(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記化学式１で表されるトリコデルミン（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎ）または
下記化学式２で表されるトリコデルミノール（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎｏｌ）を有効成分として含む、植物ウイルス防除用組成物。
【化１】
0006297148.tif 000006
【化２】
0006297148.tif 000007
【請求項２】
前記トリコデルミンまたはトリコデルミノールは、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したことを特徴とする請求項１に記載の植物ウイルス防除用組成物。
【請求項３】
前記植物ウイルスは、タバコモザイクウイルス（ＴＭＶ）、ドウガラシモットルウイルス（ＰｅｐＭｏＶ）、キュウリモザイクウイルス（ＣＭＶ）、ドウガラシマイルドモットルウイルス（ＰＭＭｏＶ）、ズッキーニ黄斑モザイクウイルス（ＺＹＭＶ）、スイカモザイクウイルス（ＷＭＶ）、スイカモザイクウイルス２（ＷＭＶ２）、ジャガイモウイルスＹ（ＰＶＹ）、カブモザイクウイルス（ＴｕＭＶ）、メロンえそ斑点ウイルス（ＭＮＳＶ）、キュウリ緑斑モザイクウイルス（ＣＧＭＭＶ）、ズッキーニ緑斑モザイクウイルス（ＺＧＭＭＶ）、ジャガイモ葉巻ウイルス（ＰＬＲＶ）、ユリモットルウイルス（ＬＭｏＶ）、ユリ無病徴ウイルス（ＬＳＶ）、オドントグロッサムリングスポットウイルス（ＯＲＳＶ）、シンビジウムモザイクウイルス（ＣｙＭＶ）、ソラマメウィルトウイルス（ＢＢＷＶ）、トマト輪点ウイルス（ＴｏｍＲＳＶ）、タバコ輪点ウイルス（ＴＲＳＶ）、トマト黄化えそウイルス（ＴＳＷＶ）、イチゴウイルス（ＳＭｏＶ）、及びサボテンＸウイルス（ＣＶＸ）からなる群より選択される１種以上であることを特徴とする請求項１または２に記載の植物ウイルス防除用組成物。
【請求項４】
前記組成物は、液剤、粒剤、粉剤、油剤、オイル剤、水和剤及び塗布剤からなる群より選択されるいずれか一つの形態に剤形化されたことを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項に記載の植物ウイルス防除用組成物。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の組成物を植物体または土壌に処理するステップを含む植物ウイルスの防除方法。
【請求項６】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する農薬組成物。
【請求項７】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する肥料添加用組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したトリコデルミンまたはトリコデルミノールを有効成分として含む抗ウイルス用組成物、植物ウイルス防除用組成物、及び当該組成物を用いた植物ウイルスの防除方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ウイルスは、宿主細胞を感染させて増殖する生命体であって、宿主とは別にその存在を考えられない生命体である。ウイルスには、宿主に応じて動物ウイルス、植物ウイルス、細菌ウイルス、かびウイルス等様々なものが存在する。
【０００３】
この中、植物ウイルスは、植物細胞を感染させるウイルスを総称する。植物ウイルスは、完全な生命体単位の菌類とは違って非細胞で構成されており、酵素がないため、自ら物質代謝ができない等非生物的特徴を有する。
【０００４】
特に、植物ウイルスは、宿主細胞（ｈｏｓｔ  ｃｅｌｌ）を利用して複製するので、様々な植物個体に被害を与え、宿主個体と細胞過程（ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｐｒｏｃｅｓｓ）を共有するので、植物ウイルスの機能のみを阻害することは困難である（Ｙａｎｍｅｉ  Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．１０４：８０８３−８０８８、２００７）。このため、植物ウイルスは１８９０年代にその存在が初めて明らかになったにもかかわらず、今までも発病した植物を圃場から除去したり、媒介虫を防除する等の物理的または間接的な防除方法を用いたりするだけで、植物ウイルス病に対する抗ウイルス剤の開発は微々たるものである。
【０００５】
