(57)【要約】【課題】  遺伝的改変によって転写及び翻訳の両方の効率が高められた組換え蛋白質生産用バクテリア宿主の提供。【解決手段】  ｔＲＮＡの含有量が増加され、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ｔＲＮＡの含有量が増加され、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
【請求項２】
ｍＲＮＡ分解の抑制が、ヌクレアーゼ活性の抑制により行われる請求項１記載のバクテリア。
【請求項３】
ｍＲＮＡ分解の抑制が、産生されるＲＮａｓｅＥのＣ末端ドメイン（４７７アミノ酸）の一部又は全部の欠損又はアミノ酸置換により行われる請求項１又は２記載のバクテリア。
【請求項４】
ｔＲＮＡが、バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡである請求項１〜３のいずれか１項に記載のバクテリア。
【請求項５】
バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを有し、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
【請求項６】
プラスミドがゲノム当たり１０コピー以上複製され得るものである請求項５記載のバクテリア。
【請求項７】
バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子がゲノムに組み込まれ、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
【請求項８】
さらに、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子が導入されていることを特徴とする、請求項１〜７のいずれか１項に記載のバクテリア。
【請求項９】
バクテリアが大腸菌である、請求項１〜８のいずれか１項に記載のバクテリア。
【請求項１０】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおいてｔＲＮＡの含有量を増加させる工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡ分解を抑制させる工程；
を含む、請求項１〜８のいずれか１項に記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１１】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
を含む、請求項５又は６記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１２】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を該バクテリアのゲノムに組み込む工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
を含む、請求項７記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１３】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程；
（ｃ）分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子を含むプラスミドをバクテリアに導入する工程；
を含む、請求項８記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１４】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を該バクテリアのゲノムに組み込む工程；
（ｃ）分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子を含むプラスミドをバクテリアに導入する工程；
を含む、請求項８記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１５】
以下の工程：
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子と、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子とを含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程；
を含む、請求項８記載のバクテリアを製造する方法。
【請求項１６】
請求項１〜９のいずれか１項に記載のバクテリアに目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子が導入されていることを特徴とする形質転換体。
【請求項１７】
目的蛋白質又はペプチドが可溶性である請求項１６記載の形質転換体。
【請求項１８】
目的蛋白質又はペプチドが膜蛋白質である請求項１６記載の形質転換体。
【請求項１９】
請求項１〜９のいずれか１項に記載のバクテリアの粗抽出物を含むことを特徴とする組成物。
【請求項２０】
請求項１６〜１８のいずれか１項に記載の形質転換体を培養し、得られる培養物から目的蛋白質又はペプチドを回収することを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドの製造方法。
【請求項２１】
さらにｉｎ  ｖｉｔｒｏにて目的蛋白質又はペプチドの不溶性凝集体を可溶化させ、再構成する工程を含む、請求項２０記載の方法。
【請求項２２】
不溶性凝集体の再構成が、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドの共存下で行われる、請求項２１記載の方法。
【請求項２３】
目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子を、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子と共発現することを特徴とする、請求項２０〜２２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２４】
目的蛋白質又はペプチドを、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる１つの蛋白質又はその部分ペプチドとの融合蛋白質として発現することを特徴とする、請求項２０〜２２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２５】
ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系において、請求項１９記載の組成物を用いて目的蛋白質又はペ
プチドを産生することを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドの製造方法。
【請求項２６】
目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子が、真核生物由来ｃＤＮＡの全長配列、又は６残基以上のアミノ酸配列をコードするその部分配列である、請求項２０〜２５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２７】
請求項２０〜２６のいずれか１項に記載の方法により製造された目的蛋白質又はペプチド、請求項１６〜１８のいずれか１項に記載の形質転換体、又は請求項１９記載の組成物のいずれかを動物に免疫する工程を含むことを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドに対する抗体の作製方法。
【請求項２８】
請求項２７記載の方法によって得られる抗体。
【請求項２９】
請求項２７に記載される免疫動物より抗体遺伝子を分離する工程を含むことを特徴とする、目的タンパク質又はペプチドに対する抗体をコードする遺伝子の調製方法。
【請求項３０】
請求項２９に記載の方法によって得られる抗体遺伝子、及び抗体の抗原認識領域の６残基以上のペプチドをコードする遺伝子。
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【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、組換え蛋白質生産に利用できる、新規な遺伝的改変が施された宿主バクテリア、及び該バクテリアを用いた蛋白質の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
宿主微生物、特に大腸菌などのバクテリアにおける組換え蛋白質の発現効率を向上させるため、これまでに転写・翻訳・ポリペプチドの折りたたみといった成熟蛋白質に到達するまでの様々の過程を改善する目的で、遺伝子工学的な手法による改善が試みられている（Ｂａｎｅｙｘ，Ｆ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１９９９  １０，４１１−４２１）。
【０００３】
例えば、分子量サイズの大きいポリペプチドを生産しようとする場合には、発現されたｍＲＮＡが分解されることがあるが、組換え蛋白質の生産においてこのｍＲＮＡの分解を抑制することは有効な手段である。これに関して、バクテリアでのｍＲＮＡの分解に関与する特定因子のリボヌクレアーゼ活性を低下させる技術が報告されている（特許文献１参照）。
【０００４】
また、宿主バクテリアにおける使用頻度が低いコドンに対応するｔＲＮＡの枯渇は外来遺伝子の翻訳途中での停止、生産されるポリペプチド鎖におけるアミノ酸の取り込みミス等を起こすことになり、これは組換え蛋白質生産における重大な問題点の原因となる。例えばＡＧＡ／ＡＧＧ、ＣＧＧ／ＣＧＡ（Ａｒｇ）、ＧＧＡ（Ｇｌｙ）、ＡＵＡ（Ｉｌｅ）、ＣＵＡ（Ｌｅｕ）及びＣＣＣ（Ｐｒｏ）は大腸菌では使用頻度が極めて低い。従って、これらのコドンが頻繁に採用されている真核生物や古細菌の遺伝子の翻訳過程においては、その速度低下、翻訳途中での停止、読みとり配列のフレームシフト、及び誤ったアミノ酸の取り込みといった悪い影響を及ぼす可能性がある（Ｋｕｒｌａｎｄ， Ｃ． ａｎｄ 
