(57)【要約】  本発明は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を含んでなる組成物、及び抗ＣＤ８３アゴニスト抗体で自己免疫疾患（炎症性腸疾患等）を治療する方法、並びに抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を含んでなる製造品に関連する。
2015511931.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
個体において自己免疫疾患を治療又は防止する方法において、個体に有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与することを含んでなる方法。
【請求項２】
自己免疫疾患が、関節リウマチ、若年性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、ループス腎炎、潰瘍性大腸炎、ウェゲナー疾患（Wegener's disease）、炎症性腸疾患、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）、自己免疫性血小板減少症、多発性硬化症、乾癬、ＩｇＡ腎症、ＩｇＭ多発ニューロパチー、重症筋無力症、血管炎、糖尿病、レイノー症候群、シェーグレン症候群及び糸球体腎炎から成る群から選択される請求項１に記載の方法。
【請求項３】
個体が、骨髄系細胞活性化を伴う自己免疫疾患を有する請求項１に記載の方法。
【請求項４】
個体が、クローン病を有する請求項３に記載の方法。
【請求項５】
個体が、潰瘍性大腸炎を有する請求項３に記載の方法。
【請求項６】
個体がヒトである請求項１−５の何れか一項に記載の方法。
【請求項７】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、成熟樹状細胞からの炎症促進性サイトカインの放出を阻害する請求項１−５の何れか一項に記載の方法。
【請求項８】
炎症促進性サイトカインＭＣＰ-１及び／又はＩＬ-１２ｐ４０の放出が阻害される請求項７に記載の方法。
【請求項９】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、成熟樹状細胞からの抗炎症性サイトカインの放出を誘導する請求項１−５の何れか一項に記載の方法。
【請求項１０】
抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａの放出が誘導される請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、成熟樹状細胞上のＣＤ８３及び／又はＨＬＡ-ＤＲの細胞表面発現の低下を誘導する請求項１−５の何れか一項に記載の方法。
【請求項１２】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、成熟樹状細胞におけるＭＡＰＫ及び／又はｍＴＯＲシグナル伝達の活性化を阻害する請求項１−５の何れか一項に記載の方法。
【請求項１３】
ＭＡＰＫシグナル伝達の活性化の阻害が、成熟樹状細胞におけるｐ３８及びＣＲＥＢタンパク質のリン酸化の低下によって測定される請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
ｍＴＯＲシグナル伝達の活性化の阻害が、成熟樹状細胞におけるｍＴＯＲタンパク質のリン酸化の低下によって測定される請求項１２に記載の方法。
【請求項１５】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体がモノクローナル抗体である請求項１−１４の何れか一項に記載の方法。
【請求項１６】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、Ｆａｂ、Ｆａｂ'-ＳＨ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、及び（Ｆａｂ'）２断片から成る群から選択される抗体断片である請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体がヒト化抗体又はキメラ抗体である請求項１−１４の何れか一項に記載の方法。
【請求項１８】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する請求項１−１７の何れか一項に記載の方法。
【請求項１９】
抗体が、配列番号：３０のアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び／又は配列番号：３６のアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する請求項１−１７の何れか一項に記載の方法。
【請求項２０】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体がヒト抗体である請求項１−１４の何れか一項に記載の方法。
【請求項２１】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、静脈内に、筋肉内に、皮下に、局所的に、経口的に、経皮的に、腹腔内に、眼窩内に、移植によって、吸入によって、髄腔内に、脳室内に、又は鼻腔内に投与される請求項１−２０の何れか一項に記載の方法。
【請求項２２】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体、及び個体における自己免疫疾患を治療又は防止するための抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の使用に関する指示を含んでなるパッケージ挿入物を含んでなる製造品。
【請求項２３】
（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；
（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；
（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；
（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；
（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；
（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３
から成る群から選択される少なくとも１、２、３、４、５又は６つの超可変領域（ＨＶＲ）を含んでなる可変ドメインを含んでなる単離された抗ＣＤ８３抗体。
【請求項２４】
以下の６つのＨＶＲ配列：
（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；
（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；
（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；
（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；
（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；
（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３
を含んでなる重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗ＣＤ８３抗体。
【請求項２５】
抗体が、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を有する請求項２３又は２４に記載の抗体。
【請求項２６】
抗体が、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を更に含んでなる請求項２５に記載の抗体。
【請求項２７】
抗体が、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を有する請求項２３又は２４に記載の抗体。
【請求項２８】
抗体がキメラ抗体又はヒト化抗体である請求項２３−２７の何れか一項に記載の抗体。
【請求項２９】
配列番号：３０のアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び／又は配列番号：３６のアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗ＣＤ８３抗体。
【請求項３０】
抗体がキメラ抗体である請求項１９に記載の抗体。
【請求項３１】
請求項２３−３０の何れか一項に記載の抗体及び薬学的に許容可能な担体を含んでなる薬学的組成物。
【請求項３２】
請求項２３−３０の何れか一項に記載の抗ＣＤ８３抗体をコードするヌクレオチド配列を含んでなる単離された核酸。
【請求項３３】
請求項３２の核酸を含んでなるベクター。
【請求項３４】
ベクターが発現ベクターである請求項３３に記載のベクター。
【請求項３５】
請求項３３又は３４に記載のベクターを含んでなる宿主細胞。
【請求項３６】
宿主細胞が原核生物細胞又は真核生物細胞である請求項３４に記載の宿主細胞。
【請求項３７】
抗ＣＤ８３抗体を作成する方法において、抗ＣＤ８３抗体をコードする核酸の発現に適した条件下で請求項３５の宿主細胞を培養することを含んでなる前記方法。
【請求項３８】
宿主細胞によって産生された抗ＣＤ８３抗体を回収することを更に含んでなる請求項３７に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本出願は、２０１１年７月１日に出願された米国仮出願第６１／５０４，１２７、及び２０１１年１２月２７日に出願された日本特許出願第２０１１-２８５５８５、２０１１年１２月２７日に出願された２０１１-２８５５９５の優先権を主張するものであり、その内容は出典明記によりその全体を本明細書中に援用する。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体、及び炎症性腸疾患等の自己免疫疾患を治療するために抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を使用する方法に関する。
【背景技術】
【０００３】
潰瘍性大腸炎及びクローン病等の炎症性腸疾患（ＩＢＤ）は、腸の慢性及び再発性炎症によって特徴付けられる。最近のエビデンスはＩＢＤが共生の腸内細菌叢に対する寛容を失うことに起因することを示し、粘膜免疫システムは病原体と共生生物とを区別することができない。このように、ＩＢＤ患者は常在菌叢に対する免疫認識を形成し、胃腸炎症性反応を示す。常在菌叢に対する血清反応性の形成の程度は、およそ疾患期間及び疾患重症度に相関する(Lodes等, J Clin Invest., 113:1296-1306, 2004)。潰瘍性大腸炎及びクローン病遺伝学間で重複する２５以上の対立遺伝子が同定された(Umeno等, Inflamm Bowel Dis. In press, 2011)。これらのＩＢＤ遺伝的対立遺伝子は、１）上皮の完全性における欠損、２）骨髄系微生物反応の欠損及び炎症促進性サイトカインの産生、及び３）Ｔヘルパー１７細胞及びＴヘルパー１細胞反応の増加をもたらす幾つかの共通経路に集結する。研究は、殆どのＩＢＤ患者が自発的な再発寛解サイクルを有し、彼らは適度な頻度で臨床的寛解となるが、長期間寛解を維持はしないことを示す。この観察は、ＩＢＤ寛解期を促進しうる未だ未確定な粘膜恒常性維持機構の存在を示す(Schirbel等, Expert Rev Gastroenterol Hepatol., 5(1):33-41, 2011)。従って、粘膜恒常性の維持に関与する分子及び機構の同定が、ＩＢＤ寛解の促進及び維持に有益となるであろう。
【０００４】
ＣＤ８３は高く保存された４５キロダルトン膜貫通糖タンパク質であり、樹状細胞及び胸腺上皮細胞の表面に主に発現される。また、ＣＤ８３は免疫系の他の活性化細胞の表面に一過性に発現され、また可溶性形態で見られることもできる。ＣＤ８３の予測アミノ酸配列の構造分析は、それが免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであることを示し、免疫系における役割を示す。ＨＣＭＶ感染成熟樹状細胞により放出されたｓＣＤ８３がＴ細胞増殖を阻害し(Senechal等, Blood., 103(11):4207-4215, 2004)、ｓＣＤ８３が樹状細胞細胞骨格への形態学的作用を有する(Kotzor等, Immunobiology., 209(1-2):129-140, 2004)という観察から、文献報告は、可溶性ＣＤ８３（ｓＣＤ８３）が免疫調節的役割を果たしうることを示唆する。しかしながら、ＣＤ８３に対する何れのリガンドも同定されておらず、ＣＤ８３の機能は不明なところが多いままである。興味深いことに、ＣＤ８３遺伝子発現はヒトクローン病において粘膜表面で下方制御され(Silva等, Dig. Dis. Sci., 53(7):1917-1928, 2008)、ＣＤ８３は粘膜恒常性の維持に関与し得、従って、ＩＢＤにおける免疫系の調節のための治療標的となり得ることを示唆する。
【０００５】
特許出願及び刊行物を含むここに引用する全ての参考文献は、出典明記によりその全体を本明細書中に援用する。
【発明の概要】
【０００６】
ここに提供するものは、個体において自己免疫疾患を治療又は防止する方法であって、個体に有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与することを含んでなる。幾つかの実施態様では、個体はヒトである。
【０００７】
幾つかの実施態様では、自己免疫疾患は、関節リウマチ、若年性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、ループス腎炎、潰瘍性大腸炎、ウェゲナー疾患（Wegener's disease）、炎症性腸疾患、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）、自己免疫性血小板減少症、多発性硬化症、乾癬、ＩｇＡ腎症、ＩｇＭ多発ニューロパチー、重症筋無力症、血管炎、糖尿病、レイノー症候群、シェーグレン症候群及び糸球体腎炎から成る群から選択される。幾つかの実施態様では、自己免疫疾患は骨髄系細胞活性化（樹状細胞及びマクロファージ）を伴い、例えば多発性硬化症及び炎症性腸疾患等である。
【０００８】
幾つかの実施態様では、個体は、自己免疫疾患を有するか、又は自己免疫疾患を有すると診断されている。幾つかの実施態様では、個体は、炎症性腸疾患(クローン病、潰瘍性大腸炎、及び不確定大腸炎等)を有するか、又は炎症性腸疾患(クローン病、潰瘍性大腸炎、及び不確定大腸炎等)を有すると診断されている。
【０００９】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、成熟樹状細胞からの炎症促進性サイトカインの放出を阻害する(例えば、炎症促進性サイトカインＭＣＰ-１及び／又はＩＬ-１２ｐ４０の放出が阻害される)。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、成熟樹状細胞からの抗炎症性サイトカインの放出を阻害する(例えば、抗炎症性  サイトカインＩＬ-１ｒａの放出が阻害される）。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、成熟樹状細胞上のＣＤ８３及び／又はＨＬＡ-ＤＲの細胞表面発現の低下を誘導する。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、成熟樹状細胞におけるＭＡＰＫ及び／又はｍＴＯＲシグナル伝達の活性化を阻害する。幾つかの実施態様では、ＭＡＰＫシグナル伝達の活性化の阻害は、成熟樹状細胞における、ｐ３８及び／又はＣＲＥＢタンパク質のリン酸化の減少によって測定される。幾つかの実施態様では、ｍＴＯＲシグナル伝達の活性化の阻害は、成熟樹状細胞におけるｍＴＯＲタンパク質のリン酸化の減少によって測定される。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、成熟樹状細胞において、創傷治癒遺伝子（例えばｖｃａｎ、ｓｐｏｃｋ２、及びｆｂｎ２）の発現をアップレギュレートする。
【００１０】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体はモノクローナル抗体である。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は抗原結合断片であり、例えばＦａｂ、Ｆａｂ’-ＳＨ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、及び（Ｆａｂ’）２断片からなる群から選択される断片である。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体はヒト化抗体である。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体はヒト抗体である。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体はキメラ抗体である。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を重鎖可変ドメイン、及び／又は配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する。幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、配列番号：３０のアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び／又は配列番号：３６のアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する。
【００１１】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、静脈内に、筋肉内に、皮下に、局所的に、経口的に、経皮的に、腹腔内に、眼窩内に、移植によって、吸入によって、髄腔内に、脳室内に、又は鼻腔内に投与される。
【００１２】
またここで提供されるものは、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を含んでなる製造品又はキットである。幾つかの実施態様では、製造品又はキットは、個体における自己免疫疾患を治療又は防止するために抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を使用するための指示を含んでなるパッケージ挿入物を更に収容しうる。
【００１３】
またここで提供されるものは、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３から成る群から選択される少なくとも１、２、３、４、５又は６つの超可変領域（ＨＶＲ）を含んでなる可変ドメインを含んでなる単離された抗ＣＤ８３抗体である。またここで提供されるものは、次の６つのＨＶＲ配列（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３、を含んでなる重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗ＣＤ８３抗体である。
【００１４】
幾つかの実施態様では、抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を有する。幾つかの実施態様では、抗体は、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を更に有する。
【００１５】
幾つかの実施態様では、抗体は、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を有する。
【００１６】
幾つかの実施態様では、キメラ抗体又はヒト化抗体である。幾つかの実施態様では、抗体は、配列番号：３０のアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び／又は配列番号：３６のアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する。
【００１７】
またここで提供されるものは、ここに記載の抗ＣＤ８３抗体及び薬学的に許容可能な担体を含んでなる薬学的組成物である。
【００１８】
またここで提供されるものは、ここに記載の抗ＣＤ８３抗体をコードするヌクレオチド配列を含んでなる単離された核酸である。ここで提供されるものは、核酸を含んでなるベクターである。幾つかの実施態様では、ベクターは発現ベクターである。またここで提供されるものは、ベクターを含んでなる宿主細胞である。幾つかの実施態様では、宿主細胞は原核生物細胞又は真核生物細胞である。
【００１９】
またここで提供されるものは、抗ＣＤ８３抗体を作成する方法において、ここに記載の抗ＣＤ８３抗体をコードする核酸の発現に適した条件下で、ここに記載の宿主細胞を培養することを含んでなる前記方法である。幾つかの実施態様では、該方法は宿主細胞によって産生された抗ＣＤ８３抗体を回収することを更に含んでなる。
【００２０】
ここに記載の様々な実施態様の一、幾つか、又は全ての特性が、本発明の他の実施態様を形成するために組合せられてもよいことが理解されるだろう。本発明のこれらの及び他の態様は、当業者に明瞭となるだろう。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】図１は、ＣＤ８３が、ＣＤ８３を発現している細胞の表面でのホモタイプ結合に関与したことを示す。（ａ）安定的に形質移入されたＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞の表面上に発現されたＣＤ８３をフローサイトメトリーによって定量化した。（ｂ）ＭＵＴＺ-３由来成熟ＤＣ上に発現されたＣＤ８３の発現をフローサイトメトリーによって定量化した。（ｃ及びｄ）ＣＤ８３．ｆｃはＣＨＯ-ｈＣＤ８３及び成熟ＤＣに結合した。
【図２】図２は、ＣＤ８３がＣＤ８３．ｆｃの結合に必要であったことを示す。（ａ）ＣＤ８３．ｆｃはＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞に結合したが、結合は抗ＣＤ８３抗体によって阻止され、フローサイトメトリーによって定量化した。（ｂ）１８Ｓに対して正規化した全ＲＮＡのｔａｑｍａｎ解析によって示される、ＭＵＴＺ-３成熟ＤＣにおけるＣＤ８３に特異的なｓｉＲＮＡ（ｓｉＣＤ８３）の効果。（ｃ）ＣＤ８３は、非標的化（ｓｉＮＴＣ）ｓｉＲＮＡで処理された成熟ＤＣの表面に発現されたが、ｓｉＣＤ８３で処理された成熟ＤＣには発現されなかった。（ｄ）ＣＤ８３．ｆｃはｍＤＣに結合したが、結合はｓｉＣＤ８３処理によって抑止された。（ｅ）ＣＤ８３のノックダウンは成熟ＤＣにおいてＭＨＣＩＩの表面発現を低下させた。（ｆ）ＣＤ８３のノックダウンは成熟ＤＣにおいてＣＤ８６の表面発現を変更しなかった。
【図３】図３は１０Ｘでの顕微鏡画像を提供し、ＣＤ８３発現が懸濁培養物において細胞凝集となったことを示す。（ａ）コントロールＣＨＯ細胞は凝集しなかった。（ｂ）ＣＤ８３を発現する細胞は懸濁培養物中においてクラスタを形成した。（ｃ）ＣＤ８３．ｆｃタンパク質でのＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞の前処理は凝集を阻止した。（ｄ）Ｉｇコントロールタンパク質でのＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞の前処理は凝集を阻止しなかった。
【図４】図４はＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ抗体での成熟ＤＣにおけるＣＤ８３処理が、表面活性化マーカーＣＤ８３及びＨＬＡ-ＤＲの発現を減少させたことを示す。
【図５】ＥＬＩＳＡデータはＣＤ８３処理されたヒト単球由来ＤＣにおける変化したサイトカイン放出を示した。（ａ及びｃ）炎症促進性サイトカインＩＬ１２-ｐ４０及びＭＣＰ-１は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ抗体処理により減少した。（ｂ）抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａはＣＤ８３処理ＤＣにおいて有意に増加した。（ｄ）ＩＬ-８はＣＤ８３処理又はコントロール処理ＤＣ間で違いを見せなかった。*は値が有意に異なることを示す；* ｐ＜０．０１、** ｐ＜０．００１。グラフは少なくとも４の異なるドナーを表す。
【図６】ＥＬＩＳＡデータはＣＤ８３処理されたＭＵＴＺ-３由来ＤＣにおける変化したサイトカイン放出を示した。（ａ及びｃ）炎症促進性サイトカインＩＬ１２-ｐ４０及びＭＣＰ-１は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ抗体処理により減少した。（ｂ）抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａはＣＤ８３処理ＤＣにおいて有意に増加した。（ｄ）ＩＬ-８はＣＤ８３処理又はコントロール処理ＤＣ間で違いを見せなかった。各ウェルからの上澄部を三重に実行した。
【図７】図７は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ抗体でのＤＣにおけるＣＤ８３処理が創傷治癒に関与する遺伝子のアップレギュレーションとなったことを示し、ｇａｐｄｈに対して正規化したｖｃａｎ、ｓｐｏｃｋ２、及びｆｂｎ２のＴａｑｍａｎ ｑＰＣＲ解析により提供された。平均相対発現（２＾ΔＣＴ）＋ＳＥＭ。
【図８】図８は、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用がトランスで生じ、ＤＣにおける抗炎症性反応を媒介することを示す。（ａ及びｂ）サイトカイン産生のＥＬＩＳＡ測定は、ＣＤ８３を過剰発現するＣＨＯ細胞のｍＤＣとの共培養が、炎症促進性サイトカインＩＬ１２-ｐ４０及びＭＣＰ-１の放出を阻害したことを示した。（ｃ）ＣＤ８３ノックアウト（ＣＤ８３ＫＯ）及び野生型（ＷＴ）同腹子から生成された成熟マウス骨髄由来ＤＣ（ＢＭＤＣ）（灰色バー）は、２４時間のＬＰＳ刺激後、類似レベルのＩＬ-１２ｐ４０を生成した。（ｄ）ＷＴ成熟ＢＭＤＣと共に培養した未熟ＢＭＤＣは、ＣＤ８３欠失成熟ＢＭＤＣと共に培養したものより有意に少ないＩＬ-１２ｐ４０を生成した。ｐ＝０．０３７２。
【図９】図９はＣＤ８３ホモタイプ相互作用がＤＣにおける抗炎症性反応を媒介したことを示す。（ａ）ＣＤ８３のｓｉＲＮＡノックダウンはＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ抗体に対する反応を抑止し、ＭＣＰ-１のＥＬＩＳＡによって示された。（ｂ）完全長ＣＤ８３及び細胞質内切断型ＣＤ８３に関するＣＤ８３レンチウィルス発現の図。（ｃ）ＭＣＰ-１産生のＥＬＩＳＡは、細胞質内切断型ＣＤ８３の発現がＣＤ８３．ｆｃタンパク質の阻害作用を阻止したことを示した。
【図１０】図１０は、抗体架橋結合が、ＤＣにおけるＣＤ８３細胞質内ドメインを介した抗炎症性反応の作動に十分であったことを示す。（ａ）ＣＤ８３キメラレンチウィルス発現コンストラクトの図であり、ＣＤ８３膜貫通部に融合されたＣＤ７９ａの細胞外ドメイン及び完全長又は切断型細胞質内ドメインを描く。（ｂ）ＩＬ１２-ｐ４０産生のＥＬＩＳＡは、切断型キメラの過剰発現が抗ＣＤ７９ａ抗体に対するＤＣ反応を阻害したことを示した。
【図１１】図１１は、ＣＤ８３がＣ末端に抗炎症性反応を媒介するクラスＩＩＩ ＰＤＺリガンドモチーフを有することを示す。（ａ）ＣＤ８３細胞質内ドメインの最後の１５アミノ酸のアミノ酸配列比較図は、保存されたクラスＩＩＩ ＰＤＺリガンドモチーフを示した。（ｂ）Ｃ末端ＰＤＺリガンドモチーフＶ２０５Ａ変異体のＣＤ８３レンチウィルス発現コンストラクトの図。（ｃ）ＭＣＰ-１産生のＥＬＩＳＡは、Ｖ２０５Ａ ＰＤＺリガンドモチーフ変異体の発現がＣＤ８３．ｆｃタンパク質の阻害作用を阻止したことを示した。
【図１２】図１２は、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用の免疫抑制作用が、ｐ３８ ＭＡＰＫ及びｍＴＯＲシグナル伝達経路によって媒介されたことを示す。（ａ−ｃ）は、ＨＢ１５ｅ抗体処理がｍＴＯＲ、ｐ３８及びＣＲＥＢのリン酸化の有意な低下となったことを示した。（ｄ）ＨＢ１５ｅ抗体処理は、ＴＮＦ経路によって活性化されるＳＴＡＴ３のリン酸化を阻害しなかった。（ｅ）ウェスタンブロット解析は、ＨＢ１５ｅ抗体処理によるｐ３８リン酸化の低下を確認した。（ｆ）ＳＴＡＴ３のリン酸化にＨＢ１５ｅ抗体処理による有意な差異は見られなかった。全ｐ３８及びＳＴＡＴ３をローディングコントロールとして使用した。
【図１３】図１３は、結腸におけるＣＤ８３過剰発現が、固有層におけるＤＣ上の表面活性化マーカーのダウンレギュレーションとなったことを示す。（ａ）ＣＤ８３遺伝子導入マウスを作成するために使用した遺伝子導入コンストラクトの図。（ｂ）免疫組織化学染色は、結腸上皮における導入遺伝子の発現を示した。（ｃ及びｅ）ＣＤ８３遺伝子導入マウスの結腸及び脾臓から単離されたＤＣ上の表面マーカーの発現をＦＡＣＳによって定量化し、平均蛍光強度（ＭＦＩ）として測定した。（ｄ及びｆ）ＣＤ８３遺伝子導入マウスの結腸又は脾臓いずれにおいても、Ｔ細胞表面活性化マーカーにおける有意な差は見られなかった。（ｇ）Ｔａｑｍａｎ ｑＰＣＲ解析は、ＣＤ８３遺伝子導入マウスから単離されたＤＣにおける創傷治癒遺伝子発現の増加を示した。
【図１４】図１４は、ＣＤ８３遺伝子導入マウスから単離されたＤＣサブセットを分析するためのＦＡＣＳゲートストラテジーを示し、これはＣＤ８３導入遺伝子がＤＣサブセット産生に何の効果も持たなかったことを示した。（ａ及びｂ）ＭＨＣＩＩ＋及びＣＤ１１ｃ ｈｉ発現によるＤＣのゲーティング。（ｃ）Ｔ細胞のゲーティング。（ｄ及びｅ）結腸及び脾臓から単離されたＤＣサブセットのフローサイトメトリー解析。
【図１５】ＣＤ８３過剰発現は、デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）誘導性大腸炎からマウスを保護した。（ａ）は、ＤＳＳで処理された場合の、野生型マウスと比較したＣＤ８３遺伝子導入マウスにおけるより少ない体重減少を示す。（ｂ）ＤＳＳ誘導大腸炎を有するマウスの結腸切片のヘマトキシリン及びエオシン染色。（ｃ）野生型及びＣＤ８３遺伝子導入マウスの組織学スコア。（ｄ）野生型同腹子と比較した、ＤＳＳで処理されたＣＤ８３遺伝子導入マウスにおける血清サイトカインレベルのＥＬＩＳＡ。（ｅ）野生型同腹子と比較した、ＤＳＳで処理したＣＤ８３Ｔｇマウスからの結腸固有層中ＤＣにおけるＩＬ-１２ｐ４０遺伝子発現のｑＰＣＲ。
【図１６】図１６はＤＣにおけるＣＤ８３のノックアウトが大腸炎を悪化させたことを示す。（ａ）ＣＤ８３コンディショナルノックアウトストラテジーの図。（ｂ）脾臓におけるＴＣＲｂ＋リンパ球に関してゲーティングしたＦＡＣＳプロット。脾臓に、ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅマウスは４８．６％のＣＤ４陽性Ｔ細胞を有し、ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅマウスは４８．１％のＣＤ４陽性Ｔ細胞を有した。（ｃ）ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ（黒線）及びＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ（灰色線）マウスの脾臓ＤＣにおけるＣＤ８３の相対発現を表すヒストグラム。（ｄ）ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ及びＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-ＣｒｅマウスにおけるＤＳＳ大腸炎生存率。コンディショナルノックアウト動物は有意に低下した生存率を有した（ログランク検定、ｐ＝０．０１８６）。（ｅ）８日目の体重は、ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ同腹子と比較してＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅマウスにおいて有意に低かった。（ｆ）動物の肛門周囲の明らかな血（frank blood）の発生。ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅの１００％が７日目までに明らかな潜血（overt occult blood）を有した。ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ同腹子において明らかな血は観察されなかった。
【図１７】図１７は抗ヒトＣＤ８３抗体がＣＤ８３を発現する細胞に結合したことを示す。フローサイトメトリーによる定量化は、抗ＣＤ８３抗体（ａ）３５Ｇ１０、（ｂ）４０Ａ１１、（ｃ）５４ＡＤ１、（ｄ）５９Ｇ１０、（ｅ）７５Ａ１、及び（ｆ）７Ｃ７がヒトＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞（黒線）に特異的に結合するが、マウスＣＤ８３を発現する細胞（破線）には結合しないことを示す。（ｇ）抗ＣＤ８３抗体６０Ｂ１０はヒトＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に結合し、またマウスＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞との交差反応も見せた。親ＣＨＯ細胞株（中実灰色ヒストグラム）には結合は見られなかった。
【図１８】図１８は抗マウスＣＤ８３抗体がマウスＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に結合したことを示す。フローサイトメトリーによる定量化は、抗ＣＤ８３抗体（ａ）４２Ｃ６及び（ｂ）３９Ａ２は、マウスＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に特異的に結合したが（破線）、親ＣＨＯ細胞株には結合しなかった（中実灰色ヒストグラム）ことを示す。
【図１９】図１９は抗ＣＤ８３抗体が炎症促進性サイトカインの産生を有意に低減したことを示す。（ａ）ＥＬＩＳＡ解析は、アイソタイプコントロール抗体（ＩＳＯ）の使用と比較して、抗ＣＤ８３抗体６０Ｂ１０、３５Ｇ１０、４０Ａ１１又は７Ｃ７がｍＤＣからのＭＣＰ-１の産生を有意に低減したことを示した；*は値がアイソタイプコントロール処置と有意に異なることを示す。それぞれｐ＝０．０３０３、ｐ＝０．０３０９、ｐ＝０．０３６９、ｐ＝０．０２４７。５４Ｄ１、５９Ｇ１０、又は７５Ａ１抗体を与えられた細胞に有意な差異は見られなかった。（ｂ）マウス骨髄由来ＤＣ（ＢＭＤＣ）におけるＩＬ-１２ｐ４０発現の定量的ＰＣＲ解析は、抗ＣＤ８３抗体３９Ａ２又は４２Ｃ６が、アイソタイプコントロール抗体の使用と比較して、ＬＰＳ誘導性ＣＤ８３発現を有意に低減したことを示す。ＩＬ-１２ｐ４０発現をβアクチンに正規化した。各シンボルは独立マウスからの細胞を表す。*，ｐ＝０．０３７２；†，ｐ＝０．０４３８。
【図２０】図２０は抗ＣＤ８３抗体がＤＳＳ誘導大腸炎からマウスを保護したことを示す。抗ＣＤ８３抗体を与えられたマウスは、抗ｇＤコントロール抗体又はＤＳＳのみを与えられたマウスと比較して、有意に低減された組織学的スコアを有した：３９Ａ２、平均＝５．３、**はｐ＝０．００１１を示す；４２Ｃ６、平均＝５．５、†はｐ＝０．００１５を示す；６０Ｂ１０、平均＝５．４、*はｐ＝０．００５９を示す。
【００２２】
（発明の詳細な説明）
Ｉ．一般的技術
