(57)【要約】プレデュラマイシンおよびプロデュラマイシンをコードする核酸が記載され、さらに、プレデュラマイシンおよびプロデュラマイシンを含む組換え核酸および宿主細胞ならびにランチビオティックス、デュラマイシンの製造のような、その使用方法が記載される。本発明はまた、デュラマイシンもしくはそのフラグメントをコードするＳ．ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓから単離された核酸配列を提供する。本明細書中で参照される核酸配列は、プレデュラマイシン（配列番号２）、プロデュラマイシン（配列番号４）、プレデュラマイシンリーダー配列（配列番号６）もしくはそれらのフラグメントをコードする配列である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
単離された核酸であって、該核酸は、以下：
（ａ）プレデュラマイシンをコードする配列番号２に記載の核酸；
（ｂ）プロデュラマイシンをコードする配列番号４に記載の核酸；
（ｃ）上記（ａ）もしくは（ｂ）の核酸と配列が少なくとも９５パーセント同一の核酸であって、そしてプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする、核酸；
（ｄ）遺伝子コードの縮重のために上記（ａ）、（ｂ）もしくは（ｃ）の核酸とは異なり、そして上記（ａ）、（ｂ）もしくは（ｃ）の核酸によりコードされるプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする、核酸
からなる群から選択される、核酸。
【請求項２】
前記核酸がＤＮＡである、請求項１に記載の核酸。
【請求項３】
配列番号２に記載の配列を有する、請求項１に記載の核酸。
【請求項４】
配列番号４に記載の配列を有する、請求項１に記載の核酸。
【請求項５】
請求項１に記載の核酸を含み、プロモーターと作動可能に連結した、組換え核酸。
【請求項６】
請求項５に記載の組換え核酸を含むベクター。
【請求項７】
前記ベクターがプラスミドである請求項６に記載のベクター。
【請求項８】
請求項１に記載の異種核酸を含み、そしてコードされたプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンを発現可能な組換え細胞。
【請求項９】
請求項８に記載の組換え細胞であって、宿主細胞がグラム陽性細菌である、細胞。
【請求項１０】
請求項８に記載の組換え細胞であって、該細胞がＢａｃｉｌｌｕｓ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属およびＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属からなる群から選択される、細胞。
【請求項１１】
プレデュラマイシン、プロデュラマイシンもしくはデュラマイシンを作製する方法であって、該方法は、以下：
コードされたプレデュラマイシンもプロデュラマイシンが発現される条件下で、請求項８に記載の宿主細胞を培養する工程；および
該培養宿主細胞から、プレデュラマイシン、プロデュラマイシンもしくはデュラマイシンを収集する工程
を包含する、方法。
【請求項１２】
請求項１１に記載の方法であって、前記宿主細胞がグラム陽性細菌である、方法。
【請求項１３】
請求項１１に記載の方法であって、前記宿主細胞がＢａｃｉｌｌｕｓ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属およびＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属からなる群から選択される、方法。
【請求項１４】
請求項１１に記載の方法であって、前記培養工程が前記宿主細胞によりデュラマイシンが生産される条件下で実行され；かつ前記収集工程が該培養宿主細胞からデュラマイシンを収集する工程を包含する、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ペプチドランチビオティックス（ｌａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ）デュラマイシンをコードする核酸配列に関する。
【背景技術】
【０００２】
（発明の背景）
ランチビオティックスは、希少なアミノ酸、ランチオニンおよび／もしくは３−メチルランチオニンを含む殺菌性ペプチドである。ランチビオティックスは、グラム陽性細菌により生成され、そしてリボソーム合成プレペプチドに由来する。このプレペプチドは、代表的にＮ末端リーダー配列であって、細胞からの分泌の間もしくは分泌後に切断される配列、およびＣ末端プロペプチドであって、翻訳後修飾され成熟ランチビオティックスを形成するプロペプチドからなる（Ｊｕｎｇ（１９９１）Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ  Ｃｈｅｍｉｅ  ３０（９）：１０５１−１１９２）。一つのこのような翻訳後修飾は、セリン残基もしくはスレオニン残基の、それぞれデヒドロアラニン（Ｄｈａ）もしくはデヒドロブチリン（Ｄｈｂ）を生じる酵素的脱水を含む（Ｗｅｉｌ，ら（１９９０）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９４：２１７−２２３）。その後、システイン残基のＳＨ基がＤｈａ残基もしくはＤｈｂ残基の二重結合と反応して、それぞれランチオニンもしくはメチルランチオニンを形成する。
【０００３】
ランチビオティックスは構造的かつ機能的に多様な分子である。それらは、３４アミノ酸残基長の伸張されたカチオン性ペプチドから、１９アミノ酸の正味の負電荷を有する球状分子に及ぶ。それらの構造的特性および機能的特性に基づいて、成熟ペプチドは二つの群、Ａ型およびＢ型に分けられている（Ｊｕｎｇ（１９９１）前出）。Ａ型ランチビオティックスは、伸張された両親媒性のペプチドであり、感受性細菌の膜上に一時的な孔を形成する（Ｓａｈｌ（１９９１）Ｇ．ＪｕｎｇおよびＨ．−Ｇ．Ｓａｈｌ（編），Ｎｉｓｉｎ  ａｎｄ  ｎｏｖｅｌ  ｌａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ（ｐ．３４７−３５８）Ｅｓｃｏｍ，Ｌｅｉｄｅｎ）。Ｂ型ランチビオティックスは、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓにより生成される球状ペプチドである。それらは２１００Ｄａより小さい分子量を有し、高い程度のアミノ酸配列相同性を共有し、そしてヘッド−トゥ−テイル縮合から構成される類似の環状構造を有する（Ｊｕｎｇ（１９９１），前出）。
【０００４】
