(57)【要約】本発明は、一般的に、ウイルス検出の分野に関する。特に、本発明は、重症急性呼吸器症候群を引き起こすコロナウイルス（ＳＡＲＳ−ＣｏＶ）ヌクレオチド配列を増幅および検出するためのチップ、プローブ、プライマー、キットおよび方法を提供する。本発明のチップ、プローブ、プライマー、キットおよび方法の臨床上の使用および他の使用も、また検討される。上記チップは、核酸ハイブリダイゼーションにおける使用に適切な支持体を備え、この支持体は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な、少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブをその上に固定し、この２つの異なるヌクレオチド配列の各々は、少なくとも１０ヌクレオチドを含有する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
重症急性呼吸器症候群を引き起こすコロナウイルス（ＳＡＲＳ−ＣｏＶ）についてアッセイするためのチップであって、該チップは、核酸ハイブリダイゼーションにおける使用に適切な支持体を備え、該支持体は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な、少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブをその上に固定し、該２つの異なるヌクレオチド配列の各々は、少なくとも１０ヌクレオチドを含有する、チップ。
【請求項２】
請求項１に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列が、以下：
ａ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内に位置する少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域内に位置する少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列；または、
ｂ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質をコードする遺伝子内に位置する少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質をコードする遺伝子内に位置する少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列、
を含有する、チップ。
【請求項３】
請求項１に記載のチップであって、以下：
ａ）以下の３つのオリゴヌクレオチドプローブのうち少なくとも１つ：標識されて、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたは含むと疑われるサンプルが該チップと接触した場合の、あらゆるハイブリダイゼーション反応に関与しない、固定化コントロールプローブ；あらゆるＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列に相補的でないが、該サンプルに含まれる非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列に相補的である、ポジティブコントロールプローブ；および、該サンプルに含まれるあらゆるヌクレオチド配列に相補的でない、ネガティブコントロールプローブ；ならびに、
ｂ）ブランクスポット、
をさらに備える、チップ。
【請求項４】
請求項１に記載のチップであって、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内に配置されるか、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質をコードする遺伝子内に配置されるか、またはＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質をコードする遺伝子内に配置される、少なくとも１０ヌクレオチドの２つの異なるヌクレオチド配列のそれぞれに相補的な、少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブ、
を含有する、チップ。
【請求項５】
請求項１に記載のチップであって、ここで：
ａ）前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域が、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内、またはヌクレオチドオカプシド（Ｎ）遺伝子内に位置する領域であり；
ｂ）前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質をコードする遺伝子が、スパイク糖タンパク質（Ｓ）、低分子エンベロープタンパク質（Ｅ）、もしくは該ヌクレオチドオカプシドタンパク質（Ｎ）をコードする遺伝子であり；あるいは、
ｃ）前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質をコードする遺伝子が、該レプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂをコードする遺伝子である、
チップ。
【請求項６】
請求項１に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域が、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのスパイク糖タンパク質（Ｓ）遺伝子内に位置する領域である、チップ。
【請求項７】
請求項１に記載のチップであって、以下：以下の４つのオリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも２つ：前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する、少なくとも１０ヌクレオチドの２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な、２つのオリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置する、少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ；および、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置する、少なくとも１０ヌクレオチドのヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ、
を備える、チップ。
【請求項８】
請求項７に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する、前記２つの異なるヌクレオチド配列のうちの１つが、以下：
ａ）高ストリンジェント条件下で、表３に示される、レプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂヌクレオチド配列またはその相補鎖にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列；または、
ｂ）表３に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む、レプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂヌクレオチド配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列、
を含む、チップ。
【請求項９】
請求項８に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する前記２つの異なるヌクレオチド配列のうちの１つが、表３に示されるヌクレオチド配列を含む、チップ。
【請求項１０】
請求項７に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置する前記ヌクレオチド配列が、以下：
ａ）高ストリンジェント条件下で、表３に示される、Ｎヌクレオチド配列またはその相補鎖にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列；または、
ｂ）表３に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む、Ｎヌクレオチド配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列、
を含む、チップ。
【請求項１１】
請求項１０に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置する前記ヌクレオチド配列が、表３に示されるヌクレオチド配列を含む、チップ。
【請求項１２】
請求項７に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置する前記ヌクレオチド配列が、以下：
ａ）高ストリンジェント条件下で、表３に示される、Ｓヌクレオチド配列またはその相補鎖にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列；または、
ｂ）表３に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む、Ｓヌクレオチド配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列、
を含む、チップ
【請求項１３】
請求項１２に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置する前記ヌクレオチド配列が、表３に示されるヌクレオチド配列を含む、チップ。
【請求項１４】
請求項３に記載のチップであって、前記固定化コントロールプローブの標識が、化学標識、酵素標識、免疫原性標識、放射性標識、蛍光標識、発光標識、およびＦＲＥＴ標識からなる群より選択される、チップ。
【請求項１５】
請求項３に記載のチップであって、前記非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列が、アッセイされるサンプル中にスパイクされる、チップ。
【請求項１６】
請求項１５に記載のチップであって、前記スパイクされた非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列が、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ由来の配列である、チップ。
【請求項１７】
請求項７に記載のチップであって、以下：前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な、２つのオリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ；標識されて、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたは含むと疑われるサンプルが該チップと接触した場合の、あらゆるハイブリダイゼーション反応に関与しない、固定化コントロールプローブ；あらゆるＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列に相補的でないが、サンプルに含まれる非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列に相補的である、ポジティブコントロールプローブ；および、該サンプルに含まれるあらゆるヌクレオチド配列に相補的でない、ネガティブコントロールプローブ、
を備える、チップ。
【請求項１８】
請求項１７に記載のチップであって、以下の複数のスポット：
前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的な、オリゴヌクレオチドプローブ；前記固定化コントロールプローブプローブ；前記ポジティブコントロールプローブ；および、前記ネガティブコントロールプローブ、
を備える、チップ。
【請求項１９】
請求項１に記載のチップであって、ＳＡＲＳ−ＣｏＶと関係のないコロナウイルスのヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブをさらに備える、チップ。
【請求項２０】
請求項１９に記載のチップであって、前記ＳＡＲＳと関係のないコロナウイルスが、第１群、第２群もしくは第３群のコロナウイルスであるか、またはトリ、ウマ、イヌ、ネコ、ブタ、子ウシ、ウシ、マウス、パフィノシス、ラット、シチメンチョウ、もしくはヒトに感染するコロナウイルスである、チップ。
【請求項２１】
請求項３に記載のチップであって、前記オリゴヌクレオチドプローブの少なくとも１つが、その５’末端にポリｄＴ領域を含み、前記支持体上での該プローブの固定を増強する、チップ。
【請求項２２】
請求項１に記載のチップであって、前記オリゴヌクレオチドプローブの少なくとも１つが、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの高発現ヌクレオチド配列と相補的である、チップ。
【請求項２３】
請求項１に記載のチップであって、前記支持体が、シリコン表面、プラスチック表面、ガラス表面、セラミック表面、ゴム表面、およびポリマー表面からなる群より選択される表面を備える、チップ。
【請求項２４】
サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶについてアッセイするための方法であって、該方法は、以下：
ａ）請求項１に記載のチップを提供する工程；
ｂ）該チップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むかまたは含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；および、
ｃ）該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列が該サンプル中に存在する場合、該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブそれぞれとの間で形成された、ハイブリッドを評価して、該サンプル中の該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在、もしくは量を決定する工程であって、それにより該ハイブリッドの一方もしくは両方の検出が、該サンプル中の該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在を示す、工程、
を包含する、方法。
【請求項２５】
サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶについてアッセイするための方法であって、該方法は、以下：
ａ）請求項２に記載のチップを提供する工程；
ｂ）該チップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むかまたは含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；ならびに、
ｃ）該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列が該サンプル中に存在する場合、該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と、以下：
ｉ）前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、のそれぞれ；または、
ｉｉ）前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質をコードする遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質をコードする遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、
との間で形成されたハイブリッドを評価して、該サンプル中の該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在、もしくは量を決定する工程であって、それにより該ハイブリッドの一方もしくは両方の検出が、該サンプル中の該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在を示す、工程、
を包含する、方法。
【請求項２６】
サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶについてアッセイするための方法であって、該方法は、以下：
ａ）請求項３に記載のチップを提供する工程；
ｂ）該チップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むかまたは含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；そして、
ｃ）以下：
（ｉ）該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列が該サンプル中に存在する場合、該ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内のヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブおよびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブそれぞれとの間で形成された、ハイブリッド；
（ｉｉ）前記固定化コントロールプローブ、またはポジティブコントロールおよび／もしくはネガティブコントロールに関するハイブリッド内に含まれる、標識；ならびに、
（ｉｉｉ）前記ブランクスポットにおけるシグナル、
を評価して該サンプル中の該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在、もしくは量を決定する工程、
を包含する、方法。
【請求項２７】
請求項２６に記載の方法であって、前記チップが、以下：前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ；前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ；固定化コントロールプローブ；ポジティブコントロールプローブ；および、ネガティブコントロールプローブ、を備え、そして以下：
ａ）該ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも１つ；該ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ；および／または該ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、を用いて、ポジティブハイブリダイゼーションシグナルが検出される場合；
ｂ）該固定化コントロールプローブからポジティブシグナルが検出される場合；
ｃ）該ポジティブコントロールプローブを用いてポジティブハイブリダイゼーションシグナルが検出される場合；
ｄ）該ネガティブコントロールプローブを用いてポジティブハイブリダイゼーションシグナルが検出されない場合；ならびに
ｅ）前記ブランクスポットにおいてポジティブハイブリダイゼーションシグナルが検出されない場合、
において、該ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在が決定される、方法。
【請求項２８】
