(57)【要約】【課題】  固相担体表面に粒子を固定して結合可能な表面積を大きくすることでＤＮＡプローブの結合量を増やすのに有用な磁性有機粒子、その磁性有機粒子の固定方法及びマイクロアレイを提供する。【解決手段】  フェルダジルラジカルを有するフェルダジル基及び水酸基、グリシジルエーテル基、カルボキシル基、スルホン酸基、アミノ基等の有機基を生体関連物質導入部位として同一分子内に有する化合物からなることを特徴とする磁性有機粒子、この粒子の固定方法及びマイクロアレイ。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
フェルダジルラジカルを有するフェルダジル基及び生体関連物質導入部位を同一分子内に有する化合物からなることを特徴とする磁性有機粒子。
【請求項２】
前記生体関連物質導入部位が、前記フェルダジル基の有するフェニル基に置換した有機基であることを特徴とする請求項１記載の磁性有機粒子。
【請求項３】
前記生体関連物質導入部位が、水酸基、グリシジルエーテル基、カルボキシル基、スルホン酸基及びアミノ基から選ばれる有機基であることを特徴とする請求項１又は２記載の磁性有機粒子。
【請求項４】
識別のための蛍光色素をさらに含有していることを特徴とする請求項１乃至３のいずれか１項記載の磁性有機粒子。
【請求項５】
前記磁性有機粒子が、２５Ｋにおける飽和磁化が５〜５０ｅｍｕ／ｇの範囲であることを特徴とする請求項１乃至４のいずれか１項記載の磁性有機粒子。
【請求項６】
測定基板表面に請求項１乃至５のいずれか１項記載の磁性有機粒子を接触させ、
測定基板上に磁界を発生させることによって前記磁性有機粒子を前記測定基板上に誘導し、
誘導した磁性有機粒子を前記測定基板上に固定することを特徴とする磁性有機粒子固定方法。
【請求項７】
粒子を固定するための測定基板と、請求項１乃至５のいずれか１項記載の生体関連物質導入部位を有する磁性有機粒子とを有し、該磁性有機粒子が前記測定基板上に固定されていることを特徴とするマイクロアレイ。
【請求項８】
前記生体関連物質導入部位に、ＤＮＡプローブが導入されていることを特徴とする請求項７記載のマイクロアレイ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、磁性有機粒子、粒子固定方法及びマイクロアレイに係り、特に、ＤＮＡチップとなる測定基板の片面から磁場を発生させることにより測定基板上に生体関連物質導入部位を有する磁性有機粒子を誘導、固定することができる磁性有機粒子、粒子固定方法及びマイクロアレイに関する。
【背景技術】
【０００２】
ゲノムプロジェクトの進歩に伴って、大量の遺伝子情報を一度に処理、解析する必要性が高まり、このようなニーズを満たすための１つの有力な手段として、ＤＮＡマイクロアレイ又はＤＮＡチップ（以下、総称してＤＮＡマイクロアレイと称する。）が開発、実用化されている。
【０００３】
ＤＮＡマイクロアレイは、多数のｃＤＮＡ、ＤＮＡ断片、オリゴヌクレオチド等（以下、ＤＮＡプローブと称する。）をシリコンやスライドガラス等の固相担体表面に固定したものであり、このＤＮＡマイクロアレイに固定されたＤＮＡプローブとこれに相補的なＤＮＡ断片試料とのハイブリダイゼーションを利用することによって試料に含まれるＤＮＡの状態を定量的又は定性的に解析するものである。
【０００４】
ＤＮＡマイクロアレイを製造するには、固相担体表面に多数のＤＮＡプローブを高密度、かつ安定に整列させ固定することが必要であり、その作製方法としては、従来から、主に固相担体表面上でオリゴヌクレオチドを合成する方法と、あらかじめ調製したＤＮＡプローブを固相担体表面に結合固定する２つの手法が用いられている。
【０００５】
固相担体表面上で合成を行う方法は、固相担体表面に反応性保護基を有する化学リンカーを導入し、半導体製造で用いるフォトリソグラフィーの技術を用いて脱保護した後、固相合成の手法により保護基を有するヌクレオチドと反応させ、これを繰り返すことによって直接オリゴヌクレオチドを合成していく方法である（例えば、特許文献１参照。）。
【０００６】
この方法により作製されたＤＮＡマイクロアレイは、人工的に合成されたオリゴヌクレオチドが固相担体表面に共有結合で固定されているため、再現性に優れた測定を行うことができる利点がある。
【０００７】
また、あらかじめ調製したＤＮＡプローブを固相担体表面に結合固定する方法は、固相担体の表面がプラスの電荷を有するように表面処理を行い、ＤＮＡプローブのもつ電荷を利用して担体表面に静電結合させる方法（例えば、特許文献２及び３参照。）と、合成オリゴヌクレオチドに反応活性基を導入し、固相担体にも反応性基を形成させるように表面処理を行い、オリゴヌクレオチドを固相担体表面に共有結合させる方法（例えば、特許文献３参照。）とが知られている。
【０００８】
この方法により作製されたＤＮＡマイクロアレイは、スポット用のＤＮＡプローブが用意できれば比較的低コストで製造することができ、既知のＤＮＡの測定には限られない。また、使用者がカスタマイズを容易に行うこともできる利点がある。
【０００９】
また、磁性粒子としては金属又はその酸化物である無機物からなるものが多く知られており、また磁性有機粒子としてはトリアミノベンゼンポリマーや１，４−ビス（２，２，６，６−テトラメチル−４−オキシ−４−ピペリジル−１−オキシル）ブタジイン等が知られており、近年、インクやトナーに用いられるものとしてフェルダジル置換アセチレンポリマー（例えば、特許文献４参照。）も知られている。
