(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
正常造血細胞および新生物細胞のエキソビボ混合物において、ウイルスと該混合物を接触させることによって、新生物細胞を減少または除去する方法であって、該新生物細胞が白血病細胞である、方法であって、ここで、該ウイルスが水疱性口内炎ウイルスである、方法。
【請求項２】
前記造血細胞が骨髄細胞である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記造血細胞が末梢血細胞である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記ウイルスが複製コンピテントウイルスである、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
前記ウイルスが複製インコンピテントウイルスである、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
正常造血細胞および新生物細胞のエキソビボ混合物において、新生物細胞を減少または除去するキットであって、該キットは、
ａ）水疱性口内炎ウイルス；ならびに
ｂ）指示書であって、以下
１）該混合物と該ウイルスとを接触させること、および
２）該ウイルスとの接触の前、その間またはその後に、化学療法剤を投与すること、を指示する指示書
を含み、
ここで、該新生物細胞は白血病細胞である、キット。
【請求項７】
正常造血細胞および新生物細胞のエキソビボ混合物において、新生物細胞を減少または除去するキットであって、該キットは、
ａ）水疱性口内炎ウイルス；ならびに
ｂ）指示書であって、以下
１）該混合物と該ウイルスとを接触させること、および
２）該ウイルスとの接触の前、その間またはその後に、インターフェロンを投与すること、を指示する指示書
を含み、
ここで、該新生物細胞は白血病細胞である、キット。
【請求項８】
哺乳動物における癌を処置するために、正常造血細胞および新生物細胞のエキソビボ混合物において、新生物細胞を減少または除去するためのキットであって、以下：
１）ＲＮＡウイルスであって、水疱性口内炎ウイルスである、ＲＮＡウイルス；および
２）以下の工程：
ａ）該哺乳動物から骨髄細胞または末梢血細胞を除去する工程、
ｂ）エキソビボで該ＲＮＡウイルスと、該骨髄細胞または該末梢血細胞とを接触させる工程
ｃ）該哺乳動物において骨髄機能を廃絶する処置を実施する工程、および
ｄ）工程ｂの浄化した造血細胞を該哺乳動物に移植する工程、
を行うことを示す指示書
を含み、
ここで、該新生物細胞は白血病細胞である、キット。
【請求項９】
前記骨髄機能を廃絶する処置が高用量の化学治療である、請求項８に記載のキット。
【請求項１０】
骨髄移植または末梢血幹細胞移植を受ける哺乳動物の癌を処置するために、正常造血細胞および新生物細胞のエキソビボ混合物において、新生物細胞を減少または除去するためのキットであって、該キットは、
１）水疱性口内炎ウイルス；ならびに
２）以下の工程：
ａ）エキソビボで移植細胞の採集した細胞と該ウイルスとを接触させる工程、および
ｂ）該哺乳動物に浄化した細胞を投与する工程、
を行うことを示す指示書、
を含み、
ここで、該新生物細胞は白血病細胞である、キット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】  （発明の分野）
本発明は、細胞の混合において、望ましくない細胞を浄化（減少および排除）する能力のあるウイルスに関する。望ましくない細胞としては、新生物細胞、対宿主性移植片病を媒介する細胞、および自己免疫性細胞が挙げられ得る。本発明はまた、癌患者、移植レシピエント、および自己免疫疾患を有する患者を含む哺乳動物の処置における骨髄細胞または末梢血細胞の採取物から望ましくない細胞を浄化することに関する。
【０００２】  （発明の背景）
エキソビボ浄化技術は、白血病または他の悪性腫瘍を有する患者に対する白系の骨髄移植または幹細胞移植の成功を制限することが示されている。骨髄または末梢血液前駆細胞（ＰＢＰＣ）を浄化することの１つの目的は、正常な幹細胞および造血前駆細胞への影響がほとんどなく、新生物細胞を除去することである。浄化した髄質の移植は、高用量の化学療法または放射線のような骨髄機能を廃絶する処置後に起こる（例えば、Ｓｔｕａｒｔ  Ｒ．Ｋ．，１９９３，Ｓｅｍｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．２０（５Ｓｕｐｐｌ６：）４０−５４）；Ｈａｍｍｅｒｔ  Ｌ．Ｃ．およびＢａｌｌ，Ｅ．Ｃ．，１９９７，Ｃｕｒｒ  Ｏｐｉｎ  Ｈｅｍａｔｏｌ  ４：４２３−４２８；Ｓｃｈｎｅｉｄｋｒａｕｔ  Ｍ．Ｊ．ら，１９９６，Ｊ  Ｈｅｍａｔｏｔｈｅｒ  ５：６３１−６４６を参照のこと）。