(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
測定対象の検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の測定方法であって、
所定時間培養処理した後の前記培養試料をフローサイトメータを用いて測定し、検出される散乱光信号の発光時間と強度とから前記培養試料の第１粒度分布を得る第１測定工程と、
前記培養処理前の培養試料を前記フローサイトメータを用いて測定し、検出される散乱光信号の発光時間と強度とから前記培養試料の第２粒度分布を得る第２測定工程と、
前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分から、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る解析工程と、
前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する判定工程と、
を含むことを特徴とする微生物測定方法。
【請求項２】
測定対象検体が尿であることを特徴とする、請求項１記載の微生物測定方法。
【請求項３】
測定対象検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の粒度を測定するフローサイトメータとともに用いられ、
前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、所定時間培養処理を行った後の培養試料の第１粒度分布を得る第１測定手段と、
前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、前記培養処理前の培養試料の第２粒度分布を得る第２測定手段と、
前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分から、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る解析手段と、
前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する判定手段と、
を備えることを特徴とする微生物測定装置。
【請求項４】
測定対象検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の粒度を測定するフローサイトメータとともに用いられ、前記粒度の測定結果を解析する解析プログラムを記録したコンピュータ読み取り可能な記録媒体であって、
Ａ；前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、所定時間培養処理を行った後の培養試料の第１粒度分布を得る段階と、
Ｂ；前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、前記培養処理前の培養試料の第２粒度分布を得る段階と、
Ｃ；前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分に基づいて、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る段階と、
Ｄ；前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する段階と、
を実行するための解析プログラムを記録した、コンピュータ読み取り可能な記録媒体。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、細菌その他培養可能な微生物を培養して菌数を測定する方法に関する。なかでも、微生物以外の夾雑物が含まれる試料においても、短時間の培養で高感度に菌数を測定する微生物測定方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
従来、微生物を培養して微生物の数を測定する一般的な方法として、寒天平板塗抹法がある。この方法では、適度な栄養分を含む寒天平板培地上に一定量の検体を塗抹し、コロニーが肉眼又は顕微鏡で観察できる大きさになるまで培養した後、生じたコロニー数を計測する。しかし、この方法を用いると、肉眼又は顕微鏡で観察可能となる程度まで菌コロニーが成長するのを待たねばならない。そのため、菌の種類をある程度類推するために、通常１８〜２４時間程度の培養期間を要している。菌種によっては、培養期間は２４時間以上、４８時間以上、あるいは１月など長期に渡るものもある。
【０００３】
培養により増殖した菌の種類によっては、微生物を特定するための菌種の同定検査や薬剤の有効性を調べる薬剤感受性検査が必要になる場合がある。ところが、前記方法では、これらの必要性が判明するまでに時間がかかり、たくさんの試料を効率的に検査することが難しい。
【０００４】
前述の寒天平板培地のかわりに液体培地を用いて試料を培養する方法がある。この方法は、適度な栄養分を含む液体培地に一定量の検体を混和して培養を行ない、肉眼や吸光度高度計、分光光度計などで濁度を測定する。しかし、光度計は、感度がいいとは言えないため、この方法においても比濁が変化する程度まで菌の増殖を待たねばならない。そのため、菌数の測定には、寒天平板塗抹法と同様に、何日間かの培養期間が必要であり、前述の問題がある。
【０００５】
また、特開平５−８２９０１号公報には、培養中の検体に光を照射し、散乱光及び透過光の時間に対する変化から菌数を測定する方法が開示されている。この方法は、発育形態が異なる菌であっても正確に菌数を求めることができる。しかし、この方法は、菌の発育課程における散乱光データの変化や透過光データの変化を用いるため、検体の培養に要する時間は短縮されない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