近年には、タバコモザイクウイルス（ｔｏｂａｃｃｏ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ、ＴＭＶ）に対する抗ウイルス活性を有した植物由来の代謝物質に関する研究が行われており、現在までニガキ（Ｐｉｃｒａｓｍａ  ｑｕａｓｓｉｏｉｄｅｓ）由来アルカロイド（ａｌｋａｌｏｉｄ）系列、鴉胆子（Ｂｒｕｃｅａ  ｊａｖａｎｉｃａ）由来クァシノイド（ｑｕａｓｓｉｎｏｉｄ）系列、ゴールデンシャワーツリー（Ｃａｓｓｉａ  ｆｉｓｔｕｌａ）由来フラボノイド（ｆｌａｖｏｎｏｉｄ）系列、 鉄刀木（Ｃａｓｓｉａ  ｓｉａｍｅａ）由来クロモン（ｃｈｒｏｍｏｎｅ）系列等の活性が報告された（Ｊｉａ  Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ａｇｒｉｃ、Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍ．５７：６５９０−９５９５、２００９；Ｘｉａｏ−Ｈｕｉ  Ｙａｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．  Ａｇｒｉｃ、Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍ．５８：１５７２−１５７７、２０１０；Ｗｅｉ  Ｚｈａｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１７９−１８２、２０１３；Ｑｉｕ−Ｆｅｎ  Ｈｕ  ｅｔａｌ．、Ｊ．Ｎａｔ．Ｐｒｏｄ．７５：１９０９−１９１４、２０１２）。
【０００６】
しかし、上記物質は、部分病斑（ｌｏｃａｌ ｌｅｓｉｏｎ）のみを見せるタバコモザイクウイルスを対象にして抗ウイルス活性を確認したことに過ぎず、その適用には限界があった。
【０００７】
そこで、本発明者らは、植物ウイルスに対する抗ウイルス活性に優れた新規物質を発掘するために研究を重ねた結果、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株からトリコデセン系列の化合物であるトリコデルミンまたはトリコデルミノールを分離及び同定し、上記化合物が、代表的な植物ウイルスであるタバコモザイクウイルスだけではなく、宿主全体（ｓｙｓｔｅｍｉｃ  ｈｏｓｔ）に病徴（ｄｉｓｅａｓｅ  ｓｙｍｐｔｏｍ）を示すドウガラシモットルウイルスに対して優れた抗ウイルス活性を示すことが確認され、本発明を完成するに至った。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明の目的は、新規抗ウイルス用組成物及び植物ウイルス防除用組成物を提供することにある。
【０００９】
本発明の他の目的は、上記組成物を用いた植物ウイルスの防除方法を提供することにある。
【００１０】
本発明のまた他の目的は、上記組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する農薬組成物及び肥料添加用組成物を提供することにある。
【００１１】
本発明のまた他の目的や利点は、以下の発明の詳細な説明、請求範囲及び図面により、より明確になるであろう。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
上記の課題を解決するために、本発明は、トリコデルミンまたはトリコデルミノールを有効成分として含む抗ウイルス用組成物を提供する。
【００１３】
また、本発明は、トリコデルミンまたはトリコデルミノールを有効成分として含む植物ウイルス防除用組成物を提供する。
【００１４】
また、本発明は、上記組成物を植物体または土壌に処理するステップを含む、植物ウイルスの防除方法を提供する。
【００１５】
また、本発明は、上記組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する農薬組成物を提供する。
【００１６】
また、本発明は、上記組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する肥料添加用組成物を提供する。
【００１７】
また、本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物を含む植物ウイルス防除用組成物を提供する。
【００１８】
また、本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物を含む植物ウイルス防除用組成物を植物体または土壌に処理するステップを含む、植物ウイルスの防除方法を提供する。
【００１９】
また、本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物からトリコデルミンまたはトリコデルミノールを抽出するステップを含むトリコデルミンまたはトリコデルミノールを生産する方法を提供する。
【００２０】
また、本発明は、トリコデルミンまたはトリコデルミノールを生産するトリコデルマ・アルボルテセンス・ＫＵＣ２１１５菌株（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ  ＫＵＣ２１１１５、寄託番号  ＫＡＣＣ９３２１５Ｐ）を提供する。
【発明の効果】
【００２１】
