(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
２Ｈ９（ＡＴＣＣ番号ＨＢ−１２６１４）と示されるモノクローナル抗体を産生する、ハイブリドーマ。
【請求項２】
請求項１に記載のハイブリドーマによって産生される、モノクローナル抗体。
【請求項３】
請求項２に記載の抗体のＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）2フラグメントまたはＦｖフラグメント。
【請求項４】
サンプル中のＰＳＣＡタンパク質の存在を検出する方法であって、該サンプルと請求項２に記載の抗体を接触させる工程、および該抗体と該サンプル中の該ＰＳＣＡタンパク質との結合を検出する工程を包含する、方法。
【請求項５】
前記検出する工程が、以下：
ａ．前記サンプル中の前記ＰＳＣＡタンパク質と複合体を形成し得る抗体を該サンプルと接触させる工程；および
ｂ．少しでも複合体がこのように形成されるか否かを決定する工程
を包含する、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記サンプルが、組織または生物学的液体である、請求項４に記載の方法。
【請求項７】
前記サンプルが、骨、骨髄、膀胱組織、前立腺組織、大腸細胞、または膵臓神経内分泌細胞である組織である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記生物学的液体が尿または血清である、請求項６に記載の方法。
【請求項９】
前記抗体が、放射標識、酵素、発色団、および蛍光剤からなる群より選択される化合物を用いて検出可能シグナルを産生するために標識される、請求項４に記載の方法。
【請求項１０】
治療剤に結合した請求項２に記載の抗体の抗原結合領域を含む分子を含む、免疫複合体。
【請求項１１】
前記治療剤が細胞傷害剤である、請求項１０に記載の免疫複合体。
【請求項１２】
前記細胞傷害剤が、ドキソルビシン、ダウノルビシン、タキソール、エチジウムブロマイド、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ジヒドロキシアントラシンジオン、アクチノマイシンＤ、ジフテリア毒素、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ菌体外毒素（ＰＥ）Ａ、ＰＥ４０、リシン、アブリン、糖質コルチコイドおよび放射性同位体からなる群より選択される、請求項１１に記載の免疫複合体。
【請求項１３】
サンプル中のＰＳＣＡタンパク質の存在を検出する方法であって、該サンプルと請求項２に記載の抗体を接触させる工程および該抗体と該サンプル中の該ＰＳＣＡタンパク質との結合を検出する工程を包含する、方法。
【請求項１４】
前記検出する工程が、以下：
ａ．前記サンプルを該サンプル中の前記ＰＳＣＡタンパク質と複合体を形成し得る抗体と接触させる工程；および
ｂ．少しでも複合体がこのように形成されるか否かを決定する工程を包含する、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
前立腺癌、膀胱癌および前立腺癌の骨転移巣からなる群より選択されるいずれかの癌を被験体中で検出するために使用する、請求項２記載の抗体。
【請求項１６】
膀胱癌組織サンプル中で過剰発現されたＰＳＣＡタンパク質の存在を検出するためのインビトロの方法であって、該方法が、該サンプルを配列番号：２の配列を有するＰＳＣＡタンパク質に結合する抗体と接触させる工程、および該抗体とサンプル中のＰＳＣＡタンパク質との結合を検出する工程を含む、方法。
【請求項１７】
検出する工程が以下の工程を含む、請求項１６記載の方法：
a.サンプル中のＰＳＣＡタンパク質と抗体とが複合体を形成するようにサンプルを抗体と接触させる工程、及び
b.形成された複合体の量を決定する工程。
【請求項１８】
検出されたＰＳＣＡタンパク質がサンプル中の膀胱癌細胞の表面に存在する、請求項１６記載の方法。
【請求項１９】
膀胱癌組織サンプル中で過剰発現されたＰＳＣＡタンパク質をコードする第一の核酸の存在を検出するためのインビトロの方法であって、該方法が、該サンプルをＰＳＣＡタンパク質をコードする第二の核酸と接触させる工程、および第一の核酸と第二の核酸との結合を検出する工程であって、該結合がサンプル中のＰＳＣＡタンパク質をコードする第一の核酸の指標となる工程を含み、ここでＰＳＣＡタンパク質をコードする核酸が配列番号：１の核酸配列を有する、方法。
【請求項２０】
第一の核酸がＲＮＡである、請求項１９記載の方法。
【請求項２１】
第二の核酸が検出可能なシグナルを直接または間接的に生じるよう、放射性標識、酵素、発色団および蛍光体からなる群より選択される化合物で標識されている、請求項１９記載の方法。
【請求項２２】
膀胱癌組織サンプル中のＰＳＣＡタンパク質をコードするＲＮＡまたはＤＮＡ核酸の存在を検出するためのインビトロの方法であって、該方法が、該サンプルをＰＳＣＡタンパク質をコードするＲＮＡまたはＤＮＡに特異的にハイブリダイズする核酸プローブと接触させる工程、およびプローブとサンプル中のＰＳＣＡをコードするＲＮＡまたはＤＮＡとの結合を検出する工程であって、該結合がサンプル中のＰＳＣＡをコードするＲＮＡまたはＤＮＡの指標となる工程を含み、ここでＰＳＣＡタンパク質をコードする核酸が配列番号：１の核酸配列を有する、方法。
【請求項２３】
ＰＳＣＡタンパク質が膀胱癌組織サンプル中で過剰発現している、請求項２２記載の方法。
【請求項２４】
膀胱癌組織サンプル中のＰＳＣＡタンパク質をコードする過剰発現しているＲＮＡまたはＤＮＡ核酸の存在を検出するためのインビトロの方法であって、該方法が、該サンプルをＰＳＣＡタンパク質をコードする核酸をRT-PCRまたはPCRによって増幅する工程、およびその結果増幅された核酸を検出する工程を含み、ここでＰＳＣＡタンパク質をコードする核酸が配列番号：１の核酸配列を有する、方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
本出願の全体にわたって、種々の刊行物が括弧内に参照される。これらの刊行物の開示は、本明細書中にそれらの全体が参考として援用される。
【０００２】
（発明の背景）
前立腺癌は、現在、アメリカ人男性に最も普通の型の癌であり、この集団において癌に関連する死の第２の主要な原因である。進行した段階において、前立腺癌は、優先的に骨に転移し、そこで前立腺癌は骨芽細胞の病巣を形成する。アンドロゲン除去治療での初期の処置後、ほとんどの転移性前立腺癌は、ホルモン治療抵抗性および致死となる。現行の診断様式および治療様式は、特異性がないことおよび、どの患者が、転移性の疾患を発症する危険性があるかを予測できないことにより限定される。
【０００３】
ほとんどの前立腺癌は、尿道からは遠い前立腺の末梢領域において初めに起こる。この領域内の腫瘍は、いかなる症状も生じないかもしれず、そしてその結果、初期段階の前立腺癌を有するほとんどの男性は、顕著な進行が起こるまで、その疾患の臨床的な症状を示さない。前立腺の転移領域への腫瘍の進行は、尿道の閉塞を導き得、従って、この疾患の第１の症状を生じ得る。しかし、これらの臨床的な症状は、良性の前立腺過形成（ＢＰＨ）の通常の非悪性状態と識別不能である。
【０００４】
前立腺癌の診断および処置における基本的な問題の１つは、初期段階の局在化した腫瘍を正確に検出できるマーカーの欠如である。多数のマーカーが同定されており、そしてＰＳＡのようないくつかは、広範に臨床的に使用されているが、理想的な前立腺腫瘍マーカーは、まだ特徴付けられていない。同様の問題は、どの癌が不活性であり、そしてどの癌が攻撃的であるか、または攻撃的になるかを決定するための効果的な予後マーカーの欠如である。例えば、ＰＳＡは、不活性な癌と攻撃的な癌とを正確に識別できない。加えて、抗体指向性の治療、免疫治療、および遺伝子治療のような治療方法の標的として役立ち得るマーカーについての大きな必要性もまた存在する。
【０００５】
現在、手術もしくは放射線治療の後に再発性の疾患を発症する患者の２０〜４０％のための、または診断時に転移性の疾患を有する患者のための効果的な処置は、存在しない。ホルモン除去治療は、これらの患者を和らげることができるが、大部分は回避不能に進行して、不治のアンドロゲン非依存性の疾患を発症する（Ｌａｌａｎｉら、１９９７、Ｃａｎｃｅｒ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ  Ｒｅｖ．１６：２９−６６）。
【０００６】
前立腺癌の初期の検出および診断は、現在、デジタル直腸検査（ＤＲＥ）、前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）測定、経直腸的な超音波検査法（ＴＲＵＳ）、および経直腸的な針生検（ＴＲＮＢ）に依存する。現在、ＤＲＥと組み合わせた血清ＰＳＡ測定は、前立腺癌を検出および診断するために使用される主な手段を表す。この両方は、この疾患のより優れた診断マーカーを発見するための激しい研究を刺激した主要な制限を有する。
【０００７】
ＰＳＡは、今日、前立腺癌をスクリーニングし、診断し、そしてモニターするために最も広く使用される腫瘍マーカーである。特に、血清ＰＳＡの検出のためのいくつかの免疫アッセイは、広範に臨床的に使用されている。最近、血清中のＰＳＡ  ｍＲＮＡに対する逆転写酵素−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）アッセイが開発された。しかし、上昇したレベルのＰＳＡが、ＢＰＨおよび前立腺炎を有する患者のうちの大きな割合において（２５〜８６％）（Ｇａｏら、１９９７、Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ３１：２６４−２８１）、ならびに他の非悪性の障害およびいくらかの正常な男性（このマーカーの診断の特異性をかなり制限する因子）において検出可能であるので、ＰＳＡは疾患特異的マーカーではない。例えば、ＢＰＨにおいて４〜１０ｎｇ／ｍｌの間の血清ＰＳＡの上昇が観察され、そして前立腺炎において（特に急性前立腺炎において）さらに高い値が観察された。男性において、ＢＰＨは、極度に普通の状態である。さらにこの状況を混乱させるのは、血清ＰＳＡの上昇は、ＤＲＥによる疾患の何の指標も伴わず観察され得、その逆もまた同じであるという事実である。さらに今や、ＰＳＡは前立腺特異的ではないと認識される（概説について、Ｇａｏら、前出）。
【０００８】
ＰＳＡに基づいた検出の特異性を改良するために設計された種々の方法（例えば、ＰＳＡ密度および遊離のＰＳＡ対複合体ＰＳＡの比の測定）が、記述された。しかし、これらの方法論はどれも、悪性の前立腺疾患と良性の前立腺疾患とを再現可能に区別し得なかった。加えて、ＰＳＡの診断は、５７〜７９％の感度を有し（ＣｕｐｐおよびＯｓｔｅｒｌｉｎｇ、１９９３、Ｍａｙｏ  Ｃｌｉｎ  Ｐｒｏｃ  ６８：２９７−３０６）、従ってこの疾患を有する有意な男性の集団における前立腺癌の同定を失敗する。
【０００９】
前立腺特異的膜抗体（ＰＳＭＡ）は、診断マーカーおよび治療マーカーとしてのその使用を評価する種々の研究の主題であった、前立腺癌の、最近記載された細胞表面マーカーである。ＰＳＭＡ発現は、主に前立腺組織に制限されるが、検出可能なレベルのＰＳＭＡ  ｍＲＮＡは、脳、唾液腺、小腸および腎細胞癌において観察された（Ｉｓｒａｅｌｉら、１９９３、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ５３：２２７−２３０）。ＰＳＭＡタンパク質は、大部分の原発性前立腺癌および転移性前立腺癌において高度に発現されるが、大部分の正常な上皮内新形成標本においてもまた発現される（Ｇａｏら、前出）。再発性の前立腺癌を画像化するためのインジウム１１１標識された抗ＰＳＭＡモノクローナル抗体（ｍＡｂ）を使用した予備的な結果は、いくらかの見込みを示す（Ｓｏｄｅｅら、１９９６、Ｃｌｉｎ  Ｎｕｃ  Ｍｅｄ  ２１：７５９−７６６）。ＰＳＭＡが、有用な治療標的であると立証されるか否かは、今だに決定されていない。しかし、ＰＳＭＡは、機能的なアンドロゲンレセプターの存在を必要とするホルモン依存性抗原である。全ての前立腺癌細胞が、アンドロゲンレセプターを発現するわけではないことから、治療標的としてのＰＳＭＡの有用性は、本質的に限定され得る。
【００１０】
前立腺癌の臨床病期分類は、今日、泌尿器科医が直面する別の基本的問題である。現在、臨床病期分類は、血清ＰＳＡ決定および経直腸的な超音波誘導生検と組み合わせた、腫瘍が前立腺嚢（局所的に閉じ込められる）の辺縁内に残っている、またはそれを超えている（局所的に進行している）か否かを決定する、直腸検査に依存する。しかし、主観性が関わるせいで、ＤＲＥによる臨床病期分類は、腫瘍の局所的な伸展を一様に過小評価または過大評価し、頻繁にその位置を誤って判断し、そして腫瘍の容積および程度とはほとんど相関しない（Ｌｅｅ，Ｃ．Ｔ．およびＯｓｔｅｒｌｉｎｇ，Ｊ．Ｅ．Ｃａｎｃｅｒ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｐｒｏｓｔａｔｅ：Ｄｉａｇｎｏｓｉｓ  ａｎｄ  Ｓｔａｇｉｎｇ、Ｕｒｏｌｏｇｉｃ  Ｏｎｃｏｌｏｇｙ，Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ  Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，３５７〜３７７頁（１９９７））。血清ＰＳＡレベルはまた、病期分類の目的のために利用されるが、ＰＳＡ単独では前立腺腫瘍を信頼性良く病期分類できていない。この疾患の進行を予測することに信頼性があると立証された技術はない。従って、前立腺癌の管理において、より信頼でき、かつより有益な病期分類および予後方法についての必要性が存在する。
【００１１】
（発明の要旨）
本発明は、前立腺幹細胞抗原（ＰＳＣＡ）と称され、高い程度の前立腺上皮内の新形成（ＰＩＮ）、アンドロゲン依存性およびアンドロゲン非依存性の前立腺腫瘍を含むすべての段階の前立腺癌で広く過剰発現する、新規の前立腺細胞表面抗原を提供する。ＰＳＣＡ遺伝子は、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）系留細胞表面抗原のＴｈｙ−１／Ｌｙ−６ファミリーのメンバーである幹細胞抗原−２（ＳＣＡ−２）に対して３０％の相同性を示し、アミノ末端シグナル配列、カルボキシ末端ＧＰＩ系留配列、および複数のＮ−グリコシル化部位を有する１２３アミノ酸のタンパク質をコードする。ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡ発現は、アンドロゲン依存性およびアンドロゲン非依存性の両方の前立腺癌の異種移植片において、高度に上方制御される。インサイチュでのｍＲＮＡ分析は、前立腺の推定幹細胞区画である基底細胞上皮にＰＳＣＡ発現を局在化させる。フローサイトメトリー分析は、ＰＳＣＡが主に細胞表面で発現され、そしてＧＰＩ連結により係留されることを実証する。蛍光インサイチュハイブリダイゼーション分析は、８０％を超える前立腺癌において得られる対立遺伝子領域である、染色体８ｑ２４．２に対してＰＳＣＡ遺伝子を局在化させる
ＰＳＣＡは、その細胞表面位置、前立腺癌細胞のような特定の型の癌における非常に上方制御された発現の観点から最適な治療標的であり得る。この点において、本発明は、そのような前立腺癌細胞を破壊するために治療的に使用できるＰＳＣＡに結合可能な抗体を提供する。加えて、ＰＳＣＡタンパク質およびＰＳＣＡコード核酸分子は、前立腺腫瘍の免疫媒介破壊を促進する種々の免疫治療方法に使用され得る。
【００１２】
ＰＳＣＡはまた、理想の前立腺癌マーカーを示し得、それは、悪性の前立腺癌と、正常な前立腺と非悪性新形成とを識別するために使用され得る。例えば、ＰＳＣＡは、良性の前立腺過形成（ＢＰＨ）と比較して前立腺癌で非常に高いレベルで発現される。対照的に、広範に使用される前立腺癌マーカーＰＳＡは、正常な前立腺およびＢＰＨの両方で高いレベルで発現されるが、前立腺癌ではより低いレベルで発現され、ＰＳＡ発現をＢＰＨまたは正常な腺と悪性の前立腺癌とを区別するために役に立たなくする。ＰＳＣＡの発現は、本質的にＰＳＡの発現の逆であるから、ＰＳＣＡの発現の分析は、非悪性状態と前立腺癌とを区別するために使用され得る。
【００１３】
ヒトおよびマウスの両方のＰＳＣＡコード遺伝子が単離され、そしてそれらのコード配列は本明細書中で解明され、そして提供される。ヒトおよびマウスの両方のＰＳＣＡのアミノ酸配列もまた提供される。本発明はさらに、核酸に基づいたアッセイおよび免疫学的なアッセイを含む、前立腺癌の検出、モニタリング、および予後のための種々の診断アッセイを提供する。ＰＳＣＡ特異的モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体、ならびに前立腺癌の処置の免疫治療方法および他の治療方法もまた提供される。本発明のこれらの局面および他の局面は、さらに以下に記載される。
（発明の詳細な説明）
本発明は、前立腺幹細胞抗原（本明細書中以降「ＰＳＣＡ」）に関する。ＰＳＣＡは新規の、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）−固着細胞表面抗原であり、これは、正常な細胞（例えば、前立腺細胞、尿路上皮、腎集合管、結腸神経内分泌細胞、胎盤、正常な膀胱細胞および尿管移行上皮細胞）において発現される（図１６）。正常な細胞に加えてＰＳＣＡはまた、アンドロゲン依存性前立腺癌細胞およびアンドロゲン非依存性前立腺癌細胞の両方（図９〜１１）、骨に転移する前立腺癌（図２０〜２４および２６〜３２）、ならびに膀胱癌腫（図６および２５）によって過剰発現される。癌（例えば、前立腺癌）におけるＰＳＣＡの発現は、増加するグレードと相関して現れる。さらに、癌（例えば、前立腺癌）に苦しんでいる患者におけるＰＳＣＡの過剰発現（すなわち、正常な細胞において見い出される、より高い発現）は、乏しい予後の指標であるようである。
【００１４】
ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡはまた、正常な前立腺において基底細胞のサブセットにより発現される。基底細胞上皮は、末期の分化型分泌細胞についての前駆体細胞を含むと考えられる（Ｂｏｎｋｈｏｆｆら、１９９４，Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ２４：１１４〜１１８）。サイトケラチンマーカーを使用した最近の研究は、基底細胞上皮が少なくとも２つの異なる細胞部分集団を含み、１つはサイトケラチン５および１４を発現し、そしてもう一方は、サイトケラチン５、８および１８を発現することを示唆する（ＢｏｎｋｈｏｆｆおよびＲｅｍｂｅｒｇｅｒ、１９９６、Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ２８：９８〜１０６）。ＰＳＣＡは、基底細胞の１つのサブセットにしか発現されないという知見は、ＰＳＣＡが、それら２つの基底細胞系統のうちの１つに対するマーカーであり得ること示唆する。
【００１５】
ＰＳＣＡの生物学的機能は知られていない。Ｌｙ−６遺伝子ファミリーは、シグナル伝達および細胞−細胞の接着を含む、多様な細胞機能に関与する。ＳＣＡ−２を通じたシグナル伝達は、未成熟の胸腺細胞におけるアポトーシスを妨げることが示されている（Ｎｏｄａら、１９９６，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８３：２３５５〜２３６０）。Ｔｈｙ−１は、ｓｒｃ様チロシンキナーゼを通じたＴ細胞の活性化およびシグナルの移行を含む（Ｔｈｏｍａｓら、１９９２，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：１２３１７〜１２３２２）。Ｌｙ−６遺伝子は、腫瘍形成および同型の細胞の接着の両方に関係している（ＢａｍｅｚａｉおよびＲｏｃｋ，１９９５，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９２：４２９４〜４２９８；Ｋａｔｚら、１９９４，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ５９：６８４〜６９１；Ｂｒａｋｅｎｈｏｆｆら、１９９５，Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１２９：１６７７〜１６８９）。基底細胞、および基底細胞とＳｃａ−２との相同性における制限された発現に基づいて、本発明者らは、ＰＳＣＡは、幹細胞機能／前駆体細胞機能（例えば、自己再生（抗アポトーシス）および／または増殖）において役割を果し得るという仮説を立てた。
【００１６】
ＰＳＣＡは、マウスおよびヒトにおいて高度に保存される。前立腺に優性に制限される保存された遺伝子の同定は、ＰＳＣＡが正常な前立腺の発達において重要な役割を果し得るという仮説を支持する。
【００１７】
種々の局面において、以下に詳細に記載されるように、本発明は、ＰＳＣＡタンパク質、抗体、核酸分子、組換えＤＮＡ分子、形質転換宿主細胞、産生方法、アッセイ、免疫的治療法、トランスジェニック動物、免疫学的アッセイおよび核酸に基づくアッセイ、ならびに組成物を提供する。
【００１８】
（ＰＳＣＡタンパク質）
本発明の１つの局面は、種々のＰＳＣＡタンパク質、およびそのペプチドフラグメントを提供する。本明細書中で使用されるように、ＰＳＣＡは、図１Ｂおよび３に提供されるような、ヒトＰＳＣＡのアミノ酸配列、図３に提供されるようなマウスＰＳＣＡホモログのアミノ酸配列、または他の哺乳動物のＰＳＣＡホモログのアミノ酸配列を有するタンパク質、およびＰＳＣＡ活性を有するそれらタンパク質の対立遺伝子改変体、および保存的置換変異体に関する。本発明のＰＳＣＡタンパク質には、本明細書中に記載される具体的に同定され、かつ特徴づけられた改変体ならびに下記に要約される以下の方法に従って過度の実験をせずに単離／産生され、そして特徴づけられ得る対立遺伝子改変体、保存的置換改変体およびホモログが挙げられる。便宜のため、全てのＰＳＣＡタンパク質は集合的にＰＳＣＡタンパク質、本発明のタンパク質、またはＰＳＣＡといわれる。
【００１９】
用語「ＰＳＣＡ」は、図１Ｂおよび３に提供されるような、ヒトＰＳＣＡの全ての天然に存在する対立遺伝子改変体、アイソフォーム、および前駆体、ならびに図３に提供されるようなマウスのＰＳＣＡを含む。一般的に、例えば、天然に存在するヒトＰＳＣＡの対立遺伝子改変体は、図１Ｂおよび３において提供されるＰＳＣＡアミノ酸配列と有意な相同性（例えば、７０〜９０％）を共有する。改変体は、わずかに異なるアミノ酸配列を有する対立遺伝子がＧＩＰ結合タンパク質として前立腺細胞の表面で発現され得るか、または分泌され得るか、もしくは解離され得る。典型的に、ＰＳＣＡタンパク質の対立遺伝子改変体は、本明細書中に記載のＰＳＣＡ配列からの保存的アミノ酸配列の置換を含むか、またはＰＳＣＡホモログ（例えば、本明細書中に記載のマウスＰＳＣＡホモログ）に対応する位置からのアミノ酸配列の置換を含む。
【００２０】
ＰＳＣＡ対立遺伝子改変体の１つのクラスは、図１Ｂおよび３に示されるＰＳＣＡアミノ酸配列の少なくとも小さな領域と高い程度の相同性を共有するタンパク質であるが、さらにその配列由来の遊離基離脱（例えば、非保存的置換、切断、挿入またはフレームシフト）を含む。そのような対立遺伝子は、ＰＳＣＡの変異体対立遺伝子と呼ばれ、そして典型的に、同じ生物学的機能を行わないタンパク質を提示する。
【００２１】
保存的アミノ酸置換は、タンパク質中において、しばしばタンパク質の高次構造またはタンパク質の機能のいずれかを変化させずになされ得る。このような変化には、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、およびロイシン（Ｌ）のいずれかを、これらの疎水性アミノ酸の他のいずれかへの置換；アスパラギン酸（Ｄ）のグルタミン（Ｅ）への置換、およびその反対の置換；グルタミン（Ｑ）のアスパラギン（Ｎ）への置換、ならびにその反対の置換；およびセリン（Ｓ）のスレオニン（Ｔ）への置換、およびその反対の置換が挙げられる。特にアミノ酸の環境、およびタンパク質の三次構造におけるその役割に依存した他の置換はまた、保存的であるとみなされ得る。例えば、グリシン（Ｇ）とアラニン（Ａ）は、しばしばアラニン（Ａ）とバリン（Ｖ）に互換可能であり得る。比較的に疎水性のメチオニン（Ｍ）は、しばしばロイシンおよびイソロイシン、そして時にはバリンと互換され得る。リジン（Ｋ）およびアルギニン（Ｒ）は、アミノ酸残基の有意な特徴がその電荷であり、そしてこれら２つのアミノ酸残基の異なったｐＫが有意でない位置においてしばしば互換可能である。なお、特定の環境中の他の変化は「保存的」であるとみなされ得る。
【００２２】
ヒトＰＳＣＡタンパク質のアミノ酸配列は、図１Ｂおよび３に提供される。ヒトＰＳＣＡは、１２３アミノ酸の単一のサブユニットから構成され、そしてアミノ末端シグナル配列、カルボキシ末端ＧＰＩ固着配列および多重Ｎグリコシル化部位を含む。ＰＳＣＡは、造血発達の最初期段階を特徴付ける細胞表面タンパク質の群であるＴｈｙ−１／Ｌｙ−６遺伝子ファミリーのメンバーである幹細胞抗原−２（ＳＣＡ−２）と３０％の相同性を示す。マウスＰＳＣＡホモログのアミノ酸配列は、図３に示される。マウスのＰＳＣＡは、ヒトＰＳＣＡおよび類似構造の生物とおよそ７０％の相同性を有する１２３アミノ酸の単一のサブユニットタンパク質である。
【００２３】
ＰＳＣＡタンパク質は、多くの形態で、好ましくは単離された形態で具体化され得る。本明細書中で使用されるように、タンパク質は、物理的方法、機械的方法または化学的方法を使用して、正常にタンパク質を付随する細胞成分からＰＳＣＡタンパク質を除去した場合、単離されたと言われる。当業者は、標準的精製方法を容易に使用し、単離されたＰＳＣＡタンパク質を入手し得る。精製されたＰＳＣＡタンパク質分子は、抗体または他のリガンドへのＰＳＣＡの結合を損なう他のタンパク質または分子を実質的に含まない。単離および精製の性質ならびに程度は、意図された使用に依存する。ＰＳＣＡタンパク質の実施形態は、精製されたＰＳＣＡタンパク質および機能的に可溶性のＰＳＣＡタンパク質を含む。機能的に可溶性のＰＳＣＡタンパク質の１つの例は、図１Ｂにおいて示されるアミノ酸配列、またはそのフラグメントを有する。１つの形態において、そのような機能的に可溶性のＰＳＣＡタンパク質またはそのフラグメントは、抗体または他のリガンドを結合する能力を保持する。
【００２４】
本発明はまた、図１Ｂおよび３に示されるヒトおよびマウスのＰＳＣＡアミノ酸配列の生物学的に活性なフラグメントを含むペプチドを提供する。例えば、本発明は、アミノ酸配列ＴＡＲＩＲＡＶＧＬＬＴＶＩＳＫ（配列番号：９）を有するペプチドフラグメント、アミノ酸配列ＶＤＤＳＱＤＹＹＶＧＫＫ（配列番号：１０）およびＳＬＮＣＶＤＤＳＱＤＹＹＶＧＫ（配列番号：１１）を有するペプチドフラグメントを提供する。
【００２５】
本発明のペプチドは、ＰＳＣＡに関連するエピトープと特異的に結合する抗体の産生を誘導する能力のような、ＰＳＣＡの特徴を示す。ＰＳＣＡタンパク質のそのようなペプチドフラグメントは、標準のペプチド合成技術および本明細書中に開示されるヒトまたはマウスＰＳＣＡタンパク質のアミノ酸配列を用いて産生され得る。あるいは、組換え方法が、このＰＳＣＡタンパク質のフラグメントをコードする核酸分子を産生するために使用され得る。この点に関して、本明細書中に記載されるＰＳＣＡコード核酸分子は、ＰＳＣＡの規定されたフラグメントを産生するための手段を提供する。
【００２６】
以下に議論されるように、ＰＳＣＡのペプチドフラグメントは、：ドメイン特異的抗体の産生；ＰＳＣＡまたはＰＳＣＡドメインに結合する因子の同定；ＰＳＣＡまたはＰＳＣＡドメインに結合する細胞因子の同定；およびヒトＰＳＣＡのホモログまたは他の対立遺伝子型の単離において、特に有用である。特に興味深い構造を含むＰＳＣＡペプチドは、当該分野で周知の種々の分析技術（例えば、Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｍａｍ分析、Ｇａｒｎｉｅｒ−Ｒｏｂｓｏｎ分析、Ｋｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ分析、Ｅｉｓｅｎｂｅｒｇ分析、Ｋａｒｐｌｕｓ−Ｓｃｈｕｌｔｚ分析またはＪａｍｅｓｏｎ−Ｗｏｌｆ分析、あるいは免疫原性に基づく方法が挙げられる）を使用して予想および／または同定され得る。例として、ヒトＰＳＣＡの疎水性プロットおよびＣｈｏｕ−Ｆａｓｍａｍプロットは、それぞれ、図４および５に提供される。そのような残基を含むフラグメントは、サブユニット特異的抗ＰＳＣＡ抗体の産生またはＰＳＣＡに結合する細胞因子の同定において特に有用である。
【００２７】
本発明のＰＳＣＡタンパク質は、以下に挙げられる使用を含む、種々の目的に対して有用であり得るが、これらの使用に限定されない：前立腺癌の診断および／または予後のマーカーとして、抗体の産生を誘導するための能力の診断および／または予後のマーカーとして、ならびに以下にさらに記載されるような種々の治療的物理療法に対する標的として。ＰＳＣＡタンパク質はまた、ＰＳＣＡに結合するリガンドおよび他の因子を同定および単離するために使用され得る。正常な前立腺において、ＰＳＣＡは、基底細胞のサブセットにもっぱら発現し、これは、ＰＳＣＡが、基底上皮内の特定の細胞系に関してマーカーとして使用され得ることを示唆する。さらに、本出願者らの結果は、基底細胞のこのセットが、悪性形質転換の標的を表すことを示唆する。従って、例えば、形質転換の原因である分子因子を除去または調節するように設計された治療的な戦略は、ＰＳＣＡ細胞表面タンパク質を介して細胞のこの集団を特異的に指向し得る。
【００２８】
（ＰＳＣＡ抗体）
本発明はさらに、ＰＳＣＡに結合する抗体（例えば、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、およびヒト化抗体）を提供する。最も好ましい抗体は、選択的にＰＳＣＡへ結合し、そして非ＰＳＣＡタンパク質に結合しない（またはより弱く結合する）。特に意図された抗ＰＳＣＡ抗体は、モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体ならびにそれらのフラグメント（例えば、組換えタンパク質）を含み、このフラグメントは、抗原結合ドメインおよび／またはこれらの抗体の１つ以上の補体決定領域を含む。これらの抗体は、任意の供給源（例えば、ラット、イヌ、ネコ、ブタ、ウマ、マウス、およびヒト）由来であり得る。
【００２９】
１つの実施形態において、このＰＳＣＡ抗体は、例えば、初代病巣および前立腺癌骨転移由来の前立腺癌細胞の細胞表面上のＰＳＣＡタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する。他の実施形態において、このＰＳＣＡ抗体は、ＰＳＣＡタンパク質または前駆体の他のドメインに特異的に結合する。当業者によって理解されるように、抗体が指向するＰＳＣＡタンパク質の領域またはエピトープは、意図された適用により変化し得る。例えば、生存可能な前立腺癌細胞上の膜結合ＰＳＣＡの検出のためのイムノアッセイにおける使用を意図される抗体は、膜結合ＰＳＣＡ上の到達可能なエピトープに指向されるべきである。そのような抗体の例は、以下の実施例に記載される。他のエピトープを認識する抗体は、損傷した細胞または瀕死の細胞中のＰＳＣＡの同定のため、分泌されたＰＳＣＡタンパク質またはそのフラグメントの検出のために有用であり得る。本発明はまた、ＰＳＣＡタンパク質を特異的に認識する抗体フラグメントを含む。本明細書中で使用される場合、抗体フラグメントとは、その標的に結合する免疫グロブリン分子の可変領域の少なくとも部分（すなわち、抗原結合領域）であるとして定義される。免疫グロブリンの定常領域のいくつかが、含まれ得る。
【００３０】
例えば、アンドロゲン依存性およびアンドロゲン非依存性の前立腺癌細胞の両方におけるＰＳＣＡの過剰発現、およびＰＳＣＡの細胞表面位置は、スクリーニングアッセイ、診断アッセイ、予後アッセイおよび追跡（ｆｏｌｌｏｗ−ｕｐ）アッセイおよび画像化方法のための優れたマーカーの特徴を示す。さらに、これらの特徴は、ＰＳＣＡが、標的抗体療法、免疫療法、および遺伝子療法のような治療方法のための優れた標的であり得ることを示す。
【００３１】
本発明のＰＳＣＡ抗体は、前立腺癌の治療技術における診断アッセイ、画像化方法論、および治療的方法において、特に有用であり得る。本発明は、ＰＳＣＡタンパク質の検出および前立腺癌の診断に有用な、種々の免疫学的アッセイを提供する。そのようなアッセイは、一般的に、ＰＳＣＡタンパク質を認識し結合し得る１つ以上のＰＳＣＡ抗体を含み、そして以下に挙げられる当該分野で周知の種々の免疫学的アッセイ形式を含むが、これらに限定されない：種々の型の沈降、凝集、補体結合、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、酵素結合免疫蛍光測定法（ＥＬＩＦＡ）（Ｈ．Ｌｉｕら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ５８：４０５５−４０６０（１９９８））、免疫組織化学的分析など。さらに、前立腺癌を検出し得る免疫学的画像化方法もまた、本発明によって提供され、標識したＰＳＣＡ抗体を用いた放射性シンチグラフィー（ｒａｄｉｏｓｃｉｎｔｉｇｒａｐｈｉｃ）画像化方法を含むがこれに限定されない。このようなアッセイは、前立腺癌の検出、モニタリングおよび予後において、臨床的に有用であり得る。
【００３２】
１つの実施形態において、ＰＳＣＡ抗体およびそのフラグメント（例えば、Ｆｖ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２）は、前立腺癌、膀胱癌腫、前立腺癌の骨転移、ＰＩＮ、またはＰＳＣＡタンパク質を発現する基底上皮細胞の存在を検出することに使用される。種々の生物学的サンプル（血清、前立腺および他の組織生検標本、骨のような他の組織、尿などが挙げられる）中の、そのようなＰＳＣＡ陽性（＋）細胞の存在は、ＰＳＣＡ抗体を用いて検出され得る。さらに、ＰＳＣＡ抗体は、インジウム−１１１（または他の同位体）結合抗体を用いた免疫シンチグラフィーのような、種々の画像化方法論において使用され得る。例えば、Ｉｎ−１１１結合抗ＰＳＭＡ抗体を用いる最近記載されたプロトコールに類似した画像化プロトコールを、再発性および転移性の前立腺癌腫の検出に使用し得る（Ｓｏｄｅｅら、１９９７、Ｃｌｉｎ  Ｎｕｃ  Ｍｅｄ  ２１：７５９−７６６）。例えば、ＳＰＭＡのような前立腺癌の他のマーカーに関連して、ＰＳＣＡは、アンドロゲン非依存性の前立腺癌細胞の標的化のために特に有用であり得る。ＰＳＣＡ抗体はまた、ＰＳＣＡ機能を阻害するために治療的に使用され得る。
