(57)【要約】生体試料内の酵素複合体の存在を伴う組織再構築関連状態の存在を診断するためおよびその発生を予想するための、方法およびキットが開示される。特に本方法は、ＭＭＰを含む高分子量酵素複合体の同定による、転移性癌の存在の診断またはその発生の予側に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の段階を含む、組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にするための非侵襲性方法：
対象から生体試料を得る段階；
生体試料において高分子量酵素複合体を検出する段階；および
高分子量酵素複合体の有無を、組織再構築関連状態の有無と相関させ、それにより組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にする段階。
【請求項２】
組織再構築関連状態が癌である、請求項１記載の方法。
【請求項３】
組織再構築関連状態が、関節炎状態、閉塞性状態、または変性状態である、請求項１記載の方法。
【請求項４】
癌が器官限局性前立腺癌である、請求項２記載の方法。
【請求項５】
癌が転移性前立腺癌である、請求項２記載の方法。
【請求項６】
癌が上皮起源の細胞内にある、請求項２記載の方法。
【請求項７】
癌が神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、膵臓、尿生殖器官、および胃腸管の癌からなる群より選択される、請求項６記載の方法。
【請求項８】
癌が中胚葉起源の細胞に生じる、請求項２記載の方法。
【請求項９】
癌が内胚葉起源の細胞に生じる、請求項２記載の方法。
【請求項１０】
癌が骨細胞または造血性起源の細胞を冒す、請求項２記載の方法。
【請求項１１】
高分子量酵素複合体がプロテアーゼを含む、請求項１〜１０のいずれか一項記載の方法。
【請求項１２】
プロテアーゼがセリンプロテアーゼである、請求項１１記載の方法。
【請求項１３】
プロテアーゼがマトリクスメタロプロテイナーゼである、請求項１１記載の方法。
【請求項１４】
マトリクスメタロプロテイナーゼがＭＭＰ−９である、請求項１３記載の方法。
【請求項１５】
高分子量酵素複合体がリポカリンを含む、請求項１〜１０のいずれか一項記載の方法。
【請求項１６】
リポカリンがＮＧＡＬである、請求項１５記載の方法。
【請求項１７】
酵素複合体がＴＩＭＰを含む、請求項１５記載の方法。
【請求項１８】
ＴＩＭＰがＴＩＭＰ−１である、請求項１７記載の方法。
【請求項１９】
高分子量酵素複合体が、自身と複合して多量体を形成する酵素を含む、請求項１〜１０のいずれか一項記載の方法。
【請求項２０】
多量体が二量体または三量体である、請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
多量体がさらにリポカリンと複合している、請求項１９記載の方法。
【請求項２２】
リポカリンがＮＧＡＬである、請求項２１記載の方法。
【請求項２３】
多量体がさらにＴＩＭＰと複合している、請求項２１記載の方法。
【請求項２４】
ＴＩＭＰがＴＩＭＰ−１である、請求項２３記載の方法。
【請求項２５】
酵素複合体の分子量が約１５０ ｋＤａである、請求項１〜１０のいずれか一項記載の方法。
【請求項２６】
酵素複合体の分子量が約１１５ ｋＤａ〜約１２５ ｋＤａである、請求項１〜２０のいずれか一項記載の方法。
【請求項２７】
以下の段階を含む、組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にするための非侵襲性方法：
対象から生体試料を得る段階；
生体試料においてリポカリンを検出する段階；および
リポカリンの有無を組織再構築関連状態の有無と相関させ、それにより、組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にする段階。
【請求項２８】
組織再構築関連状態が癌である、請求項２７記載の方法。
【請求項２９】
組織再構築関連状態が、関節炎状態、閉塞性状態、または変性状態である、請求項２７記載の方法。
【請求項３０】
癌が器官限局性前立腺癌である、請求項２８記載の方法。
【請求項３１】
癌が転移性前立腺癌である、請求項２８記載の方法。
【請求項３２】
癌が上皮起源の細胞内にある、請求項２８記載の方法。
【請求項３３】
癌が、神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、膵臓、尿生殖器官、および胃腸管の癌からなる群より選択される、請求項３２記載の方法。
【請求項３４】
癌が中胚葉起源の細胞に生じる、請求項２８記載の方法。
【請求項３５】
癌が内胚葉起源の細胞に生じる、請求項２８記載の方法。
【請求項３６】
癌が骨細胞または造血性起源の細胞を冒す、請求項２８記載の方法。
【請求項３７】
リポカリンがＮＧＡＬである、請求項２７〜３６のいずれか一項記載の方法。
【請求項３８】
リポカリンが多量体として存在する、請求項２７〜３６のいずれか一項記載の方法。
【請求項３９】
多量体が二量体または三量体である、請求項３８記載の方法。
【請求項４０】
生体試料が尿である、請求項１〜１０または請求項２７〜３６のいずれか一項記載の方法。
【請求項４１】
検出段階の前に尿から低分子量混入物を除去する段階をさらに含む、請求項４０記載の方法。
【請求項４２】
尿が透析される、請求項４１記載の方法。
【請求項４３】
酵素が電気泳動パターンにより検出される、請求項１〜１０または請求項２７〜３６のいずれか一項記載の方法。
【請求項４４】
電気泳動パターンが基質を含むザイモグラム（ｚｙｍｏｇｒａｍ）である、請求項４３記載の方法。
【請求項４５】
ザイモグラム基質が、ゼラチン、カゼイン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、プラスミン、プラスミノーゲン、ＩＶ型コラーゲン、およびＩＶ型コラーゲンの誘導体からなる群より選択される、請求項４４記載の方法。
【請求項４６】
酵素が免疫化学的に検出される、請求項１〜１０または請求項２７〜３６のいずれか一項記載の方法。
【請求項４７】
酵素が放射線免疫測定法により検出される、請求項４６記載の方法。
【請求項４８】
酵素が酵素結合免疫吸着測定法により検出される、請求項４６記載の方法。
【請求項４９】
以下を含む、組織再構築関連状態の診断および予測を容易にするためのキット：
生体試料中の高分子量酵素複合体の検出用試薬を有する容器；ならびに
組織再構築関連状態の診断および予測を容易にするための、高分子量酵素複合体の検出用試薬を使用するための使用説明書。
【請求項５０】
組織再構築関連状態が癌である、請求項４９記載のキット。
【請求項５１】
組織再構築関連状態が、関節炎状態、閉塞性状態、または変性状態である、請求項４９記載のキット。
【請求項５２】
癌が器官限局性前立腺癌である、請求項５０記載のキット。
【請求項５３】
癌が転移性前立腺癌である、請求項５０記載のキット。
【請求項５４】
癌が上皮起源の細胞内にある、請求項５０記載のキット。
【請求項５５】
癌が、神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、膵臓、尿生殖器官、および胃腸管の癌からなる群より選択される、請求項５４記載のキット。
【請求項５６】
癌が中胚葉起源の細胞に生じる、請求項５０記載のキット。
【請求項５７】
癌が内胚葉起源の細胞に生じる、請求項５０記載のキット。
【請求項５８】
癌が骨細胞または造血性起源の細胞を冒す、請求項５０記載のキット。
【請求項５９】
高分子量酵素複合体がプロテアーゼを含む、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項６０】
プロテアーゼがセリンプロテアーゼである、請求項５９記載のキット。
【請求項６１】
プロテアーゼがマトリクスメタロプロテイナーゼである、請求項５９記載のキット。
【請求項６２】
マトリクスメタロプロテイナーゼがＭＭＰ−９である、請求項６１記載のキット。
【請求項６３】
高分子量酵素複合体がリポカリンを含む、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項６４】
リポカリンがＮＧＡＬである、請求項６３記載のキット。
【請求項６５】
酵素複合体がＴＩＭＰを含む、請求項６３記載のキット。
【請求項６６】
ＴＩＭＰがＴＩＭＰ−１である、請求項６５記載のキット。
【請求項６７】
高分子量酵素複合体が、自身と複合して多量体を形成する酵素を含む、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項６８】
多量体が二量体または三量体である、請求項６７記載のキット。
【請求項６９】
多量体がさらにリポカリンと複合している、請求項６７記載のキット。
【請求項７０】
リポカリンがＮＧＡＬである、請求項６９記載のキット。
【請求項７１】
多量体がさらにＴＩＭＰと複合している、請求項６９記載のキット。
【請求項７２】
ＴＩＭＰがＴＩＭＰ−１である、請求項７１記載のキット。
【請求項７３】
酵素複合体の分子量が約１５０ ｋＤａである、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項７４】
酵素複合体の分子量が約１１５ ｋＤａ〜約１２５ ｋＤａである、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項７５】
生体試料が尿である、請求項４９〜５８のいずれか一項記載のキット。
【請求項７６】
低分子量混入物の除去のために尿を成分へ分離するための装置をさらに含む、請求項７５記載のキット。
【請求項７７】
高分子量酵素複合体が分子量１１５ ｋＤａではない、請求項１〜１０、請求項２７〜３６、または請求項４９〜５８のいずれか一項記載の方法またはキット。
【請求項７８】
高分子量酵素複合体がプロゼラチナーゼＢ酵素を含まない、請求項１〜１０、請求項２７〜３６、または請求項４９〜５８のいずれか一項記載の方法またはキット。
【請求項７９】
高分子量酵素複合体がＮＧＡＬを含まない、請求項１〜１０、請求項２７〜３６、または請求項４９〜５８のいずれか一項記載の方法またはキット。
【請求項８０】
高分子量酵素複合体が、ＮＧＡＬと会合したプロゼラチナーゼＢ酵素を含まない、請求項１〜１０、請求項２７〜３６、または請求項４９〜５８のいずれか一項記載の方法またはキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
関連出願
