(57)【要約】ＡＤＡＭＴＳ−１３に対して選択的に免疫反応性を示す抗体の提供並びに当該抗体のエピトープ解析またはＡＤＡＭＴＳ−１３自己抗体陽性患者の診断への利用を目的とした。あるいは医薬品としての利用を目的とした部分欠失ＡＤＡＭＴＳ−１３改変分子の製造方法及び用途を提供する。ＡＤＡＭＴＳ−１３のアミノ酸配列の一部または全部を含むポリペプチドで免疫感作した温血動物から得ることができるＡＤＡＭＴＳ−１３に特異的な抗体。ＡＤＡＭＴＳ−１３のアミノ酸配列の一部または全部を含むポリペプチドで温血動物を免疫感作する工程を含む抗体の製造方法。ＡＤＡＭＴＳ−１３の検出方法及び精製方法を含む当該抗体の用途並びに部分欠失ＡＤＡＭＴＳ−１３改変分子を提供することよりなる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
フォンビルブランド因子特異的切断酵素（以下、ＡＤＡＭＴＳ−１３と称することがある）を構成するアミノ酸配列のうち全長または１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質またはペプチドに対する抗体。
【請求項２】
ＡＤＡＭＴＳ−１３が霊長類または齧歯類を起源とするものである請求項１記載の抗体。
【請求項３】
配列番号１記載のＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質に対する抗体。
【請求項４】
配列番号１記載のＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列よりなるポリペプチドに対し、当該ポリペプチドのＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側またはＭｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域の間を認識する抗体。
【請求項５】
請求項１から４のいずれか１項に記載の抗体であって、ＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質のアフィニティー精製に用いられ得る抗体。
【請求項６】
請求項１から４のいずれか１項に記載の抗体であって、ＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質が有する酵素活性を阻害もしくは中和し得る抗体。
【請求項７】
ＡＤＡＭＴＳ−１３のＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側、Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域またはＤｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域を認識する請求項６記載の抗体。
【請求項８】
配列番号２及び３のＡＤＡＭＴＳ−１３部分ペプチドを含有してなる免疫原により調製された抗体。
【請求項９】
配列番号１記載のポリペプチド鎖の全長あるいはその一部の発現物を免疫あるいはそれを発現する発現ベクターを直接動物にトランスフェクトし得られる抗体。
【請求項１０】
ポリクローナル抗体である、請求項１から９のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１１】
モノクローナル抗体である、請求項１から９のいずれか１項に記載の抗体並びにその抗体をコードする遺伝子。
【請求項１２】
ハイブリドーマ株ＷＨ１０（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４）、ハイブリドーマ株ＷＨ６３．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５）、ハイブリドーマ株ＷＨＳ  ４０．３（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７６）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−３４．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７７）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−２２−１Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８３）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８４）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８５）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ６−６Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７４）およびハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−５Ｂ−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７５）からなる群から選択されるハイブリドーマが産生する抗体である請求項９記載のモノクローナル抗体並びにこの抗体をコードする遺伝子。
【請求項１３】
請求項１から１２のいずれか１項に記載の抗体によって認識されるＡＤＡＭＴＳ−１３のエピトープに結合または競合的に結合することができる抗体。
【請求項１４】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を含む医薬品組成物または診断薬。
【請求項１５】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を構成成分とする標識蛋白質。
【請求項１６】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を産生し得る単離された細胞。
【請求項１７】
ハイブリドーマである請求項１６に記載の細胞。
【請求項１８】
ハイブリドーマ株ＷＨ１０（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４）、ハイブリドーマ株ＷＨ６３．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５）、ハイブリドーマ株ＷＨＳ  ４０．３（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７６）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−３４．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７７）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−２２−１Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８３）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８４）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８５）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ６−６Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７４）およびハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−５Ｂ−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７５）からなる群から選択される請求項１７記載の細胞。
【請求項１９】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を含んでなる免疫測定キット。
【請求項２０】
ＡＤＡＭＴＳ−１３のアミノ酸配列の一部または全部を含むポリペプチドで温血動物を免疫感作する工程と、該免疫感作された温血動物の体液から請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を採取する工程を含む抗体の製造方法。
【請求項２１】
温血動物を免疫感作するためのポリペプチドが、ＡＤＡＭＴＳ−１３の一部として、配列表における配列番号１に示すアミノ酸配列の一部または全部を含む請求項２０に記載の抗体の製造方法。
【請求項２２】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を産生し得る単離された細胞を生体内または生体外で培養する工程と、その体液または培養物から該抗体を採取する工程を含む抗体の製造方法。
【請求項２３】
抗体を産生し得る単離された細胞がハイブリドーマである請求項２２に記載の抗体の製造方法。
【請求項２４】
塩析、透析、濾過、濃縮、遠心分離、分別沈澱、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ゲル電気泳動及び等電点電気泳動から選ばれる１種または２種以上を含む精製方法により抗体を採取する請求項２０から２３のいずれか１項に記載の抗体の製造方法。
【請求項２５】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を被験試料に接触させ、免疫反応によりＡＤＡＭＴＳ−１３を検出することを特徴とするＡＤＡＭＴＳ−１３の検出方法。
【請求項２６】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体を利用するラジオイムノアッセイ、エンザイムイムノアッセイまたは蛍光イムノアッセイである請求項２５に記載の検出方法。
【請求項２７】
被験試料が生体から採取した生物学的試料である請求項２５または２６に記載の検出方法。
【請求項２８】
請求項１から１３のいずれか１項に記載の抗体をＡＤＡＭＴＳ−１３と夾雑物質とを含む混合物に接触させて抗体に当該蛋白質を吸着させる工程と、吸着した当該蛋白質を抗体から脱着させる工程を含むＡＤＡＭＴＳ−１３の精製方法。
【請求項２９】
抗体が水不溶性担体に結合している請求項２８に記載の精製方法。
【請求項３０】
ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とする診断薬あるいは医薬品。
【請求項３１】
ＡＤＡＭＴＳ−１３のＳｐａｃｅｒからＮ末端側、あるいはｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域を主成分とする請求項３０記載の診断薬あるいは医薬品。
【請求項３２】
ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とした当該ポリペプチド鎖に対する抗体検出用の試薬・診断薬または医薬品。
【請求項３３】
ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とした抗体検出またはエピトープ解析用抗原の利用及びその調製法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】  本願発明は、医療用医薬品の分野に係る蛋白質に関する。詳細には、血液凝固に関与するフォンビルブランド因子（ｖｏｎ  Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ  Ｆａｃｔｏｒ：以下、ｖＷＦと称することがある）の特異的切断酵素（以下、ＡＤＡＭＴＳ−１３と称することがある）の全長もしくは部分断片及びそれらに対する抗体に関する。本願発明で提供されるＡＤＡＭＴＳ−１３に対する抗体により、血栓性血小板減少性紫斑病（ｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ  ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉｃ  ｐｕｒｐｕｒａ：以下、ＴＴＰと称することがある）等を含む当該酵素の欠損・低下（一つの可能性として以下の報告がある；例えば、非特許文献１参照）の診断または本酵素蛋白質に対する自己抗体陽性患者の診断及びそれにともなう疾病患者への当該酵素の補充療法のための効率的で高純度な当該酵素の調製の可能性が拓かれる。あるいはＤｉｓｓｅｉｎａｔｅｄ  ｉｎｔｒａｖａｓｃｕｌａｒ  ｃｏａｇｕｌａｔｉｏｎ（以下ＤＩＣと略すことがある。）、などによる血小板減少と先天性・後天性ＴＴＰによる血小板減少の区別が可能となり、血小板輸注の際の指標を得ることが可能となる。さらには、新規な抗ＡＤＡＭＴＳ−１３薬としての利用も考えられる。
【背景技術】  ｖＷＦは、血管内皮細胞や骨髄巨核球で産生され、２０５０アミノ酸残基（モノマー約２５０ｋＤａ）からなる単一サブユニットがＳ−Ｓ結合にて結ばれたマルチマー構造（分子量５００〜２０，０００ｋＤａ）を持って存在している止血因子である。血中濃度は約１０μｇ／ｍｌで、一般に高分子量のものほど比活性が高い。
ｖＷＦには２つの大きな止血因子としての機能があり、１つは血液凝固第ＶＩＩＩ因子と結合し、これを安定化させるキャリアー蛋白質としての働き、もう１つは傷害血管壁の血管内皮細胞下組織に血小板を粘着・凝集させ、血小板血栓を形成する機能である。
血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）は、全身の体組織細動脈と毛細血管に血小板血栓を生じる疾患であり、今日の医療技術の進歩にもかかわらず、当該疾患での関連死亡率は１９７１〜１９９１年にかけて約３倍に増加している。病理学的に、ＴＴＰは血管内皮細胞障害や血管内血小板凝集によって惹き起こされると考えられており、免疫組織学的には生じた血小板血栓中に多量のｖＷＦの存在が認められ、ｖＷＦがこの成因に大きな役割を果たしていると考えられている。ＴＴＰ患者のｖＷＦのマルチマー構造は正常もしくは高分子量が優位となっており、特に通常では見られない超高分子量のｖＷＦ（ｕｎｕｓｕａｌｌｙ  ｌａｒｇｅ  ｖＷＦ  ｍｕｌｔｉｍｅｒ：ＵＬｖＷＦＭ）や高分子量ｖＷＦ重合体（ｌａｒｇｅ  ｖＷＦ  ｍｕｌｔｉｍｅｒ：ＬｖＷＦＭ）が、高ずり応力下での血小板凝集の促進と微小血栓形成に大きな役割を果たしていることが推察される。一方で、ｖＷＦは健常人の循環血液中で高ずり応力下、ｖＷＦ切断酵素（ｖＷＦ−ｃｌｅａｖｉｎｇ  ｐｒｏｔｅａｓｅ）の作用により８４２Ｔｙｒ−８４３Ｍｅｔの位置で分解を受けることが知られていた。したがって、ＴＴＰは血漿中の当該酵素活性が何らかの原因で低下して、ＵＬｖＷＦＭ〜ＬｖＷＦＭが増加して血小板凝集が亢進し、血管内に血小板血栓が形成されるためというシナリオが描かれている。
２００１年、この酵素活性を有する活性本体であるｖＷＦ切断酵素、別名ＡＤＡＭＴＳ−１３をコードする遺伝子が本願出願人によりクローニングされた（ＷＯ  ０２／０８８３６６）。以下に、ＡＤＡＭＴＳ−１３の分子構造に関する知見を整理する。
ＡＤＡＭＴＳ−１３のドメイン構成はＳｉｇｎａｌ  ｐｅｐｔｉｄｅに続いてＰｒｏｐｅｐｔｉｄｅが存在し、次いで、Ｆｕｒｉｎの切断モチーフのＲＱＲＲ配列が存在し、ＨＥＸＸＨＸＸＧＸＸＨＤのコンセンサス配列からなるＲｅｐｒｏｌｙｓｉｎタイプの亜鉛キレート領域を含むＭｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ  ｄｏｍａｉｎが続く（Ｐ２８５ｓｔｏｐまで）。そして、蛇毒メタロプロテアーゼで見出されるようなＤｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ  ｄｏｍａｉｎを経て（Ｗ３８７ｓｔｏｐまで）、一般的に分子認識に重要と考えられているおよそ５０〜６０残基からなる最初のＴｓｐ１  ｍｏｔｉｆ（Ｔｓｐ１−１）（Ｑ４４９ｓｔｏｐまで）へとつながり、さらに、細胞接着モチーフの１つＲＧＤＳ配列が含まれるＣｙｓ−ｒｉｃｈ  ｒｅｇｉｏｎ（Ｔ５８１ｓｔｏｐまで）へと続く。次いで、システイン残基を全く含まない約１３０アミノ酸残基からなるＳｐａｃｅｒ  ｄｏｍａｉｎ（Ｗ６８８ｓｔｏｐまで）を経て、再びＴｓｐ１  ｍｏｔｉｆの繰り返し（Ｔｓｐ１−２〜８）の後、補体成分ＣｌｒあるいはＣｌｓの中に最初に見つかったとされるＣＵＢ  ｄｏｍａｉｎ−１，２が続く。
ところで、本酵素の効率的、高純度な精製法あるいは本酵素の存在量に関して定性的、定量的な診断の方法は確立されていない。さらに本酵素に対する自己抗体陽性患者の診断法も確立されておらず、また、本酵素の活性発現の必須ドメインの特定もされていない。
【発明の開示】
斯かる状況に鑑み、本願発明の第一の課題は、高い選択性でＡＤＡＭＴＳ−１３に対して免疫反応性を示す抗体を提供することにある。
本願発明の第二の課題は、斯かる抗体の製造方法を提供することにある。
本願発明の第三の課題は、斯かる抗体の用途を提供することにある。
本願発明の第四の課題は、上述の抗体あるいは自己抗体陽性患者由来の抗体の存在あるいは認識領域を特定することを可能にする全長もしくは部分欠失させたＡＤＡＭＴＳ−１３分子を提供することにある。
本願発明の第五の課題は、斯かる全長もしくは改変分子の製造方法を提供することにある。
本願発明の第六の課題は、斯かる全長もしくは改変分子の用途を提供することにある。
ｖＷＦ特異的切断酵素の先天的欠損患者及び後天性の当該酵素に対する抗体陽性患者の治療法として、現在までプラズマ交換療法が施されており、当該酵素の精製品または遺伝子組換え体等純品による補充療法の確立が望まれる。家族性ＴＴＰ患者は、先天的にｖＷＦ特異的切断酵素が欠損しており、非家族性では後天的に当該酵素に対する自己抗体の産生が原因と報告されている。したがって、家族性ＴＴＰ患者には、本酵素の補充療法が望ましく（現実には血漿投与が行われている）、非家族性では、血漿交換による自己抗体の除去と本酵素の補充が必要である。
したがって、本酵素の効率的な調製法あるいは診断等が必要となるが、しかし、ｖＷＦ切断酵素は、本願出願人による先の出願に記載の方法（ＷＯ  ０２／０８８３６６）、あるいはその他の方法（例えば、Ｋｏｋａｍｅ，Ｋ．ら、”Ｐｒｏｃ．Ｎ．Ａ．Ｓ．ＵＳＡ”、２００２年、第９９巻、ｐ．１１９０２−１１９０７；Ｆｕｊｉｋａｗａ，Ｋ．ら、”Ｂｌｏｏｄ”、２００１年、第９８巻、ｐ．１６６２−１６６６参照）により、血漿あるいは組換え体発現上清中より精製される方法では、十分な純度及び収量が期待できない。また、本酵素の存在量、特に抗原量としての酵素量を測定する術は今まで存在しなかった。またとくに血小板減少症においてＤＩＣなどが原因の場合と異なりＴＴＰが基礎疾患として存在する場合の血小板輸注による症状の増悪などのリスクがあった。
従って、本発明はこれらの問題点を解決するためのｖＷＦ切断酵素に対する抗体の提供を目的とする。該抗体によりｖＷＦの定量や精製が可能になる。
上述の状況の下、本願発明者等はｖＷＦ切断酵素の単離同定を達成するべく、鋭意研究を重ねた結果、従来報告のなかった所望のｖＷＦ切断酵素の精製単離に成功し、その成熟型蛋白質のアミノ酸配列及び当該アミノ酸配列をコードする遺伝子を同定するに至った（ＷＯ  ０２／０８８３６６）。
そして、活性発現に必須と考えられる領域を特定するために、Ｃ末端側ＣＵＢドメインより逐次欠失した改変分子を作製し、そのｖＷＦ切断活性を測定した。これによりＳｐａｃｅｒ領域と呼ばれる配列番号１に掲げるアミノ酸番号で６８８位近傍よりＮ末端側から構成される分子においてもその定性的な酵素活性は維持されることが確認された。一方で５８１位近傍までから構成される分子では正常な分泌が阻害され、４４９位近傍までから構成される分子では培養上清中への分泌は認められるもののその酵素活性は微弱あるいは活性が認められないことが確認され、これらの知見により本酵素分子の活性発現に必須な領域が示された。これらから本酵素活性を中和しうる抗体の作製に必要なエピトープ領域あるいは活性を有する本酵素分子の検出が可能な抗体の作製が可能となった。
そして、得られるＡＤＡＭＴＳ−１３のアミノ酸配列を基に調製されるペプチド等を抗原にして、通常の免疫方法（Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ．（１９８７）、Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ：Ａ  ＰＲＡＣＴＩＣＡＬ  ＡＰＰＲＯＡＣＨ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｊ．ＭｃＣＡＦＦＥＲＴＹ  ｅｔ  ａｌ．（１９９６）、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｎｕａｌ，Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｈａｒｌｏｗ  Ｄａｖｉｄ  Ｌａｎｅ（１９８８）あるいはＡＮＴＩＢＯＤＹ  ＥＮＧＩＮＥＥＲＩＮＧ  ｓｅｃｏｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｃａｒｌ  Ａ．Ｋ．ＢＯＲＲＥＢＡＥＣＫ（１９９５））によってモノクローナル及びポリクローナル抗体等の作製が可能である。あるいは、ファージディスプレイ技術を利用した抗体作製技術（Ｐｈａｇｅ  Ｄｉｓｐｌａｙ  ｏｆ  Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｂｒｉａｎ  Ｋ．Ｋａｙ  ｅｔ  ａｌ．（１９９６）、Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ：Ａ  ＰＲＡＣＴＩＣＡＬ  ＡＰＰＲＯＡＣＨ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｊ．ＭｃＣＡＦＦＥＲＴＹ  ｅｔ  ａｌ．（１９９６）、あるいはＡＮＴＩＢＯＤＹ  ＥＮＧＩＮＥＥＲＩＮＧ  ｓｅｃｏｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ  ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｃａｒｌ  Ａ．Ｋ．ＢＯＲＲＥＢＡＥＣＫ（１９９５））により当該蛋白質と結合する抗体の作出が可能である。あるいは、これらの技術に基づき、本酵素に対する自己抗体陽性であるＴＴＰ患者検体からの本酵素活性の中和抗体もしくは単なる結合抗体の単離も可能である。そして、これらの抗体を用いることで、本酵素量の変動を伴う疾病、例えばＴＴＰなどの疾患の診断及び治療への応用が可能となる。あるいは調製された抗体を用いて例えばマウスのＡＤＡＭＴＳ−１３に対する抗体を作製し、マウスへ移入もしくは、この抗体の遺伝子を組み込んだ発現ベクターをマウスへ移入することにより、自己抗体陽性のモデルマウスが作出される。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］  フォンビルブランド因子特異的切断酵素（以下、ＡＤＡＭＴＳ−１３と称することがある）を構成するアミノ酸配列のうち全長または１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質またはペプチドに対する抗体、
［２］  ＡＤＡＭＴＳ−１３が霊長類または齧歯類を起源とするものである［１］の抗体、
［３］  配列番号１記載のＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質に対する抗体、
