(57)【要約】      （修正有）【課題】ヘリコバクター ピロリ（Helicobacter pylori）菌を特異的かつ迅速に検出可能なプローブを提供する。【解決手段】特定なる塩基配列からなり、かつヘリコバクター ピロリ菌が保有するＤＮＡと特異的に反応するＨＰ-６０ プローブ。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号：６に記載の塩基配列からなり、かつヘリコバクター ピロリ（Helicobacter pylori）菌が保有するＤＮＡと特異的に反応する、ことを特徴とするヘリコバクター ピロリ菌検出用プローブ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、胃炎、胃潰瘍および十二指腸潰瘍などの消化器系疾患の起炎菌であるヘリコバクター ピロリ（Helicobacter pylori）菌の検出および同定に有用なプローブに関する。
【背景技術】
【０００２】
ヘリコバクター ピロリ菌〔旧名：カンピロバクター ピロリ（Campylobacter pylori）菌〕のヒトの胃粘膜での存在が報告（Warren J. R. et al., "Unidentified curved bacilli on gastric epithelium in active chronic gastritis", Lancet １: pp.1273-1275 (1983))されて以来、その生化学的性質、特に、胃・十二指腸潰瘍などの消化器系疾患との関連について数々の研究が進められている。
【０００３】
ヘリコバクター ピロリ菌は、胃炎や胃潰瘍患者の胃粘膜から高頻度に分離・検出され〔例えば、慢性胃炎、表層性胃炎、萎縮性胃炎、糜爛性胃炎などからは、50〜80％の率で検出されたとの報告もある〕、また、然るべき薬剤を投与して除菌することで症状も改善することから、消化器系疾患との関連性が示唆されていた。  ヘリコバクター ピロリ菌は、粘膜細胞内へ侵入する性質は無く、その定着・増殖部位は上皮粘膜面や細胞間隙であり、菌の増殖による胃粘膜のＰＡＳ（Periodic Acid-Sciff）反応陽性層のひ薄化により、粘膜を保護しているムチンの効果が低下し、胃粘膜の防御因子が減退すると考えられている（伊藤武、「Helicobacter pylori に関する最近の知見」、Medical Technology, 19 (10),pp.892-893（1991年９月))。
【０００４】
そしてこれまでに、ヘリコバクター ピロリ菌が胃粘膜上皮に接して生息し、ヘリコバクター ピロリ菌が保有するウレアーゼによる胃内の尿素の分解を経て生成したアンモニアが直接胃粘膜障害を引き起こし、水素イオンの逆拡散などを発生せしめ、ひいては腫瘍の形成に至るとの作用機序も報告されている(Tsujii,M. et al., "Mechanism of gastric mucosal damage Induced by ammonia", Gastroenterology 107: pp.1881-1888 (1992))。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
かようなヒトの消化器系疾患との関連が指摘されているヘリコバクター ピロリ菌の診断方法としては、(１)粘膜局所におけるヘリコバクター ピロリ菌の直接的な証明（塗抹法、組織鏡検法、培養法）、(２)ウレアーゼ活性などのヘリコバクター ピロリ菌の特性を利用した方法、および(３)血清免疫診断法がある（白井孝之、他、「Campylobacter pyloriの存在診断」、最新医学、44 (2)、pp.284-288 (1989))などに大別される。  この内、胃粘膜の生検材料の微好気培養からヘリコバクター ピロリ菌を検出する方法（培養法）が最も精度が高く、確実な方法であるが、培養時間が長いため、結果として検査に長時間を要することになる。
【０００６】
