(57)【要約】  本発明は、簡便、正確かつ高感度にＬ−キヌレニンを測定できる測定方法、及び測定キットを提供すること。  （Ａ）Ｌ−キヌレニンを含有する試料に、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下でキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを酵素反応させて、残存した電子供与体、及び生成した３−ヒドロキシキヌレニンを含む酵素反応液を取得する工程、  （Ｂ）工程（Ａ）の酵素反応液に、    （１）２価銅化合物、及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は    （２）酸化還元系発色試薬及び電荷キャリアを反応させる工程、並びに  （Ｃ）工程（Ｂ）で得られた発色物質の濃度から、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料検体又はキヌレニン３−モノオキシゲナーゼ未添加の試料検体における発色物質の濃度を差し引いた値に基づき、試料中のＬ−キヌレニン量を決定する工程を含む、試料中のＬ−キヌレニン量を測定する方法、及び測定キット。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
（Ａ）Ｌ−キヌレニンを含有する試料に、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下でキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを酵素反応させて、残存した電子供与体、及び生成した３−ヒドロキシキヌレニンを含む酵素反応液を取得する工程、
（Ｂ）工程（Ａ）の酵素反応液に、
（１）２価銅化合物、及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は
（２）酸化還元系発色試薬及び電荷キャリア
を反応させる工程、並びに
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた発色物質の濃度から、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料又はキヌレニン３−モノオキシゲナーゼ未添加の試料における発色物質の濃度を差し引いた値に基づき、試料中のＬ−キヌレニン量を決定する工程
を含む、試料中のＬ−キヌレニン量の測定方法。
【請求項２】
前記の反応による発色物質の濃度を、吸光度によって測定する、請求項１記載の測定方法。
【請求項３】
前記工程（Ｂ）の（１）で得られた発色物質が、３−ヒドロキシキヌレニンと２価銅化合物との反応で産生した１価銅イオンと、当該イオンに特異的に作用する金属指示薬との反応により生成することを特徴とする請求項１記載の測定方法。
【請求項４】
前記工程（Ｂ）の（１）で使用する１価銅イオンに特異的な金属指示薬がバソクプロイン、ネオクプロイン、ビシンコニン酸、それらの誘導体又はそれらの塩である、請求項１又は３記載の測定方法。
【請求項５】
前記工程（Ｂ）の（２）の反応の前又は同時に、更にフェノール系化合物に作用する酵素を添加することを特徴とする、請求項１記載の測定方法。
【請求項６】
請求項５のフェノール系化合物に作用する酵素を添加後又は添加と同時に、酵素サイクリング法を行うことを特徴とする、請求項１又は５記載の測定方法。
【請求項７】
前記工程（Ｂ）の（２）で得られた発色物質が、電荷キャリアを介した電子供与体と酸化還元系発色試薬との反応により生成することを特徴とする、請求項１記載の測定方法。
【請求項８】
前記酸化還元系発色物質がテトラゾリウム塩である、請求項１、５、６又は７記載の測定方法。
【請求項９】
前記電荷キャリアがジアホラーゼである、請求項１、５、６又は７記載の測定方法。
【請求項１０】
前記工程（Ａ）前に、Ｌ−キヌレニンを含有する試料中のＬ−トリプトファン及び／又は還元物質を低減する前処理工程を含む、請求項１〜９のいずれか１項に記載の測定方法。
【請求項１１】
前記還元物質が、ビリルビン、アスコルビン酸及び／又は尿酸である、請求項１０記載の測定方法。
【請求項１２】
前記工程（Ａ）前に、トリプトファナーゼ、トリプトファンオキシダーゼ、ビリルビンオキシダーゼ、アスコルビン酸オキシダーゼ、ウリカーゼ、ペルオキシダーゼ、カタラーゼ及び過酸化水素からなる群より選択される１種以上をＬ−キヌレニンを含有する試料中に添加する工程を含む、請求項１０又は１１記載の測定方法。
【請求項１３】
前記工程（Ａ）前に、キレート作用を有する物質及び／又は金属と塩を形成し沈殿する物質を添加する工程を含む、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の測定方法。
【請求項１４】
キレート作用を有する物質及び／又は金属と塩を形成し沈殿する物質が、エチレンジアミン四酢酸、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）グリシン、ジエチレントリアミンペンタ酢酸及びトランス−１，２−ジアミノシクロヘキサン−Ｎ，Ｎ，Ｎ，Ｎ−四酢酸からなる群より選択される少なくとも１種である、請求項１３記載の測定方法。
【請求項１５】
前記工程（Ｂ）前に、界面活性剤を添加する工程を含む、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の測定方法。
【請求項１６】
ＮＡＤＰ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、２価銅化合物、並びに１価銅イオンに特異的な金属指示薬を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
【請求項１７】
ＮＡＤＰ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、酸化還元系発色試薬、並びに電荷キャリアを含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
【請求項１８】
請求項１７のキットに、更にフェノール系化合物に作用する酵素を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
【請求項１９】
請求項１８のキットに、更にＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素、及びその基質を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、酵素を用いたＬ−キヌレニンの測定方法及び測定キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｌ−キヌレニンは、Ｌ−トリプトファンの代謝物として生体内に存在することが知られており、医療分野において測定意義が各種検討されている。Ｌ−キヌレニンは、液体クロマトグラフィーによる測定が一般的だが、この測定は煩雑であり、汎用性に乏しい。その他の測定法として、抗体法、Ｅｈｒｌｉｃｈ試薬を用いた比色法及び酵素法が知られているが、抗体法は煩雑であり、また比色法は特異性が低い。酵素法としては、キヌレニナーゼやキヌレニンアミノトランスフェラーゼを用いて、蛍光検出する測定法が知られている（非特許文献１及び２）が、臨床検査の場で一般的に使用されている生化学自動分析装置が使用できないという問題がある。また、キヌレニナーゼを用いる酵素法は、酵素反応液を酢酸エチルで抽出した液に対して蛍光法で測定するという手法であり大変煩雑という問題がある。【０００３】
一方、Ｌ−キヌレニンを基質とするキヌレニン３−モノオキシゲナーゼとして、シュードモナス由来、ヒト由来、ラット由来、蚊又は酵母由来の酵素が知られている（非特許文献３〜７）。しかし、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼをＬ−キヌレニンの測定に用いることができるか否かについては報告がない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｃｌｉｎｉｃａ  Ｃｈｉｍｉｃａ  Ａｃｔａ．，４７（３），ｐ．３８９−３９６，１９７３
【非特許文献２】友安彩子、外２名、第１２回合同地方会（第６１回日本臨床検査医学会中国・四国支部総会、第１５６回日本臨床化学会中国支部例会・総会、第２６回日本臨床化学会四国支部例会・総会）  抄録集、日本臨床化学会、２０１６、ｐ．２６
【非特許文献３】Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ａｎｄ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，５１，３２４−３３３，２００７
【非特許文献４】Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２６７，ｐ．１０９２−１０９９，２０００
【非特許文献５】Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，７８，ｐ．５７３−５８１，１９７５
【非特許文献６】Ｉｎｓｅｃｔ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１２（５），ｐ．４８３−４９０，２００３
【非特許文献７】Ｊ.Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，１４３（３），ｐ．１３２５−１３３３，１９８１
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、酵素を用いることにより簡便かつ正確にＬ−キヌレニンを測定できる測定方法及び測定キットを提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
そこで、本発明者らは、酵素を用いたキヌレニンの測定法について検討した結果、Ｌ−キヌレニンにＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下でキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを反応させ、さらに２価銅化合物及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は酸化還元系発色試薬及び電荷キャリアを加えることによる生成物の測定を行うことで、簡便、正確かつ高感度にＬ−キヌレニンを定量できる方法を見出し、本発明に至った。【０００７】