髄質を用いた任意の新生物細胞の移植は、患者に悪性腫瘍の再発のリスクを負わせる（例えば、Ｒｕｍｍｅｌ  ＳＡおよびＶａｎ  Ｚａｎｔ  Ｇ，１９９４，Ｊ．Ｈｅｍａｔｏｔｈｅｒ．３：２１３−２１８；Ｋｖａｌｈｅｉｍ  Ｇら，１９９６，Ｊ  Ｈｅｍａｔｏｔｈｅｒ．，５：４２７−４３６を参照のこと）。新生物細胞を選択的に殺傷させるために現在の研究で行われている方法は、化学療法剤の使用を含む（４−ヒドロペルオキシシクロフォスファミドのような；例えば、Ｂｉｒｄ  Ｊ．Ｍ．，１９９６，Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ，１８：３０９−３１３を参照のこと），モノクローナル抗体（例えば、Ｈａｍｍｅｒｔ，Ｌ．Ｃ．およびＢａｌｌ  Ｅ．Ｄ．，１９９７，Ｂｌｏｏｄ  Ｒｅｖ．，１１：８０−９０を参照のこと）、光線力学療法（例えば、Ｖｉｌｌｅｎｅｕｖｅ  Ｌ．，１９９９，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．３０：１−１７を参照のこと）、およびアデノウイルスのようなウイルスベクター（例えば、Ｈｉｒａｉ  Ｍ，ら，１９９９，Ａｃｔａ  Ｈａｅｍａｔｏｌ．，１０１：９７−１０５；Ｍａｒｉｎｉ  Ｆ．Ｃ．ら，１９９９，Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ，５：１５５７−１５６８を参照のこと）。しかし、最近の実験は、治療的浄化後に、生存癌細胞が骨髄またはＰＢＰＣに残っており、悪性腫瘍の再発を導くことを証明した。現在の方法におけるエキソビボ浄化での別の主要な制限は、正常幹細胞および／または初期造血前駆細胞に対する損傷に起因して、遅延される移植である（Ｒｕｍｍｅｌ  ＳＡおよびＶａｎ  Ｚａｎｔ  Ｇ，１９９４，Ｊ．Ｈｅｍａｔｏｔｈｅｒ．３：２１３−２１８；Ｄａｍｏｎら，１９９６，Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ，１７：９３−９９を参照のこと）。活発に増殖している前駆細胞は、したがって４−ヒドロペルオキシシクロフォスファミドを含む大部分の化学療法剤による殺傷に対して非常に感受性が高い。初期前駆細胞の結果として起こる損失は、長期化した好中球減少および／または血小板減少を引き起こし、患者に、命にかかわる感染および／または出血の高いリスクを負わせる。正常造血細胞を残しておく腫瘍の細胞傷害性薬剤または細胞溶解性薬剤は、癌治療における重要な進歩である。
【０００３】  新生物細胞に加えて、骨髄または末梢血液前駆細胞の採集物は、例えば、関節炎または多発性硬化症を有する人々において、自己免疫性細胞のような他の望ましくない細胞を含み得る。他の望ましくない細胞は、同種移植において対宿主性移植片病を媒介する細胞（例えば、特定のＴリンパ細胞）を含む。このような望ましくない細胞の減少または除去は、癌および自己免疫疾患の処置において重要である。
【０００４】  ＲｏｂｅｒｔらによるＰＣＴ出願（ＷＯ／９９１８７９９およびＰＣＴ  ＵＳ９８／２１２３０）は、ウイルスを用いる新生物の処置に関する。
【０００５】  （発明の目的）
本発明の目的は、望ましい細胞および望ましくない細胞の混合物において、望ましくない細胞の減少または除去のためのウイルスを提供することである。
【０００６】  本発明のさらなる目的は、正常細胞および新生物細胞の混合物において、新生望細胞の減少または除去のためのウイルスを提供することである。
【０００７】  本発明のさらなる目的は、エキソビボにおいて、骨髄または末梢血液前駆細胞のような正常造血細胞から新生物細胞を浄化するウイルスを提供することである。
【０００８】  本発明のさらなる目的は、エキソビボにおいて、骨髄または末梢血液前駆細胞のような正常細胞から自己免疫性細胞を浄化するウイルスを提供することである。
【０００９】  本発明のさらなる目的は、エキソビボにおいて、骨髄または末梢血液前駆細胞のような正常造血細胞から、対宿主性移植片病を媒介する細胞を浄化するウイルスを提供することである。
【００１０】  本発明のさらなる目的は、望ましい造血細胞および望ましくない細胞の混合物とウイルスとを接触させ、そして哺乳動物にこのような細胞を移植することによって、哺乳動物における疾患を処置する方法を提供することである。
【００１１】  本発明のさらなる目的は、採集した細胞とウイルスとを接触させ、そして骨髄機能を廃絶する処置後に、哺乳動物にこのような浄化した造血細胞を移植することによって、哺乳動物における癌を処置する方法を提供することである。
【００１２】  本発明のさらなる目的は、採集した細胞とウイルスとを接触させ、そして骨髄機能を廃絶する処置後に、哺乳動物にこのような浄化した造血細胞を移植することによって、哺乳動物における対宿主性移植片病を防ぐ方法を提供することである。