［４］  配列番号１記載のＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列よりなるポリペプチドに対し、当該ポリペプチドのＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側またはＭｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域の間を認識する抗体、
［５］  ［１］から［４］のいずれかの抗体であって、ＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質のアフィニティー精製に用いられ得る抗体、
［６］  ［１］から［４］のいずれかの抗体であって、ＡＤＡＭＴＳ−１３を構成するアミノ酸配列のうち１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列または前記のいずれかのアミノ酸配列の部分配列もしくは前記アミノ酸配列を含有するポリペプチド鎖よりなる蛋白質が有する酵素活性を阻害もしくは中和し得る抗体、
［７］  ＡＤＡＭＴＳ−１３のＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側、Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域またはＤｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域を認識する［６］の抗体、
［８］  配列番号２及び３のＡＤＡＭＴＳ−１３部分ペプチドを含有してなる免疫原により調製された抗体、
［９］  配列番号１記載のポリペプチド鎖の全長あるいはその一部の発現物を免疫あるいはそれを発現する発現ベクターを直接動物にトランスフェクトし得られる抗体、
［１０］  ポリクローナル抗体である、［１］から［９］のいずれかの抗体、
［１１］  モノクローナル抗体である、［１］から［９］のいずれかの抗体並びにその抗体をコードする遺伝子、
［１２］  ハイブリドーマＷＨ１０、ＷＨ６３．１、ＷＨＳ４０．３、Ｐｅｐ４−３４．１、ＷＨ２−２２−１Ａ、ＷＨ２−１−１、ＷＨ２−１１−１、Ｐｅｐ６−６ＡおよびＰｅｐ４−５Ｂ−１からなる群から選択されるハイブリドーマが産生する抗体である［９］のモノクローナル抗体並びにその抗体をコードする遺伝子、ここでＷＨ１０、ＷＨ６３．１、ＷＨＳ４０．３およびＰｅｐ４−３４．１は、独立行政法人  産業技術総合研究所  特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に、それぞれ受託番号  ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７６及びＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７７として、２００２年９月４日に、寄託されている。ＷＨ２−２２−１Ａ、ＷＨ２−１−１、ＷＨ２−１１−１、Ｐｅｐ６−６ＡおよびＰｅｐ４−５Ｂ−１は、それぞれ受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８３、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８４、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８５、ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７４及びＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７５として、２００３年４月２２日および２００３年９月１０日に、独立行政法人  産業技術総合研究所  特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に寄託されている、
［１３］  ［１］から［１２］のいずれかの抗体によって認識されるＡＤＡＭＴＳ−１３のエピトープに結合または競合的に結合することができる抗体、
［１４］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を含む医薬品組成物または診断薬、
［１５］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を構成成分とする標識蛋白質、
［１６］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を産生し得る単離された細胞、
［１７］  ハイブリドーマである［１６］の細胞、
［１８］  ハイブリドーマ株ＷＨ１０（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４）、ハイブリドーマ株ＷＨ６３．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５）、ハイブリドーマ株ＷＨＳ  ４０．３（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７６）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−３４．１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７７）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−２２−１Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８３）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８４）、ハイブリドーマ株ＷＨ２−１１−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８５）、ハイブリドーマ株Ｐｅｐ６−６Ａ（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７４）およびハイブリドーマ株Ｐｅｐ４−５Ｂ−１（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７５）からなる群から選択される［１７］の細胞、
［１９］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を含んでなる免疫測定キット、
［２０］  ＡＤＡＭＴＳ−１３のアミノ酸配列の一部または全部を含むポリペプチドで温血動物を免疫感作する工程と、該免疫感作された温血動物の体液から［１］から［１３］のいずれかの抗体を採取する工程を含む抗体の製造方法、
［２１］  温血動物を免疫感作するためのポリペプチドが、ＡＤＡＭＴＳ−１３の一部として、配列表における配列番号１に示すアミノ酸配列の一部または全部を含む［２０］の抗体の製造方法、
［２２］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を産生し得る単離された細胞を生体内または生体外で培養する工程と、その体液または培養物から該抗体を採取する工程を含む抗体の製造方法、
［２３］  抗体を産生し得る単離された細胞がハイブリドーマである［２２］の抗体の製造方法、
［２４］  塩析、透析、濾過、濃縮、遠心分離、分別沈澱、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ゲル電気泳動及び等電点電気泳動から選ばれる１種または２種以上を含む精製方法により抗体を採取する［２０］から［２３］のいずれかの抗体の製造方法、
［２５］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を被験試料に接触させ、免疫反応によりＡＤＡＭＴＳ−１３を検出することを特徴とするＡＤＡＭＴＳ−１３の検出方法、
［２６］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体を利用するラジオイムノアッセイ、エンザイムイムノアッセイまたは蛍光イムノアッセイである［２５］の検出方法、
［２７］  被験試料が生体から採取した生物学的試料である［２５］または［２６］にの検出方法、
［２８］  ［１］から［１３］のいずれかの抗体をＡＤＡＭＴＳ−１３と夾雑物質とを含む混合物に接触させて抗体に当該蛋白質を吸着させる工程と、吸着した当該蛋白質を抗体から脱着させる工程を含むＡＤＡＭＴＳ−１３の精製方法、
［２９］  抗体が水不溶性担体に結合している［２８］の精製方法、
［３０］  ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とする診断薬あるいは医薬品、
［３１］  ＡＤＡＭＴＳ−１３のＳｐａｃｅｒからＮ末端側、あるいはｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域を主成分とする［３０］の診断薬あるいは医薬品、
［３２］  ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とした当該ポリペプチド鎖に対する抗体検出用の試薬・診断薬または医薬品、ならびに
［３３］  ＡＤＡＭＴＳ−１３の全長もしくは部分欠失変異体を主成分とした抗体検出またはエピトープ解析用抗原の利用及びその調製法である。
ＡＤＡＭＴＳ−１３に結合できる抗体を、ここに開示する。これらの抗体は、当該分野において標準的な技術を用いて改変することができる。また、ここに最初に例示する抗体と類似する抗体を、ここに教示する方法と公知の方法とを組み合わせて製造することもできる。抗体を生成するこれらの方法は、哺乳動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ウマ、ヤギ、ヒツジまたはサル）を、ＡＤＡＭＴＳ−１３またはそれらのフラグメントで免疫あるいはＡＤＡＭＴＳ−１３を遺伝子組換え的に発現できる発現ベクターを皮下、皮内もしくは筋肉内にトランスフェクトすることを含む。抗体は、当該分野において公知の様々な技術を用いて、免疫した動物から得ることができ、好ましくは、興味のある抗原に対する抗体の結合を用いて、スクリーニングすることができる。抗体及び／または抗体生成細胞の動物からの単離は、動物を屠殺する工程によって行なうことができる。
ＡＤＡＭＴＳ−１３で哺乳動物を免疫する代替または補足として、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対する特異抗体を、例えば、ラムダバクテリオファージもしくは表面に機能的なイムノグロブリン結合ドメインを示すバクテリオファージフィラメントを用いて、発現させたイムノグロブリンの可変ドメインの組換え生成ライブラリーから得ることができる。ライブラリーは、いかなるＡＤＡＭＴＳ−１３（もしくはフラグメント）によっても免疫されていない生物から得られた配列から構築された天然のもの、または興味のある抗原に曝された生物から得られた配列を用いて構築されたものとすることができる。
ここに用いられるモノクローナル抗体は、ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５，１９７５によって最初に記載された方法、または組換え方法（ＭａｇｅとＬａｍｏｙｉ、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，７９−９７頁、Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ社、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９８７を参照）によって作製することができる。
