(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
修治処理されたハナビラタケ科に属する茸類又は前記茸類の抽出物を有効成分とする筋肉増加剤であって、前記修治処理が１３０℃以上２００℃未満の温度範囲で処理さることを特徴とする筋肉増加剤。
【請求項２】
請求項１に記載の筋肉増加剤の製造方法であって、 ４０℃以上１００℃未満の温度範囲にて前記茸類を加熱処理する乾燥工程と、１3０℃〜３００℃の温度範囲にて乾燥後の茸類を修治処理する修治工程とを有し、 前記修治処理では、加熱された気体によって前記乾燥後の茸類を加熱処理することを特徴とする筋肉増加剤の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ハナビラタケ科の茸類又はその抽出物を有効成分として含有する筋肉増加剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、各種の筋肉増加剤が知られている（特許文献１及び特許文献２を参照）。
そして筋肉増加剤の使用時においては、効率よく筋肉重量を増加させるため、筋肉増加剤の有効成分とは別に、エネルギー効率のよい脂肪成分を食事等として摂取することが好ましいとされている（特許文献１の明細書の段落［００２９］等を参照）。
【特許文献１】特開２００４−１６８７０４号
【特許文献２】特開２００４−０７５６３７号
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
しかしながら、食事等に含まれる脂肪成分は、その大部分が基礎代謝や筋肉重量増加のためのエネルギーとして用いられるものの、その一部がどうしても内臓脂肪として蓄積されたり、また筋肉の筋組織の間に溜まるなどして各種の問題を引き起こす。例えば、過剰な脂肪成分の摂取は、筋肉組織においても脂肪によるエネルギーの産生を高めるが、利用を越える脂肪成分は筋肉の筋繊維の間に溜まると同時に、筋肉蛋白質の分解によるアミノ酸の生体エネルギーとしての利用が高まることで筋肉重量が低下する。そして脂肪が溜まった筋肉組織では、糖の利用が低下する一方で、脂肪成分を分解してエネルギーを得ようとするようになり、生体での糖の利用が低下し、血糖値の上昇、脂質パラメーターの上昇及び内臓脂肪の蓄積が見られるようになる。このような状況が進めば、いわゆるメタボリックシンドロームとなる。このような問題は、多量の脂肪成分（例えば食事全重量に対して５％より多い重量％の脂肪成分）を含有する高脂肪食摂時において特に顕著となる。
このような観点から、筋肉増加剤としては、脂肪成分摂取（特に高脂肪食摂）に伴う内臓脂肪の増加を抑制しつつ筋肉重量を増加するものが好ましいが、従来、このような作用を奏する実用的な筋肉増加剤はほとんど知られていなかった。
【課題を解決するための手段】
【０００４】
そこで本発明者らは、上記問題を解決すべく鋭意研究を行った結果、ハナビラタケ科の茸類又は前記茸類の抽出物（有効成分）を脂肪成分と共に摂取することで、脂肪成分摂取に伴う内臓脂肪の増加を抑制しつつ筋肉重量を増加できることを見出した。さらに修治処理を施された茸類を含有の筋肉増加剤が、より実用的な内臓脂肪増加抑制作用と筋肉重量増加作用とを奏することを見出した。
すなわち上記課題を解決するための手段として、本発明の第１発明の筋肉増加剤は、「ハナビラタケ科に属する茸類又は前記茸類の抽出物」を有効成分として含有する。これにより脂肪食摂時（特に食事重量全量に対して５％より多い重量％の脂肪成分を含有する脂肪食摂時）において、内臓脂肪の蓄積を抑えつつ筋肉重量を効果的に増加させることができる。
【０００５】
