(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基が置換された組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子であって、配列番号：４、配列番号：６、配列番号：８、配列番号：１０、配列番号：１２、配列番号：１４、配列番号：１６または配列番号：１８で示されるアミノ酸配列から成る組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子。
【請求項２】
天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基に対応するアミノ酸残基がアラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基であることを条件として、請求項１に記載のアミノ酸配列のいずれか１つに対して一個または数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入または付加を有するアミノ酸配列から成り、且つシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性がＮ−アセチルアクトサミンおよびＴ抗原に対する結合親和性より高いことを特徴とする、組換ガレクチン分子。
【請求項３】
請求項１または２に記載の組換ガレクチン分子をコードする核酸分子。
【請求項４】
転写制御要素に機能的に結合した請求項３に記載の核酸分子を含む発現ベクター。
【請求項５】
シアル酸を含む糖鎖の分析方法であって、以下の、
（１）シアル酸を含む糖鎖を有する被検物質が存在することが予測される試料と請求項１または２に記載の組換ガレクチン分子を、該被検物質と組換ガレクチン分子が結合するのに充分な条件下で接触させる工程、および
（２）前記被検物質と組換ガレクチンの結合または非結合を観測する工程、
を含むことを特徴とする、シアル酸を含む糖鎖の分析方法。
【請求項６】
組換ガレクチン分子が、請求項１に記載の組換ガレクチン分子である、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
被検物質が、糖鎖自体、糖蛋白質若しくは糖脂質、或いは該糖鎖自体、糖蛋白質若しくは糖脂質を含む細胞、擬細胞または細胞膜である、請求項５または６に記載の方法。
【請求項８】
被検物質を含む試料が生物学的流体である、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
請求項１または２に記載の組換ガレクチン分子を構成員として含むレクチン・ライブラリー。
【請求項１０】
キイロナメクジ・アグルチニン（ＬＦＡ）、イヌエンジュマメ・ヘマグルチニン（ＭＡＨ）またはセイヨウニワトコ・アグルチニン（ＳＮＡ）を更に含む、請求項９に記載のレクチン・ライブラリー。
【請求項１１】
請求項９または１０に記載のレクチン・ライブラリーの各構成員が基材上の所定の位置に固相化されているレクチン・チップ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子およびその改変体に関する。また、本発明は、当該組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子またはその改変体をコードする核酸分子、該核酸分子を含む発現ベクターに関する。更に、本発明は、組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子またはその改変体を用いる糖鎖の分析方法並びに該方法に用いられるレクチン・ライブラリーおよびレクチン・チップに関する。
【背景技術】
【０００２】
ヤナギマツタケ・ガレクチン（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ  ｇａｌｅｃｔｉｎ：以下、「ＡＣＧ」とも称する。）は、Ｙａｇｉらによりヤナギマツタケの子実体から最初に単離されたレクチンの一種である（非特許文献１）。同文献で、Ｙａｇｉらは、ＡＣＧがシアリルα２，３−ガラクトース構造（ＮｅｕＡｃα２−３Ｇａｌβ−）に対して高い親和性を有しており、特にシアリルα２，３−ラクトース（ＮｅｕＡｃα２−３Ｇａｌβ１−４Ｇｌｃ）やシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン（ＮｅｕＡｃα２−３Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃ）に対して高い結合親和性／特異性を示すことを報告している。
【０００３】
しかしながら、ＡＣＧは、シアル酸に特異的というよりはむしろガラクトシル糖鎖に特異的なレクチン分子種（ガレクチン）とみなされている（たとえば、非特許文献２および特許文献１等）。つまり、非特許文献１ではＡＣＧのシアリルα２，３−ラクトースに対する親和性がラクトースに対する親和性の１００倍近くに達するとはされているものの、該ＡＣＧは、シアル酸残基自体に対しては低い親和性しか示さないことも知られている（非特許文献２）。
【０００４】
更に、このようなＡＣＧの糖鎖認識機構に関連して、非特許文献２は、ＡＣＧ／ラクトース、ＡＣＧ／３’−ラクトースおよびＡＣＧ／シアリルα２，３−ラクトースの各結晶についてのＸ線回折実験を行ない、その結果として、ＡＣＧの糖鎖結合部位中、４６位アスパラギン、６２位ヒスチジン、６６位アルギニン、７５位アスパラギンおよび８６位グルタミン酸が、ラクトース中のガラクトースおよびグルコース単位との水素結合に寄与していることを報告している。一方、ＡＣＧとシアリルα２，３−ラクトースとの結合に関しては、更に４４位のセリン、７７位アルギニンおよび８３位トリプトファンが、シアリルα２，３−ラクトース内のシアル酸単位との間で水素結合を形成することを確認している。また、非特許文献２は、ＡＣＧにおいては上記水素結合に関与する個々のアミノ酸に加えて、４４位セリン−４５位プロリン−４６位アスパラギンを含む独特のループ構造が、当該ガレクチン分子のラクトースおよびシアリルα２，３−ラクトースに対する特有の結合特異性を発現する上で必須であると結論している。（なお、天然型ＡＣＧのアミノ酸配列は、ＮＣＢＩのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｃｏｄｅ：１ＷＷ４Ａとして公開され、該配列はトレオニンから開始する１６０アミノ酸残基からなるものとされているが、非特許文献２は当該ＮＣＢＩ配列のＮ末端に１つのＡｃ−セリンが付加された配列に基づいてアミノ酸番号を付しているので、ＮＣＢＩのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｃｏｄｅ：１ＷＷ４Ａ記載の配列に従えば、たとえば非特許文献２での４６位アスパラギンはＮＣＢＩ配列の４５位アスパラギンに、８６位のグルタミン酸はＮＣＢＩ配列の８５位グルタミン酸に対応する。本明細書では、以下、ＮＣＢＩ配列にしたがってアミノ酸番号を参照する。）
【０００５】
ところで、近年、シアル酸を有する糖鎖が生物学的に重要な機能を担っていることが明らかになってきている。たとえば、非特許文献３は、ウシ末梢神経α−ジストログリカン上の糖鎖構造がＮｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ１−２Ｍａｎ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ（：シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンβ１，２−マンノース−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ）であることを同定している。α−ジストログリカン（α−ｄｙｓｔｒｏｇｌｙｃａｎ）は、膜貫通蛋白質β−ジストログリカン（β−ｄｙｓｔｒｏｇｌｙｃａｎ）と細胞外マトリックス中のラミニンとを架橋する糖蛋白質であるが、筋細胞膜においてβ−ジストログリカンは更に細胞内ジストロフィン（ｄｙｓｔｒｏｐｈｉｎ）と結合し、次いで該ジストロフィンはアクチン細胞骨格と結合することから、これらの複合体における異常と筋ジストロフィーの関連が示唆されている（非特許文献４）。また、特許文献１も先天性グリコシル化異常症（Ｃｏｎｇｅｎｉｔａｌ  Ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ  ｏｆ  Ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ、ＣＤＧ）とシアル酸含有糖鎖の関連を指摘する。
