(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
皮膚で保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物の製造方法であって、
（１）グルコマンナンを含む原料と、該原料を低粘性化する微生物を含むグルコマンナン低粘性化剤とを用意するステップと、（２）前記原料と前記低粘性化剤とを添加及び混合した水溶液のインキュベーションを行なって皮膚の保湿性を生じさせるステップとを含み、
前記微生物は、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−２７２で表されるパエニバチルス・パブリ（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ）ＳＷ１０であり、
前記原料はコンニャク粉であり、
前記インキュベーションは、インキュベーション開始時における前記水溶液が０．５％（ｗ／ｖ）コンニャク粉水溶液で、前記微生物の個数が前記水溶液２Ｌ中に２×１０９個であり、インキュベーション温度が３７°Ｃであり、３Ｌの三角フラスコを毎分１３０回で振盪し、インキュベーション時間が、ＳＷ１０で１６ないし２４時間という条件で行なうことを特徴とする、皮膚で保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、皮膚で保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物の製造方法と、該方法により製造される皮膚で保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物を含む化粧料とに関する。
【背景技術】
【０００２】
自然の材料、特に伝統的に食用に供されてきた材料は、安全性が高いだけでなく、消費者に親近感があるので、化粧料の材料として好ましい。コンニャク粉は、サトイモ科の植物であるＡｍｏｒｐｈｏｐｈａｌｌｕｓ  ｋｏｎｊａｃの球茎から精製される。食材のコンニャクはコンニャク粉の水溶液をカルシウム塩等で凝固させたものである。コンニャク粉の主成分であるグルコマンナンは保水性が高く、保湿性を有する化粧料の原料として有望である。
【０００３】
しかしコンニャク粉の水溶液は、主成分のグルコマンナンの分子量が高いため、粘性が高いうえ、加熱、カルシウム塩等の添加により容易にゲル化する。濃度を自由に調節して十分な保湿性を有しつつ粘性の低い溶液を調製することが困難なので、そのままではコンニャク粉は化粧料には利用できない。
【０００４】
従来技術には、コンニャクゲルを低分子化する微生物が特許文献１に開示されている。しかし、特許文献１に記載の微生物はコンニャクゲルに作用してマンノオリゴ糖を生成し粘性を著しく低下させて液状化させてしまう。かかる微生物はゲル化したグルコマンナンを一気に分解してしまうため、皮膚での保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物の製造には適さない。
【特許文献１】特開２０００−４１６６３号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
そこで、コンニャク粉を出発材料として、低粘性化グルコマンナンを含み、かつ、皮膚で保湿効果を有する組成物を製造する安全な方法を開発する必要がある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、（１）グルコマンナンを含む原料と、該原料を低粘性化する微生物を含むグルコマンナン低粘性化剤とを用意するステップと、（２）前記原料と前記低粘性化剤とを添加及び混合した水溶液のインキュベーションを行なって皮膚の保湿性を生じさせるステップとを含むことを特徴とする、皮膚で保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物の製造方法を提供する。
【０００７】
前記微生物は、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−２７２で表されるパエニバチルス・パブリ（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ）ＳＷ１０か、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−２７３で表されるパエニバチルス・パブリＳＷ１２かの場合がある。