本願明細書中に記載又は引用される技術及び手順は、一般に十分に理解されるものであり、当業者によって従来の方法論を用いて一般的に利用されるものである。その例として、以下の文献に記載される方法論が広く利用されている。Sambrook等, Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3d edition (2001) Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.; Current Protocols in Molecular Biology (F.M. Ausubel,等 eds., (2003)); the series Methods in Enzymology (Academic Press, Inc.): PCR 2: A Practical Approach (M.J. MacPherson, B.D. Hames and G.R. Taylor eds. (1995)), Harlow and Lane, eds. (1988) Antibodies, A Laboratory Manual, and Animal Cell Culture (R.I. Freshney, ed. (1987));  Oligonucleotide Synthesis (M.J. Gait, ed., 1984); Methods in Molecular Biology, Humana Press; Cell Biology: A Laboratory Notebook (J.E. Cellis, ed., 1998) Academic Press; Animal Cell Culture (R.I. Freshney), ed., 1987); Introduction to Cell and Tissue Culture (J.P. Mather and P.E. Roberts, 1998) Plenum Press; Cell and Tissue Culture: Laboratory Procedures (A. Doyle, J.B. Griffiths, and D.G. Newell, eds., 1993-8) J. Wiley and Sons; Handbook of Experimental Immunology (D.M. Weir and C.C. Blackwell, eds.); Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells (J.M. Miller and M.P. Calos, eds., 1987); PCR: The Polymerase Chain Reaction, (Mullis等, eds., 1994); Current Protocols in Immunology (J.E. Coligan等, eds., 1991); Short Protocols in Molecular Biology (Wiley and Sons, 1999); Immunobiology (C.A. Janeway and P. Travers, 1997); Antibodies (P. Finch, 1997); Antibodies: A Practical Approach (D. Catty., ed., IRL Press, 1988-1989); Monoclonal Antibodies: A Practical Approach (P. Shepherd and C. Dean, eds., Oxford University Press, 2000); Using Antibodies: A Laboratory Manual (E. Harlow and D. Lane (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1999); The Antibodies (M. Zanetti and J. D. Capra, eds., Harwood Academic Publishers, 1995); and Cancer: Principles and Practice of Oncology (V.T. DeVita等, eds., J.B. Lippincott Company, 1993)。
【００２３】
ＩＩ．定義
「自己免疫性」なる用語は、抗体又はリンパ球等の免疫系要素が、分子、細胞、又はそれらを生産する臓器の組織を攻撃又は害するプロセスを意味する。「自己免疫性疾患」は、組織損傷等の損傷、又は病変形成が、少なくとも部分的には、自己免疫性プロセスの結果である疾患を意味する。例として、「自己免疫疾患」は、関節リウマチ、若年性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、ループス腎炎、潰瘍性大腸炎、ウェゲナー疾患（Wegener's disease）、炎症性腸疾患、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）、自己免疫性血小板減少症、多発性硬化症、乾癬、ＩｇＡ腎症、ＩｇＭ多発ニューロパチー、重症筋無力症、血管炎、糖尿病、レイノー症候群、シェーグレン症候群及び糸球体腎炎を含む。幾つかの実施態様では、自己免疫性疾患は、骨髄系細胞活性化（樹状細胞及びマクロファージ）を伴い、例えば多発性硬化症及び炎症性腸疾患等である。
【００２４】
「炎症性腸疾患」又は「ＩＢＤ」は、腸に炎症を起こす疾患の群を意味し、一般に、腹部疝痛及び疼痛、下痢、体重減少及び腸内出血を含む症状により明らかになる。ＩＢＤは潰瘍性大腸炎（ＵＣ）、クローン病、及び不確定大腸炎を含む。
【００２５】
「潰瘍性大腸炎」又は「ＵＣ」は、血性下痢によって特徴づけられる、大腸及び直腸の慢性、突発性、炎症性疾患である。潰瘍性大腸炎は、結腸粘膜における慢性炎症によって特徴づけられ、部位に従って分類できる：「直腸炎」は直腸のみを含み；「直腸Ｓ状結腸炎」直腸及びＳ状結腸に作用し；「左側結腸炎」は大腸の左側全体を包含し;また「全大腸炎」は結腸全体を炎症させる。
【００２６】
「限局性腸炎」とも称される「クローン病」は、慢性自己免疫疾患であり、胃腸管の何れかの部分に影響するが、最も一般的には回腸(小腸及び大腸が交わる領域)に生じる。潰瘍性大腸炎と比較して、クローン病は、腸壁の全層にわたって広がり、腸間膜並びに所属リンパ節に関わる慢性炎症によって特徴づけられる。小腸又は結腸が含まれるかどうかの関わらず、基本病理過程は同じである。
【００２７】
潰瘍性大腸炎及びクローン病は、９０％以上のケースにおいて、臨床的に、内視鏡的に、病理学的に、また血清学的に互いに区別されることができ；残りは不確定ＩＢＤと考えられる(Harrison's Principles of Internal medicine, 12th edition, p. 1271 (1991))。
【００２８】
「不確定大腸炎」は炎症性腸疾患状態を意味し、潰瘍性大腸炎及びクローン病の特徴と重複する。組織学が構築上変化を有する急性及び慢性炎症が結腸に限定されることを示すが、個体がクローン病又は潰瘍性大腸炎を有するかどうか明瞭に示さない場合に、診断が与えられる。
【００２９】
ここで使用される場合、「治療」なる用語は、臨床病理学の経過の間、治療されている個体又は細胞の自然の経過を変更するよう設計されている臨床的介入を意味する。治療の望ましい効果は、疾患進行率の低下、疾患状態の寛解又は緩和、及び緩解又は予後改善を含む。例えば、自己免疫疾患（炎症性腸疾患等）に伴う一又は複数の症状が軽減又は除去された場合に、個体は成功裏に「治療」されている。
【００３０】
ここで使用される場合、「防止」なる用語は、個体における疾患の発生又は再発に対する予防を与えることを含む。個体は、自己免疫疾患に罹り易い、感受性である、又は自己免疫疾患を展開する危険性があり得るが、まだ該疾患と診断されていない。
【００３１】
ここで使用される場合、自己免疫疾患を展開する危険性がある個体とは、ここに記載の治療方法の前に、検出可能な疾患又は疾患の症状を有し得、又は表示検出可能な疾患又は疾患の症状を有し得る。「危険性がある」とは、個体が、当技術分野で知られる、自己免疫疾患の発生と相関する測定可能なパラメーターである一又は複数のリスクファクターを有することを意味する。一又は複数のこれらのリスクファクターを有する個体は、一又は複数のこれらのリスクファクターを持たない個体と比べ、疾患を発生するより高い確率を有する。
【００３２】
「有効量」とは少なくとも、所望される治療的又は予防的結果を得るための、必要な用量及び期間での、有効な量を意味する。有効量は、一以上の投与で提供されることができる。
【００３３】
「治療上有効な量」は少なくとも、特定の疾患(例えば、自己免疫疾患)の測定可能な改善をもたらすのに必要な最小の濃度である。ここでの治療上有効な量は、患者の疾患状態、年齢、性別、及び体重、及び個体において所望する反応を誘発する抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の能力等の要因によって様々でありうる。治療上有効な量はまた、治療上有益な効果が、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の何れかの毒性又は有害な効果を上回る量である。「予防的に有効な量」とは、所望の予防結果を達成するための、必要な容量及び期間での、有効な量を意味する。必ずしもではないが典型的には、予防的用量は疾患の初期段階時又は前に被験体において使用されるため、予防上有効な量は、治療上有効な量より少なくなりうる。
【００３４】
「慢性」投与とは、急性投与とは対照的に、初期治療効果（活性）を長期間維持するための持続的な医薬の投与を意味する。「間欠」投与とは、中断無く継続的に成されるのではなく、本質的に周期的である治療を意味する。
【００３５】
ここで使用される場合、別の化合物又は組成物との「併用」投与は、同時投与及び／又は異なる時間での投与を含む。併用投与はまた、共製剤又は別個製剤としての投与を包含し、異なる投与頻度又は間隔、及び同じ投与経路又は異なる投与経路を使用することを含む。
【００３６】
治療又は防止の目的のための「個体」とは、哺乳類として分類される何れかの動物を意味し、ヒト、飼育及び家畜動物、及び動物園、スポーツ、又はペット動物、例えばイヌ、ウマ、ウサギ、ウシ、ブタ、ハムスター、スナネズミ、マウス、フェレット、ラット、ネコ等を含む。幾つかの実施態様では、個体はヒトである。
【００３７】
ここで使用される場合、「サイトカイン」なる用語は一般にタンパク質であって、細胞間媒介物質として別の細胞に作用する、又は該タンパク質を生産する細胞に作用するオートクリン作用を持つ一細胞集団によって放出されるタンパク質を意味する。かかるサイトカインの例は、リンホカイン、モノカイン；インターロイキン（「ＩＬｓ」）、例えばＩＬ-１、ＩＬ-１α、ＩＬ-２、ＩＬ-３、ＩＬ-４、ＩＬ-５、ＩＬ-６、ＩＬ-７、ＩＬ-８、ＩＬ-９、ＩＬ-１１、ＩＬ-１２、ＩＬ-１３、ＩＬ-１５、ＩＬ-１７Ａ-Ｆ、ＩＬ-１８からＩＬ-２９（ＩＬ-２３等）、ＩＬ-３１、ＰＲＯＬＥＵＫＩＮ（登録商標）ｒＩＬ-２を含む；腫瘍壊死因子、例えばＴＮＦ-α又はＴＮＦ-β、ＴＧＦ-ｂ１-３；及び白血病抑制因子（「ＬＩＦ」）、毛様体神経栄養因子（「ＣＮＴＦ」）、ＣＮＴＦ-様サイトカイン（「ＣＬＣ」）、カルジオトロフィン（「ＣＴ」）、及びＫｉｔリガンド（「ＫＬ」）を含む他のポリペプチド因子を含む。
【００３８】
ここで使用される場合、「ＣＤ８３」なる用語は、天然配列ＣＤ８３及び天然に生じるＣＤ８３の変異体を包含する。ＣＤ８３は、哺乳類（ヒトを含む）組織タイプ又は別の供給源から等の様々な供給源から単離され得、又は組換え及び／又は合成方法によって調製されうる。
【００３９】
ここで使用される場合、「抗ＣＤ８３アゴニスト抗体」なる用語は、細胞表面に発現されるＣＤ８３に結合し、細胞表面に発現されるＣＤ８３に結合した後ＣＤ８３のシグナル伝達を活性化する抗体を意味する。
【００４０】
「免疫グロブリン」（Ｉｇ）なる用語は、ここでの「抗体」と互換可能に使用される。ここでの「抗体」なる用語は、広義で使用され、具体的にはモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、少なくとも２つのインタクトな抗体から形成される多重特異性抗体(例えば、二重特異性抗体)、及び所望の生物学的活性を呈する限り抗体断片を含む。
【００４１】
基本的な４鎖抗体ユニットは、２つの同一な軽（Ｌ）鎖及び２つの同一な重（Ｈ）鎖から成るヘテロ四量体糖タンパク質である。ＶＨ及びＶＬの対形成は、単抗原結合部位を形成する。異なるクラスの抗体の構造及び特性に関しては、例えばBasic and Clinical Immunology, 8th Ed., Daniel P. Stites, Abba I. Terr and Tristram G. Parslow (eds.), Appleton & Lange, Norwalk, CT, 1994, page 71 and Chapter 6を参照のこと。
【００４２】
何れかの脊椎動物種からのＬ鎖は、それらの定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、カッパ(「κ」)及びラムダ(「λ」)と呼ばれる２つの明確に異なるタイプに割り当てられることができる。それらの重鎖の定常ドメイン（ＣＨ）のアミノ酸配列により、免疫グロブリンは異なるクラス又はアイソタイプに割り当てられることができる。５つのクラスの免疫グロブリンがあり：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭ、それぞれアルファ(「α」)、デルタ(「δ」)、イプシロン(「ε」)、ガンマ(「γ」)及びμ(「μ」)と命名される重鎖を持つ。γ及びαクラスは、ＣＨ配列及び機能における比較的小さい差に基づいて、サブクラス（アイソタイプ）に更に分けられ、例えばヒトは以下のサブクラスを発現する：ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１及びＩｇＡ２。サブユニット構造及び免疫グロブリンの異なるクラスの三次元構造はよく知られ、例えばAbbas等, Cellular and Molecular Immunology, 4th ed. (W.B. Saunders Co., 2000)に概説される。
【００４３】
「天然抗体」は通常、２つの同一な軽（Ｌ）鎖及び２つの同一な重（Ｈ）鎖から成る、約１５０，０００ダルトンのヘテロ四量体糖タンパク質である。各軽鎖は一つの共有結合性ジスルフィド結合によって重鎖に結合され、一方、異なる免疫グロブリンアイソタイプの重鎖の中でのジスルフィド結合の数は様々である。各重鎖及び軽鎖はまた、規則的間隔の鎖内ジスルフィド結合を有する。各重鎖は一端に可変ドメイン（ＶＨ）を有し、多くの定常ドメインが続く。各軽鎖は、一端に可変ドメイン（ＶＬ）を、他端に定常ドメインを有し；軽鎖の定常ドメインは重鎖の第一定常ドメインと整列され、軽鎖可変ドメインは、重鎖の可変ドメインと整列される。特定のアミノ酸残基が、軽鎖及び重鎖可変ドメイン間で界面を形成すると考えられている。
【００４４】
「単離された」抗体は、その産生環境（例えば天然又は組換え）から同定され、分けられ及び／又は回収されたものである。好ましくは、単離されたポリペプチドは、その産生環境からの他の全ての混入物要素との関連がない。組換え形質移入細胞から生じるもの等、産生環境からの混入物要素は、抗体についての研究、診断又は治療使用を典型的には干渉しうる物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質性又は非タンパク質性溶質を含み得る。好ましい実施態様では、ポリペプチドは、（１）ローリ法で測定した場合９５重量％を越える、幾つかの実施態様では９９重量％を越えるまで、(２)スピニングカップシークエネーターを使用することにより、少なくとも１５残基のＮ末端あるいは内部アミノ酸配列を得るのに充分なほど、あるいは、(３)クーマシーブルーあるいは好ましくは銀染色を用いた非還元あるいは還元条件下でのＳＤＳ-ＰＡＧＥにより均一になるまで精製される。単離された抗体には、抗体の自然環境の少なくとも１つの成分が存在しないため、組換えＴ細胞内のインサイツの抗体が含まれる。しかしながら、通常は、単離されたポリペプチド又は抗体は少なくとも１つの精製工程により調製される。
【００４５】
抗体の「可変領域」又は「可変ドメイン」は、抗体の重鎖又は軽鎖のアミノ末端ドメインを意味する。重鎖及び軽鎖の可変ドメインは、それぞれ「ＶＨ」及び「ＶＬ」と称されうる。これらのドメインは一般に、（同じクラスの他の抗体と比べて）抗体の最も可変な部分であり、抗原結合部位を有する。
【００４６】
「可変」なる用語は、可変ドメインの特定セグメントが抗体間で配列について大規模に異なる事実を意味する。Ｖドメインは抗原結合を媒介し、特定の抗体のその特定の抗原に対する特異性を決定する。しかしながら、可変性は可変ドメインの全スパンにわたって均一に分布するのではない。代わりに、軽鎖及び重鎖可変ドメイン双方にある、超可変領域（ＨＶＲ）と呼ばれる３つのセグメントに集中される。可変ドメインのより高く保存された部分は、フレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれる。天然の重鎖及び軽鎖の可変ドメインは各々、βシート構造を連結する（幾つかの場合にはその一部を形成する）ループを形成する３つのＨＶＲによって連結される、主としてβシート構造をとる４つのＦＲ領域を有する。各鎖のＨＶＲはＦＲ領域により近接して保持され、他の鎖からのＨＶＲと共に、抗体の抗原結合部位の形成に寄与している（Kabat等, Sequences of Immunological Interest, Fifth Edition, National Institute of Health, Bethesda, MD (1991)を参照）。定常ドメインは抗体の抗原への結合に直接関与はしないが、抗体依存性細胞傷害性等、様々なエフェクター機能を示す。
【００４７】
ここで使用される場合、「モノクローナル抗体」なる用語は、実質的に均一な抗体の集団から得られた抗体を意味し、すなわち、集団を構成する個々の抗体は、少量で存在しうる自然に生じる可能な変異及び／又は翻訳後修飾（例えば、異性化、アミド化）を除いて同一である。モノクローナル抗体は高く特異的であり、一つの抗原部位に対している。異なる決定基(エピトープ)に対する異なる抗体を典型的には含むポリクローナル抗体と比べて、各モノクローナル抗体は、抗原上の単一の決定基に向けられる。その特異性に加えて、モノクローナル抗体は、他の免疫グロブリンによって汚染されていないハイブリドーマ培養から合成される点で有利である。「モノクローナル」との修飾語句は、実質的に均一な抗体集団から得られているという抗体の特徴を示し、抗体を何か特定の方法で生産しなければならないことを意味するものではない。例えば、本発明に従って使用されるモノクローナル抗体は様々な技術によって作成され得、例えば、ハイブリドーマ法(例えば、Kohler and Milstein., Nature, 256:495-97 (1975); Hongo等, Hybridoma, 14 (3):253-260 (1995), Harlow等, Antibodies: A Laboratory Manual, (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2d ed. 1988); Hammerling等, in: Monoclonal Antibodies and T-Cell Hybridomas 563-681 (Elsevier, N.Y., 1981))、組換えＤＮＡ法(例えば、米国特許第4,816,567を参照)、ファージディスプレイ技術(例えば、Clackson等, Nature, 352:624-628 (1991); Marks等, J. Mol. Biol. 222:581-597 (1992); Sidhu等, J. Mol. Biol. 338(2): 299-310 (2004); Lee等, J. Mol. Biol. 340(5):1073-1093 (2004); Fellouse, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 101(34):12467-472 (2004); and Lee等, J. Immunol. Methods 284(1-2):119-132 (2004)を参照、及びヒト免疫グロブリン配列をコードするヒト免疫グロブリン遺伝子座又は遺伝子の一部又は全てを有する動物において、ヒト又はヒト様抗体を生産する技術(例えば、ＷＯ１９９８／２４８９３；ＷＯ１９９６／３４０９６；ＷＯ１９９６／３３７３５；ＷＯ１９９１／１０７４１; Jakobovits等, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 90:2551 (1993); Jakobovits等, Nature 362:255-258 (1993); Bruggemann等, Year in Immunol. 7:33 (1993);米国特許第５，５４５，８０７；同第５，５４５，８０６号；同第５，５６９，８２５号；同第５，６２５，１２６号；同第５，６３３，４２５号；及び同第５，６６１，０１６号; Marks等, Bio/Technology 10:779-783 (1992); Lonberg等, Nature 368:856-859 (1994); Morrison, Nature 368:812-813 (1994); Fishwild等, Nature Biotechnol. 14:845-851 (1996); Neuberger, Nature Biotechnol. 14:826 (1996); and Lonberg and Huszar, Intern. Rev. Immunol. 13:65-93 (1995)を参照）を含む。
【００４８】
「ネイキッド抗体」なる用語は、細胞障害性部分又は放射性標識にコンジュゲートされていない抗体を指す。
【００４９】
「完全長抗体」、「インタクト抗体」又は「全抗体」なる用語は交換可能に用いられ、抗体断片とは対照的に、実質的にインタクトな形態の抗体を指す。特に全抗体には、Ｆｃ領域を含む重鎖および軽鎖を有するものが含まれる。定常ドメインは、天然配列定常ドメイン(例えばヒトの天然配列定常ドメイン)又はそのアミノ酸配列変異体であってもよい。場合によって、インタクトな抗体は一又は複数のエフェクター機能を有してもよい。
【００５０】
「抗体断片」は、無傷の抗体の一部、好ましくは無傷の抗体の抗原結合又は可変領域を含む。抗体断片の例は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２及びＦｖ断片；ダイアボディ；直鎖状抗体（米国特許第５６４１８７０号、実施例２；Zapata等, Protein Eng. 8(10):1057-1062 (1995)を参照）；抗体断片から形成された単鎖抗体分子及び多重特異性抗体を含む。
【００５１】
抗体のパパイン消化は、「Ｆａｂ」断片と呼ばれる２つの同一の抗体結合断片と、容易に結晶化する能力を反映して命名された残留「Ｆｃ」断片を産生する。Ｆａｂ断片は全長Ｌ鎖とＨ鎖の可変領域ドメイン(ＶＨ)、及び一つの重鎖の第一定常ドメイン(ＣＨ１)からなる。各Ｆａｂ断片は抗原結合性に関して一価である、すなわち単一の抗原-結合部位を有する。抗体のペプシン処理により、単一の大きなＦ(ａｂ')２断片が生じ、これは２価の抗原結合部位を持つ２つのジスルフィド結合されたＦａｂ断片にほぼ対応し、抗原を交差結合させることができるものである。Ｆａｂ'断片は、抗体ヒンジ領域からの一又は複数のシステインを含むＣＨ１ドメインのカルボキシ末端に幾つかの残基が付加されていることによりＦａｂ断片と相違する。Ｆａｂ'-ＳＨは、ここでは定常ドメインのシステイン残基(類)が遊離のチオール基を持つＦａｂ'を表す。Ｆ(ａｂ')２抗体断片は、通常はＦａｂ'断片の対として生成され、それらの間にヒンジシステインを有する。抗体断片の他の化学的結合も知られている。
【００５２】
Ｆｃ断片はジスルフィドにより一緒に保持されている双方のＨ鎖のカルボキシ末端部位を含む。抗体のエフェクター機能は、Ｆｃ領域の配列により決定され、その領域は、所定の型の細胞に見出されるＦｃレセプター(ＦｃＲ)によって認識される部位である。
【００５３】
「Ｆｖ」は、完全な抗原-認識及び-結合部位を含む最小の抗体断片である。この断片は、密接に非共有結合した１本の重鎖と１本の軽鎖の可変領域の二量体からなる。これら２つのドメインの折り畳みから、抗原結合のためのアミノ酸残基に寄与し、抗体に対する抗原結合特異性を付与する６つの高頻度可変ループ(Ｈ及びＬ鎖から、それぞれ３つのループ)が生じる。しかしながら、単一の可変ドメイン(又は抗原に特異的な３つのＣＤＲのみを含んでなるＦｖの半分)でさえ、結合部位全体よりは低い親和性であるが、抗原を認識し結合する能力を持つ。
【００５４】
「ｓＦｖ」又は「ｓｃＦｖ」とも略称される「単鎖Ｆｖ」は、単一のポリペプチド鎖内に結合したＶＨ及びＶＬ抗体ドメインを含む抗体断片である。好ましくは、ｓＦｖポリペプチドはＶＨ及びＶＬドメイン間にポリペプチドリンカーをさらに含み、それはｓＦＶが抗原結合に望まれる構造を形成するのを可能にする。ｓＦｖの概説については、Pluckthun in The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg及びMoore編, Springer-Verlag, New York, pp. 269-315 (1994)；Borrebaeck 1995, 以下を参照のこと。
【００５５】
本発明の抗体の「機能的断片」は、一般に、ＦｃＲ結合能を保持する抗体のＦｃ領域又は抗体の抗原結合領域ないし可変領域を含む、インタクト抗体の一部を含む。抗体断片の例には、線形抗体、単鎖抗体分子、及び抗体断片から形成される多特異性抗体が含まれる。
【００５６】
「ダイアボディ」なる用語は、Ｖドメインの鎖内ではなく鎖間対形成が得られるように、ＶＨ及びＶＬ間に短いリンカー（約５−１０残基）を用いてｓＦｖ断片（先行段落を参照）を組み立てることによって調製される小抗体断片を意味し、これによって二価断片、すなわち２つの抗原結合部位を有する断片が得られる。二重特異性ダイアボディは、２つの「交差」ｓＦｖ断片のヘテロ二量体であり、２つの抗体のＶＨ及びＶＬドメインは、異なるポリペプチド鎖に存在する。ダイアボディは、例えば、ＥＰ４０４，０９７；ＷＯ９３／１１１６１; Hollinger等, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 90:6444-48 (1993)により詳細に記載されている。
【００５７】
ここでのモノクローナル抗体は特に、重鎖及び／又は軽鎖の一部が、特定の種に由来する又は特定の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体における該当配列と同一又は相同であり、鎖（一又は複数）の残りは、別の種由来する又は別の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体における該当配列と同一又は相同である「キメラ」抗体、並びに所望の生物学的活性を示す限りかかる抗体の断片を含む（米国特許第４，８１６，５６７号; Morrison等, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA, 81:6851-55 (1984)）。ここで興味のキメラ抗体は、ＰＲＩＭＡＴＩＺＥＤ（登録商標）抗体を含み、抗体の抗原結合領域は、例えば、マカクザルを興味の抗原で免疫化することによって生産された抗体に由来する。ここで使用される場合、「ヒト化抗体」は「キメラ抗体」のサブセットとして使用される。
【００５８】
非ヒト(例えばマウス)の抗体の「ヒト化」型は、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含むキメラ抗体である。一実施態様では、ヒト化抗体は、レシピエントのＨＶＲからの残基が、所望の特異性、親和性、及び／又は能力を有するマウス、ラット、ウサギ又は非ヒト霊長類等の非ヒト種(ドナー抗体)のＨＶＲからの残基によって置換されたヒト免疫グロブリン(レシピエント抗体)である。幾つかの場合では、ヒト免疫グロブリンのＦＲ残基は、対応する非ヒト残基によって置換される。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、もしくはドナー抗体にも見出されない残基を含んでいてもよい。これらの修飾は、結合親和性等の抗体能力をさらに洗練するために成されてもよい。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいは実質的に全ての超可変ループが非ヒト免疫グロブリン配列のものに該当し、全てあるいは実質的に全てのＦＲ領域がヒト免疫グロブリン配列のものである、実質的に全ての少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメインを有するであろうが、ＦＲ領域は、抗原親和性、異性化、免疫原性等の抗体能力を改善する一又は複数のそれぞれのＦＲ残基置換を含んでもよい。ＦＲにおけるこれらのアミノ酸置換の数は典型的には、Ｈ鎖で多くても６、Ｌ鎖で多くても３である。ヒト化抗体は場合によっては、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部を有し、典型的にはヒト免疫グロブリンのものである。更なる詳細については、例えば、Jones等, Nature 321:522-525 (1986); Riechmann等, Nature 332:323-329 (1988); and Presta, Curr. Op. Struct. Biol. 2:593-596 (1992)を参照のこと。例えば、Vaswani and Hamilton, Ann. Allergy, Asthma & Immunol. 1:105-115 (1998); Harris, Biochem. Soc. Transactions 23:1035-1038 (1995); Hurle and Gross, Curr. Op. Biotech. 5:428-433 (1994); 及び米国特許第６，９８２，３２１号及び同第７，０８７，４０９号も参照のこと。
【００５９】
「ヒト抗体」は、ヒトによって産生された抗体の配列に相当するアミノ酸配列を有するもの、及び／又はここに開示されるヒト抗体を生産する技術の何れかを使用して生産されたものである。ヒト抗体のこの定義は得に、非ヒト抗原結合残基を含んでなるヒト化抗体を除く。ヒト抗体は、当技術分野で知られる様々な技術を使用して生産されることが可能であり、ファージディスプレイライブリを含む。Hoogenboom and Winter, J. Mol. Biol., 227:381 (1991); Marks等, J. Mol. Biol., 222:581 (1991)。ヒトモノクローナル抗体の調製のために入手可能なものはCole等, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, p. 77 (1985); Boerner等, J. Immunol., 147(1):86-95 (1991)に記載の方法もある。van Dijk and van de Winkel, Curr. Opin. Pharmacol. 5:368-74 (2001)も参照のこと。ヒト抗体は、抗原チャレンジに反応してこのような抗体を産生するよう改変されているが、その内因性遺伝子座は無能になっているトランスジェニック動物、例えば免疫化ゼノマウスに抗原を投与することによって調製されることが可能である(例えば、ＸＥＮＯＭＯＵＳＥＴＭ技術に関しては米国特許第６，０７５，１８１号及び同第６，１５０，５８４号を参照）。また、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術によって生成されるヒト抗体に関しては、例えばLi等, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA, 103:3557-3562 (2006)を参照のこと。
【００６０】
ここで使用される「高頻度可変領域」、「ＨＶＲ」又は「ＨＶ」なる用語は、配列において高頻度可変であり、及び／又は構造的に定まったループを形成する抗体可変ドメインの領域を意味する。一般に、抗体は６つの高頻度可変領域を含み；ＶＨに３つ(Ｈ１、Ｈ２、Ｈ３)、ＶＬに３つ(Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３)である。天然の抗体では、Ｈ３及びＬ３は６つの高頻度可変領域のうちで最も高い多様性を示す、特にＨ３は抗体に良好な特異性を与える際に特有の役割を果たすように思われる。例としてXu等 (2000) Immunity 13:37-45；Methods in Molecular Biology 248:1-25 (Lo, ed., Human Press, Totowa, NJ)のJohnson and Wu (2003)を参照。実際、重鎖のみからなる天然に生じるラクダ科の抗体は機能的であり、軽鎖が無い状態で安定である。例としてHamers-Casterman等, Nature 363:446-448 (1993)及びSheriff等, Nature Struct. Biol. 3:733-736 (1996)参照のこと。
【００６１】
多数のＨＶＲの描写が使用され、ここに含まれる。カバット相補性決定領域(ＣＤＲ)であるＨＶＲは配列変化に基づいており、最も一般的に使用されている(上掲のKabat等)。Chothiaは、代わりに構造的ループの位置に言及している(Chothia and Lesk J. Mol. Biol. 196:901-917 (1987))。ＡｂＭ ＨＶＲは、カバットＣＤＲとChothia構造的ループの間の妥協を表し、Oxford MolecularのＡｂＭ抗体モデリングソフトウェアにより使用される。「接触」ＨＶＲは、利用できる複合体結晶構造の分析に基づく。これらＨＶＲの各々からの残基を以下に示す。
2015511931.tif 000003
【００６２】
ＨＶＲは、次のような「拡大ＨＶＲ」を含んでもよく、即ち、ＶＬの２４−３６又は２４−３４(Ｌ１)、４６−５６又は５０−５６(Ｌ２)及び８９−９７又は８９−９６(Ｌ３)と、ＶＨの２６−３５(Ｈ１)、５０−６５又は４９−６５（好ましい実施態様）(Ｈ２)及び９３−１０２、９４−１０２、又は９５−１０２(Ｈ３)である。可変ドメイン残基には、これら拡大ＨＶＲの各々を規定するために、Kabat等, 上掲に従って番号を付した。
【００６３】
「フレームワーク」又は「ＦＲ」残基は、ここで定義するようにＨＶＲ残基以外の可変ドメイン残基である。
【００６４】
「カバットにおける可変ドメイン残基番号付け」又は「カバットにおけるアミノ酸位置番号付け」なるフレーズ及びその変形は、Kabatら 上掲における抗体の編集の重鎖可変ドメイン又は軽鎖可変ドメインについて使用される番号付けシステムを意味する。この番号付けシステムを使用すると、実際の線形アミノ酸配列は、ＦＲ又はＨＶＲの可変ドメインを短くする、又はそこに挿入される、対応のより少ない又は付加的なアミノ酸を含有可能である。例えば、重鎖可変ドメインは、Ｈ２の残基５２の後に単一のアミノ酸挿入物(カバットに従い残基５２ａ)、及び重鎖ＦＲ残基８２の後に挿入残基(例えば、カバットに従い残基８２ａ、８２ｂ、及び８２ｃ等)を含む。残基のカバット番号付けは、「標準的な」カバットナンバー配列を有する抗体配列の相同な領域で配列させることにより、付与された抗体について決定できる。
【００６５】
Ｋａｂａｔ番号付けシステムは一般に、可変ドメインにおける残基を指す時に使用される（およそ軽鎖の残基１−１０７及び重鎖の残基１−１１３）(例えば、Kabat等, Sequences of Immunological Interest. 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, Md. (1991))。「ＥＵ番号付けシステム」又は「ＥＵインデックス」は一般に、免疫グロブリン重鎖定常領域における残基を指す時に使用される。(例えば上掲のＫａｂａｔ等において報告されたＥＵインデックス)。「カバットにおけるＥＵインデックス」はヒトＩｇＧ１ ＥＵ抗体の残基番号付けを指す。本明細書中で特に明記しない限り、抗体の可変ドメイン内の残基番号の参照は、カバット番号付けシステムによって番号付けする残基を意味する。本明細書中で特に明記しない限り、抗体の定常ドメイン内の残基番号の参照は、ＥＵ番号付けシステムによる残基番号付けを意味する（例えばＥＵ番号付けに関しては米国仮出願第６０／６４０，３２３、図を参照のこと）。
【００６６】
ここで使用される場合、「アクセプターヒトフレームワーク」は、ヒト免疫グロブリンフレームワーク又はヒトコンセンサスフレームワークから得られるＶＬ又はＶＨフレームワークのアミノ酸配列を含んでなるフレームワークである。ヒト免疫グロブリンフレームワーク又はヒトコンセンサスフレームワーク「から得られる」アクセプターヒトフレームワークは、その同じアミノ酸配列を含み得、又は既存のアミノ酸変化を含みうる。幾つかの実施態様では、既存のアミノ酸変化の数は１０以下、９以下、８以下、７以下、６以下、５以下、４以下、３以下又は２以下である。既存のアミノ酸変化がＶＨ中に存在する場合、好ましいそれらの変化は位置７１Ｈ、７３Ｈ及び７８Ｈの内、３つ、２つ又は１つのみで生じ；例えばそれらの位置でのアミノ酸残基は７１Ａ、７３Ｔ及び／又は７８Ａであり得る。一実施態様では、ＶＬアクセプターヒトフレームワークは、ＶＬヒト免疫グロブリンフレームワーク配列又はヒトコンセンサスフレームワーク配列と配列が同一である。
【００６７】
