(57)【要約】      （修正有）【課題】定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉等の植物組織からの発根を促進させることにより、難発根性植物の発根性を向上させる。【解決手段】定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉等の植物組織を、根又は植物体と共存培養することにより発根させる。発根させようとする植物組織と、根を取得する植物又は植物体の種類は同じでも異なっていても構わない。また、根を取得する植物又は植物体として、難発根性のものも使用することができる。植物体としては、実生苗を始め、挿し木法若しくはマイクロカッティング法により得られた挿し穂を発根させた苗、多芽体等から得られた不定芽や茎葉を発根させた苗等を用いることができる。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
植物組織と、根又は植物体とを共存培養して、該植物組織から発根させることを特徴とする、植物組織の発根方法。
【請求項２】
植物組織が、定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉であることを特徴とする、請求項１に記載の植物組織の発根方法。
【請求項３】
植物組織が、ユーカリ属植物から得られた組織であることを特徴とする、請求項１又は２に記載の植物組織の発根方法。
【請求項４】
根として、ユーカリ属植物から得られる根を用いることを特徴とする、請求項１、２又は３に記載の植物組織の発根方法。
【請求項５】
植物体として、ユーカリ属の発根苗を用いることを特徴とする、請求項１、２又は３に記載の植物組織の発根方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願発明は、植物組織を培養して植物個体を得るための方法、特に、植物の定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉からの発根率を向上させることのできる植物組織の発根方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
植林を行うにしろ、育種を行うにしろ、目的に適った形質を持つ均質な苗を大量に増殖するステップは、必ず要求される。このとき苗の大量増殖手段として有用なのが、伝統的な挿し木法や、近年のバイオテクノロジーの発達により生まれた組織培養法である。これらの方法によれば、単に、苗の大量増殖ができるばかりではなく、同一の遺伝的性質を有する植物個体、即ちクローン苗を大量かつ迅速に増殖することができる。
【０００３】
挿し木法においては、増殖しようとする植物の個体から枝や、場合によっては頂芽、腋芽又は葉等を切取って挿し穂とし、これを発根させて苗を生産する。一方、組織培養法において木本植物を大量増殖しようとする場合には、多芽体又は苗条原基を経由することが多い。具体的には、増殖しようとする植物の個体から芽、茎頂点等を切取って培養し、多芽体又は苗条原基を誘導して不定芽や、この不定芽から伸長してくる茎葉を採取し、これを発根させる。つまり、いずれの方法を用いてクローン苗を生産するにしても、発根という過程を経ることとなる。
【０００４】
従って、植物組織の発根性は、クローン苗の生産性に大きな影響を与える。このため、植物組織の発根性を向上させる培養方法が種々検討され、植物ホルモンの適正化（特開平６-１８９６４６）や発根促進剤の使用（特開平６-１９９６１１）、炭酸ガス濃度や光条件の適正化（特開平８−２５２０３８、特開２０００−６０３３２）、薬剤による発根前処理（特開平１１−２４３７６９、特開２００２−１０７１０）、発根させる枝や茎葉の基部にキズをつけたり、基部の切断面近傍の表皮を剥離する（特開平１１−６９９１２）等の物理的な発根前処理など、多くの方法が提案されている。
【０００５】
【特許文献１】特開平６-１８９６４６
【特許文献２】特開平６-１９９６１１
【特許文献３】特開平８−２５２０３８
【特許文献４】特開２０００−６０３３２
【特許文献５】特開平１１−２４３７６９
【特許文献６】特開２００２−１０７１０
【特許文献７】特開平１１−６９９１２
