(57)【要約】  HTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP）の新規な治療薬及び新規な抗HTLV-1剤を提供する。ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分とする。
2018025923.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分とするHTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP）治療薬。
【請求項２】
上記物質は、イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質であることを特徴とする請求項１記載のHTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP）治療薬。
【請求項３】
ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分とする抗HTLV-1剤。
【請求項４】
上記物質は、イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質であることを特徴とする請求項３記載の抗HTLV-1剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ヒトTリンパ球指向性ウイルス１型を減量する抗HTLV-1剤、ヒトTリンパ球指向性ウイルスに起因する疾患であるHTLV-1関連脊髄症に対する治療薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトTリンパ球指向性ウイルス１型（以下、HTLV-1）は、CD4陽性Tリンパ球のゲノムDNAに組み込まれ、体内及び個体間で感染伝搬するレトロウイルスである。HTLV-1感染細胞が腫瘍化することで成人T細胞白血病（ATL）を発症し、またHTLV-1感染細胞が脊髄内に浸潤することで痙性脊髄麻痺や排尿障害をきたすHTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP：HTLV-1-associated myelopathy/tropical spastic paraparesis、以下HAMと称する場合もある）を発症する。さらに、HTLV-1感染細胞が眼球内に浸潤することでブドウ膜炎（HU）を発症することもある。【０００３】
上述したHTLV-1に起因する各種疾患のうちHAMについては、HTLV-1感染細胞が脊髄内に浸潤して炎症を起こすことがきっかけとなること以外、発症メカニズムは不明である。現在、HAMに対しては、根治療法は未樹立であり、病気の進行の早さや炎症の強さに応じて、炎症を抑える治療が行われる。炎症が強い場合は症状が進行する可能性が高いので、ステロイド療法、インターフェロン・アルファ注射療法等の治療が選択され、炎症を抑えて脊髄が壊れるのを防止している。具体的には、抗炎症薬として副腎皮質ステロイド（プレドニゾロン：Predonisolone）の経口投与で、ある程度のプロウイルス量が減少し、症状改善効果が確認されている。しかしながら、多くの場合、当該治療方法では、完治することができず投薬中止によるリバウンドなどの問題もある。さらに、当該知慮方法にはステロイド糖尿病、骨粗鬆症及び免疫抑制等の副作用もある。【０００４】
以上のように、HTLV-1に起因するHAMには、根治治療を可能とする治療薬が求められていた。例えば、特許文献１には、ヒトCXCL10に特異的に結合する抗ヒトCXCL10抗体または前記抗体の断片を含む、HTLV-1関連脊髄症の治療薬が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開2013-119531号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
そこで、本発明は、上述した実情に鑑み、HTLV-1関連脊髄症患者での主感染巣である末梢CD4+T細胞でのシグナル伝達を解明し、得られた知見に基づいてHTLV-1関連脊髄症の新規な治療薬を提供すること、更にHTLV-1関連脊髄症の原因となるHTLV-1を減量する抗HTLV-1剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上述した目的を達成するため、本発明者らが鋭意検討した結果、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞を用いたパスウェイ解析等により、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞において特異的に発現するパスウェイに関与するチロシンキナーゼABL1を同定し、ABL1阻害薬がHTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞を特異的に死滅できることを見いだした。さらに、ABL1阻害薬が無症候性キャリア（Asymptomatic carrier: AC）由来のCD4+T細胞をも特異的に死滅でき、無症候性キャリア等に対してウイルス量の減量を可能とする抗ウイルス剤として利用できることを見いだした。本は発明者らは、これら新たな知見に基づいて、本発明を完成するに至った。【０００８】
本発明は以下を包含する。【０００９】
（１）ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分とするHTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP）治療薬。【００１０】
（２）上記物質は、イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質であることを特徴とする（１）記載のHTLV-1関連脊髄症（HAM/TSP）治療薬。【００１１】
（３）ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分とする抗HTLV-1剤。【００１２】
（４）上記物質は、イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質であることを特徴とする（３）記載の抗HTLV-1剤。【００１３】
本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2016-152871号の開示内容を包含する。
【発明の効果】
【００１４】
本発明により、従来、有効な治療薬が無かったHTLV-1関連脊髄症に対する有効な治療剤を提供することができる。【００１５】
また、本発明により、HTLV-1関連脊髄症の原因となるHTLV-1を減量する抗HTLV-1剤を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】CellTiter-Fluor Cell Viability Assay(Promega) で測定したヒトPBMCの細胞濃度(Y)とRelative live cell signal (RLU) (X)の単回帰分析を行った結果を示す特性図である。
【図２】ABL1阻害薬(イマチニブ及びニロチニブ)による細胞生存率に対する効果を示す特性図である。
【図３】HAM、NC由来CD4+T細胞、非CD4 PBMCのin vitro培養時の細胞濃度の経時的変化を示す特性図である。
【図４】HAM患者由来CD4+T細胞を用いたマイクロアレイデータの3群分割プロトコールによるHAM特異的有意差発現遺伝子の同定方法のフローチャートである。
【図５】HAM、AC、NCにおける遺伝子発現パターンとHAM病態における細胞性遺伝子の意義の対応を示す特性図である
【図６】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図７】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図８】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図９】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図１０】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図１１】HAMでのみ高発現となっているHAM病態特異的責任遺伝子として同定された遺伝子を列挙した特性図である。
【図１２】パスウェイ解析及びHAM病態特異的パスウェイの同定方法のフローチャートである。
【図１３】実験例１で同定したHAM病態特異的パスウェイの一覧を示す特性図である。
【図１４】ΔCτDrugとABL1阻害薬処理との関係を示す特性図である。
【図１５】ΔCτDrugとイマチニブ濃度との関係を示す特性図である。
【図１６】ΔCτDrugとニロチニブ濃度との関係を示す特性図である。
【図１７】ΔCτDrugとIC50におけるイマチニブ及びニロチニブとの関係を示す特性図である。
【図１８】ΔCτDrugとCmaxにおけるイマチニブ及びニロチニブとの関係を示す特性図である。
【図１９】生細胞中pXコピー減少率とABL1阻害薬処理との関係を示す特性図である。
【図２０】生細胞中pXコピー減少率とイマチニブ濃度との関係を示す特性図である。
【図２１】生細胞中pXコピー減少率とニロチニブ濃度との関係を示す特性図である。
【図２２】生細胞中pXコピー減少率とIC50におけるイマチニブ及びニロチニブとの関係を示す特性図である。
【図２３】生細胞中pXコピー減少率とCmaxにおけるイマチニブ及びニロチニブとの関係を示す特性図である。
【図２４】PMA viability PCRにおける増幅回数(サイクル数)−増幅産物量(実数)との関係を示す特性図である。
【図２５】PMA viability PCRにおけるCτと遺伝子相対発現コピー数(log表示)との関係を例示的に示す特性図である。
【図２６】PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイにおける増幅回数(サイクル数)−増幅産物量（実数）との関係を示す特性図である。
【図２７】PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイにおけるCτと遺伝子相対発現コピー数(log表示)との関係を例示的に示す特性図である。
【図２８】NC及びAC由来CD4+T細胞に対するABL1阻害薬(イマチニブ及びニロチニブ)による細胞生存率に対する効果を示す特性図である。図中有、A及びBはCD4+T細胞に関して、C及びDは非CD4-PBMCに関して、ABL1阻害薬処理24時間後の生細胞比を示す。
【図２９】AC由来CD4+T細胞の生細胞中pXコピー減少率とABL1阻害薬処理時間との関係を示す特性図である。図中、棒グラフ上のアステリスクはT=0hとの間での有意差を示し、棒グラフ上の横棒は両端が示す棒グラフ間での有意差を示す。
【図３０】AC由来CD4+T細胞における生細胞中pXコピー減少率とイマチニブ濃度との関係を示す特性図である。図中、棒グラフ上の横棒は両端が示す棒グラフ間での有意差を示す。
【図３１】AC由来CD4+T細胞における生細胞中pXコピー減少率を薬剤間で比較した結果を示す特性図である。図中、AはABL1阻害薬それぞれのIC50濃度、Bは添付文書中のCmax濃度で検討したものである。  図中、棒グラフ上の横棒は両端が示す棒グラフ間での有意差を示す。
【図３２】生細胞中pXコピー減少率の効果をHAM由来CD4+T細胞とAC由来CD4+T細胞とで比較した結果を示す特性図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１８】
本発明では、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質がHTLV-1に感染したCD4+T細胞を特異的に死滅させる効果を有するとの知見を、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞及び無症候性キャリア（Asymptomatic carrier: AC）由来のCD4+T細胞において見いだしている。すなわち、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質は、HTLV-1関連脊髄症患者に対してHTLV-1関連脊髄症の治療目的で投与されるHTLV-1関連脊髄症治療薬として利用することができ、また、HTLV-1に関する無症候性キャリアに対してウイルス量減量を目的として投与される抗HTLV-1剤として利用することができる。なお、本発明に係るHTLV-1関連脊髄症治療薬は、HTLV-1関連脊髄症に対する治療効果とともに、HTLV-1に感染したCD4+T細胞を特異的に死滅させることによるウイルス量低減の効果も示す。
【００１９】
すなわち、本発明に係るHTLV-1関連脊髄症治療薬及び抗HTLV-1剤は、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効成分として含む。本発明に係るHTLV-1関連脊髄症治療薬及び抗HTLV-1剤は、HTLV-1に感染したCD4+T細胞に対して特異的に死滅させる効果を示すものである。
【００２０】
ABL1遺伝子は、NCBIデータベースにアクセッション番号：NM_005157（NP_005148.2）及びNM_007313（NP_009297.2）として塩基配列及びアミノ酸配列が登録されている。ただし、ABL1遺伝子は、これらデータベースに登録された具体的な塩基配列及びアミノ酸配列に限定されることなく、公知の一塩基多型等の多型により、データベースに登録された具体的な塩基配列及びアミノ酸配列と異なる場合もある。
【００２１】
ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質とは、特に限定されず、例えば、当該チロシンキナーゼの産生及び/又は活性を抑制する薬物や、当該チロシンキナーゼの分解及び/又は不活性化を促進する薬物などが含まれる。当該チロシンキナーゼの産生を抑制する物質としては、特に限定されないが、例えば当該チロシンキナーゼをコードするABL1遺伝子に対するRNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチド及びこれらを発現するベクター等が挙げられる。
【００２２】
また、当該チロシンキナーゼを阻害する物質としては、当該チロシンキナーゼに対して作用する化合物を使用することができる。このような化合物としては、有機化合物（アミノ酸、ポリペプチド又はその誘導体、低分子化合物、糖、高分子化合物等）、無機化合物等を使用することができる。また、このような化合物は、天然物質及び非天然物質のいずれであってもよい。ポリペプチドの誘導体としては、修飾基を付加して得られた修飾ポリペプチド、アミノ酸残基を改変することにより得られたバリアントポリペプチド等が挙げられる。さらに、このような化合物は、単一化合物であってもよいが、化合物ライブラリー、遺伝子ライブラリーの発現産物、細胞抽出物、細胞培養上清、発酵微生物産生物、海洋生物抽出物、植物抽出物等であってもよい。
【００２３】
具体的に、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質としては、特に限定されないが、イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブ等を挙げることができる。これらイマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブについては、チロシンキナーゼ阻害薬（TKI）として公知であり、例えば慢性骨髄性白血病の治療薬として使用されている。ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質としては、これらイマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブに限定されず、現在においてTKIとして開発中の物質或いは慢性骨髄性白血病の治療薬として治験中の物質を使用することもできる。
【００２４】
所定の物質がABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する機能を有するか否かは、定法に従って判定することができる。例えば、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを含む溶液に供試化合物を添加し、25℃で30分間プレインキュベートする。ビオチン化標識基質ペプチド（poly Glu-Tyr）とATPをプレインキュベート液に加え、25℃で30分間リン酸化反応行わせる。EDTA添加により反応を停止させ、アビジンでコートされた96ウェルプレートに反応液を加えてビオチン化基質を結合させる。基質のリン酸化レベルを、抗リン酸化チロシン抗体を用いたELISAによって測定する。本評価系では、ポジティブコントロールとしてイマチニブを用いることが好ましい。このELISAの結果により、供試化合物におけるチロシンキナーゼ阻害活性をイマチニブと比較して評価することができる。
【００２５】
また、これら公知の化合物以外でも、ABL1遺伝子の発現又は当該チロシンキナーゼ活性を抑制する物質、以下の（１）〜（３）をHTLV-1関連脊髄症治療薬及び抗HTLV-1剤とすることができる。
【００２６】
（１）ABL1遺伝子の翻訳を抑制可能な物質
（１−１）二本鎖RNA
ABL1遺伝子の翻訳を抑制するために、RNA干渉(RNA interference)を利用することが可能である。具体的には、標的とするABL1遺伝子の塩基配列に相補的な二本鎖RNAを細胞内に導入するとABL1遺伝子のmRNAが分解されて、結果としてその細胞での遺伝子発現が特異的に抑制されることとなる。この手法は、哺乳動物細胞などにおいても確認されている（Hannon,GJ., Nature (2002) 418,244-251 (review)；特表２００２−５１６０６２号公報；特表平８−５０６７３４号公報）。ABL1遺伝子に対する二本鎖RNA(dsRNA)分子の設計及び作製、その投与方法などの詳細については定法を参照することができる。
【００２７】
（１−２）アンチセンス法
また、ABL1遺伝子の翻訳を抑制する手段としては、いわゆるアンチセンス核酸を用いる方法が挙げられる。すなわち、ABL1遺伝子のmRNAに対するアンチセンスRNAを転写するDNAを、プラスミドとして導入するか又は被験者のゲノムに組み込み、当該アンチセンスRNAを過剰発現させることで、ABL1遺伝子のmRNAの翻訳が抑制される。アンチセンスRNAに関する技術は、例えば哺乳動物を宿主とした場合でも知られている（Han et al.(1991) Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 88,4313-4317; Hackett et al.(2000) Plant Physiol., 124,1079-86）。
【００２８】
（２）ABL1遺伝子の転写を抑制可能な物質
ABL1遺伝子の転写を抑制する物質としては、対象となる被験者における当該遺伝子の転写プロモーター領域を転写抑制型プロモーターと置換するために用いることが可能な発現ベクターが挙げられる。また、ABL1遺伝子の転写を抑制する手段としては、当該遺伝子の転写に関わる領域に転写抑制活性のある塩基配列を挿入するための発現ベクターを用いてもよい。上記のような発現ベクターの設計及び調製は当業者には周知である。
【００２９】
（３）ABL1遺伝子がコードするチロシンキナーゼに対する抗体
当該チロシンキナーゼに対する抗体は、チロシンキナーゼと特異的に結合することにより、該チロシンキナーゼのキナーゼ活性を抑制することができる。チロシンキナーゼに対する抗体は、当技術分野で公知の抗体作製方法によって作製することができる。簡単に説明すると、チロシンキナーゼの全長タンパク質又はその部分ペプチドを用いて免疫原を調製し、免疫原を適当な動物（マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、トリなど）に適当な回数で投与することにより、該動物においてチロシンキナーゼに対する抗体を誘起することができる。免疫した動物から抗血清を採取することによりポリクローナル抗体を得ることができる。また免疫した動物の脾細胞又は抗体産生細胞を不死化細胞（ミエローマ細胞など）と融合してハイブリドーマを作製し、目的の抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングし、該ハイブリドーマから抗体を採取することによってモノクローナル抗体を得ることができる。その他、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、抗体フラグメントなども用いることができ、それらは全て当技術分野で公知の方法に従って作製することができる。
【００３０】
上述したABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質は、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞において有意に発現亢進している遺伝子を含むパスウェイに対して抑制的に作用することで、HTLV-1関連脊髄症を治療することができるものである。
【００３１】
本発明の治療剤は、HTLV-1関連脊髄症を罹患している被験体、及びHTLV-1関連脊髄症の罹患が疑われる被験体に投与することができる。被験体は、例えば哺乳動物及び鳥類動物を含む動物でありうる。例えば、哺乳動物としては、ヒト、実験動物（マウス、ラット、サル、ウサギ、チンパンジー等）、ペット動物（ネコ、イヌ等）、家畜動物（ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、ブタ等）が挙げられる。
【００３２】
また、本発明の治療剤による治療の成果は、投与された被験体に少なくとも健康に良い効果をもたらすことであり、好ましくはHTLV-1関連脊髄症の少なくとも１つの症状を軽減若しくは緩和すること、又はHTLV-1関連脊髄症の進行若しくは再発を阻止することなどである。そのようなHTLV-1関連脊髄症の症状としては、限定されるものではないが、歩行障害；頻尿、排尿困難、尿失禁及び慢性便秘等の排尿排便障害；感覚障害；発汗障害；起立性低血圧によるめまい及びインポテンツ等の自律神経症状；手指振戦；運動失調；軽度の痴呆；両下肢痙性不全麻痺等を挙げることができる。
【００３３】
本発明の抗HTLV-1剤は、HTLV-1関連脊髄症を発症していない被験体（すなわち、HTLV-1を保有している無症候性キャリア（Asymptomatic carrier: AC））に投与することができる。なお、本発明の抗HTLV-1剤は、HTLV-1関連脊髄症を罹患している被験体、及びHTLV-1関連脊髄症の罹患が疑われる被験体に投与して、ウイルス量の低減を図っても良い。被験体は、例えば哺乳動物及び鳥類動物を含む動物でありうる。例えば、哺乳動物としては、ヒト、実験動物（マウス、ラット、サル、ウサギ、チンパンジー等）、ペット動物（ネコ、イヌ等）、家畜動物（ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、ブタ等）が挙げられる。
【００３４】
また、本発明の抗HTLV-1剤は、無症候性キャリアに投与された場合、HTLV-1プロウイルス量（PVL）、特に生細胞のみにおけるPVLに基づいて評価できる、ウイルス量低減効果を奏する。その結果、HTLV-1に関する無症候性キャリアがHTLV-1関連脊髄症や成人T細胞白血病（ATL）へ進展することを阻止することができる。
【００３５】
特に、HTLV-1関連脊髄症では、無症候性キャリアより有意にプロウイルス量が高いこと（Nagai M. J.NeuroVirol 1998.4:586-593.）、高プロウイルス量を呈するがHTLV-1関連脊髄症や成人T細胞白血病（ATL）には至っていない無症候性キャリア症例があることが知られていた。近年、高プロウイルス量の無症候性キャリア症例からHTLV-1関連脊髄症への進展が多く予後因子となりうるという報告（Martins ML. et al. J.NeuroVirol. 2017. 23(1):125-133.）や、疫学調査により高プロウイルス量（4.17-28.58 copies/100 PBMCs）の無症候性キャリア群から成人T細胞白血病（ATL）発症が報告されており（Iwanaga M. et al. Blood 2010. 116(8):1211-9.）、無症候性キャリアであっても何らかの治療的介入を行うべき症例があることがコンセンサスになりつつある。
【００３６】
抗ウイルス薬がほとんどないHTLV-1関連疾患の現状において、本発明に係る抗HTLV-1剤は有力な抗ウイルス療法の手段となる。
【００３７】
本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤は、１以上の薬学的に許容される担体又は賦形剤を用いて慣用的に製剤化することができる。例えば、本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤は、経鼻投与、経口投与、直腸投与、注射による投与などにより投与するための組成物に製剤化しうる。また、投与は全身性又は局所的のいずれであってもよい。
【００３８】
本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤は、その投与経路に応じて、液剤、懸濁剤、乳剤、錠剤、丸薬、ペレット、カプセル剤、散剤、徐放性製剤、坐剤、エアロゾル、スプレーなど、使用に適したいかなる他の剤形であってもよい。
【００３９】
経鼻投与では、有効成分を、適当な溶媒（生理食塩水、アルコールなど）に溶解し、その溶液を鼻に注入又は点鼻することによって送達することができる。あるいは、経鼻又は吸入による投与では、有効成分を、適切な噴霧剤、例えばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタン、二酸化炭素、又はその他の適切な気体を用いて、加圧パック又はネブライザからエアロゾルスプレーを噴出させる形で都合良く送達することができる。加圧エアロゾルの場合、投薬単位は、計量分が送達されるように弁を設けることにより決定することができる。
【００４０】
注射の場合、有効成分は、例えばボーラス注射又は連続注入による非経口投与（すなわち静脈内又は筋肉内投与）用に溶剤として処方することができ、好ましくはハンクス液やリンガー液、生理食塩水などの、生理学的に適合性のある緩衝液として処方することができる。この溶剤は、懸濁剤や安定剤、及び／又は分散剤などの、処方可能な薬剤を含有してよい。あるいは有効成分は、使用前に、例えば滅菌した発熱性物質を含まない水などの適切な賦形剤と共に再構成するために、粉末形態にすることができる。注射用製剤は、保存剤を添加して、例えばアンプル又は複数回投与容器中の単位投与剤形として提供することができる。
【００４１】
経口投与する場合には、本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤は、例えば錠剤、ロゼンジ、水性又は油性懸濁液、顆粒、散剤、乳剤、カプセル、シロップ、又はエリキシルの形態であり得る。錠剤又は丸薬形態の場合は、胃腸管内での分散及び吸収を遅延させ、それにより長時間持続した作用をもたらすために、組成物をコーティングすることができる。
【００４２】
その他の投与経路に適した製剤の形態及び製剤化方法は、当技術分野で公知であり、それらの任意の形態及び製剤化方法を用いて本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤を製造することができる。
