(57)【要約】【課題】  副作用がなく、より優れた免疫賦活能を有する免疫賦活剤を提供する。【解決手段】  アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られるβ−１，３−１，６−グルカンを含む培養物と、乳酸菌菌体とを有効成分として免疫賦活剤に含有させる。前記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌は、アウレオバシジウム プルランス M-1（Aureobasidium pullulans M-1）（FERM P-19213）であることが好ましい。前記乳酸菌はエンテロコッカス・フェカリス（Enterococcusfaecalis）であることがこのましく、加熱殺菌されたものであることが好ましい。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られるβ−１，３−１，６−グルカンを含む培養物と、乳酸菌菌体とを有効成分として含有することを特徴とする免疫賦活剤。
【請求項２】
前記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌は、アウレオバシジウム プルランス M-1（Aureobasidium pullulans M-1）（FERM P-19213）である、請求項１に記載の免疫賦活剤。
【請求項３】
固形分中に、前記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で５〜８０質量％含有し、かつ前記乳酸菌菌体を１０〜８０質量％含有する、請求項１又は２に記載の免疫賦活剤。
【請求項４】
前記培養物は、固形分濃度が０．５〜５質量％であり、かつ、固形分中にβ−１，３−１，６−グルカンを１０質量％以上含むものである、請求項１〜３のいずれか一つに記載の免疫賦活剤。
【請求項５】
前記乳酸菌はエンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）である、請求項１〜４のいずれか一つに記載の免疫賦活剤。
【請求項６】
前記乳酸菌は加熱殺菌されたものである、請求項１〜５のいずれか一つに記載の免疫賦活剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、経口摂取することにより、免疫機能を向上させることができる免疫賦活剤に関し、詳しくは、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られる培養物と、乳酸菌菌体とを有効成分として含有する免疫賦活剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体の免疫系は、外界からの細菌やウイルス等の微生物による感染や、生体内で発生する腫瘍等に対する防御機構として重要な役割を果している。免疫機能の低下は様々な疾病を誘発することから、疾患の予防や健康維持等の点からも免疫機能の向上を図ることは重要であると考えられる。
【０００３】
従来より、免疫機能を向上させる作用、すなわち免疫賦活能を有する素材として、例えば、β−グルカンや乳酸菌等が知られており、これらを有効成分として含む免疫賦活剤や健康食品等の開発が積極的に行われている。
【０００４】
例えば、β−グルカンを利用した免疫賦活剤として、下記特許文献１には、オウレオバシジウム プルランス（Aureobasidium pullulans）IFO4466菌株の培養上清から得られる、β−１，３結合グルコース残基を主鎖として、これにβ−１，６結合グルコース残基の分岐鎖を多数側鎖として有する数分子量１万〜５００万の高分岐度β−グルカンが、経口的に高い抗腫瘍活性及び免疫賦活活性を有し、医薬、食品添加物、飼料添加物等として有用である旨が記載されている。
【０００５】
また、下記特許文献２には、β−１，３−１，６グルカンを主成分とするアウレオバシジウム培養液が、各種疾病に対する医薬品として応用できる旨が記載されている。
【０００６】
一方、乳酸菌を利用した免疫賦活剤として、例えば、下記特許文献３には、Enterococcus faecalis AD101菌株の死菌体を主成分とする免疫調整剤が開示されている。
【０００７】
