(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
乾燥されたホップ苞の粉砕物の冷水抽出物を有効成分とする抗インフルエンザウイルス剤であって、前記冷水が０℃超１０℃以下である抗インフルエンザウイルス剤。
【請求項２】
前記乾燥されたホップ苞の粉砕物は、乾燥されたホップ毬花の粉砕物から、ルプリンの大きさ以下の粉砕物の少なくとも一部が除かれたものである、請求項１記載の抗インフルエンザウイルス剤。
【請求項３】
前記乾燥されたホップ毬花の粉砕物は、乾燥されたホップ毬花の凍結物の粉砕物である、請求項２記載の抗インフルエンザウイルス剤。
【請求項４】
アストラガリン、アストラガリンマロニルグルコシド、イソケルシトリン、イソケルシトリンマロニルグルコシド、ケルセチンマロニルグルコシド、ケンフェロールルチノシド、ケンフェロールマロニルグルコシド、ルチン及びフロロアシルフェノン配糖体からなる群より選ばれるフラボノイド配糖体の少なくとも一つを含有する、請求項１〜３のいずれか一項記載の抗インフルエンザウイルス剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗ウイルス剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
インフルエンザウイルスを初めとする病原性ウイルスは、ヒト又は動物への感染を繰り返しながら伝播し、人々の健康を害する。近年では、病原性ウイルスのヒト又は動物への感染を予防し、重篤な病気となるのを防ぐために、植物由来の天然物の利用が注目されている。例えば、緑茶成分のエピガロカテキンガレート（ＥＧＣＧ）（非特許文献１）や紅茶成分のテアフラビンジガレート（ＴＦＤＧ）（非特許文献２）は、インフルエンザウイルスのプラーク形成を抑制し、動物実験においてマウスへのウイルス感染を阻害することが報告されている。【０００３】
一方、ホップは、ビール等発泡性アルコール飲料の醸造において酵母や麦芽と並ぶ重要な原料であるが、民間療法においては、鎮静剤や抗催淫剤として使用される。ホップには、抗酸化作用を有するフムロンやルプロン等の結晶性苦味配糖体（特許文献１〜３）、ルチンやイソケルシトリン等のフラボノイド配糖体が含まれており、最近では、ホップ中のポリフェノールが、飲食品及び化粧品用の抗酸化剤として利用できることが報告されている（特許文献４）。
【特許文献１】特開平０４−２０２１３８号公報
【特許文献２】特開平０６−０２５０８１号公報
【特許文献３】特開平０６−３１２９２４号公報
【特許文献４】特開平０９−２９１７号公報
【非特許文献１】中山ら、１９９６年、感染症学雑誌、７０巻、１１号、ｐ１１９０〜１１９２
【非特許文献２】中山ら、１９９６年、感染症学雑誌、６８巻、７号、ｐ８２４〜８２８
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、植物由来の天然物で抗ウイルス活性を有するとして知られているものは、上述した緑茶及び紅茶等由来のカテキン類に限られ、より広い範囲の病原性ウイルスに対抗するには、他の植物種から異なる抗ウイルス剤を探索することが望まれている。【０００５】
また、ビール等発泡性アルコール飲料の醸造に使用されるホップペレット（ホップ毬花を乾燥させ、粉砕後に篩分し、篩を通過して微粉となったものを固めたものをいう）又はホップエキス（ホップ毬花から、有機溶媒抽出又は超臨界流体抽出された抽出物をいう）の製造過程あるいはビール等発泡性アルコール飲料の醸造過程で副産物として大量に廃棄されるホップの未利用組織又はホップ残渣は、土壌改良用の肥料や家畜の餌として二次利用されるが、これらの需要は廃棄される量に比べてはるかに低く、そのほとんどが産業廃棄物となるのが現状である。さらに、廃棄されるホップの未利用組織又はホップ残渣の二次利用は、コストの面で採算が合わず、より付加価値の高い利用法が望まれている。【０００６】
そこで、本発明の目的は、植物に由来する安全性の高い抗ウイルス剤を提供することにある。本発明の目的はまた、上記抗ウイルス剤を含有する飲食品、飼料及び飼料添加物並びに上記抗ウイルス剤を有効成分とする医薬品を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記目的を達成するため、本発明は、ホップ組織の冷水抽出物を有効成分とすることを特徴とする抗ウイルス剤を提供する。【０００８】
本発明者らは、ホップ組織の抽出物のうち冷水抽出物が、特に効果的にインフルエンザウイルスによって引き起こされる鶏赤血球凝集反応を抑制し、動物細胞へのウイルス感染を抑制することを見出した。ホップは、ビールの醸造に主に用いられ、醸造以外の種々の用途にも古くから利用されている植物であるため、ホップ由来の抗ウイルス剤は人体に対する安全性が優れると考えられる。また、本発明の抗ウイルス剤は、ホップ組織を冷水で抽出して得られるものであるため、熱による影響を受けず、抗ウイルス剤の活性を安定的に維持できる。【０００９】
