(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
セレノプロテインPを測定することを含む、２型糖尿病の検出方法。
【請求項２】
セレノプロテインPを測定することを含む、２型糖尿病に罹患するリスクを評価する方法。
【請求項３】
セレノプロテインPを測定することを含む、被験体のインスリン抵抗性または血糖コントロールを評価する方法。
【請求項４】
セレノプロテインPを測定することを含む、２型糖尿病患者におけるインスリン抵抗性を評価する方法。
【請求項５】
セレノプロテインPを測定することを含む、耐糖能正常者における２型糖尿病発症のリスクを評価する方法。
【請求項６】
セレノプロテインPからなる、２型糖尿病検出用マーカー。
【請求項７】
セレノプロテインPからなる、２型糖尿病の罹患リスク評価用マーカー。
【請求項８】
セレノプロテインPからなる、インスリン抵抗性または血糖コントロール評価用マーカー。
【請求項９】
セレノプロテインPの、２型糖尿病検出用マーカーとしての使用。
【請求項１０】
セレノプロテインPの、２型糖尿病の罹患リスク評価用マーカーとしての使用。
【請求項１１】
セレノプロテインPの、インスリン抵抗性または血糖コントロール評価用マーカーとしての使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、セレノプロテインＰの２型糖尿病または血管障害の診断、治療への利用に関する。
【背景技術】
【０００２】
世界規模で増加し続ける２型糖尿病は、網膜・腎・神経の合併症や虚血性心疾患などの動脈硬化性疾患を促進することで人類のＱＯＬと生命を脅かしており、その新たな治療法の開発は急務である。肝臓は糖・脂質代謝の主役を担うだけではなく、血管新生因子をはじめとする各種生理活性物質の生体内最大の産生臓器であることから、２型糖尿病の病態を形作る未知の分泌蛋白を多数産生している可能性がある。２型糖尿病では、インスリンによる肝臓からの糖放出抑制作用は減弱しており、この現象はインスリン抵抗性と呼ばれる（非特許文献１および２を参照）。インスリン抵抗性は肝臓からの糖放出亢進による高血糖と、脂質の産生亢進による高脂血症をもたらし、ともに動脈硬化性疾患を促進する。さらに肝臓は動脈硬化のリスクにつながる血管新生因子をはじめとする各種生理活性物質の生体内最大の産生臓器である。
【非特許文献１】Ｍｉｃｈａｅｌ  ＭＤ．ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ  ６：８７−９７，２０００
【非特許文献２】Ｓａｌｔｉｅｌ  ＡＲ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ  ４１４：７９９−８０６，２００１
【発明の開示】
【０００３】
本発明は、糖尿病関連肝臓由来分泌タンパク質であるセレノプロテインＰ（Ｓｅｌｅｎｏｐｒｏｔｅｉｎ  Ｐ）を利用して２型糖尿病や心筋梗塞、脳梗塞、閉塞性動脈硬化症などの動脈硬化性疾患等の血管障害を検出する方法および２型糖尿病や動脈硬化性疾患等の血管障害に罹患するリスクを評価する方法、ならびにセレノプロテインＰからなる糖尿病や動脈硬化性疾患等の血管障害を検出するためのマーカーおよび２型糖尿病や動脈硬化性疾患等の血管障害に罹患するリスクを評価するためのマーカーの提供を目的とする。
さらに、本発明はセレノプロテインＰを用いた２型糖尿病や動脈硬化性疾患等の血管障害を予防または治療する医薬のスクリーニング方法、セレノプロテインＰを有効成分として含む血管障害の予防または治療薬の提供を目的とする。
本発明者らは、１００例を超える糖尿病・代謝症候群患者の肝生検サンプルを前向きに蓄積し、ＤＮＡチップおよびＳＡＧＥ法を用いて６０万遺伝子を超える肝発現遺伝子を包括的に解析してきた。これらの肝発現遺伝子情報から、血糖コントロール、ＢＭＩ、インスリン抵抗性等の患者の臨床指標と肝遺伝子発現が相関する６２種の分泌蛋白群を同定した（御簾・篁・金子ら、糖尿病の病態と関連して発現変動する遺伝子群、日本国特許出願２００５−１２５６８９号）。
本発明者らは、糖尿病関連肝臓由来分泌タンパク質についてさらに鋭意検討を行った。
本発明者らは、２型糖尿病患者の肝臓での包括的遺伝子発現プロファイルから、インスリン抵抗性と糖負荷後２時間血糖値に肝遺伝子発現が相関する分泌タンパクとしてセレノプロテインＰを同定し、その機能解析を行った。その結果、マウスへのセレノプロテインＰ投与が全身でのインスリン抵抗性を誘導し糖負荷後の高血糖を惹起することを見出し、その機序として、肝細胞でのインスリンシグナルを減弱させ肝細胞からの糖放出を増加させることを明らかにした。加えて、マウス胎仔器官培養を用いた検討から、セレノプロテインＰは血管内皮細胞の増殖を抑制し、血管壁細胞の増殖を強力に誘導することを明らかにした。以上の結果から、２型糖尿病患者あるいはインスリン抵抗性を有する肥満患者においては、肝臓からのセレノプロテインＰ分泌が亢進し、その結果全身でのインスリン抵抗性および食後高血糖が誘導され、さらには血管内皮細胞の増殖低下が生じることで、血管障害を進行させている可能性が示唆された（図１）。
本発明者らは、セレノプロテインＰ遺伝子の発現が２型糖尿病の病態と関連していることから、セレノプロテインＰの発現を指標に２型糖尿病の診断を行うことができることを見出した。また、セレノプロテインＰがインスリンの作用に大きく影響することから、セレノプロテインＰの発現を制御することにより２型糖尿病の病態を制御し得ることを見出した。さらに、セレノプロテインＰが血管細胞の発生および増殖に影響を及ぼすことから、血管障害の治療に用い得ることを見出し、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は以下の通りである。
［１］  セレノプロテインＰを測定することを含む、２型糖尿病または血管障害の検出方法。
［２］  セレノプロテインＰを測定することを含む、２型糖尿病または血管障害に罹患するリスクを評価する方法。
［３］  血管障害が動脈硬化性疾患である［１］または［２］の方法。
［４］  セレノプロテインＰを測定することを含む、被験体のインスリン抵抗性または血糖コントロールを評価する方法。
［５］  セレノプロテインＰを測定することを含む、２型糖尿病患者におけるインスリン抵抗性を評価する方法。
［６］  セレノプロテインＰを測定することを含む、耐糖能正常者における２型糖尿病発症のリスクを評価する方法。
［７］  セレノプロテインＰからなる、２型糖尿病または血管障害検出用マーカー。
［８］  セレノプロテインＰからなる、２型糖尿病または血管障害の罹患リスク評価用マーカー。
［９］  血管障害が動脈硬化性疾患である［７］または［８］のマーカー。
［１０］  セレノプロテインＰからなる、インスリン抵抗性または血糖コントロール評価用マーカー。
［１１］  セレノプロテインＰの、２型糖尿病または血管障害検出用マーカーとしての使用。
［１２］  セレノプロテインＰの、２型糖尿病または血管障害の罹患リスク評価用マーカーとしての使用。
［１３］  血管障害が動脈硬化性疾患である［１１］または［１２］の使用。
［１４］  セレノプロテインＰの、インスリン抵抗性または血糖コントロール評価用マーカーとしての使用。
［１５］  ２型糖尿病または血管障害の予防または治療薬をスクリーニングする方法であって、候補化合物のセレノプロテインＰの発現または作用を抑制する能力を指標に、予防または治療薬として選択することを含むスクリーニング方法。
［１６］  血管障害が動脈硬化性疾患である［１５］のスクリーニング方法。
［１７］  セレノプロテインＰまたはセレノプロテインＰをコードする核酸を有効成分として含む血管内皮細胞の増殖または血管壁細胞の増殖低下に関連する疾患の予防または治療剤。
［１８］  血管内皮細胞の増殖または血管壁細胞の増殖低下に関連する疾患が糖尿病性網膜症、動脈硬化性疾患または癌である［１７］の予防または治療剤。
［１９］  抗セレノプロテインＰ抗体を有効成分として含む２型糖尿病または血管障害の予防または治療剤。
