(57)【要約】核酸を生物学的サンプルから抽出するための、方法および組成物を開示する。特に、核酸抽出溶液、および細胞、細胞破片またはそれらの両方を含む生物学的サンプルから、核酸配列を抽出するために、そのような溶液を使用する方法を開示する。本核酸抽出溶液は、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有する分子を含み、ここでＲ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立して選択される。本出願は、生物学的サンプルから核酸を抽出するのに十分な量の分子を含む核酸抽出溶液であって、この分子は、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有し、ここでＲ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される、核酸抽出溶液を開示する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
生物学的サンプルから核酸を抽出するのに十分な量の分子を含む核酸抽出溶液であって、該分子は、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有し、ここでＲ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される、核酸抽出溶液。
【請求項２】
請求項１に記載の溶液であって、前記アルキル基が１〜６炭素原子を有する、溶液。
【請求項３】
請求項２に記載の溶液であって、前記アルキル基が、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎ−ヘキシル、およびイソヘキシルからなる群から選択される、溶液。
【請求項４】
請求項２に記載の溶液であって、前記アルキル基が、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、およびｔｅｒｔ−ブチルからなる群から選択される、溶液。
【請求項５】
請求項１に記載の溶液であって、Ｒ１が、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、またはｔｅｒｔ−ブチルであり、そしてＲ２が水素である、溶液。
【請求項６】
請求項１に記載の溶液であって、前記分子が、２−メトキシエタノール、２−エトキシエタノール、および２−ｎ−ブチルオキシエタノールからなる群から選択される、溶液。
【請求項７】
請求項１に記載の溶液であって、前記分子が２−メトキシエタノールである、溶液。
【請求項８】
請求項１に記載の溶液であって、前記溶液が、約０．５％（ｖ／ｖ）から約５％（ｖ／ｖ）の前記分子を含む、溶液。
【請求項９】
請求項８に記載の溶液であって、前記溶液が約１％（ｖ／ｖ）の前記分子を含む、溶液。
【請求項１０】
さらに緩衝薬剤を含む、請求項１に記載の溶液。
【請求項１１】
請求項１０に記載の溶液であって、前記緩衝薬剤が、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液、およびホウ酸緩衝液からなる群から選択される、溶液。
【請求項１２】
請求項１または１０に記載の溶液であって、前記溶液が約７より高いｐＨを有する、溶液。
【請求項１３】
請求項１２に記載の溶液であって、前記ｐＨが約７より高く、そして約１３より低い、溶液。
【請求項１４】
さらに界面活性剤を含む、請求項１または１０に記載の溶液。
【請求項１５】
請求項１４に記載の溶液であって、前記界面活性剤が、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）、Ｂｒｉｊ（登録商標）、およびＴｒｉｔｏｎ（登録商標）−Ｘ１００からなる群から選択される、溶液。
【請求項１６】
生物学的サンプルから核酸を抽出する方法であって、該方法は：
核酸をサンプル中の細胞または細胞破片から遊離するために、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有する分子を含む溶液とサンプルを混合する工程であって、ここでＲ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される、工程
を含む、方法。
【請求項１７】
請求項１６に記載の方法であって、前記アルキル基が１〜６炭素原子を有する、方法。
【請求項１８】
請求項１７に記載の方法であって、前記アルキル基が、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎ−ヘキシル、およびイソヘキシルからなる群から選択される、方法。
【請求項１９】
請求項１７に記載の方法であって、前記アルキル基が、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、およびｔｅｒｔ−ブチルからなる群から選択される、方法。
【請求項２０】
請求項１６に記載の方法であって、Ｒ１が、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、またはｔｅｒｔ−ブチルであり、そしてＲ２が水素である、方法。
【請求項２１】
請求項１６に記載の方法であって、前記分子が２−メトキシエタノールである、方法。
【請求項２２】
請求項１６に記載の方法であって、前記溶液がさらに緩衝薬剤を含む、方法。
【請求項２３】
請求項２２に記載の方法であって、前記緩衝薬剤が、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液、およびホウ酸緩衝液からなる群から選択される、方法。
【請求項２４】
請求項１６または２２に記載の方法であって、前記溶液が約７より高いｐＨを有する、方法。
【請求項２５】
請求項２４に記載の方法であって、前記ｐＨが約７より高く、そして約１３より低い、方法。
【請求項２６】
混合物を、約５０℃から約１００℃の範囲内の温度まで加熱するさらなる工程を含む、請求項１６に記載の方法。
【請求項２７】
前記混合物を、約７５℃から約１００℃の温度まで加熱する工程を含む、請求項２６に記載の方法。
【請求項２８】
前記混合物を、約９０℃から約１００℃の温度まで加熱する工程を含む、請求項２７に記載の方法。
【請求項２９】
前記溶液が、約１％の２−メトキシエタノールおよびホウ酸緩衝液（ｐＨ９．５）を含む、請求項１６に記載の方法。
【請求項３０】
前記サンプルから抽出された核酸配列を増幅するさらなる工程を含む、請求項１６に記載の方法。
【請求項３１】
前記サンプルから抽出された核酸配列を検出するさらなる工程を含む、請求項１６に記載の方法。
【請求項３２】
請求項３０に記載の方法であって、前記増幅工程が、配列番号４および５の配列を含む増幅プライマー対を使用する、方法。
【請求項３３】
配列番号３の配列を含むプローブを使用して、前記核酸配列の存在を検出するさらなる工程を含む、請求項３２に記載の方法。
【請求項３４】
請求項３０に記載の方法であって、前記増幅工程が、配列番号８および９の配列を含む増幅プライマー対を使用する、方法。
【請求項３５】
配列番号１０の配列を含むプローブを使用して、前記核酸配列の存在を検出するさらなる工程を含む、請求項３４に記載の方法。
【請求項３６】
請求項１６に記載の方法であって、該方法が、クロロホルム抽出工程、フェノール抽出工程、フェノール／クロロホルム抽出工程、またはアルコール沈殿工程を欠く、方法。
【請求項３７】
請求項１６に記載の方法であって、前記核酸が細菌の核酸またはウイルスの核酸である、方法。
【請求項３８】
