(57)【要約】  本発明は、乾燥時のバイオ薬物の活性の損失を最小限に抑えること、及び保存可能期間が延長された乾燥製剤を提供することを目的とする、バイオ薬物の乾燥製剤を製造するための方法に関する。該方法は、バイオ薬物の他に少なくともアミノ酸、ポリオール及び金属塩を含む水溶液を乾燥させるステップを含む。好ましくは、アミノ酸はグルタメートであり、ポリオールはソルビトール及び任意選択でマンニトールであり、金属塩はマグネシウム塩である。溶液は真空乾燥又は凍結乾燥によって乾燥される。該方法は、ウイルス（例えば、ワクチン接種に使用されるポリオウイルス又は呼吸器合胞体ウイルス）の乾燥製剤を調製するのに特に有用である。本発明はまた、本発明に従って調製される乾燥製剤、及び医薬（例えばワクチン）としてのその使用に関する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
バイオ薬物の乾燥製剤を製造するための方法であって、バイオ薬物とアミノ酸とポリオールと金属塩と水とを含む溶液を乾燥させるステップを含む方法。
【請求項２】
溶液は、１ｍｌ当たり１ｐｇ〜１０ｇのバイオ薬物と、０．０１〜２０％（ｗ／ｖ）のアミノ酸と、０．５〜２０％（ｗ／ｖ）のポリオールと、０．００５〜１０％（ｗ／ｖ）の金属塩と、水と、から本質的になる、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ａ）アミノ酸は、グルタメート、アルギニン、ヒスチジン、アスパラギン、リシン、ロイシン、グリシン、又はそれらの混合物であり、
ｂ）ポリオールは、ソルビトール、マンニトール、マンノース、マルチトール、又はそれらの混合物であり、
ｃ）金属塩は、Ｍｇ＋＋、Ｃａ＋＋若しくはＬｉ＋の塩又はそれらの混合物、好ましくはＣｌ−若しくはＳＯ４２−塩又はそれらの混合物である、
請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
グルタメートはグルタミン酸一ナトリウムの形態で溶液に溶解している、及び／又はアルギニンはポリ−Ｌ−アルギニンの形態である、及び／又はリシンはポリ−Ｌ−リシンの形態である、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
溶液は、１ｍｌ当たり１ｐｇ〜１０ｇのバイオ薬物と、５〜２０％（ｗ／ｖ）のソルビトールと、５〜２０％（ｗ／ｖ）のグルタミン酸一ナトリウムと、２〜１０％（ｗ／ｖ）のマグネシウム塩（好ましくは、ＭｇＣｌ２及び／又はＭｇＳＯ４）と、任意選択で５〜２０％（ｗ／ｖ）のマンニトールと、から本質的になる、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
溶液は薬学的に許容される緩衝液を含み、中性ｐＨで緩衝される、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
溶液は、空気乾燥、真空乾燥、噴霧乾燥又は凍結乾燥によって乾燥される、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
バイオ薬物は、タンパク質性物質を含む薬物であり、好ましくは、バイオ薬物はウイルス（例えば、エンテロウイルス又はニューモウイルス）である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
バイオ薬物は、血清型１型、２型及び３型のポリオウイルス、好ましくは血清型１型、２型及び３型の不活化ポリオウイルスを含むか、あるいは、バイオ薬物は、ヒト又はウシＲＳＶ、好ましくは、Ｇ付着タンパク質遺伝子が欠失又は不活化しているウイルスゲノムを含むＲＳＶである、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
乾燥製剤は、乾燥後に再構成された時に、乾燥前の溶液に存在したバイオ薬物の活性の少なくとも５０％を保持する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
乾燥される溶液は２種以上の異なるバイオ薬物を含み、前記異なる薬物の活性の損失の差は好ましくは５０％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
乾燥製剤は、４５℃での少なくとも１週間の保存後に再構成された時に、乾燥前の溶液に存在したバイオ薬物の活性の少なくとも５０％を保持する、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１３】
乾燥製剤は２種以上の異なるバイオ薬物を含み、前記異なる薬物の活性の損失の差は好ましくは５０％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
請求項１〜１３のいずれか一項に記載の方法で得ることができるバイオ薬物の製剤。
【請求項１５】
感染症又は腫瘍に対する、個体における免疫応答を誘導するための、請求項１４に記載の製剤。
【発明の詳細な説明】
【発明の分野】
【０００１】
本発明は、乾燥された生物学的材料を安定化及び保存するための方法及び組成物に関する。これらの生物学的材料には、ワクチン（特にウイルスワクチン）などのバイオ薬物の凍結乾燥調製物又は真空乾燥調製物が含まれる。したがって、本発明は、バイオ薬物の製造及び製剤の分野並びにワクチン学の分野に関する。
【発明の背景】
【０００２】
生物学的化合物の長期保存は、これらの化合物が通常脆く不安定であることを考慮すると独自の難題を提起する。単離・精製し、非冷蔵条件下、特に室温又はそれより高い温度で溶液として短期間を超えて保存することが可能な程度に、液体環境で、すなわち溶液又は懸濁液の形態で安定的である生物学的化合物はほとんどない。
【０００３】
バイオ薬物の安定性を改善する１つの方法は、それらを乾燥状態に変化させることによるものである［１７］。商業的にも実用的にも、乾燥形態の生物学的化合物の保存は大きな利点をもたらす。うまく乾燥された試薬、材料及び組織は、保存可能期間の増大にもかかわらず、重量が減少し、必要スペースが縮小する。これは、３か月から２年以内に使用されるワクチンの最終ロットにおけるように最終製品のために使用されるだけでなく、シードロット、バルク又は最終ロットを備蓄する（１〜５０年又はそれ以上の保存の）ためにも使用される。また、乾燥された材料の室温保存は、低温保存及びそれに伴う費用と比較して費用効果が高い。さらに、粉剤の肺送達、コーティング型若しくは溶解型マイクロニードルによる皮膚送達、粉剤若しくは溶解性ニードルによる非経口送達を含むいくつかの送達経路は洗練された製剤化の方法に依存する。噴霧乾燥、真空乾燥、空気乾燥、コーティング、泡沫乾燥など、乾燥された生物学的化合物を製造するためのいくつかの技術が存在する。最も古く、よく使用される技術の１つは、凍結乾燥とも呼ばれるフリーズドライである。長い間、フリーズドライは科学というよりむしろ技術として見られ、それにより科学的なアプローチ及び研究が遅れた。
【０００４】
固体のバイオ薬物を製造するために最もよく使用される方法は凍結乾燥である。このプロセスは、凍結ステップ、それに続く２つの乾燥ステップ、すなわち、凍結した水分が昇華により除去される一次乾燥、及び凍結していない「結合した」水分が除去される二次乾燥からなる。凍結ストレス又は乾燥ストレスは、バイオ薬物の熱力学安定性を変化させる可能性があり、タンパク質アンフォールディングを誘導又は促進する可能性がある。アンフォールディングは、バイオ薬物の不可逆的変性をもたらす可能性があるが、乾燥状態での保存安定性を低下させる可能性もある［１９］。安定な凍結乾燥物（ｌｙｏｐｈｉｌｉｓａｔｅ）のために、安定剤及び／又はバルク剤として働く賦形剤が使用される。種々の化合物（例えば、糖、ポリマー、アミノ酸、界面活性剤）は、凍結乾燥及びその後の保存中のバイオ薬物の安定性を改善することが示されている［１８、２０］。文献において、凍結、乾燥及びその後の保存中に賦形剤がどのようにタンパク質及びワクチンのようなバイオ薬物を保護すると考えられるか、いくつかの機構が記載されている。種々の安定剤の凍結保護及び凍結乾燥保護（ｌｙｏｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ）機構を理解することは、安定な凍結乾燥ワクチンのための合理的な製剤及びプロセス設計の開発に重要である［２１］。
【０００５】
凍結中、バイオ薬物の物理的環境は劇的に変化し、タンパク質性バイオ薬物の完全性に影響を与えるストレスが発生する。バイオ薬物が凍結中に曝される最も重大なストレスは低温、凍結濃縮、及び氷の形成である［１８、１９、２１、２２］。低温変性は、バイオ薬物が、温度降下の結果としてコンパクトな折りたたみ構造を失う現象である。低温変性についての現在受け入れられている説明は、疎水性相互作用を弱め、バイオ薬物の構造を壊すであろう、より低い温度での水と非極性基との間の接触自由エネルギーの変化に基づく［１９、２０、２３］。氷の形成により、凍結中、すべての溶質の濃度が劇的に上昇する。濃度に関連するすべての変化（例えば、イオン強度、溶質の結晶化、相分離）はバイオ薬物を不安定にさせる可能性がある［２１］。
【０００６】
製剤の初期の相対組成及びｐＨは、凍結ストレスによるバイオ薬物の変質を回避させることができる。例えば、凍結前に製剤におけるバイオ薬物の濃度を他の賦形剤よりも高めると凍結融解中のバイオ薬物の安定性が高まることが、多くのバイオ薬物で見出されている［２４］。同様に、溶液中のバイオ薬物に最適な初期ｐＨにより、凍結融解後のインタクトなバイオ薬物の復元性が最も高くなる［２０］。
【０００７】
これらの因子をすべて最適化した後であっても多くのバイオ薬物は凍結融解中に依然として変性するので、タンパク質／バイオ薬物の変性を最小限に抑えるために添加剤が必要となる。全く異なる化学物質クラスに由来する種々の賦形剤が凍結保護を与えることができる。「溶質排除仮説」によれば、凍結保護剤は、水溶液において、選択的に、バイオ薬物の表面と接触しないことが示されている［２４］。種々のバイオ薬物の存在下での溶質排除の熱力学的現象は、種々の賦形剤（例えば、塩、アミノ酸、メチルアミン、ポリエチレングリコール、ポリオール、界面活性剤、糖）について決定されている［１９、２１、２４、２５］。
【０００８】
「ガラス化仮説」は広く知られた動力学機構である。この機構によれば、凍結濃縮及び温度降下は粘度を高め、運動性を低下させ、すべての動的プロセスを遅くする。系がガラス状態に達すると、ガラス内のすべての分子は物理的（例えば、変性、凝集）及び化学的（例えば、酸化、加水分解、脱アミド）に不動化し、バイオ薬物の分解の速度定数は低下する［１９、２６］。
【０００９】
凍結中に形成される氷−水の境界面は表面変性を引き起こす可能性がある。界面活性剤の添加はバイオ薬物溶液の表面張力を低下させ、その結果、バイオ薬物の吸着及び凝集を減少させる［２５、２７］。
【００１０】
ポリマーは、製剤のガラス転移温度を上昇させること、及び二糖類のような小さな安定化添加剤の結晶化を抑制することによって、バイオ薬物を安定化させることができる［１８、２２］。アミノ酸は、緩衝塩の結晶化の割合及び拡大を低減させ、その結果、ｐＨ変化を抑制することによって、バイオ薬物を凍結変性からも保護し得る［１８］。
【００１１】
水溶液中でバイオ薬物は完全に水和し、そのことは、バイオ薬物が、水に覆われ、かつ（水素結合により）バイオ薬物の表面と相互作用する単一層を有することを意味する［２８］。乾燥は水和殻の一部を除去し、その除去は、元の状態のバイオ薬物を壊し、変性をもたらし得る。乾燥中の変性を防ぐために保護剤が必要となる。そのような保護剤の重要な安定化機構は「水置換仮説」と呼ばれている［１８〜２０、２９］。糖（例えば、スクロース、トレハロース）、ポリオール［２０、３０］及びアミノ酸［３１］は、乾燥されたバイオ薬物と水素結合を形成することができる。したがって、糖、ポリオール及びアミノ酸は、水和殻が除去された場合に水の代用物として働くことができる。また、「ガラス化仮説」として前述した非晶質ガラスの形成は主要な保護機構である。
【００１２】
水置換及びガラス形成に加えて、多くの賦形剤（特にポリマー）は、ガラス転移温度（Ｔｇ）を上昇させることによってバイオ薬物を安定化させることができる。ガラス転移温度は、（液体様の）ゴム状態と（固体様の）ガラス状態との間の転移温度であると定義されている。一般に、Ｔｇが高いほど、ガラス内の分子運動性（例えば、バイオ薬物、安定化化合物、酸素及び水の動き）はより低下し、バイオ薬物製剤は、乾燥及びその後の保存中、より安定する［１８、２２］。乾燥中のバイオ薬物の安定化に関わり、多糖類及び他のポリマーに適用できる別の機構は、乾燥中のバイオ薬物を安定化させる小さな賦形剤の溶質濃縮中の結晶化の抑制である。
【００１３】
それらの賦形剤は、バイオ薬物の表面よりもバルク環境を選ぶ（先に「溶質排除」と名付けた。）ので、いくつかの賦形剤はバルク剤として働くことができ、このことは、それらの賦形剤が最終ケークに力学的な支持を与え、製品の優雅さを高め、乾燥中の製品の崩壊を防ぐことを意味する。マンニトール及びグリシンは、非毒性で、溶解性が高く、共晶温度が高いので、バルク剤として使用されることが多い［１８、２５、３２］。ほとんどのアミノ酸は、容易に結晶化するだけでなく、潜在的なバルク剤である［３３］。
【００１４】
バイオ薬物が乾燥プロセス中に安定である場合、乾燥状態での長期保存が実現可能であることが多い。一般に、乾燥プロセス自体がバイオ薬物に最も有害であるが、乾燥されたバイオ薬物は、適切に製剤化されていなければ、保存中にも依然として構造又は効力を失う可能性がある。凝集は、保存中のバイオ薬物の主要な物理的不安定要因である。種々の化学的分解（例えば、脱アミド、酸化、加水分解）も保存中に起こり得るが、これらの変化は、転化残基の位置によっては必ずしもバイオ薬物の活性に影響を与えるわけではない。グルコース及びスクロースなどの還元糖は、メイラード反応（褐変反応）によってバイオ薬物のリシン残基及びアルギニン残基と反応して、炭水化物付加物を形成し、その形成は、保存中の凍結乾燥されたバイオ薬物の活性の著しい損失をもたらし得る。
【００１５】
保存温度は、固体状態のバイオ薬物の安定性に影響を与える最も重要な因子の１つである。長期保存の安定性に影響を与える他の因子は、製剤のガラス転移温度（Ｔｇ）、製剤のｐＨ、及び乾燥後の残留水分量である。乾燥された製剤の水分量は、栓の水分の放出、非晶質賦形剤の結晶化、及び水和賦形剤からの水分の放出を含むいくつかの因子によって保存中に著しく変化する可能性がある。乾燥中にバイオ薬物を安定化させるために使用される賦形剤は、それらが製剤において適切な量で使用されていない場合、固体状態のバイオ薬物を不安定化させる可能性がある。結晶状態はガラス状態より熱力学的に安定であるので、非晶質賦形剤の結晶化のリスクも保存中存在する［３９］。多くの糖及びポリオールは結晶化する傾向があるが、この傾向は、製剤中の糖及びポリオールの相対量、保存温度及び相対湿度に強く影響される［１８、４０］。さらに、いくつかの賦形剤の相対組成及びポリマーなどの非結晶化安定剤の存在は賦形剤の結晶化を抑制し得る。
