(57)【要約】【課題】  本発明の目的は、生体由来物質の吸着量を低減できる生化学用器具を提供することにある。【解決手段】  本発明の生化学用器具は、主として側鎖に極性基を有する樹脂材料で構成される生化学用器具であって、該生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたとき、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することを特徴とするものである。前記樹脂材料は、エチレン系共重合体であることが好ましい。【特許請求の範囲】
【請求項１】
主として側鎖に極性基を有する樹脂材料で構成される生化学用器具であって、
該生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたときのスペクトル強度比（Ｂ／Ａ）が、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することを特徴とする生化学用器具。
【請求項２】
前記樹脂材料は、エチレン系共重合体である請求項１に記載の生化学用器具。
【請求項３】
前記エチレン系共重合体のエチレン部分の共重合比率は、前記エチレン系共重合体全体の５〜５０ｍｏｌ％である請求項２に記載の生化学用器具。
【請求項４】
前記エチレン系共重合体は、エチレン−ビニルアルコール共重合体である請求項２または３に記載の生化学用器具。
【請求項５】
生体由来物質の吸着率が、２０％以下である請求項１ないし４のいずれかに記載の生化学用器具。
【請求項６】
アセトニトリルの５０容量％水溶液を１０分間接触させた後の生体由来物質の吸着率が、２５％以下である請求項５に記載の生化学用器具。
【請求項７】
前記生体由来物質は、ウシ血清アルブミンまたはウシ血清イムノグロブリンＧである請求項５または６に記載の生化学用器具。
【請求項８】
前記生化学用器具は、チューブとして用いられるものである請求項１ないし７のいずれかに記載の生化学用器具。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生化学用器具に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、植物組織培養や動物細胞培養等の培養技術や免疫生化学的手法を駆使する生命科学分野では、試験用器具としてガラス製品が用いられていた。しかし、近年の感染等に対する衛生面での認識の高まり、樹脂製品の大量生産に伴う低価格化、高純度化および樹脂製品の成形加工技術の進歩によって、樹脂製品が用いられるようになってきている。
【０００３】
このような樹脂製品としては、ディスポーザブル・タイプの生化学器具（例えば、ＥＩＡ／ＥＬＩＳＡ法を用いた抗原抗体反応定量等の免疫実験に用いるプレート、タンパク質の構造／機能解析や臨床検査に使用される希釈用チューブや保存用チューブ等の生化学容器）等が挙げられる。このような生化学器具には、目的に応じてタンパク質との高い吸着能が求められる。例えば免疫実験に用いるプレートの場合、酸素プラズマ処理や紫外線処理等を行い、樹脂製品の表面を親水性することで親水−疎水のバランスを調節し、タンパク質との吸着性を上げたものが用いられている。
【０００４】
また、採血容器またはタンパク質の分析に用いられる試験管やサンプル容器といったチューブ類では、それらの表面にタンパク質等の生体由来物質が吸着することは好ましくない。例えば、臨床検査において尿または血液中のタンパク質が容器に吸着されると、タンパク質量の検査値が実際より低いか、あるいは全く検出されなく、診断を誤る可能性がある。また、タンパク質分析においても特に低濃度の微量タンパク質を扱う場合希釈または保存工程で容器に吸着すると、濃度が変化してしまう為分析結果に大きな影響を与える。
【０００５】
このような課題を解決する手段として、ポリスチレン製部材の表面をオゾンガスの流通により改質する方法が開示されている（例えば、特許文献１参照）。しかし、ポリスチレン表面に導入した極性基は気相との接触により経時的に樹脂層の内部に潜り込むことが知られており、処理の効果が経時的に低下してゆくという問題点を有していた。