【０００６】
しかるに、シアル酸含有糖鎖の精緻な識別および分析は生化学および臨床の興味深い対象であり、そのような目的に応え得るシアル酸特異的レクチン分子種探索の重要性も認識されてきている（非特許文献１など）。
【０００７】
特許文献２は、遺伝子組換技術による天然レクチン分子の糖鎖特異性の修飾、および該遺伝子組換レクチン分子を用いた糖鎖の識別について記述する。しかしながら、該文献も、ＡＣＧのシアル酸／ラクトースおよびＮ−アセチルラクトサミン含有糖鎖に対する結合特性の変更については開示していない。
【０００８】
【特許文献１】特開２００８−３２５２０号公報
【特許文献２】国際公開第ＷＯ２００２／０６６６３４号パンフレット
【非特許文献１】Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｖｏｌ．１４，ｐｐ．２８１−２８８  （１９９７）
【非特許文献２】Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，Ｖｏｌ．３５１，ｐｐ．６９５−７０６（２００５）
【非特許文献３】Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２７２，Ｎｏ．４，ｐｐ．２１５６−２１６２（１９９７）
【非特許文献４】Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２７８，Ｎｏ．１８，ｐｐ．１５４５７−１５４６０（２００３）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
したがって、本発明は、シアル酸含有糖鎖に対する特異性が改善されたレクチン分子を提供することを目的とする。より具体的には、糖鎖のシアリルα２，３−ラクトースおよびシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン構造に特異的で、対応する非シアル化糖鎖との結合親和性が制限された組換レクチン分子を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
天然型ＡＣＧ分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸を特定のアミノ酸で置換することで、対応する非シアル化糖鎖との結合が制限されることが見出された。この知見は、非特許文献２が、ＡＣＧの８５位（８６位）グルタミン酸と糖鎖のラクトースとの間の水素結合の存在を明らかにしてはいるが、同時にその他の複数のアミノ酸の重要な関与も指摘されているにも拘らず、唯一、当該８５位グルタミン酸を置換するだけで、ＡＣＧの糖鎖結合性が実質的に変更され得ることを示した点で、驚嘆すべきものであった。また、いずれの公知文献も、天然型ＡＣＧ分子の８５位グルタミン酸を置換すべきアミノ酸が、アラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸であることを示唆してはいない。したがって、本発明の第１の局面では、
（１）天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基が、アラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基で置換されていることを特徴とする、組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子が提供される。
【００１１】
上記の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子は、典型的には、以下の：
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＡｌａＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：４）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＡｒｇＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：６）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＬｙｓＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：８）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＡｓｐＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：１０）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＣｙｓＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：１２）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＧｌｙＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：１４）、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＳｅｒＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：１６）、または
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＴｈｒＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：１８）
を有する。したがって、本発明の第２の局面では、
（２）配列番号：４、配列番号：６、配列番号：８、配列番号：１０、配列番号：１２、配列番号：１４、配列番号：１６または配列番号：１８で示されるアミノ酸配列から成る、上記（１）に記載の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子が提供される。
【００１２】
更に本発明は、上記の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の改変体（本明細書では、上記の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子も含めて、「組換ガレクチン分子」とも称する。）も意図する。当該改変体は、天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基に対応するアミノ酸残基がアラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基であることを条件として、上記の各組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列と実質的に相同なアミノ酸配列から成ることができ、ただし、該改変体は上記組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子と実質的に同等の機能、特に非シアル化糖鎖に対する制限された結合性を示すものであり得る。したがって、本発明の第３の局面では、
（３）天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基に対応するアミノ酸残基がアラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基であることを条件として、上記（２）に記載のアミノ酸配列のいずれか１つに対して一個または数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入または付加を有するアミノ酸配列から成り、且つシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性がＮ−アセチルアクトサミンおよびＴ抗原に対する結合親和性より高いことを特徴とする、組換ガレクチン分子が提供される。