また、下記特許文献４には、エンテロコッカス属に属する乳酸菌および麹菌を液体培養によって培養された菌体を有効成分とすることを特徴とする免疫賦活素材が開示されている。
【０００８】
更に、β−グルカンと乳酸菌を併用したものとして、例えば、下記特許文献５には、β−グルカンを含有する素材と、乳酸産生菌の加熱処理菌体とを有効成分として含有することを特徴とする感染抑制組成物が開示されている。
【０００９】
また、下記特許文献６には、体内におけるＴＮＦをはじめとするサイトカインの産生を促進し、その作用を増強させ、抗体産生能或いは免疫作用全体を増強することによって各種感染症や腫瘍発生の予防に役立つ、低分子量の水溶性β−グルカンが開示されており、このβ−グルカンと乳酸菌を併用することが記載されている。
【特許文献１】特開平６−３４０７０１号公報
【特許文献２】特開２００２−２０４６８７号公報
【特許文献３】特開２００１−４８７９６号公報
【特許文献４】特開２００３−１１３１１４号公報
【特許文献５】特開２００３−４０７８５号公報
【特許文献６】特開２００１−３２３００１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
しかしながら、上記のような従来の免疫賦活剤は、副作用が少ないものの、その有効性において満足しうるものは少なかった。
【００１１】
したがって、本発明の目的は、副作用がなく、より優れた免疫賦活能を有する免疫賦活剤を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
上記目的を達成するため、本発明の免疫賦活剤は、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られるβ−１，３−１，６−グルカンを含む培養物と、乳酸菌菌体とを有効成分として含有することを特徴とする。
【００１３】
本発明の免疫賦活剤は、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られるβ−１，３−１，６−グルカンを含む培養物と、乳酸菌菌体とを含有することにより、これらの成分の相乗効果により、優れた免疫賦活効果が得られる。なお、β―１，３−１，６−グルカンは、小腸の腸管免疫を活性化し、乳酸菌菌体は、マクロファージ、T細胞及びB細胞の活性化を促進し、これらの作用によって相乗的な免疫賦活効果がもたらされるものと考えられる。
【００１４】
本発明の免疫賦活剤においては、前記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌は、アウレオバシジウム プルランス M-1（Aureobasidium pullulans M-1）（FERM P-19213）であることが好ましい。この態様によれば、より生理活性の高いβ−１，３−１，６−グルカンを得ることができる。
【００１５】
また、固形分中に、前記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で５〜８０質量％含有し、かつ前記乳酸菌菌体を１０〜８０質量％含有することが好ましい。
【００１６】
更に、前記培養物は、固形分濃度が０．５〜５質量％であり、かつ、固形分中にβ−１，３−１，６−グルカンを１０質量％以上含むものであることが好ましい。
【００１７】
更にまた、前記乳酸菌はエンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）であることが好ましい。
【００１８】
これらの態様によれば、β−１，３−１，６−グルカンと乳酸菌菌体による相乗的な免疫賦活効果をより期待できる。
【００１９】
更にまた、前記乳酸菌は加熱殺菌されたものであることが好ましい。この態様によれば、加熱処理が必要な飲食品にも幅広く添加することができ、また、保存安定性が高く、飲食品や医薬品の原料として用いる場合の安全性も非常に高い免疫賦活剤を提供できる。
【発明の効果】
【００２０】
本発明の免疫賦活剤は、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られるβ−１，３−１，６−グルカンを含む培養物と、乳酸菌菌体とを含有することにより、これらの成分の相乗効果により、優れた免疫賦活効果が得られる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２１】