「ヒトコンセンサスフレームワーク」は、ヒト免疫グロブリンＶＬ又はＶＨフレームワーク配列の選別において最も共通して生じるアミノ酸残基を表すフレームワークである。一般に、ヒト免疫グロブリンＶＬ又はＶＨ配列の選別は、可変ドメイン配列のサブグループから行う。一般に、配列のサブグループは、Kabat等, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)に記載のサブグループである。例は、ＶＬについては、サブグループが上掲のKabat等のサブグループカッパＩ、カッパＩＩ、カッパＩＩＩ又はカッパＩＶでありうることを含む。更に、ＶＨについては、サブグループは、上掲のKabat等のサブグループＩ、サブグループＩＩ、又はサブグループＩＩＩでありうる。
【００６８】
「ＶＨサブグループＩＩＩコンセンサスフレームワーク」は、上掲のKabat等の可変重鎖サブグループＩＩＩのアミノ酸配列から得られたコンセンサス配列を有する。
【００６９】
「ＶＬサブグループＩコンセンサスフレームワーク」は、上掲のKabat等の可変軽鎖カッパサブグループＩのアミノ酸配列から得られたコンセンサス配列を有する。
【００７０】
特定の位置、例えばＦｃ領域等での「アミノ酸修飾」は、特定残基の置換又は欠失、又は特定残基に近接する少なくとも一つのアミノ酸残基の挿入を意味する。特定残基に「近接した」挿入とは、それの一又は二残基内での挿入を意味する。挿入は、特定残基のＮ末端又はＣ末端でありうる。ここでの好ましいアミノ酸修飾は置換である。
【００７１】
「親和性成熟」抗体とは、その改変を有していない親抗体と比較して、抗原に対する抗体の親和性に改良を生じせしめる、その一又は複数のＨＶＲにおいて一又は複数の改変を持つものである。一実施態様では、親和成熟抗体は、標的抗原に対してナノモル又はピコモルの親和性を有する。親和成熟抗体は、当該分野において知られているある手順を用いて生産されてよい。例えば、Marks等, Bio/Technology, 10：779-783(1992)は、ＶＨ及びＶＬドメインシャッフリングによる親和成熟について記載している。ＨＶＲ及び／又はフレームワーク残基のランダム突然変異誘導は、例としてBarbas等, Proc Nat Acad. Sci, USA 91：3809-3813(1994)；Schier等, Gene, 169：147-155(1995)；Yelton等, J. Immunol.155：1994-2004(1995)；Jackson等, J. Immunol.154(7)：3310-9(1995)；及びHawkins等, J. Mol. Biol.226：889-896(1992)に記載されている。
【００７２】
ここで使用される場合、「に特異的に結合する」又は「に特異的である」なる用語は、標的及び抗体間の結合等、測定可能で再現可能な相互作用を意味し、生体分子を含む分子の不均一集団の存在において標的の存在を決定する。例えば、標的（エピトープであり得る）に特異的に結合する抗体は、他の標的に結合するより、より大きい親和性、アビディティで、より早く、及び／又はより長い時間この標的に結合する抗体である。一実施態様では、無関係の標的への抗体の結合の程度は、例えばラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）による測定で、標的に対する抗体の結合の約１０％未満である。ある実施態様では、標的に特異的に結合する抗体は、≦１μＭ、≦１００ｎＭ、≦１０ｎＭ、≦１ｎＭ、又は≦０．１ｎＭの解離定数（Ｋｄ）を有する。ある実施態様では、抗体は、異なる種のタンパク質の間で保存されているタンパク質のエピトープに特異的に結合する。別の実施態様では、特異的結合は、必ずしもではないが、独占結合を含む。
【００７３】
「Ｆｃ領域」なる用語は、天然配列Ｆｃ領域及び変異形Ｆｃ領域を含む、免疫グロブリン重鎖のＣ末端領域を定義するために使用される。免疫グロブリン重鎖のＦｃ領域の境界は変化するかも知れないが、通常、ヒトＩｇＧ重鎖Ｆｃ領域はＣｙｓ２２６の位置又はＰｒｏ２３０からの位置のアミノ酸残基からＦｃ領域のカルボキシル末端まで伸長すると定義される。Ｆｃ領域のＣ末端リジン(ＥＵ番号付けシステムによれば残基４４７)は、例えば、抗体の産生又は精製中に、又は抗体の重鎖をコードする核酸を組み換え遺伝子操作することによって取り除かれてもよい。したがって、インタクト抗体の組成物は、すべてのＫ４４７残基が除去された抗体群、Ｋ４４７残基が除去されていない抗体群、及びＫ４４７残基を有する抗体と有さない抗体の混合を含む抗体群を含みうる。本発明の抗体における使用に関して適切な天然配列Ｆｃ領域は、ヒトＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３及びＩｇＧ４を含む。
【００７４】
「天然配列のＦｃ領域」は、天然に見出されるＦｃ領域のアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列を包含する。天然配列のヒトＦｃ領域は、天然配列のヒトＩｇＧ１Ｆｃ領域(非Ａ-及びＡ-アロタイプ)；天然配列のヒトＩｇＧ２Ｆｃ領域；天然配列のヒトＩｇＧ３Ｆｃ領域；及び天然配列のヒトＩｇＧ４Ｆｃ領域；並びに、これらの自然に生じる変異体が含まれる。
【００７５】
「変異体Ｆｃ領域」は、少なくとも１つのアミノ酸修飾、好ましくは一又は複数のアミノ酸置換により、天然配列のＦｃ領域とは異なるアミノ酸配列を包含するものである。好ましくは、変異体Ｆｃ領域は、天然配列のＦｃ領域もしくは親ポリペプチドのＦｃ領域と比較した場合、少なくとも１つのアミノ酸置換、例えば、天然配列のＦｃ領域又は親のポリペプチドのＦＣ領域におよそ１からおよそ１０のアミノ酸置換、好ましくはおよそ１からおよそ５のアミノ酸置換を有する。本明細書中の変異体Ｆｃ領域は、好ましくは、天然配列のＦｃ領域及び／又は親ポリペプチドのＦｃ領域と、少なくともおよそ８０％の同一性を有するか、最も好ましくは少なくともおよそ９０％の配列同一性を、より好ましくは少なくともおよそ９５％の配列又はそれ以上の同一性を有するものであろう。
【００７６】
「結合親和性」は、一般に、分子(例えば抗体)の単一の結合部位とその結合パートナー(例えば抗原)との間の非共有相互作用の強度総計を意味する。特に示さない限り、ここで使用される場合、「結合親和性」は、結合対のメンバー(例えば、抗体と抗原)間の１：１相互作用を表す、固有の結合親和性を表す。分子ＸのそのパートナーＹに対する親和性は、一般的に解離定数(「Ｋｄ」、下を参照)により表すことができる。親和性は、ここに開示されたものを含む、当該技術で公知の一般的方法により測定することができる。低-親和性抗体は、一般的に抗原にゆっくりと結合し、容易に解離する傾向にあるが、高-親和性抗体は、一般的により素早く抗原に結合し、長時間、結合を持続している傾向にある。結合親和性を測定する様々な方法が当該技術で公知であり、そのいずれかを本発明の目的に使用することができる。結合親和性を測定するための、特定の例証及び例示的実施態様を以下に記載する。
【００７７】
一実施態様において、この発明において、「Ｋｄ」又は「Ｋｄ値」は、以下のアッセイに記載するように、関心ある抗体のＦａｂバージョンと、その抗原とを用いて実施される、放射標識抗原結合アッセイ(ＲＩＡ)により測定される。抗原に対する、Ｆａｂの溶液-結合親和性は、標識されていない抗原の滴定シリーズの存在下、最小濃度の(１２５Ｉ)-標識された抗原を用いてＦａｂを平衡化させ、ついで抗Ｆａｂ抗体コーティングプレート、結合抗体を捕捉することにより測定される(例えば、Chenら, J. Mol. Biol., 293:865-881(1999)を参照)。アッセイについての条件を確立するために、マイクロタイタープレート(DYNEX Technologies, Inc., Chantilly, VA)を、５０ｍＭの炭酸ナトリウム(ｐＨ９．６)に５μｇ／ｍｌの捕捉抗Ｆａｂ抗体(Cappel Labs, Cochranville, PA)が入ったもので、一晩コーティングし、続いて、室温(約２３℃)で２〜５時間、ＰＢＳに２％(ｗ／ｖ)のウシ血清アルブミンが入ったものでブロックする。非吸着プレート(Nunc #269620, Nalge Nunc International , Rochester, NY)において、１００ｐＭ又は２６ｐＭの［１２５Ｉ］-抗原を、関心あるＦａｂの連続希釈液と混合する(例えば、抗ＶＥＧＦ抗体、Ｆａｂ-１２の評価と一致、Prestaら, Cancer Res., 57:4593-4599(1997))。ついで、関心あるＦａｂを一晩インキュベートするが；インキュベートは、確実に平行に達するように、長時間(例えば、約６５時間)続けることができる。その後、混合物を、室温でインキュベート(例えば１時間)するために捕捉プレートに移す。ついで、溶液を除去し、ＰＢＳに０．１％のトゥイーン-２０ＴＭ界面活性剤が入ったもので、８回洗浄する。プレートを乾燥させた時に、１５０μｌ／ウェルの発光体(scintillant)(MICROSCINT-20ＴＭ; Packard)を添加し、プレートをTOPCOUNTＴＭガンマカウンター(Packard)で１０分計測する。最大架橋２０％未満が付与される各Ｆａｂの濃度を、競合結合アッセイを使用して選択する。
【００７８】
他の実施態様に従い、Ｋｄは、〜１０反応単位(ＲＵ)で、固定化抗原ＣＭ５チップを用い、２５℃にて、BIACORE(登録商標)-2000又はBIACORE(登録商標)-3000機器(BIAcore, Inc., Piscataway, NJ)を使用する、表面プラズモン共鳴法により測定される。簡単には、カルボキシメチル化されたデキストランバイオセンサーチップ(CM5, BIAcore Inc.)は、供給者の使用説明書に従い、Ｎ-エチル-Ｎ'-(３-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドヒドロクロリド(ＥＤＣ)及びＮ-ヒドロキシスクシンイミド(ＮＨＳ)で活性化される。抗原は、１０ｍＭの酢酸ナトリウム、ｐＨ４．８を用いて、カップリングタンパク質の反応単位(ＲＵ)が約１０になるように、５μｌ／分の流速で注射する前に、５μｇ／ｍｌ(〜０．２μＭ)に希釈される。抗原を注射した後、１Ｍのエタノールアミンを注射し、未反応基をブロックする。動力学測定のために、２倍に連続希釈されたＦａｂ(０．７８ｎＭ〜５００ｎＭ)を、約２５μｌ／分の流速で、２５℃にて、ＰＢＳに０．０５％のトゥイーン２０ＴＭ界面活性剤が入ったもの(ＰＢＳＴ)に注射する。会合速度(ｋｏｎ)と解離速度(ｋｏｆｆ)を、会合と解離のセンサーグラムを同時に適合することにより、単一の１対１Langmuir結合モデル(BIAcore(登録商標)Evaluation Software version 3.2)を使用して算出する。平衡解離定数(Ｋｄ)をｋｏｆｆ／ｋｏｎの比率として算出する。例えば、Chenら,J. Mol. Biol., 293:865-881(1999)を参照。オン速度(on-rate)が、上述した表面プラズモン共鳴アッセイにより、１０６Ｍ−１ｓ−１を超過しているならば、オン速度は、分光計、例えばストップフローが具備された分光光度計(Aviv Instruments)、又は8000シリーズのSLM-AMINCOＴＭ分光光度計(ThermoSpectronic, Madison, WI)で攪拌キュベットを具備するもので測定される場合、増加濃度の抗原下、ＰＢＳに２０ｎＭの抗抗原抗体(Ｆａｂ形)が入ったものを２５℃で、蛍光発光強度(励起＝２９５ｎｍ；発光＝３４０ｎｍ、１６ｎｍの帯域通過)における増加又は減少を測定する蛍光クエンチング技術を使用して測定可能である。
【００７９】
この発明の「オン速度」、「解離の速度」、「解離速度」又は「ｋｏｎ」は、BIACORE(登録商標)-2000又はBIACORE(登録商標)-3000システム(BIAcore, Inc., Piscataway, NJ)を使用し、上述にて記載したように測定することができる。
【００８０】
ここの抗体をコードする「単離された」核酸分子は、それが産生された環境において通常伴う少なくとも一つの混入核酸分子から同定され分離された核酸分子である。好ましくは、単離された核酸は、産生環境に伴う全ての要素と無関連である。ここのポリペプチド及び抗体をコードする単離された核酸分子は、自然において見い出される形態又は設定以外の形態である。従って単離された核酸分子は、細胞に天然に存在しているここに記載のポリペプチド及び抗体をコードする核酸と区別される。
【００８１】
ここで使用される「ベクター」という用語は、それが結合している他の核酸を輸送することのできる核酸分子を意味するものである。一つのタイプのベクターは「プラスミド」であり、これは付加的なＤＮＡセグメントが結合されうる円形の二本鎖ＤＮＡを意味する。他の型のベクターはファージベクターである。他の型のベクターはウイルスベクターであり、付加的なＤＮＡセグメントをウイルスゲノムへ結合させうる。所定のベクターは、それらが導入される宿主細胞内において自己複製することができる(例えば、細菌の複製開始点を有する細菌ベクターとエピソーム哺乳動物ベクター)。他のベクター(例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター)は、宿主細胞への導入時に宿主細胞のゲノム中に組み込まれ、宿主ゲノムと共に複製する。更に、所定のベクターは、それらが作用可能に結合している遺伝子の発現を指令し得る。このようなベクターはここでは「組換え発現ベクター」(又は単に「発現ベクター」)と呼ぶ。一般に、組換えＤＮＡ技術で有用な発現ベクターはしばしばプラスミドの形をとる。本明細書では、プラスミドが最も広く使用されているベクターの形態であるので、「プラスミド」と「ベクター」を相互交換可能に使用する場合が多い。
【００８２】
ここで交換可能に使用される「ポリヌクレオチド」又は「核酸」は、任意の長さのヌクレオチドのポリマーを意味し、ＤＮＡ及びＲＮＡが含まれる。ヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、修飾されたヌクレオチド又は塩基、及び／又はそれらの類似体(アナログ)、又はＤＮＡもしくはＲＮＡポリメラーゼにより、もしくは合成反応によりポリマー中に取り込み可能な任意の基質とすることができる。ポリヌクレオチドは、修飾されたヌクレオチド、例えばメチル化ヌクレオチド及びそれらの類似体を含み得る。存在するならば、ヌクレオチド構造に対する修飾は、ポリマーの組み立ての前又は後になされ得る。ヌクレオチドの配列は非ヌクレオチド成分により中断されてもよい。ポリヌクレオチドは合成後になされる修飾(一又は複数)、例えば標識との結合を含みうる。他のタイプの修飾には、例えば「キャップ(caps)」、類似体との自然に生じたヌクレオチドの一又は複数の置換、ヌクレオチド間修飾、例えば非荷電連結(例えばホスホン酸メチル、ホスホトリエステル、ホスホアミダート、カルバマート等)及び荷電連結(ホスホロチオアート、ホスホロジチオアート等)を有するもの、ペンダント部分、例えばタンパク質(例えばヌクレアーゼ、毒素、抗体、シグナルペプチド、ｐｌｙ-Ｌ-リジン等)を含むもの、インターカレータ(intercalators)を有するもの(例えばアクリジン、ソラレン等)、キレート剤(例えば金属、放射性金属、ホウ素、酸化的金属等)を含むもの、アルキル化剤を含むもの、修飾された連結を含むもの(例えばアルファアノマー核酸等)、並びにポリヌクレオチド(類)の未修飾形態が含まれる。更に、糖類中に通常存在する任意のヒドロキシル基は、例えばホスホナート基、ホスファート基で置き換えられてもよく、標準的な保護基で保護されてもよく、又は付加的なヌクレオチドへのさらなる連結を調製するように活性化されてもよく、もしくは固体又は半固体担体に結合していてもよい。５'及び３'末端のＯＨはホスホリル化可能であり、又は１〜２０の炭素原子を有する有機キャップ基部分又はアミンで置換することもできる。また他のヒドロキシルは標準的な保護基に誘導体化されてもよい。またポリヌクレオチドは当該分野で一般的に知られているリボース又はデオキシリボース糖類の類似形態のものをさらに含み得、これらには例えば２'-Ｏ-メチル-、２'-Ｏ-アリル、２'-フルオロ又は２'-アジド-リボース、炭素環式糖の類似体、アルファ-アノマー糖、エピマー糖、例えばアラビノース、キシロース類又はリキソース類、ピラノース糖、フラノース糖、セドヘプツロース、非環式類似体、及び非塩基性ヌクレオシド類似体、例えばメチルリボシドが含まれる。一又は複数のホスホジエステル連結は代替の連結基で置き換えてもよい。これらの代替の連結基には、限定されるものではないが、ホスファートがＰ(Ｏ)Ｓ(「チオアート」)、Ｐ(Ｓ)Ｓ(「ジチオアート」)、「(Ｏ)ＮＲ２(「アミダート」)、Ｐ(Ｏ)Ｒ、Ｐ(Ｏ)ＯＲ'、ＣＯ又はＣＨ２(「ホルムアセタール」)と置き換えられた実施態様のものが含まれ、ここでそれぞれのＲ及びＲ'は独立して、Ｈ又は、エーテル(-Ｏ-)結合を含んでいてもよい置換もしくは未置換のアルキル(１-２０Ｃ)、アリール、アルケニル、シクロアルキル、シクロア���ケニル又はアラルジル(araldyl)である。ポリヌクレオチド中の全ての結合が同一である必要はない。先の記述は、ＲＮＡ及びＤＮＡを含むここで引用される全てのポリヌクレオチドに適用される。
【００８３】
ここで使用される「オリゴヌクレオチド」とは、短く、一般的に単鎖であり、また必ずしもそうではないが、一般的に約２００未満のヌクレオチド長さの、一般的に合成のポリヌクレオチドを意味する。「オリゴヌクレオチド」及び「ポリヌクレオチド」なる用語は、相互に排他的なものではない。ポリヌクレオチドについての上述した記載はオリゴヌクレオチドと等しく、十分に適用可能である。
【００８４】
ここで用いられる「担体」は、製薬的に許容されうる担体、賦形剤、又は安定化剤を含み、用いられる服用量及び濃度でそれらに曝露される細胞又は哺乳動物に対して非毒性である。生理学的に許容されうる担体は、水性ｐＨ緩衝溶液であることが多い。生理学的に許容されうる担体の例は、リン酸塩、クエン酸塩、及び他の有機酸塩のバッファー；アスコルビン酸を含む酸化防止剤；低分子量(約１０残基未満)ポリペプチド；タンパク質、例えば血清アルブミン、ゼラチン、又は免疫グロブリン；疎水性ポリマー、例えばポリビニルピロリドン；アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリジン；グルコース、マンノース又はデキストランを含む単糖類、二糖類、及び他の炭水化物；ＥＤＴＡ等のキレート剤；マンニトール又はソルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩形成対イオン；及び／又は非イオン性界面活性剤、例えば、ＴＷＥＥＮ(登録商標)、ポリエチレングリコール(ＰＥＧ)、及びＰＬＵＲＯＮＩＣＳ(登録商標)を含む。
【００８５】
「パッケージ挿入物」は、指示、使用法、用量、投与、禁忌、包装された製品と組合せられる他の治療用製品、及び／又はこのような治療用製品の使用に関する注意についての情報を含む、治療用製品又は薬物の市販パッケージに常套的に含まれる指示を意味するために使用される。
【００８６】
「薬学的に許容可能な酸」は、それらが製剤化される濃度及び方法において無毒性である無機及び有機酸を含む。例えば、適切な無機酸には、塩酸、過塩素酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、硝酸、硫酸、スルホン酸、スルフィン酸、スルファニル酸、リン酸、炭酸などが含まれる。適切な有機酸には、直鎖及び分岐鎖アルキル、芳香族、環状、環状脂肪族、アリール脂肪族、複素環式、飽和、不飽和、モノ-、ジ-、及びトリ-カルボン酸で、例えば、蟻酸、酢酸、２-ヒドロキシ酢酸、トリフルオロ酢酸、フェニル酢酸、トリメチル酢酸、ｔ-ブチル酢酸、アントラニル酸、プロパン酸、２-ヒドロキシプロパン酸、２-オキソプロパン酸、プロパンジオイン酸（propandioic）、シクロペンタンプロピオン酸、シクロペンタンプロピオン酸、３-フェニルプロピオン酸、ブタン酸、ブタンジオイン酸（butandioic）、安息香酸、３-(４-ヒドロキシベンゾイル)安息香酸、２-アセトキシ安息香酸、アスコルビン酸、ケイ皮酸、ラウリル硫酸、ステアリン酸、ムコン酸、マンデル酸、コハク酸、エンボン酸、フマル酸、リンゴ酸、マレイン酸、ヒドロキシマレイン酸、マロン酸、乳酸、クエン酸、酒石酸、グリコール酸、グライコン酸、グルコン酸、ピルビン酸、グリオキサール酸、シュウ酸、メシリン酸（mesylic）、コハク酸、サリチル酸、フタル酸、パルモイン酸（palmoic）、パルメイン酸（palmeic）、チオシアン酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、１，２-エタンジスルホン酸、２-ヒドロキシエタンスルフホン酸、ベンゼンスルホン酸、４-コロベンゼンスルホン酸（chorobenzenesulfonic）、ナフタレン-２-スルホン酸、ｐ-トルエンスルホン酸、カンファースルホン酸、４-メチルバイシクロ[２．２．２]-オクト-２-エン-１-カルボキシル酸、グルコヘプトン酸、４，４’-メチレンビス-３-（ヒドロキシ-２-エン-１-カルボキシル酸）、ヒドロキシナフトイン酸（hydroxynapthoic）を含む。
【００８７】
「薬学的に許容可能な塩基」には、それらが製剤化される濃度及び方法において無毒性である無機及び有機塩基を含む。例えば、適切な塩基には、リチウム、ナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム、アンモニウム、鉄、亜鉛、銅、マンガン、アルミニウム、Ｎ-メチルグルカミン、モルホリン、ピペリジンなどの無機塩基形成金属、及び第一級、第二級、第三級アミン、置換アミン、環状アミンを含む有機無毒性塩基、及び塩基性イオン交換レジン、[例えば、Ｎ(Ｒ’)４＋（ここでＲ’は別個にＨ又はＣ１−４アルキル基、例えばアンモニウム、トリス）]、例えば、イソプロピルアミン、トリメチルアミン、ジエチルアミン、トリエチルアミン、トリプロピルアミン、エタノールアミン、２-ジエチルアミノエタノール、トリメタミン、ジシクロヘキシルアミン、リジン、アルギニン、ヒスチジン、カフェイン、プロカイン、ヒドラバミン（hydrabamine）、コリン、ベタイン、エチレンジアミン、グルコサミン、メチルグルカミン、テオブロミン、プリン、ピペラジン、ピペリジン、Ｎ-エチルピペリジン、ポリアミンレジン及び類似物から形成されるものが含まれる。特に、好ましい有機無毒性塩基は、イソプロピルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、トリメタミン、ジシクロヘキシルアミン、コリン及びカフェインである。
【００８８】
本発明に使用可能な、さらなる薬学的に許容可能な酸及び塩基には、アミノ酸、例えば、ヒスチジン、グリシン、フェニルアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、リジン、アスパラギンに由来するものが含まれる。
【００８９】
「薬学的に許容可能な」バッファー及び塩には、前記された酸及び塩基の塩を付加された酸及び塩基に由来するものが含まれる。具体的なバッファー及び又は塩には、ヒスチジン、コハク酸及び酢酸が含まれる。
【００９０】
「薬学的に許容可能な糖」は、目的のタンパク質と組合わせた場合、保存においてタンパク質の化学的及び／又は物理的不安定性を顕著に阻止又は軽減する分子である。製剤が凍結乾燥され、そして元に戻すことが意図される場合、「薬学的に許容可能な糖」はリオプロテクタント（lyoprotectant）としても知られる。例示的な糖及びそれらに対応する糖アルコールは；グルタミン酸一ナトリウム又はヒスチジンなどのアミノ酸；ベタインなどのメチルアミン；硫酸マグネシウムなどの溶媒変性塩；三価又はそれより大きな分子量の糖アルコール、例えば、グリセリン、デキストラン、エリスリトール、グリセロール、アラビトール、キシリトール、ソルビトール、及びマンニトール；プロピレングリコール；ポリエチレングリコール；ピューロニクス（登録商標）；及びそれらの組合わせが含まれる。更なる例示的リオプロテクタントには、グリセリン及びゼラチン、及び糖、メリビオース、メレチトース、ラフィノース、マンノトリオース及びスタキオースが含まれる。還元糖の例には、グルコース、マルトース、ラクトース、マルツロース、イソマルツロース及びラクツロースが含まれる。非還元糖の例には、糖アルコール及び他の直鎖ポリアルコールから選択されたポリヒドロキシ化合物の非還元グリコシドが含まれる。好ましい糖アルコールは、モノグリコシド、特にラクトース、マルトース、ラクツロース及びマルツロースなどのジサッカライドの還元によって得られる化合物である。グリコシド側鎖はグルコシド又はガラクトシドのいずれかであり得る。糖アルコールの更なる例は、グルシトール、マルチトール、ラクチトール及びイソ-マルツロースである。好ましい薬学的に受容される糖には非還元糖トレハロース又はスクロースである。薬学的に許容される糖は、タンパク質が保存の間（例えば、再構成及び保存の後）その物理学的及び化学的安定性と完全性を本質的に保つような「保護量」（例えば、凍結乾燥前）で製剤に添加する。
【００９１】
ここでの目的における「希釈液」は、薬学的に許容な（ヒトへの投与に関し安全で無毒性）もので、凍結乾燥後に再構成される製剤などの、液性製剤の調製に有用である。典型的な希釈液には、滅菌水、注射のための静菌水（ＢＷＦＩ）、ｐＨ緩衝溶液（例えば、リン酸バッファー生理食塩水）、滅菌生理食塩水、リンガー溶液又はデキストロース溶液が含まれる。これに代わる実施態様において、希釈液は塩及び／又はバッファーの水溶液を含み得る。
【００９２】
「保存剤」は、バクテリアの作用を減少させるために、ここにおける製剤に添加され得る化合物である。保存剤の添加は、例えば、複数回使用（複数回投与）製剤の生産を促進する。潜在的保存剤の例には、塩化オクタデシルジメチルベンジルアンモニウム、塩化ヘキサメトニウム、塩化ベンザルコニウム（アルキル基が長鎖化合物である塩化アルキルベンジルジメチルアンモニウムの混合物）、及び塩化ベンゼトニウムが含まれる。保存剤の他のタイプには、フェノールなどの芳香族アルコール、ブチル及びベンジルアルコール、メチル又はプロピルパラベンなどのアルキルパラベン、カテコール、レゾルシノール、シクロヘキサノール、３-ペンタノール、及びｍ-クレゾールが含まれる。ここで最も好ましい保存剤は、ベンジルアルコールである。
【００９３】
「薬学的製剤」なる用語は、活性成分の生物学的活性を許容する形態であり、その製剤が投与されるであろう被検体に許容できない程に毒性である更なる成分を含まない調製物を意味する。そのような製剤は無菌である。
【００９４】
「滅菌」製剤は無菌的であるか又はあらゆる生きている微生物及びその胞子を含まない。
【００９５】
「約」なる用語は、ここで使用される場合、本技術分野における技術者に容易に理解されるそれぞれの値に対する通常のエラー範囲を意味する。ここでの値又はパラメータについての「約」という記載は、その値又はパラメータ自体に関する変動を含む（また記述する）。
【００９６】
本明細書及び添付の請求の範囲で使用される場合、単数形「ａ」、「ａｎ」及び「ｔｈｅ」には、明らかな別の記載がない限り複数形も含まれる。例えば、「抗体（an antibody）」への言及は一から多数の抗体への言及であり（モル量等）、当業者に知られているその均等なもの等を含む。
【００９７】
ここに記載の発明の態様及び実施態様は、態様及び実施態様「を含んでなる」、「から成る」、及び「から本質的に成る」を含む。
【００９８】
ＩＩＩ．本発明の組成物及び方法
本発明は、個体における自己免疫疾患(炎症性腸疾患等)を治療又は防止する方法を提供し、個体に有効量のここに記載の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与することを含んでなる。幾つかの実施態様では、有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、個体における潰瘍性大腸炎を治療又は防止するために個体に投与される。幾つかの実施態様では、有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、個体におけるクローン病を治療又は防止するために個体に投与される。幾つかの実施態様では、有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が、個体における不確定大腸炎を治療又は防止するために個体に投与される。
【００９９】
ここに記載の全ての方法に関して、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体への言及は、一又は複数のこれらの薬剤を含んでなる組成物も含む。このような組成物は、適切な賦形剤を更に含有し得、例えば、バッファー、酸、塩基、糖、希釈剤、保護材等を含む薬学的に許容可能な賦形剤（担体）であり、当技術分野でよく知られており、ここに記載されている。本発明の方法は、単独で又は一般的な他の治療方法と併用して使用されてもよい。
【０１００】
Ａ．抗ＣＤ８３アゴニスト抗体
本発明の方法は抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を使用し、この用語は、細胞表面に発現されるＣＤ８３に結合し、細胞表面上に発現されるＣＤ８３（例えば、成熟樹状細胞の細胞表面上に発現されるＣＤ８３）に結合した後、ＣＤ８３によって媒介されるシグナル伝達を活性化する抗ＣＤ８３抗体を意味する。ここに記載の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、一又は複数の以下の特徴を有しうる：（ａ）成熟樹状細胞におけるＭＡＰＫシグナル伝達の活性化の阻害（例えば成熟樹状細胞におけるｐ３８及びＣＲＥＢタンパク質のリン酸化の減少を導く）；（ｂ）成熟樹状細胞におけるｍＴＯＲシグナル伝達の活性化を阻害する（例えば、成熟樹状細胞におけるｍＴＯＲタンパク質のリン酸化の減少を導く）；（ｃ）成熟樹状細胞からの一又は複数の炎症促進性サイトカイン（ＭＣＰ-１、ＩＬ-１２ｐ４０等）の放出を阻害する；（ｄ）成熟樹状細胞からの一又は複数の抗炎症性サイトカイン（ＩＬ-１ｒａ）の放出を誘導する；（ｅ）成熟樹状細胞活性化マーカー（ＣＤ８３、ＨＬＡ-ＤＲ等）の細胞表面発現の減少を誘導する；（ｆ）成熟樹状細胞において一又は複数の創傷治癒遺伝子（ｖｃａｎ、ｓｐｏｃｋ２、及びｆｂｎ２等）の発現をアップレギュレートする；及び（ｇ）自己免疫疾患（ＩＢＤ等）を治療及び／又は防止する。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の活性はインビトロ及び／又はインビボで測定されうる。
【０１０１】
抗ＣＤ８３抗体は、当技術分野で知られる方法を使用して生成され、ここに記載される一又は複数のアゴニスト活性についてスクリーニングされうる。例えば、実施例９に記載される方法を参照のこと。
【０１０２】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、ヒトＣＤ８３の細胞外領域に特異的に結合する。幾つかの実施態様では、ヒトＣＤ８３は、
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に由来する成熟アミノ酸配列を有する。
【０１０３】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、
2015511931.tif 000005
のアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドに特異的に結合する。
【０１０４】
幾つかの実施態様では、抗体はモノクローナル抗体である。幾つかの実施態様では、抗体は単離された抗体である。幾つかの実施態様では、抗体はキメラ抗体、ヒト化抗体、又はヒト抗体である。幾つかの実施態様では、抗体は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’-ＳＨ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、又は（Ｆａｂ’）２等の抗体断片である。
【０１０５】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３から選択される少なくとも１、２、３、４、５又は６つのＨＶＲを有する。
【０１０６】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を含んでなる６つのＨＶＲを有する。
【０１０７】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３から選択される少なくとも１、少なくとも２、又は全３つのＶＨ ＨＶＲ配列を有する。一実施態様では、抗体は、配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を有する。別の実施態様では、抗体は、配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３及び配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を有する。更なる実施態様では、抗体は、配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３、配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３、及び配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２を有する。更なる実施態様では、抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３を有する。
【０１０８】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３から選択される少なくとも１、少なくとも２、又は全３つのＶＬ ＨＶＲ配列を有する。一実施態様では、抗体は、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を有する。
【０１０９】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）（ｉ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、（ｉｉ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び（ｉｉｉ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３から選択される少なくとも１、少なくとも２、又は全３つのＶＨ ＨＶＲ配列を含んでなるＶＨドメイン；及び（ｂ）（ｉ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｉｉ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｉｉｉ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３から選択される少なくとも１、少なくとも２、又は全３つのＶＬ ＨＶＲ配列を含んでなるＶＬドメインを有する。
【０１１０】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１；（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２；（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３；（ｄ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１；（ｅ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２；及び（ｆ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３を有する。
【０１１１】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体はヒト化である。一実施態様では、抗ＣＤ８３抗体は、上記実施態様の何れかにおけるＨＶＲを有し、更に、例えばヒト免疫グロブリンフレームワーク又はヒトコンセンサスフレームワーク等のアクセプターヒトフレームワークを有する。
【０１１２】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体において、配列番号：３０のアミノ酸配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、又は１００％配列同一性を有する重鎖可変ドメイン（ＶＨ）を有する抗体が提供される。ある実施態様では、少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％同一性を有するＶＨ配列は基準配列に対して置換（例えば保存的置換）、挿入、又は欠失を有するが、この配列を含んでなる抗ＣＤ８３抗体はＣＤ８３に結合する能力を保持する。ある実施態様では、全部で１から１０のアミノ酸が、配列番号：３０において置換、挿入及び／又は欠失されている。ある実施態様では、置換、挿入、及び／又は欠失は、ＨＶＲの外の領域（すなわちＦＲ）において生じる。場合によっては、抗ＣＤ８３抗体は、配列番号：３０におけるＶＨ配列を有し、該配列の翻訳後修飾を含む。特定の実施態様では、ＶＨは、（ａ）配列番号：３１のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ１、（ｂ）配列番号：３２のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ２、及び（ｃ）配列番号：３３のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｈ３から選択される１、２又は３つのＨＶＲを有する。