【００１３】  本発明のさらなる目的は、採集した細胞とウイルスとを接触させ、そして骨髄機能を廃絶する処置後に、哺乳動物にこのような浄化した造血細胞を移植することによって、哺乳動物における自己免疫疾患を処置する方法を提供することである。
【００１４】  本発明のさらなる目的は、ウイルスを用いる移植の処置を含む骨髄または末梢血液の幹細胞移植を受ける哺乳動物において、癌を治療する方法を提供することである。
【００１５】  （発明の要旨）
本発明は、望ましい細胞と望ましくない細胞の混合物において、この細胞の混合物とウイルスとを接触させることによって、望ましくない細胞を減少または除去する方法に関する。
【００１６】  本発明はまた、望ましい細胞と望ましくない細胞の混合物において、この細胞の混合物とＲＮＡウイルスとを接触させることによって、望ましくない細胞を減少または除去する方法に関する。
【００１７】  本発明はまた、この混合物とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させることによって、エキソビボで正常造血細胞および新生物細胞の混合物から新生物細胞を減少または除去する方法に関する。
【００１８】  本発明はまた、採集細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させることによって、エキソビボで骨髄または末梢血液幹細胞採集物から新生物細胞を浄化する方法に関する。
【００１９】  本発明はまた、採集細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させることによって、エキソビボで骨髄または末梢血液幹細胞の採集物から自己免疫性細胞を浄化する方法に関する。
【００２０】  本発明はまた、骨髄または末梢血液幹細胞の集団とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させることによって、エキソビボでこの細胞集団から対宿主性移植片病を媒介する細胞を浄化する方法に関する。
【００２１】  本発明はまた、哺乳動物において癌のような疾患を処置または予防する方法に関し、この方法は以下の工程：ａ）上記哺乳動物から骨髄または末梢血細胞を取り出す工程、ｂ）上記骨髄または末梢血細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを、エキソビボで接触させる工程、ｃ）上記哺乳動物細胞で骨髄機能を廃絶する処置を実行する肯定、ｄ）工程ｂの浄化した造血細胞を上記哺乳動物に移植する工程、を包含する。
【００２２】  本発明はまた、骨髄または末梢血液前駆細胞の移植を受けた哺乳動物における癌を処置する方法に関し、これは移植の採集細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させる工程、および上記哺乳動物に浄化した細胞を投与する工程を包含する。
【００２３】  本発明はまた、骨髄または末梢血液前駆細胞の移植を受けた哺乳動物における自己免疫疾患を処置する方法に関し、これは移植の採集細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させる工程、および上記哺乳動物に浄化した細胞を投与する工程を包含する。
【００２４】  本発明はまた、骨髄または末梢血液前駆細胞の移植を受けた哺乳動物における対宿主性移植片病を予防する方法に関し、これは移植の採集細胞とＲＮＡウイルスのようなウイルスとを接触させる工程、および上記哺乳動物に浄化した細胞を投与する工程を包含する。
【００２５】  （発明の詳細な説明）
本発明は、望ましい細胞または望ましくない細胞の混合物から、新生物細胞のような望ましくない細胞の減少または除去のためのウイルスの発見およびウイルスの使用に関する。本発明は、ウイルスおよびウイルスを用いて正常細胞から望ましくない細胞を浄化（減少または除去）する方法を提供する。本発明のウイルスによって除去される造血細胞移植における望ましくない細胞としては、新生物細胞、自己免疫細胞（慢性関節リウマチまたは多発性硬化症の場合におけるような）、および対宿主性移植片病を媒介する細胞が挙げられる。哺乳動物の処置は、ａ）上記哺乳動物から骨髄または末梢血細胞を取り出す工程、ｂ）エキソビボで上記骨髄または末梢血細胞とウイルスとを接触させる工程、ｃ）上記哺乳動物において、骨髄機能を廃絶する処置を実行する肯定、ｄ）工程ｂの浄化した造血細胞を上記哺乳動物に移植する工程からなる。
【００２６】  （本発明の方法）
（新生物細胞の浄化）
ウイルスと正常細胞および新生物細胞の混合物とのインキュベーションは、結果として、正常細胞ではなく新生物細胞の選択的な殺傷を生じる。造血細胞から新生物細胞を浄化する効果的手段は、自系の骨髄または末梢血液幹細胞の移植を伴った哺乳動物における癌の処置に使用され得る。例えば、新生物を有する哺乳動物由来の骨髄または末梢血液幹細胞は、新生物の再発を防ぐために、移植の前にウイルスと接触される。本発明の方法によって浄化され得る新生物細胞としては、（１）白血病、（２）リンパ腫、（３）乳癌、肺癌、結腸癌、前立腺癌、および膵臓癌のような癌腫、（４）肉腫、ならびに（５）黒色腫および神経芽細胞腫のような神経上皮起源の癌が挙げられるが、これらに制限されない。