【００１３】
本発明は、本発明の組換ガレクチン分子をコードする核酸分子および当該核酸分子を発現するベクターにも関する。これらの核酸分子およびベクターは、本発明の組換ガレクチン分子を製造する上で好適に利用することができる。すなわち、本発明の第４および第５の局面では、それぞれ、
（４）上記（１）乃至（３）のいずれかに記載の組換ガレクチン分子をコードする核酸分子、および
（５）転写制御要素に機能的に結合した上記（４）に記載の核酸分子を含む発現ベクターが提供される。
【００１４】
更に、本発明は、シアル酸を含む糖鎖のより精緻且つ簡便な分析方法を提供する。シアル酸含有糖鎖の生物学的重要性にも鑑みれば、シアル酸含有糖鎖を対応する非シアル化糖鎖と明確に識別し得る本発明の組換ガレクチン分子の利点は明白である。したがって、本発明の第６乃至第９の局面は、それぞれ、
（６）シアル酸を含む糖鎖の分析方法であって、以下の、
（ｉ）シアル酸を含む糖鎖を有する被検物質が存在することが予測される試料と上記（１）乃至（３）のいずれかに記載の組換ガレクチン分子を、該被検物質と組換ガレクチン分子が結合するのに充分な条件下で接触させる工程、および
（ｉｉ）前記被検物質と組換ガレクチンの結合または非結合を観測する工程、
を含むことを特徴とする、シアル酸を含む糖鎖の分析方法；
（７）組換ガレクチン分子が、上記（２）に記載の組換ガレクチン分子である、上記（６）に記載の方法；
（８）前記被検物質が、糖鎖自体、糖蛋白質若しくは糖脂質、或いは該糖鎖自体、糖蛋白質若しくは糖脂質を含む細胞、擬細胞または細胞膜である、上記（６）または（７）に記載の方法；および
（９）前記被検物質を含む試料が生物学的流体である、上記（８）に記載の方法を提供する。
【００１５】
上記の糖鎖分析方法においては、本発明の組換ガレクチン分子とは異なる糖鎖結合特異性を有する公知のその他のレクチン分子に対する被検物質の結合性を同時に観測することも好ましい態様である。そのような分析は、本発明の組換ガレクチン分子の利用と相俟って、より詳細な被検物質上の糖鎖構造のプロファイリングを可能にする。しかして、そのような分析では、本発明の組換ガレクチン分子およびその他の公知のレクチン分子を含むレクチン・ライブラリーを利用することが有利である。その他の公知レクチン分子としては、たとえば非特許文献１に言及される、キイロナメクジ・アグルチニン（ＬＦＡ）、イヌエンジュマメ・ヘマグルチニン（ＭＡＨ）またはセイヨウニワトコ・アグルチニン（ＳＮＡ）が挙げられる。これらの天然レクチン分子もシアル酸関連糖鎖に特異的であることが知られており、しかして、これらのレクチン分子を利用することで、糖鎖のシアル酸部分以外の構造の相違も把握し得るであろう。したがって、本発明の第１０および第１１の局面では、それぞれ、
（１０）上記（１）乃至（３）のいずれかに記載の組換ガレクチン分子を構成員として含むレクチン・ライブラリー、および
（１１）キイロナメクジ・アグルチニン（ＬＦＡ）、イヌエンジュマメ・ヘマグルチニン（ＭＡＨ）またはセイヨウニワトコ・アグルチニン（ＳＮＡ）を更に含む、上記（８）に記載のレクチン・ライブラリーが提供される。
【００１６】
上記のレクチン・ライブラリーを所謂レクチン・チップの形態に構成することの利点は当業者にとって明らかであろう。端的には、該レクチン・チップの利用により、いっそう簡便に本発明の糖鎖分析方法を成し得る。したがって、本発明の更なる局面は、
（１２）上記（１０）または（１１）に記載のレクチン・ライブラリーの各構成員が基材上の所定の位置に固相化されているレクチン・チップである。
【発明の効果】
【００１７】
本発明の組換ガレクチン分子を利用することにより、生物学的に重要なシアル酸含有糖鎖のより精緻且つ簡便な分析を達成し得る。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子
本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子は、天然型ヤナギマツタケ（Ａｇｒｏｃｙｂｅ  ｃｙｌｉｎｄｒａｃｅａ）由来ガレクチン分子のアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基が、アラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基で置換されていることを特徴とする。当該天然型ヤナギマツタケ由来ガレクチン分子のアミノ酸配列は、ＮＣＢＩのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｃｏｄｅ：１ＷＷ４Ａとして公開されており、具体的には、
ＴｈｒＴｈｒＳｅｒＡｌａＶａｌＡｓｎＩｌｅＴｙｒＡｓｎＩｌｅＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＳｅｒＶａｌＡｓｐＬｅｕＡｌａＡｌａＰｒｏＶａｌＴｈｒＴｈｒＧｌｙＡｓｐＩｌｅＶａｌＴｈｒＰｈｅＰｈｅＳｅｒＳｅｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＳｅｒＡｌａＧｌｙＡｌａＧｌｙＳｅｒＰｒｏＡｓｎＡｓｎＴｈｒＡｌａＬｅｕＡｓｎＬｅｕＬｅｕＳｅｒＧｌｕＡｓｎＧｌｙＡｌａＴｙｒＬｅｕＬｅｕＨｉｓＩｌｅＡｌａＰｈｅＡｒｇＬｅｕＧｌｎＧｌｕＡｓｎＶａｌＩｌｅＶａｌＰｈｅＡｓｎＳｅｒＡｒｇＧｌｎＰｒｏＡｓｎＡｌａＰｒｏＴｒｐＬｅｕＶａｌＧｌｕＧｌｎＡｒｇＶａｌＳｅｒＡｓｎＶａｌＡｌａＡｓｎＧｌｎＰｈｅＩｌｅＧｌｙＳｅｒＧｌｙＧｌｙＬｙｓＡｌａＭｅｔＶａｌＴｈｒＶａｌＰｈｅＡｓｐＨｉｓＧｌｙＡｓｐＬｙｓＴｙｒＧｌｎＶａｌＶａｌＩｌｅＡｓｎＧｌｕＬｙｓＴｈｒＶａｌＩｌｅＧｌｎＴｙｒＴｈｒＬｙｓＧｌｎＩｌｅＳｅｒＧｌｙＴｈｒＴｈｒＳｅｒＳｅｒＬｅｕＳｅｒＴｙｒＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｕＧｌｙＴｈｒＳｅｒＩｌｅＰｈｅＳｅｒＴｈｒＶａｌＶａｌＧｌｕＡｌａＶａｌＴｈｒＴｙｒＴｈｒＧｌｙＬｅｕＡｌａ（配列番号：２）
を有するものとして特定されている。なお、非特許文献２では上記アミノ酸配列のＮ末端にＡｃ-セリンが付加された配列に基づいてアミノ酸番号が付されているので、本発明における８５位グルタミン酸とは非特許文献２でいう８６位グルタミン酸と同一である。
【００１９】
上記したように、この天然型ＡＣＧは必ずしもシアル酸含有糖鎖に対してのみ特異的に結合するわけではない。たとえば、後記の実施例に示されるように、天然型ＡＣＧは、Ｎ−アセチルラクトサミン（Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ）に対して、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン（Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ）に対するのと同等以上の結合親和性を有し得る。同様に、天然型ＡＣＧは、Ｔ抗原（Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃα）に対して、シアリルα２，３−Ｔ抗原（Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃα）対するのと同等以上の結合親和性を有する。したがって、天然型ＡＣＧを用いて被検物質上のシアル酸含有糖鎖、たとえばシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンや、シアリルα２，３−Ｔ抗原の分析を行なう際、試料中に混在するＮ−アセチルラクトサミン或いはＴ抗原により当該分析が妨害され得る。
【００２０】