本出願は、２０００年１０月１３日に出願された米国特許仮出願第６０／２４０，４８９号の優先権を主張し、その内容は参照として本明細書に明白に組み入れられている。本出願はまた、１９９６年４月２６日に出願された第０８／６３９，３７３号（放棄）、米国特許第６，０３７，１３８号、および第０９／４６９，６３７号（係属中）に関連し、それぞれの全内容は参照として本明細書に明白に組み入れられている。ヤン（Ｙａｎ）， Ｌ．ら、（２００１）Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２７６： ３７２５８〜３７２６５の内容は参照として本明細書に明白に組み入れられている。
【０００２】
発明の背景
マトリクスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）は、その活性がＺｎ＋＋およびＣａ＋＋などの金属イオンに依存する、エンドペプチダーゼのファミリーである。ＭＭＰは総じて、転移過程の一部として分解され、腫瘍細胞を正常周囲組織から隔離する障壁である、細胞外マトリクス（ＥＣＭ）の全分子成分を分解できる（Ｌｏｃｈｔｅｒ， Ａ．ら、（１９９８）Ａｎｎ Ｎ Ｙ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ８５７： １８０〜９３）。様々な生物学的過程、および病理学的過程、特に腫瘍細胞の浸潤および転移において、ＭＭＰが重要な役割を果たすことが示されている（Ｋｌｅｉｎｅｒ， Ｄ． Ｅ． およびＳｔｅｔｌｅｒ−Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ， Ｗ． Ｇ．（１９９９）Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． ４３： Ｓ４２−５１）。腫瘍細胞または周辺間質細胞によるＭＭＰの過剰生成は、転移性表現型と相互に関連している。特に、その内容が参照として本明細書に完全に組み入れられている米国特許第０９／４６９，６３７号は、生物学的活性のある無傷のＭＭＰが癌患者の生体試料において検出されうり、かつこれが独立性の疾患状態の予測因子（ｐｒｅｄｉｃｔｏｒ）であることを開示している。米国特許第０９／４６９，６３７号において検出されるＭＭＰ活性には、例えばＭＭＰ−９（９２ ｋＤａ、ゼラチナーゼＢ、ＩＶ型コラゲナーゼ、ＥＣ ３．４．２４．３５）およびＭＭＰ−２（７２ ｋＤａ、ゼラチナーゼＡ、ＩＶ型コラゲナーゼ、ＥＣ ３．４．２４．２４）を含む。これらのＭＭＰの両方が、組織再構築関連状態、例えば癌の、独立した予測因子であることが示されている。これら２つの主なゼラチナーゼ種に加えて、１５０ ｋＤａと同等、またはそれ以上の分子量をもついくつかのＭＭＰ活性が観察され、高分子量（ｈＭＷ）ＭＭＰと呼ばれた。実験的腫瘍をもつ動物由来または癌患者由来の、血清、血漿、および尿を含む生物学的液体におけるＭＭＰレベルの上昇は、その他のいくつかの研究においても報告されている（Ｎａｋａｊｉｍａ， Ｍら、（１９９３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５３： ５８０２〜７； Ｚｕｃｋｅｒ， Ｓ．ら、（１９９４）Ａｎｎ Ｎ Ｙ Ａｃａｄ Ｓｃｉ． ７３２： ２４８〜６２； Ｂａｋｅｒ， Ｔ．ら、（１９９４）Ｂｒ Ｊ Ｃａｎｃｅｒ． ７０： ５０６〜１２； Ｇａｒｂｉｓａ， Ｓ．ら、（１９９２）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５２： ４５４８〜９、１９９２）。
【０００３】
発明の概要
癌治療の進歩に伴い、初期診断および／または予測が、疾患転帰にとってますます重要になってきている。従って本発明は、組織再構築関連疾患、例えば癌と診断された対象の生体試料において見出されるｈＭＷ ＭＭＰの分子同一性を特徴とし、かつそのような疾患の初期診断／予測を提供する。これらのｈＭＷ ＭＭＰ、例えば高分子量酵素複合体の同定により、本発明は、癌などの組織再構築関連疾患を予想するための非侵襲性診断法および／または予測法の発達を促進する。
【０００４】
本発明は、組織再構築関連状態、例えば癌の診断および予測を非侵襲的にモニターするために、生物学的マーカー、例えば高分子量酵素複合体を検出するための方法およびキットを提供する。そのような方法に包含される組織再構築関連状態は、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、脳腫瘍、関節炎状態、閉塞性状態、および潰瘍性状態などの疾患を含む。本発明の方法は、生物学的液体試料、例えば医学的訓練をしていない職員により得られうる尿試料を使用し、診療所または病院を訪れることを必要としない。陽性結果と組織再構築関連状態の発生との間の統計学的関係は、これらの状態の発生の初期診断、およびこれらの状態における変化の予測に適用される。
【０００５】
一つの態様において、本発明は、組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にするための非侵襲性方法を提供する。そのような方法は、対象から生体試料を得る段階、および生体試料において高分子量酵素複合体を検出する段階を含む。本方法は、高分子量酵素複合体の有無を組織再構築関連状態の有無と相関させ、それにより、組織再構築関連状態についての対象の診断を容易にする段階をさらに含む。
【０００６】
もう一つの態様において、組織再構築関連状態は、癌、例えば器官限局性前立腺癌、転移性前立腺癌、上皮起源の、中胚葉起源の、内胚葉起源のまたは造血性起源の細胞に見出される癌、ならびに、神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、腎臓、尿生殖器官および胃腸管の癌からなる群より選択される癌である。もう一つの態様において、組織再構築関連状態は、関節炎状態、閉塞性状態、または変性状態である。
【０００７】
さらにもう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、プロテアーゼ、例えばセリンプロテアーゼ、例えばマトリクスメタロプロテイナーゼ、例えばＭＭＰ−９を含む。さらにもう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、リポカリン、例えばＮＧＡＬ、および／またはＴＩＭＰ、例えばＴＩＭＰ−１をさらに含む。
【０００８】
さらにもう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、自身と複合して多量体、例えば二量体または三量体を形成する酵素を含む。そのような多量体は、さらに、リポカリン、例えばＮＧＡＬ、および／またはＴＩＭＰ、例えばＴＩＭＰ−１と複合しうる。
【０００９】
またさらにもう一つの態様において、高分子量酵素複合体の分子量は、少なくとも約１１５ ｋＤａから少なくとも約１２５ ｋＤａである。もう一つの態様において、高分子量酵素複合体の分子量は少なくとも約１５０ ｋＤａである。
【００１０】
もう一つの態様において、本発明の方法は、対象から生体試料を得る段階、および生体試料中のリポカリンを検出する段階を含む。そのような方法は、リポカリンの有無を組織再構築関連状態の有無と相関させ、それにより、対象の組織再構築関連状態についての診断を容易にする段階をさらに含む。
【００１１】
さらにもう一つの態様において、本発明は、組織再構築関連状態の診断および予測を容易にするためのキットを提供する。そのようなキットは、生体試料中の高分子量酵素複合体の検出用試薬、ならびに、組織再構築関連状態の診断および予測を容易にする、高分子量酵素複合体の検出用試薬を使用するための使用説明書を有する容器を含む。
【００１２】
発明の詳細な説明
本発明は、組織再構築関連状態（ＴＲＡＣ）、特に、癌、閉塞性および変性の状態、ならびに関節炎状態についての、対象の診断を容易にするための非侵襲性方法を特徴とする。対象由来の生体試料中の酵素複合体、例えば高分子量（ｈＭＷ）酵素複合体のパターンの検出が、ＴＲＡＣの診断および予測を容易にするために用いられる。
【００１３】
「高分子量酵素複合体」という用語は、別の分子に会合または結合した酵素を含み、ここで複合体は本発明のその意図された機能のとあめに用いられることを可能にする高分子量を有する。酵素複合体の例には、とりわけ、別の酵素に結合した酵素、酵素阻害剤に結合した酵素、および、タンパク質結合分子、例えばリポカリンに結合した酵素が含まれる。自身に結合した酵素、例えば多量体、例えば二量体および三量体を含む酵素複合体もまた、本発明に包含される。
【００１４】
高分子量酵素複合体は、少なくとも約１１５ ｋＤａ、例えば少なくとも約１２０ ｋＤａ、例えば少なくとも約１２５ ｋＤａ、例えば少なくとも約１３０ ｋＤａ、例えば少なくとも約１３５ ｋＤａ、および、例えば少なくとも約１４０ ｋＤａの分子量を有する、酵素複合体を含む。少なくとも約１４５ ｋＤａの、例えば少なくとも約１５０ ｋＤａの、および１５０ ｋＤａを上回る分子量を有する高分子量酵素複合体もまた含まれる。
【００１５】
列挙された値までの中間にある高分子量の値の範囲もまた、本発明の一部であることが意図され、例えば少なくとも約１１５ ｋＤａから少なくとも約１２０ ｋＤａまで、少なくとも約１２０ ｋＤａから少なくとも約１２５ ｋＤａまで、少なくとも約１２５ ｋＤａから少なくとも約１３０ ｋＤａまで、少なくとも約１３０ ｋＤａから少なくとも約１３５ ｋＤａまで、少なくとも約１３５ ｋＤａから少なくとも約１４０ ｋＤａまで、少なくとも約１４０ ｋＤａから少なくとも約１４５ ｋＤａまで、および少なくとも約１４５ ｋＤａから少なくとも約１５０ ｋＤａまでである。例えば、上限および／または下限として列挙された上記の値の任意の組み合わせを用いた高分子量値の範囲が含まれることが意図される。
【００１６】
本発明の一つの態様において、高分子量酵素複合体は分子量１１５ ｋＤａではない。もう一つの態様において、高分子量酵素複合体はＮＧＡＬを含まない。もう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、プロゼラチナーゼＢ酵素を含まない。本発明のさらにもう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、ＮＧＡＬに会合したプロゼラチナーゼＢ酵素を含まない。
【００１７】
