(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号：１に記載のアミノ酸配列または配列番号：２に記載の塩基配列からなるＤＮＡによりコードされるアミノ酸配列から得られる連続する８〜１１アミノ酸からなり、ＨＬＡ抗原と結合して細胞傷害性Ｔ細胞に認識され得る腫瘍抗原ペプチド。
【請求項２】
ＨＬＡ抗原がＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２である請求項１記載の腫瘍抗原ペプチド。
【請求項３】
配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列より選択される、請求項１記載の腫瘍抗原ペプチド。
【請求項４】
配列番号：３〜配列番号：９、または配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列より選択される、請求項３記載の腫瘍抗原ペプチド。
【請求項５】
配列番号：３〜配列番号：２４のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンに置換され、および／またはＣ末端のアミノ酸残基がフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンに置換されたアミノ酸配列より選択される、腫瘍抗原ペプチド。
【請求項６】
配列番号：２５〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位がロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンに置換され、および／またはＣ末端のアミノ酸残基がバリンまたはロイシンに置換されたアミノ酸配列より選択される、腫瘍抗原ペプチド。
【請求項７】
配列番号：５３〜配列番号：６４のいずれかに記載のアミノ酸配列より選択される、腫瘍抗原ペプチド。
【請求項８】
請求項１〜７いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドをコードするＤＮＡの少なくとも１種を含有する組換えＤＮＡ。
【請求項９】
請求項８記載の組換えＤＮＡを発現させて得られうる組換えポリペプチド。
【請求項１０】
請求項１〜７いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドに特異的に結合する抗体。
【請求項１１】
腫瘍患者由来の単離された抗原提示能を有する細胞の表面に、ＨＬＡ抗原と請求項１〜７いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドとの複合体を提示させてなる抗原提示細胞。
【請求項１２】
請求項８記載の組換えＤＮＡ、あるいは請求項９記載の組換えポリペプチドを、腫瘍患者由来の単離された抗原提示能を有する細胞に取り込ませて得られうる、ＨＬＡ抗原と腫瘍抗原ペプチドとの複合体の提示された抗原提示細胞。
【請求項１３】
請求項１〜７いずれか記載の腫瘍抗原ペプチド、あるいは請求項９記載の組換えポリペプチドを含有してなる腫瘍の診断薬。
【請求項１４】
受託番号がＦＥＲＭ  ＢＰ−６８１８である、細胞傷害性Ｔ細胞ＯＫ−ＣＴＬ。
【請求項１５】
請求項１４記載のＯＫ−ＣＴＬを用いることを特徴とする、腫瘍抗原ペプチドの同定法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、新規な腫瘍抗原タンパク質および腫瘍抗原ペプチドに関する。さらに詳しくは、本発明は、新規な腫瘍抗原タンパク質およびその遺伝子、該腫瘍抗原タンパク質由来の腫瘍抗原ペプチド、これらの物質の誘導体、あるいはこれら腫瘍抗原タンパク質、遺伝子、腫瘍抗原ペプチドまたはこれらの誘導体を、ｉｎｖｉｖｏまたはｉｎ  ｖｉｔｒｏで利用した腫瘍の治療剤、予防剤または診断薬などに関する。
背景技術
生体による腫瘍の排除には、免疫系、特にＴ細胞が重要な役割を果たしていることが知られている。実際、ヒトの腫瘍局所には腫瘍細胞に対して傷害活性を示すリンパ球の浸潤が認められ（Ａｒｃｈ．Ｓｕｒｇ．，１２６：２００，１９９０）、メラノーマからは自己の腫瘍細胞を認識する細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）が比較的容易に分離されている（Ｉｍｍｕｎｏｌ，Ｔｏｄａｙ，８：３８５，１９８７、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１３８：９８９，１９８７、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，５２：５２，１９９２等）。また、該ＣＴＬの移入によるメラノーマ治療の臨床結果からも、腫瘍排除におけるＴ細胞の重要性が示唆されている（Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ．Ｉｎｓｔ．，８６：１１５９，１９９４）。
自己の腫瘍細胞を攻撃するＣＴＬが標的とする分子については長い間不明であったが、最近の免疫学および分子生物学の進歩により次第に明らかになってきた。すなわちＣＴＬは、Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）を用いて、腫瘍抗原ペプチドと呼ばれるペプチドと主要組織適合遺伝子複合体クラスＩ抗原（ＭＨＣクラスＩ抗原、ヒトの場合はＨＬＡ抗原と呼ばれる）との複合体を認識することにより、自己の腫瘍細胞を攻撃していることが明らかとなった。
腫瘍抗原ペプチドは、腫瘍に特有のタンパク質、すなわち腫瘍抗原タンパク質が細胞内で合成された後、プロテアソームにより細胞内で分解されることによって生成される。生成された腫瘍抗原ペプチドは、小胞体内でＭＨＣクラスＩ抗原（ＨＬＡ抗原）と結合して複合体を形成し、細胞表面に運ばれて抗原提示される。この抗原提示された複合体を腫瘍特異的なＣＴＬが認識し、細胞傷害作用やリンフォカインの産生を介して抗腫瘍効果を示す。このような一連の作用の解明に伴い、腫瘍抗原タンパク質または腫瘍抗原ペプチドをいわゆる癌ワクチンとして利用することにより、腫瘍患者の体内の腫瘍特異的ＣＴＬを増強させる治療法が可能となった。
腫瘍抗原タンパク質としては、１９９１年にＴ．Ｂｏｏｎらが初めてＭＡＧＥと名付けたタンパク質をヒトメラノーマ細胞から同定した（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５４：１６４３，１９９１）。その後、いくつかの腫瘍抗原タンパク質が、主にメラノーマ細胞から同定されている。メラノーマ抗原としては、メラノサイト組織特異的タンパク質であるｇｐ１００（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１７９：１００５，１９９４）、ＭＡＲＴ−１（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１：３５１５，１９９４）、チロシナーゼ（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ，，１７８：４８９，１９９３）などのメラノソームタンパク質、メラノーマだけでなく各種癌細胞と正常精巣細胞に発現するＭＡＧＥ関連タンパク質群（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１７９：９２１，１９９４）、腫瘍特異的なアミノ酸変異を持つβ−カテニン（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８３：１１８５，１９９６）、ＣＤＫ４（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６９：１２８１，１９９５）などが同定されている。また、メラノーマ以外の腫瘍抗原タンパク質としては、ＨＥＲ２／ｎｅｕ（Ｊ．Ｅｘｐ，Ｍｅｄ．，１８１：２１０９，１９９５）、ｐ５３（変異型）（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９３：１４７０４，１９９６）などの癌遺伝子産物、ＣＥＡ（Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ．Ｉｎｓｔ．，８７：９８２，１９９５）、ＰＳＡ（Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ．Ｉｎｓｔ．，８９：２９３，１９９７）などの腫瘍マーカー、ＨＰＶ（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５４：５９３４，１９９５）、ＥＢＶ（Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，７：６５３，１９９５）などのウイルスタンパク質などが同定されている。これらについては、総説（Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ，１８：２６７，１９９７、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８３：７２５，１９９６、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，８：６２８，１９９６等）の記述に詳しい。
腫瘍抗原タンパク質や腫瘍抗原ペプチドを腫瘍の治療や診断に応用するためには、メラノーマに比べて発生頻度が圧倒的に高い扁平上皮癌（食道癌、肺癌等）などに幅広く適応可能な腫瘍抗原の同定が重要である。これに関して、本発明者らは食道癌由来の扁平上皮癌細胞から腫瘍抗原タンパク質をコードする遺伝子のクローニングを行い、ＨＬＡの型がＨＬＡ−Ａ２４あるいはＨＬＡ−Ａ２６であるＨＬＡ抗原に結合して提示されるいくつかの腫瘍抗原ペプチドを、メラノーマ以外の腫瘍細胞から初めて同定した（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８７：２７７，１９９８、国際公開第９７／４６６７６号パンフレット）。
これらの腫瘍抗原ペプチドを実際に臨床に適用する際には、１種のみならず、複数の異なる腫瘍抗原ペプチドを使用することが好ましいかもしれない。すなわち、全ての癌細胞が共通に同一の腫瘍抗原を発現しているとは限らず、また、一つの癌細胞上に２種以上の異なる腫瘍抗原ペプチドが提示されていることを考慮すると、複数の異なる腫瘍抗原ペプチドを用いた治療がより効果的であると考えられる。事実、メラノーマにおいては、単一の腫瘍抗原由来のペプチドのみでは効果が不十分であったことから、複数のペプチドのカクテル製剤の開発が試みられている（Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，６６：１６２，１９９６、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，６７：５４，１９９６）。このような背景もあり、発生頻度の高い扁平上皮癌等に幅広く適用可能な、新たな腫瘍抗原タンパク質および腫瘍抗原ペプチドの同定が望まれている状況にある。
発明の開示
本発明は、新規な腫瘍抗原タンパク質および腫瘍抗原ペプチドを提供することを目的とする。すなわち本発明は、新規な腫瘍抗原タンパク質およびその遺伝子、該腫瘍抗原タンパク質由来の腫瘍抗原ペプチド、これらの物質の誘導体、あるいはこれら腫瘍抗原タンパク質、遺伝子、腫瘍抗原ペブチドまたはこれらの誘導体を、ｉｎ  ｖｉｖｏまたはｉｎ  ｖｉｔｒｏで利用した腫瘍の治療剤、予防剤または診断薬などを提供することを目的とする。本発明の腫瘍抗原ペプチドは、日本人の約６０％が保有しているＨＬＡ抗原であるＨＬＡ−Ａ２４に結合して提示される腫瘍抗原ペプチド、および、日本人および白人の約４０％が保有しているＨＬＡ抗原であるＨＬＡ−Ａ２に結合して提示される腫瘍抗原ペプチドを含むものであることから、多くの患者に適用可能である。さらに、ヒトの癌でもっとも多く認められる扁平上皮癌等に応用できるものであるため、新規な抗腫瘍剤としての有用性が期待される。ちなみに扁平上皮癌のうち食道癌や肺癌での扁平上皮癌は、現在の化学療法や放射線療法に比較的抵抗性を示すことが知られている。その点からも、本発明の腫瘍抗原ペプチドの開発が期待される。
本発明者らは、新規な腫瘍抗原タンパク質および腫瘍抗原ペプチドを得るために、以下の試みを行った。
まず本発明者らは、食道癌細胞株ＫＥ−４（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５５）由来のｃＤＮＡライブラリーを作製し、該ライブラリーの組換えプラスミドとＨＬＡ−Ａ２４０２（ＨＬＡ−Ａ２４の一種）ｃＤＮＡの組換えプラスミドを繊維芽細胞株ＶＡ−１３細胞（理化学研究所細胞開発銀行）にダブルトランスフェクトし、そのトランスフェクタントに対し、ＫＥ−４に対するＣＴＬであるＫＥ−４ＣＴＬ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５４）を作用させ、ＫＥ−４ＣＴＬが活性化されるか否かをＩＦＮ−γの産生量で測定するというスクリーニングを繰り返した。当該スクリーニングにより新規かつ有用な腫瘍抗原タンパク質が得られるという保証はなかったが、本発明者らは膨大なスクリーニングを繰り返した結果、最終的に、１つの腫瘍抗原タンパク質の遺伝子のクローニングに成功した。本発明者らは該遺伝子によりコードされる腫瘍抗原タンパク質を「ＳＡＲＴ−３」と命名した。このＳＡＲＴ−３の塩基配列を既知の配列と比較したところ、該ＳＡＲＴ−３の塩基配列は、ＧｅｎＢａｎｋデータベースにおいてＡｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｄ６３８７９として登録されている機能不明の遺伝子ＫＩＡＡ０１５６と１塩基相違する新規な塩基配列であった。
本発明者らはさらに、ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列中、ＨＬＡ−Ａ２４およびＨＬＡ−Ａ２に結合して提示される腫瘍抗原ペプチド部分を同定し、これらのペプチドに腫瘍抗原ペプチドとしての活性の存することを明らかにした。
本発明は、以上のような知見に基づき完成するに至ったものである。
すなわち本発明の要旨は、
（１）  配列番号：１に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質、又はそのアミノ酸配列のうち１もしくは複数のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列からなる変異タンパク質、をコードするＤＮＡ（ただし、該タンパク質および変異タンパク質は、ＨＬＡ抗原と結合して細胞傷害性Ｔ細胞により認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるものである）、
（２）  配列番号：２に記載の塩基配列からなるＤＮＡ、又はそのＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする変異ＤＮＡ（ただし、該ＤＮＡおよび変異ＤＮＡが発現して生産されるタンパク質は、ＨＬＡ抗原と結合して細胞傷害性Ｔ細胞により認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるものである）、
（３）  前記（１）または（２）記載のＤＮＡを有する発現プラスミド、
（４）  前記（３）記載の発現プラスミドによって形質転換された形質転換体、
（５）  前記（４）記載の形質転換体を培養し、発現される組換えタンパク質を回収することからなる、組換えタンパク質の生産方法、
（６）  前記（１）または（２）記載のＤＮＡによりコードされるか、または前記（５）記載の生産方法により生産される、腫瘍抗原タンパク質、