また本発明の第１発明の筋肉増加剤は、ハナビラタケ科の茸類が修治処理（後述する加熱処理の一種）されてなる。
また、（例えば食事重量全量に対して３５％の脂肪成分を含有の）高脂肪食摂時において、より確実に内臓脂肪の蓄積を抑えつつ、筋肉重量を増加させることができる。
【０００６】
また第１発明はハナビラタケ科の茸類が１３０℃以上２００℃未満の温度範囲にて修治処理されてなる。
本発明の筋肉増加剤は、（例えば食事重量全量に対して５％〜３５％の脂肪成分を含有の）幅広い範囲の脂肪食摂時において、内臓脂肪の蓄積を抑えつつ、安定的に筋肉重量を増加させることができる。
【０００７】
また本発明の第２発明は、第１発明に記載の筋肉増加剤を製造する方法であって、４０℃以上１００℃未満の温度範囲にて茸類を加熱処理する乾燥工程と、１３０℃〜３００℃の温度範囲にて乾燥後の茸類を修治処理する修治工程とを有する。そして修治処理では、加熱された気体によって乾燥後の茸類を加熱処理する。
第２発明では、乾燥処理を行うことにより、ハナビラタケ科の茸類に含まれる余分な水分含量を低下させることができる。そして乾燥工程の後に行う修治工程において加熱された気体によって前記茸類を加熱処理することにより、ハナビラタケ科の茸類が本来的に有する筋肉増加作用を極力損なうことなく、前記茸類から水分のみを更に除去することができる。
【０００８】
このようにして得られた筋肉増加剤は、より実用的な内臓脂肪増加抑制作用と筋肉重量増加作用とを奏することとなる。
【発明の効果】
【０００９】
第１発明によれば、脂肪成分摂取に伴う内臓脂肪の増加を抑制しつつ筋肉重量を増加させることができる。また、幅広い範囲の脂肪成分を含有する食事の食摂時において、内臓脂肪の蓄積を抑えつつ、安定的に筋肉重量を増加させることができる。
第２発明によれば、筋肉増加に有効な成分を好適な状態で含んだハナビラタケ科の茸類を含有の筋肉増加剤を製造することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下に本発明を実施するための最良の形態を説明する。
本実施形態の筋肉増加剤は、後述の「ハナビラタケ科に属する茸類又は前記茸類の抽出物」を有効成分として含有するものである。そして本実施形態の筋肉増加剤を後述の「脂肪成分」含有の食事とともに摂取することで、脂肪成分摂取に伴う内臓脂肪の増加を抑制しつつ、筋肉重量を増加させることができる。
このときハナビラタケ科の茸類は、後述する「修治処理（加熱処理の一形態）」がなされてなることが好ましく、この修治処理の温度が１３０℃以上２００℃未満であると、より実用的な筋肉重量増加作用と内臓脂肪増加抑制作用の二つの効果を奏することとなる。
【００１１】
さらに、本実施形態の筋肉増加剤を摂取することで、摂取対象者の血液環境を良好に保つことができる。ここで血液環境を良好に保つとは、専ら血液中の「総コレステロール量」、「ＬＤＬコレステロール量」、「ＨＤＬコレステロール量」、「トリグリセリド量」、「遊離脂肪酸量」及び「血糖値」を適正値に保つことを意味する。
ところで従来の筋肉増加剤（ミオシンやアクチン蛋白質を増やす作用を奏する薬剤）として、ステロイド剤、ミオスタチン阻害剤、ＩＧＦ-Ｉ誘導剤などが存在する。そして、上述のステロイド剤などのホルモン系筋肉増加剤では、例えば腎臓の働きを阻害して高コレステロール血症（血中コレステロール量が適正値を超えて増加する症状）を引き起こすなどの副作用が知られている。