Ｇａｌｌｅｔ， Ｊ．  １９９６， Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ７
， ４８９−４９３）。この問題を回避する目的で、バクテリアでの発現量が非常に少な
いｔＲＮＡを補充する遺伝的改変がなされている（非特許文献１）。
【０００５】
しかしながら、上記のｍＲＮＡの分解抑制（すなわちｍＲＮＡの安定化）又はｔＲＮＡの補充を行う、いずれか一方のみの遺伝的改変では、真核生物や古細菌由来の蛋白質の発現が十分ではないことがしばしばあった。ｍＲＮＡの分解が抑制されてもこれに対応するポリペプチド鎖の伸長を完全に行う際には、ｔＲＮＡの枯渇といった別の問題に直面するものと考えられる。これまでに転写・翻訳に関わる上記の両方の遺伝的改変を施し、組換え蛋白質の生産性を向上させる試みはなされていなかった。また、真核生物由来の蛋白質をバクテリアで生産する場合には、目的とする蛋白質が過剰に生産されたとしても不活性な不溶性凝集体として生産される場合が多く、また生産されるポリペプチド鎖が正常に折りたたまれないこともあった。
【０００６】
従って、当該技術分野においては、正確な配列及び立体構造を有する蛋白質を高効率に生産するための方法及びツールが望まれていた。
【０００７】
【特許文献１】ＷＯ ００／０８１８３号パンフレット
【非特許文献１】Ｂａｃａ， Ａ．Ｍ． ａｎｄ Ｈｏｌ， Ｗ．Ｇ．Ｊ．， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ ３０， １１３−１１８ （２０００）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、遺伝的改変によって転写及び翻訳の両方の効率が高められた組換え蛋白質生産用バクテリア宿主を提供し、さらに本発明のバクテリア宿主にて産生される蛋白質の折りたたみを改善させる目的で、蛋白質折りたたみに関与する蛋白質因子及びその遺伝子を用いる技術をも提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、バクテリアにおけるｍＲＮＡの分解を抑制し、かつ該バクテリアにおいて使用頻度が低いコドンに対応するｔＲＮＡの含有量を増加させる遺伝的改変をバクテリアに施すことによって、それぞれ単独の遺伝的改変を行った場合よりもその蛋白質生産効率が改善されることを見出した。また本発明者は、特に蛋白質生産において不活性な不溶性凝集体が形成される場合には、上記遺伝的改変に加えて、さらに分子シャペロンの共存下にて目的とする蛋白質を発現させることによって、正確な折りたたみを有する蛋白質が可溶性画分に産生されることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１０】
すなわち、本発明は、以下の（１）〜（１８）を提供する。
（１）ｔＲＮＡの含有量が増加され、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
上記バクテリアにおいて、ｍＲＮＡ分解の抑制は、例えば、ヌクレアーゼ活性の抑制により、具体的には、産生されるＲＮａｓｅＥのＣ末端ドメイン（４７７アミノ酸）の一部又は全部の欠損又はアミノ酸置換により行うことができる。また上記バクテリアにおいて、ｔＲＮＡは、該バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡであることが好ましい。
【００１１】
（２）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを有し、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
上記バクテリアにおいて、ｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドはゲノム当たり１０コピー以上複製され得るものであることが好ましい。
【００１２】
（３）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子がゲノムに組み込まれ、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするバクテリア。
【００１３】
（４）上記バクテリアにおいて、さらに分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子が導入されていることを特徴とするバクテリア。
上記（１）〜（４）のバクテリアとしては、例えば大腸菌が挙げられる。
【００１４】
（５）以下の工程を含む、上記（１）〜（４）のいずれかのバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおいてｔＲＮＡの含有量を増加させる工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡ分解を抑制させる工程
【００１５】
（６）以下の工程を含む、上記（２）のバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程
【００１６】
（７）以下の工程を含む、上記（３）のバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を該バクテリアのゲノムに組み込む工程；及び
（ｂ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程
【００１７】
（８）以下の工程を含む、上記（４）のバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程；並びに
（ｃ）分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子を含むプラスミドをバクテリアに導入する工程
【００１８】
（９）以下の工程を含む、上記（４）のバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子を該バクテリアのゲノムに組み込む工程；
（ｃ）分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子を含むプラスミドをバクテリアに導入する工程
【００１９】
（１０）以下の工程を含む、上記（４）のバクテリアを製造する方法。
（ａ）バクテリアにおいてｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させる工程；
（ｂ）バクテリアにおける使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応するｔＲＮＡをコードする遺伝子と、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子とを含むプラスミドを該バクテリアに導入する工程
【００２０】
（１１）上記（１）〜（４）のいずれかのバクテリアに目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子が導入されていることを特徴とする形質転換体。
上記形質転換体において、目的蛋白質又はペプチドとしては、例えば可溶性蛋白質、膜蛋白質などが挙げられる。
【００２１】
（１２）上記（１）〜（４）のいずれかのバクテリアの粗抽出物を含むことを特徴とする組成物。
【００２２】
（１３）上記（１１）の形質転換体を培養し、得られる培養物から目的蛋白質又はペプチドを回収することを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドの製造方法。
【００２３】
上記方法は、さらにｉｎ  ｖｉｔｒｏにて目的蛋白質又はペプチドの不溶性凝集体を可溶化させ、再構成する工程を含んでもよく、この場合、不溶性凝集体の再構成は、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、
プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドの共存下で行われることが好ましい。
また上記方法においては、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子を、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる少なくとも１つの蛋白質又はその部分ペプチドをコードする遺伝子と共発現させてもよいし、あるいは、目的蛋白質又はペプチドを、分子シャペロン、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ、ジスルフィドイソメラーゼ、プロテインジスルフィドイソメラーゼ及びチオレドキシンから選ばれる１つの蛋白質又はその部分ペプチドとの融合蛋白質として発現させてもよい。
【００２４】
（１４）ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系において、上記（１２）の組成物を用いて目的蛋白質又
はペプチドを産生することを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドの製造方法。
【００２５】
上記（１３）又は（１４）の方法においては、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子が、真核生物由来ｃＤＮＡの全長配列、又は６残基以上のアミノ酸配列をコードするその部分配列であることが好ましい。
【００２６】
（１５）上記（１３）又は（１４）の方法により製造された目的蛋白質又はペプチド、上記（１１）の形質転換体、又は上記（１２）の組成物のいずれかを動物に免疫する工程を含むことを特徴とする、目的蛋白質又はペプチドに対する抗体の作製方法。
（１６）上記（１５）の方法によって得られる抗体。
