(57)【要約】【課題】  長期間にわたって継代培養を行っても種株の特性の変化を最低限に抑えることができるとともに、活性が高い状態で種株を維持することができ、その結果として、継代培養後の薬用人参カルス培養物の収穫量が低下したり、薬用人参カルス培養物の内部に生産されるサポニン等の二次代謝産物の含有量が低下する等の問題を抑えることのできる薬用人参カルスの継代培養方法を提供する。【解決手段】  培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に繰り返すことにより薬用人参カルスを継代培養する方法であり、培養条件Ｂが、培養条件Ａに比べて使用培地量が１１０〜２００容量％であるとともに、液体培地中のオーキシン類の濃度が１／７〜１／２倍であることを特徴とする薬用人参カルスの継代培養方法とする。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に繰り返すことにより薬用人参カルスを継代培養する方法であり、培養条件Ｂが、培養条件Ａに比べて使用培地量が１１０〜２００容量％であるとともに、液体培地中のオーキシン類の濃度が１／７〜１／２倍であることを特徴とする薬用人参カルスの継代培養方法。
【請求項２】
培養条件Ａおよび培養条件Ｂのオーキシン類の濃度が０．１〜１０ｐｐｍの範囲である請求項１記載の薬用人参カルスの継代培養方法。
【請求項３】
培養条件Ａおよび培養条件Ｂの液体培地がともにサイトカイニン類を含有しており、培養条件Ｂのサイトカイニン類の濃度が培養条件Ａのサイトカイニン類の濃度に比べて２〜５倍である請求項１記載の薬用人参カルスの継代培養方法。
【請求項４】
培養条件Ａおよび培養条件Ｂのサイトカイニン類の濃度が０．０１〜５ｐｐｍの範囲である請求項３記載の薬用人参カルスの継代培養方法。
【請求項５】
薬用人参カルスがオタネ人参、チクセツ人参、アメリカ人参、三七人参、シベリア人参から選ばれる薬用人参のカルスである請求項１〜４のいずれか１項記載の薬用人参カルスの継代培養方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は薬用人参カルスの継代培養方法に関し、詳しくは、長期間継代培養を行っても薬用人参カルス培養物の収穫量が低下しにくく、また、薬用人参カルス培養物の内部に生産されるサポニン等の二次代謝産物の含有量も低下しにくい薬用人参カルスの継代培養方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
薬用人参、例えばおたね人参（Ｐａｎａｘ  ｇｉｎｓｅｎｇ）、チクセツ人参（Ｐａｎａｘ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、アメリカ人参（Ｐａｎａｘ  ｑｕｉｎｑｕｅｆｏｌｉｕｍ）、三七人参（田七人参とも呼ばれる；Ｐａｎａｘ  ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｇ）、シベリア人参（Ｅｌｅｕｔｈｅｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ）などは、二次代謝産物としてサポニン、パナキサン、サポゲニンなどの成分を含み、これら成分により強壮作用や長生作用、血糖値降下作用、鎮静作用、興奮作用、利尿作用などの薬効を示すことが知られている。
【０００３】
これら薬効のために、薬用人参は古来より漢方薬として珍重されており、また、近年では薬用人参から抽出されたエキスが医薬品や食品、化粧品等の原料として利用されている。
【０００４】
これら薬用人参エキスとしては、かつては畑などで栽培した薬用人参を原料として抽出したエキスが用いられていたが、利用分野の広がりとともに一定品質の薬用人参エキスを大量に生産することが必要となってきた。
【０００５】
そのため、現在では薬用人参のカルスを液体培地で培養し、得られた薬用人参カルス培養物を原料にして薬用人参エキスを生産することも行われており、これにより良質の薬用人参エキスを短期間で大量に生産することが可能となった。
【０００６】
薬用人参エキスを長期間にわたって安定的に生産するには、原料となる薬用人参カルスの種株の品質管理が非常に重要であり、増殖能力に優れるとともに二次代謝産物の生産能力にも優れた種株を選抜して用いることにより、長期間にわたって良質の薬用人参エキスを安定的に生産できる。
【０００７】
しかし、このような良質の種株を用いても、継代培養条件の設定を誤った場合には、継代培養中に種株の特性が変化して継代培養後の薬用人参カルス培養物の収穫量が低下したり、収穫した薬用人参カルス培養物内部のサポニン等の二次代謝産物の含有量が低下してしまうことがあり、このような場合には、良質の薬用人参エキスを大量に生産することが困難となる。
【０００８】