【００１６】
長期保存中の乾燥状態のバイオ薬物のための安定化機構は、非晶質ガラス状態の形成、水置換、及び賦形剤とバイオ薬物との間の水素結合を含む、凍結乾燥保護のための安定化機構に類似する［４１］。固体状態でのバイオ薬物を最大限安定化させるにはそれらの機構の組み合わせが必要となる［１８、４２］。凍結乾燥製品の最終的な品質は、緩衝剤、バルク剤及び安定剤を含む賦形剤の選択並びに凍結乾燥プロセスによって決定される。
【００１７】
ポリオは、主に幼児が患う感染性の強い疾患である。この疾患は、３つの血清型のポリオウイルス（１型、２型又は３型）のいずれか１つによって引き起こされ、特定の治療法を有しないが、ワクチン接種によって予防することができる。現在、経口のポリオワクチン（Ｓａｂｉｎ  ＯＰＶ）は、ポリオの世界的根絶を追求するために選択されるワクチンである。しかし、主要な懸念は、麻痺を引き起こし得る状態、いわゆるワクチン関連麻痺性ポリオ（ＶＡＰＰ）に戻るＯＰＶの能力である。弱毒生ポリオウイルスの永久的使用の他のリスクは、ワクチン由来のポリオウイルス（ＶＤＰＶ）への逆戻りである［１］。西洋諸国では、Ｓａｌｋ不活化ポリオワクチン（ＩＰＶ）の使用が、ＶＡＰＰ及び流行性（ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ）ＶＤＰＶのリスクを排除するための、現在の好ましい方法である。ＩＰＶは世界的根絶プログラムの継続に最も適していると考えられている［１〜３］。
【００１８】
世界的なポリオ根絶を実現するために、（改良された）ＩＰＶは、効果的かつ安価で、製造するのに安全であり、投与するのに簡単でなければならない［４］。ＩＰＶは、ＯＰＶよりも高価であり、注射でしか投与されないので、発展途上国での現在のＩＰＶの実現可能性は制限されている［１、３、５］。ＩＰＶの費用を抑えるために、ＷＨＯ及びＲＩＶＭは、発展途上国への技術移転のための非商業的なＩＰＶを開発している。生産中、特に発展途上国において、野生型のＳａｌｋポリオウイルスの封じ込めが問題となり得ることから、新しいワクチンは、ＯＰＶ株すなわちＳａｂｉｎ（ｓＩＰＶ）（これは、生産コストがそれほど高くないと予想される。）をベースにしたものになろう。さらにコストを減少させるために、ＲＩＶＭは、アジュバント及び／又は他の免疫化経路を使用することによって用量の節約を示すｓＩＰＶ製剤を開発している［６］。
【００１９】
代替的な送達方法及び改良されたワクチン製剤がワクチンの送達をより容易及び安全にする可能性を有する［７、８］ことから、現在、いくつかの代替的なワクチン送達方法が開発されている。
【００２０】
異なる血清型の不活化ポリオの間で熱安定性の相違が存在し、１型が最も熱に弱いようである。保存剤の非存在下で、１型は、４℃で２年間保存した後、ゆっくり劣化するが、２型及び３型は、何年もの間、効力を維持する。１型のＤ抗原含有量は、２４℃での２０日間の期間後、大幅に減少し、同じ期間３２℃にさらした後には検出できない。対照的に、２型については、それらの温度のいずれにおいてもＤ抗原性の顕著な変化は観察されなかった。３型は、２４℃で２０日間安定したままであるが、３２℃でＤ抗原含有量が大幅に減少する［９］。
【００２１】
２−フェノキシエタノールで保存され、水酸化アルミニウムに吸着させたＤＴ−ポリオワクチンでなされた観察に基づいて、ＩＰＶの３つの血清型すべては、組み合わせワクチンに組み込まれ、４℃で１年から４年超の期間保存された場合、効力の十分な維持を示す［９、１０］。より長い保存の結果、特に１型について抗原性が低下した［９］。単独ワクチンとしてのＩＰＶは、４℃では４年間、２５℃では１か月間安定している［１０］。３７℃では、１型の効力が１〜２日後に、２型及び３型の効力が２週間後に著しく損失されている［１１、１２］。凍結も、Ｄ抗原の構造の喪失に関係する悪影響をＩＰＶの効力に与える［１２］。
【００２２】
ポリオ根絶の後、ポリオワクチンの備蓄は、（ＯＰＶの中止後であっても）流行性ＶＤＰＶを原因とするポリオの新たな発生、又は生物テロ攻撃の潜在的リスクに備えるために必要となる［１３〜１５］。ワクチンの最適な備蓄を実現するためには種々の問題を考慮する必要がある。期限の遅延は備蓄コストを減少させることから、保存可能期間は重要な項目である［１６］。ワクチンの効力を何年もの間保証するためには、ＩＰＶなどのワクチンの保存可能期間が延長される必要がある。したがって、バイオ薬物の保存可能期間を延長する改良された製剤、及び好ましくは乾燥形態のそのような製剤を製造するための改善された方法の必要性が存在する。
【発明の概要】
【００２３】
第１の態様において、本発明は、バイオ薬物の乾燥製剤を製造するための方法であって、バイオ薬物とアミノ酸とポリオールと金属塩と水とを含む溶液を乾燥させるステップを含む方法に関する。
【００２４】
本発明の方法において、溶液は、１ｍｌ当たり１ｐｇ〜１０ｇのバイオ薬物と、０．０１〜２０％（ｗ／ｖ）のアミノ酸と、０．５〜２０％（ｗ／ｖ）のポリオールと、０．００５〜１０％（ｗ／ｖ）の金属塩と、水と、から本質的になることが好ましい。より好ましくは、アミノ酸は、グルタメート、アルギニン、ヒスチジン、アスパラギン、グリシン、又はそれらの混合物であり、ポリオールは、ソルビトール、マンニトール、マンノース、マルチトール、又はそれらの混合物であり、金属塩は、Ｍｇ＋＋、Ｃａ＋＋若しくはＬｉ＋の塩又はそれらの混合物（それらのうちでは、Ｃｌ−若しくはＳＯ４２−塩又はそれらの混合物が好ましい。）である。
【００２５】
本発明の方法において、グルタメートは、好ましくはグルタミン酸一ナトリウムの形態で溶液に溶解している。
【００２６】
本発明の方法の好ましい実施形態において、溶液は、１ｍｌ当たり１ｐｇ〜１０ｇのバイオ薬物と、５〜２０％（ｗ／ｖ）のソルビトールと、５〜２０％（ｗ／ｖ）のグルタミン酸一ナトリウムと、２〜１０％（ｗ／ｖ）のマグネシウム塩（好ましくはＭｇＣｌ２及び／又はＭｇＳＯ４）と、任意選択で５〜２０％（ｗ／ｖ）のマンニトールと、から本質的になる。
【００２７】
本発明の方法において、溶液は、好ましくは、薬学的に許容される緩衝液を含み、中性ｐＨで緩衝される。溶液は、真空乾燥又は凍結乾燥により乾燥されることも好ましい。
【００２８】
本発明の方法において、バイオ薬物は、好ましくは、タンパク質性物質を含む薬物である。より好ましくは、バイオ薬物はウイルス、好ましくはエンテロウイルス（Ｅｎｔｅｒｏｖｉｒｕｓ）又はニューモウイルス（Ｐｎｅｕｍｏｖｉｒｕｓ）である。最も好ましくは、バイオ薬物は、血清型１型、２型及び３型のポリオウイルス、好ましくは血清型１型、２型及び３型の不活化ポリオウイルスを含むか、あるいはヒト又はウシＲＳＶである。
【００２９】
本発明の方法の好ましい実施形態において、乾燥製剤は、乾燥後に再構成された時に、乾燥前の溶液に存在したバイオ薬物の活性の少なくとも５０％を保持する。本発明の方法の別の好ましい実施形態において、乾燥される溶液は２種以上の異なるバイオ薬物を含み、前記異なる薬物の活性の損失の差は好ましくは５０％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される。
【００３０】
本発明の方法の好ましい実施形態において、乾燥製剤は、４５℃での少なくとも１週間の保存後に再構成された時に、乾燥前の溶液に存在したバイオ薬物の生物学的活性の少なくとも５０％を保持する。本発明の方法の別の実施形態において、乾燥製剤は２種以上の異なるバイオ薬物を含み、前記異なる薬物の活性の損失の差は好ましくは５０％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される。
【００３１】
第２の態様において、本発明は、本発明による方法で得られる、バイオ薬物の乾燥製剤に関する。
【００３２】
第３の態様において、本発明は、医薬として使用するための、好ましくは感染症又は腫瘍に対する（個体における）免疫応答を誘導するための本発明の製剤に関する。
【発明の説明】
【００３３】
第１の態様において、本発明は、バイオ薬物の乾燥製剤を製造するための方法に関する。本発明の方法は、少なくとも２つの改善、すなわち、１）製剤の乾燥時（及び好ましくは乾燥製剤を再構成した時）のバイオ薬物の活性の損失を最小限に抑えること、及び２）バイオ薬物の乾燥製剤の安定性すなわち保存可能期間を増大させること、すなわち乾燥製剤の保存時のバイオ薬物の活性の損失を最小限に抑えることを実現することを目的とする。該方法は、好ましくは、バイオ薬物と、アミノ酸、ポリオール及び金属塩のうちの１つ又は複数と、を含む水溶液を乾燥させることを含むステップを含む。
【００３４】
本発明の方法において、乾燥される溶液は、ａ）以下で特定される濃度の以下で特定されるバイオ薬物と、ｂ）以下で特定される濃度の以下で特定されるアミノ酸と、ｃ）以下で特定される濃度の以下で特定されるポリオールと、ｄ）以下で特定される濃度の以下で特定される金属塩と、ｅ）水と、任意選択でｆ）以下で特定される濃度及び以下で特定されるｐＨの緩衝液と、任意選択でｇ）以下で特定される濃度の以下で特定されるさらなる成分と、を含むか、それらから本質的になるか、又はそれらからなる。
【００３５】
バイオ薬物：
本明細書において、「バイオ薬物」は、好ましくは、薬学的に許容される形態で哺乳類（特にヒト）の患者に適用した場合に生理活性を有する生物学的薬物を指すものとする。生物学的薬物という用語には、細胞から得ることができる薬物の合成コピー及び細胞から得ることができる化学修飾した薬物が含まれるが、生物学的薬物は、好ましくは、細胞により生産される又は細胞から得ることができる薬物である。生物学的薬物は、タンパク質ベースの薬物、すなわち、タンパク質、ポリペプチド、ペプチドなどのタンパク質性物質を含む薬物であり得る。生物学的薬物は、核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ）又は核酸類似体をさらに含んでもよいし、核酸（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ）又は核酸類似体からなってもよい。
【００３６】
好ましいバイオ薬物はウイルス又はビリオン、好ましくは哺乳類に感染するウイルス、好ましくはヒトに感染するウイルスである。ウイルスはエンベロープウイルスであり得るが、好ましくは非エンベロープウイルスである。本明細書において、用語「ウイルス」は、自然に発生する野生型ウイルス（例えば自然分離株）、並びに「人工の」弱毒ウイルス、変異ウイルス及び欠損ウイルスが含まれるものとする。用語「ウイルス」はまた、組み換えウイルス（すなわち、組み換えＤＮＡ技術を用いて構築されたウイルス）（例えば、１つ又は複数のウイルス遺伝子（の一部）を欠く欠損ウイルス、ウイルスゲノムの一部が１つ又は複数の目的遺伝子で置き換えられた遺伝子治療ベクター）を含む。好ましいウイルスはピコルナウイルスであり、より好ましくはエンテロウイルス（例えば、ポリオウイルス、コクサッキーウイルス、エコーウイルス、ライノウイルス）である。最も好ましくは、ウイルスはポリオウイルスである。ポリオウイルスは弱毒ポリオウイルスであり得るが、好ましくは不活化ポリオウイルス（ＩＰＶ）である。また、ポリオウイルスは不活化弱毒ポリオウイルスであり得る。バイオ薬物は、ポリオウイルス血清型１型、２型及び３型のうちの１つ又は複数を含み得るが、ポリオウイルス血清型１型、２型及び３型のすべてを含むことが好ましい。ポリオウイルス血清型１型の適切な株としては、Ｓａｂｉｎ１株、Ｍａｈｏｎｅｙ株、Ｂｒｕｎｈｉｌｄｅ株、ＣＨＡＴ株及びＣｏｘ株のうちの１つ又は複数が挙げられる（これらに限定されない）。ポリオウイルス血清型２型の適切な株としては、Ｓａｂｉｎ２株、ＭＥＦ−１株及びＬａｎｓｉｎｇ株のうちの１つ又は複数が挙げられる（これらに限定されない）。ポリオウイルス血清型３型の適切な株としては、Ｓａｂｉｎ３株、Ｓａｕｋｅｔｔ  Ｈ及びＧ株、及びＬｅｏｎ株が挙げられる。好ましい実施形態において、バイオ薬物は３価の不活化ポリオワクチン、例えば、Ｓａｌｋ−ＩＰＶ（これは、不活化ポリオウイルス１型のＭａｈｏｎｅｙ株、不活化ポリオウイルス２型のＭＥＦ−１及び不活化ポリオウイルス３型のＳａｕｋｅｔｔ株を含有する。）又はｓＩＰＶ（これは、不活化ポリオウイルスのＳａｂｉｎ１株、Ｓａｂｉｎ２株及びＳａｂｉｎ３株を含有する。）である。ワクチンに安全に使用するためにポリオウイルス株を不活化する方法は当分野で周知であり、例えば、ホルマリン又はβ−プロピオラクトンを使用する不活化を含む（例えば、Ｊｏｎｇｅｓら，２０１０，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４８：９２８〜９４０を参照されたい）。
【００３７】
別の実施形態において、バイオ薬物はニューモウイルス又はニューモウイルスのビリオンである。ニューモウイルスは、好ましくは呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）、より好ましくはヒト又はウシＲＳＶである。ヒトＲＳＶはサブグループＡ又はＢウイルスであり得、好ましくは臨床分離株、より好ましくは、インビトロで大規模な継代培養されていない（好ましくは、１０回未満、８回未満、６回未満、又は５回未満、継代培養された）分離株である。ヒト又はウシＲＳＶは、Ｇ付着タンパク質遺伝子が欠失又は不活化しているウイルスゲノムを含むウイルス、例えば、ウイルスゲノムに突然変異を有し、それにより、ウイルスゲノムが機能的なＧ付着タンパク質をコードしないウイルス、例えば、国際公開第２００５／０６１６９８号及びＷｉｄｊｏｊｏａｔｍｏｄｊｏら（２０１０，Ｖｉｒｏｌ．Ｊ．，７：１１４）に記載されているＲＳＶΔＧ及びＲＳＶΔＧ＋Ｇビリオンが好ましい。
【００３８】
バイオ薬物は、好ましくは、生きた及び／又は死んだ若しくは不活化した粒子の数が１ｍｌ当たり１×１００〜１×１０２５個である量で、乾燥される溶液中に存在する。生きた粒子の数は、例えば、プラーク形成単位、５０％細胞培養感染量（ＣＣＩＤ５０）又は５０％組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）によって、あるいは薬物の力価を決定するための他の適切なウイルス学的アッセイによって決定することができる。死んだ又は不活化した粒子の数は、例えば、抗原を定量するアッセイ（例えばタンパク質アッセイ）又は血球凝集単位若しくはポリオＤ抗原単位を決定するアッセイを用いて決定することができる。バイオ薬物は、生きた及び／又は死んだ若しくは不活化した粒子の数が１ｍｌ当たり少なくとも１×１０１、１×１０２、１×１０３、１×１０３、１×１０４、１×１０５、１×１０６、１×１０７、１×１０８、１×１０９若しくは１×１０１０個である量で、及び／又は生きた及び／又は死んだ若しくは不活化した粒子の数が１ｍｌ当たり最大で１×１０２４、１×１０２３、１×１０２２、１×１０２１、１×１０２０、１×１０１９、１×１０１８、１×１０１７、１×１０１６、１×１０１５若しくは１×１０１４個である量で、乾燥される溶液中に存在することが好ましい。
