(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされるための標的配列内の標的部位を選択する方法であって、該方法が、以下： 
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされる標的核酸配列を提供する工程；
標的核酸配列内の複数の潜在的標的部位を選択する工程；
各々の選択された標的部位が５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含むかどうかを評価する工程；
５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む標的核酸内の標的部位を出力する工程； 
を包含し、
ここで、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の各々が、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｇ）であり；ＮがＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードであり、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の少なくとも２つが、（Ｇ，Ｇ）である、方法。
【請求項２】
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされるための標的配列内の標的部位を選択する方法であって、該方法が、以下： 
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされる標的核酸配列を提供する工程；
標的核酸配列内の複数の潜在的標的部位を選択する工程；
各々の選択された標的部位が５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含むかどうかを評価する工程；
５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む標的核酸内の標的部位を出力する工程； 
を包含し、
ここで、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の各々が、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｇ）であり；ＮがＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードであり；（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の３つ全てが、（Ｇ，Ｇ）である、方法。
【請求項３】
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされるための標的配列内の標的部位を選択する方法であって、該方法が、以下： 
ジンクフィンガータンパク質によって標的にされる標的核酸配列を提供する工程；
標的核酸配列内の複数の潜在的標的部位を選択する工程；
各々の選択された標的部位が、それぞれ５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含み、０−５のヌクレオチドによって隔てられている第１及び第２のセグメントを有するかどうかを評価する工程；
それぞれ５’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む第１及び第２のセグメントを有する標的核酸内の標的部位を出力する工程； 
を包含し、
ここで、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の各々が、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｇ）であり；（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の少なくとも１つが、（Ｇ，Ｇ）であり、ＮがＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである、方法。
【請求項４】
出力標的部位の第１及び第２のセグメントが介入セグメントによって分離される、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
第２のセグメントにおいて（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の少なくとも２つが（Ｇ，Ｇ）である、請求項３に記載の方法。
【請求項６】
前記第１の標的セグメントにおけるＮＮｘ、ａＮｙ及びｂＮｚｃトリプレットにそれぞれ結合する３つのジンクフィンガー、ならびに前記第２の標的セグメントにおけるＮＮｘ、ａＮｙ、ｂＮｚｃトリプレットにそれぞれ結合する第２の３つのフィンガーを含む、第１のジンクフィンガータンパク質を合成する工程を包含する、合成工程をさらに包含する、請求項３に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生命情報科学およびタンパク質工学の技術分野にある。
【背景技術】
【０００２】
ジンクフィンガータンパク質（ＺＦＰ）は、配列特異的様式においてＤＮＡと結合し得るタンパク質である。ジンクフィンガーは、最初に、アフリカツメガエル、Ｘｅｎｏｐｕｓ ｌａｅｖｉｓの卵母細胞由来の転写因子ＴＦＩＩＩＡにおいて同定された。これらのタンパク質の１つのクラス（Ｃ2Ｈ 2クラス）を特徴付ける例示的モチーフは、−Ｃｙｓ−（Ｘ）2-4−Ｃｙｓ−（Ｘ） 12−Ｈｉｓ−（Ｘ）3-5−Ｈｉｓ（ここでＸは、任意のアミノ酸である）である。単一のフィンガードメインは、約３０アミノ酸長であり、そしていくつかの構造研究が、これがジンクを通して配位した βターンにおいて２つの不変のヒスチジン残基および２つの不変のシステイン残基を含むαヘリックスを含むことを実証している。これまでに、１０，０００を超えるジンクフィンガー配列が、数千の公知のまたは推定転写因子において同定されている。ジンクフィンガードメインは、ＤＮＡ認識のみならず、ＲＮＡ結合およびタンパク質−タンパク質結合にも関与する。現在推定されていることは、このクラスの分子が全ヒト遺伝子の約２％を構成することである。 
【０００３】
Ｚｉｆ２６８のＸ線結晶構造である、マウス転写因子由来の３つのフィンガードメインは、同族のＤＮＡ配列との複合体において解析され、そして各フィンガーは、周期的な循環によって次のフィンガー上に重ね合わされ得ることが示される。この構造は、各フィンガーが、各ＤＮＡトリプレット部分部位と接触する各認識ヘリックス上の−１、２、３および６位で側鎖を有し、３塩基対の間隔にわたって独立してＤＮＡと相互作用することを示唆する。Ｚｉｆ２６８のアミノ末端は、ＤＮＡ鎖の３ ’末端に位置し、ここで、最も多く接触する。近年の結果は、いくつかのジンクフィンガーが、標的セグメントにおける第４番めの塩基と結合し得ることを示した。ジンクフィンガータンパク質が最も多く接触する鎖が、標的鎖を設計される場合、いくつかのジンクフィンガータンパク質は、標的鎖における３塩基トリプレット、および非標的鎖上の第４番目の塩基と結合する。この第４番目の塩基は、３塩基の部分部位の３ ’末端すぐの塩基に相補的である。
【０００４】
Ｚｉｆ２６８−ＤＮＡ複合体の構造はまた、ジンクフィンガータンパク質のＤＮＡ配列特異性が、各ジンクフィンガー認識ヘリックス上の４つのヘリックスの位置（−１、２、３および６）にアミノ酸置換体を作製することによって変化し得ることが示唆された。この観察を試験するための、ジンクフィンガーコンビナトリアルライブラリーを用いたファージディスプレイ実験が、１９９４年に一連の論文で公開されていた（非特許文献１；非特許文献２；非特許文献３）。コンビナトリアルライブラリーを、第１のＺｉｆ２６８または中間のＺｉｆ２６８のいずれかのフィンガーにおける無作為化した側鎖を用いて構築し、次いで、適切なＤＮＡ部分部位が、変化したＤＮＡトリプレットによって置換された、変化したＺｉｆ２６８結合部位を選択するために使用した。さらに、導入された変異の性質と結合特異性に生じた変化との間の相関は、変化した結合特異性を有するＺＦＰの設計についての置換の規則の部分的なセットを生じた。 
【０００５】
非特許文献４は、Ｚｉｆ２６８の各フィンガーが首尾良く無作為化され、そして新しいトリプレット配列と結合するために選択されるファージディスプレイ法の加工を議論している。この論文は、核ホルモン応答エレメントである、ｐ５３標的部位およびＴＡＴＡボックス配列についてのＺＦＰの選択を報告した。 
【０００６】
多くの論文が、特定の標的部位を調節するためにＺＦＰを生成する試みを報告している。例えば、非特許文献５は、ＺＦＰがｂｒｃ−ａｂｌ癌遺伝子の発現を抑制するように設計する試みを報告している。ＺＦＰが結合する標的セグメントは、ｂｒｃおよびａｂｌをコードする遺伝子を融合する特異的な癌遺伝子の転座によって作製される連結を重複させるように選択された９つの塩基配列５ ’ＧＣＡ ＧＡＡ３’ＧＣＣであった。この意図は、この標的部位に対して特異的なＺＦＰが、ａｂｌまたはｂｒｃ構成要素遺伝子に結合することなく癌遺伝子に結合することである。著者らは、ファージディスプレイを使用して、この標的セグメントへの結合について改変体ＺＦＰのミニライブラリーをスクリーニングした。従って、単離された改変体ＺＦＰが、次いで細胞株における安定してトランスフェクトされたｂｒｃ−ａｂｌｅ構築物の発現を抑制することが報告された。 
【０００７】
非特許文献６は、Ｚｉｆ２６８由来の２つのフィンガーをＯｃｔ−１由来のホメオドメインと融合することによって、新規なＤＮＡ結合タンパク質を設計する試みを報告した。次いで、このハイブリッドタンパク質は、キメラタンパク質としての発現に関する転写活性因子と融合された。このキメラタンパク質は、その２つの構成要素の部分配列のハイブリッドを示す標的部位と結合すると報告された。次いで、著者らは、プロモーターに作動可能に連結されるルシフェラーゼ、およびそのプロモーターに近接したキメラＤＮＡ結合タンパク質についてのハイブリッド部位を含むレポーターベクターを構築した。著者らは、それらのキメラＤＮＡ結合タンパク質がルシフェラーゼ遺伝子の発現を活性化し得ることを報告した。 
【０００８】
非特許文献７は、ペプチドスペーサーを用いてそれぞれ３つのフィンガーを有する２つの構成要素のジンクフィンガータンパク質を連結し、複合ジンクフィンガータンパク質を形成することを報告している。次いで、この複合タンパク質を、転写活性化ドメインとさらに連結した。得られたキメラタンパク質が、２つの構成要素ジンクフィンガータンパク質によって結合された標的セグメントから形成された標的部位に結合することが、報告された。このキメラジンクフィンガータンパク質が、その標的部位がレポーター遺伝子に作動可能に連結されるプロモーターと近接したレポータープラスミドに挿入される場合、そのレポーター遺伝子の転写を活性化し得ることが、さらに報告された。 
【０００９】
Ｃｈｏｏら、特許文献１、特許文献２、および特許文献３（１９９８）は、ＨＩＶ Ｔａｔ遺伝子内の標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質の選択を議論している。Ｃｈｏｏらはまた、癌遺伝子ｒａｓにおける共通した変異の部位を取り囲む標的部位に結合するためのジンクフィンガータンパク質の選択を議論している。従って、ｒａｓ内の標的部位は、変異の位置によって制約された。 
【００１０】
上記の研究はどれも、候補遺伝子内の種々の潜在的な標的部位の各利点を系統的に評価するための判定基準を提供しなかった。Ｒｅｂａｒら（前出）、Ｊａｍｉｅｓｏｎら（前出）およびＣｈｏｏら、ＰＮＡＳ．（１９９４）前出によるファージディスプレイの研究は、全て天然のＺｉｆ２６８結合部位、５ ’ＧＣＧ ＴＧＧ ＧＣＧｃ３’の変化に集中し、そして予め決められた標的遺伝子に関してなされなかった。Ｃｈｏｏら、Ｎａｔｕｒｅ（１９９４）、前出の標的部位の選択は、その部位がｂｒｃセグメントとａｂｌセグメントとの間の界面を重複する意図によってのみ構築され、そしてこれは種々の潜在的な標的部位の比較を含まなかった。同様に、ＧｒｅｉｓｍａｎおよびＰａｂｏは、公知の調節的役割のために特定の標的部位を選択し、そしてあらかじめ選択された標的遺伝子内の種々の潜在的な標的セグメントの相対的な利点を考慮しなかった。同様に、Ｃｈｏｏら（１９９８）、前出のｒａｓ内の標的部位の選択は、変異の位置によって強制された。Ｃｈｏｏら（１９９８）のＨＩＶ Ｔａｔにおける標的部位の選択について判定基準は提供されていない。最終的には、Ｐｏｍｅｒａｎｔｚら、前出およびＬｉｕら、前出の両方は、複合体ジンクフィンガーについての人工ハイブリッド標的部位を構築し、次いでその標的部位をレポーター構築物に挿入した。 
【００１１】
【特許文献１】ＷＯ９８／５３０５８
【特許文献２】ＷＯ９８／５３０５９
【特許文献３】ＷＯ９８／５３０６０
【非特許文献１】Ｒｅｂａｒら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６３、６７１−６７３（１９９４）
【非特許文献２】Ｊａｍｉｅｓｏｎら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３３、５６８９−５６９５（１９９４）
【非特許文献３】Ｃｈｏｏら、ＰＮＡＳ ９１、１１１６３−１１１６７（１９９４）
【非特許文献４】ＧｒｅｉｓｍａｎおよびＰａｂｏ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７５、６５７−６６１（１９９７）
【非特許文献５】Ｃｈｏｏら、Ｎａｔｕｒｅ ３７２、６４５（１９９４）
【非特許文献６】Ｐｏｍｅｒａｎｔｚら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６７、９３−９６（１９９５）
【非特許文献７】Ｌｉｕら、ＰＮＡＳ ９４、５５２５−５５３０（１９９７）
【発明の開示】
【００１２】
本発明は、ジンクフィンガータンパク質によって標的化するために標的配列内の標的部位を選択する方法を提供する。いくつかのこのような方法は、ジンクフィンガータンパク質によって標的化される標的核酸を提供する工程、および５ ’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む標的核酸内の標的部位を産出する工程を含む。（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の少なくとも１つが（Ｇ，Ｋ）である場合、各（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）は、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｋ）である。ＮおよびＫは、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである。いくつかの方法において、標的核酸内の複数のセグメントが選択され、そして５ ’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む複数のセグメントのサブセットが産出される。代表的には、この標的核酸は、標的遺伝子を含む。いくつかの方法において、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の少なくとも２つが（Ｇ，Ｋ）である。いくつかの方法において、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の３つ全てが（Ｇ，Ｋ）である。いくつかの方法は、５ ’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’を含む遺伝子の第２のセグメントを同定する工程をさらに含む。ここで、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の各々が、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｋ）であり；（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）のうち少なくとも１つが（Ｇ，Ｋ）であり、そしてＮおよびＫはＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである。いくつかの方法において、第２のセグメントにおいて、（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）のうち少なくとも２つが（Ｇ，Ｋ）である。いくつかの方法において、少なくとも１つの（ｘ，ａ）、（ｙ，ｂ）および（ｚ，ｃ）の３つ全てが（Ｇ，Ｋ）である。いくつかの方法において、第１および第２のセグメントが、標的部位において５塩基より少ない塩基によって分離される。 
【００１３】
いくつかの方法は、ｂＮｚ ａＮｙおよびＮＮｘトリプレットにそれぞれ結合する第１、第２および第３のフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を合成する工程をさらに含む。いくつかのこのような方法において、合成工程は、標的セグメント中のＮＮｘ ａＮｙおよびｂＮｚトリプレットにそれぞれ結合する３つのジンクフィンガーおよび第２の標的セグメント中のＮＮｘ ａＮｙおよびｂＮｚトリプレットにそれぞれ結合する第２の３つのフィンガーを含む、第１のジンクフィンガータンパク質を合成する工程を含む。いくつかの方法において、第１、第２および第３のフィンガーの各々は、独立して選択されるかまたは設計される。いくつかの方法において、フィンガーは、ジンクフィンガータンパク質の指定、フィンガー構成要素のサブ指定、およびジンクフィンガータンパク質によって結合される核酸配列を含むデータベースから設計される。いくつかの方法において、フィンガーは、標的部位に結合する改変体を同定するために標的部位への特異的結合について、ジンクフィンガー結合タンパク質の改変体をスクリーニングすることによって選択される。 
【００１４】
いくつかの方法は、標的核酸を含むサンプルをジンクフィンガータンパク質と接触させ、それによってジンクフィンガータンパク質が、標的核酸の存在またはその特定の対立遺伝子形態を明らかにする標的部位に結合する工程を、さらに含む。いくつかの方法において、標的核酸を含むサンプルは、ジンクフィンガータンパク質と接触され、それによってこのジンクフィンガータンパク質が標的部位に結合し、それによってその標的核酸の発現を調節する。 
【００１５】
いくつかの方法において、標的部位はコード領域中に生じる。いくつかの方法において、この標的部位は、プロモーター、エンハンサーまたは転写開始部位内かまたはそれらに近接して存在する。いくつかの方法において、この標的部位は、プロモーター、調節配列、またはその標的核酸内の多型部位の外側に存在する。 
【００１６】