よって、長期間にわたって良質の薬用人参エキスを大量に生産するには、継代培養条件の最適化を行い、種株の特性変化を最低限に抑えるとともに、種株を活性の高い状態に維持することが重要となる。
【０００９】
継代培養条件の最適化については種々の方法が検討されており、例えば培地組成を調節する方法（例えば、特許文献１参照）や、培地組成の大きく異なる複数種類の培地を用い、交換しながら継代培養を行う方法（例えば、特許文献２参照）などが一般的に知られている。
【００１０】
しかし、植物細胞の培養の分野では、一種類の培地に繰り返し植え継いでいくと、種株が馴化して種株の活性が低下することが知られており、前者の方法のように培地組成を調節したとしても、いずれは二次代謝産物の生産効率が低下してしまうことが予想される。
【００１１】
一方、後者の方法のように組成の異なる複数種類の培地を交換しながら植え継ぐ場合、上記のような種株の馴化は比較的起きにくいと思われるものの、組成の大きく異なる複数種類の培地で交互に培養を繰り返すと、培地組成の変化が種株にとって過大なストレスとなり、その結果として種株の特性が変わってしまう懸念がある。
【００１２】
そこで発明者らは、培地組成を変更せずに種株の特性を長期間にわたって維持する方法について検討を重ねた結果、液体培養の際の使用培地量を調節することにより、培地組成を変更しなくても薬用人参カルスの特性を維持して培養できることを見出し、特願２００３−０８６８８７号として特許出願した。
【００１３】
この方法によれば、継代培養を行った後で、継代培養条件とは使用培地量の異なる条件で培養を行うことにより、培地組成を変更しなくても、種株の特性を維持したまま長期間の培養を行うことが可能であった。
【００１４】
しかし、その後の発明者らの検討の結果、長期間にわたって継代培養を行う際には、上記のように使用培地量を変更するだけでは薬用人参カルス培養物の収穫量の低下や薬用人参カルス培養物内部の二次代謝産物の含有量の低下が起きることがまれにあり、さらなる改良が求められた。
【特許文献１】特開昭５９-１６９４８７号公報（請求項１）
【特許文献２】特開平８-１９６２６９号公報（請求項１）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１５】
本発明は上記課題を解決するために為されたものであり、長期間にわたって継代培養を行っても種株の特性の変化を最低限に抑えることができるとともに、活性が高い状態で種株を維持することができ、その結果として、継代培養後の薬用人参カルス培養物の収穫量が低下したり、薬用人参カルス培養物の内部に生産されるサポニン等の二次代謝産物の含有量が低下する等の問題を抑えることのできる薬用人参カルスの継代培養方法を提供することを目的とするものである。
【課題を解決するための手段】
【００１６】
本発明者らは、上記課題を解決するために薬用人参カルスの継代培養条件を種々検討した。
【００１７】
その結果、使用培地量および液体培地中の植物ホルモン濃度の異なる培養条件Ａおよび培養条件Ｂで交互に液体培養を繰り返すことが、上記課題を解決するのに効果的であることを見出し、本発明を完成させた。
【００１８】
すなわち本発明は、培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に繰り返すことにより薬用人参カルスを継代培養する方法であり、培養条件Ｂが、培養条件Ａに比べて使用培地量が１１０〜２００容量％であるとともに、液体培地中のオーキシン類の濃度が１／７〜１／２倍であることを特徴とする薬用人参カルスの継代培養方法である。
【発明の効果】
【００１９】
本発明の薬用人参カルスの継代培養方法は、培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に繰り返す継代培養方法であり、これらの培養条件における液体培地の植物ホルモン濃度を特定の範囲で相違させるとともに、使用培地量も相違させている。
【００２０】
そのため、これらの培養条件で交互に継代培養を行うことにより、培養条件を変更した際に、種株に化学的ストレスと物理的ストレスの両方を与えることができる。
【００２１】
そして、本発明では、上記化学的ストレスおよび物理的ストレスを、ともに種株の性質を変えない程度の範囲に調節しているため、これらストレスがかかっても種株の特性は変化せず、むしろこれらストレスが種株に対する適度な刺激となって種株の馴化が起こりにくくなる。
【００２２】
この結果、長期間にわたって継代培養を行っても薬用人参カルス培養物の収穫量が低下しにくくなり、また、薬用人参カルス培養物の内部に生産されるサポニン等の二次代謝産物の含有量も低下しにくい、優れた継代培養方法となるのである。
【００２３】