（１７）上記（１５）に記載される免疫動物より抗体遺伝子を分離する工程を含むことを特徴とする、目的タンパク質又はペプチドに対する抗体をコードする遺伝子の調製方法。（１８）上記（１７）の方法によって得られる抗体遺伝子、及び抗体の抗原認識領域の６残基以上のペプチドをコードする遺伝子。
【発明の効果】
【００２７】
本発明により、ｍＲＮＡの分解が抑制され、かつｔＲＮＡ含有量が増加されており、また場合によっては分子シャペロンを含むバクテリアが提供される。このバクテリアは、所望の蛋白質又はペプチドを、正確な配列及び折りたたみを保ち、かつ高効率に生産するために有用である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２８】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００２９】
本発明の新規なバクテリアは、ｔＲＮＡの含有量が増加され、かつｍＲＮＡの分解が抑制されていることを特徴とするものであり、これを目的蛋白質又はペプチドの遺伝子組換え手法による製造に用いた場合には、該目的蛋白質又はペプチドを高効率に製造することができる。
【００３０】
１．バクテリア及びその製造
（１）バクテリア
本発明において使用するバクテリアとしては、蛋白質生産に利用されている一般的なバクテリアであれば特に限定されるものではなく、例えば、大腸菌、枯草菌等が含まれる。本発明においては、簡便性の点から大腸菌を使用することが好ましい。大腸菌としては、例えばエッシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ）ＤＨ５αなどが挙げられ、枯草菌としては、例えばバチルス・ズブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓ）などが挙げられる。
【００３１】
（２）ｍＲＮＡ安定化
組換え蛋白質の生産においてｍＲＮＡの分解を抑制し、ｍＲＮＡを安定化させることは組換えポリペプチドの生産性を向上させるための有効な手段である。ｍＲＮＡの分解を抑制するには、例えばｍＲＮＡの分解に関与する蛋白質の活性を抑制することが挙げられる。例えばそのような活性としてはヌクレアーゼ活性があり、このヌクレアーゼ活性を抑制することによってｍＲＮＡを安定化させることができる。
【００３２】
バクテリアにおけるｍＲＮＡの分解には、デグラダゾームと呼ばれるヌクレアーゼ活性を有する蛋白質複合体が主に関与していると考えられている（Ｍａｒｉａｎｎｅ  Ｇｒｕｎｂｅｒｇ−Ｍａｎａｇｏ，Ａｎｎｕ. Ｒｅｖ.Ｇｅｎｅｔ. １９９９，３３， １９３−２２７）。従って、このデグラダゾームのｍＲＮＡ分解活性を抑制（欠損又は低下）させることによって、ｍＲＮＡを安定化させることが可能である。デクラダゾームは、主にＲＮａｓｅＥ、ＰＮＰａｓｅ（ｐｏｌｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｓ
ｅ）、ヘリカーゼ活性を有するＲｈｌＢ、及びエノラーゼなどの蛋白質により構成されている。ＲＮａｓｅＥ（１０６１アミノ酸）のＣ末端ドメイン（４７７アミノ酸）は、デグラダゾームの他の蛋白質の集合の足場となっており、またＮ末端ドメイン（５８４アミノ酸）は、単独でエンドヌクレアーゼ活性を有し、ｍＲＮＡのプロセッシンングに関与し、またバクテリアの生育に必要である。以上のことから、バクテリアのｍＲＮＡの分解活性を抑制するには、例えば、以下に示すＬｏｐｅｔｚらの知見を利用することが挙げられる。Ｌｏｐｅｔｚらは、ＲＮａｓｅＥのＣ末端側４７７アミノ酸が欠損した大腸菌ＢＬ２１
（ＤＥ３）株（ｒｎｅ１３１変異株）では、ｍＲＮＡの分解が抑制されたことを報告し
ている（Ｌｏｐｅｔｚ Ｐ．Ｊ． ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． １９９９， ３３（１）， １８８−１９９）。すなわち、ＲＮａｓｅＥのＣ末端ドメインの全部又は一部を欠損又はアミノ酸置換することにより、このＲＮａｓｅのｍＲＮＡ分解活性を抑制することができる。このような蛋白質の全部又は一部の欠損及びアミノ酸置換手法は当技術分野で周知である。例えば、ＲＮａｓｅＥ以外のｍＲＮＡ分解に関与する蛋白質をコードする遺伝子を欠損又は変異させることにより、蛋白質の全部又は一部を欠損させたり、アミノ酸を置換させたりすることができる。このような遺伝子の欠損及び変異手法もまた当技術分野では周知である。
【００３３】
以上のようにｍＲＮＡ分解が抑制されたバクテリアは、発現されたｍＲＮＡの分解が低減し、例えば分子量の大きい蛋白質又はペプチドであっても高効率で生産することができる。
【００３４】
（３）ｔＲＮＡ補充
本発明では、前項（２）に記載したｍＲＮＡの分解を抑制させる遺伝的改変に加えて、バクテリアにおけるｔＲＮＡの含有量を増加させる。これによって、組換え蛋白質の生産性はさらに向上するとともに、間違ったアミノ酸配列のものが生産される可能性は極めて低くなると考えられる。例えば、バクテリアにおける使用頻度が低いコドンに対応するｔＲＮＡのうち、少なくとも１つ以上を補充することで、翻訳の効率を上昇させることが可能である。
【００３５】
ｔＲＮＡは、該ｔＲＮＡをコードする遺伝子をバクテリアのゲノム上に導入して補充してもよく、また該遺伝子をプラスミドＤＮＡとしてバクテリアに導入して補充してもよい。本明細書中、「ｔＲＮＡの補充」とは、バクテリアにおけるｔＲＮＡの含有量を増大させることを指す。例えば、ランバダインテグラーゼを発現させ得るバクテリアにて、ランバダインテグラーゼの部位特異的組換え機能を利用して、少なくともプロモーター部位（−３５〜−１０領域）、ｔＲＮＡ遺伝子及び転写停止領域を含むｔＲＮＡの発現ユニットを宿主ゲノムへ組み込むことが可能である（Ｏｌｓｏｎ，Ｐ．ｅｔ  ａｌ．１９９８，Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．１４，１６０−１６６）。ｔＲＮＡの発現ユニットはＴｉｔｏらの方法（Ｔｉｔｏ，ＢＪ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ  １９
９５，１７７，７０８６）に従って作製すればよい。この場合、挿入しようとするｔＲＮＡの発現ユニット遺伝子を事前に複数連結したものをゲノムに導入することでｔＲＮＡの含有量をより増加させることが可能となる。
【００３６】
一方、プラスミドＤＮＡによりｔＲＮＡを補充する場合、その種類は特に問わないが、後述する目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子を含む発現プラスミドと共存可能な複製領域を有していることが必要であり、またプラスミドのコピー数がゲノム当たり５コピー程度以上、好ましくは１０コピー以上のものが好ましい。現在市販されているほとんどの発現プラスミドはＣｏｌＥ１由来の複製部位を有するため、ｔＲＮＡをコードする遺伝子を補充するために使用可能なプラスミドとしては、これと同一細胞内で共存可能なプラスミドである、例えば複製部位がＰ１５Ａに由来するｐＡＣＹＣ１８４、ｐＡＣＹＣ１７７プラスミド（Ｃｈａｎｇ，ＡＣＹ．ｅｔ  ａｌ．，１９７８，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｏｉｏｌ．１３４，１１４１）、複製部位の由来がＲ６−５であるｐＳＣ１０１（Ｃｏｈｅｎ，ＳＮ．ｅｔ  ａｌ．，１９７７，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１３２，７３４）、及びこれらの誘導体が挙げられる。ｔＲＮＡを補充するためのプラスミドのコピー数は高いほどその効果が期待されるため、ｐＵＣ１８、ｐＴＺ等の複製部位がＣｏｌＥ１であるハイコピープラスミドでｔＲＮＡを発現させてもよい。この場合、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子の発現ユニットとｔＲＮＡの発現ユニットは同一プラスミドに配置するか、あるいは、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子の発現ユニットをｐＡＣＹＣプラスミド等の、ｔＲＮＡの発現ユニットを含むプラスミド（例えばＣｏｌＥ１）と共存可能なプラスミドに配置すればよい。
【００３７】
補充するｔＲＮＡの種類は問わないが、補充しようとするバクテリアにおいて使用頻度が低いコドンの少なくとも１つに対応していることが好ましい。例えば、バクテリアとして大腸菌を用いる場合には、ＡＧＡ／ＡＧＧ、ＣＧＧ／ＣＧＡ（Ａｒｇ）、ＧＧＡ（Ｇｌｙ）、ＡＵＡ（Ｉｌｅ）、ＣＵＡ（Ｌｅｕ）及びＣＣＣ（Ｐｒｏ）の少なくとも１つのコドンに対応するｔＲＮＡを補充すればよいが、あらゆる遺伝子配列に対応できる点から全ての上記コドンに対応するｔＲＮＡを補充することが特に好ましい。例えば、コドンＡＧＡ／ＡＧＧ（Ａｒｇ）、ＡＵＡ（Ｉｌｅ）、及びＧＧＡ（Ｇｌｙ）に対応するｔＲＮＡであるｇｌｙＴ、ａｒｇＵ及びｉｌｅＸが補充されたｐＡＣＹＣ１８４誘導体プラスミドｐＲＩＧを保持した大腸菌において、大腸菌での使用頻度が低いコドンを多く有する寄生虫由来の蛋白質をコードする遺伝子を高レベルで発現することに成功している（Ｂａｃａ，Ａ．Ｍ．２０００、  Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ ３０，１１３−１１８）
。
【００３８】
例えば、バクテリアとして大腸菌を使用する場合には、予め大腸菌において使用頻度が低いコドン（ＡＧＧ、ＡＧＡ、ＡＵＡ、ＣＵＡ、ＣＣＣ及びＧＧＡ）に対応するｔＲＮＡがクロラムフェニコール耐性プラスミドｐＲＡＲＥに組み込まれ、それがＴｕｎｅｒ株（大腸菌ＢＬ２１株のラックパーミアーゼ欠損株）へ導入されて作製された大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ株とその系統株が市販されており（Ｎｏｖａｇｅｎ社）、このような市販の大腸菌株を用いても本発明のバクテリアを製造することができる。
【００３９】
以上のように、ｔＲＮＡを補充することによって、種々の生物に由来する蛋白質又はペプチドであっても、正確なアミノ酸配列を有する蛋白質又はペプチドを、翻訳時の速度低下などの問題なく生産することができる。