別の局面において、本発明は、ジンクフィンガータンパク質によって標的化されるポリヌクレオチド内の標的部位を選択するための代替方法を提供する。これらの方法は、ポリヌクレオチド配列を提供する工程、およびそのポリヌクレオチド配列内の潜在的な標的部位を選択する工程を含む；この潜在的な標的部位は、連続した第１の、第２のおよび第３の塩基のトリプレットを、その潜在的な標的部位において第１、第２および第３の位置で含む。次いで、３つの連続するトリプレットの配列においてトリプレットとトリプレットの位置との間の対応規則（ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｃｅ ｒｅｇｉｍｅ）を適用することによって、複数のサブスコアが決定される。ここで、各トリプレットは、第１の、第２のおよび第３の対応する位置を有し、そしてトリプレットとトリプレットの位置との各組み合わせは、特定のサブスコアを有する。次いで、第１の、第２のおよび第３のトリプレットについてのサブスコアを組み合わせることによって潜在的な標的部位についてスコアを算出する。次いで、選択、決定および算出工程は、さらなるスコアを決定するためのさらなる潜在的な標的部位の第１の、第２のおよび第３の位置で、第１の、第２のおよび第３のトリプレットを含むさらなる潜在的な標的部位上で少なくとも１回繰り返される。次いで、そのスコアを有する少なくとも１つの潜在的な標的部位の産出が提供される。いくつかの方法において、最も高いスコアを有する潜在的な標的部位の産出が提供される。いくつかの方法において、最も高いスコアを有するｎ潜在的な標的部位の産出が提供され、そしてこの方法は、ｎについての値のユーザー入力を提供する工程をさらに含む。いくつかの方法において、サブスコアは、サブスコアの産物を形成することいよって組み合わされる。いくつかの方法において、対応規則は、６４トリプレットを含み、それぞれが第１の、第２のおよび第３の対応する位置、および１９２サブスコアを有する。 
【００１７】
いくつかの方法において、対応規則におけるサブスコアは以下によって決定される：トリプレットおよび対応する位置のサブセットのサブスコアとして、第１の値を、対応規則におけるそのトリプレットの対応する位置として、既存のジンクフィンガータンパク質中の同じ位置からのトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む、既存のジンクフィンガータンパク質が存在するトリプレットおよび位置の各々に割り当てる工程；トリプレットおよび対応する位置のサブセットのサブスコアとして第２の値を、対応規則におけるそのトリプレットの対応する位置よりも、既存のジンクフィンガータンパク質中の異なる位置からのトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む、既存のジンクフィンガータンパク質が存在するトリプレットおよび位置の各々に割り当てる工程；ならびに、トリプレットおよびそのトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む既存のジンクタンパク質が存在しない対応する位置のサブセットのサブスコアとして、第３の値を割り当てる工程。 
【００１８】
いくつかの方法において、状況パラメーターは、少なくとも１つのトリプレットのスケーリングされたサブスコアを与えるために、少なくとも１つの第１の、第２のおよび第３のトリプレットのサブスコアを有する。いくつかの方法において、この状況パラメーターは、標的部位が塩基配列５ ’ＮＮＧＫ３’（ここで、ＮＮＧは、少なくとも１つのトリプレットである）を含む場合、サブスコアと組み合わされる。 
【００１９】
別の局面において、本発明は、ジンクフィンガータンパク質を設計する方法を提供する。このような方法は、複数のジンクフィンガータンパク質（少なくとも第１の、第２のおよび第３のフィンガーを含む各タンパク質）についての指定、ならびに各ジンクフィンガータンパク質の各３つのフィンガーについてのサブ指定を含み；各ジンクフィンガータンパク質について対応する核酸配列であって、各配列は、各ジンクフィンガータンパク質において、それぞれ少なくとも第１の、第２のおよび第３フィンガーによって特異的に結合される、少なくとも第１の、第２のおよび第３のトリプレットを含み、第１の、第２のおよび第３のトリプレットは、第１の、第２のおよび第３のフィンガーが、ジンクフィンガータンパク質において配列される（Ｎ末端からＣ末端）のと同じ個々の順で、核酸配列（３ ’−５’）において配列されている３つのフィンガーの各々について核酸配列を含むデータベースを使用する。標的部位は、ジンクフィンガータンパク質の設計を提供し、この標的部位は、連続した第１の、第２のおよび第３のトリプレットを３ ’−５’の整列で含む。標的部位における第１の、第２のおよび第３のトリプレットについて、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第１の、第２のおよび第３のセットは、同定され、第１のセットは、標的部位における第１のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含み、第２のセットは、標的部位における第２のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含み、第３のセットは、標的部位における第３のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含む。工程（ｃ）で同定された第１の、第２のおよび第３のセットにおけるジンクフィンガータンパク質の指定およびサブ指定が、次いで出力される。いくつかの方法は、第１のフィンガー（第１のセットからのジンクフィンガータンパク質由来）、第２のフィンガー（第２のセットからのジンクフィンガータンパク質由来）、および第３のフィンガー（第３のセットからのジンクフィンガータンパク質由来）を含む標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質を生成する工程をさらに含む。 
【００２０】
いくつかの方法は、第１の、第２のおよび第３のセットのサブセットを同定する工程をさらに含む。第１のセットのサブセットは、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第１のフィンガー位置から標的部位における第１のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む、ジンクフィンガータンパク質を含む。第２のセットのサブセットは、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第２のフィンガー位置から標的部位における第２のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む、ジンクフィンガータンパク質を含む；第３のセットのサブセットは、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第３のフィンガー位置から標的部位における第３のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む、ジンクフィンガータンパク質を含む。第１の、第２のおよび第３のセットのサブセットの指定およびサブ指定が、出力される。次いで、第１のサブセット由来の第１のフィンガー、第２のサブセット由来の第２のフィンガー、および第３のサブセット由来の第３のフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質が、産生される。上記のいくつかの設計方法において、標的部位は、使用者の入力によって提供される。いくつかの方法において、標的部位は、上記の標的部位選択方法の１つによって提供される。 
【００２１】
本発明は、任意の上記方法を実行するためのコンピュータープログラム製品をさらに提供する。１つのコンピュータープログラム製品は、ジンクフィンガータンパク質による標的化のためのポリヌクレオチド内の標的部位を選択するための方法を実行する。このような製品は、（ａ）ポリヌクレオチド配列を提供するためのコード；（ｂ）そのポリヌクレオチド配列内の潜在的な標的部位を選択するためのコード；この潜在的な標的部位は、その潜在的な標的部位における第１の、第２のおよび第３の位置で、第１の、第２のおよび第３のトリプレットの塩基を含む；（ｃ）第１の、第２のおよび第３のトリプレットについてのサブスコア、トリプレットとトリプレット位置との間の対応規則から得られるサブスコアの組み合わせから潜在的な標的部位についてのスコアを算出するためのコード、ここで、各トリプレットは、第１の、第２のおよび第３に対応する位置を有し、そして各対応するトリプレットおよび位置は、特定のサブスコアを有する；（ｄ）さらなるスコアを決定するためのさらなる潜在的な標的部位の第１の、第２のおよび第３の位置での第１の、第２のおよび第３のトリプレットを含むさらなる潜在的な標的部位上で、少なくとも１回工程（ｂ）および（ｃ）を繰り返すためのコード；ｅ）そのスコアを有する潜在的な標的部位の少なくとも１つの出力を提供するためのコード；ならびに（ｆ）そのコードを保持するためのコンピューター読取り可能記憶媒体、を含む。 
【００２２】
本発明はさらに、上記の任意の方法を実行するためのコンピュータシステムを提供する。ジンクフィンガータンパク質による標的化について、ポリヌクレオチド中の標的部位の選択のための１つのこのようなシステムは、以下を含む：（ａ）メモリ；（ｂ）システムバス；および（ｃ）プロセッサ。このプロセッサは、以下のことをするために作動可能に配置される：（１）ポリヌクレオチド配列を提供するか、または受け入れること；（２）ポリヌクレオチド配列中の潜在的な標的部位を選択すること；この潜在的な標的部位は、この潜在的な標的部位において第１、第２，および第３の位置で、第１、第２，および第３の塩基のトリプレットを含む；（３）これらの第１、第２，および第３のトリプレットについてのサブスコア（ｓｕｂｓｃｏｒｅ）の組合せから、この潜在的な標的部位についてのスコアを計算すること。このサブスコアは、トリプレットとトリプレット位置との間の対応規則から得られる。ここで、各トリプレットは、第１、第２，および第３に対応する位置を有し、そして各対応するトリプレットおよび位置は、特定のサブスコアを有する；（４）さらなる潜在的な標的部位の第１、第２，および第３の位置で第１、第２，および第３のトリプレットを含むさらなる標的部位上で、工程（２）および（３）を少なくとも一回繰り返して、さらなるスコアを決定すること；（５）そのスコアを有する、少なくとも１つの潜在的な標的部位の出力を提供すること。 
【００２３】
ジンクフィンガータンパク質を生成するためのさらなるコンピュータプログラム製品は、以下を含む：（ａ）各タンパク質が少なくとも第１、第２および第３のフィンガーを含む、複数のジンクフィンガータンパク質の指定を含むデータベースを提供するためのコード；このジンクフィンガータンパク質の各々の３つのフィンガーの各々のサブ指定（ｓｕｂｄｅｓｉｇｎａｔｉｏｎ）；各ジンクフィンガータンパク質に対応する核酸配列であって、各配列は、各ジンクフィンガータンパク質において、それぞれ少なくとも第１、第２および第３のフィンガーによって特異的に結合される、少なくとも第１、第２および第３のトリプレットを含み、これらの第１、第２，および第３のフィンガーと同一のそれぞれの順序においてこの核酸配列（３ ’−５’）において配列される、これらの第１、第２，および第３のトリプレットが、このジンクフィンガータンパク質（Ｎ末端からＣ末端）において配列される、核酸配列；（ｂ）ジンクフィンガータンパク質の設計のために標的部位を提供するためのコードであって、この標的部位は、少なくとも第１、第２，および第３のトリプレットを含む；（ｃ）標的部位の第１、第２，および第３のトリプレットについて、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第１、第２，および第３のセットを同定するためのコードであって、この第１のセットは、この標的部位において第１のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含み、この第２のセットは、この標的部位において第２のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含み、この第３のセットは、この標的部位において第３のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む；（ｄ）工程（ｃ）において同定された第１、第２，および第３のセットにおいて、このジンクフィンガータンパク質の指定およびサブ指定を出力するためのコード、ならびに（ｅ）これらのコードを保持するためのコンピュータ読み出し可能な記録媒体。 
【００２４】
本発明はさらに、ジンクフィンガータンパク質を生成するためのシステムを提供する。このシステムは、以下を含む：（ａ）メモリ；（ｂ）システムバス；および（ｃ）プロセッサ。このプロセッサは、以下のことをするために作動可能に配置される：（１）各タンパク質が、少なくとも第１、第２，および第３のフィンガーを含む、複数のジンクフィンガータンパク質の指定、このジンクフィンガータンパク質の各々の３つのファンガーの各々のサブ指定を含むデータベース；各ジンクフィンガータンパク質に対応する核酸配列であって、各配列は、各ジンクフィンガータンパク質において、それぞれ少なくとも第１、第２，および第３のフィンガーによって特異的に結合される、少なくとも第１、第２，および第３のトリプレットを含み、第１、第２，および第３のフィンガーと同一のそれぞれの整列においてこの核酸配列（３ ’−５’）において配列される、第１、第２，および第３のトリプレットが、このジンクフィンガータンパク質（Ｎ末端からＣ末端）において配列される、核酸配列を提供すること；（２）ジンクフィンガータンパク質の設計のために標的部位を提供すること（この標的部位は、少なくとも第１、第２，および第３のトリプレットを含む）、（３）第１、第２，および第３のトリプレットについて、データベース中のジンクフィンガータンパク質の第１、第２，および第３のセットを同定すること（この第１のセットは、この標的部位において第１のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含み、この第２のセットは、この標的部位において第２のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含み、この第３のセットは、この標的部位において第３のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含む）、；ならびに（４）工程（３）において同定された第１、第２，および第３のセットにおいて、このジンクフィンガータンパク質の指定およびサブ指定を出力すること。 
【００２５】
（定義）
ジンクフィンガーＤＮＡ結合タンパク質は、亜鉛イオンの配位によってタンパク質構造の安定化を生じる結果として、配列特異的様式においてＤＮＡを結合する、タンパク質またはより大きなタンパク質内のセグメントである。用語、ジンクフィンガーＤＮＡ結合タンパク質は、しばしば、ジンクフィンガータンパク質またはＺＦＰと省略される。 
【００２６】
設計されたジンクフィンガータンパク質は、その設計／組成物が、主に合理的基準から得られる、天然に存在しないタンパク質である。設計のための合理的基準は、既存のＺＦＰ設計および結合データの情報を格納するデータベースにおける情報処理するための置換の規則およびコンピュータ化されたアルゴリズムの適用を含む。 
【００２７】
選択されたジンクフィンガータンパク質は、その産物が主に、ファージディスプレイのような経験的プロセスから得られる、天然に見出されないタンパク質である。 
【００２８】
用語、天然に存在する、とは、人間によって人工的に産生されたものとは異なるような、天然に見出され得る対象物を記載するために使用される。例えば、天然にある供給源から単離され得、そしてこれが研究室の人間によって意図的に改変されていない生物体（ウイルスを含む）に存在するポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列は、天然に存在する。一般に、用語、天然に存在する、とは、病的でない（疾患していない）個体において存在するような対象物（例えば、種を象徴するもの）をいう。 
【００２９】
核酸は、それが別の核酸配列と機能的な関係に置かれる場合、作動可能に連結される。例えば、プロモーターまたはエンハンサーは、コード配列の転写を増加させる場合に、そのコード配列に作動可能に連結される。作動可能に連結するとは、連結されたＤＮＡ配列が代表的に連続し、そして２つのタンパク質コード領域を連結することが必要である場合、連続しかつリーディングフレーム中にあることを意味する。しかし、エンハンサーは、一般に数キロベース以上までプロモーターから分離され、そしてイントロン配列が可変の長さであり得る場合に機能するので、いくつかのポリヌクレオチドエレメントは、作動可能に連結され得るが、連続ではない。 
【００３０】
例えば、ＺＦＰと特定の標的部位との間の特異的結合親和性は、少なくとも１×１０ 6Ｍ-1の結合親和性を意味する。
【００３１】
用語、遺伝子の「発現を調節する」、「発現を阻害する」、および「発現を活性化する」とは、遺伝子の転写を活性化または阻害するようなジンクフィンガータンパク質の能力をいう。活性化は、続く転写阻害の防止（すなわち、遺伝子発現の抑制の防止）を含み、そして阻害は、続く転写活性化の阻害（すなわち、遺伝子の活性化の防止）を含む。調節は、標的遺伝子の発現によって直接的または間接的に影響される任意のパラメーターを決定することによってアッセイされ得る。このようなパラメーターとしては、例えば、ＲＮＡまたはタンパク質レベルにおける変化、タンパク質活性における変化、産物のレベルにおける変化、下流の遺伝子発現における変化、レポーター遺伝子の転写における変化（ルシフェラーゼ、ＣＡＴ、 βガラクトシダーゼ、ＧＦＰ（例えば、ＭｉｓｔｉｌｉおよびＳｐｅｃｔｏｒ、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １５：９６１〜９６４（１９９７）を参照のこと）；シグナル伝達、リン酸化および脱リン酸化、レセプターリガンド相互作用、セカンドメッセンジャーの濃度（例えば、ｃＧＭＰ、ｃＡＭＰ、ＩＰ３、およびＣａ 2+）、細胞増殖、新血管形成、インビトロ、インビボ、ならびにエキソビボにおける変化が挙げられる。このような機能的な効果は、例えば、ＲＮＡまたはタンパク質レベルの測定、ＲＮＡ安定性の測定、下流またはレセプター遺伝子発現の同定を、例えば化学発光、蛍光、比色反応、抗体結合、誘導マーカー、リガンド結合アッセイを介して；細胞内のセカンドメッセンジャー（例えば、ｃＧＭＰおよびイノシトール三リン酸（ＩＰ３）における変化；細胞内のカルシウムレベルにおける変化；サイトカイン放出などによる、当業者に公知な任意の手段によって測定され得る。 
【００３２】
「調節ドメイン」とは、転写調節活性を有するタンパク質またはタンパク質サブ配列をいう。代表的に、調節ドメインは、転写を調節するためにＺＦＰに共有結合的に、または非共有結合的に連結される。あるいは、ＺＦＰは、調節ドメインを有さずに単独で作用し得るか、または転写を調節するために多数の調節ドメインを有して単独で作用し得る。 
【００３３】
標的部位内のＤ可能サブ部位は、モチーフ５’ＮＮＧＫ３’を有する。１つ以上のこのようなモチーフを含む標的部位は、時にＤ可能標的部位と記載される。Ｄ可能サブ部位に結合するように適切に設計されたジンクフィンガーは、時にＤ可能フィンガーといわれる。さらに、少なくとも１つのＤ可能サブ部位を含む標的部位に結合するように設計され、そして選択された、少なくとも１つのフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質は、時にＤ可能ジンクフィンガータンパク質といわれる。 
【発明を実施するための最良の形態】
【００３４】
（Ｉ．概説）
１つの局面において、本発明は、遺伝子を調節または検出することにおける使用を意図されるジンクフィンガータンパク質の設計のために予め選択された標的部位内の適切なセグメントを選択する方法に関する。潜在的な標的遺伝子のサイズは、約１００〜数１００，０００（数十万）ｂｐまで広範に変化し得る。ジンクフィンガータンパク質は、このような遺伝子内の小さなサブ配列または標的部位に結合し得る。例えば、３つのフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質は、代表的に９または１０塩基の標的遺伝子に結合する。本発明は、ジンクフィンガータンパク質によって標的化される標的遺伝子から、最適なサブ配列を選択するための基準および方法を提供する。 
