(57)【要約】【課題】  二つの核酸検出用試薬を一回の反応で、正確に核酸に導入可能なヌクレオチド標識試薬の提供。【解決手段】  式（Ｉ）のヌクレオチド標識試薬。【化１】2005073605.tif 000014（Ｒ１、Ｒ２は核酸検出用標識等を表し、Ｒ３はＯＨの保護基を表し、Ｒ４はリン酸の保護基を表し、Ｒ５、Ｒ６はアルキルを表し、Ｚ１、Ｚ２はＣＨまたはＮを表し、Ｌ１〜５は単結合またはアルキレン鎖等のリンカーを表す。）【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
式（Ｉ）で表されるヌクレオチド標識試薬。
【化１】
2005073605.tif 000010
（上記式中、
Ｒ１およびＲ２は、それぞれ異なる核酸検出用標識を表すか、あるいはＲ１およびＲ２のいずれか一方が核酸検出用標識であり、他方がアミノ基の保護基であり、
Ｒ３は水酸基の保護基を表し、
Ｒ４はリン酸基の保護基を表し、
Ｒ５およびＲ６は、同一または異なっていてもよく、Ｃ１−１０アルキル基を表し、
Ｚ１およびＺ２は、同一または異なっていてもよく、ＣＨまたはＮを表し、
Ｌ１、Ｌ２、およびＬ３は、同一または異なっていてもよく、単結合、Ｃ１−２０アルキレン鎖、またはＣ２−２０アルケニレン鎖を表し、アルキレン鎖およびアルケニレン鎖中の１以上の−ＣＨ２−部分は−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
Ｌ４およびＬ５は、同一または異なっていてもよく、単結合、Ｃ１−１０アルキレン鎖、またはＣ２−１０アルケニレン鎖を表し、アルキレン鎖およびアルケニレン鎖中の１以上の−ＣＨ２−部分は−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。）
【請求項２】
Ｒ１およびＲ２のいずれか一方が光エネルギー放出物質であり、他方が光エネルギー吸収物質である、請求項１に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項３】
光エネルギー放出標識物質が、蛍光物質、遅延蛍光物質、および化学発光物質からなる群から選択される、請求項２に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項４】
光エネルギー吸収物質が、インターカレーターまたは二本鎖核酸と特異的に結合する物質である、請求項２に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項５】
インターカレーターが、アクリジン、アントラセン、ピレン、クマリン、およびそれらの誘導体からなる群から選択される、請求項４に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項６】
Ｌ１、Ｌ２、およびＬ３が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜２０の整数を表す）を表し、１〜１０個の−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、Ｌ４およびＬ５が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜１０の整数を表す）を表し、１〜５個の−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい、請求項１〜５のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項７】
Ｌ１、Ｌ２およびＬ３が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜１０の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、Ｌ４およびＬ５が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜６の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい、請求項１〜６のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項８】
式（Ｉ）中、＞Ｚ１−Ｌ１−Ｚ２＜が、
＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；
＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜；
＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−（ＣＯ）ｑ−Ｎ＜；
＞Ｎ−（ＣＯ）ｑ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；または
＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜
（上記式中、ｐは０〜１０を表し、ｑは０または１を表す）
を表す、請求項１〜７のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項９】
Ｒ１およびＲ２が表すことがあるアミノ基の保護基がトリフルオロアセチル基または９−フルオレニルメトキシカルボニル基を表す、請求項１〜８のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項１０】
Ｒ３が、ジメトキシトリチル基またはモノメトキシトリチル基を表す、請求項１〜９のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項１１】
Ｒ４が、β−シアノエチル基またはメチル基を表す、請求項１〜１０のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項１２】
Ｒ５およびＲ６が、同一または異なっていてもよく、イソプロピル基、エチル基、またはメチル基を表す、請求項１〜１１のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項１３】
Ｒ１およびＲ２の一方が光エネルギー放出物質であり、他方が光エネルギー吸収物質であり、
＞Ｚ１−Ｌ１−Ｚ２＜が、＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−（ＣＯ）ｑ−Ｎ＜；＞Ｎ−（ＣＯ）ｑ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；または＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜（上記式中、ｐは０〜１０を表し、ｑは０または１を表す）を表し、
Ｌ２およびＬ３が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜１０の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
Ｌ４およびＬ５が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜６の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい、
請求項１に記載のヌクレオチド標識試薬。
【請求項１４】
請求項１〜１３のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬が導入されてなる、オリゴヌクレオチド誘導体。
【請求項１５】
式（ＩＩ）で表される、請求項１４に記載のオリゴヌクレオチド誘導体。
【化２】
2005073605.tif 000011
（上記式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｚ１、Ｚ２、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、Ｌ４、およびＬ５は、請求項１で定義した内容と同義であり、Ｒ１１およびＲ１２は、同一または異なっていてもよく、水素原子、水酸基の保護基、リン酸基、または保護されたリン酸基を表し、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］は同一または異なっていてもよく任意のオリゴヌクレオチドを表し、但し、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］の塩基数の合計は３〜１００である。）