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかし、上記培養方法によっても、発根性を向上させることが難しい植物の属・種・系統が存在する。このような植物の中には、非常に優れた形質を有するにもかかわらず、クローン苗の大量生産ができないため、未だ産業的に利用されていないものもあった。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本願発明者らは鋭意研究の結果、定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉等の植物組織を、根の存在下で培養することにより、当該植物組織からの発根率が向上することを見出し、本願発明を完成した。
【０００８】
即ち、本願発明は、植物組織と、根又は植物体とを共存培養して、該植物組織から発根させることを特徴とする、植物組織の発根方法に関する。
【０００９】
なお、本願発明において、植物組織とは根以外の植物組織を、根とは生理的に根としての機能を備えている組織をいう。また、植物体とは、このような根が形成された植物組織のこといい、発根苗やこれが生長した個体も含む意味で用いる。
【発明の効果】
【００１０】
本願発明によれば、定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉等の植物組織からの発根率が向上する。そして、かかる効果は、挿し穂からの発根が難しいとされている、難発根性植物において、一層発揮される。
【００１１】
従って、本願発明によれば、従来の挿し木法により、又は、組織培養法により、有用な形質を有する難発根性植物のクロ−ン苗の大量増殖が産業的に可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
本願発明において、根又は植物体との共存培養に供する植物組織は、どのような植物に由来するものであっても構わない。ユーカリ、マツ、サクラ、アカシア、ヤマモモ、クヌギ、ブドウ、リンゴ、バラ、ツバキ、ウメ等の木本植物や、キク、カーネーション等の草本植物にも本願発明を適用することができる。もっとも、本願発明は、ユーカリ、マツ、サクラ等の難発根性の植物に適用した場合に、特に大きな効果を発揮する。
【００１３】
また、根又は植物体との共存培養に供する植物組織は、挿し木法、マイクロカッティング法又は組織培養法において、発根に供される組織であれば何であっても構わない。典型的には、このような植物組織としては、定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉を用いることができる。ここで定芽とは、頂芽や腋芽など、植物において普通に形成される芽のことをいい、不定芽とは、枝、茎、葉、根など、通常は芽が形成されない部位に形成される芽のことをいう。
【００１４】
例えば、本願発明の共存培養に供する植物組織を、温室や屋外に生育している植物の個体から得るには、枝、定芽又は葉を切取って、これを用いればよい。木本植物の場合は緑枝（当年枝）や熟枝（前年以前に伸びた枝）、草本植物の場合は定芽や葉を用いるのが普通である。枝を用いる場合には、その枝についた葉の蒸散作用を抑制し、発根をより促進させるため、葉の一部を切除することも有効である。また、マイクロカッティング法で行われているように、高さ３０ｃｍ程度の幼木の頂芽を切除した後、形成される腋芽を切取り、これを共存培養に供してもよい。
【００１５】
一方、本願発明の共存培養に供する植物組織を、組織培養物より得る場合には、多芽体や苗条原基を誘導して得られる不定芽や、この不定芽から伸長してくる茎葉（シュートとも言う。）を、その根元付近から切取って用いればよい。多芽体又は苗条原基は、それぞれの植物において公知の方法を用い、誘導することができる。例えば、前記の木本植物から、多芽体を形成させて本願発明で使用するシュートを取得するには、概ね次のようにして行う。
【００１６】
まず、材料とする植物から頂芽、腋芽等の組織を採取し、採取した組織について、有効塩素量０．５〜４％の次亜塩素酸ナトリウム水溶液又は有効塩素量５〜１５％の過酸化水素水溶液に１０〜２０分間浸漬して表面殺菌を行う。次いで、これを滅菌水で洗浄し、固体培地に挿し付けて芽を開じょさせ、伸長してきた茎葉を同じ組成の培地で継代培養することにより、多芽体を形成させる。ユーカリ属やアカシア属の腋芽を用いる場合には、固体培地は、ショ糖１〜５重量％、植物ホルモンとしてベンジルアデニン（以下、ＢＡと略す。）０．０２〜１ｍｇ／ｌ、ゲランガム０．２〜０．３重量％若しくは寒天０．５〜１重量％を含有するムラシゲスクーグ（以下、ＭＳと略す。）培地又はこのＭＳ培地の硝酸アンモニウム成分と硝酸カリウム成分とを半減させた改変ＭＳ培地を用いるのが好ましい。こうして形成された多芽体からは活発に不定芽が分化し、茎葉が伸長してくるので、本願発明においてはこの不定芽や茎葉を切取って使用すればよい。多芽体自体は、適当に分割して多芽体形成に用いた培地と同一組成の培地で培養することにより維持し、増殖させることができる。
