(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区の選定方法であって、
（１）各実験区及びコントロール区に対応するトランスクリプトームデータから、
ｋ番目のサンプルに含まれるｉ番目の遺伝子の発現頻度Ｐikを、Ｐik＝（ｋ番目のサンプルに含まれるｉ番目の遺伝子の発現量）／（ｋ番目のサンプルに含まれる全遺伝子の発現量）と定義した場合に、各遺伝子について前記発現頻度Ｐikを算出する工程と、
（２）下記式（II）に基づいて各実験区及びコントロール区に対応するＨkの値を算出する工程と、
（II）：Ｈk  ＝  −Σ（Ｐik・ｌｏｇＰik）  但し、Ｐik＝０の場合を除く
（３）前記Ｈkの値に従って、後続の発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区を選定する工程と、
を備え、
各実験区における同一実験区のデータセット数ｎが、いずれも３以上であり、
前記（３）の工程においては、前記Ｈkの値についてｔ検定を行い、前記ｔ検定におけるｐ値が０．０５以上となる実験区及びコントロール区の組合せを、発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける対象として選定することを特徴とする実験区の選定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区の選定方法に係り、詳しくは、トランスクリプトームデータを情報処理することで、発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区を選定する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
トランスクリプトームとは、特定の状況下において細胞中に存在する全ての一時転写産物の総体を指す呼称である。原則として、細胞に存在するゲノム（ＤＮＡの全塩基配列）は同一個体内の全ての細胞で同一であり、特定の個体から採取された細胞であれば、環境に変化が生じてもゲノムは一定である。一方、トランスクリプトームは、各遺伝子の発現状況（頻度）が反映された結果であるため、同一個体の細胞であっても各細胞の存在環境に呼応した固有の構成を取るため、例えば異なる組織の細胞間では全く異なる態様を示す。
【０００３】
次世代シークエンサの登場により、トランスクリプトームの測定（細胞の遺伝子発現量総体の測定）の精度が飛躍的に向上した、しかしながら、トランスクリプトームの測定結果として得られるデータは膨大な量であるため、得られたトランスクリプトームデータが如何なる意味を持つのか、直接的に人間が理解することは難しい。
【０００４】
そのため、得られたトランスクリプトームデータが如何なる意味を持つのかについて、統計処理を行って解析することが行われている。
【０００５】
条件刺激に対するトランスクリプトームの変動（＝各遺伝子の発現頻度の変動の総体）を解析するにあたっては、例えば、発現変動遺伝子（ＤＥＧ）抽出という手法が一般的に取られる。
【０００６】
ある条件刺激に対して細胞に生じている生命現象を解析しようとした際、全ての遺伝子についてその生命現象との関連を解析することは、時間・費用等各種コストの問題の点から実質的に不可能である。従って、限られたコストで有用な考察を得るためには、少数の遺伝子に着目し集中して解析を行う必要がある。そこで、どの遺伝子に着目すべきなのかという視点で、解析対象の遺伝子を絞り込む過程が必要であり、その過程としてＤＥＧ抽出が行われる。
【０００７】
ＤＥＧ抽出は、条件刺激によって細胞に生じている事象と関連性の高い遺伝子を抽出することを目的とするものであり、条件刺激の前・後のトランスクリプトームを比較し、発現頻度がより大きく変動した遺伝子は、その条件刺激に対する細胞の反応とより関連性が高いであろう、という予測に基づき、発現頻度の変化が大きかった遺伝子をＤＥＧとして同定・抽出するものである。
【０００８】
何件の遺伝子をＤＥＧとして抽出するかは、研究者の主観で決められているが、一般的にはｐ値あるいはＦＤＲ値を用いて絞り込んで、その遺伝子発現量の変動に対しての解釈が試みられる。
【０００９】
また、発現頻度の変化量の違いから個々の遺伝子に着目して抽出しようとするＤＥＧ抽出に対して、生命現象を制御している、複数の生体分子の相互作用としての生物学的過程・径路を、一つのまとまり（パスウェイ：Pathway）として捉え、条件刺激に対するＤＥＧが有意に多く含まれるパスウェイを統計的に抽出しようとする手法は、パスウェイ解析と呼ばれる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Bentley DR, Balasubramanian S, Swerdlow HP, Smith GP, Milton J, et al. (2008) Accurate whole human genome sequencing using reversible terminator chemistry. Nature 456: 53-59.
