(57)【要約】本発明は、塩酸ドネペジルに代表される化合物を含有する、中枢神経の神経細胞保護剤、並びに中枢神経系の神経細胞障害の予防剤及び／又は治療剤に関する。
2004110444.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（ｉ）〜（ｖｉｉ）で表されるいずれかの化合物を含有する、中枢神経系の神経細胞保護剤。
（ｉ）下記化学式で表される１−ベンジル−４−〔（５，６−ジメトキシ−１−インダノン）−２−イル〕メチルピペリジン又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000053
（ｉｉ）次の一般式（Ｉ）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000054
〔式中、Ｊは下記式
2004110444.tif 000055
2004110444.tif 000056
（式中、Ｓは炭素数１〜６の低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基、ハロゲン原子又は水酸基を意味する。ｔは０又は１〜４の整数を意味する。更に（Ｓ）ｔは結合しているフェニル環の隣りあう炭素間でメチレンジオキシ基又はエチレンジオキシ基を形成していてもよい。式（ｌ）におけるＹは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味し、式（ｋ）におけるＶは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、式（ｎ）におけるＷ１及びＷ２は、互いに独立し、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、Ｗ３は水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味する。式（ａ）〜（ｅ），（ｇ），（ｊ），（ｌ）及び（ｑ）におけるフェニル環Ａは炭素数１〜６のアルキル基又は炭素数１〜６のアルコキシ基によって置換されていてもよい。）で表される基から選択された一価又は二価の基を意味する。Ｂは式−（ＣＨＲ２）ｎ−（式中、ｎは０又は１〜１０の整数、Ｒ２はそれぞれ独立に水素原子又はメチル基を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、又は式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基を意味する。Ｋは置換基として、ハロゲン化されていてもよい炭素数１〜６のアルキル基、炭素数１〜６のアルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン原子、カルボキシル基、ベンジルオキシ基、炭素数１〜６のアルコキシカルボニル基、アミノ基、炭素数１〜６のモノアルキルアミノ基、炭素数１〜６のジアルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６のアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルアミノカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルカルボニルオキシ基、水酸基、ホルミル基又はアルコキシ（炭素数１〜６）アルキル（炭素数１〜６）基を有していてもよいフェニルアルキル基を意味する。
2004110444.tif 000057
（ｉｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000058
（ｉｖ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000059
（ｖ）次の一般式（Ｉ−１）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000060
〔式中、Ｊ１−１は炭素数１〜６の低級アルキル基（以下単に低級アルキル基という）；シクロヘキシル基；置換基として低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基（以下単に低級アルコキシ基という）、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニル基、ピリジル基あるいはピラジル基；式
2004110444.tif 000061
で示される基；キノリル基；キノキサリル基；フリル基又は式Ｒ１−ＣＨ＝ＣＨ−（式中、Ｒ１は水素原子又は低級アルコキシカルボニル基を意味する）で示される基を意味する。Ｂは式−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＮＲ２−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ２は水素原子、低級アルキル基、フェニル基又は低級アルキルスルホニル基を意味する）で示される基、式−ＣＯＮＲ３−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ３は水素原子、低級アルキル基、置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン又は水酸基を有してもよいフェニル基、ベンジル基又はピリジル基を意味する）で示される基、式−ＮＨ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＨ２−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＯ−ＣＨ２−ＣＨ（ＯＨ）−ＣＨ２−で示される基、式−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−Ｃ（ＯＨ）−（ＣＨ２）ｎ−で示される基又は式−ＣＯ−ＣＨ＝ＣＨ−ＣＨ２−で示される基（以上の式中、ｎは０又は１〜１０の整数を意味する）を意味する。Ｔ１は炭素原子を意味する。Ｋはフェニル基が置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニルアルキル（アルキルの炭素数１〜２）基；シンナミル基；低級アルキル基；ピリジルメチル基；シクロアルキル（シクロアルキルの炭素数３〜６）アルキル基；アダマンタンメチル基；フルフリル基；炭素数３〜６のシクロアルキル基又はアシル基を意味する。ｑは１又は２を意味する。
（ｖｉ）次の一般式（Ｉ−２）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000062
〔式中、Ｊ１−２は置換基として炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基を有してもよいインダノニル基を意味する。Ｔ２は窒素原子を意味する。Ｂ，Ｋ及びｑは前記の意味を有する。〕
（ｖｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000063
2004110444.tif 000064
【請求項２】
塩が塩酸塩である請求項１記載の保護剤。
【請求項３】
以下の（ｉ）〜（ｖｉｉ）で表されるいずれかの化合物を含有する、中枢神経系の神経細胞障害の予防剤及び／又は治療剤。
（ｉ）下記化学式で表される１−ベンジル−４−〔（５，６−ジメトキシ−１−インダノン）−２−イル〕メチルピペリジン又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000065
（ｉｉ）次の一般式（Ｉ）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000066
〔式中、Ｊは下記式
2004110444.tif 000067
2004110444.tif 000068
（式中、Ｓは炭素数１〜６の低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基、ハロゲン原子又は水酸基を意味する。ｔは０又は１〜４の整数を意味する。更に（Ｓ）ｔは結合しているフェニル環の隣りあう炭素間でメチレンジオキシ基又はエチレンジオキシ基を形成していてもよい。式（ｌ）におけるＹは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味し、式（ｋ）におけるＶは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、式（ｎ）におけるＷ１及びＷ２は、互いに独立し、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、Ｗ３は水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味する。式（ａ）〜（ｅ），（ｇ），（ｊ），（ｌ）及び（ｑ）におけるフェニル環Ａは炭素数１〜６のアルキル基又は炭素数１〜６のアルコキシ基によって置換されていてもよい。）で表される基から選択された一価又は二価の基を意味する。Ｂは式−（ＣＨＲ２）ｎ−（式中、ｎは０又は１〜１０の整数、Ｒ２はそれぞれ独立に水素原子又はメチル基を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、又は式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基を意味する。Ｋは置換基として、ハロゲン化されていてもよい炭素数１〜６のアルキル基、炭素数１〜６のアルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン原子、カルボキシル基、ベンジルオキシ基、炭素数１〜６のアルコキシカルボニル基、アミノ基、炭素数１〜６のモノアルキルアミノ基、炭素数１〜６のジアルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６のアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルアミノカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルカルボニルオキシ基、水酸基、ホルミル基又はアルコキシ（炭素数１〜６）アルキル（炭素数１〜６）基を有していてもよいフェニルアルキル基を意味する。
2004110444.tif 000069
（ｉｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000070
（ｉｖ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000071
（ｖ）次の一般式（Ｉ−１）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000072
〔式中、Ｊ１−１は炭素数１〜６の低級アルキル基（以下単に低級アルキル基という）；シクロヘキシル基；置換基として低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基（以下単に低級アルコキシ基という）、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニル基、ピリジル基あるいはピラジル基；式
2004110444.tif 000073
で示される基；キノリル基；キノキサリル基；フリル基又は式Ｒ１−ＣＨ＝ＣＨ−（式中、Ｒ１は水素原子又は低級アルコキシカルボニル基を意味する）で示される基を意味する。Ｂは式−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＮＲ２−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ２は水素原子、低級アルキル基、フェニル基又は低級アルキルスルホニル基を意味する）で示される基、式−ＣＯＮＲ３−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ３は水素原子、低級アルキル基、置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン又は水酸基を有してもよいフェニル基、ベンジル基又はピリジル基を意味する）で示される基、式−ＮＨ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＨ２−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＯ−ＣＨ２−ＣＨ（ＯＨ）−ＣＨ２−で示される基、式−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−Ｃ（ＯＨ）−（ＣＨ２）ｎ−で示される基又は式−ＣＯ−ＣＨ＝ＣＨ−ＣＨ２−で示される基（以上の式中、ｎは０又は１〜１０の整数を意味する）を意味する。Ｔ１は炭素原子を意味する。Ｋはフェニル基が置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニルアルキル（アルキルの炭素数１〜２）基；シンナミル基；低級アルキル基；ピリジルメチル基；シクロアルキル（シクロアルキルの炭素数３〜６）アルキル基；アダマンタンメチル基；フルフリル基；炭素数３〜６のシクロアルキル基又はアシル基を意味する。ｑは１又は２を意味する。
（ｖｉ）次の一般式（Ｉ−２）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000074
〔式中、Ｊ１−２は置換基として炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基を有してもよいインダノニル基を意味する。Ｔ２は窒素原子を意味する。Ｂ，Ｋ及びｑは前記の意味を有する。〕
（ｖｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000075
2004110444.tif 000076
【請求項４】
塩が塩酸塩である請求項３記載の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項５】
神経細胞障害が、脳虚血、興奮性毒性またはＡβ毒性によって誘発されるものである請求項３又は４記載の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項６】
神経細胞障害が、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかに伴う脳虚血、興奮性毒性によって誘発されるものである請求項３又は４記載の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項７】
興奮性毒性がＮＭＤＡ又はカイニン酸によるものである請求項６記載の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項８】
神経細胞障害が、アルツハイマー病又はダウン症に伴うＡβ毒性によって誘発されるものである請求項３又は４記載の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項９】
細胞が脳由来の成熟した神経細胞である、請求項１〜８のいずれか１項記載の剤。
【請求項１０】
神経細胞が、大脳皮質、中隔野及び海馬からなる群から選択されるいずれかに由来するものである、請求項９記載の剤。
【請求項１１】