そして、本発明の薬用人参カルス培養物の製造方法によれば、上記のとおり種株である薬用人参カルス培養物の増殖能力やサポニン等の二次代謝産物を生産する能力の低下が最低限に抑えられているため、サポニン等の二次代謝産物を多量に含む良質の薬用人参カルス培養物を多量に製造することができるのである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２４】
以下、本発明の実施の形態について説明する。
【００２５】
本発明における薬用人参とは、サポニン、パナキサン、サポゲニンなどの二次代謝産物を多く含有する人参を指し、具体例としては、おたね人参やチクセツ人参、アメリカ人参、三七人参、シベリア人参などを挙げることができる。
【００２６】
本発明の継代培養方法では、これら薬用人参のカルスから分化を誘導したものを種株とする。
【００２７】
この薬用人参カルスの分化を誘導する際に用いる培地としては、薬用人参の組織培養に一般的に用いられる培地を使用する。
【００２８】
培地の具体例としては、ＭＳ（ムラシゲ−スクーグ）培地、ホワイト培地、ガンボルグＢ５培地、ニッチェ培地、ヘラー培地、モーレル培地、あるいはこれらの培地成分をそれぞれ至適濃度に修正した修正培地などを挙げることができ、さらに必要であればこれらの培地にカゼイン分解酵素、コーンスティープリカー、ビタミン類などを配合しても良い。
【００２９】
また、分化を誘導する際には、培地に各種の植物ホルモン、例えばオーキシン類やサイトカイニン類なども配合し、オーキシン類として４，３−インドール酪酸（ＩＢＡ）やβ−インドール酢酸（ＩＡＡ）、α−ナフタリン酢酸（ＮＡＡ）など、サイトカイニン類としてカイネチンやゼアチン、ジベレリン、ベンジルアデニンなどを使用する。
【００３０】
これら薬用人参や培地、植物ホルモンを用いて薬用人参カルスの分化を誘導するには、例えば以下の操作を行えば良い。
【００３１】
ビーカー等の培養容器に培地や植物ホルモン、寒天を入れて寒天固形培地を作製し、そこに薬用人参の組織を接種して静置培養を行う。
【００３２】
静置培養は、薬用人参カルスの分化誘導において一般的に採用される温度範囲、例えば２０〜２８℃の温度条件で行い、通常は２〜４週間程度の静置培養により薬用人参カルスの分化が誘導される。そして、直径５〜１５ｍｍ程度まで培養して本発明の種株として用いる。
【００３３】
この種株を用いて継代培養を行う場合、培養容器に植物ホルモンを含有する液体培地を入れ、そこに上記種株を接種して２０〜２８℃の温度範囲で振盪培養を行う。
【００３４】
継代培養に用いる培養容器としては、例えば三角フラスコやビーカー等が使用でき、取扱い性や入手の容易さなどの点から、容量０．１〜１．５Ｌのガラス製三角フラスコが好ましく、容量０．３Ｌ〜１Ｌのガラス製三角フラスコが特に好ましい。
【００３５】
継代培養に用いる液体培地も、薬用人参カルスの組織培養に一般的に用いられる培地を用いることができ、そこに適宜必要な植物ホルモン、添加物等を配合して使用する。
【００３６】
本発明では、培養条件Ａおよび培養条件Ｂの両方の液体培地が、植物ホルモンとしてオーキシン類を含むことを必須とする。オーキシン類としては、ＩＢＡやＩＡＡ、ＮＡＡなどを使用できる。
【００３７】
そして、本発明では培養条件Ａにおける液体培地中のオーキシン類濃度と、培養条件Ｂにおける液体培地中のオーキシン類濃度との比率が特定の範囲になるように調節することを一つの特徴とする。
【００３８】
オーキシン類濃度の比率の具体的な範囲は、培養条件Ｂの液体培地中のオーキシン類濃度が培養条件Ａの液体培地中のオーキシン類濃度に比べて１／７〜１／２倍の濃度となる範囲、好ましくは１／４〜１／２倍の濃度となる範囲、より好ましくは１／３〜１／２倍の濃度となる範囲である。
【００３９】
培養条件Ｂの液体培地中のオーキシン類濃度を培養条件Ａの液体培地中のオーキシン類濃度の１／７倍未満とした場合には、培養条件Ａと培養条件Ｂのオーキシン類濃度の差が大きすぎ、培養条件Ａから培養条件Ｂ、もしくは培養条件Ｂから培養条件Ａに培養条件を変えた際に、種株の特性が変わってしまうことがある。
【００４０】
一方、培養条件Ｂの液体培地中のオーキシン類濃度を培養条件Ａの液体培地中のオーキシン類濃度と比べて１／２倍を超えるようにした場合には、これらの培養条件でのオーキシン類濃度の差が小さいために、両培養条件でオーキシン類濃度が相違しても種株に化学的ストレスがあまりかからず、種株の生育にほとんど影響しない場合がある。
【００４１】
なお、本発明では培養条件Ａおよび培養条件Ｂの液体培地中のオーキシン類濃度の比率を上記のとおりに設定するが、いずれの培養条件でもオーキシン類濃度は０.１〜１０ｐｐｍの範囲、特に０.５〜５ｐｐｍの範囲となるように設定するのが好ましい。
【００４２】
