(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ギ酸及びNAD+を含む反応系に、以下の（a）又は（b）のタンパク質からなるギ酸脱水素酵素を作用させる、NADHの製造方法。
（a）配列番号２に示すアミノ酸配列を含むタンパク質
（b）配列番号２に示すアミノ酸配列に対して９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するタンパク質
【請求項２】
以下の（a）又は（b）のタンパク質をコードするギ酸脱水素酵素遺伝子を誘導型プロモーターの制御下に配置したベクターを導入した宿主を培養し、対数増殖期を過ぎた時に上記ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導し、上記宿主の生育至適温度よりも低く且つ上記宿主が生存可能な温度で培養し、
上記ギ酸脱水素酵素を取得することを特徴とする、ギ酸脱水素酵素の製造方法。
（a）配列番号２に示すアミノ酸配列を含むタンパク質
（b）配列番号２に示すアミノ酸配列に対して９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するタンパク質
【請求項３】
上記対数増殖期を過ぎた時は定常期であることを特徴とする請求項２記載のギ酸脱水素酵素の製造方法。
【請求項４】
上記宿主の生育至適温度よりも低く且つ上記宿主が生存可能な温度は１５〜３７℃であることを特徴とする請求項２記載のギ酸脱水素酵素の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ギ酸脱水素酵素を用いたNADHの製造方法、及びギ酸脱水素酵素の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NAD+）は、ギ酸と水の存在下でギ酸脱水素酵素（EC.1.2.1.2）の触媒反応によって還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NADH）に還元される。このように、ギ酸脱水素酵素は、NAD+からNADHを再生する系に利用されている。従来、ギ酸脱水素酵素としては、例えば特許文献１に記載されるようなカンジダボイジニイ（Candida boidinii）（ATCC32195）由来のギ酸脱水素酵素、特許文献２に開示されるようなバチルス属細菌由来のNAD+依存性ギ酸脱水素酵素、特許文献３に開示されるようなマイコバクテリウム・バッカエ（Mycobacterium vaccae）由来のギ酸脱水素酵素が知られていた。
【０００３】
また、非特許文献１には、これら以外にも種々の微生物や植物由来のギ酸脱水素酵素が開示されている。しかしながら、非特許文献１に記述されているように、ギ酸脱水素酵素は、様々な酵素のなかでも比活性の低いほうである。換言すると、ギ酸脱水素酵素によるNADHへの還元反応を利用したNADHの生産方法は、ギ酸脱水素酵素の比活性の低さに起因して生産性が悪いといえる。
【０００４】
【特許文献１】特開２００３−１８０３８３号公報
【特許文献２】特開２００２−２３３３９５号公報
【特許文献３】特願平１０−０２３８９６号公報
【非特許文献１】BIOCHEMISTRY (Moscow) Vol. 69 No. 11 2004 pp. 1252-1267.（Biokhimiya, Vol. 69, No. 11, 2004, pp. 1537-1554.の英訳）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
そこで、本発明は、上述した実情に鑑み、従来の知見からは予測できないほどに高い比活性を示すギ酸脱水素酵素を利用したNADHの製造方法を提供するとともに、高い比活性を示すギ酸脱水素酵素の製造方法及び当該ギ酸脱水素酵素の有用な利用用途を提供することを目的としている。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上述した目的を達成するため本発明者らが鋭意検討した結果、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は従来公知のギ酸脱水素酵素のなかでも抜群に高い比活性を示すことを明らかにした。なお、このアカカビ由来のギ酸脱水素酵素については、そのアミノ酸配列がデータベースにエントリーされているものの、このデータは塩基配列情報からの推定アミノ酸配列であって、実際に単離されておらず遺伝子もクローニングされていなかった。また、本発明者らが、鋭意検討したところ、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を定法に従って発現させても全くと言っていいほど活性型として取得することはできず、所定の条件で発現させることで初めて高い比活性を示す酵素として単離することに成功した。
【０００７】
以上の知見に基づく本発明は以下を包含する。
（１）ギ酸及びNAD+を含む反応系にアカカビ由来のギ酸脱水素酵素を作用させる、NADHの製造方法。
本発明に係るNADHの製造方法において、上記アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、以下の（a）〜（c）のいずれかのタンパク質であることが好ましい。
（a）配列番号２に示すアミノ酸配列を含むタンパク質
（b）配列番号２に示すアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列を含み、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するタンパク質