神経細胞が、初代培養細胞である請求項９又は１０記載の剤。
【請求項１２】
請求項１若しくは２記載の保護剤又は請求項３若しくは４記載の予防剤及び／若しくは治療剤を含有する、脳卒中、脳梗塞又は脳塞栓のいずれかの疾病の予後改善剤。
【請求項１３】
請求項１又は２記載の保護剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、中枢神経系の神経細胞保護方法。
【請求項１４】
請求項３又は４記載の予防剤及び／又は治療剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、中枢神経系の神経細胞障害の予防方法及び／又は治療方法。
【請求項１５】
神経細胞障害が、脳虚血、興奮性毒性又はＡβ毒性によって誘発されるものである、請求項１４記載の方法。
【請求項１６】
興奮性毒性がＮＭＤＡ又はカイニン酸によるものである請求項１５記載の方法。
【請求項１７】
神経細胞障害が、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかに伴う脳虚血または興奮性毒性によって誘発されるものである、請求項１４記載の方法。
【請求項１８】
神経細胞障害が、アルツハイマー病又はダウン症に伴うＡβ毒性によって誘発されるものである、請求項１４記載の方法。
【請求項１９】
請求項１２記載の予後改善剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかの疾病の予後改善方法。
【請求項２０】
請求項１又は２記載の保護剤、請求項３〜８のいずれか１項に記載の予防剤及び／又は治療剤、並びに請求項１２記載の予後改善剤からなる群から選択されるいずれかの剤を製造するための、請求項１又は２に示す化合物の使用。
【請求項２１】
中枢神経系のコリン作動性神経細胞に、Ａβ存在下で候補化合物を作用させ、Ａβ凝集量を検出または測定することを特徴とする、Ａβ凝集抑制作用を有する化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法。
【請求項２２】
Ａβ凝集量の検出または測定結果を用いて、候補化合物がＡβ凝集抑制作用を有するか否かを、候補化合物の非存在下におけるＡβ凝集量と比較することで判定することを特徴とする、請求項２１記載の方法。
【請求項２３】
請求項２１または２２記載の方法に使用するための、Ａβ凝集抑制作用を有する化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニングキット。
【請求項２４】
中枢神経系のコリン作動性神経細胞に、Ａβ存在下で候補化合物を作用させ、細胞傷害又は細胞死を検出することを特徴とする、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法。
【請求項２５】
細胞傷害又は細胞死の検出結果を用いて、候補化合物がＡβ毒性に対する細胞保護作用を有するか否かを、候補化合物の非存在下における細胞傷害又は細胞死の程度と比較することで判定することを特徴する、請求項２４記載の方法。
【請求項２６】
細胞傷害又は細胞死の検出が、乳酸脱水素酵素の濃度測定によるもの又はＭＴＴアッセイによるものである請求項２４または２５記載の方法。
【請求項２７】
請求項２４又は２５記載の方法に使用するための、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニングキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】  本発明は、塩酸ドネペジルを含有する神経細胞保護剤に関する。
【背景技術】  塩酸ドネペジルは、アセチルコリンを分解する酵素であるアセチルコリンエステラーゼを可逆的に阻害することにより脳内のアセチルコリンの量を増加させ、脳内コリン作動性神経系を賦活する物質である。この物質は、アルツハイマー型老年性痴呆、アルツハイマー病の治療薬として広く用いられており（特許第２５７８４７５号公報）、塩酸ドネペジルに関して様々な研究機関で研究されている。Ｊｉｎ  Ｚｈｏｕらは、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤がラットＰＣ１２細胞（腫瘍細胞）の虚血様細胞傷害に対して保護的な効果があるという旨の論文を発表しており、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤の一例として塩酸ドネペジルを用いている（Ｚｈｏｕ，Ｊ，．Ｆｕ，Ｙ．，Ｔａｎｇ，Ｘ．Ｃ．，２００１．Ｈｕｐｅｒｚｉｎｅ  Ａ  ａｎｄ  ｄｏｎｅｐｅｚｉｌ  ｐｒｏｔｅｃｔ  ｒａｔ  ｐｈｅｏｃｈｒｏｍｏｃｙｔｏｍａ  ｃｅｌｌｓ  ａｇａｉｎｓｔ  ｏｘｙｇｅｎ−ｇｌｕｃｏｓｅ  ｄｅｐｒｉｖａｔｉｏｎ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｌｅｔｔ．３０６，５３−５６））。
しかしながら、塩酸ドネペジルの神経細胞傷害に対する保護効果の詳細は明らかではない。
前記文献で用いられているＰＣ１２細胞とは、褐色細胞腫であり、好クロム性細胞腫ともいい、副腎髄質あるいは交感神経節細胞などクロム親和性細胞から発生するカテコールアミン産生腫瘍である。そのため、ＰＣ１２細胞は脳神経細胞ではなく、細胞間にシナプスを形成しておらず、また興奮性物質に反応する機能も有していないことが知られている（Ｓｕｃｈｅｒ，Ｎ．Ｊ，１９９３．Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  Ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ  ＮＭＤＡＲ１  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｓ  ｗｉｔｈｏｕｔ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｕｇｇｅｓｔｓ  Ｐｏｓｔ−ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ  Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｉｎ  ＰＣ１２  Ｃｅｌｌｓ．Ｔｈｅ  ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．Ｖｏｌ．２６８，Ｎｏ．３０，２２２９９−２２３０４．）。つまり、前記文献では、癌化した細胞についての検討がなされているのみであり、新たに脳神経細胞より調製された初代培養神経細胞を用いた検討は一切なされていない。従って、塩酸ドネペジルが、実際の神経細胞における虚血様傷害に対する保護効果を証明するデータは未だに知られていなかった。
【発明の開示】
本発明は、神経細胞（中でも中枢神経系の神経細胞）を保護する薬剤を提供することを目的とする。
本発明者は、上記課題を解決するため鋭意検討した結果、意外にも塩酸ドネペジルが神経細胞（中でも中枢神経系の神経細胞）を保護する作用を有することを見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本発明は以下の通りである。
（１）以下の（ｉ）〜（ｖｉｉ）で表されるいずれかの化合物を含有する、中枢神経系の神経細胞保護剤（特開平１−７９１５１号公報に記載の化合物を包含する）。これらの化合物の塩は、塩酸塩であることが好ましい。
（ｉ）下記化学式で表される１−ベンジル−４−〔（５，６−ジメトキシ−１−インダノン）−２−イル〕メチルピペリジン又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000003
（特許２５７８４７５号請求項（以下、「ｃｌ．」とする。）１）
（ｉｉ）次の一般式（Ｉ）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000004
〔式中、Ｊは下記式
2004110444.tif 000005
2004110444.tif 000006
（式中、Ｓは炭素数１〜６の低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基、ハロゲン原子又は水酸基を意味する。ｔは０又は１〜４の整数を意味する。更に（Ｓ）ｔは結合しているフェニル環の隣りあう炭素間でメチレンジオキシ基又はエチレンジオキシ基を形成していてもよい。式（ｌ）におけるＹは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味し、式（ｋ）におけるＶは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、式（ｎ）におけるＷ１及びＷ２は互いに独立し、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、Ｗ３は水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味する。式（ａ）〜（ｅ），（ｇ），（ｊ），（ｌ）及び（ｑ）におけるフェニル環Ａは炭素数１〜６のアルキル基又は炭素数１〜６のアルコキシ基によって置換されていてもよい。）で表される基から選択された一価又は二価の基を意味する。Ｂは式−（ＣＨＲ２）ｎ−（式中、ｎは０又は１〜１０の整数、Ｒ２はそれぞれ独立に水素原子又はメチル基を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、又は式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基を意味する。Ｋは置換基として、ハロゲン化されていてもよい炭素数１〜６のアルキル基、炭素数１〜６のアルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン原子、カルボキシル基、ベンジルオキシ基、炭素数１〜６のアルコキシカルボニル基、アミノ基、炭素数１〜６のモノアルキルアミノ基、炭素数１〜６のジアルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６のアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルアミノカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルカルボニルオキシ基、水酸基、ホルミル基又はアルコキシ（炭素数１〜６）アルキル（炭素数１〜６）基を有していてもよいフェニルアルキル基を意味する。
2004110444.tif 000007
（ｉｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000008
（特許２７３３２０３号ｃｌ．７）
（ｉｖ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000009
（特許２７３３２０３号ｃｌ．８）
（ｖ）次の一般式（Ｉ−１）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000010
〔式中、Ｊ１−１は炭素数１〜６の低級アルキル基（以下単に低級アルキル基という）；シクロヘキシル基；置換基として低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基（以下単に低級アルコキシ基という）、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニル基、ピリジル基あるいはピラジル基；式
2004110444.tif 000011
で示される基；キノリル基；キノキサリル基；フリル基又は式Ｒ１−ＣＨ＝ＣＨ−（式中、Ｒ１は水素原子又は低級アルコキシカルボニル基を意味する）で示される基を意味する。Ｂは式−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＮＲ２−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ２は水素原子、低級アルキル基、フェニル基又は低級アルキルスルホニル基を意味する）で示される基、式−ＣＯＮＲ３−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ３は水素原子、低級アルキル基、置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン又は水酸基を有してもよいフェニル基、ベンジル基又はピリジル基を意味する）で示される基、式−ＮＨ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＨ２−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＯ−ＣＨ２−ＣＨ（ＯＨ）−ＣＨ２−で示される基、式−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−Ｃ（ＯＨ）−（ＣＨ２）ｎ−で示される基又は式−ＣＯ−ＣＨ＝ＣＨ−ＣＨ２−で示される基（以上の式中、ｎは０又は１〜１０の整数を意味する）を意味する。Ｔ１は炭素原子を意味する。Ｋはフェニル基が置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニルアルキル（アルキルの炭素数１〜２）基；シンナミル基；低級アルキル基；ピリジルメチル基；シクロアルキル（シクロアルキルの炭素数３〜６）アルキル基；アダマンタンメチル基；フルフリル基；炭素数３〜６のシクロアルキル基又はアシル基を意味する。ｑは１又は２を意味する。（特許３０７８２４４号ｃｌ．１）
（ｖｉ）次の一般式（Ｉ−２）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000012
〔式中、Ｊ１−２は置換基として炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基を有してもよいインダノニル基を意味する。Ｔ２は窒素原子を意味する。Ｂ，Ｋ及びｑは前記の意味を有する。〕（特許３０７８２４４号ｃｌ．２）
（ｖｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000013
2004110444.tif 000014
（特許３０７８２４４号ｃｌ．４）
（２）以下の（ｉ）〜（ｖｉｉ）で表されるいずれかの化合物を含有する、中枢神経系の神経細胞障害の予防剤及び／又は治療剤。
（ｉ）下記化学式で表される１−ベンジル−４−〔（５，６−ジメトキシ−１−インダノン）−２−イル〕メチルピペリジン又はその薬理学的に許容できる塩。塩は、塩酸塩であることが好ましい。
2004110444.tif 000015
（特許２５７８４７５号ｃｌ．１）
（ｉｉ）次の一般式（Ｉ）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000016
〔式中、Ｊは下記式
2004110444.tif 000017
2004110444.tif 000018