【００３３】
ＰＳＣＡ抗体はまた、ＰＳＣＡタンパク質およびペプチドの精製のための方法ならびにＰＳＣＡホモログおよび関連する分子の単離のための方法において使用され得る。例えば、１つの実施形態において、ＰＳＣＡタンパク質を精製する方法は、以下の工程を包含する：固体マトリックス結合したＰＳＣＡ抗体を、ＰＳＣＡを含む溶解物または他の溶液とともに、そのＰＳＣＡ抗体がＰＳＣＡに結合することを可能にする条件下でインキュベートする工程；不純物を除去するために固体マトリックスを洗浄する工程；そしてそのＰＳＣＡを結合した抗体から溶出する工程。さらに、ＰＳＣＡ抗体は、細胞ソーティング（ｓｏｒｔｉｎｇ）および精製技術を用いてＰＳＣＡ陽性細胞を単離するために使用され得る。前立腺腫瘍細胞上のＰＳＣＡ（単独または他の細胞表面マーカーとの組み合わせ）の存在は、ヒト前立腺癌細胞を他の細胞から区別し、そして単離するために使用され得る。特に、ＰＳＣＡ抗体は、抗体に基づく細胞ソーティングまたはアフィニティー精製技術を使用して異種移殖腫瘍組織、培養中の細胞などから前立腺癌細胞を単離するために使用され得る。本発明のＰＳＣＡ抗体の他の使用は、ＰＳＣＡタンパク質を模倣する抗イディオタイプ抗体の産生を含み、例えば、モノクローナル抗イディオタイプ抗体は、１Ｇ８、２Ａ２、２Ｈ９、３Ｃ５、３Ｅ６、３Ｇ３および４Ａ１０のような本発明の任意のモノクローナル抗体上のイディオタイプと反応性である。
【００３４】
多量の比較的に純粋なヒトＰＳＣＡ陽性前立腺癌細胞（これは、組織培養において増殖し得るかまたは動物モデル（例えば、ＳＣＩＤマウスまたは他の免疫不全マウス）における異種移植腫瘍として増殖し得る）を産生する能力は、多くの利点を提供し、例えば、前立腺癌細胞の比較的に均質な集団の増殖または他の表現型特徴に対する種々の導入遺伝子または候補治療的化合物の評価を可能にすることが挙げられる。さらに、本発明の特徴はまた、種々の分子操作のために十分な量の、ヒトＰＳＣＡ陽性前立腺癌特異的核酸の非常に濃縮した調製物の単離を可能にする。例えば、多量なそのような核酸調製物は、前立腺癌疾患の進行に生物学的に関連した珍しい遺伝子の同定を補助する。
【００３５】
本発明のこの局面の別の価値がある適用は、局所的に進行した疾患または転移性の疾患を有する個体患者からクローン化した生存可能なＰＳＣＡ陽性前立腺癌細胞の比較的に純粋な調製物を単離し、分析しそしてそれをも用いて実験する能力である。このようにして、例えば、個々の患者の前立腺癌細胞は、制限された生検サンプルから増殖され得、次いで、潜在的に混乱させる混入している細胞という変数を伴わずに、診断および予後の遺伝子、タンパク質、染色体異常、遺伝子発現プロフィール、または他の関連する遺伝型および表現型の特徴の存在について試験される。さらに、そのような細胞は、動物モデルにおいて、新生物の攻撃性および転移性能力について評価され得る。同様に、患者特異的な前立腺癌ワクチンおよび細胞性免疫治療剤が、そのような細胞調製物から作製され得る。
【００３６】
抗体の調製についての種々の方法が当該分野で周知である。例えば、抗体は、単離形態または免疫結合体形態でＰＳＣＡタンパク質、ペプチド、またはフラグメントを用いて適切な哺乳動物宿主に免疫されることによって調製され得る（Ｈａｒｌｏｗ、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ（１９８９））。さらに、ＰＳＣＡの融合タンパク質（例えば、はまた、ＰＳＣＡ  ＧＳＴ融合タンパク質）もまた、使用され得る。ＰＳＣＡを発現または過剰発現する細胞ＰＳＣＡもまた、免疫のために使用され得る。同様に、ＰＳＣＡを発現するように操作された任意の細胞が、使用され得る。この戦略は、内因性ＰＳＣＡを認識する能力が増強されたモノクローナル抗体の産生をもたらし得る。例えば、実施例５に記載の標準技術および標準のハイブリドーマプロトコール（ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、１９８８、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ．（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ））を使用することによって、モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマが生成された。このハイブリドーマは、１Ｇ８（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１２）、２Ａ２（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１３）、２Ｈ９（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１４）、３Ｃ５（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１６）、３Ｅ６（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１８）、および３Ｇ３（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１５）、４Ａ１０（ＡＴＣＣ番号  ＨＢ−１２６１７）と呼ばれる。これらの抗体は、１９９８年１２月１１日、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、１２３０１  Ｐａｒｋｌａｗｎ  Ｄｒｉｖｅ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ  ２０８５２に寄託された。
【００３７】
本発明のキメラ抗体は、ヒト部分および非ヒト部分を含む、免疫グロブリン分子である。キメラ抗体の抗原結合領域（可変領域）は、非ヒト供給源（例えば、マウス）に由来し得、そしてその免疫グロブリンに生物学的エフェクター機能を与えるキメラ抗体の定常領域は、ヒト供給源由来であり得る。このキメラ抗体は、非ヒト抗体分子の抗原結合特異性およびこのヒト抗体分子により付与されるエフェクター機能を有するはずである。
【００３８】
一般的に、キメラ抗体を産生するために使用される手順は、以下の工程を含み得る：
ａ）抗体分子の抗原結合部分をコードする正確な遺伝子セグメントの同定およびクローニング；この遺伝子セグメント（重鎖についてＶＤＪ領域（可変領域、多様性（ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ）領域および接合（ｊｏｉｎｉｎｇ）領域）または軽鎖についてＶＪ領域（可変領域、接合領域）として公知であるか、または単にＶ領域または可変領域として公知）は、ｃＤＮＡ形態またはゲノム形態のいずれかであり得る；
ｂ）定常領域またはその所望される部分をコードする遺伝子セグメントのクローニング；
ｃ）完全なキメラ抗体が転写され得かつ翻訳され得る型でコードするように可変領域を定常領域と連結；
ｄ）この構築物を、選択可能なマーカー、ならびにプロモーター、エンハンサーおよびポリ（Ａ）付加シグナルのような遺伝子制御領域を含む、ベクター中に連結；
ｅ）細菌中でこの構築物の増幅；
ｆ）真核生物細胞（最も頻繁には、哺乳動物リンパ球）へのこのＤＮＡの導入（トランスフェクション）；
ｇ）選択可能なマーカーを発現する細胞の選択；
ｈ）所望するキメラ抗体を発現する細胞についてのスクリーニング；および
ｋ）適切な結合特異性およびエフェクター機能についての抗体の試験。
【００３９】
幾つかの異なる抗原結合特異性の抗体が、キメラタンパク質を産生するためのこれらのプロトコールにより操作された［例えば、抗ＴＮＰ：Ｂｏｕｌｉａｎｎｅら、Ｎａｔｕｒｅ  ３１２：６４３（１９８４）；および抗腫瘍抗原：Ｓａｈａｇａｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７：１０６６（１９８６）］。同様に、幾つかの異なるエフェクター機能が、この抗原結合領域をコードする配列に対する新規の配列を連結することによって達成された。これらの幾つかは酵素［Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ  ３１２：６０４（１９８４）］、別の種由来の免疫グロブリンの定常領域、および別の免疫グロブリン鎖の定常領域［Ｓｈａｒｏｎら、Ｎａｔｕｒｅ  ３０９：３６４（１９８４）；Ｔａｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３５：３５６５−３５６７（１９８５）］を含む。さらに、抗体分子を改変するため、および遺伝子改変を目標とするための相同組換えを用いたキメラ抗体分子の産生についての手順は、記載されている（Ｆｅｌｌら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８６：８５０７−８５１１（１９８９））。
【００４０】
これらの抗体は、例えば、前立腺癌細胞の細胞表面上のＰＳＣＡに結合し得、これによって、ＰＳＣＡの細胞表面位置が確認される。これらのｍＡｂが、細胞表面の外側のエピトープを認識するので、これらのｍＡｂは、前立腺癌の診断および治療のための有用性を有する。例えば、これらのｍＡｂは、転移性の疾患の部位を位置付けるために使用された（実施例６）。別の可能性は、ｍＡｂが、単独あるいは放射性同位体または他の毒素と結合されて使用される際、前立腺癌細胞を治療学的に標的化するために（例えば、全身的に）使用され得ることである。
【００４１】
ＰＳＣＡ  ｍＡｂは、細胞表面を斑点状の様式で染色し（実施例５参照）、これは、ＰＳＣＡが、細胞表面の特定の領域に局在し得ることを示唆する。ＧＰＩに固着されたタンパク質は、細胞表面の界面活性剤不溶性の糖脂質に富んだマイクロドメイン（ＤＩＧＳ）において密集することが公知である。小胞およびスフィンゴ脂質（ｓｈｉｎｇｏｌｉｐｉｄ）−コレステロールラフを含むこれらのマイクロドメインは、シグナル伝達および分子輸送において重要な役割を果たすと考えられている。ＰＳＣＡの相同体であるＴｈｙ−１は以前、脂質−マイクロドメインにおける相互作用を介してｓｒｃキナーゼへシグナルを伝達することが示された。本発明者らの研究室における細胞下分画実験は、ＤＩＧＳ中のＰＳＣＡの存在を確認する。
【００４２】
さらに、本発明のいくつかの抗体は、内部移行する抗体であり、すなわち、この抗体は、結合の際または結合の後に、細胞内へ内部移行する。さらに、いくつかの抗体は、ＰＳＣＡ陽性癌細胞の増殖の阻害を誘導する。
【００４３】
例えば、前立腺癌の検体におけるこれらの抗体の特徴は、ＰＳＣＡタンパク質が、正常細胞と比較して前立腺癌において過剰発現していること、そしてこの発現が、前立腺癌の進行および転移の間にアップレギュレートされるようであることを示す。これらの抗体は、ＰＳＣＡ生物学および機能研究、ならびにＰＳＣＡ関連癌（例えば、ヒト前立腺癌、前立腺癌の骨への転移、および膀胱癌腫）のインビボ標的化において有用である。
【００４４】
本明細書中に示されるＰＳＣＡのアミノ酸配列は、抗体を産生するためのＰＳＣＡタンパク質の特異的領域を選択するために使用され得る。例えば、このＰＳＣＡアミノ酸配列の親水性および疎水性の分析は、ＰＳＣＡの構造における疎水性領域を同定するために使用され得る。免疫原性構造を示すＰＳＣＡタンパク質の領域ならびに他の領域およびドメインは、当該分野で公知の種々の他の方法（例えば、Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎ分析、Ｇａｒｎｉｅｒ−Ｒｏｂｓｏｎ分析、Ｋｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ分析、Ｅｉｓｅｎｂｅｒｇ分析、Ｋａｒｐｌｕｓ−Ｓｃｈｕｌｔｚ分析またはＪａｍｅｓｏｎ−Ｗｏｌｆ分析）を用いて容易に同定され得る。これらの残基を含むフラグメントは、特定のクラスの抗ＰＳＣＡ抗体の産生に特に適する。特に有用なフラグメントには、配列ＴＡＲＩＲＡＶＧＬＬＴＶＩＳＫ（配列番号：９）およびＳＬＮＣＶＤＤＳＱＤＹＹＶＧＫ（配列番号：１１）が挙げられるが、これらに限定されない。
【００４５】
以下の実施例２に記載されるように、ウサギポリクローナル抗体を、合成ペプチドとして調製した前者のフラグメントに対して産生し、そしてＰＳＣＡ−グルタチオンＳトランスフェラーゼ融合タンパク質を用いたアフィニティー精製をした。この抗体によるＰＳＣＡの認識は、ＰＳＣＡを用いてトランスフェクトした２９３Ｔ細胞の抽出液およびＧＳＴ−ＰＳＣＡ融合タンパク質の、イムノブロット分析および免疫沈降分析によって確立した。この抗体はまた、ＰＳＣＡでトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞およびＬＡＰＣ−４細胞におけるＰＳＣＡの細胞表面発現を、蛍光細胞分析分離装置（ＦＡＣＳ）を用いて同定した。
【００４６】
さらに、ヒツジのポリクローナル抗体を、合成ペプチドとして調製した後者のフラグメントに対して産生し、そしてペプチドＡｆｆｉ−ゲルカラムを用いてアフィニティー精製した（実施例２の方法にもよる）。この抗体によるＰＳＣＡの認識は、ＰＳＣＡを用いてトランスフェクトしたＬＮＣａＰ細胞の抽出液のイムノブロット分析および免疫沈降分析によって確立された。この抗体はまた、蛍光細胞分析分離装置（ＦＡＣＳ）および免疫組織化学的分析を用いて、ＰＳＣＡでトランスフェクトされたＬＮＣａｐ細胞におけるＰＳＣＡの細胞表面の発現を同定した。
【００４７】
免疫原としての使用のためのタンパク質を調製するための方法、およびキャリア（例えば、ＢＳＡ、ＫＬＨ、または他のキャリアタンパク質）とのタンパク質の免疫原性結合体を調製するための方法は、当該分野で周知である。いくつかの状況において、例えば、カルボジイミド試薬の使用による直接的な結合が、使用され得、他の場合において、Ｐｉｅｒｃｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬによって供給されるような結合試薬は、効果的であり得る。ＰＳＣＡ免疫原の投与は、当該分野で一般的に理解されるように、適切な期間に渡って、適切なアジュバントの使用と共に、注射によって一般的に行なわれる。免疫スケジュールの間、抗体の力価が、抗体形成の適切さを決定するために得られ得る。
【００４８】
この方法で産生されるポリクローナル抗血清は、いくつかの適用にとって十分であり得るが、薬学的組成物については、モノクローナル抗体調製物が好ましい。所望するモノクローナル抗体を分泌する不死化細胞株は、一般的に公知であるように、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎの標準的な方法、またはリンパ球細胞および脾細胞の不死化をもたらす改変形を使用して調製され得る。所望する抗体を分泌する不死化細胞株は、抗原がＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡフラグメントであるイムノアッセイによってスクリーニングされる。所望の抗体を分泌する適切な不死化細胞培養物が同定された場合、その細胞は、インビトロで培養され得るか、または腹水中の産生により培養され得るかのいずれかである。
【００４９】
次いで、所望のモノクローナル抗体は、培養上清または腹水上清から回収される。免疫学的に重要な部分（すなわち、ＰＳＣＡを認識し、そして結合する部分）を含む本発明のモノクローナル抗体またはポリクローナル抗血清のフラグメント（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）2、Ｆｖフラグメント、融合タンパク質）は、アンタゴニストならびにインタクト抗体として使用され得る。ＰＳＣＡに対して指向されるヒト化抗体もまた有用である。本明細書中で使用されるように、ヒト化ＰＳＣＡ抗体は、ＰＳＣＡと結合可能であり、そして実質的にヒト免疫グロブリンのアミノ酸配列を有するＦＲ領域および実質的に非ヒト免疫グロブリンのアミノ酸配列を有するＣＤＲまたはＰＳＣＡを結合するように操作された配列を含む免疫グロブリン分子である。
【００５０】
免疫学的反応性フラグメント（例えば、Ｆａｂフラグメント、Ｆａｂ’フラグメント、またはＦ（ａｂ’）2フラグメント）の使用が、特に治療的状況においてしばしば好ましい。なぜなら、これらのフラグメントは、免疫グロブリン全体よりも、一般的に免疫性ではないからである。本発明はまた、本発明のモノクローナル抗体または抗イディオタイプモノクローナル抗体を有する薬学的組成物を提供する。
【００５１】
細胞表面ＰＳＣＡと結合可能であるモノクローナル抗体（ＭＡｂ）の産生は、実施例５において記載されている。これらのＭＡｂのエピトープマッピングは、これらがＰＳＣＡタンパク質上の異なるエピトープを認識することを示す。たとえば、一方は、カルボキシ末端領域内のエピトープを認識し、そして他方は、アミノ末端領域内のエピトープを認識する。このようなＰＳＣＡ抗体は、それらの異なるエピトープ結合特性を与えられたサンドウィッチ形式（ｓａｎｄｗｉｃｈ−ｆｏｒｍａｔｔｅｄ）ＥＬＩＳＡにおいて使用するために特に十分適切であり得る。
【００５２】
この抗体またはフラグメントはまた、現在の技術を利用して、組換え手法により産生され得る。ＰＳＣＡタンパク質の所望の領域に特異的に結合する領域もまた、多様な種起源のキメラ抗体またはＣＤＲ移植抗体の状況において産生され得る。本発明は、モノクローナル抗体、標的抗原に対して本発明の任意のモノクローナルの免疫特異的結合を競合的に阻害する抗原結合領域を含む。さらに、本発明は、本発明の任意のモノクローナル抗体の抗原結合領域を含む組換えタンパク質を提供する。
【００５３】
本発明の抗体またはそのフラグメントは、検出マーカーを用いて標識され得るか、または第２の分子（例えば、それによって免疫結合体を生じる治療剤（例えば、細胞毒因子））と結合体化され得る。例えば、この治療剤としては、抗腫瘍薬物、毒素、放射性因子、サイトカイン、二次抗体または酵素が挙げられるがこれらに限定されない。さらに、本発明は、実施形態を提供し、ここで本発明の抗体は、プロドラッグを細胞毒薬物に変換する酵素と連結される。
【００５４】
免疫結合体は、ＰＳＣＡ陽性細胞に対してこの第２の分子を標的とするために使用され得る（Ｖｉｔｅｔｔａ，Ｅ．Ｓ．ら、１９９３、Ｉｍｍｎｏｔｏｘｉｎ  ｔｈｅｒａｐｙ，ｉｎ  ＤｅＶｉｔａ，Ｊｒ．、Ｖ．Ｔ．ら編、Ｃａｎｃｅｒ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ  ｏｆ  Ｏｎｃｏｌｏｇｙ、第４版、Ｊ．Ｂ．Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ  Ｃｏ．、Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、２６２４−２６３６）。
【００５５】
細胞毒因子の例としては、リシン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、タキソール、エチジウムブロマイド、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド（ｔｅｎｏｐｏｓｉｄｅ）、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ジヒドロキシアントラシンジオン、アクチノマイシンＤ、ジフテリア毒素、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ体外毒素（ＰＥ）Ａ、ＰＥ４０、アブリン、およびグルココルチコイドならびに他の化学療法剤、ならびに放射性同位元素が挙げられるがこれらに限定されない。適切な検出マーカーとしては、放射性放射性同位元素、蛍光化合物、生物発光化合物、化学発光化合物、金属キレート剤または酵素が挙げられるがこれらに限定されない。
【００５６】
さらに、本発明の任意のモノクローナル抗体の抗原結合領域を含む本発明の組換えタンパク質は、癌を処置するために使用され得る。このような状況において、組換えタンパク質の抗原結合領域は、治療的活性を有する第２のタンパク質の少なくとも機能的に活性な部分と結合される。この第２のタンパク質としては、酵素、リンホカイン、オンコスタチンまたは毒素が挙げられるがこれに限定されない。適切な毒素としては、ドキソルビシン、ダウノルビシン、タキソール、エチジウムブロマイド、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ジヒドロキシアントラシンジオン、アクチノマイシンＤ、ジフテリア毒素、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ体外毒素（ＰＥ）Ａ、ＰＥ４０、リシン、アブリン、グルココルチコイドおよび放射性同位元素が挙げられる。
【００５７】
抗体に対して、治療剤を結合体化または結合するための技術は、周知である（例えば、Ａｍｏｎら、「Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  Ｆｏｒ  Ｉｍｍｕｎｏｔａｒｇｅｔｉｎｇ  Ｏｆ  Ｄｒｕｇｓ  Ｉｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｔｈｅｒａｐｙ」、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  Ａｎｄ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｔｈｅｒａｐｙ、Ｒｅｉｓｆｅｌｄら、（編）、２４３−５６頁（Ａｌａｎ  Ｒ．Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．１９８５）；Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍら、「Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  Ｆｏｒ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ」、Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ（第２版）、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、（編）、６２３−５３頁（Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．１９８７）；Ｔｈｏｒｐｅ、「Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｃａｒｒｉｅｒｓ  Ｏｆ  Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ  Ａｇｅｎｔｓ  Ｉｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｔｈｅｒａｐｙ：Ａ  Ｒｅｖｉｅｗ」、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ’８４：Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｐｉｎｃｈｅｒａら、（編）、４７５−５０６頁（１９８５）；およびＴｈｏｒｐｅら、「Ｔｈｅ  Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  Ａｎｄ  Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ  Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  Ｏｆ  Ａｎｔｉｂｏｄｙ−Ｔｏｘｉｎ  Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ」、Ｉｍｍｎｏｌ．Ｒｅｖ．、６２：１１９−５８（１９８２）を参照のこと）。治療剤としてのＰＳＣＡ抗体の使用は、以下の小節「ＰＲＯＳＴＡＴＥ  ＣＡＮＣＥＲ  ＩＭＭＮＯＴＨＥＲＡＰＹ」においてさらに記載される。
【００５８】
（ＰＳＣＡをコードする核酸分子）
本発明の別の局面は、ＰＳＣＡタンパク質およびそのフラグメントをコードする種々の核酸分子を、好ましくは単離された形態において（ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッド、および関連分子、ＰＳＣＡをコードする配列に相補的な核酸分子またはその一部、ならびにＰＳＣＡ遺伝子またはＰＳＣＡコード核酸とハイブリダイズするものを含む）提供する。特に好ましい核酸分子は、本明細書中で開示されるヒトＤＮＡ配列またはマウスＤＮＡ配列と実質的に同一のヌクレオチド配列または相補的なヌクレオチド配列を有する。ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、リボザイム、およびアンチセンス分子、ならびに天然供給源由来であろうと合成由来であろうと、代替の骨格に基づいた核酸または代替の塩基を含む核酸が、特に意図される。
【００５９】
例えば、アンチセンス分子は、ＲＮＡ、または塩基対依存様式（ｂａｓｅ  ｐａｉｒ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｍａｎｎｅｒ）においてＤＮＡもしくはＲＮＡと特異的に結合する他の分子（ペプチド核酸（ＰＮＡ）または非核酸分子誘導体（例えば、ホスホロチオエート）を含む）であり得る。当業者は、本明細書中に記載されているＰＳＣＡ配列を使用して、これらのクラスの核酸分子を容易に獲得し得る。便宜上、ＰＳＣＡコード核酸分子は、本明細書中で、ＰＳＣＡコード核酸分子、ＰＳＣＡ遺伝子またはＰＳＣＡ配列といわれる。
【００６０】
ヒトＰＳＣＡの１つの対立遺伝子形態をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、図１Ａにおいて提供される。マウスＰＳＣＡホモログをコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（「マウスＰＳＣＡ」）は、図２において提供される。ヒトＰＳＣＡおよびマウスＰＳＣＡのゲノムクローンはまた、実施例４において記載されるように単離された。ヒトゲノムクローンおよびマウスゲノムクローンの両方が、ＰＳＣＡ遺伝子の翻訳領域および３’非翻訳領域をコードする３つのエキソンを含む。５’非翻訳領域をコードする４番目のエキソンが、Ｌｙ−６遺伝子ファミリーおよびＴｈｙ−１遺伝子ファミリーの他のメンバーに対するＰＳＣＡの相同性に基づいて存在するために推定される（図８）。
【００６１】
ヒトＰＳＣＡ遺伝子は、染色体８ｑ２４．２に位置する。ヒト幹細胞抗原２（ＲＩＧ−Ｅ）、ならびに１つの他の最近同定されたヒトＬｙ−６ホモログ（Ｅ４８）もまた、この領域に局在し、関連遺伝子の大きなファミリーが、この遺伝子座に存在し得ることを示唆する（Ｂｒａｋｅｎｈｏｆｆら、１９９５、前出；Ｍａｏら、１９９６、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９３：５９１０−５９１４）。興味深いことに、染色体８ｑは、進行した前立腺癌および再発した前立腺癌の大部分において、対立遺伝子の増加および対立遺伝子の増幅の領域であることが報告されている（Ｃｈｅｒら、１９９４、Ｇｅｎｅｓ  Ｃｈｒｏｍ．Ｃａｎｃｅｒ  １１：１５３−１６２）。ｃ−ｍｙｃは、染色体８ｑ２４のＰＳＣＡの近位に局在し、そしてｃ−ｍｙｃの過剰コピー（対立遺伝子の増加または対立遺伝子の増幅のいずれかを介して）が、初期前立腺腫瘍の６８％および転移の９６％において見出された（Ｊｅｎｋｉｎｓら、１９９７、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．５７：５２４−５３１）。
【００６２】
本発明のＰＳＣＡコード核酸分子の実施形態は、プライマー（これは、本発明の核酸分子またはその任意の特異的部分の特異的な増幅を可能にする）、および本発明の核酸分子またはその任意の部分と選択的にまたは特異的にハイブリダイズするプローブを含む。この核酸プローブは、検出マーカーを用いて標識され得る。検出マーカーの例としては、放射性同位元素、蛍光化合物、生物発光化合物、化学発光化合物、金属キレート剤または酵素が挙げられるがこれらに限定されない。このような標識プローブは、ＰＳＣＡタンパク質を発現している細胞を診断するための手段としてＰＳＣＡタンパク質の存在を診断するために使用され得る。ＤＮＡプローブおよびＲＮＡプローブを生成するための技術は、周知である。
【００６３】
本明細書中で使用されるように、核酸分子は、この核酸分子がＰＳＣＡ以外のポリペプチドをコードする夾雑核酸分子から実質的に分離される場合、「単離される」と言われる。当業者は、単離されたＰＳＣＡコード核酸分子を獲得するために核酸単離手順を容易に用い得る。
【００６４】
本発明は、本発明のＰＳＣＡコード核酸分子のフラグメントをさらに提供する。本明細書中で使用されるように、ＰＳＣＡコード核酸分子のフラグメントは、ＰＳＣＡコード配列全体の小さい部分をいう。このフラグメントの大きさは、その意図された使用により決定される。
【００６５】
例えば、このフラグメントが、ＰＳＣＡタンパク質の活性部分（活性ドメイン、エフェクター結合部位またはＧＰＩ結合ドメインのような）をコードするように選択される場合、このフラグメントは、ＰＳＣＡタンパク質の機能的領域をコードするのに十分に大きいことが必要とされる。このフラグメントが核酸プローブまたはＰＣＲプライマーとして使用される場合、このフラグメントの長さは、プローブ化／プライマー化の間に比較的少数の疑陽性物を獲得するように選択される。
【００６６】
選択的ハイブリダイゼーションプローブまたはＰＣＲプライマーとして特に有用であるヒトＰＳＣＡのフラグメントは、当該分野で公知の方法を使用してＰＳＣＡ配列全体から容易に同定され得る。ＲＴ−ＰＣＲ分析のために有用であるＰＣＲプライマーの１つのセットは、５’プライマー−ＴＧＣＴＴＧＣＣＣＴＧＴＴＧＡＴＧＧＣＡＧ−（配列番号：１２）および３’プライマー−ＣＣＡＧＡＧＣＡＧＣＡＧＧＣＣＧＡＧＴＧＣＡ−（配列番号：１３）を包含する。
【００６７】
（他のＰＳＣＡコード核酸分子を単離するための方法）
本明細書中で記載されるＰＳＣＡコード核酸分子は、ＰＳＣＡホモログ、あるいはＰＳＣＡタンパク質のスライスされた同位体、対立遺伝子改変体、および変異体形態、ならびにそれらのコード配列および遺伝子配列の単離を可能にする。ＰＳＣＡホモログの最も好ましい供給源は、哺乳動物生物である。
【００６８】
例えば、本明細書中に記載されるＰＳＣＡコード配列の部分が、合成され得、そしてヒト以外の生物、本明細書中に記載されるヒトＰＳＣＡタンパク質の対立遺伝子改変体、およびＰＳＣＡ遺伝子を含むゲノム配列由来のＰＳＣＡファミリーのタンパク質の１つのメンバーをコードするＤＮＡを回収するためのプローブとして使用され得る。およそ１８〜２０ヌクレオチドを含むオリゴマー（約６〜７アミノ酸ストレッチ（ｓｔｒｅｔｃｈ）をコードする）が、ストリンジェントな条件または過度のレベルの擬陽性物を除去するために十分にストリジェンシーな条件下で、ハイブリダイゼーションを獲得するためのゲノムＤＮＡライブラリーまたはｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングするために調製され、そして使用される。特定の実施形態において、ヒトＰＳＣＡをコードするｃＤＮＡが、本明細書中の実施例３に記載されるように、マウスＰＳＣＡホモログをコードする全長ｃＤＮＡを単離するために、使用された。マウスクローンは、ヒトＰＳＣＡに対して７０％のアミノ酸同一性を有するタンパク質をコードする。
【００６９】
さらに、ヒトＰＳＣＡタンパク質のアミノ酸配列は、細胞から調製される発現ライブラリーをスクリーニングするための抗体プローブを生成するために使用され得る。典型的に、哺乳動物（例えば、精製されたタンパク質（以下に記載されるような）を用いて免疫化されたウサギ）由来のポリクローナル抗血清またはモノクローナル抗体が、ＰＳＣＡホモログのための適切なコード配列を獲得するために、標的生物から調製された発現ライブラリーをプローブ化するために使用され得る。クローンニングされたｃＤＮＡ配列が、融合タンパク質として発現され得るか、それ自身の制御配列を使用して直接発現され得るか、またはその酵素の発現のために使用される特定の宿主に対して適切な、制御配列を使用して発現カセットを構築することにより発現され得る。
【００７０】
ＰＳＣＡ遺伝子を含むゲノムクローンが、当業者に周知の分子クローニング方法を使用して、獲得され得る。１つの実施形態において、ＰＳＣＡ遺伝子のエキソン１〜４を含むおよそ１４ｋｂのヒトゲノムクローンが、本明細書中の実施例４でより完全に記載されるように、ヒトＰＳＣＡ  ｃＤＮＡプローブを用いたλファージライブラリーをスクリーニングすることにより獲得された。別の実施形態において、マウスＰＳＣＡ遺伝子を含むおよそ１０ｋｂのゲノムクローンが、マウスＰＳＣＡ  ｃＤＮＡ（実施例４にもまた記載される）を用いたマウスＢＡＣ（バクテリア人工染色体）ライブラリーをスクリーニングすることにより獲得された。
【００７１】
さらに、対のオリゴヌクレオチドプライマーが、ＰＳＣＡコード核酸分子またはそのフラグメントを選択的に増幅／クローンニングするために、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）における使用のために調製され得る。このようなＰＣＲプライマーを使用するためのＰＣＲの変性／アニーリング／伸長サイクルは、当業者に周知であり、そして、他のＰＳＣＡコード核酸分子を単離する際の使用のために容易に適用され得る。プローブとしてまたはプライマーとしての使用のために特に十分に適切なヒトＰＳＣＡ遺伝子の領域は、容易に同定され得る。
【００７２】
ＰＳＣＡの非ヒトホモログ、ＰＳＣＡの天然に存在する対立遺伝子改変体、およびゲノムＰＳＣＡ配列は、本明細書中に記載されるヒトＰＳＣＡ配列と高度な相同性を共有する。一般に、このような核酸分子は、ストリンジェントな条件下でヒトＰＳＣＡ配列にハイブリダイズする。このような配列は、代表的に、ヒトＰＳＣＡ配列に対して少なくとも７０％の相同性、好ましくは少なくとも８０％の相同性、最も好ましくは少なくとも９０％の相同性を含む。
【００７３】
