(57)【要約】本発明は、人を含めた動物の心身症、抑うつ症および神経精神病、例えば不安、うつ病、不眠症、統合失調症、てんかん、痙攣および慢性の痛みの治療法について開示する。適したＤＰ　ＩＶ阻害剤を投与すると、その結果として哺乳動物の脳におけるニューロペプチドＹ（ＮＰＹ）の分解が減少する。そのような治療は、機能的に活性なニューロンのＮＰＹ（１−３６）の濃度低下を減じたりまたは遅らせることになる。内因性ＮＰＹ（１−３６）の安定性が高まった結果として、ＮＰＹ活性が延長され、それによって特に機能的に活性なＮＰＹ　ＹＩレセプター活性が生じ、それによって抗うつ、不安解消、鎮痛、抗高血圧および他の神経学的効果が促進される。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶもしくはＣＤ２６）またはＤＰ　ＩＶ様酵素の阻害剤の、不安を含めたストレスに対する行動的および／または神経学的適応反応しやすさを調節する薬剤の製造のための使用。
【請求項２】
内因性、ＣＮＳ−局在ニューロペプチドＹ（ＮＰＹ）および類似の性質を共有する他の基質の分解を減少させる薬剤の製造のための請求項１に記載の使用。
【請求項３】
心身症、抑うつ症および神経精神病治療用薬剤の製造のための請求項１または２に記載の使用。
【請求項４】
心身症、抑うつ症および神経精神病が、不安症、うつ病、不眠症、慢性疲労、統合失調症、てんかん、摂食障害、痙攣および慢性の痛みよりなる群から選択されることを特徴とする、請求項３に記載の使用。
【請求項５】
阻害剤がニューロペプチドＹと組み合わせて用いられることを特徴とする、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
【請求項６】
阻害剤が生理学的に適合する薬剤放出賦形剤中に存在することを特徴とする、請求項１〜５のいずれか一項に記載の使用。
【請求項７】
阻害剤が、阻害剤のプロドラッグとして配合されることを特徴とする、請求項１〜６のいずれか一項に記載の使用。
【請求項８】
阻害剤が、非経口、腸内、経口若しくは吸入で使用される、または座薬として使用されることを特徴とする、請求項１〜７のいずれか一項に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
発明の背景
発明の属する技術分野
本発明は、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶ）およびＤＰ　ＩＶ様酵素の阻害剤の投与による、脳ニューロペプチドＹ（ＮＰＹ）系の内因性神経学的および神経心理学的効果の維持または増強に関する。本発明はさらに、中枢神経系（ＣＮＳ）内でのＮＰＹ　ＹＩレセプター仲介効果の増強による、高血圧、発熱、睡眠障害、食欲不振、うつ病を含めた不安関連疾患、てんかんを含めた発作、薬物禁断症状およびアルコール中毒症、認識機能障害および痴呆を含めた神経変性疾患、並びに統合失調症を含めた神経精神疾患の治療に関する。
【０００２】
技術背景
ＤＰ　ＩＶおよびＮＰＹ
ＤＰ　ＩＶ（ＣＤ２６；ＥＣ３．４．１４．５）は３つの機能的役割を有するエキソぺプチダ−ゼである。ＤＰ　ＩＶは、ポリペプチド、循環ホルモンおよびケモカインのＮ−末端からのＸａａ−Ｐｒｏジペプチドの放出（Ｍｅｎｔｌｅｉｎ等， １９９９； Ｐａｕｌｙ等， １９９９）、Ｔ細胞依存性免疫反応（Ｋａｈｎｅ等， １９９９； Ｋｏｒｏｍ等， １９９７）並びに転移（Ｃｈｅｎｇ等， １９９８； ２０００）にかかわる。ＤＰ　ＩＶは、端から２番目にあるＮ−末端プロリンおよびアラニン残基の後にペプチドを選択的に開裂する。この酵素に対する内因性基質には内分泌物、例えばＧＩＰおよびＧＬＰ−１のようなグルコース依存性インスリン分泌刺激ポリペプチドが含まれる。ＤＰ　ＩＶの存在下では、これらのホルモンは酵素によって不活性な形に分解される。
【０００３】
ＮＰＹの発見
ニューロペプチドＹ（ＮＰＹ）、膵臓ポリペプチド系に属する３６アミノ酸ペプチドは、１９８２年にブタの脳から初めて単離された（ＴａｔｅｍｏｔｏおよびＭｕｔｔ， １９８２）。ＮＰＹは心臓血管系を神経支配する全ての交感神経内に存在し、脳および心臓に最も多く存在するペプチドである。さらに、ヒトではなくラットでは、ＮＰＹは血小板および内皮においてニューロン外にも見られる（Ｚｕｋｏｖｓｋａ−Ｇｒｏｊｅｃ等， １９９３）。本来、ＮＰＹは有効な血管収縮物質および神経モジュレーターとして知られていた。ストレス、運動および心筋虚血によって放出されるＮＰＹは、冠状心臓疾患、うっ血性心不全、および高血圧に関係している（Ｚｕｋｏｖｓｋａ−Ｇｒｏｊｅｃ等， １９９８）。近年、ＮＰＹは、食欲を起こす力があるため肥満および糖尿病において役割を演じているのではないかと考えられている（Ｋａｌｒａ等， １９９９）。最近の発見では、ＮＰＹはラットの大動脈平滑筋細胞のミトゲンでもあることが示されている（Ｚｕｋｏｖｓｋａ−Ｇｒｏｊｅｃ等， １９９９）。
【０００４】
ＮＰＹ関連の研究は次のような少なくとも３つの主な方向に集中している：（１）ノルアドレナリンとの同時発現による、同時伝達および交感神経性血管収縮；（２）有効な申し分のない効果による、ＣＮＳ内での神経伝達および機能；および（３）ＮＰＹが公知の最も高度に保護された生物活性ペプチドの１つであるためのＮＰＹの進化（ＣｏｌｍｅｒｓおよびＷａｈｌｅｓｔｅｄｔ， １９９３； Ｌｕｎｄｂｅｒｇ， １９９６； ＷａｈｌｅｓｔｅｄｔおよびＲｅｉｓ， １９９３； Ｗｅｔｔｓｔｅｉｎ等， １９９６）。ＮＰＹは少なくとも６つのレセプター（Ｙ１〜Ｙ６）に作用し、様々なペプチド薬理学およびＣＮＳにおける明瞭な分布を有する（Ｇｅｈｌｅｒｔ， １９９８）（表１）。
【０００５】
ＮＰＹ、ＮＰＹレセプターサブタイプおよびｍＲＮＡの分布
ヒトおよびラットの脳のＣＮＳ内でのＮＰＹ自体、ＮＰＹレセプターたんぱく質およびそれらのｍＲＮＡの分布が最近、再検討されている（Ｄｕｍｏｎｔ Ｙ， Ｊａｃｑｕｅｓ Ｄ， Ｓｔ−Ｐｉｅｒｒｅ， Ｊ．−Ａ．， Ｔｏｎｇ， Ｙ．， Ｐａｒｋｅｒ， Ｒ．， Ｈｅｒｚｏｇ Ｈ．およびＱｕｒｉｏｎ， Ｒ．， ２０００； Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｎｅｕｒｏａｎａｔｏｍｙ， Ｖｏｌ．１６： Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ， Ｐａｒｔ Ｉ； Ｑｕｉｒｉｏｎ， Ｒ．， Ｂｊｏｒｋｌｕｎｄ， Ａ．およびＨｏｋｆｅｌｄ， Ｔ．， 編集者）。概略は表１に示す。
【０００６】
ＮＰＹを含むニューロンは、しばしば腺房および血管と結合する、ヒトを含む様々な種の鼻粘膜で確認されている（Ｂａｒａｎｉｕｋ等， １９９０； Ｇｒｕｎｄｉｔｚ等， １９９４）。イヌの鼻粘膜（ヴィディウス神経）への副交感神経供給の刺激はその領域の血流を増し、主にアトロピン耐性の原因となる。ＮＰＹの静脈内投与は、副交感神経刺激により、血管拡張を減じ、この効果はＮＰＹ　Ｙ１−選択的アゴニスト［Ｌｅｕ３１、Ｐｒｏ３４］ＮＰＹによる効果に似ていないが、ＮＰＹ　Ｙ２−レセプターアゴニストＮ−アシル［Ｌｅｕ２８、Ｐｒｏ３１］ＮＰＹ（２４−３６）の投与による効果によく似た効果である（Ｌａｃｒｏｉｘ等， １９９４）。これは、副交感神経末端からの伝達物質放出の前接合ＮＰＹ　Ｙ２様レセプター仲介阻害と一致する。
【０００７】
ＮＰＹレセプター機能
ＮＰＹは、現在までに発見された最も豊富なニューロペプチドであることに異論はなく、ＣＮＳおよび末梢神経系（ＰＮＳ）に広く分布している。ＮＰＹは、ペプチドＹＹ（ＰＹＹ）（約７０％同族体）および膵臓ポリペプチド（ＰＰ）（約５０％同族体）と共にペプチド系を形成し；ＮＰＹおよびＰＹＹはいずれも極めて生物活性であり、一方、ＰＰはそれほど活性ではない（Ｇｅｈｌｅｒｔ， １９９８； ＷａｈｌｅｓｔｅｄｔおよびＲｅｉｓ， １９９３）（表２）。
【０００８】
試験管内分析システムにおいてニューロペプチドＹと比較したとき、ＮＰＹの２つのレセプターサブタイプは、関連ペプチドＹＹ−（１３−３６）の切断同族体に対する様々な反応に基づき、ニューロペプチドＹ　Ｙ１（後接合）およびニューロペプチドＹ　Ｙ２（前接合）と呼ばれてきた（Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ等， １９８６）。ニューロン前接合ＮＰＹレセプターの活性化は神経活性を一般に阻害して、神経インパルスに反応しておよび神経伝達物質を放出するように働く局部因子に反応して神経伝達物質の放出を減じる（Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ等， １９８６）。前接合すなわちニューロペプチドＹ　Ｙ２レセプターの分類はペプチドＹＹ（１３−３６）の作用に基づくが、多くの系において、この分子並びにニューロペプチドＹ−（１３−３６）は、昇圧活性を示す（Ｒｉｏｕｘ等， １９８６； Ｌｕｎｄｂｅｒｇ等， １９８８； Ｐｏｔｔｅｒ等， １９８９）。これは、いくつかの血管床では後接合膜上に２種類のニューロペプチドＹレセプター（ニューロペプチドＹ　ＹｊおよびニューロペプチドＹ２）があることを示しすことによって説明されてきた（Ｓｃｈｗａｒｔｚ等， １９８９）。しかしながら、これら分子の選択性の欠如は、それらの機能的反応の減少を引き出すことを可能にするＹｊレセプター上の部分的アゴニスト活性の保持によるのかもしれない。生体内研究で全体ニューロペプチドＹ分子に等しい前接合活性を示したニューロペプチドＹの１３−３６同族体、（Ｌｅｕ１７、Ｇｌｕ″、Ａｌａ２１、Ａｌａ２２、Ｇｌｕ２３、ＬｅＵ２８、ＬｅＵ３１）ニューロペプチドＹ−（１３−３６）（ＡＮＡニューロペプチドＹ−（１３−３６））は、以前に報告された（Ｐｏｔｔｅｒ等， １９８９）。
【０００９】
これらの歴史的に十分に定義されたニューロペプチドＹレセプターとは別に、多くの他のサブタイプ（Ｙ３、Ｙ４、Ｙ５およびＹ６）の存在が薬理学的根拠に基づいて示唆されてきており（Ｍｉｃｈｅｌ等， １９９８）、Ｙ１、Ｙ２、Ｙ４およびＹ５に相当するレセプターのクローニングの詳細が公表されている（Ｈｅｒｚｏｇ等， １９９２； Ｇｅｒａｌｄ等， １９９５； Ｂａｒｄ等， １９９５： Ｇｅｒａｌｄ等， １９９６）（表１）。これらの各種レセプターサブタイプの分布および生理学的意義はまだ定まっていない。一方または他方のレセプターサブタイプに対するニューロペプチドＹの切断形の選択性についての論争はいくつかあるが（Ｐｏｔｔｅｒ等， １９８９）、明らかになりつつある状況は前および後接合レセプターサブタイプへの初期の分類を支持している。１つのニューロペプチドＹレセプターサブタイプを特に発現する細胞系は開発されており、ニューロペプチドＹのレセプター選択的類似体の開発は、これらの細胞系における結合特性に主に焦点を合わせてきた（Ｓｈｅｉｋｈ等， １９８９； Ａａｋｅｒｌｕｎｄ等， １９９０； Ｆｕｈｌｅｎｄｏｒｆｆ等， １９９０）。さらに最近では、ニューロペプチドＹ　Ｙ１レセプターをコードするｃＤＮＡがクローンされており、クローンされたレセプターを発現する細胞系はニューロペプチドＹ類似体の特異的結合（Ｈｅｒｚｏｇ等， １９９２）および特定類似体によって引き出される機能的反応の両者について分析されてきた。その後の生体内調査と組み合わせたそのような結合の研究から、２つの類似体は後接合ニューロペプチドＹ　Ｙ１レセプター上で特異的に作用するものとして分類されてきた。これらのニューロペプチドＹ　Ｙレセプター選択的類似体、（Ｐｒｏ３４）ニューロペプチドＹおよび（Ｌｅｕ″、Ｐｒｏ３４）ニューロペプチドＹは、血圧を上げる点でニューロペプチドＹの作用に似ており、そしてまたニューロペプチドＹ　Ｙレセプターのみを発現する細胞系、例えばヒト神経線維芽細胞腫細胞系ＳＫ−Ｎ−ＭＣおよびクローンされたニューロペプチドＹ　Ｙレセプターを発現する線維芽細胞系への類似の結合を共有する（Ｈｅｒｚｏｇ等， １９９２）。ニューロペプチドＹ　Ｙ２レセプター作用は、生体内心臓迷走神経作用の阻害も、アセチルコリン放出阻害の徴候も示さない（Ｐｏｔｔｅｒ等， １９９１； ＰｏｔｔｅｒおよびＭｃＣｌｏｓｋｅｙ， １９９２）。
【００１０】
【表１】
2004512300.tif 000002
【００１１】
高親和力、非ペプチドＮＰＹアンタゴニスト、ＢＩＢＰ３２２６およびＢＩＢＯ３３０４の開発は、この化合物がＹ１Ｒに対する選択性を示し、少なくともＹ２Ｒ、Ｙ３ＲおよびＹ４Ｒにおける活性を持たないので、ＮＰＹレセプターの機能的特性決定を容易にした（Ｄｏｏｄｓ等， １９９６）。最近、２つのＹ２レセプターアンタゴニストが報告された。一方はＴＡＳＰ−分子（Ｇｒｏｕｚｍａｎｎ等， １９９７）であり、他方は非ペプチドアンタゴニスト（Ｗｉｅｌａｎｄ等，１９９９）であり、他の非ペプチドレセプター特異的化合物が利用できるようになった（Ｄａｎｉｅｌｓ等， １９９５）。従って、脳内での特異的レセプター遮断により、中枢ＮＰＹレセプターによって仲介される行動的および生理学的効果の機能的特性決定が可能となった。さらに、Ｙ１Ｒの欠如したマウスがつくり出されており、これらを利用することができる（Ｐｅｄｒａｚｚｉｎｉ等， １９９８）。ＮＰＹ様免疫反応性を示すニューロンおよびＮＰＹレセプター発現はＣＮＳで豊富であり（表１）、おそらく、視床下部およびいわゆる辺縁構造に最も顕著に見られるが、脳幹モノアミン作動性ニューロンおよび皮質性ＧＡＢＡ作動性ニューロンと共に局在化もする（Ｃｈｒｏｎｗａｌｌ， １９８５； Ｄｕｍｏｎｔ等， １９９６）。
【００１２】
【表２】
2004512300.tif 000003
【００１３】
ＮＰＹ、不安およびうつ病
ＮＰＹの不安解消様効果は、高架プラス迷路試験（Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙ）、痛飲試験（Ｖｏｇｅｌ）、および苦痛反応試験（Ｇｅｌｌｅｒ−Ｓｅｉｆｔｅｒ）を用いて証明され、効力および効果はベンゾジアゼピンに匹敵する（Ｇｒｉｅｂｅｌ， １９９９； Ｈｅｉｌｉｇ等， １９８９；Ｗｅｔｔｓｔｅｉｎ等， １９９５）。ＮＰＹは、目新しさに対する反応において不安を解消するような働きをし（ＨｅｉｌｉｇおよびＭｕｒｉｓｏｎ， １９８７； ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ｂ）、高架プラス迷路試験および他の不安関係試験において不安を解消するような効果を生じる（ＷａｈｌｓｔｅｄｔおよびＲｅｉｓ， １９９３； Ｗａｈｌｓｔｅｄｔ等， １９９３）。おもしろいことには、Ｙ１レセプターアンチセンス処理ラットは著しい不安関連行動を示し、運動活性および食物摂取量は変わらなかった（Ｗａｈｌｓｔｅｄｔ等， １９９３）。さらに、うつ病を有する遺伝モデルであるフリンダーラット種では、Ｙ１レセプターｍＲＮＡ発現は様々な皮質領域および海馬の歯状回で減少し、一方、Ｙ２レセプターｍＲＮＡ発現は対照と差がなかった（Ｃａｂｅｒｌｏｔｔｏ等， １９９８）。嗅球切除ラットはうつ病を有するモデルとして開発されてきた（ＬｅｏｎａｒｄおよびＴｕｉｔｅ等， １９８１）。このモデルでは、ほとんどの変化はうつ病患者に見られるものと似ている（Ｓｏｎｇ等， １９９６）。嗅球切除ラットにＮＰＹを７日ｉ．ｃ．ｖ．投与すると、このモデルにおける行動および神経伝達物質不足が減じた（Ｓｏｎｇ等， １９９６）。ＮＰＹ　Ｙ１、Ｙ２およびおそらくＹ５レセプターは、げっ歯類動物における不安レベルの調節にかかわっていると考えられ、Ｙ１仲介効果は最たるものとみなされる（Ｈｅｉｌｉｇ等， １９９３； Ｋａｓｋ等， １９９８ｂ）。従って、内因性ＮＰＹはストレスおよび不安に対抗して作用すると結論付けることができる（Ｈｅｉｌｉｇ等， １９９４）。さらに、これらのデータは、Ｙ１レセプターサブタイプが不安−およびうつ病−関連行動に関係しうることを示唆している。さらに、Ｋａｓｋ等（１９９６）は、Ｙ１アンタゴニスト、ＢＩＢＰ３２２６のｉ．ｃ．ｖ．注射が、高架プラス迷路試験で不安を生じるような効果をもたらし、運動が不足することはないことを報告している。この効果は、背部水道周囲灰白質にＢＩＢＰ３２２６を投与することによって再生しうるが、青斑または海馬の室傍核への投与では再生されない（Ｋａｓｋ等， １９９８ｃ）。さらに、背部水道周囲灰白質へ投与したＢＩＢＰ３２２６およびＧＲ２３１１１８は、ラットの活発な社会的相互作用に費やされる時間を減じた（Ｋａｓｋ等， １９９８ｄ）。ＮＰＹの抗ストレス作用に重要な脳の領域には、これに限られないが、扁桃（Ｓａｊｄｙｋ等， １９９９， Ｔｈｏｒｓｅｌｌ等， １９９９）、青斑（Ｋａｓｋ等， １９９８ｃ）および背部水道周囲灰白質（Ｋａｓｋ等， １９９８ａｂ）が含まれる。ＮＰＹ　Ｙ１ＲのＢＩＢＰ３２２６またはＢＩＢＯ３３０４での遮断は、高架プラス迷路試験および社会的相互作用試験で測定したとき、不安を増加させなかったので、扁桃ＮＰＹは低いストレス状態では放出されない（Ｋａｓｋ等， １９９８ｂ； Ｓａｊｄｙｋ， １９９９���。しかしながら、一定のＮＰＹ作動性緊張は背部水道周囲灰白質に存在すると考えられ、ＮＰＹ　Ｙ１Ｒアンタゴニストはいずれの実験的不安モデルにおいても不安を生じるような効果を有する（Ｋａｓｋ等， １９９８ａｂ）。従って、特定の脳領域では、ＮＰＹ系による不安の緊張調節があるのかもしれない。
【００１４】
ＣＮＳ　ＮＰＹ系の精神学的および心理生理学的効果：多面発現作用
このように、多くの研究がＣＮＳにおけるＮＰＹおよび同類物質の生理学的機能についてなされており（再検討のための参照：ＫａｌｒａおよびＣｒｏｗｌｅｙ， １９９２； Ｄｕｍｏｎｔ等， １９９２； Ｓｔａｎｌｅｙ， １９９３； ＷａｈｌｅｓｔｅｄｔおよびＲｅｉｓ， １９９３； Ｇｒｕｎｄｅｍａｒ等 １９９３； Ｇｅｈｌｅｒｔ， １９９４，１９９８； ＣｏｌｍｅｒｓおよびＢｌｅａｋｍａｎ， １９９４； Ｗｅｔｔｓｔｅｉｎ等， １９９５； ＨｅｉｌｉｇおよびＷｉｄｅｒｌｏｗ， １９９５； Ｍｕｎｇｌａｎｉ等， １９９６； Ｉｎｕｎｉ， １９９９； ＢｉｓｃｈｏｆｆおよびＭｉｃｈｅｌ， １９９９； Ｖｅｚｚａｎｉ等， １９９９）、広範囲な効果が証明されている。これらの様々な生理学的機能の利点を得る薬理学的取り組みは現在存在しない。
【００１５】
ベンゾジアゼピンまたはＮＰＹを用いる不安関連疾患の治療における現在の問題
不安を治療する現在の方法はいくつかの問題を伴う：
不安解消薬として一般に用いられるベンゾジアゼピンは選択性の低いまたは選択性のない不自然な化合物である。不安解消活性の他に、ベンゾジアゼピンは鎮静および抗てんかん効果を示し、そして筋肉弛緩への影響が疑われている。都合の悪いことには、それらは多くの望ましくない副作用、すなわち、倦怠、眠気、集中力不足、注意力および反応力の減少を伴う。ベンゾジアゼピンの長期使用は神経学的疾患、例えば、運動失調、めまい、反射低下、筋肉および言語障害の原因となる。ベンゾジアゼピンでの長期治療は依存性および嗜癖を伴うことが予測される。
患者の不安の長期治療にニューロペプチドＹを直接ｉ．ｃ．ｖ．投与することは不適切である。
【００１６】
哺乳動物の脳におけるＤＰ　ＩＶおよびＤＰ　ＩＶ様活性の存在
Ｈａｒｔｅｌ−Ｓｃｈｅｎｋ等は１９９０年に、免疫組織化学および活性組織化学を比較して、妊娠１０、１６および２１日目並びに生後１、４、８、１３、２１、２６および６０日目のウイスターラット器官における発達時のＤＰ　ＩＶの出現について調べた。調査した全ての組織において、ポリクローナル抗体との免疫反応性はＤＰ　ＩＶ活性より早く現れ、胚および胚外（脱落膜）細胞の形質膜中に妊娠１０日目にすでに存在した。これらの部位および他の部位、例えば、脳毛細管内皮および気管または気管支上皮では、ポリクローナル抗体との免疫反応性は誕生後に減少または消失し、酵素活性は全く現れなかった。モノクローナル抗体との免疫反応性はポリクローナル抗体とのそれよりは遅く現れ、そしてたいていはＤＰ　ＩＶ活性がその後に見られるこれらの構造に現れる。エピトープＤに対するモノクローナル抗体は精巣上体管、腎臓収集管においておよび肝細胞形質膜の全領域において高い反応性を示し、ここではＤＰ　ＩＶ活性ばかりでなく他の抗体との免疫反応性も観察されなかった。それらの結果はまた、ＤＰ　ＩＶが、触媒活性となる前は、分子として存在すること、および免疫反応性がＤＰ　ＩＶ活性よりも多くの部位で生じることを示唆している。免疫組織化学技術により、Ｂｅｒｎｓｔｅｉｎ等は１９８７年に、ヒトの胎児、新生児および老人から得た脳内物質におけるジペプチジルアミノぺプチダ−ゼＩＶ免疫反応性の存在を調べた。この調査から、酵素たんぱく質が未発達のヒトＣＮＳ中に豊富に存在することが明らかになった。これに対して、成人の脳はジペプチジルアミノぺプチダ−ゼＩＶ免疫反応性がそれほどではなかった。酵素は、ニューロン増殖および／または特に特定のニューロン刺激ペプチド（ＩＧＦ　ＩＩ、成長ホルモン）へのその可能な作用に関する相違において重要な役割を果たすのではないかと推測される。アミノぺプチダ−ゼＭ（ＡＰＭ）、アミノぺプチダ−ゼＡ（ＡＰＡ）、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶ）およびγ−グルタミルトランスフェラーゼ（ＧＧＴ）は、上衣、脈絡叢および軟膜の反応パターンを示すことが、ラットの脳の低温槽切片において組織化学的に証明された。ＧＧＴは上衣細胞の細胞膜においておよび軟膜において証明されただけであった：しかしながら、ＡＰＡ、ＡＰＭおよびＤＰ　ＩＶは脈絡叢の毛細管内皮においておよび軟膜において一定しない活性度を示した（Ｍｉｔｒｏ ＆ Ｌｏｊｄａ， １９８８）。Ｋａｔｏ等は１９７９年に、ラットの脳においてＸ−プロリルジペプチジル−アミノぺプチダ−ゼ活性を見出し、様々な年令における発育変化を調べた。脳の全体酵素活性は生後４週まで増加し、その後、成熟の間は減少した。若いラットの脳の特異的活性は大人のラットの脳におけるよりも高かった。脳の酵素の性質は脳下垂体および他の組織のものとは異なっていた。Ｎａｓｓｅｌ等は２０００年に、ゴキブリの組織におけるプロリン特異的ＤＰ　ＩＶ活性の出現を研究した。ある程度純化したＤＰ　ＩＶ活性は、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−４−ニトロアニリドを基質として用いることによって、Ｌ． ｍａｄｅｒａｅの脳および中腸から特性決定した。最高活性は腸の膜フラクションから得られた；約１０倍のより少ない活性（たんぱく質１ｍｇ当たり）は脳膜から得られた。モルモットの脳の全体ポスト−プロリンジペプチジル−アミノぺプチダ−ゼ活性の５５％は細胞の可溶性フラクションと結びつくが、残りの活性は微粒子物フラクション全体に広く分布することが報告された。しかしながら、この微粒子物活性のかなりの部分はシナプス体膜フラクションと結びつく（Ｏ’Ｃｏｎｎｏｒ ＆ Ｏ’Ｃｕｉｎｎ， １９８６）。光学および電子顕微鏡による組織化学的研究から、アカゲザルの無毛皮膚のマイスナー小体におけるジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ活性の存在が分かった。酵素活性は、マイスナー小体の周りに不完全な包みを形成する線維芽細胞のような細胞に見られた。ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ活性によるはっきりと電子が密集した反応生成物は、知覚軸索の無髄部分を包む分化シュヴァン細胞の形質膜に一貫して集中していた。それらの軸索鞘はジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ反応生成物を有していない。（Ｄｕｂｏｖｙ， １９８８）