（７）  前記（１）または（２）記載のＤＮＡ、あるいは前記（６）記載のタンパク質を有効成分として含有する医薬、
（８）  前記（１）または（２）記載のＤＮＡ、あるいは前記（６）記載のタンパク質を有効成分として含有する、腫瘍の治療剤または予防剤、
（９）  前記（６）記載のタンパク質の一部よりなる部分ペプチドであって、かつＨＬＡ抗原と結合して細胞傷害性Ｔ細胞により認識され得る腫瘍抗原ペプチド、または機能的に同等の特性を有するその誘導体、
（１０）  ＨＬＡ抗原がＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２である前記（９）記載の腫瘍抗原ペプチド、または機能的に同等の特性を有するその誘導体、
（１１）  配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１０）記載の腫瘍抗原ペプチド、または機能的に同等の特性を有するその誘導体、
（１２）  配列番号：３〜配列番号：９、または配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１１）記載の腫瘍抗原ペプチド、または機能的に同等の特性を有するその誘導体、
（１３）  配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１１）記載の腫瘍抗原ペプチド誘導体、
（１４）  配列番号：３〜配列番号：９、または配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１３）記載の腫瘍抗原ペプチド誘導体、
（１５）  配列番号：３〜配列番号：２４のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンに置換され、および／またはＣ末端のアミノ酸残基がフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンに置換されたアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１３）記載の腫瘍抗原ペプチド誘導体、
（１６）  配列番号：２５〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位がロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンに置換され、および／またはＣ末端のアミノ酸残基がバリンまたはロイシンに置換されたアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１３）記載の腫瘍抗原ペプチド誘導体、
（１７）  配列番号：５３〜配列番号：６４のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含む配列より選択される、前記（１４）記載の腫瘍抗原ペプチド誘導体、
（１８）  前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドおよびその誘導体から選択される少なくとも１種を有効成分として含有してなる、腫瘍の治療剤または予防剤、
（１９）  前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体をコードするＤＮＡの少なくとも１種を含有する組換えＤＮＡ、
（２０）  前記（１９）記載の組換えＤＮＡを発現させて得られうる組換えポリペプチド、
（２１）  前記（１９）記載の組換えＤＮＡまたは前記（２０）記載の組換えポリペプチドを有効成分として含有してなる、腫瘍の治療剤または予防剤、
（２２）  前記（６）記載のタンパク質、前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、のいずれかに特異的に結合する抗体、
（２３）  腫瘍患者由来の単離された抗原提示能を有する細胞の表面に、ＨＬＡ抗原と前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を提示させてなる抗原提示細胞、
（２４）  前記（１）または（２）記載のＤＮＡ、前記（６）記載の腫瘍抗原タンパク質、前記（１９）記載の組換えＤＮＡ、あるいは前記（２０）記載の組換えポリペプチドを、腫瘍患者由来の単離された抗原提示能を有する細胞に取り込ませて得られうる、ＨＬＡ抗原と腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体の提示された抗原提示細胞、
（２５）  前記（２３）または（２４）記載の抗原提示細胞を有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤、
（２６）  ＨＬＡ抗原と前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を特異的に認識する細胞傷害性Ｔ細胞、
（２７）  前記（２３）または（２４）記載の抗原提示細胞に提示されたＨＬＡ抗原と腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を特異的に認識する細胞傷害性Ｔ細胞、
（２８）  前記（２６）または（２７）記載の細胞傷害性Ｔ細胞を有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤、
（２９）  前記（９）〜（１７）いずれか記載の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、前記（６）記載のタンパク質、あるいは前記（２０）記載の組換えポリペプチドを含有してなる腫瘍の診断薬、
（３０）  受託番号がＦＥＲＭ  ＢＰ−６８１８である、細胞傷害性Ｔ細胞ＯＫ−ＣＴＬ、ならびに
（３１）  前記（３０）記載のＯＫ−ＣＴＬを用いることを特徴とする、腫瘍抗原タンパク質または腫瘍抗原ペプチドの同定法、に関する。
本発明のＤＮＡは、新規な腫瘍抗原タンパク質をコードするものであり、配列番号：１に記載のアミノ酸配列からなるＳＡＲＴ−３タンパク質、又は該ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列のうち１もしくは複数のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列からなる変異タンパク質、をコードするＤＮＡ（ただし、該タンパク質および変異タンパク質は、ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるものである）、あるいは、配列番号：２に記載の塩基配列からなるＳＡＲＴ−３のＤＮＡ、又は該ＳＡＲＴ−３のＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする変異ＤＮＡ（ただし、該ＤＮＡおよび変異ＤＮＡが発現して生産されるタンパク質は、ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるものである）が例示される。以下、これら本発明のＤＮＡにつき順次説明する。
１）ＳＡＲＴ−３をコードするＤＮＡ
前記ＤＮＡのうち、「配列番号：１に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするＤＮＡ」、「配列番号：２に記載の塩基配列からなるＤＮＡ」とは、本発明の腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３をコードするＤＮＡである。該ＤＮＡは、後述の実施例に記載の方法によりクローニングすることができる。また、ＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｄ６３８７９において開示されている塩基配列、あるいは本明細書の配列表の配列番号：２に開示されている塩基配列の適当な部分をハイブリダイゼーションのプローブあるいはＰＣＲのプライマーに用いて、例えば食道癌細胞株ＫＥ−４（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５５）由来のｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることなどによっても、クローニングすることができる。該クローニングは、例えばＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ２ｎｄ  Ｅｄｔ．Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９８９）等に従い、当業者ならば容易に行うことができる。
２）ＳＡＲＴ−３の改変タンパク質またはアレル変異体等をコードするＤＮＡ
前記ＤＮＡのうち、「ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列のうち１もしくは複数のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列からなる変異タンパク質をコードするＤＮＡ」とは、人為的に作製したいわゆる改変タンパク質や、生体内に存在するアレル変異体等のタンパク質をコードするＤＮＡを意味し、この変異タンパク質をコードするＤＮＡは、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ第２版第１−３巻，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｅｒ  Ｌａｂｏｌａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９８９）に記載の種々の方法、例えば部位特異的変異誘発やＰＣＲ法等によって製造することができる。なお、ここで置換、欠失及び／又は付加されるアミノ酸残基の数は、上記部位特異的変異誘発等の周知の方法により置換、欠失及び／又は付加できる程度の数を指す。
３）ＳＡＲＴ−３のＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡ
前記ＤＮＡのうち、「ＳＡＲＴ−３のＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする変異ＤＮＡ」とは、例えばラット、マウス等の脊椎動物全てのＳＡＲＴ−３のＤＮＡ、またはＳＡＲＴ−３の部分タンパク質をコードするＤＮＡのような、配列番号：２に記載の塩基配列からなるヒトＳＡＲＴ−３のｃＤＮＡにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡを指す。
ここで「ストリンジェントな条件」とは、例えば、６×ＳＳＣ（２０×ＳＳＣは、３３３ｍＭ  Ｓｏｄｉｕｍ  ｃｉｔｒａｔｅ、３３３ｍＭ  ＮａＣｌを示す）、０．５％ＳＤＳおよび５０％ホルムアミドを含む溶液中で４２℃にてハイブリダイズさせた後、０．１×ＳＳＣ、０．５％ＳＤＳの溶液中で６８℃にて洗浄するような条件、あるいは、中山ら著、バイオ実験イラストレイテッド▲２▼遺伝子解析の基礎、ｐ．１４８−１５１、秀潤社、１９９５年、に記載の条件等を指す。
これら変異ＤＮＡは、例えば配列番号：２に記載のＤＮＡとのハイブリダイゼーションなどによりクローニングされるものであるが、具体的なｃＤＮＡライブラリーの作製、ハイブリダイゼーション、ポジティブコロニーの選択、塩基配列の決定等の操作はいずれも公知であり、先のＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ等を参照して行うことができる。ハイブリダイゼーションに用いるプローブとしては、例えば配列番号：２に記載の塩基配列を有するＤＮＡが挙げられる。
以上１）〜３）に挙げたＤＮＡのうち、「そのＤＮＡが発現して生産されるタンパク質が、細胞内分解により、ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じる」という特性を有するものが、本発明の腫瘍抗原タンパク質をコードするＤＮＡ、すなわち本発明のＤＮＡとなり得る。すなわち、該ＤＮＡが発現して生産されるタンパク質の一部のアミノ酸配列からなる部分ペプチドがＨＬＡ抗原と結合可能であり、当該ペプチドがＨＬＡ抗原と結合して細胞表面に提示された場合、そのペプチドとＨＬＡ抗原との複合体に対して特異的なＣＴＬが結合して細胞傷害作用やサイトカインの産生が誘導される、そのようなペプチド断片を生じるものが、本発明のＤＮＡとなり得る。
ここで、候補となるＤＮＡが腫瘍抗原タンパク質をコードするＤＮＡとなり得るか否かは、例えば以下のような方法により測定することができる。
すなわち、繊維芽細胞ＶＡ−１３（理化学研究所細胞開発銀行）やアフリカミドリザル腎臓由来のＣＯＳ−７（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ１６５１）に対し、候補となるＤＮＡを有する発現プラスミドと、ＨＬＡ抗原をコードするＤＮＡを有する発現プラスミドとをダブルトランスフェクトする。該トランスフェクトは、例えばリポフェクトアミン試薬（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）を用いたリポフェクチン法などにより行うことができる。その後、用いたＨＬＡ抗原に拘束性の腫瘍反応性のＣＴＬを加えて作用させ、該ＣＴＬが反応して産生する種々のサイトカイン（例えばＩＦＮ−γ）の量を、例えばＥＬＩＳＡ法などで測定することによって、候補ＤＮＡが本発明のＤＮＡであるか否かを調べることができる。ここで、ＳＡＲＴ−３はＨＬＡ−Ａ２４拘束性およびＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチド部分を有するものであるため、前記ＨＬＡ抗原をコードするＤＮＡとしては、ＨＬＡ−Ａ２４のｃＤＮＡ（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：４２４８−４２５２（１９９５）、Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ６４７４０）およびＨＬＡ−Ａ２のｃＤＮＡ（Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ８４３７９）が挙げられ、前記ＣＴＬとしては、ヒトの末梢血リンパ球より調製される場合の他、ＫＥ−４ＣＴＬ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５４）などのＨＬＡ−Ａ２４拘束性のＣＴＬ、およびＯＫ−ＣＴＬ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−６８１８）などのＨＬＡ−Ａ２拘束性のＣＴＬが挙げられる。
以上のような本発明のＤＮＡは、医薬の有効成分とすることができる。即ち、本発明のＤＮＡを有効成分として含有する「医薬」は、例えば、本発明のＤＮＡを腫瘍患者に投与することで、腫瘍を治療または予防することができる。
発現ベクターに組み込まれた本発明のＤＮＡを以下の方法により腫瘍患者に投与すると、抗原提示細胞内で腫瘍抗原タンパク質が高発現する。その後、細胞内分解を受けて生じた腫瘍抗原ペプチドがＨＬＡ抗原と結合して複合体を形成し、該複合体が抗原提示細胞表面に高密度に提示されることにより、腫瘍特異的ＣＴＬが体内で効率的に増殖し、腫瘍細胞を破壊する。以上のようにして、腫瘍の治療または予防が達成される。
本発明のＤＮＡを投与し細胞内に導入する方法としては、ウイルスベクターによる方法およびその他の方法（日経サイエンス，１９９４年４月号，２０−４５頁、月刊薬事，３６（１），２３−４８（１９９４）、実験医学増刊，１２（１５），（１９９４）、およびこれらの引用文献等）のいずれの方法も適用することができる。