（c）配列番号１に示す塩基配列の相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下においてハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされ、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するタンパク質
また、本発明に係るNADHの製造方法において、上記アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して８５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質であることが好ましい。
【０００８】
（２）アカカビ由来のギ酸脱水素酵素遺伝子を誘導型プロモーターの制御下に配置したベクターを導入した宿主を培養し、対数増殖期を過ぎた時に上記ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導し、上記宿主の生育至適温度よりも低く且つ上記宿主が生存可能な温度で培養し、上記ギ酸脱水素酵素を取得することを特徴とする、ギ酸脱水素酵素の製造方法。
【０００９】
本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法において上記アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、上記（a）〜（c）のいずれかのタンパク質であることが好ましい。また、上記アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して８５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質であることが好ましい。
さらに、本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法において上記対数増殖を過ぎた時は定常期であることが好ましい。また、本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法において、上記宿主の生育至適温度よりも低く且つ上記宿主が生存可能な温度は１５〜３７℃とすることができる。
【発明の効果】
【００１０】
本発明に係るNADHの製造方法によれば、非常に高い比活性を示すギ酸脱水素酵素を利用するため、非常に高価な物質として知られるNADHを優れた生産性で製造することができる。本発明に係るNADHの製造方法を適用することによって、NADHの工業的製造が可能となる。
【００１１】
また、本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法によれば、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を非常に高い比活性を示す状態で製造することができる。このアカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のギ酸脱水素酵素と比較して抜群に高い比活性を示すため、NADHの製造方法等に広く利用することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
以下、本発明を図面を参照して詳細に説明する。
【００１３】
本発明においては、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素が従来公知のギ酸脱水素酵素と比較して抜群に優れ比活性を示すといった知見に基づいている。先ず、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素について説明する。
【００１４】
アカカビ由来のギ酸脱水素酵素
本発明において使用可能なギ酸脱水素酵素は、アカカビ由来、すなわちアカカビが本来有しているギ酸脱水素酵素である。ここで、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を取得するためには、アカカビ（学名：Gibberella zeae）として保存されている、従来公知の種々の菌株を使用することができる。例えば、American Type Culture Collection (ATCC)には、ATCC番号10910、20271、20272、20274、24689、28106又は48063として保存されているアカカビを使用することができる。また、ATCCには、登録名がFusarium graminearumとして保存されている場合もあるが、別名としてGibberella zeaeが登録されている場合にはこれらも使用することができる。なお、Gibberella zeaeは、Fusarium graminearumの完全世代（テレオモルフ）のことを示している。また、独立行政法人製品評価技術基盤機構の生物遺伝資源部門（NBRC）には、NBRC番号4474、5269、6608、7160、7520、7772、8850又は9462として保存されているアカカビを使用することができる。
【００１５】
また、上述したようなアカカビを野生型として、ランダムに突然変異を導入した変異株を使用して、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を取得してもよい。さらに、ATCCやNBRCといった機関に保存された菌株ではなく、自然界から独自に単離したアカカビを使用してアカカビ由来のギ酸脱水素酵素を取得しても良い。