【０００６】
【特許文献１】特開平１０−１０１８２０号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明の目的は、生体由来物質の吸着量を低減できる生化学用器具を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
このような目的は、下記（１）〜（８）に記載の本発明により達成される。
（１）主として側鎖に極性基を有する樹脂材料で構成される生化学用器具であって、該生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたときのスペクトル強度比（Ｂ／Ａ）が、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することを特徴とする生化学用器具。
（２）前記樹脂材料は、エチレン系共重合体である上記（１）に記載の生化学用器具。
（３）前記エチレン系共重合体のエチレン部分の共重合比率は、前記エチレン系共重合体全体の５〜５０ｍｏｌ％である上記（２）に記載の生化学用器具。
（４）前記エチレン系共重合体は、エチレン−ビニルアルコール共重合体である上記（２）または（３）に記載の生化学用器具。
（５）生体由来物質の吸着率が、２０％以下である上記（１）ないし（４）のいずれかに記載の生化学用器具。
（６）アセトニトリルの５０容量％水溶液を１０分間接触させた後の生体由来物質の吸着率が、２５％以下である上記（５）に記載の生化学用器具。
（７）前記生体由来物質は、ウシ血清アルブミンまたはウシ血清イムノグロブリンＧである上記（５）または（６）に記載の生化学用器具。
（８）前記生化学用器具は、チューブとして用いられるものである上記（１）ないし（７）のいずれかに記載の生化学用器具。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、生体由来物質の吸着量を低減できる生化学用器具を提供することがでできる。
また、樹脂材料として特定のエチレン系共重合体を用いた場合、耐溶剤性にも優れる。
また、前記生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ＝Ｏ結合のスペクトル強度［Ｃ］としたとき、スペクトル強度比（Ｃ／Ａ）を特定の値とした場合、化学的および物理的な安定性にも優れる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明の生化学用器具について詳細に説明する。
本発明の生化学用器具は、主として側鎖に極性基を有する樹脂材料で構成される生化学用器具であって、該生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたとき、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することを特徴とするものである。
【００１１】
前記樹脂材料は、前記生化学用器具をディスポーザルタイプにすることができるのに加え、種々の形状を容易に成形できるものである。
また、該生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたときのスペクトル強度比（Ｂ／Ａ）が、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することにより、生体由来物質の吸着量を低減できるものである。
【００１２】
前記側鎖に極性基を有する樹脂材料としては、例えばポリビニルアルコール、ポリ酢酸ビニル、ポリヒドロキシアルキルメタクリレート、ポリオキシＣ2−Ｃ4アルキレン基含有メタクリレート等の側鎖に極性基を有する樹脂、前記側鎖に極性基を有する樹脂とエチレン、プロピレン等のオレフィンとの共重合体（特に、エチレン系共重合体）、前記側鎖に極性基を有する樹脂とポリ塩化ビニル等との共重合体、前記側鎖に極性基を有する樹脂とポリアルキルアクリレートとの共重合体等が挙げられる。これらの中でもエチレン系共重合体（最も、エチレン−ビニルアルコール共重合体）が好ましい。これにより、生体由来物質の吸着量を特に低減することができることに加え、耐溶剤性にも優れる。