ストリンジェントな条件は、（１）洗浄のために低イオン強度および高温を用いる（例えば、５０℃で０．０１５Ｍ  ＮａＣｌ／０．００１５Ｍ硝酸ナトリウム／０．１％ＳＤＳ）、または（２）ハイブリダイゼーションの間、ホルムアミドのような変性剤（例えば、４２℃で、０．１％ウシ血清アルブミン／０．１％Ｆｉｃｏｌｌ／０．１％ポリビニルピロリドン／７５０ｍＭ  ＮａＣｌ、７５ｍＭクエン酸ナトリウムを含有するｐＨ６．５の５０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液を含有する、５０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）ホルムアミド）を用いる条件である。
【００７４】
別の例は、４２℃で、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（０．７５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０７５Ｍクエン酸ナトリウム）、５０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ６．８）、０．１％ピロリン酸ナトリウム、５×デンハルト溶液、超音波処理されたサケ精子ＤＮＡ（５０μｇ／ｍｌ）、０．１％ＳＤＳ、および１０％硫酸デキストラン（４２℃で、０．２×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳ中において洗浄）の使用である。当業者は、明瞭かつ検出可能なハイブリダイゼーションシグナルを獲得するために適切な、ストリンジェンシー条件を容易に決定し得、そして変更し得る。
【００７５】
（ＰＳＣＡコード核酸を含む組換えＤＮＡ分子）
本明細書中に記載されるようなＰＳＣＡコード配列またはそのフラグメントを含む組換えＤＮＡ分子（ｒＤＮＡ）もまた提供される。本明細書中において使用されるように、ｒＤＮＡ分子は、インビトロの分子操作に供されたＤＮＡ分子である。ｒＤＮＡ分子を生成するための方法は、当該分野において周知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８９）を参照のこと。本発明の好ましいｒＤＮＡ分子において、ＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡのフラグメントをコードするＰＳＣＡコードＤＮＡ配列は、１つ以上の発現制御配列および／またはベクター配列と作動可能に連結される。ｒＤＮＡ分子は、ＰＳＣＡタンパク質全体をコードし得るかまたはＰＳＣＡタンパク質のフラグメントをコードし得るかのいずれかである。
【００７６】
ＰＳＣＡコード配列が作動可能に連結されるベクター配列および／または発現制御配列の選択は、当該分野において周知のように、所望される機能的特性（例えば、タンパク質発現、および形質転換されるべき宿主細胞）に直接的に依存する。本発明により意図されるベクターは、少なくとも複製または宿主染色体への挿入を指向することが可能であり、そして好ましくはｒＤＮＡ分子に含まれるＰＳＣＡコード配列の発現もまた可能である。
【００７７】
作動可能に連結されるタンパク質コード配列の発現を調節するために使用される発現制御エレメントは、当該分野において公知であり、そして誘導プロモーター、構成性プロモーター、分泌シグナル、エンハンサー、転写ターミネーターおよび他の調節エレメントが挙げられるがこれらに限定されない。好ましくは、容易に制御される誘導プロモーター（例えば、宿主細胞培地における栄養素に応答性である）が、使用される。
【００７８】
１つの実施形態において、ＰＳＣＡコード核酸分子を含むベクターは、それを用いて形質転換される原核生物レプリコン（すなわち、原核生物宿主細胞（例えば、細菌宿主細胞）において、染色体内に自律的複製および組換えＤＮＡ分子の維持を指向する能力を有するＤＮＡ配列）を含む。このようなレプリコンは、当該分野において周知である、さらに、原核生物レプリコンを含むベクターはまた、発現が薬物耐性のような検出マーカーを付与する遺伝子を含み得る。代表的な細菌性薬物耐性遺伝子は、アンピシリンまたはテトラサイクリンに対する耐性を付与する遺伝子である。
【００７９】
原核生物レプリコンを含むベクターは、細菌宿主細胞（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ）におけるＰＳＣＡコード配列の発現（転写および翻訳）を指向し得る原核生物プロモーターまたはウイルスプロモーターをさらに含み得る。プロモーターは、起こるべきＲＮＡポリメラーゼの結合および転写を可能にするＤＮＡ配列により形成される発現制御エレメントである。細菌宿主と適合性のプロモーター配列は、代表的に、本発明のＤＮＡセグメントの挿入のための都合の良い制限部位を含むプラスミドベクターにおいて提供される。当業者に周知である種々のウイルスベクター（例えば、多くの周知のレトロウイルスベクター）もまた使用され得る。
【００８０】
真核生物細胞に適合性の発現ベクター、好ましくは脊椎動物細胞に適合性のある発現ベクターはまた、ＰＳＣＡコード配列を含むｒＤＮＡ分子を改変するために用いられ得る。真核生物細胞発現ベクターは、当該分野で周知であり、そしていくつかの商業的な供給源から入手可能である。代表的に、そのようなベクターは、所望のＤＮＡセグメントの挿入に関して都合のよい制限部位を含んで、供給される。このようなベクターの代表は、ＰＳＶＬおよびｐＫＳＶ−１０（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）、ｐＢＰＶ−１／ｐＭＬ２ｄ（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．）、ｐＴＤＴＩ（ＡＴＣＣ，＃３１２５５）、本明細書中に記載されるベクターｐＣＤＭ８、および真核発現ベクターのようなベクターである。
【００８１】
本発明のｒＤＮＡ分子を構築するために使用される真核細胞発現ベクターは、真核細胞において効果的である選択マーカー、好ましくは薬物耐性選択マーカーをさらに含み得る。好ましい薬物耐性マーカーは、遺伝子であり、その発現は、ネオマイシン耐性（すなわち、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼ（ｎｅｏ）遺伝子）を生じる（Ｓｏｕｔｈｅｒｎら、Ｊ  Ｍｏｌ  Ａｎａｌ  Ｇｅｎｅｔ（１９８２）１：３２７−３４１）。あるいは、選択マーカーは、別のプラスミド上に存在し得、その２つのベクターは、宿主細胞の同時トランスフェクションにより導入され、そして選択マーカーに対して適切な薬物の存在下で培養することにより選択される。
【００８２】
本発明の実施に従い、ベクターは、上記で議論されたｃＤＮＡ分子をコードしているプラスミド、コスミドまたはファージベクターであり得る。さらに、本発明は、適切な真核宿主細胞中にトランスフェクトされるプラスミド、コスミド、またはファージベクターを含む宿主ベクター系を供給する。適切な真核宿主細胞の例は、酵母細胞、植物細胞、または哺乳動物細胞のような動物細胞を含む。適切な細胞の例は、ＬｎＣａＰ、ＬＡＰＣ−４、および他の前立腺癌細胞株を含む。この宿主ベクター系は、ＰＳＣＡタンパク質の産生のために有用である。あるいは、宿主細胞は、細菌細胞のような真核細胞であり得る。
【００８３】
（形質転換された宿主細胞）
本発明は、ＰＳＣＡタンパク質またはそのフラグメントをコードしている核酸分子で形質転換された宿主細胞をさらに供給する。この宿主細胞は、原核生物細胞または真核生物細胞のいずれかであり得る。ＰＳＣＡタンパク質の発現に有用である真核細胞は、細胞株が、細胞培養方法に対して適合性があり、そして発現ベクターの増殖およびＰＳＣＡ遺伝子の発現に適合性のある限り、限定されない。好ましい真核細胞宿主細胞は、酵母、昆虫細胞および哺乳動物細胞、好ましくはマウス、ラット、サルまたはヒト繊維芽細胞株に由来するような脊椎動物細胞を含むが、これらに限定されない。ＬｎＣａＰ、ＬＡＰＣ−４細胞株のような前立腺癌細胞株もまた、使用され得る。任意の原核宿主が、使用され、ＰＳＣＡをコードしているｒＤＮＡ分子を発現し得る。好ましい原核宿主は、Ｅ．ｃｏｌｉである。
【００８４】
本発明のｒＤＮＡ分子を用いる、適切な細胞宿主の形質転換は、使用したベクターの型および利用された宿主系に代表的に依存した周知の方法により達成される。原核宿主細胞の形質転換に関しては、エレクトロポレーションおよび塩処理方法が、代表的に使用される（例えば、Ｃｏｈｅｎら、Ｐｒｏｃ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ（１９７２）６９：２１１０；およびＭａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｅ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ（１９８２）を参照のこと）。ｒＤＮＡを含むベクターを用いる脊椎動物細胞の形質転換に関しては、エレクトロポレーション、陽イオン性脂質または塩処理方法が代表的に利用される（例えば、Ｇｒａｈａｍら、Ｖｉｒｏｌ（１９７３）５２：４５６；Ｗｉｇｌｅｒら、Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｕｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ（１９７９）７６：１３７３−７６を参照のこと）。
【００８５】
首尾よく形質転換された細胞、すなわち本発明のｒＤＮＡ分子を含む細胞は、周知の技術により同定され得る。例えば、本発明のｒＤＮＡの導入から生じる細胞は、クローニングされ、単一のコロニーを産生し得る。それらのコロニー由来の細胞は、回収され得、溶解され得、そしてそれらのＤＮＡ成分は、Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｊ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ（１９７５）９８：５０３、もしくはＢｅｒｅｎｔら、Ｂｉｏｔｅｃｈ（１９８５）３：２０８により記載されるような方法、または免疫学的方法を介してアッセイされる細胞から産生されるタンパク質を使用して、ｒＤＮＡの存在について実験され得る。
【００８６】
（ＰＳＣＡタンパク質を産生する組換え方法）
本発明は、本明細書中に記載されるＰＳＣＡをコードしている核酸分子の１つを使用してＰＳＣＡタンパク質を産生するための方法をさらに提供する。大まかに言えば、組換え型ＰＳＣＡタンパク質の生成は、代表的に以下の工程を含み得る（Ｍａｎｉａｔｉｓ、前出）。
【００８７】
第一に、図１Ａに示される核酸分子のような、ＰＳＣＡタンパク質またはそれらのフラグメントをコードする核酸分子が、得られる。次いで、ＰＳＣＡをコードしている核酸分子は、上記のように、適切な制御配列と共に作動可能に連結して好ましくは、配置され、ＰＳＣＡコード配列を含む発現ユニットを産生する。この発現ユニットは、適切な宿主を形質転換するために用いられ、そして形質転換された宿主は、ＰＳＣＡタンパク質の産生を可能にする条件下で培養される。必要に応じて、そのＰＳＣＡタンパク質は、培地から、または細胞から単離され；いくつかの不純物が許容され得るいくつかの場合は、このタンパク質の回収および精製は不必要であり得る。
【００８８】
前述の工程の各々は、種々の方法で行われ得る。例えば、所望のコード配列は、ゲノムフラグメントから得られ得、そして適切な宿主において直接的に使用され得る。種々の宿主において作動可能である発現ベクターの構築は、レプリコンおよび制御配列の適切な組み合わせを使用して達成される。この制御配列、発現ベクター、および形質転換方法は、遺伝子を発現するために用いられる宿主細胞の型に依存しており、そして以前に詳細に議論された。適切な制限部位は、通常的には入手不可能な場合、切除可能な遺伝子を供給してこれらのベクター中へ挿入するために、コード配列の末端に付加され得る。当業者は、ＰＳＣＡタンパク質を産生するＰＳＣＡコード配列を用いる用途のために、当該分野で公知の任意の宿主／発現系を容易に適合させ得る。
【００８９】
（ＰＳＣＡリガンドおよび他の結合剤を同定するためのアッセイ）
本発明の別の局面は、ＰＳＣＡに結合するＰＳＣＡリガンドおよび他の因子ならびに細胞成分を、検出および同定するために使用され得るアッセイおよび方法に関する。具体的に、ＰＳＣＡに結合するＰＳＣＡリガンドもしくは他の因子または細胞成分は、ＰＳＣＡに結合するＰＳＣＡリガンドおよび他の因子ならびに細胞成分の能力、ならびに／またはＰＳＣＡ活性を阻害／刺激する能力により同定され得る。ＰＳＣＡタンパク質を使用するＰＳＣＡ活性（例えば、結合）のためのアッセイは、高処理能スクリーニング方法における使用に関して適切である。
【００９０】
１つの実施形態では、このアッセイは、ＰＳＣＡを試験剤または細胞の抽出物と混合する工程を包含する。この因子または抽出物の成分とＰＳＣＡの結合を可能にする条件下での混合後、その混合物は、分析され、因子／成分がＰＳＣＡに結合するか否かを検出する。因子／成分の結合は、ＰＳＣＡに対して結合する能力として同定される。あるいはまたは継続して、ＰＳＣＡ活性は、ＰＳＣＡ活性のアゴニストおよびアンタゴニストを同定するための手段として、直接的に評価され得る。
【００９１】
あるいは、ＰＳＣＡタンパク質に結合する標的は、酵母ツーハイブリッド系（Ｆｉｅｌｄｓ，Ｓ．およびＳｏｎｇ，Ｏ．（１９８９）、Ｎａｔｕｒｅ  ３４０：２４５−２４６）を使用して、または結合−捕獲アッセイ（Ｈａｒｌｏｗ、前出）を使用して、同定され得る。酵母ツーハイブリッド系において、２つのサブユニット転写因子の１つのサブユニットおよびＰＳＣＡタンパク質から作製される融合タンパク質をコードしている発現ユニットは、酵母細胞に導入され、そして発現される。この細胞は、（１）その発現が、発現に関する２つのサブユニット転写因子を必要とする、検出可能なマーカーをコードしている発現ユニット、ならびに（２）転写因子の第二のサブユニットおよびＤＮＡのクローン化セグメントから作製される融合タンパク質をコードしている発現ユニット、を含むようにさらに改変される。ＤＮＡのクローン化されたセグメントが、ＰＳＣＡタンパク質に結合するタンパク質をコードする場合、その発現は、ＰＳＣＡおよびそのコードされるタンパク質との相互作用を生じる。このことは、転写因子の２つのサブユニットを結合の近位へ誘導し、転写因子の再構築を可能にする。このことは、検出可能なマーカーの発現を生じる。酵母ツーハイブリッド系は、ＰＳＣＡの、細胞の結合パートナーに関するセグメントをコードしているｃＤＮＡのライブラリーのスクリーニングにおいて、特に有用である。
【００９２】
上記アッセイにおいて使用され得るＰＳＣＡタンパク質は、単離されたＰＳＣＡタンパク質、ＰＳＣＡタンパク質のフラグメント、ＰＳＣＡタンパク質を発現するために改変された細胞、またはＰＳＣＡタンパク質を発現するために改変された細胞の画分を含むが、それらに限定されない。さらにＰＳＣＡタンパク質は、ＰＳＣＡタンパク質の全体またはＰＳＣＡタンパク質の限定されたフラグメントであり得る。ＰＳＣＡタンパク質が、結合している因子について、例えば、分子量または活性におけるシフトによりアッセイされ得る限り、本アッセイは使用され得ることが当業者には明白である。
【００９３】
薬剤／細胞の成分がＰＳＣＡタンパク質に結合するか否かを同定するために使用されるこの方法は、使用されるＰＳＣＡタンパク質の性質に主に基づく。例えば、ゲル遅延アッセイは、因子がＰＳＣＡまたはそのフラグメントに結合するか否かを決定するために使用され得る。あるいは、免疫検出およびバイオチップ技術は、ＰＳＣＡタンパク質を用いる用途に適合され得る。当業者は、特定の因子がＰＳＣＡタンパク質に結合するか否かを決定するための多くの当該分野で公知の技術を容易に利用し得る。
【００９４】
因子および細胞の成分は、無細胞アッセイ系または細胞アッセイ系を使用して、ＰＳＣＡタンパク質の活性を調節する能力についてさらに試験され得る。ＰＳＣＡタンパク質の活性がより限定的になる場合、同定される活性に基づく機能的アッセイが利用され得る。
【００９５】
本明細書において使用されるように、薬剤がＰＳＣＡ活性を減少する場合、その薬剤は、ＰＳＣＡ活性をアンタゴナイズするといわれる。好ましいアンタゴニストは、他の細胞性タンパク質のいずれにも影響せずに、選択的にＰＳＣＡをアンタゴナイズする。さらに、好ましいアンタゴニストは、ＰＳＣＡ活性を５０％を超えるまで、より好ましくは、９０％を超えるまで、最も好ましくは全てのＰＳＣＡ活性を除去するまで減少させる。
【００９６】
本明細書において使用されるように、薬剤がＰＳＣＡ活性を増加する場合、その薬剤は、ＰＳＣＡ活性をアゴナイズするといわれる。好ましいアゴニストは、他の細胞性タンパク質のいずれにも影響せずに、選択的にＰＳＣＡをアゴナイズする。さらに、好ましいアンタゴニストは、ＰＳＣＡ活性を５０％を超えるまで、より好ましくは、９０％を超えるまで、最も好ましくは二倍のＰＳＣＡ活性を超えるまで増加させる。
【００９７】
上記の方法においてアッセイされる薬剤は、無作為に選択され得るか、あるいは合理的に選択または設計され得る。本明細書中で使用されるように、因子がＰＳＣＡタンパク質の特異的配列を考慮すること無しに無作為に選択される場合、この因子は、無作為に選択されると言われる。無作為に選択された因子の例は、化学的ライブラリーまたはペプチドコンビナトリアルライブラリーの使用、あるいは生物抽出物または植物抽出物の増殖培養物である。
【００９８】
本明細書において使用されるように、因子が標的部位の配列および／あるいはその因子の作用と関連するそのコンフォメーションを考慮する非無作為な基準に基づいて選択される場合、この因子は、合理的に選択または設計されると言われる。因子は、ＰＳＣＡタンパク質を構成するペプチド配列を利用することにより、合理的に選択、または合理的に設計され得る。例えば、合理的に選択されるペプチド剤は、アミノ酸配列がＰＳＣＡタンパク質のフラグメントに対して同一であるペプチドであり得る。
【００９９】
実施例のように、本発明の方法において試験される因子は、ペプチド、小分子、およびビタミン誘導体、ならびに糖質であり得る。当業者は、本スクリーニング方法において使用される因子の構造的性質に関しては制限が存在しないことを容易に認識し得る。
【０１００】
本発明の因子の１つのクラスは、そのアミノ酸配列がＰＳＣＡタンパク質のアミノ酸配列に基づいて選択されるペプチド剤である。小ペプチド剤は、ＰＳＣＡタンパク質アセンブリの競合的インヒビターとして働き得る。
【０１０１】
ペプチド剤は、当該分野で公知のような標準の固相（または液相）ペプチド合成方法を使用して調製され得る。さらに、それらのペプチドをコードしているＤＮＡは、市販のオリゴヌクレオチド合成機器を使用して合成され得、そして標準の組換え産生系を使用して組換え的に産生され得る。非遺伝子コードアミノ酸が含まれている場合、この固相ペプチド合成を使用した産物が、必要とされる。
【０１０２】
本発明の薬剤の別のクラスは、ＰＳＣＡタンパク質の重要な位置に対して免疫反応性の抗体である。上記のように、抗体は、抗原性領域として、抗体により標的化されるように意図されるＰＳＣＡのそれらの部分を含むペプチドを用いた適した哺乳動物被検体の免疫化により得られる。重要な領域は、図１５において同定されるドメインを含み得る。このような薬剤は、競合的結合研究において使用され得、第二世代の抑制性薬剤を同定する。
【０１０３】
本発明の方法において試験される細胞の抽出物は、例えば細胞または組織水性抽出物、細胞または組織の有機抽出物、あるいは部分的に精製された細胞画分であり得る。当業者は、本発明のスクリーニング方法において使用される細胞抽出物の供給源には制限がないことを容易に認識し得る。
【０１０４】
ＰＳＣＡ抗体のようなＰＳＣＡタンパク質に結合する因子は、ＰＳＣＡの活性を調節するため、抗癌剤を適切な哺乳動物細胞に標的化するため、またはＰＳＣＡとの相互作用をブロックする因子を同定するために使用され得る。ＰＳＣＡを発現する細胞は、ＰＳＣＡに結合する因子を使用することにより標的化あるいは同定され得る。
【０１０５】
どのようにＰＳＣＡ結合剤が使用されるかは、ＰＳＣＡ結合剤の性質に依存する。例えば、ＰＳＣＡ結合剤は、ＰＳＣＡ発現細胞にジフテリア毒素、コレラ毒素、リシンまたはシュードモナス外毒素のような複合毒物を送達するため；ＰＳＣＡ活性を調節するため；ＰＳＣＡ発現細胞を直接的に殺傷するため；または競合的結合剤を同定するためのスクリーニングにおいてに使用され得る。例えば、ＰＳＣＡ阻害薬剤は、ＰＳＣＡ発現細胞の増殖を直接的に阻害するために使用され得、一方、ＰＳＣＡ結合剤は診断的薬剤として使用され得る。
【０１０６】
複数の本発明の診断的用途が存在する。例えば、本発明は、被検体（例えば、動物被検体またはヒト被検者）において、ＰＳＣＡタンパク質の存在と関連する癌を診断するための方法を提供する。１つの実施形態において、この方法は、本発明の抗体の任意の１つまたは組み合せを使用して、サンプル（例えば、細胞または生物学的液体サンプル）中のＰＳＣＡタンパク質の数を定量的に決定する工程を包含する。次いで、そうして決定されるその数は、正常な被検体由来のサンプル中の量と比較され得る。このサンプル中のはっきりと異なる量の存在（すなわち、その試験サンプル中のＰＳＣＡの数が正常なサンプル由来の数を超える）は、癌の存在を示す。試験サンプル中のＰＳＣＡの数が正常なサンプル由来の数を超える場合、ＰＳＣＡは、細胞で過剰発現される。
【０１０７】
別の実施形態では、診断は、本発明の核酸を使用して、被検体由来のサンプルにおいてＰＳＣＡタンパク質をコードしているＲＮＡの量を定量的に決定することを含む。そうして決定された量は、正常な被検体由来のサンプル中のＲＮＡの量と比較され得る。ここでも、はっきりと異なる量の存在は、癌の存在を示す。
【０１０８】
さらに、本発明は、種々の時点で被検体由来のサンプルにおけるＰＳＣＡの量を測定することにより、被検体中のＰＳＣＡと関連する癌（例えば、前立腺癌）または障害の経過をモニタリングするための方法を提供する。このことは、サンプルにおけるＰＳＣＡの量の変化を決定する（例えば、その変化が量的に小さな変化であるかまたは大きな変化（すなわち、ＰＳＣＡの過剰発現）であるかを決定する）目的で行われる。１つの実施形態では、この方法は、被検体由来の第一のサンプルにおいて、ＰＳＣＡタンパク質の存在を定量的に決定する工程、およびそのように決定された量をその被検体由来の第二のサンプル中に存在する量と比較する工程を包含し、ここでそのようなサンプルは、異なる時点で取り出されており、その量における決定された差は癌の経過を示している。
【０１０９】
別の実施形態では、モニタリングは、被検体由来の第一のサンプルにおいてＰＳＣＡのＲＮＡの存在を定量的に決定すること、およびそのように決定された量をその被検由来の第二のサンプル中に存在する量と比較することにより達成され、ここでそのようなサンプルは、異なる時点で取り出されており、その量における決定された差は癌（例えば、前立腺癌）の経過を示唆している。
【０１１０】
さらなる実施形態として、ＰＳＣＡと関連する疾患または障害は、ＰＳＣＡ遺伝子コピー数における増加または増加したＰＳＣＡ遺伝子コピー数を検出することにより、サンプルにおいてモニタリングされ得る。ＰＳＣＡ遺伝子コピー数における増加または増加したＰＳＣＡ遺伝子コピー数は、重要である。なぜならば、乏しい結果と関連し得るからである。
【０１１１】
このサンプルは、動物またはヒト由来であり得る。さらに、このサンプルは、細胞のサンプルであり得る。例えば、本発明の方法を使用して、前立腺組織、膀胱組織、神経内分泌組織および骨（前立腺癌および膀胱癌が転移し得る任意の組織、例えば、結節、肺、肝臓、膵臓）は、癌または転移病巣の存在について評価され得る。あるいは、そのサンプルは、生物学的液体（例えば、尿、血清または血漿）であり得る。
【０１１２】
本発明の実施に従って、検出は、組織学、ブロッティング、ＥＬＩＳＡおよびＥＬＩＦＡを含む免疫学的検出手段により達成され得る。サンプルが組織または細胞サンプルである場合、そのサンプルは、ホルマリン漬け、パラフィン包埋または凍結され得る。
【０１１３】
本発明は、正常組織由来の組織切片におけるＰＳＣＡの量および分布と比較して、試験されるべき新生物形成組織由来の組織切片中のＰＳＣＡの量および分布における差異を決定する方法を、さらに提供する。１つの実施形態において、この方法は、試験されるべき組織と正常組織の両方を、ＰＳＣＡとの複合体を特異的に形成するモノクローナル抗体と接触させ、それによって、ＰＳＣＡの量および分布における差異を検出する工程を包含する。
【０１１４】
さらに、本発明は、被験体における新生物形成状態または前新生物状態を診断する方法を提供する。この方法は、組織のサンプルを被験体から得る工程、上記の方法の使用における、ＰＳＣＡの量および分布の差異（このような新生物形成状態または前新生物状態を示している明瞭な測定可能な差異）を検出する工程を包含する。
【０１１５】
本発明の実施に従って、抗体は、本発明のモノクローナル抗体のいずれかが指向するエピトープに対して指向され得る。さらに、組織切片は、膀胱、前立腺、骨または筋肉由来であり得る。
【０１１６】
本発明はまた、生物学的な流体サンプル中の、ＰＳＣＡの濃度を検出し、そして定量的に決定する方法を提供する。１つの実施形態において、この方法は、モノクローナル抗体が固体支持体の表面に付着することを可能にする条件下で、ＰＳＣＡと複合体を形成する（好ましくは、特異的に形成する）過剰の１つ以上のモノクローナル抗体と、固体支持体を接触させる工程を包含する。次いで、モノクローナル抗体が付着する得られた固体支持体が、生物学的な流体サンプルと接触され、その結果、生物学的な流体中のＰＳＣＡが抗体と結合し、そしてＰＳＣＡ−抗体複合体を形成する。この複合体は、検出可能なマーカーで、直接的または間接的に標識され得る。あるいは、ＰＳＣＡまたは抗体のいずれかが、複合体の形成前に標識され得る。次いで、この複合体が検出および定量的に決定され、それによって、生物学的な流体サンプル中のＰＳＣＡの濃度を検出および定量的に決定し得る。正常細胞と比較して、サンプル中の高濃度のＰＳＣＡは、新生物形成状態または前新生物状態を示す。
【０１１７】
本発明の実施に従って、生物学的な流体は、組織抽出物、尿、血液、血清および痰を含むが、これらに限定されない。さらに、検出可能なマーカーは、酵素、ビオチン、蛍光団、発色団、重金属、常磁性同位体または放射性同位体を含むが、これらに限定されない。
【０１１８】
さらに、本発明は、ＰＳＣＡを認識および結合する抗体（抗ＰＳＣＡ抗体）；ならびに検出可能な標識の結合体、ならびに抗ＰＳＣＡ抗体の特異的結合パートナーを含む診断キットを提供する。本発明の実施に従って、標識は、酵素、放射性標識、発色団および蛍光剤を含むが、これらに限定されない。
【０１１９】
（前立腺癌免疫療法）
ＰＳＣＡタンパク質は、近傍の正常な腺と比較した場合に、多くの前立腺腫瘍において過剰発現されるので、ＰＳＣＡタンパク質は、前立腺癌免疫療法の標的である。これらの免疫治療的方法としては、抗体治療、インビボワクチンおよびエキソビボ免疫治療アプローチの使用が挙げられる。
【０１２０】
１つのアプローチにおいて、本発明は、前立腺癌を処置するために全身的に用いられ得るＰＳＣＡ抗体を提供する。例えば、非結合体化ＰＳＣＡ抗体（モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体およびそのフラグメント（例えば、組換えタンパク質）を含む）が、患者に導入され得、その結果、相補体媒介性細胞溶解、抗体依存性細胞性細胞傷害性を含み得るメカニズム（ＰＳＣＡの生理学的機能および／またはリガンド結合もしくはシグナル伝達経路の阻害を変化させること）によって、抗体が、前立腺癌細胞上のＰＳＣＡに結合し、そしてこのような細胞および腫瘍の増殖阻害（この破壊を含む）を媒介する。本発明の非結合体化ＰＳＣＡ抗体、そのフラグメントおよび組換えタンパク質に加えて、リシンのような毒物と結合体化されたＰＳＣＡ抗体がまた、治療的に用いられ、毒物を、ＰＳＣＡを保有する前立腺腫瘍細胞へ直接的に送達し得、それによって、腫瘍を破壊する。
【０１２１】
ＰＳＣＡ抗体を用いた前立腺癌免疫療法は、結腸癌（Ａｒｌｅｎら、１９９８、Ｃｒｉｔ  Ｒｅｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  １８：１３３−１３８）、多発性骨髄腫（Ｏｚａｋｉら、１９９７、Ｂｌｏｏｄ  ９０：３１７９−３１８６；Ｔｓｕｎｅｎａｒｉら、１９９７、Ｂｌｏｏｄ  ９０：２４３７−２４４４）、胃癌（Ｋａｓｐｒｙｚｙｋら、１９９２、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ５２：２７７１−２７７６）、Ｂ細胞リンパ腫（Ｆｕｎａｋｏｓｈｉら、１９９６、Ｊ  Ｉｍｍｕｎｔｈｅｒ  Ｅｍｐｈａｓｉｓ  Ｔｕｍｏｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  １９：９３−１０１）、白血病（Ｚｈｏｎｇら、１９９６、Ｌｅｕｋ  Ｒｅｓ  ２０：５８１−５８９）、結腸直腸癌（Ｍｏｕｎら、１９９４、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ５４：６１６０−６１６６；Ｖｅｌｄｅｒｓら、１９９５、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ５５：４３９８−４４０３）および乳癌（Ｓｈｅｐａｒｄら、１９９１、Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  １１：１１７−１２７）を含むが、これらに限定されない他の型の癌に関して、首尾よく利用されている種々のアプローチから生じた技術に従い得る。
【０１２２】
例えば、臨床的に抗腫瘍モノクローナル抗体を適用するための１つの方法は、抗腫瘍活性（例えば、ＡＤＣＣ活性およびＣＤＣ活性）および／またはインビトロおよび／または動物モデルにおいて、内部移行化する能力を提示する、本発明のモノクローナル抗体を用いて、改変されない形態でその抗体を投与することである（例えば、Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８２：１４９９−１５０２（１９８５）を参照のこと）。ＡＤＣＣ活性およびＣＤＣ活性を検出するために、モノクローナル抗体が、４時間のインキュベーション時間にわたり、培養された51Ｃｒ標識化腫瘍標的細胞の溶解について試験され得る。標的細胞は、51Ｃｒで標識され、次いで、エフェクター細胞（リンパ球分離培地の使用によって精製されたヒトリンパ球の形態で）と抗体との組み合わせに４時間曝露され得、これは例えば、０．１μｇ／ｍｌと１０μｇ／ｍｌの間で変化する濃度で添加される。標的細胞からの51Ｃｒの放出が、腫瘍細胞溶解（細胞傷害）の証拠として測定される。コントロールは、標的細胞単独の、または別々にリンパ球もしくはモノクローナル抗体のいずれかとの標的細胞のインキュベーションを含む。放出され得る51Ｃｒの総量が測定され、そして単独でインキュベートされる標的細胞と比較して、ＡＤＣＣが、モノクローナル抗体およびエフェクター細胞を用いて観察される標的細胞のパーセント殺傷として算出される。ＣＤＣについての手順は、相補体の供給源としてのヒト血清（１：３から１：６に希釈された）が、エフェクター細胞の代わりに添加されることを除いて、ＡＤＣＣを検出するために用いたものと同一である。
【０１２３】
本発明は、ＰＳＣＡタンパク質またはそのフラグメントを含むように処方されたワクチンを、さらに提供する。抗癌治療における使用についての、体液性免疫および細胞媒介性免疫を産生するためのワクチンにおける腫瘍抗原の使用は、当該分野で周知であり、そしてヒトＰＳＭＡ免疫抗原および齧歯類ＰＡＰ免疫抗原を用いた前立腺癌において、利用されている（Ｈｏｄｇｅら、１９９５、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ６３：２３１−２３７；Ｆｏｎｇら、１９９７、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５９：３１１３−３１１７）。このような方法は、ＰＳＣＡタンパク質もしくはそのフラグメント、または、ＰＳＣＡ免疫原を発現および適切に提示し得るＰＳＣＡをコードする核酸分子および組換えベクターの利用によって容易に実施され得る。
【０１２４】
例えば、ウイルス遺伝子の送達系が、ＰＳＣＡをコードする核酸分子の送達に使用され得る。本発明のこの局面の実施において用いられ得る種々のウイルス遺伝子の送達システムとしては、ワクシニア、鶏痘、カナリア痘、アデノウイルス、インフルエンザ、ポリオウイルス、アデノ関連ウイルス、レンチウイルスおよびシンドビスウイルス（ｓｉｎｄｂｕｓ  ｖｉｒｕｓ）が挙げられるが、これらに限定されない（Ｒｅｓｔｉｆｏ、１９９６、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．８：６５８−６６３）。非ウイルス性送達システムがまた、患者に導入された（例えば、筋肉内に）ＰＳＣＡタンパク質またはそのフラグメントをコードする裸のＤＮＡの使用によって利用され、抗腫瘍応答を誘導し得る。１つの実施形態において、全長のヒトＰＳＣＡｃＤＮＡが利用され得る。別の実施形態において、特定の細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）エピトープをコードするＰＳＣＡ核酸分子が、利用され得る。ＣＴＬエピトープが、特定のアルゴリズム（例えば、Ｅｐｉｍｅｒ，Ｂｒｏｗｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）を用いて決定され、特定化されたＨＬＡ対立遺伝子に最適に結合し得るＰＳＣＡタンパク質内のペプチドを同定し得る。
【０１２５】