【００４０】
（４）分子シャペロン様活性を有する蛋白質の存在
本発明は、上述したように、ｍＲＮＡの分解が抑制され、かつｔＲＮＡの含有量が増加されているバクテリア宿主（以下、Ｃｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  Ｐｌｕｓとも称する。）を提供し、該バクテリアを用いることにより、あらゆる蛋白質又はペプチドの高効率生産を達
成することができる（蛋白質製造に関しては、「４．目的蛋白質及びペプチドの製造」の項を参照されたい）。
【００４１】
しかしながら、一般的に特に真核生物由来の蛋白質又はペプチドをバクテリアにて大量発現しようとした場合には、その蛋白質又はペプチドが不活性な不溶性凝集体となってしまうことが多い。一度形成された不溶性凝集体を可溶化させて活性体を高効率で回収するための手段は現在はあまり有効ではなく、また非効率でもある。そのため本発明が提供するＣｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  Ｐｌｕｓ型のバクテリアを宿主として用いた場合でも、不溶性凝集体形成の問題は解消できない場合があると考えられる。従って、本発明は、そのような蛋白質又はペプチドを生産させる場合に可溶性画分への蛋白質又はペプチドの生産効率を向上させる目的で、さらに、Ｃｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  Ｐｌｕｓバクテリア内で、目的蛋白質又はペプチドを、蛋白質の折りたたみに関与する蛋白質因子と共発現させたり、該蛋白質因子との融合蛋白質として発現させる技術をも包含する。
【００４２】
生体内には、新生ポリペプチドが正常に折りたたまれて成熟蛋白質に至るまでの過程を支援している蛋白質群が存在し、これらは、分子シャペロン（Ｈａｒｔｌ，ＦＵ  ｅｔ  ａｌ．，２００２，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２９５，１８５２；Ｔｈｏｍａｓ，ＪＤ  ｅｔ  ａ
ｌ．，１９９７，Ａｐｐｌｉ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．６６，１９７）、ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼ（以下、ＰＰＩａｓｅとも称する）、ジスルフィドイソメラーゼ（以下、Ｄｓｂとも称する）、プロテインジスルフィドイソメラーゼ（以下、ＰＤＩとも称する）及びチオレドキシンである。分子シャペロンは、ＡＴＰの存在下及び非存在下で不安定な折りたたみ中間体に結合し、蛋白質の凝集形成を抑制する作用がある。分子シャペロンには、シャペロニン、ＤｎａＫ、ＤｎａＪ及びＧｒｐＥ、並びにその他の熱ショック蛋白質（ＨＳＰ）群が含まれる。一方、蛋白質又はペプチドにおけるプロリンのＮ末端側のペプチド結合は、トランス異性体よりも安定なシス異性体をとる場合があり、シス異性体の形成は蛋白質の立体構造形成で重要な役割を果たす。プロリン残基の立体異性化反応は蛋白質折りたたみ過程の律速段階であるが、これを触媒する酵素がＰＰＩａｓｅである。また蛋白質の構造形成過程でシステインを介したジスルフィド結合の形成・交換反応も重要であり、ＰＤＩ、Ｄｓｂ及びチオレドキシンがこれを触媒することが知られている。また、興味深いことに、一部のＰＰＩａｓｅ及びＰＤＩは本来の機能とは独立して、蛋白質の折りたたみ中間体に結合することにより、分子シャペロンのように、蛋白質の凝集形成を抑制することが知られている（Ｆｕｒｕｔａｎｉ，Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３９，４５３；Ｓｏｎｇ，ＪＬ．，
１９９５，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２３１，３１２）。近年では、ＰＰＩａｓｅ、Ｄｓｂ、ＰＤＩ及びチオレドキシンも分子シャペロンの１種と見なされている（本発明では、分子シャペロン、ＰＰＩａｓｅ、Ｄｓｂ、ＰＤＩ及びチオレドキシンを一括して「分子シャペロン」と称する）。
【００４３】
すなわち、本発明では、Ｃｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  ＰｌｕｓバクテリアとしてｍＲＮＡ分解を抑制しかつｔＲＮＡの含有量を増加させるだけではなく、分子シャペロンに属する蛋白質又はシャペロン活性を保持したこれらの部分ペプチドと、目的蛋白質又はペプチドとを共発現させる、又はこれらを融合蛋白質として発現させることをも含む。本発明においては、上記共発現又は融合蛋白質としての発現のいずれでもよい。例えば、目的蛋白質又はペプチドを分子シャペロンとの融合蛋白質として発現させることにより、それらを時空間的に接近させることができることから、不溶性凝集体形成の抑制効果が高いと考えられ、その点からは融合蛋白質としての発現が好ましい。一方、融合蛋白質として発現させる場合は、分子シャペロンと目的蛋白質又はペプチドを、これらの間に介在する配列を特異的に切断するプロテアーゼによって切断する工程を必要とするため、共発現法で不溶性凝集体形成を抑制できる場合には、融合蛋白質として発現させる必要はない。従って、目的蛋白質又はペプチドの性質に応じて共発現と融合蛋白質としての発現を使い分ければよい
。
【００４４】
共発現法を行う場合、目的蛋白質若しくはペプチドをコードする遺伝子を含むプラスミド（「２．形質転換体」の項を参照）、又はこれと共存可能なｔＲＮＡ遺伝子を含むプラスミド（上記（３）を参照）のいずれかに分子シャペロン蛋白質をコードする遺伝子の発現ユニットを含有させることで、本発明の意図する効果を達成することが可能である。また、互いに複製部位の異なる３種のプラスミドを用いることも可能である。例えば、目的蛋白質又はペプチドの発現は、複製部位がＣｏｌＥ１由来であるプラスミド、ｔＲＮＡの発現は複製部位がＲ６Ｋ（Ｋｏｌｔｅｒ， Ｒ． ｅｔ  ａｌ．， １９７８， Ｐｌａｓｍｉｄ １， ５７１）由来であるプラスミド、そして分子シャペロンの発現は複製部位がＰ１５Ａ由来であるプラスミドを使用することができる。これらのプラスミドに互いに異なる薬剤耐性遺伝子を含ませることで３種のプラスミドをバクテリア内部で安定的に複製させることが可能である。
【００４５】
本発明で使用できる分子シャペロンは、これに定義されるもの全てを含むが、その分子種の多様性は高い。例えばシャペロニンの場合、グループ１型と２型に分類されており、前者にはバクテリア、ミトコンドリア若しくは葉緑体のもが属し、後者には古細菌及び真核生物細胞質由来のものが属するが、いずれのグループのものでも蛋白質の折りたたみを改善する効果が期待でき、本発明において使用可能である。
【００４６】
シャペロニンのサブユニットは、頂上ドメイン（ａｐｉｃａｌ  ｄｏｍａｉｎ）、中間ドメイン（ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ  ｄｏｍａｉｎ）、及び赤道ドメイン（ｅｑｕａｔｏｒｉａｌ  ｄｏｍａｉｎ）の３つのドメインから構成されており、頂上ドメインは不安定な蛋白質の折りたたみ中間体を特異的に捉えて結合する活性を有し、シャペロニンの蛋白質折りたたみ機能において特に重要な役割を果たしている。従って、本発明のＣｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  Ｐｌｕｓバクテリアにおいて、目的蛋白質又はペプチドを、シャペロニンの全長又はその頂上ドメインのペプチドと共発現させたり、融合蛋白質として発現させることは有効である。本発明においては、分子シャペロンの部分ペプチド、例えばシャペロニンの場合には頂上ドメインを含む部分ペプチドを、目的蛋白質又はペプチドと共発現又は融合蛋白質として発現させることを含む。
【００４７】
ＰＰＩａｓｅは、シクロフィリン（サイクロスポリン結合性蛋白質）、ＦＫＢＰ（ＦＫ５０６ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）、及びパーブリンの３種に分類されるが、これらは全て蛋白質中のプロリン残基の立体異性化反応を触媒する。中でも古細菌由来ＦＫＢＰは、ＰＰＩａｓｅ活性以外に蛋白質の折りたたみ中間体の凝集形成を抑制する分子シャペロン様の活性を持つ（Ｆｕｒｕｔａｎｉ，Ｍ．ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（２０００）３９，４５３；Ｉｄｅｎｏ，Ａ．ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．（２００１）３５７，４６５）。古細菌のＦＫＢＰの中には、ＰＰＩａｓｅ活性自体は殆ど無いが、強い分子シャペロン様活性を有するものも存在する（Ｉｄｅｎｏ，Ａ．ｅｔ  ａｌ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（２０００）２６７，３１３９）。従って、不溶性凝集体の形成抑制を効果的に行うには、ＰＰＩａｓｅの中でも古細菌由来のＦＫＢＰと、目的蛋白質又はペプチドとを共発現したり、あるいはこれらを融合蛋白質として発現させることが好ましい。
【００４８】
目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドとを融合蛋白質として発現させる場合には、使用する分子シャペロンの種類及び由来に応じて、融合蛋白質における目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドの数の比を選択することが好ましい。例えば、分子シャペロン：目的蛋白質の比がｎ：１（ｎ＝約１．０〜９．０）となることが好ましい。
【００４９】