オーキシン類の濃度がこの範囲を外れたとしても、種株の継代培養はできるものの、０.１ｐｐｍ未満の濃度では植物ホルモンとしての作用を十分に発揮し得ない場合があり、また、１０ｐｐｍを超える濃度では、オーキシン類の濃度が高すぎて種株が過剰な化学的ストレスを受け、種株の特性が変化してしまうことがある。
【００４３】
また、本発明では培養条件Ａおよび培養条件Ｂの液体培地中にサイトカイニン類を配合してもよく、その場合には、オーキシン類濃度の比率を上記特定の範囲に調節するとともに、サイトカイニン類濃度の比率も特定の範囲に調節することが好ましい。
【００４４】
具体的には、培養条件Ｂの液体培地中のサイトカイニン類濃度が培養条件Ａの液体培地中のサイトカイニン類濃度に対して２〜５倍の濃度となる範囲にサイトカイニン類の濃度を調節するのが好ましい。
【００４５】
サイトカイニン類としては、カイネチンやゼアチン、ジベレリン、ベンジルアデニンなどを使用できる。
【００４６】
これらサイトカイニン類の濃度の比率を上記の範囲とすることにより、オーキシン類の濃度のみを調節した場合よりもさらに種株の馴化が起こりにくくなり、継代培養時における種株の増殖能力の低下が起こりにくくなる。
【００４７】
さらに、培養条件Ｂの液体培地中のサイトカイニン類濃度が培養条件Ａの液体培地中のサイトカイニン類濃度に対して２〜３倍の濃度となる範囲に設定すれば、種株の増殖能力とともに二次代謝産物の生産能力の低下も防止され、薬用人参カルスの特性をより好ましい状態で維持できる。
【００４８】
それに対し、培養条件Ａおよび培養条件Ｂの液体培地中のサイトカイニン類濃度の比率が５倍を超えると、サイトカイニン類濃度の差が大きすぎるために、培養条件Ａから培養条件Ｂ、もしくは培養条件Ｂから培養条件Ａに培養条件を変えた際に、種株の特性が変化してしまうことがある。
【００４９】
そして、このような場合には、種株の特性変化により種株が軟化して薬用人参カルス培養物の収穫量が低下したり、収穫した薬用人参カルス培養物の内部に生産される二次代謝産物の含有量が低下することがある。
【００５０】
なお、培養条件Ａおよび培養条件Ｂの液体培地中のサイトカイニン類の濃度を決める際には、いずれの培養条件でもサイトカイニン類の濃度が０.０１〜５ｐｐｍの範囲、特に０.１〜３ｐｐｍの範囲となるように決めるのが好ましい。
【００５１】
この濃度範囲を外れたとしても種株を継代培養できるものの、０.０１ｐｐｍ未満の濃度では植物ホルモンとしての作用を発揮しない場合があり、また、５ｐｐｍを超える濃度では、サイトカイニン類の濃度が高すぎて種株が過剰な化学的ストレスを受け、種株の特性が変化してしまうことがある。
【００５２】
本発明の継代培養方法では、また、継代培養時の各培養条件の使用培地量を相違させる点にも一つの特徴を有し、培養条件Ｂの使用培地量を培養条件Ａに比べて１１０〜２００容量％となるように調節して継代培養を行う。
【００５３】
薬用人参をはじめとする植物細胞を継代培養する場合、同一形状、同一容量の培養容器を用いて、さらに振盪条件も同じに設定して繰り返し培養を行う。そして、このような条件で継代培養を行う場合、培養容器内の培地量が多ければ培地の撹拌が穏やかになり、反対に培養容器内の培地量が少なければ培地の撹拌が強くなる。
【００５４】
よって、培養条件Ｂの使用培地量を培養条件Ａの使用培地量に比べて１１０〜２００容量％となるように調節している本発明の継代培養方法では、培養条件Ａおよび培養条件Ｂにおいて種株が受ける物理的ストレスの程度に違いが生じ、この物理的ストレスの程度の差が種株に対する適度な刺激となって馴化が起こりにくくなるのである。
【００５５】
なお、培養条件Ｂの使用培地量を培養条件Ａの１１０容量％未満とした場合には、培養条件Ａと培養条件Ｂの間の使用培地量の差が小さいために、これらの培養条件下で種株が受ける物理的ストレスの程度の差が非常に小さくなる。
【００５６】
そのため、これら培養条件で使用培地量が相違していたとしても、種株に十分な刺激を与えることができなくなる。そしてこの場合、単に植物ホルモン濃度を調節した場合と変わらなくなる。
【００５７】
一方、培養条件Ｂの使用培地量を培養条件Ａに比べて２００容量％を超えるものとした場合には、これらの培養条件で種株が受ける物理的ストレスの程度に過大な差が生じ、その結果、培養条件Ａから培養条件Ｂ、もしくは培養条件Ｂから培養条件Ａに培養条件を変えた際に、種株の特性が変化してしまうことがある。
【００５８】
培養条件Ａおよび培養条件Ｂの使用培地量を決める際には、どちらも使用する培養容器の容量の１／５〜１／２倍の範囲となるように使用培地量を調節するのが好ましい。
【００５９】
使用培地量が培養容器の容量の１／５倍より少なくなると、培養容器内で培地が移動する自由度が大きいために、振盪により液体培地が大きく動き過ぎ、種株に強いせん断力がかかる場合がある。そして、このせん断力により種株に過大な物理的ストレスが作用し、種株の特性が変化してしまうことがある。
