(57)【要約】本発明は、患者の子宮内膜症の検出法を提供し、これは浸入性で高価な外科的処置の改良である。本方法は、トムセン−フリーデンライヒ抗原（Ｔｆ）と反応する血清サンプル中の自己抗体を検出する免疫アッセイを使用する。Ｔｆ様抗原に結合する患者由来の血清サンプル中の自己抗体レベルの増加は、患者の子宮内膜症の指標である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）患者から血清サンプルを得て、
（ｂ）前記血清サンプルとトムセン−フリーデンライヒ（Ｔｆ）様抗原をインキュベートし、
（ｃ）前記サンプル中のＴｆ様抗原との自己抗原反応性を検出し、
（ｄ）前記血清サンプル中のＴｆ様抗原に対する自己抗原反応性レベルの増加を前記患者の子宮内膜症診断に相関させる、
という諸段階を含む、子宮内膜症の診断法。
【請求項２】
前記自己抗体反応性を免疫アッセイによって決定する、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記免疫アッセイが免疫測定アッセイである、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記免疫アッセイが競合免疫アッセイである、請求項２に記載の方法。
【請求項５】
（ａ）固体支持体上のＴｆ様抗原を固定し、
（ｂ）患者由来の血清サンプルの分取を前記固体支持体に結合させたＴｆ様抗原に添加し、インキュベートし、
（ｃ）前記固体支持体に標識抗ヒト免疫グロブリンを添加、ここで前記抗ヒト免疫グロブリンはシグナル発生系の一部である、
（ｄ）結合抗体から遊離の標識抗体を分離し、
（ｅ）前記固体支持体を含む溶液によって発生したシグナルを測定し、
（ｆ）患者の子宮内膜症診断にシグナル強度の増加を相関させる、
という諸段階を含む、請求項３に記載の方法。
【請求項６】
（ａ）一定量のＴｆ様抗原に結合した標識抗体と異なる濃度の患者由来の血清サンプルとのインキュベーションによって反応混合物を調製、ここで前記標識抗体はシグナル発生系の一部である、
（ｂ）遊離自己抗体から結合標識抗体を分離し、
（ｃ）前記反応混合物中の標識抗体によって発生したシグナルを測定し、
（ｄ）患者の子宮内膜症診断に患者由来の血清サンプルの添加後のシグナル強度の減少を相関させる、
という諸段階を含む、請求項４に記載の競合免疫アッセイ。
【請求項７】
（ａ）Ｔｆ様抗原に結合した第１の抗体と、異なる濃度の患者由来の血清サンプルとのインキュベーションによって反応混合物を調製し、
（ｂ）前記反応混合物に一定量の二次抗体を添加、ここで前記二次抗体は前記第１の抗体の重鎖の定常領域を認識し、前記二次抗体は標識されており、且つシグナル発生系の一部である、
（ｃ）結合抗体から遊離の標識二次抗体を分離し、
（ｄ）前記反応混合物中の前記二次抗体によって発生したシグナルを測定し、
（ｅ）患者の子宮内膜症診断にシグナル強度レベルの減少を相関させる、
という諸段階を含む、請求項４に記載の競合免疫アッセイ。
【請求項８】
前記抗体が酵素標識されており、追加の段階として前記酵素標識抗ヒト免疫グロブリンと反応する固体支持体に基質を添加する段階とその後で行うインキュベーションとが（ｄ）の段階と（ｅ）の段階との間にある、請求項５に記載の方法。
【請求項９】
前記抗体が酵素標識されており、追加の段階として前記酵素標識抗ヒト免疫グロブリンと反応する固体支持体に基質を添加する段階とその後で行うインキュベーションとが（ｂ）の段階と（ｃ）の段階との間にある、請求項６に記載の方法。
【請求項１０】
前記二次抗体が酵素標識されており、追加の段階として前記酵素標識抗ヒト免疫グロブリンと反応する固体支持体に基質を添加する段階とその後で行うインキュベーションとが（ｃ）の段階と（ｄ）の段階との間にある、請求項７に記載の方法。
【請求項１１】
前記標識抗体が放射標識されている、請求項５、請求項６、または請求項７のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
前記標識抗体がビオチン標識されている、請求項５、請求項６、または請求項７のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
（発明の背景）
子宮内膜症は、子宮外（異所性）部位での子宮内膜細胞の成長によって特徴付けられる、珍らしくない疾患である。これは、生殖年齢の女性の１０％が罹患し得る、通常の疾患である（１）。子宮内膜症の病因が謎であるにもかかわらず、明らかに細胞性および体液性免疫機能の変化が発症した疾患の特徴である（２〜４）。
【０００２】
子宮内膜抗原に対する自己抗体および補体成分の沈積が多数の研究に記載されており（（２）に概説）、多数の血清、腹腔内貯留液、および子宮内膜抗原が記載されている。おそらく、これまでのところ記載された最良に特徴付けられた組織抗原は、ヒト絨毛性ゴナドトロピン受容体（５）および炭酸脱水酵素６−８のイソ型ＩおよびＩＩである。トランスフェリンおよびα２−ヘーレマンス・シュミット糖タンパク質（α２−ＨＳＧ）に対する抗体もまた記載されており、診断マーカー９、１０として提案されている。子宮内膜症、生殖疾患、および他の自己免疫疾患におけるこれら抗体の発現率の測定に関して多数の研究が行われてきたが、関連するエピトープの性質についてはほとんど注目されていなかった。同定された抗原は、全て糖タンパク質である。たった１つの明白な例外（５）を除いて、これらのタンパク質上の炭水化物抗原は評価されていなかった。
【０００３】
本発明によれば、驚いたことに、共通の炭水化物部分が異なる上記の子宮内膜抗原上に存在することが見出された。共通の炭水化物部分は、Ｔｆ抗原またはＴｆ様抗原とも呼ばれているトムセン−フリーデンライヒ関連抗原、Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃである。本明細書中では、「Ｔｆ様抗原」は、Ｔｆ抗原をも含むものとする。Ｔｆ抗原はシアル酸によってマスクされた、潜在性二糖類構造である。シアル酸部分は、ノイラミニダーゼなどのシアリダーゼによって除去することができる。Ｔｆ抗原は、ヒト赤血球上に存在し、上皮組織中の腫瘍関連抗原である。
【０００４】
本発明は、Ｔｆ様抗原との自己抗体反応性に基づいた診断法を提供する。本診断法は、患者の子宮内膜症の存在判定の一助となり、現在の侵入性の診断法よりも改善されている。
【０００５】
（発明の要約）
本発明は、患者の子宮内膜症の診断法を提供する。本発明の１つの実施形態では、患者の子宮内膜症の診断法は、
（ａ）前記患者から血清サンプルを得て、
（ｂ）前記血清サンプルとトムセン−フリーデンライヒ（Ｔｆ）様抗原をインキュベートし、
（ｃ）前記サンプル中のＴｆ様抗原との自己抗原反応性を検出し、
（ｄ）前記血清サンプル中のＴｆ様抗原に対する自己抗原反応性レベルの増加を前記患者の子宮内膜症診断に相関させる、という諸段階を含む。
【０００６】
抗体反応性は免疫測定アッセイまたは競合アッセイなどの免疫アッセイによって判定することができる。
【０００７】
本発明の１つの実施形態では、免疫測定アッセイは、
（ａ）固体支持体上のＴｆ様抗原を固定化し、
（ｂ）患者由来の血清サンプルの一定量を前記固体支持体に結合させたＴｆ様抗原に添加し、インキュベートし、
（ｃ）前記固体支持体に標識抗ヒト免疫グロブリンを添加し、ここで前記抗ヒト免疫グロブリンはシグナル発生系の一部であり、
（ｄ）結合抗体から遊離の標識抗体を分離し、
（ｅ）前記固体支持体を含む溶液によって発生したシグナルを測定し、
（ｆ）シグナル強度の増加を患者の子宮内膜症診断に相関させる、という諸段階を含む。
【０００８】
本発明の別の実施形態では、競合免疫アッセイは、
（ａ）一定量のＴｆ様抗原に結合した標識抗体と異なる濃度の患者由来の血清サンプルとのインキュベーションによって反応混合物を調製し、ここで前記標識抗体はシグナル発生系の一部であり、
（ｂ）遊離自己抗体から結合標識抗体を分離し、
（ｃ）前記反応混合物中の標識抗体によって発生したシグナルを測定し、
（ｄ）患者由来の血清サンプルの添加後のシグナル強度の減少を患者の子宮内膜症診断に相関させる、という諸段階を含む。
【０００９】
本発明の別の実施形態では、競合免疫アッセイは、
（ａ）Ｔｆ様抗原に結合した第１の抗体と、異なる濃度の患者由来の血清サンプルとのインキュベーションによって反応混合物を調製し、
（ｂ）前記反応混合物に一定量の第二の抗体を添加し、ここで前記第二の抗体は前記第１の抗体の重鎖の定常領域を認識し、前記第二の抗体は標識化されており、且つシグナル発生系の一部であり、
（ｃ）結合抗体から遊離の標識第二抗体を分離し、
（ｄ）前記反応混合物中の前記第二抗体によって発生したシグナルを測定し、
（ｅ）シグナル強度レベルの減少を患者の子宮内膜症診断に相関させる、という諸段階を含む。
【００１０】
抗体が酵素標識されている場合には、追加の段階として酵素標識抗体と反応する固体支持体に基質を添加しさらにインキュベーションを行う段階を、発生したシグナルの測定前に追加する。
【００１１】
（発明の詳細な説明）
本発明は、患者の子宮内膜症を検出するための診断法を提供する。本診断法は、トムセン−フリーデンライヒ（Ｔｆ）抗原（Ｔｆ様抗原をも含む）と反応する患者の血清中の自己抗体の存在を検出する免疫学的検定法に基づく。本明細書中では、「Ｔｆ様抗原」は、Ｔｆ抗原をも含むものとする。Ｔｆ様抗原に結合する自己抗体の正常な血清レベルと比較する場合、Ｔｆ様抗原に結合する血清サンプル中の自己抗体レベルの増加は、患者の子宮内膜症の診断と相関する。
【００１２】
血液サンプルは、静脈穿刺または他の適切な手段によって、都合よく採取することができる。血清サンプルは、周知の方法を使用して血液サンプルから調製することができる。
