(57)【要約】  本発明は、各種疾患に対して優れた治療効果を奏する新規の間葉系幹細胞及びその間葉系幹細胞を含んだ新規の医薬組成物、並びにそれらの調製方法を提供することを目的とする。  本発明は、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞である。上記特定マーカーを発現する間葉系幹細胞は、ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性であり、未分化性を維持している。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞。
【請求項２】
ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性である、請求項１記載の間葉系幹細胞。
【請求項３】
クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を分泌する請求項１又は２記載の間葉系幹細胞。
【請求項４】
アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ（ベタセルリン）、ニドゲン−１（Ｎｉｄｏｇｅｎ−１）、ＧＬＯ−１（グリオキサラーゼ−１）、ｓｇｐ１３０（可溶型ｇｐ１３０）、コルディン様−２（Ｃｈｏｒｄｉｎ−Ｌｉｋｅ  ２）及びＥＭＡＰ−ＩＩからなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌する、請求項３記載の間葉系幹細胞。
【請求項５】
臍帯、脂肪又は骨髄由来である、請求項１から４のいずれか１項記載の間葉系幹細胞。
【請求項６】
請求項１から５のいずれか１項記載の間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含む、医薬組成物。
【請求項７】
医薬組成物が間葉系幹細胞を含む場合、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞の比率が、医薬組成物の含む間葉系幹細胞全体の７０％以上である、請求項６記載の医薬組成物。
【請求項８】
医薬組成物が間葉系幹細胞を含む場合、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞の比率が、医薬組成物の含む間葉系幹細胞全体の９０％以上である、請求項７記載の医薬組成物。
【請求項９】
癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、請求項６から８のいずれか１項記載の医薬組成物。
【請求項１０】
癌、前癌性症状、炎症性疾患、循環器疾患、心疾患、肺疾患、肝疾患及び口腔疾患からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、請求項９記載の医薬組成物。
【請求項１１】
肺癌、心筋炎、心肥大症、動脈硬化、肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肝炎、肝硬変及び歯周病からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、請求項１０記載の医薬組成物。
【請求項１２】
上皮若しくは内皮のバリア機能の低下に起因する疾患、又はＩＬ−１が関与する疾患の予防又は治療のために用いられる、請求項６から１１のいずれか１項記載の医薬組成物。
【請求項１３】
バリア機能の低下が、上皮又は内皮細胞層におけるタイトジャンクション機能の低下に起因する、請求項１２記載の医薬組成物。
【請求項１４】
ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製方法。
【請求項１５】
ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む、疾患の予防又は治療のために用いられる医薬組成物の調製方法。
【請求項１６】
上記疾患が、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される、請求項１５記載の調製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞及びその調製方法、並びに上記間葉系幹細胞を含む医薬組成物及びその調製方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、生体の細胞又は組織を利用した医薬品の開発や、再生医療の研究が進み、注目されている。このうち、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞は、臓器再生技術又は創薬スクリーニングツールとして研究が加速されている。一方、骨髄、脂肪組織、臍帯等から体性幹細胞（間葉系幹細胞）を分離して利用する細胞療法は、再生医療の中でも、病気等によって損傷を受けた組織を修復するための体性幹細胞の本来の機能を利用するものであるため、より実現性の高いものとして注目され、研究が進められている。体性幹細胞（間葉系幹細胞）は、一般的には、全ての臓器や組織に分化できるわけでなく特定の組織や臓器に分化することが知られている。【０００３】
また、体性幹細胞（間葉系幹細胞）は、上述のような損傷を受けた組織を修復させる効果だけでなく、各種疾患に対する治療効果を有することも知られている。例えば、臍帯組織に由来する体性幹細胞（間葉系幹細胞）には、移植提供者に対して組織適合性不適合な移植受容者における、逆免疫反応（ＧＶＨＤ）を抑制する効果があること（特許文献１参照）、特定の臍帯組織由来間葉系幹細胞は、パーキンソン病の治療のために使用できること（特許文献２参照）、さらに、特定の臍帯組織由来間葉系幹細胞には、循環器系の疾患に対する治療効果があること（特許文献３参照）が知られている。しかし、これらの間葉系幹細胞の各種疾患に対する治療効果は、十分とは言えない。【０００４】
特許文献４〜６には、臍帯組織由来の細胞を含む治療用細胞組成物が開示されている。これらの治療用細胞組成物が含む臍帯組織由来の細胞は、インターロイキン８、レチクロン１、ケモカイン受容体（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド３を高発現しており、さらに、ＭＣＰ−１、ＭＣＰ１β、ＩＬ−６、ＧＣＰ−２、ＨＧＦ、ＫＧＦ、ＦＧＦ、ＨＢ−ＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＴＰＯ、ＲＡＮＴＥＳおよびＴＩＭＰ１を分泌している。さらに、臍帯またはその羊膜から単離された幹細胞が各種サイトカインの遺伝子を発現していることも開示されている（特許文献７及び８）。また、臍帯血由来の間葉系幹細胞を含む組成物が、神経疾患の治療に用いられること、これらの間葉系幹細胞の培養液が、アクチビンＡ、ＰＦ４、デコリン、ガレクチン３、ＧＤＦ１５等を含むことが開示されている（特許文献９）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特表２００９−５１９９７８号公報
【特許文献２】特表２００８−５２５４８９号公報
【特許文献３】特表２００７−５２８７０５号公報
【特許文献４】特許５４２５３９９号
【特許文献５】特許５４２５４００号
【特許文献６】特許５１４８８７３号
【特許文献７】特開２０１３−０６６４７３号公報
【特許文献８】特開２０１５−５０４６６２号公報
【特許文献９】特開２０１４−２４０３８８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、上記状況に鑑みてなされたものであり、各種疾患に対して優れた治療効果を奏する新規の間葉系幹細胞及びその間葉系幹細胞を含んだ新規の医薬組成物、並びにそれらの調製方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは前記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、ある特定の間葉系幹細胞を含む医薬組成物が、各種疾患に対して優れた治療効果を示すことを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明の要旨は以下の通りである。【０００８】
（１）ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞。
（２）ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性である、（１）記載の間葉系幹細胞。
（３）クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を分泌する（１）又は（２）記載の間葉系幹細胞。
（４）アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ（ベタセルリン）、ニドゲン−１（Ｎｉｄｏｇｅｎ−１）、ＧＬＯ−１（グリオキサラーゼ−１）、ｓｇｐ１３０（可溶型ｇｐ１３０）、コルディン様−２（Ｃｈｏｒｄｉｎ−Ｌｉｋｅ  ２）及びＥＭＡＰ−ＩＩからなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌する、（１）から（３）のいずれかに記載の間葉系幹細胞。
（５）臍帯、脂肪又は骨髄由来である、（１）から（４）のいずれか記載の間葉系幹細胞。
（６）（１）から（５）のいずれか記載の間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含む、医薬組成物。
（７）医薬組成物が間葉系幹細胞を含む場合、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞の比率が、医薬組成物の含む間葉系幹細胞全体の７０％以上である、（６）記載の医薬組成物。
（８）医薬組成物が間葉系幹細胞を含む場合、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞の比率が、医薬組成物の含む間葉系幹細胞全体の９０％以上である、（７）記載の医薬組成物。
（９）癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、（６）から（８）のいずれか記載の医薬組成物。
（１０）癌、前癌性症状、炎症性疾患、循環器疾患、心疾患、肺疾患、肝疾患及び口腔疾患からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、（９）記載の医薬組成物。
（１１）肺癌、心筋炎、心肥大症、動脈硬化、肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肝炎、肝硬変及び歯周病からなる群より選択される疾患の予防又は治療のために用いられる、（１０）記載の医薬組成物。
（１２）上皮若しくは内皮のバリア機能の低下に起因する疾患、又はＩＬ−１が関与する疾患の予防又は治療のために用いられる、（６）から（１１）のいずれか記載の医薬組成物。
（１３）バリア機能の低下が、上皮又は内皮細胞層におけるタイトジャンクション機能の低下に起因する、（１２）記載の医薬組成物。
（１４）ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む、上記マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製方法。
（１５）ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む、疾患の予防又は治療のために用いられる医薬組成物の調製方法。
（１６）疾患が、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される、（１５）記載の医薬組成物の調製方法。
（１７）ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を用いる、疾患の予防又は治療方法。
（１８）間葉系幹細胞が、ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性である、（１７）記載の方法。
（１９）間葉系幹細胞が、クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を分泌する（１７）又は（１８）記載の方法。
（２０）間葉系幹細胞が、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ（ベタセルリン）、ニドゲン−１（Ｎｉｄｏｇｅｎ−１）、ＧＬＯ−１（グリオキサラーゼ−１）、ｓｇｐ１３０（可溶型ｇｐ１３０）、コルディン様−２（Ｃｈｏｒｄｉｎ−Ｌｉｋｅ  ２）及びＥＭＡＰ−ＩＩからなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌する、（１９）記載の方法。
（２１）間葉系幹細胞が、臍帯、脂肪又は骨髄由来である、（１７）から（２０）のいずれかに記載の方法。
（２２）疾患が、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される、（１７）から（２１）のいずれかに記載の方法。
（２３）疾患が、癌、前癌性症状、炎症性疾患、循環器疾患、心疾患、肺疾患、肝疾患及び口腔疾患からなる群より選択される、（２２）記載の方法。
（２４）疾患が、肺癌、心筋炎、心肥大症、動脈硬化、肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肝炎、肝硬変及び歯周病からなる群より選択される、（２３）記載の方法。
（２５）疾患が、上皮若しくは内皮のバリア機能の低下に起因する疾患、又はＩＬ−１が関与する疾患である、（１７）から（２４）のいずれか記載の方法。
（２６）バリア機能の低下が、上皮又は内皮細胞層におけるタイトジャンクション機能の低下に起因する（２５）記載の方法。
【発明の効果】
【０００９】
ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞は、マクロファージ等の免疫細胞からの炎症性サイトカイン産生を抑制する作用や、バリア機能亢進作用に優れると共に、酸化ストレスに対する耐性もあり、ダメージを受け難い細胞である、といった特性を有する。また、上記特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の培養上清は、心筋細胞、血管内皮細胞、肺上皮癌細胞、肝星細胞、歯肉線維芽細胞等に作用して、炎症や線維化に関連する遺伝子発現を適切に調節する効果も奏する。そのため、これらの間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含む本発明の医薬組成物は、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患、口腔疾患等の種々の疾患に対する優れた治療効果を示す。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】本発明の間葉系幹細胞の細胞表面マーカー発現を示す図である。
【図２】本発明の間葉系幹細胞の細胞表面マーカー発現を示す図である。
【図３】本発明の間葉系幹細胞の培養上清のバリア機能亢進活性を示す図である。
【図４】本発明の間葉系幹細胞の炎症性サイトカイン産生抑制効果を示す図である。
【図５】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト血管内皮細胞に対する抗線維化効果を示す図である。
【図６】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト血管内皮細胞に対する抗線維化効果を示す図である。
【図７】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肺上皮癌細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図８】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肺上皮癌細胞に対する抗線維化効果を示す図である。
【図９】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肝星細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１０】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肝星細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１１】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肝星細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１２】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト肝星細胞に対する抗線維化効果を示す図である。
【図１３】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト心筋細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１４】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト心筋細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１５】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト心筋細胞に対する抗線維化効果を示す図である。
【図１６】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト歯肉線維芽細胞に対する抗炎症効果を示す図である。
【図１７】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト歯肉線維芽細胞に対する歯肉減少抑制効果を示す図である。
【図１８】本発明の間葉系幹細胞の培養上清の、ヒト歯肉線維芽細胞に対する歯肉減少抑制効果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明のＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカー（以下、「特定マーカー」ともいう）を発現する間葉系幹細胞は、ＩＬ−６等の炎症性サイトカインの産生抑制作用やバリア機能亢進作用に優れる細胞である、といった特性を有する。また、心筋細胞、血管内皮細胞、肺上皮癌細胞、肝星細胞、歯肉線維芽細胞等に作用して、炎症や線維化に関連する遺伝子発現を適切に調節する効果も奏する。さらに、本発明の間葉系幹細胞は、クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を分泌し、また、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ（ベタセルリン）、ニドゲン−１（Ｎｉｄｏｇｅｎ−１）、ＧＬＯ−１（グリオキサラーゼ−１）、ｓｇｐ１３０（可溶型ｇｐ１３０）、コルディン様−２（Ｃｈｏｒｄｉｎ−Ｌｉｋｅ  ２）、ＥＭＡＰ−ＩＩから選択される特定のサイトカインを分泌することから、上記の特性以外にもこれらのサイトカインが有する機能をも有する。また、本発明の間葉系幹細胞は、未分化性を維持していると同時に、分化条件下では目的の機能を有する細胞に効率よく分化することができる。このような特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含む本発明の医薬組成物は、種々の疾患に対する優れた治療効果を奏する。以下に、本発明における特定マーカーを発現する間葉系幹細胞、その培養上清、それらを含む医薬組成物等について説明する。
【００１２】
［特定マーカーを発現する間葉系幹細胞］
本発明において間葉系幹細胞とは、骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、腱細胞、脂肪細胞等の間葉系に属する細胞への分化能を有し、この分化能を維持したまま増殖できる細胞を意味する。例えば骨髄、脂肪、血液、骨膜、真皮、臍帯、胎盤、羊膜、絨毛膜、脱落膜、筋肉、子宮内膜、真皮、歯小嚢、歯根膜、歯髄、歯胚等由来の間葉系幹細胞が挙げられ、好ましくは臍帯由来、脂肪由来、骨髄由来の間葉系幹細胞であり、より好ましくは臍帯由来の間葉系幹細胞である。ここで、「由来」とは、上記細胞が、供給源である組織から獲得され、成長、或いはｉｎ  ｖｉｔｒｏで操作された細胞であることを示す。なお、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞は、上記間葉系幹細胞の集合体であり、互いに異なる特性を有する複数種の間葉系幹細胞を含む集合体であってもよいし、実質的に均一な間葉系幹細胞の集合体であってもよい。
【００１３】
本発明における間葉系幹細胞は、被検体由来である自家性細胞であってもよいし、同種の別の対象に由来する他家性細胞であってもよい。好ましくは他家性細胞である。
【００１４】
「特定マーカーを発現する」とは、間葉系幹細胞が特定マーカー遺伝子を発現していること、若しくは特定マーカータンパクを発現していること、又はその両方を発現していることをいう。すなわち、間葉系幹細胞がＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーの遺伝子及び／又はタンパクを発現していることをいう。ここで、間葉系幹細胞が各マーカーを発現しているか否かの判断は、遺伝子発現については、例えば遺伝子チップアレイ、ポリメラーゼ連鎖反応（逆転写酵素ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、従来のＰＣＲ）等の従来公知の方法により行うことができる。また、タンパク発現については、例えば、各マーカータンパクに特異的に結合する抗体を用いたＦＡＣＳ解析（フローサイトメトリー）、酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）等の従来公知の方法により行うことができる。いずれの場合も、各マーカー遺伝子又はタンパクを発現していない細胞を陰性対照として、発現の有無や、発現の高低を判断する。
【００１５】
本発明の間葉系幹細胞は、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する。すなわち、本発明の間葉系幹細胞は、少なくとも、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５のうちのいずれか１種を発現し、好ましくは、いずれか２種を発現し、より好ましくはいずれか３種を発現し、さらに好ましくはいずれか４種を発現し、特に好ましくは全てを発現する。上記特定マーカーを発現している間葉系幹細胞は、より優れた抗炎症作用、抗線維化作用、バリア機能亢進作用、抗酸化能等を示す。
【００１６】
ＣＤ２０１は、Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  （ＥＰＣＲ）としても知られている分子である。ＣＤ２０１は、心臓と肺の動脈と静脈の内皮細胞に強く発現しており、肺と皮膚の毛細血管にはそれより弱く発現している。樹状細胞、単球、白血球といくつかの腫瘍細胞にも発現している。ＣＤ２０１の主な作用は抗凝固である。ＣＤ２０１はプロテインＣと高いアフィニティで結合し、トロンビン−トロンボモジュリン複合体によるプロテインＣの活性化を増大する。その他、ＣＤ２０１は感染、外傷、造血、自己免疫応答に対する炎症応答のような多くの病態生理学的なプロセスで重要な役割を果たしている。
【００１７】
ＣＤ４６は、４つのアイソフォームから成る膜貫通型糖タンパクである。ＣＤ４６はほとんどの有核細胞に発現し、補体成分Ｃ３ｂ及びＣ４ｂと結合することにより補体機能の調節役として機能し、自己補体攻撃からの宿主防衛に働く。ＣＤ４６はｐａｔｈｏｇｅｎ  ｍａｇｎｅｔと呼ばれ、麻疹ウイルス、ヒトヘルペスウイルス６型、Ａ群連鎖球菌とネイセリアを含むいくつかの病原体の感染に関与することが知られている。
【００１８】
ＣＤ５６は、分子量１４０ｋＤａのＮｅｕｒａｌ  Ｃｅｌｌ  Ａｄｈｅｓｉｏｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌｅ（Ｎ−ＣＡＭ）のアイソフォームで、ＮＫ細胞のマーカーとして有用な抗原である。ＣＤ５６は、末梢血の大顆粒リンパ球（ＬＧＬ）サブポピュレーションやナチュラルキラー活性を持つすべての細胞に中程度の強さで発現している。またＴ細胞のサブセット、骨髄系細胞、ミエローマの一部にも発現する。
【００１９】
ＣＤ１４７は、Ｉ型１回膜貫通タンパク質で、ベイシジンもしくはｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  ｉｎｄｕｃｅｒ（ＥＭＭＰＲＩＮ）としても知られている。ＣＤ１４７は上皮細胞、内皮細胞、白血球や癌細胞など多種の細胞に発現している。脳の非腫瘍性領域の血管上皮や癌細胞に発現しているが、悪性グリオーマ中の増殖している血管では発現していない。ＣＤ１４７は様々な生理学的、病理学的活性を有することが知られている。中でもマトリクスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）の誘導因子としての機能が最もよく知られている。その他、リンパ球応答、モノカルボン酸輸送体の発現、精子形成の制御等に関わることが示されている。
【００２０】
ＣＤ１６５は、３７−４２ｋＤａの膜表面糖タンパク質で、ほとんどの胸腺細胞、胸腺上皮細胞、大多数の血小板、線繊維芽細胞、Ｔ細胞性急性リンパ性白血病（Ｔ−ＡＬＬ）細胞、中枢神経組織のニューロン、膵臓の膵島細胞、腎臓のボーマン嚢に発現している。ＣＤ１６５は、細胞分化の過程において、胸腺細胞と胸腺上皮細胞の結合に関与していることが知られている。
【００２１】
本発明の間葉系幹細胞は、上記特定マーカーを発現するという特徴に加えて、例えば、成長特徴（例えば、継代から老化までの集団倍加能力、倍加時間）、核型分析（例えば、正常な核型、母体系統又は新生児系統）、フローサイトメトリー（例えば、ＦＡＣＳ分析）による上記以外の表面マーカー発現、免疫組織化学及び／又は免疫細胞化学（例えば、エピトープ検出）、遺伝子発現プロファイリング（例えば、遺伝子チップアレイ；逆転写ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、従来型ＰＣＲ等のポリメラーゼ連鎖反応）、ｍｉＲＮＡ発現プロファイリング、タンパク質アレイ、サイトカイン等のタンパク質分泌（例えば、血漿凝固解析、ＥＬＩＳＡ、サイトカインアレイ）、代謝産物（メタボローム解析）、本分野で知られている他の方法等によって、特徴付けられてもよい。本発明における特定マーカーを発現する間葉系幹細胞は、例えば、以下のような特徴を有する。
【００２２】
（特定マーカー以外の表面マーカーの発現）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、未分化性の指標となるＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６を発現している。
【００２３】
（特定マーカー以外の遺伝子発現）
本発明における特定マーカーを発現する間葉系幹細胞は、特定マーカー遺伝子に加えて、他の遺伝子発現の有無によって特徴付けられてもよい。本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞が発現している遺伝子としては、例えば、ＭＴ１Ｘ、ＮＩＤ２、ＣＰＡ４、ＤＫＫ１、ＡＮＫＲＤ１、ＴＩＭＰ３、ＭＭＰ１、オステオプロテゲリン（Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ；ＴＮＦＲＳＦ１１Ｂ）、ＩＧＦＢＰ５、ＳＬＣ１４Ａ１等が挙げられる。特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、ＭＴ１Ｘ、ＮＩＤ２、ＣＰＡ４、ＤＫＫ１、ＡＮＫＲＤ１、ＴＩＭＰ３、ＭＭＰ１、オステオプロテゲリン（Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ；ＴＮＦＲＳＦ１１Ｂ）、ＩＧＦＢＰ５及びＳＬＣ１４Ａ１からなる群より選択される少なくとも１種の遺伝子を発現していることが好ましい。より好ましくは２種以上、３種以上、４種以上、５種以上、さらに好ましくは６種以上、７種以上、８種以上、９種以上の、特に好ましくは、上記の全ての遺伝子を発現している。