すなわち、本発明は、以下の［１］〜［１９］を提供するものである。
［１］（Ａ）Ｌ−キヌレニンを含有する試料に、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下でキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを酵素反応させて、残存した電子供与体、及び生成した３−ヒドロキシキヌレニンを含む酵素反応液を取得する工程
（Ｂ）工程（Ａ）の酵素反応液に、
（１）２価銅化合物、及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は
（２）酸化還元系発色試薬及び電荷キャリア
を反応させる工程、
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた発色物質の濃度から、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料又はキヌレニン３-モノオキシゲナーゼ未添加の試料における発色物質の濃度を差し引いた値に基づき、試料中のＬ−キヌレニン量を決定する工程
を含む、試料中のＬ−キヌレニン量の測定方法。
［２］  前記の反応による発色物質の濃度を、吸光度によって測定する、前項［１］記載の測定方法。
［３］  前記工程（Ｂ）の（１）で得られた発色物質が、３−ヒドロキシキヌレニンと２価銅化合物との反応で産生した１価銅イオンと、当該イオンに特異的に作用する金属指示薬との反応により生成することを特徴とする前項［１］記載の測定方法。
［４］  前記工程（Ｂ）の（１）で使用する１価銅イオンに特異的な金属指示薬がバソクプロイン、ネオクプロイン、ビシンコニン酸、それらの誘導体又はそれらの塩である、前項［１］又は［３］記載の測定方法。
［５］  前記工程（Ｂ）の（２）の反応の前又は同時に、更にフェノール系化合物に作用する酵素を添加することを特徴とする、前項［１］記載の測定方法。
［６］  前項［５］のフェノール系化合物に作用する酵素を添加後又は添加と同時に、酵素サイクリング法を行うことを特徴とする、前項［１］又は［５］記載の測定方法。
［７］  前記工程（Ｂ）の（２）で得られた発色物質が、電荷キャリアを介した電子供与体と酸化還元系発色試薬との反応により生成することを特徴とする、前項［１］記載の測定方法。
［８］  前記酸化還元系発色試薬がテトラゾリウム塩である、前項［１］、［５］、［６］又は［７］記載の測定方法。
［９］  前記電荷キャリアがジアホラーゼである、前項［１］、［５］、［６］又は［７］記載の測定方法。
［１０］  前記工程（Ａ）前に、Ｌ−キヌレニンを含有する試料中のＬ−トリプトファン及び／又は還元物質を低減する前処理工程を含む、前項［１］〜［９］のいずれか１項に記載の測定方法。
［１１］  前記還元物質が、ビリルビン、アスコルビン酸及び／又は尿酸である、前項［１０］記載の測定方法。
［１２］  前記工程（Ａ）前に、トリプトファナーゼ、トリプトファンオキシダーゼ、ビリルビンオキシダーゼ、アスコルビン酸オキシダーゼ、ウリカーゼ、ペルオキシダーゼ、カタラーゼ及び過酸化水素からなる群より選択される１種以上をＬ−キヌレニンを含有する試料中に添加する工程を含む、前項［１０］又は［１１］記載の測定方法。
［１３］  前記工程（Ａ）前に、キレート作用を有する物質及び／又は金属と塩を形成し沈殿する物質を添加する工程を含む、前項［１］〜［１２］のいずれか１項に記載の測定方法。
［１４］  キレート作用を有する物質及び／又は金属と塩を形成し沈殿する物質が、エチレンジアミン四酢酸、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）グリシン、ジエチレントリアミンペンタ酢酸及びトランス−１，２−ジアミノシクロヘキサン−Ｎ，Ｎ，Ｎ，Ｎ−四酢酸からなる群より選択される少なくとも１種である、前項［１３］記載の測定方法。
［１５］  前記工程（Ｂ）前に、界面活性剤を添加する工程を含む、［１］〜［１４］のいずれか１項に記載の測定方法。
［１６］  ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、２価銅化合物、並びに１価銅イオンに特異的な金属指示薬を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
［１７］  ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、酸化還元系発色試薬、並びに電荷キャリアを含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
［１８］  前項［１７］のキットに、更にフェノール系化合物に作用する酵素を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
［１９］  前項［１８］のキットに、更にＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素、及びその基質を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キット。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によって、簡便で、正確かつ高感度にＬ−キヌレニンを定量することができる。低濃度のＬ−キヌレニン測定が可能になったことで、生体中に含まれる微量のＬ−キヌレニンの測定が可能である。該方法は、吸光度による測定が可能で、現在普及している生化学自動分析装置を使用できるため、多検体の測定に適しており、さらに臨床検査の現場で実用化可能である。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨ及び塩化銅（ＩＩ）を用いて、Ｌ−Ｋｙｎ（Ｌ−キヌレニン）と反応させて生成した発色物質に由来する４８０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４８０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４８０としてプロットした結果を示した図である。
【図２】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図３】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＰＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図４】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ペルオキシダーゼを作用させ、その後ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図５】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ラッカーゼを作用させ、その後ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図６】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ビリルビンオキシダーゼを作用させ、その後ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図７】Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ペルオキシダーゼ、アルコール脱水素酵素、エタノール、ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを作用させて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度変化について１分間あたりの変化量を算出し、それを４分間の変化量に換算した値をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【図８】除タンパク血清を使用して、還元物質の分解処理後に、Ｐ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨ及び塩化銅（ＩＩ）を用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて生成した発色物質に由来する４８０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４８０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４８０としてプロットした結果を示した図である。
【図９】血清存在下でＰ−ＫＭＯ、ＮＡＤＨを用いて、Ｌ−Ｋｙｎと反応させて酵素反応液を取得後、ＰＯＤを作用させ、その後界面活性剤、ＷＳＴ−１及びジアホラーゼを用いて、生成した発色物質に由来する４４０ｎｍの吸光度について、Ｌ−Ｋｙｎを含まない検体（コントロール）に由来する４４０ｎｍの吸光度との差をＯＤ４４０としてプロットした結果を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明は、
（Ａ）Ｌ−キヌレニンを含有する試料に、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下でキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを酵素反応させて、残存した電子供与体、及び生成した３−ヒドロキシキヌレニンを含む酵素反応液を取得する工程、
（Ｂ）工程（Ａ）の酵素反応液に、
（１）２価銅化合物、及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は
（２）酸化還元系発色試薬及び電荷キャリア
を反応させる工程、並びに
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた発色物質の濃度から、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料又はキヌレニン３-モノオキシゲナーゼ未添加の試料における発色物質の濃度を差し引いた値に基づき、試料中のＬ−キヌレニン量を決定する工程
