(57)【要約】  広範囲のアミノ配糖体に対して高度耐性を獲得した腸内細菌が有する、新規な１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子、その検査方法、その検査に使用するプライマー、該プライマーを用いた検査キット、プローブ、該プローブを用いた検査薬、並びに、前記遺伝子から産生されるタンパク質、該タンパク質を用いる該タンパク質を検出するための検査方法、該タンパク質に対する抗体、および該抗体を含有する検査薬が開示されている。【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記（ａ）〜（ｅ）のいずれかに記載された遺伝子からなることを特徴とする、１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子。
（ａ）配列番号１に示される塩基配列からなる遺伝子。
（ｂ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列において、1若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された遺伝子。
（ｃ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列との相同性が８０％以上である遺伝子。
（ｄ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子。
（ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）の何れかの塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子。
【請求項２】
請求項１に記載された遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける配列部分を用いることを特徴とする、前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子を検出するための検査方法。
【請求項３】
請求項１に記載された遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける配列部分をＰＣＲ増幅するためのプライマー。
【請求項４】
フォワードプライマーが、配列番号４−１３で示されるプライマーまたはこれらと相補的な塩基配列を有するプライマーから選択されることを特徴とする、請求項３に記載されたプライマー。
【請求項５】
リバースプライマーが、配列番号１４−２７で示されるプライマーまたはこれらと相補的な塩基配列を有するプライマーから選択されることを特徴とする請求項３に記載されたプライマー。
【請求項６】
請求項３−５の何れかに記載されたプライマーを有することを特徴とする、前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子を検出するための検査キット。
【請求項７】
請求項１に記載された遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける配列部分を有するプローブ。
【請求項８】
請求項7に記載されたプローブを有することを特徴とする、前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子を検出するための検査薬。
【請求項９】
下記（１）〜（３）のいずれかに記載されたアミノ酸配列からなることを特徴とするタンパク質。
（１）配列番号２のアミノ酸配列。
（２）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質のアミノ酸配列であって、前記（１）に記載されたアミノ酸配列において、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたタンパク質のアミノ酸配列。
（３）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質のアミノ酸配列であって、前記（１）に記載されたアミノ酸配列との相同性が８０％以上であるタンパク質のアミノ酸配列。
【請求項１０】
請求項９に記載された何れかのタンパク質を用いることを特徴とする、請求項９に記載された何れかのタンパク質を検出するための検査方法。
【請求項１１】
請求項９に記載された何れかのタンパク質に対する抗体。
【請求項１２】
請求項１１に記載された抗体を含有することを特徴とする、請求項９に記載された何れかのタンパク質を検出するための検査薬。
【請求項１３】
請求項１１に記載された抗体を含有することを特徴とする、アミノ配糖体に耐性を示す腸内細菌を検出するための検査薬。
【請求項１４】
前記腸内細菌がProteus mirabilisである、請求項１３に記載された検査薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アミノ配糖体に耐性を付与する新規な１６ＳｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子および該遺伝子から産生されたタンパク質に関し、特に、腸内細菌から発見されたこれらの遺伝子や、該遺伝子によって産生されたタンパク質を用いた、上記遺伝子または該遺伝子によって産生されたタンパク質の検査方法、該方法に用いるプライマー、プローブ、検査キット、および、検査薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