【００２４】
なお、このときの各遺伝子の発現は、当業者に公知の方法により測定することができる。例えば、細胞から常法によりｍＲＮＡを調製し、発現の有無や程度を確認したい遺伝子についてｑＲＴ−ＰＣＲを行い、それぞれの遺伝子発現を解析することができる。
【００２５】
ＭＴ１Ｘは、システインリッチな低分子量タンパクであり（分子量５００〜１４，０００Ｄａ）、ゴルジ体の膜に局在している。ＭＴ１Ｘの機能の詳細は不明であるが、抗酸化タンパクとして、酸化ストレスに対する防御機構に関与している可能性が示唆されている。また、ＭＴ１Ｘは細胞の未分化性の指標となるタンパクであるとも言われている。本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞がＭＴ１Ｘを発現していることの効果として、細胞が酸化ストレス耐性を獲得していることが挙げられ、疾患の治療に用いる場合に、よりダメージに強い細胞である点で好ましい。
【００２６】
ＮＩＤ２は、ラミニンγ１鎖に結合し、ラミニンをＩＶ型コラーゲンに結びつけることで基底膜の形成と維持に関与しているタンパクである。中枢神経組織内におけるほとんどの基底膜に発現している。本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞がＮＩＤ２を発現していることの効果としては、筋肉細胞（特に、骨格筋、心筋）への分化能が向上している可能性が考えられる。
【００２７】
ＣＰＡ４は、タンパク質のＣ末端アミノ酸を切断するタンパク分解酵素のひとつである。また、ＣＰＡ４は前立腺癌マーカーとしても知られるタンパクであり、癌の悪性度に比例して発現が上昇することが知られている。活発に増殖する未分化性の高い細胞において発現が上昇している傾向があることから、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞がＣＰＡ４を発現していることは、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞が未分化性及び増殖性が高いことを示唆していると言える。
【００２８】
ＡＮＫＲＤ１は、間葉系幹細胞の他、心筋、平滑筋、線維芽細胞、肝星細胞等に発現しているタンパクであり、分化の過程や、ストレスに関与して作用する転写因子である。多くの心疾患に関与していることが判明している。また、創傷治癒過程にある線維芽細胞や肝障害時の肝星細胞において発現が上昇すること、ＡＮＫＲＤ１を欠失させたマウスでは傷の治りが遅れること等が知られている（Ｓｕｓａｎ  Ｅ．  Ｓａｍａｒａｓ  ｅｔ  ａｌ．  Ｔｈｅ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ，  Ｖｏｌ．  １８５，  Ｎｏ．  １，  Ｊａｎｕａｒｙ  ２０１５，  Ｉｎｇｅ  Ｍａｎｎａｅｒｔｓ  ｅｔ  ａｌ，  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ  ２０１５）。また、ＭＭＰ１０，１３等の細胞外基質分解酵素の発現を制御する核内因子である（Ｋａｒｉｎｎａ  Ａｌｍｏｄｏｖａｒ−Ｇａｒｃｉａ  ｅｔ  ａｌ．  ＭＣＢ  ２０１４）。よって、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞がＡＮＫＲＤ１を発現していることの効果としては、心筋細胞への分化能向上や創傷治癒効果亢進、線維化組織の細胞外基質のリモデリングに関与する等の可能性が考えられる。
【００２９】
ＤＫＫ１は、Ｗｎｔシグナル阻害剤として機能するタンパクであり、Ｃａｎｏｎｉｃａｌ経路の抑制化に寄与していると考えられている。そのため、骨分化に関しては促進的方向に作用して骨分化能を向上させる。骨粗しょう症においては発現が低下することが知られている。一方、細胞の未分化性維持及び増殖には良い影響を与えていると考えられており、胎児発達にも寄与していることも知られている。
【００３０】
ＴＩＭＰ３（Ｔｉｓｓｕｅ  Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ｏｆ  Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  ３）は、ＭＭＰ１、ＭＭＰ２、ＭＭＰ３、ＭＭＰ９、ＭＭＰ１３の活性化を抑制する。さらに、ＭＭＰ３はその他の多くのＭＭＰの活性化に関与していることから、ＴＩＭＰ３は広範なＭＭＰの抑制因子として機能する。また、ＶＥＧＦのＶＥＧＦＲ２への結合を抑制することで血管新生を抑制することや、アポトーシス促進シグナルとして働くことが知られている。
【００３１】
ＭＭＰ１（Ｍａｔｒｉｘ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  １）は、Ｉ型、ＩＩ型、ＩＩＩ型、Ｖ型コラーゲンを対象に分解するタンパク質である。主要なＥＣＭを対象にしていることから、細胞分裂や細胞遊走の際に働くことが知られている。炎症反応によって発現が増加することが知られており、炎症時の組織破壊やリモデリングに関与している。
【００３２】
オステオプロテゲリン（Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ；ＴＮＦＲＳＦ１１Ｂ）は、破骨細胞分化因子（ＲＡＮＫＬ）のデコイ受容体で、ＲＡＮＫを介したＮＦ−κＢシグナルの活性化を阻害する。骨芽細胞、線維芽細胞、肝細胞などから産生され、破骨前駆細胞の破骨細胞への分化を阻害する。オステオプロテゲリンの局所投与により骨形成が促進されたり、逆にノックダウンにより骨粗鬆症を生じるという報告がある。
【００３３】
ＩＧＦＢＰ−５は、インシュリン様成長因子（ＩＧＦ）結合タンパク質で、ほとんどのＩＧＦはＩＧＦＢＰと結合した状態で存在している。ＩＧＦＢＰの機能として、ＩＧＦシグナルを増強することが挙げられる。また、ＴＮＦＲ１の遺伝子発現を促進するほか、ＴＮＦＲ１タンパク質に対してアンタゴニスト的に働くことで、ＴＮＦαシグナルを抑制することが知られている。また、乳癌細胞で、ＩＧＦＢＰ−５が細胞接着、生存率の増加を促進し、細胞遊走を抑制することが報告されている。
【００３４】
ＳＬＣ１４Ａ１は、尿素トランスポーターであり、腎臓で発現が高く、細胞内の尿素濃度のコントロールを行っている。間葉系幹細胞でも発現していることは示されており、特に軟骨分化時に発現低下することが報告されている。
【００３５】
（マイクロＲＮＡ発現）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、ｍｉＲＮＡの発現の有無によってさらに特徴付けられてもよい。本発明の間葉系幹細胞が発現しているｍｉＲＮＡとしては、例えば、ｈｓａ−ｍｉＲ−１４５−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１８１ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−２９ｂ−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３４ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９９ｂ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−５０３−５ｐ、ｈｓａ−ｌｅｔ−７ｅ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１３２−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９６ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２４−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２８−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３８２−５ｐ、ｈｓａ−ｌｅｔ−７ｄ−５ｐ等が挙げられる。本発明の間葉系幹細胞は、ｈｓａ−ｍｉＲ−１４５−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１８１ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−２９ｂ−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３４ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９９ｂ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−５０３−５ｐ、ｈｓａ−ｌｅｔ−７ｅ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１３２−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９６ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２４−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２８−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３８２−５ｐ、及びｈｓａ−ｌｅｔ−７ｄ−５ｐからなる群より選択される少なくとも１種のマイクロＲＮＡを発現していることが好ましい。より好ましくは２種以上、３種以上、４種以上、５種以上、６種以上の、さらに好ましくは７種以上、８種以上、９種以上、１０種以上、１１種以上、１２種以上の、特に好ましくは、上記の全てのマイクロＲＮＡを発現している。
【００３６】
なお、このときのマイクロＲＮＡの発現は、当業者に公知の方法により測定することができる。例えば、細胞から常法によりｍＲＮＡを調製し、ｑＲＴ−ＰＣＲもしくは市販のマイクロＲＮＡアレイ等により、細胞中のマイクロＲＮＡ発現を解析することができる。
【００３７】
（サイトカイン分泌）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、以下の特定のサイトカイン分泌の有無によってさらに特徴付けられてもよい。本発明の間葉系幹細胞は、クロスべインレス−２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を分泌する。
【００３８】
本発明の間葉系幹細胞は、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ、ニドゲン−１（Ｎｉｄｏｇｅｎ−１）、ＧＬＯ−１（グリオキサラーゼ−１）、ｓｇｐ１３０（可溶型ｇｐ１３０）、コルディン様−２（Ｃｈｏｒｄｉｎ−Ｌｉｋｅ  ２）及びＥＭＡＰ−ＩＩからなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌することがより好ましく、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８（ＶＩＣ）、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１（Ｌａｔｅｎｔ  ＴＧＦ−ｂｅｔａ  ｂｐ１）、ＧＤＦ１及びＶＥＧＦ−Ｃからなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌することが特に好ましく、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５及びアンジオポエチンー１からなる群より選択される少なくとも１種をさらに分泌することが最も好ましい。
【００３９】
クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２、ＣＶ−２）は、ＢＭＰＥＲ（ＢＭＰ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｒｅｇｕｌａｔｏｒ）とも知られている、骨形成タンパク質（ＢＭＰ）結合タンパク質である。
【００４０】
エクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２、ＥＤＡ−Ａ２）は、ＴＮＦレセプタースーパーファミリーのリガンドであり、毛髪、歯牙、汗腺などの外胚葉から分化した多様な器官の発達に関与するものと知られている。
【００４１】
アンジオポエチン−１は、脈管形成（ｖａｓｃｕｌｏｇｅｎｅｓｉｓ）又は血管新生（ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ）を促進する糖タンパク質である。
【００４２】
アクチビンＡは、インヒビンベータＡ（インヒビンβＡ：ＩＮＨＢＡ）とも知られている蛋白質のホモダイマーである。ヒトにおいて、ＩＮＨＢＡは、ＩＮＨＢＡ遺伝子によりコーディングされるものと知られる。
【００４３】
Ｄｋｋ−１は分泌タンパク質としてＬＲＰ−５／−６と結合することで細胞外からＷｎｔシグナルを負に制御すると報告されている。Ｄｋｋ−３は、Ｄｋｋ−１とは異なるメカニズムで細胞増殖抑制やアポトーシス誘導を行い、癌化抑制・癌細胞死誘導を制御する分子であると考えられている。
【００４４】