本発明において、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌を培養して得られる培養物（以下、単に培養物という。）としては、アウレオバシジウム属（Aureobasidiumsp.）に属し、β−１，３−１，６−グルカン生産能を有する菌を培養した培養液そのもの、該培養液の濃縮液、あるいは該培養液から水分を除いた固形物等を用いることができるが、好ましくは培養液そのもの又は該培養液の濃縮液が用いられ、その場合、固形分濃度が０．５〜５質量％であることが好ましく、１〜３質量％であることがより好ましい。
【００２２】
上記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌としては、例えば、特開昭５７−１４９３０１号公報、特公平５−４０６３号公報、特開２００２−３３５９２６号公報等に記載された菌株を用いることができるが、本発明においては、アウレオバシジウム プルランス M-1（Aureobasidium pullulans M-1、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター寄託番号FERM P-19213）が好適に用いられる。なお、本発明において、β−１，３−１，６−グルカンとは、グルコースがβ−１，３結合した主鎖からβ−１，６結合でグルコースが分岐した構造を有するものを意味する。
【００２３】
上記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌の培養は、公知の方法（特開昭５７−１４９３０１号公報等参照）に準じて行うことができる。すなわち、炭素源（ショ糖）０．５〜５．０質量％、Ｎ源０．１質量％、その他微量物質（例えば、ビタミン類、無機質）を加えた培地（ｐＨ５．２〜６．０）に菌を接種し、温度２０〜３０℃で２〜１４日間通気培養、好ましくは通気撹拌培養すればよい。β−１，３−１，６−グルカンが生成されるにしたがって培養液の粘度が上昇し、粘性の高いジェル状になる。このようにして得られる培養液には、通常、０．６〜１．８質量％の固形分が含まれており、該固形分中にはβ−１，３−１，６−グルカンが５〜８０質量％含まれている。また、β−１，３−１，６−グルカン以外にも、例えば、該グルカンの作用を助ける成分であるリン、カリウム、マグネシウム、ビタミンＣ等の他の有用成分も含まれているので、β−１，３−１，６−グルカンの有する生理活性効果を効率よく発揮できる。
【００２４】
本発明においては、固形分中にβ−１，３−１，６−グルカンを１０質量％以上含む培養物が好ましく用いられ、固形分中にβ−１，３−１，６−グルカンを２０質量％以上含む培養物がより好ましく用いられる。培養物中のβ−１，３−１，６−グルカン濃度が低すぎると、該グルカンの生理活性効果が十分に期待できない。
【００２５】
なお、β−１，３−１，６−グルカンの定量は、例えば次のような方法で行うことができる。すなわち、培養液にアミラーゼ、アミログルコシダーゼ、プロテアーゼ等を用いて酵素処理を施し、蛋白質や、プルラン等のα−グルカンを除き、エタノール沈殿を行う。更に、ガラスフィルターでろ過し、高分子試料を得る。このとき、単糖を含む低分子物質を除くため、８０％エタノールで充分に洗浄する。洗浄した高分子試料はアセトンで更に洗浄し、硫酸を加え、加水分解を行う。加水分解後、中和し、そのろ液を採取して、グルコースオキシダーゼ法によりブドウ糖を定量し、下記数式１に基づいて計算した値をグルカン量とする。
数式１：β−グルカン（ｇ／１００ｇ）＝ブドウ糖（ｇ／１００ｇ）×０．９
【００２６】
また、β−１，３−１，６−グルカンの定量は、特公平３−４８２０１号公報に記載された方法に準じて行うこともできる。すなわち、培養終了後、培養液を殺菌して、遠心分離して菌体を除去し、得られた溶液にクロロホルム／ブタノール混合液を１０％（ｖ／ｖ）加えて振とう（Sevage法）した後、遠心処理してクロロホルムと不溶物を除去する。この操作を２回繰り返した後、エタノール沈殿により、沈殿物を回収して蒸留水に溶解し、酵素処理により、プルランを分解し、蒸留水中で透析を行い、透析液をエタノール沈殿して、沈殿物（β−１，３−１，６−グルカン）を回収して収量を求めればよい。