一方、微生物のような微小な大きさの粒子を高感度に測定する装置として、フローサイトメータ等の粒子測定装置が知られている。粒子測定装置は、試料中の粒子の数を１つ１つ計測するため、高感度な測定が可能である。従って、粒子測定装置を用いれば、長時間培養しなくとも試料中の細菌数を計測可能である。
【０００７】
しかし、粒子測定装置は、微生物と同じくらいの大きさの粒子、例えば埃や析出物などの夾雑物を、微生物として検出してしまう。このため、粒子測定装置の検出結果には、夾雑物による誤差が含まれてしまう。例えば尿を検体として細菌を測定する際、その尿中の有形成分である赤血球、白血球、上皮細胞、円柱、結晶等やその崩壊物が細菌として検出されてしまう。
【０００８】
そこで、夾雑物と微生物とを識別するために、微生物を染色し、微生物から発せられる蛍光を測定する方法が提案されている。しかし、微生物の種類によって染色度合いが異なる。また、目的とする微生物のみを染色する蛍光染料や処理条件を試料ごとに設定しなくてはならない。このため、測定に手間がかかり、大量の検体を分析するには不向きである。
【０００９】
他に微生物数を迅速に検出する方法として、微生物の増殖に伴う培地のインピーダンスの変化、培養液のＰＨの変化、消費酸素量あるいは発生炭酸ガス量等を測定し、これらと微生物数の相関から微生物数を求める方法が最近研究されている。しかし、培養された微生物以外の原因によって前記測定値は変化することがある。また、微生物の検出限界、検出精度の点から満足できる方法とはいえないため、特定の条件下のみでしか使えない方法である。すなわち、前述のように、検体中の微生物を、短時間にかつ正確に判定可能な方法は、未だ提供されていない。
【００１０】
本発明は、以上のような事情を考慮したもので、微生物の測定を短時間の培養で簡易に精度良く測定する方法を提供することを目的とする。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
本願第１発明は、上記の課題を解決するため、測定対象の検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の測定方法であって、
Ａ；所定時間培養処理した後の前記培養試料をフローサイトメータを用いて測定し、検出される散乱光信号の発光時間と強度とから前記培養試料の第１粒度分布を得る第１測定工程と、
Ｂ；前記培養処理前の培養試料を前記フローサイトメータを用いて測定し、検出される散乱光信号の発光時間と強度とから前記培養試料の第２粒度分布を得る第２測定工程と、
Ｃ；前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分から、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る解析工程と、
Ｄ；前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する判定工程と、
を含むことを特徴とする微生物測定方法を提供する。
【００１２】
培養後の測定結果から培養前の測定結果を減算することにより、検体に含まれている夾雑物を微生物として測定することを防止することが出来る。夾雑物とは、例えば埃や検体中の有形成分である。
【００１３】
散乱光強度は、培養試料に含まれる粒体の大きさに関する情報を与える。また、散乱光発光時間は、培養試料に含まれる粒体の長さに関する情報を与える。従って、発光時間に対する強度の変化を測定することにより、鎖状に増殖したり、ブドウの房状に増殖しているなどの増殖形態を知ることが出来る。
【００１４】
径が比較的大きく長さがさほど長くない菌が増殖している場合はブドウ球菌、径が比較的小さく長さが短い菌が増殖している場合は桿菌、径が比較的小さく長い菌が増殖している場合は連鎖桿菌、径が連鎖桿菌よりもさらに小さく長い菌が増殖している場合は連鎖球菌と推定できる。
【００１５】
本願第２発明は、前記第１発明において、測定対象検体が尿であることを特徴とする微生物測定方法を提供する。
【００１６】
尿を検体とする場合、前記微生物の分類結果からグラム陰性／陽性の判断が可能である。
【００１７】
本願第３発明は、測定対象検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の粒度を測定するフローサイトメータとともに用いられ、第１測定手段と、第２測定手段と、解析手段と、出力手段とを備えることを特徴とする微生物測定装置を提供する。第１測定手段は、前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、所定時間培養処理を行った後の培養試料の第１粒度分布を得る。第２測定手段は、前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、前記培養処理前の培養試料の第２粒度分布を得る。解析手段は、前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分から、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る。判定手段は、前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する。
【００１８】
前記第１発明と同様の作用効果を有する。
【００１９】
本願第４発明は、測定対象検体を培養液に加えた培養試料中の微生物の粒度を測定するフローサイトメータとともに用いられ、前記粒度の測定結果を解析する解析プログラムを記録したコンピュータ読み取り可能な記録媒体であって、下記Ａ〜Ｄ段階を実行するための解析プログラムを記録した、コンピュータ読み取り可能な記録媒体を提供する。