【特許文献１】米国特許第５４２４１８６号明細書
【特許文献２】特開２００２−７１６８６号公報
【特許文献３】特開２００２−６０６７１号公報
【特許文献４】特開平７−１３８５０７号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
しかし、これらのＤＮＡマイクロアレイは、１つのマイクロアレイで一度に多数の測定を行うために、マイクロアレイ上には測定項目に対応する多種類のＤＮＡプローブが固定されているが、より多種類のＤＮＡプローブを固定しようとすると１つの種類に対して固定する面積が小さくなり感度が落ちる問題があった。
【００１１】
また、従来知られている磁性粒子は無機物、有機物のどちらもＤＮＡプローブの導入部位が存在していないためＤＮＡマイクロアレイには適用することができなかった。
【００１２】
そこで、本発明は、固相担体表面に粒子を固定して結合可能な表面積を大きくすることでＤＮＡプローブの結合量を増やすのに有用な磁性有機粒子、その磁性有機粒子の固定方法及びマイクロアレイを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者は、固相担体表面に直接ＤＮＡプローブを固定するのではなく、固相担体表面に粒子を固定して表面積を大きくし、その粒子上にＤＮＡプローブを結合することでこれらの結合量を増やすことができること及び粒子として磁性有機粒子を用いることで、磁気的に効率良く粒子を固定することができ、この粒子に生体関連物質を導入することでマイクロアレイに適した構成とすることができることを見出し本発明を完成した。
【００１４】
本発明の磁性有機粒子は、フェルダジルラジカルを有するフェルダジル基及び生体関連物質導入部位を同一分子内に有する化合物からなることを特徴とするものである。
【００１５】
この生体関連物質導入部位は、有機基であって磁性有機粒子中に存在していれば特に限定されないが、フェルダジル基の有するフェニル基に置換した有機基であることが好ましい。この有機基としては、導入する生体関連物質と結合することができる基であればよく、また、生体関連物質にはこの磁性有機粒子の有する有機基と反応することができる有機基を導入しておけばよい。これらの有機基を相互に反応させることにより、磁性有機粒子と生体関連物質とを共有結合により効率良く、強固に結合させることができる。
【００１６】
このような有機基としては、例えば、グリシジルエーテル基−アミノ基、カルボキシル基−アミノ基、カルボキシル基−水酸基、スルホン酸基−アミノ基等の組合わせを挙げることができ、これらの組合わせのうち一方を磁性有機粒子に、他方を生体関連物質に導入すればよく、磁性有機粒子には、有機基の大きさや反応性の観点から、水酸基、グリシジルエーテル基、カルボキシル基、スルホン酸基及びアミノ基から選ばれる有機基であることが好ましい。
【００１７】
また、生体関連物質としては、その末端に反応基を形成することができ、測定対象物と特異的に結合する機能を有するものであればよく、例えば、ＤＮＡ及びＲＮＡとそれに相補的な配列を持つヌクレオチド、酵素と基質、抗原と抗体等のように相互に特異的に結合するものであれば種類は特に限定されず用いることができる。
【００１８】
また、本発明の磁性有機粒子は、２５Ｋにおける飽和磁化が５〜５０ｅｍｕ／ｇの範囲であることが、ＤＮＡマイクロアレイとして測定を有効に行うことができる観点から好ましい。
【００１９】
このような磁性有機粒子は、例えば、次のように製造することができる。ただし、ジアセチレン化合物が重合した後の化合物については推定の化学構造式を示した。
【００２０】
まず、最初に、
【化１】
2005291974.tif 000003
（ここで、ｎは２〜１５００の整数である。）で表すように、臭化アセチレン誘導体（Ｉ）とアセチレン誘導体（II）とを縮合して、臭化水素を脱離することにより反応させジアセチレン誘導体（III）を合成する。このとき、反応温度を４０〜８０℃、反応溶媒としてジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、ジメチルアセトアミド等を用いて還流しながら反応させることが好ましく、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム等の触媒を用いてもよい。次に、得られたジアセチレン誘導体（III）を、トリエチルアルミニウム、テトラブチルチタネート等の触媒を用いて重合させることでポリアセチレン誘導体（IV）を合成する。この反応は、反応温度を４０〜８０℃の加熱下で、反応溶媒として四塩化炭素、クロロホルム等のハロゲン化炭化水素、ヘキサデカン等の飽和炭化水素等を用いることができ、これらを混合して用いることが好ましい。なお、重合したポリアセチレン誘導体（IV）の化学構造については推定される２種類の化学式（IVａ）、（IVｂ）について示したが、以下同様に示す。得られたポリアセチレン誘導体（IV）をｔ−ブトキシカルボニル基で保護されたアミノ基から保護基を外し、アミノ基とすることでアミン誘導体（Ｖ）を得ることができる。
【００２１】
このアミン誘導体（Ｖ）を塩酸による酸性下、亜硝酸ナトリウムで処理することによりジアゾ化させ、塩化ジアゾニウム誘導体（VI）とすることができる。なお、ジアゾニウム塩は不安定なため、単離せずにこのまま反応を継続して行うことが好ましい。