【００２７】  ＲＮＡウイルス（例えば、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）、ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）、およびレオウイルスが挙げられるが、これらに制限されない）のような多種多様のウイルスは、正常造血細胞から新生物細胞を浄化するために使用され得る。正常造血細胞は、ＲＮＡウイルスを含む多くのウイルスによる感染に対して耐性である。１つの例として、正常ヒト骨髄細胞はＶＳＶ、ラブドウイルスによる感染に対して、感染性ウイルス産生および生存能力両方によって決定されるように耐性である。２人のドナー由来の正常骨髄細胞は、たとえ高い感染多重度で感染した場合でも、感染性ウイルスを産生しなかった（例えば、１０プラーク形成単位（ｐｆｕ）／細胞；実施例１を参照のこと）。感染骨髄培養物は、メチルセルロースのインビトロでの培養後に、造血細胞型の正常範囲を形成する能力において、モック感染培養物から識別できなかった。別の例として、ＣＤ３４＋の豊富な正常ヒト骨髄は、ＮＤＶ（別のファミリー（パラミクソウイルス）由来のウイルス）による感染に対して耐性であった；Ｒｏｂｅｒｔら、ＷＯ／９９１８７９９参照のこと。
【００２８】  新生物細胞の多くの型は、ＲＮＡウイルスを含む多くのウイルスによる細胞殺傷に対して感受性がより高い。ＶＳＶを用いた例として、急性骨髄性白血病細胞株ＯＣＩ／ＡＭＬ３、ＯＣＩ／ＡＭＬ４およびＯＣＩ／ＡＭＬ５は、ＶＳＶ感染に対してより高感受性であり、０．０５ｐｆｕ／細胞で２４時間で細胞の５０％殺傷し、そしてわずか０．０００３ｐｆｕ／細胞で４８時間で５０％殺傷した（実施例１）。この実験で使用のＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａ血清型は、マウスＬ９２９細胞で増殖させ、そして採集した。別の例として、卵巣腫瘍、線維肉腫、肺癌、黒色腫、前立腺癌、および白血病細胞を含む種々の腫瘍細胞型は、ＶＳＶに対して感受生であることを示した（実施例３を参照のこと）。ＮＤＶはまた、多くのヒト新性細胞を殺傷する（例えば、Ｒｏｂｅｒｔら、ＷＯ／９９１８７９９を参照のこと）。レオウイルス３型は、正常な線維芽細胞ではなく、新生物線維芽細胞を殺傷した（実施例４）。
【００２９】  正常造血細胞との同時培養物からの新生物細胞の選択的除去は、種々のウイルスと用いて達成され得る。例えば、正常骨髄細胞との白血病ＯＣＩ／ＡＭＬ３細胞の同時培養物（１：９比率および１：３比率）において、ＶＳＶは正常造血細胞への影響をほとんど有さないで、白血病細胞の全てを殺傷する（実施例２）。この実験で使用したＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａ血清型は、マウスＬ２２９細胞で増殖させ、そして採集した。これらのデータは、正常骨髄の混合集団における白血病細胞の選択的破壊および骨髄浄化におけるＶＳＶのようなウイルスの有用性を示す。正常細胞の混合培養物における新生物細胞の選択的除去における別の実施例は、ＮＤＶを用いて示された。ＮＤＶ系ＰＰＭＫ１０７、３つのプラーク精製した中間毒力のＮＤＶ系ＭＫ１０７の単離物は、正常線維芽との混合培養物におけるヒト経口癌を選択的に殺傷した（Ｒｏｂｅｒｔｓら、ＷＯ／９９１８７９９参照のこと）。
【００３０】  （対宿主性移植片病を媒介する細胞の浄化）
望ましくない細胞（対宿主性移植片病を引き起こすＴ細胞のような）および望ましい細胞の混合物とウイルスとのインキュベートは、望ましくない細胞の選択的殺傷を生じる。このような骨髄または末梢血細胞を浄化する効果的な手段は、哺乳動物における対宿主性移植片病の保護において使用され得る。
【００３１】  （自己免疫疾患を媒介する細胞の浄化）
自己免疫性細胞（自己免疫疾患を引き起こす）および望ましい細胞の混合物とウイルスとのインキュベートは、自己免疫性細胞の選択的殺傷を生じる。このような望ましくない細胞を浄化する効果的な手段は、慢性関節リウマチおよび多発性硬化症のような自己免疫疾患の処置において使用され得る。
【００３２】  （望ましくない細胞のスクリーニング）