デコリンは、平均分子量が約９０ないし約１４０ｋＤａのプロテオグリカンである。デコリンは、スモールロイシンリッチプロテオグリカン（ｓｍａｌｌ  ｌｅｕｃｉｎｅ−ｒｉｃｈ  ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｃａｎ：ＳＬＲＰ）ファミリに属し、コンドロイチン硫酸（ｃｈｏｎｄｒｏｉｔｉｎ  ｓｕｌｆａｔｅ：ＣＳ）またはデルマタン硫酸（ｄｅｒｍａｔａｎ  ｓｕｌｆａｔｅ：ＤＳ）から構成されたグリコースアミノグリカン（ｇｌｙｃｏｓａｍｉｎｏｇｌｙｃａｎ：ＧＡＧ）を有するロイシン反復(leucine repeats)を含む蛋白質コアを含む。生体内ではユビキタスに発現し、コラーゲン線維の集合や細胞の増殖などに関与していることが知られている。本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞においてデコリンの分泌が上昇していることの効果としては、炎症部位、損傷部位における組織修復効果、組織における細胞増殖促進効果等が期待できる。
【００４５】
ＨＧＦは、肝細胞増殖因子である
【００４６】
プログラニュリン（ＰＧＮ）は、グラニュリンの前駆体である。プログラニュリンは、高度に保存された１２−システイングラニュリン／エピテリンモチーフの７．５反復を有する単一の前駆体蛋白質であり、グラニュリン（ｇｒａｎｕｌｉｎ：ＧＲＮ）は、前記プログラニュリンからカットされて分泌された、グリコシル化されたペプチドのファミリである。プログラニュリンは、プロエピテリン及びＰＣ細胞由来成長因子ともいう。
【００４７】
ＧＤＦ−１５（成長分化因子１５、ｇｒｏｗｔｈ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ  １５）は、マクロファージ阻害サイトカイン１（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  １：ＭＩＣ１）とも知られている、傷組織及び疾病過程で炎症経路（ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｐａｔｈｗａｙ）及び細胞死経路を調節する役割を行う形質転換成長因子ベータ（ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ  ｂｅｔａ：ＴＧＦ−β）スーパーファミリに属する蛋白質である。
【００４８】
本発明の間葉系幹細胞が分泌している上記以外のサイトカインとしては、例えばオステオプロテゲリン、ＭＭＰ１等が挙げられる。本発明の間葉系幹細胞は、オステオプロテゲリン及び／又はＭＭＰ１を分泌していることが好ましく、両方のサイトカインを分泌していることがさらに好ましい。
【００４９】
オステオプロテゲリン（Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ；ＴＮＦＲＳＦ１１Ｂ）は、遺伝子発現の項において記載した通り、破骨細胞分化因子（ＲＡＮＫＬ）のデコイ受容体で、ＲＡＮＫを介したＮＦ−κＢシグナルの活性化を阻害する。骨芽細胞、線維芽細胞、肝細胞などから産生され、破骨前駆細胞の破骨細胞への分化を阻害する。オステオプロテゲリンの局所投与により骨形成が促進されたり、逆にノックダウンにより骨粗鬆症を生じるという報告がある。
【００５０】
ＭＭＰ１（Ｍａｔｒｉｘ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  １）は、遺伝子発現の項において記載した通り、間質コラゲナーゼであり、Ｉ型、ＩＩ型、ＩＩＩ型、Ｖ型コラーゲンのへリックス部位を特異的に切断し、組織破壊や組織再構築に関与する酵素である。本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞においてＭＭＰ１の分泌が、特定マーカー陰性細胞と比較して低いことの効果としては、炎症部位、損傷部位における組織修復効果等が期待できる。
【００５１】
なお、サイトカインの分泌量（培養上清中の濃度）は、当業者に公知の方法により測定することができる。例えば、ＥＬＩＳＡ法等が挙げられる。
【００５２】
（分化の方向性）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、骨、脂肪、軟骨への分化能を有する。それぞれの分化能については、当業者に公知の分化誘導条件により上記間葉系幹細胞集団を培養して、判断することができる。
【００５３】
骨細胞への分化誘導法としては、従来から用いられている誘導方法を用いることができ、特に限定されないが、典型的には、以下のような方法により誘導できる。即ち、本発明の間葉系幹細胞を数日間培養した後、培地中にＦＢＳ等の血清、デキサメタゾン、β−グリセロールホスフェート（β−ｇｌｙｃｅｒｏｌ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、アスコルビン酸−２−ホスフェート（ａｓｃｏｒｂｉｃ  ａｃｉｄ−２−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）が含まれた分化培養液に懸濁して播種する。なお、上記分化培養液としては、市販の骨細胞分化用培地を用いてもよい。このような市販の骨分化用培地としては、例えば、ＯｓｔｅｏＬｉｆｅ  Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  Ｏｓｔｅｏｇｅｎｅｓｉｓ  Ｍｅｄｉｕｍ  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＭ−００２３）、Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｏｓｔｅｏｇｅｎｉｃ  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  Ｍｅｄｉｕｍ  （タカラバイオ社，Ｄ１２１０９）等が挙げられる。骨分化のための培養では、分化培養用播種から２４時間〜７２時間程度の後に培地交換を行い、以後、３〜４日毎に培地交換を行い、２週間〜１ヶ月程度培養する。
【００５４】
脂肪細胞への分化誘導方法としては、従来から用いられている誘導方法を用いることができ、特に限定されないが、典型的には、レチノイン酸を添加した培養液で数日間浮遊培養した後、インシュリン及びトリヨードサイロニン（Ｔ３）を添加した培養液で培養する。また、従来この種の細胞の培養に用いられる培養条件を利用することができ、例えば、培地の種類、組成物の内容、組成物の濃度、及び培養温度等に関して特に制限はない。また、培養期間は、典型的には２１日を超えない期間培養をするのが好ましいが、３０日〜４０日程度培養を継続することも可能である。具体的には、以下のような方法により脂肪細胞を誘導できる。即ち、本発明の間葉系幹細胞を数日間培養した後、脂肪細胞分化用培地に懸濁してクラボウ分化プロトコール推奨細胞密度にて播種する。上記分化用培地としては、例えば、ヒト間葉系幹細胞用脂肪細胞分化用培地：ＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＤｆＫｔ−１  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＬ−００５０）、  ＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＤｆＫｔ−２  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ  ，  ＬＬ−００５９）、Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ａｄｉｐｏｇｅｎｉｃ  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  Ｍｅｄｉｕｍ（タカラバイオ社，Ｄ１２１０７）等が挙げられる。脂肪分化のための培養では、分化培養用播種から２４〜７２時間程度の後に培地交換を行い、以後、３〜４日毎に培地交換を行い、２週間〜１ヶ月程度培養する。
【００５５】
軟骨細胞への分化誘導法としては、従来から用いられている誘導方法を用いることができ、特に限定されないが、典型的には、本発明の間葉系幹細胞をコラーゲンゲル等と混合してゲル化し、ＤＭＥＭ等の培地に、デキサメタゾン、アスコルビン酸−２−ホスフェート、ピルビン酸ナトリウム（ｓｏｄｉｕｍ  ｐｙｒｕｖａｔｅ）、ＴＧＦ−β３（Ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ−β３）、ＩＴＳプラスプレミックス（ＩＴＳ  ｐｌｕｓ  ｐｒｅｍｉｘ）（インシュリン、トレンスフェリン、亜セレン酸の混合物）が含まれた分化培養液を添加して培養することができる。１週に２〜３回程度培養液を交換しながら３週間程度培養する。具体的には、以下のような方法により軟骨細胞を誘導できる。即ち、本発明の間葉系幹細胞を数日間培養した後、軟骨分化用培地に懸濁して、クラボウ分化プロトコール推奨細胞密度にて、マイクロマス法を用いて播種する。上記軟骨分化用培地としては、例えば、ＣｈｏｎｄｒｏＬｉｆｅ  Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  Ｃｈｏｎｄｒｏｇｅｎｅｓｉｓ  Ｍｅｄｉｕｍ  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＭ−００２３）、Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｃｈｏｎｄｒｏｇｅｎｉｃ  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  Ｍｅｄｉｕｍ  ｗ／ｏ  Ｉｎｄｕｃｅｒｓ（タカラバイオ社，Ｄ１２１１０）等が挙げられる。その後、３〜４日毎に培地交換を行い、２週間〜１ヶ月程度培養する。
【００５６】
上記の分化誘導方法にて得られた細胞は、生化学的アプローチ或いは形態観察により分化した細胞の種類を確認することができる。例えば、顕微鏡による細胞観察、種々の細胞染色法、ハイブリダイゼーションを用いたノーザンブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法等のさまざまな確認方法によって分化した細胞の種類を特定することができる。
【００５７】
脂肪細胞、骨細胞及び軟骨細胞は、その細胞の形状からは判定が困難であるが、細胞内脂質を染色する（例えばＯｉｌ  Ｒｅｄ  Ｏ染色法により赤く染色できる。）ことにより脂肪細胞の存在を確認することができる。また、細胞をアリザリンレッド（Ａｌｉｚａｒｉｎ  ｒｅｄ）染色を行うことにより骨細胞の存在を確認することができる。また、アルシアンブルー（Ａｌｃｉａｎ  ｂｌｕｅ）染色、サフラニンＯ染色、又はトルイジンブルー染色を行うことにより軟骨細胞の存在を確認することができる。
【００５８】
本発明の間葉系幹細胞は、脂肪細胞、骨細胞、軟骨細胞への分化能を有するが、特に脂肪細胞、骨細胞への分化能が、従来の培地によって培養された間葉系幹細胞集団と比較して顕著に向上している。
【００５９】
［特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製］
特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製方法は特に限定されないが、例えば以下のようにして調製することができる。すなわち、臍帯、脂肪組織、骨髄等の組織から、当業者に公知の方法に従って、間葉系幹細胞を分離、培養し、特定マーカーに特異的に結合する抗体（抗ＣＤ２０１抗体、抗ＣＤ４６抗体、抗ＣＤ５６抗体、抗ＣＤ１４７抗体及び／又は抗ＣＤ１６５抗体）を用いて、特定マーカー陽性細胞をセルソーター、磁気ビーズ等で分離する等の方法により取得することができる。これらの方法によって得られる細胞集団において、細胞集団の７０％以上が特定マーカー陽性であることが好ましく、８０％以上が特定マーカー陽性であることがより好ましく、９０％以上が特定マーカー陽性であることがさらに好ましく、９５％以上が特定マーカー陽性であることが特に好ましく、９９％以上が特定マーカー陽性であることが最も好ましい。以下に、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製方法を具体的に説明する。
【００６０】
本発明における特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製方法としては、例えば以下のような方法を用いることができる。すなわち、（Ａ）間葉系幹細胞を含む組織を、酵素等で処理する工程、（Ｂ）上記酵素処理により得られた細胞を適切な培養培地に懸濁して付着培養を行う工程、（Ｃ）浮遊細胞を除去する工程、（Ｄ）間葉系幹細胞を継代培養する工程等を含む方法により、間葉系幹細胞を取得、培養することができる。各工程について以下に、詳細に説明する。
【００６１】
（Ａ）間葉系幹細胞を含む組織を、酵素等で処理する工程において、臍帯、脂肪、骨髄等の間葉系幹細胞を含む組織は、生理食塩水（例えばリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ））等を用いて、攪拌して沈降させること等（遠心分離による方法も含む）により洗浄する。この操作により、上記組織に含まれる夾雑物を組織から除去することができる。残存する細胞が、さまざまなサイズの塊として存在する場合には、細胞そのものの損傷を最小限に抑えながら解離させるために洗浄後の細胞塊を、細胞間結合を弱めるか、又は細胞間結合を破壊する酵素（例えばコラゲナーゼ、ディスパーゼ、トリプシン等）で処理することが好ましい。使用する酵素の量及び処理期間は、使用される条件に依存して変わるが、当技術分野の技術常識の範囲で行うことができる。このような酵素処理に代えて、又は併用して、細胞塊を、機械的な攪拌、超音波エネルギー、熱エネルギー等の他の処理法で分解することができるが、細胞の損傷を最小限に抑えるため、酵素処理のみで行うことが好ましい。酵素を用いた場合、細胞に対する有害な作用を最小限に抑えるために、酵素による処理後は、培地等を用いて酵素を失活させることが望ましい。
【００６２】
