(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
複数のＲＮＡ配列の検出方法であって、同一の連続する反応空間、ＲＮＡを捕捉するためのＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドを固定化した第１の領域、および検出対象となるＲＮＡ配列と相同する配列を有する２種類以上のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した第２の領域を有し、第１の領域と第２の領域が明確に区別され、第２の領域のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドがスポット固定化する担体であって、
該担体表面が親水性である担体を用いて、
（ａ）検出対象のＲＮＡを含む溶液を反応空間に供給し、前記ＲＮＡと固定化されたＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドとをハイブリダイズし前記ＲＮＡを捕捉する工程、
（ｂ）捕捉されたＲＮＡを鋳型にして固定化されたＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドを伸長してcＤＮＡ鎖を合成する工程、
（ｃ）（ｂ）で合成されたcＤＮＡ鎖を鋳型にして、ＤＮＡ鎖を増幅する工程、
（ｄ）増幅したＤＮＡ鎖と固定されたＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドとのハイブリダイズの状況を検出する工程、
を含むＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項２】
前記ＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドがdＴ配列である請求項１記載のＲＮＡ配列の検出
方法。
【請求項３】
工程（ａ）で捕捉されるＲＮＡがmＲＮＡである請求項１又は２記載のＲＮＡ配列の検出
方法。
【請求項４】
工程（ｃ）のＤＮＡ鎖の増幅が、ＰＣＲ、ＬＣＲ、ＳＤＡ、ＲＣＡ、ＴＭＡ、ＩＣＡ、ＮＡＳＢＡ、ＴＲＣの何れかである請求項１〜３いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項５】
工程（ｄ）のハイブリダイズの状況の検出が蛍光インターカレーターによる蛍光検出である請求項１〜４いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項６】
工程（ｃ）のＤＮＡ鎖の増幅がＰＣＲであり、増幅されるＤＮＡ鎖に標識が導入され、工程（ｄ）において導入された標識を検出する請求項１〜４いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項７】
工程（ｃ）において、ＰＣＲ反応系に標識されたモノヌクレオチドを添加する請求項６記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項８】
前記担体の形状が、スライドガラス形状、フィルム形状、マイクロタイタープレート形状、ＰＣＲ用チューブ形状、及びＰＣＲ用マルチウェル形状の中から選択される１つである請求項１〜７いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項９】
前記反応空間形状が、平面、ウェル、容器、及び微細流路の中から選択される１つである請求項１〜８いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項１０】
前記担体において第１の領域と第２の領域が流路中に順に形成されている請求項１〜９いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【請求項１１】
前記担体表面にリン脂質の親水部を構成するリン脂質エステルより誘導される基を有する請求項１いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、プライマーＤＮＡ鎖を表面に固定化した担体を用いて、試料中の複数のＲＮＡ鎖を定量及び定性検出するＲＮＡ検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
