(57)【要約】本発明は、植物由来の脱フルクトシル化酵素、これを用いたフルクトシル化ペプチド又はタンパク質からの脱フルクトシル化方法、及びフルクトシル化ペプチド及びタンパク質の測定方法に関する。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に、植物から抽出された脱フルクトシル作用を有する酵素を作用させることを特徴とする脱フルクトシル化方法。
【請求項２】
植物から抽出された脱フルクトシル作用を有する酵素が、バラ科、ブドウ科又はセリ科に属する植物から抽出されたものである請求項１記載の脱フルクトシル化方法。
【請求項３】
フルクトシル化されているペプチドのアミノ酸配列が、配列番号１〜５のいずれかで表されるものである請求項１又は２記載の脱フルクトシル化方法。
【請求項４】
フルクトシル化されているタンパク質が、ヘモグロビンＡ１ｃである請求項１〜３のいずれか１項記載の脱フルクトシル化方法。
【請求項５】
フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に対して、脱フルクトシル作用を有する酵素であって、植物由来である酵素。
【請求項６】
植物が、バラ科、ブドウ科又はセリ科に属する植物である請求項５記載の酵素。
【請求項７】
請求項１〜４のいずれか１項記載の脱フルクトシル化方法により得られた反応生成物の１種又は２種以上を測定することを特徴とするフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質の測定方法。
【請求項８】
脱フルクトシル化方法により得られた反応生成物が、過酸化水素、グルコソン、グルコース及び脱フルクトシルペプチドである請求項７記載のフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質の測定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】  本発明は、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質から、酵素により脱フルクトシル化する方法及びその作用を有する新規酵素、並びに該方法により得られた反応生成物を測定することによる、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質の測定方法に関する。
【背景技術】  ヘモグロビン（Ｈｂ）Ａ１ｃは、そのβ鎖Ｎ末端バリンのアミノ基とグルコースのアルデヒド基が、非酵素的にシッフ塩基を形成した後、アマドリ転移を生じて安定化したアマドリ転移生成物であり、結果的にバリン残基にフルクトースが結合した構造を有する糖化タンパク質である。かかるＨｂＡ１ｃは、臨床的に過去１〜２ヶ月の平均血糖値を反映することから、糖尿病管理の指標として重要であり、迅速、簡便かつ正確で実用的な定量法が求められている。
ＩＦＣＣ（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｆｅｄｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ）は、ヘモグロビンをエンドプロテアーゼＧｌｕ−Ｃにより加水分解して得られる、フルクトシルバリンの存在が疑われるβ鎖Ｎ末端の６ペプチドフラグメントをＨＰＬＣにより分離した後、キャピラリー電気泳動法又は質量分析法で定量する方法をＨｂＡ１ｃの実用基準法（Ｋｏｂｏｌｄ  Ｕ．，ｅｔ  ａｌ；Ｃａｎｄｉｄａｔｅ  ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｏｒ  ｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎＡｌｃ  ｂａｓｅｄ  ｏｎ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｍａｐｐｉｎｇ．Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．，４３，１９４４−１９５１（１９９７））としているが、この方法は、特別な装置を必要とするため、操作が煩雑で経済性が悪く、実用には不向きな方法である。
現在、実用に供されているＨｂＡ１ｃの測定方法は、疎水基あるいは陽イオン交換基をもった特殊な硬質ゲルを担体として使用するＨＰＬＣ法や抗ＨｂＡ１ｃ抗体を使用するラテックス免疫凝集法などであるが、高価な機器を必要としたり、多段階の免疫反応を必要とするなど、迅速性、簡便性、正確性を必ずしも満足する方法ではなかった。
近年、糖化タンパク質をプロテアーゼで分解し、糖化アミノ酸に作用するフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ（ＦＡＯＤ）などの酵素を使用して、ＨｂＡ１ｃやグリコアルブミンなどの糖化タンパク質を酵素法により測定しようとする方法が報告されている（特開平５−１９２１９３号、特開平７−２８９２５３号、特開平８−１５４６７２号、特開平６−０４６８４６号、特開平８−３３６３８６号、ＷＯ９７／１３８７２、ＷＯ０２／０６５１９、特開２００１−０５４３９８号）。