上記工程により得られる細胞懸濁物は、凝集状の細胞のスラリー又は懸濁物、並びに各種夾雑細胞、例えば赤血球、平滑筋細胞、内皮細胞、及び線維芽細胞を含む。したがって、続いて凝集状態の細胞とこれらの夾雑細胞を分離、除去してもよいが、後述する浮遊細胞等除去工程により、除去可能であることから、当該分離、除去は割愛しても良い。夾雑細胞を分離、除去する場合、細胞を上清と沈殿に強制的に分ける遠心分離によって達成することができる。得られた夾雑細胞を含む沈殿は、適切な溶媒に懸濁させる。懸濁状の細胞には、赤血球を含む恐れがあるが、後述する固体表面への接着による選択により、赤血球は除外されるため、溶解する工程は必ずしも必要ではない。赤血球を選択的に溶解する方法として、例えば、塩化アンモニウムによる溶解による高張培地又は低張培地中でのインキュベーション等、当技術分野で周知の方法を使用することができる。溶解後、例えば濾過、遠心沈降、又は密度分画によって溶解物を所望の細胞から分離してもよい。
【００６３】
次に（Ｂ）上記酵素処理により得られた細胞を適切な培養培地に懸濁して付着培養を行う工程において、懸濁状の細胞において、間葉系幹細胞の純度を高めるために、１回もしくは連続して複数回洗浄し、遠心分離し、培地に再懸濁してもよい。この他にも、細胞を、細胞表面マーカープロファイルを基に、又は細胞のサイズ及び顆粒性を基に分離しても良い。この工程において、特定マーカータンパクを発現している細胞のみを、セルソーター、磁気ビーズ等を用いた免疫学的手法により選択的に分離してもよい。
【００６４】
再懸濁において用いる培地は、間葉系幹細胞を培養できる培地であれば、特に限定されないが、例えば、動物細胞用の基礎培地に、血清及び／又は血清代替物等を添加して作製することができる。また、間葉系幹細胞の培養に適した培地として市販されているものを用いてもよい。なお、本発明においては間葉系幹細胞やその培養上清を動物（ヒトを含む）の疾患の治療のために用いるため、できるだけ生物由来原料を含まない培地（例えば、無血清培地）であることが好ましい。特に異種由来成分を含まない（ゼノフリー）培地が好ましい。
【００６５】
上記基礎培地の組成は、培養するべき細胞の種類に応じて適宜選択することができる。例えば、イーグル培地のような最小必須培地（ＭＥＭ）、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、最小必須培地α（ＭＥＭ−α）、間葉系細胞基礎培地（ＭＳＣＢＭ）、Ｈａｍ’ｓ  Ｆ−１２及びＦ−１０培地、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、Ｗｉｌｌｉａｍｓ培地Ｅ、ＲＰＭＩ−１６４０培地、ＭＣＤＢ培地、１９９培地、Ｆｉｓｈｅｒ培地、Ｉｓｃｏｖｅ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）、ＭｃＣｏｙ改変培地等が挙げられる。
【００６６】
血清は、例えば、ヒト血清、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、ウシ血清、仔ウシ血清、ヤギ血清、ウマ血清、ブタ血清、ヒツジ血清、ウサギ血清、ラット血清等があるがこれらに限定されない。血清を用いる場合、基礎培地に対して、０．５％〜１５％、好ましくは、５％〜１０％を添加しても良い。基礎培地に加える上記血清代替物としては、例えば、アルブミン、トランスフェリン、脂肪酸、インスリン、亜セレン酸ナトリウム、コラーゲン前駆体、微量元素、２−メルカプトエタノール、３’−チオールグリセロール等が挙げられる。
【００６７】
上記基礎培地には、必要に応じて、さらにアミノ酸、無機塩類、ビタミン類、増殖因子、抗生物質、微量金属類、幹細胞分化誘導剤、抗酸化剤、炭素源、塩、糖、糖前駆体、植物由来加水分解物、サーファクタント、アンモニア、脂質、ホルモン、緩衝剤、指示薬、ヌクレオシド、ヌクレオチド、酪酸、有機物、ＤＭＳＯ、動物由来生成物、遺伝子誘導剤、細胞内ｐＨの調節剤、ベタイン、浸透圧保護剤、鉱物、等の物質を添加しても良いが、これらの物質に限定されない。これらの物質の使用濃度は特に限定されず、通常の哺乳動物細胞用培地に用いられる濃度で用いることができる。
【００６８】
上記アミノ酸としては、例えば、グリシン、Ｌ−アラニン、Ｌ−アルギニン、Ｌ−アスパラギン、Ｌ−アスパラギン酸、Ｌ−システイン、Ｌ−シスチン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−グルタミン、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−リジン、Ｌ−メチオニン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−プロリン、Ｌ−セリン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−チロシン、Ｌ−バリン等が挙げられる。
【００６９】
上記無機塩類としては、例えば、塩化カルシウム、硫酸銅、硝酸鉄（ＩＩＩ）、硫酸鉄、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カリウム、炭酸水素ナトリウム、塩化ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム等が挙げられる。
【００７０】
上記ビタミン類としては、例えば、コリン、ビタミンＡ、ビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＢ３、ビタミンＢ４、ビタミンＢ５、ビタミンＢ６、ビタミンＢ７、ビタミンＢ１２、ビタミンＢ１３、ビタミンＢ１５、ビタミンＢ１７、ビタミンＢｈ、ビタミンＢｔ、ビタミンＢｘ、ビタミンＣ、ビタミンＤ、ビタミンＥ、ビタミンＦ、ビタミンＫ、ビタミンＭ、ビタミンＰ等が挙げられる。
【００７１】
その他、基礎培地に添加できる具体的な物質としては、塩基性線繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、内皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、上皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）等の増殖因子；ペニシリン、ストレプトマイシン、ネオマイシン硫酸塩、アンホテリシンＢ、ブラストサイジン、クロラムフェニコール、アモキシシリン、バシトラシン、ブレオマイシン、セファロスポリン、クロルテトラサイクリン、ゼオシン及びピューロマイシン等の抗生物質；グルコース、ガラクトース、フルクトース、スクロース等の炭素源；マグネシウム、鉄、亜鉛、カルシウム、カリウム、ナトリウム、銅、セレン、コバルト、スズ、モリブデン、ニッケル、ケイ素等の微量金属；β−グリセロリン酸、デキサメタゾン、ロシグリタゾン、イソブチルメチルキサンチン、５−アザシチジン等の幹細胞分化誘導剤；２−メルカプトエタノール、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ、Ｎ−アセチルシステイン等の抗酸化剤；アデノシン５’−一リン酸、コルチコステロン、エタノールアミン、インスリン、還元型グルタチオン、リポ酸、メラトニン、ヒポキサンチン、フェノールレッド、プロゲステロン、プトレシン、ピルビン酸、チミジン、トリヨードチロニン、トランスフェリン、ラクトフェリン等が挙げられる。
【００７２】
本発明における間葉系幹細胞に好適な無血清培地としては、市販の無血清培地が挙げられる。例えば、ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社、Ｌｏｎｚａ社、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社、Ｖｅｒｉｔａｓ社、Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ社、Ｃｏｒｎｉｎｇ社及びＲｏｈｔｏ社等から間葉系幹細胞用として予め調製された培地として提供されているもの等が挙げられる。
【００７３】
続いて、間葉系幹細胞を分化させずに培養容器等の固体表面上で、上述の適切な培地を使用して、適切な細胞密度及び培養条件で培養する。固体表面を有する培養容器の形状は特に限定されないが、シャーレやフラスコ等が好適に用いられる。本発明における間葉系幹細胞の培養条件は、それぞれの間葉系幹細胞に適した方法であれば特に限定されず、従来と同様の方法が用いられる。通常、３０℃〜３７℃の温度、２％〜７％ＣＯ２環境下、５％〜２１％Ｏ２環境下で行われる。
【００７４】
（Ｃ）浮遊細胞を除去する工程において、培養容器の固体表面に非付着状態の浮遊細胞及び細胞の破片等を除去し、生理食塩水（例えばリン酸緩衝食塩水；ＰＢＳ）等を用いて付着細胞を洗浄する。本発明では、最終的に培養容器の固体表面に付着した状態で留まる細胞を、間葉系幹細胞の細胞集団として選択することができる。
【００７５】
次に、（Ｄ）間葉系幹細胞を継代培養する工程を行う。培養方法は、それぞれの細胞に適した方法であれば特に限定されず、従来と同様の方法が用いられる。通常、３０℃〜３７℃の温度、２％〜７％ＣＯ２環境下、５％〜２１％Ｏ２環境下で行われる。また、間葉系幹細胞の継代の時期及び方法もそれぞれの間葉系幹細胞に適していれば特に限定されず、間葉系幹細胞の形態を観察しながら、従来と同様に行うことができる。培養に用いる培地としては、工程（Ｂ）と同様のものを用いることができる。なお、細胞の全培養期間に渡って無血清培地等を用いて行われてもよい。
【００７６】
上記（Ｄ）工程の培養によって得られた間葉系幹細胞から、特定マーカータンパクを発現している細胞のみを、セルソータ―、磁気ビーズ等を用いた免疫学的手法により選択的に分離する工程（Ｅ）をさらに含むことが好ましい。（Ｅ）工程により、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を効率的に取得することができる。
【００７７】
得られた間葉系幹細胞は、治療用に輸液製剤等に懸濁して調製し、患者に対して使用してもよく、一旦凍結保存してもよい。凍結保存は、当業者に従来公知の方法により行うことができる。凍結した細胞を患者に対して使用する際には、解凍後そのまま投与してもよく、輸液製剤等に懸濁したものを投与してもよい。
【００７８】
［医薬組成物］
本発明の医薬組成物は、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含むことを特徴とする。上述のとおり、特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、ＩＬ−６等の炎症性サイトカインの産生抑制作用等の抗炎症作用、バリア機能亢進作用、抗線維化作用に優れる、といった特性を有する。また、未分化性を維持していると同時に、分化条件下では目的の機能を有する細胞に効率よく分化することができる。このような特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及び／又はその培養上清を含む本発明の医薬組成物は、種々の疾患に対する優れた治療効果を奏する。本発明の医薬組成物は、本発明の効果を損なわない範囲で、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及び／又はその培養上清に加えて、その他の成分を含んでいてもよい。
【００７９】
本発明の医薬組成物は、間葉系幹細胞集団及び／又はその培養上清を含み、この間葉系幹細胞集団の一部又は全部が特定マーカーを発現する間葉系幹細胞である。特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の特性等については、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の項で説明した通りである。本発明の医薬組成物が含む間葉系幹細胞集団のうち特定マーカーを発現する間葉系幹細胞が占める割合は高いほど好ましい。上記割合は、５０％以上であることが好ましく、７０％以上であることがより好ましく、９０％以上であることがさらに好ましく、９５％以上であることが特に好ましく、９９％以上であることが最も好ましい。
【００８０】
［医薬組成物の調製方法］
本発明は、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む、疾患の予防又は治療のために用いられる医薬組成物の調製方法も含む。上記疾患としては、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患からなる群より選択される疾患が挙げられる。
【００８１】
本発明の医薬組成物の調製方法は、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程を含む。上記特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導する工程で採用される方法としては、間葉系幹細胞における特定マーカー発現を誘導、増強できる方法であれば特に限定されない。
【００８２】
特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を濃縮、分離選別する工程で採用される方法としては、例えば、上述のような、特定マーカーを特異的に認識する抗体を用い、セルソーター、磁気ビーズ等を用いる方法が挙げられる。これらの方法によると、特定マーカータンパクを細胞表面に発現している間葉系幹細胞を選択的に濃縮、分離選別することができる。
【００８３】
本発明における間葉系幹細胞の培養上清としては、間葉系幹細胞を培養して得られる上清であれば特に限定されないが、上記の「特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製」の項において詳細に説明した培養方法により得られる培養上清であることが好ましい。即ち、まず間葉系幹細胞を培養し、続いて交換培地中で間葉系幹細胞を培養して得られる培養上清である。
【００８４】