遺伝子の発現状況や、菌やウィルスの同定等遺伝子を用いた検出や診断が生化学の分野では、日常に行なわれている。従来遺伝子の検出には、電気泳動による方法が行なわれてきたが、近年になってＤＮＡマイクロアレイにより複数の遺伝子を同時にみる方法が行なわれている。試料中の微量のＲＮＡでも目的とする遺伝子配列を増幅及び検出することによって複数の遺伝子を定性かつ定量的に解析することが可能である。従来からの電気泳動による方法では、ＰＣＲによる反応や電気泳動時間等検出までに時間を要し、また電気泳動の操作に煩わしさがある。しかし、ＤＮＡマイクロフルイによって複数の遺伝子を同時に解析することが可能となった。
【０００３】
現在、ＤＮＡマイクロアレイによる遺伝子配列検出法として表面にプローブＤＮＡ鎖を所定の担体表面に固定化し、標識化したＤＮＡ鎖をハイブリダイズさせて検出させる方法が用いられている。また、近年ＤＮＡ断片を鋳型として担体表面に固定化された伸長用プライマーを伸長させて遺伝子を検出する方法が考案されている。その一つとして非特許文献１には、所定のアミノ−シラン試薬を用いて修飾されたガラス基板の表面に、プライマーとなるＤＮＡ鎖を共有結合させ、基板上でＰＣＲ反応を行わせＤＮＡ増幅を行う技術が開示されている。また、非特許文献２には、ガラス基板の代わりにポリ（メチルメタクリレート）表面にＤＮＡ断片を固定化させたＤＮＡマイクロアレイを用いて、所定のＤＮＡ鎖とのハイブリッド特性およびＰＣＲ反応条件下における熱安定性が評価されており、新規のＰＣＲ技術に適用できるデバイスの可能性を示唆する記載がなされている。
【０００４】
ＤＮＡマイクロアレイを用いたいずれの方法においても、生体サンプルからＲＮＡ抽出と精製、逆転写反応、増幅反応及びＤＮＡマイクロアレイによる検出など操作が非常に煩雑で、各工程におけるサンプルロスやコンタミネーションなどの問題点を有し、安定した遺伝子発現レベルの定量を行うには研究者の技術の熟練を要するのが現状である。
【非特許文献１】Adessi，Celine et al． “Solid Phase DNA amplification：Characterisation of primer attachment and amplification mechanisms” ，Nucleic Acids Research，2000，Vol．20，No.20，e87
【非特許文献２】Fixe ， F. et al ． “Functionalization of poly （ methyl- 5 -methacrylate ）（ PMMA） as a substrate for DNA microarrays” ， NucleicAcids Research，2004，January 12，Vol.32 No.１ ，ｅ9
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明の目的は、操作が簡便で、迅速に複数の標的遺伝子を検出するためのＲＮＡ配列の検出方法を提供することである。本発明者らは、ＲＮＡ抽出及び増幅反応、検出を同一反応空間で行うことで本発明の完成に至った。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は以下の通りである。
（１）複数のＲＮＡ配列の検出方法であって、同一の連続する反応空間、ＲＮＡを捕捉するためのＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドを固定化した第１の領域、および検出対象となるＲＮＡ配列と相同する配列を有する２種類以上のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した第２の領域を有し、第１の領域と第２の領域が明確に区別され、第２の領域のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドがスポット固定化する担体を用いて、
（ａ）検出対象のＲＮＡを含む溶液を反応空間に供給し、前記ＲＮＡと固定化されたＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドとをハイブリダイズし前記ＲＮＡを捕捉する工程、
（ｂ）捕捉されたＲＮＡを鋳型にして固定化されたＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドを伸長してcＤＮＡ鎖を合成する工程、
（ｃ）（ｂ）で合成されたcＤＮＡ鎖を鋳型にして、ＤＮＡ鎖を増幅する工程、
（ｄ）増幅したＤＮＡ鎖と固定されたＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドとのハイブリダイズの状況を検出する工程、
を含むＲＮＡ配列の検出方法。