【００３５】
標的部位を選択する方法のいくつかは、１つ以上のいわゆるＤ可能サブ部位を含むＤＮＡモチーフを有する１つ以上の標的セグメントを同定するために調査される。Ｄ可能サブ部位は、以下で詳細に議論されるように特徴的なＤＮＡ配列式によって規定される。ジンクフィンガータンパク質は、ジンクフィンガータンパク質の少なくとも１つの成分フィンガーが、フィンガーによって通常結合される３つの塩基サブ部位の外側のさらなる塩基を接触するようなな様式において、このようなモチーフを結合し得る。２つのＤ可能部位が標的セグメント中に存在する場合、ジンクフィンガータンパク質の２つの成分フィンガーは、標的部位の４つの塩基に各々結合し得る。３つのＤ可能サブ部位が標的セグメント中に存在する場合、ジンクフィンガータンパク質の３つの成分フィンガーは、標的部位の４つの塩基に各々結合し得る。一般に、少なくとも１つのＤ可能サブ部位を含む標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質は、Ｄ可能サブ部位を有さない標的セグメントに結合するジンクフィンガータンパク質よりも、より高い結合親和性を示す。同様に、２つのＤ可能サブ部位を有する標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質は、一般に、１つのＤ可能サブ部位を有する標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質よりも、より高い結合親和性を示し、そして３つのＤ可能サブ部位を有するジンクフィンガータンパク質は、一般に、２つのＤ可能サブ部位を有する標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質よりも、より高い結合親和性を示す。機構を理解することは本発明を実施するために必要でないが、より高い結合親和性は、ジンクフィンガーと標的セグメント中の３つの塩基との間に可能な相互作用に対して、ジンクフィンガーと標的セグメント中の４つの塩基との間に可能なさらなる相互作用から生じることが考えられる。一般に、Ｄ可能サブ部位を有する標的セグメントの高い結合親和性についての可能性は、このサブ部位をジンクフィンガータンパク質の設計のために標的遺伝子内から選択される標的部位にする。なぜなら、より高い結合親和性は、しばしば、標的遺伝子の調節のより大きな程度、および／または標的遺伝子の調節のより大きな特異性を生じるからである。 
【００３６】
本発明の他の方法は、Ｄ可能サブ部位に対するさらなる基準または代替の基準によって標的遺伝子内の標的セグメントを選択することに関する。このような方法における標的セグメントの選択についての主な基準は、３つの塩基の異なるトリプレットと９つの塩基部位内の１つのトリプレットの３つの可能な位置（すなわち、塩基１〜３、４〜６、および７〜９）との間の対応規則の形成において提供される。例示的な対応規則を表１に示す。この対応規則は、標的部位内のトリプレットおよびトリプレット位置の異なる組合せについて異なる値を提供する。標的遺伝子内の潜在的な標的部位は、対応規則から得られるその成分トリプレットについてサブスコアを組合わせることによりこの部位についてのスコアを決定することによって評価される。異なる潜在的な標的部位のスコアは、ジンクフィンガー結合タンパク質の設計のための標的部位として望ましい特定のセグメントを示す、高いスコアと比較される。 
【００３７】
別の局面において、本発明は、予め選択された標的部位に結合するジンクフィンガータンパク質を設計する方法を提供する。当然のことながら、これらの方法は、上記の手順および基準に従って、標的部位を予め選択した後に使用され得る。設計の方法は、以前に特徴付けられたジンクフィンガータンパク質についての情報を含むデータベースを使用する。この情報は、以前に特徴付けられたジンクフィンガータンパク質、これらの成分フィンガーのアミノ酸配列、およびタンパク質の各フィンガーによって結合されるヌクレオチドトリプレットの名前および他の指定を含む。データベース中の情報は、選択された標的部位に対して特異性を有する新規なジンクフィンガータンパク質において組合せのための以前と異なる設計からのフィンガーの選択を可能にするアルゴリズムを使用して利用される。 
【００３８】
（ＩＩ ジンクフィンガータンパク質）
ジンクフィンガータンパク質は、ジンクフィンガー成分から形成される。例えば、ジンクフィンガータンパク質は、１〜３７のフィンガーを有し得、一般に２、３、４、５または６つのフィンガーを有する。ジンクフィンガータンパク質は、標的部位（時に標的セグメントといわれる）を認識し、そしてこれに結合する。この標的部位は、標的遺伝子内に比較的小さなサブ配列を示す。ジンクフィンガータンパク質の各成分フィンガーは、標的部位内のサブ部位に結合し得る。このサブ部位は、同一鎖（時に、標的鎖といわれる）上で３つ連続する塩基のトリプレットを全て含む。このサブ部位はまた、標的鎖上の３つ連続する塩基のすぐ３ ’側の塩基の成分である、反対鎖上の第４の塩基を含んでもよいし、含まなくてもよい。多くのジンクフィンガータンパク質において、ジンクフィンガーは、そのトリプレットサブ部位に、同一のジンクフィンガータンパク質中の実質的に独立な他のフィンガーを結合する。従って、多数のフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質の結合特異性は、通常ほぼ、その成分フィンガーの特異性の集合体である。例えば、ジンクフィンガータンパク質が、トリプレットＸＸＸ、ＹＹＹ、およびＺＺＺに対して個々に結合する第１、第２、および第３のフィンガーから形成される場合、このジンクフィンガータンパク質の結合特異性は、３ ’ＸＸＸ ＹＹＹ ＺＺＺ５’である。
【００３９】
Ｎ末端からＣ末端のジンクフィンガータンパク質においてフィンガーの相対的な整列は、標的中の３’から５ ’方向におけるトリプレットの相対的な順序を決定する。例えば、ジンクフィンガータンパク質が上記の第１、第２、および第３のフィンガーをＮ末端からＣ末端に含む場合、このジンクフィンガータンパク質は標的セグメント３ ’ＸＸＸＹＹＹＺＺＺ５’に結合する。このジンクフィンガータンパク質が別の順序（例えば、第２のフィンガー、第１のフィンガー、第３のフィンガー）でこのフィンガーを含む場合、このジンクフィンガータンパク質は、異なる順列のトリプレット（この例においては、３ ’ＹＹＹＸＸＸＺＺＺ５’）を含む標的セグメントに結合する（ＢｅｒｇおよびＳｈｉ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７１、１０８１〜１０８６（１９９６）を参照のこと）。しかし、その成分フィンガーの集合体としてジンクフィンガータンパク質の結合特性の評価は、おおよそであるのみである。これは、同一のタンパク質中の多数のフィンガー結合の状況依存性相互作用に起因する。 
【００４０】
２つ以上のジンクフィンガータンパク質は、標的特異性を有するように連結され得る。この特異性は、成分ジンクフィンガータンパク質の特異性の集合体である（例えば、ＫｉｍおよびＰａｂｏ、ＰＮＡＳ ９５、２８１２〜２８１７（１９９８）を参照のこと）。例えば、ＸＸＸ、ＹＹＹ、およびＺＺＺにそれぞれ結合する第１、第２、および第３の成分フィンガーを有する第１のジンクフィンガータンパク質は、結合特異性ＡＡＡ、ＢＢＢ、およびＣＣＣを有する第１、第２、および第３の成分フィンガーを有する第２のジンクフィンガータンパク質に連結し得る。従って、組合せた第１および第２のタンパク質の結合特異性は、３ ’ＸＸＸＹＹＹＺＺＺ＿ＡＡＡＢＢＢＣＣＣ５’であり、ここで、下線は、短い介入領域（代表的に、任意の型の０〜５の塩基）を示す。この状況において、標的部位は、介入セグメントによって分離される２つの標的セグメントを含むと考えられ得る。 
【００４１】
連結は、以下の任意のペプチドリンカーを使用して達成され得る。ＴＧＥＫＰ（Ｌｉｕら、１９９７、前出）；（Ｇ４Ｓ）ｎ（Ｋｉｍら、ＰＮＡＳ ９３、１１５６〜１１６０（１９９６）；ＧＧＲＲＧＧＧＳ；ＬＲＱＲＤＧＥＲＰ；ＬＲＱＫＤＧＧＧＳＥＲＰ；ＬＲＱＫＤ（Ｇ３Ｓ）２ＥＲＰ。あるいは、可撓性リンカーは、ＤＮＡ結合部位およびペプチド自体の両方をモデリングし得るコンピュータプログラムを使用して、またはファージディスプレイ方法によって、合理的に設計され得る。さらなる改変において、非共有結合的な連結は、２つのジンクフィンガータンパク質のヘテロ二量体形成を促進するドメインと２つのジンクフィンガータンパク質とを融合することによって達成され得る。例えば、一方のジンクフィンガータンパク質がｆｏｓと融合され得、そして他方はｊｕｎと融合され得る（Ｂａｒｂａｓら、ＷＯ９５／１１９４３１を参照のこと）。 
【００４２】
２つのジンクフィンガータンパク質の連結は、哺乳動物ゲノム内の独特な結合特異性を与えるために有利である。代表的な哺乳動物二倍体ゲノムは、３ ×１０9ｂｐからなる。４つのヌクレオチドＡ、Ｃ、Ｇ、およびＴがランダムに分布すると仮定すると、所定の９ｂｐの配列は、約２３，０００回存在する。従って、絶対的な特異性を有する９ｂｐ標的を認識するＺＦＰは、このゲノム内の約２３，０００の部位に結合する可能性を有する。１８ｂｐの配列は、３．４ ×１０10ｂｐ中に１回またはランダムなＤＮＡ配列中に約１回存在し、これらの複雑性は、哺乳動物ゲノムの複雑性の１０倍である。 
【００４３】
ジンクフィンガータンパク質の成分フィンガーは代表的に、約３０アミノ酸を含み、そして以下のモチーフ（Ｎ−Ｃ）を有する： 
【００４４】
【数１】
0005162405.tif 000002
【００４５】
単一のβターン中の２つの不変ヒスチジン残基および２つの不変システイン残基は、亜鉛を通じて配位される（例えば、ＢｅｒｇおよびＳｈｉ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７１、１０８１〜１０８５（１９９６）を参照のこと）。上記のモチーフは、結合特異性を与えるジンクフィンガーの領域の分野において標準的である番号付けの取り決めを示す。第１の不変Ｈｉｓ残基の左（Ｎ末端側）のアミノ酸は番号＋６を割り当てられ、そしてさらに左の他のアミノ酸は、連続的に減じられた数を割り当てられる。 αヘリックスは、残基１で始まり、そして第２の保存ヒスチジンの後の残基まで伸長する。従って、このヘリックス全体は、１１残基と１３残基との間の可変の長さである。 
【００４６】
天然に存在しないＺＦＰまたは改変ＺＦＰを設計または選択する工程は、代表的にフレームワーク残基の供給源としての天然ＺＦＰで開始する。この選択または設計の工程は、所望される結合特異性を与えるように非保存位置（すなわち、位置−１〜＋６）を規定するために作用する。１つの適切なＺＦＰは、マウス転写因子Ｚｉｆ２６８のＤＮＡ結合ドメインである。このタンパク質のＤＮＡ結合ドメインは、以下のアミノ酸配列を有し、そして標的５ ’ＧＣＧ ＴＧＧ ＧＣＧ３’に結合する：
【００４７】
【数２】
0005162405.tif 000003
【００４８】
フレームワーク残基の供給源として適切な別の天然のジンクフィンガータンパク質はＳｐ−１である。ジンクフィンガータンパク質の構築のために使用されるＳｐ−１配列は、Ｓｐ−１転写因子のアミノ酸５３１〜６２４に対応する。この配列は９４アミノ酸長である。Ｓｐ−１のアミノ酸配列は以下である： 
【００４９】
【数３】
0005162405.tif 000004
【００５０】
Ｓｐ−１は標的部位５’ＧＧＧ ＧＣＧ ＧＧＧ ３’に結合する。 
【００５１】
Ｓｐ−１の代替的な形態であるＳｐ−１コンセンサス配列は、以下のアミノ酸配列を有する：
【００５２】
【数４】
0005162405.tif 000005
【００５３】
（小文字はＳｈｉおよびＢｅｒｇ、Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｙ１，８３〜８９（１９９５）からのリーダー配列である）。Ｓｐ−１コンセンサス配列について最適な結合配列は、５ ’ＧＧＧＧＣＧＧＧＧ３’である。他の適切なＺＦＰを以下に記載する。 
【００５４】
いくつかのジンクフィンガータンパク質の合理的な設計を助ける、多数の置換法則が存在する（ＤｅｓｊａｒｌａｉｓおよびＢｅｒｇ、ＰＮＡＳ ９０、２２５６〜２２６０（１９９３）；ＣｈｏｏおよびＫｌｕｇ、ＰＮＡＳ ９１、１１１６３〜１１１６７（１９９４）；ＤｅｓｊａｒｌａｉｓおよびＢｅｒｇ、ＰＮＡＳ ８９、７３４５〜７３４９（１９９２）；Ｊａｍｉｅｓｏｎら、上述；Ｃｈｏｏら、ＷＯ９８／５３０５７、ＷＯ９８／５３０５８；ＷＯ９８／５３０５９；ＷＯ９８／５３０６０を参照のこと）。これらの法則の多くは、偏在性転写因子であるＳｐ−１の３つのフィンガードメインの部位特異的変異誘発により支持される（ＤｅｓｊａｒｌａｉｓおよびＢｅｒｇ，１９９２；１９９３）。これらの法則の１つは、ＤＮＡトリプレット中の５ ’Ｇが、認識へリックスの６位にアルギニンを組み込んでいるジンクフィンガーにより結合され得ることである。別の置換法則は、サブ部位の中央のＧが、ジンクフィンガーの３位にヒスチジン残基を含むことによって認識され得ることである。さらなる置換法則は、トリプレットの中央のＡを認識するためにアスパラギンが組み込まれ得、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリンまたはスレオニンがトリプレットの中央のＣを認識するために組み込まれ得、そして小さい側鎖を有するアミノ酸（例えば、アラニン）がトリプレットの中央のＴを認識するために組み込まれ得ることである。さらなる置換法則は、トリプレットサブ部位の３ ’塩基が以下のアミノ酸を認識へリックスの−１位に組み込むことによって認識され得ることである：Ｇを認識するためにアルギニン、Ａを認識するためにグルタミン、Ｃを認識するためにグルタミン酸（またはアスパラギン酸）、およびＴを認識するためにスレオニン。これらの置換法則はジンクフィンガータンパク質の設計のために有用であるが、これらは全ての潜在的な標的部位を考慮に入れるわけではない。さらに、この法則の基となる仮説、すなわち、ジンクフィンガー中の特定のアミノ酸がサブ部位中の特定の塩基への結合の原因であることは、単なる概算である。フィンガー中の近位のアミノ酸間の前後関係依存性の相互作用または複数のアミノ酸の単塩基への結合もしくはその逆は、既存の置換法則により予測される結合特異性の変動を引き起こし得る。 
【００５５】
ファージディスプレイ技術は、所望の標的特異性を有するジンクフィンガータンパク質を生成する多数の経験的手段を提供する（例えば、Ｒｅｂａｒ、米国特許第５，７８９，５３８号；Ｃｈｏｏら、ＷＯ９６／０６１６６；Ｂａｒｂａｓら、ＷＯ９５／１９４３１およびＷＯ９８／５４３１１１；Ｊａｍｉｅｓｏｎら、上述を参照のこと）。この方法は合理的設計と組み合わせて、または合理的設計の代替法として使用され得る。この方法は、変異誘発されたジンクフィンガータンパク質の多様なライブラリーの産生、続いて親和性選択方法を使用して所望のＤＮＡ結合特性を有するタンパク質を単離することを含む。この方法を使用するために、実験者は、代表的には以下のように進める。最初に、ジンクフィンガータンパク質の遺伝子を変異誘発させて、結合特異性および／または親和性に重要である領域に多様性を導入する。代表的な適用において、これは−１位、＋２位、＋３位および＋６位、ならびにしばしば＋１位、＋５位、＋８位および＋１０位のような補助（ａｃｃｅｓｓｏｒｙ）位置で１つのフィンガーのランダム化を介して達成される。次に、変異誘発された遺伝子は、繊維状ファージの第ＩＩＩ遺伝子（これはコートタンパク質であるｐＩＩＩをコードする）との融合物としてファージまたはファージミドにベクターにクローニングされる。このジンクフィンガー遺伝子は膜搬出シグナルペプチドをコードする第ＩＩＩ遺伝子のセグメントとｐＩＩＩの残余の間に挿入され、その結果ジンクフィンガータンパク質はｐＩＩＩとのアミノ末端融合物としてか、または成熟したプロセシングされたタンパク質で発現される。ファージミドベクターを使用する場合、変異誘発されたジンクフィンガー遺伝子はまた、ｐＩＩＩのファージ粒子へのアセンブリのために必要とされるＣ末端領域を最小限にコードする第ＩＩＩ遺伝子の短縮型バージョンに融合され得る。得られるベクターライブラリーはＥ．ｃｏｌｉに形質転換され、そしてその表面上にコートタンパク質ｐＩＩＩとの融合物として改変型ジンクフィンガータンパク質を発現する繊維状ファージを産生するために使用される。ファージミドベクターが使用される場合、この工程はヘルパーファージでの重感染を必要とする。次いで、ファージライブラリーは標的ＤＮＡ部位とともにインキュベートされ、そして親和性選択法を使用してバルクファージ（ｂｕｌｋ ｐｈａｇｅ）から高親和性で標的と結合するファージを単離する。代表的には、このＤＮＡ標的は固相支持体上に固定化されて、次いでこの支持体は最も強固に結合するファージ以外を取り除くために十分な条件下で洗浄される。洗浄後、支持体上に残存する任意のファージが、ジンクフィンガー−ＤＮＡ結合を破壊する条件下での溶出を介して回収される。回収したファージを使用して新しいＥ．ｃｏｌｉを感染させ、次いでこれを増幅させてファージ粒子の新しいバッチを産生するために使用する。次いで、選択および増幅は、強固に結合するものについてファージプールを富化するに必要な回数だけ反復され、その結果として配列決定方法および／またはスクリーニング方法を使用してこれらは同定され得る。この方法はｐＩＩＩ融合物について例示されるが、類似の原則がＺＦＰ改変��をｐＶＩＩＩ融合物としてスクリーニングするために使用され得る。 
【００５６】
ジンクフィンガータンパク質は、しばしば、融合タンパク質として異種ドメインと共に発現される。ＺＦＰへの付加のための共通のドメインとしては、例えば、転写因子ドメイン（アクチベーター、リプレッサー、コアクチベーター、コリプレッサー）、サイレンサー、オンコジーン（例えば、ｍｙｃ、ｊｕｎ、ｆｏｓ、ｍｙｂ、ｍａｘ、ｍａｄ、ｒｅｌ、ｅｔｓ、ｂｃｌ、ｍｙｂ、ｍｏｓファミリーメンバーなど）；ＤＮＡ修復酵素ならびにその関連因子および修飾因子；ＤＮＡ再配置酵素ならびにその関連因子および修飾因子；クロマチン関連タンパク質およびそれらの修飾因子（例えば、キナーゼ、アセチラーゼおよびデアセチラーゼ）；ならびにＤＮＡ修飾酵素（例えば、メチルトランスフェラーゼ、トポイソメラーゼ、ヘリカーゼ、リガーゼ、キナーゼ、ホスファターゼ、ポリメラーゼ、エンドヌクレアーゼ）ならびにそれらの関連因子および修飾因子が挙げられる。ＺＦＰが標的遺伝子の発現を抑制するために使用されるべきである場合、ＺＦＰとの融合に好ましいドメインは、ヒトＫＯＸ−１タンパク質由来のＫＲＡＢ抑制ドメインである（Ｔｈｉｅｓｅｎら、Ｎｅｗ Ｂｉｏｌｏｇｉｓｔ ２、３６３〜３７４（１９９０）；Ｍａｒｇｏｌｉｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１、４５０９〜４５１３（１９９４）；Ｐｅｎｇｕｅら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：２９０８〜２９１４（１９９４）；Ｗｉｔｚｇａｌｌら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１、４５１４〜４５１８（１９９８））。活性化を達成するために好ましいドメインとしては、ＨＳＶ ＶＰ１６活性化ドメイン（例えば、Ｈａｇｍａｎｎら、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．７１、５９５２〜５９６２（１９９７）を参照のこと）、核ホルモンレセプター（例えば、Ｔｏｒｃｈｉａら、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１０：３７３〜３８３（１９９８）を参照のこと）；核因子 κＢのｐ６５サブユニット（ＢｉｔｋｏおよびＢａｒｉｋ、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．７２：５６１０〜５６１８（１９９８）ならびにＤｏｙｌｅおよびＨｕｎｔ、Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ ８：２９３７〜２９４２（１９９７））；Ｌｉｕら、Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．５：３〜２８（１９９８））、または人工キメラ機能的ドメイン（例えば、ＶＰ６４（Ｓｅｉｆｐａｌら、ＥＭＢＯ Ｊ．１１、４９６１〜４９６８（１９９２）））が挙げられる。