アミノ配糖体系抗生物質における抗菌スペクトルは、グラム陽性菌、グラム陰性菌、結核菌と広範囲におよぶことが知られている。特にカナマイシン系アミノ配糖体は、緑膿菌を含むグラム陰性桿菌に対して強力な抗菌力を示すので、臨床上重要な抗生物質である。【０００３】
また、細菌のアミノ配糖体に対する耐性機構において、薬剤を修飾することによりその薬剤を不活化する酵素（修飾酵素）が知られている。このような修飾酵素として、アミノ配糖体のアミノ基を修飾するアセチル化酵素、水酸基を修飾するリン酸化酵素およびアデニリル化酵素、並びにアセチル化とリン酸化を同時に行う二機能酵素が報告されている（非特許文献１〜３）。細菌は、これらの修飾酵素を産生することにより、１〜数種類のアミノ配糖体に対して耐性化する（非特許文献４）。【０００４】
【非特許文献１】Shawら、Microbiol. Rev.、第57巻、第138-163頁、1993年
【非特許文献２】Aminoglycoside Resistance Study Groups、Trends Microbiol.、第2巻、第347-353頁、1994年
【非特許文献３】Daviesら、Trends Microbiol.、第5巻、第234-240頁、1997年
【非特許文献４】Kondoら、J. Infect. Chemother.、第5巻、第1-9頁、1999年
【０００５】
日本で開発されたアミノ配糖体系抗生物質であるアルベカシンは、上記修飾酵素による耐性化機構を回避することを想定して創製されており、耐性菌が出現しにくい抗生物質であるといわれている。従って、アルベカシンはグラム陽性菌からグラム陰性菌に至るまで幅広い抗菌活性を示すという特徴を有しており、日本では、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）感染症の治療薬として認可され、用いられている。【０００６】
アルベカシンに対する耐性菌の出現については、最小発育阻止濃度が12.5〜25μg/mlという中等度の耐性を示すＭＲＳＡがわずかながら出現しているとの、ＭＲＳＡに関する報告がある（非特許文献５）。その耐性化機構は、アセチル化とリン酸化を同時に行う二機能酵素によるものであり、アルベカシンの6’位のアミノ基と2”位の水酸基が同時に修飾を受けることにより、アルベカシンが不活化される（前記非特許文献４）というものである。
【非特許文献５】出口ら、Jpn. J. Antibiot.、第50巻、第1-11頁、1997年
【０００７】
また、1997年には、患者の喀痰から、アルベカシンに対して高度耐性を示す緑膿菌AR-2株が分離された。表１に示した種々のアミノ配糖体に対する最小発育阻止濃度から明らかなように、このAR-2株は、カナマイシンやゲンタマイシンなど、従来のアミノ配糖体に加え、アミカシンやイセパマイシンなどの新型のアミノ配糖体等、広範囲に渡って1000μg/ml以上の高度耐性を示す。従って、院内感染や術後感染の原因菌である緑膿菌で、AR-2株のような株が臨床現場に広まっている可能性があり、将来の化学療法の実施に深刻な影響を及ぼすことが懸念された。【０００８】
【表１】
2007026926.tif 000002
尚、表１中の各略号は、KM：カナマイシン、GM：ゲンタマイシン、TOB：トブラマイシン、AMK：アミカシン、ABK：アルベカシン、SISO：シソマイシン、ISP：イセパマイシン、NEO：ネオマイシン、SM：ストレプトマイシン、HYG-B：ハイグロマイシンBを意味する。【０００９】
一方、１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼは、Streptomyces属やMicromonospora属などのアミノ配糖体系抗生物質を産生する菌が保有する酵素であり、カナマイシンやゲンタマイシンなどのアミノ配糖体系抗生物質を産生する放線菌等で確認されている。この酵素は、アミノ配糖体の標的部位である30Sリボソームにおける１６Ｓ ｒＲＮＡ（リボゾーマルRNA）をメチル化することにより、アミノ配糖体が結合するのを妨げるものであり、アミノ配糖体産生菌が自己防衛手段として生来獲得している酵素である（非特許文献６）。上記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼは、S-アデノシルメチオニンを基質として１６Ｓ ｒＲＮＡをメチル化する酵素であるが、この種の酵素は、これまでアミノ配糖体産生菌以外では確認されていなかった。
【非特許文献６】Mol Gen Genet (1985) 200:415-421
【００１０】
ところが、緑膿菌が有する、アミノ配糖体に対する耐性を付与する遺伝子をクローニングし、塩基配列を決定した後ホモロジー検索を行った結果、本発明者等は、放線菌以外の細菌では報告例のない酵素を前記緑膿菌がコードしていることを見いだすと共に、酵素としての特徴づけを行うことに成功した（特許文献１）。
【特許文献１】特開２００３−２５０５５４号公報
【００１１】
本発明者等は更に研究を続けた結果、腸内細菌群の中から、前記緑膿菌で発見された１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ等と３割程度共通する構造を有する、新規な１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼを見いだし本発明に到達した。この酵素を産生した場合には、カナマイシンやゲンタマイシン等に加え、アミカシン、トブラマイシン、イセパマイシン、アルベカシン等の比較的新しいアミノ配糖体に対しても、一貫して高度耐性が生じるので、この酵素が、今後プラスミド性に腸内細菌群に拡散した場合には、医療現場における化学療法に深刻な影響を与えるおそれがある。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