【非特許文献２】Mortazavi A, Williams BA, McCue K, Schaeffer L, Wold B (2008) Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq. Nature methods 5: 621-628.
【非特許文献３】Robinson MD, Oshlack A (2010) A scaling normalization method for differential expression analysis of RNA-seq data. Genome biology 11: R25.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本来、生命科学の研究者が観測したいのは生物個体の生命現象であるため、ＤＥＧ抽出にしてもパスウェイ解析にしても、本来であればin vivoでの各細胞のトランスクリプトームを観測できることが好ましい。しかしながら、細胞培養の簡便さ、培養条件の均一化の容易さ等の視点から、通常はin vitroの細胞を対象としてトランスクリプトームの解析がなされることが一般的に行われている。
【００１２】
ところが、in vitroの場合、人工的に培養環境を整えることができるため、各種条件刺激に対する細胞の反応を見ようとした場合、例えば薬剤投与等に対する反応を解明しようとする際に、何の判断材料もないときにはその薬剤の投与濃度の幅について無限の選択肢が存在することになり、どの投与濃度の実験区を観測対象とするのかの基準については、各研究者の主観に委ねられているのが現状である。
【００１３】
例えば、その薬剤濃度が、in vivoであれば当該細胞が正常に機能しない（細胞としては生きているが、生命体としては死を意味する）ような高濃度であってもin vitroであれば観測可能であるが、生命現象を観測したい研究者にとっては、そのような実験区のデータはあまり好ましくない。
【００１４】
そのため、研究者はある実験区におかれた細胞について、例えば、細胞の形がきれいか、変色していないか等の各自の主観的な判断で、その実験区の環境が適切であるかどうか実験区の選択の妥当性を判断してきた。
【００１５】
しかしながら、見た目等の主観的な基準のみでは、実験区選択の妥当性は経験・スキルに依存することになり、特に経験の乏しい研究者の場合、折角得られたＤＥＧが観測したい生命現象と関連性が低いために無駄なデータとなってしまうこともしばしば発生し、試実験区の選択について試行錯誤を繰り返さなければならないことも多い。
【００１６】
本発明は上記課題を解決するためなされたものであり、任意の実験区から得られたトランスクリプトームデータについて、個人の経験やスキルに依存せずに、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析にかけるべき対象かどうかを客観的な基準で判断するための方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
上記目的を達成するため、本発明に係る、発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区の選定方法は、
（１）各実験区に対応するトランスクリプトームデータから各遺伝子の発現量Ｐｉｋを算出する工程と、
（２）下記式（Ｉ）ないし（II）に基づいて各実験区に対応するＳｋないしＨｋの値を算出する工程と、
（Ｉ）：Ｓｋ  ＝  Σ（Ｐｉｋ−ａ）  但し、Ｐｉｋ＜ａの場合を除く
ここで、ａは、０．００００１＜ａ＜０．１を満たす定数
（II）：Ｈｋ  ＝  −Σ（Ｐｉｋ・ｌｏｇＰｉｋ）  但し、Ｐｉｋ＝０の場合を除く
（３）前記ＨｋないしＳｋの値に従って、後続の発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区を選定する工程と、
を備えることを特徴とする。
【００１８】
本発明にかかる実験区の選定方法によれば、細胞から客観的に得られるトランスクリプトームデータから一義的に算出されるＳｋないしＨｋの値を基準に用いることが可能となり、従来、測定者の主観に委ねられていた、発現変動遺伝子（ＤＥＧ）抽出やパスウェイ解析にかける対象としての実験区を選定するための判断基準について、客観的な尺度がもたらされる。その結果、測定者の熟練度に依存せずに実験区の選定を行うことが可能となる。