【００２２】
これとは別に、次の反応式、
【化２】
2005291974.tif 000004
（ここで、Ｒ１は水素原子、ｔ−ブチルシリルオキシ基、アルコキシカルボニル基、ｔ−ブトキシカルボニルアミノ基又はアルコキシスルホニル基である。）に示したようにベンズアルデヒド誘導体（VII）とフェニルヒドラジン誘導体（VIII）とを脱水縮合させて、フェニルヒドラゾン誘導体（IX）を得る。反応は、トルエン等の芳香族炭化水素を溶媒とし、共沸脱水することにより行うことが好ましい。
【００２３】
さらに、次の反応式、
【化３】
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（ここで、Ｒ１は水素原子、ｔ−ブチルシリルオキシ基、アルコキシカルボニル基、ｔ−ブトキシカルボニルアミノ基又はアルコキシスルホニルオキシ基であり、ｎは１０〜１０００の整数である。）に示したように先に得られたジアゾニウム誘導体（VI）をフェニルヒドラゾン誘導体（IX）とピリジン中で反応させることによりフォルマザン誘導体（Ｘ）とし、さらにフォルマザン誘導体（Ｘ）をホルマリン存在下、環化させることによりフェルダジル誘導体（XI）を得ることができる。
【００２４】
最後に、得られたフェルダジル誘導体（XI）のフェルダジル基にラジカルを発生させるには、次の反応式、
【化４】
2005291974.tif 000006
（ここで、ｎは１０〜１０００の整数である。）に従って原料であるフェルダジル誘導体（XI）の窒素原子に結合している水素原子をアルカリ条件下で脱離させフェルダジルラジカルを有する磁性有機化合物とすればよい。
【００２５】
Ｒ１が水素原子である場合には、化学式４の反応により、また、Ｒ１がｔ−ブチルジメチルシリルオキシ基（ＴＢＳＯ）、アルコキシカルボニル基、ｔ−ブトキシカルボニルアミノ基（ｔ−ＢｏｃＮＨ）又はアルコキシスルホニル基の場合には、Ｒ１を目的とする置換基に変換することができ、変換した後に化学式４と同様の反応によるフェルダジルラジカルを生じさせればよい。
【００２６】
目的とする置換基が水酸基の場合には、Ｒ１がｔ−ブチルジメチルシリルオキシ基であるベンズアルデヒド誘導体（VII）及びフェニルヒドラジン誘導体（VIII）を原料として用い、同様に合成を行いフェルダジル誘導体（XI）とした後、テトラブチルアンモニウムフルオライド（ＴＢＡＦ）により、保護基であるｔ−ブチルジメチルシリル基を外して、水酸基としてからラジカルを発生させる最終工程に付せばよい。
【００２７】
また、目的とする置換基がグリシジルエーテル基の場合には、置換基Ｒ１を水酸基とした後に、さらにグリシジルクロライドを作用させることにより得ることができる。
【００２８】
また、目的とする置換基がカルボキシル基の場合には、Ｒ１がアルコキシカルボニル基であるベンズアルデヒド誘導体（VII）及びフェニルヒドラジン誘導体（VIII）を原料として用い、同様に合成を行いフェルダジル誘導体（XI）とした後、加水分解することによりカルボキシル基とすることができる。このとき、加水分解をアルカリ処理で行うことにより、一つの工程でフェルダジル基へのラジカルの発生も同時に行うことができる。
【００２９】
また、目的とする置換基がアミノ基の場合には、Ｒ１がｔ−ブトキシカルボニルアミノ基（ＢｏｃＮＨ）であるベンズアルデヒド誘導体（VII）及びフェニルヒドラジン誘導体（VIII）を原料として用い、同様に合成を行いフェルダジル誘導体（XI）とした後、トリフルオロ酢酸等で処理することでアミノ基としてから最終工程に付せばよい。
【００３０】
目的とする置換基がスルホン酸基の場合には、Ｒ１がアルコキシスルホニル基であるベンズアルデヒド誘導体（VII）及びフェニルヒドラジン誘導体（VIII）を原料として用い、同様に合成を行いフェルダジル誘導体（XI）とした後、加水分解することによりスルホン酸基とすることができる。このとき、加水分解をアルカリ処理で行うことにより、一つの工程でフェルダジル基へのラジカルの発生も同時に行うことができる。
【００３１】
以上のように目的とする置換基に変換した後は、化学式４と同様の反応、すなわち次の反応式
【化５】
2005291974.tif 000007
（ここで、Ｒ２は、水酸基、グリシジルエーテル基、カルボキシル基、スルホン酸基及びアミノ基から選ばれる有機基であり、また、重合度ｎは１０〜１０００の整数である。）で表される反応を行うことによって、フェルダジル誘導体（XIII）の窒素原子に結合している水素原子を脱離させフェルダジルラジカルを有する磁性有機化合物として最終目的物（XIV）を得ることができる。
【００３２】
このように得られた磁性を有する化合物は、粒子として得ることができればそのまま本願発明の磁性有機粒子として用いることもできる。しかし、そのまま用いることが困難であったり、より取扱いを容易にするために、スチレン−ｎ−ブチルメタクリレート共重合体、ポリジビニルベンゼン、ポリジメチルシロキサン等の疎水性ポリマーと混合して磁性有機粒子とすることもできる。この場合には、混合物をミキサーによって撹拌後、ロールミルにて溶融混練し、その後冷却して、粉砕、分級することにより、粒径５〜１０μｍの磁性有機粒子を製造することができる。
【００３３】