従って本発明の第１の目的は、広範囲のアミノ配糖体に対して高度の耐性を獲得した病原菌が有する、前記耐性を付与する１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼをコードする遺伝子を提供することにある。
本発明の第２の目的は、広範囲のアミノ配糖体に対して高度の耐性を獲得した病原菌が有する前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼをコードする遺伝子を検出するための、検査方法を提供することにある。
本発明の第３の目的は、広範囲のアミノ配糖体に対して高度耐性を獲得した病原菌が有する前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼを産生する遺伝子の塩基配列またはそれを特徴づける塩基配列部分を、ＰＣＲ増幅するためのプライマーを提供することにあり、また、第４の目的は、該プライマーを有する検査キットを提供することにある。
本発明の第５の目的は、広範囲のアミノ配糖体に対して高度耐性を獲得した病原菌が有する前記１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼを産生する遺伝子を識別するためのプローブを提供することにあり、また、第６の目的は、該プローブを有する検査薬を提供することにある。【００１３】
本発明の第７の目的は、請求項１に記載された遺伝子から産生されるタンパク質を提供することにある。
本発明の第８の目的は、請求項１に記載された遺伝子から産生されるタンパク質を検出するための検査方法を提供することにある。
更に本発明の第９の目的は、広範囲のアミノ配糖体に対して高度耐性を獲得した病原菌が有する請求項１に記載された遺伝子から産生されるタンパク質に対する抗体を提供することにあり、また、第１０の目的は、該抗体を含有することを特徴とする検査薬を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
本発明の上記の諸目的は、
（ａ）配列番号１に示される塩基配列からなる遺伝子、
（ｂ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列において、１若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された遺伝子、
（ｃ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列との相同性が８０％以上である遺伝子、
（ｄ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子、
（ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）の何れかの塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子、
のいずれかに記載された遺伝子からなることを特徴とする１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子、その検査方法、その検査に使用するプライマー、該プライマーを用いた検査キット、プローブ、該プローブを用いた検査薬、並びに、前記遺伝子から産生されるタンパク質、該タンパク質を用いる該タンパク質を検出するための検査方法、該タンパク質に対する抗体、および該抗体を含有する検査薬によって達成された。
【発明の効果】
【００１５】
本発明によれば、本発明に係る１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子が、今後プラスミド性に腸内細菌群に拡散した場合に、医療現場における化学療法に与える深刻な影響を最小限に抑えることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】配列番号２で表わされるタンパク質の、放線菌が産生する１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ中に占める位置関係を表わす図である。
【図２】配列番号２で表わされるタンパク質が、ＡｒｍＡなど、他の１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼの構造と３割程度共通する構造を有していることを示す。
【図３】本発明のタンパク質（配列番号２）による３０Ｓリボソームサブユニット（１６Ｓ ｒＲＮＡ）のメチル化を示す図である（実施例２）。
【図４】ARS68株の電気泳動スペクトルである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
本発明における第１の発明は、
（ａ）配列番号１に示される塩基配列からなる遺伝子、
（ｂ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列において、１若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された遺伝子、
（ｃ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、前記（ａ）に記載された塩基配列との相同性が８０％以上である遺伝子、
（ｄ）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子であって、配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子、
