(57)【要約】アロマターゼ阻害剤やエストロゲンサルファターゼ阻害剤、タモキシフェンやトレミフェン等のエストロゲン競合阻害剤と異なり、細胞内に取り込まれる必要がなく、ドラッグデリバリー性に優れ、副作用がきわめて少ない乳癌治療剤のスクリーニング方法であって、ヒト乳癌培養細胞ＭＣＦ−７細胞株やＴ−４７Ｄ細胞株をエストロン３硫酸と、ブロモスルフォフタレイン等の被検物質としてのの存在下に培養し、細胞表面に発現するエストロン３硫酸トランスポーターを介してのエストロン３硫酸の細胞内への取込みが阻害され、ＭＣＦ−７細胞株の増殖が抑制されるかどうかを評価し、トランスポーター機能阻害の乳癌治療剤をスクリーニングする。【特許請求の範囲】
【請求項１】
エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞を培養し、エストロン３硫酸の培養細胞内への取り込みを被検物質存在下において測定し、被検物質による細胞内へのエストロン３硫酸の取り込み活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項２】
細胞内のエストロン３硫酸濃度を測定・評価することにより、トランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする請求項１記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項３】
細胞増殖の程度を測定・評価することにより、トランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする請求項１記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項４】
エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から単離した細胞膜画分に、エストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質によるエストロン３硫酸の細胞膜画分への特異的結合の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項５】
エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から細胞膜画分を単離し、該細胞膜画分から小胞を作製して単離細胞膜小胞とし、該単離細胞膜小胞にエストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質による小胞内へのエストロン３硫酸の取込み量もしくは取込み量の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項６】
エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞が、ヒト乳癌培養細胞株であることを特徴とする請求項１〜５のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項７】
ヒト乳癌培養細胞株が、ＭＣＦ−７細胞株，Ｔ−４７Ｄ細胞株又はこれら細胞株由来の細胞株であることを特徴とする請求項６記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項８】
被検物質として、有機アニオントランスポーターの阻害剤であり、かつ、嵩高いアニオン性化合物を用いることを特徴とする請求項１〜７のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項９】
有機アニオントランスポーターの阻害剤であり、かつ、嵩高いアニオン性化合物が、ブロモスルフォフタレイン，デヒドロエピアンドロステロンサルフェート，デヒドロエピアンドロステロン，エストラジオール，タウロコール酸，ベンズブロマロン，ＤＩＤＳ，プロベネシド，スルフィンピラゾン，ビリルビン，スタチン系ＨＭＧＣｏＡ還元酵素阻害剤，キニジン，キニーネ，ジゴキシン，胆汁酸類，甲状腺ホルモン（Ｔ３，Ｔ４），合成オリゴペプチド類であることを特徴とする請求項８記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項１０】
被検物質として、エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体を用いることを特徴とする請求項１〜７のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項１１】
エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体が、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰに対する特異抗体であることを特徴とする請求項１０記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項１２】
エストロン３硫酸トランスポーターが、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰから選ばれることを特徴とする請求項１〜１１のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法。
【請求項１３】
請求項１〜１２のいずれか記載のスクリーニング方法により得られる乳癌治療剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】  本発明は、エストロン３硫酸（エストロン−３−サルフェート；ｅｓｔｒｏｎｅ−３−ｓｕｌｆａｔｅ）トランスポーターのトランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】  細胞内外の物質輸送を行う膜タンパク質等はトランスポーターと呼ばれ、脂質二重膜中に埋め込まれているトランスポーターに特定の分子が結合すると、コンフォメーションが変化して物質が取込みあるいは排出輸送されることが知られている。近年、かかるトランスポーター、例えば有機アニオン性物質を輸送するＯＡＴ１等の有機アニオントランスポーター，有機カチオン性物質を輸送するＯＣＴ１等の有機カチオントランスポーター，ペプチド性物質を輸送するＰＥＰＴ１等のペプチドトランスポーターなどの遺伝子が相次いで単離・同定されている。これらトランスポーター遺伝子は、全身の正常組織・臓器に偏在しているものもあるが、腎臓，肝臓，脳などといった特定の組織・臓器に局在するものも知られている。
一方、エストロゲンは雌性動物に発情現象を起こす、いわゆる女性ホルモンであり、天然に存在するエストロン（Ｅ１），エストラジオール（Ｅ２），エストリオール（Ｅ３），エステトロール（Ｅ４）と、それらと同様の生物活性を有する合成エストロゲンに分類される。スチルベステロールなどの合成型の一部を除いて、エストロゲンはステロイド構造を有する。エストロン０．１μｇのもつ生物学的作用を１ＩＵ（国際単位）とし、これがエストロゲンの単位として用いられている。分泌源は主として卵巣の卵胞及び黄体であるが、妊娠時の胎児胎盤系，副腎，精巣などからも分泌される。卵巣からのエストロゲンの分泌は、下垂体前葉より分泌される性腺刺激ホルモンにより支配される（下行性調節）が、逆にエストロゲンによる間脳下垂体系へのフィードバック作用も認められ（上行性調節）、両者の相互関係により性周期が成立するといわれている。
さらに、エストロゲンはその受容体（レセプター）を介して作用し、エストロゲンの作用は標的組織である間脳−下垂体前葉−性器及び乳腺のみならず全身に及び、主な生理作用は、子宮内膜の増殖，子宮筋の発育，第二次性徴の発現，月経周期の成立の媒介，妊娠時の母体変化の惹起，乳腺管の増殖分泌促進などである。エストロゲンは主として肝臓において代謝をうけ、エストロン３硫酸等の抱合型エストロゲンとなり尿中に排泄される。臨床的には、無月経や月経異常の治療，月経の人為的移動，更年期障害，前立腺癌や乳癌に対するホルモン療法，骨粗鬆症などに対して用いられている。
乳癌は乳腺の上皮組織の末梢乳管や腺房上皮から発生する悪性腫瘍で、欧米では女性の癌死亡の第一位である。わが国での発生頻度はかなり低いが、近年の食生活の欧米化、生活様式の変化などに伴い乳がんによる死亡率は上昇傾向にある。好発年齢は４０歳代で、リスク因子として、乳癌の既往・家族歴，未婚，高齢初産，早期初潮と晩期閉経，肥満，放射線被爆，高脂肪食，良性乳腺疾患の既往などを挙げることができる。リンパ節転移は腋窩，鎖骨下，胸骨傍に頻度が高く、転移個数は予後と相関する。血行性転移は骨，肺，肝に多い。主症状は乳房腫瘤であり、表面不整，硬，境界不明瞭で可動性が少ない。