【００１３】
本発明の方法に使用することができる多数の異なる型の免疫アッセイが存在する。周知の免疫アッセイ（例えば、酵素結合免疫吸収アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、蛍光免疫吸着アッセイ（ＦＩＡ）、化学結合免疫吸着アッセイ（ＣＬＩＡ）、放射免疫アッセイ（ＲＩＡ）、および免疫ブロット法など）を、Ｔｆ様抗原と反応する血清サンプル中の自己抗体レベルの検出に適応させることができる。使用することができる異なる免疫アッセイの概説については、「免疫アッセイハンドブック」、Ｄａｖｉｄ  Ｗｉｌｄ編、Ｓｔｏｃｋｔｏｎ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９９４を参照のこと。好ましくは、固相分離を使用する競合免疫アッセイまたは抗体試験用の免疫測定アッセイを使用する。「免疫アッセイハンドブック」、第２章を参照のこと。
【００１４】
典型的なアッセイでは、試薬には、患者由来の血清サンプル、検出すべき自己抗体（血清サンプル中に含まれる）、Ｔｆ様抗原、および検出可能なシグナル発生手段が含まれる。
【００１５】
したがって、本発明の１つの実施形態では、患者の子宮内膜症の診断法は、抗体試験のための免疫測定アッセイを使用する。この実施形態では、Ｔｆ様抗原を、ビーズ、プレート、スライド、またはマイクロタイター皿などの固体支持体または表面に固定する。患者由来の血清サンプルの一定量を固体支持体に添加し、液相中でＴｆ様抗原とインキュベートする。Ｔｆ様抗原に反応する血清中に存在するヒト自己抗体中の定常領域を認識する抗体を添加する。この抗体は、抗ヒト免疫グロブリンであり、シグナル発生系の一部でもある。ＩｇＡ、ＩｇＧ、またはＩｇＭ重鎖定常領域に特異的な抗ヒト免疫グロブリンを使用することができる。液相からの固体支持体の分離後、支持相を検出可能なシグナルの有無を試験する。固体支持体上のシグナルの存在は、血清サンプル中に存在するＴｆ様抗原に対する自己抗体が固体支持体上のＴｆ様抗原に結合したことを示す。
【００１６】
シグナル発生系は、１つまたは複数の成分からなり、その少なくとも１つの成分は標識であり、この標識は、結合および／または非結合標識の量、すなわちＴｆ様抗原に結合または非結合している標識の量をあらわす検出可能なシグナルを発生する。標識は、シグナルを発生するか、誘発されてシグナルを発生できる分子である。標識の例には、蛍光発生物質、酵素、化学発光物質、光増感物質、または懸濁可能な粒子が含まれる。シグナルは、酵素活性、発光、または光吸収によって検出し、またこれによって測定することもできる。放射標識もまた使用することができ、シンチレーションカウンターを使用して放射能レベルを検出および測定をすることができる。
【００１７】
抗ヒト免疫グロブリンの標識に使用することができる酵素の例には、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびグルコース−６−リン酸脱水素酵素（「Ｇ６ＰＤＨ」）が含まれる。抗ヒト免疫グロブリンの標識に使用することができる蛍光物質の例には、フルオレセイン、イソチオシアネート、ローダミン化合物、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、ｏ−フタルアルデヒド、およびフルオレスカミンが含まれる。化学発光物質には、例えば、イソルミノールが含まれる。
【００１８】
遊離標識抗体を結合抗体から分離し、必要ならば、標識（例えば酵素）が反応する適切な基質を添加して、インキュベートする。
【００１９】
好ましい実施形態では、抗ヒト免疫グロブリンは、ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼのいずれかで標識した酵素である。
【００２０】
反応の際に現れる色彩、蛍光、発光、または放射能の量（使用したシグナル発生系に依存する）は、Ｔｆ様抗原と反応する患者の血清中の自己抗体の量に比例する。光学密度の定量化は、分光光度法を使用して行うことができる。放射標識シグナルの定量化は、シンチレーション計数法によって行いうる。
【００２１】
正常な血清レベルを超えるＴｆ様抗原に反応する自己抗体レベルの増加は、患者の子宮内膜症診断に相関する。
【００２２】
本発明の別の実施形態では、患者の子宮内膜症の診断法は、既知の抗体と患者の自己抗体とがＴｆ結合を競合する、競合免疫アッセイを使用する。この実施形態では、Ｔｆ様抗原に結合することが知られている一定量の標識抗体を、異なる濃度の患者由来の血清サンプルとインキュベートする。例えば、Ｔｆに結合することが公知のマウスモノクローナル抗体４９Ｈ．８（Ｒａｈｍａｎ  ａｎｄ  Ｌｏｎｇｅｎｅｃｋｅｒ、１９８２、Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．，１２９（５）：２０２１〜４）を使用しうる。Ｔｆ様抗原に結合し、競合免疫アッセイに使用することができる他のモノクローナル抗体には、１５５Ｈ７および１７０Ｈ８２（Ｌｏｎｇｅｎｅｃｋｅｒ等、１９８７、Ｊ．Ｎａｔ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｓｔ．，７８（３）：４８９〜９６）、Ａ７８−Ｇ／Ａ７（Ｋａｒｓｔｅｎ等、１９９５、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ，１４（１）：３７〜４４）、ＨＢ−Ｔ１（ＤＡＫＯ  Ｃｏ．）、ＲＳ１−１１４およびＡＨＢ−２５Ｂ（Ｓｔｅｉｎ等、１９８９、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，４９（１）：３２〜７）、ＨＴ８（Ｍｅｔｃａｌｆｅ等、１９８４、Ｂｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，４９（３）：３３７〜４２）、１６１Ｈ４（Ｌｏｎｇｅｎｅｃｋｅｒ等、１９８７）、ＨＨ８（Ｃｌａｕｓｅｎ等、１９８８）、ならびにＢＷ８３５（Ｈａｎｉｓｈ等、１９９５、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５（１８）：４０３６〜４０）が含まれる。上記のように、抗体を、蛍光発生物質、酵素、化学発光物質、光増感物質、懸濁可能な粒子、または放射性同位元素で標識することができる。好ましくは、公知の抗体は酵素標識されている。インキュベーション後、結合した標識抗体を、遊離の自己抗体から分離する。使用するシグナル発生系によっては、必要ならば、標識抗体と反応する適切な基質を添加してインキュベートする。次いで、サンプルが発生したシグナルを測定する。血清サンプルの添加前と添加後、または実験サンプルと対照サンプルとの間の添加による、光学密度または放射能の減少は、血清サンプル中の自己抗体がＴｆに結合したことを示す。健常者由来の実験血清サンプルと比較した場合の光学密度または放射標識シグナルの減少は、患者の子宮内膜症診断に相関する。
【００２３】
競合免疫アッセイの好ましい実施形態では、２つの抗体を使用する間接的方法を使用する。第１の抗体は、標識されていないこと以外は、上の段落に記載のＴｆ様抗原特異的抗体である。第１の抗体を、種々異なる濃度の患者由来の血清サンプルとインキュベートする。一定量の第２の抗体を次にサンプルに添加する。第２の抗体は、第１の抗体の重鎖の定常領域を認識する。例えば、第２の抗体は、Ｔｆ様抗原に反応するマウス免疫グロブリン（抗マウス免疫グロブリン）の重鎖の定常領域を認識する抗体であり得る。第２の抗体を、上記の蛍光標識体、化学発光体、または放射性同位元素で標識する。遊離の第２の抗体を、結合抗体から分離する。酵素標識抗体を使用する場合、酵素標識に反応する適切な基質を添加してインキュベートする。血清サンプルの添加前と添加後、または添加による実験サンプルを対照サンプルと比較しての、光学密度または放射能の減少は、血清サンプル中の自己抗体がＴｆに結合したことを示す。健常者由来の実験血清サンプルと比較した場合の光学密度または放射能の減少は、患者の子宮内膜症診断に相関する。
【００２４】
周知の方法を使用した本発明の方法のために、酵素をＴｆ様抗原反応性抗体に共有結合することができる。多数の周知の結合法が存在する。例えば、グルタルアルデヒドを使用して、アルカリホスファターゼおよびホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを抗体に結合させることができる。ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼを、過ヨウ素酸塩を使用して結合させることもできる。酵素結合抗体用の市販のキットも広範に販売されている。酵素結合抗ヒトおよび抗マウス免疫グロブリン特異的抗体は、複数の販売者から市販されている。
【００２５】
酵素結合抗体の代わりに、ビオチン標識抗体を使用することができる。このような場合、市販のストレプトアビジン−ホースラディッシュ・ペルオキシダーゼ検出システムを使用して、結合抗体を検出する。
【００２６】
酵素標識抗体は、基質の種類によってそれぞれ異なるシグナル発生源をつくる。シグナル発生には、反応混合物への基質の添加を行う。通常のペルオキシダーゼ基質としては、ＡＢＴＳ（登録商標）（２，２’−アジノビス（エチルベンゾチアゾリン−６−スルホナート））、ＯＰＤ（Ｏ−フェニレンジアミン）およびＴＭＢ（３，３’、５，５’−テトラメチルベンジジン）が含められる。これらの基質は、過酸化水素の存在が必要である。ｐ−ニトロフェニルホスフェートは、普通に使用されるアルカリホスファターゼ基質である。インキュベーション中、酵素は基質の一部を徐々にその最終生成物に変化させる。インキュベーション後、酵素活性を停止させる停止試薬が添加される。シグナル強度は、通常分光光度計を使用して光学密度の測定によって決定される。