Ａ型クラスは、それらのペプチド配列に従って、さらに小群に分けられている（ＳａｈｌおよびＢｉｅｒｂａｕｍ（１９９８）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５２：４１−７９）。小群ＡＩは、最も詳細に特徴づけられたメンバーとして、ニシン、サブチリン、エピデルミンおよびｐｅｐ５のようなニシン様のランチビオティックスを含む（Ａｌｌｇａｉｅｒ，ら（１９８６）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６０：９−２２；Ｇｒｏｓｓ，ら（１９６８）ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ  ２：６１−６４；Ｇｒｏｓｓ，ら（１９７１）Ｊ  Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．９３：４６３４−４６３５；Ｋａｌｅｔｔａ，ら（１９８９）Ａｒｃｈ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１５２：１６−１９；Ｗｅｉｌ，ら（１９９０）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９４：２１７−２２３）。小群ＡＩＩは、ラクチシン４８１、ＳＡ−ＦＦ２２、サリバリシンおよびバリアシンからなる（Ｈｙｎｅｓ，ら（１９９３）Ａｐｐｌ．Ｅｍｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５９：１９６９−１９７１；Ｐｉａｒｄ，ら（１９９３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１６３６１−１６３６８；Ｐｒｉｄｍｏｒｅ，ら（１９９６）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ，Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．６２：１７９９−１８０２；Ｒｏｓｓ，ら（１９９３）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５９：２０１４−２０２１）。
【０００５】
ランチビオティックスの別の特徴的な特性は、プレペプチドリーダー配列であり、これは、ｓｅｃ依存輸送システムにおいて利用される、より一般的なシグナル配列とは無関係である。リーダーペプチドは、修飾酵素および輸送システムならびにプロペプチドとの相互作用を介して、ランチビオティックスの成熟において重要な役割を果たし得る。そのため、個々の特性は、修飾システムの構成要素とそれらが操作する対応するプレペプチドとの間に存在し得る。リーダーペプチド配列に基づいたランチビオティックスの群分けおよび分類は、上記に記載した分類と矛盾しない（ＳａｈｌおよびＢｉｅｒｂａｕｍ（１９９８）前出）。
【０００６】
ランチビオティックスの生合成に関連する遺伝子は、オペロン様構造に組織される。小群ＡＩにおける全てのメンバーの生合成遺伝子座は、ランチビオティックスのための構成遺伝子であるｌａｎＡ；プレプロランチバイオティックのための翻訳後修飾酵素をコードするｌａｎＢおよびｌａｎＣ；プロセシングプロテアーゼをコードするｌａｎＰ；ランチビオティックスの分泌のためのＡＢＣ輸送体をコードするｌａｎＴを含む。エピデルミンおよびガリデルミンは、さらなる遺伝子ｌａｎＤ（Ｃ末端酸化的脱カルボキシル化に関連する）を有する（Ｋｕｐｋｅ，ら（１９９４）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：５６５３−５６５９；Ｋｕｐｋｅ，ら（１９９５）Ｊ．Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ．２７０：１１２８２−８９）。
【０００７】
対照的に、小群ＡＩＩランチビオティックスは、単純な生合成遺伝子座を有する。それらは、一つの遺伝子に含まれるｌａｎＢおよびｌａｎＣ；ｌａｎＭ；ならびにｌａｎＴに含まれるｌａｎＰおよびｌａｎＴから構成される（Ｃｈｅｎ，ら（１９９９）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．６５：１３５６−１３６０；Ｑｉ，ら（１９９９）Ａｐｐｌ  Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ  ６５：６５２−６５８；Ｒｉｎｃｅ，ら（１９９４）Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．６０：１６５２−１６５７）。ランチビオティックス遺伝子座はまた、生成株の自己防衛に関連する一連の免疫系遺伝子を含む（Ｓａｒｉｓ，ら（１９９６）Ａｎｔｏｎｉｅ  ｖａｎ  Ｌｅｅｗｅｎｈｏｅｋ  ６９：１５１−１５９）。さらに、ランチビオティックス遺伝子の発現は、一般的に単一の転写調節因子（Ｐｅｓｃｈｅｌ，ら（１９９３）Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．９：３１−３９；Ｑｉ，ら（１９９９）前出）もしくは二成分シグナル伝達系（ｄｅ  Ｒｕｙｔｅｒ，ら（１９９６）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７８：３４３４−３４３９；Ｋｌｅｉｎ，ら（１９９３）Ａｐｐｌｅ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５９：２９６−３０３；Ｋｕｉｐｅｒｓ，ら（１９９５）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０：２７２９５−２７３０４）のいずれかにより制御される。
【０００８】
ランチビオティックスであるデュラマイシンはまた、ＰＡ４００９としても知られており（図１）、Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ  ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｍ  ｆｏｒｍａ  ａｚａｃｏｌｕｔａ（ＡＴＣＣ１２６８６；現在はＳｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ亜種ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓと呼ばれる）の培養上清から単離された（Ｈａｙａｓｈｉら，（１９９０）Ｊ．Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ  ４３：１４２１；Ｐｒｉｄｈａｍ，ら（１９５６）Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ  ４６：５７５−５８１；Ｓｈｏｔｗｅｌｌ，ら（１９５８）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．８０：３９１２；Ｎａｋａｍｕｒａ，ら（１９８４）Ｂｉｏｃｈｅｍ．２３：３８５）。デュラマイシンは、リシノアラニン、ヘッド−トゥ−テイル架橋および水酸化アスパラギン酸を含む。リシノアラニンは、リシンのε−ＮＨ２基のデヒドロアラニンとの類似反応の結果として生じる。デュラマイシンの塩化物分泌を上昇させる能力が報告されている（Ｓｔｏｎｅ，ら（１９８４）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５９：２７０１；Ｃｌｏｕｔｉｅｒ，ら（１９８７）Ｐｅｄｉａｔｒ．Ｐｕｌｍｏｎｏｌ．１（補遺）：１１２；Ｃｌｏｕｔｉｅｒ，ら（１９８８）Ｐｅｄｉａｔｒ．Ｐｕｌｍｏｎｏｌ．２（補遺）：９９；Ｃｌｏｕｔｉｅｒ，ら（１９８９）Ｐｅｄｉａｔｒ．Ｐｕｌｍｏｎｏｌ．４（補遺）：１１６；Ｃｌｏｕｔｉｅｒ，ら（１９９０）Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２５９：Ｃ４５０）。貯留される肺粘液の分泌の停止を容易にするのためのデュラマイシンの使用が提供されている（例えば、米国特許第５，８４９，７０６号および同第５，７１６，９３１号）。さらに、デュラマイシンは、ホスファチジルエタノールアミンへの結合によりＢ．ｓｕｂｔｉｌｉｓの増殖を阻害する。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【０００９】
（発明の要旨）
本発明は、デュラマイシンをコードするＳｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ亜種ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓの遺伝子座を提供する。遺伝子およびこの遺伝子によりコードされたペプチドの例がまた、提供される。