また、この磁性有機粒子に、必要に応じて、識別のための蛍光色素が内包されていてもよい。このような蛍光色素としては、例えば、１，３−ビス〔（１，３−ジヒドロ−１，３，３−トリメチル−２Ｈ−インドール−２−イリデン）メチル〕−２，４−ジヒドロキシシクロブテンジイリウム、２−（３，５−ジメチルピロール−２−イル）−４−（３，５−ジメチル−２Ｈ−ピロール−２−イリデン）−３−ヒドロキシ−２−シクロブテン−１−オンやそれら塩等が挙げられ、これらの蛍光色素は１種を単独で使用してもよく、２種以上を適宜混合してもよい。
【００３４】
また、本発明の粒子固定方法は、測定基板表面に本発明の磁性有機粒子を接触させ、測定基板上に磁界を発生させることによって磁性有機粒子を測定基板上に誘導し、誘導した磁性有機粒子を測定基板上に固定することを特徴とするものである。
【００３５】
本発明の磁性有機粒子は、その外部に磁界を生じると磁気モーメントを生じ、磁化される性質を有しているため、この磁性有機粒子を測定基板表面に接触させた後、測定基板の下部より磁界を生じさせると、生じた磁界に従って磁性有機粒子が測定基板上に誘導され、所望の位置に磁性有機粒子を固定することができる。
【００３６】
磁界を生じさせるには、実用的な点から、ソレノイド、電磁石、超伝導マグネット、永久磁石等を用いることができる。
【００３７】
誘導した磁性有機粒子を測定基板上に固定するには、誘導するために生じた磁界をそのまま継続しながら固定する他、測定基板表面に接着剤組成物等の薄膜を形成しておき、磁性有機粒子を測定基板上に誘導した後、接着剤を硬化させることにより固定することもできる。
【００３８】
接着剤を用いて固定すれば、磁性有機粒子を測定基板上に固定状態とするために磁界を生じさせ続けなくてよく、そのための装置を基板と共に扱う必要がなくなるため、測定の際には磁性有機粒子を固定させた測定基板のみで行うことができるため便利である。
【００３９】
このように製造されたマイクロアレイは、粒子を固定するための測定基板と、本発明の生体関連物質導入部位を有する磁性有機粒子とを有し、この磁性有機粒子が測定基板上に固定されていることを特徴とするものである。
【００４０】
図１に、ＤＮＡプローブを結合したマイクロアレイの模式的な側面図を示したが、図１（ａ）は、磁性有機粒子にＤＮＡプローブを導入する前のＤＮＡマイクロアレイ、図１（ｂ）は、磁性有機粒子にＤＮＡプローブを導入した後のＤＮＡマイクロアレイである。図１（ａ）のマイクロアレイは、測定用のＤＮＡプローブを適宜結合させる操作を行うことで、使用者がカスタマイズできる構成をとっており、図１（ｂ）のマイクロアレイは、すぐに測定を行うことができるように、ＤＮＡプローブ４を結合させた構成をとるものである。
【００４１】
このＤＮＡマイクロアレイ１は、測定基板２、磁性有機粒子３からなり、測定基板２上に磁性有機粒子３が測定基板２に固定される構成からなるものである。また、ＤＮＡプローブ４は、磁性有機粒子３と結合しており、測定基板２上に磁性有機粒子３を介して強固に結合、固定されているものである。
【００４２】
磁性有機粒子３を固定するための測定基板２としては、シリコンやガラス等のマイクロアレイで使用されているものやその他の生体関連物質測定のために使用されているものを用いることができる。
【００４３】
また、磁性有機粒子３は、生体関連物質導入部位を有しており、例えば、粒子表面にカルボキシル基、アミノ基等の反応性の置換基を有するものを挙げることができる。
【００４４】
磁性有機粒子３上に導入する生体関連物質としては、その末端にアミノ基等の官能基が導入されたものであり、測定対象物と特異的に結合する機能を有するもの、例えば、ＤＮＡ及びＲＮＡとそれに相補的な配列を持つＤＮＡ及びＲＮＡ、酵素と基質、抗原と抗体等のように特異的に結合するものであれば種類は特に限定されず用いることができる。
【００４５】
磁性有機粒子上への生体関連物質の導入をオリゴヌクレオチドを例に挙げて説明すると、そのオリゴヌクレオチドの末端にも反応性の置換基を形成させ、オリゴヌクレオチド末端の反応性基と粒子表面の反応性基（生体関連物質導入部位）とを相互に反応させて結合することとすればよい。例えば、粒子表面にカルボキシル基を有する場合には、オリゴヌクレオチド末端にはアミノ基を導入しておき、これらの基を反応させて塩を形成させたり、または縮合剤を共存させることによりアミド結合を形成させたりすることにより、オリゴヌクレオチドを粒子上に導入することができる。
【００４６】
また、磁性有機粒子としては、平均粒径１０ｎｍ〜１００μｍの範囲のものであれば使用することができ、分散性、作業の効率性の観点から粒径のばらつきは少ない方がよく、平均粒径は１００ｎｍ〜１０μｍであることが好ましい。
【００４７】
本発明に用いる磁性有機粒子は、生体関連物質導入部位として粒子表面にカルボキシル基、スルホン酸基、アミノ基等の反応性基を有しているため、荷電性を有する粒子が大部分を占めている。そのため、マイクロアレイを製造する際には、ポリアミノ酸を有する接着剤組成物を用いると効率良く、粒子を基板上に誘導することができる。
【発明の効果】
【００４８】
本発明は、粒子径が１０ｎｍ〜１００μｍの範囲内と、一粒子を極めて微細な磁性素子とすることができ、かつオリゴヌクレオチド導入部位を有する磁性有機粒子を提供することができるため、これを測定基板に固定すれば、ＤＮＡやタンパク質等生体物質を測定基板上に固定することが可能となり、医療用診断用途に極めて有効である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４９】