を含む、試料中のＬ−キヌレニン量を測定する方法に関する。
【００１１】
（工程（Ａ））
本発明は、Ｌ−キヌレニンを含有する試料にＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体とキヌレニン３−モノオキシゲナーゼとを反応させる工程（Ａ）を含む。
【００１２】
（Ｌ−キヌレニンを含む試料）
本発明に用いられる試料は、Ｌ−キヌレニンを含む可能性のある試料であれば特に限定されず、例えば人を含む哺乳類の生体試料、例えば、血液（血清、血漿）、唾液、尿、脳脊髄液等が挙げられる。このうち、血液が好ましく、血液を試料とする場合、血清又は除蛋白した血液を用いるのがより好ましい。
【００１３】
（前処理工程）
生体試料の測定では、測定に支障となる可能性のある還元物質、夾雑蛋白質、金属イオン等の少なくとも１つを公知の方法で除去する前処理工程を含んでもよい。還元物質としては例えば、ビリルビン、アスコルビン酸、尿酸等が挙げられる。ビリルビンの低減のためにビリルビンオキシダーゼ、アスコルビン酸の低減のためにアスコルビン酸オキシダーゼ、尿酸の低減のためにウリカーゼ等の酵素を使用した前処理等がそれぞれ例示される。さらに、過酸化水素やペルオキシダーゼによる処理も行うことができる。また、使用又は産生した過酸化水素の低減のために、カタラーゼを使用することもできる。なお、酵素の使用量、反応ｐＨ及び温度は、それぞれの酵素の至適ｐＨ及び温度を踏まえて、適宜設定することができる。酵素の使用量は、前処理液中の濃度が例えば０．１〜１０００Ｕ／ｍＬ、好ましくは０．５〜１００Ｕ／ｍＬである。反応温度は、例えば１５〜５０℃、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは２５〜４０℃である。反応ｐＨは、例えば５．０〜１１．０、好ましくは５．５〜１０．５、より好ましくは６．０〜１０．０である。反応時間は、例えば１〜６０分、好ましくは１〜４０分間である。
【００１４】
夾雑蛋白質は例えば、過塩素酸やトリクロロ酢酸等の除蛋白剤で低減することができる。処理後、炭酸カリウム等を用いて中和を行うことで、試料として使用することが可能となる。なお、除蛋白剤処理によってビリルビンやヘモグロビン等の還元物質の低減も可能である。
【００１５】
金属イオンは、例えば、金属キレート剤で低減することができる。金属キレート剤は特に限定されないが、ＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸）、ビシン（Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）グリシン）、ＤＴＰＡ（ジエチレントリアミンペンタ酢酸）、ＣｙＤＴＡ（トランス−１，２−ジアミノシクロヘキサン−Ｎ，Ｎ，Ｎ，Ｎ−四酢酸）等が好適に用いられる。なお、金属キレート剤の使用濃度は、適宜設定することができる。例えば、工程（Ｂ）の第１の態様においては、使用する２価銅化合物と同じモル濃度以下、更に好ましくは１／２以下のモル濃度であることが望ましい。また、マグネシウムイオン等は、リン酸を添加することで低減することも可能である。
上述の前処理を実施した液については、前処理後直ぐに測定に使用してもよく、また冷蔵又は冷凍で保管後に使用してもよい。
【００１６】
その他、測定に支障となる物質の影響を低減する方法としては、フェリシアン化カリウム、フェロシアン化カリウム、安息香酸、ヨウ素酸塩や亜硝酸塩等の酸化還元剤を添加することや、界面活性剤を添加することが挙げられる。使用可能な界面活性剤の種類としては、非イオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、又は両性界面活性剤などがあり、例えばポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルなどの非イオン性界面活性剤、オレフィンスルホン酸、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル硫酸塩、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル酢酸塩、ラウリル硫酸ナトリウム、コール酸ナトリウム、オクタン酸ナトリウム、ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウムなどのアニオン性界面活性剤などが好適に用いられる。これらのうち、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンラウリルエーテル又はポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテルがより好ましく、そのＥＯ（エチレンオキシド）平均付加モル数は１０〜３０が好ましく、より好ましくは５〜２５である。例えば、ポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレン（２３）ラウリルエーテル又はポリオキシエチレン（１０）オクチルフェニルエーテルなどが好適に用いられる。界面活性剤は、測定系全体に対して０．０１〜５．０％（ｗ/ｖ）となる量を添加するのが好ましく、０．１〜２．０％（ｗ/ｖ）となる量を添加するのがより好ましい。また、添加時期としては、一連の酵素反応が進むのであれば特に限定されないが、発色反応の前に添加するのが好ましい。
【００１７】
上述の前処理を実施した液については、前処理後直ぐに測定に使用してもよく、また冷蔵又は冷凍で保管後に使用してもよい。また、本前処理は、工程（Ａ）及び／又は工程（Ｂ）の前の適切な時期に実施することができる。
【００１８】
（トリプトファンの影響の低減）
本発明のＬ−キヌレニン測定方法を、より正確に行うために、試料中の夾雑物の影響を実質的に除くことが好ましい。例えば、一般に生体試料中のＬ−トリプトファン濃度は、Ｌ−キヌレニン濃度に比べ１０〜１００倍程度高いと考えられるため、Ｌ−トリプトファンのＬ−キヌレニン測定への影響を抑えることが好ましい。電子供与体としてＮＡＤＨを使用したＬ−キヌレニン測定方法が好ましく、ＮＡＤＨのみを使用した測定方法がより好ましい。
【００１９】
又は、Ｌ−トリプトファンに作用する酵素により、試料中のＬ−トリプトファンを低減する工程を含むＬ−キヌレニン測定方法が好ましい。該工程は、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応に先立ち、前処理として行うのが好ましい。
【００２０】
前記のＬ−トリプトファン低減工程のため、Ｌ−トリプトファンに作用する酵素を使用することが好ましい。Ｌ−トリプトファンに作用する酵素は、Ｌ−キヌレニンに実質的に作用しない酵素であれば特に制限されないが、トリプトファンオキシダーゼやトリプトファナーゼ等が例示できる。トリプトファンオキシダーゼはカタラーゼと組み合わせて使用するのが好ましい。
【００２１】
酵素使用量は、Ｌ−トリプトファンを低減できれば特に限定されないが、トリプトファンオキシダーゼの場合、前処理液中の濃度が０．１〜１００Ｕ／ｍＬ程度であることが好ましく、１〜１０Ｕ／ｍＬ程度であることがより好ましい。トリプトファンオキシダーゼにカタラーゼを組み合わせる場合、前処理液中の濃度が０．１〜１０，０００Ｕ／ｍＬ程度であることが好ましく、１〜１，０００Ｕ／ｍＬ程度であることがより好ましい。トリプトファナーゼの場合、前処理液中の濃度が０．０１〜１０Ｕ／ｍＬ程度であることが好ましく、０．１〜２Ｕ／ｍＬ程度であることがより好ましい。
【００２２】
また、反応温度、反応ｐＨ及び反応時間は、それぞれの酵素の至適ｐＨ及び温度を踏まえて適宜設定することができる。反応温度は、例えば１５〜５０℃、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは２５〜４０℃である。反応ｐＨは、例えば５．０〜１１．０、より好ましくは５．５〜１０．５、より好ましくは６．０〜１０．０である。反応時間は、例えば１〜６０分、好ましくは１〜４０分間である。
【００２３】
（キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ（ＫＭＯ））
キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ（ＫＭＯ）としては、例えば、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ等の原核生物由来、又はヒト、ラット、蚊、酵母等の真核生物由来の公知の酵素を使用することができる。用いる酵素は組換え酵素でも良く、合成した酵素でもよい。この酵素は可溶性酵素であることが好ましいが、不溶性酵素に界面活性剤を組み合わせてもよく、可溶化タンパクとの融合又は膜結合部分の削除等により不溶性酵素を可溶化させた酵素でもよい。この酵素としては、公知のアミノ酸配列を有する酵素を利用でき、例えば、配列番号１、２、３、４又は５に記載の配列を有する酵素を使用できる。さらに、配列番号１、２、３、４又は５に記載の配列において１又は数アミノ酸を置換、付加若しくは欠失し、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ活性を有する改変酵素でもよい。配列番号１、２、３、４又は５と例えば６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％以上の類似性又は同一性を有する配列を有し、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ活性を有する蛋白質を使用してもよい。
【００２４】
（電子供与体）
本発明の工程（Ａ）は、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体の存在下で行われる。
ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨの誘導体とは、ＮＡＤＨやＮＡＤＰＨの安定性向上、モル吸光係数の上昇等のために使用することができる。本発明においては、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応が進むのであれば、ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨの誘導体の種類は特に限定されず、例えば、特開２０１２−２２４６３８公報で示されるＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ誘導体等、公知のものを使用することができる。
