(57)【要約】本発明は、オリゴリボヌクレオチドのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定方法に関する。本発明は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＤＮＡヌクレオチド配列の決定方法、およびＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いる多型性の決定方法にも関する。本発明は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによるＤＮＡ鋳型またはＲＮＡ転写産物を分析および／または決定するためのキット、および／または多型性を決定するためのキットを提供する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルファホスホロチオエート化されており、リボースの２’位に電気的に陰性の置換基を持つ少なくとも一種類の修飾リボヌクレオチドと、含窒素塩基としてのアデニン、グアニン、シトシン、ウラシルおよび／またはそれらの誘導体とを用いるＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定を実施するステップを含むオリゴヌクレオチドのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定方法。
【請求項２】
前記電気的に陰性の置換基が、Ｆ、Ｃｌ、ＮＨ２、Ｎ３、ＯＨからなる群から選択される請求項２記載の方法。
【請求項３】
前記の少なくとも一種類のリボヌクレオチドが、アルファホスホロチオエート化−２’−フルオロ−ＡＴＰ、アルファホスホロチオエート化−２’−フルオロ−ＣＴＰ、アルファホスホロチオエート化−２’−フルオロ−ＧＴＰ、アルファホスホロチオエート化−２’−フルオロ−ＵＴＰおよびそれらの誘導体からなる群から選択される請求項１記載の方法。
【請求項４】
前記ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定が、適切なＭＡＬＤＩマトリックスの存在下で実施される請求項１記載の方法。
【請求項５】
前記マトリックスが３−ＨＰＡ、ＴＨＡＰ、２，５−ＤＨＢＡまたはそれらの誘導体である請求項４記載の方法。
【請求項６】
アルファホスホロチオエート化されており、リボースの２’位にアラビノ基を持つ少なくとも一種類の修飾リボヌクレオチドと、含窒素塩基としてのアデニン、グアニン、シトシン、ウラシルおよび／またはそれらの誘導体とを用いるＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定を実施するステップを含むオリゴヌクレオチドのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定方法。
【請求項７】
前記ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定が、適切なＭＡＬＤＩマトリックスの存在下で実施される請求項６記載の方法。
【請求項８】
前記マトリックスが２，５−ＤＨＢＡ、３−ＨＰＡ、ＴＨＡＰ、ＣＮＭＥおよびそれらの誘導体からなる群から選択される請求項７記載の方法。
【請求項９】
ａ）アルファホスホロチオエート化−２’−電気陰性置換ＮＴＰまたはアラビノ−２’−ＮＴＰから選択される鎖伸長リボヌクレオチドを提供するステップと、
ｂ）ＲＮＡポリメラーゼと該ＲＮＡポリメラーゼのためのプロモーター配列を含むＤＮＡ鋳型の存在下で、前記鎖伸長リボヌクレオチドと、鎖終結リボヌクレオチドとしての一種類以上の３’−ｄＮＴＰ誘導体とを反応させ、オリゴヌクレオチド転写産物を得るステップと、
ｃ）ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより前記オリゴリボヌクレオチド転写産物を分析し、該転写産物の配列と該ＤＮＡ鋳型の配列とを決定するステップと
を含むＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＤＮＡヌクレオチド配列決定方法。
【請求項１０】
前記電気的に陰性の置換基が、Ｆ、Ｃｌ、ＮＨ２、Ｎ３、ＯＨからなる群から選択される請求項９記載の方法。
【請求項１１】
前記ＲＮＡポリメラーゼが、リボヌクレオチドを取り込む能力が改善されている突然変異Ｔ７  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｔ３  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｋ１１  ＲＮＡポリメラーゼ、ＳＰ６  ＲＮＡポリメラーゼ、またはＢＡ１４  ＲＮＡポリメラーゼである請求項９記載の方法。
【請求項１２】
前記突然変異ＲＮＡポリメラーゼが、突然変異Ｆ６４４Ｙおよび／またはＦ６６７Ｙを有するＴ７  ＲＮＡポリメラーゼである請求項１１記載の方法。
【請求項１３】
前記ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定が、適切なＭＡＬＤＩマトリックスの存在下で実施される請求項９記載の方法。
【請求項１４】
前記マトリックスが２，５−ＤＨＢＡ、３−ＨＰＡ、ＴＨＡＰ、ＣＮＭＥおよびそれらの誘導体からなる群から選択される請求項１３記載の方法。
【請求項１５】
請求項９に記載の工程ａ）〜ｃ）を含み、
工程ｃ）の前記オリゴリボヌクレオチド転写産物が、同じ遺伝子の少なくとも２つの対立遺伝子、または対立遺伝子と野生型遺伝子、または既知の野生型遺伝子と比較される少なくとも一つの対立遺伝子を含む、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いる多型性の決定方法。
【請求項１６】
ｉ）ＲＮＡ転写産物を合成するためのアルファホスホロチオエート化−２’−電気的に陰性の置換基ＮＴＰ、またはアラビノ−２’−ＮＴＰから選択される鎖伸長リボヌクレオチドのセットと、
ｉｉ）ＲＮＡ転写産物の合成を終結させ、塩基特異的な終結相補的リボヌクレオチド転写物断片のセットを生成させるための鎖終結リボヌクレオチドとしての一種類以上の３’−ｄＮＴＰ誘導体と、
ｉｉｉ）ＲＮＡポリメラーゼと
を含むＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによるＤＮＡ鋳型またはＲＮＡ転写産物の分析および／または配列決定、および／または多型性決定キット。
【請求項１７】
前記電気的に陰性の置換基が、Ｆ、Ｃｌ、ＮＨ２、Ｎ３、ＯＨから選択される請求項１６記載のキット。
【請求項１８】
前記ＲＮＡポリメラーゼが、リボヌクレオチドを取り込む能力が改善された突然変異Ｔ７  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｔ３  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｋ１１  ＲＮＡポリメラーゼ、ＳＰ６  ＲＮＡポリメラーゼ、またはＢＡ１４  ＲＮＡポリメラーゼである請求項１６記載のキット。
【請求項１９】
前記突然変異ＲＮＡポリメラーゼが、突然変異Ｆ６４４Ｙおよび／またはＦ６６７Ｙを有するＴ７  ＲＮＡポリメラーゼである請求項１８記載のキット。
【請求項２０】
前記ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析用の一種類以上のマトリックスを更に含む請求項１６記載のキット。
【請求項２１】
前記マトリックスが２，５−ＤＨＢＡ、３−ＨＰＡ、ＴＨＡＰ、ＣＮＭＥおよびそれらの誘導体からなる群から選択される請求項２０記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
［技術分野］
本発明は、マトリックス支援レーザー脱離／イオン化飛行時間型質量分析法（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ：Ｍａｔｒｉｘ−ａｓｓｉｓｔｅｄ ｌａｓｅｒ ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ−ｏｆ−ｆｌｉｇｈｔ ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ）の使用によるオリゴリボヌクレオチドの分析および／または配列決定法の改善法に関する。特に、本発明は、ＭＡＬＤＩ分析および／または配列決定時のシグナル強度の低下を減少または除去する修飾リボヌクレオチドに関する。
【０００２】
［背景技術］
ヒトゲノムプロジェクトは、ヒトゲノム配列決定の最終段階にある。ポストヒトゲノムプロジェクトの一つは、それぞれ異なるヒトまたは種を比較するために、また一塩基多型（ＳＮＰ）を決定するために、特異的部位を再配列決定することであろう。このような再配列決定システムは、極めて迅速で、費用効果が高くなくてはならない。
【０００３】
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ（Ｓｍｉｔｈ，Ｌ．Ｍ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９３，２６２，５３０；およびＨｉｌｌｅｎｋａｍｐ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ，Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ  ａｎｄ  ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ  Ｅｄｉｔｏｒｓ、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，アムステルダム，１９９０，ｐｐ．４９−６０）は、分子量の大きい合成の重要なポリマーおよび生物学的に重要なポリマーの迅速、正確、かつ鋭敏な質量分析法に発展しつつある。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳは、ＳＮＰの決定と共に、オリゴリボヌクレオチドの分析および配列決定に有利な方法である。