上記ホップ組織は、乾燥されたホップ苞の粉砕物であることが好ましく、また、乾燥されたホップ毬花の粉砕物であって、ルプリンの大きさ以下の粉砕物の少なくとも一部が除かれたものであることが好ましい。【００１０】
ビール等発泡性アルコール飲料の醸造で使用するホップは、茎や葉を除いた毬花を乾燥させ、粉砕後に篩分して篩を通過したものを固めてホップペレットとして使用するが、篩を通過しなかった粉砕物は廃棄されることになる。この廃棄される粉砕物は、ルプリンの大きさ以下の粉砕物の少なくとも一部が除かれたものであり、その大部分はホップ苞であるため、これを原料として抗ウイルス剤の抽出に用いれば産業廃棄物の減少に貢献し、ホップ苞を有効利用できる。【００１１】
また、上記ホップ組織は、乾燥されたホップ毬花から、有機溶媒抽出又は超臨界流体抽出される物質の少なくとも一部が除かれたホップ残渣とすることができる。ビールの醸造で使用するホップ毬花は、ホップペレットとして使用する他に、ホップエキスの抽出のために使用されるが、ホップエキスを抽出した後に残るホップ残渣は廃棄されることになる。この廃棄されるホップ残渣は、有機溶媒抽出又は超臨界流体で抽出される物質の少なくとも一部が除かれたものであるため、これを原料として抗ウイルス剤の抽出に用いれば産業廃棄物の減少に貢献できる。【００１２】
さらに、上記の乾燥されたホップ毬花の粉砕物は、乾燥されたホップ毬花の凍結物の粉砕物であることが好ましい。乾燥されたホップ毬花を凍結後に粉砕すると、粉砕効率が増し、粉砕時に生じる熱の影響を受けにくくなるため、抗ウイルス剤の活性を安定的に維持できる。また、ルプリンの大きさ以下の粉砕物が容易に篩を通過するようになるため、ルプリンの大きさを越える粉砕物の純度が高まり、抗ウイルス活性に影響を与える成分の純度も高めることができる。【００１３】
また、本発明の抗ウイルス剤は、アストラガリン、アストラガリンマロニルグルコシド、イソケルシトリン、イソケルシトリンマロニルグルコシド、ケルセチンマロニルグルコシド、ケンフェロールルチノシド、ケンフェロールマロニルグルコシド、ルチン及びフロロアシルフェノン配糖体からなる群より選ばれるフラボノイド配糖体の少なくとも一つ、好ましくは少なくとも二つ、より好ましくは総てを含有することが好ましい。また、本発明の抗ウイルス剤は、これらのフラボノイド配糖体のそれぞれを、０．００１重量％〜５重量％含有することが好ましい。なお、上記フロロアシルフェノン配糖体には、フロロイソブチロフェノングルコシド、フロロ−２−メチルブチロフェノングルコシド及びフロロイソバレロフェノングルコシドが含まれる。【００１４】
インフルエンザウイルスの増殖は、赤血球凝集素（ヘマグルチニン蛋白質）が宿主細胞の表面レセプターに結合することによって始まるが、Ａ型及びＢ型インフルエンザウイルスの場合には、糖鎖の非還元末端にＮ−アセチルノイラミン酸を持つ糖蛋白質又は糖脂質がレセプターとなる。本発明の抗ウイルス剤が、上記フラボノイド配糖体の少なくとも一つを含有する場合は、インフルエンザウイルスのヘマグルチニン蛋白質に吸着することが期待でき、このためにインフルエンザウイルスの細胞表面レセプターへの結合が阻害され、細胞内へのインフルエンザウイルスの侵入が阻止されると考えられる。【００１５】
上記抗ウイルス剤は、抗インフルエンザウイルス剤であることが好ましい。【００１６】
上記抗ウイルス剤は、インフルエンザウイルスの鶏赤血球凝集反応を抑制し、動物細胞への感染を阻害する活性を有するため、インフルエンザウイルスのヒト及び動物、中でも家禽類、特に鶏への感染を防止するのに好適である。【００１７】
なお、上述した本発明の抗ウイルス剤は、抗ウイルス活性と安全性に優れることから、飲食品、飼料、飼料添加物又は医薬品に含有させて有効成分として利用できる。
【発明の効果】
【００１８】
本発明によれば、ウイルスの鶏血小板凝集反応を抑制する活性を有し、病原性ウイルスのヒト及び動物への感染を防止できる抗ウイルス剤が提供される。本発明の抗ウイルス剤は、天然の植物由来であるため、安全性に優れ、各人が家庭内で病原性ウイルスの感染を予防し、感染後においては早期治癒に導くことができる。【００１９】
また本発明の抗ウイルス剤は、ビール等発泡性アルコール飲料の醸造の際の副産物として産出され、廃棄されるホップを原料とできるため、産業廃棄物の減少に貢献し、ホップの付加価値を高めて有効利用できる。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】鶏赤血球凝集価測定試験の手順を簡易的に示した図である。
【図２】インフルエンザウイルスの赤血球凝集作用に及ぼすホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物の抑制作用を示すグラフである。