【００１６】
一例として、NBRC番号4474で保存されたアカカビから単離したギ酸脱水素酵素遺伝子の塩基配列及びギ酸脱水素酵素のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号１及び２に示す。なお、この塩基配列及びアミノ酸配列は、Genbankのデータベースに登録番号NW_059922として登録されているものと100%一致している。しかし、登録番号NW_059922として登録された塩基配列及びアミノ酸配列は、コンピュータ解析による予測によりギ酸脱水素酵素遺伝子のコーディング領域とされたに過ぎず、実験的にギ酸脱水素酵素遺伝子が単離された結果として同定されたものではない。
【００１７】
本発明において使用可能なギ酸脱水素酵素は、配列番号２に示したアミノ酸配列からなるものに限定されず、例えば、配列番号２に示すアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列を含み、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するものであっても良い。ここで、複数個のアミノ酸としては、例えば、１から３０個、好ましくは１から２０個、より好ましくは１から１０個、さらに好ましくは１個から５個、特に好ましくは１個から３個を意味する。なお、アミノ酸の欠失、置換若しくは付加は、上記遺伝子をコードする塩基配列を、当該技術分野で公知の手法によって改変することによって行うことができる。塩基配列に変異を導入するには、Kunkel法またはGapped duplex法等の公知手法又はこれに準ずる方法により行うことができ、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばMutant-KやMutant-G（何れも商品名、TAKARA社製））等を用いて、あるいはLA PCR in vitro Mutagenesisシリーズキット（商品名、TAKARA社製）を用いて変異が導入される。
【００１８】
また、本発明においては、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して、例えば８５％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上、最も好ましくは９８％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含み、ギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するギ酸脱水素酵素を使用することもできる。ここで、相同性の値は、blastアルゴリズムを実装したコンピュータプログラム及び遺伝子配列情報を格納したデータベースを用いてデフォルトの設定で求められる値を意味する。
【００１９】
さらに、本発明においては、配列番号１に示す塩基配列の一部又は全部に対して相補的なポリヌクレオチドに対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドにコードされたタンパク質であってギ酸及びNAD+を基質として二酸化炭素及びNADHを生産物とする反応における触媒活性を有するタンパク質をギ酸脱水素酵素として使用することができる。ここで、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするとは、６０℃で２×ＳＳＣ洗浄条件下で結合を維持することを意味する。ハイブリダイゼーションは、J. Sambrook et al. Molecular Cloning, A Laboratory Manual,2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory(1989)に記載されている方法等、従来公知の方法で行うことができる。
【００２０】
以上で説明したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のギ酸脱水素酵素と比較して抜群に優れた比活性を有している。ここで比較対象となる従来公知のギ酸脱水素酵素としてはNeurospora crassa由来、Saccharomyces cerevisiae由来、Emericella nidulans由来又はCandida boidinii由来のギ酸脱水素酵素を挙げることができる。また、BIOCHEMISTRY (Moscow) Vol. 69 No. 11 2004 pp. 1252-1267.（Biokhimiya, Vol. 69, No. 11, 2004, pp. 1537-1554.の英訳）には、従来公知のギ酸脱水素酵素の比活性が掲載されており、これら掲載されたギ酸脱水素酵素の比活性と比較することもできる。いずれの従来公知のギ酸脱水素酵素と比較しても、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素の比活性は、２〜１０倍以上の値を示している。なお、従来公知のギ酸脱水素酵素のなかでは、Paracoccus sp.12-A由来のギ酸脱水素酵素の比活性が最も高い値を示している。Paracoccus sp.12-A由来のギ酸脱水素酵素の比活性と比較すると、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素の比活性は約２倍となっている。
【００２１】
アカカビ由来のギ酸脱水素酵素の製造