［２０］  セレノプロテインＰをコードする遺伝子の発現を抑制する２本鎖ＲＮＡを有効成分として含む２型糖尿病または血管障害の予防または治療剤。
［２１］  ２本鎖ＲＮＡが、配列番号１に示すセレノプロテインＰをコードする塩基配列の連続する１５〜５０塩基からなる塩基配列と相同な配列からなるセンスＲＮＡおよび該センスＲＮＡに相補的な配列からなるアンチセンスＲＮＡからなる２本鎖ＲＮＡである、［２０］の２型糖尿病または血管障害の予防または治療剤。
［２２］  センスＲＮＡが配列番号３で示される塩基配列からなる、［２１］の２型糖尿病または血管障害の予防または治療剤。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００６−２０６７４７号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
【図面の簡単な説明】
【０００４】
図１は、セレノプロテインＰとインスリン抵抗性および動脈硬化との関係を示す図である。
図２は、高血糖および高セレノプロテイン血症に伴う悪循環を示す図である。
図３は、ヒト肝臓でのセレノプロテインＰ遺伝子発現とＭＣＲの相関を示す図である。
図４は、ヒト肝臓でのセレノプロテインＰ遺伝子発現と糖負荷後２時間血糖値の相関を示す図である。
図５は、インスリン投与が肝細胞におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現に与える影響を示す図である。
図６は、グルコース投与が肝細胞におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現に与える影響を示す図である。
図７Ａは、肝細胞からの糖放出に及ぼすセレノプロテインＰの影響を示す図である。
図７Ｂは、肝細胞からの糖放出に及ぼすセレノプロテインＰの影響を示す図である（その２）。
図８は、肝細胞におけるインスリン投与によるＡｋｔのリン酸化に及ぼすセレノプロテインＰの影響を示す図である。図８ＡはＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真であり、図８Ｂはそれぞれの条件での発効強度を示すグラフである。
図９は、セレノプロテインＰが仔胎マウス血管新生に与える影響を示す写真である。図９Ａは陰性対照、図９ＢはセレノプロテインＰを５μｇ／ｍＬ投与した場合、図９ＣはセレノプロテインＰを２５μｇ／ｍＬ投与した場合の結果を示す。
図１０は、セレノプロテインＰ投与マウスに対する糖負荷試験の結果を示す図である。
図１１は、セレノプロテインＰ投与マウスに対するインスリン負荷試験の結果を示す図である。
図１２は、２型糖尿病患者における血清セレノプロテインＰ濃度とＢＭＩ／ＱＵＩＣＫＩの相関を示す図である。図１２ＡはＢＭＩとの相関、図１２ＢはＱＵＩＣＫＩとの相関を示す。
図１３は、２型糖尿病患者における肥満の有無による血清セレノプロテイン濃度の比較の結果を示す図である。
図１４は、耐糖能正常者における血清セレノプロテインＰ濃度と体重・ＨＯＭＡ−ＩＲの相関を示す図である。図１４Ａは体重との相関、図１４ＢはＨＯＭＡ−ＩＲとの相関を示す。
図１５は、セレノプロテインＰｓｉＲＮＡを注入したＫＫＡｙマウスにおける肝セレノプロテインＰ遺伝子発現ｓｉＲＮＡをマウスに急速投与し、７日後に肝臓からＲＮＡを抽出した結果を示す図である。遺伝子発現量はＲｅａｌｔｉｍｅ  ＰＣＲ法によって測定した。＊ｐ＜０．０５である。
図１６は、セレノプロテインＰに対するｓｉＲＮＡを注入したＫＫＡｙマウスにおける血中ＳｅＰタンパク発現を示す写真である。ｓｉＲＮＡをマウスに急速投与し、７日後に採血を施行した。セレノプロテインＰタンパク発現はＷｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔｔｉｎｇ法によって評価した。
図１７は、セレノプロテインＰに対するｓｉＲＮＡを注入したＫＫＡｙマウスにおける空腹時血糖値を示す図である。
図１８は、肝でのセレノプロテインＰをノックダウンしたＫＫＡｙマウスにおける糖負荷試験の結果を示す図である。ｓｉＲＮＡをマウスに急速投与し、２〜７日後に糖負荷試験を施行した（ｎ＝６−８  ｐｅｒ  ｇｒｏｕｐ）。＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１である。
図１９は、肝でのセレノプロテインＰをノックダウンしたＫＫＡｙマウスにおけるインスリン負荷試験の結果を示す図である。ｓｉＲＮＡをマウスに急速投与し、２〜７日後にインスリン負荷試験を施行した（ｎ＝６−８  ｐｅｒ  ｇｒｏｕｐ）。＊ｐ＜０．０５である。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００５】
セレノプロテインＰ（Ｓｅｌｅｎｏｐｒｏｔｅｉｎ  Ｐ，ＳｅＰ）は、セレノシステインを１０残基含むタンパク質である。セレノプロテインＰは、過酸化水素や過酸化脂質を還元して無毒化し、また細胞内の酸化還元を制御するグルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有する酵素として作用する。
配列番号１に、セレノプロテインＰをコードするＤＮＡの塩基配列を、配列番号２にセレノプロテインＰのアミノ酸配列を示す。
本発明において用いるセレノプロテインＰは、上記配列情報に基づいて、化学合成することができ、また遺伝子組換え技術を利用して組換えタンパク質として得ることができる。
また、セレノプロテインは、ヒト血清中に含まれており、Ｓａｉｔｏ  Ｙ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７４：２８６６−２８７１，１９９９の記載の方法に従って、ヒト血清より単離・精製することができる。
本発明に用いるセレノプロテインＰは、配列番号２に示されるアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が欠失、置換または付加したアミノ酸配列からなるタンパク質であって、上記のグルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有するタンパク質をも含む。ここで、１または数個とは１〜９個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１もしくは２個である。また、１０残基のセレノシステインのいずれかが欠失したものは除外される。さらに、本発明においては、セレノプロテインＰの断片を用いることもできる。
セレノプロテインＰを２型糖尿病等の検出等のマーカーとして用いる場合、セレノプロテインＰの断片は、限定されず、セレノプロテインＰの任意の断片をマーカーとして用いることができる。好ましくは、セレノプロテインＰのアミノ酸配列の連続した一部配列であって、アミノ酸が１０個以上、好ましくは１５個以上、さらに好ましくは２０個以上からなる一部配列からなる断片ペプチドである。
一方、セレノプロテインＰを医薬として用いる場合の断片は、上記のグルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有する断片ペプチドである。このようなセレノプロテインＰの断片として、セレノプロテインＰのＣ末端側断片を挙げることができ、例えば、配列番号２に示されるアミノ酸配列の２６０番目のアミノ酸から３６２番目までのアミノ酸を含む配列からなる断片が挙げられる。また、これらの断片のアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が欠失、置換または付加したアミノ酸配列からなる断片ペプチドであって、上記のグルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有するペプチドをも含む。
