(57)【要約】本発明は、式：Ｐｘ−Ｓｘ−Ｂｎ−（ＺＲ）−Ｈｉｒ（ＡｓｍＲ）−タンパク質（Ｙ）−Ｔ（式中、Ｐｘは重要なタンパク質の至適収率が達成可能になるような方法において選択される任意のプロモーターＤＮＡ配列であり；Ｓｘは至適収率を可能にするシグナル配列またはリーダー配列をコードする任意のＤＮＡであり；Ｂｎは１〜１５のアミノ酸コドンまたは化学結合であり；ＺはＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択されるアミノ酸のコドンであり；ＲはＡｒｇコドンまたは化学結合であり；Ａｓｍは化学結合またはｍアミノ酸コドンで、ｍ＝１〜１０であり；Ｈｉｒはヒルジンまたは天然のヒルジンと少なくとも４０％のホモロジーを有するヒルジン誘導体をコードするＤＮＡ配列であり；タンパクＹは酵母中で産生され得る、そして、酵母によって分泌され得る任意のタンパク質をコードするＤＮＡ配列であり；Ｔは発現に有利な非翻訳ＤＮＡ配列である）の発現カセットに関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
式：
Ｐｘ−Ｓｘ−Ｂｎ−（ＺＲ）−Ｈｉｒ（ＡｓｍＲ）−タンパク質（Ｙ）−Ｔ
（式中、
Ｐｘは重要なタンパク質の至適収率が達成可能になるような方法において選択される任意のプロモーターＤＮＡ配列であり；
Ｓｘは至適収率を可能にするシグナル配列またはリーダー配列をコードする任意のＤＮＡであり；
Ｂｎは１〜１５のアミノ酸コドンまたは化学結合であり；
ＺはＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択されるアミノ酸のコドンであり；
ＲはＡｒｇコドンまたは化学結合であり；
Ａｓｍは化学結合またはｍアミノ酸コドンで、ｍ＝１〜１０であり；
Ｈｉｒはヒルジンまたは天然のヒルジンと少なくとも４０％のホモロジーを有するヒルジン誘導体をコードするＤＮＡ配列であり；
タンパク質Ｙは酵母中で産生され得る、そして酵母によって分泌され得る任意のタンパク質をコードするＤＮＡ配列であり；
Ｔは発現に有利な非翻訳ＤＮＡ配列である）のＤＮＡ分子。
【請求項２】
タンパク質（Ｙ）はミニ−プロインスリンまたはその誘導体である請求項１記載のＤＮＡ分子。
【請求項３】
タンパク質（Ｙ）は医薬的に重要なタンパク質および／またはインターロイキン、リンホカインもしくはインターフェロンである請求項１記載のＤＮＡ分子。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれかに記載の任意のＤＮＡ分子によってコードされる融合タンパク質。
【請求項５】
請求項１〜３のいずれかに記載のＤＮＡ分子からなる多重コピーベクター。
【請求項６】
請求項１〜３のいずれかに記載のＤＮＡ分子からなるプラスミド。
【請求項７】
その染色体の部分として、ミニ−染色体の部分として、または染色体外において、請求項１〜３のいずれかに記載のＤＮＡ分子、請求項５記載の多重コピーベクターおよび／または請求項６記載のプラスミドを包含する宿主細胞。
【請求項８】
宿主細胞は酵母である請求項７記載の宿主細胞。
【請求項９】
Ｓ． ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ， Ｋ． ｌａｃｔｉｓ， Ｈ． ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａおよびＰ． ｐａｓｔｏｒｉｓからなる群より選択される請求項８記載の宿主細胞。
【請求項１０】
（ａ）請求項１〜３のいずれかに記載のＤＮＡ分子、請求項５記載の多重コピーベクター、または請求項６記載のプラスミドを請求項７〜９のいずれかに記載の宿主細胞内で発現させ、（ｂ）発現した融合タンパク質を細胞培養液の上清から単離する請求項４記載の融合タンパク質を培養により製造する方法。
【請求項１１】
培養の完了後、不要なタンパク質を沈殿させるためにｐＨを２．５〜３．５に調整し、発現した融合タンパク質を沈殿の上清から単離する請求項１０記載の方法。
