(57)【要約】【課題】  核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３要素を備えた遺伝子キャリアーや、かかる遺伝子キャリアーを利用した遺伝子デリバリー技術を提供すること。【解決手段】  塩化金酸をホウ素化水素ナトリウム等を用いて還元する際に、それと同時にシステアミン、あるいはシステアミンとポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を共存させ、金ナノ粒子が成長すると同時に表面をアミノ基で修飾させ、カチオン性表面をもつ金ナノ粒子やＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子を作製する。次いで、これら金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡ等の核酸とを結合させ、細胞内や生体組織内に前記核酸をデリバリーすることができる金ナノ粒子−核酸複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−核酸複合体を作製する。この複合体は、光ピンセットにより補足することができ、細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
チオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元することを特徴とするカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項２】
塩化金酸をホウ素化水素ナトリウムで還元することを特徴とする請求項１記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項３】
チオール基とアミノ基を有する化合物として、システアミンを用いることを特徴とする請求項１又は２記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項４】
請求１〜３のいずれか記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法により得られることを特徴とするカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法により得られるカチオン性金ナノ粒子。
【請求項５】
透過型電子顕微鏡による粒径が５〜１００ｎｍであることを特徴とする請求項４記載のカチオン性金ナノ粒子。
【請求項６】
ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷が＋５〜７０ｍＶであることを特徴とする請求項４又は５記載のカチオン性金ナノ粒子。
【請求項７】
請求項４〜６のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項８】
細胞内へ核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項７記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項９】
動物個体に投与し、組織内に核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項７記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１０】
核酸が、遺伝子治療用の核酸であることを特徴とする請求項７〜９のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１１】
核酸が、プラスミドＤＮＡであることを特徴とする請求項７〜１０のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１２】
直径が１５ｎｍ〜１μｍ程度であることを特徴とする請求項７〜１１のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１３】
直径が８μｍ以上であることを特徴とする請求項７〜１１のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１４】
光ピンセットで捕捉することができることを特徴とする請求項７〜１３のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１５】
光ピンセットによって細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができることを特徴とする請求項７〜１４のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項１６】
ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及びチオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元することを特徴とするＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項１７】
塩化金酸をホウ素化水素ナトリウムで還元することを特徴とする請求項１６記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項１８】
チオール基とアミノ基を有する化合物として、システアミンを用いることを特徴とする請求項１６又は１７記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法。
【請求項１９】
ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子。
【請求項２０】
透過型電子顕微鏡による粒径が２０〜８０ｎｍであることを特徴とする請求項１９記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子。
【請求項２１】
ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷がほぼ−５〜５ｍＶであることを特徴とする請求項１９又は２０記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子。
【請求項２２】
請求項１９〜２１のいずれか記載のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２３】
細胞内へ核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項２２記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２４】