ハイブリドーマ法において、免疫のために用いられるＡＤＡＭＴＳ−１３と特異的に結合する抗体を生成する、もしくは生成することができるリンパ球を引き出すために、皮下、腹腔内、または筋内経路で、マウス、ラット、ウサギ、ウマ、ヤギ、ヒツジまたはサル等の適した宿主温血動物を抗原で免疫する。あるいは、リンパ球をインビトロで免疫することができる。次いで、リンパ球を、適した融合剤、例えばポリエチレングリコールなどを用いてミエローマ細胞と融合させ、ハイブリドーマ細胞を形成させる［Ｇｏｄｉｎｇ，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ，ｐｐ．５９−１０３（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，１９８６）参照］。
免疫に用いる抗原としては、ヒトまたは非ヒト哺乳類の血液から単離した天然のｖＷＦ切断酵素、遺伝子工学の手法を用いて作製したリコンビナントのｖＷＦ切断酵素が挙げられ、由来はヒトでも他の哺乳類でもよい。全長ｖＷＦ切断酵素を用いることもでき、酵素的に切断したフラグメントあるいはｖＷＦ切断酵素をコードするＤＮＡのフラグメントを用いて遺伝子工学的に作製した、リコンビナントのｖＷＦ切断酵素の部分ペプチドを用いることができる。ｖＷＦの断片としては、例えばＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側またはＭｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域の間を含む断片が挙げられる。
このように調製したハイブリドーマ細胞は、好ましくは、未融合の親ミエローマ細胞の増殖もしくは生存を阻害する一以上の物質を含む、適した培地中に播種し、培養することができる。例えば、親ミエローマ細胞が酵素ヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴもしくはＨＰＲＴ）を欠く場合、ハイブリドーマ用培地は、典型的には、ヒポキサンチン、アミノプテリン、及びチミジンを含み（ＨＡＴ培地）、これらの物質がＨＧＰＲＴ欠損細胞の増殖を阻害する。
好ましいミエローマ細胞は、有効に融合し、選択された抗体生成細胞によって安定した高レベルでの抗体発現が支持され、ＨＡＴ培地などの培地に感受性を有するものである。
ハイブリドーマ細胞を培養する培地は、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対するモノクローナル抗体の生成でアッセイする。好ましくは、特異結合は、固相酵素免疫検定アッセイ（ＥＬＩＳＡ）によって測定される。本発明のモノクローナル抗体は、ＡＤＡＭＴＳ−１３あるいはその部分断片に特異的に結合するものである。
抗体が結合するエピトープは、後述するＣ末欠失改変ＡＤＡＭＴＳ−１３分子を発現させることでマッピングすることができる。従って、本発明は、例示された抗体が結合するＡＤＡＭＴＳ−１３エピトープと結合することができる抗体を含む。
本発明の好ましい実施態様において、モノクローナル抗体は、マイクロモルを超える親和性、または、例えばスキャッチャード分析により測定された時（ＭｕｎｓｏｎとＰｏｌｌａｒｄ、Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１０７：２２０，１９８０参照）に、より大きな親和性（すなわち１０−６モルよりも大きな親和性）を有するであろう。
所望する特異性と親和性の抗体を生成するハイブリドーマ細胞を同定した後に、クローンを限界希釈法によりサブクローニングし、標準的な方法で培養する。この目的のために適した培地は、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ改変イーグル培地またはＲＰＭＩ−１６４０培地を含む。さらに、ハイブリドーマ細胞を、動物における腹水腫瘍として、インビボで増殖させることができる。
該ハイブリドーマ細胞をｉｎ  ｖｉｔｒｏで培養することにより、所望の抗体を含む培養上清が得ることができる。また、該ハイブリドーマをマウス等の哺乳類の腹腔に移植することにより、所望の抗体を含む腹水を得ることができる。
ハイブリドーマにより分泌されたモノクローナル抗体は、従来のイムノグロブリン精製法、例えばプロテインＡセファロース、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、またはアフィニティークロマトグラフィーなどによって、好適に、培地、腹水液、または血清から分離される。
本発明のモノクローナル抗体をコードする核酸は、当該分野において公知の方法、例えば齧歯類抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合できるオリゴヌクレオチドプローブを用いて、容易に単離、配列決定される。本発明のハイブリドーマ細胞は、抗体またはそれらのフラグメントをコードする核酸の好ましい供給源である。単離後、核酸は、発現ベクターまたはクローニングベクターに結紮し、次いでこれを宿主細胞に形質転換し、組換え宿主培養細胞においてモノクローナル抗体が生成されるように、これを培養することができる。
所望する結合特性を有する抗体を生成することができるハイブリドーマは、抗体（抗体フラグメントを含む）をコードする核酸を含み、それらを発現することができる宿主細胞として、本発明の範囲内である。また、本発明は、抗体が生成し、好ましくは分泌される条件下で、抗体を生成することができる細胞を培養することを含む、抗体の生成方法を提供する。
本発明の抗体は、様々な方法で改変することができる。さらに言えば、「抗体」という用語は、必要とされる特異性を示す結合ドメインを有する全ての結合物質を網羅するものとして解釈されるべきである。従って、本発明は、抗原またはエピトープ、ここではＡＤＡＭＴＳ−１３に結合することができる抗体に類似した形状を有する、合成分子と分子を含む、抗体フラグメント、誘導体、抗体の機能的均等物及び相同体を網羅するものである。
抗原または他の結合対を結合することができる抗体フラグメントの実施例は、ＶＬ、ＶＨ、Ｃ１及びＣＨ１ドメインからなるＦａｂフラグメント；ＶＨとＣＨ１ドメインからなるＦｄフラグメント；抗体の単一アームのＶＬとＶＨドメインからなるＦｖフラグメント；ＶＨドメインからなるｄＡｂフラグメント；単離されたＣＤＲ領域とＦ（ａｂ’）２フラグメント、ヒンジ領域でジスルフィドブリッジによって連結された二つのＦａｂフラグメントを含む二価フラグメントである。また、単一鎖Ｆｖフラグメントも含まれる。
本発明のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、遺伝変異またはその他の変異を受けることができる。さらに、当業者によって、モノクローナル抗体は、元の抗体の特異性を保持するその他の抗体、ヒト化抗体またはキメラ分子を作製するための組換えＤＮＡテクノロジーの技術を受けることができると解されるであろう。そのような技術は、抗体の、イムノグロブリンの可変領域または相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードするＤＮＡを、異なるイムノグロブリンの、定常領域または枠組み領域をつなげた定常領域に導入することを含むことができる。
本発明で提供されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして、ＷＨ１０、ＷＨ６３．１、ＷＨＳ４０．３、Ｐｅｐ４−３４．１、ＷＨ２−２２−１Ａ、ＷＨ２−１−１、ＷＨ２−１１−１、Ｐｅｐ６−６ＡおよびＰｅｐ４−５Ｂ−１が挙げられる。
イムノアッセイ
本発明の抗体は、様々なアッセイ形式で、本発明の検出または診断方法において用いることができる。抗体は、ＡＤＡＭＴＳ−１３に特異的に結合できる結合剤として用いることができ、例えば、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて試料中のＡＤＡＭＴＳ−１３の検出を可能にする。または試験試料と接触させた後に、試験試料中の被検体（分析対象物）であるｖＷＦ切断酵素によって占められた結合剤の結合部位の画分を測定するための現像剤として用いることができる。すなわち、本発明の抗体がその結合部位で、分析対象物と結合し、分析対象物に結合した抗体の量を測定することにより、分析対象物の量もわかり、本発明の抗体をあたかも被検体の存在を明らかにする現像剤のように利用することができる。
抗体の使用、特にアッセイにおける現像剤としての抗体の使用は、検出できて、好ましくは測定できるシグナルを、直接的または間接的に産出することができる、標識物質またはレポーター分子で、それらを標識することを含む。また、本発明の抗体には標識した抗体も含まれる。標識は標識物質またはレポーター分子と抗体を連結させることにより行い、この連結は、直接的または間接的に、例えばペプチド結合を介した共有結合または非共有結合とすることができる。ペプチド結合を介した連結は、抗体とレポーター分子をコードする遺伝子融合体の組換え発現により得ることができる。Ｈｕｎｔｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ，１４４：９４５，１９６２；Ｄａｖｉｄら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ１３：１０１４，１９７４；Ｐａｉｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．４０：２１９，１９８１；及びＮｙｇｒｅｎ、Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ．ａｎｄ  Ｃｙｔｏｃｈｅｍ．３０：４０７，１９８２に記載された方法を含む、抗体を検出可能部分に別々に結合させるための当該分野において公知のあらゆる方法を、用いることができる。
標識物質またはレポーター分子としては、スペクトル的に単離された吸光もしくは発光特性を有する、各蛍光色素、蛍光体もしくはレーザー染料等が挙げられ、これらと抗体を共有結合により連結すればよい。適した蛍光色素は、フルオロレセイン、ローダミン、ルシフェリン、フィコエリスリン及びテキサスレッドを含む。適した発色性染料は、ジアミノベンジジンを含む。他の検出できる標識は、放射性同位元素標識、例えば、３Ｈ、１４Ｃ、３２Ｐ、３５Ｓ、１２５Ｉまたは９９ｍＴｃと、検出できる反応生成物をもたらす反応を触媒し、シグナルを増幅することができる酵素標識、例えばアルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼまたは西洋ワサビペルオキシダーゼを含む。またこれら酵素の標識にはビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジン結合を用いるなど、当該分野に公知の技術を用いて行なうことができる。
他のレポーター分子は、視覚的に観察される、電気的に検出される、またはその他の手段により記録される、検出可能なシグナルを、直接的または間接的にもたらすことができる、着色された、高分子コロイド粒子または例えばラテックスビーズなどの微粒子物質を含む。また、磁性または常磁性の微粒子も用いることができる。さらに、レポーター分子は、例えば、着色反応、変色反応、または電気的特性を変化させる反応を、触媒する酵素であってもよい。これらは、エネルギー状態間の電気的遷移により、特徴的なスペクトル吸収もしくは発光を生じるような、分子反応性を有していてもよい。さらに、これらは、バイオセンサーと結合して用いられた化学的な存在を含むことができる。
さらに、抗体は、試料中に存在する他の物質に優先して、ＡＤＡＭＴＳ−１３と特異的に結合できることから、抗体を結合剤として用いることができる。好適には、結合剤は、アッセイ中にそれらを容易に操作できるように、固体支持体上に、例えば特定の部位で、固定化する。固定化は、物理吸着または化学吸着などの当該分野に公知の技術を用いて行なうことができ、例えば、固型支持物（固体支持体）に抗体を化学的に結合させるためのビオチン／アビジンまたはビオチン／ストレプトアビジンを用いることができる。通常、試料中に存在するＡＤＡＭＴＳ−１３が結合剤に結合できるように、適切な条件下で、結合試薬と試料を接触させる。次いで、結合剤の結合部位の画分占有率を、現像剤を用いて測定することができる。すなわち、試料中の分析対象物と結合した抗体の量を測定することにより、分析対象物の量を測定することができる。
