(57)【要約】  本発明の目的は、微生物の増殖能をより強く増強することのできる、微生物の増殖能を増強する方法や、微生物の増殖能の増強剤等を提供することにある。  本発明によれば、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を用いる。具体的には、かかるシクロデキストリン包接脂肪酸を含有する培地で微生物を培養することにより、微生物の増殖能を増強することができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項２】
培地が固体培地であり、微生物の増殖能が固体培地での微生物の増殖能であることを特徴とする請求項１に記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項３】
シクロデキストリンが、メチル−β−シクロデキストリン、ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン、α−シクロデキストリン及びγ−シクロデキストリンから選択される１種又は２種以上であることを特徴とする請求項１又は２に記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項４】
炭素数５以上の脂肪酸が、炭素数５〜３０の範囲内の脂肪酸からなる群から選択される１種又は２種以上であることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項５】
脂肪酸が、オレイン酸、パルミトレイン酸、シス−バクセン酸、カプロレイン酸、リンデル酸、ミリストレイン酸、リノール酸、リノレン酸、ミード酸、ジホモリノレン酸、アラキドン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸及びネルボン酸から選択される１種又は２種以上であることを特徴とする請求項４に記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項６】
培地が固体培地である場合は、培地中の炭素数５以上の脂肪酸の合計濃度が０．０７５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内であり、培地が液体培地である場合は、培地中の炭素数５以上の脂肪酸の合計濃度が０．０５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内であることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項７】
シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸におけるシクロデキストリンと脂肪酸の重量比が、シクロデキストリン１００重量部に対して脂肪酸０．２〜４５重量部の範囲内であることを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項８】
微生物が、真正細菌、古細菌及び真核生物からなる群から選択されることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法。
【請求項９】
シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物を増殖する方法。
【請求項１０】
シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する微生物の増殖能の増強剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物の増殖能を増強する方法や、微生物の増殖能の増強剤等に関する。
【背景技術】
【０００２】
寒天等の固体培地上で微生物を増殖させてコロニーを形成させ、そこから微生物を分離する純粋培養法は、コッホの時代に確立されて現在に至るまで、すべての微生物研究の第一歩となっている。実験微生物学や公衆衛生学では、生きている微生物を、コロニー形成能を有する微生物と定義し、その微生物が形成するコロニー数を計数することによって、生きている微生物を計数することが一般に行われている。食品及び臨床検査分野では、寒天平板培地に微生物懸濁液を塗布し、一定温度で培養することにより、寒天平板培地上に微生物コロニーを形成させ、食品又は臨床検査検体中に存在する微生物を検出又は分離して、微生物汚染又は感染の有無を検出することが行われている。また、土壌サンプル等の自然界のサンプル中の産業上に有用な微生物は、寒天平板培地上に成育した微生物コロニーから分離している。しかし、寒天等の固体培地を用いたコロニー法によって分離・培養できる微生物は、天然に存在する微生物のごく一部に過ぎない（非特許文献１）。【０００３】
近年、固体培地上での微生物の増殖能を向上させてそのコロニー形成能を向上させる種々の試みがなされている。例えば、低濃度の栄養培地を用いる方法（非特許文献２）、活性酸素の発生を抑制する方法（非特許文献３、４）、寒天のかわりに固化剤としてゲラン・ガムを用いる方法（非特許文献５、６）が報告されている。また、固体培地を用いずに微生物を分離する方法も試みられている。例えば、液体培地中に成育した微生物を液体限界希釈法（最適数Most Probable Number（ＭＰＮ）法の原理で９６穴マルチプレートを用いることにより、菌数推定だけでなく分離も行う方法）を用いて分離する方法（非特許文献７）や、マイクロ流体チップを用いて分離する方法（非特許文献８）が報告されている。しかしながら、いまだに多くの種類の微生物は培養・増殖することさえ困難である（非特許文献９、１０）。【０００４】
１９７９年に木暮らは、海洋バクテリアについて、液体培地中で伸張分裂できる細胞数を顕微鏡下に計測するＤＶＣ（direct count of viable bacterial cells）法を考案し、その数が固体培地上でのコロニー形成数より格段に多いことを示した（非特許文献１１）。このことは、液体培地は潜在的に固体培地よりもより多くの自然界に生息する微生物を検出することが出来ることを示している。本発明者の一人である正木らは、海洋バクテリアを分離する際に、液体限界希釈法を用いて、コロニー法の場合の約１０倍の数の菌を分離することができた（非特許文献１２）。【０００５】
また、Colwellらは固体培地で成育できる大腸菌やコレラ菌を、培養後に食塩水や水に懸濁して低温飢餓状態に置くと、ＤＶＣが高く保たれているが時間経過とともに固体培地上でのコロニー形成数が落ちていく現象を観察し、これらの細菌が生きているものの増殖できないViable but non-culturable（ＶＢＮＣあるいはＶＮＣ）という状態に有ることを示した（非特許文献１３）。このＶＢＮＣ概念は拡大されて、環境中のほとんどのバクテリア細胞がコロニーを分離できない難培養状態、難増殖状態にあることのモデルとして期待されているが、試料となる細菌が培養によってそもそも入手できないため、そのＶＢＮＣ状態の実態の解明は進んでいない。【０００６】
しかし、ＶＢＮＣの実験は、もともと固体培地上で増殖してコロニーを形成することができるバクテリアであっても、生きているのに固体培地上で増殖できず、コロニーを形成できない状態に陥ることを実演した点で重要であり、固体培地上でコロニーを形成できることが、単に生きていることと同じではなく、生きていること以上に特殊な状態であることを示している。本発明者の一人である正木らは、低温飢餓に晒した大腸菌野生株の成育に対するオレイン酸の影響を比較したところ、オレイン酸の添加のみで、前述の大腸菌のコロニー形成能を１０倍以上に増強できることを示した（非特許文献１４）。【０００７】
本発明者の一人である正木らは、固体培地で成育できる大腸菌の中から、液体培地では成育できるが固体培地ではコロニーを形成できない変異株を取得することを目的として、大腸菌の温度感受性変異株のコレクション（非特許文献１５）から５株の変異株を得た。これら変異株を解析することにより、脂肪酸合成酵素サイクルの縮合酵素遺伝子ｆａｂＢの変異株を取得した（非特許文献１６）。この結果はｆａｂＢ遺伝子の機能が、固体培地上での増殖能やコロニー形成能に重要であることを示している。しかし、これらの変異株は変異原メチルニトロニトロソグアニジンを用いて取得された株であるため、ｆａｂＢ遺伝子以外に多数の変異を含み、遺伝的背景が複雑で未知の部分も多い。【０００８】