【００６０】
一方、使用培地量が培養容器の容量の１／２倍より多くなると、培養容器内で培地が十分に撹拌されずに、種株にかかる物理的ストレスが過少となる場合がある。
【００６１】
このような場合、増殖能力や二次代謝産物の生産能力などの活性が高い状態で種株を維持するという本発明の効果が十分に発揮されないおそれがある。
【００６２】
また、あまりに使用培地量を多くすると、振盪の際に液体培地が飛散し、培養容器の開口部周辺の壁面や、開口部に設けた蓋部材に付着して微生物汚染を引き起こすことがある。
【００６３】
これらの培養条件における使用培地量を決めるには、培養条件Ａもしくは培養条件Ｂのいずれかの使用培地量を決定し、その使用培地量を基に、本発明の特定の使用培地量の比率となるように他方の使用培地量を逆算すればよい。
【００６４】
振盪培養を行う際には、市販の振盪培養装置等を用いればよく、振盪速度等の条件は適宜設定する。
【００６５】
薬用人参カルスの継代培養に適した振盪速度は、培養容器の形状や容量、使用培地量、振盪装置の振盪方式等によっても変化するが、例えば、容量１Ｌの三角フラスコに５００ｍＬの液体培地を入れて、高崎科学機械株式会社製ＴＡ−２１６振盪装置を用いて振盪を行う場合を例に挙げれば、毎分７０〜１００ストロークの振盪速度で振盪培養を行うのが好ましい。
【００６６】
毎分１００ストロークを超える強い振盪では、飛散した液体培地が培養容器の開口部周辺の壁面や開口部に設けた蓋部材に付着し、微生物汚染を引き起こすおそれがある。
【００６７】
一方、毎分７０ストローク未満では振盪が弱すぎて培地が充分に撹拌されず、その結果、種株が十分に増殖しなかったり、薬用人参カルス培養物の内部に生産される二次代謝産物、例えばサポニンなどの含有量が低くなったりする。
【００６８】
先に示した振盪条件は、このような問題が生じない条件の一例として示したものであり、上記例とは異なる培養容器や振盪装置等を用いる場合、また、使用培地量等の条件を変更する場合にも、これら問題を解消できる程度の振盪条件に設定する。
【００６９】
本発明の継代培養方法では、培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に行うが、通常、種株の植え継ぎは数週間ごと、好ましくは２〜４週間ごとに行う。
【００７０】
そして、植え継ぎを行う場合、必ずしも１回植え継ぐ毎に培養条件を変更する必要は無く、１つの培養条件で複数回連続して植え継いで培養を行った後に、他方の培養条件に変更しても良い。
【００７１】
種株の特性変化を抑制するという目的から言えば、なるべく培養条件は変化しないほうが好ましく、１回植え継ぐ毎に異なる培養条件に変更するよりも、むしろ１つの培養条件で２〜３回連続して液体培養を行うのが好ましい。
【００７２】
このようにして、１つの培養条件で複数回、好ましくは２〜３回連続して液体培養を行い、その後、培養条件を変えて同様に２〜３回の液体培養を行うというサイクルを繰り返すことにより、長期間にわたって種株の特性を維持したまま継代培養を行うことができる。
【００７３】
上記のように本発明は、培養条件Ａでの液体培養および培養条件Ｂでの液体培養を交互に繰り返す継代培養方法であり、これらの培養条件における液体培地中の植物ホルモン濃度を特定の範囲で相違させるとともに、これらの培養条件で使用する使用培地量も相違させている。そのため、培養条件を変更した際に化学的ストレスと物理的ストレスの両方を種株に与えることができる。
【００７４】
そして本発明では、これら化学的ストレスおよび物理的ストレスの両方を、種株の性質を変えない程度の変化に調節しているため、化学的ストレスもしくは物理的ストレスの一方のみを調節して継代培養を行う場合に比べ、種株の特性を変化させずに継代培養を行うことができるのである。
【００７５】
なお、本発明の継代培養方法では、種株の特性変化を最低限に抑えつつ種株の活性を高い状態に維持するという本発明の効果を阻害しない限り、培養条件Ａおよび培養条件Ｂ以外の培養条件で種株を培養する工程を設けても良い。
【００７６】
このような培養条件の例としては、例えば培養条件Ａもしくは培養条件Ｂを基本条件として培地中の特定成分を増減したり、任意成分を追加するなどして培地組成の一部を変更した培養条件や、培地の振盪の程度を加減することにより物理的ストレスを調節した条件、また、ごく微弱な電気的ストレスの付与などにより先に説明した化学的ストレスや物理的ストレスとは異なるストレスを与えた条件などが挙げられる。
【００７７】
上記薬用人参カルスの継代培養方法により得られた種株を用いて薬用人参カルス培養物を製造することにより、サポニン等の二次代謝産物を多く含む良質な薬用人参カルス培養物を多量に製造することができる。
【００７８】