種々のエキソビボ戦略がまた、利用され得る。１つのアプローチは、樹状細胞の使用を含み、患者の免疫系に対してＰＳＣＡ抗原を提示する。樹状細胞は、ＭＨＣクラスＩおよびＭＨＣクラスＩＩ、Ｂ７同時刺激因子（ｃｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒ）ならびにＩＬ−１２を発現し、従って、高度に特定化された抗原提示細胞である。前立腺癌においては、前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ）のペプチドを用いてパルスされた自己樹状細胞が、第Ｉ相臨床試験において用いられ、前立腺癌患者の免疫系を刺激する（Ｔｊｏａら、１９９６、Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ２８：６５−６９；Ｍｕｒｐｈｙら、１９９６、Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ２９：３７１−３８０）。樹状細胞は、ＰＳＣＡペプチドをＭＨＣクラスＩ分子およびＭＨＣクラスＩＩ分子の状況におけるＴ細胞に提示するために用いられ得る。１つの実施形態において、自己樹状細胞は、ＭＨＣ分子と結合し得るＰＳＣＡペプチドを用いてパルスされる。別の実施形態において、樹状細胞は、完全なＰＳＣＡタンパク質を用いてパルスされる。さらに別の実施形態は、アデノウイルス（Ａｒｔｈｕｒら、１９９７、Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．４：１７−２５）、レトロウイルス（Ｈｅｎｄｅｒｓｏｎら、１９９６、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ５６：３７６３−３７７０）、レンチウイルス、アデノ関連ウイルス、ＤＮＡトランスフェクション（Ｒｉｂａｓら、１９９７、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．５７：２８６５−２８６９）および腫瘍誘導性ＲＮＡトランスフェクション（Ａｓｈｌｅｙら、１９９７、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８６：１１７７−１１８２）のような、当該分野において公知の種々の実行（ｉｍｐｌｅｍｅｎｔｉｎｇ）ベクターを用いた樹状細胞におけるＰＳＣＡ遺伝子の過剰発現を操作する工程を包含する。
【０１２６】
抗イディオタイプ抗ＰＳＣＡ抗体はまた、ＰＳＣＡタンパク質を発現する細胞に対する免疫応答を誘導するためのワクチンとして、抗癌治療において用いられ得る。特に、抗イディオタイプ抗体の産生は、当該分野で周知であり、そして、ＰＳＣＡタンパク質上のエピトープを模倣する抗イディオタイプ抗ＰＳＣＡ抗体を産生するために、容易に適応され得る（例えば、Ｗａｇｎｅｒら、１９９７、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  １６：３３−４０；Ｆｏｏｎら、１９９５、Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ  ９６：３３４−３４２；Ｈｅｒｌｙｎら、１９９６、Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ  ４３：６５−７６を参照のこと）。このような抗イディオタイプ抗体は、腫瘍抗原に対して指向される他の抗イディオタイプ抗体を用いて現在実施される場合に、抗イディオタイプ治療において用いられ得る。
【０１２７】
遺伝的免疫化方法は、ＰＳＣＡを発現する癌細胞に対して指向される、予防的または治療的体液性免疫応答および細胞性免疫応答を産生するために、利用され得る。本明細書中で記載されるＰＳＣＡをコードするＤＮＡ分子を用いて、ＰＳＣＡタンパク質／免疫原および適切な調節配列をコードするＤＮＡを含む構築物が、個体の筋肉または皮膚に直接的に注入され得、その結果、筋肉または皮膚の細胞が、構築物を利用して、そしてコードされたＰＳＣＡタンパク質／免疫抗原を発現する。ＰＳＣＡタンパク質／免疫抗原は、細胞表面タンパク質として発現され得るかまたは分泌され得る。ＰＳＣＡタンパク質／免疫抗原の発現は、前立腺癌に対して、予防的または治療的な体液性免疫および細胞性免疫の産生を生じる。当該分野で公知の、種々の予防的および治療的な遺伝的免疫化技術が用いられ得る（概説については、インターネットアドレスｗｗｗ．ｇｅｎｗｅｂ．ｃｏｍで公表される情報および参考文献を参照のこと）。
【０１２８】
本発明は、その細胞表面上の複数のＰＳＣＡ抗原を発現する細胞の細胞活性（例えば、細胞増殖、細胞活性化または細胞繁殖）を阻害するための方法をさらに提供する。この方法は、本発明の免疫結合体（例えば、異種混合物または同種混合物）を細胞と反応させ、その結果、細胞表面上のＰＳＣＡ抗原が、免疫結合体との複合体を形成する工程を包含する。細胞表面上のＰＳＣＡ抗原の数が増加する程、用いられ得るＰＳＣＡ抗体複合体の数も増加する。ＰＳＣＡ抗体複合体の数が増加する程、阻害される細胞活性も増加する。細胞活性の阻害が細胞死を生じる場合、新生物形成状態または前新生物形成状態を有する被験体が、この方法に従って、処置され得る。
【０１２９】
異種混合物は、異なるエピトープまたは同一のエピトープを認識するＰＳＣＡ抗体（各々の抗体は、同一の治療薬剤または異なる治療薬剤と結合体化されている）を含む。同種混合物は、同一のエピトープを認識する抗体（各々の抗体は、同一の治療薬剤と結合体化される）を含む。
【０１３０】
本発明は、ＰＳＣＡがそのリガンドと結合することをブロックすることによって、ＰＳＣＡの生物学的活性を阻害するための方法をさらに提供する。この方法は、ＰＳＣＡ免疫結合体またはＰＳＣＡ抗体複合体を可能にする条件下で、ある量のＰＳＣＡを、本発明の抗体または免疫結合体と接触させ、それによって、ＰＳＣＡがそのリガンドと結合することをブロックし、そしてＰＳＣＡの活性を阻害する工程を包含する。
【０１３１】
別の実施形態において、本発明は、本発明の免疫結合体のいずれか１つまたは組み合わせを、細胞を阻害するに十分な量における細胞と反応させることによって、ＰＳＣＡ抗原を発現する細胞を選択的に阻害する方法を提供する。このような量は、細胞を殺傷する量、または細胞成長または細胞増殖を阻害するに十分な量を含む。すでに議論した通り、用量および投薬レジメンは、ＰＳＣＡ、その集団、抗体が指向されるべき部位、特定の免疫毒素の特徴および患者に関連した処置されるべき疾患または障害の性質に依存する。例えば、免疫結合体の量は、０．１〜１０ｍｇ／ｋｇ患者体重の範囲であり得る。
【０１３２】
（ＰＳＣＡタンパク質ならびにＰＳＣＡ遺伝子およびＲＮＡを同定するための方法）
本発明は、ＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡ遺伝子を発現する、細胞、組織または器官を同定するための方法を提供する。このような方法は、インビボまたはインビトロでＰＳＣＡタンパク質を発現する、細胞または器官の存在を診断するために用いられ得る。本発明の方法は、特に、前立腺の病理学的状態を媒介する細胞の存在の決定において有用である。特に、ＰＳＣＡタンパク質の存在は、ＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡタンパク質をコードする核酸が発現されるか否かを決定することによって、同定され得る。ＰＳＣＡタンパク質の発現は、ＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡ遺伝子を発現する、細胞、組織または器官の存在を診断するための手段として、用いられ得る。
【０１３３】
種々の免疫学的および分子遺伝学的技術が、ＰＳＣＡタンパク質が、特定の細胞またはサンプル中で発現／産生されるか否かを決定するために、用いられ得る。一般に、核酸分子を含む抽出物またはタンパク質を含む抽出物が調製される。次いで、抽出物は、ＰＳＣＡタンパク質またはＰＳＣＡをコードする核酸分子が細胞中で産生されるか否かを決定するために、アッセイされる。
【０１３４】
当該分野で周知の種々のポリヌクレオチドを基にした検出方法が、ＰＳＣＡをコードする核酸分子の検出のため、および生物学的試料中のＰＳＣＡ発現細胞の検出のために、利用され得る。例えば、ＲＴ−ＰＣＲ法は、ＰＳＣＡのｍＲＮＡまたはそのフラグメントを選択的に増幅するために用いられ得、そしてこのような方法は、後述の実施例１において記載されるように、ＰＳＣＡを発現する細胞を同定するために、利用され得る。特定の実施形態において、ＲＴ−ＰＣＲは、微小転移性前立腺癌細胞または循環化前立腺癌細胞を検出するために用いられる。種々の他の増幅型検出方法（例えば、分枝ＤＮＡ方法のような）およびＤＮＡプローブまたはＲＮＡプローブを用いた種々の周知のハイブリダイゼーションアッセイはまた、ＰＳＣＡをコードするポリヌクレオチドまたはＰＳＣＡ発現細胞の検出のために用いられ得る。
【０１３５】
タンパク質の検出のための種々の方法は、当該分野で周知であり、そしてＰＳＣＡタンパク質およびＰＳＣＡ発現細胞の検出のために利用され得る。タンパク質に基づいた診断試験を行うために、適切なタンパク質サンプルが得られ、そして従来技術を用いて調製される。タンパク質サンプルは、例えば、単にＳＤＳとともにサンプルをボイルすることによって調製され得る。次いで、抽出されたタンパク質は、公知の方法を用いて、ＰＳＣＡタンパク質の存在を決定するために分析され得る。例えば、特異的なサイズのタンパク質の改変体または特異的に荷電したタンパク質の改変体の存在は、電場における移動度を使用して同定され得る。あるいは、抗体は、検出の目的のために用いられ得る。当業者は、公知のタンパク質分析方法を容易に適応し、サンプルがＰＳＣＡタンパク質を含むか否かを決定し得る。
【０１３６】
あるいは、ＰＳＣＡ発現はまた、ＰＳＣＡ遺伝子の発現のレベルを減少させる薬剤を同定するための方法において、用いられ得る。例えば、ＰＳＣＡタンパク質を発現する、細胞または組織が、試験薬剤と接触され、ＰＳＣＡ発現における薬剤の効果を決定し得る。ＰＳＣＡ発現を活性化する薬剤は、ＰＳＣＡ活性のアゴニストとして用いられ得、一方、ＰＳＣＡ発現を減少させる薬剤は、ＰＳＣＡ活性のアンタゴニストとして用いられ得る。
【０１３７】
（ＰＳＣＡプロモーターおよび他の発現調節エレメント）
本発明は、発現ベクターおよびトランスジェニック動物を産生するために用いられ得る形態において、新規に同定されたＰＳＣＡ遺伝子の５’を見出された、発現制御配列をさらに提供する。特に、ＰＳＣＡプロモーター（ＰＳＣＡ遺伝子におけるＡＴＧ開始コドンから５’であるとして容易に同定され得、そしてＤＮＡ配列をコードする作動可能に連結されたタンパク質の発現を指向するために用いられ得る）のようなＰＳＣＡ発現制御エレメント。ＰＳＣＡ発現が、前立腺細胞において主に発現されるため、発現制御エレメントは、組織特異的様式において誘導された導入遺伝子の発現の指向において、特に有用である。当業者は、当該分野で公知の方法を用いて、発現ベクターにおける、ＰＳＣＡ遺伝子プロモーターおよび他の調節エレメントを容易に使用し得る。
【０１３８】
真核生物細胞において、調節配列は、遺伝子のコード領域の上流、下流および内部で見出され得る。真核生物調節配列は、プロモーター配列、そして時折、少なくとも１つのエンハンサー配列を含む。代表的な真核生物遺伝子において、プロモーター配列は、遺伝子のコード領域に対して上流および近接して存在し、そして１方向に方向付けられて、遺伝子の発現を制御するはずである。代表的な真核生物遺伝子において、エンハンサー配列は、遺伝子のコード領域の上流、下流および内部にさえも存在し得、そして遺伝子の発現を増強するような方向または抑制するような方向のいずれかに向き得る。
【０１３９】
本発明はＰＳＣＡコード領域の上流の９ｋｂの配列を含むＤＮＡフラグメントを提供する。このＰＳＣＡフラグメントが作動可能に連結された導入遺伝子の発現を駆動する能力は、細胞にトランスフェクトされた一連のキメラレポーター構築物を用いて試験された。そのキメラレポーター構築物は、ネイティブな内因性ＰＳＣＡと同様の発現パターンを示し、そしてそのＰＳＣＡフラグメントは順配向で連結した場合に、導入遺伝子の発現を駆動する。従って、このＰＳＣＡフラグメントは、プロモーター様の活性を示すＰＳＣＡ上流の調節領域を含む。
【０１４０】
ＰＳＣＡ転写物はまた、前立腺腫瘍細胞中に有意に高いレベルで存在するが、良性の前立腺過形成中には存在しない。従って、ＰＳＣＡ転写物は、前立腺優勢の様式において検出可能であり、そして前立腺腫瘍サンプルにおいてより高いレベルで検出可能である。有意により高いレベルのＰＳＣＡ転写物、または当該分野で公知のような過剰発現は、正常な前立腺における検出可能なＰＳＣＡ転写物の量の測定および、前立腺腫瘍サンプルとの比較によって決定され得る。この比較は、ノーザン分析およびＲＴ−ＰＣＲアッセイを含む、当該分野で周知の方法によって行われ得、そして転写物レベルにおける相異が定量され得る。従って、サンプルにおける測定可能な程に異なる量のＰＳＣＡ転写物（すなわち、正常なサンプルからのＰＳＣＡ転写物の数を超える、試験サンプルにおけるＰＳＣＡ転写物の数）の存在は、前立腺癌の存在を示すのに使用され得る。
【０１４１】
ＰＳＣＡの転写物およびタンパク質の蓄積のパターンは公知であり、そしてＰＳＣＡ上流調節領域が単離され、そして特徴付けられた。導入遺伝子に作動可能に連結したＰＳＣＡ上流調節領域を含む一連のキメラ構築物が、試験された。そのＰＳＣＡ上流調節領域は、種々の前立腺細胞および細胞株、ならびに膀胱において、導入遺伝子の発現を駆動し、そして腎臓においてより低い程度に駆動する。従って、ＰＳＣＡ上流領域は、前立腺優勢な様式において導入遺伝子の発現を駆動する。
【０１４２】
好ましい実施形態において、図４２に示される様な、ＰＳＣＡ遺伝子の５’上流領域由来の９ｋｂ、６ｋｂ、３ｋｂ、および１ｋｂのＤＮＡフラグメントが、本明細書で記載される技術によって産生された。９ｋｂのＰＳＣＡ上流領域（ｐＥＧＦＰ−ＰＳＣＡ）は、遺伝子調節活性に関係し、そして１９９９年５月１７日にＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、１２３０１  Ｐａｒｋｌａｗｎ  Ｄｒｉｖｅ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ  ２０８５２に寄託され、そしてそこで、以下のＡＴＣＣ番号ＰＴＡ−８０として同定される。この９ｋｂのフラグメントはＴ７プライマーおよびＲＩｈＰＳＣＡ３’−５（５’−ｇｇｇａａｔｔｃｇｃａｃａｇｃｃｔｔｃａｇｇｇｔｃ−３’）（配列番号：１６）を用いた増幅によって得られた。
【０１４３】
（遺伝子調節活性を有するフラグメントの使用）
本発明は、罹患した前立腺癌の細胞／部位に対して、目的の遺伝子を標的化し、その結果、その遺伝子によりコードされたタンパク質が発現され得、それにより、疾患状態を直接または間接的に回復させるための方法（例えば、遺伝子治療法）を提供する。
【０１４４】
感受性の細胞が、前立腺腫瘍細胞において有意に増大した遺伝子発現活性を有するＰＳＣＡ上流領域の制御下で導入遺伝子（例えば、治療遺伝子）を発現する発現ベクターと共に導入される。前立腺腫瘍細胞において優勢に治療遺伝子を発現する発現ベクターの使用は、前立腺腫瘍細胞のような標的細胞において治療遺伝子を発現させる。
【０１４５】
感受性細胞を感染した後、導入遺伝子（例えば、治療遺伝子）が、その導入遺伝子によってコードされたタンパク質を発現するベクターにおいて、増大した遺伝子発現活性を有するＰＳＣＡ上流領域によって駆動される。かなり特異的な前立腺特異的遺伝子ベクターの使用は、標的細胞（例えば、前立腺癌細胞）における特定の遺伝子の選択的な発現を可能にする。
【０１４６】
増大した遺伝子発現活性を有するＰＳＣＡ領域は、誘導体分子を産生するために、例えば配列の変異、欠失、および挿入によって改変され得る。改変は、前立腺細胞に特異的な調節タンパク質に結合し得る配列の数の増加、および遺伝子発現活性を有するＰＳＣＡ領域において機能しない配列の欠失を含む。他の改変は、エンハンサーの付加を含み、それによって、プロモーター活性を有するＰＳＣＡ領域の効率が改善される。エンハンサーは、位置独立的な様式において機能し得、そして、転写される領域の上流、内部または下流に位置し得る。
【０１４７】
誘導体分子は、増大した遺伝子発現活性を有するＰＳＣＡ上流領域の機能特性を保持する。すなわち、このような置換を有する分子は、フラグメントの３’に位置する目的の遺伝子の前立腺組織特異的な発現を、実質的に、なお可能にする。改変は、誘導体分子が、プロモーター活性のみを有するＰＳＣＡフラグメントと比較して、実質的に前立腺特異的な様式でその遺伝子発現を駆動する能力を保持している限り、許容される。
【０１４８】
好ましい実施形態において、ベクターは、プロモーター活性を有するＰＳＣＡ上流領域の下流に異種配列（治療遺伝子）を挿入することによって、構築された。
【０１４９】
治療遺伝子の例には、自殺遺伝子（ｓｕｉｃｉｄｅ  ｇｅｎｅ）が挙げられる。これらは、その発現によって、前立腺腫瘍細胞の増殖または前立腺腫瘍細胞の死を阻害するタンパク質または因子が産生される遺伝子配列である。自殺遺伝子には、酵素（例えば、プロドラッグ酵素）をコードする遺伝子、癌遺伝子、癌抑制遺伝子、毒素をコードする遺伝子、サイトカインをコードする遺伝子、またはオンコスタチンをコードする遺伝子が挙げられる。治療遺伝子の目的は、前立腺癌細胞の増殖を阻害するか、または前立腺癌細胞を殺傷すること、あるいはサイトカインまたは直接もしくは間接的に前立腺癌細胞の増殖を阻害するか、もしくは前立腺癌細胞を殺傷する他の細胞傷害性因子を産生することである。
【０１５０】
適切なプロドラッグ酵素には、チミジンキナーゼ（ＴＫ）、Ｅ．Ｃｏｌｉ由来のキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＧＰＴ）遺伝子、またはＥ．Ｃｏｌｉのシトシンデアミナーゼ（ＣＤ）、もしくはヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＰＲＴ）が挙げられる。
【０１５１】
適切な癌遺伝子および癌抑制遺伝子には、ｎｅｕ、ＥＧＦ、ｒａｓ（Ｈ  ｒａｓ、Ｋ  ｒａｓ、およびＮ  ｒａｓを含む）、ｐ５３、網膜芽癌抑制遺伝子（Ｒｂ）、ウィルムス腫瘍遺伝子産物、ホスホチロシンホスファターゼ（ＰＴＰａｓｅ）、およびｎｍ２３が挙げられる。適切な毒素には、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ体外毒素ＡおよびＳ；ジフテリア毒素（ＤＴ）；Ｅ．ｃｏｌｉ  ＬＴ毒素、Ｓｈｉｇａ毒素、Ｓｈｉｇａ様毒素（ＳＬＴ−１、−２）、リシン、アブリン、スポリン、およびゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）が挙げられる。
【０１５２】
適切なサイトカインには、インターフェロン、ＧＭ−ＣＳＦインターロイキン、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）（Ｗｏｎｇ  Ｇら、Ｈｕｍａｎ  ＧＭ−ＣＳＦ：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ  ＤＮＡ  ａｎｄ  ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｎａｔｕｒａｌ  ａｎｄ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ．Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９８５；２２８：８１０）；ＷＯ９３２３０３４（１９９３）；Ｈｏｒｉｓｂｅｒｇｅｒ  ＭＡら、Ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ａｎａｌｙｓｅｓ  ｏｆ  ｃＤＮＡｓ  ｆｏｒ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ−  ａｎｄ  ｖｉｒｕｓ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｈｕｍａｎ  Ｍｘ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｒｅｖｅａｌ  ｔｈａｔ  ｔｈｅｙ  ｃｏｎｔａｉｎ  ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｇｕａｎｉｎｅ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ−ｂｉｎｄｉｎｇ  ｓｉｔｅｓ：ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｓｔｕｄｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ  ｇｅｎｅ  ｐｒｏｍｏｔｅｒ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１９９０年３月，６４（３）：１１７１−８１；Ｌｉ  ＹＰら、Ｐｒｏｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｃｙｔｏｋｉｎｅｓ  ｔｕｍｏｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ−ａｌｐｈａ  ａｎｄ  ＩＬ−６，ｂｕｔ  ｎｏｔ  ＩＬ−１，ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｅ  ｔｈｅ  ｏｓｔｅｏｃａｌｃｉｎ  ｇｅｎｅ  ｐｒｏｍｏｔｅｒ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９２年２月１日，１４８（３）：７８８−９４；Ｐｉｚａｒｒｏ  ＴＴら、Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ＴＮＦ  ａｌｐｈａ  ａｎｄ  ＴＮＦ  ｂｅｔａ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｒａｔ  ｃａｒｄｉａｃ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔｓ  ｄｕｒｉｎｇ  ａｌｌｏｇｒａｆｔ  ｒｅｊｅｃｔｉｏｎ．Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，１９９３年８月，５６（２）：３９９−４０４）が挙げられる。（Ｂｒｅｖｉａｒｉｏ  Ｆら、Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１−ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ．Ｃｌｏｎｉｎｇ  ｏｆ  ａ  ｎｅｗ  ｇｅｎｅ  ｒｅｌａｔｅｄ  ｔｏ  Ｃ−ｒｅａｃｔｉｖｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ａｎｄ  ｓｅｒｕｍ  ａｍｙｌｏｉｄ  Ｐ  ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９２年１１月５日，２６７（３１）：２２１９０−７；Ｅｓｐｉｎｏｚａ−Ｄｅｌｇａｄｏ  Ｉら、Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ＩＬ−２  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｓｕｂｕｎｉｔ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ＩＬ−２  ａｎｄ  ＩＦＮ−ｇａｍｍａ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９２年１１月１日，１４９（９）：２９６１−８；Ａｌｇａｔｅ  ＰＡら、Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−３（ＩＬ−３）ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｙ  ＩＬ−３  ｉｎ  ｔｈｅ  ｆｅｔａｌ  ｌｉｖｅｒ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ＦＬ５．１２  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅ．Ｂｌｏｏｄ，１９９４年５月１日，８３（９）：２４５９−６８；Ｃｌｕｉｔｍａｎｓ  ＦＨら、ＩＬ−４  ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｅｓ  ＩＬ−２−，ＩＬ−３−，ａｎｄ  ＧＭ−ＣＳＦ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐ���ｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ  ｂｌｏｏｄ  ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ．Ａｎｎａｌｓ  ｏｆ  Ｈｅｍａｔｏｌｏｇｙ，１９９４年６月，６８（６）：２９３−８；Ｌａｇｏｏ，ＡＳら、ＩＬ−２，ＩＬ−４，ａｎｄ  ＩＦＮ−ｇａｍｍａ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｒｓｕｓ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｉｎ  ｓｕｐｅｒａｎｔｉｇｅｎ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ  Ｔ  ｃｅｌｌｓ．Ｄｉｓｔｉｎｃｔ  ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔ  ｆｏｒ  ｃｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒｙ  ｓｉｇｎａｌｓ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ａｄｈｅｓｉｏｎ  ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９４年２月１５日，１５２（４）：１６４１−５２；Ｍａｒｔｉｎｅｚ  ＯＭら、ＩＬ−２  ａｎｄ  ＩＬ−５  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｒｅｓｐｏｎｓｅ  ｔｏ  ａｌｌｏａｎｔｉｇｅｎ  ｉｎ  ｌｉｖｅｒ  ａｌｌｏｇｒａｆｔ  ｒｅｃｉｐｉｅｎｔｓ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ．Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，１９９３年５月，５５（５）：１１５９−６６；Ｐａｎｇ  Ｇら、ＧＭ−ＣＳＦ，ＩＬ−１  ａｌｐｈａ，ＩＬ−１  ｂｅｔａ，ＩＬ−６，ＩＬ−８，ＩＬ−１０，ＩＣＡＭ−１  ａｎｄ  ＶＣＡＭ−１  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ａｎｄ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｄｕｏｄｅｎａｌ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ  ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ  ｗｉｔｈ  ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ，ＩＬ−１  ａｌｐｈａ  ａｎｄ  ＴＮＦ−ａｌｐｈａ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９４年６月，９６（３）：４３７−４３；Ｕｌｉｃｈ  ＴＲら、Ｅｎｄｏｔｏｘｉｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｖｉｖｏ．ＩＩＩ．ＩＬ−６  ｍＲＮＡ  ａｎｄ  ｓｅｒｕｍ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ａｎｄ  ｔｈｅ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｈｅｍａｔｏｌｏｇｉｃ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ＩＬ−６．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９１年４月１日，１４６（７）：２３１６−２３；Ｍａｕｖｉｅｌ  Ａら、Ｌｅｕｋｏｒｅｇｕｌｉｎ，ａ  Ｔ  ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ，ｉｎｄｕｃｅｓ  ＩＬ−８  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ａｎｄ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｓｋｉｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ．Ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｓｋｉｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ．Ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｎｈａｎｃｅｄ  ＮＦ−ｋａｐｐａ  Ｂ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ａｎｄ  ＮＦ−ｋａｐｐａ  Ｂ−ｄｒｉｖｅｎ  ｐｒｏｍｏｔｅｒ  ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１９９２年１１月１日，１４９（９）：２９６９−７６）。
【０１５３】
成長因子には、トランスフォーミング成長因子−α（ＴＧＦα）およびβ（ＴＧＦβ）、サイトカインコロニー刺激因子（Ｓｈｉｍａｎｅ  Ｍら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｇ−ＣＳＦ  ｉｎｄｕｃｅｄ  ｇｅｎｅ  ｃＤＮＡ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９４年２月２８日，１９９（１）：２６−３２；Ｋａｙ  ＡＢら、Ｍｅｓｓｅｎｇｅｒ  ＲＮＡ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｇｅｎｅ  ｃｌｕｓｔｅｒ，ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  ３（ＩＬ−３），ＩＬ−４，ＩＬ−５，ａｎｄ  ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ／ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ  ｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ，ｉｎ  ａｌｌｅｒｇｅｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌａｔｅ−ｐｈａｓｅ  ｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｒｅａｃｔｉｏｎｓ  ｉｎ  ａｔｏｐｉｃ  ｓｕｂｊｅｃｔｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，１９９１年３月１日，１７３（３）：７７５−８；ｄｅ  Ｗｉｔ  Ｈら、Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ  ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍ−ＣＳＦ  ａｎｄ  ＩＬ−６  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｍｏｎｏｃｙｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ．Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｙ，１９９４年２月，８６（２）：２５９−６４；Ｓｐｒｅｃｈｅｒ  Ｅら、Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ＩＬ−１  ｂｅｔａ，ＴＮＦ−ａｌｐｈａ，ａｎｄ  ＩＬ−６  ｇｅｎｅ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ｂｙ  ｔｈｅ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎ  ｒｅａｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ，Ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ  ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  ｐｅｒｉｔｏｎｅａｌ  ｅｘｕｄａｔｅ  ｃｅｌｌｓ  ｄｕｒｉｎｇ  ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ｈｅｒｐｅｓ  ｓｉｍｐｌｅｘ  ｖｉｒｕｓ−１．Ａｒｃｈｉｖｅｓ  ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１９９２，１２６（１−４）：２５３−６９）。
【０１５４】
本発明の方法における使用に適切なベクターは、アデノウイルス、レンチウイルス、レトロウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）のベクターを含むウイルス性ベクターである。
【０１５５】
好ましくは、選択されたウイルス性ベクターは、以下の基準を満たすべきである：１）そのベクターは、腫瘍細胞に感染し得なければならず、従って、適切な宿主範囲を有するウイルス性ベクターが選択されなければならない；２）転移される遺伝子は、長期間細胞中で持続し得、そして発現され得るべきである；そして３）そのベクターは、宿主に対して安全であるべきであり、そして最少の細胞の形質転換を引き起こすべきである。レトロウイルスベクターおよびアデノウイルスは、哺乳動物細胞に、外来の遺伝子を効率的に導入し、そして発現する、効率的で有用な、そして現在では最もよく特徴付けられた手段を提供する。非常に広い宿主および細胞型の範囲を有するこれらのベクターは、遺伝子を安定に、かつ効率的に発現する。これらのベクターの安全性は、多くの研究グループによって証明された。実際、その多くが臨床試験にある。