【００１７】
Ｄｅ Ｂａｕｌｔ ＆ Ｍｉｔｒｏは１９９４年に、ラットの円蓋下器官（ＳＦＯ）の血管、ＳＦＯの表面を覆う上衣、および隣接脳構造における、膜プロテアーゼグルタミルアミノぺプチダーゼ（ＥＡＰ）、ミクロソーマルアラニルアミノペプチダーゼ（ｍＡＡＰ）、ジペプチジルぺプチダーゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶ）およびγ−グルタミルトランスペプチダーゼ（γ−ＧＴＰ）の局在性を調べた。酵素組織化学反応の結果はＥＡＰ、ｍＡＡＰおよびγ−ＧＴＰに対する強い活性を示したが、これに対して、ＳＦＯの微細血管にはＤＰ　ＩＶがないことを示した。ＳＦＯを覆う上衣はγ−ＧＴＰに対して陽性であったが、調べた他のプロテアーゼに対して陰性であった。我々の結果は、ＳＦＯの大部分の血管内における範囲の酵素が、ＥＡＰ、ｍＡＡＰおよびγ−ＧＴＰに対して陽性であるが、ＤＰ　ＩＶに対して陰性であった隣接脳組織の微細血管のそれと類似していることを示した。ＤＰ　ＩＶに対する抗体およびｃＤＮＡを用いて、Ｈｏｎｇ等は１９８９年に、ラットにおける分子的研究法によってＤＰ　ＩＶの組織分布を調べた。免疫ブロット分析から、ＤＰ　ＩＶが腎臓、肺、および小腸には高レベルで、肝臓および脾臓には中レベルで、そして心臓には低レベルで存在することが分かった。肺、肝臓および脾臓では中レベルであるのに比べて、ＤＰ　ＩＶに対するｍＲＮＡの最高レベルは、腎臓および小腸で検出された。最低レベルのＤＰ　ＩＶ　ｍＲＮＡは胃、睾丸、心臓、筋肉および脳に見られた。
【００１８】
発明の概要
本発明の目的は、神経学的および心理生理学的効果に有益な薬剤を提供することである。本発明の目的は、特に、不安を含めたストレスに対する行動的および／または神経学的適応反応しやすさに対して有益な効果のある薬剤を提供することである。
さらに、本発明の目的は、哺乳動物の脳でＮＰＹの持続的もしくは長期的活性および／または効果を生じる薬理学的解決法を提供することによって、従来技術の上記の問題を解決または軽減することである。
【００１９】
これらの目的は、不安を含めたストレスに対する行動的および／または神経学的反応しやすさを調節する薬剤の製造に、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶまたはＣＤ２６）あるいはＤＰ　ＩＶ様酵素の阻害剤を用いることによって解決される。
これによって、不安の軽減、高血圧、発熱、睡眠障害、食欲不振、うつ病を含めた不安関連疾患、てんかんを含めた発作、薬物禁断症状およびアルコール中毒症、認識機能障害および痴呆を含めた神経変性疾患、並びに統合失調症を含めた神経精神疾患の治療（これらに限定されない）を含む、ＮＰＹ　Ｙ１レセプターによって仲介される内因性神経学的または神経心理学的効果が拡大される。
【００２０】
発明の詳細な説明
本技術分野で提案された他の方法に対して、本発明は、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶまたはＤＰ　ＩＶ様酵素の低分子量阻害剤での経口投与治療を提供するものである。本発明は、哺乳動物における不安および他の神経学的または心理学的疾患を治療する新規な対処法である。それは、特にヒトの病気に関する、使用者に都合がよく、商業的に有用でありそして治療に用いるのに適した方法である。
【００２１】
経口投与しうる低分子量ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ阻害剤の例は、Ｎ，（Ｎ´−置換グリシル）−２−シアノピロリジン、Ｌ−トレオ−イソロイシルチアゾリジン、Ｌ−アロ−イソロイシルチアゾリジン、Ｌ−トレオ−イソロイシルピロリジン、Ｌ−アロ−イソロイシルチアゾリジン、およびＬ−アロ−イソロイシルピロリジン等の薬剤である。それらは、ＵＳ６，００１，１５５、ＷＯ９９／６１４３１、ＷＯ９９／６７２７８、ＷＯ９９／６７２７９、ＤＥ１９８　３４　５９１、ＷＯ９７／４０８３２、ＤＥ１９６　１６　４８６　Ｃ２、ＷＯ９８／１９９９８、ＷＯ００／０７６１７、ＷＯ９９／３８５０１、およびＷＯ９９／４６２７２に記載されており、それらの全てを参照することによってここに記載されたものとする。これらの薬剤の目標はＤＰ　ＩＶを阻害することであり、そしてそうすることによって、血中グルコースレベルを下げ、それにより高血糖症および血中グルコースレベルの上昇に伴う病気を効果的に治療することである。
【００２２】
ＤＰ　ＩＶは、端から２番目のＮ−末端プロリンおよびアラニン残基の後にペプチドを選択的に開裂するエキソペプチダーゼである。この酵素に対する内因性基質には、インクレチン、例えば、ＧＩＰおよび切断されたＧＬＰ−１のようなグルコース依存性インスリン分泌刺激ポリペプチドが含まれる。ＤＰ　ＩＶの存在下では、これらのホルモンは酵素により還元されて不活性形になる。ＧＩＰおよびＧＬＰ−１の不活性形はインスリン分泌を引き起こすことができず、従って、特に高血糖状態では、血中グルコースレベルが上昇する。血中グルコースレベルの上昇は、真性糖尿病（１および２型）並びに真性糖尿病に伴う後遺症を含めた多くの様々な病状に結びつけられてきた。ＤＰ　ＩＶ様酵素は、例えば、ペプチダ−ゼを端から２番目のＮ−末端プロリンおよびアラニン残基の後にペプチドを選択的に開裂する試験を行い、そのような開裂を行うペプチダーゼを選択し、そして該ペプチダーゼを単離することによって選択することができる。
【００２３】
また、ＤＰ　ＩＶが、器官移植におけるようなＴ細胞仲介免疫反応で役割を果たしていることも発見されている。ＤＰ　ＩＶの阻害は心臓同種移植片を持続させることが証明されている。さらに、ＤＰ　ＩＶの阻害は慢性関節リウマチの抑制に寄与してきた。ＤＰ　ＩＶはＨＩＶのＴ細胞（Ｔヘルパー細胞）への進入における役割を果たしていると考えられてきた。
【００２４】
ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ阻害剤を病理学的に変化した組織の治療に用いるとき、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ阻害剤のこれらの様々な効果は正常で健康な組織および器官へ影響を及ぼすことになる。本発明の目標は、ＮＰＹの効果または活性を維持、増加または延長させる、かつ標的組織において高い生物利用能と正確に断定できる活性時間とを示す、脳を標的とする薬剤を開発することである。
【００２５】
標的特異的で経口投与可能な低分子量薬剤の例は、一般式Ａ−Ｂ−Ｃよりなる安定および不安定ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ阻害剤のプロドラッグであり、式中、Ａはアミノ酸を表し、Ｂは、ＡとＣとの間の化学結合またはアミノ酸を表し、そしてＣは、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶの不安定なまたは安定な阻害剤を表す。これらはＷＯ９９／６７２７８、ＷＯ９９／６７２７９に記載されており、それらの全ては参照することによってここに記載されたものとする。
【００２６】
本発明は、酵素ジペプチジルぺプチダ−ゼ（ＤＰ　ＩＶもしくはＣＤ２６）またはＤＰ　ＩＶ様酵素活性の阻害剤を哺乳動物の脳に投与することが、結果としてニューロペプチドＹ（ＮＰＹ）の分解を減じることにつながる、新規な方法に関する。そのような治療は機能的活性ＮＰＹ（１−３６）の濃度低下を減じたりまたは遅らせることになる。
【００２７】
本発明では、哺乳動物、特にヒトの脳におけるＮＰＹの効果および／または活性を、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶ）またはＤＰ　ＩＶ様酵素阻害剤の投与によって維持または延長することができることを見出した。それによって、脳におけるＮＰＹの分解は減じることができる。これは結果として心身症、うつ病および／または神経精神病を緩和または改善する。本発明は特に、不安および他の神経学的または心理学的疾患を治療する新規な対処法に関する。それは、特にヒトの病気に関する、使用者に都合がよく、商業的に有用でありそして治療に用いるのに適した方法である。
【００２８】
ＤＰ　ＩＶまたはＤＰ　ＩＶ様酵素阻害剤の投与によって脳におけるＮＰＹの分解を妨げたり、遅らせることができるという発見は、次の理由で非常に意外なことである：Ｈｏｎｇ等は１９８９年に、ＤＰ　ＩＶに対する抗体およびｃＤＮＡを用いて、ラットの組織におけるＤＰ　ＩＶの分布を調べた。免疫ブロット分析から、ＤＰ　ＩＶが腎臓、肺、および小腸には高レベルで、肝臓および脾臓には中レベルで、そして心臓には低レベルで存在することが分かった。肺、肝臓および脾臓では中レベルであるのに比べて、ＤＰ　ＩＶに対する最高レベルのｍＲＮＡは腎臓および小腸で検出された。最低レベルのＤＰ　ＩＶ　ｍＲＮＡは胃、睾丸、心臓、筋肉および脳に見られた。
【００２９】
Ｈａｒｔｅｌ−Ｓｃｈｅｎｋ等は１９９０年に、免疫組織化学および活性組織化学を比較して、妊娠１０、１６および２１日目並びに生後１、４、８、１３、２１、２６および６０日目のウイスターラット器官における発達時のＤＰ　ＩＶの出現について調べた。調査した全ての組織において、ポリクローナル抗体との免疫反応性はＤＰ　ＩＶ活性より早く現れ、胚および胚外（脱落膜）細胞の形質膜中に妊娠１０日目にすでに存在した。これらの部位および他の部位、例えば、脳毛細管内皮および気管または気管支上皮では、ポリクローナル抗体との免疫反応性は誕生後に減少または消失し、酵素活性は全く現れなかった。モノクローナル抗体との免疫反応性はポリクローナル抗体とのそれよりは遅く現れ、そしてたいていはＤＰ　ＩＶ活性がその後に見られるこれらの構造に現れる。エピトープＤに対するモノクローナル抗体は精巣上体管、腎臓収集管においておよび肝細胞形質膜の全領域において高い反応性を示し、ここではＤＰ　ＩＶ活性ばかりでなく他の抗体との免疫反応性も観察されなかった。それらの結果はまた、ＤＰ　ＩＶが、触媒活性となる前は、分子として存在すること、および免疫反応性がＤＰ　ＩＶ活性よりも多くの部位で生じることを示唆している。免疫組織化学技術により、Ｂｅｒｎｓｔｅｉｎ等は１９８７年に、ヒトの胎児、新生児および老人から得た脳内物質におけるジペプチジルアミノぺプチダ−ゼＩＶ免疫反応性の存在を調べた。この調査から、酵素たんぱく質が未発達のヒトＣＮＳ中に豊富に存在することが明らかになった。これに対して、成人の脳はジペプチジルアミノぺプチダ−ゼＩＶ免疫反応性がそれほどではなかった。酵素は、ニューロン増殖および／または特に特定のニューロン刺激ペプチド（ＩＧＦ　ＩＩ、成長ホルモン）へのその可能な作用に関する相違において重要な役割を果たすのではないかと推測される。
【００３０】
Ｄｅ ＢａｕｌｔおよびＭｉｔｒｏは１９９４年に、ラットの円蓋下器官（ＳＦＯ）の血管、ＳＦＯの表面を覆う上衣、および隣接脳構造における膜プロテアーゼグルタミルアミノぺプチダ−ゼ（ＥＡＰ）、ミクロソーマルアラニルアミノペプチダーゼ（ｍＡＡＰ）、ジペプチジルぺプチダ−ゼＩＶ（ＤＰ　ＩＶ）およびγ−グルタミルトランスペプチダーゼ（γ−ＧＴＰ）の局在性を調べた。酵素組織化学反応の結果はＥＰＡ、ｍＡＡＰおよびγ−ＧＴＰに対する強い活性を示したが、これに対して、ＳＦＯの微細血管にはＤＰ　ＩＶがないことを示した。ＳＦＯを覆う上衣はγ−ＧＴＰに対して陽性であったが、調べた他のプロテアーゼに対して陰性であった。これらの結果は、ＳＦＯの大部分の血管内における範囲の酵素が、ＥＰＡ、ｍＡＡＰおよびγ−ＧＴＰに対して陽性であるが、ＤＰ　ＩＶに対して陰性であった隣接脳組織の微細血管のそれと類似していることを示した。ＤＰ　ＩＶに対する抗体およびｃＤＮＡを用いた。
【００３１】
これらの発見に対して、本発明は、イソロイシルチアゾリジンのようなＤＰ　ＩＶ阻害剤の投与がラットにおいて不安解消効果を生じることを示す。本発明は、意外にも、ＤＰ　ＩＶ阻害剤であるイソロイシルチアゾリジンの投与がラットにおいて不安解消効果を示すことを示す。脳におけるソロイシルチアゾリジンの特異的分子標的はＤＰ　ＩＶ酵素ではなく、それはＭｅｎｔｌｅｉｎ（１９９３年）によって胎盤から単離され、彼はこれを試験管内研究に用いた。ＤＰ　ＩＶ阻害剤であるイソロイシルチアゾリジンがラットにｉ．ｃ．ｖ．投与した後に不安を緩和するという事実は、本発明の標的が単独または一組のＤＰ　ＩＶ様酵素であることを証明している。
【００３２】
ＤＰ　ＩＶ阻害剤の投与によって内因性ＮＰＹ（１−３６）の安定性が高められた結果、ＮＰＹ活性は維持、増加または延長され、機能的活性ＮＰＹ　Ｙ１レセプター活性を結果として生じ、特に、抗うつ、不安解消および抗高血圧効果を促す（上記参照）。
【００３３】
ヒトを含めた動物の不安を治療する本発明の方法は、ＤＰ　ＩＶまたは関連酵素活性の阻害剤を投与することによって、ＮＰＹの存在を高めることよりなる。ＤＰ　ＩＶ阻害剤の経口投与がたいていの場合好ましい。ＤＰ　ＩＶまたはＤＰ　ＩＶ様酵素活性阻害剤の投与により、ＮＰＹの活性形の半減期は生理学的条件下でかなり延長、増加または維持される。活性ＮＰＹの存在を広げることは、ＮＰＹ　Ｙ１レセプター活性を高めることになる。
【００３４】
本発明はまた医薬組成物を提供する。そのような組成物は、治療（または予防）に有効な量の阻害剤（および／またはＤＰ　ＩＶ阻害剤の投与に伴う糖衣ピル）、および特に脳を標的とするのに合った、薬学的に許容される担体または賦形剤を含む。適した担体には、これらに限定されないが、食塩水、緩衝食塩水、デキストロース、水、グリセロール、エタノール、およびこれらの組み合わせが含まれる。担体および組成物は、好ましくは良好な実験室での通常の条件下で製造され、最も好ましくは無菌である。配合物は慣行に従って投与方式に合うように選択するのが理想的である。
【００３５】
適した薬学的に許容される担体には、これらに限定されないが、水、塩溶液（例えば、ＮａＣｌ）、アルコール、アラビアゴム、植物油、ベンジルアルコール、ポリエチレングリコール、ゼラチン、炭水化物、例えばラクトース、アミロースもしくはデンプン、ステアリン酸マグネシウム、タルク、粘性パラフィン、香油、脂肪酸エステル、ヒドロキシメチルセルロース、ポリビニルピロリドン等が含まれる。薬剤は滅菌することができ、そして望ましいならば、活性化合物と悪い反応をせず、安定性、製造適性および／または美的アピールを改善する、補助剤、例えば潤滑剤、防腐剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、浸透圧に影響を与える塩、緩衝剤、着色剤、フレーバー剤および／または芳香族物質等と共に混合することができる。
【００３６】
組成物はまた、望ましいならば、少量の湿潤もしくは乳化剤、またはｐＨ緩衝剤を含有していてもよい。さらに、組成物は溶液、懸濁液、エマルジョン、錠剤、ピル、カプセル、持続放出配合物、または粉末でもよい。さらに、組成物は、従来の結合剤および担体、例えばトリグリセリドと共に、座薬として配合することもできる。経口配合物には、標準的な担体、例えば薬剤グレードのマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、ポリビニルピロリドン、サッカリンナトリウム、セルロース、炭酸マグネシウム等が含まれてもよい。
【００３７】
さらに、組成物は、ヒトへの静脈内投与に合った医薬組成物として一般的な手順で配合することができる。一般に、静脈内投与用組成物は滅菌等張性水性緩衝液中の溶液である。必要な場合、組成物は可溶化剤および注射部位の痛みを和らげる局部麻酔薬を含んでいてもよい。一般に、成分は別々に供給してもよく、または単位投与形に一緒に混合した形、例えば、活性化合物の量を表示しているアンプルまたはサッシェのような密閉容器中の凍結乾燥粉末または水非含有濃縮物として供給してもよい。組成物を注入投与する場合、滅菌薬剤グレードの水、食塩水またはデキストロース／水を含有する注入びんで小出しすることができる。組成物を注射によって投与する場合、投与前に成分を混合しうるように、注射用滅菌水または食塩水のアンプルを提供することができる。
【００３８】
最後に、本発明の組成物は中性または塩の形として配合することができる。薬学的に許容される塩には、遊離アミノ基と共に形成されるもの、例えば塩酸、リン酸、酢酸、シュウ酸、酒石酸等から誘導されるもの、およびナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウム、水酸化第二鉄、イソプロピルアミン、トリエチルアミン、２−エチルアミノエタノール、ヒスチジン、プロカイン等から誘導されるものが含まれる。
【００３９】
個々の疾患または状態の治療に効果的な本発明の組成物の量は、疾患または状態の特徴によって決まり、標準的な臨床技術によって決定することができる。さらに、最適な投与量範囲を確認するために、試験管内および／または生体内分析を任意に用いてもよい。配合物中に用いられる正確な量は、投与ルート、および病気または障害の重症度にもより、医者の判断および各患者の状況により決定すべきである。
【００４０】
本発明の精神または範囲から逸脱することなく、多くの変更が、様々なＤＰ　ＩＶ阻害剤の生成および治療組成物を含むここに示された例および教示に加えうることは無論のことであろう。
【００４１】
本発明を下記の実施例を参照して説明する。これらの実施例は、ＤＰ　ＩＶ欠損遺伝モデルにおける不安解消およびストレス防止作用（実施例１）、ＣＮＳ内での薬理学的投与量のＤＰ　ＩＶ阻害剤の不安解消作用（実施例２）、ＮＰＹ仲介不安解消効果の相互作用および増強（実施例３）、およびＮＰＹ　Ｙ１レセプター仲介効果の増強に基づく不安解消メカニズムの特徴決定（実施例４）に焦点を合わせている。
【００４２】
発明の実施例
実施例１
フィッシャー（Ｆ３４４）ラットの亜系統に見られるＤＰ　ＩＶ遺伝子の自然発生的突然変異は、行動調節およびストレス適応におけるＤＰ　ＩＶの役割を調べるためのモデルとなる。Ｆ３４４ラットの突然変異はＤＰ　ＩＶ様酵素活性の欠如を生じ、ドイツ（ＧＥＲ）および日本（ＪＡＰ）からの亜系統に見られ（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ等， １９９１； Ｔｓｕｊｉ等， １９９２）、一方、米国（ＵＳＡ）およびハノーバー（ＨＡＮ）のブリーダーからのラットはかなりの酵素活性を示す。Ｆ３４４ＪＡＰラットでは、ＣＤ２６たんぱく質におけるＧ６３３Ｒ置換が、突然変異不活性酵素の発現を大いに減じる原因となり（Ｔｓｕｊｉ等， １９９２； Ｃｈｅｎｇ等， １９９９）、他方のＤＰ　ＩＶ陰性Ｆ３４４ＧＥＲ亜系統は非活性突然変異酵素を発現する（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ等， １９９１）。従って、Ｆ３４４ＪＡＰラットは「たんぱく質ノックアウト」モデルと考えられ（Ｃｈｅｎｇ等， １９９９）、Ｆ３４４ＧＥＲ亜系統は「たんぱく質過剰発現」モデルとなりうる（Ｓｈｉｎｇｕ， Ｈｅｌｆｒｉｔｚ， Ｍｅｙｅｒ， Ｓｃｈｍｉｄｔ， Ｍｅｎｔｌｅｉｎ， ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ，提出）。これらの発見に基づき、突然変異体Ｆ３４４ＪＡＰおよびＦ３４４ＧＥＲ亜系統と「野生型」Ｆ３４４ＵＳＡラットとを直接比較すると、行動調節におけるＤＰ　ＩＶ発現および活性の役割と生体内での他の神経学的および心理生理学的機能とを見分けることが可能となるはずである。本実施例において、ＤＰ　ＩＶ欠損Ｆ３４４亜系統では、不安がより少なくかつストレスによって誘導される生理学的変化にそれほど反応しないことを報告しておく。
【００４３】
動物：　Ｆ３４４ＵＳＡ、Ｆ３４４ＪＡＰおよびＦ３４４ＧＥＲ亜系統の動物はチャールス・リバー・ドイツ社を経て別々の国から得た。Ｆ３４４ＵＳＡ亜系統から初めに誘導されたＦ３４４ＨＡＮラットは、ハノーバー・メディカル・スクールにあるセントラル・アニマル・ラボラトリーのブリーディングコロニーから得た（さらなる情報はｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｈ−ｈａｎｎｏｖｅｒ．ｄｅ／ｉｎｓｔｉｔｕｔ／ｔｉｅｒｌａｂｏｒ／ｆ３４４．ｈｔｍを参照）。全ての亜系統はハノーバーのセントラル・アニマル・ラボラトリーで１世代飼育し、餌および水が自由に得られる特異的病原菌を含まない施設で２５℃にて明暗各１２時間サイクル（７時に点灯）の下に維持した。実験には、全ての亜系統の年令がマッチした生後数週のＦ１の子を用いた。ドイツ、ハノーバーの郡政府は、全ての研究および動物に配慮がなされた手順であることを承認した。
【００４４】
Ｆ３４４亜系統の組織におけるＤＰ　ＩＶ活性の定量化：　血漿、肺および他の組織試料は使用するまで−８０℃で凍結保存した。組織はホモジネートし、ＤＰ　ＩＶ酵素活性は、基質、グリシルプロリンｐ−ニトロアニリド（ｇｌｙ−Ｐｒｏ−ｐＮＡ、ＰＢＳ中１ｍｇ／ｍｌ）（Ｂａｃｈｅｍ、ドイツ）をインキュベートすることによって検出し、発色を４０５ｎｍで測定した。
【００４５】
社会的相互作用（ＳＩ）試験：　ＳＩ試験は、Ｆｉｌｅ（１９８０）によって最初に報告された通りに実施され、初めに実験室で適用された（Ｋａｓｋ， Ｎｇｕｙｅｎ， Ｐａｂｓｔ， ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ， 提出）。遺伝子型および体重のマッチした２匹のラットを収容ケージから出し、試験環境に置いた。アリーナは遮音ボックス（コウルボーン・インストゥルメンツ社、ペンシルベニア州リーハイバリー）の中に置かれた、アルミニウムでできた四角い解放フィールド（５０×５０×５０ｃｍ）であった。装置の詳細については先の研究（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ等， １９９８ｃ）を参照。解放フィールドは赤の写真電球（フィリップスＰＦ７１２Ｅ；１．３ルックス）で照明した。ラットは装置に不慣れであった。行動は、試験／遮音ボックス内のフィールド上に置かれたビデオカメラを使用してモニターした。両ラットのＳＩ行動はボックスの上部の外側に置かれたモニターからオンラインで記録した。次のパラメーターを、ラットの亜系統を知らされていない観察者（ＨＰＮ）が評価した：受身の体の接触（休息、睡眠）以外の、臭いをかぐこと、後に続くこと、他のラットの上および下をはうこと。ＳＩ時間の増加は不安解消様反応と考えられる。