また、ヘリコバクター ピロリ菌のウレアーゼ産生能力に鑑み、胃生検材料から直接ウレアーゼを検出する方法なども利用されている（伊藤武、「特殊な細菌感染症の診断法／4.Campylobacter pylori」、臨床医、15 (増刊号) 、pp.367-369 (1989))。  しかし、これら方法はいずれも、内視鏡検査による生検材料を対象とした検査法であるため、その検査処置において患者に少なからずの苦痛を強いるものであった。
【０００７】
さらに、ヘリコバクター ピロリ菌によって胃内の尿素がアンモニアと14CO2に分解されることに着目し、この14CO2をシンチレーションカウンターで測定する診断法もあるが、この方法では、放射性同位元素の取扱いという繁雑で熟練を要する検査処置を経なければならない。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明は、上記した技術背景に鑑みて、ヘリコバクター ピロリ菌を、内視鏡などの医療器具を患者体内に導入する必要が無く、より特異的かつ効率良く検出できる技術の確立を目指して完成されたものである。
【０００９】
そして、その要旨とするところは、胃炎、胃潰瘍、十二指腸潰瘍などの消化器系疾患の起炎菌／原因菌であるヘリコバクター ピロリ菌が保有するＤＮＡまたはＲＮＡと特異的な反応性を有するプローブ、および、当該プローブに含まれるヘリコバクター ピロリ菌が本質的に保有している遺伝子部分の塩基配列を解明することにある。
【００１０】
すなわち、本発明のプローブにより、例えば、検出対象たる菌において維持されているＤＮＡを、当該プローブとＤＮＡとの間の特異性に基づいて有為に検出でき、これにより、菌を培養・増殖するといった手間をかけることなく、迅速かつ確実に菌を検出・同定できるのである。
【００１１】
また、これらプローブの塩基配列情報を参照してプライマーをデザインすれば、ハイブリダイゼーションを行わなくとも、ＰＣＲ法によるＤＮＡの増幅の有無を検出・確認することで、原因菌を同定できる。
【００１２】
さらに、ハイブリダイゼーションに用いるプローブを非放射性のもの、例えば、ビオチン化したプローブとすることで、放射性同位元素使用施設のない一般検査室でも菌の検出ができ、それにより、菌の同定検出作業が迅速、簡便に行えるのである。
【発明の効果】
【００１３】
本発明のプローブを用いれば、例えば、内視鏡などの医療器具を患者体内に導入することに伴う患者の身体的負担を解消でき、また、ヘリコバクター ピロリ菌の増殖・培養を経ることなく迅速・正確に直接的に菌を検出および同定できる。  すなわち、本発明のプローブを用いた診断では、検出率が飛躍的に向上するのみならず、１回分の検体で菌の同定まで行え、診断に要する時間も約１〜２日程度と短くなる。  それ故、早期の内に有効な治療方針が示され、実施に移すことができる。
【００１４】
また、ヒトの消化器系疾患に深く関連するヘリコバクター ピロリ菌が保有するＤＮＡに特異的に反応するプローブの塩基配列を明らかにしたことにより、これらプローブを人工的に調製することを可能とした。  さらに、解析した塩基配列の情報の一部を利用して作製したプライマーを用いて、臨床検体に含まれる原因菌のＤＮＡを、ＰＣＲ法によって増幅して、原因菌の迅速な診断に役立てることができる。
【００１５】
さらに、臨床検体に含まれるゲノミックＤＮＡの塩基配列と本発明によって解析された塩基配列とを比較参照することにより、消化器系疾患原因菌の菌種の迅速な同定が行える。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１６】
以下に、本発明のヘリコバクター ピロリ菌に由来するプローブの実施例を示す。
【実施例】
【００１７】
実施例１：ヘリコバクター ピロリ菌由来のＤＮＡプローブ
(１)ヘリコバクター ピロリ菌由来ＤＮＡプローブの調製
まず、下記表１に記載の組成を有するスキロー(Skirrow) 培地を調製した。
【００１８】
【表１】
2005192571.tif 000002
次に、臨床菌株ヘリコバクター ピロリ菌を、ブルセラ寒天培地（ディフコ社製）および前出のスキロー培地にて、微好気的条件（２％水素、５％酸素、７％二酸化炭素、86％窒素、相対湿度90％）下で、37℃で、５日間培養して、ヘリコバクター ピロリ菌を分離および増殖した。