ウイルスベクターによる方法としては、例えばレトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ボックスウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルス等のＤＮＡウイルス又はＲＮＡウイルスに本発明のＤＮＡを組み込んで導入する方法が挙げられる。この中で、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ワクシニアウイルス等を用いた方法が特に好ましい。
その他の方法としては、発現プラスミドを直接筋肉内に投与する方法（ＤＮＡワクチン法）、リポソーム法、リポフェクチン法、マイクロインジェクション法、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法等が挙げられ、特にＤＮＡワクチン法、リポソーム法が好ましい。
本発明のＤＮＡを実際に医薬として作用させるには、ＤＮＡを直接体内に導入するｉｎ  ｖｉｖｏ法、およびヒトからある種の細胞を採集し体外でＤＮＡを該細胞に導入しその細胞を体内に戻すｅｘ  ｖｉｖｏ法がある（日経サイエンス，１９９４年４月号，２０−４５頁、月刊薬事，３６（１），２３−４８（１９９４）、実験医学増刊，１２（１５），（１９９４）、およびこれらの引用文献等）。ｉｎ  ｖｉｖｏ法がより好ましい。
ｉｎ  ｖｉｖｏ法により投与する場合は、治療目的の疾患、症状等に応じた適当な投与経路により投与され得る。例えば、静脈、動脈、皮下、皮内、筋肉内等に投与することができる。ｉｎ  ｖｉｖｏ法により投与する場合は、例えば、液剤等の製剤形態をとりうるが、一般的には有効成分である本発明のＤＮＡを含有する注射剤等とされ、必要に応じて、慣用の担体を加えてもよい。また、本発明のＤＮＡを含有するリポソームまたは膜融合リポソーム（センダイウイルス（ＨＶＪ）−リポソーム等）においては、懸濁剤、凍結剤、遠心分離濃縮凍結剤等のリポソーム製剤の形態とすることができる。
製剤中の本発明のＤＮＡの含量は、治療目的の疾患、患者の年齢、体重等により適宜調整することができるが、通常、０．０００１ｍｇ〜１００ｍｇ、好ましくは０．００１ｍｇ〜１０ｍｇの本発明のＤＮＡを、数日ないし数月に１回投与するのが好ましい。
本発明においてタンパク質とは、上記した本発明の種々のＤＮＡによりコードされるタンパク質であり、その細胞内分解により、ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるという、腫瘍抗原タンパク質としての特性を有するものを指す。具体例としては、配列番号：１に記載のアミノ酸配列を有するＳＡＲＴ−３が挙げられる。これら本発明のタンパク質は、前記本発明のＤＮＡを用いることにより、大量に製造することが可能である。
本発明のＤＮＡを発現して腫瘍抗原タンパク質を生産するには、例えば、前述のＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ等の多くの成書や文献に基づいて実施することができる。すなわち、本発明のＤＮＡを適当な発現ベクター（例えばｐＳＶ−ＳＰＯＲＴ１、ｐＣＲ３など）に組み込むことにより、宿主細胞内で複製し、機能する発現プラスミドを作製する。次に発現プラスミドを適当な宿主細胞に導入して形質転換体を得る。宿主細胞としては、大腸菌などの原核生物、酵母のような単細胞真核生物、昆虫、また動物などの多細胞真核生物の細胞などが挙げられる。また、宿主細胞への遺伝子導入法としては、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ−デキストラン法、電気パルス法、リポフェクチン法などの常法が挙げられる。形質転換体は、適当な培地で培養することによって目的とするタンパク質を生産する。以上のようにして得られた腫瘍抗原タンパク質は、一般的な生化学的方法によって単離精製することができる。
以上のようにして作製された本発明の腫瘍抗原タンパク質が活性を有しているか否かは、前記したように、本発明のＤＮＡを細胞内で発現させて本発明のタンパク質を産生させ、該タンパク質の細胞内分解により生じたペプチド断片が腫瘍抗原ペプチドとしての活性を有するか否かを測定することにより、確認することができる。また、得られた腫瘍抗原タンパク質そのものを用いて活性測定を行う場合には、例えばマクロファージなどの食細胞に本発明の腫瘍抗原タンパク質を取り込ませて細胞内でペプチド断片を生じさせ、その後、該ペプチド断片とＨＬＡ抗原との複合体に対してＣＴＬを加えて作用させ、該ＣＴＬが反応して産生する種々のサイトカイン（例えばＩＦＮ−γ）の量を測定することなどによって、調べることができる。
以上のような本発明のタンパク質もまた、医薬の有効成分とすることができる。即ち、本発明のタンパク質を有効成分として含有する「医薬」は、例えば、本発明のタンパク質を腫瘍患者に投与することで、腫瘍を治療または予防することができる。当該タンパク質を腫瘍患者に投与すると、抗原提示細胞内に取り込まれ、その後、細胞内分解を受けて生じた腫瘍抗原ペプチドがＨＬＡ抗原と結合して複合体を形成し、該複合体が抗原提示細胞表面に提示され、この複合体に特異的なＣＴＬが体内で効率的に増殖し、腫瘍細胞を破壊する。以上のようにして、腫瘍の治療又は予防が達成される。
本発明の腫瘍抗原タンパク質を有効成分として含有する医薬は、細胞性免疫が効果的に成立するようにアジュバントとともに投与したり、粒子状の剤型にして投与することができる。アジュバントとしては、文献（Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，７：２７７−２８９，１９９４）に記載のものなどが応用可能である。また、リポソーム製剤、直径数μｍのビーズに結合させた粒子状の製剤、リピッドを結合させた製剤なども考えられる。投与方法としては、皮内投与、皮下投与、静脈注射などが考えられる。製剤中の本発明の腫瘍抗原タンパク質の投与量は、治療目的の疾患、患者の年齢、体重等により適宜調整することができるが、通常０．０００１ｍｇ〜１０００ｍｇ、好ましくは０．００１ｍｇ〜１００ｍｇ、より好ましくは０．０１ｍｇ〜１０ｍｇであり、これを数日ないし数月に１回投与するのが好ましい。
本発明において腫瘍抗原ペプチドとは、本発明の腫瘍抗原タンパク質の一部よりなる部分ペプチドであって、かつＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドである。すなわち、前記した本発明の腫瘍抗原タンパク質のアミノ酸配列の一部よりなるペプチドであって、かつ、該ペプチドとＨＬＡ抗原との結合複合体がＣＴＬにより認識され得るようなペプチドであれば、本発明のタンパク質のアミノ酸配列中の如何なる位置に存する如何なる長さのペプチドであっても、全て、本発明の腫瘍抗原ペプチドの範疇に含まれる。このような本発明の腫瘍抗原ペプチドは、本発明の腫瘍抗原タンパク質の一部よりなる候補ペプチドを合成し、該候補ペプチドとＨＬＡ抗原との複合体がＣＴＬにより認識されるか否か、すなわち候補ペプチドが腫瘍抗原ペプチドとしての活性を有するか否かをアッセイすることにより、同定することができる。
ここで、ペプチドの合成については、通常のペプチド化学において用いられる方法に準じて行うことができる。該公知方法としては文献（ペプタイド・シンセシス（Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ），Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９６６；ザ・プロテインズ（Ｔｈｅ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ），Ｖｏｌ  ２，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ  Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９７６；ペプチド合成，丸善（株），１９７５；ペプチド合成の基礎と実験、丸善（株），１９８５；医薬品の開発  続  第１４巻・ペプチド合成，広川書店，１９９１）などに記載されている方法が挙げられる。
次に、本発明の腫瘍抗原ペプチドの同定方法につき、以下に記述する。
ＨＬＡ−Ａ１，−Ａ０２０１，−Ａ０２０４，−Ａ０２０５，−Ａ０２０６，−Ａ０２０７，−Ａ１１，−Ａ２４，−Ａ３１，−Ａ６８０１，−Ｂ７，−Ｂ８，−Ｂ２７０５，−Ｂ３７，−Ｃｗ０４０１，−Ｃｗ０６０２などのＨＬＡの型については、該ＨＬＡに結合して提示される抗原ペプチドの配列の規則性（モチーフ）が判明している（例えばＩｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：ｐ１７８，１９９５などを参照のこと）。例えばＨＬＡ−Ａ２４のモチーフとしては、８〜１１アミノ酸よりなるペプチドのうちの第２位のアミノ酸がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンであり、Ｃ末端のアミノ酸がフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンとなることが知られている（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５２，ｐ３９１３，１９９４、Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：ｐ１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：ｐ４３０７，１９９４）。またＨＬＡ−Ａ２のモチーフについては、以下の表１に示したモチーフが知られている（Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１，ｐ１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：ｐ４７４９，１９９５）。
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さらに近年、ＨＬＡ抗原に結合可能と予想されるペプチド配列を、インターネット上、ＮＩＨのＢＩＭＡＳのソフトを使用することにより検索することができる（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｍａｓ．ｄｃｒｔ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｍｏｌｂｉｏ／ｈｌａ＿ｂｉｎｄ／）。
ペプチドの長さとしては、各種ＨＬＡ分子に結合している抗原ペプチドの解析により（Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：１７８，１９９５）、通常８から１４アミノ酸程度であることが明らかにされている（ただしＨＬＡ‐ＤＲ、‐ＤＰ、‐ＤＱについては、１４アミノ酸以上の長さの抗原ペプチドも認められる）。
これらのモチーフに関わるペプチド部分を本発明の腫瘍抗原タンパク質のアミノ酸配列中から選び出すのは容易である。例えば、腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列（配列番号：１）を見れば、上記モチーフ構造に関わるペプチド部分を容易に選び出すことができる。また前記インターネット上での検索により、ＨＬＡ抗原に結合可能と予想される配列を容易に選び出すことができる。選び出された候補ペプチドを前述の方法にて合成し、該候補ペプチドとＨＬＡ抗原との複合体がＣＴＬにより認識されるか否か、すなわち候補ペプチドが腫瘍抗原ペプチドとしての活性を有するか否かを測定することにより、本発明の腫瘍抗原ペプチドを同定することができる。
本発明の腫瘍抗原ペプチドの具体的な同定法としては、例えばＪ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５４，ｐ２２５７，１９９５に記載の方法が挙げられる。すなわち、候補ペプチドを提示すると考えられるタイプのＨＬＡ抗原が陽性のヒトから末梢血リンパ球を単離し、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで該候補ペプチドを添加して刺激した場合に、該候補ペプチドをパルスしたＨＬＡ抗原陽性細胞を特異的に認識するＣＴＬが誘導された場合は、該候補ペプチドが腫瘍抗原ペプチドに成り得ることが示される。ここでＣＴＬの誘導の有無は、例えば、抗原ペプチド提示細胞に反応してＣＴＬが産生する種々のサイトカイン（例えばＩＦＮ−γ）の量を、例えばＥＬＩＳＡ法などによって測定することにより、調べることができる。また５１Ｃｒで標識した抗原ペプチド提示細胞に対するＣＴＬの傷害性を測定する方法（５１Ｃｒリリースアッセイ、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，５８：ｐ３１７，１９９４）によっても調べることができる。
さらに、候補ペプチドを提示すると考えられるタイプのＨＬＡ抗原のｃＤＮＡを発現する発現プラスミドを、例えばＣＯＳ−７細胞（ＡＴＣＣ  Ｎｏ．ＣＲＬ１６５１）やＶＡ−１３細胞（理化学研究所細胞銀行）に導入した細胞に対して候補ペプチドをパルスし、この細胞に対して、前記候補ペプチドを提示すると考えられるタイプのＨＬＡ抗原に拘束性のＣＴＬを反応させ、該ＣＴＬが産生する種々のサイトカイン（例えばＩＦＮ−γ）の量を測定することによっても、調べることができる（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８７：２７７，１９９８）。
ここで、ＳＡＲＴ−３はＨＬＡ−Ａ２４やＨＬＡ−Ａ２に拘束性の腫瘍抗原ペプチド部分を有するものである。ＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチドを選択する場合には、前記ＨＬＡ抗原をコードするｃＤＮＡとしてはＨＬＡ−Ａ２４のｃＤＮＡ（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：４２４８−４２５２（１９９５）、Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ６４７４０）を用い、前記ＣＴＬとしては、ヒトの末梢血リンパ球のペプチド刺激により調製される場合の他、ＫＥ−４ＣＴＬ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５４）などのＣＴＬを用いることにより、前記の腫瘍抗原ペプチドの同定を行うことができる。また、ＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドを選択する場合には、ＨＬＡ−Ａ２のｃＤＮＡ（Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ８４３７９）を用い、前記ＣＴＬとしては、ヒトの末梢血リンパ球のペプチド刺激により調製される場合の他、ＯＫ−ＣＴＬ（ＦＥＲＭＢＰ−６８１８）などのＣＴＬを用いることにより、当該腫瘍抗原ペプチドを同定することができる。
以上のような種々の活性測定の具体例は、後述の実施例４、実施例６および実施例８に記載されている。
以上のような腫瘍抗原ペプチドの配列の規則性（モチーフ）が判明している場合と異なり、例えばＨＬＡ−Ａ２６のようにそのペプチドのモチーフが明らかでない場合は、該ＨＬＡ−Ａ２６と腫瘍抗原ペプチドとの複合体を認識するＣＴＬ株が存在する場合には、例えばＷＯ９７／４６６７６に記載の方法に準じて本発明の腫瘍抗原ペプチドを同定することができる。
なお、以上述べたような腫瘍抗原ペプチドの同定法を、以下、“腫瘍抗原ペプチドのアッセイ法”と総称することもある。