本発明に係るトリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したトリコテセン系列の化合物であるトリコデルミンまたはトリコデルミノールは、様々な植物ウイルスに対する抗ウイルス活性を有しており、植物ウイルス防除に有用に使用できる。また、本発明は、天然物を基盤にしたものであるので、有効成分の大量生産が容易であり、植物体に被害を与えない安全な物質を用いた環境親和的な防除剤の開発及び高付加価値の農作物生産等、農業分野で多様に活用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したトリコデルミン及びトリコデルミノールのＮＭＲスペクトルの分析結果を示す図である。
【図２】タバコからトリコデルミンのドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認した結果を示す図である（Ａ：Ｖｉｓｉｂｌｅ及びＵＶ写真撮影の結果、Ｂ：ＲＴ−ＰＣＲ及びウエスタンブロットの結果、ａ：５０μＭ、ｂ：１０μＭ、ｃ：５μＭ、ｄ：１μＭ、＋：ｃｏｎｔｒｏｌ、−：ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｍｅｎｔ，Ｍ：ｍａｒｋｅｒ）。
【図３】タバコからトリコデルミノールのドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認した結果を示す図である（Ａ：Ｖｉｓｉｂｌｅ及びＵＶ写真撮影の結果、Ｂ：ＲＴ−ＰＣＲ及びウエスタンブロットの結果、ａ：２０００μＭ、ｂ：１０００μＭ、ｃ：５００μＭ、ｄ：１００μＭ、＋：ｃｏｎｔｒｏｌ、−：ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｍｅｎｔ、Ｍ：ｍａｒｋｅｒ）。
【図４】ドウガラシからトリコデルミンのドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認した結果を示す図である（Ａ：Ｖｉｓｉｂｌｅ及びＵＶ写真撮影の結果、Ｂ：ＲＴ−ＰＣＲ及びウエスタンブロットの結果、ａ：２０００μＭ、ｂ：１０００μＭ、ｃ：５００μＭ、ｄ：１００μＭ、＋：ｃｏｎｔｒｏｌ、−：ｎｏｎｔｒｅａｔｍｅｎｔ，Ｍ：ｍａｒｋｅｒ）。
【図５】タバコからトリコデルミンのタバコモザイクウイルスに対する抗ウイルス活性を確認した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本発明は、多様な変換を加えることができ、様々な実施例を有することができるため、特定の実施例を図面に例示し、詳細に説明する。しかし、これは本発明を特定の実施形態に限定するものではなく、本発明の思想及び技術範囲に含まれるあらゆる変換、均等物ないし代替物を含むものとして理解されるべきである。本発明を説明するに当たって、係わる公知技術に対する具体的な説明が本発明の要旨をかえって不明にすると判断される場合は、その詳細な説明を省略する。
【００２４】
以下、本発明について詳細に説明する。
【００２５】
本発明は、下記化学式１で表されるトリコデルミン（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎ）または下記化学式２で表されるトリコデルミノール（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎｏｌ）を有効成分として含む抗ウイルス用組成物を提供する。
【化１】
0006297148.tif 000002
【化２】
0006297148.tif 000003
【００２６】
また本発明は、上記化学式１で表されるトリコデルミン（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎ）または上記化学式２で表されるトリコデルミノール（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎｏｌ）を有効成分として含む植物ウイルス防除用組成物を提供する。
【００２７】
本発明のトリコデルミンまたはトリコデルミノールは、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離することができ、好ましくは、寄託番号大韓民国ＫＡＣＣ９３２１５Ｐのトリコデルマ・アルボルテセンス菌株から分離することができる。また、上記トリコデルミンまたはトリコデルミノールは、当業界に公知の方法を用いて合成することができ、これに限定されるものではない。
【００２８】
本発明の植物ウイルスは、タバコモザイクウイルス（ＴＭＶ）、ドウガラシモットルウイルス（ＰｅｐＭｏＶ）、キュウリモザイクウイルス（ＣＭＶ）、ドウガラシマイルドモットルウイルス（ＰＭＭｏＶ）、ズッキーニ黄斑モザイクウイルス（ＺＹＭＶ）、スイカモザイクウイルス（ＷＭＶ）、スイカモザイクウイルス２（ＷＭＶ２）、ジャガイモウイルスＹ（ＰＶＹ）、カブモザイクウイルス（ＴｕＭＶ）、メロンえそ斑点ウイルス（ＭＮＳＶ）、キュウリ緑斑モザイクウイルス（ＣＧＭＭＶ）、ズッキーニ緑斑モザイクウイルス（ＺＧＭＭＶ）、ジャガイモ葉巻ウイルス（ＰＬＲＶ）、ユリモットルウイルス（ＬＭｏＶ）、ユリ無病徴ウイルス（ＬＳＶ）、オドントグロッサムリングスポットウイルス（ＯＲＳＶ）、シンビジウムモザイクウイルス（ＣｙＭＶ）、ソラマメウィルトウイルス（ＢＢＷＶ）、トマト輪点ウイルス（ＴｏｍＲＳＶ）、タバコ輪点ウイルス（ＴＲＳＶ）、トマト黄化えそウイルス（ＴＳＷＶ）、イチゴウイルス（ＳＭｏＶ）、またはサボテンＸウイルス（ＣＶＸ）を含み、好ましくは、タバコモザイクウイルス（ＴＭＶ）またはドウガラシモットルウイルス（ＰｅｐＭｏＶ）であってもよいが、これに限定されない。