【図３】インフルエンザウイルスの動物細胞への感染阻害試験の手順を簡易的に示した図である。
【図４】インフルエンザウイルスのＭＤＣＫ細胞への感染に及ぼすホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物の阻害作用を示すグラフである。
【図５】スペントホップ冷水抽出物に含まれるフラボノイドをＬＣ−ＭＳ分析した結果である。
【図６】各群のマウスへのインフルエンザウイルスの感染率を示した図である。
【図７】各群のマウスの生存率を示した図である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２１】
以下、本発明に係る抗ウイルス剤の好適な実施形態について説明する。【００２２】
本発明に使用するホップは、いずれのホップ品種であってもよいが、チェコ産ザーツ種、ドイツ産ハラタウ・トラディション種及び国産フラノ１８号等のビール醸造用ホップ品種が好ましく、抗ウイルス活性の高いホップ抽出物を得るには、チェコ産ザーツ種がより好ましい。【００２３】
本発明におけるホップ組織とは、ホップのいずれかの組織又はその一部を意味する。冷水抽出に用いるホップ組織は、葉、茎及び毬花のいずれでもよく、毬花が好ましく、ホップ苞がより好ましい。ホップ苞は、毬花を構成する苞葉のことであって、毬花からルプリン部分（黄色の顆粒）の少なくとも一部を取り除いて得ることができる。このため、本発明の冷水抽出に用いるホップ組織は、ビール等発泡性アルコール飲料の醸造に用いるホップペレットを加工する際に規定の大きさに粉砕されずに廃棄されるホップ苞であってもよく、後述するホップ毬花を超臨界流体又は有機溶媒で抽出した後に残るホップ残渣であってもよい。【００２４】
本発明の抗ウイルス剤は、ホップ組織の冷水抽出物を有効成分として含有するものであり、この有効成分は、ホップ組織を冷水で抽出する工程を備える製造方法により得られる。本工程では、ホップ組織を冷水で抽出するが、「冷水」とは室温以下の水を意味し、通常、０℃超３０℃以下の水のことをいう。冷水の温度は、０℃超１０℃以下が好ましく、５±３℃（さらには５±２℃）がより好ましい。なお、抽出時間を短縮するためには、水に少量のアルコール、好ましくはエタノールを、１０重量％以下添加して抽出効率を上げることができる。【００２５】
ホップ組織から抗ウイルス剤を抽出する方法としては、植物から天然物を水抽出する方法が広く採用でき、例えば、ホップ組織と一定量の冷水とを容器に入れ、適宜撹拌しながら所定時間静置し、抽出液を濾過して残渣を取り除く方法が挙げられる。混入する残渣や不純物等を完全に取り除くためには、濾過した抽出液をさらに遠心分離すればよく、その上清（以下、遠心上清）を抗ウイルス剤として使用できる。なお、得られた抗ウイルス剤は、濃縮し、乾燥して使用することもできる。【００２６】
また、ホップ組織の冷水抽出物である抗ウイルス剤は、合成吸着剤を充填したカラムに通して、精製して使用することもできる。合成吸着剤としては、例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ  ＸＡＤ−４、７及び１６（オルガノ社）、活性炭、ポリビニルポリピロリドン（ＰＶＰＰ；ポリフェノール吸着剤）が挙げられ、この中でもＡｍｂｅｒｌｉｔｅ  ＸＡＤ−４が好ましく用いられる。具体的には、ホップ組織の水抽出物を、合成吸着剤を充填したカラムに通し、その吸着成分を、例えば、水及びメタノールの混合溶媒で溶出させ、溶出した画分を抗ウイルス剤として使用できる。【００２７】
本発明の抗ウイルス剤は、乾燥されたホップ苞の粉砕物の冷水抽出物を有効成分とすることが好ましく、また、乾燥されたホップ毬花の粉砕物からルプリンの大きさ以下の粉砕物の少なくとも一部が除かれたものの冷水抽出物を有効成分とすることが好ましい。冷水抽出に用いる乾燥ホップ毬花の粉砕物は、例えば、ホップ毬花を乾燥して乾燥ホップ毬花を得る乾燥工程と、乾燥ホップ毬花を粉砕して粉砕物を得る粉砕工程と、この粉砕物からルプリンの大きさ以下の粉砕物を取り除く選別工程と、を備える製造方法により得られる。【００２８】
乾燥工程では、ホップ毬花を１００℃以下の温度で乾燥させ、ホップ毬花を保存可能な程度にまで水分を除去できればよいが、５５℃以下の温度で水分含量を７〜９％まで乾燥することが好ましい。粉砕工程では、ホップ毬花を効率的に微粉状に粉砕できればよく、例えば、ピンミル、ハンマーミル、ボールミル等の粉砕機を用いればよい。選別工程では、粉砕物をふるいにかけ、例えば、長径が０．１ｍｍ以上の粉砕物を「ルプリンを超える大きさ」のものとして選別することができる。この場合において、篩を通過させない大きさを長径０．３ｍｍ以上とすることが好ましく、長径０．５ｍｍ以上とすることがより好ましい。乾燥ホップ毬花の粉砕物からルプリンの大きさ以下の粉砕物を取り除くには、例えば、目開き０．１、０．３又は０．５ｍｍのふるいで乾燥ホップ毬花の粉砕物をふるい