【００２７】
本発明においては、上記のようにして得られる培養液をそのまま加熱又は加圧加熱殺菌して用いてもよく、遠心分離等により菌体を分離除去した後殺菌して用いてもよい。また、必要に応じて濃縮したもの、更には乾燥したものを用いることもできる。なお、アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌の培養物は、増粘安定剤等の食品添加物として使用されているものであり安全性は高い。
【００２８】
一方、本発明で用いられる乳酸菌としては、食品に使用可能な乳酸菌であれば特に制限なく用いることができ、具体的には、エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）、エンテロコッカス・フェシウム（Enterococcusfaecium）、ラクトバチルス・アシドフィルス（Lactobacillus acidophilus）、ラクトバチルス・カゼイ（Lactobacilluscasei）、ストレプトコッカス・クレモリス（Streptococcus cremoris）、ストレプトコッカス・ラクティス（Streptococcuslactis）、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）、ビフィドバクテリウム・ロンガム（BifidobacteriumLongum）、ビフィドバクテリウム・ブレーベ（Bifidobacterium breve）、ビフィドバクテリウム・ビフィダム（Bifidobacteriumbifidum）等が例示できる。上記乳酸菌は単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。
【００２９】
なお、エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）、エンテロコッカス・フェシウム（Enterococcus faecium）は乳酸菌製剤等に用いられている乳酸菌であり、ラクトバチルス・カゼイ（Lactobacilluscasei）、ラクトバチルス・アシドフィルス（Lactobacillus acidophilus）は、チーズ、発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料等に用いられている乳酸菌であり、ストレプトコッカス・クレモリス（Streptococcuscremoris）、ストレプトコッカス・ラクティス（Streptococcus lactis）、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Streptococcusthermophilus）は、チーズ、ヨーグルト等に用いられている乳酸菌であり、ビフィドバクテリウム・ロンガム（BifidobacteriumLongum）、ビフィドバクテリウム・ブレーベ（Bifidobacterium breve）、ビフィドバクテリウム・ビフィダム（Bifidobacteriumbifidum）は発酵乳等に用いられている乳酸菌である。したがって、これらの乳酸菌は、いずれも当業者が容易に入手できるものである。
【００３０】
本発明においては、上記の乳酸菌の中でも、エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）が特に好ましく用いられる。エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）は、強い免疫賦活活性を有していることが知られており、上記培養物と併用することにより、β−１，３−１，６−グルカンとの相乗的な免疫賦活効果が期待できる。
【００３１】
本発明において、上記乳酸菌は加熱殺菌されたものであることが好ましい。これにより、加熱処理が必要な飲食品にも幅広く添加することができ、また、保存安定性が高く、飲食品や医薬品の原料として用いる場合の安全性も非常に高くなる。
【００３２】
上記乳酸菌の培養は常法にしたがって行えばよく、例えば、上記乳酸菌を常法にしたがって培養して得られた培養物から、濾過、遠心分離等の方法により菌体を回収し、水洗後、水等に懸濁して８０〜１１５℃、３０分〜３秒間加熱処理すればよい。加熱殺菌した乳酸菌は、必要に応じて濃縮、乾燥してから用いてもよい。