前記したように、ＨＬＡ−Ａ２４に結合して提示される腫瘍抗原ペプチドの配列には規則性（モチーフ）があり、具体的には、８〜１１アミノ酸よりなるペプチドのうちの第２位のアミノ酸がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンであり、Ｃ末端のアミノ酸がフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンとなることが知られている（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５２，ｐ３９１３，１９９４、Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：ｐ１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：ｐ４３０７，１９９４）。また、ＨＬＡ−Ａ２に結合して提示される腫瘍抗原ペプチドの配列にも同様の規則性（モチーフ）があり、具体的には前記表１に示したモチーフが知られている（Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１，ｐ１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：ｐ４７４９，１９９５）。さらに前記したように、インターネット上、ＮＩＨのＢＩＭＡＳのソフトを用いることにより、ＨＬＡ抗原に結合可能と予想される配列を検索することができる（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｍａｓ．ｄｃｒｔ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｍｏｌｂｉｏ／ｈｌａ ｂｉｎｄ／）。
従って本発明の腫瘍抗原ペプチドのうち、ＨＬＡ−Ａ２４およびＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドとしては、配列番号：１に記載のＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列上、このようなモチーフ構造や結合可能と予想される構造に関わる部分ペプチドであって、かつ各ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが例示される。
前記ＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチドとしては、具体的には、例えば配列番号：３〜配列番号：２４のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含むペプチドであって、かつＨＬＡ−Ａ２４抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが例示される。また、ＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドとしては、具体的には、例えば配列番号：２５〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含むペプチドであって、かつＨＬＡ−Ａ２抗原と結合してＣＴＬしにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが例示される。
すなわち、
１）配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列よりなるペプチド、
２）配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の全長または連続した一部分を含み、該アミノ酸配列よりＮ末端方向及び／又はＣ末端方向に長いペプチド、または配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の連続した一部分よりなるペプチド、
であって、かつ各ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが挙げられる。ここで、前記２）のペプチドの長さとしては、各ＨＬＡ抗原に結合して提示されるという観点から、８〜１１アミノ酸程度のものが挙げられる。
本発明のＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチドの好適なものとしては、配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつＨＬＡ−Ａ２４抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが挙げられる。すなわち、
１）配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列よりなるペプチド、
２）配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列の全長または連続した一部分を含み、該アミノ酸配列よりＮ末端方向及び／又はＣ末端方向に長いペプチド、または配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列の連続した一部分よりなるペプチド、であって、かつＨＬＡ−Ａ２４抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチド、
が挙げられる。ここで、前記２）のペプチドの長さとしては、ＨＬＡ−Ａ２４抗原に結合して提示されるという観点から、８〜１１アミノ酸程度のものが挙げられる。
本発明のＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドの好適なものとしては、配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつＨＬＡ−Ａ２抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチドが挙げられる。すなわち、
１）配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列よりなるペプチド、
２）配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の全長または連続した一部分を含み、該アミノ酸配列よりＮ末端方向及び／又はＣ末端方向に長いペプチド、または配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の連続した一部分よりなるペプチド、であって、かつＨＬＡ−Ａ２抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るような腫瘍抗原ペプチド、
が挙げられる。ここで、前記２）のペプチドの長さとしては、ＨＬＡ−Ａ２抗原に結合して提示されるという観点から、８〜１１アミノ酸程度のものが挙げられる。
本発明において「腫瘍抗原ペプチドと機能的に同等の特性を有する誘導体」（以下、腫瘍抗原ペプチド誘導体と略す場合がある）とは、本発明の腫瘍抗原ペプチドのアミノ酸配列に対し、１又はそれ以上、好ましくは１〜数個のアミノ酸残基の改変を施した改変体であって、かつＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るという腫瘍抗原ペプチドとしての特性を有するものを指す。すなわち、本発明の腫瘍抗原ペプチドのアミノ酸配列に対して１又はそれ以上のアミノ酸残基の改変を施した改変体であって、かつＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るという腫瘍抗原ペプチドとしての活性を有するものは、全て、本発明の腫瘍抗原ペプチド誘導体の範疇に含まれる。
ここで、アミノ酸残基の「改変」とは、アミノ酸残基の置換、欠失、及び／又は付加（ペプチドのＮ末端、Ｃ末端へのアミノ酸の付加も含む）を意味し、好ましくはアミノ酸残基の置換が挙げられる。アミノ酸残基の置換に係る改変の場合、置換されるアミノ酸残基の数および位置は、腫瘍抗原ペプチドとしての活性が維持される限り、任意であるが、前記したように通常、腫瘍抗原ペプチドの長さが８〜１４アミノ酸程度であることから、１個から数個の範囲が好ましい。
本発明の腫瘍抗原ペプチド誘導体の長さとしては、前記腫瘍抗原ペプチドと同様に８〜１４アミノ酸程度が好ましい（ただしＨＬＡ−ＤＲ、−ＤＰ、−ＤＱについては、１４アミノ酸以上の長さの場合もある。）
以上のような本発明の腫瘍抗原ペプチド誘導体は、本発明の腫瘍抗原ペプチドの一部を改変した改変体を前記ペプチド合成法に基づき合成し、これを前記腫瘍抗原ペプチドのアッセイ法に供することにより、同定することができる。
先に記載したように、ＨＬＡ−Ａ１，−Ａ０２０１，−Ａ０２０４，−Ａ０２０５，−Ａ０２０６，−Ａ０２０７，−Ａ１１，−Ａ２４，−Ａ３１，−Ａ６８０１，−Ｂ７，−Ｂ８，−Ｂ２７０５，−Ｂ３７，−Ｃｗ０４０１，−Ｃｗ０６０２などのＨＬＡの型については、該ＨＬＡに結合して提示される抗原ペプチドの配列の規則性（モチーフ）が判明している。また前記したように、ＨＬＡ抗原に結合可能と予想されるペプチド配列をインターネット上検索することができる（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｍａｓ．ｄｃｒｔ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｍｏｌｂｉｏ／ｈｌａ＿ｂｉｎｄ／）。従って、該モチーフ等に基づき、本発明の腫瘍抗原ペプチドのアミノ酸を改変した腫瘍抗原ペプチド誘導体を作製することが可能である。
例えばＨＬＡ−Ａ２４に結合して提示される抗原ペプチドのモチーフとしては、前記したように、８〜１１アミノ酸よりなるペプチドのうちの第２位のアミノ酸がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンであり、Ｃ末端のアミノ酸がフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンであることが知られている（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５２：ｐ３９１３，１９９４、Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：ｐ１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：ｐ４３０７，１９９４）。またＨＬＡ−Ａ２の場合は、前記の表１に記載のモチーフが知られている。またインターネット上でＨＬＡ抗原に結合可能と予想されるペプチド配列が示されており（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｍａｓ．ｄｃｒｔ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｍｏｌｂｉｏ／ｈｌａ＿ｂｉｎｄ／）、例えば前記モチーフ上とり得るアミノ酸に類似の性質を持つアミノ酸が許容され得る。従って、本発明の腫瘍抗原ペプチド誘導体の例として、本発明の腫瘍抗原ペプチドに対して、これらモチーフ上アミノ酸の置換が可能な位置（ＨＬＡ−Ａ２４、ＨＬＡ−Ａ２においては第２位とＣ末端）にあるアミノ酸を他のアミノ酸（好ましくは前記インターネット上で結合可能と予想されているアミノ酸）に置換したアミノ酸配列の全部又は一部を含むものであって、かつＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得るという活性を持つペプチド誘導体が挙げられる。より好ましくは、該位置において、前記モチーフ上知られたアミノ酸残基の中から置換するアミノ酸残基を選択したアミノ酸配列の全部または一部を含むペプチドであって、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。なお「全部又は一部」の長さとしては、８〜１４アミノ酸程度の長さが好ましい（ただしＨＬＡ−ＤＲ，−ＤＰ，−ＤＱについては、１４アミノ酸以上の長さの場合もある）。
ここで、ＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２に拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体としては、例えばＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列上ＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２の結合モチーフを有するペプチドに対して、前記モチーフ上アミノ酸の置換が可能な位置、すなわち第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基（好ましくは前記インターネット上で結合可能と予想されているアミノ酸残基）に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられ、好ましくは、第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を前記モチーフ上知られたアミノ酸残基に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。該ＨＬＡ−Ａ２４またはＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体において「全部又は一部」の長さとしては、８〜１１アミノ酸程度が好ましい。
具体的には、例えば配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基（好ましくは前記インターネット上で結合可能と予想されているアミノ酸残基）に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が例示される。好ましくは、配列番号：３〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を前記モチーフ上知られたアミノ酸残基に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。すなわちＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体に関しては、配列番号：３〜配列番号：２４のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位をチロシン、フェニルアラニン、メチオニンまたはトリプトファンに置換し、および／またはＣ末端をフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンに置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が例示される。またＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体に関しては、配列番号：２５〜配列番号：５２のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位のアミノ酸残基をロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンに置換し、および／またはＣ末端のアミノ酸残基をバリンまたはロイシンに置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が例示される。