【００１０】
本発明の目的は、デュラマイシンもしくはそのフラグメントをコードするＳ．ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓから単離された核酸配列を提供することである。本明細書中で参照される核酸配列は、プレデュラマイシン（配列番号２）、プロデュラマイシン（配列番号４）、プレデュラマイシンリーダー配列（配列番号６）もしくはそれらのフラグメントをコードする配列である。
【００１１】
別な方法で記載すれば、本発明は、以下：（ａ）プレデュラマイシンをコードする配列番号２に記載の核酸；（ｂ）プロデュラマイシンをコードする配列番号４に記載の核酸；（ｃ）上記（ａ）もしくは（ｂ）の核酸と配列が少なくとも９０パーセント、９５パーセントもしくは９９パーセントまで同一な（または配列番号６のプレデュラマイシンリーダー配列とこのような同一性を有する）核酸であって、そしてプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする核酸ならびに／または、例えば、ストリンジェントなハイブダイゼーション条件下、上記（ａ）もしくは（ｂ）の配列またはそれらの相補体とハイブリダイズする核酸であって、そしてプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする核酸；ならびに（ｄ）遺伝子コードの縮重に起因して、上記（ａ）、（ｂ）もしくは（ｃ）の核酸とは異なる核酸であって、そして上記（ａ）、（ｂ）もしくは（ｃ）の核酸によってコードされるプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする核酸からなる群から選択される、単離された核酸を提供する。
【００１２】
本発明の別の目的は、デュラマイシン遺伝子によりコードされたペプチドおよびベクターならびにこれらのペプチドをコードする核酸配列を含む宿主細胞を提供することである。本明細書中で参照されるペプチド配列は、プレデュラマイシン（配列番号３）、プロデュラマイシン（配列番号５）、プレデュラマイシンリーダー（配列番号７）およびそれらの誘導体である。
【００１３】
本発明の別の目的は、特許請求されたあらゆる核酸配列の少なくとも一つのフラグメントを含む発現ベクターおよびこのベクターを含む宿主細胞を提供することである。本発明はさらに、上記の所定の核酸によりコードされたペプチドもしくはそのフラグメント（例えば、本明細書中、配列番号５として提供されるペプチド配列）の発現を提供する。このようなペプチドは、公知の技術にしたがって単離および／もしくは精製され得る。
【００１４】
本発明の別の目的は、プレデュラマイシンペプチド、プロデュラマイシンペプチドもしくは成熟デュラマイシンペプチドの生成方法を提供することである。この方法は、適切な宿主細胞にプレデュラマイシンもしくはプロデュラマイシンをコードする核酸配列を導入する工程、このようなペプチドを生成するために適切な条件下で前記細胞を培養する工程および前記細胞から生成されたプレデュラマイシン、プロデュラマイシンもしくは成熟デュラマイシンを単離する工程を包含する。好ましくは、宿主細胞は、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ属もしくはＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属由来のようなグラム陽性細菌である。
【００１５】
本発明のさらなる目的は、遺伝子工学を介してプレデュラマイシンリーダー配列を他の公知のランチビオティックス配列に融合することにより組換えランチビオティックスを生成する方法を提供することである。
【００１６】
本発明の前記および他の目的および局面は、以下に示される本明細書中で詳細に説明される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
（好ましい実施形態の詳細な説明）
本発明は、ここで本明細書中以下に、添付の図面を参照してより完全に記載され、本発明の好ましい実施形態が示される。しかし、本発明は、異なった形態で実施され得、本明細書中に示される実施形態に限定されるものとして解釈されるべきではない。むしろ、これらの実施形態は、この開示が詳細かつ完全であり、当業者に発明の範囲を完全に伝達するために提供される。
【００１８】
本明細書中で開示されるアミノ酸配列は、左から右に、アミノからカルボキシル（ｃａｒｂｏｘｙ）方向に示される。アミノ基およびカルボキシル基は、配列中には表記されない。ヌクレオチド配列は、本明細書中では、左から右に、５’から３’方向に一本鎖のみが示される。ヌクレオチドおよびアミノ酸は、本明細書中では、米国特許法施行規則１．８２２および確立された慣例にしたがって、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ  Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎにより推奨される方法で、もしくは（アミノ酸については）三文字コードにより表される。例えば、Ｐａｔｅｎｔ  Ｉｎ  Ｕｓｅｒ  Ｍａｎｕａｌ，９９−１０２（Ｎｏｖ．１９９０）（Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ  ａｎｄ  Ｔｒａｄｅｍａｒｋ  Ｏｆｆｉｃｅ）参照。
【００１９】
用語「相同性」は、本明細書中で使用される場合、相補性の程度に言及する。部分的な相同性もしくは完全な相同性（すなわち、同一）があり得る。同一の配列が標的核酸にハイブリダイズすることを少なくとも部分的に阻害する部分的に相補的な配列は、機能的な用語「実質的に相同」を使用して言及される。完全に相補的な配列の標的配列へのハイブリダイゼーションの阻害は、ハイブリダイゼーションアッセイ（サザンブロットもしくはノザンブロット、液体ハイブリダイゼーションなど）を用いて、低ストリンジェンシーの条件下で調べられ得る。実質的に相同な配列またはハイブリダイゼーションプローブは、低ストリンジェンシーの条件下で、完全に相同な配列の標的配列への結合を拮抗かつ阻害する。これは、低ストリンジェンシーの条件は非特異的な結合を許容するというようなことを意味しない；低ストリンジェンシーの条件は、二つの配列が互いに結合することが特異的な（すなわち、選択的な）相互作用であることを必要とする。非特異的な結合が存在しないことは、一部分の相補性すら欠く（例えば、約３０％未満の同一性の）第二の標的配列の使用により試験され得る。非特異的な結合が存在しない場合、プローブは第二の非相補的な標的配列にハイブリダイズしない。
【００２０】
用語「ハイブリダイゼーション」は、本明細書中で使用される場合、核酸鎖が塩基対形成を介して相補鎖と結合するあらゆるプロセスを指す。用語「ハイブリダイゼーション複合体」は、本明細書中で使用される場合、相補的なＧ塩基とＣ塩基との間およびＡ塩基とＴ塩基との間の水素結合形成によって二つの核酸配列の間に形成された複合体を指す；これらの水素結合は、塩基スタッキング相互作用によりさらに安定化され得る。二つの相補的な核酸配列は、アンチパラレル配向で水素結合する。ハイブリダイゼーション複合体は、溶液中（例えば、Ｃ０ｔもしくはＲ０ｔ分析）もしくは溶液中に存在する一方の核酸と固体の支持体（例えば、紙、膜、フィルター、チップ、ピンもしくはスライドガラス、または細胞もしくはそれらの核酸が固定されたあらゆる他の適切な基質）に固定されたもう一方の核酸配列との間で形成され得る。
【００２１】