ところで、シクロデキストリンとは、通常、５分子以上のＤ−グルコースがα（１→４）グルコシド結合によって結合し、環状構造をとった環状オリゴ糖の一種である。一般的に用いられるシクロデキストリンは、６〜８分子のグルコースが結合したものであり、６分子のグルコースが結合したものがα−シクロデキストリン、７分子のグルコースが結合したものがβ−シクロデキストリン、８分子のグルコースが結合したものがγ−シクロデキストリンと呼ばれている。シクロデキストリンは、その環状構造の内部の空孔に他の分子（ゲスト分子）を取り込んでゲスト分子を包接する作用を有することが知られている。シクロデキストリンの環状構造の外側は親水性であるのに対し、環状構造の内側の空孔は疎水性である。シクロデキストリンの包接作用を利用して、ゲスト分子の匂いをマスキングしたり、ゲスト分子を安定化したり、疎水性のゲスト分子を可溶化するために用いられることがある。しかし、シクロデキストリン、特にメチル−β−シクロデキストリンは、細胞に接触させると細胞膜の脂質を除去する性質があり、細胞の生存率が低下することが、動物細胞を用いた実験により明らかとなっていた（非特許文献１７、１８）。【０００９】
以上のようなことがこれまで知られていたが、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養すると、その微生物のコロニー増殖能を増強させることができることは、これまでに知られていなかった。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Staley, J.T et. al., Annual Review of Microbiology 1985, 39:321-346
【非特許文献２】Ohta, H. et. al., Soil Sci. Plant Nutr. 1980, 26: 99-107
【非特許文献３】Mizuno, Y. et. al., Arch. Microbiol. 1999, 172: 63-67
【非特許文献４】Tanaka, T. et. al., Appl. Environ. Microbiol. 2014, 80: 7659-7666
【非特許文献５】Janssen,P.H. et. al., Appl. Environ. Microb. 2002, 68: 2391-2396
【非特許文献６】Tamaki,H. et. al., Environ. Microbiol. 2009, 11: 1827-1834
【非特許文献７】Shigematsu, T. et. al., Biosci. Biotechnol. Biochem. 2007, 71,: 3093-3097
【非特許文献８】Nichols,D. et. al., Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76: 2445-2450
【非特許文献９】Rappe, M.S. et. al., Annu. Rev. Microbiol. 2003, 57: 369-394
【非特許文献１０】Schloss, P.D. et. al., Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2004, 68: 686-691
【非特許文献１１】Kogure, K. et. al., Canadian J. Microbiology 1979, 25: 415-420
【非特許文献１２】Shigematsu, T. et. al., FEMS Microbiology Letters 2009, 293: 240-247
【非特許文献１３】Xu, H.S. et. al., Microbial Ecology 1982, 8: 323-323
【非特許文献１４】日本農芸化学会  ２０１５年度大会講演要旨集  講演番号4A34p07、公益社団法人日本農芸化学会、２０１５年３月１５日発行
【非特許文献１５】Isono, K. et. al., Mol. Gen. Genet. 1976, 149: 297-302
【非特許文献１６】Masaki, H., IFO Res Commun, 2014, 28: 15-20
【非特許文献１７】Joel E.,et.al., Neurotoxicology. 2007, 28(3): 613-621
【非特許文献１８】Laura M., et. al., Journal of Controlled Release 2008, 126: 10-16
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
自然環境中の多くの微生物は生きていても、固体培地上で増殖できず、コロニーを形成できない状態で存在しており、固体培地上でコロニーを形成できることと微生物が生きていることは同じではない。そのため、ＤＮＡでは存在が確認されている微生物でも、ほとんどは未分離の状態である。これまでに、本発明者の一人である正木らは、オレイン酸を固体培地に添加することにより微生物のコロニー形成能を増強できることを見いだしている。この増強方法を用いると従来よりも多くの種類の微生物を分離することが可能となるため、食品・臨床検査分野での微生物汚染の検出率の向上が期待できる。また、産業に有用な微生物を選択する際のスクリーニング効率の向上も期待できる。【００１２】
しかし、オレイン酸は水に不溶性であるため、本発明者の一人である正木らは、前述の増強方法では、界面活性剤（Triton X-100）にオレイン酸を懸濁し、エマルションを形成させた状態で、固化前の液体状の培地に添加し、その後、その液体状の培地を固化することにより、固体培地にオレイン酸を添加していた。しかし、このような添加方法には、以下の（ａ）〜（ｃ）のような問題点があった。
（ａ）界面活性剤とオレイン酸がエマルションを形成しているため、そのエマルションを滅菌濾過法で無菌化することは困難である点。
（ｂ）液体状の培地が固化する間にエマルションの分布が偏るため、オレイン酸が均一に懸濁した固体培地を作製することが困難である点。
（ｃ）高濃度のオレイン酸をエマルション化するには高濃度の界面活性剤が必要になるところ、界面活性剤はそれ自体が微生物に対して毒性を発揮するため、高濃度のオレイン酸を含有する固体培地を作製することが困難である点。【００１３】
また、上述したようなエマルション化したオレイン酸を含む固体培地ではなく、エマルション化したオレイン酸を含む液体培地においても、前述の（ｃ）と同様の欠点がある。【００１４】
本発明の課題は、オレイン酸等の炭素数５以上の脂肪酸を培地に添加する際の上記の（ａ）〜（ｃ）の問題点等を改善した、微生物の増殖能をより強く増強することのできる、微生物の増殖能を増強する方法や、微生物の増殖能の増強剤等を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
炭素数５以上の脂肪酸は、通常、水（培養液）への溶解性がきわめて低く、培地に直接添加することができない。本発明者らは、前述の脂肪酸をシクロデキストリン包接させて可溶化したもの（以下、「シクロデキストリン包接脂肪酸」とも表示する）を用いることにより、上記課題を解決できることを見いだした。【００１６】
背景技術に記載したように、メチル−β−シクロデキストリン等のシクロデキストリンは、細胞に接触させると細胞膜の脂質を除去する性質があり、細胞の生存率が低下することが、動物細胞を用いた実験により明らかとなっていた（非特許文献１７）。そのため、微生物の増殖能の増強を目的とする際に、メチル−β−シクロデキストリン等のシクロデキストリンを用いることは適切でないと考えられていた。しかし、本発明者らは、メチル−β−シクロデキストリン等のシクロデキストリンが、細菌等の微生物の増殖能を阻害しないことを見いだした。【００１７】