【００１３】
前記エチレン系共重合体（特にエチレン−ビニルアルコール共重合体）のエチレン含有量は、特に限定されないが、該エチレン系共重合体全体の５〜５０モル％が好ましく、特に１０〜３０モル％が好ましい。エチレン含有量が前記下限値未満であると耐水性が低下する場合があり、前記上限値を超えると生体由来物資の吸着量を低減する効果が低下する場合がある。
【００１４】
前記樹脂材料の重量平均分子量は、特に限定されないが、１０，０００〜１００，０００が好ましく、特に２０，０００〜４０，０００が好ましい。重量平均分子量が前記範囲内であると、生化学用器具の成形性に優れ、成型品の耐水生にも優れる。
前記重量平均分子量は、例えばＧ．Ｐ．Ｃ．を用いたスチレン換算で求めることができる。
【００１５】
前記樹脂材料には成形性向上、耐候性向上を目的として、本発明の目的を損なわない範囲で炭化水素系、脂肪酸アミド系の滑剤やフェノール系、アミン系の酸化防止剤等の添加剤を添加することができる。
【００１６】
前記生化学用器具は、その内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］としたときのスペクトル強度比（Ｂ／Ａ）が、０．３≦Ｂ／Ａなる関係を満足することを特徴とするものである。さらに、具体的には前記スペクトル強度比は、０．４≦Ｂ／Ａであることが好ましく、特に０．５≦Ｂ／Ａ≦０．７であることが好ましい。
ここで、生化学容器の内表面とは容器表面のうち生体由来物質を含む試料が接触する部位であり、尚且つその表面から深さ方向に１０ｎｍまでの範囲を含む。
【００１７】
前記スペクトル強度比が前記範囲内であると、生体由来物質の吸着量が低減できる理由は以下のように考えられる。
タンパク質を含めた生体由来物質の吸着は、主に疎水性相互作用による結合である。そのため、生体由来物質の吸着量を低減させるには、容器表面の疎水性部位を減らせば良いと考えられている。しかし、単純に極性基の導入等により疎水性部位を減らしても吸着量は減少しない。
つまり、タンパク質の吸着低減量と極性基の導入量とは比例相関せず、極性基の導入量（容器内の極性基の密度）の相違で吸着量が大きく変化することを見出した。すなわち、極性基の導入量が少なく、適量よりも多く疎水性部位が残存した状態では、容器表面の極性基とタンパク質の親水性基の相互作用でタンパク質が容器表面に留まりやすくなり、タンパク質の吸着量は増加する。一方、極性基の導入量が多く、適量よりも少ない疎水性基が残存した状態では、タンパク質が基材表面に留まったとしても疎水性相互作用は発生せず吸着は誘引されない。
これに対して本発明では、容器表面の極性基の導入量を特定の値とすることにより、容器表面内に極性基に起因する結合水の層が形成され、それによって疎水性相互作用を効率的に遮断して生体由来物質の吸着量が低減できるものである。
【００１８】
従来、生化学用器具の内表面の前記スペクトル強度比（Ｂ／Ａ）は、ほとんど０程度であり、放射線照射または酸素プラズマ処理等で極性基を導入したものでも０．０１〜０．１５程度であった。これに対して、本発明では前記生化学用器具の内表面の前記スペクトル強度比（Ｂ／Ａ）が、生体由来物質の吸着量に大きく影響することを見出し、前記スペクトル強度比を特定の範囲とすることによって生体由来物質の吸着量の低減が可能となるものである。
【００１９】
さらに、前記生化学用器具の内表面のＸ線光電子分光法で測定されるＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］とし、Ｃ＝Ｏ結合のスペクトル強度［Ｃ］としたとき、スペクトル強度比（Ｃ／Ａ）は、特に限定されないが、Ｃ／Ａ≦０．０５であることが好ましく、特に０≦Ｃ／Ａ≦０．０４であることが好ましい。Ｃ＝Ｏ結合の強度は、成形時の酸化を示すものであり、スペクトル強度比が前記範囲内であると、生体由来物質の吸着量を低減できる効果に加えて、化学的、物理的な経時安定性に優れる。