しかして、本発明は、天然型ＡＣＧの糖鎖結合特異性に制限をかけること、言い換えれば、対応する非シアル化糖鎖との結合親和性を制限することでシアル酸含有糖鎖に対する特異性を向上させるものであるが、上記のとおり、その目的は、天然型ＡＣＧのアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基を、アラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基で置換することにより達成され得る。ここにおいて、同じく後記の実施例に示されるように、天然型ＡＣＧの８５位グルタミン酸残基のアラニンによる置換体（クローン１）、アルギニンによる置換体（クローン２）、リシンによる置換体（クローン３）、アスパラギン酸による置換体（クローン４）、システィンによる置換体（クローン５）、グリシンによる置換体（クローン６）、セリンによる置換体（クローン７）およびトレオニンによる置換体（クローン８）は、いずれもシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン及び／又はシアリルα２，３−ラクトースに対して実質的な結合親和性を保持しているが、それらの置換体ではＮ−アセチルラクトサミンおよびＴ抗原に対する結合親和性が顕著に制限されている。また、グルタミンによる置換体（クローン９）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースの他にシアリルα２，３−Ｔ抗原に対する実質的な結合親和性も保持されている。
【００２１】
その他、ヒスチジンによる置換体（クローン１０）では、シアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性のみが有意に保存されているが、やはりＮ−アセチルラクトサミンおよびＴ抗原に対しては実質的な結合親和性が観測されない。
【００２２】
他方で、メチオニンによる置換体（クローン１４）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびＮ−アセチルラクトサミンの双方に対する結合親和性が残存している。そして、プロリンによる置換体（クローン１６）、トリプトファンにより置換体（クローン１７）およびチロシンによる置換体（クローン１８）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性までもが損なわれている。
【００２３】
したがって、本発明においては、主に上記のアラニン置換体（クローン１）、アルギニン置換体（クローン２）、リシン置換体（クローン３）、アスパラギン酸置換体（クローン４）、システィン置換体（クローン５）、グリシン置換体（クローン６）、セリン置換体（クローン７）およびトレオニン置換体（クローン８）の利用が意図され、具体的にそれらの置換体は、それぞれ、配列番号：４、配列番号：６、配列番号：８、配列番号：１０、配列番号：１２、配列番号：１４、配列番号：１６および配列番号：１８で示されるアミノ酸配列から成るものである。
【００２４】
組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の改変体
本発明の範囲には上記の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の機能的な改変体も包含される。ここで、当該改変体とは、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の生物活性に実質的に類似の生物活性（機能的または構造的）を有する化合物である。すなわち、本発明の「改変体」という用語は、上記組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列から誘導された配列を有する任意のフラグメント、変異体、アナログおよび同族体、または化学的誘導体を含むものとする。「フラグメント」という用語は本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の任意のポリペプチドサブセットを指すものとする。「変異体」という用語は、本発明のインタクトな組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子またはそのフラグメントに構造的、機能的および実質的に類似の分子を指すものとする。両方の分子が実質的に類似の構造を有するか、両方の分子が類似の生物活性を有するならば、その分子は実質的に類似である。そのため、その２つの分子が実質的に類似の活性を有するならば、それらの分子の一方の構造が他方に無くとも、または２つのアミノ酸配列が完全に同一でなくとも、それらの分子は変異体と考えられる。たとえば、ロイシンをバリンに、リシンをアルギニンに、グルタミンをアスパラギンに置換してもポリペプチドの機能を変化させないこともあり得る（ただし、天然型ＡＣＧのアミノ酸配列の８５位グルタミン酸残基に対応するアミノ酸残基がアラニン、アルギニン、リシン、アスパラギン酸、システィン、グリシン、セリンおよびトレオニンからなる群から選択される１のアミノ酸残基であることを条件として）。「アナログ」という用語は、完全な組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子またはそのフラグメントに機能的に実質的に類似の分子を指す。
【００２５】
好ましい改変体の例は、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列に対して７０％以上の相同性、より好ましくは８０％、特に好ましくは９０％以上のアミノ酸配列相同性を示すものである。なお、ここでいうアミノ酸配列の相同性は、プログラムのデフォルトパラメータ（マトリクス＝Ｂｌｏｓｕｍ６２；ギャップ存在コスト＝１１、ギャップ拡張コスト＝１）を用いた検索で、インターネットサイトｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎ／ｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｅｇｉ−ｇｉｎ／ＢＬＡＳＴで実装可能なＢＬＡＳＴＰアルゴリズムによって示される陽性のパーセンテージとして定義できる。
【００２６】
また、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が、置換、欠失、挿入または付加されたアミノ酸配列を有する改変体も好適である。たとえば、上記した組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列に対して、該分子の精製に際して好適に利用できるＨｉｓ−ｔａｇ配列等を付加することは好ましい態様である。そして、そのような場合には、当該Ｈｉｓ−ｔａｇ配列等の除去のために、該付加配列と目的配列の間にエンドペプチダーゼ認識部位、たとえばトロンビン認識部位やカスパーゼ３認識配列（ＤＥＶＤ）を更に付加し得る。或いは、それとは別に、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子の安定性を向上させるために、たとえばそのＮ末端をプロリンやＡｃ−セリン等でブロックすることも可能であろう。要すれば、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子のアミノ酸配列に対しては、該分子の機能が損なわれない限りにおいて、組換蛋白質技術において有用性が確立されたいかなる改変（アミノ酸の置換、欠失、挿入及び／又は付加）を導入することも可能であり、当該改変体においてもそれらの技術の利点が享受され得ることを当業者は容易に理解するであろう。
【００２７】
核酸分子および発現ベクター
本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子およびその改変体（つまり、本発明の組換ガレクチン分子）は、それらをコードするｃＤＮＡ等の核酸分子を用いて適切な宿主を形質転換し、該宿主内で当該核酸分子を発現させることにより好適に製造することができる。そのような技術は当業者に周知である（たとえば、Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ等、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ  ２ｎｄ  ｅｄ．、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ（１９８９）を参照）。