【００５７】
ポリペプチド化合物（例えば、ＺＦＰ）の投与に重要な因子は、このポリペプチドが細胞の原形質膜または細胞内区画（例えば、核）の膜を横切る能力を有することを保証することである。細胞膜は脂質−タンパク質二重層からなり、これは小さな非イオン性の親油性化合物を自由に通し、そして極性化合物、高分子および治療剤または診断剤に対して本質的に不透過性である。しかしながらタンパク質および他の化合物（例えば、リポソーム）が、細胞膜を横切ってＺＦＰのようなポリペプチドをトランスロケーションさせる能力を有することが記載されている。 
【００５８】
例えば、「膜トランスロケーション（ｍｅｍｂｒａｎｅ ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ）ポリペプチド」は、膜トランスロケーションキャリアとして作用する能力を有する、両親媒性または疎水性アミノ酸のサブ配列を有する。１つの実施態様において、ホメオドメインタンパク質は細胞膜を横切ってトランスロケーションする能力を有する。ホメオドメインタンパク質であるＡｎｔｅｎｎａｐｅｄｉａの最も短いインターナライゼーション可能なペプチドは、タンパク質の第３のへリックス（アミノ酸４３位〜５８位）であることが見出された（例えば、Ｐｒｏｃｈｉａｎｔｚ、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ６：６２９〜６３４（１９９６）を参照のこと）。別のサブ配列である、シグナルペプチドのｈ（疎水性）ドメインは、類似の細胞膜トランスロケーション特性を有することが見出された（例えば、Ｌｉｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０：１４２５５〜１４２５８（１９９５）を参照のこと）。 
【００５９】
ＺＦＰの細胞内への取り込みを容易にするために、本発明のＺＦＰに連結され得るペプチド配列の例としては、以下が挙げられるがこれらに限定されない：ＨＩＶのｔａｔタンパク質の１１アミノ酸ペプチド；ｐ１６タンパク質のアミノ酸８４〜１０３に対応する２０残基のペプチド配列（Ｆａｈｒａｅｕｓら、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ６：８４（１９９６）を参照のこと）；Ａｎｔｅｎｎａｐｅｄｉａの６０アミノ酸長ホメオドメインの第３へリックス（Ｄｅｒｏｓｓｉら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：１０４４４（１９９４））；カポージ線維芽細胞増殖因子（Ｋ−ＦＧＦ）ｈ領域（Ｌｉｎら、上述）のようなシグナルペプチドのｈ領域；またはＨＳＶ由来のＶＰ２２トランスロケーションドメイン（ＥｌｌｉｏｔおよびＯ ’Ｈａｒｅ、Ｃｅｌｌ ８８：２２３〜２３３（１９９７））。増強された細胞性取り込みを提供する他の適切な化学的部分もまた、ＺＦＰに化学的に連結され得る。 
【００６０】
トキシン分子もまた、細胞膜を横切ってポリペプチドを輸送する能力を有する。しばしば、このような分子は少なくとも２つの部分からなる（「二元トキシン」と呼ばれる）：トランスロケーションまたは結合ドメインまたはポリペプチド、ならびに別個のトキシンドメインまたはポリペプチド。代表的に、トランスロケーションドメインまたはポリペプチドは細胞性レセプターに結合し、次いでこのトキシンは細胞内に輸送される。いくつかの細菌性トキシン（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｐｅｒｆｒｉｎｇｅｎｓイオータトキシン、ジフテリアトキシン（ＤＴ）、ＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓエキソトキシンＡ（ＰＥ）、百日咳トキシン（ＰＴ）、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｔｈｒａｃｉｓトキシンおよび百日咳アデニル酸シクラーゼ（ＣＹＡ）を含む）は、細胞のサイトゾルへとペプチドを内部融合物またはアミノ末端融合物として送達する試みにおいて使用されてきた（Ａｒｏｒａら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２６８：３３３４〜３３４１（１９９３）；Ｐｅｒｅｌｌｅら、Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．、６１：５１４７〜５１５６（１９９３）；Ｓｔｅｎｍａｒｋら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１１３：１０２５〜１０３２（１９９１）；Ｄｏｎｎｅｌｌｙら、ＰＮＡＳ ９０：３５３０〜３５３４（１９９３）；Ｃａｒｂｏｎｅｔｔｉら、Ａｂｓｔｒ．Ａｎｎｕ．Ｍｅｅｔ．Ａｍ．Ｓｏｃ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．９５：２９５（１９９５）；Ｓｅｂｏら、Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６３：３８５１〜３８５７（１９９５）；Ｋｌｉｍｐｅｌら、ＰＮＡＳ Ｕ．Ｓ．Ａ．８９：１０２７７〜１０２８１（１９９２）；およびＮｏｖａｋら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：１７１８６〜１７１９３（１９９２））。 
【００６１】
このようなサブ配列は、細胞膜を横切ってＺＦＰをトランスロケーションさせるために使用され得る。ＺＦＰは、便利に、このような配列に融合され得るか、またはこのような配列を用いて誘導体化され得る。代表的には、このトランスロケーション配列は融合タンパク質の一部として提供される。必要に応じて、リンカーはＺＦＰとトランスロケーション配列とを連結させるために使用され得る。任意の適切なリンカー、例えば、ペプチドリンカーが使用され得る。 
【００６２】
（ＩＩＩ．標的遺伝子の選択）
ジンクフィンガータンパク質は、任意の標的ポリヌクレオチド配列の発現を調整するために使用され得る。この配列は、例えば、ゲノム、ｃＤＮＡまたはＲＮＡあるいは発現された配列タグ（ＥＳＴ）であり得る。代表的には、標的ポリヌクレオチドとしては、遺伝子またはそのフラグメントが挙げられる。用語、遺伝子は、以下を含むように広範に使用される：例えば、エキソン領域、イントロン領域、５ ’ＵＴＲ、３’ＵＴＲ、５’隣接配列、３ ’隣接配列、プロモーター、エンハンサー、転写開始部位、リボソーム結合部位、調節部位、ポリアデニル化部位が挙げられる。標的遺伝子は、細胞性、ウイルス性または他の供給源由来（純粋に理論的な配列を含む）のものであり得る。標的遺伝子配列は、データベース（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ）、刊行物から得られ得るか、またはデノボで得られ得る。標的遺伝子としては、感染を停止するために発現の抑制が使用され得る病的なウイルスおよび微生物由来の遺伝子が挙げられる。病原性ウイルスの例としては、肝炎（Ａ型、Ｂ型またはＣ型）、ヘルペスウイルス（例えば、ＺＶＺ、ＨＳＶ−１、ＨＳＶ−６、ＨＳＶ−ＩＩおよびＣＭＶ、エプスタイン−バールウイルス）、ＨＩＶ、エボラ、アデノウイルス、インフルエンザウイルス、フラビウイルス、ＥＣＨＯウイルス、ライノウイルス、コクサッキーウイルス、コロナウイルス（ｃｏｒｎｏｖｉｒｕｓ）、ＲＳウイルス、流行性耳下腺炎ウイルス、ロタウイルス、麻疹ウイルス、風疹ウイルス、パルボウイルス、ワクシニアウイルス、ＨＴＬＶウイルス、デング熱ウイルス、パピローマウイルス、軟属腫ウイルス（ｍｏｌｌｕｓｃｕｍ ｖｉｒｕｓ）、ポリオウイルス、狂犬病ウイルス、ＪＣウイルスおよびアルボウイルス性脳炎ウイルスが挙げられる。病原性細菌のいくつかの例としては、クラミジア、リケッチア細菌、ミコバクテリア、ブドウ球菌、連鎖球菌（ｔｒｅｐｔｏｃｃｕｓ）、肺炎球菌、髄膜炎菌および淋菌（ｃｏｎｏｃｏｃｃｕｓ）、クレブシエラ、プロテウス、セラチア、シュードモナス、レジオネラ、ジフテリア、サルモネラ、バシラス、コレラ、破傷風、ボツリヌス中毒、炭疽、ペスト、レプトスピラおよびライム病細菌が挙げられる。 
【００６３】
標的遺伝子はまた、疾患の原因であるヒトまたは他の哺乳動物由来の遺伝子を含む。いくつかのこのような遺伝子はオンコジーン、腫瘍サプレッサーまたは増殖因子であり、これらはガンの原因である。オンコジーンの例としては、ｈＭＳＨ２（Ｆｉｓｈｅｌら、Ｃｅｌｌ ７５、１０２７〜１０３８（１９９３））およびｈＭＬＨ１（Ｐａｐａｄｏｐｏｕｌｏｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６３、１６２５〜１６２８（１９９４））が挙げられる。増殖因子のいくつかの例としは、線維芽細胞増殖因子、血小板由来増殖因子、ＧＭ−ＳＣＦ、ＶＥＧＦ、ＥＰＯ、Ｅｒｂ−Ｂ２およびｈＧＨが挙げられる。他のヒト遺伝子は、被験体を微生物またはウイルスによる感染に罹患し易くすることにより、疾患の原因となる。例えば、ＣＣＲ５レセプターをコードする遺伝子の特定の対立遺伝子は、被験体をＨＩＶによる感染に罹患し易くする。他のヒト遺伝子（例えば、アミロイド前駆体タンパク質またはＡｐｏＥをコードする遺伝子）は、他の疾患（例えば、アルツハイマー病）の原因である。 
【００６４】
標的遺伝子としてはまた、他の供給源が原因である疾患に対する防御機構を提供する、ヒトまたは他の哺乳動物の遺伝子が挙げられる。例えば、腫瘍リプレッサー遺伝子は、ガンに対する防御を提供する。このような遺伝子の発現は望ましく、そしてジンクフィンガータンパク質は発現を活性化するために使用される。 
【００６５】
標的遺伝子としてはまた、通常発現が止められているかまたは低レベルで発現されている遺伝子が挙げられるが、これらは活性化を通してある個体に存在する別の欠損型遺伝子を置換するために使用され得る。例えば、胎児ヘモグロビン（ｈｅｍａｇｌｏｂｉｎ）遺伝子（これは成体ヒトにおいては通常不活性である）を活性化して、鎌状赤血球貧血を有する個体における欠損型 β−グロビン遺伝子を代用し得る。
【００６６】
標的遺伝子としてはまた、その抑制または活性化が植物特性の改善（例えば、改善された作物生産、病害耐性または除草剤耐性）を導く植物遺伝子が挙げられる。例えば、ＦＡＤ２−１遺伝子の発現の抑制は、オレイン酸の増加ならびにリノール酸およびリノレン酸の減少という利点を生じる。 
【００６７】
（ＩＶ．Ｄ可能サブ部位に結合するためのジンクフィンガータンパク質の設計）
（１．方法）
本発明は、標的遺伝子を選択し、そして１〜６（以上）のＤ可能サブ部位を含む遺伝子内の標的部位を同定する方法を提供する。次いで、予め選択された部位に結合するジンクフィンガータンパク質が合成され得る。標的部位選択のこれらの方法は、標的セグメント中の１つ以上のＤ可能サブ部位の存在が、Ｄ可能サブ部位を欠損する標的セグメントに結合するジンクフィンガータンパク質と比較して、その部位に結合するように選択されたかまたは設計されたジンクフィンガータンパク質により高い結合親和性の可能性を付与するという本発明者らの認識を、一部で前提とする。この洞察を支持する実験的証拠は、実施例２〜９に提供される。 
【００６８】
Ｄ可能サブ部位は、適切に設計された単一のジンクフィンガーが、標的部位の３塩基までよりもむしろ４塩基までに結合することを可能にする標的部位の領域である。このようなジンクフィンガーは、二本鎖標的セグメント（標的鎖）の１つの鎖上の塩基のトリプレットおよび他方の鎖上の第４の塩基に結合する（図２を参照のこと）。単一のジンクフィンガーが、４塩基の標的セグメントに結合することは、標的鎖の配列上およびジンクフィンガーのアミノ酸配列上の両方に束縛を課する。標的鎖内の標的部位は、「Ｄ可能」サブ部位モチーフ５ ’ＮＮＧＫ３’を含むべきであり、ここで、ＮおよびＫは、従来のＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである。このような部位に結合するためのジンクフィンガーは、−１位にアルギニン残基および＋２位にアスパラギン酸（または次に好ましくはグルタミン酸）を含むべきである。−１位におけるアルギニン残基は、Ｄ可能サブ部位中のＧ残基と相互作用する。ジンクフィンガーの＋２位におけるアスパラギン酸（またはグルタミン酸）残基は、Ｄ可能サブ部位中のＫ塩基に相補的な反対鎖の塩基と相互作用する。名前Ｄ可能サブ部位を与えるのは、アスパラギン酸（シンボルＤ）と、反対鎖塩基（第４の塩基）との間の相互作用である。Ｄ可能サブ部位式から明らかなように、Ｄ可能サブ部位には２つのサブタイプ：５ ’ＮＮＧＧ３’および５’ＮＮＧＴ３ ’がある。前者のサブ部位には、ジンクフィンガーの＋２位のアスパラギン酸またはグルタミン酸が、Ｄ可能サブ部位に対する反対鎖中のＣと相互作用する。後者のサブ部位では、ジンクフィンガーの＋２位のアスパラギン酸またはグルタミン酸が、Ｄ可能サブ部位に対する反対鎖中のＡと相互作用する。一般に、ＮＮＧＧは、ＮＮＧＴより好ましい。 
【００６９】
３つのフィンガーを持つジンクフィンガータンパク質の設計では、標的部位は、その中で、このタンパク質の少なくとも１つのフィンガー、そして好ましくは、２つまたは３つのフィンガーが、標的部位中のＤ可能サブ部位を結合する能力を有するように選択されるべきである。これは、以下の式を有するより大きな標的遺伝子内から標的部位を選択することにより達成され得る：５ ’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’、ここでセット（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の各々は、（Ｎ、Ｎ）または（Ｇ、Ｋ）のいずれかであり、（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の少なくとも１つは（Ｇ、Ｋ）であり、そしてＮおよびＫは、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである。 
【００７０】
換言すれば、３つのセット（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の少なくとも１つは、このセットの第１の位置がＧであり、そして第２の位置がＧまたはＴであることを意味するセット（Ｇ、Ｋ）である。３つのセットのうち（Ｇ、Ｋ）ではないもの（もしあれば）は、このセットの第１の位置が任意のヌクレオチドにより占められ得、そしてこのセットの第２の位置が任意のヌクレオチドにより占められ得ることを意味する（Ｎ、Ｎ）である。例として、セット（ｘ、ａ）は（Ｇ、Ｋ）であり得、そしてセット（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）は、両方とも（Ｎ、Ｎ）であり得る。 
【００７１】
式５’ＮＮｘ ａＮｙｂ Ｎｚｃ３’において、ＮＮｘ ａＮｙおよびｂＮｚのトリプレットは、ジンクフィンガータンパク質中の３つのフィンガーにより結合される標的鎖上の塩基のトリプレットを示す。強調された塩基の相補物は、非標的鎖上で結合する潜在的な第４の塩基の部位である。ｘ、ｙおよびｚのたった１つがＧであり、そしてこのＧにＫが続く場合、標的部位は単一のＤ可能サブ部位を含む。例えば、ｘのみがＧであり、そしてａがＫである場合、この部位は、Ｄ可能サブ部位を強調して、以下のように読める： 
【００７２】
【化１】
0005162405.tif 000006
【００７３】
ｚではなく、ｘおよびｙの両方がＧであり、そしてａおよびｂがＫである場合、そのときは、標的部位は、以下のように、１つのこのような部位を太字でそして他をイタリックで示して、２つの重複するＤ可能サブ部位を有する： 
【００７４】
【化２】
0005162405.tif 000007
【００７５】
ｘ、ｙおよびｚの３つのすべてがＧであり、そしてａ、ｂおよびｃがＫである場合、そのときは、標的セグメントは、以下のように、３つのＤ可能サブ部位である、以下： 
【００７６】
【化３】
0005162405.tif 000008
【００７７】
を含み、Ｄ可能サブ部位は、太字、イタリックおよび下線で示される。
【００７８】
従って、本発明の方法は、標的遺伝子を選択すること、および式５’ＮＮｘａＮｙｂＮｚｃ３ ’に一致する標的部位のための遺伝子の潜在的なサブ配列内を系統的にサーチすることにより行われ、ここで、（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の各々は、（Ｎ、Ｎ）または（Ｇ、Ｋ）であり； 
（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の少なくとも１つは（Ｇ、Ｋ）であり、そしてＮおよびＫは、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ多義性コードである。 
このような方法のいくつかでは、潜在的な標的遺伝子のいずれかの鎖上の１０の連続塩基の潜在的なサブ配列毎に、それが上記の式に一致するか否かを決定するため、そしてもしそうであれば、Ｄ可能サブ部位がいくつあるか評価される。代表的には、このような比較は、コンピューターにより実施され、そして上記式に一致する標的部位のリストが出力される。必要に応じて、このような標的部位は、Ｄ可能サブ部位がいくつあるかに従って、異なるサブセットで出力され得る。 
【００７９】
改変法では、本発明の方法は、各々が独立に上記の式に一致する第１および第２の標的セグメントを同定する。このような方法における２つの標的セグメントは、束縛されて、標的遺伝子中、互いに隣接するかまたは近接（すなわち、約０〜５塩基内）する。近接する標的セグメントの選択の基礎となる戦略は、第１および第２の標的セグメントにそれぞれ特異的な２つの成分ジンクフィンガータンパク質の連結により形成されるジンクフィンガータンパク質の設計を可能にする。これらの原理は、任意の数の成分フィンガーを持つジンクフィンガータンパク質により結合される標的部位を選択するために拡張され得る。例えば、９フィンガーのタンパク質に適切な標的部位は、各々が上記の式に一致する３つの成分セグメントを有する。 
【００８０】