一方、本実施形態の筋肉増加剤は、上述の通り血液環境を良好に保つことができる（具体的には、後述の試験例２及び４を参照）。すなわち本実施形態の筋肉増加剤によれば、摂取対象者の全身での糖の利用及び脂質成分の利用を高めることができるため、筋肉からの糖原性アミノ酸としての分解・利用を抑えて筋肉内での脂肪成分の利用を高めることで、体重あたりの筋肉重量は増加した値を示す。言い換えれば、本実施形態の筋肉増加剤は、健全で、健康な筋肉状態を維持させることに役立てることができると言える。これらの結果、通常以上に血液環境が良好に保たれることから副作用がほとんどない又は極めて少ないことが予想される。
【００１２】
以下、筋肉増加剤の各成分とその製法を詳しく説明する。
［ハナビラタケ科の茸類］
「ハナビラタケ科の茸類」とは、ハナビラタケ（Ｓｐａｒａｓｓｉｓ ｃｒｉｓｐａ）を代表とするハナビラタケ属（Ｓｐａｒａｓｓｉｓ）に属する真菌類である。
そして「ハナビラタケ科の茸類」は、特に熱を加えることなく天然状態の性状を維持したものを筋肉増加剤に含有させて使用してもよいが、筋肉重量増加作用を更に向上させるため、以下に説明の「乾燥処理」及び「修治処理」のうちのいずれか一つの処理を施したものを使用することが好ましい。
【００１３】
［乾燥処理］
「乾燥処理」とは、一般に４０℃以上１００℃未満の温度範囲で加熱処理することを意味し、典型的には「ハナビラタケ科の茸類」を（破砕することなく）そのままの形状で熱処理を加えるものである。そして乾燥処理は本実施形態の必須の工程ではないが、後述の修治処理の前処理として行うことが好ましいものである。すなわち乾燥処理を行うことにより、ハナビラタケ科の茸類に含まれる余分な水分を除去することができる。
そして乾燥温度は常に一定温度に設定してもよいが、例えば４０℃以上１００℃未満の温度範囲において段階的又は連続的に昇温する設定、又は同温度範囲にて昇温と降温を繰り返す設定であってもよい。
なお乾燥処理温度の下限値は、室温又は外気温よりも高い温度であればよく、例えば１０℃以上４０℃未満の温度範囲にて好適に乾燥処理を行うことができる場合がある。
【００１４】
［修治処理］
「修治処理」とは、一般には茸類を加熱処理する技術であるが、本実施の形態においては、特に１００℃〜３００℃の温度範囲にてハナビラタケ科の茸類を加熱処理することを意味するものとし、１００℃未満の温度域で加熱処理する上記「乾燥処理」と区別する。また「修治処理」では、乾燥後の「ハナビラタケ科の茸類」そのままの形状で熱処理を加えてもよく、乾燥後の「ハナビラタケ科の茸類」を粉砕して破砕物状または粉状とした後に熱処理を加えてもよい。そして「修治処理」とは、換言すると「ハナビラタケ科の茸類」が炭化しない程度（視覚的に表現すると黒くならない程度）に熱処理することである。
【００１５】
そして「修治処理の温度」が１００℃〜３００℃の範囲（一定温度、昇温又は降温のいずれも可）であれば「ハナビラタケ科の茸類」を良好に修治処理することができる。そして当該茸類を修治処理されてなる筋肉増加剤は、ハナビラタケ科の茸類が本来的に有する筋肉増加作用を極力損なうことなく余分な水分を良好に除去してあるため、（例えば食事重量全量に対して３５％の脂肪成分を含有の）高脂肪食摂時に所望の筋肉重量増加作用を奏することができる（図５〜図７を参照）。そして「修治処理の温度」が１３０℃以上２００℃未満の範囲であると、（例えば食事重量全量に対して５％〜３５％の脂肪成分を含有の）幅広い範囲の脂肪食摂時において、内臓脂肪の蓄積を抑えつつ、安定的に筋肉重量を増加させることができるので好ましい。一方、「修治処理の温度」が２００℃〜３００℃の範囲であると、ハナビラタケ科の茸類の修治処理をより短時間で確実に行うことができる。
【００１６】
なお上述の乾燥処理及び修治処理において、ハナビラタケ科の茸類に熱を伝える加熱媒体は、液体、気体又は固体のいずれの状態でもよい。すなわち、茸類の煮沸、茸類の水蒸気処理、茸類の熱風処理、茸類の焼成処理、固体熱媒体を茸類に直接接触させて加熱する処理などの各種加熱方法が乾燥処理及び修治処理に含まれる。