血中セレノプロテインＰ濃度は、全身のインスリン抵抗性や血管障害進展へのリスクを反映している。セレノプロテインＰを２型糖尿病や血管障害等の疾患の検出用マーカーとして用いることができる。血管障害は、心筋梗塞、脳梗塞、閉塞性動脈硬化症等の動脈硬化性疾患を含む。また、血中セレノプロテインＰを測定することにより被験体の２型糖尿病または血管障害に罹患するリスクを評価することができる。さらに、インスリン抵抗性または血糖コントロールを評価することができる。さらに、２型糖尿病患者においては新規インスリン抵抗性評価マーカーに、耐糖能正常患者においては２型糖尿病発症の予知マーカーになりうる。すなわち、２型糖尿病患者において、セレノプロテインＰが高値である場合、インスリン感受性が減弱していると評価することができる。また、耐糖能正常者において、セレノプロテインＰが高値である場合、２型糖尿病を発症するリスクが高いと評価・判定することができる。また、セレノプロテインＰ値は、肥満と相関しており、肥満の合併症の判定基準ともなり得る。すなわち、セレノプロテインＰが高値である場合、肥満症または肥満の合併症に罹患していると判定することができる。さらに、セレノプロテインＰが高値である場合、肥満によりインスリン抵抗性が高まっていると評価・判定することもできる。
セレノプロテインＰをマーカーとして用いる場合、被験体の血液等の試料中のセレノプロテインＰを検出すればよい。検体試料としては、全血、血清または血漿等を用いることができる。
検出は、セレノプロテインＰを直接検出してもよいし、セレノプロテインＰのｍＲＮＡを検出して、セレノプロテインＰの発現を検出してもよい。セレノプロテインＰを直接検出する方法として、セレノプロテインＰを特異的に認識し結合する抗セレノプロテインＰ抗体を用いる免疫測定法により行うことができる。抗セレノプロテインＰ抗体は、公知の方法により作製することができる。免疫測定法としては、抗セレノプロテインＰ抗体を固相化した担体を用いる方法やウエスタンブロッティング等が挙げられる。固相化担体を用いる方法として、例えば、固相化マイクロタイタープレートを用いるＥＬＩＳＡ、固相化粒子を用いる凝集法等が挙げられるが、これらには限定されず、公知の免疫学的測定法を採用して、血中セレノプロテインＰを検出することができる。
セレノプロテインＰのｍＲＮＡは、ノーザンブロッティング、ＲＴ−ＰＣＲ法、ＤＮＡチップ（ＤＮＡマイクロアレイ）を利用した方法等により検出することができる。これらの方法も公知の方法で行うことができる。
さらに、セレノプロテインＰは２型糖尿病等の疾患に罹患している被験体の肝臓において、発現が亢進しているので、肝臓におけるセレノプロテインＰの発現を検出してもよい。
被験体から採取した検体試料中のセレノプロテインＰを測定し、またはセレノプロテインＰの発現を測定することにより、被験体が２型糖尿病や血管障害に罹患しているか否かを検出・診断することができ、また被験体が２型糖尿病や血管障害に罹患するリスクを評価することができる。さらに、被験体が糖・脂質代謝異常、糖尿病性合併症に罹患しているかどうかの判定や罹患するリスクを評価することもできる。
被験体から採取した検体試料中のセレノプロテインＰを測定し、セレノプロテインＰ濃度が正常人の検体試料中のセレノプロテインＰ濃度より高い場合に、あるいは被験体のセレノプロテインＰの発現が亢進している場合に、被験体が２型糖尿病や血管障害に罹患していると診断することができ、あるいは被験体の２型糖尿病や血管障害に罹患するリスクが高いと評価することができる。
さらに、セレノプロテインＰを測定し、またはセレノプロテインＰの発現を測定することにより、被験体の２型糖尿病の病態を判断することができる。例えば、被験体のインスリン抵抗性や血糖コントロールを評価することができる。ここで、インスリン抵抗性の評価とは、被験体がインスリン抵抗性となっているかどうかの判定およびインスリン抵抗性となるリスクの評価をいう。また、血糖コントロールの評価とは、被験体の血糖コントロールの良悪の評価または被験体の血糖コントロールが悪化するリスクの評価をいう。
例えば、被験体から採取した検体試料中のセレノプロテインＰを測定し、セレノプロテインＰ濃度が正常人の検体試料中のセレノプロテインＰ濃度より高い場合に、あるいは被検体のセレノプロテインＰの発現が亢進している場合に、被験体がインスリン抵抗性であると評価し、または血糖コントロールが悪化していると評価することができる。あるいは、被験体がインスリン抵抗性となるリスクが高く、または血糖コントロールが悪化するリスクが高いと評価することができる。正常人における検体試料中のセレノプロテインＰ濃度またはセレノプロテインＰの発現程度はあらかじめ測定しておき、統計的解析により、血中セレノプロテインＰの異常値や異常発現のカットオフ値を設定することが可能である。
すなわち、本発明は上記のリスクを評価するための検査方法および上記のリスクを評価するための検査用試薬をも包含する。また、セレノプロテインＰは、上記のリスクを評価するための検査用マーカーとして用いることができる。
本発明は、さらにセレノプロテインＰの発現を指標にして、２型糖尿病や血管障害を予防または治療する医薬のスクリーニングを行う方法を包含する。セレノプロテインＰは、２型糖尿病および動脈硬化病変の治療標的となり得る。特に、糖尿病患者においては、高血糖、肝からのセレノプロテインＰ分泌亢進、全身のインスリン抵抗性悪化、さらなる高血糖という悪循環が生じている可能性があり（図２）、血中セレノプロテインＰ濃度を適正レベルまで低下させることで、糖毒性に伴うこれらの病態を劇的に改善させうる可能性がある。該医薬は、体内でのセレノプロテインＰの発現を抑制し、セレノプロテインＰの分泌を抑制し、またはセレノプロテインＰの作用を阻害する医薬である。該医薬は、インスリン抵抗性を減弱させ、また血糖コントロールを改善し得る。これらの医薬は、セレノプロテイン分泌抑制薬またはセレノプロテイン作用減弱薬であり、血中セレノプロテインＰ濃度を適切なレベルに低下させることができる。
該医薬は例えば、セレノプロテインＰのプロモーターに結合し、セレノプロテインＰの発現、分泌を抑制し得る化合物である。また、該医薬は、セレノプロテインＰの受容体に結合し、セレノプロテインＰが受容体に結合するのを阻害し、セレノプロテインＰの作用を阻害し得る化合物である。
このような化合物は例えば、動物細胞等にセレノプロテインＰをコードするＤＮＡおよびセレノプロテインＰのプロモーターを導入し、セレノプロテインＰ発現系を構築し、該動物細胞と候補化合物を接触させ、すなわち候補化合物の存在下で動物細胞を培養し、該細胞におけるセレノプロテインＰの発現を指標にスクリーニングすることができる。候補化合物により、セレノプロテインＰの発現が低下した場合、該候補化合物を２型糖尿病や血管障害の予防、治療用医薬として選択することができる。
また、セレノプロテインＰ、セレノプロテインＰ受容体および候補化合物を共存させ、セレノプロテインＰとセレノプロテインＰの受容体との結合を候補化合物が阻害し、セレノプロテインＰの作用を抑制するか否かを指標にして、２型糖尿病や血管障害の予防、治療用医薬として用い得る化合物を選択することができる。
本発明は、さらにセレノプロテインＰまたはセレノプロテインＰの断片ペプチドであってグルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有するペプチドを有効成分として含む医薬組成物、ならびにセレノプロテインＰをコードする核酸またはそれらの断片ヌクレオチドであって、グルタチオンペルオキシダーゼ様活性を有するペプチドをコードする断片ヌクレオチドを有効成分として含む医薬組成物を包含する。セレノプロテインＰは、血管内皮細胞の増殖を抑制し、血管壁細胞の増殖を誘導し得るので、血管内皮細胞の増殖または血管壁細胞の増殖低下に関連した疾患の予防または治療に用いることができる。該医薬組成物は血管系細胞に直接作用し、上記疾患の予防、治療薬として用いることができる。
