(57)【要約】本発明は、アニマル・ヘルス、具体的にはウマ・ヘルペスウイルス（ＥＨＶ）により引き起こされるウマの疾患に属する。本発明は、ウマ・ヘルペスウイルスのゲノムを含む人工染色体、外来遺伝子が挿入されているか又は挿入されていない弱毒化又は毒性ＥＨＶの産生方法、該方法により得られるＥＨＶ及び該ウイルスを含む医薬組成物に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
本質的にＥＨＶ株の全ゲノムを含むことを特徴とする、細菌性人工染色体ベクター。
【請求項２】
ＥＨＶが、ＥＨＶ−1である、請求項１に記載の人工染色体ベクター。
【請求項３】
ＥＨＶが、ＥＨＶ−４である、請求項１又は請求項２に記載の人工染色体ベクター。
【請求項４】
ＥＨＶ株が、RacHである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項５】
寄託番号ECACC 01032704のベクターである、請求項４に記載の人工染色体ベクター。
【請求項６】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＢを欠失している、請求項１〜５のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項７】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＣを欠失している、請求項１〜６のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項８】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＤを欠失している、請求項１〜７のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項９】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＥを欠失している、請求項１〜８のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１０】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＧを欠失している、請求項１〜９のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１１】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＨを欠失している、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１２】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＩを欠失している、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１３】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＫを欠失している、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１４】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＬを欠失している、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１５】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇＭを欠失している、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１６】
ＥＨＶ株が、糖タンパクｇｐ1/2を欠失している、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１７】
ECACCにおいて寄託番号Q4297で寄託されている人工染色体であることを特徴とする、請求項１〜１６のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター。
【請求項１８】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の人工染色体ベクター又はそこに含まれるＥＨＶをコード化するポリヌクレオチド。
【請求項１９】
感染性ＥＨＶを産生するための、請求項１〜１８のいずれか１項記載の人工染色体ベクター又はポリヌクレオチドの使用。
【請求項２０】
請求項１〜１９のいずれか１項に記載の人工染色体ベクターを使用して適当な細胞系に感染させ、脱落させたウイルスを回収し、精製することを特徴とする、複製ＥＨＶの産生方法。
【請求項２１】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の人工染色体ベクターに含まれるＥＨＶ配列を、分子生物学的技術により特異的に修飾することを特徴とする、弱毒化ＥＨＶの産生方法。
【請求項２２】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の人工染色体ベクターに含まれるＥＨＶ配列を、分子生物学的技術により特異的に修飾し、該ＥＨＶ配列が、他のウイルス、細菌又は寄生病原体の外来配列を含むことを特徴とする、弱毒化ＥＨＶのクローニング及び産生方法。
