(57)【要約】【課題】  脂質膜の低コスト性及び迅速性を損なうことなく、溶出及び膜透過の同時評価が可能なリン脂質膜を提供すること。【解決手段】  脂質膜２と、脂質膜２上に形成された、ムコ多糖４を含むゲル状ポリマー６を含浸した親水性フィルタ８を含む親水性フィルタ層１０と、を備えるムコ多糖積層脂質膜１００。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
脂質膜と、
該脂質膜上に形成された、ムコ多糖を含むゲル状ポリマーを含浸した親水性フィルタを含む親水性フィルタ層と、を備えるムコ多糖積層脂質膜。
【請求項２】
前記親水性フィルタ層が前記脂質膜の一方面上に形成されている、請求項１記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項３】
前記親水性フィルタ層は、
ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖とを含む混合物を、当該ポリマーをゾル状にした状態で前記親水性フィルタに含浸させ、ゾル状の当該ポリマーをゲル状ポリマーに転移させて形成させた層である、請求項１又は２記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項４】
前記混合物が水溶液である、請求項３記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項５】
前記ゾル−ゲル転移しうるポリマーがアガロースである、請求項３又は４記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項６】
前記ムコ多糖が、ムチン、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、シアル酸多糖、ヘパリン、ヘパチリン硫酸、ケラト硫酸及びキチンからなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項１〜５記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項７】
前記親水性フィルタが、紙フィルタ、セルロースフィルタ及びセルロースフィルタ誘導体からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項１〜６のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項８】
前記脂質膜は人工リン脂質膜である、請求項１〜７のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項９】
前記親水性フィルタ層の厚さは１００μｍ〜５００μｍである、請求項１〜８のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜。
【請求項１０】
請求項１〜９のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜からなる膜透過性測定用フィルタ。
【請求項１１】
請求項１〜９のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜と、
前記ムコ多糖積層脂質膜の一方面上に配置され当該ムコ多糖積層脂質膜に接するように被検物質を収容する被検物質収容容器と、
前記ムコ多糖積層脂質膜の他方面上に配置され当該ムコ多糖積層脂質膜からの透過物を収容する透過物収容容器と、を備える、膜透過性測定装置。
【請求項１２】
請求項１〜９のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜と、
前記ムコ多糖積層脂質膜の一方面上に配置して当該ムコ多糖積層脂質膜に接するように被検物質を収容するための被検物質収容容器と、
前記ムコ多糖積層脂質膜の他方面上に配置して当該ムコ多糖積層脂質膜からの透過物を収容するための透過物収容容器と、から少なくとも構成される膜透過性測定用キット。
【請求項１３】
請求項１〜９のいずれか一項に記載のムコ多糖積層脂質膜の一方面に被検物質を含む溶液が接するように配置し、当該ムコ多糖積層脂質膜の他方面に前記被検物質を含まない溶液が接するように配置して、
所定時間経過後に、前記他方面側の溶液における前記被検物質の量及び／又は前記一方面側の溶液における前記被検物質の量を測定することにより、被検物質の膜透過性を測定する膜透過性評価方法。
