(57)【要約】【課題】  オオムギ等のイネ科植物のゲノムＤＮＡ中に存在し、小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーとその利用法を提供する。【解決手段】  オオムギの詳細な連鎖地図を作成し、連鎖解析を行なうことにより、オオムギ３Ｈ染色体上に座乗する小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する一組の遺伝マーカーを見出した。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
イネ科植物のゲノムＤＮＡ中に存在し、小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーであって、
上記小穂脱落性を支配する遺伝子座から０ないし９センチモルガンの範囲内の距離に位置することを特徴とする遺伝マーカー。
【請求項２】
上記イネ科植物がムギ類であることを特徴とする請求項１に記載の遺伝マーカー。
【請求項３】
上記ムギ類がオオムギであることを特徴とする請求項２に記載の遺伝マーカー。
【請求項４】
上記ゲノムＤＮＡが３Ｈ染色体であることを特徴とする請求項３に記載の遺伝マーカー。
【請求項５】
配列番号１に示される塩基配列を有するプライマーと、配列番号２に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第一プライマーセットを用いて増幅されることを特徴とする請求項１ないし４のいずれか１項に記載の遺伝マーカー。
【請求項６】
配列番号３に示される塩基配列を有するプライマーと、配列番号４に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第二プライマーセットを用いて増幅されることを特徴とする請求項１ないし４のいずれか１項に記載の遺伝マーカー。
【請求項７】
請求項１ないし６のいずれか１項に記載の遺伝マーカーを用いて小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を単離することを特徴とするＤＮＡ断片の単離方法。
【請求項８】
請求項７に記載の単離方法により得られた上記小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を、イネ科植物のゲノムＤＮＡに導入することを特徴とする小穂脱落性改変イネ科植物の生産方法。
【請求項９】
上記イネ科植物がムギ類であることを特徴とする請求項８に記載の小穂脱落性改変イネ科植物の生産方法。
【請求項１０】
上記ムギ類がオオムギであることを特徴とする請求項９に記載の小穂脱落性改変イネ科植物の生産方法。
【請求項１１】
請求項８ないし１０のいずれか１項に記載の小穂脱落性改変イネ科植物の生産方法によって得られた小穂脱落性改変イネ科植物。
【請求項１２】
請求項１ないし６のいずれか１項に記載の遺伝マーカーを指標として小穂脱落性改変イネ科植物を選抜する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規遺伝マーカーおよびその利用法に関するものであり、特に、オオムギ等のイネ科植物における小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーと、その利用に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
イネ科植物の小穂脱落性を支配する遺伝子は、その対立遺伝子により登熟後穂軸がもろくなって種子が落ちる表現型（小穂脱落性）、または登熟後も種子が落ちない表現型（小穂非脱落性）を表す。野生種では、次世代を残すために穂から自然に種子が落ちること、すなわち小穂脱落性を有することが重要である。一方、栽培種は基本的に小穂非脱落性であるものの、栽培種と野生種の交雑では雑種が小穂脱落性となり、また、栽培種同士の交雑からも小穂脱落性の雑種が分離することがある。小穂脱落性の個体では穂から自然に種子が落ちて収量の評価ができないので、農業形質の評価のためには小穂非脱落性であることが重要である。
【０００３】