【００３９】
乾燥される溶液中のバイオ薬物の量は溶液１ｍｌ当たりのバイオ薬物の重量として表すこともできる。好ましくは、バイオ薬物は溶液中に１ｐｇ／ｍｌ〜１０ｇ／ｍｌの重量／ｍｌで存在する。バイオ薬物は、溶液中に、少なくとも１０−１１、１０−１０、１０−９、１０−８、１０−７、１０−６、１０−５若しくは１０−４ｇ／ｍｌの量で、及び／又は最大で１０−３、１０−２、１０−１若しくは１００ｇ／ｍｌの量で存在する。溶液中のバイオ薬物の重量は、それ自体当分野で既知の手段（例えばタンパク質アッセイ）によって決定することができる。したがって、バイオ薬物の前述の重量は、適切なタンパク質アッセイ（例えば、Ｂｒａｄｆｏｒｄアッセイ；Ｚｏｒ及びＳｅｌｉｎｇｅｒ，１９９６，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２３６：３０２〜３０８）において決定された１ｍｌ当たりのタンパク質のグラム数として表すこともできる。
【００４０】
バイオ薬物がポリオウイルスである好ましい実施形態において、溶液中のポリオウイルスの量は、好ましくは、少なくとも０．０１、０．１、１．０若しくは１０ＤＵ／ｍｌ及び最大で１００００、１０００若しくは１００ＤＵ／ｍｌであり、ここで、１ＤＵは、Ｗｅｓｔｄｉｊｋら［６］により説明されているようにＱＣ−ＥＬＩＳＡを用いて定義及び決定される。バイオ薬物が多価のポリオウイルス（ワクチン）を含む実施形態において、各血清型のポリオウイルスは、少なくとも０．０１、０．１、１．０若しくは１０ＤＵ／ｍｌ及び最大で１００００、１０００若しくは１００ＤＵ／ｍｌの量で存在することが理解される。
【００４１】
バイオ薬物がＲＳＶである好ましい実施形態において、溶液中のＲＳＶの量は、好ましくは、少なくとも１×１０１、１×１０２、１×１０３、１×１０３若しくは１×１０４ＴＣＩＤ５０／ｍｌ及び最大で１×１０２５、１×１０２０、１×１０１５、１×１０１２、１×１０１０若しくは１×１０９ＴＣＩＤ５０／ｍｌであり、ここで、ＲＳＶのＴＣＩＤ５０は、Ｗｉｄｊｏｊｏａｔｍｏｄｊｏら（２０１０，Ｖｉｒｏｌ．Ｊ．，７：１１４）により説明されているように定義及び決定される。
【００４２】
アミノ酸：
乾燥される溶液中のアミノ酸は、薬学的に許容される任意のＤ−又はＬ−アミノ酸である。そのようなアミノ酸としては、標準的な２０種の「タンパク質構成」若しくは「天然」アミノ酸（ヒスチジン、アラニン、イソロイシン、アルギニン、ロイシン、アスパラギン、リシン、アスパラギン酸、メチオニン、システイン、フェニルアラニン、グルタミン酸、スレオニン、グルタミン、トリプトファン、グリシン、バリン、プロリン、チロシン、セリン）並びに非天然アミノ酸（例えば、オルニチン、シトルリン、セレノシステイン、タウリン、ピロリシン）が挙げられる。好ましくは、乾燥される溶液中のアミノ酸は、グルタメート、グルタミン、アルギニン、ヒスチジン、アスパラギン、リシン、ロイシン及びグリシンのうちの１つ又は複数、より好ましくは、グルタメート、アルギニン及びヒスチジンのうちの１つ又は複数である。したがって、乾燥される溶液はアミノ酸の混合物を含むことができる。乾燥される溶液中のアミノ酸はＤ−若しくはＬ−光学異性体又はその混合物であり得るが、好ましくはＬ−異性体である。
【００４３】
好ましい実施形態において、乾燥される溶液中のアミノ酸は、Ｌ−グルタメート、Ｌ−アルギニン及びＬ−ヒスチジンのうちの１つ又は複数である。Ｌ−グルタメートは、グルタミン酸Ｎａ、ペプトン、非動物性ペプトン、植物性ペプトンの形態であってもよい。Ｌ−アルギニンは、ポリ−Ｌ−アルギニン、ペプトン、非動物性ペプトン、植物性ペプトンの形態であってもよい。Ｌ−ヒスチジンはヒスチジンＮａの形態であってもよい。Ｌ−リシンはポリ−Ｌ−リシンの形態であってもよい。
【００４４】
特に好ましい実施形態において、乾燥される溶液中のアミノ酸はグルタメートを含む。グルタメートは、グルタミン酸ナトリウム、グルタミン酸カリウム、グルタミン酸アンモニウム、グルタミン酸カルシウム、グルタミン酸マグネシウム、及びグルタミン酸のうちの１つ又は複数であり得る。より好ましくは、グルタメートは、グルタミン酸一ナトリウム（ＭＳＧ）の形態で溶液に溶解している。
【００４５】
アミノ酸は、好ましくは、乾燥される溶液中に０．０１〜２０％（ｗ／ｖ）（重量／溶液体積パーセント）の濃度で存在する。したがって、好ましくは、アミノ酸は、乾燥される溶液中に、０．０１、０．０２、０．０５、０．１、０．２、０．５、１．０、２．０、５．０、８．０、９．０若しくは９．５％（ｗ／ｖ）以上若しくはそれを超える濃度で、及び／又は、２０．０、１７．５、１５．０、１２．５、１１．０若しくは１０．５％（ｗ／ｖ）以下若しくは未満の濃度で存在する。最も好ましくは、アミノ酸は、乾燥される溶液中に約１０％（ｗ／ｖ）の濃度で存在する。
【００４６】
ポリオール：
乾燥される溶液中のポリオールは、好ましくは糖又は糖アルコールである。好ましい糖としては、スクロース、トレハロース、マンノース、及びデキストランが挙げられる。好ましい糖アルコールとしては、ソルビトール、マンニトール、及びマルチトールが挙げられる。好ましくは、乾燥される溶液は、ソルビトール、マンノース、マンニトール及びマルチトールのうちの少なくとも１つ又は複数、より好ましくは、ソルビトール、マンノース及びマンニトールのうちの少なくとも１つ又は複数、より好ましくは、ソルビトール及びマンニトールの少なくとも１つ又は両方を含む。最も好ましくは、乾燥される溶液はポリオールとして少なくともソルビトールを含み、任意選択でマンニトールとの組み合わせで含む。
【００４７】
一実施形態においては、ポリオールは、好ましくは、乾燥される溶液中に０．１〜２０％（ｗ／ｖ）（重量／溶液体積パーセント）の濃度で存在する。したがって、好ましくは、ポリオールは、乾燥される溶液中に、０．１、０．２、０．５、１．０、２．０、５．０、８．０、９．０若しくは９．５％（ｗ／ｖ）以上若しくはそれを超える濃度で、及び／又は２０．０、１７．５、１５．０、１２．５、１１．０若しくは１０．５％（ｗ／ｖ）以下若しくは未満の濃度で存在する。最も好ましくは、ポリオールは、乾燥される溶液中に約１０％（ｗ／ｖ）の濃度で存在する。この実施形態における濃度は、例えば、ソルビトールがポリオールとして使用される場合に適切である。
【００４８】
別の実施形態においては、ポリオールは、好ましくは、乾燥される溶液中に０．１〜４０％（ｗ／ｖ）（重量／溶液体積パーセント）の濃度で存在する。したがって、好ましくは、ポリオールは、乾燥される溶液中に、０．１、０．２、０．５、１．０、２．０、５．０、１０．０、１２．５、１５．０、１８．０、１９．０若しくは１９．５％（ｗ／ｖ）以上若しくはそれを超える濃度で、及び／又は５０．０、４０．０、３５．０、３０．０、２５．０、２２．５、２１．０若しくは２０．５％（ｗ／ｖ）以下若しくは未満の濃度で存在する。最も好ましくは、この実施形態において、ポリオールは、乾燥される溶液中に約４０％（ｗ／ｖ）の濃度で存在する。この実施形態における濃度は、例えば、２つの異なるポリオール（例えば、ソルビトールとマンニトール）が使用される場合に適切である。その場合、２つのポリオール間の重量比は１：１００〜１：１（例えば、１：５０、１：２０、１：１０、１：５、１：２）にすることができる。
【００４９】
金属塩：
乾燥される溶液に溶解する金属塩は、二価又は一価金属カチオンの薬学的に許容される任意の塩であり得る。好ましい二価カチオンはＣａ＋＋、Ｍｇ＋＋及びＺｎ＋＋であり、Ｃａ＋＋及びＭｇ＋＋がより好ましく、Ｍｇ＋＋が最も好ましい。好ましい一価カチオンはＬｉ＋、Ｎａ＋及びＫ＋であり、Ｌｉ＋及びＮａ＋がより好ましく、Ｌｉ＋が最も好ましい。金属塩の対アニオンは、好ましくはアミノ酸ではなく、好ましくはグルタメート又はアスパルテートではない。より好ましくは、金属塩の対アニオンは無機アニオンである。好ましい（無機）アニオン性対イオンはＣｌ−、ＳＯ４２−及びＣＯ３２−であり、Ｃｌ−及びＳＯ４２−がより好ましく、Ｃｌ−が最も好ましい。溶液は、上述の金属塩のうちの１つ又は複数の混合物を含むことができる。
【００５０】
金属塩は、好ましくは、乾燥される溶液中に０．００５〜１０％（ｗ／ｖ）（重量／溶液体積パーセント）の濃度で存在する。したがって、好ましくは、金属塩は、乾燥される溶液中に、０．００５、０．０１、０．０２、０．０５、０．１、０．２、０．５、１．０、２．０、３．０、４．０若しくは４．５％（ｗ／ｖ）以上若しくはそれを超える濃度で、及び／又は１０．０、８．０、７．０、６．０若しくは５．５％（ｗ／ｖ）以下若しくは未満の濃度で存在する。最も好ましくは、金属塩は、乾燥される溶液中に約５％（ｗ／ｖ）の濃度で存在する。
【００５１】
乾燥される溶液中のアミノ酸がアミノ酸の金属塩（例えばＭＳＧ）の形態で溶解している場合、アミノ酸金属塩は、金属塩の重量パーセンテージにではなくアミノ酸の重量パーセンテージに含まれ、それにより、金属対イオンの重量はアミノ酸の重量に含まれることが理解される。
【００５２】
緩衝液：
乾燥される溶液は、好ましくは中性ｐＨ、例えば、６．０〜８．０の範囲若しくは６．５〜７．５の範囲のｐＨ又は約７．０のｐＨを有する。乾燥される溶液は、好ましくは、上記の値にｐＨを維持するための緩衝液を含む。原則として、（好ましくは上記のｐＨ値の範囲で効果的な緩衝能を有する）薬学的に許容される任意の緩衝液を、乾燥される溶液に使用することができる。緩衝液は、好ましくは０．５〜１００ｍＭ、より好ましくは１〜５０ｍＭ、最も好ましくは２〜２０ｍＭ、例えば約１０ｍＭの濃度で存在する。
【００５３】
乾燥される溶液での使用に適した緩衝液としては、ＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液（実施例を参照されたい）、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、及びヒスチジン緩衝液が挙げられる。
【００５４】
水：
乾燥される溶液を調製するために使用する水は、好ましくは、注射用水のような超高純度で、好ましくは発熱性物質を含まない水である。
【００５５】
本発明の乾燥される溶液中の成分（例えば賦形剤）の濃度を、本明細書では、一般に、重量／溶液体積（ｗ／ｖ）パーセントとして表す。これは、全溶液１リットル当たりの溶質のグラム数として表される、溶媒（例えば水）に対する溶質（例えば賦形剤）の関係であると理解される。例えば、５０ｇのグルコースが溶けた１Ｌの溶液は５％ｗ／ｖ溶液と考えられる。
【００５６】
好ましい実施形態においては、乾燥される溶液は、前述の量のバイオ薬物と、５〜２０％（ｗ／ｖ）のソルビトールと、５〜２０％（ｗ／ｖ）のグルタミン酸一ナトリウムと、２〜１０％（ｗ／ｖ）のマグネシウム塩（好ましくはＭｇＣｌ２及び／又はＭｇＳＯ４）と、任意選択で５〜２０％（ｗ／ｖ）のマンニトールと、任意選択で２〜５０ｍＭの薬学的に許容される緩衝液（これは、本明細書に記載の中性ｐＨで溶液を緩衝する。）と、から本質的になる。
【００５７】
乾燥：
本発明の方法において、バイオ薬物を含む水溶液は乾燥される。任意の既知の乾燥方法を使用することができる。乾燥方法は、例えば、噴霧乾燥、空気乾燥、コーティング、泡沫乾燥、脱水、真空乾燥、真空／フリーズドライ、又はフリーズドライ（これらは、それ自体は当業者に既知である。）であり得る。好ましい実施形態において、乾燥方法は真空乾燥又はフリーズドライであり、フリーズドライ又は凍結乾燥がより好ましい。
【００５８】
フリーズドライプロセスの一実施形態において、乾燥される溶液は、好ましくは、まず、−５０℃以下、−４０℃以下、−３０℃以下、−２０℃以下、又は−１０℃以下の初期のフリーズドライ温度又は棚温度に凍結される。好ましい初期の棚温度は−５０℃以下又は−４０℃以下である。乾燥される溶液は、上記の初期の棚温度を有する棚に溶液（を含む容器／バイアル）をすぐに置くことによって急速凍結にかけることができる。あるいは、乾燥される溶液は、０℃を超える温度（例えば、２℃、４℃又は６℃）の温度を有する棚に溶液（を含む容器／バイアル）を置き、次いで、溶液を、好ましくは１分につき０．５℃、１℃又は２℃の割合で温度を低下させていくことにより、上記の初期のフリーズドライ温度にゆっくり凍結することによって緩慢凍結にかけることができる。乾燥される溶液には１００マイクロバール以下の圧力をかけることができる。設定圧力に達したら棚温度をより高い温度に上昇させることができる。棚温度は、例えば、１分につき０．０５℃、０．１℃又は０．２℃の割合で、初期のフリーズドライ温度よりも高い５℃、１０℃又は１５℃に上昇させることができる。好ましくは、チャンバー内で圧力上昇が測定されなくなった時に一次乾燥ステップを終了する。好ましくはその時に、棚温度を、例えば１分につき０．０１℃、０．０２℃又は０．０５℃の割合で、任意選択で１つ又は複数のステップで、例えば５℃、１０℃、１５℃、２０℃又は２５℃に上昇させることができる。二次乾燥段階の間、温度は、好ましくは、圧力上昇が検出できなくなるまでこの値に維持される。好ましいフリーズドライプロセスは本明細書の実施例に記載されている。
【００５９】
真空乾燥プロセスの一実施形態において、乾燥される溶液は、好ましくは約５〜２５℃の温度（例えば室温）、より好ましくは約１０〜２０℃の温度（例えば約１５℃）である。次いで、圧力を、１ｍｂａｒ未満、０．５ｍｂａｒ未満、０．２ｍｂａｒ未満、０．１ｍｂａｒ未満、又は０．０５ｍｂａｒ未満に低下させる。減圧下で、乾燥される溶液の温度は、溶液を凍結させないために溶液の共融温度を（わずかに）超える温度（これは０℃以下であり得る。）に低下させることができる。チャンバー内で圧力上昇が測定されなくなったら、溶液の温度を、例えば１分につき０．０１℃、０．０２℃又は０．０５℃の割合で、任意選択で１つ又は複数のステップで、例えば５℃、１０℃、１５℃、２０℃又は２５℃に上昇させることができる。温度は、好ましくは、圧力上昇が検出できなくなるまでこの値に維持される。好ましい真空乾燥プロセスは本明細書の実施例に記載されている。
【００６０】
第２の態様において、本発明は、前述の本発明の方法で得ることができる又は得られる、バイオ薬物の乾燥した又は乾燥された製剤に関する。
【００６１】