上記の方法により同定される標的部位は、他の規準によるさらなる評価を受け得るか、またはこのような部位に特異的なジンクフィンガータンパク質の設計または選択（必要であれば）および産生のために直接用いられ得る。潜在的な標的部位を評価するためのさらなる規準は、遺伝子内の特定領域への近接度である。ジンクフィンガータンパク質が、それ自身に関する細胞遺伝子を抑制するために用いられるべき場合（すなわち、このジンクフィンガータンパク質を、抑制する部分に連結することなく）、最適位置は、転写開始の部位か、または約５０ｂｐ上流もしくは下流内であるか、あるいは転写複合体の形成（Ｋｉｍ＆Ｐａｂｏ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９７７））を妨害するためか、または必須エンハンサー結合タンパク質と競合するためにエンハンサーエレメント内にあるようである。しかし、ＺＦＰが、ＫＲＡＢリプレッサードメインまたはＶＰ１６アクチベータードメインのような機能的ドメインに融合される場合、結合部位の位置の選択は、かなりより柔軟であり、そして既知の調節領域の外側であり得る。例えば、ＫＲＡＢドメインは、ＫＲＡＢが結合する場所から少なくとも３ｋｂまで、プロモーターの転写を抑制し得る。従って、調節配列、または多形性部位のような標的遺伝子を含まないか、または標的遺伝子との重要なセグメントと重複しない標的部位が選択され得る。標的セグメントをさらに評価するためのその他の規準としては、このようなセグメントまたは関連セグメントへのジンクフィンガータンパク質結合の先立つ利用可能性、および／または所定の標的セグメントを結合するために新たなジンクフィンガータンパク質を設計する容易さが挙げられる。選択プロセスにおけるこのような基準の履行は、以下でより詳細に論議される。 
【００８１】
一旦、標的セグメントが選択されたなら、このセグメントに結合するジンクフィンガータンパク質は、種々のアプローチにより提供され得る。最も簡単なアプローチは、既に標的部位に結合することが知られている現存するコレクションから予め特徴付けられたジンクフィンガータンパク質を提供することである。しかし、多くの例では、このようなジンクフィンガータンパク質は存在しない。代替のアプローチは、現存するジンクフィンガータンパク質および結合特異性のデータベース中の情報を用いて、新たなジンクフィンガータンパク質を設計することである。このアプローチを以下により詳細に記載する。さらなるアプローチは、上記で議論されるような置換規則に基づきジンクフィンガータンパク質を設計することである。なおさらなる代替は、ファージディスプレイのような経験的プロセスにより所定の標的に対して特異性を持つジンクフィンガータンパク質を選択することである。このような方法のいくつかでは、ジンクフィンガータンパク質の各成分フィンガーは、他の成分フィンガーとは独立に設計または選択される。例えば、各フィンガーは、予め存在する異なったＺＦＰから得られ得るか、または各フィンガーは、別のランダム化および選択を受け得る。 
【００８２】
一旦、ジンクフィンガータンパク質が、所定の標的セグメントに対して、選択、設計、またはそうでなく提供されたなら、ジンクフィンガータンパク質またはコードＤＮＡが合成される。ジンクタンパク質を合成およびジンクタンパク質のコードＤＮＡを発現する例示の方法は以下に記載される。次いで、ジンクフィンガータンパク質またはそれをコードするポリヌクレオチドは、このジンクフィンガータンパク質が結合する標的部位を含む標的遺伝子の発現の調整、または分析に用いられ得る。 
【００８３】
（２．Ｄ可能ジンクフィンガータンパク質）
ジンクフィンガータンパク質は、それが、ポリヌクレオチド配列５’ＮＮＧＫ３ ’である、少なくとも１つのＤ可能サブ部位の第４の塩基に結合し得るフィンガーを含む場合、Ｄ可能として記載される。Ｄ可能ジンクフィンガーを設計するための好適なフレームワークは、ヒト野生型Ｓｐ−１ ＤＮＡ結合ドメインである。ヒト転写因子Ｓｐ−１の標的は、５’ＧＧＧ ＧＣＧ ＧＧＧ３ ’であり、そしてこのタンパク質のフィンガー１および２は、Ｒ−１Ｄ＋２配置を有する。設計されたＺＦＰは、３つのフィンガーの各々の認識ヘリックス中を除いてＳｐ−１と同一であり得、ここでは、配列は、それらが相互作用するトリプレットの各々を認識するように設計される。マウスＺＦＰ Ｚｉｆ２６８は、部位ＧＣＧ ＴＧＧ ＧＣＧを結合し、３つすべてのフィンガーにＲ−１Ｄ＋２配置を有して、また適切である。
【００８４】
Ｄ可能サブ部位に結合し得るジンクフィンガータンパク質の設計のためのフレームワーク残基の供給源としての他のジンクフィンガータンパク質は、いくつかの代替供給源からのＺＦＰから得られか、または由来し得る。例えば、ショウジョウバエ Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒのＴＴＫ転写調節タンパク質は、その認識ヘリックスおよびそのＤＮＡ部位の両方の配列に関して良く特徴付けられている。このタンパク質は、たった２つのフィンガーを有し、そして６塩基の標的に結合し、そこでフィンガー２が、第１のＤＮＡトリプレットと相互作用し、そしてフィンガー１がこの部位の第２のトリプレットを認識する。この部位は、第１および第２のトリプレットの接合部に存在するＧＧタイプＤ可能サブ部位を持つ５ ’ＡＡＧＧＡＴ３’であり、そしてフィンガー２は、Ｒ−１ Ｄ＋２配列を有する。他の適切なＺＦＰは、単細胞真核生物Ｓａｃｃｈｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ中に見出される。ＡＤＲ遺伝子産物は、ＡＤＨプロモーター内に結合することにりＡＤＨ遺伝子の発現を調節することが知られている。ＴＴＫについて上記に記載されるように、ＡＤＲ ＺＦＰ結合ドメインは、２つのフィンガーを有し、そして６塩基の標的ＴＴＧＧＡＧに結合する。このフィンガー２認識ヘリックスは、Ｄ可能サブ部位を持つ標的部位へのＺＦＰ結合に適切なＲ−１ Ｄ＋２配列を有する。
【００８５】
（ＩＶ．対応規則による標的部位の選択）
本発明は、標的遺伝子内から標的部位を選択するためのさらなる、または代替の方法をさらに提供する。これらの方法は、部分的には、個々のフィンガーにより結合される異なる３塩基サブ部位（トリプレット）が、ジンクフィンガータンパク質設計について異なる望ましさを有すること、これらの異なる望ましさが、数値として表現され得ること、および標的部位を含む３つの個々のトリプレットに対する数値が、標的部位に対する全体スコアを与えるために組み合わせられ得るという洞察を前提とする。異なる標的部位の相対的なメリットは、それらの相対的スコアから比較され得る。 
【００８６】
この方法は、ＺＦＰによる検出または調整のための標的部位をその中で選択することを望む、代表的には遺伝子またはｃＤＮＡであるポリヌクレオチド配列を提供することにより実施する。実際、代表的には、ポリヌクレオチド配列の２つの鎖に対して２つの配列を提供するが、単純さのために、この方法は、単一のポリヌクレオチド配列について例示される。このようなポリヌクレオチド配列内から、連続する第１、第２および第３の、塩基のトリプレットを含む少なくとも９塩基の潜在的な標的部位が選択される。これらのトリプレットは、５ ’−３配向における塩基１が塩基１であるとして、第１のトリプレットが部位の塩基７〜９を、第２のトリプレットが部位の塩基４〜６を、そして第３のトリプレットが部位の塩基１〜３を占めるという点で連続している。トリプレットの第１、第２、および第３としてのこの指定は任意であり、そして逆転され得る。しかし、第１のトリプレットが塩基７〜９を、第２のトリプレットが塩基４〜６を、そして第３のトリプレットが塩基１〜３を占めるとして指定することにより、Ｎ−Ｃ末端配向における３つのフィンガーＺＦＰの第１、第２、および第３のフィンガーは、標的部位の第１、第２および第３のトリプレットに結合する。別の様式で見ると、Ｎ末端からＣ末端へのジンクフィンガータンパク質順序にある、第１、第２および第３のフィンガーは、３ ’−５’配向で並べられた標的部位中の第１、第２および第３のトリプレットにそれぞれ特異的である。 
【００８７】
次いで、サブスコアを、各トリプレットについて、トリプレットと標的部位内の対応する位置との間の対応規則から決定される。例示の対応規則を表１に提供する。対応規則は、９塩基の標的部位内のその３つの可能な位置にある各トリプレットに対する３つの値を提供するマトリックスである。この表は、６４の可能なトリプレットの各々について３つの値を提供する。例えば、潜在的な標的部位５ ’ＡＡＡ ＡＡＧ ＡＡＣ３’を考慮する。ＡＡＣトリプレットは、標的部位の第１の位置（塩基７〜９）にあり、そして表１から１のサブスコアを割り当てられる。ＡＡＧトリプレットは、標的部位の第２の位置（塩基４〜６）にあり、そして８のサブスコアを割り当てられる。ＡＡＡトリプレットは、標的部位の第３の位置（塩基１〜３）にあり、そして８のサブスコアを割り当てられる。次いで、潜在的な標的部位中にある３つのトリプレットのサブスコアは、例えば、乗算または加算またはその他の関数により、組み合わせられる。例えば、３つのトリプレットのサブスコアの乗算は、１ ×８×８＝６４の組み合わせスコアを与える。 
【００８８】
次いで、このプロセスは、第２の潜在的な標的部位について繰り返される。第２の潜在的な標的部位の３成分トリプレットの各々についてサブスコアが決定され、そして組み合わせスコアが、第２の潜在的な標的部位に対して計算される。次いで、このプロセスは、さらなる潜在的な標的部位について繰り返され得る。必要に応じて、このプロセスは、目的の標的遺伝子のいずれかの鎖中の少なくとも９塩基の可能な連続サブ配列毎に繰り返され得る。目的のすべての可能な標的部位のスコアが決定された場合、スコアが比較される。一般に、高スコアは、ＺＦＰの設計について標的部位の望ましさを示す。高スコアで同定された１つ以上の標的部位が、スコアとともに出力され得る。 
【００８９】
対応規則における値の指定は、ジンクフィンガータンパク質の設計または選択のために、１つのトリプレットサブ部位を他より望ましくする任意の規準を反映し得る。表１の例示の対応規則における値は、所定のヌクレオチドトリプレットを結合することが知られる先に特徴付けられたＺＦＰの利用可能性を反映する。標的部位の所定の位置における所定のトリプレットについて、所定の位置におけるトリプレットを含む標的セグメントに特異的に結合する、１つ以上の先に特徴付けられたＺＦＰが存在する場合、そのときは、このトリプレットと所定の位置との組み合わせは、スコア１０が割り当てられる。所定の位置における所定のトリプレットについて、所定の位置におけるトリプレットを含む標的部位を特異的に結合する、先に特徴付けられたＺＦＰが存在しないが、異なる位置におけるトリプレットに特異的に結合する１つ以上の先に特徴付けられたＺＦＰが存在する場合、そのときは、このトリプレットは、スコア８が割り当てられる。所定のトリプレットおよび所定の位置について、所定の位置または別の位置のいずれかでトリプレットを結合する、先に特徴付けられたＺＦＰが存在しない場合、このトリプレットおよび位置は値１が割り当てられる。 
【００９０】
これらの値１０、８および１は例示に過ぎず、そして他の値が用いられ得る。さらに、より洗練された値の割り当てを用い得、それはまた、他の因子のなかでとりわけ、異なる結合親和性、特異性およびＤ可能部位の存在を考慮する。このようなスキームでは、強力な結合親和性を有する先のＺＦＰが存在するトリプレットと位置の組み合わせが、代表的には、より低い結合親和性を有する先のＺＦＰが存在するトリプレットと位置との組み合わせより高い値を与える。 
【００９１】
より大きな配列内の潜在的な標的部位の選択およびスコアの計算は、代表的には、適切にプログラムされたコンピューターにより実施され、それは、１つ以上の潜在的な標的部位を、それらのスコアとともに出力する。必要に応じて、ユーザー入力が、このようなコンピューターに提供され、いくつの潜在的な標的部位が出力されるべきかを特定する。例えば、ユーザーは、最高のスコア出力を持つｎの潜在的な標的部位を有するように選択し得る。ここでｎは、ユーザーの裁量である。ユーザーはまた、閾値スコアを特定し得、それは、出力されるべき潜在的な標的部位に等しいまたはそれを超過するに違いない。 
【００９２】
上記の方法の改変法では、潜在的な標的部位は、対応表中の値および１つ以上のＤ可能サブ部位の存在の両方に基づいて評価され得る。これは、状況パラメーターのユーザー入力により達成され、トリプレットの状況が、Ｄ可能サブ部位の存在を示す場合、トリプレットと特定位置との１つ以上の組み合わせに対するスケーリングされたスコアを提供する。例えば、Ａが続くトリプレット５ ’ＮＮＧ３’は、Ｄ可能サブ部位を提供しない。しかし、Ｋが続く５ ’ＮＮＧ３’は、Ｄ可能部位を提供する。ユーザーは、５ ’ＮＮＧ３’にＫが続く場合、５’ＮＮＧ３ ’トリプレットのサブスコアの値を増大する状況パラメーターを入力することを選択し得る。次いで、このトリプレットに対するスケーリングされたサブスコアを、他のトリプレットに対するサブスコアまたはスケーリングされたサブスコアと組み合わせ、潜在的な標的部位に対する全体スコアを与える。 
【００９３】
さらなる改変例では、上記の分析を実施するコンピューターは、プログラムされて、互いにそれらの物理的近接度により決定される対で高スコアを受ける特定の標的セグメントを出力する。両方が互いの約５塩基内にある高スコアを受ける対とされた標的セグメントは、各々が３つのフィンガーを有する２つの成分ジンクフィンガータンパク質の連結により形成される６フィンガーのジンクタンパク質の設計に適切な標的である。 
【００９４】
上記の方法により同定される潜在的な標的部位は、さらなる評価を受け得るか、またはジンクフィンガータンパク質の設計または（必要であれば）選択および産生のために直接用いられ得る。ジンクフィンガータンパク質は、上記のＤ可能サブ部位を含む潜在的な標的セグメントについて記載された同じ方法を用いて、このような標的部位に対して設計および合成され得る。 
【００９５】
（Ｖ．ＺＦＰのデータベース設計）
本発明は、予め選択された標的部位に対するＺＦＰの設計のための方法を提供する。これらの方法は、上記の標的部位選択の方法と組み合わせるか、または標的部位選択のその他の方法による使用のために適切である。 
【００９６】
新たなＺＦＰを設計することにおいて、予め特徴付けられたＺＦＰおよびそれらの標的部位中の固有の情報を使用し、それによってデノボ設計または選択のための必要性を最小にすることが一般に有利である。標的部位選択のように、いくつかの因子がこのプロセスに含まれる。標的部位中の各トリプレットサブ部位について、フィンガーが、現存するＺＦＰ中で利用可能であるばかりではなく、このようなフィンガーがまた、提案された設計におけるように、この現存するタンパク質中の同じ位置からのそれらの個々のトリプレットサブ部位と接触する場合、設計は促進される。例えば、３つの現存するＺＦＰの対および標的部位を考える：フィンガーＦ１−Ｆ２−Ｆ３を持つＺＦＰにより結合される、５ ’ＧＣＧ ＴＧＧ ＧＡＣ３’（ここでＦ３はＧＣＧと、Ｆ２はＴＧＧと、そしてＦ１はＧＡＣと相互作用する）、フィンガーＦ４−Ｆ５−Ｆ６を持つＺＦＰにより結合される、５ ’ＡＡＧ ＧＡＧ ＧＴＧ３’、およびフィンガーＦ７−Ｆ８−Ｆ９を持つＺＦＰにより結合される５ ’ＣＣＧ ＴＧＡ ＧＣＡ３’、ならびにそれに対してＺＦＰが設計されるべき標的部位５ ’ＧＣＧ ＧＡＧ ＧＣＡ３’である。この状況では、新規タンパク質Ｆ７−Ｆ５−Ｆ３は、この新規タンパク質中の各フィンガーが、それが得られたデータベースタンパク質中でそうであったように、新規タンパク質中で同じ相対的位置中に存在して、５ ’ＧＣＧ ＧＡＧ ＧＣＡ３’に結合する。この設計は、新規ＺＦＰ中の各フィンガーの、先のそのＺＦＰの各フィンガーと類似の環境は、このフィンガーが、親におけるように、新規ＺＦＰ中で同様の特異性および親和性で結合するらしいことを意味するので有利である。従って、ジンクフィンガータンパク質の結合特徴は、その成分フィンガーの凝集物であるという一般規則は、保持されるようである。 
【００９７】
新規ジンクフィンガータンパク質はまた、現存するタンパク質で利用可能であるが、設計されるタンパク質中では同じ位置でない、成分フィンガーから設計され得る。例えば、上記の現存するＺＦＰ部位対のセットを用いて、タンパク質Ｆ３−Ｆ７−Ｆ５が、配列５ ’ＧＡＧ ＧＣＡ ＧＣＧ３’を結合するように設計され得る。この新規タンパク質において、フィンガーは、それらの個々の親タンパク質中とは異なる位置を占める。所定のフィンガーが、それがＺＦＰ中で占めるその位置にかかわらず、そのトリプレット特異性および親和性を保持する近似に対してとはいえ、実際、状況の影響が、フィンガーが異なるジンクフィンガータンパク質中で異なる位置を占める場合、そのトリプレットサブ部位に対するこのフィンガーの特異性および／または親和性における変化を引き起こすようである。従って、先に特徴付けられたＺＦＰ中とは異なる位置を占める成分フィンガーから形成されたＺＦＰは、代表的には、なおこの部位に結合するが、特異性または親和性は、時に、予想されるより異なる（代表的にはより低い）。 
【００９８】
最後に、利用可能である予め存在するフィンガーがないトリプレットを含む予め選択された標的部位には、完全に新規なフィンガーは、規則を基礎にしたアプローチまたはファージディスプレイを用いて設計または選択され得る。 
【００９９】
本発明は、上記の原理に従って、予め選択された標的部位に対する新規ＺＦＰの設計における現存ＺＦＰについての情報を含むデータベースを系統的に用いる方法を提供する。代表的データベースの構成を表９に示す。代表的には、このデータベースは、予め特徴付けられたＺＦＰのコレクションの各々に対する指定を含む。このＺＦＰは、天然のＺＦＰまたは改変体ＺＦＰであり得る。この指定は、例えば、各ＺＦＰを示す名前またはシンボルであり得る。このデータベースはまた、ＺＦＰ中のフィンガーの各々に対するサブ指定を含む。代表的には、このサブ指定は、フィンガー中の選択された位置を占めるアミノ酸残基の形態にある。例えば、表９では、このサブ指定は、従来の番号付けに従って−１位〜＋６位を占めるアミノ酸である。このデータベースは、各ジンクフィンガータンパク質により結合される標的核酸セグメントをさらに含む。通常、この核酸セグメントは、３塩基の３つのトリプレットを含む。この塩基の３つのトリプレットは、１つの配列として連結されるか、または別の配列として含められ得る。９塩基の標的部位中の塩基が、５ ’末端から連続的に番号付けされる場合、第１のトリプレットは塩基７〜９を占め、第２のトリプレットは塩基４〜６を占め、そして第３のトリプレットは塩基１〜３を占める。標的セグメント内のトリプレット位置のこの指定に従って、ジンクフィンガータンパク質の第１のフィンガー（すなわち、Ｎ−末端に最も近い）は、第１のトリプレットに結合し、第２のフィンガーは、第２のトリプレットに結合し、そして第３のフィンガーは第３のトリプレットに結合する。このデータベースはまた、必須ではないが、その標的部位に対するＺＦＰの結合親和性または解離定数のようなさらなる情報を含み得る。 
【０１００】
