(57)【要約】本発明は、配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１もしくは配列番号２０の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含み、前記ヌクレオチド配列は、熱不安定性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、または相補的である核酸分子、ならびに（ａ）配列番号２のアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分（ｂ）配列番号２のアミノ酸配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分、を含む遺伝子組換えの熱不安定性アルカリホスファターゼに関し、さらにそれらを製造する方法に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１もしくは配列番号２０の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含み、
前記ヌクレオチド配列は、熱不安定性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である核酸分子。
【請求項２】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列と、少なくとも７５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む請求項１に記載の核酸分子。
【請求項３】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列と、少なくとも８５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む請求項１または２に記載の核酸分子。
【請求項４】
熱不安定性アルカリホスファターゼ（このものは、配列番号２のアミノ酸配列を含むか、またはそれと少なくとも５０％が同一である該アミノ酸配列の変異体を含む）をコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である単離核酸分子。
【請求項５】
前記アルカリホスファターゼが、配列番号２のアミノ酸配列と、少なくとも７０％が同一であるアミノ酸配列を有する請求項３に記載の核酸分子。
【請求項６】
前記アルカリホスファターゼは、配列番号２のアミノ酸配列と、少なくとも８０％が同一であるアミノ酸配列を有する請求項３に記載の核酸分子。
【請求項７】
前記アルカリホスファターゼがＰａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓアルカリホスファターゼである請求項１〜６のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項８】
作動的にプロモーター配列へ結合した請求項１〜７のいずれかに記載の核酸分子を含む遺伝子構築体。
【請求項９】
請求項１〜７のいずれかに記載の核酸分子を含み、宿主細胞中で増殖可能である組換え発現ベクター。
【請求項１０】
前記ベクターが、プラスミドベクターもしくはウイルスベクターである請求項９に記載の組換え発現ベクター。
【請求項１１】
請求項９〜１１のいずれかに記載の構築体もしくはベクターによりトランスフォームされた細胞。
【請求項１２】
前記細胞は原核細胞である請求項１１に記載の細胞。
【請求項１３】
前記細胞は真核細胞培養物の一部である請求項１１に記載の細胞。
【請求項１４】
請求項１〜３のいずれかで定義されたヌクレオチド配列を含む核酸分子を有する組換え細胞または組換え生物。
【請求項１５】
以下の（ａ）もしくは（ｂ）を含む、遺伝子組換え熱不安定性アルカリホスファターゼ：
（ａ）配列番号２のアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分
（ｂ）配列番号２のアミノ酸配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分。
【請求項１６】
配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を有する、請求項１５に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【請求項１７】
前記組換えアルカリホスファターゼがＰａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓアルカリホスファターゼである請求項１５または１６に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【請求項１８】
熱不安定性アルカリホスファターゼを発現可能であり、配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む組換え細胞または組換え生物。
【請求項１９】
熱不安定性アルカリホスファターゼを発現可能であり、配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む組換え細胞または組換え生物。
【請求項２０】
請求項９に記載の発現ベクターで宿主細胞をトランスフォームし、
培地で該細胞を維持し、
該細胞により発現された熱不安定性アルカリホスファターゼを単離することを含む、熱不安定性アルカリホスファターゼの製造方法。
【請求項２１】
配列番号１５のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１５の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含み、
前記ヌクレオチド配列は、熱不安定性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である核酸分子。
【請求項２２】
以下の（ａ）もしくは（ｂ）を含む、組換え熱不安定性アルカリホスファターゼ：
（ａ）配列番号１６のアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分
（ｂ）配列番号１６のアミノ酸配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分。
【請求項２３】
配列番号１６のアミノ酸配列または配列番号１６の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を有する、請求項２２に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【請求項２４】
請求項に記載の発現ベクターの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の技術分野】
本発明は、酵素アルカリホスファターゼに関し、より具体的には、ホッコクアカエビ（Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓ）から誘導されるこの酵素およびそれをコードする核酸分子に関する。
アルカリホスファターゼ（Ｅ．Ｃ．３．１．３．１）、別名としてアルカリホスホモノエステラーゼ、ホスホモノエステラーゼまたはグリセロホスファターゼを持ち、アルカリ条件下で酵素至適活性を有するオルソリン酸モノエステルホスホヒドロラーゼである。アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）基質の例としては、ＤＮＡ、ＲＮＡ、リボ−およびデオキシリボヌクレオシド３リン酸がある。その加水分解は、アルコールおよびオルソリン酸を生成する。換言すれば、ＡＬＰは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ｒＮＴＰおよび ｄＮＴＰを脱リン酸する。種々のＡＬＰによるタン白質の脱リン酸（ｄｅｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｔｉｏｎ）もまた、報告されている。ＡＬＰは、自然界で広範囲に存在し、細菌から人間にわたる生命体に発見されている。複雑な生物は、通常、組織特異的および非特異的なＡＬＰを含有している。そのポリペプチドは、大きさにおいて１５から１７０ｋＤａで相違している。これらのタン白質のうち数種は、細胞膜に結合されまたは「固定（ａｎｃｈｏｒ）」されている。最も一般的には、該酵素は、Ｍｇ２＋またはＺｎ２＋などの２価金属カチオンへの要求性を有している。
【０００２】
分子生物学ではＡＬＰの現在の利用は、ＤＮＡ分析または調製における３つの主要な適用に焦点が当てられているが、しかしこれらに限定されているものではない：
１） 制限酵素による消化後、クローニングベクターの自己連結を最小化するため、ベクターＤＮＡの脱リン酸であって、これにより好都合よくインサート（ｉｎｓｅｒｔ）をベクターに連結し、組換え体構造物を構築すること。
２） プライマーをｄＮＴＰに加水分解する一本鎖エクソヌクレアーゼを併用するＰＣＲ増幅後のｄＮＴＰの脱リン酸であって、ＰＣＲ産物の直接的ＤＮＡ配列決定の前に、さらに不要物を除く必要性を省くこと。
３） ［Ｙ−３２Ｐ］ＮＴＰおよびＴ４ポリヌクレオチドキナーゼを用いる３２Ｐによる次のラベリングのためにＤＮＡ末端の脱リン酸。記載されたＡＬＰ酵素反応は、ＤＮＡ分析プロセスにおける中間ステップである。当業界で公知である他の重要な応用として、酵素結合免疫吸着剤アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、遺伝子融合または遺伝子送達システム、あるいはハイブリダイゼーションプローブとして使用されるオリゴヌクレオチドへの接合などにおいて、酵素活性がリポーターとして使用されることが挙げられる。
【０００３】
主な３ＡＬＰが、商業的に入手できる製品に使用されている；
１）　仔ウシ小腸アルカリホスファターゼ（ＣＩＡＰ）
ｉｉ） 北極小エビ、Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓからのアルカリホスファターゼ（ＳＡＰ）
ｉｉｉ）細菌性アルカリホスファターゼ（ＢＡＰ）。
動物ＣＩＡＰおよび ＳＡＰ酵素は、５０ ユニット／ｍｇ ＢＡＰタン白質と比較して、２０００−４０００ ユニット／ｍｇタン白質の類似した比活性を有しており、このことは前者の２酵素を効率的な酵素としてより魅力的なものとする。ＳＡＰ酵素は、以下に論じるように中程度の熱で不活性化することから、諸方法において後のステップに先行してあらかじめ酵素活性の除去を必要とするいくつかの応用に好適である。
【０００４】
遺伝子組換えの温度感受性ＢＡＰ 変異体が、その技術を記載する詳細が与えられることなく、報告されていた［Ｓｈａｎｄｉｌｙａ， Ｈ． および Ｃｈａｔｔｅｒｊｅｅ， Ｄ． Ｋ．， １９９５． ＤＮＡを脱リン酸するための組換え熱感受性アルカリホスファターゼ，Ｆｏｃｕｓ， １７ （３）：９３−９５］。この変異体酵素（ＴｓＡＰ）は、ライフテクノロジー（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）社により販売され、これはＥＤＴＡのみの存在下に、熱（６５℃で１５分間）によって、不活性化（９５％以上）される。該変異体および野生型酵素の推奨反応温度も、また６５℃である。ＴｓＡＰは、野生型ＢＡＰよりも少なくとも４０倍より高い活性を有している。高い比活性に関しては、ＴｓＡＰは、ＣＩＡＰおよびＳＡＰなどといった他のＡＬＰとほぼ匹敵している。