請求項２７に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも１つ、または前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブを用いて、ポジティブハイブリダイゼーションシグナルを検出する一方で、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブを用いて、ポジティブハイブリダイゼーションシグナルを検出しないことが、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶの突然変異を示している、方法。
【請求項２９】
請求項２４に記載の方法であって、ＳＡＲＳ様症状を有する患者の集団から、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染患者を陽性として同定するために使用される、方法。
【請求項３０】
請求項２４に記載の方法であって、請求項１９に記載のチップおよび該方法が使用されて、ＳＡＲＳと関連のないコロナウイルスに感染した患者からＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染患者を陽性として同定する、方法。
【請求項３１】
請求項２４に記載の方法であって、請求項２２に記載のチップおよび該方法が使用されて、初期段階のＳＡＲＳ患者を診断する、方法。
【請求項３２】
請求項３１に記載の方法であって、前記初期段階のＳＡＲＳ患者が、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに感染してから約１日未満〜約３日である、方法。
【請求項３３】
請求項２４に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列が、抽出されたＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列から増幅されたＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列またはＤＮＡ配列である、方法。
【請求項３４】
請求項３３に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列が、ＱＩＡａｍｐ  Ｖｉｒａｌ  ＲＮＡキット、Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ−Ｓａｃｃｈｉ技術、またはＴＲＩｚｏｌを用いてＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染細胞から抽出される、方法。
【請求項３５】
請求項３４に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列が、ＱＩＡａｍｐ  Ｖｉｒａｌ  ＲＮＡキットを用いてＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染細胞から抽出される、方法。
【請求項３６】
請求項３３に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列が、痰もしくは唾液サンプル、血液サンプルのリンパ球から抽出される、方法。
【請求項３７】
請求項３３に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列が、鼻咽頭、口腔咽頭、気管、気管支洗浄、胸膜液、尿、便、結膜；ヒト、マウス、イヌ、ラット、ネコ、ウマ、トリ由来の組織；土壌；水；空気から抽出される、方法。
【請求項３８】
請求項３３に記載の方法であって、前記ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列が、ＰＣＲによって増幅される、方法。
【請求項３９】
請求項３８に記載の方法であって、ＰＣＲの間に、標識が、増幅されたＤＮＡ配列内に組み込まれる、方法。
【請求項４０】
請求項３８に記載の方法であって、前記ＰＣＲが、通常のＰＣＲ、多重ＰＣＲ、ネストＰＣＲまたはＲＴ−ＰＣＲを包含する、方法。
【請求項４１】
請求項３８に記載の方法であって、前記ＰＣＲが、２ステップネストＰＣＲを包含し、第１ステップがＲＴ−ＰＣＲであり、第２ステップが通常のＰＣＲである、方法。
【請求項４２】
請求項３８に記載の方法であって、前記ＰＣＲが、複数の５’および３’特異的プライマー、５’および３’ユニバーサルプライマーを用いた１ステップ多重ＲＴ−ＰＣＲを包含し、該特異的プライマーの各々は、増幅されるその標的配列に相補的な特異的配列および共通配列を含み、該５’ユニバーサルプライマーは、該５’特異的プライマーの共通配列に相補的であり、そして該３’ユニバーサルプライマーは、該３’特異的プライマーの共通配列に相補的であり、ＰＣＲにおいて、該５’および３’ユニバーサルプライマーの濃度がそれぞれ、該５’および３’特異的プライマーの濃度と同等であるかもしくは該５’および３’特異的プライマーの濃度より高い、方法。
【請求項４３】
請求項４２に記載の方法であって、前記３’ユニバーサルプライマーおよび／または前記５’ユニバーサルプライマーが標識されている、方法。
【請求項４４】
請求項４３に記載の方法であって、前記標識が、蛍光標識である、方法。
【請求項４５】
請求項３８に記載の方法であって、前記ＰＣＲが、多重ネストＰＣＲを包含する、方法。
【請求項４６】
請求項３８に記載の方法であって、前記ＰＣＲが、以下の表４に示されるプライマー対の少なくとも１つを用いて行われる、方法。
【請求項４７】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅するためのオリゴヌクレオチドプライマー対であって、該オリゴヌクレオチドプライマーは、以下：
ａ）高ストリンジェント条件下で、表１に示される、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補鎖にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列；または、
ｂ）表１に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列、
を含む、プライマー。
【請求項４８】
請求項４７に記載のプライマーであって、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡ、またはそれらの誘導体を包含する、プライマー。
【請求項４９】
請求項４７に記載のプライマーであって、表１に示されたヌクレオチド配列、またはその相補鎖を包含する、プライマー。
【請求項５０】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅するためのキットであって、該キットは、以下：
ａ）請求項４２に記載のプライマー；および、
ｂ）該請求項４２に記載のプライマーを用いてＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅し得る、核酸ポリメラーゼ、
を備える、キット。
【請求項５１】
請求項５０に記載のキットであって、前記核酸ポリメラーゼが、逆転写酵素である、キット。
【請求項５２】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列をハイブリダイズするためのオリゴヌクレオチドプローブであって、該オリゴヌクレオチドプローブは、以下：
ａ）高ストリンジェント条件下で、表２に示される、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補鎖にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列；または、
ｂ）表２に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列、
を含む、プローブ。
【請求項５３】
請求項５２に記載のプローブであって、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡ、またはそれらの誘導体を包含する、プローブ。
【請求項５４】
請求項５２に記載のプローブであって、表２に示されたヌクレオチド配列、またはその相補鎖を包含する、プローブ。
【請求項５５】
請求項５２に記載のプローブであって、標識されている、プローブ。
【請求項５６】
請求項５５に記載のプローブであって、前記標識が、化学標識、酵素標識、免疫原性標識、放射性標識、蛍光標識、発光標識、およびＦＲＥＴ標識からなる群より選択される、プローブ。
【請求項５７】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列のハイブリダイゼーション分析のためのキットであって、該キットは、以下：
ａ）請求項５２に記載のプローブ；および、
ｂ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と該プローブとの間に形成されたハイブリッドを評価するための手段、
を備える、キット。
【発明の詳細な説明】
【背景技術】
【０００１】
（発明の背景）
２００２年の１１月以来、重症急性呼吸器症候群（ＳＡＲＳ）と呼ばれる疾患が、世界各地の２２カ国で報告されている。ＷＨＯは、２００３年５月２日の時点において、累計６，０５４例のＳＡＲＳの症例および感染した人々のうちで４１７人の死亡を報告している。同じ時期に、中国は、累計３，７８８例のＳＡＲＳの症例および感染した人々のうちで１８１人の死亡を報告している。
【０００２】
ＳＡＲＳ患者の主な症状としては、熱（３８℃より高い）、頭痛、体の痛みが挙げられる。疾患の２〜７日後、患者は、呼吸困難を伴ない得る乾性咳を発症し得る。
【０００３】
香港、カナダ、およびアメリカからの知見に基づいて、以前には認識されていなかったコロナウイルスが、ＳＡＲＳの原因として同定されている。研究者は、ＳＡＲＳコロナウイルスが、ＤＮＡの中間段階なしで複製し、標準的なコドンを使用する＋鎖のＲＮＡウイルスであると見出した（Ｍａｒｒａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２００３年５月１日；（電子ジャーナル版（ｅｐｕｂ  ａｈｅａｄ  ｏｆ  ｐｒｉｎｔ））；およびＲｏｔａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２００３年５月１日（電子ジャーナル版））。
【０００４】
ＳＡＲＳコロナウイルスは、以前にはヒトまたは動物において検出されていなかった、新しく発見されたウイルスである。ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノム構造は、他のコロナウイルスに非常に類似している。ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムは、３０Ｋ塩基対の長さであり、そのゲノムは、ウイルスにとって非常に大きいとみなされている。ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムは、ＲＮＡポリメラーゼ（ポリメラーゼ１ａおよび１ｂ）、Ｓタンパク質（スパイクタンパク質）、Ｍタンパク質（膜タンパク質）、およびＮタンパク質（ヌクレオカプシドタンパク質）などをコードする。
【０００５】
現在のところ、ＳＡＲＳコロナウイルスについての３タイプの検出方法：免疫学的方法（例えば、ＥＬＩＳＡ）、逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）試験、および細胞培養方法がある。
【０００６】
上記３つの検出方法には有意な欠点がある。例えば、ＥＬＩＳＡは、確実にＳＡＲＳ患者の血清から抗体を検出し得る。しかし、それらの抗体は、症状の発生から２１日後にのみ検出され得る。細胞培養方法は、比較的長い検出サイクルを有し、限られた条件にのみ適用され得る。さらに、細胞培養方法は、生きているウイルスの存在のみを検出し得る。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
ＳＡＲＳコロナウイルスの蔓延を予防する重要な段階は、早期の診断ならびに早期の検疫および処置である。ＲＴ−ＰＣＲは、ＳＡＲＳコロナウイルスの核酸の検出を可能にする唯一の方法である。しかし、ＲＴ−ＰＣＲは、ＳＡＲＳウイルス発現の前には感染した患者を除去し得ず、ＲＴ−ＰＣＲの検出率は低い。検出プロセスは、高価なリアルタイムＰＣＲ機器を必要とする。このように、ＲＴ−ＰＣＲは、早期の臨床のスクリーニングおよび診断の要求を満たし得ない。
【０００８】
重症急性呼吸症候群（ＳＡＲＳ）の迅速で、感度がよく、かつ正確な診断の対する要求が当該分野において存在する。本発明は、当該分野におけるこの要求および他の関連した要求を扱う。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
（発明の要旨）
１つの局面において、本発明は、重症急性呼吸症候群を引き起こすコロナウイルス（ＳＡＲＳ−ＣｏＶ）をアッセイするためのチップに関し、そのチップは、核酸ハイブリダイゼーションにおける使用に適切な支持体を含み、この支持体には、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブが固定化されており、その各２つの異なるヌクレオチド配列は、少なくとも１０個のヌクレオチドを含む。
【００１０】
別の局面において、本発明は、サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶをアッセイするための方法に関し、その方法は：ａ）上記のチップを提供する工程；ｂ）そのチップを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下でＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含有するか、または含有すると推測されるサンプルと接触させる工程；およびｃ）そのＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列（そのサンプル中に存在する場合）と、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブとの間にそれぞれ形成されたハイブリッドを評価して、上記サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在または量を決定し、それによって、１つまたは両方の上記ハイブリッドの検出が、上記サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在を示す工程を包含する。
【００１１】
複数のハイブリダイゼーション標的の同時に変異する確率は、単一のハイブリダイゼーション標的における変異の確率より非常に小さいので、複数のハイブリダイゼーションプローブを使用することによって、本方法は、単一のハイブリダイゼーションプローブに基づいた試験と比べて、偽陰性結果の発生を減少させる。他の好ましい実施形態（例えば、チップ上のネガティブコントロールプローブおよびブランクスポット）が使用される場合、偽陽性結果の確率はまた、減少され得る。より好ましい実施形態（例えば、チップ上の固定化コントロールプローブおよびポジティブコントロールプローブ）を含むものは、さらにアッセイ結果の検証を提供し得る。好ましいサンプル調製手順である、ＲＮＡ抽出手順および増幅手順の使用は、本方法の感受性をさらに高め得る。
【００１２】
さらに別の局面において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅させるためのオリゴヌクレオチドプライマーに関し、そのオリゴヌクレオチドプライマーは：ａ）表１に示される、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖と、高ストリンジェンシー下で、ハイブリダイズするか；あるいはｂ）表１に示されるヌクレオチド配列を含む標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖と少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列を含む。プライマーを用いるＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅するためのキットおよび方法もまた、企図される。
【００１３】
【表１−１】
2006524988.tif 000002
【００１４】
【表１−２】
2006524988.tif 000003
さらに別の局面において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列にハイブリダイズするためのオリゴヌクレオチドプローブに関し、そのオリゴヌクレオチドプローブは：ａ）表２に示される、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補的な鎖と、高ストリンジェンシー下で、ハイブリダイズするか、あるいはｂ）表２に示される、ヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖を含む標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列を含む。プローブを用いるＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列のハイブリダイゼーション解析のためのキットおよび方法もまた、企図される。
【００１５】
【表２−１】
2006524988.tif 000004
【００１６】
【表２−２】
2006524988.tif 000005
（発明の詳細な説明）
限定の目的ではなく、開示を明確にするために、本発明の詳細な説明は、以下の小節に分割される。
【００１７】
（Ａ．定義）
他に定義されない場合、本明細書中で使用される全ての科学技術用語は、本発明が属する分野の当業者によって一般に理解されているものと同じ意味を有する。本明細書中に参照された全ての特許、出願、公開された出願および他の刊行物は、それらの全てが参考として援用される。この節に示される定義が、本明細書中で参考として援用された特許、出願、公開された出願および他の刊行物に示される定義と反するか、またはそうでなければ、一致しない場合、この節に示される定義は、本明細書中で参考として援用された定義より優先する。
【００１８】
本明細書中で使用される場合、「ａ」または「ａｎ」は、「少なくとも１つ」または「１つ以上」を意味する。
【００１９】
本明細書中で使用される場合、「コロナウイルス科」は、呼吸器疾患の原因である一本鎖ＲＮＡウイルスのファミリーをいう。ウイルスの外側のエンベロープは、外向きに放射状に広がり、陰性に染色されたウイルス粒子に特有の冠の形状を与える棍棒状の突起を有する。
【００２０】
本明細書中で使用される場合、「ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）」は、インビトロでのＤＮＡの増幅のためのシステムをいう。増幅されるべき標的ＤＮＡの２つの領域（各鎖に関して１つ）に相補的である２つの合成オリゴヌクレオチドプライマーは、過剰のデオキシヌクレオチドおよび熱安定性のＤＮＡポリメラーゼ（例えば、Ｔａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ）の存在下で、標的ＤＮＡ（純粋である必要はない）に添加される。連続した温度サイクル（例えば、３０サイクル）において、標的ＤＮＡは、繰り返し変性され（例えば、約９０℃）、プライマー（例えば、５０〜６０℃で）およびプライマーから伸長した娘鎖（例えば、７２℃）にアニールされる。娘鎖自体は、後のサイクルのためのテンプレートとしてはたらき、両方のプライマーと適合するＤＮＡフラグメントは、直線的ではなく、指数関数的に増幅される。従って、元のＤＮＡは、純粋である必要も豊富である必要もなく、それによって、ＰＣＲ反応は、研究だけではなく、臨床診断および法医科学において広範に使用される。