バイオ薬物の乾燥製剤を製造するための本発明の方法は、好ましくは、製剤の乾燥時のバイオ薬物の活性の損失を最小限に抑えることを目的とする。また、本発明の方法及び製剤は、好ましくは、本発明で得ることができる乾燥製剤の保存時のバイオ薬物の活性の損失を最小限に抑えることを目的とする。したがって、本発明の方法は、好ましくは、安定なバイオ薬物製剤すなわち保存可能期間が長い若しくは延長された製剤（好ましくは、冷蔵条件下（例えば２〜１０℃）、室温（例えば１８〜２５℃）、又は熱帯地域で発生し得るような高温（例えば３２〜４５℃）におけるそのような製剤）を製造するための方法である。
【００６２】
バイオ薬物の活性の損失又は不活性化は、化学的経路（例えば、酸化、加水分解又は酵素作用）による活性の損失並びに物理的経路（例えば、変性、凝集、ゲル化）による活性の損失を含むと理解される。バイオ薬物の活性の損失は許容レベルを超えないことが好ましい。換言すると、乾燥及び／又はその後の保存の後に、少なくとも、バイオ薬物の意図される商業的な治療的及び／又は診断的適用に十分な生物学的活性若しくは生存性のレベル及び／又は本来の機能若しくは構造のレベルが保持されている。
【００６３】
バイオ薬物の特性に応じて、当業者は、前記バイオ薬物の活性を評価するためにどのアッセイを使用すべきか分かるであろう。バイオ薬物の活性は、例えば、活性な生ウイルスの場合、その生存性として表すことができ、あるいは、活性は、当業者に既知の適切なアッセイで決定できる酵素活性又は生物学的活性として表すことができる。他の例では、バイオ薬物の活性は、むしろ、バイオ薬物の物理的及び化学的完全性に関係する可能性があり、前記のバイオ薬物の構造及び／又は機能を評価することにより決定することができる。抗原の構造は、好ましくはＥＬＩＳＡ又はＢｉａｃｏｒ分析によって評価される。二次及び三次構造は、好ましくは、ＵＶ分光法、蛍光分光法、フーリエ変換赤外（ＦＴＩＲ）分光法、及び／又は円偏光二色性（ＣＤ）分光法により評価される。免疫原性は、好ましくは、動物モデル（例えば、マウス、ラット、コットンラット、フェレット、ウサギ）を使用するインビボ分析により評価される。例えば、ラットはポリオウイルスについて好ましいモデルであり、コットンラットはＲＳＶについて好ましいモデルである。
【００６４】
本発明の方法の好ましい実施形態において、（乾燥される）溶液を乾燥させることにより、乾燥製剤は、乾燥後（好ましくは直後）に再水和された時に、乾燥前の溶液に存在した生物学的活性の少なくとも５０％、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％を保持する。２種以上のバイオ薬物が製剤中に存在する場合、異なる薬物の活性の損失の差は、好ましくは、５０％未満、６０％未満、７０％未満、７５％未満、８０％未満、８５％未満、９０％未満、又は９５％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される。
【００６５】
本発明の別の好ましい実施形態において、乾燥製剤は、４５℃での少なくとも１週間の保存後に再水和された時に、乾燥前の溶液に存在したバイオ薬物の生物学的活性の少なくとも５０％、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％を保持する。２種以上のバイオ薬物が製剤中に存在する場合、異なる薬物の活性の損失の差は、好ましくは、５０％未満、６０％未満、７０％未満、７５％未満、８０％未満、８５％未満、９０％未満、又は９５％未満であり、活性の損失が最大の薬物の保持活性は、損失が最小の薬物の保持活性（これを１００％とする。）に対するパーセントで表される。上記の保存後に保持される活性のパーセンテージは、３７℃又は４５℃で２週間、３週間、４週間、５週間、６週間、７週間、８週間、９週間、１０週間又はそれ以上保存した後も保持されることが好ましい。
【００６６】
第３の態様において、本発明は、医薬として使用するための、前述の本発明の方法により得ることができる又は得られる、バイオ薬物の製剤に関する。医薬として使用するために、該製剤は、乾燥製剤として使用することもできるし、例えば先に定義された水を用いて乾燥製剤を溶解することによって再構成することもできる。製剤は、好ましくは、元の体積すなわち乾燥前の体積に再構成される。該製剤は、感染症又は腫瘍に対する（個体における）免疫応答を誘導するための製剤であることが好ましい。本発明の製剤が投与される個体又は対象は、ヒトだけでなく、農用動物、愛玩動物などの動物（例えば、哺乳類、鳥、家畜類、家禽、ウシ、ウシ亜科の動物を含む。）であり得ることが理解される。該製剤は、感染症又は腫瘍に対するワクチン接種のための製剤であることがより好ましい。したがって、該製剤は、好ましくは、感染症又は腫瘍を予防又は治療するための製剤である。別の実施形態においては、本発明は、免疫応答を誘導するための、ワクチン接種のための、及び／又は感染症若しくは腫瘍を予防若しくは治療するための医薬を製造するための、前述の本発明の方法で得ることができる又は得られる製剤の使用に関する。さらに別の実施形態において、本発明は、有効量の該製剤を、それを必要とする対象に投与することによって、感染症又は腫瘍に対する免疫応答を誘導するための方法に関する。免疫応答は、好ましくはバイオ薬物中の抗原に対して誘導される。抗原は、好ましくは、感染症を引き起こす病原体の抗原、腫瘍の抗原、又は病原体若しくは腫瘍に対する免疫応答を誘導する抗原である。病原体は、好ましくは先に定義されたウイルスである。本発明の製剤は、再構成して又は再構成することなく、鼻腔内、非経口、筋肉内、皮下及び／又は経皮経路を介して投与することができる。
【００６７】
本明細書及び特許請求の範囲において、動詞「含む」及びその活用形は非限定的な意味で使用され、その単語に続く事項が含まれるが、具体的に言及されていない事項が排除されないことを意味する。加えた、不定冠詞（“ａ”又は“ａｎ”）による要素への言及は、文脈上該要素の１つ又はただ１つが存在すると解釈すべき場合を除いて、２つ以上の要素が存在する可能性を排除しない。したがって、不定冠詞（“ａ”又は“ａｎ”）は通常「少なくとも１つ」を意味する。
【００６８】
本明細書で引用したすべての特許及び参考文献は、参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる。
【００６９】
以下の実施例は例示目的のために示されるものにすぎず、本発明の範囲を限定することを意図したものではない。
【図面の簡単な説明】
【００７０】
【図１】Ｆｉｇ．１：  １型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ａ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。スクロース（ＳＵＣ）、トレハロース（ＴＲＥＨ）、マンニトール（ＭＡＮ）、デキストラン（ＤＥＸ）、及び塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）の安定化効果を試験した。
【図２】Ｆｉｇ．２：  １０％のマンニトール及び０％のデキストランを含有するＩＰＶ製剤の凍結乾燥直後の、３つの血清型のＤ抗原復元のパーセンテージを表す応答表面プロットである。
【図３】Ｆｉｇ．３：  １型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｂ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。スクロース（ＳＵＣ）、トレハロース（ＴＲＥＨ）、グルタミン酸一ナトリウム（ＭＳＧ）、ヒドロキシエチルデンプン（ＨＥＳ）、及び塩化ナトリウムの安定化効果を試験した。
【図４】Ｆｉｇ．４：  真空乾燥（Ｖ）、遅い凍結速度の凍結乾燥（Ｌ）、及び速い凍結速度の凍結乾燥（Ｓ）直後のＤ抗原復元率。スクロース及びトレハロースの安定化効果を、安定剤を添加してないＩＰＶワクチン（陰性対照）と比較して調査した。
【図５】Ｆｉｇ．５：  図に示された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｃ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。
【図６】Ｆｉｇ．６：  血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｄ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。すべての製剤は、５％のソルビトール、１２５ｍＭのＮａＣｌ、及び（Ｄ１１〜Ｄ１６を除いて）５％のペプトンを含有し、さらに図に示されている通りである。
【図７】Ｆｉｇ．７：  ４５℃での１週間のインキュベーション後の、Ｄ抗原復元率により決定される、図に示された凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｄ）の加速安定性試験。
【図８−１】Ｆｉｇ．８：  図に示された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｅ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。速い凍結速度（パネルａ）及び遅い凍結速度（パネルｂ）を使用して、ソルビトール（ＳＯＲ）、スクロース（ＳＵＣ）、マンニトール（ＭＡＮ）、グルタミン酸一ナトリウム（ＭＳＧ）、ペプトン（ＰＥＰ）、及びＭｇＣｌ２の安定化効果を試験した。
【図８−２】Ｆｉｇ．８：  図に示された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｅ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。速い凍結速度（パネルａ）及び遅い凍結速度（パネルｂ）を使用して、ソルビトール（ＳＯＲ）、スクロース（ＳＵＣ）、マンニトール（ＭＡＮ）、グルタミン酸一ナトリウム（ＭＳＧ）、ペプトン（ＰＥＰ）、及びＭｇＣｌ２の安定化効果を試験した。
【図９−１】Ｆｉｇ．９：  ４５℃での１週間のインキュベーション後の、及び速い凍結速度（パネルａ）及び遅い凍結速度（パネルｂ）を使用した、図に示された凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｅ）の安定性。凍結乾燥直後の最も有望な製剤のみを示す。
【図９−２】Ｆｉｇ．９：  ４５℃での１週間のインキュベーション後の、及び速い凍結速度（パネルａ）及び遅い凍結速度（パネルｂ）を使用した、図に示された凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｅ）の安定性。凍結乾燥直後の最も有望な製剤のみを示す。
【図１０】Ｆｉｇ．１０：  血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｆ，ｎ＝３）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。ペプトンの安定化効果を、１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧ及び５％のＭｇＣｌ２を含有し、１０％のマンニトールを含有する又は含有しないＩＰＶ製剤において調査した。すべての製剤を凍結乾燥プロセスの乾燥段階の前に急凍した。
【図１１】Ｆｉｇ．１１：  ４５℃での１週間のインキュベーション後の、凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｆ，ｎ＝３）の安定性。この実験は、ペプトン又は単一アミノ酸の添加により、加速安定性試験の間、１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧ及び５％のＭｇＣｌ２を含有し、１０％のマンニトールを含有する又は含有しないＩＰＶ製剤を改善することができるかどうかを調査した。
【図１２−１】Ｆｉｇ．１２：  図に示された種々の緩衝液成分を含有する血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｇ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。すべて１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧを含む、パネルａ、ｂ、ｃ及びｄに示された４つの製剤を、１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液、１０ｍＭのクエン酸緩衝液、１０ｍＭのヒスチジン緩衝液、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液、及び１０ｍＭのリン酸緩衝液で試験した。対照の製剤は透析しなかった。
【図１２−２】Ｆｉｇ．１２：  図に示された種々の緩衝液成分を含有する血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｇ）の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。すべて１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧを含む、パネルａ、ｂ、ｃ及びｄに示された４つの製剤を、１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液、１０ｍＭのクエン酸緩衝液、１０ｍＭのヒスチジン緩衝液、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液、及び１０ｍＭのリン酸緩衝液で試験した。対照の製剤は透析しなかった。
【図１３−１】Ｆｉｇ．１３：  凍結乾燥及びその後の４５℃での１週間の保存後の、図に示された種々の緩衝液成分を含有する凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｇ）の安定性。１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧ及びＭｇＣ１２を含有し、マンニトールを含有する若しくは含有しない、及びペプトンを含有する若しくは含有しない４つの製剤を、１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液、１０ｍＭのクエン酸緩衝液、１０ｍＭのヒスチジン緩衝液、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液、及び１０ｍＭのリン酸緩衝液と組み合わせて試験した。対照の製剤は透析せず、図に示された賦形剤を含有するＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液で１：１希釈した。