上述したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のタンパク質の製造方法では取得することができない。本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法は、上述したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素遺伝子を誘導型プロモーターの制御下に配置したベクターを導入した宿主を準備する。そして当該宿主を培養し、対数増殖期を過ぎた時に上記ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導する。次に、上記宿主の生育至適温度よりも低く且つ上記宿主が生存可能な温度で培養することでギ酸脱水素酵素を宿主内に発現させる。
【００２２】
本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法において、誘導型プロモーターとしては、特に限定されず、従来公知のものを使用することができる。例えば、上記の宿主として大腸菌を使用する場合には、イソプロピル-β-チオガラクトピラノシド（IPTG）の存在下に転写活性を示す誘導型プロモーターを使用することができる。このようなプロモーターの例としては、Trpプロモーター、Lacプロモーター、Trcプロモーター及びTacプロモーターを挙げることができる。また、IPTG以外の誘導物質の存在下に転写活性を示す他のプロモーターや、培地成分及び温度等の培養条件に応じて転写活性を示す他のプロモーターも、誘導型プロモーターとして使用することができる。
【００２３】
また、本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法において、ベクターとしては、上記の宿主内で複製可能なものであれば特に限定されず、如何なるベクターをも使用することができる。例えば、上記宿主として大腸菌を使用する場合には、ベクターとしてはプラスミドベクター、ファージベクターのいずれであっても良い。具体的なベクターとしては、pCDFシリーズ、pRSFシリーズ、pETシリーズ等を例示列挙することができる。
【００２４】
さらに宿主としては、発現ベクターに組み込まれたプロモーターから転写可能な宿主であれば特に限定されないが、例えば、発現ベクターがpET（T7プロモーター）系の場合には大腸菌BL21(DE3)を使用することができる。上述したベクターを宿主に導入する手法としては、一般的に形質転換法として知られる各種の手法を適用することができる。具体的な手法としては、例えば、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、リポフェクション法等を適用することができる。
【００２５】
特に本発明に係るギ酸脱水素酵素の製造方法においては、ベクターを導入した宿主を培養し、対数増殖期を過ぎた時に上記ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導する。ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導する前において、宿主の培養条件としては、何ら限定されず、例えば当該宿主の生育至適温度や生育至適pHを勘案して適宜、設定すればよい。しかし、培養を継続しながら宿主の増殖を観察し、いわゆる対数増殖期を過ぎた時点で以下の条件を満足するような培養条件に変更する。すなわち、条件１としてギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導すし、条件２として宿主の生育至適温度よりも低く且つ宿主が生存可能な温度で培養する。
【００２６】
ここで、対数増殖期を過ぎた時とは、横軸に培養時間及び縦軸に細胞数の対数をとった増殖曲線において、所定の傾きの略直線で表される部分から、接線の傾きが低下し始める時点を意味する。なお、培養曲線は培地中のOD600nmを測定することによって作製することができる。また、ギ酸脱水素酵素遺伝子の発現を誘導する際には、対数増殖期を過ぎて定常期に入ってからが好ましい。ここで定常期とは、上述した増殖曲線の接線の傾きがほぼ０となる期間である。
【００２７】
また、宿主の生育至適温度とは、宿主毎に異なる温度範囲として公知である、例えば、大腸菌B株を宿主とした場合、生育至適温度は３７℃である。例えば、大腸菌B株を宿主とした場合、生育可能な温度は１５〜３７℃である。したがって、大腸菌B株を宿主とした場合、宿主の生育至適温度よりも低く且つ宿主が生存可能な温度としては１５〜３７℃を意味する。特に、大腸菌B株を宿主とした場合、対数増殖期を過ぎた時に約２０℃にして培養を継続することが好ましい。
【００２８】
宿主の対数増殖期を過ぎたときに上記温度範囲に設定することでギ酸脱水素酵素遺伝子が発現し、宿主内に非常に高い比活性を示すギ酸脱水素酵素が生成することとなる。培養後、目的のギ酸脱水素酵素が宿主内に生産されるため菌体又は細胞を破砕し、粗酵素懸濁液を調製する。この粗酵素懸濁液には、非常に高い比活性を示すギ酸脱水素酵素が含まれる。したがって、得られた粗酵素懸濁液をそのまま利用することができる。なお、得られた粗酵素懸濁液からギ酸脱水素酵素を単離精製することもできる。このとき、蛋白質の単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることができる。単離精製されたギ酸脱水素酵素は、所定のpHの緩衝液等に懸濁された状態で利用することができる。
【００２９】
アカカビ由来のギ酸脱水素酵素の利用形態