「酵素」という用語は当技術分野に認識され、かつ化学反応のタンパク質触媒を含む。酵素は、無傷の酵素全体またはその一部もしくは断片でありうる。本発明の酵素複合体に包含される酵素は、触媒的にタンパク質を分解する天然酵素、すなわち、プロテアーゼまたはプロテイナーゼとして公知の酵素を含む。プロテイナーゼとは、その反応が進行して重大な分解が達成される、Ｎ末端またはＣ末端のいずれかからアミノ酸残基を除去することによりタンパク質を消化する進行性エキソペプチダーゼを意味し、または、残基特異性の程度が異なるアミノ酸残基間のアミド結合を破壊するエンドペプチダーゼを意味する。「プロテアーゼ」という用語はまた、タンパク質のＮ末端またはＣ末端から単一のアミノ酸を除去する高特異的アミノ酸ペプチダーゼも含みうる。例として、アラニンアミノペプチダーゼ（ＥＣ ３．４．１１．２）およびロイシンアミノペプチダーゼ（ＥＣ ３．４．１１．１）が含まれ、これらはアラニンおよびロイシンをもちうるタンパク質のアミノ末端から、アラニンまたはロイシンをそれぞれ除去する。本発明の酵素複合体を含む酵素の分子量には、これに限定されるわけではないが、約７２ ｋＤａ、約９２ ｋＤａ、約１１５ ｋＤａ〜約１２５ ｋＤａおよび約１５０ ｋＤａまたはそれ以上の範囲の分子量が含まれる。「酵素」という用語は、ヒト個体群内で天然に見出されるサイレントな突然変異である、多型変異体を含む。
【００１８】
一つの態様において、本発明の酵素複合体は、プロテアーゼまたはプロテイナーゼを含む。プロテアーゼという用語（およびその等価的用語であるプロテイナーゼ）は、基質の分子量を実質的に減少でき、かつ、特に基質のその生物学的機能がマトリクス障壁の構造的成分であるべき場合に、その生物学的機能を破壊できる、それらのエンドペプチダーゼおよび進行性エキソペプチダーゼを含むことが意図される。アラニンアミノペプチダーゼおよびロイシンアミノペプチダーゼなどのアミノ酸ペプチダーゼもまた広義にはプロテアーゼに含まれるが、基質タンパク質の分子量を有意に減少させる性質を共有しない。
【００１９】
数千のプロテアーゼが天然に存在し、かつそれぞれが、成長の別々の時点においてかつ生物内の別々の場所に現れうる。本明細書における発明は、マトリクスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ、クラスＥＣ ３．４．２４）クラスの酵素を特徴とする。これらの酵素は活性のため二価の陽イオンを必要とし、通常、胚発生初期、例えば透明帯からの接合子の孵化の際、および、子宮壁の内側に発育胚が接着する過程の際に再度発現される。Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ（ＥＣ ３．２．１．５０）などの酵素活性は、例えば糖尿病による、尿細管障害の場合に、尿中で見られる（Ｃａｒｒ， Ｍ．（１９９４）Ｊ． Ｕｒｏｌ． １５１（２）： ４４２〜４４５； Ｊｏｎｅｓ， Ａ．ら、（１９９５）Ａｎｎａｌｓ． Ｃｌｉｎ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．、３２： ６８〜６２）。これらの活性が尿細管障害の結果として尿中で見られるということは、本明細書記載の本発明には関連がない。
【００２０】
「マトリクス消化酵素」という用語は、マトリクス、例えば特定の細胞型が見出される組織において層を構成するタンパク質およびプロテオグリカンの混合物などを消化または分解できる酵素を含む。マトリクス消化酵素は、正常な胚形成段階、妊娠、および組織再構築を伴うその他の過程の際に発現する。さらに、これらの酵素のいくつか、例えばマトリクスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）のいくつかは、腫瘍細胞の転移に対する物理的障壁として働く実質性かつ血管性の基底膜の巨大な細胞外マトリクスタンパク質を分解する。これらのＭＭＰは特定の癌内で生成され、転移に関連する（Ｌｉｏｔｔａ， Ｌ． Ａ．ら、（１９９１）Ｃｅｌｌ ６４： ３２７〜３３６）。ＭＭＰの例には、ＩＶ型コラゲナーゼ、例えばＭＭＰ−２（ゼラチナーゼＡ、ＥＣ ３．４．２４．２４）およびＭＭＰ−９（ゼラチナーゼＢ、３．４．２４．３５）、ならびにストロメリシン（ＥＣ ３．４．２４．１７および３．４．２４．２２）が含まれる。メタロプロテイナーゼの組織阻害剤（ｔｉｓｓｕｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｏｆ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ；ＴＩＭＰ）（Ｗｏｅｓｓｎｅｒ， Ｊ．Ｆ．， Ｊｒ．（１９９５）Ａｎｎ． Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．、７３２： １１〜２１）と呼ばれる、同じく腫瘍細胞により過剰生成されうる分子により、いくつかのＭＭＰは特異的に阻害されるが、特定の条件下では酵素活性はＴＩＭＰよりもモル過剰である（Ｆｒｅｅｍａｎ， Ｍ． Ｒ．ら、（１９９３）Ｊ． Ｕｒｏｌ． １４９： ６５９； Ｌｕ， Ｘ．ら、（１９９１）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５１： ６２３１〜６２３５； Ｋｏｓｓａｋｏｗｓｋａ， Ａ． Ｅ．ら、（１９９１）Ｂｌｏｏｄ ７７： ２４７５〜２４８１）。従って、本発明の一つの態様において、本方法の酵素複合体は、酵素の阻害剤（ＴＩＭＰ、例えばＴＩＭＰ−１またはＴＩＭＰ−２）を含む。阻害剤の検出は、当技術分野により認識される技術を用いて達成されうる。ＭＭＰの多くは酵素前駆体として翻訳され、小型（４５ ｋＤａ、５５ ｋＤａ、６２ ｋＤａ）から大型（７２ ｋＤａ、８２ ｋＤａ、９２ ｋＤａ、ならびに１５０ ｋＤａおよびそれ以上の高重合体）を含む範囲の分子量をもつ様々な構造として見出されうる。
【００２１】
本発明のもう一つの態様において、高分子量酵素複合体は、タンパク質結合分子、例えばリポカリンを含む。リポカリンは、小さな疎水性分子と結合して分子複合体を形成する、小さな分泌タンパク質である。リポカリンは免疫応答の調節を含む様々な機能に関係しており、例えばリポカリンはインビトロで特定の免疫調節効果を発揮できる。好中球リポカリンはヒト好中球ゼラチナーゼ（ＩＶ型コラゲナーゼ）に共有結合的に結合し、それにより好中球ゼラチナーゼ結合リポカリン（ＮＧＡＬ）を形成することが示されている（Ｔｒｅｉｂｅｌら（１９９２）、およびＫｊｅｌｓｅｎら（１９９３））が、タンパク質のほとんどが非複合型で分泌されている。この著者らは、ゼラチナーゼの作用におけるＮＧＡＬに関する調節的役割を述べている。
【００２２】
もう一つの態様において、本発明は、リポカリン、例えばＮＧＡＬを、ＴＲＡＣの指標として検出する方法を含む。そのようなリポカリンは、単離されたリポカリンとして、またはリポカリン多量体、例えば二量体および三量体として、生体試料中で検出されうる。
【００２３】
本発明の方法によりモニターされうる組織再構築状態は、様々な種類の癌を含む。そのうえ、本酵素は、関節炎、変性状態、および閉塞性状態のようなその他の組織再構築状態の診断用に適している。本発明は、生物学的液体中の酵素複合体、例えばｈＭＷ酵素複合体についてのアッセイによりこれらの状態を診断するための、非侵襲性方法を提供する。
【００２４】
本発明の方法は、癌の診断および予測のための、尿中の酵素の検出を具体化する。本発明はまた、転移性前立腺癌の診断および予測に関する。本発明の方法による診断に適した多様な癌の中には、上皮起源の癌が含まれ、例えば上皮起源の細胞に形成される、神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、膵臓、尿生殖器官、卵巣、子宮および膣の癌、ならびに胃腸管癌の癌が含まれる。本明細書に記載される方法を用いて、中胚葉起源および内胚葉起源の癌、例えば骨または造血細胞に発生する癌もまた、診断される。
【００２５】
本明細書で用いられる「対象」という用語には、ある状態について、特に下記で定義されているような「組織再構築関連状態」について、診断もしくは予知の必要がある、またはこれに感受性の高い、生きている動物またはヒトが含まれる。対象とは、対象が癌および関節炎に対して感受性の高いようないくつかの環境下において、成長因子などの組織再構築シグナルに応答できる生物体である。一つの態様において、対象とは、ヒトならびに、イヌ、ネコ、ブタ、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ラットおよびマウスなどの非ヒト哺乳動物を含む、哺乳動物である。一つの態様において、対象とはヒトである。「対象」という用語は、組織再構築関連状態に関して完全に正常である個体、またはあらゆる点において正常である個体を除外しない。対象は、以前に外科的にまたは化学療法により治療されたことがあってもよく、およびホルモン療法により治療中であってもよく、または過去にホルモン療法により治療されたことがあってもよい。
【００２６】
本明細書で用いられる「患者」という用語は、１つまたは複数の診断を示唆する特定の症状のために臨床的状況下にあるヒト対象を含む。患者は、当技術分野の医学的開業医に公知の臨床的手順によるさらなる分類を必要としてもよい（またはさらなる疾患徴候をもたず、いくつかまたはあらゆる点において正常であるように思われる可能性がある）。自然に、または治療的養生もしくは処置の経過の間のいずれかにおける、さらなる疾患症状の発生または疾患の緩解などの疾患進行の経過の間に、患者の診断が変化する可能性がある。このように、「診断」という用語は、どの特定の患者または対象についても、より初期またはより後期の異なる診断を除外しない。「予知」という用語は、対象または患者が生体試料中、例えば尿中の１つまたは複数の酵素の存在に関連するかまたはそれによりより示されるような状態を発病する見込みの評価を含む。
【００２７】
「生体試料」という用語は、対象から得られる生体試料を含む。そのような試料の例には、尿、指の刺傷または静脈などその他の供給源から採取された血液、血清および血漿などの血液画分、糞便や糞便材料と抽出物、唾液、脳脊髄液、羊水、粘液、ならびに、頬スミア（ｓｍｅａｒ）、Ｐａｐスミア、細針吸引、胸骨穿刺などの細胞および組織材料、ならびに、標準医学的手順および開放性外科的手順の際に採取された任意のその他の生検材料を含む。
【００２８】