従来、作物の育種は目標形質を有する栽培品種や野生種等を交配し、多数の個体を実際に栽培して目標形質を有する個体を選抜し、当該目標形質を遺伝的に固定化しなければならず、広大な圃場や多大な人力、相当の年月が必要であった。例えば、小穂脱落性を目標形質とした場合には、選抜対象集団を栽培し、各個体が登熟した後に小穂脱落性の有無を実際に調査することにより、選抜すべき個体を特定しなければならなかった。
【０００４】
そこで、近年は育種期間の短縮、労働力および圃場面積の縮減を図るため、遺伝マーカーを指標とした選抜による育種法が用いられるようになってきた。このような遺伝マーカーによる育種では、マーカーの遺伝子型により目標形質の有無の推定が容易となるため、幼苗段階で選抜が可能となる。したがって、遺伝マーカーを利用すれば効率的な育種が実現可能である。そして、遺伝マーカーを利用した育種を実現するためには、目標形質に強く連鎖した遺伝マーカーの開発が必須となる。
【０００５】
ところで、小穂脱落性は、主働遺伝子が支配する形質である。このような主働遺伝子の遺伝子座を推定する方法としては、連鎖解析が知られている。連鎖解析は、遺伝法則を利用して複数の遺伝子座の位置（座位）を解析する方法であり、複数の座位のうち１つを目的形質を支配する遺伝子座位、他を遺伝マーカー座位とすると、遺伝マーカー座位のデータから目的形質を支配する遺伝子座位を特定することが可能である。
【０００６】
遺伝マーカーは、１９８０年代後半にＤＮＡマーカーが登場し、ＤＮＡマーカー利用による詳細な連鎖地図作成が大きく進んだ。その結果、そのような高密度連鎖地図に基づいて多くの生物で連鎖解析が行われるようになった。
【０００７】
以上のように、目標形質に連鎖する遺伝マーカーの開発は、染色体全体をカバーできる詳細な連鎖地図に基づいた精度の高い連鎖解析により可能となり、得られた遺伝マーカーを利用することにより、効率的な育種が実現できるといえる。
【０００８】
上記遺伝マーカーに関する技術としては、オオムギを例に挙げると、１）オオムギにアルミニウム耐性を付与する遺伝子に連鎖する遺伝マーカーとその利用に関する技術（特許文献１参照）や、２）オオムギ染色体由来の核酸マーカーをコムギの背景で検出するための新規なプライマーセット（特許文献２参照）とその利用に関する技術等が、本発明者らによって提案されている。
【特許文献１】特開２００２−２９１４７４号公報（２００２（平成１４）年１０月８日公開）
【特許文献２】特開２００３−１１１５９３号公報（２００３（平成１５）年４月１５日公開）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
上述のように、イネ科植物、特にオオムギ、コムギ、イネ等の作物においては、小穂非脱落性の表現型を有することが、育種において収量性をはじめとする農業的特性の評価をするために重要である。しかし、小穂脱落性か、小穂非脱落性かは、実際に対象とする植物個体が登熟した後に観察しなければ判定できなかった。そこで小穂脱落性を改変した植物の育種には遺伝マーカーを利用することが非常に有効である。小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーが開発され、利用可能となれば、小穂脱落性改変植物の育種の大幅な効率化を実現することが可能となる。
【００１０】
本発明は、上記課題に鑑みなされたものであって、その目的は、イネ科植物、特にオオムギにおける小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する新規遺伝マーカーと、その代表的な利用法とを提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは、上記課題を解決すべく、発明者らが有するオオムギＥＳＴ配列に基づいてプライマーセットを設計し、当該プライマーセットにより増幅されるオオムギゲノム断片の多型の有無により遺伝マーカー（ＤＮＡマーカー）を開発した。さらに、醸造用オオムギ「はるな二条」と野生オオムギ「Ｈ６０２」の交雑Ｆ１から作出した倍加半数体（doubled haploid、以下「ＤＨ」と略記する。）集団を材料として、上記遺伝マーカー間の連鎖を検出して、当該ＤＨ系統の連鎖地図を作成し、この連鎖地図に基づいて小穂脱落性を支配する遺伝子座の連鎖解析を行なった。その結果、小穂脱落性を支配する遺伝子座を３Ｈ染色体上に検出した。本発明者らはさらに解析を進め、小穂脱落性に関与する遺伝子座に連鎖する新規遺伝マーカーを見いだした。すなわち本発明は、上記新規知見により完成されたものであり、以下の発明を包含する。