これらの方法は、糖化タンパク質がＨｂＡ１ｃ及びグリコアルブミンのいずれの場合であっても、ＦＡＯＤなどの酵素が、糖化タンパク質のままでは作用することが困難であるため、それぞれの糖化タンパク質に特徴的な糖化アミノ酸（ＨｂＡ１ｃにおけるフルクトシルバリン、グリコアルブミンにおけるフルクトシルリジン）を糖化ペプチドあるいは糖化タンパク質より切り出して、ＦＡＯＤなどの基質とする方法である。したがって、ＦＡＯＤなどの基質となりうるように糖化アミノ酸を効率的に切り出す必要がある。
上記の目的のため、糖化タンパク質から糖化アミノ酸を効率的に切り出すプロテアーゼの探索が試みられ、多数のプロテアーゼが報告されているが、これらが実際に、糖化アミノ酸あるいは糖化アミノ酸を含むペプチドをどのように糖化タンパク質から切り出しているか、例えば、糖化タンパク質から、どのような長さのペプチド鎖が切り出されているかについては記載がなく、その意味から、前記記載が実用的なものであるか否かは不明であった。
一方、試料をプロテアーゼ処理し、遊離した糖化ペプチドに、糖化ペプチドオキシダーゼを作用させて、糖化タンパク質を測定しようとする方法が報告されている（特開２００１−０９５５９８号）。しかしながら、この方法に使用されている糖化ペプチドオキシダーゼは、実質的には、フルクトシルジペプチドに対して作用するものであり、ジペプチドよりも長いフルクトシルペプチドに対しては有効でなく、従来のＦＡＯＤなどを使用する場合と同様、基質となりうるフルクトシルジペプチドを効率よく切り出す必要があるという課題が残っていた。
また、ＦＡＯＤを他の酵素と組み合わせて使用した報告もある（特開２０００−３３３６９６号）。しかし、この方法は、プロテアーゼで切り出した糖化アミノ酸にＦＡＯＤを作用させた時に発生する過酸化水素と、同時に生成する糖化アミノ酸分解産物であるグルコソンにグルコースオキシダーゼを作用させて生成する過酸化水素の両方の過酸化水素を測定することによって、測定感度を向上させるものであり、長さの異なる糖化ペプチドについて、脱フルクトシル化を図るものではない。
【発明の開示】
したがって、本発明の目的は、ＨｂＡ１ｃ等のフルクトシル化タンパク質や当該フルクトシル化タンパク質をプロテアーゼにより分解させた時に切り出される種々の長さのフルクトシル化されたペプチドに対して、脱フルクトシル作用を有する酵素、当該酵素を用いた脱フルクトシル化方法及び当該脱フルクトシル化反応を利用したフルクトシル化されたペプチド又はタンパク質の測定方法を提供することにある。
本発明者らは、上記目的を達成すべく、酵素を自然界から探索した結果、今までに報告されているＦＡＯＤなどの脱フルクトシル作用を有する酵素が微生物由来であったのに対して、バラ科、ブドウ科、セリ科等の植物中にも脱フルクトシル作用を有する酵素が存在し、かつ当該植物由来の酵素は、フルクトシルペプチドのペプチド鎖の長さに係わらず脱フルクトシル作用を発揮することを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に、植物から抽出された脱フルクトシル作用を有する酵素を作用させることを特徴とする脱フルクトシル化方法を提供するものである。
また本発明は、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に対して、脱フルクトシル作用を有する酵素であって、植物由来である酵素を提供するものである。
さらに本発明は、前記の脱フルクトシル化方法により得られた反応生成物の１種又は２種以上を測定することを特徴とするフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質の測定方法を提供するものである。
本発明の脱フルクトシル化酵素により、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質から脱フルクトシル化することができる。さらに、反応生成物を定量することによって、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチド、タンパク質、タンパク質のサブユニット等、例えばＨｂＡ１ｃ等が正確に定量できる。
【図面の簡単な説明】  図１は、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルジペプチド（ｆ−ＶＨ）に作用させた反応液１のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図２は、精製水をフルクトシルジペプチド（ｆ−ＶＨ）に作用させた対照液１のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図３は、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルトリペプチド（ｆ−ＶＨＬ）に作用させた反応液２のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図４は、精製水をフルクトシルトリペプチド（ｆ−ＶＨＬ）に作用させた対照液２のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図５は、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルテトラペプチド（ｆ−ＶＨＬＴ）に作用させた反応液３のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図６は、精