【０１５６】
障害の補正のために細胞に遺伝子を転移するために使用され得る他のウイルスベクターには、モロニーマウス白血病ウイルス（ＭｏＭｕＬＶ）のようなレトロウイルス；ＪＣ、ＳＶ４０、ポリオーマのようなパポバウイルス；エプスタイン−バーウイルス（ＥＢＶ）；パピローマウイルス（例えば、ウシパピローマウイルスＩ型（ＢＰＶ））；ワクシニアおよびポリオウイルスならびに他のヒトおよび動物のウイルスが挙げられる。
【０１５７】
アデノウイルスは、それ自身をクローニングビヒクルとして魅力的にするいくつかの特性を有する（Ｂａｃｈｅｔｔｉｓら、Ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ｇｅｎｅ  ｆｏｒ  ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ  ｋｉｎａｓｅ−ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ  ｈｕｍａｎ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｐｕｒｉｆｉｅｄ  ｈｅｒｐｅｓ  ｓｉｍｐｌｅｘ  ｖｉｒａｌ  ＤＮＡ．ＰＮＡＳ  ＵＳＡ，１９７７  ７４：１５９０；Ｂｅｒｋｎｅｒ，Ｋ．Ｌ．：Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ  ｖｅｃｔｏｒｓ  ｆｏｒ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ  ｇｅｎｅｓ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１９８８  ６：６１６；Ｇｈｏｓｈ−Ｃｈｏｕｄｈｕｒｙ  Ｇら、Ｈｕｍａｎ  ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｖｅｃｔｏｒｓ  ｂａｓｅｄ  ｏｎ  ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  ｂａｃｔｅｒｉａｌ  ｐｌａｓｍｉｄｓ．Ｇｅｎｅ  １９８６；５０：１６１；Ｈａｇ−Ａｈｍａｎｄ  Ｙら、Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａ  ｈｅｌｐｅｒ−ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｈｕｍａｎ  ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ  ｖｅｃｔｏｒ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｕｓｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｈｅｒｐｅｓ  ｓｉｍｐｌｅｘ  ｖｉｒｕｓ  ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ  ｋｉｎａｓｅ  ｇｅｎｅ．Ｊ  Ｖｉｒｏｌ  １９８６；５７：２５７；Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  Ｍら、Ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ｏｆ  ａ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  α1−ａｎｔｉｔｒｙｐｓｉｎ  ｇｅｎｅ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｌｕｎｇ  ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ  ｉｎ  ｖｉｖｏ．Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９１；２５２：４３１）。
【０１５８】
例えば、アデノウイルスは、細胞核において複製する中間のサイズのゲノムを有し：多くの血清型が臨床的に無害であり；アデノウイルスゲノムは、外来の遺伝子を挿入するが、安定なようであり：外来の遺伝子は、欠失または再配列することなく維持されるようであり；そしてアデノウイルスは、４週間から数ヶ月までの発現期間を有する高いレベルの一過性発現ベクターとして使用され得る。広範な生化学および遺伝的研究は、ネイティブのアデノウイルス配列への７〜７．５ｋｂまでの異種配列の置換によって、生存可能で、条件的な、ヘルパー独立性ベクターを作製可能であることを示唆する（Ｋａｕｆｍａｎ  Ｒ．Ｊ．：ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ  ｎｅｃｅｓｓａｒｙ  ｆｏｒ  ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ  ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｃＤＮＡ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｃｔｏｒｓ．ＰＮＡＳ  ＵＳＡ，１９８５  ８２：６８９）。
【０１５９】
ＡＡＶは、約５ｋｂの一本鎖ＤＮＡゲノムを有する小さなヒトパルボウイルスである。このウイルスは、いくつかのヒト細胞型において、組込み型プロウイルスとして増殖され得る。ＡＡＶベクターは、ヒトの遺伝子治療にとっていくつかの利点を有する。例えば、ＡＡＶベクターはヒト細胞に対して栄養性であるが、他の哺乳動物細胞にもまた感染し得る；（２）ヒトまたは他の動物において、ＡＡＶに関連する疾患はない；（３）組込まれたＡＡＶゲノムは、その宿主細胞内で安定であるようである；（４）ＡＡＶの組込みが、宿主の遺伝子もしくはプロモーターの発現を変化させるか、またはその再配列を促進するという証拠がない；（５）導入された遺伝子は、アデノウイルスのようなヘルパーウイルスの感染によって、宿主細胞から奪還され得る。
【０１６０】
ＨＳＶ−１ベクター系は、非有糸細胞への実質的にいかなる遺伝子の導入をも容易にする（Ｇｅｌｌｅｒら、ａｎ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ  ｍｕｔａｎｔ  ｐａｃｋａｇｉｎｇ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ａ  ｄｅｆｅｃｔｉｖｅ  ｈｅｒｐｅｓ  ｓｉｍｐｌｅｘ  ｖｉｒｕｓ  ｖｅｃｔｏｒｓ：Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｔｏ  ｈｕｍａｎ  ｇｅｎｅ  ｔｈｅｒａｐｙ  ａｎｄ  ｎｅｕｒｏｎａｌ  ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ．ＰＮＡＳ  ＵＳＡ，１９９０  ８７：８９５０）。
【０１６１】
哺乳動物遺伝子の転移のための別のベクターは、ウシパピローマウイルスに基づくベクターである（Ｓａｒｖｅｒ  Ｎら、Ｂｏｖｉｎｅ  ｐａｐｉｌｌｏｍａ  ｖｉｒｕｓ  ＤＮＡ：Ａ  ｎｏｖｅｌ  ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｖｅｃｔｏｒ．Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ  １９８１；１：４８６）。
【０１６２】
ワクシニアおよび他のポックスウイルスに基づくベクターは、哺乳動物遺伝子転移系を提供する。ワクシニアウイルスは、１２０キロダルトン（ｋｄ）のゲノムサイズの巨大な二本鎖ＤＮＡウイルスである（Ｐａｎｉｃａｌｉ  Ｄら、Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｏｘｖｉｒｕｓ  ａｓ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｖｅｃｔｏｒｓ：Ｉｎｓｅｒｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ  ｋｉｎａｓｅ  ｇｅｎｅ  ｆｒｏｍ  ｈｅｒｐｅｓ  ｓｉｍｐｌｅｘ  ｖｉｒｕｓ  ｉｎｔｏ  ｔｈｅ  ＤＮＡ  ｏｆ  ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  ｖａｃｃｉｎｅ  ｖｉｒｕｓ．Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ  １９８２；７９：４９２７；Ｓｍｉｔｈら、ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  ｖａｃｃｉｎｉａ  ｖｉｒｕｓ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔｓ  ｔｈａｔ  ｅｘｐｒｅｓｓ  ｈｅｐａｔｉｔｉｓ  Ｂ  ｖｉｒｕｓ  ｓｕｒｆａｃｅ  ａｎｔｉｇｅｎｓ．Ｎａｔｕｒｅ，１９８３  ３０２：４９０）。
【０１６３】
レトロウイルスは、ウイルス遺伝子の宿主細胞への挿入のために設計されたパッケージである（Ｇｕｉｌｄ  Ｂら、Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ  ｖｅｃｔｏｒｓ  ｕｓｅｆｕｌ  ｆｏｒ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  ｃｕｌｔｕｒｅｄ  ｍｕｒｉｎｅ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｖｉｖｏ．Ｊ  Ｖｉｒｏｌ  １９８８；６２：７９５；Ｈｏｃｋ  ＲＡら、Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ  ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｔｒａｎｓｆｅｒ  ａｎｄ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｄｒｕｇ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｈｅｍｏｐｏｉｅｔｉｃ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌｓ．Ｎａｔｕｒｅ  １９８６；３２０：２７５）。
【０１６４】
基本的なレトロウイルスは、プロウイルスのタンパク質中にパッケージングされたＲＮＡの２つの同一鎖からなる。そのコアはエンベロープと呼ばれる保護被膜によって囲まれ、そのエンベロープは、ウイルスによって寄与される糖タンパク質で改変される以外は、前の宿主の膜に由来する。
【０１６５】
好ましくは、前立腺における細胞の欠損、疾患または損傷の処置にのために、本発明のベクターは、治療遺伝子または導入遺伝子（例えば、ＴＫをコードする遺伝子）を含む。その遺伝的に改変ベクターは、欠損、疾患（例えば、前立腺癌をインビボで改善効果を有する内因性分子の産生を増大する治療遺伝子産物（単数または複数）の前立腺への導入によって）を処置するために前立腺に投与される。
【０１６６】
本発明の方法のこの実施形態における基本的な課題は、目的の遺伝子の単離、遺伝子調節活性を有するフラグメントへの目的遺伝子の結合、目的の遺伝子を身体に送達するための適切なベクタービヒクルの選択、目的の遺伝子を有するベクターの身体への投与、および標的細胞への目的遺伝子の適切な発現の達成である。本発明は、クローン化された遺伝子（すなわち、目的の遺伝子）を、この遺伝子を必要とする患者の血流または関連する器官に直接注射され得るような様式でのパッケージングを提供する。そのパッケージングは、外来のＤＮＡを、免疫系による排除から保護し、そしてそれを適切な組織または細胞へ指向させる。
【０１６７】
ヒトまたは動物の目的の遺伝子と共に、別の遺伝子（例えば、選択可能マーカー）が挿入され得、改変されたレトロウイルスを取り込んだ細胞の同定が容易となる。遺伝子治療のプロセス上の重大な焦点は、新しい遺伝子が、標的細胞において、発現の十分な持続期間を有し、適切なレベルで発現されなければならないことである。
【０１６８】
ベクターを改変するための、および前立腺にこのような改変されたベクターを投与するための以下に記載の方法は、単に例証の目的であり、そして使用され得る方法の典型である。しかし、他の手順もまた、当該分野で理解されるように使用され得る。
【０１６９】
ベクターなどを構築するために使用される大部分の技術は、当該分野で広く実施されており、そして大部分の専門家は、特定の条件および手順を記載する標準的な供給源の試料に精通する。しかし、簡便のために、以下の段落が、ガイドラインとして役立ち得る。
【０１７０】
（ベクター構築のための一般的方法）
所望の治療的遺伝子コード配列および制御配列を含む適切なベクターの構築は、当該分野で十分に理解されている、標準的連結および制限技術（Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ（１９８２）を参照のこと）を使用する。単離されたプラスミド、ＤＮＡ配列、または合成されたオリゴヌクレオチドを、所望の形態に切断し、改変し、そして再連結する。
【０１７１】
部位特異的なＤＮＡ切断を、当該分野で一般的に理解されている条件下で、適切な制限酵素を用いて処理すること、およびこれらの市販されている制限酵素の製造業者によって特定化される詳細により、実行する（例えば、Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ  Ｐｒｏｄｕｃｔ  Ｃａｔａｌｏｇを参照のこと）。概して、約１μｇのプラスミドまたはＤＮＡ配列を、約２０μｌの緩衝溶液中で１単位の酵素により切断する。代表的に、過剰の制限酵素は、ＤＮＡ基質の完全な消化を保証するために使用される。
【０１７２】
約３７℃での約１時間〜２時間のインキュベーション時間は、実行可能であるが、変更を行い得る。各々のインキュベーションの後、タンパク質をフェノール／クロロホルムを用いた抽出により除去し、そして続いてエーテル抽出し得、そして核酸を、エタノールを用いた沈殿により水相から回収する。所望の場合、切断したフラグメントのサイズ分離を、標準的な技術を使用するポリアクリルアミドゲルまたはアガロースゲル電気泳動によって実行し得る。サイズ分離の一般的記述は、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ６５：４９９−５６０（１９８０）中に見出される。
【０１７３】
制限切断されたフラグメントを、４種類のデオキシヌクレオチドトリホスフェート（ｄＮＴＰ）の存在下、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．６）、５０ｍＭ  ＮａＣｌ、６ｍＭ  ＭｇＣｌ2、６ｍＭ  ＤＴＴおよび５〜１０μＭ  ｄＮＴＰ中で２０℃〜２５℃、約１５〜２５分のインキュベーション時間を用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ  ＤＮＡポリメラーゼＩ（Ｋｌｅｎｏｗ）の大きなフラグメントを用いて処理することにより、平滑断端にし得る。このＫｌｅｎｏｗフラグメントは、４種類のｄＮＴＰが存在しても、５’粘着末端で充填するが、突出した３’一本鎖を消化する。所望される場合、選択的な修復を、粘着末端の性質により指示される制限内で、ｄＮＴＰの一種類のみを提供することにより、または選択されたｄＮＴＰを用いて実行し得る。Ｋｌｅｎｏｗを用いた処置の後、この混合物をフェノール／クロロホルムを用いて抽出し、そしてエタノールを用いて沈殿する。Ｓ１ヌクレアーゼまたはＢａｌ−３１を用いた適切な条件下での処理により、任意の一本鎖部分の加水分解が生じる。
【０１７４】
連結を、Ｔ４  ＤＮＡリガーゼを用いて、次の標準条件および温度の下で、１０〜１５μｌの容量において実行する。連結プロトコルは、標準である（Ｄ．Ｇｏｅｄｄｅｌ（編）Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９９１））。
【０１７５】
「ベクターフラグメント」を使用するベクター構築において、ベクターフラグメントを、５’ホスフェートを除去し、そしてベクターの再連結を妨害するために、一般的に、細菌アルカリホスファターゼ（ＢＡＰ）または子ウシ腸アルカリホスファターゼ（ＣＩＰ）を用いて処理する。あるいは、再連結を、好ましくないフラグメントのさらなる制限酵素消化により二重に消化されるベクターにおいて、妨害し得る。
【０１７６】
適切なベクターは、ウイルスベクター系（例えば、ＡＤＶ、ＲＶ、およびＡＡＶ（Ｒ．Ｊ．Ｋａｕｆｍａｎ  「Ｖｅｃｔｏｒｓ  ｕｓｅｄ  ｆｏｒ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌｓ」  ｉｎ  Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｄ．Ｖ．Ｇｏｅｄｄｅｌ編（１９９１））を含む。
【０１７７】
機能的ＤＮＡ導入遺伝子を細胞へ挿入するための多くの方法は、当該分野で公知である。例えば、非ベクター的方法としては、細胞へのＤＮＡの非ウイルス性物理的トランスフェクションが挙げられ；例えば、マイクロインジェクション（ＤｅＰａｍｐｈｉｌｉｓら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅ  ６：６６２−６８０（１９８８））；リポソーム媒介トランスフェクション（Ｆｅｌｇｎｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８４：７４１３−７４１７（１９８７），ＦｅｌｇｎｅｒおよびＨｏｌｍ、Ｆｏｃｕｓ  １１：２１−２５（１９８９）およびＦｌｅｇｎｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｗｅｓｔ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｓｏｃ．３２：１１５−１２１（１９８９））および当該分野で公知の他の方法。
【０１７８】
（改変されたベクターの被験体への投与）
標的細胞へＤＮＡを入れるための１つの方法は、膜結合された、サックまたはベジクル（例えば、スフェロプラストまたはリポソーム）の中へＤＮＡを加えることであるか、またはリン酸カルシウム沈殿（ＣａＰＯ4）による（Ｇｒａｈａｍ  Ｆ．およびＶａｎ  ｄｅｒ  Ｅｂ，Ａ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  ５２：４５６  １９７３；Ｓｃｈａｅｆｅｒ−Ｒｉｄｄｅｒ  Ｍ．ら、Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ  ａｓ  ｇｅｎｅ  ｃａｒｒｉｅｒｓ：Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｏｕｓｅ  Ｌ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ  ｋｉｎａｓｅ  ｇｅｎｅ．Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９８２；２１５：１６６；Ｓｔａｖｒｉｄｉｓ  ＪＣら、Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎ−ｃｏａｔｅｄ  ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ  ｆｏｒ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｏｆ  ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ  ＤＮＡ  ｔｏ  ｂｏｎｅ  ｍａｒｒｏｗ  ｅｒｙｔｈｒｏｂｌａｓｔｓ  ｉｎ  ｒａｂｂｉｔｓ．  Ｅｘｐ  Ｃｅｌｌ  Ｒｅｓ  １９８６；１６４：５６８−５７２）。
【０１７９】
ベジクルを、その膜が標的細胞の外膜と融合するような方法において構築し得る。ベジクル中の本発明のベクターは、前立腺細胞の中へ向かわせ得る。
【０１８０】
スフェロプラストは、ポリエチレングリコールのような融合剤（ｆｕｓｏｇｅｎ）を用いて哺乳動物標的細胞を通して融合され得るまで、高いイオン強度緩衝液中で保持される。
【０１８１】
リポソームは、人工の脂質ベジクルである。ベジクルは、０．２〜４．０μｍの範囲の大きさであり、そして高分子を含む緩衝水溶液の１０％〜４０％を包括し得る。このリポソームは、ヌクレアーゼからＤＮＡを保護し、そして標的細胞へのその導入を容易にする。トランスフェクションはまた、エレクトロポレーションを介して生じ得る。
【０１８２】
投与の前に、改変されたベクターを、注入のために選択された濃度で完全なＰＢＳ中に懸濁する。ＰＢＳに加えて、任意の浸透圧的に均衡の取れた溶液（この溶液は、被験体に対して生理学的に適合する）を使用し、改変されたベクターを宿主へ懸濁そして注入し得る。
【０１８３】
注入のために、細胞の懸濁液をシリンジの中へ引き上げ、麻酔したレシピエントへ投与する。多重注入をこの手順を用いて行い得る。ウイルス懸濁手順は、従って、遺伝子改変されたベクターを、前立腺における任意の予定された部位へ投与することを可能にし、比較的非外傷性であり、同じウイルス懸濁液を用いる、いくつかの異なる部位または同じ部位における同時の多重投与を可能にする。多重注入は、治療的遺伝子の混合物からなり得る。
【０１８４】
（改変されたベクターの使用）
本発明は、発現活性を有するフラグメントを用いる治療的遺伝子の発現を保持および増加するための方法を提供する。
【０１８５】
本発明の方法は、治療的遺伝子を保有する改変されたベクターが、被験体へ注入される実施形態によって例証される。
【０１８６】
第１の実施形態において、宿主におけるタンパク質を産生するように本発明の宿主ベクター系を増殖させる工程、およびそのようにして産生されたタンパク質を回収する工程を包含するタンパク質生成物が、示される。この方法は、単細胞生物および多細胞生物の両方において目的の遺伝子の発現を可能にする。例えば、インビボのアッセイにおいて、目的の遺伝子（例えば、ｒａｓ遺伝子）を含む本発明のベクターを有する前立腺細胞を、ｒａｓ遺伝子産生に対して無制限のようにマイクロタイターウェルにおいて使用し得る。被験体由来のサンプルを、ｒａｓ遺伝子に対して指向された抗体の存在を検出するようにこのウェルへ加える。このアッセイは、被験体の免疫系が、上昇したレベルのｒａｓに関する疾患と闘っているか否かの臨床的評価に対して、サンプル中のｒａｓ抗体の存在の定量的決定および定性的決定において、補助し得る。
【０１８７】
第２の実施形態において、転移性の前立腺癌を、遺伝子治療、すなわち本発明の核酸分子の使用を通してインビボでの疾患表現型の補正を介して処置する。
【０１８８】
本発明の実施に従って、遺伝子治療の被験体は、ヒト被験体、ウマ被験体、ブタ被験体、ウシ被験体、マウス被験体、イヌ被験体、ネコ被験体、またはトリ被験体であり得る。他の哺乳動物をまた、本発明において含む。
【０１８９】
本発明の分子について投与および投与計画の最も有効な形態は、処置される前立腺腫瘍の正確な位置、癌の重症度および経過、処置に対する被験体の健康および応答、ならびに処置する内科医の判断による。従って、この分子の投与量を、個々の被験体に対して滴定すべきである。
【０１９０】
この分子を、別の細胞（自系細胞が好ましいが、異種細胞は本発明の範囲内に包含される）を介して直接または間接的に送達し得る。
【０１９１】
表面積のｍｇ／ｍ2に基づく、種々の大きさおよび種の動物ならびにヒトに対する投与量の相互関係は、Ｆｒｅｉｒｅｉｃｈ，Ｅ．Ｊ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．，Ｒｅｐ．５０（４）：２１９−２４４（１９６６）によって記載される。投与計画における調節は、腫瘍細胞増殖を阻害または殺傷する応答を最適化するように作製され得、例えば、用量を毎日の基準に対して分割または投与し得るか、または用量を状況に依存して比例的に減少し得る（例えば、いくつかの分割された用量を、特異的な治療的状況に従って毎日投与するか、または比例的に減少し得る）。
【０１９２】
処置を達成するために必要とされる本発明の分子の用量は、計画の最適化をとともしてさらに改変され得ることは明かである。
【０１９３】
（トランスジェニック動物の産生）
本発明の別の局面は、ＰＳＣＡ核酸を含むトランスジェニック非ヒト哺乳動物を提供する。例えば、１つの適用において、ＰＳＣＡ欠失非ヒト動物を、ＰＳＣＡホモログを不活性化するように標準ノックアウト（ｋｎｏｃｋ−ｏｕｔ）手順を用いて産生し得るか、またはこのような動物が生存不可能な場合、誘導性のＰＳＣＡホモログアンチセンス分子を使用して、ＰＳＣＡホモログ活性／発現を調節し得る。あるいは、動物を、ヒトＰＳＣＡコード核酸分子またはＰＳＣＡタンパク質の発現もしくは組織特異的様式におけるアンチセンス分子を指向するアンチセンスＰＳＣＡの発現単位を含むように変え得る。このような使用において、ＰＳＣＡホモログ遺伝子の発現が、不活性化もしくは活性化によって変化し、そして／またはヒトＰＳＣＡ遺伝子によって置換される、非ヒト哺乳動物（例えば、マウスまたはラット）を、産生する。このことを、標的化された組換えのような当該分野で公知の種々の手順を用いて達成し得る。一旦、産生されると、ＰＳＣＡホモログ欠失動物、組織特異的様式でＰＳＣＡを発現する動物（ヒトもしくはホモログ）、またはアンチセンス分子を発現する動物、を使用して（１）ＰＳＣＡタンパク質によって媒介される生物学的プロセスおよび病理学的プロセスを同定し得、（２）ＰＳＣＡタンパク質と相互作用するタンパク質および他の遺伝子を同定し得、（３）ＰＳＣＡタンパク質の欠失を克服するように外因的に提供され得る薬剤を同定し得、そして（４）活性を増加または減少するＰＳＣＡ遺伝子の中の突然変異を同定するための適切なスクリーンとして役立ち得る。
【０１９４】
例えば、組織特異的様式でＰＳＣＡをコードするヒトミニ遺伝子（ｍｉｎｉｇｅｎｅ）を発現するトランスジェニックマウスを産生し得、そして通常はＰＳＣＡタンパク質を含まない、組織および細胞においてタンパク質の過剰発現の効果を試験し得る。このストラテジーは、他の遺伝子、すなわちｂｃｌ−２（Ｖｅｉｓら、Ｃｅｌｌ  １９９３  ７５：２２９）に対して首尾良く使用されてきた。このようなアプローチは、ＰＳＣＡタンパク質／遺伝子へ容易に適用され得、そして特異的組織におけるＰＳＣＡタンパク質の潜在的に有益なまたは有害な効果の問題に取り組むために使用され得る。
【０１９５】
さらに、他の実施形態において、本発明は、癌遺伝子を含む、生殖細胞および体細胞を有するトランスジェニック動物を提供し、この癌遺伝子は、癌遺伝子に関する癌のプロモーションに対して上記マウスの組織における上記遺伝子の発現に対して有効なＰＳＣＡ上流領域へ連結され、それによってその癌のマウスモデルを産生する。
【０１９６】
（組成物）
本発明は、本発明のＰＳＣＡ核酸分子またはＰＳＣＡタンパク質をコードするかもしくはそのフラグメントをコードする発現ベクター、および必要に応じて、適切なキャリアを含む薬学的組成物を提供する。本発明は、さらに、ＰＳＣＡタンパク質を認識および結合する、抗体またはそのフラグメントを含む薬学的組成物を提供する。１つの実施形態において、抗体またはそのフラグメントは治療薬剤または細胞毒性薬剤へ結合または連結される。
【０１９７】
薬学的組成物についての適切なキャリアは、任意の物質を含み、本発明の核酸または他の分子と合わされる場合、この物質は、この分子の活性を保持し、そして被験体の免疫系に関して反応性でない。例は、リン酸緩衝化生理食塩水溶液、水、油／水エマルジョンのような乳濁液、および種々の型の湿潤剤のような任意の標準の薬学的キャリアを含むが、これらに限定されない。他のキャリアとしてはまた、無菌溶液、コーティングされた錠剤およびカプセル剤を含む錠剤が挙げられる。代表的に、このようなキャリアは、デンプン、牛乳、砂糖、ある型の粘土、ゼラチン、ステアリン酸またはその塩、ステアリン酸マグネシウムまたはステアリン酸カルシウム、滑石、植物性脂肪または植物性油、ゴム、グリコールあるいは他の公知の賦形剤を含む。このようなキャリアとしてはまた、香味添加剤および彩色添加剤または他の材料が挙げられ得る。このようなキャリアを含む組成物は、周知の慣習的な方法によって処方される。このような組成物はまた、例えばリポソームのような種々の脂質組成物およびポリマーミクロスフェアのような種々のポリマー組成物中に処方され得る。
【０１９８】
本発明はまた、ＰＳＣＡ核酸分子を含む診断用組成物、本発明の核酸分子もしくはその任意の部分へ特異的にハイブリダイズするプローブ、またはＰＳＣＡ抗体もしくはそのフラグメントを提供する。核酸分子、プローブまたは抗体もしくはそのフラグメントは、検出可能なマーカーで標識され得る。検出可能なマーカーの例としては、放射性同位体、蛍光化合物、生物発光化合物、化学発光化合物、金属キレート剤または酵素が挙げられるがこれらに限定されない。さらに、本発明は、ＲＴ−ＰＣＲのようなポリメラーゼ連鎖反応方法論を用いてＰＳＣＡコード配列を増幅し得るＰＳＣＡ特異的プライマー対を含む診断用組成物を提供する。
【０１９９】
（実施例）
（実施例１：新規前立腺細胞表面抗原（ＰＳＣＡ）の同定および分子的特性付け）
（材料および方法）
（ＬＡＰＣ−４異種移植片）  ＬＡＰＣ−４異種移植片を、Ｋｌｅｉｎら、１９９７，Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｄ．３：４０２−４０８に記載のように産生した。
【０２００】
（ＲＤＡ、ノーザン分析およびＲＴ−ＰＣＲ）  アンドロゲン依存性ＬＡＰＣ−４腫瘍およびアンドロゲン非依存性ＬＡＰＣ−４腫瘍の代表的差異的分析を、以前に記載（Ｂｒａｕｎら、１９９５，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１５：４６２３−４６３０）のように実行した。全ＲＮＡを、製造業者の説明書に従ってＵｌｔｒａｓｐｅｃ（登録商標）ＲＮＡ単離システム（Ｂｉｏｔｅｃｘ，Ｈｏｕｓｔｏｎ，ＴＸ）を用いて単離した。ノーザンフィルターを、コード配列およびＰＳＣＡの３’非翻訳配列の部分に相当する６６０ｂｐＲＤＡフラグメントまたはＰＳＡの約４００ｂｐフラグメントを用いてプローブした。ヒト多重組織ブロットを、Ｃｌｏｎｔｅｃｈから得、詳述されるようにプローブした。逆転写酵素（ＲＴ）−ＰＣＲ分析について、第１鎖ｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＡｍｐ  ＲＮＡ  ＰＣＲコアキット（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ−Ｒｏｃｈｅ，Ｎｅｗ  Ｊｅｒｓｅｙ）を用いて全ＲＮＡから合成した。ヒトＰＳＣＡ転写物のＲＴ−ＰＣＲについて、プライマー５’−ｔｇｃｔｔｇｃｃｃｔｇｔｔｇａｔｇｇｃａｇ−（配列番号：１２）および３’プライマー−ｃｃａｇａｇｃａｇｃａｇｇｃｃｇａｇｔｇｃａ−（配列番号：１３）を、約３２０ｂｐフラグメントを増幅するために使用した。熱サイクルを、９５度で３０秒間、６０度で３０秒間および７２度で１分間の２５〜２５サイクル、続いて７２度で１０分間の伸長によって実行した。ＧＡＰＤＨ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）についてのプライマーを、コントロールとして使用した。マウスＰＳＣＡについて、使用したプライマーは、５’プライマー−ｔｔｃｔｃｃｔｇｃｔｇｇｃｃａｃｃｔａｃ−（配列番号：７）および３’プライマー−ｇｃａｇｃｔｃａｔｃｃｃｔｔｃａｃａａｔ−（配列番号：８）であった。
【０２０１】
（ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡについてのインサイチュハイブリゼーションアッセイ）
ｍＲＮＡインサイチュハイブリゼーションのために、全長のＰＳＣＡ遺伝子を含む組換えプラスミドｐＣＲＩＩ（１μｇ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を線状にし、センスジゴキシゲニンおよびアンチセンスジゴキシゲニン標識したリボプローブを産生した。インサイチュハイブリゼーションを、以前に記載（Ｍａｇｉ−Ｇａｌｌｕｚｚｉら、１９９７，Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．７６：３７−４３）のように自動化した機器（Ｖｅｎｔａｎａ  Ｇｅｎ  ＩＩ，Ｖｅｎｔａｎａ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）上で実行した。前立腺標本を、約１３０標本にまで拡大された以前に記載されたデータベース（Ｍａｇｉ−Ｇａｌｌｕｚｚｉら、前出）から得た。スライドを、盲目的な様式において、二人の病理学者によって読み取り、そして点数化した。０〜３の点数を、陽性な細胞のパーセンテージ（０＝０％；１＝＜２５％；２＝２５〜５０％；３＝＞５０％）および染色の強度（０＝０；１＝１＋；２＝２＋；３＝３＋）に従って割り当てた。２つの点数を掛けて、０〜９の全体の点数を所与した。
【０２０２】
（結果）
（ヒトＰＳＣＡ  ｃＤＮＡ）  表象差異分析（ＲＤＡ）（ＰＣＲに基づく差し引きハイブリダイゼーション技術）を、ヒト前立腺癌異種移植片（ＬＡＰＣ−４）のホルモン依存性改変体とホルモン非依存性改変体との間で、遺伝子発現を比較するため、およびアンドロゲン−非依存性ＬＡＰＣ−４亜系統においてアップレギュレートされたｃＤＮＡを単離するために、使用した。複数の遺伝子を、クローニングし、配列決定し、そして示差的発現について調べた。一つの６６０ｂｐフラグメント（クローン番号１５）を同定し、このフラグメントは、正常の前立腺と比較した場合、異種移植片腫瘍において高度に過剰発現されることが見出された。正常な前立腺および異種移植片腫瘍における、このクローンの発現とＰＳＡの発現との比較は、クローン番号１５が、比較的癌特異的であることを示唆した（図９）。
【０２０３】