【０００５】
好冷性の微生物からの２種の熱不安定 ＡＬＰが精製され、同定されている［ｄｅ Ｐｒａｄａ， Ｐ．およびＢｒｅｎｃｈｌｅｙ， Ｊ． Ｅ．， １９９７，　好冷性のアルスロバクター（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ）分離菌からの２種の細胞外アルカリホスファターゼの精製および同定。Ａｐｐｌ． Ｅｎｖ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．， ６３ （７）：２９２８−２９３１］。基質特異性および速度論的特性に関して相違する酵素は、異なる熱不安定性を示し、そのうち最も不安定なものは、ＳＡＰ 酵素不安定性に類似していた。ユニット／ｍｇタン白質単位の比活性および一次構造は何ら報告されなかった。
【０００６】
大西洋のタラから低温適応性ＡＬＰが分離され、同定された［Ａｓｇｅｉｒｓｓｏｎ， Ｂ．， Ｈａｒｔｅｍｉｎｋ， Ｒ．およびＣｈｌｅｂｏｗｓｋｉ， Ｊ． Ｆ．， １９９５， 大西洋タラ（Ｇａｄｕｓ ｍｏｒｈｕａ）からのアルカリホスファターゼ。低温への適応を示す速度論的および構造的特性。Ｃｏｍｐ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｐｈｙｓｉｏｌ．， １１０Ｂ（２）： ３１５−３２９］。酵素はＳＡＰと同様の熱安定性を示した。タン白質／遺伝子の一次構造オは何ら提供されていなかった。
【０００７】
マスからのＡＬＰアイソザイムに関する研究 ［Ｗｈｉｔｍｏｒｅ， Ｄ． Ｈ．およびＧｏｌｄｂｅｒｇ， Ｅ．， １９７２， マス腸内アルカリホスファターゼＩＩ。インビトロおよびインビボにおける酵素活性への温度効果。Ｊ． Ｅｘｐ． Ｚｏｏｌ．， １８２： ５９−６８］ は、環境の温度がアイソザイムパターンに影響すること、およびあるイソ型は熱不安的性であることを示した。
【０００８】
台湾外側の暖水域からの小エビ（ｓｈｒｉｍｐ）は、いくつかのＡＬＰｓを含み ［Ｌｅｅ， Ａ．−Ｃ．およびＣｈｕａｎｇ， Ｎ．−Ｎ．， １９９１， ウシエビＰｅｎａｅｕｓ ｍｏｎｏｄｏｎ（Ｃｒｕｓｔａｃｅａ：Ｄｅｐａｃｏｄａ）からの肝膵臓（ｈｅｐａｔｏｐａｎｃｒｅａｓ）におけるアルカリホスファターゼの異なる分子形態の同定。Ｃｏｍｐ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｐｈｙｓｉｏｌ．， ９９Ｂ （４）： ８４５−８５０］、それらの酵素は熱安定であることが結論づけられていた。一次構造は提供されなかった。
【０００９】
北極小エビ、ホッコクアカエビ（Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓ）肝膵臓からのアルカリホスファターゼ活性が、小エビ産業からの処理作業排水中に含まれていることを見出され［Ｏｌｓｅｎ， Ｒ． Ｌ．， Ｊｏｈａｎｓｅｎ， Ａ．およびＭｙｒｎｅｓ， Ｂ．， １９９０， エビ廃棄物からの酵素回収。Ｐｒｏｃｅｓｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２５： ６７−６８］、およびその酵素は、後に肝膵臓から精製された［Ｏｌｓｅｎ， Ｒ． Ｌ．， Ｏｎｅｒｂｏ， Ｋ．およびＭｙｒｎｅｓ， Ｂ．， １９９１， 小エビ肝膵臓からのアルカリホスファターゼ： 触媒活性のあるサブユニットを備えた二量体酵素。Ｃｏｍｐ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｐｈｙｓｉｏｌ． ９９Ｂ （４）： ７５５−７６１］。この精製タン白質は、６５ ｋＤａ （各サブユニット）の見かけの分子量を有し、しかも触媒活性のあるサブユニットを備えた二量体酵素であったが、これに対し、大抵の他の動物ＡＬＰは、活性のために二量体化を要求する。上記の報告によれば、ＳＡＰは３．７の等電点を有している。小エビ酵素は、制限エンドヌクレアーゼによって生成する任意のＤＮＡ鎖末端（５’および３’オーバーハングまたは平滑末端）から、末端５’リン酸を効率的に除去する。もっとも５’突出末端は、平滑末端または５’後退末端よりもより反応的である。
【００１０】
ＣＩＡＰと比較して、ＳＡＰ酵素は、活性にはより低温側に僅かなシフトを有するが、真に低温活性があるとは考えられない。約４０℃（ＣＩＡＰに対して４５℃）での最大酵素活性について、１０℃または５０℃でほぼ４０％もの活性が残っているが、これと比較してＣＩＡＰについてはそれぞれ１０％および９０％である。最大活性の温度は、４０℃に近いが、ＳＡＰ酵素は、３７℃を越えて１５分間、プレインキュベートすると活性を失い始める。６５℃でのプレインキュベーション後、ＳＡＰ活性は９５％以上低下し、その活性は、７０℃でのプレインキュべーション後は検出されない。対照的に、同じ熱処理の後、ＣＩＡＰはその活性の４０％および２０％が残っている。
【００１１】
したがって、その商業的競争相手に関して、ＳＡＰ酵素は熱不安定かつ低温活性であり、したがって多段階の実験室プロトコルでの利用にＳＡＰ酵素をとりわけ好適なものとする。該プロトコルでは、簡単な熱処理工程で該酵素を失活させ、その先の方法ステップでは何ら役割を果たさないようになる。
ＢＩＯＴＥＣ ＡＳＡ（ Ｔｒｏｍｓｏ， ノルウェー）は、小エビ産業排水から商業的にＳＡＰ酵素を製造している。トロール船上で、集められた新鮮な小エビ（ｓｈｒｉｍｐ）は、大きなブロックに冷凍される。陸揚げされて、それらの小エビは、注意深く再循環される冷水で解凍される。約１０００ ｌの水が、４０００ｋｇの小エビに使用される。冷凍および解凍過程の間に、小エビ肝膵臓は破壊され、その内容物が水中に放出される。ついで、この排水は濃縮され、さらにいくつかのクロマトグラフィー工程が、ＳＡＰ酵素の精製のために使用される。
【００１２】
製造業者は、ＳＡＰを世界市場に、ＵＳＢ、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ− Ｍａｎｎｈｅｉｍ または Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈなどの著名な会社を通じて供給する。
その高い比活性、ＤＮＡ末端についてのその「汎用性」、ならびにその相対的な温度不安定性のために、ＳＡＰは、連結反応に先立つクローニングベクターの脱リン酸に、ならびにＤＮＡ配列決定に先立つＰＣＲ増幅産物の混合物処理に、米国特許第５，７４１，６７６号および 第５，７５６，２８５号に記載されているように、高い頻度で使用される。
【００１３】
ＳＡＰの現在の生産は、生産能率にも影響を及ぼす排水の質の変化に苦慮している。二つの要因がこの変動を惹き起こしている；
ｉ）小エビにおける酵素生産の自然な季節変動；および
ｉｉ）冷凍前または冷凍中の小エビ資源のハンドリング、および解凍過程の時またはその後の小エビまたは水のハンドリング。
【００１４】
排水の将来的な利用についても懸念がある；
ｉ）天然資源として、小エビが常に利用できるということは保証されない、および
ｉｉ）小エビ産業が、現在、可能な新しい小エビの冷凍法、すなわち単一の冷凍を調査しており、そこからの排水がＳＡＰといった少量の酵素を含むのか、試験が行われている。
【００１５】
これらの実用的な問題に加えて、マーケットには遺伝子組換えＳＡＰ製品への需要がある。遺伝子組換え製品が頻繁に分子生物学の諸技術において好まれているためである。特に、製品の純度が、たとえばＤＮＡに基づく治療の提示または法廷科学において、問題となる。ＳＡＰは、極めて有利な酵素的および 物理化学特性を有しており、有用となる実験室プロトコルには好適な酵素である。このため、均一かつ純粋な態様で製造される、ＳＡＰの合成または組換え体の供給源に対し、顕著な必要性がある。しかしながら、ＳＡＰのＤＮＡまたは アミノ酸配列は、未だに解明されていない。
【００１６】
遺伝子を分離するため、続いてクローンを作り組換え体ＳＡＰを製造することを目的として、いくつかの計画が、精製タン白質のＮ末端配列を得るために企てられている。これまでこれらの計画はなにも成功していない。配列解析からは、それぞれ特定のＮ−末端位置で複数（４以上）の代替アミノ酸が明らかとなっている。したがって、ＳＡＰ遺伝子を探すために、高度に縮重したオリゴヌクレオチドプローブをもってしても、利用に応えるタン白質の配列情報が得られていない。見かけ上均一である酵素標品における、非相同的なＮ末端の理由は、想像の域でしかない。ＳＡＰイソ型は、おそらく異なる遺伝子により、別個のスプライシングにより、またはタン白質の可変的な翻訳後修飾によって生成されるかも知れないし、あるいはＳＡＰが分子量の検出できるほどの減少を伴うことなくプロテアーゼによってＮ末端で攻撃されることも可能である。
【００１７】
また、本発明者らによって、北極小エビのホッコクアカエビの肝膵臓からのアルカリホスファターゼと、すでに配列決定された種からのアルカリホスファターゼとの間における限定的な相同性は、ホッコクアカエビからのアルカリホスファターゼをコードする核酸配列の定式的な分離を妨げていることも見出された。
ＳＡＰの一貫したコンセンサスアミノ酸配列を得ることは現実には困難であるにもかかわらず、本発明者らは、驚くべきことにホッコクアカエビ ｃＤＮＡライブラリーからＳＡＰをコードするｃＤＮＡを単離することができ、これによりＳＡＰをコードする配列を解明することができた。本発明は、ＳＡＰ ｃＤＮＡを提供すること、ならびに該酵素の代替源を提供する際のその使用に関する。
【００１８】
配列番号１（ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１）の配列は、５’末端での小部分を引いた酵素の全長ｃＤＮＡ配列に相当する。それにもかかわらず、この配列を含む核酸分子の発現産物は、天然（ｎａｔｉｖｅ）酵素の活性のすべてまたは少なくとも意義を有する部分（すなわち、少なくとも６０％、７０％、８０％または通常少なくとも９０％）を有すると信じられている。この配列から消失しているＮ末端のいくつかのアミノ酸は、基質または補欠因子への結合部位を含んでいない。
【００１９】
以下、本明細書では、ＳＡＰ または熱不安定アルカリホスファターゼの言及は、自然界にあるＡＬＰよりも小さいが、同一または実質的に同一活性を有する分子に及ぶものとする。有利なことには、本発明に係る発現産物および他の遺伝子組換えＡＬＰ酵素は、単離された天然酵素よりも大きい活性を有している。好適には、比活性は、ＳＡＰについて公表された数値の１９００Ｕｍｇ−１よりも高い。酵素活性に好適な試験は、本明細書に記載されている［Ｏｌｓｅｎら］。
【００２０】
したがって、一つの態様として、本発明は、配列番号１で示されるヌクレオチド配列を含む（好ましくは実質的に構成される）か、または、該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含む（単離された）核酸分子を提供することにあり、ここで前記ヌクレオチド配列は、熱不安性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である。
【００２１】
本発明に係る核酸分子は、単一鎖または二重鎖ＤＮＡ、ｃＤＮＡまたはＲＮＡであってもよい。
本発明の核酸分子は、単離された核酸分子であってもよく（換言すれば、自然界で通常見つかる成分から単離または分離される）、または、遺伝子組換えまたは合成の核酸分子であってもよい。
【００２２】