（ｅ）前記（ａ）〜（ｄ）の何れかの塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子、
のいずれかに記載された遺伝子からなることを特徴とする１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子である。【００１８】
配列番号１の塩基配列からなる遺伝子領域は、８４６塩基(終止コドンを含む。)からなっており、この遺伝子はプラスミド上に存在している。また、この遺伝子領域が産生するタンパク質は、２８１のアミノ酸（配列番号２）からなっている。上記タンパク質（ＲｍｔＣ）は、図１に示すように、放線菌が産生する１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼの１種であり、ＡｒｍＡなどの構造と３割程度共通する構造を有している（図２）。【００１９】
また本発明における第２の発明は、前記第１の発明に係る遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列部分を用いた、本発明の１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子を検出するための検査方法である。
本発明の検査方法は、公知の方法により適宜実施することができる。具体的には、前記第１の発明に係る遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列をＰＣＲにより増幅し、電気泳動やシーケンサーを用いて目的遺伝子を確認すれば良い。また、これらの塩基配列を持つヌクレオチドをプローブとして用い、サザンブロット法、ＤＮＡプローブ法やＤＮＡマイクロチップ法により遺伝子を検出しても良い。
なお、前記第１の発明に係る遺伝子を特徴づける塩基配列とは、第１の発明に係る遺伝子の塩基配列のうち、本発明の遺伝子に特異的な配列を意味し、このような配列であれば特に制限されることはない。例えば、表２のプライマーによりＰＣＲ増幅される塩基配列部分が挙げられる。具体的には、配列番号４のフォワードプライマーと配列番号１４のリバースプライマーによって増幅される配列番号１の塩基配列における９４−６８８の塩基配列や、配列番号５のフォワードプライマーと配列番号１５のリバースプライマーによって増幅される配列番号１における２２−７０３の塩基配列などを具体的に例示することができる（表２参照）。【００２０】
本発明における第３の発明は、前記第１の発明に係る遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列部分をＰＣＲ増幅するためのプライマー、第４の発明はフォワードプライマー、第５の発明は、リバースプライマーである。
ＰＣＲ増幅用プライマーは、公知の方法により適宜作製することができ、前記第１の発明に係る遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列部分を特異的に増幅しうる配列であれば、特に制限されることはない。【００２１】
第４の発明のフォワードプライマーとしては、配列番号４−１３で示されるプライマーまたはこれらに相補的な塩基配列を有するプライマーが挙げられる。また、第５の発明のリバースプライマーとしては、配列番号１４−２７で示されるプライマーまたはこれらに相補的な塩基配列を有するプライマーが挙げられる。上記のフォワードプライマーから選択される１種と、上記のリバースプライマーから選択される１種を適宜選択して使用し、ＰＣＲ反応を行なうことができる。特に、表２に示した組み合わせで使用することが可能である。
【表２】
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【００２２】
第６の発明は、該プライマーを有する本発明の１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子を検出するための検査キットである。【００２３】
本発明における第７の発明は、前記第１の発明に係る遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列部分を有するプローブ、第８の発明は、該プローブを有する前記第１の発明に係る遺伝子を検出するための検査薬である。
本発明のプローブは、公知の方法により適宜産生することができ、本発明の１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ遺伝子の塩基配列又はそれを特徴づける塩基配列部分であれば特に制限されるものではない。例えば、前記した本発明のプライマーを用い、ＰＣＲ法により増幅させたヌクレオチドでも良いし、合成したヌクレオチドを本発明のプローブとして用いても良い。【００２４】
また、本発明における第９の発明は、
（１）配列番号２のアミノ酸配列、
（２）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質のアミノ酸配列であって、前記（１）に記載されたアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたタンパク質のアミノ酸配列、
（３）１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼ活性を有するタンパク質のアミノ酸配列であって、前記（１）に記載されたアミノ酸配列との相同性が８０％以上であるタンパク質のアミノ酸配列、
のいずれかに記載されたアミノ酸配列からなることを特徴とするタンパク質であり、第１０の発明は、前記第９の発明に係るタンパク質を用いた、前記第９の発明に係るタンパク質を検出するための検査方法である。【００２５】