【請求項１４】
請求項１３記載の膜透過性測定方法により複数の被検物質の膜透過性を測定する測定工程と、
前記測定工程で得られた膜透過性のデータに基づいて、前記複数の被検物質から所望の被検物質を選択する選択工程と、を含む、被検物質のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ムコ多糖積層脂質膜、膜透過性測定用フィルタ、膜透過性測定装置、膜透過性測定用キット、膜透過性評価方法及び被検物質のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
医薬品製剤からの薬効成分（以下「薬物」という。）の吸収は、製剤からの薬物の溶出と、それに引き続く、薬物の消化管膜透過の過程を経る。易水溶性化合物の場合、経口吸収性は主に消化管膜透過性によって決定される。
【０００３】
しかしながら、近年の医薬品の開発においては、薬物が難水溶性化合物である場合が多い（非特許文献１）。難水溶性化合物では、消化管膜透過性に加えて、消化管内における薬物の溶出が経口吸収性を大きく左右することが知られている（非特許文献２）。したがって、難水溶性化合物の経口吸収性評価においては、溶出と膜透過を同時に評価しなければならない。特に、溶出と膜透過の同時評価は、製剤化研究においては必須である。
【０００４】
一方で、医薬品開発のコストは増大し、医薬品開発競争は激化していることから、経口吸収性評価に関しても、低コスト性・迅速性が求められている。したがって、低コストかつ迅速であり、なおかつ、溶出と膜透過を同時に評価可能な方法が必要とされている。
【０００５】
溶出過程と消化管膜透過を同時に評価可能な方法としては、動物実験及びCaco-2 cellを用いたin vitro dissolution-permeability system（Caco-2 D-P system）が知られている（非特許文献３及び４）。しかしながら、動物実験は、実験にコストが掛かる、データの解析が難しい、動物倫理上好ましくない、などの問題がある。また、Caco-2 D-P systemも細胞培養が必要であり、コストや迅速性の面で十分ではない。低コストかつ迅速な溶解度測定法も知られている（非特許文献５）が、この方法を応用した膜透過過程をも同時に評価可能な方法は知られていない。
【０００６】
一方、消化管膜透過を低コストかつ迅速に評価可能な方法として、フィルタ保持リン脂質膜を用いる方法が知られている。特に、parallel artificial membrane permeation assay（PAMPA）は広く利用されており（非特許文献６）、それに利用可能な膜も種々知られている（例えば、特許文献１）。しかしながら、フィルタ保持人工リン脂質膜を用いて難水溶性化合物や製剤の評価を行った場合、薬物粉体や製剤と膜が直接接触してしまうために評価できないという問題点があった。
【０００７】
前述の動物実験及びCaco-2 D-P systemにおいては、薬物粉体や製剤と細胞膜との接触は、ムコ多糖粘膜層により防がれている（非特許文献４）。しかしながら、細胞培養が必要であり、また、共有結合架橋を行って別途作成したムコ多糖粘膜層を用いているため、コストや迅速性面で充分ではなかった。
【特許文献１】ＷＯ０１／７０３８０号パンフレット
【非特許文献１】Lipinski, C. A.; J. Pharmacol. Toxicol. Methods, 2000, 44, 235-249
【非特許文献２】Amidon, G. L. et al.; Pharm. Res., 1995, 12, 413-420
【非特許文献３】Kataoka, M. et al.; Pharm. Res., 2003, 20, 1674-1680
【非特許文献４】Yamashita, Lipid-based formulation symposium, 2000, Yokohama
【非特許文献５】Kerns, E. H.; J. Pharm. Sci. 2001, 90, 1838-1858
【非特許文献６】Kansy, Manfred et al.; J. Med. Chem., 1998, 41, 1007-1010
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