【００２７】
アルカリホスファターゼ標識抗体は、蛍光測定法によっても測定することができる。したがって、本発明の免疫アッセイでは、基質４−メチルウンベリフェリルホスフェート（４−ＵＭＰ）を使用することができる。４−ＵＭＰはアルカリホスファターゼによる脱リン酸化により、４−メチルウンベリフェロン（４−ＭＵ）という蛍光標識体が形成される。入射光は３６５ｎｍであり、放射光は４４８ｎｍである。
【００２８】
本発明の方法で使用するために、Ｔｆ様抗原を、種々の供給源から得ることができる。例えばＴｆ様抗原は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）から入手可能な腺癌細胞株ＬＳ１７４Ｔなどの腫瘍細胞株の培養に使用した、馴化培養培地から精製することができる。移行性上皮癌株細胞もまた、Ｔｆ様抗原の供給源としての機能を果たしうる。Ｔｆ様抗原は、ＭＡｂ４９Ｈ．８−ＣｎＢｒ活性化セファロースカラムを使用したアフィニティークロマトグラフィーによって、このような馴化培養培地から精製することができる。それ以上に精製するにはゲル濾過を使用することもできる。Ｔｆ様抗原をまたそれ以上に精製するには不溶化落花生凝集素（ＰＮＡ）またはその他のレクチンを使用したレクチンアフィニティークロマトグラフィーを使用することができる。ＰＮＡは、カリフォルニア州サンマテオのＥ−Ｙ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓから入手することができる。
【００２９】
ＩｇＡ、ヘモペキシン、およびα−２−ヘーレマンス・シュミットなどのＴｆ様抗原を含む精製血清タンパク質もまた、抗原として使用することができる。Ｔｆ様抗原の好ましい供給源は、ウシ血清アルブミンと共有結合した市販の合成Ｔｆ様抗原である。最近Ｄａｈｌｅｎｂｏｒｇ等による、１９９７、Ｉｎ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ７０：６３〜７１に記載のように、ＢｉｏＣａｒｂなどのＴｆ様抗原およびその糖形態が市販されている。あるいはＴｆ様抗原は、市販業者からカスタム合成によって得ることができる。Ｔｆ様抗原と反応するモノクローナル抗体を容易に利用することができる。
【００３０】
ＭＡｂ４９．Ｈ（イソ型ＩｇＭ）を、Ｒａｈｍａｎ等、（１９８２）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２９：２０２１〜２０２４およびＬｏｎｇｅｎｅｃｋｅｒ等、（１９８４）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ３３：１２３〜１２９によって報告されているように、調製および精製することができる。これらの論文および本出願で引用した他の論文の開示は、それらが全文提示されていると同様にみなして本明細書中の一部とみなすべきである。
【００３１】
本発明の方法を実施するために、関連する免疫アッセイを標準化しなければならない。Ｔｆ様抗原は通常、糖タンパク質と会合しているので、天然では不均一である。このような不均一性の原因としては、シアリル化を含み得る。このために、１アンプルの国際標準（ＩＳ）または国際基準調製（ＩＲＰ）を得るべきである。国立生物学的製剤研究所（ＮＩＢＳＣ、Ｂｌａｎｃｈｅ  Ｌａｎｅ、Ｓｏｕｔｈ  Ｍｉｍｍｕｓ、Ｐｏｔｔｅｒｓ  Ｂａｒ、Ｈｅｒｔｓ  ＥＮ６３ＱＧ）は、このようなＴｆ様抗原のサンプルを調製し、その国際単位（ＩＵ）を指定することができる。また今後の多数のキャリブレータに標準値を与えるために、複数の二次標準のセットも調製しなければならない。
【００３２】
本発明の免疫アッセイは、未知のサンプルに数値または濃度を指定するためのキャリブレータの使用を必要とする。通常は未知のサンプルをプロットする前に、約６つのキャリブレータの組をプロットして、検量線を作成する。未知サンプルの濃度は補間法により決定する。最良の方法としてはコンピュータプログラムによる補間を行う。較正に関する考察については、「免疫アッセイハンドブック」、第２章を参照のこと。
【００３３】
本発明はまた、患者の子宮内膜症を緩和、予防、および／または回復させるための治療を提供する。本発明のこの実施形態では、Ｔｆ様抗原またはそのアナログを患者に注射する。注射したＴｆ様抗原またはそのアナログは、自己抗体結合で、子宮内膜症患者に存在するＴｆ様抗原と競合する。
【００３４】
以下の実施例により、本発明をさらに例示する。
【００３５】
（実施例１）
材料と方法
組織ホモジネートの調製
新鮮な異所性および正常の子宮内膜、腹腔内貯留液、および血清を、インフォームドコンセントを行った子宮摘出患者から得た。新鮮な組織（１〜２グラム）に、完全プロテアーゼ阻害剤カクテル（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ社、インディアナ州インディアナポリス）を含む１０ｍｌの氷冷ＰＢＳを添加し、調製中全体を通じて４℃に維持した。組織をポリトロンホモジナイザー（Ｂｒｉｎｋｍａｎ社製、スイス  ルツェルン）で１分間ホモジナイズし、続いて１３０００ｇで１０分間遠心分離した。上清を回収し、Ｂｒａｎｓｏｎ２５０ソニフィアー（コネチカット州ダンベリー）を使用して、超音波処理した。組織ホモジネートを、０．２２ｍｍで濾過し、２０℃で保存した。
【００３６】
血清の調製
末梢静脈血（６０ｍｌ）を健常なボランティアから、ガラス製のバキュテイナーチューブ（添加剤なし）に採取し、４時間室温で凝固させた。次いで、血清を滅菌チューブに取り出し、４℃で３０分間１２０００ｇの遠心分離により脱脂した。
【００３７】
組織自己抗原の精製
ホモジナイズ後、組織抗原をプロテインＧ  ＦＰＬＣカラム（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、ニュージャージー州ピスカタウェイ）に通し、ＩｇＧを除去した。プロテインＧカラムに保持されなかったタンパク質を、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ８．０）で平衡化した陰イオン交換カラム（ＭｏｎｏＱ  ＦＰＬＣ、Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、ニュージャージー州ピスカタウェイ）にかけた。結合したタンパク質は、０〜０．５Ｍ  ＮａＣｌの線形勾配をかけた同一の緩衝液中で、その後１Ｍ  ＮａＣｌまでの段階勾配をかけた同一の緩衝液を使用し、カラムから溶出させた。目的のタンパク質は全て１Ｍ  ＮａＣｌ勾配の前に溶出した。
【００３８】
血清自己抗原の精製
α２−ＨＳＧを、上記の組織抗原について記載の陰イオン交換クロマトグラフィーにより、ＨｉＰｒｅｐ１６／１０ＱＸＬカラムを使用して、正常な全ヒト血清から精製した。この部分精製α２−ＨＳＧは、いくつかの実験で試験中に示される通りに使用された。さらなる精製を第２の陰イオン交換カラム（ＭｏｎｏＱ）にて、２０ｍＭピペラジン緩衝液（ｐＨ５．０）で平衡化し、上記のＮａＣｌ勾配を使用した同一の緩衝液で溶出して行った。最終的なα２−ＨＳＧの均一調製物は、ＦＰＬＣスーパーロース１２カラム（Ａｍｅｒｓｈａｍ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、ニュージャージー州ピスカタウェイ）でのゲル濾過の後に得られた。α２−ＨＳＧ濃度は、ＥＬＩＳＡでモニターした。
【００３９】
ＩｇＡ１は、既に記載されているように、陰イオン交換クロマトグラフィーおよびジャカリンアガロースアフィニティークロマトグラフィーにより、全血清から精製した（１１）。トランスフェリンおよびヘモペキシンは、Ｚｎ２＋イオンで荷電したキレート化セファロースＦａｓｔ　Ｆｌｏｗ（Ａｍｅｒｓｈａｍ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、ニュージャージー州ピスカタウェイ）を封入したカラムでの金属キレートクロマトグラフィーにより、全血清から精製した。カラムおよび血清は、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ含有２０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液で予め平衡化した。亜鉛結合タンパク質は、０〜０．５Ｍイミダゾール線形勾配をかけた同一の緩衝液を使用し、溶出させた。得られたトランスフェリンおよびヘモペキシン含有画分（ウェスタンブロット分析によって決定）を個別にプールし、上記のＭｏｎｏＱ陰イオン交換カラム上、ｐＨ８．０でさらに精製した。本プロトコールによって、電気泳動上純粋なヘモペキシン調製物が得られた。トランスフェリンはしかし、トランスフェリン調製物中のヘモペキシンから分離されなかった。
【００４０】
糖タンパク質による炭水化物−エピトープの修飾
末端シアル酸部分を、アガロース結合ノイラミニダーゼでの処理により、糖タンパク質から除去した。０．５ｍｌ中１ｍｇのタンパク質を、５０ｍＭ酢酸ナトリウム、１５０ｍＭ塩化ナトリウム、４ｍＭ塩化カルシウム（ｐＨ５．５）中、５ユニットのノイラミニダーゼ（Ｓｉｇｍａ、セントルイス、ミズーリ州）で、３７℃下一晩インキュベートした。４０００ｇ５分間の遠心分離によって、アガロースビーズを除去した。上清を取り出し、４℃で保存した。
【００４１】