【００２１】
本明細書中で使用される場合、「ネスト（ネスティド）（ｎｅｓｔｅｄ）ＰＣＲ」は、連続して２対のプライマーを使用することによって、特異性が改良されるＰＣＲをいう。最初のＰＣＲは、「外側の」プライマー対を用いて行われ、次いで、少量が、「内側の」プライマー対を用いる２回目のＰＣＲのためのテンプレートとして使用される。
【００２２】
本明細書中で使用される場合、「逆転写ＰＣＲまたはＲＴ−ＰＣＲ」は、開始テンプレートがＲＮＡであり、ＤＮＡテンプレートを作製するために、最初の逆転写酵素段階の必要性を含む、ＰＣＲをいう。いくつかの熱安定性ポリメラーゼは、感知できるほどの逆転写酵素活性を有する；しかし、明示的な逆転写を行い、逆転写酵素を不活性化するか、または生成物を精製し、そして別の従来のＰＣＲを進行することが、より一般的である。
【００２３】
本明細書中で使用される場合、「プライマー」は、代表的に、増幅プロセスにおいて核酸を初回刺激するために、標的配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをいう。
【００２４】
本明細書中で使用される場合、「プローブ」は、代表的に、標的配列の検出を容易にするために、標的配列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドをいう。用語「標的配列」とは、プローブが特異的に結合する核酸配列をいう。増幅プロセスにおいて標的核酸を初回刺激するために使用されるプライマーとは異なり、プローブは、ポリメラーゼ酵素を使用して標的配列を増幅させるために伸長される必要がない。しかし、プローブおよびプライマーが、多くの場合において構造的に類似しているか、または同一であることは、当業者に明らかである。
【００２５】
本明細書中で使用される場合、「５’および３’のユニバーサルプライマーの濃度は、それぞれ、５’および３’の特異的プライマーの濃度に等しいか、または５’および３’の特異的プライマーの濃度より高い」は、５’ユニバーサルプライマーの濃度が、５’特異的プライマーの濃度に等しいか、または５’特異的プライマーの濃度より高く、そして３’ユニバーサルプライマーの濃度が、３’特異的プライマーの濃度に等しいか、または３’特異的プライマーの濃度より高いことを意味する。
【００２６】
本明細書中で使用される場合、「へアピン構造」は、二本鎖のステム部分および一本鎖のループ部分を含むポリヌクレオチドまたは核酸をいい、ここで、二本鎖のステム部分を形成する２つのポリヌクレオチドまたは核酸の鎖は、ループ部分を形成する単一のポリヌクレオチドまたは核酸の鎖によって連結または分離される。「ヘアピン構造」は、さらに、二本鎖のステム部分から伸長する３’および／または５’の一本鎖領域を含み得る。
【００２７】
本明細書中で使用される場合、「核酸」は、特に、一本鎖、二重鎖、三重鎖、直線状および環状の形態を含む、任意の形態のデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）および／またはリボ核酸（ＲＮＡ）をいう。それはまた、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、核酸のキメラおよびそのアナログを含む。本明細書中で記載される核酸は、塩基のアデノシン、シトシン、グアニン、チミジン、およびウリジンからなる周知のデオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチドから構成され得るか、あるいは、これらの塩基のアナログまたは誘導体から構成され得る。さらに、これまでにないリン酸ジエステル骨格を有する種々の他のオリゴヌクレオチド誘導体（例えば、リン酸トリエステル、ポリヌクレオペプチド（ＰＮＡ）、メチルホスホネート、ホスホロチオネート、ポリヌクレオチドプライマー、ロックされた核酸など）もまた、本明細書中に含まれる。
【００２８】
本明細書中で使用される場合、「相補的なまたは一致した」は、２つの核酸配列が、少なくとも５０％の配列同一性を有することを意味する。好ましくは、２つの核酸配列は、少なくとも６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％の配列同一性を有する。「相補的なまたは一致した」はまた、２つの核酸配列が、低ストリンジェンシー、中間のストリンジェンシーおよび／または高ストリンジェンシーの条件下でハイブリダイズし得ることを意味する。
【００２９】
本明細書中で使用される場合、「実質的に相補的なまたは実質的に一致した」は、２つの核酸配列が、少なくとも９０％の配列同一性を有することを意味する。好ましくは、２つの核酸配列は、少なくとも９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％の配列同一性を有する。あるいは、「実質的に相補的なまたは実質的に一致した」は、２つの核酸配列が、高ストリンジェンシーの条件下でハイブリダイズし得ることを意味する。
【００３０】
本明細書中で使用される場合、「２つの完全に一致したヌクレオチド配列」は、核酸の二重鎖をいい、ここで、２つのヌクレオチドの鎖は、ワトソン−クリックの塩基対の原理（すなわち、ＤＮＡ：ＤＮＡ二重鎖中のＡ−Ｔ対およびＣ−Ｇ対ならびにＤＮＡ：ＲＮＡ二重鎖またはＲＮＡ：ＲＮＡ二重鎖中のＡ−Ｕ対およびＣ−Ｇ対）に従って一致し、２つの鎖の各々に欠失または付加がない。
【００３１】
本明細書中で使用される場合：ミスマッチのパーセントを決定する際の「ハイブリダイゼーションのストリンジェンシー」は、以下：
１）高ストリンジェンシー：  ０．１×ＳＳＰＥ（または０．１×ＳＳＣ）、０．１％ＳＤＳ、６５℃；
２）中間のストリジンジェンシー：０．２×ＳＳＰＥ（または１．０×ＳＳＣ）、０．１％  ＳＤＳ、５０℃（また、中程度のストリンジェンシーともいう）；および
３）低ストリンジェンシー：  １．０×ＳＳＰＥ（または５．０×ＳＳＣ）、０．１％ＳＤＳ、５０℃
の通りである。
【００３２】
等価のストリンジェンシーが、代わりの緩衝液、塩および温度を使用して達成され得ることは、理解される。
【００３３】
本明細書中で使用される場合、「遺伝子」は、染色体上の特定の座を占める遺伝の単位をいい、その存在は、異なる対立形質の発生によって確認され得る。スプリット遺伝子の発生を仮定すると、遺伝子はまた、単一のポリペプチドを生成するために必要とされるＤＮＡ配列のセット（エキソン）を包含する。
【００３４】
本明細書中で使用される場合、「融解温度」（「Ｔｍ」）は、核酸の二重鎖（すなわち、ＤＮＡ：ＤＮＡ、ＤＮＡ：ＲＮＡ、ＲＮＡ：ＲＮＡ、ＰＮＡ：ＤＮＡ、ＬＮＡ：ＲＮＡおよびＬＮＡ：ＤＮＡなど）が、変性されるより大きい温度範囲の中間点をいう。
【００３５】
本明細書中で使用される場合、「サンプル」は、本発明のチップ、プライマー、プローブ、キットおよび方法によってアッセイまたは増幅されるべき、標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含有し得るものをいう。サンプルは、生物学的サンプル（例えば、生物学的流体または生物学的組織）であり得る。生物学的流体の例としては、尿、血液、血漿、血清、唾液、精液、便、痰、脳脊髄液、涙、粘液、羊水などが挙げられる。生物学的組織は、細胞、普通は、結合組織、上皮組織、筋肉組織および神経組織を含む、ヒト、動物、植物、細菌、真菌またはウイルスの構造の１つの構造材料を形成するそれらの細胞間物質と一緒の特定の種類の凝集体である。生物学的組織の例としてはまた、器官、腫瘍、リンパ節、動脈および個々の細胞が挙げられる。生物学的組織は、細胞懸濁液サンプルを得るために処理され得る。サンプルはまた、インビトロで調製された細胞の混合物であり得る。サンプルはまた、培養された細胞懸濁液であり得る。生物学的サンプルの場合、サンプルは、粗製のサンプルあるいは元のサンプルの種々の処理または調製後に得られる処理されたサンプルであり得る。例えば、種々の細胞分離方法（例えば、磁力的に活性化された細胞分類）は、体液サンプル（例えば、血液）から標的細胞を分離または濃縮するために適用され得る。本発明に使用されるサンプルは、そのような標的細胞を濃縮した細胞調製物を含む。
【００３６】
本明細書中で使用される場合、「液体（流体）サンプル」は、液体または流体として天然に存在するサンプル（例えば、生物学的流体）をいう。「液体サンプル」はまた、非液体状態（例えば、固体または気体）で天然に存在するが、固体または気体のサンプル物質を含有する液体、流体、溶液または懸濁液として調製されるサンプルをいう。例えば、液体サンプルは、生物学的組織を含有する液体、流体、溶液または懸濁液を包含し得る。
【００３７】
本明細書中で使用される場合、「ＰＣＲ産物を評価すること」は、ＰＣＲ産物の定量的および／または定性的な測定、そしてまた、ＰＣＲ産物のレベルを示す指標、比率、割合、目視または他の値を得ることをいう。評価は、直接または間接であり得、実際に検出される化学種は、もちろんＰＣＲ産物自体である必要はないが、例えば、その誘導体、またはいくつかのさらなる物質であり得る。
【００３８】
（Ｂ．ＳＡＲＳ−ＣｏＶをアッセイするためのチップ）
１つの局面において、本発明は、重症急性呼吸症候群を引き起こすコロナウイルス（ＳＡＲＳ−ＣｏＶ）をアッセイするためのチップに関し、そのチップは、核酸ハイブリダイゼーションにおける使用に適切な支持体を含み、この支持体には、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブが固定化されており、その各２つの異なるヌクレオチド配列は、少なくとも１０個のヌクレオチドを含む。
【００３９】
少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列は、任意の適切な組み合わせであり得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存された領域内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列を含み得る。別の例において、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの少なくとも２つの異なるヌクレオチド配列は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする構造タンパク質内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする非構造タンパク質内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列を含み得る。
【００４０】
所望の場合、本発明のチップは、他のタイプのプローブまたは他の特性を含み得る。例えば、チップは：ａ）以下の３つのオリゴヌクレオチドプローブ：ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含有するか、または含有すると推測されるサンプルが、そのチップと接触する場合、標識されて、任意のハイブリダイゼーション反応に関与しない固定化コントロールプローブ、任意のＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列と相補的でないが、サンプル中に含まれる非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列と相補的であるポジティブコントロールプローブ、およびサンプル中に含まれる任意のヌクレオチド配列と相補的でないネガティブコントロールプローブ、のうちの少なくとも１つ；ならびにｂ）ブランクスポット、をさらに含み得る。
【００４１】
特定の実施形態において、本発明のチップは、それぞれ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存された領域内に位置するか、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする構造タンパク質内に位置するか、または、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする非構造タンパク質内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドの２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブを含み得る。
【００４２】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの任意の保存された領域は、アッセイ標的として使用され得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存された領域は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子、１Ｂ遺伝子またはヌクレオカプシド（Ｎ）遺伝子内に位置する領域であり得る。
【００４３】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの任意の可変領域は、アッセイ標的として使用され得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのスパイク糖タンパク質（Ｓ）遺伝子内に位置する領域であり得る。
【００４４】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする任意の構造タンパク質は、アッセイ標的として使用され得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする構造タンパク質は、スパイク糖タンパク質（Ｓ）、小さいエンベロープタンパク質（Ｅ）またはヌクレオカプシドタンパク質（Ｎ）をコードする遺伝子であり得る。
【００４５】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする任意の非構造タンパク質は、アッセイ標的として使用され得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの遺伝子をコードする非構造タンパク質は、レプリカーゼ１Ａまたは１Ｂをコード化する遺伝子であり得る。
【００４６】
別の特定の実施形態において、本発明のチップは、以下の４つのオリゴヌクレオチドプローブ：ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子または１Ｂ遺伝子内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドの２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、のうちの少なくとも２つを含み得る。
【００４７】
好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子または１Ｂ遺伝子内に位置する異なるヌクレオチド配列の一方または両方は：ａ）表３に示される、レプリカーゼ１Ａまたは１Ｂのヌクレオチド配列またはその相補的な鎖と、高ストリンジェンシー下で、ハイブリダイズするか；あるいはｂ）表３に示される、ヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖を含むレプリカーゼ１Ａもしくは１Ｂのヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列を含み得る。より好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子または１Ｂ遺伝子内に位置する異なるヌクレオチド配列の一方または両方は、表３に示されるヌクレオチド配列を含む。
【００４８】
【表３−１】
2006524988.tif 000006
【００４９】
【表３−２】
2006524988.tif 000007
また好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列は：ａ）表３に示される、Ｎヌクレオチド配列またはその相補的な鎖と、高ストリンジェンシー下で、ハイブリダイズするか；あるいはｂ）表３に示される、ヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖を含むＮヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列を含み得る。さらに好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列は、表３に示されるヌクレオチド配列を含む。
【００５０】
また好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列は：ａ）表３に示される、Ｓヌクレオチド配列、またはその相補的な鎖と、高ストリンジェンシー下で、ハイブリダイズするか；あるいはｂ）表３に示される、ヌクレオチド配列またはその相補的な鎖を含むＳヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する、ヌクレオチド配列を含み得る。さらに好ましくは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列は、表３に示されるヌクレオチド配列を含む。
【００５１】
任意の適切な標識は、固定化コントロールプローブ（例えば、化学標識、酵素標識、免疫原性標識、放射性標識、蛍光標識、発光標識またはＦＲＥＴ標識）に使用され得る。
【００５２】
任意の適切な非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列が、使用され得る。例えば、非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列は、アッセイされるべきサンプルの内因性の成分であり得る。あるいは、非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列は、アッセイされるべきサンプル中にスパイクされる。別の例において、スパイクされた非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列は、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ起源の配列であり得る。
【００５３】
さらに別の特定の実施形態において、本発明のチップは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子または１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含有するか、または含有すると推測されるサンプルが、そのチップと接触する場合、標識されて、任意のハイブリダイゼーション反応に関与しない固定化コントロールプローブ、任意のＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列と相補的でないが、サンプル中に含まれる非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列と相補的であるポジティブコントロールプローブ、およびサンプル中に含まれる任意のヌクレオチド配列と相補的でないネガティブコントロールプローブを含み得る。
【００５４】