本明細書では、実質的に配列番号１の配列およびその変異体からなる配列に、言及がなされる。したがって、いずれか一方の末端におけるフランキング領域もまた存在していてもよい。特に、１から８１ ヌクレオチドまたは １から６０ ヌクレオチド、とりわけ１から３０ヌクレオチドの５’フランキング領域が存在していいてもよい。これらは、転写／翻訳の間において酵素の活性成熟形態のプロセッシングを指示するシグナル配列を組み込んでもよい。３’フランキング領域は通常、１〜６０、たとえば１〜３０の付加ヌクレオチドを含むであろう。
【００２３】
所定配列の相補体（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ）は、塩基対形成の通常規則にもとづいて決定され得る単一の正確な配列となるであろう。
好ましくは、上記ヌクレオチド配列は、配列番号１もしくはその相補体と、少なくとも６５％、より好ましくは少なくとも７５％、たとえば少なくとも８５％または少なくとも９５％の配列同一性を、有するであろう。同様に、該ヌクレオチド配列は、高ストリンジェンシー条件下で配列番号１もしくはその相補体と好ましくはハイブリダイズするであろう。本発明はＳＡＰに対するアミノ酸配列 およびｃＤＮＡ配列の同定に基づく一方で、これらの配列の変異体、具体的にはアレル変異体、ならびに単一もしくは多重の塩基の置換、付加、または欠失により改変された関連配列が存在するか、または産生され得るものであり、これらの配列が、新たに同定される配列と機能的に等価であることは、当技術分野では、よく理解されている。
【００２４】
本発明の特に好ましい態様は、熱不安定性の真核生物アルカリホスファターゼ、好ましくは小エビに由来する該酵素および該酵素誘導体をコードする、単離された核酸分子である。これらの誘導体は、自然界にある酵素のアミノ酸が、たとえば大きさ、親油性および極性について同様の機能的特徴を有するアミノ酸によって置換されてもよい意味においては、保存的なアミノ酸置換を含んでいてもよい。アミノ酸のこのような機能的に関連する基は、その分野の当業者によって理解される。さらには酵素の触媒活性に重大な影響を及ぼさなければ付加、欠失または置換もまた含まれていてもよい。天然の酵素と比較して、通常、酵素誘導体は１〜５０、好ましくは１〜３０、たとえば１〜１５の非保存的な変更を有するであろう。
【００２５】
「機能的等価」とは、アルカリホスファターゼ活性を有するもので、好適にはホッコクアカエビ処理排水から単離された天然酵素と比較して同等またはそれ以上の比活性のポリペプチドをコードする核酸配列（またはポリペプチド自体）を意味する。換言すれば、機能的に等価な核酸配列は、たとえば制限エンドヌクレアーゼによって産生されるＤＮＡ鎖末端（５’および３’オーバーハングまたは平滑末端）から、末端５’リン酸基の除去を触媒することができるポリペプチドをコードする。
【００２６】
アルカリホスファターゼをコードするヌクレオチド配列における変化は、種内のホッコクアカエビの異なる集団の間、異なる地理的起源の同じ集団の間および同一の生物体内において生じることがある。かかる変化は、本発明の範囲に含まれている。
ストリンジェンシーのレベルを定義する目的で、中程度のストリンジェンシーは、０．２ ｘ ＳＳＣ〜２ ｘ ＳＳＣ緩衝液、０．１％ （ｗ／ｖ） ＳＤＳ、４２℃〜６５℃で行われたハイブリダイゼーションおよび／または洗浄を含み、その一方で、高ストリンジェンシーは、０．１ ｘ ＳＳＣ〜０．２ ｘ ＳＳＣ緩衝液、０．１％ （ｗ／ｖ） ＳＤＳ、少なくとも５５℃の温度で行われたハイブリダイゼーションおよび／または洗浄を含む。ハイブリダイゼーションおよび洗浄の諸条件は、当業者には周知である。
【００２７】
本発明の範囲には、高ストリンジェンシー条件下、配列番号１もしくはその相補体またはそれらの部分（すなわち配列番号１に由来するハイブリダイゼーションプローブ）にハイブリダイズするヌクレオチド配列、および好適にはアルカリホスファターゼ酵素またはその部分をコードする配列をコードするか、それに相補的であるヌクレオチド配列が含まれる。高ストリンジェンシーの条件は、当業界で周知の技術により、たとえばＳａｍｂｒｏｏｋら、「分子クローニング、実験質マニュアル」（第２版）１９８９年に記載されているように簡単に決定することができる。本発明の範囲に含まれるハイブリダイズする配列とは、非ストリンジェントな条件（６ ｘ ＳＳＣ／５０％ ホルムアミド、室温）で結合し、および高ストリンジェンシーの条件下（たとえば０．１ ｘ ＳＳＣ， ６８℃）で洗浄されるものである。なおＳＳＣとは、０．１５ Ｍ ＮａＣｌ、０．０１５Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ７．２を表す。
【００２８】
ハイブリダイゼーションプローブは、配列番号１ 配列（または相補的配列）の一部分であってもよく、高ストリンジェンシーの条件下においてハイブリダイゼーションが起こるかどうか決定するため、サンプルあるいは被験の核酸配列に対してハイブリダイズするのに充分な塩基の長さおよび組成となっている。したがって、プローブは、長さが少なくとも、１５塩基、好ましくは長さが少なくとも３０、４０、５０、７５、１００または２００塩基である。代表的なプローブの長さとして、３０〜５００塩基、たとえば３０〜３００、５０〜２００、５０〜１５０、７５〜１００が挙げられる。
【００２９】
ヌクレオチド配列の同一性は、Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ大学からのＧｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ ｇｒｏｕｐ （ＧＣＧ） バージョン１０ ソフトウェア・パッケージのＢｅｓｔＦｉｔプログラムを用いて決定される。そのプログラムは、次のデフォルト値を有する、ＳｍｉｔｈおよびＷａｔｅｒｍａｎの局所相同性アルゴリズムを用いる：ギャップ 生成ペナルティ（ｐｅｎａｌｔｙ）＝５０、ギャップ 伸長ペナルティ（ｐｅｎａｌｔｙ）＝３、平均マッチ＝１０，０００、平均ミスマッチ＝−９．０００。
【００３０】
本明細書に示される特定配列の変異体を作成する方法、たとえば部位特異的突然変異、ランダム突然変異、または酵素的開裂および／または核酸の連結は、よく知られた技術であり、同様に周知であるのは、こうして改変された核酸が、対象の配列に対し、著しい相同性を有するかどうかを決定するための方法、たとえばハイブリダイゼーションである。
【００３１】
代わりの視点から、本発明は、熱不安定アルカリホスファターゼをコードする配列をコードするか、それに相補的である単離された核酸分子を提供し、前記アルカリホスファターゼは、配列番号２のアミノ酸配列、あるいはそれに対し少なくとも５０％、好ましくは少なくとも６０％、たとえば少なくとも７０％または８０％、同一である前記アミノ酸配列の変異体のアミノ酸配列を含む。
【００３２】
また、本発明は、ｃＤＮＡ、好ましくはホッコクアカエビに由来するｃＤＮＡであり、図２のアミノ酸配列（配列番号２） を含む熱不安定アルカリホスファターゼをコードするか、あるいはそれの変異体またはフラグメントであって、熱不安定のアルカリホスファターゼ活性を有するものをコードするｃＤＮＡを提供する。
本発明は、さらにｃＤＮＡ、好ましくはホッコクアカエビに由来するｃＤＮＡであり、配列番号２のアミノ酸配列に対して、１以上のアミノ酸残基が失欠されているか、置換されているか、または付加されているアミノ酸配列からなる熱不安定アルカリホスファターゼをコードするｃＤＮＡを提供する。
【００３３】
本発明のさらなる態様は、本明細書で定義される核酸分子によってコードされるポリペプチドを提供することである。したがって、本発明による核酸分子の提供は、組換え体アルカリホスファターゼ酵素、特にＳＡＰおよびその変異体を、これまで入手できなかった多量かつ純度で得ることを可能とし、これによって、全体として制御された条件下で製造できる、あるいは常に指定された保証可能な条件によって製造できる形態で、該酵素の持続的供給が可能となる。
【００３４】
したがって、また、本発明は、図１（配列番号１）に示されるヌクレオチド配列または機能的に等価なその変異体によってコードされる熱不安定アルカリホスファターゼ酵素を構成するアミノ酸配列を含む（または実質的に該配列からなる）遺伝子組換えポリペプチドにも及ぶ。別の観点から、また本発明は、図１（配列番号１）に示されるヌクレオチド配列または機能的に等価なその変異体によってコードされた熱不安定アルカリホスファターゼ酵素を構成するアミノ酸を配列に含み、実質的に他のホッコクアカエビ成分を含まない組換えポリペプチドを提供する。
【００３５】
本明細書で使用される用語「ポリペプチド」は、全長のタン白質およびこれより短いペプチド配列の両方を含む。
ポリペプチドアミノ酸配列に関連して上記で使用された「機能的に等価」とは、そのアミノ酸配列が単一のまたは多重のアミノ酸の置換、付加または失欠によって改変されている上記のポリペプチド配列、ならびにアミノ酸がまた化学的に改変されている（グリコシル化または脱グリコシル化を含む）配列、それにもかかわらず触媒活性が残っている配列に関係するものであるか、またはそれから誘導されるポリペプチドを定義するものである。かかる機能的に等価な変異体は、自然界の生物的変異として生じてもよく、あるいは公知の手法、たとえば機能的に等価な組換えポリペプチドは、位置特異的突然変異、ランダム突然変異、または酵素的開裂および／またはアミノ酸の連結といった公知の手法を用いて製造することができる。
【００３６】
本発明のこの態様による合成ポリペプチドは、発現制御配列または組換えＤＮＡ分子を含む組換えＤＮＡクローニングビヒクルもしくはベクター（たとえばプラスミド、コスミド、バクテリオファージ分子または酵母人工染色体）に作動的、すなわち作用可能であるように結合している、上記に広く記載されたヌクレオチド配列を含む組換えＤＮＡ分子を含む宿主細胞中での発現によって調製することが可能である。その代替法として該ポリペプチドは、本発明に係る裸のＤＮＡ分子を直接宿主細胞に注入することによって発現させてもよい。
【００３７】
そのようにして発現された合成ポリペプチドは、アルカリホスファターゼ酵素の触媒として機能する部分ならびにそれに融合した組換え分子のＤＮＡによりコードされる付加ポリペプチドとを含む融合ポリペプチドであってもよい。たとえば、β−ガラクトシダーゼ、ホスファターゼ、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ、ウレアーゼなどといったタン白質に連結した、本発明の合成アルカリホスファターゼまたは他のポリペプチドを含む融合タン白質を製造することは望ましいかもしれない。大抵の融合タン白質は、同時に２個のコード配列が読み取り枠に一緒に加わっている組換え遺伝子の発現によって形成される。また、本発明の合成ペプチドを、リガンド結合機能を有するタン白質またはペプチド、たとえば抗体に融合して、当該技術分野で周知のように、たとえば酵素結合レポーター抗体（ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｒｅｐｏｒｔｅｒ ａｎｔｉｂｏｄｙ）を産生することも望ましいであろう。アルカリホスファターゼをコードする核酸分子の融合またはハイブリッドの誘導体およびその各々のアミノ酸配列は、すべて本発明に包含される。そうした好適な組換えＤＮＡおよびポリペプチドの発現手法は、たとえばＳａｍｂｒｏｏｋ ら（１９８９年）に記載されている。また代わりに、本発明のポリペプチドは、よく知られたメリフィールド固相合成製造法などの化学的手段で製造してもよい。
【００３８】
