(57)【要約】      （修正有）【課題】トランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス（Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックス）を簡便な操作で測定しうる試薬と、測定方法の提供。【解決手段】ＴｆＲに親和性のある物質を固定した不溶性粒子で構成されるＴｆ−ＴｆＲコンプレックス測定試薬、並びにこの試薬を用いたＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを測定する。親和性物質としては、ＴｆＲやＴｆに対する抗体が有利である。【効果】操作性に優れた粒子凝集反応によるＴｆ−ＴｆＲコンプレックスの測定技術を提供することで、ＴｆＲの測定範囲が拡大し、試料を希釈すること無く広い濃度範囲を測定することができる。測定範囲の拡大は、特に造血機能の診断マーカーとしてＴｆＲを測定する場合に有効である。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
不溶性粒子に固定したトランスフェリンレセプター親和性物質をトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックスと反応させ、抗原抗体反応によって生じる不溶性粒子の凝集を観察することによって濃度を測定するトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項２】
トランスフェリンレセプター親和性物質が抗体である請求項１のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項３】
抗体が、抗トランスフェリンレセプター抗体、および抗トランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス抗体から選択される請求項２のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項４】
抗体がポリクローナル抗体である請求項３のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項５】
不溶性粒子がラテックス粒子である請求項１のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項６】
更にトランスフェリン親和性物質を固定した不溶性粒子を含む請求項１のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項７】
トランスフェリン親和性物質をトランスフェリンレセプター親和性物質とともに固定した不溶性粒子を含む請求項１のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【請求項８】
トランスフェリン親和性物質が、トランスフェリンに対するモノクローナル抗体である請求項６または７のトランスフェリン−トランスフェリンレセプター・コンプレックス測定試薬
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ヒト体液中のトランスフェリンレセプター（以下ＴｆＲと省略する）濃度に基づいて各種疾病の診断に利用するための測定試薬と、この試薬によるＴｆＲの測定方法に関する。ＴｆＲは各種細胞の表層に存在し、鉄輸送蛋白トランスフェリン（以下Ｔｆと省略する）と結合する役割を担っている。ＴｆＲとＴｆの親和性は約１０−９と抗原抗体反応に匹敵するほど強く、そのうえ一般には血中のＴｆがＴｆＲの１０３倍も多量に存在することから、血中においてはほとんどのＴｆＲがＴｆと結合した型で存在する。血中ＴｆＲ濃度は、癌や造血機能等の指標として有用であることが知られている。
【背景技術】
【０００２】