そこで、本発明の目的は、脂質膜の低コスト性及び迅速性を損なうことなく、溶出及び膜透過の同時評価が可能なリン脂質膜を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者は、上記目的を達成するため鋭意検討を進めたところ、ゾル−ゲル転移を有するポリマーとムコ多糖を混合することで、ゾル−ゲル転移により容易に装着可能な、ムコ多糖含有ゲル膜を作成可能であることを見出した。また、この膜を脂質膜上に形成形成させることにより、上記目的が達成可能な膜が得られることを見出した。
【００１０】
すなわち、本発明は、脂質膜と、該脂質膜上に形成された、ムコ多糖を含むゲル状ポリマーを含浸した親水性フィルタを含む親水性フィルタ層と、を備えるムコ多糖積層脂質膜を提供するものである。なお、親水性フィルタ層は脂質膜の一方面上に形成されていることが好ましい。
【００１１】
このように、脂質膜上に親水性層を設け、その親水性層にムコ多糖を含有させ、ムコ多糖をゲル状ポリマーで保持するとともに更に親水性フィルタと組合わせる構成を採用したことから、本発明のムコ多糖積層脂質膜を用いることで、低コスト且つ迅速に、溶出過程と消化管膜透過を同時に評価できるようになる。
【００１２】
親水性フィルタ層は、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖とを含む混合物を、当該ポリマーをゾル状にした状態で前記親水性フィルタに含浸させ、ゾル状の当該ポリマーをゲル状ポリマーに転移させて形成させた層であることが好ましい。このようにして親水性フィルタ層を形成することで、脂質膜上の親水性フィルタ層の膜厚を薄くすることができるとともに、膜厚が薄い場合であっても脂質膜からの剥離を防止できる。
【００１３】
上記混合物は水溶液とすることができ、ゾル−ゲル転移しうるポリマーはアガロースが好適である。混合物が水溶液であると親水性フィルタへの含浸を容易且つ確実に実施することができ、ゾル−ゲル転移しうるポリマーをアガロースとすることで、比較的低温で親水性フィルタ層を形成することができる。
【００１４】
ムコ多糖は、ムチン、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、シアル酸多糖、ヘパリン、ヘパチリン硫酸、ケラト硫酸及びキチンからなる群より選ぶことができ、親水性フィルタは、紙フィルタ、セルロースフィルタ及びセルロースフィルタ誘導体からなる群より選ぶことができる。また、脂質膜は人工リン脂質膜が好ましい。このような材料を用いることにより、上記効果をより顕著に発揮させることができる。
【００１５】
上述した脂質膜はフィルタとして応用できる。すなわち、ムコ多糖積層脂質膜からなる膜透過性測定用フィルタが提供される。また、脂質膜を用いて膜透過性測定装置を作製できる。このような膜透過性測定装置としては、ムコ多糖積層脂質膜と、ムコ多糖積層脂質膜の一方面上に配置され当該ムコ多糖積層脂質膜に接するように被検物質を収容する被検物質収容容器と、ムコ多糖積層脂質膜の他方面上に配置され当該ムコ多糖積層脂質膜からの透過物を収容する透過物収容容器とを備える、膜透過性測定装置が挙げられる。
【００１６】
更に、ムコ多糖積層脂質膜と、ムコ多糖積層脂質膜の一方面上に配置して当該ムコ多糖積層脂質膜に接するように被検物質を収容するための被検物質収容容器と、ムコ多糖積層脂質膜の他方面上に配置して当該ムコ多糖積層脂質膜からの透過物を収容するための透過物収容容器と、から少なくとも構成される膜透過性測定用キットが提供される。ムコ多糖積層脂質膜は予め調製されていても、調製されていなくてもよい。ムコ多糖積層脂質膜が予め調製されていない場合は、例えば、キット利用者が必要時に調製できるように、ムコ多糖積層脂質膜の原料となる素材と、その調製方法を示した書類とが添付されていればよい。
【００１７】
本発明はまた、ムコ多糖積層脂質膜の一方面に被検物質を含む溶液が接するように配置し、当該ムコ多糖積層脂質膜の他方面に被検物質を含まない溶液が接するように配置して、所定時間経過後に、他方面側の溶液における被検物質の量及び／又は一方面側の溶液における被検物質の量を測定することにより、被検物質の膜透過性を測定する膜透過性評価方法を提供する。
【００１８】