中心の炭水化物基を、エンドグリコシダーゼＦ（ＥｎｄｏＦ）およびペプチド−Ｎ−グリコシダーゼＦ（ＰＮＧアーゼＦ）での処理によって糖タンパク質から除去した。これは、Ｇｌｙｋｏ（カリフォルニア州ノヴァト）からの市販のキットにより得られた。４０ｍｇのノイラミニダーゼ処理タンパク質を、２０ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ７．５、５０ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．１％ｖ／ｖＳＤＳ、０．５％ｂ−メルカプトエタノールの存在下、１００℃で２分間の加熱によって変性した。ＰＮＧアーゼＦのＳＤＳによる阻害を防止するため、冷却後に０．１％Ｔｗｅｅｎ−２０を変性サンプルに添加した。次いで、変性タンパク質を、６６７脱グリコシル化単位（ＤＧＵ）のＥｎｄｏ　Ｆ／ＰＮＧアーゼＦ混合物に、３７℃１８時間インキュベートした。
【００４２】
ジャカリン反応性糖タンパク質のサンプルからの除去は、ジャカリン結合アガロースビーズ（Ｖｅｃｔｏｒ、カリフォルニア州バーリンゲーム）での予備吸着によって達成した。サンプルを、ジャカリン結合アガロースで室温３０分間インキュベートし、４０００ｇ５分間遠心分離した。上清を除去し、４℃で保存した。
【００４３】
抗体および糖タンパク質
ヒツジ抗ヒトα２−ＨＳＧおよびヒツジ抗ヒトトランスフェリンの免疫グロブリン画分は、Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ（メイン州ケネバンク）から得た。ヤギ抗ヒトヘモペキシン抗血清は、Ｋｅｎｔ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ワシントン州レドモンド）から得た。ＨＲＰ結合ウサギ抗ヒツジＩｇＧおよびＨＲＰ結合ウサギ抗ヤギＩｇＧは、Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ペンシルベニア州ウェストグローブ）から得た。ＨＲＰ結合ヤギ抗ヒトＩｇＡ（α鎖特異的）およびＨＲＰ結合ヤギ抗ヒトＩｇＧ（γ鎖特異的）は、（Ｓｉｇｍａ）から購入した。市販のα２−ＨＳＧは、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ−Ｎｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ（カリフォルニア州ラ・ホーヤ）から得た。
【００４４】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
ＳＤＳ−ＰＡＧＥはＬａｅｍｍｌｉの方法（１２）にしたがって行った。手短に述べると、同体積の２×ゲルローディング緩衝液をタンパク質サンプルに添加し、５分間煮沸する。適切な場合には、タンパク質を還元条件下（ゲルローディング緩衝液中、５％ｖ／ｖのｂ−メルカプトエタノール）で溶解した。還元タンパク質の再会合は、煮沸後のヨードアセトアミド（最終濃度６０ｍＭ）の添加により防止した。タンパク質サンプルは、４％〜１５％勾配ゲル（Ｂｉｏｒａｄ、カリフォルニア州ハーキュリーズ）を使用して分離した。タンパク質を直接可視可するために、ゲルを７．５％ｖ／ｖ酢酸溶液中の０．０２％ｖ／ｖ　ＳＹＰＲＯ−オレンジ（Ｂｉｏｒａｄ、カリフォルニア州ハーキュリーズ）内に３０分間置いた。次いで、ゲルを７．５％酢酸でリンスし、ゲル画像処理装置（Ａｌｐｈａ　Ｉｎｎｏｔｅｃｈ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、カリフォルニア州サンリアンドロ）上で観察した。
【００４５】
免疫ブロット法
Ｂｉｏｒａｄ　Ｔｒａｎｓｂｌｏｔ　ＳＤセミドライ・ブロッターを用い、タンパク質をＳＤＳゲルからニトロセルロース膜に転移した。ポンソー・レッド染色で、ニトロセルロース膜へのタンパク質の転移を確認した。膜は、４℃のＰＢＳ溶液中５％ｗ／ｖ脱脂粉乳、０．５％Ｔｗｅｅｎ−２０で一晩ブロックした。一次抗体または血清をブロッキング溶液に添加し、室温で２時間インキュベートした。次いで膜を、１回あたり５分間かけて６回ＰＢＳ中で洗浄した。ＨＲＰ結合二次抗体を、ＰＢＳ溶液中０．０５％ｖ／ｖ　Ｔｗｅｅｎ−２０を含む３％ｗ／ｖ脱脂粉乳で希釈した。記載のように５分間６回洗浄する前、膜を室温で２時間インキュベートした。次いで、タンパク質を増強化学発光（ＥＣＬ）（Ａｍｅｒｓｈａｍ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ社、ニュージャージー州ピスカタウェイ）により検出した。必要に応じてニトロセルロース膜を剥離し、１００ｍＭグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ１．５）中室温で３０分間の撹拌の前に、１回あたり５分間、０．９％ｗ／ｖ　ＮａＣｌ中での洗浄を２回行うことによって再プローブした。次いで、膜を、１回あたり５分間、ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で３回洗浄した。膜をブロックし、記載のように抗体で探索した。
【００４６】
酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）
Ｆａｌｃｏｎ　Ｍｉｃｒｏｔｅｓｔ　ＩＩＩマイクロタイタープレート（Ｂｅｃｔｏｎ　Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ、カリフォルニア州オックスナード）のウェルを、炭酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．２）で１００μｌまで希釈した１０μｌのタンパク質にて４℃で一晩コーティングした。プレートは０．０５％ｖ／ｖ　Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳ中で３回洗浄した。ウェルは、３回洗浄の前に、３％ｗ／ｖ　ＢＳＡのＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ２０（ブロッキング緩衝液）にて３７℃で１時間ブロックした。一次抗体または試験血清を、ブロッキング緩衝液で適切に希釈し、１００μｌを各ウェルに添加した。プレートを３７℃で２時間インキュベートし、ＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ−２０で３回洗浄した。ＨＲＰ結合二次抗体をブロッキング緩衝液で希釈し、１００μｌを各ウェルに添加した。プレートを、次いで３回洗浄した。１００ｍｌの比色定量ＨＲＰ基質であるＡＢＴを各ウェルに添加し、室温で３０分間インキュベートした。プレートを４０５ｎｍについてＤｙｎａｔｅｃｈプレートリーダー（バージニア州シャンティ）で読み取ったデータをＧｒａｐｈｐａｄ　Ｐｒｉｓｍソフトウェアを用いて分析した。
【００４７】
（実施例２）
異所性子宮内膜、正常子宮内膜、腹腔内貯留液、および血清の自己抗原の同定　可溶性子宮内膜タンパク質の調製物を、「材料と方法」の節に記載の子宮摘出組織から調製し、プロテインＧクロマトグラフィーに供してＩｇＧを除去した。得られた無ＩｇＧ調製物を、陰イオン交換クロマトグラフィーに供した（図１ａ）。次いで、このカラム由来の画分を、還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した（図１ｂ）。同一のゲル上のタンパク質バンドを、ウェスタンブロット分析のためにニトロセルロース膜に転写した。一次抗体供給源としてプールした子宮内膜症患者およびプールした健常男性ドナー由来の血清を使用して、ウェスタンブロットの発色を行った。図１ｃは、患者（Ｗ１３４５）由来の増殖期の正常子宮内膜中で同定された抗原の典型的な例を示す。健常男性ドナー由来の対照血清（示さず）で探索した同一のブロットと比較して、自己反応性ＩｇＧは子宮内膜症患者の血清（図１ｃ）に限定された。
【００４８】
対照血清を用いたＭｏｎｏＱカラムの画分２４に対してＩｇＧのｇ鎖結合が検出されたが、他の画分（示さず）では検出されなかった。興味深いことに、画分２４に対する類似の反応性は、子宮内膜症血清を使用して発色したブロットには現れなかった。プールした子宮内膜症血清を使用して検出された反応性タンパク質の分子量は、他の研究者達６、１０により記述された分子量と十分に相関する。プールした子宮内膜症血清で探索したウェスタンブロットによって、全部で１０本の自己反応性バンドが検出された。ＩｇＡα鎖特異的およびＩｇＧγ鎖特異的二次抗体の両方を含む画分２３で７２ｋＤａのバンドが検出された（図１ｃおよび１ｄ）。このバンドは、分子量およびＭｏｎｏＱカラムから溶出されたＮａＣｌ濃度に基づいてトランスフェリンとして最初に同定された（この位置でのトランスフェリンの溶出を、ヒツジ抗トランスフェリン抗体を使用したウェスタンブロット分析によって確認した（示さず））。この画分中にＩｇＧγ鎖特異的抗体を含む５４ｋＤａのタンパク質もまた検出されたが、ＩｇＡα鎖特異的を含むものは検出されなかった。このタンパク質は、部分的に脱シアリル化されたα２−ＨＳＧと同一の位置に溶出される（データ示さず）。α２−ＨＳＧは、子宮内膜症患者の自己抗原として以前に同定されている（１０）。画分２６および２９で認められた５９ｋＤａのＩｇＧ反応性バンドはＩｇＡのα鎖であり、溶出位置は、これらの作動条件では、それぞれ単量体および二量体ＩｇＡの既知の溶出位置に対応する。このタンパク質がＩｇＡα鎖であることを、ブロットを剥離して抗α鎖特異的抗体で再探索することによって確認した（示さず）。このブロットはまた、画分２３（トランスフェリン含有画分）中の抗α鎖反応性バンドの存在を示した。この画分中のＩｇＡ抗原の存在は、おそらく他の血清タンパク質１３、１４と共有結合的に複合体形成したＩｇＡに由来している。画分２６はまた、７２ｋＤａに反応性バンドを含み、画分２８および２９は、６９ｋＤａのバンドを有していた。これら後者のバンドは、α鎖特異的ブロットに対する活性を示さなかった。ＩｇＡのα鎖を認識する子宮内膜症患者のＩｇＧ抗体の存在を、高度に精製した血清ＩｇＡ１を使用したウェスタンブロットによって確認した（図７を参照のこと）。それに対して、これらの画分以外のＩｇＡα鎖を含む子宮内膜抗原に対するＩｇＡ自己抗体は認められなかった。