分け、ふるいを通過しなかった粉砕物を回収すればよい。なお、乾燥ホップ毬花の粉砕物からルプリンの大きさ以下の粉砕物の少なくとも一部が除かれたものの冷水抽出物は、こうして選別された乾燥ホップ毬花の粉砕物を、上述した冷水で抽出する工程で記載した方法で抽出すればよい。【００２９】
さらに、本発明の抗ウイルス剤を調製するために使用する乾燥されたホップ毬花の粉砕物は、乾燥されたホップ毬花の凍結物の粉砕物であることが好ましい。乾燥されたホップ毬花を凍結する方法は、特に制限されないが、−１０℃以下が好ましく、−３５℃以下がより好ましい。【００３０】
また、本発明の抗ウイルス剤は、乾燥されたホップ毬花から、有機溶媒抽出又は超臨界流体抽出される物質の少なくとも一部が除かれたホップ残渣の冷水抽出物を有効成分とすることができる。有機溶媒抽出に用いる有機溶媒としては、例えば、アルコール又はヘキサンが挙げられ、炭素数１〜４の低級アルコールが好ましく、エタノールがより好ましい。超臨界流体抽出に用いる超臨界流体としては、例えば、二酸化炭素、水、メタン、エタン、エチレン、プロパン、ペンタン、メタノール、エタノールが挙げられ、二酸化炭素が好ましい。【００３１】
本発明の抗ウイルス剤は、種々の病原性ウイルスの感染を防止する効果があり、空気感染性ウイルスの感染を防止するのに適している。空気感染性ウイルスとしては、例えば、ライノウイルス、コロナウイルス、アデノウイルス、エンテロウイルス、インフルエンザウイルス、パラインフルエンザウイルス、ＳＡＲＳコロナウイルス、ＲＳウイルス、エコーウイルス、単純ヘルペスウイルス、ＥＢウイルス、麻疹ウイルス、サイトメガロウイルスが挙げられ、インフルエンザウイルスの感染を防止するのにより適している。【００３２】
本発明の抗ウイルス剤は、病原性ウイルスの感染の予防や症状の緩和を目的として飲食品、飼料又は飼料添加物に添加することができ、又は病原性ウイルスの感染予防剤若しくは治療剤となる医薬品の有効成分として使用できる。ここで、「飲食品」とは、ヒトが摂取する飲食品のことをいい、「飼料」とは、ヒト以外の動物が摂取する飲食品のことをいう。また、「飼料添加物」とは、このような「飼料」に添加するもののことをいう。上記飲食品、飼料、飼料添加物及び医薬品は、ホップ組織の冷水抽出物を有効成分とする抗ウイルス剤のみからなっていてもよく、例えば、ホップ組織の冷水抽出物又はこの冷水抽出物の凍結乾燥品をそのまま上記飲食品、飼料、飼料添加物又は医薬品として使用できる。【００３３】
本発明の飲食品、飼料、飼料添加物は、上記の抗ウイルス剤を含んでおり、当該分野で通常使用される添加物を含んでいてもよい。この添加物としては、例えば、リンゴファイバー、大豆ファイバー、肉エキス、黒酢エキス、ゼラチン、コーンスターチ、蜂蜜、動植物油脂、グルコース等の単糖類、スクロース、フルクトース及びマンニトール等の二糖類、デキストロース及びデンプン等の多糖類、エリスリトール、キシリトール及びソルビトール等の糖アルコール類、ビタミンＣ等のビタミン類が挙げられ、これらの添加物は単独種又は複数種であってもよい。【００３４】
本発明の医薬品は、上記の抗ウイルス剤を有効成分として含んでおり、薬学的に許容される添加物をさらに含んでいてもよい。この添加物としては、例えば、グルコース等の単糖類、スクロース、フルクトース及びマンニトール等の二糖類、デキストロース及びデンプン等の多糖類、エリスリトール、キシリトール及びソルビトール等の糖アルコール類、ビタミンＣ等のビタミン類、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルギン酸塩、珪酸カルシウム、微結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース誘導体、トラガカント、ゼラチン、シロップ、ヒドロキシ安息香酸メチル、タルク、ステアリン酸マグネシウム、水、鉱油が挙げられ、これらの添加物は単独種又は複数種であってもよい。【００３５】
さらに、病原性ウイルスの感染の予防や症状の緩和の目的で、食品添加物として、特定保健用食品、特殊栄養食品、栄養補助食品、健康食品、機能性食品や病者用食品等の飲食物に配合することもできる。
【実施例】
【００３６】
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。また、特に明記しない限り、「％」は「重量％」を表す。【００３７】
（ホップ組織の冷水抽出物の調製）
ホップ組織の冷水抽出物の抗ウイルス活性を調べるため、乾燥されたホップ毬花から製造された、ルプリンを豊富に含有するホップペレット（チェコ産ザーツ種：ＳＳＡタイプタイプ９０）と、ホップペレットの製造過程で副産物として生じ、ルプリンの少なくとも一部が取り除かれた画分であるスペントホップからそれぞれ冷水抽出物（以下、それぞれ「ホップペレット冷水抽出物」及び「スペントホップ冷水抽出物」という）を調製した。まず、ホップを５０℃で水分含量が８％になるまで乾燥させ、専用の粉砕機で粉砕し、目開き０．３ｍｍのふるいを通過したホップ組織をホップペレットとし、このふるいを通過しなかった０．３ｍｍ以上の組織をスペントホップとした。すなわち、ホップペレットは、ホップ組織の微粉とルプリンを含有する画分であり、ホップ苞は、毬花を構成