【００１９】
本発明に係る実験区の選定方法においては、各実験区の同一データセット数ｎが３以上の場合は、等分散性を確認した上でＳｋないしＨｋの値でｔ検定を行い、p値が０．０５以上となる実験区の組み合わせを、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析の対象として選定することが好ましい。なお、等分散性は、Bartlett検定、Hartley検定、Levene検定といった既知の検定方法を用いて確認することが可能である。
【００２０】
また、各実験区の同一データセット数ｎが２以下の場合は、ｔ検定を行うことができないが、同一データセット数ｎが１の実験区との比較の場合は、前記ＳｋないしＨｋの値（平均値）を直接比較すれば良く、各実験区に対応するＳｋの値（平均値）の差が０．１以下となる組み合わせないしはＨｋの値の差が、０．５以下となる実験区の組合せを、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析の対象として選定すれば良い。
【発明の効果】
【００２１】
本発明によれば、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析にかけるべき対象の実験区であるかどうかを、経験やスキルに依存しない客観的な基準で判断できるようになるため、実験区を選定するための過程の効率化が可能となる。
【００２２】
また、本発明においては、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析にかける対象として選定された実験区の組合せに、参照群に相当する実験区が含まれていれば、薬剤投与等の各種条件刺激に対する細胞の反応として観測される生命現象とより関連性の高い遺伝子やパスウェイが抽出される可能性を高くすることが期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００２３】
【図１】実施例１にかかる各実験例の実験条件妥当性指標１を表す棒グラフである。
【図２】実施例１にかかる各実験例の実験条件妥当性指標２を表す棒グラフである。
【図３】実施例２にかかる各実験例の実験条件妥当性指標１を表す棒グラフである。
【図４】実施例２にかかる各実験例の実験条件妥当性指標２を表す棒グラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
以下、本発明を実施するための形態を実施例を通じて詳細に説明する。但し、以下に示す実施例は、本発明の技術思想を具体化するための一例を示すものであって、本発明をこの実施例に限定することを意図するものではなく、本発明は特許請求の範囲に示した技術思想を逸脱することなく種々の変更を行ったものにも均しく適用し得るものである。
【００２５】
なお、下記実施例１及び実施例２においては、以下に示す共通のカイコガ培養細胞及び次世代シークエンサを用いて、トランスクリプトームデータを取得した。
＜カイコガ培養細胞＞
各実験例に用いるカイコガ培養細胞としては、カイコガ終齢幼虫から摘出した脂肪体細胞を用いた。
＜シークエンサ＞
トランスクリプトームデータは、Ｉｌｌｕｍｉｎａ社製  ＧｅｎｏｍｅＡｎａｌｙｚｅｒIIｘを用いて取得した。
【実施例１】
【００２６】
シス−ペルメトリン（cis-Permethrin：以下、「ｃＰＥＲ」）は、昆虫の神経を標的とした化学物質（神経毒）であり、いわゆるピレスロイド系殺虫剤の主成分として広く使われている、合成ピレスロイドの一つである。
昆虫が農薬に対する耐性を獲得するメカニズムの一つとして、解毒酵素群による農薬の分解・無毒化が考えられている。生物で広く発見されている解毒酵素としては、シトクロームＰ４５０（Cytochrome P450：以下「ＣＹＰ」）ファミリーが知られているが、カイコのゲノム上にも８６種のＣＹＰ遺伝子が発見されている。
そこで、本実施例としては、ｃＰＥＲ刺激に対するカイコガの培養細胞の反応を、トランスクリプトームデータを取得することで観測・考察した。
【００２７】
［実験例１−１：高濃度ｃＰＥＲ］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ｃＰＥＲを２.５ｍモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。