【００２９】
本発明に係るトリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したトリコテセン系列の化合物であるトリコデルミンまたはトリコデルミノールは、様々な植物ウイルスに対する抗ウイルス活性を有しており、植物ウイルスにより発生する植物ウイルス病の予防または治療のための防除用組成物として有用に使用できる。
【００３０】
また本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物を含む植物ウイルス防除用組成物を提供する。
【００３１】
本発明に係るトリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物は、様々な植物ウイルスに対する抗ウイルス活性を有しており、植物ウイルスにより発生する植物ウイルス病の予防または治療のための防除用組成物として有用に使用できる。
【００３２】
本発明の植物ウイルス防除用組成物は、有効成分であるトリコデルミンまたはトリコデルミノール以外に、当業界に公知の抗ウイルス活性を有する物質を１種以上さらに含むことができる。
【００３３】
本発明の植物ウイルス防除用組成物は、農薬分野に公知の様々な形態に剤形化することができ、剤形化のためには農薬分野で通常的に使用される剤形化方法のいずれでも使用できる。
【００３４】
上記組成物は、例えば、液剤、粒剤、粉剤、油剤、オイル剤、水和剤または塗布剤の形態に剤形化でき、これに限定されるものではない。
【００３５】
本発明の植物ウイルス防除用組成物は剤形化のために多様な成分を含むことができ、例えば、液体担体、固体担体、界面活性剤または補助剤等を含むことができる。
【００３６】
上記液体担体としては、水（ｗａｔｅｒ）、植物油（ｖｅｇｅｔａｂｌｅ  ｏｉｌ）、エタノール（ｅｔｈａｎｏｌ）等が使用でき、上記植物油には大豆油、菜種油、椰子油、パーム核油、米糠油、トウモロコシ油、パーム油、オリーブ油等が含まれるが、これに限定されない。
【００３７】
上記固体担体としては、鉱物粉末、ゼラチン、アルギン酸等を用いることができるが、これに限定されない。
【００３８】
上記鉱物粉末としては、陽イオン粘土（ｃａｔｉｏｎ  ｃｌａｙ）、ベントナイト（ｂｅｎｔｏｎｉｔｅ）、カオリン（ｋａｏｌｉｎ）、タルク（Ｔａｌｃ）、珪藻土（ｄｉａｔｏｍａｃｅｏｕｓ  ｅａｒｔｈ）等が使用できるが、これに限定されない。
【００３９】
上記界面活性剤としては、エチレンオキサイド（Ｅｔｈｙｌｅｎｅｏｘｉｄｅ）系、ジエタノールアミン（Ｄｉｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ）系、ソルビトル（Ｓｏｒｂｉｔｏｌ）系、グリセリン（Ｇｌｙｃｅｒｉｎｅ）系等が使用できるが、これに限定されない。
【００４０】
上記補助剤としては、増量剤、不凍液、溶剤、増粘剤、展着剤等が使用できるが、これに限定されない。
【００４１】
本発明の植物ウイルス防除用組成物に含まれるトリコデルミンまたはトリコデルミノールの濃度は、植物体の生育程度、耕作地の環境、植物ウイルス病の発病程度等を考慮して当業者が適宜調整することができ、これに限定されるものではない。
【００４２】
また本発明は、上記組成物を植物体または土壌に処理するステップを含む、植物ウイルスの防除方法を提供する。
【００４３】
また本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物を含む植物ウイルス防除用組成物を植物体または土壌に処理するステップを含む、植物ウイルスの防除方法を提供する。
【００４４】
上記処理方法には、茎葉処理、土壌処理、浸漬処理、枝切断または農機具の消毒に適用する処理方法等が含まれ得るが、これに限定されない。
【００４５】
また本発明は、上記組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する農薬組成物を提供する。
【００４６】
また本発明は、上記組成物を含む植物ウイルス防除活性を有する肥料添加用組成物を提供する。
【００４７】
本発明に係るトリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株から分離したトリコテセン系列の化合物であるトリコデルミンまたはトリコデルミノールは、様々な植物ウイルスに対する抗ウイルス活性を有しており、植物ウイルスにより発生する疾病の予防、治療または改善のための農薬、肥料等に添加することができる。
【００４８】
本発明の農薬組成物または肥料添加用組成物には、有効成分であるトリコデルミンまたはトリコデルミノール以外に当業界に公知の一般の成分、例えば、溶媒、担体、乳化剤、分散剤、補助剤等が含まれ得るが、これに限定されない。
【００４９】