製水をフルクトシルテトラペプチド（ｆ−ＶＨＬＴ）に作用させた対照液３のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図７は、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルペンタペプチド（ｆ−ＶＨＬＴＰ）に作用させた反応液４のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図８は、精製水をフルクトシルペンタペプチド（ｆ−ＶＨＬＴＰ）に作用させた対照液４のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図９は、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルヘキサペプチド（ｆ−ＶＨＬＴＰＥ）に作用させた反応液５のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図１０は、精製水をフルクトシルヘキサペプチド（ｆ−ＶＨＬＴＰＥ）に作用させた対照液５のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図１１は、ブドウ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルジペプチド（ｆ−ＶＨ）に作用させた反応液６のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図１２は、精製水をフルクトシルジペプチド（ｆ−ＶＨ）に作用させた対照液６のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
図１３は、セリ科植物由来脱フルクトシル化酵素をフルクトシルジペプチド（ｆ−ＶＨ）に作用させた反応液７のキャピラリー電気泳動結果を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】  本明細書において「脱フルクトシル」とは、フルクトシルアミノ酸又はフルクトシルペプチド（即ち、フルクトシル化されているアミノ酸又はペプチド）から、フルクトシル部分が酸化分解や加水分解等を起こし、その結果、フルクトシル化されていないアミノ酸又はペプチドを生成することを意味する。
本発明に用いられる酵素（「脱フルクトシル化酵素」という）としては、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に対して、脱フルクトシル作用を有する酵素であれば、特に制限されないが、様々な長さのフルクトシルペプチドに作用することから、植物由来の脱フルクトシル化酵素が好ましい。さらに、本発明酵素が含まれている植物としては、特に制限はないが、バラ科、ブドウ科又はセリ科に属する植物が、特に好ましい。バラ科に属する植物としては、林檎、梨、桃、梅などが挙げられる。ブドウ科に属する植物としては、葡萄、蔦などが挙げられる。セリ科に属する植物としては、人参、セリ、三つ葉などが挙げられる。また、本発明酵素の植物からの抽出に際しては、脱フルクトシル化酵素が含まれている部位であれば特に制限されず、果実、葉、茎、花、根茎、根などの部位が利用できる。また、これらの植物の加工品、例えば、抽出液のジュースや凍結乾燥製剤なども利用できる。
上記植物から、脱フルクトシル化酵素を抽出する方法としては、上記植物を直接破砕して、圧搾等の処理により抽出液を得ることもできるが、適当な緩衝液等を加えてから破砕し、抽出することもできる。本発明においては、抽出液を用いることも可能であるが、精製した方がより好ましい。精製方法としては、公知の方法が利用でき、硫安分画やイオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトゲル、ゲル濾過等のカラムクロマトグラフィーを適宜組み合わせて使用することが出来る。また、植物抽出液中のポリフェノールの影響を除く為に、還元剤の添加や高分子吸収体での処理などを組み合わせることも可能である。
本発明の脱フルクトシル化酵素によれば、例えば糖化タンパク質をプロテアーゼ分解した際に、様々な長さのフルクトシルペプチドが生成されたとしても、本発明酵素はこれらのすべてに作用する為、細断するための別のプロテアーゼの追加や処理時間を費やすことがなくなり、糖化タンパク質測定の効率化が図れる。また、臨床検査だけでなく、医療など様々な分野に応用が可能である。尚、本発明の脱フルクトシル化酵素は、基質であるフルクトシルペプチドから脱フルクトシル化する際に、ＦＡＯＤのように酸化分解を行い、過酸化水素やグルコソン等を発生させる作用を有していてもよい。この作用を有している場合は、生成する過酸化水素を、公知のペルオキシダーゼ等を用いた酵素的測定系に導けるので、特に好ましい。また、フルクトシルペプチドを加水分解による脱フルクトシル化する作用を有する酵素も利用することができ、この作用で生成するグルコースを、グルコースオキシダーゼ等を用いて測定することも可能である。
本発明の脱フルクトシル化方法に用いるフルクトシル化ペプチド又はフルクトシル化タンパク質は、脱フルクトシル化酵素が作用するものであれば特に制限されないが、ヘモグロビンのβ鎖Ｎ末端バリンがフルクトシル化されているフルクトシルペプチド及びＨｂＡ１ｃであることが特に好ましい。また、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチドとしては、アミノ酸数には限定されないが、そのアミノ酸配列が配列番号１〜５で表されるものが特に好ましい。