【００４３】
薬学的に許容される担体又は賦形剤としては、限定されるものではないが、液体（例えば水、油、生理食塩水、デキストロース水溶液、エタノールなど）、固体（例えばアカシアガム、ゼラチン、デンプン、グルコース、ラクトース、スクロース、タルク、ステアリン酸ナトリウム、モノステアリン酸グリセロール、ケラチン、コロイド状シリカ、乾燥脱脂乳、グリセロールなど）が挙げられる。また、本発明の治療剤は、通常の医薬組成物に配合される補助剤、防腐剤、安定化剤、濃化剤、潤滑剤、着色剤、湿潤剤、乳化剤、及びｐＨ緩衝剤などのうち適当なものを含有してもよい。
【００４４】
本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤は、ABL1遺伝子によりコードされるチロシンキナーゼを阻害する物質を有効量で含有する。有効量とは、治療対象の被験体に健康に良い効果をもたらすのに十分な有効成分の量を意味する。
【００４５】
本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤の毒性及び治療効力は、例えばＬＤ５０（集団の５０％が致死となる量）及びＥＤ５０（集団の５０％に対して治療上有効な量）を決定するため、標準的な手順により、細胞培養物又は実験動物において決定することができる。毒性作用を示す用量と治療効果を示す用量の比は治療インデックスであり、比ＬＤ／ＥＤとして表すことができる。
【００４６】
治療インデックスが高い治療剤及び抗HTLV-1剤が好ましく、毒性が高い場合には、治療剤及び抗HTLV-1剤が罹患組織の部位に標的化するような送達系を設計して、非罹患細胞が受ける可能性のある損傷を最小限に抑え、それにより副作用を低減することに注意すべきである。
【００４７】
細胞培養アッセイ及び動物試験から得られたデータを用いて、ヒトにおける使用のための用量範囲を決定しうる。そのような治療剤及び抗HTLV-1剤の投与量は、ほとんど又は全く毒性のないＥＤ５０を含む循環血漿濃度の範囲内であることが好ましい。投与量は、この範囲内で、使用する投与剤形、及び採用する投与経路に応じて異なる。本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤については、まず細胞培養アッセイから有効量を推定しうる。細胞培養で決定したＩＣ５０（すなわち、症状の最大半分の抑制を達成する試験治療剤の濃度）を含む循環血漿濃度範囲を達成するように、動物モデルにおいて決定しうる。このような情報は、ヒトにおける有効量をより詳細に決定するために用いることができる。血漿中のレベルは、例えば高速液体クロマトグラフィーにより測定することができる。
【００４８】
被験体の症状及び年齢、並びに／又は投与経路に応じて、当業者であれば、本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤の適切な用量を選択することができる。例えば、本発明の治療剤及び抗HTLV-1剤にイマチニブ使用する場合、慢性骨髄性白血病に対する治療と同様の投薬量とすることができる。
【実施例】
【００４９】
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
〔実施例１〕
後述する実験例１に示したように、HTLV-1関連脊髄症（HTLV-1-associated myelopathy: HAM）患者由来のCD4+T細胞を用いたマイクロアレイ解析及びパスウェイ解析により、HAM患者由来のCD4+T細胞では、有意に発現亢進している遺伝子を含むパスウェイとして、ABL1遺伝子を含むパスウェイを同定した。そこで、本実施例では、ABL1遺伝子がコードするチロシンキナーゼの阻害剤であるイマチニブ（グリベック）及びニロチニブ（タシグナ）を使用し、これら薬剤のHAM患者由来CD4+T細胞に対する影響を検討した。【００５０】
＜検討方法＞
［１］CellTiter-Fluor Cell Viability Assay(G6080, Promega社製)を用いたヒトPBMCの細胞濃度測定（アッセイ感度決定）（Technical Bulletin (#TB371). CellTiter-Fluor Cell Viability Assay. Instructions for use of Products G6080, G6081 and G6082 (Promega).本キットは、生細胞プロテアーゼの基質である細胞膜透過性の蛍光ペプチド glycylphenylalanyl-aminofluoro coumarin (GF-AFC, Ex400/Em505nm) を用いて生細胞数に比例する生細胞プロテアーゼによるGF-AFC基質の開裂による蛍光を定量するキットである。）【００５１】
（１）プロトコール
（１−１）細胞の洗浄：比較的新鮮な陰性対照者（negative controls: NC）由来末梢血単核球（peripheral blood mononuclear cells: PBMC）検体（液体窒素中凍結保存細胞1×107個）を37℃湯浴で溶解しPBS10mLを入れた15mLチューブに移し、300×g、10分間遠沈し洗浄した。上清を捨て、ペレットのみとしたチューブの底部を金網上で擦過し、PBS10mLを入れて同様にもう１回洗浄した。そして、PBS 1mLで懸濁して氷上に置いた。【００５２】
（１−２）血球計算盤による細胞濃度の決定と細胞検体の濃度の調製：ビュルカー-チュルク（Burker-Turk）血球計算盤、Trypan Blue0.4％溶液（T8154, シグマ アルドリッチ ジャパン合同会社製）とトリパンブルー除外テストを用いて生細胞濃度を決定し、生細胞数の濃度を、10％非働化Fetal bovine serum（#10437028, Thermo Fisher Scientific社製）および1％penicillin-streptomycin（#15140122, Thermo Fisher Scientific社製)を添加したRPMI1640培地（#189-02025 和光純薬工業社製）中で40万個（4×105個）cells/mL(培地)となるように希釈した。【００５３】
（１−３）384ウェルプレートへのプレーティング：Nunc 384-well clear polystyrene plate with non-treated surface (#242765, Thermo Fisher Scientific社製)のような384ウェルプレートを準備し、A行及びB行の1〜3列、7〜9列の合計6列の12ウェルに細胞濃度5×105cells/mL（培地）に調製した細胞懸濁液20μL（1×104個）をマルチチャンネルピペッターでピペッティングして入れた。【００５４】
次にB〜H行、1〜3列、7〜9列に前出の培地25μLを入れた。B行は細胞懸濁液と培地が両方入り20μLになっているが、マルチチャンネルで泡立てないようピペッティングし、B行からC行へ各列とも10μLずつ移した。同様にC行からD行、D行からE行といった具合にG行まで10μLを上の行から下の行へ移した。G行からは10μL吸って廃棄した。H行にはG行からの細胞懸濁液は入れずにNo cell controlとした。【００５５】
以上の操作によりA〜G及びH行の細胞濃度はそれぞれ10,000個、5,000個、2,500個、1,250個、625個、312.5個、156,25個、0個（No cell control）となり、ウェル内の液量はすべて10μLとなる。【００５６】
（１−４）ジギトニンによる細胞の殺処理：細胞溶解性のdetergentであるジギトニン（digitonin）（Calbiochem # 300410、Merck-Millipore社製）の20mg/mL in DMSO（043-07216、和光純薬工業社製）溶液を調製し、ストック液とした。これをさらにDMSOで希釈し、300μg/mLのジギトニン溶液ワーキング溶液としておく。ジギトニン・ワーキング溶液2.5μLを先述の384ウェルプレートのA〜H行の7〜9列のウェルに各々入れた。これが死細胞の蛍光シグナルとなる。【００５７】
ジギトニン未処理サンプル（対照）としてA〜H行の1〜3列の各々のウェルには液量を標準化するためdouble distilled water（D2W）2.5μLを入れた。これにより、全ウェル内の液量は12.5μLとなる。【００５８】
（１−５）CellTiter-Fluor 2×試薬の添加：A〜H行の1〜3行と7〜9列の全ウェルにCellTiter-Fluor 2×試薬（2×Reagent） (G6080, Promega社製)を12.5μLずつ入れた。つまり、ウェル内の容量12.5μLと2×試薬の容量比は1：1で混合した。【００５９】
短時間オービタルシェーカーに載せて混合した後、37℃インキュベーター中で30分間インキュベートした。なお、GF-AFC基質とAssay Bufferを容量比1：1000で基質が完全に溶解するまでボルテックスして溶解させたものが2×Reagentである。【００６０】
（１−６）蛍光測定：TECAN Infinite 200M（Tecan Japan 社製）で蛍光(Ex400/Em505nm)を測定した。【００６１】
（１−７）蛍光シグナルと細胞濃度の回帰分析：上記（１−６）で測定した、生細胞シグナル（未処理サンプル）と死細胞シグナル（処理サンプル）を用いて下記式により希釈度（細胞濃度）毎に生細胞シグナル比を算出した。
Relative Live cell signal (RLU)=[生細胞シグナル−死細胞シグナル]/(No cell control signalの平均)【００６２】
そして、細胞濃度を説明変数、生細胞シグナル比を目的変数として単回帰分析により回帰式を作製した。作成した回帰式を用いて、同じ細胞のCellTiter Fluorのシグナルから元の細胞の細胞濃度を算出した。【００６３】
（１−８）感度の算出：各々の細胞希釈度毎に（1万cells/well; 5,000 cells/well; 2,500 cells/well, etc.）シグナル-to-ノイズ（S/N比）の計算をすることにより感度を算出した。なお、アッセイ感度の実際のレベルはS/N比が3 SDよりも大きいとされる（Niles, A.L. et al. (2007) A homogeneous assay to measure live and dead cells in the same sample by detecting different protease markers. Anal. Biochem. 366, 197-206）。
Viability S:N = [未処理サンプルの平均-処理サンプルの平均] /(H-1〜H-3までの標準偏差) 【００６４】
（２）結果
測定したRLUと細胞濃度との関係を表１に示した。
【表１】
2018025923.tif 000003
【００６５】
また、この結果を用いてRLUを説明変数（X）、細胞濃度を目的変数（Y）として単回帰分析を行った結果、回帰式：Y=5.092279X+2578.274、P=2.369E-05、R2=0.9890997となった。RLU（X）と細胞濃度（Y）の回帰式のグラフを図１に示した。本実施例においてPBMCの細胞濃度については、この回帰式を用いて蛍光シグナルデータから算出するものとした。【００６６】
［２］ABL1阻害薬処理によるHAM由来CD4+T細胞の細胞死誘導効果の測定
本項では、ABL1阻害薬：イマチニブ（Imatinib、グリベックTM）及びニロチニブ（Nilotinib）を用いてHAM患者由来PBMCを処理することで細胞死がNC由来PBMCよりも優先的に起こるかどうかを検討した。なお、本項においてイマチニブ及びニロチニブは、イマチニブの添付文書にあるCmax濃度をもとに高濃度（5μM）で検討することにした。【００６７】
（２−１）プロトコール
[検体]
HAM患者、陰性対照（NC）由来のPBMCを各6例、5×106個の液体窒素中凍結保存PBMCを準備した。【００６８】
[細胞の準備]
37℃湯浴で融解したPBMCを、PBS10mLを入れた15mLチューブに移し、300×g、10分間遠沈し洗浄した。上清を捨て、ペレットのみとしたチューブの底部を金網上で擦過し、PBS10mLを入れて同様に更に１回洗浄した。【００６９】
マイクロビーズと抗体カクテルを用いたCD4+T cell アイソレーションキット、ヒト（#130-096-533, Myltenyi Biotec社製）のプロトコールによりPBMCをCD4+T cell、非CD4-PBMCに分離した。分離した細胞はPBS 6.5mLに再懸濁し、チューブを氷上に置いた。【００７０】
[薬剤処理]
ABL1阻害薬：イマチニブ及びニロチニブによる細胞死誘導効果を、CellTiter-Fluor Cell Viability Assay(G6080, Promega社製)を用いた細胞濃度測定によって検証した。【００７１】
まず、各検体由来のCD4+T cell、非CD4-PBMCのPBS懸濁液をボルテックスしながらよく混合し、Falcon 6-well clear flat-bottom TC-treated multiwell cell culture plate with-lid (＃353046, Corning Japan社製)の3 ウェルに各ウェル2,000μLずつ入れた。ただし薬剤未処理、イマチニブ(終濃度5μM)、ニロチニブ(終濃度5μM)を各1ウェルずつ準備するものとする。イマチニブ及びニロチニブのストック液（DMSO溶液）は十分高濃度のものを用意し、1/1000で終濃度となるようにし、インキュベート開始時の3ウェルの細胞濃度は同一とみなした。【００７２】