Ａ；前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、所定時間培養処理を行った後の培養試料の第１粒度分布を得る段階、
Ｂ；前記フローサイトメータにより検出される散乱光信号の発光時間と強度とから、前記培養処理前の培養試料の第２粒度分布を得る段階、
Ｃ；前記第１粒度分布と第２粒度分布との差分に基づいて、前記培養試料中で培養された微生物の第３粒度分布を得る段階、
Ｄ；前記第３粒度分布に基づいて、前記検体に微生物が含まれている場合に、前記微生物がブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌、桿菌、または酵母様真菌のいずれに属するかを判定する段階。
【００２０】
前記第１発明と同様の作用効果を有する。
【００２１】
【発明の実施の形態】
以下、本発明について、実施形態例を挙げながら具体的に説明する。
【００２２】
本発明において、フローサイトメータとは、ａ）試料をシース液で包んで流すことにより流体力学効果による細い試料流を形成させ、ｂ）試料中の粒子を１個ずつ検出部に流し、ｃ）光を照射して粒子から発せられる散乱光や蛍光を検出する装置を言う。光源としては、半導体レーザやアルゴンレーザなどを適宜用いることができる。
【００２３】
培養液とは、微生物を培養するための適度な栄養分を含む液体培地をいう。微生物種類を特定しないのであれば一般細菌用培地を、微生物種類を特定するのであればその種類に適した培地を選択的に用いることができる。
【００２４】
培養処理とは、微生物を培養するための処理で、所定の温度（例えば３０〜３７℃）の恒温器に培養試料を入れ、微生物の培養を促進する処理をいう。
【００２５】
また、培養処理前の培養試料を測定とは、培養処理が行われる前の培養試料中の微生物を測定することである。微生物が増殖しないような低温で培養試料を保存した後に測定することも含む。
【００２６】
＜第１実施形態例＞
以下、図面に示す実施形態例に基づいてこの発明を詳述する。これによってこの発明が限定されるものではない。
【００２７】
［装置］
図１はこの発明のフローサイトメータの検出部と、信号処理装置とを含む構成図である。
【００２８】
フローサイトメータの検出部は、シースフローセル１、サンプルノズル２、ビームストッパー５、コレクターレンズ６、ダイクロイックフィルター７、フォトダイオード８、フォトマル９を有している。
【００２９】
シースフローセル１は、サンプルノズル２から流れる試料をシース液に包み、シース液に包まれた試料流４を形成する。試料流の粒子４は、図示しないレーザ源からのレーザ光３を照射される。ビームストッパ５は、試料流４を直接透過する光を遮断する。コレクターレンズ６は、粒子４が放出する前方散乱光および前方蛍光を集光する。ダイクロイックフィルター７は、前方散乱光を反射する。フォトダイオード８は、ダイクロイックフィルター７により反射された前方散乱光を検出する。検出された前方散乱光は、アンプを介して信号処理装置１０に入力される。フォトマル９は、ダイクロイックフィルター７を通過した前方蛍光を検出する。フォトダイオード８及びフォトマル９で検出された前方散乱光及び前方蛍光は、アンプを介して信号処理装置１０にそれぞれ入力される。
【００３０】
本発明に係る信号処理装置１０は、フォトダイオード８から出力される検出信号を受信し、前方散乱光の発光時間(Fscw ; Forward scatter pulse width)に対する散乱光強度(Fsc ; Forward scatter intensity)の変化を測定する。また、信号処理装置１０は、前方散乱光信号に基づいて粒度分布図を作成し、解析する。図２に、信号処理装置１０に入力される信号の概念図を示す。散乱光強度は、入力信号の強度、すなわちパルス高さに相当する。散乱光の発光時間は、入力信号のパルス幅に相当する。
【００３１】
図３は、信号処理装置１０の機能構成を示すブロック図である。信号処理装置１０は、例えばＰＣ(Personal Computer)やＷＳ(Work Station)などの情報端末に設けられ、処理結果を情報端末の出力部に出力する。信号処理装置１０は、粒度分布作成部１０１、記憶部１０２、処理部１０３及び出力制御部１０４を備えている。
【００３２】
粒度分布作成部１０１は、フローサイトメータが検出した光信号を受信し、横軸を前方散乱光発光時間、縦軸を前方散乱光発光強度とする粒度分布を受信信号に基づいて作成する。また、粒度分布作成部１０１は、作成した粒度分布を示す粒度分布図を、出力制御部１０４を介してディスプレイなどの出力部に出力可能である。後述する図６や図７などは、粒度分布作成部１０１により出力される粒度分布図の一例である。
【００３３】
記憶部１０２は、作成された粒度分布図を、培養後及び前のそれぞれについて記憶する。また、記憶部１０２は、粒度分布図に基づいて作成される区画データや粒度分布図の解析結果を記憶する。区画データ及び解析結果については後述する。
【００３４】
処理部１０３は、粒度分布図を所定の区画に細分し、各区画内のデータ数（以下、単に区画データという）を求める。言い換えれば、区画データとは、粒度分布図上の１区画に含まれる粒子数である。さらに、処理部１０３は、培養前及び後の粒度分布において、同一区画内における区画データの変化分を求める。これにより、試料中の夾雑物を微生物として測定することによる測定誤差を減少することができる。
【００３５】
夾雑物による測定誤差について、説明する。フローサイトメータの前方散乱光強度による検出は、培養液中の微生物と同じくらいの大きさの１μｍ以下の夾雑物も検出する。培養処理前でも多数の粒子が検出される（後述する図６参照）。培養処理後に粒子が多数検出されても、それが増殖した微生物なのか最初から混入している夾雑物なのか判断できない。そこで培養処理後の粒度分布から培養処理前の粒度分布を減算し、培養処理によって増加した粒子、すなわち培養された微生物だけを検出する。