【請求項１６】
Ｒ１１−［Ｏｌｉｇｏ１］−が、式（ＩＩＩ）：
【化３】
2005073605.tif 000012
（上記式中、Ｂｉはｉ番目（ｉは１〜ａの整数を表す）の塩基を表し、塩基はアデニン、グアニン、シトシン、チミン、およびウラシルからなる群から選択され、Ｑｉはｉ番目（ｉは１〜ａの整数を表す）の置換基を表し、この置換基は水素原子、水酸基、またはＣ１−４アルコキシ基を表し、ａは０〜１００の整数を表す。）
で表され、
−［Ｏｌｉｇｏ２］−Ｒ１２が、式（ＩＶ）：
【化４】
2005073605.tif 000013
（上記式中、Ｂｊはｊ番目（ｊは１〜ｂの整数を表す）の塩基を表し、塩基はアデニン、グアニン、シトシン、チミン、およびウラシルからなる群から選択され、Ｑｊはｊ番目（ｊは１〜ｂの整数を表す）の置換基を表し、この置換基は水素原子、水酸基、またはＣ１−４アルコキシ基を表し、ｂは０〜１００の整数を表す。）
で表される、請求項１５に記載のオリゴヌクレオチド誘導体。
【請求項１７】
ホスホアミダイト法によるオリゴヌクレオチド合成において、請求項１〜１３のいずれか一項に記載のヌクレオチド標識試薬を、核酸アミダイト試薬に代えて使用する工程を含んでなる、請求項１４、１５、または１６に記載のオリゴヌクレオチド誘導体の製造法。
【発明の詳細な説明】
【発明の背景】
【０００１】
発明の分野
本発明はヌクレオチド標識試薬およびそれを用いて合成されたオリゴヌクレオチド誘導体に関する。
【０００２】
背景技術
ヒトゲノムプロジェクトの成功によりヒト遺伝子における微細な違いである１塩基多型（ＳＮＰ）の検出は医療の現場においてますます重要な意味をもつようになってきた。いわゆるシークエンシング法では、ある核酸配列の塩基を連続的に決めて行くわけであるが、ＳＮＰ検出においてはその配列上にある特定の位置の塩基が何であるのかをピンポイント的に決める必要があり、シークエンシング法とはおのずと異なった方法が用いられる。
【０００３】
ＳＮＰ検出は大きく４つの方法に分けることができる。一つ目は天然に存在する酵素の塩基認識能を利用するもので、その精度は一般的に高い。代表的な方法としてはＲＦＬＰ法と呼ばれるもので、制限酵素の認識部位を利用し、１塩基の違いにより切断される場合とされない場合とで１塩基の違いを検出するものである。この方法では検出しようとするＳＮＰ部分に制限酵素の認識部位があることが必要である。また、鋳型に対してプライマーの１塩基伸長を行なって鋳型の特定の塩基を決定する方法があり、その１塩基伸長を各種の技術を用いて検出する方法が開発されている。さらに、フラップエンドヌクレアーゼの活性を利用し、鋳型に結合したプローブが鋳型に対して完全に相補的な場合のみ切断されることを利用する方法もある。また、ＤＮＡリガーゼの結合反応の特異性を利用する方法もある。
【０００４】
二つ目はいわゆるＤＮＡハイブリダイゼーション法と呼ばれる方法で、検出しようとするターゲットに対して相補的なオリゴヌクレオチドが完全にマッチしている場合が、１塩基ミスマッチがある場合より熱的により安定であることを利用する方法である。従来は担体上に固定しておいたターゲットに対してオリゴヌクレオチドプローブをハイブリダイゼーションさせ、ある条件で洗浄すると完全にマッチしているプローブが１塩基ミスマッチしているプローブより安定に担体上に保持されて残っており、それをオリゴヌクレオチドに導入しておいた標識を用いて検出する方法が用いられていた。最近では、検出をより簡便にするために溶液中でのハイブリダイゼーションを検出する方法が考案され、その代表的なものがＴａｑＭａｎ法である。ＴａｑＭａｎ法ではＦＲＥＴ（蛍光共鳴エネルギー移動）を利用し、プローブが切断されると蛍光を発するように設計されたものである。この場合も、このＴａｑＭａｎプローブをＰＣＲ反応液中に添加しておき、増幅されたターゲットに対してＴａｑＭａｎプローブがハイブリダイズするとＤＮＡポリメラーゼ反応と共同してＴａｑＭａｎプローブが切断されるため、蛍光を発するものである。この場合も、増幅されたターゲットに対してＴａｑＭａｎプローブがマッチしている場合、１塩基ミスマッチがある場合より安定となり、プローブが切断されやすくなる。そのため、マッチしている場合がより強い蛍光シグナルを得られることになる。また、ＰＣＲで．増幅されたターゲットと蛍光標識プローブのハイブリダイゼーションを溶液中で測定してマッチとミスマッチの安定性の差を検出する各種の方法が開発されている。
【０００５】
さらに、３番目の方法としては１塩基の違いによるＤＮＡの構造変化を検出する方法で、代表的な方法としてＰＣＲ−ＳＳＣＰ法がある。
【０００６】
最後に４番目の方法として化学的にミスマッチ構造を認識する方法が考案されている。たとえば、２本鎖ＤＮＡ中の電荷移動がマッチとミスマッチで差があることを利用した方法がある（Boom, E.M. et. al.  Nat. Biotechnol. 18, 1096-1100(2000)（非特許文献１））。また、ミスマッチに特異的に結合する低分子化合物を見出し、それを利用した検出法がある（Nakatani, K. et. al. Nat. Biotechnol. 19, 51-55 (2001)（非特許文献２））。さらにはマッチとミスマッチの構造変化により蛍光エネルギー移動が変化することを利用したプローブ法も開発されている（Yamane Nucleic Acids Res. 30, e97 (2002)（非特許文献３））。
【０００７】
上記４種類の原理に基づく１塩基識別法はそれぞれ長所短所があり、現在も改良が続けられているが、４番目の方法は酵素必要とせず、ハイブリダイゼーション法のように微妙な熱安定性の差を利用する必要がないため、原理的には最も有望な方法と考えられる。この４番目の方法の一つであるマジプローブ法はオリゴヌクレオチドプローブに蛍光物質とインターカレーターを導入したもので、プローブが１本鎖の時は蛍光物質を励起してもその蛍光はすぐ近傍にあるインターカレーターにより消光を受け発光することができない。しかしながら、ターゲットと２本鎖を形成するとインターカレーターは２本鎖の中にインターカレーションして蛍光を消光することができなくなり、従って発光することになる（ＷＯ０１／２２０８９号公報（特許文献１））。一方、マジプローブのインターカレーターのすぐ近傍にミスマッチが存在する場合、インターカレーターはマジプローブとターゲットとの２本鎖にインターカレーションできなくなり、依然として蛍光を消光することができる。従って、２本鎖にミスマッチがあるとマッチに比較して蛍光が弱くなる（Yamane Nucleic Acids Res. 30, e97 (2002) （非特許文献３））。
【０００８】
このような緻密なプローブにおいては蛍光物質やインターカレーターをどの位置に導入するかがひじょうに重要になってくる。従来の方法では蛍光物質とインターカレーターを別々のアミダイト誘導体としたものを利用してオリゴヌクレオチドに導入しているが、そのような方法ではフルオレセインとインターカレーターを適切な位置関係に配置することが容易でない。また、二つのアミダイト試薬を調製するための煩雑さや、合成収率の低下なども問題であった（Yamane Nucleic Acids Res. 30, e97 (2002) （非特許文献３））。
【０００９】
オリゴヌクレオチド合成において非核酸ヌクレオチドによる標識物質の導入は種々の方法があるが（Eckstein, F. Oligonucleotides and Analogues IRL Press (1991) （非特許文献４）, Rosemeyer,H. et. al. Perspectives in Nucleoside and Nucleic Acid Chemistry WILEY-VCH (2000) （非特許文献５））、ほとんどの場合、一種類ずつ標識物質を導入しなくてはならず、複数の標識を一つの非核酸ヌクレオチドで導入することはできなかった。唯一、二つの標識を導入するアミダイト試薬が合成されているが、同じ標識物質が導入されており、二つの異なる標識物質を導入することはいまだ達成されていない（Bioconjugate Chem.,Vol. 13, No.6, 2002, 1266-1273（非特許文献６））。
