(57)【要約】  脱色工程による製造時間の増加、コリスチン主成分の収量低下によるコストアップ、さらにカーボン廃棄物の発生による環境負荷などの従来の製造法の問題点を解決する、脱色工程を行わないコリスチン原末の製造法を提供する。  白色度の高いコリスチン原末を生産することができる、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス、白色度の高いコリスチン原末、および白色度の高いコリスチン原末を製造する方法。【特許請求の範囲】
【請求項１】
４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末を生産することができる、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス。
【請求項２】
独立行政法人産業技術総合研究所  特許生物寄託センターに、受託番号ＦＥＲＭ  ＡＰ−２０５５３として寄託された、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス  Ｍ５０株。
【請求項３】
請求項１または２に記載のバチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウスを培養し、培養物をイオン交換樹脂に吸着させ、溶出した後、濃縮して、乾燥することを特徴とする、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末の製造法。
【請求項４】
請求項３に記載の製造法によって得られる、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、従来のコリスチン発酵生産に使用される生産菌株と比較して、培養液の着色が大幅に減少した新規な菌株を取得し、これをコリスチン生産菌株として使用することを特徴とする、脱色工程を行うことなく、白色度の高いコリスチン原末を得る製造法に関する。
【背景技術】
【０００２】
コリスチンは、グラム陰性菌に広く殺菌的に作用するペプチド系抗生物質である。その作用機序は、細菌の細胞質膜のホスホリパーゼを活性化することによってリン脂質の分解を引き起こし、溶菌させることによる。コリスチンの選択毒性は低く、腸管から吸収されないことから飼料用添加物として広く用いられている。【０００３】
微生物の発酵生産によるコリスチンの製造法としては、安価に入手できるでんぷん質などを多く含む天然原料を主原料とした、バチルス（Bacillus）属細菌、特にバチルス・ポリミキサ（Bacilluspolymyxa）による発酵生産の方法が知られている（特許文献１、２参照）。【０００４】
安価な天然原料を主原料とした、バチルス属細菌、特にバチルス・ポリミキサによりコリスチンの発酵製造を行う場合、発酵が進行するにつれ培養液の着色も濃くなり、目的物であるコリスチンの生産量が最高値に達する発酵終了時まで着色は増す。その為、コリスチンを含有する培養液から、培地栄養源成分や発酵生成したコリスチン以外の代謝物などを除去し、コリスチンの純度を高める目的で精製工程を実施している。しかし、発酵工程で増加した培養液の着色物質については、上記精製工程で完全に除去できず、製品であるコリスチン原末に残存し、結果として着色の濃いコリスチン原末となる。特に欧州における医薬品(動物用医薬品を含む)に用いられる品質規格である欧州薬局方５版（２００４年６月１５日発行、２００５年１月１日施行）において、コリスチン原末の色の規格は「白色もしくは概ね白色」と規定されている。この規格に合格するコリスチン原末を製造するためには、従来のコリスチン原末の製造法では、精製工程にカーボンを使用するなどの脱色工程が必要であった。カーボンによる脱色工程を行う従来のコリスチン原末の製造法では、製造に要する時間が増し、しかも、目的物質であるコリスチン原末の回収率が低下するなどの問題があった。【０００５】
【特許文献１】特開昭５８−４７４９３号公報
【特許文献２】特開昭５８−１２９９９３号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、従来のコリスチン原末の製造法において必要であった脱色工程を行うことなく、白色度の高いコリスチン原末の製造法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決するため、本発明者らは鋭意検討した結果、従来の生産菌株を変異処理することにより、着色度の減少した菌株を取得し、本菌株を使用することにより、脱色工程を行うことなく、白色度の高いコリスチン原末が得られることを見出し、本発明を完成させるに至った。【０００８】
すなわち、本発明は、以下のとおりのものである。
（１）  ４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末を生産することができる、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス、