【００１９】
培養終了後に、培養菌体を集菌して、プロテイナーゼＫ（メルク社製）-0.1％SDS を用いた核酸の単離を利用する Saito-Miura法 ("Preparation of transforming deoxyribonucleic acid by phenol treatment", Biochem. Biophys. Acta. vol.72, pp.619-629 (1963))の変法に従って、そのゲノミックＤＮＡを抽出した。  抽出したＤＮＡを、制限酵素 HindIIIで完全消化し、ベクターpGEM-3Z(プロメガ製）にランダムクローニングした。
【００２０】
得られたクローンから、ヘリコバクター ピロリ菌と特異的に反応するＤＮＡ断片を含む８種のプローブを選抜した。
【００２１】
そして選抜された各プローブを、プローブHP-32、プローブHP-34、プローブHP-49、プローブHP-55(down)、プローブHP-55(up)、プローブHP-60、プローブHP-64、およびプローブHP-66と命名した。
【００２２】
(２)ヘリコバクター ピロリ菌由来ＤＮＡプローブの種特異性の検討
前述のプローブの選抜において、各プローブと各種感染症原因菌株のＤＮＡとの反応性を、以下の方法により検討した。
【００２３】
まず、検討対象菌株として、下記表２に列挙した臨床単離株および寄託菌株を準備した。
【００２４】
なお、表２中の、ヒト・ゲノミックＤＮＡの入手源として１名の健康な成人男子（30才）から採取した白血球、ならびに対照試料の入手源としてプラスミドpGEM-3Z(生化学工業製)を含んだ Escherichia coli K-12, JM109 株をそれぞれ準備した。
【００２５】
【表２】
2005192571.tif 000003
そして、表２中のヘリコバクター属に属する細菌は実施例１(１)に記載の方法、また、その他の細菌については、各種溶菌株酵素〔リゾスタフィン（シグマ製）、リゾチーム（シグマ製）、アセチルムラミダーゼＳＧ（生化学工業製) 〕を取り入れた Saito-Miura法 (前出）に従って、各菌株が保有する染色体ＤＮＡを抽出した。  抽出したＤＮＡの一定量（例えば、0.1μg/５μl)をナイロンフィルタ（ポールダイン製）にスポットし、アルカリ変性したものをドット ブロット ハイブリダイゼーションの試料とした。  なお、ヒト・ゲノミックＤＮＡ試料は、先に入手した白血球を Saito-Miura 法 (前出）に適用することで調製した。  一方、対照試料は、後述する実施例２(１)に記載のプラスミドＤＮＡの調製方法に、先に入手したプラスミド pGEM-3Z を含んだ Escherichia coli K-12, JM109 株を適用することで調製した。
【００２６】
次いで、Digoxigenin-11-dUTP(ベーリンガー マンハイム社製) でラベルしたヘリコバクター ピロリ菌由来のＤＮＡプローブを、マニアティスのマニュアル（T. Maniatis, et al., "Molecular Cloning (A Laboratory Manual)", Cold Spring Harbour Laboratory (1982))に従い、45％ホルムアミド（メルク社製）、５×SSC、42℃の条件下で、終夜ハイブリダイゼーションを実施した。
【００２７】
終夜ハイブリダイゼーションを終えた試料を、55℃にて、0.1×SSC、0.1% SDSによる20分間の洗浄を２回行った後に、Anti-Dig-ALP conjugates(ベーリンガー・マンハイム社製)で検出・発色させ、ハイブリダイゼーションに関する特異性を確認した。
【００２８】
各プローブと各臨床菌株のＤＮＡとの反応性に関する実験結果を図２に示した。  また、ウェルの位置と被検試料（ブロッティングされた菌株ＤＮＡ）との対応関係を図１に示した。  すなわち、図１に示したウェルプレートの模式図に付したウェルの位置番号は、表２に列挙した試料（菌株）に付した番号と符合する関係にある。
【００２９】