（式中、Ｓは炭素数１〜６の低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基、ハロゲン原子又は水酸基を意味する。ｔは０又は１〜４の整数を意味する。更に（Ｓ）ｔは結合しているフェニル環の隣りあう炭素間でメチレンジオキシ基又はエチレンジオキシ基を形成していてもよい。式（ｌ）におけるＹは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味し、式（ｋ）におけるＶは水素原子又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、式（ｎ）におけるＷ１及びＷ２は互いに独立し、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基、Ｗ３は水素原子又は炭素数１〜６の低級アルキル基を意味する。式（ａ）〜（ｅ），（ｇ），（ｊ），（ｌ）及び（ｑ）におけるフェニル環Ａは炭素数１〜６のアルキル基又は炭素数１〜６のアルコキシ基によって置換されていてもよい。）で表される基から選択された一価又は二価の基を意味する。Ｂは式−（ＣＨＲ２）ｎ−（式中、ｎは０又は１〜１０の整数、Ｒ２はそれぞれ独立に水素原子又はメチル基を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、又は式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基を意味する。Ｋは置換基として、ハロゲン化されていてもよい炭素数１〜６のアルキル基、炭素数１〜６のアルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン原子、カルボキシル基、ベンジルオキシ基、炭素数１〜６のアルコキシカルボニル基、アミノ基、炭素数１〜６のモノアルキルアミノ基、炭素数１〜６のジアルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６のアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルアミノカルボニル基、炭素数１〜６のアルキルカルボニルオキシ基、水酸基、ホルミル基又はアルコキシ（炭素数１〜６）アルキル（炭素数１〜６）基を有していてもよいフェニルアルキル基を意味する。
は単結合もしくは二重結合を意味する。（特許２７３３２０３号ｃｌ．１）
（ｉｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000019
（特許２７３３２０３号ｃｌ．７）
（ｉｖ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000020
（特許２７３３２０３号ｃｌ．８）
（ｖ）次の一般式（Ｉ−１）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000021
〔式中、Ｊ１−１は炭素数１〜６の低級アルキル基（以下単に低級アルキル基という）；シクロヘキシル基；置換基として低級アルキル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基（以下単に低級アルコキシ基という）、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニル基、ピリジル基あるいはピラジル基；式
2004110444.tif 000022
で示される基；キノリル基；キノキサリル基；フリル基又は式Ｒ１−ＣＨ＝ＣＨ−（式中、Ｒ１は水素原子又は低級アルコキシカルボニル基を意味する）で示される基を意味する。Ｂは式−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＮＲ２−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ２は水素原子、低級アルキル基、フェニル基又は低級アルキルスルホニル基を意味する）で示される基、式−ＣＯＮＲ３−（ＣＨ２）ｎ−（式中、Ｒ３は水素原子、低級アルキル基、置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ハロゲン又は水酸基を有してもよいフェニル基、ベンジル基又はピリジル基を意味する）で示される基、式−ＮＨ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＨ２−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−ＣＯ−ＣＨ２−ＣＨ（ＯＨ）−ＣＨ２−で示される基、式−ＣＯ−（ＣＨ２）ｎ−で示される基、式−Ｃ（ＯＨ）−（ＣＨ２）ｎ−で示される基又は式−ＣＯ−ＣＨ＝ＣＨ−ＣＨ２−で示される基（以上の式中、ｎは０又は１〜１０の整数を意味する）を意味する。Ｔ１は炭素原子を意味する。Ｋはフェニル基が置換基として低級アルキル基、低級アルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン、カルボキシル基、低級アルコキシカルボニル基、アミノ基、モノ低級アルキルアミノ基、ジ低級アルキルアミノ基、カルバモイル基、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基、シクロヘキシルオキシカルボニル基、低級アルキルアミノカルボニル基、低級アルキルカルボニルオキシ基、ハロゲン化低級アルキル基、水酸基、ホルミル基又は低級アルコキシ低級アルキル基を有していてもよいフェニルアルキル（アルキルの炭素数１〜２）基；シンナミル基；低級アルキル基；ピリジルメチル基；シクロアルキル（シクロアルキルの炭素数３〜６）アルキル基；アダマンタンメチル基；フルフリル基；炭素数３〜６のシクロアルキル基又はアシル基を意味する。ｑは１又は２を意味する。（特許３０７８２４４号ｃｌ．１）
（ｖｉ）次の一般式（Ｉ−２）で表される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000023
〔式中、Ｊ１−２は置換基として炭素数１〜６の低級アルキル基又は炭素数１〜６の低級アルコキシ基を有してもよいインダノニル基を意味する。Ｔ２は窒素原子を意味する。Ｂ，Ｋ及びｑは前記の意味を有する。〕（特許３０７８２４４号ｃｌ．２）
（ｖｉｉ）下記式で表される化合物群から選択される環状アミン誘導体又はその薬理学的に許容できる塩。
2004110444.tif 000024
2004110444.tif 000025
（特許３０７８２４４号ｃｌ．４）
上記（１）及び（２）において、化合物の塩は、塩酸塩であることが好ましく、特に、下記式に示す塩酸ドネペジルであることが好ましい。
2004110444.tif 000026
また、上記（２）において、神経細胞障害としては、脳虚血、興奮性毒性またはＡβ毒性によって誘発されるものが挙げられ、前記脳虚血及び興奮性毒性は、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかに伴うものが挙げられる。また、前記Ａβ毒性は、アルツハイマー病又はダウン症に伴うものであってもよい。
上記（１）又は（２）において、細胞は、脳由来の成熟した神経細胞であり、特に、大脳皮質、中隔野及び海馬からなる群から選択されるいずれかに由来するものが挙げられる。また、当該神経細胞は、初代培養細胞であってもよい。
（３）上記（１）記載の保護剤、あるいは（２）記載の予防剤及び／又は治療剤を含有する、脳卒中、脳梗塞又は脳塞栓のいずれかの疾病の予後改善剤。
（４）上記（１）記載の保護剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、中枢神経系の神経細胞保護方法。
（５）上記（２）記載の予防剤及び／又は治療剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、中枢神経系の神経細胞障害の予防方法及び／又は治療方法。
上記（５）において、神経細胞障害としては、脳虚血、興奮性毒性またはＡβ毒性によって誘発されるものが挙げられ、前記脳虚血及び興奮性毒性は、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかに伴うものが挙げられる。また、興奮性毒性としては、たとえばＮＭＤＡ又はカイニン酸によるものが挙げられる。さらに、前記Ａβ毒性は、アルツハイマー病又はダウン症に伴うものであってもよい。
（６）上記（３）記載の予後改善剤の有効量を患者に投与することを特徴とする、脳卒中、脳梗塞または脳塞栓のいずれかの疾病の予後改善方法。
（７）上記（１）記載の保護剤、（２）記載の予防剤及び／又は治療剤、並びに（３）記載の予後改善剤からなる群から選択されるいずれかの薬剤を製造するための、（１）に示す化合物の使用。
（８）中枢神経系のコリン作動性神経細胞に、Ａβ存在下で候補化合物を作用させ、Ａβ凝集量を検出または測定することを特徴とする、Ａβ凝集抑制作用を有する化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法。
本発明のスクリーニング方法は、上記Ａβ凝集量の検出または測定した結果を用い、上記候補化合物がＡβ凝集抑制作用を有するか否かを、上記候補化合物の非存在下におけるＡβ凝集量と比較することで、目的とする化合物であるか否かを判定することができる。
（９）上記（８）記載の方法に使用するための、Ａβ凝集抑制作用を有する化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニングキット。
（１０）中枢神経系のコリン作動性神経細胞に、Ａβ存在下で候補化合物を作用させ、細胞傷害又は細胞死を検出することを特徴とする、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法。
本発明の方法においては、上記細胞傷害又は細胞死を検出した結果を用いて、上記候補化合物がＡβ毒性に対する細胞保護作用を有するか否かを、上記候補化合物の非存在下における細胞傷害又は細胞死の程度と比較することで、目的とする化合物であるか否かを判定することができる。
上記の細胞傷害又は細胞死は、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）の濃度測定又はＭＴＴアッセイにより検出できる。
（１１）上記（１０）記載の方法に使用するための、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニングキット。
【図面の簡単な説明】  図１は、酸素グルコース除去（ＯＧＤ）処理の１２時間前、１時間前及びＯＧＤ処理の１時間後にドネペジルを細胞に添加した場合におけるラット初代培養細胞のＬＤＨの放出を表わすグラフである。ＯＧＤ（−）はＯＧＤ処理なし、ＯＧＤ（＋）はＯＧＤ処理したものを表す。Ｃｏｎｔ及びＶｅｈｉは薬剤無投与群である。データはＤｕｎｎｅｔｔ’ｓ  ｔｅｓｔで解析した。図１の「＊＊＊」はＰ＜０．００５であることを示す（「ｖｅｈｉｃｌｅ  ｇｒｏｕｐ」を対照とする）。
図２は、ＯＧＤ処理の有無におけるラット初代培養細胞の形態学的観察を示したものであり、それぞれＡはコントロール、ＢはＯＧＤ処理を施したもの、Ｃはドネペジルを１２時間前から添加した後にＯＧＤ処理を行なったものの状態を表わす顕微鏡写真である。スケールバーは０．１ｍｍを示す。
図３は、ＯＧＤ処理１２時間前から種々のアセチルコリンエステラーゼ阻害剤を添加した場合とドネペジルとを添加した場合におけるラット初代培養細胞のＬＤＨの放出を表わすグラフである。ＯＧＤ（−）はＯＧＤ処理なし、ＯＧＤ（＋）はＯＧＤ処理したものを表す。Ｃｏｎｔ及びＶｅｈｉは薬剤無投与群である。データはＤｕｎｎｅｔｔ’ｓ  ｔｅｓｔで解析した。図３の「＊」はＰ＜０．０５，「＊＊」はＰ＜０．０１，「＊＊＊」はＰ＜０．００５であることを示す（「ｖｅｈｉｃｌｅ  ｇｒｏｕｐ」を対照とする）。
図４は、ＯＧＤ処理１２時間前からドネペジルとともにスコポラミン（Ｓｃｏ）又はメカミラミン（Ｍｅｃ）を添加した場合におけるラット初代培養細胞のＬＤＨの放出を表わすグラフである。ＯＧＤ（−）はＯＧＤ処理なし、ＯＧＤ（＋）はＯＧＤ処理したものを表す。Ｃｏｎｔ及びＶｅｈｉは薬剤無投与群である。データはＡＮＯＶＡとＷｅｌｃｈ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔで解析した。図４の「＊」はＰ＜０．０５，「＊＊」はＰ＜０．０１，「＊＊＊」はＰ＜０．００５であることを示す（「ｖｅｈｉｃｌｅ  ｇｒｏｕｐ」を対照とする）。
図５は、ＮＭＤＡ処理によるラット初代培養神経細胞のＬＤＨの放出に対するドネペジルの効果を表わすグラフである。ドネペジルは１２時間前から加えた。Ｃｏｎｔ及びＶｅｈｉは薬剤無投与群である。データはＤｕｎｎｅｔｔ’ｓ  ｔｅｓｔで解析した。図５の「＊＊＊」はＰ＜０．００５であることを示す（「ｖｅｈｉｃｌｅ  ｋｒｏｕｐ」を対照とする）。
図６は、カイニン酸処理によるラット初代培養神経細胞のＬＤＨの放出に対するドネペジルの効果を表わすグラフである。ドネペジルは２４時間前から加えた。Ｃｏｎｔ及びＶｅｈｉは薬剤無投与群である。データはＤｕｎｎｅｔｔ’ｓ  ｔｅｓｔで解析した。図６の「＊＊＊」はＰ＜０．００５であることを示す（「ｖｅｈｉｃｌｅ  ｇｒｏｕｐ」を対照とする）。
図７は、培養ラット中隔野神経細胞を抗コリンアセチルトランスフェラーゼ抗体で免疫染色した図を示す。
図８は、Ａβ（１−４０）毒性に対するドネペジルの保護効果を、ＬＤＨを指標に用いて評価した結果を示す図である。
図９は、培養ラット中隔野神経細胞を抗ＭＡＰ２抗体で免疫染色した図を示す。
図１０は、Ａβの凝集をＣＤの変化を指標に用いて測定した結果を示す図である。
図１１は、細胞内アセチルコリン活性に対するｓｉＲＮＡの効果を示す図である。
図１２は、Ａβ（１−４０）毒性に対するｓｉＲＮＡの保護効果を示す図である。
図１３は、Ａβの凝集に対するｓｉＲＮＡの凝集抑制効果を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】１．概要
本発明は、以下に表されるいずれかの化合物（以下、「化合物Ｑ」とする）を含有する、中枢神経系の神経細胞の保護剤、当該神経細胞障害の予防剤及び／又は治療剤である。また、本発明により、予防剤及び／又は治療剤を適用量投与することを特徴とする、中枢神経系の神経細胞の保護方法及び／又は当該神経細胞障害の予防方法及び／若しくは治療方法が提供される。以下、本発明の保護剤、予防剤、治療剤、予後改善剤に使用される化合物Ｑを以下に示す。
２．化合物Ｑ
次の一般式（Ｉ）で表される環状アミン誘導体及びその薬理学的に許容できる塩（特開平１−７９１５１号公報、特開平０７−２５２２１６号公報、特開平１０−０６７７３９号公報を参照）。
2004110444.tif 000027
〔式中、
Ｊは（ａ）置換若しくは無置換の次に示す基；▲１▼フェニル基、▲２▼ピリジル基、▲３▼ピラジル基、▲４▼キノリル基、▲５▼シクロヘキシル基、▲６▼キノキサリル基又は▲７▼フリル基、
（ｂ）フェニル基が置換されていてもよい次の群から選択された一価又は二価の基；▲１▼インダニル、▲２▼インダノニル、▲３▼インデニル、▲４▼インデノニル、▲５▼インダンジオニル、▲６▼テトラロニル、▲７▼ベンズスベロニル、▲８▼インダノリル、▲９▼式
2004110444.tif 000028
（ｃ）環状アミド化合物から誘導される一価の基、
（ｄ）低級アルキル基、又は
（ｅ）式Ｒ１−ＣＨ＝ＣＨ−（式中、Ｒ１は水素原子又は低級アルコキシカルボニル基を意味する）
で示される基を意味する。
2004110444.tif 000029
（式中、Ｒ３は水素原子、低級アルキル基、アシル基、低級アルキルスルホニル基、置換されてもよいフェニル基又はベンジル基を意味する）で示される基、
2004110444.tif 000030