【請求項１２】
培養の上清を宿主細胞から分離したのち、宿主細胞を新鮮な培地中で反復培養し、培養時に得られた各上清から、放出された融合タンパク質を単離する請求項１１記載の方法。
【請求項１３】
沈殿後、上清中に発現したタンパク質を濃縮する工程は、マイクロろ過、疎水性相互作用クロマトグラフィーおよびイオン交換クロマトグラフィーからなる群より選択される請求項１０〜１２のいずれかに記載の方法。
【請求項１４】
（ａ）請求項１０〜１３の記載に従って融合タンパク質を発現させ、単離し；
（ｂ）融合タンパク質をトリプシンおよびカルボキシペプチダーゼＢによって処理し；そして
（ｃ）工程（ｂ）の反応混合物からインスリンを単離する、
インスリンの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の背景】
組換えタンパク質に基づく医薬を製造する至適方法の開発は以下の観点から正当に評価されなければならない課題である。すなわち、第一に、方法は可能な限り費用効果的なものであるべきであり、第二に生成物は最高の純度のものであるべきである。この関連では発現システムの選択が特定の製造方法のコースを決定し、タンパク質化学における新技術および広範囲の生物化学的可能性の開発、並びに既知の技術の新しい組み合わせが常に、現存の方法に改良の可能性を提供することは当業者には自明である。この種の関連タンパク質の酵母における発現は、本技術分野で広く用いられている。
【０００２】
インスリン、ＧＭ−ＣＳＦ（Ｌｅｕｋｉｎｅ（Ｒ））およびヒルジン（Ｒｅｆｌｕｄａｎ（Ｒ））のようなタンパク質の製造は、特定のタンパク質またはその前駆体の酵母における合成に基づく遺伝子工学方法の開発が成功した例である。一般的に、酵母は、Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ（Ｗｅｙｄｅｍａｎｎら， Ａｐｐｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ４４： ３７７−３８５， １９９５）またはＰｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ（Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄら， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ． Ｐｕｒｉｆ． ４： ４７６−８２， １９９６）を用いた場合、グラム規模の好収率で、とくにヒルジンを直接的に合成できる。
【０００３】
本発明者らは今回、驚くべきことに、ヒルジンまたはそのＮ−末端におけるヒルジン誘導体を含む融合タンパク質が、ヒルジンそれ自体の場合と同様の好収率で酵母から輸送できることを見出したのである。収率はモルベースである。これは、１Ｌあたりネイティブなヒルジン１００ｍｇの収率を産生する宿主／ベクター系が、１Ｌあたりで約１８０ｍｇの融合タンパク質（ヒルジンおよび、たとえばＥＰ−Ａ ０ ３４７ ７８１に記載されているようなミニ・プロインスリンから成る）を産生できることを意味する。驚くべきことにヒルジンは生物学的に活性で、ミニ−プロインスリンは正しくフォールディングされた三次元構造の形態で存在する。この２つのタンパク質が、他の位置では融合タンパク質を効果的には切断しないエンドプロテアーゼによって特異的に認識されるアミノ酸のリンカーを介して融合されていると、当該タンパク質は直接切断され、活性型になることができる。インスリンの製造の場合には、ヒルジンとミニ−プロインスリンの間のリンカーは好ましくは、カルボキシ末端にアルギニンを含有する。同時プロセッシングではトリプシン変換により融合部分を切断し、プロインスリンをモノ−Ａｒｇ−インスリンに変換することが可能である。したがって、本発明は、式
Ｐｘ−Ｓｘ−Ｂｎ−（ＺＲ）−Ｈｉｒ（ＡｓｍＲ）−タンパク質（Ｙ）−Ｔ