本発明のＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体の好適なものとしては、配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。より好ましくは、配列番号：３〜配列番号：９のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位をチロシン、フェニルアラニン、メチオニンあるいはトリプトファンに置換し、および／またはＣ末端をフェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンあるいはメチオニンに置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。このような腫瘍抗原ペプチド誘導体の例を、配列番号：５３〜配列番号：５９に示す。
本発明のＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチド誘導体の好適なものとしては、配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位および／またはＣ末端のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。より好ましくは、配列番号：２５〜配列番号：２９のいずれかに記載のアミノ酸配列の第２位をロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンに置換し、および／またはＣ末端のアミノ酸残基をバリンまたはロイシンに置換したアミノ酸配列の全部または一部を含み、かつ前記活性を有する腫瘍抗原ペプチド誘導体が挙げられる。このような腫瘍抗原ペプチド誘導体の例を、配列番号：６０〜配列番号：６４に示す。
本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体は、少なくとも１種または２種以上組み合わせることにより、腫瘍の治療剤または予防剤として使用することができる。すなわち本発明は、腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体を有効成分として含有する腫瘍の治療剤または予防剤をも提供するものである。本発明の腫瘍の治療剤または予防剤をＳＡＲＴ−３陽性の患者に投与すると、抗原提示細胞のＨＬＡ抗原に腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体が提示され、提示されたＨＬＡ抗原複合体特異的ＣＴＬが増殖して腫瘍細胞を破壊することができ、従って、患者の腫瘍を治療し、又は腫瘍の増殖・転移を予防することができる。ＳＡＲＴ−３は、食道癌等の扁平上皮癌等に広範に発現しているので、本発明の腫瘍の治療剤または予防剤は、適用範囲の広いことが有利である。さらに、前記扁平上皮癌は、化学療法や放射線療法に抵抗性を示すことが多いが、本発明の腫瘍の治療剤を併用することにより、治療効果を上げることが可能となる。
本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体を有効成分とする腫瘍の治療剤または予防剤は、細胞性免疫が効果的に成立するようにアジュバントとともに投与したり、粒子状の剤型にして投与することができる。アジュバントとしては、文献（Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．，７：２７７−２８９，１９９４）に記載のものなどが応用可能である。また、リポソーム製剤、直径数μｍのビーズに結合させた粒子状の製剤、リピッドを結合させた製剤なども考えられる。投与方法としては、皮内投与、皮下投与、静脈注射などが考えられる。製剤中の本発明の腫瘍抗原ペプチドあるいはその誘導体の投与量は、治療目的の疾患、患者の年齢、体重等により適宜調整することができるが、通常０．０００１ｍｇ〜１０００ｍｇ、好ましくは０．００１ｍｇ〜１００ｍｇ、より好ましくは０．０１ｍｇ〜１０ｍｇであり、これを数日ないし数月に１回投与するのが好ましい。
さらに、本発明の腫瘍の治療剤または予防剤として、以下に述べるように、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体をコードするＤＮＡの少なくとも１種を含有する組換えＤＮＡや、該組換えＤＮＡを発現させて得られうる組換えポリペプチドも、本発明の腫瘍の治療剤または予防剤の有効成分とすることができる。
ここで「組換えＤＮＡ］とは、例えば、本発明の腫瘍抗原タンパク質の一部よりなる部分ポリペプチド、部分ペプチド、これらの誘導体、またはこれらの連結したポリトープ等をコードするＤＮＡを指し、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体をコードするＤＮＡを少なくとも一つ含んでさえいれば、本発明の組換えＤＮＡの範疇に含まれる。当該組換えＤＮＡは適当な発現ベクターに組み込むことにより、腫瘍の治療剤または予防剤の有効成分とすることができる。
ここで「ポリトープ」とは、複数のＣＴＬエピトープを連結させたものであり、当該ポリトープをコードするＤＮＡは近年、ＤＮＡワクチンに利用されている（例えばＪ．ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１６０，ｐ１７１７，１９９８などを参照のこと）。本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体をコードするＤＮＡの少なくとも１種または２種以上を連結させることにより、さらには所望により他の腫瘍抗原ペプチドをコードするＤＮＡをも連結させることにより、本発明のポリトープをコードするＤＮＡを作製することができる。
本発明の組換えＤＮＡは、ＤＮＡ合成および通常の遺伝子工学的手法に基づき、例えばＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ２ｎｄ  Ｅｄｔ．，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９８９）等の基本書に従い容易に作製することができる。また、この組換えＤＮＡの発現ベクターへの組み込みも、前記基本書等に従い行うことができる。
作製された本発明の組換えＤＮＡが、ＨＬＡ抗原と結合してＣＴＬにより認識され得る腫瘍抗原ペプチドを生じるか否かは、例えば、前記本発明のＤＮＡの活性測定法に準じて行うことができる。また、本発明の組換えＤＮＡを腫瘍の治療剤または予防剤として使用する方法も、前記本発明のＤＮＡに準じて行うことができる。
前記したように、本発明の組換えＤＮＡを発現して得られうる「組換えポリペプチド」も、腫瘍の治療剤または予防剤の有効成分とすることができる。
本発明の組換えポリペプチドは、前記した本発明のタンパク質と同様の手法により調製することができる。また、作製された組換えポリペプチドが活性を有するか否かも、前記本発明のタンパク質と同様の手法により測定することができる。さらに、当該組換えポリペプチドを腫瘍の治療剤または予防剤として使用する方法も、前記本発明のタンパク質および本発明のペプチドに準じて行うことができる。
本発明は、本発明のタンパク質、または本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体に特異的に結合する抗体をも提供するものである。該抗体は、例えば、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ；Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｌａｎｅ，Ｈ，Ｄ．ら編，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ出版Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ１９８９などに記載の方法により容易に作製される。すなわち、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体等を用いて常法により適宜動物を免疫することにより、腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体等を認識する抗体、さらにはその活性を中和する抗体が容易に作製できる。抗体の用途としては、アフィニティークロマトグラフィー、免疫学的診断等が挙げられる。免疫学的診断は、イムノブロット法、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、蛍光あるいは発光測定法等より適宜選択できる。
本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、本発明の腫瘍抗原タンパク質またはそのＤＮＡ、あるいは本発明の組換えＤＮＡまたは組換えポリペプチドは、腫瘍患者の治療において、以下のようにイン・ビトロで利用することが可能である。
すなわち、腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、あるいは腫瘍抗原タンパク質またはそのＤＮＡなどを腫瘍の治療に用いる場合、患者の体内で効率良く特異的なＣＴＬを誘導することの可能な投与法が重要になる。そのための手段のひとつとして、本発明は、腫瘍患者由来の単離された抗原提示能を有する細胞の表面に、ＨＬＡ抗原と本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を提示させた抗原提示細胞、および該抗原提示細胞を有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤を提供するものである。
ここで「抗原提示能を有する細胞」とは、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体を提示することの可能なＨＬＡ抗原を細胞表面に発現する細胞であれば特に限定されないが、特に抗原提示能が高いとされる樹状細胞が好ましい。
また、前記抗原提示能を有する細胞から本発明の抗原提示細胞を調製するために添加される物質としては、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体のみならず、本発明のＤＮＡ、タンパク質、組換えＤＮＡまたは組換えポリペプチドであっても良い。その際、タンパクまたはＤＮＡの形態で使用する場合には細胞内に取り込まれる必要がある。
本発明の抗原提示細胞は、腫瘍患者から抗原提示能を有する細胞を単離し、該細胞に本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、あるいは腫瘍抗原タンパク質または組換えポリペプチドを体外でパルスして、ＨＬＡ抗原と前記腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を提示させることにより得られる（Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．，４６：８２，１９９８、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５８，ｐ１７９６，１９９７、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５９，ｐ１１８４，１９９９）。樹状細胞を用いる場合は、例えば、腫瘍患者の末梢血からフィコール法によりリンパ球を分離し、その後非付着細胞を除き、付着細胞をＧＭ−ＣＳＦおよびＩＬ−４存在下で培養して樹状細胞を誘導し、当該樹状細胞を本発明の腫瘍抗原ペプチドまたは腫瘍抗原タンパク質等と共に培養してパルスすることなどにより、本発明の抗原提示細胞を調製することができる。
また、前記抗原提示能を有する細胞に本発明のＤＮＡまたは組換えＤＮＡを導入することにより本発明の抗原提示細胞を調製する場合は、当該遺伝子は、ＤＮＡの形態であっても、ＲＮＡの形態であっても良い。具体的には、ＤＮＡの場合はＣａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５６：ｐ５６７２，１９９６やＪ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１６１：ｐ５６０７，１９９８などを参考にして行うことができ、またＲＮＡの場合はＪ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８４：ｐ４６５，１９９６などを参考にして行うことができる。
前記抗原提示細胞を有効成分として含有する腫瘍の治療剤は、抗原提示細胞を安定に維持するために、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、培地等を含むことが好ましい。投与方法としては、静脈内投与、皮下投与、皮内投与が挙げられる。このような抗原提示細胞を有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤を患者の体内に戻すことにより、ＳＡＲＴ−３陽性の患者の体内で効率良く特異的なＣＴＬが誘導され、腫瘍を治療することができる。なお、ＨＬＡ−Ａ２４に陽性の腫瘍患者に対してはＨＬＡ−Ａ２４拘束性の腫瘍抗原ペプチドあるいはその誘導体を使用するといった、患者と使用するペプチドとでＨＬＡの型を合わせる必要のあることは言うまでもない。
さらに、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、本発明の腫瘍抗原タンパク質またはそのＤＮＡ、あるいは本発明の組換えＤＮＡまたは組換えポリペプチドのイン・ビトロでの利用法として、以下の養子免疫療法における利用が挙げられる。
すなわちメラノーマにおいては、患者本人の腫瘍内浸潤Ｔ細胞を体外で大量に培養して、これを患者に戻す養子免疫療法に治療効果が認められている（Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ．Ｉｎｓｔ．，８６：１１５９、１９９４）。またマウスのメラノーマにおいては、脾細胞をイン・ビトロで腫瘍抗原ペプチドＴＲＰ−２で刺激し、腫瘍抗原ペプチドに特異的なＣＴＬを増殖させ、該ＣＴＬをメラノーマ移植マウスに投与することにより、転移抑制が認められている（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８５：４５３，１９９７）。これは、抗原提示細胞のＨＬＡ抗原と腫瘍抗原ペプチドとの複合体を特異的に認識するＣＴＬをイン・ビトロで増殖させた結果に基づくものである。従って、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体、あるいは腫瘍抗原タンパク質またはそのＤＮＡ等を用いて、イン・ビトロで患者末梢血リンパ球を刺激して腫瘍特異的ＣＴＬを増やした後、このＣＴＬを患者に戻す治療法は有用であると考えられる。
すなわち本発明は、前記ＨＬＡ抗原と本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体との複合体を特異的に認識するＣＴＬ、および、該ＣＴＬを有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤をも提供するものである。該治療剤は、ＣＴＬを安定に維持するために、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、培地等を含むことが好ましい。投与方法としては、静脈内投与、皮下投与、皮内投与が挙げられる。このようなＣＴＬを有効成分として含有してなる腫瘍の治療剤を患者の体内に戻すことにより、ＳＡＲＴ−３陽性の患者の体内でＣＴＬによる腫瘍細胞の傷害作用が促進され、腫瘍細胞を破壊することにより、腫瘍を治療することができる。