融合蛋白質における目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドとの連結パターンとしては、分子シャペロン又はその部分ペプチドのＣ末端若しくはＮ末端、又は分子シャペロンが連結しているその連結部に目的蛋白質又はペプチドを配置することが好ましい。また、目的蛋白質又はペプチドの細胞膜に対する親和性が極めて高い場合には、分子シャペロン又はその部分ペプチドの複数の部分に配置することによって毒性蛋白質の発現を抑制することが可能となる。また、目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドとの連結は、限定するものではないがペプチド結合が挙げられる。さらに、目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドとの間に、トロンビンやエンテロキナーゼなどのプロテアーゼの切断配列を配置させ、発現された融合蛋白質においてその両者を切断しやすくしてもよい。
【００５０】
融合蛋白質として発現させるには、制限酵素を用いる方法、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いる方法などの通常の遺伝子工学手法を利用して、融合蛋白質をコードする遺伝子を構築し、これを挿入した発現ベクター又はプラスミドを宿主バクテリアに導入し、該宿主において融合蛋白質として発現させることができる。
【００５１】
以上のように本発明では、転写・翻訳系が強化されたＣｏｄｏｎ／ｍＲＮＡ  Ｐｌｕｓバクテリアを提供するとともに、このバクテリア宿主内で遺伝子工学的に目的蛋白質又はペプチドを分子シャペロン又はその部分ペプチドと共発現又は融合蛋白質として発現させることによって、特に真核生物のｃＤＮＡにコードされるポリペプチドを活性型蛋白質（正確に折りたたまれた蛋白質）として、不溶性凝集体の形成を抑制して高効率で生産するものである。
【００５２】
（５）その他の改変
以上の改変に加えて、さらに目的に応じてその他の様々な遺伝的改変と組み合わせてもよい。例えば、生産される蛋白質又はペプチドの宿主プロテアーゼによる分解を抑制するには、ｌｏｎ，ＯｍｐＴのようなプロテアーゼをコードする構造遺伝子を欠損又は変異させればよい（Ｐｈｉｌｌｉｐｓ，ｅｔ  ａｌ．１９８４，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１５９，２８３−２８７）。生産しようとする蛋白質又はペプチドが構造形成にＳ−Ｓ（ジスルフィド）結合の形成を必要する場合は、バクテリアの細胞質内を酸化的に保つために、チオレドキシン還元酵素遺伝子及びグルタチオン還元酵素をコードする遺伝子を欠損又は変異させればよい（Ｐｒｉｎｚ，Ｗ．Ａ．ｅｔ  ａｌ．１９９７，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２，１５６６１−１５６６７）。また、宿主バクテリアに導入されたプラスミド内に繰り返し配列が存在する場合は、プラスミドの安定化を計るために、特定のリコンビナーゼ遺伝子を欠損又は変異させればよい。本発明が提供する宿主バクテリアの改良はこれらに限られるものではない。
【００５３】
２．形質転換体
本発明の形質転換体は、上記「１．バクテリア及びその製造」の項に記載のバクテリアを宿主とし、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子が導入されていることを特徴とする。
【００５４】
本発明において、目的蛋白質としては、特に限定されないが、Ａ型肝炎ウィルス、Ｂ型肝炎ウィルス、Ｃ型肝炎ウィルス、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、インフルエンザウィルス等の病原性ウィルスゲノムにコードされる蛋白質（外被蛋白質、コア蛋白質、プロテアーゼ、逆転写酵素、インテグラーゼ等）；ｓｃＦＶ（一本鎖抗体）、Ｆａｂ、（Ｆａｂ）2、及び完全抗体（ＩｇＧ）型である治療・診断用抗体；Ｇ蛋白質共役型受容体等の
膜受容体；血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、血液幹細胞成長因子、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、神経成長・栄養因子（ＮＧＦ又はＮＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）等の成長因子に
属するもの；腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、インターフェロン（ＩＦＮ）、インターロイキン（ＩＬ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、マクロファージ・コロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、アルブミン、ヒト成長ホルモン等に属するもの、が挙げられる。その他、ヒト、マウス及び線虫等の高等生物由来の疾病関連遺伝子産物の全てが、本発明に従って発現させる対象の目的蛋白質となり得る。
【００５５】
本発明においては、宿主として使用するバクテリアの性質から、可溶性蛋白質又は膜蛋白質をも目的蛋白質として発現対象とすることができる。そのような可溶性蛋白質としては、核内受容体、病原性ウイルスゲノムにコードされる蛋白質（外被蛋白質、コア蛋白質、プロテアーゼ、逆転写酵素、インテグラーゼ等）、ｓｃＦｖ（単鎖抗体）、Ｆａｂ、（Ｆａｂ）2、及び完全ＩｇＧ型である治療・診断用抗体、血小板増殖因子、血液幹細胞成
長因子、肝細胞成長因子、トランスフォーミング成長因子、神経成長・栄養因子、線維芽細胞成長因子、インスリン様成長因等の成長因子に属するもの、腫瘍壊死因子、インターフェロン、インターロイキン、エリスロポエチン、顆粒球コロニー刺激因子、マクロファージ・コロニー刺激因子、アルブミン、ヒト成長ホルモン等が好ましく、また膜蛋白質としては、チロシンカイネース型受容体、Ｇ蛋白質共役型受容体、イオンチャンネル構成蛋白質及びイオンチャンネル共役型膜貫通型受容体等が好ましい。
【００５６】
また本発明においては、宿主として使用するバクテリアの性質から、分子量が大きい蛋白質、例えば分子量が１５〜８００キロダルトン、好ましくは１００〜５００キロダルトンの蛋白質をも目的蛋白質として生産することができる。
【００５７】
さらに本発明においては、上記目的蛋白質の部分ペプチドをコードする遺伝子をバクテリアに導入し、本発明の形質転換体を作製してもよい。その場合、部分ペプチドは、蛋白質の全長アミノ酸配列のうち６残基以上のアミノ酸からなるものとすることができる。従って、本発明の形質転換体は、目的蛋白質をコードするｃＤＮＡのうち、６残基以上のアミノ酸配列をコードする部分配列が導入されたものであってもよい。
【００５８】
形質転換体は、適当なプラスミド又はベクターに所望の目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子、並びにこれらの遺伝子を発現させるのに必要な配列を連結（挿入）することによりプラスミド又はベクターを構築し、該プラスミド又はベクターを宿主バクテリアに導入することにより得ることができる。
【００５９】
本発明で使用するプラスミド又はベクターとしては、宿主バクテリア中で複製可能なものであれば特に限定されない。例えば、バクテリオファージ、プラスミド、コスミド、ファージミドなどが挙げられる。
【００６０】
プラスミドＤＮＡとしては、放線菌由来のプラスミド（例えばｐＫ４，ｐＲＫ４０１等）、大腸菌由来のプラスミド（例えばｐＥＴ２１，ｐＢＲ３２２，ｐＵＣ１１８等）、枯草菌由来のプラスミド（例えばｐＵＢ１１０等）、酵母由来のプラスミド（例えばＹＥｐ１３，ＹＣｐ５０等）などが挙げられ、ファージＤＮＡとしてはλファージ（λｇｔ１０，λＺＡＰ等）が挙げられる。
【００６１】
プラスミド又はベクターに遺伝子を挿入するには、まず、精製されたＤＮＡを適当な制限酵素で切断し、それを適当なプラスミド又はベクターＤＮＡの制限酵素部位又はマルチクローニングサイトに挿入してプラスミド又はベクターに連結する方法などが採用される。
【００６２】
目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子は、その遺伝子の機能が発揮されるようにプラスミド又はベクターに組み込まれることが必要である。そこで、プラスミド又はベク
ターには、プロモーター、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子のほか、所望によりエンハンサーなどのシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー、リボソーム結合配列（ＳＤ配列）などを連結することができる。なお、選択マーカーとしては、例えばジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等が挙げられる。
【００６３】
宿主がバクテリアであるため、プラスミド又はベクターＤＮＡは、該バクテリア中で自律複製可能であると同時に、プロモーター、リボゾーム結合配列、目的蛋白質又はペプチドをコードする遺伝子、転写終結配列により構成されていることが好ましい。また、プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。プロモーターは、大腸菌等のバクテリア中で発現できるものであればいずれを用いてもよい。例えばｔｒｐプロモーター、ｌａｃプロモーターなどの、大腸菌やファージに由来するプロモーターが用いられる。ｔａｃプロモーターなどのように、人為的に設計改変されたプロモーターを用いてもよい。
【００６４】
また、本発明においては、上記「１．バクテリア及びその製造」の項に記載したバクテリアの改変を行うための蛋白質又はその部分ペプチドと、所望の目的蛋白質又はペプチドとを共発現させることもある。本明細書中、「共発現」とは、２つ以上の異なる蛋白質をコードする遺伝子が、同じか又は異なるプロモーターに作動可能に結合されており、同時期に発現されることを意味する。したがって、共発現が可能であるならば、上記のそれぞれの遺伝子を同一のベクター若しくはプラスミドに組み込んでもよいし、又は、異なるベクター若しくはプラスミドに組み込んでバイナリーベクターとして使用してもよい。
【００６５】