請求項１６に記載の方法であって、前記生物学的サンプルが哺乳動物から回収される、方法。
【請求項３９】
請求項３８に記載の方法であって、前記生物学的サンプルが頸部細胞または頸部細胞の破片を含む、方法。
【請求項４０】
請求項３８に記載の方法であって、前記生物学的サンプルが胸部細胞または胸部細胞の破片を含む、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連する出願）
この出願は、２００１年１月１５日に出願された米国仮出願番号第６０／２６１，８４５号（その開示は、参考として本明細書中に援用される）の利益を主張する。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、核酸抽出溶液およびその使用に関し、より具体的には、本発明は、エチレングリコール型の試薬を含む核酸抽出溶液、およびその使用に関する
【背景技術】
【０００３】
（発明の背景）
核酸ベースのアッセイは、生物科学において、広範囲に種々の適用を有する。１つの重要な適用は、生物学的サンプルにおける特定の核酸配列の検出である。このタイプのアッセイは、例えば微生物またはウイルス病原（例えば、Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ（ＣＴ）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ  ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ（ＧＣ）、またはヒトパピローマウイルス（ＨＰＶ））のような特定の生物体が、特定の目的サンプル中に存在するかまたは存在したかどうかを決定することに有用になった。このアッセイは、目的の個体（例えば、ヒト）が、特定の生物体に感染したかまたは感染されたかどうかを決定することに有用であり得る。このタイプの情報は、個体の健康を処置するためまたは管理するために重要であり得る。
【０００４】
種々の核酸抽出溶液は、目的のサンプルから核酸配列を抽出するために長年にわたって開発されてきた。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（編）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，（１９８９）Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓを参照のこと。代表的に、多くのそのような方法は、例えば、界面活性剤媒介性細胞溶解工程、プロテイナーゼ処理工程、フェノールおよび／またはクロロホルム抽出工程、ならびにアルコール沈殿工程のような１つ以上の工程を必要とする。代表的には、そのような方法は、複数の工程を必要とし、そして時間がかかり得る。１つ以上の工程の不注意な省略または不適切な順番は、より低効率の核酸抽出を生じ得る。さらに、複数のサンプルから核酸を抽出する場合、ある特定の方法がより多くの工程を有すれば有するほど、サンプルが処理の間に相互汚染するようになる可能性がより大きくなる。例えば、増幅ベースのプロトコール（例えば、ポリメラーゼ連鎖反応を介する）を使用することによって、得られる核酸サンプルを分析する場合、相互汚染は、臨床的設定において重大であり得る、偽陽性結果を導き得る。
【０００５】
従って、サンプル間の相互汚染の危険性を最小にする、単純、迅速かつ信頼できる核酸抽出プロトコールにおいて使用され得る、核抽出溶液を産出することおよび結果として得られる核酸が、従来の方法論を使用して分析され得ることは、望ましい。本発明のこれらおよび他の目的ならびに特徴は、以下の説明および特許請求の範囲からより明確に理解される。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００６】
（発明の要旨）
本発明は、エチレングリコール型の試薬を含む核酸抽出溶液およびそのような抽出溶液を使用する方法を提供する。一旦、本発明の溶液で抽出されると、単離された核酸サンプルは、特定の核酸配列（例えば、微生物またはウイルスの核酸配列）が、目的の生物学的サンプル中に存在するかどうかを決定するために分析され得る。結果として、この方法および組成物は、微生物またはウイルスの核酸が、サンプル中に存在するかどうかを、迅速かつ確実に決定するために使用され得、従って、この方法および組成物は、微生物またはウイルスの感染または汚染の指標として作用し得る。核酸抽出溶液は、目的の核酸（例えば、細胞および／または細胞破片を含む生物学的サンプル（例えば、哺乳動物細胞および／または哺乳動物細胞破片を含む生物学的サンプル）からの微生物またはウイルスの核酸）を抽出するために使用され得る。
【０００７】
１つの局面において、核酸抽出溶液は、エチレングリコール型試薬または、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有するエチレングリコール誘導体を含む。Ｒ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される。好ましくは、Ｒ１またはＲ２のアルキル基は、１〜１２個の炭素原子を有し、そしてより好ましくは、１〜６個の炭素原子を有する。より具体的には、アルキル基は、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎ−ヘキシル、およびイソヘキシルからなる群から選択される。好ましい実施形態において、アルキル基は、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、およびｔｅｒｔ−ブチルからなる群から選択される。
【０００８】
好ましい実施形態において、Ｒ１およびＲ２は、同時に両方が水素原子であることはない。より好ましくは、Ｒ１が、メチル基、エチル基またはブチル基である場合、Ｒ２は水素である。好ましくは、エチレングリコール型試薬は、２−メトキシエタノール、２−エトキシエタノール、または２−ｎ−ブチルオキシエタノールである。最も好ましくは、試薬は、２−メトキシエタノールである。
【０００９】
別の好ましい実施形態において、溶液は、約０．５％（ｖ／ｖ）から約５％（ｖ／ｖ）の試薬を含む。しかし、最も好ましくは、溶液は、約１％（ｖ／ｖ）の試薬を含む。
【００１０】
別の好ましい実施形態において、溶液は、必要に応じて、緩衝薬剤を含む。種々の緩衝薬剤が本発明の実施において有用であり得るが、好ましくは、この緩衝薬剤は、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液、またはホウ酸緩衝液であることがを企図される。別の実施形態において、好ましくは、溶液は、約７より高いｐＨを有する。好ましくは、溶液は、約７から約１３の範囲のｐＨを有し、特定の状況下では、好ましくは、溶液は、約９から約１１のｐＨを有する。
【００１１】
別の実施形態において、溶液は、必要に応じて、さらに、界面活性剤を含む。種々の界面活性剤が、本発明の実施において有用であり得るが、好ましい界面活性剤としては、例えば、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）、Ｂｒｉｊ（登録商標）、およびＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００（登録商標）が挙げられる。さらに、溶液は、さらに、カオトロープ塩、例えば、グアニジウム塩（例えば、グアニジウムチオシアネート）を含み得る。
【００１２】