本発明の抗体を上記の現像剤として用いる場合、現像剤は、当該分野における公知の技術を用いて検出することができるように、（例えば、放射能標識、蛍光標識または酵素標識で）標識する。従って、放射能標識は、シンチレーションカウンターまたは他の放射線計数装置を用いて検出することができ、蛍光標識は、レーザーもしくは共焦点顕微鏡を用いて検出することができ、酵素標識は、基質における酵素標識の作用、典型的には、色の変化を生じる作用によって検出することができる。結合剤の占有結合部位に対して、現像剤が被検体と競合する競合的方法において、または結合剤と結合した、もしくは占有結合部位に結合した被検体と標識化現像剤が結合する非競合的方法において、現像剤を用いることができる。両方の方法により、被検体によって占有された結合部位の画分が示され、これにより試料中の被検体濃度が、例えば被検体の既知濃度を含む試料を用いて得られた標準と比較して、示される。
診断的アッセイは、患者からの生物学的試料を用いて行なわれる。これらの試料は、前処置なしに直接的に用いられることもできるし、アッセイを行なう前に例えば遠心分離やろ過により干渉する可能性のある試料中の物質を除去する等の処置を行ってもよい。適した生物学的試料の例は、血液、尿、汗、組織もしくはその抽出液または血清である。
一実施態様において、本発明は、ＴＴＰ、ＴＴＰ様の疾患またはｖＷＦ依存性の血栓症（ｖＷＦによりもたらされる血栓症）の恐れのある患者がこれらの疾患に罹患しているか否かを診断する方法、あるいは罹患するリスクがあるかを評価する方法に関し、該方法は、以下の工程を含む：（ａ）患者から得られた生物学的試料を、ＡＤＡＭＴＳ−１３と特異的に結合できる抗体を固定化した固型支持物と接触させること；
（ｂ）抗体を固定化し、さらに試料を接触させた固型支持物を、抗体の未占有結合部位、抗体に結合した結合ＡＤＡＭＴＳ−１３または抗体の占有結合部位に結合できる標識化現像剤と接触させること；及び、（ｃ）試料中におけるＡＤＡＭＴＳ−１３の濃度に相応する値を得るために、工程（ｂ）において特異的に結合した現像剤の標識を検出すること。
さらなる実施態様において、本発明は、患者におけるｖＷＦ依存性の血栓にまつわる診断をするための方法を提供し、該方法は以下を含む：（ａ）患者の生物学的試料を、請求項記載のいずれか一つの抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体と接触させること；及び、（ｂ）試料中におけるＡＤＡＭＴＳ−１３の抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体に対する結合を測定すること。
そしてさらに、試料中のＡＤＡＭＴＳ−１３濃度に相応する値を、既知標準から得られた値に相関させる工程、例えば濃度が既知の標準物質を測定し、標準曲線を作成し、濃度未知の物質測定に得られた測定値を標準曲線と比較し濃度を算出する工程を、さらに含む。
本発明の抗体は、あらゆる公知の免疫学的測定方法、例えば競合的結合アッセイ、直接的及び間接的サンドウィッチアッセイ、及び免疫沈降アッセイ［Ｚｏｌａ，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，ｐｐ１４７−１５８（ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ社、１９８７）参照］、において用いられることができる。
サンドウィッチアッセイは、各々、検出されるＡＤＡＭＴＳ−１３の異なる免疫性部位またはエピトープに、結合できる二種の抗体を使用する。サンドウィッチアッセイにおいて、試験試料の被検体を、固型支持物上に固定化されている一次抗体と結合させた後、該被検体に二次抗体を結合させて、不溶性の三部複合体（抗原、一次抗体および二次抗体）を形成させる。二次抗体は、検出できる部分（標識物質またはレポーター分子）で標識することができ、または検出できる部分で標識した抗イムノグロブリン抗体を用いて測定することができる（間接的サンドウィッチアッセイ）。例えば、サンドウィッチアッセイの一つの型は、検出できる部分が酵素であるＥＬＩＳＡアッセイである。
本発明の抗体を含む免疫測定キットも本発明に包含される。該キットが酵素免疫測定法に基づく場合は、抗体を固相化した担体を含んでいてもよく、抗体があらかじめ担体に結合していてもよい。該キットがラテックス等の担体を用いた凝集法に基づく場合は、抗体が吸着した担体を含んでいてもよい。また、該キットは適宜、標準試料、ブロッキング溶液、反応溶液、反応停止液、試料を処理するための試薬等を含んでいてもよい。
また、本発明の抗体は、インビボでのイメージングに有用であり、ここで、抗体は、放射性同位元素などの検出できる部分で標識され、宿主に、好ましくは血流中に投与され、宿主における標識化抗体の存在と局在が測定される。抗体は、ｖＷＦ切断酵素が存在または局在する組織、器官等に結合し得る。抗体は、核磁気共鳴、Ｘ線透視、または当該分野において公知のその他の検出手段によって、検出できるあらゆる部分で、標識することができ、検出できる部分に応じて特定の検出手段を用いることにより、標識抗体の存在または局在を測定することができ、すなわちｖＷＦの存在または局在を検出することができる。
また、本発明の抗体は、アフィニティークロマトグラフィーにおけるアフィニティー精製用試薬としても有用である。この方法において、抗体は、セルロファイン樹脂等の合成樹脂、濾紙等の支持物上に、当該分野に公知の方法を用いて固定化する。次いで、精製すべきＡＤＡＭＴＳ−１３を含む試料と固定化した抗体を接触させた後、固定化抗体に結合するＡＤＡＭＴＳ−１３以外の試料中の全物質を完全に除去し得る溶剤で、支持物を洗浄する。最後に、支持物を、抗体からＡＤＡＭＴＳ−１３を遊離させ得る溶剤、例えばグリシン緩衝液、ｐＨ３〜５で洗浄することにより、ｖＷＦ切断酵素を単離・精製することができる。
本発明の抗体またはＡＤＡＭＴＳ−１３分子もしくはその変異体は、薬学的組成物中に配合することができる。すなわち、本発明は本発明の抗体またはＡＤＡＭＴＳ−１３分子またはその変異体を含む薬学的組成物を包含する。ここで、変異体とは、分子全体のうち薬学的効果を奏する部分を含むフラグメントまたはＡＤＡＭＴＳ−１３分子のアミノ酸配列において１個から数個のアミノ酸が欠失、置換または付加したアミノ酸配列を有する分子である（必ずしも活性を保持した改変に絞らない）。
本発明の抗体は、ＡＤＡＭＴＳ−１３が有する酵素活性を阻害し、または中和し得る抗体を含む。該抗体は、好ましくはＡＤＡＭＴＳ−１３のドメイン構造中のＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末側に存在するエピトープを認識し結合する。また、該抗体は、ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域またはＣｙｓ−Ｓｐａｃｅｒ領域に存在するエピトープを認識し結合する。
薬学的組成物は、上記の抗体またはＡＤＡＭＴＳ−１３分子もしくはその変異体に加えて、薬学的に受容できる賦形剤、担体、緩衝液、安定剤または当該分野において公知であるその他の物質を含むことができる。そのような物質は、無毒であり、活性成分の効能に干渉しないものである。担体またはその他の物質の厳密な性質は、投与経路、例えば口、静脈、皮膚もしくは皮下、鼻、筋内、腹腔内経路に依存し、投与経路に応じて適切なものを選択することができる。
経口投与のための薬学的組成物は、錠剤、カプセル、粉末または液体形状であることができる。錠剤は、ゼラチンまたはアジュバントなどの固型担体を含むことができる。液体の薬学的組成物は、通常、液体の担体、例えば水、石油、動物性油、植物性油、鉱物性油、または合成油であることができる。生理食塩水、ブドウ糖もしくは他のサッカリド溶液またはグリコール、例えばエチレングリコール、プロピレングリコール、またはポリエチレングリコールが含まれる。
静脈、皮膚もしくは皮下注射または苦痛部位への注射の場合は、活性成分が、発熱性因子を含まず、好適なｐＨ、等張性及び安定性を有する、腸管外で受容できる水溶液の形状とするであろう。当業者は、適切な溶液を、例えば等張性の媒体、例えば塩化ナトリウム液、リンゲル液、乳酸加リンゲル液などを用いて、調製することができる。防腐剤、安定剤、緩衝液、抗酸化剤、及び／またはその他の添加剤を必要に応じて含むことができる。
本発明のＡＤＡＭＴＳ−１３に対する抗体またはＡＤＡＭＴＳ−１３分子もしくはその変異体を生理食塩水、緩衝液等で希釈して製剤化し、医薬組成物を得ることもできる。製剤のｐＨは体液のｐＨに近い弱酸性〜中性域のｐＨが望ましく、その下限は５．０〜６．４が望ましく、その上限はｐＨ６．４〜８．０が望ましい。また、凍結乾燥形態等の長期間保存可能な形態で提供することもでき、この場合使用時に水、生理食塩水、緩衝液等で所望の濃度になるように溶解して使用することができる。本発明の製剤は、通常医薬品に用いられる薬理的に許容される添加剤（例えば担体、賦形剤、希釈剤等）、安定化剤または製薬上必要な成分を含有していてもよい。安定化剤としては、グルコース等の単糖類、サッカロース、マルトース等の二糖類、マンニトール、ソルビトール等の糖アルコール、塩化ナトリウム等の中性塩、グリシン等のアミノ酸、ポリエチレングリコール、ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレン共重合体（プルロニック）、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル（トゥイーン）等の非イオン系界面活性剤、ヒトアルブミン等が例示され、１〜１０ｗ／ｖ％程度が添加されていることが好ましい。
本発明の医薬組成物は、静脈内注射、筋肉内注射、皮下注射等により有効量で投与することができ、１回または数回に分けて投与される。その投与量は、症状、年齢、体重などによって異なるが、１回あたり、０．００１ｍｇ〜１００ｍｇが好ましい。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００２−２７９９２４号および２００２−３７７５６９号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
【図面の簡単な説明】  図１は、抗体のエピトープを決定するためのＣ末欠失変異体作製法を示す図である。
図２は、調製されたＣ末欠失変異体の一時発現を抗ＦＬＡＧ抗体を用いて非還元下ウェスタンブロットにて確認した図である。
図３は、調製されたＣ末欠失変異体の一時発現のｖＷＦ切断活性を還元下のＳＤＳ−ＰＡＧＥにて確認した図である。
図４は、ＰｏＡｂ１のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図５は、ＰｏＡｂ２のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図６は、ＭｏＡｂ  Ｐｅｐ４−３４−１のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図７は、ＭｏＡｂ  ＷＨ１０のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図８は、ＭｏＡｂ  ＷＨ６３−１のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図９は、ＭｏＡｂ  ＷＨＳ４０−３のエピトープを確認した結果を示す非還元下ウェスタンブロットの図である。
図１０は、各種抗体の認識領域と活性発現に重要な領域をまとめた図である。
図１１は、ｖＷＦ切断酵素の部分合成ペプチドを免疫して得られたウサギ抗血清を用いた健常人血漿及びＴＴＰ患者血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３の確認を還元下ウェスタンブロット法で行なった結果を示す図である。