以上のようにして製造できるアカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のギ酸脱水素酵素と比較して抜群に高い比活性を示すため、従来公知のギ酸脱水素酵素が使用されている反応系のいずれにも優れた代替物として利用することができる。すなわち、従来公知のギ酸脱水素酵素が使用されている反応系において、ギ酸脱水素酵素として上述したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素を使用することによって、従来の酵素反応と比較して優れた反応効率を達成することができる。
【００３０】
例えば、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素の利用形態としては、ギ酸脱水素酵素を利用したNADHの再生系を挙げることができる。NADHは種々の酵素反応で利用されNAD+へと変換される。NADHは、例えば、化学工業や製薬工業の分野において光学異性体を生物的に合成する際の補酵素として利用される。NADHの再生系とは、反応系に残存するNAD+を還元してNADHとし、NADHを回収して再び上記酵素反応に利用することを意味する。
【００３１】
上述したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素をギ酸及びNAD+を含む反応系に作用させることによって、当該NAD+を還元してNADHを合成することができる。
【００３２】
以上のようにアカカビ由来のギ酸脱水素酵素をNADHの再生系に利用することによって、反応系に含まれるNAD+からNADHを効率よく製造することができる。特に、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のギ酸脱水素酵素と比較して非常に優れた比活性を示すため、従来公知のギ酸脱水素酵素の使用量と比較して小量でNADHを製造することができる。換言すると、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を利用することによって、従来公知のギ酸脱水素酵素の使用した場合と比較してNADHの生産スピードを向上させることができる。
【実施例】
【００３３】
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
【００３４】
〔実施例１〕
本実施例ではアカカビ由来のギ酸脱水素酵素遺伝子をクローニングした。先ず、アカカビ（Gibberella zeae）として、独立行政法人製品評価技術基盤機構のNBRCに保存されている株を購入し、指定される方法で復元したものを使用した。比較対照としてEmericella nidulansを同様に購入し復元したものを使用した。またこれらの微生物株はPD培地（組成：Potato Dextrose 24g/L、pH7に調整後オートクレーブ）培地を用いて培養した。本実施例で準備した微生物を表１に示す。
【００３５】
【表１】
0005332277.tif 000002
【００３６】
次に、上述した微生物株を培養して得た菌体から、RNeasy Plant Mini Kit（QIAGEN社製）を用いてtotal RNAを調製した。次に、RNA PCR Kit（TaKaRa社製）を用いて、得られたTotal RNAを鋳型としてcDNA合成を行った。反応液組成は以下の通りである。また、反応サイクルは５０℃（２時間）の後、９９℃（５分間）とし、その後４℃とした。
（反応液組成）
最終濃度
5mM      MgCl2
1X        RT buffer
1mM      dNTP mixture
0.5U      RNase Inhibitor
0.25U     AMV Reverse Transcriptase XL
0.125μM  Oligo dT-Adaptor primer
5μg        Total RNA
RNase free H2Oを加え、液量が10μlとなるようにした。
【００３７】
次に、合成されたcDNAを鋳型とし、データベースに保存された塩基配列に基づいて設計したプライマーを用いてPCRを行った。Gibberella zeae由来のcDNAを用いたPCRには表２に示したプライマーセットを用いた。Emericella nidulans由来のcDNAを用いたPCRには表３に示したプライマーセットを用いた。
【００３８】
【表２】
0005332277.tif 000003
【００３９】
【表３】
0005332277.tif 000004
【００４０】
なお、PCRの際にはPyrobest DNA polymerase（TaKaRa社製）を酵素として使用した。反応液50μl中の成分組成は以下の通りである。また、反応サイクルは、95℃で１分間維持した後、95℃で30秒間、60℃で30秒間及び72℃で１分間を１サイクルとして25サイクル行い、最後に72℃で10分間維持し、4℃を維持した。
（反応液組成）
1x              Pyrobest buffer
200μM         dNTPs mixture
2.5U            Pyrobest DNA polymerase
50pmol          Primer（forward）
50pmol          Primer（reverse）
10μl            cDNA溶液
滅菌水を加え、液量が50μlとなるようにした。
【００４１】