より具体的には、本発明のこの態様は、以下を含む（または実質的に以下からなる）組換えポリペプチドを提供する：
（ａ）配列番号２に示されるアミノ酸配列のすべてまたは部分、または
（ｂ）配列番号２のすべてまたは部分と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列のすべてまたは部分。
【００３９】
用語「遺伝子組換え」は、天然ポリペプチドからこれらの分子を区別し、ならびにそれらの分子が「遺伝子組換えＤＮＡテクノロジー」（当該技術分野で良く知られたフレーズ）を用いて産生されることを意味する。配列番号２のアミノ酸配列を有する酵素は、ホッコクアカエビにある天然型酵素の切断型（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ ｖｅｒｓｉｏｎ）であると信じられている。したがって、仮に対応する核酸が組換え体生産に使用されても、製造された組換え酵素は、いずれにせよ非組換えの自然に産生された分子と同一ではない。
【００４０】
特に、アミノ酸配列は、配列番号２のポリペプチドと少なくとも６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％または９８％の同一性を示してもよい。あるいはアミノ酸配列は、配列番号２のポリペプチドと少なくとも７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％または９８％の相似性を示してもよい。
特に、変異はＮ末端で起きてもよい。また、本発明のポリペプチドは、Ｎ末端で、さらに４〜２０個、たとえば５〜１０個のアミノ酸を含んでいてもよい。また、配列番号１の不完全なｃＤＮＡ配列は、配列番号２のアミノ酸配列に相当するが、残基７、アスパラギン酸でのみ始まっていることにも注目されるべきである。組換えポリペプチドにおいて、アミノ酸の変動、特に、置換は、図２に示された配列と対比して、これら最初の６ アミノ酸において生起するかも知れない。さらに、図２のＮ末端であるリジン残基は、アルギニンにより置換されていてもよい。
【００４１】
配列番号 ２のアミノ酸配列に対応するｃＤＮＡ配列は生成し得るが、これは５’末端で誘導されたヌクレオチド配列と配列番号１とから構成される。また、この領域もまた、大部分は、配列番号７の順方向プライマーによって提供され、それ自体は天然ＳＡＰの配列決定されたフラグメントから誘導される。遺伝コードの縮退のため、アミノ酸ＫＡＹＷＮＫから、ＡＡｒＧＣｎＴＡｙＴＧＧＡＡｙＡＡｒ ［配列番号 １９］（式中、ｒ＝ＡまたはＧ、ｎ＝Ｔ、Ｃ、ＡまたはＧ、およびｙ＝ＣまたはＴ）よりもさらに正確な配列を特定することはできない。配列番号 １９および配列番号 １を含む配列番号 ２に対応する完全長ｃＤＮＡ配列は、本明細書では配列番号 ２０として記載される。
【００４２】
しかしながら、実施例４の一部として行われた配列決定作業は、ホッコクアカエビ・アルカリホスファターゼの完全長ｃＤＮＡ配列を確立させた。したがって、配列番号１９に関して上記に論じた不確実さは解決され、ＫＡＹＷＮＫをコードするｃＤＮＡは以下の通りである：ＡＡＡＧＣＡＴＡＴＴＧＧＡＡＣＡＡＡ［配列番号 ２１］。
この配列は、配列番号１５内において配列番号 １９にとって代わり、アミノ酸配列、ＮＰＩＴＥＥＤをコードする配列番号１７の部分とともに、組換え酵素をコードする正確なｃＤＮＡ配列を形成することができる。この完全配列は配列番号２２として言及される。
【００４３】
アミノ酸配列の同一性または類似性は、Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ大学からのＧｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ ｇｒｏｕｐ （ＧＣＧ） バージョン１０、ソフトウェア・パッケージのＢｅｓｔＦｉｔプログラムを用いて決定される。そのプログラムは、次のデフォルト値を有するＳｍｉｔｈ および Ｗａｔｅｒｍａｎの局所相同性アルゴリズムを用いる：ギャップ形成ペナルティ （ｐｅｎａｌｔｙ）＝８、ギャップ伸長ペナルティ（ｐｅｎａｌｔｙ）＝２、平均マッチ＝２．９１２、平均ミスマッチ＝−２．００３。
【００４４】
上記に定義されるように、配列番号２のアミノ酸配列の一つの「部分」もしくはその変異体は、少なくとも２０個の隣接アミノ酸、好ましくは少なくとも３０、４０、５０、７０、１００、１５０、２００、３００、４００または４５０個の隣接アミノ酸を含んでもよい。２００個を超えるアミノ酸を有する部分、特に３００個を超えるアミノ酸を有する部分は、「意義を有する部分（ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐａｒｔｓ）」であると考えられ、そうした部分は、通常、本明細書で同定されるような酵素活性部位、さらに好ましくは補助因子の結合部位を有している。
【００４５】
組換えポリペプチドは、上記の定義によれば、好ましくは機能的に活性であり、具体的には酵素的活性がある。あるいは、それ自体は機能的に活性がなくてもよいが、全体のうち機能的特性を有する領域を提供すればよく、たとえば活性部位または酵素活性に要求される補助因子の結合部位を示せばよい。
先に論じたように、配列番号１ および 配列番号２は、天然ＳＡＰの完全なｃＤＮＡまたはアミノ酸配列に対応しない。天然ＳＡＰと同一または実質的に同一の酵素活性を示し、ならびにその酵素の熱不安定性を残した切断ポリペプチド（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ）が、本発明の別の態様を構成する。完全なｃＤＮＡ分子、またはここで定義される切断配列または機能的に等価なその変異体を組み込んだ組換えポリペプチドは、本発明のさらなる好ましい態様を構成する。
【００４６】
本発明の他の態様によれば、ＳＡＰと同じまたは実質的に同じ触媒活性および熱的特性を有すが、しかし、そのアミノ末端領域の部分を欠失しているポリペプチドが提供される。好ましくは、これらのペプチドは、Ｎ末端アミノ酸ならびに天然酵素においてそのアミノ酸に隣接する２〜５０個、好ましくは５〜３０個、具体的には５〜１０個のアミノ酸を欠失している。「実質的に同じ触媒活性」とは、ポリペプチドが少なくとも７５％、好ましくは少なくとも８５％、より好ましくは少なくとも ９０％の天然ＳＡＰの活性を有していることを意味する。これらの欠失したＮ末端部分を除けば、ポリペプチドは、配列番号 ２のポリペプチドと、好ましくは、少なくとも６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％または９８％の同一性を有している。
【００４７】
本発明によれば、触媒活性が６５℃で１５分間、好ましくは１０分間プレインキュベーションした後に検出されなければ、アルカリホスファターゼは熱不安定であるとみなすことは可能である。
本発明の酵素の触媒活性に好適なアッセイは、Ｏｌｓｅｎらのアッセイに従う。［Ｒ． Ｌ． Ｏｌｓｅｎ， Ｋ．ｏｖｅｒｂｏおよびＢ． Ｍｙｒｎｅｓ（１９９１） 小エビ（ホッコクアカエビ）肝膵臓からのアルカリホスファターゼ： 触媒活性のあるサブユニットを有する二量体酵素、Ｃｏｍｐ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｐｈｙｓｉｏｌ．， ９９８： ７５５−７６１］。アルカリホスファターゼ活性は、酵素を、全容量０．５ ｍｌ中、３７℃で１ ｍＭ ＭｇＣｌ２および １ ｍＭ ＺｎＣｌ２ を有する０．１ Ｍ グリシン／ＮａＯＨ緩衝液 ｐＨ １０．４中で、６ ｍＭ ｐ−ニトロフェニルリン酸とともにインキュベートすることで決定される。１５分後、反応は０．５ｍｌの２Ｍ ＮＡＯＨによって止め、次いで放出されたｐ−ニトロフェノール量を４０５ｎｍ（ε４０５＝１８．５ｍＭ−１ｃｍ−１）での吸収を測定することで決定される。酵素活性の１ユニットは、１分あたり１μモルのｐ−ニトロフェノールを生成する。ＳＡＰは、亜鉛によって悪影響を受けず、また最小濃度を越えてマグネシウムの著しい要求性はない。
【００４８】
また、ＳＡＰの触媒特性を保持しているかまたは発揮するものの、熱安定であるタン白質、たとえば７０℃で１５分加熱した後に活性が完全に喪失することがないタン白質をコードするか、またはそれを含む配列番号 １または配列番号 ２の変異体も、本発明の範囲であると考えられる。
また、本発明によれば、本発明のヌクレオチド配列を含む核酸分子を別の核酸分子、たとえばベクター核酸、具体的にはベクターＤＮＡに挿入することを含む、遺伝子組換え核酸分子を調製する方法もまた提供される。
【００４９】
したがって、本発明はさらに本発明のｃＤＮＡのいずれか１つを含むＤＮＡフラグメントを有するベクターＤＮＡである、組換えベクターを提供する。
組換えベクターでは、ベクターＤＮＡは好ましくは発現ベクターであり、および大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）または Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓなどの宿主細胞において増殖する能力がある。
【００５０】
本発明の発現ベクターは、たとえば翻訳（具体的には開始および終結コドン、リボソーム結合部位）ならびに本発明の核酸分子と整合読み取り枠において連結した転写調節エレメント（たとえばプロモーター−オペレーター領域、ターミネーション停止配列）などの適切な調節配列を含んでいてもよい。
本発明に係るベクターは、公知であり文献に記載された手法により、プラスミドおよびウィルス（バクテリオファージおよび真核生物ウィルスの両方を含む）を含んでいてもよく、さらに公知であり技術分野で記載された手法により、多数の異なる発現系において発現されるものであってもよい。
【００５１】
このようなベクターを、発現のために原核細胞もしくは真核細胞へ導入し、そしてトランスジェニック動物を得るために生殖細胞もしくは体細胞へ導入するための種々の技術が知られており、これらの技術を用いることができる。トランスフォーメーションもしくはトランスフェクションについての適切な技術は文献に詳細に記載されている。
【００５２】
作動的に、すなわち作用可能であるようにプロモーター配列と結合した、ここに定義された本発明の核酸分子を含む遺伝子構築体は、本発明のさらなる側面を構成する。
また、本発明はトランスフォームもしくはトランスフェクトされた宿主の原核細胞もしくは宿主の真核細胞、または上記において定義した本発明の核酸分子を含有するトランスジェニック生物を包含する。本明細書において、便宜のためトランスフォーメーションとトランスフェクションとの区別はしないこととする。このような宿主細胞として、例えば大腸菌、ストレプトミセスおよび他の細菌といった原核細胞；酵母（例えば Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）もしくはバキュロウイルス−昆虫細胞系、トランスフォームされた哺乳類細胞およびトランスジェニック動物もしくはトランスジェニック植物のような真核細胞が挙げられる。このうち、宿主原核細胞が望ましい。
【００５３】
このように、本発明は、本発明の組換えベクターでトランスフォームされた細胞である形質転換体を提供する。