好ましくは、そのチップは、記載されたプローブの複数のスポット（例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子または１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列と相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、固定化コントロールプローブ、ポジティブコントロールプローブおよびネガティブコントロールプローブの複数のスポット）を含む。
【００５５】
本発明のチップはさらに、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに関連しないコロナウイルスのヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ含み得る。例えば、ＳＡＲＳに関連しないコロナウイルスは、第Ｉ群、第ＩＩ群もしくは第ＩＩＩ群のコロナウイルスであり得るか、または以下の種に感染するコロナウイルスである：トリ種（例えば、トリ感染性気管支炎ウイルスおよびトリ感染性喉頭気管支炎ウイルス）、ウマ種（例えば、ウマコロナウイルス）、イヌ種（例えば、イヌコロナウイルス）、ネコ種（例えば、ネココロナウイルスおよびネコ感染性腹膜炎ウイルス）、ブタ種（例えば、ブタ流行性下痢ウイルス、ブタ伝染性胃腸炎ウイルスおよびブタ血球凝集性脳脊髄炎ウイルス）、仔ウシ種（例えば、新生仔ウシ下痢コロナウイルス）、ウシ種（例えば、ウシコロナウイルス）、マウス種（例えば、マウス肝炎ウイルス）、パフィノシス（ｐｕｆｆｉｎｏｓｉｓ）種（例えば、パフィノシスウイルス）、ラット種（例えば、ラットコロナウイルスおよびラットの唾液涙腺炎ウイルス）、シチメンチョウ種（例えば、シチメンチョウコロナウイルス）またはヒト種（例えば、ヒト腸内コロナウイルス）。本発明のチップはさらに、他のタイプのウイルスまたは病原体のヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブを含み得る。本発明のチップを用いてアッセイされ得るウイルスおよび病原体の例示的なリストを、以下の表５に示す。
【００５６】
【表５−１】
2006524988.tif 000008
【００５７】
【表５−２】
2006524988.tif 000009
種々のプローブ（例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存された領域内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変領域内に位置するヌクレオチド配列と相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、固定化コントロールプローブ、ポジティブコントロールプローブまたはネガティブコントロールプローブ）は、その５’末端に、ポリｄＴ領域を含み得、支持体上のその固定を増強する。
【００５８】
特定の実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも１つは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの高度に発現されるヌクレオチド配列に相補的である。このようなチップは、初期段階のＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染を検出することにおいて特に有用である。
【００５９】
このオリゴヌクレオチドプローブおよび標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列は、任意の適切な長さであり得る。好ましくは、オリゴヌクレオチドプローブおよび標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列は、少なくとも７、１０、２０、３０、４０、５０、６０、８０、９０、１００または１００を超えるヌクレオチドの長さを有する。
【００６０】
このオリゴヌクレオチドプローブおよびプライマーは、任意の適切な方法（例えば、化学合成、組換え法および／またはその両方（一般には、Ａｕｓｕｂｅｌら（編），Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．（２０００）を参照のこと））によって調製され得る。
【００６１】
任意の適切な支持体が、本発明のチップにおいて使用され得る。例えば、この支持体は、ケイ素、プラスチック、ガラス、セラミック、ゴム、およびポリマーの表面からなる群より選択される表面を含み得る。
【００６２】
（Ｃ．サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶについてアッセイするための方法）
別の局面において、本発明は、サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶについてアッセイするための方法に関し、この方法は、ａ）上記のチップを提供する工程；ｂ）上記のチップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むサンプルまたはこのヌクレオチド配列を含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；およびｃ）上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列（上記サンプル中に存在する場合）と、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの２つの異なるヌクレオチド配列にそれぞれ相補的な上記少なくとも２つのオリゴヌクレオチドプローブとの間で形成されるハイブリッドを評価して、上記サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在または量を決定し、それにより上記ハイブリッドの一方または両方の検出が、上記サンプル中の上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在を示す工程を包含する。
【００６３】
特定の実施形態において、本発明の方法は、ａ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変性領域内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列、またはＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質コード遺伝子内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列およびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質コード遺伝子内に位置する少なくとも１０個のヌクレオチドのヌクレオチド配列を含むチップを提供する工程；ｂ）上記チップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むサンプルまたはこのヌクレオチド配列を含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；ならびにｃ）上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列（上記サンプル中に存在する場合）と、ｉ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的な上記オリゴヌクレオチドプローブおよびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変性領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブとの間で形成されるハイブリッド、またはｉｉ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの構造タンパク質コード遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブおよびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの非構造タンパク質コード遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブとの間で形成されるハイブリッド、をそれぞれ評価して、上記サンプル中のＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在または量を決定し、それにより上記ハイブリッドの一方または両方の検出が、上記サンプル中の上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在を示す工程、を包含する。
【００６４】
別の特定の実施形態において、本発明の方法は、ａ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内のヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変性領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、以下の３つのオリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも１つ：標識され、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたはこれを含むと疑われるサンプルがチップと接触した場合に、いかなるハイブリダイゼーション反応にも関与しない固定化コントロールプローブ、どのＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列にも相補的でないが、サンプル中に含まれる非ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列に相補的であるポジティブコントロールプローブ、およびサンプル中に含まれるどのヌクレオチド配列にも相補的でないネガティブコントロールプローブ、ならびにブランクスポットを含むチップを提供する工程；ｂ）上記チップと、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を含むサンプルまたはこのヌクレオチド配列を含むと疑われるサンプルとを、核酸ハイブリダイゼーションに適切な条件下で接触させる工程；ならびにｃ）（ｉ）上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列（サンプル中に存在する場合）と、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの保存領域内のヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブおよびＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの可変性領域内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブとの間でそれぞれ形成されるハイブリッド；（ｉｉ）固定化コントロールプローブに含まれる標識、またはポジティブコントロールプローブおよび／もしくはネガティブコントロールプローブを含むハイブリッド、ならびに（ｉｉｉ）上記ブランクスポットにおけるシグナルを評価して、サンプル中の上記ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在、非存在または量を決定する工程、を包含する。
【００６５】
好ましくは、本発明のチップは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子またはレプリカーゼ１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列に相補的な２つのオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、固定化コントロールプローブ、ポジティブコントロールプローブおよびネガティブコントロールプローブを含み、ＳＡＲＳ−ＣｏＶの存在は、ａ）ポジティブハイブリダイゼーションシグナルが、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子またはレプリカーゼ１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブ、およびＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブのうちの少なくとも１つを使用して検出される場合；ｂ）ポジティブシグナルが、固定化コントロールプローブから検出される場合；ｃ）ポジティブハイブリダイゼーションシグナルがポジティブコントロールプローブを使用して検出される場合；ｄ）ポジティブハイブリダイゼーションシグナルが、ネガティブコントロールプローブを使用して検出されない場合；ならびにｅ）ポジティブハイブリダイゼーションシグナルがブランクスポットにおいて検出される場合に、決定される。
【００６６】
ＳＡＲＳ−ＣｏＶの可変性領域における標的配列を含めると、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのあり得る変異の評価が可能になる。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのレプリカーゼ１Ａ遺伝子またはレプリカーゼ１Ｂ遺伝子内に位置する２つの異なるヌクレオチド配列、またはＳＡＲＳ−ＣｏＶのＮ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブの少なくとも１つを使用してポジティブハイブリダイゼーションシグナルのうちを検出する一方で、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＳ遺伝子内に位置するヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブを用いてポジティブハイブリダイゼーションシグナルを検出しないことは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶの変異を示す。
【００６７】
本発明の方法は、任意の適切な予後目的および診断目的のために使用され得る。一例において、本発明の方法は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに感染した患者を、ＳＡＲＳ様症状（例えば、発熱または高温、乾いた咳、筋肉痛、呼吸困難、上昇した乳酸デヒドロゲナーゼ、低カルシウム血症、およびリンパ球減少症を有する患者の集団からポジティブに識別するために使用される（Ｂｏｏｔｈら，ＪＡＭＡ，２００３  Ｍａｙ  ６；［印刷より前に電子公開されている］）。本発明のチップ、方法およびキットは、上昇した乳酸デヒドロゲナーゼ、低カルシウム血症、およびリンパ球減少症などについて評価することをさらに包含し得る。
【００６８】
別の例において、コロナウイルスのヌクレオチド配列に相補的であるが、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに関連しないオリゴヌクレオチドプローブをさらに含むチップが使用され、この方法は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに感染した患者を、コロナウイルスに感染しているが、ＳＡＲＳには関連しない患者から、ポジティブに同定するために使用され、例えば、コロナウイルスとしては、例えば、トリ種に感染するコロナウイルス（例えば、トリ感染性気管支炎ウイルスおよびトリ感染性咽頭気管支炎ウイルス）、例えば、ウマ種に感染するコロナウイルス（例えば、ウマコロナウイルス）、例えば、イヌ種に感染するコロナウイルス（例えば、イヌコロナウイルス）、例えば、ネコ種に感染するコロナウイルス（例えば、ネココロナウイルスおよびネコ感染性腹膜炎ウイルス）、例えば、ブタ種に感染するコロナウイルス（例えば、ブタ流行性下痢ウイルス、ブタ伝染性胃腸炎ウイルスおよびブタ血球凝集性脳脊髄炎ウイルス）、例えば、仔ウシ種に感染するコロナウイルス（例えば、新生仔ウシ下痢コロナウイルス）、例えば、ウシ種に感染するコロナウイルス（例えば、ウシコロナウイルス）、例えば、マウス種に感染するコロナウイルス（例えば、マウス肝炎ウイルス）、例えば、ｐｕｆｆｉｎｏｓｉｓ種に感染するコロナウイルス（例えば、Ｐｕｆｆｉｎｏｓｉｓウイルス）、例えば、ラット種に感染するコロナウイルス（例えば、ラットコロナウイルスおよびラットのＳｉａｌｏｄａｃｒｙｏａｄｅｎｉｔｉｓウイルス）、例えば、七面鳥種に感染するコロナウイルス（例えば、七面鳥コロナウイルス）またはヒト種に感染するコロナウイルス（例えば、ヒト腸管コロナウイルス）が挙げられる。
【００６９】
なお別の例において、ＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノムの高度に発現されるヌクレオチド配列に相補的なオリゴヌクレオチドプローブを含むチップが使用され、この方法は、約１日未満から約３日で、初期段階ＳＡＲＳ患者（例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶに感染したＳＡＲＳ患者）を診断するために使用される。
【００７０】
なお別の例において、本発明の方法は、ＳＡＲＳの処置（例えば、インターフェロンまたは種々のＲＮＡウイルスの複製を阻害する薬剤（例えば、リバビリン）での処置）をモニターするために使用される。本発明の方法はまた、薬物スクリーニングアッセイにおいて、潜在的な抗ＳＡＲＳ−ＣｏＶ薬剤を評価するために使用され得る。
【００７１】
任意の適切なＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列がアッセイされ得る。例えば、アッセイされるべきＳＡＲＯＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列は、抽出されたＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列から増幅される、ＳＡＲＳ−ＣｏＶのＲＮＡゲノム配列またはＤＮＡ配列であり得る。
【００７２】
このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、任意の適切な方法によって調製され得る。例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染細胞または他の材料からＱＩＡａｍｐ  Ｖｉｒａｌ  ＲＮＡキット、Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ−Ｓａｃｃｈｉ技術またはＴＲＩｚｏｌ（Ｄｅ  Ｐａｕｌａら，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，９８  （２）：１１９−２５（２００１））を用いて抽出され得る。好ましくは、このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、ＱＩＡａｍｐ  Ｖｉｒａｌ  ＲＮＡキットを用いて、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ感染細胞または他の材料から抽出される。このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、任意の適切な供給源から抽出され得る。例えば、このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、痰または唾液のサンプルから抽出され得る。別の例において、このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、血液サンプルのリンパ球から抽出され得る。