のＤＮＡ分子（別名：発現カセット）に関し、該発現カセットはヒルジンまたは、配列ＡｓｍＲを介してタンパク質Ｙとの融合タンパク質を形成するヒルジン誘導体をコードしており、
【０００４】
式中、
Ｐｘは所定のタンパク質の至適収率が達成可能になるような方法において選択される任意のプロモーターＤＮＡ配列であり；
Ｓｘは至適収率を可能にするシグナル配列またはリーダー配列をコードする任意のＤＮＡであり；
Ｂｎは１〜１５のアミノ酸コドンまたは化学結合であり；
ＺはＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択されるアミノ酸のコドンであり；
ＲはＡｒｇコドンであり；
Ａｓｍは化学結合またはｍアミノ酸コドンで、ｍ＝１〜１０であり；
Ｈｉｒはヒルジンまたは天然のヒルジンと少なくとも４０％のホモロジーを有するヒルジン誘導体をコードするＤＮＡ配列であり；
タンパク質Ｙは酵母中で産生され得る、そして酵母により分泌され得る任意のタンパク質をコードするＤＮＡ配列であり；
Ｔは発現に有利な非翻訳ＤＮＡ配列である。
【０００５】
好ましいタンパク質Ｙはミニ−プロインスリン誘導体、インターロイキン、リンホカイン、またはインターフェロンのようなポリペプチドである。発現カセットは好ましくは酵母に導入される。上記発現カセットは、特定の酵母ゲノムに安定に統合された１または２以上のコピーを有するか、または多重コピーベクター上もしくはミニ染色体エレメント類上、染色体外に存在してもよい。
【０００６】
本発明の他の実施態様は、上述の任意のＤＮＡ分子によってコードされる融合タンパク質である。
【０００７】
本発明のさらに他の実施態様は上述のＤＮＡ分子からなる多重コピーベクターおよびプラスミドである。
【０００８】
本発明の付加的な実施態様は、その染色体の一部として、ミニ染色体の一部として、または染色体外に、上述のＤＮＡ分子、または上述の多重コピーベクターもしくは上述のプラスミドを有する宿主細胞であり、この場合、上記宿主細胞は好ましくは酵母であり、とくにＳ． ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ， Ｋ． ｌａｃｔｉｓ， Ｈ． ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａおよびＰ． ｐａｓｔｏｒｉｓからなる群より選択される。
【０００９】
本発明の他の実施態様は上記融合タンパク質を培養で製造する方法であり、
（ａ）上述のＤＮＡ分子、上述の多重コピーベクターまたは上述のプラスミドを、上述の宿主細胞内で発現させ、
（ｂ）発現した融合タンパク質を細胞培養液の上清から単離し、この場合とくに培養の完了後、不要なタンパク質を沈殿させるためにｐＨを２．５〜３．５に調整し、発現した融合タンパク質を沈殿の上清から単離する方法である。
【００１０】
本発明の他の実施態様は上述の方法において、培養上清を宿主細胞から分離したのち、宿主細胞を新鮮な培地中で反復培養し、培養時に得られた各上清から放出された融合タンパク質を単離する方法である。
【００１１】
本発明の他の実施態様は、上述の方法において、上清中に発現したタンパク質を沈殿させたのち濃縮する工程が、マイクロろ過、疎水性相互作用クロマトグラフィーおよびイオン交換クロマトグラフィーからなる群より選択される。
【００１２】
本発明の付加的実施態様は、インスリンの製造方法において、
（ａ）上述の融合タンパク質を上述の方法に従って発現させ、単離し；
（ｂ）融合タンパク質をトリプシンおよびカルボキシペプチダーゼＢによって処理し；そして、
（ｃ）工程（ｂ）の反応混合物からインスリンを単離する方法である。
【００１３】
以下に記述する発現系は例とし掲げるものである。発現カセットを上述の選択された系に導入するためには、適当な組換えＤＮＡ構築が、選ばれた宿主系のタイプに応じて作成されなければならないことは当業者に自明の通りである。したがって、選択された宿主／ベクター系に関連して工業的培養を至適化することができる。
【００１４】