【特許文献１】ＷＯ０１／２２０８９号公報
【非特許文献１】Boom, E.M. et. al.  Nat. Biotechnol. 18, 1096-1100(2000)
【非特許文献２】Nakatani, K. et. al. Nat. Biotechnol. 19, 51-55 (2001)
【非特許文献３】Yamane Nucleic Acids Res. 30, e97 (2002)
【非特許文献４】Eckstein, F. Oligonucleotides and Analogues IRL Press (1991)
【非特許文献５】Rosemeyer,H. et. al. Perspectives in Nucleoside and Nucleic Acid Chemistry WILEY-VCH (2000)
【非特許文献６】Bioconjugate Chem.,Vol. 13, No.6, 2002, 1266-1273
【発明の概要】
【００１０】
本発明は、二つの核酸検出用試薬を一回の反応で、正確に核酸に導入可能なヌクレオチド標識試薬の提供をその目的とする。
【００１１】
本発明はまた、二つの核酸検出用試薬が導入されたオリゴヌクレオチド誘導体の提供をその目的とする。
【００１２】
本発明によれば、式（Ｉ）で表されるヌクレオチド標識試薬が提供される。
【化１】
2005073605.tif 000002
（上記式中、
Ｒ１およびＲ２は、それぞれ異なる核酸検出用標識を表すか、あるいはＲ１およびＲ２のいずれか一方が核酸検出用標識であり、他方がアミノ基の保護基であり、
Ｒ３は水酸基の保護基を表し、
Ｒ４はリン酸基の保護基を表し、
Ｒ５およびＲ６は、同一または異なっていてもよく、Ｃ１−１０アルキル基を表し、
Ｚ１およびＺ２は、同一または異なっていてもよく、ＣＨまたはＮを表し、
Ｌ１、Ｌ２、およびＬ３は、同一または異なっていてもよく、単結合、Ｃ１−２０アルキレン鎖、またはＣ２−２０アルケニレン鎖を表し、アルキレン鎖およびアルケニレン鎖中の１以上の−ＣＨ２−部分は−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
Ｌ４およびＬ５は、同一または異なっていてもよく、単結合、Ｃ１−１０アルキレン鎖、またはＣ２−１０アルケニレン鎖を表し、アルキレン鎖およびアルケニレン鎖中の１以上の−ＣＨ２−部分は−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。）
【００１３】
本発明によるヌクレオチド標識試薬を用いれば、二つの標識を核酸に１回の反応で、しかも正確に導入できる点で有利である。すなわち、ヌクレオチド標識試薬にあらかじめ二つの異なる標識が導入されているため、オリゴヌクレオチド合成後にあらためて標識する必要がない点で有利である。
【００１４】
本発明によればまた、本発明によるヌクレオチド標識試薬が導入されてなるオリゴヌクレオチド誘導体が提供される。本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体は、式（ＩＩ）で表すことができる。
【化２】
2005073605.tif 000003
（上記式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｚ１、Ｚ２、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、Ｌ４、およびＬ５は、式（Ｉ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１１およびＲ１２は、同一または異なっていてもよく、水素原子、水酸基の保護基、リン酸基、または保護されたリン酸基を表し、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］は同一または異なっていてもよく任意のオリゴヌクレオチドを表し、但し、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］の塩基数の合計は３〜１００である。）
【発明の具体的説明】
【００１５】
本明細書において、「Ｃ１−１０アルキル基」とは、直鎖または分岐鎖の炭素数１〜１０のアルキル基を意味する。
【００１６】
本明細書において、「Ｃ１−４アルコキシ基」とは、直鎖または分岐鎖の炭素数１〜４のアルコキシ基を意味する。
【００１７】
本明細書において、「Ｃ１−２０アルキレン鎖」および「Ｃ１−１０アルキレン鎖」とは、それぞれ、直鎖または分岐鎖の炭素数１〜２０のアルキレン鎖および炭素数１〜１０のアルキレン鎖を意味する。
【００１８】
本明細書において、「Ｃ２−２０アルケニレン鎖」および「Ｃ２−１０アルケニレン鎖」とは、それぞれ、直鎖または分岐鎖の炭素数２〜２０のアルケニレン鎖および炭素数２〜１０のアルケニレン鎖を意味する。
【００１９】
本明細書において「核酸」および「ヌクレオチド」とは、ＤＮＡ、ＲＮＡのみならず、修飾核酸あるいはＰＮＡ（ペプチド核酸）など核酸と二本鎖を形成できるものも含む意味で用いられる。
【００２０】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｒ１およびＲ２はそれぞれ異なる一組の核酸検出用標識を表すことができ、これらの標識の相互作用を利用することにより標的核酸を検出することができる。
【００２１】
二つの標識の相互作用としては、二つの標識間の光化学的エネルギーや化学的エネルギー等のエネルギーの移動が挙げられる。このような相互作用に関与する標識物質としては、光化学的あるいは化学的にエネルギーを受け取ることにより励起状態となり、その励起状態から元の状態に戻る時にエネルギーを発するものが挙げられる。
【００２２】
二つの標識の相互作用は、上記のようなエネルギーの移動に限定されず、蛍光物質の消光現象で見られるような二つの標識間での相互作用あるいは電子移動によるような相互作用であってもよい。本発明においてエネルギー移動と考えているものについても、具体的なメカニズムが解明されているとはいえず、エネルギー移動以外のメカニズムで蛍光の発光および消光が生じる可能性がある。本発明においては、これらの現象も二つの標識の相互作用に含まれるものとする。
【００２３】
核酸検出用標識の組み合わせとしては、一方が光エネルギー放出物質であり、他方が光エネルギー放出物質から放出された光エネルギーを吸収する光エネルギー吸収物質である組み合わせが挙げられる。
【００２４】
光エネルギー放出物質としては、蛍光物質、遅延蛍光物質、および化学発光物質が挙げられる。蛍光物質としては、フルオレセインおよびその誘導体、ローダミンおよびその誘導体、テキサスレッド、ＢＯＤＩＰＹ色素およびその誘導体、Ｃｙ３およびその誘導体が挙げられる。遅延蛍光物質としては、ランタニド錯体（例えば、ユウロピウム錯体）が挙げられる（Hemmila, I. et. al. Drug Discovery Today 2, 373-381 (1997)）。化学発光物質としては、化学的に励起されるルミノール等が挙げられる。
【００２５】
光エネルギー吸収物質としては、本発明による試薬により標識されたプローブと、相補鎖核酸とのハイブリダイゼーションにより光の吸収が妨げられるものが挙げられ、そのような光吸収性物質としては、二本鎖核酸にインターカレートするもの（インターカレーター）や二本鎖核酸に特異的に結合するものが挙げられる。インターカレーターとしては、ピレン、クマリン、アクリジン、アントラセン、およびそれらの誘導体が挙げられる。二本鎖核酸と特異的に結合する物質としてはHoechst 33258色素やエチジウムブロミドが挙げられる。  光吸収性物質は、標識物質から放出されたエネルギーを吸収する能力があればよく、それ自身吸収したエネルギーを光、例えば蛍光、として放出するものでも熱として放出するものでもいずれのものでもよい。
【００２６】