なお、本明細書における間葉系幹細胞の培養上清とは、間葉系幹細胞が増殖または生存し得る条件の下、間葉系幹細胞が増殖または生存し得る培養液で間葉系幹細胞を培養して得られた培養液（培養後の培養液）から間葉系幹細胞を除去したものを意味するが、このような培養上清から、例えば、残存培地成分（培養前の培養液の成分のうち、培養後の培養液中に残存している成分）、培養液の水分などの、本発明の効果に寄与しない成分の少なくとも一部をさらに除去したものも、便宜上、本明細書における間葉系幹細胞の培養上清に含まれるものとする。なお、簡便性の観点からは、培養後の培養液から間葉系幹細胞を除去したものをそのまま培養上清として用いることが好ましい。
【００８５】
本発明における間葉系幹細胞の培養上清は、クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）及びエクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）を含有する。好ましくは、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリン、ＧＤＦ−１５、アンジオポエチンー１、ＣＣＬ２８、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１、ＧＤＦ１又はＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ、ニドゲン−１、ＧＬＯ−１、ｓｇｐ１３０、コルディン様−２又はＥＭＡＰ−IIをさらに含有する。より好ましくは、オステオプロテゲリン又はＭＭＰ−１をさらに含有する。本発明における間葉系幹細胞の培養上清は、これら全てのサイトカインを含有することがさらに好ましい。
【００８６】
本発明の医薬組成物は、上述の「特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を誘導、濃縮又は分離選別する工程」により取得した、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞に加えて、本発明の効果を損なわない範囲であれば、特定マーカー陰性の間葉系幹細胞、その他の細胞を含んでいてもよく、その用途や形態に応じて、常法に従い、薬学的に許容される担体や添加物を含有させてもよい。このような担体や添加物としては、例えば、等張化剤、増粘剤、糖類、糖アルコール類、防腐剤（保存剤）、殺菌剤又は抗菌剤、ｐＨ調節剤、安定化剤、キレート剤、油性基剤、ゲル基剤、界面活性剤、懸濁化剤、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、発泡剤、流動化剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、溶解補助剤、抗酸化剤、甘味剤、酸味剤、着色剤、呈味剤、香料又は清涼化剤等が挙げられるが、これらに限定されない。代表的な成分として例えば次の担体、添加物等が挙げられる。
【００８７】
［本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及び医薬組成物の用途］
（培養上清のバリア機能亢進作用）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、特定マーカー陰性の従来の間葉系幹細胞の培養上清と比較して、より優れた細胞のバリア機能亢進効果を示す。即ち、本発明における特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の培養上清は、炎症によって障害を受けた細胞のバリア機能を回復させる顕著な効果を有するため、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及びそれを含む医薬組成物は、炎症に関連する疾患の治療に好適に用いることができる。また、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞又はその培養上清は、化粧品用組成物、食品用組成物等としても用いることもできる。
【００８８】
（抗炎症作用）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、炎症状態において、マクロファージからの炎症性サイトカインの産生を抑制する効果を有する。この効果は、特定マーカー陰性の従来の間葉系幹細胞と比較して、有意に高いものである。そのため、本発明の特定マーカーを発現する間葉系幹細胞及びそれを含む医薬組成物は、炎症に関連する疾患の治療に好適に用いることができる。また、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞又はその培養上清は、化粧品用組成物、食品用組成物等としても用いることもできる。
【００８９】
（血管内皮細胞に対する抗線維化効果）
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞は、ヒト血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に対して作用し、線維化に関連する遺伝子であるＴＧＦβ及びＣＯＬ３Ａ１の発現を抑制する効果を示す。したがって、本発明の間葉系幹細胞は、血管内皮細胞の線維化が関与する動脈硬化等の疾患に有効であるといえる。
【００９０】
（肺上皮細胞に対する抗炎症効果、抗線維化効果）
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト肺上皮癌細胞（Ａ５４９等）に対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦ、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１の発現を抑制する効果を示す。したがって、本発明の間葉系幹細胞は、肺上皮細胞の炎症、線維化が関与する肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）等の疾患に有効であるといえる。さらに、肺癌に対する効果も期待できる。
【００９１】
（肝星細胞に対する抗炎症効果、抗線維化効果）
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト肝星細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｈｅｐａｔｉｃ  Ｓｔｅｌｌａｔｅ  Ｃｅｌｌｓ；ｈＨｓｔｅＣ）に対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＩＬ−１β、ＬＩＴＡＦ、ＩＬ−８、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１の発現を抑制する効果を示す。したがって、本発明の間葉系幹細胞は、肝星細胞の炎症、線維化が関与する肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）等の疾患に有効であるといえる。
【００９２】
（心筋細胞に対する抗炎症効果、抗線維化効果）
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト心筋細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｃａｒｄｉａｃ  Ｍｙｏｃｙｔｅｓ；ｈＣＭ）に対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦ、ＴＮＦα、線維化に関連する遺伝子であるＴＧＦβの発現を抑制する効果を示す。したがって、本発明の間葉系幹細胞は、心筋細胞の炎症、線維化が関与する心筋炎、心肥大症等の疾患に有効であるといえる。
【００９３】
（歯肉線維芽細胞に対する抗炎症効果、抗線維化効果）
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト歯肉線維芽細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｇｉｎｇｉｖａｌ  Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ；ｈＧＦ）に対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦの発現を抑制し、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１、ＣＯＬ３Ａ１の発現を増強する効果を示す。ｈＧＦについては、歯周病の改善のためには線維化が促進されることが好ましいと考えられる。すなわち、ＣＯＬ１Ａ１、ＣＯＬ３Ａ１の発現が増強される場合、歯周病改善効果があると判断できる。したがって、本発明の間葉系幹細胞は、歯肉線維芽細胞が関与する歯周病等の疾患に有効であるといえる。
【００９４】
特定マーカーを発現する本発明の間葉系幹細胞及びそれを含む医薬組成物を細胞医薬品として用いることができる疾患としては、例えば癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患及び口腔疾患が挙げられる。具体的には、例えば肺癌、心筋炎、心肥大症、動脈硬化、静脈炎、肺・呼吸器炎症、気管支喘息、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肝炎、肝線維症、肝硬変、歯周病、軟骨分解、関節リウマチ、乾癬性関節炎、脊椎関節炎、変形性関節症、痛風、乾癬、多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症、アルツハイマー病、パーキンソン病、うっ血性心不全、脳卒中、大動脈弁狭窄症、腎不全、狼瘡、膵炎、アレルギー、線維症、貧血、アテローム性動脈硬化症、再狭窄、化学療法／放射線関連合併症、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、自己免疫性肝炎、Ｃ型肝炎、原発性胆汁性肝硬変、原発性硬化性胆管炎、劇症肝炎、セリアック病、非特異性大腸炎、アレルギー性結膜炎、糖尿病性網膜症、シェーグレン症候群、ブドウ膜炎アレルギー性鼻炎、喘息、石綿症、珪肺、慢性肉芽腫性炎症、嚢胞性線維症、サルコイドーシス、糸球体腎炎、脈管炎、皮膚炎、ＨＩＶ関連悪液質、大脳マラリア、強直性脊椎炎、らい病、肺線維症、線維筋痛、食道癌、胃食道逆流症、バレット食道、胃癌、十二指腸癌、小腸癌、虫垂癌、大腸癌、結腸癌、直腸癌、肛門癌、膵臓癌、肝臓癌、胆嚢癌、脾臓癌、腎癌、膀胱癌、前立腺癌、精巣癌、子宮癌、卵巣癌、乳癌、甲状腺癌等が挙げられる。
【００９５】
これらのうち、本発明の間葉系幹細胞及びそれを含む医薬組成物を細胞医薬品として用いることができる疾患としては、癌、前癌性症状、炎症性疾患、循環器疾患、心疾患、肺疾患、肝疾患及び口腔疾患が好ましく、具体的には、肺癌、心筋炎、心肥大症、動脈硬化、静脈炎、肺・呼吸器炎症、気管支喘息、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肝炎、肝線維症、肝硬変、歯周病が好ましい。
【００９６】
本発明の医薬組成物を医薬品として用いる場合の投与方法としては、特に制限されないが、血管内投与（好ましくは静脈内投与）、腹腔内投与、腸管内投与、皮下投与等が好ましく、中でも、血管内投与がより好ましい。
【００９７】
本発明の医薬組成物の用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の医薬組成物の剤形等によって異なり得るが、十分な予防又は治療効果を奏する観点から、その量は多い方が好ましく、一方、副作用を抑制する観点からはその量は少ない方が好ましい傾向にある。通常、成人に投与する場合には、細胞数として、５×１０２〜１×１０１２個／回、好ましくは１×１０４〜１×１０１１個／回、より好ましくは１×１０５〜１×１０１０個／回である。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。また、通常、成人に投与する場合には、体重当たりの細胞数として、１×１０〜５×１０１０個／ｋｇ、好ましくは１×１０２〜５×１０９個／ｋｇ、より好ましくは１×１０３〜５×１０８個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。
【００９８】
本発明は、特定マーカーを発現する間葉系幹細胞、又は特定マーカーを発現する間葉系幹細胞を含む医薬組成物を用いることを特徴とする、疾患の予防又は治療方法を含む。上記疾患としては、例えば、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患、口腔疾患等が挙げられる。
【実施例】
【００９９】
次に、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。【０１００】
＜特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の調製＞
臍帯由来間葉系幹細胞（ＵＣ−ＭＳＣ；Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ  Ｃｏｒｄ  ｄｅｒｉｖｅｄ  Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  Ｗｈａｒｔｏｎ’ｓ  Ｊｅｌｌｙ（ＨＭＳＣ−ＷＪ）、ＦＣ−００２０、ＬｉｆｅＬｉｎｅ社）、脂肪由来間葉系幹細胞（ＡＤ−ＭＳＣ；Ａｄｉｐｏｓｅ  ｄｅｒｉｖｅｄ  Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ、ＦＣ−００３４、ＬｉｆｅＬｉｎｅ社）、又は骨髄由来間葉系幹細胞（ＢＭ−ＭＳＣ；Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  ｄｅｒｉｖｅｄ  Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ，  ＬｉｆｅＬｉｎｅ社）を、３７℃、５％ＣＯ２の条件下、ＬｉｆｅＬｉｎｅ社推奨培地（以下、単に「推奨培地」ともいう）にて馴化した後、２〜３日おきに継代しながら培養を続けた。培養過程の途中で、必要に応じて抗ＣＤ２０１抗体、抗ＣＤ４６抗体、抗ＣＤ５６抗体、抗ＣＤ１４７抗体又は抗ＣＤ１６５抗体で染色後、セルソーターによりそれぞれの抗原陽性の細胞を選別する。【０１０１】
