(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損した非ヒト動物胚を、赤血球形成に欠陥を有する貧血症モデル非ヒト動物胚として使用する方法。
【請求項２】
非ヒト動物胚が、齧歯目動物胚であることを特徴とする請求項１記載の方法。
【請求項３】
齧歯目動物胚が、マウス胚であることを特徴とする請求項２記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、デオキシリボヌクレアーゼII（DNase II）遺伝子機能が染色体上で欠損した赤血球形成に欠陥を有する貧血症モデル非ヒト動物、及び該貧血症モデル非ヒト動物を用いた赤血球形成の促進剤又は抑制剤のスクリーニング方法等に関する。
【０００２】
【従来の技術】
DNase IIは、ＤＮAに特異的に作用し、ホスホジエステル結合を加水分解して３′末端にリン酸基をもつオリゴヌクレオチドを生じるタイプのエンドヌクレアーゼであり、金属イオンを要求しない酸性条件が至適条件のリソソーム酵素（G. Bernardi, in The Enzymes P. D. Boyer, Ed.(Academic Press, New York and London, 1971), vol. 3, pp. 271）で、さまざまな組織で発現することが知られている（Gene 215, 281, 1998、J. Biol. Chem. 273, 2610, 1998）。最近、線虫(Caenorhabditis elegans)のアポトーシス細胞のＤＮＡの分解に寄与するNuc-1が、哺乳類のDNase IIの相同体として同定された（Genes Dev. 14, 536, 2000）。アポトーシスの過程にDNase IIが関与することは示されたが、哺乳類におけるDNase IIの生理学的な役割は未だ明らかにされていない。
【０００３】
他方、遺伝子操作における有効なツールとして、バクテリオファージＰ１のＣｒｅ−ｌｏｘ組換えシステム(J.Mol.Biol. 150,467-486, 1981)や酵母サッカロミセス・セレビッシェのＦＬＰ−ＦＲＴ組換えシステム（J.Mol.Biol. 284,363-384, 1998）が知られている。例えば、リコンビナーゼ（組換え酵素）Ｃｒｅは、２つのｌｏｘＰ配列間において相互の部位特異的組換えを誘導し、同一ＤＮＡ分子上に同方向の２つのｌｏｘＰ配列が存在する場合は、その間に挟まれたＤＮＡ配列が切り出されて環状分子となり（切出し反応）、またその逆に、異なるＤＮＡ分子上に２つのｌｏｘＰ配列が存在し、その一方が環状ＤＮＡである場合は、ｌｏｘＰ配列を介して環状ＤＮＡが他方のＤＮＡ分子上に挿入される（挿入反応）。この挿入反応を利用すると、ｌｏｘＰが既に存在する動植物細胞の染色体に所望の遺伝子を挿入することができるが、リコンビナーゼＣｒｅの切出し−挿入反応の平衡は切出し反応側に偏っていることが知られている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
DNase IIが貧血症に関与する研究や貧血症の治療法の開発に有効な動物モデルは現在まで知られていない。本発明の課題は、その発症機構を解明するための適切な病態モデルが存在しておらず、治療方法の開発が遅れている貧血症の治療の道を拓く貧血症モデル非ヒト動物や、これを用いた貧血症治療薬のスクリーニング方法を提供することにある。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、DNase IIの生理的機能の解明について鋭意研究を進め、DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損したマウス、すなわちDNase IIノックアウトマウスの系を確立したところ、該DNase IIが欠損したノックアウトマウスの１７．５日胚が最終的な赤血球形成に欠陥を有し、激しい貧血症の徴候を示すことを見い出し、本発明を完成するに至った。
【０００６】
すなわち本発明は、（１）DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損した非ヒト動物胚を、赤血球形成に欠陥を有する貧血症モデル非ヒト動物胚として使用する方法に関する。
【０００７】