【００４６】
ストレスに起因する体重減少：　連続３日の間に、日本（ＪＡＰ）、米国（ＵＳＡ）およびドイツ（ＧＥＲ）のブリーダーからの年令がマッチした動物を新しい部屋に個々に移し、そこに１時間留めた。第１日目は、おがくずの入った新しいカゴを使用し、動物を標準的な動物ラックの中に置いた。２日目は、カゴにおがくずがない以外は同じであった。３日目のストレスのかけ方は、カゴを新しい部屋の下の部分に置いた以外は２日目と同じであった。
【００４７】
統計分析：　反復観察データは、反復測定の分散の２元分析（ＡＮＯＶＡ）（要因：反復測定したときの「亜系統」および「ストレス後の体重変化」）によって分析した。ＤＰ　ＩＶ活性またはＳＩ時間のような簡単な測定のデータは１元（要因：「亜系統」）ＡＮＯＶＡによって分析した。星印は、フィッシャーのＰＬＳＤによって得たＦ３４４ＵＳＡ亜系統（対照）に対して有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【００４８】
Ｆ３４４亜系統におけるＤＰ　ＩＶ活性：　文献によると、Ｆ３４４ＧＥＲおよびＦ３４４ＪＡＰ亜系統は内因性ＤＰ　ＩＶ活性が欠如している（図１）。従って、これらのラットは、行動調節におけるＤＰ　ＩＶ活性の生理学的役割についての研究用遺伝モデルとなる。
【００４９】
社会的相互作用における不安：　ＤＰ　ＩＶ活性が欠如しているこれらのＦ３４４亜系統（Ｆ３４４ＪＡＰおよびＦ３４４ＧＥＲ）は、新しい領域での活発な社会的相互作用にかなりより多くの時間を費やした（図２）。従って、ＤＰ　ＩＶ活性の欠如は不安解消様効果を仲介する。
【００５０】
ストレスに起因する体重減少。Ｆ３４４ＪＡＰおよびＦ３４４ＧＥＲは、１時間移動ストレスを繰り返した後の体重減少はかなり少ない。従って、これらの亜系統における内因性ＤＰ　ＩＶ様活性の欠如は、穏やかなストレスに起因する生理学的変化を少なくする（図３）。
【００５１】
総合的に、これらのデータは、ＤＰ　ＩＶ欠損Ｆ３４４ラットの遺伝モデルにおいて、内因性ＤＰ　ＩＶ様活性の欠如は不安解消様効果およびストレス防止効果をもたらすことを証明している。
【００５２】
実施例２
前の実施例では、不安およびストレスの感じやすさがＤＰ　ＩＶ欠損遺伝モデルにおいて少なくなることを証明した。本実施例では、ＤＰ　ＩＶ阻害剤イソロイシルチアゾリジンの中枢投与（ｉ．ｃ．ｖ．）が、げっ歯類動物の不安に関する十分に確立された試験である、高架プラス迷路試験において、不安解消様効果をもたらすことを報告する。さらに、また、解放フィールド（Ｄｅｎｅｎｂｅｒｇ等， １９６８）で測定したときの目新しさに対する反応におけるラットの情動性は、活性作用のないイソロイシルチアゾリジン治療ラットではそれほど顕著ではないことを報告する。
【００５３】
動物：　体重３５０〜３９０ｇのオスのウイスターＦ／Ｈａｎ（ＷＦ）ラット（セントラル・アニマル・ラボラトリー、ハノーバー・メディカル・スクール、ドイツ、ハノーバー、詳細についてはｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｈ−ｈａｎｎｏｖｅｒ．ｄｅ／ｉｎｓｔｉｔｕｔ／ｔｉｅｒｌａｂｏｒ／ｗｆ．ｈｔｍを参照）を、特異的病原菌を含まない条件下、明暗各１２時間サイクル（７時に点灯、照明レベル８０ルックス）の、温度調整（２４．０±０．５℃）防音室に収容した。餌（アルトロミン実験室用餌ペレット）および水は自由に摂取できるようにした。ケタミン／キシラシン（１００／５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）麻酔の下で、ラットをＫｏｐｆ定位フレームに固定し、側脳室の上にカニューレ（プラスチック・ワン社、米国バージニア州ロアノーク）を植え込んだ。全ての研究および動物保護手順は、ロアー・サキソニー郡政府（ドイツ、ハノーバー）によって証明され、１９８６年１１月２４日のヨーロッパ共同体会議指令に記載の指針に従った（８６／６０９／ＥＥＣ）。
【００５４】
手術およびｉ．ｃ．ｖ．の適用：　手術では、ラットに麻酔をかけ、他で詳記された（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ，ｂ，ｃ）通りの標準定位法を用いてｉ．ｃ．ｖ．カニューレ（座標：Ａ：−０．７ｍｍ尾方、Ｌ：プレグマに対して１．４ｍｍ横；およびＶ：頭蓋表面に対して３．２ｍｍ下面；歯稜＋３．０耳稜上）で準備した。７日の回復期間の後、脳室カニューレ挿入の成功を、アンギオテンシンドリンキング反応によって確認した（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ）。陽性ドリンキング反応を示すラット（ｎ＝４０）を、７日間の毎日の偽注射で実験手法に慣らした。
【００５５】
動物を無作為に４つの実験グループ（ｎ＝８〜１０／グループ）に分け、実験的不安についての様々な行動試験を行った。各グループの動物は各段階で同じように治療し、行動試験の６０分前にｉ．ｃ．ｖ．注射した：人工脳脊髄液（ａＣＳＦ）（対照）、イソロイシルチアゾリジン（０．０５ｎｍｏｌ）、イソロイシルチアゾリジン（５ｎｍｏｌ）およびイソロイシルチアゾリジン（５００ｎｍｏｌ）。イソロイシルチアゾリジンは緩衝ａＣＳＦを用いて最終濃度に調整し、体積５μｌ／分で右側脳室へ施した。カニューレは約３０ｃｍのポリエチレン管でハミルトン微量注射器に取り付け、ＴＳＥ多流路注入ポンプ（ドイツ、バッドホンブルグ）を使用して、全ての化合物を５．０μｌ／分の速度で注入した。
【００５６】
目新しさに対する反応（解放フィールド試験）：　中枢ＤＰ　ＩＶ拮抗作用に起因する目新しさに対する反応の違いを、解放フィールド（ＯＦ）試験を用いて調べた。一般的な手順は他で詳記されている（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９３， １９９８ｄ）。しかしながら、次のように変更した：暗い段階で、ラットを、赤い写真用の光で照らされた遮音ボックス内の四角い５０×５０ｃｍのＯＦに置いた。１５分の単一連続試験期間の自発的活動を、ビデオパスアナライザーシステム（Ｅ６１−２１ビデオパスアナライザーシステム、コウルボーン・インストゥルメンツ社、米国ペンシルベニア州）を使用して記録した。アナライザーシステムは１５分間隔で行動を測定し、１４データ要素を分析する：壁−、コーナー−、コードラント１〜４−、移動−、休息−および後足立ち−時間（いずれも秒）、立体、後足立ち、時計方向回転および反時計方向回転（いずれも整数）、並びに移動距離（ｃｍ）。さらに、各期間後の糞便の合計発生回数をカウントし、毛づくろい行動の発生回数および時間（秒）を、動物の治療について知らされていない人がビデオモニターから同時に記録した（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ｃ）。
【００５７】
高架プラス迷路（ＥＰＭ）試験：　高架プラス迷路装置および試験手順は、ラットを用いるための一般的な配慮および妥当性に基づくフェルナンデスおよびファイル１９９６に合わせた。Ｅ＋装置（ＴＳＥシステムズ社、ドイツ、バッドホンブルグ）は灰色のプラスチックでつくられており、２本の解放アーム（５０×１０ｃｍ）および同じサイズの２本の閉鎖アームを有し、壁の高さは４０ｃｍで、地面よりも５０ｃｍ高くした。迷路には、Ｅ＋行動をコンピューター測定可能にした光線センサーを備えた。迷路は、閉鎖アームが影の中になるように、迷路より３０ｃｍ高く設置した赤い電球（フィリップＰＦ７１２Ｅ；１．５ルックス）で照らした。実験開始時に、ラットを、頭が閉鎖アームに向く状態で、中央のプラットフォーム（１０×１０ｃｍ）上に置き、迷路を５分間自由に探査させた。次のパラメーターを計算した：アーム進入合計数（ＴＡ）；閉鎖アーム進入合計数（ＣＡ）；解放アーム進入合計数（ＯＡ）；解放アーム進入回数率（％ＯＡ；ＯＡ×１００／ＴＡ）；合計試行時間（ＴＴ）：３００ｓ；閉鎖アーム滞在時間（閉鎖時間；ＣＬＴ）；合計アーム滞在時間におけるＣＬＴの占有率（ＣＬＴ×１００／ＴＡ）；解放アーム滞在時間（解放時間；ＯＴ）および合計アーム滞在時間におけるＯＴの占有率（％ＯＴ；ＯＴ×１００／ＴＡ）。標準の時間および空間測定の他に、「中央の四角い部分で費やす時間およびその率」を記録した（中心時間、ＣＴ；プラットフォーム滞在時間（秒）；試行時間におけるＣＴの占有率、％ＣＴ；ＣＴ×１００／ＴＴ）。解放アームで費やす時間の増加は不安解消反応として解釈され、このパラメーターの減少は不安が生じた反応として解釈される。これに対して、閉鎖アームへの進入は一般的な活動状態を示す（Ｐｅｌｌｏｗ等， １９８５）。
【００５８】
統計分析：　統計分析では、各試験記録からの未処理行動データを反復測定に対する分散の二元分析（ＡＮＯＶＡ）（要因：反復測定したときの治療および時間）によって分析した。期間からの合計として得たデータは、一元（要因：治療）ＡＮＯＶＡによって分析した。フィッシャーのＰＬＳＤによって得られたａＣＳＦ（対照）に対して有意なポストｈｏｃ効果は星印で示す。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【００５９】
解放フィールドでのイソロイシルチアゾリジンに対する反応：イソロイシルチアゾリジンは広範囲な投与量で解放フィールドでの活動状態に効果を示さなかった（図４）。解放フィールドでの情動性減少特性と同様、イソロイシルチアゾリジンによって誘導される壁近くで費やす時間の投与量依存性減少があった（図５）。５０ｐｍｏｌの非常に低用量ですでに効果的であった。
【００６０】
ＥＰＭにおけるイソロイシルチアゾリジンに関する反応：低用量（５０ｐｍｏｌ）のイソロイシルチアゾリジンは、迷路の解放アームで費やす時間の割合を増加させ、不安解消様効果を示した（図６）。総合的に、これらのデータは、初めて、ＤＰ　ＩＶ阻害剤イソロイシルチアゾリジンの薬理学的投与量の投与が、不安を有する２匹の動物モデルにおいて、投与量依存性不安解消様効果をもたらすことを示している。
【００６１】
実施例３
本実施例では、ＤＰ　ＩＶ阻害剤イソロイシルチアゾリジンの中枢投与（ｉ．ｃ．ｖ．）自体が不安に関する社会的相互作用試験における投与量依存性不安解消効果も有することを報告する。我々はまた、イソロイシルチアゾリジンによる不安解消の大きさはＮＰＹによるものに類似することも報告する。さらに、イソロイシルチアゾリジンとＮＰＹとを組み合わせて施すと、ＳＩ試験における不安解消効果が加わることを示す。最後に、１時間および１２時間の摂食量にはイソロイシルチアゾリジンの単独および組み合わせ治療による影響があまりないことを示す。
【００６２】
動物：　体重３３０〜３７０ｇのオスのウイスターＦ／Ｈａｎ（ＷＦ）ラット（セントラル・アニマル・ラボラトリー、ハノーバー・メディカル・スクール、ドイツ、ハノーバー、詳細についてはｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｈ−ｈａｎｎｏｖｅｒ．ｄｅ／ｉｎｓｔｉｔｕｔ／ｔｉｅｒｌａｂｏｒ／ｗｆ．ｈｔｍを参照）を、特異的病原菌を含まない条件下、明暗各１２時間サイクル（７時に点灯、照明レベル８０ルックス）の、温度調整（２４．０±０．５℃）防音室に収容した。餌（アルトロミン実験室用餌ペレット）および水は自由に摂取できるようにした。ケタミン／キシラシン（１００／５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）麻酔の下で、ラットをＫｏｐｆ定位フレームに固定し、側脳室の上にカニューレ（プラスチック・ワン社、米国バージニア州ロアノーク）を植え込んだ。全ての研究および動物保護手順は、ロアー・サキソニー郡政府（ドイツ、ハノーバー）によって証明され、１９８６年１１月２４日のヨーロッパ共同体会議指令に記載の指針に従った（８６／６０９／ＥＥＣ）。
【００６３】
手術およびｉ．ｃ．ｖ．の適用：　手術では、ラットに麻酔をかけ、他で詳記された（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ，ｂ，ｃ）通りの標準定位法を用いてｉ．ｃ．ｖ．カニューレ（座標：Ａ：−０．７ｍｍ尾方、Ｌ：プレグマに対して１．４ｍｍ横；およびＶ：頭蓋表面に対して３．２ｍｍ下面；歯稜＋３．０耳稜上）で準備した。７日の回復期間の後、脳室カニューレ挿入の成功を、アンギオテンシンドリンキング反応によって確認した（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ）。陽性ドリンキング反応を示すラット（ｎ＝５９）を、７日間の毎日の偽注射で実験手法に慣らした。
【００６４】
動物を無作為に２組の４つの実験グループ（ｎ＝５〜６／グループ）に分け、不安についての様々な連続ＳＩ試験を行った。各グループの動物は各段階で同じように治療し、様々な投与量（イソロイシルチアゾリジン：５ｐｍｏｌ〜５００ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：５０ｐｍｏｌ〜１．６ｎｍｏｌ）で、行動試験の６０分前および４５分前にｉ．ｃ．ｖ．注射した。イソロイシルチアゾリジンは緩衝ａＣＳＦを用いて最終濃度に調整し、体積５μｌ／分で右側脳室へ施した。カニューレは約３０ｃｍのポリエチレン管でハミルトン微量注射器に取り付け、ＴＳＥ多流路注入ポンプ（ドイツ、バッドホンブルグ）を使用して、全ての化合物を５．０μｌ／分の速度で合計体積５．０μｌ注入した。活発な社会的相互作用に費やす時間（ＳＩ時間）、１時間および１２時間摂食量を測定した。動物は、無作為に選択した治療および常に新しい相互作用パートナーで繰り返し試験した。試験はそれぞれ少なくとも４日あけ、常に暗サイクルで行った。一連の５つの試験を行った。各試験では、１つの状態当たり５〜６匹の動物からなる４グループ（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ）について行った。
【００６５】
社会的相互作用（ＳＩ）試験：　ＳＩ試験は、Ｆｉｌｅ（１９８０）によって最初に報告された通りに実施され、初めに実験室で適用された（Ｋａｓｋ， Ｎｇｕｙｅｎ， Ｐａｂｓｔ， ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ， 提出）。遺伝子型および体重のマッチした２匹のラットを収容ケージから出し、試験環境に置いた。アリーナは遮音ボックス（コウルボーン・インストゥルメンツ社、ペンシルベニア州リーハイバリー）の中に置かれた、アルミニウムでできた四角い解放フィールド（５０×５０×５０ｃｍ）であった。装置の詳細については先の研究（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ等， １９９８ｃ）を参照。解放フィールドは赤の写真電球（フィリップスＰＦ７１２Ｅ；１．３ルックス）で照明した。ラットは装置に不慣れであった。行動は、試験／遮断ボックス内のフィールド上に置かれたビデオカメラを使用してモニターした。両ラットのＳＩ行動はボックスの上部の外側に置かれたモニターからオンラインで記録した。次のパラメーターを、ラットの亜系統を知らされていない観察者（ＨＰＮ）が評価した：受身の体の接触（休息、睡眠）以外の、臭いをかぐこと、後に続くこと、他のラットの上および下をはうこと。ＳＩ時間の増加は不安解消様反応と考えられる。
【００６６】
統計分析：　反復観察（摂食量）データは、反復測定の分散の２元分析（ＡＮＯＶＡ）（要因：反復測定したときの「亜系統」および「摂食量」）によって分析した。ＤＰ　ＩＶ活性またはＳＩ時間のような簡単な測定のデータは１元（要因：「亜系統」）ＡＮＯＶＡによって分析した。星印は、フィッシャーのＰＬＳＤによって得られたａＣＳＦ＋ａＣＳＦ（対照）に対して有意なポストｈｏｃ効果を示す。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【００６７】
イソロイシルチアゾリジンによるＳＩ試験における投与量依存性不安解消：　ＤＰ　ＩＶ阻害剤イソロイシルチアゾリジンの中枢投与（グループ：ａＣＳＦ＋イソロイシルチアゾリジン：５ｐｍｏｌ〜５００ｎｍｏｌ）は不安に関する社会的相互作用試験において「ベル型」投与量依存性不安解消様効果を生じた（図７）。これは、イソロイシルチアゾリジンが、ＥＰＭおよび解放フィールド試験（実施例２参照）と同様に、有効な不安解消様化合物としてＳＩ試験でも作用することを証明している。ＮＰＹのｉ．ｃ．ｖ．適用（０．０５〜１．６ｎｍｏｌ）は同様の不安解消様効果を有する（図７）。この発見は、技術背景で記載したように、ＮＰＹの公知の不安解消様作用と重なる。イソロイシルチアゾリジン仲介効果とＮＰＹのそれとを比較すると、阻害剤が同様の効果を有することを示している。おもしろいことに、イソロイシルチアゾリジンの予備治療の後にＮＰＹで治療すると、広範囲な投与量にわたって効果が付加され（図７）、これらの化合物が同じメカニズムにより作用することを示している。従来技術で報告されているように、このメカニズムはＣＮＳ　Ｙ１レセプターの活性化の可能性が最も高い。
【００６８】
摂食におけるイソロイシルチアゾリジンの小さい効果：　図８および図９は、１時間でＮＰＹが「ｕ型」投与量依存性摂食効果（図８）を生じたことを示している。イソロイシルチアゾリジンは、０．０５ｎｍｏｌ投与量でのみ有意に達する穏やかな効果を生じた（図８）。イソロイシルチアゾリジンの後にＮＰＹが続く組み合わせ治療は、ＮＰＹ単独（最高の非生理学的投与量以外）とは異なり、ＮＰＹの摂食効果がイソロイシルチアゾリジンによって影響されるメカニズムによって仲介されないことを示している。従来技術のたいていのデータは、ＮＰＹの暗サイクル摂食効果が主にＹ５レセプター仲介であることを示している。一晩の摂食量は、極めて高い投与量以外は、どの治療によっても影響されなかった（図９）。従って、ＤＰ　ＩＶ阻害剤イソロイシルチアゾリジンの中枢適用は主要な摂食調節系（すなわち、ＮＰＹ　Ｙ５レセプター）に影響を及ぼさない。
【００６９】
実施例４
本実施例では、実施例３の図７に示すような中用量（イソロイシルチアゾリジン，５０ｎｍｏｌ；ＮＰＹ，０．８ｎｍｏｌ）でＮＰＹ仲介不安解消様効果が高まるメカニズムについて述べる。我々は、ＮＰＹ　Ｙ１レセプターアンタゴニストＢＩＢＰ３２２６を用いる予備治療が、イソロイシルチアゾリジンによるＳＩ行動におけるＮＰＹ仲介不安解消様効果の増強を妨害することを確認し、そしてさらに１時間摂食量効果がＹＩＲの遮断によってある程度影響されるだけであることを示す。
【００７０】
動物：　体重３３０±３１ｇ±ＳＤのオスのウイスターＦ／Ｈａｎ（ＷＦ）ラット（セントラル・アニマル・ラボラトリー、ハノーバー・メディカル・スクール、ドイツ、ハノーバー、詳細についてはｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｈ−ｈａｎｎｏｖｅｒ．ｄｅ／ｉｎｓｔｉｔｕｔ／ｔｉｅｒｌａｂｏｒ／ｗｆ．ｈｔｍを参照）を、特異的病原菌を含まない条件下、明暗各１２時間サイクル（７時に点灯、照明レベル８０ルックス）の、温度調整（２４．０±０．５℃）防音室に収容した。餌（アルトロミン実験室用餌ペレット）および水は自由に摂取できるようにした。ケタミン／キシラシン（１００／５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）麻酔の下で、ラットをＫｏｐｆ定位フレームに固定し、側脳室の上にカニューレ（プラスチック・ワン社、米国バージニア州ロアノーク）を植え込んだ。全ての研究および動物保護手順は、ロアー・サキソニー郡政府（ドイツ、ハノーバー）によって証明され、１９８６年１１月２４日のヨーロッパ共同体会議指令に記載の指針に従った（８６／６０９／ＥＥＣ）。
【００７１】
手術およびｉ．ｃ．ｖ．の適用：　手術では、ラットに麻酔をかけ、他で詳記された（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ，ｂ，ｃ）通りの標準定位法を用いてｉ．ｃ．ｖ．カニューレ（座標：Ａ：−０．７ｍｍ尾方、Ｌ：プレグマに対して１．４ｍｍ横；およびＶ：頭蓋表面に対して３．２ｍｍ下面；歯稜＋３．０耳稜上）で準備した。７日の回復期間の後、脳室カニューレ挿入の成功を、アンギオテンシンドリンキング反応によって確認した（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｒ等，１９９８ａ）。陽性ドリンキング反応を示すラット（ｎ＝５６）を、７日間の毎日の偽注射で実験手法に慣らした。
【００７２】
動物を無作為に８つの実験グループ（ｎ＝６〜８／グループ）に分け、不安についての１つのＳＩ試験を行った。（１）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（２）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（３）ａＣＳＦ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（４）ＢＩＢＰ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（５）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（６）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（７）ａＣＳＦ＋Ｐ３２／８９＋ＮＰＹ；（８）ＢＩＢＰ＋＋イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ。各グループの動物は各段階で同じように治療し、行動試験の６０分前および５５分前にｉ．ｃ．ｖ．注射した。グループの二晩にわたる実験は両方の暗サイクルでつり合わせた。注入カニューレは約３０ｃｍのポリエチレン管でハミルトン微量注射器に取り付け、ＴＳＥ多流路注入ポンプ（ドイツ、バッドホンブルグ）を使用して、全ての化合物を５．０μｌ／分の速度で合計体積５．０μｌ注入した。活発な社会的相互作用に費やす時間（ＳＩ時間）、１時間および１２時間摂食量を測定した。
【００７３】