する苞葉部分の０．３ｍｍ以上の粉砕物であって、ルプリンが取り除かれた画分である。【００３８】
こうして得られたホップペレット又はスペントホップは、５％となるように冷水で懸濁し、４℃の低温室で１晩静置することにより冷水抽出した。その後、各冷水抽出物を濾過（ＡＤＶＡＮＴＥＣ  Ｎｏ．５Ａ）することにより残渣を取り除き、凍結乾燥して用いた。【００３９】
（ポリフェノール濃度の定量）
ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、以下に示すフォーリンチオカルト法に従ってポリフェノール濃度を定量し、この濃度を基準にして、後述する鶏赤血球凝集価測定試験及びインフルエンザウイルスの動物細胞への感染阻害試験を行った。【００４０】
まず、各冷水抽出物を０．０５ｍｇ／ｍＬとなるように０．１％ウシ血清アルブミン含有リン酸緩衝液（以下、０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳ）に溶解し、等量の１Ｎフェノール試薬を加え、３分間反応させた。その後、添加した１Ｎフェノールと等量の１０％炭酸ナトリウム水溶液を加えて、室温でさらに1時間反応させ、７００ｎｍの吸光度を測定した。その際、濃度が予め分かっている没食子酸の標準溶液を用いて検量線を作製し、この検量線から各冷水抽出物中のポリフェノール濃度を没食子酸当量として算出した。【００４１】
（実施例１）ホップ組織の冷水抽出物の赤血球凝集抑制作用：
インフルエンザウイルスは、赤血球凝集素（ｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ；以下、ＨＡ）を持っており、このＨＡによりニワトリの赤血球を凝集させる作用を有している。このため、鶏赤血球凝集反応の有無を調べることにより、検体中のインフルエンザウイルスの有無を判定できる。一方、インフルエンザウイルスのヒト及び動物への感染及び増殖は、ウイルス表面のＨＡが宿主細胞表面のレセプターに結合することによって始まる。宿主細胞表面に吸着したインフルエンザウイルスはエンドサイトーシスにより細胞内に取り込まれ、細胞内で宿主細胞の翻訳系を利用して増殖し、他の細胞への感染を繰り返す。このため、ＨＡを介したインフルエンザウイルスの動物細胞への結合を抑制すれば、インフルエンザウイルスのヒト及び動物への感染を防止できると考えられている。そこで、ホップ組
織の冷水抽出物に鶏赤血球凝集抑制作用があるかどうかについて、以下の鶏赤血球凝集価測定試験を行って調べた。【００４２】
１）実験材料
ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、上述したように各組織から冷水抽出を行い、凍結乾燥後、所定のポリフェノール濃度となるように０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳで溶解して調製した。【００４３】
赤血球浮遊液は、鶏保存血を０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳに縣濁し、３０００ｒｐｍ、５分間の遠心分離操作を３回繰り返して赤血球を洗浄し、その後、沈殿した赤血球画分に対して０．５％（ｖ／ｖ）になるように新しい０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳを加えて調製した。【００４４】
インフルエンザウイルス株は、Ａ／Ｐｕｅｒｔｏ  Ｒｉｃｏ／８／３４（ＰＲ８：Ｈ１Ｎ１）株を用い、インフルエンザウイルス液は、ＴＣＩＤ５０値が１０５．８となるように０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳで希釈して調製した。ここで、ＴＣＩＤ５０値とは培養細胞の５０％にウイルス感染を起こさせるウイルス希釈倍率のことである。【００４５】
２）鶏赤血球凝集価測定試験
図１は、鶏赤血球凝集価測定試験の手順を簡易的に示した図である。まず、９６穴マイクロプレートの各ウェルに５０μＬのインフルエンザウイルス液と５０μＬの各濃度のホップペレット冷水抽出物、スペントホップ冷水抽出物又は０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳとを加えて混合し、室温で１時間反応させた。その後、マイクロピペットにより２倍段階希釈系列（２１倍希釈〜２１５倍希釈）をそれぞれの群について作り、これらに５０μＬの０．５％（ｖ／ｖ）赤血球浮遊液をそれぞれ加えて室温で１晩静置し、赤血球凝集像の有無を観察した。【００４６】