本発明において用いる光エネルギー放出物質と光エネルギー吸収物質との組合せは、光エネルギー放出物質から光エネルギー吸収物質へのエネルギー転移が起こるもの、あるいは二つの物質間で電子移動があるもの、であれば特に限定されない。例えば、フルオレセインとピレン、フルオレセインとアクリジン、フルオレセインとクマリン、テトラメチルローダミンとピレンの組合せが挙げられる。このような組み合わせを有する本発明によるヌクレオチド標識試薬が導入されたオリゴヌクレオチド誘導体を用いることにより、二本鎖形成の有無を均一な系で検出することができる。具体的には、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体が目的核酸とハイブリッド形成する場合には光エネルギー吸収物質が二本鎖にインターカレートするかあるいは結合することにより光の吸収が妨げられるが、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体が目的核酸とハイブリッド形成しない場合には光エネルギー吸収物質が二本鎖にインターカレートあるいは結合することができず、光の吸収が妨げられない。すなわち、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体を核酸試料と接触させ、ハイブリッド形成を行い、光エネルギー放出物質から放出された光エネルギーが検出される場合には目的核酸が存在すると、光エネルギーが検出されない場合には目的核酸が存在しないと判定することができる。
【００２７】
このような二本鎖形成の有無を検出する場合には、ハイブリッド形成の条件は、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体が標的ヌクレオチド配列にハイブリダイズし、標的ヌクレオチド以外のヌクレオチドにはハイブリダイズしないように設定することができる。そのようなハイブリッド形成条件は、オリゴヌクレオチド誘導体とその相補鎖との二本鎖の融解温度（℃）および溶液の塩濃度等に依存して決定できる。オリゴヌクレオチド誘導体のヌクレオチド配列を選択した後にそれに応じたストリンジェントな条件を設定することは当業者に周知の技術である（例えば、Molecular Cloning 2nd edition, Cold Spring Harbor Laboratory(1989)等）。
【００２８】
更に、本発明によるヌクレオチド標識試薬が導入されたオリゴヌクレオチド誘導体を用いることにより１塩基のミスマッチを正確に検出することができる。具体的には、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体を、一定の条件で試料核酸と接触させると、目的である完全マッチの核酸と１塩基ミスマッチの核酸のいずれともハイブリッド形成する。完全マッチの核酸とハイブリッドを形成した場合、光エネルギー吸収物質が二本鎖にインターカレートするかあるいは結合することにより光の吸収が妨げられる。一方、塩基ミスマッチの核酸とハイブリッド形成した場合、ミスマッチが近傍にある光エネルギー吸収物質は二本鎖にインターカレートあるいは結合することができず、従って、ハイブリッドを形成していないときと同様、光エネルギーを放出する物質からの光の吸収は妨げられない。すなわち、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体は完全マッチの試料核酸および１塩基ミスマッチの試料核酸のいずれともハイブリッドを形成するが、前者の場合のみ光エネルギー放出物質から放出された光エネルギーを検出することができる。このことにより本発明のオリゴヌクレオチド誘導体を用いて１塩基の違いを検出することができる。また、標的ヌクレオチドと標識試薬が導入されたオリゴヌクレオチド誘導体によって形成されたハイブリッド中に１塩基のバルジ構造（塩基対を形成できずに二本鎖からとび出した構造）を含む場合も１塩基ミスマッチの場合と同様に該オリゴヌクレオチドを設計することにより、完全ミスマッチと区別することができる。従って、目的核酸中の１塩基の変異のみならず、１塩基挿入や欠失をも検出することができる。
【００２９】
このような１塩基のミスマッチや１塩基のバルジを検出する場合には、ハイブリッド形成の条件は、完全マッチのハイブリッド形成よりやや緩やかな条件となる温度や塩濃度を設定すればよく、厳密な条件設定を必要としない。
【００３０】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｒ１およびＲ２が表す核酸検出用標識の他の組み合わせとしては、蛍光物質としての６−ＪＯＥ（６−カルボキシ−４’，５’−ジクロロ−２’７’−ジメトキシフルオレセイン）、６−ＴＥＴ（６−カルボキシ−２’，４，７，７’−テトウクロロフルオレセイン）、または６−ＨＥＸ（６−カルボキシ−２’４，４’，５’，７，７’−ヘテロフルオロセイン）と、インターカレーターとしてのピレンまたはクマリンとの組み合わせが挙げられる。
【００３１】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｒ１およびＲ２は、いずれか一方が核酸検出用標識であり、他方がアミノ基の保護基を表すことができる。この場合、標識物質がヌクレオチド標識試薬に導入されていないため、オリゴヌクレオチドを合成した後にアミノ基の保護基を除去し、目的の標識物質を導入することができる。従って、不安定な核酸検出用標識をオリゴヌクレオチドへ導入する際に有利である。
【００３２】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｒ１およびＲ２が表すことがあるアミノ基の保護基は、オリゴヌクレオチド合成の間安定であり、かつ脱保護する際にオリゴヌクレオチドが分解されず脱保護できるものであれば特に限定されない。このようなアミノ基の保護基は、当業界で周知であり、例えば、トリフルオロアセチル基やＦｍｏｃ（９−フルオレニルメトキシカルボニル）を用いることができる。
【００３３】
式（Ｉ）において、Ｒ３が表す水酸基の保護基としては、オリゴヌクレオチド合成に用いられる水酸基の保護基が挙げられ、例えば、ジメトキシトリチル基やモノメトキシトリチル基を用いることができる。
【００３４】
式（Ｉ）において、Ｒ４が表すリン酸基の保護基としては、オリゴヌクレオチド合成のホスホアミダイト法に用いられるリン酸基の保護基が挙げられ、例えば、β−シアノエチル基やメチル基を用いることができる。
【００３５】
式（Ｉ）において、基−ＮＲ５Ｒ６は、オリゴヌクレオチド合成のホスホアミダイト法に用いられるリン酸を活性化するための基である。Ｒ５およびＲ６は、好ましくは、同一または異なっていてもよく、イソプロピル基、メチル基またはエチル基を表し、より好ましくはＲ５およびＲ６がイソプロピルを表す。
【００３６】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、Ｌ４、およびＬ５は、それぞれリンカーを表す。
【００３７】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｌ１、Ｌ２、およびＬ３は、好ましくは、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜２０の整数を表し、好ましくは０〜１０の整数を表す）を表し、１〜１０個の−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。
【００３８】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｌ１、Ｌ２、およびＬ３は、より好ましくは、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜１０の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。
【００３９】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｌ４およびＬ５は、好ましくは、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜１０の整数を表し、好ましくは０〜６の整数を表す）を表し、１〜５個の−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。
【００４０】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、Ｌ４およびＬ５は、より好ましくは、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜６の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよい。
【００４１】