具体的な薬用人参カルス培養物の製造方法としては、上記本発明の薬用人参カルスの継代培養方法により種株の継代培養を行い、得られた種株を多数本の培地に植え継いでそれらを合わせることにより、薬用人参カルス培養物を製造したり、継代培養よりも大きなスケールで培養を行うことにより一度の培養で多量の薬用人参カルス培養物を製造する方法などが挙げられる。そして、より好ましくは、このような培養を多段階で行う。
【００７９】
このうち、継代培養より大きなスケールで培養を行う場合には、その培養容器として撹拌装置や温度制御装置などを有する培養装置を用いることが好ましく、例えば容量数Ｌ〜数十万Ｌ程度の培養タンクに撹拌羽根等の撹拌装置、ヒーターやクーラー等の温度制御装置、その他必要に応じて各種の制御装置などを設けた培養装置を用いることができ、耐久性等を考えれば、上記培養タンクとしては金属製、特にステンレス製の培養タンクを用いるのが好ましい。
【００８０】
このような培養装置を用いて薬用人参カルス培養物を製造する場合、継代培養後の種株をいきなり数百〜数万倍のスケールにスケールアップして培養を行うのではなく、多段培養により徐々にスケールアップするのが好ましい。
【００８１】
例えば、１Ｌ程度の三角フラスコで継代培養を行い、得られた薬用人参カルス培養物を、三角フラスコ数本分まとめて数Ｌ程度の小容量の培養装置に移し、必要量の液体培地を加えて培養し、そこで得られた薬用人参カルス培養物の一部もしくは全量を新たな種株として、さらに大容量の培養装置で培養を行う。これを繰り返して最終的に数百〜数万倍程度の容量で培養するのである。
【００８２】
これは、継代培養後の種株を、いきなり数百〜数万倍のスケールで培養しようとしても種株がうまく増殖しない場合や種株の特性が変わってしまう場合があり、確実に増殖させるためには、段階的に徐々にスケールアップさせるのが好ましいためである。
【００８３】
なお、この段階では、継代培養時のような培地中のホルモン類濃度の変更は行わないようにするのが好ましい。
【００８４】
薬用人参カルス培養物をこのような多段工程で多量に製造する場合は、先述の各段階ごとに使用培地量が大きく相違するため、継代培養時と比べた場合の物理的ストレスの変化が比較的大きいものとなっている。そのため、この条件にさらにホルモン類の濃度変更を行うと、種株にかかるストレスが過大になって種株の特性を変えてしまう場合がまれに生じるのである。
【実施例】
【００８５】
以下、薬用人参としてアメリカ人参を用いて継代培養を行った実施例１〜４および比較例１〜３、そして薬用人参としておたね人参を用いて継代培養を行った実施例５〜８および比較例４〜６を示して本発明を説明するが、本発明はこれらの例示によって何ら限定されるものではない。
【００８６】
（実施例１）
＜薬用人参カルスの分化誘導＞水洗いしたアメリカ薬用人参を７０％エタノール水溶液に３０秒間浸漬した後、２％次亜塩素酸ナトリウム水溶液に１０分間浸漬して滅菌した。
【００８７】
滅菌後の薬用人参を滅菌水でよく洗浄して根の部分を無菌的に切断し、その切断片を寒天固形培地に接種して植物組織培養を行い、薬用人参カルスの分化を誘導した。
【００８８】
このようにして得られた薬用人参カルス培養物を培養条件Ａで数ヶ月間液体培養し、液体培養に馴れさせて種株とした。
【００８９】
ここで、培養条件Ａの液体培地として、オーキシン類であるＩＡＡを４ｐｐｍ、そしてサイトカイニン類であるカイネチンを０．１ｐｐｍ含む修正ＭＳ培地３００ｍＬを用いた。
【００９０】
＜薬用人参カルスの継代培養＞１Ｌ容量用として市販されているガラス製三角フラスコ（実容量１．２Ｌ）に培養条件Ａの液体培地、ならびに液体培地に対して８％（ｗｔ／ｖｏｌ）の種株を入れ、２５℃の恒温室内で振盪培養を行った。振盪培養には高崎科学機械株式会社製ＴＡ−２１６振盪装置を用い、毎分７０〜１００ストロークの速度で振盪しながら培養を行った。
【００９１】
振盪培養を始めて１ヶ月後および２ヶ月後に同じ培養条件で植え継ぎを行い、合計３ヶ月間、同じ培養条件で継代培養を行った。
【００９２】
この培養条件Ａでの継代培養に続き、培養条件Ｂとして、オーキシン類であるＩＡＡを０．５７ｐｐｍおよびサイトカイニン類であるカイネチンを０．１ｐｐｍ含む修正ＭＳ培地４００ｍＬを用いて継代培養を３ヶ月間行い、さらに培養条件Ａでの継代培養を３ヶ月間、培養条件Ｂでの継代培養を３ヶ月間ずつ繰り返し、合計１２ヶ月間の継代培養を行った。上記培養条件ＢにおけるＩＡＡ濃度は、培養条件Ａに対して１／７倍の濃度であり、使用した修正ＭＳ培地の容量は培養条件Ａに対して１３３容量％である。
【００９３】
１２ヶ月間の継代培養が終了した時点で、使用培地量１Ｌあたり得られた薬用人参カルス培養物の乾燥収量（ｇ）、薬用人参カルス培養物の乾燥物１ｇあたりのサポニン含量（ｍｇ）を測定し、その測定値より、継代培養開始時と比較した乾燥収量比（下記数１）、およびサポニン含量比（下記数２）を計算した。