【請求項２３】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の人工染色体ベクターを、分子生物学的技術により特異的に修飾することを特徴とする、病原性ＥＨＶのクローニング及び産生方法。
【請求項２４】
請求項２０〜２３のいずれか１項に記載の方法により得られるＥＨＶ。
【請求項２５】
請求項１８に記載のポリヌクレオチド及び医薬的に許容可能な担体及び/又は賦形剤を含む医薬組成物。
【請求項２６】
請求項２４に記載のＥＨＶ及び医薬的に許容可能な担体及び/又は賦形剤を含む医薬組成物。
【請求項２７】
ＥＨＶ感染の予防及び/又は治療用のワクチン製造における、請求項１８に記載のポリヌクレオチドの使用。
【請求項２８】
ＥＨＶ感染の予防及び/又は治療用のワクチン製造における、請求項２４に記載のＥＨＶの使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アニマル・ヘルス、具体的にはウマ・ヘルペスウイルス（ＥＨＶ）により引き起こされるウマの疾患に属する。本発明は、ウマ・ヘルペスウイルスのゲノムを含む人工染色体、弱毒化ＥＨ-ウイルスの産生方法、該方法により得られるＥＨ-ウイルス及び該ウイルスを含む医薬組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
ウマ・ヘルペスウイルス１（ＥＨＶ-1）（Alphaherpesvirinaeの一種である）は、ウマにおけるウイルス誘発流産の主な原因であり、呼吸器系及び神経系疾患を引き起こす。ＥＨＶ-１ Ab4p株の全ＤＮＡ配列は、決定された(Telford, E.A.Rら、1992年)。ほんのわずかな遺伝子及び遺伝子産物しか、ＥＨＶ-1の病原性又は免疫原性に関するそれらの関連性について特徴付けされていない。それは、ウイルス突然変異株の産生が、ウイルスゲノムと、培養哺乳類細胞に挿入されるべきそれぞれの外来ＤＮＡとの相同的組換えによる組換えウイルスの産生に、いまだに頼られているからである。
【０００３】
ＥＨＶ-1感染のコントロールに関する二つの異なるアプローチを以下に示す。第一に、修飾生ワクチン（ＭＬＶ）が開発され、それはRacH株を含み(Mayr,Aら、1968年、Hubert, P. H.ら、1996年)、ヨーロッパ及び米国において広く使用されている。第二に、不活化ワクチン及び独立して発現されたウイルス糖タンパクが、それらの免疫原性及び防御性ポテンシャル（protective potential）について評価された。組換えを使用して発現された糖タンパクのうち、バキュロウイルスは、糖タンパク(g)Ｂ、Ｃ、Ｄ及びＨであり、それらは、マウスモデルにおいて、引き続くＥＨＶ-1感染の曝露に部分的防御を誘導した（Awan, A. Rら、1990年; Tewari, D.ら、1994年;Osterrieder, N.ら、1995年;Stokes, A.ら、1996年）。しかし、ＭＬＶの使用には、死菌及びサブユニットワクチンを超える利点がある。ＭＬＶは、細胞性免疫応答を誘導する高い効果を有し、それは疾患に対する防御に応答可能と最も思われる（Allen, G. P.ら、1995年;Mumford, J. A.ら、1995年）。
【０００４】
ヘルペスウイルス糖タンパクは、感染の初期段階において、細胞からのウイルス粒子の放出において、また、隣接細胞の融合によるウイルス粒子の直接的な細胞間拡散において、重大に関与する。これまで、１１のヘルペス単ウイルス型１（ＨＳＶ-1）コード糖タンパクが同定され、ｇＢ、ｇＣ、ｇＤ、ｇＥ、ｇＧ、ｇＨ、ｇＩ、ｇＪ、ｇＫ、ｇＬ及びｇＭと命名されている。ｇＣ、ｇＥ、ｇＧ、ｇＩ、ｇＪ及びｇＭを欠失するＨＳＶ-1突然変異株は生長可能であり、それは、これらの遺伝子が培養細胞において複製に不要であることを示唆している。ＨＳＶ-1とウマヘルペスウイルス１ヌクレオチド配列との比較は、公知ＨＳＶ-1糖タンパクのすべてが、ＥＨＶ-1に保存されていることを明らかにした。現在の命名法により、これらの糖タンパクは、それらのＨＳＶ-1相同体と呼称される。さらに、gp1/2と称されるさらなるエンベロープタンパク及びテグメントタンパク、ＨＳＶ-1のＶＰ13/14相同体は、ＥＨＶ-1の場合にはグリコシル化されていることが記載されている（Osterriederらにより再調査された。1998年）。ＥＨＶ-1 ｇＣ、ｇＥ、ｇＩ及びｇＭは細胞培養における増殖に必須ではないが、一方、ｇＢ及びｇＤは培養細胞におけるウイルス増殖に必須と思われることが知られている。培養細胞における複製に対する、他のＥＨＶ-1糖タンパクの貢献は知られていない（Neubauerら、1997年;Flowersら、1992年）。
【０００５】
ｇｐ1/2糖タンパクは、遺伝子７１によりコードされ（Wellingtonら、1996年; Telfordら、1992年）、それらがin vitroにおいてウイルス増殖に必須ではないことも示された（Sunら、1996年）。さらに、遺伝子７１翻訳領域においてlacZ挿入配列(insertion)を輸送するウイルス突然変異株は、感染マウスモデルにおいては無反応（apathogenic）であったが、引き続く感染の曝露(subsequent challenge infection)に対しては、防御可能であった（Sunら、1996年; Marahall et al, 1997）。さらに、ＥＨＶ-1のKyA株は、遺伝子７１のコード配列に主要な欠失部分を含む（Colleら、1996年）。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の根底にある技術的課題は、所定の特異性を有する弱毒化ウマヘルペスウイルスを産生する新規手段（tool）及び方法を提供することであった。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記の技術的課題は、請求の範囲及び詳細な記載に特徴付けられる態様により解決される。