本明細書中、「核酸」もしくは「オリゴヌクレオチド」または文法上同意義のものにより、共に共有結合した少なくとも二つのヌクレオチドを意味する。いくつかの場合には、以下に概略を記載するように、核酸アナログが含まれるが、本発明の核酸は、通常ホスホジエステル結合を含む。これらの核酸アナログは例えば、ホスホロアミド結合（Ｂｅａｕｃａｇｅら，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，４９（１０）：１９２５（１９９３）およびその中の引用；Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒ，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，３５：３８００（１９７０）；Ｓｐｒｉｎｚｌら，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，８１：５７９（１９７７）；Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒら，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１４：３４８７（１９８６）；Ｓａｗａｉら，Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，８０５（１９８４），Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒら，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１０：４４７０（１９８８）；およびＰａｕｗｅｌｓら，Ｃｈｅｍｉｃａ  Ｓｃｒｉｐｔａ，２６：１４１（１９８６）））、ホスホロチオエート結合（Ｍａｇら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９：１４３７（１９９１）；および米国特許第５，６４４，０４８号）、ホスホロジチオエート結合（Ｂｒｉｕら，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１１：２３２１（１９８９））、Ｏ−メチルホスホロアミダイト（Ｏ−ｍｅｔｈｙｌｐｈｏｓｐｈｏｒｏａｍｉｄｉｔｅ）結合（Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ａｎａｌｏｇｅｓ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ，Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ参照）、ならびにペプチド核酸骨格および結合（Ｅｇｈｏｌｍ，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１４：１８９５（１９９２）；Ｍｅｉｅｒら，Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌ．，３１：１００８（１９９２）；Ｎｉｅｌｓｅｎ，Ｎａｔｕｒｅ，３６５：５６６（１９９３）；Ｃａｒｌｓｓｏｎら，Ｎａｔｕｒｅ，３８０：２０７（１９９６），全て引用に含まれる））を含む代替的な骨格を有し得る。他の核酸アナログとしては、正電荷骨格を有するもの（Ｄｅｎｐｃｙら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９２：６０９７（１９９５））；非イオン骨格を有するもの（米国特許番号第５，３８６，０２３号；同第５，６３７，６８４号；同第５，６０２，２４０号；同第５，２１６，１４１号；および同第４，４６９，８６３号；Ｋｉｅｄｒｏｗｓｈｉら，Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔｌ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌｉｓｈ，３０：４２３（１９９１）；Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒら，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１０：４４７０（１９９８）Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒら，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅ＆Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ，１３：１５９７（１９９４）；第２章および第３章，ＡＳＣ  Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ  Ｓｅｒｉｅｓ  ５８０，「Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ」，Ｙ．Ｓ．ＳａｎｇｈｕｉおよびＰ．Ｄａｎ  Ｃｏｏｋ編；Ｍｅｓｍａｅｋｅｒら，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ＆Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ  Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，４：３９５（１９９４）；Ｊｅｆｆｓら，Ｊ．Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ＮＭＲ，３４：１７（１９９４）；Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏ��  Ｌｅｔｔ．，３７：７４３（１９９６））および非リボース骨格を有するものが挙げられ、米国特許第５，２３５，０３３号および米国特許第５，０３４，５０６号ならびに第６章および第７章，ＡＳＣ  Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ  Ｓｅｒｉｅｓ  ５８０，「Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ」，Ｙ．Ｓ．ＳａｎｇｈｕｉおよびＰ．Ｄａｎ  Ｃｏｏｋ編において記載される核酸アナログを含む。一つ以上の炭素環式糖を含有する核酸もまた、核酸の定義に含まれる（Ｊｅｎｋｉｎｓら，Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｒｅｖ．，（１９９５）ｐｐ．１６９−１７６参照）。いくつかの核酸アナログは、Ｒａｗｌｓ，Ｃ＆Ｅ  Ｎｅｗｓ，Ｊｕｎｅ  ２，１９９７，３５頁に記載される。リボースホスフェート骨格のこれらの改変は、標識のような付加的部分の付加を容易にするため、もしくは生理条件下でのこのような分子の安定性および半減期を上昇させるためになされ得る。さらに、天然に存在する核酸およびアナログの混合物が作製され得る。あるいは、異なる核酸アナログの混合物、および天然に存在する核酸とアナログの混合物が作製され得る。核酸は、特記された場合は、一本鎖もしくは二本鎖であり得、そうでなければ二本鎖配列と一本鎖配列の両方の部分を含み得る。核酸は、ＤＮＡ（ゲノムとｃＤＮＡの両方）、ＲＮＡもしくはハイブリッドであり得、これらの核酸は、デオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチドのあらゆる組合わせ、ならびにウラシル、アデニン、チミン、シトシン、グアニン、イノシン、キサニン、ヒポキサニン、イソシトシン、イソグアニン等を含む塩基のあらゆる組み合わせを含む。
【００２２】
本明細書中で使用される「核酸配列」は、オリゴヌクレオチド、ヌクレオチド、もしくはポリヌクレオチド、およびそれらのフラグメント、ならびに一本鎖もしくは二本鎖であり得、かつセンス鎖もしくはアンチセンス鎖を表すゲノムもしくは合成起源のＤＮＡもしくはＲＮＡを言う。「フラグメント」は、６０ヌクレオチドよりも長さの大きい核酸配列であり、最も好ましくは、少なくとも１００ヌクレオチド長もしくは少なくとも１０００ヌクレオチド長、および少なくとも１０，０００ヌクレオチド長のフラグメントを含む。