次に37℃、5％CO2下で24時間インキュベートし、24時間後に各ウェルの細胞懸濁液を全量ハーベストした。CD4+T cellの薬剤未処理ウェルの細胞懸濁液を入れたチューブをボルテックスしながらよく混合し、Nunc 384-well clear polystyrene plate with non-treated surface (#242765, Thermo Fisher Scientific社製)にHAM検体1由来CD4+T細胞懸濁液を1列A〜C行に25μLずつ3つ組で入れた。同様にHAM検体2由来CD4+T細胞懸濁液を2列A〜C行、HAM検体3由来を3列A〜C行といった順序で、最後のHAM検体6由来を6列A〜C行に入れた。また、NC検体1由来を7列A〜C行に入れ、同様に順に検体を入れ、最後のNC検体6由来を12列A〜C行に入れた。【００７３】
同様に非CD4-PBMCについてもHAM検体1〜6、NC検体1〜6由来の細胞懸濁液を1〜12列D〜F行に入れた。なお、1〜12列G行にはPBS25μLをNo cell controlとして入れた。【００７４】
その後、全ウェルにCellTiter-Fluor Reagentを25μL加え、短時間オービタルシェーカーに載せて混合した後、37℃インキュベーターに少なくとも30分間入れて遮光下でインキュベートした。その後、TECAN Infinite 200M（Tecan Japan社製）で蛍光(Ex400/Em505nm)を測定した。【００７５】
一方、別なプレートを用意し、イマチニブ処理（終濃度5μM）したCD4+Tcell/非CD4-PBMC、さらに別なプレートでニロチニブ処理（終濃度5μM）したCD4+Tcell/非CD4-PBMCについてもHAM検体1〜6及びNC検体1〜6に関して同様に蛍光を測定した。【００７６】
そして、生細胞数（絶対値）を算出し、曝露前を100％、曝露なしの場合は24時間後（曝露ありの場合は曝露24時間後）をＸ％として、細胞数の％低下（％REGRESSION）を非曝露の場合、イマチニブ曝露の場合、ニロチニブ曝露の場合で比較した。【００７７】
（２−２）コントロール実験
対比するため、HAM由来CD4+T細胞、NC由来CD4+T細胞、非CD4-PBMCのin vitro培養時の細胞濃度の経時的変化を確認した。具体的にはHAM3例及びNC2例についてPBMCをCD4+T細胞、非CD4-PBMCに分離した後、各細胞を約8×104個としてRPMI1640培地2mL中（薬剤無し）で6ウェルプレートを用いて経時的に観察した。【００７８】
観察開始時（0h）、24時間後（24h）、48時間後（48h）にトリパンブルー排除法で細胞濃度を観察した。0hの濃度を100％とし、それぞれのサンプルの相対濃度で示した。【００７９】
（２−３）結果
ABL1阻害薬(イマチニブ5μM又はニロチニブ5μM)24時間処理による細胞生存率に対する効果を図２に示した。図２のAはCD4+T細胞におけるイマチニブ5μM、24時間処理による細胞生存率に対する効果を示している。図２のBはCD4+T細胞におけるニロチニブ5μM、24時間処理による細胞生存率に対する効果を示している。図２のCは非CD4-PBMCにおけるイマチニブ5μM、24時間処理による細胞生存率に対する効果を示している。図２のDは非CD4-PBMCにおけるニロチニブ5μM、24時間処理による細胞生存率に対する効果を示している。【００８０】
図２のA及びBで示すように、CD4+T細胞ではイマチニブ及びニロチニブともにHAM由来で有意に細胞死に陥り、一方NC由来CD4+T細胞では細胞死には陥らないことが理解できる。一方、非CD4-PBMCでは、図２C及びDに示すように、イマチニブはHAMで、ニロチニブはHAM及びNCとも細胞死が有意にみられた。【００８１】
一方、上記（２−２）で説明したコントロール実験の結果を図３に示した。図３に示すように、HAM由来の非CD4-PBMC、NC由来のCD4+T細胞及び非CD4-PBMCの細胞数は24時間後にかけて減少し、その後48時間後まで著変なかった。しかしHAM由来のCD4+T細胞は24時間後から48時間後にかけて増加する傾向があることが判る。【００８２】
（３）考察
以上から、イマチニブ及びニロチニブとも、HAM患者由来のCD4+T細胞を優先的に殺す効果を有することが明らかになった。HTLV-1感染CD4+T細胞を含むHAM患者のCD4+T細胞に対するABL1阻害薬の優先的殺傷効果は今までに報告はなく、世界初の知見である。詳細を後述するアレイデータからHAM治療標的としてのABL1遺伝子を抽出したが、この結論の正しさを裏付ける結果を示唆している。【００８３】
コントロール実験において、薬物処理なしで経時的観察をするとHAM患者由来のCD4+T細胞は薬物なしでは24時間後〜48時間後には増加傾向があることを考慮すると、ABL1阻害薬による処理でHAM患者由来のCD4+T細胞が減少することは、より長い時間経時的観察をするとさらに減少効果は明らかとなる可能性がある。【００８４】
一方、非CD4-PBMCの細胞死効果については、臨床的には使わない高濃度（5μM）による副作用が疑われる。通常の臨床的に使用する濃度での細胞傷害の副作用のデータはイマチニブ及び/又はニロチニブに関する既知のデータが使用できると考えられる。【００８５】
〔実験例１〕
本実験例１では、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞を用いたマイクロアレイ解析及びパスウェイ解析により、HTLV-1関連脊髄症患者由来のCD4+T細胞において、有意に発現亢進している遺伝子を含むパスウェイを同定した。本実験の解析方法のフローチャートを図４に示した。【００８６】
＜対象＞
WHO診断基準により臨床診断したHTLV-1関連脊髄症患者４例、無症候性HTLV-Iキャリア(AC)４例及びHTLV-1陰性健康者対照(NC)４例を無作為に選んだ（表２）。なお、倫理面へ配慮し、採血及び検体保存は十分な説明と文書での同意を得て行った。本研究では患者と検体は非連結匿名化し、鹿児島大学倫理委員会の承諾を得て取得した検体を用いた。
【表２】
2018025923.tif 000004
【００８７】
＜凍結PBMC検体からのCD4+T細胞セレクションとマイクロアレイ＞
約2×107個のPBMCを含む凍結検体を用い、CD4+T細胞を回収、さらにtotalRNA抽出、cDNAの合成、Cy3標識cRNAの合成と標識(Cy3-CTP，633nm励起)、Cy3標識cRNA精製、DNAマイクロアレイ(1-color Whole Human Genome44k×4plex DNA microarray, 41,000 genes (Agilent Technologies)) を用い、ハイブリダイズと洗浄を行った。その後、Agilent Microarray scannerで画像取得後、Feature Extraction Software Ver.10.5で蛍光シグナル強度を数値化したRaw dataを取得した。さらにGeneSpring GX softwareで数値データ対数変換、正規化した。【００８８】
＜アレイデータの解析方法＞
（１）パスウェイ解析による有意差発現遺伝子、有意なパスウェイの抽出
（１−１）有意差発現遺伝子の基準（3群間One-way ANOVA）
NCに比べ2 fold change(up/down)以上の変動がありかつ3群間One-way ANOVA（一元配置分散分析）でp<0.01を満たす遺伝子を有意差発現遺伝子として絞り込んだ。有意差発現遺伝子をHAMのみ、ACのみ、HAM及びAC両方でそれぞれ探索した。【００８９】
（１−２）クラスタリングとHeatmap作成
HAM、AC、NCにおける遺伝子発現パターンとHAM病態における細胞性遺伝子の意義の対応を検討すると図５のようになる。図５における1)は、3群(HAM・AC・NC) × 2群(発現亢進/低下)分割Venn図は、NC(陰性対照)の遺伝子発現強度を基準とするため、実際は2×2で4群に大別される。HAMup、HAMdown、ACup、ACdownはそれぞれ順にHAMで高発現の遺伝子、HAMで低発現の遺伝子、ACで高発現の遺伝子、ACで低発現の遺伝子の集合を示す。添字のup(高発現)、down(低発現)で示す集合を図４のVenn図では下線付き、下線無しで示している。なお、アレイデータをクラスタリング（クラスター解析）しHeatmapを作成した。【００９０】
（１−３）3群(HAM・AC・NC)×2群(高/低発現)分割Venn図とHeatmapを対応させた新規3群分割プロトコール（Trichotomy protocol）
さらに、ウイルス感染のような3群間比較による発現変動遺伝子をVenn図で表示するために新規に考案した3群(HAM・AC・NC)×2 群(高/低発現)分割Venn図をさらに作成した。【００９１】
HAM、AC、NCでの遺伝子発現パターンとHAM病態における細胞性遺伝子の意義の対応を、Heatmapと3群(HAM・AC・NC)×2群(高/低発現)分割Venn図へのマッピングへの手順に置き換えることにより、HAMでのみ高発現となっている遺伝子をHAM病態特異的責任遺伝子として、Venn図における
【数１】
2018025923.tif 000005
の部分として177遺伝子を同定した。同定した遺伝子を図６〜１１に示した。【００９２】
なお、本項で採用した3群間比較による一連の病態特異的責任遺伝子の抽出方法は、2群間のt検定による比較とは異なる新しい方法であり、３群間分割プロトコール（Trichotomy protocol）と呼称する。【００９３】
（１−４）パスウェイ解析
パスウェイ解析のワークフローを図１２に示した。有意差発現遺伝子をパスウェイ解析ソフトウェアExPlainと文献情報からキュレーター(curator)により整備されたパスウェイデータベースTRANSPATH(いずれもBIOBASE GmbH社製)を用いて少なくとも2つ以上の遺伝子が含まれる(#Hits in groupが2個以上)パスウェイを有意(P<0.05)とした。【００９４】
（２）上流解析
（２−１）転写因子結合サイト検索
転写因子結合サイト（エレメント）のデータベースTRANSPROを用い、有意差変動遺伝子のプロモーターウインドウ(-1000〜+100)を比較・検索し、重み付きのコンセンサス配列を算出し、上流の転写因子を予想した。変化のある遺伝子群(Yes-set):fold change ≧2.0とし、変化のない遺伝子群(No-set):fold change <1.1であり、かつHAM、AC及びNC群で共通して変動がない遺伝子群を探索するため、変動係数（Coefficient of variation (C.V.)、標準偏差を算術平均で割り（下記式）、相対的なばらつきを表す単位の無い数）が下位300個の遺伝子を採用した。
【数２】
2018025923.tif 000006
【００９５】
また、Yes/Noサイト頻度比>1.5，Yes-set中の結合サイト存在数に対する偶然の確率(P<0.05)、Yes-set中のプロモーター数に対する偶然の確率(p<0.05)を満たすものを転写因子結合サイトとした。【００９６】
（２−２）キーノード(Key node)解析
Yes-setで発現/制御応答を含むエッジを最大6つまで遡るキーノードをFDR(False Discovery Rate) <0.05で検索した。【００９７】
（２−３）キーノード遺伝子によるパスウェイ解析
2つ以上のキーノードを持つ(#Hits in groupが2個以上)パスウェイをTRANSPATHデータベースから抽出した(p<0.05)。【００９８】
（３）研究結果
（３−１）有意差発現変動遺伝子
HAMのみ、ACのみ、HAM及びAC両方で、特異的な有意差発現変動遺伝子をそれぞれ181個（うち高発現遺伝子177；低発現遺伝子4）、65個（うち高発現遺伝子19；低発現遺伝子46）及び56個（うち高発現遺伝子56；低発現遺伝子0）見出した。【００９９】
（３−２）有意差発現遺伝子によるパスウェイの特徴
HAMでは有意な(p<0.05)パスウェイは12個みられたが、TGF-β/SMADに関与する1つを除いた11個すべてCaspaseによるアポトーシス制御に関与するものであった。これら11個の経路すべてに同一遺伝子であるABL1(ABL proto-oncogene 1, non-receptor tyrosine kinase, Gene ID:25) が関与していた（図１３）。なお、図１３において、項目「Pathway ID of TRANSPATH database」は、文献報告の存在するものを人手による判断（curate）を経て作成されたシグナル伝達経路（パスウェイ）のデータベースであるTRANSPATHデータベース(BIOBASE GmbH社製)のIDである。図１３において、分子名の略語は以下を意味している。
ABL-1a: c-abl oncogene 1, non-receptor tyrosine kinase isoform a; 
ABL-1b: isoform b; 
TOPBP1: DNA topoisomerase II binding protein 1; 
RAD52：DNA repair protein RAD52 homolog (S. cerevisiae) ; 
p73α: tumor protein p73 isoformα; 
Ubc9: UBE21 (ubiquitin-conjugating enzyme E2I) ; 
Ran: GTP-binding Ran (ras-related nuclear protein); 
Smurf-1: E3 ubiquitin-protein ligase SMURF1; 
cIAP-2: BIRC3 (a member of IAP family that inhibit apoptosis by binding TRAF1 and 2)【０１００】
また、図１３において、項目「#Hits in group」は、パスウェイ内に存在する遺伝子リスト中の遺伝子数を意味している。図１３において項目「Group size」はパスウェイ内に存在する遺伝子、タンパク質、代謝物質などの全体の数を意味している。図１３において項目「#Hits expected」は遺伝子リストに偶然含まれる可能性のある遺伝子数を意味している。図１３において項目「P-value」は、パスウェイ内に存在する遺伝子リスト中の遺伝子が偶然含まれる可能性を含まれる場合、含まれない場合の2×2分割表について行・列要因の独立性をFisher正確性両側検定(Two-tailed Fisher's exact test) で検定した値を意味している。なお、図１３には、P <0.05の有意のパスウェイをP値が小さい順にHAM 病態特異的パスウェイとして示している。【０１０１】