本発明は、ＥＨＶのゲノムを含む人工染色体、弱毒化ＥＨＶの製造方法、該方法により得られるＥＨＶ及び該ウイルスを含む医薬組成物に関する。
【０００８】
発明の詳細な説明
本発明の態様に先立ち、本明細書及び請求の範囲に使用する「一の〜、その〜（a, an, the）」等の単数形の語は、文脈中に明らかに指示しない限りは、複数形の語を含むことに注意しなければならない。従って、例えば、「ウイルス（a virus）」と言及した場合、そのようなウイルスの複数を含み、「細胞（cell）」といった場合は、一つ又はそれ以上の細胞及び当業者に公知なそれと均等のものをいい、他についても同様である。他に規定しない限り、本明細書中に使用する全ての技術的及び科学的用語は、本発明が属する技術分野の通常の当業者により一般的に理解されるものと同様の意味を有する。本明細書に記載したものと同じか均等のあらゆる方法及び物質も、本発明の実施又は試験において使用し得るが、好ましい方法、装置及び物質は本明細書に記載される。本明細書に記載したすべての刊行物(publication)は、本発明との関連において使用することができる刊行物に報告されている細胞系、ベクター及び方法体系を記載及び開示するために参照文献として本明細書に含まれるものとする。先行発明によりそのような開示に先行する権利が本発明に与えられないことを認めていると解釈されるものは存在しない。
【０００９】
本明細書において「ＥＨＶ」又は「ＥＨ-ウイルス」は、ウマヘルペスウイルスに関する。
本発明は、人工染色体ベクターであって、ＥＨＶ株の全ゲノムを本質的に含み、それらから、許容細胞への形質移入後に感染性子孫が再構築され得る、上記人工染色体ベクターに関する。
本発明の人工染色体ベクターにより、所定の弱毒性を有するＥＨＶを含む安全なＥＨＶワクチンを産生することができる。そのようなウイルスは、ＥＨＶ感染の予防及び／又は治療に使用するための安全な生ワクチンの作製に有用である(以下を参照)。本発明は、真核細胞への十分な感染性を残しているか、複製-欠失ウイルス(replication-deficient virus)に変更（modify）されているＥＨＶゲノムの迅速かつ効率的な操作の可能性を提供する。当該技術分野において、長期間、ＥＨＶの莫大なゲノムを扱いかつ操作する手法が必要とされていた。最後に、ＥＨＶ核酸は、ポリヌクレオチドワクチンとして使用することができ、未処置の(naive)又は準備刺激された（primed）ウマに対して、局所又は全身のいずれかで適用され、また、子宮内 (in utero) において適用することもできる。
【００１０】
本発明を、感染性ミニＦプラスミド（「細菌性人工染色体」、ＢＡＣ）としてＥＨＶ-1の全ゲノムをEscherichia coliにクローニングすることを示す実施例１において説明する。該ＢＡＣの産生は、自明ではなく、十分な量の環状ＤＮＡを作製及び抽出することを含む多くの困難がある。組換えウイルスＤＮＡの環状形態は、ミニＦプラスミド-クローン化ＥＨＶ ＤＮＡを作製するのに組換えＤＮＡでＤＨ10Ｂ細胞を形質転換するのに必要であった。十分な量の環状ウイルスＤＮＡを得るために、初期のウイルス転写を、細胞の感染後にシクロヘキシミド100μｇ／ｍｌを添加することにより阻害した。その後、ウイルスＤＮＡを作製し、ＤＨ10Ｂ細胞の形質転換のために使用した。シクロヘキシミドで処理した細胞からのみ、十分な量の環状ＤＮＡを抽出し、全RacHゲノムを含有するＤＨ10Ｂクローンを得ることが可能であった。
【００１１】
「本質的に」とは、ＥＨＶゲノムが、以下に示すような突然変異を保持し得ること以外は完全であることを意味する。
「人工染色体」は、公知の人工染色体のいずれか、例えば酵母、又は好ましくは細菌性人工染色体に関する。
好ましくは、本発明の細菌性人工染色体（ＢＡＣ）は、細菌性E. coliに見出される自然に生じるＦ−因子プラスミドに基づく、Escherichia coli細胞において大きなＤＮＡ断片（100〜300-kb挿入サイズ）をクローン化するために使用される（Shizuya, H.、B. Birren、U.J. Kimら、1992年. Cloning and stable maintenance of 300-kilobase-pair fragments of human DNA in Escherichia coli using an F-factor-based vector. Proceedings National Academy of Science 89: 8794〜8797頁）。ベクターの型は、好ましくは、Ｅ.coli当たり１又は２のレベルでそのコピー数を維持するのに関連している、複製起点（oriS）及びそれぞれのＤＮＡポリメラーゼ（repE）並びに遺伝子parＡ及びparＢを含むＦ−プラスミドレプリコンに基づく。抗生物質耐性マーカーはＣｍ-耐性が好ましい。
【００１２】