以下、本発明について実施例を参照しながら詳細に説明する。
【００５０】
（実施例１）
【化６】
2005291974.tif 000008
【００５１】
アセチレンブロマイド誘導体（化合物〔１〕）２５ｍｍｏｌを溶解したジメチルホルムアミド溶液に、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム  ０．５ｍｍｏｌを加え、さらに７０℃に加熱して、フェニルアセチレン誘導体（化合物〔２〕）２５ｍｍｏｌを溶解したジメチルホルムアミド溶液を滴下した。４時間還流後、減圧下ジメチルホルムアミドを留去し、エーテル及び１Ｍ塩酸を加え抽出した。エーテル層を水で洗浄した後、硫酸ナトリウムで乾燥し、エーテルを留去して、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製してジアセチレン誘導体  １８ｍｍｏｌを得た。
【００５２】
得られたジアセチレン誘導体  １７ｍｍｏｌをヘキサデカン、四塩化炭素、クロロホルムの８０：１２：８の混合溶媒に溶解し、この溶液に、トリエチルアルミニウム  ８５ｍｍｏｌ、テトラブチルチタネート  ４３ｍｍｏｌを加え、６０℃で１０日間撹拌した。反応終了後、０℃下でメタノール  ２ｍＬを滴下し、次いでメタノール  ６０ｍＬにあけて濾取した。メタノールで洗浄後、減圧下乾燥して、ポリアセチレン誘導体  ３．２ｇを得た。
【００５３】
ポリアセチレン誘導体  １０質量部を塩化メチレンに溶解し、０℃下でトリフルオロ酢酸  ８０質量部を加え、３時間撹拌した。反応終了後、１０％水酸化ナトリウムを加え３０分撹拌後、析出物を濾取し、水洗、乾燥し、アミノ置換されたポリアセチレン誘導体を得た。
【００５４】
このアミノ置換ポリアセチレン誘導体  ７質量部を塩酸による酸性下、亜硝酸ナトリウム  １５質量部を添加し、塩化ポリアセチレンジアゾニウム誘導体（化合物〔３〕）を得た。
【００５５】
【化７】
2005291974.tif 000009
【００５６】
これとは別に、ベンズアルデヒド（化合物〔４〕）  １８ｍｍｏｌをトルエンに溶解し、フェニルヒドラジン（化合物〔５〕）  １８ｍｍｏｌのトルエン溶液を加え、１時間共沸脱水を行った。トルエンを留去後、シリカゲルクロマトグラフィーで精製してフェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔６〕）  １７ｍｍｏｌを得た。
【００５７】
【化８】
2005291974.tif 000010
【００５８】
フェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔６〕）  ５質量部をピリジンに溶解し、塩化ポリアセチレンジアゾニウム（化合物〔３〕）  ５０質量部を０℃下で加え、１時間撹拌した。少量の水を加え、析出物を濾取、水洗、乾燥し、フォルマザン誘導体を得た。
【００５９】
得られたフォルマザン誘導体をジオキサンに溶解し、ホルマリン  ６０質量部、塩酸  ６０質量部を加え、室温で１時間撹拌した。水で反応を停止した後、トルエンで抽出、トルエンを留去し、濃硫酸  ３０質量部を加え、０℃下で２時間撹拌した。１Ｌのメタノール中に反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取し、メタノール洗浄後、ソックスレー抽出器にてクロロホルムを用いて抽出を行った。クロロホルムを留去しフェルダジル誘導体を得た。
【００６０】
フェルダジル誘導体５０質量部のブタノール溶液に水酸化カリウム溶液５０質量部を加え、２５℃下、１時間撹拌し、メタノール１Ｌへ反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取後、水、メタノールで洗浄、乾燥して最終目的物であるラジカルを有する磁性フェルダジル誘導体（化合物〔７〕）を得た。
【００６１】
（実施例２）
【化９】
2005291974.tif 000011
【００６２】
ｐ−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシベンズアルデヒド誘導体（化合物〔８〕）  ２３ｍｍｏｌをトルエンに溶解し、ｍ−テトラブチルシリルオキシフェニルヒドラジン（化合物〔９〕）  ２３ｍｍｏｌのトルエン溶液を加え１時間共沸脱水を行った。トルエンを留去後、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、フェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔１０〕）  ２１ｍｍｏｌを得た。
【００６３】
【化１０】
2005291974.tif 000012
【００６４】
フェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔１０〕）  ６質量部のピリジン溶液に塩化ポリアセチレンジアゾニウム（化合物〔３〕）  ６０質量部を０℃下で加え、１時間撹拌した。少量の水を加え、析出物を濾取し、水洗、乾燥してフォルマザン誘導体を得た。得られたフォルマザン誘導体のジオキサン溶液にホルマリン  ７２質量部、塩酸  ７２質量部を加え、１時間室温で撹拌した。水で反応を停止後トルエンにて抽出、トルエンを留去し、濃硫酸  ３６質量部を加え、０℃で２時間撹拌した。２Ｌのメタノール中に反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取し、メタノールで洗浄後、ソックスレー抽出機にてクロロホルムを用いて抽出した。クロロホルムを留去し、フェルダジル誘導体（化合物〔１１〕）を得た。