【００３３】
本発明の免疫賦活剤は、例えば、上記アウレオバシジウム属（Aureobasidium sp.）に属する菌の培養液を殺菌したものに、上記乳酸菌の加熱殺菌菌体を混合して分散させることにより得ることができる。また、必要に応じて、錠剤、カプセル剤、粉末、顆粒、液状、ペースト状、ゼリー状等の各種形態とすることもできる。
【００３４】
本発明の免疫賦活剤は、固形分中に、上記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で５〜８０質量％含有し、かつ上記乳酸菌菌体を１０〜８０質量％含有することが好ましく、更には上記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で２５〜７０質量％含有し、かつ上記乳酸菌菌体を２０〜７０質量％含有することがより好ましく、上記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で３０〜６０質量％含有し、かつ上記乳酸菌菌体を３０〜６０質量％含有することが最も好ましい。また、上記基本的成分以外に、香料、甘味料、ビタミン類、ミネラル類、オリゴ糖、増粘多糖類、デキストリン、植物エキス、その他の植物成分等を適宜含むことができる。
【００３５】
本発明の免疫賦活剤の有効摂取量は、成人１日当たり、上記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で０．０２〜０．５０ｇ、かつ上記乳酸菌菌体を０．１０〜０．９０ｇであり、好ましくは、上記培養物をβ−１，３−１，６−グルカン換算で０．０６〜０．４０ｇ、かつ上記乳酸菌菌体を０．１５〜０．４５ｇである。
【００３６】
また、本発明の免疫賦活剤は、例えば、清涼飲料、ゼリー飲料、果汁飲料、野菜ジュース、スープ、味噌汁、冷凍食品、その他の加工食品等の各種飲食品に配合することもできる。上記各飲食品における本免疫賦活剤の添加量は、上記の成人１日当たりの有効摂取量に基づいて設定すればよいが、通常、β−１，３−１，６グルカン換算で０．０２〜０．５０質量％が好ましく、０．０６〜０．４０質量％がより好ましい。また、乳酸菌菌体に関しては、０．１０〜０．９０質量％が好ましく、０．１５〜０．４５質量％がより好ましい。なお、添加方法は特に制限はなく、各飲食品に用いられる他の原料と一緒に最初から添加することもできる。
【実施例１】
【００３７】
（１）アウレオバシジウムの培養
アウレオバシジウム プルランス M-1（Aureobasidium pullulans M-1）（FERM P-19213）の前培養液を、ショ糖１％、アスコルビン酸０．２％、米糠０．２％を含む液体培地（ｐＨ５．３）に適量接種して、２５℃、２日間、通気撹拌培養を行った。培養終了後、この培養液を１２１℃、１５分間殺菌した。この培養液は固形分１質量％であり、該固形分中に３５質量％のβ−１，３−１，６−グルカンを含んでいた。
【００３８】
（２）エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）の培養
エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis、IFO 16803）を、ロゴサ培地で３７℃、２４時間培養した前培養液を、酵母エキス４％、ポリペプトン３％、乳糖１０％を含む液体培地に適量接種し、ｐＨスタットを用いてｐＨ６．８〜７．０に苛性ソーダ水溶液で調整しながら３７℃、２２〜２４時間中和培養を行った。
【００３９】
培養終了後、連続遠心機で菌体を分離、回収した後、水を加えて元の液量まで希釈して再度連続遠心機で菌体を分離、回収した。この操作を合計４回繰り返して菌体を洗浄した。次いで、洗浄した菌体を適量の水に懸濁し、１００℃、３０分間殺菌した後、スプレードライヤーを用いて菌体を乾燥して加熱殺菌菌体粉末（５×１０１２ｃｆｕ／ｇ）を調製した。
【００４０】
（３）免疫賦活剤の調製
上記（１）で得られたアウレオバシジウム培養物１Ｌに、上記（２）で得られた乳酸菌の加熱殺菌菌体１０ｇを加えて、均一に混合して免疫賦活剤を得た。
【実施例２】
【００４１】