＜特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の確認及び解析＞
（ＦＡＣＳ解析）
得られた間葉系幹細胞（臍帯由来、脂肪由来、骨髄由来）について、ＦＡＣＳにてＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５の発現を解析した。結果を図１に示す。また、細胞の未分化性を確認する目的で、ＦＡＣＳにて細胞表面マーカー（ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、１０５及び／又はＣＤ１６６）の発現を解析した。結果を図２に示す。【０１０２】
図１に示す通り、本発明の臍帯由来間葉系幹細胞は、ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５を高発現している。また、本発明の脂肪由来間葉系幹細胞及び骨髄由来間葉系幹細胞はＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ１４７、ＣＤ１６５のいずれも高発現しているが、ＣＤ５６の発現は殆ど見られない。また、図２に示す通り、本発明の臍帯由来間葉系幹細胞は、未分化マーカーであるＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０、１０５及びＣＤ１６６も発現している。骨髄由来間葉系幹細胞は、ＣＤ２９、ＣＤ７３、ＣＤ９０及び１０５を発現している。【０１０３】
（特定マーカー発現間葉系幹細胞の細胞内のｍｉＲＮＡ発現量）
上記で得られた特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞から常法によりｍＲＮＡを調製し、ｍｉＲＮＡアレイ（ｍｉＳｃｒｉｐｔ  ｍｉＲＮＡ  ＰＣＲ  ａｒｒａｙ；ＭＩＨＳ−１０５Ｚ及びＭＩＨＳ−１１７Ｚ（ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｒｅｓｐｏｎｓｅ  ＆  ａｕｔｏｉｍｍｕｎｉｔｙ及びＦｉｂｒｏｓｉｓ、ＱＩＡＧＥＮ社製）により、細胞中のｍｉＲＮＡ発現を解析した。同様の実験を２回行った。【０１０４】
合計で約１５０種のｍｉＲＮＡについて解析した結果、特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞は、ｈｓａ−ｌｅｔ−７ｅ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１３２−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９６ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２４−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３２８−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３８２−５ｐ、ｈｓａ−ｌｅｔ−７ｄ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１４５−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１８１ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−２９ｂ−３ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−３４ａ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−１９９ｂ−５ｐ、ｈｓａ−ｍｉＲ−５０３−５ｐを発現していた。【０１０５】
（特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清へのサイトカイン分泌）
本発明のＵＣ−ＭＳＣ（継代８回目）を１．５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｐｌａｔｅとなるよう１００ｍｍ  ｐｌａｔｅに播種した。翌日、培地を０．２％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地（２ｍｌ／ｗｅｌｌ）に交換した。４８時間後に培養上清を回収した。【０１０６】
上記で得られたＵＣ−ＭＳＣの培養上清を１０倍濃縮後、サイトカインアレイ（ＲａｙＢｉｏ社製Ｂｉｏｔｉｎ  Ｌａｂｅｌ−Ｂａｓｅｄ  （Ｌ−Ｓｅｒｉｅｓ）  Ｈｕｍａｎ  Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ａｒｒａｙ  ４９３  （Ｌ−４９３））を用いて公知の方法により分析した。陰性対照としては、４８時間、細胞培養環境と同じ環境に置いた０．２％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地を用いた。分析の結果、クロスべインレスー２（Ｃｒｏｓｓｖｅｉｎｌｅｓｓ−２）、エクトジスプラシン−Ａ２（Ｅｃｔｏｄｙｓｐｌａｓｉｎ−Ａ２）、アンジオポエチンー１、アクチビンＡ、Ｄｋｋ−３、デコリン、ＨＧＦ、Ｄｋｋ−１、プログラニュリンおよびＧＤＦ−１５の発現量が、陰性対照と比較して３２倍以上増大していた。また、ＣＣＬ２８、潜在型ＴＧＦ−β結合タンパク質１、ＧＤＦ１、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＢＴＣ、ニドゲン−１、ＧＬＯ−１、ｓｇｐ１３０、コルディン様−２、ＥＭＡＰ−IIの発現量が、陰性対照と比較して２０〜３０倍増大していた。よって、前記臍帯由来間葉系幹細胞は、これらサイトカインを多く分泌することで特徴づけられる細胞である。陰性対照を１として各サイトカイン分泌量を下記表に示す。【０１０７】
【表１】
2017188403.tif 000002
【０１０８】
上記で得られた特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞（推奨培地に馴化後、培地交換した細胞）を、８日後に播種し直し、翌日０．２％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ／Ｆ１２に交換し、２日後（４８時間後）、培養上清を回収した。回収した培養上清中のＤｅｃｏｒｉｎ、Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ、ＭＭＰ１量をＥＬＩＳＡにて測定した。結果を以下の表２に示す。【０１０９】
【表２】
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【０１１０】
上記表２に示す通り、特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清中には、デコリン、オステオプロテゲリン、ＭＭＰ１が含まれていることがわかった。【０１１１】
（培養上清のバリア機能亢進作用）
［特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞培養上清の回収］
上記で得られた特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の継代８回目の細胞を１．５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌとなるよう６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに播種した。翌日、培地を非馴化培地（１０％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地、２ｍｌ／ｗｅｌｌ）に交換した。２４時間後に培養上清（Ｓｕｐ−１）を回収し、新しい培地を２ｍｌ／ｗｅｌｌ注ぎ、培養を継続した。さらに２４時間後に再び培養上清（Ｓｕｐ−２）を回収した。【０１１２】
［腸管バリアモデルでの特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞培養上清の効果の検討］
ヒト結腸癌由来細胞株Ｃａｃｏ−２を１０％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ培地で継代培養し、継代数３回目の細胞を本実験に用いた。Ｃａｃｏ−２を、トランスウェル（Ｃｏｒｎｉｎｇ  Ｃｏｓｔａｒ  ＃３４６０）に６×１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、細胞がトランスウェルに付着していることを確認し、培地を除去した。上記特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清（Ｓｕｐ−１）を１０％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ培地で１０倍希釈したものをトランスウェルに添加した。翌日、培地を除去し、上記特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清（Ｓｕｐ−２）を１０％ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ培地で４倍希釈したものを添加した。さらに、ＩＬ−１βを１．５ｎｇ／ｍｌとなるよう添加し、さらに２０時間培養した後、ＴＥＲ（経上皮電気抵抗値）を測定した。同じ条件で培養したＣａｃｏ−２の細胞数（吸光度）を細胞増殖アッセイキット（ＷＳＴ−８、＃３４３−０７６２３、同仁化社）により測定し、得られたＴＥＲを細胞数で除した値をＴＥＲ値（ＴＥＲ  Ｖａｌｕｅ）として図３に示した。各実験例の条件を下記表３に示す。【０１１３】
【表３】
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【０１１４】
図３に示すように、実験例１と実験例３を比較すると、ＩＬ−１β処理を行った実験例３のＣａｃｏ−２細胞間バリア強度（ＴＥＲ値）は、ＩＬ−１β処理を行っていない実験例１より低くなり、Ｃａｃｏ−２細胞間バリア強度（ＴＥＲ値）がＩＬ−１β処理により低下したことがわかる。また、特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清を添加することにより、この低下したＣａｃｏ−２細胞間バリア強度（ＴＥＲ値）が正常レベルまで回復した（実験例４）。この結果から、特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞の培養上清には、低下したＣａｃｏ−２細胞間バリア強度を回復させる効果、即ちバリア機能亢進効果があることがわかった。【０１１５】
（抗炎症効果）
上記で得られた特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞を下記の試験に用いた。【０１１６】
染色試薬Ｃａｌｃｅｉｎ−ＡＭの０．５ｍＭ  ＤＭＳＯ溶液を１０％ＦＣＳ  ＤＭＥＭにて１，０００倍希釈したものを準備した。マウスマクロファージ細胞株Ｒａｗ２６４．７にＣａｌｃｅｉｎ−ＡＭ含有培地を添加し５％ＣＯ２、３７℃にて３時間の前培養を行ったのち、５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで４８ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに播種した。【０１１７】
翌日、上記特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞を、５×１０３ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌとなるように添加し、上記特定マーカー発現間葉系幹細胞とＲａｗ２６４．７との共培養を開始した。共培養開始から４時間後にＬＰＳを１００ｎｇ／ｍＬとなるように添加した。１７−１８時間後、培養上清を回収した。培養上清中のＩＬ−６量をＥＬＩＳＡ（ｍＩＬ−６ＥＬＩＳＡ，Ｒ＆Ｄ  Ｄｕｏｓｅｔ  ＤＹ４０６−０５）により測定した。なお、培養上清回収後、予めＲａｗ２６４．７に取り込ませたＣａｌｃｅｉｎ−ＡＭの蛍光値を測定し、割り戻すことでＩＬ−６量の細胞数補正を行った。結果を図４に示す。【０１１８】
図４に示すように、特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞との共培養により、マクロファージ細胞株Ｒａｗ２６４．７が産生する炎症性サイトカインであるＩＬ−６産生が抑制された。また、その抑制効果は、ポジティブコントロールであるデキサメタゾン（１００ｎＭ  ＤＥＸ）と同程度であった。【０１１９】
（骨分化能について）
上記で得られた特定マーカー発現間葉系幹細胞（臍帯由来又は脂肪由来）を、クラボウ分化プロトコール推奨細胞密度にて、骨細胞分化用培地（ヒト間葉系幹細胞用  骨細胞分化用培地：ＯｓｔｅｏＬｉｆｅ  Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  Ｏｓｔｅｏｇｅｎｅｓｉｓ  Ｍｅｄｉｕｍ  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＭ−００２３））を用いて、２４ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅ  （ｃｅｌｌｂｉｎｄ，  ３３３７，  Ｃｏｒｎｉｎｇ）に播種した。骨分化のための培養では、分化培養用播種から４８時間後に培地交換を行い、以後、２８日まで３−４日ごとに培地交換を行った。染色方法としては、播種後２１日目以降に、染色するｗｅｌｌをＰＢＳで１回洗浄した後、無水エタノールを添加し３０分間室温で置くことで細胞の固定を行った。無水エタノールを吸引し、クリーンベンチ内で約３０分間静置、乾燥させた。２％アリザリンレッド溶液を添加し、１５分間室温で静置した後、ＤＷ（蒸留水）で２回洗浄し、乾燥させた。染色写真は顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ  ＩＸ７０）を用いて撮影した。アリザリンレッド染色の結果、特定マーカー発現間葉系幹細胞は、骨への分化能を有していることがわかった。【０１２０】