【０００８】
前記原料は、コンニャク粉の場合がある。
【０００９】
前記インキュベーションは、インキュベーション開始時における前記水溶液が０．５％（ｗ／ｖ）コンニャク粉水溶液で、微生物の個数が前記水溶液２Ｌ中に２ｘ１０９個であり、インキュベーション温度が３７°Ｃであり、３Ｌの三角フラスコを毎分１３０回で振盪し、インキュベーション時間が１２ないし３６時間という条件で行なわれる場合がある。
【００１０】
本発明は、前記方法により製造される、保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物を含むことを特徴とする化粧料を提供する。
【００１１】
本発明のグルコマンナンを含む原料は、グルコマンナンを含み、本発明の製造方法に供することのできるいずれかの原料をいう。グルコマンナンは、サトイモ科の植物コンニャク（Ａｍｏｒｐｈｏｐｈａｌｌｕｓ  ｋｏｎｊａｃ）の球茎の主成分であり、マンノース及びグルコース残基がおよそ３：２の割合でβ１→４結合したヘテロ多糖である。前記原料は、サトイモ科の植物コンニャクの球茎の粉等を含むが、これらに限定されない。
【００１２】
本発明のグルコマンナン低粘性化剤は、本発明のグルコマンナンを含む原料とともに添加及び混合した水溶液のインキュベーションによって、保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物を産生することができる物質をいう。
【００１３】
本発明の微生物は、本発明のグルコマンナンを含む原料とともに添加及び混合した水溶液のインキュベーションによって、保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物を産生することができる微生物をいう。前記微生物は、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−２７２で表されるパエニバチルス  パブリ  ＳＷ１０（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ  ＳＷ１０）と、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−２７３で表されるパエニバチルス  パブリ  ＳＷ１２（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ  ＳＷ１２）とを含むが、これらに限定されない。本発明の微生物はグルコマンナンを含む培地中で増殖される。
【００１４】
本明細書において、皮膚の保湿性、あるいは、皮膚で保湿効果を有するとは、ヒトを含む動物の皮膚中への水分の保持を促進する効果があることをいう。前記効果は、皮膚中の水分量の維持及び向上効果、皮膚中の水分量の蒸散抑制効果等を含む。本明細書において保湿効果を有するとは、本発明の低粘性化グルコマンナン含有組成物を含む水溶液を塗布する前より塗布した後の方が皮表角層の水分量が多いことをいう。皮表角層の水分量は、皮膚表面に交流電圧を印加した場合の位相及び振幅の変化から測定される。例えば、Ｔａｇａｍｉ  Ｈ．ら、Ｊ．  Ｉｎｖｅｓｔ．  Ｄｅｒｍ．  ７５：５００−５０７（１９８０）に記載の測定方法があるがこれに限定されない。皮表角層の水分量の測定装置は、ＳＫＩＣＯＮ−２００ＥＸ（アイ・ビイ・エス株式会社）、コルネオメータ（Ｃｏｒｎｅｏｍｅｔｅｒ、登録商標）ＣＭ８２５（株式会社インテグラル）を含むが、これらに限定されない。
【００１５】
本明細書において、組成物の粘性は、絶対粘度として直接測定するか、相対粘度の計測にもとづいて間接的に測定することによって決定される。例えば、絶対粘度の測定は回転円筒粘度計ビスコテスタＶＴ−０４（リオン株式会社）が、相対粘度の測定はオストワルド相対粘度計（柴田科学株式会社）がそれぞれ用いられる場合があるが、これらに限定されない。本明細書において、グルコマンナン含有組成物の粘性が高いとは、２０°Ｃにおいて２００−５００ｍＰａ・ｓ又はそれ以上であることをいう。本明細書において、グルコマンナン含有組成物の粘性が低いとは、２０°Ｃにおいて３０−９０ｍＰａ・ｓの範囲にあることをいう。したがって、低粘性化とは、２０°Ｃにおいて２００−５００ｍＰａ・ｓ又はそれ以上の粘度から、３０−９０ｍＰａ・ｓの範囲の粘度まで粘性を下げることをいう。