体液中のＴｆＲを測定する方法としては、癌診断を目的として標識免疫測定法を応用した報告（特許文献１）があった。この報告で採用されている酵素免疫測定法（以下ＥＩＡと省略する）に代表される標識物質を利用した免疫測定法は、一般的には感度を上げる場合に用いられる方法である。標識物質としてしばしば用いられる物としては、１２５Ｉのような放射性同位元素や、ペルオキシダーゼ（以下ＰＯＤと省略する）、βガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ等の酵素が挙げられる。放射性同位元素を標識物質として用いる免疫測定法をＲＩＡ法、酵素を標識物質として用いる免疫測定法をＥＩＡ法と呼んでいる。ＲＩＡ法は、標識物質として放射性同位元素を用いるために特別な施設や装置を求められるので簡易であるとは言い難い。またＥＩＡ法は、免疫反応の他に標識物質である酵素を特定の基質に反応させる酵素反応のステップがあるため、反応様式や試薬構成が複雑となる。またいずれの方法においても、不均一系の反応原理を採用する限りは結合相と遊離相との分離（Ｂ／Ｆ分離）が要求され、自動化や迅速化の障害となりやすい。
【０００３】
更にＲＩＡ法、ＥＩＡ法ともに測定の感度を上げる方向で発達してきた経緯があるため、検体である体液中に測定対象である物質が測定可能範囲の上限を越えて多量に存在する場合には検体を希釈するステップが必要となる。ＴｆＲは血中に比較的高い濃度で存在するので、ＥＩＡ法のような標識法による測定技術ではしばしば検体の希釈を要求される。
【０００４】
ところでＴｆＲは先に紹介した癌の診断マーカーとしての用途の他に造血機能のマーカーとなることも指摘されている（非特許文献１）。造血機能のマーカーとしてＴｆＲを測定するときには、癌マーカーとして測定する場合に比べてより高い水準のＴｆＲ値を測定することが多くなる。そのためこれまでに知られているような高い感度を追求した測定系ではしばしば測定範囲を越える試料が出現することになり、希釈操作が要求される。つまりこれまでに報告されているＴｆＲの測定技術の測定濃度域は、実際に要求される濃度域をカバーできていないのである。したがって造血機能障害を疑う患者の機能検査に用いることのできる簡便なＴｆＲ測定技術の提供が望まれている。また標識法による測定技術においては、高い感度を得やすいように反応時間を長く取る場合が少なくない。このような背景から、より簡便な操作で迅速な測定を実現するＴｆＲ測定技術の提供が待たれている。
【特許文献１】特開昭６２−６１６９号公報
【非特許文献１】Clin.Chem.41/7,1053-1064;1995
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明者は鉄と造血機能との関連から、鉄輸送蛋白Ｔｆの受容体である体液中のＴｆＲ濃度を測定することの意義が大きいと考えた。そしてそのためには、より簡易に測定でき、しかも自動化しやすい測定系と、より適切な測定濃度域を持つ試薬が必要である。すなわち本発明は、従来のＴｆＲ測定技術では試料の希釈を要求されるような高濃度域であっても、低濃度域と同じ条件で測定可能な広い測定レンジを実現する新しいＴｆＲの測定技術の提供を課題とするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明の課題は、ＴｆＲ親和性物質を固定した不溶性粒子、またはＴｆＲ親和性物質とＴｆ親和性物質とを個別にまたは混合して固定した不溶性粒子で構成されるＴｆ−ＴｆＲコンプレックス測定試薬、ならびにこの試薬を用いた測定方法によって解決される。
【０００７】
本発明におけるＴｆＲ親和性物質の代表的なものは、抗ＴｆＲ抗体や抗Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックス抗体などの抗体である。またＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを測定対象としているので、抗Ｔｆ抗体も親和性物質として挙げることができる。Ｔｆを介してＴｆＲと特異的に結合すると考えられるためである。親和性物質として抗体を用いる場合は、充分抗体価の高い抗体を選びさえすれば検体となる生体体液中に親和性の点で競合するものがなく有利である。抗体としては通常の方法によりマウス、ラット、家兎、山羊などを免疫して得たポリクローナル抗体を利用できる。もちろん、モノクローナル抗体も使用できることは言うまでもない。ＴｆＲに対する抗体は、これまでにいくつか報告されている。これら公知の抗体は、ポリクローナル抗体であれ、モノクローナル抗体であれ、不溶性粒子に感作した状態でＴｆＲと反応して凝集しうる親和性と特異性を備えているものであれば本発明に利用することができる。
【０００８】