（２）前記ＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチドがdＴ配列である（１）記載のＲＮＡ配列の
検出方法。
（３）工程（ａ）で捕捉されるＲＮＡがmＲＮＡである（１）又は（２）記載のＲＮＡ配
列の検出方法。
（４）工程（ｃ）のＤＮＡ鎖の増幅が、ＰＣＲ、ＬＣＲ、ＳＤＡ、ＲＣＡ、ＴＭＡ、ＩＣＡ、ＮＡＳＢＡ、ＴＲＣの何れかである（１）〜（３）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（５）工程（ｄ）のハイブリダイズの状況の検出が蛍光インターカレーターによる蛍光検出である（１）〜（４）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（６）工程（ｃ）のＤＮＡ鎖の増幅がＰＣＲであり、増幅されるＤＮＡ鎖に標識が導入され、工程（ｄ）において導入された標識を検出する（１）〜（４）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（７）工程（ｃ）において、ＰＣＲ反応系に標識されたモノヌクレオチドを添加する（６）記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（８）前記担体の形状が、スライドガラス形状、フィルム形状、マイクロタイタープレー
ト形状、ＰＣＲ用チューブ形状、及びＰＣＲ用マルチウェル形状の中から選択される１つである（１）〜（７）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（９）前記反応空間形状が、平面、ウェル、容器、及び微細流路の中から選択される１つである（１）〜（８）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（１０）前記担体において第１の領域と第２の領域が流路中に順に形成されている（１）〜（９）いずれか記載のＲＮＡ配列の検出方法。
（１１）前記担体表面にリン脂質の親水部を構成するリン脂質エステルより誘導される基を有する（１）記載のＲＮＡ配列の検出方法。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、操作が簡便で、迅速に複数の標的ＲＮＡの検出が可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００８】
以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。  
【０００９】
本発明は、複数のＲＮＡ配列の検出方法であって、同一の連続する反応空間、ＲＮＡを捕捉するためのＲＮＡ捕捉オリゴヌクレオチドを固定化した第１の領域、および検出対象となるＲＮＡ配列と相同する配列を有する２種類以上のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した第２の領域を有する担体を用いて、検出対象のＲＮＡを含む溶液を反応空間に供給し、ＲＮＡと固定化されたＲＮＡ捕捉オリゴヌクレオチドとをハイブリダイズし前記ＲＮＡを捕捉する工程、捕捉されたＲＮＡを鋳型にして固定化されたＲＮＡ捕捉オリゴヌクレオチドを伸長してcＤＮＡ鎖を合成する工程、cＤＮＡ鎖を鋳型にして、ＤＮＡ鎖を増幅する工程、増幅したＤＮＡ鎖と固定されたＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドとのハイブリダイズの状況を検出する工程、を含むＲＮＡ配列の検出方法である。
【００１０】
本発明で使用される反応空間は、例えば図１のように同一の連続する反応空間にＲＮＡを捕捉するためのオリゴヌクレオチドを固定化した領域および検出対象となるＲＮＡ配列と相同する配列を有する２種類以上のＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した複数の領域を有するようになっている。
【００１１】
細胞溶解液に含まれるタンパク質などの生体由来成分は逆転写反応および増幅反応の酵素反応を阻害する。また、酵素反応に使用する酵素自体反応空間の内壁に吸着し、反応性を阻害する。そのため、本発明においては、細胞溶解液からＲＮＡを捕捉、精製するため、担体表面は親水性を有し、タンパク質や核酸類の吸着を抑制する性質かつ酵素反応を阻害しない性質を持つことが望ましい。また、担体表面はＲＮＡの捕捉または検出用のオリゴヌクレオチドを固定化するための官能基を有する必要がある。
【００１２】