本発明は、さらにセレノプロテインＰのアゴニストまたはセレノプロテインＰのアンタゴニストを有効成分として含む医薬組成物を包含する。ここで、セレノプロテインＰのアゴニストとは、セレノプロテインＰの受容体に結合し、細胞に生理活性作用を発現させる物質をいい、セレノプロテインＰのアンタゴニストとは、セレノプロテインＰの受容体に結合するが、生体に対する作用を発現せず、セレノプロテインＰの作用を阻害する物質をいう。セレノプロテインＰのアゴニストまたはアンタゴニストは、血管内皮細胞の増殖または血管壁細胞の増殖低下に関連した疾患の予防または治療に用いることができる。血管内皮細胞の増殖または血管壁細胞の増殖低下に関連した疾患として、例えば糖尿病性網膜症、心筋梗塞、脳梗塞、閉塞性動脈硬化症等の動脈硬化性疾患等が挙げられる。また、セレノプロテインＰは血管新生を抑制することができ、セレノプロテインＰまたはセレノプロテインＰのアゴニストもしくはアンタゴニストは、癌の予防または治療に用いることもできる。
セレノプロテインＰタンパク質または断片ペプチドを医薬として用いる場合、被験体にタンパク質または断片ペプチドを投与すればよい。また、セレノプロテインＰをコードする核酸またはそれらの断片ヌクレオチドを医薬として用いる場合、公知の遺伝子治療の手法により、核酸またはヌクレオチドを体内に投与すればよい。遺伝子を被験体へ導入する方法として、ウイルスベクターを用いる方法および非ウイルスベクターを用いる方法があり、種々の方法が公知である（別冊実験医学、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、１９９６；別冊実験医学、遺伝子導入＆発現解析実験法、羊土社、１９９７；日本遺伝子治療学会編、遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス、１９９９）。
さらに、本発明はセレノプロテインＰを標的とし、セレノプロテインＰの活性を抑制するか、またはセレノプロテインＰの発現を抑制し得る医薬をも包含する。これらの医薬は、２型糖尿病または血管障害の予防または治療薬として用いることができる。
このような医薬として用い得る化合物として、セレノプロテインＰの作用を中和し得る抗セレノプロテインＰ抗体が挙げられる。セレノプロテインＰの作用を中和し得る抗セレノプロテインＰ抗体、すなわち、セレノプロテインＰに対するアンタゴニスティック抗体は、公知の抗体作成方法により作製することができる。これらの抗体は好ましくはヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体である。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。キメラ抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒト抗体由来の定常領域とからなる。ヒト化抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域と、ヒト抗体由来のフレームワーク領域およびＣ領域とからなる。ヒト化抗体はヒト体内における抗原性が低下されているため、本発明の治療剤の有効成分として有用である。ヒト化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体ともいい、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植することにより得ることができる。ヒト抗体遺伝子座を導入し、ヒト由来抗体を産生する能力を有するトランスジェニック動物に抗原を投与することにより得ることができるヒト抗体も含む。このようなトランスジェニック動物としてマウスが挙げられ、ヒト抗体を産生し得るマウスの作出方法は、例えば、国際公開第ＷＯ０２／４３４７８号パンフレットに記載されている。本発明の抗セレノプロテインＰ抗体は、抗セレノプロテインＰ抗体の一部分（部分断片）であって、抗体の抗原への作用を有する抗体の断片も含み、具体的にはＦ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ、ジスルフィド結合Ｆｖ、一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）、及びこれらの重合体等が挙げられる。
セレノプロテインＰを標的とし、セレノプロテインＰの活性を抑制するか、またはセレノプロテインＰの発現を抑制し得る医薬として使用し得る化合物は、セレノプロテインＰの受容体に結合するが、野生型のセレノプロテインＰの作用は有さず、野生型のセレノプロテインＰが受容体に結合することを阻害するドミナントネガティブ突然変異体をも包含する。
さらに、セレノプロテインＰを標的とし、セレノプロテインＰの活性を抑制し、またはセレノプロテインＰの発現を抑制し得る医薬として使用し得る化合物は、体内においてセレノプロテインＰの発現を抑制し得る化合物を含む。このような化合物として、例えばＲＮＡｉ（ＲＮＡ干渉）により特定の配列を有する標的ｍＲＮＡを切断し、そのｍＲＮＡに対応する遺伝子の発現を抑制し得る化合物が挙げられる。ＲＮＡｉにおいては、特定の標的ｍＲＮＡと実質的に同一な配列を有するセンス鎖と該センス鎖に相補的なアンチセンス鎖からなるｓｉＲＮＡ（ｓｈｏｒｔ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ  ＲＮＡ）がガイドＲＮＡとしてターゲット配列を認識し、ターゲットｍＲＮＡを切断することにより、遺伝子の発現が抑制される。ｓｉＲＮＡは細胞内または生体内でダイサー（Ｄｉｃｅｒ）によりプロセッシングを受けて２重鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）より形成される。該化合物として、例えばＲＮＡｉ作用を有する２本鎖ＲＮＡが挙げられる。２本鎖ＲＮＡは、標的遺伝子のｍＲＮＡ配列と相同な配列からなるセンスＲＮＡおよびこれと相補的な配列からなるアンチセンスＲＮＡとからなる。また、センス鎖またはアンチセンス鎖の３’末端にオーバーハングを有していてもよく、該オーバーハングの塩基の種類、数は限定されず、例えば、１〜５、好ましくは１〜３、さらに好ましくは１もしくは２塩基からなる配列が挙げられ、例えば、ＵＵやＴＴが挙げられる。本発明において、オーバーハングとは、ｓｈＲＮＡの一方の鎖の末端に付加された塩基であって、もう一方の鎖の対応する位置に相補的に結合し得る塩基が存在しない塩基をいう。オーバーハングはＤＮＡを構成する塩基であってもよい。２本鎖部分は、ＲＮＡ干渉により発現を抑制しようとする標的遺伝子の配列中の標的配列にハイブリダイズし得る配列を有するＲＮＡ鎖（センス鎖）および該配列に相補的なＲＮＡ鎖（アンチセンス鎖）が相補的に結合した構造を有する。また、２本鎖ＲＮＡは、センス鎖とアンチセンス鎖がループ配列を介して連結しているステムループ構造を有しているショートヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）であってもよい。本発明の２本鎖ＲＮＡの標的遺伝子であるセレノプロテインＰをコードする遺伝子の特定の標的配列は、配列番号１に示すＤＮＡの塩基配列に対応するＲＮＡ中の配列であり、該配列情報に基づいて適宜設定できる。その塩基数は、限定されず、１５〜５００塩基の範囲で選択される。好ましくは１５〜５０、１５〜４５、１５〜４０、１５〜３５もしくは１５〜３０塩基、さらに好ましくは２０〜３５塩基、さらに好ましくは１９〜３０塩基、特に好ましくは１９〜２９塩基もしくは２８塩基である。
さらに、体内においてセレノプロテインＰの発現を抑制し得る化合物として、アンチセンス核酸が挙げられる。アンチセンス核酸は、目的の標的遺伝子に相補的でありハイブリダイズする配列を持つＤＮＡまたはＲＮＡであり、その標的遺伝子の発現を抑制し得る。本発明のセレノプロテインＰの発現を抑制するアンチセンス核酸は、配列番号１に示すセレノプロテインＰをコードするＤＮＡの塩基配列または該ＤＮＡ配列に対応するＲＮＡ配列の一部に相補的な核酸である。該核酸は、長さが１０から４００ヌクレオチドであり、好ましくは長さが２５０以下のヌクレオチド、さらに好ましくは長さが１００以下のヌクレオチド、さらに好ましくは長さが５０以下のヌクレオチド、特に好ましくは長さが１２〜２８の間のヌクレオチドである。