【００２３】
本明細書中で提供される核酸配列は、表１に要約される。
【００２４】
【表１Ａ】
2006502713.tif 000002
【００２５】
【表１Ｂ】
2006502713.tif 000003
本発明のポリヌクレオチドは、本明細書中で開示されるタンパク質および特に本明細書中の表１において開示されかつ表１に記載の化合物をコードするＤＮＡと、相同なタンパク質をコードするポリヌクレオチド、および本質的に同じ生物学的特性を有するポリヌクレオチドを含む。この定義は、その天然アレル配列を含むと解釈される。このようなポリヌクレオチドは、細菌起源、特にグラム陽性細菌起源であることが多い。したがって、本明細書中で開示されるＤＮＡ（または以下で議論されるハイブリダイゼーションプローブとして働くフラグメントもしくはその誘導体）にハイブリダイズし、そして本明細書中に記載される生成物の発現をコードするポリヌクレオチドはまた、本発明の一つの局面である。本発明のランチビオティックスの発現をコードする他のポリヌクレオチドが表１のＤＮＡもしくはそのフラグメントとハイブリダイズすることを許容する条件は、公知の技術にしたがって決定され得る。例えば、標準のハイブリダイゼーションアッセイにおける、表１のＤＮＡへのこのような配列のハイブリダイゼーションは、ストリンジェンシーの減少した条件下、中程度のストリンジェンシーの条件下もしくはストリンジェンシーな条件下（例えば、それぞれ３７℃で５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ溶液中３５％〜４０％ホルムアミド、０．５％ＳＤＳおよび１×ＳＳＰＥのにより示される条件；４２℃で５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ溶液中４０％〜４５％ホルムアミド、０．５％ＳＤＳおよび１×ＳＳＰＥのにより示される条件；ならびに４２℃で５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ溶液中５０％ホルムアミド、０．５％ＳＤＳおよび１×ＳＳＰＥのにより示される条件）でさえ実行され得る。例えば、Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（第２版、１９８９）（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）参照。通常、本発明のタンパク質をコードしかつ本明細書中の表１のＤＮＡ（もしくはその相補鎖）とハイブリダイズする配列は、表１のＤＮＡと少なくとも７５％相同、８５％相同、または９５％以上までも相同である（本明細書中、用語「相同性」は、「配列同一性」もしくは「同一の」と交換可能に使用される）。
【００２６】
さらに、本発明のランチビオティックスをコードするポリヌクレオチド、もしくは表１に記載の配列とハイブリダイズするポリヌクレオチドであるが、遺伝子コードの縮重によりコドン配列がそれらと異なるポリヌクレオチドはまた、本発明の一つの局面である。異なる核酸配列が同じタンパク質もしくはペプチドをコードすることを許容する遺伝子コードの縮重は、文献上公知である。例えば、Ｔｏｏｌｅらに対する米国特許第４，７５７，００６号の表１、カラム２参照。
【００２７】
本発明のランチビオティックスをコードするヌクレオチド配列は、適切に選択されたストリンジェンシーな条件下で天然に存在する本発明のタンパク質もしくはペプチドの核酸配列とハイブリダイズすることが可能であることが多いが、本発明のタンパク質もしくはペプチドをコードする核酸配列もしくは実質上異なるコドンの利用を有するその誘導体を生成することは有利であり得る。コドンは、特定の原核細胞宿主もしくは真核細胞宿主において、特定のコドンが宿主により利用される頻度に従ってペプチドが発現する比率を上昇させるために選択され得る。コードされたアミノ酸配列を変更することなく、本発明のタンパク質もしくはペプチドをコードするヌクレオチド配列およびその誘導体を実質的に改変する他の理由としては、天然に存在する配列から生成される転写物よりも所望される特性（例えば、より大きい半減期）を有するＲＮＡ転写物を生成することが挙げられる。
【００２８】
当該分野において公知のように、ある核酸が公知の配列と配列同一性もしくは配列類似性を有するか否かを同定するために、多数の異なるプログラムが用いられ得る。配列同一性および／もしくは配列類似性は、当該分野において公知の標準的な技術を用いて決定され、これらの技術は、Ｓｍｉｔｈ＆Ｗａｔｅｒｍａｎ，Ａｄｖ．Ａｐｐｌ．Ｍａｔｈ．２，４８２（１９８１）の部分配列相同性アルゴリズム、Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ＆Ｗｕｎｓｃｈ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８，４４３（１９７０）の配列相同性アルゴリズム、Ｐｅａｒｓｏｎ＆Ｌｉｐｍａｎ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８５，２４４４（１９８８）の類似性の検索法の、コンピュータ化されたこれらのアルゴリズムの実行（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ  Ｐａｃｋａｇｅ，Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  Ｃｏｍｐｕｔｅｒ  Ｇｒｏｕｐ，５７５  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｄｒｉｖｅ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩにおけるＧＡＰ，ＢＥＳＴＦＩＴ，ＦＡＳＴＡおよびＴＦＡＳＴＡ）、Ｄｅｖｅｒｅｕｘら，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．１２，３８７−３９５（１９８４）により記載されるＢｅｓｔ  Ｆｉｔ配列プログラム（好ましくは、デフォルト設定を使用する）もしくは検査が挙げられるが、これらに限定されない。好ましくは、以下のパラメータ：ミスマッチペナルティー１；ギャップペナルティー１；ギャップサイズペナルティー０．３３；および結合ペナルティー３０に基づくＦａｓｔＤＢにより、同一性百分が計算される、「Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ」、Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ａｎｄ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、Ｓｅｌｅｃｔｅｄ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、１２７−１４９頁（１９８８）、Ａｌａｎ  Ｒ．Ｌｉｓｓ，ＩＮＣ。
【００２９】