【００７３】
このＳＡＲＳ−ＣｏＶ  ＲＮＡゲノム配列は、任意の適切な方法（例えば、ＰＣＲ）によって増幅され得る。好ましくは、標識は、ＰＣＲの間にその増幅されたＤＮＡ配列に組み込まれる。任意の適切なＰＣＲ、例えば、従来の多重のネスト化ＰＣＲまたはＲＴ−ＰＣＲが使用され得る。一例において、このＰＣＲは、２工程ネスト化ＰＣＲを含み得、第１の工程は、ＲＴ−ＰＣＲであり、第２の工程は、従来のＰＣＲである。別の例において、このＰＣＲは、複数の５’特異的プライマーおよび３’特異的プライマー（これらの特異的プライマーの各々は、増幅される標的配列に相補的な特異的配列および共通配列を含む）、ならびに５’ユニバーサルプライマーおよび３’ユニバーサルバーサルプライマー（この５’ユニバーサルプライマーは、５’特異的プライマーの共通配列に相補的であり、この３’ユニバーサルプライマーは、３’特異的プライマーの共通配列に相補的である）を使用する、１工程の多重ＲＴ−ＰＣＲを包含し得る。そしてここでこのＰＣＲにおいて、この５’ユニバーサルプライマーおよび３’ユニバーサルプライマーの濃度は、それぞれ、５’特異的プライマーおよび３’特異的プライマーの濃度以上である。好ましくは、この３’ユニバーサルプライマーおよび／または５’ユニバーサルプライマーは、例えば、蛍光標識で標識される。なお別の例において、このＰＣＲは、複数工程のネスト化ＰＣＲまたはＲＴ−ＰＣＲを含む。なお別の例において、このＰＣＲは、表４に示される以下の対のプライマーのうちの少なくとも１つを使用して行われる。
【００７４】
（表４．例示的ＳＡＲＳ−ＣｏＶプライマー）
【００７５】
【表４−１】
2006524988.tif 000010
【００７６】
【表４−２】
2006524988.tif 000011
【００７７】
【表４−３】
2006524988.tif 000012
（Ｄ．ＳＡＲＳ−ＣｏＶプライマー、プローブ、キットおよびその使用）
なお別の局面において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅するためのオリゴヌクレオチドプライマーに関し、このオリゴヌクレオチドプライマーは、ａ）高ストリンジェンシー下で、表１に示される標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補鎖とハイブリダイズするか；またはｂ）表１に示されるヌクレオチド配列またはその相補鎖を含む標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列に対して少なくとも９０％同一性を有する、ヌクレオチド配列を含む。
【００７８】
本発明のプライマーは、任意の適切な型の核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡまたはこれらの誘導体）を含み得る。好ましくは、このプライマーは、表１に示されるヌクレオチド配列、またはその相補鎖を含む。
【００７９】
特定の実施形態において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅するためのキットに関し、このキットは、ａ）上記のプライマー；およびｂ）このプローブ（プライマー）を使用してＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列を増幅し得る核酸ポリメラーゼを含む。好ましくは、この核酸ポリメラーゼは、逆転写酵素である。
【００８０】
なお別の局面において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列にハイブリダイズさせるためのオリゴヌクレオチドプローブに関し、このオリゴヌクレオチドプローブは、ａ）高ストリンジェンシー下で、表２に示される標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列もしくはその相補鎖とハイブリダイズするか；またはｂ）表２に示されるヌクレオチド配列もしくはその相補鎖を含む標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列に対して少なくとも９０％同一性を有する、ヌクレオチド配列を含む。
【００８１】
本発明のプローブは、任意の適切な型の核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡまたはそれらの誘導体）を含み得る。好ましくは、このプローブは、表２に示されるヌクレオチド配列またはその相補鎖を含む。また好ましくは、このプローブは、例えば、化学標識、酵素標識、免疫原性標識、放射活性標識、蛍光標識、ルミネッセント標識およびＦＲＥＴ標識で標識される。
【００８２】
特定の実施形態において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列のハイブリダイゼーション分析のためのキットに関し、このキットは、ａ）上記のプローブ；およびｂ）ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列と上記プローブとの間で形成されるハイブリッドを評価するための手段を含む。
【００８３】
このオリゴヌクレオチドプライマーおよびプローブは、任意の適切な方法によって生成され得る。例えば、このプローブは、化学的に合成され得（概して、Ａｕｓｕｂｅｌ（編）Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，２．１１．  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ａｎｄ  ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．（２０００）を参照のこと）、天然源から単離され得、組換え法またはそれらの組み合わせによって生成され得る。合成オリゴヌクレオチドはまた、Ｍａｔｔｅｕｃｃｉら，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，３：３１８５−３１９１（１９８１）のトリエステル法を使用することによって調製され得る。あるいは、例えば、シアノエチルホスホルアミダイト化学を使用して、Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ＤＮＡ合成機での自動化合成が、好ましくあり得る。好ましくは、このプローブおよびプライマーは、化学的に合成される。
【００８４】
本発明のオリゴヌクレオチドプローブおよびプライマーを調製するための適切な塩基は、天然に存在するヌクレオチド塩基（例えば、アデニン、シトシン、グアニン、ウラシルおよびチミン）から選択され得る。これらの塩基はまた、天然に存在しないヌクレオチド塩基または「合成」ヌクレオチド塩基（例えば、８−オキソ−グアニン、６−メルカプトグアニン、４−アセチルシチジン、５−（カルボキシヒドロキシエチル）ウリジン、２’−Ｏ−メチルシチジン、５−カルボキシメチルアミノ−メチル−２−チオウリジン、５−カルボキシメチルアミノメチルウリジン、ジヒドロウリジン、２’−Ｏ−メチルプソイドウリジン、β−Ｄ−ガラクトシルキューオシン、２’−Ｏ−メチルグアノシン、イノシン、Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、１−メチルアデノシン、１−メチルプソイドウリジン、１−メチルグアノシン、１−メチルイノシン、２，２−ジメチルグアノシン、２−メチルアデノシン、２−メチルグアノシン、３−メチルシチジン、５−メチルシチジン、Ｎ６−メチルアデノシン、７−メチルグアノシン、５−メチルアミノメチルウリジン、５−メトキシアミノメチル−２−チオウリジン、β−Ｄ−マンノシルキューオシン、５−メトキシカルボニルメチルウリジン、５−メトキシウリジン、２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデノシン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシル−２−メチルチオプリン−６−イル）カルバモイル）スレオニン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）Ｎ−メチルカルバモイル）スレオニン、ウリジン−５−オキシ酢酸メチルエステル、ウリジン−５−オキシ酢酸、ワイブトキソシン、プソイドウリジン、キューオシン、２−チオシチジン、５−メチル−２−チオウリジン、２−チオウリジン、２−チオウリジン、５−メチルウリジン、Ｎ−（（９−β−Ｄ−リボフラノシルプリン−６−イル）カルバモイル）スレオニン、２’−Ｏ−メチル−５−メチルウリジン、２’−Ｏ−メチルウリジン、ワイブトシン、および３−（３−アミノ−３−カルボキシプロピル）ウリジンから選択され得る。
【００８５】
同様に、オリゴヌクレオチドの化学アナログ（例えば、ホスホジエステル結合が、例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエートまたはホスホルアミデートに改変されるオリゴヌクレオチド）もまた、使用され得る。分解からの保護は、「３’−エンドキャップ」ストラテジーの使用によって達成され得る。このストラテジーによって、ヌクレアーゼ耐性連結が、このオリゴヌクレオチドの３’末端においてホスホジエステル連結に置換され得る（Ｓｈａｗら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１９：７４７（１９９１））。ホスホルアミデート、ホスホロチオエート、およびメチルホスホネート連結は全て、この様式において適切に機能する。ホスホジエステル骨格のより徹底的な改変が、安定性を付与することが示され、オリゴヌクレオチドの増強された親和性および細胞透過の増大を可能にし得る（Ｍｉｌｌｉｇａｎら，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，３６：１９２３（１９９３））。多くの異なる化学ストラテジーは、ホスホジエステル骨格全体を、新規な連結で置換するために使用された。骨格アナログは、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、メチルホスホネート、ホスホルアミデート、ボラノホスフェート、ホスホトリエステル、ホルムアセタール、３’−チオホルムアセタール、５’−チオホルムアセタール、５’−チオエーテル、カーボネート、５’−Ｎ−カーボネート、スルフェート、スルホネート、スルファメート、スルホンアミド、スルホン、スルファイト、スルホキシド、スルフィド、ヒドロキシルアミン、メチレン（メチルイミノ）（ＭＭＩ）またはメチレンオキシ（メチルイミノ）（ＭＯＭＩ）連結を含む。ホスホロチオエートおよびメチルホスホネート改変オリゴヌクレオチドは、自動化オリゴヌクレオチド合成を介してそれらの利用可能性に起因して、特に好ましい。このオリゴヌクレオチドは、「ペプチド核酸」（例えば、（Ｍｉｌｌｉｇａｎら，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，３６：１９２３（１９９３）に記載される）であり得る。オリゴヌクレオチドプローブが標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶ配列の一部に結合し得るものの少なくとも一部の配列を保有するべきであることが、唯一の要件である。
【００８６】
ハイブリダイゼーションプローブまたは増幅プライマーは、任意の適切な長さであり得る。プローブがＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的核酸にハイブリダイズし、プローブまたはプライマーとして有効に機能する（例えば、検出または増幅を容易にする）限りにおいて、プローブまたはプライマーの長さには、上限も下限もない。本発明のプローブおよびプライマーは、５０、４０、３０、２０、１５または１０ヌクレオチド程度の短さまたはそれより短いものであり得る。同様に、このプローブまたはプライマーは、２０、４０、５０、６０、７５、１００または２００ヌクレオチド程度の長さ、またはこれより長いもの（例えば、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的配列の全長まで）であり得る。一般に、このプローブは、相補的な標的核酸鎖のいずれかの少なくとも１４ヌクレオチド、好ましくは、少なくとも１８ヌクレオチド、およびより好ましくは少なくとも２０〜３０ヌクレオチドを有し、ヘアピン二次構造を全く含まない。特定の実施形態において、このプローブは、少なくとも３０ヌクレオチドまたは少なくとも５０ヌクレオチドの長さを有し得る。完全な相補性があるべきであれば、すなわち、この鎖がプローブの配列に同一な配列を含む場合、この二本鎖は、ストリンジェントな条件下ですら比較的安定であり、このプローブは、短くてもよく、すなわち、約１０〜３０塩基対の範囲であってもよい。このプローブにおいてある程度のミスマッチが予測される場合、すなわち、このプローブが、可変領域または特定の属内の全ての種のような配列の群にハイブリダイズすると疑われる場合、このプローブは、ミスマッチの効果と釣り合いをとるために、プローブは、より長くてもよい（すなわち、１５〜４０塩基）。
【００８７】
このプローブは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的遺伝子全体にまたがる必要はない。ＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的または対立遺伝子を特異的に同定する可能性を有する標的領域の任意のサブセットが、使用され得る。結論として、この核酸プローブは、標的領域の８個程度の少ないヌクレオチドにハイブリダイズし得る。さらに、このプローブのフラグメントは、これらのフラグメントが型決定されるべきＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的遺伝子に十分に特徴的である限りにおいて、使用され得る。
【００８８】
このプローブまたはプライマーは、低ストリンジェント条件下で少なくとも８ヌクレオチドの長さであるＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的ヌクレオチド配列とハイブリダイズし得るはずである。好ましくは、このプローブまたはプライマーは、中程度のストリンジェンシー下または高ストリンジェンシー下でＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的ヌクレオチド配列とハイブリダイズする。
【００８９】
なお別の局面において、本発明は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ標的遺伝子を型決定するための、支持体に固定化されたオリゴヌクレオチドプローブのアレイに関し、このアレイは、複数のオリゴヌクレオチドプローブが固定化された、核酸ハイブリダイゼーションにおいて使用するために適切な支持体、ａ）高ストリンジェンシーで、表３に示されるＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補鎖とハイブリダイズするか；またはｂ）表３に示されるヌクレオチド配列を含む標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶヌクレオチド配列またはその相補鎖に少なくとも９０％の配列同一性を有する、ヌクレオチド配列を含む。
【００９０】
複数のプローブは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡまたはこれらの誘導体を含み得る。これらのプローブのうちの少なくとも１つまたはいくつかは、表１に示されるヌクレオチド配列、またはその相補鎖を含み得る。好ましくは、プローブアレイは、表３に示されるヌクレオチド配列またはその相補鎖の全てを含む。これらのプローブのうちの少なくとも１つ、いくつかまたは全ては、標識され得る。例示的な標識としては、化学標識、酵素標識、免疫原性標識、放射活性標識、蛍光標識、発光標識およびＦＲＥＴ標識が挙げられる。任意の適切な支持体（例えば、ケイ素、プラスチック、ガラス、セラミック、ゴム、およびポリマーの表面）が使用され得る。
【００９１】
（Ｅ．アッセイのフォーマット）
（プローブの固定化）
本発明の方法、プローブおよびプローブアレイは、溶液中で使用され得る。好ましくは、チップフォーマットにおいて、例えば、固体支持体上に固定化されたプローブを使用することによって、行われる。
【００９２】
このプローブは、任意の適切な表面、好ましくは、固体支持体（例えば、ケイ素、プラスチック、ガラス、セラミック、ゴムまたはポリマーの表面など）上に固定化され得る。このプローブはまた、３次元の多孔性ゲル基材（例えば、Ｐａｃｋａｒｄ  ＨｙｄｒｏＧｅｌ  ｃｈｉｐ（Ｂｒｏｕｄｅら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２９（１９）：Ｅ９２（２００１））中に固定化され得る。
【００９３】
アレイベースのアッセイについて、これらのプローブは、好ましくは、固体支持体（例えば、「バイオチップ」）に固定化される。この固体支持体は、生物学的、非生物学的、有機的、無機的、またはこれらのいずれかの組み合わせであり得る。この固体支持体は、粒子、繊維（ｓｔｒａｎｄ）、凝固物（ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｅ）、ゲル、シート、チューブ、球体、容器、キャピラリー、パッド、スライス、フィルム、プレート、スライドなどとして存在する。
【００９４】
プローブのライブラリーを含むマイクロアレイバイオチップは、多くの周知のアプローチによって調製され得る。これらのアプローチとしては、例えば、光指向性方法（例えば、米国特許第５，１４３，８５４号、同第５，３８４，２６１号または同第５，５６１，０７１号に記載されるＶＬＳＩＰＳＴＭ）；ビーズベースの方法（例えば、米国特許第５，５４１，０６１号に記載される）；およびピンベースの方法（例えば、米国特許第５，２８８，５１４号に記載される）が挙げられる。米国特許第５，５５６，７５２号（これは、ＶＬＳＩＰＳＴＭを使用して、マイクロアレイとして異なる二本鎖プローブのライブラリーを調製することを詳述する）はまた、マイクロアレイにおけるヘアピンプローブのライブラリーの調製に適している。
【００９５】
フローチャネル法（例えば、米国特許第５，６７７，１９５号および同第５，３８４，２６１号に記載される）は、種々の異なるプローブを有するマイクロアレイバイオチップを調製するために使用され得る。この場合、基材の特定の活性化された領域は、プローブがフローチャネルを通って支持体に送達される場合、他の領域から機械的に分離される。フローチャネル法の詳細な説明は、湿潤促進剤の保護コーティングを使用して、設計された流路を通る液体の指向性の流れを増強することを含め、米国特許第５，５５６，７５２号に記載され得る。
【００９６】