たとえば、リン脂質の親水部を構成するリン酸エステルより誘導される基を有する第一単位と電子求引性の置換基がカルボニル基に結合してなるカルボン酸誘導基を有する第二単位とを含む高分子物質を表面に配した担体が挙げられる。
【００１３】
以下、この高分子物質について説明する。
【００１４】
このリン脂質の親水部を構成するリン酸エステルより誘導される基を含む第一単位と電子求引性の置換基がカルボニル基に結合してなるカルボン酸誘導基を有する第二単位とを有する高分子物質は、ＤＮＡ鎖の非特異的吸着を抑制する性質とＤＮＡ鎖を固定化する性質とを併せ持つポリマーである。特に、第一単位に含まれるリン脂質の親水部を構成するリン酸エステルより誘導される基は鋳型ＤＮＡ断片の非特異的吸着を抑制する役割を果たし、第二単位に含まれるカルボン酸誘導基はプライマーを化学的に固定化する役割を果たす。すなわち、プライマーは、この高分子物質からなるコーティング層のカルボン酸誘導基の部位で共有結合して、当該の表面に固定化される。
【００１５】
第一の単位は、たとえば、２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン基、６−メタクリロイルオキシヘキシルホスホリルコリン基等の（メタ）アクリロイルオキシアルキルホスホリルコリン基；
２−メタクリロイルオキシエトキシエチルホスホリルコリン基および１０−メタクリロイルオキシエトキシノニルホスホリルコリン基等の（メタ）アクリロイルオキシアルコキシアルキルホスホリルコリン基；
アリルホスホリルコリン基、ブテニルホスホリルコリン基、ヘキセニルホスホリルコリン基、オクテニルホスホリルコリン基、およびデセニルホスホリルコリン基等のアルケニルホスホリルコリン基；
等の基を有し、ホスホリルコリン基がこれらの基中に含まれている構成とすることができる。
【００１６】
また、これらの基のうち、２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンが好ましい。第一単位が２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンを有する構成とすることにより、表面における生体由来成分の非特異的吸着をより一層確実に抑制することができる。
【００１７】
カルボン酸誘導体は、カルボン酸のカルボキシル基が活性化されたものであり、Ｃ＝Ｏを介して脱離基を有するカルボン酸である。カルボン酸誘導体は、具体的には、アルコキシル基よりも電子求引性の高い基がカルボニル基に結合して求核反応が活性化された化合物である。カルボン酸誘導基は、アミノ基、チオール基、水酸基等に対する反応性を有する化合物である。
【００１８】
活性化されたカルボン酸誘導体として、さらに具体的には、カルボン酸であるアクリル酸、メタクリル酸、クロトン酸、マレイン酸、フマル酸などのカルボキシル基が、酸無水物、酸ハロゲン化物、活性エステル、活性化アミドに変換された化合物が挙げられる。カルボン酸誘導基は、こうした化合物に由来する活性化された基であり、たとえば、ｐ−ニトロフェニル基やＮ−ヒドロキシスクシンイミド基等の活性エステル基、―Ｃｌ、−Ｆ等のハロゲン等の基を有することができる。
【００１９】
カルボン酸誘導基のうち、活性エステル基は、穏やかな条件における反応性に優れるため、好ましく用いられる。穏やかな条件としては、たとえば中性またはアルカリ性の条件、具体的にはｐＨ７．０以上１０．０以下、さらに具体的にはｐＨ７．６以上９．０以下、さらにまた具体的にはｐＨ８．０とすることができる。
【００２０】
また、本実施形態の担体のコーティング層に使用される高分子物質は、ホスホリルコリン基およびカルボン酸誘導基以外に他の基を含んでもよい。また、高分子物質は共重合体とすることができる。具体的には、高分子物質がブチルメタクリレート基を含む共重合体であることが好ましい。こうすることにより、高分子物質を適度に疎水化し、この高分子物質の担体表面への吸着性をさらに好適に確保することができる。
【００２１】
具体的には、高分子物質を、２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン（ＭＰＣ）基を有する第一単量体と、ｐ−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート（ＮＰＭＡ）基を有する第二単量体と、ブチルメタリレート（ＢＭＡ）基を有する第三単量体との共重合体とすることができる。これらの共重合体であるｐｏｌｙ（ＭＰＣ−ｃｏ−ＢＭＡ−ｃｏ−ＮＰＭＡ）（ＰＭＢＮ）は、模式的に下記一般式（１）で示される。