［実験例１−２：低濃度ｃＰＥＲ］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ｃＰＥＲを２５０μモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。
［実験例１−３：コントロール］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ｃＰＥＲを含まないＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。
【００２８】
［発現変動遺伝子（ＤＥＧ）抽出］
高濃度ｃＰＥＲ（実験例１−１）及び低濃度ｃＰＥＲ（実験例１−２）の各条件で、コントロール区である実験例１−３に対して遺伝子発現量がどのように変化したのかを観測するため、上記のようにして得られた、各実験例のトランスクリプトームデータを基に、各遺伝子の発現量を求め、統計解析を行って発現頻度変化の大きかった上位１０遺伝子を抽出（ＤＥＧ抽出）した。
【００２９】
その結果、実験例１−１においては、ＣＹＰファミリーの遺伝子はＤＥＧとして抽出されなかったのに対して、実験例１−２においては、ＣＹＰファミリーのひとつであるＣＹＰ６ＡＶ１の発現量が増加し、ＤＥＧとして抽出された。なお、その発現変動量としては全遺伝子中４番目であった。
【００３０】
すなわち、２５０μモル／Ｌといった低濃度のｃＰＥＲ刺激に晒されたカイコガの脂肪体細胞は、ＣＹＰ６ＡＶ１遺伝子の発現量を増加させて、ｃＰＥＲを分解・解毒する反応を示したのに対して、２.５ｍモル／Ｌといった高濃度のｃＰＥＲ刺激に晒されたカイコガの脂肪体細胞は、何らのＣＹＰファミリーの遺伝子発現が誘導されなかった。
【００３１】
これは、実験例１−２では、カイコガの脂肪体細胞はＣＹＰ６ＡＶ１を介してｃＰＥＲを分解・解毒する機構を備えていることが観測されたのに対して、実験例１−１では、カイコガの脂肪体細胞が、ＣＹＰファミリーを介した何らかのｃＰＥＲに対する分解・解毒能を備えていることは、何も観測できていないことになる。
【００３２】
このことは、実験例１−１の条件、すなわち、２.５ｍモル／Ｌといった高濃度の条件は、ｃＰＥＲ等の合成ピレスロイドに対する昆虫の防御機構を解明することを目的とした場合には不適切であったことを示す。
【００３３】
また、実験例１−１の条件であってもＤＥＧ抽出そのものは可能であるが、実験例１−１の条件では本来観測したい事象、すなわち、合成ピレスロイドに対する昆虫細胞の防御反応が生じていないか、生じていたとしてもより大きな変化が細胞に生じていることが示唆されることから、実験例１−１の条件で得られたトランスクリプトームデータによって抽出されたＤＥＧは、合成ピレスロイドに対する昆虫の防御機構との関連性が高い遺伝子である可能性は低く、このＤＥＧに着目して研究を進めるのは、合成ピレスロイドに対する昆虫の防御機構の解明を目的とした研究を進める上では、効率が悪いことが示唆される。
【００３４】
［実験条件妥当性指標１の算出］
各実験区ごとに、トランスクリプトームの生データから得られる各遺伝子の発現頻度Ｐｉに対して、下記の式にして求められる値Ｈを、実験条件妥当性指標１として算出した。なお、Ｐｉは、Ｐｉ＝（当該遺伝子ｉの発現量）／（全遺伝子の発現量）で表される確率を意味する。
Ｈ  ＝  −Σ（Ｐｉ×ｌｏｇＰｉ）  （但し、Ｐｉ＝０の遺伝子については除外した）
【００３５】
上記、Ｈの算出にあたっては、１列目に遺伝子名が、２列目に発現量が収まった行列トランスクリプトームデータについてＲ言語環境を備えたコンピュータ上で自動計算することによって求めた。自動計算に用いたプログラムは以下のとおりである。
Hx(※）<-function(x){
x2<-x/sum(x)
x3<-x2*log2(x2)
x4<-x3[!is.na(x3)]
-sum(x4)
}
※："Hx"は、英数字からなる任意の文字列であれば良い
上記のようにして得られた、各実験例のＨの値を表１に示し、基づく棒グラフを、図１に示す。
【００３６】
【表１】
0006342533.tif 000002
【００３７】
［実験条件妥当性指標２の算出］
各実験区ごとに、トランスクリプトームの生データから得られる各遺伝子の発現頻度Ｐｉに対して、下記の式にして求められる値Ｓを、実験条件妥当性指標２として算出した。なお、ａの値は、０．００００１、０．０００１、０．００１、０．００５、０．０１、０．０５、０．１の、７通りに変化させた。