【０００４】
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳは、極めて迅速なＤＮＡ配列決定を可能にし、ゲルまたは蛍光色素が不要であるという利点を有する。
【０００５】
サンガー法に基づく短いＤＮＡの再配列決定システムは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより実施されてきた（Ｍｏｎｉｆｏｒｔｅ，Ｊ．Ａ．，ａｎｄ  Ｂｅｃｋｅｒ，Ｃ．Ｈ．，Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｄ．，１９９７，３，３６０−３６２；  Ｋｉｒｐｅｋａｒ，Ｆ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９９８，２６，２５５４−２５５９）。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いて配列決定できるＤＮＡの長さが長くなるほど、ＤＮＡ配列決定分野における新たな代替技術としてのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳの利点はより大きくなる。
【０００６】
しかし、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによるＤＮＡ分析方法に重大な限界が出現した。これらの限界の一つは、ＭＡＬＤＩ過程においてＤＮＡ分子の多くが断片となる点である。ＤＮＡは、無傷の親イオンシグナルのみでなく、ＤＮＡ断片化によって生じたその他のシグナルも、塩基の喪失と骨格の切断として示す。ＭＡＬＤＩの間のＤＮＡ断片化開始段階が、核酸塩基部分のプロトン付加である断片化機序モデル（Ｚｈｕ，Ｌ．；ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１９９５，１１７，６０４８−６０５６）が作成された。核酸塩基部分のプロトン付加により、Ｎ−グリコシド結合が弱まり、塩基の喪失と、デオキシリボース部分の１’位におけるカルボカチオン形成を同時に引き起こす。その後の再配列により、３’炭素−酸素結合における骨格切断が生じる。
【０００７】
ＭＡＬＤＩ分析時のＤＮＡの安定化が、ＤＮＡ配列決定またはその他の核酸分析に有用と考えられてきた。
【０００８】
米国特許第５，６９１，１４１号に、サンガー法に基づくＤＮＡ配列決定方法が説明されている。この方法には、オリゴヌクレオチドプライマー、鎖終結ヌクレオシド三リン酸および／または鎖伸長ヌクレオシド三リン酸への質量修飾の導入および／または特異的標識配列とハイブリダイゼーション可能な質量識別標識プローブの利用が含まれる。ヌクレオチド修飾として、米国特許第５，６９１，１４１号に、末端ヌクレオシドの糖部分の５’位でグリシン残基により修飾されたプライマー；ピリミジンヌクレオシドの複素環塩基のＣ−５でグリシン残基により、β−アラニン残基により、エチレングリコールモノメチルエーテルにより、ジエチレングリコールモノメチルエーテルにより修飾されたプライマー；デオキシアデノシンの複素環塩基のＣ−８で、グリシンまたはグリシルグリシンにより質量修飾されたプライマー；２’−アミノ−２’−デオキシチミジンの糖部分のＣ−２’で、エチレングリコールモノメチルエーテル残基により質量修飾されたプライマー；ホスホロチオエート基のアルキル化によりヌクレオチド間結合において質量修飾されたＤＮＡプライマー（Ｓｌｉｍ  Ｇ．ａｎｄ  Ｇａｉｔ  Ｍ．Ｊ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９１，ｖｏｌ．１９，Ｎｏ．６，１１８３−１１８８による）；グリシンまたはβ−アラニン残基により２’−アミノまたは３’−アミノ基で質量修飾された２’−アミノ−２’−デオキシウリジン−５’−三リン酸および３’−アミノ−２’，３’−ジデオキシチミジン−５’−三リン酸；グリシン、グリシル−グリシンおよびβ−アラニン残基により複素環塩基のＣ−５で質量修飾されたデオキシウリジン−５’−三リン酸；８−グリシル−２’−デオキシアデノシン−５’−三リン酸および８−グリシル−グリシル−２’−デオキシアデノシン−５’−三リン酸；および鎖伸長２’−ジデオキシチミジン−５’−（アルファ−Ｓ）−三リン酸およびその後の２−ヨードエタノールおよび３−ヨードプロパノールによるアルキル化が説明されている。
【０００９】
しかし、米国特許第５，６９１，１４１号に説明されている修飾オリゴヌクレオチドを用いる質量分析によるＤＮＡ配列決定には、シグナル強度の低下と塩基喪失の問題がある。この欠点により、配列決定、特により長いＤＮＡ配列決定の配列決定を効率的に実施することは不可能である（Ｔａｒａｎｅｎｋｏ，ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９９８，２６，２４８８−２４９０）。
【００１０】
Ｓｈｕｅｔｔｅ  Ｊ．Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，（Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ａｎａｌ．１９９５，１３，１１９５−１２０３）は、以前に、天然ホスホジエステルＤＮＡ配列の配列決定に使用されたＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを、アルファホスホロチオエートデオキシリボヌクレオチド（Ｓ−ｄＮＴＰ）を含むＤＮＡの配列決定に使用することを提唱している。しかし、この文献に提示されているデータ（例えば、Ｓｃｈｕｅｔｔｅ  ｅｔ  ａｌ．の図２）は、Ｓ−ｄＮＴＰの利用が、ＭＡＬＤＩを使用することによる配列決定分析に有効でないことを示している。
【００１１】
ＤＮＡにホスホロチオエートヌクレオチドを取り込むことは、ＭＡＬＤＩ配列決定分析に不適切であることは、本発明者等によっても確認された。本明細書において、図１Ｃおよび１Ｄ（ホスホジエステルについて言及）と比較した（図１Ａおよび１Ｂ（Ｓ−ｄＮＴＰを含むオリゴＤＮＡについて言及、この物質を今後Ｓ−ＤＮＡと呼ぶ）は、２０ｍｅｒと３０ｍｅｒのスペクトルに焦点を合わせた時、ＤＮＡ配列決定におけるホスホジエステルのホスホロチオエートへの置換は、断片化を増加させることを示している。そのとき、オリゴＳ−ＤＮＡにより示された質量範囲の増大に伴うシグナル強度の低下は、ＤＮＡによって示されたよりも遙かにめざましいものであった。
【００１２】
上記データから、本研究分野において、シグナル強度の低下を軽減でき、より長いオリゴヌクレオチド配列の配列決定を可能にするＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析方法の新しいアプローチの開発が必要であることは確かである。
【００１３】
［発明の概要］
本発明者等は、驚くことに、今後Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰと呼ばれる２’位に電気的に陰性の置換基を有するアルファホスホロチオエート（好ましくはＳ−２’−フルオロ−リボヌクレオチド（Ｓ−２’−Ｆ−ＮＴＰ）、またはＳ−２’−ＯＨ−リボヌクレオチド（Ｓ−ＮＴＰ））、およびアラビノ−リボヌクレオチド（ａｒａ−ＮＴＰ）が、シグナル強度の低下に抵抗性を示し、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析に有利に使用できることを発見した。
【００１４】
従って、本発明は、Ｓ−２’−ｅ−ＡＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＣＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＧＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＵＴＰおよびそれらの誘導体（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）からなる群から選択される少なくとも一つのリボヌクレオチドを利用するＲＮＡ配列、断片または転写物（一般にオリゴリボヌクレオチド類）のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析方法に関する。
【００１５】
本発明はまた、ａｒａ−ＡＴＰ、ａｒａ−ＣＴＰ、ａｒａ−ＧＴＰ、ａｒａ−ＵＴＰおよびそれらの誘導体からなる群から選択される少なくとも一つのリボヌクレオチドを利用するＲＮＡ配列、断片または転写物（一般にオリゴリボヌクレオチド類）のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析方法にも関する。
【００１６】