【００６５】
【化１１】
2005291974.tif 000013
【００６６】
フェルダジル誘導体（化合物〔１１〕）  １５質量部をテトラヒドロフランに溶解し、０℃でテトラエチルアンモニウムフロリド  ６０質量部を加えた後、室温で１０時間撹拌した。反応溶液を水中に注いだ後、これを酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル層を水で洗浄した後、硫酸ナトリウムで乾燥した。酢酸エチルを留去して、フェニル基に置換したｔ−ブチルジメチルシリルオキシ基が水酸基へ変換されたフェルダジルフェノール誘導体（化合物〔１２〕）を得た。
【００６７】
【化１２】
2005291974.tif 000014
【００６８】
得られたフェルダジルフェノール誘導体（化合物〔１２〕）  ６０質量部のアセトン溶液に炭酸カリウム  ８質量部を加え１時間撹拌後、エピクロルヒドリン  ６質量部を加え３時間還流した。アセトンの留去後、残渣を大量の水で水洗し、乾燥して、水酸基がグリシジルエーテル基へ変換されたフェルダジルエポキシ誘導体を得た。次いで、このフェルダジルエポキシ誘導体  ５０質量部にトリエチルアミン  ５０質量部を加え、４０℃下、１時間撹拌し、５Ｌのメタノール中へ反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取後、水、メタノールで洗浄、乾燥して最終目的物であるラジカルを有する磁性フェルダジル誘導体（化合物〔１３〕）を得た。
【００６９】
この磁性フェルダジル誘導体（化合物〔１３〕）  １００質量部と、スチレン−ｎ−ブチルメタクリレート共重合体  １００質量部との混合物をミキサーによって撹拌後、ロールミルにて１３０〜１４０℃で０．５時間溶融混練し、その後、２５℃まで冷却した。次いで、粉砕、分級し、粒径５〜１０μｍの磁性有機粒子を得た。
【００７０】
この磁性有機粒子は、黒色粉末として得られ、磁化曲線は外部磁場により上昇し、２５Ｋでは５ｍＴで飽和し、その飽和磁化は２ｅｍｕ／ｇであった。
【００７１】
得られた有機磁性粒子は、操作型電子顕微鏡を用いて粒径を測定したところ５〜１０ｎｍの範囲内であることがわかったが、この有機磁性粒子の磁性は、簡易的には、永久磁石上に本磁性体粉末が集合することによっても確認できた。また、ＥＳＲスペクトルによりｇ＝２．０５７に鋭い１本線のピークが確認された。
【００７２】
（実施例３）
（磁性有機粒子の固定及びオリゴヌクレオチドの導入）
シリコン基板の下部にフェライトからなる磁石で５ｍＴの磁界を発生させ、ＤＮＡの導入部としてグリシジルエーテル基を有する実施例２で得られた磁性有機粒子を誘導し、固定した。この磁界の存在下、磁性有機粒子を固定した状態で、末端にアミノ基を導入したプローブＤＮＡを０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液に溶解し、その濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように調整した溶液に、シリコン基板を浸漬して７５℃で１時間インキュベートし、順次０．１％ドデシル硫酸ナトリウム水溶液、純水、エタノールに浸漬後、室温で乾燥することにより基板に付着した粒子へオリゴヌクレオチドプローブを導入し、基板上に固定した。
【００７３】
次に、ターゲットＤＮＡとしてその配列が先のプローブＤＮＡに相補的な配列を有し、蛍光色素（Ｃｙ５）で標識したオリゴヌクレオチドを０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１５ｍＭのクエン酸に溶解し、その濃度が２００ｎｇ／ｍＬとなるように調整した溶液を垂らし、４５℃で２４時間インキュベートした。その後、このものを０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１５ｍＭのクエン酸の混合溶液で洗浄した後、基板上の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で計測した結果、蛍光が確認されハイブリダイズ体が得られたことが確認できた。
【００７４】
（実施例４）
【化１３】
2005291974.tif 000015
【００７５】
置換ベンズアルデヒド（化合物〔１４〕）  ２３ｍｍｏｌをトルエンに溶解し、置換フェニルヒドラジン（化合物〔１５〕）  ２３ｍｍｏｌのトルエン溶液を加え、１時間共沸脱水を行った。トルエンを留去後、シリカゲルクロマトグラフィーで精製してフェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔１６〕）  １５ｍｍｏｌを得た。
【００７６】
【化１４】
2005291974.tif 000016
【００７７】
フェニルヒドラゾン誘導体（化合物〔１６〕）  ５質量部をピリジンに溶解し、塩化ポリアセチレンジアゾニウム（化合物〔３〕）  ５０質量部を０℃下で加え、１時間撹拌した。少量の水を加え、析出物を濾取、水洗、乾燥し、フォルマザン誘導体を得た。
【００７８】