本発明の望ましくない細胞は、染色体欠損または遺伝子の再配列を伴う新生物細胞、細胞インターフェロン応答のコードタンパク質またはモジュレーターあるいは他のインターフェロン応答に欠損のあるハーバーが挙げられる（Ｃｏｌａｍｏｎｉｃｉ  ＯＲら、１９９２，Ｂｌｏｏｄ，８０：７４４−７４９；Ｈｅｙｍａｎ  Ｍら、１９９４，Ｌｅｕｋｅｍｉａ，８：４２５−４３４；Ｂｉｌｌａｒｄ  Ｃら、１９８６，Ｂｌｏｏｄ，６７：８２１−８２６）。骨髄またはＰＢＰＣ集団の浮遊の性質は、細胞のインターフェロン応答状態の決定における、蛍光活性化細胞ソーティング（ＦＡＣＳ）分析の使用を容易にする。インターフェロン応答用のプローブとしては、遺伝子欠失または再配置のための染色体ハイブリダイゼーション、ならびに細胞レセプターおよびシグナル伝達経路（インターフェロンへの細胞応答に関与する）の構成要素の分析のための抗体といったプローブが挙げられる。
【００３３】  （本発明の化合物）
本発明のウイルスは、正常造血細胞のような望ましい細胞から、新生物細胞のような望ましくない細胞を識別することを可能にする。本発明のＲＮＡウイルスとしては、（１）ネガティブセンスＲＮＡウイルスおよびポジティブセンスＲＮＡウイルスを含む一本鎖ウイルス、および（２）二本鎖ＲＮＡウイルスが挙げられるが、これらに制限されない。本発明の一本鎖、ネガティブセンスＲＮＡウイルスとしては、ラブドウイルスのようなセグメントにされていないウイルスファミリー（例えば、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ））ならびにパラミクソウイルス（例えば、ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）およびヒトパラインフルエンザウイルス３型）が挙げられるが、これらに制限されない。本発明の一本鎖、ポジティブセンスＲＮＡウイルスとしては、ピコルナウイルス（例えば、ライノウイルス）、およびトガウイルス（例えば、シンドビスウイルス）が挙げられるが、これらに制限されない。本発明の二本鎖ＲＮＡウイルスファミリーは、レオウイルスを含む。複製コンピテントおよび複製インコンピテントのＲＮＡウイルスが本発明に含まれる。
【００３４】  Ｒｏｂｅｒｔｓら、ＷＯ／９９１８７９９（その全体が参考として本明細書中の援用される）に記載される「インターフェロン感受性ウイルス」が、本発明に含まれる。これらのウイルスは選択的に複製し、そしてＩＦＮ媒介抗ウイルス応答のこれらの細胞における選択的欠損に基づいて新生物細胞を殺傷する。ＲＮＡウイルスに加えて、「インターフェロン感受性ウイルス」に、ＤＮＡウイルスであるアデノウイルスのＶＡ１−変異体が含まれる。
【００３５】  ラブドウイルスファミリーは、密接に関連したエンベロープ、セグメントにされていないネガティブセンスのＲＮＡウイルスからなり、そして動物に感染する次の属：（１）ベシクロウイルス属（例えば、水疱性口内炎ウイルス、ＶＳＶ）；（２）リッサウイルス属（例えば、狂犬病ウイルス）;および（３）Ｅｐｈｅｍｅｒｏｖｉｒｕｓ属（Ｄｉｅｔｚｓｃｈｏｌｄ  Ｂら、１９９６．ラブドウイルス：Ｆｉｅｌｄｓ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，第３版、（編、Ｆｉｅｌｄｓ  Ｂ．Ｎ．ら）、ｐｐ１１３７−１１５９）が挙げられる。本発明による特に好都合な実施形態において、ラブドウイルスは水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）である。いくつかの血清学的に異なるＶＳＶ株は、多数の特徴付けられた変異にそって同定されている。ＶＳＶの天然の宿主としては、昆虫、げっ歯類、家畜動物が挙げられる。一般に、北アメリカの人々は、実験室の人員および農場主に起こるヒト感染の多くを伴うウイルスと接触することはほとんどない。ヒトにおいて、感染は無症候または顕在性のインフルエンザ様症状のいずれかである。ＶＳＶ株としては、Ｉｎｄｉａｎａ、ニュージャージー、Ｐｒｉｔｙ、ＣｏｃｃａｌおよびＣｈａｎｄｉｐｕｒａが挙げられるが、これらに制限されない。本明細書中に開示の実施例は、ＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａに関連するが、当業者が本明細書中にまとめられた方法にしたがって、他のＶＳＶ株およびＶＳＶ誘導体（新生物細胞を選択的に殺傷するＶＳＶの変異体を含む）を容易にスクリーニングし得ることは、理解される。
【００３６】  セグメントにされていないネガティブセンスＲＮＡウイルスのパラミクソウイルスファミリーは、３つの属を含む：（１）ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）を含むパラミクソウイルス；（２）麻疹様ウイルス（麻疹ウイルス）；および（３）ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｓｙｎｃｙｔｉａｌウイルス（ｐｎｅｕｖｉｒｕｓ）。ＮＤＶは、本発明によって好都合なウイルスである。ＮＤＶは、ニワトリおよびニワトリ胚への影響によって、３つの異なるクラスに分類される。「低毒性」株は、レントゲニック（ｌｅｎｔｏｇｅｎｉｃ）として参照され、最少の致死用量（ＭＬＤ）でニワトリ胚を殺傷するために９０〜１５０時間かかり；「中毒性」株は、中間毒力として参照され、ＭＬＤでニワトリ胚を殺傷するために６０〜９０時間かかり；「高毒性」株は、速現性として参照され、ＭＬＤでニワトリ胚を殺傷するために４０〜６０時間かかる。例えば、ＨａｎｓｏｎおよびＢｒａｄｌｅｙ，１９９５（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１２２：１５６−１５７）、およびＤｉａｒｄｉｒｉら、１９６１（Ａｍ  Ｊ  Ｖｅｔ  Ｒｅｓ  ９：９１８−９２０）を参照のこと。３つのクラスは全てが有用であり、有利には、ＭＫ１０７といったＮＤＶの中間毒力株が挙げられる。