次に、得られたPCR産物のサイズをアガロースゲル電気泳動により確認後、MiniElute Gel Extraction Kit（QIAGEN製）を用いてアガロースゲルより精製したPCR産物を、pT7 Blue T-vector（Novagen社製）、大腸菌JM109株 competent cellを用いてサブクローニングした。作製できたプラスミドをGzFDH/pT7、EnFDH/pT7とする。ここでGzはGibberella zeae、EnはEmericella nidulans由来であることを意味する。クローン化されたPCR産物の塩基配列はDye Terminator cycle sequence Kit、ABI PRIZM 3100 Genetic Analyzer（アプライドバイオシステムズ社製）および、遺伝子情報処理プログラムGENETYX-WIN（ソフトウェア開発株式会社）を用いて解析した。Gibberella zeae由来のPCR産物の塩基配列解析に使用したプライマーを表４に示し、Emericella nidulans由来のPCR産物の塩基配列解析に使用したプライマーを表５に示す。
【００４２】
【表４】
0005332277.tif 000005
【００４３】
【表５】
0005332277.tif 000006
【００４４】
その結果、Gibberella zeae由来ギ酸脱水素酵素遺伝子の塩基配列を配列番号１に示し、Gibberella zeae由来ギ酸脱水素酵素のアミノ酸配列を配列番号２示した。なお、解析の結果として得られた配列番号２に示したアミノ酸配列は、データベース上に公開されている配列（Genbank NW_059922）と１００％の一致を示していた。
【００４５】
次に、単離されたギ酸脱水素酵素遺伝子を発現ベクターに組み込んだ。具体的には、作製されたプラスミド（GzFDH/pT7、EnFDH/pT7）を制限酵素NdeI及びEcoRIで処理した（37℃、2時間）。反応後の溶液を0.8%アガロースゲル電気泳動に供し、NdeI/EcoRI断片としてベクターから切り出された各ギ酸脱水素酵素遺伝子（約1.2kb）をMini Elute Gel Extraction Kit（QIAGEN製）を用いて精製した。
【００４６】
次に、各種FDH/pT7と同様に、制限酵素NdeI及びEcoRIで処理した遺伝子発現用ベクターpET23b(+)（Novagen社製）のNdeI/EcoRIサイトにTaKaRa ligation kit Ver.2.1（TaKaRa製）を用いて上記ギ酸脱水素酵素遺伝子断片を導入後、大腸菌JM109 competent cell（TaKaRa製）によるサブクローニングをおこなった。Fowardプライマー；pET-F（5’-ACT CAC TAT AGG GAG ACC ACA AC-3’）およびReverseプライマー；pET-R（5’-TAT TGC TCA GCG GTG GCA G-3’）を用いたコロニーPCRにより目的の大きさのＤＮＡ断片を含むクローンを選抜したあと、Plasmid mini prep kit（QIAGEN製）を用いてプラスミドを精製した。更に、制限酵素マッピングにより計画通りに遺伝子の導入が確認されたプラスミドをGzFDH/pET23b(+)、EnFDH/pET23b(+)とした。なお、上述した発現ベクターの構築の工程を図１に示した。
【００４７】
〔実施例２〕
本実施例では、実施例１で作製した発現ベクターを用いて、大腸菌においてギ酸脱水素酵素の発現を検証した。
【００４８】
実施例１で作製した発現ベクターを含む大腸菌形質転換体を5mlのLB-アンピシリン培地（組成：Tryptone 10g/L、Yeast Extract 5g/L、NaCl 5g/L及びAmpicillin（SIGMA社製） 50mg/L）で一晩培養（37℃）した後、100mlの同組成培地に1%植菌し、好気的に振盪培養した。OD600の値が0.5〜0.9に達したところで対数増殖期を過ぎたと判断し、最終濃度１mMとなるようにIPTG（イソプロピル-1-チオ-β-D-ガラクトシド）（TaKaRa社製）を添加することでギ酸脱水素酵素遺伝子の発現誘導を開始した。その後、培養温度を20℃として、更に16時間培養した。
【００４９】
次に、得られた培養液を遠心分離（13krpm,4℃,10min）により集菌後、1ml/0.1g（菌体湿重量）の0.1Mリン酸カリウムバッファーで懸濁し、1g/0.1g（菌体湿重量）の0.1mm径のガラスビーズを加えマルチビーズショッカー（安井器械社製）を用いて菌体を破砕し、粗酵素液を得た。粗酵素液のギ酸脱水素酵素活性の測定は、162mM ギ酸ナトリウム、1.62mM NADを含む0.1Mリン酸カリウムバッファー（pH7.5）中で、37℃でのNADHの生成に伴う340nmの吸光度の増加を測定することによりおこなった。また、タンパク質の定量はBovine serum albumin（BSA）（BioRad社製）を標準タンパク質としてBradford法によりおこなった。その結果を図２に示した。
【００５０】
図２に示すように、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素遺伝子を含む形質転換体由来の粗酵素液ではNADHの生成に伴う340nmの吸光度の増加が確認された。一方、Emericella nidulans由来のギ酸脱水素酵素遺伝子を含む形質転換体由来の粗酵素液では340nmの吸光度増加は確認されなかった。同様にギ酸脱水素酵素遺伝子を含まないベクターのみによって形質転換された大腸菌粗酵素液も340nmの吸光度の増加が確認されなかった。以上の結果から、本実施例に示した発現誘導方法によれば、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素を、大腸菌発現系において生産可能であることが確認された。