動物個体に投与し、組織内に核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項２３記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２５】
核酸が、遺伝子治療用の核酸であることを特徴とする請求項２２〜２４のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２６】
核酸が、プラスミドＤＮＡであることを特徴とする請求項２２〜２５のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２７】
直径が５０ｎｍ〜１μｍ程度であることを特徴とする請求項２２〜２６のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２８】
直径が８μｍ以上であることを特徴とする請求項２２〜２６のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項２９】
光ピンセットで捕捉することができることを特徴とする請求項２２〜２８のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項３０】
光ピンセットによって細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができることを特徴とする請求項２２〜２９のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【請求項３１】
エレクトロポレーションによって細胞内に移動させることができることを特徴とする請求項２２〜３０のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カチオン性表面をもつ金ナノ粒子や、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法や、該作製方法により得られるカチオン性金ナノ粒子や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子や、これら金ナノ粒子と核酸との複合体に関する。カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体を用いると、前記核酸を細胞内又は生体組織内に効率よくデリバリーすることができる。
【背景技術】
【０００２】
従来、遺伝子キャリアーには塩基性脂質や塩基性ポリマーが主に用いられてきた。しかし、その遺伝子デリバリー効率は非常に悪く、動物体内あるいは細胞内での挙動がその構造に大きく左右され、かつ、未だにそれら構造と実際の挙動の相関について不明な点が多い（例えば、非特許文献１参照）。一方、無機材料からなるナノ粒子を遺伝子キャリアーとして用いる方法が報告されている。シリカ表面をアミン修飾したナノ粒子はプラスミドＤＮＡと複合体を形成し、さらに、培養細胞へ添加すると、そのプラスミドＤＮＡからの遺伝子発現が確認された（例えば、非特許文献２参照）。また、金ナノ粒子の利用も試みられている。米澤らはチオコリン（HS-CH2-CH2-N+(CH3)3）で表面修飾した金ナノ粒子のＤＮＡとの結合を確認している（例えば、非特許文献３参照）。
【０００３】
さらに、Sandhuらは金ナノ粒子を長鎖アルキル鎖の先に４級アミンをもつチオール化合物で金ナノ粒子を作製し、そのDNA結合能を確認し、その複合体を培養細胞に添加することによって、遺伝子発現が起こることを明らかにしている（例えば、非特許文献５参照）。しかし、金ナノ粒子に関するこれら手法はその粒子の調製法が複雑であったり、再現性が悪く、さらに、修飾試薬自体が市販されておらず、入手困難であるという点で一般性に欠ける。また、これまで使われている４級アミンはその分子の嵩が大きく、常にカチオン性を持つため、修飾する際、その静電的反発が起こり、修飾密度が予想以上に低くなる場合がある。
【０００４】
金ナノ粒子表面をカチオン修飾する際に共有結合ではなく、カチオン性ポリマーや界面活性剤で静電的な相互作用で修飾することも可能である。しかし、これらの修飾法では修飾剤と金ナノ粒子との結合が強固ではなく、そのため、過剰のカチオン性ポリマーや界面活性剤を除去する際に、金ナノ粒子表面からの修飾剤が失われ、金粒子同士の凝集・沈澱が起こることが多い。
【０００５】
その他、トリス（ヒドロキシメチル）ホスフィン（ＴＨＰ）と金との複合体粒子（ＴＨＰ−Ａｕ粒子）の溶液を作製し、次に、このＴＨＰ−Ａｕ粒子溶液を核酸の固定化された基板に滴下することによって、ＴＨＰ−Ａｕ粒子と核酸とを結合させた後、ＴＨＰ−Ａｕ粒子と核酸との複合体に対して無電界めっき処理を施すことにより、金ナノ粒子の大きさを制御する、生体外（ex-situ）で作製された金属ナノ粒子を用いて核酸を効率的に金属化する方法も知られている（例えば、特許文献１参照）。
【０００６】
他方、溶液中で不規則に動き回る粒子を捕捉する有効な手法としてレーザートラッピングが知られている。溶液中に分散している微粒子に、対物レンズで集光したレーザー光を照射すると、微粒子には常に集光位置に向く力（光圧）が働き、最終的に微粒子は集光位置に安定に捕捉される。この捕捉方法は光ピンセット（Optical tweezers）、あるいはレーザートラッピング（Laser trapping）と呼ばれており、この光ピンセットによりナノメーターからマイクロメーターサイズの粒子を捕捉することができることが知られている（例えば、非特許文献５参照）。レーザートラッピングでは、集光レーザー光のつくり出すポテンシャル（光圧ポテンシャル）中に粒子を捕捉するため、不規則運動する粒子を捕捉する際に都合がよく、また顕微鏡下で粒子を観測しつつ、リアルタイムで非接触に捕捉、移動させることができるといった優れた特徴を有する。
【０００７】
また、レーザートラップ技術による光ピンセットを用いて、細胞に損傷やストレスを与えることなく、無修飾、無欠損でＤＮＡを安全に且つ簡便に細胞に導入する方法を本発明者らは既に報告している。例えば、遺伝子を含むＤＮＡ若しくはＲＮＡ又はこれらを表面に吸着させた無機粒子等の微小物体及び細胞を浮遊させた液状媒質中にレンズを用いてレーザー光を集光させ、該微小物体を捕捉したまま該レーザーの焦点を該細胞内に移動させることにより細胞内へ遺伝子を導入する方法を報告している（例えば、特許文献２参照）。
【０００８】
【特許文献１】特開２００３−１３３５４１号公報
【特許文献２】特開２００３−７０４６８号公報
【非特許文献１】T. Niidome, L. Huang, Gene Ther. 9, 1647-1652 (2002)
【非特許文献２】C. Kneuer, M. Sameti, U. Bakowsky, T. Schiestel, H. Schirra, H. Schmidt, C.-M. Lehr, Bioconjugate Chem. 11, 926-932 (2000)