Ｓ  ＝  −Σ（Ｐｉ−ａ）  （但し、Ｐｉ＜ａとなる遺伝子については除外した）
上記S値の算出にあたっては、１列目に遺伝子名が、２列目に発現量が収まった行列トランスクリプトームデータについてＲ言語環境を備えたコンピュータ上で自動計算することによって求めた。自動計算に用いたプログラムは以下のとおりである。
a<-n #(nは任意の実数)
Sx(※)<-function(x){
x2<-x/sum(x)
x3<-x2-a
x3<-ifelse(x3<0,0,x3)
sum(x3)
}
※："Sx"は英数字からなる任意の文字列であれば良い
上記のようにして得られた、各実験例のＳの値を表２に示し、グラフを図２に示した。
【００３８】
【表２】
0006342533.tif 000003
【００３９】
実験条件妥当性指標１は、トランスクリプトームのいわゆる情報エントロピー（シャノンエントロピー）である。この実験条件妥当性指標１について、コントロール実験区である実験例１−３と比較すると、実験条件として好ましくないことが示唆される実験例１−１では大きく低下しているのに対して、実験条件として好ましい実験例１−２では低下していないことがわかる。
【００４０】
また、実験条件妥当性指標２についても同様に、コントロール実験区である実験例１−３と比較すると、実験条件として好ましくないことが示唆される実験例１−１では大きく低下しているのに対して、実験条件として好ましい実験例１−２では低下していないことがわかる。
【実施例２】
【００４１】
フェノバルビタール（Phenobarbital：以下、「ＰＢ」）は、抗てんかん薬の主成分として用いられる、バルビツール系中枢神経抑制作用剤である。ＰＢは薬剤代謝を誘導する化学物質として知られており、ＣＹＰ遺伝子の誘導を目的として一般的に用いられている。
そこで、本実施例としては、ＰＢ添加刺激に対するカイコガの培養細胞の反応を、トランスクリプトームデータを取得することで観測・考察した。
【００４２】
［実験例２−１：ＰＢ  ２５０μＭ］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ＰＢを２５０μモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。データセット数ｎは３とした。
【００４３】
［実験例２−２：ＰＢ  １ｍＭ］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ＰＢを１ｍモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。データセット数ｎは４とした。
【００４４】
［実験例２−３：ＰＢ  ２．５ｍＭ］
ＭＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ＰＢを２．５ｍモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。データセット数ｎは４とした。
【００４５】
［実験例２−４：ＰＢ  １２．５ｍＭ］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）に、ＰＢを１２．５ｍモル／Ｌとなるように添加した培地を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。データセット数ｎは４とした。
【００４６】
［実験例２−５：コントロール］
ＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を８０時間培養した後、ＰＢを含まないＭＧＭ−４５０昆虫培地（１０体積％ＦＢＳを含む）を用いて、カイコガ培養細胞を１０時間培養した後、トランスクリプトームデータを取得した。データセット数ｎは３とした。
【００４７】
［発現変動遺伝子（ＤＥＧ）抽出］
ＰＢ  ２５０μＭ（実験例２−１）、ＰＢ  １ｍＭ（実験例２−２）、ＰＢ  ２．５ｍＭ（実験例２−３）及びＰＢ  １２．５ｍＭ（実験例２−４）の各条件で、コントロール区である実験例２−５に対して遺伝子発現量がどのように変化したのかを観測するため、上記のようにして得られた各実験例のトランスクリプトームデータを基に、各遺伝子の発現量を求め、統計解析を行って発現頻度変化の大きかった上位１０遺伝子を抽出（ＤＥＧ抽出）した。
【００４８】