【００３７】  本発明により特に好都合な実施形態において、二本鎖ＲＮＡウイルスはレオウイルスである。本発明によるさらに好都合な実施形態において、レオウイルスはレオウイルス３型である。
【００３８】  本発明の別の好都合な実施形態において、ｓｕｂｔｉｌｉｓｍ関連プロテアーゼの発現の欠損した新生物において複製する能力があるＲＮＡウイルスが用いられる。ヒトパラインフルエンザウイルス３型は、この型のウイルスである。
【００３９】  特定の目的のために、特定のウイルス系の遺伝子均一性を確実にするか、または増強するために、そして欠損性の干渉粒子を除去するために、クローンウイルスを得ることが望ましい。欠損性の干渉粒子の除去は、１つの感染性粒子あたり総計のウイルス粒子の数によって評価されるように、最終産物における純度を増加させる。クローンウイルスは、プラーク精製またはＲｏｂｅｒｔｓらＷＯ／９９１８７９９に記載される他の手段によって生成され得る。
【００４０】  本発明の別の実施形態において、例えば、一般的にウイルスは、新生物細胞に対する選択性が増加するように改変される。ウイルスの遺伝的特性を変化させ得る、ＶＳＶのようなラブドウイルスの遺伝子操作の方法は、十分に確立されている（Ｒｏｂｅｒｔｓ  Ａ．，およびＪ．Ｋ．Ｒｏｓｅ，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１９９８，２４７：１−６）。
【００４１】  さらに、当業者に周知の標準的な技術は、ＶＳＶを遺伝的に改変するため、そして組換えＶＳＶを産生するためのＶＳＶゲノム内に所望の遺伝子を導入するために使用され得る（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ）。本発明の１つの実施形態において、ＶＳＶのＧタンパク質は、腫瘍細胞の特定の部位を標的にする融合物を産生するために改変され得る。本発明の別の実施形態において、ＶＳＶは一般的に、プロドラッグを毒性代謝産物に代謝する能力のある１つ以上の自殺遺伝子を発現するように改変され、それゆえ、ＶＳＶ感染腫瘍細胞がプロドラッグの投与によって殺傷され得る。ヘルペスウイルスチミジンキナーゼまたはシトシンデアミナーゼ遺伝子を発現させるために操作されたＶＳＶは、ガンシクロビルまたは５−Ｆｃのそれぞれを毒性化合物に転換するために用いられ得る。しかし、他の自殺遺伝子がまた用いられ得ることは理解される。
【００４２】  （処方物および投与）
本発明の好都合な実施形態は、エキソビボで、望ましい細胞および望ましくない細胞の混合物から望ましくない細胞の浄化をする用途のキットに関する。このキットは、前もって測定された処方ウイルス量、または望ましい細胞および望ましくない細胞の特定数を含む混合物を処置するために適切なウイルスを含む。好都合な処方物としては、感染性の欠損に対してウイルスを安定化する賦形剤、または望ましい細胞の生存能力または生存を高める賦形剤が挙げられる。より好都合なキットは、ウイルス処方物と細胞の標的混合物との接触を、生物学的封じ込め装置の必要なしに無菌工程で行うことを可能にする。このような装置の例は、細胞の標的混合物用の、別個の区切りに前もって測定されたウイルスを含む区分化された採集容器である。この区切りの間に開いた経路を創作することは、ウイルス、標的細胞集団と１つ以上の賦形剤との間を接触させる。別個である場合、ウイルスと賦形剤との接触は、同時または連続的に起こり得る。本発明のさらに好都合な実施形態は、ウイルスまたはウイルス間と望ましい細胞および望ましくない細胞の標的混合物との接触時間の間に、ウイルス細胞相互作用にとって最適な温度を維持する区分化された容器型である。本発明の別の好都合な実施形態は、適切な時間の後に、ウイルス、賦形剤、またはその両方から、接触した細胞の混合物を分離するためのキットに関する。適切な接触時間は当業者に公知であるか、または決定される。