【００１２】
すなわち本発明にかかる遺伝マーカーは、イネ科植物のゲノムＤＮＡ中に存在し、小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーであって、上記小穂脱落性を支配する遺伝子座から０ないし９センチモルガンの範囲内の距離に位置することを特徴としている。上記遺伝マーカーは、小穂脱落性を支配する遺伝子座に強連鎖するため、当該遺伝マーカーと小穂脱落性を支配する遺伝子座間で分離して組み換えが起こる確率は低い。それゆえ上記遺伝マーカーを用いることによって、例えば小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の取得、小穂脱落性改変イネ科植物の生産（作出）・判別等を行なうことが可能となる。
【００１３】
さらに本発明にかかる遺伝マーカーは、上記イネ科植物がムギ類であることを特徴としている。それゆえ上記遺伝マーカーを用いることによって、オオムギ・コムギ等のムギ類において小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の取得、小穂脱落性改変ムギ類の生産（作出）・判別等を行なうことが可能となる。
【００１４】
さらに本発明にかかる遺伝マーカーは、上記ムギ類がオオムギであることを特徴としている。それゆえ上記遺伝マーカーを用いることによって、オオムギにおいて小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の取得、小穂脱落性改変オオムギの生産（作出）・判別等を行なうことが可能となる。
【００１５】
さらに本発明にかかる遺伝マーカーは、上記ゲノムＤＮＡが３Ｈ染色体であることを特徴としている。それゆえ上記遺伝マーカーを用いることによって、オオムギの３Ｈ染色体上に存在する小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の取得、小穂脱落性改変オオムギの生産（作出）・判別等を行なうことが可能となる。
【００１６】
さらに本発明にかかる遺伝マーカーは、配列番号１に示される塩基配列を有するプライマーと、配列番号２に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第一プライマーセットを用いて増幅されることを特徴としている。上記第一プライマーセットを用いてＰＣＲ等の増幅反応を行なえば当該遺伝マーカーを容易に増幅・検出することが可能となり、小穂脱落性改変イネ科植物の判別を容易に行なうことができる。
【００１７】
また本発明にかかる遺伝マーカーは、配列番号３に示される塩基配列を有するプライマーと、配列番号４に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第二プライマーセットを用いて増幅されることを特徴としている。上記第二プライマーセットを用いてＰＣＲ等の増幅反応を行なえば当該遺伝マーカーを容易に増幅・検出することが可能となり、小穂脱落性改変イネ科植物の判別を容易に行なうことができる。
【００１８】
本発明にかかるＤＮＡ断片の単離方法は、上記本発明にかかる遺伝マーカーを用いて小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を単離することを特徴としている。本発明にかかる遺伝マーカーは小穂脱落性を支配する遺伝子座に強連鎖するものであり、上記遺伝マーカーを目標にクローニングを行なえば、小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を容易に単離することが可能となる。
【００１９】
また本発明にかかる小穂脱落性改変イネ科植物の生産方法は、上記本発明にかかるＤＮＡ断片の単離方法により得られた上記小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を、イネ科植物のゲノムＤＮＡに導入することを特徴としている。上記イネ科植物はムギ類であることが好ましく、オオムギであることがより好ましい。当該生産方法により、小穂脱落性改変イネ科植物を生産することが可能となる。また、当該生産方法により得られた小穂脱落性改変イネ科植物も、本発明に含まれる。