【非特許文献３】T. Yonezawa, S. Onoue, N. Kimizuka, Chem. Lett. 2002. 1172-1173
【非特許文献４】Bioconjugate Chem. 13, 3(2002)
【非特許文献５】A. Ashkin, J. M. Dziedzic, J. E. Bjorkholm, and S. Chu: Opt. Let. 11, 288 (1986)
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
前述のような問題点を抱える無機材料をベースとする遺伝子デリバリー技術は、その成功が強く期待されているにもかかわらず、大きなブレークスルーは未だ成し遂げられてはいないのが現状である。遺伝子デリバリー技術に用いられる遺伝子キャリアーには、核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３つの要素が要求される。３つの要素を同時に高いレベルで実現する遺伝子キャリアーの構築は、遺伝子治療および分子生物学一般に広く用いられる基盤技術の開発につながる。本発明の課題は、核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３要素を備えた遺伝子キャリアーや、かかる遺伝子キャリアーを利用した遺伝子デリバリー技術を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究し、表面にアミノ基を有するカチオン性の金ナノ粒子を安価かつ簡便に作製する方法を確立した。すなわち、塩化金酸を還元する際に、それと同時にチオール基とアミノ基の両方を有する化合物を共存させ、金ナノ粒子が成長すると同時に表面がアミノ基で修飾されることを見い出した。この修飾法は再現性もよく、スケールアップも簡単である。さらに、この溶液はそのままＤＮＡ複合体作製に利用でき、これまでのカチオン性金ナノ粒子のように精製する必要がない。さらに、一級アミンの利用によって、そのエンドソーム内でのプロトンスポンジ効果（Ｖ型−ATPaseによって、エンドソーム内にプロトンが流入するが、アミノ基のバッファー効果によって、ｐＨが低下せず、プロトンが流入し続けると同時に水も同時に流入して、最終的にエンドソーム膜が壊されること）が期待され、より高い遺伝子発現が得られることを見い出した。また、得られた金ナノ粒子は核酸と複合体を形成し、その複合体は生理的塩濃度においても安定に分散した。そして、それを培養細胞に添加すると、金ナノ粒子−核酸複合体は細胞内に取り込まれ、その遺伝子からのタンパク質発現が認められた。さらに、動物個体へ静脈投与した場合においても、金ナノ粒子の肝臓中での存在が認められ、核酸の肝臓への輸送のためのキャリアー分子として利用できることも見い出した。さらに、金ナノ粒子−ＤＮＡ複合体は光ピンセットにより強く捕捉され、ＤＮＡ一分子マニュピュレーションの可能性を広げ、かつ、細胞内あるいはリポソーム内にこの複合体を押し込むことが可能となった。
【００１１】
また、本発明者らは、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性金ナノ粒子の作製に成功した。すなわち、塩化金酸を還元する際に、それと同時にチオール基とアミノ基の両方を有する化合物とＰＥＧを共存させ、金ナノ粒子が成長すると同時にＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子が得られることを見い出した。このＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子はプラスミドＤＮＡと複合体を形成し、ステルス性が向上した。また、このＤＮＡ複合体を静脈投与し、エレクトロポレーションと併用することで、遺伝子導入能の向上がみられた。作製したＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子はエレクトロポレーションによる遺伝子導入の促進剤として有用である。
【００１２】
本発明は、上記の知見に基づき完成するに至ったものである。すなわち本発明は、チオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元することを特徴とするカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項１）や、塩化金酸をホウ素化水素ナトリウムで還元することを特徴とする請求項１記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項２）や、チオール基とアミノ基を有する化合物として、システアミンを用いることを特徴とする請求項１又は２記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項３）や、請求１〜３のいずれか記載のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法により得られることを特徴とするカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法により得られるカチオン性金ナノ粒子（請求項４）や、透過型電子顕微鏡による粒径が５〜１００ｎｍであることを特徴とする請求項４記載のカチオン性金ナノ粒子（請求項５）や、ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷が＋５〜７０ｍＶであることを特徴とする請求項４又は５記載のカチオン性金ナノ粒子（請求項６）に関する。
【００１３】
また本発明は、請求項４〜６のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項７）や、細胞内へ核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項７記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項８）や、動物個体に投与し、組織内に核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項７記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項９）や、核酸が、遺伝子治療用の核酸であることを特徴とする請求項７〜９のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１０）や、核酸が、プラスミドＤＮＡであることを特徴とする請求項７〜１０のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１１）や、直径が１５ｎｍ〜１μｍ程度であることを特徴とする請求項７〜１１のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１２）や、直径が８μｍ以上であることを特徴とする請求項７〜１１のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１３）や、光ピンセットで捕捉することができることを特徴とする請求項７〜１３のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１４）や、光ピンセットによって細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができることを特徴とする請求項７〜１４のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項１５）に関する。