配列分析は、クローン番号１５がデータベースで正確に適合するものを有さないが、幹細胞抗原２（グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）−アンカー型細胞表面抗原のＴｈｙ−１／Ｌｙ−６スーパーファミリーのメンバー）と３０％のヌクレオチド相同性を共有するということを明らかにした。クローン番号１５は、１２３アミノ酸のタンパク質をコードし、このタンパク質は、ＳＣＡ−２（ＲＩＧ−Ｅとも呼ばれる）と３０％同一であり、そしてＬｙ−６／Ｔｈｙ−１遺伝子ファミリーに特徴的な、多数の高度に保存されたシステイン残基を含む（図３）。ＧＰＩ−アンカー型タンパク質のファミリーとのその相同性と一致して、クローン番号１５は、アミノ末端疎水性シグナル配列、および小さなアミノ酸の群（ＧＰＩ結合についての切断／結合部位を規定する）に続く疎水性アミノ酸のカルボキシ末端ストレッチの両方を含む（ＵｄｅｎｆｒｉｅｎｄおよびＫｏｄｕｋｕｌａ、１９９５、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．６４：５６３−５９１）。これはまた、四つの推定Ｎ−グリコシル化部位も含む。幹細胞抗原−２に対するその強い相同性のために、クローン番号１５は、前立腺幹細胞抗原（ＰＳＣＡ）と改名された。次いで、５’および３’ＰＣＲ  ＲＡＣＥ分析を、ＬＡＰＣ−４アンドロゲン非依存性異種移植片から得られたｃＤＮＡを使用して行い、そして全長ｃＤＮＡヌクレオチド配列（コード領域および非翻訳領域を含む）を得た。ヒトＰＳＣＡをコードする全長ｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、図１Ａに示され、翻訳されたアミノ酸配列は図１Ｂおよび図３に示される。
【０２０４】
（ＰＳＣＡは前立腺細胞において発現される）  正常ヒト組織中のＰＳＣＡ  ｍＲＮＡの分布を、ノーザンブロット分析により調べた。その結果（図９Ｂに示される）は、ＰＳＣＡが前立腺において優性に発現され、胎盤においてはより低レベルの発現が存在することを実証する。少量のｍＲＮＡを、長い露光の後、前立腺組織で見られたレベルの約１００分の１のレベルで、腎臓および小腸において検出し得る。正常ヒト組織におけるＰＳＣＡ発現のＲＴ−ＰＣＲ分析はまた、ＰＳＣＡ発現が制限されることを実証する。正常な組織のパネルにおいて、高レベルのＰＳＣＡ  ｍＲＮＡ発現を前立腺で検出し、有意の発現を、胎盤および扁桃で検出した（図７Ａ）。種々の前立腺癌異種移植片の前立腺癌細胞株およびその他の細胞株、ならびに正常な前立腺におけるＰＳＣＡ  ｍＲＮＡ発現のＲＴ−ＰＣＲ分析は、正常な前立腺、ＬＡＰＣ−４およびＬＡＰＣ−９前立腺癌異種移植片、ならびに卵巣癌細胞株Ａ４３１に限定される高レベルの発現を示した（図７Ｂ）。
【０２０５】
正常な前立腺における主要なＰＳＣＡ転写物は、約１ｋｂである（図９Ｂ）。マウスのＰＳＣＡ発現を、マウスの脾臓、肝臓、肺、前立腺、腎臓、および精巣におけるＲＴ−ＰＣＲにより分析した。ヒトＰＳＣＡと同様に、マウスのＰＳＣＡは、前立腺で優性に発現される。発現はまた、ヒト組織のうち胎盤で見られたレベルと同様のレベルで、腎臓において検出され得る。
【０２０６】
前立腺癌細胞株および異種移植片におけるＰＳＣＡ、ＰＳＭＡおよびＰＳＡの発現を、ノーザンブロット分析により比較した。図１０に示されるその結果は、ＰＳＣＡおよびＰＳＭＡの両方の高レベルの前立腺癌に特異的な発現を実証する一方、ＰＳＡ発現は前立腺癌特異的ではない。
【０２０７】
（ＰＳＣＡは正常な前立腺における基底細胞のサブセットにより発現される）  正常な前立腺は、二つの主要な上皮細胞集団（分泌性管腔細胞および下の基底細胞）を含む。インサイチュハイブリダイゼーションを、その発現を局在化するために、ＰＳＣＡに特異的なアンチセンスリボプローブを使用して、正常な前立腺の複数の部分で行った。図１１に示されるように、ＰＳＣＡは、正常基底細胞のサブセットにおいて排他的に発現される。支質、分泌性細胞または浸潤リンパ球において、染色はほとんど見られない。センスＰＳＣＡリボプローブを用いるハイブリダイゼーションは、バックグランド染色を示さなかった。ＧＡＰＤＨについてのアンチセンスプローブを用いるハイブリダイゼーションは、全ての細胞の型におけるＲＮＡがインタクトであるということを確証した。基底細胞は、最終分化分泌性細胞の推定前駆細胞を表すため、これらの結果は、ＰＳＣＡが前立腺特異的な幹細胞／前駆細胞のマーカーであり得る（Ｂｏｎｋｈｏｆｆら、１９９４、Ｐｒｏｓｔａｔｅ  ２４：１１４−１１８）ということを示唆する。さらに、基底細胞はアンドロゲン非依存性であるため、ＰＳＣＡの基底細胞との関連は、ＰＳＣＡが、アンドロゲン非依存性前立腺癌の進行において役割を果たし得るという可能性を生じる。
【０２０８】
（ＰＳＣＡは、前立腺癌細胞において過剰発現される）  正常前立腺およびＬＡＰＣ−４異種移植片腫瘍におけるＰＳＣＡの発現を比較する初期の分析は、ＰＳＣＡが前立腺癌において過剰発現されることを示唆した。図９に示されるような、ノーザンブロット分析により明らかにされたように、ＬＡＰＣ−４前立腺癌腫瘍は、ＰＳＣＡを強く発現するが、ＢＰＨのサンプルにおいて検出可能な発現はほとんど無い。対照的に、ＰＳＡ発現は、正常前立腺において明確に検出可能であり、ＬＡＰＣ−４腫瘍において見られたレベルの２〜３倍のレベルである。従って、前立腺癌におけるＰＳＣＡの発現は、ＰＳＡで見られた発現の逆であるようである。ＰＳＡは、悪性の前立腺組織よりも正常前立腺組織において、より強く発現されるが、ＰＳＣＡは、前立腺癌においてより高度に発現される。
【０２０９】
前立腺癌の診断におけるＰＳＣＡの発現とその値を確かめるために、１２６個のパラフィンに包埋された前立腺癌の標本を、ＰＳＣＡ発現についてｍＲＮＡインサイチュハイブリダイゼーションにより分析した。標本を、一つを除く全ての場合において、根治的な前立腺切除または経尿道切除により除去された初期の腫瘍から得た。全ての標本は、バックグランド染色を制御するためにセンス構築物およびアンチセンス構築物の両方でプローブ検出された。材料および方法に記載するように、スライドには複合スコアが与えられ、６から９のスコアは強い発現を示し、４のスコアは穏やかな発現を意味する。１２６個のうち１０２個（８１％）の癌がＰＳＣＡについて強く染色されたが、１２６個のうち別の９個（７％）は穏やかな染色を示した（図１１Ｂおよび図１１Ｃ）。高段階の前立腺上皮内新形成（浸潤前立腺癌の推定の前駆病変）は、標本の８２％（１１８個のうち９７個）においてＰＳＣＡについて強く陽性に染色された（図１１Ｂ）（Ｙａｎｇら、１９９７、Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈ．１５０：６９３−７０３）。正常な腺は、一貫して悪性腺より弱く染色された（図１１Ｂ）。９個の標本を、手術の前にホルモン除去治療で処置された患者から得た。これらの残りの推定アンドロゲン非依存性の癌の９個のうち７個（７８％）は、ＰＳＣＡを過剰発現し、パーセントは未処置の癌で見られたものに類似であった。このような高いパーセントの標本が、ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡを発現したため、ＰＳＣＡ発現と腫瘍病期および悪性度分類のような病理学的特徴との間に、統計学的相関はあり得ない。これらの結果は、ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡの過剰発現が、アンドロゲン依存性および非依存性の前立腺癌に共通の特徴であるということを示唆する。
【０２１０】
（ＰＳＣＡは、アンドロゲン非依存性前立腺癌細胞株において発現される）  ＰＳＣＡを差し引きハイブリダイゼーションを使用して初めにクローニングしたが、ノーザンブロット分析は、アンドロゲン依存性ＬＡＰＣ−４異種移植片腫瘍およびアンドロゲン非依存性ＬＡＰＣ−４異種移植片腫瘍の両方における強いＰＳＣＡ発現を実証した（図９）。さらに、ＰＳＣＡ発現を、全ての前立腺癌異種移植片（ＬＡＰＣ−４異種移植片およびＬＡＰＣ−９異種移植片を含む）において検出した。
【０２１１】
アンドロゲン非依存性の、アンドロゲンレセプター陰性前立腺癌細胞株ＰＣ３およびＤＵ１４５におけるＰＳＣＡの発現をまた、逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応分析により検出した。これらのデータは、ＰＳＣＡが、機能的アンドロゲンレセプターの非存在下で発現され得るということを示唆する。
【０２１２】
（実施例２：ＰＳＣＡの生化学的特徴付け）
この実験は、ＰＳＣＡが、グリコシル化された、ＧＰＩアンカー型細胞表面タンパク質であることを示す。
【０２１３】
（材料および方法）
（ポリクローナル抗体および免疫沈降）  ウサギポリクローナル抗血清を、合成ペプチド−ＴＡＲＩＲＡＶＧＬＬＴＶＩＳＫ−（配列番号：９）に対して生成し、そしてＰＳＣＡグルタチオンＳトランスフェラーゼ融合タンパク質を使用してアフィニティー精製した。２９３Ｔ細胞を、ＰＳＣＡ、ＣＤ５９、Ｅ２５またはベクターのみを含むｐＣＤＮＡ  ＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）発現ベクターを用いてリン酸カルシウム沈殿により一過的にトランスフェクトした。免疫沈降を以前に記載されたように行った（ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、１９８８、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ．（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ））。簡単にいうと、細胞を、５００μＣｉのトランス３５Ｓ標識（ＩＣＮ、Ｉｒｖｉｎｅ、ＣＡ）を用いて６時間標識化した。細胞溶解物および馴化培地を、１μｇの精製されたウサギ
抗ＰＳＣＡ抗体および２０μｌのプロテインＡセファロースＣＬ−４Ｂ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈ、Ｓｗｅｄｅｎ）とともに２時間インキュベートした。脱グリコシル化のために、免疫沈降物を１μのＮ−グリコシダーゼＦ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を用いて３７℃で一晩処理するか、または０．１μのノイラミニダーゼ（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）で１時間処理した後２．５ｍＵのＯ−グリコシダーゼ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ）中で一晩処理した。
【０２１４】
（フローサイトメトリー）  ＰＳＣＡ細胞表面発現のフローサイトメトリー分析のために、単一細胞懸濁液を、２μｇ／ｍｌの精製された抗ＰＳＣＡ抗体および１：５００希釈のフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）標識化抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ）を用いて染色した。データをＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で取得し、ＬＹＳＩＳ  ＩＩソフトウェアを使用して分析した。コントロールサンプルを、二次抗体のみを用いて染色した。グリコシルホスファチジルイノシトール結合を、２×１０6の細胞を０．５ユニットのホスファチジルイノシトール特異的ホスホリパーゼＣ（ＰＩ−ＰＬＣ、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を用いて３７℃で９０分間消化することにより、分析した。細胞を、ＦＡＣＳスキャニングまたはイムノブロット法のいずれかによって、消化の前および後で分析した。
【０２１５】
（結果）
（ＰＳＣＡは、細胞表面に発現されたＧＰＩアンカー型糖タンパク質である）
推定ＰＳＣＡアミノ酸配列は、ＰＳＣＡが高度にグリコシル化され、ＧＰＩ機構により細胞表面上に固定されているということを予測する。これらの予測を試験するために、本発明者らは、固有のＰＳＣＡペプチドに対して惹起された、アフィニティー精製されたポリクローナル抗体を産生した（材料および方法を参照のこと）。このペプチドは、グリコシル化部位を含まず、ＣＤ５９（別のＧＰＩアンカー型ＰＳＣＡホモログ）の三次元構造との比較に基づいて、成熟タンパク質の露出された部分にあると推測された（Ｋｉｅｆｅｒら、１９９４、Ｂｉｏｃｈｅｍ．３３：４４７１−４４８２）。アフィニティー精製された抗体によるＰＳＣＡの認識を、ＰＳＣＡおよびＧＳＴ−ＰＳＣＡ融合タンパク質でトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞の抽出物のイムノブロット分析および免疫沈降分析により、実証した。このポリクローナル抗体は、ＰＳＣＡトランスフェクト細胞からの２４ｋｄのバンドを優性に免疫沈降したが、偽トランスフェクト細胞からは免疫沈降しなかった（図１２Ａ）。３つの小さなバンドも存在し、最小のものは、約１０ｋｄであった。この免疫沈降物を、これらのバンドがＰＳＣＡのグリコシル化形態を表すか否かを決定するために、ＮおよびＯ特異的グリコシダーゼを用いて処理した。Ｎ−グリコシダーゼＦはＰＳＣＡを脱グリコシル化したが、Ｏ−グリコシダーゼは、全く効果が無かった（図１２Ａ）。いくつかのＧＰＩアンカー型タンパク質は、膜結合形態および分泌形態の両方を有することが公知である（ＦｒｉｔｚおよびＬｏｗｅ、１９９６、Ａｍ．Ｊ，Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７０：Ｇ１７６−Ｇ１８３）。図１２Ｂは、いくつかのＰＳＣＡが、２９３Ｔ過剰発現系において分泌されるということを示す。ＰＳＣＡの分泌形態は、細胞表面結合形態よりも低い分子量で移動し、これはおそらく共有結合性ＧＰＩ結合の非存在を反映する。この結果は、高レベルの２９３Ｔ細胞株における発現を反映し得、前立腺癌細胞株およびインビボにおいて確認される必要がある。
【０２１６】
蛍光活性化細胞分類（ＦＡＣＳ）分析を、ＰＳＣＡ発現を、細胞表面に局在化するために使用した。非透過化処理した偽トランスフェクト２９３Ｔ細胞、ＰＳＣＡ発現２９３Ｔ細胞およびＬＡＰＣ−４細胞を、アフィニティー精製された抗体または二次抗体のみで染色した。図１２Ｃは、ＰＳＣＡをトランスフェクトした２９３Ｔ細胞およびＬＡＰＣ−４細胞におけるＰＳＣＡの細胞表面発現（偽トランスフェクト細胞では生じない）を示す。この細胞表面発現が、共有結合性ＧＰＩ結合によって媒介されていることを確認するために、細胞を、ＧＰＩ特異的ホスホリパーゼＣ（ＰＬＣ）で処理した。ＰＬＣによる細胞表面からのＰＳＣＡの放出が、蛍光強度における１ｌｏｇ換算（ｏｎｅ  ｌｏｇ  ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ）より大きいことによって示された。消化後の馴化培地におけるＰＳＣＡの回収をまた、イムノブロット法により確認した。ＧＰＩアンカー型タンパク質に対するホスホリパーゼＣ消化の特異性を、ＧＰＩ結合抗原ＣＤ５９またはＧＰＩ非結合膜貫通タンパク質Ｅ２５ａでトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞に同じ実験を行うことで確認した（Ｄｅｌｅｅｒｎｉｊｄｅｒら、１９９６、ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：１９４７５−１９４８２）。ＰＬＣ消化は、ＣＤ５９の細胞表面発現をＰＳＣＡと同じ程度まで減少させるが、Ｅ２５には影響しなかった。これらの結果は、ＰＳＣＡが、グリコシル化された、ＧＰＩアンカー型細胞表面タンパク質であるという予測を支持する。
【０２１７】
（実施例３：ＣＤＮＡをコードするマウスＰＳＣＡホモログの単離）
ヒトＰＳＣＡ  ｃＤＮＡを、潜在的トランスジェニック実験およびノックアウト実験のためのホモログを同定するために、マウスＥＳＴデータベースを検索するために使用した。マウス胎児から得られた一つのＥＳＴおよび新生児腎臓から得られたもう一つのＥＳＴは、ヌクレオチドレベルおよびアミノ酸レベルの両方で、ヒトｃＤＮＡと７０％同一であった。マウスクローンとヒトＰＳＣＡとの間の相同性は、ヒトＰＳＣＡとそのＧＰＩアンカー型ホモログとの間の相違の領域を含み、このことは、これらのクローンがＰＳＣＡのマウスホモログをおそらく表すということを示す。これらのＥＳＴの整列化およびＲＡＣＥ−ＰＣＲを使用する５’伸長は、そのコード配列全体を提供した（図２）。
【０２１８】
（実施例４：ヒトおよびマウスＰＳＣＡ遺伝子の単離）
この実験は、ＰＳＣＡが、第８染色体、バンドｑ２４．２に位置することを示す。
【０２１９】
（材料および方法）
（ゲルクローニング）  ヒトＰＳＣＡ遺伝子を含むλファージクローンを、ヒトＰＳＣＡ  ｃＤＮＡプローブを用いてヒトゲノムライブラリー（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）をスクリーニングすることにより得た（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ））。マウスＰＳＣＡ遺伝子を含むＢＡＣ（細菌性人工染色体）クローンを、マウスＰＳＣＡ  ｃＤＮＡプローブを用いてマウスＢＡＣライブラリー（Ｇｅｎｏｍｅ  Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．、Ｓｔ．  Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）をスクリーニングすることにより得た。１４ｋｂのヒトＮｏｔＩフラグメントおよび１０ｋｂマウスＥｃｏＲＩフラグメントを、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）にサブクローニングし、配列決定し、そして制限酵素地図を作成した。
【０２２０】
（蛍光インサイチュハイブリダイゼーションによる染色体マッピング）  蛍光インサイチュ染色体分析（ＦＩＳＨ）を、以前記載されたように、オーバーラップヒトλファージクローンを使用して行った（Ｒｏｗｌｅｙら、１９９０、ＰＮＡＳ  ＵＳＡ８７：９３５８−９３６２、Ｈ．Ｓｈｉｚｕｙａ、ＰＮＡＳ  ＵＳＡ、８９：８７９４）。
【０２２１】
（結果）
（ＰＳＣＡ遺伝子の構造）  それぞれ約１４ｋｂおよび１０ｋｂのヒトおよびマウスゲノムクローンを得て、制限酵素地図を作成した。ヒトおよびマウスのＰＳＣＡおよびＬｙ−６／Ｔｈｙ−１の遺伝子構造の概略図を、図８に示す。ヒトゲノムクローンおよびマウスゲノムクローンの両方は、ＰＳＣＡ遺伝子の翻訳領域および３’非翻訳領域をコードする３つのエキソンを含む。Ｌｙ−６およびＴｈｙ−１遺伝子ファミリーの他のメンバーに対するＰＳＣＡの相同性に基づいて、５’非翻訳領域をコードする第４のエキソンの存在が推測される（図８）。
【０２２２】
（染色体８ｑ２４．２に対するヒトＰＳＣＡ遺伝子地図）  ＬＡＰＣ−４ゲノムＤＮＡのサザンブロット分析は、ＰＳＣＡが、単一コピーの遺伝子によりコードされるということを明らかにした。他のＬｙ−６遺伝子ファミリーのメンバーは４つのエキソンを含み、この４つのエキソンは、５’非翻訳領域をコードする第一のエキソン、ならびに翻訳領域および３’非翻訳領域をコードするさらに３つのエキソンを含む。その推定の５’第一エキソン以外の全てを含むヒトおよびマウスＰＳＣＡのゲノムクローンを、λファージライブラリーのスクリーニングにより得た。マウスおよびヒトＰＳＣＡクローンは、類似のゲノム構成を有していた。このヒトクローンを、蛍光インサイチュハイブリダイゼーション分析によりＰＳＣＡを局在化するために使用した。オーバーラップヒトＰＳＣＡλファージクローンの同時ハイブリダイゼーションは、第８染色体のみの特異的標識を生じた（図１３）。検出されたシグナルの９７％は、染色体８ｑ２４に局在化し、そのうちの８７％は、染色体８ｑ２４．２に特異的であった。これらの結果は。ＰＳＣＡが第８染色体のバンドｑ２４．２に位置していることを示す。
【０２２３】
（実施例５：ＰＳＣＡの異なるエピトープを認識するモノクローナル抗体の生成）
（材料および方法）
（モノクローナル抗体の生成および産生）  ＢＡＬＢ／ｃマウスを、ＰＳＣＡアミノ酸２２〜９９（図１Ｂ）を含む、精製されたＰＳＣＡ−グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）融合タンパク質を用いて３回免疫化した。簡単にいうと、ヒトＰＳＣＡアミノ酸配列のアミノ酸１８〜９８に対応するＰＳＣＡコード配列を、以下のプライマー対
【０２２４】
【化１】
0004527883.tif 000002
を使用して、ＰＣＲ増幅した。
【０２２５】
増幅されたＰＳＣＡ配列を、ｐＧＥＸ−２Ｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）にクローニングし、Ｅ．ｃｏｌｉを形質転換するために使用しそして融合タンパク質を単離した。
【０２２６】
脾臓細胞を、標準ハイブリドーマ技術を使用して、ＨＬ−１骨髄腫細胞と融合した。ＥＬＩＳＡおよびＦＡＣＳ分析によりＰＳＣＡに陽性であったハイブリドーマ（結果を参照のこと）を、サブクローニングした。腹水をＣ．Ｂ．１７ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウスにおいて産生し、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）をプロテインＧアフィニティーカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、Ｎ．Ｊ．）を使用して精製した。ＰＳＣＡ  ｍＡｂ  １Ｇ８をまた、Ｃｅｌｌ−Ｐｈａｒｍ  Ｓｙｓｔｅｍ  １００で、製造業者（Ｕｎｉｓｙｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｈｏｐｋｉｎｔｏｎ、ＭＡ）により推奨されるように、生産した。
【０２２７】
（ハイブリドーマスクリーニングのためのＥＬＩＳＡ）  ＧＳＴまたはＰＳＣＡ−ＧＳＴを、Ｂｅａｃｔｉ−Ｂｉｎｄ無水マレイン酸活性化ポリスチレンプレート（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）に固定化した。５０μｌのハイブリドーマ培地をそれぞれのウェルに添加し、そして、１時間、室温でインキュベートした。ウェルを、０．１％ＢＳＡおよび０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含む２００μｌのＰＢＳで３回洗浄し、そして、アルカリホスファターゼ（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）で標識した１００μｌの抗マウスＩｇＧ（１：４０００）と共に１時間インキュベートした。プレートをアルカリホスファターゼ基質（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）を用いて発色させた。
【０２２８】
（細胞培養）  ＬＮＣａＰをＡＴＣＣより入手し、ＰＳＣＡを含むｐＣＤＮＡＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）発現ベクター、または単独のベクターで安定にトランスフェクトした（Ｒｅｉｔｅｒ，Ｒら、１９９８）。一過性にＰＳＣＡまたは単独のベクターでトランスフェクトした２９３Ｔ細胞を、以前に記載されたように調製した（Ｒｅｉｔｅｒ，Ｒら、１９９８）。１％プロナーゼ中で室温で１８分間消化した後、ＬＡＰＣ−９異種移植片の外殖片を、ＰｒＥＧＭ培地（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ、Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）中で増殖した。ＦＡＣＳ分析の前に、ＬＡＰＣ−９細胞を４０μｍのセルストレーナーに通し、単一の細胞懸濁物を得た。
【０２２９】
（免疫蛍光）  細胞を、ポリ−Ｌ−リジンでコートしたカバーガラス上で増殖させた。免疫蛍光アッセイを、透過化処理した、および透過化処理していない固定細胞について行った。固定のため、細胞を、２％のパラホルムアルデヒドのＰＢＳ−ＣＭ（ＰＢＳ、１００μＭ  ＣａＣｌ2、１ｍＭ  ＭｇＣｌ2）溶液で３０分間、暗所で処理し、５０μＭのＮＨ4ＣｌのＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡ（ＰＢＳ、１００μＭ  ＣａＣｌ2、１ｍＭ  ＭｇＣｌ2、０．２％  ＢＳＡ）溶液で１０分間クエンチし、そしてＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡで２回洗浄した。透過化処理のため、細胞をさらにＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡ−Ｓａｐｏｎｉｎ（０．０７５％のサポニン（Ｓｉｇｍａ）のＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡ溶液）で１５分間、室温で処理した。一次ｍＡｂをＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡ（透過化処理のためには、サポニンを追加）中、２〜５ｍｇ／ｍｌで６０分間添加し、そしてＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡで２回洗浄した。ＦＩＴＣと結合したヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（ＰＢＳ−ＣＭ−ＢＳＡ＋／−サポニンに１：５００で希釈；Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）を３０分間添加し、そしてＰＢＳ−ＣＭで３回洗浄した。スライドをベクターシールド（Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｉｎｃ．、Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、ＣＡ）で、マウントした。
【０２３０】
（フローサイトメトリー）  細胞（１×１０6）を、ウシ胎児血清またはハイブリドーマ馴化培地を含むＰＢＳ中、２μｇ／ｍｌで、１００μｌのｍＡｂと共に３０分間、４℃で、インキュベートした。洗浄後、細胞をＦＩＴＣと結合したヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ、ＡＬ）の１：５００希釈液で染色した。
ＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）でデータを得、そしてＬＹＳＩＳ  ＩＩソフトウエアを用いることにより分析した。
【０２３１】
（イムノブロットおよび免疫沈降）  免疫沈降を、記載のように行った（Ｈａｒｌｏｗ，Ｅ．およびＬａｎｅ，Ｄ．、１９８８）。簡単には、細胞を５００μＣｉのトランス３５標識（ＩＣＮ）で６時間、標識した。細胞溶解物を、３μｇのｍＡｂおよび２０μｌのプロテインＡ−ＳｅｐｈａｒｏｓｅＣＬ−４Ｂ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）と共に、２時間インキュベートした。イムノブロットのため、細胞を１Ｘ  ＳＤＳ  Ｌａｅｍｍｌｉサンプル緩衝液中に溶解し、５分間、煮沸することによりタンパク質抽出物を調製した。タンパク質を１２．５％ＳＤＳポリアクリルアミド上で分離し、そしてニトロセルロース膜に転写し、洗浄し、そして１０ｍｌのブロッキング緩衝液（ＴＢＳＴ中５％無脂肪乳）中の２μｇ  ｍＡｂと共にインキュベートした。ブロットをＡｍｅｒｓｈａｍ増強化学発光検出システム（Ａｍｅｒｓｈａｍ、Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ  Ｈｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）を用いて発光させた。
【０２３２】
（免疫組織化学）  正常な、ホルマリン固定したパラフィン包埋組織サンプルを、Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔｓ  ｏｆ  Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ  ａｔ  Ｂｅｔｈ−Ｉｓｒａｅｌ  Ｄｅａｃｏｎｅｓｓ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ−Ｈａｒｖａｒｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  ＳｃｈｏｏｌおよびＵＣＬＡから入手した。最初の根治的前立腺切除術の標本を、以前に記載されたデータベースから選択した（Ｍａｇｉ−Ｇａｌｌｕｚｚｉ，Ｃら、１９９７）。骨転位およびそれに一致する生検標本を、ＵＣＬＡ  Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｐａｔｈｏｌｏｇｙから入手した。再現性を保証するため、２つの研究所で独立に、正常組織を染色し、そしてスコア付けした。ＵＣＬＡから入手した標本を、以前に記載された免疫ペルオキシダーゼ技術（Ｓａｉｄ，Ｊ．Ｗ．ら、１９９８）の改変法で染色した。抗原の検索を、業務用蒸し器および０．０１Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いて、パラフィン切片で行った。ＰＳＣＡ  ｍＡｂｓとの５０分間のインキュベーションの後（以下を参照のこと）、スライドガラスを、ウサギ抗マウスＩｇＧ、ブタ抗ウサギＩｇＧおよびウサギ抗ブタＩｇＧ（全てビオチン結合している）で続けて処理した。次いで、スライドガラスをストレプトアビジン−ペルオキシダーゼと共にインキュベートし、そしてジアミノベンジジン反応を用いて抗体位置決めを行った。Ｂｅｔｈ−Ｉｓｒａｅｌ−Ｄｅａｃｏｎｅｓｓ−Ｈａｒｖａｒｄ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｓｃｈｏｏｌから入手した標本を、以前に記載した自動化Ｖｅｎｔａｎａ  ＮｅｘＥＳ機器（Ｖｅｎｔａｎａ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｔｕｃｓｏｎ、ＡＺ）を用いて染色した（Ｍａｇｉ−Ｇａｌｌｕｚｚｉ，Ｃら、１９９７）。７５０Ｗのマイクロ波により、１５分間、ＥＤＴＡ（ｐＨ８．０５）において、抗原の検索を行った。ＳＣＩＤ腹水から約１μｇ／μｌの濃度で精製したｍＡｂｓを、以下の濃度で用いた：１Ｇ８＝１：２０；３Ｅ６＝１：３０；２Ｈ９＝１：５０；４Ａ１０＝１：１００；３Ｃ５＝１：１００。ｍＡｂ１Ｇ８をＣｅｌｌＰｈａｒｍ  Ｓｙｓｔｅｍ  １００中に産生し、１：１０の濃度で使用した。陽性コントロールはＬＡＰＣ−９およびＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡを含み、そして陰性コントロールはＬＮＣａＰ、およびアイソタイプが一致した無関係な抗体であった。最初の生検標本は、骨転位を有する３人の患者について入手可能であった。脱石灰の状態に近づけるため、ＰＳＣＡ  ｍＡｂｓで染色する前に、これらの標本からのスライドガラスを２０分間、Ｄｅｃａｌ−Ｓｔａｔ（Ｌｅｎｇｅｒｓ、ＮＹ）中で処理した。
【０２３３】
モノクローナル抗体（ｍＡｂｓ）を、ＰＳＣＡのアミノ末端およびカルボキシル末端のシグナル配列の両方を欠くＰＳＣＡ−ＧＳＴ融合タンパク質に対して惹起した。ＰＳＣＡ−ＧＳＴ融合タンパク質およびＧＳＴのみを用いるＥＬＩＳＡによって、陽性の融合物を選別した。スクリーニングされた４００のハイブリドーマの内、２８はＰＳＣＡ−ＧＳＴを認識したが、ＧＳＴのみは認識しなかった。これらの融合物を、ＰＳＣＡにトランスフェクトした透過化処理していない２９３Ｔ細胞および偽トランスフェクトした２９３Ｔ細胞のフローサイトメトリーにより二次スクリーニングした。ＦＡＣＳによる二次スクリーニングは、細胞表面上のＰＳＣＡを認識可能なクローンが、後にインビボ標的化適用に有用であることを仮定して、それらを選別するために行った。７つの陽性融合物をこのように同定し（ｍＡｂ  ２Ａ２、３Ｇ３、４Ａ１０、１Ｇ８、３Ｅ６、３Ｃ５および２Ｈ９）、そのうちの５つ（ｍＡｂ  ４Ａ１０、１Ｇ８、３Ｅ６、３Ｃ５および２Ｈ９）をサブクローン化し、そして精製した。
【０２３４】
ｍＡｂを、ＰＳＣＡを免疫沈降する能力、および／またはイムノブロット上のＰＳＣＡを認識する能力について試験した。全てのｍＡｂは、２９３Ｔ−ＰＳＣＡ細胞に由来する、ならびに、高レベルの内因性ＰＳＣＡを発現するＬＡＰＣ−９前立腺癌異種移植片腫瘍に由来する、ＰＳＣＡを免疫沈降した（図３７）。同様に、全てのｍＡｂは、イムノブロットによりＰＳＣＡを検出した。しかし、ｍＡｂｓ  ２Ｈ９および３Ｅ６は、約１２ｋｄの脱グリコシド化形態のＰＳＣＡしか認識しなかった（図３４）。
【０２３５】
５つのｍＡｂにより認識されるエピトープのＰＳＣＡ上の位置を、３つの短縮型ＰＳＣＡ−ＧＳＴ融合タンパク質を用いるイムノブロット分析により決定した。ｍＡｂ  ４Ａ１０、２Ｈ９および３Ｃ５は、ＰＳＣＡのアミノ末端部分に存在するエピトープ（すなわち、アミノ酸２１〜５０）を認識し；ｍＡｂ  １Ｇ８はＰＳＣＡの中間部分に存在するエピトープ（すなわち、アミノ酸４８〜８５）を認識し；そして、ｍＡｂ  ３Ｅ６はＰＳＣＡのカルボキシル末端（アミノ酸８５〜９９）において反応する（図１５）。５つ全てのｍＡｂは、図１５に記載するようにＩｇＧである。これらの結果は、５つのｍＡｂが、複合アッセイにおいてＰＳＣＡを検出することができ、少なくとも３つの異なるＰＳＣＡ上のエピトープを認識し得ることを示す。
【０２３６】
（ＰＳＣＡ  ｍＡｂは前立腺癌細胞の細胞表面上を染色する）
ＰＳＣＡ生物学を研究するための、およびインビボ標的化適用のような潜在的臨床適用のためのｍＡｂの有用性は、形質膜上で目的の抗原を認識するそれらの能力に依存する（Ｌｉｕ，Ｈ．ら、１９９７；ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎ，Ｐ．ら、１９９８；Ｗｕ，Ｙ．ら、１９９５；Ｔｏｋｕｄａ，Ｙ．ら、１９９６）。ｍＡｂ  ２Ｈ９、３Ｅ６、１Ｇ８、４Ａ１０およびＣ５が、特に前立腺癌細胞の細胞表面上のＰＳＣＡを認識する能力を決定するため、ＰＳＣＡでトランスフェクトしたＬＮＣａＰ細胞（ＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡ）およびＬＡＰＣ−９細胞をフローサイトメトリーおよび間接的免疫蛍光により調べた。２９３Ｔ−ＰＳＣＡ細胞についてと同様、５つ全てのｍＡｂｓは、透過化処理していないＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡおよび／またはＬＡＰＣ−９細胞の細胞表面上のＰＳＣＡを、フローサイトメトリーにより検出し得た（図３３）。偽トランスフェクトしたＬＮＣａＰ、およびネオマイシン単独を含むベクター（ＬＮＣａＰ−ｎｅｏ）でトランスフェクトしたＬＮＣａＰ（いずれも検出可能なＰＳＣＡ  ｍＲＮＡを発現しない）は、共に陰性であった。