【００１７】
本願発明においては、上記植物組織と根又は植物体とを共存培養する。ここで共存培養とは、植物組織と根又は植物体とを、共通の培地を用いて同時に培養することをいう。このとき根としては、根の形成が肉眼で確認される程度に生長したものであれば用いることができ、また、植物体としても、このような根を有するものであれば用いることができる。むしろ、本願発明においては、根の形成が肉眼で確認されるようになってから時間が経っていない若い根や、このような若い根を有する植物体を使用する程、共存培養する植物組織の発根率は大きく向上するので好ましい。なお、植物体としては、良好な生育を示す植物体を用いる程、発根率の向上効果は大きい。
【００１８】
なお、根を取得する植物の種類、又は植物体の種類については特に問わない。驚くべきことに、発根性の良好な植物のみならず、発根性の劣る、いわゆる難発根性の植物の根又は植物体と共存培養しても、前記植物組織の発根性は向上する。また植物体としては、実生苗を用いてもよいが、挿し木法、マイクロカッティング法により得られた挿し穂を発根させた苗、さらには多芽体等から得られた不定芽や茎葉を発根させた苗を用いてもよい。
【００１９】
本願発明において、植物組織と根又は植物体との共存培養は、挿し木法やマイクロカッティング法における挿し穂からの発根、又は、多芽体等から得られた不定芽や茎葉からの発根のための条件として公知の条件を用いて行えばよい。例えば、定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉は、その基部を適当な固体培地又は液体培地若しくは液肥で湿潤させた支持体に挿しつけて培養を行うことにより、発根させることができる。このとき、同時に培養する根又は植物体は、少なくとも根の一部が培地に接するような状態で、上記固体培地又は支持体に置床すればよい。
【００２０】
共存培養に用いる培地や液肥は、それぞれの植物の発根用に適したものを用いるとよい。培地としては、ムラシゲ・スクーグ（ＭＳ）やガンボーグのＢ５等、植物の組織培養用培地として一般的に良く知られた基本培地又はこれを希釈したものに、必要に応じ、植物ホルモンとして１種類以上のオーキシン類、及び／又は、炭素源としてショ糖５〜３０ｇ／ｌを添加して用いることができる。オーキシン類も特に限定されるものではないが、インドール酪酸（ＩＢＡ）やナフタレン酢酸（ＮＡＡ）等が入手も容易であり使いやすい。固体培地の場合には、上記成分に寒天又はゲランガムを更に加え、固化させて使用する。なお、炭素源として、微生物の炭素源でもあるショ糖等を添加した培地を使用する場合には、無菌環境下で培養を行う。炭素源としてショ糖等の炭水化物を用いる代わりに、炭酸ガスを培養環境中に濃度３００〜１５００ｐｐｍ程度付与して培養することもでき、この場合には、挿し穂を無菌環境下で培養する必要がない。液肥としては市販の家庭園芸用複合肥料を用いることができる。
【００２１】
例えば、ユーカリ属の不定芽又は茎葉を発根させる場合は、ＭＳ培地又はガンボーグのＢ５培地を４倍希釈したものに、植物ホルモンとして、ＩＢＡ、インドール酢酸（ＩＡＡ）、２ジクロロインドール酢酸（Ｃｌ−ＩＡＡ）及びＮＡＡの１種以上を０．５〜５．０ｍｇ／ｌ、好ましくは１．０〜３．０ｍｇ／ｌ添加した培地を、発根用の培地として用いることができる。温室や屋外に生育しているユーカリから得られた枝、定芽又は葉を発根させる場合は、８倍から１６倍に希釈したＭＳ培地若しくはガンボーグのＢ５培地、又は２５０〜５００倍に希釈した家庭園芸用複合肥料（例えば、（株）ハイポネックスジャパン製『ハイポネックス液５−１０−５（登録商標）』）に、必要に応じて上記植物ホルモンを添加し、発根用の培地又は液肥として用いることができる。
【００２２】
なお、液体培地と固体培地とでは、液体培地を用いる方が好ましい。寒天等で固化させた培地で発根させた根は、健全な生長が妨げられる場合があり、しかも、発根後の植替えの際に、根についた寒天を洗い落とす等の必要があるので取扱いが煩雑となる。これに対して、液体培地を用い、この液体培地で湿潤した適当な支持体に植物組織を挿しつけて発根させると、健全な根が得られ、発根後の植替え等の際も取扱いが容易となるからである。
【００２３】