図２の反応結果から明らかなように、試験したいずれのプローブもヘリコバクター ピロリ菌に由来するＤＮＡに対してのみ反応性を示し、ヘリコバクター属に属さない菌種に由来するＤＮＡはもちろん、ヘリコバクター ピロリ菌以外のヘリコバクター属に属する他の菌種由来のＤＮＡに対しても反応性（ハイブリッドの形成）が認められず、本願発明のプローブによる種特異性が確認された。
【００３０】
実施例２：塩基配列の解析
実施例１にて種特異性が確認されたＤＮＡプローブ（計８本）の塩基配列を下記の方法に従って決定した。
【００３１】
(１)プラスミドＤＮＡの調製
サブクローンされた（塩基配列を決定すべき）挿入断片を pGEM-3Z（プロメガ製) に含んだ Escherichia coli K-12, JM109 株を、５mlの Luria-Bactani Medium (bacto-tryptone, 10g/1L; bacto-yeast extract, 5g/1L; NaCl, 10g/1L;５Ｎ NaOH でpH 7.0に調整）に植菌し、一晩培養した。
【００３２】
培養液を遠心分離(5,000rpm,５min.）して集菌した。  沈澱物に2.5mg/mlの濃度でリゾチーム（シグマ製) を含む 50mM グルコース/25mM Tris-HCl(pH8.0)/10mM EDTA 溶液を 100μl 加え、室温で５分間放置した。  得られた懸濁液に１％の濃度でドデシル硫酸ナトリウム（シグマ製) を含む 0.2Ｍ水酸化ナトリウム水溶液を加えて混合した。  ５Ｍ酢酸カリウム水溶液 (pH4.8) 150μl をさらに加えて混合し、15分間氷冷した。
【００３３】
そして、遠心分離（15,000rpm, 15min.)して得た上清を、フェノール／クロロホルム(CHCl3) 処理し、この上清に２倍量のエタノールを加え、さらに遠心分離(12,000rpm, ５分間）して沈澱を得た。  この沈澱物を、10mM Tris-HCl (pH7.5)/0.1mM EDTA溶液 100μl に溶解し、10mg/ml RNaseA（シグマ製) 溶液を加え、室温で15分間放置した。
【００３４】
この調製物に 0.1M 酢酸ナトリウム水溶液(pH4.8) を 300μl 加え、フェノール／クロロホルム(CHCl3) 処理し、上清にエタノールを加えて沈澱を得た。  この沈澱物を乾燥し、10μl の蒸留水に溶解したものをＤＮＡ試料とした。
【００３５】
(２)塩基配列決定の前処理
塩基配列決定の前処理を、AutoRead(登録商標) Sequencing Kit (ファルマシア製）を用いて行った。
【００３６】
すなわち、鋳型となるＤＮＡが32μl 溶液中に５〜10μgの濃度になるように調整した。
【００３７】
1.5mlのミニチューブ（エッペンドルフ）に、鋳型ＤＮＡ 32μl を移し、２Ｍ水酸化ナトリウム水溶液を８μl 加えて穏やかに混合した。  そして、軽く遠心した後、室温で10分間放置した。
【００３８】
３Ｍ酢酸ナトリウム(pH4.8) ７μl と蒸留水４μl を加え、さらにエタノールを120μl加えて混合し、ドライアイス上で15分間放置した。  そして、15分間遠心分離して沈澱したＤＮＡを集め、注意しながら上清を除去した。  得られた沈澱物を70％エタノールで洗浄し、10分間遠心分離した。  そして、注意しながら再度上清を除去し、減圧条件下で沈澱物を乾燥した。
【００３９】
沈澱物を蒸留水10μl に溶解し、螢光性のプライマー〔Fluorescent Primer, M13 Universal Primer; 5'-Fluorescein-d[CGACGTTGTAAAACGACGGCCAGT（配列番号：９）]-3'(1.6pmol/μl; 0.42 A260 unit/ml); M13 Reverse Primer, 5'-Fluorescein-d[CAGGAAACAGCTATGAC（配列番号：10）]-3'(2.1pmol/μl; 0.42 A260 unit/ml) 〕２μl (0.42 A260 unit/ml, ４〜６pmol）と、アニーリング用緩衝液２μl とを加え穏やかに混合した。