【０１１３】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体において、配列番号：３６のアミノ酸配列と少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、又は１００％配列同一性を有する軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）を有する抗体が提供される。ある実施態様では、少なくとも９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％同一性を有するＶＬ配列は基準配列に対して置換（例えば保存的置換）、挿入、又は欠失を有するが、この配列を含んでなる抗ＣＤ８３抗体はＣＤ８３に結合する能力を保持する。ある実施態様では、全部で１から１０のアミノ酸が、配列番号：３６において置換、挿入及び／又は欠失されている。ある実施態様では、置換、挿入、及び／又は欠失は、ＨＶＲの外の領域（すなわちＦＲ）において生じる。場合によっては、抗ＣＤ８３抗体は、配列番号：３６におけるＶＬ配列を有し、該配列の翻訳後修飾を含む。特定の実施態様では、ＶＬは、（ａ）配列番号：３７のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ１、（ｂ）配列番号：３８のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ２、及び（ｃ）配列番号：３９のアミノ酸配列を含んでなるＨＶＲ-Ｌ３から選択される１、２又は３つのＨＶＲを有する。
【０１１４】
幾つかの実施態様では、抗ＣＤ８３抗体において、上記実施態様の何れかにおけるＶＨ、及び上記実施態様の何れかにおけるＶＬを有する抗体が提供される。一実施態様では、それぞれ配列番号：３０及び配列番号：３６におけるＶＨ及びＶＬを有し、これらの配列の翻訳後修飾を含む。一実施態様では、抗体は、配列番号：２９に示す重鎖アミノ酸配列、及び配列番号：３５に示す軽鎖アミノ酸配列を有し、これらの配列の翻訳後修飾を含む。
【０１１５】
一実施態様では、ここに提供されるものは、ここに記載の抗体の何れか一つと競合的にヒトＣＤ８３に結合する抗ＣＤ８３抗体である。ある実施態様では、競合結合は、ＥＬＩＳＡアッセイを使用して決定されうる。例えば、ある実施態様では、配列番号：３０のＶＨ配列及び配列番号：３６のＶＬ配列を含んでなる抗ＣＤ８３抗体と競合してヒトＣＤ８３に結合する抗体が提供される。ある実施態様では、配列番号：２９に示す重鎖アミノ酸配列、及び配列番号：３５に示す軽鎖アミノ酸配列を含んでなる抗ＣＤ８３抗体と競合してヒトＣＤ８３に結合する抗体が提供される。
【０１１６】
抗体は、標的抗原ＣＤ８３に対してナノモル又はピコモル親和性を有しうる。ある実施態様では、抗体のＫｄは、約０．０５から約１００ｎＭである。例えば、抗体のＫｄは、約１００ｎＭ、約５０ｎＭ、約１０ｎＭ、約１ｎＭ、約５００ｐＭ、約１００ｐＭ、又は約５０ｐＭの何れかから、約２ｐＭ、約５ｐＭ、約１０ｐＭ、約１５ｐＭ、約２０ｐＭ、又は約４０ｐＭの何れかである。
【０１１７】
Ｂ．抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の組換え調製
本発明はまた組換え技術を使用する抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の生産方法を提供する。例えば、ポリペプチドは、かかる抗体又はその断片をコードする単離された核酸、かかる核酸を含んでなるベクター及び宿主細胞を使用して調製されることができる。セクションＢに記載される方法は一般に抗体の生産に対して言及するが、これらの方法は、ここに記載される任意のポリペプチドを生産するために使用されてもよい。
【０１１８】
抗体又はその断片の組換え生産のために、所望の抗体又は抗体断片をコードする核酸が単離され、さらなるクローニング(ＤＮＡの増幅)又は発現のために、複製可能なベクター中に挿入される。モノクローナル抗体をコードするＤＮＡは通常の手法を用いて、直ぐに単離され(例えば、抗体の重鎖および軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合可能なオリゴヌクレオチドを使用することによって）、配列決定される。多くのクローニング及び／又は発現ベクターが市販されている。ベクター成分には、一般に、これらに制限されるものではないが、次のものの一又は複数が含まれる：シグナル配列、複製開始点、一又は複数のマーカー遺伝子、多くの制限エンドヌクレアーゼに対する認識配列を有する多重クローニング部位、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終結配列。
【０１１９】
（１）シグナル配列成分
抗体又はその断片は直接的にだけではなく、融合タンパク質として組換え生産されてもよく、抗体は、異種ポリペプチド、好ましくはシグナル配列又は成熟タンパク質あるいはポリペプチドのＮ末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドと融合される。好ましく選択された異種シグナル配列は宿主細胞によって認識され加工される(すなわち、シグナルペプチダーゼによって切断される)ものである。天然哺乳類シグナル配列を認識せずプロセシングしない原核生物宿主細胞に対して、真核細胞（すなわち哺乳類）シグナル配列は、例えばアルカリホスファターゼ、ペニシリナーゼ、ｌｐｐあるいは熱安定なエンテロトキシンＩＩ遺伝子からのリーダー配列から成る郡から選択される原核生物シグナル配列により置換される。酵母での分泌に対して、天然シグナル配列は、例えば酵母インベルターゼリーダー、α因子リーダー(酵母菌属(Saccharomyces)及びクルイベロマイシス(Kluyveromyces)α因子リーダーを含む)、又は酸ホスフォターゼリーダー、白体(C.albicans)グルコアミラーゼリーダー、又は国際公開第９０／１３６４６号に記載されているシグナルにより置換されうる。哺乳動物細胞での発現においては、哺乳動物のシグナル配列並びにウイルス分泌リーダー、例えば単純ヘルペスウィルスｇＤシグナルが利用できる。
【０１２０】
このような前駆体領域のＤＮＡは、読み枠において、抗体又はその断片をコードするＤＮＡに結合される。
【０１２１】
（２）複製起点成分
発現及びクローニングベクターは共に、一又は複数の選択された宿主細胞において、ベクターの複製を可能にする核酸配列を含む。一般に、クローニングベクターにおいて、この配列は宿主染色体ＤＮＡとは独立にベクターが複製することを可能にするものであり、複製開始点又は自律的複製配列を含む。そのような配列は多くの細菌、酵母及びウイルスに対してよく知られている。プラスミドｐＢＲ３２２に由来する複製開始点は大部分のグラム陰性細菌に好適であり、２μプラスミド開始点は酵母に適しており、様々なウイルス開始点(ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイルス、水疱性口内炎ウイルス（「ＶＳＶ」）又はウシパピローマウイルス（「ＢＰＶ」））は哺乳動物細胞におけるクローニングベクターに有用である。一般には、哺乳動物の発現ベクターには複製開始点成分は不要である(ＳＶ４０開始点は典型的にはただ初期プロモーターを有しているために用いられる)。
【０１２２】
（３）選択遺伝子成分
発現及びクローニングベクターは、典型的には、選択マーカーとしても知られる選択遺伝子も含みうる。典型的な選択遺伝子は、（ａ）アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセート或いはテトラサイクリンのような抗生物質或いは他の毒素に耐性を与え、（ｂ）栄養要求性欠陥を補い、又は（ｃ）複合培地から得られない重要な栄養素、例えば桿菌のＤ-アラニンラセマーゼをコードしている遺伝子を供給するタンパク質をコードする。
【０１２３】
選択方法の一例では、宿主細胞の成長を抑止する薬物が用いられる。異種性遺伝子で首尾よく形質転換した細胞は、薬物耐性を付与するタンパク質を生産し、よって選択工程を生存する。このような優性選択の例は、薬剤ネオマイシン、ミコフェノール酸及びハイグロマイシンを使用する。
【０１２４】
哺乳動物細胞に適切な選択マーカーの別の例は、抗体又は抗体断片をコードする核酸を取り込むことのできる細胞の識別を可能にするものであり、例えばジヒドロ葉酸還元酵素（「ＤＨＦＲ」）、チミジンキナーゼ、メタロチオネイン-Ｉ及び-ＩＩ、好ましくは霊長類メタロチオネイン遺伝子、アデノシンデアミナーゼ、オルニチン脱炭酸酵素等である。
【０１２５】
例えば、ＤＨＦＲ選択遺伝子によって形質転換された細胞は、先ず、ＤＨＦＲの競合的アンタゴニストであるメトトリキセート(Ｍｔｘ)を含む培地において形質転換物の全てを培養することで同定される。野生型ＤＨＦＲを用いた使用の例示的な宿主細胞株は、ＤＨＦＲ活性に欠陥のあるチャイニーズハムスター卵巣(「ＣＨＯ」)株化細胞（例えば、ＡＴＣＣ ＣＲＬ-９０９６）である。
【０１２６】
哺乳動物細胞に適切な選択マーカーの別の例は、抗体又は抗体断片をコードする核酸を取り込むことのできる細胞の識別を可能にするものであり、例えばジヒドロ葉酸還元酵素（「ＤＨＦＲ」）、グルタミン合成酵素（ＧＳ）、チミジンキナーゼ、メタロチオネイン-Ｉ及び-ＩＩ、好ましくは霊長類メタロチオネイン遺伝子、アデノシンデアミナーゼ、オルニチン脱炭酸酵素等である。
【０１２７】
あるいは、ＧＳ（グルタミン合成酵素）遺伝子で形質転換された細胞は、形質転換体を、ＧＳの阻害剤であるＬ-メチオニンスルホキシミン（Ｍｓｘ）を含有する培養培地において培養することによって同定される。これらの条件下で、ＧＳ遺伝子は他の何れかの同時形質転換された核酸と共に増幅される。ＧＳ選択／増幅システムは、上記のＤＨＦＲ選択／増幅システムと併用して使用されうる。
【０１２８】
あるいは、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体又はその断片コードするＤＮＡ配列、野生型ＤＨＦＲタンパク質、及びアミノグリコシド３'-ホスホトランスフェラーゼ(「ＡＰＨ」)のような他の選択可能マーカーで形質転換あるいは同時形質転換した宿主細胞(特に、内在性ＤＨＦＲを含む野生型宿主)は、カナマイシン、ネオマイシンあるいはＧ４１８のようなアミノグリコシド抗生物質等の適切な選択マーカーの選択剤を含む培地中での細胞増殖により選択することができる。米国特許第４９６５１９９号を参照のこと。
【０１２９】
酵母中での使用に好適な選択遺伝子は酵母プラスミドＹＲｐ７に存在するｔｒｐ１遺伝子である(Stinchcomb等, Nature, 282：39(1979))。ｔｒｐ１遺伝子は、例えば、ＡＴＣＣ第４４０７６号あるいはＰＥＰ４-１のようなトリプトファン内で増殖する能力に欠ける酵母の突然変異株に対する選択マーカーを提供する。Jones, Genetics, 85:12 (1977)。酵母宿主細胞ゲノムにｔｒｐ１破壊が存在することは、ついでトリプトファンの不存在下における増殖による形質転換を検出するための有効な環境を提供する。同様に、Ｌｅｕ２欠陥酵母株(ＡＴＣＣ２０６２２あるいは３８６２６)は、Ｌｅｕ２遺伝子を有する既知のプラスミドによって補完される。
【０１３０】
さらに、１．６μｍの円形プラスミドｐＫＤ１由来のベクターは、クルイヴェロマイシス(Kluyveromyces)酵母の形質転換に用いることができる。あるいは、組換え子ウシのキモシンの大量生産のための発現系がＫ.ラクティス(lactis)に対して報告されている。Van den Berg, Bio/Technology, 8:135 (1990)。クルイヴェロマイシスの工業的な菌株からの、組換えによる成熟したヒト血清アルブミンを分泌する安定した複数コピー発現ベクターも開示されている。Fleer 等, Bio/Technology,9:968-975 (1991)。
【０１３１】
（４）プロモーター成分
発現及びクローニングベクターは通常は宿主生物体によって認識され、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体又はその断片をコードする核酸に作用可能に結合しているプロモーターを含む。原核生物宿主での使用に好適なプロモーターは、ｐｈｏＡプロモーター、ラクタマーゼ及びラクトースプロモーター系、アルカリホスファターゼプロモーター、トリプトファンプロモーター系、及びハイブリッドプロモーター、例えばｔａｃプロモーターを含むが、他の既知の細菌プロモーターも好適である。細菌系で使用するプロモータもまた抗体及び抗体断片をコードするＤＮＡと作用可能に結合したシャイン・ダルガーノ(Ｓ.Ｄ.)配列を有する。
【０１３２】
真核生物に対してもプロモーター配列が知られている。実質的に全ての真核生物の遺伝子が、転写開始部位からおよそ２５ないし３０塩基上流に見出されるＡＴリッチ領域を有している。多数の遺伝子の転写開始位置から７０ないし８０塩基上流に見出される他の配列は、Ｎが任意のヌクレオチドであるＣＮＣＡＡＴ領域である。大部分の真核生物遺伝子の３'末端には、コード配列の３'末端へのポリＡ尾部の付加に対するシグナルであるＡＡＴＡＡＡ配列がある。これらの配列は全て真核生物の発現ベクターに挿入されてもよい。
【０１３３】
酵母宿主と共に用いて好適なプロモーター配列の例としては、３-ホスホグリセラートキナーゼ又は他の糖分解酵素、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド-３-リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース-６-リン酸イソメラーゼ、３-ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及びグルコキナーゼが含まれる。
【０１３４】
酵母における誘発的プロモーターは、増殖条件によって転写が制御される付加的効果を有する。例示的な誘発的プロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチトクロムＣ、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド-３-リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域を含む。酵母の発現に好適に用いられるベクターとプロモーターは欧州特許７３６５７に更に記載されている。また酵母エンハンサーも酵母プロモーターと共に好適に用いられる。
【０１３５】
哺乳動物の宿主細胞におけるベクターからの抗体又はその断片をコードする核酸の転写は、例えば、ポリオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス、アデノウィルス(例えばアデノウィルス２)、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レトロウィルス、Ｂ型肝炎ウィルス及び最も好ましくはサルウィルス４０(ＳＶ４０)のようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーターによって、熱ショック遺伝子プロモーターによって、このようなプロモーターが所望の宿主細胞系に適合し得る限り、調節される。
【０１３６】
ＳＶ４０ウィルスの初期及び後期プロモーターは、ＳＶ４０ウイルスの複製起点を更に含むＳＶ４０制限断片として簡便に得られる。ヒトサイトメガロウィルスの最初期プロモーターは、ＨｉｎｄＩＩＩＥ制限断片として簡便に得られる。ベクターとしてウシ乳頭腫ウィルスを用いて哺乳動物宿主中でＤＮＡを発現させる系が、米国特許第４４１９４４６号に開示されている。この系の変形例は米国特許第４６０１９７８号に開示されている。また、単純ヘルペスウイルス由来のチミジンキナーゼプロモーターの調節下でのマウス細胞中でのヒトβインターフェロンｃＤＮＡの発現の方法に関して、Reyes等, Nature, 297：598-601(1982)を参照のこと。あるいは、ラウス肉腫ウィルス長末端反復をプロモーターとして使用することができる。
【０１３７】
（５）エンハンサーエレメント成分
より高等の真核生物による、抗体又はその断片をコードしているＤＮＡの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによってしばしば増強される。哺乳動物遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている(グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしながら、典型的には、当業者は、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーを用いるであろう。例としては、複製起点の後期側のＳＶ４０エンハンサー(１００−２７０塩基対)、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。真核生物プロモーターの活性化のための増強要素については、Yaniv, Nature, 297:17-18 (1982)もまた参照のこと。エンハンサーは、抗体又は抗体断片コード配列の５'又は３'位でベクター中にスプライシングされうるが、好ましくはプロモーターの５'位に位置している。
【０１３８】
（６）転写終結成分
真核生物宿主細胞(酵母、真菌、昆虫、植物、動物、ヒト、又は他の多細胞生物由来の有核細胞)に用いられる発現ベクターは、また転写の終結及びｍＲＮＡの安定化に必要な配列を含む。このような配列は、真核生物又はウィルスのＤＮＡ又はｃＤＮＡの５'、時には３'の非翻訳領域から一般に取得できる。これらの領域は、抗体又はその断片をコードしているｍＲＮＡの非翻訳部分にポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチドセグメントを含む。一つの有用な転写終結成分はウシ成長ホルモンポリアデニル化領域である。国際公開第９４／１１０２６号とそこに開示された発現ベクターを参照のこと。
【０１３９】
（７）宿主細胞の選択及び形質転換
ここに記載のベクター中の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体又はその断片をコードするＤＮＡをクローニングあるいは発現させるために適切な宿主細胞は、上述の原核生物、酵母、又は高等真核生物細胞を含む。この目的にとって適切な原核生物は、限定するものではないが、真正細菌、例えばグラム陰性又はグラム陽性生物体、例えばエシェリチアのような腸内菌科、例えば大腸菌、エンテロバクター、エルウィニア(Erwinia)、クレブシエラ、プロテウス、サルモネラ、例えばネズミチフス菌、セラチア属、例えばセラチア・マルセスキャンス及び赤痢菌属、並びに桿菌、例えば枯草菌及びバシリ・リチェフォルミス(licheniformis)(例えば、１９８９年４月１２日に公開された ＤＤ２６６７１０に開示されたバシリ・リチェニフォルミス４１Ｐ)、シュードモナス属、例えば緑膿菌及びストレプトマイセス属を含む。一つの好適な大腸菌クローニング宿主は大腸菌２９４(ＡＴＣＣ３１４４６)であるが、他の大腸菌Ｂ、大腸菌Ｘ１７７６(ＡＴＣＣ３１５３７)及び大腸菌Ｗ３１１０(ＡＴＣＣ２７３２５)のような株も好適である。これらの例は限定するものではなく例示的なものである。
【０１４０】
完全長抗体、抗体断片、及び抗体融合タンパク質は、治療用抗体が細胞毒(例えば、毒素)にコンジュゲートされる場合等、グリコシル化及びＦｃエフェクター機能が必要でない場合に特に、細菌において生産されることができる。完全長抗体は、循環においてより長い半減期を有する。大腸菌での生産がより速くより対費用効果が高い。細菌における抗体断片及びポリペプチドの発現については、例えばＵ．Ｓ．５，６４８，２３７(Carter et. al.)、Ｕ．Ｓ．５，７８９，１９９(Joly等)、及びＵ．Ｓ．５，８４０，５２３(Simmons等)（発現及び分泌を最適化するための転写開始領域（ＴＩＲ）及びシグナル配列を記載する）を参照のこと。発現後、抗体又は抗体断片は溶解性画分における大腸菌細胞ペーストから単離され、例えばアイソタイプによってタンパク質Ａ又はＧカラムを通して精製されることができる。最終精製は、例えばＣＨＯ細胞において発現された抗体又は抗体断片を精製するために使用した同じ手順によって実行されることができる。
【０１４１】
原核生物に加えて、糸状菌又は酵母菌のような真核微生物は、抗体又は抗体断片をコードするベクターのための適切なクローニング又は発現宿主である。サッカロミセス・セレヴィシア、又は一般的なパン酵母は下等真核生物宿主微生物のなかで最も一般的に用いられる。しかしながら、多数の他の属、種及び菌株も、一般的に入手可能でここで使用できる、例えば、シゾサッカロマイセスポンベ；クルイベロマイセス宿主、例えばＫ.ラクティス、Ｋ．フラギリス(ＡＴＣＣ１２４２４)、Ｋ.ブルガリカス(ＡＴＣＣ１６０４５)、Ｋ．ウィッケラミイ(ＡＴＣＣ２４１７８)、Ｋ.ワルチイ(ＡＴＣＣ５６５００)、Ｋ．ドロソフィラルム(ＡＴＣＣ３６９０６)、Ｋ．サーモトレランス、及びＫ．マルキシアナス；ヤローウィア(ＥＰ４０２２２６)；ピチアパストリス(ＥＰ１８３０７０)；カンジダ；トリコデルマ・リーシア(ＥＰ２４４２３４)；アカパンカビ；シュワニオマイセス、例えばシュワニオマイセスオクシデンタリス；及び糸状真菌、例えばパンカビ属、アオカビ属、トリポクラジウム、及びコウジカビ属宿主、例えば偽巣性コウジ菌及びクロカビが使用できる。治療用タンパク質の生産に関する酵母及び糸状菌の使用の概説については、例えばGerngross, Nat. Biotech. 22: 1409-1414 (2004)を参照のこと。
【０１４２】
グリコシル化経路が「ヒト化」された特定の菌類及び酵母株が選択されてもよく、部分的なもしくは完全なヒトグリコシル化パターンを有する抗体の生産となる。例えば、Li等, Nat. Biotech. 24:210-215 (2006) (describing humanization of the glycosylation pathway in Pichia pastoris); and Gerngross等, supraを参照のこと。
【０１４３】
グリコシル化抗体又は抗体断片の発現に適切な宿主細胞は、多細胞生物から誘導される。無脊椎動物細胞の例としては植物及び昆虫細胞が含まれる。多数のバキュロウィルス株及び変異体及び対応する許容可能な昆虫宿主細胞、例えばスポドプテラ・フルギペルダ(毛虫)、アエデス・アエジプティ(蚊)、アエデス・アルボピクトゥス(蚊)、ドゥロソフィラ・メラノガスター(ショウジョウバエ)、及びボンビクス・モリ（ガ）が同定されている。トランスフェクションのための種々のウィルス株、例えば、オートグラファ・カリフォルニカＮＰＶのＬ-１変異体とボンビクス・モリＮＰＶのＢｍ-５株が公に利用できる。そのようなウィルスは本発明においてここに記載したウィルスとして使用でき、特にスポドプテラ・フルギペルダ細胞の形質転換に使用できる。
【０１４４】
綿花、コーン、ジャガイモ、大豆、ペチュニア、トマト、及びタバコのような植物細胞培養を宿主として利用することができる。
【０１４５】
しかしながら、脊椎動物細胞におけるものが最も興味深く、培養(組織培養)中での脊椎動物細胞の増殖は常套的な手順になっている。有用な哺乳動物宿主株化細胞の例は、ＳＶ４０によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株(ＣＯＳ-７，ＡＴＣＣ ＣＲＬ１６５１);ヒト胚腎臓株（２９３又は懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された２９３細胞、Graham等, J. Gen Virol., 36:59 (1977)）；ハムスター乳児腎細胞(ＢＨＫ, ＡＴＣＣ ＣＣＬ１０)；チャイニーズハムスター卵巣細胞／-ＤＨＦＲ(ＣＨＯ, Urlaub等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980)）；マウスのセルトリ細胞（ＴＭ４, Mather, Biol. Reprod., 23:243-251 (1980)）;サルの腎細胞 (ＣＶ１ ＡＴＣＣ ＣＣＬ７０)；アフリカミドリザルの腎細胞(ＶＥＲＯ-７６, ＡＴＣＣ ＣＲＬ-１５８７)；ヒト子宮頸癌細胞 (ＨＥＬＡ, ＡＴＣＣ ＣＣＬ２）；イヌ腎細胞 (ＭＤＣＫ, ＡＴＣＣ ＣＣＬ３４）；バッファローラット肝細胞 (ＢＲＬ３Ａ，ＡＴＣＣ ＣＲＬ１４４２); ヒト肺細胞 (Ｗ１３８, ＡＴＣＣ ＣＣＬ７５）；ヒト肝細胞 (Ｈｅｐ Ｇ２，ＨＢ８０６５）；マウス乳房腫瘍細胞 (ＭＭＴ０６０５６２，ＡＴＣＣ ＣＣＬ５１）；ＴＲＩ細胞（Mather等, Annals N.Y. Acad. Sci., 383:44-68 (1982)）；ＭＲＣ５細胞;ＦＳ４細胞；及びヒト肝癌株(ＨｅｐＧ２)である。他の有用な哺乳類宿主細胞株は、ＤＨＦＲ−ＣＨＯ細胞を含むチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞(Urlaub等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:4216 (1980))；及びＮＳ０及びＳｐ２／０等の骨髄腫細胞株を含む。抗体産生に適した特定の哺乳類宿主細胞株の概説については、例えばYazaki and Wu, Methods in Molecular Biology, Vol. 248 (B.K.C. Lo, ed., Humana Press, Totowa, NJ, 2003), pp. 255-268を参照のこと。
【０１４６】
宿主細胞は、抗体又は抗体断片生産のために上述の発現又はクローニングベクターで形質転換され、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードしている遺伝子を増幅するために適切に修飾された常套的栄養培地で培養される。
【０１４７】
（８）宿主細胞の培養
ここでの抗ＣＤ８３アゴニスト抗体又は抗体断片を産生するために用いられる宿主細胞は種々の培地において培養することができる。市販培地の例としては、ハム(Ｈａｍ)のＦ１０(シグマ)、最小必須培地((ＭＥＭ),(シグマ)、ＲＰＭＩ-１６４０(シグマ)及びダルベッコの改良イーグル培地((ＤＭＥＭ),シグマ)が宿主細胞の培養に好適である。また、Ham等, Meth. Enz. 58:44 (1979), Barnes等, Anal. Biochem. 102:255 (1980), 米国特許第４７６７７０４号；同４６５７８６６号；同４９２７７６２号；同４５６０６５５号；又は同５１２２４６９号；ＷＩＰＯ公開番号ＷＯ９０／０３４３０；同第ＷＯ８７／００１９５；又は米国再発行特許第３０９８５号に記載された何れの培地も宿主細胞に対する培地として使用できる。これらの培地には何れもホルモン及び／又は他の成長因子(例えばインシュリン、トランスフェリン、又は表皮成長因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸塩)、バッファー(例えばＨＥＰＥＳ)、ヌクレオチド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、ＧＥＮＴＡＭＹＣＩＮTM薬)、微量元素(最終濃度がマイクロモル範囲で通常存在する無機化合物として定義される)及びグルコース又は等価なエネルギー源を必要に応じて補充することができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃度で含むことができる。培養条件、例えば温度、ｐＨ等々は、発現のために選ばれた宿主細胞について過去に用いられているものであり、当業者には明らかであろう。
【０１４８】
（９）抗体精製
組換え技術を用いる場合、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体又は抗体断片は細胞内、細胞膜周辺腔に生成され、又は培地内に直接分泌される。抗体が細胞内に生成された場合、第１の工程として、宿主細胞か溶解された断片の何れにしても、粒子状の細片が、例えば遠心分離又は限外濾過によって除去される。Carter等, Bio/Technology 10: 163-167 (1992)は、大腸菌の細胞膜周辺腔に分泌された抗体の単離方法を記載している。簡単に述べると、細胞ペーストを、酢酸ナトリウム（ｐＨ３．５）、ＥＤＴＡ、及びフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）の存在下で約３０分間解凍する。細胞細片は遠心分離で除去できる。抗体が培地に分泌された場合は、そのような発現系からの上清を、一般的には先ず市販のタンパク質濃縮フィルター、例えばＡｍｉｃｏｎ又はＰｅｌｌｉｃｏｎの限外濾過装置を用いて濃縮する。ＰＭＳＦなどのプロテアーゼ阻害剤を上記の任意の工程に含めて、タンパク質分解を阻害してもよく、また抗生物質を含めて外来性の汚染物の成長を防止してもよい。
【０１４９】
このような細胞から調製した抗体又は抗体断片組成物は、例えば、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、及びアフィニティークロマトグラフィーを用いて精製でき、アフィニティクロマトグラフィーが好ましい精製技術である。アフィニティーリガンドとしてのプロテインＡの適合性は、抗体中に存在する免疫グロブリンＦｃ領域の種及びアイソタイプに依存する。プロテインＡは、ヒトγ１、γ２、又はγ４重鎖に基づく抗体又は抗体断片の精製に用いることができる（Lindmark等, J. immunol. Meth. 62: 1-13 (1983)）。プロテインＧは、全てのマウスアイソタイプ及びヒト３重鎖抗体又は抗体断片に推奨されている（Guss等, EMBO J. 5: 16571575 (1986)）。アフィニティーリガンドが結合されるマトリクスはアガロースであることが最も多いが、他の材料も使用可能である。孔制御ガラスやポリ(スチレンジビニル)ベンゼン等の機械的に安定なマトリクスは、アガロースで達成できるものより早い流速及び短い処理時間を可能にする。抗体又は抗体断片がＣＨ３ドメインを含む場合、Ｂａｋｅｒｂｏｎｄ ＡＢＸＴＭ樹脂（J.T. Baker, Phillipsburg, NJ）が精製に有用である。イオン交換カラムでの分画、エタノール沈殿、逆相ＨＰＬＣ、シリカでのクロマトグラフィー、ヘパリンでのクロマトグラフィー、ＳＥＰＨＡＲＯＳＥＴＭ、又はアニオン又はカチオン交換樹脂（ポリアスパラギン酸カラム）、並びにクロマトフォーカシング、ＳＤＳ-ＰＡＧＥ、及び硫酸アンモニウム沈殿法も、回収される抗体又は抗体断片に応じて利用可能である。
【０１５０】
一又は複数の予備的精製工程に続いて、目的の抗体又は抗体断片及び混入物を含む混合液をｐＨ約２．５−４．５、好ましくは低塩濃度（例として、約０−０．２５Ｍ塩）の溶出緩衝液を用いて低ｐＨ疎水性作用クロマトグラフィを行う。
【０１５１】
一般に、研究、試験、及び臨床使用における使用に対し抗体を調整するための様々な方法論が当技術分野で確立されており、上述の方法論と一致し、及び／又は特定の興味の抗体について当技術分野の技術者によって適切であると判断される。
【０１５２】
Ｃ．抗体調整
本発明において有用な抗体は、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、抗体断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’-ＳＨ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、及びＦ(ａｂ’)２）、キメラ抗体、二重特異性抗体、多価抗体、ヘテロコンジュゲート抗体、抗体部分を含んでなる融合タンパク質、ヒト化抗体、及び必要な特異性を有する抗原認識部位を有する免疫グロブリン分子の何れかの他の修飾構造を含み、抗体のグリコシル化変異体、抗体のアミノ酸配列変異体、及び共有結合的に修飾された抗体を含む。抗体は、マウス、ラット、ヒト、又は何れか他の起源であってもよい（キメラ又はヒト化抗体を含む）。
【０１５３】
（１）ポリクローナル抗体
ポリクローナル抗体は、好ましくは、関連する抗原とアジュバントを複数回皮下(ｓｃ)又は腹腔内(ｉｐ)注射することにより動物に産生される。免疫化される種において免疫原性であるタンパク質、例えばキーホールリンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）、血清アルブミン、ウシサイログロブリン、又は大豆トリプシンインヒビターに関連抗原（例えば精製された又は組換えＣＤ８３）を、二官能性又は誘導体形成剤、例えばマレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基による抱合)、Ｎ-ヒドロキシスクシンイミド(リジン残基による)、グルタルアルデヒド、無水コハク酸、ＳＯＣｌ２、又はＲとＲ１が異なったアルキル基であるＲ１Ｎ=Ｃ=ＮＲにより抱合させることが有用である。用いられるアジュバントの例には、完全フロイントアジュバント及びＭＰＬ-ＴＤＭアジュバント（モノホスホリルLipid A、合成トレハロースジコリノミコレート）が含まれる。免疫の方法は、過度の実験をすることなく当業者によって選択することができる。
【０１５４】
動物を、例えば、１００μｇ（ウサギの場合）又は５μｇ（マウスの場合）のタンパク質又はコンジュゲートを完全フロイントアジュバント３容量と併せ、この溶液を複数部位に皮内注射することによって、抗原、免疫原性コンジュゲート、又は誘導体に対して免疫化する。１ヶ月後、該動物を、完全フロイントアジュバントに入れた初回量の１／５ないし１／１０のペプチド又はコンジュゲートを用いて複数部位に皮下注射することにより、追加免疫する。７ないし１４日後に動物を採血し、抗体価について血清を検定する。動物は、力価がプラトーに達するまで追加免疫する。コンジュゲートはまたタンパク融合として組換え細胞培養中で調製することもできる。また、ミョウバンのような凝集化剤が、免疫反応の増強のために好適に使用される。
【０１５５】
（２）モノクローナル抗体
モノクローナル抗体は、実質的に均質な抗体集団から得られるが、つまり、該集団を含む個々の抗体は、少量存在する起こりうる自然発生的突然変異及び／又は翻訳後修飾（例えば、異性化、アミド化）を除いて同一である。従って、「モノクローナル」という形容詞は、別個の抗体の混合物ではないとの抗体の特徴を示すものである。
【０１５６】
例えば、モノクローナル抗体は、Kohlerら, Nature, 256:495 (1975)により最初に記載されたハイブリドーマ法、又は組換えＤＮＡ法(米国特許第4,816,567号)によって作成することができる。
【０１５７】
ハイブリドーマ法では、マウス又は他の適切な宿主動物、ハムスター等が、免疫化に使用されるタンパク質（例えば、精製された又は組換えＣＤ８３）に特異的に結合するだろう抗体を産生する又は産生できるリンパ球を誘発するように上記のように免疫化される。あるいは、リンパ球はインビトロで免疫化されうる。次いで、リンパ球はポリエチレングリコール等の適切な融合剤を使用して骨髄腫細胞と融合されてハイブリドーマ細胞を形成する(Goding, Monoclonal Antibodies: Principles and Practice, pp.59-103 (Academic Press, 1986))。
【０１５８】
免疫化剤は、典型的には抗原タンパク質（例えば、精製又は組換えＣＤ８３）又はそれらの融合変異型を含む。一般には、ヒト起源の細胞が望まれる場合において末梢血リンパ球（「ＰＢＬ」）が用いられるか、又は非ヒト哺乳動物ソースが望まれる場合において脾臓又はリンパ節細胞が用いられるかのいずれかである。次に、リンパ球を、ハイブリドーマ細胞を調製するためにポリエチレングリコールなどの適切な融合剤を用いて不死化細胞株と融合する。Goding, Monoclonal Antibodies:Principles and Practice, Academic Press (1986), pp.59-103。
【０１５９】
