(57)【要約】【課題】固相上に固定された分子と溶液中の分子との化学反応を行なわせる化学反応デバイスや、固相上に固定された分子が溶液中の分子を化学反応で捕捉し、その後捕捉された分子を計測する化学分析デバイスにおいて、反応効率を高く、試料の処理量を大きくする。【解決手段】マイクロ流体デバイスの流路を化学反応容器とし、その内壁に特定分子を固定し、固定された構造物もしくは固定されていない流れに対する障害物を設置した、化学反応デバイスおよび化学分析デバイスを提供する。はキャピラリーの内壁に酵素を固定し、キャピラリーの内部に流れの障害物となるガラスビーズを詰めた流路を有するこの反応容器中を、反応溶液が一方的に、もしくは往復して動き、反応容器の内壁に固定された酵素と反応する。【効果】溶液の流れが層流ではものとし、前記特定分子と前記溶液との間で高効率な化学反応を起こさせる。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
溶液を納める流路と、
前記流路の内部に納める構造物とを有し、
前記流路の内壁には、前記溶液に含まれる任意の物質と化学反応する特定分子が固定されることを特徴とする化学反応デバイス。
【請求項２】
前記構造物の径は、前記流路の径の３０％以上９０％以下であることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項３】
前記流路の内部で試料の流れる空間の体積をＶ１とし、前記流路の内部の体積をＶ２として、Ｖ１／Ｖ２が０．４から０．９５の範囲であることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項４】
前記構造物は、微粒子又は帯状部材であることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項５】
前記構造物は、複数の微粒子であり、前記流路において前記微粒子は各々の中心点が一の直線上にはない状態で配置されることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項６】
前記流路の内部で、前記溶液の流れの少なくとも一部が乱流となることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項７】
前記特定分子が、核酸、タンパク質のいずれかであることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項８】
前記流路が、第１の基板に設けた溝と、前記溝を覆って設置される第２の基板とから構成されることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項９】
前記流路が、キャピラリーの内部であることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項１０】
前記特定分子は前記流路に位置する固定領域に固定され、
前記構造物の中心と前記固定領域の中心との前記溶液の流れの方向における距離は、前記溶液の流れの方向と実質的に垂直な面における流路の幅の３倍以内程度であることを特徴とする請求項１に記載の化学反応デバイス。
【請求項１１】
溶液と構造物を納める反応デバイスを設置する恒温槽と、
前記反応デバイスへ任意の溶液を導入する溶液導入手段とを有し、
前記反応デバイスの内壁に固定された特定分子と、前記溶液導入手段で導入される前記溶液に含まれる任意の物質とを化学反応させることを特徴とする化学反応システム。
【請求項１２】
前記反応デバイスの内部で生じる反応を検出する反応検出手段をさらに有し、
前記反応検出手段は、前記化学反応の結果を検出することを特徴とする請求項１１に記載の化学反応システム。
【請求項１３】
内壁に特定分子を固定され、内部に構造物を納める反応デバイスを用意する工程と、
前記反応デバイスに溶液を導入する工程と、
前記特定分子と、前記溶液に含まれる任意の分子とを化学反応させる工程とを有し、
前記化学反応させる工程では、前記溶液は前記構造物に対して相対的に動くことを特徴とする化学反応方法。
【請求項１４】
前記化学反応させる工程の所要時間は、１０分程度以上とすることを特徴とする請求項１３に記載の化学反応方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法に関する。また本発明は特に微小な空間での化学反応を利用した化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法に関する。さらに本発明は核酸やタンパク質等の生体関連分子を対象とする化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
近年、微小な空間を構成し、化学反応を行わせる技術が発展しつつある。微小な空間を構成する方法としては、半導体の製造工程で頻繁に使用されるフォトリソグラフィー技術を用いる方法がある。フォトリソグラフィーを用いてシリコン基板などに溝を構成し、その上に別の基板を貼り付けることで微小な流路を形成して、流路内の流体を駆動するマイクロ流体デバイスを構成できる。これらの微小空間を利用した化学反応による物質生産（例えば非特許文献１）や化学分析（例えば非特許文献２）が提案されている。
【０００３】
微粒子に固定された酵素を利用した化学反応では、さまざまな酵素反応に対して研究されている。酵素を固定化した微粒子につき、溶液中に懸諾して化学反応を起こさせる方法や、微粒子より遥かに大きな径を有するカラム内に充填して使用する方法がある。また微粒子を用いて特定分子を精製する方法として、微粒子上に例えばプロテインＡを固定してカラムに充填し、抗体の精製カラムとして使用する方法なども、微粒子と液界面での化学反応を利用する方法の一つとして知られている。
【０００４】
一方、生体関連分子を計測する方法としては、マイクロウエルプレートの各ウエルにプローブ分子を固定して、ウエル毎に試料を分注し、そのプローブ分子に捕捉された生体関連分子を計測する方法がある。たとえば、プローブ分子として抗体を使用し、試料中の生体関連分子の量を計測する方法として、エライザ法がある。この場合、試料中の計測対象となる生体関連分子に親和性をもつ抗体分子をプレートに固定し、抗体分子で生体関連分子を補足した上で、生体関連分子に親和性をもつ酵素標識二次抗体を用い、酵素を利用した化学発光による高感度な計測を行う。