ヒルド類の１種であるヒルからは、たとえば、トロンビン阻害ヒルジンの様々なアイソフォームが開発されてきた。ヒルジンはその分子の人工的な改変、たとえばＮ−末端アミノ酸の交換により、医薬的要求のために至適化されている（たとえば、ＥＰ−Ａ ０ ３２４ ７１２）。本発明には、ヒルジンおよびヒルジン変異体の使用が包含される。本発明の特定の実施態様では天然のヒルジンアイソフォームの一つが使用される（天然のアイソフォームは、ともに「ヒルジン」と呼ばれる）。天然のアイソフォームは、たとえばＶａｌ−Ｖａｌ−ヒルジンまたはＩｌｅ−Ｔｈｒ−ヒルジンである。本発明の他の実施態様では、天然のヒルジンアイソフォーム変異体を使用する。変異体は天然のヒルジンアイソフォームから得られるが、たとえば、天然のアイソフォームと比較してアミノ酸の付加および／またはアミノ酸の欠失および／またはアミノ酸の交換が含まれる。ヒルジン変異体は、天然のヒルジンアイソフォームとは別のペプチドセグメントおよび新たなアミノ酸を含有していてもよい。ヒルジン変異体は既知であり、たとえばＤＥ ３ ４３０ ５６６に記載されている。ヒルジン変異体はタンパク質の形で市販されている（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ， カタログ番号３７７−８５３， −９５０−９６０）。
【００１５】
多くの場合、ヒルジンを含む融合タンパク質は酸性媒体に驚くほど良好な溶解性を示し、これはタンパク質の化学的な処理に関してきわめて有利である。第一に、上清の成分の多くは上述の条件下に沈殿する。第二に、大部分のペプチダーゼまたはプロテアーゼは不活性である。したがって、操作の最後に培養液を酸性にすることで、融合タンパク質から不要な上清タンパク質を宿主細胞とともに直接分離し、更なる工程で上記融合タンパク質を濃縮することができる。これは同様に本発明の主題である。
【００１６】
培養の終わりには、フォールディングの過程はまだ１００％完全ではない。メルカプタンまたは、たとえばシステイン塩酸塩の添加がこの過程を完了させる。これは同様に本発明の主題である。
【００１７】
【実施例】
以下の実施例は本発明を、限定ではなく、さらに詳細に記述するものである。
実施例１：Ｌｅｕ−ヒルジン（Ｒｅｆｌｕｄａｎ（Ｒ））−Ａｒｇ−ミニ−プロインスリンから成る融合タンパク質をコードする発現カセットの構築
出発原料はプラスミドｐＫ１５２（ＰＣＴ／ＥＰ００／０８５３７）、ｐＳＷ３（ＥＰ−Ａ ０ ３４７ ７８１）およびウシインターロイキン２（Ｐｒｉｃｅら， Ｇｅｎｅ ５５， １９８７）をコードする組換え酵母プラスミド誘導体である。酵母プラスミドは酵母ＡＤＨ２プロモーターの制御下にα因子リーダー配列をもつことを特徴とする。この配列の後に、ＫｐｎＩ制限酵素認識部位を介して連結するウシインターロイキン２ ｃＤＮＡ配列が続き、操作後、このベクター中に１つだけ存在する、非翻訳３′末端におけるＮｃｏＩ制限酵素認識部位を含有する。したがって、このｃＤＮＡ配列はＫｐｎＩ／ＮｃｏＩ切断により、そのプラスミドから容易に切り離すことができる。良好な発現効率が報告されていることから、残余の３′インターロイキン２配列（Ｔとして）はｍＲＮＡに対して安定化作用を有し、したがって、酵母特異的なターミネーター配列により置換する必要はないことが推定できる。プラスミドｐＫ１５２はＬｅｕ−ヒルジン（Ｒｅｆｌｕｄａｎ）をコードするＤＮＡ配列を有し、プラスミドｐＳＷ３はミニ−プロインスリンのＤＮＡ配列を有する。ヒルジン−ＬｙｓＡｒｇ−ミニ−プロインスリンをコードする遺伝子配列は最初、ＰＣＲ技術によって調製される。この目的ではＥｘｐｅｄｉｔｅ（Ｒ）ＤＮＡ合成システムを用いて４つのプライマーを調製する：
【００１８】
ｉ．ｈｉｒ ｉｎｓｆ１（配列番号：１）、コードされるタンパク質セグメント（配列番号：２）
2004518446.tif 000002
ｉｉ．ｈｉｒ ｉｎｓｒｅｖ１（配列番号：３）
2004518446.tif 000003
ｉｉｉ．ｈｉｒｆ１（配列番号：４、コードされるタンパク質セグメント（配列番号：５）