（２）  独立行政法人産業技術総合研究所  特許生物寄託センターに、受託番号ＦＥＲＭ  ＡＰ−２０５５３として寄託された、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス  Ｍ５０株、
（３）  上記（１）または（２）記載のバチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウスを培養し、培養物をイオン交換樹脂に吸着させ、溶出した後、濃縮して、乾燥することを特徴とする、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末の製造法、
（４）  上記（３）記載の製造法によって得られる、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末。
【発明の効果】
【０００９】
本発明により、コリスチン原末の製造法に有用な新規な生産菌株を提供できる。さらに本発明の菌株を生産菌株として用いることにより、従来のコリスチン原末の製造方法に必須であった脱色工程を行うことなく、白色度の高いコリスチン原末の製造法を提供できる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】実施例１で得られた２０２−７１株由来の培養濾液およびＭ５０株由来の培養濾液の３００〜６００ｎｍにおける吸光度を示す。
【図２】実施例３で得られたＭ５０株由来のコリスチン原末を脱イオン水に溶解した液を液体クロマトグラフィー(ＨＰＬＣ)にて分析したチャートを示す。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
微生物の寄託
バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス（Bacillus polymyxa var. colistinus）  Ｍ５０株は、独立行政法人産業技術総合研究所  特許生物寄託センター（〒３０５−８５６６  日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に、受託番号ＦＥＲＭ  ＡＰ−２０５５３として平成１７年５月３１日付けにて寄託された。【００１２】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明では、従来のコリスチン発酵生産に使用される生産菌株に対し、人工的な突然変異処理を行い、目的とする生産菌株を取得した。
人工的な突然変異処理方法としては、人工的な変異処理であれば特に限定されないが、例えば、Ｎ−メチル−Ｎ’−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）、エチルメタンスルホネートなどの変異剤による化学的方法；紫外線照射、Ｘ線照射などの物理的方法；遺伝子組換え、トランスポゾンなどによる生物学的方法などの変異処理方法を用いることができる。
突然変異処理を行い得られた菌群は、フラスコを用いて液体培養し、培養液の着色度およびコリスチンの生産能を指標にしてスクリーニングした。ここで、着色度は、培養液の濾紙濾過液の４００ｎｍにおける吸光度を測定した値を指標とする。また、コリスチン生産能は、培養液の濾紙濾過液をＨＰＬＣにより分析した値を指標とする。
このようにして、当該着色度が従来の生産菌株に比べて大幅に減少し、且つコリスチン生産能が同等以上の生産菌株バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス（Bacilluspolymyxa var. colistinus）を取得した。【００１３】
本発明においては、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウスのコリスチンの生産で得られるコリスチン原末の白色度が明らかに高い株を用いることができる。具体的には、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下、好ましくは０．０８７以下、更に好ましくは０．０７０以上０．０８７以下であるコリスチン原末が得られるバチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウスであれば、本発明に用いることができる。さらに、本発明に使用できる生産菌株としては、これらの菌株の継代培養株、変異株、遺伝子組み替え株などが挙げられる。【００１４】
本発明の生産菌株の一例であるＭ５０株を生産菌株として発酵生産した培養液からカーボンなどによる脱色工程を行うことなく製造したコリスチン原末の色調は、従来の生産菌株由来の培養液から脱色工程を行い製造したコリスチン原末の色調と比較して、明らかに白色度が高いものである。すなわち、本発明で得られたＭ５０株を生産菌株として用いることで、従来のコリスチン原末の製造法に必須であった脱色工程を行うことなく、白色度の高いコリスチン原末を得ることが可能となる。【００１５】