式（Ｉ）および式（ＩＩ）において、＞Ｚ１−Ｌ１−Ｚ２＜は、好ましくは
＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；
＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜；
＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−（ＣＯ）ｑ−Ｎ＜；
＞Ｎ−（ＣＯ）ｑ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；および
＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜
（上記式中、ｐは０〜１０を表し、ｑは０または１を表す）
を表すことができる。ｑ＝０のとき、−（ＣＯ）ｑ−は単結合を表す。
【００４２】
式（ＩＩ）において、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］は任意のオリゴヌクレオチド配列を表し、［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］の塩基数は、それぞれ、０〜１００であり、好ましくは０〜３０、より好ましくは３〜１５である。［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］の塩基数の合計は３〜１００であり、好ましくは６〜５０、より好ましくは１２〜３０である。
【００４３】
Ｒ１１−［Ｏｌｉｇｏ１］−は、式（ＩＩＩ）：
【化３】
2005073605.tif 000004
（上記式中、Ｂｉはｉ番目（ｉは１〜ａの整数を表す）の塩基を表し、塩基はアデニン、グアニン、シトシン、チミン、およびウラシルからなる群から選択され、Ｑｉはｉ番目（ｉは１〜ａの整数を表す）の置換基を表し、この置換基は水素原子、水酸基、またはＣ１−４アルコキシ基（例えば、メトキシ基）を表し、ａは０〜１００、好ましくは、０〜３０、より好ましくは、３〜１５の整数を表す。）
で表される。各ヌクレオチドの番号は、Ｒ１１に最も近いものを１番とし、Ｌ４に最も近いものをａ番とする。
【００４４】
また、−［Ｏｌｉｇｏ２］−Ｒ１２は、式（ＩＶ）：
【化４】
2005073605.tif 000005
（上記式中、Ｂｊはｊ番目（ｊは１〜ｂの整数を表す）の塩基を表し、塩基はアデニン、グアニン、シトシン、チミン、およびウラシルからなる群から選択され、Ｑｊはｊ番目（ｊは１〜ｂの整数を表す）の置換基を表し、この置換基は水素原子、水酸基、またはＣ１−４アルコキシ基（例えば、メトキシ基）を表し、ｂは０〜１００、好ましくは、０〜３０、より好ましくは、３〜１５の整数を表す。）
で表される。
【００４５】
各ヌクレオチドの番号は、Ｌ５に最も近いものを１番とし、Ｒ１２に最も近いものをｂ番とする。
【００４６】
ａおよびｂは、標識試薬の前後のヌクレオチドの数を示しており、ａが０のときは標識を導入した非核酸ヌクレオチドが５’末端に存在することを示し、ｂが０のときは標識を導入した非核酸ヌクレオチドが３’末端に存在することを示す。
【００４７】
ＱｉおよびＱｊは核酸の糖部２’位にあたり、これらが水酸基であればリボ核酸、水素原子であればデオキシリボ核酸となる。本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体ではそれらいずれの構造でもよく、両者が混合したものであってもよい。また、必要に応じてＱｉやＱｊに水素原子や水酸基以外の置換基が導入されていてもよい。
【００４８】
式（ＩＩＩ）および式（ＩＶ）において、ａ＋ｂは３〜１００、好ましくは、６〜５０、より好ましくは１２〜３０を表す。
【００４９】
式（Ｉ）が表すヌクレオチド標識試薬のうち好ましいものとしては、
Ｒ１およびＲ２の一方が光エネルギー放出物質（より好ましくは蛍光物質）であり、他方が光エネルギー吸収物質（より好ましくはインターカレーター）であり、
＞Ｚ１−Ｌ１−Ｚ２＜が、＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；または＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜（ｐは０〜１０の整数を表す）を表し、
Ｌ２およびＬ３が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜１０の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
Ｌ４およびＬ５が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜６の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよいもの
が挙げられる。
【００５０】
式（ＩＩ）が表すオリゴヌクレオチド誘導体のうち好ましいものとしては、
Ｒ１およびＲ２の一方が光エネルギー放出物質（より好ましくは蛍光物質）であり、他方が光エネルギー吸収物質（より好ましくはインターカレーター）であり、
＞Ｚ１−Ｌ１−Ｚ２＜が、＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜；＞Ｎ−ＣＯ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＯ−Ｎ＜；または＞ＣＨ−（ＣＨ２）ｐ−ＣＨ＜（ｐは０〜１０の整数を表す）を表し、
Ｌ２およびＬ３が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｍ−（ｍは０〜１０の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
Ｌ４およびＬ５が、同一または異なっていてもよく、−（ＣＨ２）ｎ−（ｎは０〜６の整数を表す）を表し、１または２つの−（ＣＨ２）−は同一または異なっていてもよく−ＣＯ−、−ＮＨ−、または−Ｏ−により置換されていてもよく、
［Ｏｌｉｇｏ１］および［Ｏｌｉｇｏ２］が、それぞれ、式（ＩＩＩ）および式（ＩＶ）を表し、
Ｒ１１およびＲ１２が、水素原子を表すもの
が挙げられる。
【００５１】
本発明によるヌクレオチド標識試薬において、核酸検出用標識として光エネルギー放出物質と光エネルギー吸収物質との組み合わせを用いた場合には、光エネルギー放出物質から、光エネルギー吸収物質への効率的なエネルギートランスファーを引き起こすように、両者の位置を決定することが望ましい。一般的に二種の標識物が近いほどエネルギートランスファーの効率が良いと考えられるが、例外的な場合もありうるのでその位置関係は標識物の組合わせに応じて検討しなければならない（Morrison L. E. Nonisotopic DNA Probe Techniques 311-352, Academic Press Inc. (1992)）。具体的には、Ｌ２やＬ３のリンカーの長さを調節することにより、エネルギートランスファーの効率を最適化することができる。例えば、標識物質としてフルオレセインとピレンの組み合わせを用いる場合には、−Ｌ２−Ｚ１［−Ｌ１−］−Ｌ３−を−ＣＨ［−（ＣＨ２）４−］−とすることができる。
【００５２】
また、本発明によるヌクレオチド標識試薬のオリゴヌクレオチドへの導入位置は、１塩基多型を検出する場合には、多型が存在する塩基の５’側１塩基上流あるいは３’側１塩基下流とすることができる。
【００５３】
式（Ｉ）のヌクレオチド標識試薬は、例えば、式（Ｖ）：
【化５】
2005073605.tif 000006
（上記式中、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、およびＺ１は式（Ｉ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１０１およびＲ１０２はアミノ基の保護基または標識物質を表す。）
の化合物を、式（ＶＩ）：
【化６】
2005073605.tif 000007
（上記式中、Ｌ４およびＬ５は式（Ｉ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１０３およびＲ１０３’は水酸基の保護基を表す。）
の化合物と反応させて、式（ＶＩＩ）：
【化７】
2005073605.tif 000008