別の局面において、本発明は、生物学的サンプルから核酸を抽出する方法を提供する。サンプルは、哺乳動物、より具体的には、ヒトから由来し得、そして、サンプルは、例えば、組織サンプル、血液流体サンプル、またはその他の細胞含有サンプル（例えば、子宮頸部スミア）であり得る。この方法は、生物学的サンプルと、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有する試薬を含む核酸抽出溶液との混合を含む。Ｒ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される。好ましい実施形態において、Ｒ１またはＲ２のアルキル基は、１〜１２個の炭素原子を有し、より好ましくは、１〜６個の炭素を有する。好ましくは、アルキル基は、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎ−ヘキシル、およびイソヘキシルからなる群から選択される。より好ましくは、アルキル基は、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、またはｔｅｒｔ−ブチルからなる群から選択される。
【００１３】
好ましい実施形態において、Ｒ１およびＲ２は、同時に両方が水素原子であることはない。例えば、Ｒ１が、メチル、エチル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチルまたはｔｅｒｔ−ブチルである場合、Ｒ２は水素である。好ましくは、溶液は、約０．５％（ｖ／ｖ）〜約５％（ｖ／ｖ）の試薬を含む。しかし、より好ましくは溶液は、約５％（ｖ／ｖ）より少ない試薬を含む。最も好ましくは、溶液は、約１％（ｖ／ｖ）の試薬を含む。
【００１４】
別の実施形態において、溶液は、必要に応じて、さらに、溶液のｐＨを維持するための緩衝薬剤を含む。例えば、好ましい緩衝薬剤は、Ｔｒｉｓ緩衝液もしくはＴｒｉｓ様緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液、またはホウ酸緩衝液を含む。最も好ましくは、緩衝液は、ホウ酸緩衝液である。好ましくは、溶液は、約７より高いｐＨを有する。より好ましくは、溶液は、約７より高く、約１３より低い範囲のｐＨを有し、ある特定の状況において、溶液は、約９〜約１１までの範囲のｐＨを有する。好ましい実施形態において、溶液は、約１％（ｖ／ｖ）の２−メトキシエタノールおよびホウ酸緩衝液（ｐＨ９．５）を含む。従って、好ましくは、緩衝薬剤は、約７より高いｐＫａを有する。
【００１５】
別の実施形態において、溶液は、必要に応じて、さらに、界面活性剤を含む。種々の界面活性剤を本発明の実施に使用し得るが、好ましい界面活性剤としては、例えば、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）、Ｂｒｉｊ（登録商標）、およびＴｒｉｔｏｎ（登録商標）−Ｘ１００が挙げられる。さらに、溶液は、必要に応じて、さらに、カオトロープ塩（例えば、グアニジウム塩）を含み得る。
【００１６】
別の実施形態において、抽出方法は、混合液を約５０℃〜約１００℃、より好ましくは、約７５℃〜約１００℃、そして最も好ましくは、約９０℃〜約１００℃の範囲内の温度に加熱するさらなる工程を含む。しかし、好ましくは、この方法は、フェノール抽出工程、クロロホルム抽出工程、またはアルコール（例えば、エタノール）沈殿工程のうち１つ以上の工程を欠く。
【００１７】
別の実施形態において、この方法は、例えば、ハイブリッド捕捉または他のハイブリダイゼーションプロトコールを介して、サンプル中の特定の核酸配列（例えば、微生物またはウイルスの核酸配列）を検出する任意のさらなる工程を含む。この方法は、サンプル中の、１つ以上の汚染因子（微生物またはウイルス病原）の存在または非存在を同時に決定するために使用され得る。核酸配列を検出する前に、本発明の方法はまた、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応、リガーゼ連鎖反応などによって目的の核酸配列を増幅する、必要に応じた工程を含む。
【００１８】
（発明の詳細な説明）
その最も一般的な適用において、本発明は、エチレングリコール型の試薬を含む核酸抽出溶液、およびそのような抽出溶液を使用する方法を提供する。一旦、生物学的サンプルから抽出されると、核酸は、１つ以上の特定の核酸配列、例えば、微生物および／またはウイルスの核酸配列が、サンプル中に存在するかどうかを決定するために、分析され得る。結果として、この方法および組成物は、生物学的サンプル中に、微生物および／またはウイルスの核酸配列が、存在するかどうかを、迅速かつ確実に決定をするために使用され得る。
【００１９】
本発明の核酸抽出溶液は、式Ｒ１Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−ＯＲ２を有する分子を含む。Ｒ１およびＲ２は、水素およびアルキル基からなる群から独立に選択される。好ましくは、Ｒ１またはＲ２のアルキル基は、１〜１２個の炭素原子を有し、より好ましくは、１〜６個の炭素原子を有する。より具体的には、アルキル基は、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎ−ヘキシル、およびイソヘキシルからなる群から選択される。
【００２０】
好ましい実施形態において、Ｒ１およびＲ２は、同時に両方が水素原子であることはない。好ましい実施形態において、アルキル基は、メチル、エチル、およびブチルからなる群から選択される。より好ましくは、Ｒ１が、メチル基、エチル基またはブチル基である場合、Ｒ２は水素である。従って、好ましくは、分子は、２−メトキシエタノール、２−エトキシエタノールまたは２−ｎ−ブチルオキシエタノールである。最も好ましくは、分子は、２−メトキシエタノールである。
【００２１】
本発明の実施において有用な、例示的なエチレングリコール型試薬および誘導体は、以下からなる群より選択され得る：（ｉ）式ＣＨ３−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−Ｈを有し、本明細書中でＭＣＳといわれる、２−メトキシエタノール（メチルセロゾルブまたはエチレングリコールモノメチルエーテルとしても知られる）；（ｉｉ）式ＣＨ３−ＣＨ２−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−Ｈを有し、本明細書中で２−ＥＥといわれる、２−エトキシエタノール（セロゾルブまたはエチレングリコールモノエチルエステルとしても知られる）；（ｉｉｉ）式ＣＨ３−ＣＨ２−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−Ｈを有し、本明細書中でＢＣＳといわれる、２−ブトキシエタノール（ブチルセロゾルブまたはエチレングリコールモノブチルエーテルとしても知られる）；（ｉｖ）式Ｈ−Ｏ−ＣＨ２ＣＨ２−Ｏ−Ｈを有し、本明細書中でＥＧといわれる、エチレングリコール；（ｖ）式ＣＨ３−ＣＨ２−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ３を有し、本明細書中でＥＧＤＥまたはＥＧＤｅＥといわれる、１，２−ジエトキシエタン（エチレングリコールジエチルエーテルとしても知られる）、ならびに（ｖｉ）式ＣＨ３−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ２−Ｏ−ＣＨ３を有し、本明細書中でＥＧＤｍＥといわれる、１，２−ジメトキシエタン（エチレングリコールジメチルエーテルとしても知られる）。
【００２２】