ペプチドおよびアンタゴニスト：　ラットニューロペプチドＹ１−３６はポリペプチド・ラボラトリーズ（ドイツ、ウォルフェンビュッテル）から得た。ＮＰＹ　Ｙ１レセプターアンタゴニストＢＩＢＰ３２２６は米国カリフォルニア州サニーベイルのアメリカン・ペプチド社から購入した（Ｃａｔ＃；６０−１−２２Ｂ）。全ての薬剤は滅菌水に溶解し、最終希釈はａＣＳＦで行った。
【００７４】
社会的相互作用（ＳＩ）試験：　ＳＩ試験は、Ｆｉｌｅ（１９８０）によって最初に報告された通りに実施され、初めに実験室で適用された（Ｋａｓｋ， Ｎｇｕｙｅｎ， Ｐａｂｓｔ， ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ， 提出）。治療にマッチした２匹のラットを収容ケージから出し、試験環境に置いた。アリーナは遮音ボックス（コウルボーン・インストゥルメンツ社、ペンシルベニア州リーハイバリー）の中に置かれた、アルミニウムでできた四角い解放フィールド（５０×５０×５０ｃｍ）であった。装置の詳細については先の研究（ｖｏｎ Ｈｏｒｓｔｅｎ等， １９９８ｃ）を参照。解放フィールドは赤の写真電球（フィリップスＰＦ７１２Ｅ；１．３ルックス）で照明した。ラットは装置に不慣れであった。行動は、試験／遮断ボックス内のフィールド上に置かれたビデオカメラを使用してモニターした。両ラットのＳＩ行動はボックスの上部の外側に置かれたモニターからオンラインで記録した。次のパラメーターを、ラットの亜系統を知らされていない観察者（ＨＰＮ）が評価した：受身の体の接触（休息、睡眠）以外の、臭いをかぐこと、後に続くこと、他のラットの上および下をはうこと。ＳＩ時間の増加は不安解消様反応と考えられる。
【００７５】
統計分析：　ＳＩ時間および１時間摂食量の測定から得たデータは、１元（要因：「治療」）ＡＮＯＶＡによって分析した。さらに、３要因（要因：「アンタゴニスト」、「阻害剤」、「ＮＰＹ」）ＡＮＯＶＡを行って、全体的な結論を確認した（データは示されていない）。星印は、ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ（対照）に対して有意なポストｈｏｃ効果を示し、一方、「＃」記号は、フィッシャーのＰＬＳＤによって得られるアンタゴニストなしの相当する治療に対するＹ１Ｒアンタゴニスト治療の有意な差を示す。ポストｈｏｃ比較における有意性のレベルは、「＊」＝ｐ＜０．０５；「＊＊」＝ｐ＜０．０１；「＊＊＊」＝ｐ＜０．００１の星印および「＃」＝ｐ＜０．０５；「＃＃」＝ｐ＜０．０１；「＃＃＃」＝ｐ＜０．００１の「＃」記号で表される。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【００７６】
イソロイシルチアゾリジン予備治療によるＳＩ試験における、ＮＰＹ　Ｙ１レセプター仲介ＮＰＹ誘導不安解消の増強：　投与量５０ｎｍｏｌのイソロイシルチアゾリジンと投与量０．８ｎｍｏｌのＮＰＹとの組み合わせ中枢投与は、ＳＩ試験におけるＮＰＹの不安解消様効果を劇的に高める（図１０）。この発見は、相当する投与量での図７に示される観察と重なる。この投与量では、ヘミフマル酸イソロイシルチアゾリジン（Ｐ３２／９８）治療単独では不安解消様作用がない。しかしながら、内因性社会的調査行動、ＮＰＹの不安解消様効果およびイソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹの組み合わせ治療によって誘導される不安解消効果の増強はいずれもＹ１レセプター遮断によって拮抗された。これは、ＣＮＳにおけるＮＰＹ　Ｙ１レセプターによる不安レベルの緊張調節を示し、そしてさらにＮＰＹの不安解消様効果並びに組み合わせ治療によって誘導される不安解消効果の増強のいずれもが、主にＹ１レセプター仲介であることを示している。自発的摂食およびＮＰＹ誘導摂食はＹ１Ｒによってある程度仲介されるだけであり、イソロイシルチアゾリジン治療によって誘導される摂食の有意でないわずかな増加はＹ１Ｒ拮抗作用によって妨げられる（図１１）。
【００７７】
参考文献
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Ｂｒｏｗｎ， Ｍ．Ｒ．， Ｆｉｓｈｅｒ， Ｌ．Ａ．， Ｓｐｉｅｓｓ， Ｊ．， Ｒｉｖｉｅｒ． Ｊ．， Ｒｉｖｉｅｒ， Ｃ． ａｎｄ Ｖａｌｅ， Ｗ．， Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｂｉｏｌｏｇｉｃ ａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ａｎｄ ｓａｕｖａｇｉｎｅ． Ｒｅｇｕｌ． Ｒｅｐｔ．， ４ （１９８２） １０７−１１４．
Ｃａｌｅｎｃｏ， Ｃ．Ｇ．， Ｄａｕｇｅ， Ｖ．， Ｇａｃｅｌ， Ｇ．． Ｆｅｇｅｒ， Ｊ． ａｎｄ Ｒｏｑｕｅｓ， Ｂ．Ｐ．， Ｏｐｉｏｉｄ ｄｅｌｔａ ａｇｏｎｉｓｔｓ ａｎｄ ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｅｎｋｅｐｈａＬｉｎｓ ｉｎｄｕｃｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｅｍｏｔｉｏｎａｌ ｒｅａｃｔｉｖｉｔｙ ｔｈａｎ ｍｕ ａｇｏｎｉｓｔｓ ａｆｔｅｒ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ ｖｅｎｔｒａｌ ｔｅｇｍｅｎｔａｌ ａｒｅａ． Ｐｈｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ． Ｂｅｒｌ．， １０３ （１９９１） ４９３−５０２．
Ｃａｒｒ， Ｄ．Ｊ．， Ｒｏｇｅｒｓ， Ｔ．Ｊ． ａｎｄ Ｗｅｂｅｒ， Ｒ．Ｊ．， Ｔｈｅ ｒｅｌｅｖａｎｃｅ ｏｆ ｏｐｉｏｉｄｓ ａｎｄ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｏｎ ｉｍｍｕｎｏｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ ａｎｄ ｉｍｍｕｎｅ ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ， Ｐｒｏｃ． Ｓｏｃ． Ｅｘｐ／ Ｂｉｏｌ． Ｍｅｄ．， ２１３ （１９９６） ２４８−２５７．
【００７８】
Ｃｈｅｎ， Ｃ．， Ｄａｇｎｉｎｏ， Ｒ．， Ｄｅ−Ｓｏｕｚａ， Ｅ．Ｂ．， Ｇｒｉｇｏｒｉａｄｉｓ， Ｄ．Ｅ．， Ｈｕａｎｇ， Ｃ． Ｑ．， Ｋｉｍ， Ｋ．Ｉ．， Ｌｉｕ， Ｚ．， Ｍｏｒａｎ， Ｔ．， Ｗｅｂｂ， Ｔ．Ｒ．， Ｗｈｉｔｔｅｎ， Ｊ．Ｐ．， Ｘｉｅ， Ｙ．Ｆ． ａｎｄ ＭｃＣａｒｔｈｙ， Ｊ．Ｒ．， Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ａ ｓｅｒｉｅｓ ｏｆ ｎｏｎ−ｐｅｐｔｉｄｅ ｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙ ｈｕｍａｎ ｃｏｒｔｉｃｏｔｔｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ Ｉ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓ， Ｊ． Ｍｅｄ． Ｃｈｅｍ．， ３９ （１９９６） ４３５８−４３６０．
Ｃｈｒｏｎｗａｌｌ， Ｂ．Ｍ．， Ａｎａｔｏｍｙ ａｎｄ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ ｎｅｕｒｏｅｎｄｏｃｒｉｎｅ ａｒｃｕａｔｅ ｎｕｃｌｅｕｓ， Ｐｅｐｌｉｄｅｓ， ６ Ｓｕｐｐｌ ２ （１９８５） １−１１．
Ｃｏｌｍｅｒｓ， Ｗ． ａｎｄ Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ， Ｃ． （１９９３） Ｔｈｅ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ． Ｔｏｔｏｗａ， Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ．
Ｃｏｎｔｅ， Ｄ．Ｂ．， Ｒｅｙ， Ｍ．， Ｂｏｕｄｏｕｒｅｓｑｕｅ， Ｆ．， Ｇｉｒａｕｄ， Ｐ．， Ｃａｓｔａｎａｓ，． Ｅ．， Ｍｉｌｌｅｔ， Ｙ．， Ｃｏｄａｃｃｉｏｎｉ． Ｊ．Ｌ． ａｎｄ Ｏｌｉｖｅｒ， Ｃ．， Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ４ｌ−ＣＲＦ ａｎｔｉｓｅｒｕｍ ｏｎ ｔｈｅ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ＡＣＴＨ， Ｂ−ｅｎｄｏｒｐｈｉｎ ａｎｄ ａｌｐｈａ−ＭＳＨ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｐｅｐｔｉｄｅｓ， ４ （１９８３） ３０１−３０４．
Ｄａｎｉｅｌｓ， Ａ． Ｊ．， Ｍａｔｔｈｅｗｓ． Ｊ．Ｅ．， Ｓｌｅｐｅｔｉｓ， Ｒ．Ｊ．， Ｊａｎｓｅｎ， Ｍ．， Ｖｉｖｅｒｏｓ， Ｏ．Ｈ．， Ｔａｄｅｐａｌｌｉ， Ａ．， Ｈａｒｒｉｎｇｔｏｎ， Ｗ．， Ｈｅｙｅｒ， Ｄ．， Ｌａｎｄａｖａｚｏ， Ａ．， Ｌｅｂａｎ， Ｊ．Ｊ． ａｎｄ ｅｔ， ａ．， Ｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．， ９２ （１９９５） ９０６７−９０７１．
Ｄｅ Ｂａｕｌｔ， Ｌｅ．， Ｍｉｔｒｏ． Ａ．， Ｅｎｚｙｍｅ ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅａｓｅ ｉｎ ｒａｔ ｓｕｂｆｏｒｎｉｃａｌ ｏｒｇａｎ， Ａｃｔａ Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ， ９６ （１９９４） ３５５−６４
Ｄｅｖｉｎｅ， Ｄ．Ｐ．， Ｔａｙｌｏｒ， Ｌ．， Ｒｅｉｎｓｃｈｅｉｄ， Ｒ．Ｋ．， Ｍｏｎｓｍａ−ＦＪ． Ｊ．， Ｃｉｖｅｌｌｉ， Ｏ． ａｎｄ Ａｋｉｌ， Ｈ．， Ｒａｔｓ ｒａｐｉｄｌｙ ｄｅｖｅｌｏｐ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｔｈｅ ｌｏｃｏｍｏｔｏｒ−ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｎｏｖｅｌ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ， Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ． Ｒｅｓ．， ２１ （１９９６） １３８７−１３９６．
Ｄｉｅｔｅｒｉｃｈ， Ｋ．Ｄ．， Ｌｅｈｎｅｒｔ， Ｈ． ａｎｄ Ｄｅ−Ｓｏｕｚａ， Ｅ．Ｂ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ： ａｎ ｏｖｅｒｖｉｅｗ， Ｅｘｐ． Ｃｌｉｎ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ． Ｄｉａｂｅｔｅｓ， １０５ （１９９７） ６５−８２．
Ｄｏｏｄｓ， Ｈ．Ｎ．， Ｗｉｅｌａｎｄ， Ｈ．Ａ．， Ｅｎｇｅｌ， Ｗ．， Ｅｂｅｒｌｅｉｎ， Ｗ．， Ｗｉｌｌｉｍ， Ｋ．Ｄ．， Ｅｎｔｚｅｒｏｔｈ， Ｍ．， Ｗｉｅｎｅｎ， Ｗ． ａｎｄ Ｒｕｄｏｌｆ， Ｋ．， ＢＩＢＰ ３２２６， ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ： ａ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｉｔｓ ｐｈａｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ， Ｒｅｇｕｌ．Ｐｅｐｔ．， ６５ （１９９６） ７１−７７．
Ｄｕｂｏｖｙ， Ｐ．， Ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌｐｅｐｔｉｄａｓｅ ＩＶ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ Ｍｅｉｓｓｎｅｒ ｃｏｒｐｕｓｃｌｅｓ ｏｆ ｒｈｅｓｕｓ ｍｏｎｋｅｙ ａｎｄ ｉｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ４６１ （１９８８） １８６−９
Ｄｕｋｅ−Ｃｏｈａｎ ＪＳ， Ｍｏｒｉｒｎｏｔｏ Ｃ， Ｒｏｃｋｅｒ ＪＡ， Ｓｃｈｌｏｓｓｍａｎ ＳＦ： Ｓｅｒｕｍ ｈｉｇｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｗｅｉｇｈｔ ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌ ｐｅｐｔｉｄａｓｅ ＩＶ （ＣＤ２６） ｉｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｎｏｖｅｌ ａｎｔｉｇｅｎ ＤＰＰＴ−Ｌ ｒｅｌｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ａｃｔｉｖａｔｅｄ Ｔ ｃｅｌｌｓ， Ｔｈｅ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １５６． １７１４−２１ （１９９６）
Ｄｕｋｅ−Ｃｏｈａｎ ＪＳ．， Ｔａｎｇ Ｗ， Ｓｃｈｌｏｓｓｍａｎ ＳＦ： Ａｔｔｒａｃｔｉｎ： Ａ ｃｕｂ−ｆａｍｉｌｙ ｐｒｏｔｅａｓｅ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｔ ｃｅｌｌ− ｍｏｎｏｃｙｔｅ／ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ， Ａｄｖ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． Ｂｉｏｌ． ４７７， １７３−１８５ （２０００）
Ｄｕｍｏｎｔ， Ｙ．， Ｆｏｕｒｎｉｅｒ， Ａ．， Ｓｔ， Ｐ．Ｓ． ａｎｄ Ｑｕｉｒｉｏｎ． Ｒ．， Ａｕｔｏｒａｄｉｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ［ｌ２５Ｉ］Ｌｅｕ３１， Ｐｒｏ３４］ＰＹＹ ａｎｄ ［１２５Ｉ］ＰＹＹ３−３６ ｂｉｎｄｉｎｇ ｓｉｔｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ ｂｒａｉｎ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｗｏ ｎｅｗｌｙ ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ Ｙ１ ａｎｄ Ｙ２ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｒａｄｉｏｌｉｇａｎｄｓ． Ｓｙｎａｐｓｅ． ２２ （１９９６） １３９−１５８．
Ｄｕｎｎ， Ａ．Ｊ．， Ｂｅｒｒｉｄｇｅ， Ｃ．Ｗ．， Ｌａｉ， Ｙ．Ｉ． ａｎｄ Ｙａｃｈａｂａｃｈ， Ｔ．Ｌ．， ＣＲＦ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｅｘｃｅｓｓｉｖｅ ｇｒｏｏｍｉｎｇ ｂｅｈｖｉｏｒ ｉｎ ｒａｔｓ ａｎｄ ｍｉｃｅ， Ｐｅｐｔｉｄｅｓ， ８ （１９８７） ８４１−８４４．
Ｅｇａｗａ， Ｍ．， Ｙｏｓｈｉｍａｔｓｕ． Ｈ． ａｎｄ Ｂｒａｙ． Ｇ．Ａ．． Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ ｓｙｍｐａｔｈｅｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｎｔｅｒｓｃａｐｕｌａｒ ｂｒｏｗｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓｓｕｅ ｉｎ ｒａｔｓ． Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．， ２６０ （１９９１） Ｒ３２８−Ｒ３３４
Ｅｇｈｂａ１． Ａ．Ｍ．， Ｈａｔａｌｓｋｉ． Ｃ．Ｇ．， Ａｖｉｓｈａｉ， Ｅ．Ｓ． ａｎｄ Ｂａｒａｍ， Ｔ．Ｚ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔｙｐｅ ＩＩ （ＣＲＦ２） ｍｅｓｓｅｎｇｅｒ ｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｌｅｖｅｌｓ ｉｎ ｔｈｅ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ ｖｅｎｔｒｏｍｅｄｉａｌ ｎｕｃｌｅｕｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｎｆａｎｔ ｒａｔ ａｒｅ ｒｅｄｕｃｅｄ ｂｙ ｍａｔｅｒｎａｌ ｄｅｐｒｉｖａｔｉｏｎ， Ｅｎｄｏｃｒｒｉｎｏｌｏｇｙ． １３８ （１９９７） ５０４８−５０５１．
Ｅｋｍａｎ， Ｒ．， Ｓｅｒｖｅｎｉｕｓ， Ｂ．， Ｃａｓｔｒｏ， Ｍ．Ｇ．， Ｌｏｗｒｙ， Ｐ．Ｊ．， Ｃｅｄｅｒｌｕｎｄ， Ａ．Ｓ．， Ｂｅｒｇｍａｎ， Ｏ． ａｎｄ Ｓｊｏｇｒｅｎ． Ｈ．Ｏ．， Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｈｏｒｍｏｎｅ ｉｎ ｈｕｍａｎ Ｔ−ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ． Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ， ４４ （１９９３） ７−１３．
Ｆｉｌｅ． Ｓ．Ｅ．， Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｂｅｈａｖｉｏｕｒａｌ ｓｔｕｄｉｅｓ ｔｏ ｔｈｅ ｎｅｕｒｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ ａｎｘｉｅｔｙ， Ｎｅｕｒｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ， ２６ （１９８７） ８７７−８８６．
Ｆｌｏｒｉｎ， Ｓ．， Ｓｕａｕｄｅａｕ， Ｃ．Ｉ．， Ｍｅｕｎｉｅｒ， Ｊ．Ｃ．， ａｎｄ Ｃｏｓｔｅｎｔｉｎ， ］．， Ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ ｓｔｉｒｎｕｌａｔｅｓ ｌｏｃｏｍｏｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｘｐｌｏｒａｔｏｒｙ ｂｅｈａｖｉｏｕｒ ｉｎ ｍｉｃｅ． Ｅｕｒ． Ｊ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．， ３１７ （１９９６） ９−１３．
Ｆｕｈｌｅｎｄｏｒｆｆ， Ｊ．， Ｕ． Ｇｅｔｈｅｒ， Ｌ． Ａａｋｅｒｌｕｎｄ， Ｎ． Ｌａｎｇｅｌａｎｄ−Ｊｏｈａｎｓｅｎ， Ｈ． Ｔｏｇｅｒｓｏｎ， Ｓ．ＧＦ． Ｍｅｌｂｅｒｇ． Ｕ．Ｂ． Ｏｌｓｅｎ， Ｏ． Ｔｈａｓｔｒｕｐ， ａｎｄ Ｔ．Ｗ． Ｓｃｈｗａｒｔｚ ３１ ３４ （ｌ９９０）， ［ＬｅＵ ， Ｐｒｏ Ｉ Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ： Ａ ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｙｊ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ａｇｏｎｉｓｔ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ８７， １８２−１８６．
Ｇａｖｅｒｉａｕｘ， Ｒ．Ｃ．， Ｍａｔｔｈｅｓ， Ｈ．Ｗ．， Ｐｅｌｕｓｏ， Ｊ． ａｎｄ Ｋｉｅｆｆｅｒ． Ｂ．Ｌ．， Ａｂｏｌｉｔｉｏｎ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ− ｉｍｍｕｎｏｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ ｍｉｃｅ ｌａｃｋｉｎｇ ｔｈｅ ｍｕ−ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｇｅｎｅ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．， ９５ （１９９８） ６３２６−６３３０．
【００７９】
Ｇｅｈｌｅｒｔ， Ｄ．Ｒ．， Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ （ＰＰ−ｆｏｌｄ） ｆａｍｉｌｙ： ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ， Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．， ２１８ （１９９８） ７−２２．
Ｇｅｒａｌｄ， Ｃ．， Ｗａｌｋｅｒ， Ｍ．Ｗ．， Ｃｒｉｓｃｉｏｎｅ， Ｌ．， Ｇｕｓｔａｆｓｏｎ． Ｅ．Ｌ．， Ｂａｔｚｉ−Ｈａｒｔｍａｎｎ， Ｃ．， Ｓｍｉｔｈ， Ｋ．Ｅ．， Ｖａｙｓｓｅ， Ｐ．， Ｄｕｒｋｉｎ， Ｍ．Ｍ．， Ｌａｚ． Ｔ．Ｍ．， Ｌｉｎｅｒｎｅｙｅｒ， Ｄ．Ｌ．， Ｓｃｈａｆｈａｕｓｅｒ， Ａ．Ｏ．， Ｗｈｉｔｅｂｒｅａｄ． Ｓ．， Ｈｏｆｂａｕｅｒ， ＫＧ．， Ｔａｂｅｒ， Ｒ．Ｉ．， Ｂｒａｎｃｈｅｋ． Ｔ，Ａ． ａｎｄ Ｗｅｉｎｓｈａｎｋ， Ｒ．Ｌ． （ｌ９９６）． Ａ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｕｂｔｙｐｅ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ−Ｙ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｆｏｏｄ ｉｎｔａｋｅ． Ｎａｔｕｒｅ， ３８２， １６８−１７１．