通常、不死化細胞はトランスフォームされた哺乳動物細胞であり、実用的にはげっ歯類、ウシ又はヒト起源のミエローマ細胞である。通常、ラット又はマウスミエローマ細胞株が用いられる。このようにして調製されたハイブリドーマ細胞を、好ましくは、融合していない親のミエローマ細胞の増殖または生存を阻害する一又は複数の物質を含む適当な培地に蒔き、増殖させる。例えば、親のミエローマ細胞が酵素であるヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(ＨＧＰＲＴ又はＨＰＲＴ)を欠失する場合、ハイブリドーマのための培地は、典型的には、ＨＧＰＲＴ-欠失細胞の増殖を妨げる物質であるヒポキサンチン、アミノプテリン、及びチミジンを含有することになろう(ＨＡＴ培地)。
【０１６０】
好ましい不死化ミエローマ細胞は、効率的に融合し、選択された抗体産生細胞による抗体の安定な高レベルの発現をサポートし、ＨＡＴ培地のような培地に対して感受性の細胞である。これらの中でも、好ましいミエローマ株化細胞は、マウスミエローマ株、例えば、（Salk Institute Cell Distribution Center, San Diego, California USAより入手し得る）ＭＯＰC-２１及びＭＰＣ-１１マウス腫瘍、並びに、（American Type Culture Collection, Rockville, Maryland USAより入手し得る）ＳＰ-２細胞及びその誘導体（例えばＸ６３-Ａｇ８-６５３）である。ヒトミエローマ及びマウス-ヒトヘテロミエローマ株化細胞もまたヒトモノクローナル抗体の産生のために開示されている（Kozbor, J.Immunol., 133:3001 (1984)；Brodeurら, Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications,51-63頁、(Marcel Dekker, Inc., New York, 1987)）。
【０１６１】
ハイブリドーマ細胞が生育している培地を、抗原（例えばＣＤ８３）に対するモノクローナル抗体の産生について検定する。好ましくは、ハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体の結合特異性は、免疫沈降又はインビトロ結合検定、例えばラジオイムノアッセイ(ＲＩＡ)又は酵素結合免疫吸着検定(ＥＬＩＳＡ)によって測定する。
【０１６２】
ハイブリドーマ細胞を培養している培地を、所望の抗原（例えばＣＤ８３）に対するモノクローナル抗体の存在について検定する。好ましくは、モノクローナル抗体の結合親和性及び特異性は、免疫沈降又はインビトロ結合検定、例えばラジオイムノアッセイ(ＲＩＡ)又は酵素結合免疫吸着検定(ＥＬＩＳＡ)によって測定できる。このような技術及びアッセイは当業者に周知である。結合親和性は、例えば、Munsonら., Anal. Biochem., 107:220(1980)のスキャッチャード分析によって測定することができる。
【０１６３】
所望の特異性、親和性、及び／又は活性の抗体を産生するハイブリドーマ細胞が同定されると、そのクローンを限界希釈法によりサブクローニングし、標準的な方法により増殖させることができる(Goding, 上掲)。この目的に対して好適な培地には、例えば、Ｄ-ＭＥＭ又はＲＰＭＩ-１６４０培地が含まれる。また、このハイブリドーマ細胞は、動物の腹水腫瘍として、インビボで増殖させることができる。
【０１６４】
サブクローンにより分泌されたモノクローナル抗体は、例えばプロテインＡ-セファロースクロマトグラフィー、ハイドロキシルアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、アフィニティークロマトグラフィー、及び上述の他の方法等の従来の免疫グロブリン精製法によって、培地、腹水、又は血清から上手く分離することができる。
【０１６５】
また、モノクローナル抗体は、米国特許第４，８１６，５６７号などに開示される及び前述に記載のような組み換えＤＮＡ法により作製されてもよい。モノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、定法を用いて(例えば、マウス抗体の重鎖および軽鎖をコードしている遺伝子に特異的に結合するオリゴヌクレオチドプローブを用いることにより)容易に分離され、配列決定される。ハイブリドーマ細胞は、このようなＤＮＡの好ましい供給源となる。一度単離されれば、該ＤＮＡを発現ベクター中に挿入し、次に、大腸菌細胞、サルＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)細胞、又は他にイムノグロブリンタンパク質を産生しないミエローマ細胞のような宿主細胞中に形質移入し、組換え宿主細胞におけるモノクローナル抗体の合成を獲得することができる。抗体をコードするＤＮＡの細菌での組み換え発現に関する概説論文には、Skerra等, Curr. Opin. Immunol., 5:256-262 (1993) and Pluckthun, Immunol. Rev. 130:151-188 (1992)が含まれる。
【０１６６】
ある実施態様では、抗体は、McCaffertyら, Nature, 348:552-554 (1990)に記載された技術を使用して産生される抗体ファージライブラリーから分離することができる。Clacksonら, Nature, 352:624-628 (1991)及び Marksら, J.Mol.Biol., 222:581-597 (1991)は、ファージライブラリーからのマウス及びヒト抗体の分離について記述している。次の刊行物は、鎖シャフリングによる高親和性（ナノモル（ｎＭ）範囲）のヒト抗体の生産(Marksら, Bio/Technology, 10:779-783(1992))、並びに非常に大きなファージライブラリーを構築するための方策としてコンビナトリアル感染とインビボ組換え(Waterhouseら, Nuc.Acids.Res., 21:2265-2266[1993])を記述している。従って、これらの技術は、所望の特異性のモノクローナル抗体（例えば、ＣＤ８３に結合するもの）の単離に対する伝統的なモノクローナル抗体ハイブリドーマ法に対する実行可能な別法である。
【０１６７】
また、抗体又はその断片をコードするＤＮＡは、例えば、ヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのコード化配列を、相同的マウス配列に代えて置換することによって(米国特許第4,816,567号；Morrisonら, Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,81:6851(1984))、又はイムノグロブリンコード配列に非イムノグロブリンポリペプチドのコード配列の全部又は一部を共有結合させることによって修飾することができる。典型的には、かかる非イムノグロブリンポリペプチドは抗体の定常領域の代わりに置換され、又は抗体の１つの抗原結合部位の可変ドメインが置換されて、抗原に対する特異性を有するある抗原結合部位、及び異なる抗原に対する特異性を有する他の抗原結合部位を含むキメラ二価抗体を作り出す。
【０１６８】
ここに示すモノクローナル抗体（例えば、抗ＣＤ８３抗体又はその断片）は一価性であり、その調整方法は当業者に周知である。例えば、免疫グロブリンの軽鎖及び修飾重鎖の組み換え発現を伴う方法がある。一般的に重鎖はＦｃ領域の任意の場所で切断して重鎖の交差組み換え（クロスリンク）を予防する。あるいは、関連するシステイン残基を他のアミノ酸残基に置き換えたり、交差組み換えを防ぐために欠損させてもよい。また、一価抗体の調製に好適なインビトロの方法がある。当業者によくある技術を用いて抗体の断片、特にＦａｂ断片を産生することができる。
【０１６９】
また、キメラ又はハイブリッド抗体はクロスリンク剤を伴う方法を含む合成タンパク質化学における既知の方法を用いてインビトロにおいても調製される。例えば、免疫毒素はジスルフィド置換反応を用いて、又はチオエーテル結合を形成させることにより構築される。当該目的にとって適切な試薬の例には、イミノチオレート及びメチル-４-メルカプトブチルイミデートが含まれる。
【０１７０】
（３）ヒト化抗体
本発明の抗体（抗ＣＤ８３アゴニスト抗体等）又は抗体断片には、さらにヒト化又はヒト抗体が含まれる。非ヒト(例えばマウス)抗体のヒト化形とは、キメライムノグロブリン、イムノグロブリン鎖あるいはその断片(例えばＦａｂ、Ｆａｂ'-ＳＨ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、Ｆ(ａｂ')２又は抗体の他の抗原結合サブ配列)であって、非ヒトイムノグロブリン由来の最小配列を含むものである。ヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域(ＣＤＲ)の残基が、所望の特異性、親和性及び能力を有するマウス、ラット、ハムスター、又はウサギのような非ヒト種(ドナー抗体)のＣＤＲの残基によって置換されたヒトイムノグロブリン(レシピエント抗体)を含む。ある場合には、ヒトイムノグロブリンのＦｖフレームワーク残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。また、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたＣＤＲもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでいてもよい。一般に、ヒト化抗体は、少なくとも１つの、また典型的には２つの可変ドメインの全てを実質的に含み、この場合、ＣＤＲ領域の全て若しくは実質的に全てが、非ヒトイムノグロブリンのものに相当し、ＦＲ領域の全て若しくは実質的に全てが、ヒトイムノグロブリンコンセンサス配列である。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域(Ｆｃ)、典型的にはヒトのイムノグロブリンの定常領域の少なくとも一部も含む。Jones等, Nature, 321:522-525 (1986); Riechmann等, Nature, 332:323-329 (1988); 及びPresta, Curr. Op Struct. Biol., 2:593-596 (1992)。
【０１７１】
非ヒト抗体をヒト化する方法は当該技術分野において周知である。一般的に、ヒト化抗体には非ヒト由来の１つ又は複数のアミノ酸残基が導入される。これら非ヒトアミノ酸残基は、しばしば、「移入」残基と称され、典型的には「移入」可変ドメインから得られる。ヒト化は基本的には、Winter及び共同研究者、Jones等, Nature, 321:522-525 (1986)；Riechmann等, Nature, 332:323-327 (1988)；Verhoeyen等, Science, 239:1534-1536 (1988)の方法に従うか、又は齧歯動物のＣＤＲ又はＣＤＲ配列でヒト抗体の該当する配列を置換することにより実施される。従って、このような「ヒト化」抗体は、キメラ抗体であり(米国特許第4,816,567号)、無傷のヒト可変ドメインより実質的に少ない分が非ヒト種由来の対応する配列で置換されている。実際には、ヒト化抗体は典型的には幾つかのＣＤＲ残基及び場合によっては幾つかのＦＲ残基が齧歯類抗体の類似する部位由来の残基によって置換されたヒト抗体である。
【０１７２】
抗原性を低減するには、ヒト化抗体を生成する際に使用するヒトの軽重両方の可変ドメインの選択が非常に重要である。いわゆる「ベストフィット」法では、齧歯動物抗体の可変ドメインの配列を既知のヒト可変ドメイン配列のライブラリー全体に対してスクリーニングする。次に齧歯動物のものと最も近いヒト配列が、ヒト化抗体のヒトフレームワーク領域(ＦＲ)として受容される。Sims等, J. Immunol., 151:2296 (1993)；Chothiaら, J. Mol. Biol., 196:901(1987)。他の方法では、軽又は重鎖の特定のサブグループのヒト抗体全てのコンセンサス配列から誘導される特定のフレームワーク領域を使用する。同じフレームワークをいくつかの異なるヒト化抗体に使用できる。Carter等, Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 89:4285 (1992); Presta等, J. Immunol. 151:2623 (1993)。
【０１７３】
さらに、抗原に対する高親和性や他の好ましい生物学的性質を保持したまま、抗体をヒト化することが重要である。この目標を達成するべく、好ましい方法に従って、親及びヒト化配列の三次元モデルを使用して、親配列及び様々な概念的ヒト化産物の分析過程によりヒト化抗体を調製する。三次元イムノグロブリンモデルは一般的に入手可能であり、当業者にはよく知られている。選択された候補イムノグロブリン配列の予想される三次元立体配座構造を図解し、表示するコンピュータプログラムは購入可能である。これら表示を観察することで、候補イムノグロブリン配列の機能における残基の想定され得る役割の分析、すなわち候補イムノグロブリンの抗原との結合能力に影響を及ぼす残基の分析が可能になる。このようにして、例えば標的抗原（一又は複数）（例えばＣＤ８３）に対する親和性が高まるといった、望ましい抗体特性が達成されるように、ＦＲ残基をレシピエント及び移入配列から選択し、組み合わせることができる。一般的に、ＣＤＲ残基は、直接かつ最も実質的に抗原結合性に影響を及ぼしている。
【０１７４】
ヒト化抗体の様々な形態が考えられる。例えば、ヒト化抗体は、抗体断片、例えばＦａｂ、場合によっては免疫コンジュゲートを作成するために１又は複数の細胞障害剤でコンジュゲートされたものであってもよい。あるいは、ヒト化抗体又は、親和性成熟抗体は、完全な抗体、例えば完全なＩｇＧ１抗体であってもよい。
【０１７５】
（４）ヒト抗体
あるいは、ヒト抗体を産生することができる。例えば、内在性のイムノグロブリン産生がない状態で、ヒト抗体の全レパートリーを免疫化することで産生することのできるトランスジェニック動物(例えば、マウス)を作ることが現在では可能である。例えば、キメラ及び生殖系列突然変異体マウスにおける抗体重鎖結合領域(ＪＨ)遺伝子の同型接合欠損が内因性抗体産生を完全に阻害することが記載されている。このような生殖系列突然変異体マウスにおけるヒト生殖系列イムノグロブリン遺伝子列の移入は、抗原投与時にヒト抗体の産生をもたらす。例としてJakobovits等, Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 90:2551 (1993)；Jakobovits等, Nature 362:255-258 (1993)；Bruggermann等, Year in Immuno., 7:33 (1993)；米国特許第５，５９１，６６９号及びＷＯ９７／１７８５２を参照。
【０１７６】
あるいは、ファージディスプレイ技術を、非免疫化ドナーからの免疫グロブリン可変(Ｖ)ドメイン遺伝子レパートリーから、インビトロでヒト抗体及び抗体断片を産出させるために使用することができる。McCaffertyら, Nature 348：552-553(1990)；Hoogenboom及びWinter, J. Mol. Biol. 227:381(1991)。この技術によれば、抗体Ｖドメイン遺伝子は、繊維状バクテリオファージ、例えばＭ１３またはｆｄの大きい又は小さいコートタンパク質遺伝子のいずれかにおいてイン-フレームをクローンし、ファージ粒子の表面上に機能的抗体断片として表出する。繊維状粒子がファージゲノムの一本鎖のＤＮＡコピーを含むので、抗体の機能特性に基づいた選択により、これらの特性を示す抗体をコードする遺伝子の選択がなされる。よって、ファージはＢ細胞の特性のいくつかを模倣している。ファージディスプレイは多様な形式で行うことができる；例えばJohnson, Kevin S. 及びChiswell, David J., Current Opinion in Structural Biology 3：564-571(1993)を参照のこと。Ｖ-遺伝子セグメントのいくつかの供給源がファージディスプレイのために使用可能である。Clacksonら, Nature, 352：624-628(1991)は、免疫化されたマウス脾臓から得られたＶ遺伝子の小ランダム組合せライブラリーからの抗オキサゾロン抗体の異なった配列を単離した。非免疫化ヒトドナーからのＶ遺伝子のレパートリーを構成可能で、抗原(自己抗原を含む)とは異なる配列の抗体を、Marksら, J. Mol. Biol. 222：581-597(1991)、又はGriffithら, EMBO J. 12：725-734(1993)に記載の技術に本質的に従って単離することができる。また、米国特許第5,565,332号及び同5,573,905号を参照のこと。
【０１７７】
また、Cole等及びBoerner等の技術もヒトモノクローナル抗体の調製に利用可能である（Cole等, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, p.77 (1985）及びBoerner等, J. Immunol. 147(1):86-95 (1991)）。同様に、トランスジェニック動物、例えば、内在性のイムノグロブリン遺伝子が部分的に又は完全に不活性化されているマウスなどに、ヒトイムノグロブリン遺伝子座を導入することによりヒト抗体を作製することができる。免疫すると、遺伝子再構成、構築及び抗体レパートリーを含め、あらゆる観点においてヒトで観察されるものと近似したヒト抗体の産生が観察される。本アプローチは、例えば、米国特許第5,545,807号；5,545,806号、5,569,825号,、5,625,126号、5,633,425号、5,661,016号及び以下の特定の刊行物中に記載されている：Marks等, Bio/Technology 10:779-783 (1992)；Lonberg等, Nature 368:856-859 (1994)；Morrison, Nature 368:812-13 (1994)、Fishwild等, Nature Biotechnology 14:845-51 (1996)、Neuberger, Nature Biotechnology 14:826 (1996)及びLonberg及びHuszar, Intern, Rev. Immunol. 13:65-93 (1995)。
【０１７８】
最後に、ヒト抗体は活性化Ｂ細胞によりインビトロで産生してもよい（米国特許第５，５６７，６１０号及び同第５，２２９，２７５号を参照）。
【０１７９】
（５）抗体断片
ある状況では、全抗体を用いるよりもむしろ抗体断片を用いる方が有利なことがある。より小さいサイズの断片は急速にクリアランスを受け、固形腫瘍にアクセスしやすい。
【０１８０】
抗体断片を生産するために様々な技術が開発されている。伝統的には、これらの断片は、完全な抗体のタンパク分解性消化を介して誘導されていた(例えば、Morimotoら, Journal of Biochemical and Biophysical Methods 24:107-117 (1992)及びBrennanら, Science, 229:81(1985)を参照されたい)。しかしながら、これらの断片は現在は組換え宿主細胞により直接生産することが可能であり、例えば上で検討したＣＤ８３に対する抗体をコードする核酸を使用する。Ｆａｂ、Ｆｖ及びｓｃＦｖ抗体断片はすべて大腸菌内で発現され分泌されるため、これら断片を大量に産生することが容易である。抗体断片は上記した抗体ファージライブラリーから単離することができる。あるいは、Ｆａｂ'-ＳＨ断片は大腸菌から直接回収することができ、化学的に結合してＦ(ａｂ')２断片を形成することができる(Carterら, Bio/Technology 10:163-167(1992))。他のアプローチ法では、Ｆ(ａｂ')２断片を組換え宿主細胞培養から直接分離することができる。インビボ半減期が延長したＦａｂ及びＦ（ａｂ’）２抗体断片の産生は米国特許第５，８６９，０４６号に記載されている。他の実施態様では、選択抗体は単鎖Ｆｖ断片(ｓｃＦＶ)である。国際公開第９３／１６１８５号；米国特許第５，５７１，８９４号；及び米国特許第５，５８７，４５８号を参照のこと。また、抗体断片は、例えば米国特許第５，６４１，８７０号に記載されているような「直鎖状抗体」であってもよい。このような直鎖状抗体断片は単一特異性又は二重特異性であってよい。
【０１８１】
（６）二重特異性及び多特異性抗体
二重特異性（ＢｓＡｂ）は、少なくとも２つの異なるエピトープに対する結合特異性を有する抗体であり、同じ又は異なるタンパク質（例えば、ＣＤ８３）に対するものを含む。かかる抗体は、完全長抗体又は抗体断片（例えば、Ｆ(ａｂ')２  二重特異性抗体）から得ることができる。
【０１８２】
二重特異性抗体を作製する方法は当該技術分野において知られている。完全長二重特異性抗体の従来の生産は、二つのイムノグロブリン重鎖／軽鎖対の同時発現に基づいているが、この場合二つの鎖は異なる特異性を持っている。Millstein等, Nature, 305:537-539 (1983)。イムノグロブリン重鎖及び軽鎖が無作為に取り揃えられているため、これらのハイブリドーマ(四部雑種)は１０個の異なる抗体分子の潜在的混合物を産生し、そのうち一つだけが正しい二重特異性構造を有する。アフィニティークロマトグラフィー工程により行われる目的の分子の精製はかなり煩雑で、収率は低い。同様の方法がＷＯ９３／０８８２９及びTraunecker等、EMBO J. 10:3655-3659(1991)に開示されている。
【０１８３】
異なったアプローチ法では、所望の結合特異性を有する抗体可変ドメイン(抗原-抗体結合部位)を免疫グロブリン定常ドメイン配列と融合させる。該融合は好ましくは、少なくともヒンジの一部、ＣＨ２及びＣＨ３領域を含む免疫グロブリン重鎖定常ドメインとの融合である。軽鎖の結合に必要な部位を含む第一の重鎖定常領域(ＣＨ１)を、融合の少なくとも一つに存在させることが望ましい。免疫グロブリン重鎖の融合、望まれるならば免疫グロブリン軽鎖をコードしているＤＮＡを、別個の発現ベクター中に挿入し、適当な宿主生物に同時に形質移入する。これにより、組立に使用される三つのポリペプチド鎖の等しくない比率が最適な収率をもたらす態様において、三つのポリペプチド断片の相互の割合の調節に大きな融通性が与えられる。しかし、少なくとも二つのポリペプチド鎖の等しい比率での発現が高収率をもたらすとき、又はその比率が特に重要性を持たないときは、２または３個全てのポリペプチド鎖のためのコード化配列を一つの発現ベクターに挿入することが可能である。
【０１８４】
このアプローチ法の好適な実施態様では、二重特異性抗体は、第一の結合特異性を有する一方のアームのハイブリッド免疫グロブリン重鎖と他方のアームのハイブリッド免疫グロブリン重鎖-軽鎖対(第二の結合特異性を提供する)とからなる。二重特異性分子の半分にしか免疫グロブリン軽鎖がないと容易な分離法が提供されるため、この非対称的構造は、所望の二重特異性化合物を不要な免疫グロブリン鎖の組み合わせから分離することを容易にすることが分かった。このアプローチ法は、ＷＯ９４／０４６９０に開示されている。二重特異性抗体を産生するさらなる詳細については、例えばSureshら, Methods in Enzymology, 121:210 (1986)を参照されたい。
【０１８５】
ＷＯ９６／２７０１１又は米国特許第５，７３１，１６８号に記載された他のアプローチ法によれば、一対の抗体分子間の界面を操作して、組換え細胞培養から回収されるヘテロダイマーのパーセントを最大にすることができる。好適な界面は抗体定常ドメインのＣＨ３領域の少なくとも一部を含む。この方法では、第１抗体分子の界面からの一又は複数の小さいアミノ酸側鎖がより大きな側鎖(例えばチロシン又はトリプトファン)と置き換えられる。大きな側鎖と同じ又は類似のサイズの相補的「キャビティ」を、大きなアミノ酸側鎖を小さいもの(例えばアラニン又はスレオニン)と置き換えることにより第２の抗体分子の界面に作り出す。これにより、ホモダイマーのような不要の他の最終産物に対してヘテロダイマーの収量を増大させるメカニズムが提供される。
【０１８６】
抗体断片から二重特異性抗体を産生する技術もまた文献に記載されている。例えば、化学結合を使用して二重特異性抗体を調製することができる。Brennanら, Science,229:81 (1985) は無傷な抗体をタンパク分解性に切断してＦ(ａｂ')断片を産生する手順を記述している。これらの断片は、ジチオール錯体形成剤亜砒酸ナトリウムの存在下で還元して近接ジチオールを安定化させ、分子間ジスルヒド形成を防止する。産生されたＦａｂ'断片はついでチオニトロベンゾアート(ＴＮＢ)誘導体に転換される。Ｆａｂ'-ＴＮＢ誘導体の一つをついでメルカプトエチルアミンでの還元によりＦａｂ'-チオールに再転換し、他のＦａｂ'-ＴＮＢ誘導体の等モル量と混合して二重特異性抗体を形成する。生産された二重特異性抗体は酵素の選択的固定化のための薬剤として使用することができる。
【０１８７】
Ｆａｂ’断片を直接大腸菌から回収して、これは化学的に結合させて二重特異性抗体を形成してもよい。Shalaby等,J.Exp.Med., 175:217-225 (1992)は完全にヒト化された二重特異性抗体Ｆ(ａｂ')２分子の製造を記述している。各Ｆａｂ'断片は大腸菌から別個に分泌され、インビトロで定方向化学共役を受けて二重特異性抗体を形成する。このようにして形成された二重特異性抗体は、正常なヒトＴ細胞、及びＥｒｂＢ２レセプターを過剰発現する細胞に結合可能で、ヒト乳房腫瘍標的に対するヒト細胞障害性リンパ球の細胞溶解活性の誘因となる。
【０１８８】
組換え細胞培養から直接的に二価抗体断片を作成し単離する様々な技術もまた記述されている。例えば、二価ヘテロ二量体はロイシンジッパーを使用して生産されている。Kostelnyら, J.Immunol. 148(5):1547-1553 (1992)。Ｆｏｓ及びＪｕｎタンパク質からのロイシンジッパーペプチドを遺伝子融合により二つの異なった抗体のＦａｂ'部分に結合させる。抗体ホモダイマーをヒンジ領域で還元してモノマーを形成し、ついで再酸化して抗体ヘテロダイマーを形成する。Hollingerら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:6444-6448 (1993)により記述された「ダイアボディ」技術は二重特異性／二価抗体断片を作成する別のメカニズムを提供した。断片は、同一鎖上の２つのドメイン間の対形成を可能にするには十分に短いリンカーにより軽鎖可変ドメイン(ＶＬ)に重鎖可変ドメイン(ＶＨ)を結合してなる。従って、一つの断片のＶＨ及びＶＬドメインは他の断片の相補的ＶＬ及びＶＨドメインと強制的に対形成させられ、２つの抗原結合部位を形成する。単鎖Ｆｖ(ｓＦｖ)ダイマーの使用により二重特異性／二価抗体断片を製造する他の方策もまた報告されている。Gruberら, J.Immunol. 152:5368 (1994)を参照されたい。
【０１８９】
二価より多い抗体も考えられる。例えば、三重特異性抗体を調製することができる。Tuttら J.Immunol. 147:60(1991)。例示的な二重特異性抗体は任意の分子（例えば、ＣＤ８３）上の２つの異なるエピトープ上に結合する。
【０１９０】
（７）多価抗体
多価抗体は、抗体が結合する抗原を発現する細胞により、二価抗体よりも早くインターナリゼーション(及び／又は異化)されうる。本発明の抗ＣＤ８３抗体又は抗体断片は、３又はそれ以上の結合部位を有する多価抗体(ＩｇＭクラス以外のもの)であり得(例えば四価抗体)、抗体のポリペプチド鎖をコードする核酸の組換え発現により容易に生成することができる。多価抗体は二量化ドメインと３又はそれ以上の抗原結合部位を有する。好ましい二量化ドメインはＦｃ領域又はヒンジ領域を有する。このシナリオにおいて、抗体はＦｃ領域と、Ｆｃ領域のアミノ末端に３又はそれ以上の抗原結合部位を有しているであろう。ここで、好ましい多価抗体は３ないし８、好ましくは４の抗原結合部位を有する。多価抗体は少なくとも１つのポリペプチド鎖(好ましくは２つのポリペプチド鎖)を有し、ポリペプチド鎖(類)は２又はそれ以上の可変ドメインを有する。例えば、ポリペプチド鎖(類)はＶＤ１-(Ｘ１)ｎ-ＶＤ２-(Ｘ２)ｎ-Ｆｃを有し、ここでＶＤ１は第１の可変ドメインであり、ＶＤ２は第２の可変ドメインであり、ＦｃはＦｃ領域のポリペプチド鎖の一つであり、Ｘ１及びＸ２はアミノ酸又はポリペプチドを表し、ｎは０又は１である。同様に、ポリペプチド鎖(類)は：ＶＨ-ＣＨ１-柔軟なリンカー-ＶＨ-ＣＨ１-Ｆｃ領域鎖；又はＶＨ-ＣＨ１-ＶＨ-ＣＨ１-Ｆｃ領域鎖を有し得る。ここで多価抗体は、好ましくは少なくとも２つ(好ましくは４つ)の軽鎖可変ドメインポリペプチドをさらに有する。ここで多価抗体は、例えば約２〜約８の軽鎖可変ドメインポリペプチドを有する。ここで考察される軽鎖可変ドメインポリペプチドは軽鎖可変ドメインを有し、場合によってはＣＬドメインを更に有する。
【０１９１】
（８）ヘテロコンジュゲート抗体
また、ヘテロコンジュゲート抗体も本発明の範囲に入る。ヘテロコンジュゲート抗体は、２つの共有結合した抗体からなる。例えば、ヘテロコンジュゲートの一方の抗体はアビジンに結合し、他方はビオチンに結合可能である。このような抗体は、例えば、免疫系細胞を不要な細胞に対してターゲティングさせることが提案され、米国特許第４，６７６，９８０号、またＨＩＶ感染の治療のために使用されている。国際公開第ＷＯ９１／００３６０号；同第ＷＯ９２／２００３７３号；欧州特許第０３０８９３６号。該抗体は、クロスリンク剤に関連したものを含む合成タンパク化学における既知の方法を使用して、インビトロで調製することができると考えられる。例えば、ジスルフィド交換反応を使用するか又はチオエーテル結合を形成することによって、免疫毒素を作成することができる。この目的に対して好適な試薬の例には、イミノチオレート及びメチル-４-メルカプトブチリミデート、及び例えば米国特許第4,676,980号に開示されたものが含まれる。ヘテロコンジュゲート抗体は簡便なクロスリンク法を用いて作製してもよい。好適なクロスリンク剤は当業者に周知であり、クロスリンク技術の番号と共に米国特許第４，６７６，９８０号に開示されている。
【０１９２】
（９）エフェクター機能の操作
エフェクター機能を変更及び／又は抗体の血清半減期を増加するように本発明の抗体を改変することが所望されうる。例えば、定常領域のＦｃ受容体結合部位が、特定のＦｃ受容体、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ、及び／又はＦｃγＲＩＩＩに対する結合親和性を除去又は低減するように改変又は変異されうる。幾つかの実施態様では、エフェクター機能は、抗体のＦｃ領域（例えば、ＩｇＧのＣＨ２において）のＮ-グリコシル化を除去することによって損なわれる。幾つかの実施態様では、エフェクター機能は、ヒトＩｇＧの２３３−２３６、２９７、及び／又は３２７−３３１等の領域を修飾することによって損なわれ、ＰＣＴＷＯ９９／５８５７２及びArmour等, Molecular Immunology 40: 585-593 (2003); Reddy等, J. Immunology 164:1925-1933 (2000)に記載される。
【０１９３】
抗体の血清半減期を増大させるために、例えば米国特許第５７３９２７７号に記載のように、抗体(特に抗体断片)へサルベージレセプター結合エピトープを導入してもよい。ここで使用される場合の「サルベージレセプター結合エピトープ」なる用語は、ＩｇＧ分子のインビボ血清半減期を増加させる原因であるＩｇＧ分子(例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４)のＦｃ領域のエピトープを意味する。
【０１９４】
（１０）他のアミノ酸配列修飾
ここで記載の抗体のアミノ酸配列の修飾を考察する。例えば、抗体又は抗体断片の結合親和性及び／又は他の生物学的特性が改善されることが望ましい。抗体又は抗体断片のアミノ酸配列変異体は、適当なヌクレオチド変化を抗体又は抗体断片をコードする核酸に導入することにより、又はペプチド合成により調製される。そのような修飾は、例えば、抗体のアミノ酸配列内の残基の欠失、及び／又は挿入及び／又は置換を含む。欠失、挿入、及び置換の任意の組み合わせは、最終構造物に達するまでなされるが、その最終構造物は所望の特徴（つまり、ＣＤ８３と結合又は物理的相互作用する能力）を有する。また、アミノ酸変化は、グリコシル化部位の数又は位置の変化など、抗体の翻訳後過程を変更しうる。
【０１９５】
突然変異のための好ましい位置にあるアンタゴニストの残基又は領域の同定のために有用な方法は、Cunningham及びWells in Science, 244:1081-1085 (1989)に記載されているように「アラニンスキャンニング突然変異誘発」と呼ばれる。ここで、標的残基の残基又は基が同定され(例えば、ａｒｇ、ａｓｐ、ｈｉｓ、ｌｙｓ、及びｇｌｕ等の荷電残基)、中性又は負荷電アミノ酸(最も好ましくはアラニン又はポリアニリン)に置換され、アミノ酸と標的抗原との相互作用に影響を及ぼす。次いで置換に対する機能的感受性を示すこれらのアミノ酸の位置は、置換部位において又はそれに対して更に又は他の置換を導入することにより精密にされる。即ち、アミノ酸配列変異を導入する部位は予め決定されるが、変異自体の性質は予め決める必要はない。例えば、与えられた部位における変異の性能を分析するために、ａｌａスキャンニング又はランダム突然変異誘発を標的コドン又は領域で実施し、発現された抗体変異体を所望の活性についてスクリーニングする。
【０１９６】
アミノ酸配列挿入は、１残基から１００以上の残基を含むポリペプチドの長さの範囲のアミノ-(「Ｎ」)及び／又はカルボキシル-(「Ｃ」）末端融合物、並びに一又は複数のアミノ酸残基の配列内挿入物を含む。末端挿入物の例は、Ｎ-末端メチオニル残基を持つ抗体又は細胞傷害ポリペプチドに融合した抗体を含む。抗体分子の他の挿入変異体は、抗体の血清半減期を向上させる酵素又はポリペプチドの抗体のＮ-又はＣ-末端への融合物を含む。
【０１９７】
他の型の変異体はアミノ酸置換変異体である。これらの変異体は、異なる残基により置換された抗体分子に、少なくとも一のアミノ酸残基で有する。置換突然変異について最も関心ある部位は高頻度可変領域を含むが、ＦＲ交互変化も考慮される。保存的置換は、「好ましい置換」と題して表Ａに示す。これらの置換が生物活性の変化をもたらす場合、表Ａに「例示的な置換」と名前を付けた又はアミノ酸の分類を参照して以下に更に記載するような、より実質的な変化を導入し、生成物をスクリーニングしてよい。
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【０１９８】
アンタゴニストの生物学的性質における実質的な修飾は、(ａ)置換領域のポリペプチド骨格の構造、例えばシート又は螺旋配置、(ｂ)標的部位の分子の電荷又は疎水性、又は(ｃ)側鎖の嵩を維持するそれらの効果において実質的に異なる置換を選択することにより達成される。天然に生じる残基は共通の側鎖特性に基づいて群に分けられる：
(１)疎水性：ノルロイシン、ｍｅｔ、ａｌａ、ｖａｌ、ｌｅｕ、ｉｌｅ；
(２)中性の親水性：ｃｙｓ、ｓｅｒ、ｔｈｒ、
(３)酸性：ａｓｐ、ｇｌｕ；
(４)塩基性：ａｓｎ、ｇｌｎ、ｈｉｓ、ｌｙｓ、ａｒｇ；
(５)鎖配向に影響する残基：ｇｌｙ、ｐｒｏ；及び
(６)芳香族：ｔｒｐ、ｔｙｒ、ｐｈｅ。
【０１９９】
非保存的置換は、これらの分類の一つのメンバーを他の分類に交換することを必要とするであろう。
【０２００】
抗体の適切な配置の維持に関与しない任意のシステイン残基は、一般にセリンで置換し、分子の酸化的安定性を向上させて異常な架橋を防止する。逆に、抗体にシステイン結合を付加して、その安定性を向上させてもよい(特にここでの抗体は抗体断片、例としてＦｖ断片である)。
【０２０１】
特に好ましい型の置換変異体は、親抗体（例えばヒト化又はヒト抗体）の一又は複数の超可変領域残基の置換を含む。一般的に、さらなる発展のために選択され、得られた変異体(類)は、それらが作製された親抗体と比較して向上した生物学的特性を有している。そのような置換変異体を作製する簡便な方法は、ファージディスプレイを使用する親和成熟を含む。簡潔に言えば、幾つかの超可変領域部位(例えば６-７部位)を突然変異させて各部位における全ての可能なアミノ酸置換を生成させる。このように生成された抗体変異体は、繊維状ファージ粒子から、各粒子内に充填されたＭ１３の遺伝子ＩＩＩ産物への融合物として、一価種類にディスプレイされる。ファージディスプレイ変異体は、ついで、ここに開示されるようなそれらの生物活性(例えば、結合親和性)についてスクリーニングされる。修飾のための候補超可変領域部位を同定するために、アラニンスキャンニング突然変異誘発を実施し、抗原結合に大きく寄与する超可変領域残基を同定することができる。別法として、又はそれに加えて、抗原-抗体複合体の結晶構造を分析して、抗体と抗原ＣＤ８３の接点を特定するのが有利である場合もある。このような接触残基及び隣接残基は、ここに述べた技術に従う置換の候補である。そのような変異体が生成されると、変異体のパネルにここに記載するようなスクリーニングを施し、一又は複数の関連アッセイにおいて優れた特性を持つ抗体を更なる開発のために選択する。
【０２０２】