（上記式中、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、Ｌ４、Ｌ５、は式（Ｉ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１０１およびＲ１０２は式（Ｖ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１０３およびＲ１０３’は式（ＶＩ）で定義した内容と同義である。）
の化合物を得、次いで、式（ＶＩＩ）の化合物のＲ１０１またはＲ１０２の保護基を脱保護して核酸検出用標識を導入するか、あるいは別のアミノ基の保護基を導入し、Ｒ１０３’を脱保護してリン酸アミダイト、すなわち、基−Ｐ（−ＯＲ４）（−ＮＲ５Ｒ６）を導入することにより製造できる。
【００５４】
式（Ｖ）の化合物としては、リジンやオルニチンのようなアミノ酸を用いることができる。また、アミノ酸のアミノ基を保護する前に６−アミノカプロン酸のような誘導体を連結してＬ２およびＬ３の鎖長を調整してもよい。
【００５５】
式（ＶＩ）の化合物は、ジエタノールアミンのようなジオールの水酸基の一方をジメトキシトリチル基で保護し、もう一方をｔ−ブチルジメチルシリル基で保護して製造することができる。
【００５６】
リン酸アミダイトは最も不安定な部分であり、合成の最後に導入することが望ましい（Goodchild, J. Bioconjug. Chem. 1, 165-187 (1990)）。例えば、式（ＶＩＩ）の化合物のｔ−ブチルジメチル基を除去し、活性となった水酸基とＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトライソプロピル−２−シアノエチルジホスホアミダイトとの反応で導入することができる。
【００５７】
Ｚ２がＣＨであるヌクレオチド標識試薬は、例えば、式（ＶＩ）の化合物に代えてＲ１０３Ｏ−Ｌ４−ＣＨＲ−Ｌ５−ＯＲ１０３’（Ｒは官能基を表し、Ｌ４およびＬ５は式（Ｉ）で定義した内容と同義であり、Ｒ１０３およびＲ１０３’は式（ＶＩ）で定義した内容と同義である。）のようなＣＨ部分に官能基が導入された化合物を準備し、式（Ｖ）の化合物あるいはＯＨ部分が他の官能基に置き換えられたその化合物と反応させることにより製造することができる。
【００５８】
本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体は、式（Ｉ）のヌクレオチド標識試薬をオリゴヌクレオチド合成に使用することにより製造することができる。すなわち、本発明によれば、ホスホアミダイト法によるオリゴヌクレオチド合成において、本発明によるヌクレオチド標識試薬を、核酸アミダイト試薬に代えて使用する工程を含んでなる、本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体の製造法が提供される。具体的には、通常の４種類の核酸アミダイト試薬と同様な操作で、伸長してきた５’水酸基との縮合、アミダイトの酸化反応、ジメトキシトリチルの除去反応を行なって核酸鎖に導入し、引き続き目的の４種類の核酸アミダイト試薬の反応を行ない目的の配列を持ったオリゴヌクレオチド合成を行なうことができる。
【００５９】
式（Ｉ）の非核酸ヌクレオチドを５’末端に導入したい場合はオリゴヌクレオチド合成の最後に同じ操作で導入すればよい。式（Ｉ）の非核酸ヌクレオチドを３’末端に導入したい場合は、核酸を導入していないオリゴヌクレオチド導入用樹脂（Universal Support II: Glen Research）を用いればよい。合成後はいずれの場合も通常用いられる脱保護法を用いて脱保護することができる。脱保護した後は、ポリアクリルアミド電気泳動やＨＰＬＣを用いて精製することができる。未精製のままアミノ基の標識反応を行なうことができるが、標識反応を効率よく行なうことができる点でゲルろ過等の処理を行うことが好ましい。
【００６０】
一般に、オリゴヌクレオチド合成の途中で蛍光物質等の標識物質を導入した非核酸ヌクレオチドあるいは蛍光物質で誘導体化した塩基を導入する場合には、標識物質を適切に保護することが好ましい。すなわち、オリゴヌクレオチド合成で繰り返し行なわれる縮合反応、キャッピング反応、リン酸の酸化反応およびジメトキシトリチル基の除去反応に対して蛍光物質等の標識物質が必ずしも安定ではない場合があるためである。フルオレセインの場合はピバロイル基で保護することでオリゴヌクレオチド合成条件下安定に保つことができ、脱保護操作においても安定的にピバロイル基が除去されることが明らかとなっている。その他、オリゴヌクレオチド合成の途中で使用できるものとしてはTAMRAやRhodamin Dye JA-133が知られている（Rosemeyer,H. et. al. Perspectives in Nucleoside and Nucleic Acid Chemistry WILEY-VCH P141-159 (2000))。本発明による標識試薬を５’末端に導入する場合はジメトキシトリチル基の除去反応をＤＮＡ合成機で行なう必要がなく、合成されたオリゴヌクレオチドを樹脂から遊離させ、溶液中でより温和な条件で行なうことができる。従って、ピバロイル基で保護したヘキサクロロフルオレセインやテトラクロロフルオレセインあるいはＣｙ３およびＣｙ５などの色素を使用することができる。
【実施例】
【００６１】
一般的手法
１Ｈ  ＮＭＲスペクトル測定はVarian Mercury 400 (400 MHz) spectrometerを用い、１３Ｃ  ＮＭＲスペクトルJEOL JMN α-500 (125 MHz) spectrometerを用いて測定した。ＦＡＢマススペクトルはJEOL JMS HX-110A spectrometerを用いて測定した。シリカゲルクロマトグラフィーにはＷａｋｏｇｅｌ  Ｃ−２００を用いた。ＤＮＡ合成試薬はGlen Research社から購入した。オリゴヌクレオチドのマスは MALDI-TOF MS (acceleration voltage 21 kV, negative mode) を用い  ２’，３’，４’−トリヒドロキシアセトフェノンをマトリックスとし、内部標準としてＴ８（［Ｍ−Ｈ］−  ２３７０．６１）、Ｔ１７（［Ｍ−Ｈ］−  ５１０８．３７）、およびＴ２７（［Ｍ−Ｈ］−  ８１３１．２３）を使用した。オリゴヌクレオチド合成はホスホアミダイト法でApplied Biosystems392 DNA/RNA synthesizerを用いて行なった。蛍光スペクトルはSHIMADZU RF-5300PC spectrofluorophotometerを用いて、吸収スペクトルは  Ultrospec 3000pro UV-vis spectrophotometer (Amarsham Pharmacia Biotec)を用いて測定した。
【００６２】
実施例１：非ヌクレオチド標識試薬の合成
ヌクレオチド標識試薬の合成スキームは下記の通りである。
【化８】
2005073605.tif 000009
上記スキーム中の番号は、実施例１中の化合物番号１〜８と対応する。
【００６３】
Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）ジエタノールアミン（化合物１）
ジエタノールアミン（４．６ｇ，４３．８ｍｍｏｌ）をピリジン（５０ｍＬ）に溶解し、４，４’−ジメトキシトリチルクロライド（ＤＭＴｒＣｌ）（１４．８ｇ，４３．８ｍｍｏｌ）を室温で加え、室温で２時間反応した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（１：１０メタノール−クロロホルム）で精製し、黄色油状物質（化合物１）を得た（収量：７．６ｇ，４３％）。
【００６４】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，４００ＭＨｚ）δ＝８．３０（ｓ，１Ｈ），７．４１（ｄ，Ｊ＝７．９Ｈｚ，２Ｈ），７．３０−７．１８（ｍ，７Ｈ），６．８７（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４Ｈ），３．７２（ｓ，６Ｈ），３．４７（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ，２Ｈ），３．０６（ｔ，Ｊ＝５．８Ｈｚ，２Ｈ），２．７４（ｔ，Ｊ＝５．７Ｈｚ，２Ｈ），２．６０（ｔ，Ｊ＝５．７Ｈｚ，２Ｈ）；１３Ｃ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，１２５ＭＨｚ）δ＝１５８．０，１４５．１，１３５．９，１２９．６，１２７．７，１２７．７，１２６．４，１１３．０，８５．２，６２．７，６０．２，５４．９，５１．６，４８．９；ＭＳ（ＦＡＢ，ＤＴＴ，ＴＧ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）５０５［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ２５Ｈ２９ＮＯ４［Ｍ＋Ｈ］＋についての計算値：５０５．２１２７；実測値：５０５．２１２３。