中でもポリクローナル抗体は、次のような背景から好ましい抗体として示すことができる。まず凝集反応の反応原理から考えると、粒子に固定する親和性物質と被検物質との結合部位の数が多いほうが一般的に有利である。つまり結合部位が制限されるモノクローナル抗体よりも多数の結合部位を認識するポリクローナル抗体の方が有利となる。更にＴｆとコンプレックスを形成したＴｆＲを測定するために、ＴｆＲ上のＴｆ結合部位はＴｆにカバーされてしまっている。このようなコンプレックスでは、Ｔｆ結合部位を認識する抗体はもはや結合することができない。これらの理由からポリクローナル抗体が好ましい抗体として挙げられるのである。
【０００９】
より高い特異性を期待するとき、あるいは免疫原としてのＴｆＲやＴｆの消費量を少なくしたいときには、抗体としてモノクローナル抗体を利用しても良い。ただしモノクローナル抗体を利用するときには先に述べたような事情を考慮して、より有利な結合親和性を持つクローンを選択するべきである。たとえば、ＴｆＲのＴｆ結合部位を認識するような抗体は、Ｔｆによって結合部位をブロックされてしまうので選択すべきではない。したがってモノクローナル抗体の結合部位として、ＴｆＲのＴｆ結合部位以外に存在する抗原決定基、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスに特異的に存在する抗原決定基、Ｔｆに特異的な抗原決定基等を利用するのが好ましい。特にＴｆＲのＴｆ結合部位以外に存在する抗原決定基とＴｆに特異的な抗原決定基とを認識するモノクローナル抗体の組合せは、血液中でコンプレックスを形成しているＴｆＲを確実に測定することができる好ましい組合せである。これらのモノクローナル抗体を固定した不溶性粒子を混合するか、あるいはモノクローナル抗体の混合物を不溶性粒子に固定することにより本発明による試薬を得ることができる。抗Ｔｆモノクローナル抗体で構成した本発明による試薬は、遊離のＴｆにも結合するものの架橋構造を構成できないので凝集反応にはつながらない。つまりＴｆ−ＴｆＲコンプレックスが存在する時にだけ特異的に凝集を起こす高い精度を備えた試薬となることから、モノクローナル抗体の採用が有利となる態様として示すことができる。またモノクローナル抗体をポリクローナル抗体に組み合せて用いることも可能である。
【００１０】
Ｔｆに対するモノクローナル抗体を利用する場合、Ｔｆ−ＴｆＲに比較して血中に多量に存在する遊離のＴｆがこのモノクローナル抗体に競合するので十分な粒子凝集を期待できない場合が予想される。このような場合には、粒子に固定したものと同じＴｆに対するモノクローナル抗体を粒子に固定しない状態で加え、その共存下で反応させると良い。
【００１１】
本発明に用いる抗体は、Ｆｃ部位を取り除くことによって補体やリウマチ因子等による非特異反応の影響を受けにくくすることができる。Ｆｃ部位を除去する方法は、各種蛋白分解酵素を作用させる方法が公知である。
【００１２】
抗体以外の親和性物質としてはＴｆＲに対するα−１アンチトリプシンなどが想定できる。これらの親和性物質には、各々生体体液中に親和性の点でＴｆＲと競合する物質が存在するので、できるだけＴｆＲへの親和性の方が大きくなる条件のもとで反応させるのが好ましい。あるいは競合物質との結合サイトをブロックする方法も有効である。たとえばα−１アンチトリプシンを利用する時には、トリプシンを結合した粒子を用意しこれにトリプシンを介してα−１アンチトリプシンを間接的に結合させると良い。この方法によって、α−１アンチトリプシンのトリプシン結合サイトはブロックされ、ＴｆＲとの結合活性が粒子上に存在する形となる。
【００１３】
本発明に利用する不溶性粒子としては、動物の赤血球、金属ゾル、ラテックス、ゼラチン、あるいは顔料のような免疫学の分野で常用されているものが考えられるが、これらに限られるものではない。中でもポリスチレン等の合成樹脂製ラテックス粒子は既に広く利用されているので入手し易く安価であり、動物赤血球よりは質的に均一な点で有利である。ポリスチレンラテックスとしては平均粒径０．０２−１．０μｍ、好ましくは０．０４−０．６μｍのものを示すことができる。
【００１４】
本発明の親和性粒子を分散させる分散溶液は、免疫反応に必要なｐＨを提供する緩衝液に分散剤、界面活性剤、非特異反応を防ぐ物質、少量の防腐剤等を添加して用いる。これらの添加物質や濃度の選択は固定する親和性物質およびその量、不溶性粒子の種類などに応じて適宜に調整する。たとえばゼラチンやウシ血清アルブミンのような不活性蛋白質は、凝集反応の安定化や非特異反応の防止に有効である。具体的には親和性物質として抗体を固定したポリスチレンラテックスを分散させるとき、リン酸緩衝液（以下ＰＢＳと省略する）やＨＥＰＥＳのような中性域を与える緩衝液に、ＢＳＡや正常動物血清等を加える。