【０００５】
生体関連分子を計測するもう一つの方法として、複数のプローブ分子を固相の違う領域に固定し、そのプローブ分子に捕捉された生体関連分子を計測する方法が発展しつつある。例えば、ガラス等の平面基板に複数のプローブＤＮＡを固定し、核酸分子を計測するＤＮＡチップが挙げられる。チップ上に蛍光ラベルされた核酸分子を含む溶液を載せ、ハイブリダイゼーション反応を行わせた後に、チップ上の蛍光を検出する。これにより、溶液中の計測対象核酸分子の量を計測する。このＤＮＡチップの作製によく使用される方法としては、スライドガラスにＤＮＡプローブをスポットする方法（例えば非特許文献３）や、フォトリソグラフィーと光化学反応によるＤＮＡの逐次合成反応を利用する方法（例えば非特許文献４）がある。同様にタンパク質の同時多数計測を同時に行うプロテインチップも提案されている（例えば非特許文献５  ）。また平面ではなく、流路を形成させたデバイスとしては、キャピラリーの内部にＤＮＡプローブを固定したＤＮＡキャピラリー（例えば特許文献１）や、プローブを固定した微粒子をキャピラリーの内部に並べたプローブアレー（例えば特許文献２）などが提案されている。
【非特許文献１】Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ７４，  ３１１２−３１１７（２００２）
【非特許文献２】Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ７３，  ２１１２−２１１６（２００１）
【非特許文献３】Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２７０，  ４６７−４７０  （１９９５）
【非特許文献４】Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２５１，  ７６７−７７３  （１９９１）
【非特許文献５】Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ２７８，  １２３−１３１（２０００））
【特許文献１】特開平１１−７５８１２号公報
【特許文献２】特開平１１−２４３９９７号公報
【発明が解決しようとする課題】
一般的に、固相上に固定された分子と溶液中の分子との化学反応を行なわせる化学反応装置や、固相上に固定された分子が溶液中の分子を化学反応で捕捉し、その後捕捉された分子を計測する化学分析装置において、多量試料を短時間に処理することは難しい。
【０００６】
具体的には、従来の技術に述べた、微粒子をカラムに充填する方法、マイクロウエルプレートを用いる方法、及びＤＮＡチップ等では、微小な空間で反応を行ないつつ、試料を流通させることが難しい。その結果、化学反応効率を高めて処理を短時間化することは難しい。
【０００７】
本発明が解決しようとする課題は、固相上に固定された分子と溶液中の分子との化学反応、固相上に固定された分子が溶液中の分子を化学反応で捕捉し、その後捕捉された分子を計測する化学分析において、反応効率を高め、反応時間を短縮化することである。また、スループットを高めて、低濃度の試料に対する反応効率をも高めることである。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
微小な空間では、化学反応に関与する分子が分子拡散によって移動できる空間の範囲が限られ、反応しうる分子同士の接触確立が高まるため、効率のよい均一な化学反応が期待できる。また空間が小さいため、使用する化学物質や廃棄物の量と、試料のロスとを減らすことができる。
【０００９】
そこで、流路内の微小空間を反応空間とし、反応に関与する特定分子を流路内に固定した微小流体デバイスを使用して反応効率を高めることが考えられる。この際に流路が狭いと、溶液が分子の固定された特定の領域を通過する時間が短くなり、溶液内の反応分子の拡散が不十分となり、十分な反応効率を得ることが難しいと考えられる。一方、十分な拡散時間を確保して反応効率を高めるために流速を下げると、今度は試料の処理量が下がるおそれがある。
【００１０】
上記課題を解決するために、本発明では、流路を化学反応を生じさせる空間とし、その内壁に特定分子を固定し、流路内部に構造物もしくは流れに対する障害物を設置した、化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法提供する。この構造物もしくは障害物によって、通常層流であるマイクロ流体デバイス中の試料溶液の流れに乱れが生じ、溶液中にある分子の実質的な拡散定数を大幅に増加させることをできるため、反応効率の大幅な増加が、試料の処理量を減ずることなく、達成できる。同時に反応および分析時間を短縮し、低い濃度の試料に対して対応できる。
【００１１】
本発明を利用した化学反応デバイスは、溶液を納める流路と、流路の内部に納める構造物とを有し、流路の内壁には、溶液に含まれる任意の物質と化学反応する特定分子が固定されることを特徴とする。ここで、構造物の径は、流路の径の３０％以上９０％以下であるあってもよく、また、流路の内部で試料の流れる空間の体積をＶ１とし、流路の内部の体積をＶ２として、Ｖ１／Ｖ２が０．４から０．９５の範囲であってもよい。また、構造物は、微粒子、もしくは帯状部材であってもよく、帯状部材とはワイヤー状のものや、棒状のものなどであってもよい。化学反応デバイスの流路の内部では、溶液の流れの少なくとも一部が乱流となってもよい。また、流路とは、第１の基板に設けた溝と、溝を覆って設置される第２の基板とから構成されてもよく、またキャピラリーの内部であってもよい。
【００１２】
さらに、本発明を利用した化学反応システムは、溶液と構造物を納める反応デバイスを設置する恒温槽と、反応デバイスへ任意の溶液を導入する溶液導入手段とを有し、反応デバイスの内壁に固定された特定分子と、溶液導入手段で導入される溶液に含まれる任意の物質とを化学反応させる。該化学反応システムは、反応デバイスの内部で生じる反応を検出する反応検出手段をさらに有しても良い。
【００１３】