スポット方法もまた、種々のプローブが固定化されたマイクロアレイバイオチップを調製するために使用され得る。この場合、反応物は、この支持体の選択された領域に比較的少量、直接沈着させることにより、送達される。いくつかの工程において、当然のことながら、支持体表面全体が、噴霧されてもよいし、そうでなければ、特定の溶液でコーティングされてもよい。特定のフォーマットにおいて、ディスペンサーが、領域間を移動し、各工程に必要な程度だけ、プローブまたは他の試薬を沈着させる。代表的なディスペンサーは、このプローブ含有溶液または他の流体を支持体に送達するためのマイクロピペット、ナノピペット、インクジェット型カートリッジおよびピン、および必要に応じて、この支持体に対するこれらの送達デバイスの位置を制御するためのロボットシステムを含む。他のフォーマットにおいて、このディスペンサーは、一連のチューブまたは複数のウェルトレイ、マニホルド、および送達デバイスのアレイを備え、その結果、種々の試薬が、同時に反応領域に送達され得る。スポット方法は、当該分野で周知であり、例えば、米国特許第５，２８８，５１４号、同第５，３１２，２３３号および同第６，０２４，１３８号に記載されるものを含む。いくつかの場合において、フローチャネルと支持体の所定の領域に対する「スポッティング」の組み合わせはまた、固定化されたプローブを有するマイクロアレイバイオチップを調製するために使用され得る。
【００９７】
プローブを固定化するための固体支持体は、好ましくは平坦であるが、別の表面構成をとってもよい。例えば、この固体支持体は、隆起した領域または凹んだ領域を含み得る。この領域の上で、プローブ合成が行われるか、またはこの場所にプローブが結合される。いくつかの実施形態において、この固体支持体は、適切な吸光特徴を提供するように選択され得る。例えば、この支持体は、重合化ラングミュアブロジェット膜、ガラスまたは官能化ガラス、Ｓｉ、Ｇｅ、ＧａＡｓ、ＧａＰ、ＳｉＯ２、ＳｉＮ４、改変ケイ素、または種々のゲルもしくはポリマー（例えば、（ポリ）テトラフルオロエチレン、（ポリ）ビニリデンジフルオリド、ポリスチレン、ポリカーボネート、またはこれらの組み合わせ）のうちのいずれか１つであり得る。他の適切な固体支持体材料は、当業者に容易に明らかである。
【００９８】
固体支持体の表面は、反応性基を含み得、この反応性基としては、カルボキシル、アミノ、ヒドロキシル、チオールなどが挙げられ、これらの基は、オリゴヌクレオチドまたは核酸と結合される反応性基に結合させるために適切である。好ましくは、この表面は、光学的に透明であり、表面Ｓｉ−−ＯＨ官能基（例えば、シリカ表面で見出されるもの）を有する。
【００９９】
これらのプローブは、当業者に周知の化学的手段または物理的手段（例えば、イオン結合力、共有結合力または他の力）によって、支持体に結合され得る。核酸およびオリゴヌクレオチドの固定化は、当該分野で周知の任意の手段により達成され得る（例えば、Ｄａｔｔａｇｕｐｔａら，Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１７７：８５−８９（１９８９）；Ｓａｉｋｉら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６：６２３０−６２３４（１９８９）；およびＧｒａｖｉｔｔら，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏ．，３６：３０２０−３０２７（１９９８）を参照のこと）。
【０１００】
このプローブは、ハイブリダイゼーションアッセイにおいて都合がよい場合には、スペーサー分子（例えば、Ｌｏｃｋｈａｒｔらに対する米国特許第５，５５６，７５２号に記載される）によって支持体に結合されて、このプローブの二本鎖部分の間に間隔が設けられ得る。スペーサー分子は、代表的には、６〜５０原子の間の長さを含み、この支持体に結合する表面結合部分を含む。この支持体への結合は、例えば、（ポリ）トリフルオロクロロエチレン表面を有する支持体を用いて、炭素−炭素結合によって、または好ましくは、シロキサン結合（例えば、固体支持体としてガラスまたは二酸化ケイ素を用いて）達成され得る。シロキサン結合は、その支持体と、スペーサーのトリクロロシリル基またはトリアルコキシシリル基とを反応させることによって形成され得る。アミノアルキルシランおよびヒドロキシアルキルシラン、ビス（２−ヒドロキシエチル）−アミノプロピルトリエトキシシラン、２−ヒドロキシエチルアミノプロピルトリエトキシシラン、アミノプロピルトリエトキシシラン、またはヒドロキシプロピルトリエトキシシランは、有用な表面結合基である。
【０１０１】
このスペーサーはまた、伸長した部分またはより長い鎖の部分を含み得る。これらの部分は、そのプローブの表面結合部分に結合される。例えば、アミン基、ヒドロキシル基、チオール基、およびカルボキシル基は、スペーサーの伸長した部分を、表面結合部分に結合するために適している。このスペーサーの伸長した部分は、任意のその後のポリマー合成の条件に対して不活性である、種々の分子のいずれかであり得る。これらのより長い鎖の部分は、代表的には、アリールアセチレン、２〜１４個のモノマーユニットを含むエチレングリコールオリゴマー、ジアミン、二酸、アミノ酸、ペプチド、またはこれらの組み合わせである。
【０１０２】
いくつかの実施形態において、このスペーサーの伸長した部分はポリヌクレオチドであるか、またはこのスペーサー全体が、ポリヌクレオチドであり得る。このスペーサーの伸長した部分はまた、ポリエチレングリコール、ポリヌクレオチド、アルキレン、多価アルコール、ポリエステル、ポリアミン、ポリホスホジエステルおよびこれらの組み合わせから構築され得る。さらに、プローブの合成における使用に関して、スペーサーは、スペーサーの遠位端または末端（固体支持体の反対側）の官能基（例えば、ヒドロキシル、アミノまたはカルボン酸）に結合された保護基を有し得る。脱保護およびカップリングの後、この遠位端は、オリゴマーまたはプローブに共有結合され得る。
【０１０３】
本発明の方法は、一度に単一のプローブを用いて単一のサンプルを分析するために使用され得る。好ましくは、この方法は、ハイスループットフォーマットで行われる。例えば、複数のサンプルが、単一のプローブで同時に分析され得るか、または単一のサンプルが、複数のプローブを使用して同時に分析され得る。より好ましくは、複数のサンプルが、複数のプローブを使用して同時に分析され得る。
【０１０４】
（ハイブリダイゼーション条件）
ハイブリダイゼーションは、当該分野で公知の任意の適切な技術の下で行われ得る。ハイブリダイゼーション条件が、ハイブリダイゼーションの程度、ハイブリダイゼーションの特異性のレベル、および非特異的結合のバックグラウンドレベルを増大または減少させるために、（すなわち、ハイブリダイゼーションまたは洗浄の塩濃度または温度を変化させることによって）変化し得ることは、当業者に明らかである。これらのプローブと標的ヌクレオチド配列との間のハイブリダイゼーションは、任意の適切なストリンジェンシー（高ストリンジェンシー、中程度のストリンジェンシー、または低ストリンジェンシーを含む）の下で行われ得る。代表的には、ハイブリダイゼーションは、高ストリンジェンシーの条件下で行われる。
【０１０５】
上記プローブと標的核酸との間のハイブリダイゼーションは、均質であり得る（例えば、分子ビーコンにおいて使用される代表的条件（Ｔｙａｇｉ  Ｓ．ら，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１４：３０３−３０８（１９９６）；および米国特許第６，１５０，０９７号）およびハイブリダイゼーション保護アッセイにおいて使用される代表的条件（Ｇｅｎ−Ｐｒｏｂｅ，Ｉｎｃ）（米国特許第６，００４，７４５号））か、または不均質であり得る（異なる型のニトロセルロースベースのハイブリダイゼーションにおいて使用される代表的条件および磁性ビーズベースのハイブリダイゼーションにおいて使用される代表的条件）。
【０１０６】
この標的ポリヌクレオチド配列は、高〜低のストリジェンシーハイブリダイゼーション条件および洗浄条件の下で、上記標的配列のオリゴヌクレオチドと安定なハイブリッドを形成するオリゴヌクレオチドプローブとハイブリダイゼーションすることによって検出され得る。ハイブリダイゼーションによる検出の利点は、使用されるプローブに依存して、さらなる特異性があり得ることである。上記プローブが、標的配列に対して完全に相補的（すなわち、約９９％以上）であることが予想される場合、高ストリジェンシー条件が使用される。いくつかのミスマッチが予想される場合（例えば、プローブが完全には相補的でないという結果から、改変株が予想される場合）、ハイブリダイゼーションのストリジェンシーはより低下し得る。しかし、条件は、非特異的ハイブリダイゼーションを最小化するか、または除去するために選択される。
【０１０７】
ハイブリダイゼーションに影響する条件および非特異的ハイブリダイゼーションに対して選択する条件は、当該分野において公知である（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，第２版，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，１９８９）。一般的に、より低い塩濃度およびより高い温度が、ハイブリダイゼーションのストリジェンシーを増加させる。例えば、一般的にストリジェントなハイブリダイゼーション条件としては、およそ０．１×ＳＳＣ、０．１％  ＳＤＳを含む溶液中での、約６５℃のインキュベーション温度／洗浄温度におけるインキュベーションが挙げられる。中ストリジェントな条件としては、およそ１〜２×ＳＳＣ、０．１％  ＳＤＳを含む溶液中での、約５０℃〜６５℃のインキュベーション温度／洗浄温度におけるインキュベーションが挙げられる。低ストリジェントな条件は、２×ＳＳＣおよび約３０℃〜５０℃である。
【０１０８】
ハイブリダイゼーションおよび洗浄の代替的方法は、まず低ストリジェンシー条件（５×ＳＳＰＥ、０．５％  ＳＤＳ）が実行され、続いて３Ｍ塩化テトラメチルアンモニウム（ＴＭＡＣ）の存在下で高ストリジェンシー洗浄を実行することである。このＴＭＡＣの効果は、Ａ−Ｔ塩基対およびＧ−Ｃ塩基対の相対的な結合を均等にし、所定の温度でのハイブリダイゼーションの効率が、ポリヌクレオチドの長さとより密接に対応することである。ＴＭＡＣを使用して、洗浄の温度を変動して所望のストリジェンシーのレベルを達成することが可能である（Ｗｏｏｄら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，８２：１５８５−１５８８（１９８５））。
【０１０９】
ハイブリダイゼーション溶液は、２５％ホルムアミド、５×ＳＳＣ、５×デンハート溶液、１００μｇ／ｍｌの一本鎖ＤＮＡ、５％硫酸デキストラン、またはプローブハイブリダイゼーションに有用であることが公知な他の試薬を含み得る。
【０１１０】
（ハイブリッドの検出）
上記プローブと標的ＳＡＲＳ−ＣｏＶ核酸との間のハイブリダイゼーションの検出は、当該分野で公知の（例えば、プローブ、二次プローブ、標的核酸またはそれらの組み合わせを標識すること）任意の方法で実施され得、そして本発明の目的に適切である任意の方法によって実施され得る。あるいは、このハイブリッドは、検出可能な標識の非存在下において、質量分析によって検出され得る（例えば、米国特許番号６，３００，０７６号）。
【０１１１】
検出可能な標識は、ハイブリダイゼーションの後に直接的にか、または間接的にのどちらかで検出され得る部分である。言い換えると、検出可能な標識は、測定可能な物理的特徴を有するか（例えば、蛍光または吸光度）、または酵素反応の参加者である。直接標識を使用して、標的ヌクレオチド配列またはプローブが標識され、ハイブリッドの形成は、ハイブリッド中の標識を検出することによって評価される。間接標識を使用して二次プローブが標識され、ハイブリッドの形成は、二次プローブともとのハイブリッドとの間に形成される二次ハイブリッドを検出することによって、評価される。
【０１１２】
プローブまたは核酸を標識する方法は、当該分野で周知である。適切な標識としては、フルオロフォア、発色団、発光団、放射性同位元素、電子密度試薬、ＦＲＥＴ（蛍光共鳴エネルギー転移）、特異的な結合パートナーを有する酵素およびリガンドが挙げられる。特に有用な標識は、酵素的活性基（例えば、酵素（Ｗｉｓｄｏｍ，Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．，２２：１２４３（１９７６））；酵素基質（英国特許第１，５４８，７４１号）；補酵素（米国特許第４，２３０，７９７号および同第４，２３８，５６５号）および酵素インヒビター（米国特許第４，１３４，７９２号）；蛍光剤（ＳｏｉｎｉおよびＨｅｍｍｉｌａ，Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．，２５：３５３（１９７９））；発色団（フィコビリタンパク質を含む）、ルミネサー（ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｒ）（例えば、ケミルミネサー（ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｒ）およびバイオルミネサー（ｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｒ））（ＧｏｒｕｓおよびＳｃｈｒａｍ，Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．，２５：５１２（１９７９）および同書，１５３１）；特異的に結合可能なリガンド（すなわち、タンパク質結合リガンド）；抗原；および放射性同位体（例えば、３Ｈ、３５Ｓ、３２Ｐ、１２５Ｉ、および１４Ｃ）を含む残基）である。
【０１１３】
このような標識は、それら自身の物理的特性（例えば、蛍光剤、発色団および  放射性同位元素）、またはそれらの反応特性もしくは結合特性（例えば、抗体、酵素、基質、補酵素およびインヒビター）に基づいて検出される。リガンド標識もまた、オリゴヌクレオチドプローブ（すなわち、捕獲プローブ）の固相捕獲に有用である。例示的な標識としては、ビオチン（標識されたアビジンまたはストレプトアビジンへの結合によって検出可能）および酵素（例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ（酵素基質を添加して、有色反応生成物を生成することによって検出可能）が挙げられる。
【０１１４】
例えば、放射性同位体で標識したプローブまたは標的核酸はオートラジオグラフィによって検出され得る。あるいは、蛍光性部分で標識されたプローブまたは標的核酸は、当該分野で公知のような蛍光定量法によって検出され得る。ハプテンまたはリガンド（例えば、ビオチン）で標識された核酸は、標識されたリガンドに結合するハプテンまたはタンパク質に対する、抗体あるいは抗体色素（例えば、アビジン）を添加することによって検出され得る。
【０１１５】
さらなる選択肢として、上記プローブまたは核酸は、ハイブリダイゼーションを検出するためのさらなる試薬を必要とする部分で標識され得る。この標識が酵素である場合、標識された核酸（例えば、ＤＮＡ）は、最終的には適切な媒体中に配置され、触媒の程度を決定する。例えば、補因子で標識された核酸は、その標識が酵素についての補因子であり、基質である酵素を添加することによって検出され得る。従って、この酵素がホスファターゼである場合、媒体はニトロフェニルホスフェートを含み得、その色を観察することによって、生成されるニトロフェノールの量をモニタリングし得る。この酵素がβ−ガラクトシダーゼである場合、媒体は、ｏ−ニトロ−フェニル−Ｄ−ガラクト−ピラノシドを含み得る。ｏ−ニトロ−フェニル−Ｄ−ガラクト−ピラノシドもまた、ニトロフェノールを遊離する。後半の例示的な例としては、β−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ、パパインおよびペルオキシダーゼが挙げられるが、これらに限定されない。インサイチュハイブリダイゼーション研究について、基質の最終生成物は、好ましくは水不溶性である。他の標識（例えば、色素）は、当業者に明白である。
【０１１６】
上記標識は、ＤＮＡ結合リガンド（例えば、アクリジン染料、フェナントリジン、フェナジン、フロクマリン、フェノチアジンおよびキノリン）に直接的に結合し得る。この結合は、直接の化学的結合（例えば、共有結合を含む）によるか、または間接の結合（例えば、マイクロカプセルまたはリポソーム中での標識の取り込みによる）によるものであり、これは結合リガンドに同様に結合する。標識がＤＮＡ結合リガンド（例えば、インターカレーター化合物）に結合することによる方法は、当該分野で周知であり、任意の便利な方法が使用され得る。代表的なインターカレートとしては、モノ−アジドアミノアルキルメチジウム化合物またはビス−アジドアミノアルキルメチジウム化合物またはエチジウム化合物、エチジウムモノアジドエチジウムジアジド、エチジウムダイマーアジド（Ｍｉｔｃｈｅｌｌら，Ｊ  Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０４：４２６５（１９８２）））、４−アジド−７−クロロキノリン、２−アジドフルオレン、４’−アミノメチル−４，５’−ジメチルアンゲリシン、４’−アミノメチル−トリオキシサレン（ｔｒｉｏｘｓａｌｅｎ）（４’アミノメチル−４，５’，８−トリメチル−ソラレン）、３−カルボキシ−５−または−８−アミノ−または−ヒドロキシ−ソラレンが挙げられる。特異的な核酸結合アジド化合物は、Ｆｏｒｓｔｅｒら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．，１３：７４５（１９８５）により記載されている。他の有用な光反応性のインターカレーターは、ピリミジン残基と（２＋２）環付加物を形成するフルクマリンである。アルキル化剤はまた、ＤＮＡ結合リガンドとして使用され得、それらとしては、例えば、ビス−シクロエチルアミンおよびエポキシドまたはアジリジン（例えば、アフラトキシン、多環炭化水素エポキシド、マイトマイシンおよびノルフィリン（ｎｏｒｐｈｉｌｌｉｎ）Ａ）が挙げられる。特に有用な挿入剤の光活性形態は、アジドインターカレーターである。その反応性のニトレンは、長波長の紫外光または可視光で容易に生成され、アリールアジドのニトレンは、再構成生成物より挿入反応の方を優先する（Ｗｈｉｔｅら，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．，４６：６４４（１９７７））。
【０１１７】
上記プローブはまた、特定の形式（例えば、逆ドットブロット（ｒｅｖｅｒｓｅ  ｄｏｔ  ｂｌｏｔ）のための１０〜１００個のＴ残基の添加、またはウシ血清アルブミンの結合または磁気的ビーズ上への固定）で使用するために改変され得る。
【０１１８】
非間接的な検出方法によってハイブリダイゼーションを検出する場合、検出可能に標識された第二のプローブが、プローブと標識との間の最初のハイブリダイゼーションの後に、またはプローブおよび標的のハイブリダイゼーションの間に、添加され得る。必要に応じて、このハイブリダイゼーション条件は、二次プローブの添加の後に改変され得る。ハイブリダイゼーションの後、ハイブリダイズしていない二次プローブは、最初のプローブから分離され得る（例えば、最初のプローブが固体支持体上に固定されている場合、洗浄による）。固体支持体の場合において、支持体上の位置に結合した標識の検出は、サンプル中の標的ヌクレオチド配列のプローブに対するハイブリダイゼーションを示す。
【０１１９】
検出可能に標識された二次プローブは、特異的プローブであり得る。あるいは、検出可能に標識されたプローブは、変性プローブ（例えば、米国特許第５，３４８，８５５号に本質的に記載されるゲノムＤＮＡ全体のような配列の混合物）であり得る。後半の場合において、標識は、その二次プローブが二本鎖ＤＮＡを含む場合、インターカレート色素（ｉｎｔｅｒｃａｌａｔｉｎｇ  ｄｙｅ）を用いて達成され得る。好ましいＤＮＡ結合リガンドは、上に記載したようなインターカレーター化合物である。
【０１２０】
二次プローブはまた、ランダムヌクレオチドプローブ配列のライブラリーであり得る。二次プローブの長さは、二次プローブによって検出される固体支持体上の一次プローブまたは標的ヌクレオチド配列の長さおよび組成物を考慮して決定されるべきである。このようなプローブライブラリーは、光活性化試薬で標識された３’端または５’端および検出試薬（例えば、フルオロフォア、酵素、色素、発光団，または他の検出可能な公知の部分）でロードされた他の端を、好ましくは提供する。