さらなる側面において、本発明は、配列番号１もしくは配列番号２０に示されるヌクレオチド配列、またはそれらと機能的に等価な変異体（本明細書に定義される）のヌクレオチド配列を含む核酸分子を有し、熱不安定性アルカリホスファターゼを発現する、あるいは発現することができる組換え細胞もしくは組換え生物を提供する。これらの細胞もしくは生物は、その生物が本来有していない遺伝物質（この場合では熱不安定性アルカリホスファターゼをコードする遺伝物質）を含むという点で「組換え体」である。したがって、小エビＰａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓの場合には、熱不安定性アルカリホスファターゼを発現するけれどもこの遺伝子がその種において天然に見出される理由から除外される。
【００５４】
別の見方をすれば、熱不安定性アルカリホスファターゼを発現する細胞もしくは生物は、このような遺伝子型および表現型の細胞もしくは生物が天然には存在しないことから、「修飾されている」とみなすことができる。したがって、これらの細胞もしくは生物は、その中に本来有していない遺伝物質が存在することにより、そして天然由来のこれらの種もしくは細胞タイプからは生成されないタン白質（熱不安定性アルカリホスファターゼ）を生成する能力により、「非天然」的に生起する細胞もしくは生物と称することもできる。
【００５５】
上記の細胞もしくは生物は、これらもしくはこれらの先祖が、本明細書に記載するこの熱不安定性アルカリホスファターゼをコードする遺伝物質を導入することによりトランスフォームされていることから、形質転換体と称することもできる。
また、本発明は他の形質転換体、すなわち組換えベクターでトランスフォームされた大腸菌もしくはサッカロミセスを提供する。細菌、酵母および他の培養細胞の好適な発現株は、当業界では公知である。
【００５６】
また、本発明は、本発明の形質転換体を培地で培養し、培養された形質転換体からアルカリホスファターゼを単離することを含む、熱不安定性アルカリホスファターゼを産生する方法を提供する。さらに詳しくは、本発明は、配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１もしくは配列番号２０の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含む発現ベクターで、宿主細胞をトランスフォームし、該細胞を培地で維持し、前記細胞で発現された熱不安定性アルカリホスファターゼを単離することを含む、熱不安定性アルカリホスファターゼを製造する方法を提供する。細胞培養の手法は従来からよく知られており、これらの手法によれば、通常は宿主細胞が増殖され、同時にまたはそれに続いてＡＬＰ遺伝子が発現する。遺伝子生成物は細胞内部もしくは細胞外部に集積する。このようにして産生したタン白質を回収して精製する方法は、従来からよく知られている。
【００５７】
また、さらなる研究が行われ、正確な配列情報を洗練した。この結果として改訂されたｃＤＮＡとタン白失配列における変更は僅かであった。改訂ｃＤＮＡ配列を図４に示し、この配列を配列番号１５とする。図７で配列を比較して示したように、追加の５’配列が導入されるとともに（これと等価なアミノ酸配列、その配列は常に配列番号２に存在していた）、９個のヌクレオチドを欠いている。比較の結果、これらの配列は９９．４％が同一であった。
【００５８】
タン白質レベルでは、訂正の結果、タン白質の小さい部分で読み取り枠に変化を生じたために、やや大きい変更がある。改訂されたアミノ酸配列を図５に示し、この配列を配列番号１６とする。元のアミノ酸配列との比較を図８に示した。比較の結果、これらの配列は約９６％が同一であった。
かくして、上記の配列番号１および配列番号２へのすべての参照は、それぞれ配列番号１５および配列番号１６へと置き換えられる。本発明の好ましい態様を含んでいるこれらの配列は、すでに記述された。
【００５９】
さらに、ＳＡＰの完全なｃＤＮＡ配列が最近解明され、これにより全体の分子が配列番号１７に相当しており（それに配列番号１５が続く）、ＳＡＰの完全なアミノ酸配列（シグナル配列を足した）が配列番号１８に相当する（それに配列番号２もしくは配列番号１６が続く）。配列番号１８の４７個のアミノ酸のうち、最後の７個のアミノ酸（ＮＰＩＴＥＥＤ）あるいはこれらのいくつか、例えばＰＩＴＥＥＤもしくはＴＥＥＤは、成熟ＳＡＰタン白質のＮ末端に見出されると信じられている。残りのアミノ酸はシグナルポリペプチドであると考えられる。これらの配列を有する分子は、本発明のさらなる側面を構成する。本発明の好適な態様において、組換えアルカリホスファターゼは、それらのＮ末端にアミノ酸配列ＮＰＩＴＥＥＤを有している。
【００６０】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されない。
【００６１】
【実施例１】
ＳＡＰタン白質の配列決定およびＳＡＰ遺伝子の単離
＜タン白質の単離、フラグメンテーションおよび配列分析＞
小エビアルカリ性ホスファターゼ（ＳＡＰ）を、前記文献（Ｒ． Ｏｌｓｅｎら， １９９１）に記載された方法により見かけ上均一性をもつまで精製した。０．１％のＳＤＳを含む５０ｍＭの２−（Ｎ−モルホリノ）エタンスルホン酸の泳動緩衝液を用いて、１０％ＮｕＰＡＧＥ Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓゲル・システム（Ｎｏｖｅｘ社）中で電気泳動を行った後、銀染色と同様にクーマシー（ｃｏｏｍａｓｓｉｅ）でも約５５ｋＤａの単一のタン白質バンドが検出された。
【００６２】
精製タン白質１ｍｇを凍結乾燥して、商業的な配列分析サービス（Ｉｎｎｏｖａｇｅｎ社、スウェーデン）へ委託した。このタン白質は委託先でトリプシン分解され、得られたフラグメントは逆相ＨＰＬＣで分離された。３０以上のフラグメントが生成し、このうち４つのフラグメントを選択してさらに分析を行った。選択したフラグメント（Ｈ２３：１８、Ｈ２３：３０、５ＲｅＲＰ６：２６、５ＲｅＲＰ６：１７）を、質量分析法により配列分析した結果、それぞれ１２個、１０個、８個および５個のアミノ酸からなる配列が得られた。
＜タン白質フラグメントの配列から導かれるオリゴヌクレオチドの合成＞
得られたアミノ酸配列に基づいて基準コドンを予測し、次いで順方向（ｆｏｒｗａｒｄ）および逆方向（ｒｅｖｅｒｓｅ）相補的配列の縮重したオリゴデオキシリボヌクレオチドを発注（Ｅｕｒｏｇｅｎｔｅｃ社、ベルギー）して合成した。
＜小エビｃＤＮＡの合成＞
新たに捕集した小エビ、ホッコクアカエビ（ Ｐ． ｂｏｒｅａｌｉｓ） を裁断して、個々の肝膵臓を使用時まで液体窒素上で貯蔵した。ＰｏｌｙＡＴｒａｃｔ（登録商標） ＳＹＳＴＥＭ １０００（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いて、ｍＲＮＡを単一の肝膵臓から単離した。この単離ｍＲＮＡを用いて１ｓｔストランドｃＤＮＡを合成し、次いで２ｎｄストランド合成とｃＤＮＡの増幅を、Ｓｍａｒｔ（登録商標） ＰＣＲ　ｃＤＮＡ 合成キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）およびＡｄｖａｎｔａｇｅ ｃＤＮＡ ＰＣＲ キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）において与えられた指示に従って行った。
＜ＳＡＰ遺伝子内部フラグメントのＰＣＲ増幅および配列分析＞
合成したｃＤＮＡの少量アリコート（ａｌｉｑｕｏｔ）は、タン白質から導出されたオリゴヌクレオチドの一対の組合わせ（順方向および逆方向）によりプライムされるＰＣＲのテンプレート（鋳型）として用いた。増幅反応は、標準的な混合の組成を有しており、Ｅｐｐｅｎｄｏｌｆ ｇｒａｄｉｅｎｔ ｔｈｅｒｍｏｃｙｃｌｅｒ で行われた。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動の後に検出された。オリゴヌクレオチド１７Ｆと２６Ｒとを組み合わせたプライマーにより、約６００ｂｐの顕著な増幅産物が得られ、これはＴｈｅｒｍｏ Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ ｒａｄｉｏｌａｂｅｌｌｅｄ ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ ｃｙｃｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ キット（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）を用いて、配列決定に同じＰＣＲプライマーを利用して配列決定を行った。
＜ｃＤＮＡ末端の高速増幅（ＲＡＣＥ）＞
Ｍａｒａｔｈｏｎ（登録商標）ｃＤＮＡ 増幅キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）の、ｃＤＮＡテンプレートからの増幅について記載された事項に従い、ＰＣＲ産物に見出されたＤＮＡ配列に基づいて、５’および３’ＲＡＣＥ反応に用いる新しい特別の順方向プライマーおよび逆方向プライマーを合成した。
【００６３】
ＳＡＰ遺伝子に特異的な順方向プライマーＭａｌｐＦを、キットに含まれるＡＰｌプライマー（連結されるアダプターと配列同一性を有する）とともに用いて、１．４ｋｂの３’−ＲＡＣＥフラグメントを製造した。同様に、逆方向の遺伝子特異的プライマー、ＭａｌｐＲを用いて、０．５ｋｂの５’−ＲＡＣＥ産物を得た。３’−ＲＡＣＥ産物のＤＮＡ配列分析を行った結果、ＲＡＣＥ産物は６００ｂｐのＰＣＲ産物と重複することが確認された。６００ｂｐのＰＣＲ産物に含まれるｃＤＮＡ遺伝子下流配列領域についてさらに配列決定を行う目的で、ｐＭａｌｐＦプラスミドを生成するべく、３’−ＲＡＣＥ産物をＰＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔベクター（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社）にサブクローニングした。
【００６４】
６００ｂｐのＰＣＲ産物とｐＭａｌｐＦインサート（ｉｎｓｅｒｔ）は、新しい遺伝子特異的プライマーを用いて、両方向から数回にわたり配列決定した。
＜完全長ｃＤＮＡ遺伝子のハイフィディリティＰＣＲ増幅＞
プライマーのＳａｐＦおよびＳａｐＲと、Ｐｆｕポリメラーゼ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社）と、１．５ｋｂのＳＡＰｃＤＮＡ遺伝子増幅産物のためのテンプレートとしてのｃＤＮＡとを用いて最終的なＰＣＲ反応を行った。１．５ｋｂのＰＣＲ産物を、得られた配列を確認するために分析した。ｃＤＮＡ遺伝子は、４７８個のアミノ酸からなるポリペプチドをコードするオープンリーディングフレーム（ｏｐｅｎ ｒｅａｄｉｎｇ ｆｒａｍｅ）と、転写体のポリアデニル化に対応すると推定されているシグナルを含む３’配列とを含んでいることが見出された（図１および図２を参照）。
＜ＰＣＲに用いた加熱サイクルのプロファイル＞
増幅反応は、以下のサイクル・プロファイルで行った。
【００６５】
2004511232.tif 000002
＜結果＞
ＳＡＰタン白質サブユニットは、もともと６５ｋＤａの分子量をもつと見積もられていた。ＵＳＢプロダクトシートには、５９ｋＤａのＳＡＰタン白質が記載されている。そして本発明者のＳＤＳ−ＰＡＧＥシステムでは、ＳＡＰは分子量標準である５５ｋＤａのタン白質と同等に移動する。この相違は、おそらく用いた緩衝液系とゲルの質が異なるためと考えられる。
【００６６】
単離ｃＤＮＡは、分析されたＳＡＰタン白質フラグメントと配列同一性を有するポリペプチドをコードしている（図２を参照）。