好ましくは、乾燥工程と修治工程のうちの少なくとも１つの工程において、加熱された気体によって前記茸類を処理する。加熱気体によって処理（熱風処理）することで、ハナビラタケ科の茸類から余分な水分を除去することができる。
そして「修治工程」では、「ハナビラタケ科の茸類」を加熱気体にて処理（例えば熱風処理）することで、例えば１００℃〜３００℃の温度範囲であっても前記茸類を極力炭化させないように加熱処理することができる。このため加熱気体による修治処理によれば、ハナビラタケ科の茸類が本来的に有する筋肉増加作用を極力損なうことなく、ハナビラタケ科の茸類から水分のみを更に除去することができる。
【００１７】
［ハナビラタケ科の茸類の抽出物］
未修治又は修治処理したハナビラタケ科の茸類は、修治処理後の形状状態（典型的には破砕物状又は粉状）で使用できるが、より効果的な筋肉重量増加作用を奏するため、筋肉増加作用を有する有効成分を抽出してなる「抽出物」として使用することが好ましい。ここで「ハナビラタケ科の茸類の抽出物」とは、例えば後述のように、当該茸類を細かくして得られた破砕物又は粉体を水系又は有機系溶媒に混合し、粉状体の有効成分を溶媒中に溶出してなるものである。
【００１８】
「抽出物の製造方法」を例示すると、まず「ハナビラタケ科の茸類」をハンマークラッシャー型の粉末加工装置により粉末状とした後、φ０．１〜φ１．５ｍｍ（典型的にはφ０．３ｍｍ）のメッシュスクリーンにして篩をかけることで破砕物又は粉体を得る。そして、この破砕物又は粉体を、熱水などの水系溶媒や、アセトンやエタノールなどの有機系溶媒に溶解又は分散させて有効成分を抽出することで、「ハナビラタケ科の茸類の抽出物」を得る。そして好ましくは、得られた抽出液を減圧濃縮したのち、真空デシケータ中で更に乾燥し、この乾燥濃縮物を「ハナビラタケ科の茸類の抽出物」とする。なお抽出方法として例えば破砕物又は粉体を溶媒で還流するなどの手法を取り得る。
また「ハナビラタケ科の茸類」より、熱水にて（還流）抽出、濃縮及び乾燥処理を行うことで得られた「ハナビラタケ科の茸類の粗抽出物」を、さらに硫安塩析して上澄み液を得、この上澄み液を透析などの手法により濃縮したものを「ハナビラタケ科の茸類の精製抽出物」とすることもできる。
【００１９】
そして、上述の「ハナビラタケ科に属する茸類又はその抽出物」を有効成分とした筋肉増加剤を、「脂肪成分」とともに摂取することとなる。なお「脂肪成分」は、予め筋肉増加剤に含まれていてもよく、筋肉増加剤とは別に食事中に含まれていてもよい。
ここで「筋肉増加剤」は、食事量全量に対して０．１％〜１０％の重量％の範囲で含有されておればよく、食事量全量に対して０．５％〜５．０％であると所望の筋肉重量作用を奏するため好ましい。
【００２０】
［脂肪成分］
一方、「脂肪成分」とは、一般に、ラード，牛脂，魚油，ミルク脂肪，バター，チーズ，ショートニング，マーガリン，細菌類油，菌類油などの動物性脂肪（脂質）や、植物油、微小藻類油などの植物性脂肪（脂質）で構成される群から選ばれるものである。
そして「脂肪成分」は、食事量全量に対して３％〜５０％の重量％の範囲で含有されておればよく、食事量全量に対して５％〜４０％であると効率よく筋肉重量を増加させられるので好ましい。そして「脂肪成分」が、食事量全量に対して５％より多く３５％以下であると、本実施形態の筋肉増加剤がより確実に作用するため好ましい。
【００２１】
［試験例］
以下、本実施の形態を試験例に基づいて説明するが、本発明は試験例に限定されるものではない。各試験においては、以下の実施例１〜３の筋肉増加剤を各々使用することとした。
［実施例１］