また本発明は、（２）非ヒト動物胚が、齧歯目動物胚であることを特徴とする上記（１）記載の方法や、（３）齧歯目動物胚が、マウス胚であることを特徴とする上記（２）記載の方法に関する。
【０００８】
【発明の実施の形態】
本発明において、DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損した非ヒト動物とは、DNase IIをコードする非ヒト動物の内在性遺伝子が破壊・欠損・置換等の遺伝子変異により不活性化され、DNase IIを発現する機能を失なった非ヒト動物をいう。また本発明における非ヒト動物としては、マウス、ラット等の齧歯目動物を具体的に挙げることができるが、これらに限定されるものではない。
【０００９】
本発明における野生型の非ヒト動物とは、上記DNase II遺伝子機能が欠損した非ヒト動物と同種の動物を意味し、中でも同腹の動物を好適に例示することができる。また上記DNase II遺伝子機能が欠損した非ヒト動物としては、メンデルの法則に従い出生してくるものが、DNase II欠損型と同腹の野生型を得ることができ、これらを用いて正確な比較実験をすることができる点で好ましい。そして上記のように、DNase II遺伝子機能欠損貧血症モデル非ヒト動物の好適例としては、DNase IIノックアウトマウスを、野生型マウスとしては該ノックアウトマウスと同腹の野生型マウスを、それぞれ具体的に挙げることができる。以下、非ヒト動物がマウスの場合を例にとって説明する。
【００１０】
DNase IIノックアウトマウスの作製法としては、DNase IIを発現する機能を失ったノックアウトマウスを作製することができるものであればどのような作製法でもよいが、例えば、マウス遺伝子ライブラリーからＰＣＲ等の方法により得られた遺伝子断片を用いて、DNase II遺伝子をスクリーニングし、スクリーニングされたDNase II遺伝子を、プラスミドベクター等を用いてサブクローンし、ＤＮＡシーケンシングにより特定し、このクローンのDNase II遺伝子の全部又は一部を含むフラグメントをネオマイシン耐性遺伝子カセット等に置換することによって、ターゲットベクターを作製する方法を挙げることができる。
【００１１】
この線状化されたベクターをエレクトロポレーション（電気穿孔）法等によってＥＳ細胞に導入し、Ｇ―418などの薬剤に抵抗性の細胞の中から相同的組換えを行ったＥＳ細胞を選択し、その細胞のクローンをマウスの胚盤胞中にマイクロインジェクションし、かかる胚盤胞を仮親のマウスに戻し、キメラマウスを作製する。このキメラマウスを野生型のマウスとインタークロスさせると、ヘテロ接合体マウス（DNase II+/-）を得ることができ、また、このヘテロ接合体マウスをインタークロスさせることによって、DNase IIノックアウトマウス（DNase II-/-）を得ることができる。
【００１２】
また、DNase IIノックアウトマウスは激しい貧血症状を呈し、生存状態で生まれてこないので、コンディショナルなDNase IIノックアウトマウスを作製することもできる。コンディショナルDNase IIノックアウトマウスの作製法としては、例えば、マウス遺伝子ライブラリーからＰＣＲ等の方法により得られた遺伝子断片を用いて、DNase II遺伝子をスクリーニングし、スクリーニングされたDNase II遺伝子をプラスミドベクター等を用いてサブクローンし、ＤＮＡシーケンシングにより特定する。このクローンのDNase IIエキソンとその周囲のイントロンを含むフラグメントを、２つのｌｏｘＰ配列間に挟まれたDNase II遺伝子とその下流にネオマイシン耐性遺伝子等のマーカー遺伝子が連結された配列に置換することによって、ターゲットベクターを作製する。
【００１３】
この線状化されたベクターをエレクトロポレーション（電気穿孔）法等によってＥＳ細胞に導入し、Ｇ−４１８などの薬剤に抵抗性の細胞の中から相同的組換えを行ったＥＳ細胞を選択し、その細胞のクローンをマウスの胚盤胞中にマイクロインジェクションし、かかる胚盤胞を仮親のマウスに戻し、キメラマウスを作製する。このキメラマウスを野生型のマウスとインタークロスさせると、ヘテロ接合体マウスを得ることができ、また、このヘテロ接合体マウスをインタークロスさせることによって、コンディショナルDNase IIノックアウトマウスを得ることができる。このコンディショナルDNase IIノックアウトマウスに、アデノウイルスAxCANCre等を用いてリコンビナーゼ（組換え酵素）Ｃｒｅを作用させると、２つのｌｏｘＰ配列間において相互の部位特異的組換えを誘導し、２つのｌｏｘＰ配列の間に挟まれたDNase II遺伝子とマーカー遺伝子との連結ＤＮＡ配列が切り出されて、激しい貧血症状を呈するDNase IIノックアウトマウスとすることができる。