上記Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチドは、かかる配列を有するペプチド又はタンパク質、例えばＨｂＡ１ｃを、適当なエンドプロテアーゼ又はエキソプロテアーゼ等を用いて処理することにより、調製することができる。これらプロテアーゼとしては、例えばエラスターゼ、プロテイナーゼＫ、ペプシン、アルカリプロテアーゼ、トリプシン、プロリン特異エンドプロテアーゼ、Ｖ８プロテアーゼ、カルボキシペプチダーゼＡ、カルボキシペプチダーゼＢ等が挙げられる。上記調製のためのこれらプロテアーゼの活性量としては、０．０５〜１００００Ｕ／ｍＬ、特に１０〜２０００Ｕ／ｍＬが好ましい。
フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質に、本発明の脱フルクトシル化酵素を作用させる条件のうち処理温度は、２０〜５０℃、特に３０〜４０℃が好ましい。また、処理時間は、３分〜１００時間、特に５分〜２０時間が好ましい。かかる処理により、グルコソンやグルコース及び脱フルクトシルペプチドを含む反応生成物を得ることができる。従って、当該生成物の１種又は２種以上を測定すれば、フルクトシル化されているペプチド又はタンパク質を測定することができる。
また、本発明の脱フルクトシル化酵素活性の確認並びにフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質の測定方法としては、生成した脱フルクトシルペプチドを、ＨＰＬＣやキャピラリー電気泳動により分離同定することによって検出してもよいが、脱フルクトシルペプチドに適当なカルボキシペプチダーゼを作用させ、遊離してくるアミノ酸を検出、測定してもよい。例えば、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化された配列番号５のペプチドを使用した場合には、カルボキシペプチダーゼの作用により、グルタミン酸（Ｇｌｕ）、プロリン（Ｐｒｏ）、スレオニン（Ｔｈｒ）、ロイシン（Ｌｅｕ）、ヒスチジン（Ｈｉｓ）、バリン（Ｖａｌ）を生成させることが出来るが、その中で、Ｇｌｕはグルタミン酸脱水素酵素、Ｌｅｕはロイシン脱水素酵素、Ｖａｌはバリン脱水素酵素を用いて、ＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨの生成量を測定することによって検出、測定することも可能である。さらに、脱フルクトシル化により生成するグルコソンやグルコースに関しては、グルコースオキシダーゼ等を使用して、発生する過酸化水素を、ペルオキシダーゼ発色系を用いて、検出、測定することが出来る。その一例としては、以下の様な方法が挙げられる。
（酵素反応生成物の測定）
基質であるフルクトシルペプチドに本発明酵素を作用させ、一定時間加温した反応液３００μＬに、予め用意した、２００ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）７５０μＬ、４０００ｕ／ｍＬグルコースオキシダーゼ（東洋紡社）４５０μＬ、０．１５％４−アミノアンチピリン３００μＬ、０．３％ＴＯＯＳ（同仁化学社）３００μＬ、５００ｕ／ｍＬパーオキシダーゼ（東洋紡社、ＴｙｐｅＩＩＩ）３００μＬ及び１％アジ化ナトリウム３００μＬを混和した液を加え、３７℃で１０分間加温後、５５０ｎｍにおける吸光度を測定する。基質の代わりに精製水を加える以外は、上記と同様の操作を行い対照とする。生成色素量の酵素反応生成物（グルコソンやグルコース）量への換算は、グルコースの希釈系列を基質とし、本発明酵素の代わりに精製水を加えて上記操作を行い作成した検量線より行う。また、脱フルクトシル反応の際に、過酸化水素が生成する脱フルクトシル化酵素を用いた場合は、直接生成した過酸化水素を、公知のペルオキシダーゼ発色系を用いて、検出、測定することも可能である。
ペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）発色系は、特に制限はないが、反応系に色原体及びＰＯＤを添加し、該色原体を酸化して発色物質を生成させ、これを測定する方法が好適である。この色原体としては、４−アミノアンチピリンと、フェノール系化合物、ナフトール化合物又はアニリン系化合物との組み合わせ、ＭＢＴＨ（３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンヒドラゾン）とアニリン系化合物との組み合わせ、ロイコメチレンブルー等が用いられる。また、特許第２５１６３８１号に記載されているように、ＰＯＤ存在下にて過酸化水素と２価のコバルトイオンとの反応により生じた３価のコバルトイオンを、３価のコバルトイオンに特異的な指示薬、例えばＴＡＳＢＢ（２−（２−チアゾリルアゾ）−５−ジスルフォブチルアミノ安息香酸三ナトリウム塩）と組み合わせ、発色キレート化合物を生成させ、これを測定する方法も利用できる。これによれば、上記方法の５〜１０倍の測定感度を得ることができる。また、過酸化水素を検出する試薬として、高感度に測定可能なＴＰＭ−ＰＳ（Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’，Ｎ”，Ｎ”−ヘキサ（３−スルフォプロピル）−４，４’，４”−トリアミノトリフェニルメタン）（同仁化学社製）等も利用できる。