【００２０】
前記Ｘ線電子分光法で測定するＣ−Ｃ結合のスペクトル強度［Ａ］、Ｃ−Ｏ結合のスペクトル強度［Ｂ］およびＣ＝Ｏ結合のスペクトル強度［Ｃ］は、例えば以下の条件で測定することができる。
Ｘ線光電子分光装置：ＥＳＣＡＬＡＢ  ２２０ｉ−ＸＬ（ＦＩ  ＳＵＲＦＡＣＥ  ＳＹＳＴＥＭＳ社製）、分析面積：６００μｍφ、Ｘ線源：ＡｌＫα線（モノクロ）、光電子脱出角：０ｄｅｇ
【００２１】
前記生化学用器具の内表面の前記スペクトル強度（Ａ、ＢおよびＣ）を上述の範囲とするには、例えば以下のような方法が挙げられる。
１．  特定の樹脂を用いる方法
前記スペクトル強度（ＡおよびＢ）が、上述の範囲となるような比率で極性基を側鎖に有する樹脂材料を使用することができる。具体的には、ポリビニルアルコール（Ｂ／Ａ＝０．５）やポリヒドロキシエチルメタクリレート（Ｂ／Ａ＝０．６）等を用いることができる。
なお、一般的にその様な樹脂は水溶性のものが多いので、本願の目的として使用する場合には非水溶性のものを選択して使用することが好ましい。
【００２２】
２．特定の成形条件で成形する方法
例えば、エチレン含有量が前記エチレン系共重合体全体の５〜５０ｍｏｌ％のエチレン系共重合体を下記のようなステップで溶融成形することにより、前記スペクトル強度を上述の範囲とすることができる。
Ａステップ：成形前に原材料樹脂を例えば８０℃〜１５０℃×３０〜２４０分乾燥し、成形前の原料樹脂が吸水していない状態とする。Ｂステップ：原材料の融点を超える温度で溶融するが、例えば溶融状態が３００秒以上継続しないように金型の成型品容量に対して適正な射出容量の成形機を使用する。ステップＣ：冷却時の温度（例えば金型温度）を、例えば６０℃以下とし、金型温度６０℃以上での除冷を行わない。
【００２３】
前記生化学用器具の生体由来物質の吸着率[Ｑ１]は、特に限定されないが、２０％以下であることが好ましく、特に０．０００１〜１０％が好ましく、最も０．０００１〜５％が好ましい。吸着量が前記範囲内であると、特に生体由来物質の吸着率が低いことが要求される臨床検査用検体保存器具に好適に用いることができる。さらに、極微量なサンプルによる試験に用いる生化学用器具として好適に用いることができる。
前記生体由来物質の吸着率[Ｑ１]は、以下の式（１）で求めることができる。
吸着率（％）＝吸着量／溶液中の蛋白質総量  （１）
前記吸着率は、例えばヨウ素（125Ｉ）標識ウシ血清イムノグロブリンＧを１．０Ｅ−６ｇ／ｍＬ、１．０Ｅ−７ｇ／ｍＬ、１．０Ｅ−８ｇ／ｍＬ、の濃度にリン酸バッファー（ｐＨ７．４）で希釈し、本発明の容器に分注し、３７℃で１時間静置する。その後、０．０５容量％のＴｗｅｅｎ２０含有リン酸バッファーで３回洗浄を繰り返し、容器本体をγ線カウンターで測定する。
別途作成した検量線から容器本体に残留したヨウ素（125Ｉ）標識ウシ血清イムノグロブリンＧの重量を求め、各溶液濃度の吸着率を算出する。
【００２４】
本発明の生化学容器をアセトニトリルの５０容量％水溶液で１０分間接触させた後の生体由来物質の吸着率[Ｑ２]は、特に限定されないが、２５％以下であることが好ましく、特に５〜２０％が好ましい。生体由来物質の吸着率[Ｑ２]が前記下限値未満にするためには生体由来物質の種類を限定する必要があり、前記上限値を超えると極微量なサンプルによる試験に用いる生化学用器具としては好適に用いることができない。
前記アセトニトリルの５０容量％水溶液で１０分間接触させた後の生体由来物質の吸着率[Ｑ２]は、具体的には以下のように求めることができる。
アセトニトリルの５０容量％水溶液を本発明の容器に分注し、１０分間放置した後純水で洗浄、乾燥後に上記の式（１）を用いて吸着率を算出する。
【００２５】