【００１４】
本発明の赤血球形成の促進剤又は抑制剤のスクリーニング方法としては、DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損した貧血症モデル非ヒト動物に被検物質を投与し、該非ヒト動物の赤血球形成の程度を評価する方法であれば特に制限されるものではなく、例えば貧血症モデル非ヒト動物を懐胎したヘテロ接合体非ヒト動物に被検物質を投与し、DNase II遺伝子機能が染色体上で欠損した貧血症モデル非ヒト動物胚における赤血球形成の程度を同腹の野生型マウスの場合と比較評価することにより、あるいは、コンディショナルDNase IIノックアウト非ヒト動物に被検物質とＣｒｅ発現ベクターとを投与し、DNase II遺伝子機能が欠損した非ヒト動物における貧血症状の程度を同腹の野生型マウスの場合と比較評価することによりスクリーニングすることができる。
【００１５】
【実施例】
以下に、実施例を揚げてこの発明を更に具体的に説明するが、この発明の範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
実施例１（DNase II遺伝子欠損マウスの作製）
マウスのDNase II遺伝子は、２．３ｋｂゲノムＤＮＡの６つのエクソンにコードされている。そこで、図１Ａ記載のエクソン１〜５及びエクソン６の一部をネオマイシン耐性遺伝子（ｎｅｏ遺伝子）に置換したターゲティングベクターを以下のように構築した。マウスDNase IIの遺伝子を１２９／Ｓｖ系統由来のマウスのゲノムライブラリー（Stratagene）からスクリーニングした後、マウスDNase II遺伝子を有するＤＮＡ断片をサブクローニングし、DNase II遺伝子を含む２．３ｋｂのＮｒｕＩ−ＸｍｎＩのＤＮＡ断片を、ホスホグリセレートキナーゼ１遺伝子プロモーターにより発現する１．９ｋｂのｎｅｏ遺伝子に置換し、また、ポリオーマウイルスのエンハンサーの下流に配置されたジフテリアトキシンＡフラグメントをコードするＤＮＡフラグメントをDNase II遺伝子の下流に挿入することによりDNase IIターゲティングベクター（ｐＫＯＤＮII）を構築した。
【００１６】
かかるｐＫＯＤＮIIプラスミド（１９μｇ）をＮｏｔIで消化することにより線状化し、エレクトロポレーション法により７．７×１０6のＲ１マウス胚幹細胞（ＥＳ細胞）に導入した。その後、７日間、１５０μｇ／ｍｌのＧ―４１８の存在下で培養することにより上記ベクターが導入された細胞を選択し、以下に記載のＰＣＲ法によって相同組み換え体を確認し、DNase II遺伝子座に変異を有するＧ―４１８耐性のトランスフォーマントを樹立した。樹立した８個のＥＳクローン胚を仮親の雌マウスの胚盤胞中にマイクロインジェクションした（J. Biochem. Biophys. Methods 39, 137, 1999）。４つのクローンから得られたキメラマウスをＣ５７ＢＬ／６マウスと交配し、ヘテロ接合体マウス（Ｆ１）を作製した。また、ホモ接合体マウス（Ｆ２）を得るためにかかるヘテロ接合体マウスをインタークロスさせた。
【００１７】
上記ＰＣＲ法は、ＥＳクローンから単離されたゲノムＤＮＡと、４種類のプライマー［プライマー１：5'-TGCACATGAAGCGTCACCTCTGAGTGATCC-3' (5'領域)、プライマー２：5'-ACCTGCGTGCAATCCATCTTGTTCAATGGC-3' (5'領域)、プライマー３：5'-GATTCGCAGCGCATCGCCTTCTATCG-3' (3'領域)、プライマー４：5'-CACCTAGAGTCAGAAGATGACACCAGCTAC-3'  (3'領域) ］とを用いてExpand Long Template PCR System（Roche Diagnostics社製）によりＰＣＲを行い、ヘテロ接合型マウス（Ｆ１）においてDNase II遺伝子が欠損されているかどうかを確認した（図１Ｂ）。かかるヘテロ接合型DNase II+/-マウスは生きており生殖能もあったが、かかるDNase II+/-マウス同士を交配させた子孫（Ｆ２）の中に生きている状態のDNase II-/-マウスは存在しなかった（表１）。また、生存している子孫の遺伝子型はヘテロ接合体の親由来のものであった。DNase II-/-マウスの遺伝子型は胚由来のＤＮＡを用いたＰＣＲ解析により決定した。なお、マウス胚が生きているか否かは解剖時に心臓の鼓動があるかどうかで判断した。