実施例１で得られた免疫賦活剤を用いて、以下の方法により、初期感染防御効果について調べた。
【００４２】
（１）生存率の測定
１週間予備飼育を行ったBALB/cマウス（７週齢、雌）２８匹（日本エスエルシー（株）より購入）を４群（各群７匹）に分け、各群に下記の被験物質をマウス１匹当り２００μｌずつ、１日１回試験期間中連続経口投与した。
【００４３】
試験群：上記免疫賦活剤
比較群１：アウレオバシジウム培養液（実施例１（１）で得られたもの）
比較群２：乳酸菌の加熱殺菌菌体（実施例１（２）で得られたもの）をPBSに懸濁したもの（１ｇ菌体／１００ｍｌ）
対照群：ＰＢＳ
上記各被験物質を１週間連続経口投与した各群のマウスの尾静脈内に、細胞内寄生性細菌であるリステリア菌（Listeria monocytogenes、ＥＧＤ株）を５．４×１０４ｃｆｕ／２００μｌ／マウス（２×ＬＤ５０）となるように接種し、その後２週間経過観察を行い、各群のマウスの生存率及び平均生存期間を求めた。
【００４４】
その結果を表１及び図１〜３に示す。なお、試験期間中、水及び飼料（商品名「粉末飼料ＣＲＦ−１」、オリエンタル酵母株式会社製）は自由摂取とした。
【００４５】
【表１】
2005220065.tif 000002
【００４６】
表１及び図１〜３から分かるように、試験群においては、１例が死亡（菌接種後６日目）したのみであり、試験終了時の生存率は８５．７％であったが、対照群においては、全例が死亡（細菌接種４日目）し、試験終了時の生存率は０％であった。また、比較群１においては、２例が死亡（菌接種６日目に１例、７日目に１例）し、試験終了時の生存率は７１．４％であった。また、比較群２においては、５例が死亡（菌接種４日目に３例、５日目に２例）し、試験終了時の生存率は２８．６％であった。試験群と他の群間の有意差をMann-WhitneyのU検定を用いて検定したところ、試験群は対照群及び比較群２に対して危険率１％未満で有意差が認められた。
【００４７】
また、平均生存期間に関しては、試験群においては１２．７日であったのに対し、対照群が３．０日、比較群１が１１．５日、比較群２が６．４日であった。試験群と他の群間の有意差をMann-WhitneyのU検定を用いて検定したところ、試験群は対照群及び比較群２に対して危険率１％未満で有意差が認められた。
【００４８】
この結果から、本免疫賦活剤を経口摂取することにより、細菌感染における宿主の感染抵抗性を亢進させることが示唆された。
【００４９】
（２）臓器内菌数測定
上記（１）において、リステリア菌に対する感染抵抗性に本免疫賦活剤が作用をしていることが示唆されたため、菌排除の指標となる臓器内菌数の経時的変化について解析を行った。
【００５０】
１週間予備飼育を行ったBALB/cマウス（７週齢、雌）を１群当り３０匹使用し、上記と同様にして各被験物質を投与した。そして、上記各被験物質を１週間連続経口投与した各群のマウスの尾静脈内に、細胞内寄生性細菌であるリステリア菌（Listeriamonocytogenes、ＥＧＤ株）を２．７×１０３ｃｆｕ／２００μｌ／マウス（１／１０×ＬＤ５０）となるように接種し、細菌接種後１日目、３日目、５日目、７日目及び１０日目に逐日的に５匹ずつ各群のマウスを屠殺し、脾臓を回収した。
【００５１】
回収した脾臓をブレンダーにてすり潰してＰＢＳ ５ｍｌ中に再懸濁し、これを原液とした。この原液を１０倍階段希釈法にて希釈し、原液及び各希釈系列液より１００μｌ取り、ＴＳＡ培地上に塗抹し３７℃孵卵器にて１６時間培養した。ＴＳＡ培地上に発育した細菌集落数を測定し、臓器内菌数を算出した。臓器内菌数は、各群毎に平均値及び標準誤差を算出した。その結果を表２及び図４に示す。
【００５２】
【表２】
2005220065.tif 000003
【００５３】
表２から分かるように、対照群では、細菌接種３日目に脾臓内の細菌数がピークとなり、その後は徐々に減少し菌接種１０日目に検出限界付近（３．７５±７．５ＣＦＵ／脾臓）となった。一方、試験群においては、菌接種後１日目より菌の増加を認めたが、菌接種３日目は１日目とほぼ同等の菌数を示し、その後減少し菌接種１０日目では２７±２５ＣＦＵ／脾臓となった。比較群１及び比較群２では、菌接種後１日目より菌の増加を認め、菌接種３日目に脾臓内細菌数のピークを認め、その後徐々に菌は減少し、菌接種１０日目には検出限界未満（＜３．３３ＣＦＵ／脾臓）となった。