【００２０】
本発明にかかる小穂脱落性改変イネ科植物を選抜する方法は、上記本発明にかかる遺伝マーカーを指標として、小穂脱落性改変イネ科植物を選抜する方法である。上記本発明にかかる遺伝マーカーは、小穂脱落性を支配する遺伝子座に強連鎖するため、当該遺伝マーカーと小穂脱落性を支配する遺伝子座間で分離して組み換えが起こる確率が非常に低い。それゆえ上記遺伝マーカーを検出することによって、試験対象植物における小穂脱落性を支配する遺伝子座の遺伝子型を容易に判別することができ、選抜すべき個体を容易に見出すことが可能となる。
【発明の効果】
【００２１】
本発明にかかる遺伝マーカーは、小穂脱落性を支配する遺伝子座と連鎖するため、当該遺伝マーカーを指標として小穂脱落性を改変したイネ科植物の育種を可能とする。したがって、小穂脱落性改変植物の効率的な育種が実現できるという効果を奏する。より具体的には、幼苗段階で目的個体を選抜できるため、実際に植物個体の小穂脱落性または小穂非脱落性を観察した後に目的の個体を選抜する必要がなくなり、育種期間を短縮できるという効果を奏する。また、労働力および圃場面積を縮減できるという効果を奏する。
【００２２】
さらに、上記遺伝マーカーを指標として選択的に育種された小穂非脱落性植物は、登熟後も穂から種子が落ちないので、収量の減少を来たさないという効果を奏する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２３】
本発明の実施の一形態について説明すれば、以下のとおりである。なお、本発明はこれに限定されるものではない。
【００２４】
本発明は、イネ科植物における小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖する遺伝マーカーとその利用の一例とに関するものである。以下、本発明にかかる遺伝マーカー、本発明の利用の一例について説明する。
【００２５】
（１）本発明にかかる遺伝マーカー
本発明にかかる遺伝マーカーは、イネ科植物のゲノムＤＮＡ中に存在し、小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖しているものであればよい。イネ科植物としてはムギ類であることが好ましく、オオムギであることが特に好ましい。イネ科植物とは、オオムギ属、コムギ属、イネ等の植物であればよく、特に限定されるものではない。また、ムギ類とは、例えばオオムギ、コムギ、ライムギ、ライコムギ、エンバク等を意味する。
【００２６】
小穂脱落性は、登熟後に調査することにより判断することができる。すなわち、登熟後に穂から小穂が脱落していれば小穂脱落性と判断でき、登熟後も穂に小穂が付いていれば小穂非脱落性と判断できる。栽培品種では登熟後、収穫までの間に小穂が脱落すると、収量が大幅に減少するため、小穂非脱落性であることが重要となる。
【００２７】
小穂脱落性は、主働遺伝子が支配する形質であり、メンデルの法則にしたがって遺伝する。小穂脱落性を支配する遺伝子座には小穂脱落性を発現する遺伝子と小穂非脱落性を発現する遺伝子との２つの対立遺伝子があり、小穂脱落性が優性である。上述のように栽培品種では小穂非脱落性であることが重要である。例えば、小穂非脱落性の品種に、小穂脱落性の野生種等から有用形質を交雑育種により選抜しようとする場合に、目的とする形質が小穂脱落性を支配する遺伝子が座乗している染色体上にあれば、目的とする形質のみでなく小穂脱落性を支配する遺伝子も同時に導入されてしまう場合があり得る。このような場合に、本発明にかかる小穂脱落性を支配する遺伝子座と連鎖する遺伝マーカーを利用すれば効率的な選抜が可能となる。以下、本発明者らがオオムギにおいて開発した小穂脱落性を支配する遺伝子座と連鎖する遺伝マーカーについて詳細に説明する。なお、本発明に係る遺伝マーカーはこれらに限定されるものではない。
【００２８】