本発明者らは、以上のような知見を見いだし、本発明を完成するに至った。すなわち、シクロデキストリン包接脂肪酸は滅菌濾過法により無菌化することができ、また、固化する前の液体状の培地にも上記のエマルションよりも均一に懸濁することができ、また、シクロデキストリンには界面活性剤のように細菌等の微生物への毒性がない。そのため、滅菌濾過法による無菌化したシクロデキストリン包接脂肪酸をより高濃度にかつ、より均一に含有する脂肪酸含有固体培地を作製することが可能となった。かかる固体培地の場合と同様に、液体培地の場合も、シクロデキストリン包接脂肪酸を用いることにより、シクロデキストリン包接脂肪酸をより高濃度にかつ、より均一に含有する脂肪酸含有液体培地を作製することが可能となった。そして、これらの脂肪酸含有固体培地や脂肪酸含有液体培地で微生物を培養することにより、微生物の増殖能をより強く増強することが可能となった。【００１８】
すなわち、本発明は、
（１）シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物の増殖能を増強する方法や、
（２）培地が固体培地であり、微生物の増殖能が固体培地での微生物の増殖能であることを特徴とする上記（１）に記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（３）シクロデキストリンが、メチル−β−シクロデキストリン、ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン、α−シクロデキストリン及びγ−シクロデキストリンから選択される１種又は２種以上であることを特徴とする上記（１）又は（２）に記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（４）炭素数５以上の脂肪酸が、炭素数５〜３０の範囲内の脂肪酸からなる群から選択される１種又は２種以上であることを特徴とする上記（１）〜（３）のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（５）脂肪酸が、オレイン酸、パルミトレイン酸、シス−バクセン酸、カプロレイン酸、リンデル酸、ミリストレイン酸、リノール酸、リノレン酸、ミード酸、ジホモリノレン酸、アラキドン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸及びネルボン酸から選択される１種又は２種以上であることを特徴とする上記（４）に記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（６）培地が固体培地である場合は、培地中の炭素数５以上の脂肪酸の合計濃度が０．０７５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内であり、培地が液体培地である場合は、培地中の炭素数５以上の脂肪酸の合計濃度が０．０５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内であることを特徴とする上記（１）〜（５）のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（７）シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸におけるシクロデキストリンと脂肪酸の重量比が、シクロデキストリン１００重量部に対して脂肪酸０．２〜４５重量部の範囲内であることを特徴とする上記（１）〜（６）のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法や、
（８）微生物が、真正細菌、古細菌及び真核生物からなる群から選択されることを特徴とする上記（１）〜（７）のいずれかに記載の微生物の増殖能を増強する方法に関する。【００１９】
また、本発明は、
（９）シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物を増殖する方法に関する。【００２０】
さらに、本発明は、
（１０）シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する微生物の増殖能の増強剤に関する。
【発明の効果】
【００２１】
本発明によれば、微生物の増殖能をより強く増強することのできる、微生物の増殖能の増強方法等を提供することができる。本発明によれば、より多数又はより多種の微生物を増殖、検出又は分離することが可能となるため、より多数又はより多種の微生物を増殖させてその微生物の分子生態学的、生化学的な解析を可能にすることや、食品・臨床検査分野で微生物汚染又は感染の検出率を向上させることや、自然界から有用な微生物のスクリーニングの分野でスクリーニング効率を向上させることが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】図１Ａは、大腸菌野生株（ＭＧ１６５５）を、Triton X-100でエマルション化したオレイン酸（以下、「エマルション化オレイン酸」ということがある）を含む固体培地中で培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。図１Ｂは、ＭＧ１６５５株を、エマルション化オレイン酸を含む液体培地中で培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。図１Ｃ及びＤは、大腸菌の脂肪酸合成酵素（ＦａｂＢ）遺伝子欠損（ΔｆａｂＢ）株を、それぞれエマルション化オレイン酸を含有する固体培地及び液体培地中で培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。
【図２】ΔｆａｂＢ株を、０．１μｇ／ｍＬ（オレイン酸濃度） エマルション化オレイン酸を含み、Triton X-100濃度が２０〜１０００μｇ／ｍＬの液体培地中で培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。
【図３】メチル−β−シクロデキストリン濃度が０〜６０００μｇ／ｍＬである固体培地中で、ＭＧ１６５５株を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。図中の「ＣＤ」はメチル−β−シクロデキストリンを表す。
【図４】ΔｆａｂＢ株を、２０〜１８０μｇ／ｍＬ（オレイン酸換算濃度）のメチル−β−シクロデキストリン包接オレイン酸を含む固体培地中で培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。
【図５】脂肪酸合成酵素（ＦａｂＢ等）阻害剤であるセルレニンを所定濃度含む又は含まないＭ９−ＣＡＧｌｃ液体培地で、大腸菌野生株（ＭＧ１６５５）を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。グラフの横軸の数値は、培地中のセルレニンの濃度（μｇ／ｍＬ）を表し、縦軸の数値は、増殖可能細胞数を表す。また、セルレニンの各濃度において、左側の黒い棒グラフは、前述の培養後の培養液を、固体培地に播種して計測したＣＦＵ（colony forming unit）を表し、右側の薄いグレーの棒グラフは液体培地で培養した場合にＭＰＮ法で計測した増殖可能細胞数を表す。
【図６】脂肪酸合成酵素阻害剤であるセルレニンを所定濃度含む又は含まないＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ液体培地で、枯草菌（バシラス・サティリス）１６８株を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。グラフの横軸の数値は、培地中のセルレニンの濃度（μｇ／ｍＬ）を表し、縦軸の数値は、増殖可能細胞数を表す。また、セルレニンの各濃度において、左側の黒い棒グラフは、前述の培養後の培養液を、固体培地に播種して計測したＣＦＵを表し、右側の薄いグレーの棒グラフは液体培地で培養した場合にＭＰＮ法で計測した増殖可能細胞数を表す。
【図７】脂肪酸合成酵素（ＦａｂＩ）阻害剤であるトリクロサンを所定濃度含む又は含まないＭ９−ＣＡＧｌｃ液体培地で、大腸菌野生株（ＭＧ１６５５）を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。グラフの横軸の数値は、培地中のトリクロサン濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表し、縦軸の数値は、増殖可能細胞数を表す。また、トリクロサンの各濃度において、左側の黒い棒グラフは、前述の培養後の培養液を、固体培地に播種して計測したＣＦＵを表し、右側の薄いグレーの棒グラフは液体培地で培養した場合にＭＰＮ法で計測した増殖可能細胞数を表す。
