(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
動物体液中の顆粒球を吸着する処理を行う際、血漿に、吸着材を事前に接触させることを特徴とする体外循環療法用途を除く吸着材の処理方法。
【請求項２】
動物体液が骨髄液である、請求項１記載の処理方法。
【請求項３】
動物体液が末梢血液である、請求項１記載の処理方法。
【請求項４】
末梢血液がＧ−ＣＳＦ等のサイトカインを投与した後に採取したものである、請求項３記載の処理方法。
【請求項５】
動物体液が臍帯血液である、請求項１記載の処理方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、動物体液から特定成分を吸着処理する際に、吸着効率を向上させることを目的として、タンパクを含む液体に吸着材を事前に接触させる、吸着材の処理方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
患者の体液中から選択的に細胞を分離する技術は、癌治療や細胞の成分輸血を始めとして、様々な医療現場で活躍している。特に近年、細胞医療、再生医療の発展に伴いそのニーズはさらに増大している。
【０００３】
例えば、血液中の顆粒球を除去することは、移植後の炎症やＧＶＨＤ（宿主対移植片反応）を抑制するためにも重要視されている。従来、血液中の顆粒球を分離する方法として、フィコール液やパーコール液などを利用し、細胞の比重差を利用して分離する比重密度勾配遠心法や、顆粒球を選択的に付着させるとされる素材、例えばポリエステル繊維、ナイロン繊維、綿などを利用した方法が開示されている（特許文献１、特許文献２など）。
【０００４】
しかしながら、比重密度勾配遠心法の場合、密度勾配に使用する液の細胞毒性などの安全性の問題、また遠心洗浄操作などに時間を要し、開放系での操作であるためにコンタミネーションを起こしやすいなど操作性の問題、リンパ球の混入が生じるなど分離効率の点など多くの課題を残している。一方、比重密度勾配遠心法に比べ、顆粒球を選択的に吸着させる方法は、閉鎖系での操作が可能など安全面、操作性に優れ、さらに接触面積、材質や形状を工夫して分離効率を向上させる試みもなされている。
【０００５】
（特許文献３）では、顆粒球吸着材の表面積を増加させているが、顆粒球以外にリンパ球も吸着する旨が記載されており、接触面積を増加させただけでは、顆粒球の選択性は発現されない。また（特許文献４）では、癌患者の病態変化の判断や癌治療に用い得る顆粒球吸着用担体として、リンパ球に比べて顆粒球に対する親和性が高い担体を用いることにより、顆粒球を選択的に吸着させる旨が開示されている。この担体は、水に対する接触角が５５度から９５度の範囲にある物質からなるとされており、顆粒球と高い親和性を有する材質として、ポリスチレン、酢酸セルロース、６−ナイロン、ポリエチレンテレフタレートなどが例示されている。また顆粒球の主構成細胞である好中球について、接触角と付着率に関する同様の報告がある。
【０００６】
（特許文献５）では、セルロースの水酸基に官能基が固定化された水不溶性顆粒球吸着材を、アルカリ溶液にて処理することにより、体液中の顆粒球を選択的に除去する能力を大幅に向上することが可能となることが開示されている。しかし、この吸着材に体液を接触させ、通過した体液を経時的に回収して液中の顆粒球量を測定すると、通液初期の通過顆粒球量が多いことが明らかとなり、改良が望まれている。
【特許文献１】特開昭５４−４６８１２号
【特許文献２】特開昭５７−１１９２０号
【特許文献３】特公昭５８−５４１２６号
【特許文献４】特開平２−１９３０６９号
【特許文献５】国際公開公報ＷＯ２００６／０２５３７１号
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、動物体液中の特定成分を吸着する処理を行う際、体液通液初期の吸着不良の改良を行い、より効率的な吸着処理方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明は、動物体液中の特定成分を吸着する処理を行う際、タンパクを含む液体に、吸着材を事前に接触させることによって、効率的な吸着処理を行える方法を見出した。
【０００９】
すなわち本発明は、動物体液中の特定成分を吸着する処理を行う際、タンパクを含む液体に、吸着材を事前に接触させることを特徴とする吸着材の処理方法に関する。