【００２５】
（酵素反応）
工程（Ａ）に用いる酵素反応中の酵素量は、試料中のＬ−キヌレニンが３−ヒドロキシキヌレニンに変換できていれば特に限定されないが、１試料あたり０．０００１〜１００Ｕ程度が好ましく、０．００１〜１０Ｕ程度がより好ましい。工程（Ａ）中の電子供与体濃度は、試料中のＬ−キヌレニン測定ができれば特に制限はないが、０．０１〜１ｍＭが好ましく、０．０１〜０．５ｍＭがより好ましい。また、工程（Ａ）における反応温度、反応ｐＨ及び反応時間は、酵素の至適ｐＨ及び温度を踏まえて適宜設定することができる。反応温度は、例えば１５〜５０℃、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは２５〜４０℃である。反応ｐＨは、例えば５．０〜１１．０、好ましくは５．５〜１０．５、より好ましくは、６．０〜１０．０である。反応時間は、例えば１〜６０分間、好ましくは１〜３０分、より好ましくは１〜１０分間である。
【００２６】
（工程（Ｂ））
本発明は、工程（Ａ）の生成物に、
（１）２価銅化合物、及び１価銅イオンに特異的な金属指示薬、又は
（２）酸化還元系発色試薬及び電荷キャリア
を反応させる工程（Ｂ）を含む。
【００２７】
（１）第１の態様では２価銅化合物を使用し、反応液中の３−ヒドロキシキヌレニンとの酸化還元反応によって、３−ヒドロキシキヌレニン１モルあたり複数モルの１価銅イオンを生成させることができる。更に、１価銅イオンに特異的な金属指示薬との反応により発色物質を生成することができる。
【００２８】
前記２価銅化合物としては特に限定されないが、水溶性のものが好ましく、例えば、塩化銅（ＩＩ）、硫酸銅（ＩＩ）、硝酸銅（ＩＩ）、酢酸銅（ＩＩ）、クエン酸銅（ＩＩ）、グルコン酸銅（ＩＩ）等が用いられる。これらのうち、塩化銅（ＩＩ）又は硫酸銅（ＩＩ）が好適に用いられる。
【００２９】
前記１価銅イオンに特異的な金属指示薬としては、特に限定されないが、他の金属イオンとは実質的に反応せず、１価銅イオンと特異的に反応して有色の錯体を形成する指示薬などが用いられる。例えば、バソクプロイン、ネオクプロイン、ビシンコニン酸、それらの誘導体又はそれらの塩等が好適に用いられる。これらのうち、バソクプロイン又はその塩が好ましく、バソクプロインジスルホン酸二ナトリウムがより好ましい。
【００３０】
該反応中の各試薬の濃度は、２価銅化合物の場合、０．０１〜２.０ｍＭが好ましく、０．０２〜１.０ｍＭがより好ましい。１価銅イオンに特異的な金属指示薬は、０．０１〜２.０ｍＭが好ましく、０．０２〜１.０ｍＭがより好ましい。また、測定時のｐＨは３．０〜１１．０が好ましく、ｐＨ４．０〜１０．０がより好ましい。反応温度は、１５〜５０℃が好ましく、２０〜４５℃がより好ましく、２５〜４０℃が更に好ましい。
【００３１】
前記金属指示薬は、１価銅イオンの生成を判別可能とするために、２価銅化合物を加える前に試料に加えておくことが好ましい。２価銅化合物を加える前後での１価銅イオン濃度の変化により、生成した１価銅イオンを正確に定量することができる。
【００３２】
なお、３−ヒドロキシキヌレニンと２価銅イオンが作用して得られた１価銅イオンをバソクプロインやビシンコニン酸により検出できることは公知である（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ,３９,７２６６−７２７５，２０００）。しかしながら、ＮＡＤＨも２価銅イオンを還元することが知られている（Ａｎａｌｙｓｔ，１３４（８）、１６１４−１６１７、２００９）こと、及び工程（Ａ）で使用するＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨは、３−ヒドロキシキヌレニンの数１０倍溶液中に含まれることから、ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨを含んだ溶液中で、第１の態様に基づく測定ができるというのを容易に想定することは困難である。
【００３３】
（酸化還元系発色試薬）
（２）第２の態様において使用する酸化還元系発色試薬の内、還元系発色試薬とは、電荷キャリア存在下で、反応液中のＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体と反応することで、酸化型の無色物質から還元型の発色物質を生成するものである。
【００３４】
前記還元系発色試薬の種類は、試料中のＬ−キヌレニン測定ができれば特に限定されないが、例えば、２−（４−インドフェノール−３−（４−ニトリフェニル）−５−フェニル２Ｈ−タトラゾリウムクロライド（ＩＮＴ）、３−（４，５−ジメチル−２−チアゾリル）−２，５−ジフェニル−２Ｈ−テトラゾリウム  ブロミド（ＭＴＴ）、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−（２，４−ジスルホフェニル）−２Ｈ−テトラゾリウム、一ナトリウム塩（ＷＳＴ−１）、３，３’−［３，３’−ジメトキシ−（１，１’−ビフェニル）−４，４’−ジイル］−ビス［２−（４−ニトロフェニル）−５−フェニル−２Ｈ−テトラゾリウム  クロリド］（ＮＴＢ）、２−ベンゾチアゾリル−３−（４−カルボキシ−２−メトキシフェニル）−５−［４−（２−スルホエチルカルバモイル）フェニル］−２Ｈ−テトラゾリウム（ＷＳＴ−４）等のテトラゾリウム塩や、レサズリンナトリウム等が使用可能である。例えば、ＷＳＴ−１の場合、反応液における濃度が０．０２ｍｇ／ｍＬ以上が好ましく、０．１ｍｇ／ｍＬ以上がより好ましい。なお、ＭＴＴのような水への溶解性の低い発色試薬を使用する際や高濃度のホルマザン色素が生じる場合は、可溶化のためにドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）やジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）等の界面活性剤や有機溶剤を使用してもよい。
【００３５】
一方、酸化還元系発色試薬の内、酸化系発色試薬とは、電荷キャリア存在下で、反応液中のＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体と反応することで、酸化型の発色物質から還元型の無色物質を生成するものである。本試薬の種類は、試料中のＬ−キヌレニン測定ができれば特に限定されないが、例えば、ジクロロインドフェノール（ＤＣＩＰ）などがあげられる。
【００３６】
（電荷キャリア）
前記電荷キャリアは、試料中のＬ−キヌレニン測定ができれば特に限定されないが、反応液中の３−ヒドロキシキヌレニンと酸化還元系発色試薬による発色物質の生成を触媒することなく、逆に３−ヒドロキシキヌレニンによって、電子供与体と酸化還元系発色試薬の反応による発色物質の生成を阻害するものが望ましい。具体的には、ジアホラーゼの使用が好ましい。ジアホラーゼを使用する場合、使用量としては反応液における濃度が０．０１Ｕ／ｍＬ以上が好ましく、０．１Ｕ／ｍＬ以上がより好ましい。ジアホラーゼは、電子供与体と反応するものであればその種類は限定されないが、例えば、ＥＣ番号１．６．５．２、ＥＣ番号１．６．９９．１、ＥＣ番号１．６．９９．３に分類されるものを使用することができる。
【００３７】
工程（Ｂ）における反応温度、反応ｐＨ及び反応時間は、第１の態様及び第２の態様において、酵素等の至適ｐＨ及び温度を踏まえて適宜設定することができる。反応温度は、例えば１５〜５０℃、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは２５〜４０℃である。なお、工程（Ａ）における温度と同一にしてもよい。反応ｐＨは、特に限定されないが、例えば、ｐＨ３．０〜１２．０が好ましい。第１の態様では、ｐＨ４．０〜１１．０がより好ましい。第２の態様では、例えば電荷キャリアとしてジアホラーゼを使用する場合は、ｐＨ６．０〜１０．０が好ましく、ｐＨ７．０〜９．０がより好ましい。なお、工程（Ａ）における反応ｐＨと同一にしてもよい。反応時間は、例えば１〜６０分間、好ましくは１〜４０分間、より好ましくは１〜１０分間である。
【００３８】
また、第１の態様及び第２の態様における緩衝液の種類としては、目的のｐＨにおいて緩衝能を有するものであれば特に限定されないが、例えば、ビシン（Ｂｉｃｉｎｅ）、トリス（Ｔｒｉｓ）、クエン酸等、銅イオンと錯体を形成する物質の場合は、第１の態様において発色を阻害する可能性があるので注意して使用する必要がある。
【００３９】
（工程（Ｃ））
本発明は、工程（Ｂ）で得られた発色物質の濃度から、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料又はキヌレニン３-モノオキシゲナーゼ未添加の試料における発色物質の濃度を差し引いた値に基づき、試料中のＬ−キヌレニン量を決定する工程（Ｃ）を含む。なお、Ｌ−キヌレニンを含有しない試料又はキヌレニン３−モノオキシゲナーゼ未添加の試料はコントロールと呼ばれるもので、Ｌ−キヌレニン又はキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを添加しない場合における分析値への影響を除外するものである。
【００４０】
第１の態様における測定対象の発色物質は、１価銅イオンと、１価銅イオンに特異的な金属指示薬とが反応して生成した物質である。この発色物質の濃度を測定することによって、１価銅イオン濃度を測定でき、その結果、試料中のＬ−キヌレニンの濃度を高感度で測定することができる。
【００４１】
第２の態様における測定対象の発色物質は、酸化還元系発色試薬から得られたものであり、電荷キャリア存在下で、反応液中のＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体が酸化還元系発色試薬と反応して得られる。
【００４２】
即ち、以下の手順でＬ−キヌレニン濃度を測定することができる。
ａ）Ｌ−キヌレニンを含まない反応液に、前記電子供与体とキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを添加して反応後、更に電荷キャリアと酸化還元系発色試薬を供与することで得られた発色物質の濃度を測定する。または、Ｌ−キヌレニンを含む反応液に、電子供与体を添加後、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼは添加せず、更に電荷キャリアと酸化還元系発色試薬を供与することで得られた発色物質の濃度を測定する。