【００１５】
本発明は、前記Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックス測定試薬によってＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを測定する方法をも提供する。本発明の試薬とＴｆ−ＴｆＲコンプレックスとの反応は、凝集程度を観察することで追跡可能である。凝集反応を観察する方法としては、肉眼による方法および光学的装置により散乱光または透過光の量の変化として計測する方法がある。一般的に、肉眼で観察する方法は、検体を数段階の濃度に希釈しその各々を観察することによってしか定量的な測定ができない。光学的方法においては適切な検量曲線を予めまたは測定時に作成することにより検体の濃度を数段階取ることなく定量的測定ができるので、本発明の具現例としてはより好ましいものである。
【００１６】
このときに血液材料に由来するＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを標準物質として用いると良い。細胞から血中に遊離したＴｆＲは組織から抽出したＴｆＲとは構造が違うことから、精製ＴｆＲを標準とする方法では反応性の違いのために正確な結果を期待できない可能性が有る。実際、血中に遊離したＴｆＲは組織に存在する完全なＴｆＲに比べてＮ末端側の１００残基のアミノ酸が欠損している。また血中ＴｆＲの大部分がＴｆとコンプレックスとなっていることから考えて、血中ＴｆＲの値を得るにはＴｆ−ＴｆＲコンプレックスとして測定すべきである。なお血中のＴｆとコンプレックスを形成していない遊離のＴｆＲを測定するのであれば、フリーのＴｆＲを標準として用いる。
【００１７】
本発明のＴｆＲ測定試薬は従来に無い広い濃度範囲の測定を実現する。この特徴によって、本発明は大部分の血清試料を希釈操作無しで測定するＴｆ−ＴｆＲコンプレックス測定方法を提供する。なおここで言う希釈操作を必要としない測定とは、低濃度試料と高濃度試料とを同一の反応条件で測定可能であることを意味する。つまり、測定可能な濃度範囲が狭い従来の測定方法においては、高濃度試料の測定にあたっては低濃度試料とは違う希釈条件が必要であった。一方本発明では、たとえ高濃度試料であっても低濃度試料と同じ条件で測定が可能となる。
【００１８】
本発明によって得られたＴｆ−ＴｆＲコンプレックスの測定値は、ＴｆＲ値に換算することも可能である。ＴｆＲとＴｆとは１：１で結合するので両者のモル比は１：１となる。血中のＴｆＲの大部分がＴｆと結合した状態で存在していることから、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスの測定値に占めるＴｆＲの蛋白量の比をかければＴｆＲ値となる。この値は実施例で示すように４７%であり、本発明による測定値に対して４７%をかければＴｆＲ値に換算できるということである。
【００１９】
本発明に使用される標準物質とは、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスを含むＴｆ−ＴｆＲコンプレックス測定用標準物質であることが望ましい。Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスは、ＴｆＲ高値の血清を原料として精製することができる。血中のＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを測定するのであれば、試薬との反応性を共通とするためにも標準物質も血中から精製したものを用いるのが有利である。血清からＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを精製するには、血清の硫安分画、陰イオン交換クロマトグラフィー、免疫吸着クロマトグラフィー等の精製ステップにより容易に行うことができる。こうして精製したＴｆ−ＴｆＲコンプレックスは、適当な緩衝液に希釈するか、あるいはＴｆＲフリーとした血清に添加して濃度を検定し標準物質とすることができる。この標準物質は、造血機能の診断をも可能とする広い濃度域にわたって標準物質として利用できるよう１４，０００〜７０，０００ｎｇ／ｍＬ程度の高い濃度を備えたものが有用である。