【００１０】
また本発明は、前記特定成分が細胞である処理方法に関する。
【００１１】
また本発明は、前記細胞が顆粒球である処理方法に関する。
【００１２】
また本発明は、タンパクを含む液体が、被吸着動物体液から得られる血漿または血清、もしくはこれらを含む溶液である処理方法に関する。
【００１３】
また本発明は、タンパクが補体のフラグメントである処理方法に関する。
【００１４】
また本発明は、タンパクが抗体である処理方法に関する。
【００１５】
また本発明は、動物体液が骨髄液である処理方法に関する。
【００１６】
また本発明は、動物体液が末梢血液である処理方法に関する。
【００１７】
また本発明は、末梢血液がＧ−ＣＳＦ等のサイトカインを投与した後に採取したものである処理方法に関する。
【００１８】
また本発明は、動物体液が臍帯血液である処理方法に関する。
【発明の効果】
【００１９】
本発明によれば、動物体液中の特定成分を吸着する処理を行う際、体液通液初期の吸着不良が改良されるので、より効率的な吸着処理を行うことが出来る。また本発明によれば、体液通液初期から、安定して吸着が行えるので、特定成分の処理後の体液への混入を最大限回避することが出来る。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２０】
本発明について、以下具体的に説明する。
【００２１】
本明細書にいう動物体液とは、血液、骨髄液、臍帯血以外に、それらの希釈液、細胞懸濁液を含む。細胞懸濁液とは、血液、骨髄液、臍帯血などを対象から採取し、所望によりフィコール、パーコール、バクティナーチューブ、リフォプレップ、ヒドロキシエチルスターチなどを使用し、比重密度遠心分離法により赤血球を除去した細胞画分（単核球画分、間葉系幹細胞、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞（ＥＰＣ）、顆粒球などの細胞画分）や、さらにこれらの細胞画分を再度遠心分離して濃縮したものなどを指す。
【００２２】
本発明における吸着材の形状としては、球状、粒状、平膜状、繊維状、中空糸状等いずれも有効に用いられる。その素材としては、ガラス、シリカゲル、活性炭などの無機担体、架橋ポリビニルアルコール、架橋ポリアクリレート、架橋ポリアクリルアミド、架橋ポリスチレンなどの合成高分子や架橋アガロース、架橋デキストリンなどの多糖類からなる有機担体、セルロース、酢酸セルロース、ポリビニルアルコール、エチレン−酢酸ビニル共重合体鹸化物、ポリアクリルアミド、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリメタクリル酸メチル、ポリアクリル酸グラフト化ポリエチレン、ポリアクリルアミドグラフト化ポリエチレン、さらにはこれらの組み合わせによって得られうる有機−有機、有機−無機などの複合担体などが代表例として挙げられるが、本発明はこれらのみに限定されるものではない。さらに任意の硬質担体、軟質担体の外表面を上記した素材で被覆して使用することもできる。以上に挙げた中でも、細胞との接触頻度や非吸着細胞の回収などの観点から球状であることが好ましく、その素材としては顆粒球を吸着することで知られている酢酸セルロースが好ましく、吸着能力の向上として部分的に鹸化されている酢酸セルロースがより好ましい。
【００２３】
本発明における吸着材の事前処理は、以下に挙げる条件に代表されるが、これに限定されるものではない。処理方法として、吸着材を処理液に浸しても良く、この場合の処理液量は吸着材が十分に浸る量であれば特に制限は無いが、吸着体体積の０．３〜１０倍量程度あれば良く、この中でも２〜５倍量が好ましく、３〜４倍量がより好ましい。また処理時間に関しても特に制限は無いが、生体試料を使用する場合、タンパクの変性を考慮して３日以内が好ましい。またその時の処理温度は４〜６０℃、好ましくは２５〜３７℃、より好ましくは３７℃が挙げられる。
【００２４】
また、処理方法として吸着材をカラム化し、このカラムに処理液を通液しても良く、この場合の処理液量は吸着材体積の０．３〜１０倍量程度あれば良く、この中でも２〜５倍量が好ましく、３〜４倍量がより好ましい。処理流速としては、極端に速い場合は吸着材と処理液との接触を十分に行うために必要な液量が増加してしまうため、１０ｍｌ／ｍｉｎ以下が好ましく、この中でも１ｍｌ／ｍｉｎ以下が好ましく、０．３ｍｌ／ｍｉｎがより好ましい。またその時の処理温度は４〜６０℃、好ましくは２５〜３７℃、より好ましくは３７℃が挙げられる。