本発明者らは、醸造用オオムギ「はるな二条」と野生オオムギ「Ｈ６０２」との交雑Ｆ１から作出した倍加半数体（ＤＨ）集団を用いて、高密度連鎖地図を作成した。すなわち、本発明者らが有するオオムギＥＳＴ（expressed sequence tag）配列に基づいて設計されたプライマーセットを用いてオオムギゲノムＤＮＡを増幅し、「はるな二条」と「Ｈ６０２」との間に増幅断片長の多型を有するものや、増幅断片長の制限酵素による消化のパターンが異なる多型を有するものを特定し、これらのＤＮＡマーカーを含む約５００遺伝子座からなる連鎖地図を構築した。この連鎖地図および本発明者らが観察した上記ＤＨ集団９３個体についての小穂脱落性の表現型のデータに基づいて、小穂脱落性を支配する遺伝子座の連鎖解析を行った。その結果、小穂脱落性を支配する遺伝子座を３Ｈ染色体上に検出した。本発明に係る遺伝マーカーは３Ｈ染色体上に座乗する小穂脱落性を支配する遺伝子座を挟み、最も近傍に位置する２つの遺伝マーカーである。発明者らはこれらの遺伝マーカーを「ｋ０８４９０」および「ｋ０９３３７」と命名した。
【００２９】
ｋ０８４９０は、
ＡＡＡＴＣＡＣＧＡＣＧＡＧＴＴＧＧＣＡＴ（配列番号１）に示される塩基配列を有するプライマー、および
ＣＡＡＧＴＣＧＴＴＧＧＡＧＧＡＧＡＡＧＣ（配列番号２）に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第一プライマーセットを用いてオオムギゲノムＤＮＡを鋳型として増幅されるＤＮＡマーカーであり、上記３Ｈ染色体上に検出された小穂脱落性を支配する遺伝子座から短腕側に約３．１センチモルガン（以下ｃＭと表示する）の距離に座乗している。上記プライマー配列は、発明者らが独自に開発したオオムギＥＳＴ配列の１つ（ESTクローン名：BaGS4J14、配列番号５）に基づいて設計されている。図１に当該ＥＳＴの塩基配列を示した。下線を付した部分が上記プライマー配列（配列番号１）および上記プライマー配列（配列番号２）の相補配列である。はるな二条の増幅産物とＨ６０２の増幅産物との間にＳＮＰ（single nucleotide polymorphisms；一塩基多型）がある。図２に両者の増幅産物の塩基配列のうち、上記ＳＮＰを含む部分の塩基配列を示した。上がＨ６０２の塩基配列（配列番号６）であり、下がはるな二条の塩基配列（配列番号７）である。□で囲んだ塩基がＳＮＰである。下線部が制限酵素ＨｈａＩの認識配列（GCGC）を示す。図２から明らかなように、Ｈ６０２の増幅産物は制限酵素ＨｈａＩの認識配列（GCGC）を有しているためＨｈａＩで切断されるが、はるな二条の増幅産物は上記認識配列部分のＣがＴに変異しているため（GTGC）制限酵素ＨｈａＩで切断されない。すなわち、本遺伝マーカーｋ０８４９０は、ＣＡＰＳ（cleaved amplified polymorphic sequence）マーカーであり、上記第一プライマーセットによる増幅と、増幅産物の制限酵素ＨｈａＩ切断により、対象個体が３Ｈ染色体に座乗する小穂脱落性を支配する遺伝子座の対立遺伝子について、はるな二条型の遺伝子型を有するか、Ｈ６０２型の遺伝子型を有するかを判別できる。
【００３０】
ｋ０９３３７は、
ＡＡＧＣＣＴＧＴＧＧＧＡＣＴＣＣＡＴＡＡ（配列番号３）に示される塩基配列を有するプライマー、および
ＴＴＧＣＡＡＧＧＡＣＴＣＡＴＴＧＧＧＴＡ（配列番号４）に示される塩基配列を有するプライマーとの組み合わせである第二プライマーセットを用いてオオムギゲノムＤＮＡを鋳型として増幅される遺伝マーカーであり、上記３Ｈ染色体上に検出された小穂脱落性を支配する遺伝子座から長腕側に約５．８ｃＭの距離に座乗している。上記プライマー配列は、発明者らが独自に開発したオオムギＥＳＴ配列の１つ（ESTクローン名：BaH32J06、配列番号８）に基づいて設計されている。図３に当該ＥＳＴの塩基配列を示した。下線を付した部分が上記プライマー配列（配列番号３）および上記プライマー配列（配列番号４）の相補配列である。はるな二条の増幅産物とＨ６０２の増幅産物との間にＳＮＰがある。図４に両者の増幅産物の塩基配列のうち、上記ＳＮＰを含む部分の塩基配列を示した。上がＨ６０２の塩基配列（配列番号９）であり、下がはるな二条の塩基配列（配列番号１０）である。□で囲んだ塩基がＳＮＰである。下線部が制限酵素ＢａｎＩＩの認識配列（G[GA]GC[CT]C）を示す。図４から明らかなように、はるな二条の増幅産物は制限酵素ＢａｎＩＩの認識配列（GAGCTC）を有しているためＢａｎＩＩで切断されるが、Ｈ６０２の増幅産物は上記認識配列部分のＣがＴに変異しているため（GAGTTC）制限酵素ＢａｎＩＩで切断されない。すなわち、本遺伝マーカーｋ０９３３７は、ＣＡＰＳマーカーであり、上記第二プライマーセットによる増幅と、増幅産物の制限酵素ＢａｎＩＩ切断により、対象個体が３Ｈ染色体に座乗する小穂脱落性を支配する遺伝子座の対立遺伝子について、はるな二条型の遺伝子型を有するか、Ｈ６０２型の遺伝子型を有するかを判別できる。