支持体としては、赤土（赤玉土）、川砂、山砂、鹿沼土、バーミキュライト、パーライト、ピートモス、水ごけ等、挿し木法やマイクロカッティング法に用いられる一般的な支持体を使用することができる。その他の発根用資材として、スミザーオアシス社製「オアシス（登録商標）」、日清紡績（株）製「フロリアライト（登録商標）」等も用いることができる。
【００２４】
共存培養は、植物組織の発根過程の全期間にわたって、つまり、植物組織を培地に植付けてから発根するまで行うことが好ましい。培養容器として、底面積４０〜１５０ｃｍ２の容器を用い、これに支持体を入れ、６０〜３００ｍｌの液体培地で湿潤させて植物組織及び根又は植物体を植付ける場合には、植物組織１０に対し、根又は植物体が１以上の割合で同一培養容器内に存在するよう共存培養すれば、この植物組織の発根性を向上させることができる。
【００２５】
共存培養における植物組織と根又は植物体との配置については、特に制限はない。しかし、例えば、図１に示したように、根又は植物体が、発根させようとする植物組織の間に、できるだけ均一に分布するよう配置することが好ましい。なお、図１中、×で示したのが定芽、不定芽、茎葉、枝又は葉等の植物組織、◎で示したのが根又は植物体の植付け位置である。
【００２６】
植物組織の発根後は、ある程度の期間、そのまま培養を続けることにより、根の充実した発根苗を得た後、これを育苗容器又は苗畑等に移植して育成し、植林等の所定の目的に使用可能な苗とすることができる。この間の用土や、苗を育成する際の温度・光強度等の条件は、その植物に適するように適宜設定すればよい。なお、多芽体や苗条原基等、培養組織由来の不定芽又は茎葉を発根させた場合には、通常、育苗容器等への移植の前に、順化の過程を経る必要がある。
【作用】
【００２７】
植物組織を、根や植物体の存在下で培養した場合に、その発根性が向上する理由は明らかではない。枯死した根では、かかる効果は得られないので、生きた根による生理的作用、例えば、発根促進物質の分泌や、培地中に存在する発根阻害物質の吸収等、あるいはこれらの相乗作用が寄与しているものと考えられる。
【００２８】
しかも、本願発明における発根性の向上効果は、難発根性の植物の根又は植物体と共存培養した場合でも達成される。従って、生きた根による上記作用は、その植物の種類や発根性の優劣を問わず、共通の作用であると推測される。
【実施例】
【００２９】
以下、実施例により本願発明をさらに詳細に説明する。
【００３０】
［実施例１］
難発根性のユーカリプタス・グロブラス（Eucalyptus globulus、以下、単にＥ．グロブラスと略記する。）Ａ系統の定芽を用い、特開平８−２２８６２１に示す方法を用いて誘導した多芽体から、約４ｃｍ長さに伸長した茎葉を切取り、これを、発根性に優れたＥ．グロブラスＤ系統の多芽体由来の発根苗（根の形成が肉眼で確認されてから４週間後）と共に、共存培養に供した。Ｅ．グロブラスＡ系統とＤ系統とは、どちらも同じＥ．グロブラスであるが、それぞれ、その由来する母樹が異なっており、遺伝的にも異なる系統であることが確認されている。
【００３１】
なお、共存培養は、底面が正方形で面積１００ｃｍ２の培養容器に、発泡フェノール樹脂（スミザーオアシス社製『オアシス（登録商標）』）とＩＢＡ２．０ｍｇ／ｌを添加した４倍希釈ＭＳ液体培地１００〜２００ｍｌを入れて、発泡フェノール樹脂を液体培地で湿潤させ、これを支持体として、上記茎葉及び発根苗を、培養容器１個あたり合わせて２５本づつ、図１に示すように配置して挿しつけ、炭酸ガス濃度１０００ｐｐｍ、温度２４℃、湿度６０％、照度５０００ｌｕｘ、明期１６時間、非無菌環境下で行った。
【００３２】
共存培養の開始から４週間後、共存培養に供したＥ．グロブラスＡ系統の茎葉を観察し、５ｍｍ以上の根が形成されている場合を「発根」として、発根率を算出した。結果を表１に示す。
【００３３】
表１から明らかなように、本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＡ系統の発根性は大幅に向上し、発根率８１．８％を示した。
【００３４】
［実施例２］
難発根性のＥ．グロブラスＢ系統の多芽体から得られた茎葉を、発根性に優れたＥ．グロブラスＤ系統の苗と共に共存培養に供した他は、実施例１と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＢ系統の発根率を算出した。このＥ．グロブラスＢ系統も、Ｄ系統又は実施例１で使用したＡ系統とは、その由来する母樹が異なっており、遺伝的にも異なる系統であることが確認されている。