【０１２１】
標識された核酸を作製する際に使用される特定の配列は、異なり得る。従って、例えば、アミノ置換ソラレンは、まず核酸に光化学的に結合し得、この生成物は、標識に結合し得ることによってペンダントアミノ基を有する（すなわち、標識は、ＤＮＡ結合リガンドと試験サンプル中の核酸を光化学的に反応させることによって実施され得る）。あるいは、上記ソラレンは、まず標識（例えば、酵素）に結合し、次いでその核酸に結合し得る。
【０１２２】
好都合なことに、ＤＮＡ結合リガンドは、まず化学的に標識と結合し、その後核酸プローブと結合する。例えば、ビオチンはカルボキシル基を運ぶので、ビオチンは、アミド形成またはエステル形成によって、フロクマリンまたはビオチンの生物学的活性の光化学的活性への干渉を伴わずに、フロクマリンと結合し得る。アミノメチルアンゲリシン（Ａｍｉｎｏｍｅｔｈｙｌａｎｇｅｌｉｃｉｎ）、ソラレンおよびフェナントリジウム（ｐｈｅｎａｎｔｈｒｉｄｉｕｍ）の誘導体は、臭化フェナントリジウムおよびこれらの誘導体（例えば、塩化アミノプロピルメチジウム）が結合し得るのと同様に（Ｈｅｒｔｚｂｅｒｇら，Ｊ．Ａｍｅｒ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０４：３１３（１９８２））、標識に結合し得る。あるいは、二官能性試薬（例えば、ジチオビススクシンイミジルプロピオネートまたは１，４−ブタンジオールジグリシジルエステル）は、ＤＮＡ結合リガンドを反応物がアルキルアミノ残基を有する標識に結合させるために、溶媒、比率、および反応の条件に関してさらに公知の様式で直接的に使用され得る。特定の二官能性試薬、グルタルアルデヒドは、適切であり得ない可能性がある。なぜならば、グルタルアルデヒドが結合する間、これらは核酸を改変し得、従ってアッセイを干渉し得るからである。このような困難を防ぐために、決まった注意を払い得る。
【０１２３】
また好都合なことに、ＤＮＡ結合リガンドは、スペーサーによって標識に結合し得る。スペーサーは、約４０原子まで（好ましくは、約２〜２０原子）の鎖を含み、炭素、酸素、窒素および硫黄が挙げられるが、これらに限定されない。このようなスペーサーは、多機能性ラジカルのメンバーであり、ペプチド、炭化水素、ポリアルコール、ポリエーテル、ポリアミン、ポリイミンおよび炭水化物（例えば、−グリシル−グリシル−グリシル−または他のオリゴペプチド、カルボニルジペプチド、およびω−アミノ−アルカン−カルボニルラジカルなど）が挙げられるが、これらに限定されない。糖、ポリエチレンオキシドラジカル、グリセリル、ペンタエリトリトールおよび類似のラジカルもまた、スペーサーとして役割を果たし得る。スペーサーは、核酸結合リガンドおよび／または標識に直接的に結合し得るか、あるいはこの結合は、二価ラジカルの連結（例えば、ジチオビス−スクシンイミジル−プロピオネート、１，４−ブタンジオールジグリシジルエーテル、ジイソシアネート、カルボジイミド、グリオキサール、グルタルアルデヒドなど）を含み得る。
【０１２４】
ハイブリダイゼーションを間接的に検出するための二次プローブはまた、例えば、ＴｙａｇｉおよびＫｒａｍｅｒ、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈ．、１４：３０３−３０９（１９９６）またはＬｉｚａｒｄｉらに対する米国特許第５，１１９，８０１号および同第５，３１２，７２８号に記載される「ビーコンプローブ」方法におけるエネルギー移動によって検出され得る。当該分野で公知のいずれのＦＲＥＴ検出系も、本方法において使用され得る。例えば、ＡｌｐｈａＳｃｒｅｅｎＴＭ系が使用され得る。ＡｌｐｈａＳｃｒｅｅｎ技術は、「Ａｍｐｌｉｆｉｅｄ  Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｘｉｍｉｔｙ  Ｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓ  Ａｓｓａｙ」方法である。
【０１２５】
６８０ｎｍでのレーザー光での照射に関して、供与体ビーズ中の光増感剤は、周囲の酸素（ａｍｂｉｅｎｔ  ｏｘｙｇｅｎ）を一重項状態の酸素に変換する。励起された一重項状態の酸素分子は、急速に崩壊する前に、およそ２５０ｎｍ（１個のビーズの直径）に発散する。アクセプタービーズが、供与体ビーズの非常に近接している場合、生物学的相互作用の効力によって、一重項状態の酸素分子は、アクセプタービーズ中の化学発光基と反応し、即座に、同じビーズ中の蛍光アクセプターにエネルギーを移す。これらの蛍光アクセプターは、発光の波長を５２０〜６２０ｎｍに移動させる。この全体の反応は、０．３秒の崩壊の半減期を有し、測定は、時間分解様式（ｔｉｍｅ−ｒｅｓｏｌｖｅｄ  ｍｏｄｅ）で行われる。他の例示的なＦＲＥＴ供与体／アクセプター対としては、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（供与体）およびテトラメチルローダミン（アクセプター）（５５Åの有効距離）；ＩＡＥＤＡＮＳ（供与体）およびＦｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（アクセプター）（４６Åの有効距離）；ならびにＦｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（供与体）およびＱＳＹ−７色素（アクセプター）（６１Åの有効距離）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）が挙げられる。  
【０１２６】
核酸検出のための定量的アッセイはまた、本発明に従って行われ得る。マイクロアッセイスポットに結合した二次プローブの量は、測定され得、そしてサンプル中の核酸標的の量と関連し得る。サンプルの希釈は、公知の量の標的核酸を含むコントロールを用いて使用され得る。これらの工程を実行するための正確な条件は、当業者には明らかなようにみえる。マイクロアレイアッセイ分析において、検出可能な標識は、プローブアレイをｘ線フィルムもしくはホスホイメージャー（ｐｈｏｓｐｈｏｉｍａｇｅｒ）の隣に配置し、プローブが結合している部位を同定することによって、可視化され得るか、または評価され得る。蛍光は、電荷結合素子（ＣＣＤ）またはレーザースキャンニングによって検出され得る。
【０１２７】
（試験サンプル）
任意の適切なサンプル（ヒト、動物または環境（例えば、土または水）起源のサンプルを含む）は、本方法を使用して分析され得る。試験サンプルとしては、体液（例えば、血液、精液、脳脊髄液、膿、羊水、涙）、または半固体もしくは流体分泌物（例えば、痰、唾液、肺の吸引物（ａｓｐｉｒａｔｅ）、膣もしくは尿道の排泄物、便または固体組織サンプル（例えば、生検材料または絨毛膜絨毛の標本）が挙げられ得る。試験サンプルはまた、皮膚、性器、または咽喉から綿棒で回収されるサンプルを含む。
【０１２８】
試験サンプルは、当該分野で周知の種々の手段によって処理され、核酸を単離し得る（一般的には、Ａｕｓｕｂｅｌ（編）Ｃａｒｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏ，２．Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ＤＮＡ、および４．Ｐｒｅｐａｒａｆｉｏｎ  ａｎｄ  Ａｎａｌｓｉｓ  ｏｆ  ＲＮＡ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．（２０００）を参照のこと）。標的核酸が、直接的なサンプルの形態か、または精製された核酸もしくはアンプリコンの形態であり得るＲＮＡあるいはＤＮＡであり得ることは、当業者に明らかである。
【０１２９】
精製された核酸は、上記のサンプルから抽出され得、そして純度について分光光分析的に（ｓｐｅｃｔｒａｐｈｏｔｏｍｅｔｒｉｃａｌｌｙ）または他の機器によって測定され得る。核酸増幅の当業者にとって、アンプリコンは、種々の増幅方法による最終生成物として得られる。種々の増幅方法は、例えば、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応（米国特許第４，６８３，１９５号、同第４，６８３，２０２号、同第４，８００，１５９号および同第４，９６５，１８８号））、ＮＡＳＢＡ（核酸配列ベースの増幅）（米国特許第５，１３０，２３８号））、ＴＭＡ（転写介在増幅））（Ｋｗｏｈら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，ＵＳＡ，８６：１１７３−１１７７（１９８９））、ＳＤＡ（鎖置換増幅（Ｗａｌｋｅｒら，米国特許第５，２７０，１８４号によって記載））、ｔＳＤＡ（好熱性の鎖置換増幅（米国特許第５，６４８，２１１号および欧州特許Ｎｏ．ＥＰ０  ６８４３１５））、ＳＳＳＲ（自立配列複製）（米国特許第６，１５６，５０８号）である。
【０１３０】
特異的な実施形態において、ヒト起源のサンプルがアッセイされる。さらに別の特異的な実施形態において、唾液、尿、血液、組織切片、食物、土または水のサンプルがアッセイされる。
【０１３１】
（キット）
本プローブは、キット形式中に、好ましくは標的遺伝子を検出するためのプローブの使用についての指示を含んでパッケージングされ得る。上記キットの構成要素は、共通の容器に一緒にパッケージングされ得、代表的には、本明細書中に開示される方法の選択された特定の実施形態を実行するための書面の指示を含む。検出方法のための構成要素は、本明細書中に記載されるとおり、必要に応じてキット中に含まれ得る。これらの構成要素は、例えば、第二のプローブ、および／または試薬、ならびに標識検出を実施するための手段（例えば、放射性標識、酵素基質、抗体など）である。
【実施例】
【０１３２】
（実施例１．プローブ設計）
ＳＡＲＳ−ＣｏＶの種々のゲノム配列が、利用可能である（例えば、表６を参照のこと）。
【０１３３】
（表６：最近得られたＳＡＲＳコロナウイルスのゲノム配列（２００３年５月２日現在））
【０１３４】
【表６】
2006524988.tif 000013
表６に示される９種のゲノムの大きさは、非常に類似している。中国によって提出された５種のゲノムは種々のレベルの未同定のヌクレオチド（Ｎ）を含む。
【０１３５】
以下の表７は、ＳＡＲＳコロナウイルスの９種のゲノム間の類似性または同一性を示す。
【０１３６】
（表７．ＳＡＲＳコロナウイルスの９種のゲノムの間の類似性の比較）
【０１３７】
【表７】
2006524988.tif 000014
ＳＡＲＳコロナウイルスの９種のゲノムの類似性を比較した。表７に示される数値は、２種のゲノムの間の類似性の割合を表す。表７中の各数値は、２種のゲノムにおける同じ塩基の数を比較する塩基の総数（約３０，０００塩基）で割り、次いで１００倍した数と等しい。
【０１３８】
表７は、ＳＡＲＳコロナウイルスの種々のゲノムが、ＢＪ０４以外は互いに非常に類似していることを示す。９９％未満の類似性は、そのヌクレオチド配列中にＮが存在することによって生じる。ＢＪ０１〜ＢＪ０４に由来するヌクレオチド配列中のＮすべてが、他のゲノムと同じであると見なされる場合（この仮定は、上記ゲノムの他の部分の比較に基づいて妥当である）、その９つのゲノムは、互いに対して９９％類似している。
【０１３９】
ＳＡＲＳコロナウイルスが、表６および表７において示されるように保存的である場合、核酸ベースの検出方法が、合理的である。図１Ｂは、ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムの種々の部分を同時に検出すると、その検出方法の感度および特異性が有意に増加され得ることを、示す。
【０１４０】
本発明者らは、２つの全体的計画を有する。一方の計画は、ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムの種々の部分についての多重ＰＣＲを実施し、検出用プローブとしてＰＣＲ産物を使用することである。２番目の計画は、ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムの種々の部分についての多重ＰＣＲを実施し、検出用プローブとして７０マーオリゴヌクレオチドを使用することである。
【０１４１】
（標的遺伝子選択）
ＳＡＲＳコロナウイルスのゲノムの分析に基づいて、本発明者らは、３つの遺伝子を標的遺伝子として選択した。これらの３つの遺伝子は、ｏｒｆ  １Ａポリメラーゼタンパク質、ｏｒｆ  １Ｂポリメラーゼタンパク質、スパイクタンパク質、および核カプシドタンパク質である。本発明者らは、ヒトハウスキーピング遺伝子であるＧＡＰＤ（グリセルアルデヒド３リン酸デヒドロゲナーゼ）（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＮＭ＿００２０４６）を、ＲＮＡ単離についてのポジティブコントロールとして選択した。本発明者らは、遺伝子（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＡＪ４４１２５２）を、組込んだポジティブコントロールとして選択した。この遺伝子（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）は、ヒトおよび一般的病原体のヌクレオチドに対して何の相同性も有さない。
【０１４２】
（プライマーおよびプローブの設計）
ＳＡＲＳコロナウイルスの上記３つのタンパク質を分析し、それらの保存配列を比較した。多重ＰＣＲの要件に従って、複数のプライマー対を、種々のゲノムの間で保存された配列に基づいて設計した。この複数のプライマー対は、同様のＴｍ値を有し、距離が１．５Ｋｂ離れており、２００ｂｐ〜９００ｂｐの増幅産物を有する。さらに、複数の非重複オリゴヌクレオチド（７０マー）を、各プライマー対の増幅産物に基づいて設計した。これらのプライマーおよびプローブを、ＢＬＡＳＴＮを使用して最新のＮＣＢＩ核酸非重複ヌクレオチドデータベースと比較し、上記プローブおよびプライマーの特異性を保証した。
【０１４３】
（実施例２．血液サンプルの予備処理プロセス）
血液サンプルの予備処理は、比較的複雑なプロセスを含む。しかし、報告されている血清中での比較的低いＳＲＡＳウイルス濃度を考慮すると、本明細書中に記載される予備処理は、約２ｍｌの全血からリンパ球を有効に濃縮して、検出機会を増加させ得る。
【０１４４】
（１．サンプルの収集および移動）
１）病室にて患者から収集したサンプルを、第一移動ウィンドウに配置する。その後、そのウィンドウのドアを閉じ、鍵をかける。
【０１４５】
２）その後、それらのサンプルを、第二移動ウィンドウに移す。それらのサンプルを、ノートに記入する。３つのバーコード標識を印刷する。それらのサンプルを、従来の検出のために試験し、予備処理移動ウィンドウへと移す。
【０１４６】
（２．バイオセーフキャビネットの使用）
１）予備処理プロセスを実施するための病院職員が、上記予備処理室に入室し、そのドアを閉じる。その後、そのバイオセーフキャビネットを作動させる。その後、そのキャビネットのファンおよび照明が、自動的に作動する。
【０１４７】
２）電力開閉器の表示ライト、気流速度スイッチの表示ライト、および作業ライトスイッチの表示ライトが正常に作動するかを、チェックする。空気選択スイッチの表示ライトが、オフの状態であるかチェックする。異常な作動または異例の作動について、報告する。
【０１４８】
３）警告スイッチの表示ライトが、自己点検後にバイオセーフキャビネットの正常状態を示す警告音を発する。１５分間後、アラームスイッチの表示ライトからの警告音が停止し、そのバイオセーフキャビネットにおけるプロセスを、開始し得る。
【０１４９】
４）そのキャビネットにおけるプロセスは、上記アラーム音が継続した場合には開始できない。または、そのプロセスは、そのプロセスの間に警告音が鳴った場合には、停止されなければならない。その出来事は、すぐに報告されなければならない。
【０１５０】
５）そのバイオセーフキャビネットが正常に作動した後、第二移動ウィンドウからサンプルを取り出し、そのキャビネット中に配置する。その移動ウィンドウの上部を、７５％アルコールで拭き取って０．５％過酢酸を噴霧することによって、清浄にする。その後、その移動ウィンドウのドアを閉じ、鍵をかける。
【０１５１】
６）その後、完全なサンプル予備処理プロセスを、そのバイオセーフキャビネットにおいて実施する。
【０１５２】
（３．血清単離）
１）抗凝固剤を含む血液（１．８ｍｌ）を、３，５００ｒｐｍで１０分間遠心分離する。最上層をマーカーペンでマークする。
【０１５３】
２）最上層の血清（約１．０ｍｌ）を次いで収集し、１．５ｍｌの滅菌エッペンドルフ遠心分離チューブに入れる。
【０１５４】
３）そのエッペンドルフ遠心分離チューブを、バーコード（「Ｐ」のようにマークされる）で標識し、そして配列番号で標識する。
【０１５５】
４）そのサンプルを次いで、ノートに記録する。
【０１５６】
５）その血清サンプルを含有する遠心分離チューブを、特殊なサンプルボックスに入れ、−８０℃で保管する。そのサンプルボックスの外側にＳＡＲＳ、血清およびサンプル番号の範囲を標識する。
【０１５７】
（４．血球の単離）
１）リンパ球単離溶液（３．６ｍｌ）を、１０ｍｌの遠心分離チューブに加える。
【０１５８】
２）滅菌生理食塩水（上記のように遠心分離チューブ内に取り出された血清と等しい容量）を、その血球を含む遠心分離チューブに加える。その血球細胞を、パスツールピペットを使用して生理食塩水中に再懸濁する。
【０１５９】
３）その再懸濁された血球細胞を、緩やかにリンパ球単離溶液の上に充填し、１，５００ｒｐｍで２０分間遠心分離する。
【０１６０】
４）その層の間に位置する細胞を収集し、１．５ｍｌの滅菌エッペンドルフ遠心分離チューブに入れ、これを次いで１０，０００ｒｐｍで５分間遠心分離してその細胞をスピンダウンする。その上清を取り除く。
【０１６１】
５）その細胞ペレットを含むチューブを次いで、バーコード（「Ｃ」とマークされる）で標識し、そして配列番号で標識する。
【０１６２】
６）そのサンプルをノートに記録する。
【０１６３】
７）その血球サンプルを含む遠心分離チューブを、特殊なサンプルボックスに入れ、−８０℃で保管する。そのサンプルボックスの外側を、ＳＡＲＳ、血球、およびサンプル数の範囲で標識する。
【０１６４】
８）次いで生物学的に安全なキャビネットのガラス面のプレートを開ける。次いでその生物学的に安全なキャビネットの表面および他の表面を、７０％アルコールで拭き０．５％過酢酸をスプレーして滅菌する。
【０１６５】
９）清浄後、そのガラス面のプレートを閉じる。紫外線をそのキャビネットの内側に設置し、１５分間オンにする。
【０１６６】
１０）その生物学的に安全なキャビネットの電源スイッチを、サンプル前処理の部屋を去る前に、オフにする。
【０１６７】
（５．注意事項）
１）リンパ球単離溶液は、冷蔵庫から出された直後に使用してはならない。この溶液は、その温度が室温に達し、この溶液が十分混合された後に使用されなければならない。
【０１６８】
２）この単離プロセス全体は、１８〜２８℃で行わなければならない。温度が高すぎるまたは低すぎると、単離プロセスの質に影響を及ぼし得る。
【０１６９】
３）ピペットチップ、エッペンドルフ遠心分離チューブ、グローブ、および処理済みの（ｄｉｓｐｏｓｅｄ）試薬または液体は、廃棄タンク（０．５％  過酢酸を含む）中に廃棄されなければならない。廃棄タンクの中のものは全て、実験後に高温で処理され、その後廃棄されなければならない。
【０１７０】
４）０．５％の過酢酸は、Ｈ２Ｏ中１６％  過酢酸（３２ｍｌ）で希釈し、最終容積１，０００ｍｌにすることで調製される。
【０１７１】
（実施例３．ＱＩＡａｍｐウイルスＲＮＡキットを用いて、ＲＮＡを抽出するためのプロセス）
以下の手順を、ＲＮＡ調製において使用する：