得られたフォルマザン誘導体をジオキサンに溶解し、ホルマリン  ６０質量部、塩酸  ６０質量部を加え、室温で１時間撹拌した。水で反応を停止した後、トルエンで抽出、トルエンを留去し、濃硫酸  ３０質量部を加え、０℃下で２時間撹拌した。１Ｌのメタノール中に反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取し、メタノール洗浄後、ソックスレー抽出器にてクロロホルムを用いて抽出を行った。クロロホルムを留去しフェルダジル誘導体を得た。
【００７９】
フェルダジル誘導体５０質量部の塩化メチレン溶液に０℃下、トリフルオロ酢酸  １００質量部を加え、３時間撹拌した。反応終了後、塩化メチレンを留去した後、水酸化カリウムを溶解したブタノール溶液  ５０質量部を加え、２５℃下、１時間撹拌し、メタノール２Ｌへ反応溶液をあけ、得られた沈殿物を濾取後、水、メタノールで洗浄、乾燥して最終目的物であるラジカルを有する磁性フェルダジル誘導体（化合物〔１７〕）を得た。
【００８０】
この磁性フェルダジル誘導体（化合物〔１７〕）  １００質量部と、スチレン−ｎ−ブチルメタクリレート共重合体  １００質量部との混合物をミキサーによって撹拌後、ロールミルにて１３０〜１４０℃で０．５時間溶融混練し、その後、２５℃まで冷却した。次いで、粉砕、分級し、粒径５〜１０μｍの磁性有機粒子を得た。
【００８１】
この磁性有機粒子は、黒色粉末として得られ、磁化曲線は外部磁場により上昇し、２５Ｋでは５ｍＴで飽和し、その飽和磁化は２ｅｍｕ／ｇであった。
【００８２】
得られた有機磁性粒子は、操作型電子顕微鏡を用いて粒径を測定したところ５〜１０ｎｍの範囲内であることがわかったが、この有機磁性粒子の磁性は、簡易的には、永久磁石上に本磁性体粉末が集合することによっても確認できた。また、ＥＳＲスペクトルによりｇ＝２．０３５に鋭い１本線のピークが確認された。
【００８３】
（実施例５）
シリコン基板の下部にフェライトからなる磁石で５ｍＴの磁界を発生させ、実施例４で得られた磁性有機粒子を実施例３と同様の操作でシリコン基板上に誘導したところ、基板上に固定することができた。
【００８４】
また、実施例４で合成した磁性フェルダジル誘導体（化合物〔１７〕）  １００質量部と、マグネタイト  １０質量部と、スチレン−ｎ−ブチルメタクリレート共重合体  １００質量部との混合物をミキサーによって撹拌後、ロールミルにて１３０〜１４０℃で０．５時間溶融混練し、その後、２５℃まで冷却し、次いで、粉砕、分級して、粒径５〜１０μｍの磁性有機粒子を得た。この磁性有機粒子についても、実施例３の操作と同様にシリコン基板上に誘導したところ、マグネタイトを含有しない磁性有機粒子よりも安定に基板上に固定することができた。
【００８５】
（実施例６）
赤蛍光染料１，３−ビス〔（１，３−ジヒドロ−１，３，３−トリメチル−２Ｈ−インドール−２−イリデン）メチル〕−２，４−ジヒドロキシシクロブテンジイリウムと、オレンジ染料２−（３，５−ジメチルピロール−２−イル）−４−（３，５−ジメチル−２Ｈ−ピロール−２−イリデン）−３−ヒドロキシ−２−シクロブテン−１−オンとを異なる比率でクロロホルムとエタノールの混合溶媒（混合比２：３）に溶解して、２種の染料の混合比の異なる６４種の混合染料液を調製した。
【００８６】
これらの各混合染料液０．６ｍＬに、実施例４で得られたアミノ基を有する磁性有機粒子  ６０ｍｇをそれぞれ懸濁させ、２時間の超音波処理を行った。処理後、各懸濁液から微粒子を分離し、１．２ｍＬのメタノールに懸濁させた後、さらに２時間の超音波処理及びメタノール洗浄を行い、６４個（種）の微粒子ライブラリー（同種の蛍光染料を異なる比率で配合したもの）を作成した。
【００８７】
得られた６４個の微粒子ライブラリーをそれぞれ緩衝液に濃度が１質量％となるように懸濁させた後、これらの各懸濁液に、末端にカルボキシル基を導入したプローブＤＮＡを、０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液に、その濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように溶解した溶液を混合して、７５℃で１時間インキュベートし、微粒子にプローブＤＮＡを導入した。この後、微粒子を分離し、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム水溶液、純水及びエタノールに順に浸漬した後、純水に濃度が１質量％となるように懸濁させた。なお、６４個の微粒子ライブラリーのうちの１つに、目的遺伝子検出のためのプローブＤＮＡを導入し、その他には目的遺伝子を有さないプローブＤＮＡを導入した。
【００８８】
次いで、これらのプローブＤＮＡを導入した６４個の微粒子ライブラリーを含む懸濁液を混合し、この混合液中にシリコン基板を浸漬しつつ、シリコン基板に磁界を発生させて、プローブＤＮＡを導入した磁性有機粒子を基板上に固定させた。浸漬後、基板を液中から引き上げ風乾した。
【００８９】
この後、上記基板上に、ターゲットＤＮＡとしてその配列が先に固定した目的遺伝子検出のためのプローブＤＮＡに相補的な配列を有し、蛍光色素（フルオレセイン）で標識したオリゴヌクレオチドを０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液に、その濃度が２００ｎｇ／ｍＬとなるように溶解した溶液をスポットし、４５℃で約２４時間インキュベートした。その後、０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液で洗浄し、乾燥させた。基板上の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で計測したところ、フルオロセイン蛍光が確認され、ハイブリダイズ体が得られたことが確認できた。また、微粒子の染色蛍光によって目的遺伝子が確認できた。