本発明の核抽出溶液において有用な、エチレングリコール型試薬の必須量は、慣用的な実験によって決定され得ることが企図される。例えば、異なる量の試薬を含む核酸抽出溶液が、調製され得、そして目的の生物学的サンプルから核酸を抽出するそれらの相対的な能力について試験され得る。本発明の抽出溶液中のエチレングリコール型分子の濃度は、好ましくは、溶液の約０．５％（ｖ／ｖ）から約５％（ｖ／ｖ）である。好ましい濃度は、約１％（ｖ／ｖ）である。例えば２−メトキシエタノールを使用する場合、抽出溶液中の２−メトキシエタノールの好ましい濃度は、約１％（ｖ／ｖ）である。
【００２３】
他の好ましい実施形態において、溶液は、必要に応じて、緩衝薬剤を含む。種々の緩衝薬剤が、本発明の実践において有用であり得ることが企図される。特定の抽出溶液に対する適切な緩衝薬剤、緩衝液濃度、およびｐＨの選択は、慣用的な実験によって決定され得る。例示的な緩衝薬剤は、Ｔｒｉｓアンモニウム緩衝液、ホウ酸緩衝液およびＭＯＰＳ緩衝液を含む。しかし、ホウ酸緩衝液が好ましい。好ましくは、抽出溶液のｐＨは、約７より高い。好ましくは、抽出溶液は、約７〜約１３の範囲のｐＨを有し、特定の状況下では、この溶液は、好ましくは、約９〜約１１のｐＨを有する。好ましくは、緩衝薬剤は、約７より大きなｐＫａを有する。
【００２４】
さらに、溶出溶液は、必要に応じて、界面活性剤を含み得る。種々の異なる界面活性剤および界面活性剤濃度は、本発明の実施において、有用であり得ることが企図される。しかし、界面活性剤は、抽出溶液のｐＨが、約７より低い場合、最も利益を有する。さらに、抽出溶液は、必要に応じて、さらにカオトロープ塩、例えば、グアニジン塩を含み得る。好ましいグアニジン塩は、グアニジンチオシアネートを含む。さらに、抽出溶液は、必要に応じて、塩、例えば、二価カチオン（例えば、ＭｇＣｌ２の形態で、Ｍｇ２＋）を含み得る。
【００２５】
本発明の抽出溶液は、目的の生物学的サンプルからの核酸の迅速かつ信頼できる抽出を可能にする。生物学的サンプルは、真核生物、原核生物もしくはウイルス供給源の、細胞、細胞破片、または細胞および細胞破片の両方を含み得る。本発明の抽出溶液は、真核細胞または真核細胞の破片（例えば、核、ミトコンドリア、またはいくつかの他の非細胞器官）もまた含む生物学的サンプルからの、原核生物またはウイルス供給源の核酸の抽出に、特に有用である。例えば、抽出溶液は、哺乳動物、より好ましくは、ヒト供給源から回収されるサンプルから原核生物またはウイルスの核酸を抽出するために使用され得る。
【００２６】
例えば、生物学的サンプルとしては、組織サンプル（例えば、生検サンプル）、体液サンプル（例えば、血液、血清、血漿、リンパ、精液、膣分泌液、乳房滲出物、痰、もしくは腹水液）または別の細胞含有サンプル（例えば、子宮頸部スミアもしくは乳房洗浄）が挙げられ得る。生物学的サンプルは、すぐに処理され得るか、または次の処置のための保存溶液中に保存され得る。本発明の方法および組成物は、例えば、子宮頸部スミアによって収集され、そして保存溶液中に保存された頸部サンプルのようなサンプルを含む頸部細胞、または乳房洗浄によって収集され、そして保存溶液中に保存されたサンプルを含む乳房細胞から核酸を抽出するのに、特に有用である。
【００２７】
本発明の実施において、生物学的サンプルは、抽出溶液とあわせられ、そして混合される。その後、好ましくは、得られる混合液は、例えば、約５０℃より高い温度まで、より好ましくは約７５℃より上、より好ましくは約９０℃より上、そして最も好ましくは約９８℃まで加熱される。加熱工程は、例えば、１分〜３０分の範囲における特定の時間に対してあり得るが、好ましい加熱工程は、約５分〜約１５分の間に対してである。加熱工程の最適な長さは、慣用的な実験によって決定され得る。その後は、サンプルは冷却され得、得られる溶液のサンプルは、核酸についての種々の分析的アッセイを使用して分析され得る。
【００２８】
核酸は、一旦サンプルから抽出されると、種々の分子的技術を使用して分析され得る。例えば、目的の核酸は、ゲル電気泳動によって分画され得、エチジウムブロマイド染色の後、ＵＶ光を介して視覚化され得る。あるいは、標的核酸の存在は、標識化されたプローブを使用して、例えば、ササンブロッティング、ノーザンブロッティング、スロットブロット、ドットブロットなどのような核酸ベースのハイブリダイゼーション技術を介して検出され得る。プローブは、例えば、放射標識、蛍光標識、酵素標識、スピン標識などのような、１つ以上の検出可能な部分で標識され得る。標的核酸は、必要に応じて、前述の方法の前にまたはそれと同時に、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）またはリガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）によって、増幅され得ることもまた企図される。
【００２９】
抽出された核酸を増幅しやすい場合、増幅効率は、ＰＣＲインヒビターの除去によって強化され得ることが意図される。ＰＣＲインヒビターは、例えば、シリカガラスビーズ、Ｃｈｅｌｅｘ樹脂、およびイオン交換樹脂を含む、固体粒子の添加によって、サンプルから除去され得る。従って、特定の状況において、そのような固体粒子を使用前に、本発明の核酸抽出溶液に加えることは、有用であり得る。
【００３０】
好ましい実施形態において、標的核酸の存在は、標的核酸を、ＰＣＲを介して増幅し、そしてリアルタイム検出を介して検出する技術を使用して決定される。この目的に有用な熱サイクル機器は、商用名ＲＯＣＨＥ  ＬＩＧＨＴＣＹＣＬＥＲのもとで得られ得る。適切な増幅プライマーおよび増幅条件の選択は、慣用的な実験によって決定され得ることが企図される。リアルタイム検出は、適切に標識された分子ビーコンを使用して達成され得る。
【００３１】
分子ビーコンは、分子のループ部位が標的核酸配列に相補的なプローブ配列である、ステムアンドループ構造を有する一本鎖化核酸プローブである。ステムは、２つの相補的アーム配列のアニーリングによって生成され、各々はプローブ配列のどちらか末端に位置する。アーム配列は、標的配列とは関係せず（すなわち相同ではなく）、各々のアームは、その末端で標識される。蛍光部分は、プローブの一方の末端（例えば、５’末端）に結合され、蛍光消光物質は、もう一方の末端（例えば、３’末端）に結合される。蛍光の発生期の状態において、分子ビーコンは、蛍光を放射しない。なぜなら、蛍光団によって得られたエネルギーが消光物質に伝達され、熱として放散される（蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）といわれる現象）ように、蛍光部分および消光物質対が選択されるからである。分子ビーコンは、例えば、米国特許第５，９２５，５１７号に記載される。
【００３２】
融解温度（Ｔｍ）より少し高い温度で、分子ビーコンのステム部位は、巻き戻し、分子のプローブ断片を標的鎖に露出する。一旦、露出されると、ビーコンおよび標的は、互いにハイブリダイズし得る。ハイブリダイゼーションの際、分子ビーコンは、コンフォメーション変化を受け、それにより蛍光団および消光物質が、ハイブリダイズしていない状態におけるそれらの空間位置に比べて、互いに空間的に離れるように、ビーコンのアーム配列は、離される。蛍光団が、もはや消光物質の近傍に存在しない場合、ＦＲＥＴはもはや不可能であり、従って、蛍光団は、励起された場合、適切な波長の検出可能な光を発光する。分子ビーコンの型は、特定の適用について、最適化され得る。
【００３３】
本発明の実施は、以下の実施例からなおより十分に理解される。この実施例は、本明細書中で例示に対してのみ提示され、どのような方法においても、本発明を制限するように解釈されるべきではない。
【実施例】
【００３４】
（実施例１−異なるエチレングリコールベースの抽出溶液の比較）