Ｇｅｒａｌｄ， Ｃ．， Ｗａｌｋｅｒ， Ｍ．Ｗ．， Ｖａｙｓｓｅ， Ｐ．Ｊ．−Ｊ， Ｈｅ， Ｃ．， Ｂｒａｎｃｈｅｋ， Ｔ．Ａ． ａｎｄ Ｗｅｉｎｓｈａｎｋ， Ｒ．Ｌ． （ｌ９９５） Ｊ． Ｂｉｏ１． Ｃｈｅｍ．， ２７０， ２６７５８−２６７６１． Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｃｌｏｎｉｎｇ ａｎｄ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｈｕｍａｎ ｈｉｐｐｏｃａｍｐａｌ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ／ｐｅｐｔｉｄｅ ＹＹ Ｙ２ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｕｂｔｙｐｅ．
Ｇｏｓｎｅｌｌ， Ｂ．Ａ．， Ｌｅｖｉｎｅ． Ａ．Ｓ． ａｎｄ Ｍｏｒｌｅｙ， Ｊ．Ｅ．， Ｔｈｅ ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｏｏｄ ｉｎｔａｋｅ ｂｙ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ａｇｏｎｉｓｔｓ ｏｆ ｍｕ， ｋａｐｐａ ａｎｄ ｄｅｌｔａ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ， Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．， ３８ （１９８６） １０８１−１０８８．
Ｇｒｏｓｓｋｒｅｕｔｚ， Ｃ．Ｌ． ａｎｄ Ｂｒｏｄｙ， Ｍ．Ｊ．， Ｒｅｇｉｏｎａｌ ｈｅｍｏｄｙｎａｍｉｃ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｃｅｎｔｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ （ＣＲＦ）， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ４４２ （１９８８） ３６３−３６７．
Ｇｒｏｕｚｍａｎｎ， Ｅ．， Ｂｕｃｌｉｎ， Ｔ．， Ｍａｒｔｉｒｅ， Ｍ．． Ｃａｎｎｉｚｚａｒｏ， Ｃ．， Ｄｏｒｎｅｒ． Ｂ．， Ｒａｚａｎａｍｅ， Ａ． ａｎｄ Ｍｕｔｔｅｒ， Ｍ．， Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ａｔ ｔｈｅ Ｙ２ ｋｅｐｔｏｒ． Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｙ２ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ， Ｊ．Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２７２ （１９９７） ７６９９−７７０６．
Ｇｒｕｎｄｅｍａｒ． Ｌ．， Ｇｒｕｎｄｓｔｒｏｍ， Ｎ．． ｊｏａｈａｎｓｓｏｎ， Ｉ．Ｇ．Ｍ．， Ａｎｄｅｒｓｓｏｎ． ＲＧ．Ｇ． ａｎｄ Ｈａｋａｎｓｏｎ． Ｒ． （ｌ９９０） Ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｂｙ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｏｆ ｃａｐｓａｉｃｉｎ−ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｎｓｏｒｙ ｎｅｒｖｅ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｏｎｔｒａｃｔｉｏｎ ｉｎ ｇｕｉｎｅａ−ｐｉｇ ａｉｒｗａｙｓ． Ｂｒ． Ｊ． Ｐｈａｍａｃｏｌ．， ９９， ４７３−４７６．
Ｇｒｕｎｄｅｍａｒ， Ｌ．， Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ， Ｃ． ａｎｄ Ｗａｎｇ， Ｚ．Ｙ． （１９９３） Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ ｔｈｅ ｎｅｕｒｏｇｅｎｉｃ ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｉｌｌ ｔｈｅ ｒａｂｂｉｔ ｅｙｅ； ｍｏｄｅ ｏｆ ａｃｔｉｏｎ． Ｒｅｇｕ１． Ｐｅｐｔ．， ４３， ５７−６４．
Ｇｒｕｎｄｉｔｚ， Ｔ．， Ｕｄｄｍａｎ， Ｒ． ａｎｄ Ｓｕｎｄｌｅｒ， Ｆ． （ｌ９９４） Ｏｒｉｇｉｎ ａｎｄ ｐｅｐｔｉｄｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｎｅｒｖｅ ｆｉｂｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｎａｓａｌ ｍｕｃｏｓａ ｏｆ ｒａｔｓ． Ａｎａｔ． Ｅｍｂｒｙｏｌ． １８９， ３２７−３３７．
Ｇｕｅ， Ｍ．， Ｊｕｎｉｅｎ， Ｊ．Ｌ．， Ｒｅｅｖｅ−ＪＲ， Ｊ．， Ｒｉｖｉｅｒ， Ｊ．， Ｇｒａｎｄｔ， Ｄ． ａｎｄ Ｔａｃｈｅ， Ｙ．， Ｒｅｖｅｒｓａｌ ｂｙ ＮＰＹ， ＰＹＹ ａｎｄ ３−３６ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｆｏｒｍｓ ｏｆ ＮＰＹ ａｎｄ ＰＹＹ ｏｆ ｉｎｔｒａｃｉｓｔｅｒｎａｌ ＣＲＦ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ｇａｓｔｒｉｃ ａｃｉｄ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｉｎ ｒａｔｓ， Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，１１８ （１９９６） ２３７−２４２．
Ｈａｒｔｅ１−Ｓｃｈｅｎｋ， Ｓ．， Ｇｏｓｓｒａｕ， Ｒ．， Ｒｅｕｔｔｅｒ， Ｗ．， Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ｉｒｒｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌ ｐｅｐｔｉｄａｓｅ ｌＶ ｉｎ ｒａｔｓ ｏｒｇａｎｓ ｄｕｒｉｎｇ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ， Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｊ， ２２ （１９９０） ５６７−７８
Ｈｅｉｌｉｇ， Ｍ． ａｎｄ Ｍｕｒｉｓｏｎ， Ｒ．， Ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ ｏｐｅｎ ｆｉｅｌｄ ａｎｄ ｈｏｍｅ ｃａｇｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｒｅｇｕｌ．Ｐｅｐｔ．， １９ （１９８７） ２２１−２３１．
Ｈｅｉｌｉｇ， Ｍ．， Ｂ． Ｓｏｄｅｒｐａｌｍ， Ｊ．Ａ． Ｅｎｇｅｌ ａｎｄ Ｅ． ＷｉｄｅｒＩｏｖ， （１９８９）． Ｃｅｎｔｒａｌｌｙ ａｄｍｈｉｓｔｅｒｅｄ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ （ＮＰＹ） ｐｒｏｄｕｃｅｓ ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ−ｌｉｋｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｉｎ ａｎｉｍａｌ ａｎｘｉｅｔｙ ｍｏｄｅｌｓ， Ｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ． ９８， ５２４−５２９．
Ｈｅｉｌｉｇ， Ｍ．， ＭｃＬｅｏｄ， Ｓ．， Ｂｒｏｔ， Ｍ．， Ｈｅｉｎｒｉｃｈｓ， Ｓ．Ｃ．， Ｍｅｎｚａｇｈｉ， Ｆ．， Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ． ａｎｄ Ｂｒｉｔｔｏｎ， Ｋ．Ｔ．， Ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ−ｌｉｋｅ ａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ： ｍｅｄｉａｔｉｏｎ ｂｙ Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｉｎ ａｍｙｇｄａｌａ， ａｎｄ ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ｆｏｏｄ ｉｎｔａｋｅ ｅｆｆｅｃｔｓ， Ｎｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ．， ８ （１９９３） ３５７−３６３．
Ｈｅｉｌｉｇ， Ｍ．， Ｓｏｄｅｒｐａｌｍ， Ｂ．， Ｅｎｇｅｌ． Ｊ．Ａ． ａｎｄ Ｗｉｄｅｒｌｏｖ， Ｅ．， Ｃｅｎｔｒａｌｌｙ ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｃ Ｙ （ＮＰＹ） ｐｒｏｄｕｃｅｓ ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ−ｌｉｋｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｉｎ ａｎｉｍａｌ ａｎｘｉｅｔｙ ｍｏｄｅｌｓ， Ｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ Ｂｅｒｌ．， ９８ （１９８９） ５２４−５２９．
Ｈｅｉｎｒｉｃｈｓ， Ｓ．Ｃ．， Ｌａｐｓａｎｓｋｙ， Ｊ．， Ｂｅｈａｎ， Ｄ．Ｐ．， Ｃｈａｎ， Ｒ．Ｋ．， Ｓａｗｃｈｅｎｋｏ， Ｐ．Ｅ．， Ｌｏｒａｎｇ， Ｍ．， Ｌｉｎｇ． Ｎ．， Ｖａｌｅ， Ｗ．Ｗ． ａｎｄ Ｄｅ−Ｓｏｕｚａ， Ｅ．Ｂ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ ｌｉｇａｎｄ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｂｌｕｎｔｓ ｅｘｃｅｓｓｉｖｅ ｗｅｉｇｈｔ ｇａｉｎ ｉｎ ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｏｂｅｓｅ Ｚｕｃｋｅｒ ｒａｔｓ ａｎｄ ｒａｔｓ ｄｕｒｉｎｇ ｎｉｃｏｔｉｎｅ ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ， Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．， ９３ （１９９６） １５４７５−１５４８０．
Ｈｅｉｎｒｉｃｈｓ， Ｓ，Ｃ．， Ｐｉｃｈ， Ｅ．Ｍ．， Ｍｉｃｚｅｋ． Ｋ．Ａ．， Ｂｒｉｔｔｏｎ， Ｋ．Ｔ． ａｎｄ Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ ｒｅｄｕｃｅｓ ｅｍｏｔｉｏｎａｌｉｔｙ ｉｎ ｓｏｃｉａｌｌｙ ｄｅｆｅａｔｅｄ ｒａｔｓ ｖｉａ ｄｉｒｅｃｔ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｉｃ ａｃｔｉｏｎ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ５８１ （１９９２） １９０−１９７．
Ｈｅｒｚ， Ａ．， Ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｗａｒｄ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ： ａ ｋｅｙ ｒｏｌｅ ｉｎ ｄｒｕｇ ａｂｕｓｅ？， Ｃａｎ． Ｊ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． Ｐｈａｍａｃｏｌ．， ７６ （１９９８） ２５２−２５８．
Ｈｅｒｚｏｇ， Ｈ．， Ｙ．Ｊ． Ｈｏｒｔ， Ｈ．Ｊ． Ｂａｌｌ， Ｇ． Ｈａｙｅｓ， Ｊ． Ｓｈｉｎｅ， ａｎｄ Ｌ．Ａ． Ｓｅｌｂｉｅ （１９９２）， Ｃｌｏｎｅｄ ｈｕｍａｎ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｃｏｕｐｌｅｓ ｔｏ ｔｗｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｅｃｏｎｄ ｍｅｓｓｅｎｇｅｒ ｓｙｓｔｅｍｓ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ． ８９， ５７９４−５７９８．
Ｈｏｅｈｅ， Ｍ． ａｎｄ Ｄｕｋａ， Ｔ．， Ｏｐｉａｔｅｓ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｐｌａｓｍａ ｃａｔｅｃｈｏｌａｍｉｎｅｓ ｉｎ ｈｕｍａｎｓ， Ｐｓｙｃｈｏｎｅｕｒｏｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ）．， １８ （１９９３） １４１−１４８．
【００８０】
Ｈｏｆｆｍａｎ， Ｋ．Ｅ．， Ｍａｓｌｏｎｅｋ， Ｋ．Ａ．， Ｄｙｋｓｔｒａ， Ｌ．Ａ． ａｎｄ Ｌｙｓｌｅ， Ｄ．Ｔ．， Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｅｎｔｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ ｏｎ ｉｍｍｕｎｅ ｓｔａｔｕｓ ｉｎ Ｌｅｗｉｓ ａｎｄ Ｗｉｓｔａｒ ｒａｔｓ． ｌｎ Ｂ．Ｍ． Ｓｈａｒｐ， Ｔ．Ｋ． Ｅｉｓｅｎｓｔｅｉｎ． Ｊ．Ｊ． Ｍａｄｄｅｎ ａｎｄ Ｈ． Ｆｒｉｅｄｍａｎ （Ｅｄｓ．） Ｔｈｅ ｂｒａｉｎ ｉｍｍｕｎｅ ａｘｉｓ ａｎｄ ｓｕｂｓｔａｎｃｅ ａｂｕｓｅ， Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ． １９９５， ｐｐ． １５５−１５９．
Ｈｏｎｇ， Ｗ．， Ｐｅｔｅｌ１， Ｊ．Ｋ．， Ｓｗａｎｋ， Ｄ．， Ｓａｎｆｏｒｄ， Ｊ．， Ｈｉｘｓｏｎ， Ｄ．Ｃ．， Ｄｏｙｌｅ， Ｄ．， Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｄｉｐｅｔｉｄｙｌ ｐｅｐｔｉｄａｓｅ ＩＶ ｉｎ ｒａｔ ｔｉｓｓｕｅｓ ｉｓ ｍａｉｎｌｙ ｒｅｇｕｌａｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｍＲＮＡ ｌｅｖｅｌｓ． Ｅｘｐ． Ｃｅｌｌ． Ｒｅｓ．， １８２ （１９８９）， ２５６−２６６
Ｈｏｒｓｔｅｎ， Ｓ．Ｖ．， Ｄｉｍｉｔｒｉｊｅｖｉｃ Ｍ．， Ｍａｒｋｏｖｉｃ Ｂ． Ｍ， ａｎｄ Ｊａｎｋｏｖｉｃ Ｂ．Ｄ．， Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｅａｒｌｙ ｃｅｘｐｅｒｉｅｎｃｅ ｏｎ ｂｅｈａｖｉｏｒ ａｎｄ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｐｈｙｓｉｏｌ Ｂｅｈａｖ， ５４ （１９９３） ９３１−４０．
Ｈｏｒｓｔｅｎ． Ｓ．ｖ．， Ｂａｌｌｏｆ， Ｊ．， Ｈｅｌｆｒｉｔｚ， Ｆ．， Ｎａｖｅ， Ｈ．， Ｍｅｙｅｒ， Ｄ．， Ｓｃｈｍｉｄｔ， Ｒ．Ｅ．， Ｓｔａｌｐ， Ｍ．， Ｋｌｅｍｍ， Ａ．， Ｔｓｃｈｅｒｎｉｇ， Ｔ． ａｎｄ Ｐａｂｓｔ， Ｒ．， Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｎａｔｅ ｉｍｍｕｎｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ｂｙ ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒｌｙ ａｐｐｌｉｅｄ Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ： Ｄｏｓｅ ａｎｄ ｔｉｍｅ ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｅｆｆｅｃｔｓ． Ｌｌｆｅ Ｓｃｉ．， ６３ （１９９８ａ） ９０９−９２２．
Ｈｏｒｓｔｅｎ， Ｓ．ｖ．， Ｅｘｔｏｎ， Ｍ．Ｓ．， Ｖｏｇｅ Ｊ， Ｓｃｈｕｍｉｄｔ Ｍ．， Ｎａｇｅｌ， Ｅ．， Ｓｃｌｍｉｄｔ Ｒ．Ｅ．， Ｗｅｓｔｅｒｍａｒｎ Ｊ． ａｎｄ Ｓｃｈｅｄｌｏｗｓｋｉ Ｍ．， Ｃｙｃｌｏｓｐｏｒｉｎｅ Ａ ａｆｆｅｃｔｓ ｏｐｅｎ ｆｉｅｌｄ ｂｅｈａｖｉｏｒ ｉｎ ＤＡ ｒａｔｓ， Ｐｈａｒｍａｃｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｅｈａｖ， ６０ （１９９８ｄ） ７１−６．
Ｈｏｒｓｔｅｎ， Ｓ．ｖ．． Ｅｘｔｏｎ， Ｎ．Ｇ．， Ｅｘｔｏｎ， Ｍ．Ｓ．， Ｈｅｌｆｒｉｔｚ． Ｆ．， Ｎａｖｅ， Ｈ．， Ｂａｌｌｏｔ， Ｊ．， Ｓｔａｌｐ， Ｍ． ａｎｄ Ｐａｂｓｔ， Ｒ．， Ｂｒａｉｎ ＮＰＹ Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｒａｐｉｄｌｙ ｍｅｄｉａｔｅ ｔｈｅ ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｎｏｖｅｌｔｙ ａｎｄ ａ ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎ ｂｌｏｏｄ ａｎｄ ｓｐｌｅｅｎ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ８０６ （ｌ９９８ｃ） ２８２−２８６．
Ｈｏｒｓｔｅｎ， Ｓ．ｖ．， Ｎａｖｅ， Ｈ．， Ｂａｌｌｏｆ， Ｊ．， Ｈｅｌｆｒｉｔｚ． Ｆ．， Ｍｅｙｅｒ， Ｄ．， Ｓｃｈｍｉｄｔ． Ｒ．Ｅ．， Ｓｔａｌｐ， Ｍ．， Ｅｘｔｏｎ， Ｎ．Ｇ．， Ｅｘｔｏｎ， Ｍ．Ｓ．， Ｓｔｒａｕｂ， Ｒ．Ｈ．， Ｒａｄｕｌｏｖｉｃ， Ｊ． ａｎｄ Ｐａｂｓｔ， Ｒ．， Ｃｅｎｔｒａｌｌｙ ａｐｐｌｉｅｄ ＮＰＹ ｍｉｍｉｃｓ ｉｍｍｕｎｏａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｎｏｎａｎａ１ｇｅｓｉｃ ｄｏｓｅｓ ｏｆ Ｍｅｔ−Ｅｎｋｅｐｈａｌｉｎ， Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ．． ９ （１９９８ｂ） ３８８１−３８８５．Ｈｏｒｖａｔｈ， Ｔ．Ｌ．， Ｎａｆｔｏｌｉｎ， Ｆ．， Ｋａｌｒａ， Ｓ．Ｐ． ａｎｄ Ｌｅｒａｎｔｈ， Ｃ．， Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ−Ｙ ｉｎｎｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｅｔａ−ｅｎｄｏｒｐｈｉｎ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｃｅｌｌｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ ｍｅｄｉｏｂａｓａｌ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｕｓ： ａ ｌｉｇｈｔ ａｎｄ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｉｃ ｄｏｕｂｌｅ ｉｍｍｕｎｏｓｔａｉｎｉｎｇ ａｎａｌｙｓｉｓ ［ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｅｒｒａｔｕｍ ａｐｐｅａｒｓ ｉｎ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ １９９６ Ｆｅｂ； １３７（２）：５３２］， Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ， １３１ （１９９２） ２４６１−２４６７．
Ｊａｎｋｏｖｉｃ， Ｂ．Ｄ． ａｎｄ Ｒａｄｕｌｏｖｉｃ， Ｊ．， Ｅｎｋｅｐｈａｌｉｎｓ， ｂｒａｉｎ ａｎｄ ｉｍｍｕｎｉｔｙ： ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｂｙ ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ−ｅｎｋｅｐｈａｌｉｎ ｉｎｊｅｃｔｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｃｅｒｅｂｒａｌ ｃａｖｉｔｙ， Ｉｎｔ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．， ６７ （１９９２） ２４１−２７０．
Ｊｅｎｃｋ， Ｆ．， Ｍｏｒｅａｕ， Ｊ．Ｌ．， Ｍａｒｔｉｎ， Ｊ．Ｒ．， Ｋｉｌｐａｔｒｉｃｋ． Ｇ．Ｊ．， Ｒｅｉｎｓｃｈｅｉｄ， Ｒ．Ｋ．， Ｍｏｎｓｍａ−ＦＪ． Ｊ．， Ｎｏｔｈａｃｋｅｒ， Ｈ．Ｐ． ａｎｄ Ｃｉｖｅｌｌｉ． Ｏ．， Ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ ａｃｔｓ ａｓ ａｎ ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ ｔｏ ａｔｔｅｎｕａｔｅ ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｓｔｒｅｓｓ， Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．， ９４ （１９９７） １４８５４−１４８５８．
Ｋａｌｒａ， Ｐ．Ｓ．， Ｎｏｒｌｉｎ， Ｍ． ａｎｄ Ｋａｌｒａ， Ｓ．Ｐ．， Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｓｔｉｍｕｌａｔｅｓ ｂｅｔａ−ｅｎｄｏｒｐｈｉｎ ｒｅｌｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｂａｓａｌ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｕｓ： ｒｏｌｅ ｏｆ ｇｏｎａｄａｌ ｓｔｅｒｏｉｄｓ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ７０５ （１９９５） ３５３−３５６．
Ｋａｒａｌｉｓ． Ｋ．， Ｍｕｇｌｉａ， Ｌ．Ｊ．， Ｂａｅ， Ｄ．， Ｈｉｌｄｅｒｂｒａｎｄ， Ｈ． ａｎｄ Ｍａｊｚｏｕｂ， Ｊ．Ａ．， ＣＲＨ ａｎｄ ｔｈｅ ｉｍｍｕｎｅ ｓｙｓｔｅｍ， Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｍｏｌ．， ７２ （１９９７） １３１−１３６．