【図１３−２】Ｆｉｇ．１３：  凍結乾燥及びその後の４５℃での１週間の保存後の、図に示された種々の緩衝液成分を含有する凍結乾燥された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤（実験Ｇ）の安定性。１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧ及びＭｇＣ１２を含有し、マンニトールを含有する若しくは含有しない、及びペプトンを含有する若しくは含有しない４つの製剤を、１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液、１０ｍＭのクエン酸緩衝液、１０ｍＭのヒスチジン緩衝液、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液、及び１０ｍＭのリン酸緩衝液と組み合わせて試験した。対照の製剤は透析せず、図に示された賦形剤を含有するＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液で１：１希釈した。
【図１４】Ｆｉｇ．１４：  真空乾燥（Ｖ）、遅い凍結速度の凍結乾燥（Ｌ）、及び速い凍結速度の凍結乾燥（Ｓ）直後のＤ抗原復元率。種々の製剤の安定化効果を、安定剤の添加なしのＩＰＶワクチン（陰性対照）、及びスクロース若しくはトレハロースを配合したＩＰＶと比較した。
【図１５】Ｆｉｇ．１５：  図に示された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤の凍結乾燥直後のＤ抗原復元率。
【図１６】Ｆｉｇ．１６：  凍結乾燥及びその後の４５℃での１週間の保存後の、Ｄ抗原復元率により決定される、図に示された血清型１型、２型及び３型ＩＰＶ製剤の安定性。
【実施例】
【００７１】
１．材料及び方法
１．１  材料
１型の不活化Ｍａｈｏｎｅｙ株、２型のＭＥＦ及び３型のＳａｕｋｅｔｔを含有する３価の不活化ポリオワクチン（Ｓａｌｋ−ＩＰＶ）を、ＲＩＶＭ−Ｖａｃｃｉｎｏｌｏｇｙのプロセス開発部門（Ｂｉｌｔｈｏｖｅｎ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）から得た。３価のＳａｌｋ−ＩＰＶバルク（１０×）を、１０倍濃度の４０−８−３２ＤＵ／ヒト単回用量（１ｍｌ）として製剤化した。この試験で使用したＩＰＶ０５−１２６Ｂバルクの濃度を、Ｗｅｓｔｄｉｊｋら［６］により説明されているようにＱＣ−ＥＬＩＳＡで４１１−９０−３１４ＤＵ／ｍｌに決定した。
【００７２】
賦形剤、すなわち、スクロース、Ｄ−ソルビトール、Ｄ−トレハロース二水和物、Ｄ−グルコース一水和物、マンニトール、Ｌ−グルタミン酸一ナトリウム一水和物（本明細書で、グルタメート、グルタミン酸ナトリウム、グルタミン酸一ナトリウム、又はＭＳＧと呼ぶ）、ミオイノシトール、Ｄ−ラフィノース、ヒドロキシエチルデンプン、グリシン、Ｌ−プロリン、Ｌ−ロイシン、塩化カルシウム二水和物、マルチトール、塩化マグネシウム六水和物、塩化リチウム、及びオボアルブミンは、すべてＳｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から購入した。ペプトン（植物）、デキストラン（リューコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属の種由来，６ｋＤａ）、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−アラニン、塩化亜鉛、及びラクトビオン酸カルシウム一水和物は、Ｆｌｕｋａ（Ｂｕｃｈｓ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）製であった。ラクチトール（ラクティ（Ｌａｃｔｙ）登録商標−Ｍ）はＰｕｒａｃ  Ｂｉｏｃｈｅｍ（Ｇｏｒｉｎｃｈｅｍ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）製であり、Ｌ−アルギニン（ＥＰ，非動物起源）及びＴｗｅｅｎ８０はＭｅｒｃｋ（Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）製であり、ポリビニルピロリドン２５（ＰＶＰ，２９ｋＤａ）はＳｅｒｖａ  Ｆｅｉｎｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ  ＧｍｂＨ（Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）製であり、加水分解ブタゼラチンであるＳｏｌ−Ｕ−ＰｒｏはＤｙｎａｇｅｌ  Ｉｎｃ．（Ｃａｌｕｍｅｔ  Ｃｉｔｙ，ＩＬ）製であり、フィコール（Ｆｉｃｏｌｌ）はＰｈａｒｍａｃｉａ（Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）製であった。緩衝液成分として、リン酸二水素ナトリウム二水和物（ＮａＨ２ＰＯ４）、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）、リン酸二水素カリウム（ＫＨ２ＰＯ４）及びＥＤＴＡ（Ｍｅｒｃｋ製）を使用した。クエン酸三ナトリウム二水和物、クエン酸及びＨＥＰＥＳはＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）製であり、リン酸水素二ナトリウム二水和物（Ｎａ２ＨＰＯ４）はＦｌｕｋａ（Ｂｕｃｈｓ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）製であった。使用したすべての賦形剤は試薬グレード又はより高いグレードのものであった。
【００７３】
１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液を調製するために、１０ｍＭのクエン酸を１０ｍＭのＮａ２ＨＰＯ４に１：６の比率で添加し、ｐＨ値を７．０にした。１０ｍＭのクエン酸緩衝液については、構成成分であるクエン酸三ナトリウム二水和物（１０ｍＭ）及びクエン酸（１０ｍＭ）をｐＨ７．０に達するまで一緒に混合した。ｐＨ７．０の１０ｍＭのリン酸緩衝液は１０ｍＭのＫＨ２ＰＯ４及び１０ｍＭのＮａ２ＨＰＯ４からなるものであった。１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液及び１０ｍＭのヒスチジン緩衝液は、緩衝液の構成成分を秤量し、溶解した後、ＨＣｌ及び／又はＮａＯＨを用いてｐＨ値を７．０に調整することによって調製した。
【００７４】
１．２  方法
１．２．１  透析
特に断らない限り、３価のＩＰＶバルク材料を、分画分子量１０ｋＤａの低結合再生セルロース膜の透析カセット（スライド−Ａ−ライザー（Ｓｌｉｄｅ−Ａ−Ｌｙｚｅｒ（登録商標），Ｐｉｅｒｃｅ，Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）を使用して、１０ｍＭのＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液に対して透析し、ＩＰＶバルク（Ｍ１９９培地）の緩衝液成分を交換した。
【００７５】
１．２．２  乾燥される溶液
すべての賦形剤を、示された最終濃度の２倍の濃度でＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液に溶解した。透析したＩＰＶを、試験する製剤と均一に混合した。その後、２ｍｌのガラスの注射バイアル（Ｍｕｌｌｅｒ＋Ｍｕｌｌｅｒ，Ｈｏｌｚｍｉｎｄｅｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を０．２ｍｌのＩＰＶ−賦形剤混合物で満たし、予め（９０℃で一晩）乾燥させた１３ｍｍのゴム栓（Ｈｅｌｖｏｅｔ  Ｐｈａｒｍａ，Ａｌｋｅｎ，Ｂｅｌｇｉｕｍ製のＶ９２５０タイプ）で蓋をした。
【００７６】
１．２．３  凍結乾燥及び真空乾燥プロセス
凍結乾燥については、満たされ、栓が半分閉まったバイアルを、−５０℃の棚温度又は４℃の棚温度のＬｅｙｂｏｌｄのＧＴ４フリーズドライヤー又はＺｉｒｂｕｓの試験用／実験室用フリーズドライユニット昇華装置２−３−３に入れ、次いで１℃／分の割合で温度を低下させていくことによって−５０℃に凍結させる（それぞれ、急速凍結及び緩慢凍結と表す）。バイアルを２時間、−５０℃に維持した。一次乾燥段階については、棚温度を０．１℃／１分で−４５℃に上昇させ、次いで０．０２℃／分で−４０℃に上昇させ、その後、４２時間インキュベーションした。二次乾燥段階を、棚温度をさらに０．０２℃／１分で１０℃に上昇させ、その後、１０℃で８時間インキュベーションすることによって行った。その後、棚温度を０．０２℃／分で２５℃に上昇させた。
【００７７】
真空乾燥については、満たされ、栓が半分閉まったバイアルを、１５℃の棚温度のＺｉｒｂｕｓのフリーズドライユニット昇華装置２−３−３に入れ、１０分間、その温度に維持した。チャンバーの圧力を、１５分の降下ステップにおいて、異なる速度（１ｍｂａｒ／分、０．３ｍｂａｒ／分、０．１ｍｂａｒ／分）、２５ｍｂａｒのチャンバー圧力で開始して１ｍｂａｒまで低下させた。温度を、０．０５ｍｂａｒで１時間、及び０．０３ｍｂａｒで１時間、−１０℃まで低下させた（その結果、製剤は凍結しなかった。）（製剤の共晶温度を超えた製品温度）。その後、棚温度を０．０５℃／分で３０℃に上昇させた。そのサイクルの最後に、バイアルを、真空下でバイアルを閉じ、ａｌｕ−キャップで密閉して、分析まで４℃に維持した。真空乾燥プロセス中の棚温度（ｓｈｅｌｆ  ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ）及びチャンバーの圧力の例を表１に示す。
【００７８】
表１：
2015509529.tif 000002
【００７９】
１．２．４  Ｄ抗原ＥＬＩＳＡ
ポリスチレンの９６ウェルのマイクロタイタープレートを、室温で一晩、血清型に特異的なウシ抗ポリオ血清（ＲＩＶＭ，Ｂｉｌｔｈｏｖｅｎ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）で被覆した。０．１％Ｔｗｅｅｎ２０のＰＢＳ溶液（洗浄緩衝液）で洗浄した後、ＩＰＶ標準試料の２倍希釈物、及びアッセイ緩衝液（０．５％のＰｒｏｔｉｆａｒ及び０．１％のＴｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ）で希釈したＩＰＶ製剤の希釈物を添加した（１００μ／ウェル，二連）。プレートを、穏やかな振動下、３７℃で３０分間インキュベートし、広範囲で洗浄し、血清型に特異的なマウスモノクローナル抗体（ｍａｂ３−４−Ｅ４（１型）、３−１４−４（２型）、１−１２−９（３型）、すべてＲＩＶＭ，Ｂｉｌｔｈｏｖｅｎ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ製）及びＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｂｕｃｋｉｎｇｈａｍｓｈｉｒｅ，ＵＫ）の混合物を添加した。その後、プレートを、穏やかな振動下、３７℃で３０分間インキュベートした。プレートを広範囲で洗浄し、ＥＬＩＳＡハイライト（ＨｉｇｈＬｉｇｈｔ）シグナル試薬（Ｚｏｍｅｒｂｌｏｅｍｅｎ  ＢＶ，Ｚｅｉｓｔ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を添加し、ルミノメーター（Ｂｅｒｔｈｏｌｄのセントロ（Ｃｅｎｔｒｏ）ＬＢ９６０）を用いて、１０〜１５分間、化学発光を測定した。
【００８０】
１．２．５  水分量分析
水分量を、カールフィッシャー電量滴定装置（モデルＣＡ−６水分計，Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ）を用いて決定した。カールフィッシャー法による水分残留決定の原理は、ヨウ素及び二酸化硫黄のみが水の存在下で反応するという事実に基づく。試料を秤量し、カールフィッシャー試薬であるハイドラナールクーロマット（Ｈｙｄｒａｎａｌ  Ｃｏｕｌｏｍａｔ）Ａ（Ｆｌｕｋａ，Ｂｕｃｈｓ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）で再構築した。再構築した試料を注射器に採取し、滴定容器に注入した。各バイアルを三連で測定した。空のバイアルを秤量し、滴定装置によって測定した水分量、バイアル中の凍結乾燥された生成物の重量、試薬の再構築体積、滴定体積、及び空試験の水分量に基づいて水分量を算出した。
【００８１】
１．２．６  示差走査熱量測定（ＤＳＣ）
製剤の熱力学的振る舞いを、示差走査熱量測定（ＤＳＣ）、すなわち、物質の相転移と関連する温度及び熱流量を時間及び温度の関数として測定する方法によって決定した。フリーズドライされた製剤をアルミニウムのＤＳＣパンに入れ、示差走査熱量測定装置（ＤＳＣ  Ｑ１００，ＴＡ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）の制御温度プログラムにかけた。試料を２０℃／分の加熱速度で０℃から１５０℃に加熱し、試料チャンバーを窒素ガスでパージした（５０ｍｌ／分）。ガラス転移温度（Ｔｇ）を、ソフトウェア（Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  ２０００，ＴＡ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）を使用して、熱流量曲線における不連続部分の中点として決定した。
【００８２】
２．結果
２．１  凍結乾燥中の異なる血清型のＩＰＶの安定化
最初の実験（実験Ａ）において、４つの周知の糖／ポリオール（スクロース、トレハロース、マンニトール、デキストリン）及び塩化ナトリウムを安定化の潜在能力について評価した（Ｆｉｇ．１）。この試験は、ＩＰＶの凍結乾燥に最適な製剤を得るために実験法の設計により始めた。
【００８３】
異なるＩＰＶ製剤を前述（セクション１．２．３）のように凍結乾燥した。凍結乾燥ケークを、最初の体積と等量の水を添加することによって再構成し、Ｄ抗原復元率をＥＬＩＳＡ（セクション１．２．４）によって決定した。復元率を、凍結乾燥前に測定した液体製剤のＤ抗原含有量に対するパーセンテージで示した。
【００８４】