【００２８】
上記の技術で用いら得るｃＤＮＡ等の核酸分子は、本明細書に記載の配列番号：４、配列番号：６、配列番号：８、配列番号：１０、配列番号：１２、配列番号：１４、配列番号：１６または配列番号：１８で示されるアミノ酸配列に基づいて設計することができる。好適には、該核酸分子は、それを発現させるべき宿主に適したコドンを考慮して設計されたヌクレオチド配列から成り得る。つまり、遺伝子コードは縮重しているので、ある特定のアミノ酸をコードするのに複数のコドンを使用でき、その場合、宿主細胞において使用頻度の高いコドンを利用するのが好ましい。たとえば、大腸菌を宿主とする場合、本明細書に記載の配列番号：３、配列番号：５、配列番号：７、配列番号：９、配列番号：１１、配列番号：１３、配列番号：１５および配列番号：１７に示されるヌクレオチド配列に基づいて前記核酸分子を設計し得る。
【００２９】
上記の核酸分子を調製するにあたっては、ホスホアミダイト法などの化学合成的手法が利用できる。或いは、天然型ＡＣＧをコードする核酸分子に対して所定の変異を導入することで、本発明の組換ガレクチン分子をコードする核酸分子を調製することも可能であり、そのような技法としては、たとえばＩｎｖｅｒｓｅ  ＰＣＲ法に基づく部位特異的変異導入技術を利用するのが簡便である。当該Ｉｎｖｅｒｓｅ  ＰＣＲ法に基づく部位特異的変異導入は当業者によく知られた技法おり、そのためのキットも市販されている（たとえば、東洋紡績株式会社からの「ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ」（商品名）が利用可能である。）。当該技法とは、概略、鋳型環状プラスミドに対して逆方向に設定した２種類のプライマーによりＰＣＲを行うことでプラスミド全周を増幅し、その際に用いるプライマーに対して導入すべき変異を含ませておくものであるが、当該技法の具体的な実施形態については本明細書の実施例に例示する。
【００３０】
しかして、本発明の範囲には、上記の核酸分子を含む発現ベクターも含まれる。すなわち、上記の本発明にかかる組換ガレクチン分子をコードするｃＤＮＡ等は、調節配列、つまり適切なプロモーターと他の適切な転写制御要素を含む発現ベクターへの分子クローニングにより組換え的に発現させることができ、原核宿主細胞または真核宿主細胞に移入されて本発明の組換ガレクチン分子を産生できる。このような操作の技術もＪ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ等（前掲）に十分に記載され、当業界で公知である。
【００３１】
つまり、発現ベクターは、適切な宿主での遺伝子のクローン化コピーの転写と得られたｍＲＮＡの翻訳に必要なＤＮＡ配列を含み、このようなベクターを使用して、細菌、藍藻類、植物細胞、昆虫細胞、菌類細胞、動物細胞等の種々の宿主で真核遺伝子を発現させることができる。特別に設計されたベクターは、宿主間、たとえば細菌−酵母、細菌−動物細胞、細菌−真菌細胞、または細菌−無脊椎動物細胞間でＤＮＡのシャトリングをすることができる。
【００３２】
適切に構築された発現ベクターは、宿主細胞での自律複製のための複製起点、選択マーカー、限られた数の有用な制限酵素部位、高コピー数のための可能要素、活性なプロモーターを含むべきである。プロモーターは、構造性プロモーターであるか調節プロモーターであるかに拘わらず、ＲＮＡポリメラーゼをＤＮＡに結合させ、ＲＮＡ合成を開始させるＤＮＡ配列と定義される。強いプロモーターとはｍＲＮＡを高頻度で開始させるプロモーターである。また、発現ベクター中の他の調節配列としては、転写エンハンサおよびターミネータ、並びに転写抑制因子の結合、アテニエーションまたはアンチアテニエーション等の既知の機構によって蛋白質の発現を調節するような他の配列が含まれる。ＳＶ４０またはアデノウイルスの初期および後期プロモーター、ｌａｃ系、ｔｒｐ系、ＴＡＣまたはＴＲＣ系、λファージの主要オペレーターおよびプロモーター領域、ｆｄコート蛋白質の制御領域、解糖系酵素（たとえば、３−ホスホグリセレートキナーゼ）に対するプロモーター、Ｐｈｏ５プロモーター、酵母α接合系プロモーター等が、その宿主細胞の性質等に応じて利用可能である。なお、発現ベクターにはクローニングベクター、改変クローニングベクター、特別に設計されたプラスミドまたはウイルスがあるが、それらに限定されない。
【００３３】
種々の細菌の発現ベクターを使用して細菌宿主細胞で組換ガレクチンＤＮＡを発現させることができる。また、種々の哺乳動物発現ベクターを使用して、哺乳動物宿主細胞で本発明の組換ガレクチンＤＮＡを発現させることができる。同じく、種々の菌類宿主細胞発現ベクターを使用して菌類細胞で組換ガレクチンＤＮＡを発現させることができ、更に、種々の昆虫細胞発現ベクターを使用して昆虫宿主細胞で組換ガレクチンＤＮＡを発現させることができる。発現のための様々な宿主・ベクター系が知られており、たとえば、細菌宿主に対してはコリシンＥ１型複製開始機構を有するｐＢＲ３２２やｐＵＣ系ベクターの他、Ｈｉｓ−ｔａｇ／ｔｈｒｏｍｂｉｎ／Ｔ７−ｔａｇ／ＭＣＳ（ＢａｍＨＩ，ＥｃｏＲＩ，ＳａｃＩ，ＳａｌＩ，ＨｉｎｄＩＩＩ，ＥａｇＩ，ＮｏｔＩ，ＸｈｏＩ）／Ｈｉｓ−ｔａｇを持つｐＥＴ−２８ａ（＋）ベクター等が挙げられる。また、Ｍ１３等のλファージ派生体、酵母細胞においては２μプラスミド、真核宿主にはＳＶ４０、ウシ乳頭腫ウイルス、アデノウイルスおよびサイトメガロウイルスから得られる発現制御配列からなるベクター、昆虫においてはｐＶＬ９４１等が挙げられる。
【００３４】
宿主細胞としては大腸菌、シュードモナス属およびバチルス属細菌、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属やＰｉｃｈｉａ属酵母、ＳＦ９等の昆虫細胞、ＣＨＯ、ＣＯＳ７等の動物細胞が挙げられる。特に好ましい宿主は原核細胞由来、より好ましくは大腸菌由来宿主細胞である。ベクターを宿主細胞に導入する方法としては、エレクトロポレーション法、プロトプラスト法、アルカリ金属法、リン酸カルシウム沈澱法、ＤＥＡＥデキストラン法、マイクロインジェクション法、ウイルス粒子を用いる方法等の公知方法（実験医学臨時増刊、遺伝子工学ハンドブック１９９１年３月２０日発行、羊土社、参照）があるが、いずれの方法を用いても構わない。
【００３５】
また、上記したように、本発明の組換ヤナギマツタケ・ガレクチン分子をＨｉｓ−ｔａｇ以外の他の蛋白質やタグ、たとえばグルタチオンＳトランスフェラーゼ、プロテインＡ、ＦＬＡＧタグ等との融合蛋白質として発現させることも可能である。発現させた融合型は、適当なプロテアーゼ（トロンビン等）を用いて切り出すことが可能である。
【００３６】
宿主細胞での組換ガレクチン分子の発現の後、該蛋白質を回収して該蛋白質を精製型で得ることができる。幾つかの精製方法が利用でき、たとえば、塩分画、イオン交換クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイト吸着クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィーの種々の組合せ、または個々の適用により、細胞溶解液および細胞抽出液から、本発明の組換ガレクチン分子を精製できる。
【００３７】
糖鎖分析方法
本発明の組換ガレクチン分子は、糖鎖分析、つまり糖鎖構造の解析やプロファイリング、識別等に好適に用いられ得、殊にシアル酸を含む糖鎖（シアル酸含有糖鎖）の分析において有用である。シアル酸含有糖鎖は、典型的には糖鎖の非還元末端にシアル酸が結合した構造を有するもので、本発明においてはガラクトシル糖鎖にシアル酸が結合したもの、たとえばシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン構造単位、シアリルα２，３−ラクトース構造単位、或いはシアリルα２，３−Ｔ抗原（Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃα）構造単位をとるものなどが例示され、特に前述のα−ジストログリカンとの関係で記載したＮｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ１−２Ｍａｎ−糖鎖等は興味深い分析対象である。