Ｋａｓｋ， Ａ．， Ｌ． Ｒａｇｏ ａｎｄ Ｊ． Ｈａｒｒｏ， （１９９８）． ＮＰＹ Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｄｏｒｓａｌ ｐｅｒｉａｑｕｅｄｕｃｔａｌ ｇｒａｙ ｍａｔｔｅｒ ｒｅｇｕｌａｔｅ ａｎｘｉｅｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｓｏｃｉａｌ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｔｅｓｔ， Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｎ， ９， ２７１３−２７１６．
Ｋａｓｋ， Ａ．， Ｒａｇｏ， Ｌ． ａｎｄ Ｈａｒｒｏ， Ｊ．， Ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ−ｌｉｋｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ （ＮＰＹ） ａｎｄ ＮＰＹ １３−３６ ｍｉｃｒｏｉｎｊｅｃｔｅｄ ｉｎｔｏ ｖｉｃｉｎｉｔｙ ｏｆ ｌｏｃｕｓ ｃｏｅｒｕｌｅｕｓ ｉｎ ｒａｔｓ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ７８８ （１９９８） ３４５−３４８．
Ｋａｔｏ， Ｔ．， Ｍａｍａ， Ｔ．， Ｎａｇａｔｓｕ， Ｔ．， Ｋｕｚｕｙａ， Ｈ．， Ｓａｋａｋｉｂａｒａ， Ｓ．， Ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ Ｘ−ｐｒｏｌｙｌ ｄｉｐｅｐｄｄｙｌ−ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ｒａｔ ｂｒａｉｎ． Ｅｘｐｅｒｉｅｎｔｉａ， ３５ （１９７９） １３２９−３０
Ｋｉｒｉｔｓｙ． Ｒ．Ｊ．， Ａｐｐｅ１， Ｎ．Ｍ．， Ｂｏｂｂｉｔｔ， Ｆ．Ｇ． ａｎｄ Ｖａｎ−Ｌｏｏｎ， Ｇ．Ｒ．， Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｍｕ−ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ ｐａｒａｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｎｕｃｌｅｕｓ ｏｎ ｂａｓａｌ ａｎｄ ｓｔｒｅｓｓ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｃａｔｅｃｈｏｌａｍｉｎｅ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ａｎｄ ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ， Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２３９ （１９８６） ８１４−８２２．
Ｋｉｒｉｔｓｙ， Ｒ．Ｊ．， Ｍａｒｓｏｎ， Ｌ． ａｎｄ Ｖａｎ−Ｌｏｏｎ， Ｇ．Ｒ．， Ｓｙｍｐａｔｈｏａｄｒｅｎａ１． ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ ａｎｄ ｂｌｏｏｄ ｇａｓ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｈｉｇｈｌｙ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｍｕ ａｎｄ ｄｅｌｔａ ｏｐｉｏｉｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ， Ｊ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２５１ （１９８９） １０９６−１１０３．
Ｋｏｎｉｇ． Ｍ．， Ｚｉｍｍｅｒ， Ａ．Ｍ．， Ｓｔｅｉｎｅｒ， Ｈ．， Ｈｏｌｍｅｓ． Ｐ．Ｖ．， Ｃｒａｗｌｅｙ， Ｉ．Ｎ．， Ｂｒｏｗｎｓｔｅｉｎ， Ｍ．Ｊ． ａｎｄ Ｚｉｍｍｅｒ， Ａ．， Ｐａｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ， ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ ａｇｇｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ ｍｉｃｅ ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ ｉｎ ｐｒｅ−ｐｒｏｅｎｋｅｐｈａｌｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ， ３８３ （１９９６） ５３５−５３８．
Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ． ａｎｄ Ｂｌｏｏｍ， Ｆ．Ｅ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ ａｎｄ ｂｅｈａｖｉｏｒ． Ｆｅｄ．Ｐｒｏｃ．， ４４ （１９８５） ２５９−２６３．
【００８１】
Ｋｏｔｚ， Ｃ．Ｍ．， Ｇｒａｃｅ， Ｍ．Ｋ．， Ｂｉｌｌｉｎｇｔｏｎ， Ｃ．Ｊ． ａｎｄ Ｌｅｖｉｎｅ， Ａ．Ｓ．， Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｎｏｒｂｉｎａｌｔｏｒｐｈｉｍｉｎｅ， ｂｅｔａ−ｆｕｎａｌｔｒｅｘａｍｉｎｅ ａｎｄ ｎａｌｔｒｉｎｄｏｌｅ ｏｎ ＮＰＹ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｆｅｅｄｉｎｇ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ６３１ （１９９３） ３２５−３２８．
Ｋｒｅｐｅ１ａ Ｅ， Ｋｒａｍｌ Ｊ， Ｖｉｃａｒ Ｊ， Ｋａｄｌｅｃｏｖａ Ｌ， Ｋａｓａｆｉｒｅｋ Ｅ： Ｄｉｐｃｐｔｉｄｙｌ ｐｃｐｔｉｄａｓｅ ＩＶ ｈｙｄｒｏｌｙｓｅｓ Ｇａｓｔｒｉｃ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ Ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ， Ｇｌｕｃａｇｏｎ−ｌｉｋｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ−１ （７−３６）ａｍｉｄｅ， Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅ Ｍｅｔｈｉｏｎｉｎ ａｎｄ ｉｓ Ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ｉｎ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｕｒｎ， Ｅｕｒ．Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２１４， ８２９−８３５ （１９９３）
Ｌａｃｒｏｉｘ， Ｊ．Ｓ．， Ｕｌｍａｎ， Ｌ．Ｇ． ａｎｄ Ｐｏｔｔｅｒ， Ｅ．Ｋ． （１９９４） Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｂｙ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｏｆ ｐａｒａｓｙｍｐａｔｈｅｔｉｃ ｎｅｒｖｅ−ｅｖｏｋｅｄ ｎａｓａｌ ｖａｓｏｄｉｌｉｔａｔｉｏｎ ｖｉａ Ｙ２ ｐｒｅｊｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｒｅｃｅｐｔｏｒ． Ｂｒ． Ｊ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．， １１３， ４７９−４８４．
Ｌａｍｂｅｒｔ， Ｐ．Ｄ．， Ｗｉｌｄｉｎｇ， Ｊ．Ｐ．， ａｌ−Ｄｏｋｈａｙｅｌ， Ａ．Ａ．， Ｇｉｌｂｅｙ， Ｓ．Ｇ． ａｎｄ Ｂｌｏｏｍ， Ｓ．Ｒ．， Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｃｅｎｔｒａｌ ｂｌｏｃｋａｄｅ ｏｆ ｋａｐｐａ−ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｏｎ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｆｅｅｄｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ６２９ （１９９３） １４６−１４８．
Ｌｅｕ， Ｓ．Ｊ． ａｎｄ Ｓｉｎｇｈ， Ｖ．Ｋ．， Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｎａｔｕｒａｌ ｋｉｌｌｅｒ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｌｙｓｉｓ ｂｙ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｎｅｕｒｏｈｏｒｍｏｎｅ． Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．， ３３ （１９９１） ２５３−２６０．
Ｌｅｖｉｎｅ． Ａ．Ｓ， ａｎｄ Ｂｉｌｌｉｎｇｔｏｎ， Ｃ．Ｊ．， Ｏｐｉｏｉｄｓ． Ａｒｅ ｔｈｅｙ ｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ ｏｆ ｆｅｅｄｉｎｇ？， Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．， ５７５ （１９８９） ２０９−２１９．
Ｌｏｃｋｅ， Ｋ．Ｗ． ａｎｄ Ｈｏｌｔｚｍａｎ， Ｓ．Ｇ．， Ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｏｐｉｏｉｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｆｏｒ ｍｕ ｏｒ ｄｅｌｔａ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ． Ｉ． Ｍｏｒｐｈｉｎｅ−ｌｉｋｅ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｖｅ ｓｔｉｍｕｌｕｓ ｅｆｆｅｃｔｓ， Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２３８ （１９８６） ９９０−９９６．
Ｌｏｈ， Ｈ．Ｈ．， Ｌｉｕ， Ｈ．Ｃ．， Ｃａｖａｌ１ｉ， Ａ．， Ｙａｎｇ， Ｗ．， Ｃｈｅｎ， Ｙ．Ｆ． ａｎｄ Ｗｅｉ． Ｌ．Ｎ．， ｍｕ Ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｉｎ ｍｉｃｅ： ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｌｉｇａｎｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ ａｎａｌｇｅｓｉａ ａｎｄ ｍｏｒｐｈｉｎｅ ｌｅｔｈａｌｉｔｙ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．Ｍｏｌ．Ｂｒａｌｉｎ Ｒｅｓ．， ５４ （１９９８） ３２１−３２６．
Ｌｕｎｄｂｅｒｇ， Ｊ．Ｍ．， Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ ｃｏｎｔｒａｓｍｉｓｓｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ａｕｔｏｎｏｍｉｃ ｎｅｒｖｏｕｓ ｓｙｓｔｅｍ： Ｉｎｔｅｒｇｒａｔｉｖｅ ａｓｐｅｃｔｓ ｏｎ ａｍｉｎｅｓ， ｎｅｒｕｏｐｅｐｔｉｄｅｓ， ａｄｅｎｏｓｉｎｅ ｔｒｉｐｈｏｓｐｈａｓｔｅ， ａｍｉｎｏ ａｃｉｄｓ ａｎｄ ｎｉｔｒｉｃ ｏｘｉｄｅ， Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｒｅｖ．， ４８ （１９９６） １１３−ｌ７８．
Ｌｕｎｄｂｅｒｇ， Ｊ．Ｍ．， Ｈｅｎｓｅｎ， Ａ．， Ｌａｒｓｓｏｎ． Ｏ．， Ｒｕｄｅｈｉｌｌ， Ａ．， Ｓａｒｉａ， Ａ ＆ Ｆｒｅｄｈｏｌｍ Ｂ．Ｂ． （１９８８）． Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｉｎ ｐｉｇ ｓｐｌｅｅｎ； ｂｉｎｄｉｎｇ ｃｈａｎｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ， ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｃＡＭＰ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃａｌｃｉｕｍ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ｖａｓｏｃｏｎｓｔｒｉｃｔｉｏｎ． Ｅｕｒ． Ｊ， Ｐｈａｍａｃｏｌ． Ｖｏ１． ４５； ２１−２９
Ｌｙｓｌｅ， Ｄ．Ｔ．， Ｈｏｆｆｍａｎ， Ｋ．Ｅ． ａｎｄ Ｄｙｋｓｔｒａ， Ｌ．Ａ．， Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｃａｕｄａｌ ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｐｅｒｉａｑｕｅｄｕｃｔａｌ ｇｒａｙ ｉｎ ａ ｓｕｂｓｅｔ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｉｍｍｕｎｅ ｓｔａｔｕｓ， Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２７７ （１９９６） １５３３−１５４０．
Ｍａｋｉｎｏ， Ｓ．， Ｔａｋｅｍｕｒａ， Ｔ．， Ａｓａｂａ， Ｋ．， Ｎｉｓｈｉｙａｍａ， Ｍ．， Ｔａｋａｏ， Ｔ． ａｎｄ Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ． Ｋ．， Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｙｐｅ−１ ａｎｄ ｔｙｐｅ−２ａｌｐｈａ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｈｏｒｍｏｎｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｍＲＮＡ ｉｎ ｔｈｅ ｈｙｐｏｔｈｌａｍｉｃ ｐａｒａｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｎｕｃｌｅｕｓ ｏｆ ｔｈｅ ｒａｔ． Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．Ｍｏｌ．Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ４７ （１９９７） １７０−１７６．
Ｍａｍｉｙａ， Ｔ．， Ｎｏｄａ． Ｙ．， Ｎｉｓｈｉ， Ｍ．， Ｔａｋｅｓｈｉｍａ， Ｈ． ａｎｄ Ｎａｂｅｓｈｉｍａ， Ｔ．， Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ ｓｐａｔｉａｌ ａｔｔｅｎｔｉｏｎ ｉｎ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ／ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｍｉｃｅ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ７８３ （１９９８） ２３６−２４０．
Ｍａｎａｂｅ， Ｔ．， Ｎｏｄａ， Ｙ．， Ｍａｍｉｙａ， Ｔ．， Ｋａｔａｇｉｒｉ， Ｈ．， Ｈｏｕｔａｎｉ， Ｔ．， Ｎｉｓｈｉ， Ｍ．， Ｎｏｄａ． Ｔ．， Ｔａｋａｈａｓｈｉ． Ｔ．， Ｓｕｇｉｍｏｔｏ． Ｔ．， Ｎａｂｅｓｈｉｍａ． Ｔ． ａｎｄ Ｔａｋｅｓｈｉｍａ， Ｈ．， Ｆａｃｉｌｉｔａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ ｐｏｔｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｎｄ ｍｅｍｏｒｙ ｉｎ ｍｉｃｅ ｌａｃｋｉｎｇ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ． Ｎａｔｕｒｅ， ３９４ （１９９８） ５７７−５８１．
Ｍａｔｔｈｅｓ， Ｈ．Ｗ．， Ｍａｌｄｏｎａｄｏ． Ｒ．， Ｓｉｍｏｎｉｎ， Ｆ．， Ｖａｌｖｅｒｄｅ， Ｏ．， Ｓｌｏｗｅ， Ｓ．， Ｋｉｔｃｈｅｎ， Ｉ．， Ｂｅｆｏｒｔ， Ｋ．， Ｄｉｅｒｉｃｈ， Ａ．， Ｌｅ−Ｍｅｕｒ， Ｍ．， Ｄｏｌｌｅ， Ｐ．， Ｔｚａｖａｒａ， Ｅ．， Ｈａｎｏｕｎｅ， Ｊ．， Ｒｏｑｕｅｓ， Ｂ．Ｐ． ａｎｄ Ｋｉｅｆｆｅｒ， Ｂ．Ｌ．， Ｌｏｓｓ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ ａｎａｌｇｅｓｉａ， ｒｅｗａｒｄ ｅｆｆｅｃｔ ａｎｄ ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ ｓｙｍｐｔｏｍｓ ｉｎ ｍｉｃｅ ｌａｃｋｉｎｇ ｔｈｅ ｍｕ ｏｐｉｏｉｄ−ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｇｅｎｅ ［ｓｅｅ ｃｏｍｍｅｎｔｓｌ． Ｎａｔｕｒｅ， ３８３ （１９９６） ８１９−８２３．
Ｍａｙ， Ｃ．Ｎ．， Ｄａｓｈｗｏｏｄ， Ｍ．Ｒ．， Ｗｈｉｔｅｈｅａｄ， Ｃ．Ｊ ａｎｄ Ｍａｔｈｉａｓ， Ｃ．Ｊ．， Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕ１ａｒ ａｎｄ ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｃｅｎｔｒａｌ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｏｐｉｏｉｄ ａｇｏｎｉｓｔｓ ｉｎ ｃｏｎｓｃｉｏｕｓ ｒａｂｂｉｔｓ： ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｒｃｃｅｐｔｏｒ ｄｉｓｔｒｉｂｔｌｔｉｏｎ， Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．， ９８ （１９８９） ９０３−９１３．
Ｍｅｌｌａｄｏ， Ｍ．Ｌ．， Ｇｉｂｅｒｔ， Ｒ．Ｊ．， Ｃｈｏｖｅｒ， Ａ．Ｊ． ａｄｄ Ｍｉｃｏ， Ｊ．Ａ．． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｏｗ ｄｏｓｅｓ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｉｎ ｍｉｃｅ． Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．， ５８ （１９９６） ２４０９−２４１４．
Ｍｅｌｌｏｎ． Ｒ．Ｄ． ａｎｄ Ｂａｙｅｒ． Ｂ．Ｍ．， Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｃｅｎｔｒａｌ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｉｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｙ ｅｆｆｃｔｓ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ： ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ（ｓ） ｏｆ ａｃｔｉｏｎ， Ｊ．Ｎｅｕｒｏｅｍｍｕｎｏｌ．， ８３ （１９９８） １９−２８．
Ｍｅｌｌｏｎ， Ｒ．Ｄ． ａｎｄ Ｂａｙｅｒ． Ｂ．Ｍ．． Ｒｏｌｅ ｏｆ ｃｅｎｔｒａｌ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｕｂｔｙｐｅｓ ｉｎ ｍｏｒｐｈｉｎｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ７８９ （ｌ９９８） ５６−６７．
【００８２】
Ｍｅｎｚａｇｈｉ， Ｆ．， Ｈｅｉｎｒｉｃｈｓ， Ｓ．Ｃ．， Ｐｉｃｈ， Ｅ．Ｍ．， Ｔｉｌｄｅｒｓ， Ｆ．Ｊ． ａｎｄ Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ．， Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ ｏｆ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ｎｅｕｒｏｎｓ ｗｉｔｈ ｉｍｍｕｎｏｔａｒｇｅｔｅｄ ｔｏｘｉｎｓ ｅｎｈａｎｃｅｓ ｆｏｏｄ ｉｎｔａｋｅ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ， Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ６１８ （１９９３） ７６−８２．
Ｍｅｎｚａｇｈｉ， Ｆ．， Ｈｏｗａｒｄ， Ｒ．Ｌ．， Ｈｅｉｎｒｉｃｈｓ， Ｓ．Ｃ．， Ｖａｌｅ， Ｗ．， Ｒｉｖｉｅｒ， Ｊ． ａｎｄ Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ．， Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｎｏｖｅｌ ａｎｄ ｐｏｔｅｎｔ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔ ｉｎ ｒａｔｓ． Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２６９ （１９９４） ５６４−５７２．