異なるエチレングリコール型試薬を含む種々の抽出溶液を、頸部細胞サンプルからの微生物核酸配列をそれらの抽出する能力に対して試験した。試験された４つの溶液は：１．０％（ｖ／ｖ）２−メトキシエタノールを含む、２ｍＭホウ酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．５）（溶液１）、１．０％（ｖ／ｖ）２−ブトキシエタノールを含む、２ｍＭホウ酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．５）（溶液２）、１．０％（ｖ／ｖ）２−メトキシエタノールおよび０．１３Ｍグアニジウムチオシアネートを含む、２ｍＭホウ酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．５）（溶液３）、ならびに１．０％（ｖ／ｖ）２−ブトキシエタノールおよび０．１３Ｍグアニジウムチオシアネートを含む、２ｍＭホウ酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．５）（溶液４）、を含む。
【００３５】
溶液を、これらの、収集された剥離頸部細胞から核酸を抽出する能力について試験し、Ｃｙｔｙｃ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ｂｏｘｂｏｒｏｕｇｈ，ＭＡ）から入手可能なＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）として公知の、メタノールベースの細胞保存溶液中に保存した。サンプルを含む細胞を２つの等しい部分に分割した。Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ基本小体（２５，０００／ｍＬ）を１つの部分に加え、ポジティブコントロールを提供した。Ｃｈｌａｍｙｄｉａ基本小体を添加されないもう１つの部分は、ネガティブコントロールとして使用した。次いで、これらのサンプルを、抽出溶液（溶液１〜４）のうちの１つを使用して、以下の方法に従って抽出した。
【００３６】
１．０ｍＬの各々の細胞を含有する懸濁物（ポジティブコントロールまたはネガティブコントロールのいずれか）を、１３，０００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、細胞を収集した。この上清を捨て、そして、０．２ｍＬの溶液１、溶液２、溶液３、または溶液４を各々の細胞ペレットに加えた。次いで、細胞を、ボルテックス混合を介して、各々の溶液中に再懸濁し、次いで、各サンプルを熱水浴中で、９８℃１０分間加熱した。その後、チューブを冷却し、次いで、短く遠心分離し、凝縮物を収集した。サンプルを、１％  Ｔｗｅｅｎ（登録商標）−２０を含む、コントロール溶液でもまた抽出した。
【００３７】
次いで、単離された核酸含有サンプルを、以下の方法を介したＰＣＲによって分析した。ＰＣＲに対する代表的な熱サイクルの条件は、９５℃４分間の最初の変性工程、続いて３５サイクルの、３０秒間の９５℃での変性工程、３０秒間の５５℃でのアニーリング工程、１分間の７２℃での伸長工程、を含んだ。２５μＬアリコートの代表的なＤＮＡマスターミックスは、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、５０ｍＭ  ＫＣＬ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭの各ｄＮＴＰ、２Ｍベタイン、５０ピコモルの各プライマー、２．５ユニットの白金Ｔａｑポリメラーゼ（ＰＥ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ．）および５μＬの各サンプル抽出物を含んだ。使用した増幅プライマーは、
【００３８】
【化１】
2004526430.tif 000002
を含んだ。Ｃｈｌａｍｙｄｉａに対して得られたアンプリコンは、２４２塩基長であった。得られた生成物を、０．８％アガロースゲルでのゲル電気泳動によって分画し、エチジウムブロマイドで染色し、ＵＶ光で可視化した。
【００３９】
得られるゲルは、各々の抽出されたサンプルについての２４２塩基対増幅産物の存在によって証明されるように、溶液１〜４が、（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ基本小体でスパイクされた）ポジティブコントロールサンプルから、微生物の核酸を抽出したことを示した。同様の増幅産物が、１％  Ｔｗｅｅｎ（登録商標）−２０で抽出されたポジティブコントロールサンプル中で産生された。対照的に、どの増幅産物も溶液１および溶液２で抽出された、（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ基本小体でスパイクされなかった）ネガティブコントロールのサンプル中で可視化されなかった。
【００４０】
（実施例２−抽出溶液を含むＭＣＳを使用した抽出）
ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液中の３つの臨床的頸部細胞含有サンプル、ポジティブコントロールおよびネガティブコントロールを、実施例１からの溶液１で、水で、あるいはＡｂｂｏｔｔ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  Ｕｒｉｎｅ  Ｓｐｅｃｉｍｅｎ  Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（カタログ番号３Ｂ２１−２４）を介してのいずれかで抽出した。３つの臨床的サンプルは、以前に、独立した方法論を介して、Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓを含むことが示された。コントロールを以下のように調製した。ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液中の剥離した頸部細胞を、２つの部分に分離した。１部分を、１２，５０００  Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ基本小体／ｍＬ（ポジティブコントロール）でスパイクし、もう一方の部分を、基本小体（ネガティブコントロール）でスパイクしなかった。
【００４１】
サンプルを、実施例１に記載のように抽出した。しかし、サンプルを、迅速熱サイクリング（ＬＩＧＨＴＣＹＣＬＥＲ  ＰＣＲ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｆｒｏｍ  Ｒｏｃｈｅ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）およびＣｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓに対して特異的なプローブ（分子ビーコン）を使用したリアルタイム検出を用いてＰＣＲ増幅した。この分子ビーコンプローブは、４２塩基長であり、そして以下の配列を有する：
【００４２】
【化２】
2004526430.tif 000003
このＰＣＲ増幅プライマーは、順方向プライマー
【００４３】
【化３】
2004526430.tif 000004
および逆方向プライマー
【００４４】
【化４】
2004526430.tif 000005
を含んだ。
【００４５】