【００１８】
【表１】
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【００１９】
上記妊娠時のDNase II-/-マウス胚から調製されたNcoI消化ＤＮＡと、図１Ａに示される領域からなるプローブ（０．７ｋｂ）を用いてサザンハイブリダイゼーションを行ったところ、胚の段階ではほぼメンデルの法則に従いDNase II-/-マウス胚が存在していることがわかった。なお、図１Ａ中の黒及び影付のボックスは、それぞれDNase IIとＥＫＬＦ遺伝子のエクソンを意味し、太線はサザンブロットにおいて用いられたプローブの領域を、矢印と矢頭はＰＣＲ法において用いたプライマーの位置をそれぞれ示している。
【００２０】
実施例２（野生型及び変異型マウスの胚肝臓における遺伝子発現の解析）
胎生１４．５日のDNase II+/+マウス、DNase II+/-マウス、又はDNase II-/-マウスの胚由来の肝臓から全ＲＮＡ（６μｇ）を単離し、DNase II、ＥＫＬＦ、マウスβmajorグロビン（βmajor）の各ｃＤＮＡをプローブとして用い、ノーザンハイブリダイゼーションを行い、メチレンブルーで染色した。なお、コントロールとしてリボゾームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）を用いた。その結果を図２Ａに示す。図２Ａ中の矢頭はそれぞれ２８Ｓと１８ＳのｒＲＮＡを示す。これらの結果から、野生型マウス及びDNase II+/-マウスの胚由来の肝臓においてはDNase II遺伝子が発現しており、DNase II-/-マウス胚由来の肝臓ではかかる遺伝子の発現が確認できなかった。また、赤芽球Ｋｒｕｐｐｅｌ様因子（ＥＫＬＦ）は赤芽細胞分化において必須の転写因子であり（Nature 375, 316, 1995、Nature 375, 318, 1995）、ＥＫＬＦ遺伝子はDNase II遺伝子の３．９ｋｂ上流に位置している（図１Ａ）ことから、胎生１４．５日のDNase II-/-マウス及び野生型マウス胚由来の肝臓におけるＥＫＬＦ及びβmajグロビンのｍＲＮＡの発現を調べたところ、同レベルで発現しているのが確認できた。このことから、ＥＫＬＦの発現と機能はDNase II-/-マウス胚では正常であることがわかった。
【００２１】
ＤＬＡＤとＸｉｂのような他のDNaseはDNase IIと同様な性質（至適条件が酸性ｐＨ及び２価の陽イオンの要求性なし）を持っていることが知られている（Nucleic Acids Res. 27, 4083, 1999、Gene 188, 119, 1997）。そこで、胎生１４．５日のDNase II+/+マウス胚（＋／＋）、DNase II+/-マウス胚（＋／−）、及びDNase II-/-マウス胚（−／−）の肝臓からそれぞれ調製した細胞抽出物におけるDNase II活性を調べてみた。文献（J. Biol. Chem. 270, 28579, 1995）記載の方法と同様に、胎生１４．５日の上記各マウス胚の肝臓から細胞抽出物を採取し、３種類の濃度（１．０、２．０、３．０μｇタンパク質）に調製した。かかる細胞抽出物を、１０ｍＭのＥＤＴＡを含む１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ５．７）３００μｌ中で２μｇのプラスミドＤＮＡ（pBluescript）といっしょに１時間インキュベートした後、フェノール抽出し、得られたＤＮＡを１％のアガロースゲル電気泳動法で分離し、DNase II活性を測定した。DNase I活性の測定は、１０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）、１０ｍＭのＣａＣｌ2、及び１０ｍＭのＭｇＣｌ2を含む反応液中で上記と同様に行った。