更に、本発明は、ａ）上記に定義されたａｒａ−ＮＴＰまたはＳ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）から選択されるリボヌクレオシド三リン酸またはアルファ−チオ−置換（鎖伸長リボヌクレオチド）を提供するステップと、ｂ）ＲＮＡポリメラーゼと該ＲＮＡポリメラーゼのためのプロモーター配列を含むＤＮＡ鋳型の存在下で、前記鎖伸長リボヌクレオチドと、一種類以上の３’−ｄＮＴＰ誘導体（鎖終結リボヌクレオチド）とを反応させ、オリゴヌクレオチド転写産物を得るステップと、ｃ）ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより前記オリゴリボヌクレオチド転写産物を分析し、転写産物の配列とＤＮＡ鋳型の配列を決定するステップとを含むＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＤＮＡヌクレオチド配列の決定方法に関する。
【００１７】
本発明は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳと、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）またはａｒａ−ＮＴＰを利用するＳＮＰの決定方法にも関する。
【００１８】
本発明は更に、ｉ）ＲＮＡ転写産物を合成するための本発明に従って修飾された鎖伸長リボヌクレオチド（上記工程ａで提示）のセットと、ｉｉ）ＲＮＡ転写産物の合成を終結させ、塩基特異的な終結相補的リボヌクレオチド転写物断片を生成するための一種類以上の鎖終結リボヌクレオチドと、ｉｉｉ）ＲＮＡポリメラーゼとを含む、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによるＤＮＡ鋳型またはＲＮＡ転写産物の配列決定キットに関する。
【００１９】
開示されている上記キットは、任意で（ｉｖ）ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析用の一種類以上のマトリックスも更に含むことができる。
【００２０】
本発明は、（ｉ）〜（ｉｉｉ）および上記に開示されている成分任意の（ｉｖ）を含むＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＳＮＰの決定キットにも関する。
【００２１】
［発明の詳細な説明］
本発明は、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）およびａｒａ−ＮＴＰから選択される少なくとも一つのリボヌクレオチドを利用する、ＲＮＡ配列、ＲＮＡ断片またはＲＮＡ転写物（一般にオリゴリボヌクレオチド）のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定方法を開示する。本発明によるオリゴリボヌクレオチドラダーの分析方法の実施例は、図４、５、６、８に報告されている。
【００２２】
本発明のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ法に有用な修飾リボヌクレオチドは、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰおよびａｒａ−ＮＴＰとして示され、一方ＮＴＰを含むオリゴは、それぞれオリゴＳ−２’−ｅ−ＲＮＡおよびオリゴａｒａ−ＲＮＡとして示される。
【００２３】
Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰを含むオリゴの化学式は図３（Ｈ）に記載されている。「Ｓ」という用語はアルファホスホロチオエート骨格を意味し、「ｅ」はリボース部分の２’位における強力な電気的に陰性の置換基を意味する。電気的に陰性の置換基は、好ましくはＦ、Ｃｌ、ＮＨ２、Ｎ３およびＯＨからなる群から選択される（Ｇｕｓｃｈｌｂａｕｅｒ  Ｗ．ａｎｄ  Ｊａｎｋｏｗｓｋｉ  Ｋ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９８０，ｖｏｌｕｍｅ  ８，ｎｕｍｂｅｒ  ６，１４２１−１４３３の表ＩＩＩ参照）。しかし、これらの好ましい置換基には限定されない。その他の強力な電気的に陰性の置換基も使用できる。「ｅ」が−ＯＨの場合、リボヌクレオチドはＳ−ＮＴＰとして表示される（この場合、オリゴはオリゴＳ−ＲＮＡとして表示される。）。
【００２４】
リボヌクレオチドＳ−２’−ｅ−ＮＴＰは、種々の含窒素塩基、すなわちアデニン、グアニン、シトシン、ウラシル、および／またはそれらの誘導体を含む。従って、化合物、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰは、一般にＳ−２’−ｅ−ＡＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＧＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＣＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＵＴＰとしても表示できる。
【００２５】
Ｋａｗａｓａｋｉ  Ａ．Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，（Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，１９９３，３６，８３１−８４１）は、Ｓ−２’−Ｆ−ＮＴＰを開示し、ＲＮＡ標的に対する結合力を保持できるオリゴを調製した。しかし、このリボヌクレオチドまたはオリゴをＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析または配列決定に利用することに関しては開示も提唱もされていない。本発明のＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰおよびＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡに関して、これらはＴｒｉＬｉｎｋ  Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社（サンディエゴ、カリフォルニア州）により調製された。
【００２６】
オリゴＳ−ＲＮＡは、シュモクザメのリボザイムの切断機序の研究において、Ｓｌｉｍ  Ｇ．ａｎｄ  Ｇａｉｔ  Ｍ．Ｊ．，（Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９１，ｖｏｌ．１９，Ｎｏ．６，１１８３−１１８８）により開示され、合成された。しかし、ＭＡＬＤＩ系におけるこのオリゴの利用は開示も提唱もされていない。
【００２７】
本発明のＳ−ＮＴＰは、種々の含窒素塩基であるアデニン、グアニン、シトシン、ウラシル、および／またはそれらの誘導体を含み、Ｓ−ＡＴＰ、Ｓ−ＣＴＰ、Ｓ−ＧＴＰ、Ｓ−ＵＴＰ、およびそれらの誘導体として表される。
【００２８】
本発明者等は、少なくとも一種類のＳ−ＮＴＰ（図３の化学式Ｆ）を含むオリゴは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定のシグナル強度低下に対し抵抗することを発見した（図４）。
【００２９】
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによる分析および配列決定におけるＳ−ＲＮＡの利用が有利であることは、予測できなかった。なぜならば、ＤＮＡへのアルファ−ホスホロチオ基の導入（図３Ｅおよび図１Ａ、１Ｂ参照）およびＲＮＡのアルファ−リン酸基へのアルキル−チオ−の導入（図７参照）により、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定におけるシグナル強度低下への抵抗性を示さなかったためである。
【００３０】
オリゴＳ−２’−ｅ−ＲＮＡに関して、好ましい例は、Ｓ−２’−Ｆ−ＡＴＰ、Ｓ−２’−Ｆ−ＣＴＰ、Ｓ−２’−Ｆ−ＧＴＰ、Ｓ−２’−Ｆ−ＵＴＰおよびそれらの誘導体からなる群から選択される少なくとも一種類のＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰを含むオリゴＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡである。
【００３１】
リボースの２’位におけるフルオロ置換基に関して、Ｔａｎｇ  Ｗｅｉ  ｅｔ  ａｌ．（Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９７，６９，３０２−３１２）は、２’炭素において置換されたフルオロ部分を有するデオキシリボヌクレオチド（ｄＮＴＰ）は、ＤＮＡ配列を断片化に対して安定化させ、従って、入手可能な質量範囲を拡大することを提唱した。しかし、最近の研究（Ｓｃａｌｆ，Ｍ．学位論文、ウィスコンシン大学、マディソン、ウィスコンシン州、２９００）により、２’−フルオロ−電気陰性置換基がシグナル強度の低下を軽減しないことを証明した。この事は、ＭＡＬＤＩ分析においてＤＮＡ配列の配列決定を不利にする可能性がある。
【００３２】
本発明者等は、２’−フルオロリボヌクレオチド（２’−Ｆ−ＮＴＰ）のオリゴＲＮＡ（２−Ｆ’−ＲＮＡ）への導入効果を更に研究し、オリゴ２−Ｆ’−ＲＮＡを使用するＭＡＬＤＩ配列決定法の結果（本明細書の図２Ａおよび２Ｂ）が、ＲＮＡ配列の場合（図２Ｃおよび２Ｄ）と変わらず、長いＲＮＡ配列のシグナル強度の低下を軽減しないことを見いだした。
【００３３】