抗体のアミノ酸変異の他の型は、抗体の元のグリコシル化パターンを変更する。変更とは、抗体に見い出される一又は複数の炭水化物部分の欠失、及び／又は抗体に存在しない一又は複数のグリコシル化部位の付加を意味する。
【０２０３】
抗体のグリコシル化は、典型的には、Ｎ結合又はＯ結合の何れかである。Ｎ結合とは、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物部分の結合を意味する。トリペプチド配列であるアスパラギン-Ｘ-セリン及びアスパラギン-Ｘ-スレオニン、ここでＸはプロリンを除く任意のアミノ酸である、は、アスパラギン側鎖への炭水化物部分の酵素的結合のための認識配列である。従って、ポリペプチド中にこれらのトリペプチド配列の何れかが存在すると、潜在的なグリコシル化部位が作出される。Ｏ-結合グリコシル化は、ヒドロキシアミノ酸、最も一般的にはセリン又はスレオニンに、糖類Ｎ-アセチルガラクトサミン、ガラクトース、又はキシロースの一つが結合することを意味するが、５-ヒドロキシプロリン又は５-ヒドロキシリジンもまた用いられる。
【０２０４】
抗体へのグリコシル化部位の付加は、アミノ酸配列を、それが一又は複数の上述したトリペプチド配列(Ｎ-結合グリコシル化部位のもの)を含むように変化させることによって簡易に達成される。該変化は、元の抗体の配列への一又は複数のセリン又はスレオニン残基の付加、又はこれによる置換によってもなされる(Ｏ-結合グリコシル化部位の場合)。
【０２０５】
抗ＩｇＥ抗体のアミノ酸配列変異体をコードする核酸分子は、この分野で知られた種々の方法によって調製される。これらの方法は、限定するものではないが、天然源からの単離(天然に生じるアミノ酸配列変異体の場合)又は初期に調製された抗体又は抗体断片の変異体又は非変異体のオリゴヌクレオチド媒介(又は部位特異的)突然変異誘発、ＰＣＲ突然変異誘発、及びカセット突然変異誘発による調製を含む。
【０２０６】
（１０）他の抗体修飾
本発明の抗体又は抗体断片は、当技術分野で知られ容易に入手可能である更なる非タンパク質性部分を持つよう更に修飾されることができる。好ましくは、抗体の誘導体化に適した部分は水溶性ポリマーである。水溶性ポリマーの非制限的な例は、限定するものではないが、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、エチレングリコール／プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ-１、３-ジオキソラン、ポリ-１,３,６-トリオキサン、エチレン／無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸（ホモポリマー又はランダムコポリマー）、及びデキストラン又はポリ（ｎ-ビニルピロリドン）ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド／エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチレンポリオール（例えば、グリセロール）、ポリビニルアルコール、及びその混合を含む。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中のその安定性により製造において利点を有しうる。ポリマーは、任意の分子量であり得、分岐又は非分岐でありうる。抗体に結合されるポリマーの数は様々であり得、一以上のポリマーが結合される場合は、それらは同じもしくは異なる分子であってもよい。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数及び／又はタイプは考察に基づいて決定されることが可能であり、限定するものではないが、改良される抗体の特定の特性又は機能、抗体誘導体が決められた条件下の治療で使用されるかどうか等を含む。このような技術及び多の適切な製剤は、Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Ed., Alfonso Gennaro, Ed., Philadelphia College of Pharmacy and Science (2000)に開示されている。
【０２０７】
Ｄ．薬学的組成物及び製剤
ここに記載される抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の治療用組成物及び製剤は、任意の製薬上許容可能な担体、賦形剤又は安定剤と、所望の精製度を有する活性成分とを混合することにより、調製されすることができる(Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Ed., (Gennaro, A.R., ed., Lippincott Williams & Wilkins, Publishers, Philadelphia, PA 2000)。許容される担体、賦形剤又は安定剤は、用いる投与量及び濃度ではレシピエントに対して無毒性であり、緩衝液、アスコルビン酸、メチオニン、ビタミンＥ、異性重亜硫酸ナトリウムを含む抗酸化剤；防腐剤、等張剤(isotonicifier)、安定剤、金属複合体（例えば、Zn-タンパク質複合体）；ＥＤＴＡ等のキレート剤及び／又は非イオン性界面活性剤等を含む。
【０２０８】
緩衝液（バッファ）は、特にｐＨに依存して安定する場合に、治療的有効性が最適になる範囲にｐＨを調節するために用いる。緩衝液は約５０ｍＭから２５０ｍＭの濃度範囲であるのが好ましい。本発明の使用のために好適な緩衝剤には、有機及び無機酸の両方とそれらの塩が含まれる。例えば、クエン酸塩、リン酸塩、琥珀酸塩、酒石酸塩、フマル酸塩、グルコン酸塩、シュウ酸塩、乳酸塩、酢酸塩。更に、緩衝液はトリスのようなヒスチジン及びトリメチルアミンからなり得る。
【０２０９】
防腐剤（保存剤）は細菌の成長を遅らせるために一般的に０．２％−１．０％（ｗ／ｖ）の範囲で添加される。本発明の使用に好適な保存剤には、塩化オクタデシルジメチルベンジルアンモニウム；塩化ヘキサメトニウム；ベンザルコニウムハロゲン化合物（例えば、塩化物、臭化物、ヨウ化物）、塩化ベンゼトニウム；チメロサール、フェノール、ブチル及びベンジルアルコール；メチル又はプロピルパラベンなどのアルキルパラベン；カテコール；レゾルシノール；シクロヘキサノール、３-ペンタノール、及びｍ-クレゾールが含まれる。
【０２１０】
時に「安定剤」としても知られる緊張剤は、液体成分の緊張性を調節又は維持するためにある。タンパク質や抗体のような大きな、荷電した生体分子と共に用いる場合、アミノ酸側鎖の荷電基と相互作用して分子内及び分子間相互作用を潜在的に減少させるのでたびたび「安定剤」と呼称される。緊張剤は重量にして０．１％〜２５％の間、より好ましくは１％〜５％の間で、他の成分との相対的な量を考慮して任意の量で加える。好ましい緊張剤には、多価糖質アルコール類、好ましくは三水素又はより高い糖質アルコール類、例えばグリセリン、エリトリトール、アラビトール、キシリトール、ソルビトール及びマンニトールが含まれる。
【０２１１】
更なる賦形剤には、以下のうちの一以上の役割をする薬剤が含まれる：（１）充填剤、（２）溶解亢進剤、（３）安定剤及び（４）変性や容器壁への付着を防止する作用剤。安定剤は活性なタンパク質又は抗体の重量当たり０．１〜１００００分の１の範囲で加えることができる。このような賦形剤には：多価糖質アルコール類（上記を列挙した）；アミノ酸、例えばアラニン、グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、リジン、オルニチン、ロイシン、２-フェニルアラニン、グルタミン酸、トレオニン、その他；有機糖質または糖質アルコール類、例えば蔗糖、ラクトース、ラクチトール(lactitol)、トレハロース、スタキオース、マンノース、ソルボース、キシロース、リボース、リビトール、ミオイノシトース(myoinisitose)、ミオイノシトール、ガラクトース、ガラクチトール、グリセロール、シクリトール（例えばイノシトール）、ポリエチレングリコール）；硫黄を含んでいる還元剤、例えば尿素、グルタチオン、チオクト酸、ナトリウムチオグリコール酸塩、チオグリセロール、α-モノチオグリセロール及びナトリウムチオ硫酸塩；低分子量のタンパク質、例えばヒト血清アルブミン、ウシ血清アルブミン、ゼラチンまたは他の免疫グロブリン；親水性ポリマー、例えばポリビニルピロリドン；単糖類（例えば、キシロース、マンノース、フルクトース、ブドウ糖）；二糖類（例えばラクトース、マルトース、蔗糖）；三糖類（例えばラフィノース）；及び多糖類（例えばデキストリンまたはデキストラン）が含まれる。
【０２１２】
非イオン性界面活性剤又は洗浄剤（「湿潤剤」としても知られている）は、攪拌誘導性凝集から治療的タンパク質を保護するだけでなく治療的薬剤を溶解するのを促進し、それによって製剤が曝され、活性な治療的タンパク質又は抗体の変性の原因となることなく表面ストレスを剥奪する。非イオン性界面活性剤は約０．０５ｍｇ／ｍｌ〜約１．０ｍｇ／ｍｌ、好ましくは約０．０７ｍｇ／ｍｌ〜約０．２ｍｇ／ｍｌの範囲内で加える。
【０２１３】
好適な非イオン性界面活性剤には、ポリソルベート（２０，４０，６０，６５，８０，等）、ポリオキサマー（１８４，１８８，等）、ピューロニック(Pluronic)（登録商標）、ポリオルズ(polyols)、トリトン（登録商標）、ポリオキシエチレンソルビタンモノエーテル（トゥイーン（登録商標）-２０、トゥイーン（登録商標）-８０、等）、ラウロマクロゴール４００、ステアリン酸ポリオキシル４０、ポリオキシエチレン水素化されたヒマシ油１０、５０及び６０、グリセロールモノステアレート、スクロース脂肪酸エステル、メチルセルロース及びカルボキシメチルセルロースが含まれる。使用可能な陰イオン洗剤には、ドデシル硫酸ナトリウム、ジオクチルナトリウムスルホサクシネート及びジオクチルナトリウムスルホン酸塩が含まれる。陽イオン洗剤には、塩化ベンザルコニウムまたは塩化ベンゼトニウムが含まれる。
【０２１４】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を含んでなる薬学的製剤をインビボ投与に用いるために、滅菌しなければいけない。滅菌濾過膜に濾過することによって製剤を無菌的に精製してもよい。ここでいう医薬組成物は一般的に、滅菌したアクセスポートを有する容器、例えば、静脈溶液バッグ又は皮下注射針によって穴を開けることができる栓を有するバイアルに納めてある。
【０２１５】
投与方法は公知で適応できる方法に従う、例として、単回又は複数回のボーラス投与、又は好適な方法での長時間をかけての輸液、例えば、皮下、静脈内、腹膜内、筋肉内、動脈内、病巣内、関節内による注入又は輸液、局所投与、吸入、又は持続的除放あるいは伸展的除放方法による。
【０２１６】
また、ここでいう抗ＣＤ８３アゴニスト抗体組成物及び製剤は、治療する特定の症状に必要な一以上の活性な化合物、好ましくはお互い悪影響を示さない相補的活性を有する化合物を含んでよい。あるいは又は加えて、化合物は細胞障害性剤、サイトカイン又は成長阻害性剤を含んでよい。そのような分子は意図する目的に有効な量で適切に組み合わせる。
【０２１７】
また、活性成分は、例えばコアセルベーション技術により又は界面重合により調製されたマイクロカプセル、例えば、各々ヒドロキシメチルセルロース又はゼラチン-マイクロカプセル及びポリ(メタクリル酸メチル)マイクロカプセル中、コロイド状薬物送達系(例えば、リポソーム、アルブミン小球、マイクロエマルション、ナノ粒子及びナノカプセル)中、又はマイクロエマルション中に包括されていてもよい。これらの技術はRemington's Pharmaceutical Sciences 20th Edition（上掲）に開示されている。
【０２１８】
ここで開示したタンパク質及び抗体の安定性は、非毒性の「水溶性多価金属塩」の使用により亢進されるであろう。例として、Ｃａ２＋、Ｍｇ２＋、Ｚｎ２＋、Ｆｅ２＋、Ｆｅ３＋、Ｃｕ２＋、Ｓｎ２＋、Ｓｎ４＋、Ａｌ２＋、及びＡｌ３＋が含まれる。上記多価金属陽イオンと共に水溶性塩を形成する例示的な陰イオンには、無機酸及び／又は有機酸によって形成されるものが含まれる。このような水溶性塩は水（２０℃）において、少なくとも２０ｍｇ／ｍｌ、或いは１００ｍｇ／ｍｌ、或いは２００ｍｇ／ｍｌまで可溶性である。
【０２１９】
「水溶性多価金属塩」を形成するのに使用可能な好適な無機酸には、塩酸、酢酸、硫酸、硝酸、チオシアン酸及びリン酸が含まれる。使用可能な好適な有機酸には、脂肪族カルボン酸及び芳香族の酸が含まれる。この定義の範囲内の脂肪族の酸は、飽和又は不飽和Ｃ２−９カルボン酸（例えば、脂肪族モノ-、ジ-及びトリ-カルボン酸）と定義してよい。例として、この定義の範囲内の例示的モノカルボン酸には、飽和Ｃ２−９モノカルボン酢酸(monocarboxylic acids acetic)、プロピオン酸、酪酸、バレリアン酸、カプロン酸、エナント酸、カプリルペラルゴン酸及びカプリオニック(capryonic)酸、及び不飽和Ｃ２−９モノカルボン酸アクリル(monocarboxylic acids acrylic)、プロピオン酸、メタクリル酸、クロトン酸及びイソクロトン酸が含まれる。例示的ジカルボン酸には、飽和Ｃ２−９ジカルボン酸マロン(dicarboxylic acids malonic)、コハク酸、グルタル酸、脂肪酸及びピメリン酸が含まれ、一方、不飽和Ｃ２−９ジカルボン酸にはマレイン酸、フマル酸、シトラコニック(citraconic)酸及びメサコン酸が含まれる。例示的トリカルボン酸には、不飽和Ｃ２−９トリカルボン酸トリカルバリル酸及び１,２,３-ブタネトリカルボキシル酸が含まれる。更にまた、この定義のカルボン酸は、ヒドロキシカルボン酸を形成するように一又は二の水酸基を持つ。例示的ヒドロキシカルボン酸には、グリコール酸、乳酸、グリセリン酸、タルトロン酸、リンゴ酸、酒石酸及びクエン酸が含まれる。この定義の範囲内の芳香族の酸は、安息香酸性及びサリチル酸酸を含む。
【０２２０】
本発明のカプセル化ポリペプチドを安定化を亢進するために使用可能な一般的に用いられる水溶性多価金属塩には、例として：（１）ハロゲン化物（例えば塩化亜鉛、塩化カルシウム）、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩及びチオシアン酸塩の無機酸性金属塩類；（２）脂肪族カルボン酸金属塩（例えば酢酸カルシウム、酢酸亜鉛、カルシウムプロピオン酸、亜鉛グリコール酸塩、カルシウム乳酸塩、亜鉛乳酸塩及び亜鉛酒石酸塩）；及び（３）ベンゾアートの芳香族のカルボン酸金属塩（例えば亜鉛ベンゾアート）及びサリチル酸塩が含まれる。
【０２２１】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の薬学的製剤は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を直ちに放出するように（「即放性」製剤）、長期間にわたって抗体を徐々に放出するように(「持続放出性」、「制御放出性」又は「徐放性」製剤)、又は別の放出プロファイルと共にデザインされてもよい。薬学的製剤を調整するために使用される更なる材料は、製剤の治療形態に依存して様々でありえる（例えば、そのシステムが即放性又は持続放出性、制御放出性、又は徐放性かどうか）。あるバリエーションでは、持続放出性製剤は、ドラッグデリバリー後にプライミング投与量を速く送達するために即放性要素、並びに持続放出性要素を更に含んでも良い。このように持続放出性製剤は、システムへの薬物の急速な「バースト」、並びに長い段階的な放出を提供するために、即放性製剤と組み合わせることが可能である。例えば、コアの持続放出性製剤は、薬物を取り込んでいる高可溶性層でコートされうる。あるいは、持続放出性製剤及び即放性製剤は、錠剤において交互の層として、又はカプセルにおいて別個の顆粒タイプとして含まれうる。異なるタイプの製剤の他の組合せが、所望の治療血漿プロファイルを得るために使用されることができる。
【０２２２】
例示的な持続放出性投与製剤（上掲のRemington's Pharmaceutical Sciences 20th Editionで検討される）は、広範なドラッグデリバリーシステムを含むことができ、以下のものを利用するものを含む：（ａ）薬物がポリマー膜に被包されており、薬物を溶解するために水が膜を通して拡散することが可能であり、次いでこれが装置から拡散するリザーバー系；（ｂ）薬物がポリマーマトリックス中に懸濁されており、マトリックスが溶解又は分解すると徐々に外に拡散するマトリックス系（勾配又は一体化）；（ｃ）マイクロカプセル化及びコーティング化されており、直径１マイクロメーター（「μｍ」；１０−６ｍ）程の小さい薬物粒子（又は薬物及びポリマーの粒子）がポリマー膜にコーティングされているものであって、異なる放出特徴を有するポリマー（ｐＨ依存性又は非ｐＨ依存性ポリマー、異なる水溶解度を有する化合物等）でコーティングされた粒子が単カプセルにおいて共に送達される実施態様を含む顆粒系；（ｄ）（ｉ）浸透物質及び薬物が半透膜にカプセル化されており、浸透勾配が水を装置内に引き込み、増加した圧力が薬物を膜の孔を介して装置から送りだす、浸透圧的に制御された装置（例えば、ＯＲＯＳ（登録商標）, Alza Corp., Mountain View, CA）；（ｉｉ）薬物がポリマー内に分散及び／又はポリマーが薬物の粒子上にコートされており、ポリマーは水との接触で膨張し（ある実施態様では、膨張はｐＨ依存性、ｐＨ非依存性、又は他の物理的又は化学的特徴に依存する）、装置からの薬物の拡散を可能にするハイドロゲル膨張系；（ｉｉｉ）薬物は水との接触で溶解する要素を有する膜にカプセル化されており（ある実施態様では、膨張はｐＨ依存性、ｐＨ非依存性、又は他の物理的又は化学的特徴に依存する）、膜に孔を産生し、それを通して薬物が拡散する微小孔性膜系；及び（ｉｖ）薬物及び付加可溶性要素がワックス内に分散されており、水が可溶性要素を溶解する時、システムからの薬物の分散が可能になるものを含むワックスマトリックス系を含む溶媒活性化系；及び（ｅ）（ｉ）薬物がポリマーマトリックス中に分散されており、分解がランダム様にポリマー構造中くまなく発生し、薬物放出を可能にするバルク分解；及び（ｉｉ）薬物がポリマーマトリックス中に分散されており、ポリマーの表面が浸食すると薬物が送達される表面浸食を含むポリマー分解系。
【０２２３】
Ｅ．治療の方法
本発明は、個体において自己免疫疾患（炎症性腸疾患（ＩＢＤ）等）を治療又は防止する方法を提供し、個体に有効量のここに記載の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与することを含んでなる。幾つかの実施態様では、個体はヒトである。幾つかの実施態様では、自己免疫疾患は、関節リウマチ、若年性関節リウマチ、全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）、ループス腎炎、潰瘍性大腸炎、ウェゲナー疾患（Wegener's disease）、炎症性腸疾患、特発性血小板減少性紫斑病（ＩＴＰ）、血栓性血小板減少性紫斑病（ＴＴＰ）、自己免疫性血小板減少症、多発性硬化症、乾癬、ＩｇＡ腎症、ＩｇＭ多発ニューロパチー、重症筋無力症、血管炎、糖尿病、レイノー症候群、シェーグレン症候群及び糸球体腎炎から成る群から選択される。幾つかの実施態様では、個体は、病因において骨髄系細胞活性化(樹状細胞及びマクロファージ)を伴う自己免疫疾患を発生する危険性を有する。幾つかの実施態様では、個体はＩＢＤを有する、又はＩＢＤを発生する危険性にある。
【０２２４】
ＩＢＤは、潰瘍性大腸炎（ＵＣ）、クローン病、又は不確定大腸炎でありうる。幾つかの実施態様では、ＩＢＤを有する個体は、ＩＢＤの一又は複数の徴候、症状、又は他の指標を経験している又は経験した、又はＩＢＤであると診断されたものである。ＩＢＤを有する個体は、ステロイド抵抗性及び／又はステロイド依存性ＩＢＤ、ステロイド抵抗性及び／又はステロイド依存性ＵＣ又はステロイド抵抗性及び／又はステロイド依存性クローン病を有しうる。「ステロイド抵抗性」ＩＢＤは、ＩＢＤを伴う被験体にステロイドが投与されても、進行又は悪化するＩＢＤである。「ステロイド依存性」ＩＢＤを伴う個体は、ステロイド使用に依存性であり、臨床症状の急性増悪無くステロイド投与を減らす又は中止することができない。
【０２２５】
抗ＣＤ８３抗体の投与は、臨床応答及び／又は疾患寛解となりうる。ここで使用される場合、「臨床応答」とは、疾患の症状の改善を意味する。「疾患寛解」とは、疾患の症状のエビデンスが実質的に無いことを示す。臨床応答又は疾患寛解は、特定のタイムフレーム内で達成され得、例えば、アンタゴニストでの治療の開始から、又はアンタゴニストの初回投与から約８週間で又は以内でありうる。また臨床応答は、期間の間持続され得、２４週間以上、又は４８週間以上などである。幾つかの実施態様では、ＩＢＤに伴う体重減少は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を用いた治療により低減及び／又は除かれうる。幾つかの実施態様では、ここに記載の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を用いた治療は、ＩＢＤを有する個体における胃腸組織の粘膜損傷を防止、及び／又は上皮修復を支援する。
【０２２６】
ＩＢＤに伴う症状は、腹痛、嘔吐、下痢、血便（便中の鮮紅色の血液）、及び体重減少を含む。更なる試験がＩＢＤの診断に実行されうる。例えば、全血球計算、電解質パネル、肝機能検査（ＬＦＴ）、便潜血検査、Ｘ線(バリウム注腸及び上部消化管撮影を含む)、S状結腸鏡検査、大腸内視鏡検査、及び上部消化管内視鏡検査が使用されうる。当技術分野で知られる様々なスコアシステムが、疾患の重症度を定量的に評価するために使用されうる。
【０２２７】
疾患の防止又は治療に対し、活性剤（すなわち抗ＣＤ８３アゴニスト抗体）の適切な用量は、治療される疾患のタイプ、疾患の重症度及び経過、薬剤が予防又は治療目的のために投与されるかどうか、患者の臨床歴及び薬剤に対する反応、及び主治医の裁量に依存するだろう。特定の投与計画、すなわち用量、時間、及び反復は、特定の個体及び医師によって評価される個々の病歴に依存するだろう。典型的には、臨床医は、所望の結果に達する用量まで抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与するだろう。
【０２２８】
本発明の方法は、個体における自己免疫疾患（ＩＢＤ等）の症状の治療、寛解又は緩和、又は自己免疫疾患に苦しむ個体の予後の改善に有用である。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を用いた治療後、疾患を患っている個体の生活の質が改善され得、また症状が軽減又は除去され得る。また本発明の方法は、疾患を展開させる危険性にある個体における自己免疫疾患（ＩＢＤ等）の展開の遅延又は防止に有用である。ここに記載の何れかの抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が個体に投与されうる。
【０２２９】
Ｆ．併用療法
本発明の方法は、併用又は付加治療工程として、又は治療用製剤の付加要素として、自己免疫疾患（ＩＢＤ等）に対する既知の治療方法と組み合わせてもよい。あるいは、異なる抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が組み合わせて投与されうる。選択される併用療法のタイプは、疾患の臨床症状に依存するだろう。
【０２３０】
例えば、ＩＢＤ（潰瘍性大腸炎、クローン病、又は不確定大腸炎等）は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体をＩＢＤに対する第二医薬と併用して投与することを含んでなる併用療法によって治療されることが可能である。このような第二医薬のタイプは様々な要因に依存し、ＩＢＤのタイプ、ＩＢＤの重症度、被験体の状態及び年齢、用いられる第一医薬の用量等を含む。幾つかの実施態様では、第二医薬は、一又は複数のアミノサリチル酸、コルチコステロイド、及び免疫抑制剤を含む。幾つかの実施態様では、アミノサリチル酸は、スルファサラジン、オルサラジン、メサラミン、バルサラジド、及びアサコールの内の一つである。幾つかの実施態様では、複数のアミノサリチル酸が共投与され、例えばスルファサラジン及びオルサラジンの組合せである。幾つかの実施態様では、コルチコステロイドは、ブデソニド、プレドニゾン、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロン、６-メルカプトプリン（６-ＭＰ）、アザチオプリン、メトトレキサート、又はシクロスポリンである。幾つかの実施態様では、第二医薬は、シプロフロキサシン及び／又はメトロニダゾール等の抗生物質；又はインフリキシマブ（Ｒｅｍｉｃａｄｅ（登録商標））等の抗体ベース薬剤である。
【０２３１】
全てのこれらの第二医薬は互いに組み合わせて又はそれ自体で、第一医薬と共に使用され得、「第二医薬」なる表現は、ここで使用される場合、それぞれ、第一医薬の他の唯一の医薬であることを意味しない。従って、第二医薬は、一つの医薬である必要はなく、一以上のこのような薬剤から成る、又はを含みうる。
【０２３２】
ここに説明した第二医薬は一般に、上記で使用したのと同じ薬用量及び投与経路で、又は上記で使用した薬用量の約１から９９％で使用される。このような第二医薬が使用される場合は、特に第一医薬による初回投与の後の連続的投与においては治療による副作用を除く又は低減するために、好ましくは第一医薬が存在しない場合より少ない量で使用される。
【０２３３】
ここでの併用投与は、別個の製剤又は単一の薬学的製剤を使用する同時投与、及び好ましくは両（又は全）活性薬剤がそれらの生物学的活性を同時に呈する時間がある連続投与（任意の順）を含む。
【０２３４】
Ｇ．薬剤用量
本発明の医薬品組成物の用量及び所望の薬物濃度は、想定する特定の使用によって変化する。適当な用量の測定または投与のルートは、当分野の技術の範囲内でよい。動物実験は、ヒト治療のための有効量の決定のための確実な手引きとなる。有効量の異種間スケーリングは、Mordenti, J. 及び Chappell, W. 「The Use of Interspecies Scaling in Toxicokinetics」, In Toxicokinetics and New Drug Development, Yacobi 等, 編集, Pergamon Press, New York 1989, pp.42-46.に記載の原理に従って行うことができる。
【０２３５】
ここに記載のポリペプチド又は抗体のインビボ投与では、通常の用量は、１日あたり、個体の体重の約１０ｎｇ／ｋｇから約１００ｍｇ／ｋｇまで変化し得、又はそれ以上であってもよく、好ましくは約１ｍｇ／ｋｇ／日から１０ｍｇ／ｋｇ／日であり、投与の経路による。数日間又はそれ以上にわたる反復投与は、治療される疾患又は障害の重症度に異存して、治療は症状の所望の抑制が得られるまで持続される。
【０２３６】
例示的な投与計画は、約２ｍｇ／ｋｇの抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の初回投与量、その後隔週で約１ｍｇ／ｋｇの週間維持投与量を投与することを含む。他の投与計画が有用であり得、医師が希望する薬物動態減衰のパターンに依存する。例えば、個体に週に１から２１回投与することをここで検討する。ある実施態様では、約３μｇ／ｋｇから約２ｍｇ／ｋｇ（約３μｇ／ｋｇ、約１０μｇ／ｋｇ、約３０μｇ／ｋｇ、約１００μｇ／ｋｇ、約３００μｇ／ｋｇ、約１ｍｇ／ｋｇ、及び約２／ｍｇ／ｋｇ等)の範囲の投与が使用されうる。ある実施態様では、投与頻度は、日に３回、日に２回、日に１回、隔日、週に１回、２週に１回、４週に１回、５週に１回、６週に１回、７週に１回、８週に１回、９週に１回、１０週に１回、又は付きに１回、２ヶ月に１回、３ヶ月に１回、又はそれより長い間隔である。治療の経過は、一般的な技術及びアッセイによって容易にモニタされる。投与計画は、投与される抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を含め、使用される用量とは独立して経時に様々であってよい。
【０２３７】
特定の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の用量は、一又は複数の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の投与が与えられた個体において経験的に決定されうる。個体は、漸増用量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が与えられる。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の効果を評価するために、自己免疫疾患（ＩＢＤ等）の臨床的症状がモニタされうる。
【０２３８】
本発明の方法による抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の投与は、持続的又は間欠的であり得、例えばレシピエントの生理的状態、投与の目的が治療的であるか又は予防的であるか、及び技術を持つ実践者に知られている他の要因に依存する。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の投与は、予め選択された期間にわたり基本的に連続的であってもよく、又は例えば自己免疫疾患（潰瘍性大腸炎、及びクローン病等）の発生の間又は後に、一連の間隔投与であってもよい。
【０２３９】
特定の用量及び運搬の方法に関する手引きは、文献に示される；例として、米国特許第４，６５７，７６０号；５，２０６，３４４；又は５，２２５，２１２を参照。異なる製剤が異なる処置及び異なる疾患のために効果的であること、及び特定の器官または組織を治療することを目的とする投与は他の器官または組織への投与と異なる方法で運搬する必要があることは本発明の範囲内である。さらに、用量は、一つ以上の別々の投与によって、又は持続性点滴によって投与することができる。数日以上にわたる繰り返し投与の処置は、症状に応じて、疾患症状が希望通りに抑制されるまで継続する。しかしながら、他の投与計画は有効でありうる。この治療の進行は、従来技術及びアッセイにより容易にモニターされる。
【０２４０】
Ｈ．製剤の投与
限定はしないが、再構成される製剤を含む本発明の製剤（例えば、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の製剤）は、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体による治療を必要としている個体、好ましくはヒト、に対して、ボーラス又はある期間にわたる連続的注入による静脈内投与、筋肉内、腹腔内、脳脊髄内、皮下、関節内、滑膜内、腱鞘内、口内、局部的又は吸入経路による既知の方法に従い投与される。
【０２４１】
好ましい実施態様では、製剤は皮下（すなわち、皮膚の下）投与によって個体に投与される。かかる目的のため、製剤はシリンジを用いて注射される。しかし、製剤の投与のための他の装置、例えば、注射装置（例えば、Inject-easeTM及びGenjectTM装置）；インジェクターペン（GenPenTMなど）；自動インジェクター装置、針なし装置（例えば、MediJectorTM及びBioJectorTM）；及び皮下パッチ送達システムなどが利用可能である。
【０２４２】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の適当な投与量（「有効量」）は、例えば、治療される状態、状態の重篤性及び経過、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が予防的又は治療的目的で投与されかどうか、治療歴、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体に対する患者の臨床歴及び反応性、使用される抗ＣＤ８３アゴニスト抗体のタイプ、及び主治医の判断に依存するであろう。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、一時期に又は一連の治療にわたり適切に投与され、その後の診断による任意の時期に患者に投与される。抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は、単一の治療として、又は自己免疫疾患（例えばＩＢＤ）の治療において有用な他の薬剤又は療法と併せて投与してもよい。
【０２４３】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の場合、例えば、一回又は複数回に分けての投与のいずれであっても、個体への投与に関する初回の推奨される投与量は、約０．１ｍｇ／ｋｇ−約２０ｍｇ／ｋｇである。しかし、他の投与計画が有効な場合もある。本治療の進捗は、従来の技術によって容易にモニターすることができる。
【０２４４】
抗ＣＤ８３アゴニスト抗体製剤の使用には、自己免疫疾患（ＩＢＤ等）の治療又は予防が含まれる。治療される疾患の重症度に依存して、有効量（例えば、約１ｍｇ／ｋｇから約１５ｍｇ／ｋｇ）の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体が個体に投与される。
【０２４５】
Ｉ．製造品及びキット
別の態様では、製造品又はキットが提供され、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体製剤を含み、好ましくは本発明の使用におけるそれの使用に対する指示を提供する。従って、ある実施態様では、製造品又はキットは、個体においてＩＢＤ（潰瘍性大腸炎及びクローン病を含む）等の自己免疫疾患を治療又は防ぐための方法における、抗ＣＤ８３アゴニスト抗体の使用に対する指示を含み、個体に有効量の抗ＣＤ８３アゴニスト抗体を投与することを含んでなる。ある実施態様では、個体はヒトである。
【０２４６】
製造品又はキットは容器を更に含んでいてもよい。適切な容器は、例えばボトル、バイアル（例えば二重チャンババイアル））、シリンジ（単又は二重チャンバシリンジ）及び試験管を含む。容器は、ガラス又はプラスチック等様々な材料から形成されうる。容器は製剤を保持する。製造品又はキットはラベル又はパッケージ挿入物を更に含んでもよく、容器上にあるか又は付随し、製剤の再構成及び／又は使用のための指示を示しうる。ラベル又はパッケージ挿入物は、個体における自己免疫疾患（ＩＤＢ等）の治療又は防止に対し、皮下又は他の方法の投与に対して、製剤が有用又は対照とすることを更に示しうる。製剤を収容する容器は、使い捨てバイアル又は、再構成製剤の反復投与（例えば２−６投与）を可能にする複数使用バイアルであってもよ。製造品又はキットは、適切な希釈剤（例えばＢＷＦＩ）を含んでなる第二容器を更に有してもよい。希釈剤及び凍結乾燥製剤の混合の際、再構成製剤における最終タンパク質、ポリペプチド、又は小分子濃度は、一般に、少なくとも５０ｍｇ／ｍｌであろう。製造品又はキットは、商業的、治療的、及び使用者観点から望ましい他の材料を更に含み得、他のバッファー、希釈剤、フィルター、針、シリンジ、使用に対する説明を有するパッケージ挿入物を含む。
【０２４７】
ここでの製造品又はキットは、場合によっては、第二医薬を含んでなる容器を更に有し、ここで抗ＣＤ８３アゴニスト抗体は第一医薬であり、そして、この製造品は、有効量における第二医薬を用いて被験体を治療するための、パッケージ挿入物の指示を更に含む。第二医薬は、上に記載のものの何れかであり得、抗ＣＤ８３抗体がＩＢＤ治療のために使用される場合、例示的な第二医薬は、アミノサリチル酸、経口ステロイド剤、６-メルカプトプリン（６-ＭＰ）、及びアザチオプリンである。
【０２４８】
別の実施態様では、ここで提供されるものは、自動注入器における投与に対するここに記載の製剤を含んでなる製造品又はキットである。自動注入器は、作動の際に、患者又は投与者の更なる必要な行動無しでその内容物を送達するだろう。それらは、送達速度が一定でなければならなく、また送達時間が数分より長い場合に、治療製剤のセルフメディケーションに特に適している。
【０２４９】
本発明は、以下の実施例の参照により、より十分に理解されるだろう。しかしながら、それらは本発明の範囲を制限するとして解釈されるべきではない。開示にわたる全ての引用を、出典明記により本明細書に援用する。
実施例
ＣＤ８３は、成熟樹状細胞（ＤＣ）の表面に主に見られる、Ｉｇスーパーファミリーの良く保存されたタイプ１膜タンパク質である。可溶性ＣＤ８３は免疫抑制活性を有するが、ＤＣ上でのＣＤ８３の機能及びその推定リガンドは未知のままである。我々は、ＤＣに抗炎症性作用を誘発するＣＤ８３ホモタイプ相互作用を同定した。ＤＣ成熟間の可溶性ＣＤ８３又は抗ＣＤ８３抗体での処理は、表面活性化マーカーの発現及びＩＬ-１２ｐ４０等の炎症促進性サイトカインの分泌の低下となった。表面ＣＤ８３発現のノックダウン、又は細胞質領域のトランケーションは、ＣＤ８３治療への反応を抑止し、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用が炎症の阻害を媒介することを示した。ＭＡＰＫ及びｍＴＯＲシグナル伝達はこの抑止の下流で機能し、ＣＤ８３処置は、表面活性化マーカー発現及びＩＬ-１２ｐ４０産生に必要であるｍＴＯＲ及びｐ３８αのリン酸化を阻害する。ＣＤ８３免疫抑制は、寛容及び免疫間のバランスの維持の中心であり、粘膜表面でＣＤ８３を過剰発現するマウスは大腸炎により抵抗性であり、体重維持及び低下血清サイトカインレベルにつながる。このように、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用は、ＤＣ免疫反応を調整し、不適切な炎症を防ぎ寛容を促進する。