なお、コントロールとして仔牛膵臓由来のDNase I（Boehringer Mannheim社製）及びブタ脾臓由来のDNase II（Worthington 社製）を用いて上記と同様の操作を行った。その結果を図２Ｂに示す。この結果から、野生型マウス胚（＋／＋）又はヘテロ接合体マウス胚（＋／−）の肝臓由来の細胞抽出物はｐＨ５．７において、実質的にDNase活性を示し、DNase活性はDNase II-/-マウス胚の肝臓由来の抽出物においても検出された。これに対してＣａ2+とＭｇ2+の存在下で、中性のｐＨでDNase I活性を測定したところ、DNase II-/-マウス胚の肝臓由来の抽出物におけるDNase I活性は野生型マウス胚のものよりわずかに高いことがわかった。
【００２２】
実施例３（DNase II+/-マウスからの同腹子の産生）
胎生１２．５日の卵黄嚢やかかるマウス胚［DNase II+/+（野生型）マウス胚又はDNase II-/-（ＫＯ）マウス胚］における脈構造は正常であった（図３Ａ；参考写真１参照）。また、胎生１２．５日のDNase II-/-マウス胚における原始赤血球数は、DNase II+/+マウス胚のものと同じくらいであった。しかし、いくつかのDNase II-/-マウス胚では胎生１４．５日目で野生型の胚よりも色が白いことが確認できた。また、DNase II-/-マウス胚の全てが胎生１７．５日目で激しい貧血症を伴っていた（図３Ｂ；参考写真１参照）。１７．５日齢の各マウス胚［DNase II+/+マウス胚（＋／＋）、DNase II+/-マウス胚（＋／−）、又はDNase II-/-マウス胚（−／−）］は１unit/mlのヘパリンを含む生理的食塩水を１０ｍｌ心臓に流しこむことにより出血させ、全血液細胞数をＣｏｕｌｔｅｒカウンターによりカウントした。なお、表２の値は５つの各マウス胚から求め、平均＋ＳＤで表した。DNase II-/-マウス胚の末梢血液における成熟型赤血球の数は、同腹子の胎生１７．５日の野生型マウスと比べて１０分の１以下であった（表２）。また、野生型マウス胚の末梢血液において確認できた好中球や単核白血球などの有核細胞が、DNase II-/-マウス胚の末梢血液中でも同数程度確認できた（図３Ｃ；参考写真１参照）。なお、末梢血液細胞はサイトスピン（cytospin）により収集し、ライトギムザ（Wright-Giemsa）で染色し、視覚化した。さらに有核赤血球を含むDNase II-/-マウス胚の末梢血液はエリスロシン（erythrosin）に対して陽性を示す原始赤血球ではなく、除核されていない赤血球であった（図３Ｃ；参考写真１参照）。激しい貧血症を除いて胎生１７．５日のDNase II-/-マウス胚では脳、腸、心臓、腎臓、指趾間形成において異常がなく、明らかに正常であった。これらの結果から赤血球形成能はDNase II-/-マウス胚において特異的に損なわれていることがわかった。
【００２３】
【表２】
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【００２４】
胚における赤血球生成は肝臓や脾臓で行われている。造血細胞に特異的なサイトカインを含むメチルセルロース培地中で、胚肝臓における血球の未熟細胞数を文献（Genes Dev. 12, 1176, 1998、Proc.Natl.Acad. Sci. USA 96, 7265, 1999）記載の方法により測定した。胎生１２．５日の野生型マウス胚（野生型）又はDNase II-/-マウス胚（ＫＯ）由来の肝臓を細かく切断した後、１ｍＭのＥＧＴＡを添加した肝臓perfusion培地（Gibco/ＢＲＬ）で培養し、さらに肝臓消化培地（Ｇｉｂｃｏ／ＢＲＬ）で培養した。成熟型赤血球を１．０ｍＭのＫＨＣＯ3、１５０ｍＭのＮＨ4Ｃｌ、０．１ｍＭのＥＤＴＡを含む溶液中で溶解した。細胞（ＣＦＵ−Ｅは２×１０4、ＢＦＵ−Ｅ、ＣＦＵ−Ｇ、及びＣＦＵ−Ｍは１×１０5）は、最終濃度が１．０％のメチルセルロース、３０％のウシ血清胎児、１％のＢＳＡ、０．１ｍＭのβメルカプトエタノール、２ｍＭのＬ−グルタミンになるように添加したMethocult M3231（Stem Cell Technologies）を含む３５ｍｍ培養皿中で混合した。