【００２２】
【化１】
0005157382.tif 000002
【００２３】
ただし、上記一般式（１）において、ａ、ｂ、およびｃは、それぞれ独立して、正の整数である。また、上記一般式（１）において、第一〜第三単量体がブロック共重合していてもよいし、これらの単量体がランダムに共重合していてもよい。
【００２４】
上記一般式（１）で示される共重合体は、高分子物質の適度な疎水化と、鋳型ＲＮＡ断片の非特異吸着を抑制する性質と、プライマーを固定化する性質とのバランスとに、より一層優れた構成である。このため、このような共重合体を用いることにより、担体表面をより一層確実に高分子物質で被覆するとともに、高分子物質がコーティングされた担体上への鋳型ＲＮＡ断片の非特異的吸着を抑制しつつ、プライマーをさらに確実に共有結合により固定化して担体上に導入することができる。
【００２５】
なお、上記第一の高分子物質の第一単位と上記第二の高分子物質の第一単位とは同一構造であってもよいし、異なる構造であってもよい。また、上記第一の高分子物質がブチルメタクリレート基を含む第三単位を含むとき、この第一の高分子物質の第三単位と上記第二の高分子物質の第三単位とは同一構造であってもよいし、異なる構造であってもよい。
【００２６】
このような第二の高分子物質は、鋳型ＤＮＡ断片の非特異的吸着を抑制するポリマーとして用いられる。このようなポリマーとしては、たとえばホスホリルコリン基が３０モル％、ブチルメタクリレート基が７０モル％の割合で含まれているものであるＭＰＣポリマー（日本油脂社製）を用いることができる。
【００２７】
以上のような高分子物質からなるコーティング層を表面に含む担体は、所定の形状に加工された担体の表面に高分子物質を含む液体を塗布し、乾燥することにより得られる。また、高分子物質を含む液体中に担体を浸漬し、乾燥してもよい。
【００２８】
また、担体として、プラスチック材料を用いた場合には、形状やサイズの変更に対する柔軟性が確保される上に、ガラス担体のものに比べて安価で提供することができるという観点から好ましい。このようなプラスチック材料としては、表面処理の容易性および量産性の観点から、熱可塑性樹脂を用いることができる。
【００２９】
熱可塑性樹脂としては、ある程度耐熱性があれば特に制限はない、耐熱性のある樹脂としてたとえば、ポリエチレン、ポリプロピレン等の直鎖状ポリオレフィン、環状ポリオレフィン、含フッ素樹脂、等を用いることができる。
【００３０】
担体を、検出における反応条件として１００℃近い高温にさらす場合、熱安定性からポリプロピレンや環状ポリオレフィンなどがさらに好ましい。
【００３１】
次に、担体の表面へのプライマー（ＲＮＡを捕捉するためのＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチド）の固定化方法について説明する。
例えば、（ｉ）担体上の高分子物質に含まれる複数の活性エステル基のうち、少なくとも一部の活性エステル基とプライマーとを反応させて共有結合を形成させることにより、担体表面でプライマーを固定化し、続いて（ｉｉ）プライマーを固定化した以外の担体表面の活性エステル基を不活性化する、すなわち残りの活性エステル基を不活性化することにより、プライマーを担体の表面に固定することができる。以下、それぞれの工程について説明する。
【００３２】
上記工程（ｉ）において、鋳型ＲＮＡ断片とアニールするプライマーを担体上に固定化する際には、プライマーを溶解または分散した液体を接触させることにより、高分子物質に含まれる活性エステル基の一部がプライマーと反応して、プライマーの間で共有結合が形成される。
【００３３】
このプライマーを溶解または分散した液体は、例えば中性からアルカリ性、例えばｐＨが７．６以上とすることができる。
【００３４】
また、接触後、担体表面に固定化されなかったプライマーを除去するため、純水や緩衝液で洗浄してもよい。
【００３５】
また、担体に固定化するプライマーには、活性エステル基との反応性を高めるため、アミノ基を導入しておくことが好ましい。アミノ基は活性エステル基との反応性に優れるため、アミノ基が導入されたプライマーを用いることにより、効率よくかつ強固に担体の表面上にプライマーを固定化することができる。アミノ基の導入位置はプライマーの分子鎖末端あるいは側鎖であってもよいが、分子鎖末端に導入されていることが、相補的な鋳型ＲＮＡ断片とのアニーリングをより一層効率よく行うことができるという観点からは、好ましい。
【００３６】