この膜透過性評価方法を適用して被検物質のスクリーニングが可能である。すなわち、上記膜透過性測定方法により複数の被検物質の膜透過性を測定する測定工程と、測定工程で得られた膜透過性のデータに基づいて、複数の被検物質から所望の被検物質を選択する選択工程と、を含む、被検物質のスクリーニング方法を提供可能である。
【発明の効果】
【００１９】
本発明のムコ多糖積層脂質膜を用いることで、低コスト性かつ迅速に、薬物やその調製物の溶出及び膜透過の同時評価が可能となり、有用な医薬品の開発が可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２０】
以下、図面を参照しながら、好適な実施形態に係るカバー材並びにカバー材付き貼付剤について説明する。なお、図面の寸法比率は説明のものと必ずしも一致していない。
【００２１】
図１は、第１実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜を模式的に示す断面図である。図１に示す第１実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜１００は、脂質膜２と、脂質膜２上に形成された、ムコ多糖４を含むゲル状ポリマー６を含浸した親水性フィルタ８を含む親水性フィルタ層１０とを備えている。図１においてムコ多糖４を粒状に表したが、ムコ多糖４はこのようにゲル状ポリマー６中で分散していてもよく、ゲル状ポリマー６中で溶解又は膨潤されていてもよい。また、図１において親水性フィルタ８は親水性フィルタ層１０の脂質膜２側だけに存在するように表したが、親水性フィルタ８は親水性フィルタ層１０の全体に配置されていてもよい。
【００２２】
図２は、第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜を模式的に示す断面図である。図２に示す第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜１１０は、第１実施形態と同様に、脂質膜２と、脂質膜２上に形成された、ムコ多糖４を含むゲル状ポリマー６を含浸した親水性フィルタ８を含む親水性フィルタ層１０とを備えているが、脂質膜２は支持体１２により支持されている点において第１実施形態と異なる。このように支持体１２で支持することにより脂質膜２の形状安定性を担保でき、膜透過性評価や被検物質のスクリーニングをより正確に行うことができる。
【００２３】
図３は図２に示す第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜１１０が組み込まれた膜透過性測定装置２００を模式的に示す断面図である。図２に示す膜透過性測定装置２００は、ムコ多糖積層脂質膜１１０と、ムコ多糖積層脂質膜１１０の一方面上に配置されムコ多糖積層脂質膜１１０に接するように被検物質を収容する被検物質収容容器２０と、ムコ多糖積層脂質膜１１０の他方面上に配置されムコ多糖積層脂質膜１１０からの透過物を収容する透過物収容容器２２とを備えたものである。
【００２４】
図４は図３に示す膜透過性測定装置２００を用いて、被検物質の膜透過性を測定している状態を模式的に示す断面図である。図４は、ムコ多糖積層脂質膜１１０の一方面に被検物質３２を含む溶液３０が接するように配置して、ムコ多糖積層脂質膜１１０の他方面に被検物質３２を含まない溶液３４が接するように配置して、所定の時間が経過した状態を示している。
【００２５】
図４においては、被検物質収容容器２０に収容された溶液３０に初期的に含まれていた被検物質３２が減少し、その一部がムコ多糖積層脂質膜１１０を通過して、透過物収容容器２２中の溶液３４中に到達している。図４に示す状態で、他方面側の溶液３４における被検物質３２の量及び／又は一方面側の溶液３０における被検物質３２の量を測定することにより、被検物質３２の膜透過性を測定することができる。
【００２６】
図３及び４に示す膜透過性測定装置２００には、脂質膜２上に親水性フィルタ層１０を備えるムコ多糖積層脂質膜１１０を用いていることから、非特許文献５や特許文献１において生じていた、薬物粉体や製剤と膜が直接接触してしまうために評価ができないという問題が解消される。また、ムコ多糖積層脂質膜１１０には非特許文献４の構成とは異なって、脂質膜２上に親水性フィルタ層１０を設け、その親水性フィルタ層１０にムコ多糖４を含有させ、ムコ多糖４をゲル状ポリマー６で保持するとともに、更に親水性フィルタ８と組合わせたことから、低コスト且つ迅速に、溶出過程と消化管膜透過を同時に評価できる。
【００２７】