有用なアルゴリズムの例は、ＢＬＡＳＴアルゴリズムであり、これはＡｌｔｓｃｈｕｌら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５，４０３−４１０，（１９９０）およびＫａｒｌｉｎら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９０，５８７３−５７８７（１９９３）に記載される。特に有用なＢＬＡＳＴプログラムは、Ａｌｔｓｃｈｕｌら，Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２６６，４６０−４８０（１９９６）から得られたＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２プログラムである。ＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２は、いくつかのサーチパラメータを用い、そのほとんどはデフォルト値に設定される。調節可能なパラメータは、以下の値に設定される：オーバーラップスパン＝１、オーバーラップフラクション＝０．１２５、文字限界（Ｔ）＝１１。ＨＳＰ  ＳおよびＨＳＰ  Ｓ２パラメータは変動する値であり、特定の配列の組成、および目的の配列が検索される特定のデータベースの組成に依存してプログラム自体によって確立される；しかし、これらの値は、感度を増すために調整され得る。
【００３０】
本明細書中で同定されるポリペプチドのコード配列に関して、「核酸配列同一性百分率（％）」は、細胞周期タンパク質のコード配列におけるヌクレオチド残基と同一の候補配列におけるヌクレオチド残基の百分率として定義される。好ましい方法は、デフォルトパラメーター、オーバーラップスパンとオーバーラップフラクションがそれぞれ１と０．１２５に設定されたＷＵ−ＢＬＡＳＴ−２のＢＬＡＳＴＮモジュールを利用する。
【００３１】
アラインメントは、整列される配列におけるギャップの導入を含み得る。さらに、図面の配列によりコードされるタンパク質より多いアミノ酸もしくは少ないアミノ酸のどちらかを含む配列について、一つの実施形態において、配列同一性の百分率がアミノ酸の総数に対する同一のアミノ酸の数に基づいて決定されることが理解される。したがって、例えば、図面に示される配列より短い配列の配列同一性は、以下で議論されるように、一つの実施形態において、より短い配列のアミノ酸数を用いて決定される。同一性百分率の計算において、比重は、挿入、欠損、置換などの配列多様性の種々な出現に割当てられない。
【００３２】
本発明はまた、本発明のランチビオティックスをコードするＤＮＡ配列、もしくはそのフラグメントの完全に合成化学による生成を含む。生成後、合成配列は、当該分野で周知の試薬を用いて、多くの任意の入手可能な発現ベクターおよび細胞システムに挿入され得る。さらに、合成化学は、本発明のタンパク質もしくはペプチドをコードする配列またはそのあらゆるフラグメントに、変異を導入するために使用され得る。
【００３３】
本明細書中の表１において開示されたヌクレオチド配列の情報は、そのフラグメント（好ましくは、少なくとも５、７もしくは１０ヌクレオチド長）を含み、ハイブリダイゼーションプローブを作製するために使用され得、このプローブは、本発明のタンパク質の増幅もしくは過剰発現の存在を決定するために本発明のＤＮＡもしくはｍＲＮＡに特異的に結合し、本発明のタンパク質の増幅もしくは過剰発現の存在を決定する。
【００３４】
クローン遺伝子、組み換えＤＮＡ、ベクター、形質転換宿主細胞、遺伝子工学によるタンパク質およびタンパク質フラグメントの生成は、周知である。例えば、Ｂｅｌｌらに対する米国特許第４，７６１，３７１号の６欄、３行〜９欄、６５行；Ｃｌａｒｋらに対する米国特許第４，８７７，７２９号の４欄、３８行〜７欄、６行；Ｓｃｈｉｌｌｉｎｇに対する米国特許第４，９１２，０３８号の３欄、２６行〜１４欄、１２行；およびＷａｌｌｎｅｒに対する米国特許第４，８７９，２２４号の６欄、８行〜８欄、５９行参照。（出願人は特に、本明細書中に引用される全ての特許参考文献の開示が、本明細書においてその全体が参考として援用されることを意図する）。
【００３５】
ベクターは、複製可能なＤＮＡ構築物である。ベクターは、本明細書中では、本発明のタンパク質をコードするＤＮＡの増幅もしくは本発明のタンパク質の発現のどちらかのために使用される。発現ベクターは、複製可能なＤＮＡ構築物であり、このベクターにおいて、本発明のタンパク質をコードするＤＮＡ配列は、適切な宿主内で本発明のタンパク質の発現に効果を及ぼし得る適切な制御配列に作動可能に連結される。このような制御配列の必要性は、選択された宿主および選択された形質変換方法に依存して変化する。通常、制御配列は、転写プロモーター、転写を制御するための任意のオペレーター配列、適切なｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列、ならびに転写および翻訳の終結を制御する配列を含む。増幅ベクターは、発現制御ドメインを必要としない。必要とされる全ては、宿主中で複製する能力であり、通常、複製起点、および形質転換体の判断を容易にする選択遺伝子により付与される。
【００３６】
ベクターは、プラスミド、ウイルス（例えば、アデノウイルス、サイトメガロウイルス）、ファージ、レトロウイルスおよび組込み可能なＤＮＡフラグメント（すなわち、組換えにより宿主ゲノムに組込み可能なフラグメント）を含む。ベクターは、宿主ゲノムに非依存的に複製および機能し、もしくは、いくつかの場合には、ゲノム自体に組込み得る。発現ベクターは、発現されるべき遺伝子に作動可能に連結され、かつ宿主生物体において作動可能なプロモーターおよびＲＮＡ結合部位を含むべきである。
【００３７】
ＤＮＡ領域は、互いに機能的に関係する場合は、作動可能に連結もしくは作動可能に連結される。例えば、プロモーターがその配列の転写を制御する場合、プロモーターはコード配列に作動可能に連結される；リボソーム結合配列が翻訳を許可するように配置される場合、リボソーム結合部位はコード配列に作動可能に連結される。通常、作動可能に連結されるとは、連続することを意味し、そしてリーダー配列の場合は、連続することかつリーディング相にあることを意味する。
【００３８】
形質転換される宿主細胞は、本発明のランチビオティックスをコードするＤＮＡを含むベクターを形質転換もしくは形質導入される細胞であり、タンパク質を発現する必要はない。
【００３９】
適切な宿主細胞は、原核細胞、酵母細胞、もしくは高等真核生物細胞を含む。原核宿主細胞は、グラム陰性生物もしくはグラム陽性生物、例えばＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ（Ｅ．ｃｏｌｉ）もしくはＢａｃｉｌｌｉを含む。高等真核細胞は、以下に記載する哺乳動物起源の確立された細胞株を含む。宿主細胞の例として、Ｅ．ｃｏｌｉ  Ｗ３１１０（ＡＴＣＣ  ２７，３２５）、Ｅ．ｃｏｌｉ  Ｂ、Ｅ．ｃｏｌｉ  Ｘ１７７６（ＡＴＣＣ  ３１，５３７）、Ｅ．ｃｏｌｉ  ２９４（ＡＴＣＣ  ３１，４４６）が挙げられる。広範な種々の適切な原核細胞および微生物のベクターが利用可能である。Ｅ．ｃｏｌｉは、ｐＢＲ３２２の使用により代表的に形質転換される。Ｂｏｌｉｖａｒら，Ｇｅｎｅ  ２，９５（１９７７）参照。組換え微生物発現ベクターにおいて最も一般的に使用されるプロモーターは、β−ラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）およびラクトースプロモーターシステム（Ｃｈａｎｇら，Ｎａｔｕｒｅ  ２７５，６１５（１９７８）；およびＧｏｅｄｄｅｌら，Ｎａｔｕｒｅ  ２８１，５４４（１９７９））、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーターシステム（Ｇｏｅｄｄｅｌら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．８，４０５７（１９８０）およびＥＰＯ  Ａｐｐ．Ｐｕｂｌ．Ｎｏ．３６，７７６）ならびにｔａｃプロモーター（Ｈ．Ｄｅ  Ｂｏｅｒら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８０，２１（１９８３））を含む。プロモーターおよび（原核宿主発現のための）Ｓｈｉｎｅ−Ｄａｌｇａｒｎｏ配列は、本発明のＤＮＡに作動可能に連結され、すなわち、それらはＤＮＡからｍＲＮＡへの転写を促進するように配置される。