【００１４】
本発明はまた、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及びチオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元することを特徴とするＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項１６）や、塩化金酸をホウ素化水素ナトリウムで還元することを特徴とする請求項１６記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項１７）や、チオール基とアミノ基を有する化合物として、システアミンを用いることを特徴とする請求項１６又は１７記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法（請求項１８）に関する。
【００１５】
さらに本発明は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子（請求項１９）や、透過型電子顕微鏡による粒径が２０〜８０ｎｍであることを特徴とする請求項１９記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子（請求項２０）や、ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷がほぼ−５〜５ｍＶであることを特徴とする請求項１９又は２０記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子（請求項２１）や、請求項１９〜２１のいずれか記載のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２２）や、細胞内へ核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項２２記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２３）や、動物個体に投与し、組織内に核酸をデリバリーすることができることを特徴とする請求項２３記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２４）や、核酸が、遺伝子治療用の核酸であることを特徴とする請求項２２〜２４のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２５）や、核酸が、プラスミドＤＮＡであることを特徴とする請求項２２〜２５のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２６）や、直径が５０ｎｍ〜１μｍ程度であることを特徴とする請求項２２〜２６のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２７）や、直径が８μｍ以上であることを特徴とする請求項２２〜２６のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２８）や、光ピンセットで捕捉することができることを特徴とする請求項２２〜２８のいずれか記載のＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項２９）や、光ピンセットによって細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができることを特徴とする請求項２２〜２９のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項３０）や、エレクトロポレーションによって細胞内に移動させることができることを特徴とする請求項２２〜３０のいずれか記載のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体（請求項３１）に関する。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によると、チオール基とアミノ基を有する化合物の共存下塩化金酸を還元することにより得られるカチオン性表面を持つ金ナノ粒子や、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及びチオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元することにより得られるＰＥＧで表面修飾したカチオン性表面をもつ金ナノ粒子（ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子）は、核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３要素を備えた遺伝子キャリアーとして有用であり、かかる遺伝子キャリアーをＤＮＡ、ＲＮＡ、オリゴヌクレオチドなどと反応させ核酸複合体を作製すれば、細胞内へのデリバリーを実現できる。上記のアミノ基で修飾した金ナノ粒子の利用はその基礎的技術基盤をつくるための、有望な素材であり、従来にない高機能性遺伝子キャリアーの実用化につながるものである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