転移性癌（Ｄａｒｎｅｌｌ， Ｊ．（１９９０）「分子細胞生物学（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ）」、第３版、Ｗ． Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ、ＮＹ）に関連して本明細書で用いられる「侵襲性（ｉｎｖａｓｕｖｅｎｅｓｓ）」という用語は、医学的手順を記載するための「侵襲性の（ｉｎｖａｓｉｖｅ）」という用語の使用とは性質が異なり、その区別は文脈においてなされる。医学的手順についての「侵襲性の」という用語は、特定の手順が身体の完全性を中断する程度に関係する。「侵襲性」という用語は、尿または唾液の採集のような完全な非侵襲性から、中程度の侵襲性まで、例えば臨床的状況において訓練された職員を必要とする、Ｐａｐスミア、頬掻爬または血液検査；胸骨髄採集または脊髄穿刺のようなより侵襲性まで、例えば脳手術、肺手術、または前立腺癌の場合の経尿道の切除術の際に採取された生検材料により腫瘍の大きさおよび性質を検出するための開放手術のような大規模な侵襲性までに及ぶ。
【００２９】
癌または新形成は、調節解除された細胞増殖および分裂を特徴とする。内胚葉または外胚葉を起源とする組織において発生した腫瘍は癌腫（ｃａｒｃｉｎｏｍａ）  と呼ばれ、中胚葉を起源とする組織において発生したものは肉腫として知られている（Ｄａｒｎｅｌｌ， Ｊ．（１９９０）「分子細胞生物学（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ）」、第３版、Ｗ． Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ、ＮＹ）。腫瘍の起源に関する機構の最新モデルは、発癌遺伝子として知られている遺伝子における突然変異による、または第二癌抑制遺伝子の非活性化によるものである（Ｗｅｉｎｂｅｒｇ， Ｒ． Ａ．（１９８８年９月）Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ａｍｅｒ． ４４〜５１）。これまで同定された発癌遺伝子は、体細胞においてのみ発生し、従って、これらの効果を宿主動物の生殖系へ伝えることはできなかった。対照的に、癌抑制遺伝子における突然変異は、生殖系細胞において同定されうり、従って、動物の子孫へ伝えることができる。癌の例には、神経系、乳房、網膜、肺、皮膚、腎臓、肝臓、膵臓、尿生殖器官、胃腸管の癌、骨癌、ならびに白血病およびリンパ腫などの造血性起源の癌を含む。本発明の一つの態様において、癌とは膀胱癌ではない。
【００３０】
慢性である場合、疾患が膠原性構造の崩壊に特徴付けられるため、リウマチ様関節炎などの関節炎状態とは、ＴＲＡＣの例である（Ｊ． Ｏｒｔｅｎら、（１９８２）「人間の生化学（Ｈｕｍａｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）」、第１０版、Ｃ． Ｖ． Ｍｏｓｂｙ、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）。過剰のコラゲナーゼは、増殖する滑膜の細胞により生成される。潰瘍性疾患、閉塞性疾患および変性疾患などのその他のＴＲＡＣ状態は、同様に、構造的タンパク質代謝の酵素における変化を特徴とする。
【００３１】
「電気泳動」という用語は、一般的に紙、デンプンゲル、またはポリアクリルアミドなどの不活性の支持系を使用する、電場における分子の任意の分離系を指すために用いられる。ポリアクリルアミドゲルおよびドデシル硫酸ナトリウム変性界面活性剤を用いた電気泳動法は、下記の実施例に記載されている。プロトコールは、当業者に公知の等価の手順を除外することを意図したものではない。当業者に公知のその他のＳＤＳポリアクリルアミド手順を使用してもよく、例えば１０％などの単一のポリアクリルアミド濃度は、分離ゲル中での勾配の代わりとなりうる。電気泳動マトリクスについての物理的支持体は、ガラスのプレートよりむしろ、キャピラリーチューブでありうる。いくつかのＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動システムの詳細は、多くの概説論文およびバイオテクノロジーのマニュアルに記載されている（例えば、Ｍａｎｉａｔｉｓ， Ｔ．、「分子クローニング：実験マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ． Ｙ．）。ＳＤＳおよびその他の界面活性剤を用いる方法に限定されない。さらに、界面活性剤非存在下での電気泳動も使用されうる。タンパク質は、非変性条件下で、例えばポリアクリルアミドマトリクス上の尿素の存在下で（Ｍａｎｉａｔｉｓ、前出）、または電荷により、例えば等電点電気泳動の手順により、分離されうる。
【００３２】
酵素の分離のために電気泳動技術を使用する場合、電気泳動図はザイモグラムとして展開されうる。本明細書における「ザイモグラフィー」という用語は、分離系のマトリクスを酵素活性を可能にする条件に曝し、続いて検出にかけることによる、電気泳動後に酵素の検出を可能にする、化学的に不活性な分離系または支持マトリクスを利用する任意の分離系を含むことを意味する。より狭義には、ザイモグラフィーという用語は、電気泳動停止後にマトリクスを活性条件に曝すことにより、活性酵素の正確な位置および従って、移動度を可視化するシステムが得られるように、不活性のマトリクスへ関心対象の酵素に関する適切な基質を組み込むことを示す。当業者に周知の技術により、タンパク質の分子量は、ザイモグラム上の位置から導かれる移動度に基づいて計算される。そのような技術は、その移動度が一般的なタンパク質染色からまたはそれらの標準に固有のプレステイン（ｐｒｅ−ｓｔａｉｎｓ）から測定されるような、分子量標準との比較、および、ザイモグラム技術、すなわち酵素活性により可視化されている、関心対象の精製単離酵素の陽性対照との比較を含む。
【００３３】
特に、ザイモグラフィーによるプロテアーゼの検出のための基質は、電気泳動マトリクス中に含まれる。ＩＶ型コラゲナーゼについて、天然の基質はＩＶ型コラーゲンであり、ゼラチン、Ｉ型コラーゲン誘導体は、本明細書に示される実施例においてザイモグラフィーの基質として使用される。しかしながら、ＴＲＡＣ診断において関心対象のさらなるプロテアーゼの検出に適しているその他のタンパク質には、例えばフィブロネクチン；ビトロネクチン；Ｉ型からＩＩＩ型までおよびＶ型からＸＩＩ型までのコラーゲン；プロコラーゲン；エラスチン；ラミニン；プラスミン；プラスミノーゲン；エンタクチン；ニドゲン；シンデカン；テネイシン；ならびに、ヒアルロン酸、コンドロイチン−６−硫酸、コンドロイチン−４−硫酸、ヘパラン硫酸、ケラタン硫酸、およびデルマタン硫酸およびヘパリンなどの糖で置換された硫酸化プロテオグリカンが含まれる。さらに、カゼインなどの便利で安価な基質タンパク質は、関心対象のプロテアーゼの天然の標的でない可能性があるが、技術的には適しており、本発明のザイモグラフィー技術の適切な基質成分として含まれる。天然タンパク質基質の化学的に合成された模倣体もまた潜在的ザイモグラフィー基質であり、酵素的切断の際に色または蛍光の変化を生じるための色素生産能力または蛍光発生能力などの好適な性質を有するようにさえ設計されうる。
【００３４】
ザイモグラフィーは、生体試料におけるプロテアーゼ阻害剤の検出にも適応されうる。ＴＩＭＰ−１およびＴＩＭＰ−２などの様々な天然のＭＭＰ阻害剤が合成されており、かつＴＲＡＣ状況下では調節解除されることが見出されているため、本発明は、酵素阻害剤、例えばＴＩＭＰを含む酵素複合体の検出を含む。したがって、例えばそれに対する酵素阻害活性が測定されるような「レポーター酵素」を、対象および患者より得られた各生体試料と共に、試料の１つまたは複数のアリコートに対応する１つまたは複数の量で、電気泳動前にインキュベートしてもよい。この酵素は、生体試料のアリコートの１つからは省略される。試料中の阻害性の存在は、展開されたザイモグラムからのレポーター酵素バンドの消失または減少として検出される。または、反応混合物中に既知のレベルの活性酵素を含み、推定の阻害活性をもつ試験的試料のアリコートが添加される、機能的酵素活性アッセイにより、阻害剤の存在が検出されうる。
【００３５】
さらに、組織再構築酵素は、タンパク質分解活性を超える酵素活性まで達する。例えば、グリコシル、リン酸、硫酸、脂質およびヌクレオチド残基（例えば、アデニル）などの残基で置換されている酵素は、当業者によく知られている。これらの残基は次に、他の酵素、例えばグリコシダーゼ、キナーゼ、ホスファターゼ、アデニルトランスフェラーゼなどにより、付加または除去される。ＴＲＡＣの診断および予測のためのそのような活性の存在について便利な検出方法は当業者により容易に開発され、本明細書において本発明の一部を構成することが意図されている。
【００３６】
本明細書の実施例において記載されているザイモグラムは、タンパク質の一般的な染色、この場合はクーマシーブルー色素の使用により展開されている。展開は、一般的なタンパク質染色、例えばアミドブラック色素、およびＳＹＰＲＯオレンジ染色（Ｂｉｏｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ９４５３７）により可能である。染色されたマトリクスにおける消化の透明帯を超える追加的な技術、例えば放射性標識された基質による放射能領域の非存在、放射性標識された基質の移動度における変化、または、蛍光発生的もしくは色素生産性基質の使用で、それぞれ、蛍光もしくは色の展開のバンドの非存在もしくは移動度変化により、酵素活性はさらに検出されうる。
【００３７】
モレキュラーダイナミックスホスフォイメージャー（燐光体画像装置）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｙｎａｍｉｃｓ ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｍａｇｅｒ）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｙｎａｍｉｃｓ、９２８ Ｅａｓｔ Ａｒｑｕｅｓ Ａｖｅ．、サニーヴェール、ＣＡ ９４０８６）の活性化プレート上にゲルを直接置くことによるザイモグラムにより、または８ビットのビデオカードおよびマックイメージ（ＭｃＩｍａｇｅ）を備え付けたマッキントッシュコンピューターへ連結されたデータコピーＧ８プレートスキャナー（Ｄａｔａｃｏｐｙ Ｇ８ ｐｌａｔｅ ｓｃａｎｎｅｒ）（Ｘｅｒｏｘ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて定量的濃度測定を行うことができる。バックグラウンドの測定については、試料レーンと分離されたゲル領域が同様にスキャンされうり、値は、酵素活性についての読みとり値から差し引かれる。
【００３８】