【００４３】  本発明のウイルスのために適切な処方物は、新生物の処置に使用される列挙されたウイルスを含む（Ｒｏｂｅｒｔｓら、１９９９，ＰＣＴ  ＷＯ９９１８７９９）。さらに、好都合な処方物は化合物または生物学的製剤を含み、これらは、望ましい細胞および望ましくない細胞の混合物において、望ましい細胞に関する１つ以上の以下の活性を有する：分化、増殖、保存、刺激、保護、および無活動の誘導。例えば、これらの型の化合物および生物学的製剤としては、サイトカイン、細胞周期のペプチドレギュレーター、インターロイキン、増殖因子、エネルギー供給源、ビタミンおよび電解質が挙げられる。さらなる所望の賦形剤としては、凍結防止化合物が挙げられる。
【００４４】  本発明のウイルス有効量は、望ましい細胞を維持して望ましくない細胞の減少または除去のために使用される。望ましくない細胞の減少または除去のために使用されるウイルスの量が、ウイルスの選択、望ましくない細胞の型および量、ならびに維持される望ましい細胞の型および量に依存して変化することは、当業者によって理解される。例えば、ＶＳＶは、１細胞あたり０．００００１〜１０プラーク形成単位（ｐｆｕ）、より好都合には１細胞あたり０．０００３〜１０ｐｆｕで使用され得る。
【００４５】  本発明の別の好都合な実施形態において、このウイルスは、インターフェロンとの接触前、接触中または接触後に、処置される新生物細胞および正常細胞の混合物と接触するために使用される。インターフェロンは正常細胞の保護の増強を可能にする（実施例３およびＲｏｂｅｒｔｓら、ＷＯ／９９１８７９９を参照のこと）。インターフェロン（ＩＦＮ）は、クラスＩ（α、βおよびΩ）およびクラスＩＩ（γ）、ならびに組換え改変体およびそのアナログの群から選択される（例えば、Ｓｒｅｅｖａｌｓｏｕｎ，Ｔ．，１９９５（Ｂｉｏｌｏｇｉｃ  Ｔｈｅｒａｐｙ  ｏｆ  Ｃａｎｃｅｒ，第２版、Ｖ．Ｔ．ＤｅＶｉｔａ，Ｊｒ．ら編、Ｊ．Ｂ．Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ  Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ｐｐ３４７−３６４において議論される）。
【００４６】  本発明の別の好都合な実施形態において、このウイルスは、インターフェロンとの接触前、接触中または接触後に、化学療法剤を用いる処置される新生物細胞および正常細胞の混合物と接触するために使用される。この化学療法剤はさらに新生物細胞の生存能力を減少させるために使用される。
【００４７】  以下の実施例は例示であるが、本発明の方法および組成物を制限するものではない。種々の状態およびパラメーターの他の適切な改変および適合は、臨床治療において通常直面し、これは本発明の精神と範囲内であることは、当業者に明らかである。
【００４８】  （実施例１：別個の細胞培養物での決定と同様な、水疱性口内炎ウイルスによる白血病細胞および非正常骨髄細胞の選択的殺傷）
ＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａ血清型を、マウスＬ９２９細胞でプラーク精製した。個々のプラークを、単層のＬ９２９細胞を感染させるために使用し、１８時間後に上清を採集し、６，０００×ｇで１０分間の遠心分離に供した。次いで、清澄化した上清を０．２マイクロフィルター（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）によって濾過し、次いでＬ細胞上で力価測定し、アリコートにして−８０℃で貯蔵した。ウイルスの個々のアリコートは、一度しか使用しなかった。二人の別個の健康なドナー由来の正常骨髄培養物は、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）のこのＩｎｄｉａｎａ血清型による感染に耐性であった。１０ｐｆｕ／細胞の感染多重度で感染させた場合でさえ、正常骨髄細胞は感染性ＶＳＶ粒子を産生しなかった。さらに、この感染した骨髄培養物は、メチルセルロースでのインビトロ培養をうけて、造血細胞型の正常範囲を形成するそれらの能力において、モック感染培養物から識別できなかった。対照的にＡＭＬ細胞株ＯＣＩ／ＡＭＬ３、ＯＣＩ／ＡＭＬ４およびＯＣＩ／ＡＭＬ５は、ＶＳＶ感染に高感受性であり、０．０５ｐｆｕ／細胞で２４時間で細胞の５０％を殺傷し、そしてわずか０．０００３ｐｆｕ／細胞で４８時間で５０％を殺傷した。
【００４９】  （実施例２：正常骨髄細胞を含む混合培養物における水疱性口内炎ウイルスによる白血病細胞の選択的殺傷）
この実施例において使用したＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａ血清型を、実施例１に示したように調製した。白血病ＯＣＩ／ＡＭＬ３細胞と正常骨髄細胞とを混合した同時培養（１：９比率）において、ＶＳＶは選択的に腫瘍崩壊性の特性を有した。この実施例において（表１）、同時培養物をＶＳＶに、１プラーク形成単位（ｐｆｕ）／細胞または２４時間で５ｐｆｕ／細胞の感染多重度で感染させ、次いで、増殖因子を伴うか、または伴わないメチルセルロースにプレートした。増殖因子存在下において、正常骨髄および腫瘍細胞の両方ともが増殖し、一方増殖因子の非存在下ではＯＣＩ／ＡＭＬ３細胞のみがコロニーを形成した。コロニーのカウントを１４日後に実施し（表１）、そして増殖因子非依存性白血病細胞の完全な消失を証明し、正常骨髄前駆体の保存を証明した。ＯＣＩ／ＡＭＬ３細胞および正常骨髄細胞の１：３の混合で使用した場合に、同一性の結果を観察した。このデータは、混合した正常骨髄の集団における白血病細胞の選択的破壊およびエキソビボでの骨髄浄化におけるＶＳＶの有用性を示す。