本明細書の実験章に使用された２−Ｆ’−ＲＮＡは、ＴｒｉＬｉｎｋ  Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社（サンディエゴ、カリフォルニア州）により調製され、２’−フルオロ−（Ｃ）ｎＴの形態で合成された。ｄＴＴＰ（２’−フルオロ修飾されていない）を出発ヌクレオチドとして使用し、ＣＰＧ支持体に結合させた。その上に、例えば、「Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ」Ｖｏｌ，Ｉ，Ｓｅｃｔｉｏｎ  Ｖ，Ｕｎｉｔ  ２．１１，Ｊｏｈｏｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．に記載されている、本技術において一般的であり、十分に既知の技術に従って、２’−フルオロ−ＣＴＰを加えた。２’−フルオロ−（Ｃ）１０Ｔ、−（Ｃ）２０Ｔ、−（Ｃ）３０Ｔのオリゴマーが合成された。これらのオリゴマーは、たとえこれらのオリゴマーの実際の大きさが、３’末端のＴの存在により１１、２１、３１ｍｅｒであったとしても、それぞれＲＮＡ１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒと呼ばれる。実際には、ｄＴＴｐは修飾されず、本発明は、２’−電気的に陰性な置換基、およびａｒａ−置換基に関するものである。
【００３４】
Ｓ−２’−Ｆ（Ｃ）ｎＴおよびａｒａ（Ｃ）ｎＴも、２’−Ｆ−（Ｃ）ｎ−Ｔに関する説明と同様に合成された。この場合も、オリゴマーは、たとえ実際の大きさが、３’末端のＴの存在により１１、２１、３１ｍｅｒであったとしても、１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒと呼ばれる。
【００３５】
同様に、図６のオリゴマーは、たとえ実際の大きさが、３’末端のＴの存在により１〜１１ｍｅｒ、１〜２１ｍｅｒ、１〜３１ｍｅｒであったとしても、１〜１０ｍｅｒ、１〜２０ｍｅｒ、１〜３０ｍｅｒと呼ばれる。
【００３６】
Ｓ−２’−Ｆ−ＮＴＰを含むオリゴの分析に関する本発明の方法に関して、図５および図６は明らかに、リボースの２’位におけるフルオロ置換基と組み合わせたアルファ−ホスホロチオ基の導入は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定において特に有用かつ有効であり、シグナル強度の低下に抵抗性を示すことを示している。これは、リボヌクレオチドへのアルキル−Ｓ基の導入（図７Ｃおよび７Ｄ参照）と、リボヌクレオチドの２’位におけるフルオロ基の導入（図２Ａおよび２Ｂ）が、シグナル強度低下の存続を証明したことから、驚くべき効果である。
【００３７】
本発明者等は、２’−エピマーリボヌクレオチド（アラビノ−ＮＴＰおよびａｒａ−ＮＴＰとしても知られる、化学式図３のＤ）を含むオリゴが、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定においてシグナル強度の低下に対する抵抗性を示すことも見いだした。これらのリボヌクレオチドは、化合物Ｓ−２’−ｅ−ＲＮＡに関して報告された種々の含窒素塩基であるアデニン、グアニン、シトシン、ウラシルおよび／またはそれらの誘導体を含む。
【００３８】
ａｒａ−ＲＮＡは、例えば、Ｂｅａｒｄｓｌｅｙ，Ｇ．Ｐ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９８８，１６，９１６５−９１７６；  Ｔａｎｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９７，６９，３０２−３１２に従って、調製できる。ａｒａ−ＲＮＡは、Ｔａｎｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，において開示されたが、アラビノ−ヌクレオシドは、Ｔａｎｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，の図３Ｂ、４、６Ｂおよび８にあるように、塩基喪失ピークを示すことが観察された。これによって、この修飾による安定化は完璧とは言えないことが示された（Ｔａｎｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，の文献の３１１ページ、左の列、１６−２０行参照）。従って、ａｒａ−ＲＮＡは、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析または配列決定に有用でないと見なされた。これに反して、本発明者等は、ａｒａ−リボヌクレオチドを含むａｒａ−ＲＮＡラダーは、好ましくはＭＡＬＤＩマトリックスとして３−ＨＰＡの存在下に、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析または配列決定を用いるシグナル強度の低下に対する抵抗性を示すことを証明した。
【００３９】
上記に説明されているリボヌクレオチドは、オリゴリボヌクレオチド配列産物を調製するために使用され、このオリゴリボヌクレオチド配列産物は、Ｓ−２’−ｅ−ＲＮＡ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡまたはＳ−ＲＮＡ）およびａｒａ−ＲＮＡとして定義することができる。本発明のオリゴリボヌクレオチド配列産物（ＯＲＮ）は、本発明のアルファ−チオおよび／またはアラビノ修飾リボヌクレオチドを含むあらゆるＯＲＮが可能であり、例えば、オリゴリボヌクレオチドラダー、遺伝子のオリゴリボヌクレオチド断片または完全な配列、発現配列標識（ＥＳＴ）または全長ＲＮＡ配列のＲＮＡ転写産物、ｔ−ＲＮＡ、ｒ−ＲＮＡ、ｍ−ＲＮＡまたはプライマーのＲＮＡ転写物の断片が挙げられる。
【００４０】
ラダーのようなＲＮＡ断片は、例えば、本技術分野において既知の標準的な技術に従って（例えば、修飾リボヌクレオチドの化学的取り込みにより、または下記に説明されている転写配列決定（ＴＳ）法によりＯＲＮを形成するために、少なくとも一種類の本発明のアルファ−チオおよび／またはアラビノ修飾リボヌクレオチドを供給することにより調製できる。従って、本発明は、上記に説明されている本発明のアルファ−チオおよび／またはアラビノ修飾リボヌクレオチドを含むＲＮＡ配列または断片または転写産物（オリゴリボヌクレオチド）にも関する。
【００４１】
オリゴリボヌクレオチドラダー分析の実施例は、図４、５、６、８に報告されており、ピークの分解能が高く、分析されるラダーの純度が高いことを示している。分析は、ラダーの質量の決定にも利用できる。
【００４２】
「対照」の図１、２、７のデータと比較した図４、５、６、８のデータは、アルファ−チオリン酸リボヌクレオチドのＲＮＡラダーへの導入により、シグナル強度の低下が有意に軽減されることを証明している（図４）。これは、アルファホスホロチオエート化ｄＮＴＰのＤＮＡへの導入（Ｓ−ＤＮＡ）によっても、アルキル−チオリン酸ＮＴＰのＲＮＡへの導入（ＣＨ３Ｓ−ＲＮＡ）によっても、シグナル強度が大きく低下したという事実から、予想外の結果であった（図１Ａ、図１Ｂおよび図７Ａ、図７Ｂをそれぞれ参照）。
【００４３】
リボヌクレオチドに導入されたアルファ−チオリン酸基と２’位の強力な電気的に陰性の置換基（好ましくはフルオロ基）との両者の組み合わせにより、前記リボヌクレオチドを含むオリゴリボヌクレオチド（ＲＮＡ）配列は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定にとって特に有用となる。従って、図５は、オリゴ３０ｍｅｒが、３−ＨＰＡにおいてシグナル低下の効果（ｄｒｏｐ−ｏｆｆ ｅｆｆｅｃｔ）を示す図４と比較して、明らかなシグナル強度の低下に対する抵抗性を有することを示している。Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡは、塩基喪失に対し特に安定で、抵抗性を有し、Ｓ−ＲＮＡよりもバックグラウンドノイズが低い。
【００４４】
図５と図２Ａ、Ｂの比較により、２’−Ｆ−ＲＮＡの２０ｍｅｒと３０ｍｅｒに関して、シグナル強度の低下に対する抵抗性の明らかな改善が認められる。
【００４５】
図６は、１〜１０ｍｅｒの断片（パネルＡ）、１〜２０ｍｅｒの断片（パネルＢ）、１〜３０ｍｅｒの断片（パネルＣ）のＵＶ−ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ質量スペクトルである。図６のパネルは、ピークの分解能が良好であることを示しており、この方法により供給された断片を効率的に配列決定できることが証明された。
【００４６】
図８は、好ましくはマトリックス３−ＨＰＡの存在下で、ａｒａ−ＲＮＡ１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒラダーが、シグナル強度の低下に対する抵抗性を有し、従って、ａｒａ−ＮＴＰがＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析および／または配列決定に有効に利用できることを示している。
【００４７】
本発明のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ法に使用されるマトリックスは、ＭＡＬＤＩ法に通常使用されるマトリックス、例えば、３−ＨＰＡ、ＴＨＡＰ、２，５−ＤＨＢＡ（Ｚｈｕ，Ｙ．Ｆ．ｅｔ  ａｌ．，Ｒａｐｉｄ  Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ，１９９６，１０，３８３−３８８；  Ｔｎａｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９７，６９，３０２−３１２）から選択できる。特定の実験条件に特異的なマトリックスを選択することは、シグナルの良好な分解能とシグナル強度の低下に対する抵抗性を得るために重要と思われる。例えば、ＭＡＬＤＩ分析アラビノ−１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒ（図８Ａ）において、マトリックス３−ＨＰＡの選択は好ましく、有利であると考えられる。
【００４８】