で示されるアルキレン基が置換基を持たないか、又は１つ又は１つ以上のメチル基を有しているような形で水素原子又はメチル基を意味する。）、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝
（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基、
2004110444.tif 000031
で示される基、式−ＮＨ−で示される基、式−Ｏ−で示される基、式−Ｓ−で示される基、ジアルキルアミノアルキルカルボニル基又は低級アルコキシカルボニル基を意味する。
Ｔは窒素原子又は炭素原子を意味する。
2004110444.tif 000032
Ｋは水素原子、置換若しくは無置換のフェニル基、フェニル基が置換されてもよいアリールアルキル基、フェニル基が置換されてもよいシンナミル基、低級アルキル基、ピリジルメチル基、シクロアルキルアルキル基、アダマンタンメチル基、フリルメチル基、シクロアルキル基、低級アルコキシカルボニル基又はアシル基を意味する。
ｑは１〜３の整数を意味する。
2004110444.tif 000033
化合物（Ｉ）における上記の定義において、Ｊ，Ｋ，Ｒ３，Ｒ４にみられる低級アルキル基とは、炭素数１〜６の直鎖もしくは分枝状のアルキル基、例えばメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、イソブチル基：ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基（アミル基）、イソペンチル基、ネオペンチル基、ｔｅｒｔ−ペンチル基、１−メチルブチル基、２−メチルブチル基、１，２−ジメチルプロピル基、ヘキシル基、イソヘキシル基、１−メチルペンチル基、２−メチルペンチル基、３−メチルペンチル基、１，１−ジメチルブチル基、１，２−ジメチルブチル基、２，２−ジメチルブチル基、１，３−ジメチルブチル基、２，３−ジメチルブチル基、３，３−ジメチルブチル基、１−エチルブチル基、２−エチルブチル基、１，１，２−トリメチルプロピル基、１，２，２−トリメチルプロピル基、１−エチル−１−メチルプロピル基、１−エチル−２−メチルプロピル基などを意味する。これらのうち好ましい基としては、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基などを挙げることができ、最も好ましいものはメチル基である。
Ｊにおける「置換もしくは無置換の次に示す基；▲１▼フェニル基、▲２▼ピリジル基、▲３▼ピラジル基、▲４▼キノリル基、▲５▼シクロヘキシル基、▲６▼キノキサリル基又は▲７▼フリル基」という定義において、置換基としては、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基などの炭素数１〜６の低級アルキル基；メトキシ基、エトキシ基など上記の低級アルキル基に対応する低級アルコキシ基；ニトロ基；塩素、臭素、フッ素などのハロゲン；カルボキシル基；メトキシカルボニル基、エトキシカルボニル基、イソプロポキシカルボニル基、ｎ−プロポキシカルボニル基、ｎ−ブチロキシカルボニル基など、上記の低級アルコキシ基に対応する低級アルコキシカルボニル基；アミノ基；モノ低級アルキルアミノ基；ジ低級アルキルアミノ基；カルバモイル基；アセチルアミノ基、プロピオニルアミノ基、ブチリルアミノ基、イソブチリルアミノ基、バレリルアミノ基、ピバロイルアミノ基など、炭素数１〜６の脂肪族飽和モノカルボン酸から誘導されるアシルアミノ基；シクロヘキシルオキシカルボニル基などのシクロアルキルオキシカルボニル基；メチルアミノカルボニル基、エチルアミノカルボニル基などの低級アルキルアミノカルボニル基；メチルカルボニルオキシ基、エチルカルボニルオキシ基、ｎ−プロピルカルボニルオキシ基など前記に定義した低級アルキル基に対応する低級アルキルカルボニルオキシ基；トリフルオロメチル基などに代表されるハロゲン化低級アルキル基；水酸基；ホルミル基；エトキシメチル基、メトキシメチル基、メトキシエチル基などの低級アルコキシ低級アルキル基などを挙げることができる。上記の置換基の説明において、「低級アルキル基」、「低級アルコキシ基」とは、前記の定義から派生する基をすべて含むものとする。置換基は同一又は異なる１〜３個で置換されていてもよい。
更にフェニル基の場合は、次の如き場合も置換されたフェニル基に含まれるものとする。即ち、
2004110444.tif 000034
Ｅは炭素原子又は窒素原子を意味する。
これらのうち、フェニル基に好ましい置換基としては、低級アルキル基、低級アルコキシ基、ニトロ基、ハロゲン化低級アルキル基、低級アルコキシカルボニル基、ホルミル基、水酸基、低級アルコキシ低級アルキル基、ハロゲン、ベンゾイル基、ベンジルスルホニル基などを挙げることができ、置換基は同一又は相異なって２つ以上でもよい。
ピリジル基に好ましい基としては、低級アルキル基、アミノ基、ハロゲン原子などを挙げることができる。
ピラジル基に好ましい基としては、低級アルコキシカルボニル基、カルボキシル基、アシルアミノ基、カルバモイル基、シクロアルキルオキシカルボニル基などを挙げることができる。
また、Ｊとしてのピリジル基は、２−ピリジル基、３−ピリジル基又は４−ピリジル基が望ましく、ピラジル基は２−ピラジル基が望ましく、キノリル基は２−キノリル基又は３−キノリル基が望ましく、キノキサリル基は２−キノキサリル基又は３−キノキサリル基が望ましく、フリル基は２−フリル基が望ましい。
Ｊの定義において、（ｂ）グループに記載されている▲１▼〜▲９▼について、その代表例を示せば以下のとおりである。
2004110444.tif 000035
上記一連の式において、ｔは０又は１〜４の整数を意味し、Ｓは同一又は相異なる前記したＪ（ａ）の定義における置換基のうち１つ又は水素原子を意味するが、好ましくは水素原子（無置換）、低級アルキル基又は低級アルコキシ基をあげることができる。更に、フェニル環の隣りあう炭素間でメチレンジオキシ基、エチレンジオキシ基などのアルキレンジオキシ基で置換されていてもよい。
これらのうち最も好ましい場合は、無置換若しくはメトキシ基が１〜３個置換されている場合である。
なお、上記のインダノリデニルはＪ（ｂ）の定義におけるフェニル基が置換されていてもよい二価の基の例である。すなわちＪ（ｂ）の▲２▼のインダノニルから誘導される代表的な二価の基である。
Ｊの定義において、環状アミド化合物から誘導される一価の基とは、例えばキナゾロン、テトラハイドロイソキノリン−オン、テトラハイドロベンゾジアゼピン−オン、ヘキサハイドロベンツアゾシン−オンなどを挙げることができるが、構造式中に環状アミドが存在すればよく、これらのみに限定されない。
単環もしくは縮合ヘテロ環から誘導される環状アミドがありうるが、縮合ヘテロ環としては、フェニル環との縮合ヘテロ環が好ましい。この場合、フェニル環は炭素数１〜６の低級アルキル基、好ましくはメチル基、炭素数１〜６の低級アルコキシ基、好ましくはメトキシ基あるいはハロゲン原子によって置換されていてもよい。
好ましい例を挙げれば次の通りである。
2004110444.tif 000036
上記の式中で、式（ｉ），（ｌ）におけるＹは水素原子又は低級アルキル基を意味し、式（ｋ）におけるＶは水素原子又は低級アルコキシ基、式（ｍ），（ｎ）におけるＷ１，Ｗ２は水素原子、低級アルキル基、低級アルコキシ基、Ｗ３は水素原子又は低級アルキル基を意味する。
なお、式（ｊ），（ｌ）において、右側の環は７員環であり、式（ｋ）において右側の環は８員環である。
Ｊの上記の定義のうち最も好ましいものは、フェニル環が置換されてもよいインダノンから誘導される一価の基、環状アミド化合物から誘導される一価の基である。
2004110444.tif 000037
Ｒ２が水素原子である場合は式−（ＣＨ２）ｎ−で表され、更にアルキレン鎖のいずれかの炭素原子に１つ又はそれ以上のメチル基が結合していてもよいことを意味する。この場合、好ましくはｎは１〜３である。
また、Ｂの一連の基において、基内にアミド基を有する場合も好ましい基の一つである。
更に好ましい基としては、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基、式−ＮＨ−で示される基、式−Ｏ−で示される基又は式−Ｓ−で示される基をあげることができる。
2004110444.tif 000038
Ｋの定義における「置換又は無置換のフェニル基」、「置換もしくは無置換のアリールアルキル基」において、置換基は前記のＪの定義において（ａ）の▲１▼〜▲７▼において定義されたものと同一のものである。
アリールアルキル基とは、フェニル環が上記の置換基で置換されるか、無置換のベンジル基、フェネチル基などを意味する。
ピリジルメチル基とは具体的には、２−ピリジルメチル基、３−ピリジルメチル基、４−ピリジルメチル基などを挙げることができる。
Ｋについては、フェニル基が置換されてもよいアリールアルキル基、置換若しくは無置換のフェニル基、フェニル基が置換されてもよいシンナミル基が最も好ましい。
好ましいアリールアルキル基は、具体的には例えばベンジル基、フェネチル基などをいい、これらはフェニル基が炭素数１〜６の低級アルコキシ基、炭素数１〜６の低級アルキル基、水酸基などで置換されていてもよい。
2004110444.tif 000039
二重結合である場合の例をあげれば、上記で述べたフェニル環が置換されてもよいインダノンから誘導される二価の基の場合、すなわちインダノリデニル基である場合をあげることができる。
本発明において、薬理学的に許容できる塩とは、例えば塩酸塩、硫酸塩、臭化水素酸塩、燐酸塩などの無機酸塩、蟻酸塩、酢酸塩、トリフルオロ酢酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、メタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、トルエンスルホン酸塩などの有機酸塩を挙げることができる。
また置換基の選択によっては、例えばナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩、カルシウム塩、マグネシウム塩のようなアルカリ土類金属塩、トリメチルアミン塩、トリエチルアミン塩、ピリジン塩、ピコリン塩、ジシクロヘキシルアミン塩、Ｎ，Ｎ’−ジベンジルエチレンジアミン塩などの有機アミン塩、アンモニウム塩などを形成する場合もある。
なお、本発明において上記化合物は、置換基の種類によっては不斉炭素を有し、光学異性体が存在しうるが、これらは本発明の範囲に属することはいうまでもない。
具体的な例を一つ述べれば、Ｊがインダノン骨格を有する場合、不斉炭素を有するので幾何異性体、光学異性体、ジアステレオマーなどが存在しうるが、何れも本発明の範囲に含まれる。
これらの定義を総合して特に好ましい化合物群をあげれば次のとおりである。
2004110444.tif 000040
〔式中、Ｊ１はフェニル基が置換されていてもよい次の群から選択された一価又は二価の基；▲１▼インダニル、▲２▼インダノニル、▲３▼インデニル、▲４▼インデノニル、▲５▼インダンジオニル、▲６▼テトラロニル、▲７▼ベンズスベロニル、▲８▼インダノリル、
2004110444.tif 000041
Ｂ，Ｔ，Ｑ，ｑ，Ｋは前記と同様の意味を有する。〕
で表される環状アミン又は薬理学的に許容できる塩。
上記のＪ１の定義中、最も好ましい基としては、フェニル基が置換されていてもよいインダノニル基、インダンジオニル基、インダノリデニル基をあげることができる。また、この場合、フェニル基は置換されていないか、同一又は相異なる水酸基、ハロゲン、低級アルコキシ基で置換されている場合が最も好ましい。低級アルコキシ基とは、炭素数１〜６の例えばメトキシ基、エトキシ基、イソプロポキシ基、ｎ−プロポキシ基、ｎ−ブトキシ基などをいい、１〜４置換をとりうるが、２置換の場合が好ましい。最も好ましい場合はメトキシ基が２置換となっている場合である。
（Ａ）式に含まれる化合物の中で更に好ましい化合物群としては、次の一般式で表される化合物（Ｂ）をあげることができる。
2004110444.tif 000042
〔式中、Ｊ１はフェニル基が置換されていてもよい次の群から選択された一価又は二価の基；▲１▼インダニル、▲２▼インダノニル、▲３▼インデニル、▲４▼インデノニル、▲５▼インダンジオニル、▲６▼テトラロニル、▲７▼ベンズスベロニル、▲８▼インダノリル、
2004110444.tif 000043
で示されるアルキレン基が置換基を持たないか、又は１つ又は１つ以上のメチル基を有しているような形で水素原子又はメチル基を意味する。）で示される基、式＝（ＣＨ−ＣＨ＝ＣＨ）ｂ−（式中、ｂは１〜３の整数を意味する）で示される基、式＝ＣＨ−（ＣＨ２）ｃ−（式中、ｃは０又は１〜９の整数を意味する）で示される基又は式＝（ＣＨ−ＣＨ）ｄ＝（式中、ｄは０又は１〜５の整数を意味する）で示される基を意味する。
Ｔ，Ｑ，ｑ，Ｋは前記と同様の意味を有する。〕
（Ｂ）式に含まれる化合物の中で更に好ましい化合物群としては、次の一般式で表される化合物（Ｃ）をあげることができる。
2004110444.tif 000044
（式中、Ｊ１，Ｂ１，Ｋは前記と同様の意味を有する。）
2004110444.tif 000045
（Ｃ）式に含まれる化合物の中で更に好ましい化合物群としては、次の一般式で表される化合物（Ｄ）をあげることができる。
2004110444.tif 000046
（式中、Ｊ２はフェニル基が置換されてもよいインダノニル、インダンジオニル、インダノリデニル基から選択された基を意味する。
Ｋ１は置換若しくは無置換のフェニル基、置換されてもよいアリールアルキル基、置換されてもよいシンナミル基を意味する。
Ｂ１は前記と同様の意味を有する。）
３．神経細胞保護
本発明において、中枢神経系の神経細胞とは、脳由来の成熟した神経細胞（好ましくは、神経回成に取り込まれ機能的に成熟したヒト又はヒト以外の哺乳動物由来の中枢神経系の神経細胞）を意味し、大脳皮質、中隔野及び海馬からなる群から選択されるいずれかに由来する細胞である。
本発明において、中枢神経系の神経細胞保護とは、中枢神経系の神経細胞に対する脳虚血等の虚血様作用によるもの、ＮＭＤＡ（Ｎ−ｍｅｔｈｙｌ−Ｄ−ａｓｐａｒｔａｔｅ）、カイニン酸など興奮性物質による興奮性毒性によるもの、ペプチド又はタンパク質の凝集体毒性（Ａβ毒性、プリオン毒性を含む）によるもの、ＮＯ（ｎｉｔｒｉｃ  ｏｘｉｄｅ）や活性酸素種によるものの他、様々の負荷に対する保護作用をいう。また、脳虚血により誘発される神経細胞傷害には、例えば脳卒中、脳梗塞、脳塞栓（最近ではアルツハイマーの原因とも言われている）などの、脳神経の変性疾患等の傷害を含む。当該ペプチド又はタンパク質の凝集体毒性、特にＡβ毒性は、アルツハイマー病又はダウン症に伴って誘発されるものも含まれる。
当該神経細胞保護は、例えば、中枢神経系の神経細胞に対する負荷（例えば、ストレス、栄養障害、病気、外傷、手術などによる体力低下、衰弱、老化など、恒常性維持に好ましくない物理的または化学的な障害もしくは細胞毒性作用）による神経細胞死を実際に防止する作用のほか、神経細胞の機能低下を防止する作用を含む広い意味に用いる。
神経細胞が保護されたか否かを調べるためには、神経細胞を調製する必要がある。この場合、細胞は特に限定されるものではなく、生体試料から調製した初代培養細胞であってもよい。生体試料からの初代培養細胞の調製方法は、例えば、大脳皮質由来の初代培養神経細胞は大脳皮質より得ることができ、中隔野細胞由来の初代培養神経細胞は、中隔部位、つまり中隔野及び前脳基底核を含む部位から得ることができる。