【００３１】
ここで、１センチモルガン（１ｃＭ）とは、２つの遺伝子座の間に１％の頻度で交叉が起きるときの、両遺伝子座間の距離を表す単位である。
【００３２】
ところで、増幅に際して鋳型として用いられるゲノムＤＮＡは、植物体より従来公知の方法で抽出可能である。具体的には、植物体からゲノムＤＮＡを抽出するための一般法（Murray,M.G. and W.F.Thompson(1980) Nucleic Acids Res.8:4321-4325. など参照）が好適な例として挙げられる。また、上記のゲノムＤＮＡは、根、茎、葉、生殖器官など、オオムギの植物体を構成するいずれの組織を用いても抽出可能である。また、場合によってはオオムギのカルスから抽出してもよい。なお、上記生殖器官には、花器官（雄性・雌性生殖器官を含む）や種子も含まれる。ゲノムＤＮＡの抽出は、例えば、オオムギの幼苗期の葉を用いて行われる。この理由としては、組織の摩砕が比較的容易であり、多糖類などの不純物の混合割合が比較的少なく、また、種子から短期間で育成可能である点が挙げられる。さらに、幼苗段階で個体の選抜が可能となり、育種期間を大幅に短縮できる点が挙げられる。
【００３３】
またオオムギのゲノムＤＮＡを鋳型とし、上記プライマーの組み合わせを用いて増幅する方法は、従来公知のＤＮＡ増幅法を採用することができる。一般には、ＰＣＲ法（ポリメラ−ゼ連鎖反応法）や、その改変法が用いられる。ＰＣＲ法や、その改変法を用いる際の反応条件は特に限定されるものではなく、通常と同様の条件下で増幅することができる。
【００３４】
（２）本発明の利用
〔小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の単離方法〕
上述のとおり本発明にかかる遺伝マーカー（ｋ０８４９０、ｋ０９３３７）は、オオムギ３Ｈ染色体上に検出された小穂脱落性を支配する遺伝子座に連鎖するものである。よって、ｋ０８４９０、ｋ０９３３７の遺伝マーカーを用いることによってオオムギ３Ｈ染色体上に検出された小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を単離することができる。
【００３５】
単離とは、目的のＤＮＡ断片、すなわち小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片をクローニングすることを意味することはいうまでもないが、広義には交雑Ｆ１集団から戻し交配等により、両親のうち一方の小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を有する個体を選抜し、その遺伝子座領域のみを目的品種に導入する同質遺伝子系統の作成も単離に含まれる。
【００３６】
本発明にかかる遺伝マーカーを用いて小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を単離する方法としては特に限定されるものではないが、例えば次のような方法を挙げることができる。
【００３７】
オオムギでは本発明者らが開発を進めている「はるな二条」を含めて、ゲノムＤＮＡのＢＡＣライブラリーが２種類作成されており、現在複数のＢＡＣライブラリーが開発中である。そこで、このようなＢＡＣライブラリーを用いて、従来公知のマップベースクローニングの手法にしたがって、小穂脱落性を支配する遺伝子座と当該遺伝子座に連鎖する本発明の遺伝マーカーとで当該マーカーを含むＢＡＣクローンを同定し、そこからＢＡＣのコンティグを作成して塩基配列を確定することにより、最終的に小穂脱落性に関与する遺伝子座に到達することができる。
【００３８】
また、上述のように、交雑Ｆ１に一方の親を戻し交配することにより、他方の親の小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を目的品種に導入して（広義の）単離をすることができる。
【００３９】