ＲＮＡ配列または断片の配列決定に関して、配列決定方法は、本技術分野において、例えば、Ｆａｕｌｓｔｉｃｈ，Ｋ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９７，６９，４３４９−４３５３；  およびＷｏｕｎｅｒ，Ｋ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ  ＆  Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，１９９７，１６，５７３−５７７により報告されている。しかし、これらの方法は、ＲＮＡゲノム断片の配列決定に関するもので、オリゴリボヌクレオチドに修飾リボヌクレオチドの導入を必要とする本発明の方法の目的に使用することはできない。
【００４９】
従って、本発明の別の側面によれば、「転写配列決定」（ＴＳ）およびＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳと呼ばれる方法を用いるＤＮＡヌクレオチド配列の決定方法に関する。
【００５０】
ＴＳ法は、Ｓａｓａｋｉ，Ｎ．ｅｔ  ａｌ．，（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１９９８，９５，３４５５−３４６０）に説明されており、また米国特許６，０７４，８２４号，およびＰＣＴ出願ＷＯ９９／０２７２９にも説明されている。ＴＳは、Ｉ）ＡＴＰ、ＧＴＰ、ＣＴＰ、ＵＴＰおよびその誘導体からなる群から選択されるリボヌクレオシド−５’−三リン酸（鎖伸長リボヌクレオチドとしても知られる）を提供するステップと、ＩＩ）ＲＮＡポリメラーゼと該ＲＮＡポリメラーゼのためのプロモーター配列を含むＤＮＡ鋳型断片または配列の存在下で、前記リボヌクレオチドを、一種類以上の３’−ｄＮＴＰ誘導体（鎖終結リボヌクレオチド）と反応させるステップと、ＩＩＩ）精製されたＲＮＡ転写産物を分離し、ＲＮＡ転写物（およびＤＮＡ鋳型）のリボヌクレオチド配列を決定するステップとを含むＤＮＡ鋳型のＤＮＡヌクレオチド配列の決定方法を含む。
【００５１】
本発明の更なる側面によれば、本発明は、ａ）Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰ、Ｓ−２’−Ｃｌ−ＮＴＰ、Ｓ−２’−ＮＨ２−ＮＴＰ、Ｓ−２’− Ｎ３−ＮＴＰ、Ｓ−ＮＴＰ）またはａｒａ−ＮＴＰといったリボヌクレオチドを提供するステップと、ｂ）ステップａ）のリボヌクレオチドを一種類以上の３’−ｄＮＴＰ誘導体と、ＲＮＡポリメラーゼとＲＮＡポリメラーゼのためのプロモーター配列を含むＤＮＡ鋳型断片または配列の存在下で反応させ、オリゴリボヌクレオチド転写産物を得るステップと、ｃ）前記オリゴリボヌクレオチド転写産物をＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより分析し、転写産物配列とＤＮＡ鋳型配列を決定するステップとを含む方法に関する。
【００５２】
オリゴリボヌクレオチド転写産物は、好ましくはＭＡＬＤＩステップを適用する前に精製される（Ｗｕ，Ｑ．ｅｔ  ａｌ．，Ｒａｐｉｄ  Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｕｍ．，１９９６，１０，８３５−８３８）。
【００５３】
任意で、米国特許第６，０７４，８２４号に開示されているように、ＤＮＡ鋳型は、ＴＳを実施する前に増幅工程にかけることができる。
【００５４】
上記方法の工程ａにおいて、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰは、Ｓ−２’−ｅ−ＡＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＧＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＣＴＰ、Ｓ−２’−ｅ−ＵＴＰ、およびそれらの誘導体からなる群から選択され（この場合、「ｅ」は、好ましくはＦ、Ｃｌ、ＮＨ２、Ｎ３またはＯＨである。）；ａｒａ−ＮＴＰは、ａｒａ−ＡＴＰ、ａｒａ−ＧＴＰ、ａｒａ−ＣＴＰ、ａｒａ−ＵＴＰおよびそれらの誘導体からなる群から選択される。
【００５５】
「それらの誘導体」という句は、例えば、Ｐａｔｅｎｔｉｎ  Ｖｅｒｓｉｏｎ  ２．１の表１３−３、Ｕｓｅｒ  Ｍａｎｕａｌ、米国特許庁、または世界知的所有権機関基準ＳＴ．２５（１９９８）、付録２、表２に一覧されている修飾塩基を有する本技術分野において既知のあらゆる修飾を含むＮＴＰまたはｄＮＴＰを包含することを意図している。
【００５６】
３’−ｄＮＴＰ誘導体（鎖終結リボヌクレオチドとしても知られる）は、上記に開示されているＳ−２’−ｅ−、Ｓ−およびアラビノの様な修飾を含む３’−ｄＡＴＰ、３’−ｄＧＴＰ、３’−ｄＣＴＰ、３’−ｄＵＴＰおよびそれらの誘導体からなる群から選択される。簡単に述べると、これらは、３’位にデオキシを持つ本発明の修飾リボヌクレオチドと対応しているため、これらはリボヌクレオチド転写合成を終結させる。これらは、Ｓ−２’−ｅ−３’−ｄＮＴＰ、Ｓ−３’−ｄＮＴＰ、ａｒａ−３’−ｄＮＴＰまたはそれらの誘導体としても表示できる。
【００５７】
ＲＮＡポリメラーゼは、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）、またはａｒａ−ＮＴＰまたはそれらの誘導体、およびＳ−２’−ｅ−３’−ｄＮＴＰ（好ましくはＳ−３’−Ｆ−ｄＮＴｐまたはＳ−３’−ｄＮＴＰ）、ａｒａ−３’−ｄＮＴＰまたはそれらの誘導体を組み込むことができるあらゆるＲＮＡポリメラーゼが可能である（Ｐａｄｉｌｌａ，Ｒ．，；  Ｓｏｕｓａ  Ｒ．Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１９９９，２７，１５６１−１５６３；およびＧｒｉｆｆｉｔｈｓ，Ａ．Ｄ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１９８７，１５，４１４５−４１６２）。適切なＲＮＡポリメラーゼの例は、Ｔ７  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｔ３  ＲＮＡポリメラーゼ、Ｋ１１  ＲＮＡポリメラーゼ、ＳＰ６  ＲＮＡポリメラーゼ、ＢＡ１４  ＲＮＡポリメラーゼである（Ｈｙｏｎｅ−Ｍｙｏｎｇ  Ｅｕｎ，”Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  Ｐｒｉｍｅｒ  ｆｏｒ  Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ＤＮＡ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ”  Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．，１９９６，Ｃｈａｐｔｅｒ”ＲＮＡ  Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ”）。ＴＳ法に特に有利なのは、ＮＴＰおよび／または３’−ＮＴＰの組み込み能が増強されたＷＯ／０２７２９に説明されている突然変異を持つＲＮＡポリメラーゼである。これらの突然変異ＲＮＡポリメラーゼは、例えば、突然変異Ｆ６４４Ｙ、Ｌ６６５Ｐ、Ｆ６６７Ｙ、Ｌ６６５Ｐ／Ｆ６６７Ｙ、Ｆ６６４Ｙ／Ｌ６６５Ｐ／Ｆ６６７Ｙの少なくとも一つを有するＴ７  ＲＮＡポリメラーゼ；突然変異Ｆ６４５Ｙ、Ｌ６６６Ｐ、Ｆ６６８Ｙ、Ｆ６４５Ｙ／Ｌ６６６Ｐ、Ｆ６４５Ｙ／Ｆ６６８Ｙ、Ｌ６６５６／Ｆ６６８Ｙ、Ｆ６４５Ｙ／Ｌ６６６Ｐ／Ｆ６６８Ｙの少なくとも一つを持つＴ３  ＲＮＡポリメラーゼ；突然変異Ｌ６６８Ｐ、Ｆ６９０Ｙ、Ｌ６８８Ｐ／Ｆ６９０Ｙの少なくとも一つを持つＫ１１  ＲＮＡポリメラーゼである。好ましくは、ＲＮＡポリメラーゼは、突然変異Ｆ６４４Ｙおよび／またはＦ６６７Ｙを持つＴ７  ＲＮＡである。適切な突然変異ＲＮＡポリメラーゼのより完璧な説明と、使用される専門用語の説明は、ＷＯ９９／０２７２９に記載されている。更なる有用なＲＮＡポリメラーゼは、Ｐａｄｉｌｌａ，Ｒ．ａｎｄ  Ｓｏｕｓａ，Ｒ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９９９，２７，１５６１−１５６３に説明されているＴ７  ＲＮＡポリメラーゼＹ６３９Ｆである。
【００５８】
一旦、本技術分野において既知のＴＳ法（上記引用文献参照）に従い、本発明の修飾リボヌクレオチドを含むＲＮＡ転写物断片が調製されれば、前記ＲＮＡ転写物断片は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ法を用いて配列決定することができる。
【００５９】
Ｔ７  ＲＮＡポリメラーゼにより産生された転写物Ｓ−２’−ｅ−ＲＮＡ（好ましくは、Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡまたはＳ−ＲＮＡ）は、Ｒｐ−チオホスホジエステル結合のみを有する。Ｒｐ−Ｓ−結合を維持するために、転写物は、ＲＮＡ切断、ヌクレアーゼＳ１、ヌクレアーゼＰ１、リボヌクレアーゼＴ１、リボヌクレアーゼＡに対する抵抗能を示す（Ｐａｄｉｌｌａ，Ｒ．；  Ｓｏｕｓａ  Ｒ．Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１９９９，２７，１５６１−１５６３；  Ｄａｈｍ，Ｓ．Ｃ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １９９３，３２，１３０４０−１３０４５；  Ｌｏｖｅｒｉｘ，Ｓ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ＆  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ２０００，７，６５１−６５８）。