ＳＡＰタン白質の配列を、公的に利用可能なデータベースによる相同性検索のクエリー配列（ｑｕｅｒｙ ｓｅｑｕｅｎｃｅ）として用いた。相同性検索と多重配列アライメントには、ソフトウェアプログラムＢＬＡＳＴおよびＣｌｕｓｔａｌＷをそれぞれ用いた。ＳＡＰ配列は、マウス（Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ ｎｕｍｂｅｒ Ｐ０９２４２）、ヒト（Ａ． ｎ． Ｐ０５１８６）、ニワトリ（Ａ． ｎ． Ｑ９２０５８）、およびカイコガＢｏｍｂｙｘ ｍｏｒｉ （Ａ． ｎ． Ｐ２９５２３））で見出された、組織非特異的なＡＬＰを最高のスコアとなる相同体群に並置した。このアライメントを図３に示す。利用可能な公共データベースによる相同性検索では、ｃＤＮＡと等価な配列は見出されなかった。しかしながら、導出されたタン白質配列は、多くの知られているＡＬＰに対して、アミノ酸配列において４４％の同一性と６０％の類似性を有する比較的高い相同性を記録した。タン白質の相同性は、Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｂｉｏｉｎｆｏｍａｔｉｃｓ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅのインターネットサーバーで、デフォルトパラメータを「ｂｌｏｓｕｍ５０ ｍａｔｒｉｘ， ｇａｐ ｏｐｅｎ ｐｅｎａｌｔｙ ＝ −１２ ａｎｄ ｇａｐ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｅｎａｌｔｙ−２， ａｎｄ ＫＴＵＰ ＝ ２」としてＦａｓｔａ ３プログラムを駆動し、ＳＷＡＬＬデータベース（非−重複タン白質配列データベース；Ｓｗｉｓｓｐｌｏｔ＋Ｔｒｅｍｂｌ＋ＴｒｅｍｂｌＮｅｗ）で検索した（Ｗ． Ｒ． Ｐｅａｒｓｏｎ ａｎｄ Ｄ． Ｊ． Ｌｉｐｍａｎ （１９８８）， ”生物学の配列解析用の改良ツール（Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｔｏｏｌｓ ｆｏｒ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ）”， ＰＮＡＳ ８５：　２４４４−　２４４８； Ｗ． Ｒ． Ｐｅａｒｓｏｎ， （１９９０）， ”Ｒａｐｉｄ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ＦＡＳＴＰ ａｎｄ ＦＡＳＴＡ”， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ １８３：６３−９８を参照）。
【００６７】
また、ｃＤＮＡでコードされたタン白質は、Ｐｒｏｓｉｔｅ ＰＳＯＯ １２３で定義された、ＡＬＰ活性部位パターンに相当するモチーフ「ＶＴＤＳＡＡＳＡＴ」をその配列に含まれるように有している。したがって、小エビ肝膵臓から得たｍＲＮＡ−転写体の単離ｃＤＮＡは、Ｐ．ｂｏｒｅａｌｉｓ　ＳＡＰの遺伝子を表している。
配列決定されたタン白質フラグメント５ＲｅＲＰ６：２６と、これに相当するｃＤＮＡから導かれた配列との間で、一つのアミノ酸に食い違いがある。これは、ＳＡＰ遺伝子におけるアレルの変動か、あるいはタン白質配列分析におけるエラーとして説明できる。
＜実施例１で用いた配列＞
タン白質フラグメント：
2004511232.tif 000003
オリゴヌクレオチド：
2004511232.tif 000004
実施例１の操作を繰り返し、配列情報を洗練した。図４および図５に反映されているように、ｃＤＮＡ遺伝子は４７５個のアミノ酸からなるタン白質をコードする１つのオープンリーディングフレームを含んでいることが見出された。図４のｃＤＮＡは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに基づく精製した天然のＳＡＰで見積もられた分子量５４〜５５ｋＤａと比較すると、５３ｋＤａの分子量理論値を有している。多重配列アライメントによれば、ＳＡＰはＮ末端に５〜１０個の追加されたアミノ酸を含んでおり、これが分子量を５４ｋＤａに近づけると確信できる。上述したように、このＮ末端領域は、ヘプタペプチド「ＮＰＩＴＥＥＤ」の一部またはすべてを含むと考えられる（実施例４も参照）。
【００６８】
【実施例２】
天然ＳＡＰとの比較でｃＤＮＡから導出されたタン白質配列のアミノ酸組成
凍結乾燥したＳＡＰタン白質を６Ｍの塩酸に溶解し、１１０℃で２４時間加水分解した。塩酸を蒸発させた後、試料を０．２Ｍのクエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ２．２）へ再懸濁し、加水分解生成物中のアミノ酸の同定と、そのモル％を決定するためＨＰＬＣクロマトグラフィーを行った。
（注）：このシステムではアスパラギン酸塩とアスパラギンが区別されず、グルタミン酸塩とグルタミンが区別されない。したがって、天然ＳＡＰタン白質中のこれらのアミノ酸に関する数値は、これらが組み合わされたものである。また、該タン白質が酸化されていないため、システイン残基数はおそらく低く見積もっている。
【００６９】
【表１】
2004511232.tif 000005
【００７０】
結論：
大半のアミノ酸において、ｃＤＮＡ導出（すなわち、ｃＤＮＡから導出された）タン白質配列中の各アミノ酸のモル比は、精製した天然ＳＡＰで見出された比率とほぼ同一である。僅かに存在する見掛けの不一致については上述したとおりである。
【００７１】
このように、ＳＡＰタン白質と比較して、単離ｃＤＮＡは非常に類似した、あるいは同一のアミノ酸組成をもつタン白質をコードしている。
この実施例および分析を、改訂ｃＤＮＡ配列について再度行った。その結果を以下に示す。
【００７２】
【表２】
2004511232.tif 000006
【００７３】
【実施例３】
Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ内でのＳＡＰの組換え発現
ＳＡＰをコードするｃＤＮＡは、発酵により組換え酵素を産生するために、好適な微生物中でこの酵素を異種発現するために用いられる。いくつかの発現系を利用することができるが、自然な状態で適度なレベルに酵素を発現することから、真核細胞の発現系が望ましい。このような系としては、メチロトローフ酵母Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）が挙げられ、この酵母は細胞内発現により１２ｇ／Ｌまでのレベルで組換えタン白質を発現することが報告され（Ｃｌａｒｅ， Ｊ．Ｊ． Ｒａｉｙｍｅｎｔ， Ｆ．Ｂ．， Ｂａｌｌａｎｔｉｎｅ， Ｓ．Ｐ．， Ｓｒｅｅｋｒｉｓｈｎａ， Ｋ． ａｎｄ Ｒｏｍａｎｏｓ， Ｍ．Ａ． （１９９１）： Ｈｉｇｈ−ｌｅｖｅｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｔｅｔａｎｕｓ ｔｏｘｉｎ ｆｒａｇｍｅｎｔ ｃ ｉｎ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ ｓｔｒａｉｎｓ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｔａｎｄｅｍ ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｅ． Ｂｌｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９， ４５５−４６０を参照）、組換えタン白質は２．６ｇ／Ｌまで培地中へ分泌される（Ｐａｉｆｅｒ， Ｅ．， Ｍａｒｇｏｌｌｅｓ， Ｐ， Ｃｒｅｍａｔａ， Ｊ．， Ｍｏｎｔｅｓｉｎｏ． Ｒ．， Ｈｅｒｒｅｒａ， Ｌ． ａｎｄ Ｄｅｌｇａｄｏ， ＪＭ． （１９９４）： Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｌｐｈａ ａｍｙｌａｓｅ ｉｎ Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ ｕｓｉｎｇ ｔｗｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｉｇｎａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ． Ｙｅａｓｔ １０． １４１６−１４１９を参照）。
【００７４】
挿入された遺伝子はＡＯＸ１（アルコールオキシダーゼ）プロモーターで調節され、メタノールにより発現が誘導される。
ＳＡＰ ｃＤＮＡは市販のベクターｐＰＩＣ９Ｋへ挿入される。組換えＳＡＰは、その後、ベクター中に含まれるＳ． ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ ａ−因子から導かれるシグナルペプチド配列と融合することにより分泌生成物として発現する。ｈｉｓ−株（ＫＭ７１もしくはＧＳ１１５）に組み込まれる場合には、ｈｉｓ遺伝子型はベクターインサートで補完されるため、株はヒスチジンフリーの媒地中でｈｉｓ＋クローンの選択により組換え体のため選別される。さらに、組換え体は、プラスミドが含有するカナマイシン耐性遺伝子により獲得されたジェネチシン（Ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ、Ｇ４１８、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）の濃度増加に対する耐性により、多重遺伝子インサートのためにスクリーニングされる。
【００７５】
詳細には、ａ因子シグナル配列とともにインフレームでｐＰＩＣ９Ｋベクターへ組み込むための適当な制限部位を含む新しいＰＣＲ産物を得るべく、新しいＰＣＲ反応において、ＰＣＲ産生ＳＡＰ ｃＤＮＡがテンプレートとして用いられる。ＰＣＲ反応の新しい順方向プライマーとして、トリプシンにより切り離されたと推定されるリジン残基を再構築するために、修飾”１７Ｆ”プライマー（配列番号１３）が使用され、ＡＴＧコドン（Ｍｅｔ）をリジンコドン（ＡＡＧ）で置換する。逆方向プライマー（配列番号１４）は、ＮｏｔＩ制限サイト３’をＳＡＰ ｃＤＮＡ配列の終結コドンに取り付けるために構築される。
【００７６】
得られたＰＣＲ産物はＮｏｔＩで切断され、予めＳｎａＢＩとＮｏｔＩで切断されたｐＰＩＣ９Ｋベクターにライゲートされる（結果としてプラスミドｐＰＩＣ９Ｋ−ＳＡＰを生成する）。該ベクターはＳｎａＢＩにより５’結合部位（ｊｏｉｎｉｎｇ ｓｉｔｅ）で平滑末端となるため、そして両末端はリーディングフレーム内にあるため、この修飾ｃＤＮＡの５’末端のさらなる修飾を必要としない。
【００７７】
ベクターはこの後、ＴＯＰ１０Ｆ’（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）もしくはその等価物のようなコンピテントＥ． ｃｏｌｉ株のトランスフォーメーションにより増殖し、組換え体はそのアンピシリン耐性により選択される。単離ｐＰ１０９Ｋ−ＳＡＰプラスミドは、次いでＰｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓのＡＯＸＩ遺伝子へ挿入されるベクターカセットを創生するために、ＳｏｃＩによる制限的切断で直線化される。Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ細胞（株ＧＳ１１５もしくはＫＭ７１）を、直線化したｐＰＩＣ９Ｋ−ＳＡＰ構築物で型質転換した後、組換え体がｈｉｓ＋変異体から製造者のプロトコルに従って選択される。
【００７８】