【００２０】
本発明におけるＴｆＲ親和性物質を固定した不溶性粒子は、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスと結合してその分析を可能とする。本発明は、従来ＴｆＲの測定に利用されていた高感度を実現するための測定技術に換えて、より簡便な操作で実施可能な粒子凝集反応を応用した点において新規である。粒子凝集反応の応用によって、試料を希釈することなく低濃度域の測定と同じ条件のもとで、高い濃度までを十分な精度で測定することが可能となる。更に均一系反応である粒子凝集反応では、標識による測定で要求されるＢ／Ｆ分離が不要となるため、測定の自動化が著しく容易となる。このことは検査時間短縮などの迅速化にも貢献するものである。
【発明の効果】
【００２１】
本発明は、操作性に優れた粒子凝集反応によるＴｆ−ＴｆＲコンプレックスの測定を可能とする。本発明によってＴｆＲの測定範囲が拡大し、試料を希釈すること無く広い濃度範囲を測定することができる。測定範囲の拡大は、特に造血機能の診断マーカーとしてＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを測定する場合に有効である。更に本発明によれば、標識による測定で要求されるＢ／Ｆ分離が不要となるため、標識技術を利用した高感度測定法に比べて容易に迅速化、自動化を実現することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
不溶性粒子にＴｆＲ親和性物質を固定し、粒子凝集反応を利用して測定することにより、ＴｆＲ−ＴｆＲコンプレックスの測定範囲拡大と分析の迅速化、自動化を実現した。
【実施例】
【００２３】
１．試薬の調製
【００２４】
抗ＴｆＲ抗体の作成：公知の方法（J.Biol.Chem.,263,8318-8325,1988）で胎盤から精製したヒトＴｆＲをフロイントのコンプリート・アジュバントと等量混合し、充分乳化した後、家兎フットパットに初回の免疫を行い、４週毎に背部皮内に２回の追加免疫を行った。精製ヒトＴｆＲとのオクテロニー法により抗体価の上昇を確認して、最終免疫後２週目に採血を行い抗血清を分離した。抗血清をＤＥＡＥ−セルロース・イオン交換クロマトグラフィーで精製し、そのＩｇＧ分画をもって抗ＴｆＲ抗体とした。本発明試薬の調製例：抗ＴｆＲ抗体をポリスチレンラテックス（平均粒径０．１０４μｍ）と混和し３７℃１時間反応させた。３，０００×Ｇ、１５分遠心によりラテックス粒子を分離した後、１％ＢＳＡを含むＰＢＳ緩衝液に懸濁して０.５％ラテックス乳液を得、本発明の測定試薬とした。
【００２５】
参考試薬の調製例：上記抗ＴｆＲ抗体をＰＢＳ緩衝液で１０ｍｇ／Ｌとし９６穴マイクロタイタープレート（ヌンク社製）のウエルに０．１ｍＬずつ分注後、３７℃１時間静置し、更にプレートを生理食塩液で洗浄後ＢＳＡによるブロック操作をほどこしてＥＬＩＳＡ用固相プレートとした。また抗ＴｆＲ抗体を過ヨウ素酸架橋法にてＰＯＤ標識し、ＥＬＩＳＡ用標識抗体とした。
【００２６】
標準物質の調製：血清を４５〜７０％飽和硫安で分画後、２０ｍＭトリス塩酸（ｐＨ８．６）の緩衝液で透析し、陰イオン交換カラム（Ｑ−セファロース、ファルマシア社）にアプライした。０．５ＭのＮａＣｌを含む２０ｍＭのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．６）でリニアグラジエントに溶出した。ＥＬＩＳＡによってＴｆＲ濃度を追跡してＴｆＲに富む分画をプールし、抗Ｔｆ抗体を固定化したアフィニティーカラムにかけた。カラムはまず０．１ＭのＮａＣｌを含む５０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）、次いで１００ｍＭのＮａＣｌと１ｍＭのｄｅｓｆｅｒｒｏｘａｍｉｎｅ ｍｅｓｉｌａｔｅを含む５０mMのクエン酸緩衝液（ｐＨ４．９）でこのカラムを洗浄してＴｆから鉄を遊離させた。再び０．１ＭのＮａＣｌを含む５０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）で洗浄後、３MのＫＣｌを含む５０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．