ACではCaspaseよりも上流にある細胞性ストレス関連のMAPK経路の遺伝子を含む2個の有意なパスウェイが抽出された（詳細は省略）。また、HAM・ACで共通した有意な（2個以上の遺伝子がヒットする）パスウェイは認められなかった。【０１０２】
（３−３）上流解析
（３−３−１）転写因子結合サイト検索
HAM特異的遺伝子プロモーター領域、AC特異的遺伝子プロモーター領域からコンセンサス配列を作成し、転写因子結合サイトのデータベースと照合したところ、HAMでは56個、ACでは21個の転写因子が変動発現遺伝子上流に予想された。HTLV-1との関連をデータベースで検索すると、HAMではHTLV-1との関連が既知のもの（C/EBP，ATF2(CREB2)，GATA1,3など）を除くとほとんど関連が知られていない転写因子であり、HAM及びACに共通したものが散見された（詳細は省略）。【０１０３】
（３−３−２）キーノード解析
HAM特異的遺伝子群から予想したキーノード解析では、CREBのリン酸化キナーゼのひとつCaMKII、アポトーシス関連遺伝子（Fas，Daxx）、TGF-βR、Jak1・2、p38MAPK、HTLV-1との関連が知られているアダプター分子Crk、またインスリン受容体(InsR)など23個が抽出された。【０１０４】
ACのキーノード解析では、IFN-α1、IL-4R、IL-10R、IL-22Rなどサイトカインと受容体、Jak3、TykなどJak/Tykキナーゼなど47個が抽出された。【０１０５】
（３−３−３）キーノード遺伝子によるパスウェイ解析
キーノード分子を含む有意なパスウェイがHAMでは66個、ACでは65個抽出された。HAMではインスリン受容体からリン酸化シグナルに関するパスウェイ、Jak-STAT系、p38MAPKのパスウェイが、ACではインスリン受容体からリン酸化シグナルに関するパスウェイの他、Jak3、Tyk2、SHP-1、SHP-2、CAS、CrkLなど比較的細胞膜近くの分子に関するパスウェイが有意だった（詳細は省略）。【０１０６】
（４）考察
Tattermusch S, Skinner JA, Bangham CR. et al. PLoS Pathog. 2012 Jan;8(1):e1002480. Systems biology approaches reveal a specific interferon-inducible signature in HTLV-1 associated myelopathy（以下、参考文献）には、HAMにおけるアレイデータが報告されている。参考文献によれば、HAMでは末梢血白血球でIFN誘導性遺伝子(STAT1及び2、TAP1、CXCL10(IP-10)、IFI35など)の過剰発現が特徴であり単球、好中球でも同様と報告されている。また、参考文献では、パスウェイ解析の事実上の標準的ソフトウェアであるIngenuity(Ingenuity Systems社製)を用いているが、これでは上流解析はできない。本実験例で使用したExplain(TRANSPATH, TRANSFACデータベース含む)は上流解析が可能である（Kel A., Voss N., Wingender E., et al. BMC Bioinformatics. 2006, 7(Suppl 2):S13. Beyond microarrays: Finding key transcription factors controlling signal transduction pathways）。また、本実験例では、末梢白血球全体でなくHTLV-1の主な感染源であるCD4+T細胞を濃縮し検討するなど方法が異なり、その結果、結論も違いがみられた。【０１０７】
HAM特異的変動遺伝子によるパスウェイでは、ABL1の関与したCaspase関連のアポトーシス及び上流のストレス応答関連パスウェイが特徴的である。実際のHAM脊髄の病理でCaspaseが観察されることと矛盾しない結果と考えられた。【０１０８】
これに対しACではMAPKシグナル経路上流のMEKK2 (MAPK kinase kinase 2)などストレス応答のパスウェイが特徴的でHAMと異なりアポトーシスに陥っていないことが示唆された。【０１０９】
上流解析のうち転写因子結合サイト検索では，HAM、ACともHTLV-1との関連が文献的に知られていない転写因子が多く、HTLV-1の病的なシグナル伝達経路が十分検討されていないと考えられた。【０１１０】
HAMのキーノード解析では、HAM・ACのキーノードから4ノード以内の接続する遺伝子（connecting gene）中に、転写因子CREBは含まれたが、ATLのシグナル伝達で重要なNF-κBは含まれておらず、HAMは炎症やサイトカインの下流であるJAK-STAT系に関与するCREBとの関係が、ATLは細胞増殖に関連するNF-κBとの関係がそれぞれシグナル伝達上で深いことを反映していると考えられる。これは特異的変動遺伝子による特異的パスウェイでも同様だった。【０１１１】
キーノード分子を用いた上流のパスウェイでinsulin受容体からのシグナルがHAM及びAC共に抽出されたが、これは一般的にリン酸化シグナルのかなり上流にありエネルギーを供与するとされている。【０１１２】
要約すると、本実験例では末梢血CD4+T細胞でHAM病態特異的責任遺伝子として抽出された177遺伝子中のABL1は、HAM病態特異的パスウェイとして抽出されたものである。上流解析では少数の遺伝子には収束せず、HAMの遺伝子あるいは分子標的治療法として有望な遺伝子は他に見つからなかった。【０１１３】
またABL1は、HAM脊髄と同様なCaspaseなどのアポトーシス経路のパスウェイに関する遺伝子であり、従来のHAM脊髄での病理学的知見とも矛盾しないことから、ABL1を阻害標的とするABL1阻害薬はHAMの遺伝子あるいは分子標的治療法となる可能性が考えられた。【０１１４】
（５）結論
HAM末梢血CD4+T細胞を用いたアレイデータを用いて抽出したHAM病態特異的責任遺伝子、またHAM病態特異的パスウェイから、HAM治療の有望な標的としてABL1チロシンキナーゼを同定した。【０１１５】
〔実施例２〕
本実施例では、生細胞のみにおけるHTLV-1プロウイルス量（PVL）を定量できる新規定量法 PMA（propidium monoazide）-HTLV-1 viability PCRを開発し、この手法を用いることでABL1阻害薬が生細胞中HTLV-1プロウイルス量減少効果を有するか検討した。通常のPVL測定法では、死細胞と生細胞のPVLをそれぞれ区別して測定することができず、両者について一括してPVLを測定することとなる。【０１１６】
新規定量法 PMA-HTLV-1 viability PCRは、詳細を後述の実験例２にて説明するが、従前公知であったPMA Viability PCR（Nocker A. et al. J Microbiol Methods 2006. 67: 310-320）に基づいている。【０１１７】
（１）PMA-HTLV-1 Viability PCR によるABL1阻害薬のアッセイ
（１−１）実験の準備
（１−１−１）対象・細胞
液体窒素中冷凍保存されているHAM由来16例のPBMCを用いた。【０１１８】
（１−１−２）PMA処理・光クロスリンキング
PMA処理の方法は、詳細を後述するPMA-HTLV-1 viability PCRと同様である。PMAストック液（20mM、-20℃遮光冷凍保存）を最終濃度50μMとなるように細胞サンプルに添加し、室温、5分間、暗所で（アルミホイルで包んで）チューブをインキュベートした（時々チューブを混合するため指ではじく）。【０１１９】
光クロスリンキングはすべてハロゲンランプ光クロスリンカーを用いて家庭用交流電源100Vで行った。細胞検体の容量はPBSを適宜加えて調製し200μLとし、暗所にてハロゲンランプから20cm離した位置で5分間照射した。サンプルの温度が37℃以上に上昇しないように照射中は空冷した。時々サンプルチューブを指ではじいた。【０１２０】
（１−１−３）薬物（イマチニブ及びニロチニブ）
イマチニブ及びニロチニブの製品添付文書にあるABL1 50%阻害濃度（IC50）、体内動態検討データでのCmax濃度のデータと分子量から、IC50としてイマチニブ600nM、ニロチニブ30nM、Cmaxとしてイマチニブ5μM、ニロチニブ3μMを検討した。【０１２１】
（１−２）実験プロトコール
（１−２−１）細胞検体の洗浄と細胞濃度カウント
凍結PBMC検体を37℃湯浴で融解した後、PBSで2回、300×gで洗浄し、ペレットをPBS 1mL中に懸濁し氷上に置いた。Trypan Blue排除法とヘモサイトメーターで細胞濃度をカウントした。【０１２２】
（１−２−２）薬物未処理DNAサンプルの処理（T=0h）
5×105〜1×106個程度の細胞をエッペンドルフチューブに2本取り分け、溶液量をPBSを適宜加え、容量200μLとした。一方はPMA処理・光クロスリンキングを行い、もう一方はこの処理を行わず、両者ともDNeasy Blood & Tissue Kit (QIAGEN)でDNAを抽出した。【０１２３】
PMA未処理の方はSample No-D(Drug)-P-、PMA処理した方のDNAはSample No-D+P+と命名した。【０１２４】
（１−２−３）薬物処理（イマチニブ及びニロチニブ）
各細胞検体の細胞懸濁液の残った液に細胞培地RPMI1640（Fetal calf serum 10%、Penicillin-streptomycn 1%添加したもの）を約7.5mL加え合計8.0mL+αとしておき、ポリスチレン製6ウェルプレートに1細胞検体当たり4ウェルを使って約2000μLプレーティングした。1細胞検体当たりウェル内最終濃度がイマチニブ 600nM或いは5μM、ニロチニブ30nM或いは3μMとなるように添加した。【０１２５】
（１−２−４）インキュベート
薬物を添加したらシェーカーで軽く振盪してから37℃、5%CO2インキュベーター内でインキュベート開始した。【０１２６】
（１−２−５）T=6hでのハーベストとPMA処理、DNA抽出
T=6hで各ウェルの細胞懸濁液を半分程度ハーベストし、エッペンドルフチューブに取り、3,500rpm×10分間で遠沈し、上清を捨て、ペレットをPBS1mLで再懸濁させ、もう1回3,500rpm×10分間で遠沈し、上清を捨てて洗浄した。PBSを加え200μLの容量とし、全部の検体をPMA処理及び光クロスリンキングを行った後、再度PBSで洗浄し、DNeasy Blood & Tissue Kit (QIAGEN)でDNAを抽出した。【０１２７】
DNAサンプル名は、Sample No-Imatinib600nM-6hなどと命名した。【０１２８】
（１−２−６）T=12hでのハーベストとPMA処理、DNA抽出
上記（１−２−５）で説明したT=6hのときと同様に行い、DNAサンプル名は、Sample No-Imatinib600nM-12hなどと命名した。【０１２９】
（１−２−７）DNA濃度測定とWorking solutionの調製
DNA濃度はND-1000 (Thermo Fisher Scientific社製) により測定し、リアルタイムPCRをTriplicateで行うのに十分な量（10ng/μL×Triplicate以上）を調製した。使用するまで-20℃に凍結保存した。【０１３０】
（１−２−８）TaqMan プローブを用いたReal-Time PCRによる測定（Triplicate）
TaqMan Universal Master Mix II (#4440044, Thermo Fisher Scientific社製)のプロトコール（合計25μLのPCRの系）に従い、20μM Forward Primer、Reverse Primer、8μM TaqMan Probe、2×Universal Master Mix II、D2Wを混合し、MicroAmp Fast 96-well Reaction Plate (0.1mL) (REF 4346907, Applied Biosystems社製）、MicroAmp Optical Adhesive Film (P/N 4311971, Applied Biosystems社製) を用いてTriplicateの各ウェルに25μLずつピペッティングした。【０１３１】
スタンダード曲線作成のためのスタンダード希釈系列は、pXについてNTC(No Template Control)、2 copies/μL(5μLで10 copies)、20 copies/μL(同100 copies)、200 copies/μL(同1000 copies)、2000 μL(同10000 copies) の各5点から作成した。【０１３２】
サーマル・サイクルプログラムは、StepOne PlusリアルタイムPCRシステム（Applied Biosystems社製）とStepOne software ver.2.3を用いて、Hold stage 1 cycle: 50℃×2分、95℃×10分、Amplification 45 cycles: 95℃×15秒、60℃×1分で行った。【０１３３】
（１−２−９）PMA-HTLV-1 viability PCRの指標の計算方法
ABL1阻害薬処理によるCτ 延長効果の指標
【数３】
2018025923.tif 000007
及びABL1阻害薬処理によるHTLV-1ウイルス量減少効果の指標
【数４】
2018025923.tif 000008
を算出するため、T=0でのDNAサンプルのD−P+サンプル群とT=6h及びT=12hでの各薬物・濃度で割り振られた細胞由来のDNAサンプル（D+P+群）とから上記指標を算出した。【０１３４】
（１−２−１０）検定