なお、上記方法をはじめとする小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を単離する際には、目的とする小穂脱落性を支配する遺伝子座に対してなるべく近傍に座乗する遺伝マーカーを選択して用いることが好ましい。目的とする小穂脱落性を支配する遺伝子座と遺伝マーカーの間で組み換えが起こる確率がより低くなり、より確実に小穂脱落性を支配する遺伝子座を含む断片を単離することができるからである。
【００４０】
〔小穂脱落性改変植物の生産方法、および当該生産方法によって得られた小穂脱落性改変植物〕
上記本発明にかかる小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の単離方法によって得られた小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片をイネ科植物のゲノムＤＮＡに導入することによって、小穂脱落性改変イネ科植物を生産することが可能である。イネ科植物としてはムギ類であることが好ましく、オオムギであることが特に好ましい。また、例えば、オオムギから単離された小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片をオオムギ以外のイネ科植物に導入することも可能であり、同一属間のみでの単離、導入に限定されるものではない。
【００４１】
上記ＤＮＡ断片を導入する方法は特に限定されるものではなく、公知の方法を適宜選択して用いることができる。より具体的には、例えばアグロバクテリウムまたはパーティクルガンを用いてイネ科植物のゲノムＤＮＡに導入することによって生産すればよく、これにより、小穂脱落性改変品種が得られることとなる。例えば、雑誌The Plant Journal(1997) 11(6),1369-1376 には、Sonia Tingay等により、Agrobacterium tumefaciens を用いてオオムギを形質転換する方法が開示されており、この方法を利用して形質転換オオムギを生産可能である。
【００４２】
また、目的とする小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を有する植物個体と、当該ＤＮＡ断片を導入しようとする植物個体との交雑により、小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片を、植物に導入することも可能である。この方法では、交雑が可能である限りにおいて、他の種や属の植物が有する小穂脱落性を支配する遺伝子座を含むＤＮＡ断片の導入が可能である。
【００４３】
本発明にかかる小穂脱落性改変植物は、上記本発明にかかる生産方法により得られるものである。当該小穂脱落性改変植物は、小穂脱落性の植物に穂の小穂非脱落性の表現型を表す対立遺伝子を含むＤＮＡ断片を導入した場合には、小穂非脱落性の植物が得られる。逆に、小穂非脱落性の植物に小穂脱落性の表現型を表す対立遺伝子を含むＤＮＡ断片を導入した場合には、小穂脱落性の植物が得られる。
【００４４】
〔小穂脱落性改変イネ科植物の選抜方法〕
本発明にかかる小穂脱落性改変イネ科植物の選抜方法は、上記本発明にかかる遺伝マーカーを指標として小穂脱落性改変イネ科植物を選抜する方法であればよく、その他の工程、条件、材料等は特に限定されるものではない。例えば、従来公知の作物育種法を利用することができる。
【００４５】
より具体的には、例えば、交配等により作出した植物のゲノムＤＮＡを抽出し、本発明に係る遺伝マーカーの遺伝子型を指標として植物を選抜する方法が挙げられる。遺伝マーカーを検出する手段としては、例えば、対象とする植物から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型として上記第一または第二プライマーセットのいずれかを用いて増幅したＤＮＡ断片について、断片長または断片の制限酵素消化パターンの観察を挙げることができる。
【００４６】
なお本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。
【実施例】
【００４７】
〔使用植物〕
醸造用オオムギ「はるな二条」（Hordeum vulgare ssp. vulgare variety Harunanijo）と野生オオムギ「Ｈ６０２」（Hordeum vulgare ssp. spontaneum H602）との交配から得られたＦ１の花粉を培養して半数体（haploid）を育成し、自然倍加した倍加半数体（doubled haploid）９３個体からなる集団（ＤＨ集団）を使用した。