【００４０】
そして、軽く遠心した後、65℃で５分間熱処理を行い、素早く37℃条件下に置き、そこで10分間保温した。  保温後10分以上室温で放置し、軽く遠心した。  そして、延長用緩衝液１μl とジメチルスルホキシド３μl を加えたものを試料とした。
【００４１】
４本のミニチューブにＡ、Ｃ、ＧおよびＴと記入し、それぞれのチューブにＡMix (ddATPをdATP、dCTP、dGTP、およびdTTPと共に溶解したもの) 、Ｃ Mix (ddCTP をdATP、dCTP、dGTP、およびdTTPと共に溶解したもの) 、Ｇ Mix (ddGTP をdATP、dCTP、dGTP、およびdTTPと共に溶解したもの) およびＴ Mix(ddTTPをdATP、dCTP、dGTP、およびdTTPと共に溶解したもの) を 2.5μl ずつ分注した。  なお、それぞれの溶液は使用時までは氷中で保存し、使用時には37℃で１分間以上保温してから使用した。
【００４２】
希釈したT7DNA ポリメラーゼ（ファルマシア製；６〜８units/２μl)２μl をＤＮＡ試料に加え、ピペッティングもしくは穏やかな混合により、完全に混合した。  混合後すぐに、この混合液を 4.5μl ずつ保温しておいた４種の溶液に分注した。  なお、分注に際しては新しいチップを用いた。
【００４３】
37℃で５分間保温し、前出の AutoRead(登録商標) Sequencing Kitに添付されていた反応停止溶液を５μl ずつそれぞれの反応液に加えた。  この分注においても、新しいチップを用いた。  90℃で、２〜３分間保温し、すぐに氷中で冷却した。  電気泳動には１レーンあたり４〜６μl を泳動した。
【００４４】
(３)塩基配列の決定
実施例１に記載のヘリコバクター ピロリ菌が保有するＤＮＡに対して特異性を有するプローブそれぞれの塩基配列を、泳動温度45℃、泳動時間６時間として、A.L.F. DNA Sequencerシステム（ファルマシア製）を用いて決定した。
【００４５】
その結果、プローブ ＨＰ-３２（配列番号：１）、プローブ ＨＰ-３４（配列番号：２）、プローブ ＨＰ-４９（配列番号：３）、プローブ ＨＰ-５５(down)（配列番号：４）、プローブ ＨＰ-５５(up)（配列番号：５）、プローブ ＨＰ-６０（配列番号：６）、プローブ ＨＰ-６４（配列番号：７）、およびプローブ ＨＰ-６６（配列番号：８）それぞれの塩基配列の全容が明らかとなった。
【産業上の利用可能性】
【００４６】
このように、本発明は、所期の目的であった感染症診断用プローブを提供するのみならず、ＰＣＲ用プライマー作製の指針として、また臨床検体に含まれるゲノミックＤＮＡとの比較参照用に適した標準配列として優れた有用であり、さらには消化器系疾患の原因菌であるヘリコバクター ピロリ菌が保有するＤＮＡに特異的に反応するプローブの今後の探究・開発における貴重な手がかりをもたらす。
【００４７】
また、本願で開示した塩基配列は、臨床分離株のゲノミックＤＮＡをランダムにクローニングして得られたものであり、それ故、本発明の塩基配列の有用性はその相補鎖にまで及ぶものである。
【００４８】
さらに、野性株が保有するＤＮＡに変異部分が存在することは当然考えられる。  しかしながら、上記実施例の開示から明らかなように、当該ＤＮＡ変異部分は、消化器系疾患診断のためのハイブリダイゼーションへ利用する際の本発明プローブの特異性、あるいは本願で開示した塩基配列情報を消化器系疾患の迅速診断を目的としたＰＣＲ用のプライマーをデザインするために利用できる等の本発明が奏する有用性には何ら影響を与えるものではない。
【図面の簡単な説明】
【００４９】
【図１】ウェルの位置と被験試料（ブロッティングされた菌株ＤＮＡ）との対応関係を示す図である。
【図２】本発明のプローブと各種菌株由来のＤＮＡとの反応性を示すドットハイブリダイゼーションの結果を示す図である。
【図１】
2005192571.tif 000004
【図２】
2005192571.tif 000005
【配列表】
2005192571000001.app