図１２は、ポリクローナル抗体とモノクローナル抗体を組み合わせて構築したＥＬＩＳＡ系の模式図とアッセイの流れ図である。
図１３は、ドメイン毎に調製された抗体により構築されたＥＬＩＳＡ法の概念図である。
図１４は、モノクローナル抗体とモノクローナル抗体を組み合わせて構築したＥＬＩＳＡ系の模式図とアッセイの流れ図である。
図１５は、ヒト胎児腎細胞株２９３を宿主とした培養上清から抗体カラムによりアフィニティー精製された遺伝子組換えＡＤＡＭＴＳ−１３のＳＤＳ−ＰＡＧＥの泳動図である。
図１６は、ヒトプール血漿のＦＩペーストから抗体カラムによりアフィニティー精製されたＡＤＡＭＴＳ−１３のＳＤＳ−ＰＡＧＥの泳動図である。
図１７は、抗体を用いた中和活性能の評価（非還元下のｖＷＦ切断活性のＳＤＳ−ＰＡＧＥ）を示す図である。
図１８は、後天性ＴＴＰ患者血漿中の抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体の検出（ＥＬＩＳＡ法）を示す図である。
図１９は、マウス血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３の検出（ウェスタンブロット法）を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】  以下に、実施例に従って本願発明を詳説するが、本願発明はこれら実施例に何等限定されるものではない。
【実施例１】（ポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ）の作製）
マウスまたはウサギに、常法により（Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ｃｈａｐｔｅｒ  １１  ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ：Ａ  ＰＲＡＣＴＩＣＡＬ  ＡＰＰＲＯＡＣＨ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｊ．ＭｃＣＡＦＦＥＲＴＹ  ｅｔ  ａｌ．あるいはＡＮＴＩＢＯＤＹ  ＥＮＧＩＮＥＥＲＩＮＧ  ｓｅｃｏｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ  Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ  Ｃａｒｌ  Ａ．Ｋ．ＢＯＲＲＥＢＡＥＣＫなど）、ヒトプラズマより部分精製した抗原タンパク、あるいはその一部のアミノ酸配列を有する合成ペプチド（例として、配列番号２または配列番号３記載のペプチド）を適切なキャリアー物質（ＫＬＨ等）に結合させたもの（ＫＬＨを付加しやすくするためにＣｙｓをＮ末端あるいはＣ末端などに付加したもの）、あるいは遺伝子組換えタンパク質またはそれをコードする遺伝子を導入した発現ベクターを皮下・皮内または筋肉内にトランスフェクトし、モノクローナル抗体発現ハイブリドーマの確立及びポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ）の作出を行なった。ＰｏＡｂに関しては全長または後述するＱ４４９ｓｔｏｐまたはＰ２８５ｓｔｏｐを発現するベクターのトランスフェクトによりＰｏＡｂ１、ＰｏＡｂ２及びＰｏＡｂ３の三種を作製した。
【実施例２】（モノクローナル抗体（ＭｏＡｂ）の作製）
Ｂａｌｂ／ｃマウスに、初免疫感作として後肢にフロイント完全アジュバント存在下で遺伝子組換え由来ＡＤＡＭＴＳ−１３または配列番号２もしくは配列番号３記載のペプチドを、ＫＬＨをキャリアーとして付加したものを調製した。ＡＤＡＭＴＳ−１３はＷＯ  ０２／０８８３６６に記載の方法で調製すればよい。
調製した抗原の１μｇから１０μｇ相当量を１回接種した後、１週間後に常法に従いマウス後肢大腿部のリンパ節または脾臓より細胞を採取した。それぞれマウス２匹から、得られた細胞をミエローマ細胞Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｐ３Ｕ１）（ＡＴＣＣ寄託番号ＣＲＬ−１５９７：Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，ｖｏｌ．８１，ｐ．１（１９７８））と細胞数１対１〜２の割合で混合し、遠心処理（１，５００ｒｐｍ、５分）して上清を除き、沈殿した細胞塊を充分ほぐした後、予め３７℃に加温しておいた１ｍｌのポリエチレングリコール溶液（４５％ポリエチレングリコール４０００、５５％ＲＰＭＩ培地）を攪拌しながら加えた。３７℃で５分間インキュベートした後、液の全量が５０ｍｌとなるようにゆっくりとＲＰＭＩ培地を加えた。遠心分離（１，３００ｒｐｍ、７分）後、上清を除去して緩やかに細胞をほぐした。これにエスクロンＣＭ−Ｂ培地（三光純薬社製）５０ｍｌを加え、メスピペットを用いて緩やかに細胞を懸濁した。この細胞懸濁液を４〜５枚の９６ウェル細胞培養プレートの各ウェルに１００μｌずつ分注し、５％炭酸ガスを含む３７℃のＣＯ２インキュベーター内で培養した。翌日に、ＨＡＴ培地（エスクロンＣＭ−Ｂ培地にヒポキサンチン１×１０−４Ｍ、チミジン１．５×１０−３Ｍ、アミノプテリン４×１０−７Ｍになるよう添加したもの）を各ウェルに１００μｌずつ分注し、５％炭酸ガスを含む３７℃のＣＯ２インキュベーター内で培養した。ハイブリドーマのコロニーが十分生育したものからＨＴ培地（上記ＨＡＴ培地からアミノプテリンを除いたもの）に交換し、培養上清の一部を分取し、以下に述べるスクリーニング法にて目的のハイブリドーマを選別した。
目的のハイブリドーマの選別は下記のＥＬＩＳＡ法、ウエスタン・ブロッティング法を組み合わせて実施した。
（１）ＥＬＩＳＡ法
９６ウェルのマイクロテストプレートに前記のごとく作製した合成ペプチド抗原、または精製抗原（蛋白質濃度０．５〜２μｇ／ｍｌ）を５０μｌ／ウェルで加え、４℃で一晩インキュベートすることにより固相化した。さらに、１％ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）溶液３００μｌを加え、同様にインキュベートしてマスキングを行なった。このようにして作製した抗原固相化プレートに細胞融合法によって得られたハイブリドーマ及びクローニング後のハイブリドーマの培養上清を加えて、４℃で１時間インキュベート後、ＴＢＳで３回洗浄し、ペルオキシダーゼ標識抗マウス免疫グロブリン抗体溶液（カッペル社製、５，０００倍希釈）を１００μｌ／ウェル加えた。４℃で１時間インキュベート後、ＴＢＳにて３回洗浄し、その後ＴＭＢＺ基質溶液を加え、常法により発色させその吸光度を波長４５０ｎｍにて測定した。こうして精製抗原と反応するハイブリドーマクローンを選択した。また、この方法はさらにヒト血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３に対する自己抗体検出への応用も可能であった。
（２）ウエスタン・ブロッティング法
ＥＬＩＳＡで得られた陽性コロニーについてウエスタン・ブロッティング法によるスクリーニングを行なった。精製抗原を８％のＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルを用いて電気泳動し、ＰＶＤＦ膜上に移行させ、膜を０．４〜０．５ｃｍ幅に切断した。各細片をハイブリドーマ培養上清液に浸し、１時間３７℃でインキュベートした。その後、細片をＴＢＳＴ（０．０５％Ｔｗｅｅｎ含）で３回洗浄した後、アルカリフォスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ（ＴＡＧＯ社製）の１：２０００希釈液中で３７℃、１時間インキュベートした。ＴＢＳＴで３回洗浄後、ＢＣＩＰ／ＮＢＴを用いる発色試薬（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）で発色させ、精製抗原の発色バンドを示すハイブリドーマを選択しクローニングした。クローニング後のハイブリドーマクローンについても同様の手法で選別した。上記の選別方法によって所望のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマがおよそ３０クローン得られた。また、この方法はさらにヒト血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３に対する自己抗体検出への応用も可能であった。
【実施例３】（ＡＤＡＭＴＳ−１３Ｃ末欠失変異体の作製）
図１に示すストラテジーにより、全長のｖＷＦ切断酵素遺伝子クローニングベクター（ｐＣＲ２．１ｖＷＦＣＰ）を利用して、全長及び配列番号表４から１８に示すプライマーを用いてＣ末端より逐次ドメインを欠失させた変異体（Ｆｕｌｌ１４２７ｓｔｏｐ、Ｔ１１３５ｓｔｏｐ、Ｗ１０１６ｓｔｏｐ、Ｗ８９７ｓｔｏｐ、Ｗ８０８ｓｔｏｐ、Ｗ７４６ｓｔｏｐ、Ｗ６８８ｓｔｏｐ、Ｔ５８１ｓｔｏｐ、Ｑ４４９ｓｔｏｐ、Ｗ３８７ｓｔｏｐ、Ｐ２８５ｓｔｏｐ、：それぞれの数字は開始コドンＡＴＧのコードするＭｅｔから終結コドンまでのアミノ酸の残基数を示し、ＦＬＡＧエピトープ（ＤＮＡ配列：ｇａｃｔａｃａａｇｇａｃｇａｔｇａｃｇａｔａａｇｔｇａ（配列番号表１９）、アミノ酸配列：Ａｓｐ  Ｔｙｒ  Ｌｙｓ  Ａｓｐ  Ａｓｐ  Ａｓｐ  Ａｓｐ  Ｌｙｓ（配列番号表２０））を付加した部位を示す。）を発現する遺伝子を調製し、ｐＣＡＧ発現ベクター（Ｎｉｗａ，Ｈ．，ｅｔ  ａｌ．Ｇｅｎｅ  ｖｏｌ．１０８，１９３−１９９）に組み込み、Ｈｅｌａ細胞を用いて、以下の手順でトランスフェクトした。
全長のｖＷＦ切断酵素遺伝子クローニングベクター（ｐＣＲ２．１ｖＷＦＣＰ）は、ＷＯ  ０２／０８８３６６に記載の方法により入手可能である。
まず初めに、１−３×１０５個／３５ｍｍ  ｄｉｓｈで細胞を捲き、その翌日に上記発現ベクターを２μｇ当たり１０μｌのＰｏｌｙａｍｉｎｅ  Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ  ＲｅａｇｅｎｔであるＴｒａｎｓＩＴ（ＴＡＫＡＲＡ社製）をとり、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ等の無血清培地２００μｌに添加して、試薬添付文書に従い、ＤＮＡとのコンプレックスを調製後、準備しておいた前記各種細胞へ滴下し、６時間インキュベーションし、その後、培地をＡＳＦ１０４無血清培地（味の素社製）に変更後、７２時間３７℃インキュベーション後、その上清を回収した。検出は抗ＦＬＡＧ−Ｍ２抗体（コダック社製）を用いたウエスタンブロット法により、抗マウスＩｇ−アルカリフォスファターゼ酵素標識抗体系で染色して行なった（図２に発現の様子を確認した結果を示す。）。また本改変分子群はＦＬＡＧタグを付加しており、常法である抗ＦＬＡＧタグ抗体固定化アガロース等を用いて容易に精製可能であった。
【実施例４】（ＡＤＡＭＴＳ−１３Ｃ末欠失変異体のｖＷＦ切断活性確認）
ｖＷＦの調製
ｖＷＦは、セファクリルＳ−５００ＨＲ（アマシャムファルマシア）の２．６×９０ｃｍカラムにより、プラズマクリオ画分２ｇを２０ｍＬのバッファー（０．０１％Ｔｗｅｅｎ−８０／５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ／１００ｍＭ  ＮａＣｌ  ｐＨ７．４）に溶解したものをゲル濾過することにより調製した（ＷＯ  ０２／０８８３６６を参照）。
ｖＷＦ切断反応
ｖＷＦ切断活性のアッセイは、ＷＯ  ０２／０８８３６６に記載の方法で行った。すなわち、終濃度１０ｍＭの塩化バリウムを加えたサンプルを３７℃で５分間プレインキュベートし、プロテアーゼの活性化を行なった。５０ｍＬのファルコンチューブにバッファー（１５〜２０ｍＬの１．５Ｍ  Ｕｒｅａ／５ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ８．０）を入れた。次にミリポア社製のメンブレンフィルター（０．０２５μｍ）を浮遊させ、５０μＬのｖＷＦ基質溶液を加えて混合した活性化サンプルを１００μＬ添加した。３７℃のインキュベーターに一晩静置して翌日フィルターから回収した。回収したサンプルを、以下のＳＤＳ−ＰＡＧＥの項に示すｖＷＦの切断パターンにより評価した。