【００９４】
なお、サポニン含量の測定にあたっては、サポニンの一種であるジンセノサイド類の含量を高速液体クロマトグラフィーにより測定し、その総和をサポニン含量とみなした。
【００９５】
【数１】
2005312323.tif 000002
【００９６】
【数２】
2005312323.tif 000003
【００９７】
（実施例２〜４）
培養条件Ｂにおける液体培地中のＩＡＡ濃度を表１に記載した濃度に変更した以外は実施例１と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。実施例２〜４における培養条件ＢのＩＡＡの濃度は、それぞれ培養条件Ａに対して１／４、1／３、1／２倍の濃度である。
【００９８】
（比較例１）
培養条件Ｂにより培養する工程を設けず、培養条件Ａでの継代培養を１２ヶ月間行った後に、実施例１と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。
【００９９】
（比較例２）
培養条件Ｂを、培養条件Ａと同じ組成の液体培地を４００ｍＬ使用する条件に変更した以外は実施例１と同様にして培養し、乾燥収量比およびサポニン含量比を計算した。
【０１００】
（比較例３）
培養条件Ｂにおける液体培地中のＩＡＡ濃度を０.５ｐｐｍに変更した以外は実施例１と同様にして培養し、乾燥収量比およびサポニン含量比を計算した。培養条件ＢのＩＡＡの濃度は、培養条件Ａに対して１／８倍の濃度である。
【０１０１】
【表１】
2005312323.tif 000004
本発明の実施態様である実施例１〜４では、いずれも乾燥収量比およびサポニン含量比ともに１００％以上の値を示し、継代培養開始時に比べて増殖能力、サポニン生産能力ともに活性低下が起きていないことが示された。
【０１０２】
特に、培養条件Ｂの液体培地中のＩＡＡ濃度を培養条件Ａに対して１／２〜１／３倍とした実施例３〜４では、培養条件ＡおよびＢの間のＩＡＡの濃度変化が比較的小さいにも関わらず乾燥収量比およびサポニン含量比が良好に維持されており、薬用人参の種株を長期間継代培養するのに適した条件であった。
【０１０３】
実施例１〜４の結果から、本発明の要件を満たす継代培養方法で培養したことにより、適度な物理的刺激および化学的刺激が種株に作用し、種株の活性が高められたのだと考えられる。
【０１０４】
これに対し、培養条件Ｂに相当する培養工程を設けず、培養条件Ａで１２ヶ月間継代培養を行った比較例１では、継代培養１２ヶ月後の薬用人参カルスの乾燥収量比は９８％であり、継代培養開始時と比べてとほぼ同等であったものの、サポニン含量比については６７％と、継代培養開始時に比べて大幅に低下していた。
【０１０５】
比較例１では、一定の条件で長期間継代培養を行ったことにより、種株が馴化してサポニン生産活性が落ちてしまったものと考えられる。
【０１０６】
また、培養条件Ｂとして、培養条件Ａと同じ組成の液体培地を用いて、使用培地量を増加させて継代培養を行った比較例２では、サポニン含量比については継代培養開始時と同程度の値を示していたものの、乾燥収量比については継代培養開始時と比べて若干低下しており、本発明の実施態様である実施例１〜４に比べると、明らかにその収量が低下していた。
【０１０７】
この結果から、液体培地量の変更のみでもサポニン含量の低減はある程度抑えられるものの、実施例１〜４に比べるとその効果は低く、長期的にはサポニン含量が低下する可能性があると思われた。
【０１０８】
比較例３は、実施例１〜４と同様に、培養条件Ｂにおける使用培地量を培養条件Ａに比べて増量するとともに、培養条件Ｂのオーキシン類の濃度を培養条件Ａに比べて低下させて継代培養を行った結果であるが、この比較例では、培養条件Ｂのオーキシン類の濃度が培養条件Ａの１／８倍であり、本発明の範囲から外れている。
【０１０９】
そして、比較例３の結果では、薬用人参カルス培養物の乾燥収量比は実施例１〜４に比べて低く、さらにサポニン含量比に至っては、実施例１〜４だけでなく、全期間を培養条件Ａで培養した比較例１と比べても著しく低いという結果であった。
【０１１０】
この比較例３では、培養条件Ａ，Ｂ間のオーキシン類の濃度の違いが非常に大きいために、種株に過大な化学的ストレスが与えられて種株の特性が変化し、その結果、薬用人参カルス培養物中のサポニン含量が低下してしまったものと考える。
【０１１１】
これらの結果から明らかなように、本発明の効果を得るためには、培養条件Ａと培養条件Ｂの条件を単に相違させるだけではなく、オーキシン類の濃度比を特定の範囲とすることが非常に重要であり、具体的な範囲として、培養条件Ａに対する培養条件Ｂのオーキシン類の濃度を１／７〜１／２倍の範囲、特に１／２〜１／３倍の範囲とするのが好ましいのである。
【０１１２】