乳癌の２／３はエストロゲン依存性である（Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ  ３０２：７８−９０，１９８０）、すなわち、細胞増殖がエストロゲンによって制御されている。乳癌は、発癌時点からエストロゲン受容体システムの異常作動があり、初期はエストロゲン依存性の増殖を続けるが、次第にこの制御を離れた増殖となる。このことから、乳癌の発生と進展にエストロゲンとその受容体が深く関与していると考えられているが、その機序は未だ明らかではない。エストロゲンの生物活性型がエストラジオールであり、２つの主要経路を経て合成される（Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ５７：１１２５−１１２８，１９８３；Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  Ｔｒｅａｔ  ７：３５−４４，１９８６）。１つは、アロマターゼがアンドロゲンをエストロゲンに変換するアロマターゼ経路であり、もう１つは、ステロイドスルファターゼがエストロン３硫酸をエストロンに変換するスルファターゼ経路である。乳癌に罹患している閉経前及び閉経後の患者では、スルファターゼの活性はアロマターゼの活性と比べて５０〜２００倍の高さであるため、スルファターゼ経路は、エストロン３硫酸由来生物活性エストロゲンの主要な供給源である（Ａｎｎ  Ｎ  Ｙ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ４６４：１２６−１３７，１９８６；Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８１：１４６０−１４６４，１９９６）。また、エストロン３硫酸の循環血漿濃度は、非抱合エストロゲンの場合と比べて約１０〜２，０００倍であり、エストロン３硫酸の半減期はエストラジオールの半減期よりも長い（Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８１：１４６０−１４６４，１９９６；Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２３６：１０４３−１０５０，１９６１；Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ  ５１：１０２０−１０３３，１９７２）。したがって、エストロン３硫酸は、エストロン３硫酸自体があまり生物活性を示さなくても、活性エストロゲンの貯蔵庫として、乳癌の進行に重要な役割を果たすと考えられている。
エストロン３硫酸による乳癌細胞増殖の刺激には、下記の一連のプロセスが関わっている：エストロン３硫酸の細胞への取り込み、エストロゲンスルファターゼによる脱硫酸化、Ｉ型の１７β−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼによるエストロンのエストラジオールへの変換、核エストロゲン受容体への結合、及び遺伝子転写の制御（Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １３８：８６３−８７０，１９９７；Ｍｏｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  １１：７７−８６，１９９７；Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １２３：１２８１−１２８７，１９８８；Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  ９：２９６−３０２，２００２）。関与している酵素や、受容体についてよく調べてみたが、エストロン３硫酸などのリガンドが細胞膜を通過する機序はわかっていない。エストロン及びエストラジオールは拡散性であるが、エストロン３硫酸は親水性化合物であるため、拡散によって細胞膜を通過することはないと思われる（Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ５９：１１２８−１１３２，１９８４）。エストロン３硫酸とともにインキュベーションした後のＭＣＦ−７細胞の細胞質画分中で、エストロン３硫酸は完全な形で検出されており（Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １０６：１０７９−１０８６，１９８０）、エストロゲン作用を示していた（Ａｎｎ  Ｎ  Ｙ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ４６４：１２６−１３７，１９８６；Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８１：１４６０−１４６４，１９９６；Ｊ  Ｓｔｅｒｏｉｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ  ７３：２２５−２３５，２０００）。したがって、ホルモン依存性増殖を示す乳癌細胞へのエストロン３硫酸の供給には、特異的トランスポーターが関与していると思われる。
有機アニオントランスポーター（ＯＡＴ、ＳＬＣ２２Ａ）（Ｐｆｌｕｇｅｒｓ  Ａｒｃｈ  ４４０：３３７−３５０，２０００）ファミリー及び有機アニオン輸送ペプチド（ＯＡＴＰ、ＳＬＣ２１Ａ、ＳＬＣＯ）（Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ  １６０９：１−１８，２００３，Ｐｆｌｕｇｅｒｓ  Ａｒｃｈ  ４４７：６５３−６６５，２００３）ファミリーのメンバーのなかには、エストロン３硫酸を輸送するものがあることが既に知られている。それらは主として肝臓、腎臓、脳、腸、その他の部位で発現するが、乳癌細胞中での発現は報告されていない。エストロン３硫酸に対するそれらのＫｍ値は０．０５μＭ〜５９μＭの範囲内である。女性では、エストロン３硫酸の血漿中レベルは１〜１０ｎＭの範囲で変動するため（Ｈｏｒｍｏｎｅ  Ｒｅｓ  ２７：６１−６８，１９８７）、これらの又はその他のトランスポーターは、ホルモン依存性増殖の第一歩としての、エストロン３硫酸の癌細胞への取り込みにおいて、ある役割を果たしていると思われる。
最近、Ｐｉｚｚａｇａｌｌｉ  ｅｔ  ａｌ．が、ヒトの乳腺におけるステロイドサルフェートトランスポーターであるＯＡＴＰ−Ｂの発現を示唆している（Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８８：３９０２−３９１２，２００３）。しかし、エストロゲン依存性ＭＣＦ−７細胞及びＴ−４７Ｄ細胞中でＯＡＴＰ−Ｂ  ｍＲＮＡが検出されなかったのに対し、ＯＡＴＰ−Ｄ及びＯＡＴＰ−Ｅ  ｍＲＮＡはこれらの細胞中で発見されている（Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８８：３９０２−３９１２，２００３）。ＯＡＴＰ−Ｄ及びＯＡＴＰ−Ｅは、その遺伝子をＨＥＫ２９３細胞中で一過性に発現させた場合にエストロン３硫酸に対する輸送活性を示すため（Ｔａｍａｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２７３：２５１−２６０，２０００）、癌細胞におけるエストロン３硫酸の輸送に関与していると思われる。しかし、エストロゲン依存性細胞においてトランスポーターが媒介するエストロン３硫酸の取り込みは、これまで調べられていなかった。乳癌細胞の増殖機序を充分に理解するためには、該細胞へのエストロゲンの供給機序を解明しなくてはならない。
乳癌細胞におけるエストロゲンとその受容体との結合によるシグナル伝達をアップストリームにブロックする乳癌細胞の増殖阻害については、図１に示されるように、以下の方法（ブロック１〜４）が知られている。
ブロック１（アンドロゲンからのエストロゲンの合成阻害）
ファドロゾール：閉経後、エストロゲン合成の律速酵素として働くアロマターゼを選択的に阻害して、アンドロゲンからエストロゲンへの変換を妨げることにより、生体内のエストロゲン濃度を低下させ、乳ガンの増殖を抑制する。
ブロック２（エストロゲンレセプターでの競合阻害）
タモキシフェン、トレミフェン：乳ガン組織などのエストロゲン受容体に対し、エストロゲンと競合的に阻害し、抗エストロゲン作用を示すことによって抗乳ガン作用を発揮する。
ブロック３（エストロン硫酸からのエストロゲン合成阻害）
抱合型エストロゲンは細胞内でエストロゲンサルファターゼによって活性型となり、ガン細胞増殖を促進する。この脱抱合酵素を阻害する。
ブロック４（膜タンパクに対する抗体を利用した細胞障害作用）
ハーセプチン：乳ガン細胞にはＨＥＲ２タンパクが高発現するものがある。このＨＥＲ２と抗体の結合を利用し、抗体依存性細胞障害作用による抗腫瘍効果を発揮する。
乳癌細胞の増殖阻害における、上記ブロック１〜４の方法では、アロマターゼ阻害剤やエストロゲンサルファターゼ阻害剤、あるいは、タモキシフェンやトレミフェン等のエストロゲン競合阻害剤が乳癌細胞内に取り込まれないと抗腫瘍効果が発揮されないことからドラッグデリバリーの面で、また、細胞内に取り込まれると副作用の面で、それぞれ問題がないとはいえない。本発明の課題は、細胞内に取り込まれる必要がなく、ドラッグデリバリー性に優れ、副作用がきわめて少ない乳癌治療剤のスクリーニング方法を提供することにある。
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究し、乳癌細胞の増殖阻害の方法として、以下のブロック５（図１参照）について検討した。
ブロック５（トランスポーター活性の阻害）
エストロゲン感受性の乳ガン細胞に対し、エストロゲンの供給源であるエストロン３硫酸の細胞内取込みを阻害することで抗腫瘍効果が現れる。
そして、ヒト乳癌培養細胞ＭＣＦ−７細胞株をエストロン３硫酸と、被検物質としてのブロモスルフォフタレイン（Ｂｒｏｍｏｓｕｌｆｏｐｈｔａｌｅｉｎ；ＢＳＰ）の存在下に培養した時、細胞表面に発現するエストロン３硫酸トランスポーターを介してのエストロン３硫酸の細胞内への取込みが阻害され、ＭＣＦ−７細胞株の増殖が抑制されることを見い出し、本発明を完成するに至った。
【発明の開示】