【０２５０】
実施例１．ＣＤ８３は細胞表面でのホモタイプ結合に関与する
細胞表面上に発現されるＣＤ８３に可溶性ＣＤ８３が結合するか決定するために、アミノ酸配列
ＴＰＥＶＫＶＡＣＳＥＤＶＤＬＰＣＴＡＰＷＤＰＱＶＰＹＴＶＳＷＶＫＬＬＥＧＧＥＥＲＭＥＴＰＱＥＤＨＬＲＧＱＨＹＨＱＫＧＱＮＧＳＦＤＡＰＮＥＲＰＹＳＬＫＩＲＮＴＴＳＣＮＳＧＴＹＲＣＴＬＱＤＰＤＧＱＲＮＬＳＧＫＶＩＬＲＶＴＧＣＰＡＱＲＫＥＥＴＦＫＫＹＧＲＡＱＶＴＤＫＡＡＨＹＴＬＣＰＰＣＰＡＰＥＬＬＧＧＰＳＶＦＬＦＰＰＫＰＫＤＴＬＭＩＳＲＴＰＥＶＴＣＶＶＶＤＶＳＨＥＤＰＥＶＫＦＮＷＹＶＤＧＶＥＶＨＮＡＫＴＫＰＲＥＥＱＹＮＳＴＹＲＶＶＳＶＬＴＶＬＨＱＤＷＬＮＧＫＥＹＫＣＫＶＳＮＫＡＬＰＡＰＩＥＫＴＩＳＫＡＫＧＱＰＲＥＰＱＶＹＴＬＰＰＳＲＥＥＭＴＫＮＱＶＳＬＴＣＬＶＫＧＦＹＰＳＤＩＡＶＥＷＥＳＮＧＱＰＥＮＮＹＫＴＴＰＰＶＬＤＳＤＧＳＦＦＬＹＳＫＬＴＶＤＫＳＲＷＱＱＧＮＶＦＳＣＳＶＭＨＥＡＬＨＮＨＹＴＱＫＳＬＳＬＳＰＧＫ（配列番号：３）
を含んでなるＣＤ８３．ｆｃを生成し、ＣＨＯ細胞（ＣＨＯ-ｈＣＤ８３）上に安定的に発現されるヒトＣＤ８３、又はＭＵＴＺ-３由来成熟樹状細胞（ｍＤＣ）上で発現される内因性ＣＤ８３の何れかに結合するその能力を評価した。安定ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞株の産生のための発現ベクターを生成するために、Ｎ末端ＨＩＳタグヒトＣＤ８３（ｈＣＤ８３）をコードするＤＮＡ断片を、位置ＸｂａＩ及びＸｈｏＩで、ネオマイシン耐性プラスミド、ｐＲＫｎｅｏ(Crowley等, Proc Natl Acad Sci USA., 90(11):5021-5025, 1993)にクローニングしてｈＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏを生成した。ＣＨＯ細胞をＦｕｇｅｎｅ(Roche)を使用してｈＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏで形質移入し、上位１０％のＣＤ８３陽性細胞をＦＡＣＳで選別し、次いでＧ４１８（４００μｇ／ｍｌ；ＧＩＢＣＯ）を用いて選択し、安定ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞株を生成した。ＭＵＴＺ-３細胞から未熟ＤＣ（ｉＤＣ）を得るため、細胞を、１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおいて培養した。ＤＣを、２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１ｂ、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦα及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有するサイトカインカクテルを用いて、ＣＤ８３の表面発現に対して成熟させた。
【０２５１】
ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞及びＭＵＴＺ-３由来ｍＤＣ上のＣＤ８３発現を、ＣＤ８３に対する蛍光色素コンジュゲート抗体を用いて細胞を染色し、ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェア(Becton Dickinson)を使用してＬＳＲ ＩＩフローサイトメトリーでフローサイトメトリーによって細胞を分析することによって確認した。非特異的染色のレベルを決定するために、標識されたアイソタイプ適合抗体を使用した。ＦｌｏｗＪｏ ｖ．８．４．５を使用した、データ解析及び全結合を示すヒストグラムの構築は、ＣＤ８３が、安定的に形質移入されたＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞（黒線）の表面で発現され、コントロールＣＨＯ細胞（破線）では発現されないことを示した（図１Ａ）。ＣＤ８３は、ＭＵＴＺ-３由来ｍＤＣ（黒線）で発現されたが、ｉＤＣ（灰色線)では非常に低いレベルであった（図１Ｂ）。中実ヒストグラムはアイソタイプコントロールを表す。細胞表面ＣＤ８３発現の確認の後、ＣＨＯ細胞及びＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞を４％のＰＦＡにおいて５分間固定し、次いで冷却１ＸＰＢＳで洗浄した。細胞をＰＢＳ／２％ＢＳＡ／２ｍＭ ＥＤＴＡを含有するＦＡＣＳバッファーに再懸濁し、１μｇのＰＥ-標識ＣＤ８３．Ｆｃ又は標識ＩｇＧ．Ｆｃコントロールタンパク質で、氷上で暗所において３０分間インキュベートした。細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、フローサイトメトリーで分析した。ｉＤＣ及びｍＤＣについては、固定化及びフローサイトメトリーの前に、細胞を１０μｇ／ｍｌのＰＥ-標識ＣＤ８３．Ｆｃ又は標識ＩｇＧ．Ｆｃコントロールタンパク質で標識した。データ解析は、ＣＤ８３．ｆｃはＣＨＯ-ｈＣＤ８３（黒線）に結合するが、コントロールＣＨＯ細胞（破線）には結合しないことを示した（図１Ｃ）。更に、ＣＤ８３．ｆｃは成熟ＤＣ（黒線）に結合したが、未熟ＤＣ（灰色線）には結合しなかった（図１Ｄ）。これらの結果は、可溶性ＣＤ８３．ｆｃが、細胞表面にＣＤ８３を発現する細胞に特異的に結合することを示す。
【０２５２】
ＣＤ８３．ｆｃ結合に細胞表面ＣＤ８３が必要か確認するために、ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞を１μｇ／ｍｌの抗ＣＤ８３抗体（ＨＢ１５ｅ; Santa Cruz Biotechnology）でインキュベートし、これがＣＤ８３．ｆｃ結合を阻止するか決定した。データ解析は、ＣＤ８３．ｆｃはＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞(黒線)に結合するが、結合は、アイソタイプコントロール(灰色線)ではなくＨＢ１５ｅ（破線）によってブロックされることを示した（図２Ａ）。ＣＤ８３．ｆｃ結合のためのＣＤ８３発現の必要性を、ＣＤ８３を発現していないＭＵＴＺ-３由来ＤＣにおいて更に検定した。ＭＵＴＺ-３ ｉＤＣを、１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおける培養の４日後、ＣＤ８３を標的にするＡｃｃｅｌｌ ｓｉＲＮＡ(Cat. No. E-012680; Dharmacon)又は非標的化コントロール(Cat. No. D-001910; Dharmacon)で形質移入した。ＭＵＴＺ-３ ｉＤＣを、１０ｕＭのｓｉＲＮＡを含有し、３％加熱不活性化ＦＢＳ、１５０ｎｇ／ｍｌのＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ-４で補充されたAccell delivery media(Cat. No. B-005000; Dharmacon)において、５％ＣＯ２で３７°Ｃで７２時間インキュベートした。７日目、上述したようにｍＤＣを産生するために成熟刺激でＤＣを処理した。ｓｉＲＮＡ媒介によるＣＤ８３ ＲＮＡ及びタンパク質発現ノックダウンの効果を、それぞれｔａｑｍａｎ ｑＰＣＲ並びにウエスタンブロット（全細胞溶解物）によって評価した。１８Ｓに正規化した、非標的化コントロール（ｓｉＮＴＣ）ｓｉＲＮＡ又はＣＤ８３特異的ｓｉＲＮＡ（ｓｉＣＤ８３）で処理したＭＵＴＺ-３ ｍＤＣからの全ＲＮＡの分析は、ＣＤ８３ ｓｉＲＮＡで形質移入されたＤＣが、ＣＤ８３ ＲＮＡレベルの有意なダウンレギュレーションを呈することを実証した（図２Ｂ）。ＭＵＴＺ-３ ｍＤＣにおけるＣＤ８３のノックダウンを、ＣＤ８３に対する蛍光色素コンジュゲート抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーによって細胞を解析することによって確認した。データ解析及び全結合を示すヒストグラムの構築は、ＣＤ８３は、ｓｉＮＴＣで処理されたｍＤＣの表面に発現されるが（黒線）、ｓｉＣＤ８３で処理されたｉＤＣ（灰色線）又は成熟ＤＣ（破線）では発現されないことを示した（図２Ｃ）。中実ヒストグラムはアイソタイプコントロールを示す。ＣＤ８３発現のノックダウンの確認の後、ｉＤＣ、ｓｉＮＴＣ ｍＤＣ、及びｓｉＣＤ８３ ｍＤＣを、上述のようにＰＥ-標識ＣＤ８３．Ｆｃ又は標識ＩｇＧ．Ｆｃコントロールタンパク質でインキュベートし、フローサイトメトリーに課した。データ解析は、ＣＤ８３．ｆｃはｓｉＮＴＣ ｍＤＣに結合するが、ｉＤＣ又はｓｉＣＤ８３ ｍＤＣに結合しないことを実証し、成熟ＤＣに対するＣＤ８３．ｆｃ結合がＣＤ８３発現を必要とすることを示した（図２Ｄ）。ＣＤ８３のノックダウンはまた、ＭＨＣＩＩの低下した発現をもたらしたが、ＣＤ８６等の他の活性マーカーには何の変化もなかった（図２Ｅ及びＦ）。
【０２５３】
ＣＤ８３がホモタイプ結合を通した細胞対細胞接着を媒介するか決定するために、ｈＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞において細胞凝集を検定した。ＣＨＯ細胞及びＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞を２ｍＭのＥＤＴＡでフラスコから脱離させ、洗浄し、２％ＦＢＳ／１０ｍＭＥＤＴＡを含有するがＣａ２＋又はＭｇ２＋を欠くＨＢＳＳに再懸濁させた。その後、細胞を１０６／ｍｌで再懸濁させ、７０μｍフィルターを通過させて、低接着１０ｃｍ培養皿にプレーティングするための単個細胞浮遊液を得た。軌道プラットフォームシェーカーにおける３７℃で９０分間のインキュベーションの後、細胞を４％のＰＦＡで固定して細胞凝集を評価した。細胞の顕微鏡イメージングは、ＣＤ８３発現を欠くコントロールＣＨＯ細胞は凝集せず、ｈＣＤ８３を発現するＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞は懸濁培養中でクラスターを形成したことを示した（図３Ａ及びＢ）。１μｇのＣＤ８３．ｆｃタンパク質でのＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞の前処理は凝集を阻止したが、Ｉｇコントロールでの処理は阻止しなかった（図３Ｃ及びＤ）。これらの結果は、ＣＤ８３の表面発現が細胞対細胞接着に十分であり、この相互作用はホモタイプ結合に対する競合のため可溶性ＣＤ８３の添加により阻止できることを示す。
【０２５４】
実施例２．ＤＣの可溶性ＣＤ８３処理は、ＤＣ成熟及び炎症促進性サイトカイン放出の阻害により抗炎症性表現型となる。
可溶性ＣＤ８３処理によりＤＣに誘導される免疫反応を特徴付けるために、ｍＤＣ表面活性化マーカーへのＣＤ８３処理の効果を評価した。ＭＵＴＺ-３細胞からｉＤＣを得るために、細胞を１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおいて６日間培養した。ｉＤＣを、２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１ｂ、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦａ及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有する成熟刺激サイトカインカクテルで処理した。１０μｇ／ｍｌのＣＤ８３．ｆｃ、１μｇ／ｍｌのＨＢ１５ｅ、又はコントロールＩｇＧ．ｆｃでのｍＤＣの処理を成熟刺激と同時に行った。ＭＵＴＺ-３由来ｍＤＣにおける細胞表面活性化マーカー、ＣＤ８３及びＨＬＡ-ＤＲ（ＭＨＣＩＩ）の発現を、ＣＤ８３又はＭＨＣＩＩに対する蛍光色素コンジュゲート抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーによって細胞を分析することによって検査した。非特異的染色のレベルを決定するために、標識アイソタイプ適合抗体を使用した。データ解析及び全結合を示すヒストグラム構築は、ＣＤ８３及びＭＨＣＩＩはＭＵＴＺ-３由来ｍＤＣで発現されたが（黒線）、ｉＤＣ（中実線ヒストグラム）では低レベルであることを示した（図４）。中実非線ヒストグラムはアイソタイプコントロールを表す。ＣＤ８３及びＭＨＣＩＩ双方の発現は、ＣＤ８３．ｆｃ（灰色線）又はＨＢ１５ｅ（破線）処置で低減され、ＣＤ８３処理がｍＤＣにおける表面活性化マーカーの発現を低減することを示す。
【０２５５】
ＤＣはサイトカインの生成を介し免疫反応を調節することが知られているため、可溶性ＣＤ８３処理のＤＣへの効果を、処理されたヒト単球由来ＤＣ（ＭＤＤＣ）からのサイトカイン分泌の検出によって評価した。ＭＤＤＣを複数ドナーの全血から単離し、成熟させるためにＣＤ８３．Ｆｃ又はＨＢＩ５ｅの有無においてサイトカインを用いて刺激した。単離及び処理のために、ヒト全血をＰＢＳで希釈し、Ｆｉｃｏｌｌ Ｐａｑｕｅ（ＧＥ healthcare）上に重層し３０分間１５００ｒｐｍで回転させた。白血球層を取り除き、ＰＢＳで洗浄した。単球をHuman monocyte isolation kit ＩＩ(Miltenyi)を用いて単離し、１２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ(R&D systems)を含有するＲＰＭ／１０％ＦＢＳ／１Ｘｐｅｎ／ｓｔｒｅｐにおいて６日間培養した。未熟ＤＣを得るために、培地を一日おきに変えた。１０μｇ／ｍｌＣＤ８３．Ｆｃ又は１μｇ／ｍｌ抗ＣＤ８３抗体（ＨＢＩ５ｅ；Santa Cruz）を用いた全処理は成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をＤＣの成熟後４８時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、ＭＣＰ-１、ＩＬ１２-ｐ４０及びＩＬ-８(Invitrogen)、並びにＩＬ-１ｒａ(Cell Sciences)についてキットを使用してＥＬＩＳＡによって解析した。ＤＣによって分泌されたサイトカインの解析は、成熟刺激を共に用いたＣＤ８３．Ｆｃでの処理が、ＤＣサイトカインの分泌を変化させ、ＩＬ-１受容体に結合し下流の炎症性シグナル伝達をブロックするインターロイキン-１受容体アンタゴニスト（ＩＬ-１ｒａ）を増加し（図５Ｂ）、炎症促進性サイトカイン単球走化性タンパク質-１（ＭＣＰ-１）及びインターロイキン-１２（ｌＬ-１２ｐ４０）のサブユニットβの産生を低下させた（図５Ａ及びＣ）。ＣＤ８３．Ｆｃ又はＨＢＩ５ｅを用いた処理は、炎症性サイトカインＩＬ-８の産生に何の効果も持たなかった（図５Ｄ）。
【０２５６】
可溶性ＣＤ８３処理によりＤＣに誘発された免疫反応を更に特徴付けるために、ｍＤＣによる炎症促進性サイトカイン分泌へのＣＤ８３処置の効果を評価した。ＭＵＴＺ-３細胞から未熟ＤＣを得るために、細胞を１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおいて６日間培養した。ＤＣを、２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１β、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦａ及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有するサイトカインカクテルを用い、ＣＤ８３の表面発現について成熟させた。１０μｇ／ｍｌのＣＤ８３．ｆｃ、１μｇ／ｍｌのＨＢ１５ｅ、又はコントロールＩｇＧ．ｆｃでのｍＤＣの処理を成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をＤＣの成熟後４８時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、ＭＣＰ-１、ＩＬ１２-ｐ４０及びＩＬ-８キット(Invitrogen)、並びにＩＬ-１ｒａ(Cell Sciences)を使用してＥＬＩＳＡによって解析した。ＤＣによって分泌されたサイトカインの解析は、炎症促進性サイトカインＭＣＰ-１（図６Ａ）及びＩＬ-１２ｐ４０（図６Ｃ）が、ＣＤ８３．Ｆｃ又はＨＢＩ５ｅ処理によりｍＤＣにおいて低下されたことを示した。対照的に、抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａは、ＣＤ８３処理ｍＤＣにおいて有意に増加された（図６Ｂ）。放出ＩＬ-８のレベルは、ＣＤ８３処理又はコントロール処理ｍＤＣ間に差異を示さなかった（図６Ｄ）。各ウェルからの上澄部を３重で実施し、*は値が有意に異なることを示す、*ｐ＜０．０ｌ、**ｐ＜０．００１。各ドットは個々のウェルの平均を表す。グラフは少なくとも３回の独立実験の代表である。
【０２５７】
ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅで処理されたＤＣの抗炎症性表現型、発現を更に特徴付けるため、処理後、マイクロアレイ分析をＤＣから単離されたＲＮＡについて実施した。マイクロアレイの統計的解析をR project(http://r-project.org)及びBioconductor project (http://bioconductor.org)からのソフトウェアを使用して行った。バックグラウンド減算マイクロアレイデータを、アレイ内でＬＯＥＳＳ正規化、アレイ間で分位数正規化した。次いで、正規化データをｌｏｇ２変換し、プローブをBioconductorの「ｇｅｎｅｆｉｌｔｅｒ」パッケージを使用してフィルター処理した（例えば、Ｅｎｔｒｅｚ遺伝子にマッピングされるプローブのみ保持される）。５０％最小可変プローブを除去する非特異的フィルターを次に使用した(Bourgon等, Proc Natl Acad Sci USA., 107(21):9546-51, 2010)。異なって発現される遺伝子を同定するために、ｌｉｍｍａパッケージを使用して(Smyth., Stat Appl Genet Mol Biol., 3:Article 3, 2004)、減衰ｔ検定を算出した。線形モデルを、未熟及び成熟ＤＣ間、並びにＣＤ８３連結サンプル（ＣＤ８３ｆｃ-及びＨＢ１５ｅ-処理成熟ＤＣ）及びコントロールサンプル（ＩｇＧ-及び非処理成熟ＤＣ）間の異なる発現に対して試験した。false discovery rate（ＦＤＲ）をBenjamini-Hochberg法を使用して算出した。０．０１未満のＦＤＲを有する場合、遺伝子は異なって発現されると考えた。５つの異なるドナーからの全遺伝子発現解析は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ処理が抗炎症性表現型となることを示した。全体的にみて、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ処理におけるＤＣサイトカイン放出及び遺伝子発現の測定は、可溶性ＣＤ８３処理が炎症促進性サイトカインの分泌を阻害し、また抗炎症性応答を誘導することを実証する。
【０２５８】
実施例３．可溶性ＣＤ８３処理は、創傷治癒に関与する遺伝子のアップレギュレーションとなる。
ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅで処理されたＤＣに誘導される遺伝子発現における変更を更に特徴づけるため、処理後、ＤＣから単離されたＲＮＡにマイクロアレイ分析を実施した。マイクロアレイに関する統計解析をR project(http://r-project.org)及びBioconductor project(http://bioconductor.org)からのソフトウェアを使用して行った。バックグラウンド減算マイクロアレイデータを、アレイ内でＬＯＥＳＳ正規化、アレイ間で分位数正規化した。次いで、正規化データをｌｏｇ２変換し、プローブをBioconductorの「ｇｅｎｅｆｉｌｔｅｒ」パッケージを使用してフィルター処理した（例えば、Ｅｎｔｒｅｚ遺伝子にマッピングされるプローブのみ保持される）。次に、５０％最小可変プローブを除去する非特異的フィルターを使用した(Bourgon等, Proc Natl Acad Sci USA., 107(21):9546-51, 2010)。異なって発現される遺伝子を同定するために、ｌｉｍｍａパッケージを使用して(Smyth., Stat Appl Genet Mol Biol., 3:Article 3, 2004)、減衰ｔ検定を算出した。線形モデルを、未熟及び成熟ＤＣ間、並びにＣＤ８３連結サンプル（ＣＤ８３ｆｃ-及びＨＢ１５ｅ-処理成熟ＤＣ）及びコントロールサンプル（ＩｇＧ-及び非処理成熟ＤＣ）間の異なる発現に対して試験した。false discovery rate（ＦＤＲ）をBenjamini-Hochberg法を使用して算出した。０．０１未満のＦＤＲを有する場合、遺伝子は異なって発現されると考えた。５つの異なるドナーからのＤＣの分析は、ＣＤ８３．ｆｃ及びＨＢ１５ｅ処理細胞が分離し、未処理ｍＤＣ並びにｉＤＣから独立してクラスタとなることを示し、処理が創傷治癒に関与する遺伝子のアップレギュレーションとなることを示した。マイクロアレイデータを、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅで処理したｍＤＣからの単離された全ＲＮＡのｔａｑｍａｎ ｑＰＣＲ分析によって確認した（図７）。ｇａｐｄｈに対する正規化後、遺伝子発現解析は、創傷治癒に関与する遺伝子ｖｃａｎ、ｓｐｏｃｋ２、及びｆｂｎ２がアップレギュレートされたことを示した。示した平均相対発現は２＾ΔＣＴ＋標準誤差（ＳＥＭ）である。これらのインビトロ結果は、可溶性ＣＤ８３処理が、炎症性疾患により引き起こされる組織損傷の治癒のための、正常な細胞増殖及び遊走を促進しうることを示す。
【０２５９】
実施例４．ＣＤ８３ホモタイプ相互作用は抗炎症性反応を媒介する。
抗炎症性反応を調節するＣＤ８３相互作用を更に特徴付けるために、ＤＣを、ｈＣＤ８３を過剰発現するＣＨＯ細胞と共培養した時に、抗炎症性反応についてモニタした。ＭＵＴＺ-３細胞からｉＤＣを得るために、細胞を１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおいて６日間培養した。生成されたｉＤＣを、コントロールＣＨＯ細胞株又はヒトＣＤ８３を安定に発現するＣＨＯ細胞と共培養した。その後、混合細胞の培養物を未処理か、もしくは２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１β、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦα及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有するサイトカインカクテルで処理してｍＤＣを生成した。細胞培養上澄み液をＤＣの成熟４８時間後収集し、分泌されたサイトカインＩＬ１２-ｐ４０及びＭＣＰ-１を標準の製造者指示に従ってＥＬＩＳＡ(Invitrogen)によって分析した。分泌されたＩＬ１２-ｐ４０及びＭＣＰ-１レベルの分析は、炎症促進性サイトカインの放出が、ＣＤ８３発現を欠くＣＨＯ細胞と比較して、ｈＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞と共培養されたｍＤＣにおいて有意に低減されることを示した（図８Ａ及びＢ）。このデータは、ＣＤ８３がトランスホモタイプ相互作用に関与して抗炎症性反応を媒介することが可能であることを実証する。このデータは、ＣＤ８３が、抗炎症性反応を媒介するためにトランスホモタイプ相互作用に関与することが可能なことを示す。これらの結果は、複数ドナーの全血から単離されたヒト単球由来ＤＣ（ＭＤＤＣ）を使用して確認した。刺激後、ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞と共に培養したＤＣは、ＣＤ８３発現を欠くＣＨＯ細胞と共に培養したものより有意に少ないＩＬ１２-ｐ４０を産生した。
【０２６０】
未熟ＢＭＤＣの、野生型又はＣＤ８３欠乏動物からの成熟ＢＭＤＣとの共培養物を、ＩＬ１２-ｐ４０産生について調査し評価した。ＣＤ８３ノックアウトマウス（ＣＤ８３−／−）を、Fujimoto, Y. et al., Cell 108,755-767,2002（出典明記により本明細所中に引用する）において使用されるものと類似の相同組換えストラテジーを使用して作成し、これは免疫グロブリンドメインの半分及びＣＤ８３の膜貫通及び細胞質内ドメインを欠如した。ＣＤ４ Ｔ細胞を欠乏するが他は豊富であるＣＤ８３−／−マウスを期待メンデル比で作成し、それらの野生型同腹子と共に繁殖させた。ＬＰＳでの刺激により、ＣＤ８３−／−マウスから生成されたＢＭＤＣは、表面成熟マーカーＣＤ８６をアップレギュレートし、野生型同腹子から産生されるのと類似なレベルでサイトカインを産生することができた（図８Ｃ）。ＭＨＣＩＩのアップレギュレーションもまたＬＰＳによる刺激の際に見られたが、しかしながらＣＤ８３−／−マウスからのＢＭＤＣは、野生型マウスから生成されるものより少ないＭＨＣＩＩを発現した。次に、新鮮な未熟ＢＭＤＣを、ＬＰＳ刺激と共に、野生型又はＣＤ８３−／−動物からの成熟細胞と共培養した。２４時間後、培養上澄部を集め、ＥＬＩＳＡによって、ＩＬ１２-ｐ４０産生について評価した。高レベルのＣＤ８３を発現する成熟ＤＣと共培養した未熟ＤＣは、ＣＤ８３欠損成熟ＤＣと培養したものより、有意に少ないＩＬ１２-ｐ４０を産生した（図８Ｄ）。
【０２６１】
細胞表面ＣＤ８３との相互作用を必要とするＣＤ８３処理により媒介される抗炎症性反応を検証するために、ＣＤ８３を発現していないＤＣにおいて処理を検定した。ＭＵＴＺ-３ ｉＤＣを、１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４を含有するＭＥＭα＋ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおける培養の４日後、ＣＤ８３を標的にするＡｃｃｅｌｌ ｓｉＲＮＡ(Cat. No. E-012680; Dharmacon)又は非標的化コントロール(Cat. No. D-001910; Dharmacon)で形質移入した。ＭＵＴＺ-３ ｉＤＣを、１０ｕＭのｓｉＲＮＡを含有し、３％加熱不活性化ＦＢＳ、１５０ｎｇ／ｍｌのＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ-４で補充されたAccell delivery media(Cat. No. B-005000; Dharmacon)において、５％ＣＯ２で３７°Ｃで７２時間インキュベートした。７日目、ｉＤＣを、２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１β、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦα及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有するサイトカインカクテルで処理してｍＤＣを生成した。１０μｇ／ｍｌのＣＤ８３．ｆｃ、１μｇ／ｍｌのＨＢ１５ｅ、又はコントロールＩｇＧ．ｆｃでのｍＤＣの処理を成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をＤＣの成熟後４８時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、ＭＣＰ-１キット(Invitrogen)を使用してＥＬＩＳＡによって解析した。ＤＣによって放出されたＭＣＰ-１の解析は、ＣＤ８３のｓｉＲＮＡノックダウン（ｓｉＣＤ８３）がＣＤ８３．ｆｃ及びＨＢ１５ｅ抗体への反応を抑止したことを示した（図９）。従って、このデータは、ＣＤ８３処理による抗炎症性反応を媒介するために細胞表面にＣＤ８３が必要であることを示す。これらの結果は分泌されたＩＬ-１２ｐ４０の検出によって確認された。ｍＤＣによって放出されたＩＬ-１２ｐ４０の解析は、ＣＤ８３のｓｉＲＮＡノックダウン（ｓｉＣＤ８３）がＣＤ８３．ｆｃ及びＨＢ１５ｅ抗体への反応を抑止したことを示した。
【０２６２】
ＣＤ８３処理中の抗炎症性反応がホモタイプ結合、及び細胞表面ＣＤ８３を介した下流シグナル伝達を必要とするか決定するために、細胞質内切断型ＣＤ８３コンストラクトを発現するＤＣにおいて処理を評価した。ＣＤ８３レンチウイルス発現コンストラクトはｐＧＣＭＶ．ＩＲＥＳ．ｅＧＦＰ(pGIPZ誘導体; Openbiosystems)から得られ、完全長ｈＣＤ８３遺伝子（ＣＤ８３ＦＬ）又は細胞質領域（Δ１７２−２０５）切断ｈＣＤ８３遺伝子のセグメントをＰＣＲ増幅し、これらの断片をＸｈｏＩ／ＥｃｏＲＩクローニング部位に挿入することによって作成した（図９Ｂ）。ＤＣの感染のためのレンチウィルスを生成するために、２９３Ｔ細胞をゼラチン化された１０ｃｍの培養皿に１Ｘ１０７で播種し、８０−９０％の培養密度に達するまで〜２０時間増殖させた。培地を５ｍｌのＤＭＥＭ、１０％ＦＢＳ、２ｍＭのＬ-グルタミンで補充し、３７℃で６時間、Lipofectamine 2000 (Invitrogen)を使用して、１：２．３：０．２のモル比で５μｇ発現プラスミド、デルタ８．９及びＶＳＶＧを含有するＤＮＡミックスで細胞を形質移入した。形質移入培地を６ｍｌの通常の増殖培地で補充し、細胞を更に４０時間３７℃でインキュベートした。上澄部を回収し、０．４５μｍのtube top filter(Corning)を通して濾過することによって精製し、製造者の指示に従ってLenti-X-concentrator(Clonetech)を使用して濃縮した。ＭＵＴＺ-３細胞を、ＭＥＭα＋Ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳ／１５％ＨＴＢ-９馴化培地を含有する維持培地における２４ウェル培養プレートに０．５ｘ１０６／ｍｌで播種した。ポリブレン及び濃縮レンチウィルス上澄み部をそれぞれ４μｇ／ｍｌの最終濃度及び１０のＭＯＩで細胞に加えた。細胞を、室温で３０分間Allegra X-12R卓上遠心分離機において１８００ｒｐｍでスピンさせ、次いで３７℃で一晩インキュベートした。レンチウィルスを含有する培地を除去し、新鮮な維持培地と交換した。２−３日の培養後、上位１０％のＧＦＰ陽性細胞を選別し、１５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＧＭ-ＣＳＦ及び５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-４で補充されたＭＥＭα＋Ｇｌｕｔａｍａｘ／２０％加熱不活性化ＦＢＳにおいて６日間培養し、ｉＤＣとして使用した。細胞を４８時間、成熟刺激、並びにＣＤ８３．Ｆｃ、ＨＢ１５ｅ又はアイソタイプコントロールで処理した。その後、上澄み部を収集し、ＭＣＰ-１放出をＥＬＩＳＡによって解析した。分泌されたＭＣＰ-１の解析は、完全長ＣＤ８３のレンチウィルス過剰発現は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅへのｍＤＣ反応を阻害しなかったが、細胞質切断型ＣＤ８３の発現はＣＤ８３処理の抗炎症性作用を阻止したことを示した（図９Ｃ）。これらの結果を分泌されたＩＬ-１２ｐ４０の検出によって確認した。分泌されたＩＬ-１２ｐ４０の解析は、完全長ＣＤ８３のレンチウィルス過剰発現は、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅへのｍＤＣ反応を阻害しなかったが、細胞質切断型ＣＤ８３の発現はＣＤ８３処理の抗炎症性作用を阻止したことを示した。
【０２６３】
架橋結合のみがＣＤ８３細胞質ドメインを介した抗炎症性反応の作動に十分か決定するために、ＣＤ８３膜貫通部に融合されたＣＤ７９ａの細胞外領域及び完全長又は切断型細胞質ドメインを有する、ＣＤ８３キメラレンチウィルス発現コンストラクトを生成した（図１０Ａ）。ｉＤＣを上記のように指示レンチウィルスコンストラクトで感染させ、その後、成熟刺激及び１μｇのＣＤ７９ａ抗体（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ）又はアイソタイプコントロールで４８時間処理した。上澄み部を収集し、ＩＬ１２-ｐ４０放出をＥＬＩＳＡによって分析した。分泌ＩＬ１２-ｐ４０の分析は、完全長ＣＤ８３キメラのレンチウィルス過剰発現は、抗ＣＤ７９ａ抗体に対するｍＤＣ反応を阻害しなかったが、細胞質内切断型ＣＤ８３キメラの発現は抗ＣＤ７９ａでの処理の抗炎症性作用を阻止したことを示した（図１０Ｂ）。全体として、これらの結果は、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用がＣＤ８３処理により抗炎症性作用を媒介するという新規な発見を示す。
【０２６４】
実施例５．ＣＤ８３ホモタイプ相互作用はＭＡＰＫ及びｍＴＯＲシグナル伝達経路の抑制を通して炎症を阻害する。
ＣＤ８３ホモタイプ相互作用がＤＣに抗炎症性効果を誘発するという新規な発見により、ＣＤ８３細胞質内ドメインによって調整される下流シグナル伝達経路を調査した。ＣＤ８３細胞質内ドメインの最後の１５アミノ酸の配列比較は、Ｃ末端クラスＩＩＩ ＰＤＺリガンドモチーフがＣＤ８３において保存されていることを示す（図１０Ａ）。このモチーフがＣＤ８３処理中の抗炎症性反応を媒介するか決定するために、ＣＤ８３レンチウイルス発現コンストラクトを生成し、これはクラスＩＩＩ ＰＤＺリガンドモチーフを消失するために位置２０５でバリンからアラニンへの変異（Ｖ２０５Ａ）を有する完全長ＣＤ８３を有した（図１１Ｂ）。ｉＤＣを上述のように指示レンチウィルスで感染させた。細胞を、４８時間、成熟刺激、並びにＣＤ８３．Ｆｃ、ＨＢ１５ｅ又はアイソタイプコントロールで処理した。その後、上澄部を収集し、ＩＬ１２-ｐ４０放出をＥＬＩＳＡによって分析した。分泌ＩＬ１２-ｐ４０の分析は、完全長ＣＤ８３のレンチウィルス過剰発現はＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅに対するｍＤＣ反応を阻害しなかったが、しかし、ＣＤ８３ Ｖ２０５Ａ変異体の発現がＣＤ８３処理の抗炎症性効果を阻止したことを実証した（図１１Ｃ）。これらの結果は、ＣＤ８３細胞質内ドメイン上のクラスＩＩＩ ＰＤＺリガンドモチーフが、抗炎症性反応を媒介するタンパク質と相互作用することを示唆する。
【０２６５】
ＣＤ８３ホモタイプ相互作用の免疫抑制作用が更なるシグナル伝達経路によって媒介されるか決定するために、ＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅで５分間処理されたｍＤＣからの細胞溶解物にホスホキナーゼアッセイをを実施した。ヒトホスホキナーゼアッセイ(R&D systems)を、製造者の指示に従って実施した。簡単には、ＭＵＴＺ-３ ＤＣを冷却ＰＢＳで洗浄し、Ｌｙｓｉｓ Ｂｕｆｆｅｒ６において可溶化させ、４℃で３０分間揺動させた。溶解物を１４，０００Ｘｇで５分間遠心分離し、Ｂｒａｄｆｏｒｄ(Bio-Rad)による全タンパク質の分析のために上澄部を新しい管に移した。二重にスポッティングされた４６の抗体を有するアレイ膜を１時間室温でブロックし、次いで希釈細胞溶解物で一晩４℃でインキュベートした。膜を洗浄し、次いで検出抗体を用い２時間室温でインキュベートした。洗浄後、膜をStreptavidin-HRPにおいて３０分間室温でインキュベートし、ＥＣＬ Ｐｌｕｓ試薬(Amersham)での検出の前に再び洗浄した。膜をFUJI FILM Image Reader LAS-3000に露出し、平均強度をMulti Gauge v3.1(FUJI FILM)によって分析した。ＨＢ１５ｅ処理はｍＴＯＲ、ｐ＝０．０４６（図１２Ａ）、ｐ３８、ｐ＝０．００８（図１２Ｂ）並びにＣＲＥＢ、ｐ＝０．０１０４（図１２Ｃ）のリン酸化において有意な低下となった。対照的に、ＨＢ１５ｅ抗体処理は、成熟刺激の要素であるＴＮＦαのＴＮＦ受容体結合によって活性化されるＳＴＡＴ３のリン酸化を阻害しなかった（図１２Ｄ）。ＣＤ８３．Ｆｃ又はαＣＤ８３（ＨＢ１５ｅ）で処理したヒト単球由来ＤＣ（ＭＤＤＣ）からの全細胞溶解物のウェスタンブロット解析は、リン酸化ｐ３８ＭＡＰＫ（図１２Ｅ）の低下を確証したが、ＳＴＡＴ３リン酸化に有意な効果を示さなかった（図１２Ｆ）。これらの新規な発見は、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用の抗炎症性作用がｐ３８ ＭＡＰＫ並びにｍＴＯＲタンパク質シグナル伝達によって媒介されたことを示す。
【０２６６】