【００６０】
本発明は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳとＳ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）またはａｒａ−ＮＴＰを用いるＳＮＰの決定方法にも関する。ＳＮＰ決定方法は、上記に説明されている様に、ＴＳ法を用いて、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを適用して実現できる。
【００６１】
特に、多型性を決定するためには、同じ遺伝子または遺伝子断片の少なくとも２つの対立遺伝子（または一つの対立遺伝子と野生型）が配列決定されなくてはならない。あるいは、一つ以上の対立遺伝子が配列決定され、既知の配列決定された対立遺伝子（または野生型）と比較される。
【００６２】
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＳＮＰ決定の一般方法と異なるアプローチは、米国特許第５，９６５，３６３号に説明されている。
【００６３】
好ましくは、多型性に関して分析される配列または断片転写物（オリゴヌクレオチド）は、望ましくない核酸産物をスペクトルから除去するために、厳密な精製が行われる。更に、分析されるオリゴリボヌクレオチドの大きさは、必要な質量分解能と精度を保証できる質量分析の範囲内でなくてはならない（米国特許第５，９６５，３６３号参照）。
【００６４】
特定の実施例において、鋳型ＤＮＡは、本技術分野において既知の技術により、特異的プライマーを用いて増幅できる。その時、標的配列（すなわち、多型性を含むと推定される分析および配列決定の対象となる配列）が識別される。従って、標的配列（例えば、エキソンまたはそれより短い配列に対応）が、好ましくは適切なプライマーを用いて増幅ステップに、あるいはＤＮＡ鋳型レベルで一つ以上のフランキング領域部分を切り取ることにより、取り出される。次に、転写産物が調製され、短縮された（増幅されたか、あるいは増幅されない）標的オリゴリボヌクレオチドのそれぞれの質量がＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いて決定される。この方法は、野生型標的核酸または前記標的核酸のその他の対立遺伝子と比較した質量の変動性を検出することにより一つの標的核酸における多型性を検出するために利用できる。
【００６５】
本方法は、一組の種々の標的核酸における多型性を検出するためにも利用でき、方法は、（任意で前記標的核酸のそれぞれの増幅も含み）、標的オリゴヌクレオチドの長さを減じ、および／または分離し、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより、本発明の組み込まれたリボヌクレオチドを含む転写産物の質量を、ＴＳ法を用いて、決定することを含む。
【００６６】
本発明は更に、ｉ）ＲＮＡ転写産物を合成するための１組の鎖伸長リボヌクレオシド三リン酸またはアルファ−ホスホチオエート化物であって、鎖伸長リボヌクレオシドは、Ｓ−２’−ｅ−ＮＴＰ（好ましくはＳ−２’−Ｆ−ＮＴＰまたはＳ−ＮＴＰ）およびａｒａ−ＮＴＰからなる群から選択される１組の鎖伸長リボヌクレオシド三リン酸またはアルファ−ホスホチオエート化物と、ｉｉ）ＲＮＡ転写産物の合成を終結させ、塩基特異的な終結相補的リボヌクレオチド転写物断片のセットを生成するための一種類以上の鎖終結リボヌクレオチドと、ｉｉｉ）ＲＮＡポリメラーゼと、ｉｖ）鋳型または標的での増幅に適切な１組のプライマーと、ｖ）ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析用の一種類以上のマトリックスとを含む、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによるＤＮＡ鋳型またはＲＮＡ転写産物の配列決定キットにも関する。マトリックスは、例えば、Ｚｈｕ，Ｕ．Ｆ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｒａｐｉｄ  Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ，１９９６，１０，３８３−３８８；  Ｔａｎｇ，Ｗ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，１９９７，６９，３０２−３１２に説明されているものから選択できる。
【００６７】
本発明は、ＤＮＡ鋳型またはＲＮＡ転写産物の配列決定キットに開示されている同じ成分（ｉ）〜（ｉｉｉ）と任意の成分である（ｉｖ）〜（ｖ）と、更に任意で、増幅される標的オリゴヌクレオチドの長さを減じることができる少なくとも一種類の制限エンドヌクレアーゼとを含むＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いるＳＮＰの決定キットにも関する（米国特許第５，９６，３６３号）。
【００６８】
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳ法を用いる本発明の産物と方法は、本発明が質量範囲の増加に伴うシグナル強度の低下という重大な現象を軽減することから、例えば、ＤＮＡ再配列決定および／またはＳＮＰ検査に特に有利である。
【００６９】
本発明は、以下の実施例を引用して、更に詳細に説明される。
【００７０】
［実施例］
＜質量分析のマトリックスおよび設定＞
使用したマトリックスは、アルドリッチケミカル社（ミルウォーキー、ウィスコンシン州）から購入した。マトリックスである３−ヒドロキシピコリン酸（３−ＨＰＡ）の調製は、５０％アセトニトリルに溶解された０．５Ｍの３−ＨＰＡを１８０μｌと、ミリＱ水に溶解された０．５Ｍのクエン酸第二アンモニウム２０μｌとを混合するプロトコールに従い、実験に使用した。マトリックスである２，５−ジヒドロキシ安息香酸（２，５−ＤＨＢＡ）は、１０％のアセトニトリルの０．５Ｍ溶液として調製された。２，４，６−トリヒドロキシアセトフェノン（２，４，６−ＴＨＡＰ）／２，３，４−トリヒドリキシアセトフェノン（２，３，４−ＴＨＡＰマトリックスの調製は、以前に既述されたプロトコールに従い（Ｚｈｕ，Ｙ．Ｆ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｒａｐｉｄ  Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ．１９９６，１０，３８３−３８８）、２，４，６−ＴＨＡＰ；２，３，４−ＴＨＡＰ：クエン酸第二アンモニウムのモル比２：１：１を全てのＴＨＡＰ調製に使用した。マトリックスである２，５−ＤＨＢＡまたはＴＨＡＰを、ＭＡＬＤＩ過程におけるオリゴヌクレオチド断片化の証明と検討のために使用した。１μｌあたり５０ｐｍｏｌの各１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒのオリゴヌクレオチドを、等モル混合物調製品として混合した。直径２ｍｍのステンレススチール製プローブチップにおいて、オリゴヌクレオチド試料にマトリックス溶液を加えた。この溶液を、プローブチップにおいてピペッティングにより十分混合し、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳによる分析の前に室温で結晶させた。
【００７１】
２ｎｓのパルス幅を生じる窒素レーザーを装備し、遅延抽出（ｄｅｌａｙｅｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ）電圧２０．８ｋＶ（ＩＳ／２）で２８．５ｋＶ（ＩＳ／１）において直線正イオン検出モードで運転されるＢｒｕｋｅｒ  Ｒｅｆｌｅｘ  ＩＩＩ飛行時間型質量分析計により質量スペクトルを得た。試料に使用されたレーザー出力設定は、フルレーザー出力の２０−３０％であった。全ての実験において最良のスペクトルを得るために、マトリックス表面と結晶化された試料混合物のスイートスポットが探索され、放射された。透明な結晶が、白濁色の結晶よりも有利であった。各スペクトルは合計５０ショットで構成された。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳは、文献に従って、実施した。
【００７２】
＜リボヌクレオチドおよびＤＮＡ、Ｓ−ＤＮＡ、ＲＮＡ、２’−Ｆ−ＲＮＡ、Ｓ−ＲＮＡラダーの調製＞
ＤＮＡ、Ｓ−ＤＮＡ、ＲＮＡ、Ｓ−ＲＮＡ（それぞれ図３Ａ、３Ｅ、３Ｂ、３Ｆ）ラダーをＧＥＮＳＥＴ  ＯＬＩＧＯ（京都、日本およびパリ、フランス）により合成し、ＨＰＬＣ精製した。ＤＮＡの配列は１０ｍｅｒ：ｄ（ＧＡＴＣＴＣＡＧＣＴ）（配列番号１）；２０ｍｅｒ：ｄ（ＧＡＴＣＴＣＡＧＣＴＣＴＡＡＴＧＣＧＧＴ）（配列番号２）；３０ｍｅｒ：ｄ（ＧＡＴＣＴＣＡＧＣＴＣＴＡＡＴＧＣＧＧＴＴＣＧＡＴＡＡＡＴＣ）（配列番号３）であった。
【００７３】
ＲＮＡの配列は、ＲＮＡではＴがＵである以外はＤＮＡと同じあり、１０ｍｅｒ：（ＧＡＵＣＵＣＡＧＣＵ）（配列番号４）；２０ｍｅｒ：（ＧＡＵＣＵＣＡＧＣＵＣＵＡＡＵＧＣＧＧＵ）（配列番号５）；３０ｍｅｒ：（ＧＡＵＣＵＣＡＧＣＵＣＵＡＡＵＧＣＧＧＵＵＣＧＡＵＡＡＡＵＣ）（配列番号６）と定義される。
【００７４】
Ｓ−ＤＮＡとＳ−ＲＮＡは、ホスホロチオエート置換物として合成され、ＤＮＡとＲＮＡは、それぞれ陽電荷標識を付加するために３’末端にアミンを持つ。
【００７５】