本発明の腫瘍抗原ペプチドおよびその誘導体、本発明のタンパク質、または本発明の組換えポリペプチドは、腫瘍を診断するための診断薬の成分とすることができる。すなわち、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体そのものなどを診断薬として用い、腫瘍が疑われる患者から得た試料（例えば血液、腫瘍組織など）中の抗体の存在を検出することにより、腫瘍の早期発見、再発、転移を診断することが可能である。また本発明の腫瘍抗原ペプチド等を有効成分とする医薬の適応可能な腫瘍患者の選択にも利用できる。具体的には、イムノブロット法、ＲＩＡ、ＥＬＩＳＡ、蛍光または発光測定法などを用いることにより、当該診断を行うことができる。
さらに近年、抗原ペプチドとＨＬＡ抗原との複合体を用いて抗原特異的ＣＴＬを検出する新しい検出方法が確立された（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２７４：ｐ９４，１９９６）。本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体とＨＬＡ抗原との複合体を前記検出方法に供し、腫瘍抗原特異的ＣＴＬを検出することにより、腫瘍の早期発見、再発、転移を診断することができる。また本発明の腫瘍抗原ペプチド等を有効成分とする医薬の適応可能な腫瘍患者の選択や、当該医薬による治療効果の判定などにも利用できる。すなわち本発明においては、本発明の腫瘍抗原ペプチドまたはその誘導体等を含有する、腫瘍の診断薬をも提供するものである。
具体的には、文献（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２７４：ｐ９４，１９９６）に記載の方法に従って蛍光標識したＨＬＡ抗原と腫瘍抗原ペプチドとの複合体の４量体を作製し、これを用いて腫瘍が疑われる患者の末梢血リンパ球中の抗原ペプチド特異的ＣＴＬをフローサイトメーターにより定量することにより、前記診断を行うことができる。
本発明はまた、結腸癌由来の腫瘍内浸潤リンパ球から樹立されたＣＴＬである、ＯＫ−ＣＴＬ（受託番号  ＦＥＲＭ  ＢＰ−６８１８）をも提供するものである。当該ＯＫ−ＣＴＬは、ＨＬＡ−Ａ２拘束性のＣＴＬ株であることが明らかとなっている。従って、ＯＫ−ＣＴＬを利用することにより、新たな腫瘍抗原タンパク質およびＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドを見出すことができる。具体的には、後述の実施例８を参照されたい。
発明を実施するための最良の形態
以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によりなんら限定されるものではない。
参考例１
食道癌細胞株に対する細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）株の樹立
中尾ら著，Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：４２４８−４２５２（１９９５）の記載に従い、組織型が扁平上皮癌に分類される食道癌細胞株ＫＥ−４に対するＣＴＬを患者の末梢血単核球細胞から樹立し、ＫＥ−４ＣＴＬと命名して以下の実験に使用した。食道癌細胞株ＫＥ−４およびＫＥ−４ＣＴＬは、茨城県つくば市東１丁目１番３号、工業技術院生命工学工業技術研究所に、それぞれ受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５５およびＦＥＲＭ  ＢＰ−５９５４で寄託されている（寄託日：いずれも平成９年５月２３日）。また、前述の中尾らの報告に従い、ＫＥ−４のＨＬＡクラスＩ分子のタイピングを行い、ＨＬＡ−Ａ２４０２、−Ａ２６０１、−Ｂ５４、−Ｂ６０、−Ｃｗ１、−Ｃｗ３であることを確認した。
参考例２
ＨＬＡ−Ａ２４０２  ｃＤＮＡの調製
ＫＥ−４から、中尾ら著，Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：４２４８−４２５２（１９９５）の記載に従い、ＨＬＡ−Ａ２４０２のｃＤＮＡ（Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ６４７４０）を発現ベクターｐＣＲ３（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ社製）に組み込んだ組換えプラスミドを作製した。
参考例３
ＫＥ−４由来ｃＤＮＡライブラリーの作製
ＫＥ−４からｍＲＮＡ精製システム（ファルマシアバイオテク社製）を用い添付のプロトコールに従い、全ＲＮＡ画分の分離およびｏｌｉｇｏ（ｄＴ）カラムによるｐｏｌｙ（Ａ）＋ｍＲＮＡの調製を行った。ｍＲＮＡよりスーパースクリプトプラスミドシステム（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）を用い添付のプロトコールに従い、両端にＮｏｔＩアダプターとＳａｌＩアダプターを連結したｃＤＮＡを作製した後、このｃＤＮＡを発現ベクターのプラスミドｐＳＶ−ＳＰＯＲＴ１（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ  社製）の制限酵素ＮｏｔＩおよびＳａｌＩの切断部位にライゲーションにより連結して組換えプラスミドを得た。この組換えプラスミドをジーンパルサー（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）を用いて２５μＦ，２．５ｋＶの条件で、電気パルスにより大腸菌のエレクトロマックスＤＨ１０ＢＴＭセル（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）に導入し、アンピシリン（５０μｇ／ｍｌ）を含むＬＢ培地（１％バクトトリプトン、０．５％イーストエキス、０．５％ＮａＣｌ、ｐＨ７．３）で組換プラスミドが導入されている形質転換体を選択した。
実施例１
新規な腫瘍抗原タンパク質遺伝子のスクリーニング
参考例３に示した形質転換体の約１００個のプールからの組換えプラスミドＤＮＡの回収は以下のように行った。すなわち、アンピシリン（５０μｇ／ｍｌ）を含むＬＢ培地の入った９６ウェルＵ底マイクロプレートに、ウェルあたり１００個の形質転換体を加え培養後、その一部をウェル当たり０．２５ｍｌのＴＹＧＰＮ培地（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌら編、ＣＵＲＲＥＮＴ  ＰＲＯＴＣＯＬＳ  ＩＮ  ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＢＩＯＬＯＧＹ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．）の入った別の９６ウェルＵ底マイクロプレートに移して３７℃で４８時間培養し、残りのＬＢ培地のマイクロプレートは凍結保存した。ＴＹＧＰＮ培地で培養した形質転換体の組換えプラスミドＤＮＡは、マイクロプレートでアルカリ溶解法（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌら編、ＣＵＲＲＥＮＴ  ＰＲＯＴＣＯＬＳ  ＩＮ  ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＢＩＯＬＯＧＹ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．）により調製した。イソプロパノール沈澱で回収した組換えプラスミドＤＮＡは、５０μｌの２０ｎｇ／ｍｌ  ＲＮａｓｅを含む１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，ｐＨ７．４溶液で懸濁した。
線維芽細胞株のＶＡ−１３細胞（理化学研究所細胞開発銀行、Ａｎｎ．Ｍｅｄ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｆｅｎｎ．，４４：２４２−２５４，１９６６）へ、リポフェクチン法により以下のようにＫＥ−４ｃＤＮＡの組換えプラスミドとＨＬＡ−Ａ２４０２ｃＤＮＡの組換えプラスミドをダブルトランスフェクトした。すなわち、ＶＡ−１３細胞を９６ウェル平底マイクロプレートにウェル当たり７０００個を加えて、１００μｌの１０％  ＦＣＳを含むＲＰＭＩ１６４０培養液で２日間培養した。リポフェクチン試薬（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）を用い、形質転換体約１００個分のＫＥ−４ｃＤＮＡの組換えプラスミド２５μｌと参考例２に示したＨＬＡ−Ａ２４０２ｃＤＮＡの組換えプラスミド１０μｌ（２００ｎｇ）と約３５倍に希釈したリポフェクチン試薬３５μｌの混合液７０μｌのうちの３０μｌをＶＡ−１３細胞に加えてダブルトランスフェクトした。トランスフェクタントは２点ずつ用意した。５時間後、このトランスフェクタントに２００μｌの１０％  ＦＣＳを含む培養液を加え、更に７２時間、３７℃で培養した後、培養液を除去し、ウェル当たり１００００個のＫＥ−４ＣＴＬを加えて１００μｌの１０％ＦＣＳと２５Ｕ／ｍｌのＩＬ−２を含む培養液で３７℃で２４時間培養した。培養液を回収し、以下のＥＬＩＳＡ法にてＩＦＮ−γ量を測定した。
すなわち、９６ウェルマイクロプレートに固層化抗体として抗ヒトＩＦＮ−γマウスモノクローナル抗体を吸着させ、ウシ血清アルブミンで非特異的結合をブロックした後、検体中のＩＦＮ−γを抗体に結合させた。次に検出抗体として抗ヒトＩＦＮ−γウサギポリクローナル抗体を結合させ、さらにアルカリフォスファターゼ標識した抗ウサギイムノグロブリンヤギ抗体を結合した後、発色基質としてパラニトロフェニルフォスフェートを反応させ、１Ｎ  ＮａＯＨを等量加えて反応を停止させた後、吸光度（４０５ｎｍ）を測定した。これをスタンダードのＩＦＮ−γで得られた値と比較することにより定量した。
高いＩＦＮ−γ産生が認められた群については、該当する凍結保存してあったＫＥ−４ｃＤＮＡの組み換えプラスミドによる形質転換体約１００個のプールを用いてさらに以下のようにスクリーニングを行った。すなわち、形質転換体のプールをアンピシリン（５０μｇ／ｍｌ）を含むＬＢ寒天培地のプレートにまいてコロニーを得て、各群２００コロニーについてウェル当たりの形質転換体が１種類となる条件で上記と同様の方法で培養し、ＫＥ−４ｃＤＮＡの組換えプラスミドＤＮＡを調製した。さらに上記と同様な方法でＶＡ−１３細胞へのＫＥ−４ｃＤＮＡの組換えプラスミドとＨＬＡ−Ａ２４０２  ｃＤＮＡの組換えプラスミドのダブルトランスフェクトを行い、引き続いてＫＥ−４ＣＴＬとの混合培養を行い、ＫＥ−４ＣＴＬが反応して産生した培養液中のＩＦＮ−γの定量を行って陽性のプラスミドを選択した。この操作によりＫＥ−４ｃＤＮＡ組換えプラスミドクローンが選択され、クローン１３と命名した。解析の結果、クローン１３には、約１．２ｋｂのｃＤＮＡが組み込まれていた。クローン１３については、さらにもう一度、同様な操作を繰り返してＫＥ−４ＣＴＬによるＩＦＮ−γの産生量を上記と同様の方法により定量した。その結果を以下の表２に示す。
0004436977.tif 000003
ＫＥ−４ＣＴＬは、ＶＡ−１３にＨＬＡ−Ａ２４０２のみをトランスフェクトした細胞に対してよりも、ＶＡ−１３にＨＬＡ−Ａ２４０２とクローン１３をダブルトランスフェクトした細胞に対して、より強く反応してＩＦＮ−γを産生した。この結果から、クローン１３がコードするタンパク質は、腫瘍抗原タンパク質であることが示された。
実施例２
腫瘍抗原タンパク質をコードする全長のｃＤＮＡクローンのクローニング
実施例１で得られたクローン１３に組込まれたｃＤＮＡの遺伝子の全長の長さを調べるために、以下のノーザンハイブリダイゼーションを行った。
まず食道癌細胞株ＫＥ−４より、ＲＮＡｚｏｌ  Ｂ（ＴＥＬ−ＴＥＳＴ，ＩＮＣ，社製）を用いてＲＮＡを調製した。５μｇのＲＮＡをホルムアミド、ホルムアルデヒド存在下で変性させ、アガロース電気泳動を行った後、Ｈｙｂｏｎｄ−Ｎ＋ナイロンメンブレン（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）に転写、固定した。マルチプライムＤＮＡラベリングシステム（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）により、クローン１３の挿入配列部分を３２Ｐで標識してＤＮＡプローブを作製し、公知の方法（中山ら著、バイオ実験イラストレイテッド▲２▼遺伝子解析の基礎、ｐ．１４８−１５１、秀潤社、１９９５年）に従って、メンブレン上のＲＮＡにハイブリダイズさせた後、オートラジオグラフィーにより、クローン１３に組込まれたｃＤＮＡに対応するｍＲＮＡを検出した。この結果より、ｍＲＮＡの全長は約３．８ｋｂであることが明らかになったため、先に得られたクローン１３を含む全長のｃＤＮＡクローンのクローニングを行った。参考例３に示したＫＥ−４由来ｃＤＮＡライブラリーをアンピシリン（５０μｇ／ｍｌ）を含むＬＢ寒天培地のプレートにまいてコロニーを得た後、Ｈｙｂｏｎｄ−Ｎ＋  ナイロンメンブレン（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）に添付のプロトコールに従って、コロニーのＤＮＡを転写、固定した。クローン１３の挿入配列部分を３２Ｐで標識したＤＮＡプローブを用い、上述のノーザンハイブリダイゼーションと同様の条件でハイブリダイゼーションとオートラジオグラフィーを行って、陽性を示す形質転換体のコロニーを選択した。さらに、選択された複数のコロニーより組換えプラスミドを回収し、制限酵素ＮｏｔＩ及びＳａｌＩで処理した後、アガロース電気泳動により組み込まれたｃＤＮＡの長さを確認した。約３．８ｋｂのｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドを選択し、これをクローンＫと命名した。次に、実施例１と同様な方法により、腫瘍抗原タンパク質遺伝子のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドクローンＫと、ＨＬＡ−Ａ２４０２のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドとをＶＡ−１３細胞にダブルトランスフェクトした細胞を標的細胞として、ＫＥ−４ＣＴＬが反応して産生したＩＦＮ−γ量を定量した。その結果を以下の表３に示す。
0004436977.tif 000004
ＫＥ−４ＣＴＬは、ＶＡ−１３にＨＬＡ−Ａ２４０２のみをトランスフェクトした細胞に対してよりも、ＶＡ−１３にＨＬＡ−Ａ２４０２とクローンＫをダブルトランスフェクトした細胞に対して、より強く反応してＩＦＮ−γを産生した。この結果から、クローンＫがコードするタンパク質は腫瘍抗原タンパク質であることが示された。このクローンＫがコードする腫瘍抗原タンパク質を、ＳＡＲＴ−３（ｓｑｕａｍｏｕｓ  ｃｅｌｌ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ  ａｎｔｉｇｅｎｓ  ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ  ｂｙ  Ｔｃｅｌｌｓ−３）と命名した。
実施例３
腫瘍抗原タンパク質遺伝子の塩基配列の決定