【００４９】
同一の患者（Ｗ１３４５）由来の卵巣異所性子宮内膜サンプルは、分子量５４、４７、４３、および３４ｋＤａの自己抗原タンパク質を有していた（示さず）。５４ｋＤａのタンパク質は、ヒツジ抗α２−ＨＳＧ特異的抗体で発色させたウェスタンブロットにより、α２−ＨＳＧであると判定された。α２−ＨＳＧはまた、ウェスタンブロットによって異なる患者（Ｗ１５１７）由来の腹腔洗浄液中で検出された。５４ｋＤａの抗原に加えて、１８６、１２６、６８、４３、３７、および３４ｋＤａの抗原が、腹腔内貯留液中に存在していた（図２）。
【００５０】
プールした患者および各血清を用いて、２つの分子量マーカーとの反応性が認められた（図１ｃおよび図３を参照のこと）。これらのマーカーは、２０５ｋＤのミオシンおよび４２ｋＤの炭酸脱水酵素ＩＩであった。プールした男性対照およびいくつかの各男性血清の両方を用いたミオシンバンドとの反応性もまた認められた。それに対して、脱水素酵素ＩＩとの反応性は子宮内膜症血清に特異的であり、このタンパク質は他の研究者によって子宮内膜症における自己抗原７、８と報告されている。
【００５１】
要約すれば、正常および異所性子宮内膜ならびに腹腔内貯留液由来の調製物中の自己抗原を同定した。以前に公開された報告と一致して、α２−ＨＳＧ、トランスフェリンおよび炭酸脱水酵素ＩＩは、子宮内膜症患者由来の血清によって認識される自己抗原である。さらに、本明細書中に示した結果は、ＩｇＡのα鎖はまた、同一の血清によって認識される自己抗原であることを示す。これらのタンパク質がタンパク質レベルで有意な相同性を示さないので、４つ全てのタンパク質は共通のペプチド・エピトープを共有する可能性は少ない。しかし、４つのタンパク質のうち３つ（α２−ＨＳＧ、ＩｇＡｌのα鎖、およびおそらく炭酸脱水酵素ＩＩ）が共通の炭水化物エピトープを共有する。このＯ結合炭水化物構造は、ジャックフルーツ（Ａｒｔｏｃａｒｐｕｓ　ｉｎｔｅｇｒｉｆｏｌｉａ）のレクチン、ジャカリンによって認識されるＧａｌβ１−３ＮＡｃＧａｌエピトープを含む。本明細書中に示した結果は、α２−ＨＳＧおよびカルビニック脱水素酵素が、子宮内膜症血清中に存在する自己抗体によって認識される自己抗原であるという以前の報告を確認するものである。本発明の研究は、これらの結果を拡大して、ＩｇＡおよびヘモペキシンもまた子宮内膜症患者由来の血清によって認識される自己抗原であることを示している。
【００５２】
（実施例３）
ジャカリン予備吸着により、自己抗体結合が排除される。
【００５３】
α２−ヘーレマンス・シュミット糖タンパク質（α２−ＨＳＧ）を、子宮内膜症反応におけるジャカリン反応性炭水化物の潜在的役割を調査するためのモデル抗原として選択した。市販のα２−ＨＳＧを使用した最初の実験は、不満足な証明となった。これは、これらの調製物中にある糖形態が多様なためだった。ほとんどのシアリル化された糖タンパク質と共通して、α２−ＨＳＧは保存中に末端のシアル酸残基を喪失する。正常なヒト血清由来の完全にシアリル化されたα２−ＨＳＧを、新たに調製した。その炭水化物含有量についての調製の偏りを避けるため、レクチンベースの親和性精製プロトコールを避け、代わりに陰イオン交換クロマトグラフィーとゲル濾過クロマトグラフィーとの組み合わせを使用した。ｐＨ８．０でのＭｏｎｏＱカラム上での陰イオン交換、続いてｐＨ５．０での第２のＭｏｎｏＱカラム、そして最後にスーパーロース１２カラムによるゲル濾過段階からなる３段階の処理により、分子量５８ｋＤａの完全にシアリル化された糖形態のα２−ＨＳＧが精製された。
【００５４】
第１の陰イオン交換カラム由来の部分精製α２−ＨＳＧ画分を使用して実験を行った場合、ウェスタンブロットによる子宮内膜症血清との自己反応性はジャカリンアガロースでの予備インキュベーション後に消滅した（図３）。ＳＹＰＲＯオレンジ染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルにおいて１４本のタンパク質バンドが認められた（図３、レーンａ）。子宮内膜症血清との反応性は、５つのタンパク質で認められた（図３、レーンｂ）。反応性タンパク質は、約２３０、１８８、１６８、１２０、および５８ｋＤａの分子量を有しており、５８ｋＤａのものはα２−ＨＳＧであった。これら５本のバンド全ての子宮内膜症血清におけるＩｇＧによる結合は、ジャカリンアガロースとのインキュベーション後に消滅し（図３、レーンｄ）、これは、自己抗体の結合は画分中に存在する全てのジャカリン結合タンパク質に対してであって、ただα２−ＨＳＧに対してだけでないことを示す。吸着前および後の、画分１３のゲルのタンパク質染色は、活性の喪失が画分中のタンパク質の非特異的喪失によって引き起こされたのではないことを示す。吸着および非吸着タンパク質の濃度は、ウェスタンブロット法に使用するゲル上に添加する総タンパク質量が均一となるように調整した。
【００５５】
ジャカリンによって認識される炭水化物構造は非常に特異的であり、結合はＴｆの存在に依存する。ジャカリンは、いくつかのＯ結合少糖類の内に存在する二糖類Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃを認識する。Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃは、多数の血漿タンパク質のうち非常に限られたいくつかによって発現する。これらのタンパク質には、ＩｇＡ１、ＩｇＤ、Ｃ１阻害剤、ヘモペキシン、プラスミノゲン、α１−抗トリプシン、α２−マクログルブリン、８Ｓ−α３糖タンパク質、絨毛性ゴナドトロピン（ｈＣＧ）、およびα２−ＨＳＧが含まれる（１５）。ｈＣＧに関して、ｈＣＧの受容体がＴｆ様抗原も発現すること、随伴性の子宮内膜症を罹患しているか、罹患していないか、いずれもの不妊症患者で見出された自己抗体が受容体に結合すること５は興味深い。
【００５６】
（実施例４）
炭水化物の除去による自己抗体結合の停止。
【００５７】
ジャカリンによる自己抗体によって認識されるタンパク質の除去は、それ自体に共通の炭水化物エピトープ（群）が含まれるかどうかは決定できない。炭水化物が子宮内膜症の自己抗体によるα２−ＨＳＧの認識に不可欠であるかどうかを判定するために、脱グリコシル化α２−ＨＳＧとの反応性を調査した。α２−ＨＳＧ炭水化物は、２段階の処理で除去された。第一段階では、ノイラミニダーゼを使用して、末端シアル酸を切断した。第二段階は、ＥｎｄｏＦ／ＰＮＧアーゼ消化工程を更に使用して、炭水化物を完全に除去した。未処理、ノイラミニダーゼ処理、および脱グリコシル化α２−ＨＳＧを、等量のタンパク質をロードするウェスタンブロット分析に供した（図４）。シアル酸および全ての炭水化物の除去を、ヒツジ抗α２−ＨＳＧとの反応性で示される分子量の減少によって確認した（図４、レーンＡ〜Ｃ）。
【００５８】
ヒツジ抗α２−ＨＳＧ抗体は、ペプチドに反応性を示し、二重免疫拡散法によるジャカリン結合タンパク質との反応性を示さない（データ示さず）。ノイラミニダーゼでの末端シアル酸の除去により、患者の血清との反応性は減少した（図４、レーンＤおよびＥ）。この画分に残存する反応性は未消化α２−ＨＳＧと同一の分子量においてで、これは自己抗体結合が末端シアル酸の存在に依存することを示している。ノイラミニダーゼ処理とその後に続くＥｎｄｏＦ／ＰＮＧアーゼ消化による炭水化物の完全な除去で、反応性は完全に消滅した（図４、レーンＦ）。類似の部分精製α２−ＨＳＧ処理により、５つ全ての反応性タンパク質への結合が減少するので、ノイラミニダーゼ後の自己抗体結合のこの減少はα２−ＨＳＧに制限されない（図３、レーンｃ）。
【００５９】
【表１】
2004501349.tif 000002
これらの結果は（トランスフェリンを除いて）、通常の炭水化物エピトープがα２−ＨＳＧ、炭酸脱水酵素、ヘモペキシン、およびＩｇＡ１のａ鎖に認識されることを示している（本研究、および公開された研究において同定された抗原、ならびにそれらのジャカリン反応性の要約は、表１を参照のこと）。全ての同定した抗原（トランスフェリンおよび炭酸脱水酵素ＩＩを除く）がレクチンジャカリンに結合することが知られていることと、抗原からの炭水化物の除去により子宮内膜症血清のこれらの抗原への結合能力が失われることに基づいてこの結論に至った。
【００６０】
（実施例５）
ウシフェチュインへの自己抗体の結合
ヒトα２−ＨＳＧのホモログであるウシフェチュインは、ヒトα２−ＨＳＧと同一のジャカリン結合炭水化物部分を有する。ヒトＳＧペプチドに対して惹起したヒツジ抗血清は、ウシフェチュインと交差反応を示さず、このことから、かなりの配列相同性にも関わらず２種の間の抗原性が有意に異なると示唆される。ＥＬＩＳＡおよびウシフェチュインでのウェスタンブロットによれば、子宮内膜症患者由来の血清は正の反応性を示す（図５）。フェチュインのノイラミニダーゼ処理は、−ＨＳＧと対照的に、ＥＬＩＳＡでの自己抗体反応性をわずかに増加させた（図５）。しかし、ウシフェチュインのより完全な脱シアリル化または完全な脱グリコシル化により、抗体結合は消滅し、これにより子宮内膜症患者の自己抗体反応は炭水化物依存性であるというさらなる証拠が得られた（示さず）。完全なノイラミニダーゼ処理後のフェチュインへの結合の増加は、ウシフェチュインがそのヒト対応物に比べより強くシアリル化されることに起因しうる。
【００６１】
（実施例６）