【００１６】
本発明の製造方法において、グルコマンナンを含む原料と、該原料を低粘性化する微生物を含むグルコマンナン低粘性化剤とを添加及び混合した水溶液のインキュベーションの条件は、インキュベーション開始時における前記微生物の数と、インキュベーション温度と、インキュベーションの際の旋回の有無及び回転数と、インキュベーションの時間の長さとに依存する。インキュベーション温度は、前記微生物の増殖と、グルコマンナン分解酵素との至適温度に近いことが好ましい。インキュベーション温度は、好ましくは３２−４０°Ｃであり、より好ましくは３５−３８°Ｃである。インキュベーションの際の振盪（又は旋回）の有無及び回数は、前記微生物の酸素要求性等の呼吸特性に依存して設定することが好ましい。グルコマンナンを含む原料の低粘性化は、前記微生物の数が多く、インキュベーション時間が長いほど反応が進行する。低粘性化グルコマンナンの保湿性は、インキュベーションの開始後徐々に増大し、やがてピークに達するが、インキュベーションのさらなる継続により徐々に低減する。したがって高い保湿効果を有する低粘性化グルコマンナン含有組成物を産生するために、適切なインキュベーション条件を設定する必要がある。インキュベーション開始時における前記水溶液は０．５％（ｗ／ｖ）コンニャク粉水溶液で、微生物の個数は前記水溶液２Ｌ中に２ｘ１０９個であり、インキュベーション温度は３７°Ｃであり、３Ｌの三角フラスコを毎分１３０回で振盪するときには、前記インキュベーション時間は、ＳＷ１０株については１２−３０時間、ＳＷ１２株については３０−４８時間が好ましく、ＳＷ１０株については１６−２４時間、ＳＷ１２株については３６時間がより好ましい。
【００１７】
本発明の「化粧料」とは、身体を清潔にしたり、外見を美しくしたりする目的で、皮膚への塗布、散布等を行うもので、作用の緩和なものをいう。本発明の化粧料は、基礎化粧料、メイクアップ化粧料、薬用化粧料、トイレタリー製品等を含む。
【００１８】
本発明の化粧料は、前記製造方法により製造される低粘性化グルコマンナン含有組成物を含み、保湿効果を有する。本発明の化粧料は、剤形に応じ常法により製造することができる。その剤形は、本発明の効果を損なわないものであれば特に限定されない。例えば、ローション剤、ゲル剤、クリーム、軟膏及びシート状製品等の任意の剤形を採用することができる。
【００１９】
また、本発明の化粧料には、他の有効成分や生理学的に許容可能な賦形剤、色素、香料等の添加物を組み合わせて配合することができる。例えば、本発明の効果を損なわない範囲で、化粧料に配合し得る油脂類、保湿剤、色素、香料、栄養素、抗菌剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤等を配合することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２０】
以下に実施例を示すが、これらは実施態様の例示を意図しており本発明の範囲を限定することは意図しない。
【実施例１】
【００２１】
１．材料の調製
１．１  コンニャク粉溶液の調製
コンニャク粉は、荻野商店（群馬県甘楽郡下仁田町）から入手できる白雪特級を使用した。コンニャク粉５ｇを１０００ｍＬの滅菌水に室温で混合及び撹拌し、懸濁させたものをコンニャク粉溶液とした。
【００２２】
１．２  ＳＷ１０及びＳＷ１２株の菌の調製
パエニバチルス  パブリ（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ）ＳＷ１０及びＳＷ１２株は、コンニャク粉水溶液に土などの微生物源を添加して、室温で振盪培養を行なって、粘性が低下した溶液中の微生物をコンニャク粉を含む寒天培地上でコロニー形成させて単一コロニーとして単離された。ＳＷ１０及びＳＷ１２株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センターに寄託され、それぞれＮＩＴＥ  Ｐ−２７２及びＮＩＴＥ  Ｐ−２７３という受託番号を付与された。
【００２３】
本発明の微生物の増殖に用いられる液体培地の組成は以下のとおりである。
（ＮＨ４）２ＳＯ４        ６．６ｇ
Ｋ２ＨＰＯ４              １．３９ｇ
ＫＨ２ＰＯ４              ０．２７２ｇ
ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ      ０．２０３ｇ
ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ      ０．１４７ｇ
コンニャク粉            ５．０ｇ
滅菌水                １０００ｍｌ  
ｐＨを７．０ないし７．２に調整してオートクレーブ滅菌する。
【００２４】
本発明の微生物の増殖に用いられる寒天培地の組成は以下のとおりである。
（ＮＨ４）２ＳＯ４        ６．６ｇ
Ｋ２ＨＰＯ４              １．３９ｇ
ＫＨ２ＰＯ４              ０．２７２ｇ
ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ      ０．２０３ｇ
ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ      ０．１４７ｇ
寒天                  １５．０ｇ
コンニャク粉            ５．０ｇ
滅菌水                １０００ｍｌ  
ｐＨを７．０ないし７．２に調整してオートクレーブ滅菌する。
【００２５】
ＳＷ１０及びＳＷ１２株の菌は１×１０９／ｍＬのグリセロールストックを使用した。試験に当たり、前記液体培地に１００μＬのグリセロールストックを添加し、３７°Ｃ、２４時間、毎分１３０回の振盪の前培養を行い前培養液を得た。次いで２，０００ｍＬの前記液体培地に前記前培養液を２ｍＬ添加し、３７°Ｃ、２４時間、毎分１３０回の振盪の本培養を行い、ＳＷ１０及びＳＷ１２の本培養液を得た。
【００２６】
１．３  ＳＷ１０及びＳＷ１２株の菌の特徴付け
１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子の解析は、Ｗｅｉｓｂｕｒｇ  ＷＧら、Ｊ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．  １７３：６９７（１９９１）に従って行い、配列データは国立遺伝学研究所の日本ＤＮＡデータバンク（ＤＤＢＪ）のデータベースを用いて近縁配列を検索し、アライメントをとって表示した。糖利用能力はアピ５０ＣＨ判定キット（日本ビオメリュー株式会社）で判定した。安全性試験は、ＳＷ１０又はＳＷ１２株のコンニャク溶液による培養液（菌数１ｘ１０９／ｍＬ）か、滅菌水かをそれぞれＪｃｌ：ＭＣＨ（ＩＣＲ）マウス（日本クレア株式会社）に連日０．１ｍＬずつ経口投与して、体重の変化を記録し、５７日後に屠殺解剖して内臓所見を得た。マウスはそれぞれ実験条件当たりオス３個体ずつ用いた。安全性試験は、実験開始時に１２週齢のマウスを使って１回、１９週齢のマウスを使ってもう１回行った。
【００２７】
１．４  結果
今回土壌から単離し、ＤＮＡ配列を決定したＳＷ１０及びＳＷ１２株の１６ＳリボソームＲＮＡ遺伝子のヌクレオチド配列を配列表の配列番号１及び２にそれぞれ示す。ＳＷ１０及びＳＷ１２の１６ＳリボソームＲＮＡ遺伝子のヌクレオチド配列と相同性の高い配列をＤＤＢＪのデータベースで検索したところ、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉがヒットした。ＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌の１６ＳリボソームＲＮＡ遺伝子のヌクレオチド配列を配列番号３に示す。これらのヌクレオチド配列のアライメントをとった結果を図１に示す。ＳＷ１０株及びＳＷ１２株の１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子の間ではヌクレオチドが１個だけ相違した。ＳＷ１０株とＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌の１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子との間ではヌクレオチドが５個相違し、ＳＷ１２株とＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌の１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子との間ではヌクレオチドが４個相違していた。そこで、ＳＷ１０及びＳＷ１２株はＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉに属する新株と考えられる。