プラスミド又はベクターＤＮＡを宿主バクテリアに導入する手法は、バクテリアにＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されず、例えば、カルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法等が挙げられる。
【００６６】
３．バクテリア抽出物を含む組成物
本発明のバクテリアの抽出物は無細胞翻訳反応にも利用可能であり、これも発明の対象となる。該抽出物を得るためには、バクテリアの細胞は比較的穏和な条件で破砕することが好ましく、例えば、ガラスビーズによる破砕、リゾチーム処理と浸透圧ショックを組み合わせた方法による破砕が挙げられる。このとき使用する緩衝液は転写、翻訳に関わる蛋白質、酵素等の活性を低下させないものが好ましく、例えばｐＨ６．０〜７．８、１０〜５０ｍＭのリン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、Ｈｅｐｅｓ−ＫＯＨ緩衝液等が挙げられる。また必要に応じて５〜２００ｍＭのＮａＣｌ等の塩類を添加してもよい。細胞抽出液は３０００−５０００ｇで遠心分離を行うことで、沈殿物と分離して回収されうる。無細胞翻訳反応に供するためには、得られた細胞抽出液にアミノ酸、ＡＴＰ等のエネルギー物質、及びヌクレオチド等を添加して使用する。通常さらにｔＲＮＡの補充を行うが、本発明のバクテリアの抽出物を用いる場合は、補充量が少なくてすみ、経済的に優位である。また本発明のバクテリアの抽出物のＲＮＡ分解活性は抑制されているので、効率的に翻訳反応が進行する。
【００６７】
４．目的蛋白質及びペプチドの製造
本発明のバクテリアは、上述したように、ｍＲＮＡの分解が抑制され、かつｔＲＮＡ含有量が増加されており、また場合によっては分子シャペロンを含むものであるため、所望の蛋白質又はペプチドを、正確な配列及び折りたたみを保ち、かつ高効率に、不溶性凝集体の形成を抑制して生産するために有用である。従って、本発明は、さらに本発明のバクテリアを用いることを特徴とする目的蛋白質又はペプチドの製造方法を提供する。
【００６８】
本発明において、目的蛋白質又はペプチドは、上記「２．形質転換体」の項に記載の形質転換体を培養し、その培養物から採取することにより得ることができる。「培養物」と
は、培養上清、培養菌体、又は菌体の破砕物のいずれをも意味するものである。本発明の形質転換体を培地で培養する方法は、バクテリアの培養に用いられる通常の方法に従って行われる。
【００６９】
バクテリアを培養する培地としては、バクテリアが資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、バクテリアの培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。
【００７０】
炭素源としては、グルコース、フラクトース、スクロース、デンプン等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類、そしてジベンゾフラン、ゲンチジン酸、サリチル酸等の芳香族炭化水素が用いられる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸若しくは有機酸のアンモニウム塩、ペプトン、肉エキス、コーンスティープリカー、又はその他の含窒素化合物が用いられる。無機物としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等が用いられる。
【００７１】
培養は、通常、振盪培養又は通気攪拌培養などの好気的条件下、２５〜３７℃で１０〜５０時間行う。培養期間中、ｐＨは約７．４（５．０〜７．９）に保持する。ｐＨの調整は、無機又は有機酸、アルカリ溶液等を用いて行う。培養中は必要に応じてアンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
【００７２】
プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いたプラスミド又はベクターで形質転換したバクテリアを培養する場合は、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換したバクテリアを培養するときにはイソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）等を、ｔｒｐプロモーターを用いたプラスミド又はベクターで形質転換したバクテリアを培養するときにはインドール酢酸（ＩＡＡ）等を培地に添加してもよい。
【００７３】
培養後、目的蛋白質又はペプチドが菌体内に生産される場合には、菌体を破砕することにより当該目的蛋白質又はペプチドを抽出する。また、目的蛋白質又はペプチドが菌体外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離等により菌体を除去する。その後、蛋白質の単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることにより、前記培養物中から目的の蛋白質又はペプチドを単離精製することができる。
【００７４】
また、目的蛋白質又はペプチドが、分子シャペロン又はその部分ペプチドとの融合蛋白質として生産される場合には、この融合蛋白質をそのまま精製して使用してもよいし、あるいは融合蛋白質から目的の蛋白質又はペプチドのみを分離してもよい。この分離は、培養物をエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）で処理し、マグネシウム及びＡＴＰを含有しない緩衝液に対して透析を行い、マグネシウム及びＡＴＰを取り除く。これによって分子シャペロン又はその部分ペプチドの立体構造が破壊され、目的蛋白質又はペプチドが露出することになる。また、透析内液にトロンビンなどのプロテアーゼを作用させ、目的蛋白質又はペプチドと分子シャペロン又はその部分ペプチドとの切断を行ってもよい。
【００７５】
目的蛋白質又はペプチドが不溶性凝集体を形成した場合には、この不溶性凝集物を回収し、リポソーム、界面活性剤、蛋白質変性剤（グアニジウム塩酸、尿素）又は適当な担体の存在下にて可溶化させ、分子シャペロン又はその部分ペプチドの存在下にて再構成（再折りたたみ）してもよい。この工程により、正しい折りたたみを有する目的蛋白質又はペ
プチドを再生することができる。
【００７６】
あるいは、当業者には周知のように、ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系を利用して目的蛋白質又
はペプチドを製造することも可能である。ｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系とは、ｍＲＮＡ転写及
び／又は蛋白質翻訳に必要な成分が含まれ、所望の蛋白質をコードするＤＮＡ又はＲＮＡを添加することにより、それらの成分が細胞内と同様に機能して、蛋白質が生産される系を指し、このようなｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系は当業者に周知である。本発明においては、
このｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳系は、上記「３．バクテリア抽出物を含む組成物」の項に記載
の組成物を利用して行うことができる。簡単に説明すると、本発明のバクテリアの抽出物を含む組成物中に、目的蛋白質又はペプチドをコードするＤＮＡ又はＲＮＡを添加し、該目的蛋白質又はペプチドを発現させ、その組成物から目的蛋白質又はペプチドを回収する。
【００７７】
５．抗体及び抗体をコードする遺伝子
人工的に調製される組換えマウス・ヒトキメラ抗体、ヒト化抗体、及びヒト抗体が、今後、蛋白医薬の中でも最も成長する素材の一つであると予測されている。従って本発明は、哺乳動物由来のｃＤＮＡから上述したように生産された目的蛋白質又はペプチドを動物に免疫することを含む、目的蛋白質又はペプチドに対する抗体の作製方法、及びその抗体をコードする遺伝子の単離方法をも包含する。
【００７８】
現在では、抗原（目的蛋白質又はペプチド）を動物に免疫して免疫応答を誘発することができる。動物の免疫手法は当該技術分野で周知であり、また抗体の単離も慣例的な手法に従って行うことができる。また抗体をコードする遺伝子を単離する場合には、免疫した動物の抗体産生組織からｍＲＮＡを回収し、逆転写酵素−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）によって抗体可変領域に相当する遺伝子を増幅し、例えば大腸菌を用いたファージディスプレイ法（Ｗｉｎｔｅｒ，Ｇ．ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２，４３３）等によって抗体可変領域遺伝子をクローニングすることができる。クローン化された可変領域遺伝子とヒト抗体遺伝子と融合させることで、キメラ又はヒト化抗体が作製可能である。また免疫動物としてヒト抗体産生マウス（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ，Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ  １７，３９１；Ｔｏｍｉｚｕｋａ，ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７，７２２）を用いることにより、直接ヒト抗体及びその遺伝子を得ることも
可能である。目的蛋白質が膜蛋白質である場合、バクテリア宿主の膜画分に蓄積する場合が多いため、バクテリア宿主自体を動物に免疫しても膜蛋白質に対する抗体及びその遺伝子は取得できる。このような膜蛋白質又はそのペプチドに対する抗体は、膜蛋白質に対するアゴニスト（作動薬）又はアンタゴニスト（拮抗薬）の作用を示すものと考えられ、医薬として多大な可能性を有する。
【実施例】
【００７９】
以下、本発明を実施例に基づき具体的に説明する。ただし、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００８０】
〔実施例１〕ｔＲＮＡの含有量が増加され、かつｍＲＮＡの分解が抑制されたバクテリアの調製