５）で鉄の遊離によってＴｆとの結合性の低下したＴｆＲを溶出した。アフィニティーカラムの溶出物は、過剰量の鉄飽和Ｔｆと反応させて完全にＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを形成させ２０mMトリス塩酸（ｐＨ８．６）の緩衝液で透析した後、さらにゲルろ過カラム及び陰イオン交換カラム（リソース−Ｑ、ファルマシア社）を用いて、精製Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスを得た。この方法によるコンプレックスの収率は約５０％であった（２，０００ｎｇ/ｍＬのＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを含む血清２Ｌから約２．０ｍｇのＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを回収）。
【００２７】
精製物は、非還元状態でのＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分子量約８５ｋＤａと６５ｋＤａの２つのバンドが認められた。還元状態では、Ｔｆは分子内ＳＳ結合がはずれて見かけの分子量が大きくなるので、２つのバンドが近接する。ＰＶＤＦ膜へブロッティング後それぞれの蛋白についてアミノ酸配列分析を行ったところ、８５ｋＤａはＴｆＲの１０１番目からの配列と一致し、６５ｋＤａはＴｆのＮ末端からの配列と一致することが確認できた。ＴｆＲとＴｆの組成比率は、染色したＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルのデンシトグラムからほぼ４７％対５３％であり、アミノ酸残基数がＴｆＲが６６０、Ｔｆが７１９の比と一致した。つまりモル比として１対１であったと考えられる。蛋白量にＴｆＲの濃度比（４７％）を乗じた値を精製したコンプレックス中のＴｆＲ量として決定した。なお精製Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスの蛋白量は、ＢＣＡ蛋白定量法により決定した。この精製Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスを１％のＢＳＡ、０．１％のＴｆを含むＰＢＳで希釈して１次標準として使用した。ＥＬＩＳＡでは血清を適宜希釈したものの凍結乾燥品を、ラテックス凝集法では、血清からＴｆ−ＴｆＲコンプレックスをイオン交換カラムにより部分的に精製濃縮した物の凍結乾燥品をそれぞれ１次標準で検定し、２次標準として用いた。従って、この標準を用いた測定によって得られる濃度値は、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスの濃度である。
【００２８】
２．本発明の測定試薬と参考試薬の検量線比較
【００２９】
１で作成した本発明の測定試薬を用い試料液（検量線の場合は標準希釈濃度液、一般測定の場合は検体液）３０μＬ、と本試薬乳液３００μＬを測定セルに分注して混和し、２５秒後および３００秒後に散乱光（波長６６０ｎｍ）を測定し散乱光の強度の差を求めた。標準希釈液は部分精製ヒトＴｆ−ＴｆＲコンプレックスを１６，０００ｎｇ/ｍＬより順次２倍希釈した５段階の各々を用いて測定し検量曲線を作成した。測定には全自動免疫化学分析装置ＬＸ−３０００（栄研化学・アナリテイカルインスツルメント社製、商品名）を用いた。
【００３０】
対照として、１で作成した参考試薬によるＥＬＩＳＡ法の検量線を作成した。測定は固相プレートにウエル当たり１００μＬの試料液を分注し３７℃で１時間反応後０．１％のＴｗｅｅｎ２０加ＰＢＳで洗浄、標識抗体を１００μＬを加え３７℃３０分反応させ洗浄、ＴＭＢ（テトラメチルベンチジン）で発色させ波長４５０ｎｍでの吸光度を測定、という操作によって行った。標準希釈濃度液はＴｆ−ＴｆＲコンプレックス値既知の血清を７８．０ｎｇ/ｍＬより順次２倍希釈した５段階の各々を用いて測定し検量曲線を作成した。この標準物質の濃度は、予備的に行った実験で確認した実用的な精度で測定が可能な濃度範囲に基づいて設定したものである。結果は図１および図２に示した。本発明の測定試薬では測定範囲が５００〜１６，０００ｎｇ/ｍＬである（図１）に対し、参考例ＥＬＩＳＡ法（図２）では２．４４〜７８．０ｎｇ/ｍＬである。つまりＥＬＩＳＡ法で本発明の測定試薬と同じ測定範囲を得るには試料を予め２００倍に希釈する必要があることが確認された。