自己抗体結合のＤ−ガラクトース依存性。
【００６２】
ジャカリン結合は、Ｇａｌｂ１−３ＮａｃＧａｌ成分の存在に依存する。もし自己抗体反応がこのエピトープを含んでいたら、ジャカリン結合の場合と同様に、結合はＤ−ガラクトースによって競合的に阻害されるはずである。ウェスタンブロットでのａ２−ＨＳＧへの子宮内膜症ＩｇＧの結合は、０．８Ｍ　Ｄ−ガラクトースの存在下で完全に消滅し、これはＤ−ガラクトースが、自己抗体によって認識されるエピトープの一部を形成しうることを示している（示さず）。
【００６３】
（実施例７）
子宮内膜症血清により認識される血清自己抗原は、同じエピトープを共有する。
【００６４】
同一の炭水化物エピトープが上記で同定された異種抗原との自己反応性の原因となるため、ここで自己抗体結合は、過剰な異種の抗原の存在下では遮断されるはずである。このことは以下の例で証明された：１０倍過剰の高度に精製されたａ２−ＨＳＧまたはウシフェチュインの添加は、どちらも自己抗体の炭酸脱水酵素ＩＩおよび７２ｋＤａの抗原への結合を阻害した（図６）。
【００６５】
子宮内膜症の７２ｋＤａ自己抗原は、トランスフェリンよりもむしろヘモペキシンであろうか？　これまでに記載の抗原のうち、トランスフェリンを除く全てが、ジャカリンによって認識された。このような炭水化物構造はトランスフェリン上には発現せず、ジャカリンはトランスフェリンと結合しない１５。このことから、以下の３つの可能性が残る：ジャカリン炭水化物反応とは別個の抗トランスフェリン反応が子宮内膜症血清に存在するか、またはトランスフェリンで精製する反応性がトランスフェリン調製物中の夾雑物に対するものであるか、またはその両方かである。正常子宮内膜Ｗ１３４５の陰イオン交換画分中には、〜７０ｋＤａの２つの反応性タンパク質が見出された。一方は、塩勾配の早い箇所でトランスフェリンと同一の画分中に溶出した。他方のタンパク質はより高い塩濃度で、ＩｇＡと同一の画分中に溶出された。スイス２Ｄデータベースを調査した結果、類似の分子量および等電点のジャカリン結合タンパク質がヘモペキシンを含むことを示した。ヘモペキシンをＺｎ２＋金属キレ−トクロマトグラフィー、および陰イオン交換クロマトグラフィーにより精製した場合に、均質な調整物が得られた。ヘモペキシン特異的抗体を含む画分のウェスタンブロット法により、同一性を確認した。子宮内膜症患者の血清に対して試験したところ、このタンパク質は自己抗原として認識された（図７）。トランスフェリンに対し特異的な抗体での同じタンパク質のウェスタンブロット分析は、精製ヘモペキシンとの反応性を示されなかった。同一のカラム由来の画分をトランスフェリン反応性について調査したところ、陰イオン交換カラム由来のより早期のピークがトランスフェリンを含むことがわかった。抗ヘモペキシンでのトランスフェリン含有画分のウェスタンブロット分析により、ＳＤＳ−ＰＡＧＥでの移動度がトランスフェリンと類似のヘモペキシンの存在が明らかになった。二重免疫拡散法で抗ヘモペキシンおよび抗トランスフェリンがトランスフェリンのピーク画分に対して沈降反応させた場合に一致線は示されず、これは、抗血清が抗原特異的であることを表している（示さず）。このトランスフェリン調製物中のジャカリン結合活性の存在を、ジャカリンに対する二重免疫拡散法での沈降線の存在によって確認した（示さず）。トランスフェリンで共精製される抗原の性質を決定するため、さらなる実験が現在進行中であるが、しかし７２ｋＤａ結合活性が純粋なａ２−ＨＳＧ調製物の添加により阻害されることは興味深いことである（図６）。
【００６６】
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１５．　Ｋａｂｉｒ　Ｓ．（１９９８）「ジャカリン：免疫生物学研究において多用途施用のジャックフルーツ（Ａｒｔｏｃａｒｐｕｓ　ｈｅｔｅｒｏｐｈｙｌｌｕｓ）種子由来レクチン」Ｊ　Ｉｍｍｕｎｏｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ，２１２，１９３．
１６．　Ｃａｏ　Ｙ．，Ｓｔｏｓｉｅｋ　Ｐ．，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ　Ｇ．Ｆ．およびＫａｒｓｔｅｎ　Ｕ．（１９９６）「正常な成人ヒト組織におけるトムセン−フリーデンライヒ関連炭水化物抗原：体系的および比較的研究」Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ　Ｃｅｌｌ　Ｂｉｏｌ，１０６，１９７．
１７．　Ｄｏ　Ｓ．Ｉ．およびＣｕｍｍｉｎｇｓ　Ｒ．Ｄ．（１９９２）「ヒトトランスフェリン受容体中のトレオニン残基上のＯ結合少糖類の存在」Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，２，３４５．
１８．　Ｂｌａｓｃｏ　Ｅ．，Ｂａｒｒａ　Ａ．，Ｎｉｃｏｌａｓ　Ｍ．，Ｌｅｃｒｏｎ　Ｊ．Ｃ．，Ｗｉｊｄｅｎｅｓ　Ｊ．およびＰｒｅｕｄ’ｈｏｍｍｅ　Ｊ．Ｌ．（１９９５）「レクチンジャカリンによって刺激されたヒトＣＤ４＋　Ｔリンパ球の増殖反応」Ｅｕｒ　Ｊ　Ｉｍｍｕｎｏｌ，２５，２０１０．
１９．　Ｋｅｅｎａｎ　Ｊ．Ａ．，Ｃｈｅｎ　Ｔ．Ｔ．，Ｃｈａｄｗｅｌｌ　Ｎ．Ｌ．，Ｔｏｒｒｙ　Ｄ．Ｓ．およびＣａｕｄｌｅ　Ｍ．Ｒ．（１９９５）「腹腔内貯留液、および子宮内膜症の女性のマクロファージ馴化培地中の、ＩＬ−１β、ＴＮＦ−α、およびＩＬ−２」Ａｍ　Ｊ　Ｒｅｐｒｏｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌ，３４，３８１．
２０．　Ａｗａｄａｌｌａ　Ｓ．Ｇ．，Ｆｒｉｅｄｍａｎ　Ｃ．Ｉ．，Ｈａｑ　Ａ．Ｕ．，Ｒｏｈ　Ｓ．Ｉ．，Ｃｈｉｎ　Ｎ．Ｗ．およびＫｉｍ　Ｍ．Ｈ．（１９８７）「局所腹腔因子：子宮内膜症に関連する不妊症への役割」Ａｍ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ，１５７，１２０７．
２１．　Ｍｏｒｉ　Ｈ．，Ｓａｗａｉｒｉ　Ｍ．，Ｎａｋａｇａｗａ　Ｍ．，Ｉｔｏｈ　Ｎ．，Ｗａｄａ　Ｋ．およびＴａｍａｙａ　Ｔ．（１９９２）「子宮内膜症患者由来の腹腔マクロファージ中のインターロイキン１（ＩＬ−１）β伝令リボ核酸（ｍＲＮＡ）およびＩＬ−１受容体アンタゴニストｍＲＮＡの発現」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，５７，５３５．
２２．　Ｔａｋｅｔａｎｉ　Ｙ．，Ｋｕｏ　Ｔ．Ｍ．およびＭｉｚｕｎｏ　Ｍ．（１９９２）「未処置または処置された子宮内膜症の女性の不妊症における腹腔内貯留液中のサイトカインレベルと胚毒性との比較」Ａｍ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ，１６７，２６５．
２３．Ｆａｋｉｈ　Ｈ．，Ｂａｇｇｅｔｔ　Ｂ．，Ｈｏｌｔｚ　Ｇ．，Ｔｓａｎｇ　Ｋ．Ｙ．，Ｌｅｅ　Ｊ．Ｃ．およびＷｉｌｌｉａｍｓｏｎ　Ｈ．Ｏ．（１９８７）「インターロイキン１：子宮内膜症に関連する不妊症における可能性のある役割」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，４７，２１３．
２４．　Ｈｉｌｌ　Ｊ．Ａ．およびＡｎｄｅｒｓｏｎ　Ｄ．Ｊ．（１９８９）「子宮内膜症を持つおよび持たない、妊娠可能および不妊症の女性由来の、腹腔内貯留液の存在下でのリンパ球活性」Ａｍ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ，１６１，８６１．
２５．　Ｋｏｙａｍａ　Ｎ．，Ｍａｔｓｕｕｒａ　Ｋ．およびＯｋａｍｕｒａ　Ｈ．（１９９３）「子宮内膜症患者の腹腔内貯留液中のサイトカイン」Ｉｎｔ　Ｊ　Ｇｙｎａｅｃｏｌ　Ｏｂｓｔｅｔ，４３，４５．
２６．Ｏｖｅｒｔｏｎ　Ｃ．，Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ−Ｓｈａｗ　Ｓ．，Ｈｉｃｋｓ　Ｂ．，Ｂａｒｌｏｗ　Ｄ．およびＳｔａｒｋｅｙ　Ｐ．（１９９６）「腹腔内貯留液サイトカインおよび子宮内膜症と痛みとの関連」Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ，１１，３８０．
２７．　Ｈａｒａｄａ　Ｔ．，Ｙｏｓｈｉｏｋａ　Ｈ．，Ｙｏｓｈｉｄａ　Ｓ．，Ｉｗａｂｅ　Ｔ．，Ｏｎｏｈａｒａ　Ｙ．，Ｔａｎｉｋａｗａ　Ｍ．およびＴｅｒａｋａｗａ　Ｎ．（１９９７）「活動性子宮内膜症を伴う不妊症の腹腔内貯留液中のインターロイキン６レベルの増加」Ａｍ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ，１７６，５９３．
２８．　Ｒｉｅｒ　Ｓ．Ｅ．，Ｚａｒｍａｋｏｕｐｉｓ　Ｐ．Ｎ．，Ｈｕ　Ｘ．およびＢｅｃｋｅｒ　Ｊ．Ｌ．（１９９５）「異所的子宮内膜間質細胞におけるインターロイキン６反応の制御不全：子宮内膜症の女性の腹腔内貯留液中の可溶性受容体の減少との相関関係」Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ　Ｍｅｔａｂ，８０，１４３１．
２９．　Ｒｉｅｒ　Ｓ．Ｅ．，Ｐａｒｓｏｎｓ　Ａ．Ｋ．およびＢｅｃｋｅｒ　Ｊ．Ｌ．（１９９４）「子宮内膜症患者由来の腹腔白血球によるインターロイキン６産生の変化」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，６１，２９４．
３０．　Ｂｕｙａｌｏｓ　Ｒ．Ｐ．，Ｆｕｎａｒｉ　Ｖ．Ａ，Ａｚｚｉｚ　Ｒ．，Ｗａｔｓｏｎ　Ｊ．Ｍ．およびＭａｒｔｉｎｅｚ−Ｍａｚａ　Ｏ．（１９９２）「骨盤疾患患者の腹腔内貯留液中のインターロイキン６レベルの上昇」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，５８，３０２．