いかなる添加剤も含有せず、ＩＰＶがＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液で１：１希釈された３価のＩＰＶ製剤は、凍結乾燥の後、すべての血清型について１０％未満の復元率を示した（Ｆｉｇ．１：Ａ１）。ＩＰＶ２型は、すべての製剤の中で、±８０％という最大の復元率を有する最も安定な血清型であることを示した。デキストランは、凍結乾燥されたＩＰＶ製剤、特に１型及び３型のＤ抗原復元にマイナスの影響を与えたようであった。血清型１型、２型及び３型について最大の復元率がそれぞれ±５５％、±８５％及び±５０％という最良の結果は、マンニトールとの組み合わせでスクロース及び／又はトレハロースを含有する製剤によって得られた（Ｆｉｇ．１：製剤Ａ３，Ａ４，Ａ１２，Ａ１６）。ＮａＣｌの添加は、凍結乾燥後のＩＰＶの復元にプラスの影響を与えなかった。
【００８５】
この最初の試験的実験は、各ＩＰＶ血清型が各々の安定剤を好む３価のポリオワクチンを凍結乾燥することの複雑さを明確に示している。１０％のマンニトールを有する製剤において、１型及び３型は、トレハロースなしの高濃度のスクロースの存在を好んだが、２型は、スクロースなしの高濃度のトレハロースを好んだ（Ｆｉｇ．２）。
【００８６】
次の実験（実験Ｂ）においては、グルタメート、糖類及びポリマーの混合物の安定化の潜在能力を調査した。賦形剤であるスクロース、トレハロース、グルタミン酸一ナトリウム（ＭＳＧ）、ヒドロキシエチルデンプン（ＨＥＳ）及びＮａＣｌの異なる組み合わせを調査した。ＭＳＧと共に二糖類、スクロース及び／又はトレハロースをベースにした製剤を有する３価のＩＰＶの凍結乾燥は、３つの血清型について、それぞれ、５０〜６０％、７０〜９５％、及び５０〜６５％というＤ抗原復元率を示した（Ｆｉｇ．３：製剤Ｂ４，Ｂ７，Ｂ９，Ｂ１２，Ｂ１３）。８％のＨＥＳ又は６３ｍＭのＮａＣｌのみをベースにした製剤は、凍結乾燥中、ＩＰＶを保護しなかった（Ｆｉｇ．３：Ｂ５及びＢ１０）。スクロースを有する製剤へのＮａＣｌの添加は、凍結乾燥後のＤ抗原復元率の５〜１０％の増加を示した（Ｆｉｇ．３：Ｂ２及びＢ１６）。
【００８７】
２．２  乾燥プロセスの影響と製剤
次の試験において、乾燥プロセスに関する、バイオ薬物の乾燥に使用される典型的な製剤の結果を示す。３価のＩＰＶを含有する製剤を、真空乾燥（凍結を含まない方法）、急速凍結ステップを使用するフリーズドライ（予め冷却した−５０℃の棚に製品を直接置く方法）、及び緩慢凍結ステップを使用するフリーズドライ（４℃の棚に製品を置き、−５０℃に冷却して凍結させる方法）によって乾燥した。Ｆｉｇ．４に示されるように、例えば、スクロース又はトレハロースをベースにした標準的な製剤は、真空乾燥時にはＩＰＶを一部保護する。しかし、これらの製剤はフリーズドライ時には保護しない。
【００８８】
２．３  賦形剤のスクリーニング
次の実験（実験Ｃ）において、いくつかのアミノ酸、タンパク質／ペプチド又は他の安定剤と組み合わされたソルビトール、マンニトール、スクロース及び／又はＭＳＧを試験した（表２）。凍結乾燥されたＩＰＶ製剤における塩の効果を調査するために、１２５ｍＭのＮａＣｌを添加したＣ−製剤も試験した。Ｄ抗原復元率に対するＮａＣｌの明白な効果は観察されなかった（データは示さず）。凍結乾燥直後の抗原性の結果をまず見ると、５％のソルビトール、５％のペプトン及び１％の塩化リチウム（ＬｉＣｌ）を含有する製剤Ｃ１３が、すべての血清型について最も高い復元率、すなわち、１型、２型及び３型についてそれぞれ±８５％、±１００％及び±８５％を示したことが明らかであった（Ｆｉｇ．５）。ＬｉＣｌ化合物を１．８％のＭｇＣｌ２に置き換えた結果、３つの血清型について、Ｄ抗原復元率が±５％、±２０％、及び１５％減少した。しかし、これらの製剤は、比較的高い残留水分量（ＭｇＣｌ２含有製剤について２．１％、及びＬｉＣｌを含有する製剤について６．２％）を示した。非常に少量の界面活性剤、Ｔｗｅｅｎ８０を、スクロース、トレハロース、並びにアミノ酸のグリシン及びリシンを含有する製剤に添加すると、Ｄ抗原復元率は５〜１５％増加した（Ｆｉｇ．５：Ｃ８，Ｃ９）。ソルビトール、マンニトール及びＭＳＧをベースにした製剤（Ｃ２，Ｃ３，Ｃ４，Ｃ７）は、１型、２型及び３型について、それぞれ６５％超、８０％超及び７０％超の復元率を示した。
【００８９】
この試験において、ソルビトール、ペプトン、及び塩ＬｉＣｌ若しくはＭｇＣｌ２の組み合わせは、ＩＰＶの凍結乾燥直後のＤ抗原復元にプラスの効果を与えたようであった。別の注目すべき製剤はソルビトール、マンニトール及びＭＳＧの混合物であり、その混合物は、ＭＳＧと組み合わせたポリオールの存在により、凍結乾燥中、ＩＰＶが安定することを示した。
【００９０】
凍結乾燥された製剤のガラス転移温度を測定した（表２）が、ガラス転移温度はＤ抗原復元率との明白な関係を示さなかった。オボアルブミン及びペプトンを含有する製剤は最も高いガラス転移温度を示した。
【００９１】
表２：
凍結乾燥されたＩＰＶ製剤の組成（実験Ｃ）。残留水分量（ＲＭＣ）をカールフィッシャー法によって決定し、乾燥ケークのＴｇをＤＳＣによって決定した。
2015509529.tif 000003
【００９２】
これらの発見に基づいて新たなスクリーニング実験（実験Ｄ）を設計した。最も有望な復元率は、ソルビトール、ペプトン及び塩化Ｍｇ若しくは塩化Ｌｉをベースにした製剤で得られたので、本発明者らは、１０％のソルビトール、５％のペプトン及び１２５ｍＭのＮａＣｌをベースにした実験を設計した。オボアルブミンは動物由来であり、したがって、ヒトに使用するワクチンには望ましくない賦形剤であるので、オボアルブミンを除いた。いくつかの賦形剤のＩＰＶ安定化機構をより理解するために、１０％のソルビトール、５％のペプトン及び１２５ｍＭのＮａＣｌを含有する製剤を、糖／ポリオール、（５％のペプトンの代わりに）アミノ酸、塩、又は他の安定剤（例えば、界面活性剤又はタンパク質）と組み合わせた。ソルビトール、ＮａＣｌ及び１％のヒスチジンを有する製剤は、フリーズドライプロセスの直後、９０〜１００％の復元率を示した（Ｆｉｇ．６：Ｄ１１）。先に観察されたように、ＭｇＣｌ２含有製剤は、凍結乾燥中、有望な安定化能力を示し、塩化カルシウム（ＣａＣ１２）を含有するＩＰＶ製剤及び塩化リチウム（ＬｉＣｌ）を含有するＩＰＶ製剤についても同様であった（Ｆｉｇ．６：Ｄ１７〜１９）。凍結乾燥後の高温での保存後も、安定した凍結乾燥製品を同様にもたらす能力で賦形剤を選択するために、スクリーニング段階の間、加速安定性を評価した。
【００９３】
２．４  加速安定性試験
いくつかの製剤は、凍結乾燥直後、許容されるＤ抗原復元率を示したが、４５℃での１週間のインキュベーション後、これらの４つの製剤のＤ抗原復元率は、１型、２型及び３型について、それぞれ、３０％、６０％及び１０％を下回るパーセンテージまで降下した（Ｆｉｇ．７）。５％のミオイノシトールは、４５℃でのインキュベーション後、最も高いＤ抗原復元率を示したが、それでも、３つの血清型について±４０％、１０％及び３０％の減少が観察され、ＩＰＶ２型が最も安定な血清型であることが再度示された（Ｆｉｇ．７：Ｄ５）。４５℃での１週間の保存時に、１％のラクチトールを含有する製剤は、２型についてＤ抗原復元率の１０％未満の減少を示したが、残念なことに、１型及び３型は３０％超の減少を示した（Ｆｉｇ．７：Ｄ７）。
【００９４】
ソルビトール、マンニトール及びＭＳＧとの組み合わせ、並びにペプトン及びＭｇＣｌ２の安定化潜在能力をさらに調査するために、種々の賦形剤と凍結乾燥後のＤ抗原復元との関係を決定するための実験設定の新たな設計を行った。実験Ｅには、以下の変数、すなわち、０／１０％のソルビトール、０／１０％のスクロース、０／１０％のマンニトール、０／１０％のＭＳＧ、０／５％のペプトン、及び／又は０／５％のＭｇＣ１２が含まれ、この実験において凍結速度を調査した。緩慢凍結は、バイアルを４℃の棚に置き、その後、０．１℃／分の割合で−５０℃まで冷却することを意味し、急速凍結は、予め−５０℃に冷却した棚にバイアルを直接置くことを意味する。その結果を、速い凍結速度についてはＦｉｇ．８ａに、遅い凍結速度についてはＦｉｇ．８ｂに示した。
【００９５】
凍結乾燥後のＤ抗原復元率をまず見ると、糖／ポリオールとの組み合わせでＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有する急速凍結製剤は、すべての血清型について±８０〜９０％という最も高い復元率を示した（Ｆｉｇ．８ａ：Ｅ２２〜２４，Ｅ２９〜３２）。ゆっくり凍結された試料に関しては、ＭｇＣｌ２含有製剤が１型及び３型について７５〜９０％の復元率を示した（Ｆｉｇ．８ｂ：Ｅ５４〜５７，Ｅ６３〜６６）。しかし、２型については、ペプトンと組み合わせた糖の製剤のみが±７０％という復元率を示した（Ｆｉｇ．８ｂ：Ｅ４３〜４８）。実験の再現性を示すために、製剤Ｈ３３及びＨ６６を三連で試験し、製剤Ｈ３３及びＨ６６はすべての血清型について１０％未満の標準偏差を示した。凍結乾燥直後（Ｆｉｇ．８）、又は４５℃での１週間のインキュベーション後（Ｆｉｇ．９）のこれら２つの製剤のＤ抗原復元率から、凍結速度はこれらのＩＰＶ製剤のＤ抗原復元率に大きく影響しなかったことが明らかである。
【００９６】
実験Ｅを、Ｕｍｅｔｒｉｃｓ製の「Ｍｏｄｄｅ」ソフトウェアを使用する「実験の設計（Ｄｅｓｉｇｎ  ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ）」に基づいて設定した。凍結乾燥後のＤ抗原復元率に加えて、凍結乾燥及びその後の３７℃又は４５℃での保存後の復元率も、設計におけるアウトプットとして使用した。製剤の関数としてのアプトプットを調整し、Ｍｏｄｄｅを用いてモデルに入れた。これは、どの製剤パラメーターが凍結乾燥及び保存後の復元率に影響を与えるかを明らかにした（データは示さず）。
【００９７】
各ウイルス血清型についての最も重要な製剤パラメーターを表３〜表５にまとめる。
【表３】
2015509529.tif 000004
【表４】
2015509529.tif 000005
【表５】
2015509529.tif 000006
【００９８】
２．５  ペプトンの代替
ペプトンは、凍結乾燥されたＩＰＶの４５℃でのその後の保存を安定化させたようであったので、本発明者らは、１０％のソルビトール、５％のＭＳＧ及び５％のＭｇＣｌ２を有する製剤並びにその製剤に１０％のマンニトールを組み合わせた製剤におけるペプトンの役割を調査する実験を行った。ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有する製剤への１０％のマンニトールの添加による大きな差異は見出されなかった。５％のペプトンの添加はいずれの製剤の抗原性にも影響を与えなかった（Ｆｉｇ．１０）。
【００９９】
単一アミノ酸の添加が、凍結乾燥されたＩＰＶのその後の保存中のペプトンの安定化の役割を担うことができるかどうかを確かめるために、アミノ酸を、ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有し、マンニトールを含有する又は含有しない製剤に添加した。４５℃での１週間のインキュベーション後、ペプトンも、添加したアミノ酸も、１０％のソルビトール、１０％のＭＳＧ及び１０％のＭｇＣｌ２を含有する対照製剤と比較してＤ抗原復元の安定性の改善を示さなかった（Ｆｉｇ．１１：Ｆ１．０〜Ｆ１．５）。マンニトールの存在下で、ペプトンの安定化能力は３型について示されたにすぎないが、そのＤ抗原復元率は対照試料と比較して±１５％改善した。しかし、１型について大幅な復元率の減少（ｐ＜０．００１）が見出され、それほど大幅ではないが、２型も±１０％低い復元率を示した（Ｆｉｇ．１１：Ｆ２．０，Ｆ２．１）。ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有するすべての製剤について、４５℃での１週間の期間後、Ｄ抗原含有量の±１０％の減少が示されたが、マンニトールの添加は、加速安定性試験の間、２型について安定にすることが見出された。アルギニンは、ソルビトール、ＭＳＧ、ＭｇＣｌ２及びマンニトールを含有する製剤において安定化の潜在能力を有したようであり（Ｆｉｇ．１１：Ｆ２．３）、４５℃でのインキュベーション後、１型及び３型のＤ抗原復元率について、それぞれ±１５％及び±３０％の減少を示したにすぎなかった。これは、アルギニンの代わりにペプトンを有するほぼ同じ製剤による安定性に匹敵した（Ｆｉｇ．１１：Ｆ２．１）。
【０１００】
ペプトンなどの不確定な賦形剤はヒトのワクチンに好まれないという事実により、ＩＰＶを安定化させ得る、ペプトンの可能な代替物を調査した。質量分析法及びＨＰＬＣによる分析は、ペプトンに存在する最も豊富なアミノ酸を示した（データは示さず）。ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有する製剤へのいくつかの単一アミノ酸の添加は、対照製剤と比較して４５℃での安定性を改善しなかった。ペプトンは、ソルビトール、ＭＳＧ、ＭｇＣｌ２及びマンニトールを含有する製剤において３型を安定化させたようであったが、アルギニンは１型及び３型両方の安定性を改善することができる。２型は、対照製剤において、加速安定性試験の間、Ｄ抗原復元の十分な維持を示していた。ペプトンの正確な組成を決定することは困難であるが、加水分解されていないペプトン対化学的に加水分解されたペプトンによる逆相ＨＰＣＬによるアミノ酸の定量は、ペプトンが単一アミノ酸及びペプチドの両方からなることを示した（但し、９０％ｗ／ｗ超のペプトンは不確定なままである）。ペプトンは、試験対象のＩＰＶ製剤のガラス転移温度を上昇させたようであるので、ペプトンを、スクロース又はトレハロースのように高いＴｇを有する賦形剤で代替することは可能かもしれない。
【０１０１】
表７：
ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有し、マンニトールを含有する又は含有しないＩＰＶ製剤のガラス転移温度（Ｔｇ’及びＴｇ）をＤＳＣによって決定した。これらの製剤のガラス転移温度へのペプトンの影響を調査した。単一の測定値を示した。
2015509529.tif 000007
【０１０２】
先の実験は、ペプトンに値する代替物を与えず、ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有し、マンニトールを含有する又は含有しない製剤が、加速安定性試験の後でも最良な結果をもたらすことを示した。この試験の間、すべての製剤を、ＩＰＶの凍結乾燥に適した緩衝液として知られる［５２］ＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液で調製した。製剤をさらに最適化するために、緩衝液のスクリーニングを、バイオ薬物の凍結乾燥に頻繁に使用される［１８］緩衝液で行った。各緩衝液におけるＩＰＶバッチを透析によって調製し、透析されていないＩＰＶが対照としての役割を果たした。
【０１０３】
ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有する製剤は、凍結乾燥直後、３つの血清型について、±９５％、±８５％及び±９０％の復元率を示した（Ｆｉｇ．１２ａ：Ｇ１．０〜Ｇ１．５）。ペプトンの添加後、１型及び３型のＤ抗原復元率は１０〜１５％低下したが、２型は、ペプトンを含有しない製剤と比較して同様の復元率を示した（Ｆｉｇ．１２ｂ）。ＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液は、他の緩衝液成分と比較して２型について１０〜１５％低い復元率を示した。ヒストン緩衝液は、ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有するＩＰＶ製剤の凍結乾燥後、ＩＰＶのＤ抗原収率を増加させたようであった（１型及び３型について９５％超の復元率；Ｆｉｇ．１２ａ：Ｇ１．３）。凍結乾燥後、リン酸緩衝液では、２型についてＤ抗原復元率が８８％に達した一方で、ＭｃＩｌｖａｉｎｅ緩衝液は、２型について７３％の復元率を示した（Ｆｉｇ．１２ａ：Ｇ１．５）。
【０１０４】
ペプトンなしのソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２の製剤へのマンニトールの添加は、２型について８５〜１００％の復元率が見出された（Ｆｉｇ．１２ｃ）ことから、２型が、凍結乾燥中、製剤におけるマンニトールの存在を好むことを明らかにした。ソルビトール、ＭＳＧ、ＭｇＣｌ２及びマンニトールを含有するＩＰＶ製剤の場合、１型では８０〜９０％の復元率、３型では±８０％の復元率が見出された。ペプトンの添加は、凍結乾燥後、１型及び３型の復元率の±１０％の減少を示し、２型についても同様のＤ抗原含有量を示した（Ｆｉｇ．１２ｄ）。
【０１０５】
２．６  緩衝液の影響
加速安定性実験は、使用した緩衝液間で製剤に応じた違いを示した。対照製剤は、凍結乾燥直後、高い復元率を示したが、ペプトンのない対照製剤については、４５℃での１週間のインキュベーション後、１型、２型及び３型について、それぞれ±４０％、±５０％及び＜１５％の復元率が見出された（Ｆｉｇ．１３：Ｇ１．０及びＧ３．０）。対照製剤については、ペプトンは１型及び２型の安定性の明白な改善を示したが、３型は、マンニトールを含有しない製剤及びマンニトールを含有する製剤について、それぞれ９０％超及び８０％のＤ抗原復元率に対して、４５℃での保存後、±２５％及び±１５％のＤ抗原復元率の減少を示した（Ｆｉｇ．１３：Ｇ２．０及びＧ４．０）。ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含有する製剤について、凍結乾燥及び保存後、ＨＥＰＥＳ緩衝液では、３つの血清型について、±８０％、±８５％及び±６０％のＤ抗原含有量という最も高い復元率が観察された。これは、加速安定性試験の間、１型、２型及び３型について、Ｄ抗原復元率がそれぞれ１０％、０％及び±３０％しか減少しなかったことを意味する。クエン酸緩衝液では、３型のみについて、より良好な結果、すなわち±２０％の減少が観察され、７９％の復元率のままであった（Ｆｉｇ．１３ａ：Ｇ１．２）。ペプトンの添加は、ペプトンを含有しない同じ製剤及び緩衝液と比較して、すべての血清型について全体的に１５〜２５％の復元率の減少を示した（Ｆｉｇ．１３ａ）。ソルビトール、ＭＳＧ、ＭｇＣｌ２及びマンニトールを含有する製剤にペプトンを添加した場合、安定性の明らかな改善が示された。ペプトンを含有しない異なる緩衝液の製剤は、±５５％、±７５％及び±４５％という最大復元率を示した一方で、ペプトンを含有する同様の緩衝液製剤は±５０％、±８０％及び±５５％の復元率を示した（Ｆｉｇ．１３ｂ）。賦形剤であるソルビトール、ＭＳＧ、ＭｇＣｌ２、マンニトール及びペプトンと共にリン酸緩衝液をベースにした製剤は、４５℃でのインキュベーション後、復元率の減少が、１型について±３０％、２型及び３型について±１０％にすぎない最も安定な製剤であることを示した。
【０１０６】
２．７  乾燥方法と無関係に安定性に適した製剤
Ｆｉｇ．１４は、ソルビトールを含有する製剤のみが、異なる乾燥方法によって引き起こされるストレスに抵抗できることを示す。これは、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２を含むことによってさらに高めることができ（特に３型）、その結果、トレハロース又はスクロースの場合の真空乾燥に匹敵する又はそれより高い復元率を与える製剤がもたらされた。先の結果（実験Ｅ）から、本発明者らは、ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２をベースにした製剤が、加速安定性試験の後、最良の復元率を有すると結論付けた。
【０１０７】
２．８  ペプトンを含有しない製剤
本発明者らが先の実験で見出した、ペプトンを含有しないより優れた製剤の１つは、１０％のソルビトール＋１０％ＭＳＧ＋５％のＭｇＣｌ２を含有する製剤である。さらなる実験において、本発明者らは、この製剤における主要な賦形剤の影響を評価した。その結果を、スクロース及びトレハロースをベースにした２つの標準的な製剤と比較した。凍結乾燥後の結果をＦｉｇ．１５に示す。Ｆｉｇ．１５から、本発明者らは、主としてソルビトールが、特に１型及び２型について凍結乾燥後のＩＰＶの復元率に関与すると結論付けた。ＭＳＧとＭｇＣｌ２との組み合わせは３つのＩＰＶ血清型の大きな安定化を示す。ソルビトールのみと比較して、ソルビトール、ＭＳＧ及びＭｇＣｌ２は、凍結乾燥後、特に３型について最良の復元率を示した。
【０１０８】
Ｆｉｇ．１６に示される加速安定性評価時に、製剤のほとんどが、ソルビトールのみを含有する製剤と同様に復元率の非常に大きな減少を示した。しかし、１０％のソルビトール＋１０％ＭＳＧ＋５％のＭｇＣｌ２を含有する製剤（マンニトール含有／非含有）は、４５℃での１週間の保存後、高い復元率を示した。
【０１０９】
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３２．  Ａｋｅｒｓ，Ｍ．Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｇｌｙｃｉｎｅ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｚａｔｉｏｎ  ｄｕｒｉｎｇ  ｆｒｅｅｚｉｎｇ：  ｔｈｅ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｓａｌｔ  ｆｏｒｍ，  ｐＨ，  ａｎｄ  ｉｏｎｉｃ  ｓｔｒｅｎｇｔｈ．  Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ，  １９９５．１２（１０）：  ｐ．１４５７−６１．
３３．  Ｍａｔｔｅｒｎ，Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｉｎ  ｖａｃｕｕｍ−ｄｒｉｅｄ  ｇｌａｓｓｅｓ．  ＩＩ．  Ｐｒｏｃｅｓｓ  ａｎｄ  ｓｔｏｒａｇｅ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｉｎ  ｓｕｇａｒ−ｆｒｅｅ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄ  ｓｙｓｔｅｍｓ．  Ｐｈａｒｍ  Ｄｅｖ  Ｔｅｃｈｎｏｌ，  １９９９．４（２）：  ｐ．１９９−２０８．
３４．  Ｃｏｓｔａｎｔｉｎｏ，Ｈ．Ｒ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｅｔｅｒｉｏｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ．  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（Ｍｏｓｃ），  １９９８．６３（３）：  ｐ．３５７−６３．
３５．  Ｋａｄｏｙａ，Ｓ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｗｉｔｈ  ｇｌａｓｓ−ｆｏｒｍｉｎｇ  ｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｓｕｇａｒ  ａｌｃｏｈｏｌｓ．  Ｉｎｔ  Ｊ  Ｐｈａｒｍ，  ２０１０．３８９（１−２）：  ｐ．１０７−１３．
３６．  Ｌｉ，Ｓ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｒｅｄｕｃｉｎｇ  ｓｕｇａｒｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｃｈｅｍｉｃａｌ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｒｅｌａｘｉｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ  ｓｔａｔｅ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９６．８５（８）：  ｐ．８７３−７．
３７．  Ｆｒａｎｋｓ，Ｆ．，  Ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ  ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（ＮＹ），  １９９４．１２（３）：  ｐ．２５３−６．
３８．  Ｙｕ，Ｌ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｘｉｓｔｅｎｃｅ  ｏｆ  ａ  ｍａｎｎｉｔｏｌ  ｈｙｄｒａｔｅ  ｄｕｒｉｎｇ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ  ａｎｄ  ｐｒａｃｔｉｃａｌ  ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９９．８８（２）：  ｐ．１９６−８．
３９．  Ｈａｎｃｏｃｋ，Ｂ．Ｃ．  ａｎｄ  Ｇ．Ｚｏｇｒａｆｉ，  Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ａｎｄ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ａｍｏｒｐｈｏｕｓ  ｓｔａｔｅ  ｉｎ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  ｓｙｓｔｅｍｓ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９７．８６（１）：  ｐ．１−１２．
４０．  Ｓｃｈｍｉｔｔ，Ｅ．Ａ．，  Ｄ．Ｌａｗ，  ａｎｄ  Ｇ．Ｇ．Ｚｈａｎｇ，  Ｎｕｃｌｅａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｚａｔｉｏｎ  ｋｉｎｅｔｉｃｓ  ｏｆ  ｈｙｄｒａｔｅｄ  ａｍｏｒｐｈｏｕｓ  ｌａｃｔｏｓｅ  ａｂｏｖｅ  ｔｈｅ  ｇｌａｓｓ  ｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ  ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９９．８８（３）：  ｐ．２９１−６．
４１．  Ｆｏｘ，Ｋ．Ｃ．，  Ｂｉｏｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ．  Ｐｕｔｔｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｕｎｄｅｒ  ｇｌａｓｓ．  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  １９９５．２６７（５２０６）：  ｐ．１９２２−３．
４２．  Ｃｒｏｗｅ，Ｊ．Ｈ．，  Ｊ．Ｆ．Ｃａｒｐｅｎｔｅｒ，  ａｎｄ  Ｌ．Ｍ．Ｃｒｏｗｅ，  Ｔｈｅ  ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｖｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｉｎ  ａｎｈｙｄｒｏｂｉｏｓｉｓ．  Ａｎｎｕ  Ｒｅｖ  Ｐｈｙｓｉｏｌ，  １９９８．６０：  ｐ．７３−１０３．
４３．  ｖａｎ  Ｉｎｇｅｎ，Ｃ．  ａｎｄ  Ｃ．Ｓ．Ｔａｎ，  Ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ  ｍｉｘｔｕｒｅ  ａｎｄ  ｕｓｅ  ｔｈｅｒｅｏｆ，  Ｗ．Ｉ．Ｐ．Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ，  Ｅｄｉｔｏｒ．  ２０１０，  Ｄｅ  Ｓｔａａｔ  Ｄｅｒ  Ｎｅｄｅｒｌａｎｄｅｎ，  ｖｅｒｔ．  ｄｏｏｒ  ｄｅ  ｍｉｎｉｓｔｅｒ  ｖａｎ  ＶＷＳ．
４４．  Ｂａｍ，Ｎ．Ｂ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｗｅｅｎ  ｐｒｏｔｅｃｔｓ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｈｕｍａｎ  ｇｒｏｗｔｈ  ｈｏｒｍｏｎｅ  ａｇａｉｎｓｔ  ａｇｉｔａｔｉｏｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｄａｍａｇｅ  ｖｉａ  ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９８．８７（１２）：  ｐ．１５５４−９．
４５．  Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ，Ｄ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｒｅｈａｌｏｓｅ  ｐｒｅｓｅｒｖｅｓ  ＤＤＡ／ＴＤＢ  ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ａｄｊｕｖａｎｔ  ｅｆｆｅｃｔ  ｄｕｒｉｎｇ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ．  Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ，  ２００７．１７６８（９）：  ｐ．２１２０−２１２９．