本発明のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法としては、チオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元する方法であれば特に制限されるものではなく、ここで、カチオン性表面をもつ金ナノ粒子とは、ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷が正（＋）、好ましくは＋５〜＋１００ｍＶ、より好ましくは＋２０〜＋７０ｍＶ、さらに好ましくは＋２５〜＋６０ｍＶ、中でも＋３０．９〜５１．５ｍＶの表面電荷をもつ金ナノ粒子をいう。一般にゼータポテンシャルが３０ｍＶ以下の粒子は静電的反発力のみによっては溶液中に安定分散できない。一方、７０ｍＶを超えるゼータポテンシャルを示す粒子は、核酸と非常に強固な静電的相互作用によって結合し、核酸の構造を損ねる場合がある。本発明の目的には、ＤＮＡと金ナノ粒子が適切な静電相互作用で結合するゼータポテンシャルを示す粒子が好ましい。また、金ナノ粒子の粒径としては特に制限されないが、１〜２５０ｎｍ、好ましくは５〜１５０ｎｍ、より好ましくは２０〜８０ｎｍ、さらに好ましくは３０〜４０ｎｍ、中でも３３．３〜３３．９ｎｍの粒径をもつ金ナノ粒子を好適に例示することができる。粒径が１nmより小さい場合は核酸のサイズよりも小さいため適切な複合体形成が困難である。また、粒径が２５０nmを超える場合は細胞への取り込み効率が低下することが知られている。本発明に好適な粒子サイズは核酸との複合体の安定性と細胞への取り込み効率によって決定される。さらに、金ナノ粒子表面に対する各種化学修飾（糖鎖など）によっても、最適な粒子サイズは影響を受ける。
【００１８】
上記チオール基とアミノ基を有する化合物としては、システアミン（２−アミノメルカプタン，アミノエタンチオール）、システイン、イソシステイン、６−アミノ−１−ヘキサンチオール、１１−アミノ−１−アンデカンチオール、メルカプトアデニン、アミノチオフェノールを挙げることができるが、これらの他、メルカプトテトラゾール、メルカプトヒポキサンチン、メルカプトピリジン、２−メルカプトピリジン、メルカプトプリン、フェニレンチオ尿素等を便宜的に例示することができる。これらの中でも、システアミンが、容易に入手しうる点、核酸の構造に影響を与えにくい点、化学的に安定である点で特に好ましい。
【００１９】
また、塩化金酸を還元するのに使用される還元剤としては、従来公知の還元剤であれば特に制限されないが、ホウ素化水素ナトリウム、ヒドキシアミン等の無機物やその塩、クエン酸、アスコルビン酸、酒石酸、シュウ酸、ＥＤＴＡ、タンニン酸等の有機酸やその塩、さらにトリエタノールアミン、システイン、チオシアネート、黄リン等の酸化分解性有機物等を挙げることができる。さらに、紫外線や可視光照射による光触媒反応、あるいはＸ線あるいはガンマ線照射による放射光反応も塩化金酸の還元に有用である。これらの中でも、ホウ素化水素ナトリウムやクエン酸還元が、容易に入手しうる点、再現性が高い点、反応の制御性が高く粒径制御が可能である点、作業上安全である点、反応生成物が無害である点で特に好ましい。
【００２０】
本発明の金ナノ粒子の作製方法は再現性に優れ、スケールアップも簡単であり、さらに、反応液はそのままＤＮＡ複合体作製に利用でき、これまでのカチオン性金ナノ粒子のように精製する必要がない上に、一級アミンの利用によって、そのエンドソーム内でのプロトンスポンジ効果が期待され、より高い遺伝子発現を得ることができる。
【００２１】
本発明のカチオン性金ナノ粒子としては、本発明のカチオン性表面をもつ金ナノ粒子の作製方法により得られる金ナノ粒子であれば特に制限されるものではなく、透過型電子顕微鏡による粒径が１〜２５０ｎｍ、好ましくは５〜１００ｎｍ、より好ましくは２０〜８０ｎｍ、さらに好ましくは３０〜４０ｎｍ、中でも３３．３〜３３．９ｎｍの粒径をもつ金ナノ粒子、及び／又は、ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷が正（＋）、好ましくは＋５〜＋１００ｍＶ、より好ましくは＋２０〜＋７０ｍＶ、さらに好ましくは＋２５〜＋６０ｍＶ、中でも＋３０．９〜５１．５ｍＶの表面電荷をもつ金ナノ粒子を好適に例示することができる。また、本発明のカチオン性金ナノ粒子としては、核酸と容易にかつ効率よく複合体を形成しうるものが好ましく、特に、核酸と複合体を形成することにより、核酸を細胞内へデリバリーすることができるもの、あるいは動物個体に投与したときに核酸を組織内にデリバリーすることができるものや、中でも、核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３要素を備えた遺伝子キャリアーとして有用なものが特に好ましい。さらに、本発明のカチオン性金ナノ粒子を用いると、本発明のカチオン性金ナノ粒子と複合体を形成することができる核酸以外の酸性ポリマー、酸性抗がん剤（強引にこのようなものを挙げました）等の成分を細胞内や生体組織内にデリバリーすることができる。
【００２２】
本発明のＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子の作製方法としては、ＰＥＧ及びチオール基とアミノ基を有する化合物の共存下で塩化金酸を還元する方法であれば特に制限されるものではなく、ＰＥＧとしては、分子量１２０〜１,０００,０００、好ましくは４０００〜６０００を有利に用いることができ、また、チオール基とアミノ基を有する化合物や、塩化金酸を還元するのに使用される還元剤としては、上記ものを用いることができる。
【００２３】
また、本発明のＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子としては、例えば、本発明のＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子の作製方法のより得られるものを例示することができ、透過型電子顕微鏡による粒径が５〜２００ｎｍ、好ましくは１０〜１００ｎｍ、より好ましくは２０〜８０ｎｍ、さらに好ましくは４３〜５２ｎｍ、中でも４７．５ｎｍの粒径をもつ金ナノ粒子、及び／又は、ゼータポテンシャル計で測定した表面電荷が−１０〜１０ｍＶ、好ましくは−８〜８ｍＶ、より好ましくは−５〜５ｍＶ、さらに好ましくは−０．１〜０．３ｍＶ、中でも０．１ｍＶの表面電荷をもつ金ナノ粒子を好適に例示することができる。ＰＥＧ鎖は水和の度合いが高く、分子の運動性も高い。この自由エネルギーの高い状態は、鎖間が相互作用を起こして自由度を低くするよりも、有利である。また、分極の度合いも極めて低いため、ファンデアワールス力も低く、相互作用は小さい。したがって、ＰＥＧ修飾すれば分子間の相互作用が大幅に低下し、粒子の場合では粒子間での凝集が起こらなくなる。このため、ゼータ電位がニュートラルでも溶液中に安定に分散できる。また、本発明のＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子としては、核酸と容易にかつ効率よく複合体を形成しうるものが好ましく、特に、核酸と複合体を形成することにより、核酸を細胞内へデリバリーすることができるもの、あるいは動物個体に投与したときに核酸を組織内にデリバリーすることができるものや、中でも、核酸の生分解の抑制、臓器あるいは組織選択性の高い体内動態、及び高い遺伝子発現効率の３要素を備えた遺伝子キャリアーとして有用なものが特に好ましい。さらに、本発明のカチオン性金ナノ粒子を用いると、本発明のカチオン性金ナノ粒子と複合体を形成することができる核酸以外の酸性ポリマー、酸性抗がん剤（強引にこのようなものを挙げました）等の成分を細胞内や生体組織内にデリバリーすることができる。