ハナビラタケ科の茸類｛具体的にはハナビラタケ（Sparassis  crispa）｝を４０℃〜６０℃の温度範囲で乾燥処理を施した後に粉体としたものを「実施例１」の筋肉増加剤として使用した。そして実施例１の筋肉増加剤を、後述の食事重量全量に対して０．２％、１．０％、５．０％の割合で添加することとした（［図１］〜［図４］の各表では、「混餌濃度(％)」の欄を設けて割合の別を表した）。なお本試験では、４０℃（１５時間）、４５℃（５時間）、５０℃（５時間）及び６０℃（５時間）で順次温度を上げつつ乾燥処理を行った。
【００２２】
［実施例２］
ハナビラタケに乾燥処理を施した後、１５０℃（０．５時間）の修治処理（ハナビラタケが茶褐色となる程度）を施した後に粉体としたものを「実施例２」の筋肉増加剤として使用した。この実施例２の筋肉増加剤を、食事重量全量に対して０．２％、１．０％、５．０％の割合で添加することとした。
【００２３】
［実施例３］
ハナビラタケに乾燥処理を施した後、１７０℃（０．５時間）の修治処理（ハナビラタケがコゲ茶色となる程度）を施した後に粉体としたものを「実施例３」の筋肉増加剤として使用した。この実施例３の筋肉増加剤を、食事重量全量に対して０．２％、１．０％、５．０％の割合で添加することとした。
【００２４】
［試験例１：高脂肪食摂時の筋肉重量及び内臓脂肪量の変化］
試験例１では、雄性ＳＤラット（販売会社：日本ＳＬＣ株式会社）を摂取対象として用いた。そして「高脂肪食｛ＭＦ粉末（オリエンタル酵母社製）に牛脂（ラード）を加えて合計脂肪成分量を３５％とした食事｝」全量に対して、実施例１の筋肉増加剤を上記割合で混合した「実施例１の混合サンプル」を各々用意した。
そして同様に高脂肪食全量に対して実施例２の筋肉増加剤を上記割合で混合した「実施例２の混合サンプル」を各々用意した。そして高脂肪食全量に対して実施例３の筋肉増加剤を上記割合で混合した「実施例３の混合サンプル」を各々用意した。
そして各実施例の「混合サンプル」をそれぞれ別のラットに供与して４ヶ月の間飼育した。ラットの飼育環境は、温度２３±２℃、湿度５０±５％及び１２時間（明／暗）に設定した。そして飼育後の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」を、実施例ごと及びその割合ごとに下記１）〜３）の手順で測定した。
一方、比較例１（コントロール）では、（筋肉増加剤を含有しない）高脂肪食を、ラットに供与して４ヶ月の間飼育した。そして実施例と同様に、飼育後の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」を測定した。
【００２５】
１）「筋肉重量値」とは、個々のラットの下肢両側より剥離した「ヒラメ筋」の重量を各々の「ラット体重」で割ることで算出したものである。
２）「腎臓周辺の白色脂肪組織値」は、両側の副腎周囲の脂肪組織を奇麗に剥離し、この脂肪組織重量を測定後、個々の「ラット体重」で割ることで算出したものである。
３）「精巣周辺の白色脂肪組織値」は、両側の精巣周囲の脂肪組織を奇麗に剥離し、この脂肪組織重量を測定後、個々の「ラット体重」で割ることで算出したものである。
【００２６】
［試験例２：高脂肪食摂時の血液環境］
実施例ごと及びその割合ごとの［試験例１］実施後のラット血液を採取した。そしてラット血液中の「総コレステロール量（Ｔ-Ｃｈｏ）」、「ＬＤＬコレステロール量（ＬＤＬ-Ｃ）」、「ＨＤＬコレステロール量（ＨＤＬ-Ｃ）」、「トリグリセリド量（Ｔｒｉｇｌｙｃｅｒｉｄｅ）」、「遊離脂肪酸量（ＮＥＦＡ）」及び「血糖値（Ｇｌｕｃｏｓｅ）」を、長浜ライフサイエンスラボラトリー（オリエンタル酵母工業株式会社）に委託して測定した。