本発明においては、バチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウスを培養し、培養物をイオン交換樹脂に吸着させ、溶出した後、濃縮して、乾燥することで、脱色工程を行うことなく、４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度が０．１５以下であるコリスチン原末を製造することができる。これにより、欧州における医薬品(動物用医薬品を含む)に用いられるコリスチン原末の品質規格である欧州薬局方の色規格「概ね白色」に合格するコリスチン原末を製造することが可能となる。また、通常、活性炭などのカーボンを添加して攪拌し濾過するなどの脱色工程が必要であったが、本発明の製造法では、脱色工程を省略できるため、コリスチン原末の製造に要する時間を約半日間短縮することが可能である。さらに、脱色に使用するカーボンなどによるコリスチン原末の損失を低減できるとともに、従来のコリスチン原末の製造法の脱色工程で使用していたカーボンなどの廃棄をも回避することができる。【００１６】
尚、本発明におけるコリスチン原末は、ポリミキシン系ペプチド抗生物質として一般に知られているコリスチンを含有する。コリスチンは、下記構造のコリスチンＡ、同様のアミノ酸構成を有するコリスチンＢが知られている。【００１７】
【化１】
2007013487.tif 000002
【００１８】
本発明のコリスチン原末とは、コリスチンを医薬品として使用できる程度に含有する粗抽出物であり、上述したように脱色工程を経ることなく得られるものである。コリスチン原末の使用方法は特に制限されず、そのまま使用することもできるし、更に処理してコリスチン製剤として使用してもよい。【００１９】
以下実施例および試験例により、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例および試験例に限定されるものではない。また、各実施例および試験例における吸光度の測定は、日本分光社製の分光高度計Ｖ−５６０を用いて行った。また、特に定義の無い場合、％は重量対容量百分率（Ｗ／Ｖ）を表す。
【実施例】
【００２０】
＜実施例１＞
従来からコリスチン原末の製造に使用しているバチルス・ポリミキサ・バー・コリスチニウス２０２−７１株に対して、濃度１０〜１０００μｇ／ｍｇのＮＴＧで、温度２５〜３０℃、１分〜２４時間静置もしくは振盪して突然変異処理を行い、トリプトン２％、イーストエキス０．２％、グルコース１％からなる寒天培地プレート上にコロニーを生育させた。各々のコロニー（菌株）を普通ブイヨン２％、イーストエキス０．２％および塩化ナトリウム０．３％からなる液体シード培地へ植菌し、２８℃で約２４時間培養後、約０．１ｍＬをコーンフラワー４．５％、コーンミール１．５％、小麦胚芽０．２％、脱脂大豆０．２％、硫酸アンモニウム１％、リン酸一カリウム０．０５％、硫酸第一鉄０．００５％、炭酸カルシウム０．０５％および水飴１．５％からなる液体培地３０ｍＬ入の２５０ｍＬ容三角フラスコへ植菌した。２８℃で約１２０時間振とう培養後、培養液を濾紙を用いて濾過し、得られた濾液の色調およびコリスチンの生産性を比較した。これら菌群から２０２−７１株のコリスチン生産能と同等以上で、且つ濾液の色調が明らかに２０２−７１株のそれより薄い菌株として、Ｍ５０株を選択した。２０２−７１株とＭ５０株の培養濾液について、分光光度計で３００〜６００ｎｍの吸光度を測定し、結果を図１に示した。４００ｎｍの吸光度は２０２−７１株由来の培養濾液で３.６１に対して、Ｍ５０株由来の培養濾液では１.４２であり、明らかな差が認められた（表１）。【００２１】
【表１】
2007013487.tif 000003
【００２２】
＜実施例２＞
実施例１で得られた培養液の着色が薄いＭ５０株および従来からコリスチン発酵生産に使用している培養液の着色が濃い２０２−７１株を、普通ブイヨン２％、イーストエキス０．２％および塩化ナトリウム０．３％からなる液体シード培地へ植菌し、２８℃で約２４時間培養した後、各々約１５ｍＬをコーンフラワー４．５％、コーンミール１．５％、小麦胚芽０．２％、脱脂大豆０．２％、硫酸アンモニウム１％、リン酸一カリウム０．０５％、硫酸第一鉄０．００５％、炭酸カルシウム０．０５％および水飴１．５％からなる液体培地４Ｌ入の５Ｌ容ジャーファメンターに植菌した。各々、通気・攪拌しながらｐＨ５.０〜７.０で３０℃にて約１２０〜１４４時間培養した。得られた培養液を濾紙を用いて濾過し４００ｎｍの吸光度を測定したところ、２０２−７１株由来の培養濾液では４.５０に対して、Ｍ５０株由来の培養濾液では１.３９であり、実施例１のフラスコでの試験結果と同様に明らかな差が認められた(表２)。【００２３】