【００３６】
また、処理部１０３は、各区画データやその変化分に基づいて、所定の方法で粒度分布を解析し、解析結果を表示制御部に出力する。例えば、最も変化分が多い区画を１００％とした場合に、各区画データの変化分の割合を求め、所定の割合以下の区画を表示部分とすることが挙げられる。さらに、処理部１０３は、区画データの変化の度合いを視覚的に表示するために、変化の度合いに応じた色を各区画に設定する。処理部１０３は、培養前及び後の粒度分布についても、同様に区画データの大小に応じた色を各区画に設定してもよい。
【００３７】
出力制御部１０４は、処理部１０３により設定された表示色を用い、各区画をディスプレイやプリンタなどの出力部に出力する。後述する図２１〜２８は、出力制御部１０４により出力される解析結果の表示例である。縦軸は散乱光強度を、横軸は散乱光の発光時間である。例えば、図２１は、桿菌について、培養前の粒度分布、培養後の粒度分布及び培養により増加した微生物の粒度分布の解析結果をそれぞれ示す。
【００３８】
［処理の流れ］
次に、信号処理装置１０が行う解析処理の流れを説明する。図４は、信号処理装置１０が行う解析処理の流れの一例を示すフローチャートである。フローサイトメータから検出信号が入力されることにより、以下の処理が開始される。
【００３９】
まず、ステップＳ１では、処理部１０３が、所定の初期化処理を行う。具体的には、処理部１０３は、ｎ＝１、ｘ＝１、ｙ＝１とする。ここで、ｎは測定回数を示す変数である。ｘおよびｙは、細分化された粒度分布図の区画のｘ軸方向及びｙ軸方向の位置を示す変数である。
【００４０】
ステップＳ２では、粒度分布作成部１０１が、フローサイトメータから検出信号を受信する。
【００４１】
ステップＳ３では、粒度分布作成部１０１が、受信した検出信号に基づいて前方散乱光の発光時間に対する発光強度を求め、粒度分布を作成する。さらに粒度分布作成部１０１は、前記作成した粒度分布を記憶部１０２に格納する。粒度分布作成部１０１は、ユーザからの指示に応じてまたは自動的に、粒度分布を記憶部１０２から読み出し、ディスプレイなどに出力可能である。
【００４２】
ステップＳ４では、処理部１０３は、所定の区画数に粒度分布図を細分する。例えば、２５６×２５６の区画（１≦ｘ≦２５６、１≦ｙ≦２５６）に細分する。
【００４３】
ステップＳ５では、処理部１０３は、各区画毎の区画データを全ての区画について求め、記憶部に格納する。すなわち、処理部１０３は、粒度分布図上の各区画内に含まれる粒子数を、粒度分布に基づいて求める。
【００４４】
ステップＳ６では、処理部１０３は、測定回数ｎをインクリメントする。
【００４５】
ステップＳ７では、処理部１０３は、測定回数ｎが２であるか否かを判断する。“Ｙｅｓ”と判断すると、２回目の測定を行うためにステップＳ８に移行する。“Ｎｏ”と判断すると、後述するステップＳ９に移行する。培養前と培養後の粒度分布の測定が終了しているので、両者の粒度分布の差から増加した菌数を求めるためである。
【００４６】
ステップＳ８では、処理部１０３は、所定時間Ｔが経過するのを待機する。この時間は、検体によって変化するため一概に規定することは難しいが、例えば尿の場合には通常は４時間程度で十分である。
【００４７】
ステップＳ９〜ステップＳ１４では、前記ステップＳ４で細分した各区画ごとに、区画データの変化分を求め、菌の増加数を決定する処理を行う。
【００４８】
まず、ステップＳ９では、処理部１０３は、所定数の区画の中から処理対象の区画を設定する。通常、区画（ｘ＝１，ｙ＝１）から順に処理対象とする。
【００４９】
ステップＳ１０では、処理部１０３は、処理対象の区画について、培養後の区画データから培養前の区画データを減算し、区画データの変化分を求める。
【００５０】
ステップＳ１１では、処理部１０３は、区画データの変化分が所定値未満であるか否かを判断する。“Ｙｅｓ”と判断すると、ステップＳ１２に移行する。“Ｎｏ”と判断すると、後述するステップＳ１３に移行する。区画データの変化分があまりにも小さい場合には、測定誤差などを考慮して、菌の増加数はないと見なすためである。所定値は、通常、経験的に定められる。
【００５１】
ステップＳ１２では、処理部１０３は、処理対象の区画データについて、菌の増加数をゼロに設定する。また、処理部１０３は、区画と菌の増加数とを対応付けて、記憶部１０２に格納する。
【００５２】
ステップＳ１３では、処理部１０３は、処理対象の区画について、区画データの変化分が所定値以上であるので、（菌の増加数）＝（区画データの変化分）とする。前記ステップＳ１２と同様、処理部１０３は、区画と菌の増加数とを対応付けて、記憶部１０２に格納する。
【００５３】
ステップＳ１４では、処理部１０３は、全ての区画について、菌の増加数を求めたか否かを判断する。“Ｙｅｓ”と判断すると、ステップＳ１５に移行する。“Ｎｏ”と判断すると、ステップＳ９に戻り、次の区画について菌の増加数を決定する。
【００５４】
ステップＳ１５〜ステップＳ２０では、培養前後の粒度分布及び増加した菌の解析結果を順に表示する処理が行われる。なお、これら全てを表示する必要はなく、例えば増加した菌についてのみ表示を行っても良い。また、ユーザからの指示に応じて各解析結果を表示することも可能である。
【００５５】
まず、ステップＳ１５では、処理部１０３は、培養前、培養後または増加した菌のいずれの粒度分布を解析及び表示対象にするかを決定する。本実施形態例では、培養前、培養後、増加した菌の順に表示するものとする。
【００５６】
ステップＳ１６では、処理部１０３は、区画データが最大である区画の区画データを１００％とした場合の、各区画データの割合を求める。解析対象が増加した菌の場合、菌の増加数が最大である区画の菌数を１００％とした場合の、各区画の菌の増加数の割合を求める。
【００５７】