【００２４】
本発明のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体としては、上記本発明のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体であれば特に制限されるものではなく、細胞内へ核酸をデリバリーすることができるもの、あるいは動物個体に投与し、組織内に核酸をデリバリーすることができるものが好ましく、上記核酸としては、１本鎖若しくは２本鎖ＤＮＡ、ＲＮＡ、オリゴヌクレオチド、ウイルスＤＮＡ、ウイルスＲＮＡ、プラスミドＤＮＡ等を挙げることができるが、これら核酸の中でも、遺伝子治療用の核酸はドラッグデリバリーシステムとして有用であり、この点からして、遺伝子治療に用いられるプラスミドＤＮＡやウイルスＤＮＡが好ましい。
【００２５】
本発明のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体は、カチオン性金ナノ粒子やＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸を、低イオン強度の水中で混合することによって得られる。緩衝液や培養液中でも静電的な相互作用がシールドされて複合体の形成が起こらない。金ナノ粒子核酸複合体は、ｐＨ６〜８、温度１０〜４０℃下の緩衝溶液や液中で、沈殿や孤立粒子へのかい離を起こさず、安定に分散する。この場合、カチオン性金ナノ粒子表面のアミノ基と核酸におけるリン酸基が結合することにより、カチオン性金ナノ粒子表面に核酸が強固に結合することが安定な複合体形成の要因である。また、カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体の大きさは、核酸分子の大きさや、核酸に対するこれら金ナノ粒子の混合比等に依存するが、例えば、直径が１μｍ程度のものは、細胞内へのデリバリーおよび光ピンセットで容易に捕捉される点で好ましく、直径が８μｍ以上のものは、細胞内へのデリバリーの点で好ましい。
【００２６】
さらに、本発明のカチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子と核酸との複合体としては、光ピンセットで捕捉することができるものや、光ピンセットによって細胞内あるいはリポソーム内に移動させることができるものが好ましい。例えば、細胞内に移動させるには、生きた細胞を、その生命が維持できる環境を持つバッファー中に置き、１〜１００００個、好ましくは１００〜１０００個（各複合体の大きさに比例する）のカチオン性金ナノ粒子−核酸複合体に、予め蛍光顕微鏡観察が可能なような量の蛍光色素を吸着させ、経時的に観察しながら、任意のカチオン性金ナノ粒子−核酸複合体や、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−核酸複合体を光りピンセットで捕捉し、３次元的に移動させながら任意の１つの細胞に近接させ、そのまま穏やかに細胞壁や細胞膜等を貫通させることにより、カチオン性金ナノ粒子−核酸複合体を非接触的な細胞内へ導入することができる。
【００２７】
本発明のＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−核酸複合体を静脈投与し、エレクトロポレーションと併用することで、遺伝子導入能の向上がみられる。ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−核酸複合体は、一般的ポリカチオンとの複合体に比べ弱く、そのため、パルスを照射することにより遺伝子が解離しやすいと考えられる。また、金ナノ粒子の導電性という性質もエレクトロポレーションの効果を促進している可能性もある。作製したＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子はエレクトロポレーションによる遺伝子導入の促進剤として有利に用いることができる。
【００２８】
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
【実施例１】
【００２９】
［カチオン性金ナノ粒子の調製］
塩化金酸とホウ素化水素ナトリウムで還元する際、システアミンを共存させることにより、表面がカチオン修飾された金ナノ粒子を得た。詳しくは、１．４２ｍＭの塩化金酸（和光純薬工業株式会社製）水溶液２ｍＬと２１３ｍＭのシステアミン（東京化成工業株式会社製）２０μＬを混合し、室温で２０分攪拌した。その後、１０ｍＭの水素化ホウ素ナトリウム（和光純薬工業株式会社製）水溶液０．５μＬを添加し、さらに、室温で１５分攪拌した。得られたカチオン性金ナノ粒子の透過型電子顕微鏡（日本電子社製  JEM-100S型））写真を図１に示す。この透過型電子顕微鏡写真によると、粒径は３３．６±０．３ｎｍだった。また、得られた金ナノ粒子の表面電荷をゼータポテンシャル計（Malvern Instruments社製Zetasizer Nano ZS）で測定した結果、＋３６．２±１５．３ｍＶだった。
【実施例２】
【００３０】
［金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体の形成］
６μｇのプラスミドＤＮＡに対して、実施例１で調製したカチオン性金ナノ粒子を水中、さまざまな量比（０〜１．８）で室温で２分間混合し、その結合をアガロースゲル電気泳動で解析した。結果を図２に示す。その結果、金ナノ粒子／プラスミドDNAの重量比が０．７以上でプラスミドＤＮＡの泳動に影響が現れ始め、金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡとが相互作用していることがわかった。
【００３１】
使用したプラスミドＤＮＡは次のように作製したものを用いた。ｐＧＬ３−コントロールベクター（Promega, Madison, WI, USA）のルシフェラーゼｃＤＮＡを制限酵素HindIII/XbaIで切り出し、その断片をｐｃＤＮＡ３ベクター（Invitrogen, Carlsbad, CA, USA）のマルチクローニングサイトに組み込んだ。このプラスミド（ｐＣＭＶ−Ｌｕｃ）を大腸菌DH5alphaにより増殖させ、キアゲン・プラスミド・ギガ・キット（QIAGEN GmbH, Hilden, Germany）にて精製した。
【００３２】
金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡが結合することによるＤＮＡ鎖の折り畳みの程度について、エチジウムブロミドのインターカレーション阻害を指標に評価した。結果を図３に示す。その結果、金ナノ粒子を添加するに従いエチジウムブロミドの蛍光が低下し、重量比１１．２でゼロとなった。
【００３３】