また本発明は、トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の菌体、培養液、またはこれらの混合物からトリコデルミンまたはトリコデルミノールを抽出するステップを含むトリコデルミンまたはトリコデルミノールを生産する方法を提供する。
【００５０】
本発明のトリコデルミンまたはトリコデルミノールを抽出する方法としては、当業界に公知の様々な抽出方法を用いることができ、特に制限されない。詳細な抽出方法の例示は、下記の実施例に記載されている。
【００５１】
また本発明は、トリコデルミンまたはトリコデルミノールを生産するトリコデルマ・アルボルテセンス・ＫＵＣ２１１５菌株（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ  ＫＵＣ２１１１５、大韓民国寄託番号  ＫＡＣＣ９３２１５Ｐ）を提供する。
【００５２】
以下に、本発明を実施例を挙げてより詳細に説明する。
【００５３】
但し、下記実施例は、本発明をより容易に理解するためのものであって、本発明の内容が実施例により限定されるものではない。
【実施例】
【００５４】
（実施例１）トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株の培養及びこれの抽出物からの化合物の分離
＜実施例１−１．Ｔ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ菌株の培養及び抽出＞
トリコデルマ・アルボルテセンス（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ）菌株は、大韓民国五台山国立公園の土壌から、高麗大学校生命科学大学のキムジェジン教授により採集及び同定された（大韓民国農村進興庁国立農業科学院農業遺伝資源情報センター、寄託番号：ＫＡＣＣ９３２１５Ｐ）。
【００５５】
上記のＴ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ菌株をポテトデキストロース寒天培地（ｐｏｔａｔｏ  ｄｅｘｔｒｏｓｅ  ａｇａｒ、ＰＤＡ）で、２８℃の温度及び暗条件で１０日間培養した。培養されたＴ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ菌株を２Ｌのメタノール（ｍｅｔｈａｎｏｌ：ＭｅＯＨ）で３回抽出及び濾過した後、真空減圧濃縮器を用いて溶媒を除去した。濃縮されたＴ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓメタノール抽出物を蒸溜水で懸濁させた後、エチルアセテート（ｅｔｈｙｌａｃｅｔａｔｅ：ＥｔＯＡｃ）で溶媒分画し、分離されたエチルアセテート層を再び濾過した後、濃縮して最終のＴ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓエチルアセテート抽出物０．８ｇが得られた。
【００５６】
＜実施例１−２．化合物の分離＞
実施例１−１で得られたＴ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓエチルアセテート抽出物０．８ｇを逆相シリカゲル（ＯＤＳ−Ａ、１２ｎｍ、Ｓ−７５μｍ）カラムクロマトグラフィー（３×５８ｃｍ）にメタノール−蒸溜水（ＭｅＯＨ：Ｈ２Ｏ、５：５、８：２、１０：０）の溶媒組成により６つの分画物（分画１〜６）に分離した。
【００５７】
上記６つの分画物中、分画２（１００ｍｇ）を順相シリカゲル（ｓｉｌｉｃａｇｅｌ６０、２３０−４００Ｍｅｓｈ）カラムクロマトグラフィー（１×２８ｃｍ）にクロロホルム−メタノール（ＣＨＣｌ３：ＭｅＯＨ、９．８：０．２、９．５：０．５、９：１、７：３）の溶媒組成により、再び３つの詳細分画物（分画２−１〜分画２−３）に分けた。この中、分画２−１（３０ｍｇ）を順相シリカゲル（ｓｉｌｉｃａｇｅｌ６０、２３０−４００Ｍｅｓｈ）カラムクロマトグラフィー（１×３８ｃｍ）にヘキサン−エチルアセテート（ｈｅｘａｎｅ：ＥｔＯＡｃ、８：２、７：３、５：５）溶媒組成により化合物２（１０ｍｇ）を単離した。
【００５８】
また、分画３（３００ｍｇ）を順相シリカゲル（ｓｉｌｉｃａｇｅｌ６０、２３０−４００Ｍｅｓｈ）カラムクロマトグラフィー（１×１２ｃｍ）にヘキサン−エチルアセテート（ｈｅｘａｎｅ：ＥｔＯＡｃ、８：２、６：４、５：５）溶媒組成により化合物１（２００ｍｇ）を単離した。
【００５９】
（実施例２）Ｔ．ａｌｂｏｌｕｔｅｓｃｅｎｓ菌株から分離した化合物の構造分析
上記実施例１で得られた化合物１及び２の構造を分析するために、次の装備を用いて実験を行った。
【００６０】
旋光係（ｐｏｌａｒｉｍｅｔｅｒ）としてＪＡＳＣＯ・Ｐ−２０００を使用し、ＩＲスペクトルとしてＶａｒｉａｎ６４０−ＩＲを使用した。１Ｈ、１３Ｃ、及び２ＤＮＭＲスペクトルとしてはＶａｒｉａｎ５００ＭＨｚＮＭＲを使用し、内部標準物質としては、ＴＭＳが含まれたＣＤＣｌ３を使用し、化学的移動は、δ値で表現した。高分解能電子噴霧イオン化（ｈｉｇｈ−ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ  ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ  ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ：ＨＲＥＳＩ）質量スペクトルは、ＷａｔｅｒｓＱ−ＴＯＦ質量分析機を使用して測定した。