なお、担体の材料をプラスチックとした場合、形状は板状には限られず、９６穴や３８４穴に代表されるマイクロタイタープレートの形状、スライドグラスに代表される基板状のもの、ＰＣＲチューブ形状のもの、あるいはシート状、フィルム状のもの、あるいは微細流路の形状等が上げられる。
【００３７】
上記により得られるオリゴヌクレオチドが固定化された担体は、一般的なプラスチック表面に比べ、ポリマーの親水性基の効果により担体表面への非特異的吸着が抑制されている。このため例えば細胞溶解液などの生体由来成分が混在するサンプルから表面に固定化されたプライマーに相補的なＲＮＡが捕捉され、上清を取り除き、洗浄を行うことで捕捉されたＲＮＡの精製を行うことができる。
【００３８】
検出のため固定化されるオリゴヌクレオチドは、スポット固定化することで複数の配列を検出することができる。
【００３９】
以下、この担体を用いたＲＮＡ検出方法の具体的な態様について説明する。以下の実施態様については、検出対象のＲＮＡを含む溶液が、細胞溶解液を含む試料である場合について例示する。
（第一の実施態様）
図１は、上記担体から得られる反応空間の一例を示す。同一反応空間内にＲＮＡ捕捉するためのオリゴヌクレオチド部分（ＲＮＡ捕捉部）と検出するためのオリゴヌクレオチド部分（検出部）からなる。図２は、実施態様としてのＲＮＡ検出方法の手順を示すフローチャートである。図３および図４は、図２のフローチャートにしたがって担体の反応空間で行われる反応を模式的に示す図である。
【００４０】
このＲＮＡ検出法は、担体１２に設けられた反応空間２０に細胞溶解物を含む試料２２導入し（ステップＳ１０）、ハイブリダイゼーションを行う（ステップＳ２０）第１段階と、洗浄を行う（ステップＳ３０）第２段階と、ＤＮＡ鎖伸長用酵素系およびヌクレオチドモノマーを含む試料２３を導入し（ステップＳ４０）、細胞溶解物に含まれるＲＮＡ鎖１６を鋳型にして、ＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチド（プライマー１４）のＤＮＡ鎖伸長反応を行って、ｃＤＮＡ鎖１８を形成する（ステップＳ５０）第３段階と、ｃＤＮＡ鎖１８を含む反応系に伸長用ＤＮＡプライマー、ＤＮＡ鎖伸長用酵素系、ヌクレオチドモノマーおよびラベル化ヌクレオチドモノマーを含む試料２４を導入し（ステップＳ６０）、ｃＤＮＡ鎖１８を鋳型にして、ＰＣＲ反応を行い、ラベル化ＤＮＡ鎖２１を増幅する（ステップＳ７０）と、増幅されたＤＮＡ２１と、同反応空間中に固定化されたＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチド（プライマー１５）にハイブリダイズし、ＤＮＡ鎖２１を鋳型にしてＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチドのＤＮＡ鎖伸長反応を行って、ラベル化ＤＮＡ鎖２３を作製する（ステップＳ８０）第４段階と、ラベルを利用し検出する（ステップＳ９０）第5段階とを含むものである。
【００４１】
ステップＳ１０において導入される細胞溶解液中にＤＮＡ鎖伸長用酵素系による酵素反応を阻害しない場合、また酵素反応への阻害を低減させる工夫がある場合、細胞溶解液を含む試料２２にＤＮＡ鎖伸長用酵素系およびオリゴヌクレオチドモノマーを加え、ステップＳ２０およびＳ３０を省略することができる。
【００４２】
ステップＳ２０では、細胞溶解液中の標的ＲＮＡ鎖１６と固相化したプライマー１４とのハイブリダイゼーションを行い、標的ＲＮＡ鎖１６は捕捉される。（図３Ｂ、図４Ｂ）固相化したプライマー１４の配列と相補的でないＲＮＡ鎖はハイブリダイゼーションすることはできず、液相に存在する。プライマー１４にオリゴｄＴプライマーを用いることにより、一般的にｍＲＮＡがもつポリＡとのハイブリダイゼーションによって、ｍＲＮＡを捕捉することができる。また、ポリＡ以外にプライマー１４にある特異的な配列をもつＤＮＡプライマーを用いることにより、相補的なＲＮＡ鎖のみを捕捉することができる。
【００４３】
ステップＳ３０では、反応空間２０を洗浄することで、プライマー１４とＲＮＡ鎖１６との二本鎖を残し反応空間内の試料２２を取り除くことができる。洗浄において上記ポリマーをコートした表面は親水性基に細胞溶解液中に含まれる生体分子を無吸着効果があるために、純粋なＲＮＡ鎖１６として精製することができる。その表面に無吸着性の低いポリスチレン、ポリプロピレンなどのプラスチック表面を用いた場合、後工程の酵素反応阻害物質を取り除くことができず検出において悪影響を与える。
【００４４】