各薬物及び濃度でまとめ、上記指標を時系列（T=0h、6h及び12h）、薬物毎の濃度間、濃度（IC50及びCmax）毎の薬物間などで対応のあるt検定（Paired t-test）で検定を行った。すべてサンプルはN=16で検討した。【０１３５】
（２）アッセイ結果
（２−１）PMA-HTLV-1 viability PCRによるABL1阻害薬のアッセイの結果
ABL1阻害薬処理によるCτ延長効果の指標ΔCτDrug及び生細胞中pXコピー減少率（pX decrease rate）(%)を算出し、算出結果を表３にまとめた。
【表３】
2018025923.tif 000009
【０１３６】
（２−２）ΔCτDrugによるABL1阻害薬の検討
（２−２−１）時系列での検討（図１４）
結果を図１４に示した。図１４においては、T=0hとの差を*P<0.05, **P<0.01で有意; T=12hについては6hとの差も† P<0.05, ‡P<0.01で有意として示した。有意であることを示す*, **, †, ‡の記号に続く番号はそれぞれ以下に示す危険率である:1) 7.88E-05; 2) 2.01E-07; 3) 2.56E-12 ; 4) 6.30E-10 ; 5) 1.71E-10 ; 6) 0.0027 ; 7) 0.0014 ; 8) 0.85; 9) 8.17E-15; 10) 0.0071; 11) 0.0014; 12) 0.069。記号が前にない番号は有意ではない(N=16, Paired t-test)。【０１３７】
図１４に示すように、イマチニブ（600nM或いは5μM）、ニロチニブ（30nM或いは3μM）のいずれもT=0に比べてT=6hでもT=12hの時点でも危険率1%以下で有意にCτ延長効果がみられた。T=12hの時点ではT=6hの時点とも比較し、イマチニブ600nM、ニロチニブ30nMという低濃度（IC50）の方が有意にT=6hよりもCτ延長効果がみられ、高濃度（Cmax）では両者とも有意ではなかった。【０１３８】
（２−２−２）濃度間比較（図１５、図１６）
イマチニブを使用したときの結果を図１５に示した。図１５に示すように、イマチニブ600nM vs 5μMでは有意差はみられないもののT=6hでもT=12hでも低濃度（600nM）の方が高濃度（5μM）よりもCτ延長効果がやや大きい傾向がみられた。【０１３９】
ニロチニブを使用したときの結果を図１６に示した。図１６に示すように、ニロチニブ30nM vs 3μMではT=6hでもT=12hでも低濃度（30nM）の方が高濃度（3μM）よりもCτ延長効果が危険率1%以下で有意に大きかった。【０１４０】
（２−２−３）薬剤間比較（図１７、図１８）
IC50同士（イマチニブ600nM vs ニロチニブ30nM）で比較した結果を図１７に示す。図１７に示すように、T=6hでもT=12hでもイマチニブ600nMよりもニロチニブ30nMの方がCτ延長効果が危険率1%以下で有意に大きかった。【０１４１】
高濃度Cmax同士（イマチニブ5μM vs ニロチニブ3μM）で比較した結果を図１８に示す。図１８に示すように、T=6hでもT=12hでも有意差はなかった。【０１４２】
（２−３）生細胞中pXコピー減少率（pX decrease rate）(%) によるABL1阻害薬の検討
（２−３−１）時系列での検討（図１９）
結果を図１９に示した。図１９においては、T=0hとの差を*P<0.05, **P<0.01で有意; T=12hについては6hとの差も† P<0.05, ‡P<0.01で有意として示した。有意であることを示す*, **, †, ‡の記号に続く番号はそれぞれ以下に示す危険率である: 1) 1.97E-07; 2) 1.71E-10; 3) 0.0027; 4) 2.01E-07; 5) 0.0014; 6) 0.846; 7) 2.56E-12; 8) 8.17E-15; 9) 0.0071; 10) 6.30E-10; 11) 0.0014; 12) 0.069。記号が前にない番号は有意ではない(N=16, Paired t-test)。【０１４３】
図１９に示すように、イマチニブ（600nM或いは5μM）、ニロチニブ（30nM或いは3μM）のいずれもT=0に比べてT=6hでもT=12hの時点でも危険率1%以下で有意に生細胞中pXコピー減少効果がみられた。T=12hの時点ではT=6hの時点とも比較し、イマチニブ600nM、ニロチニブ30nMという低濃度（IC50）の方が有意にT=6hよりも細胞中pXコピー減少効果がみられ、高濃度（Cmax）では両者とも有意ではなかった。【０１４４】
低濃度（IC50）での各薬物での生細胞中pXコピー数減少率は、T=6h、12hの順に、イマチニブ600nMでは50.35％、66.37％、ニロチニブ30nMでは69.51％、78.00％と顕著にプロウイルス量を減少させることが明らかとなった。【０１４５】
（２−３−２）濃度間比較（図２０、図２１）
イマチニブを使用したときの結果を図２０に示した。図２０に示すように、イマチニブ600nM vs 5μMにおいて、T=6hでは有意差はみられないものの低濃度（600nM）の方が高濃度（5μM）よりも生細胞中pXコピー数減少率がやや大きい傾向がみられた。T=12hでは有意に低濃度（600nM）の方が高濃度（5μM）よりも生細胞中pXコピー数減少率が大きかった。【０１４６】
ニロチニブを使用したときの結果を図２１に示した。図２０に示すように、ニロチニブ30nM vs 3μMにおいては、T=6hでもT=12hでも低濃度（30nM）の方が高濃度（3μM）よりも生細胞中pXコピー数減少率が危険率1%以下で有意に大きかった。【０１４７】
（２−３−３）薬剤間比較（図２２、図２３）
IC50同士（イマチニブ600nM vs ニロチニブ30nM）で比較した結果を図２２に示す。図２２に示すように、T=6hでもT=12hでもイマチニブ600nMよりもニロチニブ30nMの方が生細胞中pXコピー数減少率が危険率1%以下で有意に大きかった。【０１４８】
高濃度Cmax同士（イマチニブ5μM vs ニロチニブ 3μM)で比較した結果を図２３に示す。図２３に示すように、T=6hでは、ニロチニブ3μMの方がイマチニブ5μMよりも有意に生細胞中pXコピー数減少率が大きかった。T=12hでは有意差はなかった。【０１４９】
（３）考察
上記（２）で示したように、PMA-HTLV-1 viability PCRによるABL1阻害薬のアッセイにより、Cτ延長効果の指標であるΔCτDrug及び生細胞中pXコピー減少率（pX decrease rate）(%)ともに、薬物未処理に比べてABL1阻害薬で処理すると、生細胞中のHTLV-1プロウイルス量が減少することを明らかにすることができた。【０１５０】
これらABL1阻害薬の効果は、T=6h、12hと時系列的にも減少効果は有意に継続することがわかった。実施例１の図３でHAM、NC由来CD4+T細胞、非CD4-PBMCの薬物未処理の状態におけるin vitro培養時の細胞濃度の経時的変化を示したが、これでみたようにin vitroでは、すなわち中和抗体などがない体外ではHAM由来CD4+T細胞はT=24h〜48hでSpontaneous proliferation を起こして自然に増殖すること、すなわちプロウイルス量が拡大するという性質があることを考えると、ウイルス減少効果が比較的長時間継続するとHAM治療には大きな長所となることが期待できる。【０１５１】
またイマチニブよりもニロチニブの方が、濃度が同程度（IC50同士）では有意に効果が高かった。これは、ニロチニブがより特異的な第２世代の薬物であることと合致していると考えられる。【０１５２】
同一薬物ではイマチニブ及びニロチニブともに低濃度（IC50）の方が高濃度（Cmax）よりも有意に生細胞中ウイルス減少効果が高いと考えられる結果だった。ABL1チロシンキナーゼがHAMでの病態特異的責任遺伝子として、またHAM病態特異的パスウェイに関与する遺伝子として抽出され、さらにHAMのCD4+T細胞におけるアポトーシス/サバイバルに関与する遺伝子としてみつかったこと、ABL1は細胞内でさまざまなイベントに関与する多機能な分子であることなどを考慮すると、これまでの実験結果が示すようにABL1阻害薬を低濃度処理すると細胞死の方向に強く向かうことが理解できる。【０１５３】
生体内では細胞膜が壊れたCD4+T細胞はただちにマクロファージが認識して貪食するが、in vitroの培養系ではマクロファージはほとんどいないことを考慮すると、ABL1阻害薬を体内投与した場合には、本実施例で示したin vitroにおける生細胞中ウイルス量減少効果がそのまま反映されるような臨床的検査結果が得られる可能性が期待できる。【０１５４】
ABL1阻害薬は既に述べたように慢性骨髄性白血病（CML）の臨床応用されている分子標的薬である。HAMに対しHTLV-1プロウイルス量減少目的で新たな適応追加が期待される。【０１５５】
〔実験例２〕
本実験例２では、生細胞中のみでのPVL新規定量法 PMA-HTLV-1 viability PCR を説明する。【０１５６】
[PMA viavility PCR]
まず、基礎となるPMA viavility PCRの概略を説明する。PMA（propidium monoazide）とは、膜非透過性、核酸（DNA/RNA）結合性蛍光色素で、azide基に光反応性がある。PMA Viability PCRとは2006年に環境学的検体、食品などの検体における微生物が生きているかどうかを判定する目的でNockerらにより考案された（Nocker A. et al. J Microbiol Methods 2006. 67: 310-320）。【０１５７】
PMAは、膜統合性（非対称性）が喪失した、死にかけている細胞又は死んだ細胞（併せて死細胞）に入り、二重鎖DNAに優先的に結合する。一方、PMAは、膜統合性を有する生細胞内には入り込まない。【０１５８】
二重鎖DNAに結合したPMAは、吸収波長464nm(ほぼ470nm)を照射することで、で光クロスリンク(Photo-crosslinking)によりDNA鎖に不可逆的に結合する。一方、結合しなかったPMAは光分解(photolysis) する。そして、抽出したDNAを鋳型に定量PCR (qPCR) を行うと、PMAが結合したDNAを鋳型とするPCRは阻害され、PMAと結合していない生細胞由来のDNAのみ鋳型としてPCRが進行する。このように、鋳型となるDNAのなかにPMAが結合したDNAが含まれると、定量PCRにおける閾値に到達するサイクル数（Cτ値）は大きくなる（延長する）。よって、生菌（生細胞）が多いとPMAが結合していないDNAが多いのでPCRがかかりCτ値は小さく、生菌（生細胞）が少ないとCτ値は大きくなる（延長する）。【０１５９】
PMAのPCR阻害効果を検討するための指標として、Nockerらの原著（Nocker A. et al. J Microbiol Methods 2006. 67: 310-320）では、PMA未処理検体のCτから同一検体のPMA処理検体のCτを差し引いた値（負になる）をΔCτとして下向きに表示して用いている（下記式）。
【数５】
2018025923.tif 000010
Cτw/o PMA：PMA未処理後抽出DNAのPCRで測定したCτ値
Cτwith PMA：同一細胞サンプルのPMA処理後DNAのPCRで測定したCτ値【０１６０】
[PMA-HTLV-1 viability PCR]
本実験例では、生細胞中のみでのPVL新規定量法（PMA-HTLV-1 viability PCRと呼称する）を提案する。PMA viavility PCRのプロトコールと計算理論を拡張した後にPMA-HTLV-1 viability PCRを導入する。【０１６１】
（１）PMA viability PCRのプロトコールと計算理論の拡張
（１−１）PMA viability PCRのプロトコールの拡張
PMA viability PCRのプロトコールでは、通常のリアルタイムPCR絶対法と異なり、標的核酸の標準品希釈系列を用いた標準曲線を作成しない。本実験例では、ここで標的核酸の標準品とその希釈系列、標的核酸に対するプライマーセット及びTaqManプローブを用いてリアルタイムPCR絶対法に準じたプロトコールを行う場合を考える。【０１６２】
測定対象となる細胞を２分割し、PMA処理しないもの(w/o (without) PMA)、PMA処理したもの(with PMA)とし、DNA抽出し、リアルタイムPCR絶対法に準じたプロトコールに従い標的核酸のスタンダードと、測定対象DNA検体の標的核酸コピー数を三重測定（Triplicate）で測定するものとする。【０１６３】
（１−２）PMA viability PCRの計算理論の拡張
リアルタイムPCRでは一般に増幅産物を意味する蛍光強度は最初の1〜最大10サイクルまではノイズレベルでサンプルブランクとみなし、それらの標準偏差(Standard deviation:SD) を算出し、10SDを閾値(Threshold)とする。閾値を初めて最初に上回るサイクル数をCycle threshold (Cτ)値とする。リアルタイムPCRのプロトコールでアプライするDNA量は一定量であるが、その中の標的初期鋳型DNA量がPCR開始時に多いとCτ値は小さく、標的初期鋳型DNA量が少ないとCτ値は大きくなる。【０１６４】
これらの関係と細胞検体のPMA処理の有無を含め、PCRの増幅回数-増幅産物量（実数）プロット、Cτ-遺伝子相対発現コピー数（log表示）プロット中にそれぞれ図示すると、図２４及び図２５のようになる。【０１６５】
（１−２−１）PMA viability PCR における増幅回数(サイクル数)−増幅産物量(実数)プロット（図２４）
Nocker AらによるPMA viability PCRの原著 (Nocker A. et al. J Microbiol Methods 2006. 67: 310-320) ではPMAのPCR阻害効果を検討するための指標として、PMA未処理検体のCτから同一検体のPMA処理検体のCτを差し引いた値（負になる）をΔCτとして下向きのグラフに表示して用いている。【０１６６】