以下、本発明に適用される構成要素の各々について好適な実施形態を説明する。
ムコ多糖とは、具体的には、ムチン、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、シアル酸多糖、ヘパリン、ヘパチリン硫酸、ケラト硫酸、キチン及びそれらの混合物をいう。
【００２８】
ゾル−ゲル転移しうるポリマーとは、物理的刺激（温度、光、イオン強度、ｐＨなど）に応答して粘弾性が変化するポリマーであり、当該目的を達成するものであれば天然ポリマーであっても合成ポリマーであってもよい。
【００２９】
天然ポリマーとしては、例えば、アガロース、ゼラチン、カラギーナン、マンナン等が挙げられる。さらに、それらの化学装飾物及び化学処理物などが挙げられる。
【００３０】
合成ポリマーとしては、ポリＮ置換アクリルアミド誘導体、ポリＮ置換メタアクリルアミド誘導体、ポリビニルメチルエーテル、ポリビニルアルコール部分酸化物、ポリエチレンオキサイド−ポリプロピレンオキサイド−ポリエチレンオキサイドブロックポリマー（ＰＥＯ−ＰＰＯ−ＰＥＯ：商品名  Ｐｌｕｒｏｎｉｃ、認可グレードはＦ６８及びＦ１２７）、その類似のポリマーとしてポリプロピレンオキサイド−ポリエチレンオキサイド−ポリプロピレンオキサイドブロックポリマー（ＰＰＯ−ＰＥＯ−ＰＰＯ：商品名  ＰｌｕｒｏｎｉｃＲ）等が知られている。また、疎水部にＰＰＯの変わりにポリ乳酸／ポリグリコール酸共重合体を用いた、ポリエチレンオキサイド−ポリ乳酸／ポリグリコール酸共重合体−ポリエチレンオキサイドブロックポリマー（ＰＥＯ−ＰＬＧＡ−ＰＥＯ：商品名  Ｒｅｇｅｌ）又はポリ乳酸／ポリグリコール酸共重合体−ポリエチレンオキサイド−ポリ乳酸／ポリグリコール酸共重合体ブロックポリマー（ＰＬＧＡ−ＰＥＯ−ＰＬＧＡ：商品名  Ｒｅｇｅｌ）も同様の温度応答性機能を持つことが知られている（国際公開公報  ＷＯ９９／１８１４２号）。
【００３１】
このうち、温度に応答して粘弾性が変化するポリマーが使用する際の簡便性の上から好ましく、その中でも費用の面からは天然ポリマーが特に好ましい。
【００３２】
親水性フィルタとは、水溶液が容易に浸透可能なフィルタであり、紙フィルタ、セルロースフィルタ、その他親水性処理を施したフィルタ等が挙げられる。具体的にはろ紙が挙げられる。
【００３３】
脂質膜とは、膜透過性を評価するために用いられる人工脂質膜であれば特に限定されないが、好ましくは人工リン脂質膜である。具体的には、脂質と有機溶媒からなる膜、ｎ−デカンに生体（ラット）から採取した膜成分を溶解した膜（INUI, Ken-ichi et al.; Journal of Pharmacy and Pharmacology, 1977, 29, 22-26）、ドデカン、ホスファチジルコリン、１，９−デカジエンを用いた膜、脂肪酸を含有する膜（Kansy, Manfred et al.; J. Med. Chem., 1998, 41, 1007-1010）、炭素数７から９の不飽和炭化水素を用いた膜（国際公開公報  ＷＯ０１／７０３８０号）が挙げられる。好ましくは、炭素数７から９の不飽和炭化水素、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール及びコレステロールを含有する膜である。脂質膜は、それを支持することができる支持体をさらに含んでいてもよい。ここで支持体としては、フィルターペーパー等の多孔性のシート状物あるいは膜状物が挙げられ、好ましくは、疎水性ＰＴＦＥ（ポリテトラフルオロエチレン）、疎水性ＰＶＤＦ（ポリビニリデンジフルオリド）などの疎水性材質からなるもの（以下、疎水性フィルタともいう）が挙げられる。
【００３４】
本発明において、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖とは混合溶解物として調製され、親水性フィルタ層に含浸されることが好ましい。この混合溶解物の量は特に限定されないが、被検物質の膜透過性の定量的な評価のためには、親水性フィルタ層を全て含浸し、およそ均一に脂質膜を覆う程度の量が必要である。具体的には、表面積が０．２６６ｃｍ２の膜に対して１０μＬ程度あれば十分であるが、これ以上の過剰量を用いてもよい。
【００３５】