【図８】脂肪酸合成酵素（ＦａｂＩ）阻害剤であるトリクロサンを所定濃度含む又は含まないＣＭ２Ｂ液体培地で、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２株を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。グラフの横軸の数値は、培地中のトリクロサン濃度（μｇ／ｍＬ）を表し、縦軸の数値は、増殖可能細胞数を表す。また、トリクロサンの各濃度において、左側の黒い棒グラフは、前述の培養後の培養液を、固体培地に播種して計測したＣＦＵを表し、右側の薄いグレーの棒グラフは液体培地で培養した場合にＭＰＮ法で計測した増殖可能細胞数を表す。また、４μｇ／ｍＬのトリクロサンと共に、６０μｇ/ｍＬ（オレイン酸濃度換算）のシクロデキストリン包接オレイン酸を添加した場合の結果を、右から１番目と２番目のグラフに示す。
【図９】脂肪酸合成酵素（ＦａｂＩ）阻害剤であるトリクロサンを所定濃度含む又は含まないＣＭ２Ｂ液体培地で、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２株を培養したときの増殖可能細胞数を解析した結果を示す。グラフの横軸の「Triclosan」の数値は、培地中のトリクロサン濃度（μｇ／ｍＬ）を表し、「Fatty acid」の数値は、シクロデキストリン包接脂肪酸の添加濃度（μｇ／ｍＬ）（脂肪酸濃度換算）を表し、縦軸の数値は、ＣＦＵを表す。また、「Ｃ１６：１」は、シクロデキストリン包接パルミトレイン酸を添加した結果を表し、「Ｃ１８：１」は、シクロデキストリン包接オレイン酸を添加した結果を表す。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本発明は、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物の増殖能を増強する方法（以下、「本発明の増強方法」とも表示する。）や、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含むことを特徴とする微生物を増殖する方法（以下、「本発明の増殖方法」とも表示する。）からなる。また、本発明は、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する微生物の増殖能の増強剤（以下、「本発明の増強剤」とも表示する。）からなる。
【００２４】
本発明の増強方法や、本発明の増殖方法としては、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有する培地で微生物を培養する工程を含んでいる限り特に制限されないが、かかる培養工程に加えて、かかる培養工程により増殖した微生物の全部又は一部を、単離する工程を含んでいてもよい。かかる単離工程としては、公知の単離方法を用いることができる。また、かかる単離工程は、微生物の種類や、所望の活性の有無、程度や、所望の性質の有無、程度等を指標に行ってもよい。
【００２５】
本明細書における「シクロデキストリン」には、狭義のシクロデキストリンのほか、包接作用を有するシクロデキストリンの誘導体も含まれる。かかる狭義のシクロデキストリンとしては、α−シクロデキストリン、７分子のグルコースが結合したものがβ−シクロデキストリン、８分子のグルコースが結合したものがγ−シクロデキストリンが好ましく挙げられる。また、上記のシクロデキストリンの誘導体には、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基などのアルキル基；ヒドロキシメチル基、ヒドロキシエチル基、ヒドロキシプロピル基などのヒドロキシアルキル基；アセチル基；等によって修飾した化合物や、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、１級アミン、２級アミン、３級アミン、４級アンモニウム、アミド化合物、カルボニル化合物、エステル化合物、エーテル化合物、ハロゲン化物、カルボン酸等に誘導した化合物も含まれ、中でも、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基などのアルキル基；ヒドロキシメチル基、ヒドロキシエチル基、ヒドロキシプロピル基などのヒドロキシアルキル基；アセチル基；等によって修飾した化合物が好ましく挙げられ、中でも、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基などのアルキル基；ヒドロキシメチル基、ヒドロキシエチル基、ヒドロキシプロピル基などのヒドロキシアルキル基；によって修飾した化合物がより好ましく挙げられ、中でも、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基、ヒドロキシメチル基、ヒドロキシエチル基及びヒドロキシプロピル基からなる群から選択される１種又は２種以上の基によって修飾した化合物がさらに好ましく挙げられ、中でも、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、メチル基によって修飾した化合物（メチル−β−シクロデキストリン）や、狭義のシクロデキストリンを構成するグルコースの一部またはすべての２位、３位、６位の水酸基を、ヒドロキシプロピル基によって修飾した化合物（ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン）がより好ましく挙げられ、中でも、メチル−β−シクロデキストリンが特に好ましく挙げられる。
【００２６】
本発明において、シクロデキストリンは１種を用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。各種のシクロデキストリンは市販品を用いてもよいし、化学的手段や生物学的手段により調製してもよい。
【００２７】
上記の「炭素数５以上の脂肪酸」としては、炭素数５以上の脂肪酸である限り、不飽和脂肪酸であっても飽和脂肪酸であってもよいが、不飽和脂肪酸が好ましく、直鎖不飽和脂肪酸がより好ましい。また、かかる脂肪酸は、直鎖脂肪酸、分岐脂肪酸、環状脂肪酸であってもよいが、直鎖脂肪酸が好ましく挙げられる。脂肪酸の炭素数としては、５以上であれば特に制限されないが、好ましくは５〜３０の範囲内、より好ましくは８〜２８の範囲内、さらに好ましくは１０〜２６の範囲内、より好ましくは１２〜２２の範囲内が挙げられる。不飽和脂肪酸の炭素間の二重結合の数としては、１つであってもよいし、２つ以上であってもよいが、１〜５の範囲内が好ましく、１〜４の範囲内がより好ましい。
【００２８】
炭素数５以上の直鎖不飽和脂肪酸として具体的には、カプロレイン酸（Ｃ１０：１）、リンデル酸（Ｃ１２：１）、ミリストレイン酸（Ｃ１４：１）、パルミトレイン酸（Ｃ１６：１）、オレイン酸（Ｃ１８：１）、シス−バクセン酸（Ｃ１８：１）、リノール酸（Ｃ１８：２）、リノレン酸（Ｃ１８：３）、ミード酸（Ｃ２０：３）、ジホモリノレン酸（Ｃ２０：３）、アラキドン酸（Ｃ２０：４）、エイコサテトラエン酸（Ｃ２０：４）、エイコサペンタエン酸（Ｃ２０：５）、ドコサヘキサエン酸（Ｃ２２：６）、ネルボン酸（Ｃ２４：１）等が挙げられ、中でも、パルミトレイン酸（Ｃ１６：１）、オレイン酸（Ｃ１８：１）、シス−バクセン酸（Ｃ１８：１）リノール酸（Ｃ１８：２）、リノレン酸（Ｃ１８：３）、ミード酸（Ｃ２０：３）、ジホモリノレン酸（Ｃ２０：３）、アラキドン酸（Ｃ２０：４）、エイコサテトラエン酸（Ｃ２０：４）が好ましく挙げられ、中でも、オレイン酸、パルミトレイン酸、シス−バクセン酸が特に好ましく挙げられる。
【００２９】