前記生体由来物質としては、例えば天然もしくは合成のペプチド、蛋白質、酵素、糖類、レクチン、ウイルス、細菌、核酸、ＤＮＡ、ＲＮＡ、抗原（例えばリコンビナント抗原も含む）抗体、ＩｇＧ．ＩｇＭ．ＩｇＥなどの免疫グロブリン：補体、ＣＲＰ．フェリチン、α1 マイクログロブリン、β2 マイクログロブリンなどの血漿蛋白およびそれらの抗体：α−フェトプロテイン、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、前立腺性酸性ホスファターゼ（ＰＡＰ）、ＣＡ１９−９、ＣＡ−１２５などの腫瘍マーカおよびそれらの抗体：黄体化ホルモン（ＬＨ）、卵胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、ヒト繊毛性ゴナドトロビン（ｈＣＧ）、エストロゲン、インスリンなどのホルモン類およびそれらの抗体：ＨＢＶ関連抗原（ＨＢｓ．ＨＢｅ．ＨＢｃ）．ＨＩＶ．ＡＴＬなどウイスル感染関連物質およびそれらの抗体：ジフテリア菌、ボツリヌス菌、マイコプラズマ、梅毒トレポネーマなどのバクテリア類およびそれらの抗体：トキソプラズマ、トリコモナス、リーシュマニア、トリバノゾーマ、マラリア原虫などの原虫類およびそれらの抗体：フェニトイン、フェノバルビタールなどの抗てんかん薬、キニジン、ジゴキシニンなどの心血管薬、テオフィリンなどの抗喘息薬、クロラムフェニコール、ゲンタマイシンなどの抗生物質などの薬物類およびそれらの抗体：その他酵素、菌体外毒素（スチレリジンＯなど）およびそれらの抗体等が挙げられる。これらの中でも、血清アルブミンまたは血清イムノグロブリンＧが好ましくこれらにより臨床診断を含む幅広い研究に使用する事が出来る。
【００２６】
前記生化学容器としては、例えば生化学研究に使用されるピペット、ディスペンサーチップ等の液体操作用器具類および遠沈管、凍結保存チューブ、チューブ、マルチウェルプレート等の容器類が挙げられる。これらの中でも、生体由来物質との接触時間が比較的長く、各種分析における試料調製に使用されるチューブとして用いられることが好ましい。これにより、分析結果の精度及び感度が向上する。
【実施例】
【００２７】
以下、本発明を実施例および比較例に基づいて詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
（実施例１）
樹脂材料としてエチレン含有率が２６％のエチレン−ビニルアルコール共重合体（ソアノールＶ２６０３Ｂ  日本合成化学製）を用い、以下のステップで溶融成形した容器（チューブ）を得た。
Ａステップ：１３０℃で３時間の予備乾燥を実施、１２０℃に設定したホッパードライヤーを使用した。
Ｂステップ：８ヶ取り金型（樹脂充填量３０ｃｍ3）で射出容量９０ｃｍ3／ｓｈｏｔのシリンダーを使用し、シリンダー温度を２２０℃−２１０℃−１９５℃−１８５℃に設定、成形サイクルは３０秒とした。
Ｃステップ：金型温度を３０℃、冷却時間を１０秒に設定し、成形を行なった。
なお、成形機は、日精樹脂工業株式会社製  ＮＳ６０  スクリュー径３２ｍｍ  射出容量９０ｃｍ3／ｓｈｏｔを使用した。
成形した容器の形状は、高さ３９ｍｍ、外径１０ｍｍ、容量１．５ｍＬのＶ底チューブであった。
【００２８】
（実施例２）
樹脂材料として下記のものを用い、ＢステップおよびＣステップを以下のようにした以外は実施例１と同様にした。
樹脂材料としてエチレン含有率が２９％のエチレン−ビニルアルコール共重合体（ソアライトＭ  日本合成化学製）を用いた。
Ｂステップ：８ヶ取り金型（樹脂充填量３０ｃｍ3）で射出容量９０ｃｍ3／ｓｈｏｔのシリンダーを使用し、シリンダー温度を２１５℃−２００℃−１９０℃−１８５℃に設定、成形サイクルは３０秒とした。
Ｃステップ：金型温度を２０℃、冷却時間を１０秒に設定した。
【００２９】
（実施例３）
溶融成形する条件を以下のようにした以外は、実施例１と同様にした。
Ａステップ：１３０℃で３時間の予備乾燥を実施、１２０℃に設定したホッパードライヤーを使用した。
Ｂステップ：８ヶ取り金型（樹脂充填量３０ｃｍ3）で射出容量９０ｃｍ3／ｓｈｏｔのシリンダーを使用し、シリンダー温度を２５０℃−２４０℃−２１０℃−１９０℃に設定、成形サイクルは４０秒とした。
Ｃステップ：金型温度を８０℃、冷却時間を１０秒に設定した。
【００３０】
（実施例４）
溶融成形する条件を以下のようにし、プラズマ処理を行なった以外は、実施例１と同様にした。
Ａステップ：１３０℃で３時間の予備乾燥を実施、１２０℃に設定したホッパードライヤーを使用した。