2004518446.tif 000004
ｉｖ．ｉｎｓｎｃｏ１ｒｅｖ（配列番号：６）
2004518446.tif 000005
【００１９】
プライマーｈｉｒ ｉｎｓｆ１は、ヒルジンの末端アミノ酸（５９−６５）のコドンとＡｒｇリンカー（コドン太字部）を介するインスリン配列Ｂ１〜Ｂ７の間の接続部を表している。プライマーｈｉｒ ｉｎｓｒｅｖ１はそれに対し１００％相補的である。プライマーｈｉｒｆ１は、ＥＰ−Ａ ０ ３２４ ７１２に記載されているように、ヒルジン遺伝子の開始部位からＫｐｎＩ切断部位までをコードする。プライマーｉｎｓｎｃｏｉｒｅｖはＥＰ−Ａ ０３４７ ７８１による合成ミニ−プロインスリンの３′末端をマークする。
【００２０】
２つの標準ポリメラーゼ連鎖反応は、プライマーペアｈｉｒｆ１／ｈｉｒ ｉｎｓｒｅｖ１と鋳型としてプラスミドｐＫ１５２のＤＮＡ、およびｈｉｒ＿ｉｎｓｆ１／ｉｎｓｎｃｏｉｒｅｖと鋳型としてプラスミドｐＳＷ３のＤＮＡを用いて実施する。この反応は、１００μＬのＰＣＲ緩衝液中で、各場合２００ｎｍｏｌのプライマー、１μＬのポリメラーゼおよび１００ｎｇのベクターを用いて実施される。工程１は９５℃で２分間のインキュベーションである。
ついで、９５℃で３０”、５５℃で３０”および７２℃で３０”を２５サイクル行う。最後のサイクルに続いて、７２℃で３分間インキュベートし、ついで反応を停止させる。プライマーｈｉｒ＿ｉｎｓｒｅｖｋｒおよびｈｉｒ＿ｉｎｓｆｋｒは１００％相補的なので、２つの生成物のＤＮＡ産物は上記配列に応じて重複し、したがって最初の２反応の生成物を鋳型として、ならびにプライマーｈｉｒｆ１およびｉｎｓｎｃｏｉｒｅｖを用いた第三の反応において、Ａｒｇによって隔てられるヒルジンおよびミニ−プロインスリンをコードするＤＮＡフラグメントを形成させる。ＰＣＲフラグメントを酵素ＫｐｎＩおよびＮｃｏＩで消化し、ついでＴ４リガーゼ反応において、ＫｐｎＩ／ＮｃｏＩによって開裂したｐαＡＤＨ２ベクター中に挿入する。次に、ＥＰ−Ａ ０３４７ ７８１の実施例７と同様にコンピテント Ｅ． ｃｏｌｉ ＭＭ２９４細胞を、ライゲーション混合物で形質転換する。プラスミドＤＮＡをついで２つのクローンから、ＤＮＡ配列解析による特性分析のために単離する。挿入されたＤＮＡ配列の確認後、プラスミド調製物のＤＮＡを使用して上記実施例に従いパンの酵母、Ｙ７９株の細胞を形質転換する。しかしながら、ｐαＡＤＨ２ベクターを使用した場合、上記実施例とは対照的に、ベクターの導入の後に、ｔｒｐ１−１変異の相補性の選択を行う。他のコントロールでは、プラスミドＤＮＡは、酵母形質転換体から再単離され、制限分析によって分析される。構築された発現ベクターはｐＡＤＨ２Ｈｉｒ＿ Ｉｎｓと表される。発現は実施例４に従って実施する。融合タンパク質は上清中に見出される。
【００２１】
実施例２：Ｌｅｕ−ヒルジン（Ｒｅｆｌｕｄａｎ）−Ｇｌｙ Ａｓｎ Ｓｅｒ Ａｌａ Ａｒｇ−ミニ−プロインスリンから成る融合タンパク質をコードする発現カセットの構築
この実施例はヒルジン誘導体とミニ−プロインスリンの間のトリプシン認識部位を修飾する方法を示す。構築は実施例１に従って実施する。
【００２２】
２つの新しいオリゴヌクレオチドを合成する。
Ｈｉｒ＿ｉｎｓｆ（配列番号：７）、コードされたるンパク質セグメント（配列番号：８）
2004518446.tif 000006
Ｈｉｒ＿ｉｎｓｒｅｖ（配列番号：９）
2004518446.tif 000007
【００２３】
プライマーペアｈｉｒｆ１／ｈｉｒ＿ｉｎｓｒｅｖ１と、鋳型としてプラスミドｐＫ１５２のＤＮＡを用いて、およびｈｉｒ＿ｉｎｓｆ１／ｉｎｓｎｃｏｉｒｅｖと、鋳型としてプラスミドｐＳＷ３のＤＮＡを用いて２種のポリメラーゼ連鎖反応を実施する。最初の２反応の生成物を鋳型として、およびプライマーｈｉｒｆ１およびｉｎｓｎｃｏｉｒｅｖを用いた第三の反応において、リンカーＧｌｙ Ａｓｎ Ｓｅｒ Ａｌａ Ａｒｇによって隔てられるヒルジンおよびミニ−プロインスリンをコードするＤＮＡフラグメントを形成させる。ＰＣＲ３の生成物をついでＫｐｎＩおよびＮｃｏＩで切断し、適当に開裂したｐαＡＤＨ２ベクター中に導入し、実施例１に従って特性を調べる。このプラスミドはｐＡＤＨＨ＿ＧＮＳＡ＿Ｉｎｓと表される。細胞をプラスミドＤＮＡで形質転換する。発現は実施例３に従って実施する。融合タンパク質は上清中に見出される。