ここで、リアルタイムPCRにおける増幅回数(サイクル数)−増幅産物量(実数)プロット上でさらにΔCτの表示を試みると図２４のように表示できる。PMA処理(-)ではCτ値は小さいがPMA処理(+)では生細胞DNAのみにより増幅産物量曲線が立ち上がりCτ値は遅延し（大きくなり）、死細胞数に依拠するΔCτは小さい方のPMA処理(-)Cτw/o PMA値から大きい方のCτwith PMA値を引いて拡大した負の値になる。【０１６７】
（１−２−２）PMA viability PCRにおけるCτ−遺伝子相対発現コピー数(log表示)プロット（図２５）
図２４のΔCτは、PMA VIABILITY PCRに加えてさらに同時に標的核酸配列の標準品とそれに対するTAQMANプローブを用いた絶対法で標準曲線（検量線回帰式）を得たとする。この標準曲線を用いてY軸(Cτ)上に図２５のようにΔCτをプロットできる。【０１６８】
さらにX軸上の遺伝子相対発現コピー数(log表示)の軸上でPCR時にアプライした初期鋳型コピー数を
Iw/o PMA：PMA処理(-)検体でPCRによりCτw/o PMA値だった時の初期鋳型量（コピー数）(log表示)
Iwith PMA：PMA処理(+)検体でPCRによりCτwith PMA値だった時の初期鋳型量（コピー数）(log表示)
とするとき、ΔCτと同様に負の値として初期鋳型量（コピー数）減少分：ΔI=Iw/o PMA−Iwith PMAを新たに定義し図示できる。【０１６９】
なお、標準曲線から算出した次式を用いてΔIを計算することもできる。
【数６】
2018025923.tif 000011
【０１７０】
（２）生細胞のみにおけるHTLV-1プロウイルス量（PVL）新規定量法 PMA-HTLV-1 viability PCR
通常のTaqMan法によるPVL測定法（Nagai M. J Neurovirol. 1998 Dec;4(6):586-93.）は、生細胞、死細胞を含むPBMCからDNA抽出キットにより精製したDNAを鋳型に、標的遺伝子pX、内部対照遺伝子β-actinに対するTaqManプローブ、プライマーセットによりリアルタイムPCRを行う。この方法では生細胞、死細胞由来のHTLV-1プロウイルス量（PVL）は原理的に区別できない。【０１７１】
そこで生細胞のみのPVLを測定する方法があれば、抗HTLV-1候補薬処理の有無により生細胞PVL量を比べることで抗HTLV-1候補薬の効果を検討することが可能となる。生細胞でのPVLの減少を示すために、Dead cell removal kit （Miltenyi Biotec 130-090-101）のようなAnnexin V（膜GPIアンカー構造であるPhosphatidyl serineやCa2+と結合する抗凝固蛋白）をコンジュゲートしたビーズを詰めたカラムで死細胞を除去する方法では、細胞単位で死細胞が除去され、ハーベストできるDNA量が顕著に減少してしまい、PVL測定に必要なゲノムDNAの量と質を確保することは非常に困難となる。このためこの方法では、抗HTLV-1候補薬処理をする際に低い薬剤濃度で処理せざるを得ず、抗HTLV-1候補薬の効果の検討で有意差をみいだすことが困難になってしまうという二律背反に陥ってしまう。【０１７２】
そこで細胞レベルではなく、DNAレベルで、即ちReal-Time PCRの段階で生細胞・死細胞由来のDNAを区別する方法として、PMA-HTLV-1 viability PCRを提案する。【０１７３】
（２−１）PMA viability PCR を拡張したPMA-HTLV-1 viability PCR
PMA Viavility PCRを細菌その他の微生物ではなく、哺乳類であるヒト細胞に応用し、ヒトゲノムDNAに組み込まれたHTLV-1ウイルスpX領域を標的遺伝子（核酸）としてプライマーセット、TaqManプローブ、pX標準品希釈系列を用いたスタンダードをConventionalなHTLV-1 PVL定量法と同様に用い、PMA処理、DNA抽出、Cτ値測定およびΔCτ値算出といったステップを含む方法をPMA-HTLV-1 viability PCR と呼称することにする。【０１７４】
（２−２）PMA-HTLV-1 viability PCRは生細胞のみにおけるHTLV-1を測定する
PMA-HTLV-1 viability PCRは、PMA viability PCRをHTLV-1 pXに対して測定するものなので、増幅回数(サイクル数)−増幅産物量(実数)プロット、Cτ−遺伝子相対発現コピー数(log表示)プロット（図２４及び図２５）はそのまま使用できる。【０１７５】
PMA viability PCRの基本的事項はそのままPMA-HTLV-1 viability PCRについても成り立つことをHAM患者由来PBMCおよびHTLV-1感染細胞株Hut102を用いて後に示す。【０１７６】
基本的事項を再確認すると、生・死菌混合物由来DNAの場合、PMA処理(-)でのDNAを用いた通常のPCRでは生・死細胞比率に無関係に産物量は一定（Cτ値一定）だが、PMA処理(+)でのDNAを用いた、すなわちPMA viability PCRでは生細胞比率が高いと産物量が増えPCR立ち上がりが早く（Cτ値小さい）、生細胞比率が低いとPCR立ち上がりが遅い（Cτ値大きい）。つまり産物量とCτ値は負の相関関係にある。【０１７７】
PMA処理(-)のDNAを用いたPCRすなわち通常のPCRでは早い立ち上がり（あるいは大きいCτ値）は生・死細胞両方から抽出されたDNAに由来するが、PMA処理(+)のDNAを用いたPCRすなわちPMA viability PCRでの遅い立ち上がり（Cτ値遅延あるいは大きいCτ値）は生細胞のみに由来する。これにより生細胞のみでのHTLV-1 PVL定量が可能となる。【０１７８】
同様に、ΔCτは死細胞のみに由来する。これを用いて抗HTLV-1薬の効果が判定可能となる。【０１７９】
（３）PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイ
次に、PMA-HTLV-1 viability PCRを用いて、HTLV-1感染細胞を標的として殺傷する薬物（ずなわち、実施例２で使用したようなABL1阻害薬）をアッセイする場合を考える。【０１８０】
（３−１）PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイにおける増幅回数(サイクル数)−増幅産物量（実数）プロット（図２６）
（３−１−１）PMA処理によるCτ値延長ΔCτPMA、薬物処理によるCτ値延長ΔCτDrug
候補薬物処理（Drug処理）で標的細胞が死ぬと、その後にPMA処理し、標的細胞の特異的核酸（遺伝子）を増幅するPCRは阻害されCτ値（CτD+ P+）は候補薬物処理なしの時（CτD- P+）よりも大きくなる。前述したPMA処理によるCτ値延長ΔCτをΔCτPMAとし、候補薬物処理によるCτ値延長をΔCτDrugとして新たに定義する。すなわち、
ΔCτPMA=CτD- P-−CτD- P+ (Nocker A. 原著の式に相当する)
ΔCτDrug=CτD- P+−CτD+ P+
CτD- P-：Drug処理(-)、PMA処理(-)のDNAを用いたときのCτ値であり、薬物未処理検体の生細胞及び死細胞由来DNA量を反映する。
CτD- P+：Drug処理(-)、PMA処理(+)のDNAを用いたときのCτ値であり、薬物未処理検体の生細胞由来DNA量を反映する。
CτD+ P+：Drug処理(+)、PMA処理(+)のDNAを用いたときのCτ値であり、薬物処理検体の生細胞由来DNA量を反映する。【０１８１】
そして、ΔCτPMAは、細胞サンプル毎に異なる生細胞及び死細胞比率を反映するPMA処理による生細胞のみのDNA量の指標である。ΔCτDrugは、生細胞のみに由来するDNA量の薬物による減少を反映する。よって薬物の標的細胞傷害効果を判定する指標として使用できる。【０１８２】
（３−２）PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイにおけるCτ−遺伝子相対発現コピー数(log表示)プロット（図２７）
PMA viability PCRに加えて同時に標的核酸配列の標準品とそれに対するTaqManプローブを用いた絶対法でpXの標準曲線（検量線回帰式）を得たとする。この標準曲線を用いてY軸(Cτ)上に図のようにΔCτをプロットできる。【０１８３】
（３−２−１）PMA処理による初期鋳型減少ΔIPMA、薬物処理による初期鋳型コピー数減少ΔIDrug
同様にCτ−遺伝子相対発現コピー数(log表示)プロット上ではPCRにアプライした初期鋳型コピー数の減少を前に定義したΔIをΔIPMAとし、候補薬剤処理（Drug処理）による減少をΔIDrugとして新たに定義する。すなわち、
ΔIPMA=ID- P-−ID- P+
ΔIDrug=ID- P+−ID+ P+
ID- P-：Drug処理なし、PMA処理なしのDNAを用いたときの初期鋳型コピー数であり、薬物未処理検体中の生細胞及び死細胞由来DNA中初期鋳型コピー数である。
ID- P+：Drug処理なし、PMA処理ありのDNAを用いたときの初期鋳型コピー数であり、薬物未処理検体中の生細胞由来DNA中初期鋳型コピー数である。
ID+ P+：Drug処理あり、PMA処理ありのDNAを用いたときの初期鋳型コピー数であり、薬物処理検体中の生細胞由来DNA中初期鋳型コピー数である。【０１８４】
ID- P-が生細胞及び死細胞全体の中の初期鋳型コピー数なのに対し、ID- P+及びID+ P+は生細胞中のみの初期鋳型コピー数である。【０１８５】
ΔIPMAは細胞サンプル毎に異なる生細胞及び死細胞比率を反映するPMA処理による生細胞のみの初期鋳型コピー数の指標である。ΔIDrugは生細胞のみに由来する初期鋳型コピー数の薬物による減少を反映する。よって薬物の標的細胞傷害効果を判定する指標として使用できる。なお、標準曲線から算出した次式を用いてΔIPMAを計算することもできる。
【数７】
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【０１８６】
（３−２−２）生細胞中標的遺伝子コピー数減少率(Target gene decrease rate in live cells) (%) と生細胞中標的遺伝子コピー数残存率(Target gene survival rate in live cells) (%)
PMA-HTLV-1 viability PCRによるHTLV-1感染細胞傷害性薬物のアッセイでは、候補薬物処理（Drug処理）により減少した生細胞中の標的核酸（ここではHTLV-1 pX遺伝子すなわちウイルス量）コピー数の減少率(%)を元来あった生細胞のみにおける初期鋳型コピー数ID- P+に対する比率として、生細胞中標的遺伝子コピー数減少率(Target gene decrease rate in live cells) (%)を定義し計算できる。これによりアッセイしたい薬物の標的核酸（ここではHTLV-1ウイルス量）減少効果の指標となり効果が判定できる。
【数８】
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【０１８７】
上記式から判るように、100−Target gene survival rate in live cells (%)で求まる値は、生細胞中標的遺伝子コピー数残存率である。【０１８８】
〔実施例３〕
本実施例１では、ABL1阻害薬（イマチニブ、ニロチニブ）がHAM由来のCD4+T細胞に対して特異的に殺傷する結果を示した。本実施例では、ABL1阻害薬（イマチニブ及びニロチニブ）が無症候性キャリア（AC）由来のCD4+T細胞に対しても特異的な殺傷効果を持つか検証した。【０１８９】
（３−１）プロトコール
本実施例では、検体として、無症候性HTLV-Iキャリア(AC)、陰性対照（NC）由来のPBMCを各4例、5×106個の液体窒素凍結保存PBMCを準備した。そして、実施例１に記載した〔細胞の準備〕と同じ方法により細胞を処理し、実施例１に記載した〔薬剤処理〕と同様な方法により薬剤処理を行った。但し、本実施例では、AC検体#1由来CD4+T細胞についてA行1〜3列に薬剤未処理ウェル懸濁液、A行4〜6列にイマチニブ5μM処理ウェル懸濁液、A行7〜9列にニロチニブ5μM処理ウェル懸濁液をそれぞれ25μLずつ3つ組で入れた。同様に、AC検体#2由来CD4+T細胞についてB行1〜9列に、AC検体#3由来CD4+T細胞についてC行1〜9列、AC検体#4由来CD4+T細胞についてD行1〜9列に入れた。また、NC検体#1由来CD4+T細胞について同様にE行1〜9列に、NC検体#2由来CD4+T細胞についてF行1〜9列に、NC検体#3由来CD4+T細胞について同様にG行1〜9列に、NC由来#4由来CD4+T細胞をH行1〜9列に入れた。【０１９０】
同様にこれらのCD4+T細胞懸濁液を同じ手順でもう一組、10列はブランクとし、A〜H行11〜19列に入れた。後者の検体の領域の各ウェルには細胞毒ジゴトニン300μM溶液2.5μLを入れて死細胞蛍光強度測定用とし、前者の生細胞領域のウェルには等量とするためPBS(-)2.5μLを入れた。【０１９１】
さらに、同様に非CD4-PBMC細胞についても、異なるNunc384-well clear polystyrene plate with non-treated surfaceプレートを準備し、AC検体#1〜4、NC検体#1〜4由来の細胞懸濁液を1〜16列D〜F行に入れ、同様にジゴトニン溶液及びPBS(-) も加えた。なお、1〜12列G行にはPBS25μLをNo cell controlとして入れた。【０１９２】
そして、実施例１と同様にして、CellTiter-Fluor Reagent及びTECAN Infinite 200M (Tecan Japan社製）で蛍光（Ex400/Em505nm）を測定した。得られた蛍光強度は、実施例１と同様に、Relative live cell signal (RLU) を検量線回帰式に代入して細胞濃度（cells/mL）を算出した。【０１９３】