Ｍｅｒｃｅｒ， Ｍ．Ｅ． ａｎｄ Ｈｏｌｄｅｒ， Ｍ．Ｄ．， Ｆｏｏｄ ｃｒａｖｉｎｇｓ， ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｏｐｉｏｉｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ， ａｎｄ ｆｏｏｄ ｉｎｔａｋｅ： ａ ｒｅｖｉｅｗ． Ａｐｐｅｔｉｔｅ．， ２９ （１９９７） ３２５−３５２．
Ｍｅｕｎｉｅｒ， Ｊ．Ｃ．， Ｍｏｌｌｅｒｅａｕ， Ｃ．， Ｔｏｌｌ， Ｌ．， Ｓｕａｕｄｅａｕ， Ｃ．， Ｍｏｉｓａｎｄ， Ｃ．， Ａｌｖｉｎｅｒｉｅ， Ｐ．， Ｂｕｔｏｕｒ， Ｊ．Ｌ．， Ｇｕｉｌｌｅｍｏｔ， Ｊ．Ｃ．， Ｆｅｒｒａｒａ， Ｐ．， Ｍｏｎｓａｒｒａｔ， Ｂ． ａｎｄ ｅｔ， ａ． Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｔｈｅ ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ａｇｏｎｉｓｔ ｏｆ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｌｉｋｅ ＯＲＬ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ［ｓｅｅ ｃｏｍｍｅｎｔｓ］ Ｎａｔｕｒｅ， ３７７ （１９９５） ５３２−５３５．
Ｍｉｌｌａｎ， Ｍ．Ｊ．， Ｋａｐｐａ−ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ａｎｄ ａｎａｌｇｅｓｉａ， Ｔｒｅｎｄｓ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｓｃｉ．， １１ （１９９０） ７０−７６．
Ｍｉｎａｍｉ， Ｍ． ａｎｄ Ｓａｔｏｈ， Ｍ．， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ： ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ， ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓ， Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｒｅｓ．， ２３ （１９９５） １２１−１４５．
Ｍｉｔｒｏ， Ａ．， Ｌｏｊｄａ， Ｚ．， Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ ｐｒｏｔｅａｓｅｓ ｉｎ ｅｐｅｎｄｙｍａ ｃｈｏｒｏｉｄ ｐｌｅｘｕｓ ａｎｄ ｌｅｐｔｏｍｅｎｉｎｇｅｓ， Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ８８ （１９８８） ６４５−６
Ｍｏｇｉ１， Ｊ．Ｓ．， Ｇｒｉｓｃｌ， Ｊ．Ｅ．， Ｒｅｉｎｓｃｈｅｉｄ． Ｒ．Ｋ．， Ｃｉｖｅｌｌｉ． Ｏ．， Ｂｅｌｋｎａｐ， Ｊ．Ｋ． ａｎｄ Ｇｒａｎｄｙ， Ｄ．Ｋ．， Ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ ｉｓ ａ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｎｔｉ−ｏｐｉｏｉｄ ｐｅｐｔｉｄｅ， Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ， ７５ （１９９６） ３３３−３３７．
Ｍｏｌｌｅｒｅａｕ， Ｃ．， Ｐａｒｍｅｎｔｉｅｒ， Ｍ．， Ｍａｉｌｌｅｕｘ， Ｐ．， Ｂｕｔｏｕｒ， Ｊ．Ｌ．， Ｍｏｉｓａｎｄ， Ｃ．， Ｃｈａｌｏｎ， Ｐ．， Ｃａｐｕｔ， Ｄ．， Ｖａｓｓａｒｔ， Ｇ． ａｎｄ Ｍｅｕｎｉｅｒ， Ｊ．Ｃ．， ＯＲＬ１， ａ ｎｏｖｅｌ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｆａｍｉｌｙ． Ｃｌｏｎｉｎｇ， ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ． ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．， ３４１ （１９９４） ３３−３８．
Ｍｏｔｔａ， Ｖ． ａｎｄ Ｂｒａｎｄａｏ． Ｍ．Ｌ．， Ａｖｅｒｓｉｖｅ ａｎｄ ａｎｔｉａｖｅｒｓｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｍｏｒｐｈｉｎｅ ｉｎ ｔｈｅ ｄｏｒｓａｌ ｐｅｒｉａｑｕｅｄｕｃｔａｌ ｇｒａｙ ｏｆ ｒａｔｓ ｓｕｂｍｉｔｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｅｌｅｖａｔｅｄ ｐｌｕｓ−ｍａｚｅ ｔｅｓｔ ，Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｅｈａｖ．， ４４ （１９９３） １１９−１２５．
Ｎａｓｓｅｌ， Ｄｒ．， Ｍｅｎｔｌｅｉｎ， Ｒ．． Ｂｏｌｌｎｅｒ． Ｔ．， Ｋａｒｌｓｓｏｎ． Ａ．， Ｐｒｏｌｉｎｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌ ｐｅｐｔｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｃｋｒｏａｃｈ ｂｒａｉｎ ａｎｄ ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ： ｐａｒｔｉａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ， ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ， ａｎｄ ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｔａｃｈｙｋｉｎｉｎ−ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ， Ｊ Ｃｏｍｐ Ｎｅｕｒｏｌ， ４１８ （２０００） ８１−９２
Ｎｉｓｈｉ， Ｍ．， Ｈｏｕｔａｎｉ， Ｔ．， Ｎｏｄａ， Ｙ．， Ｍａｍｉｙａ， Ｔ．， Ｓａｔｏ， Ｋ．， Ｄｏｉ， Ｔ．， Ｋｕｎｏ， Ｊ．， Ｔａｋｅｓｈｉｍａ， Ｈ．， Ｎｕｋａｄａ， Ｔ．， Ｎａｂｅｓｈｉｍａ， Ｔ．， Ｙａｍａｓｈｉｔａ， Ｔ．， Ｎｏｄａ， Ｔ． ａｎｄ Ｓｕｇｉｍｏｔｏ，． Ｔ．， Ｕｎｒｅｓｔｒａｉｎｅｄ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｖｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ａｎｄ ｄｉｓｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｅａｒｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ ｍｉｃｅ ｌａｃｋｉｎｇ ｔｈｅ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ／ｏｒｐｈａｎｉｎＦＱ ｒｅｃｅｐｔｏｒ， ＥＭＢＯ Ｊ．， １６ （１９９７） １８５８−１８６４．
Ｎｏｂｌｅ， Ｆ．， Ｓｍａｄｊａ， Ｃ．， Ｖａｌｖｅｒｄｅ， Ｏ．， Ｍａｌｄｏｎａｄｏ， Ｒ．， Ｃｏｒｉｃ， Ｐ．， Ｔｕｒｃａｕｄ， Ｓ．， Ｆｏｕｒｎｉｅ， Ｚ．Ｍ． ａｎｄ Ｒｏｑｕｅｓ， Ｂ．Ｐ．， Ｐａｉｎ−ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｖａｒｉｏｕｓ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｖｅ ｓｔｉｍｕｌｉ （ｔｈｅｍｒａｌ， ｃｈｅｍｉｃａｌ， ｅｌｅｃｔｒｉｃａｌ ａｎｄ ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ） ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｏｒａｌｌｙ ａｃｔｉｖｅ ｅｎｋｅｐｈａｌｉｎ−ｍｅｔａｂｏｌｉｚｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ＲＢ １２０， Ｐａｉｎ． ７３ （ｌ９９７） ３８３−３９１．
Ｎｏｄａ， Ｙ．， Ｍａｍｉｙａ， Ｔ．， Ｎａｂｅｓｈｉｍａ， Ｔ．， Ｎｉｓｈｉ， Ｍ．， Ｈｉｇａｓｈｉｏｋａ． Ｍ． ａｎｄ Ｔａｋｅｓｈｉｍａ， Ｈ．， Ｌｏｓｓ ｏｆ ａｎｔｉｎｏｃｉｃｅｐｔｉｏｎ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｎａｌｏｘｏｎｃ ｂｅｎｚｏｙｌｈｙｄｒａｚｏｎｅ ｉｎ ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｍｉｃｅ， Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．， ２７３ （１９９８） １８０４７−１８０５１．
Ｎｏｖａｋ． Ｊ． Ｅ．， Ｇｏｍｅｚ−Ｆｌｏｒｅｓ， Ｒ． Ｃａｌｄｅｒｏｎ， Ｓ．Ｎ．， Ｒｉｃｅ， Ｋ．Ｃ． ａｎｄ Ｗｅｂｅｒ， Ｒ．Ｊ．， Ｒａｔ ｎａｔｕｒａｌ ｋｉｌｌｅｒ ｃｅｌｌ， Ｔ ｃｅｌｌ ａｎｄ ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ａｆｔｅｒ ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ＳＮＣ８０， Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏ１．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２８６ （１９９８） ９３１−９３７．
Ｏ’Ｃｏｎｎｏｒ． Ｂ．， Ｏ’Ｃｕｉｎｎ． Ｇ．， Ｐｏｓｔ−ｐｒｏｌｉｎｅ ｄｉｐｅｐｔｉｄｙ１−ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ ｆｒｏｍ ｓｙｎａｐｔｏｓｏｍａｌ ｍｅｒｎｂｒａｎｅｓ ｏｆ ｇｕｉｎｅａ−ｐｉｇ ｂｒａｉｎ． Ａ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｒｏｌｅ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｈｉｓ−ＰｒｏＮＨ２， ａｒｉｓｉｎｇ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｓｙｎａｐｔｏｓｏｍａｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｙｒｏｇｌｕｔａｍａｔｅ ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ ｏｎ ｔｈｙｒｏｌｉｂｅｒｉｎ， Ｅｕｒ Ｊ Ｂｉｏｃｈｅｍ，． １５４ （ｌ９８６） ３２９−３５
Ｏｌｓｏｎ， Ｇ．Ａ．， Ｏｌｓｏｎ， Ｒ．Ｄ． ａｎｄ Ｋａｓｔｉｎ． Ａ．Ｊ．， Ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｏｐｉａｔｅｓ： ｌ９９５， Ｐｅｐｌｉｄｅｓ， １７ （１９９６） １４２１−１４６６．
Ｏｎｏ， Ｎ．， Ｌｕｍｐｋｉｎ， Ｍ．Ｄ．， Ｓａｍｓｏｎ， Ｗ．Ｋ．， ＭｃＤｏｎａｌｄ， Ｊ．Ｋ． ａｎｄ ＭｃＣａｎｎ， Ｓ．Ｍ．， Ｉｎｔｒａｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ ａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｈｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ （ＣＲＦ） ｔｏ ｉｎｈｉｂｉｔ ｇｒｏｗｔｈ ｈｏｒｍｏｎｅ ａｎｄ ＬＨ ｒｅｌｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．， ３５ （１９８４） １１１７−１ｌ２３．
Ｐｅｃｈｎｉｃｋ， Ｒ．Ｎ．， Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｏｐｉｏｉｄｓ ｏｎ ｔｈｅ ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｏ−ｐｉｔｕｉｔａｒｙ−ａｄｒｅｎａｌ ａｘｉｓ， Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｏｃｏｌ．， ３３ （１９９３） ３５３−３８２．
Ｐｅｄｒａｚｚｉｎｉ， Ｔ．， Ｓｅｙｄｏｕｘ， Ｊ．， Ｋｕｎｓｔｎｅｒ， Ｐ．， Ａｕｂｅｒｔ． Ｊ．Ｆ．， Ｇｒｏｕｚｍａｎｎ， Ｅ．， Ｂｅｅｒｍａｎｎ， Ｆ． ａｎｄ Ｂｒｕｎｎｅｒ， Ｈ．Ｒ．， Ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ ｒｅｓｐｏｎｓｅ， ｆｅｅｄｉｎｇ ｂｅｈａｖｉｏｒ ａｎｄ ｌｏｃｏｍｏｔｏｒ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｍｉｃｅ ｌａｃｋｉｎｇ ｔｈｅ ＮＰＹ Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ［ｓｅｅ ｃｏｍｍｅｎｔｓ］． Ｎａｔ．Ｍｅｄ．， ４ （１９９８） ７２２−７２６．
【００８３】
Ｐｆｅｉｆｆｅｒ， Ａ．， Ｂｒａｎｔｌ， Ｖ．， Ｈｅｒｚ， Ａ． ａｎｄ Ｅｍｒｉｃｈ， Ｈ．Ｍ．， Ｐｓｙｃｈｏｔｏｍｉｍｅｓｉｓ ｍｅｄｉａｔｅｄ ｂｙ ｋａｐｐａ ｏｐｉａｔｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２３３ （１９８６） ７７４−７７６．
Ｐｏｍｏｎｉｓ， Ｊ．Ｄ．， Ｂｉｌｌｉｎｇｔｏｎ， Ｃ．Ｊ． ａｎｄ Ｌｅｖｉｎｅ， Ａ．Ｓ．， Ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ， ａｇｏｎｉｓｔ ｏｆ ｏｒｐｈａｎ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ＯＲＬ１， ｓｔｉｍｕｌａｔｅｓ ｆｅｅｄｉｎｇ ｉｎ ｒａｔｓ， Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ．， ８ （１９９６） ３６９−３７１．
Ｐｏｔｔｅｒ， Ｅ．Ｋ． ａｎｄ Ｍ．Ｊ．Ｄ． ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ， （１９９２）． ［Ｌｅｕ ３’， Ｌｅｕ ３４ １ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ， ａ ４５ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｇｏｎｉｓｔ ａｔ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｉｎ ａｎａｅｓｔｈｅｔｉｓｅｄ ｒａｔｓ， Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｌｅｔｔ． １３４， １８３−１８６．
Ｐｏｔｔｅｒ，． ＥＸ， Ｊ． Ｆｕｈｌｅｎｄｏｒｆｆ ａｎｄ Ｔ．Ｗ． Ｓｃｈｗａｒｔｚ （１９９１）． ［Ｐｒｏ３４ Ｊ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅｌｙ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ ｐｏｓｔｊｕｎｃｔｉｏｎａｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ｉｎ ｉｄｖｏ ｉｎ ｒａｔｓ ａｎｄ ｄｏｇｓ， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． １９３， １５−１９．
Ｐｏｔｔｅｒ， ＥＸ， Ｍｉｔｃｈｅｌｌ， Ｌ．， ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ， Ｍ．Ｊ．， Ｔｓｅｎｇ， Ａ．， Ｇｏｏｄｍａｎ， Ａ．Ｅ．， Ｓｈｉｎｅ， Ｊ． ａｎｄ ＭｃＣｌｏｓｋｅｙ， Ｄ．Ｉ． （１９８９） Ｐｒｅ−ａｎｄ ｐｏｓｔｊｕｃｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｒｅｇｕｌ． Ｐｅｐｔ． ２５， １６７−１７７．
Ｐｒｉｖｅｔｔｅ， Ｔ．Ｈ． ａｎｄ Ｔｅｒｒｉａｎ， Ｄ．Ｍ．， Ｋａｐｐａ ｏｐｉｏｉｄ ａｇｏｎｉｓｔｓ ｐｒｏｄｕｃｅ ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ−ｌｉｋｅ ｂｅｈａｖｉｏｒ ｏｎ ｔｈｅ ｅｌｅｖａｔｅｄ ｐｌｕｓ−ｍａｚｅ， Ｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍｌａｃｏｌｏｇｙ Ｂｅｒｌ．， １１８ （１９９５） ４４４−４５０．
Ｒａｄｕｌｏｖｉｃ， Ｊ． ａｎｄ Ｊａｎｋｏｖｉｃ， Ｂ．Ｄ．， Ｏｐｐｏｓｉｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｂｒａｉｎ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｕｍｏｒａｌ ａｎｄ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ． Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．， ６６１ （１９９４） １８９−１９５．
Ｒａｄｕｌｏｖｉｃ， Ｊ．， Ｍｉｌｊｅｖｉｃ， Ｃ．， Ｄｊｅｒｇｏｖｉｃ， Ｄ．， Ｖｕｊｉｃ， Ｖ．， Ａｎｔｉｃ， Ｊ．， ｖｏｎ−Ｈｏｒｓｔｅｎ， Ｓ． ａｎｄ Ｊａｎｋｏｖｉｃ， Ｂ．Ｄ．， Ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｈｕｍｏｒａｌ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｉｎ ｖｉｖｏ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ： ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｋａｐｐａ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ， Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．， ５７ （１９９５） ５５−６２．
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Ｔｅｊｅｄｏｒ， Ｒ．Ｐ．， Ｃｏｓｔｅｌａ， Ｃ． ａｎｄ Ｇｉｂｅｒｔ， Ｒ．Ｉ．， Ｎｅｏｎａｔａｌ ｈａｎｄｌｉｎｇ ｒｅｄｕｃｅｓ ｅｍｏｔｉｏｎａｌ ｒｅａｃｔｉｖｉｔｙ ａｎｄ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｌｅａｎｅｄ ｈｅｌｐｌｅｓｓｎｅｓｓ． Ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｃａｔｅｃｈｏｌａｍｉｎｅｒｇｉｃ ｓｙｓｔｅｍｓ， Ｌｉｆｅ Ｓｃｉ．， ６２ （１９９８） ３７−５０．
Ｔｉａｎ， Ｍ．， Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ， Ｈ．Ｅ．， Ｆａｎ， Ｙ．， Ｌａｉ， Ｚ．， Ｚｈａｎｇ， Ｓ．， Ａｒｏｎｉｃａ， Ｓ．， Ｃｏｏｐｅｒ， Ｓ．， Ｂｉｇｓｂｙ， Ｒ．Ｍ．， Ｓｔｅｉｎｍｅｔｚ， Ｒ．， Ｅｎｇｌｅ， Ｓ．Ｊ．， Ｍｅｓｔｅｋ， Ａ．， Ｐｏｌｌｏｃｋ． Ｊ．Ｄ．， Ｌｅｈｍａｎ， Ｍ．Ｎ．， Ｊａｎｓｅｎ， Ｈ．Ｔ．， Ｙｉｎｇ， Ｍ．， Ｓｔａｍｂｒｏｏｋ， Ｐ．Ｊ．， Ｔｉｓｃｈｆｉｅｌｄ， Ｊ．Ａ． ａｎｄ Ｙｕ， Ｌ．， Ａｌｔｅｒｅｄ ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｓｉｓ， ｂｅｈａｖｉｏｒ， ａｎｄ ｓｅｘｕａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎ ｍｕ ｏｐｉｏｉｄ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ ｍｉｃｅ． Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．， １８５ （１９９７） １５１７−１５２２．
Ｔｏｒｔｅｌｌａ， Ｆ．Ｃ． ａｎｄ ＤｅＣｏｓｔｅｒ， Ｍ．Ａ．， Ｋａｐｐａ ｏｐｉｏｉｄｓ： ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｃｏｎｓｉｄｅｒａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｅｐｉｌｅｐｓｙ ａｎｄ ＣＮＳ ｉｎｊｕｒｙ， Ｃｌｉｎ．Ｎｅｕｒｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．， １７ （１９９４） ４０３−４１６．
Ｔｓｕｄａ， Ｍ．， Ｓｕｚｕｋｉ， Ｔ．， Ｍｉｓａｗａ， Ｍ． ａｎｄ Ｎａｇａｓｅ， Ｈ．， Ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｉｏｉｄ ｓｙｓｔｅｍ ｉｎ ｔｈｅ ａｎｘｉｏｌｙｔｉｃ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｄｉａｚｅｐａｍ ｉｎ ｍｉｃｅ， Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．， ３０７ （１９９６） ７−１４．
Ｕｅｈａｒａ， Ｙ．， Ｓｈｉｍｉｚｕ， Ｈ．， Ｏｈｔａｎｉ， Ｋ．， Ｓａｔｏ， Ｎ． ａｎｄ Ｍｏｒｉ， Ｍ．， Ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｈｏｒｍｏｎｅ ｉｓ ａ ｍｅｄｉａｔｏｒ ｏｆ ｔｈｅ ａｎｏｒｅｘｉｇｅｎｉｃ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｌｅｐｔｉｎ， Ｄｉａｂｅｔｅｓ， ４７ （１９９８） ８９０−８９３．