炭素数５以上の直鎖飽和脂肪酸として具体的には、カプロン酸（Ｃ６：０）、エナント酸（Ｃ７：０）、カプリル酸（Ｃ８：０）、ペラルゴン酸（Ｃ９：０）、カプリン酸（Ｃ１０：０）、ラウリン酸（Ｃ１２：０）、ミリスチン酸（Ｃ１４：０）、ペンタデシル酸（Ｃ１５：０）、パルミチン酸（Ｃ１６：０）、マルガリン酸（Ｃ１７：０）、ステアリン酸（Ｃ１８：０）、アラキジン酸（Ｃ２０：０）、ヘンイコシル酸（Ｃ２１：０）、ベヘン酸（Ｃ２２：０）、リグノセリン酸（Ｃ２４：０）、セロチン酸（Ｃ２６：０）、モンタン酸（Ｃ２８：０）、メリシン酸（Ｃ３０：０）等が挙げられ、中でも、ミリスチン酸（Ｃ１４：０）、パルミチン酸（Ｃ１６：０）、ステアリン酸（Ｃ１８：０）、アラキジン酸（Ｃ２０：０）、ベヘン酸（Ｃ２２：０）等が好ましく挙げられ、中でも、リスチン酸（Ｃ１４：０）、パルミチン酸（Ｃ１６：０）、ステアリン酸（Ｃ１８：０）等がより好ましく挙げられる。
【００３０】
炭素数５以上の環状脂肪酸として具体的には、ヒドノカルビン酸（Ｃ１６）、ショールムーグリン酸（Ｃ１８）、ゴルリン酸（Ｃ１８）等が挙げられる。
【００３１】
炭素数５以上の分岐脂肪酸として具体的には、２−エチルブタン酸、イソペンタン酸、２−メチルペンタン酸、２−エチルペンタン酸、１２−ヒドロキシステアリン酸、イソステアリン酸、イソノナン酸等が挙げられる。
【００３２】
本発明において、炭素数５以上の脂肪酸は１種を用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。なお、脂肪酸として、脂肪酸含有物を用いてもよい。また、各種の脂肪酸は市販品を用いてもよいし、脂肪酸を含む食品材料（動物性油脂、食部性油脂等）から抽出等したものを用いてもよい。
【００３３】
本発明において、「シクロデキストリンに包接された物質Ｘ」とは、物質Ｘ（ゲスト分子）の全部又は一部が、シクロデキストリン（ホスト分子）の環状構造の内側の疎水性の空孔に取り込まれていることを意味する。物質Ｘがシクロデキストリンに包接されているかどうかは、溶液状態においては円二色性スペクトルやＮＭＲスペクトルを用い、固体状態においては熱分析ＤＳＣ、粉末Ｘ線などで、シクロデキストリン単独、ゲスト分子単独、物理的混合物とＣＤ包接体を比較するなどして確認することができる。
【００３４】
本発明における、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸（シクロデキストリン包接脂肪酸）中の、シクロデキストリンと脂肪酸の重量比としては、対象となる微生物の増殖能を増殖し得る限り特に制限さないが、例えば、シクロデキストリン１００重量部に対して脂肪酸を０．１〜９０重量部の範囲内、好ましくは０．２〜４５重量部の範囲内、より好ましくは０．３〜３０重量部の範囲内、さらに好ましくは１〜９重量部の範囲内、さらにより好ましくは１．５〜６重量部の範囲内、特に好ましくは２〜４．５重量部の範囲内とすることができる。
【００３５】
本発明におけるシクロデキストリン包接脂肪酸を調製する方法としては、特に制限されず、例えば混練法、飽和水溶液法、乳化法、混合粉砕法等の公知の方法を用いることができる。上記の混練法としては、ホスト分子に少量の水を添加してペースト状にし、そこに一定量のゲスト分子を添加して混練機等でよく練って、ホスト分子に包接されたゲスト分子を得る方法が挙げられる。上記の飽和水溶液法としては、ホスト分子の飽和水溶液を作製し、その後一定量のゲスト分子を添加・混合し、３０分間〜数日間、攪拌混合して、ホスト分子に包接されたゲスト分子を沈殿させて得る方法が挙げられる。上記の乳化法としては、ホスト分子の２０〜５０％懸濁液を作製し、そこに一定量のゲスト分子を添加し、ホモジナイザーで乳化させて、ホスト分子に包接されたゲスト分子を得る方法が挙げられる。上記の混合粉砕法としては、ホスト分子とゲスト分子を振動ミルに入れ、粉砕して、ホスト分子に包接されたゲスト分子を得る方法が挙げられる。なお、上述の混練法、飽和水溶液法、乳化法において、固体状のシクロデキストリン包接脂肪酸を得る場合は、それぞれの方法で得られるシクロデキストリン包接脂肪酸を含む液体を乾燥（好ましくは凍結乾燥）すればよい。保存は、常温であってもよいが、より長期間の保存を可能にする観点から、４℃以下の温度で行うことが好ましい。
【００３６】
本発明における培地は、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸（シクロデキストリン包接脂肪酸）を含有する培地である限り特に制限されないが、そのほかに、微生物の成育に必要な成分を含んでいる。本発明の培地は、固体培地でも液体培地であってもよいが、食品・臨床検査分野で微生物汚染又は感染の検出率を向上させることや、自然界から有用な微生物のスクリーニングの分野でスクリーニング効率を向上させることが可能となるなど、本発明の意義がより大きい点で、固体培地が好ましく挙げられる。
【００３７】
本発明における培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸の濃度としては、対象となる微生物の増殖能を増強し得る限り特に制限さないが、培地が固体である場合は、脂肪酸濃度換算で（脂肪酸の濃度に換算して）、例えば０．０７５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、好ましくは０．１〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは１〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは１０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは２０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは４０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは６０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは８０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは１００〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは１２０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内が挙げられ、また、コストの観点から、培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸の濃度の上限を、脂肪酸濃度換算で４００μｇ／ｍＬ以下、３００μｇ／ｍＬ以下としてもよい。他方、培地が液体である場合は、脂肪酸濃度換算で、例えば０．０５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、好ましくは０．０７５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは０．１〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは１〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは５〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは１０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは２０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは４０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは６０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは８０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、より好ましくは１００〜５００μｇ／ｍＬの範囲内、さらに好ましくは１２０〜５００μｇ／ｍＬの範囲内が挙げられ、また、コストの観点から、培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸の濃度の上限を、脂肪酸濃度換算で４００μｇ／ｍＬ以下、３００μｇ／ｍＬ以下、２００μｇ／ｍＬ以下としてもよい。シクロデキストリン包接脂肪酸の濃度が高いほど、それと同濃度の脂肪酸をTritonX-100で培地に懸濁させる場合の、TritonX-100の微生物への毒性が問題となりやすいため、本発明の意義がより大きくなる。