【００５４】
この結果から、本免疫賦活剤は感染早期での免疫機構に作用しており、感染抵抗性の亢進は、成熟Ｔ細胞による攻撃性の強い免疫機構よりも未熟型Ｔ細胞もしくは貪食細胞による非特異的免疫機構により行われている可能性が推測された。
【００５５】
（３）細胞表面分子の解析
上記（１）、（２）において、生存率、生存期間及び臓器内菌数に差異が認められたため、リステリア菌に対する感染抵抗性に関与する生体側の細胞に関してフローサイトメータによる解析を行った。
【００５６】
上記（２）の臓器内菌数測定と同時に腸間膜リンパ節（ＭＬＮ）を回収した。回収したＭＬＮをスライドガラスにてすり潰し、ステンレスメッシュにて余分な組織片を除去した後、リンパ球を１×１０６／ｍｌとなるようにＦＡＣＳ用Ｈａｎｋ’ｓ液に再懸濁した。下記（ａ）〜（ｄ）に示す４種類の染色パターンにてリンパ球を染色し、フローサイトメータ（Epics-XL;Beckman Coulter）を用いて細胞（Ｔ細胞中心）表面分子の解析を行った。その結果を表３及び図５に示す。
（ａ）Cy-chrome(Cy)標識抗CD3mAb（T細胞固有認識マーカー）/FITC標識抗TCRαβmAb（T細胞型別認識マーカー）/PE標識抗CD4mAb/biotin標識抗TCRγδ（T細胞型別認識マーカー）mAb
（ｂ）Cy標識抗CD3mAb/FITC標識抗TCRαβmAb/PE標識抗CD4mAb/biotin標識抗CD69mAb（早期活性化マーカー）
（ｃ）Cy標識抗CD3mAb/FITC標識抗TCRαβmAb/PE標識抗CD4mAb/biotin標識抗CD25mAb（IL-2Rα；活性化マーカー）
（ｄ）Cy標識抗CD3mAb/FITC標識抗TCRαβmAb/PE標識抗CD122mAb（IL-2Rβ；活性化マーカー）/biotin標識抗CD4mAb
【００５７】
【表３】
2005220065.tif 000004
【００５８】
表３及び図５に示されるように、試験群、比較群１、２は、対照群に比べてＣＤ４陽性αβ型Ｔ細胞の増加が認められた。特に、試験群においては、比較群１、２よりも増加の割合が多かった。なお、菌感染３日後においては、いずれの群もほぼ同様の割合を示した。一方、ＣＤ４陽性細胞中の活性化マーカーに関しては、ＣＤ２５分子（ＩＬ−２Ｒα）、ＣＤ１２２分子（ＩＬ−２Ｒβ）及びＣＤ６９分子（早期活性化マーカー）いずれも各群を問わずほぼ同等の発現程度であった。
【００５９】
この結果から、試験群では感染前と感染後もＣＤ４陽性αβ型Ｔ細胞の著しい変化は認められなかったので、本免疫賦活剤による感染抵抗性の亢進は、分化の低い細胞集団の機能亢進によるものと推測された。
【００６０】
なお、血液中のサイトカインに関して、市販のマウスインターフェロン−γ（ＩＦＮ−γ）測定キット（米国  ゲンザイム社製）を用いて測定したところ、表４に示すように、試験群では感染３日目にＩＦＮ−γ量が高値を示した。ＣＤ４陽性αβ型Ｔ細胞の変化は認められなかったことより、ＩＦＮ−γを産生している細胞はマクロファージの可能性が考えられた。
【００６１】
【表４】
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【産業上の利用可能性】
【００６２】
本発明の免疫賦活剤は食品由来の成分を有効成分としているので安全性が高く、医薬品としてだけでなく、健康食品素材としても利用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００６３】
【図１】リステリア菌摂取後の生存率と経過日数との関係を示す図表である。
【図２】リステリア菌摂取後の生存率に及ぼす被験物質の影響を示す図表である。
【図３】リステリア菌摂取後の平均生存日数と被験物質との関係を示す図表である。
【図４】リステリア菌摂取後の脾臓内菌数の経時的変化に及ぼす被験物質の影響を示す図表である。
【図５】リステリア菌摂取後、フローサイトメータを用いて細胞表面分子の解析を行った結果を示す図表である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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