【０２３７】
免疫蛍光分析を、ＰＳＣＡタンパク質が細胞表面に位置するかどうかを確認するために、透過化処理したおよび透過化処理していない細胞の両方で行った（Ｌｉｕ，Ｈ．ら、１９９７）。透過化処理していないＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡは、ｍＡｂ  １Ｇ８、３Ｅ６、４Ａ１０および３Ｃ５に対して明らかな細胞表面反応性を示したが、ｍＡｂ  ２Ｈ９に対しては染色されなかった（ｍＡｂ  ２Ｈ９はまた、ＦＡＣＳによりＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡ細胞上のＰＳＣＡを検出しなかった）。ＬＡＰＣ−９細胞は、５つ全てのｍＡｂに対して細胞表面反応性を示した（図３５）。ＬＮＣａＰ−ｎｅｏは、予想されたように、透過化処理の有無に関わらず陰性であった。ＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡおよびＬＡＰＣ−９の透過化処理は、膜染色および細胞質染色の両方を生じた。全てのｍＡｂは、細胞表面上に斑点の染色パターンを生じたが、それはｍＡｂ  ３Ｅ６、３Ｃ５および４Ａ１０に関して最も顕著であった（図３５）。このパターンは、ＰＳＣＡの細胞表面の両駅への凝集またはクラスター化を反映し得る。これらの結果は、５つ全てのｍＡｂがインタクトな前立腺癌細胞の細胞表面上ＰＳＣＡと反応することを示す。
【０２３８】
（正常前立腺中のＰＳＣＡの免疫組織化学的染色）
ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡは、正常前立腺中の基底細胞のサブセットに位置し、このことはＰＳＣＡが前立腺の幹細胞／前駆細胞に対する細胞表面標識であり得ることを示唆する（Ｒｅｉｔｅｒ，Ｒ．ら、１９９８）。ＰＳＣＡタンパク質が基底細胞のマーカーであり得る可能性を試験するため、正常前立腺のパラフィン包埋切片において、ＰＳＣＡ発現を免疫組織化学的に調べた。ｍＡｂ  １Ｇ８および２Ｈ９は基底細胞および分泌細胞の両方の細胞質を染色し、一方でｍＡｂ  ３Ｅ６は基底細胞と主に反応した（図３８）。基底細胞サイトケラチンを発現する萎縮性腺は、全ての３つのｍＡｂで強く染色された（図３８）（Ｏ’Ｍａｌｌｅｙ，Ｆ．Ｐ．ら、１９９０）。ｍＡｂ  ３Ｃ５および４Ａ１０は、パラフィン切片において強いバックグラウンド染色および／または非特異的な核染色を生じ、さらには使用されなかった。これらの結果は、ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡが基底細胞において特異的に検出されるが、ＰＳＣＡタンパク質は前立腺の上皮細胞層の両方（すなわち、基底および分泌）において検出され得ることを示唆するが、それぞれの抗体の染色パターンにいくらかの違いはある。
【０２３９】
（正常組織の免疫組織化学的分析）
本発明者らの初期の研究は、男性におけるＰＳＣＡ発現が、腎臓および小腸において検出可能なＲＮＡが低レベルであり、主に前立腺特異的であることを示した。ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡを、胎盤においてもまた検出した。ＰＳＣＡタンパク質発現の前立腺特異性を、ｍＡｂ  １Ｇ８を用いて、２０の組織の免疫組織化学染色により試験した（表１を参照のこと）。ｍＡｂ  １Ｇ８での陽性の組織染色は、異なるエピトープに対して向けられるｍＡｂとの再現性を保証するため、ｍＡｂ  ２Ｈ９および／または３Ｅ６で確認された。染色はまた、結果を確認するため、２つの研究所で独立に行い、そしてスコア付けした。ＲＮＡ分析から予想されたように、胎盤は試験した全てのｍＡｂについて陽性であり、細胞質染色が栄養膜において見られた（図３９Ａ）。腎臓において、染色は集合尿細管および遠位曲尿細管において検出されたが、糸球体においては検出されなかった（図３９Ａ）。膀胱および尿管の移行上皮（以前は、ｍＲＮＡレベルで調べていなかった）は、試験した全てのｍＡｂについて陽性であった（図３９Ａ）。有意な免疫反応性を有する他の唯一の組織は結腸であり、陰窩の奥深くで単一の細胞が強く陽性に染色された（図３９Ａ）。クロモグラニンを用いた二重染色は、これらの細胞が神経内分泌由来であることを示した。
【０２４０】
膀胱におけるｍＡｂの反応性がＰＳＣＡを表すことを確認するため、根治的膀胱切除で得られた３つの正常な膀胱サンプル上でノーザンブロット分析を行い、前立腺、腎臓およびＬＡＰＣ−９異種移植片におけるＰＳＣＡ発現と比較した（図３９Ｂ）。ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡは、膀胱において、前立腺において見られたより低いレベルで検出され、免疫組織学的結果を確証した。３つの腎臓標本において、シグナルは検出されず、腎臓におけるＰＳＣＡ発現は前立腺よりも有意に低いという本発明者らの以前の結果と首尾一貫していた（Ｒｅｉｔｅｒ，Ｒ．ら、１９９８）。骨転位から樹立された前立腺癌異種移植片ＬＡＰＣ−９は、正常な膀胱および前立腺と比較して非常に高いレベルのＰＳＣＡ  ｍＲＮＡを発現する（Ｗｈａｎｇ，Ｙ．Ｅ．ら、１９９８）。これらの結果は、男性におけるＰＳＣＡ発現が主に前立腺優勢であることを確証するが；尿路上皮、腎臓の集合尿導管および結腸の神経内分泌細胞における検出可能なＰＳＣＡタンパク質発現もまた存在する。
（ＰＳＣＡタンパク質は、局在化した前立腺癌の大部分によって発現される）
本発明者らの以前の研究において、ｍＲＮＡは約８０％の腫瘍において発現し、そして悪性腺よりも正常腺においてより高度に発現するようである（Ｒｅｉｔｅｒ，Ｒ．ら、１９９８）。ＰＳＣＡタンパク質が前立腺癌において検出され得るかどうか、およびＰＳＣＡタンパク質レベルが良性腺と比較して悪性腺において増加するかどうかを決定するため、初期転位性前立腺癌のパラフィン包埋の病理標本をｍＡｂ  １Ｇ８で免疫染色した（図２１および２８）。単離された場合もまた、染色の特異性を確認するために、ｍＡｂ  ３Ｅ６または２Ｈ９で染色した。１５の初期癌の内、１２は陽性に染色された（図２１）（高い段階の前立腺の上皮内新形成の病巣を含む２つの症例のうち２つを含む）。染色強度は異なり、７つの症例は癌および隣接する正常な腺において同等な染色を示し、そして５つは癌において有意に強い染色を示した。いくつかの場合においては、悪性腺において強い発現が存在し、そして隣接した正常組織において検出可能な発現は存在しなかった（図２１；患者１）。また、染色が不均一であり、いくつかの悪性腺について、他と比べてより強く染色されるいくつかの症例も存在した（図２１；患者２）。全体的に、あまり分化していない腫瘍は、十分に分化した腫瘍より強く染色され、このことはＰＳＣＡ過剰発現が腫瘍段階の増進と相関し得ることを示唆した（図２１；患者３）。これらの結果はＰＳＣＡタンパク質が前立腺癌において発現することを示す。本発明者らのインサイチュ研究における以前のｍＲＮＡと一致して、有意な割合の癌において、おそらく増進する腫瘍の段階と一致して、ＰＳＣＡは過剰に発現すると思われる。
【０２４１】
本研究は、ＰＳＣＡに対する５つの単クローン抗体を用いたＰＳＣＡタンパク質発現の最初の特徴付けを記載する。これらのｍＡｂは細胞表面の外側のエピトープを認識するので、それらは前立腺癌診断および治療のための有用性を有し得る（Ｌｉｕ，Ｈ．ら、１９９７）。１つの可能性は、ＰＳＭＡに対する抗体を使用するＰｒｏｓｔａｓｃｉｎｔスキャンと同様に、これらのｍＡｂが転位性疾患の部位を位置決めするために用いられ得ることである（Ｓｏｄｅｅ，Ｄ．Ｂ．ら、１９９６）。別の可能性は、それらが、単独でか、または放射性同位体または他の毒素と結合されるかのいずれかで、前立腺癌細胞を治療的に標的化するために用いられ得ることである。同様のアプローチは、現在、ＰＳＭＡ上の細胞外エピトープに対する抗体を用いて評価されている（Ｍｕｒｐｈｙ，Ｇ．Ｐ．ら、１９９８；Ｌｉｕ，Ｈ．ら、１９９７；Ｌｉｕ，Ｈ．ら、１９９８）。
【０２４２】
ＰＳＣＡ  ｍＡｂは、細胞表面を斑点状に染色し、ＰＳＣＡが細胞表面の特定の領域に局所化し得ることを示唆する。ＧＰＩ−アンカー型タンパク質は、細胞表面の界面活性剤の不溶性糖脂質富化ミクロドメイン（ＤＩＧＳ）においてクラスター化することが公知である（Ｖａｒｍａ，ＲおよびＭａｙｏｒ，Ｓ．，１９９８）。小胞およびスフィンゴリピド−コレステロールラフト（ｒａｆｔ）を含むこれらのミクロドメインは、シグナル伝達および分子輸送において重要な役割を果たすと考えられている（Ａｎｄｅｒｓｏｎ，Ｒ．Ｃａｖｅｏｌａｅ，１９９３；Ｆｒｉｅｄｒｉｃｈｓｏｎ，Ｔ．およびＫｕｒｚｃｈａｌｉａ，Ｔ．Ｖ．，１９９８；Ｈｏｅｓｓｌｉ，Ｄ．Ｃ．およびＲｏｂｉｎｓｏｎ，Ｐ．Ｊ．，１９９８）。Ｔｈｙ−１（ＰＳＣＡの相同体）は以前、脂質−ミクロドメインにおける相互作用を介してｓｒｃキナーゼにシグナルを送ることが示された（Ｔｈｏｍａｓ，Ｐ．Ｍ．およびＳａｍｕｅｌｓｏｎ，Ｌ．Ｅ．，１９９２；Ｓｔｅｆａｎｏｖａ，Ｉ．ら、１９９１）。本発明者らの実験室における予備的な亜細胞分画実験は、ＤＩＧＳ中のＰＳＣＡの存在を確認する（Ｘａｖｉｅｒ，Ｒ．ら、１９９８）。
【０２４３】
ＧＰＩ−アンカー型タンパク質はまた、プロスタソーム（ｐｒｏｓｔａｓｏｍｅ）（前立腺上皮細胞より放出された、膜に閉ざされた保存ビヒクル）に局在化すると報告された（Ｒｏｎｑｕｉｓｔ，Ｇ．およびＢｒｏｄｙ，Ｉ．、１９８５）。ＣＤ５９（補体媒介性細胞溶解のＧＰＩアンカー型インヒビター）は、正常の前立腺上皮細胞のプロスタソームおよび前立腺分泌物中に高濃度で見出される（Ｒｏｏｎｅｙ，Ｉ．ら、１９９３）。ＰＳＣＡタンパク質は、前立腺分泌細胞中に検出される。
【０２４４】
ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡが独占的に基底細胞に局在化するという本発明者らの以前の発見に反して、本結果は、ＰＳＣＡタンパク質が基底細胞および分泌細胞の両方に存在し得ることを示唆する。前立腺におけるｍＲＮＡとタンパク質局在性との間の同様の違いは、ＰＳＭＡおよびアンドロゲンレセプターについて記載されている（Ｍａｇｉ−Ｇａｌｕｚｚｉ，Ｃ．ら、１９９７；Ｋａｗａｋａｍｉ，Ｍ．およびＮａｋａｙａｍａ，Ｊ．，１９９７）。分泌細胞中のＰＳＣＡタンパク質の存在についての１つの可能な説明は、ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡが基底前駆細胞において転写されるが、そのＰＳＣＡタンパク質発現は、基底細胞が分泌細胞へ分化するように存続することである。別の可能性は、ＰＳＣＡタンパク質が基底細胞から分泌細胞へ翻訳後に転写されることであり得る。
【０２４５】
ｍＡｂ  ３Ｅ６、１Ｇ８および２Ｈ９による基底細胞および分泌細胞の染色強度における違いは、基底および分泌細胞における抗体および／またはＰＳＣＡの翻訳後修飾における違いにより認識される異なるエピトープを反映し得る。この可能性を支持することは、５つのｍＡｂが、全てのアッセイまたは細胞株においてＰＳＣＡと同様に反応しないという意見である。ｍＡｂ  ２Ｈ９は、ＬＡＰＣ−９の細胞表面上のＰＳＣＡを認識し、ＬＮＣａＰ−ＰＳＣＡは認識しない。このことは、この抗体により認識されるエピトープが、後者の細胞型において改変され得るか、または覆い隠され得ることを示唆する。本発明者らはまた、ｍＡｂ  ３Ｅ６が、時としてｍＡｂ  １Ｇ８および２Ｈ９と同じように強く癌を染色しないことを観測した。このことは、ｍＡｂ  ３Ｅ６がＰＳＣＡの特定の型と優先的に反応し得ることを示唆する。
【０２４６】
男性においては大部分は前立腺特異的であるが、ＰＳＣＡはまた、尿路上皮、直腸の神経内分泌細胞、ならびに腎尿細管および集合管において低レベルで発現される。腎尿細管および集合管において見られる染色は、これらの構造が発生学的に中腎管の尿管芽に由来することにおいて興味深く、腎臓において見られる染色パターンに対する考えられ得る理由を示唆する。検出可能なＰＳＣＡ  ｍＲＮＡの腎臓試料における非存在は、低レベルの発現、または集合管が腎髄質中に位置するが故に、このサンプルが腎皮質から主に得られたサンプルである可能性のいずれかを反映し得る。
【０２４７】
前立腺特異的な細胞表面遺伝子を同定するための主な起動力は、選択的な、無毒性の治療を開発する要求である。ＰＳＭＡ（別の「前立腺制限」タンパク質）はまた、十二指腸、結腸の神経内分泌細胞、および近位尿細管において発現されることが示されている（Ｓｉｌｖｅｒ，Ｄ．Ａ．ら、１９９７）。ＰＳＭＡワクチン治療の先の報告は、有意な毒性を生じていない（Ｔｊｏａ，Ｂ．Ａ．ら、１９９８）。
【０２４８】
尿路上皮および腎臓におけるＰＳＣＡの発現は、正常な前立腺における発現より低く、そして評価された多くの前立腺癌において見られる発現よりも顕著に低いようである。ＰＳＣＡに対して指示される治療は、それ故、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕを過剰発現する乳癌を主に標的にするＨｅｒ−２／ｎｅｕ抗体と同程度に、癌に対して相対的に選択的であり得る（Ｄｉｓｉｓ，Ｍ．Ｌ．およびＣｈｅｅｖｅｒ，Ｍ．Ａ．，１９９７）。
【０２４９】
尿路上皮および腎臓におけるＰＳＣＡの発現は、それが移行細胞癌および腎臓細胞癌において発現され得る可能性を生じる。検査された２つの膀胱癌はＰＳＣＡを発現し、１つはＬＡＰＣ−９と同様のレベルであり、これはＰＳＣＡが移行細胞癌のいくつかの場合において過剰発現され得ることを示唆する。膀胱癌試料のより完全な調査が、この可能性を試験するために必要とされる。
【０２５０】
本明細書中のデータは、ＰＳＣＡが前立腺癌の大多数において発現されるという本発明者らの初期の観察を支持する。同様に、ＰＳＣＡタンパク質は、隣接する正常な腺と比較した場合に、いくつかの前立腺腫瘍において過剰発現され、前立腺癌治療のための標的としてのその使用を支持している。ｍＲＮＡのインサイチュ研究と対照的に、現在の結果はＰＳＣＡタンパク質発現が、癌の段階および／または程度と相関し得ることを示唆する。ＲＮＡとタンパク質発現との間の同様の差異は、サイモシンＢｅｔａ−１５について記載されている（Ｂａｏ，Ｌ．ら、１９９６）。
【０２５１】
（表１．正常な組織におけるＰＳＣＡ発現）
（染色）      （組織）
陽性        前立腺（上皮）
膀胱（移行上皮）
胎盤（栄養膜）
結腸（神経内分泌細胞）
腎臓（尿細管および集合管）*
陰性        腎臓（糸球体）
前立腺（間質）
膀胱（平滑筋）
精巣
子宮内膜
小腸
肝臓
膵臓
乳房
胆嚢
骨格筋
脳
末梢神経
骨髄
胸腺
脾臓
肺
気管支
心臓
*ｍＡｂ  ３Ｅ６は遠位曲尿細管と反応し、一方ｍＡｂ  １Ｇ８は遠位尿細管と反応し、そしていくつかの場合には、近位尿細管と反応する。
【０２５２】
（実施例６）
本実験は、ＰＳＣＡ発現が前立腺癌の骨転移において増幅されることを示す。
【０２５３】
（材料および方法）
ウマ血清（ＮＨＳ）（ＧＩＢＣＯ  ＃２６０５０−０７０）を１％カゼイン、ＰＢＳＴ中に希釈した（１／２０希釈）。ＰＳＣＡを認識する本発明の抗体を、１／１００ＮＨＳ、ＰＢＳＴ中に希釈した。
【０２５４】
検出システムは、ＨＲＰ−ウサギ抗マウスＩｇ（ＤＡＫＯ  Ｐ２６０）、ＨＲＰ−ブタ抗ウサギＩｇ（ＤＡＫＯ  Ｐ２１７）、ＨＲＰ−ウサギ抗ブタＩｇ（ＤＡＫＯ  Ｐ１６４）を含んだ。それぞれを、１／１００ＮＨＳ、ＰＢＳＴ中１／１００に希釈した。
【０２５５】
３，３’−ジアミノベンジジンテトラヒドロクロリド（ＤＡＢ）（Ｆｌｕｋａ）ストックを、１３５ｍｌの０．０５Ｍトリス（ｐＨ７．４）中に５ｇ溶解することにより作製した。ＤＡＢを、１ｍｌ／バイアル中に等分し、そして−２０℃で冷凍した。ＤＡＢの検量線用溶液を、１ｍｌのＤＡＢを４０ｍｌのＤＡＢ緩衝液および４０マイクロリットルの５０％Ｈ2Ｏ2に加えることにより作製した。
【０２５６】
ＤＡＢ緩衝液を、１．３６ｇのイミダゾール（Ｓｉｇｍａ  ＃Ｉ−０１２５）と１００ｍｌのＤ2−Ｈ2Ｏを混合し、次いで５Ｎ  ＨＣｌでｐＨを７．５に調整することにより調製した。ｐＨ調整後、２０ｍｌの０．５ＭトリスｐＨ７．４および８０ｍｌのＤ2−Ｈ2Ｏを加えた。
【０２５７】
抗体に対して陽性であることが既知であり、そして先に示された、組織／細胞の切片は、患者のスライドと共に行った。このスライドは、その抗体に対する「陽性のコントロール」として役立つ。患者の試験試料の切片を、一次抗体の代わりに陰性のコントロール抗体とインキュベートした。このスライドは、試験のための「陰性のコントロール」として役立つ。
【０２５８】
染色手順は以下のとおりである。骨サンプルをスライドに適用した。次いで、このスライドを、６０℃で一晩ベーキングした。スライドを、５分間ずつ４交換のキシレン中で脱パラフィン化し、そして段階的な一連のエチルアルコール（１００％×４、９５％×２）から水道水を通過させ、次いでＮＢＦに移し、そして３０分間固定した。固定されたスライドを、流水道水中に１５分間置き、３％Ｈ2Ｏ2−ＭｅＯＨに移し、１０分間インキュベートし、そして流水道水で５分間洗浄し、次いで脱イオン水でリンスした。
【０２５９】
次いで、スライドを０．０１Ｍクエン酸塩緩衝液ｐＨ６．０に供し、４５℃で２５分間加熱し、１５分間冷却し、次いでＰＢＳで洗浄した。次いで、このスライドをＰＢＳでリンスし、そして以下の４工程のプログラムを用いるプログラムされたＤＡＫＯ自動染色機に配置した。この４工程のプログラムは以下の通りである。スライドをＰＢＳでリンスし、そしてＰＢＳＴ中１％カゼイン中の１／２０ＮＨＳを用いて１０分間ブロックする。次いで、一次抗体を適用し、そして３０分間インキュベートし、続いて緩衝液でリンスする。次いで、ＨＲＰ−ウサギ抗マウスＩｇを適用し、そして１５分間インキュベートし、続いて別の緩衝液でリンスする。ＨＲＰ−ブタ抗ウサギＩｇを適用し、そして１５分間インキュベートし、続いて緩衝液でリンスする。ＨＲＰ−ウサギ抗ブタＩｇを適用し、そして１５分間インキュベートし、続いて緩衝液でリンスする。
【０２６０】
次いで、ＤＡＢをこのスライドに適用し、そして５分間インキュベートし、続いて緩衝液でリンスする。第二のＤＡＢを適用し、そして５分間インキュベートし、続いて緩衝液でリンスする。
【０２６１】
このスライドを、自動染色機から取り出して、そしてスライドホルダー中に置き、水道水でリンスし、そしてＨａｒｒｉｓヘマトキシリンでカウンター染色する（１５秒）。次いで、このスライドを水道水で洗浄し、酸アルコールに浸漬し、水道水で洗浄し、炭酸水素ナトリウム溶液に浸漬し、そして水道水で洗浄する。次いで、このスライドを、段階的なエチルアルコール（９５％×２、１００％×３）およびＰｒｏｐａｒ×３で脱水し、そしてＰｅｒｍｏｕｎｔでカバーガラスをする。
【０２６２】
（前立腺癌の骨への転移において強力に発現されるＰＳＣＡタンパク質）
前立腺癌は、優先的に骨に転移し、そして骨芽細胞の応答を誘導するその傾向において、ヒトの腫瘍の中でも独特である。前立腺癌の骨転移の９個の切片が、免疫組織化学的に検査された（図２８）。全てが、ｍＡｂ  １Ｇ８（および／または３Ｅ６）と強烈にそして均一に反応した。２つの例において、微小転移はヘマトキシリンで容易に検出可能ではなく、そしてｍＡｂ  １Ｇ８を用いる染色後に、エオシン切片が見られ得る（図２８；患者５）。全体的に、骨転移における染色は、原発性腫瘍における染色よりも強力で、そしてより均一であった。３つの場合において、原発性腫瘍由来の生検試料は、比較のために利用可能である。対応する骨転移と比較した場合、全てはＰＳＣＡに対して弱く陽性であり、ＰＳＣＡ発現が骨で増加することを示唆した。１つの生検試料においては、悪性の腺の小さな病巣のみにおいて弱い染色が現れ、一方で残りの腫瘍は陰性であった（図２１および２８；患者４）。２つの場合においては、生検試料は骨転移の１０年前および１５年前に得られ、原発性病変と転移病変との発生の間の長い潜伏期間を示した。骨における強力な染色が骨切片を調製するために用いられる脱灰プロセスにより引き起こされたという可能性を除外するため、３つの原発性生検試料をまた脱灰緩衝液で処理する。この処理はバックグラウンド染色を増加させたが、それは上皮の反応性を顕著には変化させず、骨における強力なシグナルは脱灰プロセスにより引き起こされたのではなさそうだということを示す。これらの結果は、ＰＳＣＡが骨への前立腺癌の転移において選択され得るかまたは上方制御され得ることを示唆する。
【０２６３】
図２１〜２３は、前立腺癌の骨転移の骨サンプルがＰＳＣＡに対して陽性であったことを示す。前立腺癌の骨転移の９つの切片が検査された。一貫して、強烈な染色が９つの前立腺癌の骨転移において見られ、全てはｍＡｂ  １Ｇ８（および／または３Ｅ６と強烈にそして均一に反応した。２つの例において、病理学者は、１Ｇ８を用いる染色が病変を強調するまで転移を容易に同定し得ない。全体的に、骨転移における染色は、原発性腫瘍における染色よりも強力にそしてより均一に現れた。
【０２６４】
これらの結果は、ＰＳＣＡが骨への前立腺癌の転移において非常に過剰発現され得ることを示唆する。Ｓｃａ−２（ＰＳＣＡの近いホモログ）が骨髄において破骨細胞活性を抑制することが最近報告されたので、これは特に興味深い。ＰＳＣＡが同様の活性を有する場合、破骨細胞活性の阻害は骨における骨形成の活性のバランスを傾けるので、それは、前立腺癌転移が破骨細胞応答を生じる傾向についての、１つの説明を提供し得る。別の可能性は、他のＬｙ−６／Ｔｈｙ−１ファミリーのメンバーが同様のプロセスにおいて関与するので、ＰＳＣＡが骨への接着に関与し得ることである。多数の原発性前立腺癌におけるＰＳＣＡの異質な発現が存在した。これらの結果は、進行した疾患に対する新規の標的としてのＰＳＣＡの使用をさらに支持する。
【０２６５】
本研究の最も興味深い結果の１つは、一貫して、強烈な染色が９つの前立腺癌の骨転移において見られたことである。ＬＡＰＣ−９（骨の転移より定着された異種移植片）はまた、ＰＳＣＡのために強烈に染色される。３人の患者において、対応する原発性生検試料は骨の転移と比較して低レベルのＰＳＣＡ発現を示した。検査された３人の患者の原発性腫瘍における強力なＰＳＣＡ発現の領域は、生検のみが分析のために利用可能であるので、避けられ得た。ＰＳＣＡの異質な発現は、少なくとも１つの対応する原発性腫瘍、および対応する転移病変が利用可能ではなかったいくつかの原発性腫瘍において検出された。また、２つの場合において、原発性腫瘍は、骨転移の少なくとも１０年前にサンプリングされ、それは、原発性腫瘍内に高レベルのＰＳＣＡを発現するクローンが、初期の生検に続いて発生し得る可能性を生じた。これらの結果は、明らかに骨転移におけるＰＳＣＡ発現を示し、さらに、進行した疾患についての新規な標的としてそれを支持する。
【０２６６】
（実施例７）
本実験は、ＰＳＣＡ発現が、膀胱癌において通常の膀胱よりも高いことを示す。
【０２６７】
前立腺、膀胱、腎臓、精巣、および小腸由来の組織（前立腺癌ならびに膀胱癌および腎臓癌を含む）を患者から得た。次いで、これらの組織を、以下の通りにノーザンブロット分析およびウエスタンブロット分析を用いて、ＰＳＣＡへの結合について検査した。
【０２６８】
ノーザンブロット分析については、組織サンプルを切除し、そして０．５×０．５ｃｍより小さい組織サンプルを、液体窒素で急速冷凍した。これらのサンプルを、Ｂｉｏｔｅｃｘにより提供されたプロトコルを用いるｐｏｌｙｔｒｏｎホモジナイザー（ＵｌｔｒａｓｐｅｃTM  ＲＮＡ単離システム、Ｂｉｏｔｅｃｘ  Ｂｕｌｌｅｔｉｎ  Ｎｏ：２７，１９９２）を用いて、７ｍｌのＵｌｔｒａｓｐｅｃ（Ｂｉｏｔｅｃｘ、Ｈｏｕｓｔｏｎ、Ｔｅｘａｓ）中でホモジナイズした。
【０２６９】
定量した後、各サンプル由来の２０μｇの精製ＲＮＡを、１％アガロースホルムアルデヒドゲル上にロードした。運転条件およびブロッティング条件は、実施例１において用いられた条件と同じであった。フィルターを、標識化ＰＳＣＡおよび内部標準（アクチン）で、別々に検査した。フィルターを洗浄し、そして数時間終夜で曝した。
【０２７０】
ウエスタンブロット分析については、組織サンプルを切除し、そして０．５×０．５ｃｍより小さい組織サンプルを取り出して、そして素早くミンスし、そして同容積の熱い２Ｘ  Ｓａｍｐｌｅ  Ｂｕｆｆｅｒ（５％ＳＤＳ、２０％グリセロール）中でボルテックスした。サンプルを１００℃で５分間インキュベートし、３０分間ボルテックスし、そして透明にした。タンパク質濃度を、Ｂｉｏｒａｄ’ｓ  ＤＣ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙキット（Ｒｉｃｈｍｏｎｄ，ＣＡ）により決定した。４０μｇ／サンプルを、１２％ポリアクリルアミドタンパク質ゲル上でロードした。ニトロセルロースフィルターへの転写を標準的な方法（Ｔｏｗｂｉｎら、ＰＮＡＳ  ７６：４３５０（１９７９）により行った。ウエスタンブロットを、フィルターをＩＧ８一次抗体、続いてＩＧ８二次抗体（すなわち、ヤギαマウスＩｇＧ  ＨＲＰ）とともにインキュベートすることにより行った。検出は、Ａｍｅｒｓｈａｍ  ＥＣＬ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎキット（Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ  Ｈｅｉｇｈｔｓ，ＩＬ）によった。
【０２７１】
１Ｇ８は、ウエスタンブロット分析において、ＬＡＰＣ９および膀胱癌（指定された膀胱（Ｒｏｂ））の細胞表面上のＰＳＣＡを認識し、結合した（図６）。図６において、ＬＡＰＣ９を除く全ての組織は正常であった。ノーザンブロット分析は、膀胱癌組織（指定された膀胱（Ｒｏｂ）（Ｒｏｂ’ｓ  Ｋｉｄ  ＣＡともいう）およびＬＡＰＣ９）における増強したＰＳＣＡを確認した（図２５）。
【０２７２】
（実施例８）
本実験は、ＰＳＣＡ遺伝子コピー数がｃ−ｍｙｃのコピー数の増加と同様に増加することを示す（図７）。ｃ−ｍｙｃ増幅は乏しい結果と相関するので、これは重要である。従って、このデータは、ＰＳＣＡ増幅はまた、乏しい結果に対する前兆となり得ることを示唆する。
【０２７３】
（染色体列挙プローブおよびｃ−Ｍｙｃに対するプローブを用いるＦＩＳＨ）  ＦＩＳＨの方法は周知である（Ｑｉａｎ，Ｊ．ら、「Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ  Ａｎｏｍａｌｉｅｓ  ｉｎ  Ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  Ｉｎｔｒａｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  Ｎｅｏｐｌａｓｉａ  ａｎｄ  Ｃａｒｃｉｎｏｍａ  Ｄｅｔｅｃｔｅｄ  ｂｙ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ」、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９５，５５：５４０８−５４１４）。手短には、組織切片（サンプル３４および７５は２人の患者由来であった）を脱パラフィン化し、脱水し、２Ｘ  ＳＳＣ中７５℃で１５分間インキュベートし、３７℃で１５分間ペプシン溶液中（０．９％ＮａＣｌ（ｐＨ１．５）中４ｍｇ／ｍｌ）で消化し、室温で５分間２Ｘ  ＳＳＣでリンスし、そして空気乾燥した。
【０２７４】
ＰＳＣＡに対しておよび８ｑ２４（ｃ−ｍｙｃ）領域に対して直接的に標識された蛍光ＤＮＡプローブを選択した。ＰＳＣＡ  ｃＤＮＡ（図１）を、製造者のプロトコル（Ｇｅｎｏｍｅ  Ｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ．）に従ったＦＩＳＨ分析において次に用いられる、１３０ｋｂの細菌性人工染色体（ｂａｃ）クローン（ＰＳＣＡプローブ）を同定するために用いた。このように同定され、ＦＩＳＨ分析において用いられたｂａｃクローンは、ＢＡＣＨ−２６５Ｂ１２（Ｇｅｎｏｍｅ  Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．コントロール番号１７４２４）であった。
【０２７５】
ＳＧ標識ＰＳＣＡプローブと共に、８ｑ２４（ｃ−ｍｙｃ）に対するＳＯ標識プローブを用い、連続的な５μｍ切片上でデュアルプローブハイブリダイゼーションを行った。プローブおよび標的ＤＮＡを、８０℃のオーブンで５分間、同時に変性させ、そしてそれぞれのスライドを３７℃で一晩インキュベートした。
【０２７６】
１．５Ｍ尿素／０．１Ｘ  ＳＳＣ中、４５℃で３０分間、および２Ｘ  ＳＳＣ中、室温で２分間、ハイブリダイゼーション後の洗浄を行った。核を、４，６−ジアミジノ−２−フェニルインドールおよびａｎｉｌｆａｄｅ化合物ｐ−フェニレンジアミンでカウンター染色した。
【０２７７】
ＦＩＳＨシグナルの数を、トリプルパスフィルター（Ｉ０２−１０４−１０１０；ＶＹＳＩＳ）を装着したＺｅｉｓｓ  Ａｘｉｏｐｌａｎ顕微鏡を用いて数えた。ｃ−ｍｙｃシグナルおよびＰＳＣＡシグナルの数を、各々の核について数え、そしてｃ−ｍｙｃ：ＰＳＣＡ比の全体的な平均値を計算した。結果を図１７に示す。
【０２７８】
この結果は、ＰＳＣＡ遺伝子コピー数が、前立腺癌サンプルにおいて増加したことを示す（図７）。ＰＳＣＡ遺伝子は、８ｑ２４．２に位置する。遺伝子コピー数の増加は、第８染色体の増加、およびＰＳＣＡ遺伝子の増幅の両方による（図１７）。興味深いことには、ＰＳＣＡ遺伝子コピー数の増加は、これもまた８ｑ２４に位置するｃ−ｍｙｃの遺伝子コピー数の増加と類似する（図１７）。先の研究は、第８染色体の増加およびｃ−ｍｙｃの増幅は、前立腺癌の進行の潜在的なマーカーであることを示した（Ｒ  Ｂ  Ｊｅｎｋｉｎｓら  １９９７  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ５７：５２４−５３１）。
【０２７９】
（実施例９）
（ルシフェラーゼ発現を駆動するためのｈＰＳＣＡ  ９ｋｂ上流領域を使用したレポーター遺伝子構築物）
実施例４に記載されるように、ヒトＰＳＣＡをコードする１４ｋｂ  ＮｏｔＩゲノムフラグメントを、全長ヒトＰＳＣＡ  ｃＤＮＡプローブでライブラリーをスクリーニングすることにより、ヒトゲノムＤＮＡ(Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ)をコードするλＦ［ＸＩ］ライブラリーから単離した（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ）。１４ｋｂ  ヒトＰＳＣＡゲノムフラグメントはレポーター遺伝子の発現を駆動するために使用された９ｋｂのＰＳＣＡ上流配列を含む。
【０２８０】
レポーター遺伝子ベクターは図４２に示され、そして以下のように構築した。１４ｋｂ  ＮｏｔＩフラグメントをλベクターからＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ  ＫＳベクター（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）ヘサブクローン化し、ｐＢＳＫＳ−ＰＳＣＡ（１４ｋｂ）構築物を生じた。ＰＳＣＡ上流配列を、Ｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔベクターの中に含まれるＴ７配列に対応するプライマーおよびＰＳＣＡエクソン１の中に含まれる配列に対応するプライマー（プライマーＨ３ｈＰＳＣＡ３'−５、このプライマーの配列は以下の通りである：Ｈ３ｈＰＳＣＡ３'−５の配列は５'−ｇｇｇａａｇｃｔｔｇｃａｃａｇｃｃｔｔｃａｇｇｇｔｃ−３'（配列番号：１７）である）を使用して、ＰＣＲ増幅によりｐＢＳＫＳ−ＰＳＣＡ（１４ｋｂ）からサブクローン化した。ＰＳＣＡエクソン１に対応するプライマーは、ＰＣＲ増幅後のさらなるサブクローン化を可能にするために導入されたＨｉｎｄＩＩＩ配列を含んだ。生じた増幅されたフラグメントを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化し、そして、ｐＧＬ３−基本ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）の中にサブクローン化し、ルシフェラーゼ遺伝子と作動可能に連結された種々の長さのＰＳＣＡ上流配列を含む一連の欠失レポーター遺伝子構築物を生成するのに使用されたｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（７ｋｂ）を生成した（図４２）。ＰＳＣＡ上流領域の欠失された部分をｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（７ｋｂ）から制限フラグメントをサブクローン化することにより得た。−９ｋｂと−７ｋｂの間のＰＳＣＡ上流領域をｐＢＳＫＳ−ＰＳＣＡ（１４ｋｂ）構築物からサブクローンし、ＮｏｔＩ部位をＫｌｅｎｏｗによって平滑末端へ変換し、そして、そのフラグメントをｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（９ｋｂ）構築物を得るためにｐＧＬ−ＰＳＣＡ（７ｋｂ）のＳａｃＩ／ＨｉｎｄＩＩＩ部位にクローンした。ＰＳＣＡコード領域の上流配列に対する表示は（例えば−９ｋｂおよび−６ｋｂ（など））ＡＴＧ翻訳開始コドンと関連する。レポーター遺伝子構築物ｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（９ｋｂ）、ｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（６ｋｂ）、ｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（３ｋｂ）およびｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（１ｋｂ）をルシフェラーゼ遺伝子と作動可能に連結した（図４２）。プラスミド、ｐＧＬ３−ＣＭＶは、ルシフェラーゼ遺伝子に連結されたサイトメガロウイルスプロモーター（Ｂｏｓｈａｒｔ，Ｍ．ら、１９８５  Ｃｅｌｌ  ４１：５２１−５３０）を含み、そして陽性コントロールとして使用した。また、プラスミドｐＧＬ３はプロモーター配列を含まず、ネガティブコントロールプラスミドとして使用した。
