026
【０５４９】
【表２４】
2004532022.tif 000027
【０５５０】
【表２５】
2004532022.tif 000028
【０５５１】
【表２６】
2004532022.tif 000029
【０５５２】
【表２７】
2004532022.tif 000030
【０５５３】
【表２８】
2004532022.tif 000031
【０５５４】
【表２９】
2004532022.tif 000032
【０５５５】
【表３０】
2004532022.tif 000033
【０５５６】
【表３１】
2004532022.tif 000034
【０５５７】
【表３２】
2004532022.tif 000035
【０５５８】
【表３３】
2004532022.tif 000036
【０５５９】
【表３４】
2004532022.tif 000037
【０５６０】
【表３５】
2004532022.tif 000038
【０５６１】
【表３６】
2004532022.tif 000039
【０５６２】
【表３７】
2004532022.tif 000040
【０５６３】
【表３８】
2004532022.tif 000041
【０５６４】
【表３９】
2004532022.tif 000042
【０５６５】
【表４０】
2004532022.tif 000043
【０５６６】
【表４１】
2004532022.tif 000044
【０５６７】
【表４２】
2004532022.tif 000045
【０５６８】
【表４３】
2004532022.tif 000046
【０５６９】
【表４４】
2004532022.tif 000047
【０５７０】
【表４５】
2004532022.tif 000048
【０５７１】
【表４６】
2004532022.tif 000049
【０５７２】
【表４７】
2004532022.tif 000050
【０５７３】
【表４８】
2004532022.tif 000051
【０５７４】
【表４９】
2004532022.tif 000052
【０５７５】
【表５０】
2004532022.tif 000053
【０５７６】
【表５１】
2004532022.tif 000054
【０５７７】
【表５２】
2004532022.tif 000055
【０５７８】
【表５３】
2004532022.tif 000056
【０５７９】
【表５４】
2004532022.tif 000057
【０５８０】
【表５５】
2004532022.tif 000058
【０５８１】
【表５６】
2004532022.tif 000059
【０５８２】
【表５７】
2004532022.tif 000060
【０５８３】
【表５８】
2004532022.tif 000061
【０５８４】
【表５９】
2004532022.tif 000062
【０５８５】
【表６０】
2004532022.tif 000063
【０５８６】
【表６１】
2004532022.tif 000064
【０５８７】
【表６２】
2004532022.tif 000065
【０５８８】
【表６３】
2004532022.tif 000066
【０５８９】
【表６４】
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【０５９０】
【表６５】
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【０５９１】
【表６６】
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【０５９２】
【表６７】
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【０５９３】
【表６８】
2004532022.tif 000071
【０５９４】
【表６９】
2004532022.tif 000072
【０５９５】
【表７０】
2004532022.tif 000073
【０５９６】
【表７１】
2004532022.tif 000074
【０５９７】
【表７２】
2004532022.tif 000075
【０５９８】
【表７３】
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【０５９９】
【表７４】
2004532022.tif 000077
【０６００】
【表７５】
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【０６０１】
【表７６】
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【０６０２】
【表７７】
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【０６０３】
【表７８】
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【０６０４】
【表７９】
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【０６０５】
【表８０】
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【０６０６】
【表８１】
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【０６０７】
【表８２】
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【０６０８】
【表８３】
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【０６０９】
【表８４】
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【０６１０】
【表８５】
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【０６１１】
【表８６】
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【０６１２】
【表８７】
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【０６１３】
【表８８】
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【０６１４】
【表８９】
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【０６１５】
【表９０】
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【０６１６】
【表９１】
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【０６１７】
【表９２】
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【０６１８】
【表９３】
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【０６１９】
【表９４】
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【０６２０】
【表９５】
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【０６２１】
【表９６】
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【０６２２】
【表９７】
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【０６２３】
【表９８】
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【０６２４】
【表９９】
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【０６２５】
【表１００】
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【０６２６】
【表１０１】
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【０６２７】
【表１０２】
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【０６２８】
【表１０３】
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【０６２９】
【表１０４】
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【０６３０】
【表１０５】
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【０６３１】
【表１０６】
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【０６３２】
【表１０７】
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【０６３３】
【表１０８】
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【０６３４】
【表１０９】
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【０６３５】
【表１１０】
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【０６３６】
【表１１１】
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【０６３７】
【表１１２】
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【０６３８】
【表１１３】
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【０６３９】
【表１１４】
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【０６４０】
【表１１５】
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【０６４１】
【表１１６】
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【０６４２】
【表１１７】