本発明は、好ましくは、ＥＨＶがＥＨＶ-1であることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶがＥＨＶ-4であることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株がRacHであることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明により、複製-欠失及び／又は弱毒化ＥＨ−ウイルスを得るのに、あらゆるタイプの突然変異をＥＨＶゲノムに導入することができる。そのような変異株としては、糖タンパクｇＢ、ｇＣ、ｇＤ、ｇＥ、ｇＧ、ｇＩ、ｇＪ、ｇＬ及びｇＭ、ｇｐ1/2に関する突然変異株のいずれか（例えば欠失、挿入、置換）及びそれらの組み合わせのいずれかを含むが、それらに限定されるものではない。好ましくは、上記突然変異は、欠失突然変異、すなわち、それぞれの糖タンパク、例えばｇＭが完全に欠失しているものである。
【００１３】
従って、本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＢを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＣを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＤを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＥを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
【００１４】
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＧを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＨを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＩを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＫを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＬを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
【００１５】
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクｇＭを欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、ＥＨＶ株が糖タンパクgp1/2を欠失していることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
本発明は、好ましくは、人工染色体が細菌性人工染色体（ＢＡＣ）であることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。上記ＢＡＣは、当業者に公知のどの細菌においても、例えば、好ましくはEsherichia coliにおいても増殖させることが可能である。
本発明は、好ましくは、人工染色体が酵母菌人工染色体（ＹＡＣ）であることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターに関する。
【００１６】
本発明は、好ましくは、人工染色体が、イギリス、ポートンダウンのECACC(European Collection of Cell Cultures, CAMR, Salisbury, Wiltshire SP4 0JG, UK)において、寄託番号 ECACC 01032704 で寄託されているものであることを特徴とする、本発明の人工染色体ベクターRacH-BACに関する。
本発明の他の重要な態様は、本発明の人工染色体ベクター又はそこに含まれるＥＨＶをコードするポリヌクレオチドワクチンである。
さらに、本発明の他の重要な態様は、感染性ＥＨＶの産生に関する本発明の人工染色体ベクターの使用である。
さらに、本発明は、感染性ＥＨＶの産生方法であって、本発明の人工染色体ベクターを使用して適当な細胞系を感染させ、脱落させた（shedded）ウイルスを回収し、精製することを特徴とする、上記方法に関する。
【００１７】
さらに本発明は、弱毒化ＥＨＶの産生方法であって、本発明の人工染色体ベクターに含まれるＥＨＶ配列を、分子生物学的技術により特異的に修飾することを特徴とする上記方法に関する。
上記修飾は、当技術分野に公知の方法、例えば部位特異的変異誘発により行うことができる。例えばSambrook ら、(1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New Yorkを参照されたい。
さらに、本発明は、本発明の方法により得られるＥＨＶに関する。
他の非常に重要な態様は、本発明のポリヌクレオチドを含有し、及び医薬的に許容され得る担体及び／又は賦形剤を含んでいてもよい医薬組成物である。本発明のそのようなポリヌクレオチドを、医薬組成物において、本発明の範囲内で、例えばＤＮＡワクチン接種のために使用することができる。
【００１８】