【００３８】
本発明における培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸以外の成分としては、培養対象である微生物の成育に必要な成分が挙げられ、かかる成分としては、その微生物が資化し得る炭素源、窒素源、アミノ酸、無機塩類（特に、リン化合物、マグネシウム化合物、マンガン化合物、鉄化合物等）が挙げられる。本発明の培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸以外の成分からなる培地としては、後述の参考例２に記載するＭ９−ＣＡＧｌｃ培地（Ｍ９最少培地にグルコースとカザミノ酸（カゼインの塩酸加水分解中和物）を添加した培地）や、後述の実施例２に記載するＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ培地、ＣＭ２Ｂ培地や、L-broth培地やNutrient broth培地などが挙げられる。本発明における培地中のシクロデキストリン包接脂肪酸以外の成分は、培養対象となる微生物や増殖させたい微生物の種類等に応じて、適宜選択することができる。また、本発明における培地中には、シクロデキストリン包接脂肪酸以外にも、微生物の増殖能を増強する成分を添加してもよい。
【００３９】
本発明における微生物の種類としては、シクロデキストリン包接脂肪酸で増殖能が増強される限り特に制限されず、真正細菌（Bacteria）、古細菌（Archaea）、真核生物（Eucarya）が挙げられ、中でも、真正細菌、古細菌、酵母が好ましく挙げられ、中でも、真正細菌、古細菌がより好ましく挙げられる。また、本発明における微生物としては、グラム陽性の細菌（好ましくは真正細菌）、グラム陰性の細菌（好ましくは真正細菌）が挙げられる。グラム陽性の真正細菌としては、フィルミクテス門、放線菌門の真正細菌が好ましく挙げられる。フィルミクテス門の真正細菌としては、バシラス属、ラクトバシラス属、クロストリジウム属、テルモアナエロバクテル属、ハロアナエロビウム属、ナトラナエロビウス属、エリシペロトリクス属、セレノモナス属、テルモリトバクテル属の細菌が好ましく挙げられ、中でも、バシラス属、ラクトバシラス属がより好ましく挙げられ、バシラス属がさらに好ましく挙げられる。放線菌門の真正細菌としては、コリネバクテリウム属、マイコバクテリウム属、ロドコッカス属、プロピオニバクテリウム属、ストレプトマイセス属、ビフィドバクテリウム属、ミクロコッカス属、フランキア属が挙げられ、中でも、コリネバクテリウム属、マイコバクテリウム属、ロドコッカス属、プロピオニバクテリウム属、ストレプトマイセス属、ビフィドバクテリウム属がより好ましく挙げられ、中でも、コリネバクテリウム属、マイコバクテリウム属、ロドコッカス属がさらに好ましく挙げられる。また、本発明は、本発明における微生物（シクロデキストリン包接脂肪酸で増殖能が増強される微生物）を少なくとも一部に含む微生物群（例えば、自然界から採取した微生物群）に適用してもよい。そのように用いることによって、自然界から有用な微生物のスクリーニングを行う際に、スクリーニング効率を向上させることが可能となる。
【００４０】
本発明における培地で微生物を培養する工程としては、かかる培地で微生物を培養する限り、培養期間、培養温度、湿度、酸素濃度などの培養条件等について特に制限されず、培養する微生物の種類等に応じて培養条件を適宜設定することができる。培養期間として例えば、５時間〜２週間の範囲内、８時間〜１週間の範囲内が挙げられ、培養温度として例えば５〜５０℃の範囲内、１０〜４０℃の範囲内が挙げられる。
【００４１】
本発明において「微生物の増殖能が増強している」とは、シクロデキストリン包接脂肪酸を含有させないこと以外は同じ組成の脂肪酸不含有培地（例えばＭ９−ＣＡＧｌｃ培地、ＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ培地又はＣＭ２Ｂ培地）で、同じ培養条件で培養した場合と比較して、シクロデキストリン包接脂肪酸含有培地で培養した場合の微生物の増殖可能細胞数が多いことを意味する。本発明において「微生物の増殖能が増強している」ことには、シクロデキストリン包接脂肪酸を含有させないこと以外は同じ組成の脂肪酸不含有培地（例えばＭ９−ＣＡＧｌｃ培地、ＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ培地又はＣＭ２Ｂ培地）で、同じ培養条件（好ましくは、その微生物に好適な培養条件）で例えば３０時間培養した場合と比較して、シクロデキストリン包接脂肪酸含有培地で培養した場合の微生物の増殖可能細胞数が、割合として好ましくは１０％以上、より好ましくは２０％以上、さらに好ましくは３０％以上、より好ましくは５０％以上、さらに好ましくは１００％以上増加していることが含まれる。また、本発明において「微生物の増殖能が増強している」ことに含まれる別の態様として、シクロデキストリン包接脂肪酸を含有させることに代えて、それに含まれる脂肪酸と同濃度の脂肪酸をTritonX-100で培地に懸濁させたこと以外は同じ組成の培地（脂肪酸を含有させる前の培地として例えばＭ９−ＣＡＧｌｃ培地、ＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ培地又はＣＭ２Ｂ培地）で、同じ培養条件（好ましくは、その微生物に好適な培養条件）で培養した場合と比較して、シクロデキストリン包接脂肪酸含有培地で培養した場合の微生物の増殖可能細胞数が多いことが含まれ、より好ましくは、シクロデキストリン包接脂肪酸を含有させることに代えて、それに含まれる脂肪酸と同濃度の脂肪酸をTritonX-100で培地に懸濁させたこと以外は同じ組成の培地（脂肪酸を含有させる前の培地として例えばＭ９−ＣＡＧｌｃ培地、ＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ培地又はＣＭ２Ｂ培地）で、同じ培養条件（好ましくは、その微生物に好適な培養条件）で例えば３０時間培養した場合と比較して、シクロデキストリン包接脂肪酸含有培地で培養した場合の微生物の増殖可能細胞数が、割合として好ましくは１０％以上、より好ましくは２０％以上、さらに好ましくは３０％以上、さらにより好ましくは５０％以上、特に好ましくは８０％以上、特により好ましくは１００％以上、特にさらに好ましくは１５０％以上、特にさらにより好ましくは２００％以上、より好ましくは４００％、さらに好ましくは６００％以上、より好ましくは８００％以上増加していることが含まれる。
【００４２】
本発明において、培養後の「微生物の増殖可能細胞数」とは、その培養後の微生物のうち、増殖が可能である微生物の細胞数を意味する。かかる増殖可能細胞数は、具体的には以下の方法により計測、算出することができる。例えば、「固体培地Ｘ」による培養後の、その「固体培地Ｘ」上の増殖可能細胞数を計測、算出する場合は、その固体培地Ｘ全体の微生物を擦り取って、緩衝液に懸濁し、その懸濁液を希釈し及び／又は一部を新たな固体培地Ｘ上に播種して培養し、該固体培地上に形成されたコロニー形成単位（colony-forming unit：ＣＦＵ）を計測し、希釈率等に基づいて、そのＣＦＵ値から固体培地Ｘ上の増殖可能細胞数を算出することができる。一方、「液体培地Ｙ」による培養後の、その「液体培地Ｙ」中の増殖可能細胞数を算出する場合は、その液体培地Ｙを希釈し及び／又は一部を、その液体培地Ｙに対応する新たな固体培地（液体培地Ｙの組成にアガロースを添加して作製した固体培地）上に播種して培養し、該固体培地上に形成されたコロニー形成単位（Colony forming unit：ＣＦＵ）を計測し、希釈率等に基づいて、そのＣＦＵ値から前述の液体培地Ｙ中の増殖可能細胞数を算出することができる。なお、微生物の増殖能の増強は、培養後の「微生物の増殖可能細胞数」の増加に代えて、培養後の微生物の粒子数の増加により確認することもできる。微生物の粒子数は、コールターカウンターやセルソーターなどにより簡便に計測することができる。