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【０６４３】
【表１１８】
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【０６４４】
【表１１９】
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【０６４５】
【表１２０】
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【０６４６】
【表１２１】
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【０６４７】
【表１２２】
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【０６４８】
【表１２３】
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【０６４９】
【表１２４】
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【０６５０】
【表１２５】
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【０６５１】
【表１２６】
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【０６５２】
【表１２７】
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【０６５３】
【表１２８】
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【０６５４】
【表１２９】
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【０６５５】
【表１３０】
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【０６５６】
【表１３１】
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【０６５７】
【表１３２】
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【０６５８】
【表１３３】
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【０６５９】
【表１３４】
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【０６６０】
【表１３５】
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【０６６１】
【表１３６】
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【０６６２】
【表１３７】
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【０６６３】
【表１３８】
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【０６６４】
【表１３９】
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【０６６５】
【表１４０】
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【０６６６】
【表１４１】
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【０６６７】
【表１４２】
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【０６６８】
【表１４３】
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【０６６９】
【表１４４】
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【０６７０】
【表１４５】
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【０６７１】
【表１４６】
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【０６７２】
【表１４７】
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【０６７３】
【表１４８】
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【０６７４】
【表１４９】
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【０６７５】
【表１５０】
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【０６７６】
【表１５１】
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【０６７７】
【表１５２】
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【０６７８】
【表１５３】
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【０６７９】
【表１５４】
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【０６８０】
【表１５５】
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【０６８１】
【表１５６】
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【０６８２】
【表１５７】
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【０６８３】
【表１５８】
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【０６８４】
【表１５９】
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【０６８５】
【表１６０】
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【０６８６】
【表１６１】
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【０６８７】
【表１６２】
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【０６８８】
【表１６３】
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【０６８９】
【表１６４】
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【０６９０】
【表１６５】
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【０６９１】
【表１６６】
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【０６９２】
【表１６７】
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【０６９３】
【表１６８】
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【０６９４】
【表１６９】
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【０６９５】
【表１７０】
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【０６９６】
【表１７１】
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【０６９７】
【表１７２】
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【０６９８】
【表１７３】
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【０６９９】
【表１７４】
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【０７００】
【表１７５】
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【０７０１】
【表１７６】
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【０７０２】
【表１７７】
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【０７０３】
【表１７８】
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【０７０４】
【表１７９】
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【０７０５】
【表１８０】
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【０７０６】
【表１８１】
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【０７０７】
【表１８２】
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【０７０８】
【表１８３】
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【０７０９】
【表１８４】
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【０７１０】
【表１８５】
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【０７１１】
【表１８６】
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【０７１２】
【表１８７】
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【０７１３】
【表１８８】