その結果、ＤＥＧとして抽出された上位１０遺伝子の中に、ＣＹＰファミリー遺伝子が含まれていたのは、実験例２−１のみであった。実験例２−１でＤＥＧとして抽出されたＣＹＰファミリー遺伝子は、ＣＹＰ４Ｇ２３ｂ（全遺伝子中２番目の変動量）、ＣＹＰ４Ｇ２３ａ（同、７番目の変動量）であった。
【００４９】
すなわち、ＣＹＰファミリーの誘導という、ＰＢ刺激による反応として期待される反応を生じている実験区はＰＢの投与濃度が２５０μモル／Ｌの実験例２−１のみであり、１ｍモル／Ｌ以上の濃度のＰＢが投与されている実験区（実験区２−２〜２−４）では、ＰＢ刺激によって本来観測されるべきであると考えられるＣＹＰファミリーの誘導が生じていないか、生じていたとしても、より大きな変化が培養細胞に生じており、培養細胞において観測したい事象が観測できない状態になっていることが示唆された。
【００５０】
これは、実験例２−１によって示唆される、カイコガの脂肪体細胞の、ＣＹＰ４Ｇ２３ｂ及びＣＹＰ４Ｇ２３ａを介したＰＢの代謝機構の存在について、実験例２−２〜２−４では、何も観測できていないことを意味する。
【００５１】
このことから、ＰＢ刺激に対して生じるカイコガ脂肪体細胞の事象を適切に観測するための実験区としては実験例２−２〜２−４の投与濃度の設定は、不適切であることが示唆される。
【００５２】
そのため、実験例２−２〜２−４の条件であってもＤＥＧ抽出そのものは可能であるが、実験例２−２〜２−４の条件では本来観測したい事象、すなわち、ＰＢを代謝する反応が生じていないか、生じていたとしてもより大きな変化が細胞に生じていることが示唆され、実験例２−２〜２−４の条件で得られたトランスクリプトームデータによって抽出されたＤＥＧは、ＰＢの代謝機構との関連性が高い遺伝子である可能性は低く、このＤＥＧに着目するのは、ＰＢの代謝機構との関連性が高い遺伝子であることを期待して研究を進める上では、効率が悪いことが示唆される。
【００５３】
［実験条件妥当性指標１及び２の算出］
実施例１と同様にして、トランスクリプトームの生データから得られる各遺伝子の発現頻度Ｐｉに対して、下記式で求められる値Ｈ、Ｓを、実験条件妥当性指標１、２として算出した。
Ｈ  ＝  −Σ（Ｐｉ×ｌｏｇＰｉ）  （但し、Ｐｉ＝０の遺伝子については除外した）
Ｓ  ＝  −Σ（Ｐｉ−ａ）  （但し、Ｐｉ＜ａとなる遺伝子については除外した）
【００５４】
上記のようにして得られた、各実験例のＨの値を表３に示すと共にグラフを図３に示し、各実験例のＳの値を表４及び表５に示すと共にグラフを図４に示した。
【００５５】
【表３】
0006342533.tif 000004
【００５６】
【表４】
0006342533.tif 000005
【００５７】
【表５】
0006342533.tif 000006
【００５８】
トランスクリプトームの情報エントロピー（シャノンエントロピー）である実験条件妥当性指標１について、コントロール実験区である実験例２−５と比較すると、実験条件として好ましくないことが示唆される実験例２−２〜２−４では大きく低下しているのに対して、実験条件として好ましい実験例２−１では低下していない。
【００５９】
また、実験条件妥当性指標２についても同様に、コントロール実験区である実験例２−５と比較すると、実験条件として好ましくないことが示唆される実験例実験例２−２〜２−４では大きく低下しているのに対して、実験条件として好ましい実験例２−１では低下していない。
【００６０】
［実験条件妥当性指標１のｔ検定］
実験条件妥当性指標１（Ｈ値）について、有意な差が生じているかどうかを以下のとおりｔ検定を行い確認した。
正規性については、実験例２−１〜２−５のＨ値についてコルモゴロフ-スミノフ検定を行い、全ての実験区について正規性が確認された。
等分散性については、コントロール実験区である実験例２−５に対して、実験例２−１〜２−４のそれぞれについてＦ検定を行い、全ての比較について比較Ｈ値間の等分散性が確認された。
実験例２−５に対して、実験例２−１〜２−４のそれぞれについて、比較Ｈ値間の平均値の差についてｔ検定を行った。結果を以下に示す。
【００６１】
・実施例２−１と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がなかった。（ｐ＝０．９１８３）
・実施例２−２と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００１１０９）