【００６１】
以上の実験により化合物１をトリコデルミン（化学式１）と、化合物２をトリコデルミノール（化学式２）と同定した。
【００６２】
具体的な実験結果及び化合物の構造を下記に示す。
【００６３】
トリコデルミン（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎ）：無色、無臭のオイル形態を有する。旋光度を測定した結果、［α］２６Ｄ−８５．２（ｃ１．５、ＣＨＣｌ３）の数値を得た。ＩＲスペクトルを測定した結果、  Ｖｍａｘ値が、２９６３、１７３０、１４３６、１３７３、１２４０、１０７８、１０２９、９９０ｃｍ−１で観察された。１Ｈ及び１３ＣのＮＭＲスペクトルの分析結果（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）を図１に示した。陽性高分解能ＥＳＩＭＳで２９３．１７６２［Ｍ＋Ｈ］＋  （Ｃ１７Ｈ２５Ｏ４、２９３．１７５３で計算）値を確認し、陰性ＥＳＩＭＳでは、該当するイオンが現われなかった。
【化３】
0006297148.tif 000004
【００６４】
トリコデルミノール（Ｔｒｉｈｏｃｄｅｒｍｉｎｏｌ）：無色、無臭のオイル形態を有する。旋光度を測定した結果、［α］２６Ｄ−５．７（ｃ０．８、ＣＨＣｌ３）の数値を得た。ＩＲスペクトルを測定した結果、Ｖｍａｘ値が、３４４４、２９２８、１７２５、１４３３、１３７５、１２４５、１０７４、１０３０、９６３ｃｍ−１で観察された。１Ｈ及び１３ＣのＮＭＲスペクトルの分析結果（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）を図１に示した。陽性ＥＳＩＭＳで３０９．１［Ｍ＋Ｈ］＋、６１７．３［２Ｍ＋Ｈ］＋、９２５．５［３Ｍ＋Ｈ］＋値が現れ、高分解能ＥＳＩＭＳで３０９．１６９４［Ｍ＋Ｈ］＋（Ｃ１７Ｈ２５Ｏ５、３０９．１７０２で計算）が確認され、陰性ＥＳＩＭＳでは、３５３．１［Ｍ＋ＨＣＯＯ］−が確認された。
【化４】
0006297148.tif 000005
【００６５】
（実施例３）ドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性の検証
＜実施例３−１．材料＞
ドウガラシモットルウイルス（ｐｅｐｐｅｒ  ｍｏｔｔｌｅ  ｖｉｒｕｓ、ＰｅｐＭｏＶ）に対する抗ウイルス活性を検証するために、実験宿主植物個体としてタバコ（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ  ｂｅｎｔｈａｍｉａｎａ）とドウガラシ（Ｃａｐｓｉｃｕｍ  ａｎｕｕｍ  Ｌ．）を用いた。これは、大韓民国ソウル女子大学校の植物ウイルス銀行（ｐｌａｎｔ  ｖｉｒｕｓ  ｇｅｎｅｂａｎｋ、ＰＶＧＢ）から提供された。また、全身感染宿主（ｓｙｓｔｅｍｉｃ  ｈｏｓｔ）内での抗ウイルス活性を確認するために、緑色蛍光タンパク質（ｇｒｅｅｎ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎ、ＧＦＰ）でタグされたドウガラシモットルウイルスを用いた（Ｌｅｅ、Ｍ．  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．、Ｖｉｒｕｓ  Ｒｅｓ．１５５：４８７−４９４、２０１１）。
【００６６】
＜実施例３−２．タバコから抗ウイルス活性の検証＞
上記実施例２で得られた化合物のドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認するために、下記のような実験を行った。
【００６７】
全身感染宿主として使用されたタバコは、播種後に４週間の間に２５℃に維持される温室で培養した。接種源（ｉｎｏｃｕｌｕｍ）としては、ドウガラシモットルウイルスに感染されたタバコの葉から緑色蛍光タンパク質がＵＶ上に均一に広がっている葉を採取して接種バッファー（０．０１Ｍ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｄ  ｓａｌｉｎｅ  ｂｕｆｆｅｒ、ＰＢＳ  ｂｕｆｆｅｒ、ｐＨ７．２）で磨砕して汁液を得、これを用いた。各化合物の濃度ごとのサンプルは、１０％ＤＭＳＯ（ｓｉｇｍａ）を含んだＰＢＳバッファーで溶かして準備し（化合物１（トリコデルミン）は、５０μＭ、１０μＭ、５μＭ、１μＭの濃度を用い、化合物２（トリコデルミノール）は、２０００μＭ、１０００μＭ、５００μＭ、１００μＭの濃度を用いた）、上記化合物を接種源である汁液２００μｌと混合して室温で３０分の間に反応させた後に接種した。接種法としては、４週間の間に培養したタバコ植物の子葉（ｃｏｔｙｌｅｄｏｎ）を含む下葉４個にカーボランダム（ｃａｒｂｏｒｕｎｄｕｍ）をふりかけた後に、接種源である汁液と化合物の濃度ごとのサンプルとを混合した混合液を擦って接種（ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ）し、最小３回繰り返した。対照群（ｃｏｎｔｒｏｌ）としては、ＤＭＳＯと接種源との混合液を用いた。約２週間の間にＵＶ上で緑色蛍光タンパク質の有無によりドウガラシモットルウイルスの拡散形態を確認した。３、６、９、１２ｄｐｉ（ｄａｙｓ  ｐｏｓｔ−ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ）に植物体上葉を採取してＵＶ写真を撮影し、上記植物体上葉の葉片から、フェノール／クロロホルム抽出法を用いてＲＮＡ及びタンパク質を分離した後、分子的分析（ＲＴ−ＰＣＲ及びウェスタンブロット）を行った。