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【０７１４】
【表１８９】
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【０７１５】
【表１９０】
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【０７１６】
【表１９１】
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【０７１７】
【表１９２】
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【０７１８】
【表１９３】
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【０７１９】
【表１９４】
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【０７２０】
【表１９５】
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【０７２１】
【表１９６】
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【図面の簡単な説明】
【０７２２】
【図１】図１は，７つの異なる種類の酵素的核酸分子の二次構造モデルを示す。
【図２】図２は，化学的に安定化されたリボザイムモチーフの例を示す。
【図３】図３は，化学的に安定化されたアンバーザイムリボザイムモチーフの例を示す。
【図４】図４は，化学的に安定化されたチンザイムＡリボザイムモチーフの例を示す。
【図５】図５は，ＤＮＡザイムモチーフの例を示す。
【図６】図６は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルの変化のパーセントを示す棒グラフである。
【図７】図７は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の平均血清ＨＢＶ  ＤＮＡレベルを示す棒グラフである。
【図８】図８は，ＨＢＶトランスジェニックマウスにおける１４日のリボザイム治療後の血清ＨＢＶ  ＤＮＡ（ｌｏｇ）レベルの低下を示すを示す棒グラフである。
【図９】図９は，ＨｅｐＧ２．２．１５細胞において，ＨＢＶ  ＲＮＡを標的とするリボザイムで処理した後のＨＢＶ  ＤＮＡの減少を示す棒グラフである。
【図１０】図１０は，ＨｅｐＧ２細胞を，ＨＢＶプレゲノムＲＮＡの部位２７３を標的とするリボザイムで処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を示す棒グラフである。
【図１１】図１１は，ＨｅｐＧ２細胞をＲＰＩ１８３４１単独またはＩｎｆｅｒｇｅｎ（登録商標）との組み合わせで処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を示す棒グラフである。
【図１２】図１２は，ＨｅｐＧ２細胞をＲＰＩ１８３４１単独でまたはラミブジンとの組み合わせで処理した後のＨＢｓＡｇレベルの低下を示す棒グラフである。
【図１３】図１３は，ＨＢＶ逆転写に関与する工程の概要を表すスキームを示す。
【図１４】図１４は，ＨＢＶ逆転写の阻害の非限定的例を示す。
【図１５】図１５は，２’−Ｏ−アリル修飾核酸分子のＨＢＶ核酸スクリーニングを示すデータを示す。
【図１６】図１６は，２’−Ｏ−メチル修飾核酸分子のＨＢＶ核酸スクリーニングのデータを示す。
【図１７】図１７は，ＨＢＶリバーストランスクリプターゼプライマーを標的とする２’−Ｏ−メチル修飾核酸分子の用量応答データを示す。
【図１８】図１８は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子の核酸スクリーニングのデータを示す。
【図１９】図１９は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子の核酸スクリーニングのデータを示す。
【図２０】図２０は，ＨＢＶエンハンサーＩコア領域を標的とする核酸分子の用量応答データを示す。
【図２１】図２１は，無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍成長を，腫瘍体積（ｍｍ3）対時間（日）として示すグラフである。
【図２２】図２２は，無胸腺ｎｕ／ｎｕ雌マウスにおけるＨｅｐＧ２．２．１５腫瘍成長を，腫瘍体積（ｍｍ3）対時間（日）として示すグラフである。
【図２３】図２３は，細胞培養におけるルシフェラーゼ活性の酵素的核酸媒介性減少を示すために用いられたデュアルレポーターシステムの図解である。
【図２４】図２４は，ＨＣＶ５’ＵＴＲの二次構造の図解を示す。
【図２５】図２５は，ヌクレアーゼ耐性酵素的核酸分子の非限定的例を示す。
【図２６】図２６は，ＯＳＴ７細胞におけるＨＣＶ−ルシフェラーゼ発現の酵素的核酸媒介性阻害を示す１組の棒グラフである。
【図２７】図２７は，酵素的核酸処理後のＨＣＶ／ルシフェラーゼ発現の用量依存的阻害を示す一連の線グラフである。
【図２８】図２８はＯＳＴ７細胞におけるＨＣＶ／ルシフェラーゼＲＮＡの減少およびＨＣＶ−ルシフェラーゼ発現の阻害を示す１組の棒グラフである。
【図２９】図２９は，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸処理と組み合わせたインターフェロン（ＩＦＮ）アルファ２ａおよび２ｂの用量応答を示す１組の棒グラフである。
【図３０】図３０は，インターフェロン（ＩＦＮ）アルファ２ａおよび２ｂ前処理と組み合わせた，部位１９５抗ＨＣＶ酵素的核酸の用量応答を示す線グラフである。
【図３１】図３１は，コンセンサスインターフェロン（ＣＩＦＮ）／酵素的核酸の組み合わせ処理からのデータを示す１組の棒グラフである。
【図３２】図３２は，コンセンサスインターフェロン（ＣＩＦＮ）と組み合わせて用いた部位１９５を標的とする抗ＨＣＶ酵素的核酸の酵素的核酸活性および増強された抗ウイルス効果を示す棒グラフである。
【図３３】図３３は，ＨＣＶ５’−ＵＴＲ中の種々の部位を標的とするチンザイム酵素的核酸分子での処理によるＨＣＶ−ＰＶキメラ複製の阻害を示す棒グラフである。
【図３４】図３４は，ＨＣＶ５’−ＵＴＲの保存領域を標的とするアンチセンス核酸分子によるＨＣＶ−ＰＶキメラ複製の阻害を示す棒グラフである。
【図３５】図３５は，この実験において用いた化合物（２−５Ａ）の構造を示す。
【図３６】図３６は，リボザイム活性および増強された抗ウイルス効果を示す棒グラフである。
【図３７】図３７は，抗ＨＣＶリボザイム（ＲＰＩ１３９１９）または２−５Ａ（ＲＰＩ２１０９６）処理によるウイルス複製の阻害を示すグラフである。
【図３８】図３８は，２−５Ａ処理と組み合わせた抗ＨＣＶリボザイムを示す棒グラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
2004532022.tif 000206
【図６】
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【図７】
2004532022.tif 000208
【図８】
2004532022.tif 000209
【図９】
2004532022.tif 000210
【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
2004532022.tif 000222
【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６Ａ】
2004532022.tif 000227
【図２６Ｂ】
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【図２７Ａ】
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【図２７Ｂ】
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【図２７Ｃ】
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【図２７Ｄ】
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【図２７Ｅ】
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【図２８Ａ】
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【図２８Ｂ】
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【図２９Ａ】
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【図２９Ｂ】
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【図３０】
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【図３１Ａ】
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【図３１Ｂ】
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【図３２】
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【図３３】
2004532022.tif 000242
【図３４】
2004532022.tif 000243
【図３５】
2004532022.tif 000244
【図３６Ａ】
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【図３６Ｂ】
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【図３７】
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【図３８】
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【国際公開パンフレット】
2004532022.tif 000249
2004532022.tif 000250
2004532022.tif 000251
2004532022.tif 000252
2004532022.tif 000253
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【国際調査報告】
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