【００４３】
本発明の増強剤としては、シクロデキストリンに包接された、炭素数５以上の脂肪酸を含有している限り特に制限されない。本発明の増強剤は、液体状であってもよいし、固体状であってもよいが、保存性の観点から固体状であることが好ましい。
【００４４】
本発明の増強剤は、微生物の培養用培地に適量を添加して用いることができるため、本発明の増強剤におけるシクロデキストリン包接脂肪酸の濃度としては特に制限されないが、本発明の増強剤全量に対して、例えば０．００１〜１００重量％の範囲内、好ましくは０．１〜９５重量％の範囲内、より好ましくは１〜８０重量％の範囲内、さらに好ましくは２〜５０重量％の範囲内が挙げられる。
【００４５】
本発明の増強剤は、シクロデキストリン包接脂肪酸のみを含有していてもよいし、他の成分を含有していてもよい。他の成分としては、水等の液状の溶媒や、固体状の増量剤などが挙げられるほか、培養対象である微生物の成育に必要な成分が挙げられ、かかる成分としては、その微生物が資化し得る炭素源、窒素源、アミノ酸、微量成分（無機塩類等、特に、リン化合物、マンガン化合物、鉄化合物等）が挙げられる。微生物の成育に必要な成分を含んでいる本発明の増強剤は、微生物の増殖能を増強するための培地添加剤、あるいは、微生物の増殖能を増強するための培地として使用することもできる。
【００４６】
［参考例１］ΔｆａｂＢ株の構築
背景技術に記載したように、非特許文献１６の変異株は、変異原メチルニトロニトロソグアニジンを用いて取得された株であるため、ｆａｂＢ遺伝子以外に多数の変異を含み、遺伝的背景が複雑で未知の部分も多い。そこで、大腸菌の野生株ＭＧ１６５５からｆａｂＢ遺伝子だけを欠損させた変異株（ｆａｂＢ遺伝子欠損株：ΔｆａｂＢ）の取得を試みた。
【００４７】
pRed/ET Recombination system（Gene Bridges GmbH社製）を用いた相同組換えによって、大腸菌の野生株ＭＧ１６５５のｆａｂＢ ＯＲＦを、Ｔｎ５由来カナマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子のＯＲＦで置換し、ｆａｂＢ遺伝子欠損株（ΔｆａｂＢ）を構築した。
【００４８】
［参考例２］
（エマルション化オレイン酸含有培地におけるΔｆａｂＢ株の増殖能 １）
エマルション化オレイン酸含有培地（固体培地及び液体培地）におけるΔｆａｂＢ株の増殖能を調べるために、Triton X-100でエマルション化したオレイン酸０．０１〜２０μｇ／ｍＬを含む、脂肪酸不含の合成液体培地（Ｍ９−ＣＡＧｌｃ培地；０．６％ Ｎａ２ＨＰＯ４、０．３％ ＫＨ２ＰＯ４、０．１％ ＮＨ４Ｃｌ、０．１％ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＭｇＳＯ４、０．１ｍＭ ＣａＣｌ２、０．５％ カザミノ酸、０．４％ Ｄ−グルコース）（以下、「エマルション化オレイン酸含有液体培地」という）、又は合成固体培地（以下、「エマルション化オレイン酸含有固体培地」という）を用いて細胞増殖レベルを解析した。細胞増殖レベルは、増殖可能細胞数を指標とした。増殖可能細胞数の算出方法は、上記の「発明を実施するための形態」に記載した方法を用いた。なお、０．０１〜２０μｇ／ｍＬ（オレイン酸濃度） エマルション化オレイン酸含有液体培地は、１％ Triton X-100に２ｍｇ／ｍＬ オレイン酸を添加して、激しく撹拌した後、Ｍ９−ＣＡＧｌｃ培地で１００〜２０００００倍（オレイン酸の最終濃度２０〜０．０１μｇ／ｍＬ）希釈することにより調製した。また、エマルション化オレイン酸含有固体培地は、エマルション化オレイン酸含有液体培地に１．５％となるようにアガロースを添加して調製した。また、コントロールとしてΔｆａｂＢ株をエマルション化オレイン酸不含の培地中で培養する実験や、野生株（ＭＧ１６５５株）をエマルション化オレイン酸含有又は不含の培地中で培養する実験も行った。
【００４９】
その結果、野生株であるＭＧ１６５５株は、培地中のオレイン酸の有無やオレイン酸濃度によらず、増殖可能細胞数はほぼ同様であり、ほぼ同じレベルで増殖することが確認された（図１Ａ及びＢ参照）。一方、ΔｆａｂＢ株は、オレイン酸を０．０１μｇ／ｍＬ含む液体培地中で培養した場合、増殖しなかったが、液体培地中のオレイン酸濃度を０．０７５μｇ／ｍＬから２０μｇ／ｍＬまで順次上昇させるのに依存して、液体培地中で増殖レベルが顕著に上昇すること（増殖能が顕著に増強すること）（図１Ｄ参照）、及び、それに反して固体培地上では、細胞の増殖が強く抑制されること（図１Ｃ参照）が確認された。
【００５０】
［参考例３］
（エマルション化オレイン酸含有培地におけるΔｆａｂＢ株の増殖能 ２）
参考例２で調製したエマルション化オレイン酸含有培地に含まれるTriton X-100が、ΔｆａｂＢ株の増殖能に影響を与えるかどうか調べた。具体的には、０．１μｇ／ｍＬ エマルション化オレイン酸含有液体培地におけるTriton X-100濃度が、２０〜１０００μｇ／ｍＬとなるように培地を調製し、ΔｆａｂＢ株の細胞増殖レベル（増殖可能細胞数）を解析した。
【００５１】
その結果、ΔｆａｂＢ株は、培地中のTriton X-100濃度が１００μｇ／ｍＬ以下の場合、ほぼ同じレベルで増殖することが確認された（図２参照）。一方、培地中のTriton X-100濃度が２００μｇ／ｍＬ以上の場合、ΔｆａｂＢ株の増殖レベルは低下し、特に培地中のTriton X-100濃度が５００μｇ／ｍＬ以上の場合、ΔｆａｂＢ株の増殖レベルは大幅に低下した（図２参照）。この結果は、ΔｆａｂＢ株をエマルション化オレイン酸含有培地で効率よく培養するためには、培地中のTriton X-100濃度は１００μｇ／ｍＬ以下（オレイン酸で換算すると２０μｇ／ｍＬ以下）に抑える必要があることを示している。
［参考例４］
【００５２】
（メチル−β−シクロデキストリン含有培地におけるＭＧ１６５５株の増殖能）
参考例３の結果から、Triton X-100でエマルション化したオレイン酸を培地に添加する方法では、Triton X-100が大腸菌の増殖レベルを低下させる効果を有するため、培地中のオレイン酸は、最大でも２０μｇ／ｍＬの濃度でしか添加することができない。そこで、オレイン酸を培地に添加する方法として、Triton X-100でオレイン酸をエマルション化する方法に代えて、メチル−β−シクロデキストリンでオレイン酸を抱接する方法を検討した。それに先立ち、まず、メチル−β−シクロデキストリンがＭＧ１６５５株の増殖能に与える影響を調べた。
【００５３】
Ｍ９−ＣＡＧｌｃ固体培地におけるメチル−β−シクロデキストリン濃度が、０〜６０００μｇ／ｍＬとなるように培地を調製し、ＭＧ１６５５株の細胞増殖レベルを解析した。
【００５４】
その結果、培地中に含まれるメチル−β−シクロデキストリン濃度が、少なくとも６０００μｇ／ｍＬまでの場合、ＭＧ１６５５株の細胞増殖レベル（増殖可能細胞数）は低下しないことが示された（図３参照）。なお、動物細胞を用いた実験では、シクロデキストリン、特にメチル−β−シクロデキストリンは、細胞に接触させると細胞膜の脂質を除去する性質があり、細胞の生存率が低下することが知られていた（非特許文献１７、１８）ことを考慮すると、メチル−β−シクロデキストリンが大腸菌の増殖レベルを低下させないことは、当該分野の研究者等にとって意外であった。
【実施例１】
【００５５】
（抱接オレイン酸含有培地におけるΔｆａｂＢ株の増殖能）
参考例４の結果から、大腸菌の増殖能は６０００μｇ／ｍＬのメチル−β−シクロデキストリンによっても低下しないことが示された。そこで、オレイン酸を培地に添加する方法として、Triton X-100でオレイン酸をエマルション化する方法に代えて、メチル−β−シクロデキストリンでオレイン酸を抱接する方法を試みた。【００５６】