単離したコロニーは、製造者が推奨する方法に従い、メタノールの存在下で細胞を育成することにより、組換えＳＡＰの媒地中への発現を試験するために供される。所望により、組換え遺伝子の多重コピーを含むクローンのために組換え株をスクリーニングすることにより、発現レベルのさらなる増大は達成される。これは、抗生物質Ｇ４１８（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）が存在しそのレベルが上昇していく条件下で、ｈｉｓ＋変異体を培養して行われる。高いＧ４１８レベルで成長するクローンは遺伝子の多重コピーを含みやすい。
【００７９】
培養、トランスフォーメーションおよび選択のすべての方法は、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓシステムの供給元（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、オランダ）から入手できるプロトコルに詳細に記述されている。
修飾されたＳＡＰ構築物は、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓシグナルペプチダーゼＫＥＸ２の残りのシグナル認識配列から５個のアミノ酸（ＥＡＥＡＹ）が追加された組換え生成物を与える。このＮ−末端配列は僅かに切り詰められた最終生成物を与えるが、他のアルカリホスファターゼと適度のコンセンサスにあり、Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓシグナルペプチダーゼ用認識配列をなお含んでいる。
＜実施例３に用いたプライマー＞
順方向：
ＡＡＧＧＣＩＴＡＹＴＧＧＡＡＹＡＡＲ （配列番号１３）
ここで、
Ｉ ＝ Ｉｎｏｓｉｎｅ
Ｒ ＝ Ａ ＋ Ｇ
Ｙ ＝ Ｃ ＋ Ｔ
逆方向：
ＴＡＣＡＧＣＧＧＣＣＧＣＣＡＴＣＴＣＡＴＴＴＴＴＣＧ （配列番号１４）
【００８０】
【実施例４】
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０中におけるＳＡＰの発現
＜ＳＡＰシグナル配列の決定＞
ＳＡＰのＮ末端シグナル配列は、ｃＤＮＡをテンプレートに用いて５’−ＲＡＣＥにより決定した。ｍＲＮＡは、１００ｍｇの小エビ（Ｐａｎｄａｌｕｓ Ｂｏｒｅａｌｉｓ）の肝膵臓から、Ｏｌｉｇｏｔｅｘ Ｄｉｒｅｃｔ ｍＲＮＡ ミニキット（Ｑｉａｇｅｎ社）を用いて製造者による記載に従い単離した。小エビ肝膵臓ｃＤＮＡは、ＳＭＡＲＴ ＰＣＲ ｃＤＮＡ 合成キット（Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ社）を使用し、製造者が記載したプロトコルに従って作成した。４０μｇのプロテイナーゼ Ｋを５０μｌのｃＤＮＡへ加えて４５℃で４５分間および９０℃で８分間インキュベートし、次いで１５ＵのＴ４−ＤＮＡポリメラーゼ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を加えて、１６℃で３０分間および７２℃で１０分間インキュベーションすることにより、ｃＤＮＡの末端平滑化および精製を行った。最後にそのｃＤＮＡをフェノール／クロロホルムで２回抽出し、エタノールで沈殿させた。Ｍａｒａｔｈｏｎ ｃＤＮＡ 増幅キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）の記載に従い、ＲＡＣＥ−アダプターをｃＤＮＡへライゲートした。５’−ＲＡＣＥ反応は、Ａｄｖａｎｔａｇｅ ｃＤＮＡ ポリメラーゼ ｍｉｘ （Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）、ＡＰ１プライマー（Ｍａｒａｔｈｏｎ ｃＤＮＡ 増幅キットとともに供給される）、ＳＡＰ−特異的プライマー（５’−ＧＣＧ ＴＧＧ ＴＧＣ ＡＴＡ ＴＧＧ ＴＣＡ ＡＴＣ ＣＧＴ ＣＣ−３’）、およびテンプレートとして、５μｌの５０倍希釈のアダプター連結ｃＤＮＡを用いて、最終容量５０μｌ中で行った。ＲＡＣＥ ＰＣＲ反応は、Ｂｉｏｍｅｔｒａ ＴＧｒａｄｉｅｎｔ ｔｈｅｒｍｏｃｙｃｌｅｒ中で、９４℃、３０秒間の初期変性ステップ、それに続く９４℃、５秒間および７２℃、３分間の５サイクルと、９４℃、５秒間および７０℃、３分間の５サイクル、さらに９４℃、５秒間および６８℃、３分間の３０サイクルで行った。生成した１２００ｂｐのＳＡＰフラグメントをアガロースゲルから精製し、ＰＣＲで再増幅を行って配列決定した。
＜ＳＡＰのｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａ発現ベクターへのクローニング＞
ＳＡＰ遺伝子をｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａベクターへクローニングするため、ＳＡＰ遺伝子をＳａｃＩおよびＨｉｎｄＩＩＩサイトをそれぞれ含む二つのプライマーとともにＰＣＲ増幅した（下線）。得られたＳＡＰ配列の全長（主要配列にシグナル配列を追加した）に基づき、プライマーを、Ｎ末端としてアミノ酸配列「ＮＰＩＴＥＥＤＫＡＹＷＮＫ」をもつＳＡＰ遺伝子を増幅するように設計した。加えて、Ｎ末端コドンの３つ（プライマー配列において小文字で表される）を最適化するために、プライマー１において３つの塩基が変更された（ＣからＡ、ＡからＣ、およびＡからＣ）（プライマー１：５’−ＡＴＧ ＧＡＧ ＣＴＣ ＡＡＣ ＣＣａ ＡＴｃ ＡＣｃ ＧＡＡ ＧＡＡ ＧＡＣ ＡＡ−３’　プライマー２：５’−ＡＴＧ ＡＡＧ ＣＴＴ ＴＣＡ ＴＴＴ ＴＴＣ ＧＴＣ ＡＣＡ ＧＡＡ ＡＧＴ Ｇ−３’）。
【００８１】
ＰＣＲは、１０μＭの２つの各プライマー、１．５ＵのＰｆｕ−ポリメラーゼ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）、供給された緩衝液、０．２ｍＭのｄＮＴＰ、およびテンプレートとしての１０ｎｇの小エビ肝膵臓ｃＤＮＡを含む、最終容量５０μｌ中で行った。ＰＣＲは９４℃、３０秒間の初期変性ステップと、それに続く９４℃、１５秒間と、５５℃、１分間と、７２℃、３分間との３０サイクルで行われた。ＰＣＲ産物はＱｉａｑｕｉｃｋ ＰＣＲ 精製キット（Ｑｕｉａｇｅｎ社）で精製された。
【００８２】
ｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａ ベクターとＳＡＰ ＰＣＲ産物は、５ＵのＳａｃＩおよびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素でそれぞれ処理した。ＳＡＰ ＰＣＲ産物は、１ＵのＴ４−ＤＮＡリガーゼ（ＵＳＢ）、約１ｍｇのプラスミドおよびＰＣＲ産物とを用いて１０μｌの反応で、該ベクターへライゲートした。反応混合物は１６℃で１６時間インキュベートした。次いで、ライゲーション混合物を４０μｌのエレクトロコンピテント（ｅｌｅｃｔｒｏｃｏｍｐｅｔｅｎｔ）Ｅ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０細胞へ加えて、１８００Ｖでエレクトロポレーションすることにより、ライゲーション混合物を用いてＥ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０細胞をトランスフォームした。エレクトロポレーションの直後に、１ｍｌのＳＯＣ媒地を加えて、３７℃で１時間インキュベートした。次いで、細胞を１００ｍｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢプレートに載置し、トランスフォームされた細胞を選択した。
＜Ｅ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０中でのＳＡＰの遺伝子発現＞
ＳＡＰ遺伝子を含む組換えｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａベクターを含有している２つのＥ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０コロニーを発現のために選択した。空のｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａベクターを含有しているＥ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０株を、ネガティブ・コントロールとして用いた。
【００８３】
５０ｍｌのＬＢ培地を含む３個の三角フラスコへ、１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを供給したＬＢ培地中で一晩培養した培養物２．５ｍｌを接種した。３０℃で、振とう下に細胞を成長させ、細胞の密度としてＯＤ６００が約０．５となるまで増殖させた。次いで、３つの培養物のそれぞれを、２つ（２×２５ｍｌ）に分割して、２つの培養物のうち一つを、Ｌ−アラビノースを最終濃度、０．０５％（ｗ／ｖ）となるまで加えることにより誘導した。すべての細胞培養物は、回収する前に３０℃で３時間振とうしてさらに成長させた。
＜発現培養物の分析＞
それぞれの発現培養物から、２００μｌの試料を遠心分離して上澄みを除去した。細胞ペレットへ、１００μｌの１×ＳＤＳ−ＰＡＧＥ試料緩衝液を加え、１００℃で３分間インキュベートし、次いで１８，０００ｇで３分間遠心分離した。次いで、その細胞溶解物をＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルへ直接適用して分析した。追加のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルは、タン白質をニトロセルロースブロッティング膜（０．４５μｍ、Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）へ転写させるためにさらにエレクトロブロットして、小エビ処理水から精製したＳＡＰに対して生起された抗体と、ヤギ・抗ウサギＩｇＧ （Ｈ ＋ Ｌ） （ヒトＩｇＧ吸着）・西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲート（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）とを用いて免疫染色した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、エレクトロブロッティングおよび免疫染色については、それぞれ標準プロトコルに従った。
【００８４】
図１０および図１１に示したように、ｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａベクターと、ホストとしてＥ． ｃｏｌｉ ＴＯＰ１０細胞を用いて、組換えＳＡＰが発現された。組換えｐＢＡＤ／ｇＩＩＩ Ａ−ＳＡＰベクターを含む、両組換えＥ． ｃｏｌｉ 株は、組換えＳＡＰを産生した。一方、ネガティブ・コントロールはウエスタンブロットでシグナルを与えなかった（図１１）。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、ホッコクアカエビ（Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓ） からのＳＡＰをコードするｃＤＮＡ配列（５’末端における小部分を差し引いている）を示す。終結コドンと、ポリＡテール（ｔａｉｌ）を含むｃＤＮＡの下流配列には下線を引いている。