ステップＳ４０では、逆転写反応に使用する酵素反応系を導入する。例えば、逆転写反応能力を持つ酵素としてReverse Transcriptase M-MLV (Rnase H-)やｒＴｔｈポリメラーゼなどが上げられる。
【００４５】
ステップＳ５０では、プライマー１４の３'末端でＲＮＡ鎖１６を鋳型としてＤＮＡ鎖伸長用酵素系の作用により逆転写反応が起こり、ＤＮＡ鎖が作製される。ＲＮＡ鎖１６に相補的なｃＤＮＡ鎖１８が基板１２の上に形成される。（図３Ｃ、図４Ｃ）また、ＲＮＡ鎖１６に相補的な配列を持つプライマーが液相に存在する場合、プライマーがＲＮＡ鎖１６とハイブリダイゼーションし逆転写反応が起こる。
【００４６】
ステップＳ６０では、ｃＤＮＡ鎖１８を鋳型ＤＮＡ鎖としてのｃＤＮＡ鎖１８の一部と相補的な配列を有するプライマー（不図示）、ＤＮＡ鎖伸長酵素系、ヌクレオチドモノマーおよびラベル化ヌクレオチドモノマーを含むＰＣＲ試薬を導入する。ＤＮＡ鎖伸長酵素系としては、例えばＰＣＲで代表的に使用されるTaqポリメラーゼなどの耐熱性酵素が挙げられる。
【００４７】
ステップＳ７０では、ｃＤＮＡ鎖１８とｃＤＮＡ鎖１８の一部と相補的な配列を有するプライマーとＤＮＡ鎖伸長酵素系の作用によりＤＮＡ増幅反応が起こり、ＤＮＡ鎖２１が増幅される（図３Ｄ、図４Ｄ）。このときステップＳ６０においてラベル化ヌクレオチドモノマーが含まれる場合、ＤＮＡ鎖２１がラベル化される。
【００４８】
ステップ８０では、増幅反応によって作製されたＤＮＡ鎖２１は、反応空間に固定化された相補的な配列を有するオリゴヌクレオチド（プローブ１５）とハイブリダイゼーションを行い、捕捉される。このときプライマー１５の３'末端において、ＤＮＡ鎖２１を鋳型としてＤＮＡ鎖伸長用酵素系の作用によりＤＮＡ鎖伸長反応が起こり、ＤＮＡ鎖２１に相補的なＤＮＡ鎖２３が基板１２の上に形成される。このときステップＳ６０においてラベル化ヌクレオチドモノマーが含まれる場合、ＤＮＡ鎖２３がラベル化される。
【００４９】
ステップＳ９０では、ステップ８０でラベル化されたＤＮＡ鎖２１および固相されたＤＮＡ鎖２３を、ラベルを利用し検出することができる。ラベル化に蛍光物質を用いることにより、蛍光顕微鏡、蛍光スキャナーなどで検出することができる。また、ラベルにビオチンを用い、アビジン固定化アルカリフォスファターゼなどの酵素を結合させることで、高感度で検出することができる。検出されるシグナルを数値化することにより、定量を行うことができる。
【００５０】
ステップＳ４０〜ステップＳ８０において、ｃＤＮＡ作製を行う逆転写酵素等とＰＣＲ反応を行うＤＮＡポリメラーゼ等を同一反応溶液で行うことができる１ステップタイプのＲＴ−ＰＣＲ反応液を用いることにより、ステップＳ６０を省略することができる。
【実施例】
【００５１】
（ＰＭＢＮコート反応空間の作製）
プラスチック板を切削によって、図１のような反応空間を作製した。この反応空間を２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンーブチルメタクリレートーｐ−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート共重合体（ｐｏｌｙ（ＭＰＣ−ｃｏ−ＢＭＡ−ｃｏ―ＮＰＭＡ）（ＰＭＢＮ）、各基は、モル％で２５：７４：１）の０．５重量％エタノール溶液に浸漬することにより、表面にホスホリルコリン基と活性エステル基とを有する高分子物質を導入して、ＰＭＢＮをコ−トした担体を得た。以下ＰＭＢＮコート担体と称す。
【００５２】
（プライマーの固定）
プライマーとして、表１に示す５’末端がアミノ基で修飾されたオリゴＤＮＡを各々０．２５Ｍ炭酸バッファ（ｐＨ９．０）を用いて溶解し、１０μＭのオリゴＤＮＡ溶液を調製した。捕捉用プライマーのオリゴDNA溶液を上記PMBNコート担体に図１のように固定化した。また、検出用プライマーのオリゴＤＮＡ溶液を同様に図１のようにスポット形状に点着し、担体を８０℃で１時間放置することで、担体に固定化した。超純水により洗浄を行った後、ブロッキング処理をおこなった。
【００５３】
このブロッキング処理とは、担体表面にオリゴＤＮＡを固定化させて、固定化プライマーとした後に、担体の表面に存在する未反応の活性エステルを不活性化して、試料中のＤＮＡ鎖およびＲＮＡ鎖、その他たんぱく質などの生体由来物質などが非特異的に結合することを防止するための処理をいう。
【００５４】
具体的には、ＰＭＢＮコート担体について、ブロッキング溶液として、１ｍｏｌ／ｌのＮａＯＨ溶液を反応空間に４００μｌ分注し、５分間室温で放置した後、ブロッキング液を除き、超純水により洗浄をおこなった。
【００５５】