実施例２で得られた腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３をコードするＤＮＡついて、ＤｙｅＤｅｏｘｙ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇキット（パーキンエルマー社製）を使用して、その塩基配列を決定した。決定されたＳＡＲＴ−３の塩基配列を、配列表の配列番号：２に示す。該ｃＤＮＡの全長は３７９８塩基対であった。配列番号：２によってコードされるＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列（９６３アミノ酸）を、配列番号：１に示す。配列番号：２に記載した塩基配列を、ＧｅｎＢａｎｋデータベースを使用して既知の配列と比較した結果、腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３の塩基配列は、ＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｄ６３８７９として登録されている機能不明の遺伝子ＫＩＡＡ０１５６と、１塩基（ＫＩＡＡ０１５６の第１０８位）相違する新規な塩基配列を有していた。
実施例４
候補ペプチドの選択
ＨＬＡ分子に結合して提示される抗原ペプチドの配列には規則性（モチーフ）があり、ＨＬＡ−Ａ２４の場合、８〜１１アミノ酸よりなるペプチドの第２位がチロシン、フェニルアラニン、メチオニンあるいはトリプトファン、またＣ末端がフェニルアラニン、トリプトファン、ロイシン、イソロイシンあるいはメチオニンがモチーフとなることが知られている（Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，４１：１７８，１９９５、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５２：３９１３，１９９４、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５５：４３０７，１９９４）。このようなモチーフに従い、配列番号：１に記載の腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列から、上記モチーフを有する８〜１１アミノ酸よりなるペプチド部分を選択した。当該ペプチドの例を配列番号：３〜配列番号：２４に示す。これらのペプチドを（株）バイオロジカに依頼し、Ｆｍｏｃ法にて合成を行った。
次にＨＬＡ−Ａ２４０２  ｃＤＮＡの組換えプラスミドを文献（Ｊ．Ｅｘｐ，Ｍｅｄ．，１８７：２７７，１９９８）の記載に従い、１．８×１０４個のＶＡ−１３細胞にリポフェクチン法にてトランスフェクションしてＨＬＡ−Ａ２４０２を発現させた。この細胞に対し、先に合成したＨＬＡ−Ａ２４の結合モチーフを有する各種ペプチドをそれぞれ１０μＭで２時間添加してパルスした後、２×１０４個のＫＥ−４ＣＴＬとともに１８時間培養し、ＫＥ−４ＣＴＬが産生した培養上清中のＩＦＮ−γ量をＥＬＩＳＡ法にて測定した。７種のペプチド、すなわち腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列の第１０９位から第１１８位の配列よりなるペプチド「１０９−１１８」（配列番号：３）、第１７２位から第１８１位の配列よりなるペプチド
「１７２−１８１」（配列番号：４）、第２８４位から第２９２位の配列よりなるペプチド
「２８４−２９２」（配列番号：５）、第３１５位から第３２３位の配列よりなるペプチド
「３１５−３２３」（配列番号：６）、第４１６位から第４２５位の配列よりなるペプチド
「４１６−４２５」（配列番号：７）、第４２６位から第４３４位の配列よりなるペプチド
「４２６−４３４」（配列番号：８）、及び第４４８位から第４５６位の配列よりなるペプチド
「４４８−４５６」（配列番号：９）を用いて上記の実験を行った結果を表４に示す。
0004436977.tif 000005
ＫＥ−４ＣＴＬは、ペプチドをパルスしていない細胞に対してよりも、ペプチドをパルスした細胞に対して強く反応してＩＦＮ−γを産生した。この結果から、これら７種のペプチドは腫瘍抗原ペプチドとして機能することが示された。
実施例５
腫瘍抗原ペプチドの合成
前記７種のペプチドについて、以下のように固相法により合成を行った。
（１）ＳＡＲＴ−３「１０９−１１８」Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｃｙｓ−Ｈｉｓ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ（配列番号：３）の合成
樹脂はＦｍｏｃ−Ｌｅｕ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ（０．５５ｍｍｏｌ／ｇ、１００−２００ｍｅｓｈ）を用いた。この樹脂１００ｍｇを用いて、後記スケジュール１に従って合成を開始し、Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｃｙｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ，−Ｖａｌ−ＯＨを順次カップリングさせた。カップリングの後スケジュール１の工程３まで行い、その結果、ペプチド樹脂が得られた。
このペプチド樹脂にＲｅａｇｅｎｔＫ（５％フェノール、５％チオアニソール、５％Ｈ２Ｏ、２．５％エタンジチオール／ＴＦＡ溶液）２ｍｌを加え、室温で２．５時間反応させた。水冷下反応液にジエチルエーテル１０ｍｌを加え１０分攪拌し、濾過しジエチルエーテル１０ｍｌで洗浄した。濾上物に酢酸水１０ｍｌを加えて３０分間攪拌後、樹脂を濾別し、酢酸水４ｍｌで洗浄した。濾洗液を凍結乾燥後、得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を１８０分で２５％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｃｙｓ−Ｈｉｓ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ  ３１．０ｍｇを得た。
得られたＶａｌ−Ｔｙｒ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｃｙｓ−Ｈｉｓ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｌｅｕは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、１６％から４６％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間１９．３分を示し、そのアミノ酸分析値（ただし、Ｃｙｓは検出せず）および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、８時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：２．７７  （３）
Ｖａｌ：１．７０  （２）
＊Ｌｅｕ：１．００  （１）
Ｔｙｒ：１．９８  （２）
Ｈｉｓ：０．９１  （１）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１２４１
0004436977.tif 000006
（２）ＳＡＲＴ−３「１７２−１８１」Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅ（配列番号：４）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｉｌｅ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ（０．４１ｍｍｏｌ／ｇ、１００−２００ｍｅｓｈ）１００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を３００分で３０％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅ６６．３ｍｇを得た。
得られたＬｅｕ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、１２％から４２％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間２３．８分を示し、そのアミノ酸分析値および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、１２時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：０．９４  （１）
Ｇｌｘ：１．０３  （１）
Ａｌａ：１．００  （１）
Ｖａｌ：０．８８  （１）
Ｉｌｅ：０．９２  （１）
＊Ｌｅｕ：１．００  （１）
Ｔｙｒ：０．９６  （１）
Ｐｈｅ：０．９７  （１）
Ｌｙｓ：１．４５  （２）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１２２５
（３）ＳＡＲＴ−３「２８４−２９２」Ａｓｎ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ｇｌｎ−Ｌｅｕ（配列番号：５）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ  １００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を３００分で３０％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ａｓｎ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ｇｌｎ−Ｌｅｕ  ２５．０ｍｇを得た。
得られたＡｓｎ−Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ｇｌｎ−Ｌｅｕは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、１２％から４２％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間１９．０分を示し、そのアミノ酸分析値および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、１２時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：１．８７  （２）
Ｇｌｘ：２．０３  （２）
Ａｌａ：０．９８  （１）
＊Ｌｅｕ：２．００  （２）
Ｔｙｒ：０．９９  （１）
Ｌｙｓ：０．９７  （１）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１０９１
（４）ＳＡＲＴ−３「３１５−３２３」Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｌｙｓ−Ｉｌｅ（配列番号：６）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｉｌｅ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ（０．６２ｍｍｏｌ／ｇ、１００−２００ｍｅｓｈ）１００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｍｅｔ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｉｌｅ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を１８０分で４０％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｌｙｓ−Ｉｌｅ  １５．４ｍｇを得た。
得られたＡｌａ−Ｔｙｒ−Ｉｌｅ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ−Ｇｌｕ−Ｍｅｔ−Ｌｙｓ−Ｉｌｅは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、２１％から５１％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間１９．６分を示し、そのアミノ酸分析値（ただし、Ｍｅｔは検出せず）および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、８時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：０．９１  （１）
Ｇｌｘ：１．０６  （１）
Ａｌａ：１．０６  （１）
Ｉｌｅ：１．６９  （２）
Ｔｙｒ：０．８１  （１）
＊Ｐｈｅ：１．００  （１）
Ｌｙｓ：０．８７  （１）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１１３０
（５）ＳＡＲＴ−３「４１６−４２５」Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｕ−Ｉｌｅ−Ｔｒｐ−Ｇｌｎ−Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｌｅｎ（配列番号：７）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ  １００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｒｐ（Ｂｏｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｉｌｅ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を１８０分で３５％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｕ−Ｉｌｅ−Ｔｒｐ−Ｇｌｎ−Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ  １８．９ｍｇを得た。
得られたＡｓｐ−Ｔｙｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｕ−Ｉｌｅ−Ｔｒｐ−Ｇｌｎ−Ａｌａ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、２５％から５５％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間２０．５分を示し、そのアミノ酸分析値（ただし、Ｔｒｐは検出せず）および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、１０時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：１．００  （１）
Ｇｌｘ：２．０９  （２）
Ａｌａ：１．０４  （１）
Ｖａｌ：０．８９  （１）
Ｉｌｅ：０．８６  （１）
＊Ｌｅｕ：１．００  （１）
Ｔｙｒ：１．９５  （２）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１３００
（６）ＳＡＲＴ−３「４２６−４３４」Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ（配列番号：８）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ（０．７２ｍｍｏｌ／ｇ、１００−２００ｍｅｓｈ）１００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｍｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｍｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｍｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を２４０分で２５％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ａｓｐ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｐｈｅ  ３４．０ｍｇを得た。