【００３８】
本発明の糖鎖分析方法は、シアル酸を含む糖鎖を有する被検物質が存在することが予測される試料と本発明の組換ガレクチン分子を、該被検物質と組換ガレクチン分子が結合するのに充分な条件下で接触させる工程を含むことを特徴とする。被検物質としては、糖鎖自体以外にも、糖鎖と他の化学物質との結合体、たとえば糖蛋白質、糖脂質などが挙げられるがこれらに限定されない。また、前記糖鎖、糖蛋白質、糖脂質などを含む細胞、擬細胞、細胞膜或いは組織等も広義の被検物質に含め得る。したがって、本発明にいう被検物質が存在することが予測される試料とは、前記の糖鎖、糖蛋白質または糖脂質、或いはそれらを有する細胞、擬細胞または細胞膜を含む溶液を包含するものであり得る。つまり、本発明の分析方法に供される試料としては、前記細胞、擬細胞または細胞膜の懸濁液または抽出液、或いは前記組織の抽出液なども含まれ得、特に臨床的検査における本発明の糖鎖分析の応用においては、各種の生物学的流体、たとえば血液、リンパ液、唾液、尿、粘膜質液なども直接または希釈液などの形態として分析試料と成し得る。
【００３９】
当該試料と本発明の組換ガレクチン分子は、前記被検物質と該組換ガレクチン分子が結合するのに充分な条件下で接触させられなければならない。そのような条件は、試料の由来や状態などの他にも、具体的分析が実施される特定の測定手技やプロトコールにより変化するが、慣用的な測定手技やプロトコールが適用される場合の当該条件もまた当業者は容易に選択でき、或いは適切に変更できるであろう。
【００４０】
たとえば、本発明の糖鎖分析方法を、ＥＬＩＳＡを模した所謂サンドイッチ・アッセイ・プロトコールに適合させ得る（非特許文献１参照）。簡単に説明すると、まず、本発明の組換ガレクチン分子を固体支持体に固相化する。固相化は、たとえばリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に組換ガレクチン分子を溶解し、該溶液をマイクロプレートのウェルに添加して所定時間インキュベートすることで達成できる。その後、当該ウェルをウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）などでブロッキングしてもよい。ウェルを０．０５％のＴｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳ等で十分に洗浄後、当該ウェルに試料を添加して、室温で１０分乃至数時間、好ましくは３０分乃至２時間前後の間インキュベートする。インキュベーションの終了後、ウェルから試料を取り除き、前記と同様にしてウェルを十分に洗浄する。洗浄後、ウェルに検出用のプローブ、典型的には被検物質に対する抗体を加えることで、組換ガレクチン−被検物質−抗体のサンドイッチ複合体を形成させる。抗体と被検物質の反応を行なうには、たとえば室温で３０分乃至３時間程度インキュベーションさせればよい。その後、余剰の抗体除去し、ウェルを洗浄して、形成されたサンドイッチ複合体の存在或いは量を検出することで、被検物質と組換ガレクチンの結合または非結合を観測する。
【００４１】
上記サンドイッチ・アッセイ・プロトコールにおいて使用する際、被検物質に対する抗体を標識しておくことは、形成されたサンドイッチ複合体の検出において有利である。たとえば、抗体を放射性物質、金コロイド等の着色粒子、蛍光または化学発光標識、或いは酵素（ＥＬＩＳＡ法）で標識することができる。抗体の標識の方法としては当業者にとって周知のいかなる方法も採用することができ、たとえば、Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．ｖｏｌ．１１、３９５〜３９９頁（１９７９）、Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．ｖｏｌ．１４、４１〜５７頁（１９８２）、Ｉｍｍｕｎｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｒｅｌａｔｅｄ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ／Ｎｏｒｔｈ  Ｈｏｌｌａｎｄ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｐｒｅｓｓ、２１５〜２２５頁（１９７８）に記載の方法を利用することができる。検出は、抗体に標識された標識物質の性質に依存し、放射性標識であれば放射線量が、着色粒子標識であれば発色量や吸光度が、また酵素標識（ＥＬＩＳＡ法）であれば、更に適当な基質をウェルに添加し、所定のインキュベーション後の吸光度が検出される。なお、ＥＬＩＳＡ法の例において、用いる酵素には特に制限がなく、たとえば西洋ワサビペルオキシダーゼやアルカリ性フォスファターゼ等の酵素が有利に使用される。西洋ワサビペルオキシダーゼで標識する場合は、当該酵素の基質として３,３’,５,５’−テトラメチルベンチジン等が利用可能である。アルカリ性フォスファターゼを使用する場合は、基質としてｐ−ニトロフェニル燐酸があげられる。
【００４２】
レクチン・ライブラリー及びレクチン・チップ
既に記述したように、上記の糖鎖分析方法においては、本発明の組換ガレクチン分子およびその他の公知のレクチン分子を含むレクチン・ライブラリーを利用することが有利である。本発明の組換ガレクチン分子とは異なる糖鎖結合特異性を有する公知のその他のレクチン分子に対する被検物質の結合性を同時に観測することは、本発明の組換ガレクチン分子の利用と相俟って、より詳細な被検物質上の糖鎖構造のプロファイリングを可能にする。また、そのようなプリファイリングにおいて、当該レクチン・ライブラリーを所謂レクチン・チップの形態に構成することの利点は当業者にとって更に明らかであろう。当該レクチンライブラリー及びレクチン・チップについては特許文献２において詳細に記述され、したがって当該文献の内容は、引用することでここに援用する。
【００４３】
更に説明せずとも、これまでの説明を与えられた当業者は、本発明を充分に活用し得る。以下、説明のみの目的で実施例を与える。なお、本明細書において、特にことわりのない限り、アミノ酸配列はＮ末端からＣ末端方向に、ヌクレオチド配列は５’末端から３’末端方向に向けて記載される。
【実施例】
【００４４】
組換ガレクチン分子コード化配列の調製
天然型ＡＣＧのアミノ酸配列の８５位グルタミン酸を置換するために、まずはｐＥＴ−２８ａ（＋）ベクターのマルチクローニングサイトに挿入された天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡをもつプラスミド（ｐＥＴ−２８ａ（＋）−ＡＣＧ）を調製し、更に当該プラスミドを用いて大腸菌ＪＭ１０９（ＴａＫａＲａ；９０５２）を形質転換することで、該ｐＥＴ−２８ａ（＋）−ＡＣＧをメチル化した。次いで、該メチル化ｐＥＴ−２８ａ（＋）−ＡＣＧを鋳型として使用し、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ（東洋紡；ｃｏｄｅ Ｎｏ．ＳＭＫ−１０１）のプロトコールに従って、Ｉｎｖｅｒｓｅ  ＰＣＲ法による部位特異的変異導入を実施した。なお、上記の鋳型プラスミド（ｐＥＴ−２８ａ（＋）−ＡＣＧ）の大腸菌ＪＭ１０９によるメチル化処理は、当該Ｉｎｖｅｒｓｅ  ＰＣＲ法キットのプロトコールに従ってＰＣＲ法を実施した後に、該メチル化鋳型のみを制限酵素ＤｐｎＩ（メチル化ＤＮＡ特異的）で分解するためのものであった。
【００４５】
また、上記で使用した天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡはヌクレオチド合成（ＩＤＴ社に依頼）により調製されたものであった。具体的には、当該天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡはベクターｐＺＥｒ０−２に挿入された形（ｐＺＥｒ０−２：ＡＣＧ）として合成された。次いで該合成ベクター内の天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡを発現ベクターｐＥＴ−２８ａ（＋）に移し換えるため、前記ｐＺＥｒ０−２：ＡＣＧを鋳型にしてそれをＰＣＲ増幅した。この増幅においては、制限酵素認識配列並びに天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡの５’末端に対してカスパーゼ３認識部位（ＤＥＶＤ）コード化配列を導入し得るプライマーを設計して使用した。