そして［試験例１］実施後の比較例１のラットから血液を採取し、上記実施例と同様に、ラット血液中の「総コレステロール量」、「ＬＤＬコレステロール量」、「ＨＤＬコレステロール量」、「トリグリセリド量」、「遊離脂肪酸量」及び「血糖値」を測定した。
【００２７】
［試験例３：通常脂肪食摂時の筋肉重量及び内臓脂肪量の変化］
試験例３では、上記「高脂肪食」の代わりに、「通常脂肪食｛ＭＦ粉末（オリエンタル酵母社製）に牛脂（ラード）を加えて合計脂肪成分量を５％とした食事｝」を用いた。そして試験例１と同様に、通常脂肪食全量に対して、実施例１〜３のいずれかの筋肉増加剤を上記割合で各々混合した「混合サンプル」を用意した。この混合サンプルをそれぞれラットに供与して４ヶ月の間飼育し、ラットの飼育環境は試験例１の飼育環境と同一とした。そして実施例ごと及びその割合ごとに、飼育後の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」を上記１）〜３）の手順にて測定した。
一方、比較例２（コントロール）として、ラットに対して（筋肉増加剤を含有しない）通常脂肪食をラットに供与して４ヶ月の間飼育した。そして実施例と同様に、飼育後の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」を測定した。
【００２８】
［試験例４：通常脂肪食摂時の血液環境］
実施例ごと及びその割合ごとの［試験例３］実施後のラット血液を採取した。そしてラット血液中の「総コレステロール量」、「ＬＤＬコレステロール量」、「ＨＤＬコレステロール量」、「トリグリセリド量」、「遊離脂肪酸量」及び「血糖値」を、長浜ライフサイエンスラボラトリー（オリエンタル酵母工業株式会社）に委託して測定した。
そして［試験例３］実施後の比較例２のラットから血液を採取し、上記実施例と同様に、ラット血液中の「総コレステロール量」、「ＬＤＬコレステロール量」、「ＨＤＬコレステロール量」、「トリグリセリド量」、「遊離脂肪酸量」及び「血糖値」を測定した。
【００２９】
［試験例１の結果］
図１の表は、試験例１の結果（高脂肪食摂時の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」）を示す表である。
図１の表を参照して、実施例１〜３のラットでは、比較例１のラットと比較して、「筋肉重量」の増加が確認できた。また実施例１〜３のラットでは、比較例１のラットと比較して、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」の減少が確認できた。さらに実施例１〜３のラットでは、比較例１のラットと比較して「体重」の減少が確認できた。
特に、実施例２及び３のラット（「修治処理されたハナビラタケ」を含有の筋肉増加剤を供与したラット）では、比較例１のラットと比較して、より確実に内臓脂肪の蓄積が抑制されるとともに、さらに筋肉重量が増加したことがわかった。
【００３０】
［試験例２の結果］
図２の表は、試験例２の結果（高脂肪食摂時の血液環境の変化）を示す表である。単位「ｍｇ／ｄＬ」は、血液１ｄＬ中に含まれる成分含量（ｍｇ）を示し、単位「μＥｑ／Ｌ」は、血液１Ｌ中に含まれる成分当量（μＥｑ）を示す。
図２の表を参照して、実施例１〜３のラットでは、比較例１のラットと比較して、血液環境が全般的に良好であった。具体的には、実施例１〜３のラットでは、「総コレステロール量」及び「ＬＤＬコレステロール量」(いわゆる悪玉コレステロール)が減少するとともに、「ＨＤＬコレステロール量」(いわゆる善玉コレステロール)が増加傾向にあることがわかった。また実施例１〜３のラットでは、「トリグリセリド量」が減少する一方、「遊離脂肪酸(ＮＥＦＡ)量」の大幅な増加は見られなかった。そして実施例１〜３のラットでは「血糖値」が減少することがわかった。