標的部位は、このデータベースを用いてジンクフィンガータンパク質の設計のために提供される。いくつかの方法では、この標的部位は、ユーザー入力により提供される。他の方法では、この標的部位は、上記の標的部位の選択の任意の方法からの出力として提供される。代表的には、この標的部位は、少なくとも３つのトリプレットを形成する少なくとも９つの塩基を含む。この３つの成分トリプレットは、その５塩基 ’を塩基１として割り当てて、標的部位の塩基７〜９、４〜６および１〜３を占める、それぞれ第１、第２および第３のトリプレットと指定される。この標的部位における第１のトリプレットに対して、コンピューターは、このトリプレットに結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質についてデータベースを調査する。このコンピューターは、ジンクフィンガータンパク質に関する記録を貯蔵し、そしてそれによって、第１のトリプレットに結合するそれらのフィンガーを同定する。必要に応じて、このコンピューターは、第１のフィンガー位置で標的部位の第１のトリプレットに結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質と他の位置における標的部位の第１のトリプレットに結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質との間を区別する。そうである場合、このコンピューターは、２つのサブセットのジンクフィンガータンパク質を、別々の記録として蓄える。次いで、このプロセスを、標的部位にある第２のトリプレットについて繰り返す。コンピューターは、第２のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を同定する。必要に応じて、コンピューターは、現存するジンクフィンガータンパク質の第２の位置から第２のトリプレットを結合するジンクフィンガーまたは異なる位置にある第２のトリプレットを結合するジンクフィンガーとの間を区別する。最後に、コンピューターは、標的部位の第３のトリプレットに特異的に結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を同定する。必要に応じて、このコンピューターは、現存するジンクフィンガータンパク質の第３の位置から第３のトリプレットを結合するジンクフィンガーと、または別の位置から第３のトリプレットを結合するジンクフィンガーとの間を区別する。標的セグメント中の、第１、第２および第３のトリプレットの各々に結合するＺＦＰを調査した後、このコンピューターは、同定されたＺＦＰの指定、および第１、第２および第３のトリプレットに結合するフィンガーのサブ指定を出力する。必要に応じて、このコンピューターは、第１のフィンガー位置から第１のトリプレットを結合するＺＦＰのサブセット、および他の位置から第１のトリプレットを結合するＺＦＰのサブセット；および第２のフィンガー位置からおよびその他の位置から第２のトリプレットを結合するＺＦＰの対応するサブセット、および第３のフィンガー位置からおよびその他の位置から第３のトリプレットを結合するＺＦＰの対応するサブセットの別々の出力を提供する。 
【０１０１】
このコンピューターによる情報出力は、予め選択された標的に結合する新規ジンクフィンガータンパク質の設計および合成に用いられ得る。例えば、この出力が、標的の第１のトリプレットを結合するフィンガーＸを持つＺＦＰ１、標的の第２のトリプレットに結合するフィンガーＹを含むＺＦＰ２、および標的の第３のトリプレットに結合するフィンガーＺを含むＺＦＰ３を含む場合、新規ＺＦＰは、この順序（Ｎ−末端からＣ−末端）でフィンガーＸＹＺを含んで合成され得る。このコンピューターが、所定のトリプレットに結合する複数の異なるフィンガーを含む複数の異なるジンクフィンガータンパク質を出力する場合、ユーザーは、フィンガーが、設計されるＺＦＰ中におけるのと、データベースタンパク質中の同じ位置からの特定のトリプレット位置に結合するか否かに依存して、フィンガー間を選択し得る。例えば、Ｘが標的部位中の第１のトリプレットに結合するフィンガーＸＹＺを含むＺＦＰ１は、一般に、フィンガーＣが標的部位中の第１のトリプレットに結合するフィンガーＡＢＣを含むＺＦＰ２より好まれる。従って、代表的には、この標的セグメントを結合するために設計されたＺＦＰ中の第１のフィンガー位置を占めるために、フィンガーＣよりもフィンガーＸを用いる。しばしば、コンピュータープログラムは、各々が特定のトリプレットを結合するフィンガーを含む、２つのＺＦＰを同定し、そして各ＺＦＰにおいて、このフィンガーは、それが由来するデータベースタンパク質において、意図された設計ＺＦＰ中におけるのと同じ位置を占める。このような場合には、それらの個々の標的に対する結合親和性に基づいて２つのフィンガー間を、しばしば、より高い結合親和性が好適であるとして選択する。必要に応じて、コンピューターはまた、フィンガーにより結合される対応するトリプレットに対する１つ以上のフィンガーに対して提案されるアミノ酸置換の出力を提供する。 
【０１０２】
データベース分析は、３つのフィンガーを有する予め特徴付けられたジンクフィンガータンパク質について主に例示されるが、このようなデータベースは、より少ないかまたはより多い数のフィンガーを持つジンクフィンガータンパク質に関する情報を代わりにまたは付加的に貯蔵し得る。同様に、このようなデータベースは、３つのフィンガーより少ないかまたはより多くを有するジンクフィンガータンパク質の設計に用いられ得る。例えば、本発明のいくつかのデータベースは、２つのフィンガーのみを持つＺＦＰに関する情報およびまたはそれに代わって３つのフィンガーを持つＺＦＰに関する情報を貯蔵する。２つのフィンガーのみを持つＺＦＰは、２つのトリプレットのみを持つ対応する標的部位を有する。２つのフィンガーＺＦＰに関する情報は、上記と本質的に同じ様式で９つの塩基標的部位に結合する３フィンガーＺＦＰの設計に用いられ得る。しかし、２フィンガータンパク質中の２つのフィンガーの相対的位置と、３フィンガージンクフィンガータンパク質中の３つのフィンガーの相対的位置との間には正確な対応はない。この論点は、２つの方法で扱われ得る。第１に、２フィンガータンパク質中のすべてのフィンガーは、３フィンガータンパク質中のフィンガーとは異なる位置を占めるとして効率的に処理され得る。従って、２フィンガータンパク質が、所定のトリプレットに結合するフィンガーを含む場合、コンピューターはこの情報を出力し、そしてこのフィンガーが、データベース２フィンガータンパク質中で、設計される３フィンガータンパク質におけるのと同じ位置に生じないことを示す。あるいは、２フィンガータンパク質中の第１（Ｎ末端）のフィンガーは、３フィンガータンパク質中の第１または第２のフィンガーのいずれかと等価であると考慮され得る。２フィンガータンパク質中の第２のフィンガーは、３フィンガータンパク質中の第２または第３のフィンガーのいずれかと等価であると考慮され得る。従って、コンピューターが、それに対してジンクフィンガータンパク質が設計されるべき標的部位中の第１のトリプレットに結合する第１（Ｎ末端）のフィンガーを持つ２フィンガータンパク質を同定する場合、コンピューターは、２フィンガータンパク質が、適切なフィンガーと、データベースタンパク質において、設計されるべき３フィンガータンパク質におけるのと同じ位置を供給することを出力し得る。 
【０１０３】
（ＶＩＩ．ＺＦＰの産生）
ＺＦＰポリペプチドおよびこれをコードする核酸は、組換え遺伝学の分野における慣用的な技法を用いて作製され得る。本発明における使用の一般的方法を開示する基礎的テキストは、Ｓａｍｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（第２版，１９８９）；Ｋｒｉｅｇｌｅｒ、Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ａｎｄ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（１９９０）；およびＣｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｕｓｕｂｅｌら編、１９９４）を含む。さらに、約１００塩基より少ない核酸は、Ｔｈｅ Ｍｉｄｌａｎｄ Ｃｅｒｔｉｆｉｅｄ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｃｏｍｐａｎｙ（ｍｃｒｃ＠ｏｌｉｇｏｓ．ｃｏｍ）、Ｔｈｅ Ｇｒｅａｔ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｇｅｎｅ Ｃｏｍｐａｎｙ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｃｏ．ｃｏｍ）、ＥｘｐｒｅｓｓＧｅｎ Ｉｎｃ．（ｗｗｗ．ｅｘｐｒｅｓｓｇｅｎ．ｃｏｍ）、Ｏｐｅｒｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．（Ａｌａｍｅｄａ、ＣＡ）のような、任意の種々の市販供給源から注文生産され得る。同様に、ペプチドは、ＰｅｐｔｉｄｏＧｅｎｉｃ（ｐｋｉｍ＠ｃｃｎｅｔ．ｃｏｍ）、ＨＴＩ Ｂｉｏ−ｐｒｏｄｕｃｔｓ、ｉｎｃ．（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｈｔｉｂｉｏ．ｃｏｍ）、ＢＭＡ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓ Ｌｔｄ（Ｕ．Ｋ．）、Ｂｉｏ．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、Ｉｎｃ．のような任意の種々の供給源から注文生産され得る。 
【０１０４】
オリゴヌクレオチドは、Ｂｅａｕｃａｇｅ ＆ Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｓ．２２：１８５９−１８６２（１９８１）により最初に記載された固相ホスホルアミダイトトリエステル法に従い、Ｖａｎ Ｄｅｖａｎｔｅｒら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１２：６１５９−６１６８（１９８４）に記載のように、自動化合成器を用いて化学的に合成され得る。オリゴヌクレオチドの精製は、変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動によるか、または逆相ＨＰＬＣによるかのいずれかによる。クローン化遺伝子および合成オリゴヌクレオチドの配列は、クローニング後に、例えば、Ｗａｌｌａｃｅら、Ｇｅｎｅ １６：２１−２６（１９８１）の二本鎖テンプレートを配列決定するための鎖停止方法を用いて確認され得る。
【０１０５】
代表的には、２つの代替法を用いて、新たに設計されたＤＮＡ結合性ペプチドを発現するために必要なコード配列を生成する。１つのプロトコルは、６つの重複オリゴヌクレオチドを利用するＰＣＲを基礎にするアセンブリ手法である（図３）。３つのオリゴヌクレオチド（図３中のオリゴ１、３、および５）は、認識ヘリックスの間のＤＮＡ結合ドメインの部分をコードする「ユニバーサル」配列に対応する。代表的には、これらのオリゴヌクレオチドは、すべてのジンクフィンガー構築物について一定のままである。他の３つの「特異的」オリゴヌクレオチド（図３中オリゴ２、４および６）を、認識ヘリックスをコードするために設計する。これらのオリゴヌクレオチドは、認識ヘリックス上の主に位置１、２、３および６における置換を含み、それらを、異なるＤＮＡ結合ドメインの各々に対して特異的にする。 
【０１０６】
ＰＣＲ合成は２段階で実施される。第１に、二本鎖ＤＮＡテンプレートを、低温アニーリング工程を伴う４サイクルＰＣＲ反応で、６オリゴヌクレオチド（３つのユニバーサル、３つの特異的）を組み合わせることにより生成し、それによってオリゴヌクレオチドをアニーリングし、ＤＮＡ「足場」を形成する。この足場中のギャップを、高い忠実度の熱安定性ポリメラーゼ（ＴａｑおよびＰｆｕポリメラーゼの組み合わせもまた十分である）によりフィルインする。構築の第２段階では、このジンクフィンガーテンプレートを、シャトルベクター中または直接発現ベクター中へのクローニングのために、いずれかの末端で制限部位を取り込むために設計された外部プライマーにより増幅する。 
【０１０７】
新たに設計されたＤＮＡ結合性タンパク質をクローニングする代替法は、所望のＺＦＰの特異的領域をコードする相補的オリゴヌクレオチドをアニーリングすることに依存する。この特定の適用は、オリゴヌクレオチドが、最終の連結工程の前にリン酸化されることを必要とする。通常、これは、アニーリング反応をセットアップする前に実施される。簡単に述べれば、このタンパク質の定常領域をコードする上記「ユニバーサル」オリゴヌクレオチド（上記のオリゴ１、２および３）を、それらの相補的オリゴヌクレオチドとアニールする。さらに、フィンガー認識ヘリックスをコードする上記「特異的」オリゴヌクレオチドを、それらの個々の相補的オリゴヌクレオチドとアニールする。これらの相補的オリゴは、上記で述べたプロトコルでポリメラーゼによって先にフィルインされた領域をフィルインするために設計される。共通オリゴ１およびフィンガー３に相補的なオリゴは加工されて、次の工程で選択されたベクター中へのクローニングにおいて用いられる制限部位に特異的なオーバーハング配列を残す。第２のアセンブリプロトコルは、最初のプロトコルと、次の局面で異なる：新たに設計されたＺＦＰをコードする上記「足場」は、完全に合成ＤＮＡからなり、それによって、ポリメラーゼフィルイン工程をなくし、さらに、ベクター中にクローニングされるフラグメントは増幅を必要としない。最後に、配列特異的オーバーハングを残す設計は、挿入フラグメントの制限酵素消化の必要性をなくする。あるいは、ＺＦＰ認識ヘリックスへの変化は、従来の部位特異的変異誘発方法を用いて作製され得る。 
【０１０８】
両方のアセンブリ方法は、新たに設計されたＺＦＰをコードする得られるフラグメントが、ベクター中に連結されることを必要とする。最終的に、ＺＦＰをコードする配列は、発現ベクター中にクローニングされる。一般に利用される発現ベクターは、改変ｐＭＡＬ−ｃ２細菌発現ベクター（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ）または真核生物発現ベクター、ｐｃＤＮＡ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を含むがこれらに限定されない。最終構築物は、配列分析により確認される。 
【０１０９】
当業者に公知の任意の適切なタンパク質精製方法を用いて、本発明のＺＦＰを精製し得る（Ａｕｓｕｂｅｌ、前述、Ｓａｍｂｒｏｏｋ、前述を参照のこと）。さらに、任意の適切な宿主、例えば、細菌細胞、昆虫細胞、酵母細胞、哺乳動物細胞などを発現のために使用し得る。 
【０１１０】
細菌株ＪＭ１０９における、マルトース結合性タンパク質に融合したジンクフィンガータンパク質（ＭＢＰ−ＺＦＰ）の発現は、アミロースカラム（ＮＥＢ）による直接精製を可能にする。このジンクフィンガーキメラタンパク質の高い発現レベルは、ｐＭａｌ−ｃ２発現プラスミド中のこのＭＢＰ−ＺＦＰ融合が、ｔａｃプロモーター（ＮＥＢ）の制御下にあるので、ＩＰＴＧを用いた誘導により得られ得る。ＭＢＰ−ＺＦＰ融合プラスミドを含む細菌を、１０ μＭ ＺｎＣｌ2、０．０２％グルコース、および５０ μｇ／ｍｌアンピシリンを含む２×ＹＴ培地中に接種し、そして３７ ℃で振盪する。対数増殖の中央でＩＰＴＧを０．３ｍＭ添加し、そしてこの培養物を振盪した。３時間後、細菌を遠心分離により回収し、音波処理によるか、またはフレンチプレスセルを通過させることによるかまたはリゾチームの使用により破壊し、そして不溶性物質を、遠心分離により取り除いた。ＭＢＰ−ＺＦＰタンパク質を、アミロース結合樹脂上に捕獲し、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、２００ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＤＴＴおよび５０μＭ ＺｎＣｌ 2を含む緩衝液で大規模に洗浄し、次いで、本質的に同じ緩衝液中のマルトースで溶出した（精製は、ＮＥＢからの標準的なプロトコールに基づく）。精製タンパク質を定量し、そして生化学的分析のために貯蔵した。 
【０１１１】
精製したタンパク質の解離定数（例えば、Ｋｄ）は、代表的には、電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）（ＢｕｒａｔｏｗｓｋｉおよびＣｈｏｄｏｓｈ、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、１２．２．１．−１２．２．７頁（Ａｕｓｕｂｅｌ編、１９９６））を介して特徴付けられる。親和性は、固定量の標識した二本鎖オリゴヌクレオチド標的に対して、精製したタンパク質を力価決定することによって測定される。この標的は、代表的に、天然配列に見出される３ｂｐおよびさらなる定常の隣接配列に隣接する天然の結合部位配列を含む。天然結合部位は、代表的に、３フィンガータンパク質について９ｂｐであり、６フィンガーＺＦＰについては、２ ×９ｂｐ＋介在塩基である。アニールしたオリゴヌクレオチド標的は、１塩基の５’オーバーハングを有し、これによって、Ｔ４ファージポリヌクレオチドキナーゼを用いてその標的の効率よい標識が可能となる。そのアッセイについて、その標的を、１ｎＭ以下の濃度で添加し（実際の濃度を、予測解離定数のものから少なくとも１０分の１に維持する）、精製したＺＦＰを、種々の濃度で添加し、そしてその反応物を少なくとも４５分間平衡化させた。さらに、反応混合物はまた、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１００ｍＭ ＫＣｌ、１ｍＭ ＭｇＣｌ2、０．１ｍＭ ＺｎＣｌ 2、５ｍＭ ＤＴＴ、１０％グリセロール、０．０２％ ＢＳＡを含む。（註：初期のアッセイにおいては、ポリｄ（ＩＣ）もまた、１０〜１００ μｇ／μｌで加えた）。
【０１１２】
平衡化した反応物を、Ｔｒｉｓ／グリシン緩衝液において４５分間前泳動した１０％ポリアクリルアミドゲルにロードし、次いで、結合した標識標的および結合しない標識標的を、１５０Ｖでの電気泳動によって分離した。（あるいは、４％のポリアクリルアミドスタッカーを含む１０％〜２０％の勾配Ｔｒｉｓ−ＨＣｌゲルが使用され得る）。乾燥させたゲルを、オートラジオグラフィーまたはホスホルイメージによって可視化し、そして見かけ上のＫｄを、最大の半分の結合を与えるタンパク質濃度を計算することによって決定した。 
【０１１３】
このアッセイはまた、タンパク質調製物における活性画分を決定することを含み得る。活性画分を、化学量論的なゲルシフトによって決定する。ここで、タンパク質を、高い濃度の標的ＤＮＡに対して力価決定する。力価決定を、１００％、５０％および２５％の標的で行う（通常、マイクロモル濃度レベル）。 
【０１１４】
（ＩＸ．設計したＺＦＰの適用）
特定の標的遺伝子に結合するＺＦＰ、およびそれらをコードする核酸を、種々の適用について使用し得る。これらの適用は、ＺＦＰまたはそれをコードする核酸を被験体に投与し、そしてそれを使用して、その被験体内の標的遺伝子の発現を調節する治療方法を含む（同時係属中の出願Ｔｏｗｎｓｅｎｄ ＆ Ｔｏｗｎｓｅｎｄ ＆ Ｃｒｅｗ 代理人整理番号０１９４９６−００２２００、１９９８年１月１２日出願を参照のこと）。この調節は、例えば、その標的遺伝子が病原性の感染性微生物中、または疾患状態に寄与している患者の内因性遺伝子（例えば、ガン遺伝子またはウイルスレセプター）に存在する場合は、抑制の形態であり得る。あるいは、この調節は、内因性細胞遺伝子の発現の活性化または発現の増加が疾患状態を改善し得る場合は、活性化の形態であり得る。そのような適用について、ＺＦＰまたはより代表的にはそれをコードする核酸は、薬学的に受容可能なキャリアとともに、薬学的組成物として処方される。 
【０１１５】
薬学的に受容可能なキャリアは、投与される特定の組成物、およびその組成物を投与するために使用される特定の方法によって、部分的に決定される（例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第１７版、１９８５を参照のこと）。ＺＦＰは、単独または他の適切な成分との組み合わせで、エアロゾル処方物が作製されて（すなわち、それらは、「噴霧化」され得て）、吸入を介して投与され得る。エアロゾル処方物を、加圧した受容可能な噴霧剤（例えば、ジクロロジフルオロメタン、プロパン、窒素など）中に入れ得る。非経口投与（例えば、静脈内、筋肉内、皮内、および皮下の経路）に適した処方物としては、水性および非水性の、等張性の無菌注射溶液（これは、抗酸化剤、緩衝液、静菌剤、およびその処方物を意図するレシピエントの血液と等張にさせる溶質を含み得る）および懸濁剤、可溶化剤、濃稠化剤、安定化剤および保存剤を含み得る水性および非水性の、無菌懸濁物が挙げられる。組成物は、例えば、静脈注入により、経口的、局所的、腹腔内的、嚢内的または髄腔内的に投与され得る。化合物の処方物は、単位投薬形態または多数回の封入された容器中に（例えば、アンプルまたはバイアル）提示され得る。注射溶液および懸濁液は、以前に記載されている種類の無菌の粉末、顆粒および錠剤から調製され得る。 
【０１１６】