ステップＳ１７では、処理部１０３は、区画データまたは菌の増加数が所定の割合以下の区画を、表示部分に決定する。これは、全ての区画を表示対象とすると、粒度分布が見にくくなり増殖した菌の特性が判別しにくくなるからである。後述する図２１〜図４４は、区画データまたは菌の増加数の割合が１０％以下の部分を表示部分とした場合の解析結果を示している。
【００５８】
ステップＳ１８では、処理部１０３は、区画データまたは菌の増加数の割合を予め定めておいたレベルに分け、レベル毎に異なる所定の表示色を表示部分内の各区画について設定する。後述する図２１〜図４４は、０〜２％、２〜４％、４〜６％、６〜８％、８〜１０％の５つのレベル毎に異なる色を用いて表示した解析結果の例である。
【００５９】
ステップＳ１９では、出力制御部１０４が、表示部分を設定された表示色を用いて出力部に出力する。これにより、図２１〜２８に例示する解析結果が出力部に表示される。
【００６０】
ステップＳ２０では、処理部１０３は、培養前、培養後または培養後−培養前の全てについて、解析結果を表示したか否かを判断する。“Ｙｅｓ”と判断すると、処理を終了する。“Ｎｏ”と判断すると、再び前記ステップＳ１５に戻り、表示されていない解析結果を表示する。
【００６１】
［実施例］
前記フローサイトメータ及び信号処理装置を用いて行った、試料中の微生物の測定について説明する。
【００６２】
（１）微生物の数の測定
（１−１）培養及び測定
検体としては尿を用いた。尿中細菌の検査は、膀胱炎や腎孟腎炎などの尿路感染症の診断のために、臨床検査としてひろく行われている。
【００６３】
尿中の細菌培養液として、一般細菌用液体培地であるハートインフィージョンブイヨン（ニッスイ製）を用いた。使用方法としては、取扱い説明に従い、加温融解したものを高圧蒸気滅菌してから使用した。
【００６４】
まず、培養液２ｍｌをいれた試験管２本を用意した。尿検体１００μｌを各試験管に添加し、攪拌し、培養試料２本を準備した。培養試料の１本を培養処理せずに、後述するようにフローサイトメータで微生物数を測定した。もう１本の培養試料を恒温機に入れて３７℃で４時間培養した後、フローサイトメータで同様に微生物数を測定した。
【００６５】
ブローサイトメータによる微生物数の測定は、次のように行った。フローサイトメータで分析する試料の量は、０．８μｌとした。フローサイトメータにより前方散乱光を検出し、検出光を信号処理装置１０に入力し、前方散乱光発光時間に対する前方散乱光強度を測定した。培養処理された培養試料の測定結果を第１粒度分布、培養処理前の培養試料の測定結果を第２粒度分布とし、第１粒度分布と第２粒度分布との差を求めて培養試料の最終的な粒度分布を求めた。
【００６６】
図６及び図７は、検体の第１及び第２粒度分布の測定結果を示す。横軸は散乱光発光時間Ｆｓｃｗ、縦軸は散乱光強度Ｆｓｃである。図６及び図７に示す粒度分布の縦軸の１００ｃｈは、粒子径にして約１μｍに相当する。図６及び図７の粒度分布から、２５６７６個もの粒子が増殖したことが分かった。増殖した粒子数は、培養の前後におけるデータ数（各粒度分布におけるプロット数）の差から求めた。
【００６７】
（１−２）従来の測定法との精度比較
次に、培養前後の粒度分布から求めた微生物量と、従来の寒天平板培地を用いて培養及び測定される微生物量との比較を行った。
【００６８】
前記（１−１）で述べたのと同様に試料を準備して培養し、粒度分布の測定を行った。測定に基づいて微生物数を求めた（以下、本法という）。
【００６９】
比較対象とする寒天平板培地による培養及び測定は、次のように行った。
【００７０】
まず、寒天平板培地として、尿中微生物検査で通常用いられるウリカルトＥ（Ｏｒｉｏｎ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ製）を用いた。この培地はＣＬＥＤ培地とマッコンキー培地とエンテロコッカス培地とから構成されている。取扱い説明書に従い培地表面に尿を塗抹し、３７度で２４時間培養を行なった。判定はコロニー数の密度を目視にて所定の対照表と比較し、尿中の菌数を求めた。
【００７１】
前記ウリカルトＥ法と本法とを４０検体について行った。測定結果を図８に示す。図８は、ウリカルトＥ法及び本法による菌数の測定結果を示している。
【００７２】
ウリカルトＥ法では、細菌数１０５／ｍｌ以上を陽性（細菌尿）と判定し、細菌数１０４／ｍｌを陽性の疑いがある判定保留とする。そこで、ウリカルトＥ法で１０４個／ｍｌ以上となった１６検体について、本法の測定結果と比較した。本法による測定結果は、いずれの１６検体についても１０４個／ｍｌ以上という同等の測定結果を示した。また、測定された値の差は、１桁の範囲内であった。このことから、ウリカルトＥ法と本法との良好な相関関係が示されたと言える。
【００７３】
次に、ウリカルトＥ法で陰性である一方、本法では高値の陽性結果となった検体（図８中矢印Ａ）について、再検査を行なった。すると、ウリカルトＥの培地表面に溶けているところがあった。これは細菌コロニーが密集しすぎて起こったものである。このことから、この検体については、ウリカルトＥ法において細菌が増殖しているのにコロニーが観察されないため、陰性と誤判定されたと考えられる。
【００７４】
次にウリカルトＥ法に比べ本法が低値となった２検体（図８中矢印Ｂ）について、検討した。両検体の培養後の粒度分布図（図９、図１１）は、ともに散乱光発光時間が長いほうに広がる粒度分布を示している。この粒度分布は培養前の粒度分布図（図１０、図１２）には見られないので、培養によって増殖した菌の粒度分布である。そこでこれらの培養試料を顕微鏡でさらに詳細に調べた。これらの検体では、いずれも菌が連鎖して増殖していることが観察された。さらに菌種を調べると、図９及び図１０で示される菌は連鎖球菌のEnterococcus erogenesであり、図１１及び図１２で示される菌は連鎖桿菌のPseudomonasであった。