投与の対象系、例えば、本発明のポリヌクレオチドに関する一つの例は、コロイド分散系である。コロイド分散系は、高分子複合体、ナノカプセル、微小球（microsphere）及び水中油型エマルジョン、ミセル、混合ミセル及びリポソーム又はリポソーム組成物を含む脂質ベース系を含む。リポソームは、本発明の好ましいコロイド系である。リポソームは、人工膜ベシクルであり、in vitro 及びin vivoにおける運搬体として有用である。それらの組成物は、カチオン性、アニオン性又は中性の電荷を帯びていてもよい。大きさが0.2〜4.0μｍの大規模単層ベシクル（ＬＵＶ）は、多量の高分子(large macromolecule)を含有する水性緩衝溶液の大部分を封入できることが分かった。ＲＮＡ、ＤＮＡ及び無処置のウイルス粒子は、水相内部に被包され、生物学的活性形態において標的に運搬され得る（Fraley Rら、1981年、Trends Biochem Sci 6, 77〜80頁）。哺乳類細胞の他に、リポソームは、植物、酵母菌及び細菌細胞へのヌクレオチドの標的輸送に好適であることも分かった。効果的な遺伝子輸送担体であるように、以下の特性が存在すべきである：(1)遺伝子が、それらの生物学的活性を損なうことなく、高い効率で封じ込められるべきである；(2)非標的細胞と比較して標的細胞に対して、優先的かつ実質的に結合すべきである；(3)ベシクルの水相は、標的細胞の細胞質に高い効率で移送されるべきである；また、(4)遺伝情報は、正確かつ効率的に発現されるべきである（Mannino RJら、1988年, BioTechniques 6, 682〜690頁）。
【００１９】
リポソームの組成物は、通常、リン脂質の組み合わせ、具体的には、相転移温度の高いリン脂質、例えばステロイド、例えばコレステロールとの組み合わせを含む。他のリン脂質又は他の脂質を使用してもよい。リポソームの物理的特徴は、ｐＨ、イオン濃度及び二価カチオンの存在に依存する。
また、本発明の医薬組成物は、本発明のベクター、例えば上記ＥＨＶゲノムを含むＢＡＣベクターを、例えば、裸の(naked)「遺伝子発現ベクター」として含んでもよい。これは、本発明のベクターが、目的とする投与（例えば、リポソーム、コロイド粒子等）に関してアジュバントと関連（associate）しないことを意味する。裸のＤＮＡベクターの主な利点は、ベクターそれ自体により生じるあらゆる免疫応答が存在しないことである。
本発明のＥＨＶ核酸は、ポリヌクレオチドワクチンとして使用することが可能であり（上記医薬組成物を参照されたい）、それは、未処置の又は準備刺激したウマに、局所的（例えば、鼻腔内に）又は全身的のいずれかで適用され、また、子宮内(in utero)において適用することもできる。
【００２０】
他の非常に重要な態様は、本発明のＥＨＶ及び医薬的に許容可能な担体及び／又は賦形剤を含む医薬組成物である。
医薬的に許容可能な担体は、生理学的に許容可能な化合物を含むことが可能である。該化合物は、例えば、本発明のＥＨＶ又はポリヌクレオチドの徐放性製剤の一部を形成し、吸収を安定し、又は増加するように作用する。そのような生物学的に許容可能な化合物としては、例えば、炭水化物、例えばグルコース、スクロース又はデキストラン、抗酸化剤、例えばアスコルビン酸又はグルタチオン、キレート化剤、低分子量タンパク質又は他の安定剤又は賦形剤が挙げられる（例えば、Remington's Pharmaceutical Sciences (1990). 18th ed. Mack Publ. Eastonも参照されたい）。当業者であれば、生物学的に許容可能な化合物を含む医薬的に許容可能な担体の選択は、例えば組成物の投与経路に依存することを知っているであろう。
【００２１】
さらに、本発明は、ＥＨＶ感染の予防及び／又は治療用ワクチンの製造における、本発明のポリヌクレオチドの使用に関する。
さらに、本発明は、ＥＨＶ感染の予防及び／又は治療用ワクチンの製造における、本発明のＥＨＶの使用に関する。
さらに、本発明は、病原性が高く、遺伝的によく特徴づけられたＥＨＶを確立するためのＢＡＣ技術の使用に関する。免疫化、及び例えばワクチン力価(vaccine potency)研究において使用するための負荷（challenge）研究のために使用することができる。
さらに、本発明は、ＥＨＶの遺伝的又は非遺伝的変異体の出現を考慮して産生される、ＢＡＣ突然変異株を産生するための本発明のＥＨＶ ＢＡＣの使用に関する。これは、存在するＥＨＶ  ＢＡＣに容易に導入することができるＥＨＶの「新規変異体」内に存在する一つ又はそれ以上の突然変異株に関する。
以下の実施例は、本発明の理解を助けるためのものであり、決して、本発明の範囲を制限するとみなされるべきではない。
【実施例１】
【００２２】
EHV-1 細菌性人工染色体の構築
一般的に均一な個体群のRacH (256th 継代)を単離した。257継代RacHで、Rk13細胞を感染させ、母プール(mother pool)を確立した。RK13細胞における一つの追加の継代のウイルスを使用し、RK13細胞を感染し、そこからウイルスＤＮＡを作製した。ウイルスＤＮＡ 10マイクログラム(μg)を、プラスミド p71-pHA2 10 μgで（図１）、RK13細胞に同時形質移入した。プラスミド p71-pHA2 の構築のために、EHV-1 遺伝子71 のいずれか側の2.0及び2.4 kbp 断片(図１; 表1)を、好適な制限酵素部位を含むプライマーを使用して、ポリメラーゼ連鎖反応法 (PCR)により増幅した。両方の断片を、引き続き、pTZ18R (Pharmacia-Amersham)にクローン化し、プラスミドp71を得た（図１）。 HCMV（ヒトサイトメガロウイルス）の制御下、 Eco-gpt 及びGFP（緑色蛍光タンパク質）遺伝子を含むBACベクター（pHA2; Messerleら、1997年）を、PacI 断片として、プラスミドpHA2から放し、p71においてクローン化した 2.0 及び2.4 kbp断片の PacI 部位に挿入した(図1；表1)。ウイルス子孫を収集し、緑色蛍光タンパク質（GFP）を発現する個々のプラークを単離し、ウイルス子孫が蛍光顕微鏡下で均一な緑色に染色されるまで、プラーク精製を三回行った (Seyboldt ら、2000年)。同様に、p71-pHA2及びEHV-1 ケンタッキーA (KyA)株のＤＮＡの同時形質移入を行い、組換えウイルスを均一に精製した。