４６．  Ｉｚｕｔｓｕ，Ｋ．，  Ｓ．Ｙｏｓｈｉｏｋａ，  ａｎｄ  Ｔ．Ｔｅｒａｏ，  Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｍａｎｎｉｔｏｌ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｉｔｙ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｎｚｙｍｅｓ  ｄｕｒｉｎｇ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ  Ｂｕｌｌ  （Ｔｏｋｙｏ），  １９９４．４２（１）：  ｐ．５−８．
４７．  Ｋｉｍ，Ａ．Ｉ．，  Ｍ．Ｊ．Ａｋｅｒｓ，  ａｎｄ  Ｓ．Ｌ．Ｎａｉｌ，  Ｔｈｅ  ｐｈｙｓｉｃａｌ  ｓｔａｔｅ  ｏｆ  ｍａｎｎｉｔｏｌ  ａｆｔｅｒ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ：  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｍａｎｎｉｔｏｌ  ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ，  ｆｒｅｅｚｉｎｇ  ｒａｔｅ，  ａｎｄ  ａ  ｎｏｎｃｒｙｓｔａｌｌｉｚｉｎｇ  ｃｏｓｏｌｕｔｅ．  Ｊ  Ｐｈａｒｍ  Ｓｃｉ，  １９９８．８７（８）：  ｐ．９３１−５．
４８．  Ｋｒｅｉｌｇａａｒｄ，Ｌ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ａｄｄｉｔｉｖｅｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｈｕｍａｎ  ｆａｃｔｏｒ  ＸＩＩＩ  ｄｕｒｉｎｇ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｙｉｎｇ  ａｎｄ  ｓｔｏｒａｇｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｄｒｉｅｄ  ｓｏｌｉｄ．  Ａｒｃｈ  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ，  １９９８．３６０（１）：  ｐ．１２１−３４．
４９．  Ｌｅａｌ，Ｍ．Ｌ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｔｕｄｙ  ｏｎ  ｔｈｅｒｍｏｓｔａｂｉｌｉｚｅｒｓ  ｆｏｒ  ｔｒｉｖａｌｅｎｔ  ｏｒａｌ  ｐｏｌｉｏｍｙｅｌｉｔｉｓ  ｖａｃｃｉｎｅ．  Ｍｅｍ  Ｉｎｓｔ  Ｏｓｗａｌｄｏ  Ｃｒｕｚ，  １９９０．８５（３）：  ｐ．３２９−３８．
５０．  Ｌｉｓｋａ，Ｖ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｈｕｍａｎ  ｇｅｌａｔｉｎ  ａｓ  ａ  ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｅ  ｆｏｒ  ａ  ｈｙｄｒｏｌｙｚｅｄ  ｐｏｒｃｉｎｅ  ｇｅｌａｔｉｎ  ｉｎ  ａ  ｒｅｆｒｉｇｅｒａｔｏｒ−ｓｔａｂｌｅ  Ｏｋａ／Ｍｅｒｃｋ  ｌｉｖｅ  ｖａｒｉｃｅｌｌａ  ｖａｃｃｉｎｅ．  Ｊ  Ｉｍｍｕｎｅ  Ｂａｓｅｄ  Ｔｈｅｒ  Ｖａｃｃｉｎｅｓ，  ２００７．５：  ｐ．４．
５１．  Ｍｅｌｎｉｃｋ，Ｊ．Ｌ．，  Ｔｈｅｒｍｏｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ａｎｄ  ｍｅａｓｌｅｓ  ｖａｃｃｉｎｅｓ．  Ｄｅｖ  Ｂｉｏｌ  Ｓｔａｎｄ，  １９９６．８７：  ｐ．１５５−６０．
５２．  Ｎａｇｅｌ，Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｏｍｅ  ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ  ｏｎ  ｆｒｅｅｚｅｄｒｙｉｎｇ  ｏｆ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｐｏｌｉｏｍｙｅｌｉｔｉｓ−ｖａｃｃｉｎｅｓ．  Ａｒｃｈ  Ｇｅｓａｍｔｅ  Ｖｉｒｕｓｆｏｒｓｃｈ，  １９６３．１２：  ｐ．７１８−２０．
５３．  Ｏｈｔａｋｅ，Ｓ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｅａｔ−ｓｔａｂｌｅ  ｍｅａｓｌｅｓ  ｖａｃｃｉｎｅ  ｐｒｏｄｕｃｅｄ  ｂｙ  ｓｐｒａｙ  ｄｒｙｉｎｇ．  Ｖａｃｃｉｎｅ，  ２０１０．２８（５）：  ｐ．１２７５−８４．
５４．  Ｓｏｏｄ，Ｄ．Ｋ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｔｕｄｙ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  １７Ｄ−２０４  ｙｅｌｌｏｗ  ｆｅｖｅｒ  ｖａｃｃｉｎｅ  ｂｅｆｏｒｅ  ａｎｄ  ａｆｔｅｒ  ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ．  Ｖａｃｃｉｎｅ，  １９９３．１１（１１）：  ｐ．１１２４−８．
５５．  Ｕｎｇａｒ，Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  ｏｆ  ａ  ｆｒｅｅｚｅ−ｄｒｉｅｄ  Ｂ．Ｃ．Ｇ．ｖａｃｃｉｎｅ  ｏｆ  ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ．  Ｂｒ  Ｍｅｄ  Ｊ，  １９６２．２（５３１２）：  ｐ．１０８６−９．
５６．  Ｗａｎｇ，Ｗ．，  Ｉｎｓｔａｂｉｌｉｔｙ，  ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ，  ａｎｄ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｌｉｑｕｉｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ．  Ｉｎｔ  Ｊ  Ｐｈａｒｍ，  １９９９．１８５（２）：  ｐ．１２９−８８．
５７．  Ｗｒｉｇｈｔ，Ｄ．，  Ｐ．Ｗ．Ｍｕｇｇｌｅｔｏｎ，  ａｎｄ  Ｍ．Ｉ．Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ，  Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｄｒｉｅｄ  ＢＣＧ  ｖａｃｃｉｎｅ．  Ｔｕｂｅｒｃｌｅ，  １９７２．５３（２）：  ｐ．９２−９．
５８．  Ｉｚｕｔｓｕ，Ｋ．，  Ｃ．Ｙｏｍｏｔａ，  ａｎｄ  Ｎ．Ａｏｙａｇｉ，  Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍａｎｎｉｔｏｌ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｚａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｆｒｏｚｅｎ  ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ  ｂｙ  ｓｏｄｉｕｍ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅｓ  ａｎｄ  ｃｉｔｒａｔｅｓ．  Ｃｈｅｍ  Ｐｈａｒｍ  Ｂｕｌｌ  （Ｔｏｋｙｏ），  ２００７．５５（４）：  ｐ．５６５−７０．
５９．  Ｓｈｉｏｍｉ，Ｈ．，  Ｔ．Ｕｒａｓａｗａ，  ａｎｄ  Ｓ．Ｕｒａｓａｗａ，  Ｈｅａｔ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ  Ｓａｂｉｎ  ｐｏｌｉｏｖａｃｃｉｎｅ．  Ｊｐｎ  Ｊ  Ｉｎｆｅｃｔ  Ｄｉｓ，  ２００３．５６（２）：  ｐ．７０−２．
６０．  Ｂｕｒｋｅ，Ｃ．Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｈｅ  ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｔｏ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  ｃｏｎｔａｉｎｅｒ  ｓｕｒｆａｃｅｓ．  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，  １９９２．８６（１）：  ｐ．８９−９３．
６１．  Ｋｅｒｓｔｅｎ，Ｇ．，  Ｔ．Ｈａｚｅｎｄｏｎｋ，  ａｎｄ  Ｃ．Ｂｅｕｖｅｒｙ，  Ａｎｔｉｇｅｎｉｃ  ａｎｄ  ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｉｃ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  ｏｆ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｐｏｌｉｏ  ｖａｃｃｉｎｅ  ｍａｄｅ  ｆｒｏｍ  Ｓａｂｉｎ  ｓｔｒａｉｎｓ．  Ｖａｃｃｉｎｅ，  １９９９．１７（１５−１６）：  ｐ．２０５９−２０６６．
６２．  Ｄｏｅｌ，Ｔ．Ｒ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｈｅ  ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｐｈｙｓｉｃａｌ  ｍｅｔｈｏｄ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ｐａｒｔｉｃｌｅｓ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ  ｔｏ  Ｄ−ａｎｔｉｇｅｎｉｃｉｔｙ  ａｎｄ  ｐｏｔｅｎｃｙ  ｔｅｓｔｉｎｇ  ｉｎ  ｒａｔｓ．  Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｓｔａｎｄ，  １９８４．１２（１）：  ｐ．９３−９．
６３．  Ｉｖａｎｏｖ，Ａ．Ｐ．  ａｎｄ  Ｅ．Ｍ．Ｄｒａｇｕｎｓｋｙ，  ＥＬＩＳＡ  ａｓ  ａ  ｐｏｓｓｉｂｌｅ  ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｔｅｓｔ  ｆｏｒ  ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ  ｔｈｅ  ｉｍｍｕｎｅ  ｒｅｓｐｏｎｓｅ  ｔｏ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ｖａｃｃｉｎｅｓ．  Ｅｘｐｅｒｔ  Ｒｅｖ  Ｖａｃｃｉｎｅｓ，  ２００５．４（２）：  ｐ．１６７−７２．
６４．  ｖａｎ  Ｓｔｅｅｎｉｓ，Ｇ．，  Ａ．Ｌ．ｖａｎ  Ｗｅｚｅｌ，  ａｎｄ  Ｖ．Ｍ．Ｓｅｋｈｕｉｓ，  Ｐｏｔｅｎｃｙ  ｔｅｓｔｉｎｇ  ｏｆ  ｋｉｌｌｅｄ  ｐｏｌｉｏ  ｖａｃｃｉｎｅ  ｉｎ  ｒａｔｓ．  Ｄｅｖ  Ｂｉｏｌ  Ｓｔａｎｄ，  １９８１．４７：  ｐ．１１９−２８．
６５．  Ｗｏｏｄ，Ｄ．Ｊ．  ａｎｄ  Ａ．Ｂ．Ｈｅａｔｈ，  Ａ  ＷＨＯ  ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ  ｓｔｕｄｙ  ｏｆ  ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｉｃｉｔｙ  ａｓｓａｙｓ  ｏｆ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ｖａｃｃｉｎｅｓ．  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ，  １９９５．２３（４）：  ｐ．３０１−１１．
【０１１０】
略語：
ＢＣＧ：  カルメットゲラン桿菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  Ｃａｌｍｅｔｔｅ−Ｇｕｅｒｉｎ）
ＤｏＥ：  実験の設計
ＤＳＣ：  示差走査熱量測定
ＤＵ／Ｄ−Ａｇ：  Ｄユニット／Ｄ抗原性
ＥＬＩＳＡ：  酵素結合免疫吸着法（Ｅｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ  ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ  Ａｓｓａｙ）
ＨＥＳ：  ヒドロキシエチルデンプン
ＨＲＰ：  セイヨウワサビペルオキシダーゼ
ＩｇＧ：  免疫グロブリンＧ
ＩＰＶ：  不活化ポリオワクチン
ＭＡＮ：  マンニトール
ＭＳ：  質量分析法
ＭＳＧ：  グルタミン酸一ナトリウム
ＯＰＶ：  経口ポリオワクチン
ＰＥＰ：  ペプトン
ＱＣ：  品質管理（ＲＩＶＭでの部門）
ＲＩＶＭ：  オランダ国立公衆衛生環境研究所
ＲＭＣ：  残留水分量
ＲＰ−ＨＰＬＣ：  逆相高速液体クロマトグラフィー
ｓＩＰＶ：  Ｓａｂｉｎ不活化ポリオワクチン（Ｓａｂｉｎ株をベースにしている）
ＳＯＲ：  ソルビトール
ＳＵＣ：  スクロース
Ｔｇ：  ガラス転移温度
ＴＲＥＨ：  トレハロース
ＶＡＰＰ：  ワクチン関連麻痺性ポリオ
ＶＤＰＶ：  ワクチン由来ポリオウイルス
ＷＨＯ：  世界保健機関
【図１】
2015509529.tif 000008
【図２】
2015509529.tif 000009
【図３】
2015509529.tif 000010
【図４】
2015509529.tif 000011
【図５】
2015509529.tif 000012
【図６】
2015509529.tif 000013
【図７】
2015509529.tif 000014
【図８−１】
2015509529.tif 000015
【図８−２】
2015509529.tif 000016
【図９−１】
2015509529.tif 000017
【図９−２】
2015509529.tif 000018
【図１０】
2015509529.tif 000019
【図１１】
2015509529.tif 000020
【図１２−１】
2015509529.tif 000021
【図１２−２】
2015509529.tif 000022
【図１３−１】
2015509529.tif 000023
【図１３−２】
2015509529.tif 000024
【図１４】
2015509529.tif 000025
【図１５】
2015509529.tif 000026
【図１６】
2015509529.tif 000027
【国際調査報告】
2015509529.tif 000028
2015509529.tif 000029
2015509529.tif 000030