ｂ）Ｌ−キヌレニンを含む反応液に、電子供与体とキヌレニン３−モノオキシゲナーゼを添加して反応後、更に電荷キャリアと酸化還元系発色試薬を供与することで得られた発色物質の濃度を測定する。
ｃ）ａ）の濃度からｂ）の濃度を減算することで得られた値から、Ｌ−キヌレニン濃度を算出する。
【００４３】
ところで、還元系発色試薬を使用する場合、電荷キャリア存在下で前記電子供与体が還元系発色試薬と反応することで得られる発色物質の濃度は、電子供与体の濃度依存的に増加する。また、Ｌ−キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応を実施した場合、反応液中のＬ−キヌレニンと同じモル数の電子供与体が減少するので、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応後の酵素反応液においては、Ｌ−キヌレニンの濃度依存的に発色物質が減少するが、その傾きの絶対値は、先の電子供与体と発色物質の間において得られる傾きの絶対値と等しくなると考えられる。
【００４４】
しかしながら、今回、本発明者が検討した結果、実施例に示すように、傾きの絶対値が誤差範囲を超えるレベルで増加していることが確認できた。本原因を追究した結果、Ｌ−キヌレニンからキヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応により生じた３−ヒドロキシキヌレニンによって、電荷キャリアの一種であるジアホラーゼ存在下での前記電子供与体と還元系発色試薬との間の反応が、３−ヒドロキシキヌレニンの濃度依存的に阻害され、発色物質の生成が阻害されることを見出した。
【００４５】
つまり、Ｌ−キヌレニン濃度の上昇に伴う発色物質の濃度の減少は、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応後の電子供与体の減少の影響だけでなく、Ｌ−キヌレニン濃度の増加に伴い増加する３−ヒドロキシキヌレニン量の影響も加味されるため、想定以上の傾きの絶対値の増加が得られることが分かった。その結果、本発色物質の濃度を測定することによって、試料中のＬ−キヌレニンの濃度を高感度で測定することができる。
【００４６】
また、第２の態様における測定において、電荷キャリアや酸化還元系発色試薬を供与する前又は同時に、３−ヒドロキシキヌレニンに作用する物質を添加することで、電荷キャリアによる電子供与体と酸化還元系発色試薬との間の反応を阻害する効果が更に高くなり、その結果、より高感度の測定ができることを見出した。具体的な物質としては、３−ヒドロキシキヌレニンを含まない系では殆ど反応を阻害しないが、３−ヒドロキシキヌレニンを含む系では反応を阻害する物質であれば特に限定されないが、好ましくはフェノール系化合物に作用する酸化剤又は重合剤であり、更に好ましくはフェノール系化合物に作用する酵素である。具体的には、酸化還元酵素としては、ペルオキシダーゼ（ＥＣ番号１．１１．１．Ｘ）、ラッカーゼ（ＥＣ番号１．１０．３．２）、ビリルビンオキシダーゼ（ＥＣ番号１．３．３．５）、チロシナーゼ（ＥＣ番号１．１０．３．１又は１．１４．１８．１）、３−ヒドロキシアントラニル酸オキシダーゼ（ＥＣ番号１．１０．３．５）、フェロオキシダーゼ（ＥＣ番号１．１６．３．１）、フェノール−２−モノオキシゲナーゼ（ＥＣ番号１．１４．１３．７又は１．１４．１４．２０）、アミノフェノールオキシダーゼ（ＥＣ番号１．１０．３．４）、グリキサゾンシンターゼ（ＥＣ番号１．１０．３．１５）、２−アミノフェノール１，６−ジオキシゲナーゼ（ＥＣ番号１．１３．１１．７４）、２−アミノ−５−クロロフェノール１，６−ジオキシゲナーゼ（ＥＣ番号１．１３．１１．７６）等が例示され、転移酵素としては、Ｎ−ヒドロキシアリルアミンＯ−アセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ番号２．３．１．１１８）、グルクロノシルトランスフェラーゼ（ＥＣ番号２．４．１．１７）、フェニルβ−グルコシルトランスフェラーゼ（ＥＣ番号２．４．１．３５）、アリルアミンＮ−アセチルトランスフェラーゼ（ＥＣ番号２．３．１．５）、アリル硫酸スルホトランスフェラーゼ（ＥＣ番号２．８．２．２２）等が例示される。その中で好ましいのはペルオキシダーゼ、ラッカーゼ又はビリルビンオキシダーゼである。ペルオキシダーゼ、ラッカーゼ又はビリルビンオキシダーゼの濃度は、３−ヒドロキシキヌレニンを含まない系では殆ど反応を阻害しないが、３−ヒドロキシキヌレニンを含む系では反応を阻害するような濃度であれば、その範囲は限定されないが、好ましくは０．００１〜１，０００Ｕ／ｍＬ、更に好ましくは０．０１〜１００Ｕ／ｍＬである。また、反応ｐＨ、温度、時間は、前述の発色反応やそれぞれの酵素に適した条件に併せて適宜設定することができる。なお、フェノール系化合物に作用する酵素の添加時期は、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応前、反応中又は反応後のいずれの時期でもよいが、好ましくはキヌレニン３−モノオキシゲナーゼによる反応後である。反応温度は、例えば１５〜５０℃、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは２５〜４０℃である。反応ｐＨは、例えば５．０〜１１．０、好ましくは５．５〜１０．５、より好ましくは６．０〜１０．０である。反応時間は、例えば１〜６０分、好ましくは１〜４５分、より好ましくは１〜１０分である。
【００４７】
フェノール系化合物に作用する酵素を使用した場合、フェノール系化合物に作用する酵素を添加後又は添加と同時に、酵素サイクリング法と組み合わせることで、更なる高感度測定も可能である。本酵素サイクリング法とは、具体的には電荷キャリアを用いた反応で得られたＮＡＤ＋やＮＡＤＰ＋に対して、適切なＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素、及びその基質を供与することで、ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨに変換し、再び電荷キャリアを用いた反応を行わせる方法である。
【００４８】
なお、ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素としては、例えば、アルコール脱水素酵素、グルコース脱水素酵素、グルタミン酸脱水素酵素、ギ酸脱水素酵素、リンゴ酸脱水素酵素、グルコース−６−リン酸脱水素酵素、ホスホグルコン酸脱水素酵素、グリセロール脱水素酵素等が挙げられる。
【００４９】
上記反応で使用するＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素と基質の組み合わせとしては、目的を満たせば酵素やその基質の種類は制限されないが、例えばアルコール脱水素酵素とエタノール、グルコース脱水素酵素とグルコース、グルタミン酸脱水素酵素とグルタミン酸、ギ酸脱水素酵素とギ酸、リンゴ酸脱水素酵素とリンゴ酸、グルコース６リン酸脱水素酵素とグルコース６リン酸、ホスホグルコン酸脱水素酵素とホスホグルコン酸、グリセロール脱水素酵素とグリセロール等が知られている。
【００５０】
ＮＡＤＨ再生酵素としてアルコール脱水素酵素を使用する場合、酵素量としては、試料中のＬ−キヌレニン測定ができれば特に限定されないが、反応液におけるアルコール脱水素酵素濃度としては０．５〜３０Ｕ／ｍＬ程度が好ましく、３〜１５Ｕ／ｍＬ程度がより好ましい。また、反応温度、反応ｐＨ及び反応時間は、それぞれの酵素の至適ｐＨ及び温度を踏まえて適宜設定することができる。
【００５１】
（測定手段）
発色物質の濃度測定手段は特に限定されないが、例えば分光光度計による吸光度変化の測定が例示できる。分光光度計による測定では、レート法又はエンドポイント法から適宜選択することが好ましい。測定に用いられる分光光度計としては、日本分光、日立ハイテクノロジーズ、島津製作所等各社から販売されている市販品が例示できる。
【００５２】
第１の態様において、吸光度測定における測定波長はそれぞれの金属指示薬によって異なる。例えば、１価銅イオンに特異的な金属指示薬としてバソクプロインを使用した場合４８０ｎｍ付近、ネオクプロインの場合４５０ｎｍ付近、ビシンコニン酸の場合５６２ｎｍ付近の波長での吸光度が用いることができるが、必要に応じて適宜変更してもよい。
【００５３】
第２の態様において、生成した発色物質を定量するための測定波長は、各発色物質が吸収を持つ波長であれば特に限定されないが、各発色物質の吸収極大を示す波長が望ましい。例えば、ＷＳＴ−１を使用した場合は、４００〜４８０ｎｍが望ましく、４４０ｎｍ付近の測定波長で測定することが更に好ましい。但し、ＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ濃度が高い状態で吸収極大を示す波長で測定する場合、吸光度が高くなりすぎ、正確性を欠く恐れがあるため、吸収極大を示す波長から、低波長側、長波長側のいずれかにずらして測定することも可能である。
【００５４】
（任意成分）
本発明のＬ−キヌレニン測定方法において、当業者に公知の他の任意成分を適宜含有させ、前記酵素等試薬成分の安定性を高めてもよい。任意成分は測定に影響のない成分であれば特に限定されないが、例えば、フラビンアデニンジヌクレオチド（ＦＡＤ）、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、卵白アルブミン、糖類、糖アルコール類、カルボキシル基含有化合物、酸化防止剤、界面活性剤、酵素と作用性のないアミノ酸類等が例示できる。特に、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）由来のキヌレニン３−モノオキシゲナーゼは、塩濃度が高い方が安定性や活性が増す傾向にあることから、例えば、試薬組成物の緩衝液や塩化ナトリウムの終濃度を１０ｍＭ以上にすることが好ましく、１００ｍＭ以上にすることがより好ましい。
【００５５】
（キット）
本発明の測定は、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、前記電子供与体を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キットを使用して行うことができる。該キットに含まれる該キヌレニン３−モノオキシゲナーゼは、Ｌ−キヌレニンを３−ヒドロキシキヌレニンに変換する酵素であればよい。詳細には、Ｌ−キヌレニンを基質として、前記電子供与体、Ｈ＋及び酸素存在下で、３−ヒドロキシキヌレニン、前記電子受容体及び水を生成する反応を触媒する酵素であればよい。