Ｂステップ：８ヶ取り金型（樹脂充填量３０ｃｍ3）で射出容量９０ｃｍ3／ｓｈｏｔのシリンダーを使用し、シリンダー温度を２４０℃−２３０℃−２１０℃−１９０℃に設定、成形サイクルは２５秒とした。
Ｃステップ：金型温度を１０℃、冷却時間を１０秒に設定した。
Ｄステップ：成形後の容器に１５分間の酸素プラズマ処理を行った。
【００３１】
（実施例５）
樹脂材料としてエチレン含有率が３４％のエチレン−ビニルアルコール共重合体（エバールＥ１０５  クラレ製）を用いた以外は、実施例２と同様にした。
【００３２】
（実施例６）
樹脂材料としてポリプロピレンで成形したチューブを用い、内面に以下の工程でポリヒドロキシエチルメタアクリレートのコーティング層を形成して容器（チューブ）を得た。
工程１：ポリヒドロキシエチルメタアクリレート（ポリ−２ヒドロキシエチルメタクリレート  シグマ製）をメタノールで１容量％濃度に希釈したコーティング溶液を作成。
工程２：コーティング溶液をポリプロピレンで成形したチューブに全量分注し、クリーンベンチ内で自然乾燥させた。
【００３３】
（比較例１）
樹脂材料としてポリプロピレン（ＧＦＷ−ＮＣＦ  グランドポリマー製）を用い、以下のステップで溶融成形した容器（チューブ）を得た。
Ａステップ：予備乾燥は実施せず。
Ｂステップ：８ヶ取り金型（樹脂充填量３０ｃｍ３）で射出容量９０ｃｍ３／ｓｈｏｔのシリンダーを使用し、シリンダー温度を２１０℃−２０５℃−１９５℃−１９０℃に設定、成形サイクルは２０秒とした。
Ｃステップ：金型温度を３０℃、冷却時間を７秒に設定、成形を行った。
【００３４】
（Ｘ線光電子分光法による内表面の測定）
実施例１〜６および比較例１の内表面をＸ線光電子分光法にて測定した結果を表１に示す。尚、測定装置および測定条件は以下の通りである。
Ｘ線光電子分光装置：ＥＳＣＡＬＡＢ  ２２０ｉ−ＸＬ（ＦＩ  ＳＵＲＦＡＣＥ  ＳＹＳＴＥＭＳ社製）、分析面積：６００μｍφ、Ｘ線源：ＡｌＫα線（モノクロ）、光電子脱出角：０ｄｅｇ
【００３５】
【表１】
2005249703.tif 000002
【００３６】
表１から明らかなように、実施例１〜６のＣ−Ｏ／Ｃ−Ｃの値は０．３以上であった。
また、実施例１、２、４および６のＣ−Ｏ／Ｃ−Ｃの値は、特に高かった。
また、実施例１、２、５および６は、Ｃ＝Ｏ／Ｃ−Ｃの値は、０．０５以下であった。
【００３７】
得られた容器について、以下の評価を行なった。評価項目を内容と共に示す。得られた結果を表２に示す。
１．生体由来物質吸着性の比較
１．１ウシ血清イムノグロブリン吸着性
ウシ血清イムノグロブリンの吸着性を次のように評価した。ウシ血清イムノグロブリン（Ｂｏｖｉｎｅ  ｇａｍｍａ  ｇｌｏｂｕｌｉｎ  ｓｔａｎｄａｒｄ  ２３２１０  ＰＩＥＲＣＥ社製）をヨウ素（125Ｉ）標識し、１．０Ｅ-7ｇ／ｍＬの濃度にリン酸バッファー（ｐＨ７．４）で希釈し、各実施例および比較例で得られた容器に分注し、３７℃で１時間静置した。その後、０．０５容量％のＴｗｅｅｎ２０含有リン酸バッファーで３回洗浄を繰り返し、容器本体をγ線カウンターで測定した。
別途作成した検量線から容器本体に残留したヨウ素（125Ｉ）標識ウシ血清イムノグロブリンの重量を求め、各溶液濃度の吸着率を算出した。
【００３８】
１．２ウシ血清アルブミン吸着性
ウシ血清アルブミンの吸着性を次のように評価した。ウシ血清アルブミン（２３２０９  ＰＩＥＲＣＥ社製）を０．５μｇ／ｍＬに希釈した溶液を、各実施例および比較例で得られた容器に１．０ｍＬづつ分注し、３７℃で１時間インキュベートした後０．０５容量％ｔｗｅｅｎ２０入りリン酸緩衝液ｐＨ７．４で３回洗浄した。
次にブロッキングとして３．０重量％スキムミルク入りリン酸緩衝液ｐＨ７．４溶液を１．５ｍＬづつ分注し、３７℃で１時間インキュベートした後０．０５容量％ｔｗｅｅｎ２０入りリン酸緩衝液ｐＨ７．４で３回洗浄した。次にペルオキシターゼ標識坑ウシ血清アルブミン抗体（５５２８５  ＣＡＰＰＥＬ社製）をリン酸緩衝液ｐＨ７．４で１．０μｇ／ｍＬに希釈した溶液を各容器に１．０ｍＬづつ分注し室温で３０分インキュベートした後０．０５容量％ｔｗｅｅｎ２０入りリン酸緩衝液ｐＨ７．４で３回洗浄し、ぺルオキシターゼ用発色キット（ＳＵＭＩＬＯＮ  ＭＬ−１１２０Ｔ  住友ベークライト社製）を使用して発色させた後プレートリーダーを使用して４５０／６３０ｎｍの吸光度を測定した。