すなわち本発明は、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞を培養し、エストロン３硫酸の培養細胞内への取り込みを被検物質存在下において測定し、被検物質による細胞内へのエストロン３硫酸の取り込み活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項１）や、細胞内のエストロン３硫酸濃度を測定・評価することにより、トランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする請求項１記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項２）や、細胞増殖の程度を測定・評価することにより、トランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする請求項１記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項３）や、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から単離した細胞膜画分に、エストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質によるエストロン３硫酸の細胞膜画分への特異的結合の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項４）や、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から細胞膜画分を単離し、該細胞膜画分から小胞を作製して単離細胞膜小胞とし、該単離細胞膜小胞にエストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質による小胞内へのエストロン３硫酸の取込み量もしくは取込み量の阻害の程度を測定・評価することを特徴とする乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項５）や、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞が、ヒト乳癌培養細胞株であることを特徴とする請求項１〜５のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項６）や、ヒト乳癌培養細胞株が、ＭＣＦ−７細胞株，Ｔ−４７Ｄ細胞株又はこれら細胞株由来の細胞株であることを特徴とする請求項６記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項７）や、被検物質として、有機アニオントランスポーターの阻害剤であり、かつ、嵩高いアニオン性化合物を用いることを特徴とする請求項１〜７のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項８）や、有機アニオントランスポーターの阻害剤であり、かつ、嵩高いアニオン性化合物が、ブロモスルフォフタレイン，デヒドロエピアンドロステロンサルフェート，ベンズブロマロン，ＤＩＤＳ，プロベネシド，スルフィンピラゾン，ビリルビン，スタチン系ＨＭＧＣｏＡ還元酵素阻害剤，キニジン，キニーネ，ジゴキシン，胆汁酸類，甲状腺ホルモン（Ｔ３，Ｔ４），合成オリゴペプチド類であることを特徴とする請求項８記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項９）や、被検物質として、エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体を用いることを特徴とする請求項１〜７のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項１０）や、エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体が、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰに対する特異抗体であることを特徴とする請求項１０記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項１１）や、エストロン３硫酸トランスポーターが、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰから選ばれることを特徴とする請求項１〜１１のいずれか記載の乳癌治療剤のスクリーニング方法（請求項１２）や、請求項１〜１２のいずれか記載のスクリーニング方法により得られる乳癌治療剤（請求項１３）に関する。
【図面の簡単な説明】  第１図は、乳癌の分子ターゲットを示す模式図の写真である。
第２図は、ＢＳＰによるエストロン３硫酸の乳癌細胞への取込み阻害を示す写真である。
第３図は、エストロゲンによるＴ−４７Ｄ乳癌細胞増殖刺激の経時変化（ａ）及び濃度依存性（ｂ）を示す図である。
（ａ）Ｔ−４７Ｄ細胞を密度８，０００個／ウェルで播種し、培養した。播種の２４時間後（第１日）、エストラジオール（１ｐＭ、▲）、エストロン３硫酸（１００ｎＭ、●）、ＤＭＳＯ（０．１％、△）又は水（○）を添加した。所定日数経過後、Ｔ−４７Ｄ細胞をトリプシン処理し、計数した。
（ｂ）濃度範囲がそれぞれ１０−１６〜１０−１１Ｍ、又は１０−１１〜１０−６Ｍの各種濃度のエストラジオール（▲）又はエストロン３硫酸（●）の存在下で、Ｔ−４７Ｄ細胞を増殖させた。播種６日後に細胞数を数えた。各値は平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す（ｎ＝３）。
第４図は、Ｔ−４７Ｄ細胞による［３Ｈ］エストロン３硫酸取り込みの経時変化を示す図である。
培養したＴ−４７Ｄ細胞を、［３Ｈ］エストロン３硫酸（７．１ｎＭ）を含み、さらに１ｍＭの非標識エストロン３硫酸を含む培地（○）又は含まない培地（●）で、３７℃で３５分間インキュベーションした。各値は平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す（ｎ＝４）。エラーバーが表示されていない場合、それらが記号よりも小さいことを示す。
第５図は、Ｔ−４７Ｄ細胞による［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みに対する細胞外カチオンの作用を示す図である。
細胞外Ｎａ＋の存在下又は不在下で、［３Ｈ］エストロン３硫酸（７．１ｎＭ）の取り込み速度を１０分間にわたって測定した。細胞外Ｎａ＋を、Ｋ＋、Ｌｉ＋、又はＮ−メチルグルカミン＋（ＮＭＧ＋）と置換した。各値は平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す（ｎ＝４）。
第６図は、Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸取り込みの濃度依存性を示す図である。
５．１ｎＭから５０μＭまで、各種濃度のエストロン３硫酸の取り込みを、３７℃で１０分間測定した。過剰な非標識エストロン３硫酸（１ｍＭ）の存在下での取り込みを差し引いた後、飽和性取り込みを得て、非線形最少二乗分析による速度定数の評価に使用した。挿入図は、エストロン３硫酸の飽和性取り込みのＥａｄｉｅ−Ｈｏｆｓｔｅｅプロットを示す。各値は平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す（ｎ＝４）。エラーバーが表示されていない場合、それらが記号よりも小さいことを示す。
第７図は、Ｔ−４７Ｄ細胞によるＤＨＥＡＳ取り込みの濃度依存性を示す図である。
１０．３ｎＭから１００μＭまで、各種濃度のＤＨＥＡＳの取り込みを、３７℃で１０分間測定した。過剰な非標識ＤＨＥＡＳ（５ｍＭ）の存在下での取り込みを差し引いた後、飽和性取り込みを得て、非線形最少二乗分析による速度定数の評価に使用した。挿入図は、ＤＨＥＡＳの飽和性取り込みのＥａｄｉｅ−Ｈｏｆｓｔｅｅプロットを示す。各値は平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す（ｎ＝４）。エラーバーが表示されていない場合、それらが記号よりも小さいことを示す。
第８図は、Ｔ−４７Ｄ細胞におけるＯＡＴＰ及びＯＡＴトランスポーターの発現を示すの写真である。
Ｔ−４７Ｄ細胞から得たｍＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲ分析を行った。材料と手法に記載のとおりに反応を行った。矢印は、ＯＡＴＰ−Ｄ及びＯＡＴＰ−Ｅの特異的なバンドを示す。
【発明を実施するための最良の形態】  本発明の乳癌治療剤のスクリーニング方法としては、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞を培養し、エストロン３硫酸の培養した細胞内への取り込みを被検物質存在下において測定し、被検物質による細胞内へのエストロン３硫酸のトランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価する方法や、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から単離した細胞膜画分に、エストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質によるエストロン３硫酸の細胞膜画分への特異的結合の阻害の程度を測定・評価する方法や、エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から細胞膜画分を単離し、該細胞膜画分から小胞を作製して単離細胞膜小胞とし、該単離細胞膜小胞にエストロン３硫酸と被検物質とを接触させ、被検物質による小胞内へのエストロン３硫酸の取込み量もしくは取込み量の阻害の程度を測定・評価する方法であれば特に制限されるものではなく、上記エストロン３硫酸と被検物質との共存下の細胞の培養は、使用細胞の増殖用培地を用い、通常の細胞培養条件下、（被検物質非存在下の場合に）少なくとも細胞増殖が有意に認められるまで行うことが望ましく、上記エストロン３硫酸と被検物質との細胞膜画分との接触や、上記エストロン３硫酸と被検物質との単離細胞膜小胞との接触は、使用細胞の増殖用培地や適当な緩衝液中でインキュベーションすることにより行うことができる。