【００５６】
また、本発明のキットには、前処理用に、トリプトファナーゼ、トリプトファンオキシダーゼ、ビリルビンオキシダーゼ、アスコルビン酸オキシダーゼ、ウリカーゼ、ペルオキシダーゼ、カタラーゼ及び過酸化水素からなる群より選択される１種以上を含有させてもよい。
【００５７】
第１の態様では、２価銅化合物を用い、さらに１価銅イオンに特異的に反応する金属指示薬を含む。第２の態様では、前記酸化還元系発色試薬及び前記電荷キャリアを用いる。すなわち、第１の態様では、ＮＡＤＰＨ、ＮＡＤＰ及びそれらの誘導体からなる群より選択される電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、２価銅化合物、並びに１価銅イオンに特異的な金属指示薬を含む、Ｌ−キヌレニン測定用キットが用いられる。第２の態様では、前記電子供与体、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、酸化還元系発色試薬及び電荷キャリアを含む、Ｌ−キヌレニン測定用キットが用いられる。なお、第２の態様におけるキットにおいては、更にフェノール系化合物に作用する酵素を含んでいても良く、更にＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ再生酵素、及びその基質を含んでいても良い。
【実施例】
【００５８】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例によって限定されるものではない。【００５９】
［実施例１］
（塩化銅（ＩＩ）／バソクプロイン系での測定）
シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）由来のキヌレニン３−モノオキシゲナーゼ（Ｐ−ＫＭＯ）及び塩化銅（ＩＩ）を用いて、生じる１価銅イオンを測定することで、各濃度のＬ−キヌレニンを定量した。
試薬混合液２．６４ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに入れ、２５℃で５分間保温後に、Ｐ−ＫＭＯ  ０．０６ｍＬを添加、混合し、２５℃で酵素反応を開始した。尚、酵素反応液の組成は、１００ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、０．５、１又は２μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０５ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．０１Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした（注：反応液の濃度は、塩化銅（ＩＩ）添加後の濃度で示している）。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した。【００６０】
Ｐ−ＫＭＯは、配列番号１記載のアミノ酸配列を有する蛋白質であり、ＵｎｉＰｒｏｔでＱ８４ＨＦ５（ｈｔｔｐ://ｗｗｗ.ｕｎｉｐｒｏｔ.ｏｒｇ/ｕｎｉｐｒｏｔ/Ｑ８４ＨＦ５）として公開されている。配列番号１記載のアミノ酸配列をコードする遺伝子を挿入した組換え微生物を培養し、培養物からＰ−ＫＭＯを回収した後、精製した酵素である。【００６１】
酵素反応開始３０分後に、各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのセルに金属指示薬である１ｍＭのバソクプロインジスルホン酸二ナトリウム０．１５ｍＬを各々添加、混合し、分光光度計（Ｖ−６６０、日本分光社製）にて４８０ｎｍにおける吸光度を測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００６２】
次に、各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのセルに１ｍＭの塩化銅（ＩＩ）溶液０．１５ｍＬを各々添加、混合し、２５℃で経時的に４８０ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、上述したように、塩化銅（ＩＩ）溶液を添加すると、Ｐ−ＫＭＯによりＬ−キヌレニンから変換されたヒドロキシキヌレニンが、複数モルの２価銅イオンを還元するため、還元された１価銅イオンとバソクプロインが４８０ｎｍを吸収極大とする錯体を生成する。【００６３】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの４分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ａ及び減算値Ｂ）。続いて、各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ａから、コントロールの減算値Ｂを各々減算した値を、ＯＤ４８０として図にプロットした。なお、本測定は、異なる日に計３回実施した。各測定値と平均値を図１に示した。【００６４】
図１より、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４８０の値が高くなっており、Ｐ−ＫＭＯによりＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。また、全測定において、Ｌ−キヌレニン濃度が２μＭ以下と低い濃度であっても再現性のあるデータが得られており、Ｐ−ＫＭＯによりＬ−キヌレニンの高感度の定量が可能であることが示された。【００６５】
以上より、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、ＮＡＤＨのような電子供与体、バソクプロインジスルホン酸二ナトリウム及び塩化銅（ＩＩ）を用いて、Ｌ−キヌレニンを高感度に定量できることが分かった。【００６６】
［実施例２］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１系での測定（ＮＡＤＨ使用））
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、Ｐ−ＫＭＯ反応によって減少したＮＡＤＨ量を電荷キャリアであるジアホラーゼと、還元系発色試薬であるＷＳＴ−１を用いて測定した。酵素反応液１．８ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃、１５分間酵素反応を実施した。【００６７】
酵素反応液の組成は、５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、１、２、３又は４μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０３ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。【００６８】
反応終了後、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１（２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−（２，４−ジスルホフェニル）−２Ｈ−テトラゾリウム、一ナトリウム塩（同仁化学研究所製））を１００μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計（Ｖ−６６０、日本分光社製）で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００６９】
次に、１００Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（オリエンタル酵母製）を１００μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【００７０】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図２に示した。図２より、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、Ｌ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。【００７１】
なお、本試験とは別に、５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）中に、ＮＡＤＨ濃度を０．０２７、０．０２８、０．０２９又は０．０３０ｍＭにした溶液１．８ｍＬに対し、１００Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（オリエンタル酵母製）、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を１００μＬずつ添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。その結果、得られた傾きはＮＡＤＨ  １μＭあたり０．０２９［ａｂｓ］の増加であった。先の試験において得られた傾きは、Ｌ−キヌレニン１μＭあたり０．０４５［ａｂｓ］の増加であったので、単なるＮＡＤＨ量の変化以外の要因により感度が増大していることが確認できた。【００７２】
また、５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）中に、ＮＡＤＨ終濃度が０．０３ｍＭ、３−ヒドロキシキヌレニン濃度が０〜５μＭとなるように各試薬を添加した液１８０μＬに対し、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１、１００Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（オリエンタル酵母製）を１０μＬずつ添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度をプレートリーダー（ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ  Ｐｌｕｓ３８４、モレキュラーデバイス社製）で測定した結果、３−ヒドロキシキヌレニン濃度の増大に従って、４４０ｎｍの値が減少していることが確認できた。【００７３】