４２塩基分子ビーコンを、Ｍｉｄｌａｎｄ  Ｃｅｒｔｉｆｉｅｄ  Ｒｅａｇｅｎｔ  Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｍｉｄｌａｎｄ  Ｔｅｘａｓ）から購入し、５’末端にＦＡＭ蛍光プローブ、そして３’末端にＤＡＢＣＹＬ消光物質を含んだ。自発的にステムループ構造を形成する、隣接する領域を有し、そして順方向増幅プライマーおよび逆方向増幅プライマーによって増幅される、Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓヌクレオチド配列産物（アンプリコン）の領域に相補的な、２８ヌクレオチドの内部配列を有する４２塩基配列を設計した。この分子ビ−コンは、標的アンプリコン配列に結合またはハイブリダイズすると蛍光を発した。４０サイクルの増幅後の任意の蛍光レベルを以下の表１に示す。
【００４６】
【表１】
2004526430.tif 000006
この結果は、溶液１が、頸部細胞含有サンプルから、微生物の核酸を抽出可能であり、得られる核酸は、ＰＣＲを介して増幅可能であることを示す。
【００４７】
（実施例３−異なる緩衝液と組み合わせて異なるエチレングリコール型試薬を有する抽出溶液）
特定のエチレングリコール型試薬、および緩衝液の組合せを含む種々の抽出溶液を、抽出効率について試験した。試験した試薬は、（ｉ）２−メトキシエタノール（ＭＣＳ）、２−ブトキシエタノール（ＢＣＳ）、２−エトキシエタノール（２−ＥＥ）、エチレングリコール（ＥＧ）または１，２−ジエトキシエタン（１，２−ｄｉｅｔｈｏｘｙｅｔｈｅｎｅ）（ＥＧＤＥ）および（ｉｉ）クエン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液またはホウ酸緩衝液の組合せを含んだ。
【００４８】
各々の溶液を調製し、通常のＰＣＲを使用して増幅され得る核酸を、抽出する能力について試験した。試験溶液を、Ｃｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓを含むことが既知である、ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液（ポジティブコントロール）またはＣｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓを含まないことが既知である、ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液（ネガティブコントロール）中の細胞懸濁物を、抽出するために使用した。ポジティブコントロールおよびネガティブコントロールを以下のように抽出した。５００μＬのポジティブコントロールまたはネガティブコントロールを、２ｍＬのねじ付きふたをした遠心チューブに移した。このサンプルを、１３，０００ｒｐｍで１５分間、遠心分離して、細胞をペレット化した。上清を捨て、この細胞を２００μＬの各々の抽出溶液に再懸濁し、ボルテックス混合を介して試験した。得られた細胞懸濁物を、９８℃の水浴で１０分間加熱した。冷却後、チューブを遠心分離し、凝縮物を得、得られた細胞抽出物を、次の分析まで、４℃（約１週間の短期間の保存）または−２０℃（長期間の保存）で保存した。
【００４９】
サンプルを、リアルタイム検出を用いたＰＣＲによって増幅した。ＰＣＲ増幅を：（ｉ）１μＭの順方向プライマー
【００５０】
【化５】
2004526430.tif 000007
１μＭの逆方向プライマー
【００５１】
【化６】
2004526430.tif 000008
５０ｎＭの分子ビーコン
【００５２】
【化７】
2004526430.tif 000009
２００μＭの各ｄＮＴＰ、１ユニットの白金Ｔａｑ（ＰＥ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ．）、８．３３ｍＭのマグネシウム、１×製造業者の酵素緩衝液、０．７５Ｍベタインを含む１６μｌの試薬、および（ｉｉ）４μＬの各細胞抽出物を含む、２０μＬの反応混合液中で行った。
【００５３】
サンプルを以下のように増幅した：
（１）９５℃１分間の単一開始サイクル、次いで、（２）変性工程（２０℃／秒の勾配を有し、９５℃５秒間）、第１アニーリング工程（５℃／秒の勾配を有し、４８℃２０秒間）、第２アニーリング工程（５℃／秒の勾配を有し、５３℃２秒間）、および伸長工程（５℃／秒の勾配を有し、７２℃１０秒間）を有し、各々５５サイクル、次いで最後に（３）単一冷却工程（２０℃／秒の勾配を有し、４０℃３０秒間）。ＤＮＡアンプリコン由来の蛍光を、各第１アニーリング工程の間測定し、この結果を、閾サイクル値（すなわち、蛍光を検出した場合の、サイクル数）および絶対蛍光値（飽和に達した最大レベルの蛍光）として表した。ポジティブコントロール由来の結果を、以下の表２に要約する。
【００５４】
【表２】
2004526430.tif 000010
表２の結果は、全ての抽出溶液が、増幅可能な微生物の核酸を抽出し得たことを示す。この結果はまた、アルカリｐＨを有する抽出溶液は、一般的に、良好な性能特徴を有することを示す。
【００５５】
（実施例４−異なる界面活性剤の効果）
特定の界面活性剤が、ＭＣＳを含む抽出溶液の性能を増強し得るかどうかを試験するために、種々の界面活性剤を、異なる緩衝化ＭＣＳ含有溶液に加えた。各々の溶液において使用されるＭＣＳの濃度を、１％（ｖ／ｖ）に維持した。異なる緩衝液は、クエン酸、Ｔｒｉｓおよびホウ酸を含んだ。試験した界面活性剤は、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０、Ｂｒｉｊ（登録商標）３５、およびＴｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ−１００を含み、これら全ては、Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙから得た。
【００５６】
実施例３に記載されるように、サンプルを抽出し、リアルタイム検出を共にＰＣＲ増幅を行った。結果を表３に要約する。
【００５７】
【表３】
2004526430.tif 000011
この結果は、界面活性剤が、酸性ｐＨを有する特定の溶液の抽出特性を、改善し得ることを示す。対照的に、この界面活性剤は、溶液がアルカリ性ｐＨを有する場合、ほとんど利益を提供し得ない。さらにこのデータは、概して、アルカリ性ｐＨを有する溶液は、最高の性能特性を示すことを示唆する。
【００５８】
（実施例５−異なる緩衝液の効果）
異なる緩衝液が、ＭＣＳを含む抽出溶液の性能を増強するかどうかを試験するために、種々の異なる緩衝液系を、異なるＭＣＳを含む溶液に加えた。各々の溶液で使用されるＭＣＳの濃度を、１％（ｖ／ｖ）に維持した。試験した異なる緩衝液は，クエン酸−グリシン緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液、Ｔｒｉｓアンモニウム緩衝液およびホウ酸緩衝液を含んだ。
【００５９】
緩衝液を以下のように調製した。クエン酸−グリシン緩衝液を、クエン酸一水和物（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃから）およびグリシン（Ａｍｒｅｓｃｏから）を用いて、２５０ｍＭストック溶液として調製した。ＭＯＰＳ緩衝液をＭＯＰＳ（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．から）を用いて、２５０ｍＭ溶液として調製した。Ｔｒｉｓアンモニウム緩衝液を、Ｔｒｉｓ塩基（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．から）および塩化アンモニウム（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙから）を用いて、２５０ｍＭストック溶液として調製した。