【００４６】
上記で増幅されたＰＣＲ産物とｐＥＴ−２８ａ（＋）は、ともに制限酵素（ＮｈｅＩ及びＸｈｏＩ、東洋紡社製）で消化され、目的配列どうしをライゲーションした後に、大腸菌ＪＭ１０９（ＴａＫａＲａ；９０５２）の形質転換に使用された。形質転換体を選択し、選択されたクローンからのｃＤＮＡシークエンスを確認して、上記のメチル化ｐＥＴ−２８ａ（＋）−ＡＣＧを得た。なお、ここで用いたｐＥＴ−２８ａ（＋）ベクターはカナマイシン耐性マーカーを有し、Ｎ末端からＨｉｓ−ｔａｇ／ｔｈｒｏｍｂｉｎ／Ｔ７−ｔａｇ／ＭＣＳ（ＢａｍＨＩ，ＥｃｏＲＩ，ＳａｃＩ，ＳａｌＩ，ＨｉｎｄＩＩＩ，ＥａｇＩ，ＮｏｔＩ，ＸｈｏＩ）／Ｈｉｓ−ｔａｇを持つ大腸菌用発現ベクターであり、これはＮｏｖａｇｅｎ社から購入可能である（ｃｏｄｅ Ｎｏ．６９８６４−３）。当該発現ベクター内への天然型ＡＣＧ  ｃＤＮＡの挿入は、ｐＥＴ−２８ａ（＋）のＴ７−ｔａｇ配列中のＮｈｅＩとＭＣＳ配列中のＸｈｏＩサイトに対して行なわれた。
【００４７】
前記のとおり、続くＩｎｖｅｒｓｅ  ＰＣＲ法による部位特異的変異導入は、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  Ｋｉｔ（東洋紡；ｃｏｄｅ Ｎｏ．ＳＭＫ−１０１）のプロトコールに従って行われた。具体的には、表１の反応液：
【表１】
0005233347.tif 000002
を使用し、またプライマーとしては：
プライマー１:5’-nnncagcgtgtttctaacgtagcaaaccagttcattgg-3’
（配列番号：４１）
プライマー２:5’-gaccagccaaggagcgttcggctgacgggagttgaacacgat-3’
（配列番号：４２）
を用いた。なお、上記プライマー１の５‘末端ｎｎｎ部分にランダムな配列が導入された。また、このＰＣＲの反応サイクルは、９４℃（２分）の後、９８℃（１０秒）→６８℃（５分４５秒）を３５サイクル行い、４℃でホールドするものであった。
【００４８】
上記のＰＣＲ反応終了後、１％アガロース（和光純薬；ｃｏｄｅ Ｎｏ．３１２−０１１９３，Ａｇａｒｏｓｅ  Ｓ）を使用し、目的ＰＣＲ産物の確認を行なった。つぎに、鋳型Ｐｌａｓｍｉｄの消化を行なうため、ＰＣＲ反応液にＤｐｎＩを２μｌ添加し、３７℃で１時間インキュベートした。インキュベート後、ＰＣＲ産物のセルフ・ライゲーションのために表２の反応液を調製し、該反応液内で１６℃でインキュベートした。
【表２】
0005233347.tif 000003
【００４９】
上記のライゲーション反応後の反応液をそのまま使用して、大腸菌ＪＭ１０９（ＴａＫａＲａ；９０５２）を形質転換し、当該大腸菌をカナマイシン（終濃度２０μｇ／ｍｌ）を含むＬＢ寒天培地に適量を播いた。３７℃で一晩培養後４８個のシングルコロニーを釣り上げ、それを液体培養して、Ｍｉｎｉ  ＰｌｕｓＴＭ  Ｐｌａｓｍｉｄ  ＤＮＡ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ（ＶＩＯＧＥＮＥ；Ｃｏｄｅ Ｎｏ．ＧＦ２００２）を使用し、部位特異的変異を導入したＡＣＧ  ｃＤＮＡを含むＰｌａｓｍｉｄ  ＤＮＡの抽出を行なった。得られたＡＣＧ  ｃＤＮＡの確認を行ない、目的箇所に変異が導入されている１９個のクローン、つまりクローン１〜クローン１９を選択した。
【００５０】
上記の各クローンは、天然型ＡＣＧのアミノ酸配列の８５位グルタミン酸に対して、アラニン置換体（クローン１）、アルギニン置換体（クローン２）、リシン置換体（クローン３）、アスパラギン酸置換体（クローン４）、システィン置換体（クローン５）、グリシン置換体（クローン６）、セリン置換体（クローン７）、トレオニン置換体（クローン８）、グルタミン置換体（クローン９）、ヒスチジン置換体（クローン１０）、イソロイシン置換体（クローン１１）、ロイシン置換体（クローン１２）、アスパラギン置換体（クローン１３）、メチオニン置換体（クローン１４）、フェイルアラニン置換体（クローン１５）、プロリン置換体（クローン１６）、トリプトファン置換体（クローン１７）、チロシン置換体（クローン１８）およびバリン置換体（クローン１９）の関係にあった。また、各クローン内の蛋白質（組換ガレクチン分子）コード化ヌクレオチド配列は、それぞれ、配列番号：４５、配列番号：４７、配列番号：４９、配列番号：５１、配列番号：５３、配列番号：５５、配列番号：５７、配列番号：５９、配列番号：６１、配列番号：６３、配列番号：６５、配列番号：６７、配列番号：６９、配列番号：７１、配列番号：７３、配列番号：７５、配列番号：７７、配列番号：７９および配列番号：８１であった。なお、対応する天然型ＡＣＧについてのコード化配列は配列番号：４３で示される。
【００５１】
ヒスタグ融合タンパク質（組換ガレクチン分子）の発現と精製
天然型およびクローン１〜１９からの上記発現プラスミドを用いて大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ２  ＤＥ２（ＴａＫａＲａ；ｃｏｄｅ Ｎｏ．７１４０５−３）を形質転換した。各形質転換体のシングルコロニーをカナマイシン（終濃度２０μｇ／ｍｌ）を含む５ｍｌのＬＢ培地に接種して３７℃で一晩前培養した。カナマイシン（終濃度２０μｇ／ｍｌ）を含む１５０ｍｌのＬＢ培地に前培養液５ｍｌを添加し、３７℃、１００ｒｐｍにてＯＤ６００＝０．７まで培養し、イソプロピルβ−Ｄ−チオガラクトシド（ＩＰＴＧ；最終濃度１ｍＭ）で発現誘導を行なった。発現誘導後は、３０℃、１００ｒｐｍにて継続的に５時間の培養を行なった。バクテリア・セル・ペレットが、１１０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎにて回収された。回収されたバクテリア・セル・ペレットに緩衝液Ｉ（２％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ１００，５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ  ＮａＣｌ：ｐＨ７．４）を１０ｍｌ添加し、ペレットを懸濁した。得られたバクテリア・セル・ペレット懸濁液にプロテアーゼ阻害剤カクテル（ナカライテスク社製：ｃｏｄｅ Ｎｏ．２５９５５−１１）を１００倍希釈にて添加し、更にリゾチーム（最終濃度１ｍｇ／ｍｌ）を添加して、氷上で３０分間インキュベートした。インキュベート後、超音波破砕装置にてバクテリア・セル・ペレット懸濁液内のバクテリア・セルを破砕した。破砕されたバクテリア・セルは、冷却遠心機により１１０００ｒｐｍ、１０分間で遠心分離され、可溶性画分が回収された。回収された可溶性画分を０．４５μｍフィルターにて濾過した。次に、得られたヒスタグ融合タンパク質の精製を行うため、Ｈｉｓ  ＧｒａｖｉＴｒａｐ（ＧＥ  ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製：ｃｏｄｅ Ｎｏ．１１−００３３−９９）に緩衝液Ｉの１０ｍｌを添加し、平衡化を行なった。平衡化したＨｉｓ  ＧｒａｖｉＴｒａｐに上記で濾過した可溶性画分を添加した。添加後、緩衝液ＩＩ（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，５００ｍＭ  ＮａＣｌ：ｐＨ７．０）にて洗浄を行なった。続いて緩衝液ＩＩＩ（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，５００ｍＭ  ＮａＣｌ，７５ｍＭ  Ｉｍｉｄａｚｏｌｅ：ｐＨ７．０）にて２回目の洗浄を行なった。洗浄後、目的のヒスタグ融合タンパク質を溶出するために、緩衝液ＩＶ（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，５００ｍＭ  ＮａＣｌ，５００ｍＭ  Ｉｍｉｄａｚｏｌｅ：ｐＨ７．０）を５ｍｌ添加した。溶出されたヒスタグ融合タンパク質は、ＰＢＳにて透析を行い試料中の緩衝液を交換した。透析されたヒスタグ融合タンパク質について、ＢＣＡＴＭ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙ  ｋｉｔを用いて精製ヒスタグ融合タンパク質濃度を決定した。また、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて精製ヒスタグ融合タンパク質の純度確認を行なった。結果を図１に示した。