本発明の２本鎖ＲＮＡまたはアンチセンス核酸の導入方法としては、Ｈｙｄｒｏｄｙｎａｍｉｃ法、カルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法、マイクロインジェクション法等が挙げられる。
本発明は上記の化合物を有効成分として含む２型糖尿病または血管障害の治療または予防のための医薬組成物を包含する。
本発明の医薬組成物は、セレノプロテインＰタンパク質もしくはその断片ペプチドまたはセレノプロテインＰをコードする核酸またはそれらの断片ヌクレオチドを含むベクターならびに薬理学的に許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤を含む。
本発明の医薬組成物は、種々の形態で投与することができ、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤等による経口投与、あるいは注射剤、点滴剤、座薬、スプレー剤、点眼剤、経鼻投与剤、貼付剤などによる非経口投与を挙げることができる。
本発明の医薬組成物は、局所投与することも可能であり、例えば肝臓組織部位に注射により投与することによりその効果を発揮し得る。
本発明の医薬組成物は、製剤分野において通常用いられる担体、希釈剤、賦形剤を含む。たとえば、錠剤用の担体、賦形剤としては、乳糖、ステアリン酸マグネシウムなどが使用される。注射用の水性液としては、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液などが使用され、適当な溶解補助剤、たとえばアルコール、プロピレングリコールなどのポリアルコール、非イオン界面活性剤などと併用してもよい。油性液としては、ゴマ油、大豆油などが使用され、溶解補助剤としては安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどを併用してもよい。
その投与量は、症状、年齢、体重などによって異なるが、タンパク質またはペプチドの場合、経口投与では、１日約０．００１ｍｇ〜１００ｍｇであり、１回または数回に分けて投与すればよい。また、非経口投与では、１回あたり、０．００１ｍｇ〜１００ｍｇを皮下注射、筋肉注射、または静脈注射によって投与すればよい。また、被験体内で翻訳させる発現ベクター等に挿入されたセレノプロテインＰをコードする核酸またはそれらの断片ヌクレオチドは、数日または数週間または数ヶ月おきに１回あたり、０．００１ｍｇ〜１００ｍｇを皮下注射、筋肉注射、または静脈注射によって投与すればよい。ＲＮＡｉの作用を有する２本鎖ＲＮＡまたはアンチセンス核酸の場合、肝臓の細胞当たり少なくとも１コピーの２本鎖ＲＮＡまたはアンチセンス核酸が導入されるように投与してもよい。  本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
一連の実施例において、材料、試薬および動物は以下のものを用いた。
ラットヘパトーマ由来Ｈ４ＩＩＥＣ細胞は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）より購入した。ヒト由来セレノプロテインＰは高橋和彦教授（北海道薬科大学，日本）から供与を受けた（Ｓａｉｔｏ  Ｙ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７４：２８６６−２８７１，１９９９）。セレノプロテインＰ濃度はウシ血清アルブミンをスタンダードとしてブラッドフォード法を用いて測定した。ヒト組み換えインスリンはＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓから購入した。抗Ａｋｔ抗体と抗セリン（４７３）リン酸化Ａｋｔ抗体はＣｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから購入した。抗ＣＤ３１モノクローナル抗体はＰｈａｒｍｉｎｇｅｎ、ＨＲＰ結合Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  Ｓｍｏｏｔｈ  Ｍｕｓｃｌｅ  Ａｃｔｉｎ抗体はＤＡＫＯ  Ｃｙｔｏｍａｔｉｏｎから購入した。
雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスは三共ラボサービス（日本）より８週齢の時点で購入し、標準的な光（１２時間の光／闇）および温度の環境で維持した。これらのマウスは１グループあたり５匹のケージで飼育し、水と食料をａｄ  ｌｉｂｉｔｕｍで提供し、約１０週齢で実験に使用した。
【実施例１】
【０００６】
セレノプロテインＰ遺伝子発現と糖尿病の病態
ヒト肝臓におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現とインスリン抵抗性の関連
主に骨格筋におけるインスリン抵抗性を、人工膵臓を用いた正常血糖下高インスリンクランプ法を用いて、ｇｌｕｃｏｓｅ  ｍｅｔａｂｏｌｉｃ  ｃｌｅａｒａｎｃｅ  ｒａｔｅ（ＭＣＲ）として定量化した。ＭＣＲは骨格筋へのインスリン依存性糖取り込みを反映し、ＭＣＲが低いほどインスリン抵抗性は強い。結果を図３に示す。図３に示すように、ＤＮＡチップを用いて定量したヒト肝臓でのセレノプロテインＰ遺伝子発現量は、インスリン抵抗性指標であるＭＣＲと負に相関した。すなわち、ヒト肝でのセレノプロテインＰ遺伝子発現がインスリン抵抗性に関連して亢進することが判明した。
同様に、ヒト肝臓におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現と高血糖の関連を調べた。結果を図４に示す。図４に示すように、ヒト肝臓でのセレノプロテインＰ遺伝子発現量は、糖負荷後２時間血糖値と正の相関を示した。すなわち、ヒト肝でのセレノプロテインＰ遺伝子発現が糖負荷後高血糖に関連して亢進することが判明した。
【実施例２】
【０００７】
細胞レベルでの発現制御・機能解析
（１）  インスリン投与が肝細胞におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現に与える影響
ヒト肝臓におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現がインスリン抵抗性や高血糖で亢進することがわかったので、インスリンおよびグルコースがセレノプロテインＰ遺伝子発現に及ぼす作用を試験管内で検討した。
肝細胞（Ｈ４ＩＩＥＣ）を６穴プレート上でＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ培地（ＤＭＥＭ，Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）、２０％ウマ血清（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）、５％ＦＢＳにて８０％コンフルエント状態まで培養した。ＰＢＳにて一回細胞を洗った後、血清なしのＤＭＥＭ培地で６時間培養しｓｔａｒｖａｔｉｏｎをおこなった。その後、インスリンを培地に添加し６時間インキュベートし、Ｑｕｉｃｋ  ｇｅｎｅ  ｓｙｓｔｅｍ（ＦＵＪＩ  ＦＩＬＭ）を用いてＴｏｔａｌ  ＲＮＡを回収した。１サンプルにつき１００ｎｇのＲＮＡをＨｉｇｈ−ｃａｐａｃｉｔｙ  ｃＤＮＡ  Ａｒｃｈｉｖｅ  Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）にてｃＤＮＡに変換し、ＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ  ７７００  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いてセレノプロテインＰ遺伝子発現の変化をＲｅａｌ−ｔｉｍｅ  ＰＣＲ法にて観察した。セレノプロテインＰのプライマーとＴａｑＭａｎプローブはＡｐｌｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ所有のものを使用した（Ａｓｓａｙｓ−ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｐｒｏｄｕｃｔ）。ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎのためのコントロール遺伝子として、１６ｓ  ｒＲＮＡを用いた。ＰＣＲ条件は５０℃・２分を１サイクル、９５℃・１０分を１サイクル、その後９５℃・１５秒と６０℃・１分を４０サイクルとした。浸透圧の影響を除外するため、グルコースと等濃度のマンニトールをコントロールに用いた。