【００６５】
Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）−Ｏ’−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）ジエタノールアミン（化合物２）
化合物１（７．６ｇ，１８．７ｍｍｏｌ）をＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（５０ｍＬ）に溶解し、イミダゾール（１．５３ｇ，２２．５ｍｍｏｌ）とｔｅｒｔ−ブチルヂメチルクロロシラン（ＴＢＤＭＳＣｌ）（３．３８ｇ，２２．４ｍｍｏｌ）を室温で加え、攪拌しながら２時間反応した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（２：１へキサン−酢酸エチル）で精製し黄色油状物質（化合物２）を得た（収量：８．２３ｇ，８４％）。
【００６６】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，５００ＭＨｚ）δ＝８．３０（ｓ，１Ｈ），７．３９（ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ，２Ｈ），７．３７−７．１８（ｍ，７Ｈ），６．８５（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４Ｈ），３．７２（ｓ，６Ｈ），３．６３  （ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ，２Ｈ），３．０２（ｔ，Ｊ＝５．３Ｈｚ，２Ｈ），  ２．７０（ｔ，Ｊ＝５．４Ｈｚ，２Ｈ），２．５９（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ，２Ｈ），０．８５（ｓ，９Ｈ），０．０３（ｓ，６Ｈ）；１３Ｃ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，１２５ＭＨｚ）δ＝１５７．９，１４５．１，１３５．９，１２９．６，１２７．７，１２７．７，１２６．５，１１３．０，８５．１，６２．７，６２．３，５４．９，５１．２，４８．９，２５．７，１７．９，−５．４；ＭＳ（ＮＢＡ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）５２２［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ３１Ｈ４３ＮＯ４Ｓｉ［Ｍ＋Ｈ］＋  についての計算値：５２２．３０４０；実測値：５２２．３０４３。
【００６７】
Ｎα−Ｆｍｏｃ−Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ（化合物３）
ピレンカルボン酸（０．６６８ｇ，２．７１ｍｍｏｌ）をＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（２０ｍＬ）に溶解し、縮合剤であるベンゾトリアゾール−１−イル−オキシ−トリス−ピロリジノ−ホスホリウムヘキサフルオロホスフェート（ＰｙＢＯＰ）（１．４１ｇ，２．７１ｍｍｏｌ）、エチルジイソプロピルアミン（ＤＩＥＡ）（０．４６ｍＬ，２．７１ｍｍｏｌ）とＮα−（９−フルオレニルメトキシカルボニル）−Ｌ−リジン（１ｇ，２．７１ｍｍｏｌ）を室温で加え、１．５時間攪拌した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。混合物を精製しないで次の反応に使用した。
【００６８】
Ｎ−（Ｎα−Ｆｍｏｃ−Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ）−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）−Ｏ’−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）ジエタノールアミン（化合物４）
化合物３をＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（２０ｍＬ）に溶解し、縮合剤であるベンゾトリアゾール−１−イル−オキシ−トリス−ピロリジノ−ホスホリウムヘキサフルオロホスフェート（ＰｙＢＯＰ）（１．４１ｇ，２．７１ｍｍｏｌ），エチルジイソプロピルアミン（ＤＩＥＡ）（０．４６ｇ，２．７１ｍｍｏｌ）と化合物２（１．４１ｇ，２．７１ｍｍｏｌ）を室温で加え、１．５時間攪拌した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（１：５０メタノール−クロロホルム）で精製し、無色結晶（化合物４）を得た（収量：２．３６ｇ，８０％（２ステップ））。
【００６９】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，４００ＭＨｚ）δ＝８．６９−８．６７（ｍ，１Ｈ），８．４８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ，１Ｈ），８．３４−８．１８（ｍ，７Ｈ），８．１１−８．０７（ｍ，２Ｈ），７．８６（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ，２Ｈ），７．７１−７．６３（ｍ，３Ｈ），７．３７−７．０８（ｍ，１３Ｈ），６．８７−６．８１（ｍ，４Ｈ），４．４８−４．４２（ｍ，１Ｈ），４．２３−４．１６（ｍ，２Ｈ），３．７８−３．５０（ｍ，１１Ｈ），３．４０−３．００（ｍ，８Ｈ），１．６５−１．３４（ｍ，６Ｈ），０．８０（ｄ，Ｊ＝９．６Ｈｚ，９Ｈ），−０．０３（ｓ，６Ｈ）；ＭＳ（ＦＡＢ，ＮＢＡ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）１１００［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ６９Ｈ７３Ｎ３Ｏ８Ｓｉ［Ｍ＋Ｈ］＋  についての計算値：１０９９．５１６６；実測値：１０９９．５１４５。
【００７０】
Ｎ−（Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ）−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）−Ｏ’−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）ジエタノールアミン（化合物５）
化合物４（１．４９ｇ，１．３６ｍｍｏｌ）をＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（５ｍＬ）に溶かし、２０％ピペリジンＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド溶液（１０ｍＬ）を室温で加え、室温で１分間攪拌した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（１：３０メタノール−クロロホルム）で精製し、無色結晶（化合物５）を得た（収量：１．０６ｇ，８９％）。