【００６８】
より具体的には、ＲＴ−ＰＣＲのために下記のような実験を行った。
【００６９】
先ず、０．５ｍＭｄＮＴＰｓ、１０ｐＭの逆方向プライマー、１Ｘ反応緩衝液（ｒｅａｃｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒ）、及び２．５ｕｎｉｔｓ  ＲｅｖｅｒｔＡｉｄ  ｒｅｖｅｒｓｅ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（Ｔｈｅｒｍｏ  ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ＵＳＡ）の反応混合物に、各ＲＮＡサンプルと蒸溜水とを混合して２０μｌの量にした後、Ｍｙ  ＣｙｃｌｅｒＴＭ  Ｔｈｅｒｍａｌ  Ｃｙｃｌｅｒ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、ＵＳＡ）を使用して４２℃で６０分間反応させてＲＴ反応を行った（ｃＤＮＡ生成）。その後、１Ｘ反応緩衝液（ｒｅａｃｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒ）、５ｕｎｉｔｓ  Ｅｘ−Ｔａｑ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（ＴＡＫＡＲＡ、Ｊａｐａｎ）、１０ｐＭの逆方向プライマー、及び１０ｐＭの正方向プライマーの反応混合物に、上記ＲＴ反応により合成されたｃＤＮＡ及び蒸溜水を混合して３０μｌの量にした後、Ｍｙ  ＣｙｃｌｅｒＴＭ  Ｔｈｅｒｍａｌ  Ｃｙｃｌｅｒを使用してＰＣＲを行った。
【００７０】
［変性（ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ）９５℃で３分後に、９５℃で３０秒、５８℃で３０秒、７２℃で６０秒を総３５回サイクルを行い、ＰｅｐＭｏＶ−ＣＰの正方向プライマー：５’−ＡＧＣ  ＡＧＣ  ＴＣＡ  ＡＧＡ  ＴＣＡ  ＧＡＣ  ＡＣ  ３’、ＰｅｐＭｏＶ−ＣＰの逆方向プライマー：５’−ＣＡＴ  ＡＴＴ  ＴＣＴ  ＧＡＣ  ＣＣＣ  ＡＡＧ  ＣＡＧ  −３’］。
【００７１】
上記過程により生成された反応物をアガロースゲル（ａｇａｒｏｓｅ  ｇｅｌ）を使用した電気泳動（ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ）を行い、臭化エチジウム（ｅｔｈｉｄｉｕｍ  ｂｒｏｍｉｄｅ、ＥｔＢｒ）で染色してドウガラシモットルウイルスの外被タンパク質（ｃｏａｔ  ｐｒｏｔｅｉｎ、ＣＰ）のＲＮＡ  ｃｏｄｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎを確認した（８２２ｂｐ）。
【００７２】
また、ウエスタンブロットのために、下記のような実験を行った。
【００７３】
先ず、それぞれの全体タンパク質のサンプルをドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル（ｓｏｄｉｕｍ  ｄｏｄｅｃｙｌ  ｓｕｌｆａｔｅ（ＳＤＳ）−ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅ  ｇｅｌ）で電気泳動して分離した後、ニトロセルローズ（ｎｉｔｒｏｃｅｌｌｕｌｏｓｅ、ＮＣ）メンブレンに、Ｍｉｎｉ−Ｐｒｏ−ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、ＵＳＡ）を用いてエレクトルブロッティング（ｅｌｅｃｔｒｏ  ｂｌｏｔｔｉｎｇ）により転写（ｔｒａｎｓｆｅｒ）した。
【００７４】
転写の終わったニトリセルローズメンブレインをＴＢＳ−Ｔバッファー（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、０．１％  Ｔｗｅｅｎ２０）で３回洗浄した後、５％のｓｋｉｍ  ｍｉｌｋ（Ｄｉｆｃｏ、ＵＳＡ）に浸漬させ、２５℃で４時間の間ブロッキングした。ドウガラシモットルウイルスの外被タンパク質の発現を確認するために、上記ニトロセルローズメンブレインをドウガラシモットルウイルスに対する抗体（１：１０００に希釈、ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  Ｇ（Ｉｇ  Ｇ）ｆｒａｃｔｉｏｎ、１ｍｇ／ｍＬ）と、アルカリホスファタ−ゼ（ａｌｋａｌｉｎ  ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ、ＡＰ）に結合（ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ）した２次抗体（１：７５００  ｄｉｌｕｔｉｏｎ、Ｐｒｏｍｅｇａ、ＵＳＡ）とを用いて順次反応させた後、ＴＢＳ−Ｔ  バッファーで３回洗浄し、ＡＰｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒ（０．