ＣＦＵ−Ｅ、ＣＦＵ−Ｇ及びＧ−ＣＳＦの分析のため、２units/mlのヒトＥＰＯ（中外製薬）、５ｎｇ／ｍｌのヒトＧ−ＣＳＦ（中外製薬）、及び５ｎｇ／ｍｌのヒトＭ−ＣＳＦ（森永乳業）を加えた培養液中で、３７℃で３日、４日及び７日間培養した。ＢＦＵ−Ｅにおいては、２units/mlのヒトＥＰＯと１０units/mlのマウスＳＣＦ（Pepprotech EC社製）とを添加した培養液で７日間培養した。赤芽細胞コロニーは文献（Exp. Hematol. 15, 85, 1987）記載の方法と同様にＤＡＦ（2,7-diaminofluorene）で染色しコロニー数を計測した。その結果を表３に示す。なお、表３の値は３つの各マウス胚から求め、平均＋ＳＤで表した。この結果から、胎生１２．５日のDNase II-/-マウス胚の肝臓におけるＢＦＵ−Ｅ、ＣＦＵ−Ｇ、ＣＦＵ−Ｍ、ＣＦＵ−Ｅの数は野生型マウス胚におけるものと同じぐらいであることがわかった（表３）。ＢＦＵ−ＥとＣＦＵ−Ｅのコロニーの細胞がＤＡＦ（2,7-diaminofluorene）によって染色されることは、DNase II-/-マウス由来の赤芽細胞がヘモグロビン産生細胞に分化できることを示唆している。また、野生型マウス（野生型）又はDNase II-/-マウス（ＫＯ）胚の肝臓において産生されたＣＦＵ−Ｅのコロニーでは、約１０％の細胞で核が取り除かれていた（図３Ｄ；参考写真１参照）。
【００２５】
【表３】
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【００２６】
Ｆ２胚由来の肝臓細胞を、致死照射したＢ６．ＳＪＬマウスに移植した。胚肝臓細胞を移植する際、胎生１２．５日の野生型マウス胚又はDNase II-/-マウス胚（各７〜８胚）の肝臓から調製した単細胞浮遊物を回収し、137Ｃｓ源により致死的に照射（９００ｃＧｙ）された３ヶ月齢の仮親Ｂ６．ＳＪＬマウスに、１×１０6の胚肝臓細胞を静脈中に注射した。抗生物質水溶液（１０００unit/mlの硫酸ポリミキシンＢと1.1mg/mlの硫酸ネオマイシン）を飲料水に加えることによって上記マウスを維持した。その結果を図３Ｅ（参考写真１参照）に示す。なお、コントロール１及びコントロール２は、それぞれＨｂｂsとＨｂｂdハプロタイプのヘモグロビンを電気泳動した結果を示し、βs、βdmaj（βdmajor）、及びβdmin（βdminor）は各β−グロビンのバンドを、αはα−グロビンのバンドを、n.s.は非特異的なバンドをそれぞれ示す。照射のみしたコントロールマウスは３週間しか生きられなかったが、野生型マウス胚あるいはDNase II-/-マウス胚の肝臓細胞のマウスは少なくとも４週間生き延びた。宿主Ｂ６．ＳＪＬ株におけるＨｂｂdハプロタイプはホモ接合体で、一方１２９／ＳｖのＥＳ細胞はハプロタイプでホモ接合体である（Ann N. Y. Acad. Sci. 241, 25, 1974）。図３Ｅに示すように、野生型マウス又はDNase II-/-マウスの胚肝臓細胞を移植したマウスのβ−グロビンの３０〜５０％は移植後３週間でＨｂｂdハプロタイプを示した。これらの結果はDNase II-/-マウス赤芽細胞が成熟細胞に発達することができ、DNase II-/-マウスの赤血球形成においては欠陥がないことを示唆している。
【００２７】
実施例４（DNase II-/-胚の肝臓における異常な病巣）
（A）胚肝臓の組織学的解析
DNase II-/-マウス胚の肝臓について次に示すように組織学的に解析を行った。野生型とDNase II-/-（ＫＯ）の胎生１４．５日の胚をヘマトキシリンとエオシン（H&E）又はFeulgenで染色し、０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）において４％パラホルムアルデヒド／４％ショ糖で固定し、パラフィン包埋し４μｍの切片にした。胎生１２．５日胚の細胞切片（５μｍ）でライトギムザ染色が行われた。倍率は上段が４００倍、下段が１００倍である。正常な胎生１２．５〜１７．５日の胚肝臓は分化のさまざまなステージの赤芽細胞で構成されている（図４Ａ；参考写真２参照）。胎生１４．５日のDNase II-/-肝臓の細胞数は正常な肝臓と比べてわずかに少なかった。しかし多数の異常な大きさの病巣がDNase II-/-胚の肝臓において観察された。病巣にはFeulgen反応又はＤＡＰＩにおいて陽性である多数の小粒子がみうけられた。しかし、ヘマトキシリン−エオシン染色よりもよく染まらなかった。このことは異常な病巣はＤＮＡで構成されていることを示唆している。同じようなFeulgen陽性の病巣が胎生１７．５日の胚の脾臓でも観察された。