細胞の採取源となる動物種は、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ等のいずれでもよく、特に限定されるものではない。細胞は、胎仔から成体までのいずれの成長過程からも採取することもできるが、胎仔（例えば胎生１８日齢）から調製することが好ましい。採取した組織を、トリプシン処理又はコラゲナーゼ等で処理することにより、神経細胞を得ることができる。
細胞培養は、通常の動物細胞の培養方法で行うことができ、当業者であれば、適当な培養条件を設定することができる。
４．神経細胞保護剤、保護方法
前述の化合物Ｑは、神経細胞（中でも中枢神経系の神経細胞）の障害に対して保護作用を有する。また、アセチルコリンエステラーゼ遺伝子（ＡＣｈＥ遺伝子）のｓｉＲＮＡは、ＡＣｈＥ遺伝子の発現を抑制してＡＣｈＥの機能を阻害し、Ａβの産生を抑制する。したがって、本発明において化合物Ｑ又は後述のＡＣｈＥ遺伝子のｓｉＲＮＡは、上記脳卒中、脳梗塞、脳塞栓などの脳神経の変性疾患中枢神経保護剤、神経細胞障害の予防剤、治療剤及び／又は予後改善剤（以下、「本発明の保護剤等」ともいう）の有効成分として有用であり、アルツハイマー病及びダウン症等の治療剤、治療方法、予後改善剤及び予後改善方法が提供される。
本発明の保護剤等の有効成分（例えば、塩酸ドネペジル）は、無水物であってもよく、水和物を形成していてもよい。また、例えば、上記ドネペジルには結晶多型が存在することもあるがこれに限定されず、いずれかの結晶形が単一であってもよいし、結晶形混合物であってもよい。
本発明において用いる化合物Ｑ（例えば塩酸ドネペジル）は、公知の方法で製造することができる。代表的な例として、特開平１−７９１５１号公報、特許２５７８４７５号公報、特許２７３３２０３号公報、あるいは特許３０７８２４４号公報に開示されている方法により容易に製造することができる。また、塩酸ドネペジルは、細粒剤等の製剤としても入手できる。
本発明において用いるｓｉＲＮＡは、後述の方法に従って設計し、当業者であれば核酸合成装置等を用いた公知の方法で製造することができる。
本発明の保護剤等には、化合物ＱまたはＡＣｈＥ遺伝子のｓｉＲＮＡをそのまま用いることも、公知の薬学的に許容できる担体等を配合して製剤化することも可能である。このような薬学的に許容できる担体としては、例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味矯臭剤、安定化剤、乳化剤、吸収促進剤、界面活性剤、ｐＨ調整剤、防腐剤、抗酸化剤等を挙げることができる。製剤化の剤形としては、経口的投与形態に用いられる錠剤、散剤、細粒剤、顆粒剤、カプセル剤、シロップ剤等が、また非経口的投与形態に用いられる坐剤、注射剤、軟膏剤、バップ剤等が挙げられる。
また、本発明の保護剤等の投与形態は特に限定されず、経口又は非経口的に投与することができる。例えば、経口投与形態として、塩酸ドネペジルの細粒剤は商品名アリセプト細粒（エーザイ株式会社）、錠剤は商品名アリセプト錠（エーザイ株式会社）として入手することができる。あるいは、非経口投与の形態として、経皮吸収、静脈内注射、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射又は腹腔内注射などが挙げられるが、好ましくは静脈内注射である。また、注射剤は、非水性の希釈剤（例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール等のグリコール、オリーブ油等の植物油、エタノール等のアルコール類など）、懸濁剤又は乳濁剤として調製することが可能である。注射剤の無菌化は、フィルターによる濾過滅菌、殺菌剤の配合等により行えばよい。また、注射剤は、用時調製の形態として製造することができる。即ち、凍結乾燥法などによって無菌の固体組成物とし、使用前に無菌の注射用蒸留水または他の溶媒に溶解して使用することができる。貼布剤として経皮吸収により投与する場合には、塩を形成しない、いわゆるフリー体を選択することが好ましい。
経口投与における化合物Ｑの投与量は、塩酸ドネペジルを例にあげると、好ましくは、０．１〜１００ｍｇ／日であり、さらに好ましくは１．０〜５０ｍｇ／日であり、また、ＡＣｈＥ遺伝子のｓｉＲＮＡの好ましい投与量としては、０．０１〜１００ｍｇ／日であり、さらに好ましくは０．１〜５０ｍｇ／日である。
非経口投与において、貼布剤の場合、好ましい投与量としては、５〜５０ｍｇ／日であり、さらに好ましくは１０〜２０ｍｇ／日である。また、注射剤の場合には、生理食塩水又は市販の注射用蒸留水等の薬学的に許容される担体中に０．１μｇ／ｍｌ担体〜１０ｍｇ／ｍｌ担体の濃度となるように溶解または懸濁することにより製造することができる。このようにして製造された注射剤の投与量は、処置を必要とする患者に対し、０．０１〜５．０ｍｇ／日であり、さらに好ましくは０．１〜１．０ｍｇ／日であり、一日あたり１〜３回に分けて投与することができる。
５．機能評価方法
本発明の神経細胞保護剤が、虚血性の傷害から神経細胞を保護する効果については、ＯＧＤ（Ｏｘｙｇｅｎ  Ｇｌｕｃｏｓｅ  Ｄｅｐｒｉｖａｔｉｏｎ：酸素グルコース除去）試験によって評価することが可能である。また、本発明の神経細胞保護剤が、興奮性毒性から神経細胞を保護する効果については、ＮＭＤＡまたはカイニン酸刺激試験によって評価することが可能である。さらに、本発明の神経細胞保護剤が、Ａβ毒性から神経細胞を保護する効果については、Ａβ毒性試験またはＡβ凝集試験によって評価することが可能である。以下、それぞれの試験方法について説明する。
（１）ＯＧＤ試験
ＯＧＤ試験では、ラット初代培養大脳皮質神経細胞に対して酸素・グルコース除去による負荷を与えることによって虚血様細胞傷害を誘発するというモデルを用いる。そして、当該モデルにおいて、塩酸ドネペジルが前記虚血様傷害に対して神経細胞保護作用を有するかどうかの検討を行う。
本実施例においては、初代培養神経細胞はラット胎仔（胎生１７−１９日齢）の大脳皮質より得ることができる。細胞は通常の動物細胞の培養環境下、例えば、３７℃、５％ＣＯ２環境下で、７日以上培養したものを用いることができる。ＯＧＤ処理は、培養したラット初代培養大脳皮質神経細胞をグルコースの入っていない緩衝液中に置き、続いて密閉されたチャンバーに移し、窒素置換を行い低酸素環境にすることによって行う。ＯＧＤ処理後の細胞は、グルコースの入っていない緩衝液から細胞培養用溶液に置換し、３７℃、５％ＣＯ２環境下で一晩培養する。
（Ａ）化合物Ｑ、例えばドネペジルにより虚血性の傷害から神経細胞を保護の効果が認められるか否かを明らかにするには、まず、ＯＧＤ処理の前後で当該化合物を添加した条件で本実施例を行えばよい。例えば、ＯＧＤ処理の１２時間前からドネペジルを添加したＰｒｅ−１２ｈ、ＯＧＤ処理の１時間前からドネペジルを添加したＰｒｅ−１ｈ及びＯＧＤ処理の１時間後からドネペジルを添加したＰｏｓｔ−１ｈと、ＯＧＤ処理をしなかったＣｏｎｔ及びＯＧＤ処理前後にドネペジルを加えなかったＶｅｈｉｃｌｅとの神経細胞保護作用を比較する。神経保護作用の指標としては、ＬＤＨの放出の抑制率を用いることができる。ＬＤＨ（ｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）は細胞質に存在する酸化還元酵素であり、ピルビン酸を乳酸へと変換し、それに伴って細胞内のＮＡＤＨ（ｎｉｃｏｔｉｎａｍｉｄｅ  ａｄｅｎｉｎｅ  ｄｉｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）量を減少させる。したがって、細胞がＯＧＤにより傷害を受けるとＬＤＨが細胞内から細胞外の溶液中に流出し、その溶液には細胞の傷害度（細胞死）に応じてＬＤＨが存在することになる。また、溶液中に存在するＬＤＨの量はその溶液にピルビン酸、および、ＮＡＤＨを加え、ＮＡＤＨの減少率を吸光度計により測定することによって分かる。本試験例により、ＯＧＤ処理の１２時間前からドネペジルを添加した場合（Ｐｒｅ−１２ｈ）に、もっとも神経保護効果を奏することが示される。
（Ｂ）また、前述のようにＯＧＤ処理したラット初代培養神経細胞を顕微鏡により形態を観察することにより、細胞の受けた傷害の程度、または化合物による神経細胞の保護の程度を観察することもできる。Ｖｅｈｉｃｌｅ処置細胞は、コントロール細胞と比較して、正常な形態をとらない。一方、ＯＧＤ処理前にドネペジルを処置した場合には、Ｖｅｈｉｃｌｅ処置細胞ほどの細胞の傷害はみられず、ＯＧＤ処理前の神経細胞に近い形態を示す。従って、細胞形態の側面からも、ＯＧＤ処理前にドネペジルを添加することにより、神経細胞が保護されているということが示される。
（Ｃ）さらに、前述の試験と同様の操作により、ラット初代培養神経細胞をＯＧＤ処理し、その際に各種アセチルコリンエステラーゼ阻害剤（ガランタミン、タクリン、リバスチグミン）及びドネペジルを用いてそれぞれの濃度を変えて細胞に添加した際のＬＤＨ放出に及ぼす影響について試験を行うこともできる。この試験において、ドネペジルのアセチルコリンエステラーゼ５０％阻害濃度はリバスチグミンとほぼ同等であるが、リバスチグミンや他のアセチルコリンエステラーゼ阻害剤は神経細胞保護作用を示さなかった。従って、ドネペジルによるＯＧＤ処置神経に対する神経保護作用がアセチルコリンエステラーゼ阻害作用とは異なる作用機序に基づくものであることを示唆している。
（Ｄ）次に、前述のドネペジルの神経細胞保護作用が、アセチルコリン受容体を介するものであるのかを調べるために、アセチルコリン受容体アンタゴニストであるスコポラミン（ムスカリン受容体アンタゴニスト）及びメカミラミン（ニコチン受容体アンタゴニスト）を細胞に添加した際にドネペジルによる保護作用がどのように影響を受けるのかを調べる。本試験により、ドネペジルの神経細胞保護作用は、スコポラミン及びメカミラミンの添加により影響は受けず、従って、ドネペジルの神経細胞保護作用は、アセチルコリン受容体を介するものではないことを示している。
（２）興奮性毒性試験
（Ａ）ＮＭＤＡ毒性
興奮性毒性試験では、初代培養神経細胞におけるＮＭＤＡ（Ｎ−ｍｅｔｈｙｌ−Ｄ−ａｓｐａｒｔａｔｅ）毒性に対する化合物（例えばドネペジル）の細胞保護作用を検討する。ラット初代培養大脳皮質神経細胞に対してＮＭＤＡ刺激を与えることによって細胞傷害を誘発するモデルを用いる。方法は、前述のようにして得られたラット初代培養神経細胞に対して、ＮＭＤＡを添加（例えば１００μＭを９時間添加）し、その後、培養液中に存在するＬＤＨの量を測定すればよい。ドネペジルはＮＭＤＡ刺激を加える前、例えば１２時間前から細胞に添加しする。そして、ＮＭＤＡ添加後、例えば９時間後に培養液中に存在するＬＤＨの量を測定し、神経保護作用の指標とすることができる。
本試験によりドネペジルはＮＭＤＡ興奮性毒性に対して濃度依存的に神経細胞保護効果を示すことが明らかである。
（Ｂ）カイニン酸毒性
カイニン酸は、アルツハイマー病の原因因子の一つとされているβ−アミロイドが誘発する神経細胞死を増強するといわれている。本試験では、ラット初代培養大脳皮質神経細胞において、カイニン酸により誘発される細胞傷害に対して、化合物（例えば、ドネペジル）による細胞保護作用を検討する。
カイニン酸処置は、例えば、７日以上培養した細胞の培地にカイニン酸を加え、３７℃、５％ＣＯ２環境下で一晩培養すればよい。化合物Ｑ（例えばドネペジル）は、カイニン酸刺激を加える前、例えば２４時間前から細胞に添加する。そしてカイニン酸添加後、例えば２４時間後に培養液中に存在するＬＤＨの量を測定し、神経保護作用の指標することができる。本試験において、ドネペジルは、用量依存的に神経細胞のＬＨＤ放出を抑制することから、ドネペジルはカイニン酸興奮性毒性に対して濃度依存的に保護効果を示すことが明らかである。
（３）Ａβ毒性試験またはＡβ凝集試験
（Ａ）培養中隔野神経細胞
Ａβはアルツハイマー病の原因と考えられており、また、アルツハイマー病では、記憶や学習に関与する中枢のコリン作動性神経が脱落する。そして、コリン作動性神経は、中隔野から海馬などのアルツハイマー病で障害を受けやすい領域に投射されている。以上の知見と、塩酸ドネペジルの投与によってアルツハイマー病による海馬の体積減少が抑制されることを考慮すると、コリン作動性神経において、化合物（例えば、ドネペジル）のＡβ毒性に対する保護効果及びＡβ凝集抑制効果を解析することが好ましい。
中隔野神経細胞の多くは、アセチルコリン合成酵素であるコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）を有するために、コリン作動性神経であると考えられる。本発明では、コリン作動性神経である前記中隔野神経細胞において、ドネペジルによるＡβ凝集抑制作用によるコリン作動性神経細胞の毒性に対する細胞保護効果を初めて示したものである。
中隔野神経細胞は、生体から採取し、培養することで得ることができ、その由来はマウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ等のいずれでもよく、種に限定されない。細胞は、胎仔から成体までのいずれの成長過程からも採取することもできるが、胎仔（例えば胎生１８日齢）から調製することが好ましい。脳の中隔部位、つまり、中隔野及び前脳基底核を含む部位を切り出し、トリプシン処理を行うことで細胞を得ることができる。
中隔野神経細胞は、前記のように得られた細胞を、培養プレートに適当な濃度で播種しての培養することができる。培養プレートは、ポリＤ−リジンでコートしたプレートであることが好ましく、濃度は、例えば９６ウェルポリＤ−リジンコートプレートにウェルあたり１．２×１０５細胞で播種することが好ましい。培地は、５％ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍを含むＤＭＥＭを用いることができ、ＤＭＥＭは、５μｇ／ｍｌ  ｉｎｓｕｌｉｎ、３０ｎｍｏｌ／Ｌ  ｓｏｄｉｕｍ  ｓｅｌｅｎｉｔｅ、１００μｍｏｌ／Ｌ  ｐｕｔｒｅｃｉｎｅ、２０ｎｍｏｌ／Ｌ  ｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ、１５ｎｍｏｌ／Ｌ  ｂｉｏｔｉｎ、１００ｕｎｉｔｓ／ｍｌ  ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ、１００μｇ／ｍｌ  ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ、１ｍｍｏｌ／Ｌ  ｓｏｄｉｕｍ  ｐｙｒｕｖａｔｅ等を含むことがより好ましい。
培養中隔野神経細胞がコリン作動性神経であることの確認は、上記のようにＣｈＡＴの発現を指標に用いて行うことができる。ＣｈＡＴの発現の有無は、培養中隔野神経細胞を抗ＣｈＡＴ抗体で免疫染色して確認することができる。
（Ｂ）Ａβ凝集の検出
本発明において、Ａβの凝集はＡβのβ−シート構造形成に起因する２１５〜２６０ｎｍにおけるＣＤ（ｃｉｒｃｕｌａｒ  ｄｉｃｈｒｏｉｓｍ）スペクトルの変化を指標に用いて検討することができる。２１５〜２６０ｎｍにおけるＣＤ（ｃｉｒｃｕｌａｒ  ｄｉｃｈｒｏｉｓｍ）スペクトルは、Ａβがα−ヘリックス構造又はβ−シート構造を形成すると減少する。特に、β−シート構造の形成は、２１５ｎｍ周辺のＣＤスペクトルを減少させることが知られている。