【００２８】
ＳＷ１０及びＳＷ１２株の糖利用能力をアピ５０ＣＨ判定キット（日本ビオメリュー株式会社）で判定した結果を以下に示す。
【００２９】
ＳＷ１０株  糖類の利用（＋；利用する  −；利用しない）  ※ガス産生なし
グリセロール  ＋、エリスリトール  −、Ｄ−アラビノース  −、Ｌ−アラビノース  ＋、Ｄ−リボース  ＋、Ｄ−キシロース  ＋、Ｌ−キシロース  −、Ｄ−アドニトール  −、メチル−β−Ｄ−キシロピラノシド  ＋、Ｄ−ガラクトース  ＋、Ｄ−グルコース  ＋、Ｄ−フルクトース  ＋、Ｄ−マンノース  ＋、Ｌ−ソルボース  −、Ｌ−ラムノース  ＋、ズルシトール  ＋、イノシトール  −、Ｄ−マンニトール  ＋、Ｄ−ソルビトール  ＋、メチル−α−Ｄ−マンノピラノシド  −、メチル−α−Ｄ−グルコサミン  ＋、Ｎ−アセチルグルコサミン  ＋／−、アミグダリン  ＋、アルブチン  ＋、エスクリンクエン酸鉄  ＋、サリシン  ＋、Ｄ−セリオビオース  ＋、Ｄ−マルトース  ＋、Ｄ−ラクトース  ＋、Ｄ−メリビオース  ＋、Ｄ−スクロース  ＋、Ｄ−トレハロース  ＋、イヌリン  −、Ｄ−メレジトース  −、Ｄ−ラフィノース  ＋、スターチ  ＋、グリコーゲン  ＋、キシリトール  −、ゲンチビオース  ＋、Ｄ−ツラノース  ＋／−、Ｄ−リキソース  −、Ｄ−タガトース  −、Ｄ−フコース  −、Ｌ−フコース  −、Ｄ−アラビトール  −、Ｌ−アラビトール  −、グルコネート  −、２−ケトグルコネート  −、５−ケトグルコネート  −
ＳＷ１２株糖類の利用（＋；利用する  −；利用しない）※ガス産生なし
グリセロール  ＋、エリスリトール  −、Ｄ−アラビノース  −、Ｌ−アラビノース  ＋、Ｄ−リボース  ＋、Ｄ−キシロース  ＋、Ｌ−キシロース  −、Ｄ−アドニトール  −、メチル−β−Ｄ−キシロピラノシド  ＋／−、Ｄ−ガラクトース  ＋、Ｄ−グルコース  ＋、Ｄ−フルクトース  ＋、Ｄ−マンノース  ＋、Ｌ−ソルボース  −、Ｌ−ラムノース  ＋、ズルシトール  ＋、イノシトール  −、Ｄ−マンニトール  ＋、Ｄ−ソルビトール  ＋、メチル−α−Ｄ−マンノピラノシド  −、メチル−α−Ｄ−グルコサミン  ＋、Ｎ−アセチルグルコサミン  ＋／−、アミグダリン  ＋、アルブチン  ＋、エスクリンクエン酸鉄  ＋、サリシン  ＋、Ｄ−セリオビオース  ＋、Ｄ−マルトース  ＋、Ｄ−ラクトース  ＋、Ｄ−メリビオース  ＋、Ｄ−スクロース  ＋、Ｄ−トレハロース  ＋、イヌリン  −、Ｄ−メレジトース  −、Ｄ−ラフィノース  ＋、スターチ  ＋、グリコーゲン  ＋、キシリトール  −、ゲンチビオース  ＋、Ｄ−ツラノース  ＋／−、Ｄ−リキソース  −、Ｄ−タガトース  −、Ｄ−フコース  −、Ｌ−フコース  −、Ｄ−アラビトール  −、Ｌ−アラビトール  −、グルコネート  −、２−ケトグルコネート  −、５−ケトグルコネート  −
ＳＷ１０及びＳＷ１２の糖利用能力の間ではメチル−β−Ｄ−キシロピラノシドの利用能のみが不一致であった。ＳＷ１０及びＳＷ１２株の糖利用能力は、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ属の菌のうち、Ｐ．ａｌｖｅｉ、Ｐ．ｍａｃｅｒａｎｓ及びＰ．ｐｏｌｙｍｙｘａの糖利用能力とは不一致であった。なお、グラム染色を施して鏡検したところ、ＳＷ１０及びＳＷ１２株はともにグラム陽性の桿菌であった。
【００３０】
ＳＷ１０及びＳＷ１２株と、滅菌水とをそれぞれ経口投与したマウスの体重の平均値の変化を図２に示す。ＳＷ１０及びＳＷ１２株と、滅菌水との間でマウスの体重変化に格別の相違は見られなかった。また、解剖所見からも、ＳＷ１０及びＳＷ１２株と、滅菌水とでは異常はみられなかった。したがって、ＳＷ１０及びＳＷ１２株はともにマウス経口投与での安全性が確認された。
【実施例２】
【００３１】
２．コンニャク粉溶液の低粘性化処理
２．１  方法