さらに、本発明を利用した化学反応方法では、内壁に特定分子を固定され、内部に構造物を納める反応デバイスを用意する工程と、反応デバイスに溶液を導入する工程と、特定分子と、溶液に含まれる任意の分子とを化学反応させる工程とを有し、化学反応させる工程では、溶液は構造物に対して相対的に動くことを特徴とする。該化学反応方法は、化学反応させる工程の所要時間は、１０分程度以上としてもよい。この所要時間は、化学反応の所望の条件により、５分程度以上から１５分程度以上の間で任意の時間とできる。標準的には、１０分程度以上で一定以上の化学反応効率が得られる。
【００１４】
【発明の実施の形態】
以下に、本発明の実施例を、図を参照にして詳細に説明する。
【００１５】
図１は、本発明の第１の実施例の化学反応デバイスと化学反応装置の構造を模式的に示す図である。図１（Ａ）は、本発明における化学反応デバイスの反応容器の一例の一部分を拡大した例である。この反応容器はキャピラリー１０１の内壁に酵素１０２を固定し、キャピラリー１０１の内部に流れの障害物となる構造物として、ガラスビーズ１０３を詰めた流路である。このキャピラリー１０１の内部に酵素反応の基質となる分子を含んだ反応溶液を流通させることで、酵素反応を起こすことができる。様々な酵素反応に対してこの反応容器を用いることができるが、ここでは一例としてタンパク質の分解を目的としたトリプシン固定化反応容器について示す。この反応容器を用いて分解されたタンパク質分解産物は、例えばタンパク質のフィンガープリントとして使用でき、また質量分析計による分子量測定を行うことで、未知のタンパク質を同定するために使用することもできる。トリプシンが内壁に固定されたキャピラリー１０１は、例えば次のような手順で作製できる。ここでは内径１５０ミクロンの溶融石英キャピラリーを使用した。まず、キャピラリーの内壁を洗浄しヒドロオキシ基を導入するために、純水で洗浄した後、８０℃の１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を１０分間流通させ、再度ｐＨが中性に戻るまで、純水で洗浄する。次にキャピラリーの内壁にアミノ基を導入するため、３−アミノプロピルトリメトキシシランの１％水溶液をキャピラリーの内部に添加し、室温で１０分間反応させた後、純水で洗浄し、その後１２０℃のオーブン中で６０分間放置する。次にカルボキシル基を導入するため、５００ｍＭの無水コハク酸（１−メチル−２−ピロリドン溶液）をキャピラリーの内部に添加し、５０℃で６０分間反応させた後、純水でよく洗浄する。次に導入されたカルボキシル基を活性化するため、２０ｍＭのＮ−ヒドロキシスクシイミドと１００ｍＭのＮ−エチル−Ｎ’−３−メチルアミノプロピルカルボジイミド（０．１Ｍホウ酸バッファー（ｐＨ６．２）溶液）をキャピラリーの内部に添加し、室温で６０分間放置した後、０．１Ｍホウ酸バッファー（ｐＨ６．２）と純水で洗浄する。最後にトリプシンを固定するため５０ｍｇ／ｍＬトリプシン（０．１Ｍホウ酸バッファー（ｐＨ６．２）溶液）をキャピラリー内部に添加し、４℃の冷蔵庫で一昼夜放置し、その後１０ｍＭトリス塩酸バッファー（ｐＨ８．０）で洗浄する。実際に使用するまでは、１０ｍＭトリス塩酸バッファー（ｐＨ８．０）をキャピラリー内部に添加し４℃で保存する。実際に使用する際には、直前に適当な長さ、例えば２０ｃｍのキャピラリーを切り出して、障害物を内部に納めて使用する。ここでは障害物としてガラスビーズ１０３を使用した。本実施例では１２６ミクロンメッシュの篩に掛けて通ったもののうち、１０５ミクロンメッシュの篩に掛けて篩上に残ったガラスビーズを超音波洗浄したものを使用した。ガラスビーズ１０３の大きさは均一でも不均一でもよい。また、障害物として利用するビーズの素材は、樹脂などガラス以外の素材であってもよい。また、形も真円、楕円、多角体等のいずれでもよい。ビーズについては、以下、径というときには、真円の時は直径、楕円の時は長径、多角形の時は表面上の１点と当該多角形の中心点に対して対称的に位置する点を結んだ線分の長さのうち最長のものをいう。
【００１６】
さらに他の障害物として、例えば１００ミクロン程度の直径を持つステンレスワイヤーを切断して代用することもできる。図１（Ｂ）にステンレスワイヤーを障害物として使用した反応容器の例を示す。この反応容器はキャピラリー１０４の内壁に酵素１０５を固定し、キャピラリー１０４の内部に１００ミクロンのステンレス製の１０６を納めた流路である。このワイヤーや同様の帯状部材、円筒部材等である障害物を用いた場合、障害物はキャピラリーの内部で溶液の流れによって動くことが可能なように設置されても、または機械的に動くような構成により設置されても良い。
【００１７】
径が数ミクロン程度で、キャピラリーの径に比べてはるかに小さい微粒子を構造物として密に充填する、微粒子充填カラム等の場合には、基質を含んだ溶液が流れる隙間が非常に小さくなり、圧力損失が非常に大きくなる。その場合には、溶液の流れが層流となって物質の実質的な拡散定数が上がらず、内壁に固定された酵素１０２にまで基質が到達しにくくなる。そして、結果として反応効率が下がる。例えば内径１５０ミクロンのキャピラリーを反応容器として使用した場合には、障害物として納めるビーズの径は、キャピラリーと比較して小さすぎず、かつキャピラリーに収まりつつも化学反応を促進させる溶液の流れを形成しうる範囲として、５０ミクロンから１３０ミクロン程度が最適である。すなわち、ビーズの径は、キャピラリーの径の３０％程度以上、９０％程度以下とする。この場合には、反応溶液の流れを層流ではなく、乱流への遷移領域もしくは乱流とすることができる。流れが層流の場合には、流れの中心部にある基質は壁面近傍への移動に十分な時間を必要とするが、以上のように流れを乱流、もしくは部分的な乱流を生じる乱流への遷移領域とすることにより、全ての分子が壁面に衝突しやすくなり、化学反応効率を上げることができる。なお、この場合にキャピラリーの内部において、複数のビーズがその各々の中心点が実質的に一の直線上にあるように配置されてもよく、また、図１（Ａ）に示されるように各々の中心点が一の直線上にはない状態で配置されてもよい。
【００１８】