特定のタンパク質の存在についての生体試料の分析のためのもう一つの電気泳動に基づく技術とは、親和性に基づく移動度変化システムである（Ｌａｎｄｅｒ， Ａ．（１９９１）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．、８８（７）： ２７６８〜２７７２）。ＭＭＰまたは関心対象のその他の種類の酵素は、例えばその酵素に本質的に不可逆的に結合し、それゆえ移動度を減少させるような基質類似体の包含により、検出されうる。親和性物質の非存在下での移動度に対する移動度の変化の結果として関心対象の酵素の検出を行うため、親和性物質は電気泳動の間存在し、かつマトリクスへ組み込まれている。タンパク質が電場において移動しないと考えられるようなｐＨ、またはｐＩと呼ばれる等電点が、任意のタンパク質種に関して存在するため、電気泳動的タンパク質分離のさらにもう一つの技術は、緩衝液のｐＨの機能としてのタンパク質の内在的電荷に基づく。尿試料などの生体試料のタンパク質は等電点電気泳動により分離されうり、その後、酵素活性についてのアッセイにより、例えば基質をもつ材料への移動により、すなわち、ザイモグラフィーにより展開されうる。電気泳動は、免疫学的検出の基盤として用いられることが多く、ここで、分離段階に続いて、紙またはナイロンなどの不活性支持体へのタンパク質の物理的または電気泳動的な移動を行い（「ブロット」として知られる）、その後、ブロットされたタンパク質パターンは、抗体による特異的一次結合の使用（ウエスタンブロット）およびその後の西洋ワサビペルオキシダーゼなどの検出酵素に結合した二次抗体による結合した抗体の展開により、検出されうる。なお、ＴＲＡＣ酵素複合体についての追加的な免疫学的検出系は、下記に詳細に記載されている。
【００３９】
本明細書で用いられる「抗体」という用語は、本発明の方法およびキットにおける成分の一つとの特異的反応性も有する抗体の断片を含むことが意図されている。抗体は、従来技術を用いて断片化されうり、断片は、上記と同じ様式での利用のために抗体全体についてスクリーニングされうる。例えば、Ｆ（ａｂ）２断片は、ペプシンで抗体を処理することにより作成されうる。その結果生じたＦ（ａｂ）２断片は、ジスルフィド架橋を還元するように処理されてＦａｂ断片を生じうる。「抗体」という用語はさらに、単鎖、二重特異性分子およびキメラ分子を含むことが意図される。「抗体」という用語は、本出願の必要性により、標的に対するモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体（Ａｂ）両方の可能な使用を含む。
【００４０】
ポリクローナル抗体は、動物、例えばウサギまたはヤギを、関心対象の抗原の精製型、または少なくとも１つの抗原性部位を含む抗原断片で免疫することにより得られうる。特定の免疫化スケジュールの使用などの動物の最適な免疫化を得るための条件、および、例えばフロイントアジュバントなどのアジュバント、または例えばキーホールリンペットヘモシアニンなどの抗原に共有結合的に付着される免疫原性置換基を使用して血清中の抗体力価の収率を高めることは、当業者によく知られている。モノクローナル抗体は、当業者に周知の手順により調製され、この手順は抗原または最小限の抗原決定基を含む抗原断片で免疫された動物、例えばマウスから、抗体産生リンパ球のクローン、すなわち、単細胞系単離物由来の細胞系を得る段階、および、不死化された高収量細胞系を産生するためにクローンを骨髄腫細胞系と融合させる段階を含む。多数のモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体の調製物が市販されており、かつ抗原の精製、動物の免疫、動物の維持および飼育、血清およびＩｇＧ画分の精製における、またはモノクローナル抗体産生細胞系の選択および融合のための、専門技術を提供する商業的サービス会社が、利用可能である。
【００４１】
抗体の代わりに使用されうる特定の高親和性結合タンパク質は、当業者に公知の方法に従って作製されうる。例えば、特定のＤＮＡ配列に結合するタンパク質を設計することができ（Ｌａｄｎｅｒ， Ｒ． Ｃ．ら、米国特許第５，０９６，８１５号）、かつ、様々な他の標的、特にタンパク質標的に結合するタンパク質（Ｌａｄｎｅｒ， Ｒ． Ｃ．ら、米国特許第５，２３３，４０９号；Ｌａｄｎｅｒ， Ｒ． Ｃ．ら、米国特許第５，４０３，４８４号）を設計することができ、本発明において、放射性核種をもつ複合体が穏やかな条件下で形成されるようにするために、キレート分子への共有結合のために使用することができる。抗体および結合タンパク質は、例えばマルチウェルプレートアッセイ法において表面上での、またはカラム精製に関しては粒子上での、本発明の組成物の固定化を必要する大規模な診断またはアッセイ法プロトコールへ組み入れられうる。
【００４２】
様々な免疫測定法を行うのに用いられる一般的技術は、当業者に知られている。さらにこれらの手順の一般的記述は、米国特許第５，０５１，３６１号において提供され、参照としておよび当業者に公知の手順として本明細書に組み入れられており、かつ、当技術分野のマニュアルにおいて記載されている（Ｉｓｈｉｋａｗａ， Ｅ．ら、（１９８８）「酵素免疫学的検定法（Ｅｎｚｙｍｅ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）」、医学書院、東京、ＮＹ； Ｈａｌｌｏｗ， Ｅ．およびＤ． Ｌａｎｅ、「抗体：実験マニュアル（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」、ＣＳＨ Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ）。いくつかの免疫測定法が与えられるかどうかの例を本明細書において考察する。
【００４３】
放射性標識されたリガンド、例えば３Ｈまたは１４Ｃまたは１２５Ｉで直接標識された抗原を利用する放射線免疫測定法（ＲＩＡ）は、抗原性物質としてＭＭＰの存在を測定する。一定量の標識化ＭＭＰ抗原は、試料由来の非標識化抗原と、限られた数の抗体結合部位について競合する。標識化抗原−抗体の結合複合体を、未結合（遊離）抗原から分離した後、結合画分、もしくは遊離画分、または両方における放射能を適当な放射線計数装置で測定する。結合した標識化抗原の濃度は、試料中に存在する非標識化抗原の濃度に逆比例する。ＭＭＰに対する抗体は、溶液の状態であってよく、遊離抗原ＭＭＰと結合抗原ＭＭＰの分離は、木炭などの薬剤、または免疫グロブリンがＭＭＰに対する抗体を含む動物種に特異的な二次抗体を用いて達成されうる。または、ＭＭＰに対する抗体が、不溶性材料の表面に付着されうり、この場合、結合ＭＭＰと遊離ＭＭＰの分離は適切な洗浄により行われる。
【００４４】
免疫放射線測定法（ＩＲＭＡ）は、抗体試薬が放射性標識されている免疫測定法である。ＩＲＭＡは、タンパク質、例えばウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ）への結合などの技術による、多価ＭＭＰ結合体の生成を必要とする。多価ＭＭＰ結合体は、分子あたり少なくとも２個のＭＭＰ残基を有しなければならず、かつＭＭＰ残基は、少なくとも２個の抗体がＭＭＰに結合することができる位十分な距離を隔てていなければならない。例えば、ＩＲＭＡにおいて、多価ＭＭＰ結合体は、プラスチック球などの固体表面に付着されうる。標識されていない「試料」ＭＭＰおよび放射性標識されたＭＭＰに対する抗体を多価ＭＭＰ結合体でコーティングされた球を含む試験管へ添加する。試料中のＭＭＰは、多価ＭＭＰ結合体と、ＭＭＰ抗体結合部位について競合する。適当なインキュベーション期間後、結合していない反応物を洗浄により除去して、固相上の放射能の量を測定する。結合した放射性抗体の量は、試料中のＭＭＰの濃度に逆比例している。
【００４５】
その他の免疫測定法技術は、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ルシフェラーゼ、ウレアーゼ、およびβ−ガラクトシダーゼなどの酵素標識を使用する。例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼへ結合されたＭＭＰは、遊離試料ＭＭＰと、マイクロタイタープレートなどの固体表面に付着されたＭＭＰに対する抗体上に存在する限られた数の抗体結合部位について競合する。ＭＭＰ抗体は、例えばＭＭＰをウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ）などの血清タンパク質と結合することにより調製される多価ＭＭＰ結合体でマイクロタイタープレートを最初にコーティングすること（コーティング抗原）により、マイクロタイタープレートへ直接的にまたは間接的に付着されうる。未結合標識化ＭＭＰから結合した標識化ＭＭＰの分離後、結合した画分における酵素活性は、西洋ワサビペルオキシダーゼ色素生産性基質の添加後一定の期間において、例えばマルチウェルマイクロタイタープレートリーダーにより、比色定量的に測定される。
【００４６】
または、マイクロタイタープレートまたはポリスチレンビーズなどの表面に付着された抗体を、生体試料のアリコートとインキュベートする。液体中に存在するＭＭＰは、抗体に、ＭＭＰ濃度およびその二者間の結合定数依存性の様式で結合すると考えられる。洗浄後、抗体／ＭＭＰ複合体を、ＭＭＰへ２つの抗体を同時結合することにおける立体障害とならないように、ＭＭＰ特異的抗体結合部位から十分遠位のＭＭＰ上の様々なエピトープに特異的な二次抗体と、インキュベートする。例えば、二次抗体は、酵素前駆体配列の部分に特異的でありうる。二次抗体は、放射性同位元素、蛍光化合物、または共有結合された酵素などの、検出に適した様式で標識されうる。未結合二次抗体を洗い流した後の結合した標識化二次抗体の量は、生体試料に存在するＭＭＰの量に比例している。
【００４７】
免疫測定法の上記の例では、放射能でおよび酵素的に標識されたトレーサーの使用を記載している。アッセイ法はまた、フルオレセインおよびその類似体、５−ジメチルアミノナフタレン−１−スルホニル誘導体、ローダミンおよびその類似体、クマリン類似体、ならびにアロフィコシアニンおよびＲ−フィコエリトリンなどのフィコビリプロテイン（ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎ）などの蛍光物質；エリトロシンおよびユーロピウムなどのリン光性物質；ルミノールおよびルシフェリンなどの発光物質；ならびに、金および有機色素などのゾルの使用を含みうる。本発明の態様の一つにおいて、生体試料は、低分子量混入物を除去するために処理される。
【００４８】