本発明の検査方法は、公知の方法により適宜行なうことができる。具体的には、ラテックス凝集法、ウエスタンブロット法、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）、イムノクロマト法などが挙げられる。
例えば、Hujer et al.,ELISAs for CMY-2 and SHV β-lactamases.,J.Clin.Microbiol.Vol.40,2002,p.1947-1957.、Wu et al.,Influence of antibody on florfenicol accumulation,J.Clin.Microbiol.Vol.44,2006,p.378-382、Sueur et al.,Chlamydia pneumoniae 54-kDa protein ,Clinical Microbiology and Infection,Vol.12 No.5,May 2006,p.470-477等、公知の文献に記載されている方法を用いることが可能である。【００２６】
本発明における第１１の発明は、前記第９の発明に係るタンパク質に対する抗体、第１２の発明は該抗体を含有する前記第９の発明に係るタンパク質を検出するための検査薬であり、第１３の発明は、アミノ配糖体に耐性を示す腸内細菌用の検査薬、第１４の発明は、特に該腸内細菌がProteus mirabilisである場合の検査薬である。【００２７】
本発明の新規な１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼを産生する遺伝子を保有する菌は、多種類のアミノ配糖体系抗生物質に高度の耐性を有し、臨床上極めて危険であるので、迅速に検出して除去する必要がある。
本発明の遺伝子情報およびアミノ酸配列情報は、そのために必須の情報であり、その情報を公知の方法に応用し、前記本発明の１６Ｓ ｒＲＮＡメチラーゼを産生する遺伝子を保有する菌の検出に役立てることができる。【００２８】
即ち、本発明の遺伝子およびタンパク質は、これらをもたらす原因となる腸内細菌等の検出手段に利用することができる。例えば、塩基配列１の情報をもとにしてプライマーを設計し、ＰＣＲ法によって検出したり、ＤＮＡマイクロチップなどの遺伝子を直接又は間接的に検出するなど、臨床検査法に応用することができる。更に、公知の方法によって本発明のタンパク質に対する抗体を作成し、本発明の遺伝子やタンパク質の検査薬とすることも容易である。
本発明においては、このように病原菌に内在する遺伝子や病原菌が産生するタンパク質を検出するため、アミノ配糖体系抗生物質に対する耐性を獲得したProteus mirabilisのみならず、本発明に係る遺伝子が、他のグラム陰性桿菌へ菌種を越えて、プラスミドを介して伝播されることにより耐性を獲得した、Proteus mirabilis以外の緑膿菌、大腸菌などのグラム陰性桿菌を検出することも可能である。【００２９】
このように本発明によれば、医療機関や臨床検査センター等における日常の細菌検査業務の中で、本耐性遺伝子を保有する菌を速やかに識別し除去することが可能となる。
以下、実施例によって本発明をさらに説明するが、本発明はこれらによって限定されるものではない。
【実施例１】
【００３０】
まず、腸内細菌Proteus mirabilisから全ＤＮＡの抽出を行った。クローニングベクターとしてpBluescript由来のpBC SK+（Stratagene社製）を用い、宿主大腸菌としてＤＨ５αを用いた。全ＤＮＡおよびベクターを制限酵素SacIで処理した後連結し、electoroporation法によりＤＨ５αへ形質転換した。アルベカシンを４μg/ml添加した培地に生育したコロニーからアミノ配糖体耐性遺伝子を有する形質転換体を得た。【００３１】
形質転換体からプラスミドを回収し制限酵素SacIで処理した後、電気泳動によって、約１２kbのＤＮＡ断片が挿入されていることを確認した。上記約１２kbのＤＮＡ断片の一部について塩基配列を決定した。この操作により、アミノ配糖体耐性遺伝子の種々の部位を含む約３ｋｂｐの塩基配列の情報が得られた。【００３２】
得られた塩基配列（配列番号３）について解析ソフトGENETYX ver.10.1を用いて解析したところ、２つの読み枠（open reading frame）が存在し、２番目のopen reading frameが目的の遺伝子（配列番号１：配列番号３の塩基配列における１６９２〜２５３７番目の塩基配列）であると推察された。【００３３】
さらに、得られた塩基配列（配列番号１）をQuery配列として、BLAST（Basic Local Alignment Search Tool）法を用いてBLASTX（DNA配列×アミノ酸配列DB）プログラムによりホモロジー検索を行った。その結果、本遺伝子（配列番号１）は、ネブラマイシン産生放線菌であるStreptoalloteichus hindustanusが産生する１６Ｓ ｒＲＮＡ メチラーゼやゲンタマイシン産生放線菌であるMicromonospora roseaが産生する１６Ｓ ｒＲＮＡ メチラーゼなど、アミノ配糖体系抗生物質産生放線菌が産生する１６Ｓ ｒＲＮＡ メチラーゼと、アミノ酸配列上約30%のホモロジーを示すことが確認された。
【実施例２】
【００３４】
リボソーム構成中にメチル化酵素によってRNAがメチル化を受けることにより、細胞内RNaseによる分解から保護されることが知られている。この際作用するメチル化酵素とホモロジー検索結果から得た１６Ｓ ｒＲＮＡ メチラーゼの構造、および酵素学的な特性は異なっており、転写後にｒＲＮＡを修飾する。