キャピラリーすなわち流路の内部の体積に対する、構造物以外の空間の体積の割合であり、キャピラリー内部で試料の流れる空間の体積をＶ１とし構造物（もしくは障害物）が存在しない場合の空間体積をＶ２とした場合にＶ１／Ｖ２で示される、空隙率という観点から考えると、微粒子充填カラムの場合には、自由空間での最密充填である六方最密充填の場合の空隙率０．２６に近い空隙率を持つ。上記した通り、微粒子充填カラムでは、溶液の流れが層流となって物質の実質的な拡散定数が上がらず、内壁に固定された酵素１０２にまで基質が到達しにくくなる。そして、結果として反応効率が下がる。そこで、微粒子充填カラムよりも大きい空隙率とし、かつ化学反応を促進させる溶液の流れを形成しうる空隙率の範囲として、障害物としてビーズを用いる際の空隙率は０．５程度から０．７程度の範囲が適当である。図１（Ｂ）に示すように、障害物が真円や楕円などの球形ではない帯状の連続体場合には、任意の空隙率をとりやすくなり、０．４程度から０．９５程度の範囲の空隙率をとれる。以上のような範囲の空隙率を確保しうる障害物を利用すると、反応溶液の流れを層流ではなく、乱流、もしくは部分的な乱流を生じる乱流への遷移領域とすることができる。これにより、ビーズの径を規定する場合と同様に化学反応効率を上げることができる。
【００１９】
図１（Ｃ）は、本発明の第１の実施例の化学反応デバイスを使用した化学反応装置全体の構造を模式的に示す図である。反応容器１１０は、図１（Ａ）に記述した、キャピラリー１０１の内壁に酵素１０２を固定し、ガラスビーズ１０３を詰めたものである。反応容器１１０の両端には、反応容器１１０の内部に詰めたガラスビーズ１０３が送液中に外に出ていくことを妨げ、送液用のキャピラリー１１２、１１２’に接続するためのコネクター１１１、１１１’を設置する。一方の送液用キャピラリー１１２の端部に酵素反応の基質となる分子の入った反応溶液が入ったサンプルチューブ１１３をセットし、他方の送液用のキャピラリー１１２’の端にシリンジポンプ１１５上にセットされたシリンジ１１４を接続する。このシリンジポンプ１１５を動かすことでサンプルチューブ１１３に入った反応溶液が反応容器１１０の中に引き込まれ、引き続いてシリンジポンプ１１５の動きによって、反応溶液が反応容器１１０の中を一方的に、もしくは往復して動く。これにより、反応容器１１０の内壁に固定された酵素と反応溶液内の基質物質との反応を促進することができる。化学反応時の温度を一定に保つためには、これらの装置一式を恒温槽１１６の内部に設置して使用すればよい。シリンジ１１４およびシリンジポンプ１１５が、温度に対する負荷に弱い場合には、シリンジ１１４およびシリンジポンプ１１５を恒温槽１１６の外側に設置してもよい。図１（Ａ）の説明で述べたトリプシン固定化ガラスビーズを用いたタンパク質の分解反応の場合、サンプルの容量が１μＬ〜３００μＬ程度の反応溶液が無理なく操作できる。例えば、毎分１〜１００μＬ程度の体積流量となるようにシリンジポンプ１１５を動かせば、反応容器１１０の内部での反応溶液の挙動が層流ではなく、乱流への遷移領域となり、基質分子の実質的な拡散定数を大きくすることができる。
【００２０】
本装置の使用例を以下に述べる。タンパク質の一つであるチトクロムＣをこの化学反応装置でトリプシンにより分解した。１０μＬの０．２ｍｇ／ｍＬのチトクロムＣ（１０ｍＭトリス塩酸緩衝溶液（ｐＨ８．０））を反応溶液とし、流速を毎分１０μＬとして反応容器の中を往復させ、反応温度を３７℃として、トリプシンによる分解反応を行った。反応時間は０分間（反応させず）、１５分間、３０分間、６０分間とした。反応後の反応溶液を５μＬ採り、２μＬのローディングバッファー（３１３ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、１０％ＳＤＳ、１０％メルカブトエタノール、３０％グリセロール、０．０１％プロモフェノルブルー、ｐＨ６．８）を添加し、９５℃で約２分間加熱して、そのうち３μＬを電気泳動の試料とした。電気泳動にはドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を添加した１５％ポリアクリルアミドゲルを使用し、電気泳動用の緩衝液（２５ｍＭ  トリス塩酸、１９２ｍＭグリシン、０．１％ＳＤＳ、ｐＨ８．５）を用いた。電気泳動電流を２０ｍＡに設定し、２時間の電気泳動を行った後、クマジーブリリアントブルーで１時間染色し、１０％酢酸−４０％メタノール溶液で２時間脱色し、電気泳動結果を得た。また、比較のために、本発明による反応装置を使用せずに、５０μＬの２ｍｇ／ｍＬチトクロムＣ（１０ｍＭトリス塩酸溶液（ｐＨ８．５））に、濃度１ｍｇ／ｍＬのトリプシン溶液を１μＬと純水３９μＬを添加し、反応チューブ内に静置して３７℃で分解反応を行った。反応時間は０時間（反応させず）、１時間、４時間、１６時間、２０時間とした。これらの反応産物も化学反応装置を用いた場合と同様の方法で電気泳動し、電気泳動結果を得た。図２に上記のチトクロムＣのトリプシンによる分解反応産物を電気泳動した結果を示す。図２（Ａ）は図１に示す化学反応装置を使用した場合の電気泳動結果を、図２（Ｂ）は反応チューブ内に静置した場合の電気泳動結果を、それぞれ示す。図１で示した化学反応装置を使用した場合には、図２（Ａ）に示す通り、反応時間０分間（反応なし）のサンプルの場合に濃く観察されるチトクロムＣ由来のバンドが、反応時間１５分間、３０分間、６０分間のサンプルの場合には観測することができず、チトクロムＣがトリプシンの分解反応により分解されていることがわかる。分解された産物のバンドは観測されていないが、これは分解の結果生じる断片の種類が多くかつ種類ごとの量が少ないこととその断片の長さが短いことが原因であると考えられる。これに対して、反応チューブ内に静置して反応させた場合には、図２（Ｂ）に示す通り、反応時間が１時間（６０分間）の場合にも、反応時間が０時間（反応なし）の場合とほとんど変わらない。反応時間が長くなるにつれてバンドの濃さは減少し、トリプシンによる分解反応は進んではいるが、反応時間が２０時間の場合にも完全にはバンドが消えず、分解反応を受けないチトクロムＣが残存していると考えられる。これらの結果から、本発明による反応容器によりトリプシンの分解反応が促進され、１５分間でチトクロムＣが完全に分解されていることが分かる。一般には、トリプシンによるタンパク質の分解反応を静置したままで完全に行う際には、溶液中の反応で一昼夜程度かかるのが普通である。これに対し、本発明の方法によれば、１０〜２０分間程度で反応を行うことができるため、分析時間が大きく短縮される。なお、この実施例では酵素反応デバイスとして、キャピラリー内部に固定するプローブとして酵素を使用し、酵素反応を対象とした化学分析装置の例を示したが、同様に核酸プローブを利用した反応等も行うことができる。固定する分子としては核酸と酵素の他にも、他の種類の生体関連分子等が使用可能であり、また計測対象としても核酸、タンパク質、さらに他に生体関連分子等が同様に可能である。化学反応として酵素反応を行わせた場合には、反応後に酵素反応を終えた溶液のキャピラリーからの回収等を行う。また、化学反応として、プローブに対して特異的な物質の結合を行わせた場合には、反応後にプローブに結合した特異的物質の回収、もしくは検出などを行う。