本発明方法を用いれば、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチド又はタンパク質、例えばＨｂＡ１ｃを極めて高精度で定量することができる。ここでＨｂＡ１ｃの定量に使用される被験試料としては、例えば全血、赤血球等が挙げられる。
【実施例】  次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【実施例１】  バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素の調製
梨の表皮及び種子周辺を除いた果肉部分１００ｇ当り、３００ｍＭ塩化ナトリウムを含む１００ｍＭ酢酸ナトリウム（ｐＨ４．５）を１００ｍＬ加え、直接ミキサーにて破砕した後、遠心分離により固形物を除去し、粗抽出液を得た。この粗抽出液に、ＰＶＰＰ（ポリビニルポリピロリドン：ナカライテスク社製）を２％分添加し、室温で３０分攪拌した。その後、遠心分離によりＰＶＰＰを除去し処理液を得た。これを粗精製酵素とした。
【実施例２】  ブドウ科植物由来脱フルクトシル化酵素の調製
ブドウの表皮を除いて、果肉部分をミキサーで破砕した後、遠心分離により固形物を除去し、抽出液を得た。これを粗精製酵素とした。
【実施例３】  セリ科植物由来脱フルクトシル化酵素の調製
人参の根茎部分を、直接ジューサーにて破砕した後、遠心分離により固形物を除去し、粗抽出液を得た。この粗抽出液を、マイレックスフィルター（０．４５μｍ）（ミリポア社製）を用いて濾過を行い、澄明な抽出液を得た。この抽出液３ｍＬに対して、冷エタノールを４ｍＬ添加し、生じた沈殿を遠心分離によって除いた。得られた上清に、さらに冷エタノールを添加し、生じた沈殿を遠心分離により得た。得られた沈殿に、少量の２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）を加えて溶解させ、これを粗精製酵素とした。
【実施例４】  フルクトシルペプチドの脱フルクトシル化方法
（バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素の使用）
（ｉ）１００ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）１００μＬに、配列番号１〜５で表されるアミノ酸配列を有するＮ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチド（ｆ−ＶＨ〜ｆ−ＶＨＬＴＰＥ：バイオクエスト社製）の各５００μＭ水溶液４０μＬ、精製水２０μＬおよび実施例１で得られた梨由来の粗精製酵素の溶液４０μＬを加え、混和後、３７℃で６４時間反応させた。この反応液を、分子量１００００の限外濾過を行い、濾液を分取した（反応液１〜５）。この反応液１〜５を、キャピラリー電気泳動装置ＣＡＰＩ−３２００（大塚電子社製）にて、泳動緩衝液：１５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ２．０）、電圧：１５ｋｖ、検出波長：２１０ｎｍの条件で分析を行い、ピーク位置およびピーク面積を測定した。
（ｉｉ）対照試験
対照として、粗精製酵素溶液の代わりに、精製水を加え、同じ条件にて反応させ濾液を得た（対照液１〜５）。この対照液１〜５の分析結果を反応液１〜５の結果と比較した。
尚、酵素反応及び対照試験に用いた各フルクトシルペプチドには、非フルクトシルペプチドが含まれており、２種のピークの変化で、酵素活性の有無を検出した。
反応液１の結果を図１に、対照液１の結果を図２に示した。図２では、ｆ−ＶＨに由来するピーク（面積：１３ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）及びＶＨに由来するピーク（面積：３４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められているが、図１では、ｆ−ＶＨのピークが減少（面積：４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、ＶＨのピークが増加（面積：３８ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）しているのが確認された。
反応液２の結果を図３に、対照液２の結果を図４に示した。図４では、ｆ−ＶＨＬに由来するピーク（面積：３２ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）及びＶＨＬに由来するピーク（面積：２２ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められているが、図３では、ｆ−ＶＨＬのピークが減少（面積：７ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、ＶＨＬのピークが増加（面積：３４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）しているのが確認された。