得られたＡｓｐ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｐｈｅは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、１２％から４２％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間２０．１分を示し、そのアミノ酸分析値および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、１２時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ａｓｘ：１．９０  （２）
Ｖａｌ：０．９５  （１）
＊Ｌｅｕ：１．００  （１）
Ｔｙｒ：１．００  （１）
Ｐｈｅ：０．９９  （１）
Ａｒｇ：２．９３  （３）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１２３９
（７）ＳＡＲＴ−３「４４８−４５６」Ａｌａ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ（配列番号：９）の合成
前記（１）と同様にして、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−Ａｌｋｏ  Ｒｅｓｉｎ  １００ｍｇを用いて、Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ（Ｐｍｃ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ，Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨを順次カップリングさせ、その後脱保護を行った。得られた粗ペプチドを酢酸水に溶解し、予め０．１％ＴＦＡ水で平衡化させた逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−Ａカラム（３０φ×２５０ｍｍ）に注入し、カラムを０．１％ＴＦＡ水で洗浄後、アセトニトリル濃度を２４０分で３０％まで増加させ、流速７ｍｌ／ｍｉｎ．で溶出した。溶出液をＡ２２０ｎｍでモニターし、目的物を含む画分を集め、凍結乾燥し、Ａｌａ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ  ２２．８ｍｇを得た。
得られたＡｌａ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕは、逆相系充填剤ＹＭＣ−ＰＡＣＫ  ＯＤＳ−ＡＭカラム（４．６φ×２５０ｍｍ）を用いた、２０％から５０％までの０．１％ＴＦＡを含むアセトニトリルの直線濃度勾配溶出法による分析において保持時間１８．１分を示し、そのアミノ酸分析値および質量分析値は理論値と一致した。
アミノ酸分析
加水分解：１％フェノール／６Ｎ塩酸水溶液、１１０℃、１２時間
分析法：ニンヒドリン法
＊基準アミノ酸      （）内理論値
Ｔｈｒ：０．９１  （１）
Ｇｌｘ：１．０３  （１）
Ａｌａ：１．９１  （２）
＊Ｌｅｕ：２．００  （２）
Ｔｙｒ：１．００  （１）
Ｐｈｅ：０．９７  （１）
Ａｒｇ：０．９７  （１）
質量分析（ＦＡＢ）
［Ｍ＋Ｈ］＋：１０８３
実施例６
腫瘍抗原ペプチド及びその誘導体による末梢血リンパ球からのＣＴＬ誘導
実施例５で合成した「１０９−１１８」（配列番号：３）及び「３１５−３２３」（配列番号：６）のペプチドを用いて、末梢血リンパ球から抗原特異的なＣＴＬが誘導できるか検討した。
ＨＬＡ−ＡローカスがＡ２４のヘテロである健常人２名（それぞれＨＤ１、ＨＤ２と表記する）の末梢血からフィコール法によりリンパ球を分離した。２４穴プレートに２×１０６細胞／穴となるようにリンパ球を加え、リンパ球培養液で培養した。培養液に前記腫瘍抗原ペプチドを１０μＭになるように加え、末梢血リンパ球を刺激した。１週間後、Ｘ線照射（５０Ｇｙ）した約２×１０５個の末梢血リンパ球とともに前記腫瘍抗原ペプチドを１０μＭになるように加えて、２回目の刺激を行った。さらに１週間後、３回目の刺激を同様に繰り返した。３回目の刺激から１週間後、培養したリンパ球を回収した。ＳＡＲＴ−３を発現しておりＨＬＡ−Ａ２４０２陽性のＴ細胞白血病細胞株であるＭＴ−２、及びＳＡＲＴ−３を発現しているがＨＬＡ−Ａ２４０２陰性のＴ細胞白血病細胞株であるＲＰＭＩ８４０２をそれぞれ標的細胞（１×１０４個）として、前記のリンパ球（８×１０４個）が反応して産生する培養上清中のＩＦＮ−γ量を、実施例１と同様のＥＬＩＳＡ法にて測定した。結果を表６に示す。
0004436977.tif 000007
「１０９−１１８」及び「３１５−３２３」のペプチドで刺激した末梢血リンパ球は、ＨＬＡ−Ａ２４陽性のＭＴ−２に反応したが、ＨＬＡ−Ａ２４陰性のＲＰＭＩ８４０２には反応しなかったことから、ＨＬＡ−Ａ２４拘束性の抗原ペプチド特異的なＣＴＬが誘導されていることが示された。
なお本実験で用いたＭＴ−２の代わりに、ＨＬＡ−Ａ２４のｃＤＮＡ発現プラスミドをＣＯＳ−７細胞（ＡＴＣＣ  Ｎｏ．ＣＲＬ１６５１）やＶＡ−１３細胞（理化学研究所細胞銀行）に導入してペプチドをパルスした細胞を用いることによっても、同様の実験を行うことが可能である（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８７：２７７，１９９８）。
実施例７
大腸癌由来の腫瘍内浸潤リンパ球（ＴＩＬ）からの細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）株の樹立
Ｓ状結腸癌患者手術検体（ＨＬＡ−Ａ０２０７陽性）のＴＩＬを２４穴プレートを用い、４５％ＲＰＭＩ、４５％ＡＩＭ−Ｖ（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）、１０％ＦＣＳに、１００Ｕ／ｍｌインターロイキン−２、０．１ｍＭ  ＮＥＡＡ（ＧＩＢＣＯ  ＢＲＬ社製）を添加した培養液（以下、リンパ球培養液と呼ぶ）で培養した。培養開始から２日間は、培養液中に抗ＣＤ３抗体のＮＵ−Ｔ３（ニチレイ社製）を１μｇ／ｍｌ添加した。３０日以上培養を続け、ＨＬＡ−Ａ２拘束性のＣＴＬ株を樹立し、これをＯＫ−ＣＴＬと命名した。ＯＫ−ＣＴＬは、茨城県つくば市東一丁目１番３号、工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託されている（微生物の表示：ＯＫ−ＣＴＬ；受領日：平成１１年８月３日；受託番号：ＦＥＲＭ  ＢＰ−６８１８）。
次に、ＳＷ６２０細胞（ＡＴＣＣ株番号ＣＣＬ−２２７）から中尾ら著，Ｃａｎｃｅｒ．Ｒｅｓ，，５５：４２４８，１９９５の記載に従い、ＨＬＡ−Ａ０２０１のｃＤＮＡ（Ｇｅｎｂａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ８４３７９）を発現ベクターｐＣＲ３（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ社製）に組込んだ組換えプラスミドを作製した。実施例１と同様のリポフェクチン法により、アフリカミドリザルの腎臓由来の細胞株ＣＯＳ−７（ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ１６５１）（１×１０４個）へＳＡＲＴ−３遺伝子のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドクローンＫとＨＬＡ−Ａ０２０１のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドをダブルトランスフェクトした細胞を標的細胞として、５×１０４個のＯＫ−ＣＴＬが反応して産生したＩＦＮ−γ量をＥＬＩＳＡ法にて定量した。また、対照群として、トランスフェクトしない無処理群、組換えプラスミドクローンＫとＨＬＡ−Ａ２４０２のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドをダブルトランスフェクトした群を設定した。その結果を以下の表７に示す。
0004436977.tif 000008
ＳＡＲＴ−３遺伝子のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドクローンＫとＨＬＡ−Ａ０２０１のｃＤＮＡが組み込まれた組換えプラスミドをダブルトランスフェクトした場合、ＯＫ−ＣＴＬは他の群に比べ強く反応して、ＩＦＮ−γを産生した。このことから、ＨＬＡ−Ａ０２０１に腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３の抗原ペプチドが提示され、これをＯＫ−ＣＴＬが認識すること、すなわちＳＡＲＴ−３にはＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドの存在していることが明らかになった。
実施例８
ＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドの同定
配列番号：１に記載の腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列からＨＬＡ−Ａ０２０１に結合可能と予想される９または１０アミノ酸よりなるペプチドを、インターネットによりＮＩＨのＢＩＭＡＳのソフト（ｈｔｔｐ：／／ｂｉｍａｓ．ｄｃｒｔ．ｎｉｈ，ｇｏｖ／ｍｏｌｂｉｏ／ｈｌａ＿ｂｉｎｄ／）を用いて検索した。検索されたペプチドの例を配列番号：２５〜配列番号：５２に示す。これらのペプチドを（株）バイオロジカに依頼し、Ｆｍｏｃ法にて合成を行った。
次に、ＨＬＡ−Ａ０２０１陽性であるが内因性ペプチド提示能が欠損しているＴ−Ｂハイブリドーマ細胞株のＴ２細胞（Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ，２１：２３５，１９８５）１×１０４個に対し、先に合成したＨＬＡ−Ａ０２０１に結合可能と予想されるペプチドをそれぞれ１０μＭで２時間パルスした後、６×１０４個のＯＫ−ＣＴＬとともに１８時間培養し、ＯＫ−ＣＴＬが産生した培養上清中のＩＦＮ−γ量をＥＬＩＳＡ法にて定量した。５種類のペプチド、すなわち腫瘍抗原タンパク質ＳＡＲＴ−３のアミノ酸配列の第１５２位から第１６０位の配列よりなるペプチド「１５２−１６０」（配列番号：２５）、第２４９位から第２５７位の配列よりなるペプチド「２４９−２５７」（配列番号：２６）、第３０２位から第３１０位よりなるペプチド「３０２−３１０」（配列番号：２７）、第３０９位から第３１７位よりなるペプチド「３０９−３１７」（配列番号：２８）、及び第３８６位から第３９４位よりなるペプチド「３８６−３９４」（配列番号：２９）を用いて上記の実験を行った結果を表８に示す。
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ＯＫ−ＣＴＬは、ペプチドをパルスしていない細胞に対してよりも、ペプチドをパルスした細胞に対して強く反応してＩＦＮ−γを産生した。この結果から、これら５種類のペプチドはＨＬＡ−Ａ２拘束性の腫瘍抗原ペプチドとして機能することが示された。
なお本実験で用いたＴ２細胞の代わりに、ＨＬＡ−Ａ０２０１のｃＤＮＡ発現プラスミドをＣＯＳ−７細胞（ＡＴＣＣ  Ｎｏ．ＣＲＬ１６５１）やＶＡ−１３細胞（理化学研究所細胞銀行）に導入した細胞を用いることによっても、同様の実験を行うことが可能である（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８７：２７７，１９９８）。
配列表フリーテキスト
配列番号：５３に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第１０番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５４に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第１０番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５５に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第９番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５６に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第９番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５７に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第１０番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５８に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第９番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：５９に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、チロシン、メチオニンまたはトリプトファンであり、第９番目のアミノ酸は、フェニルアラニン、ロイシン、イソロイシン、トリプトファンまたはメチオニンである。
配列番号：６０に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、ロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンであり、第９番目のアミノ酸は、バリンまたはロイシンである。
配列番号：６１に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、ロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンであり、第９番目のアミノ酸は、バリンまたはロイシンである。
配列番号：６２に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、ロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンであり、第９番目のアミノ酸は、バリンまたはロイシンである。
配列番号：６３に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、ロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンであり、第９番目のアミノ酸は、バリンまたはロイシンである。
配列番号：６４に記載のアミノ酸配列の第２番目のアミノ酸は、ロイシン、メチオニン、バリン、イソロイシンまたはグルタミンであり、第９番目のアミノ酸は、バリンまたはロイシンである。
産業上の利用の可能性
本発明により、新規な腫瘍抗原タンパク質およびその遺伝子、該腫瘍抗原タンパク質由来の腫瘍抗原ペプチド、これらの物質の誘導体、あるいはこれら腫瘍抗原タンパク質、遺伝子、腫瘍抗原ペプチドまたはこれらの誘導体を、ｉｎ  ｖｉｖｏまたはｉｎ  ｖｉｔｒｏで利用した腫瘍の治療剤、予防剤または診断薬などを提供することができる。
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