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
ＳＤＳ−５％ポリアクリルアミドゲルを自家調製し使用した。ｖＷＦ切断活性のアッセイ項で述べたサンプル１０μＬに、ＳＤＳ泳動バッファー（還元剤２−メルカプトエタノール存在下または不在下）２μＬを加え３分間煮沸したものを泳動サンプルとした。３０ｍＡで１時間電気泳動したのち、ゲルはＣＢＢ染色を利用したＧｅｌ  Ｃｏｄｅ  Ｂｌｕｅ  Ｓｔａｉｎ  Ｒｅａｇｅｎｔ（ＰＩＥＲＣＥ社）にて染色した。
その結果、図３に示す如く、Ｆｕｌｌ−ｌｅｎｇｔｈの分子からＷ６８８ｓｔｏｐまでの分子で明らかなｖＷＦ切断活性が認められた。また先の抗ＦＬＡＧ抗体による上清中への発現パターンを考慮した場合、Ｔ５８１ｓｔｏｐでの発現が上清中に認められないことからこの近傍（Ｃｙｓ−ｒｉｃｈ領域からＳｐａｃｅｒ領域）での切断は分泌障害を起こす場合があることが確認され、本酵素活性を維持するためには、この領域を含むことが重要であることがわかった。
【実施例５】（ウェスタンブロットを利用した抗体のエピトープの解析）
常法により、ウェスタンブロットを行ない、確立したポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ１，ＰｏＡｂ２）及びお互いに認識部位が競合しないと考えられたモノクローナル抗体数種（本発明者らが先に作製したＣｌｏｎｅ  Ｎｏ．ＷＨ１０（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７４）に加えて、ＷＨ６３．１（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７５）、ＷＨＳ４０．３（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７６）、Ｐｅｐ４−３４．１（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８１７７））についての認識領域を特定するため、実施例４記載の部分欠失改変分子の一時発現培養上清を利用し、ウェスタンブロットを行なった（図４〜９）。
これに加えて新たに確立されたクローンＷＨ２−２２−１Ａ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８３）、ＷＨ２−１−１（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８４）、ＷＨ２−１１−１（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４８５）、Ｐｅｐ６−６Ａ（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７４）、Ｐｅｐ４−５Ｂ−１（ＦＥＲＭ  ＢＰ−８４７５）についても同様の解析を行った。決定された抗体の認識領域及び活性発現に重要と考えられた領域を図１０にまとめる。ＰｏＡｂ１の認識領域は図４からＱ４４９ｓｔｏｐ以降Ｗ６８８ｓｔｏｐまでの間あるいは全長部分にわたっていることが推察され、ＰｏＡｂ２は図５よりＰ２８５ｓｔｏｐ以降Ｗ３８７ｓｔｏｐ、またはこれ以降Ｔｓｐ１−を認識しており、本ポリクローナル抗体ＰｏＡｂ１が中和活性を有すること（後述）並びにＰｏＡｂ２さらにはＰｏＡｂ３もＡＤＡＭＴＳ−１３の酵素活性を中和したため、これらの事実を併せて鑑みるとＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末端側、ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域、Ｔｓｐ１−１領域、Ｃｙｓ−Ｓｐａｃｅｒ領域等がｉｎ  ｖｉｔｒｏのアッセイにおいて機能的に重要であり中和領域となりえることが確認された。
【実施例６】（ＥＬＩＳＡを利用した抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体のエピトープ領域の確認）
イムノモジュール９６ウェルプレートに抗ＦＬＡＧ抗体１０μｇ／ｍＬ  １００μＬを固相化したのちＦＬＡＧをポリペプチド鎖に付加したＡＤＡＭＴＳ−１３  ｗｉｌｄ  ｔｙｐｅもしくは各種上記欠失変異体を固相化、もしくはＦＬＡＧの付加に無関係に直接プレートへ本酵素変異体を固相化し、公知の方法によりブロッキング操作を施したプレートに適当に希釈されたＭｏＡｂの１００μＬを反応後、プレートをＴｗｅｅｎなどの界面活性剤を含有するバッファーにて洗浄後、抗マウスＩｇＨＲＰコンジュゲートと３７℃一時間反応させ洗浄後、ＴＭＢＺ等で発色させることにより、実施例５同様なエピトープ領域の絞込みを行なった。その結果、実施例５で示された結果を支持した。また、この方法はヒト血漿中に存在する抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体の検出並びにエピトープ解析に有効であると考えられた。
【実施例７】（確立された抗体を用いてのウェスタンブロットによるヒト血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３の検出）
続いて、上記種々の方法により調製された抗体を用いて、常法により（Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ｃｈａｐｔｅｒ  １０  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ、Ｃｈａｐｔｅｒ  １１  ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙなど）、本酵素のウエスタンブロット法による検出を行なった。本酵素のＣ末端領域のペプチド配列（配列番号２）Ｐｈｅ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｓｅｒ−ＳｅｒをＫＬＨに結合したものを免疫原として得られたペプチド抗体により、還元条件下、健常人血漿、ＴＴＰ患者血漿中から本酵素の検出を行なったところ、一部のＴＴＰ患者血漿では明瞭ではないが、概ね２５０ｋＤａ程度の本酵素由来のシグナルと想定されるバンドが確認された（図１１）。
【実施例８】（確立された抗体を用いた酵素免疫測定法によるヒト血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３の検出・測定１）
得られたポリクローナル抗体とモノクローナル抗体の組み合わせ（ＭｏＡｂ−ＰｏＡｂの系）により（認識エピトープは図１０参照）構築される酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）を用いて（図１２）、様々な検体での本酵素の定量を行なった。測定方法の工程を以下に示す。
１．各試薬類を室温に戻す。
２．ＷＨ１０  ＭｏＡｂ固定化プレートにサンプルを１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
３．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
４．ＰｏＡｂ  １またはＰｏＡｂ  ２を１μｇ／ｍｌとなるよう希釈液（１％ＢＳＡ−ＴＢＳ）にて希釈し、１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
５．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
６．抗ウサギＩｇＧ−ＨＲＰ標識コンジュゲートを希釈液（１％ＢＳＡ−ＴＢＳ）にて１００００倍希釈し、１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
７．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
８．ＴＭＢ基質液（直前に室温で２液を混ぜたもの）１００μｌ／ウェル添加（ポジティブウェルは青色へ）室温１０分程度（スタンダードとして同封の組み換え品１００ｎｇ／ｍｌの色が反応停止後、最終的にＯＤ４５０ｎｍ＝１程度となるように）反応停止液（０．５Ｍ硫酸）を１００μｌ／ウェル添加（ポジティブウェルは黄色へ）
９．プレートリーダにて４５０ｎｍ及び６５０ｎｍ測定
定量のためのスタンダードは遺伝子組換えＡＤＡＭＴＳ−１３を後述する抗体によるアフィニティー精製により得られたものを用いた。その結果、健常人血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３濃度は用いた抗体により変化することが明らかとなり、これは血漿中で本酵素が様々な分子形態で存在することを示唆するものであった（表１）。このことから理想的なＥＬＩＳＡ系として、積極的に分解パターンを解析できるようなドメイン毎に認識する抗体群を利用した系もしくは表２に示すこれらの影響が少ないと考えられるＰｏＡｂ−ＰｏＡｂ（ＰｒｏｔｅｉｎＧ等で精製したＰｏＡｂを直接ＥＬＩＳＡプレートへ固相化し、ビオチン化ＰｏＡｂ−ストレプトアビジンＨＲＰ）による系の構築が望ましいと考えられた（図１３）。図１３に示す系において、ポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ）もしくはＮ末より（メタロプロテアーゼドメインなど）の認識エピトープを有するモノクローナル抗体（ＭｏＡｂ）を固相化に用いて、検出側の二次抗体にドメイン毎に異なるエピトープのＭｏＡｂを用いることで全てのバリエーションのＡＤＡＭＴＳ−１３をトラップする。あるいは、この逆に様々なエピトープのＭｏＡｂを固相化に用いるあるいはＰｏＡｂとＰｏＡｂでのサンドイッチＥＬＩＳＡなどが想定される。図に示すようにサンプル中のＡＤＡＭＴＳ−１３は様々なバリエーションが存在する。これらの系で病態と血漿中の存在分子形態との相関を見ることが可能になる。
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【実施例９】（確立された抗体を用いた酵素免疫測定法によるヒト血漿中のＡＤＡＭＴＳ−１３の検出・測定２）
得られたモノクローナル抗体を組み合わせることで構築される酵素免疫測定法（ＭｏＡｂ−ＭｏＡｂの系）（図１４）により、数検体のヒト血漿中の本酵素の定量を行なった。測定方法の工程を以下に示す。
１．各試薬類を室温に戻す。
２．ＷＨ１０  ＭｏＡｂ固定化プレートにサンプルを１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
３．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
４．ビオチン化抗体を１μｇ／ｍｌとなるよう希釈液（１％ＢＳＡ−ＴＢＳ）にて希釈し、１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
５．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
６．ストレプトアビジン−ＨＲＰ標識コンジュゲートを希釈液（１％ＢＳＡ−ＴＢＳ）にて１００００倍希釈し、１００μｌ／ウェル添加
３７℃  １時間
７．０．０５％  Ｔｗｅｅｎ−２０−ＴＢＳでプレート洗浄３回
８．ＴＭＢ基質液（直前に室温で２液を混ぜたもの）１００μｌ／ウェル添加（ポジティブウェルは青色へ）室温１０分程度（スタンダードとして同封の組み換え品１００ｎｇ／ｍｌの色が反応停止後、最終的にＯＤ４５０ｎｍ＝１程度となるように）
反応停止液（０．５Ｍ硫酸）を１００μｌ／ウェル添加（ポジティブウェルは黄色へ）
９．プレートリーダにて４５０ｎｍ及び６５０ｎｍ測定