そこで本実施例においては、本発明の遺伝子（配列番号１）がコードしているタンパク質（配列番号２）が１６Ｓ ｒＲＮＡをメチル化することを示すため、メチル基取り込み実験を行った。
本実施例で用いる精製酵素蛋白、および反応基質となる30Sリボソームサブユニットの抽出を、以下のようにして行った。
配列番号１の塩基配列から成るポリヌクレオチドを、蛋白発現用pET29aにクローニングし、大腸菌BL21(DE3)pLysSへ形質転換した。
得られた形質転換体を培養して菌体を集菌した後、緩衝液A (５0mM リン酸緩衝液ｐH7.4、0.5M NaCl、10mMイミダゾール)を加え、120MPaの条件下で、フレンチプレスを用いて菌体を破砕した。【００３５】
次に、100,000gで１時間、超遠心処理を行った。上清をHisTrapカラムに通し、NaClで溶出させた後、緩衝液B(20mM Tris-HCl pH7.5）を用いて透析し、脱塩操作を行った。脱塩後の液をHiTrapQカラムに通し、NaClで溶出させた後、ゲルをロ過し、緩衝液C(10mM Hepes KOH pH7.5、10mM MgCl2、50mM NH4Cl、および3mM 2-ME)を用いて透析し、精製酵素蛋白液を得た。【００３６】
大腸菌HD5αを培養し、30Sリボソームの抽出を行った。培養した菌体に、緩衝液C(20mM Tris-HCl pH7.5、100mM NH4Cl、10mM MgCl2、6mM 2-ME)を加え、１２０MPaの条件下で、フレンチプレスにより菌体を破砕した。前述した条件と同じ条件で、フレンチプレスを用いて破砕した後、RNase-free DNase I（終濃度5μg/ml）を加た。再度同じ条件でフレンチプレスにかけ、30,000gで45分間遠心処理を行った。得られた上清を緩衝液D（10mM Tris-HCl pH7.5、500mM NH4Cl、10mM
MgCl2、6mM 2-ME)を用いて作成した20%ショ糖溶液に等量重層し、100,000gで15時間、超遠心処理を行った。得られたペレットを緩衝液Bに溶解し、同緩衝液を用いて作成した40%ショ糖溶液に等量重層し、先と同様の条件で超遠心処理を行った。得られたペレットを緩衝液Dに溶解し、脱塩をするために、緩衝液E (10mM Tris-HCl、 pH7.5、 150mM NH4Cl、 1mM MgCl2、 6mM 2-mercaptoethanol)を用いて透析を行った。透析後の溶液を緩衝液Eを用いて作成した10−30%ショ糖密度勾配溶液に重層し、48,000gで15時間、超遠心処理を行った。遠心処理後、260nmの波長でモニターを行い、30Sリボソームに相当する画分を採取した。【００３７】
メチル化の証明には、得られた基質、精製酵素蛋白抽出液およびメチル基供与体としてトリチウム標識されたS-アデノシルメチオニンを用いた。メチル化反応には、溶媒として緩衝液F (50mM Tris-HCl、 pH7.5、 37.5mM NH4Cl、 7.5mM MgCl2、 6mM 2-mercaptoethanol)  を用い、基質濃度（30Sリボソーム）20 pmol、メチル基供与体５ μCi (500 mCi /mmol； 18.5 GBq /mmol)、および精製蛋白を２０pMol添加し、全容量を200 μlとした。反応温度は35℃とした。反応開始から０、５、１５、３０、６０分経過後に、反応液を３５μlずつ採取し、取り込まれたメチル基の放射能活性を、液体シンチレーションカウンターにより測定した。
図３に示すように、時間とともにメチル基の取り込み活性が上昇することが確認された。
【実施例３】
【００３８】
本発明の遺伝子はプラスミド上に存在している。導入したプラスミドは形質転換体からも回収でき、電気泳動やＤＮＡハイブリダイゼーション、ＰＣＲ解析を行うことにより確認することができる。そこで、プラスミド供与株としてP. mirabilis ARS68株を、プラスミド受容株として大腸菌DH5αを用い、以下のようにして形質転換実験を行い、ＰＣＲ解析によって本発明の遺伝子を確認した。
大腸菌DH5αに、P. mirabilis ARS68株から抽出したプラスミドをエレクトロポーレーション法によって導入し、その後アルベカシン４μg/mlを含むLBアガープレートにまき、３７℃で一夜培養した。生育したコロニーを無作為に５つ採取し、プラスミドの保持を確認した。【００３９】
これら形質転換体と供与株（ARS68）について、米国臨床検査標準委員会（National Committee for Clinical Laboratory Standards：NCCLS）のガイドラインに準じて最小発育阻止濃度を測定した。その結果を表３に示す。各形質転換体における種々のアミノ配糖体に対する最小発育阻止濃度は、供与株（ARS68）と同様の値を示した。
【表３】
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また、配列番号３の配列の１７８５〜１８０２と２３６０〜２３７９の配列をもとに作成したフォワードプライマー（配列番号４）とリバースプライマー（配列番号１４）を用い、熱変性温度94℃で１分、アニーリング温度55℃で１分、伸長反応温度72℃で１分、30サイクルの条件で、P. mirabilis ARS68株、P. aeruginosa AR-2株（rmtA)、S. marcescens S95株（rmtB)、E. coli C3162株（arm A)についてＰＣＲ解析を行った。その結果、電気泳動によりARS68株について本発明の遺伝子が確認された（図４）。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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