患者に投与される用量は、経時的にその患者における利益のある治療的応答をもたらすに充分であるべきである。この用量は、使用する特定のＺＦＰの効力およびＫ d、標的細胞およびその患者の状態ならびに処置される患者の体重または表面積によって決定される。用量の大きさもまた、特定の患者における特定の化合物またはベクターの投与に伴う任意の有害な副作用の存在、性質および程度によって決定される。 
【０１１７】
他の適用において、ＺＦＰは、サンプルにおける標的核酸の配列特異的な検出のための診断方法において使用される。例えば、ＺＦＰを使用して、患者のサンプルにおける疾患または表現型と関連する改変体対立遺伝子を検出し得る。例として、ＺＦＰを使用して、ｍＲＮＡまたはｃＤＮＡの複合混合物における特定のｍＲＮＡ種またはｃＤＮＡの存在を検出し得る。さらなる例として、ＺＦＰを使用して、サンプルにおける遺伝子のコピー数を定量し得る。例えば、臨床サンプルにおける１コピーのｐ５３遺伝子の欠失の検出は、ガンに対する感受性の指標である。さらなる例において、ＺＦＰを使用して、臨床サンプルにおける病原性微生物の存在を検出する。これは、検出される微生物内の遺伝子に特異的な１以上のＺＦＰを用いて達成される。診断アッセイを実施するための適切な形式は、ＥＬＩＳＡプレートにおいてＺＦＰの固定を可能にするドメインに連結されたＺＦＰを使用する。この固定されたＺＦＰを、結合が生じ得る条件下で標的核酸を含むと疑われるサンプルと接触させる。代表的には、サンプル中の核酸を標識する（例えば、ＰＣＲ増幅の過程において）。あるいは、標識されていないプローブを、第二の標識したプローブを用いて検出し得る。洗浄後、結合した、標識された核酸を検出する。 
【０１１８】
ＺＦＰはまた、遺伝子発現の表現型および機能を決定するためのアッセイのために使用され得る。遺伝子機能の決定のための現在の方法論は、主に、天然の生物学的設定からの目的の遺伝子の過剰発現または除去（完全にノックアウトすること）にのいずれかおよびその効果を観察することに依存する。観察される表現型の効果は、生物学的系における遺伝子の役割を示す。 
【０１１９】
従来のノックアウト分析に対する遺伝子のＺＦＰ媒介調節の１つの利点は、ＺＦＰの発現が低分子のコントロールの下に置かれ得るということである。次いでＺＦＰの発現レベルを制御することによって、ＺＦＰによって制御される遺伝子の発現レベルを制御して、所定の表現型効果または生化学的効果を達成するのに必要とされる発現の抑制または刺激の程度を決定し得る。このアプローチは、薬物開発について特に価値がある。ＺＦＰを低分子の制御下に置くことによって、胚性の致死性および発生補償の問題は、マウスの発生後期においてＺＦＰリプレッサーにスイッチを入れること、および成体動物での効果を観察することによって回避され得る。ＺＦＰによって調節される標的遺伝子を有するトランスジェニックマウスは、その標的遺伝子に対してイントランスの任意の部位にＺＦＰをコードする核酸を組み込むことによって、作製され得る。したがって、相同組換えは、その核酸の組込みには必要ではない。さらに、ＺＦＰがトランス優性であることから、１つの染色体コピーのみが必要であり、それゆえ、機能的ノックアウト動物は、戻し交配することなく作製され得る。 
【０１２０】
（Ｘ．コンピュータシステムおよびプログラム）
図４は、本発明を実行するのに適切な代表的なコンピュータシステムを示す。図４は、本発明での使用に適切なコンピュータシステム１０の基本的なサブシステムを示す。図４において、コンピュータ１０は、バス１２を備える。このバスは、中央プロセッサ１４、システムメモリ１６、入力／出力コントローラ１８、外部デバイス（例えば、パラレルポート２２を介したプリンタ２０）、ディスプレーアダプタ２６を介したディスプレースクリーン２４、シリアルポート２８、キーボード３０、固定ディスクドライブ３２およびフロッピディスク３３Ａを作動可能に受け入れるためのフロッピディスクドライブ３３）のような主要なサブシステムを相互接続する。多くの他のデバイスが、接続可能である（例えば、Ｉ／Ｏコントローラ１８を介したスキャナ６０（示さず）、シリアルポート２８に接続されたマウス３６、またはネットワークインタフェイス４０）。他の多くのデバイスまたはサブシステム（示さず）は、類似の様式で接続され得る。また、図４に示されるデバイスの全てが本発明を実行するに存在することは、下記で議論するように必要ではない。これらのデバイスおよびサブシステムは、図４に示すものとは異なる方法において、相互接続され得る。図４に示されるもののようなコンピュータシステムの操作は、当該分野で容易に公知であり、そして本願においては詳細には議論しない。本発明を実行するためのソースコードは、システムメモリ１６に作動可能に配置され得るか、または固定ディスク３２またはフロッピディスク３３Ａのような記憶媒体上に格納され得る。 
【０１２１】
図５は、本発明の方法を具現化するに適切な図４の代表的なコンピュータシステム１０の例示である。図５は、本発明とともに用いられ得る多くの可能なコンピュータタイプまたは構成のほんの一例を示す。図５は、ディスプレースクリーン２４、キャビネット２０、キーボード３０、スキャナ６０、およびマウス３６を備えるコンピュータシステム１０を示す。マウス３６およびキーボード３０は、「ユーザー入力デバイス」を例示する。ユーザー入力デバイスの他の例は、タッチスクリーン、ライトペン、トラックボール、データグローブなどである。 
【０１２２】
好ましい実施態様において、システム１０は、Ｐｅｎｔｉｕｍ（登録商標）クラスに基づくコンピュータを含み、このコンピュータは、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ ＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎによるＷｉｎｄｏｗｓ（登録商標）バージョン３．１、Ｗｉｎｄｏｗｓ９５（登録商標）またはＷｉｎｄｏｗｓ９８（登録商標）オペレーティングシステムを実行する。しかし、この方法は、本発明の範囲を逸脱することなく、他のオペレーティングシステムに容易に適用される。 
【０１２３】
マウス３６は、ボタン３７のような１以上のボタンを有し得る。キャビネット２０は、ディスクドライブ３３、プロセッサ、記憶媒体などのような慣用のコンピュータ構成要素を収容する。本明細書において使用される場合、「記憶手段」には、コンピュータシステムと接続して使用される任意の記憶デバイスが含まれる（例えば、ディスクドライブ、磁気テープ、半導体メモリ、バブルメモリなど）。キャビネット２０は、スキャナ６０、外部記憶装置、他のコンピュータまたはさらなる周辺機器のような外部デバイスへコンピュータシステム１０を接続するための入力／出力（Ｉ／Ｏ）インターフェイス１８のようなさらなるハードウェアを備え得る。図５は、本発明を具現化するためのシステムのほんの一つのタイプの代表である。他の多くのシステムのタイプおよび構成が、本発明と組み合せた使用について適切である。 
【０１２４】
図６は、ジンクフィンガータンパク質によって標的化するための標的配列内のＤ可能サブ部位を含む標的部位を選択するための代表的な実施態様における単純化された工程のフローチャート３０１を示す。工程３０２において、ジンクフィンガータンパク質によって標的化される標的配列が提供される。次いで、工程３０３において、その標的配列内の潜在的な標的部位を、評価のために選択する。決定工程３０４において、潜在的な標的部位を評価して、Ｄ可能サブ部位を含むか否かを決定する。そのような標的部位は、以下の式に従う：５ ’ＮＮｘ ａＮｙ ｂＮｚｃ３’、ここで、 （ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の各々は、（Ｎ，Ｎ）または（Ｇ，Ｋ）であり； 
（ｘ、ａ）、（ｙ、ｂ）および（ｚ、ｃ）の少なくとも１つは、（Ｇ，Ｋ）であり、そして ＮおよびＫは、ＩＵＰＡＣ−ＩＵＢの多義性コードである。 
【０１２５】
潜在的な標的部位は、Ｄ可能サブ部位を含む場合、潜在的な標的部位は、２０５における記録として格納される。この方法は、さらなる決定工程３０６を継続する。さらなる潜在的な標的部位の評価は、ユーザーによって要求される場合、その方法のさらなる反復は、３０３から出発して実施する。充分な潜在的標的部位が、すでに評価されている場合、工程３０５において格納された標的部位の記録を工程３０７において出力する。 
【０１２６】
図７Ａは、ジンクフィンガータンパク質によって標的化するためのポリヌクレオチド内の標的部位を選択するための別の代表的な実施態様において単純化された工程のフローチャートを示す。工程４０２において、ポリヌクレオチド標的配列は、分析のために提供される。次いで、工程４０４において、そのポリヌクレオチド配列内の潜在的な標的部位が選択される。この潜在的な標的部位は第一、第二および第三の塩基トリプレットを、その潜在的な標的部位における第一、第二および第三の位置にて含む。次いで、工程４０６において、複数のサブスコアを、トリプレットとトリプレット位との間の対応規則を適用することによって決定する。ここで、各トリプレットは、第一、第二および第三の対応する位置を有し、そして各対応するトリプレットおよび位置には、特定のサブスコアを割り当てる。次に、必要に応じて、決定工程４０８が存在する。この工程において、そのユーザーは、工程４１０におけるスケーリング計数を用いて１つ以上のサブスコアをスケーリングするように選択し得る。その後、工程４１２において、スコアを、第一、第二および第三のトリプレットについて、サブスコアから決定する（適切にスケーリングする）。次いで、決定工程４１４において、なんらかのさらなる潜在的な標的部位が試験されるべきか否かを決定するためのチェックを行う。そうである場合、工程４０４での処理を継続する。そうでなければ、工程４１６において、潜在的な標的部位およびそのスコアの少なくとも１つを出力として提供する。 
【０１２７】
図７Ｂは、ジンクフィンガータンパク質を産生するための代表的な実施態様における単純化された工程のフローチャートを示す。工程４５０において、複数のジンクフィンガータンパク質についての指定を含むデータベースが提供される。このデータベースにおける各タンパク質は、少なくとも第一、第二および第三のフィンガーを含む。このデータベースは、そのジンクフィンガータンパク質の各々の３つのフィンガーの各々についてのサブ指定、および各ジンクフィンガータンパク質について対応する核酸配列をさらに含む。各配列は、少なくとも第一、第二および第三のトリプレットを含む。これらのトリプレットは、各ジンクフィンガータンパク質において、それぞれ、少なくとも第一、第二および第三のフィンガーによって、特異的に結合される。この第一、第二、および第三のトリプレットは、それぞれ同じ順序（３ ’−５’）で核酸配列においてある配置を有する。なぜなら、第一、第二および第三のフィンガーは、ジンクフィンガータンパク質において配列されているからである（Ｎ末端からＣ末端）。 
【０１２８】
工程４５２において、少なくとも第一、第二および第三のトリプレットを含むジンクフィンガータンパク質の設計のための標的部位が提供される。次いで、工程４５４において、その標的配列において第一のトリプレットに結合するフィンガーを有するジンクフィンガータンパク質の第一のセットが同定される。次に、４５４において決定されるセットの第一および第二のサブセットを同定する任意の工程４５６が続く。この第一のサブセットは、そのジンクフィンガータンパク質における第一のフィンガー位から第一のトリプレットを結合するフィンガーを有するジンクフィンガータンパク質を含む。第二のサブセットは、そのジンクフィンガータンパク質において第一のフィンガー位以外からの第一のトリプレットを結合するフィンガーを有するジンクフィンガータンパク質を含む。この方法は、工程４５８に続く。この工程において、ジンクフィンガータンパク質のさらなるセットが同定され、このセットは、その標的部位における第二のトリプレットに結合するフィンガーを含む。この工程の後に、工程４５８において同定されるセットの第一および第二のサブセットを同定する任意の工程４６０が続く。この第一のサブセットは、ジンクフィンガータンパク質内の第二の位置からの第二のトリプレットに結合するジンクフィンガータンパク質を含む。この第二のサブセットは、ジンクフィンガータンパク質の第二の位置以外からの第二のトリプレットを結合するジンクフィンガータンパク質を含む。この方法は、工程４６２に続く。４６２において、その標的部位の第三のトリプレットに結合するフィンガーを含む１セットのジンクフィンガータンパク質を同定する。任意の工程４６４において、工程４６２において同定されたセットの第一および第二のサブセットを、同定する。第一のサブセットは、ジンクフィンガータンパク質の第三のフィンガー位からの第三のトリプレットに結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含む。第二のサブセットは、ジンクフィンガータンパク質の第三のフィンガー位以外からの第三のトリプレットに結合するフィンガーを含むジンクフィンガータンパク質を含む。この方法は、工程４６６に続く。この工程では、工程４５４、４５８および４６２において同定されたジンクフィンガータンパク質のセットが別々に出力される。さらに任意の工程４６８が存在する。ここで、工程４６０、４６４および４６８において同定されたジンクフィンガータンパク質の第一および第二のサブセットが出力される。 
【０１２９】
図８Ａは、Ｅｎｔｉｔｙ Ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｏｎ Ｄｉａｇｒａｍ（ＥＲＤ）へのキーである。このダイヤグラムを使用して、ＺＦＰデータベースの内容を記述する。代表的な表５０２は、１以上のキー属性５０４および１以上のキーではない（ノンキー）属性５０６を含む。代表的な表５０２は、１以上のレコードを含み、ここで、各レコードは、列挙した属性に対応するフィールドを含む。キーフィールドの内容を一緒にして、個々のレコードを同定する。ＥＲＤにおいて、各表は、水平線によって分割された長方形によって表される。その線より上のフィールドまたは属性は、キーであるが、他方、その線より下のフィールドまたは属性は、キーではないフィールドである。同定する関係５０８は、親の表５１０のキー属性もまた、子供の表５１２のキー属性であることを示す。同定しない関係５１４は、親の表５１６のキー属性もまた、子供の表５１８のキーではない属性であることを示す。（ＦＫ）が括弧内に現れる場合は、それは、１つの表の属性が、別の表のキー属性であることを示す。同定しない関係および同定する関係の両方について、親の表における１つのレコードは、子供の表における１以上のレコードに対応する。 
【０１３０】
図８Ｂは、本発明の特定の実施態様に従った代表的なＺＦＰデータベース５５０を示す。データベース５５０は、代表的には、予め特徴付けたＺＦＰの収集物の各々についての指定を含み得る。このＺＦＰは、天然のＺＦＰまたは改変体ＺＦＰであり得る。この指定は、例えば、各ＺＦＰを代表する名称またはシンボルであり得る。例えば、図８Ｂにおけるデータベース５５０のＺＦＰ５５２は、「ＺＦＰ００１」と指定される。データベース５５０はまた、ＺＦＰにおけるフィンガーの各々についてのサブ指定（例えば、サブ指定５５４、ＺＦＰ００１ ５５２のフィンガー１）を含む。代表的には、このサブ指定は、フィンガーにおいて選択された位置を占有するアミノ酸残基の形態である。さらに、ＺＦＰは、従来の番号付けに従って−１位から＋６位までを占有するアミノ酸であるサブ指定を有する。このデータベースはさらに、各ジンクフィンガータンパク質によって結合される標的核酸セグメントを含み得る。この核酸セグメントは通常、３つの塩基の３つのトリプレットを含む。塩基の３つのトリプレットは、１つの配列として共同で含まれ得るか、または別個の配列として含まれ得る。９塩基の標的部位における塩基が５ ’末端から連続的に番号付けされる場合、第一のトリプレットは、塩基７〜９を占有し、第二のトリプレットは、塩基４〜６を占有し、そして第三のトリプレットは、塩基１〜３を占有する。標的セグメント内のトリプレット位のこの指定に従って、ジンクフィンガータンパク質の第一のフィンガー（すなわち、Ｎ末端に最も近い）は、第一のトリプレットに結合し、第二のフィンガーは、第二のトリプレットに結合し、そして第三のフィンガーは第三のトリプレットに結合する。このデータベースはまた、その標的部位についてＺＦＰの結合親和定数または解離定数のようなさらなる情報を含み得る。しかし、そのようなものは必須ではない。さらにデータベース５５０は、本発明の範囲を逸脱することなく、図８Ｂに示される以外のＺＦＰ、フィンガーおよび核酸の間の他の配置および関係を含み得る。 
【実施例】
【０１３１】
（実施例１：ＤＮＡモチーフについての検索プロトコル）
本実施例は、標的セグメントがより長い遺伝子からどのように選択されるかを例示する。検索手順を、検索プロトコルにおける１以上のＤＮＡ配列モチーフを特定することを可能にするコンピュータプログラムを用いて実行する。通常の手順は、遺伝子またはｃＤＮＡのＤＮＡ配列を入力すること、次いで、異なるモチーフについて、最も所望されるものから最も所望されないものまで、複数回配列を検索することである。従って、下記に列挙した例示的プロトコルのなかで、代表的に、プロトコル１をまず実行し、そしてそれが潜在的な標的セグメントの適切な数を得られない場合は、プロトコル２を試行し、そして以下同様とする。 
【０１３２】
プロトコル１は、各々９塩基または１０塩基の２つの別個のセグメントから形成された標的部位について標的遺伝子を検索する。２つのセグメントは、０〜３の介入塩基によって分離され得る。各セグメントは、ＮＮＧＧ形態（ボールドで示す）のＤ可能サブ部位を含む。セグメント内の３塩基のサブ部位の各々は、Ｇで始まる。この分析によって同定された標的部位は、ＺＦＰ設計について直接使用され得るか、またはさらなる分析に供され得、例えば、標的セグメントがさらなるＤ可能サブ部位を有するものを同定し得る。それぞれ１０塩基からなる２つのセグメントから形成された標的部位において、合計で６つのＤ可能サブ部位が存在し得る。以下の全ての標的部位を、５ ’から３’で示し、そして指定「０，３」は、任意のタイプの０〜３のヌクレオチドが存在し得ることを示す。 
【０１３３】
【数５】
0005162405.tif 000009
【０１３４】
プロトコル２は、標的遺伝子内の標的部位を評価するための第二の手順である。この手順は、再度、それぞれ９塩基または１０塩基の２つのセグメントから形成される標的部位について検索する。各セグメントは、形態ＫＮＧＧの少なくとも１つのＤ可能サブ部位を含む。プロトコル２は、プロトコル１とは、プロトコル２が、３塩基サブ部位がＧで始まることを必要としない点において異なる。プロトコル２においてはむしろ、３塩基サブ部位はＧまたはＴのいずれか（ＩＵＢＰＡＣ−ＩＵＢの多義性コードにおいてはＫ）で始まる。標的部位は、５ ’から３’で示し、そしてシンボル（０，３）および（０，２）は、それぞれ、０〜３塩基および０〜２塩基の介入セグメントを示す。 
【０１３５】
【数６】
0005162405.tif 000010
【０１３６】
プロトコル３は、そのプロトコル３がＫＮＧＧまたはＫＮＧＴのいずれかのＤ可能サブ部位を用いて標的部位を選択することを除いて、プロトコル２と同じである。標的部位を、５ ’から３’で示す。
【０１３７】
【数７】
0005162405.tif 000011
【０１３８】
プロトコル４は、上記のプロトコルのいずれよりもより一般的であり、そして標的部位がＤ可能サブ部位を含むことを必要としない。プロトコル４は、互いに０〜３塩基内に、形態ＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮのそれぞれが９塩基である２つのセグメントを同様に必要とする。
【０１３９】