反応液３の結果を図５に、対照液３の結果を図６に示した。図６では、ｆ−ＶＨＬＴに由来するピーク（面積：３８ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）及びＶＨＬＴに由来するピーク（面積：２０ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められているが、図５では、ｆ−ＶＨＬＴのピークが減少（面積：５ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、ＶＨＬＴのピークが増加（面積：３２ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）しているのが確認された。
反応液４の結果を図７に、対照液４の結果を図８に示した。図８では、ｆ−ＶＨＬＴＰに由来するピーク（面積：６４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）及びＶＨＬＴＰに由来するピーク（面積：２３ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められているが、図７では、ｆ−ＶＨＬＴＰのピークが減少（面積：８ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、ＶＨＬＴＰのピークが増加（面積：５７ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）しているのが確認された。
反応液５の結果を図９に、対照液５の結果を図１０に示した。図１０では、ｆ−ＶＨＬＴＰＥに由来するピーク（面積：５４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）及びＶＨＬＴＰＥに由来するピーク（面積：２１ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められているが、図９では、ｆ−ＶＨＬＴＰＥのピークが減少（面積：９ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、ＶＨＬＴＰＥのピークが増加（面積：４８ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）しているのが確認された。
これらの結果から、バラ科植物由来脱フルクトシル化酵素を使用することにより、フルクトシルペプチドから脱フルクトシル化することができることが分かった。
【実施例５】  フルクトシルペプチドの脱フルクトシル化方法
（ブドウ科植物由来脱フルクトシル化酵素の使用）
実施例２で得られた粗精製酵素についても、実施例４と同様の条件下で試験を行った。但し、Ｎ末端のバリンがフルクトシル化されているペプチドは、ＶＨを含まないｆ−ＶＨを使用し、反応時間は３７℃で１６時間とした（反応液６）。また、対照試験は、実施例４に準じて行った（対照液６）。
反応液６の結果を図１１に、対照液６の結果を図１２に示す。図１２では、ｆ−ＶＨに由来するピーク（面積：４２ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）のみが認められたが、図１１では、ｆ−ＶＨのピークが減少（面積：３６ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、新たに反応生成物のピーク（面積：４ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められた。さらに、この反応液にＶＨを少量添加し、再度キャピラリー電気泳動でピークの増減を確認したところ、反応生成物とＶＨのピークが一致したことから、反応生成物はＶＨであることが確認できた。
この結果から、ブドウ科植物由来脱フルクトシル化酵素を使用することにより、フルクトシルペプチドから脱フルクトシル化することができることが分かった。
【実施例６】  フルクトシルペプチドの脱フルクトシル化方法
（セリ科植物由来脱フルクトシル化酵素の使用）
実施例３で得られた粗精製酵素については、実施例５と同様の条件下で試験を行った（反応液７）。
反応液７の結果を図１３に示す。対照液の結果は、上記の図１２で兼用した。図１２では、ｆ−ＶＨに由来するピーク（面積：４２ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）のみが認められているが、図１３では、ｆ−ＶＨのピークが減少（面積：１６ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）し、新たに反応生成物のピーク（面積：１６ｍＡＢＵ×ｓｅｃ）が認められた。さらに、この反応液にＶＨを少量添加し、再度キャピラリー電気泳動でピークの増減を確認したところ、反応生成物とＶＨのピークが一致したことから、反応生成物はＶＨであることが確認できた。
この結果から、セリ科植物由来脱フルクトシル化酵素を使用することにより、フルクトシルペプチドから脱フルクトシル化することができることが分かった。
【配列表】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【国際調査報告】
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2004038033.tif 000020