【００３１】
３．本発明によるラテックス凝集法とＥＬＩＳＡ法の相関
【００３２】
様々な濃度のＴｆ−ＴｆＲコンプレックス値を持つ血清検体８０検体を１で調製した本発明によるラテックス凝集反応試薬と、参考試薬であるＥＬＩＳＡ試薬により測定し測定値の相関を調査した。ＥＬＩＳＡ法では直接測定できない高値検体は適宜希釈して測定した。結果は図３に示すとおりである。本発明による測定値とＥＬＩＳＡによる測定値とは良好な相関を示し高精度な測定が可能なことが確認された。
【００３３】
４．本発明の測定試薬による測定例
【００３４】
２に示した本発明の測定試薬により、健常者１５名、鉄欠乏性貧血症患者１０名、安定期透析患者１５名、鉄欠乏を伴う透析患者１０名、多血症患者２名、腎移植患者２名の血清についてＴｆ−ＴｆＲコンプレックス値を測定した。結果は表１に示した。鉄欠乏性貧血症、多血症等の患者血清中のＴｆＲ値は異常に高く、本発明によるＴｆＲの測定が造血機能の診断マーカーとして有用なことが確認された。このような高い値は、ＥＬＩＳＡ法の測定可能範囲を越えている。
【００３５】
【表１】
2005321411.tif 000002
【００３６】
４．本発明の測定試薬による測定例
【００３７】
ＴｆＲのＴｆ結合部位以外を認識するモノクローナル抗体と、Ｔｆを認識するモノクローナルにより本発明の測定試薬を構成した。特開昭６２−６１６９号公報に記載された方法にしたがって前記モノクローナル抗体を調製し、これをそれぞれ不溶性粒子に固定した後に混合した。具体的な操作は次のとおりである。１で用いたのと同じ精製ＴｆＲをフロイントのコンプリート・アジュバントと等量混合しＢａｌｂ／ｃマウスの皮下に免疫した。２週間おきに免疫をくり返し、４回の免疫の後に５０μｇのＴｆＲを腹腔内に免疫した。最終免疫の３日後に抗体価の上昇していることを確認して脾臓を摘出し、常法(Harada.NらProc.Natl.Acad.Sci. USA 84:4581-4585,1987)によってマウスミエローマ細胞Ｐ３−Ｘ６３Ａｇ８．６５３と細胞融合させた。
【００３８】
ハイブリドーマは精製ＴｆＲを抗原とするイムノブロッティングアッセイによって、まずＴｆＲに特異的な抗体についてスクリーニングした。ＴｆＲを認識するモノクローナル抗体を産生するクローンは、更にＴｆＲとＴｆを用いたインヒビションアッセイによりスクリーニングしてＴｆ結合部位以外の部分に存在する抗原決定基を認識するモノクローナル抗体を産生するものをセレクションした。こうしてＴｆＲのＴｆ結合部位以外を認識するモノクローナル抗体を得た。一方Ｔｆを認識するモノクローナル抗体については、免疫原をＴｆとすること、またスクリーニングを単にＴｆについて行うこと以外はほぼ同じ操作によって得た。
【００３９】
こうして得た２種類のモノクローナル抗体（ＩｇＧ、０．１１ｍｇ/ｍＬ）をそれぞれ粒径０．１０４μｍのポリスチレンラテックスに３７℃で１時間物理吸着させた。ＨＥＰＥＳ緩衝液で洗浄後、１％のＢＳＡを含むＨＥＰＥＳ緩衝液に粒子濃度０．５％となるように等量分散させてモノクローナル抗体で構成された本発明の試薬とした。
【００４０】
モノクローナル抗体で構成された本発明による試薬は、２と同じ操作によって精製Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスと反応させた時、光学測定が可能な凝集を定量的に生じることを確認した。この凝集は精製したＴｆやＴｆＲでは観察できず、Ｔｆ−ＴｆＲコンプレックスに特異的であることが明らかであった。
【図面の簡単な説明】
【００４１】
【図１】本発明の測定試薬を用い、免疫学的ラテックス凝集反応法によって得られた標準曲線。図中、縦軸は６６０ｎｍにおける散乱光強度の変化量（ＤＬＳＥ）を、横軸はＴｆ−ＴｆＲコンプレックス濃度（ｎｇ/ｍＬ）を示す。
【図２】参考試薬を用いＥＬＩＳＡ法によって得られた標準曲線。図中、縦軸は４５０ｎｍにおける吸光度を、横軸はＴｆ−ＴｆＲコンプレックス濃度（ｎｇ/ｍＬ）を示す。
【図３】本発明によるラテックス凝集反応試薬（ＬＡ法)による測定値と、ＥＬＩＳＡ試薬による測定値の相関を示すグラフ。
【図１】
2005321411.tif 000003
【図２】
2005321411.tif 000004
【図３】
2005321411.tif 000005