脂質膜上には親水性フィルタ層が形成されているが、親水性フィルタ層は脂質膜に付着及び／又は保持されているとよい。ここで、付着及び／または保持とは、具体的には、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖との混合溶解物を含浸した親水性フィルタ層が、脂質膜に付着及び／または保持されている状態を指す。この際、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖との混合溶解物を含浸した親水性フィルタ層と脂質膜とは、直接的には（共有結合等により）結合していない。
【００３６】
この際、前記のゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖との混合溶解物を含浸した親水性フィルタ層は、脂質膜全体を覆っていてもよいが、脂質膜の一方面に付着及び／または保持されていればその目的を達成できる。生体との類似性や、用いる各原料の量や膜の調製に必要な手間等を考慮すれば、脂質膜の一方面に付着及び／または保持されているのが好ましい。
【００３７】
当該脂質膜は、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖との混合溶解物を含浸した親水性フィルタ層を含んだ全体の膜の厚さとして１００μｍより薄いものであれば安定的利用が困難になり、同じく５００μｍより厚いものであれば消化管ムコ多糖層の厚さ（１００〜５００μｍ程度）を大幅に超えてしまうため、これにより評価される被検物質の膜透過性が生体内でのそれと合致しなくなるおそれが高くなる。従って、ゾル−ゲル転移しうるポリマーとムコ多糖との混合溶解物を含浸した親水性フィルタ層を含んだ全体の膜の厚さとして、１００μｍ〜５００μｍの厚さを有するものが好ましい。尚、脂質膜自体は通常５０Å〜２００μｍの範囲で調製され得る。
【００３８】
本発明のムコ多糖積層脂質膜は、例えば次のように調製することができる。ムコ多糖とゾル−ゲル転移しうるポリマーとを緩衝液に添加して、ムコ多糖ゲルを作成する。親水性フィルタ粉砕物を揮発性有機溶媒中に分散し、疎水性フィルタ上に添加後にろ過し、有機溶媒を蒸発させることで、疎水性フィルタ上に親水性フィルタ層を接合させる。ムコ多糖ゲルを物理的刺激（温度、光、イオン強度、ｐＨなど）によりゾル状態にした後、親水性フィルタ層に添加し、物理的刺激によりゲル化して固定する。疎水性フィルタに脂質成分を添加して脂質膜を作成する。
【００３９】
この際、９６穴メンブレフィルター等の多穴メンブレフィルターに本発明のムコ多糖積層脂質膜を作成し（ドナープレート）、このドナープレートを脂質膜を作成していない同種の多穴メンブレフィルター（アクセプタープレート）の上に装着すれば、簡易に被検物質の膜透過性を測定することが可能となる。
【００４０】
被検物質の膜透過性の測定は、例えば、本発明のムコ多糖積層脂質膜の一方面に被検物質を含む溶液を配置し、ムコ多糖積層脂質膜の他方面に被検物質を含まない溶液を配置し、一定時間経過後に、他方面側に透過した被検物質の量及び／又は一方面側に残存する被検物質の量を測定すればよい。このような被検物質の膜透過性を測定する工程と、所定の膜透過性を有する被検物質を選択する工程とを組み合わせて、被検物質のスクリーニングに供してもよい。
【実施例】
【００４１】
以下、本発明の実施例を示して、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではなく、本発明の技術的思想を逸脱しない範囲での種々の変更が可能である。
【００４２】
（実施例１）ムコ多糖層-人工リン脂質膜の作製
実施例１に係るムコ多糖積層脂質膜を図５に示す工程図に従って作製した。
先ず、コンドロイチン硫酸（シグマ社より購入）とアガロース（低融点）（シグマ社より購入）をｐＨ６．０リン酸緩衝液に添加して、加熱溶解し、各々を１％含有するゲル（以下ムコ多糖ゲル）を作成した。
【００４３】
紙製フィルタ（Ａｄｖａｎｔｅｃ  ５Ａ（ＴＯＹＯ社製））を水に入れ、ミキサーにて破砕後、さらにヒストロン破砕機で破砕した。得られた破砕物をエタノール中に分散し、濾紙分散液（ろ紙３ｍｇ／ＥｔＯＨ）を作成した。
【００４４】