組換えウイルスＤＮＡを作製し（Schumacherら、2000年）、Escherichia coli DH10B 株(Messerleら、1997年; Schumacherら、2000年)に電気穿孔した。エレクトロコンピテント細菌（electrocompetent bacteria）を記載のように作製し (Muyrersら、1999年; Narayananら、1999年; Zhangら、1998年)、電気穿孔を、0.1cmのキュベットにおいて、1250 V、抵抗200 Ω及び静電容量25μF で行った(Easyject electroporation system, Eurogenentec)。形質転換した細菌を、0.4% グルコースで補足したルリア−ベルターニ(ＬＢ)培地 (28) 1 ml中で、１時間、37℃でインキュベートし、その後、クロラムフェニコール30μg/mlを含有するＬＢ寒天にプレーティングした。単一のコロニーを液体ＬＢ倍地に取りだし、ＢＡＣ ＤＮＡの小規模プレパレーションを、Escherichia coli のアルカリ溶解により行った(Schumacherら、2000年)。ＢＡＣ ＤＮＡの大規模プレパレーションを、商業上入手可能なキット(Qiagen, Macherey & Nagel)を使用して、シリカベースのアフィニティクロマトグラフィにより成し遂げた。
【００２３】
クロラムフェニコール耐性細菌性コロニーから、一つのコロニーそれぞれを選び、RacH-BACと名づけ、ここで、それはEHV-1 RacHゲノムを含んでいる。RACH-BAC DNA を制限酵素BamHI, EcoRI 及びHindIII で切断し、その制限酵素パターンを、親ウイルスＤＮＡのものと比較した。(Schumacherら、2000年)。遺伝子７１座へのミニＦプラスミドの挿入後、バンド形成パターンにおいて、計算されかつ予期された変化が、RacH-BACに観察された。一方、親ウイルスと比較して、制限酵素パターンにおいて、他の違いは明らかではなかった(図２)。アフィニティクロマトグラフィを用いたRacH-BAC DNAの精製の後、RK13細胞を組換えＤＮＡ１μｇで形質転入した。形質転入の１日後、緑色蛍光細胞のフォーカス（foci）が認識され、それらは、感染の後日にプラークに発展したものである（図３）。これらの結果から、ＥＨＶ−1のRacH 菌株は、Escherichia coliにおける感染性の完全長(full-length)のウイルスＤＮＡとして、クローン化されたと結論付けられた。RacH-BACにおける遺伝子７１の欠失は、プラークの大きさにおいて、10%減少よりも少なかった（図３）。
【００２４】
【表１】
2004531254.tif 000002
【００２５】
EHV-1 BACsの変異原性
Escherichia coliにおけるRacH-BAC DNAの変異原性に関して、線状ＤＮＡ断片間の相同的組換えを促進するrecE-及びrecT-触媒反応（E/T クローニングとも言われる）を行った (Muyrers ら、1999年; Zhangら、1999年)。RecE、recT 及びバクテリオファージλ gam 遺伝子(Narayananら、1999年)を含むプラスミドpGETrec (Dr. Panos Ioannou, Murdoch Institute, Melbourne, オーストラリア、より好意的に提供された)をRacH-BAC-含有DH10B細胞に形質転換した。0.2%アラビノースの添加によるrecE、recT及びgamの導入後、エレクトロコンピテントを、記載のように基本的に作製した (Muyrersら、1999年)。RACH-BACにおけるgD及びgM 遺伝子の欠失のため、プラスミドpACYC177 (Stratagene)のカナマイシン耐性遺伝子(kanR)をPCRにより増幅した。設計されたプライマーは、gD 又はgM 内に所望の欠失をボーダリングする(bordering)５０ヌクレオチドの相同性アーム及びkanR の増幅のための２０ヌクレオチドを含んでいた。(表１)。得られた0.95 kbp 断片をアガロースゲル (Qiagen)から精製し、pGETrec-含有RacH-BAC細胞に電子穿孔した。camR 及びkanR 遺伝子を含むコロニーを、両方の抗生物質を含むプレート上で同定した。
H-BAC△gD 及びH-BAC△gM DNA をEscherichia coli から、クロマトグラフィにより単離し、制限酵素消化にかけ、サザンブロット分析（図４）の形質転入研究を行った。RacH-BAC及びH-BAC△gMは、RK13細胞上にウイルスプラークを産生可能であったが、H-BAC△gDは、トランス(in trans) のみgD を発現する細胞上にプラークを産生可能であった。組換えプラスミドの転入の後、gD 細胞は、一過性に(transiently)EHV-1 gD を発現し、ここで、gD は、HCMV 最初期プロモーター/エンハンサーの制御下にある。これらの観察から、EHV-1 gD が、in vitroにおけるウイルス増殖に必須であることが示された。
References
Adler H., M. Messerle, M. Wagner, and U.H. Koszinowski UH. 2000. Cloning and mutagenesis of the murine gammaherpesvirus 68 genome as an infectious bacterial artificial chromosome. J Virol.74: 6964-6974.