２’−フルオロ−（Ｃ）ｎ（２’−Ｆ−ＲＮＡ）（ｎ＝１０、２０、３０）は、ＴｒｉＬｉｎｋ  ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社（サンディゴ、カリフォルニア州）により合成され、ポリアクリルアミドゲルから精製された（配列番号７〜９）。以下の配列番号７〜９において、合成時ＣＰＧビーズ（ＣＰＧ，Ｉｎｃ．，リンカーンパーク、ニュージャージー州）での出発物の目的だけのために、３’位にＴが付加された。
【００７６】
ｄＴＴＰは２’修飾されず、本発明の目的と見なされなかった。２’−Ｆ−ＣＴＰのみ、オリゴマーのナンバリングに数えられた。従って、合成されたオリゴマーが１１、２１、３１ｍｅｒであっても、それらは１０、２０、３０ｍｅｒと呼ばれた。
【表１】
2004518420.tif 000002
【００７７】
原液として全てのオリゴヌクレオチドがＴＥ緩衝液（トリス塩酸ｐＨ８．０、１ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ８．０）に溶解した。ミリＱ水をその他の希釈工程で使用した。
【００７８】
＜ＤＮＡ、ＲＮＡ、２’−Ｆ−ＲＮＡラダーの分析＞
図１Ｃ、Ｄおよび図２Ｃ、Ｄおよび図２Ａ、Ｂは、３種類の２’基のそれぞれの１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒの等モル混合物が、ＭＡＬＤＩにおいて２種類のマトリックスを用いて、調製、分析されたことを示している。各図において、質量範囲の増大に伴いシグナル強度の低下が増加傾向を示した。オリゴヌクレオチドラダーの反応は、３−ＨＰＡとＴＨＡＰで同じ傾向を示した。図１Ｄ、２Ｄ、２Ｂにおいて、ＴＨＡＰを使用したＤＮＡ、ＲＮＡ、２’−Ｆ−ＲＮＡラダーの３０ｍｅｒのスペクトルは、塩基喪失に対する安定性の傾向は、２’−Ｆ−ＲＮＡ＞ＲＮＡ＞ＤＮＡの順番であったことを示している。以前の研究では、ＭＡＬＤＩ分析において、より電気陰性度の高い２’基がオリゴヌクレオチドの安定性をより高めるという同じ傾向が報告された（Ｓｃａｌｆ，Ｍ．学位論文、ウィスコンシン大学、マディソン、ウィスコンシン州、２０００）。しかし、本実施例において、２’位における電気陰性度は、シグナル強度の低下に対する抵抗性に全く影響を及ぼさなかった。
【００７９】
＜Ｓ−ＤＮＡラダーの分析＞
図１Ｃおよび１Ｄと比較した図１Ａおよび図１Ｂは、２０ｍｅｒと３０ｍｅｒのスペクトルに焦点を合わせると、ＤＮＡにおけるホスホロチオエートの置換により過剰な断片化が促進されたことを示している。Ｓ−ＤＮＡラダーにおいて示される様に、質量範囲の増加に伴うシグナル強度の低下は、そのＤＮＡにおいて遙かに劇的であった。以前の研究も、オリゴＳ−ＤＮＡが、ＭＡＬＤＩ分析における配列決定産物に適切でないことを示唆していた（Ｓｃｈｕｅｔｔｅ，Ｊ．Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ａｎａｌ．１９９５，１３，１１９５−１２０３）。
【００８０】
＜Ｓ−ＲＮＡラダーの分析＞
Ｓ−ＲＮＡラダーを、マトリックスである３−ＨＰＡおよびＴＨＡＰにおいて分析した。図２Ｃおよび２Ｄと比較した図４Ａおよび４Ｂは、ＲＮＡにおけるホスホロチオエートの置換により、両マトリックスを使用し、質量範囲の増加に伴うシグナル強度の低下に対する抵抗性が得られたことを示している。ＴＨＡＰにおける各ピークのシグナル強度はほぼ同じであった。
【００８１】
＜Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡラダーの合成と分析＞
ホスホロチオエート置換２’−フルオロ−（Ｃ）ｎＴ（配列番号７〜９）としてのＳ−２’−フルオロ−（Ｃ）ｎＴ（Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ）（図３Ｇ）も、ＴｒｉＬｉｎｋ  Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社により調製された。オリゴマーの長さのナンバリングは１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒで、３’末端におけるＴの存在は、ナンバリングの理由から考慮に入れられなかった。同様に、図６に示す粗オリゴマーは、３’末端位のＴをナンバリングの理由から考慮に入れられなかったため、１〜１０ｍｅｒ、１〜２０ｍｅｒ、１〜３０ｍｅｒと表示される。
【００８２】
粗Ｓ−２’−Ｆ−（Ｃ）ｎＴ（Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ）を合成し、余分な塩を除去するためにエタノール沈殿により処理し、ナトリウム塩の形態に交換した（ＴｒｉＬｉｎｋ  Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、サンディエゴ、カリフォルニア州から購入時）。粗１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡは精製されなかった。従って、粗１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡは、１〜１０ｍｅｒ、１〜２０ｍｅｒ、１〜３０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡをそれぞれ含んでいた。これらの粗オリゴヌクレオチドを、図６に報告されている実験に使用した。
【００８３】
次に、同じ種類の粗オリゴヌクレオチドをポリアクリルアミドゲルにより精製し、１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒの精製オリゴリボヌクレオチド（Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ）を得た。これらの精製オリゴリボヌクレオチドを、図５に報告されている実験に使用した。
【００８４】
図５Ａおよび５Ｂにおいて、Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡの１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒラダーは、極めて鋭いシグナルピークを示し、塩基喪失は認められず、３−ＨＰＡおよびＴＨＡＰマトリックスを使用して同等のシグナル強度ピークを示した。
【００８５】
図６Ａおよび６Ｂは、粗Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡの１０ｍｅｒと２０ｍｅｒが３−ＨＰＡにおいて分析されたことを示す。ラダースペクトルが、質量範囲の増加に伴い、シグナル強度の低下に対し、どの位抵抗性を示すかを判定するために、対照としての２’−Ｆ−ＲＮＡのスペクトルとの比較を実施した。図２Ａに示す２’−Ｆ−ＲＮＡラダーのスペクトルにおいて、１０ｍｅｒのシグナル強度を１００とした時、２０ｍｅｒのシグナル強度は２０であった。質量が約２倍に増加すると、強度は５倍低下した。しかし、図６Ｂに示す２０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡのスペクトルにおいて、９ｍｅｒの強度を１００とすると、１８ｍｅｒの強度は６２であった。質量が約２倍増加したとき、強度の低下は２倍よりも少なかった。Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡのシグナルピークの番号が、シグナル強度の低下に及ぼす影響は少なかった。この結果から、Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡが、質量範囲の増加に伴いシグナル強度の低下に対し抵抗性の傾向を確実に有することが証明される。図６Ｃは、粗Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡが３−ＨＰＡにおいて分析されたことを示している。質量範囲に伴うシグナル強度の低下が同様に証明された。しかし、シグナル強度の低下に対する抵抗性は、産物の長さがより長く、モル数がより小さい条件で出現した。等モルのＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡラダーは、ほぼ同じシグナル強度をＭＡＬＤＩ分析において示すことが可能であると予測される。
【００８６】
このデータから、Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡはＳ−ＲＮＡと共に、シグナル強度の低下に対する抵抗能を有することが証明された。
【００８７】
＜ＣＨ３Ｓ−ＲＮＡの合成と分析＞
ＲＮＡのリン酸基のアルファ位へのアルキル−チオ基の導入効果を確認するために、ＣＨ３Ｓ−ＲＮＡの分析を実施した。Ｇｕｔ  ｅｔ  ａｌ．は、１０ｍｅｒホスホロチオエート化ＤＮＡを用いて、質量分析による選択的ＤＮＡアルキル化および検出の手順を提示した（Ｇｕｔ，Ｉ．Ｇ．ｅｔ  ａｌ．，Ｒａｐｉｄ  Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ  １９９７，１１，４３−５０）。同じ手順が、陽電荷標識した１０、２０、３０ｍｅｒのＣＨ３Ｓ−ＲＮＡの生産に使用された。従って、陽電荷３’標識ＲＮＡ（ＣＨ３Ｓ−オリゴリボヌクレオチド−Ｎ＋（ＣＨ３）３が合成された。全てメチル化されたホスホロチオエート、
【表２】
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が、ＣＨ３Ｉ反応を用いて、Ｇｕｔ  ｅｔ  ａｌ．に従って、合成された。分析の再現性が、マトリックスとしてアルファ−シアノ−ヒドロキシ桂皮酸メチルエステル（ＣＮＭＥ）を用いる本ＭＡＬＤＩ法において証明された。