【図２】図２は、図１のＳＡＰｃＤＮＡによりコードされたアミノ酸配列を示す（追加のＮ末端領域を取り込んでいる）。配列決定されたタン白質フラグメントとの相同位置は、下線を引いて特定している。また、酵素の活性部位（Ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅ）の配列、すなわち（知られているアルカリホスファターゼに基づく）は太字で示している。
【図３】図３は、Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ データベースで見出された、組織に特異的でないＡＬＰ（マウス（ｍｏｕｓｅ）（Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ ｎｕｍｂｅｒ Ｐ０９２４２）、ヒト（ｈｕｍａｎ）（Ａ． ｎ． Ｐ０５１８６）、ニワトリ（ｃｈｉｃｋｅｎ）（Ａ． ｎ． Ｑ９２０５８）、およびカイコガ（ｂｏｍｍｏ） Ｂｏｍｂｙｘ ｍｏｒｉ （Ａ．ｎ． Ｐ２９５２３））を、その最高スコアとなる相同体群に並置させたＳＡＰ配列である。
【図４】図４は、Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓ からのＳＡＰをコードする改訂ｃＤＮＡ配列を示す。ポリＡテールは（Ａ）２３で示している。５’配列の５つのヌクレオチド位置（小文字）は、増幅と配列決定に用いた縮重ＰＣＲプライマーでバイアスされているため、その位置を特定していない。
【図５】図５は、図４のＳＡＰ ｃＤＮＡによりコードされたアミノ酸配列を示す。配列決定されたタン白質フラグメントへの相同位置は下線を引いて特定している。また、酵素の提案されている活性部位（Ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅ）の配列は太字で示されている。Ｎ末端リジン残基（小文字）は、上の図４について言及したように縮重ＰＣＲプライマーによるバイアスのため、アルギニンであってもよい。
【図６】図６は、図５の改訂アミノ酸配列を取りこんだ以外は、上の図３に相当する。
【図７】図７は、図４の改訂ｃＤＮＡ配列（上側）と、図１の元の配列（本来、図２の等価アミノ酸配列においてのみ表されていた５’末端をさらに含む）とのアライメントである。２つの配列の最適アライメント（ギャップを含む）を見出すために、Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ−Ｗｕｎｓｃｈ グローバルアライメントアルゴリズム（ｇｌｏｂａｌ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ａｌｇｏｒｉｔｈｍ）を利用するＮｅｅｄｌｅプログラムを用いて比較を行った（Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ ら Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． （１９８３） ４８， ｐｐ ４４３−４５３を参照。ｍａｔｒｉｘ Ｂｌｏｓｕｍ ６２ ｗｉｔｈ ｇａｐ ｐｅｎａｌｔｉｅｓ ｏｆ Ｇａｐ ｏｐｅｎ ＝ １０．０ ａｎｄ Ｇａｐ ｅｘｔｅｎｄ ＝ ０．５．　全体の同一性（％）＝ ９９．４ ％）。
【図８】図８は、図５の改訂アミノ酸配列（上側）と、図２の元の配列とのアライメントである。上記のＮｅｅｄｌｅプログラムを用いて比較を行った（ｍａｔｒｉｘ Ｂｌｏｓｕｍ ６２ ｗｉｔｈ ｇａｐ ｐｅｎａｌｔｉｅｓ ｏｆ Ｇａｐ ｏｐｅｎ ＝ １０．０ ａｎｄ Ｇａｐ ｅｘｔｅｎｄｅｄ ＝ ０．５．　全体の同一性（％）＝ ９６．０３ ％）。
【図９】図９は、ホッコクアカエビ（Ｐａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓ） からのアルカリホスファターゼの提案されたシグナル配列およびＮ末端領域の、ｃＤＮＡ配列（配列番号１７）とアミノ酸配列 （配列番号１８）を示す。ＳＡＰアミノ酸配列は、この後に、図２および図４に示したようにＫＡＹＷＮＫ…と続く。
【図１０】図１０は、実施例４の発現培養物からの、全細胞タン白質抽出物のＳＤＳ−ＰＡＧＥから得た写真である（第１レーンと第１０レーン：広範囲の基準タン白質、第２レーンと第９レーン：ＳＡＰ １．５μｇ、第３レーン：ネガティブ・コントロール培養物（非誘導）、第４レーン：ネガティブ・コントロール培養物（誘導）、第５レーン：ＳＡＰ−培養物１（非誘導）、第６レーン：ＳＡＰ−培養物１（誘導）、第７レーン：ＳＡＰ−培養物２（非誘導）、第８レーン：ＳＡＰ−培養物２（誘導）。広範囲の基準タン白質中におけるタン白質は、ミオシン（２００ｋＤ）、β−ガラクトシダーゼ（１１６ｋＤ）、ホスホリラーゼ ｂ（９７．４ｋＤ）、血清アルブミン（６６ｋＤ）、オボアルブミン（４５ｋＤ）、炭酸脱水酵素（３１ｋＤ）、トリプシンインヒビター（２１．５ｋＤ）、リゾチーム（１４．４ｋＤ）およびアプロチニン（６．５ｋＤ）である）。
【図１１】図１１は、実施例４の発現培養物からの全細胞タン白質抽出物の、イムノブロットの写真である（第１レーンと第８レーン：ＳＡＰ ５０ｎｇ、第２レーン：ネガティブ・コントロール培養物（非誘導）、第３レーン：ネガティブ・コントロール培養物（誘導）、第４レーン：ＳＡＰ−培養物１（非誘導）、第５レーン：ＳＡＰ−培養物１（誘導）、第６レーン：ＳＡＰ−培養物２（非誘導）、第７レーン：ＳＡＰ−培養物２（誘導））。
【図２】
2004511232.tif 000007
【図３】
2004511232.tif 000008
【図５】
2004511232.tif 000009
【図６】
2004511232.tif 000010
【国際公開パンフレット】
2004511232.tif 000011
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【手続補正書】
【提出日】平成14年9月3日(2002.9.3)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１もしくは配列番号２０の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含み、
前記ヌクレオチド配列は、熱不安定性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である核酸分子。
【請求項２】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列と、少なくとも７５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む請求項１に記載の核酸分子。
【請求項３】
配列番号１もしくは配列番号２０のヌクレオチド配列と、少なくとも８５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列を含む請求項１または２に記載の核酸分子。
【請求項４】
熱不安定性アルカリホスファターゼ（このものは、配列番号２のアミノ酸配列を含むか、またはそれと少なくとも５０％が同一である該アミノ酸配列の変異体を含む）をコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である単離核酸分子。
【請求項５】
前記アルカリホスファターゼが、配列番号２のアミノ酸配列と、少なくとも７０％が同一であるアミノ酸配列を有する請求項３に記載の核酸分子。
【請求項６】
前記アルカリホスファターゼは、配列番号２のアミノ酸配列と、少なくとも８０％が同一であるアミノ酸配列を有する請求項３に記載の核酸分子。
【請求項７】
前記アルカリホスファターゼがＰａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓアルカリホスファターゼである請求項１〜６のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項８】
作動的にプロモーター配列へ結合した請求項１〜７のいずれかに記載の核酸分子を含む遺伝子構築体。
【請求項９】
請求項１〜７のいずれかに記載の核酸分子を含み、宿主細胞中で増殖可能である組換え発現ベクター。
【請求項１０】
前記ベクターが、プラスミドベクターもしくはウイルスベクターである請求項９に記載の組換え発現ベクター。
【請求項１１】
請求項９〜１１のいずれかに記載の構築体もしくはベクターによりトランスフォームされた細胞。
【請求項１２】
前記細胞は原核細胞である請求項１１に記載の細胞。
【請求項１３】
前記細胞は真核細胞培養物の一部である請求項１１に記載の細胞。
【請求項１４】
請求項１〜３のいずれかで定義されたヌクレオチド配列を含む核酸分子を有する組換え細胞または組換え生物。
【請求項１５】
以下の（ａ）もしくは（ｂ）を含む、遺伝子組換え熱不安定性アルカリホスファターゼ：
（ａ）配列番号２のアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分
（ｂ）配列番号２のアミノ酸配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分。
【請求項１６】
配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を有する、請求項１５に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【請求項１７】
前記組換えアルカリホスファターゼがＰａｎｄａｌｕｓ ｂｏｒｅａｌｉｓアルカリホスファターゼである請求項１５または１６に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【請求項１８】
熱不安定性アルカリホスファターゼを発現可能であり、配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む組換え細胞または組換え生物。
【請求項１９】
熱不安定性アルカリホスファターゼを発現可能であり、配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む組換え細胞または組換え生物。
【請求項２０】
請求項９に記載の発現ベクターで宿主細胞をトランスフォームし、
培地で該細胞を維持し、
該細胞により発現された熱不安定性アルカリホスファターゼを単離することを含む、熱不安定性アルカリホスファターゼの製造方法。
【請求項２１】
配列番号１５のヌクレオチド配列、または該ヌクレオチド配列と少なくとも５５％の配列同一性を有するヌクレオチド配列、および／または中程度のストリンジェンシー条件下で配列番号１５の相補的配列とハイブリダイズすることが可能なヌクレオチド配列、または前記各配列の相補的配列を含み、
前記ヌクレオチド配列は、熱不安定性アルカリホスファターゼをコードしている配列をコードするか、またはその配列と相補的である核酸分子。
【請求項２２】
以下の（ａ）もしくは（ｂ）を含む、組換え熱不安定性アルカリホスファターゼ：
（ａ）配列番号１６のアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分
（ｂ）配列番号１６のアミノ酸配列と少なくとも６０％の配列同一性を有するアミノ酸配列の全部もしくは意義を有する部分。
【請求項２３】
配列番号１６のアミノ酸配列または配列番号１６の配列と少なくとも７５％の配列同一性を有するアミノ酸配列を有する、請求項２２に記載の組換えアルカリホスファターゼ。
【国際調査報告】
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