以上の結果より、実施例１〜３のラットでは、筋肉組織において糖の利用及び脂肪成分の利用、そして肝臓での脂質成分の合成抑制が高められていることが示唆された。
【００３１】
［試験例３の結果］
図３の表は、試験例３の結果（通常脂肪食摂時の「ラット体重」、「筋肉重量」、「腎臓周辺の白色脂肪組織」及び「精巣周辺の白色脂肪組織」）を示す表である。
図３の表を参照して、実施例２のラット（「１５０℃にて修治処理されたハナビラタケ」を含有の筋肉増加剤を供与したラット）では、比較例１のラットと比較して、より確実に内臓脂肪の蓄積が抑制されるとともに筋肉重量が増加したことがわかった。
そして試験例３の結果と上述の試験例１の結果を総合すると、実施例２の筋肉増加剤をはじめとして、１３０℃以上２００℃未満の温度範囲にて（茶褐色〜コゲ茶色となる程度に）修治処理されたハナビラタケを含有の筋肉増加剤は、（食事重量全量に対して５％〜３５％の脂肪成分を含有の）幅広い範囲の脂肪食摂時において、内臓脂肪の蓄積を抑制し、且つ安定的に筋肉重量を増加することが確認できた。
【００３２】
［試験例４の結果］
図４の表は、試験例２の結果（通常脂肪食摂時の血液環境の変化）を示す表である。
図４の表を参照して、実施例１〜３のラットでは、比較例２のラットと比較して、「ＨＤＬコレステロール量」(いわゆる善玉コレステロール)が増加傾向にある一方、「ＬＤＬコレステロール量」(いわゆる悪玉コレステロール)が減少傾向にあった。そして実施例１〜３のラットでは、「遊離脂肪酸(ＮＥＦＡ)量」が大幅に減少する一方、「トリグリセリド量」の大幅な増加は見られなかった。
【００３３】
［総合評価］
図５は、図１の表に示した筋肉重量値を棒グラフで示した図である。図６は、図１の表に示した内臓脂肪値を棒グラフで示した図である。図７は、図１及び図３の表に示した筋肉重量値及び内臓脂肪値を棒グラフで示した図である。これらの図では、比較例１又は比較例２の各値を基準（１００）として、各々の実施例の値をパーセンテージ（％）で示してある。
そして図５及び図６を参照して、上記試験例１〜４の結果を総合評価すると、本実施形態の筋肉増加剤（実施例１〜３）を「脂肪成分」含有の食事とともに摂取することで、脂肪成分摂取に伴う内臓脂肪の増加を抑制しつつ、筋肉重量を増加できることがわかった。このときハナビラタケは、「修治処理」がなされてなる（例えば実施例２）と、より確実に内臓脂肪の蓄積を抑えつつ、筋肉重量を増加させることわかった。
さらに図７を参照して、ハナビラタケの修治処理の温度が１３０℃以上２００℃未満（好ましくは１４０℃以上１７０℃未満）の筋肉増加剤（例えば実施例２）であると、幅広い脂肪成分含有の食摂時において、より実用的な筋肉重量増加作用と内臓脂肪増加抑制作用を奏することがわかった。
【００３４】
さらに上記試験例１及び３の結果を考察すると、実施例１〜３の筋肉増加剤は、食事中の脂肪成分量の増加に比例して、内臓脂肪の蓄積を抑えつつ筋肉を増加させることが推測された。すなわち、食事中の脂肪成分が少ない場合には内臓脂肪増加抑制作用が若干弱められる一方、食事中の脂肪成分が多い場合には、極めて強い内臓脂肪増加抑制作用を奏することが推察された。
ここで食事に含まれる脂肪分が適切な量である場合には、基礎代謝などの関係からムリに内臓脂肪を減少させる必要はない。このことを考えると、筋肉増加剤の理想的な効果は、食事中に余分な脂肪成分が多量に含まれている場合にのみ、脂肪増加抑制作用を奏しつつ筋肉増加を図ることである。そして本実施例の筋肉増加剤は、上述の要求にも十分に答えるものであり、健康面においてより寄与度が高いものであると推測される。