プロトコル５は、それが、互いに０〜３塩基内で、式５’ＫＮＮ ＫＮＮ ＫＮＮ３ ’の２つの標的セグメントから形成された標的部位について、検索することを除いてプロトコル４と同じである。 
【０１４０】
（実施例２）
本実施例は、少なくとも１つのＤ可能サブ部位を含む標的セグメントに結合するジンクフィンガータンパク質が、一般的に、そのＺＦＰが＋２位にＤ残基を有する場合、ジンクフィンガータンパク質結合より高い親和性を伴って、Ｄ可能サブ部位を欠く標的セグメントへ結合することを例示する。５３のＺＦＰ（各々は、３つのフィンガーを有する）を、結合親和性またはＤ可能サブ部位への結合に関係なく収集物から選択した。選択したＺＦＰの解離定数を、いずれかの側に標的配列由来の少なくとも１つの隣接塩基を有するＺＦＰの３つのフィンガーによってそれぞれ結合した３つの連続的なヌクレオチドトリプレットを含む標的セグメントへのＺＦＰの結合によって決定した。すべてのＺＦＰは、ヒトＳｐ１フレームワークを有した。これらの５３のＺＦＰの結合親和性を、表２におけるＫｄ値として列挙される任意の４群に分けた。 
【０１４１】
【表２】
0005162405.tif 000012
【０１４２】
この分類に従うと、これらのタンパク質の約２５％（１４／５３)のみが、それらのそれぞれの標的について、高親和性（１００ｎＭ以下のＫｄ）を有した。これらの１４のタンパク質のうち、すべてが少なくとも１つのＤ可能サブ部位をその標的内に有していた。 
【０１４３】
（実施例３）
本発明者らは、ダイズ（Ｇｌｙｃｉｎｅ ｍａｘ）ＦＡＤ２−１ ｃＤＮＡの配列を、対合した近位の９塩基標的セグメントについて、プロトコル２およびプロトコル３を用いて検索した。５つの標的セグメントを選択し、そして１または２のいずれかのＺＦＰを、その標的の各々に結合するように設計した。選択した標的およびそれぞれの設計したＺＦＰについてのＫｄ値を、表３に示す。Ｄ可能サブ部位をボールドで示す。配列を５ ’から３’にむけて示す。
【０１４４】
【表３】
0005162405.tif 000013
【０１４５】
作製した８つのＺＦＰのうち、すべてが高親和性（１００ｎＭ以下のＫｄ）で、それらの標的に結合した。このことは、９ｂｐの標的内にＤ可能サブ部位を有する標的を選択することによって、高親和性ＺＦＰを効率よく設計することが可能であることを示す。さらに、２つのＤ可能サブ部位を有する標的部位へ結合するＺＦＰのすべては、１つのみのＤ可能サブ部位を有する標的部位へ結合するＺＦＰよりも強力に結合した。 
【０１４６】
（実施例４）
本実施例は、Ｄ可能サブ部位が高親和性を付与する証拠をさらに提供する。５３の標的セグメントを上記のプロトコル５によって同定した。このプロトコルは、Ｄ可能サブ部位が標的部位に存在することを必要としない。５３のＺＦＰを、これらのそれぞれの部位に結合するように設計した。３３の標的セグメントを、上記のプロトコル３によって同定した。このプロトコルは、Ｄ可能サブ部位を必要とする。そして、３３のＺＦＰを、これらのそれぞれの部位に結合するように設計した。表４は、異なる手順によって設計されるＺＦＰのＫｄを比較する。 
【０１４７】
【表４】
0005162405.tif 000014
【０１４８】
表４は、プロトコル３によって設計された３３のＺＦＰのうち、３１が高親和性（１００ｎＭ未満のＫｄ）を有することを示す。対照的に、プロトコル５によって設計したＺＦＰのうち１４のみが高結合親和性を有する。これらのデータは、高親和性ＺＦＰ（Ｋｄ＜１００ｎＭ）は、検索プロトコルがＤ可能サブ部位を必要としない場合よりも、その検索プロトコルがＤ可能サブ部位の基準を含む場合に、標的についてより効率よく設計され得ることを示す。 
【０１４９】
（実施例５）
ＺＦＰの親和性と、標的における１以上のＤ可能サブ部位の存在との間の関係を、殆どが異なる標的部位に対して特異的な約３００の設計したＺＦＰについて分析した。この分析および続く分析において、１つのＺＦＰのみが、１つの標的部位あたりに含まれる。これは最も高い親和性を伴うＺＦＰである。 
【０１５０】
表５および図１は、結合した９塩基の標的部位におけるＤ可能サブ部位の数およびタイプによって分類された異なるカテゴリーのＺＦＰの平均Ｋｄを示す。表４において、および後の表６、表７および表８において、ｓ．ｅ．ｍ．は、平均の標準誤差を示し、そしてｎは試験したタンパク質の数を示す。 
【０１５１】
【表５】
0005162405.tif 000015
【０１５２】
２つのＧＧタイプのＤ可能サブ部位を有する標的に対して設計された２２のＺＦＰは、平均Ｋｄ＝１５ｎＭを伴い、最高の結合親和性を有する。１００ｎＭ未満のＫｄを有する５０のＺＦＰのうち、４９が、少なくとも１つのＤ可能サブ部位を有する。この表は、以下の結論を示す：（１）１つのＤ可能サブ部位を伴う標的部位への結合は、Ｄ可能サブ部位を欠く標的部位へのＺＦＰの結合よりもさらに強力に結合する；（２）２つのＤ可能サブ部位を伴う標的部位へ結合するＺＦＰは、１つのＤ可能サブ部位を伴う標的部位へ結合するＺＦＰよりもさらに強力に結合する、および（３）ＧＧ Ｄ可能サブ部位を伴う標的部位を有するＺＦＰは、ＧＴ Ｄ可能サブ部位を伴う標的部位を有するＺＦＰよりもさらに強力に結合する。
【０１５３】
（実施例６）
設計したＺＦＰの結合親和性に影響を与える別の因子は、標的部位が、ＫＮＮ ＫＮＮ ＫＮＮよりむしろＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮの形態を有するか否かである。本実施例は、Ｄ可能サブ部位が、高度の結合親和性を、ＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮモチーフの状況においてさえも、与えることを示す。この分析のために、本発明者らは、５９のＺＦＰの集団を選択した。これらの各々は、形態ＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮの異なる標的部位に結合する。表６は、設計されたＺＦＰのＫｄ値を、ＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮ標的を有するＤ可能サブ部位の存在の関数として示す。 
【０１５４】
【表６】
0005162405.tif 000016
【０１５５】
Ｄ可能サブ部位の存在は、その標的がＧＮＮ ＧＮＮ ＧＮＮモチーフに適合する場合でさえも、ＺＦＰの結合親和性に強力に影響を与える。 
【０１５６】
（実施例７）
本実施例は、Ｄ可能サブ部位の増加した結合親和性を付与するという点に対する効果が、他の残基に対してより高い結合親和性の付与におけるＧ残基の任意の効果について相加的であるというさらなる証拠を提供する。この分析について、本発明者らは、１０１のジンクフィンガータンパク質の、本発明者らの収集物からの異なる標的部位への結合を選択し、そして存在するＧ残基の数によってこれらの標的部位を分類した。これらの標的部位は、２〜８のＧ残基を、９塩基配列中に含んでいた。表７は、概して、標的部位に存在するＧ残基が増えれば、その部位についてのＺＦＰの結合親和性も強くなることを示す。 
【０１５７】
【表７】
0005162405.tif 000017
【０１５８】
本発明者らは、Ｄ可能サブ部位の存在または非存在が設計したＺＦＰの平均Ｋｄ値に影響を与えたか否かを問い掛けることによってさらにこれらのデータを分析した。表７からの９塩基標的の各カテゴリーを、Ｄ可能サブ部位を含む標的またはそれを含まない標的へと細分した。この分析の結果を表８に示す。 
【０１５９】
【表８】
0005162405.tif 000018
【０１６０】
この表は、同じ数のＧ残基を有するが、異なる数のＤ可能サブ部位を有する標的部位を比較した場合、Ｄ可能サブ部位を含む部位がより高い結合親和性を付与することを示す。４つ以上のＧを有する９塩基の標的部位について、平均Ｋｄは、その標的が少なくとも１つのＤ可能サブ部位を有する場合、約１００ｎＭ以下である。特に顕著なのは、５つのＧ残基を有する標的部位間の比較である。Ｄ可能サブ部位を欠く５つのそのような標的は、６４０ｎＭの平均Ｋｄを有した。２つのＤ可能サブ部位を有する２３のそのような標的部位は、９８ｎＭの平均Ｋｄを有した。 
【０１６１】
（実施例１０：ＺＦＰ予測モジュール）
本実施例は、対応規制を用いた、標的遺伝子内の標的セグメントの選択、および選択した標的セグメントに結合するＺＦＰを設計するためのデータベースの使用を例示する。ＺＦＰ Ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎ Ｍｏｄｕｌｅは、（ｉ）目的のＤＮＡ配列、（ｉｉ）種々のデータ表、（ｉｉｉ）設計パラメータおよび（ｉｖ）出力パラメータを入力として採用すること、ならびに目的の配列における潜在的なＺＦＰ標的部位のリストおよび各標的部位におけるサブ部位に対して設計されたフィンガーのまとめを出力として提供することによって、部位の選択およびＺＦＰ設計プロセスの両方を容易にする。この節は、プログラムの入力、出力およびそのプログラムについてのプロトコルをスコア付けすることを記載する。明確さのために、その記述を部位選択および設計機能へと分割する。 
【０１６２】
（１．目的のＤＮＡ領域内の標的部位の選択）
（入力）
１）標的ＤＮＡ配列
２）９ｂｐ標的部位における可能な３塩基対サブ部位およびその３つの可能な位置についてのスコアの各々を列挙するスコア表を、図１に示す。そのスコア表は、実行時にユーザーによって提供され、そしてカスタマイズされ得、そしてジンクフィンガーモチーフのＤＮＡ配列優先性についてのユーザーの最新の理解を反映するようにアップデートされ得る。 
【０１６３】
３）既存の高親和性ＺＦＰについて、標的部位、アミノ酸配列および参照データを含む「ＺＦＰデータ表」。この表は、出力パラメータ（ｉｉ）が下記において選択される場合にのみそのプログラムのこの部分について必要とされる。ＺＦＰデータ表の例を表９に提供する。 
【０１６４】
４）任意の状況パラメータ−実行時にユーザーによって入力される「『Ｄ可能』トリプレットについての増強因子」。このパラメータは、３ ’ＧまたはＴが隣接する任意の「ｘｘＧ」サブ部位についてのスコアに増強因子を乗じる。
【０１６５】
５）出力パラメータ（ユーザーによって供給される）は、以下を特定する： ｉ）その出力において含まれる標的部位の数 ｉｉ）そのプログラムが、（存在する場合）３つのフィンガータンパク質がすでに設計されているその標的部位を特に強調すべきか否か ｉｉｉ）そのプログラムが、入力標的配列におけるその相対位置に従って、出力標的部位を再整列すべきか否か ｉｖ）そのプログラムが、９ｂｐ ＤＮＡ部位の標的化可能な対を強調すべきか否か（隣接し、重複しない、ｎ以下の塩基だけ分離されている部位の対、ここで、ｎは、代表的には、５、４、３、２または１である）。 
【０１６６】
出力：スコアによって階級付けされた標的ＤＮＡ配列における潜在的な標的部位のセット。
【０１６７】
特定されている場合、３フィンガータンパク質がすでに設計されている任意の標的部位のリスト。
【０１６８】
特定されている場合、入力配列における配置に従って、再整列された出力部位のリスト。
【０１６９】
特定されている場合、９ｂｐＤＮＡ部位のすべての標的化可能な対のリスト。
【０１７０】
そのプログラムの部位選択部分は、所定の標的ＤＮＡフラグメントにおいて、すべての可能な９ｂｐ配列に対してスコアを割り当てる。このスコアは、先に設計したジンクフィンガータンパク質からの情報を使用することに基づいて標的化可能性の容易さを反映する。所定の９塩基配列を評価するにおいて、そのプログラムは、まず、その標的を、その成分サブ部位へと分割し、次いで、そのスコア表を参考にして潜在的な標的部位におけるその位置での各サブ部位についてのスコアを入手する。最後に、これにサブ部位スコアを乗じて、９ｂｐ標的部位についての全体スコアを得る。例えば、試験配列５ ’ＡＧＴＧＣＧＣＧＧＴＧＣ３’および表１におけるスコア表を用いると、出力部位（５ ’−３’）およびスコアは以下のとおりである： 
【０１７１】
【数８】
0005162405.tif 000019
【０１７２】
本実施例において、最良の標的部位は、５’ＴＧＣ ＧＣＧ ＧＴＧ ３ ’であり、スコアは１０００である。このプログラムはまた、反対の（アンチセンスの）鎖における潜在的な標的に対してスコアを割り当てるが、単純さのために、これらの部位は、本実施例において無視する。任意の因子である「『Ｄ可能』トリプレットについての増強因子」が、標的部位の評価において、状況因子「Ｄ可能接触」を担う上記のスコア付けプロトコルを変更するために提供され得る。この特徴が選択される場合、このプログラムは、サブ部位スコアを割り当てる場合に、引き続きのチェックを実施する。 
【０１７３】
サブ部位が形態ｘｘＧのものである場合、次いで隣接塩基（３’側）は、ＴまたはＧである場合、ｘｘＧサブ部位のスコアに増強因子を乗じるか、そうでなければ、サブ部位スコアは同じままである。 
【０１７４】
（そのサブ部位が形態ｘｘＡ、ｘｘＣまたはｘｘＴのものである場合、そのスコアもまた、変化しないままである。）
例えば、ユーザーが、１．２５という「Ｄ可能」トリプレットについての増強因子を入力する場合、上記のスコアは、以下のように調整される： 
【０１７５】
【数９】
0005162405.tif 000020
【０１７６】
（この選択肢を使用する場合、このプログラムは、その標的部位のすぐ３’側の塩基（小文字）の同一性を考慮する。最後の部位について、この塩基は、本実施例において規定されておらず、そしてこれは、この位置にてシャープ記号「＃」を入れることによって注意が喚起される。 
【０１７７】
その標的ＤＮＡにおけるすべての９塩基対配列に対してスコアを割り当てた後、次いで、そのプログラムは、トップスコアを、ユーザーによって決定され、出力された部位の数とともに、印刷する。 
【０１７８】
ユーザーによって特定される場合、そのプログラムはまた、以下を提供する： ｉ．３つのフィンガータンパク質がすでに設計されている任意の標的部位のリスト ｉｉ．入力配列における位置に従って、再整列された出力部位のリスト ｉｉｉ．９ｂｐ ＤＮＡ部位のすべての標的可能な対のリスト（隣接し、重複しない、５、３またはそれ未満の塩基だけ分離されている部位の対）。 
【０１７９】
（ＩＩ．選択した標的部位についてのタンパク質の設計）
入力：そのプログラムの部位選択部分からの部位（または、他の方法によって決定される）既存の高親和性ＺＦＰについて、標的部位、アミノ酸配列および参照データを含む、「ＺＦＰデータ表」。 
【０１８０】
そのプログラムがその出力を以下のいずれかに限定するか否かを特定する出力パラメータ（ユーザーによって供給される）： ｉ （存在する場合）その標的部位がその出力における部位と完全に同一であるタンパク質のみ、または ｉｉ （存在する場合）その標的部位が３ｂｐサブ部位の２以上にて出力部位に適合するタンパク質のみ。
【０１８１】
出力：制限（ｉ）も（ｉｉ）も存在しない場合： 潜在的な９塩基対標的部位の各々について、ＺＦＰデータ表からのＺＦＰおよびその成分フィンガーの３つのセットの表。これら成分フィンガーは、それぞれ、その標的部位内の３つのトリプレットサブ部位に結合する。各サブ部位について、ＺＦＰのそのセットは、２つのサブセットへと細分され得る。１つのサブセットは、その親のＺＦＰにおける対応するフィンガー位からの所定の位置にてトリプレットを結合するＺＦＰおよびそれらのフィンガーを含む。他のサブセットは、親のＺＦＰ内の対応しない位置からの所定の位置にてトリプレットを結合するＺＦＰおよびそのフィンガーを含む。第一のフィンガー位（Ｎ−Ｃ）は、最初のトリプレット３ ’−５’に対応する。
【０１８２】
このプログラムのＺＦＰ設計部分は、ユーザーが所定の９塩基標的部位におけるサブ部位を結合することが公知のすべてのフィンガーを迅速に再検討することを可能にすることによって設計プロセスを容易にする。上記の例（５ ’ＴＧＣＧＣＧＧＴＧ３’）からの最適な設計標的、および表９に提供される短いＺＦＰデータ表を与えられると、出力（制限（ｉ）も（ｉｉ）も存在しない場合）は以下のとおりである： 
【０１８３】
【数１０】
0005162405.tif 000021
【０１８４】
「整列した（ｏｒｄｅｒｅｄ）」出力は、ＺＦＰデータ表において、ＴＧＣサブ部位が標的部位の第三のトリプレットにおけるジンクフィンガーが接触する１つの例が存在することを示す。この場合におけるフィンガーは、ＥＲＤＨＬＲＴであり、そしてその部位は、５ ’ＴＧＣＧＧＧＧＣＡ３’である。他の２つのサブ部位−ＧＣＧおよびＧＴＧの各々について１つの類似する例もまた存在する。これらの場合におけるフィンガーは、それぞれ、ＲＳＤＥＬＱＲおよびＲＫＤＳＬＶＲである。この情報を使用して、３つのフィンガータンパク質Ｆ１−ＲＫＤＳＬＶＲ、Ｆ２−ＲＳＤＥＬＱＲ、Ｆ３−ＥＲＤＨＬＲＴを、標的５ ’ＴＧＣＧＣＧＧＴＧ３’を結合するための設計として提唱する。 
【０１８５】
「整列していない」出力は、フィンガーが標的の中心サブ部位ではなくＧＣＧサブ部位に接触するＺＦＰデータ表において２つの場合が存在することを示す。むしろ、１つの場合において、ＧＣＧは、５ ’末端に接触し、そして他方は３’末端に接触し、そしてこれらの場合において、フィンガー配列は、ＲＳＤＥＬＴＲおよびＲＳＤＥＲＫＲである。これらは、その標的部位においてＧＣＧを結合するための別の設計である。 
【０１８６】
【表１】
0005162405.tif 000022
【０１８７】
【表９】
0005162405.tif 000023
【０１８８】
そのようなデータベースにおける包含に適切な、ジンクフィンガータンパク質、それらのフィンガーの配列および結合する標的部位の他の例は、背景の節において引用された参考文献に議論される。 
【０１８９】
上記の発明を、理解の明確化の目的のために、詳細に記載してきたが、特定の改変は、添付の請求の範囲の範囲内で実施され得ることは自明である。本明細書において、引用した全ての刊行物および特許文書は、本明細書において、その全体が、それら各々が個々そのように注記されているのと同程度にまで全ての目的のために参考として援用される。 
【図面の簡単な説明】
【０１９０】
【図１】図１は、ジンクフィンガータンパク質によって結合される標的部位においてサブ部位の存在および数が結合親和性に相関するデータを提供する図を示す。
【図２】図２は、３つのＤ可能サブ部位を含む標的部位に結合される３つのジンクフィンガータンパク質を示す。
【図３】図３は、設計されたＺＦＰをコードする核酸をアセンブルするプロセスを示す。
【図４】図４は、標的部位の選択およびジンクフィンガータンパク質の設計の方法を実行するためのコンピュータシステムを示す。
【図５】図５は、標的部位の選択およびジンクフィンガータンパク質の設計の方法を実行するためのコンピュータシステムを示す。
【図６】図６は、標的配列内にＤ可能サブ部位を含む標的部位を選択するための方法のフローチャートを示す。
【図７Ａ】図７Ａは、対応規則を使用して標的配列内の標的部位を選択するためのフローチャートを示す。
【図７Ｂ】図７Ｂは、データベースを使用して、所望の標的部位を結合するようにＺＦＰを設計するためのフローチャートを示す。
【図８Ａ】図８Ａは、ＺＦＰデータベースのエンティティの代表図を示す。
【図８Ｂ】図８Ｂは、ＺＦＰデータベースの代表例である。
【図１】
0005162405.tif 000024
【図２】
0005162405.tif 000025
【図３】
0005162405.tif 000026
【図４】
0005162405.tif 000027
【図５】
0005162405.tif 000028
【図６】
0005162405.tif 000029
【図７Ａ】
0005162405.tif 000030
【図７Ｂ】
0005162405.tif 000031
【図８Ａ】
0005162405.tif 000032
【図８Ｂ】
0005162405.tif 000033