以上より、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、ＮＡＤＨ、ジアホラーゼ及びＷＳＴ−１のような還元系発色試薬を用いて、Ｌ−キヌレニンを高感度に定量できることが分かった。【００７４】
［実施例３］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１系での測定（ＮＡＤＰＨ使用））
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、Ｐ−ＫＭＯ反応によって減少したＮＡＤＰＨ量を電荷キャリアであるジアホラーゼと、還元系発色試薬であるＷＳＴ−１を用いて測定した。酵素反応液１．８ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃、１５分間酵素反応を実施した。【００７５】
酵素反応液の組成は、５０ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、０．５、１又は２μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０４ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０３ｍＭ  ＮＡＤＰＨ、及び０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した。【００７６】
反応終了後、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を１００μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００７７】
次に、３Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（旭化成ファーマ製）を１００μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【００７８】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図３に示した。図３より、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、Ｌ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。傾きは、Ｌ−キヌレニン１μＭあたり０．０５８［ａｂｓ］の増加であり、ＮＡＤＰＨを使用した場合においても、Ｌ−キヌレニン濃度を高感度に定量できた。【００７９】
［実施例４］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１／ＰＯＤ系での測定）
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、Ｐ−ＫＭＯによる反応後、ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を混合し、減少したＮＡＤＨ量を電荷キャリアであるジアホラーゼと、還元系発色試薬であるＷＳＴ−１を用いて測定した。酵素反応液１．８５ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃、３０分間酵素反応を実施した。【００８０】
酵素反応液の組成は、１００ｍＭ  トリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．５）、０．２５、０．５、１又は２μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．１ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０３ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した。【００８１】
反応終了後、４０Ｕ／ｍＬのＰＯＤ（和光純薬工業製）を５０μＬセルに添加し、２５℃３分間酵素反応を実施した。反応終了後、２０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を５０μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００８２】
次に、２０Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（ニプロ製）を５０μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【００８３】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図４に示した。Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、ＰＯＤ添加によってＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。傾きは、Ｌ−キヌレニン１μＭあたり０．２［ａｂｓ］の増加であり、実施例２より高感度の測定が可能であった。【００８４】
［実施例５］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１／ラッカーゼ系での測定）
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、Ｐ−ＫＭＯによる反応後、ラッカーゼを混合し、減少したＮＡＤＨ量を電荷キャリアであるジアホラーゼと、還元系発色試薬であるＷＳＴ−１を用いて測定した。酵素反応液１．８４ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃、３０分間酵素反応を実施した。【００８５】
酵素反応液の組成は、１００ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、０．２５、０．５、又は１μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０５ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０４ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した。【００８６】
反応終了後、１００Ｕ／ｍＬのラッカーゼ（カワラタケ由来）（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ製）を１０μＬセルに添加し、２５℃３分間酵素反応を実施した。反応終了後、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を１００μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００８７】
次に、２０Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（ニプロ製）を５０μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【００８８】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図５に示した。Ｌ−キヌレニン０．５μＭまでは、濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、ラッカーゼ添加によってＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。傾きは、Ｌ−キヌレニン０．５μＭまでの範囲では、Ｌ−キヌレニン１μＭあたり０．１２［ａｂｓ］の増加であり、実施例２より高感度の測定が可能であった。【００８９】
［実施例６］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１／ビリルビンオキシダーゼ系での測定）
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、Ｐ−ＫＭＯによる反応後、ビリルビンオキシダーゼを混合し、減少したＮＡＤＨ量を電荷キャリアであるジアホラーゼと、還元系発色試薬であるＷＳＴ−１を用いて測定した。酵素反応液１．８４ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃、３０分間酵素反応を実施した。【００９０】
酵素反応液の組成は、１００ｍＭ  トリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．５）、０．２５、０．５、１、又は２μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０５ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０３ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。【００９１】
反応終了後、２Ｕ／ｍＬのビリルビンオキシダーゼ（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ製）を１０μＬセルに添加し、２５℃３分間酵素反応を実施した。反応終了後、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を１００μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【００９２】
次に、２０Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（ニプロ製）を５０μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１５分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【００９３】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１５分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図６に示した。Ｌ−キヌレニン１．０μＭまでは、濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、ビリルビンオキシダーゼ添加によってＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。傾きは、Ｌ−キヌレニン１．０μＭまでの範囲では、Ｌ−キヌレニン１μＭあたり０．１［ａｂｓ］の増加であり、実施例２より高感度の測定が可能であった。【００９４】