【００６０】
ポジティブコントロールおよびネガティブコントロールを、サンプルを５分間、１０分間または１５分間加熱したことを除いて、実施例３に記載されるように抽出した。得られた抽出物を、実施例３に記載されるように、リアルタイム検出と共にＰＣＲ増幅をした。ポジティブサンプルの結果を、表４、５、６、および７に示す。
【００６１】
【表４】
2004526430.tif 000012
【００６２】
【表５】
2004526430.tif 000013
【００６３】
【表６】
2004526430.tif 000014
【００６４】
【表７】
2004526430.tif 000015
この結果はまた、アルカリ性ｐＨを有する抽出溶液が、一般的に、よりよい性能特性を有することを示す。ホウ酸緩衝液を含む抽出溶液に関して、１３未満のアルカリ性ｐＨを有する抽出溶液は、最適の性能特性を有した。
【００６５】
（実施例６−リガーゼ連鎖反応を介した抽出された核酸の検出）
本発明に従った抽出溶液の効果を、別の検出方法；リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）を通して試験した。感染されたＭｃＣｏｙ培養細胞から得られたＣｈｌａｍｙｄｉａ  ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ基本小体を、ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液（ポジティブコントロール）に加えた。基本小体を添加されなかったＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液の試料は、ネガティブブコントロールを提供した。次いで、サンプルを抽出し、ＬＣｘ  Ｐｒｏｂｅ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｏｆ  Ａｂｂｏｔｔ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ａｂｂｏｔｔ  Ｐａｒｋ，  ＩＬ）を使用したＬＣＲにかけ、ＣＴ  ＤＮＡについて試験した。
【００６６】
基本小体含有サンプルを、２つのアリコ−トに分割した。第１のアリコートを、尿試料の処理に対して、ＡｂｂｏｔｔのＬＣｘ試薬およびＡｂｂｏｔｔのプロトコールを使用して抽出した（ずなわち、ＬＣｘ  Ｕｒｉｎｅ  Ｓｐｅｃｉｍｅｎ  Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ）。第２のアリコートを、実施例１に記載されるプロセスを通して、２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ７．６）、および５０ｍＭ  ＭｇＣｌ２中の１％  ＭＣＳ（溶液５）を含む１００μＬの抽出溶液を使用して抽出した。次いで、両方のアリコートからのＤＮＡを、残りのＬＣｘアッセイ（増幅および検出）にかけた。このアッセイは、Ａｂｂｏｔｔの標準手順にならった。
【００６７】
サンプルが、ＣＴ  ＤＮＡに対してポジティブであったかどうかを、決定することに対する製造業者の推奨は、これらの実験に従った。より具体的には、平均シグナルとカットオフの比（Ｓ／ＣＯ）が、少なくとも１．００であった場合、結果は、ＣＴ  ＤＮＡに対してポジティブであったと考えられ；Ｓ／ＣＯが、０．８０より下であった場合、結果は、ネガティブと考えられ；そして、その間の任意のＳ／ＣＯは、不確かであると考えられる。この結果を、表９に要約する。
【００６８】
【表８】
2004526430.tif 000016
表９に示されるように、溶液５を使用して得られた結果は、Ａｂｂｏｔｔ  ＬＣｘ系に含まれる抽出系を使用した結果と一致した。さらに、この結果はまた、溶液５が、Ａｂｂｏｔｔ  ＬＣｘ系に含まれる増幅試薬と、適合性であることを示す。
【００６９】
（実施例８−Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ  ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅの検出）
本発明に従う抽出溶液を、生物学的サンプルから、第２の生物体、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ  ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ（ＧＣ）の核酸を抽出する能力について試験した。種々の増幅ベースの検出方法を使用して、抽出された核酸の存在を証明した。
【００７０】
通常の（Ｑｕｅｌａｂ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｍｏｎｔｒｅａｌ，Ｑｕｅｂｅｃ，Ｃａｎａｄａから入手可能な、２×スクロースリン酸輸送緩衝液中に回収された）膣スワブサンプルの約１００μＬをそれぞれ１ｍＬのＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液を含む、２１個のバイアルに加えた。以前に、尿生殖器痕跡感染（ｇｅｎｉｔｏｕｒｉｎａｒｙ  ｔｒａｃｋ  ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ）、骨盤炎症性疾患、および播種性淋菌疾患を示す患者から回収されたＧＣ細胞を、次いで、２１個のサンプルバイアルの各々に加えた。この２１個のバイアルに加えられたＧＣ細胞はまた、独立した方法論を介して、２１個の異なるＧＣ株であることが示された。各々１ｍＬのＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液のみ（すなわち、どんな細胞も有さない）を含む、２つのバイアルを、ネガティブコントロールとして使用した。独立した方法を介して抽出されたＧＣ  ＤＮＡを含む別のバイアルは、ポジティブコントロールを提供した。
【００７１】
２４個のサンプルバイアルを、実施例１のように、２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．５）中の１％  ＭＣＳ（溶液１）を使用して抽出した。得られたＤＮＡサンプルを２つのアリコートに分割した。１つのアリコートを、ＤＮＡ検出のために従来のＰＣＲおよびゲル電気泳動にかけ；もう１つのアリコートを分子ビーコンプローブを使用したリアルタイム検出を伴うＰＣＲにかけた。
【００７２】
ＧＣ  ＤＮＡの第１のアリコートを増幅するための従来のＰＣＲを、Ｈｏら、（１９９２）Ｐａｔｈｏｌ．４５：４９３−４４２に記載されるＨＯ１／ＨＯ３プライマーセットを使用して実行した。ＨＯ１プライマーは、以下の配列を含む：
【００７３】
【化８】
2004526430.tif 000017
ＨＯ３プライマーの配列は、
【００７４】
【化９】
2004526430.tif 000018
である。このプライマーのセットは、ＧＣ  ＤＮＡ中のｃｐｐＢ遺伝子の３９０塩基対のＤＮＡフラグメントを増幅する。増幅は、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、５０ｍＭ  ＫＣｌ、２．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭのｄＮＴＰ、１μＭの各プライマー、および１単位の白金Ｔａｑポリメラーゼ（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  Ｃｅｔｕｓ，Ｐ．Ｅ．Ｒｏｃｈｅ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｓｙｓｔｅｍ，Ｉｎｃ．，Ｂｒａｎｃｈｂｕｒｇ，ＮＪ，Ｕ．Ｓ．Ａ）ならびに５μＬのＤＮＡサンプルを含む、２５μＬの反応容量中で行った。熱サイクル工程は、９４℃４分間の最初の変性工程、続いて、各々９４℃３０秒間の変性工程、６０℃１分間のアニーリング工程および７４℃３０秒間の伸長工程から各々なる、３５サイクルを含んだ。サイクルの最後に、温度を７４℃にし、その温度で８分間保った。