【表２】
2007013487.tif 000004
【００２４】
＜実施例３＞
実施例２で得られたＭ５０株および２０２−７１株の５Ｌ容ジャーファメンター培養液を、濾過助剤(ボディミックス)を敷いたヌッチェで濾過した後、カラムに充填したイオン交換樹脂（アンバーライトＩＲＣ−５０（Ｎａ＋型）ロームアンドハース社製、３００ｍＬ）へ吸着させた。イオン交換樹脂から約０．４ｍｏｌ／Ｌ硫酸でコリスチンを溶離させた後６００ｍＬの脱イオン水で洗浄し、得られた溶離液、洗浄液の混合液を約５％濃度（Ｗ／Ｖ）まで濃縮させ、コリスチン高含有液を得た。コリスチン高含有液の４００ｎｍにおける吸光度は、２０２−７１株由来のコリスチン高含有液が０．３５９に対して、Ｍ５０株由来のコリスチン高含有液が０．０７であり、明らかにＭ５０株由来のコリスチン高含有液の着色は薄かった(表３)。【００２５】
【表３】
2007013487.tif 000005
【００２６】
さらに、各コリスチン高含有液をスプレードライして、目的とするコリスチン原末を得た。２０２−７１株由来のコリスチン原末は、茶色を帯びた色調であった。これに対し、Ｍ５０株由来のコリスチン原末はやや黄色味がかった白色であり、明らかにＭ５０株由来コリスチン原末の着色は、２０２−７１株由来のコリスチン原末と比較して薄く、より白色であった。各々コリスチン原末を５％濃度（Ｗ／Ｖ）となるよう脱イオン水に溶解し、５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液を得た。４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度を測定したところ、２０２−７１株由来のコリスチン原末では０．４７９に対して、Ｍ５０株由来のコリスチン原末では０．０８７であり、明らかな差が認められた（表４）。【００２７】
【表４】
2007013487.tif 000006
【００２８】
＜試験例１＞
実施例３で得られたＭ５０株由来コリスチン原末を脱イオン水に溶解した液を液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）にて分析し、その結果を図２に示した。ＨＰＬＣの測定条件は下記のとおりである。
測定条件
検出器：吸光度検出器（測定波長：２１５ｎｍ）
カラム：ＹＭＣ−Ｐａｃｋ  ＯＤＳ−ＡＭ（ＡＭ−３１２）（ワイエムシー社製）
１５０ｍｍ×Φ４．６ｍｍ
カラム温度：３０℃
移動相： ４．４６ｇの無水硫酸ナトリウムを９００ｍｌの純水に溶解し、２．５ｍｌのリン酸を加え、１００ｍｌにメスアップする（ｐＨ２．３〜２．５）。この溶液７８にアセトニトリルを２２の割合で混合する。
流量：１．０ｍｌ/ｍｉｎ【００２９】
＜試験例２＞
実施例３で得られた２０２−７１株由来のコリスチン高含有液を、実施例３で得られたＭ５０株由来のコリスチン高含有液の色調にするために必要な脱色カーボン量について試験した。２０２−７１株由来のコリスチン高含有液の固形分換算量に対し、２％、５％、１０％（それぞれＷ／Ｖ）に相当するカーボン(精製白鷺、武田薬品工業社製)を添加して３０分間撹拌した後、桐山ロートで濾過し、得られた濾液をスプレードライした。各スプレードライ粉末を脱イオン水に溶解し、５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液を得た。４００ｎｍにおける５％濃度（Ｗ／Ｖ）水溶液の吸光度を測定した結果、最も脱色カーボン量が多い１０％（Ｗ／Ｖ）カーボン添加水溶液でも吸光度は０．１３５であり、実施例３で得られた脱色カーボン処理を行っていないＭ５０株由来のコリスチン高含有液の吸光度０．０８７に達しなかった(表５)。【００３０】
【表５】
2007013487.tif 000007
【００３１】
また、１０％（Ｗ／Ｖ）カーボン添加における、脱色工程によるコリスチンの収率ロスは約２７％であり（表５）、脱色工程を含むコリスチンの製造法におけるコリスチンの収率は明らかに低下していた。従来の生産菌株で白色度の高いコリスチン原末を得るためには、多量の脱イオン水でイオン交換樹脂を洗浄するか、イオン交換樹脂からの溶離液を多量のカーボンで処理する脱色工程を経なければならなかったが、培養液の着色が薄くカーボンによる脱色工程を必要としないＭ５０株を用いたコリスチン原末の製造法は非常にメリットが大きい。
【産業上の利用可能性】
【００３２】
本発明により、コリスチン原末の製造法に有用な新規な生産菌株を提供できる。さらに本発明の菌株を用いることにより、従来のコリスチン原末の製造法に必須であった脱色工程を経ることなく、効率的なコリスチン原末の製造法を提供できる。
【図１】
2007013487.tif 000008
【図２】
2007013487.tif 000009
【国際調査報告】
2007013487.tif 000010
2007013487.tif 000011
2007013487.tif 000012