まず、１ｇ メチル−β−シクロデキストリンを５ｍＬ 脱イオン水に溶解した後、２０ｍｇ オレイン酸を添加し、激しく撹拌して、メチル−β−シクロデキストリン包接オレイン酸（以下、単に「シクロデキストリン包接オレイン酸」という）を調製した。かかるシクロデキストリン包接オレイン酸を、１．５％ アガロースを含有するＭ９−ＣＡＧｌｃ培地で希釈することによって、２０〜１８０μｇ／ｍＬ（オレイン酸濃度換算の濃度）のシクロデキストリン抱接オレイン酸を含有するＭ９−ＣＡＧｌｃ固体培地（以下、「抱接オレイン酸含有固体培地」という）を調製し、ΔｆａｂＢ株の増殖レベル（増殖可能細胞数）を解析した。なお、コントロールとして、ΔｆａｂＢ株を２０μｇ／ｍＬ（オレイン酸濃度） エマルション化オレイン酸含有固体培地中に培養する実験を行った。なお、図１Ｃの固体培養では、一夜培養した定常期のΔｆａｂＢ菌株を洗浄した後、固体培地に播種して培養を行ったのに対し、この実験では、対数増殖期のΔｆａｂＢ菌株を洗浄した後、固体培地に播種して培養を行った。【００５７】
この実験におけるΔｆａｂＢ株の増殖可能細胞数を以下の表１に示し、それをグラフにしたものを図４に示す。【００５８】
【表１】
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【００５９】
表１及び図４の結果から分かるように、ΔｆａｂＢ株を、抱接オレイン酸含有固体培地中で培養することにより、オレイン酸濃度が２０μｇ／ｍＬ以上でもその濃度依存的にΔｆａｂＢ株の増殖レベル（増殖可能細胞数）が上昇することが示された。また、ΔｆａｂＢ株を２０μｇ／ｍＬ シクロデキストリン抱接オレイン酸含有固体培地中で培養した場合、２０μｇ／ｍＬ エマルション化オレイン酸含有固体培地中で培養した場合と比べ、増殖可能細胞（菌体）数が、２．９倍（培養開始後１０時間）、７．１倍（培養開始後２０時間）、４．２倍（培養開始後３０時間）、６５．６倍（培養開始後４０時間）と、顕著に多いことも示された（表１及び図４参照）。この結果は、ΔｆａｂＢ株等の脂肪酸飢餓状態の微生物を、メチル−β−シクロデキストリン等のシクロデキストリンで抱接したオレイン酸を含む培地中で培養すると、従来技術である界面活性剤（Triton X-100等）でエマルション化したオレイン酸を含む培地中で培養した場合と比べ、細胞増殖能が顕著に増強し、また、コロニー形成効率が顕著に上昇することを示している。
【実施例２】
【００６０】
（脂肪酸合成酵素阻害剤の添加による、細菌のコロニー形成能等の増殖能の低下）
固体培地上でコロニー形成能が低下した大腸菌変異株は脂肪酸合成酵素ＦａｂＢ遺伝子欠損株であった。そこで、各種微生物の野生株を用いた際に、脂肪酸合成酵素阻害剤を添加することにより、コロニー形成能等の増殖能が低下するかどうかを、増殖可能細胞数を指標に検討した。ＣＦＵは微生物を液体培養して得られた培養液の一部を固体培地に播種し、培養して形成されたコロニー数を計測し、ＭＰＮは前述の培養液を常法にしたがって希釈して菌数を計測した。【００６１】
脂肪酸合成酵素（ＦａｂＢ等）阻害剤であるセルレニンをＭ９−ＣＡＧｌｃ液体培地に添加し、グラム陰性細菌である大腸菌野生株ＭＧ１６５５株を３７℃で３日間培養したところ、セルレニン濃度が高くなると大腸菌のＣＦＵがＭＰＮよりも強く阻害を受け、液体培地での増殖に比べてコロニー形成能が大きく低下することが示された（図５）。また、セルレニンをＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ液体培地（ＳＰＭＭ−ＣＡＧｌｃ液体培地；１４ｇ／Ｌ  Ｋ２ＨＰＯ４（国産化学株式会社製）、６ｇ／Ｌ  ＫＨ２ＰＯ４（国産化学株式会社製）、２ｇ／Ｌ  （ＮＨ４）２ＳＯ４（和光純薬工業株式会社製）、１ｇ／Ｌ  クエン酸三ナトリウム二水和物（国産化学株式会社製）、０．２ｇ／Ｌ  ＭｇＳＯ４（米山薬品工業株式会社製）、５ｇ／Ｌ  Ｄ−グルコース（国産化学株式会社製）、５０ｍｇ／Ｌ  Ｄ−トリプトファン（株式会社 ペプチド研究所製）、５ｇ／Ｌ  Casamino Acids-Vitamin Assay（ベクトン・ディッキンソン社製））に添加し、グラム陽性細菌である枯草菌（バシラス・サティリス）１６８株を３７℃で４日間（枯草菌）培養したところ、枯草菌では大腸菌よりも広いセルレニン濃度範囲にわたって、ＣＦＵがＭＰＮよりも強く阻害を受け、液体培地での増殖に比べてコロニー形成能が大きく低下することが示された（図６）。【００６２】
また、別の脂肪酸合成酵素（ＦａｂＩ）阻害剤であるトリクロサンをＭ９−ＣＡＧｌｃ液体培地に添加し、グラム陰性細菌である大腸菌野生株ＭＧ１６５５株を３７℃で３日間培養したところ、トリクロサンの広い濃度範囲にわたって、ＭＰＮが高く保たれるのに対しＣＦＵだけが強く阻害を受け、液体培地での増殖に比べてコロニー形成能が大きく低下することが示された（図７）。また、トリクロサンをＣＭ２Ｂ液体培地（ＣＭ２Ｂ液体培地；１０ｇ／Ｌ  ハイポリペプトン（日本製薬株式会社製）、１０ｇ／Ｌ  Bacto Yeast Extract（ベクトン・ディッキンソン社製）、５ｇ／Ｌ  ＮａＣｌ（国産化学株式会社製））に添加し、グラム陽性細菌であるコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２株を、３０℃で３日間（枯草菌）培養したところ、トリクロサン濃度が２μｇ／ｍＬを越えると、ＭＰＮが高く保たれるのに対しコロニーが全く見られなくなり、コリネバクテリウム・グルタミカムでもコロニー形成能が特に大きく低下することが示された（図８）。
【実施例３】
【００６３】
（シクロデキストリン包接脂肪酸の添加による、コロニー形成能等の増殖能の回復）
脂肪酸合成酵素阻害剤の添加により低下した細菌のコロニー形成能等の増殖能が、シクロデキストリン包接脂肪酸の添加により回復するかどうかを検討した。シクロデキストリン包接脂肪酸としては、上記実施例１で作製したシクロデキストリン包接オレイン酸を用いた。【００６４】
ＣＭ２Ｂ液体培地にトリクロサン４μｇ／ｍＬを添加して、コロニー形成能が低下する条件とした培地に、シクロデキストリン包接オレイン酸６０μｇ／ｍＬ（オレイン酸濃度換算）をさらに添加した培地で、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２株を３０℃で４日間培養した。その結果、トリクロサンで低下したコリネバクテリウム・グルタミカムのＣＦＵが完全に回復し（図８）、コロニー形成能の低下が脂肪酸欠乏だけに起因する現象であったことが示された。【００６５】
また、シクロデキストリン包接オレイン酸に代えて、シクロデキストリン包接パルミトレイン酸を用いた場合にも同様の効果が得られるかを確認するために、シクロデキストリン包接パルミトレイン酸を用いた実験も行った。シクロデキストリン包接パルミトレイン酸は、１ｇ メチル−β−シクロデキストリンを５ｍＬ 脱イオン水に溶解した後、２０ｍｇパルミトレイン酸を添加し、激しく撹拌して調製した。【００６６】
ＣＭ２Ｂ液体培地にトリクロサン４μｇ／ｍＬを添加して、コロニー形成能が低下する条件とした培地に、シクロデキストリン包接パルミトレイン酸又はシクロデキストリン包接オレイン酸６０μｇ／ｍＬ（脂肪酸濃度換算）をさらに添加した培地で、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２株を３０℃で４日間培養した。その結果、トリクロサンで低下したコリネバクテリウム・グルタミカムのＣＦＵは、シクロデキストリン包接オレイン酸（「Ｃ１８：１」）を添加した場合と同様に、シクロデキストリン包接パルミトレイン酸（「Ｃ１６：１」）を添加した場合でも完全に回復した（図９）。【００６７】
これらの結果から、微生物の低下したコロニー形成能等の増殖能は、培地にシクロデキストリン包接脂肪酸を添加することにより回復することが示された。
【産業上の利用可能性】
【００６８】
本発明によれば、微生物の増殖能をより強く増強することのできる、微生物の増殖能の増強方法等を提供することができる。本発明によれば、より多数又はより多種の微生物を増殖、検出又は分離することが可能となるため、より多数又はより多種の微生物を増殖させてその微生物の分子生態学的、生化学的な解析を可能にすることや、食品・臨床検査分野で微生物汚染又は感染の検出率を向上させることや、自然界から有用な微生物のスクリーニングの分野でスクリーニング効率を向上させることが可能となる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【国際調査報告】
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