ブロッキング処理後、ＰＢＳ（−）に１％ＢＳＡを反応空間に４００μｌを分注し、室温で２時間放置し、ＰＢＳ（−）に０．０５％の濃度でＴｗｅｅｎ２０を含有する洗浄溶液を４００μｌ分注し吸引除去を３回で洗浄を行った後、乾燥させた。
【００５６】
【表１】
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【００５７】
（ラット組織からＲＮＡの精製）
正常ラットおよび高血圧肥満ラットの脂肪細胞を用意し、各細胞にグアニジンを含む細胞溶解液を加え、ピペッティング等によりよく攪拌し、ラット脂肪細胞の細胞溶解液を得た。これら溶液を希釈したものを別々のＰＭＢＮコート担体に５０μｌを分注し、室温で１５分静置した。静置後、界面活性剤を含む緩衝液を２００μｌ分注、吸引を繰り返し2回洗浄した。担体表面上のｄＴプライマーによりポリＡを有するｍＲＮＡが捕捉されており、細胞溶解液に含まれるｍＲＮＡ以外の生体由来物質を除去することができる。
【００５８】
（ｍＲＮＡから固相ｃＤＮＡの合成）
反応液として、Reverse Transcriptase M-MLV (ＲＮＡse H-)、５×Reverse Transcriptase M-MLV Buffer 、ＲＮＡse Inhibitor(Super)、２０ｍＭｄＴＴＰ、２０ｍＭｄＡＴＰ、２０ｍＭｄＧＴＰ、２０ｍＭｄＣＴＰ、ＤＥＰＣ処理水（treated water）を加えて調製した。この溶液を各担体に５０μｌを分注し、４２℃で１５分以上インキュベートした。インキュベート後、溶液の除去を行った。
【００５９】
（固相ｃＤＮＡからＰＣＲ反応）
反応液として、ExTaq HS（タカラバイオ製）、10×ExTaq Buffer、１０μM  PCR Forwardプライマー、１０μM  PCR Reverseプライマー、２０ｍMビオチン化ｄUＴＰ、２０ｍＭｄＡＴＰ、２０ｍＭｄＧＴＰ、２０ｍＭｄＣＴＰ、ＤＥＰＣ処理水（treated water）を加えて調製したものを担体に５０μｌを分注し、PCRを行った。このとき、増幅されたPCR産物と検出用の固定化プライマーの伸長反応が起こり、ラベル化される。なお、Forwardプライマー、Reverseプライマーはラット由来β Actinおよびadrenergic receptor β3を選択した。プライマーの配列について表２に示す。
【００６０】
【表２】
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【００６１】
（発色反応）
上記伸長反応の後、ＤＮＡ伸長用反応液の除去および洗浄を行い、ストレプトアビジンを標識したアルカリフォスファターゼ溶液を基板表面に供給し、３７℃で３０分放置後、アルカリフォスファターゼ溶液を除去後、基板の洗浄を行い、続いてNBT/BICP溶液を供給し、３７℃で３０分静置し、酵素反応を行った。基板を洗浄した後、PNBMコート担体表面において明確にスポット状に点着部分への着色が観察できた。基板のプライマー点着部分の着色像をCCDカメラにより取り込み、取り込んだデジタルデータを画像処理ソフト（NIHイメージ）により処理し、着色度合いを数値化した。結果を表３に示す。
【００６２】
【表３】
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【００６３】
スポット状に得られたシグナル値はPCR産物量に依存した値を示しており、PCRにおける出発鋳型量を示している。シグナル値を得ることで、細胞溶解液中に含まれる標的ＲＮＡの発現量を解析することができる。複数のスポットを同一反応空間に配することで、多検体の検査をすることができる。
【図面の簡単な説明】
【００６４】
【図１】本発明に用いる担体の一実施形態を模式的に示す図である。
【図２】本発明のＲＮＡ検出方法の一実施形態を示すフローチャートである。
【図３】図２のフローチャートにしたがって担体の反応空間で行われる反応を模式的に示す図である。
【図４】図２のフローチャートにしたがって担体の反応空間で行われる反応を模式的に示す図である。
【符号の説明】
【００６５】
１２  担体
１４  ＲＮＡ捕捉用オリゴヌクレオチド
１５  ＲＮＡ配列検出用オリゴヌクレオチド
１６  ＲＮＡ鎖
１８  ｃＤＮＡ鎖
２０  反応空間
２１  ラベル化ＤＮＡ鎖
２２  細胞溶解物を含む試料
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【配列表】
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