【０２８１】
（実施例１０）
（ｈＰＳＣＡ上流領域を含むレポーター遺伝子構築物を使用したトランスフェクションアッセイ）
前立腺細胞株および非前立腺細胞株の３通りの皿を、Ｔｆｘ５０（Ｂｏｅｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｈｅｉｍ）により、ＰＳＣＡ構築物ｐＧＬ３−ＰＳＣＡ（９ｋｂ）または陽性コントロール構築物であるｐＧＬ３−ＣＭＶ（両方とも上記実施例９に記載される）を用いてトランスフェクトし、そしてルシフェラーゼ活性についてアッセイした（図４３）。トランスフェクトされた細胞および細胞株には、ＰｒＥＣ（アンドロゲン非依存性前立腺基底細胞）、ＬＮＣａＰ（アンドロゲン依存性前立腺分泌細胞株）、ＬＡＰＣ４（アンドロゲン依存性前立腺細胞株）、ＨＴ１３７６（膀胱細胞株）および２９３Ｔ（腎臓細胞株）が挙げられる。その構築物の発現活性はＣＭＶプロモーターの活性の割合として表される。標準誤差がバーの上に示される。
【０２８２】
結果は、９ｋｂのヒトＰＳＣＡ上流配列が、図１０に示された天然ｈＰＳＣＡに見られるｍＲＮＡ発現パターンと類似する組織特異的様式においてルシフェラーゼ遺伝子の発現を駆動することを示す（実施例１）。ルシフェラーゼは、アンドロゲン依存性前立腺細胞株およびアンドロゲン非依存性前立腺細胞株ならびに膀胱の両方に容易に検出可能であった。ルシフェラーゼもまた、低レベルではあるが、腎臓細胞で検出可能であった。
【０２８３】
（実施例１１）
（ＰＳＣＡ上流領域内の調節エレメントの同定）
ＰｒＥＣ（Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ）またはＬＮＣａＰ細胞の３通りの皿を、上記実施例９に記載されたレポーター遺伝子構築物または陽性コントロール構築物でトランスフェクトし、ルシフェラーゼ活性についてアッセイした。レポーター遺伝子構築物は、ルシフェラーゼ遺伝子に作動可能に連結された種々の長さのｈＰＳＣＡ上流領域を含む。陽性コントロール構築物であるｐＧＬ３−ＣＭＶは、ルシフェラーゼに作動可能に連結されたＣＭＶプロモーターを含む。その細胞をＴｆｘ５０トランスフェクション系（Ｐｒｏｍｅｇａ）を使用して、トランスフェクトした。トランスフェクトされた細胞におけるルシフェラーゼの発現をＤｕａｌ  Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ  Ｒｅｐｏｒｔｅｒ  Ａｓｓａｙ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を使用して、アッセイし、ルシフェラーゼ発現のレベルを相対的単位（ＲＬＵ）で測定した。
【０２８４】
ルシフェラーゼ発現を駆動する種々の長さのｈＰＳＣＡ上流領域の能力は、ＣＭＶプロモーターを含む陽性コントロール構築物の活性の割合として表される。標準誤差を示す。
【０２８５】
図４４に示される結果は、ＰｒＥｃ細胞およびＬＮＣａＰ細胞の両方において３ｋｂのｈＰＳＣＡ上流配列はルシフェラーゼの発現を駆動することを実証するが、ＰｒＥＣ細胞と比較して、ＬＮＣａＰ細胞における検出可能なルシフェラーゼのレベルは６倍高い。この比較は検出可能なルシフェラーゼのレベルに基づいた。対照的に、１ｋｂのｈＰＣＳＡ上流配列は、いずれの細胞株のルシフェラーゼの発現をも駆動しなかった。
【０２８６】
（実施例１２）
（標的ベクター）
標的ベクターを相同組換えによって、内因性ＰＳＣＡコード領域を欠失するように設計した。図４０は、マウスＰＳＣＡ遺伝子の標的ベクター、およびマウス細胞に含まれる内因性ＰＳＣＡ遺伝子を欠失させるためにこの標的ベクターを使用するためのストラテジーを示す。標的ベクターは、マウスＰＳＣＡ上流配列を含む１２ｋｂ  ＳｐｅＩフラグメント、ｐＧＴ−Ｎ２９ベクター（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏ  Ｌａｂｓ）由来のｎｅｏr遺伝子に作動可能に連結されたＰＧＫプロモーターを含むＮｏｔＩ／ＥｃｏＲＩフラグメントおよびマウスＰＳＣＡ下流配列を含む３．５ｋｂＢｓｔＸＩ／ＸｈｏＩフラグメントを含む。ネオマイシン耐性遺伝子の構成的発現はＰＧＫプロモータにより制御され、標的ベクターを含む標的細胞の抗生物質選択を可能にする。
【０２８７】
当業者に理解されているように、本明細書に記載される標的ベクターとしては、標的ベクターを含むか、または選択レポーター遺伝子を含み得ない細胞の選択のためのｎｅｏr遺伝子が挙げられるが限定されない。標的ベクターはまた、トランスジェニックマウス（当該分野で公知の、それぞれ標的ベクターがレポーター遺伝子を含むか否かに依存する、ノックインマウスまたはノックアウトマウス）の生成に使用され得る。トランスジェニックマウスは、マウスの前立腺発達におけるＰＳＣＡ遺伝子の機能を研究するための動物モデルとして使用され得る。
【０２８８】
限定することが意図されない１つの例として、標的ベクターを使用して、欠失されたＰＳＣＡ遺伝子を含む、ヘテロ接合性の細胞を生成するために、胚性幹細胞（ＥＳ）細胞中の野生型内因性ゲノムマウスＰＳＣＡコード配列を欠失させた。例えば、標的ベクターを使用して生成したヘテロ接合性細胞は、図４０に結果として示されるようなＰＳＣＡ＋／ｎｅｏrである。ヘテロ接合性細胞またはトランスジェニックマウスの表現型は野生型ＰＳＣＡ細胞または動物と比較され得る。
【０２８９】
標的ベクターは以下のように構築される。ＰＳＣＡ上流およびエキソン１配列の一部を含む１２ｋｂ  ＳｐｅＩフラグメントの末端を、平滑末端化し、そしてネオマイシン耐性遺伝子を含むｐＧＴ−Ｎ２９（Ｂｉｏ  Ｌａｂｓ）由来の平滑末端化されたＮｏｔＩ／ＥｃｏＲＩフラグメントに連結した。ネオマイシン耐性遺伝子の３'末端を、ＰＳＣＡ  エキソン３の一部および下流配列を含む平滑末端化された３．５ｋｂＢｓｔＸＩ／ＸｈｏＩフラグメントに連結した。生じたフラグメントを、標的ベクターｐＧＴ−Ｎ２９−ｍＰＳＣＡ５'／３'を生成するためにｐＧＴ−Ｎ２９へクローン化した。
【０２９０】
標的ベクターを、以下に記載される方法を使用して、エレクトロポレーションによりＥＳ細胞へトランスフェクトした：Ｔｅｒａｔｏｃａｒｃｉｎｏｍａｓ  ａｎｄ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ；Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ．ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ、Ｏｘｆｏｒｄ（１９８７）。ネオマイシン耐性細胞を、選択し、そしてゲノムＤＮＡを選択された細胞から単離した。ゲノムサザン分析を実施して、相同組換え反応の結果を決定した。相同組換え反応および非標的ＥＳ細胞由来の１０μｇのＤＮＡをＥｃｏＲＩで消化し、そしてサザンブロット法によって分析した（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ、ＥＭ  １９７５  Ｊ．Ｍｏｌｅｃ．Ｂｉｏｌ．９８：５０３）。ブロットをＰＳＣＡコード領域に対する配列３'を含むＸｈｏＩ／ＥｃｏＲＩフラグメントを用いて厳密に調べた。その結果はプローブは、ＰＳＣＡ＋／ＰＳＣＡ＋であるコントロール非標的細胞に対応する１０ｋｂフラグメントおよびヘテロ接合性であり、そしてＰＳＣＡ＋／ｎｅｏrを含む標的細胞に対応する４ｋｂフラグメントを検出することを示す。
【０２９１】
（実施例１３）
（前立腺癌のためのトランスジェニックマウスモデル）
本発明は、前立腺基底細胞中に腫瘍形成を誘導するために、癌遺伝子の発現を駆動するＰＳＣＡ遺伝子の上流領域を使用して、前立腺癌のためのトランスジェニックマウスモデルを生成するストラテジーを意図する。図４１に示されるように、ストラテジーは腫瘍の形成を誘導する遺伝子産物をコードする導入遺伝子に作動可能に連結されるＰＳＣＡ遺伝子の上流領域を含むキメラ癌遺伝子ベクターの投与（例えばマイクロインジェクション）を含む。他の研究者らは、癌遺伝子に作動可能に連結された異なる前立腺調節配列および非前立腺調節配列を用いて、本技術を使用する。例えば、Ｃ３（１）は前立腺優性調節配列（Ｍｏｒｏｕｌａｋｏｕら  １９９４  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９１：１１２３６−１１２４０）であり、そしてプロバシン（ｐｒｏｂａｓｉｎ）は前立腺特異的調節配列（Ｇｒｅｅｎｂｅｒｇら  １９９５  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９２：３４３９−３４４３）であり、そしてこれら両方の調節配列は前立腺分泌細胞中の導入遺伝子の発現を駆動する。Ｃｒｙｐｔｄｉｎ２は前立腺内分泌細胞中の癌遺伝子の発現を引き起こす小腸優性調節配列（Ｇａｒａｇｅｎｉａｎら  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ９５：１５３８２−１５３８７）である。対照的に、本発明は、前立腺癌のためのトランスジェニックマウスモデルを生成するために、前立腺基底細胞中に癌遺伝子の発現を駆動するためＰＳＣＡ上流領域を使用することを意図する。
【０２９２】
誘導された前立腺腫瘍の臨床的特徴は、分析され得、そしてキメラ癌遺伝子ベクターを構築する際に使用される特定の癌遺伝子により引き起こされる腫瘍の公知の特性と比較され得る。さらに、トランスジェニックマウスの種々の組織および器官は、キメラ癌遺伝子ベクターの存在および発現パターンを確かめるために、ＤＮＡ、ＲＮＡおよびタンパク質分析により分析され得る。
【０２９３】
（実施例１４）
（ｈＰＳＣＡ上流配列および導入遺伝子を含むキメラベクターを保有するトランスジェニックマウス）
ｈＰＳＣＡ上流領域の制御下における導入遺伝子の発現パターンが試験される。この終わりの方で、ｈＰＳＣＡ上流配列および導入遺伝子を含むキメラベクターを保有するキメラマウスが生成される。導入遺伝子に作動可能に連結された９ｋｂまたは６ｋｂのｈＰＳＣＡ上流配列を含むキメラベクターを構築し、そして図４５に概要的に表される。その導入遺伝子はＳＶ４０ポリアデニル化配列（ＰＳＣＡ（９ｋｂ）−ＧＦＰおよびＰＳＣＡ（６ｋｂ）−ＧＦＰ）に連結された緑色蛍光タンパク質ｃＤＮＡ（ＧＦＰ，Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）、ｍＲＮＡ（ＰＳＣＡ（９ｋｂ）−ＧＦＰ−３'ｈＧＨおよびＰＳＣＡ（６ｋｂ）−ＧＦＰ−３'ｈＧＨ）（Ｂｒｉｎｓｔｅｒら１９８８  ＰＮＡＳ  ８５：８３６−８４０）に対して安定性を与えるイントロンカセットを含むヒト成長ホルモンの３'領域に連結される緑色蛍光タンパク質ｃＤＮＡおよびイントロン（ＰＳＣＡ（９ｋｂ）−ＳＶ４０ＴＡＧおよびＰＳＣＡ（６ｋｂ）−ＳＶ４０ＴＡＧ）（Ｂｒｉｎｓｔｅｒら  １９８４  Ｃｅｌｌ  ３７：３６７−３７９）を含むＳＶ４０スモールおよびラージＴ抗原体をコードするゲノムフラグメントを含んだ。
【０２９４】
キメラベクターを使い、ファウンダートランスジェニックマウスの系統を生成した。直線化されたキメラベクターをＣ５７ＢＬ／６ＸＣ３Ｈハイブリッドマウスの異種交配に由来するマウス受精卵の中へ微量注入した。キメラベクター保有のファウンダーマウスを、プローブとしてＧＦＰｃＤＮＡまたはＳＶ４０ゲノムＤＮＡを使用して、テールＤＮＡのサザン分析により同定した。各々のトランスジェニックマウス系統のファウンダーの数は図４５の右パネルに示される。
【０２９５】
（実施例１５）
（トランスジェニックマウス中の導入遺伝子のｈＰＳＣＡ上流配列駆動発現）
ＰＳＣＡ（９ｋｂ）−ＧＦＰ導入遺伝子を保有する２つの独立したファウンダーマウスを、その子孫を得るためにＢａｌｂ／ｃマウスと交配させた。８週齢および１２週齢で、雄および雌のトランスジェニック同腹子または非トランスジェニック同腹子を屠殺した。屠殺後、泌尿生殖器全体および他の組織を蛍光照明下で固定組織を観測することによりＧＦＰ発現について試験した。図４６に示される結果は、非トランスジェニックマウスおよびトランスジェニックマウス由来の前立腺、膀胱および皮膚組織の緑色蛍光画像を示す。２つのファウンダー系統のうちの１つが前立腺、膀胱および皮膚中にＧＦＰタンパク質を発現した（図４６）。ＧＦＰを発現しなかった組織としては：精嚢、肝臓、胃、腎臓、肺、脳、精巣、膵臓、心臓、骨格筋、小腸、結腸、胎盤が挙げられる。
【０２９６】
（実施例１６）
（ヒトおよびマウス組織中のＰＳＣＡの転写発現パターン）
図４７の上部パネルは、全長ヒトＰＳＣＡｃＤＮＡプローブを用いて厳密に調べられたヒト多重組織ノーザンブロット（Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈから得られる）を示す。その結果は、ヒトＰＳＣＡ転写物は、前立腺には豊富であり、および容易に検出可能であるが、胎盤には豊富でなく、しかし脾臓、胸腺、精巣、卵巣、小腸、結腸、末梢血液白血球（ＰＢＬ）、心臓、脳、肺、肝臓、筋肉、腎臓および膵臓には検出可能ではないことを実証する。
【０２９７】
図４７の下部パネルは、種々のマウス組織中のマウスのＰＳＣＡ転写発現パターンの臭化エチジウム染色アガロースゲルのＲＴ−ＰＣＲ分析を示す。ＲＴ−ＰＣＲをＵｌｔｒａｓｐｅｃ．ＲＮＡ（Ｂｉｏｔｅｘ）およびｃＤＮＡサイクルキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて調製した。ＰＳＣＡのエキソン１およびエキソン３内の領域に対応するプライマーを使用して３２０ｂｐフラグメントを増幅した。エキソン１プライマー配列は以下の通りである：
５’プライマー：５’−ＴＴＣＴＣＣＴＧＣＴＧＧＣＣＡＣＣＴＡＣ−３’（配列番号：７）。
エキソン３プライマー配列は以下の通りである：
３’プライマー：５’−ＧＣＡＧＣＴＣＡＴＣＣＣＴＴＣＡＣＡＡＴ−３’（配列番号：８）。
種々のマウス組織から単離されたＲＮＡサンプルの整合性を実証するために、コントロールとして、３００ｂｐＧ３ＰＤフラグメントを増幅した。
【０２９８】
図４７の下部パネルに示された結果は、マウスＰＳＣＡ転写物は、背側／外側前立腺、腹側前立腺、膀胱、胃（噴門、胃体および幽門）および皮膚中において検出され得ることを実証する。対照的に、マウスＰＳＣＡ転写物は前方前立腺、腹側前立腺、精嚢、尿道、精巣、腎臓、十二指腸、小腸、結腸、唾液腺、脾臓、胸腺、骨髄、骨格筋、心臓、脳、眼、肺および肝臓中に検出されない。Ｇ３ＰＤＨ結果は種々のマウス組織から単離された転写物はインタクトであったことを実証する。
【０２９９】
本発明は、本明細書に開示された実施形態による範囲内に限定されず、これは、本発明の個々の局面の単一の例示と意図され、そして機能的に等価であるものはいずれも本発明の範囲内にある。本明細書に記載されたものに加えて、本発明のモデルおよび方法に対する種々の改変は、前述の記載および教示から当業者に対して明らかになり、そして本発明の範囲内に入ると同様に解釈される。このような改変または他の実施形態は本発明の真の範囲および精神から離れることなく実行され得る。
【図面の簡単な説明】
【図１】  ヒトＰＳＣＡをコードするｃＤＮＡ（ＡＴＣＣ指定２０９６１２）のヌクレオチド配列（Ａ）（配列番号：１）および翻訳されたアミノ酸（配列Ｂ）（配列番号：２）。
【図２】  マウスＰＳＣＡホモログ（配列番号：４）をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号：３）。
【図３】  ヒトＰＳＣＡ（配列番号：２）、マウスＰＳＣＡ（配列番号：６）およびヒト幹細胞抗原−２（ｈＳＣＡ−２）（配列番号：５）のアミノ酸配列のアラインメント。影の領域は、保存されたアミノ酸を強調する。保存されたシステインを太字で示す。ＰＳＣＡにおける４つの予測されたＮ−グリコシル化部位を星印で示す。タンパク質の最初および最後の下線のアミノ酸は、それぞれ、Ｎ末端の疎水性シグナル配列およびＣ末端ＧＰＩ係留配列を示す。
【図４】  ヒトＰＳＣＡの疎水性プロット。
【図５】  ヒトＰＳＣＡのチョウ−ファスマン（Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｓｍａｎ）分析。
【図６】  モノクローナル抗体１Ｇ８が、ＬＡＰＣ９（ＰＳＣＡ陽性コントロール）および膀胱（Ｒｏｂ）と称される移行上皮癌（膀胱癌）に結合することを示すウェスタンブロット。
【図７】  正常組織および癌組織におけるＰＳＣＡ  ｍＲＮＡの制限された発現。Ａ：前立腺、胎盤、および扁桃で高度な発現を示す正常ヒト組織におけるＰＳＣＡ発現のＲＴ−ＰＣＲ分析。示された組織由来の１ｎｇの逆転写された第１鎖ｃＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ、ＣＡ）を、ＰＳＣＡ遺伝子特異的プライマーを用いて増幅した。示されたデータは、３０サイクルの増殖からである。Ｂ：前立腺癌異種移植片および正常組織における高いレベルを実証する、ＰＳＣＡ発現のＲＴ−ＰＣＲ分析。示された組織由来の逆転写されたｃＤＮＡの５ｎｇがＰＳＣＡ遺伝子特異的プライマーを用いて増幅された。β−アクチン遺伝子特異的プライマーを用いた増幅は、種々のサンプルの第１鎖ｃＤＮＡの規準化を示す。示されたデータは、２５サイクルの増幅からである。ＡＤ、アンドロゲン依存性；ＡＩ、アンドロゲン非依存性；ＩＴ、脛骨内異種移植片；Ｃ．Ｌ．、細胞株。
【図８】  ヒトＰＳＣＡ、マウスＰＳＣＡ、およびヒトＴｈｙ−１／Ｌｙ−６遺伝子構造の模式図。
【図９Ａ】  ＰＳＣＡ  ＲＮＡの発現のノーザンブロット分析。Ａ：正常の前立腺およびＬＡＰＣ−４アンドロゲン依存性（ＡＤ）前立腺癌異種移植片およびＬＡＰＣ−４アンドロゲン非依存性（ＡＩ）前立腺癌異種移植片由来の総ＲＮＡを、ＰＳＣＡ特異的プローブまたはＰＳＡ特異的プローブを使用して分析した。等しいＲＮＡローディングおよびＲＮＡ統合性を、１８Ｓ  ＲＮＡおよび２８Ｓ  ＲＮＡのエチジウム染色により別々に示した。
【図９Ｂ】  ＰＳＣＡ  ＲＮＡの発現のノーザンブロット分析。Ｂ：ＰＳＣＡ  ＲＮＡのヒトの複数の組織のノーザンブロット分析。Ｃｌｏｎｔｅｃｈ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ、ＣＡ）よりフィルターを得た。そしてこのフィルターは、それぞれのレーンに２μｇのポリＡ  ＲＮＡを含む。
【図１０】  前立腺癌異種移植片および腫瘍細胞株におけるＰＳＣＡ、ＰＳＭＡおよびＰＳＡのＲＮＡの発現のノーザンブロット比較。ＰＳＣＡおよびＰＳＭＡは、高いレベルの前立腺癌特異的な遺伝子発現を示す。示された組織由来の１０μｇの総ＲＮＡが、アガロース／ホルムアルデヒドゲルにおいてサイズ分画され、ニトロセルロースに移され、そして続いてＰＳＣＡ、ＰＳＭＡおよびＰＳＡのｃＤＮＡフラグメントを表す32Ｐで標識されたプローブと順次ハイブリダイズされた。膜の４時間および７２時間のオートラジオグラフィーの露出、およびサンプルの等しいローディングを示す臭化エチジウムゲルを示す。ＢＰＨ、良性前立腺過形成；ＡＤ、アンドロゲン依存性；ＡＩ、アンドロゲン非依存性；ＩＴ、脛骨内異種移植片；Ｃ．Ｌ．細胞株。
【図１１】  正常前立腺標本および悪性前立腺標本におけるヒトＰＳＣＡ  ＲＮＡに対するアンチセンスリボプローブとのインサイチュハイブリダイゼーション。Ａ：ＰＳＣＡ  ＲＮＡは、基底細胞上皮内の基底細胞の部分集合により発現される（黒矢印）が、前立腺管の内側を覆う最後まで分化した分泌細胞により発現されない（拡大率４００×）。Ｂ：ＰＳＣＡ  ＲＮＡは、高い程度の前立腺上皮内腫瘍（ＰＩＮ）により強く発現され（黒矢印）、侵襲性前立腺癌腺により強く発現される（黄矢印）が、正常の上皮においては、拡大率４０倍で検出可能でない（緑矢印）。Ｃ：高い程度の癌の場合におけるＰＳＣＡ  ＲＮＡの強い発現（拡大率２００×）。
【図１２Ａ】  ＰＳＣＡタンパク質の生化学的分析。Ａ：ＰＳＣＡタンパク質を、材料および方法に記載されたように、ＰＳＣＡ構築物を用いて一時的にトランスフェクトされ、次いで、Ｎ−グリコシダーゼＦまたＯ−グリコシダーゼのどちらかを用いて消化した２９３Ｔ細胞から免疫沈降した。
【図１２Ｂ】  ＰＳＣＡタンパク質の生化学的分析。Ｂ：ＰＳＣＡタンパク質をトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞、ならびこれらの細胞の訓化培地から免疫沈降した。細胞関連ＰＳＣＡは、１５％ポリアクリルアミドゲルにおいて、分泌されたＰＳＣＡまたは脱落したＰＳＣＡより速く移動する。
【図１２Ｃ】  ＰＳＣＡタンパク質の生化学的分析。Ｃ：アフィニティー精製されたポリクローナル抗ＰＳＣＡ抗体を使用して、偽トランスフェクトされた２９３Ｔ細胞、ＰＳＣＡをトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞およびＬＡＰＣ−４前立腺癌異種移植片細胞のＦＡＣＳ分析。細胞は、表面の発現のみを検出するために透過処理されなかった。ｙ軸は、相対的な細胞数を示し、そしてｘ軸は、対数的なスケールにおける蛍光染色強度を示す。
【図１３】  フィトヘマグルチニンで刺激した末梢血液リンパ球由来のヒト分裂中期細胞に対するビオチン標識ＰＳＣＡプローブのインサイチュハイブリダイゼーション。第８染色体ホモログは、矢印で同定される；特異的標識が、８ｑ２４．２に観察された。はめ込み図は、８ｑ２４．２での特異的な標識を例示する２つの第８染色体ホモログの部分的な核型を示す（矢尻）。画像は、冷却式電荷結合デバイス（ＣＣＤ）カメラを連結したＺｅｉｓｓ  Ａｘｉｏｐｈｏｔ顕微鏡を使用して得た。ＤＡＰＩ染色した染色体およびハイブリダイゼーションシグナルの別々の画像が、画像分析ソフトウェア（ＮＵ２００およびＩｍａｇｅ１．５７）を使用して合わされた。
【図１４】  抗ＰＳＣＡモノクローナル抗体１Ｇ８（緑）および３Ｅ６（赤）、マウス抗ＰＳＣＡポリクローナル血清（青）、またはコントロールの２次抗体（黒）を使用した、前立腺癌異種移植片（ＬＡＰＣ−９）、前立腺癌細胞株（ＬＡＰＣ−４）および正常な前立腺上皮細胞（ＰｒｅＣ）についての細胞表面ＰＳＣＡタンパク質発現のフローサイトメトリー分析。詳細は、実施例５を参照のこと。
【図１５】  （ａ）７つの開示された抗体のそれぞれのエピトープ地図。（ｂ）抗ＰＳＣＡモノクローナル抗体のエピトープ地図作成を、ＧＳＴ−ＰＳＣＡ融合タンパク質のウエスタンブロット分析により行った。
【図１６】  ＰＳＣＡが、ＧＰＩ係留タンパク質であることを示す模式図。ヒト幹細胞抗原−２（ｈＳＣＡ−２）（配列番号：５）、ヒトＰＳＣＡ（配列番号：２）およびマウスＰＳＣＡ（配列番号：６）。
【図１７】  前立腺癌におけるＰＳＣＡおよびｃ−ｍｙｃの遺伝子コピー数のＦＩＳＨ分析を示す写真。
【図１８】  ＴＣ標識された１Ｇ８抗体が、ＰＳＣＡでトランスフェクトされたＬＮＣＡＰ細胞上のＦＩＰＳＣＡタンパク質に強く結合することを示す写真。
【図１９】  ＦＩＴＣ標識された１Ｇ８抗体がＰｒｅＣ細胞に弱く結合することを示す写真。
【図２０】  正常な前立腺基底細胞におけるＰＳＣＡのインサイチュＲＮＡハイブリダイゼーションを示す写真。
【図２１】  原発性前立腺癌におけるＰＳＣＡの免疫染色。４人の患者由来の代表的なパラフィン包埋切片は、抗ＰＳＣＡ  ｍＡｂを用いて染色された。患者１由来の標本は、グリースングレード（Ｇｌｅａｓｏｎ  ｇｒａｄｅ）４の腫瘍（矢印）におけるＰＳＣＡタンパク質の過剰発現を示し、そしてＰＳＣＡ  ｍＡｂ  １Ｇ８を使用した隣接する正常な腺（くさび形）におけるＰＳＣＡの検出不可能な発現を示す。陽性染色の癌は、正常な腺を完全に包囲する。患者２由来の標本は、グリースングレード３＋３／４の癌における異質な染色を示す。グリースンパターン３の腺（くさび形）は、より大きな癌と比較して弱く染色し、さらなる有孔形態はグリースンパターン３／４の腺（矢印）を表す。患者３由来の標本は、ｍＡｂ  １Ｇ８を用いた弱く分化したグリースン５（矢印）の腫瘍によってＰＳＣＡの強い発現を示す。患者４は、弱く分化した腫瘍（くさび形）の大部分においてＰＳＣＡが染色していないこと、および標本中で同定された有孔形態の病巣において極度に弱く染色していることを示している生検標本である。患者４由来の一致した骨性転移は、図２８に示される。
【図２２】  ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジンに連結したビオチン化された１Ｇ８モノクローナル抗体により決定された場合の、前立腺癌の骨性転移を示す骨サンプルの写真。
【図２３】  ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジンに連結したビオチン化された１Ｇ８モノクローナル抗体により決定された場合の、前立腺癌の骨性転移を示す骨サンプルの写真。
【図２４】  ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジンに連結したビオチン化された３Ｅ６モノクローナル抗体により決定された場合の、前立腺癌の骨性転移を示す骨サンプルの写真。
【図２５】  ＬＡＰＣ９および進行型膀胱癌の移行細胞癌におけるＰＳＣＡ  ＲＮＡの増加したレベルを示すノーザンブロット。
【図２６】  ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジンに連結したビオチン化された３Ｅ６モノクローナル抗体により決定された場合の初期段階にある前立腺癌の組織の写真。
【図２７】  ヘマトキシリン染色された３Ｅ６モノクローナル抗体により決定された場合の前立腺癌の骨性転移を示す骨サンプルの写真。
【図２８】  骨性転移の前立腺癌におけるＰＳＣＡの免疫染色。上のパネルは、患者５由来の骨性病巣（ｂｏｎｙ  ｌｅｓｉｏｎ）のヘマトキシリン染色およびエオシン染色（左）ならびにＰＳＣＡ（右）染色を示す。癌の疑いがある単一の病巣（矢印）は、Ｈ切片およびＥ切片において同定され、そして抗ＰＳＣＡ  ｍＡｂ  １Ｇ８を用いて強烈に染色することによって確認された(矢印）。下のパネルは、患者４由来の骨性病巣のＨ染色およびＥ染色（左）ならびにＰＳＣＡ染色（右）示す。患者４由来の原発性病変は、図２１に示される。Ｈ染色およびＥ染色ならびにＰＳＣＡ染色の両方は、前立腺癌（矢印）による拡散性の骨性併発を示す。再び、骨性転移におけるＰＳＣＡ免疫染色は均一かつ強烈である。
【図２９】  ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジン連結したビオチン化された１Ｇ８モノクローナル抗体によって決定された場合の、前立腺癌の初期段階にある組織の写真。
【図３０】  ヘマトキシリン染色により決定された場合に、１Ｇ８が、ＬＡＰＣ９細胞に結合することを示す写真。
【図３１】  １Ｇ８が、ＰＳＣＡでトランスフェクトされたＬｎＣａＰ細胞に結合することを示す写真。
【図３２】  １Ｇ８が、ＬｎＣａＰ細胞（ＰＳＣＡでトランスフェクトされていない）に結合しないことを示す写真。
【図３３】  ｍＡｂ  １Ｇ８、２Ｈ９、３Ｈ６、３Ｃ５、および４Ａ１０を使用した非透過化処理したＬＡＰＣ−９ヒト前立腺癌細胞の細胞表面上のＰＳＣＡのフローサイトメトリー認識。染色は、無関係のアイソタイプコントロール抗体と比較された。
【図３４】  ＰＳＣＡを用いて過渡的にトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞およびＰＳＣＡモノクローナル抗体を用いてイムノブロットされた２９３Ｔ細胞を示す写真。モノクローナル抗体２Ｈ９および３Ｅ６は、２９３Ｔ細胞において、脱グリコシル化されたＰＳＣＡに結合するが、グリコシル化されたＰＳＣＡには結合しない。対照的に、モノクローナル抗体１Ｇ８、３Ｃ５および４Ａ１０はグリコシル化されたＰＳＣＡを認識する。
【図３５】  非透過化処理した前立腺癌細胞におけるＰＳＣＡの細胞表面発現を示す免疫蛍光分析。ＬＮＣａＰ細胞は、安定してＰＳＣＡでトランスフェクトされ、そしてｍＡｂ  １Ｇ８、３Ｅ６、３Ｃ５および４Ａ１０を用いて染色された。ネガティブコントロールは、無関係のアイソタイプ抗体を含み、そしてＬＮＣａＰ細胞はコントロールベクターを用いてトランスフェクトされ、その全ては、延長した曝露後でさえ、染色を示さなかった。
【図３６】  ＬＡＰＣ９細胞に結合するモノクローナル抗体２Ｈ９を示す写真。
【図３７】  抗ＰＳＣＡ  ｍＡｂの免疫学的反応性を示す写真。（Ａ）ｍＡｂ  １Ｇ８、２Ｈ９、３Ｃ５、３Ｅ６および４Ａ１０を用いてＰＳＣＡで過渡的にトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞由来のＰＳＣＡの免疫沈降。コントロールは、無関係のマウスＩｇＧ  ｍＡｂであった。（Ｂ）５つの抗ＰＳＣＡ  ｍＡｂを使用したＰＳＣＡを用いて過渡的にトランスフェクトされた２９３Ｔ細胞のイムノブロット分析。ｍＡｂ  １Ｇ８、３Ｃ５および４Ａ１０は全て、ＰＳＣＡの等分子形態を認識し、ここで、このアッセイにおいてｍＡｂ  ２Ｈ９および３Ｅ６は、２９３Ｔ−ＰＳＣＡ細胞におけるＰＳＣＡの脱グリコシル化された形態をわずかに認識するのみである。
【図３８】  抗ＰＳＣＡ  ｍＡｂを用いた正常な前立腺の免疫組織化学的染色。実施例は、ネガティブコントロールとして、無関係のアイソタイプ抗体を用いて染色された正常腺（矢印）、ＰＳＣＡ  ｍＡｂ  ３Ｅ６およびｍＡｂ  １Ｇ８を含むことを示した。分泌細胞（くさび形）と比較した場合、ＰＳＣＡ  ｍＡｂ  ３Ｅ６は、優先的に基底細胞（矢印）を染色し、一方、ｍＡｂ  １Ｇ８は、基底細胞（矢印）および分泌細胞（くさび形）の両方を等しく染色する。ＰＳＣＡ  ｍＡｂ  ２Ｈ９を用いて染色された正常前立腺標本由来の萎縮性の単一層状腺の強い染色もまた示される。
【図３９】  正常な組織におけるＰＳＣＡタンパク質の発現。（Ａ）パネルａは、ｍＡｂ  １Ｇ８を用いた膀胱の過渡的な上皮の染色を示す。パネルｂは、ｍＡｂ  １Ｇ８を用いて染色した結腸神経内分泌細胞を示す。クロモグラニンを用いた二重染色は、陽性細胞は、神経内分泌起源であることを明らかにした（示されていない）。パネルｃは、ｍＡｂ  ３Ｅ６を用いた集合管（矢印）および細管の染色を示す。パネルｄは、ｍＡｂ  ３Ｅ６を用いた胎盤栄養膜の染色を示す。（Ｂ）ＰＳＣＡ  ｍＲＮＡ発現のノーザンブロット分析。正常な前立腺、腎臓、膀胱およびＬＡＰＣ−９前立腺癌異種移植片に由来する総ＲＮＡは、ＰＳＣＡ特異的プローブを使用して分析された（上のパネル）。同膜は、負荷差異のコントロールに対してアクチンを用いてプローブされた（下のパネル）。
【図４０】  マウスＰＳＣＡ遺伝子の標的化。（Ａ）パネルａは、ＰＳＣＡ標的化ベクターを作製するためのストラテジーを示す模式図である。（Ｂ）パネルｂは、野生型（＋／＋）ＥＳ細胞および異種接合型（＋／−）ＥＳ細胞の回復を示す３’プローブを使用したゲノムＤＮＡのサザンブロット分析の写真である。
【図４１】  上方のパネルは、前立腺癌のトランスジェニックマウスのモデルを産生するためのストラテジーの模式図である。下方のパネルは、前立腺癌の存在するトランスジェニックマウスのモデルの一覧表である。
【図４２】  トランスフェクションアッセイのためのレポーター遺伝子構築物を示す模式図。
【図４３】  増加した遺伝子発現活性を有する、９ｋｂヒトＰＳＣＡ上流調節領域の組織優勢発現（前立腺細胞および膀胱細胞）を示す棒グラフ。
【図４４】  増加した遺伝子発現活性を有する、ＰＳＣＡ上流領域（すなわち、９ｋｂ、６ｋｂ、３ｋｂおよび１ｋｂのＰＳＣＡ領域）中の前立腺優勢発現エレメントを同定する棒グラフ。
【図４５】  検出可能なマーカーに作動可能に連結した９ｋｂまたは６ｋｂのヒトＰＣＳＡ上流領域のいずれかを含むトランスジェニックベクターの設計を示す模式図。
【図４６】  ９ｋｂ  ＰＳＣＡ上流領域が、インビボで前立腺、膀胱および皮膚におけるレポーター遺伝子の発現を駆動することを示す写真。
【図４７】ヒトおよびマウスのＰＳＣＡ  ＲＮＡの組織特異的発現パターンを示す多組織ノーザンブロット分析の写真。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９Ａ】
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【図９Ｂ】
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【図１０】
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0004527883.tif 000015
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【図１１Ａ】
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【図１１Ｂ】
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【図１１Ｃ】
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【図１２Ａ】
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【図１２Ｂ】
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【図１２Ｃ】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【図４０】
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【図４１】
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【図４２】
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【図４３】
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【図４４】
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【図４５】
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【図４６】
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【図４７】
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【配列表】
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