本発明の一つの態様において、生体試料は、低分子量混入物を除去するために、例えば透析により処理される。「透析」という用語は、本発明において、低分子量混入物から試料中の酵素を分離する任意の技術を含む。本実施例は、分子量カットオフ値（ＭＷＣＯ）３，５００のＳｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ膜透析管を使用するが、ＭＷＣＯレベルの異なる他の製品も機能的に等価である。他の製品は、例えば大容量のための再生セルロース繊維（ＭＷＣＯ ６，０００または９，０００）からなる中空繊維濃縮システム、試料サイズ１ ｍｌ〜５ ｍｌ間の複合型透析装置、ならびに９６ウェルプレート中の試料用に便利であり、かつＭＷＣＯ ５，０００、８，０００および１０，０００の複合型微小透析装置を含む。これらの装置は、ＰＧＣサイエンティフィック（ＰＧＣ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、ゲーサーズバーグ（Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ）、ＭＤ、２０８９８から入手可能である。複合型透析ユニットの有用性を、および特に、これが関連研究室および診療所用のキットに適していることを、当業者は理解すると考えられる。その他等価の技術には、低分子量物質の除去に適した樹脂または樹脂混合物を有するカラムを介した通過が含まれる。ＢｉｏＧｅｌ（ＢｉｏＲａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）およびＳｅｐｈａｒｏｓｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）ならびにその他の樹脂は、当業者に公知である。透析技術、または同様の機能をもつ等価技術は、生体試料から低分子量混入物を除去することを意図している。本発明の必須の成分ではないが、そのような混入物の除去段階は、生体試料中の疾患関連酵素の検出を容易にする。
【００４９】
本発明はさらに、以下の実施例により説明されるが、さらなる限定として解釈されるべきではない。本出願全体で引用された、すべての参照、係属中の特許出願および公開された特許の内容は、本明細書に参照として明白に組み入れられる。
【００５０】
実施例
以下の材料および方法は、後述の実施例を通じて用いられたものである。
【００５１】
材料および方法
尿試料の採集および調製−
尿試料採集は、その内容が参照として完全に本明細書に組み入れられている、モーゼズ（Ｍｏｓｅｓ）， Ｍ． Ａ．ら、（１９９８）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． ５８： １３９５〜９に記載されているように行われた。試料は、採集後直ちに凍結され、アッセイまで−２０℃で凍結保存された。分析の前に、血液または白血球を含む検体は、Ｍｕｌｔｉｓｔｉｘ ９ Ｕｒｉｎａｌｙｓｉｓ Ｓｔｒｉｐｓ（Ｂａｙｅｒ、Ｅｌｋｈａｒｔ、ＩＮ）を使用して血液および白血球の存在について試験することにより除外された。尿試料のクレアチン濃度は、市販のキット（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を用い、製造会社の使用説明書に従って測定された。
【００５２】
基質ゲル電気泳動−
基質ゲル電気泳動は、以前に記載された米国特許第０９／４６９，６３７号に基づき改変を加えて行われた。最初の尿試料（５０ μｌ）を非還元試料緩衝液［４％ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、０．１５ Ｍ トリス ｐＨ ６．８、２０％ｖ／ｖ グリセロール、および０．５％ｖ／ｖ ブロモフェノールブルー］と混合し、０．１％ゼラチンを含む１０％ポリアクリルアミドゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）上で分離した。電気泳動後、ゲルを２．５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００で２回洗浄した（各洗浄あたり１５分間）。ゲルを５ ｍＭ ＣａＣｌ２、１ μＭ ＺｎＣｌ２、１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００および０．０２％ＮａＮ３を含む５０ ｍＭ トリス−ＨＣｌ（ｐＨ ７．６）中、３７℃で２４時間インキュベートすることにより、基質消化を行った。ゲルを０．１％クーマシーブリリアントブルーＲ２５０（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）で染色し、ゼラチン分解活性の位置を均一な青色染色のバックグラウンド上に透明なバンドとして検出した。
【００５３】
タンパク質電気泳動およびウエスタンブロット分析−
分子量カットオフ値（ＭＷＣＯ）５０ ｋＤａのＵｌｔｒａＦｒｅｅ−４遠心フィルター装置（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｅｄｆｏｒｄ、ＭＡ）を用いて、尿試料を濃縮した。濃縮された尿試料のタンパク質濃度は、ＭｉｃｒｏＢＣＡ法（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ ６１１０５）を用いて測定された。等量（２０ μｇ）のタンパク質を４％〜１５％勾配ゲルにロードし、非還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離した。分離されたタンパク質をニトロセルロース膜（ＴｒａｎｓＢｌｏｔ、Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）へ電気泳動的に移動させた。ＴＢＳ−Ｔ（１０ ｍＭ トリス、ｐＨ ７．２、５０ ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０）中で１時間、室温で５％低脂肪粉乳を用いて膜をブロックし、続いて、４℃で１８時間、一次抗体とインキュベートした。ブロットをＴＢＳ−Ｔで８回洗浄し（洗浄あたり５分間）、３％ＢＳＡを含むＴＢＳ−Ｔで１：５０００希釈された西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合型二次抗体（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、ＣＡ）と、室温で１時間インキュベートした。標識されたタンパク質は、増幅された化学発光により可視化された（Ａｍｅｒｓｈａｍ、Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）。ヒトＮＧＡＬに対する精製ポリクローナル抗体は、１：１００希釈で使用された（Ｋｊｅｌｄｓｅｎ， Ｌ．ら、（１９９３））。精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体は、陽性対照として使用された（ＣａｌＢｉｏｃｈｅｍ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）。
【００５４】
免疫沈降−
１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性を含む最初の尿試料を、等量のＲＩＰＡ緩衝液（１５０ ｍＭ ＮａＣｌ、１．０％ＮＰ−４０、０．５％デオキシコール酸ナトリウム、０．１％ＳＤＳ、５０ ｍＭ トリス ｐＨ ８．０、０．０２％アジ化ナトリウム）と混合した。希釈された尿試料５０ μｌをウサギ抗ヒトＮＧＡＬ抗体または対照抗体の増加量と混合した。氷上で３０分間インキュベートした後、試料を５ μｌ ＲＩＰＡ緩衝ザイソルビン（Ｚｙｓｏｒｂｉｎ）（ＺｙｏＭｅｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｓｏｕｔｈ Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、ＣＡ）と混合した。氷上で更に３０分間インキュベーションした後、抗体−抗原複合体を、１０，０００ ｇで５分間の遠心分離により除去した。上清を基質ゲル電気泳動に供して、残存ＭＭＰ活性を検出した。
【００５５】
ＭＭＰ−ＮＧＡＬ複合体のインビトロ再構成−
組換えヒトｐｒｏＭＭＰ−９（Ｏｎｃｏｇｅｎｅ、Ｃａｍｂｅｉｄｇｅ、ＭＡ）をゼラチナーゼ緩衝液［５０ ｍＭ 酢酸ナトリウム（ｐＨ ＝ ５．５）または５ ｍＭ ＣａＣｌ２、１ μＭ ＺｎＣｌ２を含む５０ ｍＭ トリス−ＨＣｌ（ｐＨ ＝ ７．０、７．６、または８．０）］で希釈し、最終濃度を１０ μＭにした。組換えヒトＮＧＡＬを前述のように精製し、ゼラチナーゼ緩衝液で７０ μＭまで希釈した。ｐｒｏＭＭＰ−９を１：２０のモル比でＮＧＡＬと混合し、３７℃で１時間インキュベートした。ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の形成は、基質ゲル電気泳動を用いて分析された。ｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬをまた、ＭＭＰ活性をもたない正常な対照尿によって別々に希釈した。尿中でのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体形成の可能性は、ｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを、２：１、１：５、１：１０、および１：２０のモル比で混合することにより調査された。ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体は、基質ゲル電気泳動を用いて検出された。
【００５６】
実施例１
尿試料中のＭＭＰ活性の基質ゲル電気泳動
尿試料に含まれるＭＭＰ活性は、基質ゲル電気泳動を用いてアッセイされた。新たに解凍された尿試料５０ μｌを分析のために使用した。これらの尿試料において少なくとも４つの主なＭＭＰ活性が容易に検出され、見かけの分子量は２００，０００、１２５，０００、９２，０００、および７２，０００であった（図１Ａ）。９２ ｋＤａおよび７２ ｋＤａのＭＭＰ活性は、それぞれＭＭＰ−９およびＭＭＰ−２であることが以前に判定されている。２００ ｋＤａ ＭＭＰ活性は、ＭＭＰ−９二量体の推定分子量と一致している。１２５ ｋＤａ ＭＭＰの同一性は不明である。好中球由来の精製されたヒトＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体と共に分析された場合、１２５ ｋＤａ尿ＭＭＰ活性は、ヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬのそれと同じ位置に移動した（図２Ａ）。この１２５ ｋＤａ尿ＭＭＰは、ＭＭＰ−９およびＮＧＡＬの活性複合体である。ＭＭＰであるというこれらのゼラチン分解活性の同一性は、最終濃度１０ ｍＭで１，１０−フェナントロリンを使用する阻害研究により確認された（データは未表示）。