結果を図５に示す。図５に示すように、インスリンは用量依存性に肝セレノプロテインＰ遺伝子発現を低下させることが明らかとなった。
（２）  グルコース投与が肝細胞におけるセレノプロテインＰ遺伝子発現に与える影響
肝細胞（Ｈ４ＩＩＥＣ）を６穴プレート上でＤＭＥＭ培地、２０％ウマ血清、５％ＦＢＳにて８０％コンフルエント状態まで培養した。ＰＢＳにて一回細胞を洗った後、糖新生バッファー（ｇｌｕｃｏｓｅ−ｆｒｅｅ  ＤＭＥＭ、３．７ｇ／Ｌ  ｓｏｄｉｕｍ  ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ）、０．４％ＦＢＳで６時間培養しｓｔａｒｖａｔｉｏｎをおこなった。その後、グルコースを培地に添加し６時間インキュベートし、Ｑｕｉｃｋ  ｇｅｎｅ  ｓｙｓｔｅｍ（ＦＵＪＩ  ＦＩＬＭ）を用いてＴｏｔａｌ  ＲＮＡを回収した。浸透圧の影響を除外するため、グルコースと等濃度のマンニトールをコントロールに用いた。１サンプルにつき１００ｎｇのＲＮＡをＨｉｇｈ−ｃａｐａｃｉｔｙ  ｃＤＮＡ  Ａｒｃｈｉｖｅ  Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）にてｃＤＮＡに変換し、ＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ  ７７００  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いてセレノプロテインＰ遺伝子発現の変化をＲｅａｌ−ｔｉｍｅ  ＰＣＲ法にて観察した。セレノプロテインＰのプライマーとＴａｑＭａｎプローブはＡｐｌｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ所有のものを使用した（Ａｓｓａｙｓ−ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ  ｇｅｎｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｐｒｏｄｕｃｔ）。ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎのためのコントロール遺伝子として、１６ｓ  ｒＲＮＡを用いた。ＰＣＲ条件は５０℃・２分を１サイクル、９５℃・１０分を１サイクル、その後９５℃・１５秒と６０℃・１分を４０サイクルとした。
結果を図６に示す。図６に示すように、グルコースはコントロールであるマンニトールに比較して有意に肝セレノプロテインＰ遺伝子発現を亢進させた。
（３）  肝細胞におけるインスリン作用におよぼすセレノプロテインＰの影響
次に、セレノプロテインＰの機能を解析した。
インスリンは肝からの糖新生を抑制することで血糖を制御する。そこで、まず、セレノプロテインＰが肝におけるインスリン作用に及ぼす効果を評価した。
糖新生系を有するラットｈｅｐａｔｏｍｅ由来培養肝細胞であるＨ４ＩＩＥＣ細胞を、６穴プレート上でＤＭＥＭ培地、２０％ウマ血清、５％ＦＢＳにて８０％コンフルエント状態まで培養した。ＰＢＳにて二回細胞を洗った後、糖新生バッファー（ｇｌｕｃｏｓｅ−ｆｒｅｅ  ＤＭＥＭ，ｓｏｄｉｕｍ  ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ  ３．７ｇ／Ｌ，ｓｏｄｉｕｍ  ｐｙｒｕｖａｔｅ  ５ｍＭ，ｓｏｄｉｕｍ  ｌａｃｔａｔｅ  ５０ｍＭ，ｃＡＭＰ  １ｍＭ，ｄｅｘａｍｅｔｈａｓｏｎｅ  ２５０ｎＭ）とセレノプロテインＰまたは対照ならびにインスリンと共に２４時間培養した。培養液を回収し、上清中に遊離したグルコースの濃度をＧｌｕｃｏｓｅ  Ｏｘｉｄａｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｓｉｇｍａ）にて測定した（Ｆｕｋｕｈａｒａ  Ａ．ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ３０７：４２６−４３０，２００５）。培養液回収後、細胞をＲＩＰＡバッファーにて回収し、タンパク濃度をＬｏｗｒｙ法にて測定した。グルコース濃度をタンパク濃度で除した値を、肝細胞からのグルコース放出として計算した。
結果を図７ＡおよびＢに示す。図７ＡおよびＢに示すように、インスリンは用量依存性に肝細胞からの糖新生を抑制した。１０μｇ／ｍＬのセレノプロテインＰ存在下では、インスリンによる肝糖新生抑制作用を減弱させた。このことは、セレノプロテインＰは肝におけるインスリン作用を減弱させることを示している。
（４）  肝細胞内インスリンシグナルに対するセレノプロテインＰの影響
セレノプロテインＰが、肝臓におけるインスリン作用を減弱することがわかったので、次に、肝細胞内インスリンシグナルへの影響を検討した。
肝細胞（Ｈ４ＩＩＥＣ）を６穴プレート上でＤＭＥＭ培地、２０％ウマ血清、５％ＦＢＳにて８０％コンフルエント状態まで培養した。ＰＢＳにて一回細胞を洗った後、無血清ＤＭＥＭ培地とともに、セレノプロテインＰ  ０、１、５、１０μｇ／ｍＬ存在下で６時間培養した。その後、ヒトインスリン（１ｎｇ／ｍＬ）で３７℃１５分間処置し、３００μＬ／ｄｉｓｈのＣｅｌｌ  ｌｙｓｉｓ  ｂｕｆｆｅｒ（Ｔｒｉｓ  ２０ｍＭ，ＥＤＴＡ  ５ｍＭ，Ｎａ４Ｐ２Ｏ７  １０ｍＭ，ＮａＦ  １００ｍＭ，ＮＰ−４０  １％，Ｐｒｏｔｅａｓｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ｃｏｃｋｔａｉｌ（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ），Ｎａ３ＶＯ４  ２ｍＭ）を用いて細胞を回収した。超音波破砕装置（ＢＩＯＲＵＰＴＯＲ  ＣＯＳＭＯ  ＢＩＯ）を用いて細胞を破砕した後、１５０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し上清を新しいチューブへ回収した。等量のタンパクを４〜２０％  ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて分離し、ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｉｄｅｎｅ  ｄｉｆｌｕｏｒｉｄｅ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ（ＰＶＤＭｓ）の上へＢｉｏ−Ｒａｄ  Ｔｒａｎｓｂｌｏｔ装置を用いて転写した。メンブレンをブロッキングバッファー（Ｔｒｉｓ  ５０ｍＭ，ＮａＣｌ  １５０ｍＭ，０．１％  Ｔｗｅｅｎ２０，５％  ｎｏｎ−ｆａｔ  ｍｉｌｋ）で室温１時間ブロッキングし、その後それぞれの一次抗体で室温１時間もしくは４℃１６時間プローブした。メンブレンをバッファー（Ｔｒｉｓ  ５０ｍＭ，ＮａＣｌ  １５０ｍＭ，０．１％  Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄した後、ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ  ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ結合二次抗体とインキュベートし、ｅｎｈａｎｃｅｄ  ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ  ｒｅａｇｅｎｔ（ＥＣＬ  ｐｌｕｓ  Ａｍｅｒｓｈａｍ）を用いて化学発光反応を評価した。