【００２５】
また、処理方法として吸着材をカラム化し、このカラムに処理液を満たした際に通液を止め、インキュベーションしても良く、この場合の処理液量はカラム内を満たしていれば良い。またこの場合の処理時間は特に制限は無いが、生体試料を使用する場合、タンパクの変性を考慮して３日以内が好ましい。またその時の処理温度は４〜６０℃、好ましくは２５〜３７℃、より好ましくは３７℃が挙げられる。
【００２６】
本発明における動物体液中の特定成分とは、該体液中に含まれるものであれば特に限定は無いが、例としては顆粒球、単球、マクロファージ、赤芽球、骨髄球、リンパ球、破骨細胞、骨芽細胞、繊維芽細胞、軟骨芽細胞、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞、間葉系幹細胞等の細胞、β２ミクログロブリン、フィブロネクチン、活性化補体、βＴＧ、顆粒球エラスターゼ、ブラジキニン等のタンパク質、フィブリノーゲン等の血液凝固因子、低密度コレステロール（ＬＤＬ）等の脂質、ＴＮＦα、ＴＧＦβ等のサイトカイン、抗ＤＮＡ抗体等の抗体等が挙げられる。
【００２７】
本発明における顆粒球は、哺乳類末梢血液、骨髄液、臍帯血液中の顆粒球、及びアファレーシスにより濃縮された白血球中の顆粒球、フィコールやバクティナー管、ヒドロキシエチルスターチなどの密度勾配遠心法にて分取された白血球画分中の顆粒球、またこれら方法にて分取された白血球画分を緩衝液中や培養液、生理食塩液中に懸濁した細胞懸濁液中の顆粒球などを指す。
【００２８】
本発明における血漿とは、抗凝固剤を添加して採取した末梢血液、骨髄液、臍帯血液等を遠心分離操作を行い、沈殿した血球を除くように上清を回収したものを指す。この場合、抗凝固剤としては特に限定はないが、ヘパリンが好ましい。遠心分離操作の速度、時間は、血球が十分沈降するものであれば特に制限はないが、例えば速度は１０００〜４５００ｒｐｍ、時間は５〜３０分程度で良く、血小板などの不要な成分を完全に除くためにも、３０００ｒｐｍ、１５分程度がより好ましい。
【００２９】
本発明における血清とは、抗凝固剤を添加せずに採取した末梢血液、骨髄液、臍帯血液等を５６℃、３０分間程度静置し、上清を回収したもの、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、ウシ血清（ＣＳ）ウマ血清（ＨＳ）、等が挙げられるがこの限りではない。
【００３０】
本発明における血漿または血清を含む溶液とは、上記血漿、血清の少なくともどちらか一方を含む溶液であり、混在する溶液としては特に制限はないが、等張液であることが好ましく、例えば生理食塩水、リン酸緩衝液、α−ＭＥＭ等の培地等が挙げられるが、この限りではない。またその濃度に関しては特に制限はないが、少量のプライミング液量で十分な効果を得るためには、２０％（Ｖ／Ｖ）以上が好ましく、５０％（Ｖ／Ｖ）以上がより好ましい。
【００３１】
本発明における補体のフラグメントとしては、Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ、Ｃ４、Ｃ４ａ、Ｃ４ｂ、Ｃ５、Ｃ５ａ、Ｃ５ｂ、Ｃ６、Ｃ７、Ｃ８、Ｃ９が挙げられる。その中でも活性化補体フラグメントであるＣ３ａ、Ｃ３ｂ、Ｃ４ａ、Ｃ４ｂ、Ｃ５ａ、Ｃ５ｂが好ましく、さらにその中でもＣ３ｂがより好ましい。
【００３２】
本発明における抗体とは、免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）、免疫グロブリンＡ（ＩｇＡ）、免疫グロブリンＭ（ＩｇＭ）、免疫グロブリンＤ（ＩｇＤ）、免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）を指し、この中でもＩｇＧが好ましい。
【実施例】
【００３３】
以下の実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらにより限定されるものではない。
【００３４】
（実施例１）
以下、ブタ骨髄液から顆粒球を吸着するカラムを調製し、該カラムを用いた効率的な顆粒球吸着処理方法を示す。
【００３５】
１．顆粒球吸着材の調製