実施例６．ＣＤ８３過剰発現は結腸固有層ＤＣにおける表面活性化マーカーの発現の低下となる。
ＣＤ８３ホモタイプ相互作用がインビトロにおいてＤＣに抗炎症性効果を誘発するという新規な発見は、それがインビボにおいて類似な効果を誘発し得ることを示唆する。インビボにおけるＣＤ８３媒介免疫抑制の効果を調査するために、粘膜表面にＣＤ８３を過剰発現する遺伝子導入マウスラインを作成した。ＦＡＢＰ．ＣＤ８３ターゲティングベクターを作成するために、ＳｐｅＩ／ＳａｃＩＩ部位を使用してＦＡＢＰ．ｓｕｐ．ＬａｃＺベクターにクローニングするために、Ｐｉｃｏｍａｘ ＰＣＲシステムを使用して結腸組織からの完全長マウスＣＤ８３（ｍＣＤ８３）を増幅させた（図１３Ａ）。ＰＣＲに使用したプライマーは、ＣＤ８３ＳＰＥ順方向プライマー：５’-ＧＡＴＣＡＡＡＣＴＡＧＴＣＣＡＣＣＡＴＧＴＣＧＣＡＡＧＧＣＣＴＣＣＡＧＣＴＣＣＴ-３’及びＣＤ８３ＳＡＣＩＩ-逆方向プライマー：５’-ＣＡＴＣＡＴＣＣＧＣＧＧＴＣＡＴＡＣＣＧＴＩＴＣＴＧＴＣＴＴＡＧＧＡＡＧ-３’であった。マイクロインジェクション後、７２匹のファウンダーマウスを、結腸における高発現及び腎臓における低発現についてスクリーニングした。１匹のマウスがこれらの基準を満たし、ＦＶＢマウスへの戻し交配によって遺伝子導入ラインを作成するために使用した(Jackson Labs)。マウスは特定病原体除去バリアー設備に収容した。全ての手順はGenentech Animal Care and Use Committeeによって承認された。
【０２６７】
ＣＤ８３についての結腸の免疫組織化学染色は、野生型動物におけるＣＤ８３の発現は腸管関連リンパ組織に限定されるが、ＣＤ８３Ｔｇは結腸上皮においてＣＤ８３を過剰発現することを示した（図１３Ｂ）。ＣＤ８３過剰発現がＤＣサブセット、Ｔ細胞集団及び表面マーカーに影響を有するか決定するために、結腸（colons）を収集し、冷却ＨＢＳＳ／２％ ＦＢＳ／１０ｍＭ ＨＥＰＥＳでフラッシュした。結腸に関連する脂質及び他の組織を除去し、結腸をＨＢＳＳ／２％ＦＢＳで濯いだ。結腸をハサミで長軸方向に切断し、氷上の３０−４０ｍｌ ＨＢＳＳ／２％ＦＢＳを有する５０-ｍｌのコニカルビーカーに移した。次いで、結腸小片を、１０−１５ｍｌの予め温められたＨＢＳＳ／２％ＦＢＳ／１０ｍＭのＨＥＰＥＳ／１ｍＭのＥＤＴＡと共に無菌バッフルフラスコ(Corning)に移した。フラスコを２００ｒｐｍで４５分間３７℃で振とうさせた。培地を注ぎ出し、結腸を新鮮なＨＢＳＳ／２％ＦＢＳ／１０ｍＭのＨＥＰＥＳにおいて洗浄し、残留上皮をブレードを使用してこすり落とした。１０％ＦＣＳ、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、０．５ｍｇ／ｍｌコラゲナーゼ／ディスパーゼ、ペニシリン、及びストレプトマイシンを含有するＲＰＭＩに結腸を１−２ｍｍ小片に切り、次いで２００ｒｐｍでの振とうで、３７℃で４５−９０分間インキュベートした。上澄部を４−５回ピペットでとり、１００μｍフィルターを通して濾過し、４℃で１０分間１８００ｒｐｍ回転を行った。細胞を５％ＦＢＳ、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、及び０．１ｍｇ／ｍｌのＤＮＡｓｅを含有するＲＰＭＩで洗浄し、７０μｍフィルターを通して濾過した。次いで細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、免疫細胞の分析並びにＲＮＡ単離及びｑＰＣＲのためのＤＣの選別のために抗体で染色した。
【０２６８】
ＣＤ８３Ｔｇマウスの結腸固有層又は脾臓から単離したＤＣを、ＭＨＣＩＩ及びＣＤ１１ｃ ｈｉ発現についてフローサイトメトリーによって選別した（図１３Ａ及びＢ）。ＤＣサブセットの分析は、結腸（図１４Ｄ）又は脾臓（図１４Ｅ）から単離された形質細胞様（ＣＤ１１ｂ−／Ｂ２２０＋）、骨髄（ＣＤ１１ｂ＋）、又はリンパ系（ＣＤ１１ｂ−／Ｂ２２０−／ＣＤ８ａ＋）ＤＣの数又はパーセンテージにおいて有意な差がないことを示し、ＣＤ８３過剰発現がＣＤ８３Ｔｇマウス内のＤＣサブセットに何ら影響がなかったを示す。ＤＣ表面活性化マーカーＣＤ８３、ＣＤ８６、及びＭＨＣＩＩ（Ｉ-Ａ／Ｅ）の分析は、それらが結腸から単離されたＤＣの表面上で有意に低下されたことを示したが、*ｐ＜０．０５、**ｐ＜０．０１（図１３Ｃ）、脾臓からのものは有意な差を見せなかった（図１３Ｅ）。各ドットは、３匹の動物からプールされた細胞を表す。更に、ＣＤ８３Ｔｇマウスの結腸固有層又は脾臓から単離され選別されたＴ細胞の分析は（図１４Ｃ）、結腸（図１３Ｄ）又は脾臓（図１３Ｆ）何れから単離されても、Ｔ細胞活性化の指標であるＣＤ４４表面マーカーの発現に有意な差を示さなかった。興味深いことに、ＣＤ８３Ｔｇ ＤＣから単離された全ＲＮＡのｔａｑｍａｎ ｑＰＣＲ分析は、結腸において創傷治癒遺伝子発現の増加を示したが、野生型マウスの結腸においては不検出であった（ＮＤ）（図１３Ｇ）。データは３つの独立実験のものであり、各グループについてｎ＝６。全体的に見て、これらのインビボでの結果は、ＤＣのＣＤ８３．ｆｃ又はＨＢ１５ｅ処理で観察されたインビトロでの結果によってサポートされる。
【０２６９】
実施例７．ＣＤ８３免疫抑制はＤＳＳ誘導大腸炎からマウスを保護する
炎症性腸疾患のマウスモデルにおけるＣＤ８３過剰発現の効果を評価するために、大腸炎を、前の実施例において産生し特徴づけたＣＤ８３Ｔｇマウスラインにおいて、デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）を用いた処理によって誘発させた。８−１０週の年齢のＣＤ８３Ｔｇマウスが、７日間飲料水において６％ＤＳＳが自由に与えられ、７日目に、１２日目の実験の中止まで通常の飲料水に切り替えられた。マウスは０日目、及び４日目以降毎日重さを量り、潜血、下痢及び何れか他の異常徴候についてチェックした。体重減少が０日目の初期体重の２０％を超えた場合、マウスを安楽死させた。１２日目に、マウスを麻酔の下、眼窩採血して１５０−２００μｌの血液を採取し、これは〜１５０μｌの血清を産生した。血清サイトカインを、製造者の指示に従ってBio-Plex Pro Mouse 23-Plex アッセイ(Cat. No. M60-009RDPD; Bio-Rad)を使用して評価した。次いで、マウスを安楽死させ、小腸及び大腸を切片化し、組織学分析のためにＨ＆Ｅで染色した。切片をランダム化し、二重盲検でスコア付けした。６％ＤＳＳで処置された野生型マウスは〜２０％の体重を減少させたが、ＣＤ８３Ｔｇマウスは１２日目まで〜８９％の初期体重を維持した（図１５Ａ）。野生型マウスは、ＣＤ８３Ｔｇマウスと比較して、結腸構造の欠失を特徴とする重度な大腸炎及び炎症性浸潤の増加を有した（図１５Ｂ）。野生型及びＣＤ８３Ｔｇマウスからの結腸切片のＨ＆Ｅ染色の組織学スコアは、野生型マウスは８．２の平均組織学スコアであったが、ＣＤ８３Ｔｇマウスの組織学スコアは有意に低く（**，Ｐ＝０．００９４）、５．３であることを示した（図１４Ｂ及びＣ）。更に、炎症促進性サイトカインの血清レベルをＥＬＩＳＡによって測定し、野生型同腹子と比較して６％ＤＳＳで処置されたＣＤ８３Ｔｇマウスにおいて有意に低下したことが分かった（*，Ｐ＜０．０５）（図１４Ｄ）。これらの結果は、粘膜表面でＣＤ８３を過剰発現するマウスが大腸炎に対してより抵抗性があることを示し、体重維持及び低減血清サイトカインレベルに至った。このように、ＣＤ８３ホモタイプ相互作用は、ＤＣ媒介免疫反応を調整し、不適切な炎症を防ぎ、寛容を促進した。
【０２７０】
ＣＤ８３を過剰発現するマウスにおけるＤＳＳ大腸炎中に見られる保護が、下層粘膜固有層ＤＣへのＣＤ８３の効果によるものだったか決定するために、ＩＬ-１２ｐ４０発現を、ＤＳＳ大腸炎であるＣＤ８３Ｔｇ及びＷＴマウスからの粘膜固有層ＤＣにおいて検定した。７日間のＤＳＳ処理後、体重減少がＣＤ８３Ｔｇ及びＷＴ同胞間で有意に異なった９日目にマウスを安楽死させた。次いで単離された粘膜固有層免疫細胞からＤＣを選別し、炎症促進性サイトカインの発現をｑＰＣＲによって評価した。ＤＳＳは、ＣＤ８３Ｔｇ及びＷＴマウス双方において炎症促進性サイトカインの発現を誘導した。しかしながら、ＣＤ８３Ｔｇマウスから単離されたＤＣは、野生型同腹子と比較して、ＩＬ-１２ｐ４０発現が有意に低下し(*, ｐ＝０．０３１５)（図１５Ｅ）、増加された粘膜ＣＤ８３レベルはＤＣ炎症反応を調節し大腸炎中に保護することを示す。
【０２７１】
実施例８：樹状細胞におけるＣＤ８３の欠損は大腸炎を悪化させる
ＤＣにおけるＣＤ８３の欠失が大腸炎を悪化させるか決定するために、ＤＣにおいて特異的にＣＤ８３を欠くマウスを作成しアッセイした。ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌマウスを相同組換えにより作成した。まず、固有制限部位：
2015511931.tif 000007
を有する合成ＣＤ８３検出ベクターを使用して、ＣＤ８３ゲノム断片をＢＡＣ(Cat. No. RPCI23.C, Invitrogen)から検出した。精製した検出断片を、検出ゲノム断片にｌｏｘＰフランクカナマイシン選択カセットを挿入する第一ターゲティングカセット：
2015511931.tif 000008
で同時形質転換した。次いで精製した標的プラスミドをアラビノース誘導されたエレクトロコンピテントＳＷ１０６細胞に形質転換し、選択カセットのＣｒｅ媒介ポップアウトにより単一ｌｏｘＰ部位を残した。次いで精製した断片を合成第二ターゲティングカセット：
2015511931.tif 000009
で同時形質転換し、２つのＦｒｔ部位及び１つのｌｏｘＰ部位によりフランクされたＰＧＫ-ｅｍ７-Ｎｅｏ-ｐＡ耐性遺伝子を挿入しコンディショナルターゲティングベクターを作成した。この選択カセットはＥＳ細胞におけるポジティブ選択のためにコンディショナルターゲティングベクターに残され、その後ＥＳ細胞においてＦｌｐをコードするｃＤＮＡの一過性形質移入により除去されコンディショナルＣＤ８３ｆｌ対立遺伝子を作成した（図１６Ａ）。次いでＣＤ８３ｆｌ対立遺伝子を保有するＥＳ細胞をマウス胚盤胞に注入してキメラマウスを作成し、次いでこれを使用してホモ接合性ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌマウスを作成した。ＣＤ８３ノックアウトマウスを、Fujimoto, Y. et aI., Cell 108, 755-767, 2002（出典明記により本明細書中に援用する）で使用されるものと類似のストラテジーを使用して作成した。ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌマウスを、ＣＤ１１ｃプロモーターの制御下でＣｒｅリコンビナーゼのトランスジェニック発現を有するマウスと繁殖させ、ＤＣにおいて特異的にＣＤ８３を欠失するマウスを作成した（ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅ）。ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅマウスはグロス形態学的異常を示さず、全般的ＣＤ８３ノックアウトマウスと異なり、ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｅ同腹子と比較した場合、脾臓において正常な数のＣＤ４Ｔ細胞を有し、これは胸腺上皮細胞におけるＣＤ８３発現がこれらのマウスにおいておそらく影響を受けなかったためである。（図１６Ｂ）。また脾臓及び結腸におけるＤＣの数は類似していたが、ＣＤ８３の発現はＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-ＣｒｅマウスのほとんどのＤＣにおいて失われていた（図１６Ｃ）。ＤＣにおけるＣＤ８３発現の欠失は結果としてＤＳＳ大腸炎の生存率の低下となった（図１６Ｄ）。ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-ＣｒｅＤＳＳ処理マウスは重度な体重減少となり、８日目までに、ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｅ同腹子（８４．９％）と比較して有意に少ないそれらの初期体重を維持した（７７．７％）（図１６Ｅ）。更に、ＤＳＳ処理は、８日目までに、ＣＤ８３ｗｔ／ｗｔＣＤ１１ｃ-Ｃｅ同腹子には観察されなかった、ＣＤ８３ｆｌ／ｆｌＣＤ１１ｃ-Ｃｒｅマウスの１００％における肛門周辺及び便中の明らかな血（overt blood）を生じ（図１６Ｆ）、人道的理由による安楽死を必要とした。これらの結果は、ＤＳＳ誘導性大腸炎耐容のためにＤＣ ＣＤ８３発現が必要であることを示す。
【０２７２】
実施例９．アゴニスト抗ＣＤ８３抗体の生成及び特徴付け
ヒトＣＤ８３の細胞外領域内のエピトープに特異的に結合するアゴニスト抗体は、ファージディスプレイライブラリー等の抗体ライブラリーをスクリーニングすることによって産生され得る。ライブラリーの抗体は、ヒト抗体、ヒト化抗体、又はキメラ抗体でありうる。またライブラリーの抗体は、単鎖抗体又は単ドメイン抗体でありうる。あるいは、ヒトＣＤ８３の細胞外領域からのペプチドがマウスの免疫化使用されてもよく、抗ＣＤ８３抗体が下に示すようにＣＤ８３アゴニスト活性に対して同定される。
【０２７３】
細胞表面ＣＤ８３のアゴニスト抗ＣＤ８３抗体による結合：
樹状細胞上の細胞表面ＣＤ８３に結合する抗体を同定するために、生成された抗体の結合親和性をフローサイトメトリー分析によってスクリーニングした。簡単には、未熟樹状細胞（ｉＤＣ）をサイトカインカクテルで処理して、ＤＣ成熟及びＣＤ８３の表面発現を誘導した。固定及びフローサイトメトリーの前に、ｍＤＣを、ＤＣ成熟刺激と同時に生成された抗体で処理した。ｍＤＣの表面に発現されたＣＤ８３に特異的に結合する抗体をフローサイトメトリーデータを分析することによって同定した。あるいは、生成された抗ＣＤ８３抗体を細胞凝集アッセイを使用してスクリーニングした。簡単には、ｈＣＤ８３（ＣＨＯ-ｈＣＤ８３）を発現するＣＨＯ細胞を２ｍＭのＥＤＴＡを用いてフラスコから脱離させ、洗浄し、２％ＦＢＳ／１０ｍＭＥＤＴＡを含有するがＣａ２＋又はＭｇ２＋を欠くＨＢＳＳ培地に再懸濁させた。その後細胞を、１０６／ｍｌで再懸濁させ、７０μｍフィルターを通過させて、低接着１０ｃｍ培養皿にプレーティングするための単個細胞浮遊液を得た。その後、ＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞を生成された抗体で処理し、４％のＰＦＡでの固定の前に、３７℃で９０分間、軌道プラットフォームシェーカーでインキュベートした。ＣＤ８３ホモタイプ結合の競合によりＣＨＯ-ｈＣＤ８３細胞の凝集を阻止する抗体を、細胞の顕微鏡イメージングによって同定した。これらの抗体は、それらのヒトＣＤ８３に対する結合及びアゴニスト活性について更に特徴付けられてもよい。
【０２７４】
アゴニスト抗ＣＤ８３抗体処理によるｍＤＣからのサイトカイン放出の変化：
ＣＤ８３アゴニスト活性を有する抗ＣＤ８３抗体を同定するために、ｍＤＣによる炎症促進性及び抗炎症性サイトカイン分泌へのＣＤ８３処理の効果を評価する。簡単には、ｉＤＣをサイトカインカクテルで処理し、ＤＣ成熟及びＣＤ８３の表面発現を誘導する。生成された抗体でのｍＤＣの処理をＤＣ成熟刺激と同時に行う。ＤＣの成熟の４８時間後、細胞培養物上澄み液を収集し、炎症促進性サイトカインＭＣＰ-１及びＩＬ-１２ｐ４０並びに抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａの分泌をＥＬＩＳＡによって分析する。炎症促進性サイトカインＭＣＰ-１及びＩＬ-１２ｐ４０の放出を阻害する、及び／又は抗炎症性サイトカインＩＬ-１ｒａの放出を誘導する抗ＣＤ８３抗体を、アゴニスト活性を有する抗体として同定する。
【０２７５】
アゴニスト抗ＣＤ８３抗体処理によるｍＤＣ細胞表面活性化マーカーの低下発現：
ｍＤＣの活性化を阻害するアゴニスト抗ＣＤ８３抗体を同定するために、生成された抗体を、細胞表面活性化マーカーの発現を低減させる能力についてスクリーニングする。簡単には、未熟樹状細胞（ｉＤＣ）をサイトカインカクテルで処理し、ＤＣ成熟を誘導する。ｍＤＣを、ＤＣ成熟刺激と同時に、生成された抗体で処理する。ｍＤＣ上の細胞表面活性化マーカー、ＣＤ８３及びＨＬＡ-ＤＲ（ＭＨＣＩＩ）の発現を、ＣＤ８３又はＭＨＣＩＩに対する蛍光色素コンジュゲート抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーによって細胞を分析することによって調査する。ｍＤＣ上におけるＣＤ８３及び／又はＨＬＡ-ＤＲの細胞表面発現を低下させる抗ＣＤ８３抗体を、アゴニスト活性を有する抗体として識別する。
【０２７６】
アゴニスト抗ＣＤ８３抗体処置を用いたＭＡＰＫ及びｍＴＯＲシグナル伝達経路の阻害：  ｍＤＣにおいてＭＡＰＫ及びｍＴＯＲ（ラパマイシンの哺乳類標的）シグナル伝達の活性化を阻害するアゴニスト抗ＣＤ８３抗体を同定するために、生成された抗体を、下流シグナル伝達タンパク質のリン酸化を阻害する能力についてスクリーニングする。簡単には、未熟樹状細胞（ｉＤＣ）をサイトカインカクテルで処理し、ＤＣ成熟を誘導する。ｍＤＣを、ＤＣ成熟刺激と同時に、生成された抗体で処理する。処理されたｍＤＣからの細胞溶解物をＳＤＳ-ＰＡＧＥ、次いでリン酸化部位特異的抗体を用いてウエスタンブロット解析に課す。ｍＤＣにおけるｐ３８及びＣＲＥＢタンパク質の低減されたリン酸化によりＭＡＰＫシグナル伝達経路を阻害する、及び／又はｍＴＯＲタンパク質の低減されたリン酸化によりｍＴＯＲシグナル伝達経路を阻害する抗ＣＤ８３抗体を、アゴニスト活性を有する抗体として同定する。
【０２７７】
上で概要した抗体スクリーニング方法から同定された候補アゴニスト抗ＣＤ８３抗体は、動物モデルにおいて自己免疫疾患を治療するために様々な用量で使用され、大腸炎についてはＩＬ-１０ノックアウトマウスモデル(Scheinin等, Clin Exp Immunol., 133:38-43, 2003)、多発性硬化症については実験用自己免疫性脳脊髄炎マウスモデル(Miller等, Curr Protoc Immunol., Chapter 15:Unit 15.1, 2007)等で使用される。
【０２７８】
実施例１０．抗ＣＤ８３抗体の生成
材料及び方法
培地及び抗体
ClonaCell-HY培地Ｂ(Cat# 03802)、培地Ｃ(Cat# 03803)、培地Ｄ(Cat# 03804)及び培地Ｅ(Cat# 03805)をStem Cell Technologiesから得た。電気融合に使用したCytofusion培地Ｃ(Cat# LCM-C)をCyto Pulse Sciencesから得た。ヤギ抗ハムスターＩｇＧ(Ｈ＋Ｌ)-ＨＲＰコンジュゲート抗体(Cat# 127-035-160)をJackson Immuno Research Laboratoriesから得た。TMB one component HRP microwell substrate(Cat# TMBW-1000-01)及びTMB stop reagent(Cat# BSTP-1000-01)をBioFx Laboratoriesから得た。
インビボ免疫化
アルメニアンハムスターを、全１８ブーストを３〜４日の間隔で腹腔内注射によって、モノホスホリルリピドＡ／トレハロースジコリノミコレートアジュバントに再懸濁した組換えマウス及びヒトＣＤ８３にて、ハムスターにつき注入につき２μｇで免疫化した。最終プレ融合ブーストの３日後、免疫化したハムスター脾臓からのリンパ球を回収した。
ハイブリドーマ生成及び抗体スクリーニング
単離したハムスターの脾臓細胞を、Cyto Pulse CEEF-50 装置(Cyto Pulse Sciences)を使用してＰＵ-ｌ骨髄腫細胞（American Type Culture Collection）で融合した。簡単には、Cytofusion培地Ｃで２回洗浄した後、単離した脾臓細胞及びＰＵ-ｌ細胞を１：１比で混合し、次いでCytofusion培地Ｃ中に１０００万細胞／ｍｌで再懸濁した。電気融合を製造者の指示に従って実施した。融合細胞を７％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で一晩、ClonaCell-HY培地Ｃにおいて培養した。翌日、融合細胞を遠心分離し、次いで１０ｍｌのClonaCell-HY培地Ｃに再懸濁し、その後ＨＡＴ成分を含有する９０ｍｌのメチルセルロースベースのClonaCell-HY培地Ｄで穏やかに混合した。細胞を１００ｍｍペトリ皿(Cat#351029, Becton Dickinson)にプレーティングし、７％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で増殖させた。１０日のインキュベーションの後、単一ハイブリドーマクローンをClonePix(Genetix, United Kingdom)によって選び、ウェルにつき２００μＬのClonaCell-HY培地Ｅを有する９６ウェル細胞培養プレート(#353075, Becton Dickinson)に移した。ハイブリドーマ培養培地をＥＬＩＳＡスクリーニングの前に変えた。培地交換の３日後、ハイブリドーマ上澄部を、ＥＬＩＳＡ陽性クローンの同定のために、ヒトＣＤ８３又はマウスＣＤ８３に対してＥＬＩＳＡによってスクリーニングした。
ハムスターＡｂｓ精製
ハイブリドーマ上澄部をプロテインＡ親和性クロマトグラフィーによって精製し、次いで無菌的に濾過し (０．２μｍ孔サイズ, Nalge Nunc International, NY, USA)、ＰＢＳにおいて４℃で保管した。機能アッセイを使用して更に試験する前に、精製したｍＡｂｓをＥＬＩＳＡによって確認した。
ＥＬＩＳＡアッセイ
ＥＬＩＳＡアッセイを標準のプロトコルに従って実施した。ＥＬＩＳＡ９６ウェルマイクロタイタープレート(Greiner, Gennany)を、０．０５Ｍの炭酸バッファー（ｐＨ９．６）中に２μｇ／ｍｌの濃度で、ウェルにつき１００μＬのヒト又はマウスＣＤ８３でコートし、４℃で一晩インキュベートした。ウェルを洗浄バッファー（ＰＢＳ中０．０５％Ｔｗｅｅｎ ２０, Sigma）で３回洗浄した後、プレートを、ＢＳＡと共に１００μＬのＥＬＩＳＡアッセイ希釈液でブロックした。１００μＬの培養上澄部又は希釈精製ｍＡｂを加え、1時間室温でインキュベートした。プレートを３回洗浄し、ＨＲＰコンジュゲートヤギ抗ハムスターＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）で１時間インキュベートした。ウェルを３回洗浄した後、結合したＨＲＰコンジュゲート抗体を、ウェルにつき１００μＬのＴＭＢ基質(BioFX Laboratories, MD, USA)の添加によって検出し、プレートを５分間インキュベートした。 反応をウェルにつき１００μＬの停止剤(BioFX, Laboratories, MD, USA)の添加によって停止し、色をＡ６３０ｎｍで検出してヒト又はマウスＣＤ８３に結合した抗体を同定又は確認した。
ＦＡＣＳ結合アッセイ
生成された抗体を、ＣＨＯ細胞上に安定して発現されるヒトＣＤ８３又はマウスＣＤ８３に結合するそれらの能力について検定した。安定細胞株の産生のための発現ベクターを生成するために、Ｎ末端ＨＩＳタグヒトＣＤ８３（ｈＣＤ８３）又はＮ末端ＨＩＳタグマウスＣＤ８３（ｍＣＤ８３）をコードするＤＮＡ断片を、ＸｂａＩ及びＸｈｏＩ部位で、ネオマイシン耐性プラスミドｐＲＫｎｅｏ (Crowley et ai., Proc Natl Acad Sci USA., 90(11):5021-5025, 1993)にクローニングし、ｈＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏ又はｍＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏをそれぞれ産生した。ＣＨＯ細胞をFugene (Roche)を使用してｈＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏ又はｍＣＤ８３．ｐＲＫｎｅｏで形質移入し、上位１０％のＣＤ８３陽性細胞をＦＡＣＳによって選別し、次いでＧ４１８(４００μｇ／ｍｌ; GIBCO)で選択して、安定ＣＨＯ-ｈＣＤ８３又はＣＨＯ-ｍＣＤ８３細胞株をそれぞれ生成した。ＣＨＯ-ｈＣＤ８３及びＣＨＯ-ｍＣＤ８３細胞を、ＰＢＳ／２％ＢＳＡ／２ｍＭ ＥＤＴＡを含有するＦＡＣＳバッファーに再懸濁し、氷上で３０分間、抗ヒトＣＤ８３抗体又は抗マウスＣＤ８３抗体でインキュベートした。細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、次いで３０分間氷上で暗所において蛍光色素コンジュゲート抗ハムスターＩｇＧ２次抗体でインキュベートした。細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェア(Becton Dickinson)を使用してＬＳＲ ＩＩフローサイトメーターでフローサイトメトリーによって解析した。データ解析及び図の構築をFlowJo v.9.4.11を使用して実施した。
サブクローニング
野生型マウスＩｇＧ２ａ定常領域をハムスター可変領域と共に有するキメラ抗体の産生のために、マウス又はヒトＣＤ８３に結合可能な抗体を産生したハイブリドーマクローンを少なくとも１回の単一細胞サブクローニングに課した。その後抗体を配列決定した。
結果
ＦＡＣＳ結合アッセイのデータ解析は、ＣＤ８３に結合する能力を有する抗体を産生する９つのハイブリドーマクローンを同定した。抗ＣＤ８３抗体３５Ｇ １０、４０Ａ１１，５４Ｄ１１、５９Ｇ１Ｏ、７５ＡＩ及び７Ｃ７はヒトＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に結合したが（黒線）、マウスＣＤ８３を発現する細胞（破線）又はＣＤ８３発現を欠いた親ＣＨＯ細胞（中実ヒストグラム）には結合しなかった（図１７Ａ-Ｆ）。抗ＣＤ８３抗体６０Ｂ１０はヒトＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に結合し、またマウスＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞との交差反応も見せた（図１７Ｇ）。抗ＣＤ８３抗体４２Ｃ６及び３９Ａ２は、マウスＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞に特異的に結合したが（破線）、ヒトＣＤ８３を発現するＣＨＯ細胞（黒線）又はＣＤ８３発現を欠く親ＣＨＯ細胞株には結合しなかった（図１８Ａ及びＢ）。
【０２７９】
ハイブリドーマクローンから単離した抗体の配列決定から以下の配列を得た（可変領域に下線を引きＨＶＲを太字にする）：
３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３重鎖ＤＮＡ配列
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３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３重鎖アミノ酸配列
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３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３重鎖可変領域アミノ酸配列
2015511931.tif 000012
３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｈｌアミノ酸配列
2015511931.tif 000013
３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｈ２アミノ酸配列
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３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｈ３アミノ酸配列
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３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３軽鎖ＤＮＡ配列
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３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３軽鎖アミノ酸配列
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３９Ａ２ 抗マウスＣＤ８３軽鎖可変領域アミノ酸配列
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３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｌｌアミノ酸配列
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３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｌ２アミノ酸配列
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３９Ａ２ ＨＶＲ-Ｌ３アミノ酸配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３重鎖ＤＮＡ配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３重鎖アミノ酸配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３重鎖可変領域アミノ酸配列
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４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｈｌアミノ酸配列
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４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｈ２アミノ酸配列
2015511931.tif 000026
４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｈ３アミノ酸配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３軽鎖ＤＮＡ配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３軽鎖アミノ酸配列
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４２Ｃ６ 抗マウスＣＤ８３軽鎖可変領域アミノ酸配列
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４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｌ１アミノ酸配列
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４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｌ２アミノ酸配列
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４２Ｃ６ ＨＶＲ-Ｌ３アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３重鎖ＤＮＡ配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３重鎖アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３重鎖可変領域アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｈｌアミノ酸配列
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６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｈ２アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｈ３アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３軽鎖ＤＮＡ配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３軽鎖アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ 抗ヒトＣＤ８３軽鎖可変領域アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｌ１アミノ酸配列
2015511931.tif 000043
６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｌ２アミノ酸配列
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６０Ｂ１０ ＨＶＲ-Ｌ３アミノ酸配列
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【０２８０】
実施例１１．抗ＣＤ８３抗体はｍＤＣからの炎症促進性サイトカインの放出を低減する。
樹状細胞（ＤＣ）を、抗ＣＤ８３抗体６０Ｂ１０、３５Ｇ１０、４０Ａ１１、５４Ｄ１、５９Ｇ１０、７５ＡＩ、又は７Ｃ７で処理した場合の抗炎症性反応についてモニタした。アッセイでは、単球由来樹状細胞を未熟ＤＣ（ｉＤＣ）のまま残すか、又は２５ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-１β、１００ｎｇ／ｍｌのｒｈＩＬ-６、５０ｎｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦａ及び１μｇ／ｍｌのＰＧＥ-２を含有するサイトカインカクテルで処理して成熟ＤＣ（ｍＤＣ）を生成した。成熟ＤＣを１０μｇ／ｍｌの示した抗ＣＤ８３抗体で処理し、４８時間インキュベートした。インキュベート後、細胞培養上澄部を集め、分泌された炎症促進性サイトカインを標準の製造者の指示に従ってＥＬＩＳＡ（Invitrogen）によって解析した。分泌サイトカインレベルの解析は、炎症促進性サイトカインＭＣＰ-ｌの放出が、抗ＣＤ８３抗体６０Ｂ１０、３５Ｇ１０、４０Ａ１１、又は７Ｃ７で処理したｍＤＣにおいて有意に低減されたことを示した（図１９）。抗ＣＤ８３抗体５４Ｄ１、５９Ｇ１０、又は７５ＡＩでの処理は、ｍＤＣからのＭＣＰ-ｌの産生を有意には低減しなかった（図１９Ａ）。
【０２８１】
ＤＣを、抗マウスＣＤ８３抗体３９Ａ２又は４２Ｃ６で処理した場合の抗炎症性についてモニタした。アッセイでは、マウス骨髄由来ＤＣ（ＢＭＤＣ）を未熟ＤＣ（ｉＤＣ）のまま残すか、又はＬＰＳで成熟させた。成熟ＤＣを３９Ａ２、４２Ｃ６又は可溶性マウスＣＤ８３．Ｆｃタンパク質で処理し、その後、炎症促進性サイトカインＩＬ-１２ｐ４０の発現の決定のためにＲＮＡの単離のために回収した。ＩＬ-１２ｐ４０ＲＮＡレベルの定量的ＰＣＲ解析は、ＬＰＳ刺激を共に用いた抗マウスＣＤ８３抗体３９Ａ２又は４２Ｃ６によるＤＣの処理は、可溶性マウスＣＤ８３．Ｆｃタンパク質で処理したＤＣにおいて観察された類似のレベルまでＩＬ-１２ｐ４０発現を有意に低減させた。
【０２８２】
実施例１２．抗ＣＤ８３抗体の使用はＤＳＳ誘導大腸炎からマウスを保護する
炎症性腸疾患のマウスモデルにおける抗ＣＤ８３抗体処置の効果を評価するために、大腸炎をデキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）での処置によってマウスに誘発させた。８−１０週の年齢のＦＶＢマウスに、２００μｇの抗ＣＤ８３抗体３９Ａ２、４２Ｃ６、又は６０Ｂ１０、又はコントロール抗ｇＤ抗体を、腹腔内注入によって、研究の１日目、３日目、及び５日目に１日に１回に与えた。マウスに、飲料水中に６％のＤＳＳを、研究の０日目に開始して７日間与えた。７日目に、マウスは１２日目の実験の中止まで通常の飲料水に変更した。次いでマウスを安楽死させ、小及び大腸の薄片を作り、組織学的分析のためにＨ＆Ｅで染色した。切片をランダム化し、二重盲検でスコア付けした。ＤＳＳのみで処置されたマウスからの結腸切片は、８．４の平均組織学的スコアを有した（図２０）。対照的に、抗ＣＤ８３抗体を与えられたマウスは組織学的スコアを有意に低減させた。３９Ａ２、４２Ｃ６、又は６０Ｂ１０抗体の使用は、それぞれ５．３、５．５、又は５．４の平均組織学的スコアの結果となった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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