【００２１】
障害物となるガラスビーズ等に化学反応に関与する分子を固定する方法に比べると、反応溶液の内壁に分子を固定する方法をとる本発明の方が、ガラスビーズを反応容器に入れる際にビーズの表面にダメージを与えるような操作を許容でき、ビーズの取扱いが比較的容易になる。またこのため、反応装置が安価に再現性よく作製できる。また、ガラスビーズのような表面が曲率を持つ障害物の表面では、反応溶液が流れる際に流れの剥離が起こるため、曲率を持たない流路（ここではキャピラリー）の内壁表面に比べて大きな力を受ける。そのため、固定された化学反応に関与する分子が比較的剥がれやすい。これは、特に物理吸着、すなわち分子間力による吸着を利用して分子を固定した場合に常に問題となる。物理吸着を利用した分子の固定は簡便に行うことができるため、分子固定方法として有用であるが、固相と固定された分子の間に共有結合が存在しないため、流体などの物理的な負荷に弱く剥がれやすい。しかし、本発明による方法の場合は、反応処理中に分子が剥がれにくいようにに固定されているため、反応効率を高く保つことができる。
分子の固定を物理吸着で行い、固定された分子の剥がれ易さを検討した例をしめす。装置の構成としては、図１（Ｂ）に示したものと、キャピラリー内壁へ酵素が固定されていることを除き同様のものを使用した。図３は、分子の固定を物理吸着で行った、化学反応デバイスを模式的に示す図である。図３（Ａ）は、酵素をキャピラリーの内壁に物理吸着で固定させた化学反応デバイスの流路の一部分を拡大した模式図である。キャピラリー２０１の内壁に酵素２０２を物理吸着で固定し、キャピラリー２０１の内部に流れの障害物としてガラスビーズ２０３を納めてある。図３（Ｂ）はキャピラリーの内壁ではなく、ガラスビーズに酵素を物理吸着で固定させた化学反応デバイスの流路の一部分を拡大した模式図である。ここでは例としてトリプシンを固定した化学反応デバイスを作製した。物理吸着によるトリプシンの固相表面への固定は、例えば次のような手順で行う。図３（Ａ）のようにキャピラリー２０１の内壁に固定する場合には、まずキャピラリーを純水で洗浄した後、８０℃の１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を１０分間流通させ、再度ｐＨが中性に戻るまで、純水で洗浄する。水酸化ナトリウムで処理することにより溶融石英キャピラリーの内面にヒドロオキシ基を導入され、表面がマイナス電荷を帯びる。次に１ｍｇ／ｍＬのトリプシン（０．０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７．０））をキャピラリーに１時間室温で流通させ、その後０．０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７．０）でキャピラリーを洗浄する。トリプシンの等電点は計算上約８．５であるため、ｐＨ７．０の溶液中ではプラス電荷を帯び、その結果ガラス表面に物理吸着で固定されることになる。実際に使用するまでは、０．０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７．０）をキャピラリー内部に納めて４℃で保存することができる。実際に使用する直前に適当な長さのキャピラリーを切り出して、ガラスビーズを納めれば図３（Ａ）に示す化学反応デバイスが作製できる。酵素を物理吸着で固定したガラスビーズを作製する際にも同様の反応条件で、ガラスビーズ表面への固定を行えばよい。作製したガラスビーズ２０５をキャピラリー２０５に詰めることにより、図３（Ｂ）で模式的に示す反応容器を作成できる。キャピラリーとガラスビーズ以外には第１の実施例に記載したのと同じものを使用し、この二つの反応容器を図１（Ｂ）で示す化学反応装置の一部としてセッティングし、タンパク質を含まないトリス緩衝溶液（ｐＨ７．０）を流通させて、残っているトリプシンの量を測定した。緩衝溶液の量は１００μＬとし、流速は毎分５０μＬとして反応容器を往復させた。往復させる時間を振って、緩衝溶液に中に剥がれてきたトリプシンの量を計測した。微量のタンパク質を標識なしで定量することは難しいため、この検討では放射性同位体の一つであるＣ１３で標識したトリプシンを使用した。まず、トリプシンの固定の前後に固定用トリプシン溶液のトリプシン由来の放射線量を検出し、検出量の減少した量から固定されたトリプシンの量を算出しておく。その後、キャピラリーを流通した緩衝液の放射線量を計測し、はがれた結果、緩衝液に含まれるトリプシンの量を算出し、前もって算出したおいた固定トリプシン量との比較を行った。
【００２２】
図４は、最初に各化学反応デバイスの中に固定されているトリプシンの量を１として規格化し、緩衝液の流通後に残っているトリプシンの量の経時変化を表したものである。白丸２１０で表現されているのが図３（Ａ）に示すキャピラリー２０１の内壁に酵素２０２をつけ、ガラスビーズ２０３を詰めた化学反応デバイスに対するデータであり、白三角２１１で表現されているのが図３（Ｂ）に示す酵素を固定化したガラスビーズ２０５をキャピラリー２０４に詰めた化学反応デバイスに関するデータである。例えば反応時間を２０分間とした場合には、それぞれ約８０％と約５０％のトリプシンが残っている。このことより、有効トリプシン量が多い、キャピラリー２０１の内面に酵素２０２を固定した化学反応デバイスの方がより高い反応効率が得られることがいえる。ここでは、特に物理吸着を利用して分子を固定した場合について示したが、共有結合により固定した場合についても、同様にキャピラリーの内面に酵素を固定した場合により高い反応効率を得ることが出来る。なお、この図２及び図４の結果を踏まえると、化学反応の所要時間としては、化学反応が十分に進行しかつ反応デバイスからの特定分子はがれ等に基づく反応効率低下の開始のおそれがあるタイミングを考慮し、化学反応の所望の条件に応じて５分程度以上から１５分程度以上の間で任意の時間と考えられる。標準的には、１０分程度以上で一定以上の化学反応効率が得られる。