また別の態様として、培養液中でのＡβの凝集を簡便に検討するためＴｈｉｏｆｌａｖｉｎ  Ｔを用いてＡβの蛍光を測定することができる。細胞にＡβ（１−４２）を添加４８時間後、培地を採って１０μｍｏｌ／ＬのＴｈｉｏｆｌａｖｉｎ−Ｔを添加し、直後にｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ波長４５０ｎｍ，ｅｍｉｓｓｉｏｎ波長４９０ｎｍで蛍光測定する（Ｗａｌｌ  Ｊ．，Ｓｃｈｅｌｌ  Ｍ．，Ｍｕｒｐｈｙ  Ｃ．，Ｈｒｎｃｉｃ  Ｒ．，Ｓｔｅｖｅｎｓ  Ｆ．Ｊ．，Ｓｏｌｏｍｏｎ  Ａ．（１９９９）Ｔｈｅｒｍｏｄｙｎａｍｉｃ  ｉｎｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｌａｍｂｄａ  ６  ｌｉｇｈｔ  ｃｈａｉｎｓ：ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ｆｉｂｒｉｌｌｏｇｅｎｉｃｉｔｙ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ．３８（４２），１４１０１−１４１０８．）。
（Ｃ）Ａβ毒性の検出
Ａβはβ−シート構造をとるとＡβ繊維の固まりを形成しやすくなり、毒性を示すことが知られている。本発明においてＡβ毒性の検出は、中隔野神経細胞にＡβを添加した後に、細胞障害を測定する公知の方法を用いて行なうことができ、次に好適な代表例を記載するがこれに限定されない。例えば、上記（１）と同様に培地中のＬＤＨ量を指標に用いて検討する。あるいは、本発明において、Ａβ毒性は、中隔野神経細胞にＡβを添加した後に、ＭＴＴ（ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ）−２，５−ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍｂｒｏｍｉｄｅ）アッセイによって検討する。ＭＴＴアッセイの方法は、例えば、ＭＴＴ（シグマ社製）を培地中に終濃度が１ｍｇ／ｍｌになるように加え、３７℃で１時間インキュベーション後、培地を取り除き、細胞をＤＭＳＯで可溶化し、その吸光度（５５０ｎｍ）を測定すればよい。あるいは、ａｌａｍａｒ  ｂｌｕｅによる細胞障害測定方法によって検討する。ａｌａｍａｒ  ｂｌｕｅによる該方法は、培地の１０分の１量のａｌａｍａｒ  ｂｌｕｅ（和光純薬社製）を加え、５％ＣＯ２環境下で反応させる。４時間後、励起波長５３０ｎｍ，蛍光波長５９０ｎｍ，ｇａｉｎ  ３５で測定する。培地のみを０％，コントロールを１００％として換算する。
細胞に添加するＡβは、全長のＡβを用いてもよいし、Ｎ末端から４０残基のみのＡβ（１−４０）を用いてもよいし、βシート構造をとる配列である限り、いずれの長さのＡβを用いてもよい。
また、Ａβ毒性による細胞死の程度は抗ＭＡＰ２抗体による免疫染色によっても検討することができる。前記のＭＡＰ２は神経細胞のマーカーであるため、ＭＡＰ２を発現する細胞の量から、Ａβ毒性による神経細胞の脱落の程度を確認することができる。あるいは、トリパンブルーによる細胞障害測定方法によって検討する。トリパンブルー（和光純薬社製）を加え、濃青で染色されない細胞を生細胞として数を数える。
（Ｄ）中隔野神経細胞のＡβ毒性に対する神経保護剤及びＡβ凝集抑制剤
アセチルコリンエステラーゼ（ＡＣｈＥ）遺伝子のｓｉＲＮＡを、中隔野神経細胞に添加すると、細胞内のＡＣｈＥ活性が低下する。ｓｉＲＮＡの処置によりＡβ毒性に対する中隔野神経細胞の障害が緩和されることが、上記（Ｃ）のＬＤＨを測定することにより示される。
また、当該ｓｉＲＮＡを添加した中隔野神経細胞において、ｓｉＲＮＡの処置によりＡβ凝集作用が抑制されることが、上記（Ｂ）のＣＤスペクトルを測定することにより示される。
以上のことから、中隔野神経細胞のＡβ毒性及びＡβ凝集には、ＡＣｈＥが関与していることを明らかである。従って、アセチルコリンエステラーゼの機能阻害作用を有する化合物であって、実質的にアセチルコリンエステラーゼとＡβとの相互作用を抑制する作用を併せ持つ化合物を含有するＡβ凝集抑制剤は、本発明に含まれる。
「相互作用」とは、アセチルコリンエステラーゼとＡβが結合することを意味する。「実質的にアセチルコリンエステラーゼとＡβとの相互作用を抑制する」とは、アセチルコリンエステラーゼ存在下にＡβの凝集が促進されることを抑制することであることを意味する。そして、Ａβ毒性が阻害される限り、「実質的」に相互作用が抑制されるといえる。
アセチルコリンの機能低下作用は、アセチルコリンエステラーゼの活性阻害によるものであっても、アセチルコリンエステラーゼ遺伝子の発現阻害によるものであってもよい。
ＡＣｈＥの活性阻害は、アセチルコリンとＡβとの相互作用を抑制する限り、ＡＣｈＥの酵素活性を阻害するものであれば、いずれの化合物であってもよく（例えば下記式の塩酸ドネペジル）、また、抗ＡＣｈＥ抗体であってもよい。
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ＡＣｈＥ遺伝子の発現阻害は、アセチルコリンとＡβとの相互作用を抑制し、かつ、ＡＣｈＥ遺伝子の発現を阻害するものであれば、ＲＮＡｉを生ずるいずれの核酸（ｓｉＲＮＡやｓｈＲＮＡ）であってもよい。ＲＮＡｉによりＡＣｈＥ遺伝子の発現を抑制するには、例えばＡＣｈＥ遺伝子に対するｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ  ＲＮＡ）または、ｓｈＲＮＡ（ｓｈｏｒｔ  ｈａｉｒｐｉｎ  ＲＮＡ）を設計及び合成し、これを作用させてＲＮＡｉを起こさせればよい。ｓｉＲＮＡは、細胞内でＤｉｃｅｒによってプロセッシングを受けて産生される短鎖ＲＮＡである。一方、ｓｈＲＮＡはヘアピン構造に折り畳まれた小さなＲＮＡ分子であり、センス鎖とアンチセンス鎖をループでつないだステムループ構造を持つ。
ｓｉＲＮＡの設計基準は以下の通りである。
（ａ）ＡＣｈＥをコードする遺伝子の開始コドンの下流の領域を選択する。開始コドンより下流の配列であれば特に限定されるものではなく、任意の領域を全て候補にすることが可能である。
（ｂ）選択した領域から、ａａで始まる連続する１１〜３０塩基、好ましくは２１〜２５の配列を選択する。
具体的には、以下の塩基配列を標的配列とし、この標的配列を含み、かつ、３０塩基以下、例えば１１〜３０塩基の長さ（好ましくは２１〜２５塩基の長さ）の配列をｓｉＲＮＡとして使用することができる（（ｉ−１）と（ｉ−２）、及び（ｉｉ−１）と（ｉｉ−２））。
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本発明においてＡＣｈＥ遺伝子のｓｉＲＮＡは、（ｉ−１）と（ｉ−２）との組み合わせ、及び（ｉｉ−１）と（ｉｉ−２）との組み合わせで形成する二本鎖ＲＮＡの形で用いることが好ましい。
また、ｓｈＲＮＡの設計基準は以下の通りである。
（ａ）ＲＮＡｉに使用するＡＣｈＥに対するｓｈＲＮＡ配列は、遺伝子に特異的な５’末端領域から３００塩基までの間で設計する（Ｅｌｂａｓｈｉｒ，Ｓ．Ｍ．ｅｔ．ａｌ．Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．１５，１８８−２００（２００１））。
（ｂ）それぞれの遺伝子転写産物の５’末端に近い領域から、ａａ又はａから始まるｍＲＮＡ配列を標的配列として選択及び設計する。標的領域の長さは特に限定されるものではなく、好ましくは３０ｂｐ以下、より好ましくは２１〜２５ｂｐ程度である。
ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡを培養中隔野神経細胞に導入するには、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで合成したｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡをプラスミドＤＮＡに連結してこれを細胞に導入する方法、２本のＲＮＡをアニールする方法などを採用することができる。
また、Ａβ凝集抑制効果を示すｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡの構造解析から予想される化合物であって、Ａβ凝集抑制効果を有するものも本発明に含まれる。
（Ｅ）コリンエステラーゼ阻害剤又はコリンエステラーゼ遺伝子のｓｉＲＮＡによるＡβ凝集抑制作用及びＡβ毒性に対する保護作用の検出
本発明は、Ａβ凝集抑制作用を有する化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法を提供する。つまり、中枢神経系の神経細胞に、Ａβの存在下に被検化合物（候補化合物）を添加したときの２１５〜２６０ｎｍ、特に２１５ｎｍにおけるＣＤスペクトルの減少を測定することで、Ａβの凝集を抑制する化合物のスクリーニングを行うことができる。被検化合物がＡβ凝集抑制作用を有するかの判断は、被検化合物によるＡβ凝集量を、候補化合物の非存在下におけるＡβ凝集量と比較することで行うことができる。本発明は、上記方法に使用するためのＡβ凝集抑制作用を有する化合物又はその薬学的に許容される塩のスクリーニングキットも提供する。
本発明のキットには、Ａβ凝集抑制を上記（Ｂ）のＣＤスペクトル法で測定するために必要なものが含まれる。Ａβ凝集に必要なＡβ、ＣＤスペクトル測定時に使用される試薬類は、下記の実施例６及び７において使用したものが好適に用いられる。
また、本発明は、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物またはその薬理学的に許容される塩のスクリーニング方法を提供する。つまり、被検化合物及びＡβを培養中隔野神経細胞に添加したときの細胞傷害又は細胞死を検出することによって、Ａβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物のスクリーニングを行うことができる。上記の細胞障害又は細胞死は、上記（Ｃ）に記載のＬＤＨ量を測定することによって、あるいはＭＴＴアッセイ等によって検出することができる。本発明は、上記方法に使用するためのＡβ毒性によって誘発される中枢神経系の神経細胞障害の予防及び／又は治療に有効な化合物又はその薬学的に許容される塩のスクリーニングキットも提供する。
また、本発明のキットには、Ａβ毒性による神経細胞障害を上記（Ｃ）の細胞外ＬＤＨ量を指標に測定するために必要なもの、あるいは、ＭＴＴアッセイ等を実施するために必要なものが含まれる。Ａβ毒性による細胞障害の程度をＬＤＨで測定するために必要な試薬類は、下記の実施例１，２，３，５及び７において使用したものが好適に用いられるが、例えば、ＮＡＤＨ、ピルビン酸が挙げられる。また、Ａβ毒性による細胞障害の程度をＭＴＴで測定するために必要な試薬類は、例えばＭＴＴが挙げられる。
これらのキットを構成する各成分は、別個に用意してもよく、あるいは、支障がない限り共存させていてもよい。キットは溶液を含んでもよく、あるいはそのような溶液を配合するための成分が濃縮形態であってもよい。
さらに必要に応じて、本キットは補助剤、専用容器、その他の必要なアクセサリー、説明書などを含んでもよい。
本発明において、ドネペジルのようなアセチルコリンエステラーゼ阻害剤又はアセチルコリンエステラーゼ遺伝子のｓｉＲＮＡによるＡβ凝集抑制作用は、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤を、Ａβの添加前（例えば２４時間）に添加し、Ａβの添加後（例えば４８時間後）に、前述のＣＤスペクトルを測定することによって確認することができる。
また、同様に処置した細胞において、培地中のＬＤＨ量を測定することで、ドネペジルのようなアセチルコリンエステラーゼ阻害剤又はアセチルコリンエステラーゼ遺伝子のｓｉＲＮＡによるＡβ毒性に対する保護作用を確認することができる。
以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本実施例により本発明は限定されるものではない。
実施例１：ＯＧＤ試験
本実施例では、ラット初代培養大脳皮質神経細胞に対して酸素・グルコース除去による負荷を与えることによって虚血様細胞傷害を誘発するモデルを用いた。塩酸ドネペジルが前記虚血様傷害に対して神経細胞保護作用を有するかどうかの検討を行った。
本実施例においては、初代培養神経細胞はラット胎仔（胎生１７−１９日齢）の大脳皮質より得た。培養液はＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）に１０％ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ），１０％ｈｏｒｓｅ  ｓｅｒｕｍ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ），５？ｇ／ｍｌ  ｉｎｓｕｌｉｎ（Ｓｉｇｍａ），３０ｎＭ  ｓｏｄｉｕｍ  ｓｅｌｅｎｉｔｅ（Ｓｉｇｍａ），１００？Ｍ  ｐｕｔｒｅｃｉｎｅ（Ｓｉｇｍａ），２０ｎＭ  ｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ（Ｓｉｇｍａ），１５ｎＭ  ｂｉｏｔｉｎ（Ｓｉｇｍａ），１００ｕｎｉｔｓ／ｍｌ  ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ），１００？ｇ／ｍｌ  ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ），８ｍＭ  ｇｌｕｃｏｓｅ  ａｎｄ  １ｍＭ  ｐｙｒｕｖｉｃ  ａｃｉｄ（Ｓｉｇｍａ）を用い（参照文献Ｓｃｈｏｌｔｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９８８）、細胞は３７℃、５％ＣＯ２環境下で培養した。７日以上培養した後、ＯＧＤ処理を施こした。ＯＧＤ処理は、ラット初代培養大脳皮質神経細胞をグルコースの入っていない緩衝液：Ｋｒｅｂｓ−Ｒｉｎｇｅｒ  ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒ（５．３６ｍＭ  ＫＣｌ，１．２６ｍＭ  ＣａＣｌ２，０．４４ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４，０．４９ｍＭ  ＭｇＣｌ２，０．４１ｍＭ  ＭｇＳＯ４，１３７ｍＭ  ＮａＣｌ，４．１７ｍＭ  ＮａＨＣＯ３，０．３４ｍＭ  Ｎａ２ＨＰＯ４，１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４））中に置き、それから密閉されたチャンバーに移し、窒素置換し、低酸素環境にすることによって行った。ＯＧＤ処理後の細胞は、グルコースの入っていない緩衝液から細胞培養用溶液に置換し、３７℃、５％ＣＯ２環境下で一晩培養した。まず、ＯＧＤ処理の前後でドネペジルを添加することによって神経細胞保護の効果が認められるのか、また、変化するのかを検討した。ＯＧＤ処理の１２時間前からドネペジルを添加したＰｒｅ−１２ｈ、ＯＧＤ処理の１時間前からドネペジルを添加したＰｒｅ−１ｈ及びＯＧＤ処理の１時間後からドネペジルを添加したＰｏｓｔ−１ｈと、ＯＧＤ処理をしなかったＣｏｎｔ及びＯＧＤ処理前後にドネペジルを加えなかったＶｅｈｉｃｌｅとの神経細胞保護作用を比較した。神経保護作用の指標としては、ＬＤＨの放出の抑制率を用いた。ＬＤＨ（ｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）は細胞質に存在する酸化還元酵素であり、ピルビン酸を乳酸へと変換し、それに伴って存在しているＮＡＤＨ（ｎｉｃｏｔｉｎａｍｉｄｅ  ａｄｅｎｉｎｅ  ｄｉｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）量を減少させる。したがって、細胞がＯＧＤにより傷害を受けるとＬＤＨが細胞内から細胞外の溶液中に流出し、その溶液には細胞の傷害度（細胞死）に応じてＬＤＨが存在することになる。また、溶液中に存在するＬＤＨの量はその溶液にピルビン酸、および、ＮＡＤＨを加え、ＮＡＤＨの減少率を吸光度計により測定することによって分る。結果を図１に示す。図１から明らかなようにＰｒｅ−１２ｈが最も大きなＬＤＨ放出抑制作用を示し、以下Ｐｒｅ−１ｈ、Ｐｏｓｔ−１ｈと続いた。この結果により、ＯＧＤ処理の１２時間前からドネペジルを添加した場合に、神経細胞を効果的に保護するということが分かる。これ以降のＯＧＤ試験におけるドネペジルの添加時間はいずれも���ｒｅ−１２ｈに固定した。