・実施例２−３と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００１４８６）
・実施例２−４と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝５．１７７ｅ−０５）
【００６２】
［実験条件妥当性指標２のｔ検定］
実験条件妥当性指標２（Ｓ値）について、有意な差が生じているかどうかを、以下のとおりｔ検定を行い確認した。なお、ａ値は０．０１、０．０００１の場合で確認した。、
実験例２−１〜２−５のＳ値についてコルモゴロフ-スミノフ検定を行い、全ての実験区について正規性が確認された。
次いで、コントロール実験区である実験例２−５に対して、実験例２−１〜２−４のそれぞれについてＦ検定を行い、全ての比較について比較Ｓ値間の等分散性が確認された。
実験例２−５に対して、実験例２−１〜２−４のそれぞれについて、比較Ｓ値間の平均値の差についてｔ検定を行った。結果を以下に示す。
【００６３】
＜ａ＝０．０１＞
・実施例２−１と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がなかった。（ｐ＝０．９０９６）
・実施例２−２と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝４．７３１ｅ−０５）
・実施例２−３と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００１１６３）
・実施例２−４と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝２．９４３ｅ−０５）
【００６４】
＜ａ＝０．０００１＞
・実施例２−１と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がなかった。（ｐ＝０．９８５）
・実施例２−２と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００２２９１）
・実施例２−３と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００１５６２）
・実施例２−４と実施例２−５の比較では平均値に有意な差がないとは言えなかった。（ｐ＝０．０００１０８２）
【００６５】
なお、実験例１−１と実験例１−２及び１−３との比較、実験例２−１及び２〜５と、実験例２−２〜２〜４との比較から、トランスクリプトームとして観測できる細胞の状態には、いわば２つの相が存在することが予測される。
【００６６】
すなわち、実験例１−１ないし実験例２−２〜２−４はコントロールである、実験例１−３ないし実験例２−５に対して、過大な薬物刺激を受けたことによって、いわば相転移が生じている状態であり、そのため、正常な細胞であれば生じうるはずのＣＹＰファミリーの誘導が観測できなかったものと考えられる。
【００６７】
一方、実験例１−２及び実験例２−１においては相転移が生じていないため、ＣＹＰの誘導という好ましい反応が観測できたものと考えられる。
従って、特定の条件刺激に対する生命現象を観察するためにＤＥＧ抽出やパスウェイ解析を行う際には、実験条件妥当性指標１（Ｈ値）ないし２（Ｓ値）を用いて、コントロール群に対して相転移が生じていないことが確認された実験区について絞り込んで、ＤＥＧ抽出やパスウェイ解析を行うことで、条件刺激とより関連性の高い遺伝子やパスウェイの抽出に結びつく可能性が高くなるものと示唆される。
【００６８】
また、図２及び４からわかるように、ａの値が大き過ぎる（０．１以上）または小さ過ぎる（０．０００１以下）場合は、Ｓ値の違いを判別しにくくなるため、トランスクリプトームのＳ値を用いて後続の発現変動遺伝子抽出又はパスウェイ解析にかける実験区を選定する場合は、ａの値を、０．００００１＜ａ＜０．１としておくことが好ましい。
【００６９】
また、データセット数ｎが２以下の実験区に対しては、ｔ検定を行うことはできないが、Ｓ値（平均値）の直接比較を行えば良い。なお、ａの値を０．００１≦ａ≦０．０１としてＳ値を算出した場合は、Ｓ値が０．１以下となる組合せをＤＥＧ抽出やパスウェイ解析の対象として選定すれば良い。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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