別途作成した検量線から容器本体に残留したペルオキシターゼ標識坑ウシ血清アルブミン抗体＝ウシ血清アルブミンの重量を求め、吸着率を算出した。
【００３９】
１．３ペルオキシターゼ標識アビジン吸着性
ペルオキシターゼ標識アビジンの吸着性を次のように評価した。ペルオキシターゼ標識アビジン（４３−４４２３  ＺＹＭＥＤ社製）を０．５μｇ／ｍＬに希釈した溶液をそれぞれ各実施例および比較例で得られた容器に１．０ｍＬづつ分注し、室温で１時間静置した後、０．０５％ｔｗｅｅｎ２０入りリン酸緩衝液ｐＨ７．４で３回洗浄し、ぺルオキシターゼ用発色キット（ＳＵＭＩＬＯＮ  ＭＬ−１１２０Ｔ  住友ベークライト社製）を使用して発色させた後プレートリーダーを使用して４５０／６３０ｎｍの吸光度を測定した。
別途作成した検量線から容器本体に残留したペルオキシターゼ標識アビジンの重量を求め、吸着率を算出した。
【００４０】
２．耐溶剤性
耐溶剤性は、下記の処理後のウシ血清イムノグロブリンＧの吸着率で評価した。
各実施例および比較例で得られた容器にアセトニトリルの５０容量％水溶液を１．５ｍＬづつ分注し、１０分間放置した後、純水で洗浄し、上記（ウシ血清イムノグロブリン吸着性）で評価した方法にてウシ血清イムノグロブリンＧの吸着性の評価を行なった。
【００４１】
３．遠心強度
遠心強度は、遠心機を用いて評価した。
各実施例および比較例で得られた容器に純水１．５ｍＬを分注し、遠心機（ＣＦ１６ＲＸ形  日立多用途小型遠心機  ローター＃.１１）にセットし、２５℃、１５，０００ｒｐｍで１５分間遠心した後で、目視により容器の変形、割れを確認した。
【００４２】
４．耐熱性
耐熱性は、下記処理後の容器の変形等およびウシ血清イムノグロブリンＧの吸着率で評価した。
各実施例および比較例で得られた容器に純水１．５ｍＬを分注し、６０℃の恒温槽に２４時間静置し、純水を廃棄した後、目視により容器の変形、割れを確認した。
また、前述のウシ血清イムノグロブリン吸着性を評価した方法にてウシ血清イムノグロブリンＧの吸着性の評価を行なった。
【００４３】
５．耐寒性の評価
耐寒性は、下記処理後の容器の変形等およびウシ血清イムノグロブリンＧの吸着率で評価した。
各実施例および比較例で得られた容器に純水１．５ｍＬを分注し、−８０℃のディープフリーザーに２４時間静置した後、純水を廃棄し、目視によりチューブ本体の変形、割れを確認した。
また、前述のウシ血清イムノグロブリン吸着性を評価した方法にてウシ血清イムノグロブリンＧの吸着性の評価を行なった。
【００４４】
【表２】
2005249703.tif 000003
【００４５】
表２から明らかなように実施例１〜６は、いずれの生体由来物質に対しても吸着率が低かった。
また、実施例１〜５は、アセトニトリル処理後の生体由来物質の吸着率も低く、耐溶剤性にも優れていた。
また、実施例１〜６は、遠心強度にも優れていた。
また、実施例１〜５は、６０℃で処理した後でも容器等の変形、割れが無く、さらに生体由来物質に対する吸着率が低く、耐熱性にも優れていた。
また、実施例１〜６は、−８０℃で処理した後でも容器等の変形、割れが無く、さらに生体由来物質に対する吸着率が低く、耐寒性にも優れていた。
以上のように実施例１〜６は、生体由来物質の吸着率が低いので、特に低濃度の生体由来物質の分析を行なう容器に適していることが示された。
【産業上の利用可能性】
【００４６】
本発明の生化学用器具は、遺伝子工学、蛋白質工学、臨床検査学等の生化学研究に好適に使用することができるものである。生体由来物質等の試料の吸着による損失が無く、有機溶剤を使用する事が可能で、高精度かつ高感度な分析を行なう事が出来る。具体的にはため、特に生体由来物質の分析を行なう際の器具類であるピペット、ディスペンサーチップ、保存容器、希釈容器等として使用する事ができる。