【００７５】
増幅産物を、２％アガロースゲルでの電気泳動を介して、分画し、ゲルをエチジウムブロマイドで染色した後、ＵＶ光を用いて可視化した。２１個のＧＣ含有試料のうち２０個が、３９０塩基対のＤＮＡの可視のバンドを生成したのに対して、ネガティブコントロールは、生成物のバンドを生成しなかった。従来のＰＣＲ検出法からの結果は、ＭＣＳ含有溶液がＧＣから核酸配列を抽出することを示す。
【００７６】
ＧＣ  ＤＮＡ試料の第２のアリコートを、リアルタイム検出で、ＰＣＲ増幅した。このＰＣＲ増幅は、ｉ−Ｃｙｃｌｅｒ  ＰＣＲ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）を使用し、以下の：順方向プライマー
【００７７】
【化１０】
2004526430.tif 000019
および、逆方向プライマー
【００７８】
【化１１】
2004526430.tif 000020
のプライマーセットを用いて実施した。増幅されたＤＮＡ産物のリアルタイム検出を、以下のＦＡＭおよびＤＡＢＣＹＬで標識された、４２マーの分子ビーコンプローブ：
【００７９】
【化１２】
2004526430.tif 000021
を使用して、分子ビーコン技術によって実施した。代表的には、リアルタイムＰＣＲ反応を、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、５０ｍＭ  ＫＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭのｄＮＴＰ、１μＭの各プライマー、１単位の白金Ｔａｑポリメラーゼ（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  Ｃｅｔｕｓ）、５０ｎＭの分子ビーコン、および５μＬの標的ＤＮＡを含む、２５μＬの混合液中で実行した。代表的な熱サイクル条件は、９５℃３分間の最初の変性工程、続いて、９５℃３０秒間の変性工程、５５℃４５秒間のプライマーおよび分子ビーコンのアニーリング工程、および７２℃３０秒間の伸長工程から各々なる、６０サイクルを含んだ。
【００８０】
６０の熱サイクルの後に、その蛍光読み取りの増加がネガティブコントロール（ＧＣ  ＤＮＡを含まないＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液）よりも少なかったサンプルを、ネガティブコントロールと考え、そしてその逆もまた同様である。２１個全てのＧＣ含有サンプル（１００％）から、ポジティブな読み取りが得られた。
【００８１】
要約すると、異なる増幅ベースの検出工程は、ＭＣＳ含有溶液が、高い選択性を有して、ＧＣ核酸配列を首尾よく抽出したことを示す。
【００８２】
（実施例９−ヒトパピローマウイルスの検出）
本発明に従う抽出溶液を、細胞含有サンプルからヒトパピローマウイルス（ＨＰＶ）の核酸を抽出するその能力に対して、試験した。
【００８３】
ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）溶液に保存された、いくつかの頸部細胞試料を、サンプルとして使用した。これらのサンプルは、高い危険性のＨＰＶ株で感染された細胞を含むサンプルとして、独立の方法を介して、以前に試験され、遺伝子型が決定された。この試料を等量のアリコートに分割した。第１のアリコートを、市販のＱＩＡａｍｐ（登録商標）ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ，Ｖａｌｅｎｃｉａ，ＣＡ）を使用して抽出した。Ｑｉａｇｅｎ  ＱＩＡａｍｐ（登録商標）ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔによる抽出を、血液および体液スピンサンプルを処理するための、製造業者の使用説明書に従って、遠心分離でサンプルから回収された細胞に対して行った。第２のアリコートを、２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．５）中の１％  ＭＣＳ（溶液１）を用いた、実施例１に記載されるプロセスを使用して抽出した。
【００８４】
次いで、得られたサンプルを、従来のＰＣＲで分析した。いくつかの高危険性ＨＰＶ株のＥ６領域の一部を増幅する順方向プライマーおよび逆方向プライマーのカクテルを使用した。代表的なＤＮＡマスター混合液を、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、５０ｍＭ  ＫＣｌ、１．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭのｄＮＴＰ、０．５μＭの各プライマーカクテル（順方向および逆方向）、１．２５単位の白金Ｔａｑポリメラーゼ（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  Ｃｅｔｕｓ，Ｐ．Ｅ．Ｒｏｃｈｅ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｓｙｓｔｅｍ，Ｉｎｃ．，Ｂｒａｎｃｈｂｕｒｇ，ＮＪ，Ｕ．Ｓ．Ａ）、および３μＬの標的ＤＮＡを含む、最終容量２５μＬに調製した。
【００８５】
ＰＣＲを、以下の熱サイクル条件下で行った：９４℃５分間の最初の変性工程、続いて、４０サイクルの、９４℃１分間、４８℃１分間のアニーリング工程、および７２℃１分間の伸長工程。７２℃８分間、最終伸長を、ＰＣＲサイクルプロセスに続いて行った。ＰＣＲに続いて、増幅産物を、２．５％アガロースゲルを介した電気泳動によって分画し、エチジウムブロマイドで染色後、ＵＶ光で可視化した、
結果は、ＨＰＶ核酸を、溶液１とＱＩＡａｍｐ（登録商標）ＤＮＡ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔとの両方を使用して抽出し得、得られた核酸をＰＣＲによって増幅し得たことを示した。生成物のバンドは、４５型および３１型を含む、種々のＨＰＶ株に対して予想される長さと一致した。ＤＮＡアンプリコンは、ＨＰＶ  ＤＮＡについてネガティブであると試験された、ＰＲＥＳＥＲＶＣＹＴ（登録商標）サンプル中には観察されなかった。これらの結果は、ＭＣＳ含有溶液が、抽出および、その後の、抽出されたＨＰＶ核酸の分析に対して有用であり得ることを示唆する。
【００８６】
本明細書中で同定された各々の特許文書および非特許文書の内容は、本明細書中で参考として特に援用される。
【００８７】
本発明は、その精神またはその本質的な特徴から逸脱することなく、他の特定の形態において具体化され得る。従って、本発明の実施形態は、例示的かつ非限定的に全ての局面において考慮されるべきであり、本発明は、前述の記載によってではなく、添付された特許請求の範囲によって示される範囲、従って、特許請求の範囲の等価な意味および範囲に収まる全ての変更は、特許請求の範囲に含まれるべきであることが意図される。
【００８８】
本発明の他の実施形態は、前述の特許請求の範囲内にある。
【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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