【００２４】
実施例３：パンの酵母系における組換え生成物の発現
発現は２相に分割する。最初に、前培養を酵母最小培地中で行う。培地は１Ｌあたり以下の組成を有する。
６．７ｇ    酵母窒素ベース（アミノ酸なし）
５．０ｇ    カサミノ酸（ビタミンなし）
０．００８％  アデニン
０．００８％  ウラシル
２％      グルコース
【００２５】
本培養または発現培養は、前培養のアリコートを接種して行う。本培養培地は１Ｌあたり以下の成分を含有する。
１０ｇ     酵母エキス
２０ｇ     ペプトン
０．００８％  アデニン
０．００８％  ウラシル
４％      グルコース
【００２６】
記載の培地を使用し、発現は次のようにして振盪フラスコ中で実施する。
方法：一夜培養した前培養液０．３ｍＬを８０ｍＬの予め加温した培地で希釈し、激しく振盪しながら３０℃で約２４時間インキュベートする。各場合とも、この方法で産生させた培養液１ｍＬをついで遠心分離し、光学密度を測定したのち、そして細胞を除去したのち、上清を凍結乾燥し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析する。生物学的に活性なヒルジンの含量はトロンビン阻害アッセイを行って決定する。別の培養プロトコールにより、細胞は、ろ過または注意深い遠心分離により除去される。所定のタンパク質を培地から単離する一方、細胞に炭素源としてアルコールと０．５％以下のグルコースを含有する、新鮮な予め加温した本培養培地を加える。このようにして培養は中断しないで継続される。この工程は５回まで反復できる。
【００２７】
実施例４：Ｐ． ｐａｓｔｏｒｉｓ系におけるヒルジン− Ａｒｇ−ミニ−プロインスリン融合タンパク質のクローニングおよび発現
Ｐ． ｐａｓｔｏｒｉｓ系を使用する組換えタンパク質の製造のためのクローニングおよび発現キットはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｒ）から市販されている。したがって、所望の組換えタンパク質を製造するためのＰ． ｐａｓｔｏｒｉｓ系の調製および以後の発現に関する詳細な技術的プロトコールは提供されているため、上述のプロトコールに従う場合、所望のタンパク質をコードする発現ベクターの構築のみを記述する。ＥａｓｙＳｅｌｅｃｔ（Ｒ）Ｐｉｃｈｉａ発現キット（カタログ番号Ｋ１７４０−０１）を使用する。
【００２８】
ｐＰＩＣＺαＡベクターはそのキットの一部である。制限酵素ＸｈｏＩおよびＳａｃＩＩによるベクターの開裂は実施例１と同様、所定のタンパク質をα因子リーダーに付加し、上清への分泌について試験することを可能にする。融合タンパク質のクローニングには２つのプライマーが要求される。プライマー ｐｉｃｈｉａ＿Ｈ＿ｌｆ１（配列番号：１０）は次の配列を有する：
2004518446.tif 000008
プライマー ｐｉｃｈｉａ＿Ｈ＿ｌｒｅｖ２ｆ１（配列番号：１１）は次の配列を有する：
2004518446.tif 000009
【００２９】
使用する鋳型はプラスミドｐＡＤＨ２Ｈｉｒ＿ＩｎｓのＤＮＡである。両プライマーによる標準ＰＣＲは、ＸｈｏＩおよびＳａｃＩＩの挿入部位により延長されたヒルジン−Ａｒｇ−ミニ−ロインスリンの配列を含有するＤＮＡ生成物を産生する。このＤＮＡ生成物が適当に切断されて、そのフラグメントが単離されると、上記フラグメントをＴ４ ＤＮＡリガーゼ反応において、開裂されたベクターＤＮＡ中に挿入することができる。製造業者のプロトコールを変えて、実施例１に記載のＥ． ｃｏｌｉ ＭＭ２９４株をライゲーション混合物で形質転換し、ゼオシン選択プレート上で組換えコロニーをスクリーニングして、成功した形質転換体を得る。プラスミドＤＮＡをクローンから再単離し、ついで制限分析およびＤＮＡ配列分析により特性を調べる。次に、この方法で構築されたプラスミドを用いて、製造業者の指示書に従って、融合タンパク質製造のためのＰ． ｐａｓｔｏｒｉｓ発現クローンを調製する。