コンニャク粉の０．５％溶液２，０００ｍＬに対して、ＳＷ１０又はＳＷ１２の本培養液２ｍＬを混合した。インキュベーション開始時における菌数は１ｍＬ当たり１ｘ１０９個であった。前記混合液を３Ｌの三角フラスコに入れて、３７°Ｃ、２４時間、毎分１３０回の振盪をしながらインキュベーションした。インキュベーション開始後、４、８、１２、２４、３０、５２、６４、６８及び７２時間の前記混合液について、粘度測定を実施した。粘度測定は、絶対粘度の測定は回転円筒粘度計ビスコテスタＶＴ−０４（リオン株式会社）が、相対粘度の測定はオストワルド相対粘度計（柴田科学株式会社）がそれぞれ用いられた。
【００３２】
２．２  結果
図３は、各インキュベーション時間におけるコンニャク粉溶液の粘度変化を示すグラフである。粘度は、インキュベーション開始直後には４７０ｍＰａ・ｓであったが、ＳＷ１０株については４時間、ＳＷ１２株では８時間で、ともに７０ｍＰａ・ｓ前後に急激に低下し、その後は３０時間で５０ｍＰａ・ｓ程度まで緩やかに低下した。その後、５２時間以降は約３ｍＰａ・ｓまで低下し、粘性はほぼ消失した。
【実施例３】
【００３３】
３．保湿性試験
３．１．方法
インキュベーション後の測定時間に１６、３０、３６及び４８時間を追加する以外は２．１に示したのと同じ方法で、ＳＷ１０菌体又はＳＷ１２菌体による低粘性化コンニャク粉溶液を調製した。保湿性試験は、室温２７°Ｃ、湿度７０％の条件で半そで服を着用した複数人の被験者を使用して実施した。被験者の左手前腕掌側の皮膚に半径７ｍｍの円でマーキングし、この円形の場所にそれぞれのインキュベーション時間の低粘性化コンニャク粉溶液１０μＬを滴下した。塗布前と、塗布後１０分、２０分又は３０分に、ＳＫＩＣＯＮ−２００ＥＸ（アイ・ビイ・エス株式会社）を用いて皮表角層の水分量を５回連続測定して、その平均値を塗布前及び塗布後各時点での皮表角層の水分量とした。塗布後の皮表角層の水分量を塗布前に皮膚の同じ場所で測定した皮表角層の水分量の測定値を１００とした相対値を保湿性の変化率とした。
【００３４】
３．２．結果
図４及び５は、それぞれＳＷ１０及びＳＷ１２株で低粘性化したコンニャク粉溶液のインキュベーション時間と保湿性変化率を示すグラフである。それぞれのインキュベーション時間及び塗布後の時間の条件ごとにＳＷ１０では複数人の被検者の皮膚合計８箇所、ＳＷ１２では合計５箇所の測定を行い、実験条件ごとの皮膚の保湿性の変化率の平均値を棒グラフで表した。図４及び５から、インキュベーション時間がＳＷ１０株については１２−２４時間、ＳＷ１２株については１６時間の低粘性化コンニャク粉溶液は保湿性の変化率は１００を超えており、保湿効果があった。
【図面の簡単な説明】
【００３５】
【図１−１】ＳＷ１０及びＳＷ１２と、ＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌との１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子ヌクレオチド配列のアライメント結果。
【図１−２】ＳＷ１０及びＳＷ１２と、ＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌との１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子ヌクレオチド配列のアライメント結果。
【図１−３】ＳＷ１０及びＳＷ１２と、ＤＤＢＪのＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｂｕｌｉ菌との１６Ｓ  リボソームＲＮＡ遺伝子ヌクレオチド配列のアライメント結果。
【図２】マウスへの経口投与による体重変化を示すグラフ。
【図３】各インキュベーション時間におけるコンニャク粉溶液の粘度変化を示すグラフ
【図４】ＳＷ１０株で低粘性化したコンニャク粉溶液のインキュベーション時間と保湿性変化率を示すグラフ
【図５】ＳＷ１２株で低粘性化したコンニャク粉溶液のインキュベーション時間と保湿性変化率を示すグラフ
【図１−１】
0004596373.tif 000002
【図１−２】
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【図１−３】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
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