鶏赤血球凝集反応は、赤血球凝集像が認められた場合に陽性であると判定し、赤血球凝集反応が陽性となる最高希釈倍率を赤血球凝集価（ＨＡ価）として求めた。赤血球凝集抑制作用の有無は、インフルエンザウイルス液と０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳの混合液に赤血球浮遊液を反応させた希釈系列のＨＡ価（対照群）と各被検抽出物のＨＡ価とを比較することにより調べた。グラフ中の値は、それぞれの実験を３回行った平均値±標準誤差で、対照群のＨＡ価と試験群のＨＡ価との間の有意差検定は、Ｍａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ検定で行った。【００４７】
図２は、インフルエンザウイルスのＨＡ価に及ぼすホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物の赤血球凝集抑制作用を示すグラフである。縦軸はＨＡ価を表し、各被検抽出物の濃度は、ポリフェノール含量で示している。【００４８】
その結果、ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、０．６ｍｇ／ｍＬの濃度でインフルエンザウイルスのＨＡ価を有意に抑制した。この結果より、ホップ組織の冷水抽出物には、インフルエンザウイルスの赤血球凝集反応を抑制する物質が含まれていることが判明し、抗ウイルス活性があることが示唆された。【００４９】
（実施例２）インフルエンザウイルスのＭＤＣＫ細胞への感染に及ぼすホップ組織の冷水抽出物の効果：
ホップ組織の冷水抽出物が、インフルエンザウイルスの動物細胞への感染を阻害するか否かについて、正常イヌ腎臓由来上皮細胞であるＭＤＣＫ細胞（Ｍａｄｉｎ−Ｄａｒｂｙ  ｃａｎｉｎｅ  ｋｉｄｎｅｙ  ｃｅｌｌｓ）を用いて調べた。ＭＤＣＫ細胞は、さまざまなウイルスの感染実験に適した細胞であり、インフルエンザウイルスの感染阻害作用の評価に一般的に用いられる細胞である。【００５０】
１）ＭＤＣＫ細胞の培養
ＭＤＣＫ細胞は、３７℃、５％のＣＯ２濃度下（ＣＯ２インキュベータ中）、５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有するＭＥＭ培地中で培養し、週２回の頻度で継代培養して維持した。インフルエンザウイルスの感染実験には、３×１０５細胞／ｍＬに調製したＭＤＣＫ細胞の細胞懸濁液を９６ウェルプレートに２００μＬずつ添加し、３日又は４日間培養して使用した。【００５１】
２）インフルエンザウイルスの動物細胞への感染阻害試験
図３は、インフルエンザウイルスの動物細胞への感染阻害試験の手順を簡易的に示した図である。まず、２５μＬのインフルエンザウイルス希釈液（上記のインフルエンザウイルス液を５×１０４倍希釈）と各濃度のホップペレット冷水抽出物又はスペントホップ冷水抽出物とを９６ウェルプレート中で混合し、室温で１時間反応させた（以下、この反応液をウイルス反応液と呼ぶ。）。その後、予め９６ウェルプレートで３日間又は４日間培養した上記ＭＤＣＫ細胞からＭＥＭ培地を吸引除去し、そこに２５μＬの上記ウイルス反応液を添加し、３７℃のＣＯ２インキュベータ中でさらに１時間反応させた。反応後、各ウェルに２００μＬの維持培地（０．２％アルブミン、５μｇ／ｍＬアセチルトリプシンを含むＭＥＭ培地）を添加して３日間培養し、この培養上清に鶏赤血球凝集作用があるか否かについて調べた。【００５２】
すなわち、インフルエンザウイルスのＭＤＣＫ細胞への感染が成立した場合には、３日間の培養期間中にウイルス粒子が複製され、培地中にウイルス粒子が放出されるため、この培養上清の鶏赤血球凝集作用の有無を調べれば、インフルエンザウイルスのＭＤＣＫ細胞への感染の阻害の程度を調べることができる。【００５３】
鶏赤血球凝集作用の有無は、上述した鶏赤血球凝集価測定試験とほぼ同じ手順で調べられるが、ＨＡ価を求めない点で相違する。具体的には、９６穴マイクロプレートの各ウェルに５０μＬのインフルエンザウイルス液（ＴＣＩＤ５０値＝１０５．８）と５０μＬの各培養上清又は０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳとを加えて混合し、室温で１時間反応させ、これに５０μＬの０．５％赤血球浮遊液を加えて室温で１晩静置する。その後、赤血球凝集像の有無を観察し、各群（ｎ＝６）の培養上清ごとに赤血球凝集が阻害された割合を調べ、赤血球凝集阻害率として評価した。さらに、赤血球凝集阻害率と被検抽出物の濃度との関係から５０％感染阻害濃度（ＴＣＩＤ５０)についても求め、インフルエンザウイルスの感染阻害活性の指標とした。【００５４】
図４は、インフルエンザウイルスのＭＤＣＫ細胞への感染に及ぼすホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物の阻害作用を示すグラフである。縦軸は、鶏赤血球凝集阻害率（％）を表し、各被検抽出物の濃度は、ポリフェノール含量で表している。【００５５】