Borst, E.M., G. Hahn, U.H. Koszinowski, and M. Messerle. 1999. Cloning of the human cytomegalovirus (HCMV) genome as an infectious bacterial artificial chromosome in Escherichia coli: a new approach for construction of HCMV mutants. J. Virol. 73: 8320-8329．
Flowers, C.C. and OCallaghan, D.J., 1992. The equine herpesvirus type 1 (EHV-1) homolog of herpes simplex virus type 1 US9 and the nature of a major deletion wethin the unique short segment of the EHV-1 KyA strain genome. Virology 190, 307-315．
Hubert, P.H., Birkenmaier, S., Rziha, H.J. and Osterrieder, N., 1996. Alterations in the equine herpesvirus type-1 (EHV-1) strain RacH during attenuation. J. Vet. Med. B 43, 1-14.
Marshall KR, Sun Y, Brown SM, Field HJ. An equine herpesvirus-1 gene 71 deletant is attenuated and elicits a protective immune response in mice. Virology. 1997 28;231(1):20-7.
Mayr, A., Pette, J., Petzoldt, K. and Wagener, K., 1968. Untersuchungen zur Entwicklung eines Lebendimpfstoffes gegen die Rhinopneumonitis (Stutenabort) der Pferde. J. Vet. Med. B 15, 406-418.
Meindl, A. and Osterrieder, N., The equine herpesvirus 1 Us2 homolog encodes a nonessential membrane-associated virion component J. Virol., 73(4):3430-7, 1999.
Messerle, M., I. Crnkovic, W. Hammerschmidt, H. Ziegler, and U.H. Koszinowski. 1997. Cloning and mutagenesis of a herpesvirus genome as an infectious bacterial artificial chromosome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94: 14759-14763.
Mumford, J.A., Hannant, D.A., Jessett, D.M., ONeill, T., Smith, K.C. and Ostlund, E.N., 1995. Abortigenic and neurological disease caused by experimental infection with liquid herpesvirus-1. In“Proceedings 7th International Conference of Equine Infectious Disease”(H. Nakajima and W. Plowright, Eds.) pp. 261-175. R&W Publ., Newmarket, U.K. United Kingdom.
Muyrers, J.P., Y. Zhang, G. Testa, and A.F. Stewart. 1999. Rapid modification of bacterial artificial chromosomes by ET-recombination. Nucleic Acids Res. 27: 1555-1557.
Narayanan, K., R. Williamson, Y. Zhang, A.F. Stewart, and P.A. Ioannou. 1999. Efficient and precise engineering of a 200 kb beta-globin human/bacterial artificial chromosome in E. coli DH10B using an inducible homologous recombination system. Gene Ther. 6: 442-447.
Neubauer, A., Beer, M., Brandmuller, C., Kaaden, O.-R. and Osterrieder, N., 1997. Equine herpesvirus 1 mutants devoid of glycoprotein B or M are apathohenic for mice but induce protection against challenge infection. Virology 239, 36-45.
Osterrieder, N., Neubauer, A., Brandmuller, C., Braun, B., Kaaden, O.-R. and Baines, J.D., 1996. The equine herpesvirus 1 glycoprotein gp21/22a, the herpes simplex virus type 1 gM homolog, is involved in virus penetration and cell-to-cell spread of virions. Journal of virology, June 1996, p. 4110-4115.
Osterrieder, N., Wagner, R., Brandmuller, C., Schmidt, P., Wolf, H. and Kaaden, O.-R., 1995. Protection against EHV-1 challenge infection in the murine model after vaccination with various formulations of recombinant glycoprotein gp14 (gB). Virology 208, 500-510.
Peeters, B., Biendowska-Szewcyk, K., Hulst, M., Giellens, A. and Kimman, T., 1997. Biologically safe, non-transmissible pseudorabies virus vector vaccine protects pigs against both Aujeszky's disease and classical swine fever. J. Gen. Virol. 78, 3311-3315.
Sambrook, J., Fritsch, D.F. and Maniatis, T., 1989. Molecular Cloning: A laboratory manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.
Sun Y, MacLean AR, Dargan D, Brown SM. Identification and characterization of the protein product of gene 71 in equine herpesvirus 1. J Gen Virol. 1994 Nov;75 ( Pt 11):3117-26.
Telford, E.A.R., Watson, M.S., McBride, K. and Davison, A.J., 1992. The DNA sequence of equine herpesvirus-1. Virology 189, 304-316.