酢酸セルロースをジメチルスルホキシドとプロピレングリコールの混合溶剤に溶解し、この溶液を特開昭６３―１１７０３９号広報に記載された方法（振動法）により液滴化し、凝固させて酢酸セルロースの球形の粒子を得た。得られた球形粒子の粒径は、約４５０μｍであった。この粒子を沈降体積比で、０．１規定水酸化ナトリウム水溶液と１：１（Ｖ／Ｖ）の割合で混合し、３０分間接触させることにより、部分加水分解反応を行った。吸着体沈降体積の約２００倍量の蒸留水にて洗浄後、生理食塩液（最終濃度で５ＩＵ／ｍｌのヘパリンを含む）にて置換を行った。このときの酢化度は、５０．１％であった。
【００３６】
２．顆粒球吸着カラムの調製
得られた上記吸着材をヘパリン(ヘパリンナトリウム注射液、ニプロファーマ（株）)加生理食塩水（ヘパリンの最終濃度が５ＩＵ／ｍｌになるように調製）で洗浄を行い、ヘパリンの平衡化を行った。次に担体の脱泡を行った後、沈降体積で３．５ｍｌをミニカラム（アクリル製，内径１０ mm，高さ３８ mm）に充填した。カラム入口側にポリ塩化ビニル製のチューブ（内径1 mm，外径３ mm，長さ７０ｃｍ）を装着し、またカラム出口側にも同様のポリ塩化ビニル製のチューブ（長さ３０ｃｍ）を装着した。
【００３７】
３．ブタ骨髄液の調製
ブタ（３０kg）腸骨部より骨髄液を採取し、ヘパリンを５０ＩＵ／ｍｌとなるように添加した。該骨髄液を７０μmセルストレーナーを通過させることにより血餅、骨粉などを取り除くことにより骨髄液を調製した。
【００３８】
４．吸着材の前処理
調製した骨髄液を３０００ｒｐｍ、１５ｍｉｎ遠心分離を行い、上清である血漿を回収した。この血漿を流速０．２６ｍｌ／ｍｉｎで１０．５ｍｌ（カラム体積の３倍量）通液した。
【００３９】
５．骨髄液−顆粒球吸着カラムの接触条件
上記で調製した骨髄液を、テフロン（登録商標）製三角フラスコ内（内容量５０ ｍｌ，サンワ（株））に１５ｍｌ入れ、３７℃の恒温槽内に静置し、５ｍｉｎに一度穏やかに攪拌した。次に流速０．２６ｍｌ／ｍｉｎで通血実験を開始した。カラム出口側から骨髄液が出てきた時点を開始時点として、経時的に１ｍｌずつサンプリングを行った。
【００４０】
（比較例１）
吸着材の前処理をヘパリン加生理食塩水（５ＩＵ／ｍｌ）に変えたほかは、実施例１と同様に行った。骨髄液採取も実施例１と同一の個体から行った。
【００４１】
（実施例２）
吸着材の前処理をＩｇＧ（ＩｇＧ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｓｅｒｕｍ、ＳＩＧＭＡ）  溶液（生理食塩水を用いて１０ｍｇ／ｍｌに調製）に変えたほかは、実施例１と同様に行った。ただし、骨髄液採取は実施例１とは異なる個体（ブタ）から行った。
【００４２】
（比較例２）
比較例１と同様に行った。骨髄液採取は実施例２と同一の個体から行った。
【００４３】
６．評価
カラム出口側から流出する骨髄液を、経時的に１ｍｌずつサンプリングした（通液開始から通算して７ｍｌ目からは２ｍｌずつサンプリングを行った）。採取したサンプルを、自動血液細胞数カウンター（シスメックスK４５００）にて細胞数を測定した。また、フローサイトメーター（FACSCanto  ベクトンディッキンソン）にて単核球・顆粒球両画分比率を求めた。その結果をもとに、顆粒球吸着率を以下の式によって算出した。
顆粒球吸着率（％）
＝１００×[（通液前顆粒球数−通液後顆粒球数）／通液前顆粒球数]
実施例１および比較例１の結果をそれぞれ経時的に並べ表１及び図１に、また実施例２および比較例２の結果を表２及び図２に示した。
【００４４】
【表１】
0004583325.tif 000002
【００４５】
【表２】
0004583325.tif 000003
図１に示す結果より、比較例１では処理量４ｍｌからは吸着材の吸着能力を最大限に発揮しているが、処理量３ｍｌまでは顆粒球吸着率が低値を示しているのに対し、実施例１では初期から安定した吸着率が示された。また図２に示す結果より、比較例２に比べて実施例２では初期の顆粒球吸着率が改善された。
【図面の簡単な説明】
【００４６】
【図１】実施例１及び比較例１の顆粒球吸着率を経時的に図示したもの（表１をグラフ化したもの）
【図２】実施例２及び比較例２の顆粒球吸着率を経時的に図示したもの（表２をグラフ化したもの）
【図１】
0004583325.tif 000004
【図２】
0004583325.tif 000005