ミリポア９６穴メンブレフィルター（疎水性ＰＶＤＦ（ポリビニリデンジフルオリド）、ｐｏｒｅ  ０．４５μｍ、面積  ０．２６６ｃｍ２）（日本ミリポア社より購入）に、ろ紙分散液２００μＬを添加し吸引濾過後、エタノールを７０℃にて３０分間程度蒸発させることで、疎水性フィルタ上に、親水性フィルタ層を構築した。親水性フィルタ層に、加熱融解したムコ多糖ゲル１０μＬを添加し、５℃にて３０分冷却した。さらに、疎水性フィルタに、フォスファチジルコリン２．０％（ｗ／ｗ）、ドデカン９８．０％（ｗ／ｗ）からなるリン脂質有機溶媒溶液を５μＬ添加することで、ムコ多糖層と人工リン脂質膜が重なった膜（ムコ多糖層−人工リン脂質膜：ムコ多糖積層脂質膜）を作製した。作製したムコ多糖積層脂質膜の外観を図６（ａ）及び（ｂ）に示す。
【００４５】
（比較例１）
実施例１において、親水性フィルタ層を構せずにムコ多糖ゲルを添加した。その場合の外観を、図７（ａ）に示す。ムコ多糖ゲル１０μＬ添加では、疎水性フィルタとの表面張力により液滴状になってしまった。均一に添加するには７５μＬを必要とした（図７（ｂ））。７５μＬを添加した場合のムコ多糖ゲルの膜厚は約３０００μｍであった。
【００４６】
（実施例２）
３０％のＤＭＳＯを含むｐＨ７．４リン酸緩衝液を９６穴テフロン（登録商標）製アクセプタープレート（日本ミリポア社より購入）に３００μＬ添加した。アクセプタープレート上に、実施例１と同様の方法（但し、フォスファチジルコリン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルエタノールアミン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルセリン０．２％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルイノシトール０．２％（ｗ／ｗ）、コレステロール１．０％（ｗ／ｗ）、１，７−オクタジエン９７．０％（ｗ／ｗ）からなるリン脂質有機溶媒溶液を利用）により作成したムコ多糖層−人工リン脂質膜を底部に有するプレートを装着した（ドナープレート）。尚、ムコ多糖層−人工リン脂質膜を作成する際、ムコ多糖ゲル添加量を７．５μＬから７５μＬまで変化させてムコ多糖層−人工リン脂質膜を作成した。また、同時に対照として、ミリポア９６穴メンブレフィルターに、フォスファチジルコリン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルエタノールアミン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルセリン０．２％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルイノシトール０．２％（ｗ／ｗ）、コレステロール１．０％（ｗ／ｗ）、１，７−オクタジエン９７．０％（ｗ／ｗ）からなるリン脂質有機溶媒溶液のみを添加して作成した、ムコ多糖層を有しない人工リン脂質膜も作成した。
【００４７】
Ｈｙｄｒｏｃｏｒｔｉｓｏｎｅ、Ｋｅｔｏｐｒｏｆｅｎ、Ｐｒｏｐｒａｎｏｌｏｌ（いずれもシグマ社より購入）を被検物質とし、それらの０．５ｍＭ  ｐＨ６．０緩衝液を１００μＬ、各ウェル上に添加した。２時間３０℃にてインキュベート後、アクセプター側に透過した量をＵＶ（スペクトラマックス、モレキュラーデバイス社製）にて測定した。測定結果を図８に示す。図８より、膜透過率は、膜が存在しない場合の理論ＵＶ吸収量に対する実際のＵＶ吸収量の比率とした。ムコ多糖層が厚くなるに従い、膜透過性が低下していることが示唆された。
【００４８】
（実施例３）薬物懸濁液からの吸収性評価への応用例
３０％のＤＭＳＯを含むｐＨ７．４リン酸緩衝液を９６穴テフロン（登録商標）製アクセプタープレートに３００μＬ添加した。アクセプタープレート上に、実施例１と同様の方法（（但し、フォスファチジルコリン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルエタノールアミン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルセリン０．２％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルイノシトール０．２％（ｗ／ｗ）、コレステロール１．０％（ｗ／ｗ）、１，７−オクタジエン９７．０％（ｗ／ｗ）からなるリン脂質有機溶媒溶液を利用）により作成したムコ多糖層−人工リン脂質膜を底部に有するプレート（ドナープレート）を装着した。尚、ムコ多糖層−人工リン脂質膜を作成する際、対照として、ミリポア９６穴メンブレフィルターに、フォスファチジルコリン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルエタノールアミン０．８％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルセリン０．２％（ｗ／ｗ）、フォスファチジルイノシトール０．２％（ｗ／ｗ）、コレステロール１．０％（ｗ／ｗ）、１，７−オクタジエン９７．０％（ｗ／ｗ）からなるリン脂質有機溶媒溶液のみを添加して作成した、ムコ多糖層を有しない人工リン脂質膜も作成した。