［実施例７］
（ジアホラーゼ／ＷＳＴ−１／ＰＯＤ系での酵素サイクリング法による測定）
各濃度のＬ-キヌレニン溶液を試料とし、０．４ｍＬの反応液Ａで、Ｐ−ＫＭＯによる反応を実施した。反応液Ａの組成は、１００ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、０．２５、０．５、０．７５、１μＭ  Ｌ−キヌレニン、２ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０４ｍＭ  ＮＡＤＨ、及び０．４Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯとした。コントロールとして、基質の代わりに超純水を使用した。２５℃で１５分反応させた。【００９５】
反応終了後に、１．５ｍＬの反応液Ｂと混合した。反応液Ｂの混合により、２００ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、４％（ｖ/ｖ）  エタノール、５Ｕ／ｍＬ  アルコール脱水素酵素（オリエンタル酵母製）、１Ｕ／ｍＬ  ＰＯＤ、及び０．２ｍｇ／ｍＬ  ＷＳＴ−１になるようにした（注：本反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。【００９６】
次に、１０Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（ニプロ製）を１００μＬ各セルに添加、混合、２５℃、１０分間酵素サイクリングによる酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度をレート法により分光光度計で測定した。レート法で測定しているのは、本酵素サイクリング法の場合、測定時間による吸光度変化が永続的に続くため、実施例１〜６で実施したようなエンドポイント法では、測定誤差が大きくなることによる。【００９７】
なお、この時のＬ−キヌレニンの終濃度は、反応液Ｂ及びジアホラーゼ溶液の添加によって、０．０５、０．１、０．１５、０．２μＭとなっている。【００９８】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールにおいて、酵素サイクリング開始後０分から４分までのデータから１分間あたりの４４０ｎｍの変化量をそれぞれ算出した。続いて、酵素反応４分間での４４０ｎｍの変化量を算出するために、１分間あたりの４４０ｎｍの変化量を４倍した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図７に示した。その結果、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、酵素サイクリング法を組み合わせることによって、低濃度のＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。Ｌ−キヌレニン０．１μＭあたり０．０４６［ａｂｓ］の増加、即ちＬ−キヌレニン１μＭあたりに換算すると、０．４６［ａｂｓ］の増加であり、実施例２及び実施例４より高感度の測定が可能であった。【００９９】
［実施例８］
（血清存在下での塩化銅（ＩＩ）／バソクプロイン系での測定）
実施例１で示した方法で血清存在下での測定が可能か否かの検証を行ったところ、血清をそのまま使用した測定においては、還元物質の影響が大きいことから、測定が困難であることが分かった。そのため、以下の要領で前処理を実施して測定を実施した。【０１００】
ヒト正常血清に対し０．５Ｎの過塩素酸溶液を入れて混合し、遠心分離にて上清回収後、得られた液１０００μＬに対して、２Ｎの炭酸カリウム溶液１８０μＬを加えて中和し、冷蔵保管後、過剰量の過塩素酸カリウムを沈殿物として除去することにより、除タンパク血清を取得した。除タンパク血清１．０ｍＬを含む酵素反応液２．４４５ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、３７℃２０分還元物質を低減する前処理を実施した。【０１０１】
酵素反応液の組成は、２００ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、４０μＭ  ＥＤＴＡ、１Ｕ／ｍＬ  アスコルビン酸オキシダーゼ（和光純薬工業製）、０．５Ｕ／ｍＬ  ウリカーゼ（和光純薬工業製）、１０Ｕ／ｍＬ  カタラーゼ（和光純薬工業製）とした。【０１０２】
上記前処理終了後に、１００μＭ  ＮＡＤＰＨ、０．５、１、２μＭ  Ｌ−キヌレニン、０．０８Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯになるように添加混合後、３０℃で３０分間反応させた。この時の酵素反応液を２．５５ｍＬになるようにした（注：反応液の濃度は、塩化銅（ＩＩ）添加後の濃度で示している）。コントロールとして、基質の代わり超純水を使用した。【０１０３】
酵素反応後に、各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのセルに金属指示薬である２ｍＭのバソクプロインジスルホン酸二ナトリウム０．１５ｍＬを各々添加、混合し、分光光度計（Ｖ−６６０、日本分光社製）にて４８０ｎｍにおける吸光度を測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。 【０１０４】
次に、各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのセルに４ｍＭの塩化銅（ＩＩ）溶液０．３ｍＬを各々添加、混合し、３７℃で経時的に４８０ｎｍにおける吸光度を測定した。【０１０５】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ａ及び減算値Ｂ）。続いて、各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ａから、コントロールの減算値Ｂを各々減算した値を、ＯＤ４８０として図にプロットした。【０１０６】
図８に示すように、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４８０の値が高くなっており、本手法によりＬ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。【０１０７】
以上の通り、血清を含む系でも、前処理を行うことで、キヌレニン３−モノオキシゲナーゼ、ＮＡＤＨ、バソクプロインジスルホン酸二ナトリウム及び塩化銅（ＩＩ）を用いることにより、Ｌ−キヌレニンを高感度に定量できることが分かった。【０１０８】
［実施例９］
（血清存在下でのジアホラーゼ／ＷＳＴ−１／ＰＯＤ系での測定）
実施例４で示した方法で血清存在下での測定が可能かの検証を行ったところ、血清をそのまま使用した測定においては、還元物質等の影響が大きく、ＷＳＴ−１の発色反応が阻害されたため、界面活性剤であるポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート（商品名：Ｔｗｅｅｎ２０）を添加した測定を行った。ヒト正常血清０．２ｍＬを含む酵素反応液１．５ｍＬを光路長１ｃｍの石英セルに添加、混合し、２５℃で１０分間酵素反応を実施した。【０１０９】
酵素反応液の組成は、２００ｍＭ  リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）、０．１、０．２、０．３又は０．５μＭ  Ｌ−キヌレニン、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．０４ｍＭ  ＮＡＤＨ、０．２Ｕ／ｍＬ  Ｐ−ＫＭＯ、０．５Ｕ／ｍＬ  ＰＯＤ。コントロールとして、基質の代わり超純水を使用した（注：反応液の濃度は、ジアホラーゼ添加後の濃度で示している）。なお、比較例として、血清無添加の系での評価も実施した。【０１１０】
反応終了後、血清添加群においては、３％（ｗ／ｖ）のＴｗｅｅｎ２０を２００μＬ添加した（血清無添加群は超純水を２００μＬ添加した）。その後、１０ｍｇ／ｍＬのＷＳＴ-１を１００μＬ各セルに添加、混合し、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。この測定値を各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールのブランク値とした。【０１１１】
次に、５Ｕ／ｍＬのジアホラーゼ（ニプロ製）を２００μＬ各セルに添加、混合し、２５℃、１０分間酵素反応を実施して、４４０ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定した。【０１１２】
各Ｌ−キヌレニン濃度及びコントロールの１０分後の測定値からブランク値を各々減算した（減算値Ｃ及び減算値Ｄ）。続いて、コントロールの減算値Ｄから各Ｌ−キヌレニン濃度の減算値Ｃを各々減算した値を、ＯＤ４４０としてプロットした結果を図９に示した。血清存在下であっても、Ｌ−キヌレニンの濃度上昇に従いＯＤ４４０の値が高くなっており、Ｌ−キヌレニンの定量が可能であることが示された。傾きは、血清の有無によらず、Ｌ−キヌレニン０．５μＭあたり０．１［ａｂｓ］程度の増加、すなわちＬ−キヌレニン１μＭあたりに換算すると、０．２［ａｂｓ］程度の増加であり、実施例４と同等の結果であった。
【図１】
2018056431.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
2018056431.tif 000009
【図８】
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【図９】
2018056431.tif 000011
【配列表】
2018056431000001.app
【国際調査報告】
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2018056431.tif 000013
2018056431.tif 000014
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