上記被検物質による細胞内へのエストロン３硫酸のトランスポーター活性の阻害の程度を測定・評価する方法としては、細胞内のエストロン３硫酸濃度を測定・評価する方法や、細胞増殖の程度を測定・評価する方法を挙げることができる。後述するＭＣＦ−７細胞株，ＫＰＬ−１，ＭＫＬ−Ｆ又はそれら細胞株由来の細胞株等のヒト乳癌培養細胞株を用いる場合は、細胞内の被検物質濃度を測定・評価する方法と、細胞増殖の程度を測定・評価する方法とを利用することができるが、エストロン３硫酸トランスポーターを発現する形質転換細胞を用いる場合は、細胞内の被検物質濃度を測定・評価する方法を利用することができる。また、エストロン３硫酸トランスポーター遺伝子をアフリカツメガエル卵母細胞等に発現させ、２本の微小電極を用いて、トランスポーターを介した基質輸送に伴って生じる膜電位の変化を検出（電流を測定）する電気生理学的方法により測定・評価することもできる。
エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞から細胞膜画分を単離する方法としては、Ｆ．Ｐｉｅｔｒｉ−Ｒｏｕｘｅｌら（Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２４７，１１７４−１１７９，１９９７）の方法など、従来公知の方法を用いることができ、また、細胞膜画分から小胞を作製して単離細胞膜小胞とする方法としては、Ｊ．Ｅ．Ｌｅｖｅｒら（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２５２，１９９０−１９９７（１９７７））の方法など、従来公知の方法を用いることができる。そしてまた、被検物質によるエストロン３硫酸の細胞膜画分への特異的結合の阻害の程度を測定する方法としては、放射性標識エストロン３硫酸を用いた定常状態結合阻害から平衡解離定数ＫＤを測定する方法を例示することができ、被検物質による単離細胞膜小胞内へのエストロン３硫酸の取込み量もしくは取込み量の阻害の程度を測定する方法としては、Ｉ．Ｔａｍａｉら（Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１５１２，２７３−２８４（２００１））記載の方法など、従来公知の手法を細胞内エストロン３硫酸の測定方法として用いることができる。
上記エストロン３硫酸トランスポーターとしては、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰを候補トランスポーターとして好適に挙げることができる。
上記エストロン３硫酸トランスポーターを細胞表面に発現する細胞としては、ＭＣＦ−７細胞株，Ｔ−４７Ｄ細胞株，ＫＰＬ−１，ＭＫＬ−Ｆ又はそれら細胞株由来の細胞株等のヒト乳癌培養細胞株を好適に用いることができる。これらヒト乳癌培養細胞株の他、エストロン３硫酸トランスポーターを発現する形質転換細胞も使用することができる。かかる形質転換細胞の作製に使用される前記ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰをコードする遺伝子の由来としては特に制限されるものではなく、例えばヒト，イヌ，ウシ，ウマ，ヤギ，ヒツジ，サル，ブタ，ウサギ，ラット，マウス等を挙げることができるが、ヒト由来が好ましい。
上記のようなトランスポーターををコードする遺伝子やｃＤＮＡを細胞に発現させる方法としては特に限定されないが、Ｄａｖｉｓら（ＢＡＳＩＣ  ＭＥＴＨＯＤＳ  ＩＮ  ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＢＩＯＬＯＧＹ，１９８６）及びＳａｍｂｒｏｏｋら（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ  ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ  ＭＡＮＵＡＬ，２ｎｄ  Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，１９８９）などの多くの標準的な実験室マニュアルに記載される方法、例えば、リン酸カルシウムトランスフェクション，ＤＥＡＥ−デキストラン媒介トランスフェクション，トランスベクション（ｔｒａｎｓｖｅｃｔｉｏｎ）マイクロインジェクション，カチオン性脂質媒介トランスフェクション，エレクトロポレーション，形質導入，スクレープローディング（ｓｃｒａｐｅｌｏａｄｉｎｇ），弾丸導入（ｂａｌｌｉｓｔｉｃ  ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ），感染等の遺伝子導入法により、トランスポーター遺伝子を宿主細胞へ導入することにより発現させることができるが、トランスポーター遺伝子を含む発現ベクターを上記宿主細胞に導入することが好ましく、中でもトランスポーター遺伝子を含む発現ベクターを宿主細胞に感染させることにより、トランスポーターを細胞に発現させることがより好ましい。
上記発現ベクターとしては、例えば、非分裂細胞を含む全ての細胞（血球系以外）での一過性発現に用いられるアデノウイルスベクター（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５２，４３１−４３４，１９９１）や、分裂細胞での長期発現に用いられるレトロウイルスベクター（Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１５８，１−２３，１９９２）や、非病原性，非分裂細胞にも導入可能で、長期発現に用いられるアデノ随伴ウイルスベクター（Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５８，９７−１２９，１９９２）、ＳＶ４０のようなパポバウイルスベクター，ワクシニアウイルスベクター等のウイルスベクターの他、リポソーム等を具体的に挙げることができるが、これらに限定されるものではない。これらの中でも、高い効率で細胞における遺伝子発現が可能なアデノウイルスベクターが特に好ましい。また、これらの発現ベクターへのトランスポーター遺伝子の導入は常法によって行うことができ、例えばこれら発現ベクター中の適当なプロモーターの下流にトランスポーター遺伝子等を挿入することにより発現ベクターを構築することができる。また、発現ベクターはトランスポーター遺伝子及びマーカー遺伝子に加え、トランスポーターの細胞当たりの発現量を規格化するためのＩＲＥＳ（ｍＲＮＡ内部のリボソーム結合サイト）の他、エンハンサー，ターミネーター等発現を調節する制御配列を含んでいてもよい。
トランスポーターを発現する宿主細胞としては、ドロソフィラＳ２，スポドプテラＳｆ９等の昆虫細胞，Ｖｅｒｏ細胞，ＨｅＬａ細胞，ＣＨＯ細胞，ＷＩ−３８細胞，ＢＨＫ細胞，ＣＯＳ−７細胞，ＭＤＣＫ細胞，Ｃ１２７細胞，ＨＫＧ細胞，ヒト腎細胞株，ＣＶ−１細胞，ＬＬＣ−ＭＫ２細胞，ＭＤＢＫ細胞，ＭＲＣ−５細胞，ＣａＣｏ−２細胞，ＨＴ２９細胞，ヒトリンパ芽球細胞，アフリカツメガエル等の卵母細胞や、これらのｄｈｆｒ欠損株，ＨＧＰＲＴ欠損株，ウアバイン耐性株等を挙げることができる。具体的には、ＣＨＯ−Ｋ１（チャイニーズハムスター卵巣細胞：ＡＴＣＣ  ＣＣＬ６１），ＢＨＫ（ハムスター腎細胞：ＡＴＣＣ  ＣＣＬ１０），ＣＯＳ−７（ＣＶ−１  Ｏｒｉｇｉｎ，ＳＶ−４０細胞：ＡＴＣＣ  ＣＲＬ１６５１），Ｖｅｒｏ細胞（アフリカミドリザル腎細胞：ＡＴＣＣ  ＣＣＬ８１），ヒトリンパ芽球細胞（ＩＭ−９，ＡＴＣＣ  ＣＣＬ１５９）を例示することができる。
上記被検物質として、有機アニオントランスポーターの阻害剤であり、かつ、嵩高いアニオン性化合物を乳癌治療剤の候補化合物として好適に例示することができる。より具体的には、ブロモスルフォフタレイン，デヒドロエピアンドロステロンサルフェート（ＤＨＥＡＳ），デヒドロエピアンドロステロン，エストラジオール，タウロコール酸，ベンズブロマロン（Ｂｅｎｚｂｒｏｍａｒｏｎｅ），ＤＩＤＳ，プロベネシド（Ｐｒｏｂｅｎｅｃｉｄ），スルフィンピラゾン（Ｓｕｌｆｉｎｐｙｒａｚｏｎｅ），ビリルビン（Ｂｉｌｉｒｕｂｉｎ），スタチン（ｓｔａｔｉｎ）系ＨＭＧＣｏＡ（３−Ｈｙｄｒｏｘｙ−３−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｔａｒｙｌ  ｃｏｅｎｚｙｍｅ  Ａ）還元酵素阻害剤（例えば、プラバスタチンナトリウム，シンバスタチン，フルバスタチンなど），キニジン（Ｑｕｉｎｉｄｉｎｅ），キニーネ（Ｑｕｉｎｉｎｅ），ジゴキシン（Ｄｉｇｏｘｉｎ），胆汁酸類（例えば、Ｔａｕｒｏｃｈｏｌａｔｅ，ｃｈｏｌａｔｅなど），甲状腺ホルモン（Ｔ３，Ｔ４など），合成オリゴペプチド類等を挙げることができる。
また、トランスポーターは細胞膜表面に発現する膜タンパク質であるため、エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体は細胞外から選択的に標的を阻害する可能性があり、このことから上記被検物質として、エストロン３硫酸トランスポーターに対する中和抗体を乳癌治療剤の候補物質として好適に例示することができる。より具体的には、ＳＬＣトランスポーター，ＯＡＴ１，ＯＡＴ２，ＯＡＴ３，ＯＡＴ４，ＯＡＴＰ−Ａ，ＯＡＴＰ−Ｂ，ＯＡＴＰ−Ｃ，ＯＡＴＰ−Ｄ，ＯＡＴＰ−Ｅ，ＯＡＴＰ−Ｆ，ＯＡＴＰ−８，ＮＴＣＰ，ＭＲＰｓ，ＢＣＲＰを特異的に認識する抗体を例示することができ、かかる特異的に認識する抗体としては、モノクローナル抗体，ポリクローナル抗体，一本鎖抗体，ヒト化抗体，キメラ抗体，２つのエピトープを同時に認識することができる二機能性抗体等を例示することができる。これら抗体は、慣用のプロトコールを用いて、動物（好ましくはヒト以外）にエストロン３硫酸トランスポーターを膜表面に発現している細胞やその細胞膜画分を投与することにより産生され、例えばモノクローナル抗体の調製には、連続細胞系の培養物により産生される抗体をもたらす、ハイブリドーマ法（Ｎａｔｕｒｅ  ２５６，４９５−４９７，１９７５），トリオーマ法，ヒトＢ細胞ハイブリドーマ法（Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ  Ｔｏｄａｙ  ４，７２，１９８３）及びＥＢＶ−ハイブリドーマ法（ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ  ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ  ＡＮＤ  ＣＡＮＣＥＲ  ＴＨＥＲＡＰＹ，ｐｐ．７７−９６，Ａｌａｎ  Ｒ．Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．，１９８５）など任意の方法を用いることができる。