【００４９】
ドナープレートに、絶食及び飽食時擬似消化管液（Galia, E.; Nicolaides, E.; Horter, D.; Lobenberg, R.; Reppas, C. et al.,. Pharm. Res. 1998, 15, 698-705.）を９５μＬ添加した。さらに、難水溶性薬物であるダナゾールのカルボキシメチルセルロースナトリウム懸濁液５μＬ（０．４ｍｇ／ｍＬ）を添加した。１５時間３０℃にてインキュベート後、アクセプター側に透過した量をＨＰＬＣにて測定した。ＨＰＬＣ条件は、Ａｌｌｉａｎｃｅ（Ｗａｔｅｒｓ社製）を用い、移動相６０％アセトニトリル０．１％ＴＦＡ、カラムＣａｄｅｎｚａ  ＣＤ  Ｃ１８  ５０×３ｍｍ（Ｉｍｔａｋｔ社製）、カラム温度４０℃、流量１ｍＬ／分、検出波長２２９ｎｍとした。同様にして、ムコ多糖層がない場合も測定した。以下の表１に示すように、絶食擬似消化管液を用いた場合の透過量と飽食模擬溶液を用いた場合の比率を絶食／飽食比率とした。ムコ多糖がない場合、臨床における吸収を反映しなかったが、ムコ多糖がある場合は反映した。なお、表１における「ａ」は絶食時消化管模擬溶液と飽食時消化管模擬溶液を用いた場合の透過率の比率を意味し、「ｂ」はヒトにおける絶食時投与と飽食時投与の吸収量の比率（Charman, W. N.; Rogge, M. C.; Boddy, A. W.; Berger, B. M. J. Clin. Pharm. 1993, 33, 381-386.）を意味する。
【００５０】
【表１】
2005221442.tif 000003
【図面の簡単な説明】
【００５１】
【図１】第１実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜を模式的に示す断面図である。
【図２】第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜を模式的に示す断面図である。
【図３】第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜１１０が組み込まれた膜透過性測定装置２００を模式的に示す断面図である。
【図４】膜透過性測定装置２００を用いて、被検物質の膜透過性を測定している状態を模式的に示す断面図である。
【図５】実施例１に係るムコ多糖積層脂質膜を作製する工程を模式的に示す断面図である。
【図６】（ａ）は実施例１のムコ多糖積層脂質膜の側面図、（ｂ）は実施例１のムコ多糖積層脂質膜の上面図である。
【図７】（ａ）は、親水性フィルタ層を構せずにムコ多糖ゲルを添加した状態を示す側面図、（ｂ）は、親水性フィルタ層を構せずにムコ多糖ゲルを均一に添加した状態を示す側面図である。
【図８】実施例８における膜透過性評価の結果を示す図である。
【符号の説明】
【００５２】
２・・・脂質膜、４・・・ムコ多糖、６・・・ゲル状ポリマー、８・・・親水性フィルタ、１０・・・親水性フィルタ層、１２・・・支持体、２０・・・被検物質収容容器、２２・・・透過物収容容器、３０，３４・・・溶液、３２・・・被検物質、１００・・・第１実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜、１１０・・・第２実施形態に係るムコ多糖積層脂質膜、２００・・・膜透過性測定装置。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
2005221442.tif 000008
【図６】
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【図７】
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【図８】
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