（３−２）結果
薬剤未処理ウェルの細胞濃度を100とし、イマチニブ5μM処理ウェル、ニロチニブ5μM処理ウェルのそれぞれの相対濃度(%)を算出した。結果を表４に示した。なお、表4に示した数値は、生細胞濃度（cells/mL）の薬剤未処理に対する相対％を示している（相対％±標準誤差)。
【表４】
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【０１９４】
また、表４に示した結果のグラフと統計解析結果を図２８に示した。図２８において、A及びBはCD4+T細胞に関する結果であり、C及びDは非CD4-PBMC細胞に関する結果である。また、図２８においてA及びCはイマチニブ5μM処理の結果であり、B及びDはニロチニブ5μM処理の結果を示している。図２８のA〜Dにおいて、それぞれ左側にNCの結果、右側にACの結果を示している。また、A〜Dにおいてにおいて黒い棒グラフは薬剤未処理の細胞濃度（cells/mL）で100％とし、イマチニブ5μM処理の相対的細胞濃度（% cell viability）を白い棒グラフで、ニロチニブ5μM処理の相対的細胞濃度（% cell viability）を灰色の棒グラフで示した。【０１９５】
（３−３）考察
関連のあるt検定で統計解析すると、AC検体由来CD4+T細胞をイマチニブ5μM処理、ニロチニブ5μM処理すると、NCに比べて有意に細胞濃度を減少させる（それぞれP=0.011；P=0.007）ことがわかった。このような効果は非CD4-PBMC細胞ではみられず、ABL1阻害薬のHTLV-1感染細胞特異的な細胞死誘導効果であることが示唆された。【０１９６】
本実施例及び実施例１で示したように、ABL1阻害薬がHAM由来のCD4+T細胞及びAC由来のCD4+T細胞、すなわちHTLV-1感染CD4+T細胞に対して優先的に細胞死を誘導する効果を発見した。特に、本実施例において、ABL1阻害薬は無症候性キャリア（AC）由来のCD4+T細胞に対しても優先的細胞死誘導効果を持つことを世界で初めて発見したと言える。【０１９７】
〔実施例４〕
本実施例２では、死細胞を除き、生細胞のみのHTLV-1プロウイルスを定量する技術を適用して、ABL1阻害薬（イマチニブ、ニロチニブ）がHAM由来のCD4+T細胞の生細胞におけるプロウイルス量を減少させる効果を持つことが実証された。本実施例では、同ABL1阻害薬が無症候性キャリア（AC）由来のCD4+T細胞に対しても、同様にプロウイルス量減少効果を持つか検証した。【０１９８】
（４−１）プロトコール
（４−１−１）対象・細胞
液体窒素中冷凍保存されているAC由来14例の各例1×107個のPBMCを用いた。【０１９９】
（４−１−２）T=0hでのハーベスト（ABL1阻害薬未処理検体）
液体窒素中冷凍保存されている検体を37℃湯浴で融解後、約10mLのPBSで300×g、10分間遠沈にて2回洗浄し、PBS中1mL中に再懸濁し、細胞濃度をトリパンブルー排除法でカウントした。そして、各検体について約10万個のPBMCとなるように2組に取り分けた。これらのうち一方はPMA処理しないもの、他方はPMA処理するものとした。各々Sample No-Drug-P-及びSample No-Drug-P+と命名しておく。【０２００】
Sample No-Drug-P+と命名された検体には、実施例２に記載した方法と同様に、まずPMAストック液を終濃度50μMとなるよう加え、遮光下に室温、5分間、時々振盪しながらPMA処理し、ハロゲンランプ光クロスリンカーで5分間空冷しながらクロスリンキングした。PMA処理しない前者と合わせ両者ともDNeazy Blood & Tissue Kit（Cat No 69504、QIAGEN社製）を用いてゲノムDNAを抽出した。【０２０１】
（４−１−３）薬物処理
上記（４−１−２）にて2組の検体を取り分けた後の残りの細胞懸濁液に、約7mL+αの容量のRPMI1640（10% ウシ胎児血清、1% Penicilin、Streptomycin添加）を加え、ボルテックスしたのち、6-well平底ポリスチレンプレートに約2mL分注し、実施例１の濃度と同様に、イマチニブ600nM（IC50）、同5μM（Cmax）、ニロチニブ30nM（IC50）、同3μM（Cmax）となるようにイマチニブ或いはニロチニブを加えた。短時間シェーカーで混合した後、5%CO2インキュベーター内で培養した。【０２０２】
（４−１−４）T=6hでのハーベストとPMA処理、DNA抽出
実施例２に記載した方法により、T=6h以降は全検体をPMA処理及びクロスリンキングし、その後ゲノムDNAを抽出した。【０２０３】
（４−１−５）T=12hでのハーベストとPMA処理、DNA抽出
実施例２に記載した方法によりPMA処理、DNA抽出を行った。これにより、供試したAC1検体につきゲノムDNAが10サンプル、すなわち14検体から140サンプル調製された。【０２０４】
（４−１−６）DNA濃度測定、Working solutionの調製、リアルタイムPCR法及びPMA-HTLV-1 viability PCRの指標の計算方法
本実施例において、DNA濃度測定、Working solutionの調製、リアルタイムPCR法及びPMA-HTLV-1 viability PCRの指標の計算方法については、実施例２に記載した方法を適用した。【０２０５】
（４−１−７）検定
各薬物及び濃度でまとめ、上記指標を時系列（T=0h、6h及び12h）、薬物毎の濃度間、濃度（IC50及びCrnax）毎の薬物間などで対応のあるt検定（Paired t-test）で検定を行った。すべてサンプルはN=14で検討した。【０２０６】
（４−２）アッセイ結果
PMA-HTLV-1 viability PCRによるABL1阻害薬のアッセイの結果として、ABL1阻害薬処理による生細胞中pXコピー減少率（pXdecrease rate（%））を算出し、結果を表５にまとめた。
【表５】
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【０２０７】
表５に示したように、実施例２に示したHAM由来CD4+T細胞-PBMCの場合に比べるとやや成績は劣るものの、AC由来CD4+T細胞-PBMCでも、イマチニブ及びニロチニブともIC50濃度12h処理でそれぞれ約45％及び71％と未処理時に比べ大幅に生細胞中ウイルスコピー数を減少させる効果があることが証明できた。【０２０８】
（４−３）考察
以下、ΔCτDrugによる検討、生細胞中pXコピー数減少率（%）による検討は、同等なので、簡単のため後者の生細胞中pXコピー数減少率（%）のみ用いて考察した。統計学的検討は時系列での比較はPaired t-test、濃度間及び薬剤間比較はMann-Whitney U testを用い、†：P<0.05、*：P<0.01で有意を示した。【０２０９】
（４−３−１）時系列での検討（図２９）
結果を図２９に示した。図２９においてAはイマチニブ（600nM、5μM）、Bはニロチニブ（30nM、3μM）について経時的変化を検討した結果を示している。図２９に示すように、イマチニブ及びニロチニブとも、T=0hと6h及び12hとの間でいずれも危険率1%未満で有意差を認めた。イマチニブ600nM（IC50）では6hと12hとの間でも危険率1%未満で有意差を認めた。イマチニブの効果による生細胞中ウイルス減少効果の出現が6h時点でやや低いためと考えられるが、この現象がAC由来検体に特異的かどうかは更なる解析が必要である。なお、AC由来検体であっても12h後には十分な効果が出現している。【０２１０】
（４−３−２）濃度間での検討（図３０）
同一薬剤及び同時点で濃度による効果の差があるかどうかを検討した。結果を図３０に示した。図３０はイマチニブを600nMと5μMで使用したときの結果である。図３０に示したように、イマチニブの600nMと5μMの間では6hの時点において危険率1％未満で有意差を認め、5μMで使用した場合の方が600nMで使用した場合と比べて、生細胞中ウイルス減少率が高かった。たたし、図３０に示したように、12hの時点では濃度間の有意差なかった。データを示さないが、ニロチニブでは濃度間の差は6h及び12hともなかった。【０２１１】
（４−３−３）薬剤間での検討（図３１）
結果を図３１に示した。図３１においてAはIC50濃度でのイマチニブ（600nM）及びニロチニブ（30nM）間を比較した結果を示し、BはCmax濃度でのイマチニブ（5μM）及びニロチニブ（3μM）間を比較した結果を示している。図３１に示すように、イマチニブ600nM及びニロチニブ30nMは、6hの時点では危険率1%未満で有意差がみられ、12hの時点でもP値0.059といずれの時点でも、イマチニブと比べてABL特異性がより高いニロチニブを使用したほうが生細胞中ウイルス減少率が高かった。この傾向はHAM由来CD4+T細胞を使用した場合と同様であった。なお、Cmax濃度での両者はBに示したように有意差はなかった。【０２１２】
（４−３−４）HAM由来CD4+T細胞への効果とAC由来CD4+T細胞への効果の比較（図３２）
実施例２で行ったHAM由来CD4+T細胞-PBMCに対するPMA-HTLV-1 Viability PCRによるABL1阻害薬のアッセイの結果と、本実施例で行ったAC由来CD4+T細胞-PBMCに対する同アッセイの結果とを比較した結果を図３２に示した。図３２に示すグラフにおいて、6h及び12hの各区には、左から順にイマチニブ600nMの結果、イマチニブ5μMの結果、ニロチニブ30nMの結果及びニロチニブ3μMの結果を棒グラフとして示している。【０２１３】
図３２に示すように、同一時点、同一薬、同一濃度では、HAM由来CD4+T細胞に対する生細胞中HTLV-1 pXコピー数減少率が、AC由来CD4+T細胞に対する同減少率と比較して大きい傾向であった。HAMの病態機序でABL1発現亢進に基礎をおく治療薬なので、ACではHAMほど高発現ではないこととHAMほど減少率が得られないことが関連していると推測される。
しかし6hと12hとで有意に低下するなど観察した12h後まで有意な減少が継続した。ACでは12h後は未処理時（T=0h）とは有意差があり6hとは有意差がなかったが、減少傾向は継続し、ニロチニブ30nMで最大71.38%とHAMに匹敵する減少率がみられた。【０２１４】
以上のように本実施例の結果と上述した実施例３の結果を併せて考えると、イマチニブやニロチニブ等のABL1阻害薬は、AC由来CD4+T細胞における生細胞中HTLV-1ウイルスのコピー数を減少させる効果があることが証明された。【０２１５】
〔実施例５〕
〔ヒトにおける投与例〕
HTLV-1感染動物モデルは、成人T細胞白血病（ATL）様動物腫瘍モデルに比べて、これまでのところ良いモデルが樹立されていない。HAM動物モデルはさらに困難な状況である。したがって、in vivoの系において、ABL1阻害薬によるHAM改善効果や抗ウイルス効果を検証することが困難である。【０２１６】
一方、ABL1阻害薬は、慢性骨髄性白血病（Chronic myelogenous leukemia: CML）慢性期に対する臨床応用が確立した薬剤である。現在、ABL1阻害薬は、日本において当該臨床応用について保険適応となっている医薬品である。CMLは人口10万人当たり有病率1人とされる比較的まれな疾患であり、日本の抗HTLV-1抗体陽性率0.1%を考慮すると、抗体陽性CMLの症例は年間10症例程度が出現するはずである。【０２１７】
そこで、ヒトのCML患者で抗HTLV-1抗体陽性が判明し、且つ、ABL1阻害薬投与前後でPVL測定を行った症例を検索し、ABL1阻害薬投与の後にPVLの低下がみられたかどうかを検索した。その結果、1例の抗HTLV-1抗体陽性であるCML患者を発見した。当該症例は、52歳時にHAMを発症し杖歩行していた。ステロイド、IFN-αなどHAMに対する治療は行われていなかった。当該症例は、8年後、60歳時にさらにCMLを発症した。このとき、白血球27,430/μLと増多、NAPスコア低値、フィラデルフィア染色体陽性にてCMLを確定診断された。イマチニブ400mg/日内服開始し、1か月後に白血球減少のため300mg/日に減量したが現在（2017年7月）も内服継続し、CMLは分子遺伝学的寛解となっている。【０２１８】
イマチニブ400mg/日で運動機能障害度５が４となり、300mg/日へ減量後も５のままで維持され、それ以上の悪化を認めていない。当該症例について、末梢血PVLは、投薬前において２８４４コピーであり、投薬５か月後１１３８コピーに減少し、投薬１年５か月後４４８コピー/104PBMCと明らかなPVL低下が認められた。【０２１９】
本実施例では、抗HTLV-1抗体陽性であるCML患者で、ABL1阻害薬投与のHTLV-1に対する臨床応用例を示すことができた。ABL1阻害薬の効果と考えられる明らかなPVL低下効果を実際の臨床において示すことができ、また、ABL1阻害薬による重篤な副作用や予期せぬ神経学的増悪は出現せず、内服継続可能であったという貴重な知見が得られた。【０２２０】
以上、本実施例で示したように、現状では利用が困難なHTLV-1感染動物モデルの代わりに、ABL1阻害薬の臨床応用例として抗HTLV-1抗体陽性のCML患者を挙げることで、ABL1阻害薬のHTLV-1に対する治療効果を臨床的にも示唆することができた。【０２２１】
本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【手続補正書】
【提出日】平成29年12月25日(2017.12.25)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質を有効成分とするＨＴＬＶ−１関連脊髄症（ＨＡＭ／ＴＳＰ）治療薬。
【請求項２】
（削除）
【請求項３】
イマチニブ、ニロチニブ及びダサチニブからなる群から選ばれる少なくとも１つの物質を有効成分とする抗ＨＴＬＶ−１剤。
【国際調査報告】
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