【００２３】
一般に、微粒子に酵素を固定し、化学反応基質分子の入った溶液に懸濁して、化学反応を行う際に、微粒子を完全に懸濁させることは難しい。すなわち、この場合には、溶液中に存在する基質分子に対して、微粒子をまんべんなく接触させて化学反応を起こさせることが難しい。また、上記の通り、酵素固定化微粒子充填カラムを使用する際には、反応容器内の充填率が高くかつ空隙率が低いために、反応溶液の流れる速度が遅くなり、また流れが層流となって実質的な拡散速度が遅くなるため、反応効率を上げることが難しい。また流速を上げたい際には、高圧のポンプの使用が必要となる。本発明によれば、特定物質を反応容器の内壁に固定して、特定物質との反応の対象となる分子に強制的に狭い空間を通過させ、かつ溶液の流れとして、層流ではない乱れを作る構成をとり、短い反応時間で効率の良い反応を行うことができる。さらに、上記の通り、反応容器の内壁に特定物質を固定しかつ反応容器の内部に構造物もしくは障害物を納める構成により、微粒子に分子を固定する系で問題となる、固定化された分子の剥がれを小さくできるという利点もある。
【００２４】
図５は本発明の第２の実施例の化学分析デバイスの構造を模式的に示す図である。図５（Ａ）はチップ形状を持つＤＮＡ計測デバイスの一例の全体図である。このデバイスは平らなスライドガラス３０２の上に、化学反応部兼計測部となる流路３０３を持つポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）基板３０１を貼り付けて構成されている。スライドガラス３０２の大きさは２５ｍｍ×７５ｍｍであり、その厚みは約１ｍｍである。後の蛍光測定のためスライドガラス３０２にはクラウンガラス製の無蛍光なものを使用した。ＰＤＭＳ基板３０１は約２ｍｍの厚みを持ち、スライドガラス３０２の長辺から内側へ約２ｍｍの部分を残し、スライドガラス３０２を覆っている。ＰＤＭＳ基板３０１で覆わなかったところは、後の蛍光計測時に使用するＤＮＡチップスキャナーへの差込の際に、デバイスを保持するための掴み部分として使用される。流路３０３の断面は１５０ミクロン×１５０ミクロンであり、長さは４ｃｍである。流路３０３に分析の対象となる試料溶液や洗浄液を入れるための溶液穴３０４と流路内に溶液を引き込み動かすための外部ポンプ等に接続する接続穴３０５が流路３０３の両端に構成されている。このデバイスの作製は、例えば非特許文献６に記載されているように、フォトリソグラフィーの技術を用いて作ったＰＤＭＳ部分の型となる鋳型に対して、未反応のＰＤＭＳを流し込んで硬化させ、硬化したＰＤＭＳ基板３０１を鋳型から外し、スライドガラス３０２と張り合わせることで行われる。図５（Ｂ）は、図５（Ａ）に示した化学反応部兼計測部となる流路３０３の一部分を拡大した模式図である。流路３０３はＰＤＭＳ基板３０１とスライドガラス３０２の間に構成されている。ＰＤＭＳ基板３０１には突起３１１が付いており、この突起３１１が流路３０３の上側から流路３０３の中に突き出している。この突起３１１には反応溶液の流れを乱して基質の実質的な拡散速度を向上させる効果がある。ＰＤＭＳ基板３０１は、あまりに細い構造物では作成が困難だが、流路３０３の溶液の流れを乱して反応速度を向上させるためには、構造物がある程度の大きさを有することが必要である。そこで、例えば、流路の幅や高さに対してその１／３以上程度の凹凸が適当であると考えられる。ここでは、突起３１１は７５ミクロンの立方体の形状を取っている。突起３１１の間隔は２００ミクロンとした。この実施例では、流路３０３のスライドガラス３０２側にはＤＮＡ計測のためのＤＮＡプローブ３１０がスポットしてある。スポットの大きさに特に規定はないが、ここではスポットの径は５０〜１００ミクロン程度のスポットとした。ＤＮＡプローブ３１０のスポッティングは市販のスポッターを利用して行うことができる。このＤＮＡプローブのスライドガラス３０２に対するスポッティングは、ＰＤＭＳ基板３０１を貼り付ける前に行っておいてもよい。ＤＮＡプローブ３１０同士の間隔は突起３１１の間隔と同じく２００ミクロンとした。
【００２５】
図６は図５で示したＤＮＡ計測デバイスを組み込んだ化学分析装置の構成を模式的に示す図である。分析の対象となる試料溶液や洗浄液を入れるための溶液穴３０４と流路３０３と接続穴３０５を持つＤＮＡ計測デバイス３２１は恒温槽３２２の中に設置される。接続穴３０５にコネクター３２３を介して接続用のキャピラリー３２９を接続する。接続用のキャピラリー３２４は三方弁３２７により３方に分岐されている。分岐したキャピラリー３３１の一端はシリンジポンプ３２６上に設置されたシリンジ３２５に接続され、分岐したキャピラリー３３０の一端は廃液溜め３２８に繋がっている。ＤＮＡの分析を行う際には、通常のＤＮＡチップと同様、計測対象となる蛍光標識されたターゲットＤＮＡをＤＮＡプローブに化学反応の一種であるハイブリダイゼーション反応で捕捉し、蛍光測定を行う。この蛍光計測には、蛍光顕微鏡の使用などさまざまな方法が使用できる。例えば、ＤＮＡチップスキャナー様の装置を使用する場合を図６（Ｂ）に示す。レーザー３５１から出た光はダイクロイックミラー３５５で曲げられ、ダイクロイックミラー３５３を通過し、レンズ３５４にて集光されてＤＮＡ計測デバイスを照射する。レーザー光の照射による発する蛍光標識されたターゲットＤＮＡ由来の蛍光はレンズ３５４によって集光され、ダイクロイックミラー３５３によりその光路を曲げられ、光学フィルター３５６を通過して光電子倍増管３５２によって計測され、パーソナルコンピュータ３５７によって解析される。ＤＮＡ計測デバイス中の各ＤＮＡプローブについて計測を行うためには、ＤＮＡ計測デバイスを移動しレーザー光をスキャンさせたり、上記のスキャナー様装置の構成の一部分を可動的にしてこれを移動させたりすればよい。なお、同様のスキャナー様装置は、図１（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に示した実施例の場合にも使用できる。すなわち、図１（ａ）、（ｂ）、（ｃ）に示した実施例の場合であって、化学反応としてプローブに対して特異的な物質の結合を行わせた場合に、反応後にキャピラリー内に納めたビーズやワイヤーなどの構造物をキャピラリーから除去し、図６（ｂ）と同様な構成を用いて、プローブに直接／間接的にに結合した蛍光標識から発せられる蛍光を検出することもできる。