３１．　Ｒａｎａ　Ｎ．，Ｂｒａｕｎ　Ｄ．Ｐ．，Ｈｏｕｓｅ　Ｒ．，Ｇｅｂｅｌ　Ｈ．，Ｒｏｔｍａｎ　Ｃ．およびＤｍｏｗｓｋｉ　Ｗ．Ｐ．（１９９６）「子宮内膜症の女性における腹腔マクロファージによるサイトカインの基本および刺激分泌」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，６５，９２５．
３２．　Ｅｉｓｅｒｍａｎｎ　Ｊ．，Ｇａｓｔ　Ｍ．Ｊ．，Ｐｉｎｅｄａ　Ｊ．，Ｏｄｅｍ　Ｒ．Ｒ．およびＣｏｌｌｉｎｓ　Ｊ．Ｌ．（１９８８）「腹腔鏡下手術を受けた女性の腹腔内貯留液中の腫瘍開始因子」Ｆｅｒｔｉｌ　Ｓｔｅｒｉｌ，５０，５７３．
３３．　Ｈａｌｍｅ　Ｊ．（１９８９）「ｉｎ　ｖｉｖｏおよびインビトロでのヒト腹腔マクロファージによる腫瘍開始因子αの放出」Ａｍ　Ｊ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ，１６１，１７１８．
３４．　Ｋａｂｉｒ　Ｓ．およびＷｉｇｚｅｌｌ　Ｈ．（１９８９）「インターロイキン１の阻害剤としての新規の尿シアロ糖タンパク質」Ｃｌｉｎ　Ｅｘｐ　Ｉｍｍｕｎｏｌ，７７，８９．
３５．　Ｌｅｂｒｅｔｏｎ　Ｊ．Ｐ．，Ｊｏｉｓｅｌ　Ｆ．，Ｒａｏｕｌｔ　Ｊ．Ｐ．，Ｌａｎｎｕｚｅｌ　Ｂ．，Ｒｏｇｅｚ　Ｊ．Ｐ．およびＨｕｍｂｅｒｔ　Ｇ．（１９７９）「炎症過程におけるヒトα２ＨＳ糖タンパク質の血清濃度：α２ＨＳ糖タンパク質は陰性急性期反応物質であることの証明」Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｉｎｖｅｓｔ，６４，１１１８．
３６．　Ａｋｈｏｕｎｄｉ　Ｃ．，Ａｍｉｏｔ　Ｍ．，Ａｕｂｅｒｇｅｒ　Ｐ．，Ｌｅ　Ｃａｍ　Ａ．およびＲｏｓｓｉ　Ｂ．（１９９４）「インスリンおよびインターロイキン１はｐｐ６３（肝臓癌株における急性期リンタンパク質）を個別に制御する」Ｊ　Ｂｉｏｌ　Ｃｈｅｍ，２６９，１５９２５．
３７．　Ｄｅｍｅｔｒｉｏｕ　Ｍ．，Ｂｉｎｋｅｒｔ　Ｃ．，Ｓｕｋｈｕ　Ｂ．，Ｔｅｎｅｎｂａｕｍ　Ｈ．Ｃ．およびＤｅｎｎｉｓ　Ｊ．Ｗ．（１９９６）「フェチュイン／α２−ＨＳ糖タンパク質は、形質転換成長因子−βＩＩ型受容体模倣物およびサイトカインアンタゴニストである」Ｊ　Ｂｉｏｌ　Ｃｈｅｍ，２７１，１２７５５．
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３９．　Ｋｕｐｋｅｒ　Ｗ．，Ｓｃｈｕｌｔｚｅ−Ｍｏｓｇａｕ　Ａ．およびＤｉｅｄｒｉｃｈ　Ｋ．（１９９８）「子宮内膜症の女性の腹腔環境のパラクリン変換」Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ　Ｕｐｄａｔｅ，４，７１９．
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４１．　Ｍａｓｓｏｖａ　Ｉ．，Ｋｏｔｒａ　Ｌ．Ｐ．，Ｆｒｉｄｍａｎ　Ｒ．およびＭｏｂａｓｈｅｒｙ　Ｓ．（１９９８）「基質メタロプロテイナーゼ：構造、進化、および多様化」Ｆａｓａｂ　Ｊ，１２，１０７５．
４２．　Ｓｏｌｏｍｏｎ　Ｊ．Ｃ．，Ｓｔｏｌｌ　Ｍ．Ｓ．，Ｐｅｎｆｏｌｄ　Ｐ．，Ａｂｂｏｔｔ　Ｗ．Ｍ．，Ｃｈｉｌｄｓ　Ｒ．Ａ．，Ｈａｎｆｌａｎｄ　Ｐ．およびＦｅｉｚｉ　Ｔ．（１９９１）「固定化糖脂質および新糖脂質を使用した可溶性で１４，０００ダルトンのウシ心筋レクチンの結合特異性についての研究」Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ　Ｒｅｓ，２１３，２９３．
４３．　Ａｈｍｅｄ　Ｈ．，Ａｌｌｅｎ　Ｈ．Ｊ．，Ｓｈａｒｍａ　Ａ．およびＭａｔｔａ　Ｋ．Ｌ．（１９９０）「ヒト脾臓ガラプチン：炭水化物結合特異性および結合部位の特徴づけ」Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２９，５３１５．
４４．　Ｂａｒｏｎｄｅｓ　Ｓ．Ｈ．，Ｃｏｏｐｅｒ　Ｄ．Ｎ．，Ｇｉｔｔ　Ｍ．Ａ．およびＬｅｆｆｌｅｒ　Ｈ．（１９９４）「ガレクチン　動物レクチンの一大ファミリーの構造および機能」Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６９，２０８０７．
４５．　Ｋｏｐｉｔｚ　Ｊ．，ｖｏｎ　Ｒｅｉｔｚｅｎｓｔｅｉｎ　Ｃ．，Ｂｕｒｃｈｅｒｔ　Ｍ．，Ｃａｎｔｚ　Ｍ．およびＧａｂｉｉｕｓ　Ｈ．Ｊ．（１９９８）「ガレクチン１はガングリオシドＧＭ１の主要な受容体である（培養物中のヒト神経芽細胞腫に対する細胞表面ガングリオシドシアリダーゼの成長調節活性の生成物）」Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２７３，１１２０５．
４６．Ｏｃｈｉｅｎｇ　Ｊ．，Ｇｒｅｅｎ　Ｂ．，Ｅｖａｎｓ　Ｓ．，Ｊａｍｅｓ　Ｏ．およびＷａｒｆｉｅｌｄ　Ｐ．（１９９８）「基質メタロプロテイナーゼによるガレクチン３の生物学的機能の調整」Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ　ｅｔ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ　Ａｃｔａ，１３７９，９７．
４７．　Ｏｃｈｉｅｎｇ　Ｊ．，Ｆｒｉｄｍａｎ　Ｒ．，Ｎａｎｇｉａ−Ｍａｋｋｅｒ　Ｐ．，Ｋｌｅｉｎｅｒ　Ｄ．Ｅ．，Ｌｉｏｔｔａ　Ｌ．Ａ．，Ｓｔｅｔｌｅｒ−Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ　Ｗ．Ｇ．およびＲａｚ　Ａ．（１９９４）「ガレクチン３は、ヒト基質メタロプロテイナーゼ２および９の新規の基質である」Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３３，１４１０９．
４８．　Ｂｒｕｎｅｒ　Ｋ．Ｌ．，Ｍａｔｒｉｓｉａｎ　Ｌ．Ｍ．，Ｒｏｄｇｅｒｓ　Ｗ．Ｈ．，Ｇｏｒｓｔｅｉｎ　Ｆ．およびＯｓｔｅｅｎ　Ｋ．Ｇ．（１９９７）「基質メタロプロテイナーゼの抑制は、ヌードマウスにおいてヒト子宮内膜症による異所性損傷の確立を阻害する」Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｉｎｖｅｓｔ，９９，２８５１．
４９．　Ｃｈｏｅ　Ｙ．Ｓ．，Ｓｈｉｍ　Ｃ．，Ｃｈｏｉ　Ｄ．，Ｌｅｅ　Ｃ．Ｓ．，Ｌｅｅ　Ｋ．Ｋ．およびＫｉｍ　Ｋ．（１９９７）「マウス尿中のガレクチン１　ｍＲＮＡの発現は、胚盤胞移植中は卵巣ステロイドの調節下にある」Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　＆　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，４８，２６１．
５０．　Ｖａｎ　ｄｅｎ　Ｂｒｕｌｅ　Ｆ．Ａ．，Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ　Ｐ．Ｌ．，Ｂｕｉｃｕ　Ｃ．，Ｌｉｕ　Ｆ．Ｔ．，Ｊａｃｋｅｒｓ　Ｐ．，Ｌａｍｂｏｔｔｅ　Ｒ．およびＣａｓｔｒｏｎｏｖｏ　Ｖ．（１９９７）「妊娠第１期のヒト胚形成間のガレクチン１およびガレクチン３発現の相違」Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ　Ｄｙｎａｍｉｃｓ，２０９，３９９．
５１．　Ｐｈｉｌｌｉｐｓ　Ｂ．，Ｋｎｉｓｌｅｙ　Ｋ．，Ｗｅｉｔｌａｕｆ　Ｋ．Ｄ．，Ｄｏｒｓｅｔｔ　Ｊ．，Ｌｅｅ　Ｖ．およびＷｅｉｔｌａｕｆ　Ｈ．（１９９６）「妊娠マウスの生殖管中の２つのβガラクトシド結合レクチン発現の相違」Ｂｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，５５，５４８．
５２．　Ｂｙｒｊａｌｓｅｎ　Ｉ．，Ｌａｒｓｅｎ　Ｐ．Ｍ．，Ｆｅｙ　Ｓ．Ｊ．およびＣｈｒｉｓｔｉａｎｓｅｎ　Ｃ．（１９９５）「正常な月経周期中の発現が周期的に変化したヒト子宮内膜タンパク質：タンパク質配列解析による特性決定」Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ，１０，２７６０．
５３．　Ｏｄｕｋｏｙａ　Ｏ．Ａ．，Ｂａｎｓａｌ　Ａ．，Ｗｉｌｓｏｎ　Ａ．Ｐ．，Ｗｅｅｔｍａｎ　Ａ．Ｐ．およびＣｏｏｋｅ　Ｉ．Ｄ．（１９９５）「子宮内膜症患者の血清−可溶性ＣＤ２３およびダナゾールおよび酢酸ロイプロリド蓄積注射による治療効果」Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ，１０，９４２．
５４．　Ｏｄｕｋｏｙａ　Ｏ．，Ｂａｎｓａｌ　Ａ．およびＣｏｏｋｅ　Ｉ．（１９９６）「子宮内膜症患者の血清子宮内膜ＩｇＧ抗体および可溶性ＣＤ２３濃度」Ａｃｔａ　Ｏｂｓｔｅｔ　Ｇｙｎｅｃｏｌ　Ｓｃａｎｄ，７５，９２７．
５５．　Ｏｄｕｋｏｙａ　Ｏ．Ａ．，Ｂａｎｓａｌ　Ａ．，Ｗｉｌｓｏｎ　Ｐ．，Ｌｉｍ　Ｋ．，Ｗｅｅｔｍａｎ　Ａ．Ｐ．およびＣｏｏｋｅ　Ｉ．Ｄ．（１９９６）「子宮内膜症患者の腹腔内貯留液中の可溶性ＣＤ２３タンパク質」Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ，１１，２０１８．
５６．　Ｇａｎｇｕｌｙ　Ｓ．，Ｓａｒｋａｒ　Ｄ．およびＧｈｏｓｈ　Ｊ．Ｊ．（１９７６）「異なる子宮不全条件下でのヒト子宮内膜組織、子宮液、および血漿中のシアル酸およびシアリダーゼ活性」Ａｃｔａ　Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ（Ｃｏｐｅｎｈ），８１，５７４．