【００５０】  表１．正常骨髄細胞と同時培養した急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）細胞の選択的殺傷
ＶＳＶ感染の二週間後に観察された１皿あたりのコロニー（１０４細胞を受容）を、新生物細胞（白血病）ならびに正常造血細胞（好中球、混合、および単球）について下に表にした。
【００５１】
【表１】
0005208343.tif 000002
【００５２】＊＿１皿あたり１０５細胞をプレートした場合でさえ、増殖因子マイナスの皿において白血病コロニーを検出しなかった。
【００５３】  （実施例３：ＶＳＶは正常細胞と比較して、別個の細胞培養物での決定と同様に、新生物細胞で選択的に増殖し、そして新生物細胞を殺傷する）
種々の正常細胞株および形質転換した細胞株に、１００単位のＩＦＮ−αで未処置または前処置のいずれかを行い、０．１ｐｆｕ／ｍｌのＭＯＩでＶＳＶ  Ｉｎｄｉａｎａを感染させ、そして３７℃で１８時間インキュベートした（表２）。それぞれのサンプルからの培養培地をＶＳＶ産生について力価測定した。インターフェロンを用いる正常細胞培養物の前処置は、ウイルス産生を１ｍｌあたり＜１０００感染性ウイルス粒子まで減少させ、一方、腫瘍細胞株は大量のウイルス粒子を産生し続けた（１ｍｌあたり１０５〜１０８プラーク形成単位）。ＶＳＶのより急速なそして劇症性の増殖は、線維芽細胞または上皮起源の初代正常細胞培養物よりも腫瘍細胞において、観察された。種々の細胞型間の差異は、ウイルス粒子の産生だけでなく、顕微鏡レベルで観察される細胞病理学的影響（ｃｐｅ）にも影響した。
【００５４】  表２．ＩＦＮ未処置またはＩＦＮ処置のいずれかの種々の細胞株における、オーバーナイトＶＳＶ感染後のウイルス産生量
【００５５】
【表２】
0005208343.tif 000003
【００５６】  （実施例４：別個の細胞培養物において、レオウイルス３型は新生物細胞を選択的に殺傷し、正常線維芽細胞を選択的に殺傷しない）
ヒト腫瘍細胞（ＨＴ１０８０線維肉腫）および正常細胞（ＣＣＤ９９２ｓｋ、正常ヒト表皮線維芽）を、２４ウェル組織培養皿において約８０％コンフルエンスまで増殖させた。増殖培地を除去し、ＰＰＶＲ−８２４（ヒトレオウイルスＩＩＩ型、Ｄｅａｒｉｎｇ株のプラーク形成クローン）は、１０倍の希釈（ＥｘｐＩ）で１０ＰＦＵ／ウェルに対して、１Ｅ＋６プラーク形成単位（ＰＦＵ）／細胞、または１０倍の希釈で１０７Ｉ〜１００ＰＦＵ／ウェル（ＥｘｐＩＩ）に対して７．２±７ＰＦＵ／細胞となった。ウイルスの添加を伴わないコントロールウェルを、それぞれのプレートに含めた。ウイルスを３７℃で９０分間ロッキングプラットフォームに吸着させた。インキュベーション期間の終わりに、ウイルスの希釈物を除去し、１ｍｌの増殖培地で置換した。次いで、プレートを３７℃、５％ＣＯ２中で５日間インキュベートした。細胞毒性を、比色分析のＭＴＴ（２−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド）アッセイ（Ｃｅｌｌ  Ｔｉｔｅｒ９６、カタログ＃Ｇ４０００，Ｐｒｏｍｅｇａ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｍａｄｉｓｏｎ  ＷＩ  ５３７１１）を用いて定量し、ミトコンドリア酵素活性を検出する５７０ｎｍで監視した（Ｍｏｓｍａｎ，Ｔ．，１９８３，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ  ６５：５５）。ウイルス処置したウェルの生存能力を、未処置のコントロールウェルにおける活性の割合として表現した。このデータを、ＰＦＵ／細胞  対  生存能力（コントロールの割合として）として、グラフにプロットした。ＩＣ５０を、生存可能な量で５０％減少を引き起こすＰＦＵ／ウェルでのウイルスの量とし計算した。新生物細胞はＰＰＶＲ−８２４による殺傷に対して高い感受性を示した（表３）。
【００５７】  表３．別個の細胞培養物において、レオウイルス３型は新生物細胞を選択的に殺傷し、正常線維芽細胞を選択的に殺傷しない）
【００５８】
【表３】
0005208343.tif 000004
【００５９】。
【００６０】  上記の実施例は、本発明の例示として意図されるものであり、制限するものではない。多くの変更および改変は、本発明の真の範囲から逸脱することなしに、行われ得る。