また、一本鎖抗体をつくるために、一本鎖抗体の調製法（米国特許第４，９４６，７７８号、米国特許第５，２６０，２０３号、米国特許第５，０９１，５１３号、米国特許第５，４５５，０３０号）を用いることができ、ヒト化抗体をつくるために、ヒト化抗体の調製法（米国特許第５，５８５，０８９号、Ｎａｔｕｒｅ，３２１，５２２−５２５，１９８６、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，４，７７３−７８３，１９９１）を用いることができ、キメラ抗体をつくるために、キメラ抗体の調製法（米国特許第４，８１６，５６７号、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２９，１２０２−１２０７，１９８５、Ｂｉｏ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，４，２１４，１９８６、Ｎａｔｕｒｅ，３１２，６４３−６４６，１９８４、Ｎａｔｕｒｅ，３１４，２６８．２７０，１９８５）を用いることができる。二機能性抗体は、２つの関連した抗体を産生する２つのモノクローナル細胞系同士のハイブリッド、または２つの抗体の断片の化学結合によって産生することができ、例えば、エストロン３硫酸トランスポーターと被験ペプチドとに同時に結合しうる二機能性抗体を挙げることができる。
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
【実施例１】  ＭＣＦ−７細胞（ＡＴＣＣ−ＨＴＢ２２）のエストロン３硫酸による細胞増殖促進効果の抑制が、エストロン３硫酸の細胞内蓄積を抑えることで達成されるか否かを検討した。ＭＣＦ−７細胞を８×１０４個／ｃｍ２の濃度で９６ウェル  プレートに播種し１日培養した後、１０ｐＭ〜１０μＭの各種濃度のエストロン３硫酸（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）と１００μＭのブロモスルフォフタレイン（ＢＳＰ：Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）、及び、１ｐＭ〜１０ｎＭの各種濃度のエストラジオール（ｅｓｔｒａｄｉｏｌ：Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）と１００μＭのＢＳＰを含む培地をそれぞれ添加し、さらに３日間培養した。その後、細胞量を測定した。エストロン３硫酸及びエストラジオールによる細胞増殖促進効果の結果を図２に示す。
図２から明らかなように、ポジティブコントロールであるエストロン３硫酸単独存在下及びエストラジオール単独存在下においては、細胞増殖促進効果が観察された（ｏｐｅｎ  ｃｏｌｕｍｎ）。一方、エストロン３硫酸又はエストラジオールに、１００μＭのＢＳＰを同時添加することによって共存下に培養すると、エストロン３硫酸低濃度条件において細胞増殖促進効果が見られるが、これは、ＢＳＰ自身あるいはその代謝物によるエストロゲン活性であると考えられる。この効果はエストロゲン濃度が増加するに従い、相対的に低くなった。興味深いことに、エストロン３硫酸１０μＭ添加時、ＢＳＰによる細胞増殖効果は阻害されたのに対し、エストラジオール添加による効果には変化しなかった。したがって、エストロン３硫酸の細胞内取込みはＢＳＰにより阻害され、脂溶性の高いエストラジオールは阻害されないため、細胞増殖効果にも変化がなかったと考えられた。以上のことから、細胞増殖におけるエストロン３硫酸の取り込みトランスポーターの重要性が示唆され、そのトランスポーターを阻害することによる細胞増殖抑制の可能性が示された。
【実施例２】１．材料と方法
（材料）
［３Ｈ］エストロン３硫酸、アンモニア塩（１７０２．０ＧＢｑ／ｍｍｏｌ）及び［３Ｈ］デヒドロエピアンドロステロンサルフェート（ＤＨＥＡＳ、２９２６．７ＧＢｑ／ｍｍｏｌ）を、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ，Ｉｎｃ．社より購入した。金沢大学がん研究所の佐々木琢磨教授より、Ｔ−４７Ｄ細胞の供与を受けた。ウシ胎仔血清（ＦＣＳ）は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  Ｃｏｒｐ．社より入手した。その他の試薬はすべてＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社及びＷａｋｏ  Ｐｕｒｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社より購入した。
（Ｔ−４７Ｄ細胞増殖アッセイ）
フェノールレッド及び１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）にＴ−４７Ｄ細胞を入れ、加湿したインキュベーター内で、３７℃、５％ＣＯ２にて通常どおり増殖させた。増殖アッセイのため、ＦＣＳを０．５％のデキストラン炭（ＤＣＣ）とともに４℃で一晩インキュベーションし、その後培地を取り出してＤＣＣを濾過し（０．２μｍ）、ステロイドホルモンを除去した。この処理を３回繰り返した。その後、２．５％のＤＣＣ処理ＦＣＳを含むフェノールレッド非含有ＲＰＭＩ１６４０培地を入れた９６ウェルプレートに、８，０００個／ウェルの密度でＴ−４７Ｄ細胞を播種した。播種の１日後、水中又はジメチルスルフォキシド（ＤＭＳＯ、０．１％）中で、原液からの段階的濃度にてエストラジオール又はエストロン３硫酸を添加した。ネガティブコントロールは、溶媒のみであった。播種後、所定の日数で、該細胞をトリプシン処理し、細胞数を数えた。
（エストロン３硫酸の取り込み活性の阻害）
文献（Ｔａｍａｉ  ｅｔ  ａｌ．，２００１）記載のとおり、輸送実験を行った。１５ｃｍのディッシュでＴ−４７Ｄ細胞を培養した後、該細胞を採取し、１２５ｍＭのＮａＣｌ、４．８ｍＭのＫＣｌ、５．６ｍＭのＤ−グルコース、１．２ｍＭのＣａＣｌ２、１．２ｍＭのＫＨ２ＰＯ４、１．２ｍＭのＭｇＳＯ４及び２５ｍＭのＨｅｐｅｓを含み、ｐＨ７．４に調整された輸送培地に懸濁した。輸送培地中の細胞懸濁液及び放射標識を施した被験化合物を含む溶液を、２０分間３７℃で個別にインキュベーションして、それらを混合することにより輸送を開始させた。適時、混合液を１５０μＬずつ取り除き、シリコーンオイル（ＳＨ５５０、Ｔｏｒａｙ  Ｄｏｗ  Ｃｏｒｎｉｎｇ  Ｃｏ．社製）混合液の層、及び密度１．０３の流動パラフィン（Ｗａｋｏ  Ｐｕｒｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社製）を通しての遠心濾過によって、輸送培地から細胞を分離した。各細胞ペレットを３ＮのＫＯＨ中で可溶化し、ＨＣｌで中和した。その後、液体シンチレーション流体としてクリアゾル−１（Ｎａｃａｌａｉ  ｔｅｓｑｕｅ社製）を用いた液体シンチレーションカウンターで、関連する放射能を測定した。
（逆転写ＰＣＲ法）
Ｔ−４７Ｄ細胞におけるＯＡＴＰ及びＯＡＴトランスポーターの発現をＲＴ−ＰＣＲ法で調べた。オリゴ（ｄＴ）プライマー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  Ｃｏｒｐ．社製）を用いて、一本鎖ｃＤＮＡを構築した。下記の特異的プライマーを使用した。
ＯＡＴＰ−Ａ：
2004113558.tif 000002
ＯＡＴＰ−Ｂ：
2004113558.tif 000003
ＯＡＴＰ−Ｃ：
2004113558.tif 000004
ＯＡＴＰ−Ｄ：
2004113558.tif 000005
ＯＡＴＰ−Ｅ：
2004113558.tif 000006
ＯＡＴＰ−Ｆ：
2004113558.tif 000007
ＯＡＴＰ８：
2004113558.tif 000008
ＯＡＴ１：
2004113558.tif 000009
2004113558.tif 000010
ＯＡＴ２：
2004113558.tif 000011
ＯＡＴ３：
2004113558.tif 000012
ＯＡＴ４：
2004113558.tif 000013
デオキシヌクレオチド及びタグポリメラーゼ（Ｔａｋａｒａ  Ｂｉｏ  Ｉｎｃ．社製）の存在下で、９４℃で３０秒、５８℃（ＯＡＴＰ）又は５６℃（ＯＡＴ）で３０秒、７２℃で３０秒、最終的な伸長が７２℃で１０分間というサイクルを３５回繰返して、反応を行った。１％アガロースゲル（ｗ／ｖ）電気泳動でＰＣＲ産物を分析し、かかるゲルを臭化エチジウムで染色して、バンドを視覚化した。
（分析方法）
標準物質としてのウシ血清アルブミン（Ｂｒａｄｆｏｒｄ，１９７６）とＢｉｏＲａｄタンパク質アッセイキット（Ｈｅｒｃｕｌｅｓ社製）を使用し、Ｂｒａｄｆｏｒｄの方法にしたがって、細胞タンパク質含有量を測定した。飽和性輸送の動態学的パラメータを見積もるために、ＫａｌｅｉｄａＧｒａｐｈＴＭ（Ｓｙｎｅｒｇｙ社製）を用いた非線形最少二乗回帰分析によって下記の方程式に取り込み速度（ｖ）を適用した。
ｖ＝Ｖｍａｘ＊ｓ／（Ｋｍ＋ｓ）
ここで、ｖ及びｓはそれぞれ取り込み速度と基質濃度であり、ＫｍとＶｍａｘはそれぞれ半飽和濃度（ミカエリス定数）と最大輸送速度を示す。データはすべて平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．で表した。有意さの基準としてＰ＜０．０５を用いたＳｔｕｄｅｎｔ’ｓ  ｔ  ｔｅｓｔにより統計学的分析を行った。細胞取り込み量を取り込み培地中の被験化合物の濃度で割ることにより、細胞対培地比を得た。