大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）株（ｉｎＮｏｖａｔｉｏｎ，２００１，１２，１−３）を、クロラムフェニコールを３４μｇ／Ｌ含むＬＢ培地にて培養し、プラスミドｐＲＡＲＥを回収した。ｐＲＡＲＥは、大腸菌での使用頻度が低いコドンに対応する６個のｔＲＮＡ遺伝子（ｐｒｏＬ，ｌｅｕＷ，ａｒｇＷ，ｇｌｙＴ，ａｒｇＵ，及びｉｌｅＸ）がｐＡＣＹＣプラスミドに導入されたものである（ｉｎＮｏｖａｔｉｏｎｓ，２００１，１２，１−３）。回収されたｐＲＡＲＥで大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（Ｉｎｖｉ
ｔｒｏｇｅｎ社）を形質転換し，クロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて選択することによりｐＲＡＲＥを保持したＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（以下、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株と称する）を得た。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株は、ｍＲＮＡ分解に大きく関与する蛋白質であるＲＮａｓｅＥの遺伝子の一部が欠損しており、該株ではｍＲＮＡの安定化が図れている（Ｌｏｐｅｔｚ  Ｐ．Ｊ．ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．３３，１９９９，１８８−１９９）。従って、本実施例によってｍＲＮＡ分解の抑制とｔＲＮＡの補充の両方の遺伝的形質を持ち合わせた大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株が作製された。
【００８１】
〔実施例２〕アクチン蛋白質の発現
配列番号１に記載にされたヒト由来アクチン蛋白質をコードする遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ  Ｎｏ．Ｘ００３５１）をｐＥＴ２１（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入し、発現ベクターｐＡＣＴを得た。このｐＡＣＴを用いて実施例１で調製されたＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株を形質転換し、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて選択することにより形質転換体ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株（ａ）を得た。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ
ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で３時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＢＬ２１（ＤＥ３）株にｐＲＡＲＥを導入したＢＬ２１（ＤＥ３）／ｐＰＡＲＥ株（ｄ）、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（ｃ）、及びＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＡＣＹＣ株（ｂ）にｐＡＣＴを導入して同様の条件下で発現実験を行った。各菌体培養液ＯＤ６００値を２．０に調整した後、これをドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）で分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって各バンドを数値化して発現レベルを定量し、各発現実験におけるアクチン蛋白質の発現レベルを比較した。アクチン蛋白質の発現は、抗アクチンポリクローナル抗体を用いるウエスタンブロッティングによって確認した。この結果を表１に示す。
【００８２】
【表１】
2005046066.tif 000002
【００８３】
表１に示されるように、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株でアクチン蛋白質の最も高い発現量が得られた。以上のことから、ｍＲＮＡ分解の抑制とｔＲＮＡの補充の両方の遺伝的形質がアクチン蛋白質の発現に有効であることが明らかとなった。
【００８４】
〔実施例３〕チューブリン蛋白質の発現
配列番号２に記載にされたヒト由来チューブリン蛋白質をコードする遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ  Ｎｏ．Ｋ００５５８）をｐＥＴ２１（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入し、発現ベクターｐＴＵＢを得た。このｐＴＵＢを用いて実施例１で調製されたＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株を形質転換し、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニ
コール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて選択することにより形質転換体ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＵＢ株（ａ）を得た。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＵＢ株を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ  ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で３時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＢＬ２１（ＤＥ３）株にｐＲＡＲＥを導入したＢＬ２１（ＤＥ３）／ｐＰＡＲＥ株（ｄ）、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（ｃ）、及びＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＡＣＹＣ株（ｂ）にｐＴＵＢを導入して同様の条件下で発現実験を行った。各菌体培養液のＯＤ６００値を２．０に調整した後、これをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって各バンドを数値化して発現レベルを定量し、各発現実験におけるチューブリン蛋白質の発現レベルを比較した。チューブリンの発現は抗チューブリンポリクローナル抗体を用いるウエスタンブロッティングによって確認した。結果を表２に示す。
【００８５】
【表２】
2005046066.tif 000003
【００８６】
表２に示されるように、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株でチューブリン蛋白質の最も高い発現量が得られた。以上のことから、ｍＲＮＡ分解の抑制とｔＲＮＡの補充の両遺伝的形質がチューブリン蛋白質の発現にも有効であることが明らかとなった。
【００８７】
〔実施例４〕古細菌シャペロニンサブユニット４回連結体の発現
配列番号３に記載にされた古細菌Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．ＫＳ−１株由来シャペロニンαサブユニット遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ  Ｎｏ．ＡＢ００１０８０）の４回連結体をｐＥＴ２１（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入し、発現ベクターｐＴＣＰ４を得た。このｐＴＣＰ４を用いて実施例１で調製されたＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株を形質転換し、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて選択することにより形質転換体ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＣＰ４株（ａ）を得た。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＣＰ４株を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ  ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で３時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＢＬ２１（ＤＥ３）株にｐＲＡＲＥを導入したＢＬ２１（ＤＥ３）／ｐＰＡＲＥ株（ｄ）、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（ｃ）、及びＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＡＣＹＣ株（ｂ）にｐＴＣＰ４を導入して同様の条件下で発現実験を行った。各菌体培養液のＯＤ６００値を１．０に調整した後、これをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって各バンドを数値化して発現レベルを定量し、各発現実験におけるシャペロニン４回連結体の発現レベルを比較した。結果を表３に示す。
【００８８】
【表３】
2005046066.tif 000004
【００８９】