【００３５】
結果を表１に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＢ系統の発根性も大幅に向上し、発根率７９．３％を示した。
【００３６】
【表１】
2005102516.tif 000003
【００３７】
［実施例３］
難発根性のＥ．グロブラスＡ系統の多芽体から得られた茎葉２００本づつを、ユーカリプタス・シトリオドーラ（Eucalyptus citriodora、以下、単にＥ．シトリオドーラと略記する。）、ユーカリプタス・カマルドレンシス（Eucalyptus camaldulensis、以下、単にＥ．カマルドレンシスと略記する。）、ユーカリプタス・トレリアーナ（Eucalyptus torelliana、以下、単にＥ．トレリアーナと略記する。）、ユーカリプタス・グランディス（Eucalyptus grandis、以下、単にＥ．グランディスと略記する。）、ユーカリプタス・ニテンス（Eucalyptus nitens、以下、単にＥ．ニテンスと略記する。）、アカシア・モリッシマ（Acacia mollissima、以下、単にＡ．モリッシマと略記する。）又はアカシア・メルンシー（Acacia mearnsii、以下、単にＡ．メルンシーと略記する。）の種子と共に共存培養に供した他は、実施例１と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＡ系統の発根率を算出した。なお、このとき、上記のユーカリ属各種の種子及びアカシア属各種の種子は、共存培養後、約３〜７日後に発芽・発根して、発根苗となった。
【００３８】
結果を表２に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＡ系統の発根性はこの場合も大幅に向上し、いずれの種子と共存培養を行った場合でも、５０％以上の発根率を示した。
【００３９】
［実施例４］
難発根性のＥ．グロブラスＢ系統の多芽体から得られた茎葉２００本づつを、Ｅ．シトリオドーラ、Ｅ．カマルドレンシス、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス、Ｅ．ニテンス、Ａ．モリッシマ又はＡ．メルンシーの種子と共に共存培養に供した他は、実施例３と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＢ系統の発根率を算出した。
【００４０】
結果を表２に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＢ系統の発根性はこの場合も大幅に向上し、いずれの種子と共存培養を行った場合でも、５０％以上の発根率を示した。
【００４１】
［実施例５］
難発根性のＥ．グロブラスＣ系統の幼木の腋芽２００個づつを、Ｅ．シトリオドーラ、Ｅ．カマルドレンシス、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス、Ｅ．ニテンス、Ａ．モリッシマ又はＡ．メルンシーの種子と共に共存培養に供した他は、実施例３と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＣ系統の発根率を算出した。このＥ．グロブラスＣ系統も、先の実施例で使用したＡ系統、Ｂ系統又はＤ系統とは、その由来する母樹が異なっており、遺伝的にも異なる系統であることが確認されている。
【００４２】
結果を表２に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＣ系統の発根性も大幅に向上し、いずれの種子と共存培養を行った場合でも、５０％以上の発根率を示した。
【００４３】
【表２】
2005102516.tif 000004
【００４４】
［実施例６］
難発根性のＥ．グロブラスＡ系統の多芽体由来の茎葉２００本ずつを、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス及びＡ．モリッシマの発根苗と共に共存培養に供した他は、実施例１と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＡ系統の発根率を算出した。なお、このとき、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス及びＡ．モリッシマの発根苗は、これらの種子を、水で湿潤させた発泡フェノール樹脂（スミザーオアシス社製『オアシス（登録商標）』）に播種し、根の形成が肉眼で確認されてから２週間後のものを使用した。