２．結果
（Ｔ−４７Ｄ細胞の増殖に対するエストラジオール及びエストロン３硫酸の作用）
Ｔ−４７Ｄ細胞の増殖に対するエストロン３硫酸の作用を解明するため、かかる細胞をエストラジオール及びエストロン３硫酸で処理した。エストロゲン依存性ＭＣＦ−７細胞を用いた従来の研究（Ｂｉｌｌｉｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）と一致して、Ｔ−４７Ｄ細胞の増殖は、溶媒だけで処理した細胞と比較して、１ｐＭのエストラジオールと１００ｎＭのエストロン３硫酸の両方によって刺激されていた（図３Ａ）。播種から６日後に評価したところ、エストロゲン依存性の刺激は、濃度依存的に増大していた（図３Ｂ）。非線形回帰分析により、エストラジオール及びエストロン３硫酸の５０％有効濃度（ＥＣ５０）値を、それぞれ約２２．５ｆＭ及び１７．１ｎＭと評価した。
（Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸の取り込み）
図４は、非標識１ｍＭエストロン３硫酸の存在下又は不在下でのＴ−４７Ｄ細胞による［３Ｈ］エストロン３硫酸（７．１ｎＭ）取り込みの経時変化を示す。［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みは、２０分にわたって直線的に増大した。非標識１ｍＭエストロン３硫酸の存在下では、［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込み量の有意な増大は、３５分間観察されなかった（図４）。これは、単なる拡散によってエストロン３硫酸がＴ−４７Ｄ細胞に取り込まれることは、ほとんどないことを示唆している。したがって、以下の実験では、Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸の取り込みを１０分にわたって動態学的に分析した。さらに、細胞膜への吸着及び単なる拡散による取り込みを考慮に入れるため、非標識エストロン３硫酸の存在下での取り込み（非飽和性取り込み）を差し引いた後の外見上の取り込みを分析した。
エストロン３硫酸の輸送機序を特徴づけるため、Ｎａ＋を各種カチオンに置換して調べてみた（図５）。Ｎａ＋を、Ｋ＋、Ｌｉ＋、又はＮ−メチルグルカミン＋と置換した場合、［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みは、Ｎａ＋存在下の場合と同等であった。これは、Ｎａ＋非依存性輸送機序を示唆するものである。
Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸取り込みの動態学的パラメータを得るため、エストロン３硫酸取り込みの濃度依存性を調べた。図６に示すように、１ｍＭのエストロン３硫酸の存在下での値を差し引いた後のエストロン３硫酸の取り込みは、飽和性であった。Ｅａｄｉｅ−Ｈｏｆｓｔｅｅプロット分析では単一の直線が得られており、これは、単一の飽和性機序が動態学的に関与していることを示唆している。非線形回帰分析では、Ｋｍ及びＶｍａｘの値（平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．）はそれぞれ３．９±０．７８μＭ及び５７６．３±３２．９ｐｍｏｌ／ｍｇタンパク質／１０ｍｉｎであった。
（エストロン３硫酸の取り込み活性の阻害）
輸送システムの基質特異性を特徴づけるため、Ｔ−４７Ｄ細胞による［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みに対する、ホルモン、その抱合代謝産物、及び各種有機化合物の阻害作用を調べた。結果を（表１）に示す。表１中、対照（％）は、対照におけるエストロン３硫酸の取り込み量を１００％としたときの割合で示され、各値は平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．（ｎ＝４）で表されれ、＊Ｐ＜０．０５は対照との比較（Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｔｅｓｔ）。
2004113558.tif 000014
その結果、非標識エストロン３硫酸それ自体が、最も強い阻害作用を示した（５μＭ及び５０μＭのコントロールに対し、それぞれ３４．７％と６．６％）。ＤＨＥＡＳの阻害作用は有意であった（５０μＭのコントロールに対し、４４．８％）が、エストロン３硫酸の阻害作用よりも弱かった。グルクロニド抱合体であるエストラジオール−１７β−グルクロニドは、５０μＭでは全く作用を示さなかった。非抱合ステロイドホルモンは、そのすべてが有意に［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みを阻害した。しかし、それらの親和性は、硫酸抱合体、エストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳの親和性よりも低かった。調べてみたその他の有機化合物のうち、ブロモスルフォフタレイン及びタウロコール酸は、１００μＭで阻害作用を示した（それぞれコントロールの１８．９％と６９．３％）。その他の有機化合物、サリチル酸、ｐ−アミノ馬尿酸、テトラエチルアンモニウム、サイクロスポリンＡ、及びジゴキシンは、全く作用を示さなかった。一方、プロベネシド及びベンジルペニシリンはわずかな阻害作用を示した。
閉経後の女性においては、アンドロゲン及びその硫酸抱合体は、活性エストロゲンの供給源として、乳癌の進行に重要な役割を果たしている。ＤＨＥＡＳは、多くの閉経後患者で高濃度（約１μＭ）で存在することから、主要な前駆物質である（Ｗｏｒｇｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９８２）。そのため、ＤＨＥＡＳが特異的輸送機序を介して輸送されるかどうかを調べてみた。ＤＨＥＡＳの取り込みは、３０分にわたって直線的に増大し、５ｍＭの非標識ＤＨＥＡＳの存在下で有意に減少した（データは図示せず）。５ｍＭの非標識ＤＨＥＡＳの存在下での取り込み（非特異的取り込み）を差し引いた後のＤＨＥＡＳの取り込みは、飽和性であった（図７）。ＤＨＥＡＳのＥａｄｉｅ−Ｈｏｆｓｔｅｅ分析では、エストロン３硫酸の場合と同様に単一の直線が得られており（図７、挿入図）、Ｋｍ及びＶｍａｘの値を計算したところ、それぞれ６２．５±２１．１μＭ及び１８９３±３１５．７ｐｍｏｌ／ｍｇタンパク質／１０ｍｉｎであった。
Ｔ−４７Ｄ細胞におけるエストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳの取り込みを仲介するトランスポーターを同定するため、エストロン３硫酸を輸送する可能性があるＯＡＴＰ及びＯＡＴトランスポーターの発現を、ＲＴ−ＰＣＲ分析で測定した。特異的プライマーを用いることにより、テストしたＯＡＴＰ及びＯＡＴのうちＯＡＴＰ−Ｄ及びＯＡＴＰ−Ｅの発現がＴ−４７Ｄ細胞中で検出されたが（図８）、ＲＴ反応を含まないＰＣＲではバンドは全く検出されなかった（データは図示せず）。したがって、ＯＡＴＰ−Ｄ及びＯＡＴＰ−Ｅは、エストロゲン依存性乳癌細胞中でエストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳの取り込みを仲介する候補物質であるのかもしれない。
３．考察
エストロン３硫酸は主要な循環エストロゲンであり、エストロゲン依存性乳癌の進行に関与している（Ｐａｓｑｕａｌｉｎｉ  ＪＲ，Ｇｅｌｌｙ  Ｃ，Ｎｇｕｙｅｎ  ＢＬ  ａｎｄ  Ｖｅｌｌａ  Ｃ（１９８９）Ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ  ｏｆ  ｅｓｔｒｏｇｅｎ  ｓｕｌｆａｔｅｓ  ｉｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ．Ｊ  Ｓｔｅｒｏｉｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  ３４：１５５−１６３）。腫瘍細胞内で、ステロイドスルファターゼにより脱硫酸化され、続いて生物活性エストロゲンに変換される。乳癌細胞の細胞質中でステロイドスルファターゼが検出されているため（Ｓａｅｋｉ  Ｔ，Ｔａｋａｓｈｉｍａ  Ｓ，Ｓａｓａｋｉ  Ｈ，Ｈａｎａｉ  Ｎ  ａｎｄ  Ｓａｌｏｍｏｎ  ＤＳ（１９９９）Ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｓｔｒｏｎｅ  ｓｕｌｆａｔａｓｅ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｒｃｉｎｏｍａｓ．Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  ６：３３１−３３７）、エストロン３硫酸は、脱硫酸化の前に細胞膜を通過して細胞内に輸送されたに違いない。エストロン３硫酸の親水性を鑑みると、エストロン３硫酸の内在化は、特異的な輸送機序により仲介されるようである。これに対し、疎水性非抱合ステロイドホルモンは単に細胞内に拡散するにすぎないようである（Ｖｅｒｈｅｕｇｅｎ  Ｃ，Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ  ＷＭ，Ｊｕｄｄ  ＨＬ  ａｎｄ  Ｃｈａｕｄｈｕｒｉ  Ｇ（１９８４）Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ  ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｕｔｅｒｉｎｅ  ａｎｄ  ｌｉｖｅｒ  ｖａｓｃｕｌａｒ  ｂｅｄｓ  ｔｏ  ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ  ａｎｄ  ｅｓｔｒｏｇｅｎ  ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ．Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ５９：１１２８−１１３２．）。そのため、本研究では、エストロゲン依存性増殖を示すモデル細胞と見なされているＴ−４７Ｄ乳癌細胞への、エストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳの取り込みを仲介する特異的な輸送システムの有無を調べてみた。