その結果、ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、インフルエンザウイルスと室温で１時間反応させることにより、ＭＤＣＫ細胞への感染及び増殖を阻害することが判明した。さらに、スペントホップ冷水抽出物は、５０μｇ／ｍＬの濃度で８０％以上の感染を阻害するものであり、同じ濃度のホップペレット冷水抽出物よりも強いものであった。【００５６】
また、スペントホップ冷水抽出物のＴＣＩＤ５０を算出すると、２８．６μｇ／ｍＬであった。【００５７】
これらの結果より、ホップ組織の冷水抽出物には抗ウイルス活性があり、スペントホップの冷水抽出物には、ホップペレットの冷水抽出物よりも強い抗ウイルス活性があることが示唆された。【００５８】
（実施例３）スペントホップ冷水抽出物中に含まれるフラボノイドの分析：
１）ＬＣ−ＭＳによる分析
スペントホップ冷水抽出物中に含まれるフラボノイド成分を調べるため、以下の条件下で、スペントホップ冷水抽出物のＬＣ−ＭＳ分析を行った。
ＬＣ−ＭＳの分析条件：
・溶離液：A液  ０．０５％ＴＦＡ水溶液、B液  アセトニトリル
・グラジエント条件：０〜１６ｍｉｎ、Ｂ液１０％〜５０％
・流量：０．２ｍＬ／ｍｉｎ
・カラム温度：４０℃
・カラム：Ｗａｔｅｒｓ  Ｓｙｍｍｅｔｒｙ  Ｃ１８  ２．１×１５０ｍｍ  ３．５μｍ
・マススペクトル：（ＳＩＲ；ｍ／ｚ１９７、ｍ／ｚ２１１、ｍ／ｚ２８７、ｍ／ｚ３０３）【００５９】
図５は、スペントホップ冷水抽出物中に含まれるフラボノイドをＬＣ−ＭＳ分析した結果である。その結果、アストラガリン、イソケルシトリン、ケルセチンマロニルグルコシド、ケンフェロールルチノシド、ケンフェロールマロニルグルコシド及びルチン並びにフロロアシルフェノン配糖体であるフロロイソブチロフェノングルコシド、フロロ−２−メチルブチロフェノングルコシド及びフロロイソバレロフェノングルコシドが含まれていることが判明した。【００６０】
２）スペントホップ冷水抽出物中に含まれるフラボノイドアグリコンの分析
まず、４００μＬのスペントホップ冷水抽出物（２０ｍｇ／ｍＬ）に２ｍＬの２Ｎ塩酸を加え、沸騰水浴中で３０分間加熱して加水分解した。その後、ＳｅｐＰａｋ  Ｃ１８（Ｗａｔｅｒｓ社）カラムに吸着する画分を、２ｍＬのメタノールで溶出し、得られたメタノール溶出物をＨＰＬＣで分析した。【００６１】
ＨＰＬＣ分析条件は以下の通りである。
ＨＰＬＣ分析条件：
・溶離液：Ａ液  １０ｍＭリン酸水溶液、Ｂ液  アセトニトリル
・グラジエント条件：０〜２０ｍｉｎ、Ｂ液  ２０％−５０％；２０〜３０ｍｉｎ、Ｂ液  ５０％〜１００％；３０〜４０ｍｉｎ、Ｂ液  １００％
・流量：０．２ｍＬ／ｍｉｎ
・カラム温度：４０℃
・カラム：Ｗａｔｅｒｓ  Ｓｙｍｍｅｔｒｙ  Ｃ１８  ２．１×１５０ｍｍ  ３．５μｍ
・検出：ＵＶ３７０ｎｍ【００６２】
表２は、スペントホップ冷水抽出物の加水分解の前後におけるケルセチン及びケンフェロールの含有割合（％；ホップ冷水抽出物の乾燥重量重に対する各フラボノイドアグリコンの重量比）を比較した結果を示したものである。【００６３】
【表１】
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【００６４】
その結果、加水分解前では、ケルセチン及びケンフェロールを含むフラボノイドアグリコンは検出されなかったが、加水分解後では、ケルセチンが１．０２％、ケンフェロールが１．２１％含有されていることが判明した。加水分解前のスペントホップ冷水抽出物には、フラボノイドアグリコンは検出されなかったことより、スペントホップ冷水抽出物中に含有されるフラボノイドは配糖体として存在し、抗ウイルス活性に寄与していることが示唆された。【００６５】
（実施例４）インフルエンザウイルスのマウスへの感染に及ぼすホップ組織の冷水抽出物の効果：
ホップ組織の冷水抽出物が、インフルエンザウイルスのマウスへの感染を阻害するか否かについて、ＢＡＬＢ／ｃマウスとインフルエンザウイルスを使用したｉｎ  ｖｉｖｏの感染実験で調べた。【００６６】
マウス（ＢＡＬＢ／ｃマウス、７週齢、雌性）は、日本エスエルシー（株）から購入し、１週間の検疫期間を設けて予備飼育した。予備飼育で異常の認められなかったマウスは、体重を測定し、各群の平均体重及び分散がほぼ等しくなるように無作為に３群（ホップペレット冷水抽出物投与群、スペントホップ冷水抽出物投与群及び対照群；１群＝５匹）に分けた。【００６７】