【００２６】
このＤＮＡ計測デバイス３２１を用いた化学分析装置によるＤＮＡの分析例を以下に示す。ＤＮＡプローブとしてｐ５３の各エクソン（但しエクソン１と３は使用せず、合計１０種。プローブ１〜１０とする。）のアンチセンス側の塩基配列の一部を持つ１８塩基長の合成ＤＮＡを用意した。ターゲットＤＮＡとしては、ＤＮＡプローブと完全に相補であり、Ｃｙ３蛍光体で標識された１８塩基長の合成ＤＮＡ（合計１０種。ターゲット１〜１０とする。）を準備した。相補的なＤＮＡプローブとターゲットＤＮＡの融解温度は約７０℃であった。配列を以下に示す。
ＤＮＡプローブ１の配列：５’−ＴＧＴＣＡＣＣＧＴＣＧＴＧＧＡＡＡＧ−３’（配列番号１）
ＤＮＡプローブ２の配列：５’−ＡＴＣＴＧＡＣＴＧＣＧＧＣＴＣＣＴＣ−３’  （配列番号２）
ＤＮＡプローブ３の配列：５’−ＡＡＧＡＡＧＣＣＣＡＧＡＣＧＧＡＡＡ−３’  （配列番号３）
ＤＮＡプローブ４の配列：５’−ＧＣＣＴＣＡＣＡＡＣＣＴＣＣＧＴＣＡ−３’  （配列番号４）
ＤＮＡプローブ５の配列：５’−ＴＣＡＴＡＧＧＧＣＡＣＣＡＣＣＡＣＡ−３’  （配列番号５）
ＤＮＡプローブ６の配列：５’−ＡＴＧＡＴＧＧＴＧＡＧＧＡＴＧＧＧＣ−３’  （配列番号６）
ＤＮＡプローブ７の配列：５’−ＣＣＣＴＴＴＣＴＴＧＣＧＧＡＧＣＴＴ−３’’  （配列番号７）
ＤＮＡプローブ８の配列：５’−ＴＴＴＣＴＴＣＴＴＴＧＧＣＴＧＧＧＧ−３’  （配列番号８）
ＤＮＡプローブ９の配列：５’−ＣＣＴＧＧＧＣＡＴＣＣＴＴＧＡＧＴＴ−３’  （配列番号９）
ＤＮＡプローブ１０の配列：５’−ＡＴＧＧＣＧＧＧＡＧＧＴＡＧＡＣＴＧ−３’  （配列番号１０）
ＤＮＡターゲット１の配列：５’−ＣＴＴＴＣＣＡＣＧＡＣＧＧＴＧＡＣＡ−３’  （配列番号１１）
ＤＮＡターゲット２の配列：５’−ＧＡＧＧＡＧＣＣＧＣＡＧＴＣＡＧＡＴ−３’  （配列番号１２）
ＤＮＡターゲット３の配列：５’−ＴＴＴＣＣＧＴＣＴＧＧＧＣＴＴＣＴＴ−３’  （配列番号１３）
ＤＮＡターゲット４の配列：５’−ＴＧＡＣＧＧＡＧＧＴＴＧＴＧＡＧＧＣ−３’  （配列番号１４）
ＤＮＡターゲット５の配列：５’−ＴＧＴＧＧＴＧＧＴＧＣＣＣＴＡＴＧＡ−３’  （配列番号１５）
ＤＮＡターゲット６の配列：５’−ＧＣＣＣＡＴＣＣＴＣＡＣＣＡＴＣＡＴ−３’  （配列番号１６）
ＤＮＡターゲット７の配列：５’−ＡＡＴＣＴＣＣＧＣＡＡＧＡＡＡＧＧＧ−３’  （配列番号１７）
ＤＮＡターゲット８の配列：５’−ＣＣＣＣＡＧＣＣＡＡＡＧＡＡＧＡＡＡ−３’  （配列番号１８）
ＤＮＡターゲット９の配列：５’−ＡＡＣＴＣＡＡＧＧＡＴＧＣＣＣＡＧＧ−３’  （配列番号１９）
ＤＮＡターゲット１０の配列：５’−ＣＡＧＴＣＴＡＣＣＴＣＣＣＧＣＣＡＴ−３’  （配列番号２０）
ＤＮＡプローブの固定にはさまざまな方法が可能であるが、ここでは、スポッターを利用し、ポリ−Ｌ−リジンのコーティングされたスライドガラスに対して、ＤＮＡプローブ溶液をピン先でスポットする方法を採用した。スポットの順序は溶液穴３０４側から接続穴３０５側の方向に一列に、ＤＮＡプローブ１からＤＮＡプローブ１０の順とした。スポッティング後のスライドガラスに水蒸気を数秒当てるリハイドレーションを行った後、ＵＶクロスリンカー内で６０ｍＪのＵＶを照射し、ＤＮＡプローブの固定を行った。非特異なハイブリダイゼーション防ぐため、２０分間ブロッキング溶液につけ、純水とエタノールで順に洗浄した。ブロッキング溶液は、３３５ｍＬの１−メチル−２−ピロリドンと５．５ｇ無水コハク酸と１Ｍホウ酸ナトリウム（ｐＨ８．０）１５ｍＬを混合して作製した。ハイブリダイゼーションバッファーとしては４ｘＳＳＣ−０．１％ＳＤＳ溶液を使用し、各ターゲットＤＮＡの濃度を１ｘ１０−１０Ｍとなるように調製した。分析の直前にターゲットＤＮＡを含む試料溶液を９４℃で２分間加熱して熱変性させた後、氷上で冷やした。分析は以下の手順で行った。まず、恒温槽３２２を４５℃に設定し、温度が安定するように１０分間放置した。次に、氷上の試料溶液を１０μＬとり、溶液穴３０４に入れた。三方弁３２７をシリンジ３２５と接続穴３０５がつながる方向に設定し、シリンジポンプ３２６を動かして試料溶液をＤＮＡプローブがスポットされている流路３０３に引き込んで通過させた。流路３０３の内体積は１μＬ以下であるため、引き込まれた試料溶液はそのまま接続穴３０５を通過しキャピラリー３２９に引き込まれる。シリンジ３２５が試料体積と同じ１０μＬ動いた時点でシリンジポンプ３２６を止める。この時試料溶液が三方弁３２７に到達しないように、三方弁３２７と接続穴３０５の間のキャピラリー３２９の内体積は１０μＬより大きくなるようにあらかじめ設定しておく。その後シリンジポンプ３２６によりシリンジ３２５のピストンを往復させることで、試料溶液をＤＮＡプローブが固定された流路３０３内を往復させ、ハイブリダイゼーション反応を進行させる。この例では体積流量を毎分１０μＬとした。体積流量としては、流路３０３内の突起（図５に記載された突起３１１）により流れに乱れが生じるように設定しておくことが重要で、これによりハイブリダイゼーション反応を高速に起こさせることができる。流れが乱れることでターゲットＤＮＡがＤＮＡプローブにまで到達しやすくなるためである。１０分間の反応時間の後、三方弁３２７を超えてシリンジ３２５側に試料溶液を引き込んだ後、三方弁３２７をシリンジ３２５と廃液溜め３２８が接続するように設定し、引き込んだ反応後の試料溶液を廃液溜め３２８に廃棄する。次に、３０μＬの１ｘＳＳＣ−０．０３％ＳＤＳ溶液、３０μＬの０．２ｘＳＳＣ、３０μＬの０．０５ｘＳＳＣ、３０μＬの純水を順に使って洗浄を行う。