結果を図８に示す。図８に示すように、セレノプロテインＰは用量依存性にＡｋｔのセリンリン酸化を阻害した。ヒト正常血中セレノプロテインＰ濃度は５．３μｇ／ｍＬと報告されていることから（Ｔａｋａｈａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ４７，Ｐａｇｅｓ  ３４６−３５２，２００１）、セレノプロテインＰはヒト正常血中濃度に極めて近い濃度で、肝におけるインスリン作用を抑制しうることが判明した。
（５）  セレノプロテインＰが仔胎マウス血管新生に与える影響
長期間にわたる糖尿病の持続は網膜、腎臓、神経の細小血管障害、および虚血性心疾患や脳梗塞といった動脈硬化性疾患を引き起こす。そこで、これらの血管合併症の病態に及ぼすセレノプロテインＰの作用をまず試験管内の血管系細胞を用いて検討した。実験には、マウス胎仔器官培養系（Ｔａｋａｋｕｒａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｅｌｌ  １０２：１９９−２０，２０００）を用いた。
ストローマ細胞株であるＯＰ９（Ｎａｋａｎｏ  Ｔ．ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２６５：１０９８−１１０１，１９９４）をａｌｐｈａ−ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｍｉｎｉｍｕｍ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉａ（α−ＭＥＭ  Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）、２０％  Ｆｅｔａｌ−ｃａｌｆ  ｓｅｒｕｍ（ＦＣＳ；ＪＲＨ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）にて培養した。妊娠８．５日目のマウスから胎仔を摘出し、血管系幹細胞の起源のひとつとされるパラ大動脈臓側中胚葉（ＰＡＳ）領域を臍腸管動脈（ｏｍｐｈａｌｏｍｅｓｅｎｔｅｒｉｃ  ａｒｔｅｒｙ）を含むように取り出し、１０％ＦＣＳ、１０−５Ｍ  ２−メルカプトエタノール（２−ＭＥ；Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）、ＲＰＭＩ  １６４０（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）の中のＯＰ９細胞上で１４日間培養した（Ｔａｋａｋｕｒａ  Ｔ．ｅｔ  ａｌ．，Ｃｅｌｌ  １０２：１９９−２０９，２０００）。培養７日目からセレノプロテインＰを５、２５μｇ／ｍＬで投与し、血管系細胞の発生を検討した。血管内皮細胞をＣＤ３１抗体（ＭＥＣ１３．３  ｒａｔ  ａｎｔｉ  ｍｏｕｓｅ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ；Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いて青色に、血管壁細胞をａｌｐｈａ−ＳＭＡ抗体（Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  Ｓｍｏｏｔｈ  Ｍｕｓｃｌｅ  Ａｃｔｉｎ／ＨＲＰ  Ｄａｋｏ  Ｃｙｔｏｍａｔｉｏｎ）を用いて茶色に免疫染色した。
結果を図９に示す。図９に示すように、セレノプロテインＰは血管内皮細胞の発生・増殖を有意に抑制し、一方で血管壁細胞の発生・増殖を強力に誘導した。
【実施例３】
【０００８】
個体レベルでの機能解析
（１）セレノプロテインＰ投与がマウス耐糖能に与える影響
セレノプロテインＰが試験管内で、肝細胞におけるインスリン作用を障害することがわかったので、次に個体レベルでの作用を検討した。
１グループにつき５匹の１０週齢雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスに対し、セレノプロテインＰ  １μｇ／ｇＢＷもしくはベヒクル（ｖｅｈｉｃｌｅ）を午前７時と午後７時の二回腹腔内投与した。マウスは一回目の注射後から絶食とした。二回目の注射の２時間後、１．５ｍｇ／ｇＢＷのグルコースを腹腔内投与し、血糖値を０から１２０分において測定した。血糖値はＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（キッセイ  日本）を用いて測定した。
結果を図１０に示す。図１０に示すように、コントロールマウスと比較して、セレノプロテインＰ投与マウスでは、糖負荷後１５、３０分後の血糖が有意に高値を示した。すなわち、個体レベルで、セレノプロテインＰが糖負荷後高血糖を誘導しうることが明らかとなった。
（２）セレノプロテインＰ投与がマウスのインスリン感受性に与える影響
セレノプロテインＰがマウスに糖負荷後高血糖をもたらした機序を探るため、本タンパクがマウスのインスリン感受性に与える影響を検討した。
１グループにつき５匹の１０週齢雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスに対し、セレノプロテインＰ  １μｇ／ｇＢＷもしくはベヒクル（ｖｅｈｉｃｌｅ）を午前７時と午後７時の二回腹腔内投与した。マウスは二回目の注射の２時間前から絶食とした。合計４時間の絶食の後、０．５ｍＵ／ｇＢＷのヒトインスリン（Ｈｕｍａｌｉｎ  Ｒ（登録商標）、Ｌｉｌｌｙ  Ｊａｐａｎ）を腹腔内投与し、血糖値を０から１２０分において測定した。血糖値はＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（キッセイ、日本）を用いて測定した。
結果を図１１に示す。図１１に示すように、コントロールマウスと比較して、セレノプロテインＰ投与マウスでは、糖負荷後１５、３０分後の血糖降下率が有意に高値であった。したがって、セレノプロテインＰはマウスにインスリン抵抗性を誘導することにより、糖負荷後高血糖をもたらすことが明らかとなった。
【実施例４】
【０００９】
ヒト血中セレノプロテインＰ濃度測定
金沢大学医学部附属病院代謝内科に通院または入院した２型糖尿病患者１６人（年齢  ５９±１４歳，ＢＭＩ  ２５．２±４．６ｋｇ／ｍ２，空腹時血糖  １８４±５０ｍｇ／ｄＬ，ＨｂＡｌｃ  １０．４±３．２％）、耐糖能正常者８人（年齢  ４２±１５歳，ＢＭＩ  ２３．２±３．５ｋｇ／ｍ２，空腹時血糖  ９３±９ｍｇ／ｄＬ）を対象とした。空腹状態にて採血を施行し、採取した血清のセレノプロテインＰ濃度を２種のセレノプロテインＰモノクローナル抗体によるサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用いて測定した（Ｓａｉｔｏ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｃｉ  ２００１；４７：３４６；Ａｋｉｒａ  Ａｎｄｏｈ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ  ２１（２００５）５７４−５７９）。抗体は北海道薬科大学高橋和彦教授より供与を受けた。耐糖能正常患者のインスリン抵抗性を、下記のごとくｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ  ｍｏｄｅｌ  ｆｏｒ  ｉｎｓｕｌｉｎ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ（ＨＯＭＡ−ＩＲ）を算出することによって評価した（Ｍａｔｔｈｅｗｓ  ＤＲ  ｅｔ  ａｌ．，Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ  ２８：４１２−４１９，１９８５）。２型糖尿病患者のインスリン抵抗性は、下記のごとくｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ｉｎｓｕｌｉｎ  ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ  ｃｈｅｃｋ  ｉｎｄｅｘ（ＱＵＩＣＫＩ）を算出することによって評価した（Ａｒｉｅ  Ｋａｔｚ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ  ８５：２４０２−２４１０）。