表３に示されるように、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株で最も高い発現量が得られた。以上のことから、ｍＲＮＡ分解の抑制とｔＲＮＡの補充の両遺伝的形質が古細菌由来の巨大蛋白質（約２４０ｋＤａ）の発現にも有効であることが明らかとなった。
【００９０】
〔実施例５〕古細菌シャペロニンβサブユニット８量体の発現
配列番号４に記載にされた古細菌Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．ＫＳ−１株由来シャペロニンβサブユニット遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ  Ｎｏ．ＡＢ００１０８１）の８回連結体をｐＥＴ２１（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入し、発現ベクターｐＴＣＰ８を得た。このｐＴＣＰ８を用いて実施例１で調製されたＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株を形質転換し、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて選択することにより形質転換体ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＣＰ８株（ａ）を得た。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＴＣＰ８株を、アンピシリン１００μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール３４μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ  ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で３時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＢＬ２１（ＤＥ３）株にｐＲＡＲＥを導入したＢＬ２１（ＤＥ３）／ｐＰＡＲＥ株（ｄ）、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）株（ｃ）、及びＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＡＣＹＣ株（ｂ）にｐＴＣＰ８を導入して同様の条件下で発現実験を行った。各菌体培養液のＯＤ６００値を２.０に調整した後、これをＳＤＳ−
ＰＡＧＥで分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって各バンドを数値化して発現レベルを定量し、各発現実験におけるシャペロニン８回連結体の発現レベルを比較した。結果を表４に示す。
【００９１】
【表４】
2005046066.tif 000005
【００９２】
表４に示されるように、ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ株で最も高い発現量が得られた。以上のことから、ｍＲＮＡ分解の抑制とｔＲＮＡの補充の両遺伝的形質が
古細菌由来の巨大蛋白質（約４８０ｋＤａ）の発現にも有効であることが明らかとなった。
【００９３】
〔実施例６〕ペプチジルプロリルシストランスイソメラーゼとの共発現によるアクチン蛋白質の発現
配列番号５に記載にされた古細菌Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．ＫＳ−１株由来ＦＫＢＰ型ＰＰＩａｓｅ（ＴｃＦＫ）遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ  Ｎｏ．ＡＢ０１２２０９）をｐＥＴ３ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入した後、ＴｃＦＫ遺伝子のＴ７系発現ユニットをＢｇｌＩＩ−ＢａｍＨＩを用いた制限酵素反応によって切り出した。これをｐＳＣ１０１（Ｃｏｈｅｎ，ＳＮ．ｅｔ  ａｌ．，１９７７，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１３２，７３４）の誘導体(複製領域：Ｒ６−５)に挿入し、ｐＲＴＦＫを構築した。このｐＲＴＦＫを実施例１にて作製した大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株に導入し、アクチンとＴｃＦＫの共発現が可能な大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ／ｐＲＴＦＫ株を構築した。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ／ｐＲＴＦＫ株を、アンピシリン（１００μｇ／ｍｌ）、クロラムフェニコール（３４μｇ／ｍｌ）及びカナマイシン（５０μｇ／ｍｌ）を含有するＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ  ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で３時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＴｃＦＫ遺伝子を導入していないＢＬ２１（ＤＥ３）ｓｔａｒ／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株をアンピシリン（１００μｇ／ｍｌ）、及びクロラムフェニコール（３４μｇ／ｍｌ）を含有するＬＢ培地にて同様の条件下で発現実験を行った。各菌体を超音波によって破砕した後、遠心分離によって上清と沈殿に分離し、これらをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって各バンドを数値化して発現レベルを定量した。またアクチン蛋白質の発現は抗アクチンポリクローナル抗体を用いるウエスタンブロッティングによって確認した。アクチンのみの発現では殆ど全てが沈殿画分に存在し、上清には殆ど検出されなかった（コントロール）が、ＴｃＦＫとの共発現によって細胞質可溶性全蛋白質の約１２％にアクチンが発現していることがわかった。以上のことからＴｃＦＫのシャペロン活性によってアクチン蛋白質が大腸菌細胞質可溶性画分に発現したと考えられる。
【００９４】
〔実施例７〕大腸菌シャペロニンＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳとの共発現によるアクチン蛋白質の発現
配列番号６に示された大腸菌ＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳオペロン遺伝子（ＧｅｎＢａｎｋ
Ｎｏ．Ｘ０７８５０）をｐＥＴ２１ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ社）に挿入した後、ＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳ遺伝子のＴ７系発現ユニットをＢｇｌＩＩ−ＮｏｔＩを用いた制限酵素反応によって切り出した。これをｐＳＣ１０１の誘導体に導入し、ｐＲＴＧＲＯを構築した。ｐＲＴＧＲＯを実施例１にて作製した大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ  （ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株に導入し、アクチンとＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳの共発現が可能な大腸菌ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ／ｐＲＴＧＲＯ株を構築した。ＢＬ２１  ｓｔａｒ（ＤＥ３）／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ／ｐＲＴＧＲＯ株を、アンピシリン（１００μｇ／ｍｌ）、クロラムフェニコール（３４μｇ／ｍｌ）及びカナマイシン（５０μｇ／ｍｌ）を含有するＬＢ培地にて３７℃でＯＤ６００値が１．５となるまで培養し、１ｍＭ  ＩＰＴＧを添加して発現を誘導しさらに３７℃で４時間培養した後、菌体を遠心分離によって回収した。コントロール発現実験として、ＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳ遺伝子を導入していないＢＬ２１（ＤＥ３）ｓｔａｒ／ｐＲＡＲＥ／ｐＡＣＴ株を、アンピシリン（１００μｇ／ｍｌ）及びクロラムフェニコール（３４μｇ／ｍｌ）を含有するＬＢ培地にて同様の条件下で発現実験を行った。菌体を超音波によって破砕した後、遠心分離によって上清と沈殿に分離し、これらをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥデータからＥＤＡＳ２００電気泳動解析システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって
各バンドを数値化して発現レベルを定量した。またアクチン蛋白質の発現は抗アクチンポリクローナル抗体を用いるウエスタンブロッティングによって確認した。アクチンのみの発現では殆ど全てが沈殿画分に存在し、上清には殆ど検出されなかった（コントロール）が、ＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳとの共発現によって細胞質可溶性全蛋白質の約１１％にアクチンが発現していることがわかった。以上のことから、ＧｒｏＥＬ／ＧｒｏＥＳのシャペロン活性によってアクチン蛋白質が大腸菌細胞質可溶性画分に発現したと考えられる。
【産業上の利用可能性】
【００９５】
本発明により、ｍＲＮＡの分解が抑制され、かつｔＲＮＡ含有量が増加されており、また場合によっては分子シャペロンを含むバクテリアが提供される。このバクテリアは、所望の蛋白質又はペプチドを、正確な配列及び折りたたみを保ち、かつ高効率に生産するために有用である。
【配列表】
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