【００４８】
〔連鎖地図の作成〕
本発明者らが有するオオムギＥＳＴ配列約１２万をphredによって再度ベースコールした後、quality score 20でトリミングし、ベクターマスキングを行って３’端約６万配列を得た。これらの配列からphrapによってcontig 8,753、 singlet 6,686からなるUnigeneを作成した。プライマー作成ソフトPrimer3によって、400bpを中心として150-500bpのcDNA配列を増幅するプライマーセット約11,000を作成した。このうち約5,100のプライマーセットについて、はるな二条とＨ６０２との間に増幅されるゲノム断片の多型の有無を検出するために、それぞれのゲノムＤＮＡをＰＣＲ増幅し、アガロースゲル電気泳動によってバンドの有無、バンド数、バンドサイズを調査し、マーカーとなり得るものを選択した。さらに、バンドサイズに多型のない場合は、増幅断片をダイレクトシークエンスすることにより塩基配列の差異を検出し、３９種類の制限酵素に対してＣＡＰＳ（cleaved amplified polymorphic sequence）化が可能なものをマーカーとして選択した。
【００４９】
以上により、上記はるな二条とＨ６０２との交雑Ｆ１由来のＤＨ集団について、合計４９９遺伝子座のマーカーからなる連鎖地図を構築した。この連鎖地図の平均マーカー密度は3.0cM/locus、全長は1,470cMである。
【００５０】
〔遺伝子型の判定〕
ＤＨ集団各個体の遺伝子型の判定は、上記ＤＨ集団の連鎖地図にマッピングされたマーカーを用いて行った。すなわち、各個体の新鮮な葉の組織から分離したＤＮＡを鋳型として、ＥＳＴ配列に基づいて設計したプライマーセットを用いてＰＣＲを行った。断片長多型マーカーについてはＰＣＲ産物の電気泳動により遺伝子型を判定した。ＣＡＰＳ（cleaved amplified polymorphic sequence）マーカーについては、ＰＣＲ産物を制限酵素で消化し、電気泳動により遺伝子型を判定した。
【００５１】
〔小穂脱落性の観察〕
ＤＨ集団の各個体について、登熟後に小穂脱落性か小穂非脱落性かを調査し、記録した。
【００５２】
〔連鎖解析〕
連鎖解析は、小穂脱落性の表現型と上記連鎖地図上のマーカーの遺伝子型との組換え頻度を調べ、最も組換え頻度の少ないマーカーを特定し、小穂脱落性を支配する遺伝子座の位置を推定した。
【００５３】
〔結果〕
結果を表１に示した。表１から明らかなように、小穂脱落性を支配する遺伝子座は３Ｈ染色体上の、遺伝マーカーk08490とk09337とに挟まれる位置に検出された。小穂脱落性を支配する遺伝子座は、遺伝マーカーk08490から長腕側に3.1cM、遺伝マーカーk09337から短腕側に5.8cMの位置に座乗することが推定された。
【００５４】
【表１】
2005229853.tif 000002
【産業上の利用可能性】
【００５５】
本発明にかかる遺伝マーカーは、小穂脱落性改変植物の育種、小穂脱落性を支配する遺伝子の単離等に用いることができ、育種の効率化に大きく貢献することが期待される。したがって、広く農業全般に利用可能であり、さらには、オオムギ等を原料とする食品産業においても有効である。また、生物分野の基礎研究、特に植物ゲノム研究等にも利用可能である。
【図面の簡単な説明】
【００５６】
【図１】オオムギＥＳＴクローン：BaGS4J14の塩基配列、および当該配列に基づいて設計されたプライマー配列の位置を示す図である。
【図２】遺伝マーカーｋ０８４９０における、Ｈ６０２とはるな二条との間のＳＮＰおよびＳＮＰ周囲の塩基配列を示す図である。
【図３】オオムギＥＳＴクローン：BaH32J06の塩基配列、および当該配列に基づいて設計されたプライマー配列の位置を示す図である。
【図４】遺伝マーカーｋ０９３３７における、Ｈ６０２とはるな二条との間のＳＮＰおよびＳＮＰ周囲の塩基配列を示す図である。
【図１】
2005229853.tif 000003
【図２】
2005229853.tif 000004
【図３】
2005229853.tif 000005
【図４】
2005229853.tif 000006
【配列表】
2005229853000001.app