【００４５】
結果を表３に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＡ系統の発根性はこの場合も大幅に向上し、いずれの発根苗と共存培養を行った場合でも、７０％以上の発根率を示した。
【００４６】
［実施例７］
難発根性のユーカリプタス・グンニ（Eucalyptus gunii、以下、単にＥ．グンニと略記する。）の多芽体由来の茎葉２００本ずつを、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス及びＡ．モリッシマの発根苗と共に共存培養に供した他は、実施例６と同様にして共存培養を行い、このＥ．グンニの発根率を算出した。
【００４７】
結果を表３に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グンニの発根性も大幅に向上し、いずれの発根苗と共存培養を行った場合でも、６０％以上の発根率を示した。
【００４８】
【表３】
2005102516.tif 000005
【００４９】
［実施例８］
難発根性のＥ．グロブラスＡ系統の多芽体から得られた茎葉２００本づつを、Ｅ．グロブラスＤ系統、Ｅ．グロブラスＡ系統、Ｅ．シトリオドーラ、Ｅ．カマルドレンシス、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス又はＡ．モリッシマのそれぞれの根と共に、共存培養に供した他は、実施例１と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＡ系統の発根率を算出した。なお、ここで、共存培養に供した根は、Ｅ．グロブラスＤ系統については挿し木法により得られた発根苗の根、Ｅ．グロブラスＡ系統、Ｅ．シトリオドーラ又はＥ．カマルドレンシスについては組織培養法により得られた発根苗の根、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス又はＡ．モリッシマについては、これらの種子を、水で湿潤させた発泡フェノール樹脂（スミザーオアシス社製『オアシス（登録商標）』）に播種して得られた発根苗の根であり、いずれも、根の形成が肉眼で確認されてから２週間後のものを使用した。
【００５０】
結果を表４に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＡ系統の発根性は、この場合も大幅に向上し、難発根性であるＥ．グロブラスＡ系統自身の根を始め、いずれの根と共存培養を行った場合でも、６０％以上の発根率を示した。
【００５１】
［実施例９］
難発根性のＥ．グロブラスＢ系統の多芽体から得られた茎葉２００本づつを、Ｅ．グロブラスＤ系統、Ｅ．グロブラスＡ系統、Ｅ．シトリオドーラ、Ｅ．カマルドレンシス、Ｅ．トレリアーナ、Ｅ．グランディス又はＡ．モリッシマのそれぞれの根と共に、共存培養に供した他は、実施例８と同様にして共存培養を行い、このＥ．グロブラスＢ系統の発根率を算出した。
【００５２】
結果を表４に示す。本願発明の共存培養を行うことにより、Ｅ．グロブラスＢ系統の発根性は、この場合も大幅に向上し、難発根性であるＥ．グロブラスＡ系統の根を始め、いずれの根と共存培養を行った場合でも、７０％以上の発根率を示した。
【００５３】
【表４】
2005102516.tif 000006
【００５４】
［比較例１］
Ｅ．グロブラスＡ系統、Ｅ．グロブラスＢ系統、Ｅ．グンニ若しくはＥ．グロブラスＤ系統の多芽体から得られた茎葉２００本づつ、又はＥ．グロブラスＣ系統若しくはＥ．グロブラスＤ系統の幼木の腋芽２００個づつを、単独で培養した他は、実施例１と同様にして培養を行い、これらの発根率をそれぞれ算出した。
【００５５】
結果を表５に示す。単独で培養を行った場合、発根性に優れたＥ．グロブラスＤ系統については９０％以上の発根率を示したが、難発根性であるＥ．グロブラスＡ系統、Ｂ系統、Ｃ系統及びＥ．グンニについては、発根率が１０〜２５％程度であった。
【００５６】
【表５】
2005102516.tif 000007
【図面の簡単な説明】
【００５７】
【図１】本願発明の共存培養における、植物組織と根又は植物体との配置の一例を示す、平面説明図である。
【符号の説明】
【００５８】
１  培養容器
２  支持体
３  挿しつけ部
４  植物組織
５  根又は植物体
【図１】
2005102516.tif 000008