Ｖａｕｇｈａｎ， Ｊ．， Ｄｏｎａｌｄｓｏｎ， Ｃ．， Ｂｉｔｔｅｎｃｏｕｒｔ， Ｊ．， Ｐｅｒｒｉｎ， Ｍ．Ｈ．， Ｌｅｗｉｓ， Ｋ．， Ｓｕｔｔｏｎ， Ｓ．， Ｃｈａｎ， Ｒ．， Ｔｕｒｎｂｕｌｌ， Ａ．Ｖ．， Ｌｏｖｅｊｏｙ， Ｄ．， Ｒｉｖｉｅｒ， Ｃ． ａｎｄ ｅｔ， ａ．， Ｕｒｏｃｏｒｔｉｎ， ａ ｍａｍｍａｌｉａｎ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｆｉｓｈ ｕｒｏｔｅｎｓｉｎ Ｉ ａｎｄ ｔｏ ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ ［ｓｅｅ ｃｏｍｍｅｎｔｓ］， Ｎａｔｕｒｅ， ３７８ （１９９５） ２８７−２９２．
Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ， Ｃ． ａｎｄ Ｒｅｉｓ， Ｄ．Ｊ．， Ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ−ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ−−ａｒｅ ｔｈｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｄｒｕｇ ｔａｒｇｅｔｓ？， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． Ｔｏｘｉｃｏｌ．， ３３ （１９９３） ３０９−３５２．
Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ， Ｃ．， Ｎ． Ｙａｎａｉｈａｒａ ａｎｄ Ｒ． Ｈ． Ａｋａｎｓｏｎ， （１９８６）， Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｒｅ− ａｎｄ ｐｏｓｔ−ｊｕｎｃｔｉｏｎｌ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｆｏｒ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｐｅｐｔｉｄｅｓ． Ｒｅｇｕｌ． Ｐｅｐ． １３． ３０７−３１８．
Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ， Ｃ．， Ｐｉｃｈ， Ｅ．Ｍ．， Ｋｏｏｂ， Ｇ．Ｆ．， Ｙｅｔ， Ｆ． ａｎｄ Ｈｅｉｌｉｇ， Ｍ．， Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ａｎｘｉｅｔｙ ａｎｄ ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ−Ｙ１ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｂｙ ａｎｔｉｓｅｎｓｅ ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ， Ｓｃｉｅｎｃｅ． ２５９ （１９９３） ５２８−５３１．
Ｗｅｔｔｓｔｅｉｎ， Ｊ．Ｇ．， Ｅａｒｌｅｙ， Ｂ． ａｎｄ Ｊｕｎｉｅｎ． Ｊ．Ｌ．， Ｃｅｎｔｒａｌ ｎｅｒｖｏｕｓ Ｓｙｓｔｅｍ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ ｎｃｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅ Ｙ， Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． Ｔｈｅｒ．， ６５ （１９９５） ３９７４１４．
Ｘｕ， Ｘ．Ｊ．， Ｈａｏ， Ｊ．Ｘ． ａｎｄ Ｗｉｅｓｅｎｆｅｌｄ， Ｈ．Ｚ．， Ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ ｏｒ ａｎｔｉｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ： ｐｏｔｅｎｔ ｓｐｉｎａｌ ａｎｔｉｎｏｃｉｃｅｐｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｏｒｐｈａｎｉｎ ＦＱ／ｎｏｃｉｃｅｐｔｉｎ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ， Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ．， ７ （１９９６） ２０９２−２０９４．
Ｚａｄｉｎａ， Ｊ．Ｅ．， Ｈａｃｋｌｅｒ， Ｌ．， Ｇｅ， Ｌ．Ｊ． ａｎｄ Ｋａｓｔｉｎ， Ａ．Ｊ．， Ａ ｐｏｔｅｎｔ ａｎｄ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｅｎｄｏｇｅｎｏｎｓ ａｇｏｎｉｓｔ ｆｏｒ ｔｈｅ ｍｕ−ｏｐｉａｔｅ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ［ｓｅｅ ｃｏｍｍｅｎｔｓ］． Ｎａｔｕｒｅ， ３８６ （１９９７） ４９９−５０２．
Ｚｈａｏ， Ｘ．Ｊ．， Ｈｏｈｅｉｓｅｌ， Ｇ．， Ｓｃｈａｕｅｒ， Ｊ． ａｎｄ Ｂｏｒｎｓｔｅｉｎ， Ｓ．Ｒ．， Ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ ｈｏｒｍｏｎｅ−ｂｉｒｌｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ ａｎｄ ｉｔｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｒｏｌｅ ｉｎ ｎｅｕｒｏｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｉｃａｌ ｒｅｓｅａｒｃｈ． Ｈｏｒｎ．Ｍｅｔａｂ．Ｒｅｓ．， ２９ （１９９７） ３７３−３７８．
Ｚｈｕ， Ｙ． ａｎｄ Ｉｍ， Ｗ． Ｂ．， Ｂｌｏｃｋ ｏｆ ｓｏｄｉｕｍ ｃｈａｎｎｅｌ ｃｕｒｒｅｎｔ ｂｙ ａｎｔｉｃｏｎｖｕｌｓａｎｔ Ｕ−５４４９４Ａ ｉｎ ｍｏｕｓｅ ｎｅｕｒｏｂｌａｓｔｏｍａ ｃｅｌｌｓ， Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．， ２６０ （１９９２） １１０−１１６．
【図面の簡単な説明】
【図１】
図１は、ハノーバー（ＨＡＮ）、米国（ＵＳＡ）、ドイツ（ＧＥＲ）および日本（ＪＡＰ）ブリーダーからのフィッシャー３４４（Ｆ３４４）ラット亜系統の血清におけるＤＰ　ＩＶ酵素活性を示す。結果は、遺伝子型ごとの４−５才の年令がマッチした動物の平均（±ＳＥＭ）である。分散分析は、Ｆ（３，１５）：５０．４，ｐ＜０．０００１で「亜系統」の有意な効果を示した。星印は、「野生型」Ｆ３４４ＵＳＡおよびＦ３４４ＨＡＮ亜系統に対して有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊＊＊」＝ｐ＜０．０００１）。
【図２】
図２は、日本（ＪＡＰ）、米国（ＵＳＡ）およびドイツ（ＧＥＲ）ブリーダーからのフィッシャー３４４（Ｆ３４４）ラット亜系統における活発な社会的相互作用（ＳＩ）に費やす時間を示す。不安についてのラットの社会的相互作用試験におけるＳＩ時間の増加は、不安解消様反応として解釈される。結果は、遺伝子型ごとの１２才の年令がマッチした動物の平均（±ＳＥＭ）である。分散分析は、Ｆ（２，３２）：８．８，ｐ＜０．０００９で「亜系統」の有意な効果を示した。星印は、「野生型」Ｆ３４４ＵＳＡラットに対して有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊＊」＝ｐ＜０．０１；「＊＊＊」＝ｐ＜０．００１）。
【図３】
図３は、連続して３日、ストレスを加えた後の体重変化を示す。連続３日の間に、日本（ＪＡＰ）、米国（ＵＳＡ）およびドイツ（ＧＥＲ）のブリーダーからの年令がマッチした動物を新しい部屋に個々に移し、そこに１時間留めた。第１日目は、おがくずの入った新しいカゴを使用し、動物を標準的な動物ラックの中に置いた。２日目は、カゴにおがくずがない以外は同じであった。３日目のストレスのかけ方は、カゴを新しい部屋の下の部分に置いた以外は２日目と同じであった。反復測定の分散分析は、Ｆ（２，３０）：１３．５，ｐ＝０．０００４で「亜系統」の有意な効果を示した。星印は、「野生型」Ｆ３４４ＵＳＡに対して有意な、日によって分けたＰＬＳＤポストｈｏｃ効果１要因ＡＮＯＶＡを示す（「＊」＝ｐ＜０．０５；「＊＊」＝ｐ＜０．０１）。
【図４】
図４は、解放フィールド試験の連続４分間の移動距離におけるｉ．ｃ．ｖ．イソロイシルチアゾリジン治療の効果を示す。反復測定の分散分析は、この活性パラメーターにおける治療の有意な効果がなかったことを示した（Ｆ（３，７８）：０．７，ｐ＝０．５；ｎ．ｓ．）。
【図５】
図５は、解放フィールド試験の合計連続４分間に壁近くで費やす時間における、ｉ．ｃ．ｖ．イソロイシルチアゾリジン治療の効果を示す。分散分析は、Ｆ（３，２６）：４．１，ｐ＝０．０１５で「治療」の有意な効果を示した。星印は、「ａＣＦＳ」対照に対して有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊」＝ｐ＜０．０５）。
【図６】
図６は、高架プラス迷路（ＥＰＭ）の開放アームで費やす時間の割合における、ｉ．ｃ．ｖ．イソロイシルチアゾリジン治療の効果を示す。分散分析は、Ｆ（３，２６）：３．０，ｐ＝０．０４８で「治療」の有意な効果を示した。星印は、「ａＣＦＳ」対照に対して有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊」＝ｐ＜０．０５）。
【図７】
図７は、ａＣＳＦ、イソロイシルチアゾリジンおよびＮＰＹを様々な投与量（イソロイシルチアゾリジン：５ｐｍｏｌ〜５００ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：５０ｐｍｏｌ〜１．６ｎｍｏｌ）で組み合わせて用いる組み合わせｉ．ｃ．ｖ．治療の効果を示す。不安に関する社会的相互作用試験において活発な社会的相互作用に費やす時間（ＳＩ時間）を測定した。ＳＩ時間の増加は不安解消様効果を示す。試験手順に慣らした後、動物を、無作為に選択した治療および常に新しい相互作用パートナーで繰り返し試験した。試験はそれぞれ少なくとも４日あけて行った。各試験では、１つの状態当たり５〜６匹の動物からなる４グループについて行い、分散分析は、左から右への「治療」（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ）について下記の有意な効果を示した：イソロイシルチアゾリジン５ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ５０ｐｍｏｌ：Ｆ（３，１８）：０．２５，ｐ＝０．８，ｎ．ｓ．；イソロイシルチアゾリジン５０ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ１００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，１８）：２２．４，ｐ＜０．０００１；イソロイシルチアゾリジン５００ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ２００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：８．６，ｐ＝０．００７；イソロイシルチアゾリジン５０ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ０．８ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：２３．３，ｐ＜０．０００１；およびイソロイシルチアゾリジン５００ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ１．６ｎｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：１１．２，ｐ＝０．０００８であった。星印は、「ａＣＦＳ＋ａＣＳＦ」対照に対する有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示し、そしてバーで示すところではａＣＳＦ＋ＮＰＹ対イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ間の有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊」＝ｐ＜０．０５）。
【図８】
図８は、ａＣＳＦ、イソロイシルチアゾリジンおよびＮＰＹを様々な投与量（イソロイシルチアゾリジン：５ｐｍｏｌ〜５００ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：５０ｐｍｏｌ〜１．６ｎｍｏｌ）で組み合わせて用いる組み合わせｉ．ｃ．ｖ．治療の効果を示す。１時間内に食べた量を測定した。無作為に選んだ治療で動物を繰り返し試験した。試験はそれぞれ少なくとも４日あけて行った。各試験では、１つの状態当たり５〜６匹の動物からなる４グループについて行い、分散分析は、左から右への「治療」（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ）について下記の有意な効果を示した：イソロイシルチアゾリジン５ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ５０ｐｍｏｌ：Ｆ（３，１８）：７．０，ｐ＝０．００２５；イソロイシルチアゾリジン５０ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ１００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：４．５，ｐ＝０．０１６；イソロイシルチアゾリジン５００ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ２００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：４．４，ｐ＝０．０１５；イソロイシルチアゾリジン５０ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ０．８ｎｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：６．６，ｐ＝０．００２７；およびイソロイシルチアゾリジン５００ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ１．６ｎｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：１３．７，ｐ＜０．０００１であった。星印は、「ａＣＦＳ＋ａＣＳＦ」対照に対する有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示し、そしてバーで示すところではａＣＳＦ＋ＮＰＹ対イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ間の有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果を示す（「＊」＝ｐ＜０．０５）。
【図９】
図９は、ａＣＳＦ、イソロイシルチアゾリジンおよびＮＰＹを様々な投与量（イソロイシルチアゾリジン：５ｐｍｏｌ〜５００ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：５０ｐｍｏｌ〜１．６ｎｍｏｌ）で組み合わせて用いる組み合わせｉ．ｃ．ｖ．治療の効果を示す。１２時間内に食べた量を測定した。各試験では、１つの状態当たり５〜６匹の動物からなる４グループについて行い、分散分析は、左から右への「治療」（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ）について下記の有意な効果を示した：イソロイシルチアゾリジン５ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ５０ｐｍｏｌ：Ｆ（３，１８）：０．５，ｐ＝０．７，ｎ．ｓ．；イソロイシルチアゾリジン５０ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ１００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：０．１７，ｐ＝０．９，ｎ．ｓ．；イソロイシルチアゾリジン５００ｐｍｏｌ＋ＮＰＹ２００ｐｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：１．１，ｐ＝０．３４，ｎ．ｓ．；イソロイシルチアゾリジン５０ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ０．８ｎｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：１．２，ｐ＝０．３；およびイソロイシルチアゾリジン５００ｎｍｏｌ＋ＮＰＹ１．６ｎｍｏｌ：Ｆ（３，２０）：３．４，ｐ＝０．０３９であった。星印は、「ａＣＦＳ＋ａＣＳＦ」対照に対する有意なＰＬＳＤポストｈｏｃ効果、そしてバーで示すようにａＣＳＦ＋ＮＰＹ対イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ間を示す（「＊」＝ｐ＜０．０５）。
【図１０】
図１０は、Ｙ１ＲアンタゴニストＢＩＢＰ３２２６、イソロイシルチアゾリジンおよびＮＰＹを組み合わせて用いる（ＢＩＢＰ３２２６：１００ｎｍｏｌ；イソロイシルチアゾリジン：５０ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：０．８ｎｍｏｌ）組み合わせｉ．ｃ．ｖ．治療の効果を示す。不安についての社会的相互作用試験での活発な社会的相互作用に費やす時間（ＳＩ時間）を測定した。ＳＩ時間の増加は不安解消様効果を示す。試験手順に慣らした後、動物をｉ．ｃ．ｖ．治療プロトコルおよび同じ治療相互作用パートナーに無作為に割り当てた。試験は、１つの治療状態当たり合計６〜８匹の動物で２回連続して行った。分散分析は「治療」の有意な効果を示し、次のグループにわたってＦ（７，４４）：３３．６，ｐ＜０．０００１であった：（１）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（２）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（３）ａＣＳＦ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（４）ＢＩＢＰ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（５）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（６）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（７）ａＣＳＦ＋Ｐ３２／８９＋ＮＰＹ；（８）ＢＩＢＰ＋＋イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ。対照（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ）に対するポストｈｏｃ比較における有意性のレベルは星印で表し、「＊」＝ｐ＜０．０５；「＊＊」＝ｐ＜０．０１；「＊＊＊」＝ｐ＜０．００１であり、相当するアンタゴニスト治療（ＢＩＢＰ＋ｎ．ｎ．）に対しては「＃」記号で表し、「＃」＝ｐ＜０．０５；「＃＃」＝ｐ＜０．０１；「＃＃＃」＝ｐ＜０．００１である。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【図１１】
図１１は、Ｙ１ＲアンタゴニストＢＩＢＰ３２２６、イソロイシルチアゾリジンおよびＮＰＹを組み合わせて用いる（ＢＩＢＰ３２２６：１００ｎｍｏｌ；イソロイシルチアゾリジン：５０ｎｍｏｌ；ＮＰＹ：０．８ｎｍｏｌ）１時間摂食量における組み合わせｉ．ｃ．ｖ．治療の効果を示す。試験手順に慣らした後、動物をｉ．ｃ．ｖ．治療プロトコルおよび同じ治療相互作用パートナーに無作為に割り当てた。試験は、１つの治療状態当たり合計６〜８匹の動物で２回連続して行った。分散分析は「治療」の有意な効果を示し、次のグループにわたってＦ（７，４４）：５．４，ｐ＜０．０００２であった：（１）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（２）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ；（３）ａＣＳＦ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（４）ＢＩＢＰ＋イソロイシルチアゾリジン＋ａＣＳＦ；（５）ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（６）ＢＩＢＰ＋ａＣＳＦ＋ＮＰＹ；（７）ａＣＳＦ＋Ｐ３２／８９＋ＮＰＹ；（８）ＢＩＢＰ＋＋イソロイシルチアゾリジン＋ＮＰＹ。対照（ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ＋ａＣＳＦ）に対するポストｈｏｃ比較における有意性のレベルは星印で表し、「＊」＝ｐ＜０．０５；「＊＊」＝ｐ＜０．０１；「＊＊＊」＝ｐ＜０．００１であり、相当するアンタゴニスト治療（ＢＩＢＰ＋ｎ．ｎ．）に対しては「＃」記号で表し、「＃」＝ｐ＜０．０５；「＃＃」＝ｐ＜０．０１；「＃＃＃」＝ｐ＜０．００１である。全てのデータは平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．として表す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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2004512300.tif 000063
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