【００５２】
ＢＩＡｃｏｒｅによる各組換ガレクチン分子の糖鎖特異性指摘
グライコテック社より購入した各マルチバレントビオチン化糖ポリマー：
Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（Ｎ−アセチルラクトサミン−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）、
Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃα−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（Ｔ抗原−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）、
Ｎｅｕ５Ａｃα２−６Ｇａｌβ−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（シアリルα２，６−ガラクトース−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）、
Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（シアリルα２，３−ガラクトース−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）、
３’−Ｓｉａｌｙｌｌａｃｔｏｓｅ−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（シアリルα２，３−ラクトース−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ），
Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃβ−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）、
Ｎｅｕ５Ａｃα２−３Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃ?−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ（シアリルα２，３−Ｔ抗原−ＰＡＡ−ｂｉｏｔｉｎ）
を、各々、終濃度２．５μｇ／ｍｌになるようにＰＢＳにて調製した。調製した糖ポリマーを以下の条件にて固層化した。
【００５３】
［固層化条件］
測定装置：ＢＩＡｃｏｒｅ  ３０００（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（ＢＩＡｃｏｒｅ）社製）、
センサーチップ：ｓｅｎｓｏｒ  ｃｈｉｐ  ＳＡ（ｃｏｄｅ Ｎｏ．ＢＲ−１０００−３２）、
庫内の温度：２５℃設定、
流速：５μｌ／ｍｉｎ、
インジェクション：１００μｌ（糖ポリマーを終濃度２．５μｇ／ｍｌに調整したＰＢＳ溶液）、
ランニング緩衝液：ＰＢＳ
【００５４】
次に、上記のマルチバレントビオチン化糖ポリマーを固層化したセンサーチップを使用し、各組換ガレクチン分子の糖鎖特異性指摘を行なった。
【００５５】
［ＢＩＡｃｏｒｅ測定条件］
測定装置：ＢＩＡｃｏｒｅ  ３０００（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（ＢＩＡｃｏｒｅ）社製）、
センサーチップ：各マルチバレントビオチン化糖ポリマーを固層化した上記のセンサーチップ、
庫内の温度：２５℃設定、
流速：２０μｌ／ｍｉｎ、
インジェクション：１００μｌ（１００μｇ／ｍｌのＰＢＳ中の各組換ガレクチン分子）、
ランニング緩衝液：ＰＢＳ、
再生液：５０ｍＭ  ＮａＯＨ
【００５６】
上記のＢＩＡｃｏｒｅ測定の結果を図２に示した。該図２から、天然型ＡＣＧの８５位グルタミン酸残基のアラニンによる置換体（クローン１）、アルギニンによる置換体（クローン２）、リシンによる置換体（クローン３）、アスパラギン酸による置換体（クローン４）、システィンによる置換体（クローン５）、グリシンによる置換体（クローン６）、セリンによる置換体（クローン７）およびトレオニンによる置換体（クローン８）は、いずれもシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン及び／又はシアリルα２，３−ラクトースに対して実質的な結合親和性を保持しているが、それらの置換体ではＮ−アセチルラクトサミンおよびＴ抗原に対する結合親和性が顕著に制限されていることがわかる。また、グルタミンによる置換体（クローン９）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースの他にシアリルα２，３−Ｔ抗原に対する実質的な結合親和性も保持されており、ヒスチジンによる置換体（クローン１０）では、シアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性のみが有意に保存されているが、やはりＮ−アセチルラクトサミンおよびＴ抗原に対しては実質的な結合親和性が観測されていない。他方で、メチオニンによる置換体（クローン１４）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびＮ−アセチルラクトサミンの双方に対する結合親和性が残存していることがわかる。そして、プロリンによる置換体（クローン１６）、トリプトファンにより置換体（クローン１７）およびチロシンによる置換体（クローン１８）では、シアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミンおよびシアリルα２，３−ラクトースに対する結合親和性までもが損なわれていることが見出された。
【産業上の利用可能性】
【００５７】
以上から明らかなとおり、本発明の組換ガレクチン分子は、糖鎖のシアリルα２，３−ラクトースおよびシアリルα２，３−Ｎ−アセチルラクトサミン構造に特異的であり且つ対応する非シアル化糖鎖との結合親和性が制限されているので、生化学研究や臨床検査などにおいても注目されている生物学的に重要なシアル酸含有糖鎖の精緻且つ簡便な分析の用途に好適に利用できるものであるから、とりわけ、医療産業等において利用可能である。
【図面の簡単な説明】
【００５８】
【図１】ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる本発明の組換ガレクチン分子（精製ヒスタグ融合タンパク質として）の純度確認の結果を示す図である。
【図２Ａ】ＢＩＡｃｏｒｅによる本発明の組換ガレクチン分子の糖鎖特異性解析結果を示す図である。表側の単位（ＲＵ）はＢＩＡｃｏｒｅ測定におけるリゾナンスユニットで、１０００ＲＵ＝１ｍｍ２当たり１ｎｇの変化に対応する。また、表下のラベルは、クローン番号（置換アミノ酸残基）を示す。ＡＧＣは天然型ヤナギマツタケ・ガレクチン分子を示す。
【図２Ｂ】ＢＩＡｃｏｒｅによる本発明の組換ガレクチン分子の糖鎖特異性解析結果を示す図である。表側の単位（ＲＵ）はＢＩＡｃｏｒｅ測定におけるリゾナンスユニットで、１０００ＲＵ＝１ｍｍ２当たり１ｎｇの変化に対応する。また、表下のラベルは、クローン番号（置換アミノ酸残基）を示す。ＡＧＣは天然型ヤナギマツタケ・ガレクチン分子を示す。ＭＡＬＩはイヌエンジュマメ・ロイコグルニチンを、ＭＡＬＩＩはイヌエンジュマメ・ヘマグルニチンを、ＥＣＡはデイゴマメ・アグルチニンを、そしてＳＮＡはセイヨウニワトコ・アグルチニン分子を示す（いずれも天然型）。
【図１】
0005233347.tif 000004
【図２Ａ】
0005233347.tif 000005
【図２Ｂ】
0005233347.tif 000006
【配列表】
0005233347000001.app