【００９０】
（実施例７）
赤蛍光染料１，３−ビス〔（１，３−ジヒドロ−１，３，３−トリメチル−２Ｈ−インドール−２−イリデン）メチル〕−２，４−ジヒドロキシシクロブテンジイリウムと、オレンジ染料２−（３，５−ジメチルピロール−２−イル）−４−（３，５−ジメチル−２Ｈ−ピロール−２−イリデン）−３−ヒドロキシ−２−シクロブテン−１−オンと、黄緑蛍光染料３，６−ジアミノ−２，５−ピラジンカルボニトリルとを、異なる比率でクロロホルムとエタノールの混合溶媒（混合比２：３）に溶解して、３種の染料の混合比の異なる１２８種の混合染料液を調製した。
【００９１】
これらの各混合染料液０．６ｍＬに、実施例４で得られたアミノ基を有する磁性有機粒子  ６０ｍｇをそれぞれ懸濁させ、２時間の超音波処理を行った。処理後、各懸濁液から微粒子を分離し、１．２ｍＬのメタノールに懸濁させた後、さらに２時間の超音波処理及びメタノール洗浄を行い、１２８個（種）の微粒子ライブラリー（同種の蛍光染料を異なる比率で配合したもの）を作成した。
【００９２】
得られた１２８個の微粒子ライブラリーをそれぞれ緩衝液に濃度が１質量％となるように懸濁させた後、これらの各懸濁液に、末端にカルボキシル基を導入したプローブＤＮＡを、０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液に、その濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように溶解した溶液を混合して、７５℃で１時間インキュベートし、微粒子にプローブＤＮＡを導入した。この後、微粒子を分離し、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム水溶液、純水及びエタノールに順に浸漬した後、純水に濃度が１質量％となるように懸濁させた。なお、１２８個の微粒子ライブラリーのうちの１つに、目的遺伝子検出のためのプローブＤＮＡを導入し、その他には目的遺伝子を有さないプローブＤＮＡを導入した。
【００９３】
次いで、これらのプローブＤＮＡを導入した１２８個の微粒子ライブラリーを含む懸濁液を混合し、この混合液中にシリコン基板を浸漬しつつ、シリコン基板に磁界を発生させて、プローブＤＮＡを導入した磁性有機粒子を基板上に固定させた。浸漬後、基板を液中から引き上げ風乾した。
【００９４】
この後、上記基板上に、ターゲットＤＮＡとしてその配列が先に固定した目的遺伝子検出のためのプローブＤＮＡに相補的な配列を有し、蛍光色素（フルオレセイン）で標識したオリゴヌクレオチドを０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液に、その濃度が２００ｎｇ／ｍＬとなるように溶解した溶液をスポットし、４５℃で約２４時間インキュベートした。その後、０．１５Ｍ塩化ナトリウム及び１５ｍＭクエン酸水溶液で洗浄し、乾燥させた。基板上の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で計測したところ、フルオロセイン蛍光が確認され、ハイブリダイズ体が得られたことが確認できた。また、微粒子の染色蛍光によって目的遺伝子が確認できた。
【００９５】
（比較例１）
次の一般式
【化１５】
2005291974.tif 000017
（Ｒはオリゴマーである。）で表される１，４−ビス（２，２，６，６−テトラメチル−４−オキシ−４−ピペリジル−１−オキシル）ブタジイン（化合物〔１８〕、以下、ＢＴＯＰＯＢと称する。）に上記実施例と同様にオリゴヌクレオチドプローブを導入し、蛍光強度を測定した。
【００９６】
（比較例２）
さらに、次の一般式
【化１６】
2005291974.tif 000018
（Ｒはオリゴマーである。）で表されるトリアミノベンゼンポリマー（化合物〔１９〕）についても同様にオリゴヌクレオチドプローブを導入し、蛍光強度を測定した。
【００９７】
実施例３及び比較例の結果を、ＢＴＯＰＯＢにおける測定値を１として、相対的な蛍光強度の比率を示した。これらの傾向強度の数値は、ガラス基板に純水のみを載せた時の蛍光強度の数値をブランクとして差し引いて調製したものである。
【００９８】
【表１】
2005291974.tif 000019
【００９９】
この結果より、本発明の磁性粒子は、ハイブリダイズしたＤＮＡの検出濃度が極めて高く、従来の磁性粒子に比べて検出限界の向上に寄与するものであることが確認できた。
【０１００】
本発明によれば、ＤＮＡチップに固定されているオリゴヌクレオチドと、そのオリゴヌクレオチドに対して相補的なＤＮＡ断片試料とをハイブリダイゼーションさせることにより、ＤＮＡ断片試料の有無を検出することができる。
【図面の簡単な説明】
【０１０１】
【図１】本発明のマイクロアレイを模式的に示した側面図である。
【符号の説明】
【０１０２】
１…ＤＮＡマイクロアレイ、２…基板、３…接着剤組成物、４…粒子、５…ＤＮＡプローブ
【図１】
2005291974.tif 000020