１．キャリアＲＮＡを含む５６０μｌの調製した緩衝液ＡＶＬを、１．５ｍｌの微小遠心分離チューブの中にピペットで移す。サンプル容積が１４０μｌより多い場合、緩衝液ＡＶＬ／キャリアＲＮＡの量を、比例して増やす（例えば、２８０μｌのサンプルは、１１２０μｌの緩衝液ＡＶＬ／キャリアＲＮＡを要する）。
【０１７２】
２．１４０μｌの血漿、血清、尿、細胞培養上清、または無細胞体液を、この微小遠心分離チューブ中の緩衝液ＡＶＬ／キャリアＲＮＡに添加する。１５秒間パルス状にボルテックスすることによって、混合する。効率的な溶解を確実にするために、このサンプルを、緩衝液ＡＶＬと激しく混合して、均質の溶液を得ることが必須である。１回だけ融解した凍結サンプルもまた、使用され得る。
【０１７３】
３．室温（１５〜２５℃）で１０分間インキュベートする。ウイルス粒子溶解は、室温で１０分間の溶解の後に完了する。インキュベーションの時間をより長くしても、精製ＲＮＡの収率または量に対する影響はない。潜在的に感染性の因子およびＲＮａｓｅを、緩衝液ＡＶＬ中で不活性化する。
【０１７４】
４．この１．５ｍｌの微小遠心分離チューブを短時間遠心分離して、ふたの内側の液滴を除去する。
【０１７５】
５．このサンプルに、エタノール（９６〜１００％）５６０μｌを添加し、１５秒間、パルス状にボルテックスすることによって混合する。混合した後、１．５ｍｌの微小遠心分離チューブを短時間遠心分離して、ふたの内側の液滴を除去する。他のアルコールは、ＲＮＡ収率および純度の低下を生じ得るので、エタノールが唯一好ましい。このサンプル容積が１４０μｌより多い場合、エタノールの量を、比例して増やす（例えば、２８０μｌのサンプルは、１１２０μｌのエタノールを要する）。効率的な結合を確実にするために、このサンプルをエタノールと激しく混合して、均質な溶液を得ることが必須である。
【０１７６】
６．工程５からの溶液６３０μｌを、ＱＩＡａｍｐスピンカラム（２ｍｌ収集チューブ中）に縁をぬらさないようにして、注意深くアプライする。キャップを閉め、６０００×ｇ（８０００ｒｐｍ）で１分間遠心分離する。このＱＩＡａｍｐスピンカラムをきれいな２ｍｌ収集チューブに入れ、濾液を含むチューブを廃棄する。遠心分離の間に交叉汚染することを防ぐために、各スピンカラムを閉じる。微小遠心分離チューブノイズを制限するために、遠心分離を、６，０００×ｇ（８，０００ｒｐｍ）で行う。最高速度での遠心分離しても、ウイルスＲＮＡの収率にも、純度にも影響はない。この溶液が、膜を完全に通過しなかった場合は、この溶液の全てが通過するまで、より高速で再度遠心分離する。
【０１７７】
７．このＱＩＡａｍｐスピンカラムを注意深く開け、工程６を繰り返す。このサンプル容積が１４０μｌより多い場合、溶解物の全てがスピンカラムに載せられるまで、この工程を繰り返す。
【０１７８】
８．このＱＩＡａｍｐスピンカラムを注意深く開け、５００μｌの緩衝液ＡＷ１を添加する。キャップを閉め、６，０００×ｇ（８，０００ｒｐｍ）で１分間遠心分離する。このＱＩＡａｍｐスピンカラムをきれいな２ｍｌ収集チューブ（準備しておく）に入れ、濾液を含むチューブを廃棄する。もとのサンプル容積が１４０μｌより多かったとしても、緩衝液ＡＷ１の容積を増やす必要はない。
【０１７９】
９．このＱＩＡａｍｐスピンカラムを注意深く開け、５００μｌの緩衝液ＡＷ２を添加する。キャップを閉め、最高速度（２０，０００×ｇ；１４，０００ｒｐｍ）で３分間遠心分離する。工程１０に直接続けるか、またはあり得る緩衝液ＡＷ２の持ち越しの可能性を排除するために、工程９ａを行い、その後、工程１０に続ける。注意：溶離液中の残りの緩衝液ＡＷ２は、下流のアプリケーションにおいて問題を引き起こし得る。いくつかの遠心分離ローターは減速の際に振動して、緩衝液ＡＷ２を含むフロースルーを生じ、ＱＩＡａｍｐスピンカラムに接触し得る。このＱＩＡａｍｐスピンカラムと収集チューブをローターから外すこともまた、フロースルーを引き起こして、このＱＩＡａｍｐスピンカラムとの接触を生じ得る。これらの場合、選択肢としての工程９ａを行うべきである。
【０１８０】
９ａ．（必要に応じる）：上記ＱＩＡａｍｐスピンカラムを、新しい２ｍｌコレクションチューブ（備えられていない）中に配置し、古いコレクションチューブをその濾液とともに捨てる。最大速度で１分間遠心分離する。
【０１８１】
１０．上記ＱＩＡａｍｐスピンカラムを、１．５ｍｌ微量遠心チューブ（備えられていない）中に配置する。その濾液を含む古いコレクションチューブを捨てる。そのＱＩＡａｍｐスピンカラムを注意深く開け、室温まで平衡化した６０μｌの緩衝液ＡＶＥを添加する。その蓋を閉め、室温にて１分間インキュベートする。６，０００×ｇ（８，０００ｒｐｍ）にて１分間遠心分離する。６０μｌの緩衝液ＡＶＥを用いて１回溶出すると、十分に、そのＱＩＡａｍｐスピンカラムから上記ウイルスＲＮＡのうちの少なくとも９０％を溶出し得る。４０μｌの緩衝液ＡＶＥを２回使用して二重溶出を実施すると、収率は１０％まで増加する。３０μｌ未満の容量で溶出すると、収量が減少し、その溶出液中の最終ＲＮＡ濃度は増加しない。ウイルスＲＮＡは、−２０℃または−７０℃にて保存すると、１年間まで安定である。
【０１８２】
以下は、上記の手順に関するさらなる情報である：
・サンプルを室温（１５℃〜２５℃）になるように平衡化する
・緩衝液ＡＶＥを、工程１０における溶出のために室温まで平衡化する
・緩衝液ＡＷ１、緩衝液ＡＷ２、およびキャリアＲＮＡを、第１４頁〜第１５頁にある指示に従って調製したかどうかチェックする
・緩衝液ＡＶＬ／キャリアＲＮＡ中の沈殿物を、必要ならば加熱することにより溶解させ、使用前に室温まで冷却する
・すべての遠心分離工程は、室温にて実施する。
【０１８３】
（実施例４．ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップの例示的アレイ形態）
図５は、ＳＲＡＲ−ＣｏＶ検出チップの例示的アレイ形態を示す。
【０１８４】
「固定化コントロール」とは、オリゴプローブであり、これは、末端にて蛍光色素ＨＥＸで標識しており、かつＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むサンプルまたはＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むと疑われるサンプルをそのチップに接触させた場合にいかなるハイブリダイゼーション反応に関与しない。
【０１８５】
「ポジティブコントロール（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）」とは、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（あるモデル生物種）遺伝子に従って設計したオリゴプローブであり、かつＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むサンプルまたはＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むと疑われるサンプルをそのチップに接触させた場合にはいかなるハイブリダイゼーション反応にも関与しない。ハイブリダイゼーション反応の間、このポジティブコントロールと完全にハイブリダイズし得る標的プローブを、そのハイブリダイゼーション溶液に添加する。そのポジティブコントロールのシグナルは、そのハイブリダイゼーション反応をモニターするために適用し得る。
【０１８６】
「ネガティブコントロール」とは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むサンプルまたはＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むと疑われるサンプルをそのチップに接触させた場合に、いかなるハイブリダイゼーション反応にも関与しない、オリゴプローブである。
【０１８７】
「ブランクコントロール」とは、ＤＭＳＯ溶液スポットである。これは、整列の品質をモニターするために使用する。
【０１８８】
「ＳＡＲＳプローブ」は、０１１プローブ、０２４プローブ、０４０プローブ、および０４４プローブである。
【０１８９】
（実施例５．ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号３）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶの検出）
図６Ａおよび図６Ｂは、ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号３）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶの検出を示す。リンパ球を、番号３のＳＡＲＳ患者血液サンプルから単離した。リンパ球からのＲＮＡを、ＱＩＡａｍｐ  Ｋｉｔによって抽出した。ＲＴ−ネストＰＣＲを、上記の抽出したＲＮＡをテンプレートとして使用することによって実施した。０４４  ＲＴ−ネストＰＣＲの結果は、良好であった。ハイブリダイゼーションの結果もまた、良好であった。０４０  ＲＴ−ネストＰＣＲの結果は悪かったが、ハイブリダイゼーションの結果は、良好であった。このことは、チップハイブリダイゼーション法は、感度が良くて特異的であることを示す。
【０１９０】
（実施例６．ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号４）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶの検出）
図７Ａおよび図７Ｂは、ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号４）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶの検出を示す。リンパ球を、番号４のＳＡＲＳ患者血液サンプルから単離した。リンパ球からのＲＮＡを、ＱＩＡａｍｐ  Ｋｉｔによって抽出した。ＲＴ−ネストＰＣＲを、上記の抽出したＲＮＡをテンプレートとして使用することによって実施した。０２４  ＲＴ−ネストＰＣＲ、０４０  ＲＴ−ネストＰＣＲ、および０４４  ＲＴ−ネストＰＣＲの結果は、良好であった。ハイブリダイゼーションの結果もまた、良好であった。
【０１９１】
（実施例７．ＳＡＲＳ患者の痰サンプル（サンプル番号５）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶの検出）
図８は、ＳＡＲＳ患者の痰サンプル（サンプル番号５）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。５番のＳＡＲＳ患者痰サンプル由来のＲＮＡを、ＱＩＡａｍｐ  Ｋｉｔによって抽出した。上記で抽出したＲＮＡをテンプレートとして用いて、ＲＴ−ネストＰＣＲを実施した。０４０  ＲＴ−ネストＰＣＲ結果は良好であり、ハイブリダイゼーション結果もまた良好であった。
【０１９２】
（実施例８．ＳＡＲＳ患者痰サンプル（サンプル番号６）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出）
図９は、ＳＡＲＳ患者の痰サンプル（サンプル番号６）からのＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。６番のＳＡＲＳ患者痰サンプル由来のＲＮＡを、ＱＩＡａｍｐ  Ｋｉｔによって抽出した。上記で抽出したＲＮＡをテンプレートとして用いて、ＲＴ−ネストＰＣＲを実施した。全プローブでのＲＴ−ネストＰＣＲ結果は良好であり、ハイブリダイゼーション結果もまた良好であった。
【０１９３】
（実施例９．ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップの、別の例示的アレイ形式）
図１０は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップの、別の例示的アレイ形式を示す。
【０１９４】
固定化コントロールは、その末端において蛍光色素ＨＥＸによって標識され、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたは含むと疑われるサンプルが上記チップと接触した場合のあらゆるハイブリダイゼーション反応に関与しない、オリゴプローブである。
【０１９５】
ポジティブコントロール（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）は、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（モデル生物の１種）遺伝子に従って設計され、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたは含むと疑われるサンプルが上記チップと接触した場合のあらゆるハイブリダイゼーション反応に関与しない、オリゴプローブである。ハイブリダイゼーション反応の間、このポジティブコントロールと完全にハイブリダイズし得る標的プローブが、このハイブリダイゼーション溶液に添加される。ポジティブコントロールのシグナルは、このハイブリダイゼーション反応をモニタリングするために適用され得る。
【０１９６】
ネガティブコントロールは、ＳＡＲＳ−ＣｏＶを含むかまたは含むと疑われるサンプルが上記チップと接触した場合のあらゆるハイブリダイゼーション反応に関与しない、オリゴプローブである。
【０１９７】
ブランクコントロールは、ＤＭＳＯ溶液スポットである。これは、アレイの品質をモニタリングするために使用される。
【０１９８】
ＳＡＲＳプローブは、０１１、０２４、０４０および０４４プローブである。
【０１９９】
（実施例１０．図１０に示されたＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップ上での、全ての可能性のある陽性結果）
図１１は、図１０に示されたＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップ上での、全ての可能性のある陽性結果を示す。
【０２００】
ＳＡＲＳウイルスを検出するため、チップ上に４セットのプローブが存在する：プローブ０１１、プローブ０２４、プローブ０４０およびプローブ０４４。
【０２０１】
第１列は、４セットのプローブ全て：０１１＋０２４＋０４０＋０４４、において出現したシグナルによる陽性結果（１つ）を示す。
【０２０２】
第２列は、３セットのプローブ：０１１＋０２４＋０４４、０２４＋０４０＋０４４、０１１＋０４０＋０４４、０１１＋０２４＋０４０、において出現したシグナルによる、可能性のある陽性結果（４つ）全てを示す。
【０２０３】
第３列は、２セットのプローブ：０１１＋０４０、０２４＋０４４、０１１＋０４４、０４０＋０４４、０１１＋０２４、０２４＋０４０、において出現したシグナルによる、可能性のある陽性結果（６つ）全てを示す。
【０２０４】
第４列は、１セットのプローブ：０１１、０２４、０４０、０４４、のみにおいて出現したシグナルによる、可能性のある陽性結果（４つ）全てを示す。
【０２０５】
上記の実施例は、説明目的のみのために記載されており、本発明の範囲を限定することを意図しない。上記に対する多くの変更が可能である。上記実施例に対する改変および変更は、当業者にとって明らかであるので、本発明は、添付の特許請求の範囲のみによって限定されることが意図される。
【図面の簡単な説明】
【０２０６】
【図１】図１Ａおよび１Ｂは、例示的なＳＡＲＳ−ＣｏＶゲノム構造を示す（Ｍａｒｒａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２００３年５月１日の図２；［電子ジャーナル版］；およびＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＮＣ＿００４７１８号を参照のこと）。
【図２】図２は、例示的なサンプル調製手順を示す。
【図３】図３は、ＰＣＲに使用される例示的なプローブ標識を示す。ユニバーサルプライマーの配列は、特異的プライマーの共通の配列に相補的である。ユニバーサルプライマーおよび特異的プライマーは、増幅が行われる前に、ＰＣＲマスターミックス中に添加される。増幅の特異性は、特異的プライマーの特異的部分によって確実にされる。１回または数回の熱サイクルの後、ユニバーサルプライマーは、効果的にアンプリコン中に組み込まれ得る。次いで、ユニバーサルプライマーは、特異的プライマーの共通の配列の相補的な配列にアニールし得る。ＰＣＲは、さらにユニバーサルプライマーに組み込まれた蛍光染料を用いて進行し得る。１および６は、蛍光染料を示し；２は、上流のユニバーサルプライマーを示し；３は、共通の配列を有する上流の特異的プライマーを示し；４は、テンプレートを示し；５は、共通の配列を有する下流の特異的プライマーを示し；そして７は、下流のユニバーサルプライマーを示す。
【図４】図４は、アミノ基で改変した（例えば、ポリ−Ｌ−リジン処理した）スライドガラス表面上のプローブの固定化を示す。アミン結合化学：アミン基材は、ガラス表面（長方形）に共有結合的に付着した第１級アミン基（ＮＨ３＋）を含有する。アミンは、中性のｐＨで正電荷を運び、負に荷電したリン酸骨格とのイオン結合の形成によって負に荷電したＤＮＡ（二重螺旋）の付着を可能にする（中央のパネル）。静電気の付着は、紫外線または熱を用いる処理によって追加され、それは、第１級アミンおよびチミンとの間の共有結合によって表面にＤＮＡの共有結合性の付着を誘発する（右のパネル）。静電結合および共有結合性の付着の組み合わせは、高度に安定な様式でＤＮＡを基材に結合する。
【図５】図５は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップの例示的なアレイフォーマットを示す。
【図６】図６Ａおよび６Ｂは、ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号３）由来のＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。
【図７】図７Ａおよび７Ｂは、ＳＡＲＳ患者の血液サンプル（サンプル番号４）由来のＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。
【図８】図８Ａおよび８Ｂは、ＳＡＲＳ患者の唾液サンプル（サンプル番号５）由来のＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。
【図９】図９Ａおよび９Ｂは、ＳＡＲＳ患者の唾液サンプル（サンプル番号６）由来のＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出を示す。
【図１０】図１０は、ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップの別の例示的なアレイフォーマットを示す。
【図１１】図１１は、図１０に示したＳＡＲＳ  ＳＡＲＳ−ＣｏＶ検出チップ上の全ての可能性のあるポジティブ結果を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図１０】
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【図１１】
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【手続補正書】
【提出日】平成18年3月15日(2006.3.15)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】配列表
【補正方法】追加
【補正の内容】
【配列表】
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【国際調査報告】
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