５７．　Ｎｅｌｓｏｎ　Ｊ．Ｄ．，Ｊａｔｏ−Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ　Ｊ．Ｊ．，Ｌａｂｒｉｅ　Ｆ．およびＭｏｏｋｅｒｊｅａ　Ｓ．（１９７７）「ラットの発情周期中の子宮内膜におけるグリコシル転移酵素およびＵＤＰ−ガラクトースピロホスファターゼ活性」Ｊ　Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ，７３，５３．
５８．　Ｚｈｕ　Ｚ．，Ｄｅｎｇ　Ｈ．，Ｆｅｎｄｅｒｓｏｎ　Ｂ．Ａ．，Ｎｕｄｅｌｍａｎ　Ｅ．Ｄ．およびＴｓｕｉ　Ｚ．（１９９０）「月経周期、妊娠、および加齢におけるヒト子宮筋層および子宮内膜のスフィンゴ糖脂質ならびにその変化」Ｊ　Ｒｅｐｒｏｄ　Ｆｅｒｔｉｌ，８８，７１．
５９．　Ｔａｋａｍａｔｓｕ　Ｋ．，Ｋａｍｅｉ　Ｋ．，Ｋｕｂｏｓｈｉｒｏ　Ｋ．，Ｋｉｇｕｃｈｉ　Ｋ．，Ｎｏｚａｗａ　Ｓ．およびＩｗａｍｏｒｉ　Ｍ．（１９９３）「ヒト子宮頸上皮および子宮内皮における黄体期に特徴的なＩ３ＳＯ３−ＧａｌＣｅｒの誘導およびファローピウス管の異なる領域における卵胞期に特徴的なガングリオシド由来の負電荷勾配の形成」Ｂｉｏｃｈｉｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ａｃｔａ，１１７０，２３２．
６０．　Ｒａｖｎ　Ｖ．およびＪｅｎｓｅｎ　Ｈ．（１９８８）「ヒト子宮内膜におけるトムゼン−フリーデンライヒ関連抗原：モノクローナル抗体４９Ｈ．８を使用した免疫組織化学研究、予備試験」Ａｐｍｉｓ，９６，５５２．
６１．　Ｒａｖｎ　Ｖ．，Ｔｅｇｌｂｊａｅｒｇ　Ｃ．Ｓ．，Ｍａｎｄｅｌ　Ｕ．およびＤａｂｅｌｓｔｅｅｎ　Ｅ．（１９９２）「正常なヒト子宮内膜周期における２型鎖組織−血液群抗原の分布」Ｃｅｌｌ　Ｔｉｓｓｕｅ　Ｒｅｓ，２７０，４２５．
６２．　Ｃｒａｍｅｒ　Ｄ．Ｗ．，Ｈｏｒｎｓｔｅｉｎ　Ｍ．Ｄ．，Ｎｇ　Ｗ．Ｇ．およびＢａｒｂｉｅｒｉ　Ｒ．Ｌ．（１９９６）「ガラクトース−１リン酸ウリジル転移酵素（ＧＡＬＴ）のＮ３１４Ｄ変異に関連する子宮内膜症」Ｍｏｌ　Ｈｕｍ　Ｒｅｐｒｏｄ，２，１４９．
６３．　Ｔｏ　Ｗ．Ｙ．，Ｌｅｕｎｇ　Ｊ．Ｃ．およびＬａｉ　Ｋ．Ｎ．（１９９５）「ジャカリン結合タンパク質としてのヒト血清α２−ＨＳ糖タンパク質の同定および性質決定」Ｂｉｏｃｈｉｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ａｃｔａ，１２４９，５８．
６４．　Ｋｉｊｉｍｏｔｏ−Ｏｃｈｉａｉ　Ｓ．およびＵｅｄｅ　Ｔ．（１９９５）「ＣＤ２３分子は、ＥＢＶ形質転換ヒトＢ細胞株の細胞凝集におけるガラクトース結合レクチンとして作用する」Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，５，４４３．
６５．　Ｋｉｊｉｍｏｔｏ−Ｏｃｈｉａｉ　Ｓ．，Ｈｏｒｉｍｏｔｏ　Ｅ．およびＵｅｄｅ　Ｔ．（１９９４）「ＣＤ２３分子と糖タンパク質のガラクトース残基との間の相互作用の証明」Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｌｅｔｔｅｒｓ，４０，４９．
６６．　Ｓａｋａｉ　Ｈ．，Ｙａｍａｇｉｓｈｉ　Ｆ．，Ｍｉｕｒａ　Ｍ．，Ｈａｔａ　Ｋ．，Ｋｏｙａｍａ　Ｉ．，Ｓａｋａｇｉｓｈｉ　Ｙ．およびＫｏｍｏｄａ　Ｔ．（１９９４）「レクチン連続アフィニティークロマトグラフィーによって同定されたヒト尿絨毛性ゴナドトロピン糖鎖の不均一性：良性疾患と悪性疾患との間の相違」Ｔｕｍｏｕｒ　Ｂｉｏｌ，１５，２３０．
【図面の簡単な説明】
【図１】
図１ａは子宮内膜症患者由来のホモジナイズした正常子宮内膜のＭｏｎｏＱ陰イオン交換クロマトグラフィーを示す溶出プロフィールである。ホモジネートをプロテインＧカラムを通過させてＩｇＧを除去後、ＭｏｎｏＱカラムに添加した。塩勾配開始前の最初のピークは、複数の１ｍｌのホモジネートのロードを示す。溶出条件：５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ（ｐＨ８．０）。同一の緩衝液中で、０〜０．５ＮａＣｌの線形勾配（１Ｍ　ＮａＣｌを終点とする）で溶出を行い、これは破線で示した。ゲルローディングに対応する画分（図１ｂ〜ｄ）をグラフの上部に示す。
図１ｂは、図１ａに示される選択されたカラム画分の５〜１５％勾配ゲルを還元条件下で泳動しＳＹＰＲＯオレンジで染色した結果を示す図である。
図１ｃはプールした子宮内膜症の血清中に存在するＩｇＧによって認識されるホモジネート画分中のタンパク質を示すオートラジオグラフィーを示す図である。プールした正常な男性血清を使用した同一のブロットの剥離および再探索によっても、同一のバンドとの反応性を示さなかった。ＩｇＧ結合活性は対照血清を使用した画分２４中で検出されたが、子宮内膜症の血清を使用した場合は類似の結合は認められなかった。４５．２ｋＤａの分子量マーカーである炭酸脱水酵素ＩＩは反応性を示す。この同一の反応性は、対照血清では認められなかった。
図１ｄは子宮内膜症の血清のＩｇＡ結合活性を示すオートラジオグラフィーを示す図である。一次血清不在での抗ＩｇＡ　ａ鎖特異的抗体でのブロットの探索により、これらの画分中にＩｇＡが存在することが示された。
【図２】
図２は、還元およびアルキル化条件下、５〜１５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で流した腹水（Ｗ１５１７）のウェスタンブロットを示す図である。次いで、ウェスタンブロットを、ヒツジ抗ヒトα２−ＨＳＧ、これに続いてＨＲＰ−ヤギ抗ヒツジ（レーンａ）で、または子宮内膜症の血清を１：１００希釈したもので、これに続いてＨＲＰ−ヤギＩｇＧ　ｇ鎖特異的抗体（１：１０００希釈）で、のいずれかでインキュベートした。レーンａのα２−ＨＳＧ、およびレーンｂの同分子量のバンドがはっきりと認められる。
【図３】
図３ａはα２−ＨＳＧの部分精製画分（ＭｏｎｏＱカラム、ｐＨ８．０）を示すＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルである。ＳＹＰＲＯオレンジでの染色後に１４本のタンパク質バンドが認められる。
図３ｂはα２−ＨＳＧの部分精製画分を泳動し、子宮内膜症血清ＨＲＰヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体で探索した、ゲルのウェスタンブロットである。５本のタンパク質バンドが検出された。
図３ｃは、タンパク質画分を電気泳動前にノイラミニダーゼで処理したこと以外は図３ｂに記載通りのウェスタンブロットである。タンパク質全体に結合する抗体が、明白に減少している。
図３ｄは、α２−ＨＳＧ画分を電気泳動前にジャカリンアガロースで予備吸着させること以外は図３ｂに記載通りのウェスタンブロットである。抗体結合が全部除去されている。
図３ｅは、分子量マーカーの存在下での、ミオシンおよび炭酸脱水酵素ＩＩとの自己反応性を示す。
【図４】
図４はα２−ＨＳＧの部分精製画分を泳動し、子宮内膜症血清ＨＲＰヤギ抗ヒトＩｇＧ抗体で探索したゲルのウェスタンブロットを示し、これはα２−ＨＳＧの脱グリコシル化が自己抗体結合を消失させることを表している。シアル酸の末端の切断にはノイラミニダーゼを使用した（レーンＢ、Ｅ、Ｈ）。次いで、ＥｎｄｏＦ／ＰＮＧアーゼ消化を使用して、炭水化物を完全に除去した（レーンＣ、Ｆ、Ｈ）。シアル酸および全炭水化物の除去は、ヤギ抗α２−ＨＳＧとの反応性によって示される分子量の減少によって確認した（レーンＡ〜Ｃ）。レーンＡ、Ｄ、およびＧは未処理であった。ノイラミニダーゼでの末端シアル酸の除去により、患者の血清との反応性が減少した（レーンＤ対Ｅ）。この画分の残存する反応性は、未消化α２−ＨＳＧと同一の分子量であり、これは、自己抗体結合が末端シアル酸の存在に依存することを示す。ノイラミニダーゼ処理後のＥｎｄｏＦ／ＰＮＧアーゼ消化による炭水化物の完全な除去により、反応性が完全に消失した（レーンＦ）。プールした男性対照血清の使用では、同等の反応性は認められなかった（レーンＧ〜Ｉ）。
【図５】
図５ａは、ウシフェチュインの脱シアリル化が子宮内膜症の血清との反応性を増加させることを表している。ＥＬＩＳＡで測定したところ、ノイラミニダーゼでの処理後に、わずかだが有意な結合の増加が認められる。
図５ｂはノイラミニダーゼ処理後のフェチュインでの分子量減少を示すＳＹＰＲＯオレンジ染色ゲルを示す。レーンＡは未処理である；レーンＢはノイラミニダーゼ処理である。
【図６】
図６はどちらも、７２ｋＤａ抗原および炭酸脱水酵素ＩＩへの結合がα２−ＨＳＧの存在下で阻害されたことを表す、グラフおよびラジオオートグラフィーである。
【図７】
図７は還元およびアルキル化泳動した５〜１５％勾配ゲルからニトロセルロースに転写した後の、精製タンパク質のウェスタンブロット分析である。精製ヘモペキシン（レーンＡ）、α２−ＨＳＧ（レーンＢ）、および血清ＩｇＡ１（レーンＣ）は、子宮内膜症血清中のＩｇＧ抗体によって認識される自己抗原である。
【図１】
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【図３】
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【図５】
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【図６】
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【国際公開パンフレット】
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【国際調査報告】
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