【００５７】
実施例２
抗ＮＧＡＬ抗体による尿試料のウエスタンブロット分析
ＭＭＰ−９およびＮＧＡＬの複合体としての１２５ ｋＤａの尿ＭＭＰの同一性をさらに示すために、濃縮尿試料を、ヒトＮＧＡＬに対する精製抗体を用いるウエスタンブロット分析に供した（Ｋｊｅｌｄｓｅｎ， Ｌ．（１９９３））。非還元条件下で、１２５ ｋＤａのタンパク質バンドが、１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性を含む尿試料中で検出された（図１Ｂ）。癌患者由来の尿試料のスクリーニングにより、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬタンパク質複合体の検出と１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性の存在との間の相関関係が確立された（図１Ｂ）。精製抗ＮＧＡＬ抗体を用いて、１２５ ｋＤａタンパク質バンドが１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性を含む尿試料中に一貫して検出された。抗体はまた、分析されたすべての尿試料中で、ＮＧＡＬ単量体型（２５ ｋＤａ）、二量体型（５０ ｋＤａ）、および三量体型（７５ ｋＤａ）の存在を検出した。ＮＧＡＬ抗体の特異性は、精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体を用いて確認された。非還元条件下で、抗体は、好中球から精製されたＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体と同様に、濃縮された尿試料中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体を認識した（図２Ｂ）。ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体ならびにＮＧＡＬ単量体、二量体および三量体の複合体に加えて、見かけの分子量１５０ ｋＤａのいくつかの微量タンパク質バンドもまた、濃縮された尿試料中に検出された。それらの同一性は現在不明であるが、抗ＮＧＡＬ抗体と非特異的に交差反応したタンパク質である可能性が最も高い。
【００５８】
実施例３
免疫沈降−ザイモグラフィー
尿中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性の同一性をさらに実証するために、抗ＮＧＡＬ抗体を用いて、尿中にＮＧＡＬとの複合体の形で存在する任意のＭＭＰ活性を免疫沈降させた。図３に示されるように、抗ＮＧＡＬ抗体は、濃度依存的様式で、１２５ ｋＤａ尿ＭＭＰ活性を特異的に免疫沈降させた。１２５ ｋＤａ尿ＭＭＰ活性の増加量は、抗ＮＧＡＬ抗体の増加量を用いた処理により除去された。抗ＮＧＡＬ抗体１．０ μｌで処理された場合、１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性は完全に除去された。抗ＮＧＡＬ抗体は、他の任意のＭＭＰ活性、例えば２００ ｋＤａ ＭＭＰ−９二量体、９２ ｋＤａ ＭＭＰ−９、または７２ ｋＤａ ＭＭＰ−２に効果がなかった。免疫沈降反応の特異性はまた、最高濃度においてでさえいずれのＭＭＰ活性も免疫沈降させない対照抗体を用いて、確認された。対照抗体１．０ μｌで処理された試料中のＭＭＰ−２活性における増加は、血清に含まれる内因性ＭＭＰ−２活性から生じた。これらのデータをひとまとめにして考えると、癌患者の尿試料中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性はＭＭＰ−９とＮＧＡＬの複合体であるという本発明者らの発見が裏付けられる。
【００５９】
実施例４
インビトロでのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の再構成
ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の形成はまず、陽イオン性のイオンを含むゼラチナーゼ緩衝液を用いて調べられた。組換えヒトｐｒｏＭＭＰ−９およびヒトＮＧＡＬを最初、ｐＨ値が異なる（５．５、７．０、７．６および８．０）ゼラチナーゼ緩衝液に希釈した。希釈されたｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを、続いて１：１０のモル比で混合し、最終濃度をそれぞれ、２．６ μＭおよび２６ μＭ にした。３７℃での１時間のインキュベーション後、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の形成を基質ゲル電気泳動を用いてモニターした。ｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを混合することにより、分子量約１１５ ｋＤａの優勢なＭＭＰ活性が生じた（図４Ａ）。１１５ ｋＤａ ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の形成は、５．５から８．０の範囲内のｐＨ値、つまり正常な尿のｐＨ範囲をもつ緩衝液中で起きた。しかしながら、この優勢なＭＭＰ活性のサイズは、精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬのそれと同じではない。ｐＨ ７．０、７．６および８．０の緩衝液において観察される、１２５ ｋＤａの微量なＭＭＰ活性がある。尿中でのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体形成の可能性は、正常な対照尿中でｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを希釈することにより直接試験された。希釈されたｐｒｏＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを異なるモル比（ｐｒｏＭＭＰ−９／ＮＧＬＡ ＝ ２：１、１：５、１：１０および１：２０）で混合し、３７℃で１時間インキュベートした。１１５ ｋＤａ ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の形成は、すべての混合比において容易に検出された（図４Ｂ）。希釈液として使用された対照尿において、ＭＭＰ活性は検出されなかった。
【００６０】
実施例５
インビトロでのＮＧＡＬによるＭＭＰ−９分解の調節
インビトロにおいてＮＧＡＬがＭＭＰ−９分解に与える影響は、インキュベーション前に、ＭＭＰ−９（０．１ μ）およびＮＧＡＬ（１／０ μ）を混合することにより試験された。ＭＭＰ−９分解は、ＮＧＡＬの存在下で阻害され、その結果として単独でインキュベートされたＭＭＰ−９と比較した各時点での酵素残存量の増加により証明されるように、酵素的分解速度の減少がもたらされた。免疫的に枯渇したＮＧＡＬは、明らかなＭＭＰ−９の保護を示さなかった。ＮＧＡＬの増加量の存在下で、ＭＭＰ−９の分解が減少し、残存するＭＭＰ−９活性の増加がもたらされた。ＮＧＡＬは用量依存的様式でＭＭＰ−９を分解から保護できると考えられ、その結果として、ＭＭＰ−９活性の保存がもたらされた。これらのデータは、ＭＭＰ−９活性の調節におけるＮＧＡＬについての潜在的な調節的役割を、例えばＮＧＡＬがＭＭＰ−９との相互作用により腫瘍進行に関与しうることを示唆している。
【００６１】
実施例６
細胞培養におけるＮＧＡＬによるＭＭＰ−９分解の調節
ＭＭＰ−９分解へのＮＧＡＬの保護的効果は、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１ヒト乳癌細胞を用いた細胞培養において試験された。ＮＧＡＬ（Ｎ−２およびＮ−５）を過剰発現する細胞において、ＭＭＰ−９活性が検出された。したがって、ＮＧＡＬ発現の増大が、ＭＭＰ−９活性における増加をもたらすと考えられた。定常状態のＭＭＰ−９ ｍＲＮＡのレベルは、ＲＴ−ＰＣＲ分析を用いて測定されたが、明らかな違いは検出されなかった。内因性ＭＭＰ−９阻害剤、ＴＩＭＰ−１およびハウスキーピング遺伝子、ＧＡＰＧＨの発現レベルを測定したが、ＮＧＡＬの過剰発現は、ＴＩＭＰ−１またはＧＡＰＤＨのｍＲＮＡレベルに明らかな影響を及ぼさなかった。ヒト乳癌細胞におけるＮＧＡＬの過剰発現は、ＭＭＰ−９遺伝子転写における変化に依存しない、ＭＭＰ−９活性の増加をもたらした。
【００６２】
考察
癌患者の尿中のｈＭＷ酵素複合体、例えばＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを含む酵素複合体の同定は、ＴＲＡＣを予測するものであり、以下の知見により裏付けられる：（ａ）尿中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性は、ヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬが移動するのと同じ位置に移動する；（ｂ）抗ＮＧＡＬ抗体は、１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性を含む濃縮尿試料のほとんどにおいて１２５ ｋＤａタンパク質バンドをの検出に成功した；（ｃ）同一の抗体が、他の任意のＭＭＰ活性に作用することなく、濃度依存的様式で尿中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性を特異的に免疫沈降させることができた。そのような証拠は、参照として本明細書に完全に組み入れられている米国特許第０９／４６９，６３７号に記載された知見、ＭＭＰ−９およびＭＭＰ−２と同様、ｈＭＷ ＭＭＰの検出が、転移性または器官限局性の癌それぞれの独立した予測因子として役に立つということと一致する。
【００６３】
ＮＧＡＬは、最初、ヒト好中球ゼラチナーゼと共に同時精製される２５ ｋＤａのタンパク質として同定された（Ｋｊｅｌｄｓｅｎ， Ｌ．ら、（１９９３）Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ． ２６８： １０４２５〜３２）。ＮＧＡＬとＭＭＰ−９の結合は、酢酸ミリスチン酸ホルボール（ＰＭＡ）で刺激されたヒト好中球の特定の顆粒において検出される１３５ ｋＤａのゼラチナーゼ活性をもたらす（Ｋｊｅｌｄｓｅｎ， Ｌ．ら（１９９３））。ＮＧＡＬおよびＭＭＰ−９は、特定の顆粒に保存されているが、一方で、ＭＭＰ−９はまた、ゼラチナーゼ顆粒内で独立して存在している（Ｍｏｒｅｌ， Ｆ．ら、（１９９４）Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ． １２０１： ３７３〜３８０；Ｋｊｅｌｄｓｅｎ， Ｌ．ら、（１９９４）Ｂｌｏｏｄ． ８３： ７９９〜８０７；およびＢｏｒｒｅｇａａｒｄ， Ｎ．およびＣｏｗｌａｎｄ， Ｊ． Ｂ．（１９９７）Ｂｌｏｏｄ． ８９： ３５０３〜２１）。しかしながら、本発明者らは白血球を含む尿試料を特別に除外したことから、癌患者の尿中で検出されるＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体は白血球由来ではない。