（実施例５）
薬用人参としておたね人参を使用した点、培養条件Ａおよび培養条件Ｂの条件を表２に記載した培地組成および使用培地量とした点、そして、培養条件Ａ、培養条件Ｂでの継代培養を、培養条件Ａ、培養条件Ｂ、培養条件Ａ、培養条件Ｂの順にそれぞれ２ヶ月間交互に培養を行って合計８ヶ月間の継代培養とした点以外は実施例１と同じ操作を行い、おたね人参カルス培養物の継代培養を行った。
【０１１３】
実施例５における培養条件ＢのＩＢＡの濃度は培養条件Ａの１／２倍であり、培地量は培養条件Ａの１５０容量％である。また、カイネチンの濃度は培養条件Ａと同じである。
【０１１４】
（実施例６〜８）
培養条件Ｂにおけるカイネチン濃度を表２に記載した濃度に変更した以外は実施例５と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。実施例６〜８における培養条件Ｂのカイネチンの濃度は、それぞれ培養条件Ａの２、３、５倍の濃度である。
【０１１５】
（比較例４）
培養条件Ｂによる培養工程を設けず、培養条件Ａでの継代培養を８ヶ月間行った以外は実施例５と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。
【０１１６】
（比較例５）
培養条件Ｂを、培養条件Ａと同じ組成の液体培地を４５０ｍＬに変更した以外は実施例５と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。
【０１１７】
（比較例６）
培養条件Ｂにおける培地中のカイネチン濃度を２ｐｐｍとした以外は実施例５と同様にして培養し、乾燥収量比、およびサポニン含量比を計算した。この培養条件Ｂにおけるカイネチンの濃度は、培養条件Ａに対して１０倍である。
【０１１８】
実施例５〜８および比較例４〜６の培養条件および乾燥収量比、サポニン含量比を表２に示した。
【０１１９】
【表２】
2005312323.tif 000005
培養条件Ａで８ヶ月間系継培養を行った比較例４では、継代培養後の乾燥収量比が７４％、サポニン含量比が２１％と、ともに継代培養開始時に比べて著しく低い値となり、このような薬用人参カルス培養物を種株として用いて薬用人参カルスの大量培養を行ったとしても、得られる薬用人参カルスの量は少量となり、また、得られる薬用人参カルスも、サポニン含量の低い低品質のものとなってしまうことが予想された。
【０１２０】
これは、一定条件で継代培養を続けたために、継代培養の間に種株が馴化して活性が低下してしまったものと考えられた。
【０１２１】
また、培養条件Ａと同じ組成の培地を用い、使用培地量を増加させて継代培養Ｂを行った比較例５では、乾燥収量比、サポニン含量比ともに比較例４に比べて大きな値を示しており、培地量の増加が種株の増殖能力、サポニン生産能力の向上に寄与していることが示された。
【０１２２】
しかし、サポニン含量比については継代培養開始時と比べて明らかに低下しており、これを種株にして薬用人参カルスを製造し、エキスを得ても、有効成分であるサポニンの含量がやや低い低品質のエキスになってしまうと思われた。
【０１２３】
これら比較例に対し、本発明の実施態様である実施例５〜８では、乾燥収量比は最低でも９６％、サポニン含量比は最低でも９２％となり、継代培養開始時と同程度、もしくはそれ以上の乾燥収量比およびサポニン含量比を有する種株が得られた。
【０１２４】
特に、培養条件Ｂのオーキシン類の濃度を培養条件Ａに比べて１／２倍とし、サイトカイニン類の濃度を培養条件Ａに比べて２〜３倍とした実施例６および７では、乾燥収量比、サポニン含量比ともに継代培養開始時と比べて大きな値となっており、これら種株を用いて薬用人参の大量培養を行えば、有効成分であるサポニン類の含量が高い高品質の薬用人参カルス培養物を、多量に製造できると考えられる。
【０１２５】
ただし、実施例５の培養条件を基に、培養条件Ｂにおけるカイネチンの濃度を培養条件Ａの１０倍とした比較例６についても測定を行った結果、一定条件で培養を行った比較例４に比べると乾燥収量比、サポニン含量比ともに高い値ではあったものの、実施例５〜８と比べると明らかにこれら値が低下しており、特にサポニン含量比については４０％と、著しく低下してしまっていた。
【０１２６】
この結果から明らかなように、培養条件Ａと培養条件Ｂのサイトカイニン類の濃度を変化させることにより種株の乾燥収量比およびサポニン含有比を向上させることが可能であるが、そのためには、サイトカイニン類の濃度比を所定の範囲、具体的には培養条件Ｂのサイトカイニン類を培養条件Ａに対して１〜８倍、より好ましくは２〜５倍の範囲に調節することが好ましく、比較例６では、両培養条件でのサイトカイニン類の濃度比が１０倍と大きいため、この培養条件の違いが種株に過大な化学的ストレスを与え、種株の特性を変化させたものと考えられる。