その結果を前述の実施例５に示す結果と比較すると、この組み合わせの系は最も低い定量値を示した（表３）。また、この組み合わせでは後述するヒトプール血漿のＦＩペーストから精製された本酵素を検出することは出来なかった。このことは、抗体の組み合わせにより定量値が変動するという事実を考慮すると抗体の組み合わせを変えた様々な系の構築（図１３）の重要性を示している。
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【実施例１０】（遺伝子組換えＡＤＡＭＴＳ−１３の発現）
ヒト胎児腎細胞株である２９３細胞を用いて組換えＡＤＡＭＴＳ−１３の安定発現株を以下の方法で作出した（ＷＯ  ０２／０８８３６６）。概略として、以下の手順でトランスフェクトした。まず初めに１−３×１０５個／３５ｍｍ  ｄｉｓｈで細胞を捲き、その翌日に上記発現ベクターを２μｇ当たり１０μｌのＰｏｌｙａｍｉｎｅ  Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ  ＲｅａｇｅｎｔであるＴｒａｎｓＩＴ（ＴＡＫＡＲＡ社製）をとり、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ等の無血清培地２００μｌに添加して、試薬添付文書に従い、ＤＮＡとのコンプレックスを調製後、準備しておいた前記各種細胞へ滴下し、６時間インキュベーションし、その後、培地交換し、さらにその３日後Ｇ４１８添加選択培地に交換した。これからさらに３日毎に培地交換を行ない、選択されたコロニー群から限界希釈法及び先のＭｏＡｂ（ＷＨ１０）−ＰｏＡｂ１のＥＬＩＳＡ系を利用して、発現クローン（Ｃｌｏｎｅ  Ｎｏ．ＶＷＦ  ＣＰ−２９３−３５並びに２９３−２−４）を確立した。
【実施例１１】（抗体を用いての遺伝子組換え体の培養上清からの遺伝子組換えＡＤＡＭＴＳ−１３の精製）
得られた抗体の一例としてＷＨ１０を用いた例を示す。この抗体を適当な固定化担体に結合させることでアフィニティーカラムを作製し、当該酵素の精製に供した。アフィニティーカラムの調製には、チッソ社製ＮＨＳ活性化セルロファインを用いて、添付文書に従い抗体を固定化した。これにより調製した約１ｍｌの膨潤担体を用いて、実施例９に示す当該酵素の２９３細胞を宿主とした遺伝子組換え体の発現培養上清をアプライしたのち、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ０．１Ｍ  ＮａＣｌ  ｐＨ７．５（以下ＴＢＳ）でカラムを洗浄後、０．１ＭグリシンｐＨ３バッファーで溶出した。溶出された画分を１Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ８．５にて中和し、ＴＢＳに対して透析した。得られた精製酵素のＳＤＳ−ＰＡＧＥを図１５に示す。また、得られた精製画分にｖＷＦを切断する活性が存在することも確認された。そして、この組換え酵素により断片化されたｖＷＦの切断点は、その断片のＮ末端アミノ酸配列解析から８４２Ｔｙｒ−８４３Ｍｅｔの位置であることが確認された。
続いて精製された組換え体由来のＡＤＡＭＴＳ−１３の部分アミノ酸配列を決定した。常法により、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ後、ＰＶＤＦ膜へトランスファーし、風乾したのち、ＰＥアプライドバイオシステムズ社のオートプロテインシークエンサー４９２にて解析を行なった。その結果、部分Ｎ末端配列としてＡｌａ−Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−を有することが明らかとなった。この配列は、遺伝子構造から推定された当該酵素の成熟体のＮ末端配列に一致した。
【実施例１２】（抗体を用いてのヒトプール血漿由来ＦＩペーストからのＡＤＡＭＴＳ−１３の精製）
ＦＩペーストの可溶化
ＦＩペーストは１２ｇずつに小分けし凍結保存した。使用する前日に４℃に出して融解させ、翌日、可溶化バッファー（０．０５％アザイド、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．４、１００ｍＭ  ＮａＣｌ）を１０ｍｇ／ｍＬになるよう、１２０ｍＬ加え３７℃で２時間攪拌した。１００００ｒｐｍで１０分間遠心した後、上清を回収し、プレフィルター、５．０μｍフィルター、０．８μｍフィルターの順でろ過したものを可溶化サンプルとした。
ｖＷＦ切断酵素のゲルろ過クロマトグラフィー
可溶化したＦＩペーストを、セファクリルＳ−３００ＨＲ（アマシャムファルマシア）の５×９０ｃｍカラムにかけ、１回目のゲルろ過を行なった。可溶化バッファーと同じ０．０５％アザイド、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．４、１００ｍＭ  ＮａＣｌ（以後溶出バッファー）を用い、流速は５ｍＬ／ｍｉｎ．、分取は推定分子量１００ｋ〜３００ｋＤａに相当する画分をプールし、これに、終濃度３３％飽和となるよう飽和硫安を少量ずつ滴下した。これをさらに一晩４℃に静置した。翌日１００００ｒｐｍ、１０分遠心し、目的の活性画分を沈殿として回収した。以上の可溶化・ゲルろ過・硫安沈澱の操作を５バッチ行ない、−２０℃で凍結保存した。
１回目のゲルろ過によって得られた硫安沈殿物２〜３バッチ分を、溶出バッファ−５０ｍＬに溶解し１回目と同様セファクリルＳ−３００ＨＲカラム（５×９０ｃｍ）に通液し、２回目のゲルろ過を行なった。溶出バッファー、条件、操作等については１回目と同様である。この操作を２回実施した。
２回目のゲルろ過によって得られた硫安沈殿物２回分を、溶出バッファー５０ｍＬに溶解し、１、２回目と同様、セファクリルＳ−３００ＨＲカラム（５×９０ｃｍ）にかけ、３回目のゲルろ過を実施した。溶出バッファー、条件、操作等については１、２回目と同様である。そして推定分子量１００ｋ〜３００ｋＤａに相当する画分をプールした。このプールサンプルを前述のリコンビナントＡＤＡＭＴＳ−１３精製と同様の手順にてＣｌｏｎｅ  Ｎｏ．ＷＨ１０モノクローナル抗体固定化カラムを用いて精製を行なった。その結果、図１６に示されるようにＳＤＳ−ＰＡＧＥにて１０５ｋＤａ〜１６０ｋＤａのサイズを有するほぼ単一のＡＤＡＭＴＳ−１３が精製された。このＮ末端アミノ酸配列を解析したところリコンビナントと同様の結果が得られた。
【実施例１３】（抗体による本酵素活性の中和）
前述の家兎ポリクローナル抗体によるｖＷＦ切断酵素の中和活性を評価した。遺伝子組換えＡＤＡＭＴＳ−１３の１〜１０μｇ／ｍｌ（ブラッドフォード法にて概算）に対して、正常家兎血清、Ｃ末端領域のペプチド配列（配列番号２）Ｐｈｅ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ−Ｇｌｕ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｎ−Ｓｅｒ−ＳｅｒをＫＬＨに結合したものを免疫原として得られた家兎抗血清、及び全長ＡＤＡＭＴＳ−１３発現ベクターにより発現された蛋白質により免疫誘導された抗血清（ＰｏＡｂ１）のそれぞれを体積比１対１あるいは１０倍希釈した抗血清を１対１で予め３７℃で１時間反応させた後、前述したｖＷＦ切断活性のアッセイに供し、その活性の阻害を評価した。
その結果、図１７に示すごとく本酵素の阻害活性を有するものが調製された（メタロプロテアーゼのインヒビターであるＥＤＴＡを阻害の陽性コントロールとした。）。また、中和活性を有するポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ１）のエピトープ解析の結果（図４）から、ＡＤＡＭＴＳ−１３のドメイン構造中のＳｐａｃｅｒ領域よりＮ末側に中和エピトープが存在することが推察された。またさらに、ＰｏＡｂ２並びにＰｏＡｂ３においても中和能を有することが確認された。これらのことから、中和可能領域として、ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ領域、Ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｌｉｋｅ領域なども想定された。このように中和抗体が作成可能であるということは、ｖＷＦ切断酵素に対する自己抗体陽性の後天的ＴＴＰ患者様のモデルを構築できる可能性も示唆している。
【実施例１４】（ヒト血漿中の抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体の検出）
実施例６に示す方法を利用し、後天性ＴＴＰ患者血漿中の抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体の検出を行った。イムノモジュール９６ウェルプレートに抗ＦＬＡＧ抗体２μｇ／ｍＬ  １００μＬを固相化したのちＦＬＡＧをポリペプチド鎖に付加したＡＤＡＭＴＳ−１３  ｗｉｌｄ  ｔｙｐｅを反応させたのち、５、１０、５０倍希釈された検体１００μＬを３７℃一時間反応後、プレートを０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むトリスバッファーにて洗浄後、抗ヒトＩｇＨＲＰコンジュゲートと３７℃一時間反応させ洗浄後、ＴＭＢＺ等で発色させた。その結果、図１８に示されるように後天性のＴＴＰ患者血漿（Ａｃｑｕｉｒｅｄ）のみが正常血漿（Ｎｏｒｍａｌ）並び先天性ＴＴＰ血漿（Ｃｏｎｇｅｎｉｔａｌ）に比べ４５０ｎｍの吸光度において突出した値を示し、抗ＡＤＡＭＴＳ−１３抗体を有することが確認された。
【実施例１５】（抗マウスＡＤＡＭＴＳ−１３ポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ）の作製）
ヒト同様マウスの本酵素をコードする遺伝子（ＷＯ  ０２／０８８３６６）を常法にしたがい導入した発現ベクターをウサギの皮下・皮内または筋肉内にトランスフェクトし、ポリクローナル抗体（ＰｏＡｂ）の作出を行なった。得られた抗体を用いてマウス血漿中より本酵素を免疫沈降させ検出した（図１９）。マウスの系統により本酵素の分子サイズが異なることが認められた。また、本ポリクローナル抗体をプレートに固相化し、さらにはビオチン化することでＰｏＡｂ−ＰｏＡｂのサンドウィッチＥＬＩＳＡを構築した（表４）。これにより本酵素の血中存在量の測定がマウスでも可能になる。
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本明細書に引用されたすべての刊行物は、その内容の全体を本明細書に取り込むものとする。また、添付の請求の範囲に記載される技術思想および発明の範囲を逸脱しない範囲内で本発明の種々の変形および変更が可能であることは当業者には容易に理解されるであろう。本発明はこのような変形および変更をも包含することを意図している。
【産業上の利用可能性】  本願発明の抗体は、ＡＤＡＭＴＳ−１３に対して特異的に免疫反応性を示す。したがってＡＤＡＭＴＳ−１３酵素量の迅速な検出、本酵素変動に伴う疾病の診断及びＡＤＡＭＴＳ−１３の効率的な精製あるいはＡＤＡＭＴＳ−１３の酵素活性の中和が可能となる。このように、本願発明の抗体は、ＡＤＡＭＴＳ−１３の検出及び精製をはじめとする多種多様の用途を有するものでもある。斯くも有用なこの発明の抗体はこの発明による抗体の製造方法により所望量を容易に得ることができる。
本願発明は、斯くも顕著な作用効果を発揮するものであり、斯界に貢献すること誠に多大な意義のある発明であると云える。また、本願発明のＡＤＡＭＴＳ−１３部分欠失体も機能上重要な領域の決定等に利用することができる。さらにこれら酵素分子を利用した試料中の本酵素に対する抗体の存在の有無の判定が可能となり、血小板減少症のより詳細な原因究明の手段を提供し、これによりあやまった血小板輸注のリスクを回避可能にするものである。
【配列表】
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【図１】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【国際調査報告】
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