ホップペレット冷水抽出物投与群は、ホップペレット冷水抽出物とインフルエンザウイルスとを含む０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳ溶液（ホップペレット冷水抽出物投与液）を、スペントホップ冷水抽出物投与群は、スペントホップ冷水抽出物とインフルエンザウイルスとを含む０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳ溶液（スペントホップ冷水抽出物投与液）を、対照群はインフルエンザウイルスのみを含む０．１％ＢＳＡ・ＰＢＳ溶液（対照用インフルエンザウイルス投与液）を、各マウスの鼻孔に投与した。【００６８】
インフルエンザウイルスは、実施例１で使用したＡ型Ｐｕｅｒｔｏ  Ｒｉｃｏ／８／３４（ＰＲ８：Ｈ１Ｎ１）株を使用し、このインフルエンザウイルス株の原液（ＴＣＩＤ５０値＝１０５．９）を０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで１０倍希釈して調製したインフルエンザウイルス液を実験に用いた。【００６９】
ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、上述したように調製し、ポリフェノール濃度が５０ｍｇ／ｍＬとなるように０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで溶解して用いた。【００７０】
マウスへの感染に使用するホップペレット冷水抽出物投与液及びスペントホップ冷水抽出物投与液は、それぞれ１．９８ｍＬのホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物に上記のインフルエンザウイルス液をそれぞれ０．０２ｍＬずつ加えて３７℃で３分間反応させて調製した。対照用インフルエンザウイルス投与液については、ホップ組織の冷水抽出物を含まない０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳに上記のインフルエンザウイルス液を０．０２ｍＬ加えて３７℃で３分間反応させて調製した。【００７１】
マウスへの感染実験は、以下の手順で行った。まず、ネンブタールを腹腔内投与してマウスを麻酔し、各群のマウスの両鼻孔にホップペレット冷水抽出物投与液、スペントホップ冷水抽出物投与液又は対照用インフルエンザウイルス投与液を１０μＬずつ（２０μＬ／マウス）投与した。投与開始から２週間目まで連日、マウスの体重の推移を記録すると共に毛並みの乱れ及び運動性の低下を観察し、インフルエンザウイルスの感染の有無及び生存数を調べた。インフルエンザウイルスの感染の有無は、マウスの体重の推移、毛並みの乱れ及び運動性の低下を指標にし、２項目以上が該当する場合に感染成立と判断した。【００７２】
なお、スペントホップ冷水抽出物投与群及びホップペレット冷水抽出物投与群と対照群との間における感染率及び生存率の有意差の有無は、ログランク検定により解析した。【００７３】
図６は、各群のマウスへのインフルエンザウイルスの感染率を、図７は、各群のマウスの生存率を示したものである。感染率が低く、生存率が高いほど、インフルエンザウイルスのマウスへの感染が抑制されたことを意味している。【００７４】
その結果、対照群では、投与開始３日目に全てのマウスでインフルエンザウイルスの感染が認められ、投与開始８日目に最初の死亡が確認され、投与開始１２日目に全てのマウスの死亡が確認された。【００７５】
一方、ホップペレット冷水抽出物投与群では、試験期間の２週間にわたって、インフルエンザウイルスの感染は一匹も認められず、生存率についても１００％であった。ホップペレット冷水抽出物投与群の生存率は、対照群と比較して顕著に高く、両群の間には統計的有意差（ｐ＜０．０１）が認められた。【００７６】
また、スペントペレット冷水抽出物投与群では、投与開始３日目に２匹、投与開始８日目に全てのマウスにインフルエンザウイルスの感染が認められ、投与開始１０日目には最初の死亡が確認されたが、対照群のように全てのマウスが死亡することはなく、２週間経過後においても３匹のマウスが生存していた。スペントペレット冷水抽出物投与群は、対照群と比較して高い生存率を示し、両群の間には統計的有意差が認められた（ｐ＜０．０５）。【００７７】
以上の結果より、ホップペレット冷水抽出物及びスペントホップ冷水抽出物は、インフルエンザウイルス感染を効果的に抑制することが示唆された。
【産業上の利用可能性】
【００７８】
本発明によれば、ウイルスの鶏血小板凝集反応を抑制する活性を有し、病原性ウイルスのヒト及び動物への感染を防止できる抗ウイルス剤が提供される。本発明の抗ウイルス剤は、天然の植物由来であるため安全性に優れ、また、ビール等発泡性アルコール飲料の醸造の際の副産物として産出され、廃棄されるホップを原料とするため、産業廃棄物の減少に貢献し、ホップの付加価値を高めて有効利用できる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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