洗浄の過程も反応の過程と同じ手順の送液を行ったが、体積流量を毎分３０μＬ、洗浄時間を各１分間とし、その後に廃液溜め３２８に廃棄するという条件とした。洗浄時の温度も４５℃であり、融解温度よりも十分低いため、特異的なハイブリダイゼーションに���ってＤＮＡプローブ上にハイブリダイゼーション反応で捕捉されたターゲットＤＮＡのほとんどは、洗浄では剥がれない。洗浄後にＤＮＡ計測デバイス３２１を恒温槽３２２から取り出し、ＤＮＡチップスキャナーによって、蛍光の計測を行った。ＤＮＡ計測デバイスの素材であるスライドガラスとＰＤＭＳ樹脂は可視光に対してほぼ透明であり、また蛍光も発しないため、計測対象としているＣｙ３の蛍光計測を妨げることはない。図７は反応後のＤＮＡ計測デバイス３２１をＤＮＡチップスキャナーにて計測し、流路３０３の部分を拡大した場合の模式図を示す。これはターゲット５のみを含む試料溶液を分析した結果である。ターゲット５に相補的な配列を持つプローブ５をスポットしたところにのみ蛍光が観測され、それ以外のプローブがスポットされた場所（白い点線の円で表記）には蛍光が観測されないことから、確かに配列に依存したハイブリダイゼーションが計測されていることが分かる。このように、流路内のＤＮＡプローブの近傍に突起という構造物を設置し、試料の流れに乱れを起こすことにより、通常時間のかかるハイブリダイゼーション反応を、１０分間程度で計測することができた。
【００２７】
この実施例ではデバイスの材料としてＰＤＭＳ樹脂とスライドガラスの組み合わせを使用したが、ガラス同士の貼り合わせや他の樹脂（ポリメチルメタクリレートなど）を使用することも可能である。また構造物としては単純な立方体状の突起の繰り返し以外にも、様々な形状の流路の凹凸を利用することができる。流れの乱れは構造物の周辺で生じるため、ＤＮＡプローブをスポットする場所と構造物の距離が近いことが重要である。一般に単純な流路の場合には流れが定常になる助走距離が流路幅の数倍程度といわれていることから、ＤＮＡプローブをスポットする位置の中心とと構造物の中心の溶液の流れ方向における距離は、溶液の流れ方向と実質的に垂直な面における流路の幅、ずなわちスポットが固定された流路壁面から対面壁面への高さの３倍以内程度であることが適当である。また第１の実施例のように、構造物の替わりにガラスビーズなどの障害物をＤＮＡプローブが固定された流路に納めて、流れに乱れを生じさせ、ハイブリダイゼーション反応を高速化することもできる。この場合にも、障害物が光学的にほぼ透明であればＤＮＡチップスキャナー等の光学装置で直接蛍光を測定することもできるし、障害物がほぼ透明といえない場合にもその障害物を反応後に取り除いて計測すればよい。この実施例ではＤＮＡ計測デバイスとして、プローブにＤＮＡを使用し、ＤＮＡを計測した化学分析装置の例を示したが、同様に抗体等を利用した免疫分析等も行うことができる。固定する分子としては核酸と抗体の他にも、他の種類のタンパク質が可能であり、また計測対象としても核酸、タンパク質、生体関連分子等が同様に可能である。この実施例では捕捉された分子を測定しているが、例えば固定化酵素による検出対象分子に対する特異的な反応産物を流路下流の別な領域で計測するという酵素センサー型の化学分析デバイスも同様に可能である。また、この実施例では蛍光計測によって捕捉された分子の検出を行ったが、他にも化学発光、呈色反応、表面プラズモン散乱等を利用した計測を利用して高感度な化学分析装置を構成することができる。
【００２８】
【非特許文献６】Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ，  ２２，  ３２８−３３（２００１）
【発明の効果】
反応効率の高く、試料の処理量も大きい化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法を実現できる。また反応速度が短く、対象分子の数が少ない場合にも有効な化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法を実現できる。また高感度な化学反応デバイス、化学反応システムおよび化学反応方法を実現できる。
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】本発明の一実施例に基づく化学反応デバイスと化学反応装置の構造の模式図。
【図２】本発明の一実施例に基づく化学反応デバイスと化学反応装置を用いたタンパク質の酵素分解産物の電気泳動結果。
【図３】本発明の一実施例に基づく化学反応デバイスと比較となる化学反応デバイスの模式図。
【図４】本発明の一実施例に基づく化学反応デバイスと比較となる化学反応デバイス中に残る固定化酵素量と経過時間の関係を示すグラフ。
【図５】本発明の一実施例に基づく化学分析デバイスの構造の模式図。
【図６】本発明の一実施例に基づく化学分析装置の構造の模式図。
【図７】本発明の一実施例に基づく化学分析デバイスの蛍光計測結果。
【符号の説明】
１０１：キャピラリー、１０２：酵素、１０３：ガラスビーズ、１０４：キャピラリー、１０５：酵素、１０６：ステンレス製ワイヤー、１１０：反応容器、１１１，  １１１’：コネクター、１１２，  １１２’：送液用のキャピラリー、１１３：サンプルチューブ、１１４：シリンジ、１１５：シリンジポンプ、２０１：キャピラリー、２０２：物理吸着で固定された酵素、２０３：ガラスビーズ、２０４：キャピラリー、２０５：酵素を物理吸着で固定したガラスビーズ、２１０：白丸、２１１：白三角、３０１：ＰＤＭＳ基板、３０２：スライドガラス、３０３：流路、３０４：溶液穴、３０５：接続穴、３１０：ＤＮＡプローブ、３１１：突起、３２１：ＤＮＡ計測デバイス、３２２：恒温槽、３２３：コネクター、３２５：シリンジ、３２６：シリンジポンプ、３２７：三方弁、３２８：廃液溜め、３２９：接続用のキャピラリー、３３０：接続用のキャピラリー、３３１：接続用のキャピラリー、３５１：レーザー、３５２：光電子増倍管、３５３：ダイクロイックミラー、３５４：レンズ、３５５：ミラー、３５６：光学フィルター、３５７：パーソナルコンピュータ。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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