【００４０】
発現ベクターは、宿主生物に認識されるプロモーターを含むべきである。これは、通常、意図された宿主から得られるプロモーターを意味する。組換え微生物発現ベクターにおいて最も一般的に使用されるプロモーターは、β−ラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）およびラクトースプロモーターシステム（Ｃｈａｎｇら，Ｎａｔｕｒｅ  ２７５，６１５（１９７８）；およびＧｏｅｄｄｅｌら，Ｎａｔｕｒｅ  ２８１，５４４（１９７９））、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーターシステム（Ｇｏｅｄｄｅｌら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｏｄｓ  Ｒｅｓ．８，４０５７（１９８０）およびＥＰＯ  Ａｐｐ．Ｐｕｂｌ．Ｎｏ．３６，７７６）ならびにｔａｃプロモーター（Ｈ．Ｄｅ  Ｂｏｅｒら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８０，２１（１９８３））を含む。これらは一般的に使用されるが、他の微生物プロモーターが適切である。多数の微生物プロモーターのヌクレオチド配列に関する詳細が公開されており、技術者が、プラスミドもしくはウイルスベクターのタンパク質をコードするＤＮＡに、作動可能にこれらを連結することを可能にする（Ｓｉｅｂｅｎｌｉｓｔら，Ｃｅｌｌ  ２０，２６７（１９８０））。プロモーターおよび（原核宿主発現のための）Ｓｈｉｎｅ−Ｄａｌｇａｒｎｏ配列は、所望のタンパク質をコードするＤＮＡに作動可能に連結され、すなわち、それらは、ＤＮＡからタンパク質ｍＲＮＡへの転写を促進するように配置される。
【００４１】
酵母培養物のような真核微生物は、適切なタンパク質コードベクターで形質転換され得る。例えば、米国特許第４，７４５，０５７号参照。他の多くの株も一般的に利用可能であるが、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅは、下等真核宿主微生物の中で最も一般的に使用される。酵母ベクターは、２ミクロンの酵母プラスミド由来の複製起点もしくは自律的複製配列（ＡＲＳ）、プロモーター、所望のタンパク質をコードするＤＮＡ、ポリアデニル化および転写終結のための配列、ならびに選択遺伝子を含み得る。例示的なプラスミドは、ＹＲｐ７、（Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら，Ｎａｔｕｒｅ  ２８２，３９（１９７９）；Ｋｉｎｇｓｍａｎら，Ｇｅｎｅ  ７，１４１（１９７９）；Ｔｓｃｈｅｍｐｅｒら，Ｇｅｎｅ  １０，１５７（１９８０））である。このプラスミドは、ｔｒｐ１遺伝子を含み、トリプトファン中で生育する能力を欠く変異株酵母（例えば、ＡＴＣＣ識別番号４４０７６もしくはＰＥＰ４−１（Ｊｏｎｅｓ，Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  ８５，１２（１９７７）））に対する選択マーカーを提供する。酵母宿主細胞ゲノムにおけるｔｒｐ１損傷の存在は、次いで、トリプトファン非存在下の生育により、形質転換の検出のための効果的な環境を提供する。
【００４２】
酵母ベクターにおける適切な促進配列は、メタロチオネイン、３−ホスホ−グリセレートキナーゼ（Ｈｉｔｚｅｍａｎら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５，２０７３（１９８０））もしくはエノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−ホスフェートイソメラーゼ、３−ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼのような他の解糖系酵素（Ｈｅｓｓら，Ｊ．Ａｄｖ．Ｅｎｚｙｍｅ  Ｒｅｇ．７，１４９（１９６８）；およびＨｏｌｌａｎｄら，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １７，４９００（１９７８））に対するプロモーターを含む。酵母発現における使用のための適切なベクターおよびプロモーターは、Ｒ．Ｈｉｔｚｅｍａｎら，ＥＰＯ  Ｐｕｂｌｎ．Ｎｏ．７３，６５７にさらに記載される。
【００４３】
プレデュラマイシン、プロデュラマイシンもしくはデュラマイシンは、全て公知の技術による所望のタンパク質の発現および生成を引き起こすまたは許容する条件下での細胞の培養により、上記のように生成される組換え宿主細胞において生成され得る。
【００４４】
プレデュラマイシンおよびプロデュラマイシンは、本明細書中に記載されるように、宿主細胞における形質転換およびインサイチュプロセシング、もしくは後の化学的／合成的改変のどちらかにより、デュラマイシンの生成のための中間体として有用である。
【００４５】
本明細書中に記載の方法により生成されるデュラマイシンは、抗生物質としてもしくは嚢胞性線維症、慢性気管支炎、および喘息のような障害を処置するために有用であり、Ｍｏｌｉｎａに対する米国特許第５，８４９，７０６号、およびＫｉｎｇに対する米国特許第６，４５１，３６５号に記載されるそれらの使用を含むが、限定されず、これらの開示は、その全体が本明細書中に参考として援用される。
【００４６】
以下の実施例は、本発明を説明するために示され、本発明を限定するものとして解釈されるべきではない。
【実施例】
【００４７】
（実施例１）
（デュラマイシン構造遺伝子の単離）
デュラマイシン生成株Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ亜種ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ（ＡＴＣＣ  １２６８６）を酵母抽出麦芽抽出物（ＹＥＭＥ）、１０％スクロース、０．５％グリシン中で生育させた。周知のセチルトリメチルアンモニウムブロミド（ＣＴＡＢ）法（Ｋｅｉｓｅｒ，ら（２０００）Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）を用いてゲノムＤＮＡを単離した。デュラマイシンのプロペプチドアミノ酸配列（配列番号５）は、シナマイシン（配列番号８）、デュラマイシンＢ（配列番号９）、デュラマイシンＣ（配列番号１０）、およびアンコベニン（配列番号１１）のようなＳｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓにより生成される他のＢ型ランチビオティックス（図２）と類似する。ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）プライマー（表１）を、プレシナマイシンをコードするヌクレオチド配列（ＧＥＮＢＡＮＫ（登録商標）登録番号Ｘ５８５４５；配列番号１２；図３）に基づいて設計した。
【００４８】
【表２】
2006502713.tif 000004
Ｓ．ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ  ＡＴＣＣ  １２６８６のゲノムＤＮＡを鋳型とするＰＣＲ反応において、フォワードプライマーおよびリバースプライマーの９つの全ての組み合わせを使用した。３個の全てのフォワードプライマーは、リバースプライマーＭｏｌ６と組合わせて使用した場合、一貫して、予測される大きさのＰＣＲ産物を増幅した。二つの独立した増幅物を、直接配列決定しデュラマイシン構造遺伝子を含むことを見出した。Ｍｏｌ１／Ｍｏｌ６により開始されるＰＣＲ反応からの増幅物を、ＴＡ  ＣＬＯＮＩＮＧ（登録商標）キット（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮＴＭ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を用いてサブクローニングし、その後ＡＬＫ−ＰＨＯＳ  ＤＩＲＥＣＴＴＭ標識キット（ＡＭＥＲＳＨＡＭＴＭ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）を用いてハイブリダイゼーションプローブを作製するために使用した。Ｓ．ｃｉｎｎａｍｏｎｅｕｓ  ＡＴＣＣ  １２６８６ゲノムＤＮＡのサザンブロット分析により、ＢａｍＨＩ、ＫｐｎＩおよびＸｈｏＩを含むいくつかの制限酵素消化の各々において、一本のｄｕｒＡバンドを検出した。その後のゲノムライブラリーのスクリーニングに、この同じプローブを使用した。