【００８８】
ＣＨ３Ｓ−オリゴリボヌクレオチド−Ｎ＋（ＣＨ３）３の分析において、陽電荷標識付加後１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒのＣＨ３Ｓ−ＲＮＡ等容量を、等モル混合物の調製品として混合した。
【００８９】
図７Ａ、Ｂは、これらのオリゴＣＨ３−ＲＮＡのスペクトルを示す。図７Ａ、Ｂに示すＣＨ３Ｓ−ＲＮＡの分析において、予想される無傷の親イオンピークの代わりに多くの短いスペクトルが観察された。
【００９０】
これらのスペクトルの対照スペクトルをＳ−ＲＮＡのスペクトルとして図４Ａ、Ｂに示す。
【００９１】
このデータは、リボヌクレオチドのアルファ−リン酸基へのアルキル−チオ基の導入（図７）がシグナル強度の低下を回避しないのに対し、チオ基のみの導入（図４）がシグナル強度の低下に対する抵抗性を示すことを示している。これは、Ｓ−ＮＴＰのシグナル強度の低下に対する抵抗性の効果が予測できなかったことの更なる確証である。
【００９２】
＜ａｒａ−ＲＮＡラダーの分析＞
配列番号７〜９の配列をそれぞれ持つアラビノ−（Ｃ）ｎＴラダー（ｎ＝１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒ）は、ＴｒｉＬｉｎｋ  Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（サンディエゴ、カリフォルニア州）により合成され、ポリアクリルアミドゲルから精製された。２’−Ｆ−ＲＮＡとＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡの合成と同様に、この場合も、３’末端位のＴはナンバリングの理由から考慮に入れられなかったため、オリゴマーの長さは、１０ｍｅｒ、２０ｍｅｒ、３０ｍｅｒと表示された。事実、ｄＴＴＰは、ａｒａ−ＮＴＰが持っている２’−エピマー位の−ＯＨを持っていない。
【００９３】
アラビノ核酸は、リボ核酸誘導体よりも、蛇毒ホスホジエステラーゼ（ＳＶＤＰＥ）加水分解に対してより安定であると報告されていた；すなわちａｒａ−ＲＮＡ＞ＲＮＡ＞２’−Ｆ−ＲＮＡ（Ｎｏｒｏｎｈａ，Ａ．Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２０００，３９，７０５０−７０６２）。本発明者等は、オリゴヌクレオチドの糖−リン酸の傾向に焦点を合わせていたので、ＳＶＤＰＥ加水分解に対する安定性の順序を検討して、ＭＡＬＤＩ分析における断片化に対する安定性に適合させる様にした。ＭＡＬＤＩ分析におけるａｒａ−ＲＮＡラダーの反応は、マトリックスである３−ＨＰＡおよびＴＨＡＰにおいて更に確認された。図８Ａは、極めて鋭いシグナルピークと質量範囲の増大に伴うシグナル強度の低下に対する抵抗性が、３−ＨＰＡを使用して観察されたことを示している。各ピークのシグナル強度は、ほぼ同等であった。マトリックスであるＴＨＡＰにおけるａｒａ−ＲＮＡラダーも、図８Ｂに示すように、２０ｍｅｒと３０ｍｅｒの間で抵抗性を示した。ａｒａ−ＲＮＡラダーは、図８Ａおよび８Ｂに示すように、質量範囲の増大に伴いシグナル強度の低下に対する抵抗性を示した。ＲＮＡのホスホロチオエート置換は、骨格切断を困難にすると理解されている。この効果が研究され、糖−リン酸における骨格切断が、ＭＡＬＤＩ分析において、質量範囲の増大に伴うシグナル強度の低下に対し重要な役割の一つを果たしている可能性が証明された。
【００９４】
図８、むしろ図８Ａは、本技術における開示と対照的に、ａｒａ−ＮＴＰが、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳを用いてシグナル強度の低下に対し抵抗できることを示している。
【００９５】
＜配列決定法＞
特異的な鋳型ＤＮＡ断片または配列のＲＮＡ転写物断片は、上記に示す引用文献に開示されているＴＳ法により生産できる。ＲＮＡ転写物断片は、一定量の脱塩酸性溶液により処理でき、不純物を殆ど含まず回収できる。次に転写物をマトリックスと混合し、結晶化させる。ＲＮＡ配列を、本技術分野において既知の方法により、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＳにより決定する。次に、鋳型ＤＮＡ塩基の配列を、転写物ＲＮＡ塩基に従って、決定する。
【００９６】
本明細書において引用された全ての特許文献、出版物およびその他の資料は、引用することにより本明細書の一部をなすものとする。
【００９７】
説明されている本発明は、多くの方法で変更できることは明らかである。このような変更は、本発明の精神と範囲を逸脱しないものと見なされ、本技術に精通する者にとって明らかなこのような変更は全て、請求の範囲に含まれる。
【図面の簡単な説明】
【図１】
マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＡ）およびＴＨＡＰ（パネルＢ）をそれぞれ使用して得られたＳ−ＤＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップ（Ａ）および（Ｂ）の試料／マトリックスの容量（μｌ）は０．５／１．０であった。マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＣ）およびＴＨＡＰ（パネルＤ）をそれぞれ使用して得られたＤＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップ（Ｃ）および（Ｄ）の試料／マトリックスの容量（μｌ）は０．５／１．０であった。
【図２】
マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＡ）およびＴＨＡＰ（パネルＢ）をそれぞれ使用して得られた２’Ｆ−ＲＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップ（Ａ）および（Ｂ）の試料／マトリックスの容量（μｌ）は０．８／０．８であった。マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＣ）およびＴＨＡＰ（パネルＤ）をそれぞれ使用して得られたＲＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップ（Ｃ）および（Ｄ）の試料／マトリックスの容量（μｌ）は０．８／０．８であった。
【図３】
（Ａ）デオキシ−；（Ｂ）リボ−；（Ｃ）２’−フルオロ−；（Ｄ）アラビノ−；（Ｅ）ホスホロチオエート化デオキシ−；（Ｆ）ホスホロチオエート化リボ−；（Ｇ）ホスホロチオエート化２’−フルオロ−；（Ｈ）ホスホロチオエート化２’−電気陰性（２’−ｅ）置換基オリゴヌクレオチドの構造。
【図４】
マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＡ）およびＴＨＡＰ（パネルＢ）をそれぞれ使用して得られたＳ−ＲＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップの試料／マトリックスの容量（μｌ）は（Ａ）：０．５／１．０、（Ｂ）：０．８／０．８であった。［２０ｍｅｒ＋２Ｈ］２＋および［３０ｍｅｒ＋２Ｈ］２＋ピークとして表示されたピークは、二価の陽電荷効果を意味する。
【図５】
マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＡ）およびＴＨＡＰ（パネルＢ）をそれぞれ使用して得られたＳ−２’−Ｆ−ＲＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップの試料／マトリックスの容量（μｌ）は（Ａ）：０．５／１．０、（Ｂ）：０．８／０．８であった。
【図６】
マトリックスとして３−ＨＰＡを使用して得られた粗（精製されていない）Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ１０ｍｅｒ（パネルＡ）、２０ｍｅｒ（パネルＢ）、３０ｍｅｒ（パネルＣ）のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。濃度（Ａ）：２５０μＭ、（Ｂ）：２５０μＭ、（Ｃ）２５０μＭは、それぞれ、精製最終産物（Ａ）：１０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ、（Ｂ）：２０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡ、（Ｃ）：３０ｍｅｒ  Ｓ−２’−Ｆ−ＲＮＡの濃度として計算された。プローブチップ（Ｃ）の試料／マトリックスの容量（μｌ）は（Ａ）：０．５／１．０、（Ｂ）：０．８／０．８であった。
【図７】
マトリックスとしてクエン酸第二アンモニウムを含まない３−ＨＰＡ（パネルＡ）および２，５−ＤＨＢＡ（パネルＢ）を使用して得られたＣＨ３Ｓ−ＲＮＡ−Ｎ＋マトリックスの等モル混合物の（Ａ）および（Ｂ）のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップの試料／マトリックスの容量（μｌ）は（Ａ）：１．０／１．０、（Ｂ）：０．５／１．０であった。
【図８】
マトリックスとして３−ＨＰＡ（パネルＡ）およびＴＨＡＰ（パネルＢ）をそれぞれ使用して得られたａｒａ−ＲＮＡの等モル混合物のＵＶ−ＭＡＬＤＩ質量スペクトルを示す図である。プローブチップの試料／マトリックスの容量（μｌ）は（Ａ）：０．５／２．０、（Ｂ）：０．５／１．５であった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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