【００６４】
興味深いことに、ヒトＮＧＡＬは、両方とも発癌遺伝子媒介性細胞形質転換において過剰発現された、マウス２４ｐ３およびラットｎｅｕ／ＨＥＲ２／ｃ−ｅｒｂＢ−２関連リポカリン（ＮＲＬ）に対する配列類似性を含有する（Ｃｏｗｌａｎｄ， Ｊ． Ｂ．およびＢｏｒｒｅｇａａｒｄ， Ｎ．（１９９７）Ｇｅｎｏｍｉｃｓ． ４５： １７〜２３；Ｈｒａｂａ−Ｒｅｎｅｖｅｙ， Ｓ．ら、（１９８９）Ｏｎｃｏｇｅｎｅ． ４： ６０１〜８；Ｓｔｏｅｓｚ， Ｓ． Ｐ．およびＧｏｕｌｄ， Ｍ． Ｎ．（１９９５）Ｏｎｃｏｇｅｎｅ． １１： ２２３３〜４１）。正常な条件下において、ヒトＮＧＡＬの発現は、乳房、肺、気管および骨髄に限定されている（Ｃｏｗｌａｎｄ， Ｊ． Ｂ．およびＢｏｒｒｅｇａａｒｄ， Ｎ．（１９９７）Ｇｅｎｏｍｉｃｓ． ４５： １７〜２３；Ｓｔｏｅｓｚ， Ｓ． Ｐ．ら、（１９９８）Ｉｎｔ． Ｊ Ｃａｎｃｅｒ． ７９： ５６５〜７２）。しかしながら、ＮＧＡＬ発現レベルの上昇が、ヒト乳房腫瘍、ならびに、肺、結腸および膵臓の腺癌において観察されている（Ｓｔｏｅｓｚ（１９９８）；Ｆｒｉｅｄｌ， Ａ．ら、（１９９９）Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｊ． ３１： ４３３〜４１）。ＮＧＡＬ生成の増加は癌疾患状態と密接に関連しうり、これはその後、尿中のＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体レベルの上昇に寄与する。この複合体は、基質ゲル電気泳動、および、抗体に基づくアッセイ法で検出されうる。米国特許第０９／４６９，６３７号に記載されるように、尿中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ活性の存在は、癌転移の独立した多変量の予測因子としての役割を果たしうり、この活性とＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の同一性により、様々な癌の疾患状態を評価するための非侵襲性予知の手段の発達が促進されるものと思われる。
【００６５】
癌患者の尿中の１２５ ｋＤａ ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ活性の起源は不明のままである。糸球体濾過の限界がたった４５ ｋＤａであることを考慮すれば、この大きなタンパク質複合体が血清から尿へと直接的に濾過される可能性はない。各成分が別々に尿中へ濾過された後、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体が形成されることの可能性は、インビトロでの再構成アッセイ法を用いて調べられた。その結果から、ｐＨ値の異なるゼラチナーゼ緩衝液中で、および、正常な尿中で、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体形成の実行可能性が実証された。したがって、ＭＭＰ−９およびＮＧＡＬは、尿へと別々に実行され、そこでそれらが１２５ ｋＤａ ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体を形成する可能性がある。
【００６６】
尿中のＭＭＰ−９とＮＧＡＬの複合体の存在は、最近の独立した研究により裏付けられた（Ｍｏｎｉｅｒ， Ｆ．、Ｃｌｉｎ Ｃｈｉｍ Ａｃｔａ． ２９９： １１〜２３、２０００）。還元条件下で、ＭＭＰ−９およびＮＧＡＬは、１１５ ｋＤａゼラチナーゼ活性を含む連続溶離電気泳動画分において、別々に検出された。同じ画分中のＭＭＰ−９およびＮＧＡＬの検出により、観察された１１５ ｋＤａゼラチナーゼ活性がＭＭＰ−９とＮＧＡＬの複合体であることが示される。
【００６７】
また最近の研究より、ＮＧＡＬがＭＭＰ−９に対して保護的効果を発揮すると考えられること、およびインビトロおよび細胞の両方においてＭＭＰ−９が分解されるのを妨げることが確認された。実施例５および実施例６により、ＭＭＰ−９−ＮＧＡＬ複合体が腫瘍進行において積極的な役割を果たす可能性があることが示唆される。
【００６８】
等価物
当業者は、本明細書に記載された本発明の特定の態様に対する多数の等価物を認識するか、または日常的な実験のみを用いて確かめることができると考えられる。そのような等価物は、添付の特許請求の範囲に包含されることが意図される。
【図面の簡単な説明】
【図１】尿試料の基質ゲル電気泳動およびＮＧＡＬウエスタンブロット分析を示す。Ａ． 尿試料中のＭＭＰの基質ゲル電気泳動：未処理の尿試料５０ μｌをＭＭＰ活性について分析した。４つの主なゼラチナーゼ活性を、約２００，０００、１２５，０００、９２，０００、および７２，０００の見かけの分子量で検出した。それらの同一性を右の矢印でマークした。分子量マーカーは、大きさ１５０ ｋＤａ、１００ ｋＤａ、７５ ｋＤａ、および５０ ｋＤａ（左の矢印）のパーフェクトプロテインマーカーズ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｍａｒｋｅｒｓ）（Ｎｏｖａｇｅｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）である。Ｂ． 濃縮尿試料の２０ μｇを非還元条件下で４％〜１５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で分離した。ヒトＮＧＡＬに対するポリクローナル抗体を用いてウエスタンブロット分析を行った。分子量マーカーは、大きさ１２６ ｋＤａ、９０ ｋＤａ、４４ ｋＤａ、３４ ｋＤａ、および１７ ｋＤａ（左の矢印）のカレイドスコーププレステインドスタンダード（Ｋａｌｅｉｄｏｓｃｏｐｅ Ｐｒｅｓｔａｉｎｅｄ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ）（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）である。
【図２】尿試料および精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体のウエスタンブロットおよび基質ゲル電気泳動を示す。Ａ． ＮＧＡＬウエスタンブロット分析：１２５ ｋＤａのＭＭＰ活性を含む濃縮尿試料を、精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬと共に、非還元条件下で４％〜１５％のＳＤＳ−ゲル電気泳動により分離し、その後、ヒトＮＧＡＬに対するポリクローナル抗体を用いるウエスタンブロット分析に供した。１２５ ｋＤａのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体をマークしている（右の矢印）。Ｂ． 基質ゲル電気泳動：同じ尿試料および精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体を基質ゲル電気泳動で分析した。ＭＭＰ−９二量体（２００ ｋＤａ）、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ（１２５ ｋＤａ）、ＭＭＰ−９（９２ ｋＤａ）、およびＭＭＰ−２（７２ ｋＤａ）の位置は、右の矢印で示されている。分子量マーカーは、大きさ１５０ ｋＤａ、１００ ｋＤａ、７５ ｋＤａ、および５０ ｋＤａ（左の矢印）のパーフェクトプロテインマーカーズ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｍａｒｋｅｒｓ）（Ｎｏｖａｇｅｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）である。
【図３】抗ＮＧＡＬ抗体を用いた１２５ ｋＤａのＭＭＰ活性の免疫沈降を示す。１２５ ｋＤａのＭＭＰ活性を含む尿試料（ＲＩＰＡにより１：１ ｖ／ｖ希釈）５０ μｌを１．０ μｌ、０．１ μｌ、または０．０１ μｌの抗ＮＧＡＬ抗体または対照抗体混合した。氷上で３０分間インキュベートした後、抗体−抗原複合体をザイソルビン（Ｚｙｓｏｒｂｉｎ）を用いて除去した。残存ＭＭＰ活性を検出するために上清を基質ゲル電気泳動に供した。対照抗体１．０ μｌで処理された試料中で観察された、増大したＭＭＰ−２活性の増加は、血清由来の内因性ＭＭＰ−２活性であった。
【図４】インビトロでのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体の再構成を示す。Ａ． 組換えヒトＭＭＰ−９およびＮＧＡＬをｐＨ値の異なるゼラチナーゼ緩衝液に希釈し、続いて、１：１０（ｐｒｏＭＭＰ−９対ＮＧＡＬ）のモル比で混合した。３７℃で１時間、インビトロでの再構成を行った。１０ μＭ  ｐｒｏＭＭＰ−９を各レーンにロードした。精製されたヒト好中球ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬを、対照として含めた。Ｂ． 組換えヒトＭＭＰ−９およびＮＧＡＬを、ＭＭＰ活性を含まない正常な尿に希釈し、続いて、異なるモル比（ｐｒｏＭＭＰ−９対ＮＧＡＬ ＝ ２：１、１：５、１：１０、１：２０）で混合した。３７℃で１時間インキュベーションを行った後、ＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ複合体形成を、基質ゲル電気泳動を用いて分析した。１２５ ｋＤａおよび１１５ ｋＤａのＭＭＰ−９／ＮＧＡＬ活性の位置は、それぞれ、右の矢印および矢じりで示されている。分子量マーカーは１５０ ｋＤａ、１００ ｋＤａ、７５ ｋＤａ、および５０ ｋＤａ（左の矢印）パーフェクトプロテインマーカーズ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｍａｒｋｅｒｓ）（Ｎｏｖａｇｅｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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