【００７５】
以上から、ウリカルトＥ法と本法との測定結果が一致しなかった原因が次のように考えられる。連鎖桿菌及び連鎖球菌は、鎖状に連なりながら増殖していく。ところが、フローサイトメータは、複数の菌が連鎖した鎖状の固まりを一つの粒子として検出する。そこで、フローサイトメータは、菌の増殖が起こっていても、連鎖しているためにに実際の増加分を検出できない。
【００７６】
連鎖桿菌及び連鎖球菌は、長く連なった形状であるので、散乱光強度はほとんど変わらないが、散乱光の発光時間が連鎖した菌の長さに応じて長くなる。従って、散乱光発光時間が長い信号を監視することにより、信号強度だけでは見逃してしまう連鎖桿菌及び連鎖球菌の増殖を検出可能である。
【００７７】
具体的には、散乱光発光時間が例えば９０ｃｈ以上の領域に所定数以上の菌が検出される場合、連鎖桿菌または連鎖球菌が存在している陽性であると判定をすることができる。さらに、その領域の信号については、散乱光発光時間の長さに応じ、連鎖した菌数に対応させる係数を乗じることにより、増殖した微生物数を推定可能である。
【００７８】
以上の検討結果より、本法は従来法であるウリカルトＥ法と良好な相関関係を有し、しかも従来より大幅に短い培養時間で良好な測定結果を提供出来ることが分かった。
【００７９】
培養液の種類を選択性培地にすることで、上記と同じ操作にて、微生物の種類を特定することも可能である。培養時間が短時間で済むので、培養条件を変えて微生物を詳細に検討することが短時間で可能となる。
【００８０】
さらに、連鎖桿菌及び連鎖球菌以外の各種の微生物について、増殖形態と粒度分布図との関係を調べてみた。
【００８１】
連鎖桿菌及び連鎖球菌以外に菌が集団となって増殖する菌としてブドウ球菌がある。２種類のブドウ球菌を試料としてそれぞれ前記（１―１）と同様に培養し、フローサイトメータにより散乱光を検出して信号処理装置による粒度分布の測定を行なった。その粒度分布図が図１７、図１８である。前記の連鎖菌とは異なり、粒度分布は散乱光強度の大きいほうへ細長く伸びる粒度を示す。ブドウ球菌は増殖によって菌が房のように集まりながら増えてゆく。従って、菌の増殖に従い、菌の集団の径が大きくなり、散乱光強度も大きくなる。
【００８２】
菌が増殖しても集団とはならない菌である桿菌についても同様に粒度分布を調べてみた。その粒度分布図を図１５、図１６に示す。散乱光信号の強度や発光時間が大きいほうに広がるような粒度分布は示されていない。これは菌が増殖しても菌どうしがばらばらの状態であるので、散乱光信号の強度や発光時間が変わることなく一定値以下のところに現れることを示している。
【００８３】
以上の検討により、フローサイトメータでは菌の集団を一つの粒子として捉えるために、連鎖桿菌、連鎖球菌及びブドウ球菌について実際の増殖数より低く計測していることがわかった。また、連鎖桿菌、連鎖球菌、ブドウ球菌及び桿菌は、増殖形態が異なるために粒度分布が異なり、増殖した菌の粒度分布に基づいて、菌の種類を特定可能であることが分かった。なかでも、連鎖桿菌及び連鎖球菌は、散乱光強度が単独の桿菌とあまり変わらないので、散乱光強度を測定するだけでは判別ができない。散乱光信号の強度と発光時間との２つのパラメータを測定することによって、ブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌及び桿菌を区別することが可能となる。図４５は、前記４種の菌による粒度分布の違いを模式的に示したものである。
【００８４】
具体的には、例えば散乱光強度が９０ｃｈ以下で散乱光の発光時間が９０ｃｈ以上の領域に菌が所定数以上検出される場合、連鎖桿菌が存在していると警報を出素ことが考えられる。また、散乱光強度が５０ｃｈ以上で散乱光の発光時間が８０ｃｈ以下の領域に菌が所定数以上検出される場合は、ブドウ球菌が存在していると警報を出すことが考えられる。連鎖桿菌もブドウ球菌も増殖に従って粒度分布が延びてゆくので、判定を領域の個数だけでは粒度分布の形状をも監視することが可能である。
【００８５】
さらに、集団の菌数によって粒度分布が変化するので、その領域の信号については、散乱光の強度もしくは発光時間の大きさに応じて集まった菌数に対応させた係数を乗じることにより、増殖した菌数自体を推定することも可能である。
【００８６】
酵母様真菌についても粒度分布を測定したのでその結果を示す。図１３及び図１４は、酵母様真菌の粒度分布図を示している。散乱光強度が２５０ｃｈを超えたところに信号が現れるため、この図面に粒度が現れていない。酵母様真菌は大きさが３〜５μｍと大きいため、散乱光強度も強くなるからである。
【００８７】
（２）微生物の分類
本実施形態例に係る信号処理装置により測定結果の解析を行い、微生物の分類を行ったので、測定結果及び解析結果について説明する。
【００８８】
培養対象としては下記の細菌を用いた。下記の細菌は、尿中に検出される細菌であり、検体に尿を用いて細菌検査を行う場合に検査対象となる細菌である。
【００８９】
桿菌（１）      Escherichia coli
桿菌（２）      Pseudomonas aeruginosa
ブドウ球菌（１）Staphylococous aureus
ブドウ球菌（２）Staphylococous epldermidis
連鎖球菌（１）  Entercococus faecalis
連鎖球菌（２）  Streptococous agalactlae
連鎖桿菌        Pseudomonas
酵母様真菌      Candida glabrata