次に、先ほどの試験と同様の操作によりラット初代培養細胞をＯＧＤ処理した際の神経細胞を、顕微鏡で観察した。結果を図２に示す。図２から明らかなように、Ｖｅｈｉｃｌｅ（Ｂ）ではコントロール（Ａ）と比較して細胞が正常な状態をとどめておらず、ＯＧＤによってダメージを受けていることが顕著である。一方、ＯＧＤ処理の前にドネペジルを添加した場合には、（Ｂ）に見られるような神経細胞のダメージは見られず、ＯＧＤ処理前の神経細胞の状態に近い状態であることが明らかである（Ｃ）。よって、ＯＧＤ処理前にドネペジルを添加することにより、神経細胞が保護されているということが示された。
次に、前述の試験と同様の操作により、ラット初代培養神経細胞をＯＧＤ処理し、その際に各種アセチルコリンエステラーゼ阻害剤（ガランタミン、タクリン、リバスチグミン）及びドネペジルを用いてそれぞれの濃度を変えて細胞に添加した際のＬＤＨ放出に及ぼす影響について試験を行った。添加した濃度は、ドネペジル、タクリン及びリバスチグミンは０．１，１．０，１０μＭ、ガランタミンは１．０，１０，１００μＭとした。結果を図３に示す。図３Ａより明らかなように、ドネペジルのみが用量依存的に神経細胞のＬＨＤ放出を統計上有意に抑制していることが分かる。ここで、それぞれのラット脳破砕懸濁液におけるアセチルコリンエステラーゼ阻害剤の５０％阻害濃度（ＩＣ５０）を表１に示す。
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表１から明らかなように、ドネペジルのアセチルコリンエステラーゼ５０％阻害濃度はリバスチグミンとほぼ同等であることが分かる。しかしながら、リバスチグミンや他のアセチルコリンエステラーゼ阻害剤は神経細胞保護作用を示さなかった。この結果は、神経保護作用がアセチルコリンエステラーゼ阻害作用とは異なる作用機序に基づくものであることを示唆している。
次に、ドネペジルの神経細胞保護作用が、アセチルコリン受容体アンタゴニストであるスコポラミン（ムスカリン受容体アンタゴニスト）及びメカミラミン（ニコチン受容体アンタゴニスト）を細胞に添加した際にどのように影響を受けるのかを、以下の実験により調べた。
前述の試験と同様に、ＯＧＤ処理の１２時間前からドネペジル、スコポラミン、メカミラミン、ドネペジルとスコポラミン、もしくは、ドネペジルとメカミラミンを神経細胞培養液中に添加し、ＯＧＤ処理によるＬＤＨ放出に及ぼす影響について試験を行った。添加した濃度は、ドネペジル、スコポラミン、メカミラミンのいずれも１０μＭとした。
結果を図４に示す。図４より明らかなように、ドネペジルの神経細胞保護作用は、Ｃｏｎｔ（ＯＧＤ処理なし）、Ｖｅｈｉ（ドネペジル添加なし）及びドネペジル添加のいずれのサンプルにおいてもアセチルコリン受容体アンタゴニストであるスコポラミン（図４Ａ）又はメカミラミン（図４Ｂ）の添加の有無によっては影響を受けていないということが分かる。これは、ドネペジルがアセチルコリン受容体の阻害の有無に関係なく神経細胞を保護しているということを示す。よって、本実験によりドネペジルはアセチルコリンエステラーゼ阻害作用以外の作用機序によって神経細胞保護的に作用していると考えられる。
実施例２：興奮性毒性試験
本実施例では、ＮＭＤＡ毒性に対するドネペジルの細胞保護作用を検討した。ラット初代培養大脳皮質神経細胞に対してＮＭＤＡ刺激を与えることによって細胞傷害を誘発するというモデルを用いた。実施例１のようにして得られたラット初代培養神経細胞に対してＮＭＤＡ  １００μＭを添加し、９時間後に培養液中に存在するＬＤＨの量を測定した。
本実施例においては、初代培養神経細胞はラット胎仔（胎生１７−１９日齢）の大脳皮質より得た。培養液は、ＭＥＭ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）にブドウ糖（１ｇ／Ｌ）、ｐｅｎｉｃｉ．／ｓｔｒｅｐｔ．（１００ｕｎｉｔ／ｍＬ）、１０％ＦＣＳを添加したものを用いた。培地交換は２，３日毎に行う。ＫＡ毒性を見るときは、培地をＮｅｕｒｏｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）にＢ−２７とグルタミン０．２５ｍＭを加えたものを用いた。細胞は３７℃、５％ＣＯ２環境下で培養した。７日以上培養した後、培地にＮＭＤＡ  １００μＭを加え、３７℃、５％ＣＯ２環境下で一晩培養した。ドネペジルはＮＭＤＡ刺激を加える１２時間前から細胞に添加した。そして、ＮＭＤＡ添加９時間後に培養液中に存在するＬＤＨの量を測定し神経保護作用の指標とした。
本実施例の結果を図５に示す。図５より、ドネペジルが０．１μＭから１０μＭの範囲で用量依存的に神経細胞のＬＤＨ放出を抑制していることが分かる。本実験により、ドネペジルはＮＭＤＡ興奮性毒性に対して濃度依存的に神経細胞保護効果を示すことが明らかとなった。
実施例３：興奮性毒性試験
カイニン酸は、アルツハイマー病の原因因子の一つとされているβ−アミロイド（Ａβ）が誘発する神経細胞死を増強するといわれている。本実施例では、カイニン酸をラット初代培養大脳皮質神経細胞に対して与えることによって細胞傷害を誘発するというモデルを用いた。
本実施例においては、初代培養神経細胞はラット胎仔（胎生１７−１９日齢）の大脳皮質より得た。細胞は３７℃、５％ＣＯ２環境下で培養した。７日以上培養した後、培地にＮＭＤＡまたはカイニン酸を加え、３７℃、５％ＣＯ２環境下で一晩培養した。ドネペジルは、カイニン酸刺激を加える２４時間前から細胞に添加した。そしてカイニン酸添加２４時間後に培養液中に存在するＬＤＨの量を測定し神経保護作用の指標とした。
本実施例の結果を図６に示す。図６より、ドネペジルが０．１μＭから１μＭの範囲で用量依存的に神経細胞のＬＤＨ放出を抑制していることが分かる。本実験によりドネペジルはカイニン酸興奮性毒性に対して濃度依存的に保護効果を示すことが明らかとなった。
以下の実施例４〜７において使用した試薬及び統計解析法は以下の通りである。
Ａβ（Ｈｕｍａｎ，１−４０）はペプチド研（Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）から購入した。Ｔｒｙｐｓｉｎ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ，ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ，ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ，Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ），ＨＥＰＥＳはＬｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｉｎｃ．（Ｇｒａｎｄ  Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）から購入した。Ｉｎｓｕｌｉｎ，ｓｏｄｉｕｍ  ｓｅｌｅｎｉｔｅ，ｐｕｔｒｅｓｃｉｎｅ，ＤＮａｓｅ  Ｉ，ｍｅｃａｍｙｌａｍｉｎｅ，ｓｃｏｐｏｌａｍｉｎｅはＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から購入した。Ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍとｈｅａｔ−ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｈｏｒｓｅ  ｓｅｒｕｍはＮｉｃｈｉｒｅｉ  Ｃｏ．（Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）から購入した。ＣｈＡＴ，ｍｉｃｒｏｔｕｂｕｌｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ−２（ＭＡＰ２）はＣｈｅｍｉｃｏｎ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｃ．（Ｔｅｍｅｃｕｌａ，ＣＡ）から購入した。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ５４６はＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ（Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）から購入した。Ｖｅｃｓｔａｉｎ  Ｅｌｉｔｅ  ＡＢＣ  ｋｉｔ，ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ（ＤＡＢ）ｋｉｔはＶｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，ＣＡ）から購入した。Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ  ２０００はＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  Ｃｏ．（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）から購入した。ｓｉＲＮＡは日本バイオサービス（Ｓａｉｔａｍａ，Ｊａｐａｎ）に合成を依頼した。
統計解析のデータは平均値±標準誤差で表示した。比較検定はＷｅｌｃｈ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔを用いた。ｐ＜０．０５を有意差ありとした。統計解析ソフトはＳＡＳ８．１（ＳＡＳ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  Ｊａｐａｎ  Ｌｔｄ．，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を用いた。
実施例４：中隔野神経細胞の培養及びコリン作動性神経であることの確認
中隔野神経細胞はウィスターラット（日本チャールズリバー）の胎仔（胎生１８日齢）から調製した。胎仔脳から中隔部位（中隔野および前脳基底核を含む）を切り出し、０．２５％トリプシンと０．２ｍｇ／ｍｌ  ＤＮａｓｅ  Ｉを含むＣａ２＋／Ｍｇ２＋−ｆｒｅｅ  Ｈａｎｋｓ’ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ中で、３７℃で１５分間インキュベーションした。得られた細胞に、１０％ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍ，１０％ｈｏｒｓｅ  ｓｅｒｕｍを加えたＤＭＥＭ（５μｇ／ｍｌ  ｉｎｓｕｌｉｎ，３０ｎｍｏｌ／Ｌ  ｓｏｄｉｕｍ  ｓｅｌｅｎｉｔｅ，１００μｍｏｌ／Ｌ  ｐｕｔｒｅｃｉｎｅ，２０ｎｍｏｌ／Ｌ  ｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ，１５ｎｍｏｌ／Ｌ  ｂｉｏｔｉｎ，１００ｕｎｉｔｓ／ｍｌ  ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ，１００μｇ／ｍｌ  ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ，１ｍｍｏｌ／Ｌ  ｓｏｄｉｕｍ  ｐｙｒｕｖａｔｅを含む）を加えてトリプシンを失活させ、細胞を２回洗浄した。９６−ｗｅｌｌのｐｏｌｙ−Ｄ−ｌｙｓｉｎｅ−ｃｏａｔｅｄ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｐｌａｔｅｓに、１．２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌの濃度で細胞を蒔いた。播種した細胞をＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃）で培養した。１日後、５％ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍを含む上記ＤＭＥＭで培地の３分の２を交換した。３日後に、再び５％ｆｅｔａｌ  ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍを含む上記ＤＭＥＭで培地の３分の２を交換した。６日後に、血清を含まない上記ＤＭＥＭ（但し、Ｇｌｎは含まない）で培地を全量交換した。
以上の方法で培養した中隔野神経細胞を、抗コリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）抗体で免疫染色した。まず、培養した中隔野神経細胞を中性ホルマリン溶液で６０分間固定した。５％ヤギ血清で３０分間インキュベーションした後、１％ヤギ血清存在下で５００倍希釈のＣｈＡＴ抗体で１日間インキュベーションした。続いて、細胞を５００倍希釈のｇｏａｔ  ａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ  ＩｇＧ及びＨＲＰ  ｌａｂｅｌｅｄ  ａｖｉｄｉｎ−ｂｉｏｔｉｎ  ｃｏｍｐｌｅｘで１時間インキュベーションした後、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅの基質としてＤＡＢを用いて細胞を染色した。
培養ラット中隔野神経細胞を抗ＣｈＡＴ抗体で免疫染色した結果を図７に示す。図７のスケールバーは０．１ｍｍを示す。免疫染色により、培養ラット中隔野神経細胞の多くはアセチルコリン合成酵素であるコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣｈＡＴ）を有することが示された。このことは、培養ラット中隔野神経細胞がコリン作動性神経であることを意味している。つまり、当該細胞がコリン作動性神経であることが確認できた。
これまでに、アルツハイマー患者脳におけるコリンアセチルトランスフェラーゼの減少は、認知障害の重さと相関があることが報告されている（Ｐｅｒｒｙ  Ｅ．Ｋ．，Ｔｏｍｌｉｎｓｏｎ  Ｂ．Ｅ．，Ｂｌｅｓｓｅｄ  Ｇ．，Ｂｅｒｇｍａｎ  Ｋ．，Ｇｉｂｓｏｎ  Ｐ．Ｈ．ａｎｄ  Ｐｅｒｒｙ  Ｒ．Ｈ．（１９７８）Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｈｏｌｉｎｅｒｇｉｃ  ａｂｎｏｒｍａｌｉｔｉｅｓ  ｗｉｔｈ  ｓｅｎｉｌｅ  ｓｅｎｉｌｅ  ｐｌａｑｕｅｓ  ａｎｄ  ｍｅｎｔａｌ  ｔｅｓｔ  ｓｃｏｒｅｓ  ｉｎ  ｓｅｎｉｌｅ  ｄｅｍｅｎｔｉａ．Ｂｒ．Ｍｅｄ．Ｊ．２，１４５７−１４５９．）。従って、中隔野神経細胞傷害の抑制の程度はアルツハイマー病患者での認知機能低下抑制につながるといえる。
実施例５：Ａβ（１−４０）毒性に対するドネペジルの保護効果及び細胞死実験