金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡの複合体を形成させるときにＤＡＰＩ（4’,6-diamidino-2-phenylindole dihydrochloride）をプラスミドＤＮＡの染色剤として添加し、蛍光顕微鏡（Nikon社製ECLIPSE TE300）にてその複合体を観察した。その際、６μｇのプラスミドＤＮＡに対して、カチオン性金ナノ粒子をさまざまな量比（０〜１．８）で混合する条件下で複合体を形成させた。結果を図４に示す。その結果、重量比５．６〜８．４で混合したとき、１μｍ程度の複合体が観察され、重量比１１．２で混合したときは、８μｍ以上の大きな凝集体が形成されることがわかった。
【実施例３】
【００３４】
［金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体の細胞内取込み］
２．５μｇのプラスミドＤＮＡに対して、１４．０μｇの金ナノ粒子を２５０μＬのＰＢＳ中で混合し、作製した金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体を培養細胞（チャイニーズハムスター卵巣由来細胞；ＣＨＯ細胞）培地中（ダルベッコ改変イーグル培地）に添加し、２４時間後の細胞内に取り込まれたプラスミドＤＮＡからの遺伝子（ルシフェラーゼ）発現を評価した。結果を図５に示す。その結果、プラスミドＤＮＡ単独の場合と比べて１０倍の遺伝子発現が認められ、それは、高効率なトランスフェクション試薬として知られているデンドリティックポリリジン第６世代（ＫＧ６：M. Ohsaki et al., Bioconjugate Chem. 13, 510-517 (2002)）と比べても遜色のないものだった。
【実施例４】
【００３５】
［金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体のインビボでの挙動］
２５μｇＤＮＡに対して、５３μｇの金ナノ粒子を２００μＬのＰＢＳ中で混合し、作製した金ナノ粒子−ＤＮＡ複合体をマウス（ｄｄＹマウス、雄、２９〜３１ｇ）に尾静脈より投与し、３０分後に各臓器を摘出した。それぞれの臓器を約５ｍｌの王水に浸漬してホットプレート上で加熱した。各臓器を完全に溶解させた後、溶液の量が１／５程度になるまでホットプレート上で加熱した。これに０．５Ｎ塩酸を約５ｍｌ加え、遠心分離（１０，０００Ｇ×１０分）によって、少量の沈殿物を取り除いた。次に、この溶液をエバポレーターによって乾固させた。それぞれ２ｍｌの塩酸に溶かし、測定用試料とした。ポアサイズ０．４５ｍマイクロｍのフィルターを通し、ＩＣＰ−ＭＳ（Agilent社製 7500c）による溶液の金濃度測定から定量を行った。結果を図６に示す。その結果、全投与量の７９％の金が肝臓から検出された。
【実施例５】
【００３６】
［金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体の光ピンセット捕捉性］
実施例２記載のように作製した金ナノ粒子−ＤＮＡ複合体（w/w ratio = 5.6）をレーザートラップ技術による光ピンセットによりマニュピュレートできるかどうか検討した。手法は文献（K. Kubo et al., Appl. Phys. Lett., 83, 2468-2470, 2002、特開２００３−７０４６８号公報、細胞への遺伝子導入方法）にしたがって行った。結果を図７に示す。その結果、金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体は容易に光ピンセットで捕捉することが可能で（図７Ａ）、また、５０ヘルツで水平方向１８μｍの振幅で振動（図７Ｂ）、あるいは、直径１８μｍの回転運動（図７Ｃ）させても、複合体は安定にトラップされたままであった。このトラップ力は一般的なスペルミンなどのポリアミンから作られるＤＮＡ複合体と比べて強いものであった。
【実施例６】
【００３７】
［ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子の作製法］
塩化金酸とホウ素化水素ナトリウムで還元する際、システアミンとポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を共存させることにより、表面がＰＥＧされたカチオン性金ナノ粒子を得た。４２ｍＭ塩化金酸（和光純薬工業）溶液２ｍＬに、２１３ｍＭアミノエタンチオール（Sigma）溶液２０μＬ、１００ｍＭのｍＰＥＧ−ＳＨ（Nektar，Ｍｗ：５０００）水溶液４２．６μＬを混合し、室温で２０分放置した。その後、１００ｍＭ水素化ホウ素ナトリウム１μＬを添加し、３０分撹拌し、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子を得た。
【実施例７】
【００３８】
［ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体の形成］
０．５μｇのプラスミドＤＮＡに対して、実施例６で調製したＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子をＰＢＳ中で混合し１０分間放置した後、アガロース電気泳動でＤＮＡ結合能を評価した。また比較としてＰＥＧ修飾なしカチオン性金ナノ粒子も同様に行った。蛍光で観察した結果を図８Ａ，可視光で観察した結果を図８Ｂに示す。その結果、ＰＥＧ修飾なしカチオン性金ナノ粒子はＡｕ／ＤＮＡ質量比５．６以上で複合体を形成した。ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子は、蛍光観察ではＡｕ／ＤＮＡ質量比が上がるとともにＤＮＡのバンドが薄くなり、可視光観察ではＤＮＡと同様に金ナノ粒子も泳動され、プラスミドＤＮＡと相互作用していることがわかった。
【実施例８】
【００３９】
［ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体の粒径・表面電荷測定］
ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子の粒径と表面電荷をゼータポテンシャル計（Malvern社製 Zetasizer Nano ZS）で測定した。結果を表１、図９に示す。表１は混合してから１０分後の結果である。ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子は４７．５±４．５ｎｍ、０．１±０．２ｍＶであった。プラスミドＤＮＡとの複合体は質量比８．４，１６．８では粒径がそれぞれ８９．０±３．１ｎｍ、１０６．５±６．０ｎｍであり、表面電荷は−８．４±０．８ｍＶ、−４．１±０．９ｍＶであり、ゼロに近い値であった。また、図９はその複合体の粒径を時間経過でみた結果であり、質量比８．４（●）で混合すると１時間近く経過しても１００ｎｍ以下の安定な複合体を保持していた。