これらの細菌を、前記（１−１）と同様に培養し、フローサイトメータにより散乱光を検出して信号処理装置による粒度分布の測定を行った。ただし、培養時間は４時間ではなく２時間として実験を行った。図１５〜２０は、各細菌の培養前及び培養後の粒度分布を示す。図１５は桿菌（１）、図１６は桿菌（２）、図１７はブドウ球菌（１）、図１８はブドウ球菌（２）、図１９は連鎖球菌（１）、図２０は連鎖球菌（２）についての粒度分布である。各図において（ａ）は培養前の粒度分布を、（ｂ）は培養後の粒度分布を示している。また、連鎖桿菌の粒度分布は前記図１１及び１２に示すとおりである。酵母様真菌の粒度分布は、前記図１３及び１４に示すとおりである。
【００９０】
前記図１５〜２０の各図において、図（ａ）と図（ｂ）とを比較することにより、粒度分布図上のどの領域で細菌が増加しているかが分かる。しかし、著しい変化がない場合、前記変化が分かりにくい。そこで、前述のように、粒度分布図の区画毎に培養の前後における粒度分布の変化分を求め、変化の割合が所定範囲の区画を表示する解析処理を行った。
【００９１】
解析結果を図２１〜図４４に示す。解析結果は、前記粒度分布のグラフを２５６×２５６の区画に分割し、各区画における粒子数を割り出し、最も多い粒子数を１００％とした場合の１０％以下の区画を、所定のレベル毎に色分けして表示したグラフである。
【００９２】
図２１、２２及び図２３は、桿菌（１）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。また、図２４、２５及び図２６は、桿菌（２）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。桿菌（１）の散乱光強度は、おおむね１０〜８０ｃｈの範囲にある。桿菌（２）の散乱光強度は、０〜２０ｃｈの範囲にある。また、散乱光の発光時間は、桿菌（１）でおおむね４０〜９０ｃｈの範囲であり、桿菌（２）で３０〜７０ｃｈの範囲と短い。桿菌の種類によって粒度分布の位置に少し違いはあるが、粒度分布はあまり広がらずにまとまっている。すなわち桿菌は増殖しても集団とはならないことが示されている。また、桿菌（２）は粒子径の小さい小型桿菌であることが示されている。
【００９３】
図２７、２８及び２９は、ブドウ球菌（１）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。また、図３０、３１及び３２は、ブドウ球菌（２）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。培養対象がブドウ球菌であるため、増殖した菌の散乱光強度が広い範囲に渡っている。
【００９４】
例えば、ブドウ球菌（１）では、増殖した菌の散乱光強度は、主に２０〜１９０ｃｈの範囲に渡っている。ブドウ球菌（２）では、増殖した菌の散乱光強度は、主に０〜１６０ｃｈの範囲に渡っている。しかし、散乱光の発光時間は４０〜９０ｃｈの範囲にあり、散乱光強度が大きくなるにつれて大きくなっている。すなわち、菌が、鎖状ではなく房状に増殖していることが示されている。
【００９５】
図３３、３４及び３５は、連鎖球菌（１）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。また、図３６、３７及び３８は、連鎖球菌（２）について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。培養対象が連鎖球菌であるため、増殖した菌の散乱光強度は主に０〜５０ｃｈの小さい範囲にまとまっている。しかし、散乱光の発光時間は、連鎖球菌（１）では４０〜２２０ｃｈ、連鎖球菌（２）では３０〜１７０ｃｈの範囲に、散乱光強度の大きさにかかわらず広がっている。すなわち、増殖した菌は、小径ではあるが連鎖して長さが長くなっていることが示されている。
【００９６】
図３９、４０及び４１は、連鎖桿菌について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。培養対象が連鎖桿菌であるため、増殖した菌の散乱光強度は主に３０〜６０ｃｈの小さい範囲にまとまっている。しかし、散乱光の発光時間は、６０〜１８０ｃｈの範囲に散乱光強度の大きさにかかわらず広がっている。すなわち、小径な菌が連鎖して増殖していることが示されている。連鎖球菌、連鎖桿菌はいずれも菌の連鎖度合いに従って散乱光発光時間がおおきくなってゆく。しかし散乱光強度は各菌の径によるため、連鎖桿菌の方が連鎖球菌より径が大きいため、散乱光強度も大きくなる。
【００９７】
図４２、４３及び４４は、酵母様真菌について、培養前、培養後及びその変化分の粒度分布をそれぞれ示す解析結果である。培養対象が酵母様真菌であるため、増殖した菌の散乱光強度は図では２４０ｃｈ近辺にあるが、これは２４０ｃｈ以上の大きい信号が含まれている。また、発光時間は６０〜１５０ｃｈの範囲に渡っている。
【００９８】
以上から、ユーザは、培養により増殖した菌の解析結果に基づいて、桿菌、ブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌及び酵母様真菌の５つの分類のいずれに、増殖した菌が該当するか類推可能である。また、解析結果に基づいて、増殖した菌が前記５つの分類のいずれに該当するかを信号処理装置１０により判定することも可能である。例えば、前記５つの分類のそれぞれに属する粒度分布上の区画領域を予め定めておき、各区画領域の信号数に応じて、分類結果を表すことが考えられる。又、粒度分析のピーク位置や分布幅を解析して菌を分類することも考えられる。
【００９９】
さらに、検体が尿である場合、尿中の桿菌及び連鎖桿菌はそのほとんどがグラム陰性であり、尿中のブドウ球菌及び連鎖球菌はそのほとんどがグラム陽性であることが知られている。従って、前記増殖した菌の解析結果に基づいて菌の分類を類推し、グラム陽性／陰性までも推定することが可能である。
【０１００】
【発明の効果】
本発明を利用することにより、フローサイトメータを用い、微生物を短時間の培養によって簡単に測定することができ、測定結果に及ぼす夾雑物の影響を減少して正確な測定を期することができる。
【０１０１】