【００５１】
〔実施例３〕
本実施例では、実施例２で得られたアカカビ由来のギ酸脱水素酵素を精製し、精製されたアカカビ由来のギ酸脱水素酵素の比活性を従来公知のギ酸脱水素酵素との間で比較した。
【００５２】
先ず実施例２で得られたアカカビ由来のギ酸脱水素酵素を含む粗破砕液をサンプルとして、HiTrap Q FFカラム 5ml（アマシャムバイオサイエンス社製）を使用し、図３に示す手順でカラム精製を実施した。溶出画分のうちギ酸脱水素酵素を含む１０フラクション（全体の１／３）を２次精製のサンプルとした。
【００５３】
そして、上記で得られたギ酸脱水素酵素を含む画分は、Amicon Ultra-15(30kDaカット)を用いて脱塩後、10mM KPB(pH7.2)で適量（3bed＝15ml程度）に希釈した。二次精製要カラムとしてEcono-Pac CHT-IIカラム 5mlを使用し、図４の手順でカラム精製を実施した。二次精製後に精製度80％以上の画分を得た。
【００５４】
得られた画分は、アカカビ由来のギ酸脱水素酵素（GzFDH）のギ酸分解反応における活性比較を行うため濃度調整した。対照として性状が公知であるCandida boidinii由来FDH（CbFDH）（シグマ社製）を用いた。CbFDHはリン酸カリウム緩衝液に溶解後、本実施例で上述した方法と同様の方法で精製したものを標品とした。精製したGzFDHとCbFDHのそれぞれについて、BSAを標準タンパク質としたBradford法で定量後、濃度が一定となるよう調製した。Bradford法染色液としてBio-Safe CBB G-250ステイン（BioRad社製）を使用した。
【００５５】
精製して濃度調整済みのGzFDH、CbFDHの２種についてギ酸分解反応のエンドポイント法による活性測定を行い、反応速度を比較した。FDH触媒によるギ酸分解反応は次式で示される。
HCOO- ＋ NAD+ → CO2 ＋ NADH
【００５６】
ここに電子伝達物質であるMethoxy PMS（mPMS）と、酸化還元発色指示薬であるWST1（共にDOJINDO社製）を加えることで次式のように反応が進むため、波長438nmの吸光度で黄色ホルマザンを測定することで、ギ酸分解量の定量が可能となる。なお黄色ホルマザンの吸光係数はNADHの約６倍であり、NADHの直接測定よりも高感度での定量が可能となる。
NADH ＋ mPMS  → NAD+ ＋ mPMS（還元型）
mPMS（還元型） ＋ WST1 → mPMS ＋ 黄色ホルマザン（37000 / M・cm、438 nm）
【００５７】
反応液の組成は、162mMのHCOONa、1.62mMのNAD、3.33μg/mlのmPMS、0.33mg/mlのWST1、0.02mg/mlのGzFDH又はCbFDH及び100mMのリン酸カリウム緩衝液(pH7.5)とし、全量を100μlとした。反応液を混和後、25℃で30分間の反応を行った後、プレートリーダー（TECAN社製）によってA430を測定した。反応後の黄色ホルマザン生成量（反応速度）の比較を図５に示す。また従来公知のギ酸脱水素酵素の性状を網羅した論文データ（Biochemistry vol.69, No.11 2004 991252-1267）との比較を図６に示す。これらの結果および公知データとの比較から、今回取得したアカカビ由来のギ酸脱水素酵素は、従来公知のギ酸脱水素酵素と比較すると世界最高レベルの比活性を有していることが示された。
【００５８】
〔比較例１〕
比較例１では、実施例１で作製した発現ベクターを含む大腸菌形質転換体を用いて、対数増殖期に発現誘導を行う以外は実施例２と同様にしてアカカビ由来のギ酸脱水素酵素の生産を試みる。比較例１では、上記発現有の結果としてタンパク質の発現は確認されるが、ギ酸脱水素酵素活性を検出することができない。
【００５９】
〔比較例２〕
比較例２では、実施例１で作製した発現ベクターを含む大腸菌形質転換体を用いて、対数増殖期を過ぎた時点で発現誘導し、その後、３７℃で培養を継続する以外は実施例２と同様にしてアカカビ由来のギ酸脱水素酵素の生産を試みる。比較例２では、上記発現有の結果としてタンパク質の発現は確認されるが、ギ酸脱水素酵素活性を検出することができない。
【図面の簡単な説明】
【００６０】
【図１】GzFDH/pET23b(+)及びEnFDH/pET23b(+)の構築の工程を示す模式図である。
【図２】実施例２で調製した粗酵素液を用いて酵素反応を行いNADHの生成に伴う340nmの吸光度を検出した結果を示す特性図である。
【図３】実施例３で行ったカラム精製の手順を示すフローチャートである。
【図４】実施例３で行った二次精製の手順を示すフローチャートである。
【図５】精製したGzFDH及びCbFDHについて反応速度を比較した結果を示す特性図である。
【図６】精製したGzFDH及びCbFDHについて、従来公知のギ酸脱水素酵素の性状を網羅した論文データ（Biochemistry vol.69, No.11 2004 991252-1267）と比較した結果を示す特性図である。
【図１】
0005332277.tif 000007
【図２】
0005332277.tif 000008
【図３】
0005332277.tif 000009
【図４】
0005332277.tif 000010
【図５】
0005332277.tif 000011
【図６】
0005332277.tif 000012
【配列表】
0005332277000001.app