【００４０】
【表１】
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【実施例９】
【００４１】
［ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子及びプラスミドＤＮＡのマウス体内動態］
４０μｇのPEG修飾カチオン性金ナノ粒子をＰＢＳで全量を２００μＬに調整し、マウス（ｄｄＹマウス、雄、２０〜３０ｇ）に尾静脈投与し、５、３０、１２０分ごとに血液、肝臓、肺を摘出した。それらの臓器を２〜５ｍＬの王水に溶解させ、遠心分離（１０００Ｇ，５ｍｉｎ）によって沈殿物を取り除いた。次にエバポレータによって乾固させた。２ｍＬの酸に溶かし、ＩＣＰ−ＭＳ（Agilent社製 ７５００ｃ）により金濃度を測定した。その結果を図１０に示す。ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子は血液中で１２０分経過しても２０％存在し、安定にマウス体内を安定に滞留していた。
【００４２】
また、２５μｇのプラスミドＤＮＡに対して、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子を質量比８．４になるように混合し、マウス尾静脈より投与し、１、５、１０、３０分ごとに血液、肝臓、肺を摘出し、Ｄｎｅａｓｙ（Qiagen）を用いてＤＮＡを抽出した。このＤＮＡ溶液を、リアルタイムＰＣＲ（BioFlux社製 LineGene）により投与したプラスミドＤＮＡを定量した。その結果を図１１に示す。その結果、プラスミドＤＮＡが血液中に５分まで５％、肝臓内では５分まで１２％存在していた。
【実施例１０】
【００４３】
［ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体のエレクトロポレーション併用における遺伝子導入］
５０μｇのプラスミドＤＮＡに対して、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子を質量比８．４になるように混合し、マウスに尾静脈投与し、その１分後に開腹し、肝臓左葉部位にエレクトロポレーター（Nepagene社製  ＣＵＹ２１）を用いて電気パルス（２５０ｍＶ／ｃｍ，２０ｍｓｅｃ，８ｐｕｌｓｅ，１Ｈｚ）をかけた。閉腹し、６時間後に肝臓の左葉（Left Lobe）、右葉（Right Lobe）、方形葉（Median Lobe）、尾状葉（Caudate Lobe）部位を摘出し、１ｍＬの細胞溶解液中で組織を破砕し、遠心分離（１００００Ｇ，１０分）し、プラスミドＤＮＡの遺伝子（ルシフェラーゼ）発現を評価した。結果を図１２Ａに示す。この結果から電気パルスをかけた部位だけ発現がみられ、プラスミドＤＮＡ単独と比較して１０倍の遺伝子発現の向上がみられた。
【００４４】
また同様に投与し１、５、１０、３０分後に肝臓左葉部位に電気パルスをかけて遺伝子発現を評価した。その結果を図１２Ｂに示す。５分後では、プラスミドＤＮＡ単独では発現がみられないが、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子では１００倍もの発現の向上がみられた。
【００４５】
その他の遺伝子キャリーと比較した結果を図１２Ｃに示した。この結果は投与後５分後に電気パルスをかけた結果である。ＰＥＧ修飾なしカチオン性金ナノ粒子（cationic Au）、ポリエチレンイミン（PEA，Sigma，Ｍｗ：２００００）では発現の向上は全くみられないが、ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子ではエレクトロポレーションの遺伝子導入を向上させた。
【図面の簡単な説明】
【００４６】
【図１】本発明のシステアミンで表面が修飾された金ナノ粒子の電子顕微鏡写真を示す図である。
【図２】アガローズゲル電気泳動によるカチオン性金ナノ粒子とプラスミドDNAの結合解析の結果を示す図である。
【図３】エチジウムブロミドのインターカレーション阻害によるカチオン性金ナノ粒子とプラスミドDNAの結合解析の結果を示す図である。
【図４】本発明のカチオン性金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体の蛍光顕微鏡を示す図である。左；金ナノ粒子／ＤＮＡ＝５．６（ｗ／ｗ）中；金ナノ粒子／ＤＮＡ＝８．４（ｗ／ｗ）右；金ナノ粒子／ＤＮＡ＝１１．２（ｗ／ｗ）．
【図５】本発明のカチオン性金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体のCHO細胞）へのトランスフェクション効率を示す図である。
【図６】本発明のカチオン性金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体のマウス静脈投与後３０分での金の分布を示す図である。
【図７】光ピンセットによる本発明のカチオン性金ナノ粒子−プラスミドDNA複合体のマニュピュレーション結果を示す図である。Ａ；レーザートラップ技術によって捕捉された複合体（黒矢印）とステージを動かしたときの背景の移動のようす（白矢印）を示す。Ｂ；レーザーを左右に振動（２Ｈｚ）させ、複合体を高速で往復運動（３Ｈｚ）させているようすを示す。Ｃ；レーザーを回転させ、複合体を高速で回転運動させているようすを示す。
【図８】アガロース電気泳動によるＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡの結合能解析の結果を示す図である。Ａ；蛍光観察  Ｂ；可視光観察
【図９】ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子とプラスミドＤＮＡの粒径測定の結果を示す図である。●；Ａｕ／ＤＮＡ質量比８．４  ○；Ａｕ／ＤＮＡ質量比１６．８
【図１０】ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子のマウス尾静脈投与後の金の分布を示す図である。
【図１１】ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体のマウス尾静脈投与後のプラスミドＤＮＡの分布を示す図である。
【図１２】ＰＥＧ修飾カチオン性金ナノ粒子−プラスミドＤＮＡ複合体によるエレクトロポレーションの遺伝子導入の効果を示す図である。Ａ；尾静脈投与１分後にエレクトロポレーションを行った結果である。Ｂ；投与とエレクトロポレーションとの間隔による発現効率の影響を示す。Ｃ；尾静脈投与５分後にエレクトロポレーションを行った結果である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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