さらに、フローサイトメータが検出する散乱光の発光時間及び信号強度から、微生物の分類の概要を類推することができ、検査に要する時間を短縮することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】フローサイトメータの検出部の構成を示す説明図。
【図２】フローサイトメータに入力される信号の説明図。
【図３】信号処理装置の機能構成を示すブロック図。
【図４】信号処理装置が行う解析処理の流れを示すフローチャート（前半）。
【図５】信号処理装置が行う解析処理の流れを示すフローチャート（後半）。
【図６】培養処理後の粒度分布図（尿）。
【図７】図３の試料培養処理前の粒度分布図。
【図８】ウリカルトＥ法と本法との測定結果。
【図９】連鎖球菌の培養処理後の粒度分布図。
【図１０】図６の連鎖球菌の培養処理前の粒度分布図。
【図１１】連鎖桿菌の培養処理後の粒度分布図。
【図１２】図１１の連鎖桿菌の培養処理前の粒度分布図。
【図１３】酵母様真菌の培養処理後の粒度分布図。
【図１４】図１０の酵母様真菌の培養処理前の粒度分布図。
【図１５】（ａ）培養前の桿菌（１）の粒度分布
（ｂ）培養後の桿菌（１）の粒度分布
【図１６】（ａ）培養前の桿菌（２）の粒度分布
（ｂ）培養後の桿菌（２）の粒度分布
【図１７】（ａ）培養前のブドウ球菌（１）の粒度分布
（ｂ）培養後のブドウ球菌（１）の粒度分布
【図１８】（ａ）培養前のブドウ球菌（２）の粒度分布
（ｂ）培養後のブドウ球菌（２）の粒度分布
【図１９】（ａ）培養前の連鎖球菌（１）の粒度分布
（ｂ）培養後の連鎖球菌（１）の粒度分布
【図２０】（ａ）培養前の連鎖球菌（２）の粒度分布
（ｂ）培養後の連鎖球菌（３）の粒度分布
【図２１】桿菌（１）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図２２】桿菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図２３】桿菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図２４】桿菌（２）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図２５】桿菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図２６】桿菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図２７】ブドウ球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図２８】ブドウ球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図２９】ブドウ球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図３０】ブドウ球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図３１】ブドウ球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図３２】ブドウ球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図３３】連鎖球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図３４】連鎖球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図３５】連鎖球菌（１）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図３６】連鎖球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図３７】連鎖球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図３８】連鎖球菌（２）の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図３９】連鎖桿菌の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図４０】連鎖桿菌の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図４１】連鎖桿菌の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図４２】酵母様真菌の粒度分布の解析結果（培養前）。
【図４３】酵母様真菌の粒度分布の解析結果（培養後）。
【図４４】酵母様真菌の粒度分布の解析結果（培養後−前）。
【図４５】ブドウ球菌、連鎖球菌、連鎖桿菌及び桿菌の菌種による粒度分布の違いを示す模式図。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【図４０】
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【図４１】
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【図４２】
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【図４３】
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【図４４】
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【図４５】
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