【００４９】
コスミドライブラリーを、ＡＴＣＣ  １２６８６株から単離したＤＮＡから構築し、デュラマイシンプローブを用いてスクリーニングし、ランチビオティックス生合成オペロンを単離するために、大きな（３０キロベースより大きい）フランキングＤＮＡのストレッチを同定した。高分子量のゲノムＤＮＡを、上記ＣＴＡＢ法を用いて単離した。その後、このＤＮＡを、周知の方法を用いてＳａｕ３Ａ制限酵素で部分的に消化し、平均の大きさが約４０ｋｂのフラグメントプールを得た（Ｃｕｒｒｅｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ａｕｓｕｂｅｌ，ら（編）Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ）。ＳｕｐｅｒＣｏｓ  Ｃｏｓｍｉｄ  Ｌｉｂｒａｒｙ  Ｋｉｔ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ（登録商標），Ｌａ  Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）を用いて、コスミドライブラリーを構築した。このライブラリーは、約１５，０００クローンを含んでいた。１０個のランダムに選択したクローンを、制限酵素消化により分析した；全てのクローンは、少なくとも３０ｋｂのインサートを含んでいた。上記の非放射活性のｄｕｒＡプローブを用いるニトロセルロース膜におけるコロニーハイブリダイゼーションにより、４，０００クローンをスクリーニングした。４個の陽性クローンを単離した。コスミドクローンにおけるデュラマイシン構造遺伝子の存在を、ｄｕｒＡ特異的プライマーおよび鋳型としてのコスミドクローンＤＮＡにより生成される増幅物を増幅し、かつ直接スクリーニングすることにより実証した。二つの重複するコスミドクローン、１．１および３．４を、ショットガンシーケンシングのために選択した。
【００５０】
ＴＯＰＯ（登録商標）Ｓｈｏｔｇｕｎ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｋｉｔ（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮＴＭ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を、約１ｋｂのランダムフラグメントを作製するための、噴霧によるコスミドＤＮＡの切断のために使用した。切断されたＤＮＡの末端を、Ｔ４  ＤＮＡポリメラーゼおよびＫｌｅｎｏｗにより平滑にし、その後ｐＣＲ（登録商標）４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯ（登録商標）ベクター（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮＴＭ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）に連結した。各コスミドに対して３００より多いサブクローンを得、各コスミドに対して２８８クローンを三つの９６ディープウェルプレートにピックアップした。ＥＰＰＥＮＤＯＲＦ（登録商標）９６ウェルプラスミドプレップキット（ＥＰＰＥＮＤＯＲＦ（登録商標）ＡＧ，Ｈａｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて鋳型ＤＮＡを調製するために、各コスミドに対して二つの９６ウェルプレートを使用した。ユニバーサルフォワードプライマーおよびユニバーサルリバースプライマーによるＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ（登録商標）３７００  ＤＮＡ  Ａｎａｌｙｚｅｒ（ＡＰＰＬＩＥＤ  ＢＩＯＳＹＳＴＥＭＳ（登録商標），Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ，ＣＡ）を用いたハイスループット配列決定に、鋳型を使用した。
【００５１】
約４６ｋｂの連続するＤＮＡ配列を得た。これは、さらなる１．１フランキングＤＮＡの２３ｋｂおよび３．４フランキングＤＮＡの６ｋｂを有する二つのコスミドの間の１７ｋｂの重複を示した。デュラマイシンをコードする構造遺伝子に加えて、デュラマイシン生合成オペロンのｄｕｒＭ遺伝子、ｄｕｒＦ遺伝子およびｄｕｒＲ遺伝子に相同な配列は、これらの二つのコスミド中に含まれた。
【００５２】
論理的に推理されるアミノ酸配列分析は、プレデュラマイシンが５８アミノ酸リーダー配列（配列番号７）および１９アミノ酸プロペプチド（配列番号５）を含み、成熟ランチビオティックスの生成のために翻訳後に修飾されることを明らかにした。プレデュラマイシンの論理的に推理されるアミノ酸配列（配列番号３）は、シナマイシンの論理的に推理されるアミノ酸配列（配列番号１３）と高い程度の相同性を共有する（図４）。
【００５３】
前記の実施例は、本発明の実例であり、その限定として解釈されるべきではない。本発明は、添付の特許請求の範囲に記載され、請求項と同等のものが特許請求の範囲に含まれる。
【図面の簡単な説明】
【００５４】
【図１】図１は、デュラマイシンの構造（ＳａｈｌおよびＢｉｅｒｂａｕｍ（１９９８）前出からの改変）を示す。
【図２】図２は、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓにより生成されるＢ型ランチビオティックスのプロペプチドアミノ酸配列類似性を示す。
【図３】図３は、シナマイシンをコードする核酸配列（ＧＥＮＢＡＮＫ（登録商標）登録番号Ｘ５８５４５；配列番号１２）を示す。デュラマイシン構造遺伝子の増幅に用いられるフォワード（Ｍｏｌ１，３，５）およびリバース（Ｍｏｌ２，４，６）のＰＣＲプライマーの位置が示される。
【図４】図４は、デュラマイシン（配列番号３）とシナマイシン（配列番号１３）との間のプレペプチド配列の比較を示す。プロペプチド配列は下線で示される。＊は、アミノ酸の差異を示す。
【配列表】
2006502713.tif 000005
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【図１】
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【図２】
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【図３】
2006502713.tif 000013
【図４】
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【手続補正書】
【提出日】平成17年7月4日(2005.7.4)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】配列表
【補正方法】追加
【補正の内容】
【配列表】
2006502713000001.app
【国際調査報告】
2006502713.tif 000015
2006502713.tif 000016