（脂肪分化能について）
上記で得られた特定マーカー発現間葉系幹細胞（臍帯由来又は脂肪由来）を、クラボウ分化プロトコール推奨細胞密度にて、分化培地｛ヒト間葉系幹細胞用  脂肪細胞分化用培地：ＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＤｆＫｔ−１  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＬ−００５０）  ｏｒ  ＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＤｆＫｔ−２  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ  ，  ＬＬ−００５９）を用いて、２４ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅ  （ｃｅｌｌｂｉｎｄ，  ３３３７，  Ｃｏｒｎｉｎｇ）、に播種した。脂肪分化のための培養では、分化培養用播種から４８時間後に培地交換を行い、以後、２８日まで３−４日ごとに培地交換を行った。染色方法としては、播種後２１日目以降に、染色するｗｅｌｌをＰＢＳで１回洗浄した後、４％  （ｖ／ｖ）  パラホルムアルデヒド・リン酸緩衝液で培地を少し残すようにしながら２回洗浄した。４％  （ｖ／ｖ）  パラホルムアルデヒド・リン酸緩衝液を再度添加し、２０分間室温で静置した。その後、培地を少し残すようにしながら、ＤＷ（蒸留水）で２回洗浄し、１００％イソプロパノールで１回洗浄した。ＤＷ（蒸留水）で６０％に希釈したオイルレッドＯ染色原液を添加し、３０分間３７℃で静置後、完全に吸引した。その後６０％イソプロパノールを添加し、１０秒ほど待ち、ＤＷ（蒸留水）を加えた。ＤＷ（蒸留水）で２回洗浄後、顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ  ＩＸ７０）で写真撮影した。なお、ＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＤｆＫｔ−２のＡｄｉｐｏＬｉｆｅ  ＢＭ  （１００ｍｌ）  にＤｉｆＦａｃｔｏｒ  ３  （１０ｍｌ）を加えて分化培地とした。  オイルレッドＯ染色の結果、特定マーカー発現間葉系幹細胞は、脂肪細胞への分化能を有していることがわかった。【０１２１】
（軟骨分化能について）
上記で得られた特定マーカー発現間葉系幹細胞（臍帯由来又は脂肪由来）を、クラボウ分化プロトコール推奨細胞密度にて、分化培地（ヒト間葉系幹細胞用  軟骨細胞分化用培地：ＣｈｏｎｄｒｏＬｉｆｅ  Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  Ｃｈｏｎｄｒｏｇｅｎｅｓｉｓ  Ｍｅｄｉｕｍ  （Ｌｉｆｅｌｉｎｅ，  ＬＭ−００２３））を用いて、２４ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅ  （３５２７，  Ｃｏｒｎｉｎｇ）に播種した。軟骨分化のための培養では、マイクロマス法で播種を行った。具体的には、回収した細胞を各維持培地で１．６  ×  １０７  ｃｅｌｌｓ／ｍｌに濃縮し、２４ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅ  （３５２６，  Ｃｏｒｎｉｎｇ）に５ｕｌずつ４ｄｒｏｐｓ／ｗｅｌｌで滴下し、２時間３７℃，  ５％ＣＯ２で静置した後、５００ｕｌ／ｗｅｌｌで軟骨分化培地を添加した。その後、２１日まで３日ごとに培地交換を行った。染色方法としては、播種後２１日目以降に、染色するｗｅｌｌをＰＢＳで１回洗浄した後、１０％中性緩衝ホルマリン液を添加し、３０分間室温で置くことで細胞の固定を行った。その後、ＤＷ（蒸留水）で１回洗浄し、３％酢酸を添加し、１分間静置した。アルシアンブルー染色液を添加後２０分間室温で静置した後、染色液を吸引し、３％酢酸を添加して３分間待った。最後にＤＷ（蒸留水）で２回洗浄し、デジタルカメラで撮影した。その結果、特定マーカー発現間葉系幹細胞は、軟骨細胞への分化能を有することがわかった。【０１２２】
（培養上清のヒト血管内皮細胞に対する線維化抑制作用）
［特定マーカー発現間葉系幹細胞の培養上清の回収］
上記特定マーカー発現臍帯由来間葉系幹細胞（推奨培地に馴化後、培地交換した細胞）の凍結保存後の細胞を解凍し、上記推奨培地又は処方培地（ＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地に、Ｌ−グルタミン、アスコルビン酸、ヒト組み換え型アルブミン、ウシ血清由来Ｆｅｔｕｉｎ、炭酸水素ナトリウム、ＨＥＰＥＳ、Ｌｉｐｉｄ混合液、ＩＴＳＥ混合液、ｂＦＧＦ、プロゲステロン、ハイドロコルチゾン、ＶＯ−ＯＨＰｉｃ、Ｐｉｆｉｔｈｒｉｎ−α（ピフィスリン−α）、ＳＢ２０３５８０、塩化リチウム及びＹ−２７６３２を加えた培地）中で培養し、３日後に播種し直した。翌日培地を０．２％ＦＢＳ、１％ＡＢ（Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ−Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｇｉｂｃｏ社））含有ＤＭＥＭ／Ｆ１２に交換し、２日後（４８時間後）、培養上清を回収した。上記推奨培地で培養した細胞から得られた培養上清をＭＳＣｓｕｐ１、上記処方培地で培養した細胞から得られた培養上清をＭＳＣｓｕｐ２とした。以下の実験に用いるコントロール培地としては、０．２％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地（細胞なし）を４８時間培養器に入れておいたものを用いた。【０１２３】
ヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣを、６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、培地を除き、上記培養上清（ＭＳＣｓｕｐ１又はＭＳＣｓｕｐ２）又は上記コントロール培地を培養用培地で１／２に希釈したものを各ｗｅｌｌに添加した。２４時間後、又は４８時間後に細胞を回収し、常法に従いＲＮＡを分離し、リアルタイムＰＣＲによってＴＧＦβ、ＣＯＬ３Ａ１の発現の程度を確認し、コントロールでの発現強度を１とした場合のそれぞれの強度を図５、図６に示した。【０１２４】
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに対して作用し、線維化に関連する遺伝子であるＴＧＦβ及びＣＯＬ３Ａ１の発現を抑制する効果を示した。このことは、本発明の間葉系幹細胞の培養上清が、血管内皮細胞の線維化が関与する動脈硬化等の疾患に有効であることを示唆している。【０１２５】
（培養上清のヒト肺上皮癌細胞に対する抗炎症作用及び線維化抑制作用）
ヒト肺上皮癌細胞株Ａ５４９を、６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、培地を除き、上記培養上清（ＭＳＣｓｕｐ１又はＭＳＣｓｕｐ２）若しくは上記コントロール培地又はこれらを培養用培地で１／２に希釈したもの、又は上記培養培地（ＭＳＣｓｕｐ１又はＭＳＣｓｕｐ２）のみ、若しくは上記コントロール培地のみを各ｗｅｌｌに添加した。２４時間後に細胞を回収し、常法に従いＲＮＡを分離し、リアルタイムＰＣＲによってＬＩＴＡＦ、ＣＯＬ１Ａ１の発現の程度を確認し、コントロールでの発現強度を１とした場合のそれぞれの強度を図７、図８に示した。【０１２６】
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト肺上皮癌細胞株Ａ５４９に対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦ、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１の発現を抑制する効果を示した。このことは、本発明の間葉系幹細胞の培養上清が、肺上皮細胞の炎症、線維化が関与する肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）等の疾患に有効であることを示唆している。【０１２７】
（培養上清のヒト肝星細胞に対する抗炎症作用及び線維化抑制作用）
ヒト肝星細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｈｅｐａｔｉｃ  Ｓｔｅｌｌａｔｅ  Ｃｅｌｌｓ；ｈＨｓｔｅＣ）を、６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、培地を除き、上記培養上清（ＭＳＣｓｕｐ１又はＭＳＣｓｕｐ２）若しくは上記コントロール培地を各ｗｅｌｌに添加した。２４時間後にＬＰＳを１００ｎｇ／ｍＬになるよう添加し、添加の２４時間後に細胞を回収し、常法に従いＲＮＡを分離し、リアルタイムＰＣＲによってＩＬ−１β、ＬＩＴＡＦ、ＩＬ−８、ＣＯＬ１Ａ１の発現の程度を確認し、コントロールでの発現強度を１とした場合のそれぞれの強度を図９〜１２に示した。【０１２８】
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト肝星細胞ｈＨｓｔｅＣに対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＩＬ−１β、ＬＩＴＡＦ、ＩＬ−８、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１の発現を抑制する効果を示した。このことは、本発明の間葉系幹細胞の培養上清が、肝星細胞の炎症、線維化が関与する肺・呼吸器炎症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）等の疾患に有効であることを示唆している。【０１２９】
（培養上清のヒト心筋細胞に対する抗炎症作用及び線維化抑制作用）
ヒト心筋細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｃａｒｄｉａｃ  Ｍｙｏｃｙｔｅｓ；ｈＣＭ）を、６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、培地を除き、上記培養上清（ＭＳＣｓｕｐ１）又は上記コントロール培地を各ｗｅｌｌに添加した。４８時間後に細胞を回収し、常法に従いＲＮＡを分離し、リアルタイムＰＣＲによってＬＩＴＡＦ、ＴＮＦα、ＴＧＦβの発現の程度を確認し、コントロールでの発現強度を１とした場合のそれぞれの強度を図１３〜１５に示した。【０１３０】
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト心筋細胞ｈＣＭに対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦ、ＴＮＦα、線維化に関連する遺伝子であるＴＧＦβの発現を抑制する効果を示した。このことは、本発明の間葉系幹細胞の培養上清が、心筋細胞の炎症、線維化が関与する心筋炎、心肥大症等の疾患に有効であることを示唆している。【０１３１】
（培養上清のヒト歯肉線維芽細胞に対する抗炎症作用及び線維化促進作用）
ヒト歯肉線維芽細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｇｉｎｇｉｖａｌ  Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ；ｈＧＦ）を、６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種し、翌日、培地を除き、上記培養上清（ＭＳＣｓｕｐ１、ＭＳＣｓｕｐ２）又は上記コントロール培地を各ｗｅｌｌに添加した。４８時間後に細胞を回収し、常法に従いＲＮＡを分離し、リアルタイムＰＣＲによってＬＩＴＡＦ、ＣＯＬ１Ａ１、ＣＯＬ３Ａ１の発現の程度を確認し、コントロールでの発現強度を１とした場合のそれぞれの強度を図１６〜１８に示した。なお、ｈＧＦについては、歯周病の改善のためには線維化が促進されることが好ましいと考えられる。すなわち、ＣＯＬ１Ａ１、ＣＯＬ３Ａ１の発現が増強される場合、歯周病改善効果があると判断できる。【０１３２】
本発明の間葉系幹細胞の培養上清は、ヒト歯肉線維芽細胞ｈＧＦに対して作用し、炎症に関連する遺伝子であるＬＩＴＡＦの発現を抑制し、線維化に関連する遺伝子であるＣＯＬ１Ａ１、ＣＯＬ３Ａ１の発現を増強する効果を示した。このことは、本発明の間葉系幹細胞の培養上清が、歯周病の予防及び／又は治療に有効であることを示唆している。
【産業上の利用可能性】
【０１３３】
ＣＤ２０１、ＣＤ４６、ＣＤ５６、ＣＤ１４７及びＣＤ１６５からなる群より選択される少なくとも１種の細胞表面マーカーを発現する間葉系幹細胞は、マクロファージ等の免疫細胞からの炎症性サイトカイン産生を抑制する作用や、バリア機能亢進作用に優れると共に、酸化ストレスに対する耐性もあり、ダメージを受け難い細胞である、といった特性を有する。また、上記特定マーカーを発現する間葉系幹細胞の培養上清は、心筋細胞、血管内皮細胞、肺上皮癌細胞、肝星細胞、歯肉線維芽細胞等に作用して、炎症や線維化に関連する遺伝子発現を適切に調節する効果も奏する。そのため、これらの間葉系幹細胞を含む本発明の医薬組成物は、癌、前癌性症状、炎症性疾患、免疫疾患、神経変性疾患、代謝疾患、循環器疾患、心疾患、骨疾患、胃腸疾患、肺疾患、肝疾患、腎疾患、口腔疾患等の種々の疾患に対する優れた治療効果を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【国際調査報告】
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