なお本段落に記載された全ての推測は、本発明をなんら拘束するものではない。
【００３５】
本実施の形態の筋肉増加剤は、上述した実施の形態に限定されるものではなく、その他各種の実施の形態を取り得る。
（１）本実施の形態においては、ハナビラタケ科の茸類又はその抽出物を有効成分とする例を説明した。これとは異なり、ハナビラタケ科の近縁種（例えば、「ヒダナシタケ目に属する茸類」や「カンゾウタケ目に属する茸類」）であって少なくとも筋肉重量増加作用を奏するものであれば、本実施の形態においてハナビラタケ科の茸類の代替物となりえる可能性がある（なお本推測は、なんら本発明を拘束するものではない）。上述のヒダナシタケ目には、例えば、サンゴハリタケ科（Ｈｅｒｉｃｉａｃｅａｅ）、イボタケ科（Ｔｈｅｌｅｐｈｏｒａｃｅａｅ）、タコウキン科（Ｐｏｌｙｐｏｒａｃｅａｅ）、マンネンタケ科（Ｇａｎｏｄｅｒｍａｔａｃｅａｅ）の茸類が属する。また「カンゾウタケ目に属する茸類」としては、例えば、スエヒロタケ科（Ｓｃｈｉｚｏｐｈｙｌｌａｃｅａｅ）、パイプタケ科（Ｌａｃｈｎｅｌｌａｃｅａｅ）、フウリンタケ科（Ｓｔｉｇｍａｔｏｌｅｍｍａｃｅａｅ）の茸類が属する。
【００３６】
（２）また本実施形態の筋肉増加剤には、ビタミン類、ミネラル類、ホルモン類、酸化防止剤、生理活性物質、甘味料、酸味料、香料、塩分又は糖類などを添加剤として添加することができる。
（３）そして本実施形態の筋肉増加剤は、飲食物や薬物などの種々の形態で人に摂取又は投与することができ、ダイエット用食品、スポーツ用食品などとして利用することができる。上記の飲食物として、例えば、飲料類（例えば、ドリンク剤、ミルク飲料、コーヒー飲料、紅茶飲料、緑茶飲料、ジュースなど）、調味液類（例えば、たれ汁など）、食肉製品類（例えば、ハム、ソーセージなど）、菓子類（例えば、ビスケット、クッキー、キャンディー、スナック菓子、ラムネ菓子など）、魚肉製品類（例えば、かまぼこ、ちくわなど）や、乳製品類（例えば、チーズなど）などが例示できる。かかる飲食物に有効成分（即ち、「ハナビラタケ科の茸類」）を含有させ、それを飲食することにより有効成分が摂取される。上記の飲食物は、その調製段階の適当な工程において有効成分を添加する以外は常法に準じて調製することができる。
（４）「乾燥処理」には、上記加熱処理のほかに、フリーズドライ法などのような冷却処理も含まれる。
【図面の簡単な説明】
【００３７】
【図１】試験例１の結果を示す表である。
【図２】試験例２の結果を示す表である。
【図３】試験例３の結果を示す表である。
【図４】試験例４の結果を示す表である。
【図５】（ａ）は、図１の実施例１における筋肉重量の増減を棒グラフで表示した図であり、（ｂ）は、図１の実施例２における筋肉重量の増減を棒グラフで表示した図である。
【図６】（ａ）は、図１の実施例１における内臓脂肪（精巣周辺）の増減を棒グラフで表示した図であり、（ｂ）は、図１の実施例１における内臓脂肪（腎臓周辺）の増減を棒グラフで表示した図であり、（ｃ）は、図１の実施例２（精巣周辺）における内臓脂肪の増減を棒グラフで表示した図であり、（ｄ）は、図１の実施例２における内臓脂肪（腎臓周辺）の増減を棒グラフで表示した図である。
【図７】（ａ）は、図１及び図３の実施例２における筋肉重量の増減を総合して棒グラフで表示した図であり、（ｂ）は、図１及び図３の実施例２における内臓脂肪の増減を総合して棒グラフで表示した図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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