【００７１】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，４００ＭＨｚ）δ＝８．６９（ｔ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ），８．４９（ｄｄ，Ｊ＝９．６，４．４Ｈｚ，１Ｈ），８．３５−８．１７（ｍ，７Ｈ），８．１２−８．０８（ｍ，２Ｈ），７．９４（ｓ，１Ｈ），７．３７−７．２１（ｍ，９Ｈ），６．８８−６．８５（ｍ，４Ｈ），３．７２−２．９９（ｍ，２０Ｈ），１．５９−１．３７（ｍ，６Ｈ），０．８１９（ｓ，３Ｈ），０．８１３（ｓ，３Ｈ），０．８１１（ｓ，３Ｈ），−０．０１７（ｓ，３Ｈ），−０．０２３（ｓ，３Ｈ）；ＭＳ（ＦＡＢ，ＮＢＡ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）８７８［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ５４Ｈ８３Ｎ３Ｏ６Ｓｉ［Ｍ＋Ｈ］＋  についての計算値：８７７．４４８６；実測値：８７８．４５７０。
【００７２】
Ｎ−（Ｎα−トリフルオロアセチル−Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ）−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）−Ｏ’−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）ジエタノールアミン（化合物６）
化合物５（０．１４７ｇ，０．１６８ｍｏｌ）をピリジン（１０ｍＬ）に溶かし、無水トリフルオロ酢酸（ＴＦＡＡ）（７２μＬ，０．５０４ｍｍｏｌ）を室温で加え、室温で２時間攪拌した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（１：３０メタノール−クロロホルム）で精製し、無色結晶（化合物６）を得た（収量：０．１２２ｇ，７５％）。
【００７３】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，４００ＭＨｚ）δ＝９．６８−９．６３（ｍ，１Ｈ），８．７１−８．６４（ｍ，１Ｈ），８．３３−８．１８（ｍ，７Ｈ），８．１３−８．０６（ｍ，２Ｈ），７．３６−７．２０（ｍ，９Ｈ），６．８８−６．８２（ｍ，４Ｈ），３．８１−３．０２（ｍ，１８Ｈ），１．７６−１．３６（ｍ，６Ｈ），０．８２（ｓ，３Ｈ），０．８１（ｓ，３Ｈ），０．８０（ｓ，３Ｈ），−０．０２（ｓ，３Ｈ），−０．０３（ｓ，３Ｈ）；ＭＳ（ＦＡＢ，ＮＢＡ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）９７３［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ５６Ｈ６２Ｆ３Ｎ３Ｏ６Ｓｉ［Ｍ＋Ｈ］＋  についての計算値：９７３．４３０９；実測値：９７３．４３１０。
【００７４】
Ｎ−（Ｎα−トリフルオロアセチル−Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ）−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）ジエタノールアミン（化合物７）
化合物６（０．９０６ｇ，０．９３１ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍＬ）に溶かし、テトラブチルアンモニウムフルオライド（ＴＢＡＦ）（１５ｍＬ）と酢酸（ＡｃＯＨ）（３ｍＬ）を室温で加えた。室温で１時間攪拌した。反応後、クロロホルムと飽和重曹水で抽出した。クロロホルム層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。硫酸マグネシウムをろ別し、クロロホルムを留去して乾固した。残渣をシリカゲルクロマトグラフィー（１：２０メタノール−クロロホルム）で精製し、無色結晶（化合物７）を得た（収量：０．５１５ｇ，６４％）。
【００７５】
１Ｈ  ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６，４００ＭＨｚ）δ＝８．７３−８．６８（ｍ，１Ｈ），８．４７−８．４４（ｍ，１Ｈ），８．３６−８．１９（ｍ，７Ｈ），８．１３−８．０６（ｍ，２Ｈ），７．３８−７．１６（ｍ，９Ｈ），６．９２−６．８２（ｍ，４Ｈ），３．７４−３．５６（ｍ，９Ｈ），３．４６−３．１６（ｍ，８Ｈ），３．０９−３．０３（ｍ，１Ｈ），１．８６−１．３０（ｍ，６Ｈ）；ＭＳ（ＦＡＢ，ＮＢＡ／ＤＭＳＯ）ｍ／ｅ（％）８５９［Ｍ＋Ｈ］＋；ＨＲＭＳ（ＦＡＢ）Ｃ５０Ｈ４８Ｆ３Ｎ３Ｏ７［Ｍ＋Ｈ］＋  についての計算値：８５９．３４４４；実測値：８５９．３４４８。
【００７６】
Ｎ−（Ｎα−トリフルオロアセチル−Ｎε−（ピレン−１−カルボニル）−Ｌ−Ｌｙｓ）−Ｏ−（４，４’−ジメトキシトリチル）ジエタノールアミン  Ｏ−ホスホアミダイト（化合物８）
化合物７（０．１３０ｇ，０．１３４ｍｍｏｌ）、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトライソプロピル−２−シアノエチル  ジホスホアミダイト（５２μＬ）およびテトラゾール（１３ｍｇ、０．２０ｍｍｏｌ）をアセトニトリル（６７μＬ）に溶解し、室温で１時間攪拌した。析出物（化合物８）をろ別し、そのままオリゴヌクレオチド合成に使用した。
【００７７】
実施例２：フルオレセインおよびピレンを有するオリゴヌクレオチド誘導体の合成
デオキシヌクレオチドの４種類のアミダイト試薬に加え、化合物８を使用してＤＮＡ自動合成機で５’ＧＴＧＴＧＣＣＴＡＡ（化合物８）ＴＡＡＣＣＧＡＴＧＴの配列（配列番号１）をもつオリゴヌクレオチドを合成した。合成後は、樹脂に濃アンモニア水（１ｍｌ）を加え５５℃で８時間脱保護反応した。真空で乾固したのち、逆相ＨＰＬＣ（カラム：５−ＯＤＳ−Ｈ、溶出液：５％−３５％アセトニトリル−０．１  Ｍトリエチルアミン酢酸（ｐＨ７．０））で精製した。得られたオリゴヌクレオチド水溶液（１Ｏ．Ｄ．、２０μＬ）に１Ｍ  炭酸水素ナトリウム（５μｌ）および５−フルオレセインスクシニジミルエステルＤＭＦ溶液（０．２５ｍｇ、２５μｌ）を加えて激しく攪拌して溶解し、室温で１４時間反応した。反応後はゲルろ過（セファデックス  Ｇ−５０、５０ｍＭ  炭酸トリエチルアミンバッファー（ｐＨ７．３））で粗精製した。さらに、逆相ＨＰＬＣ（カラム：ハミルトンＰＲＰ−１、溶出液：５％−３５％アセトニトリル−５０ｍＭ  炭酸トリエチルアミン（ｐＨ７．３））で精製した。得られたオリゴヌクレオチドは吸収スペクトルおよび蛍光スペクトルを測定して、ピレンおよびフルオレセインが導入されていることを確認した。
【００７８】
実施例３：フルオレセインおよびピレンを導入したオリゴヌクレオチド誘導体の特性
フルオレセイン（Ｆ）およびピレン（Ｐｙ）を導入したオリゴヌクレオチドの特性を調べるために次の実験を行なった。以下５’ＧＴＧＴＧＣＣＴＡＡ（Ｆ−Ｐｙ）ＴＡＡＣＣＧＡＴＧＴ（配列番号１）を標識オリゴヌクレオチドと略する。０．１μＭ  標識オリゴヌクレオチド、１０ｍＭ  リン酸バッファー（ｐＨ７．０）、１０ｎｇ／μｌ  キャリアーＤＮＡ、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、０．４μＭ  標識オリゴヌクレオチドに相補的なオリゴヌクレオチド（５’ＡＣＡＴＣＧＧＴＴＡＴＴＡＧＧＣＡＣＡＣ（配列番号２））溶液を調製し（全量２０μｌ）、ライトサイクラーＴＭ（ロシュダイアグノスティックス）を用いて温度変化に対する蛍光変化を測定した。なお、１塩基ミスマッチを含む相補的なオリゴヌクレオチド（５’ＡＣＡＴＣＧＧＴＴＣＴＴＡＧＧＣＡＣＡＣ（配列番号３））を含む場合も同様な溶液を調製し、また相補的なオリゴヌクレオチドを含まないものをコントロールとした。結果を図１に示した。
【００７９】
相補的なオリゴヌクレオチドを加えた場合、温度が下がるのに伴う２本鎖形成に対応してフルオレセインの蛍光が増大した。一方、標識オリゴヌクレオチドに相補的なオリゴヌクレオチドを含まない場合、あるいは１塩基のミスマッチを含むオリゴヌクレオチドを含む場合は蛍光の変化はほとんど見られなかった。
【図面の簡単な説明】
【００８０】
【図１】本発明によるオリゴヌクレオチド誘導体を用いて１塩基のミスマッチを有するＤＮＡ配列を検出した結果を示した図である。太い実線は相補的なオリゴヌクレオチドを含む場合を示す。細い実線は１塩基のミスマッチが存在するオリゴヌクレオチドを含む場合を示す。点線は相補的なオリゴヌクレオチドを含まない場合を示す。
【図１】
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【配列表】
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