１  Ｍ  Ｔｒｉｓ  （ｐＨ  ９．５）、０．１  ｍＭ  ＮａＣｌ、５０ｍＮ  ＭｇＣｌ２）に浸漬させた。最終的に、上記ニトロセルローズメンブレインをｗｅｓｔｅｒｎ  ｂｌｕｅ（Ｐｒｏｍｅｇａ、ＵＳＡ）試薬で染色した後、ｃｏｍｉｇｒａｔｅｄ  ｂｌｕｅ  ｍａｒｋｅｒ  ｐｒｏｔｅｉｎと比較してドウガラシモットルウイルスの外被タンパク質の位置を確認した（３３ｋＤａ）。
【００７５】
以上の実験結果を図２及び図３に示した。
【００７６】
図２及び図３に示すように、対照群に比べてトリコデルミンまたはトリコデルミノール処理した群のタバコ上葉サンプルからは、緑色蛍光タンパク質が遅く観察され、緑色蛍光タンパク質が見えないタバコ上葉サンプルからはドウガラシモットルウイルスのｖｉｒａｌ  ＲＮＡ及び外被タンパク質が発現されなかったことが確認された。上記結果から、トリコデルミンまたはトリコデルミノールによりタバコにおけるドウガラシモットルウイルスの拡散速度が抑制されることが確認された。
【００７７】
＜実施例  ３−３．ドウガラシから抗ウイルス活性の検証＞
上記実施例２で得られた化合物のドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認するために、下記のような実験を行った。
【００７８】
宿主植物としては、茄子科（Ｓｏｌａｎａｃｅａｅ）植物中、ドウガラシモットルウイルスの主な被害作物であるドウガラシを用い、植物培養法、接種源及び接種方法は、上記実施例３−２と同様に行った。その結果を図４に示した。
【００７９】
図４に示すように、対照群に比べてトリコデルミン処理した群のドウガラシ上葉からは緑色蛍光タンパク質が遅く観察され、緑色蛍光タンパク質が見えないドウガラシ上葉サンプルからはドウガラシモットルウイルスのｖｉｒａｌ  ＲＮＡ及び外被タンパク質が発現されなかったことが確認された。上記結果から、トリコデルミンによりドウガラシにおけるドウガラシモットルウイルスの拡散速度が抑制されることが確認された。
【００８０】
（実施例４）タバコモザイクウイルスに対する抗ウイルス活性の検証
上記実施例３によりドウガラシモットルウイルスに対する抗ウイルス活性を確認した  化合物のタバコモザイクウイルス（ｔｏｂａｃｃｏ  ｍｏｓａｉｃ  ｖｉｒｕｓ、ＴＭＶ、大韓民国ソウル女子大学校植物ウイルス銀行（ｐｌａｎｔ  ｖｉｒｕｓ  ｇｅｎｅｂａｎｋ、（ＰＶＧＢ）から提供される）に対する抗ウイルス活性をさらに確認するために半葉法（ｈａｌｆ  ｌｅａｆ  ｍｅｔｈｏｄ）を行った。半葉法は、局部感染寄主であるタバコ（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ  ｔａｂａｃｕｍ  ｃｖ．Ｘａｎｔｈｉ  ｎｃ）において、タバコモザイクウイルスの抵抗性遺伝子によりタバコモザイクウイルスに感染した周囲部に壊死病斑（ｌｏｃａｌ  ｌｅｓｉｏｎ）を引き起こして黒い斑点を形成する特徴を用いる実験である。より具体的に、本葉７〜８葉期の局部感染寄主の上位３葉と４葉を取って布上に移し、カーボランダムを葉の全体に均一にふりかけ、ＤＭＳＯに溶かした濃度別の化合物１（トリコデルミン）サンプルとタバコモザイクウイルスの汁液とを混合した後、これをタバコ葉の右側半葉に綿棒を使用して接種した。タバコ葉の左側半葉にはタバコモザイクウイルス汁液のみを同じ方法で接種した（対照群）。その後、タバコ葉の葉柄を綿で取り囲み蒸溜水を供給した後、ペトリ皿（１５０ｍｍ×２ｃｍ）に移し、蓋をして２３℃インキュベーター（空気非循環方式）で３日間培養した。培養中には、一日に１回、約１ｍｌの蒸溜水を供給してタバコ葉の乾燥を予防した。接種３日後に壊死病斑を計数し、無処理した対照群の半葉の病斑数が１００個〜４００個の間にある結果のみを反映した。病斑の数を用いた防除率は、算出された公式（防除価（％）＝［１−（薬剤処理の半葉病斑数／無処理の半葉病斑数）］Ｘ１００）を用いて求めた。その結果を、図５に示した。
【００８１】
図５に示すように、トリコデルミンは、５ｐｐｍ以上の濃度にて約９７％以上の高いタバコモザイクウイルスに対する抗ウイルス活性を示すことが確認された。
【００８２】
以上のように、本発明の一実施例について説明したが、当該技術分野で通常の知識を有した者であれば、特許請求範囲に記載した本発明の思想から逸脱しない範囲内で、構成要素の付加、変更、削除または追加等により本発明を多様に修正及び変更することができ、これも本発明の権利範囲内に含まれるものと言えよう。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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