ＨＯＭＡ−ＩＲ＝空腹時血糖値（ｍｇ／ｄＬ）×空腹時の血中インスリン濃度（μＵ／ｍｌ）／４０５
ＱＵＩＣＫＩ＝１／［ｌｏｇ  空腹時の血中インスリン濃度（μＵ／ｍｌ）＋ｌｏｇ  空腹時血糖値（ｍｇ／ｄＬ）］
（１）ヒト血清におけるセレノプロテインＰ濃度測定
（ｉ）２型糖尿病患者における血清セレノプロテインＰ濃度
２型糖尿病患者１６人において血清セレノプロテインＰ濃度を測定した結果、その平均濃度は５．２８±１．３μｇ／ｍＬであった。患者のセレノプロテインＰ値はＢＭＩと正に、ＱＵＩＣＫＩと負に相関した（図１２Ａ及びＢ）。
（ｉｉ）２型糖尿病患者における肥満の有無による血清セレノプロテインＰ濃度の比較
２型糖尿病患者における血清セレノプロテインＰ濃度を、肥満の有無にて比較検討した。ＢＭＩ２５以上を肥満、２５未満を非肥満群としたところ、血清セレノプロテインＰ値は肥満群で５．９±１．１μｇ／ｍＬ、非肥満群で４．４μｇ／ｍＬであり、肥満群にて有意に高値であった（ｐ＝０．０２９）（図１３）。
（ｉｉｉ）耐糖能正常者における血清セレノプロテインＰ濃度と体重・ＨＯＭＡ−ＩＲの相関
耐糖能正常者８人において血清セレノプロテインＰ濃度を測定した結果、その平均濃度は６．１±０．８μｇ／ｍＬであった。耐糖能正常者のセレノプロテインＰ値も糖尿病患者のそれと同様に、体重およびＨＯＭＡ−ＩＲと正に相関する傾向を示した（図１４ＡおよびＢ）。
以上の結果から、血清セレノプロテインＰ値は肥満・インスリン抵抗性を強く反映する臨床マーカーであることが判明した。さらに、血清セレノプロテインＰ値と肥満・インスリン抵抗性との相関が２型糖尿病患者と耐糖能正常者の両者において認められた。細胞および動物実験の結果からセレノプロテインＰがインスリン抵抗性原因ホルモンのひとつであると考えられることより、ヒト血清セレノプロテインＰ値測定は２型糖尿病患者においては新規インスリン抵抗性評価マーカーに、耐糖能正常患者においては２型糖尿病発症の予知マーカーになりうる。
【実施例５】
【００１０】
肝臓由来セレノプロテインＰをターゲットとした２型糖尿病に対する新規遺伝子治療
これまでの投与実験の結果から、セレノプロテインＰが２型糖尿病におけるインスリン抵抗性・高血糖の原因ホルモンのひとつであることが明らかとなった。そこで、ｓｈｏｒｔ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｅｎｃｅ  ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を用いた肝臓におけるセレノプロテインＰ産生の抑制が２型糖尿病に対する新たな治療になりうるかを検討した。
自然発症肥満２型糖尿病モデル動物であるＫＫＡｙマウス（７〜８週令、体重３１〜３３ｇ）に対し、ｈｙｄｒｏｄｙｎａｍｉｃ法を用いてセレノプロテインＰに特異的なｓｉＲＮＡを遺伝子導入した。方法は、Ｚｅｎｄｅｒ，Ｌ．ｅｔ  ａｌ．Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ  １００，７７９７−８０２（２００３）およびＭｃＣａｆｆｒｅｙ，Ａ．Ｐ．ｅｔ  ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ  ４１８，３８−９（２００２）に記載の方法に従った。動物導入用のｓｉＲＮＡはＡｍｂｉｏｎから購入した（Ｓｉｌｅｎｃｅｒ（登録商標）Ｉｎ  Ｖｉｖｏ  Ｒｅａｄｙ  Ｐｒｅ−ｄｅｓｉｇｎｅｄ  ｓｉＲＮＡ）。セレノプロテインＰをノックダウンするｓｉＲＮＡは以下の配列のごとく合成した：Ｍｉｃｅ  Ｓｅｐｐ１：５’−ＧＧＵＧＵＣＡＧＡＡＣＡＣＡＵＣＧＣＡｔｔ−３’（ｓｅｎｓｅ）（ｔｔを除いた配列を配列番号３に示す）。ネガテイブコントロールのｓｉＲＮＡはＡｍｂｉｏｎより購入した。ネガテイブコントロールのｓｉＲＮＡはマウス、ラットおよびヒトにおけるいずれの既知遺伝子に対しても有意な相同性を有さない。ペントバルビツールによってマウスに全身麻酔をほどこした後、２ｎｍｏｌのｓｉＲＮＡを３．０ｍＬのＰＢＳに溶解し、尾静脈を介して約１５〜２０秒間で投与した。ｓｉＲＮＡ投与２〜７日後に１２時間の絶食後糖負荷試験およびインスリン負荷試験をおこなった。０．３ｍｇ／ｇ  ｂｏｄｙ  ｗｅｉｇｈｔのグルコースもしくは４Ｕ／ｋｇ  ｂｏｄｙ  ｗｅｉｇｈｔのインスリンを腹腔内投与し、１５、３０、６０および１２０分後に血糖値を測定した。
セレノプロテインＰ遺伝子特異的なｓｉＲＮＡを経尾静脈から急速投与した結果、肝でのセレノプロテインＰ遺伝子発現は約８０％に減弱した（図１５）。血中セレノプロテインＰ濃度も同様に有意に低下した（図１６）。肝でのセレノプロテインＰ遺伝子をノックダウンしたＫＫＡｙマウスでは空腹時血糖値には変動を認めなかったが（図１７）、糖負荷試験にて耐糖能異常の改善を（図１８）、インスリン負荷試験にてインスリン抵抗性の改善を認めた（図１９）。
ｈｙｄｒｏｄｙｎａｍｉｃ法を用いた遺伝子導入によって、肝臓におけるセレノプロテインＰ産生の抑制が全身のインスリン抵抗性を改善し、２型糖尿病における負荷後高血糖を軽減させることが明らかとなった。以上の結果から、肝臓由来セレノプロテインＰは２型糖尿病の重要な治療標的であることが証明された。さらに肝臓由来セレノプロテインＰは、動脈硬化症、メタボリックシンドロームに代表されるその他のインスリン抵抗性関連疾患に対しても治療標的となりうる可能性があることが示された。
【産業上の利用可能性】
【００１１】
セレノプロテインＰがインスリン抵抗性および血管内皮障害の原因ホルモンのひとつであり、セレノプロテインＰ濃度の測定は、全身のインスリン抵抗性または血管障害進展へのリスクを反映する新たな臨床マーカーとして有用である。セレノプロテインＰをマーカーとして、２型糖尿病や動脈硬化性疾患等の疾患の病態を判定することが可能である。
また、セレノプロテインＰは、血管系細胞にも直接作用を有することから、これらのセレノプロテインＰを含む医薬、あるいはセレノプロテインＰ抑制療法は、血管障害に対する画期的な治療法となり得る。
さらに、セレノプロテインＰは、２型糖尿病および動脈硬化病変の治療標的となり得る。特に、糖尿病患者においては、高血糖、肝からのセレノプロテインＰ分泌亢進、全身のインスリン抵抗性悪化、さらなる高血糖という悪循環が生じている可能性があり、血中セレノプロテインＰ濃度を適正レベルまで低下させることで、糖毒性にともなうこれらの病態を劇的に改善させ得る。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
［配列表］
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図１】
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【図２】
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【図６】
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【図８】
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【図９】
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【図１６】
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