【００３０】
実施例５：トロンビン阻害アッセイ
ヒルジン濃度はＧｒｉｅｓｓｂａｃｈらの方法（Ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ３７， ｐｐ． ３４７−３５０， １９８５）に従って決定する。この目的には、検量曲線を確立させるため、特定量のＲｅｆｌｕｄａｎ標準を測定に包含させる。これからｍｇ／Ｌでの収率が直接測定できる。生物活性も、融合タンパク質のプロインスリン成分の正しいフォールディングの直接的な指標となる。また正しいＳ−Ｓ架橋形成を測定するために、蛋白分解性Ｓ． ａｕｒｅｕｓ消化、ついでＲＰ−ＨＰＬＣシステムにおける分析を使用することも可能である。
【００３１】
実施例６：融合タンパク質の精製
培養の完了後、ｐＨを２．５〜３に調整する。宿主細胞の自然分解または分泌により上清に見出される大部分の他のポリペプチドとは対照的に、融合タンパク質は驚くべきことにｐＨ ２．５〜３では沈殿しない。したがって、培養培地を適宜、酸性にし、ついで沈殿の完了後に、沈殿と細胞を遠心分離またはマイクロろ過によって除く。次に、培地をｐＨ ６．８に調整し、融合タンパク質の含有量を分析的ＨＰＬＣ測定により平行して測定する。測定に続いて、融合タンパク質１〜１．５ ｍｇあたり約１μｇになるように、上清にトリプシンを添加する。室温で約４時間インキュベートしたのち、精製は２−プロパノールの存在下に、ｐＨ３．５で陽イオン交換クロマトグラフィーにより実施する。溶出は０．１５〜０．４５Ｍの勾配を適用して緩衝液中で実施する。モノ−Ａｒｇ−インスリンは約０．３Ｍで溶出する。１：１に希釈したのち、１０％濃度のＺｎＣｌ２溶液を添加し、モノ−Ａｒｇ−インスリンを、約ｐＨ６．８においてインスリン含有分画から沈殿させる。インスリンをろ別し、ついで０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．５）に溶解し、２ｍｇ／ｍＬの溶液を得る。ついで、溶液１００ｍＬあたり約１ユニットのカルボキシペプチダーゼＢを添加し、穏やかに攪拌しながら反応を実施する。ついでクエン酸でｐＨを５．５に調整し、インスリンをＺｎＣｌ２の存在下に結晶化させる。結晶を取り、溶解し、ＲＰ−ＨＰＬＣで精製したのち、インスリンを再度結晶化により精製する。
【００３２】
実施例７：培養培地中において直接行われる融合タンパク質のプロセッシング
発現期の終わりに、培養培地のｐＨを６．８に調整し、トリプシンを攪拌しながら加えて、最終濃度４〜８ｍｇ／Ｌを確立させる。約４時間インキュベートしたのち、この方法で処理した培養液のｐＨを２．５〜３に調整する。１〜６時間かけて沈殿させたのち、ｐＨを３．５に上げ、形成されたモノ−Ａｒｇ−インスリンを３０％２−プロパノールの存在下に陽イオン交換クロマトグラフィーによって精製する。溶出は０．０５〜０．５ＭのＮａＣｌ塩の勾配を用いて実施する。生成物含有分画をＨ２Ｏで１：１に希釈し、ついで０．１％濃度のＺｎＣｌ２溶液になるようにＺｎＣｌ２を加える。モノ−Ａｒｇ−インスリンをｐＨ約６．８で沈殿させ、たとえば実施例６に従ってインスリンに変換する。
【国際公開パンフレット】
2004518446.tif 000010
2004518446.tif 000011
2004518446.tif 000012
2004518446.tif 000013
2004518446.tif 000014
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【国際調査報告】
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