細胞障害の指標として、ＬＤＨ（ｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）を測定した。細胞には、実施例４の培養方法に従って７日間培養した中隔野神経細胞を用いた。中隔野神経細胞の培養培地に１５μｍｏｌ／ＬのＡβ（１−４０）を添加し、ＣＯ２インキュベーター（５％ＣＯ２、３７℃）で培養した。ドネペジル（０．０１，０．１，１，１０μｍｏｌ／Ｌ）、メカミラミン（１０μｍｏｌ／Ｌ）、スコポラミン（１０μｍｏｌ／Ｌ）はＡβ（１−４０）添加の２４時間前に加えた。Ａβ（１−４０）の添加４８時間後に、培地中のｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（ＬＤＨ）活性を測定した。同時に、細胞を０．５％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含むｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）で可溶化し、細胞中のＬＤＨも測定した。全体のＬＤＨ（細胞内及び培地中）の内、培地中に漏出したＬＤＨの量を計算し、％で表した（Ｋｏｈ  Ｊ．Ｙ．ａｎｄ  Ｃｈｏｉ  Ｄ．Ｗ．（１９８７）Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｇｌｕｔａｍａｔｅ  ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｃｏｒｔｉｃａｌ  ｎｅｕｒｏｎａｌ  ｉｎｊｕｒｙ  ｉｎ  ｃｅｌｌ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｂｙ  ｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ  ｅｆｆｌｕｘ  ａｓｓａｙ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｍｅｔｈ．２０，８３−９０．）。データはＡＮＯＶＡ及びＷｅｌｃｈ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔの解析手法で解析した。
結果を図８に示す。図８中、白カラムはＡβを加えない細胞を示し、灰色カラムはＡβを加えた細胞を示す。それぞれの値を平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．（ｎ＝２３−２５）で求めてグラフ化した。図８の「＊」はＰ＜０．０５、「＊＊」はＰ＜０．０１、及び「＊＊＊」はＰ＜０．００１であることを示す（「ｃｏｎｔｒｏｌ  ｃｅｌｌｓ」を対照とする）。
培養した中隔野神経細胞はＡβ（１−４０）で障害を受けやすかった（図８「ｃｏｎｔｒｏｌ  ｃｅｌｌｓ」）。Ａβ（１−４０）を４８時間加えたときの毒性に対して、ドネペジルは０．１μｍｏｌ／Ｌから有意に保護効果を示した（図８）。ドネペジルによるＡβ（１−４０）毒性の抑制効果は、アセチルコリン受容体拮抗剤であるメカミラミン及びスコポラミンで阻害されなかった（図８）。
次に、上記のようにＡβ（１−４０）で処置した培養マウス中隔野神経細胞を、抗ＭＡＰ２抗体で免疫染色した。ＭＡＰ２は神経細胞のマーカーとして用いられている（Ｈｅｒｚｏｇ  Ｗ．ａｎｄ  Ｗｅｂｅｒ  Ｋ．（１９７８）Ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｂｒａｉｎ  ｍｉｃｒｏｔｕｂｕｌｅ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｗｏ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｗｈｉｃｈ  ｓｔｉｍｕｌａｔｅ  ｔｕｂｕｌｉｎ  ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ．Ｅｕｒ  Ｊ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．９２（１），１−８）。ＭＡＰ２染色は、上記実施例４の免疫染色の方法に準じて行い、中隔野神経細胞に１５μｍｏｌ／ＬのＡβ（１−４０）を４８時間添加後、細胞を固定して免疫染色した。ドネペジルはＡβ（１−４０）添加の２４時間前から加えた。細胞を固定した後、３００倍に希釈した抗ＭＡＰ２抗体で一日間インキュベーションし、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ５４６を蛍光基質として用いて検出した。
結果を図９に示す。スケールバーは０．１ｍｍを示す。ＡはＡβ（１−４０）を加えないコントロールの細胞を示す。ＢはＡβ（１−４０）を加えた細胞を示す。Ｃ，Ｄ，ＥはそれぞれＡβ（１−４０）とドネペジル（０．１，１，１０μｍｏｌ／Ｌ）とを加えた細胞を示す。左側の写真はＨｏｆｆｍａｎ  ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎによる明視野の写真である。右側の写真は蛍光の写真である。Ａβ（１−４０）を４８時間加えると、ＭＡＰ２に染色される神経細胞が減少した（図９Ｂ）。ドネペジルは、Ａβ（１−４０）によるＭＡＰ２染色細胞の障害を抑制することが認められた（図９）。
実施例６：Ａβ（１−４０）の凝集に対するドネペジルの効果
培養液中でのＡβ（１−４０）の構造状態を検討するためにＣＤスペクトルを測定した。Ａβはβ−シート構造をとるとＡβ繊維の固まりを形成しやすくなり、毒性を示すことが知られている（Ｈｏｗｌｅｔｔ  Ｄ．Ｒ．，Ｊｅｎｎｉｎｇｓ  Ｋ．Ｈ．，Ｌｅｅ  Ｄ．Ｃ．，Ｃｌａｒｋ  Ｍ．Ｓ．，Ｂｒｏｗｎ  Ｆ．，Ｗｅｔｚｅｌ  Ｒ．，Ｗｏｏｄ  Ｓ．Ｊ．，Ｃａｍｉｌｌｅｒｉ  Ｐ．ａｎｄ  Ｒｏｂｅｒｔｓ  Ｇ．Ｗ．（１９９５）Ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ  ｓｔａｔｅ  ａｎｄ  ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｃ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  ｏｆ  Ａｌｚｈｅｉｍｅｒ  ｂｅｔａ−ａｍｙｌｏｉｄ  ｐｅｐｔｉｄｅ．Ｎｅｕｒｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ．４，２３−３２．）。また、Ａβ（１−４０）がα−ヘリックス構造またはβ−シート構造をとると、２０５ｎｍから２２５ｎｍにおけるＣＤ（ｃｉｒｃｕｌａｒ  ｄｉｃｈｒｏｉｓｍ）スペクトルが減少することが知られている（Ｓｒｅｅｒａｍａ  Ｎ．，Ｖｅｎｙａｍｉｎｏｖ  Ｓ．Ｙ．ａｎｄ  Ｗｏｏｄｙ  Ｒ．Ｗ．（２０００）Ｅｓｔｉｍａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｆｒｏｍ  ｃｉｒｃｕｌａｒ  ｄｉｃｈｒｏｉｓｍ  ｓｐｅｃｔｒａ：ｉｎｃｌｕｓｉｏｎ  ｏｆ  ｄｅｎａｔｕｒｅｄ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ｗｉｔｈ  ｎａｔｉｖｅ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ａｎａｌｙｓｉｓ．Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２８７，２４３−２５１、Ｂｏｋｖｉｓｔ  Ｍ．，Ｌｉｎｄｓｔｒｏｍ  Ｆ．，Ｗａｔｔｓ  Ａ．ａｎｄ  Ｇｒｏｂｎｅｒ  Ｇ．（２００４）Ｔｗｏ  ｔｙｐｅｓ  ｏｆ  Ａｌｚｈｅｉｍｅｒ’ｓ  ｂｅｔａ−ａｍｙｌｏｉｄ（１−４０）ｐｅｐｔｉｄｅ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ：ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇ  ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ  ａｎｃｈｏｒｉｎｇ  ｖｅｒｓｕｓ  ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｄ  ｓｕｒｆａｃｅ  ｆｉｂｒｉｌ  ｆｏｒｍａｔｉｏｎ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３３５，１０３９−４９．）。特に、β−シート構造の形成は２１５ｎｍ周辺のＣＤスペクトルを減少させることが知られている。そこで、Ａβの凝集の指標として、ＣＤを測定した。
培養した中隔野神経細胞に１５μｍｏｌ／ＬのＡβ（１−４０）を加え、添加４８時間後に培地を採取し、２１５ｎｍ〜２６０ｎｍのＣＤスペクトルを測定した。ＣＤスペクトル測定にはＪＡＳＣＯ（日本分光、Ｊ−７２０ＷＩ）を使用した。
結果を図１０に示す。Ａはｄｏｎｅｐｅｚｉｌを加えない細胞を示す。Ｂはｄｏｎｅｐｅｚｉｌ（１０μＭ）を加えた細胞を示す。実線はＡβを加えない細胞、破線はＡβを加えた細胞を示す。また、Ａ２及びＢ２は、それぞれＡ及びＢグラフの破線の値から実線の値を引いたものを示した。１０μｍｏｌ／Ｌのドネペジル添加により、２１５ｎｍから２２５ｎｍにおいてＣＤスペクトルの減少が抑制された。従って、本実施例により、Ａβがα−ヘリックス構造又はβ−シート構造を形成するのを、ドネペジルが抑制することが示された。
実施例７：ｓｉＲＮＡの細胞内アセチルコリン活性に対する効果及びＡβ（１−４０）毒性に対する保護効果
（１）ｓｉＲＮＡ処理
アセチルコリンエステラーゼの二本鎖ｓｉＲＮＡとして下記の２組のオリゴヌクレオチド（（ｉ）及び（ｉｉ））を用いた。
2004110444.tif 000050
中隔野神経細胞の培養６日目と７日目に、１μｍｏｌ／Ｌの上記（ｉ）及び（ｉｉ）のｓｉＲＮＡとｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００（０．４μＬ／ｍＬ）とを培地中に加えた。培養９日目に、細胞を可溶化し、細胞内のアセチルコリンエステラーゼ活性（ＡＣｈＥ活性）を測定した。
（２）アセチルコリンエステラーゼ活性の測定
アセチルコリンエステラーゼ活性の測定は、Ｅｌｌｍａｎらの方法に従って行った（Ｅｌｌｍａｎ  Ｇ．Ｌ．，Ｃｏｕｒｔｎｅｙ  Ｋ．Ｄ．，Ａｎｄｅｒｓ  Ｖ．Ｊ．，Ｆｅａｔｈｅｒ−Ｓｔｏｎｅ  Ｒ．Ｍ．（１９６１）Ａ  ｎｅｗ  ａｎｄ  ｒａｐｉｄ  ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ  ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｃｅｔｙｌｃｈｏｌｉｎｅｓｔｅｒａｓｅ  ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．７，８８−９５）。細胞を０．５％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含むリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）で可溶化した。得られた細胞可溶化溶液を遠心分離し、上澄みをリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）で３倍希釈した。希釈した上清に、５，５’−ｄｉｔｈｉｏｂｉｓ（２−ｎｉｔｒｏｂｅｎｚｏｉｃ  ａｃｉｄ）（０．３３ｍｍｏｌ／Ｌ）とａｃｅｔｙｌｔｈｉｏｃｈｏｌｉｎｅ  ｉｏｄｉｄｅ（ＡｔｈＣｈ）（０．５ｍｍｏｌ／Ｌ）とを添加し、攪拌した後、４１２ｎｍでの吸光度の増加を測定した（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｅｖｉｃｅｓ，ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ  １９０ＥＸＴ）。データはＡＮＯＶＡとＷｅｌｃｈ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔで解析した。
結果を図１１に示す。それぞれの値を平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．（ｎ＝１１）の形式でグラフ化した（ｎ＝１１）。図１１中、ｓｉＲＮＡ無添加細胞に対して、「＊＊」はＰ＜０．０１を、「＊＊＊」はＰ＜０．００１であることを示す。
２種類のｓｉＲＮＡ、（ｉ）及び（ｉｉ）を検討した結果、ともにＡＣｈＥ活性の抑制効果が認められた（図１１）。
（３）Ａβ（１−４０）毒性に対するｓｉＲＮＡの保護効果
細胞障害の指標としてＬＤＨ（ｌａｃｔａｔｅ  ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）を測定した。中隔野神経細胞に１５μｍｏｌ／ＬのＡβ（１−４０）を培養７日目に添加し、４８時間インキュベートした。１μｍｏｌ／ＬのｓｉＲＮＡはＡβ（１−４０）添加の２４時間前と直前に加えた。白カラムはＡβ（１−４０）を加えない細胞を示す。灰色カラムはＡβ（１−４０）を加えた細胞を示す。データはＡＮＯＶＡとＷｅｌｃｈ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔで解析した。
結果を図１２に示す。それぞれの値を平均値±Ｓ．Ｅ．Ｍ．の形式でグラフ化した（ｎ＝７）。図１２中、ｓｉＲＮＡ無添加細胞に対して、「＊＊＊」はＰ＜０．００１であることを示す。
上記の２種類のｓｉＲＮＡ（（ｉ）及び（ｉｉ））の効果を検討した結果、ともにＡβ毒性を抑制した（図１２）。
ＬＤＨの測定と並行して、Ａβの凝集を２１５ｎｍ〜２６０ｎｍにおけるＣＤスペクトルの変化で解析した。
結果を図１３に示す。ＡはＲＮＡｉを加えた細胞を示す。実線はＡβを加えない細胞、破線はＡβを加えた細胞を示す。Ｂは、Ａの破線の値から実線の値を引いた値を示す。ｓｉＲＮＡの添加によりＣＤスペクトルの２１５ｎｍから２２５ｎｍの減少が抑制された（図１３）。
産業上の利用の可能性
本願発明に係る神経細胞保護剤は、虚血様細胞傷害および興奮性毒性による傷害に対して神経細胞保護的に働く。よって、本願発明に係る神経細胞保護剤によって脳梗塞や脳血栓等により誘発される虚血性神経細胞死および興奮性毒性により誘発される神経細胞死を防止、抑制することができる。
【配列表フリーテキスト】  配列番号１：ｓｉＲＮＡ
配列番号２：ｓｉＲＮＡ
配列番号３：ｓｉＲＮＡ
配列番号４：ｓｉＲＮＡ
【配列表】
2004110444.tif 000051
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
2004110444.tif 000082
【図７】
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【図８】
2004110444.tif 000084
【図９】
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【図１０】
2004110444.tif 000086
【図１１】
2004110444.tif 000087
【図１２】
2004110444.tif 000088
【図１３】
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【国際調査報告】
2004110444.tif 000090
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2004110444.tif 000092
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