最初に、細胞増殖のエストロゲン依存性を確認した。エストロン３硫酸、又はエストラジオールでの処理により、Ｔ−４７Ｄ細胞の増殖が増大し、エストロン３硫酸のＥＣ５０の値が１７．１ｎＭとなった。この値は、エストロン３硫酸の生理学的血漿濃度に近い。エストロン３硫酸自体が、エストロゲン受容体での低い直接的生物反応を誘導するため（Ｋｕｉｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）、かかる結果は、細胞膜を通過してエストロン３硫酸が内在化し、続いて細胞中で活性非抱合エストロゲンに変換されることを示唆している。したがって、本研究は、エストロゲン活性を解明する第一歩として、Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロゲンの硫酸抱合体の取り込みに焦点を当てている。
Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸取り込みの経時的変化は、高濃度のエストロン３硫酸（１ｍＭ）の存在下では取り込みが有意に減少することから、取り込みが特異的トランスポーターによって仲介されることを示唆している（図４）。エストロン３硫酸の特異的な取り込みは、Ｎａ＋を、Ｌｉ＋、Ｋ＋、又はＮ−メチルグルカミン＋と置換しても影響を受けない（図５）。ＯＡＴＰ及びＯＡＴファミリーのメンバーは、Ｎａ＋非依存性エストロン３硫酸取り込みトランスポーターの候補物質である。Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸取り込みのＫｍ値を計算したところ、３．９±０．７８μＭであった（図６）。これは、ＯＡＴＰ及びＯＡＴの既知のＫｍ値範囲である０．０５μＭ〜５９μＭと一致する（Ｔａｍａｉ  Ｉ，Ｎｏｚａｗａ  Ｔ，Ｋｏｓｈｉｄａ  Ｍ，Ｎｅｚｕ  Ｊ，Ｓａｉ  Ｙ  ａｎｄ  Ｔｓｕｊｉ  Ａ（２００１）Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｉｎｇ  ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  Ｂ（ＯＡＴＰ−Ｂ）ｉｎ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｗｉｔｈ  ｌｉｖｅｒ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ＯＡＴＰ−Ｃ．Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ  １８：１２６２−１２６９；Ｋｕｓｕｈａｒａ  Ｈ，Ｓｅｋｉｎｅ  Ｔ，Ｕｔｓｕｎｏｍｉｙａ−Ｔａｔｅ  Ｎ，Ｔｓｕｄａ  Ｍ，Ｋｏｊｉｍａ  Ｒ，Ｃｈａ  ＳＨ，Ｓｕｇｉｙａｍａ，Ｙ，Ｋａｎａｉ  Ｙ，ａｎｄ  Ｅｎｄｏｕ  Ｈ（１９９９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｎｅｗ  ｍｕｌｔｉｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ｆｒｏｍ  ｒａｔ  ｂｒａｉｎ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７４：１３６７５−１３６８０；Ｃｈａ  ＳＨ，Ｓｅｋｉｎｅ  Ｔ，Ｋｕｓｕｈａｒａ  Ｈ，Ｙｕ  Ｅ，Ｋｉｍ  ＪＹ，Ｋｉｍ  ＤＫ，Ｓｕｇｉｙａｍａ  Ｙ，Ｋａｎａｉ  Ｙ  ａｎｄ  Ｅｎｄｏｕ  Ｈ（２０００）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｕｌｔｉｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ４  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｐｌａｃｅｎｔａ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７５：４５０７−４５１２．）。
輸送機序をさらに特徴づけ、関与するトランスポーターを同定するために、Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸の取り込みに対する阻害について研究した。エストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳなどのステロイドホルモンの硫酸抱合体の阻害作用が、非抱合ステロイドホルモンの阻害作用よりも強力であったのに対し、グルクロニド抱合体には阻害作用が全くなかった。したがって、硫酸部分がトランスポーターに対する高親和性を与えているのかもしれず、その一方、グルクロニド部分はほとんど認識されていないのかもしれない。硫酸抱合体は、非抱合ステロイド又はグルクロニド抱合体と比較してイオン化定数（ｐＫａ）値が低いため、これらの結果は、トランスポーターによる基質の認識にはアニオン性部分が不可欠であることを示唆している。ステロイドホルモンの硫酸抱合体の血漿濃度は、非抱合ホルモン又はそれらのグルクロニド抱合体と比較して高いため、かかるトランスポーターは、乳房腫瘍へのエストロゲンの供給に対し、効果的な作用を及ぼしているはずである。さらに、Ｔ−４７Ｄ細胞ではＤＨＥＡＳの取り込みも飽和性であり、Ｋｍ値を計算したところ６２．５±２１．１μＭであり、これはエストロン３硫酸の値（３．９μＭ、図６及び７）よりもかなり高いものである。エストロン３硫酸とＤＨＥＡＳの血漿濃度は、それぞれ約１〜１０ｎＭと１μＭであるため（Ｈｏｎｊｏ  Ｈ，Ｋｉｔａｗａｋｉ  Ｊ，Ｉｔｏｈ  Ｍ，Ｙａｓｕｄａ  Ｊ，Ｉｗａｓａｋｕ  Ｋ，Ｕｒａｂｅ  Ｍ，Ｎａｉｔｏｈ  Ｋ，Ｙａｍａｍｏｔｏ  Ｔ，Ｏｋａｄａ  Ｈ，Ｏｈｋｕｂｏ  Ｔ  ａｎｄ  Ｎａｍｂａｒａ  Ｔ（１９８７）Ｈｏｒｍｏｎｅ  Ｒｅｓ  ２７：６１−６８；Ｗｏｒｇｕｌ  ＴＪ，Ｓａｎｔｅｎ  ＲＪ，Ｓａｍｏｊｌｉｋ  Ｅ  ａｎｄ  Ｗｅｌｌｓ  ＳＡ（１９８２）Ｈｏｗ  ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ  ｉｓ  ｓｕｒｇｉｃａｌ  ａｄｒｅｎａｌｅｃｔｏｍｙ  ｉｎ  ｌｏｗｅｒｉｎｇ  ｓｔｅｒｏｉｄ  ｈｏｒｍｏｎｅ  ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ？  Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ５４：２２−２６）、乳癌細胞は、飽和することなく効果的にそれらを取り込むのかもしれない。
ＯＡＴＰ、ＯＡＴ３及びＯＡＴ４のメンバーには、ステロイドホルモンの硫酸抱合体を輸送できるものがある（Ｈａｇｅｎｂｕｃｈ  Ｂ  ａｎｄ  Ｍｅｉｅｒ  ＰＪ（２００３ａ）Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ  １６０９：１−１８，Ｈａｇｅｎｂｕｃｈ  Ｂ  ａｎｄ  Ｍｅｉｅｒ  ＰＪ（２００３ｂ）Ｐｆｌｕｇｅｒｓ  Ａｒｃｈ  ４４７：６５３−６６５；Ｓａｅｋｉ  Ｔ，Ｔａｋａｓｈｉｍａ  Ｓ，Ｓａｓａｋｉ  Ｈ，Ｈａｎａｉ  Ｎ  ａｎｄ  Ｓａｌｏｍｏｎ  ＤＳ（１９９９）Ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｓｔｒｏｎｅ  ｓｕｌｆａｔａｓｅ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｒｃｉｎｏｍａｓ．Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  ６：３３１−３３７；Ｋｕｓｕｈａｒａ  Ｈ，Ｓｅｋｉｎｅ  Ｔ，Ｕｔｓｕｎｏｍｉｙａ−Ｔａｔｅ  Ｎ，Ｔｓｕｄａ  Ｍ，Ｋｏｊｉｍａ  Ｒ，Ｃｈａ  ＳＨ，Ｓｕｇｉｙａｍａ，Ｙ，Ｋａｎａｉ  Ｙ，ａｎｄ  Ｅｎｄｏｕ  Ｈ（１９９９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｎｅｗ  ｍｕｌｔｉｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ｆｒｏｍ  ｒａｔ  ｂｒａｉｎ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７４：１３６７５−１３６８０）。そのなかでも、ＯＡＴＰ−Ｂ及びＯＡＴ４は、それぞれＫｍ値が９．０４μＭと１．０１μＭの硫酸抱合体を認識することができるが、その一方で、ステロイドホルモンのグルクロニド抱合体に対する親和性は皆無である（Ｔａｍａｉ  Ｉ，Ｎｏｚａｗａ  Ｔ，Ｋｏｓｈｉｄａ  Ｍ，Ｎｅｚｕ  Ｊ，Ｓａｉ  Ｙ  ａｎｄ  Ｔｓｕｊｉ  Ａ（２００１）Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｉｎｇ  ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  Ｂ（ＯＡＴＰ−Ｂ）ｉｎ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｗｉｔｈ  ｌｉｖｅｒ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ＯＡＴＰ−Ｃ．Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ  １８：１２６２−１２６９；Ｃｈａ  ＳＨ，Ｓｅｋｉｎｅ  Ｔ，Ｋｕｓｕｈａｒａ  Ｈ，Ｙｕ  Ｅ，Ｋｉｍ  ＪＹ，Ｋｉｍ  ＤＫ，Ｓｕｇｉｙａｍａ  Ｙ，Ｋａｎａｉ  Ｙ  ａｎｄ  Ｅｎｄｏｕ  Ｈ（２０００）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｕｌｔｉｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ４  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｐｌａｃｅｎｔａ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７５：４５０７−４５１２）。Ｔ−４７Ｄ細胞中で、［３Ｈ］エストロン３硫酸の取り込みがグルクロニド抱合体によって阻害されなかったため、ＯＡＴＰ−Ｂ又はＯＡＴ４の機能的特質は、ステロイド抱合体の基質認識に関しては、Ｔ−４７Ｄ細胞における取り込み機序と一致している。その一方で、ＯＡＴＰ−Ａ、ＯＡＴＰ−Ｃ、ＯＡＴＰ８、及びＯＡＴ３は、硫酸抱合体とグルクロニド抱合体の両方を輸送するため、これらのトランスポーターが、Ｔ−４７Ｄ細胞中でのエストロン３硫酸の輸送に関与している可能性は低いと思われる（Ｈａｇｅｎｂｕｃｈ  Ｂ  ａｎｄ  Ｍｅｉｅｒ  ＰＪ（２００３ａ）Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ  １６０９：１−１８，Ｈａｇｅｎｂｕｃｈ  Ｂ  ａｎｄ  Ｍｅｉｅｒ  ＰＪ（２００３ｂ）Ｐｆｌｕｇｅｒｓ  Ａｒｃｈ  ４���７：６５３−６６５；Ｋｕｓｕｈａｒａ  Ｈ，Ｓｅｋｉｎｅ  Ｔ，Ｕｔｓｕｎｏｍｉｙａ−Ｔａｔｅ  Ｎ，Ｔｓｕｄａ  Ｍ，Ｋｏｊｉｍａ  Ｒ，Ｃｈａ  ＳＨ，Ｓｕｇｉｙａｍａ，Ｙ，Ｋａｎａｉ  Ｙ，ａｎｄ  Ｅｎｄｏｕ  Ｈ（１９９９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｎｅｗ  ｍｕｌｔｉｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ｆｒｏｍ  ｒａｔ  ｂｒａｉｎ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７４：１３６７５−１３６８０）。鍵となるトランスポーターの性質に関する洞察を得るために、各種ヒトＯＡＴＰ及びＯＡＴの発現をＲＴ−ＰＣＲ分析で調べてみた（図８）。発現が検出されたのはＯＡＴＰ−ＤとＯＡＴＰ−Ｅだけであり、これは、以前の報告（Ｐｉｚｚａｇａｌｌｉ  Ｆ，Ｖａｒｇａ  Ｚ，Ｈｕｂｅｒ  ＲＤ，Ｆｏｌｋｅｒｓ  Ｇ，Ｍｅｉｅｒ  ＰＪ  ａｎｄ  Ｓｔ−Ｐｉｅｒｒｅ  ＭＶ（２００３）Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｔｅｒｏｉｄ  ｓｕｌｆａｔｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｍａｍｍａｒｙ  ｇｌａｎｄ．Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８８：３９０２−３９１２）と一致するものであった。ＯＡＴＰ−ＤとＯＡＴＰ−Ｅは、ＨＥＫ２９３細胞中で一過性に発現した際にエストロン３硫酸に対する輸送活性を示したため（Ｔａｍａｉ  Ｉ，Ｎｅｚｕ  Ｊ，Ｕｃｈｉｎｏ  Ｈ，Ｓａｉ  Ｙ，Ｏｋｕ  Ａ，Ｓｈｉｍａｎｅ  Ｍ  ａｎｄ  Ｔｓｕｊｉ  Ａ（２０００）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｎｏｖｅｌ  ｍｅｍｂｅｒｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｏｒｇａｎｉｃ  ａｎｉｏｎ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ（ＯＡＴＰ）ｆａｍｉｌｙ．Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ  ２７３：２５１−２６０）、Ｔ−４７Ｄ細胞中で細胞膜を通過してのエストロン３硫酸の取り込みに関与しているのかもしれない。しかし、それらの機能的特質がよくわかっていないため、Ｔ−４７Ｄ細胞によるエストロン３硫酸の取り込みに関与するトランスポーターを本研究で同定することはできなかった。ＢＣＲＰ（ＡＢＣＧ２）及びＯＳＴａｌｐｈａ−ＯＳＴｂｅｔａが、基質としてエストロン３硫酸を受容できることも、報告されている（Ｓｕｚｕｋｉ  Ｔ，Ｍｏｒｉｙａ  Ｔ，Ｉｓｈｉｄａ  Ｔ，Ｋｉｍｕｒａ  Ｍ，Ｏｈｕｃｈｉ  Ｎ  ａｎｄ  Ｓａｓａｎｏ  Ｈ（２００２）Ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｂｒｅａｓｔ  Ｃａｎｃｅｒ  ９：２９６−３０２；Ｄｏｙｌｅ  ＬＡ，Ｙａｎｇ  Ｗ，Ａｂｒｕｚｚｏ  ＬＶ，Ｋｒｏｇｍａｎｎ  Ｔ，Ｇａｏ  Ｙ，Ｒｉｓｈｉ  ＡＫ  ａｎｄ  Ｒｏｓｓ  ＤＤ（１９９８）Ａ  ｍｕｌｔｉｄｒｕｇ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ＭＣＦ−７  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌｓ．Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ  ９５：１５６６５−１５６７０；Ｔｓｕｒｕｏｋａ  Ｓ，Ｉｓｈｉｂａｓｈｉ  Ｋ，Ｙａｍａｍｏｔｏ  Ｈ，Ｗａｋａｕｍｉ  Ｍ，Ｓｕｚｕｋｉ  Ｍ，Ｓｃｈｗａｒｔｚ  ＧＪ，Ｉｍａｉ  Ｍ  ａｎｄ  Ｆｕｊｉｍｕｒａ  Ａ（２００２）Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ＡＢＣＡ８，ａ  ｎｅｗ  ｄｒｕｇ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ．Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ  ２９８：４１−４５；Ｉｍａｉ  Ｙ，Ａｓａｄａ  Ｓ，Ｔｓｕｋａｈａｒａ  Ｓ，Ｉｓｈｉｋａｗａ  Ｅ，Ｔｓｕｒｕｏ  Ｔ  ａｎｄ  Ｓｕｇｉｍｏｔｏ  Ｙ（２００３）Ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｅｘｐｏｒｔｓ  ｓｕｌｆａｔｅｄ  ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ  ｂｕｔ  ｎｏｔ  ｆｒｅｅ  ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ．Ｍｏｌ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  ６４：６１０−６１８；Ｓｅｗａｒｄ  ＤＪ，Ｋｏｈ  ＡＳ，Ｂｏｙｅｒ  ＪＬ  ａｎｄ  Ｂａｌｌａｔｏｒｉ  Ｎ（２００３）Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ａ  ｎｏｖｅｌ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｐｏｌｙｇｅｎｉｃ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｃｏｍｐｌｅｘ  ａｎｄ  ａｎ  ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｉｌｙ  ａｎｃｉｅｎｔ  ｏｒｇａｎｉｃ  ｓｏｌｕｔｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ，ＯＳＴａｌｐｈａ−ＯＳＴｂｅｔａ．  Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７８：２７４７３−２７４８２）。したがって、ＯＡＴＰとＯＡＴ以外のトランスポーターも、Ｔ−４７Ｄ細胞におけるエストロン３硫酸の取り込みに関与している可能性がある。
上記実施例により、エストロン３硫酸が、特異的輸送機序を介してエストロゲン依存性Ｔ−４７Ｄ細胞により取り込まれることが、はっきりと実証された。これは、主要な循環エストロゲン、エストロン３硫酸及びＤＨＥＡＳが、特異的なトランスポーターを介してエストロゲン依存性乳癌細胞に供給されることを初めて実証するものである。Ｔ−４７Ｄ細胞中のトランスポーターを同定するためにはさらなる研究が必要だが、そのようなトランスポーター分子は、エストロゲン依存性乳癌治療のための新しい分子標的となるであろう。
【産業上の利用可能性】  本発明によると、アロマターゼ阻害剤やエストロゲンサルファターゼ阻害剤、タモキシフェンやトレミフェン等のエストロゲン競合阻害剤と異なり、細胞内に取り込まれる必要がなく、ドラッグデリバリー性に優れ、副作用がきわめて少ない乳癌治療剤をスクリーニングすることができる。
【配列表】
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【図１】
2004113558.tif 000026
【図２】
2004113558.tif 000027
【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【国際調査報告】
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