Tewari, D., Whalley, J.M., Love, D.N. and Field, H.J., 1994. Characterisation of immune responses to baculovirus expressed equine herpesvirus type 1 glycoproteins D and H in a murine model. J. Gen. Virol. 75, 1735-1741.
Wagner, M., S. Jonjic, U.H. Koszinowski, and M. Messerle. 1999. Systematic excision of vector sequences from the BAC-cloned herpesvirus genome during virus reconstitution. J. Virol. 73:7056-7060.
Zhang, Y., F. Buchholz, J.P. Muyrers, and A.F. Stewart. 1998. A new logic for DNA engineering using recombination in Escherichia coli. Nature Genet. 20:123-128.
【００２６】
2004531254.tif 000003
2004531254.tif 000004
2004531254.tif 000005
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】RacH ゲノム(A)へのミニＦプラスミドの導入に関するクローニング計画。ゲノム(B)のＵＳ領域に位置する遺伝子７１の境界(bordering)断片のＰＣＲ増幅を行い、得られた BamHI-KpnI 及びSalI-SphI 断片を、ベクターpTZ18R (C)に継続的にクローン化した。ミニＦプラスミド配列を、組換えプラスミド pHA2 (Adlerら、2000年)からPacI を用いて放し、クローン化し、組換えプラスミドp71-pHA2 (D)を作製した。このプラスミドをRacH DNAで、RK13細胞に同時形質移入し、蛍光発光ウイルス子孫を選択した。緑色蛍光発光性ウイルス子孫由来のウイルスＤＮＡを使用し、 Escherichia coli DH10B 細胞を形質転換し、ここから感染性RacH-BAC を単離した。制限酵素部位及びスケール(kbp)を示した。
【図２】RacH 及びRacH-BACの制限酵素消化。0.8% アガロースゲル電気泳動法による分離の後、断片をナイロン膜 (Pharmacia-Amersham)に移動し、標識化した pHA2 プローブでハイブリッド形成した (図１参照)。ミニ Fプラスミド配列の挿入のために存在する反応性断片を、星印で示した。分子量マーカーは１kbラダー(ladder) (Gibco-BRL)であった。使用した制限酵素を示した。
【図３】RacH 及びRacH-BACのプラークサイズ。プラークサイズをRK13細胞上で、それぞれ150プラークの直径を測定することにより判定した。 RacH のプラークサイズを100%にそれぞれ設定し、BACから最構成されたウイルス子孫のプラークサイズを親ウイルスのものと比較した。標準偏差を示した。
【図４】E/Tクローニングを使用して、カナマイシン耐性遺伝子(kanR)で翻訳領域を置換することによる、RacH-BACにおけるgD (a)又はgM (b)のコード遺伝子欠失の原理。表１に収載したプライマーを使用して、PCRにより、kanR 遺伝子を増幅し、単位複製配列をRacH-BAC及びプラスミドpGETrec を含有するDH10B 細胞に電子穿孔し、ここで、それらは、アラビノース誘導後に、E/Tクローニングを必要とする酵素を発現する(Schumacherら、2000)。カナマイシン耐性コロニーを取りだし、DNAを単離し、kanR-特異性プローブを使用してサザンブロット分析を行った。gD-陰性RacH-BAC (c) 及びgM-陰性RacH-BAC (d)の両方において、予期したサイズの断片 (gD: 20.4 kbp; gM: 9.3 kbp)は、kanR プローブと特異的に反応した。
【図１】
2004531254.tif 000006
【図２】
2004531254.tif 000007
【図３】
2004531254.tif 000008
【図４ａ】
2004531254.tif 000009
【図４ｂ】
2004531254.tif 000010
【図４ｃ】
2004531254.tif 000011
【図４ｄ】
2004531254.tif 000012
【国際公開パンフレット】
2004531254.tif 000013
2004531254.tif 000014
2004531254.tif 000015
2004531254.tif 000016
2004531254.tif 000017
2004531254.tif 000018
2004531254.tif 000019
2004531254.tif 000020
2004531254.tif 000021
2004531254.tif 000022
2004531254.tif 000023
2004531254.tif 000024
2004531254.tif 000025
2004531254.tif 000026
2004531254.tif 000027
2004531254.tif 000028
2004531254.tif 000029
2004531254.tif 000030
2004531254.tif 000031
2004531254.tif 000032
2004531254.tif 000033
2004531254.tif 000034
2004531254.tif 000035
2004531254.tif 000036
2004531254.tif 000037
2004531254.tif 000038
【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
2004531254.tif 000039
【国際調査報告】
2004531254.tif 000040
2004531254.tif 000041
2004531254.tif 000042
2004531254.tif 000043
2004531254.tif 000044
2004531254.tif 000045
2004531254.tif 000046
2004531254.tif 000047
2004531254.tif 000048
2004531254.tif 000049
2004531254.tif 000050