【００２８】
（Ｂ）胚肝臓部分の電子顕微鏡写真
胎生１４．５日のDNase II-/-胚からの肝臓組織について透過型顕微鏡で解析を行った。胎生１４．５日胚の肝臓は０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）において２％グルタルアルデヒド／２％パラホルムアルデヒドで固定し、さらに１％ＯｓＯ4で固定しＥｐｏｎ８１２で包埋した。切片（１μｍ）はクエン酸鉛及び酢酸ウラニルにより染色し、Ｈｉｔａｃｈｉ Ｈ−７１００電子顕微鏡で倍率６０００倍で観察した。図４Ｂ（参考写真２参照）記載の略称について以下に示す。マクロファージ核：ＭＮ：macrophage nuclei、網状赤血球:ＲＥ：reticulocytes、赤芽球：ＥＢ：erythroblast、赤芽細胞核：Ｎ：erythroid nuclei、赤血球：Ｅ：erythrocyte.図４Ｂに示すように、各焦点の中央部で多くのゆるくパックされた核様構造物を含むマクロファージ様細胞が見うけられた。これらの核様構造物はＤＮＡと思われる繊維状の物質を含んでいた。また、新たに貪食された核と思われる濃縮した物質を含んでいるケースが見受けられた。マクロファージ様細胞はしばしば分化の各段階の赤芽細胞（赤芽球、網状赤血球、成熟型赤血球）によって囲まれていた。
【００２９】
（Ｃ）胚肝臓の免疫組織学的解析。
胚肝臓の免疫組織学的解析は次の方法で行われた。胎生１２．５日の野生型マウス胚（野生型）とDNase II-/-マウス胚（ＫＯ）の肝臓細胞切片（５μｍ）を、Ｆ４／８０（緑）に対するモノクローナル抗体（Genes Dev. 14, 549, 2000）で染色した。Ｆ４／８０はマクロファージ特異的な抗原である。図４Ｃ（参考写真２参照）に示すように多くのＦ４／８０陽性マクロファージは野生型マウス胚の肝臓に存在していた。これらのマクロファージは赤芽球によって囲まれており、血島の中心部にあることを示している（J. Exp. Med. 162, 993, 1985）。また図４Ｃ中の右のパネルではFeulgen（赤）で対比染色し、Ｆ４／８０で染色されているものが含まれていた。
【００３０】
（Ｄ）ＡＣｈＥ活性のための胚肝臓染色
胎生１２．５日のDNase II-/-マウス胚由来の肝臓細胞切片（８μｍ）を標準プロトコルに基づき、アセチルコリンエステラーゼ（ＡＣｈＥ）活性により染色した。右のパネルでは同じ部分がＤＡＰＩでさらに染色されている。野生型マウス胚の肝臓とくらべるとDNase II-/-マウス胚の肝臓のＦ４／８０陽性マクロファージの数は明らかに減少しており、Feulgen陽性の異常な病巣はＦ４／８０陽性マクロファージの内側に存在していた。また、ＡＣｈＥ陽性巨核球は胚肝臓において散在していたが、DNase II-/-胚肝臓においては核様構造をもつ巨核球は観察されなかった（図４Ｄ；参考写真２参照）。
【００３１】
【発明の効果】
本発明によると、貧血症モデル非ヒト動物や、これを用いた抗貧血症治療薬のスクリーニング方法を提供することができるので、その発症機構を解明するための適切な病態モデルが存在しておらず治療方法の開発が遅れている貧血症の治療の道を拓くことができる。
【００３２】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】本発明のDNaseIIノックアウトマウスと野生型マウスの遺伝子地図と、各マウスにおけるＰＣＲ法及びサザンブロット法の結果を示す図である。
【図２】本発明のDNaseIIノックアウトマウス、野生型マウス、ヘテロ接合体マウスにおけるノーザンブロット分析及びDNase活性の結果を示す図である。
【図３】本発明のDNaseIIノックアウトマウスと野生型マウスの胚における各組織の比較についての結果を示す図である。
【図４】本発明のDNaseIIノックアウトマウス胚の肝臓における異常な病巣を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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